Source: https://www.scribd.com/doc/259237847/Bioseguridad-en-Odontologia
Timestamp: 2018-11-21 00:00:57+00:00

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DIRECCIÓN EJECUTIVA DE ATENCIÓN INTEGRAL DE SALUD
N T Nº
INTRODUCCIÓN…………………………………………………………………….. 5
FINALIDAD…………………………………………………………………
APLICACIÓN………………………………………………….. 6
LEGAL………………………………………………………………….. 6
ESPECÍFICAS……………………………………………. 7
1. MEDIDAS BÁSICAS DE PREVENCIÓN CONTRA LAS
INFECCIONES TRANSMISIBLES…………………………………........ 7
1.1. CUIDADOS DEL PERSONAL…………………………………... 7
1.1.1. INMUNIZACIONES………………………………………… 8
1.1.2. LAVADO DE MANOS………………………………………. 8
1.2.1. MÉTODOS
1.2.1.1. ESTERILIZACIÓN……………………………………..11
PROCESO DE ESTERILIZACIÓN CON CALOR…….
PROCESO DE ESTERILIZACIÓN POR AGENTES
QUÍMICOS………………………………………………… 22
DESINFECCIÓN……………….24
TIPOS DE DESINFECTANTES………………………….
1.2.2. SELECCIÓN DEL MÉTODO ADECUADO PARA LA
ELIMINACIÓN DE MICROORGANISMOS……………. 32
1.2.2.1. MÉTODOS SEGÚN CLASIFICACIÓN DE
SPAULDING………………………………………..….. 32
…………………………………… 32
SEMICRÍTICO…………………………….. 33
CRÍTICO……………………………….. 38
1.2.2.2. MÉTODOS SEGÚN CARACTERÍSTICAS Y
COMPOSICIÓN DE MATERIALES…………………40
A) ACERO…………………………………………………….. 40
B) PLÁSTICO…………………………………………………..41
D) LATEX……………………………………………………... 41
1.3. MANEJO DEL AMBIENTE ODONTOLÓGICO……………... 42
1.3.1. PROTECCIÓN DEL AMBIENTE DE TRABAJO………..42
2. USO DE BARRERAS…………………………………………………... 45
2.1. GUANTES………………………………………………………... 45
2.2. MASCARILLAS………………………………………………….. 47
....5...56 VI.2.. ANEXOS………………………………………………………………………. DE MEDIDAS BÁSICAS FRENTE A ACCIDENTES DE EXPOSICIÓN A SANGRE O FLUIDOS CORPORALES (AES)………………………. . 59 VII.……..3.. CONDUNTA A SEGUIR EN CASO DE UN AES…………….……53 2..54 3.49 2. MANIPULANCIÓN DE RESIDUOS PUNZOCORTANTES….. PECHERA………………………………………………………….2.. AGENTES INFECCIOSOS TRANSMITIDOS POR AES…….6. 51 2. MANDIL………………………………………………………….4.. 48 2. 53 1. 63 4 ... 49 3.49 3. MANEJO DE RESIDUOS CONTAMINADOS………………………... MANIPULANCIÓN DE MATERIAL TÓXICO……………….49 3..1. CLASIFICACIÓN DE AES………………………………………. ELIMINACIÓN RESIDUOS…………………………………. GORRA……………………………………………………………. BIBLIOGRAFÍA……………………………………………………………… .50 3.
cuidados del personal asistencial. manejo de residuos contaminados y medidas básicas frente a accidentes de exposición a sangre o fluidos corporales. e instrumental. el equipo. se debe considerar que el perfil de la atención odontológica ha cambiado enormemente en los últimos años. cuando se enfrenta a riesgos para su salud y la de la comunidad. producto de la aparición de nuevas enfermedades. de potenciales portadores de enfermedad. Además. la que se define como un conjunto de procedimientos básicos de conducta que debe seguir cualquier personal de salud. se han adaptado a los recursos 5 . especialmente fluidos corporales. uso de barreras protectoras. del servicio de odontología. Esta incluye. por lo que el contacto repetitivo entre profesional y paciente con tales características. manejo del ambiente odontológico.INTRODUCCIÓN El Equipo de Salud que otorga la atención odontológica y sus pacientes. aerosoles y las superficies contaminadas. están expuestos a una variedad de microorganismos por la naturaleza de las interacciones. hay que destacar que a su vez el operador es portador de microorganismos en sus manos y cuerpo en general. donde se produce un contacto directo o indirecto con el instrumental. hacen necesario tomar diferentes medidas de protección para prevenir la infección cruzada. el interés social por la calidad de los servicios de salud. en el curso de su trabajo diario. La norma de Bioseguridad en Odontología ha sido elaborada teniendo en cuenta la bibliografía actual y la normatividad vigente. dentro de otros. incorporación de nuevas tecnologías de tratamiento. En tal sentido se ha desarrollado la norma técnica de Bioseguridad en Odontología. la importancia de la salud ocupacional. Asimismo. la importancia de la protección del ambiente y la masificación de la información han generado la necesidad revisar y actualizar los procedimientos para el control de las infecciones en la práctica odontológica. manejo del material. Asimismo.
6 . sino también su difusión. Pero no solo se requiere el diseño de normas y procedimientos efectivos y de bajo costo. No obstante. de estos al paciente y entre pacientes del servicio odontológico.económicos y financieros disponibles en nuestro medio para que se pueda cumplir lo mejor posible. Nº 26842. secreciones orales y/o respiratorias desde el paciente hacia los profesionales y colaboradores.} IV. personal de limpieza y personal de laboratorio. OBJETIVOS:  Establecer las medidas de prevención para evitar las enfermedades de riesgo profesional y la infección cruzada entre el profesional odontólogo. II. con la evolución del conocimiento humano. III. FINALIDAD: La Norma Técnica de Bioseguridad en Odontología tiene como finalidad reducir el riesgo de transmisión de enfermedades infectocontagiosas a través de la sangre. es necesaria la evaluación periódica de estas Normas para adecuarlas al conocimiento científico actualizado. la enseñanza y la vigilancia de su cumplimiento. en todo el territorio nacional. personal auxiliar. BIOSEGURIDAD EN ODONTOLOGIA I. pacientes.  BASE LEGAL: Ley General de Salud.  Establecer la conducta a seguir frente a un accidente con exposición a sangre y otros fluidos corporales. AMBITO DE APLICACIÓN: La presenta norma es de aplicación obligatoria en los consultorios odontológicos de los establecimientos públicos y privados del Sector Salud.
que aprueba la Norma Técnica del Manejo de Residuos Sólidos Hospitalarios. 014-2002 –  SA. 3. 1. que aprueba el Manual de Esterilización y Desinfección. Precauciones universales. Resolución Ministerial N° 753-2004/MINSA. La presente Norma de Bioseguridad abordará principalmente las medidas preventivas para evitar la transmisión de enfermedades infecciosas y las mediadas a tomar cuando se produzca un accidente de exposición a sangre y otras secreciones corporales. Si tenemos en cuenta además. que aprueba la Norma Técnica de Vigilancia Epidemiológica de las Infecciones Intrahospitalarias.Ley del Ministerio de Salud Nº 27 657 y su Reglamento.      V. Resolución Ministerial N° 452-2003 SA/DM. Por esta razón. a las cuales el odontólogo y su personal auxiliar estas expuestos. Resolución Ministerial N° . 2. que la cavidad bucal es portadora de una multiplicidad de agentes microbianos. Estas medidas preventivas están basadas en tres principios fundamentales: 1. D. S. Resolución Ministerial N° 217-2004 SA. se pueden causar durante las maniobras pequeños sangrados o incluso no es raro observar sangrados espontáneos. creemos que el odontólogo debe conocer detalladamente las normas de bioseguridad e incorporarlas a su práctica cotidiana. Uso de barreras. igualmente señalar los diferentes procedimientos que eliminen el riego de transmitir al paciente infecciones por contacto directo o a través del uso de instrumental o material contaminado. que aprueba el Manual de Aislamiento Hospitalario. 7 . que aprueba la Norma Técnica de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias. podemos concluir que el odontólogo puede contaminarse o contaminar accidentalmente. MEDIDAS BÁSICAS DE PREVENCIÓN CONTRA LAS INFECCIONES TRANSMISIBLES: Estas normas están destinadas a reducir el riesgo de transmisión de enfermedades infectocontagiosas de fuentes reconocidas o no reconocidas. Resolución Ministerial N° 179-2005/MIN. Manejo de residuos. DISPOSICIONES ESPECÍFICAS: Cuando se realizan procedimientos odontoestomatológicos de rutina.
dosis transcurrido cuatro meses de la segunda. frente a un accidente punzante con aguja contaminada con sangre infectada con HIV. INMUNIZACIONES: El personal que labora en el consultorio odontoestomatológico y que tienen la posibilidad de exposición a sangre u otros fluidos corporales debe recibir la vacuna contra la hepatitis B. producida por un virus 100 veces más infectante que el virus HIV. considerando que toda persona puede ser de alto riesgo. La aplicación de esta vacuna se realiza en tres dosis: 1 era dosis. para que disminuyan el riego de adquirir infecciones en el medio laboral. Asimismo. Su control debe ser hecho a través de títulos positivos de AgHBs o niveles altos de Anti AgHBs (mayor de 10 mUI/ml). dosis a los 30 días de la primera y la 3era. asimismo. la 2da. los pacientes con hepatitis B tienen la probabilidad de transformarse en portadores crónicos (10%) y posteriormente.1. La vacuna contra la hepatitis B. por ejemplo. independientemente de presentar o no patologías. por las siguientes razones: la hepatitis B es una enfermedad transmitida por sangre.1. es del 30%. El cáncer hepático es el único cáncer que se previene con una vacuna. el 85-95% de los sujetos normales que reciben esta vacuna se inmunizan contra el virus de la hepatitis B y se protegen indirectamente contra la hepatitis Delta. PRECAUCIONES UNIVERSALES: Constituyen un conjunto de medidas que deben aplicarse sistemáticamente a todos los pacientes sin distinción. Actualmente. Por otra parte. CUIDADOS DEL PERSONAL: Son todas aquellas precauciones estándares que rutinariamente deben seguir todo el personal que labora en el servicio de odontología. además se necesita dosis de recuerdo cada 5 años. la probabilidad de contagio es de alrededor del 0. mientras que si lo mismo ocurre con un elemento contaminado con virus de hepatitis B.4%. considerar todo fluido corporal como potencialmente contaminante.1. Las medidas deben involucrar a todos los pacientes. es la más importante. padecer cirrosis. Además. deben hacerse pruebas para asegurarse que la vacuna provea inmunidad contra la infección correspondiente. 8 . la vacuna se aplica por inyección intramuscular profunda en región deltoidea.1. 1. Esta vacuna debe ser aplicada en dosis completas y según esquema vigente. 1. Lo más grave aún es que los pacientes con cirrosis relacionada con hepatitis B tienen un riesgo 247 veces mayor de contraer cáncer hepático que la población en general.
Técnica del lavado de manos: La técnica de lavado de manos varía de acuerdo al tiempo de contacto del jabón con las manos (ver tabla N° 1): Tabla N° 1 Técnica de lavado de manos 9 .1.2. LAVADO DE MANOS: Es el método más eficiente para disminuir el traspaso de microorganismos de un individuo a otro y cuyo propósito es la reducción continua de la flora residente y desaparición de la flora transitoria de la piel y de las uñas.1.
Igual espacios interdigitales 5. 4. Friccionar las manos y 5. Enjuagar las manos con 6. descartar toallas 8. 9. individual y un solo uso.) LAVADO LARGO (Quirúrgico) Jabón líquido antiséptico 1. Secar con toallas estériles. Igual manos: reloj. repitiéndola e intercalando en el medio el enjuague de las manos hasta los codos. Igual última toalla del secado. Cerrar los grifos con la 8. pulseras 2. De no usar jabón 9. yodopovidona. Igual que no sean automáticos) 1. Secar con toallas descartables 7. 2. Igual 5. Abrir los grifos (en el caso 2. etc. Retirar los accesorios de las 1. Mojar las manos. 3.LAVADO CORTO (Clínico) Jabón neutro líquido LAVADO MEDIANO Jabón líquido antiséptico (clorhexidina al 4%. anillos cintas. Escurrir sin juntar las manos. sobre todo alrededor de las uñas. Igual 4. Mantener las manos hacia arriba 8. Mojar las manos y las 3. Friccionar las manos muñecas o realizar un hasta los codos o realizar frotamiento mecánico vigoroso un frotamiento mecánico durante 15 a 20 segundos vigoroso durante 2 minutos (contar hasta 20). Mojar manos. Friccionar las manos hasta los codos. muñecas y antebrazos con agua corriente. Igual desde los dedos. Igual abundante agua corriente 7. Lavado y enjuagado con antiséptico. en caso de que estos no fueran automáticos. Este paso puede dividirse en 2 etapas de 2 minutos y medio c/u. Colocar jabón y frotar en 4. Igual 3. 6. No sacudirlas 7. efectuar los alcohol iodado o alcohol de 70º pasos del 1 al 7 con jabón neutro y finalizar con alcohol iodado o alcohol de 70º En relación al lavado de manos debe considerarse: 10 . en forma sistemática durante 5 minutos cepillar las uñas y friccionar con esponja descartable la piel. muñecas con agua corriente muñecas y antebrazos con agua corriente. 6. Jabonar bien (contar hasta 12O) toda la superficie.
después de usar los sanitarios. antes y después de usar los guantes para realizar procedimientos no invasivos. libre de salpicaduras.  Durante el lavado de manos.  El uso de guantes no sustituye el lavado de manos. el lavado de manos deberá tener la suficiente duración y la acción mecánica que permita que los productos antimicrobianos estén en contacto el tiempo suficiente para lograr los resultados deseados. pues se ha demostrado que el contacto repetido favorece el crecimiento de bacterias provenientes tanto de la piel del operador como de la boca del paciente. Se debe realizar un lavado corto al ingresar y retirarse del consultorio.  Evitar el empleo de jabones sólidos.  Para ser efectivo. después de tener contacto con pacientes infectados por gérmenes resistentes. después de manipular material e instrumental contaminado con fluidos corporales. arreglarse el cabello o cuando estén visiblemente sucias. tocarse la cara. debido a que en las toallas de felpa también crecen bacterias provenientes tanto de la piel del operador como de la boca del paciente. deberán mantenerse cortas y siempre muy limpias en el surco ungueal. parte del dorso de las manos y bajo las uñas.  Se debe realizar un lavado mediano antes y después de realizar procedimientos invasivos.  Los dispensadores de toalla en lo posible deben ser cerrados para impedir la contaminación por exposición al ambiente o contacto con las manos del personal y debe estar muy cercano al lavamanos a una altura que permita mantenerlo seco. luego de cuatro usos consecutivos.  Se debe realizar un lavado largo antes de efectuar cualquier procedimiento quirúrgico. toser. antes y después de ingerir líquidos y alimentos. 11 . después de estornudar.  Las uñas de todos los profesionales y las del personal auxiliar.  Utilizar jabones líquidos obtenidos de dispensadores apropiados.  Para el secado de las manos se debe emplear toallas de papel.  El enjuague debe realizarse con agua fría para cerrar los poros.  No frote sus manos con un cepillo pues irrita la piel dejando incluso heridas abiertas. se deberá tener especial atención en: la parte interna de los dedos sobre todo los dedos pulgares.
debe poseer un claro conocimiento sobre los métodos existentes para la eliminación de microorganismos.2. con el fin de interrumpir la cadena de transmisión y ofrecer una práctica segura para el paciente. estas deberán ser cerradas con la última toalla del secado. obteniéndose como consecuencia la protección antibacteriana de los instrumentos y materiales. MANEJO DE LOS ARTÍCULOS ODONTOLÓGICOS: El material e instrumenta. A) PROCESO DE ESTERILIZACIÓN CON CALOR: Son los métodos físicos que se utilizan para la destrucción de microorganismos que actúan por medio de altas temperaturas.1. ESTERILIZACIÓN: Es el proceso mediante el cual se eliminan de los objetos inanimados todas las formas vivientes.  Se debe procurar que las llaves de agua del lavatorio del consultorio sean de palanca.2. así como el equipo odontológico. accionadas con el pie o fotosensibles. el personal responsable del procesamiento de los artículos de atención odontológica. por su lentitud y riesgo de recontaminación. En caso que sean de rosca. destinados a la atención del paciente. 1. 1. MÉTODOS DE ELIMINACIÓN DE MICROORGANISMOS: Son todos aquellos procedimientos. En tal sentido. Los métodos de esterilización por calor son muy efectivos y en general fáciles de certificar.2. destinados a garantizar la eliminación o disminución de microorganismos de los objetos inanimados. La esterilización se puede conseguir a través de medios físicos como el calor y por medio de sustancias químicas. No se recomienda el uso de secador de aire. Este proceso debe ser utilizado en los materiales e instrumentales de categoría crítica. Aquellos objetos que no pueden ser esterilizados por el calor. Se debe usar como medio de esterilización el calor seco o húmedo. puede convertirse en un vehículo de transmisión indirecta de agentes infectantes.1. El proceso de esterilización con calor comprende las siguientes etapas: 12 . con ella se logra destruir las formas vegetativas y esporas de los microorganismos. pueden eventualmente serlo con el uso de sustancias químicas esterilizantes. de tal forma que garantice que los artículos de atención directa reciben el procedimiento adecuado para eliminar o disminuir el riego de infección.1. 1.
Finalizado este tiempo debe enjuagarse con agua corriente a fin de arrastrar la materia orgánica presente. caso contrario no puede ser garantizado la limpieza de la parte final. lentes. b) Lavado c) Secado y d) Lubricación del material. La limpieza puede realizarse a través de métodos de lavado manual o automático. porque estos detergentes desintegran la materia orgánica. Mantener sumergido en agua tibia (menor a 45° C) y agente tensioactivo durante toda la etapa de lavado a fin de evitar 13 . ya sea impidiendo el contacto del agente esterilizante con todas las superficies o en el caso de procesamiento por calor. El lavado manual es un procedimiento realizado por un operador. La materia orgánica e inorgánica presente en los artículos interfiere en los métodos de esterilización y desinfección. El prelavado debe realizarse preferentemente por inmersión en detergente enzimático durante 2 ó 5 minutos o en su defecto en agentes tensioactivos con pH neutro. Separar los elementos punzocortantes con el fin de evitar pinchaduras o accidentes. para lograr una adecuada limpieza manual son: a. porque esto evitará que la biocarga (sangre. por lo que se tendrá en cuenta prevenir accidentes con materiales cortopunzantes. g. Antes del lavado se debe retirar restos de cintas o tapes e. En países como el nuestro es lo más frecuente.Descontaminación y limpieza: Esta etapa consiste en la remoción mecánica de toda materia extraña en las superficies de objetos inanimados. En la limpieza se debe realizar los siguientes pasos: a) Descontaminación o prelavado. que procura la remoción de la suciedad por fricción aplicada sobre la superficie del material. Realizarse un prelavado inmediatamente y en el mismo sitio donde fue utilizado el material odontológico. Los procedimientos a seguir. f. d. saliva u otros) se seque y dificulte aún más el lavado. Para ello se seleccionará este y el operador hará uso de las barreras de protección adecuadas como son un mandil impermeable. Desarticular todas las piezas que constituyen el elemento. c. La limpieza disminuye la carga microbiana por arrastre pero no destruye microorganismos. prolongando los tiempos de exposición requeridos para lograr el mismo objetivo. b. guantes y mascarilla.
ya que desgastan el material. Luego llevar la bandeja bajo el chorro de agua para eliminar el máximo de biocarga. n. En caso que se encuentre algún desperfecto deberá volver a realizarse los mismos procedimientos antes descritos. debe efectuare inmediatamente para evitar recontaminación. l. Proceder a escobillar prolijamente con una escobilla de cerdas duras. o. ya sea por medio de paños o aire comprimido con filtro bacteriano. aerosolizaciones.  No utilizar sustancias abrasivas y cepillos metálicos. 14 .h. Para la limpieza se debe tener las siguientes consideraciones:  Con el fin de evitar la coagulación de albúmina. esto evita la corrosión del material metálico y el depósito de sales calcáreas en el material de vidrio.  El instrumental tiene que ser depositado de tal forma. Realizar la evaluación visual minuciosa de los artículos lavados en búsqueda de suciedad que pudiera interferir en los métodos de esterilización.  Instrumental grande tiene que ser depositado en las bandejas de tal forma que no impida por sombras de lavado la limpieza del instrumental restante. k. m.  Los residuos de la fase de limpieza tienen que ser quitados durante los enjuagados posteriores. Realizar un último enjuague. j. la cual trae consigo problemas de limpieza. El enjuague final se recomienda con agua destilada. de no hacerlo así aparecerán manchas y/o decoloraciones en el instrumental quirúrgico. Lubricar si fuera necesario y después de unos minutos secar el lubricante con papel absorbente. que no se dañe mutuamente. Comprobar que estén en buen estado de funcionamiento.  Al emplear procedimientos usuales de preparación mecánica las piezas de aluminio anodinadas en color pueden perderlo y por ende su función de codificación. El empleo de un producto neutralizante apropiado puede favorecer este proceso y también el resultado del enjuagado posterior. la temperatura del agua introducida no podrá pasar los 45º C. i. las ranuras y cremallera.  Las bandejas no pueden ser sobrecargadas para que así pueda ser enjuagado suficientemente todo el instrumental. Enjuagar con abundante agua corriente para eliminar el resto de detergente y materia orgánica. El secado de los elementos. teniendo especial cuidado de limpiar las articulaciones. El agua tibia mejora las propiedades de disolución del detergente y las enzimas.
(figura N° 1) b. los instrumentos pueden manifestar rigidez y dificultad en el manejo así como también pueden presentar manchas y otros eventos. pues los agentes esterilizantes no penetran debidamente y por lo tanto los microorganismos no serían destruidos. El empaque debe ser seleccionado de acuerdo al método de esterilización y al artículo a ser preparado. Los procedimientos a seguir. cambios de color y corrosión. No debe ser aceitoso. (figura N° 1) 15 . Si el instrumental quirúrgico va a ser esterilizado en autoclave a vapor el lubricante debe ser soluble en agua y siempre haber sido fabricado para uso en esterilización. Posicionar el material diagonalmente en el centro del empaque. No deben utilizarse aceites minerales o de silicona. Colocar el indicador o integrador químico interno en el centro del paquete. identificación y mantenimiento de la esterilidad. ya que este proceso será imposible de alcanzar. por lo que es importante la lubricación de estos después de la limpieza y antes de la esterilización.     E1 empleo de agua totalmente desalinizado para el lavado final evitará manchas. la apertura y la transferencia del material estéril con técnica aséptica. Preparación y Empaque: En esta etapa los artículos a esterilizar son preparados y empaquetados con el objetivo de brindar una adecuada protección. Después de la limpieza. La presencia de restos de sangre originan que el instrumento se queme en los bordes del lugar donde se halla la sangre. ni tóxico. ni aceite de máquinas. además facilita el transporte. Ningún instrumento que presente restos de sangre deberá ser introducido al esterilizador. el manejo por el usuario. pegajoso. originándose su posterior oxidación e inutilización. para lograr un adecuado empaque son: a. Del mismo modo toda sustancia adherida (empastes) debe ser retirada de inmediato para evitar el endurecimiento por precipitación. permitiendo una utilización segura de este.
(figura N° 5) Figura N° 5 16 . (figura N° 3) e. de cinta de control. (figura N° 4) Figura N° 3 f. Doblar los laterales hacia el centro del paquete en forma de sobre. Realizar el mismo procedimiento en el otro lado de modo que ambas cubran el artículo. siempre haciendo un doblez en la punta. Luego realizar un doblez con la punta hacia fuera.Figura N° 1 c. No se debe poner menos de 5 cm. Figura N° 4 Completar el paquete levantando la cuarta y última punta hacia el centro del paquete y fechar con cinta indicadora de proceso envolviendo todo el paquete. (Figura N° 2) Figura N° 2 d. Doblar la punta que da a la persona que esta preparando de tal manera que llegue al centro del paquete cubriendo el artículo.
etc. papel aluminio o frascos de vidrio refractario.  Todo paquete debe rotularse consignando la fecha de esterilización y el nombre del material a procesar. No dañar el envoltorio al escribir. de los artículos odontológicos. proceso que es acelerado por la presencia de agua. Ser económico y fácil de encontrar en el mercado. a. Debe ser flexible para facilitar su manipulación.  Preparar paquetes de instrumentos de acuerdo a la actividad a la cual van a ser destinados y rotularlos. Para la esterilización con calor húmedo se debe tener en cuenta las siguientes consideraciones:  La autoclave se puede utilizar para esterilizar textiles.  Cada paquete debe contener solamente la cantidad necesaria de elementos para “un solo procedimiento” o prestación. Debe ser impermeable a los líquidos. Calor húmedo (autoclaves de vapor saturado a presión): Este método de esterilización elimina microorganismos por desnaturalización de las proteínas. ni comprimido.  El diseño de todo paquete que va a ser esterilizado debe permitir la libre circulación del agente esterilizante por lo cual su contenido no debe estar sobrecargado.  Para la estufa se puede usar cajas metálicas. equipo de biopsia. siempre que las características del material lo permita. Este método de esterilización se considera de primera elección. 17 .Las características principales de los empaques son:  El envoltorio utilizado debe permitir el ingreso y remoción del agente esterilizante y ser barrera bacteriológica para evitar su recontaminación. Se puede usar para ello etiquetas adhesivas o cinta adhesiva (maskingtape)  En los paquetes deberá colocarse el testigo químico correspondiente según el método de esterilización. requiriendo temperaturas y tiempos menores de exposición que el calor seco. Para la esterilización por calor húmedo se utilizan equipos denominados autoclaves a vapor. Esterilización por calor: La esterilización por calor. pues es un método efectivo. gomas y plásticos termoresistentes. instrumentos de acero inoxidable. equipo de exodoncia. equipo de operatoria. equipo de cirugía periodontal. no debe combinarse con el agente esterilizante. se puede realizar a través del calor húmedo o del calor seco. pero tiene la desventaja que el vapor puede oxidar los objetos. equipo de profilaxis.  Para la autoclave se recomienda usar un empaque de papel grado quirúrgico por que el papel kraft ya esta en desuso. rápido y penetrante. No debe ser tóxico y debe ser resistente a la rotura y humedad. Ejemplo: equipo de examen.
La disposición de la carga dentro de la cámara debe ser en forma vertical dejando un espacio entre paquete y paquete que permita la libre circulación del vapor. la cantidad del calor disponible y los niveles de pérdida de calor.  b. lo que 18 .       El vapor es un agente esterilizante de superficie.0 2.Pupinel): Este sistema elimina los microorganismos por coagulación de las proteínas. pero tiene la desventaja de poseer un menor nivel esporicida y requiere mayor tiempo y temperatura. Cargar el equipo en forma homogénea para que requieran el mismo tiempo de exposición (calidad y tamaño de paquetes). Tabla Nº 2 Parámetros de Trabajo Presión (Atm) Temperatura Tiempo de exposición 1. Este método puede usarse como segunda opción. No sobrecargar ni encimar los paquetes. Su efectividad depende de la difusión del calor. pues la principal ventaja de esterilizar con calor seco es que no corroe los instrumentos metálicos. Todo ciclo debe iniciarse con uno o varios vacíos (previo al ingreso de vapor) para asegurar la evacuación total del aire de la cámara. No ocupar más del 7O % de su capacidad para permitir el acceso del aire caliente al material. constatar el viraje de los indicadores químicos utilizados en dicha carga y constatar que tenga la fecha de vencimiento correspondiente al envoltorio utilizado en un lugar visible.  Antes de almacenar.  Al abrir la puerta de la cámara esperar un corto lapso de tiempo antes de descargar para permitir que se iguale la temperatura de la carga y la ambiental. Calor Seco (Estufa . por ello todo el material y cajas a esterilizar deben encontrarse ABIERTAS.5 2. además del grosor de los empaques y el tipo de autoclave (tabla Nº 2). El tiempo que los instrumentos deben estar en la autoclave depende de la temperatura y la presión que se utilice.9 121º C 126º C 134º C 15’ 10’ 3’ FUENTE: Ministerio de Salud Chile Desinfección de Elementos Clínicos” 2001 “Normas Técnicas sobre Esterilización y Todo el material que salga del esterilizador “húmedo” debe considerarse "no estéril" y volver a procesarse.
 No encimar ni superponer las cajas. tales como: aceites. Para la esterilización con calor seco se debe tener en cuenta las siguientes consideraciones:  Cargar la estufa en forma homogénea (tamaño y calidad de materiales).  E1 tiempo de esterilización debe considerarse a partir del momento en que el termómetro de la estufa alcance la temperatura de trabajo (tabla Nº 3). petrolatos. haya espacio suficiente para conseguir una buena circulación.  Retirar el material frío del esterilizador a fin de evitar cambios bruscos de temperatura. Tabla Nº 4 Parámetros de trabajo Temperatura Tiempo 160º C 200’ (3 horas y 20’) 19 . caso contrario iniciar el proceso nuevamente. Tabla Nº 3 Parámetros de trabajo Temperatura 160º 170º C Tiempo 120’+ tiempo de calentamiento de carga 60' + tiempo de calentamiento de carga FUENTE: Ministerio de Desarrollo Social y Salud Argentina “Manual de Bioseguridad”  Si no se cuenta con instrumentos necesarios para determinar el tiempo de calentamiento de carga se puede optar por la siguiente alternativa (tabla Nº 4).contribuye a deteriorar los materiales (perdida de filo de instrumentos punzocortantes).  Los paquetes no deben tocar las paredes y que entre cada paquete.  El contenido de instrumental no debe ocupar más de 2/3 de la capacidad. polvos y objetos de vidrio.  Nunca abrir la puerta de la estufa durante el proceso de esterilización. para dejar espacio para la libre circulación de agente esterilizante (aire caliente). como es el caso de los instrumentos o sustancias que puedan ser dañados por la humedad o que son impermeables a esta. vaselinas. Se recomienda usar el calor seco en materiales que no pueden ser esterilizados en autoclave.
programador de tiempo. tiempo de exposición. a. constatar el viraje de los indicadores químicos utilizados en dicha carga y constatar que tengan la fecha de vencimiento correspondiente al envoltorio utilizado en un lugar visible. ya que pueden reaccionar en forma inexacta con los parámetros de esterilización adecuados o su lectura es poco clara. termo registrador. Para esto se pueden utilizar tres tipos de indicadores. Para que un producto sea clasificado como estéril se debe garantizar que todas las etapas del proceso fueron realizadas en forma correcta y que el proceso de esterilización es valido. talco) y soluciones oleosas (aceites. b. vaselinas) deben colocarse en pequeños recipientes de vidrio o paquetitos de papel.  Calor Seco: termómetro.  Antes de almacenar. sin garantizar la calidad de éste. manómetro de cámara externa. Estos monitores deben calibrarse periódicamente para garantizar su adecuado funcionamiento. Su valor es limitado y solo indica que los materiales fueron expuestos a un aparato de esterilización que produce calor.  Una vez terminado el proceso de esterilización se debe dejar la puerta entreabierta durante 10 minutos. además los fabricantes no han hecho una estandarización de ellos. termo registrador. según sea el caso.170º C 120´(2 horas) FUENTE: Ministerio de Desarrollo Social y Salud Argentina “Manual de Bioseguridad” Los polvos (ej. Físicos: Corresponde a los elementos incorporados al esterilizador que permite visualizar si el equipo ha alcanzado los parámetros exigidos en el proceso.  Los monitores o indicadores son equipos o reactivos que permite certificar que el proceso de esterilización se efectuó en forma apropiada. termostato. El nivel de seguridad de los procesos de esterilización depende en forma importante de la validación y supervisión permanente y rutinaria de cada ciclo. presión o cierto grado de humedad. termómetro de cámara interna. son útiles pero no suficientes. Estos pueden ser: 20 . Químicos: Sustancias químicas que cambian de color al alcanzar la temperatura necesaria. con el objeto de enfriar el material esterilizado y evitar accidentes al descargar. Control del Proceso de Esterilización: La obtención del material estéril depende de una serie de parámetros que deben ser cuidadosamente observados por el equipo de salud a cargo de los procesos. termocuplas. grasas. Estos son:  Calor Húmedo: manovacuómetro de cámara interna.
Son los únicos censores confiables de esterilización. Estos indicadores pueden ser:  Tiras con esporas: Es una preparación de esporas viables sobre papel dentro de un sobre. Puede indicarnos que el paquete estuvo expuesto a una determinada temperatura. El periodo de incubación es alrededor de 7 días. Constituyen los indicadores 21 . Indicadores de parámetro (Clase 3): Diseñados para responder a una variable crítica del proceso. Son muchos más precisos que los de la clase 4. También se utilizan reactivos químicos capaces de detectar enzimas o proteínas específicas de estos microorganismos. que evalúa la eficacia del sistema de vacío del autoclave. Están diseñados para confirmar la presencia o ausencia de microorganismos viables después del proceso de esterilización. Debe ser colocada dentro de un paquete de prueba y requiere ser procesada en el laboratorio. Indicadores de pruebas específicas (Clase 2): Destinados al uso en pruebas específicas. c.  Autocontenidos: Son esporas viables sobre papel que ofrecen gran resistencia a los agentes esterilizantes dentro de un tubo plástico que contiene un caldo de cultivo. Puede indicarnos que el paquete estuvo expuesto a una determinada temperatura en un determinado tiempo. Indicadores de parámetros múltiples (Clase 4): Diseñados para responder a dos o más variables críticas del proceso. Biológicos: Se colocarán en los sitios más críticos del esterilizador (vértices de la cámara y centro de paquetes). Para su fabricación se emplean en general esporas de Bacillus stearothermophilus como indicador de esterilización por vapor saturado a presión y esporas Bacillus subtilis variedad Níger para la esterilización por calor seco. Indicadores emuladores o de verificación de ciclos (Clase 6): Diseñados para reaccionar frente a todas las variables críticas de un ciclo de esterilización a niveles considerados como “satisfactorios” con un 95% de confiabilidad. Las esporas crecerán y proliferarán en caso de que el proceso de esterilización no se haya alcanzado. mientras que la ausencia de crecimiento microbiano es señal de éxito en el proceso. como el Test de Bowie-Dick. Para ello se selecciona un microorganismo de prueba que posee alta resistencia al proceso de esterilización usado. Indicadores de parámetros integrados (Clase 5): Diseñados para responder a todas las variables críticas de ciclos de esterilización específicos con un 75% de confiabilidad.      Indicadores de proceso (Clase 1): Es utilizado como ayuda para distinguir los elementos procesados de los no procesados.
La no fluorescencia indica la inactivación de la enzima (proceso de esterilización adecuado evidenciando por una luz verde en la incubadora) Almacenamiento del material estéril: Corresponde al proceso a través del cual. calor húmedo. La estantería debe estar a 25 cm del suelo y 50 cm. vapor de formaldehído y peróxido de hidrógeno. Su lectura es en 48 horas.  Debe ser un ambiente libre de polvo. tratando en lo posible que los lotes antiguos salgan antes que los nuevos. los artículos son conservados hasta su uso. del techo y guardando de 15 a 20 cm de la pared.  Deben almacenarse en armarios cerrados y alejados de las áreas de limpieza del instrumental.  De lectura rápida: Consiste en un sustrato que al detectar una enzima activa asociada a esporas de microorganismos pasa a ser fluorescente produciendo un resultado positivo o negativo. Se debe mantener la temperatura en un rango de 18 a 20°C y humedad entre 35 y 55%.  Los materiales esterilizados deberán almacenarse adecuadamente en cajas o bolsas cerradas.  Las estanterías y cestas metálicas no deben tener picos. Debe estar adyacente al área de esterilización. pared y techo. Existe este diseño de indicadores biológicos para la mayoría de los métodos de esterilización: óxido de etileno. con superficies lisas y lavables. para facilitar el aseo de piso.biológicos utilizados con mayor frecuencia. Con respecto al almacenamiento se debe tener en cuenta las siguientes consideraciones:  El almacenamiento de los artículos estériles deben realizarse en un lugar que evite los riesgos de contaminación y favorezca el movimiento e identificación rápida de los artículos.  Los paquetes deben colocarse de forma que sea fácil rotar su uso y estar protegidos de las corrientes de aire. ni aristas que puedan desgarrar la envoltura.  La duración de la esterilidad del material está dada por el tiempo que el envase permanece indemne con las condiciones locales 22 . La fluorescencia indica la presencia de la enzima (falla en el proceso de esterilización evidenciada por una luz roja de la incubadora de la lectura rápida). Las condiciones de almacenamiento deben asegurar la esterilidad o desinfección del artículo al momento del uso.  Guardar y distribuir los paquetes obedeciendo el orden cronológico de sus lotes de esterilización. pues la elevada humedad aumenta la porosidad de los envoltorios y lleva a la recontaminación del mismo.  Los materiales se almacenan en ambiente fresco y seco.
pero son dos de ellas que se acomodan mejor para ser utilizadas en los artículos estomatológicos: El glutaraldehído y el ácido peracético. Depende de factores como calidad del material del empaque. Esterilización por agentes químicos: Existe una serie de sustancias químicas que producen la esterilización de los artículos. La solución madre es ácida (pH 2. a. la concentración de la solución química. Para lograr una adecuada descontaminación y limpieza se debe seguir los procedimientos y las consideraciones antes mencionadas en la esterilización por calor. la presencia en los instrumentos de material que puedan inactivar al agente químico. el tiempo de exposición al agente químico y los procedimientos de limpieza previos para eliminar residuos tóxicos o materiales orgánicas de los instrumentos. pues la mayoría de sustancias químicas esterilizantes se inactivan por la presencia de sustancias orgánicas e inorgánicas presentes en los diferentes artículos. Para tener propiedad esterilizante la solución debe ser activada (alcalinizada) mediante 23 . Según la norma DIN se ha establecido un enfoque racional para la vigencia del material estéril. Estos son el tipo y magnitud de la contaminación microbacteriana de los instrumentos a esterilizar. condiciones del transporte y manipulación de los productos estériles.5) y en este estado en general sus propiedades microbicidas son menores. condiciones del almacenamiento. estos deben ser sometidos a una profunda descontaminación y limpieza. El proceso de esterilización con agentes químicos comprende los siguientes pasos: Descontaminación y limpieza: Antes de esterilizar los instrumentos con líquidos químicos. Glutaraldehído: Es un agente químico que se utiliza como sustancia esterilizante y como desinfectante de alto nivel.del almacenamiento. (Tabla N° 5) Tabla N° 5 Duración de Material Estéril Envoltura Un empaque Doble empaque Cobertor plástico Estante Cerrado Seis semanas Seis meses Máximo 5 años Estante Abierto Un día Seis semanas Máximo 5 años FUENTE: Norma DIN 58953 Parte 1 B) PROCESO DE ESTERILIZACIÓN POR AGENTES QUÍMICOS: La eficacia de este método de esterilización denominado “en frió” depende de varios factores ajenos a la naturaleza del producto químico.
el uso de agentes que elevan el pH de la solución a 7.5 -8.5. En este estado
la solución alcanza el máximo de su capacidad microbicida pero se
hace inestable debido a la polimerización de las moléculas que bloquean los
grupos aldehídos responsables de su actividad microbicida. Las
formulaciones convencionales de glutaraldehído tienen una duración
aproximada de 14 días. Existen formulaciones nuevas en las que se han
agregado agentes estabilizantes para prolongar la vida útil a alrededor de 28
El mecanismo de acción de glutaraldehído se debe a la anquilación de los
grupos amino, sulfidrilo, hidroxilo y carboxilo, los cuales alteran el ARN, el
ADN y la síntesis proteica en los microorganismos.
Para producir esterilización el tiempo de exposición no debe ser inferior a
10 horas; la concentración debe ser del 2%.
La actividad microbicida de glutaraldehído es afectada por tiempo de uso,
dilución y carga de materia orgánica. No se recomienda usar formulaciones
de glutaraldehído a concentraciones iniciales inferiores al 2% debido a que
no han sido suficientemente evaluadas y algunos productos de estas
características han demostrado ser inefectivos frente a determinados
El producto es tóxico al ser inhalado y al entrar en contacto con la piel o
mucosa. Debe ser usado en habitaciones bien ventiladas, en contenedores
cerrados, con la protección adecuada que evite exposición y de acuerdo
estrictamente a instrucciones del fabricante. Los equipos sometidos al
glutaraldehído deben ser enjuagados rigurosamente posterior al proceso
para evitar residuos tóxicos.
No deben mezclarse diferentes marcas de glutaraldehído porque los
activadores o aditivos pueden influir en su acción si son han sido validadas
El Ácido Peracético:
ácido peracético al 35% con peróxido de hidrógeno y de soluciones
neutralizantes que eliminan su efecto corrosivo.
Generalmente está indicado para material sumergible, sensible al calor a
temperaturas que oscilan de 50º C a 56º C, a un pH neutro de 6.4 y a una
concentración final de 0.2%, siendo ideal para materiales y piezas que
requieran una rápida reutilización. El ciclo puede durar entre 25 y 30
minutos. Asimismo cuenta con un sistema de controles o monitores
Para la esterilización por agentes químicos se debe realizar los
Las soluciones se deben manipular con protección
adecuada para evitar la exposición laboral del personal que lo manipula.
El operador deberá usar barreras protectoras como son mandil
impermeable, mascarilla, lentes protectores y guantes.
Seleccionar y preparar la sustancia química siguiendo las
La solución debe estar vigente, para estos efectos se debe
consignar la fecha de vencimiento en el contenedor o bidón.
Si se procesa por inmersión, se debe asegurar que los
materiales a esterilizar sean sumergidos completamente para que se
pongan en contacto con el agente esterilizante. El contenedor
seleccionado para la desinfección debe asegurar este contacto.
El tiempo de esterilización debe ser establecido de acuerdo
a las características propias de cada agente químico.
Los contenedores deben mantenerse tapados para evitar la
evaporación y vapores tóxicos en el ambiente.
Los procedimientos deben ser realizados en áreas bien
ventiladas a fin de evitar exposición del personal a vapores producidos
por el agente químico.
Pasado el tiempo de exposición se debe sacar los artículos
manipulándolos con técnica aséptica (guantes estériles) y enjuagarlos
con agua estéril o destilada cuidando de no contaminarlos, en caso de no
contar con este suministro, se debe usar agua potable y posteriormente
enjuagar con alcohol etílico o isopropílico, pues este producto eliminará
microorganismos residuales y contribuirá en el proceso de secado.
El secado debe ser realizado con aire filtrado o
comprensas estériles para evitar su recontaminación.
Se debe utilizar controles biológicos que midan la
concentración de las sustancias químicas en la medida que exista
disponibilidad de ellos.
Se recomienda esterilizar los instrumentos inmediatamente
antes de su uso para evitar contaminación de los mismos.
Si no se utiliza inmediatamente después de esterilizado,
deben ser guardados envueltos en paños o protectores estériles y el
almacenamiento debe ser según las características antes descritas.
Se define como el proceso por medio del cual se logra eliminar a los
microorganismos de formas vegetativas en objetos inanimados, sin que se
asegure la eliminación de las esporas bacterianas.
El grado de desinfección producido depende de varios factores, pero
esencialmente de la calidad y concentración del agente microbiano, de la
naturaleza de la contaminación de los objetos y el tiempo de exposición.
Los materiales e instrumentos descritos como semi-críticos, que no pueden ser
esterilizados, serán desinfectados a alto nivel.
La desinfección también se usa en materiales e instrumentos definidos como no
Descontaminación y limpieza: El material que será sometido a
desinfección debe estar totalmente libre de materia orgánica, por que esta
interfiere en el proceso de desinfección.
Para lograr una adecuada descontaminación y limpieza se debe seguir los
mismos procedimientos y consideraciones mencionados para la
esterilización con calor.
Métodos de Desinfección: La desinfección es uno de los procedimientos
más antiguos que fuera utilizado en un primer momento para eliminar
microorganismos del ambiente e higienizar las manos. Existen dos métodos
de desinfección: los químicos y físicos:
Este proceso consiste en poner en contacto el material o superficie con
agentes químicos desinfectantes. Para la desinfección, el material debe
permanecer en inmersión por un tiempo determinado de acuerdo al
Los procedimientos para desinfectar son iguales a los utilizados para la
esterilización con agentes químicos, con diferencias en la concentración y
tiempo de exposición; que varía de acuerdo a la sustancia a utilizar.
Usar el producto como lo indica el fabricante, en cuanto a
concentración y vida útil.
Hacer las diluciones con agua destilada, en el caso de no
especificar que puede utilizarse agua potable.
No mezclar desinfectantes cuando no se conoce su efecto.
5. Evitar el contacto del instrumental en perfecto estado. El hervido: Se puede alcanzar desinfección de alto nivel con agua hervida. Físicos: Los métodos de desinfección físicos pueden ser la pasteurización. los chorros de vapor y el hervido. para evitar la corrosión por contacto. Sacar toda burbuja de aire de los artículos a desinfectar. Dejar actuar el desinfectante por el tiempo adecuado. ya que el fuego alto hace rebotar los objetos y disminuye el nivel de agua.  Colocar el instrumental en un recipiente y agregar agua hasta cubrirlos completamente y no se agregará ningún otro mientras este hirviendo. En nuestro medio se utiliza más el hervido. Usar dispositivos limpios y secos para almacenar los desinfectantes o antisépticos. No rellenar los frascos en los cuales hay restos de desinfectantes. con otros cuyas superficies se encuentren dañadas. contados desde que rompe el hervor. junto con el tratamiento cuidadoso de los materiales.  Se seca con una toalla esterilizada antes de volver a utilizar los materiales o almacenarlos. Una dosificación insuficiente de productos alcalinos (concepto de ahorro erróneo) implicará el peligro de la presencia de corrosión en forma de picaduras. Evitar la permanencia prolongada del instrumental en las soluciones desinfectantes.  Poner el recipiente a calentar y esperar a que el agua hierva. solamente podrá evitarse la misma utilizando agua totalmente desalinizada. b.         Introducir los artículos secos para evitar la sobre dilución. La desinfección por olla a presión se puede utilizar en situación de extensión. Al utilizar productos ácidos podrá provocarse una corrosión a través de los cloruros que se encuentran en el agua.  El fuego será suave.  Se hierve los instrumentos en un recipiente con tapa. garantizará un perfecto resultado de desinfección. si se sigue los siguientes pasos:  Realizar el lavado y limpieza del instrumental de acuerdo a lo descrito. Una dosificación correcta. que se evitarán con valores pH superiores a 10.  Mantener a los instrumentos en agua hirviendo durante 30 minutos.  Se recomienda usar tiempos más prolongados para lugares de gran altura sobre el nivel del mar. Para ello se debe seguir con los siguientes procedimientos: 27 .
 Se debe tener cuidado cuando se abre la olla a presión. 28 .  Los instrumentos se sacan de la olla a presión con fórceps y se secan con una toalla estéril.9) y por lo tanto no requiere de activación.  La olla a presión debe ser retirada de la estufa después de 15 minutos y se le debe dejar que se enfríe. Es micobactericida y virucida. c. Espectro: Los estudios han demostrado su excelente actividad microbicida y una mayor actividad frente a micobacterias que el glutaraldehído. Mecanismo de acción: Su acción es por aniquilación de los componentes celulares y actúa directamente sobre los ácidos nucleicos. Ventajas y desventajas: La principal ventaja es que posee una excelente estabilidad en un amplio rango de pH (3 . Este agente químico es nuevo y se usa para la desinfección de alto nivel (DAN).  Los instrumentos limpios se colocan en una olla a presión y se agrega agua limpia a una altura de 2-3 cm. Cuando el vapor sale del respiradero.  La olla a presión es calentada continuamente por un mínimo de 15 minutos. Los principales desinfectantes son: Orthophthaldehído. El vapor debe seguir liberándose de la olla a presión durante este tiempo. Almacenaje: Se debe tener en cuenta las mismas consideraciones que en la esterilización por agentes químicos. Si esto se detiene puede ser que no haya más agua en la olla a presión. B) TIPOS DE DESINFECTANTES: Los desinfectantes químicos líquidos son los más utilizados en nuestro país y además existen múltiples agentes germicidas en forma líquida. el peso debe colocarse en su lugar.  La olla a presión se coloca en la estufa y se lleva a un hervor. permitiendo que se enfríe.2. Primero se debe liberar la presión. del fondo. b. Los instrumentos deben distribuirse por igual alrededor de la olla (lea las instrucciones de la olla a presión). Realizar el lavado y limpieza del instrumental de acuerdo a lo descrito. Se debe considerar que el uso constante de agua hervida deteriora los instrumentos por favorecer el depósito de compuestos cálcicos y por oxidación. a.  Si esto sucede la olla a presión debe ser retirada del calor. Corresponde al grupo de aldehídos inorgánicos y contiene benzenecarboxaldehyde 1. No es carcinogénico. Presenta además una excelente compatibilidad con cualquier material o artículo y cuenta con indicadores químicos. añada agua y el ciclo debe ser repetido.
sistema respiratorio y la piel. además mancha la piel. fungicida. d. En este estado la solución alcanza el máximo de su capacidad microbicida pero se hace inestable debido a la polimerización de las moléculas que bloquean los grupos aldehídos responsables de su actividad microbicida. Mecanismo de acción: Su acción es consecuencia de la alquilación de componentes celulares alterando la síntesis proteica de los ácidos ADN Y ARN. Ventajas y desventajas: No es corrosivo. Por ello. los instrumentos otorrinológicos y odontológicos y las láminas de laringoscopio. La solución madre es ácida (pH 2. micobactericida y esporicida. Para tener propiedad desinfectante de alto nivel la solución debe ser activada (alcalinizada) mediante el uso de agentes que elevan el pH de la solución a 7. Indicaciones de uso: El tiempo que se requiere para la desinfección de alto nivel varía según los siguientes estándares: • Estándar americano (FDA) (10 a 12 minutos a 20° C.5 -8. el alto costo parece ser la desventaja principal para su uso. También en el uso de artículos o materiales de metal como son los espéculos.5. Se requiere de 45 minutos para hacer DAN a una temperatura de 29 . Concentraciones de uso: En nuestro medio contamos con una solución al 2%. Es un agente químico que se utiliza como sustancia esterilizante y como desinfectante de alto nivel. Este agente no debe ser usado en la desinfección de las superficies ambientales en ninguna circunstancia. a.pero se recomienda utilizarse en áreas ventiladas ya que todavía no se ha determinado si puede producir irritación en los ojos y orificios nasales.) • Estándar en Europa (5 min.) • En nuestro medio se recomienda utilizarlo 10 a 12 minutos. La solución tiene una duración de 14 días de reuso. c. y dos años de vida útil. Espectro: Es bactericida. e. Para desinfección de alto nivel (DAN) se utiliza por 45 minutos. Concentraciones de uso: Está indicado en una concentración del 0. Por ahora. Indicaciones de uso: Está indicado para la DAN de endoscopios cuando la esterilización no es posible.) • Estándar en Canadá (10 min. En la actualidad se han diseñado cabinas con las cuales se protege al operador de ese tipo de injurias. Las formulaciones convencionales de glutaraldehído tienen una duración aproximada de 14 días. b. ropa y superficies.5) y en este estado en general sus propiedades microbicidas son menores. d. ya que una vez activado suelen producir vapores irritantes para las mucosas. La gran desventaja del glutaraldehído es su toxicidad. Glutaraldehído. virucida.55%. e. a temperatura-ambiente tiene actividad germicida en presencia de materia orgánica. Existen formulaciones nuevas en las que se han agregado agentes estabilizantes para prolongar la vida útil a alrededor de 28 días. debe utilizarse en ambientes muy ventiladas y con protección personal.
(0. Mecanismo de acción: Produce inactivación de microorganismos por alquilación del grupo amino y sulfidrilo de proteínas y del anillo nitrogenado de bases púricas lo que hace alterar la síntesis de los ácidos nucleicos. fungicida. Ventajas y desventajas: Su acción es rápida. dañan textiles y degradan plásticos y gomas.5% con tiempos mayores de inmersión.1%) durante 10 minutos.4%. produce irritación de la piel y mucosas. Su eficiencia disminuye por el aumento del pH. La disociación de este ácido y por consiguiente la menor actividad depende del pH. jabones y detergentes. Además se inactiva en presencia de materia orgánica. a 0. En Europa existen concentraciones de 1.2 ppm. Existen otras formulaciones de Glutaraldehído en concentraciones que varían entre 2. desnaturalización de las proteínas e inactivación de los ácidos nucleicos. se polimeriza por los rayos de sol y necesita estar protegida en envases opacos. Formaldehído (fo): Es un desinfectante de alto nivel pero actualmente esta discontinuado debido a su alta toxicidad y el olor penetrante que aparece aún a muy bajas concentraciones (como la formalina que se da del 37% al 40 %). c. a. virucida y esporicida. b. Cloro y compuestos clorados: Los desinfectantes basados en el cloro generalmente están disponibles en forma líquida como hipoclorito de sodio (lejía). incluyendo al de la Hepatitis B y al del VIH. Espectro: Son de amplio espectro microbicida. Tiene propiedades desodorizantes y actividad microbicida atribuible al ácido hipocloroso no disociado. Espectro: Bactericida (micobactericida). Su uso está limitado por su actividad corrosiva. esporas y virus. Su uso en la actualidad aparte de blanqueador se limita al saneamiento ambiental común de las superficies y artículos no críticos. No se recomienda para desinfección de instrumental. en 8 horas de trabajo. Concentraciones de uso: La concentración mínima para eliminar las microbacterias es de 1000 ppm.05 ppm.. a. haciendo que las concentraciones de cloro disponible disminuyan de 40% a 50%.4% a 3. o sólida como hipoclorito de calcio (dicloroisocianurato de sodio). pues son muy eficaces contra las bacterias Gram positivo y negativos. b. hongos. Mecanismo de acción: Su acción produce inhibición de las reacciones enzimáticas. Las soluciones de cloro no deben conservarse en envases destapados por más de 12 horas debido a la evaporación del producto activo. El valor límite del umbral (VLU / valor de exposición) del glutaraldehído es de 0.20°C. de bajo costo y de fácil manejo. 30 . d.
Concentraciones de uso: En concentraciones bajas de 0. c. Produce toxicidad ocular e irritación de las mucosas. d. Indicaciones de uso: Está indicado en el uso de DAN para endoscopios por su compatibilidad con este material. Puede corroer cobre. Solo se acepta su utilización como desinfectante en solución acuosa para filtros de hemodiálisis y conservación de piezas de anatomía patológica. Ventajas y desventajas: No daña lentes ni artículos de plástico. d. virucida y esporicida.5% en 30 minutos. desde 1996 la formalina bajo cualquier presentación. además de irritar las mucosas. tiene rápida acción contra microorganismos (incluyendo las esporas). b. Concentraciones de uso: Su presentación varía entre 3% a 7. fungicida. está excluida de la lista de desinfectantes en los Estados Unidos de Norteamérica. virucida y esporicida en concentraciones del 6% al 7%. d. Mecanismo de acción: Su acción antimicrobiana se ejerce por la producción de radicales libres hidroxilos que dañan las membranas lipídicas. Debido a su efecto tóxico e irritante. a. e. c. Mecanismo de acción: Actúa por desnaturalización de las proteínas alterando la permeabilidad de la pared celular. Indicaciones: Dada su toxicidad su uso es muy reducido. b. Ventajas y desventajas: La mayor ventaja de este elemento es que no produce residuos tóxicos y tampoco necesita activación. Ácido peracético: También denominado ácido peroxiacético es un agente oxidante que actúa de manera similar al peróxido de hidrógeno a. Espectro: Bactericida. Desventajas: Presenta olor desagradable. Presenta toxicidad ocular y también puede producir colitis pseudomembranosa por mal enjuague en la DAN.2% en un tiempo entre 10 a 15 minutos. La solución puede reutilizarse durante 21 días. el DNA y otros componentes celulares.1% a 0. fungicida. Se considera potencialmente carcinogénico. bronce y fierro galvanizado. 31 . Peróxido de hidrógeno estabilizado: El Peróxido de Hidrógeno es un agente oxidante utilizado para DAN. Esta corrosión puede ser controlada con aditivos del pH. Espectro: Bactericida (micobactericida). Es oxidante para artículos metálicos. Para realizar la desinfección de alto nivel la indicación es de 6% a 7. Al utilizarse deberán tomarse las precauciones de exposición ocupacional. Concentraciones de uso: Para producir una desinfección de alto nivel se requiere una exposición de 30 minutos a una concentración de 8% y para la desinfección intermedia a 4%.c.5%. e. La solución tiene una duración de 14 días.
tuberculosis. benzil. los más utilizados son el alcohol etílico y el alcohol isopropílico. c. e. Ventajas y desventajas: Son económicos. a. fenil. Espectro: Bactericida (micobactericida). Indicaciones de uso: El alcohol se considera un desinfectante de nivel intermedio y se usa en la desinfección de superficies y artículos no críticos. Alcoholes: Son componentes químicos solubles en agua. tales como el plástico. Mecanismo de acción: Actúa por desnaturalización de las proteínas. Su uso no es indicado en artículos semicríticos debido a la ausencia de datos sobre su eficacia germicida. d. En bajas concentraciones. halógeno). a. Mecanismo de acción: En altas concentraciones rompen la pared celular penetrando la célula y precipitando proteínas citoplasmáticas. Concentraciones de uso: Las concentraciones varían según la presentación del producto. Indicaciones de uso: Los derivados fenólicos están indicados principalmente en la desinfección de artículos no críticos y en superficies lisas. causan la muerte de microorganismos por inactivación de las enzimas de la pared celular. su utilización está contraindicada en la limpieza de incubadoras y otras superficies en las áreas de neonatos por generar hiperbilirrubinemia. Amonio cuaternario: Son antisépticos de bajo nivel.Fenólicos: Los derivados fenólicos comúnmente encontrados como principio activo de las formulaciones son: el ortho-fenil-fenol y el orthobenzil-para-clorofenol. dejando residuos que producen irritación en las mucosas. La concentración habitual de uso 70% en que tiene su mayor efectividad. Hoy en día y debido a su baja eficacia y a los riesgos descritos. Desventajas: Los fenólicos pueden ser absorbidos por los materiales porosos. c. Tiene poca acción en los virus pequeños como echovirus. coxsackievirus. Concentraciones de uso: La concentración bactericida óptima está en un rango de 60% a 90% por volumen. Asimismo. prácticamente no tiene indicaciones de uso. virus y M. Las desventajas de los alcoholes es que tienden a alterar y endurecer el material de goma y plástico. b. funguicida y virucida. Los compuestos fenólicos son producidos a través de la sustitución de uno o dos átomos de hidrógeno aromático de fenol con un grupo funcional (alquil. d. Los compuestos más usados en las unidades hospitalarias son cloruro de alquil-dimetil-benzil32 . poliovirus. b. Espectro: Destruye rápidamente formas vegetativas de bacterias hongos. Los fenólicos se inactivan ante la presencia de materias orgánicas. e. Esto condiciona que no se debe usar alcoholes como método de desinfección de alto nivel ni para materiales en inmersión. se inactiva en presencia de materia orgánica y se evapora rápidamente.
amonio. Concentraciones de uso: Las concentraciones de uso varían de acuerdo con la combinación de compuestos cuaternarios de amonio en cada formulación comercial. Indicaciones de uso: Por su baja toxicidad puede ser utilizado para la desinfección de superficies y mobiliario. Los restos de gasa y algodón pueden afectar su acción. se considera el enfoque más racional para la selección de los métodos de eliminación de microorganismos y en términos generales es aplicable a la mayoría de los artículos que se utilizan en la atención odontoestomatológica. y el cloruro de dialquildimetil-amonio. Earl Spaulding clasificó los materiales en tres categorías (críticos. 33 . Ventajas y desventajas: Constituye un buen agente para la limpieza debido a su baja toxicidad. también se debe considerar el tipo de material del que está fabricado el artículo odontológico. previniendo su deterioro para asegurar su vida útil a lo largo del tiempo y evitando de esta manera costos innecesarios. su cuidado y mantención con el fin de utilizarlo adecuadamente. ni microbactericida.amonio. En 1968. b.2. 1. SELECCIÓN DEL MÉTODO ADECUADO ELIMINACIÓN DE MICROORGANISMOS: PARA LA En la atención odontológica directa se utilizan numerosos artículos y equipos que toman contacto con el paciente. cloruro de alquil-didecildimetil. c. Espectro: Fungicida. Por otro lado.2. Pero la complejidad de la atención y la diversidad de artículos que se utilizan hacen necesario que en muchos casos se deba analizar en forma particular algunos equipos y tomar la decisión basada en las características y riesgos asociados sin considerar completamente la clasificación de Spaulding. Aún cuando la complejidad de la atención actual y el diseño de algunos artículos hace que no siempre sea apropiada esta clasificación. ni tampoco presenta acción sobre virus hidrofílicos. No es esporicida. bactericida y virucida solo contra los lipofílicos. El método de eliminación de microorganismos requerido por cada artículo esta directamente relacionado con el riesgo potencial que tiene este artículo en particular de producir infección en el paciente. Mecanismo de acción: Su acción se debe a la inactivación de enzimas productoras de energía. En tal sentido el personal responsable del procesamiento de los artículos debe conocer en profundidad las características de los distintos materiales. para seleccionar el método de eliminación de microorganismos. e. a la desnaturalización de las proteínas celulares y a la ruptura de la membrana celular. a. d. semi-críticos y no críticos) de acuerdo al riesgo antes mencionado.
endodoncia. Ejemplo: instrumental de cirugía y traumatología. Es decir.2. etc. no más de 50 grs. periodoncia. representan un riesgo alto de infección debido a que las áreas donde son utilizados no cuentan con sistemas de defensa que les permita enfrentar la agresión de estos microorganismos o son un buen medio de cultivo para su reproducción. METODOS SEGÚN CLASIFICACIÓN DE SPAULDING: Con el fin de racionalizar las indicaciones del procesamiento de los artículos se considerará el grado de riego de infección que existe en el empleo de los artículos y los clasifica en las siguientes tres categorías: A) MATERIAL CRÍTICO: Los materiales críticos son aquellos que se ponen en contacto con áreas estériles del organismo. descartando la esponja luego de la atención de cada paciente. Los instrumentales de mango de acero inoxidable o mango de plástico deben ser esterilizados en autoclave.1. corresponde a instrumentos quirúrgicos punzocortantes u otros que penetran en los tejidos blandos o duros de la cavidad bucal. El esponjero con su correspondiente esponja debe estar estéril. Las puntas de papel deben ser esterilizadas con autoclave. Los clamps de acero inoxidable pueden ser esterilizados como primera opción en autoclaves. Estos materiales deben ser obligatoriamente esterilizados. Instrumental de endodoncia: Todos los instrumentales deben ser esterilizados.1. 34 . El instrumental que se contamina durante el tratamiento del conducto se trata con gasa humedecida con desinfectante (alcohol de 70°). limas y tiranervios deben ser preparados particularmente ya que son sensibles contra los daños mecánicos y estos deben ser esterilizados.2. y utilizarse uno por paciente. Si estos materiales están contaminados aún con un inoculo mínimo de microorganismos. cubriendo no más de dos tercios de la capacidad del frasco y luego se esterilizan en el pupinel. El instrumental con mango anodizado por color es atacado por las soluciones alcalinas y pierde su color codificado. La vaselina se coloca en frascos de vidrio con tapa hermética. Al concluir el tratamiento los escariadores.
deben estar libres de los microorganismos antes mencionados y deben ser estériles. Estos materiales. Instrumental de cirugía: Los instrumentales quirúrgicos de acero inoxidable deben ser esterilizados en autoclave. Por lo tanto. por lo general son resistentes a infecciones por esporas bacterianas comunes pero susceptibles a las formas vegetativas de las bacterias. hasta que sea adquirida se puede seguir el siguiente método de desinfección. no todas las piezas pueden ser esterilizadas y el tiempo que tomaría la esterilización es muy largo para realizarlo entre pacientes. las piezas de mano que son posibles de esterilizar deben ser hechas al final del día. no obstante. En caso de que la esterilización no sea posible deben ser sometidos minimamente a desinfección de alto nivel. retire la película (sin abrir aún) cuidadosamente de la boca del paciente. Instrumental de periodoncia: Todo el instrumental que se use en Periodoncia debe ser esterilizado. pero considerando la realidad económica de que no se pueda adquirir de inmediato un aditamento con estas propiedades. Turbina y micromotor: Es deseable la esterilización de rutina de las piezas de mano de alta o baja velocidad. haciéndola funcionar por 30 segundos. Antes de ser esterilizadas deberán ser limpiadas vigorosamente con un paño húmedo y embebido en solución detergente que permita retirar los restos de sangre. B) MATERIAL SEMICRÍTICO: Corresponde a artículos que no penetran las mucosas pero pueden estar en contacto con ellas o expuesta a la saliva. Todas las turbinas y micromotores deberán ser esterilizados siguiendo estrictamente las recomendaciones dadas por el fabricante. El algodón y la gasa deben esterilizarse en autoclave en paquetes pequeños. Todo profesional deberá adquirir piezas de manos y micromotores que puedan ser esterilizados en autoclave. posteriormente deberá retirarse todo el resto de agua o lubricante que tenga en su interior. Los instrumentales que no sean de acero inoxidable deben ser esterilizados con el pupinel. una vez tomada la placa radiográfica. 35 . virus y Mycobacterias. sangre u otros fluidos.Para el caso de las radiografías. enjuáguela bajo un chorro de agua corriente para retirar la saliva y/o sangre adherida y luego desinféctela sumergiéndola en alcohol de 70º por un espacio de 5 minutos. entre paciente. Estos. Algunos fabricantes recomiendan lubricar las piezas de mano antes de esterilizarlas. saliva u otros elementos presentes en su superficie y luego séquelas bien.
 Haga funcionar durante 1 minuto la pieza de mano de alta velocidad y la jeringa triple a fin de que el agua limpie los conductos correspondientes.  Cuando no están en uso. Las pinzas. No pueden ser introducidas en baños de inmersión. luego de ser utilizadas con cada paciente. 36 . en alcohol isopropyl al 90% o en alcohol etílico al 70%. usando agua esterilizada. se podrá realizar utilizando compresas embebidas en glutaraldehído al 2%. Instrumental de operatoria: Todo instrumental de operatoria debe ser esterilizado y en caso de que no se pueda debe ser desinfectado a alto nivel. Para la limpieza y conservación del interior tienen que ser aplicados los métodos indicados por el fabricante. Jeringa triple: Se debe esterilizar con calor húmedo o debe esterilizarlas con glutaraldehído al 2% por 10 horas. para remover todos los restos orgánicos. Se debe desinfectar al igual que las piezas de mano. El equipo de ultrasonido debe ser tratado de manera similar. antes de empezar a trabajar. Se deberá mantener la pieza de mano en contacto con el desinfectante durante el tiempo especificado por el fabricante.  La desinfección de estos materiales. se debe dejar correr el agua que contengan las mangueras de la turbina durante por lo menos un minuto. debe retirarse cualquier residuo químico. Instrumental de examen: Los espejos deben ser esterilizados por autoclave o se debe seguir las recomendaciones del fabricante. Luego de trabajar en el paciente dejar correr el agua de la turbina durante 30 segundos antes de continuar con otro paciente. los exploradores y las sondas periodontales pueden ser esterilizadas en autoclave o en el pupinel.  Lavar y limpiar el instrumental. Es aconsejable dejar correr el agua que tienen en su interior entre cada paciente y al inicio de las actividades diarias.  Después de la desinfección.  Seque el instrumento con un paño absorbente. Todos los días. guárdelos en recipientes metálicos apropiados. Las líneas de aprovisionamiento de agua deben ser irrigadas con soluciones bactericidas. para eliminar las bacterias que puedan haber aflorado durante la noche en el sistema de suministro de agua. con la técnica antes descrita.
Cuando no es posible desinfectar las impresiones se procederá a desinfectar el modelo de yeso. sin embargo. colocándose en los recipientes o dispositivos de sujeción especiales para ellos y deben ser esterilizadas como el resto del material sucio. se deberá seguir las recomendaciones del fabricante acerca de la estabilidad de los materiales frente al uso de los desinfectantes. Material de laboratorio: Los procedimientos de esterilización y desinfección que se recomendaron para el instrumental de uso clínico. piedras. deberán encontrarse esterilizados y desinfectados. Las cubetas de acero inoxidable pueden ser esterilizadas en autoclave. La parte activa de los equipos de transiluminación. Las soluciones de 37 . Se recomienda tener un juego básico de fresas para cada paciente. El cambia fresa debe ser esterilizado o debe recibir una desinfección de alto nivel. utilizando sustancias que no las deterioren o distorsionen. elastómero de silicona y elastómeros de poliéster. Cualquier elemento que deba ser llevado al Laboratorio. El resto de las superficies de estos equipos pueden ser desinfectadas con alcohol de 70° Instrumental protésico: Tazas de goma.) deberán separarse de los demás. deberán ser estrictamente mantenidos con los materiales de laboratorio. Impresiones: Las impresiones hechas en el consultorio deben ser desinfectadas antes de realizar el vaciado del yeso. para evitar el uso de cambia fresas. espátulas y cubetas no metálicas se desinfectarán con glutaraldehído al 2% durante 45 minutos o aplicando alcohol 70° mediante fricción mecánica. Instrumental de ortodoncia: Todos los alicates de uso para ortodoncia así como todo el instrumental usado. No se las debe almacenar en un fresero y menos sueltas en los cajones de los armarios. de no ser posible. esterilizado. etc. luz halógena y pulpómetro no son fáciles de limpiar ni desinfectar por lo que deben ser cubiertos con fundas de polietileno o de papel de aluminio.Los elementos rotativos (fresas. En el caso de envío de impresiones. mantenga las fresas sumergidas por 30 minutos en alcohol de 70° (el hipoclorito de sodio corroe las fresas rápidamente) dentro de un recipiente cerrado. deberá ser desinfectado previamente y de ser posible. se recomienda usar el sistema ultra push. sobre todo aquellos que posean extremos o puntas plásticas que impidan su esterilización por medio del calor. caucho. Las espátulas para resina son instrumentos sensibles al calor por lo que pueden someterse a una Desinfección de Alto Nivel. Las cubetas para impresión cromadas o de aluminio deben ser esterilizadas en pupinel o sumergirlas en alcohol de 70° por 30 minutos. La solución de clorhexidrina ha sido usada sin efectos adversos con alginato. a. Las fresas deben ser esterilizadas en pupinel.
recomendándose el uso regular de guantes para realizarle la correspondiente higiene antes de trabajas sobre ellas. Las prótesis totales y también las parciales.glutaraldehído al 2% y de hipoclorito de sodio al 1%. b. deberán ser manipuladas con bastante precaución. con el fin de informarnos sobre los parámetros de higiene en los que se desarrolla el trabajo en él y así poder implementar cuidados adicionales con aquellos aditamentos que 38 . Una buena recomendación es conocer las instalaciones del laboratorio con el que habitualmente se trabaja. pero no sucede lo mismo con los otros materiales. NR R/10 min. NR NR R/30 min. Es esencial remover cualquier residuo de desinfectante lavando las impresiones y la prótesis. se deberán desinfectar prolijamente antes de ser introducido en la boca de paciente. antes de sacarlos de los consultorios. dejar correr el agua. NR NR R/30 min. deberán ser desinfectados siguiendo las mismas pautas que se utilizan para el instrumental operatorio y en el caso de que ya se encuentre con acrílicos. Se tendrá especial cuidado en retirarles todo el vestigio de sangre. R/1 min. R/10 min. FUENTE: Asociación Dental Americana (ADA) R Recomendable NR No recomendable ? Se desconoce (*)El tiempo mínimo de exposición al desinfectante debe ser 20 minutos. Ha sido demostrado la gran prevalencia de Candida Albicans en pacientes portadores de prótesis que presentan estomatitis por prótesis dental. Aparatos protésicos y de ortodoncia: Los aparatos protésicos y de ortodoncia deben ser igualmente desinfectados antes de enviarse al laboratorio dental. bajo chorro de agua y posteriormente deberán ser desinfectados. R/10 min. Las impresiones como los aparatos protésicos deberán ser enjuagados de la saliva que portan. producen cambios estadísticamente significativos en las impresiones de alginato. Tabla Nº 6 Desinfección de Impresiones Soluciones desinfectantes / Tiempo de exposición Material de Impresión Hipoclorito 1% Iodóforos Glutaraldehído 2% Alginato Silicona o Mercaptano Pasta Zinquenólica Godiva (modelina) R/1 min. Cuando los aparatos protésicos metálicos lleguen al consultorio procedente del laboratorio. empleando sustancias que no corroan o cambien el color del material utilizando en su confección (tablas Nº 7).
les enviemos. Para prevenir infecciones. Se debe alertar al laboratorista cuando le estemos remitiendo algún implemento de trabajo perteneciente a algún paciente que presenta alguna enfermedad infectocontagiosa. Tabla Nº 7 Desinfección de Aparatología para Laboratorio Dental (*) Aparato (Prótesis/ortodoncia) Sustancias Desinfectante Hipoclorito Glutaraldehído Iodóforos (1%) (2%) Prótesis Fija Metal/porcelana Metal/acrílico Porcelana Acrílico Prótesis Removible Metal/acrílico Acrílico/porcelana Ortodoncia Acrílico/alambres Ferulas De Relajamiento Acrílico R/D R/D R/D R/D R/D R/D R R R R R/D R NR NR R/D NR NR R R NR R/D R FUENTE: UPCH “Control de las Infecciones Transmisibles en la Práctica Odontológica R Recomendable NR No recomendable R/D Recomendable pero puede dañar el material (*) Siempre enjuagar previamente con agua y luego sumergirlo en la sustancia recomendada por minutos c. se convierte en un reservorio bacteriano y puede permanecer contaminada durante 3 meses. Las sustancias pulidoras del tipo de la piedra pómez cuando son usadas sobre prótesis contaminadas. La comunicación en este aspecto deberá ser sumamente fluida entre el profesional y el laboratorista. C) MATERIAL NO CRÍTICO: 39 . se puede añadir a la piedra pómez un líquido desinfectante (5 partes de hipoclorito de sodio a 100 partes de agua destilada). Modelo de yeso: Sumergir el modelo fraguado y sin el material de impresión en una solución de hipoclorito de sodio al 1% durante 30 minutos y luego enjuagar con agua.
Para lograrlo es recomendable colocar sobre la misma un campo descartable. Estos materiales toman sólo contacto con piel sana por lo que el riesgo de producir infecciones es mínimo o inexistente. Los eyectores deben ser desacartables y las puntas de los suctores deben ser autoclavadas o esterilizadas con desinfectantes de alto nivel de acción (glutaraldehído al 2% durante 10 horas). dos veces a la semana. Con relación a la lámpara se debe forrar el mango del mismo con una bolsita de nylon que deberá ser cambiada después de cada paciente.Mycobacterium. con un paño embebido en alcohol de 70°. equipos de rayos x.Legionella. unidad dental. haciendo correr agua. debiendo utilizar desinfectantes químicos como hipoclorito de sodio al 1%. sillón. Unidad dental: La unidad dental deberá ser desinfectada diariamente al comienzo y al finalizar las labores de trabajo.) lo que indica que el agua que entra procedente de la red comunitaria es la fuente de contaminación de estos microorganismos. La escupidera debe ser higienizada con agua y detergente al iniciar el día y después de cada paciente eliminando todo tipo de residuos que se pudieran acumular. mangueras de piezas de manos y jeringa triple. En dicha mesa de trabajo 40 . Para estos materiales deben utilizarse desinfectantes de nivel intermedio o bajo nivel. El depósito de agua debe ser decontaminado con un agente químico de nivel intermedio. La piel sana actúa como una barrera efectiva para la mayoría de los microorganismos y por lo tanto el nivel de eliminación de microorganismos requerido puede ser mucho menor. llaves y otros. tocados por el paciente o por las manos contaminadas del clínico o auxiliar dental durante el tratamiento. Por ejemplo amalgamador. Es fundamental evitar la formación del biofilm. que se cambiará luego de la atención de cada paciente. lámpara de luz halógena.Esta clasificación corresponde a instrumentos o dispositivos que pueden tener contacto frecuente con los aerosoles generados durante el tratamiento dental. En el agua de la unidad dental se han encontrado microorganismos de transmisión hídrica (Pseudomonas. Mesa de trabajo: La mesa de trabajo deberá mantenerse en buenas condiciones de higiene durante toda la jornada de trabajo.etc.
se recomienda desinfectar el sillón dental inmediatamente después que se haya retirado. Comprensora: Las comprensoras deberán ser purgadas. deben ser desinfectadas prolijamente con una solución de hipoclorito de sodio 0. cada uno de ellos con características propias. luego lavar con agua y detergente y desinfectar con solución de hipoclorito de sodio al 1%. es decir. En caso de manchas orgánicas (sangre-saliva) absorber en toalla descartable eliminar como residuo peligroso. se les deberá eliminar el agua que se condensa en el interior del recipiente que contiene el aire. 1. Algunos 41 . ya que esa agua se puede oxidar y contaminar con facilidad con el siguiente riego para el paciente cuando se le aplica la turbina o el aire de la jeringa triple. Equipo de Rayos X: Cubrir con papel de aluminio el cabezal de rayos X. de no contar con cubierta descartable lavar con agua y detergente. MÉTODOS SEGÚN CARACTERÍSTICAS Y COMPOSICIÓN DE MATERIALES: Los diferentes elementos que se utilizan en la odontología están fabricados de diversos materiales.2. A) ACERO: Los artículos de acero inoxidable tienen en su composición distintos componentes y su calidad depende de la proporción de ellos.sólo deberá estar el equipamiento necesario para la atención de cada paciente. sillones dentales. pues pueden originar decoloración. etc. respaldo) y la manija del foco bucal.5%. Colocar cubiertas descartables en toda la superficie del sillón odontológico que esté en contacto directo con el cuerpo del paciente (apoyabrazos. No se debe usar desinfectantes a base de Yodo en superficies plásticas. Si un paciente presentará lesiones cutáneas o capilares exudativas o micóticas.5% o alcohol 70° antes y después de la atención diaria. Sillón: Desinfecte el sillón dental con un paño embebido de hipoclorito de sodio 0. Se deberá evitar expresamente que el porta residuos se encuentre en dicha mesa de trabajo. cabezal.. las cuales deben ser consideradas para seleccionar el tipo de método que se debe emplear en la eliminación de microorganismos.2.2. Las superficies de las mesas de trabajo.
La resistencia de los plásticos es directamente proporcional a la densidad. Se utiliza principalmente para la fabricación de instrumental quirúrgico y cajas de instrumental. B) PLÁSTICOS: Son compuestos realizados sobre la base de polímeros naturales o sintéticos y su característica principal es que son capaces de deformarse y moldearse. Son utilizados ampliamente en el ámbito clínico ya sea como componente de instrumentos y equipos. estas características los hacen muy frágiles y fáciles de 42 . También puede dañarse por el tipo de marcado si éste debilita su estructura original. humedad. C) VIDRIOS: Son sustancias que se fabrican a partir de sílice que se funden a grandes temperaturas. Los artículos de acero inoxidable son durables si se mantiene de acuerdo a indicaciones del fabricante. Son rígidos debido a que sus moléculas son muy cohesionadas. El acero al carbón o cromado debe ser preferentemente esterilizado en el pupinel. Este tipo de artículos son resistentes a la oxidación y herrumbre aún en contacto con ácidos. álcalis y gases corrosivos y es capaz de resistir a altas temperaturas. En general resiste la acción de ácidos. La calidad del agua puede dañarlos ya sea por exceso de cloruros o de sustancias alcalinas o ácidas. como aislante térmico y eléctrico y como empaque. Para los artículos de plásticos termo resistentes se puede utilizar la autoclave y los artículos termolábiles se deben esterilizar con sustancias químicas como el glutaraldehído al 2% durante 10 horas. Para aumentar la resistencia a la corrosión el instrumental es sometido a pulido y pasivazo. álcalis y algunos solventes.afectan su dureza y otros su resistencia al óxido. Las superficies que no son pulidas son más propensas a la corrosión. Para este tipo de instrumentales se recomienda la esterilización con vapor de agua (autoclave). a mayor densidad mayor resistencia. Este último consiste en dejar una capa de óxido de cromo en la superficie del instrumento que es muy resistente a la corrosión si se utilizan método de limpieza y mantención que no lo alteren.
Ciertas características del látex son alteradas con los detergentes haciéndolos permeables al paso de microorganismos. F) LÍQUIDOS: En la actualidad. E) ALGODONES: Son textiles provenientes de fibras naturales. Sólo es posible efectuarla en autoclaves que tengan un programa especial para estos efectos. se utiliza la autoclave. D) LATEX: Son sustancias derivadas del caucho que se utilizan para la fabricación de guantes. La esterilización de líquidos por lo tanto son excepcionales. Los vidrios esmerilados (opacos) no se utilizan en la fabricación de materiales que requieren ser esterilizados debido a que podrían tener materia orgánica o residuos de gases. Los algodones resisten altas temperaturas pero se dañan fácilmente con la tracción y acción de instrumentos. debido a la dificultad que presenta la esterilización de líquidos la mayoría de soluciones que se usan en la práctica clínica se obtienen estériles de fábrica. el lavado no es suficiente para eliminar todas las bacterias de sus superficies y se han descrito reacciones a pirógenos atribuidas a guantes reesterilizados. Por lo anterior los guantes no deben ser reutilizados. 1. En estos espacios no se guardará alimentos o utensilios de comida. A mayor cohesión de sus partículas es más duro y resistente.3. pero cuando se trata de envases de vidrio que contengas líquidos para esterilizar. Los algodones como las gasas deben ser esterilizadas por autoclave. MANEJO DEL AMBIENTE ODONTOLÓGICO: En las áreas de atención profesional no se deben realizar otras actividades que no sean la señalada. Se caracteriza por ser muy vulnerable y poco resistente a la tracción y acción del detergente. Por otra parte. Los vidrios pueden contener en su composición metales y plásticos. Los vidrios deben ser esterilizados por calor seco (pupinel) o deben ser desinfectados. Los algodones absorben líquido por lo que sólo pueden ser esterilizados en equipos que aseguren su secado. 43 . Muchos artículos usados en odontología están envasados en vidrios Los más frecuentes procesados son los de tipo pirex debido a que son de mayor grosor y dureza que confieren resistencia a tracción y temperaturas altas. ni tampoco se tendrán plantas o materiales de limpieza.romper.
1.3. delantal impermeable.  Reducir la formación de aerosoles y salpicaduras de saliva y sangre utilizando solo la cantidad necesaria de agua en la pieza de mano de alta velocidad y en los destartarizadores ultrasónicos. producen mayor contaminación de los ambientes. b. Cuando se use la jeringa triple. La limpieza de los ambientes debe ser realizada por un personal protegido con un gorro.La ventilación de todos los lugares de trabajó deberá ser muy intensa a fin de evitar la polución causada por aerosoles generados durante las preparaciones dentarias o debido a las emanaciones del sistema de desagüe.  Evitar la contaminación de pisos y módulos con la caída de saliva. A través de aerosoles y otras sustancias expelidas por las turbinas. sangre. los que pueden diseminar grandes cantidades de microorganismos de la boca del paciente hacia todos los ambientes del consultorio. son: a.1.3. mascarilla. pues provocará aerosoles muy intensos con acción diseminadora muy extensa. PROTECCIÓN DEL AMBIENTE DE TRABAJO: Los medios más frecuentes a través de los cuales se producen infecciones cruzadas. Se recomienda que primero se use el spray de agua y luego el del aire. guantes de goma hasta la mitad del 44 .  Utilizar un buen sistema de evacuación (succión) de sangre y saliva. Contacto directo de las manos del profesional o su asistente con los equipos. En los establecimientos asistenciales hay gérmenes patógenos presentes en los elementos o equipos sucios o contaminados cercanos al paciente que se pueden comportar como reservorios o fuentes de infección. micromotores. materiales contaminados como algodones y restos de impresión. instrumentos. LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN DEL AMBIENTE: Estas normas tienen por objeto disminuir la contaminación ambiental y eliminar la suciedad visible. se debe tener cuidado de que la presión de agua no sea demasiado fuerte. materiales contaminados con saliva o sangre del paciente. jeringas triples y aparatos de profilaxia.2. Para limitar la diseminación de la sangre y la saliva en el ambiente se debe seguir las siguientes consideraciones: Reducir al mínimo necesario el uso de la jeringa triple. pues el uso alterno de ambos elementos.   1.
La limpieza de mobiliario debe realizarse una vez por turno y siempre que se encuentren visiblemente sucios. 45 . por el mismo motivo. desinfectantes. Es importante tener presente que la boca puede expulsar saliva o sangre hasta un diámetro de dos metros desde el lugar en que se encuentra ubicado el paciente.antebrazo y anteojos protectores.1% y desinfectar la totalidad del mueble por 15 minutos.  Los muebles deben estar separados de la pared por lo menos 20 cm.  No se debe usar cortinas en los baños.  La limpieza comienza por las superficies verticales. puertas. por lo tanto todas las superficies que se encuentran ubicadas en ese espacio se deberán desinfectar con mayor frecuencia que el resto del mobiliario. Para la limpieza de los ambientes se debe tener las siguientes consideraciones:  Siempre se efectuará la limpieza ambiental desde el área más limpia a la más sucia. según punto anterior. No usar cera. kerosén. enjuagar y luego embeber una esponja con solución de hipoclorito de sodio al 0. aerosoles. escoba. El procedimiento a seguir es el siguiente:  Lavar con solución de detergente limpiador.  Deben eliminarse aquellos muebles que no cumplan una función estrictamente definida y específica en cada sector. proceder a la limpieza con solución detergente e hipoclorito de sodio al 1%. eliminar como residuo patogénico. escobillón o elementos que movilicen el polvo ambiental.  En caso de mancha de sangre u otro fluido orgánico embeber inmediatamente en toalla absorbente. Asimismo el personal debe estar vacunado contra el tétano y la Hepatitis B. Paredes. siguiendo por sillones y pisos. evitando apliques innecesarios o materiales rugosos o porosos que dificulten la higiene del consultorio. para facilitar la limpieza y del piso por lo menos 10 cm. que acumulen polvo o desechos contaminados. finalmente enjuagar con una esponja embebida en agua y secar la superficie descontaminada. desodorantes ambientales y pastillas de formol.  En las áreas de trabajo no debe existir alfombras u otros.  Se prohíbe el uso de plumeros. liso y con la menor cantidad posible de ángulos en donde se pueda depositar el polvo o material contaminado. Limpieza de Mobiliario: Las superficies de los muebles de trabajo deberán ser de material fácilmente higienizable. ventanas y vidrios: El local asistencial deberá contar con paredes y pisos de fácil lavado.
incluidos los sistemas de iluminación. lavar la superficie limpiando vigorosamente con un trapo de piso embebido en solución detergente (no mezclar con hipoclorito de sodio). Finalmente. dejar secar los baldes boca abajo. descartar las toallitas en bolsa plástica de Residuos Patogénicos. lavarse las manos antes y después de este procedimiento previo al retiro de los guantes. Luego pasar un trapo con agua y detergente. repasar con el segundo trapo y la solución de hipoclorito de sodio manteniendo húmedo durante 15 ó 20 minutos.1°/o. Desechar el contenido líquido de los baldes por la pileta de patio o por el inodoro. Parra ello se debe usar una solución detergente o jabón. enjuagar y pasar un trapo con hipoclorito de sodio al 1%. enjuagar con agua limpia pasando el mismo trapo por las superficies. con los trapos extendidos y las cerdas de cepillos hacia arriba. Enjuagar. en cada turno o cuando estén visiblemente sucios con material orgánico. Este procedimiento se debe realizar una vez por turno y siempre que se encuentren visiblemente sucios. Baños: Se efectuará igual procedimiento que el descrito en pisos y paredes. cepillando en forma meticulosa. Cielorrasos: Deben estar visiblemente limpios. tantas veces como sea necesario para que nunca esté notoriamente sucia. enjuagar el balde y trapos utilizados. En el caso de pisos que no están contaminados. Una vez absorbida. el personal de limpieza debe colocarse los guantes y luego colocar toallitas de papel sobre la mancha (tantas veces como sea necesario) para que la mancha se absorba. tibia y detergente. Este procedimiento se debe realizar una vez por semana y cuando se encuentren visiblemente sucios. secar y a continuación desinfectar esta superficie con solución de hipoclorito de sodio al 0. proceder a limpiar de la siguiente manera: llenar un balde con agua limpia. enjuagar y por último desinfectar con hipoclorito de sodio al 0. Pintarlos por lo menos una vez por año o cuando estén visiblemente sucios. 46 . llenar el otro balde con solución hipoclorito de sodio al 0.Se debe lavar desde una altura de 2m. La frecuencia de limpieza es cada 2 meses. hacia abajo. Pisos y zócalos: Se utilizará la técnica de doble balde/doble trapo.1%. Cambiar ambas soluciones tantas veces como sea necesario o cuando se encuentre las soluciones visiblemente sucias. No eliminarlo por la pileta del lavado de manos bajo ningún aspecto. el inodoro y el lavatorio se desmancharán con jabón aniónico o solución de detergente. Se deberá cambiar el agua entre ambientes. Los materiales utilizados en este sector no se pueden utilizar en otro sector.1%. en los cuales se realizará los siguientes procedimientos: Si hubiese presencia de materia orgánica. evitando la salpicaduras y teniendo extrema precaución con las bocas de electricidad.
en todo tipo de procedimiento odontológico. GUANTES: Su uso tiene como objetivo la protección del personal de salud y la del paciente.  Debe atenderse a pacientes de alto riego con guantes estériles. La utilización de barreras no evita los accidentes de exposición a estos fluidos. o mucosas del paciente a las manos del operador.  Los guantes estériles de látex deben utilizare en todo procedimiento invasivo (ej. y en otros casos que microorganismos del personal sanitario sean transmitidos a los pacientes. no aplicar lociones o cremas en las manos inmediatamente antes de colocarse los guantes. tales como anillos. pulseras y relojes. el uso de guantes es indispensable.  Los guantes gruesos de hule deberán ser utilizados para el manejo y limpieza de instrumentos contaminados.  Si se utilizan guantes de látex. En relación al uso de guantes debe considerarse:  Se deberá usar guantes para todo tipo de procedimiento que se realice en la atención odontológica del paciente.  Antes de utilizar los guantes.1.2.  Verificar que no estén dañados los guantes antes de usarlos.  Podrán utilizarse guantes de látex no estériles en los procedimientos no invasivos (ej. 47 . pero disminuyen las consecuencias de dicho accidente. Para lograr esto el odontólogo y el personal auxiliar que apoye directamente en el área asistencial deberá usar los siguientes métodos de barrera 2.  Las manos deben ser lavadas según técnica y secadas antes de su colocación. al evitar o disminuir tanto el riesgo de contaminación del paciente con los microorganismos de la piel del operador. el personal de salud deberá verificar que sus uñas estén cortadas o se deben retirar las uñas artificiales. incluyendo el examen clínico. por lo tanto. como de la transmisión de gérmenes de la sangre. saliva. para examen). cirugía maxilofacial y periodontal). manejo de desechos contaminados.  Retirar las joyas. USO DE BARRERAS: Comprende el concepto de evitar la exposición directa a sangre y otros fluidos orgánicos potencialmente contaminantes. ya que el aceite puede degradar el látex. Estos dispositivos de protección tienen el objeto de impedir contaminación con microorganismos eliminados por los enfermos. limpieza de ambientes y limpieza de sangre y otros fluidos corporales  Usar como mínimo un par de guantes nuevos por paciente. mediante la utilización de materiales adecuados que se interpongan al contacto de los mismos.
Las mascarillas deben tener las siguientes características:  Adaptarse con comodidad a la cara.  Carecer de costura central para evitar el paso de gérmenes. 2.  No irritar la piel. en los aerosoles y contra las salpicaduras de sangre y saliva. disparar el accionador del equipo radiográfico o de otro equipo y de ser el caso. No permanecer con los guantes puestos más de 45 minutos. Para evitar contaminarse las manos enguantadas o contaminar los objetos que toque. Los guantes deben estar bien adaptados. si son grandes o muy estrechos interfieren con la destreza manual.2. No recogerlo sino hasta la finalización de dicho tratamiento. utilizar otro similar y continuar con el tratamiento interrumpido. 48 . Los trabajadores que tengan heridas en la mano. nariz y piel descubierta. No se pasee por el consultorio con los guantes puestos.  Las mascarillas odontológicas deben filtrar partículas de 1 micrón y tener como mínimo tres capas con una eficiencia de filtración del 95%. En caso haya lesiones abiertas.  Permitir la respiración. Mientras realiza la atención.  Cubrir sin presionar los labios ni los orificios nasales. cortes. es preferible que la asistenta se encargue de controlar la luz. luego del contacto con materiales que puedan contener alta concentración de microorganismos o cuando estos se hayan contaminado con sangre. pues estos procedimientos los deterioran. los trabajadores deben evitar tratar con sangre u otros fluidos corporales. Nunca intentar desinfectar y/o esterilizar los guantes. deberán considerar la posibilidad de usar doble guante. Los guantes deben cubrir el puño del mandil. MASCARILLAS: Se utilizan para proteger las mucosas de nariz y boca contra la inhalación o ingestión de partículas presentes en el aire. así como aquellos que se dañen durante los actos operatorios. dichos guantes no deberán manipular ningún objeto o equipamiento que no esté estrictamente vinculado al área asistencial del paciente.          Cambiar los guantes entre diferentes procedimientos en el mismo paciente.  No filtrar aire por los lados. de tener que hacerlo deberá desechar esos guantes y utilizar un nuevo par. alcanzar el instrumental que no se encuentre a mano. Si durante la realización de algún procedimiento odontológico se cayera un instrumento. el contestar las llamadas telefónicas. o manos agrietadas. Evite tocarse con las manos enguantadas los ojos. pues favorece la maceración y fisuración de la piel y además produce deterioro del material del guante.
1% .  Toda mascarilla debe ser cambiada al estar presente la humedad en algunas de las capas.    En relación al uso de anteojos de protección debe considerarse:  Se deberá usar protectores oculares para cualquier tipo de procedimiento que se realice en la atención odontológica del paciente. salpicaduras de sangre y saliva y de las partículas que se generan durante el trabajo odontológico como ocurre cuando se desgastan amalgama. por consiguiente deben ser consideradas como un objeto séptico.  Frotar con un paño suave. si tiene banda sujetadora.  Nunca deben ser tocadas con las manos aun estando enguantadas. Se consideran a las de fibra de vidrio como las más eficaces. de material resistente (alto impacto). PROTECTORES OCULARES: Los protectores oculares sirven para proteger la conjuntiva ocular y el ojo de la contaminación por aerosoles.2%. usar desinfectantes tales como: alcohol isopropílico al 0. 49 . Los lentes deben ser amplios y ajustados al rostro para cumplir eficazmente con la protección  Debe tener protección lateral y frontal.  Las mascarillas deben ser de uso personal y preferentemente descartables.  Debe tener ventilación indirecta.3. En relación al uso de mascarillas debe considerarse:  Se deberá usar mascarillas para cualquier tipo de procedimiento que se realice en la atención odontológica del paciente.  Deben ser fácilmente descontaminables. Debe permitir el uso simultáneo de anteojos correctores. Debe permitir una correcta visión. Manipularlas del elástico de soporte. hule espuma.7%.  Para la desinfección. compuestos de amonio cuaternario al 0. orientada hacia atrás para evitar que se empañen. Tela. Las mascarillas están disponibles en variedad de materiales: Papel. etc.  Lavarlos y desinfectarlos después de cada paciente utilizando jabones germicidas o soluciones antisépticas.  Sus superficies son susceptibles a contaminarse. Tener presente que las soluciones altamente cáusticas dañaran la superficie de la película.0. ésta deberá retirarse y lavarse por separado.  No favorecer el empañamiento de los protectores oculares. acrílico. fibra de vidrio y otros compuestos sintéticos. 2.  Debe ser de uso personal. metales. Los anteojos deben tener las siguientes características:  Deben ser neutros.
6. el al la la 2.4. de ahí recomendación de que el mandil sea de preferencia de color blanco. prolija e impecable.5.  Preferentemente de color blanco.  Cuando se haya terminado de realizar los cuidados y antes de lavarse las manos.  Confortables. GORRA: Evita la contaminación de los cabellos por aerosoles o gotas de saliva y/o sangre generadas por el trabajo odontológico. Si pese al uso de anteojos cae sangre o saliva a los ojos. PECHERA: La pechera protege al mandil y evita las salpicaduras. 2. con observación de adicionar siempre blanqueadores caseros (lejía). En relación al uso del mandil debe considerarse:  Siempre que se trabaja en el consultorio odontológico debe usarse mandil. También protege al paciente de gérmenes que el profesional puede traer en su vestimenta cotidiana. En relación al uso de la pechera debe considerarse:  Colocarse la pechera sobre el mandil.  Deberá usarse dentro de las instalaciones del consultorio y será retirada salir de él.  No mezclar la ropa cotidiana con la vestimenta protectora.  El lavado debe seguir el ciclo normal de lavado de ropa.  Manga larga y de preferencia con el puño elástico adaptado a la muñeca. aerosoles y partículas generadas durante el trabajo odontológico.  Las pecheras pueden ser de tela o de plástico. cada vez que se realizará un procedimiento invasivo. MANDIL: El mandil protege la piel de brazos y cuello de salpicaduras de sangre y saliva.   Enjuagarlos con abundante agua y secarlos con paños de papel.  Cambiar el mandil y la pechera cuando estén visiblemente manchados o salpicados con sangre o saliva. inmediatamente debe aplicarse repetidas veces agua con un gotero. 2.  Cerrado hasta el cuello. Tener cuidado de no rayarlos con productos en base a piedra pómez. líquidos o fluidos corporales del enfermo evitando el cambio de este entre pacientes. Debe tener las siguientes características:  Longitud aproximadamente hasta el tercio superior del muslo.  Debe mantenerse siempre limpia. 50 . los mandiles serán removidos o desechados  Depositar y transportar la pechera en bolsas plásticas descartables.
Si se efectúa una segunda punción durante un mismo procedimiento clínico. para volver a colocar la cubierta protectora de la aguja o algún método que elimine la posibilidad de pincharse. curetas periodontales y para dentina. 3. Coordinar con precisión el pase de instrumentos punzo-cortantes entre el asistente y el operador. exploradores. En relación a los residuos punzo-cortantes se considera:           Nunca reinsertar con las manos las agujas en su protector. fresas de diamante y carburo. Los recipientes descartadores deben estar lo más próximo posible al área de trabajo. evitando la caída hacia la parte anterior o lateral de la cara. piedras montadas y discos de pulido. resistentes a la punción.  El cabello debe estar totalmente recogido. ni querer romperlas. instrumentos de endodoncia. etc. debe delimitarse un campo estéril en el área clínica directa para dejar la jeringa carpule (riñón o bandeja estéril).En relación al uso del gorro debe considerarse:  El gorro debe cubrir totalmente el cuero cabelludo. MANEJO DE RESIDUOS CONTAMINADOS: Comprende el conjunto de dispositivos y procedimientos adecuados a través de los cuales los materiales utilizados en la atención de pacientes. son depositados y eliminados sin riesgo. Los pinchazos o cortes con aguja o instrumento contaminado con sangre o secreciones son altamente peligrosos. 3. Las agujas sin cubierta protectora deben retirarse de las jeringas utilizando una pinza porta agujas o desinsertarla en contenedores.1. Nunca dejar la aguja sin cubierta en la bandeja de instrumentos. MANIPULACIÓN DE RESIDUOS PUNZOCORTANTES: Un gran porcentaje de los accidentes laborales se da por el mal manejo del material punzocortantes. 51 . los residuos orgánicos de los instrumentos que se están utilizando. Estos instrumentos incluyen: agujas. tijeras bandas y alambre para ortodoncia. cinta matriz. En caso contrario solo el operador deberá manipular el instrumental de la bandeja. bisturís. Las hojas de bisturí deben retirarse del mango con instrumentos con cremalleras. No doblar las agujas. No permitir que el asistente limpie con una gasa o algodón. aun con las manos enguantadas. O bien utilizar siempre una pinza porta aguja. Las jeringas y agujas usadas deben ser recolectados y eliminados en recipientes descartadores rígidos.
el nivel de vapor de mercurio aumenta considerablemente. que se cerrará herméticamente antes de su eliminación. previa rotulación con el título de “Material Tóxico”. MANIPULACIÓN DE MATERIAL TÓXICO: Una de las muchas precauciones que se deberá tener en el consultorio odontológico es respecto a la manipulación del mercurio. pero cuando se equivocan los procedimientos para su utilización. ya que el calor del esterilizador incrementa notoriamente los niveles de gases mercuriales con el consiguiente daño para la salud de quienes trabajan en el consultorio. Lo que se recomienda hacer es evitar el contacto físico de las manos con la amalgama y mantener herméticamente cerrado los frascos que contengan mercurio. La eliminación de residuos contaminantes.3. Respecto al tema de contaminación ambiental producida por la amalgama y más propiamente respecto al mercurio. ya que el paciente permanece muy poco tiempo en el consultorio como para perjudicarse con sus gases. El uso de aspiradoras sobre las alfombras contaminadas puede causar una elevación en el nivel ambiental de mercurio. como puede ser el permitir los derrames accidentales. el calentar en el esterilizador instrumentos que presenten restos de amalgama y la eliminación de antiguas amalgamas sin usar aerosol de agua. aumenta la concentración de mercurio en el ambiente. deberán ser colocados dentro de un recipiente descartable a prueba de agua. Se deberá tener mucho cuidado en limpiar el resto de Mercurio de todos los instrumentos utilizados e la confección de obturaciones de amalgama. la ventilación y los años de uso del mismo. tipo de revestimiento de los pisos. Cuando se pisan las amalgamas que se encuentran en el suelo o al momentote prepararlas. Cuando una amalgama es calentada a consecuencia de su remoción con una fresa de alta velocidad. la confección de amalgama en la palma de la mano de la asistente o del profesional. Todos los sobrantes se guardarán en un frasco de vidrio que contenga agua. La fricción de las partículas contenidas en las alfombras eleva el vapor de mercurio 10 y 20 veces por encima del límite de seguridad y estos niveles dañinos se mantienen durante varios días. por lo que 52 . el hecho de exprimir con los dedos descubiertos los excesos de mercurio de una amalgama.2. Se recomienda eliminar las alfombras y tapetes en las áreas de tratamiento. las fallas de los amalgamadores. Sin embargo se debe expresar que si existen algunas personas que presentan reacciones alérgicas al mercurio. la higiene del consultorio. se ha determinado que existe relación con el número de amalgamas que se elaboren. Los riesgos del paciente en relación al mercurio no son grandes. La exposición al mercurio metálico es un factor de riesgo. como son los excesos de amalgama de plata.
elementos punzocortantes. tales como sustancia para revelado. radioactivas y líquidos tóxicos. Para este tipo de residuos se debe utilizar bolsas de color amarillo. Deben ser depositados en bolsas rojas.se reitera la utilidad de usar succionadores de alta potencia cuando se efectúa este tipo de trabajo. Los residuos biocontaminados provenientes del área asistencial (algodones. Los residuos comunes o no contaminados provenientes de la limpieza en general (polvos. inyectores de saliva. deben tener asa para su transporte y que la misma permita manipularlo lejos de la abertura del descartador. Es recomendable que los descartadores deben estar hechos con material resistente a los pinchazos y compatible con el procedimiento de incineración sin afección del medio ambiente. gasas. Los residuos especiales lo constituyen los elementos contaminados con sustancias químicas. Las partículas de amalgama combinadas con otras fuentes de mercurio existentes en los consultorios.3. vendas. La abertura debe ser amplia de forma tal que al introducir el material descartado. etc. mercurio. etc. La presencia de mercurio en las partículas de amalgama es baja. cartones.). etc. no representan riesgo de infección para las personas que lo manipulan y que por su semejanza con los residuos domésticos pueden ser considerados como tales. contribuyen al riesgo de la salud para quienes trabajan en odontología y para el paciente. Debe tener tapa para que cuando se llene hasta las dos terceras partes del 53 . con materiales e insumos necesarios para descartar los residuos de acuerdo a los criterios técnicos establecidos en esta Norma. son residuos sólidos con grandes cantidades de microorganismos provenientes de las secreciones. plásticos. papeles. ELIMINACIÓN DE RESIDUOS: Para la eliminación de los residuos se debe acondicionar previamente los servicios. excreciones y demás líquidos orgánicos del paciente y si no se eliminan en forma apropiada. Deben ser almacenados en recipientes con bolsas de color negro. Estos residuos deben ser tratados previamente (incineración.). desinfección por microondas ó enterramiento controlado) antes de ser eliminados en los rellenos sanitarios autorizados por DIGESA. la mano del operador no sufra riesgo de accidente. esterilización por autoclave. la no disponibilidad de bolsa color rojo obliga a colocar rótulos bien legibles indicando “residuos contaminados”. Los residuos contaminados como los materiales punzocortantes deben ser depositados en los descartadores. con destino a su eliminación. de manera que la amalgama no es considerada como una fuente de vapor. 3. son potencialmente riesgosos. guantes. Estos descartadores no deben bajo ninguna circunstancia ser reutilizados.
se usarán recipientes rígidos como botellas plásticas de gaseosa. se pueda obturarlo en forma segura. Desechar los residuos con un mínimo de manipulación. deben asegurarse que la empresa prestadora de servicios de manejo de residuos sólidos hospitalarios. por ello los métodos de tratamiento recomendado son: enterramiento 54 . Cerrar herméticamente las bolsas una vez que estén llenas en las dos terceras partes. Deberá tener dicha inscripción y símbolo. color y capacidad de las bolsas (que debe ser al menos 20% mayor de la capacidad del recipiente) a utilizar según la clase de residuos. Identificar y clasificar el residuo para eliminarlo en el recipiente respectivo. Las autoridades del establecimiento de salud. de buena capacidad.5% con la finalidad de desinfectar el material y dañarlo para impedir que vuelva a ser usado. de forma de visualizarlo fácilmente desde cualquier posición. Los residuos deben ser tratados sin perjuicio a la población y al medio ambiente. En el caso de que no se pueda adquirir descartadores. sobre todo para aquellos residuos biocontaminados y especiales. Sumergir los residuos en hipoclorito de sodio al 0.volumen del mismo. eliminar la aguja con una pinza porta aguja. Los descartadores deben ser de color amarillo y tener el símbolo de material infectante y una inscripción advirtiendo que se manipule con cuidado. de dimensiones no menores a un tercio de la altura mínima de capacidad del recipiente y con dos impresiones. debe contar con la autorización emitida por el Municipio y ser depositada en rellenos sanitarios registrados en la DIGESA. Ubicar el recipiente para el residuo punzocortante de tal manera que no se caiga ni se voltee. además de contar con la autorización para la disposición final de residuos sólidos hospitalarios. descartar sólo la aguja en dicho recipiente Si el recipiente no cuenta con dispositivo de separación de aguja. de paredes rígidas y cierre a rosca que asegure inviolabilidad. Los residuos deben permanecer el menor tiempo posible acumulados en las áreas de trabajo retirándose con una frecuencia mínima de una vez por turno y siempre que se encuentren llenos los recipientes. Si el recipiente tiene dispositivo para separar la aguja de la jeringa. Las bolsas nunca deben ser arrastradas. Para la eliminación de residuos se debe considerar:            Determinar la cantidad. Los recipiente serán colocados con sus respectivas bolsas lo más cercano posible a la fuente de generación.
a todo contacto con sangre o fluidos corporales y que lleva una solución de continuidad (pinchazo o herida cortante) o con contacto con mucosa o piel lesionada (eczema. Dudosa: Cualquier lesión causada con instrumental contaminado con fluidos no infectantes. Inyección accidental de más de 1 ml. Probable: Herida superficial sin sangrado espontáneo con instrumentos contaminados con sangre o fluidos infectantes o bien mucosas expuestas a sangre o fluidos infectantes. 1. de sangre o fluidos contaminados. Definida: Cualquier herida que sangre espontáneamente contaminada con sangre o fluidos infectantes o bien.controlado.4. 1. o exposición de piel intacta o fluidos o sangre infectante.2.). 55 . CLASIFICACIÒN DE AES: Los Accidentes de Exposición a Sangre (AES) se clasifican de acuerdo a la naturaleza de la exposición y puede clasificarse en 4 categorías probables: 1. 1.1. 1. etc. esterilización por autoclave. excoriación. 2. Masiva: Transfusión de sangre infectada por VIH. cualquier herida penetrante con aguja u otro instrumento contaminado con sangre o fluidos infectantes.3. En un AES se debe definir:  La víctima o personal de salud accidentado  El material causante del accidente  El procedimiento determinante del mismo  La fuente. es decir la sangre o fluido potencialmente contaminante. MEDIDAS BASICAS FRENTE A ACCIDENTES DE EXPOSICIÓN A SANGRE O FLUIDOS CORPORALES (AES): Se denomina AES. Cualquier exposición parenteral a materiales de laboratorio o de investigación conteniendo virus VIH. incineración y desinfección por microondas.
En un contacto mucoso con sangre contaminada baja a un 0.  HEPATITIS A VIRUS B (HBV): el riesgo de infectarse por este virus en un accidente laboral a través de una aguja que tiene sangre contaminada es promedio un 15%. pueden ser transmitidos en el curso de un accidente.  HEPATITIS A VIRUS C (HVC): el riesgo en este caso no está todavía bien precisado citándose cifras de hasta un 10%. Tabla Nº 8 Infecciones Transmisibles de Interés en Odontología Enfermedad Hepatitis Tipo B Sida Tuberculosis Herpes simple Tipo I Herpes simple Tipo II Conjuntivitis Herpética Agente Modo de Transmisión Periodo de Incubación Sangre.1%. Virus contacto con sangre. llegando hasta un 40%.5 . pero igualmente presentan una serie de secuelas y complicaciones (ver tabla Nº 8 y 9). saliva. muerte Dolor. sangre latente Autoinoculación con 3 a 7 días Virus saliva infectada latente Virus Secuelas y complicaciones Carcinoma de hígado Muerte Inhabilitación. Virus semanas saliva. Hasta 6 meses Bacteria instrumentos latente contaminados Contacto con saliva 3 a 7 días Virus infectada latente Hasta 2 Contacto sexual. saliva.05%. inhabilitación Lesiones dolorosas Ceguera 56 . En la práctica odontológica también se produce la transmisión de otras enfermedades de menor frecuencia. Hasta 10 años madre-niño Inhalación. AGENTES INFECCIOSOS TRANSMITIDOS POR AES: Numerosos agentes infecciosos en la sangre o fluidos corporales de lo que se denomina "fuente". 2 a 6 meses material contaminado Contacto sexual. En la práctica los agentes más frecuentemente comprometidos en los AES son:  VIRUS DE LA INMUNODEFICIENCIA HUMANA (VIH): el riesgo de infectarse por este virus en un accidente laboral a través de una aguja que tiene sangre contaminada es estimado en 0.2.
periodontitis Exposición a heridas cutáneas Saliva. sangre 4 a 7 semanas Inhalación 14 a 25 días Gonorrea Mononucleosis Infecciosa Paperas Virus Infecciones Estreptocósicas Bacteria Infecciones Estafilocócicas Bacteria Resfrió Virus Contacto con secreciones ulceras orales.Bacteria Contacto sexual. esterilidad en mujeres Sífilis Bacteria Contacto directo. => PAC ? Alto Bajo Alto Bajo Bajo Bajo Bajo Bajo Intermedio Alto Raro Intermedio Intermedio Intermedio Bajo ? Alto Bajo Alto ? Raro Raro ? Raro Intermedio Alto ? Intermedio Intermedio Intermedio Bajo 57 .S. Por meningocosos Parotiditis Rotavirus Rubeola Salmonella/Shigella Línea De Transmisión P. muerte Inhabilitación temporal Inhabilitación temporal. saliva. contacto sexual 2 a 12 semanas Daño cerebral. sangre 1 a 7 días Artritis.S. VIH/SIDA Viruela/Zoster diseminado Zoster localizado Conjuntivitis viral Citomegalovirus Hepatitis A Hepatitis B Hepatitis no A y no -B Herpes simple Influenza Sarampión Infec. esterilidad en hombres Osteomielitis reumatismo cardiaco Osteomielitis neumonía Inhabilitación temporal FUENTE: UPCH “Control de las Infecciones Transmisibles en la Práctica Odontológica Tabla Nº 9 Riesgo de Transmisión de las Infecciones entre los Pacientes y el Personal de Salud Enfermedad PAC =>P. sangre 1 a 3 días 4 a 10 días 48 a 72 horas Inhabilitación. muerte Tétano Bacteria Heridas abiertas 7 a10 días Virus Saliva. sangre.
Avisar al supervisor inmediato. En caso de corresponderle los beneficios y prestaciones de Seguros. Primeros cuidados de urgencia 1. 3. deberá ser enviado inmediatamente al mismo a los efectos de proseguir con las medidas a tomar. Contacto con piel intacta: Efectuar arrastre mecánico con abundante agua corriente. o alcohol yodado o tintura de yodo al 2%.Bajo ? ? Bajo a alto Bajo Sarna Streptococo aureus Streptococo grupo A Tuberculosis Sífilies Bajo Raro Raro Bajo a alto ? FUENTE: OPS . No utilizar desinfectantes sobre las mucosas. 1.SILOS Nº 12 (?): No hay suficientes datos para comentar 3. Favorecer el sangrado haciendo que fluya sangre al exprimir la zona adyacente a la lesión. (3 minutos).3. 4. por un tiempo no menor a 10 minutos. Volver a lavar la herida con agua y jabón Realizar antisepsia de la herida con alcohol al 70% vol. realizar la evaluación 58 . Cada Institución definirá quien registrará los datos a efectos de recabar la información necesaria para asegurar que se den todos los pasos correspondientes en forma eficiente. boca): Lavar abundantemente con agua o con suero fisiológico. 1. 2. Contacto con mucosas (ojo. nariz. no menos de diez minutos. El supervisor designado por la institución en el punto 2 deberá.2. Mantenga la herida cubierta siempre que atienda a un paciente hasta su total cicatrización. con el asesoramiento técnico que corresponda.1. Pinchazos y heridas:        Retirarse los guantes inmediatamente Lavar inmediatamente la zona cutánea lesionada con abundante agua y jabón. CONDUNTA A SEGUIR EN CASO DE UN AES: Cuando ocurre un AES se debe realizar los siguientes procedimientos: 1. En el caso de ojos agregar colirio simple. Dependiendo del tamaño de la herida cubrir la misma con gasa estéril.
En caso de no poderse evaluar el caso fuente éste debe ser considerado como positivo y procederse en consecuencia. 6. Es necesario conocer el estado clínico-serológico del paciente fuente.. definida y masiva. A las 48 horas el médico de referencia deberá reevaluar toda la situación. No es conveniente que el propio trabajador accidentado sea el que realice dicha evaluación. El supervisor responsable de la evaluación solicitará al accidentado en forma voluntaria los exámenes serológicos correspondientes.del tipo de riesgo generado por dicho accidente. teniendo en cuenta la presencia de indicadores de riesgo de infección. 12. el conocimiento de la serología del paciente fuente y la tolerancia de la medicación. Se complementará el formulario de declaración de accidente laboral que se adjunta el cual se archivará en la Institución tanto pública como privada. En el caso de VIH se iniciara el tratamiento lo antes posible. En el caso de Hepatitis B se debe aplicar inmunoglobulinas y vacunas según el caso (ver tabla Nº 10). el médico prescribirá la realización de los siguientes exámenes previo consentimiento del paciente: serología para VIH. 7. Cada institución tendrá la medicación disponible en todo momento para iniciar un tratamiento. 11. Tienen indicación de tratamiento los accidentes por exposición laboral de las categorías probable. La extracción deberá hacerse dentro de las 24 horas de producido el accidente. 10. Tabla Nº 10 Medidas Complementarias a la exposición del virus de la hepatitis B (VHB) Si Y Entonces el --Trabajador de Salud 59 . dentro de las seis horas de producida la exposición. 5. En ningún caso se demorará el comienzo de la medicación por dicho examen. El tratamiento será a base de antiretroviral de acuerdo al esquema que maneja la estrategia. Con estos elementos se evaluará la pertinencia de la continuación del tratamiento iniciado o la interrupción del mismo en caso de no ser justificado. 9. Notificar el accidente a los Comités Locales de Control de Infecciones del establecimiento de salud. Si el estado serológico es desconocido. marcadores de hepatitis y otros análisis que juzgue por conveniente el profesional. 8.
bacterias. Si fuente es de alto riesgo o hepatitis B sospechosa de HBsAg. hongos.1. debe recibir HBlg en los 7 primeros días Personal de salud está El manejo debe ser individualizado para vacunado contra la cada caso hepatitis B FUENTE: UPCH “Control de las Infecciones Transmisibles en la Práctica Odontológica VIII.06 ml/kg) Anti-HBs : Anticuerpos contra antígeno de superficie para hepatitis B ANEXOS: ANEXO I DEFINICIONES OPERACIONALES 1. HBsAg : Antígeno de superficie para Hepatitis B HBlg : Inmunoglobulina específica para Hepatitis B (DOSIS: 0. Fuente de contacto niega a analizar sangre o no identifica la fuente contacto se su se de Debe recibir esquema de vacunación contra hepatitis B 2. Fuente de contacto es hallada positiva para HBsAG Fuente de contacto es hallada negativa para HBsAg. protozoarios o helmintos capaces de producir una infección. 60 . Debe recibir dosis única de HBlg en los 7 primeros días Debe medirse anti-HBs y si es < 10 mU aplicar una dosis de HBlg y vacuna de refuerzo Personal de salud no está vacunado contra hepatitis B Personal de salud está vacunado contra hepatitis B Personal de salud no está vacunado contra Debe recibir vacuna contra hepatitis B hepatitis B Personal de salud está No requiere ninguna medida vacunado contra la hepatitis B 1. Debe recibir el esquema Personal de salud no vacunación está vacunado contra 2. AGENTE INFECCIOSO: Virus. rickettsias.
En circunstancias especiales puede eliminar el Mycobacterium tuberculosis. 7. DESINFECTANTE DE BAJO NIVEL: Destruye bacterias patógenas en su forma vegetativa y algunos hongos. 61 . Existen desinfectantes de nivel bajo que no destruyen las formas vegetativas de todas las bacterias. 10. Dentro de su evolución puede tener un estadio asintomático es decir sin sintomatología.2. CONTAMINACIÓN: Es la presencia de un agente infeccioso en la superficie del cuerpo. DESINFECTANTE DE NIVEL INTERMEDIO: Destruye las formas vegetativas de bacterias. vendajes quirúrgicos u otros artículos inanimados o sustancias incluyendo el agua y los alimentos. el peroxido de hidrógeno. FUENTE: Es el lugar desde el cual un agente infeccioso pasa hacia el huésped. hongos y virus pero no necesariamente todos los virus de tamaño pequeño no lipídico. DETERGENTE: Los detergentes son agentes químicos utilizados para la eliminación de suciedad que es insoluble en el agua. 5. ENFERMED INFECCIOSA: Se define como la proliferación de microorganismos dentro de los tejidos produciendo daño y dando lugar a una variedad de manifestaciones clínicas. 8. BIOSEGURIDAD: Es el conjunto de actitudes y procedimientos orientados a impedir la contaminación por microorganismos hacia el personal de salud y hacia el paciente. ENFERMEDAD TRASMISIBLE: Es aquella causada por un agente infeccioso capaz de transmitirse de una persona o animal infectado o de un reservorio a un huésped susceptible. el formaldehído y los productos basados en ácido paracético. La fuente puede ser animada (ser vivo) o inanimado (objetos). instrumentos. 3. tuberculoso y a los virus resistentes. DESINFECTANTE DE ALTO NIVEL: Destruye todos los microorganismos incluyendo al M. el orthophthaldehído. Aquí se incluyen los Compuestos clorados. 4. 9. 6. Este paso puede ser por contacto directo o indirecto. los alcoholes y los fenoles. En este grupo están los amonios cuaternarios. vestidos. los agentes Iodóforos. no elimina el Mycobacterium tuberculosis ni los virus de tamaño pequeño no lipídicos. Como ejemplo esta el glutaraldehído. pero no lo hace con todas las esporas bacterianas. con sintomatología leve (sub-clínica) o con sintomatología evidente (infección activa).
14. 16. en razón de sus actividades. utilizando para ello el lavado manual o mecánico. mucosas o cavidades del paciente. mucosas o cavidades y que implica el riego de contaminación. ANEXO II PREPARACIÓN DE DESINFECTANTES QUÍMICOS 62 .11. TRANSMISION INDIRECTA: Es la transferencia de un agente infeccioso a un individuo susceptible a través de vehículos de transmisión. 20. clínicas. FUENTE DE GENERACIÓN: Unidad o servicio del establecimiento de salud que. El propósito de la limpieza es disminuir la biocarga (número de microorganismos) a través del arrastre mecánico. mucosa oral mucosa nasal. químicas y biológicas de un residuo peligroso en un residuo no peligroso o bien menos peligroso a efectos de hacer más seguras las condiciones de almacenamiento. 12. 17. genera residuos sólidos. laboratorios y otros. INCINERACIÓN: Método de tratamiento de residuos que consiste en la oxidación química para la combustión completa de los residuos en instalaciones apropiadas. PROCEDIMIENTOS NO INVASIVOS: Procedimientos que no penetran piel. LIMPIEZA: La limpieza es la remoción mecánica de toda materia extraña en el ambiente. vectores o aerosoles. a fin de reducir y controlar riesgos a la salud y ambiente. TRANSMISION DIRECTA: Es el traspaso directo e inmediato de un agente infeccioso a puerta de puerta de entrada receptiva tal como piel. conjuntivas o cosas genitales. RESIDUOS SÓLIDOS HOSPITALARIOS: Los Residuos Sólidos Hospitalarios son aquellos desechos generados en los procesos y en las actividades de atención e investigación médica en los establecimientos como hospitales. PROCEDIMIENTOS INVASIVOS: Procedimientos que penetra piel. 15. 18. postas. 13. TRATAMIENTOS DE RESIDUOS: El tratamiento de los residuos sólidos hospitalarios consiste en transformar las características físicas. 19. en superficies y en objetos. Usualmente se utiliza agua y detergente para este proceso. TRANSMISION: Es cualquier mecanismo en virtud del cual un agente infeccioso se propaga en el ambiente o de un persona a otra. transporte o disposición final.
existen 2 formas: a. HIPOCLORITO DE SODIO Para obtener 1 litro a una concentración del 1% (1:5).  Utilizar las diluciones especificadas. 3.  Las diluciones de la lejía concentrada deberán realizarse en forma diaria reduciendo de esta manera la pérdida significativa de cloro activo. Medir 62. delantal de polietileno y barbijo).5% (durante el periodo de uso de 14 ó 28 días desde la activación). Nunca superar ese tiempo establecido.  El agua utilizada para la dilución de la lejía concentrada será agua corriente (no destilada) y fría.1. guantes de látex. 2. Precauciones:  La lejía concentrada deberá almacenarse a temperatura inferior a 25º.5cc de glutaraldehído y agregar 937.  No superar los tiempos de exposición establecidos ya que es inútil. b. existen 2 formas: a.5% (1:10). Medir 100cc de lejía doméstica y agregar 900cc de agua destilada. GLUTARALDEHÍDO AL 2% CON BUFFER FENÓLICO Para obtener 1 litro a una concentración de 1:16. Medir una parte de solución y agregar 15 partes de agua destilada. b.  Los elementos que se colocan en este producto deben estar siempre secos.  La solución de glutaraldehído al 2% activada utilizada para esterilizar o desinfectar debe descartarse a los 14 ó 28 días después de ser activado. existen 2 formas: a. Para obtener 1 litro a una concentración del 0.5cc de agua destilada. a fin de evitar dilución del preparado. protegida de la luz en frascos plásticos opacos y bien tapados. Medir 200cc de lejía doméstica y agregar 800cc de agua destilada para obtener un litro de hipoclorito al 1%.  Utilizar tiras de control de concentración de glutaraldehído con el fin de descartar aquellas soluciones cuya concentración haya disminuido por debajo del 1. no aumentar la concentración ya que es inútil por eficacia y costo.  El envase donde se almacena el glutaraldehído activado deberá estar bien tapado.  Nunca utilizar lejía concentrada como desinfectante o decontaminante ya que es totalmente ineficaz. Nunca utilizar agua caliente o tibia. ALCOHOL DE 70° 63 . Precauciones:  Trabajar con ambiente bien ventilado con elementos de protección (anteojos de seguridad. Medir una parte de lejía doméstica y agregar nueve partes de agua destilada. Medir una parte de lejía doméstica y agregar cuatro partes de agua destilada. b.
no tiene propiedades germicidas. Precauciones:  Conservar en sitio fresco (inferior a 25o C) en recipientes de vidrio de color caramelo. ALCOHOL IODADO Para obtener un litro de alcohol iodado: Medir 100 ml de tintura de yodo fuerte y agregar 900ml. de alcohol de 70°. por lo tanto nunca usar alcohol de 95º sin diluir.  Evitar el contacto directo con elementos metálicos ya que es corrosiva. FORMALDEHÍDO Para obtener 1 litro de formaldehído al 8%: Medir 200cc de formol comercial al 40% y agregar 800cc de agua destilada. Necesita la presencia de agua para actuar como microbicida. al abrigo de la luz. Precauciones:  El alcohol de 95º. 5. Para obtener 1 litro de formaldehído al 4%: Medir 100cc de formol comercial al 40% y agregar 900cc de agua destilada. 4. 64 .Para obtener 1 litro de alcohol de 70°: Medir 623cc de alcohol de farmacia de 95° y agregar 377cc de agua destilada para obtener un litro de alcohol de 70º.
Programa Especial de Control de SIDA. “Manual de Bioseguridad para VIH/SIDA”.Octubre de 1991. “Normas de Bioseguridad”. Ministerio de Salud “Manual de Bioseguridad para Laboratorios”. MINSA. Publicación N° 3. Perú . MINSA. Resolución Ministerial N° 753-2004/MINSA. “Manual de Bioseguridad”. Lima – Perú. BIBLIOGRAFÍA: 1. Resolución Ministerial N° 452-2003 SA/DM. MINSA. República Argentina. 11. “Norma Técnica de Vigilancia Epidemiológica de las Infecciones Intrahospitalarias”. Ministerio de salud. Perú – 2004. Gobierno de Chile. Jaime Otero M. Adelina LO BUE y Col. Ministerio de Salud Pública. “Normas Técnicas sobre Esterilización y Desinfección de Elementos Clínicos y Manual para su aplicación”. 27 de Noviembre del 2001. Lima – Perú. “Control de las Infecciones Transmisibles en la Práctica Odontológica”. 5. MINSA. y Jaime Ignacio Otero. 12. Gabriel Flores Mana. Gobierno de Mendoza. OPD/INS. Ministerio de salud. “Manual de Aislamiento Hospitalario”. 2. “Norma Técnica de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias”. 6. 9.Perú – 2004. Ministerio de Salud “Manual de Esterilización y Desinfección Hospitalaria”. 1995. Edición. Ministerio de salud. Víctor Vives Barreto. 3. Margarita Serra y Col. Ministerio de Salud. Perú – 2005.2003. 1ra. Ministerio de Salud. 7.IX. “Norma Técnica de Manejo de Residuos Sólidos Hospitalarios”. MINSA. Instituto Nacional de Salud Resolución Jefatural N° 447-2002. Perú . Ministerio de Salud Chile. Uruguay. 65 . Perú – 2002. Wilson Delgado Azañero. Resolución Ministerial N° 179-2005/MIN. 2002. Ministerio de Desarrollo Social y Salud. 8. Noviembre 1997. “Manual de Bioseguridad en Odontología”. Universidad Particular Cayetano Heredia. Perú -2002. 4. Resolución Ministerial N° 217-2004 SA. 10. 1999.
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