Source: https://es.scribd.com/doc/58053626/BIOSEGURIDAD-MINSA
Timestamp: 2016-02-13 21:38:47+00:00

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NORMA TÉCNICA BIOSEGURIDAD EN ODONTOLOGÍA
ÍNDICE………………………………………………………………………………… 2 INTRODUCCIÓN…………………………………………………………………….. 5 I. FINALIDAD………………………………………………………………… …. 6 OBJETIVOS………………………………………………………………… …. 6 AMBITO DE APLICACIÓN………………………………………………….. 6 BASE LEGAL………………………………………………………………….. 6 DISPOSICIONES ESPECÍFICAS……………………………………………. 7 1. MEDIDAS BÁSICAS DE PREVENCIÓN CONTRA LAS INFECCIONES TRANSMISIBLES…………………………………........ 7 1. PRECAUCIONES UNIVERSALES……………………………………. 7 1.1. CUIDADOS DEL PERSONAL…………………………………... 7 1.1.1. INMUNIZACIONES………………………………………… 8 1.1.2. LAVADO DE MANOS………………………………………. 8 1.2. MANEJO DE LOS ARTÍCULOS ODONTOLÓGICOS……….11 1.2.1. MÉTODOS DE ELIMINACIÓN DE
MICROORGANISMOS…………………………………… 11 1.2.1.1. ESTERILIZACIÓN……………………………………..11 A) PROCESO DE ESTERILIZACIÓN CON CALOR……. 11 B) PROCESO DE ESTERILIZACIÓN POR AGENTES QUÍMICOS………………………………………………… 22
1.2.1.2. DESINFECCIÓN………………………………………. 24 A) PROCEDIMIENTO DESINFECCIÓN……………….24 DE
B) TIPOS DE DESINFECTANTES…………………………. 27 1.2.2. SELECCIÓN DEL MÉTODO ADECUADO PARA LA ELIMINACIÓN DE MICROORGANISMOS……………. 32 1.2.2.1. MÉTODOS SEGÚN CLASIFICACIÓN DE SPAULDING………………………………………..….. 32 A) MATERIAL …………………………………… 32 CRÍTICO
B) MATERIAL SEMICRÍTICO…………………………….. 33 C) MATERIAL CRÍTICO……………………………….. 38 NO
1.2.2.2. MÉTODOS SEGÚN CARACTERÍSTICAS Y COMPOSICIÓN DE MATERIALES…………………40 A) ACERO…………………………………………………….. 40 B) PLÁSTICO………………………………………………… ..41 C) VIDRIOS…………………………………………………… .41 D) LATEX……………………………………………………... 41 E) ALGODONES…………………………………………… … 42 F) LÍQUIDOS…………………………………………………. 42 1.3. MANEJO DEL AMBIENTE ODONTOLÓGICO……………... 42 1.3.1. PROTECCIÓN DEL AMBIENTE DE TRABAJO………..42 1.3.2. LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN DEL AMBIENTE………43
PROTECTORES OCULARES………………………………….54 3. MANEJO DE RESIDUOS CONTAMINADOS……………………….. MANDIL………………………………………………………….3..2..……53 2.56
VI. CONDUCTA A SEGUIR EN CASO DE UN AES……………. 49 3. 63
VII.49 2. CLASIFICACIÓN DE AES……………………………………….
. ELIMINACIÓN RESIDUOS………………………………….2.5.2. AGENTES INFECCIOSOS TRANSMITIDOS POR AES……. 53 1.. PECHERA…………………………………………………………..
ANEXOS………………………………………………………………………. 47 2. 47 2.49 3. 51 DE
2... 45 2. 48 2.4........ 59 BIBLIOGRAFÍA……………………………………………………………… .. ....1.. GUANTES……………………………………………………….. MANIPULANCIÓN DE MATERIAL TÓXICO………………. USO DE BARRERAS…………………………………………………. 45 2.6.1..……..49 3. MASCARILLAS…………………………………………………..3. MEDIDAS BÁSICAS FRENTE A ACCIDENTES DE EXPOSICIÓN A SANGRE O FLUIDOS CORPORALES (AES)……………………….50 3. MANIPULANCIÓN DE RESIDUOS PUNZOCORTANTES…. GORRA…………………………………………………………….
el interés social por la calidad de los servicios de salud. producto de la aparición de nuevas enfermedades. la importancia de la protección del ambiente y la masificación de la información han generado la necesidad revisar y actualizar los procedimientos para el control de las infecciones en la práctica odontológica. se debe considerar que el perfil de la atención odontológica ha cambiado enormemente en los últimos años.
. están expuestos a una variedad de microorganismos por la naturaleza de las interacciones. incorporación de nuevas tecnologías de tratamiento. la importancia de la salud ocupacional. donde se produce un contacto directo o indirecto con el instrumental.INTRODUCCIÓN
El Equipo de Salud que otorga la atención odontológica y sus pacientes. especialmente fluidos corporales. Asimismo. el equipo. Además. aerosoles y las superficies contaminadas. hacen necesario tomar diferentes medidas de protección para prevenir la infección cruzada. de potenciales portadores de enfermedad. hay que destacar que a su vez el operador es portador de microorganismos en sus manos y cuerpo en general. por lo que el contacto repetitivo entre profesional y paciente con tales características.
La Norma Técnica de Bioseguridad en Odontología tiene como finalidad reducir el riesgo de transmisión de enfermedades infectocontagiosas a través de la sangre.En tal sentido se ha desarrollado la norma técnica de Bioseguridad en Odontología. La norma de Bioseguridad en Odontología ha sido elaborada teniendo en cuenta la bibliografía actual y la normatividad vigente. Pero no solo se requiere el diseño de normas y procedimientos efectivos y de bajo costo. Asimismo.
. cuidados del personal asistencial.
OBJETIVOS:  Establecer las medidas de prevención para evitar las enfermedades de riesgo profesional y la infección cruzada entre el profesional odontólogo.
I. Esta incluye. personal auxiliar. personal de limpieza y personal de laboratorio. No obstante. manejo de residuos contaminados y medidas básicas frente a accidentes de exposición a sangre o fluidos corporales. secreciones orales y/o respiratorias desde el paciente hacia los profesionales y colaboradores. manejo del ambiente odontológico. sino también su difusión. la que se define como un conjunto de procedimientos básicos de conducta que debe seguir cualquier personal de salud. es necesaria la evaluación periódica de estas Normas para adecuarlas al conocimiento científico actualizado. con la evolución del conocimiento humano.  Establecer la conducta a seguir frente a un accidente con exposición a sangre y otros fluidos corporales. de estos al paciente y entre pacientes del servicio odontológico. pacientes. del servicio de odontología. la enseñanza y la vigilancia de su cumplimiento. se han adaptado a los recursos económicos y financieros disponibles en nuestro medio para que se pueda cumplir lo mejor posible. manejo del material. cuando se enfrenta a riesgos para su salud y la de la comunidad. uso de barreras protectoras. e instrumental. dentro de otros. en el curso de su trabajo diario.
Si tenemos en cuenta además. Nº 26842. 014-2002 – SA.III.  Resolución Ministerial N° 179-2005/MIN.
IV. en todo el territorio nacional. D. que aprueba la Norma Técnica del Manejo de Residuos Sólidos Hospitalarios.  Ley del Ministerio de Salud Nº 27 657 y su Reglamento. que la cavidad bucal es portadora de una multiplicidad de agentes microbianos. MEDIDAS BÁSICAS DE INFECCIONES TRANSMISIBLES:
BASE LEGAL:  Ley General de Salud. se pueden causar durante las maniobras pequeños sangrados o incluso no es raro observar sangrados espontáneos.  Resolución Ministerial N° 452-2003 SA/DM. Por esta razón.  Resolución Ministerial N° 217-2004 SA. La presente Norma de Bioseguridad abordará principalmente las medidas preventivas para evitar la transmisión de enfermedades infecciosas y las mediadas a tomar cuando se produzca un accidente de exposición a sangre y otras secreciones corporales. podemos concluir que el odontólogo puede contaminarse o contaminar accidentalmente.  Resolución Ministerial N° .  Resolución Ministerial N° 753-2004/MINSA.
La presenta norma es de aplicación obligatoria en los consultorios odontológicos de los establecimientos públicos y privados del Sector Salud.
Cuando se realizan procedimientos odontoestomatológicos de rutina. creemos que el odontólogo debe conocer detalladamente las normas de bioseguridad e incorporarlas a su práctica cotidiana. que aprueba la Norma Técnica de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias. que aprueba el Manual de Aislamiento Hospitalario.
1. S. que aprueba el Manual de Esterilización y Desinfección. que aprueba la Norma Técnica de Vigilancia Epidemiológica de las Infecciones Intrahospitalarias.
INMUNIZACIONES: El personal que labora en el consultorio odontoestomatológico y que tienen la posibilidad de exposición a sangre u otros fluidos corporales debe recibir la vacuna contra la hepatitis B. la probabilidad de contagio es de alrededor del 0. por ejemplo. CUIDADOS DEL PERSONAL: Son todas aquellas precauciones estándares que rutinariamente deben seguir todo el personal que labora en el servicio de odontología. 2. frente a un accidente punzante con aguja contaminada con sangre infectada con HIV. 3.4%.1. Estas medidas preventivas están basadas en tres principios fundamentales: 1. Por otra parte. deben hacerse pruebas para asegurarse que la vacuna provea inmunidad contra la infección correspondiente. asimismo. es del 30%. Precauciones universales. producida por un virus 100 veces más infectante que el virus HIV.
1. PRECAUCIONES UNIVERSALES: Constituyen un conjunto de medidas que deben aplicarse sistemáticamente a todos los pacientes sin distinción. los pacientes con hepatitis B tienen la probabilidad de transformarse en portadores crónicos (10%) y posteriormente. El cáncer hepático es el único cáncer que se previene con una vacuna. Lo más grave aún es que los pacientes con cirrosis relacionada con hepatitis B tienen un riesgo 247 veces mayor de contraer cáncer hepático que la población en general. considerando que toda persona puede ser de alto riesgo. Las medidas deben involucrar a todos los pacientes.
1. Asimismo. por las siguientes razones: la hepatitis B es una enfermedad transmitida por sangre. 1. Uso de barreras. mientras que si lo mismo ocurre con un elemento contaminado con virus de hepatitis B. considerar todo fluido corporal como potencialmente contaminante. independientemente de presentar o no patologías. La vacuna contra la hepatitis B.1. para que disminuyan el riego de adquirir infecciones en el medio laboral. Además.Estas normas están destinadas a reducir el riesgo de transmisión de enfermedades infectocontagiosas de fuentes reconocidas o no reconocidas. Esta vacuna debe ser aplicada en dosis completas y según esquema vigente.1. es la más importante. Manejo de residuos. el 85-95% de los 8
. igualmente señalar los diferentes procedimientos que eliminen el riego de transmitir al paciente infecciones por contacto directo o a través del uso de instrumental o material contaminado. padecer cirrosis. a las cuales el odontólogo y su personal auxiliar estas expuestos.
dosis a los 30 días de la primera y la 3era. LAVADO DE MANOS: Es el método más eficiente para disminuir el traspaso de microorganismos de un individuo a otro y cuyo propósito es la reducción continua de la flora residente y desaparición de la flora transitoria de la piel y de las uñas. además se necesita dosis de refuerzo cada 5 años.2.sujetos normales que reciben esta vacuna se inmunizan contra el virus de la hepatitis B y se protegen indirectamente contra la hepatitis Delta.
1. Actualmente. Técnica del lavado de manos: La técnica de lavado de manos varía de acuerdo al tiempo de contacto del jabón con las manos (ver tabla N° 1):
.1. Su control debe ser hecho a través de títulos positivos de AgHBs o niveles altos de Anti AgHBs (mayor de 10 mUI/ml). la vacuna se aplica por inyección intramuscular profunda en región deltoidea. La aplicación de esta vacuna se realiza en tres dosis: 1 era dosis. dosis transcurrido cuatro meses de la segunda. la 2da.
6. Mojar manos. Enjuagar las manos con 6. Secar con toallas descartables 7. anillos cintas. en caso de que estos no fueran automáticos. pulseras 2.
8. efectuar los alcohol iodado o alcohol de 70º pasos del 1 al 7 con jabón neutro y finalizar con alcohol iodado o alcohol de 70º
. Friccionar las manos muñecas o realizar un hasta los codos o realizar frotamiento mecánico vigoroso un frotamiento mecánico durante 15 a 20 segundos vigoroso durante 2 minutos (contar hasta 20). yodopovidona. Igual desde los dedos. sobre todo alrededor de las uñas. Igual manos: reloj. Cerrar los grifos con la 8. muñecas y antebrazos con agua corriente. Igual que no sean automáticos) 3.LAVADO CORTO (Clínico) Jabón neutro líquido
LAVADO MEDIANO Jabón líquido antiséptico (clorhexidina al 4%. Igual 5. en forma sistemática durante 5 minutos cepillar las uñas y friccionar con esponja descartable la piel. Igual espacios interdigitales 5. Mantener las manos hacia arriba
6. 4. Mojar las manos. Escurrir sin juntar las manos. etc. descartar toallas 8. muñecas con agua corriente muñecas y antebrazos con agua corriente. De no usar jabón 9. Igual
3. Este paso puede dividirse en 2 etapas de 2 minutos y medio c/u. individual y un solo uso. Jabonar bien (contar hasta 12O) toda la superficie. 9. Secar con toallas estériles. Abrir los grifos (en el caso 2. 4. Igual
2. Retirar los accesorios de las 1.
1. Igual abundante agua corriente 7. Friccionar las manos y 5. Igual última toalla del secado. Lavado y enjuagado con antiséptico. No sacudirlas 7. Mojar las manos y las 3. Friccionar las manos hasta los codos. Colocar jabón y frotar en 4.)
LAVADO LARGO (Quirúrgico) Jabón líquido antiséptico
1. repitiéndola e intercalando en el medio el enjuague de las manos hasta los codos.
se deberá tener especial atención en: la parte interna de los dedos sobre todo los dedos pulgares.  Los dispensadores de toalla en lo posible deben ser cerrados para impedir la contaminación por exposición al ambiente o contacto con las manos del personal y debe estar muy cercano al lavamanos a una altura que permita mantenerlo seco. Se debe realizar un lavado corto al ingresar y retirarse del consultorio. antes y después de ingerir líquidos y alimentos.  No frote sus manos con un cepillo pues irrita la piel dejando incluso heridas abiertas. arreglarse el cabello o cuando estén visiblemente sucias. antes y después de usar los guantes para realizar procedimientos no invasivos. deberán mantenerse cortas y siempre muy limpias en el surco ungueal. después de estornudar.  Para ser efectivo. pues se ha demostrado que el contacto repetido favorece el crecimiento de bacterias provenientes tanto de la piel del operador como de la boca del paciente.  Durante el lavado de manos.
 Las uñas de todos los profesionales y las del personal auxiliar.
 Para el secado de las manos se debe emplear toallas de papel. después de usar los sanitarios. tocarse la cara. después de tener contacto con pacientes infectados por gérmenes resistentes.  Se debe realizar un lavado largo antes de efectuar cualquier procedimiento quirúrgico. El enjuague debe realizarse con agua fría para cerrar los poros.  Se debe realizar un lavado mediano antes y después de realizar procedimientos invasivos. luego de cuatro usos consecutivos. libre de salpicaduras.  Evitar el empleo de jabones sólidos.   Utilizar jabones líquidos obtenidos de dispensadores apropiados. debido a que en las toallas de felpa también crecen bacterias provenientes tanto de la piel del operador como de la boca del paciente. parte del dorso de las manos y bajo las uñas. toser. después de manipular material e instrumental contaminado con fluidos corporales. el lavado de manos deberá tener la suficiente duración y la acción mecánica que permita que los productos antimicrobianos estén en contacto el tiempo suficiente para lograr los resultados deseados.
.  El uso de guantes no sustituye el lavado de manos.
 Se debe procurar que las llaves de agua del lavatorio del consultorio sean de palanca.1. En tal sentido. Aquellos objetos que no pueden ser esterilizados por el calor. La esterilización se puede conseguir a través de medios físicos como el calor y por medio de sustancias químicas. obteniéndose como consecuencia la protección antibacteriana de los instrumentos y materiales. Se debe usar como medio de esterilización el calor seco o húmedo. 1. con ella se logra destruir las formas vegetativas y esporas de los microorganismos.
1. destinados a garantizar la eliminación o disminución de microorganismos de los objetos inanimados. pueden eventualmente serlo con el uso de sustancias químicas esterilizantes. MANEJO DE LOS ARTÍCULOS ODONTOLÓGICOS: El material e instrumenta.2. En caso que sean de rosca. por su lentitud y riesgo de recontaminación.1. Los métodos de esterilización por calor son muy efectivos y en general fáciles de certificar. destinados a la atención del paciente. El proceso de esterilización con calor comprende las siguientes etapas:
. puede convertirse en un vehículo de transmisión indirecta de agentes infectantes. estas deberán ser cerradas con la última toalla del secado. de tal forma que garantice que los artículos de atención directa reciben el procedimiento adecuado para eliminar o disminuir el riego de infección. 1.1. accionadas con el pie o fotosensibles.2. MÉTODOS DE ELIMINACIÓN DE MICROORGANISMOS: Son todos aquellos procedimientos. el personal responsable del procesamiento de los artículos de atención odontológica. debe poseer un claro conocimiento sobre los métodos existentes para la eliminación de microorganismos. Este proceso debe ser utilizado en los materiales e instrumentales de categoría crítica. ESTERILIZACIÓN: Es el proceso mediante el cual se eliminan de los objetos inanimados todas las formas vivientes. con el fin de interrumpir la cadena de transmisión y ofrecer una práctica segura para el paciente. así como el equipo odontológico. A) PROCESO DE ESTERILIZACIÓN CON CALOR: Son los métodos físicos que se utilizan para la destrucción de microorganismos que actúan por medio de altas temperaturas. No se recomienda el uso de secador de aire.2.
El prelavado debe realizarse preferentemente por inmersión en detergente enzimático durante 2 ó 5 minutos o en su defecto en agentes tensioactivos con pH neutro. porque esto evitará que la biocarga (sangre. Antes del lavado se debe retirar restos de cintas o tapes e. Finalizado este tiempo debe enjuagarse con agua corriente a fin de arrastrar la materia orgánica presente. para lograr una adecuada limpieza manual son: a. El lavado manual es un procedimiento realizado por un operador. saliva u otros) se seque y dificulte aún más el lavado. lentes. b) Lavado c) Secado y d) Lubricación del material. La materia orgánica e inorgánica presente en los artículos interfiere en los métodos de esterilización y desinfección. Separar los elementos punzocortantes con el fin de evitar pinchaduras o accidentes. Realizarse un prelavado inmediatamente y en el mismo sitio donde fue utilizado el material odontológico. que procura la remoción de la suciedad por fricción aplicada sobre la superficie del material. En la limpieza se debe realizar los siguientes pasos: a) Descontaminación o prelavado. guantes y mascarilla. Para ello se seleccionará este y el operador hará uso de las barreras de protección adecuadas como son un mandil impermeable. Mantener sumergido en agua tibia (menor a 45° C) y agente tensioactivo durante toda la etapa de lavado a fin de evitar
. La limpieza disminuye la carga microbiana por arrastre pero no destruye microorganismos. d. caso contrario no puede ser garantizado la limpieza de la parte final. g. Desarticular todas las piezas que constituyen el elemento. c. La limpieza puede realizarse a través de métodos de lavado manual o automático. prolongando los tiempos de exposición requeridos para lograr el mismo objetivo. porque estos detergentes desintegran la materia orgánica. ya sea impidiendo el contacto del agente esterilizante con todas las superficies o en el caso de procesamiento por calor. por lo que se tendrá en cuenta prevenir accidentes con materiales cortopunzantes.Descontaminación y limpieza: Esta etapa consiste en la remoción mecánica de toda materia extraña en las superficies de objetos inanimados. b. Los procedimientos a seguir. En países como el nuestro es lo más frecuente. f.
 Instrumental grande tiene que ser depositado en las bandejas de tal forma que no impida por sombras de lavado la limpieza del instrumental restante. j. ya que desgastan el material. El enjuague final se recomienda con agua destilada. de no hacerlo así aparecerán manchas y/o decoloraciones en el instrumental quirúrgico. Para la limpieza se debe tener las siguientes consideraciones:  Con el fin de evitar la coagulación de albúmina. Realizar un último enjuague. teniendo especial cuidado de limpiar las articulaciones. o.  No utilizar sustancias abrasivas y cepillos metálicos.aerosolizaciones. l. h. Proceder a escobillar prolijamente con una escobilla de cerdas duras. que no se dañe mutuamente. ya sea por medio de paños o aire comprimido con filtro bacteriano. esto evita la corrosión del material metálico y el depósito de sales calcáreas en el material de vidrio. El secado de los elementos. i. Enjuagar con abundante agua corriente para eliminar el resto de detergente y materia orgánica. las ranuras y cremallera. n. El agua tibia mejora las propiedades de disolución del detergente y las enzimas. k.  Los residuos de la fase de limpieza tienen que ser quitados durante los enjuagados posteriores. Luego llevar la bandeja bajo el chorro de agua para eliminar el máximo de biocarga. m. debe efectuare inmediatamente para evitar recontaminación. la cual trae consigo problemas de limpieza. la temperatura del agua introducida no podrá pasar los 45º C.  Al emplear procedimientos usuales de preparación mecánica las piezas de aluminio anodinadas en color pueden perderlo y por ende su función de codificación. El empleo de un producto neutralizante apropiado puede favorecer este proceso y también el resultado del enjuagado posterior. Lubricar si fuera necesario y después de unos minutos secar el lubricante con papel absorbente. Comprobar que estén en buen estado de funcionamiento. 14
.  Las bandejas no pueden ser sobrecargadas para que así pueda ser enjuagado suficientemente todo el instrumental. Realizar la evaluación visual minuciosa de los artículos lavados en búsqueda de suciedad que pudiera interferir en los métodos de esterilización. En caso que se encuentre algún desperfecto deberá volver a realizarse los mismos procedimientos antes descritos.  El instrumental tiene que ser depositado de tal forma.
. además facilita el transporte. para lograr un adecuado empaque son: a. originándose su posterior oxidación e inutilización. pues los agentes esterilizantes no penetran debidamente y por lo tanto los microorganismos no serían destruidos. los instrumentos pueden manifestar rigidez y dificultad en el manejo así como también pueden presentar manchas y otros eventos.  Después de la limpieza. Los procedimientos a seguir. Posicionar el material diagonalmente en el centro del empaque. por lo que es importante la lubricación de estos después de la limpieza y antes de la esterilización. Preparación y Empaque: En esta etapa los artículos a esterilizar son preparados y empaquetados con el objetivo de brindar una adecuada protección. el manejo por el usuario.  Ningún instrumento que presente restos de sangre deberá ser introducido al esterilizador. permitiendo una utilización segura de este. cambios de color y corrosión. El empaque debe ser seleccionado de acuerdo al método de esterilización y al artículo a ser preparado. ni tóxico. ni aceite de máquinas.  Si el instrumental quirúrgico va a ser esterilizado en autoclave a vapor el lubricante debe ser soluble en agua y siempre haber sido fabricado para uso en esterilización. Colocar el indicador o integrador químico interno en el centro del paquete. E1 empleo de agua totalmente desalinizado para el lavado final evitará manchas. pegajoso. La presencia de restos de sangre originan que el instrumento se queme en los bordes del lugar donde se halla la sangre. ya que este proceso será imposible de alcanzar.  No deben utilizarse aceites minerales o de silicona. (figura N° 1) b. la apertura y la transferencia del material estéril con técnica aséptica. Del mismo modo toda sustancia adherida (empastes) debe ser retirada de inmediato para evitar el endurecimiento por precipitación. No debe ser aceitoso. identificación y mantenimiento de la esterilidad.
No se debe poner menos de 5 cm. (figura N° 5)
. Doblar la punta que da a la persona que esta preparando de tal manera que llegue al centro del paquete cubriendo el artículo. de cinta de control. (Figura N° 2)
Figura N° 2 d.Figura N° 1 c. Realizar el mismo procedimiento en el otro lado de modo que ambas cubran el artículo. Luego realizar un doblez con la punta hacia fuera. (figura N° 3) e. siempre haciendo un doblez en la punta. (figura N° 4)
f. Completar el paquete levantando la cuarta y última punta hacia el centro del paquete y fechar con cinta indicadora de proceso envolviendo todo el paquete. Doblar los laterales hacia el centro del paquete en forma de sobre.
Debe ser flexible para facilitar su manipulación. se puede realizar a través del calor húmedo o del calor seco.  Cada paquete debe contener solamente la cantidad necesaria de elementos para “un solo procedimiento” o prestación. 17
. instrumentos de acero inoxidable. papel aluminio o frascos de vidrio refractario. gomas y plásticos termoresistentes. ni comprimido. no debe combinarse con el agente esterilizante. pues es un método efectivo. No debe ser tóxico y debe ser resistente a la rotura y humedad. equipo de profilaxis. requiriendo temperaturas y tiempos menores de exposición que el calor seco. Calor húmedo (autoclaves de vapor saturado a presión): Este método de esterilización elimina microorganismos por desnaturalización de las proteínas. pero tiene la desventaja que el vapor puede oxidar los objetos. No dañar el envoltorio al escribir. Esterilización por calor: La esterilización por calor. de los artículos odontológicos. Debe ser impermeable a los líquidos. Ser económico y fácil de encontrar en el mercado. equipo de exodoncia. Este método de esterilización se considera de primera elección.  Para la autoclave se recomienda usar un empaque de papel grado quirúrgico por que el papel kraft ya esta en desuso. equipo de biopsia. a.  Todo paquete debe rotularse consignando la fecha de esterilización y el nombre del material a procesar. equipo de operatoria. equipo de cirugía periodontal.  El diseño de todo paquete que va a ser esterilizado debe permitir la libre circulación del agente esterilizante por lo cual su contenido no debe estar sobrecargado. Para la esterilización con calor húmedo se debe tener en cuenta las siguientes consideraciones:  La autoclave se puede utilizar para esterilizar textiles. Se puede usar para ello etiquetas adhesivas o cinta adhesiva (maskingtape)  En los paquetes deberá colocarse el testigo químico correspondiente según el método de esterilización. siempre que las características del material lo permita.  Para la estufa se puede usar cajas metálicas. Para la esterilización por calor húmedo se utilizan equipos denominados autoclaves a vapor.Las características principales de los empaques son:  El envoltorio utilizado debe permitir el ingreso y remoción del agente esterilizante y ser barrera bacteriológica para evitar su recontaminación. rápido y penetrante. etc. proceso que es acelerado por la presencia de agua.  Preparar paquetes de instrumentos de acuerdo a la actividad a la cual van a ser destinados y rotularlos. Ejemplo: equipo de examen.
Presión (Atm) Temperatura Tiempo de exposición
1.0 2. pues la principal ventaja de esterilizar con calor seco es que no corroe los instrumentos metálicos. por ello todo el material y cajas a esterilizar deben encontrarse ABIERTAS.  La disposición de la carga dentro de la cámara debe ser en forma vertical dejando un espacio entre paquete y paquete que permita la libre circulación del vapor.Pupinel): Este sistema elimina los microorganismos por coagulación de las proteínas.5 2.  No ocupar más del 7O % de su capacidad para permitir el acceso del aire caliente al material. El vapor es un agente esterilizante de superficie.  No sobrecargar ni encimar los paquetes.  Al abrir la puerta de la cámara esperar un corto lapso de tiempo antes de descargar para permitir que se iguale la temperatura de la carga y la ambiental. Su efectividad depende de la difusión del calor. además del grosor de los empaques y el tipo de autoclave (tabla Nº 2). Este método puede usarse como segunda opción.  Antes de almacenar. Calor Seco (Estufa .  Todo ciclo debe iniciarse con uno o varios vacíos (previo al ingreso de vapor) para asegurar la evacuación total del aire de la cámara.  Cargar el equipo en forma homogénea para que requieran el mismo tiempo de exposición (calidad y tamaño de paquetes). pero tiene la desventaja de poseer un menor nivel esporicida y requiere mayor tiempo y temperatura. lo que
121º C 126º C 134º C
15’ 10’ 3’
FUENTE: Ministerio de Salud Chile Desinfección de Elementos Clínicos” 2001
“Normas Técnicas sobre Esterilización y
 Todo el material que salga del esterilizador “húmedo” debe considerarse "no estéril" y volver a procesarse. b.  El tiempo que los instrumentos deben estar en la autoclave depende de la temperatura y la presión que se utilice. la cantidad del calor disponible y los niveles de pérdida de calor. constatar el viraje de los indicadores químicos utilizados en dicha carga y constatar que tenga la fecha de vencimiento correspondiente al envoltorio utilizado en un lugar visible.
petrolatos. caso contrario iniciar el proceso nuevamente.contribuye a deteriorar los materiales (perdida de filo de instrumentos punzocortantes). polvos y objetos de vidrio. Tabla Nº 4
Parámetros de trabajo Temperatura Tiempo
.  El contenido de instrumental no debe ocupar más de 2/3 de la capacidad. vaselinas.  No encimar ni superponer las cajas. para dejar espacio para la libre circulación de agente esterilizante (aire caliente). Para la esterilización con calor seco se debe tener en cuenta las siguientes consideraciones:  Cargar la estufa en forma homogénea (tamaño y calidad de materiales).  Nunca abrir la puerta de la estufa durante el proceso de esterilización. Se recomienda usar el calor seco en materiales que no pueden ser esterilizados en autoclave.  Retirar el material frío del esterilizador a fin de evitar cambios bruscos de temperatura. como es el caso de los instrumentos o sustancias que puedan ser dañados por la humedad o que son impermeables a esta. haya espacio suficiente para conseguir una buena circulación. Tabla Nº 3
120’+ tiempo de calentamiento de
carga 60' + tiempo de calentamiento de carga
 Si no se cuenta con instrumentos necesarios para determinar el tiempo de calentamiento de carga se puede optar por la siguiente alternativa (tabla Nº 4).  E1 tiempo de esterilización debe considerarse a partir del momento en que el termómetro de la estufa alcance la temperatura de trabajo (tabla Nº 3). tales como: aceites.  Los paquetes no deben tocar las paredes y que entre cada paquete.
vaselinas) deben colocarse en pequeños recipientes de vidrio o paquetitos de papel. son útiles pero no suficientes. grasas. El nivel de seguridad de los procesos de esterilización depende en forma importante de la validación y supervisión permanente y rutinaria de cada ciclo.  Una vez terminado el proceso de esterilización se debe dejar la puerta entreabierta durante 10 minutos. ya que pueden reaccionar en forma inexacta con los parámetros de esterilización adecuados o su lectura es poco clara.170º C
 Los polvos (ej. Control del Proceso de Esterilización: La obtención del material estéril depende de una serie de parámetros que deben ser cuidadosamente observados por el equipo de salud a cargo de los procesos. talco) y soluciones oleosas (aceites. manómetro de cámara externa. Estos son:  Calor Húmedo: manovacuómetro de cámara interna. termo registrador. según sea el caso. Estos monitores deben calibrarse periódicamente para garantizar su adecuado funcionamiento. programador de tiempo. termostato. constatar el viraje de los indicadores químicos utilizados en dicha carga y constatar que tengan la fecha de vencimiento correspondiente al envoltorio utilizado en un lugar visible. con el objeto de enfriar el material esterilizado y evitar accidentes al descargar. tiempo de exposición. Para esto se pueden utilizar tres tipos de indicadores. b. Los monitores o indicadores son equipos o reactivos que permite certificar que el proceso de esterilización se efectuó en forma apropiada. presión o cierto grado de humedad. sin garantizar la calidad de éste.  Antes de almacenar. Para que un producto sea clasificado como estéril se debe garantizar que todas las etapas del proceso fueron realizadas en forma correcta y que el proceso de esterilización es valido. a. Estos pueden ser: 20
. además los fabricantes no han hecho una estandarización de ellos.  Calor Seco: termómetro. termocuplas. termo registrador. Químicos: Sustancias químicas que cambian de color al alcanzar la temperatura necesaria. Su valor es limitado y solo indica que los materiales fueron expuestos a un aparato de esterilización que produce calor. Físicos: Corresponde a los elementos incorporados al esterilizador que permite visualizar si el equipo ha alcanzado los parámetros exigidos en el proceso. termómetro de cámara interna.
 Indicadores de proceso (Clase 1): Es utilizado como ayuda para distinguir los elementos procesados de los no procesados. El periodo de incubación es alrededor de 7 días. Puede indicarnos que el paquete estuvo expuesto a una determinada temperatura. Son muchos más precisos que los de la clase 4. Las esporas crecerán y proliferarán en caso de que el proceso de esterilización no se haya alcanzado. c. Puede indicarnos que el paquete estuvo expuesto a una determinada temperatura en un determinado tiempo. que evalúa la eficacia del sistema de vacío del autoclave. Están diseñados para confirmar la presencia o ausencia de microorganismos viables después del proceso de esterilización.  Indicadores emuladores o de verificación de ciclos (Clase 6): Diseñados para reaccionar frente a todas las variables críticas de un ciclo de esterilización a niveles considerados como “satisfactorios” con un 95% de confiabilidad. Biológicos: Se colocarán en los sitios más críticos del esterilizador (vértices de la cámara y centro de paquetes). mientras que la ausencia de crecimiento microbiano es señal de éxito en el proceso. Para ello se selecciona un microorganismo de prueba que posee alta resistencia al proceso de esterilización usado.  Indicadores de parámetros múltiples (Clase 4): Diseñados para responder a dos o más variables críticas del proceso. Debe ser colocada dentro de un paquete de prueba y requiere ser procesada en el laboratorio.  Autocontenidos: Son esporas viables sobre papel que ofrecen gran resistencia a los agentes esterilizantes dentro de un tubo plástico que contiene un caldo de cultivo. como el Test de Bowie-Dick. Constituyen los indicadores 21
. También se utilizan reactivos químicos capaces de detectar enzimas o proteínas específicas de estos microorganismos.  Indicadores de parámetro (Clase 3): Diseñados para responder a una variable crítica del proceso.  Indicadores de parámetros integrados (Clase 5): Diseñados para responder a todas las variables críticas de ciclos de esterilización específicos con un 75% de confiabilidad. Para su fabricación se emplean en general esporas de Bacillus stearothermophilus como indicador de esterilización por vapor saturado a presión y esporas Bacillus subtilis variedad Níger para la esterilización por calor seco.  Indicadores de pruebas específicas (Clase 2): Destinados al uso en pruebas específicas. Son los únicos censores confiables de esterilización. Estos indicadores pueden ser:  Tiras con esporas: Es una preparación de esporas viables sobre papel dentro de un sobre.
Debe estar adyacente al área de esterilización.  La duración de la esterilidad del material está dada por el tiempo que el envase permanece indemne con las condiciones locales 22
. del techo y guardando de 15 a 20 cm de la pared. ni aristas que puedan desgarrar la envoltura.  Guardar y distribuir los paquetes obedeciendo el orden cronológico de sus lotes de esterilización. Las condiciones de almacenamiento deben asegurar la esterilidad o desinfección del artículo al momento del uso.  Los materiales se almacenan en ambiente fresco y seco. calor húmedo. los artículos son conservados hasta su uso. con superficies lisas y lavables.  Los paquetes deben colocarse de forma que sea fácil rotar su uso y estar protegidos de las corrientes de aire. para facilitar el aseo de piso.  Los materiales esterilizados deberán almacenarse adecuadamente en cajas o bolsas cerradas. Se debe mantener la temperatura en un rango de 18 a 20°C y humedad entre 35 y 55%. vapor de formaldehído y peróxido de hidrógeno. tratando en lo posible que los lotes antiguos salgan antes que los nuevos.  De lectura rápida: Consiste en un sustrato que al detectar una enzima activa asociada a esporas de microorganismos pasa a ser fluorescente produciendo un resultado positivo o negativo. La fluorescencia indica la presencia de la enzima (falla en el proceso de esterilización evidenciada por una luz roja de la incubadora de la lectura rápida).biológicos utilizados con mayor frecuencia.  Debe ser un ambiente libre de polvo. Su lectura es en 48 horas. pues la elevada humedad aumenta la porosidad de los envoltorios y lleva a la recontaminación del mismo. La no fluorescencia indica la inactivación de la enzima (proceso de esterilización adecuado evidenciando por una luz verde en la incubadora) Almacenamiento del material estéril: Corresponde al proceso a través del cual. Existe este diseño de indicadores biológicos para la mayoría de los métodos de esterilización: óxido de etileno. pared y techo.  Deben almacenarse en armarios cerrados y alejados de las áreas de limpieza del instrumental.  Las estanterías y cestas metálicas no deben tener picos. La estantería debe estar a 25 cm del suelo y 50 cm. Con respecto al almacenamiento se debe tener en cuenta las siguientes consideraciones:  El almacenamiento de los artículos estériles deben realizarse en un lugar que evite los riesgos de contaminación y favorezca el movimiento e identificación rápida de los artículos.
condiciones del transporte y manipulación de los productos estériles. el tiempo de exposición al agente químico y los procedimientos de limpieza previos para eliminar residuos tóxicos o materiales orgánicas de los instrumentos. Para lograr una adecuada descontaminación y limpieza se debe seguir los procedimientos y las consideraciones antes mencionadas en la esterilización por calor. El proceso de esterilización con agentes químicos comprende los siguientes pasos: Descontaminación y limpieza: Antes de esterilizar los instrumentos con líquidos químicos. la presencia en los instrumentos de material que puedan inactivar al agente químico. condiciones del almacenamiento.5) y en este estado en general sus propiedades microbicidas son menores. Estos son el tipo y magnitud de la contaminación microbacteriana de los instrumentos a esterilizar.del almacenamiento. estos deben ser sometidos a una profunda descontaminación y limpieza. Según la norma DIN se ha establecido un enfoque racional para la vigencia del material estéril. Depende de factores como calidad del material del empaque. Para tener
. a. Esterilización por agentes químicos: Existe una serie de sustancias químicas que producen la esterilización de los artículos. La solución madre es ácida (pH 2. Glutaraldehído: Es un agente químico que se utiliza como sustancia esterilizante y como desinfectante de alto nivel. pues la mayoría de sustancias químicas esterilizantes se inactivan por la presencia de sustancias orgánicas e inorgánicas presentes en los diferentes artículos. pero son dos de ellas que se acomodan mejor para ser utilizadas en los artículos estomatológicos: El glutaraldehído y el ácido peracético. (Tabla N° 5) Tabla N° 5 Duración de Material Estéril
Un empaque Doble empaque Cobertor plástico
Seis semanas Seis meses Máximo 5 años
Un día Seis semanas Máximo 5 años
B) PROCESO DE ESTERILIZACIÓN POR AGENTES QUÍMICOS: La eficacia de este método de esterilización denominado “en frió” depende de varios factores ajenos a la naturaleza del producto químico. la concentración de la solución química.
propiedad esterilizante la solución debe ser activada (alcalinizada) mediante el uso de agentes que elevan el pH de la solución a 7.5 -8.5. En este estado la solución alcanza el máximo de su capacidad microbicida pero se hace inestable debido a la polimerización de las moléculas que bloquean los grupos aldehídos responsables de su actividad microbicida. Las formulaciones convencionales de glutaraldehído tienen una duración aproximada de 14 días. Existen formulaciones nuevas en las que se han agregado agentes estabilizantes para prolongar la vida útil a alrededor de 28 días. El mecanismo de acción de glutaraldehído se debe a la anquilación de los grupos amino, sulfidrilo, hidroxilo y carboxilo, los cuales alteran el ARN, el ADN y la síntesis proteica en los microorganismos. Para producir esterilización el tiempo de exposición no debe ser inferior a 10 horas; la concentración debe ser del 2%. La actividad microbicida de glutaraldehído es afectada por tiempo de uso, dilución y carga de materia orgánica. No se recomienda usar formulaciones de glutaraldehído a concentraciones iniciales inferiores al 2% debido a que no han sido suficientemente evaluadas y algunos productos de estas características han demostrado ser inefectivos frente a determinados microorganismos. El producto es tóxico al ser inhalado y al entrar en contacto con la piel o mucosa. Debe ser usado en habitaciones bien ventiladas, en contenedores cerrados, con la protección adecuada que evite exposición y de acuerdo estrictamente a instrucciones del fabricante. Los equipos sometidos al glutaraldehído deben ser enjuagados rigurosamente posterior al proceso para evitar residuos tóxicos. No deben mezclarse diferentes marcas de glutaraldehído porque los activadores o aditivos pueden influir en su acción si son han sido validadas con anterioridad. b. El Ácido Peracético: Una nueva tecnología aprobada en 1999 por la FDA, es la combinación de ácido peracético al 35% con peróxido de hidrógeno y de soluciones neutralizantes que eliminan su efecto corrosivo. Generalmente está indicado para material sumergible, sensible al calor a temperaturas que oscilan de 50º C a 56º C, a un pH neutro de 6.4 y a una concentración final de 0.2%, siendo ideal para materiales y piezas que requieran una rápida reutilización. El ciclo puede durar entre 25 y 30
minutos. Asimismo cuenta con un sistema de controles o monitores químicos y biológicos. Para la esterilización por agentes químicos se debe realizar los siguientes pasos:  Las soluciones se deben manipular con protección adecuada para evitar la exposición laboral del personal que lo manipula. El operador deberá usar barreras protectoras como son mandil impermeable, mascarilla, lentes protectores y guantes.  Seleccionar y preparar la sustancia química siguiendo las recomendaciones del fabricante.  La solución debe estar vigente, para estos efectos se debe consignar la fecha de vencimiento en el contenedor o bidón.  Si se procesa por inmersión, se debe asegurar que los materiales a esterilizar sean sumergidos completamente para que se pongan en contacto con el agente esterilizante. El contenedor seleccionado para la desinfección debe asegurar este contacto.  El tiempo de esterilización debe ser establecido de acuerdo a las características propias de cada agente químico.  Los contenedores deben mantenerse tapados para evitar la evaporación y vapores tóxicos en el ambiente.  Los procedimientos deben ser realizados en áreas bien ventiladas a fin de evitar exposición del personal a vapores producidos por el agente químico.  Pasado el tiempo de exposición se debe sacar los artículos manipulándolos con técnica aséptica (guantes estériles) y enjuagarlos con agua estéril o destilada cuidando de no contaminarlos, en caso de no contar con este suministro, se debe usar agua potable y posteriormente enjuagar con alcohol etílico o isopropílico, pues este producto eliminará microorganismos residuales y contribuirá en el proceso de secado.  El secado debe ser realizado con aire filtrado o comprensas estériles para evitar su recontaminación.  Se debe utilizar controles biológicos que midan la concentración de las sustancias químicas en la medida que exista disponibilidad de ellos. Almacenaje del instrumental estéril:  Se recomienda esterilizar los instrumentos inmediatamente antes de su uso para evitar contaminación de los mismos.  Si no se utiliza inmediatamente después de esterilizado, deben ser guardados envueltos en paños o protectores estériles y el almacenamiento debe ser según las características antes descritas.
1.2.1.2. DESINFECCION: 25
Se define como el proceso por medio del cual se logra eliminar a los microorganismos de formas vegetativas en objetos inanimados, sin que se asegure la eliminación de las esporas bacterianas. El grado de desinfección producido depende de varios factores, pero esencialmente de la calidad y concentración del agente microbiano, de la naturaleza de la contaminación de los objetos y el tiempo de exposición. Los materiales e instrumentos descritos como semi-críticos, que no pueden ser esterilizados, serán desinfectados a alto nivel. La desinfección también se usa en materiales e instrumentos definidos como no críticos.
A) PROCEDIMIENTO DE DESINFECCIÓN: El Procedimiento de desinfección consta de las siguientes etapas: Descontaminación y limpieza: El material que será sometido a desinfección debe estar totalmente libre de materia orgánica, por que esta interfiere en el proceso de desinfección. Para lograr una adecuada descontaminación y limpieza se debe seguir los mismos procedimientos y consideraciones mencionados para la esterilización con calor. Métodos de Desinfección: La desinfección es uno de los procedimientos más antiguos que fuera utilizado en un primer momento para eliminar microorganismos del ambiente e higienizar las manos. Existen dos métodos de desinfección: los químicos y físicos: a. Químicos: Este proceso consiste en poner en contacto el material o superficie con agentes químicos desinfectantes. Para la desinfección, el material debe permanecer en inmersión por un tiempo determinado de acuerdo al producto. Los procedimientos para desinfectar son iguales a los utilizados para la esterilización con agentes químicos, con diferencias en la concentración y tiempo de exposición; que varía de acuerdo a la sustancia a utilizar. Para la desinfección se debe tener las siguientes consideraciones:  Usar el producto como lo indica el fabricante, en cuanto a concentración y vida útil.  Hacer las diluciones con agua destilada, en el caso de no especificar que puede utilizarse agua potable.  No mezclar desinfectantes cuando no se conoce su efecto. 26
 Introducir los artículos secos para evitar la sobre dilución. En nuestro medio se utiliza más el hervido.  Colocar el instrumental en un recipiente y agregar agua hasta cubrirlos completamente y no se agregará ningún otro mientras este hirviendo.  Se recomienda usar tiempos más prolongados para lugares de gran altura sobre el nivel del mar. Al utilizar productos ácidos podrá provocarse una corrosión a través de los cloruros que se encuentran en el agua. solamente podrá evitarse la misma utilizando agua totalmente desalinizada. b. si se sigue los siguientes pasos:  Realizar el lavado y limpieza del instrumental de acuerdo a lo descrito.  Una dosificación insuficiente de productos alcalinos (concepto de ahorro erróneo) implicará el peligro de la presencia de corrosión en forma de picaduras.  Se seca con una toalla esterilizada antes de volver a utilizar los materiales o almacenarlos.  El fuego será suave. contados desde que rompe el hervor. con otros cuyas superficies se encuentren dañadas.  Sacar toda burbuja de aire de los artículos a desinfectar. garantizará un perfecto resultado de desinfección.  Una dosificación correcta. para evitar la corrosión por contacto.5. ya que el fuego alto hace rebotar los objetos y disminuye el nivel de agua. El hervido: Se puede alcanzar desinfección de alto nivel con agua hervida. Físicos: Los métodos de desinfección físicos pueden ser la pasteurización.  Evitar el contacto del instrumental en perfecto estado.  No rellenar los frascos en los cuales hay restos de desinfectantes. que se evitarán con valores pH superiores a 10.  Se hierve los instrumentos en un recipiente con tapa. los chorros de vapor y el hervido. junto con el tratamiento cuidadoso de los materiales.  Dejar actuar el desinfectante por el tiempo adecuado.  Mantener a los instrumentos en agua hirviendo durante 30 minutos.
.  Usar dispositivos limpios y secos para almacenar los desinfectantes o antisépticos.  Poner el recipiente a calentar y esperar a que el agua hierva.  Evitar la permanencia prolongada del instrumental en las soluciones desinfectantes.
Si esto se detiene puede ser que no haya más agua en la olla a presión. b. Se debe considerar que el uso constante de agua hervida deteriora los instrumentos por favorecer el depósito de compuestos cálcicos y por oxidación. Los principales desinfectantes son: Orthophthaldehído. Los instrumentos deben distribuirse por igual alrededor de la olla (lea las instrucciones de la olla a presión).2. Espectro: Los estudios han demostrado su excelente actividad microbicida y una mayor actividad frente a micobacterias que el glutaraldehído. Corresponde al grupo de aldehídos inorgánicos y contiene benzenecarboxaldehyde 1. del fondo. el peso debe colocarse en su lugar. El vapor debe seguir liberándose de la olla a presión durante este tiempo.  Se debe tener cuidado cuando se abre la olla a presión.La desinfección por olla a presión se puede utilizar en situación de extensión. Para ello se debe seguir con los siguientes procedimientos:  Realizar el lavado y limpieza del instrumental de acuerdo a lo descrito. Primero se debe liberar la presión. Almacenaje: Se debe tener en cuenta las mismas consideraciones que en la esterilización por agentes químicos. Este agente químico es nuevo y se usa para la desinfección de alto nivel (DAN).  Si esto sucede la olla a presión debe ser retirada del calor. añada agua y el ciclo debe ser repetido.
. Mecanismo de acción: Su acción es por aniquilación de los componentes celulares y actúa directamente sobre los ácidos nucleicos. B) TIPOS DE DESINFECTANTES: Los desinfectantes químicos líquidos son los más utilizados en nuestro país y además existen múltiples agentes germicidas en forma líquida. Cuando el vapor sale del respiradero. Es micobactericida y virucida.  Los instrumentos limpios se colocan en una olla a presión y se agrega agua limpia a una altura de 2-3 cm.  Los instrumentos se sacan de la olla a presión con fórceps y se secan con una toalla estéril.  La olla a presión debe ser retirada de la estufa después de 15 minutos y se le debe dejar que se enfríe.  La olla a presión es calentada continuamente por un mínimo de 15 minutos. permitiendo que se enfríe. a.  La olla a presión se coloca en la estufa y se lleva a un hervor.
Concentraciones de uso: Está indicado en una concentración del 0. Por ahora. y dos años de vida útil. No es carcinogénico. debe utilizarse en ambientes muy ventiladas y con protección personal. fungicida.55%. pero se recomienda utilizarse en áreas ventiladas ya que todavía no se ha determinado si puede producir irritación en los ojos y orificios nasales. a. Este agente no debe ser usado en la desinfección de las superficies ambientales en ninguna circunstancia.5. d. Ventajas y desventajas: No es corrosivo. además mancha la piel. En este estado la solución alcanza el máximo de su capacidad microbicida pero se hace inestable debido a la polimerización de las moléculas que bloquean los grupos aldehídos responsables de su actividad microbicida. e. ya que una vez activado suelen producir vapores irritantes para las mucosas. Ventajas y desventajas: La principal ventaja es que posee una excelente estabilidad en un amplio rango de pH (3 . micobactericida y esporicida.5) y en este estado en general sus propiedades microbicidas son menores. Existen formulaciones nuevas en las que se han agregado agentes estabilizantes para prolongar la vida útil a alrededor de 28 días. el alto costo parece ser la desventaja principal para su uso.) • Estándar en Europa (5 min. Indicaciones de uso: Está indicado para la DAN de endoscopios cuando la esterilización no es posible. Las formulaciones convencionales de glutaraldehído tienen una duración aproximada de 14 días. c. Por ello.9) y por lo tanto no requiere de activación.) • Estándar en Canadá (10 min. Es un agente químico que se utiliza como sustancia esterilizante y como desinfectante de alto nivel. En la actualidad se han diseñado cabinas con las cuales se protege al operador de ese tipo de injurias. Indicaciones de uso: El tiempo que se requiere para la desinfección de alto nivel varía según los siguientes estándares: • Estándar americano (FDA) (10 a 12 minutos a 20° C. sistema respiratorio y la piel. También en el uso de artículos o materiales 29
.) • En nuestro medio se recomienda utilizarlo 10 a 12 minutos.5 -8. ropa y superficies. Glutaraldehído. d. virucida. a temperatura-ambiente tiene actividad germicida en presencia de materia orgánica. La gran desventaja del glutaraldehído es su toxicidad. Para tener propiedad desinfectante de alto nivel la solución debe ser activada (alcalinizada) mediante el uso de agentes que elevan el pH de la solución a 7. Presenta además una excelente compatibilidad con cualquier material o artículo y cuenta con indicadores químicos. b.c. La solución madre es ácida (pH 2. Espectro: Es bactericida. La solución tiene una duración de 14 días de reuso. Para desinfección de alto nivel (DAN) se utiliza por 45 minutos. Mecanismo de acción: Su acción es consecuencia de la alquilación de componentes celulares alterando la síntesis proteica de los ácidos ADN Y ARN.
b.2 ppm. pues son muy eficaces contra las bacterias Gram positivo y negativos. El valor límite del umbral (VLU / valor de exposición) del glutaraldehído es de 0. Se requiere de 45 minutos para hacer DAN a una temperatura de 20°C. La disociación de este ácido y por consiguiente la menor actividad depende del pH. En Europa existen concentraciones de 1..4%. Concentraciones de uso: En nuestro medio contamos con una solución al 2%. incluyendo al de la Hepatitis B y al del VIH. produce irritación de la piel y mucosas. Espectro: Son de amplio espectro microbicida. desnaturalización de las proteínas e inactivación de los ácidos nucleicos. Concentraciones de uso: La concentración mínima para eliminar las microbacterias es de 1000 ppm. Las soluciones de cloro no deben conservarse en envases destapados por más de 12 horas debido a la evaporación del producto activo. Su uso está limitado por su actividad corrosiva. 30
. d. jabones y detergentes. a. Mecanismo de acción: Produce inactivación de microorganismos por alquilación del grupo amino y sulfidrilo de proteínas y del anillo nitrogenado de bases púricas lo que hace alterar la síntesis de los ácidos nucleicos. Además se inactiva en presencia de materia orgánica. los instrumentos otorrinológicos y odontológicos y las láminas de laringoscopio. Su eficiencia disminuye por el aumento del pH. Mecanismo de acción: Su acción produce inhibición de las reacciones enzimáticas. se polimeriza por los rayos de sol y necesita estar protegida en envases opacos. Existen otras formulaciones de Glutaraldehído en concentraciones que varían entre 2.05 ppm. c.de metal como son los espéculos. esporas y virus.5% con tiempos mayores de inmersión. de bajo costo y de fácil manejo. Formaldehído (fo): Es un desinfectante de alto nivel pero actualmente esta discontinuado debido a su alta toxicidad y el olor penetrante que aparece aún a muy bajas concentraciones (como la formalina que se da del 37% al 40 %). No se recomienda para desinfección de instrumental. e. a 0. hongos. Su uso en la actualidad aparte de blanqueador se limita al saneamiento ambiental común de las superficies y artículos no críticos. dañan textiles y degradan plásticos y gomas. o sólida como hipoclorito de calcio (dicloroisocianurato de sodio).1%) durante 10 minutos. (0. Ventajas y desventajas: Su acción es rápida. Cloro y compuestos clorados: Los desinfectantes basados en el cloro generalmente están disponibles en forma líquida como hipoclorito de sodio (lejía). haciendo que las concentraciones de cloro disponible disminuyan de 40% a 50%.4% a 3. en 8 horas de trabajo. a. Tiene propiedades desodorizantes y actividad microbicida atribuible al ácido hipocloroso no disociado.
desde 1996 la formalina bajo cualquier presentación.2% en un tiempo entre 10 a 15 minutos. c. Concentraciones de uso: Su presentación varía entre 3% a 7. virucida y esporicida. fungicida. Al utilizarse deberán tomarse las precauciones de exposición ocupacional.b. Mecanismo de acción: Su acción antimicrobiana se ejerce por la producción de radicales libres hidroxilos que dañan las membranas lipídicas. La solución puede reutilizarse durante 21 días. el DNA y otros componentes celulares. e. a. Produce toxicidad ocular e irritación de las mucosas. Espectro: Bactericida (micobactericida). Ventajas y desventajas: No daña lentes ni artículos de plástico. b. Mecanismo de acción: Actúa por desnaturalización de las proteínas alterando la permeabilidad de la pared celular. Concentraciones de uso: Para producir una desinfección de alto nivel se requiere una exposición de 30 minutos a una concentración de 8% y para la desinfección intermedia a 4%. La solución tiene una duración de 14 días. Puede corroer cobre. d. Presenta toxicidad ocular y también puede producir colitis pseudomembranosa por mal enjuague en la DAN.5%. virucida y esporicida en concentraciones del 6% al 7%. Peróxido de hidrógeno estabilizado: El Peróxido de Hidrógeno es un agente oxidante utilizado para DAN.1% a 0. Indicaciones: Dada su toxicidad su uso es muy reducido. Espectro: Bactericida (micobactericida). Espectro: Bactericida. d. Ventajas y desventajas: La mayor ventaja de este elemento es que no produce residuos tóxicos y tampoco necesita activación. c. fungicida. c. Concentraciones de uso: En concentraciones bajas de 0. Debido a su efecto tóxico e irritante. e. Ácido peracético: También denominado ácido peroxiacético es un agente oxidante que actúa de manera similar al peróxido de hidrógeno a. 31
. virucida y esporicida. tiene rápida acción contra microorganismos (incluyendo las esporas). además de irritar las mucosas. b. fungicida. bronce y fierro galvanizado. Solo se acepta su utilización como desinfectante en solución acuosa para filtros de hemodiálisis y conservación de piezas de anatomía patológica. Para realizar la desinfección de alto nivel la indicación es de 6% a 7. Desventajas: Presenta olor desagradable.5% en 30 minutos. d. Indicaciones de uso: Está indicado en el uso de DAN para endoscopios por su compatibilidad con este material. Esta corrosión puede ser controlada con aditivos del pH. está excluida de la lista de desinfectantes en los Estados Unidos de Norteamérica. Es oxidante para artículos metálicos. Se considera potencialmente carcinogénico.
c. b. tuberculosis. e. prácticamente no tiene indicaciones de uso. funguicida y virucida. Hoy en día y debido a su baja eficacia y a los riesgos descritos. Los compuestos fenólicos son producidos a través de la sustitución de uno o dos átomos de hidrógeno aromático de fenol con un grupo funcional (alquil. fenil.
. e. Espectro: Destruye rápidamente formas vegetativas de bacterias hongos. benzil. Tiene poca acción en los virus pequeños como echovirus. Mecanismo de acción: Actúa por desnaturalización de las proteínas. los más utilizados son el alcohol etílico y el alcohol isopropílico.Fenólicos: Los derivados fenólicos comúnmente encontrados como principio activo de las formulaciones son: el ortho-fenil-fenol y el orthobenzil-para-clorofenol. Ventajas y desventajas: Son económicos. Los fenólicos se inactivan ante la presencia de materias orgánicas. causan la muerte de microorganismos por inactivación de las enzimas de la pared celular. Las desventajas de los alcoholes es que tienden a alterar y endurecer el material de goma y plástico. Concentraciones de uso: Las concentraciones varían según la presentación del producto. Indicaciones de uso: Los derivados fenólicos están indicados principalmente en la desinfección de artículos no críticos y en superficies lisas. Espectro: Bactericida (micobactericida). Alcoholes: Son componentes químicos solubles en agua. En bajas concentraciones. dejando residuos que producen irritación en las mucosas. Su uso no es indicado en artículos semicríticos debido a la ausencia de datos sobre su eficacia germicida. se inactiva en presencia de materia orgánica y se evapora rápidamente. poliovirus. Desventajas: Los fenólicos pueden ser absorbidos por los materiales porosos. La concentración habitual de uso 70% en que tiene su mayor efectividad. halógeno). d. Mecanismo de acción: En altas concentraciones rompen la pared celular penetrando la célula y precipitando proteínas citoplasmáticas. a. tales como el plástico. Concentraciones de uso: La concentración bactericida óptima está en un rango de 60% a 90% por volumen. Indicaciones de uso: El alcohol se considera un desinfectante de nivel intermedio y se usa en la desinfección de superficies y artículos no críticos. virus y M. Esto condiciona que no se debe usar alcoholes como método de desinfección de alto nivel ni para materiales en inmersión. su utilización está contraindicada en la limpieza de incubadoras y otras superficies en las áreas de neonatos por generar hiperbilirrubinemia. a. Asimismo. b. coxsackievirus. c. d.
Espectro: Fungicida. c. ni microbactericida. Los compuestos más usados en las unidades hospitalarias son cloruro de alquil-dimetil-benzilamonio. bactericida y virucida solo contra los lipofílicos. Concentraciones de uso: Las concentraciones de uso varían de acuerdo con la combinación de compuestos cuaternarios de amonio en cada formulación comercial.amonio. Los restos de gasa y algodón pueden afectar su acción. Por otro lado. El método de eliminación de microorganismos requerido por cada artículo esta directamente relacionado con el riesgo potencial que tiene este artículo en particular de producir infección en el paciente. En tal sentido el personal responsable del procesamiento de los artículos debe conocer en profundidad las características de los distintos materiales.Amonio cuaternario: Son antisépticos de bajo nivel. a. b. Indicaciones de uso: Por su baja toxicidad puede ser utilizado para la desinfección de superficies y mobiliario.
. cloruro de alquil-didecildimetil. SELECCIÓN DEL MÉTODO ADECUADO ELIMINACIÓN DE MICROORGANISMOS:
En la atención odontológica directa se utilizan numerosos artículos y equipos que toman contacto con el paciente. se considera el enfoque más racional para la selección de los métodos de eliminación de microorganismos y en términos generales es aplicable a la mayoría de los artículos que se utilizan en la atención odontoestomatológica. Pero la complejidad de la atención y la diversidad de artículos que se utilizan hacen necesario que en muchos casos se deba analizar en forma particular algunos equipos y tomar la decisión basada en las características y riesgos asociados sin considerar completamente la clasificación de Spaulding. Earl Spaulding clasificó los materiales en tres categorías (críticos. y el cloruro de dialquildimetil-amonio.
1. a la desnaturalización de las proteínas celulares y a la ruptura de la membrana celular. también se debe considerar el tipo de material del que está fabricado el artículo odontológico.2. Mecanismo de acción: Su acción se debe a la inactivación de enzimas productoras de energía. semi-críticos y no críticos) de acuerdo al riesgo antes mencionado. ni tampoco presenta acción sobre virus hidrofílicos. Ventajas y desventajas: Constituye un buen agente para la limpieza debido a su baja toxicidad. d. En 1968. para seleccionar el método de eliminación de microorganismos.2. e. No es esporicida. Aún cuando la complejidad de la atención actual y el diseño de algunos artículos hace que no siempre sea apropiada esta clasificación. su cuidado y mantención con el fin de utilizarlo adecuadamente.
Si estos materiales están contaminados aún con un inoculo mínimo de microorganismos.previniendo su deterioro para asegurar su vida útil a lo largo del tiempo y evitando de esta manera costos innecesarios.2. y utilizarse uno por paciente. endodoncia. corresponde a instrumentos quirúrgicos punzocortantes u otros que penetran en los tejidos blandos o duros de la cavidad bucal. Es decir. El instrumental con mango anodizado por color es atacado por las soluciones alcalinas y pierde su color codificado. METODOS SEGÚN CLASIFICACIÓN DE SPAULDING: Con el fin de racionalizar las indicaciones del procesamiento de los artículos se considerará el grado de riego de infección que existe en el empleo de los artículos y los clasifica en las siguientes tres categorías: A) MATERIAL CRÍTICO: Los materiales críticos son aquellos que se ponen en contacto con áreas estériles del organismo. El instrumental que se contamina durante el tratamiento del conducto se trata con gasa humedecida con desinfectante (alcohol de 70°). Instrumental de endodoncia: Todos los instrumentales deben ser esterilizados.1. periodoncia. Las puntas de papel deben ser esterilizadas con autoclave. representan un riesgo alto de infección debido a que las áreas donde son utilizados no cuentan con sistemas de defensa que les permita enfrentar la agresión de estos microorganismos o son un buen medio de cultivo para su reproducción. Estos materiales deben ser obligatoriamente esterilizados. El esponjero con su correspondiente esponja debe estar estéril.
1. limas y tiranervios deben ser preparados particularmente ya que son sensibles contra los daños mecánicos y estos deben ser esterilizados. etc. Ejemplo: instrumental de cirugía y traumatología. Los instrumentales de mango de acero inoxidable o mango de plástico deben ser esterilizados en autoclave.
. Los clamps de acero inoxidable pueden ser esterilizados como primera opción en autoclaves. Al concluir el tratamiento los escariadores.2. descartando la esponja luego de la atención de cada paciente.
no obstante. no todas las piezas pueden ser esterilizadas y el tiempo que tomaría la esterilización es muy largo para realizarlo entre pacientes. no más de 50 grs. Estos. Estos materiales. entre paciente. Por lo tanto. enjuáguela bajo un chorro de agua corriente para retirar la saliva y/o sangre adherida y luego desinféctela sumergiéndola en alcohol de 70º por un espacio de 5 minutos. sangre u otros fluidos. posteriormente deberá retirarse todo el resto de agua o lubricante que tenga en su interior. El algodón y la gasa deben esterilizarse en autoclave en paquetes pequeños. deben estar libres de los microorganismos antes mencionados y deben ser estériles. Para el caso de las radiografías. Instrumental de cirugía: Los instrumentales quirúrgicos de acero inoxidable deben ser esterilizados en autoclave. Instrumental de periodoncia: Todo el instrumental que se use en Periodoncia debe ser esterilizado. retire la película (sin abrir aún) cuidadosamente de la boca del paciente. Turbina y micromotor: Es deseable la esterilización de rutina de las piezas de mano de alta o baja velocidad. saliva u otros elementos presentes en su superficie y luego séquelas bien. Antes de ser esterilizadas deberán ser limpiadas vigorosamente con un paño húmedo y embebido en solución detergente que permita retirar los restos de sangre. las piezas de mano que son posibles de esterilizar deben ser hechas al final del día. cubriendo no más de dos tercios de la capacidad del frasco y luego se esterilizan en el pupinel. Algunos fabricantes recomiendan lubricar las piezas de mano antes de esterilizarlas.La vaselina se coloca en frascos de vidrio con tapa hermética. haciéndola funcionar por 30 segundos.
B) MATERIAL SEMICRÍTICO: Corresponde a artículos que no penetran las mucosas pero pueden estar en contacto con ellas o expuesta a la saliva. virus y Mycobacterias. por lo general son resistentes a infecciones por esporas bacterianas comunes pero susceptibles a las formas vegetativas de las bacterias. Todo profesional deberá adquirir piezas de manos y micromotores que puedan ser esterilizados en autoclave. una vez tomada la placa radiográfica. En caso de que la esterilización no sea posible deben ser sometidos minimamente a desinfección de alto nivel. Los instrumentales que no sean de acero inoxidable deben ser esterilizados con el pupinel. Todas las turbinas y micromotores deberán ser esterilizados siguiendo estrictamente las recomendaciones dadas por el fabricante. pero considerando la realidad 35
Se debe desinfectar al igual que las piezas de mano. debe retirarse cualquier residuo químico. 36
.  Lavar y limpiar el instrumental.  Después de la desinfección. Las pinzas. Todos los días. antes de empezar a trabajar. Es aconsejable dejar correr el agua que tienen en su interior entre cada paciente y al inicio de las actividades diarias.  Cuando no están en uso. usando agua esterilizada. hasta que sea adquirida se puede seguir el siguiente método de desinfección. se debe dejar correr el agua que contengan las mangueras de la turbina durante por lo menos un minuto. con la técnica antes descrita. Jeringa triple: Se debe esterilizar con calor húmedo o debe esterilizarlas con glutaraldehído al 2% por 10 horas. Instrumental de examen: Los espejos deben ser esterilizados por autoclave o se debe seguir las recomendaciones del fabricante. para eliminar las bacterias que puedan haber aflorado durante la noche en el sistema de suministro de agua.
 La desinfección de estos materiales. El equipo de ultrasonido debe ser tratado de manera similar. en alcohol isopropyl al 90% o en alcohol etílico al 70%. Luego de trabajar en el paciente dejar correr el agua de la turbina durante 30 segundos antes de continuar con otro paciente. guárdelos en recipientes metálicos apropiados. Para la limpieza y conservación del interior tienen que ser aplicados los métodos indicados por el fabricante. Las líneas de aprovisionamiento de agua deben ser irrigadas con soluciones bactericidas. para remover todos los restos orgánicos. se podrá realizar utilizando compresas embebidas en glutaraldehído al 2%.  Haga funcionar durante 1 minuto la pieza de mano de alta velocidad y la jeringa triple a fin de que el agua limpie los conductos correspondientes. los exploradores y las sondas periodontales pueden ser esterilizadas en autoclave o en el pupinel. Se deberá mantener la pieza de mano en contacto con el desinfectante durante el tiempo especificado por el fabricante.económica de que no se pueda adquirir de inmediato un aditamento con estas propiedades. luego de ser utilizadas con cada paciente. No pueden ser introducidas en baños de inmersión.  Seque el instrumento con un paño absorbente.
para evitar el uso de cambia fresas. deberá ser desinfectado previamente y de ser posible. de no ser posible. sin embargo. Las fresas deben ser esterilizadas en pupinel. a. Cualquier elemento que deba ser llevado al Laboratorio. Impresiones: Las impresiones hechas en el consultorio deben ser desinfectadas antes de realizar el vaciado del yeso. No se las debe almacenar en un fresero y menos sueltas en los cajones de los armarios. Material de laboratorio: Los procedimientos de esterilización y desinfección que se recomendaron para el instrumental de uso clínico. Las cubetas de acero inoxidable pueden ser esterilizadas en autoclave. se deberá seguir las recomendaciones del fabricante acerca de la estabilidad de los 37
.Instrumental de operatoria: Todo instrumental de operatoria debe ser esterilizado y en caso de que no se pueda debe ser desinfectado a alto nivel. deberán ser estrictamente mantenidos con los materiales de laboratorio. En el caso de envío de impresiones. La parte activa de los equipos de transiluminación. esterilizado. El resto de las superficies de estos equipos pueden ser desinfectadas con alcohol de 70° Instrumental protésico: Tazas de goma. mantenga las fresas sumergidas por 30 minutos en alcohol de 70° (el hipoclorito de sodio corroe las fresas rápidamente) dentro de un recipiente cerrado. Cuando no es posible desinfectar las impresiones se procederá a desinfectar el modelo de yeso. etc. Se recomienda tener un juego básico de fresas para cada paciente. espátulas y cubetas no metálicas se desinfectarán con glutaraldehído al 2% durante 45 minutos o aplicando alcohol 70° mediante fricción mecánica. utilizando sustancias que no las deterioren o distorsionen. piedras. sobre todo aquellos que posean extremos o puntas plásticas que impidan su esterilización por medio del calor. El cambia fresa debe ser esterilizado o debe recibir una desinfección de alto nivel. Instrumental de ortodoncia: Todos los alicates de uso para ortodoncia así como todo el instrumental usado. Los elementos rotativos (fresas. colocándose en los recipientes o dispositivos de sujeción especiales para ellos y deben ser esterilizadas como el resto del material sucio. Las espátulas para resina son instrumentos sensibles al calor por lo que pueden someterse a una Desinfección de Alto Nivel. se recomienda usar el sistema ultra push. Las cubetas para impresión cromadas o de aluminio deben ser esterilizadas en pupinel o sumergirlas en alcohol de 70° por 30 minutos. luz halógena y pulpómetro no son fáciles de limpiar ni desinfectar por lo que deben ser cubiertos con fundas de polietileno o de papel de aluminio.) deberán separarse de los demás. deberán encontrarse esterilizados y desinfectados.
materiales frente al uso de los desinfectantes. recomendándose el uso regular de guantes para realizarle la correspondiente higiene antes de trabajas sobre ellas. Se tendrá especial cuidado en retirarles todo el vestigio de sangre. Ha sido demostrado la gran prevalencia de Candida Albicans en pacientes portadores de prótesis que presentan estomatitis por prótesis dental. bajo chorro de agua y posteriormente deberán ser desinfectados. deberán ser manipuladas con bastante precaución. Las prótesis totales y también las parciales. pero no sucede lo mismo con los otros materiales.
b. Las impresiones como los aparatos protésicos deberán ser enjuagados de la saliva que portan. Aparatos protésicos y de ortodoncia: Los aparatos protésicos y de ortodoncia deben ser igualmente desinfectados antes de enviarse al laboratorio dental. R/30 min. R/30 min. dejar correr el agua.
FUENTE: Asociación Dental Americana (ADA) R Recomendable NR No recomendable ? Se desconoce (*)El tiempo mínimo de exposición al desinfectante debe ser 20 minutos.
. se deberán desinfectar prolijamente antes de ser introducido en la boca de paciente. Es esencial remover cualquier residuo de desinfectante lavando las impresiones y la prótesis. Tabla Nº 6 Desinfección de Impresiones Soluciones desinfectantes / Tiempo de exposición Material de Impresión Hipoclorito 1% Iodóforos Glutaraldehído 2% Alginato Silicona o Mercaptano Pasta Zinquenólica Godiva (modelina) R/1 min. R/10 min. caucho. NR NR NR R/10 min. empleando sustancias que no corroan o cambien el color del material utilizando en su confección (tablas Nº 7). producen cambios estadísticamente significativos en las impresiones de alginato. La solución de clorhexidrina ha sido usada sin efectos adversos con alginato. Las soluciones de glutaraldehído al 2% y de hipoclorito de sodio al 1%. elastómero de silicona y elastómeros de poliéster. R/10 min. Cuando los aparatos protésicos metálicos lleguen al consultorio procedente del laboratorio. antes de sacarlos de los consultorios. deberán ser desinfectados siguiendo las mismas pautas que se utilizan para el instrumental operatorio y en el caso de que ya se encuentre con acrílicos. NR NR R/1 min.
Modelo de yeso: Sumergir el modelo fraguado y sin el material de impresión en una solución de hipoclorito de sodio al 1% durante 30 minutos y luego enjuagar con agua. Tabla Nº 7 Desinfección de Aparatología para Laboratorio Dental (*)
Aparato (Prótesis/ortodoncia) Sustancias Desinfectante Hipoclorito Glutaraldehído Iodóforos (1%) (2%)
Prótesis Fija Metal/porcelana Metal/acrílico Porcelana Acrílico Prótesis Removible Metal/acrílico Acrílico/porcelana Ortodoncia Acrílico/alambres Ferulas De Relajamiento Acrílico
c. Para prevenir infecciones. Las sustancias pulidoras del tipo de la piedra pómez cuando son usadas sobre prótesis contaminadas. se puede añadir a la piedra pómez un líquido desinfectante (5 partes de hipoclorito de sodio a 100 partes de agua destilada).Una buena recomendación es conocer las instalaciones del laboratorio con el que habitualmente se trabaja. con el fin de informarnos sobre los parámetros de higiene en los que se desarrolla el trabajo en él y así poder implementar cuidados adicionales con aquellos aditamentos que les enviemos. Se debe alertar al laboratorista cuando le estemos remitiendo algún implemento de trabajo perteneciente a algún paciente que presenta alguna enfermedad infectocontagiosa. La comunicación en este aspecto deberá ser sumamente fluida entre el profesional y el laboratorista. 39
. se convierte en un reservorio bacteriano y puede permanecer contaminada durante 3 meses.
Para estos materiales deben utilizarse desinfectantes de nivel intermedio o bajo nivel.Mycobacterium. haciendo correr agua.
.etc. La piel sana actúa como una barrera efectiva para la mayoría de los microorganismos y por lo tanto el nivel de eliminación de microorganismos requerido puede ser mucho menor.Legionella.) lo que indica que el agua que entra procedente de la red comunitaria es la fuente de contaminación de estos microorganismos. unidad dental.C) MATERIAL NO CRÍTICO: Esta clasificación corresponde a instrumentos o dispositivos que pueden tener contacto frecuente con los aerosoles generados durante el tratamiento dental. La escupidera debe ser higienizada con agua y detergente al iniciar el día y después de cada paciente eliminando todo tipo de residuos que se pudieran acumular. Los eyectores deben ser desacartables y las puntas de los suctores deben ser autoclavadas o esterilizadas con desinfectantes de alto nivel de acción (glutaraldehído al 2% durante 10 horas). Por ejemplo amalgamador. El depósito de agua debe ser decontaminado con un agente químico de nivel intermedio. con un paño embebido en alcohol de 70°. Con relación a la lámpara se debe forrar el mango del mismo con una bolsita de nylon que deberá ser cambiada después de cada paciente. equipos de rayos x. tocados por el paciente o por las manos contaminadas del clínico o auxiliar dental durante el tratamiento. mangueras de piezas de manos y jeringa triple. En el agua de la unidad dental se han encontrado microorganismos de transmisión hídrica (Pseudomonas. debiendo utilizar desinfectantes químicos como hipoclorito de sodio al 1%. sillón. llaves y otros. dos veces a la semana. lámpara de luz halógena. Estos materiales toman sólo contacto con piel sana por lo que el riesgo de producir infecciones es mínimo o inexistente. Unidad dental: La unidad dental deberá ser desinfectada diariamente al comienzo y al finalizar las labores de trabajo. Es fundamental evitar la formación del biofilm.
2. que se cambiará luego de la atención de cada paciente. No se debe usar desinfectantes a base de Yodo en superficies plásticas.Mesa de trabajo: La mesa de trabajo deberá mantenerse en buenas condiciones de higiene durante toda la jornada de trabajo. se recomienda desinfectar el sillón dental inmediatamente después que se haya retirado. respaldo) y la manija del foco bucal. En caso de manchas orgánicas (sangre-saliva) absorber en toalla descartable eliminar como residuo peligroso. ya que esa agua se puede oxidar y contaminar con facilidad con el siguiente riego para el paciente cuando se le aplica la turbina o el aire de la jeringa triple. se les deberá eliminar el agua que se condensa en el interior del recipiente que contiene el aire. etc. Sillón: Desinfecte el sillón dental con un paño embebido de hipoclorito de sodio 0.5%.2. es decir. de no contar con cubierta descartable lavar con agua y detergente. cabezal. Para lograrlo es recomendable colocar sobre la misma un campo descartable. las cuales deben ser consideradas para seleccionar el tipo de método que se debe emplear en la eliminación de microorganismos. MÉTODOS SEGÚN CARACTERÍSTICAS Y COMPOSICIÓN DE MATERIALES: Los diferentes elementos que se utilizan en la odontología están fabricados de diversos materiales.
1. Se deberá evitar expresamente que el porta residuos se encuentre en dicha mesa de trabajo.2.. cada uno de ellos con características propias. Colocar cubiertas descartables en toda la superficie del sillón odontológico que esté en contacto directo con el cuerpo del paciente (apoyabrazos.5% o alcohol 70° antes y después de la atención diaria.
. Las superficies de las mesas de trabajo. deben ser desinfectadas prolijamente con una solución de hipoclorito de sodio 0. En dicha mesa de trabajo sólo deberá estar el equipamiento necesario para la atención de cada paciente. luego lavar con agua y detergente y desinfectar con solución de hipoclorito de sodio al 1%. sillones dentales. Si un paciente presentará lesiones cutáneas o capilares exudativas o micóticas. pues pueden originar decoloración. Comprensora: Las comprensoras deberán ser purgadas.
La resistencia de los plásticos es directamente proporcional a la densidad. Algunos afectan su dureza y otros su resistencia al óxido. humedad. B) PLÁSTICOS: Son compuestos realizados sobre la base de polímeros naturales o sintéticos y su característica principal es que son capaces de deformarse y moldearse. En general resiste la acción de ácidos. Las superficies que no son pulidas son más propensas a la corrosión. Para este tipo de instrumentales se recomienda la esterilización con vapor de agua (autoclave). Se utiliza principalmente para la fabricación de instrumental quirúrgico y cajas de instrumental. como aislante térmico y eléctrico y como empaque. a mayor densidad mayor resistencia. La calidad del agua puede dañarlos ya sea por exceso de cloruros o de sustancias alcalinas o ácidas. Los artículos de acero inoxidable son durables si se mantiene de acuerdo a indicaciones del fabricante.
. Este tipo de artículos son resistentes a la oxidación y herrumbre aún en contacto con ácidos. álcalis y gases corrosivos y es capaz de resistir a altas temperaturas. También puede dañarse por el tipo de marcado si éste debilita su estructura original. Para aumentar la resistencia a la corrosión el instrumental es sometido a pulido y pasivazo. El acero al carbón o cromado debe ser preferentemente esterilizado en el pupinel. Este último consiste en dejar una capa de óxido de cromo en la superficie del instrumento que es muy resistente a la corrosión si se utilizan método de limpieza y mantención que no lo alteren. álcalis y algunos solventes. Para los artículos de plásticos termo resistentes se puede utilizar la autoclave y los artículos termolábiles se deben esterilizar con sustancias químicas como el glutaraldehído al 2% durante 10 horas.A) ACERO: Los artículos de acero inoxidable tienen en su composición distintos componentes y su calidad depende de la proporción de ellos. Son utilizados ampliamente en el ámbito clínico ya sea como componente de instrumentos y equipos.
pero cuando se trata de envases de vidrio que contengas líquidos para esterilizar. Los vidrios esmerilados (opacos) no se utilizan en la fabricación de materiales que requieren ser esterilizados debido a que podrían tener materia orgánica o residuos de gases. D) LATEX: Son sustancias derivadas del caucho que se utilizan para la fabricación de guantes. el lavado no es suficiente para eliminar todas las bacterias de sus superficies y se han descrito reacciones a pirógenos atribuidas a guantes reesterilizados. Son rígidos debido a que sus moléculas son muy cohesionadas. MANEJO DEL AMBIENTE ODONTOLÓGICO:
. Los vidrios deben ser esterilizados por calor seco (pupinel) o deben ser desinfectados. Muchos artículos usados en odontología están envasados en vidrios Los más frecuentes procesados son los de tipo pirex debido a que son de mayor grosor y dureza que confieren resistencia a tracción y temperaturas altas. se utiliza la autoclave. La esterilización de líquidos por lo tanto son excepcionales. Sólo es posible efectuarla en autoclaves que tengan un programa especial para estos efectos. debido a la dificultad que presenta la esterilización de líquidos la mayoría de soluciones que se usan en la práctica clínica se obtienen estériles de fábrica. Los vidrios pueden contener en su composición metales y plásticos. A mayor cohesión de sus partículas es más duro y resistente. Los algodones resisten altas temperaturas pero se dañan fácilmente con la tracción y acción de instrumentos. Los algodones como las gasas deben ser esterilizadas por autoclave. 1.C) VIDRIOS: Son sustancias que se fabrican a partir de sílice que se funden a grandes temperaturas. Ciertas características del látex son alteradas con los detergentes haciéndolos permeables al paso de microorganismos.3. Por otra parte. Los algodones absorben líquido por lo que sólo pueden ser esterilizados en equipos que aseguren su secado. E) ALGODONES: Son textiles provenientes de fibras naturales. Se caracteriza por ser muy vulnerable y poco resistente a la tracción y acción del detergente. F) LÍQUIDOS: En la actualidad. Por lo anterior los guantes no deben ser reutilizados. estas características los hacen muy frágiles y fáciles de romper.
sangre. instrumentos. materiales contaminados como algodones y restos de impresión.
Para limitar la diseminación de la sangre y la saliva en el ambiente se debe seguir las siguientes consideraciones:  Reducir al mínimo necesario el uso de la jeringa triple.
1.  Cuando se use la jeringa triple. producen mayor contaminación de los ambientes. materiales contaminados con saliva o sangre del paciente. pues provocará aerosoles muy intensos con acción diseminadora muy extensa. se debe tener cuidado de que la presión de agua no sea demasiado fuerte. b. pues el uso alterno de ambos elementos.  Utilizar un buen sistema de evacuación (succión) de sangre y saliva. ni tampoco se tendrán plantas o materiales de limpieza.  Evitar la contaminación de pisos y módulos con la caída de saliva. PROTECCIÓN DEL AMBIENTE DE TRABAJO: Los medios más frecuentes a través de los cuales se producen infecciones cruzadas. Contacto directo de las manos del profesional o su asistente con los equipos. los que pueden diseminar grandes cantidades de microorganismos de la boca del paciente hacia todos los ambientes del consultorio. En los establecimientos asistenciales hay gérmenes patógenos
. micromotores. La ventilación de todos los lugares de trabajó deberá ser muy intensa a fin de evitar la polución causada por aerosoles generados durante las preparaciones dentarias o debido a las emanaciones del sistema de desagüe. LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN DEL AMBIENTE: Estas normas tienen por objeto disminuir la contaminación ambiental y eliminar la suciedad visible.3. jeringas triples y aparatos de profilaxia.En las áreas de atención profesional no se deben realizar otras actividades que no sean la señalada.2. Se recomienda que primero se use el spray de agua y luego el del aire.3.  Reducir la formación de aerosoles y salpicaduras de saliva y sangre utilizando solo la cantidad necesaria de agua en la pieza de mano de alta velocidad y en los destartarizadores ultrasónicos. En estos espacios no se guardará alimentos o utensilios de comida.
1. son: a.1. A través de aerosoles y otras sustancias expelidas por las turbinas.
desinfectantes.  En caso de mancha de sangre u otro fluido orgánico embeber inmediatamente en toalla absorbente.
Limpieza de Mobiliario: Las superficies de los muebles de trabajo deberán ser de material fácilmente higienizable. por el mismo motivo. mascarilla. enjuagar y luego embeber una esponja con solución de hipoclorito de sodio al 0.  Se prohíbe el uso de plumeros. Asimismo el personal debe estar vacunado contra el tétano y la Hepatitis B. La limpieza de mobiliario debe realizarse una vez por turno y siempre que se encuentren visiblemente sucios. kerosén. No usar cera.  No se debe usar cortinas en los baños. El procedimiento a seguir es el siguiente:  Lavar con solución de detergente limpiador. por lo tanto todas las superficies que se encuentran ubicadas en ese espacio se deberán desinfectar con mayor frecuencia que el resto del mobiliario. escobillón o elementos que movilicen el polvo ambiental.
. escoba. desodorantes ambientales y pastillas de formol. aerosoles. siguiendo por sillones y pisos. La limpieza de los ambientes debe ser realizada por un personal protegido con un gorro. finalmente enjuagar con una esponja embebida en agua y secar la superficie descontaminada.  Deben eliminarse aquellos muebles que no cumplan una función estrictamente definida y específica en cada sector. liso y con la menor cantidad posible de ángulos en donde se pueda depositar el polvo o material contaminado.presentes en los elementos o equipos sucios o contaminados cercanos al paciente que se pueden comportar como reservorios o fuentes de infección. Para la limpieza de los ambientes se debe tener las siguientes consideraciones:  Siempre se efectuará la limpieza ambiental desde el área más limpia a la más sucia. eliminar como residuo patogénico. que acumulen polvo o desechos contaminados.1% y desinfectar la totalidad del mueble por 15 minutos. Es importante tener presente que la boca puede expulsar saliva o sangre hasta un diámetro de dos metros desde el lugar en que se encuentra ubicado el paciente.  La limpieza comienza por las superficies verticales.  Los muebles deben estar separados de la pared por lo menos 20 cm. guantes de goma hasta la mitad del antebrazo y anteojos protectores. para facilitar la limpieza y del piso por lo menos 10 cm. delantal impermeable.  En las áreas de trabajo no debe existir alfombras u otros.
puertas. incluidos los sistemas de iluminación. proceder a limpiar de la siguiente manera: llenar un balde con agua limpia. En el caso de pisos que no están contaminados. tantas veces como sea necesario para que nunca esté notoriamente sucia. descartar las toallitas en bolsa plástica de Residuos Patogénicos. Paredes. en los cuales se realizará los siguientes procedimientos: Si hubiese presencia de materia orgánica. evitando la salpicaduras y teniendo extrema precaución con las bocas de electricidad. repasar con el segundo trapo y la solución de hipoclorito de sodio manteniendo húmedo durante 15 ó 20 minutos. Desechar el contenido líquido de los baldes por la pileta de patio o por el inodoro. Finalmente. enjuagar con agua limpia pasando el mismo trapo por las superficies.proceder a la limpieza con solución detergente e hipoclorito de sodio al 1%. Este procedimiento se debe realizar una vez por semana y cuando se encuentren visiblemente sucios. el personal de limpieza debe colocarse los guantes y luego colocar toallitas de papel sobre la mancha (tantas veces como sea necesario) para que la mancha se absorba. dejar secar los baldes boca abajo. Luego pasar un trapo con agua y detergente. según punto anterior. Cambiar ambas soluciones tantas veces como sea necesario o cuando se encuentre las soluciones visiblemente sucias. enjuagar y pasar un trapo con hipoclorito de sodio al 1%. ventanas y vidrios: El local asistencial deberá contar con paredes y pisos de fácil lavado. secar y a continuación desinfectar esta superficie con solución de hipoclorito de sodio al 0. Pisos y zócalos: Se utilizará la técnica de doble balde/doble trapo. La frecuencia de limpieza es cada 2 meses. Enjuagar.1%.1%. Se deberá cambiar el agua entre ambientes. evitando apliques innecesarios o materiales rugosos o porosos que dificulten la higiene del consultorio. con los trapos extendidos y las cerdas de cepillos hacia arriba. Se debe lavar desde una altura de 2m. lavar la superficie limpiando vigorosamente con un trapo de piso embebido en solución detergente (no mezclar con hipoclorito de sodio). Este procedimiento se debe realizar una vez por turno y siempre que se encuentren visiblemente sucios. cepillando en forma meticulosa. tibia y detergente. 46
. No eliminarlo por la pileta del lavado de manos bajo ningún aspecto. llenar el otro balde con solución hipoclorito de sodio al 0. lavarse las manos antes y después de este procedimiento previo al retiro de los guantes. hacia abajo. Pintarlos por lo menos una vez por año o cuando estén visiblemente sucios. Parra ello se debe usar una solución detergente o jabón. enjuagar el balde y trapos utilizados. Cielorrasos: Deben estar visiblemente limpios. Una vez absorbida.
el inodoro y el lavatorio se desmancharán con jabón aniónico o solución de detergente.  Las manos deben ser lavadas según técnica y secadas antes de su colocación.  Retirar las joyas. no aplicar lociones o cremas en las manos inmediatamente antes de colocarse los guantes. mediante la utilización de materiales adecuados que se interpongan al contacto de los mismos.Baños: Se efectuará igual procedimiento que el descrito en pisos y paredes. el personal de salud deberá verificar que sus uñas estén cortadas o se deben retirar las uñas artificiales.  Verificar que no estén dañados los guantes antes de usarlos. o mucosas del paciente a las manos del operador. enjuagar y por último desinfectar con hipoclorito de sodio al 0. La utilización de barreras no evita los accidentes de exposición a estos fluidos. pero disminuyen las consecuencias de dicho accidente. por lo tanto. en todo tipo de procedimiento odontológico.  Si se utilizan guantes de látex.1. tales como anillos.  Podrán utilizarse guantes de látex no estériles en los procedimientos no invasivos (ej. como de la transmisión de gérmenes de la sangre.1°/o. En relación al uso de guantes debe considerarse:  Se deberá usar guantes para todo tipo de procedimiento que se realice en la atención odontológica del paciente.
2. incluyendo el examen clínico.  Los guantes estériles de látex deben utilizare en todo procedimiento invasivo (ej. cirugía maxilofacial y periodontal). saliva. el uso de guantes es indispensable. Para lograr esto el odontólogo y el personal auxiliar que apoye directamente en el área asistencial deberá usar los siguientes métodos de barrera 2. Estos dispositivos de protección tienen el objeto de impedir contaminación con microorganismos eliminados por los enfermos. 47
. en cada turno o cuando estén visiblemente sucios con material orgánico. ya que el aceite puede degradar el látex. pulseras y relojes. para examen). y en otros casos que microorganismos del personal sanitario sean transmitidos a los pacientes. GUANTES: Su uso tiene como objetivo la protección del personal de salud y la del paciente.
USO DE BARRERAS:
Comprende el concepto de evitar la exposición directa a sangre y otros fluidos orgánicos potencialmente contaminantes.  Antes de utilizar los guantes. al evitar o disminuir tanto el riesgo de contaminación del paciente con los microorganismos de la piel del operador. Los materiales utilizados en este sector no se pueden utilizar en otro sector.
 Los guantes deben estar bien adaptados. si son grandes o muy estrechos interfieren con la destreza manual. así como aquellos que se dañen durante los actos operatorios. pues estos procedimientos los deterioran. 48
.2.  Nunca intentar desinfectar y/o esterilizar los guantes. limpieza de ambientes y limpieza de sangre y otros fluidos corporales  Usar como mínimo un par de guantes nuevos por paciente. No recogerlo sino hasta la finalización de dicho tratamiento. nariz y piel descubierta.  Mientras realiza la atención. utilizar otro similar y continuar con el tratamiento interrumpido. el contestar las llamadas telefónicas. MASCARILLAS: Se utilizan para proteger las mucosas de nariz y boca contra la inhalación o ingestión de partículas presentes en el aire.  Carecer de costura central para evitar el paso de gérmenes. pues favorece la maceración y fisuración de la piel y además produce deterioro del material del guante. No se pasee por el consultorio con los guantes puestos. deberán considerar la posibilidad de usar doble guante. es preferible que la asistenta se encargue de controlar la luz.  Para evitar contaminarse las manos enguantadas o contaminar los objetos que toque. cortes.  No filtrar aire por los lados.  Evite tocarse con las manos enguantadas los ojos. alcanzar el instrumental que no se encuentre a mano. de tener que hacerlo deberá desechar esos guantes y utilizar un nuevo par.  Los guantes gruesos de hule deberán ser utilizados para el manejo y limpieza de instrumentos contaminados.  Si durante la realización de algún procedimiento odontológico se cayera un instrumento. manejo de desechos contaminados. En caso haya lesiones abiertas. los trabajadores deben evitar tratar con sangre u otros fluidos corporales. luego del contacto con materiales que puedan contener alta concentración de microorganismos o cuando estos se hayan contaminado con sangre. disparar el accionador del equipo radiográfico o de otro equipo y de ser el caso.  Los guantes deben cubrir el puño del mandil. Las mascarillas deben tener las siguientes características:  Adaptarse con comodidad a la cara. en los aerosoles y contra las salpicaduras de sangre y saliva.  No permanecer con los guantes puestos más de 45 minutos.  Cambiar los guantes entre diferentes procedimientos en el mismo paciente.  Los trabajadores que tengan heridas en la mano. o manos agrietadas. Debe atenderse a pacientes de alto riego con guantes estériles. dichos guantes no deberán manipular ningún objeto o equipamiento que no esté estrictamente vinculado al área asistencial del paciente. 2.
 Cubrir sin presionar los labios ni los orificios nasales.  Las mascarillas deben ser de uso personal y preferentemente descartables.  Sus superficies son susceptibles a contaminarse. En relación al uso de mascarillas debe considerarse:  Se deberá usar mascarillas para cualquier tipo de procedimiento que se realice en la atención odontológica del paciente. Los anteojos deben tener las siguientes características:  Deben ser neutros.  No favorecer el empañamiento de los protectores oculares.  Debe permitir el uso simultáneo de anteojos correctores. metales.  Permitir la respiración.  Debe tener ventilación indirecta. salpicaduras de sangre y saliva y de las partículas que se generan durante el trabajo odontológico como ocurre cuando se desgastan amalgama. etc. 2. 49
. Manipularlas del elástico de soporte.  Las mascarillas están disponibles en variedad de materiales: Papel. por consiguiente deben ser consideradas como un objeto séptico.3.  Debe ser de uso personal.  Nunca deben ser tocadas con las manos aun estando enguantadas. Las mascarillas odontológicas deben filtrar partículas de 1 micrón y tener como mínimo tres capas con una eficiencia de filtración del 95%. En relación al uso de anteojos de protección debe considerarse:  Se deberá usar protectores oculares para cualquier tipo de procedimiento que se realice en la atención odontológica del paciente.  Lavarlos y desinfectarlos después de cada paciente utilizando jabones germicidas o soluciones antisépticas. orientada hacia atrás para evitar que se empañen. Tela. acrílico. fibra de vidrio y otros compuestos sintéticos.  Debe permitir una correcta visión. hule espuma. PROTECTORES OCULARES: Los protectores oculares sirven para proteger la conjuntiva ocular y el ojo de la contaminación por aerosoles.  Deben ser fácilmente descontaminables.  No irritar la piel.  Los lentes deben ser amplios y ajustados al rostro para cumplir eficazmente con la protección  Debe tener protección lateral y frontal. Se consideran a las de fibra de vidrio como las más eficaces. de material resistente (alto impacto).  Toda mascarilla debe ser cambiada al estar presente la humedad en algunas de las capas.
 Debe mantenerse siempre limpia.  Confortables.  Preferentemente de color blanco. prolija e impecable. Debe tener las siguientes características:  Longitud aproximadamente hasta el tercio superior del muslo.  Si pese al uso de anteojos cae sangre o saliva a los ojos.4. si tiene banda sujetadora. 2. MANDIL: El mandil protege la piel de brazos y cuello de salpicaduras de sangre y saliva. con observación de adicionar siempre blanqueadores caseros (lejía). cada vez que se realizará un procedimiento invasivo.  Enjuagarlos con abundante agua y secarlos con paños de papel. de ahí recomendación de que el mandil sea de preferencia de color blanco. los mandiles serán removidos o desechados  Depositar y transportar la pechera en bolsas plásticas descartables.
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2. En relación al uso de la pechera debe considerarse:  Colocarse la pechera sobre el mandil. compuestos de amonio cuaternario al 0.5.1% .2%.  Deberá usarse dentro de las instalaciones del consultorio y será retirada salir de él. Frotar con un paño suave. ésta deberá retirarse y lavarse por separado.  Cambiar el mandil y la pechera cuando estén visiblemente manchados o salpicados con sangre o saliva. inmediatamente debe aplicarse repetidas veces agua con un gotero.  El lavado debe seguir el ciclo normal de lavado de ropa.  Cerrado hasta el cuello. 50
.0.  Manga larga y de preferencia con el puño elástico adaptado a la muñeca. usar desinfectantes tales como: alcohol isopropílico al 0.  Tener cuidado de no rayarlos con productos en base a piedra pómez.  Para la desinfección.  Cuando se haya terminado de realizar los cuidados y antes de lavarse las manos. También protege al paciente de gérmenes que el profesional puede traer en su vestimenta cotidiana. En relación al uso del mandil debe considerarse:  Siempre que se trabaja en el consultorio odontológico debe usarse mandil. PECHERA: La pechera protege al mandil y evita las salpicaduras.7%. líquidos o fluidos corporales del enfermo evitando el cambio de este entre pacientes. Tener presente que las soluciones altamente cáusticas dañaran la superficie de la película. aerosoles y partículas generadas durante el trabajo odontológico.  Las pecheras pueden ser de tela o de plástico.
En relación a los residuos punzo-cortantes se considera:  Nunca reinsertar con las manos las agujas en su protector.  Las hojas de bisturí deben retirarse del mango con instrumentos con cremalleras.
No mezclar la ropa cotidiana con la vestimenta protectora. fresas de diamante y carburo.
Comprende el conjunto de dispositivos y procedimientos adecuados a través de los cuales los materiales utilizados en la atención de pacientes.  Nunca dejar la aguja sin cubierta en la bandeja de instrumentos.6.  Las agujas sin cubierta protectora deben retirarse de las jeringas utilizando una pinza porta agujas o desinsertarla en contenedores.  Coordinar con precisión el pase de instrumentos punzo-cortantes entre el asistente y el operador. Los pinchazos o cortes con aguja o instrumento contaminado con sangre o secreciones son altamente peligrosos. O bien utilizar siempre una pinza porta aguja. ni querer romperlas. exploradores. Estos instrumentos incluyen: agujas. tijeras bandas y alambre para ortodoncia. En caso contrario solo el operador deberá manipular el instrumental de la bandeja. etc. para volver a colocar la cubierta protectora de la aguja o algún método que elimine la posibilidad de pincharse.1. instrumentos de endodoncia.
3. bisturís. evitando la caída hacia la parte anterior o lateral de la cara.  El cabello debe estar totalmente recogido. MANIPULACIÓN DE RESIDUOS PUNZOCORTANTES: Un gran porcentaje de los accidentes laborales se da por el mal manejo del material punzocortantes. En relación al uso del gorro debe considerarse:  El gorro debe cubrir totalmente el cuero cabelludo. son depositados y eliminados sin riesgo. cinta matriz.  No doblar las agujas.
. piedras montadas y discos de pulido.  Si se efectúa una segunda punción durante un mismo procedimiento clínico. GORRA: Evita la contaminación de los cabellos por aerosoles o gotas de saliva y/o sangre generadas por el trabajo odontológico. curetas periodontales y para dentina.
2. 3. debe delimitarse un campo estéril en el área clínica directa para dejar la jeringa carpule (riñón o bandeja estéril).
la confección de amalgama en la palma de la mano de la asistente o del profesional. No permitir que el asistente limpie con una gasa o algodón. La exposición al mercurio metálico es un factor de riesgo. los residuos orgánicos de los instrumentos que se están utilizando. el calentar en el esterilizador instrumentos que presenten restos de amalgama y la eliminación de antiguas amalgamas sin usar aerosol de agua. Respecto al tema de contaminación ambiental producida por la amalgama y más propiamente respecto al mercurio. que se cerrará herméticamente antes de su eliminación. como son los excesos de amalgama de plata. Lo que se recomienda hacer es evitar el contacto físico de las manos con la amalgama y mantener herméticamente cerrado los frascos que contengan mercurio. Todos los sobrantes se guardarán en un frasco de vidrio que contenga agua.  Las jeringas y agujas usadas deben ser recolectados y eliminados en recipientes descartadores rígidos. La fricción de las partículas contenidas en las alfombras eleva el vapor de mercurio 10 y 20 veces por encima del límite de seguridad y estos niveles dañinos se mantienen durante varios días. como puede ser el permitir los derrames accidentales. Se deberá tener mucho cuidado en limpiar el resto de Mercurio de todos los instrumentos utilizados e la confección de obturaciones de amalgama. las fallas de los amalgamadores.  Los recipientes descartadores deben estar lo más próximo posible al área de trabajo. la higiene del consultorio. el hecho de exprimir con los dedos descubiertos los excesos de mercurio de una amalgama. resistentes a la punción. Se recomienda eliminar las alfombras y tapetes en las áreas de tratamiento. pero cuando se equivocan los procedimientos para su utilización. 3. El uso de aspiradoras sobre las alfombras contaminadas puede
. MANIPULACIÓN DE MATERIAL TÓXICO: Una de las muchas precauciones que se deberá tener en el consultorio odontológico es respecto a la manipulación del mercurio. deberán ser colocados dentro de un recipiente descartable a prueba de agua. previa rotulación con el título de “Material Tóxico”. se ha determinado que existe relación con el número de amalgamas que se elaboren. tipo de revestimiento de los pisos. La eliminación de residuos contaminantes.2. la ventilación y los años de uso del mismo. Sin embargo se debe expresar que si existen algunas personas que presentan reacciones alérgicas al mercurio. ya que el paciente permanece muy poco tiempo en el consultorio como para perjudicarse con sus gases. aun con las manos enguantadas. ya que el calor del esterilizador incrementa notoriamente los niveles de gases mercuriales con el consiguiente daño para la salud de quienes trabajan en el consultorio. Los riesgos del paciente en relación al mercurio no son grandes.
Estos descartadores no deben bajo ninguna circunstancia ser reutilizados. etc. Cuando se pisan las amalgamas que se encuentran en el suelo o al momentote prepararlas.
. la no disponibilidad de bolsa color rojo obliga a colocar rótulos bien legibles indicando “residuos contaminados”. con destino a su eliminación. Deben ser depositados en bolsas rojas. Las partículas de amalgama combinadas con otras fuentes de mercurio existentes en los consultorios. aumenta la concentración de mercurio en el ambiente. por lo que se reitera la utilidad de usar succionadores de alta potencia cuando se efectúa este tipo de trabajo. excreciones y demás líquidos orgánicos del paciente y si no se eliminan en forma apropiada. son residuos sólidos con grandes cantidades de microorganismos provenientes de las secreciones. cartones. tales como sustancia para revelado.). La presencia de mercurio en las partículas de amalgama es baja. papeles. esterilización por autoclave. contribuyen al riesgo de la salud para quienes trabajan en odontología y para el paciente. desinfección por microondas ó enterramiento controlado) antes de ser eliminados en los rellenos sanitarios autorizados por DIGESA. Para este tipo de residuos se debe utilizar bolsas de color amarillo. guantes. Los residuos especiales lo constituyen los elementos contaminados con sustancias químicas.3. etc. inyectores de saliva. Los residuos comunes o no contaminados provenientes de la limpieza en general (polvos. son potencialmente riesgosos. Estos residuos deben ser tratados previamente (incineración.causar una elevación en el nivel ambiental de mercurio. plásticos. elementos punzocortantes. Deben ser almacenados en recipientes con bolsas de color negro. Los residuos biocontaminados provenientes del área asistencial (algodones. no representan riesgo de infección para las personas que lo manipulan y que por su semejanza con los residuos domésticos pueden ser considerados como tales. gasas. vendas. Cuando una amalgama es calentada a consecuencia de su remoción con una fresa de alta velocidad.). etc. el nivel de vapor de mercurio aumenta considerablemente. con materiales e insumos necesarios para descartar los residuos de acuerdo a los criterios técnicos establecidos en esta Norma.
3. de manera que la amalgama no es considerada como una fuente de vapor. ELIMINACIÓN DE RESIDUOS: Para la eliminación de los residuos se debe acondicionar previamente los servicios. mercurio. Los residuos contaminados como los materiales punzocortantes deben ser depositados en los descartadores. radioactivas y líquidos tóxicos.
Sumergir los residuos en hipoclorito de sodio al 0. de paredes rígidas y cierre a rosca que asegure inviolabilidad. de buena capacidad.  Si el recipiente tiene dispositivo para separar la aguja de la jeringa. La abertura debe ser amplia de forma tal que al introducir el material descartado.  Desechar los residuos con un mínimo de manipulación.  Identificar y clasificar el residuo para eliminarlo en el recipiente respectivo. Deberá tener dicha inscripción y símbolo. Para la eliminación de residuos se debe considerar:  Determinar la cantidad. Las autoridades del establecimiento de salud. debe contar con la autorización emitida por el Municipio y ser depositada en rellenos sanitarios registrados en la DIGESA. se pueda obturarlo en forma segura.5% con la finalidad de desinfectar el material y dañarlo para impedir que vuelva a ser usado.  Los recipiente serán colocados con sus respectivas bolsas lo más cercano posible a la fuente de generación.  Ubicar el recipiente para el residuo punzocortante de tal manera que no se caiga ni se voltee. de forma de visualizarlo fácilmente desde cualquier posición. la mano del operador no sufra riesgo de accidente. Los descartadores deben ser de color amarillo y tener el símbolo de material infectante y una inscripción advirtiendo que se manipule con cuidado. Debe tener tapa para que cuando se llene hasta las dos terceras partes del volumen del mismo. deben asegurarse que la empresa prestadora de servicios de manejo de residuos sólidos hospitalarios. color y capacidad de las bolsas (que debe ser al menos 20% mayor de la capacidad del recipiente) a utilizar según la clase de residuos. En el caso de que no se pueda adquirir descartadores. se usarán recipientes rígidos como botellas plásticas de gaseosa.
.Es recomendable que los descartadores deben estar hechos con material resistente a los pinchazos y compatible con el procedimiento de incineración sin afección del medio ambiente. sobre todo para aquellos residuos biocontaminados y especiales. descartar sólo la aguja en dicho recipiente  Si el recipiente no cuenta con dispositivo de separación de aguja.  Cerrar herméticamente las bolsas una vez que estén llenas en las dos terceras partes. además de contar con la autorización para la disposición final de residuos sólidos hospitalarios.  Las bolsas nunca deben ser arrastradas. eliminar la aguja con una pinza porta aguja. de dimensiones no menores a un tercio de la altura mínima de capacidad del recipiente y con dos impresiones. deben tener asa para su transporte y que la misma permita manipularlo lejos de la abertura del descartador.
1. cualquier herida penetrante con aguja u otro instrumento contaminado con sangre o fluidos infectantes. esterilización por autoclave.3.  Los residuos deben ser tratados sin perjuicio a la población y al medio ambiente. MEDIDAS BASICAS FRENTE A ACCIDENTES DE EXPOSICIÓN A SANGRE O FLUIDOS CORPORALES (AES): Se denomina AES. Los residuos deben permanecer el menor tiempo posible acumulados en las áreas de trabajo retirándose con una frecuencia mínima de una vez por turno y siempre que se encuentren llenos los recipientes. etc.2.1. a todo contacto con sangre o fluidos corporales y que lleva una solución de continuidad (pinchazo o herida cortante) o con contacto con mucosa o piel lesionada (eczema. Definida: Cualquier herida que sangre espontáneamente contaminada con sangre o fluidos infectantes o bien.).
2. Dudosa: Cualquier lesión causada con instrumental contaminado con fluidos no infectantes.
1. En un AES se debe definir:     La víctima o personal de salud accidentado El material causante del accidente El procedimiento determinante del mismo La fuente. excoriación. 1. por ello los métodos de tratamiento recomendado son: enterramiento controlado. incineración y desinfección por microondas. o exposición de piel intacta o fluidos o sangre infectante. es decir la sangre o fluido potencialmente contaminante.
. Probable: Herida superficial sin sangrado espontáneo con instrumentos contaminados con sangre o fluidos infectantes o bien mucosas expuestas a sangre o fluidos infectantes. CLASIFICACIÒN DE AES: Los Accidentes de Exposición a Sangre (AES) se clasifican de acuerdo a la naturaleza de la exposición y puede clasificarse en 4 categorías probables: 1.
Cualquier exposición parenteral a materiales de laboratorio o de investigación conteniendo virus VIH.  HEPATITIS A VIRUS C (HVC): el riesgo en este caso no está todavía bien precisado citándose cifras de hasta un 10%. saliva. Masiva: Transfusión de sangre infectada por VIH.5 .
. En la práctica los agentes más frecuentemente comprometidos en los AES son:  VIRUS DE LA INMUNODEFICIENCIA HUMANA (VIH): el riesgo de infectarse por este virus en un accidente laboral a través de una aguja que tiene sangre contaminada es estimado en 0. muerte Dolor.
AGENTES INFECCIOSOS TRANSMITIDOS POR AES:
Numerosos agentes infecciosos en la sangre o fluidos corporales de lo que se denomina "fuente". Hasta 6 meses Bacteria instrumentos latente contaminados Virus Contacto con saliva 3 a 7 días Virus
Carcinoma de hígado Muerte Inhabilitación.1%. saliva.
En la práctica odontológica también se produce la transmisión de otras enfermedades de menor frecuencia.4.  HEPATITIS A VIRUS B (HBV): el riesgo de infectarse por este virus en un accidente laboral a través de una aguja que tiene sangre contaminada es promedio un 15%.05%. Inyección accidental de más de 1 ml. En un contacto mucoso con sangre contaminada baja a un 0. Tabla Nº 8 Infecciones Transmisibles de Interés en Odontología
Tuberculosis Herpes simple
Sangre. pero igualmente presentan una serie de secuelas y complicaciones (ver tabla Nº 8 y 9). Hasta 10 años madre-niño Inhalación. 2 a 6 meses material contaminado Contacto sexual. de sangre o fluidos contaminados.1. llegando hasta un 40%. pueden ser transmitidos en el curso de un accidente.
2. Virus contacto con sangre.
saliva. sangre.Tipo I Herpes simple Tipo II Conjuntivitis Herpética Gonorrea
infectada Virus Virus Bacteria Contacto sexual. sangre
latente Hasta 2 semanas latente 3 a 7 días latente 1 a 7 días 2 a 12 semanas 7 a10 días 4 a 7 semanas
inhabilitación Lesiones dolorosas Ceguera Artritis. muerte Inhabilitación temporal Inhabilitación temporal.S. esterilidad en hombres Osteomielitis reumatismo cardiaco Osteomielitis neumonía Inhabilitación temporal
Sífilis Tétano Mononucleosis Infecciosa Paperas
Inhalación Contacto con secreciones ulceras orales. sangre
14 a 25 días
Infecciones Estreptocósicas Infecciones Estafilocócicas Resfrió
1 a 3 días 4 a 10 días 48 a 72 horas
FUENTE: UPCH “Control de las Infecciones Transmisibles en la Práctica Odontológica
Tabla Nº 9 Riesgo de Transmisión de las Infecciones entre los Pacientes y el Personal de Salud
Enfermedad PAC =>P. muerte Inhabilitación. => PAC
? Alto Bajo Alto Bajo Bajo Bajo Bajo Bajo Intermedio
? Alto Bajo Alto ? Raro Raro ? Raro Intermedio 57
. VIH/SIDA Viruela/Zoster diseminado Zoster localizado Conjuntivitis viral Citomegalovirus Hepatitis A Hepatitis B Hepatitis no A y no -B Herpes simple Influenza Línea De Transmisión P. sangre Autoinoculación con saliva infectada Contacto sexual. saliva. periodontitis Exposición a heridas cutáneas Saliva. contacto sexual Heridas abiertas Saliva.S. esterilidad en mujeres Daño cerebral. sangre Contacto directo.
.SILOS Nº 12 (?): No hay suficientes datos para comentar
Alto Raro Intermedio Intermedio Intermedio Bajo Bajo ? ? Bajo a alto Bajo
Alto ? Intermedio Intermedio Intermedio Bajo Bajo Raro Raro Bajo a alto ?
3. Contacto con piel intacta: Efectuar arrastre mecánico con abundante agua corriente. por un tiempo no menor a 10 minutos.
1.1. o alcohol yodado o tintura de yodo al 2%.  Mantenga la herida cubierta siempre que atienda a un paciente hasta su total cicatrización.
CONDUNTA A SEGUIR EN CASO DE UN AES:
Cuando ocurre un AES se debe realizar los siguientes procedimientos: 1.Sarampión Infec.  Favorecer el sangrado haciendo que fluya sangre al exprimir la zona adyacente a la lesión. En el caso de ojos agregar colirio simple. boca): Lavar abundantemente con agua o con suero fisiológico. No utilizar desinfectantes sobre las mucosas.  Volver a lavar la herida con agua y jabón  Realizar antisepsia de la herida con alcohol al 70% vol. Primeros cuidados de urgencia
1. Por meningocosos Parotiditis Rotavirus Rubeola Salmonella/Shigella Sarna Streptococo aureus Streptococo grupo A Tuberculosis Sífilies
FUENTE: OPS . 2. Pinchazos y heridas:   Retirarse los guantes inmediatamente Lavar inmediatamente la zona cutánea lesionada con abundante agua y jabón. Contacto con mucosas (ojo. 1.  Dependiendo del tamaño de la herida cubrir la misma con gasa estéril.3.2. (3 minutos). Avisar al supervisor inmediato. no menos de diez minutos. nariz. Cada Institución definirá quien registrará los datos a efectos de recabar la información necesaria para asegurar que se den todos los pasos correspondientes en forma eficiente.
El tratamiento será a base de antiretroviral de acuerdo al esquema que maneja la estrategia. No es conveniente que el propio trabajador accidentado sea el que realice dicha evaluación. 5. 8. Es necesario conocer el estado clínico-serológico del paciente fuente. 4. Con estos elementos se evaluará la pertinencia de la continuación del tratamiento iniciado o la interrupción del mismo en caso de no ser justificado. teniendo en cuenta la presencia de indicadores de riesgo de infección. el conocimiento de la serología del paciente fuente y la tolerancia de la medicación. En caso de corresponderle los beneficios y prestaciones de Seguros. 10. La extracción deberá hacerse dentro de las 24 horas de producido el accidente. En ningún caso se demorará el comienzo de la medicación por dicho examen. definida y masiva. Tabla Nº 10 Medidas Complementarias a la exposición del virus de la hepatitis B (VHB) 59
. 6. El supervisor designado por la institución en el punto 2 deberá. Se complementará el formulario de declaración de accidente laboral que se adjunta el cual se archivará en la Institución tanto pública como privada. Si el estado serológico es desconocido. 11. En el caso de Hepatitis B se debe aplicar inmunoglobulinas y vacunas según el caso (ver tabla Nº 10). A las 48 horas el médico de referencia deberá reevaluar toda la situación. Notificar el accidente a los Comités Locales de Control de Infecciones del establecimiento de salud. marcadores de hepatitis y otros análisis que juzgue por conveniente el profesional. El supervisor responsable de la evaluación solicitará al accidentado en forma voluntaria los exámenes serológicos correspondientes. deberá ser enviado inmediatamente al mismo a los efectos de proseguir con las medidas a tomar. 12.3. el médico prescribirá la realización de los siguientes exámenes previo consentimiento del paciente: serología para VIH.. En caso de no poderse evaluar el caso fuente éste debe ser considerado como positivo y procederse en consecuencia. 9. Cada institución tendrá la medicación disponible en todo momento para iniciar un tratamiento. Tienen indicación de tratamiento los accidentes por exposición laboral de las categorías probable. con el asesoramiento técnico que corresponda. dentro de las seis horas de producida la exposición. 7. En el caso de VIH se iniciara el tratamiento lo antes posible. realizar la evaluación del tipo de riesgo generado por dicho accidente.
06 ml/kg) Anticuerpos contra antígeno de superficie para hepatitis B
FUENTE: UPCH “Control de las Infecciones Transmisibles en la Práctica Odontológica HBsAg HBlg Anti-HBs : : :
VIII. Si fuente es de alto riesgo o hepatitis B sospechosa de HBsAg. Debe recibir esquema de vacunación contra hepatitis B 2.Si
Entonces el --Trabajador de Salud
1. Debe recibir el esquema Personal de salud no vacunación está vacunado contra 2. Debe recibir dosis única de HBlg en los 7 primeros días Debe medirse anti-HBs y si es < 10 mU aplicar una dosis de HBlg y vacuna de refuerzo
ANEXO I DEFINICIONES OPERACIONALES
. debe recibir HBlg en los 7 primeros días Personal de salud está El manejo debe ser individualizado para vacunado contra la cada caso hepatitis B
Antígeno de superficie para Hepatitis B Inmunoglobulina específica para Hepatitis B (DOSIS: 0.
Personal de salud no está vacunado contra hepatitis B Personal de salud está vacunado contra hepatitis B Personal de salud no está vacunado contra Debe recibir vacuna contra hepatitis B hepatitis B Personal de salud está No requiere ninguna medida vacunado contra la hepatitis B 1.
10. 7. con sintomatología leve (sub-clínica) o con sintomatología evidente (infección activa). 2. pero no lo hace con todas las esporas bacterianas. 8. los agentes Iodóforos.1. no elimina el Mycobacterium tuberculosis ni los virus de tamaño pequeño no lipídicos. ENFERMED INFECCIOSA: Se define como la proliferación de microorganismos dentro de los tejidos produciendo daño y dando lugar a una variedad de manifestaciones clínicas. Como ejemplo esta el glutaraldehído. Este paso puede ser por contacto directo o indirecto. DESINFECTANTE DE NIVEL INTERMEDIO: Destruye las formas vegetativas de bacterias. bacterias. En este grupo están los amonios cuaternarios. ENFERMEDAD TRASMISIBLE: Es aquella causada por un agente infeccioso capaz de transmitirse de una persona o animal infectado o de un reservorio a un huésped susceptible. CONTAMINACIÓN: Es la presencia de un agente infeccioso en la superficie del cuerpo. DESINFECTANTE DE BAJO NIVEL: Destruye bacterias patógenas en su forma vegetativa y algunos hongos. 3. AGENTE INFECCIOSO: Virus. 6. rickettsias. La fuente puede ser animada (ser vivo) o inanimado (objetos). 61
. vendajes quirúrgicos u otros artículos inanimados o sustancias incluyendo el agua y los alimentos. instrumentos. hongos y virus pero no necesariamente todos los virus de tamaño pequeño no lipídico. el peroxido de hidrógeno. el orthophthaldehído. 5. hongos. Aquí se incluyen los Compuestos clorados. FUENTE: Es el lugar desde el cual un agente infeccioso pasa hacia el huésped. Existen desinfectantes de nivel bajo que no destruyen las formas vegetativas de todas las bacterias. DESINFECTANTE DE ALTO NIVEL: Destruye todos los microorganismos incluyendo al M. los alcoholes y los fenoles. DETERGENTE: Los detergentes son agentes químicos utilizados para la eliminación de suciedad que es insoluble en el agua. tuberculoso y a los virus resistentes. 9. Dentro de su evolución puede tener un estadio asintomático es decir sin sintomatología. el formaldehído y los productos basados en ácido paracético. En circunstancias especiales puede eliminar el Mycobacterium tuberculosis. BIOSEGURIDAD: Es el conjunto de actitudes y procedimientos orientados a impedir la contaminación por microorganismos hacia el personal de salud y hacia el paciente. vestidos. protozoarios o helmintos capaces de producir una infección. 4.
11. genera residuos sólidos. 15. 19. 18. postas. mucosa oral mucosa nasal. TRANSMISION INDIRECTA: Es la transferencia de un agente infeccioso a un individuo susceptible a través de vehículos de transmisión. 20. El propósito de la limpieza es disminuir la biocarga (número de microorganismos) a través del arrastre mecánico. RESIDUOS SÓLIDOS HOSPITALARIOS: Los Residuos Sólidos Hospitalarios son aquellos desechos generados en los procesos y en las actividades de atención e investigación médica en los establecimientos como hospitales. en superficies y en objetos. a fin de reducir y controlar riesgos a la salud y ambiente. mucosas o cavidades y que implica el riego de contaminación. INCINERACIÓN: Método de tratamiento de residuos que consiste en la oxidación química para la combustión completa de los residuos en instalaciones apropiadas. FUENTE DE GENERACIÓN: Unidad o servicio del establecimiento de salud que. laboratorios y otros. PROCEDIMIENTOS INVASIVOS: Procedimientos que penetra piel. LIMPIEZA: La limpieza es la remoción mecánica de toda materia extraña en el ambiente. 14. mucosas o cavidades del paciente.
ANEXO II PREPARACIÓN DE DESINFECTANTES QUÍMICOS 62
. químicas y biológicas de un residuo peligroso en un residuo no peligroso o bien menos peligroso a efectos de hacer más seguras las condiciones de almacenamiento. TRANSMISION: Es cualquier mecanismo en virtud del cual un agente infeccioso se propaga en el ambiente o de un persona a otra. clínicas. vectores o aerosoles. 17. PROCEDIMIENTOS NO INVASIVOS: Procedimientos que no penetran piel. TRATAMIENTOS DE RESIDUOS: El tratamiento de los residuos sólidos hospitalarios consiste en transformar las características físicas. en razón de sus actividades. utilizando para ello el lavado manual o mecánico. 12. 16. 13. transporte o disposición final. Usualmente se utiliza agua y detergente para este proceso. conjuntivas o cosas genitales. TRANSMISION DIRECTA: Es el traspaso directo e inmediato de un agente infeccioso a puerta de puerta de entrada receptiva tal como piel.
 La solución de glutaraldehído al 2% activada utilizada para esterilizar o desinfectar debe descartarse a los 14 ó 28 días después de ser activado. existen 2 formas: a. Medir 62. existen 2 formas: a. HIPOCLORITO DE SODIO Para obtener 1 litro a una concentración del 1% (1:5). b.  Los elementos que se colocan en este producto deben estar siempre secos.5% (1:10).
. guantes de látex.5% (durante el periodo de uso de 14 ó 28 días desde la activación). b. Medir 200cc de lejía doméstica y agregar 800cc de agua destilada para obtener un litro de hipoclorito al 1%. Medir una parte de lejía doméstica y agregar cuatro partes de agua destilada. delantal de polietileno y barbijo).  No superar los tiempos de exposición establecidos ya que es inútil. existen 2 formas: a. no aumentar la concentración ya que es inútil por eficacia y costo.  Utilizar las diluciones especificadas. Medir una parte de solución y agregar 15 partes de agua destilada.5cc de agua destilada. b. Nunca utilizar agua caliente o tibia. Precauciones:  La lejía concentrada deberá almacenarse a temperatura inferior a 25º. a fin de evitar dilución del preparado.1.  El agua utilizada para la dilución de la lejía concentrada será agua corriente (no destilada) y fría.
Precauciones:  Trabajar con ambiente bien ventilado con elementos de protección (anteojos de seguridad. Medir una parte de lejía doméstica y agregar nueve partes de agua destilada. protegida de la luz en frascos plásticos opacos y bien tapados. Medir 100cc de lejía doméstica y agregar 900cc de agua destilada.  Las diluciones de la lejía concentrada deberán realizarse en forma diaria reduciendo de esta manera la pérdida significativa de cloro activo.5cc de glutaraldehído y agregar 937.  Nunca utilizar lejía concentrada como desinfectante o decontaminante ya que es totalmente ineficaz. 2.  Utilizar tiras de control de concentración de glutaraldehído con el fin de descartar aquellas soluciones cuya concentración haya disminuido por debajo del 1.  El envase donde se almacena el glutaraldehído activado deberá estar bien tapado. Nunca superar ese tiempo establecido. GLUTARALDEHÍDO AL 2% CON FENÓLICO Para obtener 1 litro a una concentración de 1:16. Para obtener 1 litro a una concentración del 0.
FORMALDEHÍDO Para obtener 1 litro de formaldehído al 8%: Medir 200cc de formol comercial al 40% y agregar 800cc de agua destilada. Necesita la presencia de agua para actuar como microbicida. Precauciones:  Conservar en sitio fresco (inferior a 25o C) en recipientes de vidrio de color caramelo.
4. al abrigo de la luz. 5.  Evitar el contacto directo con elementos metálicos ya que es corrosiva. Precauciones:  El alcohol de 95º. no tiene propiedades germicidas. ALCOHOL DE 70° Para obtener 1 litro de alcohol de 70°: Medir 623cc de alcohol de farmacia de 95° y agregar 377cc de agua destilada para obtener un litro de alcohol de 70º. de alcohol de 70°.
. Para obtener 1 litro de formaldehído al 4%: Medir 100cc de formol comercial al 40% y agregar 900cc de agua destilada. ALCOHOL IODADO Para obtener un litro de alcohol iodado: Medir 100 ml de tintura de yodo fuerte y agregar 900ml.3. por lo tanto nunca usar alcohol de 95º sin diluir.
“Manual de Bioseguridad para VIH/SIDA”. Perú – 2004. Noviembre 1997. Resolución Ministerial N° 179-2005/MIN.
1. 12. Gobierno de Mendoza. 3. 9. 7.Perú – 2004. Ministerio de Salud “Manual de Bioseguridad para Laboratorios”. Lima – Perú. Gobierno de Chile. Edición. 4. MINSA. Resolución Ministerial N° 217-2004 SA. Ministerio de salud. Lima – Perú. “Control de las Infecciones Transmisibles en la Práctica Odontológica”. Adelina LO BUE y Col. Perú . Ministerio de salud. Perú -2002. Resolución Ministerial N° 452-2003 SA/DM. Programa Especial de Control de SIDA.IX. 10. Wilson Delgado Azañero. Víctor Vives Barreto. Margarita Serra y Col. “Norma Técnica de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias”. OPD/INS. MINSA. 8. Resolución Ministerial N° 753-2004/MINSA. Universidad Particular Cayetano Heredia. 65
. “Norma Técnica de Vigilancia Epidemiológica de las Infecciones Intrahospitalarias”. 5. MINSA. MINSA. Publicación N° 3. Jaime Otero M. Ministerio de Salud “Manual de Esterilización y Desinfección Hospitalaria”. Ministerio de Salud. 1999. Gabriel Flores Mana. Uruguay. y Jaime Ignacio Otero.2003.Octubre de 1991. Ministerio de salud. 1995. 11. Instituto Nacional de Salud Resolución Jefatural N° 447-2002. Perú – 2002. Ministerio de Salud. “Manual de Aislamiento Hospitalario”. Ministerio de Salud Pública. 2. República Argentina. “Norma Técnica de Manejo de Residuos Sólidos Hospitalarios”. “Normas Técnicas sobre Esterilización y Desinfección de Elementos Clínicos y Manual para su aplicación”. Ministerio de Salud Chile. 27 de Noviembre del 2001. 1ra. Ministerio de Desarrollo Social y Salud. “Normas de Bioseguridad”. “Manual de Bioseguridad en Odontología”. “Manual de Bioseguridad”. MINSA. 2002. Perú – 2005. 6. Perú .

References: Resolución 
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