Title: wetten.nl - Regeling - Warenwetregeling Methode van onderzoek voedingsvezelgehalte - BWBR0006156

Source: https://wetten.overheid.nl/BWBR0006156/

Content:
{"title": "wetten.nl - Regeling - Warenwetregeling Methode van onderzoek voedingsvezelgehalte - BWBR0006156", "content": "Warenwetregeling Methode van onderzoek voedingsvezelgehalte\n\nDe Staatssecretaris van Welzijn, Volksgezondheid en Cultuur,\n\nGelet op artikel 12, derde lid, van het Warenwetbesluit Voedingswaarde-informatie levensmiddelen;\n\nGezien het advies van de Adviescommissie Warenwet (advies van 16 juni 1992, nr. 14511/(3)5);\n\nBesluit:\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\nHet gehalte aan voedingsvezel van de in het Warenwetbesluit Voedingswaarde-informatie levensmiddelen bedoelde eet- of drinkwaren, wordt bepaald volgens de methode van onderzoek die is\n                                    opgenomen in de bij deze regeling behorende bijlage.\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\nDeze regeling treedt in werking met ingang van 1 oktober 1993.\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\nDeze regeling wordt aangehaald als:\n\nWarenwetregeling Methode van onderzoek voedingsvezelgehalte.\n\nDeze regeling zal in de Staatscourant worden geplaatst.\n\nStaatssecretaris\n\nHans J. Simons\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\nEnzymatische-gravimetrische methode vlgs. Asp e.a.\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\nDit voorschrift beschrijft een methode voor het bepalen van het gehalte aan oplosbare\n                                    en onoplosbare voedingsvezel in levensmiddelen.\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\nHet gehalte aan oplosbare en onoplosbare voedingsvezel: het gehalte bepaald volgens\n                                    de hierna beschreven methode, uitgedrukt in g per 100 g.\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\nHet in tweevoud ingewogen droge en vetvrije monster wordt met behulp van het enzyme\n                                    Termamyl (thermisch-stabiele alpha-amylase) verstijfseld en vervolgens enzymatisch\n                                    ontsloten met de enzymen protease en amyloglucosidase waarbij eiwit en zetmeel tot\n                                    oplosbare verbindingen worden afgebroken.\n\nDe oplosbare voedingsvezel wordt neergeslagen met ethanol. Het onopgeloste deel en\n                                    het neerslag worden samen afgefiltreerd, uitgewassen, gedroogd en gewogen.\n\nEen van de residuen wordt onderzocht op het gehalte aan eiwit, het andere wordt verast.\n\nDe massa van het gedroogde residu, verminderd met de massa van het eiwit en de massa\n                                    van de as, is de hoeveelheid voedingsvezel.\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\nAlle reagentia dienen analystisch zuiver te zijn.\n\nOnder water wordt verstaan gedistilleerd water of gedemineraliseerd water van gelijkwaardige\n                                    kwaliteit.\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\n4.1.1. Ethanol 95% v/v, C2H5OH\n\n4.1.2. Aceton, C2H6O\n\n4.1.3. Dinatriumwaterstoffosfaat watervrij, Na2HPO4\n\n4.1.4. Natriumdiwaterstoffosfaat monohydraat, NaH2PO4.H2O\n\n4.1.5. Termamyloplossing 120L (120KNU/g)\n\n4.1.6. Protease uit Bacillus Subtilis gelyofiliseerd\n\n4.1.7. Amyloglucisidase-oplossing (14 Units/ml) uit Aspergillus Oryzea\n\n4.1.8. Natriumhydroxyde NaOH\n\n4.1.9. Fosforzuur 85% m/m, H3PO4\n\n4.1.10. Celite 545\n\n4.1.11. Petroleumether, kooktraject 40\u201360\u00b0C\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\n4.2.1. Ethanoloplossing 71% v/v\n\nBreng in een 1000 ml maatkolf 250 ml water. Vul aan met ethanol (4.1.1.) tot aan de\n                                       ijkstreep en meng. Koel tot kamertemperatuur en vul wederom aan tot de ijkstreep met\n                                       ethanol (4.1.1.) en meng.\n\n4.2.2. Bufferoplossing\n\nLos 1,5 g dinatriumwaterstoffosfaat (4.1.3.) en 10 g natriumdiwaterstoffosfaat (4.1.4.)\n                                       op in een maatkolf van 1 l. in 700 ml water. Vul aan met water tot aan de ijkstreep\n                                       en meng. Stel indien nodig de pH in op 6.0 door druppelsgewijze toevoeging van hetzij\n                                       verdunde dinatriumwaterstoffosfaatoplossing hetzij verdunde natriumdiwaterstoffosfaatoplossing.\n\n4.2.3. Natriumhydroxyde oplossing 0,285 mol/l\n\nLos 11,4 Natriumhydroxyde (4.1.8.) in een maatkolf van 1 L op in een 700 ml water.\n                                       Koel af tot kamertemperatuur, vul aan met water tot aan de ijkstreep en meng.\n\n4.2.4. Fosforzuuroplossing 0,329 mol/l\n\nLos 37,9 fosforzuur 85% m/m (4.1.9.) in een maatkolf van 1 L op in 700 ml water. Vul aan met water tot aan de\n                                       ijkstreep en meng.\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\nHet normale laboratorium glaswerk en de volgende benodigdheden\n\n5.1. Vacuumdroogstoof voorzien van een automatische temperatuurregeling ingesteld\n                                    op 70\u00b0C\u00b11\u00b0C.\n\n5.2. Laboratoriummolen geschikt om te malen tot een deeltjesgrootte van 0,3 tot 0,5\n                                    mm.\n\n5.3. Bij de laboratoriummolen (5.2.) behorende zeven.\n\n5.4. Droogstoof voorzien van een automatische temperatuurregeling, ingesteld op 103\u00b0C\u00b12\u00b0C.\n\n5.5. Moffeloven, voorzien van een Pyrometer en automatische temperatuurregeling, ingesteld\n                                    op 525\u00b0C\u00b125\u00b0C.\n\n5.6. Exsiccator, voorzien van vers geaktiveerde Silacagel met vochtindicator of een\n                                    gelijkwaardig droogmiddel.\n\n5.7. Waterbad, kokend.\n\n5.8. Schudwaterbad elektrisch verwarmd, voorzien van een automatische temperatuurregeling,\n                                    ingesteld op 60\u00b0C\u00b11\u00b0C.\n\n5.9. pH meter.\n\n5.10. Filterkroezen, bijvoorbeeld van Pyrex, pori\u00ebngrootte 200\u201360 u.\n\n5.11. Magneetroerder.\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\n6.1.1. Indien het vetgehalte van het monster meer dan 5% m/m bedraagt dient het monster ontvet te worden.\n\nIndien het vetgehalte onbekend is verdient het aanbeveling steeds een vetextractie\n                                       toe te passen. Weeg tot op 0,01 g nauwkeurig 10 g van het monster af in een bekerglas\n                                       van 250 ml. Voeg toe 25 ml petroleumether. Roer gedurende 15 minuten, met behulp van\n                                       een magneetroerder (5.11.). Laat gedurende enkele minuten bezinken en schenk de petroleumetherlaag\n                                       voorzichtig af.\n\nHerhaal deze procedure twee maal. Plaats het bekerglas gedurende een nacht in de vacuumdroogstoof\n                                       (5.1.) bij 70\u00b0C\u00b11\u00b0C. Bepaal het massaverlies.\n\n6.1.2. Maal zonodig het ontvette monster met behulp van de laboratoriummolen (5.2.)\n                                       tot een poeder met een deeltjesgrootte van 0,3\u20130,5 mm.\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\n6.2.1. Weeg in tweevoud tot op 0,1 mg nauwkeurig ongeveer 1 g van het analysemonster(6.1.2.)\n                                       in een bekerglas van 400 ml(hoog model). Voeg aan ieder bekerglas toe 50 ml fosfaatbufferoplossing\n                                       (4.2.2.). Voeg toe 100 microliter Termanyloplossing (4.1.5.).\n\nDek de bekerglazen af met aluminiumfolie en plaats gedurende 15 minuten in het kokende\n                                       waterbad (5.7.). Zwenk iedere 5 minuten om. De temperatuur van de inhoud van de bekerglazen\n                                       dient ongeveer 100\u00b0C te bereiken. Verleng zonodig de incubatietijd (30 minuten is\n                                       meestal voldoende).\n\nKoel af tot kamertemperatuur en stel de Ph in op 7,5\u00b10,1 door toevoeging van ongeveer\n                                       10 ml natriumhydroxyde oplossing 0,285 mol/l (4.2.3.).\n\n6.2.2. Voeg toe 5 mg protease (4.1.6.). Maak daartoe een oplossing met een bekend\n                                       gehalte en pipetteer de benodigde hoeveelheid.\n\nDek de bekerglazen af met aluminiumfolie en plaats ze gedurende 30 minuten in het\n                                       schudwaterbad (5.8.) bij 60\u00b0C\u00b11\u00b0C.\n\nKoel af tot kamertemperatuur en stel de pH in op 4,5\u00b10,2 met ongeveer 10 ml fosforzuur\n                                       0,329 mol/l (4.2.4.).\n\n6.2.3. Voeg toe 0,3 ml amyloglucosidaseoplossing (4.1.7.).\n\nDek de bekerglazen af met aluminiumfolie en plaats ze gedurende 30 minuten in het\n                                       schudwaterbad (5.8.) 60\u00b0C\u00b11\u00b0C.\n\n6.2.4. Neem de bekers uit het waterbad en voeg toe 280 ml ethanol 95% v/v(4.1.1.),\n                                       voorverwarmd op 60\u00b0C\u00b11\u00b0C. Laat gedurende 60 minuten bij kamertemperatuur staan voor\n                                       de vorming van het neerslag.\n\n6.2.5. Breng in de Pyrexfilterkroezen (5.10.) 0,5 celite 545(4.1.10.). Droog de filterkroes\n                                       met celite in de droogstof (5.4.) tot constant gewicht. Koel af in de exsiccator (5.6.)\n                                       en weeg tot op 0,1 mg nauwkeurig.\n\n6.2.6. Spreid vervolgens de celite gelijkmatig over de bodem van de filterkroes met\n                                       behulp van een spuitfles gevuld met ethanol 71% v/v (4.1.11.). Zuig voorzichtig af. De gelijkmatige celitelaag vormt een afscheiding\n                                       tussen de af te filtreren vezel en de gesinterde bodem van de filterkroes. Hierdoor\n                                       kan de inhoud van de kroes gemakkelijk verwijderd worden.\n\n6.2.7. Filtreer, zo nodig onder afzuiging, het reactiemengsel (6.2.4.) door de filterkroes(6.2.6.).\n                                       Was het residu drie maal met telkens 20 ml ethanol 71% v/v (4.2.1.), vervolgens twee maal met telkens 10 ml ethanol 95% v/v (4.1.1.) en twee\n                                       maal met telkens 10 ml aceton (4.1.2.).\n\n6.2.8. Droog de filterkroes met inhoud gedurende een nacht bij 70\u00b0C\u00b11\u00b0C in de vacuumdroogstof\n                                       (5.1.) of bij 103\u00b0C\u00b12\u00b0C in de droogstof (5.4.). Koel af tot kamertemperatuur in de\n                                       exsiccator (5.6.) en weeg tot op 0,1 mg nauwkeurig.\n\n6.2.9. Bepaal in \u00e9\u00e9n van de filterresiduen het gehalte aan eiwit volgens de Kjeldahl\n                                       methode.\n\nSchraap hiertoe de celite en vezel uit een van de filterkroezen op een stikstofvrij\n                                       filtreerpapier, vouw dit dicht en breng het zo in de Kjeldahldestructiekolf. Gebruik,\n                                       indien de aard van het eiwit bekend is, de bijbehorende factor. Is de aard van het\n                                       eiwit onbekend, gebruik dan de factor 6,25.\n\n6.2.10. Plaats de tweede kroes in de moffeloven (5.5.) en veras bij 525\u00b0C\u00b125\u00b0C gedurende\n                                       5 uren. Koel af in de exsiccator (5.6.) en weeg tot op 0,1 mg nauwkeurig.\n\n6.2.11. Voer een blanco bepaling in tweevoud uit teneinde de bijdrage van de gebruikte\n                                       chemicali\u00ebn aan het resultaat vast te stellen.\n\n[Regeling vervallen per 17-09-2005]\n\nGehalte aan oplosbare en onoplosbare voedingsvezel uitgedrukt in g/100g=Massafilter\n                                    residu (6.2.8.) in g-(Massa prote\u00efne in g + massa as in g + Massa blanco in g) 100/m\n\nWaarom m=de inweeg in g."}