Source: http://watchemec.ru/article/28193/
Timestamp: 2019-04-20 04:53:21+00:00

Document:
Опубликовано в журнале «Вода: химия и экология» № 11 за 2016 год, стр. 47-57.
1. Traller J.C. High throughput imaging to the diatom Cyclotella cryptica demonstrates substantial cell-to-cell variability in the rate and extent of triacylglycerol accumulation / J.C. Traller, M. Hildebrand // Algal Res. 2013. V. 2. P. 244–252.
2. Ильяш Л.В. Флуоресценция отдельных клеток водоросли Conticribra weissflogii при гиперосмо-тическом стрессе / Л.В.Ильяш, В.А. Курочкина, Т.А. Белевич, С.И. Погосян // Вопр. совр. альго-логии. 2012. №2(2). URL: http:// algology.ru/131.
3. Bucci V. Microscale patchiness leads to large and important intraspecific internal nutrient heterogeneity in phytoplankton / V. Bucci, D. Nunez-Milland, D.S. Twining, F.L. Hellweger // Aquat. Ecol. 2012. V. 46. P. 101-118.
4. Курочкина В.А. Изменчивость флуоресценции отдельных клеток водоросли Conticribra weissflogii при ос¬мотическом стрессе / В.А. Курочкина, Т.А. Белевич, С.И. Погосян, Л.В. Ильяш // Вода: химия и экология. 2013. №2. С. 71–76.
5. Montagnes D.J.S. Effect of temperature on diatom volume, growth rate, and carbon and nitrogen con-tent: reconsidering some paradigms / D.J.S. Montagnes, D.J. Franklin // Limnol. Oceanogr. 2001. V. 46(8). P. 2008-2018.
6. Chisholm S.W. Phytoplankton size // Primary productivity and biogeochemical cycles in the sea. N.Y.: Plenum Press. 1992. P. 213-237.
7. Peter K.H. Phytoplankton cell size reduction in response to warming mediated by nutrient limitation / K.H. Peter, U. Sommer // PLOS ONE. 2013. V. 8(9). doi:10.1371/journal.pone.0071528.
8. Nagai S. The effect of salinity on the size of initial cells during vegetative cell enlargement of Coscino-discus wailesii (Bacillariophyceae) in culture / S. Nagai, I. Imai // Diatom Res. 1999. V. 14(2). P. 337 — 342.
9. Martín-Cereceda M. Morphological variation in a small Thalassiosira species (Bacillariophyta) under different culture regimes / M. Martín-Cereceda, E.J. Cox // Botanica Marina. 2011. V. 54(6). P. 563-574.
10. Trobajo R. Effects of salinity on growth and on valve morphology of five estuarine diatoms / R. Trobajo, L. Rovira, D.G. Mann, E.J. Cox // Phycological Res. 2011. V. 59. P. 83–90.
11. Bergquist A.M. Shifts in phytoplankton size structure and community composition during grazing by contrasting zooplankton assemblages / A.M. Bergquist, S.R. Carpenter, J.C. Latino // Limnol. Oceanogr. 1985. V. 30(5). P. 1037-1045.
12. Tall L. Grazer-diatom size relationships in an epiphytic community / L. Tall, L. Cloutier, A. Cattaneo // Limnol. Oceanogr. 2006. V. 51(2). P. 1211-1216.
13. Armbrust E.V. Patterns of cell size change in a marine centric diatom: variability evolving from clonal isolates / E.V. Armbrust, S.W. Chisholm // J. Phycol. 1992. V. 28. P. 146–156.
14. Прохоцкая В.Ю. Размерно-возрастная структура лабораторной популяции Scenedesmus quadricauda (Turp.) Breb. в присутствии сульфата имазалила / В.Ю. Прохоцкая, Т.В. Веселова, В.А. Веселовский, А.Г. Дмитриева, В.И. Артюхова // Альгология. 2002. Т. 12. № 3. С. 376–384.
15. Dassow P. Inter‐and intraspecific relationships between nuclear DNA content and cell size in selected members of the centric diatom genus Thalassiosira (Bacillariophyceae) / P. Dassow, T.W. Petersen, V.A. Chepurnov, E.V. Armbrust // J. Phycol. 2008. V. 44(2). P. 335-349.
16. Fryxell G.A. The genus Thallasiosira: some species with a modified ring of strutted processes / G.A. Fryxell, G.R. Hasle // Nova Hedwigia. 1977. V. 54. P. 67-98.
17. Диатомовые водоросли СССР (ископаемые и совре¬менные), Т. II. Вып. 1 / Под ред. И.В. Ма-каровой. Л.: Наука, 1988. 117 с.
18. Генкал С.И. К морфологии, экологии и распростра¬нению Thalassiosira weissflogii (Bacillariophyta) / С.И. Генкал, М.С. Куликовский // Поволжский экол. журн. 2009. №3. С. 183-189.
19. García N. Effect of salinity on growth and chemical composition of the diatom Thalassiosira weiss-flogii at three culture phases /N. García, J.A. López-Elías, A. Miranda, M. Martínez-Porchas, N. Huerta, A. García // Lat. Am. J.Aquat. Res. 2012. V. 40(2). P. 435-440.
20. Hasle G.R. Marine diatoms / G.R. Hasle, E.E. Syvertsen // Identifying marine phytoplankton. San Di-ego: Acad. Press. 1997. P. 5-386.
21. Stachura-Suchoples K. Description of Conticribra tricircularis, a new genus and species of Thalassi-osirales, with a discussion on its relationship to other continuous cribra species of Thalassiosira Cleve (Bacillariophyta) and its freshwater origin / K. Stachura-Suchoples, D.M. Williams // Eur. J. Phycol. 2009. V. 44(4). P. 477-486.
22. Montagnes D.J.S. Estimating carbon, nitrogen, protein, and chlorophyll a from cell volume in marine phytoplankton / D.J.S. Montagnes, J.A. Berges, P.J. Harrison, F.J.R. Taylor // Limnol. Oceanogr. 1994. V. 39(5). P. 1044-1060.
23. Радченко И.Г. Рост и фотосинтетическая активность диатомовой водоросли Thalassiosira weissflogii при сни¬жении солености / И.Г. Радченко, Л.В. Ильяш // Изв. АН. Сер. биол. 2006. №3. С. 306-313.
24. Guillard R.R.L. Studies on marine diatoms. I. Cyclotella nana Hustedt and Detonula confervacea (Cleve) Gran. / R.R.L. Guillard, J.H. Ryther // Can. J. Microbiol. 1962. V. 8. P. 229-239.
25. Hillebrand H. Biovolume calculation for pelagic and benthic microalga / H. Hillebrand, C-D. Durse-len, D. Kirschtel, U. Pollingher, T. Zohary // J. Phycol. 1999. V. 35. P. 403-424.
26. Зайцев Г.Н. Математическая статистика в экспериментальной ботанике. М.: Наука. 1984. 424 с.
27. Елисеева И.И. Общая теория статистики / И.И. Елисеева, М.М. Юзбашев. М.: Финансы и ста-тистика. 2001. 480 с.
30. Elowitz M. Stochastic gene expression in a single cell / M. Elowitz, A. Levine, E. Siggia, P. Swain // Science. 2002. V. 297. P. 1183–1186.
31. Белевич Т.А. Взаимодействие между планктонны¬ми водорослями при разных источниках азо-та / Т.А. Белевич, Е.В. Запара, Л.В. Ильяш // Усп. совр. биол. 2009. Т. 129. №4. С. 379-385.
32. Lynn S.G. Effect of nutrient availability on the biochemical and elemental stoichiometry in the fresh-water diatom Stephanodiscus minutulus (Bacillariophyceae) / S.G. Lynn, S.S. Kilham, D.A. Kreeger, S.J. Interlandi // J. Phycol. 2000. V. 36(3). P. 510–522.
33. Leynaert A. Effect of iron deficiency on diatom cell size and silicic acid uptake kinetics / A. Leynaert, E. Bucciarelli, P. Claquin, R.C. Dugdale, V. Martin-Jézéquel, P. Pondaven, O. Ragueneau // Limnol. Oceanogr. 2004. V. 49(2). P. 1134-1143.
34. Marchetti A. Coupled changes in the cell morphology and the elemental (C, N, and Si) composition of the pennate diatom Pseudo-nitzschia due to iron deficiency / A. Marchetti, P.J. Harrison // Limnol. Oceanogr. 2007. V. 52(5). P. 2270–2284.
35. Курочкина В.А. Внутрипопуляционная гетерогенность объемов клеток водоросли Attheya ussurensis в условиях стресса / В.А. Курочкина, Л.Ф. Ткебучава // Изв. ТИНРО. 2016. Т. 185. С. 220-233.
36. Айздайчер Н.А. Соленостные адаптации одноклеточной водоросли Attheya ussurensis (Bacillariophyta) // Изв. ТИНРО. 2013. Т. 173. С. 223-229.
37. Roubeix V. Effect of salinity on growth, cell size and silicification of an euryhaline freshwater dia-tom: Cyclotella meneghinianaKütz / V. Roubeix, C. Lancelot // Transit. Waters Bull. 2008. V. 1. P. 31-38.
38. Balzano S. Effect of salinity on the grown rate and morphology of ten Sceletonema strains / S. Balza-no, D. Sarno, W.H.C. Ekooistra // J. Plant Res. 2011. V. 33(6). P. 937-945.
39. Lakeman M.B. The strain concept in phytoplankton ecology / M.B. Lakeman, P. Dassow, R.A. Cattol-ico // Harmful Algae. 2009. V. 8. P. 746–758.
40. Rynearson T.A. Genetic differentiation among populations of the planktonic marine diatom Ditylum brightwellii (Bacillariophyceae) / T.A. Rynearson, E.V. Armbrust // J. Phycol. 2004. V. 40. P. 34–43.
41. Maumus F. Stemming epigenetics in marine stramenopiles / F. Maumus, P. Rabinowicz, C. Bowler, M. Rivarola // Current Genomics. 2011. V. 12(5). P. 357–370.
42. Laney S. Diatoms favor their younger daughters / S. Laney, R. Olson, H. Sosik // Limnol. Oceanogr. 2012. V. 57(5). P. 1572–1578.
43. Bisson M.A. Osmotic acclimation and turgor pressure regulation in algae / M.A. Bisson, G.O. Kirst // Naturwissenschaften. 1995.V. 82. P. 461-471.
44. Шоренко К.И. Влияние солености на морфологиче¬ские характеристики панцирей двух близ-ких видов диатомовых водорослей Nitzschia longissima (Bréb.) Grunow и N. rectilonga Takano / К.И. Шоренко, Н.А. Давидович, О.И. Давидович // Морський екологічний журнал. 2014. Т. XIII. №3. С. 75-80.
45. Håkansson H. A study of variation in valve morphology of diatom Cyclotella meneghiniata in mono-clonal cultures: effect of auxospore formation and different salinity conditions / H. Håkansson, V. Chepurnov // Diatom Res. 1999. V. 14(2). P. 251-272.
46. Zhu C.J. Effects of temperature and growth phase on lipid and biochemical composition of Isochrysis galbana TK1 / C.J. Zhu, Y.K. Lee, T.M. Chao // J. Appl. Phycol. 1997. V. 9(5). P. 451-457.
47. Hellebust J.A. Osmoregulation // Ann. Rev. Plant Physiol. 1976. V. 27. P. 485-505.
48. Спектров К.С. Механизмы, обеспечивающие устойчивость морских и пресноводных водорос-лей к измене¬нию осмотического давления окружающей среды / К.С. Спектров, Б.П. Строганов // Физиол. раст. 1979.Т. 26. №5. С. 967-977.
49. McLachlan J. The effect of salinity on growth and chlorophyll content in representative classes of uni-cellular marine algae // Can. J. Microbiol. 1961. V. 7. P. 399-406.
50. Admiraal W. Salinity tolerance of benthic estuarine diatoms as tested with a rapid polarographic measurement of photosynthesis // Marine Biology. 1977. V. 39. P. 11-18.
51. Ahmad I. The relationship between inorganic nitrogen metabolism and proline accumulation in osmo-regulatory responses of two euryhaline microalgae / I. Ahmad, J.A. Hellebust // Plant Physiol. 1988. V. 88(2). P. 348-354.
52. Shikata T. Effects of down - and up–shocks from rapid changes of salinity on survival and growth of estuarine phytoplankters / T. Shikata, S. Nagasoe, S.-J. Oh, T. Matsubara, Y. Yamasaki, Y. Shimasaki, Y. Oshima, T. Honjo // J. Fac. Agr., Kyushu Univ. 2008. V. 53(1). P. 81-87.

References: V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V. 
 V.