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Timestamp: 2018-11-18 17:50:24+00:00

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trabajo procesos tel
Actividad Temas de Fisica
PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.
MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA
PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. MÉDICO CIRUJANO
DIRECTORA DE LABORATORIOS Y T ALLERES
JORGE CASTELÁN MELÉNDEZ
SECRETARIO DEL INSTITUTO DE CIENCIAS DE LA SALUD
JEFE DEL ÁREA ACADÉMICA DE MÉDICO CIRUJANO
JORDÁN ZAMORA
COORDINADOR DEL PROGRAMA EDUCATIVO DE MÉDICO CIRUJANO
ANA HILDA FIGUEROA GUTIÉRREZ DRA.ESP. ANA HILDA FIGUEROA GUTIÉRREZ SECRETARIA VO. EN C. DEL PRESIDENTE Y SECRETARIO DE LA ACADEMIA DE MÉDICO CIRUJANO: NOMBRE FIRMA M. EN C. MARÍA DEL CARMEN ALEJANDRA HERNÁNDEZ CERUELOS VO. IRIS CRISTINA LÓPEZ SANTILLÁN PRESIDENTA M. IRIS CRISTINA LÓPEZ SANTILLÁN FIRMA M. LUIS CARLOS ROMERO QUEZADA FECHA DE LA ÚLTIMA REVISIÓN Y/O ACTUALIZACIÓN: AGOSTO-NOVIEMBRE 2014. EN C.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.C. EN C. BO. DEL COORDINADOR DEL PROGRAMA EDUCATIVO DE MÉDICO CIRUJANO: NOMBRE FIRMA M. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA FECHA DE APROBACIÓN DEL MANUAL DE PRÁCTICAS: NOMBRE DE QUIENES PARTICIPARON EN LA ELABORACIÓN: NOMBRE M. REVISADO POR: DIRECCIÓN DE LABORATORIOS Y TALLERES . BO.
....................................................................................................MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA ÍNDICE A................................................................................................................................ NORMAS DE SEGURIDAD Y LINEAMIENTOS..........Programa del Sistema de Prácticas y Actividades Extramuros.REGLAMENTO..........................7 B................................3 1............................................................. 3 2......46 Replicación..................... traducción y mutación.............................................................................................................................................................12 3......................................Cuadro de normas y referencias de seguridad de la práctica................................................8 CAPÍTULO III...................................................NORMAS DE SEGURIDAD ESPECÍFICAS DE LA PRÁCTICAS DE ESTE MANUAL............................. 20 Manejo de Microscopio y Localización de Metafases................ Talleres.......... 4 3......Medidas de Seguridad en los Laboratorios.................18 D........... 39 Análisis de Bandeo Cromosómico con Uso de TICs................................................................................................................................................................................................................17 1..... talleres y actividades extramuros...............................................................................................................................................20 Sexocromatina...........8 1..........................................................................................................................................................................................................................................................................Política Ambiental............26 Elaboración de Preparaciones Cromosómicas a Partir del Cultivo de Linfocitos..............Cuadro de Disposición de Residuos............................................................................57 Estudio de la Herencia Poligénica..........20 Identificación..........Introducción................................... transcripción................................... 75 Extracción de DNA.............. Clínicas y Actividades Extramuros.................... 13 C.................... clínicas.........................83 1 .......17 2........................... 8 2..50 Estudio Genealógico en Genética Humana..66 Genética de Poblaciones..........................CONTENIDO DE CADA PRÁCTICA EN PARTICULAR........................35 El cariotipo Humano.... 23 Manipulación de Material Estéril en un Simulacro de Cultivo Celular...............Competencias..............Lineamientos de seguridad para trabajar en laboratorios.............................................Reglamento de Laboratorios..............................................................................................................ENCUADRE DEL MANUAL DE PRÁCTICAS.............. 18 2a..... 80 Electroforesis de ácidos nucléicos...................................................................................................................31 Tinciones Cromosómicas....... Cultivo de Linfocitos.................................................................................................................................................................................................................................
..................................92 Anexo 7....................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................... 87 Anexo 3.......................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................................MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Anexo 1.................................................................................................................................................... 88 REPORTE DE PRÁCTICA............ 86 LINEAMIENTOS DE ACREDITACIÓN....................................... 87 Guía de Observación.... 91 CONSENTIMIENTO INFORMADO........................................................................................................................................................................................................................ 93 CONSENTIMIENTO INFORMADO............................................................................................................................. 88 Anexo 4........91 Anexo 6..86 Anexo 2.................................................................................................................................90 Anexo 5........ 92 CONSENTIMIENTO INFORMADO..........................................................................................................93 2 ............................................................................ 90 Rúbrica de Reporte de Práctica.................
. Surgió y se desarrolló a fines del siglo XIX. La citogenética humana se define como el estudio microscópico de los cromosomas y la correlación que hay entre sus anormalidades y las del paciente. ya que dichos procedimientos son la base para la realización de muchas otras 3 . Se identificaron defectos enzimáticos específicos en células que crecían y se desarrollaban en cultivos de tejidos. la embriotoxicidad de los fármacos.MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA A. cuando se logró identificar a los cromosomas. que permite la amplificación de pequeñísimas cantidades de ADN para su posterior caracterización.. la elaboración y el estudio de los cromosomas. así como las técnicas básicas para el manejo. Años después.ENCUADRE DEL MANUAL DE PRÁCTICAS. lo cual se vio reforzada con el surgimiento de la microscopia electrónica. la microbiología y la bioquímica. la genética y de la biología molecular se han desarrollado ampliamente. Se han desarrollado técnicas como: la hibridización por fluorescencia in situ (FISH).Introducción. Así mismo. Posteriormente. se han descubierto anormalidades estructurales cromosómicas en algunas entidades que se consideraban mendelianas como por ejemplo el Síndrome de PraderWilli. tanto en número. así como de la obtención y caracterización del DNA en la asignatura de Genética. la clonación de genes humanos en otros organismos. se han perfeccionado técnicas sofisticadas que permiten el conocimiento de las diferencias existentes entre los genes de procariontes y de eucariontes. la cual facilita el análisis citogenética a nivel molecular y la técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR). las técnicas citogenéticas y bioquímicas se combinaron y abrieron un nuevo horizonte: la genética de células somáticas. por primera vez. con la introducción de las técnicas de bandeo cromosómico en 1973. Por lo anterior. determinar el número cromosómico de una especie y conocer el significado de las variaciones. morfología. tamaño. la identificación precisa de cada par cromosómico en el cariotipo humano. arreglo y número de segmentos cromosómicos. se logró. permite establecer correlaciones entre los eventos mitóticos y meióticos con los genéticos. el presente manual pretende ofrecer al estudiante una fuente de información accesible y concisa sobre los pasos a seguir para realizar un cultivo de linfocitos. En la última década. La citogenética es una ciencia híbrida originalmente formada por la citología y la genética. ya que gracias a las herramientas de las nuevas tecnologías. 1. un mejor entendimiento de los mecanismos de regulación génica y de los procesos responsables de fenómenos como el crecimiento y la diferenciación celular. la localización de oncogenes humanos y más ampliamente el total mapeo del genoma humano (Proyecto Genoma Humano).
DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE
técnicas más sofisticadas, abriendo un promisorio panorama para el diagnóstico prenatal,
la prevención y el tratamiento de enfermedades de índole genética.
La Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo cuenta con siete competencias
Institucionales denominadas Genéricas, que cumplen con tres niveles de dimensión.
El programa educativo de Médico Cirujano desarrollará las siete competencias
establecidas por la institución:
2. Competencia de Formación
3. Competencia de Pensamiento Crítico
4. Competencia de Creatividad
5. Competencia de Liderazgo Colaborativo
6. Competencia de Ciudadanía
7. Competencia de uso de Tecnología
1. Asumen una postura crítica para comunicarse de forma oral y escrita en español y en un segundo
2. Establecen comunicación en equipos de trabajo.
3. Se comunican de manera crítica para realizar análisis, diagnóstico, diseño, planeación, ejecución
4. Elaboran ensayos en los que construye explicaciones científicas para la solución de diversos
6. Identifican y categorizan los contenidos básicos de la profesión.
7. Elaboran las etapas del proceso de investigación.
9. Reconocen la diferencia entre problemas sociales y científicos.
11. Desarrollan las habilidades necesarias para insertarse en los campos profesional y social.
1. Analizan la situación desde varias perspectivas.
2. Interpretan el problema y explican los aspectos más significativos del mismo (la esencia del
3. Poseen altos niveles de pensamiento conceptual y expresan ideas de manera concreta y
4. Analizan e interpretan la información siguiendo un orden lógico.
5. Establecen y organizan de manera autónoma y responsable sus actividades de trabajo.
8. Integran y aplican los métodos de estudio o investigación y procedimientos (convencionalismos,
tendencias, secuencias, clasificaciones, criterios, metodología en técnicas, métodos y
Generalizan la solución de problemas.
Sintetizan las partes, cualidades, las múltiples relaciones, propiedades y componentes de un
Llegan a conclusiones y a soluciones razonadas, y las somete a prueba confrontándolas con
criterios y estándares relevantes.
Aplican el pensamiento crítico para afrontar las exigencias del entorno (dimensión profesional y
Resuelven problemas complejos.
Valoran lo aprendido y lo que necesita aprender.
1. Solucionan problemas utilizando ideas originales e innovadoras.
2. Disponen de un clima que dé seguridad, que elimine la inhibición y fomente la libre expresión.
6. Asumen riesgos y toma decisiones en el contexto de situaciones nuevas.
8. Intervienen en situaciones menos estructuradas y de creciente complejidad.
1. Declaran el alcance de la idea y proyecto.
2. Definen la secuencia de las actividades de un proyecto, estimando su duración y las fechas de inicio
y término de cada una de ellas.
3. Generan en el equipo de trabajo un estado de ánimo de superación y logro de metas, y detectan las
fortalezas y debilidades de los miembros de su equipo para lograr un alto desempeño.
5. Poseen alto grado de autonomía personal y grupal.
6. Asumen la responsabilidad por el trabajo de otros.
7. Responsabilidad en la organización, planificación del tiempo, toma de decisiones, trabajo en equipo
y motivación y conducción hacia metas comunes.
TecnologíaUso de la
Asumen una postura personal a partir de la comparación de estructuras de creencias, costumbres
y de esquemas de valores.
Presentan un nivel de corresponsabilidad entre académico y estudiante para realizar las
actividades propuestas en el programa educativo.
Interviene en situaciones menos estructuradas y de creciente complejidad, donde la toma de
decisiones implica asumir una postura ética.
3. Asumen responsabilidad en el trabajo con otros.
Desarrollan apropiadamente las aplicaciones específicas del aprendizaje, la comunicación, el
área disciplinar y la investigación como herramientas de apoyo.
El Programa Educativo de Lic. Médico Cirujano sume seis competencias específicas, que
cumplen con tres niveles de dimensión. En la asignatura se desarrollarán 4 de ellas.
1. Competencia de Habilidades Clínicas
2. Competencia de Bases Científicas de la Medicina:
3. Competencia de Salud Pública:
4. Competencia para el Manejo de la Información
5. Competencia de Aplicación de la Normatividad Jurídica y de Salud:
6. Competencia de Ética Médica:
Ética Médica InformaciónManejo de la
1. Utiliza la tecnología de la información para la búsqueda, organización, resguardo y aplicación de
información confiable en salud de diferentes bases de datos y fuentes, mediante la medicina
basada en evidencias en escenario áulico y virtual.
Fundamenta la prevención, procedimientos diagnósticos y terapéuticos para aplicarlos en la
realización de intervenciones en escenarios áulicos.
Identifica las anormalidades en estructura y función y respuesta corporal que ocurren en las
enfermedades en escenarios áulicos y reales.
Identifica comportamiento humano normal y anormal en escenarios áulicos.
Identifica el ciclo de vida humano y los efectos de crecimiento, desarrollo y envejecimiento en el
individuo, la familia y la comunidad en escenarios áulicos y reales.
Clasifica los determinantes y factores de riesgo de salud y de enfermedad y la interacción entre el
hombre y su ambiente físico y social en comunidades.
Clasifica los factores genéticos, sociales y ambientales que determinan la salud, la enfermedad y
la respuesta al tratamiento en escenarios áulicos y reales.
Identifica al individuo, a la familia y a la comunidad como generadoras de salud y enfermedad
para sus miembros en su ámbito de influencia.
Evalúa las intervenciones nutricionales, bioquímicas, farmacológicas, quirúrgicas, psicológicas y
sociales y otras relevantes en las enfermedades agudas y crónicas, en la rehabilitación y en los
cuidados en etapas terminales en su ámbito laboral.
Identifica los principios morales y éticos de la profesión en escenarios áulicos, reales y virtuales.
Incorpora valores como la excelencia, el altruismo, la responsabilidad, la compasión, la empatía,
la confiabilidad, la honestidad, el compromiso y la integridad en escenarios áulicos, reales y
Asume una actitud de respeto y responsabilidad por si mismo por los demás, por la cultura, por la
naturaleza en su práctica profesional.
Cultivo de linfocitos. Análisis de Bandeo Cromosómico con uso de TICs. 3 2 1 4 2 1 5 2 1 Tinciones cromosómicas.MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 3. NÚM.. Estudio de la herencia poligénica.Programa del Sistema de Prácticas y Actividades Extramuros. 12 8 1 Extracción de DNA. Replicación. 6 2 1a3 El cariotipo humano. Estudio genealógico en genética humana. Transcripción. Elaboración de preparaciones cromosómicas a partir del cultivo de linfocitos. 7 2 1a2 8 3 1a2 9 4 1a2 10 5 1 11 6 1 Genética de poblaciones. 13 8 1 Electroforesis de ácidos nucléicos. PROGRAMACIÓN DE LA PRÁCTICA (SEMANA) Laboratorio de Genética 3 Laboratorio de Genética 4 Laboratorio de Genética 5 Laboratorio de Genética 6 Laboratorio de Genética Laboratorio de Genética 7 8 Laboratorio de Genética 9 Laboratorio de Genética 10 Laboratorio de Genética Laboratorio de Genética Laboratorio de Genética Laboratorio de Genética Laboratorio de Genética 11 12 13 14 15 7 . 2 2y5 1 Sexocromatina. DE PRÁCTICA UNIDAD PROGRAMÁTICA SESIONES NOMBRE ÁMBITO DE LA DE PRÁCTICA DESARROLLO 1 2 1 Manejo de microscopio y localización de metafases. Traducción y Mutación. Manipulación de material estéril en un simulacro de cultivo celular.
Artículo 22. con la acreditación respectiva y cuando cuenten con la asesoría del director de tesis o del investigador responsable del proyecto en el que participan. III. NORMAS DE SEGURIDAD Y LINEAMIENTOS. autorice el Director de la Unidad Académica. Los usuarios académicos de la Universidad deberán acreditar esta calidad ante el Responsable de Laboratorios. la práctica no podrá realizarse. así como los programas y convenios con los que se relaciona la actividad por realizar y tener aprobados los proyectos de investigación.MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA B. 1. por causa académica justificada. previo registro ante el Jefe de Laboratorios. Los profesores visitantes que requieran de la utilización o Servicios de los laboratorios de acuerdo a convenios establecidos. Los alumnos de la Universidad que. Artículo 21. éste quedará a cargo del profesor titular del mismo. Las personas que.. clínica o taller de que se trate. requieran de este apoyo. Se consideran corno usuarios de los laboratorios: I. CAPÍTULO IV De la operación y uso 8 . IV. de acuerdo a los programas educativos vigentes. CAPÍTULO III De los usuarios Artículo 18. II.. Artículo 19. Los usuarios estudiantes a que se refiere la fracción III del artículo 18 de este reglamento podrán hacer uso del laboratorio. Los profesores visitantes nacionales o extranjeros deberán acreditar su pertenencia a la institución que representan. así como tener aprobados los proyectos de investigación. Artículo 23. del protocolo de investigación aprobado y con el visto bueno del Director de la Unidad Académica. Artículo 20. El personal académico de la Universidad que requiera apoyo de los laboratorios.REGLAMENTO. En caso de que el profesor no asista. conforme a los planes y programas de estudio de los diferentes niveles educativos. quien lo controlará y asesorará. prestatarios de servicio social o colaborando en actividades académicas. Tratándose de prácticas de asignatura de los planes y programas de estudio vigentes en que deba asistir el grupo.Reglamento de Laboratorios. V. Los usuarios alumnos de la Universidad deberán acreditar esta calidad así como el derecho a cursar la asignatura con la que se relaciona la práctica y/ó proyecto a realizar. Los estudiantes o pasantes que se encuentren realizando tesis o prácticas profesionales.
una bitácora actualizada de servicios prestados. Artículo 27. Artículo 28. que serán resguardados por el Responsable del Laboratorio. II. Artículo 30. y una copia del inventario interno actualizado. toda persona se abstendrá de fumar. serán usadas mientras dure la práctica. Todo material y equipo solicitados deberán ser devueltos al Responsable del Laboratorio. Artículo 33. herramientas. Las mesas de trabajo de cualquier laboratorio. en los horarios previamente establecidos: I. Los usuarios a quienes se refiere el artículo 18 de este reglamento. del uso de teléfono celular y radiolocalizador. registrará este hecho en la bitácora del laboratorio. En caso de pérdida. equipo y materiales para el mismo fin. En caso contrario. que se empleen durante una práctica o prestación de servicios. se comunicará al Responsable. Artículo 25. En el caso de tratarse de procesos continuos que no se puedan interrumpir. Cada laboratorio deberá contar con un archivo general. Artículo 34. quedarán bajo la responsabilidad directa del usuario que los solicitó. estarán en poder del Responsable. El personal adscrito a los mismos. solamente tendrán acceso para su uso. y se contará con un duplicado en la dirección de la Unidad Académica. deberá ser autorizado por el director de la Unidad Académica. Artículo 32. El solo hecho de hacer el vale correspondiente no da derecho al usuario a sustraerlo de la Unidad. el Jefe de Laboratorio tiene la obligación de notificar inmediatamente su alta o baja dentro del inventario. se procederá a levantar un acta informativa y se seguirá el procedimiento legal que corresponda. Tras la adquisición o pérdida de algún equipo o mobiliario de laboratorio. Los espacios físicos destinados a cubículos u oficinas dentro de los laboratorios. sólo podrán ser utilizados por el personal adscrito al laboratorio. Artículo 29. clínica y taller. Los equipos. Cualquier uso fuera del horario de operación. quien tiene la obligación de revisar que estén completos y en buen estado. Las llaves de las puertas de acceso al laboratorio y de las demás áreas físicas del mismo.MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Artículo 24. prácticas o proyectos realizados. otra bitácora por cada equipo que así lo requiera. ni a conservarlo en uso exclusivo más del tiempo autorizado. así como el mobiliario. Los laboratorios permanecerán abiertos en el horario definido por cada Unidad Académica. manuales de prácticas y de operación. Artículo 31. La no observancia a esta disposición causará la suspensión del derecho al uso de los laboratorios. de consumir alimentos. salvo autorización especial y por escrito del director de la Unidad Académica. reactivos y materiales del laboratorio. por lo que no se podrá dejar material en ellas por mayor tiempo del autorizado. Durante su estancia en los laboratorios. o del equipo 9 . Durante el tiempo de operación de los laboratorios.
Artículo 35. 10 . o que presente un comportamiento indisciplinado. Artículo 41. quien hará un convenio con el o los alumnos para fincar la responsabilidad y acordar la modalidad de la reparación de la pérdida o daño. lo cual será informado a la dirección de la Unidad Académica. Será amonestado verbalmente. Artículo 43. Artículo 40. vigilar y registrar. se apliquen las sanciones que procedan. según la gravedad de la falta. Artículo 37. clínica o taller. Artículo 39. Es obligación del Responsable del Laboratorio. de acuerdo a los procedimientos establecidos por la Dirección de Recursos Materiales cualquier mudanza autorizada. debiendo el Jefe de laboratorios. Ningún equipo. será amonestada o se le suspenderá temporal o definitivamente el permiso de uso de los laboratorios. en un lapso no mayor de quince días hábiles. Será su responsabilidad revisar y actualizarlos periódicamente. notificando inmediatamente al Jefe de Laboratorios. reactivo o mobiliario podrá ser sustraído de los laboratorios. le será suspendida la autorización para seguir trabajando ese día. contados a partir de la fecha del incidente. se hará acreedor a las siguientes sanciones: I. accesorio. De no cumplir lo anterior. en su caso. El manejo de reactivos y materiales dentro de los laboratorios deberá sujetarse a las normas nacionales e internacionales que en materia de seguridad e higiene estén establecidas. En caso de reincidir. la Dirección de la Unidad Académica comunicará a la Secretaría General las faltas cometidas para que. será suspendido por el resto del semestre. Artículo 36. El director de la Unidad Académica aplicará las sanciones referidas en el artículo 38. Toda pérdida o daño al equipo o del material causados por el usuario serán repuestos o reparados por él mismo. Respecto a los usuarios académicos de la Universidad y a los profesores visitantes que infrinjan las normas de seguridad y disposiciones de este reglamento.MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA específico. a través de depósito bancario o directo en la Coordinación de Administración y Finanzas. fuera o dentro de la unidad académica. cuadros u otros señalamientos. contar con carteles. sin la autorización de la dirección de la Unidad Académica. supervisar el cumplimiento de las reglas de seguridad. II. clínicas o talleres y se sujetará a lo dispuesto por la legislación universitaria. material. materiales o instalaciones. Artículo 38. Todo usuario alumno que no utilice o que haga mal uso de los materiales de protección diseñados para trabajar en el área o que ponga en peligro a otros usuarios a través de su comportamiento inadecuado. en especie o pagos. se le suspenderá el permiso para utilizar los laboratorios. y de acuerdo a lo establecido en el reglamento interno de la Unidad Académica correspondiente. De no corregir de inmediato su actitud. según la gravedad o frecuencia con que dicha acción se realice. La persona que haga mal uso del equipo.
Número de muestras y material usados. materiales y/o maquinaria que se utilizan. siempre y cuando se tenga la autorización previa del presupuesto respectivo. cada vez que sea utilizado un equipo. Hora de terminación del uso del equipo. II. CAPÍTULO V De los servicios Artículo 47. evaluación técnica de procedimientos experimentales. Los servicios de los laboratorios serán de dos tipos: internos y externos. Proyecto. en tanto que el costo de reactivos o materiales específicos relacionados con las tesis de titulación. Talleres. VI. Cuando se trabaja en un Laboratorio o Taller. con hojas foliadas y resistentes. análisis. Se consideran servicios prestados por los laboratorios: a toda actividad en apoyo a la docencia e investigación.MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Artículo 44. de control. Fecha. los laboratorios. y se ubicará permanentemente junto al equipo correspondiente. les proporcionarán aquellos que son de carácter general. y son aquellos servicios prestados a usuarios internos que tengan por objeto cumplir con alguna de las funciones sustantivas de la Universidad.Medidas de Seguridad en los Laboratorios. Nombre y firma. Artículo 50. así como asesoría. Cada equipo mayor deberá contar con una bitácora de operación propia. Artículo 48. Observaciones generales. el usuario deberá registrar en ella: I. siempre y cuando no represente un gasto no autorizado previamente.. y VIII. la cual será un libro de pasta dura. Clínicas y Actividades Extramuros. Toda información técnica perteneciente a los equipos y accesorios de un Laboratorio es parte integral del mismo. siempre existe el peligro potencial de sufrir un accidente durante el manejo de las sustancias. fabricación y preparación de muestras. III. capacitación. medición o calibración que se prestan a la comunidad universitaria o a los sectores externos a la misma. Artículo 45. los cubrirá la Universidad. IV. Tratándose de los servicios a los usuarios a que se refiere la fracción III del artículo 18 del presente reglamento. Unidad académica o dependencia externa de adscripción. EL LABORATORIO O TALLER ES UN LUGAR PARA TRABAJAR CON 11 . V. práctica o servicio al que corresponde el uso. clínicas y talleres. y deberá estar disponible para su consulta en el lugar al que pertenecen. Hora de inicio del uso del equipo. VII. 2. Los servicios internos serán gratuitos. Articulo 49.
así como la toxicidad de los reactivos a utilizar 10. sobre el manejo DE LOS MATERIALES Y LA MAQUINARIA A UTILIZAR.-En caso de que ocurra alguna intoxicación deberá informar al médico los datos que se tengan del reactivo causante de la intoxicación. 3. base o fuego. con el propósito de evitar incidentes durante la práctica 5..-Es obligatorio el uso de bata de algodón y lentes de seguridad. 4..-Siempre se debe trabajar en un lugar bien ventilado y con iluminación suficiente. asimismo los zapatos deben ser cómodos y no tener descubiertos los pies 6. antes de cada sesión de laboratorio/o Taller. y en buenas condiciones tanto al principio como al final del experimento. 14. Todos los usuarios deberán respetar la Normatividad Universitaria vigente.Deberá leer cuidadosamente su práctica. 3.-Cuando trabaje con DISOLVENTES ORGÁNICOS.-Para cada práctica deberá revisar cuidadosamente las medidas de seguridad específicas.-Deberá envasar los residuos de la práctica en los recipientes respectivos y tener cuidado de ¡NO MEZCLARLOS! 13. 2. neutralizar y acudir a la enfermería si lo considera necesario 12.MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA SERIEDAD.Lineamientos de seguridad para trabajar en laboratorios. talleres y actividades extramuros. 12 .-Todo el material que vayas a emplear debe estar perfectamente limpio. TODOS DEBEMOS TOMAR CONCIENCIA DE LA IMPORTANCIA DE CONDUCIRNOS CON SEGURIDAD.-Cuando trabaje en el taller. clínicas.-Tu lugar de trabajo siempre debe estar LIMPIO y ORDENADO. Bo. deberá comunicárselo al profesor y al laboratorista auxiliar 15. del asesor. I.-Si tu cabello es largo.-NO se debe COMER ni FUMAR EN EL LABORATORIO y/o TALLER 7. siempre deberá ser en presencia del asesor o del laboratorista auxiliar pero con el Vo. RECUERDA QUE: Materiales y maquinaria + Descuido= ¡ACCIDENTE! Por lo que deberás considerar las siguientes recomendaciones: 1. 11. especialmente cuando se trabaja con mechero y/o maquinaria.-En caso de cualquier quemadura con ácido.En caso de ocurrir algún accidente por mínimo que sea. así aprovecharás mejor tu tiempo y evitarás errores 9.. deberá poner la parte afectada durante quince minutos aproximadamente bajo el chorro de agua fría. deberá tener cuidado de hacerlo en lugares ventilados y nunca cerca de la flama.-QUEDA PROHIBIDA LA VISITA DE PERSONAS AJENAS A LAS SESIONES DE LABORATORIO y/o TALLER 8. deberá estar recogido para evitar accidentes. ya que éstos son volátiles e inflamables.
durante el tiempo que dure la práctica y después de su uso. zapato y/ó bota antiderrapantes. para evitar lo anterior. VI. favor de indicarla previamente a los alumnos para que estén en posibilidad de cumplirla estrictamente. pelo recogido. y deberá ser entregado en las mismas condiciones en las que fue proporcionado. al final de la práctica. clínica y/ó taller: Bata reglamentaria de color blanco. a indicación del catedrático: Laboratorios. equipo. haga la entrega del mismo. filipina o bien uniforme que corresponda . Si el catedrático considera alguna otra. utensilios. En todo momento deberá conducirse en el laboratorio. clínica y/ó taller será a la hora exacta de acuerdo a lo Programado.H. completo y funcionando. herramienta y/ó equipo deberá ser quien a la vez.MANUAL II. bajo la supervisión directa del catedrático.  LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Los usuarios sólo podrán trabajar y permanecer en el laboratorio y/ó taller. El usuario solicitará el equipo. VIII. III. tomando en cuenta que la seguridad y preservación de éste espacio depende de todos y cada uno de los usuarios. VII. La entrada al laboratorio. IX. Si el usuario no conoce el funcionamiento del equipo o máquina alguna. IV. X. El laboratorio. uñas cortas y sin portar alhajas.A. de acuerdo al Artículo 20 del Reglamento de Laboratorios. puede provocar que ésta sea averiada o bien provocar algún accidente al tratar de utilizarla. En ningún caso el auxiliar o responsable de laboratorio. ya que éstos serán suministrados por el catedrático de la materia correspondiente. por favor ¡solicite asesoría a su catedrático!. guía de trabajo y/ó de investigación. El usuario deberá revisar el mobiliario. y su identificación oficial de la U. de manga de tela de algodón. clínica y/ó taller. Para asistir a sesiones de laboratorio. mediante el vale de préstamo debidamente requisitado. material y reactivos descritos correctamente. podrá suplir al catedrático ó investigador en su función. sin adornos. larga. clínica y/o taller NO proporcionará manuales de prácticas a los usuarios. clínica ó taller. herramienta. El usuario que solicite y reciba el material. con los materiales específicos por adquisición personal. éste quedará a responsabilidad del usuario(s). verificando que esté limpio. Asimismo deberá portar. 13 . es requisito indispensable que los usuarios se presenten con manual de prácticas. de acuerdo a las especificaciones del manual de prácticas. con respeto y responsabilidad hacia el catedrático y a sus compañeros. Formato DLA009. ordenado. V. herramienta y material que se les proporcione.E. necesarios para el trabajo a realizar en los laboratorios y/ó taller y portar adecuadamente su equipo de seguridad según aplique. PERSONALIZADA y como lo haya indicado el catedrático.
el usuario solicitará al auxiliar el vale de adeudo Formato DLA-010 y anotará en éste el nombre y número de cuenta de todos los integrantes del equipo y será respaldado con la identificación oficial de la U. XIX. XVIII. debidamente requisitada en este vale. que existen en el laboratorio. El usuario que realice práctica de recuperación deberá cumplir con todo lo estipulado en el presente.A. XIV. ruptura o desperfecto del equipo o material de laboratorio. XVII.MANUAL XI. la de sus compañeros. La acreditación de cada una de las prácticas que se realicen. Cuando el material quede bajo la responsabilidad del usuario. serán dados de alta. el vale de laboratorio Formato DLA-009 y su identificación oficial de la U.A.E. será retenido por el auxiliar o responsable hasta la devolución del material. bolsa. equipo y material. 14 . deberán ser etiquetados. serán sujetos a la sanción correspondiente prevista en el Reglamento de Laboratorios Artículo 36 y 38.H.2-01. utensilios o la de las instalaciones. el o los usuarios responsables.H. XXI. Los usuarios que por indisciplina o negligencia pongan en peligro su integridad.. En este procedimiento se retendrá únicamente el vale de adeudo. XV. En caso de no cumplir con la reposición del material en el plazo establecido.H. Todo frasco. la del mobiliario. material.E. NO ingieras alimentos. XVI. para que de emergencia. debe conocer la ubicación y el uso de los extintores. Clínicas y Talleres. no podrán continuar con la realización de las prácticas correspondientes. El adeudo se repondrá en un plazo no mayor a 15 días hábiles.E. LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Al devolver el mobiliario. clínica y/o taller debes mantenerte alerta y sin distracciones y además NO corras. proceda correctamente. Si el material adeudado no es repuesto en el plazo fijado.6. Por lo tanto cualquier sustancia con recipiente no etiquetado será desechada.E. XX. las puertas de emergencia. Departamento Control del Medio Ambiente” DLA-MO-7. conforme a lo que indica el “Manual de Procedimientos. estará sujeta a la evaluación que aplique el catedrático.H. NO se permite el uso de equipos de sonido personales y NO SE PERMITEN VISITAS DURANTE TU ESTANCIA EN LABORATORIO..A. XII. el usuario(s). El usuario de laboratorio. Control de adeudo Formato DLA-011. en la aplicación del Sistema Institucional de Control de Adeudos en Laboratorios. implementado en la Dirección de Laboratorios y Talleres de la U. CLÍNICA O TALLER ALGUNO. XIII. caja o contenedor. En caso de pérdida. reactivos y/ó equipo. el usuario deberá solicitar el vale de laboratorio Formato DLA-009 y su identificación oficial de la U.A. clínica o taller. y la circulación correcta del lugar así como las rutas de evacuación. Por la naturaleza de los materiales.
racial o social. al jefe de los mismos o en su caso a la Dirección de la escuela. clínicas y talleres. para obtenerla hará una donación en especie (material que se usa en los. clínica y/o taller deberán de nombrarse con apodos. (Manual de Higiene. XXIII. clínicas y/o talleres se toma en cuenta la regla de cortesía la cual marca que por ningún motivo o circunstancia las personas que se encuentren dentro de las instalaciones del laboratorio. herramienta y/o equipo de laboratorios. En los laboratorios. Queda estrictamente prohibido realizar cualquier tipo de actividad ajena al desarrollo de las tareas propias del laboratorio. material y equipos utilizados. XXV. deben dejar limpia el área de trabajo. clínicas. XXVII. MESAS Y EN EQUIPOS. Seguridad y Ecología. Al concluir la práctica. malas palabras o faltarse al respeto de cualquier connotación sexual. XXVIII. LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA El usuario que incurra en alguna falta académica será sancionado de acuerdo a la Normatividad Universitaria vigente. En caso contrario la Dirección correspondiente y la Dirección de Laboratorios aplicarán lo conducente de acuerdo a la legislación universitaria aplicable. NO TIRES PAPELES Y/O BASURA A LAS TARJAS. XXIV. Capitulo 1). XXIX. laboratorios y talleres) de acuerdo al Formato DLA-043. 15 . así como el mobiliario. en orden y cuidando su integridad y la de sus compañeros. Los usuarios deben reportar cualquier anomalía o maltrato por parte del catedrático y del personal de laboratorio.MANUAL XXII. Las situaciones no previstas en este lineamiento serán resueltos por la Dirección correspondiente y la Dirección de Laboratorios de acuerdo a la legislación universitaria aplicable. clínica y/o taller. Al concluir la licenciatura. Todo usuario deberá entrar y salir por los accesos autorizados. posteriormente el documento que se extienda se entregará a la Dirección de Laboratorios y Talleres donde se elabora y entrega la constancia de no adeudo. maestría o doctorado y realice su trámite de titulación el usuario solicitará su constancia de no adeudo de material. la cantidad de la donación será entre tres y cuatro salarios mínimos vigente en el estado de Hidalgo para ello es necesario entregar la nota y escribir en el formato el material donado. XXVI.
Quemadura Trabajar a la distancia Lavar con abundante agua y Fuego directo indicada por el catedrático remitir a servicio médico. y sin previa revisión. Utilizar el extintor adecuado. Seguridad y Ecología y la sustancia específica ingerida. 16 . Para el llenado. o el equipo que requiere señalada y dar aviso a las bien sistemas electricidad para su autoridades. Objetos punzantes manos y depositarlas en los contenedores exclusivos para tal fin Incendios por Conectar y desconectar Seguir la ruta de evacuación descargas eléctricas. consulte el “Manual de Higiene. tomándolo firmemente tanto de la instalación de la clavija como del equipo conectado.NORMAS DE SEGURIDAD ESPECÍFICAS DE LA PRÁCTICAS DE ESTE MANUAL 1. Higiene. y evitar derrames de alcohol Heridas con No recoger la cristalería Lavar con abundante agua y Material roto u rota directamente con las remitir a servicio médico. Seguridad y Ecología” T IPO DE RIESGO COMO EVITARLO COMO PROCEDER EN CASO DE UN ACCIDENTE… Envenenamiento por Ingestión Pipetear las sustancias Con base en el Manual de únicamente con propipeta. Envenenamiento por Utilizar Guantes cuando Lavar con abundante agua y Absorción por la piel sea indicado en la remitir a servicio médico.. práctica Quemadura por Utilizar Guantes cuando Lavar con abundante agua y Sustancias químicas sea indicado en la práctica remitir a servicio médico.MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA C.. eléctricos conectados funcionamiento.Cuadro de normas y referencias de seguridad de la práctica.
Sólido RPBI Bolsa de polietileno color Rojo. Recipientes rígidos de polipropileno color Rojo.Cuadro de Disposición de Residuos. Explosivos. Agujas Sólido RPBI Portaobjetos rotos Cubreobjetos rotos Pipetas serológicas rotas Sólido Sólido Sólido Recipientes rígidos de polipropileno color Rojo. así como con los requisitos e iniciativas que la Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo emita. 2a. Tóxicos e Inflamables) y el “Manual de Procedimientos del Departamento de Control del Medio Ambiente. Plan de Manejo de los Residuos C R E T I (Corrosivos.. Reactivos. Cubrebocas Sólido RPBI Bolsa de polietileno color Rojo. T IPO DE RESIDUOS CLASIFICACIÓN T IPO DE CONTENEDOR Sangre embebida en Algodón o en torundas. Abatelenguas Sólido RPBI Bolsa de polietileno color Rojo. para mitigar el impacto ambiental generado por las actividades universitarias y para direccionar a la institución hacia el desarrollo sostenible mediante el fomento del equilibrio entre el respeto al medio ambiente y el desarrollo universitario. 17 .MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 2. Guantes Sólido RPBI Bolsa de polietileno color Rojo. Puntas de micropipeta Sólido RPBI Bolsa de polietileno color Rojo.. “Manual de Procedimientos del Departamento de Control del Medio Ambiente. Plan de Manejo de los Residuos R P B I” (Residuos Peligrosos Biológicos e Infecciosos). Caja de cartón identificada con la leyenda material de cristal roto. Recipientes rígidos de polipropileno color Rojo.Política Ambiental Política ambiental Es compromiso de todos los integrantes de la comunidad universitaria cumplir la normatividad vigente aplicable en materia ambiental.
Caja de cartón identificada con la leyenda material de cristal roto. Caja de cartón embalada con plástico por y material absorbente dentro rotulado específicamente para éste residuos. rotulado específicamente para éste residuo. rotulado para Residuos Tóxicos no reactivos. rotulado para residuos Tóxicos no reactivos.MANUAL LICENCIATURA EN MÉDICO CIRUJANO DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE T IPO DE RESIDUOS CLASIFICACIÓN Pipetas Pasteur rotas Sólido Cristalería rota Sólido Solución Fijadora de Carnoy Líquido Inflamable (CR) Corrosivo e no halogenado Solución saturada de EDTA Líquido Tóxico (T) Tris borato EDTA Liquido Tóxico (T) Irritante ocular y cutáneo Bromuro de etídio Líquido Toxico agudo (Th) Geles teñidos con bromuro de etídio Sólido Tóxico agudo (Th) Etanol absoluto Líquido inflamable disolvente no halogenado (I) GENÉTICA T IPO DE CONTENEDOR Caja de cartón identificada con la leyenda material de cristal roto. rotulado para residuos disolventes inflamables no halogenados. Recipiente hermético con tapa rosca. Recipiente hermético con tapa rosca. Recipiente hermético con tapa rosca. 18 . Recipiente hermético con tapa rosca. rotulado específicamente para éste residuos. Recipiente hermético con tapa rosca.
Tipo B. además aprenda a enfocar y localizar metafases. Recordar el manejo del microscopio. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. Para microscopía y 20 ml Aceite de inmersión Hematología Por grupo Diferencial Automatizada 1 Block Papel Seda Block con 100 hojas Por grupo 19 . Manejo de Microscopio y NOMBRE DE LA PRÁCTICA: NO. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: 1 4 1.  Ser capaz de enfocar el microscopio. aprender a enfocar y a localizar las metafases adecuadas. 2. para adquirir las habilidades necesarias que le permitan realizar las prácticas posteriores. 3.  Aplicar los cuidados básicos del microscopio.. Identificación. Objetivos Específicos. DE PRÁCTICA: Localización de Metafases 1 NO. Introducción. 4. DE SESIONES: NO. Objetivo General. Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos a) Reactivos/Insumos. El microscopio amplia las imágenes para su observación por el uso de lentes de aumento lo que permite el análisis en este caso de preparaciones sanguíneas y de cultivo de linfocitos para que el alumno se familiarice con el uso y cuidados básicos del aparato. Reactivos/Insumos.  Identificar metafases de buena calidad para realizar un análisis cromosómico.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.CONTENIDO DE CADA PRÁCTICA EN PARTICULAR. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA D.
Marca Karl Zeiss. 3. Dibujar el campo observado con los objetivos de 10X y 100X para la laminilla de linfocitos con metafases. b)micrométrico y c)superior e inferior de la platina? 4. Cambiar al objetivo de 100 X. Menciona las diferencias entre los objetivos secos y húmedos. 4. CANTIDAD 1 pza. ¿Cuál es la función del aceite de inmersión? Fundamenta tu respuesta. 4 fcos. 1. Enfocar la laminilla de linfocitos y ubicar una metafase en 10X. 2. 3. Por equipo Por equipo Por grupo OBS. ¿Cuáles son las diferentes maneras por las que se puede regular el nivel de luz en el microscopio? 5. 1 pza. 8. 20 . b) Materiales/Utensilios. Cuestionario. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA CANTIDAD 1 pza. Desarrollo de la Actividad Práctica. 5. 2. adicionando una gota de aceite de inmersión. Dibujar el campo observado con los objetivos de 10X y 100X para el Frotis sanguíneo. c) Equipos/Instrumentos. Enfocar la laminilla de frotis sanguíneo con el objetivo de 10 X. 1. Menciona los cuidados básicos de uso y limpieza del microscopio y los objetivos. 6. Por equipo 6. 7. Cambiar el objetivo a 100 X. 40X y 100X OBS.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Tinción con Write o Laminilla de frotis sanguíneo con Giemsa Laminilla de linfocitos con Tinción con Giemsa cromosomas en metafase Recipientes plásticos Goteros para aceite de con tapa dispensadora inmersión alargada. Para limpieza de lentes de microscopio sin rayarlos. Bibliografía. 10cmX15cm. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Óptico binocular. ¿Para qué sirven y resalta las diferencias que hay entre los tornillos: a)macrométrico. con Microscopio objetivos de 10X.
R. (2009). Argentina: Médica Panamericana. H. McInnes.). MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Nussbaum. (2007). Formato y especificación del reporte de práctica. & Ellard.). Barcelona.. ed. Solari. Turnpenny. Deberá desarrollar en su Marco Teórico los Temas: Funcionamiento del microscopio. Barcelona. R. EMERY (13a ed. Barcelona. La elaboración del reporte de práctica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3. S. Buenos Aires. Elementos de Genética Médica. España: Elsevier.Masson. (2007). Genética Humana (3a. Genetica Medica. F. Thomson & Thomson (7a ed.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. P.). S. 21 ... D. España: Elsevier. 9. R. A. & Willard.
Identificación. 3. 5. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1.  Determinar la frecuencia de corpúsculos de Barr en hombres y mujeres. DE PRÁCTICA: Sexocromatina. como un punto compacto no refringente que se tiñe de negro o púrpura oscuro cuando la preparación de células de descamación se tiñe con orceína ácida el cual es un colorante específico para DNA. nos permite evaluar posibles algunas anomalías numéricas ligadas al cromosoma X. 22 . Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos. NOMBRE DE LA PRÁCTICA: NO.  Adquirir la capacidad de identificar el corpúsculo de Barr en una muestra de epitelio bucal. 2 NO. Objetivos Específicos. Realizar la prueba rápida de orceína ácida para la determinación de la frecuencia de la sexocromatina positiva. 4. Contabilizar el número de corpúsculos de Barr. y en su caso la existencia de alteraciones numéricas del cromosoma X.  Comprender en que consiste el fenómeno de Lyonización. a) Reactivos/Insumos. en muestras de células de descamación tanto en individuos. Objetivo General. Introducción. DE SESIONES: 1 4 2.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Reactivos/Insumos. para determinar alteraciones numéricas del cromosoma X en células epiteliales de la mucosa oral. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: NO. La condensación que sufre el cromosoma X por inactivación permite observarlo como un corpúsculo adosado a la membrana nuclear de las células de la mujer.
Por equipo Por equipo Por grupo Por grupo OBS. 4 pzas. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Balanza Digital Capacidad 1200gX0. para manos desechables 24cmX21cm Orceína+ ácido acético + ácido Acetorceína clorhídrico Tipo B. Cambiar al objetivo de 100X y cuantificar en 100 células de epitelio oral el porcentaje de ellas que presentan el corpúsculo de Barr el cual se observa 23 .PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Frascos goteros de vidrio Para la orceína ácida c) Equipos/Instrumentos. Por grupo Por equipo 6. 2 pzas. 6. 2. Envolver la preparación en papel secante. 2 pzas. 1. 40X y 100X OBS. Presionar la laminilla para retirar el exceso de colorante y expandir las células. CANTIDAD 1 pza. Adicionar 3 gotas de acetorceína y extender el colorante colocando el cubreobjetos evitando la formación de burbujas. 1 pza. Desarrollo de la Actividad Práctica.001g Óptico binocular. con objetivos de 10X. 7. 4. Marca Karl Microscopio Zeiss. Toallas de papel Interdobladas. Papel Seda Para limpieza de lentes de microscopio sin rayarlos. 3. 50 ml 20 ml 1 Block CANTIDAD 2 pzas. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Portaobjetos Laminillas de vidrio de 27X75mm Laminillas de vidrio de Cubreobjetos del no. Para microscopía y Aceite de inmersión Hematología Diferencial Automatizada Block con 100 hojas 10cmX15cm. Colocar la preparación en el microscopio y enfocar con el objetivo de 10 X. 5. Realizar un raspado de la cara interna del carrillo del sujeto de estudio (quien debe llenar el consentimiento informado del Anexo 5 de este manual previamente). b) Materiales/Utensilios. 4 fcos. Extender la muestra en un portaobjetos y dejar secar al aire. pulido y libre de astillas.1 borosilicato de 24mmX50-60mm Goteros para aceite de Recipientes plásticos con tapa inmersión dispensadora alargada. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES 15cmX2cmX2mm De madera fina. puntas Abatelenguas redondeadas. Por equipo Por equipo Por grupo Por grupo Por grupo OBS. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA CANTIDAD 2 pzas.
). 1.. 8. Deberá desarrollar en su Marco Teórico el Tema: Inactivación del cromosoma X y gonosomopatías..). Solari. 9. La elaboración del reporte de práctica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3. (2007). Thomson & Thomson (7a ed. España: Elsevier.). Nussbaum. H. EMERY (13a ed. Bibliografía. adosado a la membrana nuclear. R. R. Barcelona. Buenos Aires. Genetica Medica. 9. 2. Turnpenny. que no refringe. McInnes. Concentrar los datos del conteo de corpúsculos de Barr en la siguiente tabla: VARÓN MUJER Con corpúsculo Sin corpúsculo Total Porcentaje 7. Genética Humana (3a. Elementos de Genética Médica. A. (2007). S. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA como un objeto redondo y oscuro. S. & Ellard. ¿En qué consiste el proceso de Lyonizacion? ¿Por qué en los hombres la frecuencia de cuerpos de Barr es casi nulo? ¿Cuándo ocurre la inactivación del crosoma X? ¿Qué determina cuál cromosoma (materno o paterno) se va a inactivar? 8. Argentina: Médica Panamericana. 4. F. Barcelona. P. Cuestionario. (2009). Realizar la cuantificación en una muestra de hombre y en una de mujer. España: Elsevier.. R. Formato y especificación del reporte de práctica. Barcelona. D. 24 . & Willard.Masson.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 3. ed.
Manipulación de Material Estéril en un NOMBRE DE LA PRÁCTICA: Simulacro de Cultivo Celular. Los procesos de esterilización permiten la eliminación de gérmenes saprofitos y patógenos de distintas superficies. Los principales métodos de esterilización que se utilizarán en este curso son: a) Calor seco. La esterilización implica el uso de agentes químicos o físicos para eliminar todos los microrganismos vivos de un material. Objetivo General. ya que en términos generales lo que se desea es destruir los microorganismos. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: 1 4 2. 3. La elección de uno u otro método para llevar a cabo la esterilización dependerá de la naturaleza del material que se desea esterilizar. en este caso la práctica pretende adiestrar a los alumnos a que trabajen con material estéril utilizando un mechero o lámpara de alcohol (calor seco) que brinda un área estéril de 10 cm a la redonda dentro de la cual se debe manipular el material de cristalería y los medios de cultivo previamente esterilizados. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1. DE PRÁCTICA: 3 NO. Introducción. en caso de contaminación por bacterias este presentara turbidez. en el caso de los medios de cultivo celular es importante que el método de esterilización no degrade los nutrientes que contiene. c) Filtración. Cultivo de Linfocitos. DE SESIONES: NO. sin dañar el material de laboratorio que los contiene. en caso de que la manipulación sea correcta los cultivos obtenidos permanecerán transparentes sin cambio aparente en el medio. Identificación. Más aún. b) Calor húmedo. NO. Comprender la importancia del manejo de material estéril y adquirir la habilidad 25 .PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.
1 lt Alcohol al 70% para desinfectar Por Grupo 100 ml Medio Caldo nutritivo Preparado y esterilizado Por equipo Diluido en caldo nutritivo 10 ml Rojo de fenol Por equipo y esterilizado Solución inyectable 0.  Entender los fundamentos del cultivo celular. 4. 1 pza.1 ml Heparina Por Grupo 1000UI/ml (Sigma) 4 lts Agua Desionizada Comercial. Cinta testigo para esterilización Para uso en autoclave Por Grupo Lienzo de 50cm de largo. 21GX32mm Por Grupo 3 pzas. Cubrebocas Desechables persona Por 1 par Guantes de látex Desechables persona 3 pzas. de abrasividad media. Filtros milipore Desechables Por Grupo 26 .PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. así como aprender todos los pasos para realizar un cultivo de linfocitos. a) Reactivos/Insumos. peltre y aluminio. Reactivos/Insumos.  Adquirir las habilidades manuales en la manipulación del material estéril a través de un simulacro de cultivo celular. Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos. 1 lienzo Franela Por equipo preferentemente blanca. Indeleble. Marcador Aportado punta mediana. Fibra verde multiusos para materiales como Por equipo plástico. Marca Hycell Por Grupo 1pza. Objetivos Específicos. tipo lapicero.  Realizar un cultivo de linfocitos para la posterior elaboración de preparaciones histológicas. Jeringa para insulina Volumen muerto Por Grupo 5 pzas. 100 gr Algodón Plisado Por equipo Para trabajo de limpieza. 5. 1 pza. Por 1 pza. Jeringas 10 ml. cerámicas. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA necesaria para el manejo de cultivos celulares. 1 rollo Papel aluminio 15mX30cm Por Grupo Por equipo. por el alumno. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS.
previamente Pipetas serológicas esterilizadas. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1 bolsa CANTIDAD 3 pzas. A) Simulacro de Cultivo Celular 1. previamente de rosca esterilizadas. 2 pzas. 1 pza. previamente esterilizadas. 1 pza. Desinfectar con etanol al 70% y algún otro desinfectante químico y secar con el algodón. DESCRIPCIÓN Campana para cultivo celular Balanza digital Incubadora 1 pza. Colocarse cubre bocas y guantes. acero inoxidable. 2. 10 pzas. grupo 6. b) Materiales/Utensilios. 1 pza. 3. 500 gr. Frascos viales esterilizables con 15 ml. 1 pza. 27 . 2 pzas.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Por de uso manual. Desarrollo de la Actividad Práctica.001g grupo Clínica de acero Por inoxidable. Botellas para medio esterilizables con tapa fenólica 25 ml y sellos de teflón Tubos para centrífuga de punta 15 ml V Matraces erlenmeyer con tapón 50 ml. previamente Pipetas serológicas esterilizadas. De vapor. Detergente Roma. CANTIDAD 1 pza. 1 pza. Pipetas Pasteur De vidrio. Lavar la mesa con agua y detergente y limpiar con la franela. Gradilla Para tubos de ensaye de 15 ml Bulbos para pipeta Pasteur De goma Propipeta Mechero o lámpara de alcohol De cristal con tapa c) Equipos/Instrumentos. Autoclave Por Grupo OBS. 2 pzas. Por Class IIA/B3 grupo Por Capacidad 1200gX0. 5 ml. 10 pzas. previamente tapón de rosca esterilizadas. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES 10 ml. Por equipo Por equipo Por equipo Por equipo Por Grupo Por Grupo Por equipo Por equipo Por equipo Por equipo Por equipo ESPECIFICACIONES OBS. 1 pza. con una grupo capacidad mínima de 90L. 1 pza.
Volver a incubar otras 24 horas más. 6. 9. Incubar 70 horas a 37º C. 6. Por pareja tomar 8 ml de caldo nutritivo de matraz con la pipeta ajustada a la propipeta en condiciones de esterilidad. Obtener de 1. Obtención de la muestra y siembra de linfocitos 1. 4. A cada tubo se debe añadir Hipoclorito de Sodio 4-7% durante 30 minutos y verter al drenaje. sembrar 2 tubos. 8. 5. 2.06 ml de fitohemaglutinina para obtener una concentración final de la misma de 5 mg/ml en las botellas de cultivo estériles. revisar los frascos. Transcurrido este periodo adicionar 5 gotas de colchicina e incubar por 2 horas 28 . Adicionar a cada frasco 10 gotas del caldo con rojo de fenol. Adicionar 0. ligar el antebrazo y realizar la punción. al cual. Dentro de la campana de cultivo. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 4. Una vez obtenida la sangre mezclar muy bien rotando la jeringa. determinar la contaminación microbiológica en los frascos de cultivo por turbidez en el medio o cambio de coloración. por lo menos. 10. 3. 8. Encender el mechero. 7. Adicionar 8 gotas de sangre heparinizada y agitar.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 9. tomándolo en condiciones de esterilidad del tubo con la pipeta Pasteur. 12. Depositar el liquido en el frasco de cultivo teniendo cuidado de no chorrear las paredes cuidando de mantener las condiciones de esterilidad. agitando cada 24 hrs. tres torundas humedecidas con alcohol. Agitar hasta que el colorante se mezcle con el medio e incubar por 24h. se le Limpiará la zona de punción (antebrazo) con agua y jabón y desinfectarse con. No olvidar que toda la operación debe hacerse dentro de la zona estéril donde se está trabajando. El alumno que haya aceptado participar en este estudio deberá haber firmado previamente la Carta de Consentimiento informado (Anexo 6). Transcurridos los tiempos de incubación. 5. Este es el único anticoagulante que puede usarse. B) Cultivo de Linfocitos. Describir las características presentadas en los frascos a los diferentes tiempos Tubo 0 horas 24 horas 48 horas 1 2 11.5 a 2 ml de sangre venosa por medio de una jeringa previamente heparinizada. 7. Aflojar los tapones del matraz y los frascos de cultivo. Servir 8 ml de medio de cultivo en cada uno de los frascos para cultivo. manejando todo a menos de 5 cm del mechero.
(2006). T. 1. A. (2009). Elaboración de Preparaciones Cromosómicas NOMBRE DE LA PRÁCTICA: NO. S.). Cuestionario. 13. Elementos de Genética Médica. (2007). Genética Humana (3a ed. & Ellard.. & Read. (2012). DE PRÁCTICA: a Partir del Cultivo de Linfocitos 4 NO. ed. Texto Ilustrado e Interactivo de Biologia Molecular e Ingeniería Genética (2a ed. Argentina: Médica Panamericana. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA más a 37°C. México: Mc Graw Hill Interamericana Editores. Turnpenny. Deberá desarrollar en su Marco Teórico el Tema: Métodos de esterilización. Genética Humana (3a. D. Strachan. Buenos Aires. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: NO. 4.). Barcelona. (Este apartado tiene continuidad con la práctica No. 15. 2. Barcelona. Identificación. Á. La elaboración del reporte de práctica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3. Describir las características presentadas en los frascos a los diferentes tiempos. 1. Formato y especificación del reporte de práctica. DE SESIONES: 1 4 29 . P.. 3. España: Elsevier.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Herráez. 10. España: Elsevier.F. Bibliografía.). Solari. Realizar un cuadro comparativo donde se indique la diferencia de las técnicas utilizadas. P. A.). ¿Cuál es la diferencia entre el calor húmedo y el calor seco como métodos de esterilización? ¿Qué componentes tiene el caldo nutritivo? ¿Cuáles son los rangos de viraje del pH del rojo de fenol como indicador? 14. 2).. EMERY (13a ed. D.
Obtener preparaciones cromosómicas. Reactivos/Insumos. Las preparaciones cromosómicas se obtienen a partir de un cultivo de linfocitos el cual consiste en adicionar sangre completa a un medio de cultivo rico en nutrientes al cual se le adiciona un agente mitógeno para estimular la división celular de los linfocitos (fitohemaglutinina). Objetivos Específicos. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 2. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES 1 pza. Objetivo General. 1.  Adquirir la habilidad en el manejo del material del laboratorio. 30 . 3. con el fin de obtener el material de análisis que le conducirá a la elaboración de un cariotipo. 5. Introducción.075M grupo Por Solución Fijadora de Carnoy Metanol : ácido acético 3:1 grupo b) Materiales/Utensilios. Mediano para limpieza de Por Escobillón material equipo Por Agua destilada Comercial.5 lt 100 ml 400 ml OBS. a) Reactivos/Insumos. Marca Hycell. Por equipo. por el alumno. punta Marcador Aportado mediana. tipo lapicero. Indeleble. grupo Por Cloruro de potasio Solución al 0.   Realizar la cosecha de linfocitos a partir de un cultivo previo. permitiendo de esta manera observar a los cromosomas en ésta etapa después de realizar el proceso de cosecha.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Aprender a elaborar preparaciones cromosómicas a partir de la cosecha de los linfocitos de un cultivo previo. 4. el cual consiste en lisar a las células blancas y rojas mediante un tratamiento hipotónico con cloruro de potasio. Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos. a las 71 h de cultivo esta división celular se detiene mediante la adición de colchicina la cual es un alcaloide que impide la polimerización del huso acromático interrumpiendo la mitosis en metafase. 1pza. deshidratarlas y desnaturalizarlas con solución fijadora de Carnoy (metanol: ácido acético 3:1) con el fin de que se adhieran a los portaobjetos para su posterior tinción con Giemsa.
Pipetas Pasteur De vidrio. de vidrio 4 pzas. largas (23cm) 10 pzas. Potenciómetro 1 pza.000 rpm.9 mV. rotor y camisas Centrífuga para tubos de 15ml y 50 ml. 4 pza. Agitador vórtex 1 pza. rueda giratoria para aspirar y botón de liberación rápida. económica. Probeta 500 ml 1 pza.00 y ±399. Temperatura de -20 a +120 °C. Por grupo Por grupo Por grupo Por 31 . para pipetas de vidrio y plástico. Calibración automática Óptico binocular. Microscopio Vel. Pipetas serológicas 10 ml. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Refrigerada. Hoja de papel tamaño carta. Marca Karl OBS. Vel max. Propipeta manual automática 2 tubos De cultivo con células cultivadas y fijadas de la práctica anterior Tubos por mesa 2 pzas. Por equipo Por equipo Por equipo Por equipo Por grupo Por equipo Por grupo Por grupo Por equipo Por equipo Por equipo Por equipo Por equipo OBS. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Plástica. Vasos de precipitado 100 ml c) Equipos/Instrumentos. de plástico y desechables 2 pzas. puede ser reciclada 2 pzas.00-16. Probeta 100 ml 1 pza. Bulbo de plástico para pipeta pasteur 12 pzas. 3. Piceta 250 ó 500 ml 2 pzas.000 rpm Rango de pH -2. 4. ±2000 mV.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 1pza. Matraz aforado 100 ml 1 pza. Portaobjetos De vidrio 2 pzas. CANTIDAD 1 pza. Tubos para centrífuga de punta V 15 ml. Monomando.
3. Balanza analítica 1 pza. Adicionar 8 ml de solución de KCl 0.001g equipo Por grupo Por grupo 6. 40 y 100X Capacidad 120G X 0.5 ml de líquido. Retirar el sobrenadante de la tercera fijación y resuspender el botón 10. Resuspender el botón celular restante y adicionar por goteo 8 ml de solución fijadora de Carnoy. Resuspender con una pipeta Pasteur el botón celular. Realizar un dibujo y/o tomar una foto del botón celular obtenido en la cosecha de linfocitos y describirlo. Centrifugar y retirar el sobrenadante. 9. Balanza Digital Zeiss. 11. 4. 1. 14. Realizar un dibujo y/o tomar una foto del campo observado a 40X de una de las laminillas montadas localizando la metafase y describirla. que deberá ser colocado en un recipente independiente al cual se deberá añadir Hipoclorito de Sodio 4-7% durante 30 minutos y verter al drenaje.075M previamente calentada a 37º con agitación en vórtex. Dejar que se evapore el solvente por al menos 24 horas 12. Observar al microscopio una de las laminillas obtenidas. 7. Tomar unas gotas de las células de la práctica anterior y depositar en un portaobjetos limpio dejándolas caer desde al menos 1. 2. Capacidad 1200gX0. Depositar el cultivo en un tubo cónico y centrifugar 10 minutos a 2000 rpm. 2. Incubar 45 minutos a 37º C. Repetir la fijación en dos ocasiones más. ¿Cuál es la función de la solución fijadora de Carnoy? ¿Cuál es la función del KCl y porque permite lisar las células? ¿Por qué se seleccionó esa velocidad y tiempo de centrifugación en los lavados realizados? 32 . Cosecha de linfocitos 1. 8.1MG. Cuestionario.5m de altura. 15.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. enfocando a 40X con ayuda del profesor y la auxiliar de laboratorio. Desarrollo de la Actividad Práctica. 7. 6. Realizar una tabla en donde se represente el equilibrio de peso de los tubos para centrifugar. objetivos: 10. De calibración interna. 13. 3. Eliminar el sobrenadante con una pipeta serológica evitando tocar el botón celular y dejando 0. 5. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1 pza.
R. D. NOMBRE DE LA PRÁCTICA: NO. Las técnicas de tinción en la citogenética se utilizan como un apoyo para realizar la identificación de cromosomas dentro del cariotipo humano. Genética Humana (3a. A. 3. permitiendo separarlos por grupo y por par. (2012). Barcelona..Masson. DE PRÁCTICA: Tinciones Cromosómicas. 9. (2006). Estas técnicas de tinción tienen utilidad en la clínica. H.. España: Elsevier. 5 NO. Solari. asimismo nos permiten distinguir las distintas partes de dichos cromosomas.). F. Nussbaum. S.). R. Introducción..F. A. Buenos Aires. dentro de las que se incluye el diagnóstico de enfermedades que tienen origen en las cromosomopatías. utilizadas en el diagnóstico 33 . McInnes. T. ¿De qué otros tejidos se pueden obtener preparaciones cromosómicas? 8. & Willard. Identificación. Objetivo General. España: Elsevier. Thomson & Thomson (7a ed. Á. P. Genetica Medica. Bibliografía. Formato y especificación del reporte de práctica.. Genética Humana (3a ed. Strachan. México: Mc Graw Hill Interamericana Editores. Barcelona. R. (2007).).PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Argentina: Médica Panamericana. Texto Ilustrado e Interactivo de Biologia Molecular e Ingeniería Genética (2a ed. La elaboración del reporte de práctica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3.). Herráez. (2007). 1. & Read. Deberá desarrollar en su Marco Teórico el Tema: Cultivo celular. Realizar la tinción con Giemsa y para bandas G. Barcelona. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: NO. DE SESIONES: 1 4 2. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 4. ed.
4 fcos. 2 pzas. grupo Por Pinza con punta de goma De 15-20cm de largo grupo Por Piceta 250 ó 500 ml grupo c) Equipos/Instrumentos. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA citogenético para la identificación de cromosomas. 4. grupo Aceite de inmersión Tipo B para microscopía Por y hetatología diferencial grupo automatizada b) Materiales/Utensilios. Por grupo Por grupo Por grupo Por grupo Bicarbonato de sodio Por Q.P.  Realizar la tinción para bandas G para el análisis cromosómico. anhidro 250 gr Fosfato de potasio Q. Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos a) Reactivos/Insumos. Objetivos Específicos. Reactivos/Insumos. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. Gibco.P. grupo Solución salina Por Fisiológica comercial grupo Agua desionizada Por Comercial. equipo Goteros de aceite de Recipientes plásticos con tapa Por inmersión dispensadora alargada grupo Verticales para 10 portaobjetos. grupo EDTA disódica Por Q. Mca. 4 pzas. 2 pzas. 100 gr Tripsina porcina Potencia 1:250 10 gr 1 lt 5 lts 50 gr 20 ml CANTIDAD 12 pzas. 5.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.  Realiza la tinción con Giemsa. monobásico 100 ml Giemsa liquida Kariomax en Solución Gurr. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES 250 gr Fosfato de sodio dibásico Q. con tapa rosca. de vidrio.P.P. Por Laminillas Obtenidas en la sesión anterior. Por Vaso coplin 50 ml. Mca. grupo Por Vaso de Precipitado 500 ml. 34 . OBS. 20 pzas. Hicell.
Lavar al chorro del agua y dejar secar al aire. ¿Qué tipo estructuras celulares tiñe el colorante de Giemsa? 3. Por equipo Por grupo Por grupo 6. Las laminillas quedan listas para su observación. 11. 8. Teñir 15 minutos en Giemsa al 4% pH de 6. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA CANTIDAD DESCRIPCIÓN 1 pza. Lavar en buffer de fosfatos pH= 6.8. Teñir 15 minutos en Giemsa al 4% pH de 6. ¿Cuál es el fundamento de la técnica de bandeo G? 35 . Capacidad 1200gX0. Neutralizar la acción de la tripsina introduciendo la preparación en una solución saturada de EDTA sal disódica por 20 segundo con agitación. Balanza analítica 1 pza. De calibración interna. por lo cual hay que corroborar la tinción al final del proceso. Introducir la laminilla en una solución de tripsina (20 mg/50 ml de SSF) amortiguada a pH= 8 de 15 a 20 segundos agitando. 40X y 100X Capacidad 120G X 0. Lavar al chorro del agua y dejar secar al aire. 1.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 6. Desarrollo de la Actividad Práctica. 3. Balanza Digital ESPECIFICACIONES Óptico binocular. ¿Por qué se tiene que poner el colorante en una solución taponada? 4. a 37°C el tiempo varía entre personas.8. 4.1MG. 7. 2. ¿Qué otros colorantes se tienen para tinción del material genético? 5. Tinciones cromosómicas a) Técnica de Tinción directa con Giemsa 1. 10. Microscopio 1 pza.8 por 20 segundos y repetir el lavado. con objetivos de 10X. Introducir la preparación cromosómica en solución salina fisiológica (SSF) por dos minutos. 9. Marca Karl Zeiss. Realizar un esquema de los trenes de tinción utilizados y Describir que sucede en cada vaso coplin que los conforman. b) Técnica de bandeo G 5. los cromosomas presentan bandas claras y obscuras en donde cada par cromosómico tiene un patrón específico. Introducir la preparación cromosómica en solución salina fisiológica (SSF) por dos minutos. 7. Las laminillas quedan listas para su observación. Cuestionario. 2.001g OBS.
Argentina: Médica Panamericana. D. H. ed.. P. & Read. & Ellard. 9. La elaboración del reporte de practica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3. Barcelona. Genética Humana (3a ed. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 6. A. (2012). D. Bibliografía. ¿Qué parte del cromosoma tiñe específicamente el bandeo C? 8. Solari. Thomson & Thomson (7a ed. Formato y especificación del reporte de práctica.). 36 . S.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. S.. Barcelona. P. EMERY (13a ed. R. Herráez. (2009).F.. México: Mc Graw Hill Interamericana Editores. F. (2007). R. & Willard. McInnes.. Barcelona.). A.). España: Elsevier. Texto Ilustrado e Interactivo de Biologia Molecular e Ingeniería Genética (2a ed. T. Á. Elementos de Genética Médica.Masson. España: Elsevier. Genética Humana (3a. (2007).). Buenos Aires. (2006).). Barcelona.. Deberá desarrollar en su Marco Teórico los Temas: Funcionamiento del microscopio y Técnicas de tinción cromosómica. R. Strachan. Nussbaum. España: Elsevier. Turnpenny. Genetica Medica.
El cariotipo es el ordenamiento de los 46 cromosomas de un individuo y viene definido
por la morfología de los cromosomas en la metafase mitótica, de donde se distinguen
dos cromátides hermanas y se tiene el mayor grado de condensación.
En la especie humana la dotación cromosómica es de 2n = 46: 22 pares de autosomas
La clasificación se realiza acomodando los cromosomas por tamaño decreciente,
posición centromérica (constricción primaria) y constricciones secundarias. Los grupos
van del A al G, clasificables a partir de una tinción regular, en donde los cromosomas
se agrupan únicamente por la morfología. Si se tiene una técnica de tinción con bandas
también se puede hacer la clasificación por par de acuerdo al patrón en código de
barras específico para cada uno.
Los gonosomas o cromosomas sexuales se clasifican aparte preferentemente con una
tinción con bandas, debiendo indicar el sexo del individuo XX para la mujer y XY para
el varón, precediendo al número total de cromosomas observables. Si se carece de
esta tinción, el cromosoma X por su forma submetacéntrica y tamaño se clasifica
dentro del grupo C y el Y por su tamaño pequeño y su forma acrocéntrica en el grupo
De esta forma el cariotipo humano queda constituido de la siguiente manera:
Medianos, descendiendo de
tamaño siendo el mayor el
par 12 y el más pequeño del
grupo el par 6.
El cromosoma X tiene un
tamaño similar al par 7
Medianos, son los más
grandes, en cuanto a su
posición centromérica
Pares 1 y 3 metacéntricos,
Par 2 submetacéntrico
Submetacéntricos.
6, 7, 8, 9, 10, 11, Submetacéntricos
21, 22 y Y
Acrocéntricos con
secundarias notorias
(satélites)
Par 16 metacéntrico
Pares 17 y 18
cuanto a su forma.
Las cromosomopatías pueden incluir alteraciones en el número (aneuploidias) y la
estructura cromosómica (aneusomias) ambas diagnosticables mediante el estudio
clínico del cariotipo.
Algunas aberraciones cromosómicas pueden ocasionar ciertas patologías, como son:
Superhombre o chico YY
Polisomía gonosómica por cromosoma(s) X extra(s) en
varones XXY, XXXY, XXXXY
Trisomía gonosómica por
cromosoma Y extra en
Monosomía del cromosoma X
Si bien las aneusomias pueden ocurrir en cualquiera de los 46 cromosomas, estas se
dividen en intracromosómicas en donde el cambio solo se lleva a cabo en un
cromosoma como deleciones, inserciones, inversiones, isocromosomas y anillos, y las
intercromosómicas que incluyen el intercambio de material genético entre dos
cromosomas de distinto par, las cuales pueden ser, simples, recíprocas, de fusión
centromérica conocidas también como Robertsonianas.
El estudio del cariotipo tiene también su aplicación en el diagnóstico prenatal, en
parejas con problemas de fertilidad y para el diagnóstico de algunas neoplasias.
3. Objetivo General. .
Aprender a clasificar a los cromosomas por grupo, distinguiéndolos por su forma y
tamaño, para obtener análisis de cariotipo.
4. Objetivos Específicos. .
 Ser capaz de realizar un análisis de cariotipo por clasificación en grupos.
 Determinar las diferencias morfológicas entre los cromosomas.
 Determinar el sexo cromosómico del individuo con base en la elaboración del
5. Reactivos/Insumos, Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos.
a) Reactivos/Insumos.
Block con 100 hojas
limpieza de lentes de
microscopio sin rayarlos.
Tipo B para microscopía
y hetatología diferencial
b) Materiales/Utensilios.
Laminilla de linfocitos
con cromosomas en
Tinción con Giemsa
Recipientes plásticos con
Goteros de Aceite de
Cambiar al objetivo de 100 X y dibujar el campo. Por equipo y proporcionado por los alumnos. Los pares 1 y 3 son metacéntricos (el 1 mayor que el 3) y el 2 submetacéntrico. cuando está presente. Por equipo y proporcionado por los alumnos. Grupos G y D: 1. Buscar los 6 cromosomas del grupo A. alfileres Punta redonda hoja de unicel 25X25 cms 46 pzas. 3. 40X y 100X Por equipo y proporcionado por los alumnos.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. sobre blanco Para carta. Siguiendo estas instrucciones. Presentar el dibujo de la metafase localizada. Indicar el sexo al que corresponde el cariotipo. CANTIDAD 1 pza. proceder en cada una de las sesiones de la siguiente manera: Grupos A y B: 1. Marca Microscopio Karl Zeiss. Por equipo 6. Cariotipo impreso Bandeado. con la identificación de los cromosomas de los grupos A y B. Enfocar la laminilla de linfocitos y ubicar una metafase en 10X. Desarrollo de la Actividad Práctica. Buscar los 4 cromosomas del grupo B que son los submetacéntricos de mayor tamaño. al cromosoma Y que será el más largo de los anteriores. Son los mayores. 2. 2. 1 pza. Contar los cromosomas y apuntar el número. Buscar y colocar los cromosomas más pequeños y acrocéntricos que corresponden al grupo G y. 1 pza. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1 pza. con objetivos de 10X. c) Equipos/Instrumentos. En total serán 5 si es XY o 4 si es XX. 2. OBS. 40 . Instrucciones Generales Metodología A: 1. 5. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Óptico binocular. 4. con o sin aberración cromosómica. Por equipo y proporcionado por los alumnos. Contar los cromosomas y apuntar el número.
en general. algo mayores que los F. Buscar los 4 cromosomas metacéntricos más pequeños. Para diferenciarlo hay que recurrir al estudio de las bandas lo mismo que. ya que el cromosoma X es idéntico a los que constituyen el par 12. Recortar individualmente cada uno de los cromosomas evitando dejar el número que lo identifica. Instrucciones Generales Metodología B: 1. dejando un pequeño marco de papel. Contar los cromosomas y apuntar el número. Colocar los todos cromosomas recortados (cuidando no perderlos) dentro de un sobre blanco sin marcas y se entregará al profesor. E y F: 1. Buscar los 14 cromosomas del grupo C. buscar a qué grupo pertenece el sobrante. Buscar otros 6 cromosomas acrocéntricos pero más grandes que los anteriores y que constituyen el grupo D. 3. En caso de que el número de cromosomas sea inferior a 46 señalar el 41 . 5. con la identificación de los cromosomas de los grupos C. NOTA: En el caso de que haya más de 46 cromosomas. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 3. son submetacéntricos y la 16 metacéntricos. para obtener el cariotipo. 2.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. con la identificación de los cromosomas de los grupos D y G. Sobre el unicel y con ayuda de los alfileres para sostener se procederá a organizar los cromosomas por número y por grupo. ejemplo: 3. E y F. Grupos C. Presentar el dibujo de la metafase localizada. Indicar el sexo al que corresponde el cariotipo. 4. cada equipo debe imprimir un cariotipo bandeado. 4. Presentar el dibujo de la metafase localizada. Buscar los cromosomas del grupo E que son 6. 4. Colocarlos en el grupo F. Dos de las parejas. Encontraremos más de 14 cromosomas. incluyendo al Y si está presente. 5. colocarlo allí y señalar el síndrome a que da lugar esta anomalía. 2. 6. Se sorteará un cariotipo a cada equipo. Indicar el sexo al que corresponde el cariotipo. para numerar las parejas dentro de cada grupo. Previo a la práctica. 5. la 17 y 18.
Genética Humana (3a ed.Masson. vuelve a observar el cariograma detenidamente y realizar el análisis nuevamente.. D. R.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.).. Texto Ilustrado e Interactivo de Biologia Molecular e Ingeniería Genética (2a ed. Barcelona.). Strachan.. Genética Humana (3a.  Patologías relacionadas con cromosomas del grupo E. S.. 9.). (2006). Si el diagnóstico no es correcto. España: Elsevier. F. Herráez. Barcelona. Si el número de cromosomas es de 46. 42 .. 8. P. translocaciones. en general. (2007). ed. Elementos de Genética Médica. (2007).. A. unos cromosomas de otros? 2. hay que hacer el diagnóstico del cariotipo obtenido. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA cromosoma que falta así como el síndrome a que da lugar esta anomalía. Argentina: Médica Panamericana.¿Qué mecanismos cromosómicos producen anomalías del cariotipo humano? 4. España: Elsevier. México: Mc Graw Hill Interamericana Editores.¿Qué características permiten diferenciar. & Willard.). McInnes. Cuestionario.. EMERY (13a ed. F y C.¿Se manifiestan siempre las alteraciones cromosómicas en el fenotipo del individuo que las transmite? Explica tu respuesta. Deberá desarrollar en su Marco Teórico los Temas:  El cariotipo humano  Patologías relacionadas con cromosomas del grupo A y B. D. P. (2012). & Read..F. Genetica Medica. Buenos Aires.). Barcelona. Thomson & Thomson (7a ed. Nussbaum.  Patologías relacionadas con cromosomas acrocéntricos. 1.. Á.¿Qué células del organismo llevan el cariotipo diploide completo? 3.). T. R. España: Elsevier. estudiar cada cromosoma para comprobar si hay algún tipo de alteración estructural (deleciones. H. Turnpenny. Barcelona. Bibliografía. Por último. La elaboración del reporte de práctica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3. S. & Ellard. R.. A. Solari. 7.. Formato y especificación del reporte de práctica. (2009).
en caso de que el observante detecte algún error en el acomodo de los cromosomas. Finalmente el analizador permite imprimir el diagnóstico del paciente en el cual se debe incluir. el sexo. permiten examinar de manera más detallada la topografía celular facilitando el diagnóstico de diversas patologías. cabe destacar que el aparato no es infalible y que el criterio del citogenetista es el que finalmente decide el acomodo final de los cromosomas. DE SESIONES: 1a2 4 2. incrementar el contraste entre las bandas y separar aquellos cromosomas que hayan quedado encimados a partir de la imagen original. determinar alteraciones a nivel cromosómico. el analizador determina en escala de grises las bandas claras y obscuras que nos indican las zonas eucromáticas y heterocromáticas de los cromosomas. Identificación.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. por lo cual es deseable que se tenga experiencia previa en el análisis cromosómico. . el nombre. En el armado automático del cariograma permite girar los cromosomas y moverlos a su posición correcta. la fórmula cromosómica y las observaciones relacionadas con el diagnóstico. si bien no sustituyen al experto en el área. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: NO. DE PRÁCTICA: con Uso de TICs 7 NO. la edad. leyéndolas como si fueran un código de barras y asignándoles una posición con base en este patrón en el cariograma de manera automática. una cámara de video para capturar las imágenes a analizar y un software especial que permite manipular la imagen para eliminar los artefactos que pudieran interferir con la lectura. realizar análisis citológicos o bien como en este caso. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1. El analizador de imágenes consiste de un microscopio de luz. Análisis de Bandeo Cromosómico NOMBRE DE LA PRÁCTICA: NO. Introducción. Los analizadores de imágenes son un parte aguas en el campo de la microscopía. Siguiendo el patrón del bandeo G. 43 .
0 1 Impresora HP 1 Video-proyector Compatible con el analizador de imágenes Por grupo Por grupo Por grupo 44 . Objetivos Específicos. 4. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. Laminilla de linfocitos con Por cromosomas en metafase Con tinción de bandas G grupo masculino Laminilla de linfocitos con Por cromosomas en metafase Con tinción de bandas G grupo femenino c) Equipos/Instrumentos. Cartucho de tinta negra Para impresora HP 96 1 pza. Por grupo Por grupo Por grupo Block con 100 hojas 10cmX15cm. Realizar el análisis de cariotipo de manera automatizada. Para limpieza de Por Papel seda lentes de microscopio sin grupo rayarlos. Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos. 5. a) Reactivos/Insumos. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Paquete con 100 hojas blancas 1paquete Hojas Blancas tamaño carta 1pza. Objetivo General. Cartucho de tinta color Para impresora HP 97 1 Block 20 ml CANTIDAD 1 1 CANTIDAD OBS. Aceite de inmersión Tipo B para microscopía Por y hematología diferencial grupo automatizada b) Materiales/Utensilios. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 3.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.  Conocer el uso de un analizador de imágenes  Comprender los fundamentos básicos usados por el software Ikaros para la clasificación cromosómica por grupo y par. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. 1 Marca Karl Zeiss acoplado a Microscopio con computadora y con el programa analizador de imágenes IKAROS 2. Reactivos/Insumos.
el aparato automáticamente separa los objetos que detecta como posibles cromosomas. Desarrollo de la Actividad Práctica. NOTA: la práctica es de carácter demostrativo. 13. Corregir los errores del aparato colocando de manera manual los cromosomas en el lugar correcto. Corregir con la herramienta Solapar. 1. se separan los cromosomas que se encuentren juntos. Con la herramienta Girar acomodar todos los cromosomas con el centrómero en la posición correcta. 10. Encender el microscopio y el analizador de imágenes. 6. 15. 9.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 4. 8. Imprimir la foto de la metafase y el cariograma obtenido. Capturar dando click derecho con el ratón de la computadora. Cuestionario. Una vez que se detecten 46 cromosomas. ¿Qué comandos del programa te permiten realizar las acciones que el sistema no pudo realizar solo? 3. el aparato será manipulado principalmente por el profesor responsable del grupo de acuerdo al protocolo del equipo. 3. Se eliminan los artefactos de la imagen con la herramienta Eliminar y seleccionando el objeto con apoyo del mouse. ¿Qué ventajas tiene el uso del analizador de imágenes para cariotipo? 2. Delimitar el área a analizar con la herramienta Mask Met dando clicks izquierdos y terminar con click derecho para eliminar las posibles interferencias. Dando click izquierdo y terminando con derecho. 14. 11. en la vista previa. 5. mejorar la calidad de la imagen. edad. ¿Para otras pruebas de laboratorio aplicadas a su formación sirven los 45 . 7. ¿Cuál de las acciones que realiza el programa IKAROS. 12. Enfocar una metafase en 10X y pasarla al objetivo de inmersión 100X. para el análisis de cariotipo les sorprendió más? 4. 2. Capturar los datos indicando el nombre. sexo y fórmula cromosómica. seleccionar el recuadro del cariograma. 1. Con apoyo de la herramienta Umbral de Objeto. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 6. los cromosomas que se encuentren encimados. Seleccionar con el Mouse la opción Separar. 7. Presionar la letra A para el acomodo automático de los cromosomas.
). Thomson & Thomson (7a ed. S. Argentina: Médica Panamericana. F. 9.. Turnpenny.). Nussbaum. EMERY (13a ed. R. & Ellard. Bibliografía. S.F. & Read. Formato y especificación del reporte de práctica. La elaboración del reporte de práctica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3.). P. Barcelona. D.. R. (2006). (2009). P. Genetica Medica. ed. Genética Humana (3a. A. (2007). Buenos Aires. R.. 46 . H.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Strachan.).. España: Elsevier. Solari. Elementos de Genética Médica. Barcelona. McInnes. & Willard. Barcelona. T. México: Mc Graw Hill Interamericana Editores. (2007).. Genética Humana (3a ed. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA analizadores de imágenes? 8. Deberá desarrollar en su Marco Teórico el Tema: Analizadores de imágenes.Masson. D. España: Elsevier. A.
es decir. DE PRÁCTICA: traducción y mutación 8 NO. en los segmentos donde están localizados los genes transcripcionalmente activos. que serán madurados para convertirse en mensajeros a través del splicing out. Los mecanismos de replicación y de transcripción son susceptibles a errores. El flujo de la información genética se da de forma general en las células en sentido DNA → RNA → péptido y se conoce como “Dogma Central de la Biología Molecular”. La complementariedad de la cadena doble se mantiene mediante uniones tipo puente de hidrógeno. Identificación. El proceso de síntesis de una nueva copia del DNA se realiza usando ambas hélices de la cadena como molde. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: NO. La replicación de concreta es de forma semiconservativa. La molécula de DNA es la encargada de transmitir la información de generación en generación. es decir. mientras que la otra será obtenida de la cadena original. DE SESIONES: 1a2 4 2.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Se realiza por una enzima RNA polimerasa usando de molde a sólo una de las hebras del DNA. Replicación. u otros RNAs funcionales como tales. Este paso se conoce como replicación y se lleva a cabo antes de cada división celular. Introducción. NOMBRE DE LA PRÁCTICA: NO. 47 . está dada por la enzima DNA polimerasa. para la doble hélice se formará una cadena complementaria nueva. Esta información debe ser transferida a un RNA durante el proceso de transcripción. para que pueda ser decodificada. La información contenida en el DNA está codificada en la secuencia lineal de sus bases nitrogenadas. sirviendo a su vez como molde. La síntesis se da en el sentido 3’5’. Los productos pueden ser transcritos primarios. transcripción. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1. que va uniendo desoxinucleótidos a través de enlaces fósfodiéster.
el RNA mensajero puede ser reutilizado mientras que los ribosomas y los RNA de transferencia se pueden acoplar a un nuevo sistema de síntesis peptídica. Una vez concluida la traducción. Los cambios son permanentes y transmisibles a través de mecanismos de herencia cromosómica. ordenada de acuerdo a los codones codificados por cada triplete de bases nitrogenadas. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA cambios a nivel molecular en el orden lineal de las bases nitrogenadas. el ribosoma.sustitución. Las alteraciones que se producen en el DNA generalmente son corregidas a través de mecanismos de reparación. Las dos últimas producen un cambio en el marco de lectura modificando así el proceso de traducción.inserción. • Incorporación incorrecta de bases durante la replicación o reparación. los aminoácidos serán unidos a través de enlaces peptídicos para producir una cadena de secuencia específica. y que determinan el orden de aminoácidos que van a formar al péptido resultante.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. pérdida de una base nitrogenada. basado en el código genético y RNAs de transferencia. organelos citoplasmáticos formados por RNA y proteínas. cuando hay complementariedad de estas dos secuencias. Los tipos de mutación que incluyen a un solo nucleótido son básicamente tres: . se pueden presentar mutaciones. La síntesis de péptidos y proteínas ocurre en los ribosomas. es encargado de ensamblar al péptido según la información decodificada en el mensaje. heredables. sin embargo.deleción. que son cambios permanentes en la información genética y. adición de una base nitrogenada. que es el encargado de llevar la información codificada a través de secuencias de tripletes de nucleótidos llamados codones. En el proceso de traducción intervienen: un RNA mensajero. 48 . . formado por dos componentes estructurales de RNA ribosomal y proteínas. . que son las moléculas que transportan aminoácidos libres en el citoplasma hacia los ribosomas y que contienen una secuencia anticodón que debe ser complementaria al codón. incorporándose una base nitrogenada errónea. Hay dos vías que conducen a la mutación: • Daño en la secuencia del DNA. A partir de la secuencia lineal de un RNA mensajero se obtiene la información que es decodificada por los ribosomas. al modificar la secuencia con base en tripletes. transición (cambio purina/purina ó pirimidina/pirimidina) ó transversión (purina/pirimidina ó viceversa). por lo tanto. para que se constituya una secuencia lineal de aminoácidos.
Blancas o Proporcionado por el cuadriculadas 10 hojas alumno. Tamaño carta o bond Hojas de Papel Las hojas pueden ser según indicación recicladas Lápiz De madera o Por alumno. Realizar los diferentes tipos de mutación genética. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. los codones de inicio. alumno. la síntesis de un péptido y distinga los diferentes tipos de mutación genética. Secuencia de un gen Obtenida del 1 juego Por equipo GeneBank. la obtención de un RNA mensajero. Solo para procedimiento 1 Hoja de Alfileres Por equipo.     4. Hoja de unicel Por equipo.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 3. Objetivos Específicos. Proporcionado por el Con aproximadamente 1 pza. Comprender cómo se lleva a cabo el procesamiento de la información genética a partir de una cadena de DNA. 5. término y la secuencia del polipéptido de la secuencia génica real. Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos. Realizar la simulación del proceso de replicación sobre una secuencia génica real. Proporcionado por el 1 pza. . utilizando el código genético. a) Reactivos/Insumos. 1 pza. No aplica b) Materiales/Utensilios. Reactivos/Insumos. portaminas Proporcionado por el 49 . desde la obtención de una nueva copia durante su replicación. de 50X100 cm alumno. Realizar la simulación del proceso de transcripción para obtener la secuencia de un RNAm Determinar en la secuencia del RNAm. e impresa. por sustitución. 250-500 pzas Solo para procedimiento 1 Por equipo. deleción y adición e identificar sus consecuencias en el producto polipeptídico. Objetivo General.
Sobre el mismo unicel realizar la transcripción utilizando las bases de RNA. acomodando linealmente las letras correspondientes. 4 pzas. PROCEDIMIENTO (1) 1. Por equipo. asegurándose que no haya tripletes de paro a lo largo de la cadena. DNA RNA A (verde) a (verde) T (rojo) u (rojo) C (azúl) c (azúl) G (blanco) g (blanco) c) Equipos/Instrumentos. Completar el proceso según el tamaño indicado del transcrito 6. No aplica 6. Proporcionado por el alumno. Solo para procedimiento 1 Proporcionado por el alumno. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Adenina Timina Citosina Guanina CANTIDAD OBS. Las secuencias a trabajar son de DNA 3. Por equipo Solo para procedimiento 2 Proporcionado por el alumno. a manera de tripletes de bases. Realizar la búsqueda del codón de inicio considerando que se encuentra en la hebra complementaria al DNA (cadena molde) 4. 2. Fijar las letras con alfileres y separar los tripletes entre sí por un pequeño espacio 5. y deberán estar recortadas. Por equipo. Solo para procedimiento 2 Proporcionado por el alumno. alumno. En una hoja de unicel y a partir del triplete de inicio. Blanca lapiceros o lápices de colores Diferentes entre sí Tablas del código genético Impresas Bases nitrogenadas representadas en papel de colores. Por equipo. Se proporcionará a cada equipo la secuencia de un gen en particular. Transcribir a papel la secuencia de RNA obtenida. integrar la secuencia complementaria de DNA (replicación). Desarrollo de la Actividad Práctica. La secuencia obtenida representa el 50 . MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Goma 1 pza. El tamaño de cada base se sugiere de 1 cm2. 2 pzas. acomodando esta secuencia de forma paralela a la cadena de DNA 7. 200 aprox.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. como se indica en la tabla.
.transversión (renglón 4) color rojo. . 51 . 8. Nota: en caso de encontrar una secuencia sin sentido en medio de la hebra de RNA.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 10. realizar la búsqueda de un nuevo triplete de inicio y repetir el procedimiento. Resaltar el cambio (mutación) que realizaste en la secuencia en los renglones indicados con color en la secuencia del DNA. el RNAm resultante y los cambios en la secuencia del polipéptido.transición (renglón 3) color amarillo. Ejemplo: Sentido: S Antisentido: AS RNAm: Rm Codón de inicio Péptido: P ORIGIN S 1 ACGGGCTGGG TCTATGGTCG CTCCGCGGGC CGCTCCGCCG GCTGGTGCTT TTTTATCAGG AS TGCCCGACCC AGATACCAGC GAGGCGCCCG GCGAGGAGGA CGACCACGAA AAAATAGTCC Rm ACGGGCUGGG UCUAUGGUCG CUCCGCGGGC CGCUCCGCCG GCUGGUGCUU UUUUAUCAGG S 61 GCAAGCTGTG TTCCATGGCA GGGAACTTTT GGCAGAGCTC CCACTATTTG CAATGGATTT AS CGTTCGACAC AAGGTACCGT CCCTTGAAAA CCGTCTCGAG GGTGATAAAC GTTACCTAAA Rm GCAAGCUGUGUUCCAUG/GCA/GGG/AAC/UUU/UGG/CAG/AGC/UCC/CAC/UAU/UUG/CAA/UGG/AUU/U P Met/ala/gly/asn/phe/trp/gln/ser/ser/his/tyr/leu/gln/trp/ile Mutación (Inserción) S 1 ACGGGCTGGG TCTATGGTCG CTCCGCGGGC CGCTCCGCCG GCTGGTGCTT TTTTATCAGG AS Rm S TGCCCGACCC AGATACCAGC GAGGCGCCCG GCGAGGAGGA CGACCACGAA AAAATAGTCC ACGGGCUGGG UCUAUGGUCG CUCCGCGGGC CGCUCCGCCG GCUGGUGCUU UUUUAUCAGG 61 GCAAGCTGTG TTCCATGGCA GGGAAACTTTT GGCAGAGCTC CCACTATTTG CAATGGATTT AS CGTTCGACAC AAGGTACCGT CCCTTTGAAAA CCGTCTCGAG GGTGATAAAC GTTACCTAAA Rm GCAAGCUGUGUUCCAUG/GCA/GGG/AAA/CUU/UUG/GCA/GAG/CUC/CCA/CUA/UUU/GCA/AUG/GAU/UU P Met/ala/gly/lys/pro/leu/ala/glu/leu/pro/leu/phe/ala/met/asp 9. . De acuerdo a la clasificación de las mutaciones. elaborar una mutación de cada tipo señalado en la secuencia del péptido: . . MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA RNA mensajero del gen. Presentar la secuencia del péptido obtenido y realizar la comparación con el tamaño propuesto.deleción (renglón 5) color morado. .silenciosa (renglón 2) color verde.sin sentido (renglón 1) color azul.inserción(renglón 6) color naranja.
Transcribir la secuencia a RNA mensajero. Continuar con el paso No. 4. 7. y ordenando la secuencia del péptido de diez en diez. 5. 10. junto con la cadena complementaria de DNA (replicación). Inferir las consecuencias resultantes de cada una de las mutaciones presentadas. 13. acomodando el RNA en tripletes a partir de ese punto. Nota: en caso de encontrar una secuencia sin sentido en medio de la hebra de RNA. Completar el proceso según el tamaño indicado del transcrito. La secuencia obtenida representa el RNA mensajero del gen. 8 del Procedimiento 1 7. de forma paralela y a manera de tripletes. Hacer en papel la cadena complementaria de DNA (replicación). Qué tipo de mutágenos producen: 52 . ¿Qué cadena se lee para el proceso de transcripción? 4. 12. Cuestionario. Las secuencias a trabajar son de DNA. ¿En qué sentido se llevan a cabo la lectura y la síntesis de los ácidos nucleicos? 3. 2. realizar la búsqueda de un nuevo triplete de inicio y repetir el procedimiento. Presentar en papel la secuencia de RNA obtenida. y la secuencia de RNA correspondiente (transcripción). En el transcrito buscar el codón de inicio. Se proporcionará a cada equipo la secuencia de un gen en particular. 3. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 11. Realizar la traducción del RNA mensajero utilizando el código genético. ¿Qué tipos de RNA intervienen en el proceso de traducción? 5.Presentar el unicel con la secuencia molde de DNA del gen trabajado (replicación). Presentar en papel la secuencia del gen. 14. 6.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Presentar en papel la secuencia transcrita del gen (RNA). PROCEDIMIENTO (2) 1. Presentar numerando la secuencia cada 10 bases. de acuerdo al gen trabajado por el equipo. 9. en tripletes de bases. 1. ¿Cuales son los codones de inicio y término? 6. 8. ¿Qué función llevan a cabo las siguientes enzimas? a) Topoisomerasas b) Girasas c) Primasa d) DNA polimerasa e) Ligasa 2.
National Center of Biotechnology Information. Texto Ilustrado e Interactivo de Biologia Molecular e Ingeniería Genética (2a ed. & Ellard..). (2009). F.). MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA a) Rupturas del material genético b) Mutaciones de cambio de marco de lectura c) Formación de dímeros de timina 8. Barcelona. La elaboración del reporte de práctica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3. Gob..nlm. R..). McInnes.Masson. Bibliografía.  Código genético. (s.. & Willard. E. Krebs. Á. Burlingtong. P. (2007). Information. R. H. S. N. I.ncbi. Herráez. España: Elsevier.).Jones & Bartlett Publishers. Formato y especificación del reporte de práctica. Turnpenny. C. MA.. España: Elsevier. R. Obtenido de www. N. (2014). Medicine.  Mutación genética y su clasificación. B. S. L.nih. E. Lewin's Genes XI (11 ed.gov 9. U. & Golds.. Barcelona. Lewin. Elementos de Genética Médica. USA: Ed. S. España: Elsevier. N..f.). Genetica Medica. Barcelona. Nussbaum. 53 .. Deberá desarrollar en su Marco Teórico el Tema:  Replicación del material genético  Transcripción y Maduración del RNA.  Síntesis de proteínas.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Barcelona. & Healt. D. EMERY (13a ed. (2012). J. Thomson & Thomson (7a ed.
ocurre una generación cada dos meses y los descendientes de cada pareja pueden contarse por decenas. De hecho. los cruzamientos experimentales constituyen uno de los mejores métodos para el conocimiento de los caracteres hereditarios. b) las gestaciones son largas. la generación dura 20 días y se cuentan los descendientes por centenares. análisis de 54 . DE SESIONES: 1a2 4 2. DE PRÁCTICA: Estudio Genealógico en Genética Humana 9 NO. Así. Identificación. NOMBRE DE LA PRÁCTICA: NO. 2. de los que por otra parte no se obtendría gran información. Hay una gran diversidad genética de individuos. Por ejemplo en los ratones. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: NO. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Por lo tanto. En Drosophila. la mezcla de razas. otros organismos que se utilizan frecuentemente en la investigación genética presentan características mucho más ventajosas. El hombre presenta ciertas características especiales que lo califican como un material difícil para el estudio genético. la genética humana tiene que recurrir para su desarrollo a métodos indirectos tales como el uso de pedigríes o árboles genealógicos. en estos organismos y otros de características similares. y también la estructura genética de las poblaciones humanas varía continuamente debido a las migraciones. Por motivos éticos y morales no se practican cruzamientos experimentales. c) entre una generación y la siguiente transcurre mucho tiempo d) el tamaño de las familias es pequeño En cambio. Introducción. etc. estas características son: 1. ya que: a) de cada parto suele nacer un solo individuo.
 Elaborar y analizar un pedigree a partir de datos reales   Determinar a través de la observación de la genealogía en el pedigree el modo de herencia para cada una de las características fenotípicas estudiadas en la práctica. Lápiz. hasta llegar a varios millares. se ha ido acumulando el conocimiento de nuevos caracteres determinados genéticamente y de los genes que los controlan. Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. mediante el uso de información recabada por los alumnos. etc. las técnicas citogenéticas y moleculares han permitido identificar nuevos genes y determinar su localización cromosómica. No aplica b) Materiales/Utensilios. y el modo de herencia involucrado en la transmisión genética de algunos caracteres sencillos y de fácil observación. 3. Proporcionado 55 . lapiceros y/o lápices De colores. Hojas de colecta de datos de Debidamente llenadas Las fenotipos con los datos de los Individual necesarias familiares de al menos 3 generaciones. Objetivos Específicos. y determinar el genotipo de los individuos que lo componen. Aprender a confeccionar y esquematizar árboles genealógicos. a) Reactivos/Insumos. 4. 5. Posteriormente. Hojas Blancas Tamaño carta. Por alumno. desde principios de siglo y mediante el uso de técnicas genealógicas. Asignar un genotipo a cada uno de los integrantes del árbol genealógico de manera congruente con el modo de herencia determinado para cada característica en congruencia con su fenotipo. Por equipo 2 pzas. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA poblaciones. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. Proporcionadas por el alumno. Reactivos/Insumos. A pesar de todas estas dificultades. 8 pzas.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Objetivo General.
Desarrollo de la Actividad Práctica. Goma Blanca 1 pza. c) Equipos/Instrumentos. CANTIDAD 1 DESCRIPCIÓN Calculadora ESPECIFICACIONES Simple OBS. 56 . en primer lugar. Por equipo y proporcionado por el alumno 6. Lóbulo separado de la mejilla o pegado lateralmente a la mejilla. Si no se puede contactar con varios miembros de su familia. b) Línea frontal del pelo. por el alumno. Se enumeran a continuación dichos caracteres para la recopilación de datos: Descripción de los caracteres: a) Disposición del lóbulo de la oreja. de donde el alumno deducirá su genotipo en cada caso. La práctica en sí consiste. AVISO DE RECOPILACIÓN DE DATOS Es necesario previamente que cada alumno recoja datos de una serie de caracteres en al menos tres generaciones de los miembros de su familia. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1 pza. Los datos se tomarán en una hoja como la que se indica al final de esta práctica. en el reconocimiento de las variaciones fenotípicas para cada uno de los caracteres monogénicos que se describen a continuación.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Puede ser continua o tener un saliente frontal en el centro denominado "pico de viuda". Ser o no capaces de enrollar la lengua en forma de U fuera de la boca. c) Capacidad de enrollar la lengua. En las personas calvas no se pueden contabilizar. pueden recoger los de alguna otra familia allegada. Por equipo Proporcionado por el alumno. Por equipo Proporcionado por el alumno. Sacapuntas De plástico o metal. tratando de verificar la presencia de los caracteres en el mayor número de parientes posible. Se usará una hoja de datos para cada persona.
y los ojos serán totalmente azules. Capacidad o incapacidad de doblar hacia atrás la última falange del pulgar en un ángulo de casi 90º respecto a la anterior ("dedo del autoestopista"). El meñique puede estar recto. Tomar los datos de tantos parientes (padres. Se colocan ambas manos relajadas sobre una mesa y se observa si los dedos están paralelos o si los meñiques se doblan hacia dentro. etc. Anotar los datos de cada persona en una hoja de datos diferente. marrones. e) Hiperextensibilidad del dedo pulgar. y la expresividad del rasgo es variable. g) Dirección del Remolino. Tomar los datos del fenotipo propio como caso índice. pero en esto no nos fijaremos. La presencia de pigmento en las capas superiores del iris enmascara en mayor o menor grado el color azul del fondo. Presencia o ausencia de hoyuelos en las mejillas. 5. Otros genes determinan el color exacto y su intensidad para ojos verdes. proceder de la siguiente manera: 1. Esta capacidad puede manifestarse sólo en una de las manos. Anotar todos los fenotipos en el lugar correspondiente de la hoja de datos. Confeccionar el árbol genealógico indicando el fenotipo de cada persona para. Una vez realizada la observación. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA d) Pigmentación del iris. Lo que se compara es la ausencia total o no de pigmentación en la superficie del ojo. sean éstos verdes o marrones. 2. f) Dedo meñique doblado. se observa la lámina interna azul del iris. al 57 . tíos) como sea posible. h) Hoyuelos faciales.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. En ausencia de ésta. 4. Ojos azules frente a ojos más oscuros. Es responsabilidad del alumno tener los datos recopilados cuando llegue a práctica. o bien con la última falange doblada hacia el dedo anular. El remolino formado en el cuero cabelludo puede tener dirección dextrógira (sentido de las manecillas del reloj) o levógiro (al contrario de las manecillas del reloj).. abuelos. 3. hermanos.
La primera generación (I) corresponde a la primera persona de la que se posean datos. En base al tipo de herencia.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. dos de los caracteres analizados. Con los datos recopilados seleccionar al integrante del equipo cuya familia tenga mayor prevalencia del caracter seleccionado y proceder a dibujar la genealogía de acuerdo a la nomenclatura presentada en la parte del procedimiento. Las parejas se unen por una línea horizontal. 6. Indicar cuando sea posible los genotipos de todos los miembros para cada carácter. nombrar los alelos adjudicados a cada carácter en la hoja de datos. deben 58 .4 y 5) o gemelos fraternos (II. en mayúsculas/minúsculas para dominante/recesivo. ELABORACIÓN DE ÁRBOLES GENEALÓGICOS Como ejemplo de árbol genealógico se seguirá un esquema como el que se indica a continuación: En la genealogía se indica el orden de las generaciones con número romano. y por rombos los individuos de los que no se conocen los datos (II. a.9). y la tercera (III). por ejemplo la de los abuelos del alumno. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA menos. las mujeres con círculos. a la generación del alumno.4 y 5). usando una letra distinta para cada carácter. excepto en el caso de mellizos (III. Determinar si es posible el tipo de herencia de los caracteres analizados. 7. 8. Los varones se representan con cuadrados. la segunda (II) correspondería a la de los padres y tíos. Los descendientes se disponen bajo una línea horizontal desde la que parte una línea vertical por individuo. que se indican por líneas convergentes (ver figura). Los individuos que muestran el fenotipo en estudio se indican rellenando el símbolo.
Ejemplo: Característica dominante: Cabello lacio Característica recesiva: Cabello rizado Modo de herencia: Autosómico recesivo Calculo de probabilidad del caso índice: Cruza: Rr x Rr Gametos R r R RR Rr r Rr rr 75% cabello lacio Frecuencia Genotípica 1 RR: 2 Rr : 1 rr Frecuencia fenotípica 25 % cabello rizado. 59 . es decir si es dominante o recesivo. b. analizarla para determinar el modo de herencia involucrado en la herencia de cada rasgo fenotípico. Una vez dibujada la genealogía. indicar el genotipo de los miembros de la familia y calcular las frecuencias genotípicas y fenotípicas para determinar la probabilidad para que se presente la característica en el caso índice.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA entregar un árbol genealógico por cada característica.
MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Hoja de colecta de Datos No.___ Parentesco: Lóbulo de la oreja Dedo autoestopista separado ausente unido presente Pico de viuda Dirección del remolino presente dextrógiro ausente levogiro Lengua en U Dedo meñique capaz curvado incapaz recto Pigmentación del iris Hoyuelos faciales azul presente otro color ausente Hoja de colecta de Datos No. ___ Parentesco: Lóbulo de la oreja Dedo autoestopista separado ausente unido presente Pico de viuda Dirección del remolino presente dextrógiro ausente levogiro Lengua en U Dedo meñique capaz curvado incapaz recto Pigmentación del iris Hoyuelos faciales azul presente Otro color ausente Hoja de colecta de Datos No.___ Parentesco: Lóbulo de la oreja Dedo autoestopista separado ausente unido presente Pico de viuda Dirección del remolino presente dextrógiro ausente levogiro Lengua en U Dedo meñique capaz curvado incapaz recto Pigmentación del iris Hoyuelos faciales azul presente otro color ausente Hoja de colecta de Datos No. ___ Parentesco: Lóbulo de la oreja Dedo autoestopista separado ausente unido presente Pico de viuda Dirección del remolino presente dextrógiro ausente levogiro Lengua en U Dedo meñique capaz curvado incapaz recto Pigmentación del iris Hoyuelos faciales azul presente Otro color ausente Hoja de colecta de Datos No.___ Parentesco: Lóbulo de la oreja Dedo autoestopista separado ausente unido presente Pico de viuda Dirección del remolino presente dextrógiro ausente levogiro Lengua en U Dedo meñique capaz curvado incapaz recto Pigmentación del iris Hoyuelos faciales azul presente otro color ausente 60 . ___ Parentesco: Lóbulo de la oreja Dedo autoestopista separado ausente unido presente Pico de viuda Dirección del remolino presente dextrógiro ausente levogiro Lengua en U Dedo meñique capaz curvado incapaz recto Pigmentación del iris Hoyuelos faciales azul presente Otro color ausente Hoja de colecta de Datos No.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.
Argentina: Médica Panamericana. McInnes. Strachan. R. Menciona 4 características y 4 patologías de la herencia autosómico dominante 3. R.. España: Elsevier. D. P.. Turnpenny. P. Genetica Medica. (2006). Barcelona.). A. (2007). Elementos de Genética Médica.). Solari. Genética Humana (3a. México: Mc Graw Hill Interamericana Editores. Buenos Aires. Barcelona. & Willard. (2009). D.F. Barcelona. Bibliografía. & Read. F. Menciona 4 características y 4 patologías de la herencia autosómico recesiva 8. 9. Cuestionario.). ed. Thomson & Thomson (7a ed. H. R. España: Elsevier. ¿Cómo se estandarizó la nomenclatura para el desarrollo de las genealogías? 2. 61 . Formato y especificación del reporte de práctica.). Deberá desarrollar en su Marco Teórico el Tema: Herencia monogénica. S.. 1. Genética Humana (3a ed.. T. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 7.Masson. (2007). & Ellard.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. EMERY (13a ed. A. Nussbaum. La elaboración del reporte de práctica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3. S..
MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1. En 1890. la inteligencia. DE PRÁCTICA: Estudio de la Herencia Poligénica 10 NO. los rasgos se cuantifican midiéndose. el color de la piel. Estos tienen unas características comunes: 1. pues requiere de realizar estudios estadísticos en poblaciones normales para determinar el (los) Umbrales. el peso. al igual que los demás caracteres de herencia 62 . NOMBRE DE LA PRÁCTICA: NO. la presión arterial. 3.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. La herencia poligénica no se puede analizar empleando pedigríes ni estudiando los cromosomas a través del cariotipo (de no ser que se estudie una aberración cromosómica en concreto). Un ejemplo de su utilidad es el estudio de la huella del recién nacido para el diagnóstico precoz de anormalidades cromosómicas. Introducción. los rasgos son controlados por 2 ó más genes resultando en un efecto aditivo. La herencia de las huellas dactilares. Demostrar y estudiar la herencia de los rasgos poligénicos no es fácil. dentro de los cuales se encontrarán los individuos afectados. los fenotipos de los rasgos poligénicos y multifactoriales varían de expresión por efecto de los factores ambientales. 4. Identificación. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: NO. 2. Existen numerosos ejemplos de este tipo de herencia por ejemplo la estatura. Francis Galton sugirió que las huellas dactilares serían una buena manera de identificación para humanos. DE SESIONES: 1 4 2. Un rasgo poligénico es el fenotipo resultante de la acción de dos o más genes. los rasgos son controlados por efecto de alelos múltiples. etc.
es decir. también se ve influida por factores ambientales aunque. A continuación se examinará cómo el TRC apoya el modelo de herencia poligénica. Objetivos Específicos. En los pulgares sin arcos. XXXXX 17 3. Holt en 1968 determinó que para varones la media es de 145 y para mujeres de 126. cálculo del IMC. 4. XYY 103 46. Estudio de las huellas dactilares: recuento de las líneas El objetivo de este estudio será el estudio del total de las líneas de la huella (en inglés: total ridge count o TRC).Trisomía 21: dedos con lazos cubitales generalmente.X): alto recuento TRC sin aumento de espirales. llegando a su mayor desarrollo hacia la semana 12-13. XXYY 88 46. XX 126 48. Relación entre la media de TRC y el número de cromosomas X e Y 45. Posteriormente regresarán hasta adquirir la morfología final que ya no se verá alterada durante el restante desarrollo prenatal y postnatal.Síndrome de Turner (45. Objetivo General. X 165 47. XY 145 48. Características de algunos síndromes comunes: . XXY 114 49. Comprender las características de la herencia poligénica.Trisomía 18: líneas poco desarrolladas. recuentos TRC bajos. Las líneas se han de contar desde el trirradio al centro de la huella (ver la línea blanca de las imágenes de las huellas de arriba). peso. la morfología y recuento de las líneas dactilares. lazos radiales en dedos 4 y 5. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA poligénica. Las huellas dactilares se pueden detectar a partir de la 6ª semana de desarrollo fetal. con lazos radiales. . las huellas que presentan el patrón del arco tienen un recuento de cero (no hay trirradio). 63 . gran frecuencia de arcos (media de 7-8 con al menos un arco). En los espirales el recuento ha de efectuarse desde cada trirradio al centro de la huella. XYYY 83 47. basándose en observaciones de estatura. el fenotipo no cambiará tras el nacimiento. . debido a la precocidad y rapidez del desarrollo de éstas. Una vez contadas todas las líneas de todas las huella por persona se sumarán para obtener el TRC.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.
5. 2. 4 Frasco de tinta para sellos Color negro o morado Por grupo e) Materiales/Utensilios. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. Formato de recogida de las Aportado por 1 1 copia por alumno huellas dactilares. Desarrollo de la Actividad Práctica. 1 Calculadora Científica Aportado por el alumno REACTIVOS/INSUMOS CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. Reactivos/Insumos. Tomar las huellas dactilares de todos los alumnos del grupo en el formato anexo. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA  Determinar a través de la aplicación de pruebas estadísticas y elaboración de histogramas.  Diferenciar entre las herencias poligénica y monogénica.. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. Clasificar el tipo de huella de acuerdo al patrón de las líneas. los parámetros de distribución normal de las características poligénicas estudiadas.Recuento de las líneas de las huellas dactilares: 1. Los patrones de los dibujos de las huellas se pueden clasificar en tres grupos principalmente: 64 . d) Reactivos/Insumos. el alumno Cojines de tinta para huellas 12 Fingerprint Por grupo dactilares Por equipo. A. Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos. 1 Báscula clínica con tallímetro Con tallímetro integrado Por grupo 1 Estereomicroscopio Marca Karl Zeiss Por equipo 6.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.
Estaturas. 5. El patrón espiral presenta dos trirradios.4% para el lazo radial. Llevar a cabo el recuento total de ambas manos.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. B.. 5.5% para el lazo cubital. a) Grafique sus resultados por rangos de estatura. Separa los datos por sexo. y 26. 6. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA En las huellas donde aparecen lazos. dependiendo de hacia dónde estén inclinados. encontrándose en un punto intermedio (trirradio). Realizar el conteo total de cada mano. 2.0% para el arco. Hacer el análisis de frecuencias para los TRC del grupo. peso y del IMC. Éstos pueden ser radiales o cubitales. 4. con apoyo del estereomicroscopio. Recopilar los datos en la tabla para todo el grupo.30m y terminando en 2 m. Realizar el análisis de frecuencias para los datos de estatura. 3. 5. En el centro del punto de encuentro se forma un triángulo. 4. el IMC. Calcular el IMC 3. y en peso desde 40 kg hasta 110 kg. comenzando con 1. y con las frecuencias obtenidas. 65 . Las frecuencias de los patrones en la población son de 5.1% para el espiral. 63. las líneas aparecen en tres direcciones. peso e Índice de Masa Corporal (IMC) : 1. 7. realizar el análisis de frecuencias y graficar los resultados. Medir la estatura y el peso de todos los miembros del grupo. Realizar el recuento parcial de las líneas de cada huella. Graficar en histogramas y por separado para ambos datos obtenidos.
el peso y el IMC sigue una distribución normal.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 66 . MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA b) Determine si la estatura.
PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Datos individuales pulgar derecho (I) índice derecho (II) corazón derecho (III) anular derecho (VI) meñique derecho(V) pulgar izquierdo (I) índice izquierdo (II) corazón izdo (III) anular izdo (IV) meñique izdo (V) Mano derecha pulgar índice corazón anular meñique patrón obtenido: recuento parcial: recuento total mano derecha= Mano izquierda pulgar patrón obtenido: recuento parcial: índice corazón anular meñique recuento total mano izquierda= Recuento total de dos manos: TRC= ___________ Tabla para recopilación de datos del grupo de prácticas Estudiante sexo Número de dedos con: 67 .
16. 31. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA V/M TRC Lazos radiales cubitales espirales arcos 1. 20. 23. 18. 3. 30. 12. 15. 22. 26. 7. 68 . 4.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 10. 28. 6. 11. 8. 5. 25. 2. 14. 2. 13. 17. 27. 24. 21. % del total: media del TRC: media TRC mujeres: media TRC varones: Datos de Estatura y Peso Alumno Sexo (v/m) Estatura (m) Peso (kg) IMC= Peso/estatura 2 1. 29. 9. 19.
15. 12. 21. 25. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 3. 30. 16. 6. 20. Promedio de estatura del grupo Desviación estándar Promedio estatura de varones Desviación estándar Promedio estatura de mujeres Desviación estándar 1. 22. 7. 23.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 8. 5. 32. ¿Cuál es la media TRC para el grupo? ¿Existen diferencias en las TRC medias para los varones y mujeres? ¿Cuál puede ser la causa de esta diferencia? Fundamenten su respuesta. 28. 19. 9. 31. 24. 3. 4. Comparen las TRC de cada uno de los miembros del equipo con la media total y 69 . Cuestionario. 10. 13. 27. 4. 29. 14. 2. 11. 33. 7. 17. 26. 18.
. Formato y especificación del reporte de práctica. A. Strachan. (2009). Comparen la media total con la de cada sexo para los datos de estatura. T.F.edu. Ed. Deberá desarrollar en su Marco Teórico el Tema: Herencia poligénica o multifactorial. La elaboración del reporte de practica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3. (2006). 5. De haber recogido datos de una población mucho mayor ¿creen que los gráficos presentarían otro aspecto? Fundamenten su respuesta. Thomson & Thomson (7a ed. A..PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 7. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA con la de su sexo.. Resuman y razonen los resultados obtenidos en los histogramas para las dos características graficadas (huellas. España: Elsevier. 9. estatura. S. F.. México: Mc Graw Hill Interamericana Editores.). Hidalgo. 70 . Genética Humana (3a ed. C. España: Elsevier. D. peso e IMC. P. (2007). D. Barcelona. A. & Figueroa Gutiérrez. McInnes. Solari. (U. Buenos Aires. 6.mx/scige/boletin/icsa/n4/p1. 8. Bibliografía.. (2007). R. Turnpenny. Genetica Medica. Barcelona. peso e IMC).).. EMERY (13a ed. Argentina: Médica Panamericana. P. A. E.). López Santillán. Barcelona.uaeh. Genética Humana (3a. R. R.) Obtenido de http://www. H. (1 de Junio de 2014). ed. I.html Nussbaum.Masson. & Willard. S. & Read.). & Ellard. Elementos de Genética Médica. Estudio de la Herencia Poligénica. H.
Weinberg definieron los principios básicos de la herencia poligénica y demostraron que en poblaciones en equilibrio las frecuencias (p y q) de los diferentes alelos de un gen. DE PRÁCTICA: Genética de Poblaciones 11 NO. Hardy y W. Calcular las frecuencias alélicas. que la distribución de los genotipos de la generación será: p2 + q2 + 2pq = 1 3. 71 . MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1. G. genotípicas y de los fenotipos estudiados en la práctica Estudio Genealógico en Genética Humana. Introducción. Objetivo General. permanecen constantes generación tras generación. deriva genética. siempre y cuando no se produzcan fenómenos de mutación. migración o deriva meiótica. las frecuencias para los distintos fenotipos serán: Espermatozoide p (A) q (a) Óvulo p (A) p2 (AA) pq (Aa) q (a) qp (aA) q2 (aa) Es decir. DE SESIONES: 1 4 2.H. selección. y q la frecuencia del a. En el caso de dos alelos (A y a) si p es igual a la frecuencia del alelo A. Identificación. NOMBRE DE LA PRÁCTICA: NO. entonces: p+q=1 O lo que es lo mismo en porcentajes: el % A + el % a = 100% En poblaciones donde la fecundación ocurre de forma aleatoria. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: NO.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.
4. c) Equipos/Instrumentos. 3. Tablas de datos Mesa ____ Equipos: Alumno 1 Alumno 2 72 .  Calcular las frecuencias alélicas. Calcular las frecuencias genotípicas p 2 (AA). 9 Individual en genética humana.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Hacer el conteo de la presencia o ausencia de cada característica de manera individual. Desarrollo de la Actividad Práctica.  Determinar si la población analizada cumple con los postulados de la Ley de Hardy-Weimberg. Por equipo y 1 Calculadora Científica proporcionado por el alumno 6. en las tablas anexas. a) Reactivos/Insumos. No aplica b) Materiales/Utensilios. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 4. Datos y resultados obtenidos en 8 hojas la práctica Estudio genealógico De la práctica No. Reactivos/Insumos. Objetivos Específicos. q2 (aa) y 2pq (Aa) empleando la Ley de Hardy-Weinberg. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. 10 Hojas blancas. 2. 1. Tamaño carta. 5. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos. Reunir los datos de anteriores de los equipos de cada mesa de laboratorio. blancas o Por equipo cuadriculadas. fenotípicas y genotípicas en una población a partir de datos reales. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. Calcular las frecuencias de los alelos A (p) y a (q) empleando la Ley de HardyWeinberg.
MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Alumno 3 Alumno 4 Alumno 5 Alumno 6 Alumno 7 Alumno 8 Alumno 9 Alumno 10 Alumno 11 Alumno 12 Fenotipo: Lóbulo de la oreja Número de familiares del Alumno Alumno 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Total 11 12 11 12 Separado Unido Total Fenotipo: Pico de viuda Alumno 1 2 3 Número de familiares del Alumno 4 5 6 7 8 9 10 Total presente ausente Total Fenotipo: Lengua en U Alumno 1 2 3 Número de familiares del Alumno 4 5 6 7 8 9 10 Total 11 12 capaz incapaz Total Fenotipo: Pigmentación del iris Número de familiares del Alumno Alumno 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Total 11 12 azul Otro color Total 73 .PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.
H. R. Nussbaum. McInnes. Thomson & Thomson (7a ed. Bibliografía. Expliquen la aplicación práctica del cálculo de frecuencias siguiendo la Ley de Hardy-Weinberg 8. Barcelona. Cuestionario. R. 74 . F. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Fenotipo: Dedo autoestopista Número de familiares del Alumno Alumno 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Total 11 12 presente ausente Total Fenotipo: Dirección del Remolino Número de familiares del Alumno Alumno 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Total 11 12 Dextrógiro levógiro Total Fenotipo: Dedo meñique Alumno 1 2 3 Número de familiares del Alumno 4 5 6 7 8 9 10 Total 11 12 curvado recto Total Fenotipo: Hoyuelos faciales Número de familiares del Alumno Alumno 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Total 11 12 Presentes ausentes Total 7. España: Elsevier. Buenos Aires. A.. Genetica Medica. Argentina: Médica Panamericana. Expliquen cuál es el significado de la frecuencia alélica y la frecuencia genotípica en una enfermedad monogénica.. (2007). Solari. 1. 2. R.). & Willard. (2007). Barcelona. S.Masson. Genética Humana (3a.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. ed.).
Elementos de Genética Médica.. 9.. EMERY (13a ed.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. D. México: Mc Graw Hill Interamericana Editores. S. A.). P. Genética Humana (3a ed.F. Barcelona. (2009). Deberá desarrollar en su Marco Teórico el Tema: Genética de poblaciones. La elaboración del reporte de practica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3.). Formato y especificación del reporte de práctica. (2006). D. & Ellard. Turnpenny. & Read. P. T. España: Elsevier.. 75 . MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Strachan.
en este caso de la línea blanca sanguínea. Obtener DNA a partir de una muestra sanguínea.  Adquirir la habilidad en el uso del material de laboratorio en técnicas de biología molecular. 5.  Comprender la función de cada uno de los reactivos utilizados en la extracción de DNA y las bases que permiten llevar a cabo este proceso. Introducción. DE PRÁCTICA: Extracción de DNA 12 NO. a) Reactivos/Insumos. La extracción de DNA se puede realizar a partir de cualquier tipo de célula nucleada. y extraer mediante solventes orgánicos aquellos componentes celulares como proteínas y lípidos de manera que el material genético obtenido este puro y listo para utilizarse en los procedimientos estándar de biología molecular. Objetivo General. DE SESIONES: 1 4 2. el procedimiento consiste en lisar a las células eliminando tanto membrana celular como la nuclear mediante la acción de detergentes como el tritón y el SDS. 76 . DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: NO. Objetivos Específicos. Identificación.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 3. Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1. NOMBRE DE LA PRÁCTICA: NO. Reactivos/Insumos. 4.
1 pza. 1. No estériles 10 ml azules amarillas Rollo al 5% (TRIS 10mM –Tritón 1% Sacarosa 300 mM) 5 mM. 2 ml 5 ml 2 ml 2 ml 2 ml 2 lts 5 ml 5 ml 1ml 1 lt CANTIDAD 3 pzas. añadir 600 l de solución TTS. 1 pza. 1 jgo. Desarrollo de la Actividad Práctica. 3. 1 pza. 20 pzas. 1 pza. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Ultramicrocentrífuga Refrigerada Vortex Congelador (-20°C) Incubadora (37ºC) Balanza Analítica Por equipo Por equipo Por equipo Por grupo Por equipo Por equipo Por equipo Por grupo OBS. decantar sin sacudir el tubo. 4. 2.5ml Vaso de precipitado 50 o 100 ml Tubos de ensayo Cristal. Por equipo Por equipo Por equipo Por equipo Por equipo Por equipo OBS.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA CANTIDAD 4 pares 2 pzas. capacidad 15 ml Juego de 2 Micropipetas 10-100l y 200-1000l Caja portapuntas esterilizables Para puntas amarillas Caja portapuntas esterilizables Para puntas azules c) Equipos/Instrumentos.5 Agua inyectable Comercial b) Materiales/Utensilios. Saturada Comercial Hycell Temperado a -20ºC Por equipo Por equipo Por equipo Por equipo Por grupo Por equipo Por equipo Solución de Cloruro de sodio Solución de SDS Solución de Cloruro de sodio Agua desionizada Etanol absoluto Solución de Cloroformo (23:1) Alcohol isoamílico Solución Buffer Tris-EDTA pH=7. 1 pza. Mezclar y centrifugar 2 minutos a 16. 5. al 10 %. DESCRIPCIÓN Pares de guantes Jeringas Puntas para micropipeta Puntas para micropipeta Paquete de parafilm Solución de EDTA Solución TTS ESPECIFICACIONES OBS. 1 pza. Resuspender el botón con 570 l de la solución de cloruro de sodio.000 rpm. 77 . DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Tubos Eppendorf 1. 1 pza. 20 pzas. Por grupo Por grupo Por grupo Por grupo Por grupo 6. 1 pza. 2 pzas. Repetir el lavado con TTS hasta obtener un botón de células blancas o que se vea rosado (máximo de 4 lavados). Obtener sangre venosa y depositarla en un tubo con 100 μl EDTA al 5%. Depositar 1ml de la muestra en un tubo Eppendorf. CANTIDAD 1 pza.
Masson. 8. R. Á. 12. P. S. Adicionar 200 l de cloruro de sodio saturado y agitar en el vórtex por 3 min. España: Elsevier.). MA.). USA: Ed. F. NOMBRE DE LA PRÁCTICA: Electroforesis de ácidos nucléicos 78 . A. & Willard. EMERY (13a ed. Turnpenny. sellar el tubo con parafilm y almacenar 15. En que solventes es soluble e insoluble el DNA 2. Lewin's Genes XI (11 ed. Cuestionario.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 11. S. Identificación. ¿Cuáles son las funciones de las siguientes soluciones utilizadas en la práctica? a) SDS b) Cloroformo : isoamílico c)Etanol 8. Barcelona. R. ed. D. Formato y especificación del reporte de práctica.. Dibujar o tomar una fotografía del DNA obtenido. Centrifugar el tubo por 15 min a 16. Argentina: Médica Panamericana.Jones & Bartlett Publishers. Buenos Aires.). (2012). S.. Deberá desarrollar en su Marco Teórico el Tema: Técnicas de extracción de ácidos nucléicos. 9. J. 9. (2007). (2007).). E. Agregar 2ml de etanol absoluto -20º y precipitar por toda la noche. La elaboración del reporte de practica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3. 1. Recuperar el DNA con la punta de una micropipeta y colocar en un Eppendorff. Elementos de Genética Médica. Herráez. R. Texto Ilustrado e Interactivo de Biologia Molecular e Ingeniería Genética (2a ed. Bibliografía. Barcelona. Solari. Genetica Medica. Thomson & Thomson (7a ed. Krebs.. 14.000 rpm.. Recuperar la fase acuosa (superior) y transferir a un tubo de ensaye limpio. agregar un volumen igual de la solución cloroformo:isoamílico. 7. 7. Genética Humana (3a.000 rpm. & Golds. Nussbaum. Barcelona.. (2009). Burlingtong. B. & Ellard. 1. H.). mezclar y centrifugar 1 min a 16. Lewin. Transferir el sobrenadante a un tubo Eppendorf limpio. 10. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 6. (2014). McInnes. Adicionar 30 l de la solución de SDS mezclar por 5 minutos. E. España: Elsevier. España: Elsevier. Resuspender con 200l de Tris-EDTA. 13. Barcelona. Lavar con 1 ml etanol al 70% y dejar secar a 37º hasta deshidratar el DNA.
5. CANTIDAD DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES OBS. cuando se aplica una corriente eléctrica a la muestra a separar que esta embebida en un material poroso como agarosa o poliacrilamida en una cámara que contiene una solución conductora. Objetivos Específicos. Reactivos/Insumos. carga eléctrica. punto isoeléctrico. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: 1 4 2. Conocer la técnica más utilizada en biología molecular.25%/Xilencianol 0.  Realizar la digestión enzimática del DNA. La electroforesis es la técnica más utilizada en biología molecular para la separación de moléculas orgánicas en función de su peso molecular.  Aplicar la técnica en la separación del DNA en fragmentos. Objetivo General. 3.25%/ Grado Biología Molecular Ficoll ipac 400 15%/ en agua) 5 lts Agua desionizada Comercial Hycell Por grupo 79 . logrado una separación diferencial. Introducción. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA NO. Materiales/Utensilios y Equipos/Instrumentos. a) Reactivos/Insumos.5 lts Solución Buffer TAE (TrisGrado Biología Molecular Por grupo Acetato-EDTA) 1 ml Buffer de carga (Bromuro de etidio 2l/ Azul de bromofenol Por grupo 0. 1m Parafilm De Rollo Por grupo 40 par Guantes No estériles Por grupo 20 pzas Puntas para micropipeta azules Por equipo 20 pzas Puntas para micropipeta amarillas Por equipo 20 pzas Puntas para micropipeta blancas Por equipo 5 gr Agarosa Grado Biología Molecular Por grupo 2. DE SESIONES: NO. 4. DE PRÁCTICA: 13 NO.  Comprender los fundamentos de la electroforesis.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.
5. 2. Transferir el gel a una tina y adicionar agua para enjuagar. Preparar 100 ml de agarosa al 0. 7. 1. 30 mA. Conectar la cámara a la fuente de poder y ajustar a 100V. 9. tomando 2 µl e igual volumen de buffer de carga. Desarrollo de la Actividad Práctica. Servir directamente en el poso del gel. Por grupo Por grupo Por grupo Por grupo Por grupo 6. 10. fundiéndola y esperando a que enfríe a 40º para servir en el porta gel de la cámara.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.6% en solución buffer tris-Acetato-EDTA (TAE). MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA 1 kit 1 kit CANTIDAD 2 juegos 2 pza 1 pza 1 pza 1 pza 2 caja 2 caja 2 caja 8 pzas CANTIDAD 1 equipo 1 equipo 1 equipo 1 equipo 1 equipo Enzima de restricción BamIII Enzima de restricción EcoRI b) Materiales/Utensilios. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Cámara de electroforesis Con todos sus accesorios Fuente de poder Con 4 conectores Transiluminador Microondas Convencional Thermoblock Para 12 tubos eppendorf Por grupo Por grupo OBS. 4. 10-100l y 200-1000l Charolas para geles 25X25cm Matraz Erlenmeyer 250 ml Pala para geles De silicón Regla De plástico Caja portapuntas para puntas amarillas Caja portapuntas para puntas azules Caja portapuntas para puntas blancas Lentes para protección a luz UV c) Equipos/Instrumentos. clavando el peine para marcar los posos del gel. Correr la electroforesis hasta que el colorante haya recorrido ¾ de la longitud del gel. Mezclar en un papel parafilm la muestra de DNA digerido. 8. Colocar el gel en el transiluminador con luz ultravioleta para observar la separación 80 . Realizar la digestión de las muestras del DNA obtenido siguiendo las indicaciones del Kit para la enzima de restricción que se les proporcione. Añadir el buffer TBE hasta cubrir el gel por arriba de 1 mm. 6. Una vez gelificado retirar el peine y acomodar dentro del tanque de manera que los posos estén del lado negativo (negro) y el frente de corrimiento hacia el polo positivo (rojo). 3. Por grupo Por grupo Por grupo Por grupo Por grupo Por equipo Por equipo Por equipo Por grupo OBS. DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES De 3 Micropipetas 1-10l.
España: Elsevier. & Willard. J. S.Jones & Bartlett Publishers. Argentina: Médica Panamericana.. (2014). 7. Buenos Aires. Turnpenny. Barcelona.. Dibujar el patrón de bandas obtenido o tomar una fotografía del gel teñido. Solari. P. Cuestionario. Á.. S. Barcelona. (2012). R. Genética Humana (3a. (2009). Texto Ilustrado e Interactivo de Biologia Molecular e Ingeniería Genética (2a ed. Burlingtong. España: Elsevier. La elaboración del reporte de practica deberá seguir el formato y especificaciones del Anexo 3. Bibliografía. Genetica Medica. & Ellard. (2007). A. 1.). Lewin.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. Thomson & Thomson (7a ed. USA: Ed. 9. R.). Herráez.). H. Formato y especificación del reporte de práctica. (2007). Elementos de Genética Médica.. R. MA. EMERY (13a ed. Krebs.). Barcelona.). E. ¿Cuál es el principio de la migración del DNA? 3. ed.Masson. Deberá desarrollar en su Marco Teórico el Tema: Electroforesis y su aplicación en la biología molecular. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA del material genético. 11. McInnes. B. & Golds. 81 .. Lewin's Genes XI (11 ed. D. España: Elsevier. Barcelona. Nussbaum. ¿Porque es necesario la solución buffer para el corrimiento electroforético? 2. F. ¿Por qué se observan diferentes bandas en las muestras de DNA a lo largo del gel? 8. S. E.
que deberá entregarse en la siguiente sesión de laboratorio y tendrá un valor del 70%.  Trabajo individual y en equipo dentro del laboratorio. LINEAMIENTOS DE ACREDITACIÓN Es necesario el 80% de asistencia para acreditar el laboratorio y 7 de promedio final . y que será evaluado con la lista de cotejo del Anexo 2.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Anexo 1. 82 . El laboratorio de Genética se evalúa promediando los siguientes parámetros:  Un reporte por cada práctica realizada. La calificación obtenida en el laboratorio equivale al 15% de la calificación total del curso. y tendrá un valor del 30%.
MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Anexo 2. Guía de Observación 83 .PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.
MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Anexo 3. 1. etc. tabla. la comparación con la literatura relacionada. los datos cuantificables. es responsabilidad del alumno el capturar y resumir lo encontrado en la búsqueda bibliográfica. 5. CONCLUSIONES 84 . presentados como dibujo. REPORTE DE PRÁCTICA Los reportes se entregaran por equipo según las indicaciones de su profesor. porcentaje. La introducción no puede contener información cortada y pegada directamente de internet o del manual.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 6. MARCO TEÓRICO Máximo cinco cuartillas relacionadas con el tema indicado en la práctica. los pro y contra de la técnica empleada. MATERIAL Y METODOS Describir lo que viene en el manual con las adecuaciones hechas para cada práctica. OBJETIVOS Lo que el alumno pretende obtener de la práctica experimental. RESULTADOS Las observaciones realizadas durante la sesión de laboratorio. 3. o c) A través de la plataforma institucional BlackBoard (una vez que el curso esté disponible) o por el medio electrónico que el(la) profesor(a) les indique. Todos los reportes deben incluir portada y el contenido llevará el siguiente orden. en caso de que se detecte la presencia de ligas o evidencias de plagio de información la práctica tendrá una calificación reprobatoria y promediable. ANÁLISIS DE RESULTADOS Debe incluir la explicación de los datos obtenidos. gráfica. La forma de la presentación de los resultados está especificada en cada práctica. los pormenores durante el desarrollo experimental. 4. 2. por los siguientes medios: b) En una libreta destinada para ello.
a consideración del profesor(a) se descontarán los puntos que considere pertinentes. CUESTIONARIO Responder de manera concisa y clara las preguntas que se piden. para ese reporte. BIBLIOGRAFÍA Citada de acuerdo al sistema Oxford. sacar una conclusión del tema desarrollado. 85 . Vancouver o APA. Nota: Cuando el reporte sea un producto electrónico o impreso y el profesor(a) detecte que en este se incluye información copiada y pegada o se detecte plagio de alguna página de internet o documento electrónico. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA De manera concisa y en base a los objetivos. 8.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. 7. explicando las ventajas que tiene en su formación la adquisición del conocimiento y las habilidades adquiridas durante en la realización de la práctica.
Rúbrica de Reporte de Práctica 86 . MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Anexo 4.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC.
entonces se le pedirá que firme esta forma de consentimiento. OBJETIVO DEL ESTUDIO El estudio tiene un objetivo educativo práctico. Antes de decidir si participa o no. PROCEDIMIENTOS DEL ESTUDIO En caso de aceptar participar en el estudio. debe conocer y comprender cada uno de los siguientes apartados. Siéntase con absoluta libertad para preguntar sobre cualquier aspecto que le ayude a aclarar sus dudas al respecto. ACLARACIONES Su decisión de participar en el estudio es completamente voluntaria y no habrá ninguna consecuencia desfavorable para usted. sin afán de lucro. para realizar el cariotipo correspondiente. No recibirá pago por su participación. de Cuenta: _____________ Edad: _________ A usted se le está invitando a participar en este estudio con fines educativos.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. que son reacciones normales a la toma de la misma. se le tomará una muestra de sangre venosa del antebrazo. en caso de no aceptar la invitación. La información obtenida en este estudio. CARTA DE CONSENTIMIENTO INFORMADO Yo. utilizando material desechable estéril y será realizada por personal capacitado. Nombre del alumno: ________________________________________________ Sexo:__________ No. o en caso de retirarse en el momento que lo desee. _____________________________________________________ he leído y comprendido la información anterior y mis preguntas han sido respondidas de manera satisfactoria. que es: conocer la metodología empleada para elaboración de laminillas de linfocitos con metafases y los procedimientos de tinción y análisis cromosómico. Este proceso se conoce como Consentimiento Informado. Laboratorio de Genética. La toma de la muestra podría causarle un poco de dolor y provocarle un hematoma en la zona. _____________________________________ Firma del participante _____________________________ Testigo Nombre y Firma _____________________ Fecha _____________________________ Testigo Nombre y Firma 87 . CONSENTIMIENTO INFORMADO Sede donde se realizará el estudio: Instituto de Ciencias de la Salud. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Anexo 5. Convengo en participar en este estudio. con fines educativos. o un ligero edema. He sido informado y entiendo que los datos obtenidos en el estudio pueden ser publicados o difundidos con fines educativos. Si usted desea participar.
No recibirá pago por su participación. La toma de la muestra no le provocará dolor ni reacción adversa.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. ACLARACIONES Su decisión de participar en el estudio es completamente voluntaria y no habrá ninguna consecuencia desfavorable para usted. que es: conocer la metodología empleada para el análisis de la Sexocromatina. debe conocer y comprender cada uno de los siguientes apartados. Convengo en participar en este estudio. o en caso de retirarse en el momento que lo desee. se le tomará una muestra de carrillo. Antes de decidir si participa o no. _____________________________________ Firma del participante _____________________________ Testigo Nombre y Firma _____________________ Fecha _____________________________ Testigo Nombre y Firma 88 . entonces se le pedirá que firme esta forma de consentimiento. CARTA DE CONSENTIMIENTO INFORMADO Yo. Nombre del alumno: ________________________________________________ Sexo:__________ No. He sido informado y entiendo que los datos obtenidos en el estudio pueden ser publicados o difundidos con fines educativos. en caso de no aceptar la invitación. Laboratorio de Genética. sin afán de lucro. con fines educativos. OBJETIVO DEL ESTUDIO El estudio tiene un objetivo educativo práctico. Si usted desea participar. La información obtenida en este estudio. PROCEDIMIENTOS DEL ESTUDIO En caso de aceptar participar en el estudio. Este proceso se conoce como Consentimiento Informado. Siéntase con absoluta libertad para preguntar sobre cualquier aspecto que le ayude a aclarar sus dudas al respecto. _____________________________________________________ he leído y comprendido la información anterior y mis preguntas han sido respondidas de manera satisfactoria. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Anexo 6 CONSENTIMIENTO INFORMADO Sede donde se realizará el estudio: Instituto de Ciencias de la Salud. de Cuenta: _____________ Edad: _________ A usted se le está invitando a participar en este estudio con fines educativos.
La toma de la muestra podría causarle un poco de dolor y provocarle un hematoma en la zona. La información obtenida en este estudio. o un ligero edema. PROCEDIMIENTOS DEL ESTUDIO En caso de aceptar participar en el estudio. Este proceso se conoce como Consentimiento Informado. CARTA DE CONSENTIMIENTO INFORMADO Yo. No recibirá pago por su participación. de Cuenta: _____________ Edad: _________ A usted se le está invitando a participar en este estudio con fines educativos. Antes de decidir si participa o no. o en caso de retirarse en el momento que lo desee. CONSENTIMIENTO INFORMADO Sede donde se realizará el estudio: Instituto de Ciencias de la Salud. utilizando material desechable estéril y será realizada por personal capacitado. MÉDICO CIRUJANO MANUAL DE PRÁCTICAS DE LA ASIGNATURA DE GENÉTICA Anexo 7. Si usted desea participar. entonces se le pedirá que firme esta forma de consentimiento. _____________________________________________________ he leído y comprendido la información anterior y mis preguntas han sido respondidas de manera satisfactoria. OBJETIVO DEL ESTUDIO El estudio tiene un objetivo educativo práctico.PROGRAMA EDUCATIVO DE LIC. que es: conocer la metodología empleada para la extracción de DNA de una muestra sanguínea. con fines educativos. debe conocer y comprender cada uno de los siguientes apartados. sin afán de lucro. ACLARACIONES Su decisión de participar en el estudio es completamente voluntaria y no habrá ninguna consecuencia desfavorable para usted. Laboratorio de Genética. Nombre del alumno: ________________________________________________ Sexo:__________ No. _____________________________________ Firma del participante _____________________________ Testigo Nombre y Firma _____________________ Fecha _____________________________ Testigo Nombre y Firma 89 . en caso de no aceptar la invitación. He sido informado y entiendo que los datos obtenidos en el estudio pueden ser publicados o difundidos con fines educativos. se le tomará una muestra de sangre venosa del antebrazo. que son reacciones normales a la toma de la misma. Convengo en participar en este estudio. Siéntase con absoluta libertad para preguntar sobre cualquier aspecto que le ayude a aclarar sus dudas al respecto.
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