Source: https://es.scribd.com/document/58053626/BIOSEGURIDAD-MINSA
Timestamp: 2016-07-23 09:25:53+00:00

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49 3.……... MANIPULANCIÓN DE MATERIAL TÓXICO………………..3. AGENTES INFECCIOSOS TRANSMITIDOS POR AES…….5. USO DE BARRERAS…………………………………………………..56
VI. MANEJO DE RESIDUOS CONTAMINADOS………………………... MANDIL…………………………………………………………... MASCARILLAS………………………………………………….49 3. CLASIFICACIÓN DE AES……………………………………….6. PROTECTORES OCULARES………………………………….1.49 2..2.……53 2.. 63
VII. 51 DE
2. MEDIDAS BÁSICAS FRENTE A ACCIDENTES DE EXPOSICIÓN A SANGRE O FLUIDOS CORPORALES (AES)………………………. 47 2. GORRA……………………………………………………………. CONDUCTA A SEGUIR EN CASO DE UN AES……………. 53 1. PECHERA…………………………………………………………... ELIMINACIÓN RESIDUOS…………………………………. 49 3.. 45 2..2. MANIPULANCIÓN DE RESIDUOS PUNZOCORTANTES….
ANEXOS………………………………………………………………………...2...54 3.
. ..4.. GUANTES……………………………………………………….3. 47 2. 48 2.50 3.. 59 BIBLIOGRAFÍA……………………………………………………………… . 45 2...1.
El Equipo de Salud que otorga la atención odontológica y sus pacientes. de potenciales portadores de enfermedad. hay que destacar que a su vez el operador es portador de microorganismos en sus manos y cuerpo en general. aerosoles y las superficies contaminadas.
. la importancia de la salud ocupacional. producto de la aparición de nuevas enfermedades. por lo que el contacto repetitivo entre profesional y paciente con tales características. el equipo. incorporación de nuevas tecnologías de tratamiento. Asimismo. hacen necesario tomar diferentes medidas de protección para prevenir la infección cruzada. especialmente fluidos corporales. están expuestos a una variedad de microorganismos por la naturaleza de las interacciones. se debe considerar que el perfil de la atención odontológica ha cambiado enormemente en los últimos años. la importancia de la protección del ambiente y la masificación de la información han generado la necesidad revisar y actualizar los procedimientos para el control de las infecciones en la práctica odontológica. el interés social por la calidad de los servicios de salud. donde se produce un contacto directo o indirecto con el instrumental. Además.
personal auxiliar. La norma de Bioseguridad en Odontología ha sido elaborada teniendo en cuenta la bibliografía actual y la normatividad vigente. manejo de residuos contaminados y medidas básicas frente a accidentes de exposición a sangre o fluidos corporales. es necesaria la evaluación periódica de estas Normas para adecuarlas al conocimiento científico actualizado. dentro de otros. manejo del material.En tal sentido se ha desarrollado la norma técnica de Bioseguridad en Odontología. cuidados del personal asistencial. Asimismo. No obstante.
I. de estos al paciente y entre pacientes del servicio odontológico. secreciones orales y/o respiratorias desde el paciente hacia los profesionales y colaboradores.
II. se han adaptado a los recursos económicos y financieros disponibles en nuestro medio para que se pueda cumplir lo mejor posible. personal de limpieza y personal de laboratorio.
OBJETIVOS:  Establecer las medidas de prevención para evitar las enfermedades de riesgo profesional y la infección cruzada entre el profesional odontólogo. la enseñanza y la vigilancia de su cumplimiento. en el curso de su trabajo diario. cuando se enfrenta a riesgos para su salud y la de la comunidad. sino también su difusión. la que se define como un conjunto de procedimientos básicos de conducta que debe seguir cualquier personal de salud. uso de barreras protectoras. con la evolución del conocimiento humano.  Establecer la conducta a seguir frente a un accidente con exposición a sangre y otros fluidos corporales. del servicio de odontología.
La Norma Técnica de Bioseguridad en Odontología tiene como finalidad reducir el riesgo de transmisión de enfermedades infectocontagiosas a través de la sangre. manejo del ambiente odontológico. pacientes. Pero no solo se requiere el diseño de normas y procedimientos efectivos y de bajo costo. e instrumental. Esta incluye.
La presenta norma es de aplicación obligatoria en los consultorios odontológicos de los establecimientos públicos y privados del Sector Salud. Por esta razón. D.  Resolución Ministerial N° . 014-2002 – SA.
BASE LEGAL:  Ley General de Salud. que aprueba el Manual de Aislamiento Hospitalario.  Ley del Ministerio de Salud Nº 27 657 y su Reglamento.
Cuando se realizan procedimientos odontoestomatológicos de rutina. MEDIDAS BÁSICAS DE INFECCIONES TRANSMISIBLES:
.  Resolución Ministerial N° 179-2005/MIN. que aprueba la Norma Técnica de Vigilancia Epidemiológica de las Infecciones Intrahospitalarias.III. Si tenemos en cuenta además. en todo el territorio nacional. se pueden causar durante las maniobras pequeños sangrados o incluso no es raro observar sangrados espontáneos. que aprueba la Norma Técnica del Manejo de Residuos Sólidos Hospitalarios. Nº 26842. que aprueba el Manual de Esterilización y Desinfección. S. podemos concluir que el odontólogo puede contaminarse o contaminar accidentalmente.
V. creemos que el odontólogo debe conocer detalladamente las normas de bioseguridad e incorporarlas a su práctica cotidiana.  Resolución Ministerial N° 452-2003 SA/DM. La presente Norma de Bioseguridad abordará principalmente las medidas preventivas para evitar la transmisión de enfermedades infecciosas y las mediadas a tomar cuando se produzca un accidente de exposición a sangre y otras secreciones corporales. que aprueba la Norma Técnica de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias.  Resolución Ministerial N° 753-2004/MINSA. que la cavidad bucal es portadora de una multiplicidad de agentes microbianos.  Resolución Ministerial N° 217-2004 SA.
deben hacerse pruebas para asegurarse que la vacuna provea inmunidad contra la infección correspondiente. Las medidas deben involucrar a todos los pacientes. los pacientes con hepatitis B tienen la probabilidad de transformarse en portadores crónicos (10%) y posteriormente. PRECAUCIONES UNIVERSALES: Constituyen un conjunto de medidas que deben aplicarse sistemáticamente a todos los pacientes sin distinción. producida por un virus 100 veces más infectante que el virus HIV. asimismo. 2. la probabilidad de contagio es de alrededor del 0. por las siguientes razones: la hepatitis B es una enfermedad transmitida por sangre. padecer cirrosis. frente a un accidente punzante con aguja contaminada con sangre infectada con HIV. independientemente de presentar o no patologías. Uso de barreras. Asimismo. Esta vacuna debe ser aplicada en dosis completas y según esquema vigente. es del 30%. Por otra parte. 3. es la más importante.
1. a las cuales el odontólogo y su personal auxiliar estas expuestos. igualmente señalar los diferentes procedimientos que eliminen el riego de transmitir al paciente infecciones por contacto directo o a través del uso de instrumental o material contaminado. INMUNIZACIONES: El personal que labora en el consultorio odontoestomatológico y que tienen la posibilidad de exposición a sangre u otros fluidos corporales debe recibir la vacuna contra la hepatitis B. el 85-95% de los 8
. La vacuna contra la hepatitis B. considerando que toda persona puede ser de alto riesgo.1.Estas normas están destinadas a reducir el riesgo de transmisión de enfermedades infectocontagiosas de fuentes reconocidas o no reconocidas. El cáncer hepático es el único cáncer que se previene con una vacuna.
1. Precauciones universales. para que disminuyan el riego de adquirir infecciones en el medio laboral. por ejemplo. Estas medidas preventivas están basadas en tres principios fundamentales: 1. mientras que si lo mismo ocurre con un elemento contaminado con virus de hepatitis B.4%.1. considerar todo fluido corporal como potencialmente contaminante. 1.1. Lo más grave aún es que los pacientes con cirrosis relacionada con hepatitis B tienen un riesgo 247 veces mayor de contraer cáncer hepático que la población en general. Además. Manejo de residuos. CUIDADOS DEL PERSONAL: Son todas aquellas precauciones estándares que rutinariamente deben seguir todo el personal que labora en el servicio de odontología.
la vacuna se aplica por inyección intramuscular profunda en región deltoidea. Su control debe ser hecho a través de títulos positivos de AgHBs o niveles altos de Anti AgHBs (mayor de 10 mUI/ml).sujetos normales que reciben esta vacuna se inmunizan contra el virus de la hepatitis B y se protegen indirectamente contra la hepatitis Delta. Técnica del lavado de manos: La técnica de lavado de manos varía de acuerdo al tiempo de contacto del jabón con las manos (ver tabla N° 1):
.2. Actualmente. la 2da. dosis a los 30 días de la primera y la 3era.
1.1. LAVADO DE MANOS: Es el método más eficiente para disminuir el traspaso de microorganismos de un individuo a otro y cuyo propósito es la reducción continua de la flora residente y desaparición de la flora transitoria de la piel y de las uñas. además se necesita dosis de refuerzo cada 5 años. dosis transcurrido cuatro meses de la segunda. La aplicación de esta vacuna se realiza en tres dosis: 1 era dosis.
4. Lavado y enjuagado con antiséptico. efectuar los alcohol iodado o alcohol de 70º pasos del 1 al 7 con jabón neutro y finalizar con alcohol iodado o alcohol de 70º
. Friccionar las manos muñecas o realizar un hasta los codos o realizar frotamiento mecánico vigoroso un frotamiento mecánico durante 15 a 20 segundos vigoroso durante 2 minutos (contar hasta 20). Igual
3. 9. No sacudirlas 7. Igual espacios interdigitales 5. muñecas y antebrazos con agua corriente. anillos cintas. pulseras 2. individual y un solo uso. Enjuagar las manos con 6. Igual
2. en forma sistemática durante 5 minutos cepillar las uñas y friccionar con esponja descartable la piel. Este paso puede dividirse en 2 etapas de 2 minutos y medio c/u. Mantener las manos hacia arriba
6. Igual última toalla del secado. 4. Secar con toallas estériles. Igual que no sean automáticos) 3. Mojar las manos. 6. Jabonar bien (contar hasta 12O) toda la superficie. Igual abundante agua corriente 7. yodopovidona. Friccionar las manos y 5. Abrir los grifos (en el caso 2. Secar con toallas descartables 7.
1. Friccionar las manos hasta los codos.)
1. etc. Igual manos: reloj. Escurrir sin juntar las manos.
8. Mojar las manos y las 3.LAVADO CORTO (Clínico) Jabón neutro líquido
LAVADO MEDIANO Jabón líquido antiséptico (clorhexidina al 4%. Mojar manos. en caso de que estos no fueran automáticos. Igual desde los dedos. muñecas con agua corriente muñecas y antebrazos con agua corriente. descartar toallas 8. repitiéndola e intercalando en el medio el enjuague de las manos hasta los codos. Retirar los accesorios de las 1. Cerrar los grifos con la 8. Colocar jabón y frotar en 4. De no usar jabón 9. Igual 5. sobre todo alrededor de las uñas.
. libre de salpicaduras.
 Las uñas de todos los profesionales y las del personal auxiliar.  Se debe realizar un lavado mediano antes y después de realizar procedimientos invasivos.  Para ser efectivo. El enjuague debe realizarse con agua fría para cerrar los poros. deberán mantenerse cortas y siempre muy limpias en el surco ungueal. toser. arreglarse el cabello o cuando estén visiblemente sucias.  El uso de guantes no sustituye el lavado de manos.
 Para el secado de las manos se debe emplear toallas de papel. luego de cuatro usos consecutivos.  Los dispensadores de toalla en lo posible deben ser cerrados para impedir la contaminación por exposición al ambiente o contacto con las manos del personal y debe estar muy cercano al lavamanos a una altura que permita mantenerlo seco. después de usar los sanitarios. debido a que en las toallas de felpa también crecen bacterias provenientes tanto de la piel del operador como de la boca del paciente. después de estornudar. parte del dorso de las manos y bajo las uñas. antes y después de usar los guantes para realizar procedimientos no invasivos.  Durante el lavado de manos. Se debe realizar un lavado corto al ingresar y retirarse del consultorio.  No frote sus manos con un cepillo pues irrita la piel dejando incluso heridas abiertas.  Se debe realizar un lavado largo antes de efectuar cualquier procedimiento quirúrgico.   Utilizar jabones líquidos obtenidos de dispensadores apropiados. antes y después de ingerir líquidos y alimentos.  Evitar el empleo de jabones sólidos. pues se ha demostrado que el contacto repetido favorece el crecimiento de bacterias provenientes tanto de la piel del operador como de la boca del paciente. después de tener contacto con pacientes infectados por gérmenes resistentes. después de manipular material e instrumental contaminado con fluidos corporales. tocarse la cara. el lavado de manos deberá tener la suficiente duración y la acción mecánica que permita que los productos antimicrobianos estén en contacto el tiempo suficiente para lograr los resultados deseados. se deberá tener especial atención en: la parte interna de los dedos sobre todo los dedos pulgares.
1. pueden eventualmente serlo con el uso de sustancias químicas esterilizantes. obteniéndose como consecuencia la protección antibacteriana de los instrumentos y materiales.  Se debe procurar que las llaves de agua del lavatorio del consultorio sean de palanca. MANEJO DE LOS ARTÍCULOS ODONTOLÓGICOS: El material e instrumenta.1. MÉTODOS DE ELIMINACIÓN DE MICROORGANISMOS: Son todos aquellos procedimientos. con ella se logra destruir las formas vegetativas y esporas de los microorganismos. ESTERILIZACIÓN: Es el proceso mediante el cual se eliminan de los objetos inanimados todas las formas vivientes. con el fin de interrumpir la cadena de transmisión y ofrecer una práctica segura para el paciente.1. así como el equipo odontológico. Se debe usar como medio de esterilización el calor seco o húmedo. El proceso de esterilización con calor comprende las siguientes etapas:
. estas deberán ser cerradas con la última toalla del secado. 1.1. destinados a garantizar la eliminación o disminución de microorganismos de los objetos inanimados. accionadas con el pie o fotosensibles. debe poseer un claro conocimiento sobre los métodos existentes para la eliminación de microorganismos. el personal responsable del procesamiento de los artículos de atención odontológica. 1. de tal forma que garantice que los artículos de atención directa reciben el procedimiento adecuado para eliminar o disminuir el riego de infección. puede convertirse en un vehículo de transmisión indirecta de agentes infectantes. Los métodos de esterilización por calor son muy efectivos y en general fáciles de certificar. No se recomienda el uso de secador de aire. En caso que sean de rosca. por su lentitud y riesgo de recontaminación. Este proceso debe ser utilizado en los materiales e instrumentales de categoría crítica. La esterilización se puede conseguir a través de medios físicos como el calor y por medio de sustancias químicas.2.2. Aquellos objetos que no pueden ser esterilizados por el calor.2. destinados a la atención del paciente. En tal sentido. A) PROCESO DE ESTERILIZACIÓN CON CALOR: Son los métodos físicos que se utilizan para la destrucción de microorganismos que actúan por medio de altas temperaturas.
por lo que se tendrá en cuenta prevenir accidentes con materiales cortopunzantes. La materia orgánica e inorgánica presente en los artículos interfiere en los métodos de esterilización y desinfección. Para ello se seleccionará este y el operador hará uso de las barreras de protección adecuadas como son un mandil impermeable. En países como el nuestro es lo más frecuente. b.Descontaminación y limpieza: Esta etapa consiste en la remoción mecánica de toda materia extraña en las superficies de objetos inanimados. Finalizado este tiempo debe enjuagarse con agua corriente a fin de arrastrar la materia orgánica presente. Antes del lavado se debe retirar restos de cintas o tapes e. lentes. que procura la remoción de la suciedad por fricción aplicada sobre la superficie del material. El prelavado debe realizarse preferentemente por inmersión en detergente enzimático durante 2 ó 5 minutos o en su defecto en agentes tensioactivos con pH neutro. Los procedimientos a seguir. En la limpieza se debe realizar los siguientes pasos: a) Descontaminación o prelavado. El lavado manual es un procedimiento realizado por un operador. f. La limpieza disminuye la carga microbiana por arrastre pero no destruye microorganismos. porque esto evitará que la biocarga (sangre. d. b) Lavado c) Secado y d) Lubricación del material. Mantener sumergido en agua tibia (menor a 45° C) y agente tensioactivo durante toda la etapa de lavado a fin de evitar
. ya sea impidiendo el contacto del agente esterilizante con todas las superficies o en el caso de procesamiento por calor. Realizarse un prelavado inmediatamente y en el mismo sitio donde fue utilizado el material odontológico. saliva u otros) se seque y dificulte aún más el lavado. c. Separar los elementos punzocortantes con el fin de evitar pinchaduras o accidentes. porque estos detergentes desintegran la materia orgánica. La limpieza puede realizarse a través de métodos de lavado manual o automático. prolongando los tiempos de exposición requeridos para lograr el mismo objetivo. g. guantes y mascarilla. para lograr una adecuada limpieza manual son: a. caso contrario no puede ser garantizado la limpieza de la parte final. Desarticular todas las piezas que constituyen el elemento.
El secado de los elementos. la temperatura del agua introducida no podrá pasar los 45º C. h. El enjuague final se recomienda con agua destilada. la cual trae consigo problemas de limpieza. de no hacerlo así aparecerán manchas y/o decoloraciones en el instrumental quirúrgico. 14
. ya sea por medio de paños o aire comprimido con filtro bacteriano. Realizar un último enjuague. El empleo de un producto neutralizante apropiado puede favorecer este proceso y también el resultado del enjuagado posterior. m.  Instrumental grande tiene que ser depositado en las bandejas de tal forma que no impida por sombras de lavado la limpieza del instrumental restante. j. i. l.  Al emplear procedimientos usuales de preparación mecánica las piezas de aluminio anodinadas en color pueden perderlo y por ende su función de codificación. Comprobar que estén en buen estado de funcionamiento. que no se dañe mutuamente. Lubricar si fuera necesario y después de unos minutos secar el lubricante con papel absorbente.  El instrumental tiene que ser depositado de tal forma. ya que desgastan el material.  No utilizar sustancias abrasivas y cepillos metálicos. Luego llevar la bandeja bajo el chorro de agua para eliminar el máximo de biocarga. Realizar la evaluación visual minuciosa de los artículos lavados en búsqueda de suciedad que pudiera interferir en los métodos de esterilización. Enjuagar con abundante agua corriente para eliminar el resto de detergente y materia orgánica. las ranuras y cremallera. Para la limpieza se debe tener las siguientes consideraciones:  Con el fin de evitar la coagulación de albúmina. debe efectuare inmediatamente para evitar recontaminación. n. Proceder a escobillar prolijamente con una escobilla de cerdas duras. El agua tibia mejora las propiedades de disolución del detergente y las enzimas. o.  Los residuos de la fase de limpieza tienen que ser quitados durante los enjuagados posteriores.aerosolizaciones. teniendo especial cuidado de limpiar las articulaciones. esto evita la corrosión del material metálico y el depósito de sales calcáreas en el material de vidrio.  Las bandejas no pueden ser sobrecargadas para que así pueda ser enjuagado suficientemente todo el instrumental. k. En caso que se encuentre algún desperfecto deberá volver a realizarse los mismos procedimientos antes descritos.
originándose su posterior oxidación e inutilización. para lograr un adecuado empaque son: a. (figura N° 1) b. (figura N° 1)
.  Después de la limpieza.  Si el instrumental quirúrgico va a ser esterilizado en autoclave a vapor el lubricante debe ser soluble en agua y siempre haber sido fabricado para uso en esterilización. por lo que es importante la lubricación de estos después de la limpieza y antes de la esterilización. los instrumentos pueden manifestar rigidez y dificultad en el manejo así como también pueden presentar manchas y otros eventos. cambios de color y corrosión. pues los agentes esterilizantes no penetran debidamente y por lo tanto los microorganismos no serían destruidos. además facilita el transporte. Posicionar el material diagonalmente en el centro del empaque. ya que este proceso será imposible de alcanzar. Los procedimientos a seguir. El empaque debe ser seleccionado de acuerdo al método de esterilización y al artículo a ser preparado. la apertura y la transferencia del material estéril con técnica aséptica.  No deben utilizarse aceites minerales o de silicona. Preparación y Empaque: En esta etapa los artículos a esterilizar son preparados y empaquetados con el objetivo de brindar una adecuada protección. Colocar el indicador o integrador químico interno en el centro del paquete.  Ningún instrumento que presente restos de sangre deberá ser introducido al esterilizador. Del mismo modo toda sustancia adherida (empastes) debe ser retirada de inmediato para evitar el endurecimiento por precipitación. identificación y mantenimiento de la esterilidad. permitiendo una utilización segura de este. La presencia de restos de sangre originan que el instrumento se queme en los bordes del lugar donde se halla la sangre. E1 empleo de agua totalmente desalinizado para el lavado final evitará manchas. pegajoso. ni tóxico. el manejo por el usuario. No debe ser aceitoso. ni aceite de máquinas.
Completar el paquete levantando la cuarta y última punta hacia el centro del paquete y fechar con cinta indicadora de proceso envolviendo todo el paquete. Doblar los laterales hacia el centro del paquete en forma de sobre. (figura N° 3) e. de cinta de control. No se debe poner menos de 5 cm. (Figura N° 2)
Figura N° 2 d. Doblar la punta que da a la persona que esta preparando de tal manera que llegue al centro del paquete cubriendo el artículo. Luego realizar un doblez con la punta hacia fuera. siempre haciendo un doblez en la punta. (figura N° 4)
f.Figura N° 1 c. (figura N° 5)
. Realizar el mismo procedimiento en el otro lado de modo que ambas cubran el artículo.
a. papel aluminio o frascos de vidrio refractario. pues es un método efectivo. equipo de operatoria. Ser económico y fácil de encontrar en el mercado. Debe ser impermeable a los líquidos. siempre que las características del material lo permita. equipo de exodoncia. Para la esterilización por calor húmedo se utilizan equipos denominados autoclaves a vapor. pero tiene la desventaja que el vapor puede oxidar los objetos. No debe ser tóxico y debe ser resistente a la rotura y humedad. se puede realizar a través del calor húmedo o del calor seco.  Cada paquete debe contener solamente la cantidad necesaria de elementos para “un solo procedimiento” o prestación.  Todo paquete debe rotularse consignando la fecha de esterilización y el nombre del material a procesar. equipo de biopsia.Las características principales de los empaques son:  El envoltorio utilizado debe permitir el ingreso y remoción del agente esterilizante y ser barrera bacteriológica para evitar su recontaminación. No dañar el envoltorio al escribir. Para la esterilización con calor húmedo se debe tener en cuenta las siguientes consideraciones:  La autoclave se puede utilizar para esterilizar textiles. gomas y plásticos termoresistentes. Ejemplo: equipo de examen. Esterilización por calor: La esterilización por calor. instrumentos de acero inoxidable.  Para la estufa se puede usar cajas metálicas. Este método de esterilización se considera de primera elección. ni comprimido. proceso que es acelerado por la presencia de agua. Debe ser flexible para facilitar su manipulación.  El diseño de todo paquete que va a ser esterilizado debe permitir la libre circulación del agente esterilizante por lo cual su contenido no debe estar sobrecargado. Calor húmedo (autoclaves de vapor saturado a presión): Este método de esterilización elimina microorganismos por desnaturalización de las proteínas.  Preparar paquetes de instrumentos de acuerdo a la actividad a la cual van a ser destinados y rotularlos. requiriendo temperaturas y tiempos menores de exposición que el calor seco. 17
. no debe combinarse con el agente esterilizante. etc. rápido y penetrante. de los artículos odontológicos. equipo de profilaxis. equipo de cirugía periodontal. Se puede usar para ello etiquetas adhesivas o cinta adhesiva (maskingtape)  En los paquetes deberá colocarse el testigo químico correspondiente según el método de esterilización.  Para la autoclave se recomienda usar un empaque de papel grado quirúrgico por que el papel kraft ya esta en desuso.
 Cargar el equipo en forma homogénea para que requieran el mismo tiempo de exposición (calidad y tamaño de paquetes). pues la principal ventaja de esterilizar con calor seco es que no corroe los instrumentos metálicos.  La disposición de la carga dentro de la cámara debe ser en forma vertical dejando un espacio entre paquete y paquete que permita la libre circulación del vapor. b. Su efectividad depende de la difusión del calor. Este método puede usarse como segunda opción. El vapor es un agente esterilizante de superficie. la cantidad del calor disponible y los niveles de pérdida de calor. constatar el viraje de los indicadores químicos utilizados en dicha carga y constatar que tenga la fecha de vencimiento correspondiente al envoltorio utilizado en un lugar visible.9
 Todo el material que salga del esterilizador “húmedo” debe considerarse "no estéril" y volver a procesarse.Pupinel): Este sistema elimina los microorganismos por coagulación de las proteínas.  Antes de almacenar.5 2. Calor Seco (Estufa . pero tiene la desventaja de poseer un menor nivel esporicida y requiere mayor tiempo y temperatura.0 2. por ello todo el material y cajas a esterilizar deben encontrarse ABIERTAS.  Al abrir la puerta de la cámara esperar un corto lapso de tiempo antes de descargar para permitir que se iguale la temperatura de la carga y la ambiental.  No ocupar más del 7O % de su capacidad para permitir el acceso del aire caliente al material.  No sobrecargar ni encimar los paquetes. Tabla Nº 2 Parámetros de Trabajo
. además del grosor de los empaques y el tipo de autoclave (tabla Nº 2).  El tiempo que los instrumentos deben estar en la autoclave depende de la temperatura y la presión que se utilice.  Todo ciclo debe iniciarse con uno o varios vacíos (previo al ingreso de vapor) para asegurar la evacuación total del aire de la cámara.
para dejar espacio para la libre circulación de agente esterilizante (aire caliente). tales como: aceites.  El contenido de instrumental no debe ocupar más de 2/3 de la capacidad. vaselinas.  Nunca abrir la puerta de la estufa durante el proceso de esterilización. polvos y objetos de vidrio.  Retirar el material frío del esterilizador a fin de evitar cambios bruscos de temperatura. caso contrario iniciar el proceso nuevamente.  E1 tiempo de esterilización debe considerarse a partir del momento en que el termómetro de la estufa alcance la temperatura de trabajo (tabla Nº 3). como es el caso de los instrumentos o sustancias que puedan ser dañados por la humedad o que son impermeables a esta. Se recomienda usar el calor seco en materiales que no pueden ser esterilizados en autoclave. petrolatos.contribuye a deteriorar los materiales (perdida de filo de instrumentos punzocortantes). Tabla Nº 3
 Si no se cuenta con instrumentos necesarios para determinar el tiempo de calentamiento de carga se puede optar por la siguiente alternativa (tabla Nº 4). Para la esterilización con calor seco se debe tener en cuenta las siguientes consideraciones:  Cargar la estufa en forma homogénea (tamaño y calidad de materiales).  No encimar ni superponer las cajas.  Los paquetes no deben tocar las paredes y que entre cada paquete. Tabla Nº 4
. haya espacio suficiente para conseguir una buena circulación.
 Antes de almacenar. termómetro de cámara interna. ya que pueden reaccionar en forma inexacta con los parámetros de esterilización adecuados o su lectura es poco clara. según sea el caso. Químicos: Sustancias químicas que cambian de color al alcanzar la temperatura necesaria. grasas. Control del Proceso de Esterilización: La obtención del material estéril depende de una serie de parámetros que deben ser cuidadosamente observados por el equipo de salud a cargo de los procesos. presión o cierto grado de humedad. Estos monitores deben calibrarse periódicamente para garantizar su adecuado funcionamiento. a. Para esto se pueden utilizar tres tipos de indicadores.  Calor Seco: termómetro. programador de tiempo. Estos pueden ser: 20
. El nivel de seguridad de los procesos de esterilización depende en forma importante de la validación y supervisión permanente y rutinaria de cada ciclo. termocuplas. además los fabricantes no han hecho una estandarización de ellos. constatar el viraje de los indicadores químicos utilizados en dicha carga y constatar que tengan la fecha de vencimiento correspondiente al envoltorio utilizado en un lugar visible.  Una vez terminado el proceso de esterilización se debe dejar la puerta entreabierta durante 10 minutos. Su valor es limitado y solo indica que los materiales fueron expuestos a un aparato de esterilización que produce calor. termo registrador. termostato. Para que un producto sea clasificado como estéril se debe garantizar que todas las etapas del proceso fueron realizadas en forma correcta y que el proceso de esterilización es valido. Estos son:  Calor Húmedo: manovacuómetro de cámara interna. b. tiempo de exposición. manómetro de cámara externa. con el objeto de enfriar el material esterilizado y evitar accidentes al descargar. talco) y soluciones oleosas (aceites.170º C
 Los polvos (ej. son útiles pero no suficientes. sin garantizar la calidad de éste. vaselinas) deben colocarse en pequeños recipientes de vidrio o paquetitos de papel. termo registrador. Los monitores o indicadores son equipos o reactivos que permite certificar que el proceso de esterilización se efectuó en forma apropiada. Físicos: Corresponde a los elementos incorporados al esterilizador que permite visualizar si el equipo ha alcanzado los parámetros exigidos en el proceso.
c. Para ello se selecciona un microorganismo de prueba que posee alta resistencia al proceso de esterilización usado. Biológicos: Se colocarán en los sitios más críticos del esterilizador (vértices de la cámara y centro de paquetes). Constituyen los indicadores 21
. Para su fabricación se emplean en general esporas de Bacillus stearothermophilus como indicador de esterilización por vapor saturado a presión y esporas Bacillus subtilis variedad Níger para la esterilización por calor seco. Están diseñados para confirmar la presencia o ausencia de microorganismos viables después del proceso de esterilización. Son muchos más precisos que los de la clase 4. como el Test de Bowie-Dick. que evalúa la eficacia del sistema de vacío del autoclave. Debe ser colocada dentro de un paquete de prueba y requiere ser procesada en el laboratorio.  Indicadores de pruebas específicas (Clase 2): Destinados al uso en pruebas específicas. El periodo de incubación es alrededor de 7 días. Puede indicarnos que el paquete estuvo expuesto a una determinada temperatura en un determinado tiempo. También se utilizan reactivos químicos capaces de detectar enzimas o proteínas específicas de estos microorganismos.  Autocontenidos: Son esporas viables sobre papel que ofrecen gran resistencia a los agentes esterilizantes dentro de un tubo plástico que contiene un caldo de cultivo. Puede indicarnos que el paquete estuvo expuesto a una determinada temperatura. Son los únicos censores confiables de esterilización.  Indicadores de parámetro (Clase 3): Diseñados para responder a una variable crítica del proceso.  Indicadores emuladores o de verificación de ciclos (Clase 6): Diseñados para reaccionar frente a todas las variables críticas de un ciclo de esterilización a niveles considerados como “satisfactorios” con un 95% de confiabilidad.  Indicadores de parámetros múltiples (Clase 4): Diseñados para responder a dos o más variables críticas del proceso.  Indicadores de parámetros integrados (Clase 5): Diseñados para responder a todas las variables críticas de ciclos de esterilización específicos con un 75% de confiabilidad. Las esporas crecerán y proliferarán en caso de que el proceso de esterilización no se haya alcanzado. mientras que la ausencia de crecimiento microbiano es señal de éxito en el proceso. Indicadores de proceso (Clase 1): Es utilizado como ayuda para distinguir los elementos procesados de los no procesados. Estos indicadores pueden ser:  Tiras con esporas: Es una preparación de esporas viables sobre papel dentro de un sobre.
 De lectura rápida: Consiste en un sustrato que al detectar una enzima activa asociada a esporas de microorganismos pasa a ser fluorescente produciendo un resultado positivo o negativo. con superficies lisas y lavables. Su lectura es en 48 horas. La fluorescencia indica la presencia de la enzima (falla en el proceso de esterilización evidenciada por una luz roja de la incubadora de la lectura rápida). Existe este diseño de indicadores biológicos para la mayoría de los métodos de esterilización: óxido de etileno. Con respecto al almacenamiento se debe tener en cuenta las siguientes consideraciones:  El almacenamiento de los artículos estériles deben realizarse en un lugar que evite los riesgos de contaminación y favorezca el movimiento e identificación rápida de los artículos.  Debe ser un ambiente libre de polvo. para facilitar el aseo de piso.  Deben almacenarse en armarios cerrados y alejados de las áreas de limpieza del instrumental.biológicos utilizados con mayor frecuencia.  Guardar y distribuir los paquetes obedeciendo el orden cronológico de sus lotes de esterilización.  La duración de la esterilidad del material está dada por el tiempo que el envase permanece indemne con las condiciones locales 22
. vapor de formaldehído y peróxido de hidrógeno. tratando en lo posible que los lotes antiguos salgan antes que los nuevos. Se debe mantener la temperatura en un rango de 18 a 20°C y humedad entre 35 y 55%. pues la elevada humedad aumenta la porosidad de los envoltorios y lleva a la recontaminación del mismo. Las condiciones de almacenamiento deben asegurar la esterilidad o desinfección del artículo al momento del uso.  Las estanterías y cestas metálicas no deben tener picos. Debe estar adyacente al área de esterilización. del techo y guardando de 15 a 20 cm de la pared.  Los materiales se almacenan en ambiente fresco y seco. La no fluorescencia indica la inactivación de la enzima (proceso de esterilización adecuado evidenciando por una luz verde en la incubadora) Almacenamiento del material estéril: Corresponde al proceso a través del cual. ni aristas que puedan desgarrar la envoltura. pared y techo.  Los paquetes deben colocarse de forma que sea fácil rotar su uso y estar protegidos de las corrientes de aire.  Los materiales esterilizados deberán almacenarse adecuadamente en cajas o bolsas cerradas. calor húmedo. los artículos son conservados hasta su uso. La estantería debe estar a 25 cm del suelo y 50 cm.
a. estos deben ser sometidos a una profunda descontaminación y limpieza. Depende de factores como calidad del material del empaque.5) y en este estado en general sus propiedades microbicidas son menores. la concentración de la solución química. pero son dos de ellas que se acomodan mejor para ser utilizadas en los artículos estomatológicos: El glutaraldehído y el ácido peracético. Para lograr una adecuada descontaminación y limpieza se debe seguir los procedimientos y las consideraciones antes mencionadas en la esterilización por calor. Estos son el tipo y magnitud de la contaminación microbacteriana de los instrumentos a esterilizar. Según la norma DIN se ha establecido un enfoque racional para la vigencia del material estéril. (Tabla N° 5) Tabla N° 5 Duración de Material Estéril
B) PROCESO DE ESTERILIZACIÓN POR AGENTES QUÍMICOS: La eficacia de este método de esterilización denominado “en frió” depende de varios factores ajenos a la naturaleza del producto químico. La solución madre es ácida (pH 2. la presencia en los instrumentos de material que puedan inactivar al agente químico. el tiempo de exposición al agente químico y los procedimientos de limpieza previos para eliminar residuos tóxicos o materiales orgánicas de los instrumentos. Para tener
. El proceso de esterilización con agentes químicos comprende los siguientes pasos: Descontaminación y limpieza: Antes de esterilizar los instrumentos con líquidos químicos. Esterilización por agentes químicos: Existe una serie de sustancias químicas que producen la esterilización de los artículos. Glutaraldehído: Es un agente químico que se utiliza como sustancia esterilizante y como desinfectante de alto nivel. condiciones del transporte y manipulación de los productos estériles.del almacenamiento. pues la mayoría de sustancias químicas esterilizantes se inactivan por la presencia de sustancias orgánicas e inorgánicas presentes en los diferentes artículos. condiciones del almacenamiento.
ya que el fuego alto hace rebotar los objetos y disminuye el nivel de agua.  Evitar el contacto del instrumental en perfecto estado.  Se seca con una toalla esterilizada antes de volver a utilizar los materiales o almacenarlos. solamente podrá evitarse la misma utilizando agua totalmente desalinizada.  Dejar actuar el desinfectante por el tiempo adecuado. si se sigue los siguientes pasos:  Realizar el lavado y limpieza del instrumental de acuerdo a lo descrito. que se evitarán con valores pH superiores a 10. Al utilizar productos ácidos podrá provocarse una corrosión a través de los cloruros que se encuentran en el agua.  Una dosificación correcta.  El fuego será suave. En nuestro medio se utiliza más el hervido. El hervido: Se puede alcanzar desinfección de alto nivel con agua hervida. con otros cuyas superficies se encuentren dañadas. Introducir los artículos secos para evitar la sobre dilución.  Evitar la permanencia prolongada del instrumental en las soluciones desinfectantes. b.  Se recomienda usar tiempos más prolongados para lugares de gran altura sobre el nivel del mar.  Poner el recipiente a calentar y esperar a que el agua hierva.  Usar dispositivos limpios y secos para almacenar los desinfectantes o antisépticos.
.  Colocar el instrumental en un recipiente y agregar agua hasta cubrirlos completamente y no se agregará ningún otro mientras este hirviendo.  Mantener a los instrumentos en agua hirviendo durante 30 minutos. contados desde que rompe el hervor.  Sacar toda burbuja de aire de los artículos a desinfectar.5. para evitar la corrosión por contacto. los chorros de vapor y el hervido. Físicos: Los métodos de desinfección físicos pueden ser la pasteurización.  Se hierve los instrumentos en un recipiente con tapa. junto con el tratamiento cuidadoso de los materiales.  No rellenar los frascos en los cuales hay restos de desinfectantes.  Una dosificación insuficiente de productos alcalinos (concepto de ahorro erróneo) implicará el peligro de la presencia de corrosión en forma de picaduras. garantizará un perfecto resultado de desinfección.
el peso debe colocarse en su lugar. Este agente químico es nuevo y se usa para la desinfección de alto nivel (DAN). Cuando el vapor sale del respiradero. añada agua y el ciclo debe ser repetido.
. Se debe considerar que el uso constante de agua hervida deteriora los instrumentos por favorecer el depósito de compuestos cálcicos y por oxidación. Mecanismo de acción: Su acción es por aniquilación de los componentes celulares y actúa directamente sobre los ácidos nucleicos. b.La desinfección por olla a presión se puede utilizar en situación de extensión.  Los instrumentos se sacan de la olla a presión con fórceps y se secan con una toalla estéril.  La olla a presión se coloca en la estufa y se lleva a un hervor.  Si esto sucede la olla a presión debe ser retirada del calor.  La olla a presión debe ser retirada de la estufa después de 15 minutos y se le debe dejar que se enfríe.  La olla a presión es calentada continuamente por un mínimo de 15 minutos. a.  Los instrumentos limpios se colocan en una olla a presión y se agrega agua limpia a una altura de 2-3 cm.  Se debe tener cuidado cuando se abre la olla a presión. Los principales desinfectantes son: Orthophthaldehído. El vapor debe seguir liberándose de la olla a presión durante este tiempo. Corresponde al grupo de aldehídos inorgánicos y contiene benzenecarboxaldehyde 1. Si esto se detiene puede ser que no haya más agua en la olla a presión. Almacenaje: Se debe tener en cuenta las mismas consideraciones que en la esterilización por agentes químicos. del fondo. Espectro: Los estudios han demostrado su excelente actividad microbicida y una mayor actividad frente a micobacterias que el glutaraldehído. Para ello se debe seguir con los siguientes procedimientos:  Realizar el lavado y limpieza del instrumental de acuerdo a lo descrito. permitiendo que se enfríe.2. B) TIPOS DE DESINFECTANTES: Los desinfectantes químicos líquidos son los más utilizados en nuestro país y además existen múltiples agentes germicidas en forma líquida. Es micobactericida y virucida. Primero se debe liberar la presión. Los instrumentos deben distribuirse por igual alrededor de la olla (lea las instrucciones de la olla a presión).
Es un agente químico que se utiliza como sustancia esterilizante y como desinfectante de alto nivel. micobactericida y esporicida. e. Las formulaciones convencionales de glutaraldehído tienen una duración aproximada de 14 días. Existen formulaciones nuevas en las que se han agregado agentes estabilizantes para prolongar la vida útil a alrededor de 28 días. Ventajas y desventajas: No es corrosivo.) • Estándar en Europa (5 min. No es carcinogénico.5 -8. Ventajas y desventajas: La principal ventaja es que posee una excelente estabilidad en un amplio rango de pH (3 .55%. b.) • En nuestro medio se recomienda utilizarlo 10 a 12 minutos. Este agente no debe ser usado en la desinfección de las superficies ambientales en ninguna circunstancia. además mancha la piel.5.) • Estándar en Canadá (10 min. sistema respiratorio y la piel. d. y dos años de vida útil. virucida.5) y en este estado en general sus propiedades microbicidas son menores. Indicaciones de uso: El tiempo que se requiere para la desinfección de alto nivel varía según los siguientes estándares: • Estándar americano (FDA) (10 a 12 minutos a 20° C. También en el uso de artículos o materiales 29
. Para tener propiedad desinfectante de alto nivel la solución debe ser activada (alcalinizada) mediante el uso de agentes que elevan el pH de la solución a 7. c. Por ahora.c. Glutaraldehído.9) y por lo tanto no requiere de activación. En la actualidad se han diseñado cabinas con las cuales se protege al operador de ese tipo de injurias. En este estado la solución alcanza el máximo de su capacidad microbicida pero se hace inestable debido a la polimerización de las moléculas que bloquean los grupos aldehídos responsables de su actividad microbicida. a. La solución tiene una duración de 14 días de reuso. La gran desventaja del glutaraldehído es su toxicidad. el alto costo parece ser la desventaja principal para su uso. Para desinfección de alto nivel (DAN) se utiliza por 45 minutos. Espectro: Es bactericida. a temperatura-ambiente tiene actividad germicida en presencia de materia orgánica. Mecanismo de acción: Su acción es consecuencia de la alquilación de componentes celulares alterando la síntesis proteica de los ácidos ADN Y ARN. ropa y superficies. debe utilizarse en ambientes muy ventiladas y con protección personal. Presenta además una excelente compatibilidad con cualquier material o artículo y cuenta con indicadores químicos. fungicida. pero se recomienda utilizarse en áreas ventiladas ya que todavía no se ha determinado si puede producir irritación en los ojos y orificios nasales. Concentraciones de uso: Está indicado en una concentración del 0. Indicaciones de uso: Está indicado para la DAN de endoscopios cuando la esterilización no es posible. Por ello. d. ya que una vez activado suelen producir vapores irritantes para las mucosas. La solución madre es ácida (pH 2.
El valor límite del umbral (VLU / valor de exposición) del glutaraldehído es de 0. b. Se requiere de 45 minutos para hacer DAN a una temperatura de 20°C. Espectro: Son de amplio espectro microbicida. de bajo costo y de fácil manejo. los instrumentos otorrinológicos y odontológicos y las láminas de laringoscopio. Su uso está limitado por su actividad corrosiva. Ventajas y desventajas: Su acción es rápida. pues son muy eficaces contra las bacterias Gram positivo y negativos. se polimeriza por los rayos de sol y necesita estar protegida en envases opacos.de metal como son los espéculos.. Existen otras formulaciones de Glutaraldehído en concentraciones que varían entre 2. (0. Su uso en la actualidad aparte de blanqueador se limita al saneamiento ambiental común de las superficies y artículos no críticos. a. en 8 horas de trabajo. 30
.4% a 3. Concentraciones de uso: La concentración mínima para eliminar las microbacterias es de 1000 ppm. incluyendo al de la Hepatitis B y al del VIH. d. produce irritación de la piel y mucosas. jabones y detergentes.2 ppm. En Europa existen concentraciones de 1. haciendo que las concentraciones de cloro disponible disminuyan de 40% a 50%. Cloro y compuestos clorados: Los desinfectantes basados en el cloro generalmente están disponibles en forma líquida como hipoclorito de sodio (lejía). dañan textiles y degradan plásticos y gomas. Mecanismo de acción: Produce inactivación de microorganismos por alquilación del grupo amino y sulfidrilo de proteínas y del anillo nitrogenado de bases púricas lo que hace alterar la síntesis de los ácidos nucleicos.5% con tiempos mayores de inmersión. Formaldehído (fo): Es un desinfectante de alto nivel pero actualmente esta discontinuado debido a su alta toxicidad y el olor penetrante que aparece aún a muy bajas concentraciones (como la formalina que se da del 37% al 40 %). No se recomienda para desinfección de instrumental. a 0. esporas y virus. o sólida como hipoclorito de calcio (dicloroisocianurato de sodio).1%) durante 10 minutos. Su eficiencia disminuye por el aumento del pH. Concentraciones de uso: En nuestro medio contamos con una solución al 2%. La disociación de este ácido y por consiguiente la menor actividad depende del pH. desnaturalización de las proteínas e inactivación de los ácidos nucleicos. Las soluciones de cloro no deben conservarse en envases destapados por más de 12 horas debido a la evaporación del producto activo. Además se inactiva en presencia de materia orgánica. e. a. Mecanismo de acción: Su acción produce inhibición de las reacciones enzimáticas.05 ppm.4%. c. hongos. Tiene propiedades desodorizantes y actividad microbicida atribuible al ácido hipocloroso no disociado.
Espectro: Bactericida. Debido a su efecto tóxico e irritante. Espectro: Bactericida (micobactericida).5% en 30 minutos. tiene rápida acción contra microorganismos (incluyendo las esporas). Mecanismo de acción: Su acción antimicrobiana se ejerce por la producción de radicales libres hidroxilos que dañan las membranas lipídicas. d. Espectro: Bactericida (micobactericida). c. Presenta toxicidad ocular y también puede producir colitis pseudomembranosa por mal enjuague en la DAN. virucida y esporicida en concentraciones del 6% al 7%. b. Mecanismo de acción: Actúa por desnaturalización de las proteínas alterando la permeabilidad de la pared celular. virucida y esporicida. Puede corroer cobre. Esta corrosión puede ser controlada con aditivos del pH. fungicida. bronce y fierro galvanizado.2% en un tiempo entre 10 a 15 minutos. Para realizar la desinfección de alto nivel la indicación es de 6% a 7. desde 1996 la formalina bajo cualquier presentación. Concentraciones de uso: Su presentación varía entre 3% a 7. Solo se acepta su utilización como desinfectante en solución acuosa para filtros de hemodiálisis y conservación de piezas de anatomía patológica. además de irritar las mucosas. Produce toxicidad ocular e irritación de las mucosas. Se considera potencialmente carcinogénico. Es oxidante para artículos metálicos. Ventajas y desventajas: La mayor ventaja de este elemento es que no produce residuos tóxicos y tampoco necesita activación. Al utilizarse deberán tomarse las precauciones de exposición ocupacional. fungicida. Desventajas: Presenta olor desagradable. c. b. e. virucida y esporicida. Concentraciones de uso: En concentraciones bajas de 0. Indicaciones de uso: Está indicado en el uso de DAN para endoscopios por su compatibilidad con este material. Ácido peracético: También denominado ácido peroxiacético es un agente oxidante que actúa de manera similar al peróxido de hidrógeno a. está excluida de la lista de desinfectantes en los Estados Unidos de Norteamérica.5%.b. Ventajas y desventajas: No daña lentes ni artículos de plástico.1% a 0. el DNA y otros componentes celulares. La solución puede reutilizarse durante 21 días. Peróxido de hidrógeno estabilizado: El Peróxido de Hidrógeno es un agente oxidante utilizado para DAN. d. e. Indicaciones: Dada su toxicidad su uso es muy reducido. c. d. Concentraciones de uso: Para producir una desinfección de alto nivel se requiere una exposición de 30 minutos a una concentración de 8% y para la desinfección intermedia a 4%. 31
. fungicida. a. La solución tiene una duración de 14 días.
Indicaciones de uso: El alcohol se considera un desinfectante de nivel intermedio y se usa en la desinfección de superficies y artículos no críticos. En bajas concentraciones. causan la muerte de microorganismos por inactivación de las enzimas de la pared celular. Esto condiciona que no se debe usar alcoholes como método de desinfección de alto nivel ni para materiales en inmersión. Concentraciones de uso: La concentración bactericida óptima está en un rango de 60% a 90% por volumen. coxsackievirus. los más utilizados son el alcohol etílico y el alcohol isopropílico. Indicaciones de uso: Los derivados fenólicos están indicados principalmente en la desinfección de artículos no críticos y en superficies lisas. Mecanismo de acción: En altas concentraciones rompen la pared celular penetrando la célula y precipitando proteínas citoplasmáticas. se inactiva en presencia de materia orgánica y se evapora rápidamente. Ventajas y desventajas: Son económicos. Hoy en día y debido a su baja eficacia y a los riesgos descritos. b. d. benzil. virus y M. Desventajas: Los fenólicos pueden ser absorbidos por los materiales porosos. a.Fenólicos: Los derivados fenólicos comúnmente encontrados como principio activo de las formulaciones son: el ortho-fenil-fenol y el orthobenzil-para-clorofenol. tuberculosis. Asimismo.
. halógeno). b. La concentración habitual de uso 70% en que tiene su mayor efectividad. Su uso no es indicado en artículos semicríticos debido a la ausencia de datos sobre su eficacia germicida. c. Los fenólicos se inactivan ante la presencia de materias orgánicas. e. funguicida y virucida. Los compuestos fenólicos son producidos a través de la sustitución de uno o dos átomos de hidrógeno aromático de fenol con un grupo funcional (alquil. prácticamente no tiene indicaciones de uso. a. fenil. Espectro: Bactericida (micobactericida). Mecanismo de acción: Actúa por desnaturalización de las proteínas. poliovirus. Las desventajas de los alcoholes es que tienden a alterar y endurecer el material de goma y plástico. Tiene poca acción en los virus pequeños como echovirus. su utilización está contraindicada en la limpieza de incubadoras y otras superficies en las áreas de neonatos por generar hiperbilirrubinemia. c. Espectro: Destruye rápidamente formas vegetativas de bacterias hongos. Alcoholes: Son componentes químicos solubles en agua. d. e. Concentraciones de uso: Las concentraciones varían según la presentación del producto. dejando residuos que producen irritación en las mucosas. tales como el plástico.
Amonio cuaternario: Son antisépticos de bajo nivel. para seleccionar el método de eliminación de microorganismos.2. y el cloruro de dialquildimetil-amonio. Concentraciones de uso: Las concentraciones de uso varían de acuerdo con la combinación de compuestos cuaternarios de amonio en cada formulación comercial. se considera el enfoque más racional para la selección de los métodos de eliminación de microorganismos y en términos generales es aplicable a la mayoría de los artículos que se utilizan en la atención odontoestomatológica. ni microbactericida. Los restos de gasa y algodón pueden afectar su acción. Indicaciones de uso: Por su baja toxicidad puede ser utilizado para la desinfección de superficies y mobiliario. bactericida y virucida solo contra los lipofílicos. b. Espectro: Fungicida. Los compuestos más usados en las unidades hospitalarias son cloruro de alquil-dimetil-benzilamonio.2.amonio. su cuidado y mantención con el fin de utilizarlo adecuadamente. En tal sentido el personal responsable del procesamiento de los artículos debe conocer en profundidad las características de los distintos materiales. SELECCIÓN DEL MÉTODO ADECUADO ELIMINACIÓN DE MICROORGANISMOS:
En la atención odontológica directa se utilizan numerosos artículos y equipos que toman contacto con el paciente.
1. Mecanismo de acción: Su acción se debe a la inactivación de enzimas productoras de energía. Pero la complejidad de la atención y la diversidad de artículos que se utilizan hacen necesario que en muchos casos se deba analizar en forma particular algunos equipos y tomar la decisión basada en las características y riesgos asociados sin considerar completamente la clasificación de Spaulding. El método de eliminación de microorganismos requerido por cada artículo esta directamente relacionado con el riesgo potencial que tiene este artículo en particular de producir infección en el paciente. semi-críticos y no críticos) de acuerdo al riesgo antes mencionado. ni tampoco presenta acción sobre virus hidrofílicos. Aún cuando la complejidad de la atención actual y el diseño de algunos artículos hace que no siempre sea apropiada esta clasificación. e. cloruro de alquil-didecildimetil. Por otro lado. c. Ventajas y desventajas: Constituye un buen agente para la limpieza debido a su baja toxicidad. a.
. a la desnaturalización de las proteínas celulares y a la ruptura de la membrana celular. No es esporicida. d. Earl Spaulding clasificó los materiales en tres categorías (críticos. también se debe considerar el tipo de material del que está fabricado el artículo odontológico. En 1968.
2. endodoncia. Al concluir el tratamiento los escariadores. descartando la esponja luego de la atención de cada paciente.1. Las puntas de papel deben ser esterilizadas con autoclave. El instrumental que se contamina durante el tratamiento del conducto se trata con gasa humedecida con desinfectante (alcohol de 70°). etc.2. limas y tiranervios deben ser preparados particularmente ya que son sensibles contra los daños mecánicos y estos deben ser esterilizados. Los clamps de acero inoxidable pueden ser esterilizados como primera opción en autoclaves. Ejemplo: instrumental de cirugía y traumatología. Estos materiales deben ser obligatoriamente esterilizados. representan un riesgo alto de infección debido a que las áreas donde son utilizados no cuentan con sistemas de defensa que les permita enfrentar la agresión de estos microorganismos o son un buen medio de cultivo para su reproducción.
. corresponde a instrumentos quirúrgicos punzocortantes u otros que penetran en los tejidos blandos o duros de la cavidad bucal. Si estos materiales están contaminados aún con un inoculo mínimo de microorganismos. Es decir. Los instrumentales de mango de acero inoxidable o mango de plástico deben ser esterilizados en autoclave.previniendo su deterioro para asegurar su vida útil a lo largo del tiempo y evitando de esta manera costos innecesarios. y utilizarse uno por paciente.
1. El esponjero con su correspondiente esponja debe estar estéril. METODOS SEGÚN CLASIFICACIÓN DE SPAULDING: Con el fin de racionalizar las indicaciones del procesamiento de los artículos se considerará el grado de riego de infección que existe en el empleo de los artículos y los clasifica en las siguientes tres categorías: A) MATERIAL CRÍTICO: Los materiales críticos son aquellos que se ponen en contacto con áreas estériles del organismo. El instrumental con mango anodizado por color es atacado por las soluciones alcalinas y pierde su color codificado. Instrumental de endodoncia: Todos los instrumentales deben ser esterilizados. periodoncia.
las piezas de mano que son posibles de esterilizar deben ser hechas al final del día. una vez tomada la placa radiográfica. saliva u otros elementos presentes en su superficie y luego séquelas bien. Antes de ser esterilizadas deberán ser limpiadas vigorosamente con un paño húmedo y embebido en solución detergente que permita retirar los restos de sangre. enjuáguela bajo un chorro de agua corriente para retirar la saliva y/o sangre adherida y luego desinféctela sumergiéndola en alcohol de 70º por un espacio de 5 minutos. sangre u otros fluidos. Estos. Los instrumentales que no sean de acero inoxidable deben ser esterilizados con el pupinel. Turbina y micromotor: Es deseable la esterilización de rutina de las piezas de mano de alta o baja velocidad. haciéndola funcionar por 30 segundos. Algunos fabricantes recomiendan lubricar las piezas de mano antes de esterilizarlas. El algodón y la gasa deben esterilizarse en autoclave en paquetes pequeños. virus y Mycobacterias. Todo profesional deberá adquirir piezas de manos y micromotores que puedan ser esterilizados en autoclave. Estos materiales. posteriormente deberá retirarse todo el resto de agua o lubricante que tenga en su interior. Instrumental de cirugía: Los instrumentales quirúrgicos de acero inoxidable deben ser esterilizados en autoclave. no todas las piezas pueden ser esterilizadas y el tiempo que tomaría la esterilización es muy largo para realizarlo entre pacientes. retire la película (sin abrir aún) cuidadosamente de la boca del paciente.
B) MATERIAL SEMICRÍTICO: Corresponde a artículos que no penetran las mucosas pero pueden estar en contacto con ellas o expuesta a la saliva. no obstante. Todas las turbinas y micromotores deberán ser esterilizados siguiendo estrictamente las recomendaciones dadas por el fabricante. por lo general son resistentes a infecciones por esporas bacterianas comunes pero susceptibles a las formas vegetativas de las bacterias. no más de 50 grs. Por lo tanto. pero considerando la realidad 35
. Para el caso de las radiografías. En caso de que la esterilización no sea posible deben ser sometidos minimamente a desinfección de alto nivel. Instrumental de periodoncia: Todo el instrumental que se use en Periodoncia debe ser esterilizado. deben estar libres de los microorganismos antes mencionados y deben ser estériles. entre paciente. cubriendo no más de dos tercios de la capacidad del frasco y luego se esterilizan en el pupinel.La vaselina se coloca en frascos de vidrio con tapa hermética.
 Seque el instrumento con un paño absorbente. Luego de trabajar en el paciente dejar correr el agua de la turbina durante 30 segundos antes de continuar con otro paciente. No pueden ser introducidas en baños de inmersión.  Lavar y limpiar el instrumental. luego de ser utilizadas con cada paciente. Las pinzas.  Haga funcionar durante 1 minuto la pieza de mano de alta velocidad y la jeringa triple a fin de que el agua limpie los conductos correspondientes. Se deberá mantener la pieza de mano en contacto con el desinfectante durante el tiempo especificado por el fabricante. guárdelos en recipientes metálicos apropiados. 36
. se debe dejar correr el agua que contengan las mangueras de la turbina durante por lo menos un minuto. Para la limpieza y conservación del interior tienen que ser aplicados los métodos indicados por el fabricante. antes de empezar a trabajar. para eliminar las bacterias que puedan haber aflorado durante la noche en el sistema de suministro de agua. con la técnica antes descrita. Es aconsejable dejar correr el agua que tienen en su interior entre cada paciente y al inicio de las actividades diarias. para remover todos los restos orgánicos. Se debe desinfectar al igual que las piezas de mano.  Después de la desinfección. El equipo de ultrasonido debe ser tratado de manera similar. debe retirarse cualquier residuo químico. hasta que sea adquirida se puede seguir el siguiente método de desinfección.  Cuando no están en uso. en alcohol isopropyl al 90% o en alcohol etílico al 70%.económica de que no se pueda adquirir de inmediato un aditamento con estas propiedades. usando agua esterilizada. Las líneas de aprovisionamiento de agua deben ser irrigadas con soluciones bactericidas. Todos los días. los exploradores y las sondas periodontales pueden ser esterilizadas en autoclave o en el pupinel. Instrumental de examen: Los espejos deben ser esterilizados por autoclave o se debe seguir las recomendaciones del fabricante. se podrá realizar utilizando compresas embebidas en glutaraldehído al 2%.
 La desinfección de estos materiales. Jeringa triple: Se debe esterilizar con calor húmedo o debe esterilizarlas con glutaraldehído al 2% por 10 horas.
Cuando no es posible desinfectar las impresiones se procederá a desinfectar el modelo de yeso. Instrumental de ortodoncia: Todos los alicates de uso para ortodoncia así como todo el instrumental usado. piedras. utilizando sustancias que no las deterioren o distorsionen. etc. La parte activa de los equipos de transiluminación. Las espátulas para resina son instrumentos sensibles al calor por lo que pueden someterse a una Desinfección de Alto Nivel. deberá ser desinfectado previamente y de ser posible. deberán ser estrictamente mantenidos con los materiales de laboratorio. En el caso de envío de impresiones. Las fresas deben ser esterilizadas en pupinel. a. para evitar el uso de cambia fresas. Las cubetas de acero inoxidable pueden ser esterilizadas en autoclave. El resto de las superficies de estos equipos pueden ser desinfectadas con alcohol de 70° Instrumental protésico: Tazas de goma. Cualquier elemento que deba ser llevado al Laboratorio. se deberá seguir las recomendaciones del fabricante acerca de la estabilidad de los 37
. sobre todo aquellos que posean extremos o puntas plásticas que impidan su esterilización por medio del calor. Impresiones: Las impresiones hechas en el consultorio deben ser desinfectadas antes de realizar el vaciado del yeso. Los elementos rotativos (fresas. Se recomienda tener un juego básico de fresas para cada paciente. Las cubetas para impresión cromadas o de aluminio deben ser esterilizadas en pupinel o sumergirlas en alcohol de 70° por 30 minutos. se recomienda usar el sistema ultra push. deberán encontrarse esterilizados y desinfectados.Instrumental de operatoria: Todo instrumental de operatoria debe ser esterilizado y en caso de que no se pueda debe ser desinfectado a alto nivel. espátulas y cubetas no metálicas se desinfectarán con glutaraldehído al 2% durante 45 minutos o aplicando alcohol 70° mediante fricción mecánica. luz halógena y pulpómetro no son fáciles de limpiar ni desinfectar por lo que deben ser cubiertos con fundas de polietileno o de papel de aluminio. sin embargo. de no ser posible. colocándose en los recipientes o dispositivos de sujeción especiales para ellos y deben ser esterilizadas como el resto del material sucio. esterilizado. El cambia fresa debe ser esterilizado o debe recibir una desinfección de alto nivel.) deberán separarse de los demás. Material de laboratorio: Los procedimientos de esterilización y desinfección que se recomendaron para el instrumental de uso clínico. mantenga las fresas sumergidas por 30 minutos en alcohol de 70° (el hipoclorito de sodio corroe las fresas rápidamente) dentro de un recipiente cerrado. No se las debe almacenar en un fresero y menos sueltas en los cajones de los armarios.
Aparatos protésicos y de ortodoncia: Los aparatos protésicos y de ortodoncia deben ser igualmente desinfectados antes de enviarse al laboratorio dental. Las prótesis totales y también las parciales. R/10 min. antes de sacarlos de los consultorios. Las soluciones de glutaraldehído al 2% y de hipoclorito de sodio al 1%. recomendándose el uso regular de guantes para realizarle la correspondiente higiene antes de trabajas sobre ellas. caucho. Se tendrá especial cuidado en retirarles todo el vestigio de sangre. Tabla Nº 6 Desinfección de Impresiones Soluciones desinfectantes / Tiempo de exposición Material de Impresión Hipoclorito 1% Iodóforos Glutaraldehído 2% Alginato Silicona o Mercaptano Pasta Zinquenólica Godiva (modelina) R/1 min. Es esencial remover cualquier residuo de desinfectante lavando las impresiones y la prótesis. Las impresiones como los aparatos protésicos deberán ser enjuagados de la saliva que portan. R/10 min. La solución de clorhexidrina ha sido usada sin efectos adversos con alginato.
b. se deberán desinfectar prolijamente antes de ser introducido en la boca de paciente. elastómero de silicona y elastómeros de poliéster. Ha sido demostrado la gran prevalencia de Candida Albicans en pacientes portadores de prótesis que presentan estomatitis por prótesis dental. dejar correr el agua. NR NR NR R/10 min. NR NR R/1 min. empleando sustancias que no corroan o cambien el color del material utilizando en su confección (tablas Nº 7). deberán ser manipuladas con bastante precaución. pero no sucede lo mismo con los otros materiales. bajo chorro de agua y posteriormente deberán ser desinfectados.
FUENTE: Asociación Dental Americana (ADA) R Recomendable NR No recomendable ? Se desconoce (*)El tiempo mínimo de exposición al desinfectante debe ser 20 minutos. R/30 min. R/30 min.
. Cuando los aparatos protésicos metálicos lleguen al consultorio procedente del laboratorio. deberán ser desinfectados siguiendo las mismas pautas que se utilizan para el instrumental operatorio y en el caso de que ya se encuentre con acrílicos.materiales frente al uso de los desinfectantes. producen cambios estadísticamente significativos en las impresiones de alginato.
se puede añadir a la piedra pómez un líquido desinfectante (5 partes de hipoclorito de sodio a 100 partes de agua destilada). con el fin de informarnos sobre los parámetros de higiene en los que se desarrolla el trabajo en él y así poder implementar cuidados adicionales con aquellos aditamentos que les enviemos. se convierte en un reservorio bacteriano y puede permanecer contaminada durante 3 meses. Se debe alertar al laboratorista cuando le estemos remitiendo algún implemento de trabajo perteneciente a algún paciente que presenta alguna enfermedad infectocontagiosa. 39
. La comunicación en este aspecto deberá ser sumamente fluida entre el profesional y el laboratorista.Una buena recomendación es conocer las instalaciones del laboratorio con el que habitualmente se trabaja. Para prevenir infecciones. Las sustancias pulidoras del tipo de la piedra pómez cuando son usadas sobre prótesis contaminadas. Modelo de yeso: Sumergir el modelo fraguado y sin el material de impresión en una solución de hipoclorito de sodio al 1% durante 30 minutos y luego enjuagar con agua. Tabla Nº 7 Desinfección de Aparatología para Laboratorio Dental (*)
El depósito de agua debe ser decontaminado con un agente químico de nivel intermedio. Los eyectores deben ser desacartables y las puntas de los suctores deben ser autoclavadas o esterilizadas con desinfectantes de alto nivel de acción (glutaraldehído al 2% durante 10 horas). debiendo utilizar desinfectantes químicos como hipoclorito de sodio al 1%.C) MATERIAL NO CRÍTICO: Esta clasificación corresponde a instrumentos o dispositivos que pueden tener contacto frecuente con los aerosoles generados durante el tratamiento dental. equipos de rayos x. llaves y otros.Mycobacterium.Legionella. La piel sana actúa como una barrera efectiva para la mayoría de los microorganismos y por lo tanto el nivel de eliminación de microorganismos requerido puede ser mucho menor. unidad dental. Unidad dental: La unidad dental deberá ser desinfectada diariamente al comienzo y al finalizar las labores de trabajo. lámpara de luz halógena. sillón. Es fundamental evitar la formación del biofilm. Estos materiales toman sólo contacto con piel sana por lo que el riesgo de producir infecciones es mínimo o inexistente. haciendo correr agua.etc.
. La escupidera debe ser higienizada con agua y detergente al iniciar el día y después de cada paciente eliminando todo tipo de residuos que se pudieran acumular. Por ejemplo amalgamador. mangueras de piezas de manos y jeringa triple. En el agua de la unidad dental se han encontrado microorganismos de transmisión hídrica (Pseudomonas. Para estos materiales deben utilizarse desinfectantes de nivel intermedio o bajo nivel. dos veces a la semana.) lo que indica que el agua que entra procedente de la red comunitaria es la fuente de contaminación de estos microorganismos. con un paño embebido en alcohol de 70°. tocados por el paciente o por las manos contaminadas del clínico o auxiliar dental durante el tratamiento. Con relación a la lámpara se debe forrar el mango del mismo con una bolsita de nylon que deberá ser cambiada después de cada paciente.
respaldo) y la manija del foco bucal.
Equipo de Rayos X: Cubrir con papel de aluminio el cabezal de rayos X. sillones dentales. pues pueden originar decoloración. MÉTODOS SEGÚN CARACTERÍSTICAS Y COMPOSICIÓN DE MATERIALES: Los diferentes elementos que se utilizan en la odontología están fabricados de diversos materiales. se recomienda desinfectar el sillón dental inmediatamente después que se haya retirado. deben ser desinfectadas prolijamente con una solución de hipoclorito de sodio 0. ya que esa agua se puede oxidar y contaminar con facilidad con el siguiente riego para el paciente cuando se le aplica la turbina o el aire de la jeringa triple.5%. que se cambiará luego de la atención de cada paciente. etc. cada uno de ellos con características propias. de no contar con cubierta descartable lavar con agua y detergente. Colocar cubiertas descartables en toda la superficie del sillón odontológico que esté en contacto directo con el cuerpo del paciente (apoyabrazos. Si un paciente presentará lesiones cutáneas o capilares exudativas o micóticas. En caso de manchas orgánicas (sangre-saliva) absorber en toalla descartable eliminar como residuo peligroso. Sillón: Desinfecte el sillón dental con un paño embebido de hipoclorito de sodio 0.Mesa de trabajo: La mesa de trabajo deberá mantenerse en buenas condiciones de higiene durante toda la jornada de trabajo.2.
. cabezal. En dicha mesa de trabajo sólo deberá estar el equipamiento necesario para la atención de cada paciente.2.
1..2. No se debe usar desinfectantes a base de Yodo en superficies plásticas. Se deberá evitar expresamente que el porta residuos se encuentre en dicha mesa de trabajo. luego lavar con agua y detergente y desinfectar con solución de hipoclorito de sodio al 1%. Para lograrlo es recomendable colocar sobre la misma un campo descartable. Comprensora: Las comprensoras deberán ser purgadas. Las superficies de las mesas de trabajo. las cuales deben ser consideradas para seleccionar el tipo de método que se debe emplear en la eliminación de microorganismos. es decir. se les deberá eliminar el agua que se condensa en el interior del recipiente que contiene el aire.5% o alcohol 70° antes y después de la atención diaria.
Para los artículos de plásticos termo resistentes se puede utilizar la autoclave y los artículos termolábiles se deben esterilizar con sustancias químicas como el glutaraldehído al 2% durante 10 horas. a mayor densidad mayor resistencia. Los artículos de acero inoxidable son durables si se mantiene de acuerdo a indicaciones del fabricante. Son utilizados ampliamente en el ámbito clínico ya sea como componente de instrumentos y equipos. Este tipo de artículos son resistentes a la oxidación y herrumbre aún en contacto con ácidos. álcalis y gases corrosivos y es capaz de resistir a altas temperaturas. La resistencia de los plásticos es directamente proporcional a la densidad. como aislante térmico y eléctrico y como empaque. El acero al carbón o cromado debe ser preferentemente esterilizado en el pupinel. Se utiliza principalmente para la fabricación de instrumental quirúrgico y cajas de instrumental. Este último consiste en dejar una capa de óxido de cromo en la superficie del instrumento que es muy resistente a la corrosión si se utilizan método de limpieza y mantención que no lo alteren. álcalis y algunos solventes.
. También puede dañarse por el tipo de marcado si éste debilita su estructura original. Para este tipo de instrumentales se recomienda la esterilización con vapor de agua (autoclave). Para aumentar la resistencia a la corrosión el instrumental es sometido a pulido y pasivazo. En general resiste la acción de ácidos. B) PLÁSTICOS: Son compuestos realizados sobre la base de polímeros naturales o sintéticos y su característica principal es que son capaces de deformarse y moldearse. La calidad del agua puede dañarlos ya sea por exceso de cloruros o de sustancias alcalinas o ácidas. Las superficies que no son pulidas son más propensas a la corrosión. Algunos afectan su dureza y otros su resistencia al óxido. humedad.A) ACERO: Los artículos de acero inoxidable tienen en su composición distintos componentes y su calidad depende de la proporción de ellos.
Por otra parte.C) VIDRIOS: Son sustancias que se fabrican a partir de sílice que se funden a grandes temperaturas. Por lo anterior los guantes no deben ser reutilizados. Sólo es posible efectuarla en autoclaves que tengan un programa especial para estos efectos. D) LATEX: Son sustancias derivadas del caucho que se utilizan para la fabricación de guantes. La esterilización de líquidos por lo tanto son excepcionales. pero cuando se trata de envases de vidrio que contengas líquidos para esterilizar. F) LÍQUIDOS: En la actualidad. debido a la dificultad que presenta la esterilización de líquidos la mayoría de soluciones que se usan en la práctica clínica se obtienen estériles de fábrica. MANEJO DEL AMBIENTE ODONTOLÓGICO:
. Son rígidos debido a que sus moléculas son muy cohesionadas. se utiliza la autoclave. Los vidrios esmerilados (opacos) no se utilizan en la fabricación de materiales que requieren ser esterilizados debido a que podrían tener materia orgánica o residuos de gases. Los algodones absorben líquido por lo que sólo pueden ser esterilizados en equipos que aseguren su secado.3. Los algodones resisten altas temperaturas pero se dañan fácilmente con la tracción y acción de instrumentos. el lavado no es suficiente para eliminar todas las bacterias de sus superficies y se han descrito reacciones a pirógenos atribuidas a guantes reesterilizados. estas características los hacen muy frágiles y fáciles de romper. Se caracteriza por ser muy vulnerable y poco resistente a la tracción y acción del detergente. E) ALGODONES: Son textiles provenientes de fibras naturales. Muchos artículos usados en odontología están envasados en vidrios Los más frecuentes procesados son los de tipo pirex debido a que son de mayor grosor y dureza que confieren resistencia a tracción y temperaturas altas. Ciertas características del látex son alteradas con los detergentes haciéndolos permeables al paso de microorganismos. Los algodones como las gasas deben ser esterilizadas por autoclave. A mayor cohesión de sus partículas es más duro y resistente. Los vidrios deben ser esterilizados por calor seco (pupinel) o deben ser desinfectados. Los vidrios pueden contener en su composición metales y plásticos. 1.
producen mayor contaminación de los ambientes. En estos espacios no se guardará alimentos o utensilios de comida. pues provocará aerosoles muy intensos con acción diseminadora muy extensa. materiales contaminados con saliva o sangre del paciente.1. A través de aerosoles y otras sustancias expelidas por las turbinas. pues el uso alterno de ambos elementos. sangre.  Reducir la formación de aerosoles y salpicaduras de saliva y sangre utilizando solo la cantidad necesaria de agua en la pieza de mano de alta velocidad y en los destartarizadores ultrasónicos.  Utilizar un buen sistema de evacuación (succión) de sangre y saliva. instrumentos.2. son: a. los que pueden diseminar grandes cantidades de microorganismos de la boca del paciente hacia todos los ambientes del consultorio.En las áreas de atención profesional no se deben realizar otras actividades que no sean la señalada.
1. se debe tener cuidado de que la presión de agua no sea demasiado fuerte. Se recomienda que primero se use el spray de agua y luego el del aire. b. PROTECCIÓN DEL AMBIENTE DE TRABAJO: Los medios más frecuentes a través de los cuales se producen infecciones cruzadas. Contacto directo de las manos del profesional o su asistente con los equipos.  Evitar la contaminación de pisos y módulos con la caída de saliva.
1. En los establecimientos asistenciales hay gérmenes patógenos
.3. materiales contaminados como algodones y restos de impresión. La ventilación de todos los lugares de trabajó deberá ser muy intensa a fin de evitar la polución causada por aerosoles generados durante las preparaciones dentarias o debido a las emanaciones del sistema de desagüe.3.  Cuando se use la jeringa triple. jeringas triples y aparatos de profilaxia. ni tampoco se tendrán plantas o materiales de limpieza. LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN DEL AMBIENTE: Estas normas tienen por objeto disminuir la contaminación ambiental y eliminar la suciedad visible. micromotores.
1% y desinfectar la totalidad del mueble por 15 minutos. kerosén.
. El procedimiento a seguir es el siguiente:  Lavar con solución de detergente limpiador.  No se debe usar cortinas en los baños. desinfectantes. Para la limpieza de los ambientes se debe tener las siguientes consideraciones:  Siempre se efectuará la limpieza ambiental desde el área más limpia a la más sucia. No usar cera.  Se prohíbe el uso de plumeros. enjuagar y luego embeber una esponja con solución de hipoclorito de sodio al 0. eliminar como residuo patogénico. escobillón o elementos que movilicen el polvo ambiental. mascarilla. siguiendo por sillones y pisos. liso y con la menor cantidad posible de ángulos en donde se pueda depositar el polvo o material contaminado. delantal impermeable.  En las áreas de trabajo no debe existir alfombras u otros. escoba. La limpieza de los ambientes debe ser realizada por un personal protegido con un gorro. para facilitar la limpieza y del piso por lo menos 10 cm.
Limpieza de Mobiliario: Las superficies de los muebles de trabajo deberán ser de material fácilmente higienizable. por el mismo motivo. La limpieza de mobiliario debe realizarse una vez por turno y siempre que se encuentren visiblemente sucios. aerosoles.  La limpieza comienza por las superficies verticales.  Deben eliminarse aquellos muebles que no cumplan una función estrictamente definida y específica en cada sector. Asimismo el personal debe estar vacunado contra el tétano y la Hepatitis B. Es importante tener presente que la boca puede expulsar saliva o sangre hasta un diámetro de dos metros desde el lugar en que se encuentra ubicado el paciente. guantes de goma hasta la mitad del antebrazo y anteojos protectores. finalmente enjuagar con una esponja embebida en agua y secar la superficie descontaminada.presentes en los elementos o equipos sucios o contaminados cercanos al paciente que se pueden comportar como reservorios o fuentes de infección.  En caso de mancha de sangre u otro fluido orgánico embeber inmediatamente en toalla absorbente.  Los muebles deben estar separados de la pared por lo menos 20 cm. desodorantes ambientales y pastillas de formol. por lo tanto todas las superficies que se encuentran ubicadas en ese espacio se deberán desinfectar con mayor frecuencia que el resto del mobiliario. que acumulen polvo o desechos contaminados.
incluidos los sistemas de iluminación. repasar con el segundo trapo y la solución de hipoclorito de sodio manteniendo húmedo durante 15 ó 20 minutos. secar y a continuación desinfectar esta superficie con solución de hipoclorito de sodio al 0. el personal de limpieza debe colocarse los guantes y luego colocar toallitas de papel sobre la mancha (tantas veces como sea necesario) para que la mancha se absorba. lavar la superficie limpiando vigorosamente con un trapo de piso embebido en solución detergente (no mezclar con hipoclorito de sodio).1%. Paredes. hacia abajo. Una vez absorbida. llenar el otro balde con solución hipoclorito de sodio al 0. ventanas y vidrios: El local asistencial deberá contar con paredes y pisos de fácil lavado. según punto anterior. No eliminarlo por la pileta del lavado de manos bajo ningún aspecto. evitando apliques innecesarios o materiales rugosos o porosos que dificulten la higiene del consultorio. Enjuagar. enjuagar con agua limpia pasando el mismo trapo por las superficies. En el caso de pisos que no están contaminados. tantas veces como sea necesario para que nunca esté notoriamente sucia. puertas. enjuagar y pasar un trapo con hipoclorito de sodio al 1%. en los cuales se realizará los siguientes procedimientos: Si hubiese presencia de materia orgánica. Pisos y zócalos: Se utilizará la técnica de doble balde/doble trapo. proceder a limpiar de la siguiente manera: llenar un balde con agua limpia. Este procedimiento se debe realizar una vez por semana y cuando se encuentren visiblemente sucios. 46
. Cambiar ambas soluciones tantas veces como sea necesario o cuando se encuentre las soluciones visiblemente sucias. Luego pasar un trapo con agua y detergente. con los trapos extendidos y las cerdas de cepillos hacia arriba. Se debe lavar desde una altura de 2m. evitando la salpicaduras y teniendo extrema precaución con las bocas de electricidad.1%. Cielorrasos: Deben estar visiblemente limpios. La frecuencia de limpieza es cada 2 meses. tibia y detergente. Desechar el contenido líquido de los baldes por la pileta de patio o por el inodoro.proceder a la limpieza con solución detergente e hipoclorito de sodio al 1%. Finalmente. lavarse las manos antes y después de este procedimiento previo al retiro de los guantes. dejar secar los baldes boca abajo. cepillando en forma meticulosa. Parra ello se debe usar una solución detergente o jabón. Se deberá cambiar el agua entre ambientes. enjuagar el balde y trapos utilizados. Pintarlos por lo menos una vez por año o cuando estén visiblemente sucios. Este procedimiento se debe realizar una vez por turno y siempre que se encuentren visiblemente sucios. descartar las toallitas en bolsa plástica de Residuos Patogénicos.
 Si se utilizan guantes de látex.  Las manos deben ser lavadas según técnica y secadas antes de su colocación. mediante la utilización de materiales adecuados que se interpongan al contacto de los mismos.Baños: Se efectuará igual procedimiento que el descrito en pisos y paredes.
Comprende el concepto de evitar la exposición directa a sangre y otros fluidos orgánicos potencialmente contaminantes. 47
. pero disminuyen las consecuencias de dicho accidente.  Verificar que no estén dañados los guantes antes de usarlos. En relación al uso de guantes debe considerarse:  Se deberá usar guantes para todo tipo de procedimiento que se realice en la atención odontológica del paciente. el inodoro y el lavatorio se desmancharán con jabón aniónico o solución de detergente. cirugía maxilofacial y periodontal).1°/o. GUANTES: Su uso tiene como objetivo la protección del personal de salud y la del paciente.1. en todo tipo de procedimiento odontológico.  Podrán utilizarse guantes de látex no estériles en los procedimientos no invasivos (ej. como de la transmisión de gérmenes de la sangre. el personal de salud deberá verificar que sus uñas estén cortadas o se deben retirar las uñas artificiales. el uso de guantes es indispensable. Estos dispositivos de protección tienen el objeto de impedir contaminación con microorganismos eliminados por los enfermos. pulseras y relojes. enjuagar y por último desinfectar con hipoclorito de sodio al 0.
2. ya que el aceite puede degradar el látex. por lo tanto. tales como anillos. Para lograr esto el odontólogo y el personal auxiliar que apoye directamente en el área asistencial deberá usar los siguientes métodos de barrera 2. para examen).  Los guantes estériles de látex deben utilizare en todo procedimiento invasivo (ej. al evitar o disminuir tanto el riesgo de contaminación del paciente con los microorganismos de la piel del operador. incluyendo el examen clínico. saliva.  Retirar las joyas. o mucosas del paciente a las manos del operador. La utilización de barreras no evita los accidentes de exposición a estos fluidos. en cada turno o cuando estén visiblemente sucios con material orgánico. no aplicar lociones o cremas en las manos inmediatamente antes de colocarse los guantes.  Antes de utilizar los guantes. Los materiales utilizados en este sector no se pueden utilizar en otro sector. y en otros casos que microorganismos del personal sanitario sean transmitidos a los pacientes.
los trabajadores deben evitar tratar con sangre u otros fluidos corporales. pues estos procedimientos los deterioran. si son grandes o muy estrechos interfieren con la destreza manual. o manos agrietadas.  Mientras realiza la atención. En caso haya lesiones abiertas. deberán considerar la posibilidad de usar doble guante. nariz y piel descubierta. el contestar las llamadas telefónicas. Debe atenderse a pacientes de alto riego con guantes estériles. pues favorece la maceración y fisuración de la piel y además produce deterioro del material del guante. disparar el accionador del equipo radiográfico o de otro equipo y de ser el caso. luego del contacto con materiales que puedan contener alta concentración de microorganismos o cuando estos se hayan contaminado con sangre.  Los trabajadores que tengan heridas en la mano.  Los guantes deben cubrir el puño del mandil. de tener que hacerlo deberá desechar esos guantes y utilizar un nuevo par.2. No se pasee por el consultorio con los guantes puestos. Las mascarillas deben tener las siguientes características:  Adaptarse con comodidad a la cara.  Los guantes gruesos de hule deberán ser utilizados para el manejo y limpieza de instrumentos contaminados.  No permanecer con los guantes puestos más de 45 minutos. 48
. MASCARILLAS: Se utilizan para proteger las mucosas de nariz y boca contra la inhalación o ingestión de partículas presentes en el aire.  Evite tocarse con las manos enguantadas los ojos. es preferible que la asistenta se encargue de controlar la luz.  Para evitar contaminarse las manos enguantadas o contaminar los objetos que toque. alcanzar el instrumental que no se encuentre a mano. cortes.  Los guantes deben estar bien adaptados. limpieza de ambientes y limpieza de sangre y otros fluidos corporales  Usar como mínimo un par de guantes nuevos por paciente. así como aquellos que se dañen durante los actos operatorios.  Carecer de costura central para evitar el paso de gérmenes. utilizar otro similar y continuar con el tratamiento interrumpido. en los aerosoles y contra las salpicaduras de sangre y saliva.  Cambiar los guantes entre diferentes procedimientos en el mismo paciente.  Si durante la realización de algún procedimiento odontológico se cayera un instrumento. 2.  Nunca intentar desinfectar y/o esterilizar los guantes. dichos guantes no deberán manipular ningún objeto o equipamiento que no esté estrictamente vinculado al área asistencial del paciente. No recogerlo sino hasta la finalización de dicho tratamiento. manejo de desechos contaminados.  No filtrar aire por los lados.
. por consiguiente deben ser consideradas como un objeto séptico. PROTECTORES OCULARES: Los protectores oculares sirven para proteger la conjuntiva ocular y el ojo de la contaminación por aerosoles.  Cubrir sin presionar los labios ni los orificios nasales. Manipularlas del elástico de soporte.  Permitir la respiración. de material resistente (alto impacto).  Las mascarillas están disponibles en variedad de materiales: Papel. Se consideran a las de fibra de vidrio como las más eficaces. hule espuma. orientada hacia atrás para evitar que se empañen. Tela. En relación al uso de mascarillas debe considerarse:  Se deberá usar mascarillas para cualquier tipo de procedimiento que se realice en la atención odontológica del paciente.  Nunca deben ser tocadas con las manos aun estando enguantadas.3. En relación al uso de anteojos de protección debe considerarse:  Se deberá usar protectores oculares para cualquier tipo de procedimiento que se realice en la atención odontológica del paciente.  Debe tener ventilación indirecta.  Debe permitir una correcta visión. 2. fibra de vidrio y otros compuestos sintéticos.  Debe ser de uso personal. Los anteojos deben tener las siguientes características:  Deben ser neutros.  Deben ser fácilmente descontaminables.  Lavarlos y desinfectarlos después de cada paciente utilizando jabones germicidas o soluciones antisépticas.  Las mascarillas deben ser de uso personal y preferentemente descartables. Las mascarillas odontológicas deben filtrar partículas de 1 micrón y tener como mínimo tres capas con una eficiencia de filtración del 95%. acrílico.  Los lentes deben ser amplios y ajustados al rostro para cumplir eficazmente con la protección  Debe tener protección lateral y frontal.  No favorecer el empañamiento de los protectores oculares.  Debe permitir el uso simultáneo de anteojos correctores. etc.  No irritar la piel. metales.  Toda mascarilla debe ser cambiada al estar presente la humedad en algunas de las capas. salpicaduras de sangre y saliva y de las partículas que se generan durante el trabajo odontológico como ocurre cuando se desgastan amalgama.  Sus superficies son susceptibles a contaminarse.
si tiene banda sujetadora. En relación al uso del mandil debe considerarse:  Siempre que se trabaja en el consultorio odontológico debe usarse mandil. con observación de adicionar siempre blanqueadores caseros (lejía).  Si pese al uso de anteojos cae sangre o saliva a los ojos.  Las pecheras pueden ser de tela o de plástico. MANDIL: El mandil protege la piel de brazos y cuello de salpicaduras de sangre y saliva.0.1% .2%.  Manga larga y de preferencia con el puño elástico adaptado a la muñeca.  Confortables.  Enjuagarlos con abundante agua y secarlos con paños de papel. usar desinfectantes tales como: alcohol isopropílico al 0.  Cerrado hasta el cuello. 2. Frotar con un paño suave.  El lavado debe seguir el ciclo normal de lavado de ropa.  Tener cuidado de no rayarlos con productos en base a piedra pómez. los mandiles serán removidos o desechados  Depositar y transportar la pechera en bolsas plásticas descartables. Tener presente que las soluciones altamente cáusticas dañaran la superficie de la película. compuestos de amonio cuaternario al 0. líquidos o fluidos corporales del enfermo evitando el cambio de este entre pacientes. de ahí recomendación de que el mandil sea de preferencia de color blanco. ésta deberá retirarse y lavarse por separado. inmediatamente debe aplicarse repetidas veces agua con un gotero.  Cambiar el mandil y la pechera cuando estén visiblemente manchados o salpicados con sangre o saliva. PECHERA: La pechera protege al mandil y evita las salpicaduras.  Para la desinfección.  Debe mantenerse siempre limpia. Debe tener las siguientes características:  Longitud aproximadamente hasta el tercio superior del muslo.5.7%.  Preferentemente de color blanco.  Deberá usarse dentro de las instalaciones del consultorio y será retirada salir de él. aerosoles y partículas generadas durante el trabajo odontológico.4.  Cuando se haya terminado de realizar los cuidados y antes de lavarse las manos. prolija e impecable. cada vez que se realizará un procedimiento invasivo. En relación al uso de la pechera debe considerarse:  Colocarse la pechera sobre el mandil. También protege al paciente de gérmenes que el profesional puede traer en su vestimenta cotidiana.
fresas de diamante y carburo.
Comprende el conjunto de dispositivos y procedimientos adecuados a través de los cuales los materiales utilizados en la atención de pacientes. piedras montadas y discos de pulido.
2. debe delimitarse un campo estéril en el área clínica directa para dejar la jeringa carpule (riñón o bandeja estéril).  El cabello debe estar totalmente recogido.
No mezclar la ropa cotidiana con la vestimenta protectora. curetas periodontales y para dentina. etc. En caso contrario solo el operador deberá manipular el instrumental de la bandeja.
3. son depositados y eliminados sin riesgo. tijeras bandas y alambre para ortodoncia.  No doblar las agujas.  Si se efectúa una segunda punción durante un mismo procedimiento clínico. En relación a los residuos punzo-cortantes se considera:  Nunca reinsertar con las manos las agujas en su protector. cinta matriz. Los pinchazos o cortes con aguja o instrumento contaminado con sangre o secreciones son altamente peligrosos.  Coordinar con precisión el pase de instrumentos punzo-cortantes entre el asistente y el operador. ni querer romperlas.  Las hojas de bisturí deben retirarse del mango con instrumentos con cremalleras.
. evitando la caída hacia la parte anterior o lateral de la cara.  Nunca dejar la aguja sin cubierta en la bandeja de instrumentos. para volver a colocar la cubierta protectora de la aguja o algún método que elimine la posibilidad de pincharse. MANIPULACIÓN DE RESIDUOS PUNZOCORTANTES: Un gran porcentaje de los accidentes laborales se da por el mal manejo del material punzocortantes. En relación al uso del gorro debe considerarse:  El gorro debe cubrir totalmente el cuero cabelludo. bisturís.  Las agujas sin cubierta protectora deben retirarse de las jeringas utilizando una pinza porta agujas o desinsertarla en contenedores.1.6. exploradores. Estos instrumentos incluyen: agujas. 3. instrumentos de endodoncia. O bien utilizar siempre una pinza porta aguja. GORRA: Evita la contaminación de los cabellos por aerosoles o gotas de saliva y/o sangre generadas por el trabajo odontológico.
Sin embargo se debe expresar que si existen algunas personas que presentan reacciones alérgicas al mercurio. Todos los sobrantes se guardarán en un frasco de vidrio que contenga agua. deberán ser colocados dentro de un recipiente descartable a prueba de agua.  Los recipientes descartadores deben estar lo más próximo posible al área de trabajo. la higiene del consultorio. la ventilación y los años de uso del mismo. Lo que se recomienda hacer es evitar el contacto físico de las manos con la amalgama y mantener herméticamente cerrado los frascos que contengan mercurio. No permitir que el asistente limpie con una gasa o algodón. ya que el paciente permanece muy poco tiempo en el consultorio como para perjudicarse con sus gases. Se deberá tener mucho cuidado en limpiar el resto de Mercurio de todos los instrumentos utilizados e la confección de obturaciones de amalgama. ya que el calor del esterilizador incrementa notoriamente los niveles de gases mercuriales con el consiguiente daño para la salud de quienes trabajan en el consultorio. La eliminación de residuos contaminantes. el hecho de exprimir con los dedos descubiertos los excesos de mercurio de una amalgama. La fricción de las partículas contenidas en las alfombras eleva el vapor de mercurio 10 y 20 veces por encima del límite de seguridad y estos niveles dañinos se mantienen durante varios días. los residuos orgánicos de los instrumentos que se están utilizando. pero cuando se equivocan los procedimientos para su utilización. como son los excesos de amalgama de plata. MANIPULACIÓN DE MATERIAL TÓXICO: Una de las muchas precauciones que se deberá tener en el consultorio odontológico es respecto a la manipulación del mercurio. La exposición al mercurio metálico es un factor de riesgo. como puede ser el permitir los derrames accidentales. 3. Respecto al tema de contaminación ambiental producida por la amalgama y más propiamente respecto al mercurio. tipo de revestimiento de los pisos. El uso de aspiradoras sobre las alfombras contaminadas puede
. Los riesgos del paciente en relación al mercurio no son grandes. resistentes a la punción. el calentar en el esterilizador instrumentos que presenten restos de amalgama y la eliminación de antiguas amalgamas sin usar aerosol de agua. las fallas de los amalgamadores. la confección de amalgama en la palma de la mano de la asistente o del profesional. aun con las manos enguantadas.  Las jeringas y agujas usadas deben ser recolectados y eliminados en recipientes descartadores rígidos. Se recomienda eliminar las alfombras y tapetes en las áreas de tratamiento. se ha determinado que existe relación con el número de amalgamas que se elaboren. que se cerrará herméticamente antes de su eliminación.2. previa rotulación con el título de “Material Tóxico”.
la no disponibilidad de bolsa color rojo obliga a colocar rótulos bien legibles indicando “residuos contaminados”. Para este tipo de residuos se debe utilizar bolsas de color amarillo. ELIMINACIÓN DE RESIDUOS: Para la eliminación de los residuos se debe acondicionar previamente los servicios. Estos residuos deben ser tratados previamente (incineración. Cuando una amalgama es calentada a consecuencia de su remoción con una fresa de alta velocidad. no representan riesgo de infección para las personas que lo manipulan y que por su semejanza con los residuos domésticos pueden ser considerados como tales. son potencialmente riesgosos. con destino a su eliminación. Cuando se pisan las amalgamas que se encuentran en el suelo o al momentote prepararlas. radioactivas y líquidos tóxicos.).). aumenta la concentración de mercurio en el ambiente. de manera que la amalgama no es considerada como una fuente de vapor. esterilización por autoclave. elementos punzocortantes. gasas. Los residuos contaminados como los materiales punzocortantes deben ser depositados en los descartadores. cartones. etc. inyectores de saliva. desinfección por microondas ó enterramiento controlado) antes de ser eliminados en los rellenos sanitarios autorizados por DIGESA. Los residuos especiales lo constituyen los elementos contaminados con sustancias químicas. guantes. Deben ser depositados en bolsas rojas. Los residuos comunes o no contaminados provenientes de la limpieza en general (polvos. tales como sustancia para revelado.
3.causar una elevación en el nivel ambiental de mercurio. Los residuos biocontaminados provenientes del área asistencial (algodones. papeles. Estos descartadores no deben bajo ninguna circunstancia ser reutilizados. el nivel de vapor de mercurio aumenta considerablemente. con materiales e insumos necesarios para descartar los residuos de acuerdo a los criterios técnicos establecidos en esta Norma. contribuyen al riesgo de la salud para quienes trabajan en odontología y para el paciente. Las partículas de amalgama combinadas con otras fuentes de mercurio existentes en los consultorios. etc. La presencia de mercurio en las partículas de amalgama es baja. vendas. excreciones y demás líquidos orgánicos del paciente y si no se eliminan en forma apropiada.
. por lo que se reitera la utilidad de usar succionadores de alta potencia cuando se efectúa este tipo de trabajo.3. Deben ser almacenados en recipientes con bolsas de color negro. mercurio. son residuos sólidos con grandes cantidades de microorganismos provenientes de las secreciones. plásticos. etc.
 Identificar y clasificar el residuo para eliminarlo en el recipiente respectivo.Es recomendable que los descartadores deben estar hechos con material resistente a los pinchazos y compatible con el procedimiento de incineración sin afección del medio ambiente. de buena capacidad. de forma de visualizarlo fácilmente desde cualquier posición. La abertura debe ser amplia de forma tal que al introducir el material descartado.
. En el caso de que no se pueda adquirir descartadores.  Ubicar el recipiente para el residuo punzocortante de tal manera que no se caiga ni se voltee. Sumergir los residuos en hipoclorito de sodio al 0. sobre todo para aquellos residuos biocontaminados y especiales. de paredes rígidas y cierre a rosca que asegure inviolabilidad. eliminar la aguja con una pinza porta aguja.5% con la finalidad de desinfectar el material y dañarlo para impedir que vuelva a ser usado. Para la eliminación de residuos se debe considerar:  Determinar la cantidad.  Cerrar herméticamente las bolsas una vez que estén llenas en las dos terceras partes. Los descartadores deben ser de color amarillo y tener el símbolo de material infectante y una inscripción advirtiendo que se manipule con cuidado.  Los recipiente serán colocados con sus respectivas bolsas lo más cercano posible a la fuente de generación. deben asegurarse que la empresa prestadora de servicios de manejo de residuos sólidos hospitalarios. además de contar con la autorización para la disposición final de residuos sólidos hospitalarios.  Las bolsas nunca deben ser arrastradas. Debe tener tapa para que cuando se llene hasta las dos terceras partes del volumen del mismo. descartar sólo la aguja en dicho recipiente  Si el recipiente no cuenta con dispositivo de separación de aguja. debe contar con la autorización emitida por el Municipio y ser depositada en rellenos sanitarios registrados en la DIGESA. se usarán recipientes rígidos como botellas plásticas de gaseosa. Las autoridades del establecimiento de salud. color y capacidad de las bolsas (que debe ser al menos 20% mayor de la capacidad del recipiente) a utilizar según la clase de residuos.  Desechar los residuos con un mínimo de manipulación. se pueda obturarlo en forma segura.  Si el recipiente tiene dispositivo para separar la aguja de la jeringa. la mano del operador no sufra riesgo de accidente. deben tener asa para su transporte y que la misma permita manipularlo lejos de la abertura del descartador. de dimensiones no menores a un tercio de la altura mínima de capacidad del recipiente y con dos impresiones. Deberá tener dicha inscripción y símbolo.
Definida: Cualquier herida que sangre espontáneamente contaminada con sangre o fluidos infectantes o bien.1. etc. esterilización por autoclave. 1. incineración y desinfección por microondas. Los residuos deben permanecer el menor tiempo posible acumulados en las áreas de trabajo retirándose con una frecuencia mínima de una vez por turno y siempre que se encuentren llenos los recipientes. cualquier herida penetrante con aguja u otro instrumento contaminado con sangre o fluidos infectantes.3. Dudosa: Cualquier lesión causada con instrumental contaminado con fluidos no infectantes. 1. En un AES se debe definir:     La víctima o personal de salud accidentado El material causante del accidente El procedimiento determinante del mismo La fuente. MEDIDAS BASICAS FRENTE A ACCIDENTES DE EXPOSICIÓN A SANGRE O FLUIDOS CORPORALES (AES): Se denomina AES.2. CLASIFICACIÒN DE AES: Los Accidentes de Exposición a Sangre (AES) se clasifican de acuerdo a la naturaleza de la exposición y puede clasificarse en 4 categorías probables: 1. o exposición de piel intacta o fluidos o sangre infectante.).
2. por ello los métodos de tratamiento recomendado son: enterramiento controlado. a todo contacto con sangre o fluidos corporales y que lleva una solución de continuidad (pinchazo o herida cortante) o con contacto con mucosa o piel lesionada (eczema.  Los residuos deben ser tratados sin perjuicio a la población y al medio ambiente.
. Probable: Herida superficial sin sangrado espontáneo con instrumentos contaminados con sangre o fluidos infectantes o bien mucosas expuestas a sangre o fluidos infectantes. excoriación. es decir la sangre o fluido potencialmente contaminante.
1%. Inyección accidental de más de 1 ml.
Numerosos agentes infecciosos en la sangre o fluidos corporales de lo que se denomina "fuente". Masiva: Transfusión de sangre infectada por VIH. Hasta 10 años madre-niño Inhalación. Cualquier exposición parenteral a materiales de laboratorio o de investigación conteniendo virus VIH.5 .  HEPATITIS A VIRUS B (HBV): el riesgo de infectarse por este virus en un accidente laboral a través de una aguja que tiene sangre contaminada es promedio un 15%. Hasta 6 meses Bacteria instrumentos latente contaminados Virus Contacto con saliva 3 a 7 días Virus
Carcinoma de hígado Muerte Inhabilitación.
En la práctica odontológica también se produce la transmisión de otras enfermedades de menor frecuencia. En la práctica los agentes más frecuentemente comprometidos en los AES son:  VIRUS DE LA INMUNODEFICIENCIA HUMANA (VIH): el riesgo de infectarse por este virus en un accidente laboral a través de una aguja que tiene sangre contaminada es estimado en 0.4. Virus contacto con sangre. saliva. de sangre o fluidos contaminados. En un contacto mucoso con sangre contaminada baja a un 0. saliva. pueden ser transmitidos en el curso de un accidente. llegando hasta un 40%.05%. 2 a 6 meses material contaminado Contacto sexual. muerte Dolor.  HEPATITIS A VIRUS C (HVC): el riesgo en este caso no está todavía bien precisado citándose cifras de hasta un 10%. pero igualmente presentan una serie de secuelas y complicaciones (ver tabla Nº 8 y 9). Tabla Nº 8 Infecciones Transmisibles de Interés en Odontología
Sangre.1.
inhabilitación Lesiones dolorosas Ceguera Artritis. VIH/SIDA Viruela/Zoster diseminado Zoster localizado Conjuntivitis viral Citomegalovirus Hepatitis A Hepatitis B Hepatitis no A y no -B Herpes simple Influenza Línea De Transmisión P.S. saliva. sangre. sangre Contacto directo.S. muerte Inhabilitación temporal Inhabilitación temporal. contacto sexual Heridas abiertas Saliva. periodontitis Exposición a heridas cutáneas Saliva. => PAC
. saliva. sangre
Enfermedad PAC =>P. esterilidad en hombres Osteomielitis reumatismo cardiaco Osteomielitis neumonía Inhabilitación temporal
Inhalación Contacto con secreciones ulceras orales. esterilidad en mujeres Daño cerebral. muerte Inhabilitación.Tipo I Herpes simple Tipo II Conjuntivitis Herpética Gonorrea
infectada Virus Virus Bacteria Contacto sexual. sangre Autoinoculación con saliva infectada Contacto sexual.
no menos de diez minutos.  Favorecer el sangrado haciendo que fluya sangre al exprimir la zona adyacente a la lesión.SILOS Nº 12 (?): No hay suficientes datos para comentar
3. Avisar al supervisor inmediato. Pinchazos y heridas:   Retirarse los guantes inmediatamente Lavar inmediatamente la zona cutánea lesionada con abundante agua y jabón. boca): Lavar abundantemente con agua o con suero fisiológico. Contacto con mucosas (ojo. 2.Sarampión Infec.
1.2. por un tiempo no menor a 10 minutos. Primeros cuidados de urgencia
1. (3 minutos). En el caso de ojos agregar colirio simple. nariz.  Mantenga la herida cubierta siempre que atienda a un paciente hasta su total cicatrización. Por meningocosos Parotiditis Rotavirus Rubeola Salmonella/Shigella Sarna Streptococo aureus Streptococo grupo A Tuberculosis Sífilies
FUENTE: OPS .  Dependiendo del tamaño de la herida cubrir la misma con gasa estéril.1.3. No utilizar desinfectantes sobre las mucosas.  Volver a lavar la herida con agua y jabón  Realizar antisepsia de la herida con alcohol al 70% vol. o alcohol yodado o tintura de yodo al 2%.
Cuando ocurre un AES se debe realizar los siguientes procedimientos: 1.
. Contacto con piel intacta: Efectuar arrastre mecánico con abundante agua corriente. Cada Institución definirá quien registrará los datos a efectos de recabar la información necesaria para asegurar que se den todos los pasos correspondientes en forma eficiente. 1.
Si el estado serológico es desconocido. El supervisor designado por la institución en el punto 2 deberá. 4. No es conveniente que el propio trabajador accidentado sea el que realice dicha evaluación. Notificar el accidente a los Comités Locales de Control de Infecciones del establecimiento de salud. En el caso de Hepatitis B se debe aplicar inmunoglobulinas y vacunas según el caso (ver tabla Nº 10). 11. 5. Cada institución tendrá la medicación disponible en todo momento para iniciar un tratamiento. Tienen indicación de tratamiento los accidentes por exposición laboral de las categorías probable. El tratamiento será a base de antiretroviral de acuerdo al esquema que maneja la estrategia. con el asesoramiento técnico que corresponda.3. El supervisor responsable de la evaluación solicitará al accidentado en forma voluntaria los exámenes serológicos correspondientes. deberá ser enviado inmediatamente al mismo a los efectos de proseguir con las medidas a tomar. La extracción deberá hacerse dentro de las 24 horas de producido el accidente. Es necesario conocer el estado clínico-serológico del paciente fuente. Se complementará el formulario de declaración de accidente laboral que se adjunta el cual se archivará en la Institución tanto pública como privada. marcadores de hepatitis y otros análisis que juzgue por conveniente el profesional.. En el caso de VIH se iniciara el tratamiento lo antes posible. 9. 10. En caso de no poderse evaluar el caso fuente éste debe ser considerado como positivo y procederse en consecuencia. 12. En ningún caso se demorará el comienzo de la medicación por dicho examen. En caso de corresponderle los beneficios y prestaciones de Seguros. realizar la evaluación del tipo de riesgo generado por dicho accidente. 8. Tabla Nº 10 Medidas Complementarias a la exposición del virus de la hepatitis B (VHB) 59
. teniendo en cuenta la presencia de indicadores de riesgo de infección. A las 48 horas el médico de referencia deberá reevaluar toda la situación. el conocimiento de la serología del paciente fuente y la tolerancia de la medicación. Con estos elementos se evaluará la pertinencia de la continuación del tratamiento iniciado o la interrupción del mismo en caso de no ser justificado. el médico prescribirá la realización de los siguientes exámenes previo consentimiento del paciente: serología para VIH. 6. dentro de las seis horas de producida la exposición. 7. definida y masiva.
Antígeno de superficie para Hepatitis B Inmunoglobulina específica para Hepatitis B (DOSIS: 0. Debe recibir dosis única de HBlg en los 7 primeros días Debe medirse anti-HBs y si es < 10 mU aplicar una dosis de HBlg y vacuna de refuerzo
Fuente de contacto es hallada negativa para HBsAg.Si
1. Debe recibir esquema de vacunación contra hepatitis B 2.06 ml/kg) Anticuerpos contra antígeno de superficie para hepatitis B
VIII. Debe recibir el esquema Personal de salud no vacunación está vacunado contra 2. Si fuente es de alto riesgo o hepatitis B sospechosa de HBsAg.
CONTAMINACIÓN: Es la presencia de un agente infeccioso en la superficie del cuerpo. AGENTE INFECCIOSO: Virus. 3. Aquí se incluyen los Compuestos clorados. vestidos. rickettsias. FUENTE: Es el lugar desde el cual un agente infeccioso pasa hacia el huésped. DESINFECTANTE DE NIVEL INTERMEDIO: Destruye las formas vegetativas de bacterias. Existen desinfectantes de nivel bajo que no destruyen las formas vegetativas de todas las bacterias. el orthophthaldehído. ENFERMEDAD TRASMISIBLE: Es aquella causada por un agente infeccioso capaz de transmitirse de una persona o animal infectado o de un reservorio a un huésped susceptible. 6. protozoarios o helmintos capaces de producir una infección. ENFERMED INFECCIOSA: Se define como la proliferación de microorganismos dentro de los tejidos produciendo daño y dando lugar a una variedad de manifestaciones clínicas. BIOSEGURIDAD: Es el conjunto de actitudes y procedimientos orientados a impedir la contaminación por microorganismos hacia el personal de salud y hacia el paciente. DESINFECTANTE DE BAJO NIVEL: Destruye bacterias patógenas en su forma vegetativa y algunos hongos. el peroxido de hidrógeno. bacterias. Como ejemplo esta el glutaraldehído. 5. vendajes quirúrgicos u otros artículos inanimados o sustancias incluyendo el agua y los alimentos. Dentro de su evolución puede tener un estadio asintomático es decir sin sintomatología. 4.1. 8. 2. Este paso puede ser por contacto directo o indirecto. DESINFECTANTE DE ALTO NIVEL: Destruye todos los microorganismos incluyendo al M. 9. no elimina el Mycobacterium tuberculosis ni los virus de tamaño pequeño no lipídicos. pero no lo hace con todas las esporas bacterianas. 7. En circunstancias especiales puede eliminar el Mycobacterium tuberculosis. los alcoholes y los fenoles. hongos. tuberculoso y a los virus resistentes. La fuente puede ser animada (ser vivo) o inanimado (objetos). DETERGENTE: Los detergentes son agentes químicos utilizados para la eliminación de suciedad que es insoluble en el agua. En este grupo están los amonios cuaternarios. 10. hongos y virus pero no necesariamente todos los virus de tamaño pequeño no lipídico. los agentes Iodóforos. el formaldehído y los productos basados en ácido paracético. instrumentos. 61
. con sintomatología leve (sub-clínica) o con sintomatología evidente (infección activa).
transporte o disposición final. TRANSMISION DIRECTA: Es el traspaso directo e inmediato de un agente infeccioso a puerta de puerta de entrada receptiva tal como piel. 17. 18. laboratorios y otros. genera residuos sólidos. 16. Usualmente se utiliza agua y detergente para este proceso. 12. 13. FUENTE DE GENERACIÓN: Unidad o servicio del establecimiento de salud que. TRANSMISION: Es cualquier mecanismo en virtud del cual un agente infeccioso se propaga en el ambiente o de un persona a otra. en razón de sus actividades. TRATAMIENTOS DE RESIDUOS: El tratamiento de los residuos sólidos hospitalarios consiste en transformar las características físicas. mucosas o cavidades y que implica el riego de contaminación. 15. RESIDUOS SÓLIDOS HOSPITALARIOS: Los Residuos Sólidos Hospitalarios son aquellos desechos generados en los procesos y en las actividades de atención e investigación médica en los establecimientos como hospitales. LIMPIEZA: La limpieza es la remoción mecánica de toda materia extraña en el ambiente. utilizando para ello el lavado manual o mecánico. 14. vectores o aerosoles.11. PROCEDIMIENTOS NO INVASIVOS: Procedimientos que no penetran piel. postas. 20.
. en superficies y en objetos. PROCEDIMIENTOS INVASIVOS: Procedimientos que penetra piel. mucosas o cavidades del paciente. conjuntivas o cosas genitales. mucosa oral mucosa nasal. El propósito de la limpieza es disminuir la biocarga (número de microorganismos) a través del arrastre mecánico. INCINERACIÓN: Método de tratamiento de residuos que consiste en la oxidación química para la combustión completa de los residuos en instalaciones apropiadas. clínicas. a fin de reducir y controlar riesgos a la salud y ambiente. químicas y biológicas de un residuo peligroso en un residuo no peligroso o bien menos peligroso a efectos de hacer más seguras las condiciones de almacenamiento. 19. TRANSMISION INDIRECTA: Es la transferencia de un agente infeccioso a un individuo susceptible a través de vehículos de transmisión.
5cc de glutaraldehído y agregar 937. Precauciones:  La lejía concentrada deberá almacenarse a temperatura inferior a 25º.  El agua utilizada para la dilución de la lejía concentrada será agua corriente (no destilada) y fría. Medir una parte de lejía doméstica y agregar cuatro partes de agua destilada.  Utilizar tiras de control de concentración de glutaraldehído con el fin de descartar aquellas soluciones cuya concentración haya disminuido por debajo del 1. Medir 100cc de lejía doméstica y agregar 900cc de agua destilada. a fin de evitar dilución del preparado. b.  Las diluciones de la lejía concentrada deberán realizarse en forma diaria reduciendo de esta manera la pérdida significativa de cloro activo.5cc de agua destilada. GLUTARALDEHÍDO AL 2% CON FENÓLICO Para obtener 1 litro a una concentración de 1:16. Medir una parte de lejía doméstica y agregar nueve partes de agua destilada.
Precauciones:  Trabajar con ambiente bien ventilado con elementos de protección (anteojos de seguridad.  Los elementos que se colocan en este producto deben estar siempre secos. delantal de polietileno y barbijo). Medir 200cc de lejía doméstica y agregar 800cc de agua destilada para obtener un litro de hipoclorito al 1%. existen 2 formas: a. b. guantes de látex. existen 2 formas: a.5% (durante el periodo de uso de 14 ó 28 días desde la activación). Nunca utilizar agua caliente o tibia. HIPOCLORITO DE SODIO Para obtener 1 litro a una concentración del 1% (1:5). Medir 62.
. Para obtener 1 litro a una concentración del 0. no aumentar la concentración ya que es inútil por eficacia y costo.  No superar los tiempos de exposición establecidos ya que es inútil.1.  El envase donde se almacena el glutaraldehído activado deberá estar bien tapado. existen 2 formas: a.  Nunca utilizar lejía concentrada como desinfectante o decontaminante ya que es totalmente ineficaz. 2.5% (1:10). b. Medir una parte de solución y agregar 15 partes de agua destilada. protegida de la luz en frascos plásticos opacos y bien tapados. Nunca superar ese tiempo establecido.  La solución de glutaraldehído al 2% activada utilizada para esterilizar o desinfectar debe descartarse a los 14 ó 28 días después de ser activado.  Utilizar las diluciones especificadas.
Precauciones:  El alcohol de 95º. de alcohol de 70°.
. ALCOHOL DE 70° Para obtener 1 litro de alcohol de 70°: Medir 623cc de alcohol de farmacia de 95° y agregar 377cc de agua destilada para obtener un litro de alcohol de 70º.3. al abrigo de la luz. por lo tanto nunca usar alcohol de 95º sin diluir. Para obtener 1 litro de formaldehído al 4%: Medir 100cc de formol comercial al 40% y agregar 900cc de agua destilada. no tiene propiedades germicidas. ALCOHOL IODADO Para obtener un litro de alcohol iodado: Medir 100 ml de tintura de yodo fuerte y agregar 900ml. FORMALDEHÍDO Para obtener 1 litro de formaldehído al 8%: Medir 200cc de formol comercial al 40% y agregar 800cc de agua destilada. Precauciones:  Conservar en sitio fresco (inferior a 25o C) en recipientes de vidrio de color caramelo. 5.  Evitar el contacto directo con elementos metálicos ya que es corrosiva.
4. Necesita la presencia de agua para actuar como microbicida.
Noviembre 1997.Perú – 2004. Lima – Perú. Ministerio de Salud “Manual de Bioseguridad para Laboratorios”. “Normas de Bioseguridad”. 2002. Perú – 2004. 9. MINSA. y Jaime Ignacio Otero. Lima – Perú. “Norma Técnica de Vigilancia Epidemiológica de las Infecciones Intrahospitalarias”. República Argentina. Ministerio de Salud Pública. Wilson Delgado Azañero. Resolución Ministerial N° 179-2005/MIN. Margarita Serra y Col. Jaime Otero M. Resolución Ministerial N° 452-2003 SA/DM. 7. Resolución Ministerial N° 753-2004/MINSA. 65
. 4. “Control de las Infecciones Transmisibles en la Práctica Odontológica”. Ministerio de salud. “Manual de Aislamiento Hospitalario”. 1ra. Gabriel Flores Mana. Universidad Particular Cayetano Heredia. MINSA. Uruguay. 1995. Ministerio de Salud. Ministerio de salud. Programa Especial de Control de SIDA. Resolución Ministerial N° 217-2004 SA. 12. Publicación N° 3. MINSA. Perú -2002. “Manual de Bioseguridad en Odontología”. Edición. Ministerio de Salud Chile. Ministerio de Salud. Gobierno de Chile. “Norma Técnica de Manejo de Residuos Sólidos Hospitalarios”. MINSA. Perú – 2005. 6. 3.2003. Instituto Nacional de Salud Resolución Jefatural N° 447-2002. Ministerio de Desarrollo Social y Salud. 1999. MINSA. “Manual de Bioseguridad para VIH/SIDA”. 8. Adelina LO BUE y Col. 10. 5. Perú .IX. “Normas Técnicas sobre Esterilización y Desinfección de Elementos Clínicos y Manual para su aplicación”. “Manual de Bioseguridad”. Víctor Vives Barreto. 2. Ministerio de salud. “Norma Técnica de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias”. Ministerio de Salud “Manual de Esterilización y Desinfección Hospitalaria”.Octubre de 1991. 11.
1. OPD/INS. Gobierno de Mendoza. 27 de Noviembre del 2001. Perú – 2002. Perú .
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