CELEX: 31993L0117
Language: nl
Date: 1993-12-17 00:00:00
Title: Twaalfde richtlijn 93/117/EG van de Commissie van 17 december 1993 tot vaststelling van gemeenschappelijke analysemethoden voor de officiële controle van diervoeders

Avis juridique important

|

31993L0117

Twaalfde richtlijn 93/117/EG van de Commissie van 17 december 1993 tot vaststelling van gemeenschappelijke analysemethoden voor de officiële controle van diervoeders  

Publicatieblad Nr. L 329 van 30/12/1993 blz. 0054 - 0062 Bijzondere uitgave in het Fins: Hoofdstuk 3 Deel 54 blz. 0186  Bijzondere uitgave in het Zweeds: Hoofdstuk 3 Deel 54 blz. 0186 

TWAALFDE RICHTLIJN 93/117/EG VAN DE COMMISSIE van 17 december 1993 tot vaststelling van gemeenschappelijke analysemethoden voor de officiële controle van diervoedersDE COMMISSIE VAN DE EUROPESE GEMEENSCHAPPEN,  Gelet op het Verdrag tot oprichting van de Europese Gemeenschap,  Gelet op Richtlijn 70/373/EEG van de Raad van 20 juli 1970 betreffende de invoering van gemeenschappelijke bemonsterings- en analysemethoden voor de officiële controle van diervoeders (1), laatstelijk gewijzigd bij Verordening (EEG) nr. 3768/85 (2), en  met name op artikel 2,  Overwegende dat in Richtlijn 70/373/EEG is bepaald dat de officiële controle van diervoeders die tot doel heeft na te gaan of aan de op grond van de wettelijke of bestuursrechtelijke bepalingen inzake de kwaliteit en de samenstelling van diervoeders  gestelde eisen is voldaan, volgens communautaire bemonsterings- en analysemethoden wordt verricht;  Overwegende dat, om te controleren of de voorwaarden inzake het gebruik van robenidine en van methylbenzoquaat in diervoeders worden nageleefd, op communautair niveau voor deze additieven een analysemethode moet worden vastgesteld;  Overwegende dat de in deze richtlijn vervatte maatregelen in overeenstemming zijn met het advies van het Permanent Comité voor diervoeders,  HEEFT DE VOLGENDE RICHTLIJN VASTGESTELD:   Artikel 1  De Lid-Staten schrijven voor dat de analyses voor de officiële controle van diervoeders ten aanzien van het gehalte aan robenidine en methylbenzoquaat volgens de in de bijlage omschreven methoden worden uitgevoerd.   Artikel 2  De Lid-Staten doen de nodige wettelijke en bestuursrechtelijke bepalingen in werking treden om uiterlijk op 30 november 1994 aan deze richtlijn te voldoen. Zij stellen de Commissie daarvan onverwijld in kennis.  Wanneer de Lid-Staten deze bepalingen aannemen, wordt in die bepalingen naar de onderhavige richtlijn verwezen of wordt hiernaar verwezen bij de officiële bekendmaking van die bepalingen. De regels voor deze verwijzing worden vastgesteld door de  Lid-Staten.   Artikel 3  Deze richtlijn treedt in werking op de derde dag volgende op die van haar bekendmaking in het Publikatieblad van de Europese Gemeenschappen.  Gedaan te Brussel, 17 december 1993.  Voor de Commissie René STEICHEN Lid van de Commissie  (1) PB nr. L 170 van 3. 8. 1970, blz. 2.  (2) PB nr. L 362 van 31. 12. 1985, blz. 8.     BIJLAGE   1. BEPALING VAN ROBENIDINE  1,3-Bis[(4-chloorbenzylideen)amino]guanidine-hydrochloride 1. Doel en toepassingsgebied  Deze methode dient voor de bepaling van robenidine in diervoeders. De onderste bepalingsgrens is 5 mg/kg.  2. Principe  Het monster wordt met zure methanol geëxtraheerd. Het extract wordt gedroogd en een gedeelte ervan wordt gezuiverd over een aluminiumoxyde-kolom. Robenidine wordt met methanol van de kolom geëlueerd, geconcentreerd en tot een geschikt volume aangevuld  met mobiele fase. Het gehalte aan robenidine wordt bepaald met reversed phase hoge-druk-vloeistofchromatografie (HPLC) met UV-detectie.  3. Reagentia 3.1. Methanol 3.2. Zure methanol  Breng 4,0 ml zoutzuur (P20, 1,18 g/ml) over in een maatkolf van 500 ml, vul aan tot de maatstreep met methanol (3.1) en meng. Deze oplossing dient voor gebruik vers te worden bereid.  3.3. Acetonitril, HPLC-kwaliteit 3.4. Moleculaire zeef  Korrels van type 3A, 8-12 mesh (korrels van 1,6-2,5 mm, kristallijn aluminosilicaat, poriediameter 0,3 nm) 3.5. Aluminiumoxyde: zuur, activiteitsklasse I voor kolomchromatografie  Breng 100 g aluminiumoxyde over in een geschikte kolf en voeg 2,0 ml water toe. Sluit de kolf af met een stop en schud de kolf ongeveer 20 minuten. In een goed afgesloten kolf bewaren.  3.6. Kaliumdiwaterstoffosfaat-oplossing, c = 0,025 mol/l  Los 3,40 g kaliumdiwaterstoffosfaat op in water (HPLC-kwaliteit) in een maatkolf van 1000 ml, vul aan tot de streep met water en meng.  3.7. Dinatriumwaterstoffosfaat-oplossing, c = 0,025 mol/l  Los 3,55 g watervrij dinatriumwaterstoffosfaat (of 4,45 g dihydraat of 8,95 g dodecahydraat ervan) op in water (HPLC-kwaliteit) in een maatkolf van 1000 ml, vul aan tot de streep met water en meng.  3.8. Mobiele fase HPLC  Meng de volgende reagentia met elkaar:   650 ml acetonitril (3.3)  250 ml water (HPLC-kwaliteit)  50 ml kaliumdiwaterstoffosfaat-oplossing (3.6)  50 ml dinatriumwaterstoffosfaat-oplossing (3.7)  Filtreer de oplossing door een filter van 0,22 mm (4.6) en ontgas de oplossing (bij voorbeeld door een ultrasoon-behandeling van 10 minuten) 3.9. Standaardstof  Zuiver robenidine: 1.3-bis[(4-chloorbenzylideen)amino]guanidinehydrochloride, E 758 3.9.1. Standaard-voorraadoplossing robenidine, 300 mg/ml  Weeg 30 mg robenidine-standaardstof (3.9) op 0,1 mg nauwkeurig af, los dit in een maatkolf van 100 ml op in zure methanol (3.2), vul aan tot de maatstreep en meng. Wikkel de kolf in aluminiumfolie en bewaar deze in het donker.  3.9.2. Standaard-tussenoplossing robenidine, 12 mg/ml  Breng 10,0 ml van de standaard-voorraadoplossing (3.9.1) over in een maatkolf van 250 ml, vul aan tot de maatstreep met de mobiele fase (3.8) en meng. Wikkel de kolf in aluminiumfolie en bewaar deze in het donker.  3.9.3. IJkoplossingen  Breng in een reeks maatkolven van 50 ml respectievelijk 5,0, 10,0, 15,0, 20,0 en 25,0 ml standaard-tussenoplossing (3.9.2). Vul aan tot de maatstreep met mobiele fase (3.8) en meng. Deze oplossingen komen overeen met respectievelijk 1,2, 2,4, 3,6, 4,8  en 6,0 mg/ml robenidine. Deze oplossingen moeten voor gebruik vers worden bereid.  4. Apparatuur 4.1. Glazen kolom  Gemaakt van bruin glas, voorzien van een stop en een reservoir van ongeveer 150 ml inhoud; inwendige diameter 10-15 mm, lengte 250 mm.  4.2. Laboratorium-schudapparaat (polsbeweging) 4.3. Rotatievacuuemverdamper 4.4. HPLC-apparatuur met UV-detector met variabele golflengte of diode array detector; bereik 250-400 nm 4.4.1. Vloeistofchromatografiekolom, 300 mm × 4 mm, C-18, vulling van 10 mm of een soortgelijke kolom 4.5. Glasvezelfilters (Whatman GF/A of soortgelijk materiaal) 4.6. Membraanfilters, 0,22 mm 4.7. Membraanfilters, 0,45 mm 5. Werkwijze  NB: Robenidine is lichtgevoelig. Bij alle bewerkingen dient bruin glaswerk te worden gebruikt.  5.1. Algemeen 5.1.1. Een blanco diervoeder dient geanalyseerd te worden, om te controleren dat noch robenidine, noch storende stoffen aanwezig zijn.  5.1.2. De recovery dient bepaald te worden door middel van analyse van het blanco diervoeder (5.1.1) waaraan een vergelijkbare hoeveelheid robenidine is toegevoegd als aanwezig in het monster. Voor een gehalte van 60 mg/kg wordt 3,0 ml  standaard-voorraadoplossing (3.9.1) in een erlenmeyer van 250 ml gebracht. De oplossing wordt met een stroom stikstof tot ongeveer 0,5 ml ingedampt. Er wordt 15 g blanco diervoeder toegevoegd, gemengd en 10 minuten gewacht, alvorens de extractiestap  (5.2) uit te voeren.   Opmerking: Voor het doel van deze methode dient het blanco diervoerder van vergelijkbare soort te zijn als het monster en dient hierin bij analyse geen robenidine detecteerbaar te zijn.  5.2. Extractie  Weeg ongeveer 15 g van het voorbereide monster op 0,01 g nauwkeurig af. Breng het over in een erlenmeyer van 250 ml en voeg 100,0 ml zure methanol (3.2) toe; sluit de kolf af en schud 1 uur met het schudapparaat (4.2). Filtreer de oplossing door een  glasvezelfilter (4.5) en vang het gehele filtraat op in een erlenmeyer van 150 ml. Voeg 7,5 g moleculaire zeef (3.4) toe, sluit de kolf af met een stop en schud 5 minuten. Filtreer onmiddellijk door een glasvezelfilter. Bewaar deze oplossing voor de  zuiveringsstap (5.3).  5.3. Zuivering 5.3.1. Bereiding van de aluminiumoxyde-kolom  Breng een propje glaswol onderin een glazen kolom (4.1) en druk dit met een glazen staaf aan. Weeg 11,0 g bereid aluminiumoxyde (3.5) af en breng dit over in de kolom. Het aluminiumoxyde moet zo weinig mogelijk aan de atmosfeer worden blootgesteld.  Klop zachtjes onderaan op de gevulde kolom zodat het aluminiumoxyde zich zet.  5.3.2. Zuivering monsterextract  Breng met een pipet 5,0 ml van het volgens 5.2 bereide monsterextract op de kolom. Houd de punt van de pipet dicht tegen de kolomwand en laat de oplossing door het aluminiumoxyde absorberen. Elueer het robenidine met 100 ml methanol (3.1) met een  elutiesnelheid van 2-3 ml/min en vang het eluaat op in een rondbodemkolf van 250 ml. Damp de methanoloplossing droog aan de rotatievacuuemverdamper (4.3) bij verminderde druk bij 40 °C. Los het residu weer op in 3-4 ml mobiele fase (3.8) en breng de  oplossing kwantitatief over in een maatkolf van 10 ml. Spoel de rondbodemkolf na met enkele porties van 1-2 ml mobiele fase en breng deze spoelvloeistof in de maatkolf over. Vul aan tot de maatstreep met dezelfde vloeistof en meng. Filtreer een gedeelte  door een membraanfilter van 0,45 mm (4.7). Gebruik deze oplossing voor de HPLC-bepaling (5.4).  5.4. HPLC-bepaling 5.4.1. Parameters  De volgende condities worden als leidraad aangegeven, andere parameters mogen gebruikt worden onder voorwaarde dat vergelijkbare resultaten worden verkregen.   Vloeistofchromatografiekolom (4.4.1)  Mobiele fase HPLC (3.8)  Elutiesnelheid: 1,5 tot 2 ml/min  Detectiegolflengte: 317 nm  Injectievolume: 20 tot 50 ml.   Controleer de stabiliteit van het chromatografisch systeem door enige malen de ijkoplossing (3.9.3) met 3,6 mg/ml te injecteren totdat constante piekhoogten (-oppervlakten) en retentietijden worden verkrgen.  5.4.2. IJklijn  Injecteer elke ijkoplossing (3.9.3) enkele malen en meet voor elke concentratie de piekhoogten (-oppervlakten). Maak een ijklijn met de gemiddelde piekhoogten of -oppervlakten als ordinaat en de bijbehorende concentraties in mg/ml als abscis.  5.4.3. Monsteroplossing  Injecteer het monsterextract (5.3.2) enige malen waarbij hetzelfde volume als voor de ijkoplossingen wordt gebruikt; bepaal de gemiddelde robenidine piekhoogte (oppervlakte) van de robenidine pieken.  6. Berekening van de resultaten  Bepaal uit de gemiddelde hoogte (oppervlakte) van de robenidine pieken van de monsteroplossing op basis van de ijklijn (5.4.2) de concentratie van de monsteroplossing in mg/ml.   Het gehalte aan robenidine w (mg/kg) in het monster wordt verkregen met behulp van de volgende formule:    waarin:   c = concentratie robenidine van de monsteroplossing in mg/ml  m = massa van de analyseportie in g.  7. Validatie van de resultaten 7.1. Identiteit  De identiteit van de geanalyseerde stof kan worden bevestigd door co-chromatografie of met een diode array detector, waarbij de spectra van het monsterextract en de ijkoplossing (3.9.3) met 6,0 mg/ml worden vergeleken.  7.1.1. Co-chromatografie  Voeg aan een deel van het monsterextract een geschikte hoeveelheid van een ijkoplossing (3.9.3) toe. De toegevoegde hoeveelheid robenidine moet ongeveer gelijk zijn aan de geschatte hoeveelheid robenidine in het monsterextract.   Alleen de hoogte van de robenidinepiek mag naar verhouding toenemen, waarbij rekening wordt gehouden met zowel de toegevoegde hoeveelheid als met de verdunning van het extract. De piekbreedte op de helft van de maximale hoogte moet binnen ± 10 % van de  oorspronkelijke breedte liggen.  7.1.2. Diode array detectie  De resultaten worden op grond van de volgende criteria beoordeeld:   a) De golflengten van de absorptiemaxima van de spectra van het monster en de standaard, opgenomen op de top van de chromatografische piek, moeten overeenkomen binnen een marge die wordt bepaald door het oplossend vermogen van het detectiesysteem. Voor  diode array detectie is deze marge meestal ± 2 nm.   b) Tussen 250 en 400 nm mogen de spectra van het monster en de standaard, opgenomen op de top van de chromatografische piek voor het gedeelte van de spectra met een relatieve absorptie van 10-100 % niet van elkaar verschillen. Aan dit criterium is  voldaan wanneer dezelfde maxima aanwezig zijn en de afwijking tussen de twee spectra op geen enkel punt meer dan 15 % van de absorptie van de standaard bedraagt.   c) Tussen 250 en 400 nm mogen de spectra in de buigpunten en op de top van de chromatografische piek van het monsterextract voor het gedeelte van de spectra met een relatieve absorptie van 10-100 % niet van elkaar verschillen. Aan dit criterium is  voldaan wanneer dezelfde maxima aanwezig zijn en de afwijking tussen de spectra op geen enkel punt meer dan 15 % van de absorptie van het spectrum van de top bedraagt.   Indien aan een van deze criteria niet is voldaan, is de aanwezigheid van de te analyseren stof niet bevestigd.  7.2. Herhaalbaarheid  Het verschil tussen de resultaten van twee parallelle, op hetzelfde monster verrichte bepalingen mag bij robenidinegehalten van meer dan 15 mg/kg niet meer dan 10 % van het hoogste resultaat bedragen.  7.3. Recovery  Voor het blanco-monster met toevoeging dient het terugvindingspercentage ten minste 85 % te bedragen.  8. Resultaten van een ringonderzoek  Door de EEG werd een ringonderzoek georganiseerd, waarin vier monsters kippevoeder en konijnevoeder, als voedermeel of in pelletvorm, door twaalf laboratoria werden onderzocht. Op elk monster werden duplo-analyses uitgevoerd. De resultaten zijn  hieronder vermeld.   "" ID="1">Gemiddeld mg/kg> ID="2">27,00> ID="3">27,99> ID="4">43,6 > ID="5">40,1 "> ID="1">Sr (mg/kg)> ID="2">1,46> ID="3">1,26> ID="4">1,44> ID="5">1,66"> ID="1">CVr (%)> ID="2">5,4> ID="3">4,5> ID="4">3,3> ID="5">4,1"> ID="1">Sr (mg/kg)>  ID="2">4,36> ID="3">3,36> ID="4">4,61> ID="5">3,91"> ID="1">CVR (%)> ID="2">16,1 > ID="3">12,0 > ID="4">10,6 > ID="5">9,7"> ID="1">Recovery (%)> ID="2">90,0 > ID="3">93,3 > ID="4">87,2 > ID="5">80,2 ""   Sr = standaardafwijking van de herhaalbaarheid.  CVr = variatie-coëfficiënt van de herhaalbaarheid SR = standaardafwijking van de reproduceerbaarheid CVR = variatie-coëfficiënt van de reproduceerbaarheid > 2. BEPALING VAN METHYLBENZOQUAAT 7-Benzyloxy-6-butyl-3-methoxycarbonyl-4-chinolon 1. Doel en toepassingsgebied  Deze methode dient voor de bepaling van methylbenzoquaat in diervoeders. De onderste bepalingsgrens is 1 mg/kg.  2. Principe  Methylbenzoquaat wordt uit het monster geëxtraheerd met een oplossing van methaansulfonzuur in methanol. Het extract wordt gezuiverd met dichloormethaan, door middel van ionenwisselingschromatografie en daarna nogmaals met dichloormethaan. Het gehalte  aan methylbenzoquaat wordt bepaald met reversed phase hoge-druk-vloeistofchromatografie (HPLC) met UV-detectie.  3. Reagentia 3.1. Dichloormethaan 3.2. Methanol, HPLC-kwaliteit 3.3. Mobiele fase HPLC  Mengsel van methanol (3.2) en water (HPLC-kwaliteit) 75 + 25 (V + V).   Filtreer de oplossing door een filter van 0,22 mm (4.5) en ontgas de oplossing (bij voorbeeld door een ultrasoon-behandeling van 10 minuten).  3.4. Methaansulfonzuur-oplossing, s = 2 %  Verdun 20,0 ml methaansulfonzuur met methanol (3.2) tot 1 000 ml.  3.5. Zoutzuur, s = 10 %  Verdun 100 ml zoutzuur (P20 cd. 1,18 g/ml) met water tot 1 000 ml.  3.6. Kationenwisselingshars Amberlite CG-120 (Na), 100-200 mesh  De hars wordt voor gebruik voorbehandeld: suspendeer 100 g hars in 500 ml zoutzuur (3.5) en breng het mengsel op een kookplaat onder voortdurend roeren aan de kook. Laat het mengsel afkoelen en decanteer het zuur. Filtreer de rest onder vacuuem door een  filtreerpapier. Was de hars twee maal met telkens 500 ml water en vervolgens met 250 ml methanol (3.2). Spoel de hars met nog eens 250 ml methanol (3.2) en droog de filterkoek door overleiden van lucht. Bewaar de gedroogde hars in een afgesloten fles.  3.7. Standaardstof: zuiver methylbenzoquaat (7-benzyloxy-6-butyl-3-methoxycarbonyl-4-chinolon) 3.7.1. Standaard-voorraadoplossing methylbenzoquaat, 500 mg/ml  Weeg 50 mg standaardstof (3.7) op 0,1 mg nauwkeurig af, los dit in een maatkolf van 100 ml op in methaansulfonzuur-oplossing (3.4), vul aan tot de maatstreep en meng.  3.7.2. Standaard-tussenoplossing methylbenzoquaat, 50 mg/ml  Breng 5,0 ml van de standaard-voorraadoplossing methylbenzoquaat (3.7.1) over in een maatkolf van 50 ml, vul aan met methanol (3.2) tot de maatstreep en meng.  3.7.3. IJkoplossingen  Breng in een reeks maatkolven van 25 ml respectievelijk 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 en 5,0 ml tussen-standaardoplossing methylbenzoquaat (3.7.2). Vul aan tot de maatstreep met mobiele fase (3.3) en meng. Deze oplossingen hebben concentraties van respectievelijk  2,0, 4,0, 6,0, 8,0 en 10,0 mg/ml methylbenzoquaat. Deze oplossingen moeten voor gebruik vers worden bereid.  4. Apparatuur 4.1. Laboratorium-schudapparaat 4.2. Rotatievacuuemverdamper 4.3. Glazen kolom (250 mm × 15 mm), voorzien van een stop en een reservoir van ongeveer 200 ml inhoud 4.4. HPLC-apparatuur met UV-detector met variable golflengte of diode array detector 4.4.1. Vloeistofchromatografiekolom, 300 mm × 4 mm, C-18, vulling van 10 mm of een soortgelijke kolom 4.5. Membraanfilters, 0,22 mm 4.6. Membraanfilters, 0,45 mm 5. Werkwijze 5.1. Algemeen 5.1.1. Een blanco diervoeder dient te worden geanalyseerd om te controleren dat er noch methylbenzoquaat, noch storende stoffen aanwezig zijn.  5.1.2. De recovery dient bepaald te worden door analyse van het blanco diervoeder waaraan een vergelijkbare hoeveelheid methylbenzoquaat is toegevoegd als aanwezig in het monster. Voor een gehalte van 15 mg/kg wordt aan 20 g blanco diervoeder 600 ml  standaard-voorraadoplossing (3.7.1) toegevoegd, gemengd en 10 minuten gewacht alvorens de extractiestap (5.2) uit te voeren.   Opmerking: Voor het doel van deze methode dient het blanco diervoeder van vergelijkbare soort te zijn als het monster en dient hierin bij analyse geen methylbenzoquaat detecteerbaar te zijn.  5.2. Extractie  Weeg ongeveer 20 g van het voorbereide monster op 0,01 g nauwkeurig af en breng het over in een erlenmeyer van 250 ml. Voeg 100,0 ml methaansulfonzuuroplossing (3.4) toe en schud 30 minuten (4.1). Filtreer de oplossing door een filtreerpapier en bewaar  het filtraat voor de vloeistof-vloeistofverdelingsstap (5.3).  5.3. Vloeistof-vloeistofverdeling  Breng 25,0 ml van het bij (5.2) verkregen filtraat over in een scheitrechter van 500 ml die 100 ml zoutzuur (3.5) bevat. Voeg 100 ml dichloormethaan (3.1) in de scheitrechter toe en schud 1 minuut. Laat de fasen zich scheiden en laat de onderste laag  (dichloormethaan) in een rondbodemkolf van 500 ml lopen. Herhaal de extractie van de waterfase met nog twee porties dichloormethaan van 40 ml en voeg de extracten bij het eerste extract in de rondbodemkolf. Damp het dichloormethaanextract droog bij 40  °C aan de rotatievacuuemverdamper (4.2) onder verminderde druk. Los het residu op in 20-25 ml methanol (3.2), sluit de kolf af met een stop en bewaar het gehele extract voor ionenwisselingschromatografie (5.4).  5.4. Ionenwisselingschromatografie 5.4.1. Bereiding van de kationen-wisselingskolom  Breng een propje glaswol onderin een glazen kolom (4.3). Maak een suspensie van 5,0 g van de behandelde kationen-wisselingshars (3.6) met 50 ml zoutzuur (3.5), giet de suspensie in de glazen kolom en laat de hars bezinken. Laat de overmaat zuur tot net  boven het oppervlak van de hars weglopen en spoel de kolom met water tot het afgetapte water met lakmoes neutraal reageert. Breng 50 ml methanol (3.2) op de kolom en laat deze doorlopen tot het oppervlak van de hars.  5.4.2. Kolomchromatografie  Breng het bij 5.3 verkregen extract met een pipet voorzichtig op de kolom. Spoel de rondbodemkolf met twee porties van 5-10 ml methanol (3.2) en breng de spoelvloeistof ook telkens op de kolom. Laat het extract tot het oppervlak van de hars doorlopen  en spoel de kolom met 50 ml methanol (3.2), zodanig dat de elutiesnelheid niet meer dan 5 ml/min bedraagt. Verwerp de doorgelopen vloeistof. Elueer het methylbenzoquaat met 150 ml methaansulfonzuuroplossing (3.4) van de kolom en vang het eluaat op in  een erlenmeyer van 250 ml.  5.5. Vloeistof-vloeistofverdeling  Breng het bij 5.4.2 verkregen eluaat over in een scheitrechter van 1 liter. Spoel de erlenmeyer met 5-10 ml methanol (3.2) en voeg de spoelvloeistof toe aan de inhoud van de scheitrechter. Voeg 300 ml zoutzuur (3.5) en 130 ml dichloormethaan (3.1) toe.  Schud 1 minuut en laat de fasen scheiden. Laat de onderste laag (dichloormethaan) in een rondbodemkolf van 500 ml lopen. Herhaal de extractie van de waterfase met nog twee porties van 70 ml dichloormethaan en voeg deze extracten bij het eerste extract  in de rondbodemkolf.   Damp het dichloormethaan-extract droog bij 40 °C aan de rotatievacuuemverdamper onder verminderde druk. Los het residu in de kolf op in ongeveer 5 ml methanol (3.2) en breng deze oplossing kwantitatief over in een maatkolf van 10 ml. Spoel de  rondbodemkolf na met nog twee porties van 1-2 ml methanol en breng deze in de maatkolf over. Vul aan tot de maatstreep met methanol en meng. Een gedeelte wordt door een membraanfilter (4.6) gefiltreerd. Gebruik deze gefiltreerde oplossing voor de  HPLC-bepaling (5.6).  5.6. HPLC-bepaling 5.6.1. Parameters  De volgende condities worden als leidraad aangegeven, andere parameters mogen gebruikt worden onder voorwaarde dat vergelijkbare resultaten worden verkregen.   Vloeistofchromatografiekolom (4.4.1)  Mobiele fase HPLC: mengsel van methanol en water (3.3)  Elutiesnelheid: 1 tot 1,5 ml/min  Detectiegolflengte: 265 nm  Injectievolume: 20 tot 50 ml.   Controleer de stabiliteit van het chromatografisch systeem door enige malen de ijkoplossing (3.7.3) met 4,0 mg/ml te injecteren totdat constante piekhoogten (-oppervlakten) en retentietijden worden verkregen.  5.6.2. IJklijn  Injecteer elke ijkoplossing (3.7.3) enkele malen en meet voor elke concentratie de piekhoogten (-oppervlakten). Maak een ijklijn met de gemiddelde piekhoogten of -oppervlakten als ordinaat en de bijbehorende concentraties in mg/ml als abscis.  5.6.3. Monsteroplossing  Injecteer het monsterextract (5.5) enige malen waarbij hetzelfde volume als voor de ijkoplossingen wordt gebruikt; bepaal de gemiddelde methylbenzoquaatpiekhoogte (oppervlakte) van de methylbenzoquaatpieken.  6. Berekening van de resultaten  Bepaal uit de gemiddelde hoogte (oppervlakte) van de methylbenzoquaatpieken van de monsteroplossing op basis van de ijklijn (5.6.2) de concentratie van de monsteroplossing in mg/ml.   Het gehalte aan methylbenzoquaat w (mg/kg) van het monster wordt verkregen met behulp van de volgende formule:    waarin:   c = concentratie methylbenzoquaat van de monsteroplossing in mg/ml  m = massa van de analyseportie in g.  7. Validatie van de resultaten 7.1. Identiteit  De identiteit van de geanalyseerde stof kan worden bevestigd door co-chromatografie of met een diode array detector, waarbij de spectra van het monsterextract en de ijkoplossing (3.7.3) met 10 mg/ml worden vergeleken.  7.1.1. Co-chromatografie  Voeg aan een deel van het monsterextract een geschikte hoeveelheid van de standaard-tussenoplossing (3.7.2) toe. De toegevoegde hoeveelheid methylbenzoquaat moet ongeveer gelijk zijn aan de geschatte hoeveelheid methylbenzoquaat in het monsterextract.  Alleen de hoogte van de methylbenzoquaatpiek mag naar verhouding toenemen, waarbij rekening wordt gehouden met zowel de toegevoegde hoeveelheid als met de verdunning van het extract. De piekbreedte op de helft van de maximale hoogte moet binnen ± 10 %  van de oorspronkelijke breedte liggen.  7.1.2. Diode array detectie  De resultaten worden op grond van de volgende criteria beoordeeld:   a) De golflengten van de absorptiemaxima van de spectra van het monster en de standaard, opgenomen op de top van de chromatografische piek, moeten overeenkomen binnen een marge die wordt bepaald door het oplossend vermogen van het detectiesysteem. Voor  diode array detectie is deze marge meestal ± 2 nm.   b) Tussen 220 en 350 nm mogen de spectra van het monster en de standaard, opgenomen op de top van de chromatografische piek, voor het gedeelte van de spectra met een relatieve absorptie van 10-100 % niet van elkaar verschillen. Aan dit criterium is  voldaan wanneer dezelfde maxima aanwezig zijn en de afwijking tussen de twee spectra op geen enkel punt meer dan 15 % van de absorptie van de standaard bedraagt.   c) Tussen 220 en 350 nm mogen de spectra in de buigpunten en op de top van de chromatografische piek van het monsterextract voor het gedeelte van de spectra met een relatieve absorptie van 10-100 % niet van elkaar verschillen. Aan dit criterium is  voldaan wanneer dezelfde maxima aanwezig zijn en de afwijking tussen de spectra op geen enkel punt meer dan 15% van de absorptie van het spectrum van de top bedraagt.   Indien aan een van deze criteria niet is voldaan, is de aanwezigheid van de te analyseren stof niet bevestigd.  7.2. Herhaalbaarheid  Het verschil tussen de resultaten van twee parallelle, op hetzelfde monster verrichte bepalingen mag bij methylbenzoquaatgehalten tussen 4 en 20 mg/kg niet meer dan 10 % van het hoogste resultaat bedragen.  7.3. Recovery  Voor het blanco-monster met toevoeging dient het terugvindingspercentage ten minste 90 % te bedragen.  8. Resultaten van een ringonderzoek  Vijf monsters werden door tien laboratoria onderzocht. Op elk monster werden duplo-analyses uitgevoerd.  Resultaten "" ID="1">Gemiddeld (mg/kg)> ID="2">n.d.> ID="3">4,50> ID="4">4,50> ID="5">8,90> ID="6">8,70"> ID="1">Sr (mg/kg)> ID="2">-> ID="3">0,30> ID="4">0,20> ID="5">0,60> ID="6">0,50"> ID="1">CVr (%)> ID="2">-> ID="3">6,70> ID="4">4,40> ID="5">6,70>  ID="6">5,70"> ID="1">SR (mg/kg)> ID="2">-> ID="3">0,40> ID="4">0,50> ID="5">0,90> ID="6">1,00"> ID="1">CVR (%)> ID="2">-> ID="3">8,90> ID="4">11,10> ID="5">10,10> ID="6">11,50"> ID="1">Recovery (%)> ID="2">-> ID="3">92,00> ID="4">93,00> ID="5">92,00>  ID="6">89,00""    n.d. niet gedetecteerd Sr = standaardafwijking van de herhaalbaarheid CVr = variatie-coëfficiënt van de herhaalbaarheid SR = standaardafwijking van de reproduceerbaarheid CVR = variatie-coëfficiënt van de reproduceerbaarheid >