Source: http://investigacion.us.es/scisi/sgi/servicios/microscopia/equipamiento
Timestamp: 2017-07-26 18:39:55+00:00

Document:
Microscopía: Equipamiento
MicroscopíaPresentaciónServiciosEquipamientoReserva de equiposDocumentosPersonal y Dirección
Acceso a todo el equipamiento del Servicio de Microscopía
- LEICA SP2
- NIKON LV100ND
- OLYMPUS BX61
- ZEISS APOTOME
- ZEISS DUO
- FEI TENEO
- HITACHI S5200
- JEOL 6460LV
- PHILIPS XL30 (II)
- ZEISS AURIGA
- ZEISS EVO
- ZEISS LIBRA 120
- PHILIPS CM200
- Pico Plus
- LAB MAT
Todos los equipos han sido adquiridos con fondos de los siguientes organismos:
LEICA TCS-SP2
Categoría: microscopio óptico motorizado
Técnicas: microscopía confocal, epifluorescencia, DIC, luz transmitida, célula viva.
Responsables: Asunción Fernández // Juan Luis Ribas
Localización: edificio CITIUS, planta baja, ala izquierda (descargar plano)
Manual de usuario del Leica TCS SP2 español (Vers.: 31102002)
Descargar Leica Lite (no funciona con windows 7). (Disponible en el escritorio del equipo)
Descargar Leica LAS AF. (Disponible en el escritorio del equipo)
Estativo DM IRE2 motorizado
Platina manual
Epifluorescencia convencional: lámpara de Mercurio HBO 50W.
Argón ion, líneas de excitación 458, 476, 488, 514 nm
Helio-Neon (verde), línea de excitación 543 nm
Helio-Neon (naranja), línea de excitación 633 nm
Filtro acústico-óptico sintonizable (AOTF)
Objetivos (descargar tabla ampliada de características):
N PLAN 2.5X/0.07
HC PL FLUOTAR 10x/0.30
HC PL FLUOTAR 20x/0.50
HCX PLAN 40x/0.85
HCX PL APO 40x/1.25-0.75 Oil
PL APO 63x/1.32-0.6 Oil
PL APO 100x/1.40-0.70 Oil
Software instalado en este equipo:
Colocalización (Multicolor Package)
Análisis de superficie y de rugosidad (Materials Package)
Fisiología (Physiology, in vivo cell imaging)
Sistema de incubación para la temperatura y CO2
NIKON LV100ND
Categoría: microscopio óptico.
Responsables: José María Sanabria // Francisco Varela // Consuelo Cerrillos
Localización: edificio CITIUS, planta baja, ala derecha (plano).
Cuerpo principal - sistema óptico: CFI60 infinity.
Cuerpo principal - iluminación: lámpara de halógeno de 12V-50W; transformador integrado de 12V-50W CC; interruptor de transferencia de iluminación diascópica/episcópica; lente de ojo de mosca; filtros integrados NCB11, ND8; tipo 12V-100W opcional (requiere fuente de energía externa)
Cuerpo principal - enfoque: perilla de enfoque aproximado/fino coaxial; recorrido de enfoque: 30 mm; aproximado: 14mm por rotación, fino: 0.1mm; lectura mínima: en incrementos de 1µm.
Ocular: 10 aumentos (C.D.V. 22mm), tipo CM con punto de visión y escala micrométrica
Tubo de lente ocular: cabezal trinocular P-TT para microscopía polarizante; cabezal binocular P-TB para microscopía polarizante
Tubo intermedio: lente Bertrand enfocable incorporada, extraíble del trayecto óptico; observaciones conoscópicas/ortoscópicas conmutables; analizador incorporado; ranura para placa/compensador.
Analizador: dial giratorio en 360°; ángulo mínimo de lectura de 0.1°
Puente nasal: quíntuple de centrado invertido (desmontable); ranura DIN
Platina: Platina graduada circular especializada de calidad superior. Giro horizontal en 360°; puede fijarse a una posición específica. Graduada en 360° (en incrementos de 1°); topes cada 45°. Platina mecánica incorporable: 35 x 25mm de desplazamiento; vernier 0.1mm
Condensador: Impulsor libre de tensión especializado; acromático P AN 0.9.
Polarizador: fijado a la parte inferior del portacondensador; escala
Objetivos: Plan acromático CFI de 2, 4, 10, 20, 50 aumentos, CFI LU plan de fluorita EPI P de 2 , 4 , 10, 20, 50 aumentos
Iluminador episcópico: el iluminador epi universal LV-UEPI incluye un transformador opcional de 12V-50W. 12V-100W .(requiere fuente de energía externa)
Compensadores: estándar 1/4 λ y placa de tinción, cuña de cuarzo o compensador Senarmont insertado en la ranura del cabezal intermedio.
Consumo de energía: 1.2A/75W
Categoría: microscopio óptico motorizado.
Técnicas: epifluorescencia, estereología, reconstrucción neuronal, Nomarski y luz transmitida.
Responsables: Asunción Fernández // Cristina Vaquero // Juan Luis Ribas
Localización: edificio CITIUS, planta baja, ala izquierda (plano).
CellSens (adquisición y procesamiento de imagenes)
NewCAST (software de estereología)
Instrucciones microscopio motorizado
Instrucciones Sistema de Fluorescencia
Estativo motorizado
Platina motorizada
Transmitida: lámpara halógena convencional
Epifluorescencia: Excite 120PC. Lámpara de vapor de Mercurio de 120W.
Filtros disponibles (descargar curvas de transmisión) (*colocados habitualmente)
DAPI (banda ancha)*
FITC BP (banda estrecha)*
TRITC BP (banda estrecha)*
CY3 (banda estrecha)*
CY5 (banda ancha)*
FITC (banda ancha)
TRITC (banda ancha)
WIY (banda ancha)
Objetivos (descargar tabla ampliada de características) (*colocados habitualmente)
PlanApo 1.25X/0.07 aire*
UPlanApo 4X/0.15 aire
UPlanApo 10X/0.40 aire*
UPlanApo 20X/0.70 aire*
UPlanApo 40X/0.85 aire*
UPlanSApo 60X/1.35 aceite*
PlanApo 100X/1.40 aceite*
Categoría: Perfilómetro óptico 3D de no contacto.
Microscopía Óptica convencional de campo claro y campo oscuro.
Microscopía Interferométrica de desplazamiento de fase (PSI) y de luz blanca (VSI).
Variación de foco.
Responsables: Consuelo Cerrillos // José María Sanabria
Folleto: Sensofar-S Neox
Localización: edificio CITIUS, planta baja, ala derecha.
Manual SensoScan 5.0 (adquisición de imágenes)
Manual Sensomap V7 (análisis de imágenes)
Platina motorizada xy. Área máxima de escaneo de 100x75 mm. Con plataforma Tip/Tilt manual para el nivelado en medidas interferométricas y con sistema para giro de muestra en horizontal.
Sistema de posicionamiento vertical formado por un escáner lineal y un escáner piezoeléctrico:
Rango de escaneo vertical máximo con posicionador lineal de 40mm con linealidad de 0.05% del rango de medida.
Sistema piezoeléctrico en lazo cerrado de 200 micras de carrera
con resolución
Iluminación: Fuente de luz multiespectral de 4 LEDs (Rojo 620nm, Verde 530nm, Azul 460nm y Blanco).
Especificaciones de los objetivos: Ver ANEXO I.
Cámara CCD blanco/negro de 1.3 Mpixels y resolución 1360x1024.
Software de análisis: Sensomap-v7 Premiun de Mountains (Digital Surf): Ver Hoja de especificaciones Sensomap-v7 Premiun.
Análisis de textura de superficies multidimensional en 2D y en 3D, para el estudio gráfico de parámetros de volúmenes, extracción de superficies y rugosidad.
Medida de alturas, distancias y pendientes de las características superficiales.
Filtrado de imágenes.
Cálculo de parámetros de forma, rugosidad, ondulación de la superficie y volumen de desgaste.
Módulo estadístico para el análisis de las medidas realizadas.
Módulo de mosaico que permite adquirir una serie de imágenes y generar automáticamente una imagen mosaico a través de porciones que solapan. Área máxima de observación: 13.58x74.79 mm.
Análisis de contorno de perfiles geométricos como tamaños, ángulos y radios.
Análisis de superficies que contienen granos, partículas, poros, células o islas.
Técnicas: epifluorescencia, DIC, luz transmitida, célula viva, sistema de iluminación estructurada (seccionamiento óptico).
Estativo: AxioObserver.Z1 totalmente motorizado.
Platina: motorizada en XY. Area máxima de escaneo 130X85cm.
Transmitida: lámpara halógena 12V 100W
Epifluorescencia: Excite 120HXP. Lámpara de vapor de Mercurio de 120W.
DAPI(Ex365; D395; EmBP455/50)
FITC (ExBP470/40;D495;EmBP525/50)
TRITC (ExBP550/25;D570;EmBP605/70)
YFP (Ex500/20;D515;Em535/30)
Cy5 (Ex640/30;D600;Em690/50)
EC Plan-Neofluar 10x/0.30
LD LCI "Plan-Apochromat" 25x/0.8 Imm Corr DIC*
Plan-Apochromat 40x/0.95 Corr
C-Apochromat 40x/1.2 W Corr M27*
Plan-Apochromat 63x/1.40 Oil DIC
LCI Plan-Neofluar 63x/1.3 Imm Corr DIC*
Plan-Apochromat 100X/1.40 Oil
(*: Compartido con confocal LSM7DUO)
Axiocam 506. Cámara monocroma, de alta sensibilidad para captura de imágenes fluorescentes. Sensor de 1936x1460px (3 Mpx). Tamaño pixel 4.54 micras. Digitalización 14 bits/pixel.
Axiocam IC c5. Cámara color, para luz transmitida y epi-fluorescencia convencional. Sensor 2452x2056 px (5 Mpx). Tamaño pixel 3.45 micras. Digitalización 12 bits/pixel.
Dispositivo de iluminación estructurada (ApoTome.2) : permite el seccionamiento óptico de la muestra. El espesor del seccionamiento es fijo y depende del objetivo.
ZEN (blue): control del microscopio y análisis de imagen
ZEN (Lite): soporte básico, gratuito y distribuible entre usuarios.
Autofoco: Definite Focus (LED 835nm)
Sistema de incubación para célula viva.
Incubador pequeño (Heating insert P y Lab-teK 2000)
Control de temperatura (TempModuleS)
Control de temperatura en pocillos (Control sensor T S1)*
Control de temperatura de todo el estativo (Heating unit XL)
Control de CO2 (Pecon CO2 Module S)
Control de O2 (Pecon O2 Module S)
(*: Disponible bajo petición en Zeiss LSM7DUO del SM)
ZEISS LSM 7 DUO
Categoría: microscopio confocal espectral de barrido láser
Manuales (en el escritorio del equipo):
Manual LSM 7 DUO (m60-1-0040_duo_e.pdf)
Manual Definite Focus
Manual MTS para ZEN
Manual X-Cite120PC
ZEN Lite 2012 (descarga desde la web de Zeiss)
710: Diodo 405nm @ 30mW
710: Ar multilíneas (458, 488, 514nm) @ 25mW
710: DPSS 561nm @ 20mW
710: HeNe 594nm @ 2mW
710: HeNe 633nm @ 5mW
LIVE: Diodo 405nm @ 50mW
LIVE: OPSS 488nm @ 100 mW
LIVE: DPSS 561nm @ 40mW
LIVE: Diodo 635nm @ 30mW
Sistema de detección: unidad espectral (LSM 710)
2 PMTs convencionales
1 PMT espectral (32 canales)
1 LSM BiG con 2 PMTs de alta sensibilidad (GaAsP)
LD LCI "Plan-Apochromat" 25x/0.8 Imm Corr DIC
C-Apochromat 40x/1.2 W Corr M27
LCI Plan-Neofluar 63x/1.3 Imm Corr DIC
Plan-Apochromat 100X/1.40 Oil*
(*: Disponible bajo petición en Zeiss Apotome)
Software ZEN2011 (control microscopio y análisis de imagen)
Topografía (análisis de superficie y rugosidad)
Fisiología (sondas ratiométricas, etc...)
FRET/FRAP
FCS (espectroscopía por correlación de fluorescencia)
MTS (configurador de experimentos complejos)
Incubador pequeño (Heating insert P)
Control de temperatura en pocillos (Control sensor T S1)
FEI TENEO
Categoría: microscopio electrónico de barrido de emisión de campo.
Responsable: Consuelo Cerrillos // José María Sanabria // Francisco Varela
Folleto: Catálogo Teneo
Manuales (en el escritorio del equipo): manual de instrucciones.
Columna: cañón de emisión de campo tipo Schottky
Voltaje de aceleración: 200 eV-30 KeV. (20 eV con BD)
1.0 nm a 30 kV
1.6 nm a 1 kV
1.4 nm a 1 kV (con BD)
0.8 nm a 30 kV (STEM)
Corriente: de 1 pA a 400 nA
SE convencional (Everthart-Thomley).
BSE segmentado en cuatro anillos. Permite la detección separada de electrones emitidos en diferentes ángulos. Los segmentos pueden ser adquiridos de forma simultánea o mezclada.
Dos detectores in lens (T1 y T2). Permiten obtener imágenes de alta resolución a cortas distancias de trabajo (1-2 mm). Proporcionan información composicional y topográfica según la elección del modo de trabajo.
STEM segmentado con ocho canales individuales. Permite obtener imágenes de transmisión en campo claro, campo oscuro y campo oscuro de alto ángulo (HAADF).
Espectrómetro de dispersión de energía de Rayos X, EDS (Energy Dispersive Spectrometer) para microanálisis.
Con detector SDD de alta resolución para elementos ligeros.
Tipos de análisis puntual, matricial, área seleccionada y mapping.
Software avanzado con corrección de deriva.
Cámara CCD de infrarrojos para visualizar el interior de la cámara de muestras.
Sistema de navegación. Cámara en color integrada que captura una imagen completa del portamuestras, permitiendo después desplazamientos fáciles y rápidos entre las distintas muestras.
El software permite mostrar y guardar hasta 4 señales de los detectores simultáneamente.
Cámara de muestras de gran capacidad y versatilidad. La platina soporta muestras de hasta 2 kg de peso, y permite movimientos de X=Y= 110 mm, Z= 65 mm y T= -15º - 90º.
Portamuestra. Soporte multiuso con posiciones marcadas que permite:
La carga simultánea de 18 muestras en posición horizontal y 3 inclinadas 45º.
Una pinza abrazadera para el montaje de secciones transversales.
Dos barras que permiten el montaje de hasta 6 rejillas de TEM en horizontal e inclinadas 52º
Plasma cleaner: Sistema de limpieza para la cámara y para la superficie de la muestra.
Software (MAPS) para la realización y montaje automatizado de imágenes, para así poder barrer grandes áreas de trabajo.
HITACHI S5200
Categoría: microscopio electrónico de barrido de alta resolución.
Responsable: Francisco Varela
Localización: edificio CITIUS, sótano, ala derecha.
S5200_theory_and_applications.zip
S5200 Imágenes obtenidas.pdf
Microscopio de alta resolución de última generación
Máxima resolución entre puntos: 5 Å
Tensión de trabajo: 0.1-30 kV
E. Secundarios
E. Retrodispersados
Adquisición digital de imágenes en formato TIF
3 Movimiento de la muestra motorizado
JEOL 6460LV
Categoría: microscopio electrónico de barrido convencional.
Modos: alto y bajo vacío.
Responsables: Cristina Vaquero // José María Sanabria
Localización: planta baja, ala derecha (plano)
Manuales: Manual del equipo: “Instructions Jeol”. (En español)
Manual instrucciones EDS INCA Calibraciones: Calibración Magnificación 2014
Calibración EDS 2014
Software libre: Programa INCAEnergy. Solicitar a técnico responsable.
Tipo de cañón: emisión termoiónica.
Filamento: Tungsteno.
E. Secundarios. Configuración Everhart-Thornley. Material destellante.
E. Retrodispersados. Configuración Everhart-Thornley. Material semiconductor (unión P-N)
Microanálisis (EDS). Si(Li). Oxford Instruments INCA x-sight. Modelo: 7573. Ventana: ATW2.
Adquisición de imágenes en formato TIF, JPG y BMP.
Movimiento de la muestra motorizado en 5 ejes.
Condiciones de trabajo. Modo
Alto Vacío Bajo Vacío Resolución
3 nm (a 30kV)
4 nm (a 30kV)
Voltaje Aceleración 0.3 - 30 kV (paso 100 V)
10X – 200.000X
10 a 270 Pa
BSE (Electrones Retrodispersados)
Imagen composicional (BEC)
Imagen topográfica (BEW)
Imagen estereoscópica (BES)
SEI (Electrones Secundarios)
X: 0 a 125 mm // Y: 0 a 100 mm // Z: 5 a 80 mm
T: -10º a 90º // R: 360º
Tamaño: 20mm x 20mm
Naturaleza: conductora
Naturaleza: Sin restricción
Masa < 1 Kg
Microanálisis Análisis puntual
Análisis área
Dedo Frío. Hasta -25ºC
Portamuestras hasta 2 muestras
Portamuestras hasta 7 muestras
Windows 2000 (INCA)
PHILIPS XL-30
Categoría: microscopio electrónico de barrido.
Modo de trabajo: alto vacío
Responsables: José María Sanabria // Consuelo Cerrillos.
Folleto: catálogo XL30
Tipo de cañon: emisión termoiónica.
Voltaje de aceleración: de 0,2 a 30 kV
Resolución: 3 nm a 30 kV
Corriente: de 4 pA a 20 nA
E. Retrodispersados. (Configurable po usuario)
Análisis de imagen y manipulación Scandium.
Adquisición de imágenes en formato TIFF. 12 M.
Movimiento de la muestra motorizado y control de posición.
Punto Eucéntrico.
Técnicas: microscopía electrónica de barrido, FIB, criosem, EDX, EBSD .
Responsables: Francisco Varela (Ap. Materiales) // Juan Luis Ribas (Ap. Biología).
Folleto: Auriga_brochure
Platina: motorizada en 6 ejes.
Columna SEM (Gemini):
Fuente de electrones: cañón de emisión de campo tipo Schottky.
Resolución: 1,0 nm a 15 kV; 1,9 nm a 1 kV
Aumentos: de 12X a 1000kX
Voltaje de aceleración: de 0,1 a 30 kV
Columna FIB (Cobra):
Fuente de iones: Galio líquido.
Resolución: 2,5 nm a 30 kV
Aumentos: de 300X a 500kX
Corriente: de 1 pA a 50 nA
Voltaje de aceleración: de 1 a 30 kV
En cámara: SE Everhart-Thomley
En cámara: BSE
In lens: SE
In lens: EsB, con rejilla de filtrado para detección de BSE puros.
Sistema de inyección de gases con 5 precursores.
2 cámaras CCD de infrarrojos para visualización de la muestra.
Sistema de micromanipuladores.
Sistema para realizar estudios en muestras congeladas.
Platina con control de temperatura.
Brazo de transferencia VCT100 .
Sistema de compensación local de carga (N2 gas).
Categoría: microscopio electrónico de barrido ambiental.
Técnicas: microscopía electrónica de barrido, criosem.
Responsables: Cristina Vaquero // Asunción Fernández // Juan Luis Ribas
Manuales (en el escritorio del equipo) : Manual de instrucciones. Serie EVO
Tipo de cañón: emisión termiónica.
Filamento: hexaboruro de lantano (LaB6) / tungsteno (W).
Bajo vacío (1-133 Pa) (permite cambiar entre los modos de alto vacío y presión variable sin necesidad de cambiar de apertura).
Vacío extendidol (hasta 1000 Pa).
2 nm (30 kV) y 15 nm (1 kV) – SE, LaB6.
3 nm (30kV) y 20 nm (1kV) – SE, W.
3.5 nm (30kV) – SE, W, modo bajo vacío.
4.5 nm (30 kV) –SE, W condiciones ambientales.
Aumentos: 5 – 1.000.000 X
Voltaje de aceleración: 1-30 kV.
Modos OptiBeam: Resolución, profundidad y análisis.
Formato de imágenes: máx. 3072x2304 píxeles, adquisición de señal mediante integración y ponderación.
ETSE: detector Everhart-Thornley de electrones secundarios.
VPSE: detector de electrones secundarios a presión variable.
HDBSD: detector de electrones retrodispersados de alta resolución para todo el rango de presiones.
STEM: detector STEM para trabajar en campo claro y campo oscuro.
Cámara CCD de infrarrojos para visualización del interior de la cámara.
Platina motorizada en 5 ejes:
X = 125 mm
T = 0-90º
R = 360º (continuo)
Altura máxima de la muestra: 100 mm
Platina Peltier permite controlar la temperatura de la muestra entre -30 ºC a, aproximadamente, +50 ºC.
Brazo de transferencia VCT100.
Metalizador AC600, con posibilidad de hacer criofractura.
Sistema de microscopía correlativa (Shuttle & Find) para combinar con el microscopio óptico confocal ZEISS Axio Observer LSM 710 ya instalado en el CITIUS.
ZEISS LIBRA 120
Categoría: microscopio electrónico de transmisión.
Técnicas: microscopía electrónica de transmisión, EELS, ESI, tomografía, crioTEM.
Folleto: Libra 120 plus brochure
Tensión de trabajo: hasta 120 kV (60, 80 y 120).
Sistema de adquisición digital de imágenes (cámara de porte inferior SSCCD de 2Mpx).
Rango de aumentos: 80x-630.000x
Resolución máxima: 0,34 nm
Categoría: microscopio electrónico de transmisión
Operación con el Philips CM200
Rutina de alineamiento del Philips CM200
Tensión de trabajo: 200 kV
Modos de trabajo: MET
Microanálisis (EDS)
Capacidad de alta resolución
Giro simple
Calentamiento (Hasta 800ºC)
Tamaño mínimo de spot: 15nm
Cámara CCD de puerto inferior para la adquisición digital de imágenes
Máxima resolución entre puntos: 2.8 Å
FEI TALOS
Categoría: microscopio electrónico de transmisión de emisión de campo
Responsable: Francisco Varela // Consuelo Cerrillos
Folleto Talos F200S
Cañón de emisión de campo (Schottky) con un potencial de aceleración de, hasta, 200 kV.
Goniómetro informatizado y motorizado en 5 ejes.
Resolución: 0.25 nm.
Obtención de imágenes en campo claro, campo oscuro y campo oscuro centrado.
Difracción de electrones, con mecanismo de beam stop y longitudes de cámara entre 12-5700 mm.
Portamuestras de giro simple y doble de bajo fondo.
Cámara CCD Ceta16M:
Sensor CCD de tipo CMOS DE 4k x 4k píxeles.
Centelleador de fósforo de alta resolución.
Con capacidad de digitalización de 16 bits.
Área activa de 60 mm x 60 mm.
Realización de FFTs en tiempo real.
Detector STEM:
Modos de trabajo en STEM:
BF (Campo claro).
ADF (Campo oscuro anular).
HAADF (Campo oscuro anular de alto ángulo).
Las imágenes de STEM de 4k x 4k píxeles, y 16 bits.
Permite mostrar imágenes de, hasta, 1k x 1k píxeles a 4 fps.
Microscopios de fuerza atómica y efecto tunel
Responsable: Consuelo Cerrillos
Fabricante: Molecular Imaging
Modelo: Pico Plus
Scanner disponibles: 10 µm , 10 µm y 1 µm (STM)
Técnicas disponibles: AFM, STM
Celda para líquidos
Cámara ambiental para medidas en atmósfera inerte.
Laboratorio de preparación de muestras biológicas
Leica UC7. Ultramicrotomo
Ultramicrotomía. Obtención de cortes ultrafinos (50-70nm) para su visualización mediante TEM.
Leica FC7. Cámara para crioultramicrotomía
Crioultramicrotomía. Obtención de cortes ultrafinos (50-70nm) en muestras congeladas, para su visualización posterior mediante TEM o para la realización de inmunomarcajes.
Reichert Ultracut E. Ultramicrotomo
LEICA CM1950. Criostato
Permite la obtención de cortes de muestras congeladas en un rango de 5 a unas 40 micras.
Leica AC20. Contrastador automático de rejillas.
Contratinción simple o doble. Proporciona aumento del contraste de los tejidos para su visualización en TEM
Leica EM TP. Procesador automático de muestras.
Inclusión a temperatura ambiente. Es posible procesar a la vez varias muestras y utilizar protocolos específicos. Actualmente se realizan con esta máquina todos los protocolos estandarizados del laboratorio, desde la fijación aldehica hasta la infiltración a resina 100%. Alta reproducibilidad.
Leica AFS2. Equipo de criosustitución.
-Criosustitución. Inclusión a baja temperatura de muestras criofijadas.
-PLT (Progressive lowering temperature).
Balzers CPD300. Deshidratador CPD:
Deshidratación por punto crítico. Permite la deshidratación de muestras acuosas sin pasar por fases de evaporación de agua que pueden alterar tejidos biológicos delicados. Posteriormente, las muestras se visualizan mendiante SEM.
Leica KMR3. Fabricación cuchillas vidrio. Permite obtener cuchillas de vidrio de alta calidad para realizar secciones finas o semifinas mediante ultramicrotomía.
Leica CPC. Criofijador.
Criofijación. Congelación rápida de la muestra que mantiene su estado nativo. Permite que no se formen cristales de hielo en el interior de las células en unas 10-20 micras.
Pequeño equipamiento auxiliar:
Agitador rotatorio para tubos SELECTA, Movi-Rod
Agitador magnético/calefactor SELECTA, Agimatic-E
Balanza abierta - COBOS, precisión
Centrífuga no refrigerada BECKMAN COULTER, Microfuge 18
Estufa SELECTA
Lupa Cambridge Instruments
Microscopio óptico Cambridge Instruments, Galen-III
Phmetro CRISON, micropH-2001
Laboratorio de preparación de muestras. Materiales y metalográfico
Responsables: José María Sanabria // Francisco Varela
Buehler Ecomet 250. Pulidora.
Pulidora para preparación automatizada de muestras.
Enlace de interés: http://www.buehler.com/Spanish/EcoMet-AutoMet-250.php Stuers Lavopol-5. Pulidora
Pulidora de preparación manual de muestras.
Enlace de interés: http://www.struers.com/default.asp?top_id=3&main_id=182&doc_id=1313 Buehler Vibromet 2. Esmeriladora vibratoria
Permite preparar superficies de alta calidad, incluyendo para estudios por EBSD. Sus 7200 ciclos por minuto de movimiento horizontal, producen una superficie lisa y con menor deformación.
Enlace de interés: http://www.buehler.com/Spanish/VibroMet-2.php
Buehler Isomet low speed. Cortadora
Cortadora de precisión diseñada para cortar materiales con una mínima deformación.
Enlace de interés: https://shop.buehler.com/equipment/sectioning-equipment/precision-diamond-wafering-saws/isomet-low-speed-saw
Buehler isomet 4000. Cortadora.
Permite el corte de diversos tipos de materiales con deformación mínima. Posicionamiento preciso (1 micra) de la muestra.
Enlace de interés: http://www.buehler.com/Spanish/IsoMet-4000.php Buehler isomet 5000. Cortadora.
Diseñada para cortar diversos tipos de materiales con deformación mínima. Con respecto a la versión 4000, presenta 20 métodos personalizables de corte y otros 35 predeterminados, para una gran variedad de materiales. Permite montar copas pulidoras para esmerilado automático a profundidad.
Enlace de interés: http://www.buehler.com/Spanish/IsoMet-5000.php Buehler abrasimet 250. Cortadora.
Cortadora con amplio espacio de trabajo y múltiples opciones de sujeción en mordaza. Especial para corte de muestras petrográficas o geológicas.
http://www.buehler.com/Spanish/AbrasiMet-250.php Buehler simplimet 1000. Embutidora.
Embutidora automática.
http://www.spectrographic.co.uk/shop/refurbished/recent-sales-refurbished/buehler-simplimet-1000/ Struers displan - TS. Rectificadora.
Máquina de corte de precisión y de esmerilado para mineralogía, petrografía y secciones cerámicas finas. El lado izquierdo de esta máquina tiene un compartimiento con un disco de corte diamantado y soportes para corte iniciales y re-seccionamiento de muestras. El lado derecho tiene un disco diamantado y un soporte de aspirador para esmerilado simultaneo de hasta 3 muestras que estén casi al final de su grosor con una estimación de 2 µm.
http://www.struers.com/default.asp?top_id=3&main_id=14&doc_id=197 Buehler petrothin. Rectificadora.
Re-secciona y esmerila material hasta ±5 µm. Su diseño de eje único garantiza el paralelismo de los bordes de la muestra, eliminando la necesidad de quitar las láminas portaobjetos de vidrio entre pasos.
http://www.buehler.com/Spanish/PetroThin.php Struers Tenupol 5. Adelgazador electrolítico.
Adelgazador electrolítico de muestras para TEM. Permite pulir muestras por ambos lados simultáneamente. Una fuente de luz infrarroja y un detector, controlan el paso de luz y detienen el proceso.
http://www.struers.fr/default.asp?top_id=3&main_id=12&sub_id=0&doc_id=208&admin_language=8 Leica EM SCD500. Metalizador.
Deposición de películas metálicas muy delgadas de grano fino y recubrimientos de carbono.
http://www.leica-microsystems.com/es/productos/preparacion-de-muestras-de-me/materiales-industriales/recubrimiento/detalles/product/leica-em-scd500/ Polaron SC7610 CA7615. Metalizador.
Metalizador compacto para muestras SEM. Accesorio de evaporación de carbón CA7615.
http://www.aname.es/modules/polaronsc7620/ Edwars Evap. Auto 306. Evaporador.
Evaporador térmico para metalización sobre un semiconductor o substrato metálico. Está configurado para la evaporación de cromo (de una fuente de varilla) y oro.
http://saf.chem.ox.ac.uk/edwards-auto-306-cryo-evaporator.aspx Edwars Sputter Six Scancoat. Metalizador.
Dispositivo de revestimiento por bombardeo iónico. Diseñado para revestir muestras para SEM con una capa de metal conductor de alta calidad.
http://www.hhv.in/products/scancoat-six-bench-top-sputter-coater-for-electron-microscopy Gatan 691 Pips. Adelgazador iónico.
Sistema de pulido iónico de precisión. Diseñado para producir muestras de alta calidad para TEM.
http://www.gatan.com/products/tem%E8%A9%A6%E6%96%99%E4%BD%9C%E8%A3%BD/pips-ii-system Fischione 1050. Adelgazador iónico.
Herramienta para el fresado y pulido iónico de muestras delgadas para microscopía electrónica de transmisión (TEM).
http://www.fischione.com/products/ion-beam-preparation/model-1050-tem-mill Fischione 1060. Adelgazador iónico.
Herramienta para el fresado y pulido iónico de muestras delgadas para microscopía electrónica de barrido (SEM).
http://www.fischione.com/products/ion-beam-preparation/model-1060-sem-mill Gatan Duo Ion Mil. Adelgazador iónico.
Sistema de adelgazamiento iónico para la preparación de muestras de TEM de alta calidad. Presenta dos estaciones de adelgazamiento independientes, que funciona sin perturbar las condiciones de vacío o adelgazamiento de la otra estación.
Gatan 656. Dimpler.
Método mecánico rápido y fiable de adelgazamiento previo. Reduce considerablemente los tiempos de adelgazamiento iónico previo al TEM.
http://www.gatan.com/products/tem%E8%A9%A6%E6%96%99%E4%BD%9C%E8%A3%BD/dimple-grinder-ii Fischione M200. Dimpler.
Método mecánico de adelgazamiento previo. Incluyen un indicador de adelgazamiento controlado, operación automatizada, y un microscopio de alineación.
http://www.fischione.com/products/conventional-specimen-preparation/model-200-dimpling-grinder Gatan 623. Disc Grinder.
Dispositivo para el pulido manual de muestras, reduciendo tiempos de adelgazamiento Iónico, y mejorando su calidad.
http://www.gatan.com/products/tem-specimen-preparation/disc-grinder-system Fischione 160. Disc Grinder.
Herramienta precisa y fiable para el pre-adelgazamiento manual de muestras. Produce muestras de espesor uniforme y lados paralelos..
http://www.gatan.com/products/tem-specimen-preparation/disc-grinder-system Diener Femto Ql pcc. Plasma cleaner.
Permite limpiar las muestras inmediatamente antes de introducirlas en el Microscopio Electrónico. Aplica plasma a baja energía y alta frecuencia (Hf), que limpia la superficie de la muestra, sin cambiar su composición o estructura.
http://www.plasma.de/en/plasmasystems/femto.html Leica TXP. TXP.
Dispositivo de preparación de blancos para fresar, aserrar, triturar y pulir muestras antes de realizar un examen mediante técnicas de SEM, TEM y LM. El microscopio estereoscópico integrado permite localizar y preparar de forma sencilla blancos apenas visibles.
http://www.leica-microsystems.com/es/productos/preparacion-de-muestras-de-me/materiales-industriales/tecnologia-de-estado-solido/detalles/product/leica-em-txp/ Vicerrectorado de Investigación. Universidad de Sevilla.

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