Newsgroup: it.comp.giochi.action
Titolo: Le texture sfocate di Rage

http://twitter.com/#!/ID_AA_Carmack/status/124916837791186945
 
 
IMO, questo è il meglio che si possa fare. Non credo che il pacco 
Hi-res uscirà mai, sarebbe abnorme.
 
-- 
Secondo la Nasa, i dinosauri non scomparvero per colpa di un meteorite. 
Era solo la versione per l’assicurazione.
 
 


 
 
Basterebbe fare come sul primo Crysis, in cui di base molte texture non 
erano eccellenti (ricordare tipo i massi e altro), ma con 
l'implementazione di alcuni effetti il tutto diventava spettacolare.
Il Reli2 per Crysis era il mod più bello e non toccava le texture base 
(che peraltro non ho mai modificato con altri mod).

Snake01 ha detto questo sabato :

sono due cose diverse
 
-- 
"I pompini fanno venire il cancro." Alla cecità da seghe non credeva 
più nessuno. (Massimo Famularo)
 
 


 
 
A proposito, è old ma non sapevo che fosse in preparazione (h) anche 
quest'altro mod grafico:
http://www.gamesblog.it/post/27733/deus-ex-human-revolution-nuovi-aggiornamenti-sulla-mod-enb-series-immagini-e-video
 


 
interessante...sarebbe utile sapere QUANDO. cosi' magari posticipo la 
progressione del gioco...

 uscirà mai, sarebbe abnorme.
 
Quoto, ci vorrebbe un HD solo per scaricare le textue......
 
 

 
http://twitter.com/#!/ID_AA_Carmack/status/124916837791186945
 
 
Ottimo, ancora non mi ci sono cimentato, tanto ho da finire DEHR.
 
Ma quand'è che avrebbero intenzione di rilasciare questo "upcoming patch"? 
 


il giorno dopo che io l'avro finito....

 il giorno dopo che io l'avro finito....
 
Appunto... con Crysis2 sono riuscito a resistere stoicamente fino alla patch 
DX11 + texture hi-res. Qui non so se avrò la stessa pazienza... 
 


pero' è abbastanza diverso: 99% dei casi la cosa di rage non avra' lo 
stesso effetto della patch di crysis 2....a essere sinceri il paccone di 
crysis 2 ha cambiato un bel po' di cose, in rage piu' di un TOT non 
riusciranno a cambiare, quindi tanto vale giocarlo adesso (lo sto 
dicendo anche piu' per autoconvincermi che per altro...ormai l'ho 
iniziato e non riesco a fermarmi...)

 texture hi-res
 
sei stato davvero un eroe
 
 

Connor MacLeod ha spiegato il 16/10/11 :

Direi un mito...
 
 

 sei stato davvero un eroe
 
Dimmi qualcosa che non so (cit).
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
PS: non ti ci azzardare!!!
 

 Dimmi qualcosa che non so (cit).
 
rimanendo IT potrei dirti che UROBOROS e' il settimo album del gruppo 
giapponese dei Dir en grey. L'album e' stato rilasciato il 12 Novembre 
2008. L'album prende il nome dal simbolo Ouroboros, che rappresenta il 
serpente che si morde la coda. Tale immagine rappresenta la continuita' 
e il potere del circolo, sottolineando il tema della reincarnazione, 
idea propagata con forza dalla band durante la promozione.
Tracce [modifica]
 
Tutti i brani sono testo di Kyo e musica dei Dir en grey. Dopo il 
titolo è indicata fra parentesi "()" la grafia originale del titolo.
SA BIR (SA BIR?) - 2:00
VINUSHKA (VINUSHKA?) – 9:37
RED SOIL (RED SOIL?) – 3:24
Doukoku to sarinu (慟�ӭ����λ�Š��¬?) - 3:48
Toguro (蜷��€?) – 3:57
GLASS SKIN (GLASS SKIN?) - 4:27
STUCK MAN (STUCK MAN?) - 3:34
Reiketsu nariseba (�Ʒ血����Š�����° ?) - 3:33
Ware, yami tote... (我����ׇ��������������¥?) - 7:01
BUGABOO (BUGABOO?) - 4:43
Gaika, chinmoku ga nemuru koro (�Ǳ歌���沈�������ܠ�‹��ƒ ?) - 4:22
DOZING GREEN (DOZING GREEN?) - 4:05
INCONVENIENT IDEAL (INCONVENIENT IDEAL?) - 4:23
Formazione [modifica]
 
Kyo (京 Kyo?): voce
Kaoru (薫 Kaoru?): chitarra
Die (Die?): chitarra
Toshiya (Toshiya?): basso
Shinya (Shinya?): batteria
 
 

 Tutti i brani sono testo di Kyo e musica dei Dir en grey.
 
Ah, nei quali ha militato anche Gaster. Drosophila Melano-Gaster.
 
Gli insetti della specie Drosophila melanogaster hanno occhi rossi, il corpo 
giallo-marrone con alcuni anelli neri trasversali nel loro addome. È 
evidente il dimorfismo sessuale: le femmine sono lunghe 2,5 mm, mentre i 
maschi sono un po' più corti e la parte terminale del loro corpo e più 
scura. La principale differenza tra i due sessi (facilmente osservabile al 
microscopio anche da un neofita) è il ciuffo di piccoli peli che circonda 
l'ano e i genitali del maschio.
 
Ciclo vitale
 
Il ciclo vitale di Drosophila melanogaster a 25 °C è di sole 2 settimane; la 
durata è circa doppia a 18 °C. Le femmine possono deporre fino a 600 uova 
(embrioni) all'interno di frutta o altri materiali organici. Le uova, il cui 
diametro è di circa 0,5 millimetri, si schiudono dopo 24 ore dalla 
deposizione.
 
Il liquido seminale maschile ha due effetti sulla femmina: il primo di 
regolarizzare la percentuale di uova deposte, il secondo di abbassare il 
desiderio sessuale nella femmina e prevenire così eventualmente 
l'accoppiamento con un altro maschio, ciò nonostante lo stesso sperma 
contribuisce anche a minare la salute della femmina abbassandone la durata 
della vita[1].
 
Le larve risultanti crescono per 5 giorni, in cui usano microorganismi che 
decompongono la frutta e gli zuccheri della frutta stessa per nutrirsi. Poi 
la larva si trasforma in pupa, passando altri 5 giorni consumando il cibo 
accumulato per effettuare una metamorfosi, alla fine della quale emerge 
l'insetto adulto.
 
Le femmine si accoppiano dopo circa 12 ore dalla metamorfosi, accumulando lo 
sperma in alcune sacche, utilizzandolo a posteriori per fecondare le uova. 
Per questo motivo i genetisti devono separare le femmine dal resto della 
popolazione prima che abbiano la possibilità di accoppiarsi, in modo da 
essere certi che l'incrocio avvenga solo con il particolare tipo di maschio 
da utilizzare nell'esperimento. Femmine inseminate possono essere 
"re-verginizzate" con una prolungata incubazione a -10 °C, uccidendo lo 
sperma (Ashburner et al. 2005).
 
Organismo modello
 
La Drosophila melanogaster è un organismo modello, ovvero uno degli 
organismi più studiati nella ricerca biologica, in particolare nella 
genetica e nella divulgazione biologica.
 
I motivi sono molteplici:
si tratta di un insetto piccolo e facile da allevare in laboratorio;
ha un breve tempo di generazione (circa 2 settimane) e una elevata 
produttività (ogni singola femmina può deporre fino a 600 uova in 10 
giorni);
le larve mature mostrano cromosomi politenici nelle ghiandole salivari;
hanno solo 4 paia di cromosomi: 3 autosomi e 1 sessuale;
i maschi non mostrano ricombinazioni genetiche, facilitando gli studi 
genetici;
tecniche di trasformazione genetica sono state disponibili dal 1987;
il sequenziamento del suo genoma è stato completato nel 1998;
le mutazioni genetiche nella specie sono molto frequenti.
 
A Charles W. Woodworth è riconosciuto il merito di essere stato il primo ad 
allevare esemplari di Drosophila e di aver suggerito a W. E. Castle, durante 
il suo soggiorno alla Harvard University, che essi potevano essere usati per 
ricerche genetiche. A partire dal 1910 i moscerini della frutta furono di 
aiuto a Thomas Hunt Morgan per compiere i suoi studi sull'ereditarietà. 
Morgan e colleghi estesero il lavoro di Mendel descrivendo i meccanismi 
ereditari legati al cromosoma X e dimostrando che i geni collocati su uno 
stesso cromosoma non mostravano ricombinazioni genetiche. Gli studi sulle 
caratteristiche collegate al cromosoma X hanno aiutato a confermare che i 
geni si trovano nei cromosomi, mentre altri studi sulle caratteristiche 
morfologiche di Drosophila hanno portato alle prime mappe che mostravano le 
locazioni dei geni sui cromosomi. La prima mappatura dei cromosomi di 
Drosophila fu completata da Alfred Sturtevant.
 
Il genoma della Drosophila
 
La Drosophila ha 4 paia di cromosomi: una coppia X/Y e tre coppie 
autosomiche etichettate 2, 3, e 4. Il quarto cromosoma è così sottile che è 
spesso ignorato. Il genoma, che è stato interamente sequenziato, contiene 
132 milioni di basi e approssimativamente 13.767 geni, tra questi ad esempio 
vi sono:
Antennapedia (gene che controlla il posizionamento delle antenne 
dell'insetto)
 
Somiglianze con la specie umana
 
Da un punto di vista genetico l'uomo e il moscerino della frutta sono 
abbastanza simili. Circa il 60% delle malattie genetiche conosciute si 
possono verificare nel patrimonio genetico del moscerino. E circa il 50% 
delle proteine della Drosophila hanno un analogo nei mammiferi. La 
Drosophila viene usata come modello genetico per varie malattie umane, 
inclusi i disturbi neurodegenerativi come il morbo di Parkinson, la corea di 
Huntington e il morbo di Alzheimer. La mosca viene utilizzata anche per 
studiare il meccanismo biologico del sistema immunitario, del diabete, del 
cancro, dell'intelligenza, dell'invecchiamento e persino dell'abuso di 
sostanze stupefacenti.
 
Nomenclatura genetica
 
I geni che prendono il nome da alleli recessivi hanno l'iniziale minuscola, 
mentre gli alleli dominanti hanno l'iniziale maiuscola. I geni che prendono 
il nome dalla proteina prodotta hanno l'iniziale maiuscola. I nomi dei geni 
sono solitamente scritti in corsivo. La convenzione di scrittura dei 
genotipi è X/Y; 2nd/2nd; 3rd/3rd.
 
Nella comunità dei biologi molecolari la nomenclatura genetica della 
Drosophila è nota per i nomi fantasiosi associati alle mutazioni genetiche 
scoperte. Le mutazioni del lievito di birra o di altri organismi, 
microscopici e non, hanno solitamente nomi come "cdc4" e "cdk4"; nella 
Drosophila invece sono frequenti nomi come "cheap date" (letteralmente 
"appuntamento economico", una mutazione che rende il moscerino più sensibile 
all'effetto dell'etanolo) o "snafu" (una mutazione che provoca anomalie 
anatomiche grottesche).
 
Sviluppo ed embriogenesi
 
L'embriogenesi nella Drosophila è stata studiata molto approfonditamente. La 
piccola dimensione, il ciclo di vita molto breve e la grande quantità di 
prole tipici della Drosophila ne fanno un campione ideale per studi 
genetici. È anche l'unico fra gli organismi modello in cui la suddivisione 
dell'ovulo fecondato avviene in una cavità sinciziale.
 
Durante l'ovogenesi, l'ovocita in formazione è connesso alle cellule nutrici 
dei ponti citoplasmatici. Sostanze nutrienti e altre molecole che 
controllano lo sviluppo si trasferiscono nell'ovocita.
 
Nella figura si può vedere come l'ovocita in formazione venga rivestito da 
cellule follicolari di supporto. Circa 5000 nuclei cellulari si ammassano 
nel citoplasma indiviso dell'ovocita prima che inizi la loro migrazione 
verso la superficie e vengano avvolti da membrane plasmatiche per formare le 
cellule che circondano il sacco del tuorlo. Poco dopo la linea germinale si 
separa dalle cellule somatiche, attraverso la formazione di cellule polari 
nell'estremità posteriore dell'embrione.
 
La divisione cellulare nei primi stadi dell'embrione di Drosophila avviene 
tanto rapidamente che non esistono fasi distinte, per cui possono 
verificarsi errori nella divisione del DNA. Per aggirare questo problema i 
nuclei che commettono tali errori si staccano dai loro centrosomi e cadono 
nel centro dell'embrione, che non farà parte dell'insetto.
 
Allevamento di moscerini di Drosophila melanogaster
 
La definizione degli assi antero-posteriore e dorso-ventrale avviene secondo 
un meccanismo definito specificazione sinciziale, in cui gradienti di geni 
materni, introdotti nell'oocita grazie alle cellule nutrici, definisco gli 
assi del corpo prima ancora che l'oocita venga fecondato; in particolare i 
geni materni nanos e bicoid creano il gradiente morfogeno che specifica per 
le strutture anteriori (bicoid) e per quelle posteriori (nanos).
 
I geni materni agiscono come fattori di trascrizione attivando i geni 
zigoti. I primi geni zigoti ad essere trascritti sono la classe dei geni 
gap, il cui nome deriva dal fatto che la loro mutazione provoca una grossa 
perdita di segmenti nella larva del moscerino. I più importanti geni gap 
sono hunchback, kruppel, giant, knirps e tailless ognuno dei quali, in base 
a gradienti di concentrazione dei geni materni, è espresso in determinate 
regioni lungo l'asse antero/posteriore dell'embrione di drosophila 
dividendolo in unità distinte.
 
Combinazioni opportune di geni gap sono in grado di attivare specifici 
enhancer di promotori modulari dei geni della regola pari primari i quali 
vengono espressi periodicamente in 7 strisce lungo l'asse antero-posteriore 
andando così a delineare un pattern di 14 zone discrete definite 
parasegmenti. La caratteristica principale di questa classe di geni è che 
alcuni di essi saranno espressi solo nei parasegmenti dispari mentre altri 
solo nei parasegmenti pari. Tali geni sono inoltre importanti per 
determinare il pattern di espressione dei geni della regola pari secondari: 
questi sono espressi inizialmente in tutto l'embrione ma a seguito 
dell'espressione dei geni della regola pari primari la loro espressione sarà 
limitata in quei parasegmenti non occupati da quest'ultimi in quanto sono in 
grado di legare gli enhancer dei geni della regola pari secondari e 
regolarne negativamente l'espressione.
 
Una volta che i geni della regola pari sono espressi, quest'ultimi attivano 
i geni della polarità segementale i quali definisco il lato anteriore e 
posteriore di un parasegmento. In particolare nei 14 parasegmenti formati le 
file di cellule che mostrano un'alta concentrazione di prodotto genico dei 
geni della regola pari cominciano ad esprimere il gene della polarità 
segmentale chiamato engrailed che definisce il confine anteriore del 
parasegmento; a sua volta engrailed agisce come fattore di trascrizione 
facendo esprimere il gene hedgehog il quale venendo secreto dalle cellule va 
ad interagire con il recettore cellulare posto sulla fila di cellule 
anteriore a quelle esprimenti engrailed, ciò attiva un pathway che permette 
di esprimere un altro gene della polarità segmentale chiamato wingless che 
definisce il confine posteriore del parasegmento. Wingless a sua volta viene 
secreto ed interagisce con il recettore frizzled della fila di cellule 
esprimenti engrailed il quale induce un patway che induce ulteriore 
espressione di engrailed chiudendo il circuito. Grazie a tale sistema, anche 
a seguito di cessato stimolo da parte dei geni della regola pari, questo 
circuito può automantenersi definendo in modo definitivo i confini di ogni 
parasegmento.
 
Geni omeotici
 
La combinazione di geni gap, della regola pari e della polarità segmentale 
fa esprimere l'ultima classe di geni per lo sviluppo della drosophila 
chiamati geni selector omeotici. Tali geni definiscono in modo preciso il 
destino dello sviluppo di ogni parasegmento definendo se questo diventarà 
una zampa piuttosto che un'antenna.
 
Espressione dei geni Omeobox in Drosophila melanogaster
La specificazione dell'asse dorso-ventrale è stabilito dal gradiente di 
concentrazione di un fattore di trascrizione chiamato dorsal. L'mRNA materno 
di dorsal è posto nell'oocita di drosophila dalle cellule nutrici lungo 
tutto la membrana citoplasmatica dove viene tradotto 90 minuti dopo la 
fertilizzazione. Nonostante dorsal sia presente in tutto l'oocita esso entra 
solo nel nucleo delle cellule ventrali dove attiva geni per la 
ventralizzazione (twist e snail) e reprime quelli per la dorsalizzazione. Il 
fatto che dorsal entri solo nelle cellule ventrali è dovuto alla posizione 
all'intero del citoplasma del nucleo dell'oocita nel periodo che precede la 
fecondazione: trovandosi sul lato dorsale attiva fattori di trascrizione che 
inibiscono i geni necessari per attivare dorsal. Ciò non succede sul lato 
ventrale che si trova lontano dal nucleo ed in questo modo dorsal può 
esplicare la sua funzione ventralizzante.
 
Genetica comportamentale e neuroscienze
 
Nel 1971 Ron Konopka e Seymour Benzer pubblicarono un articolo intitolato 
"Mutanti orologio di Drosophila melanogaster" in cui descrivevano la prima 
mutazione che influenzava il comportamento di un animale. I moscerini 
Drosophila normali mostravano un ritmo di attività e riposo coincidente 
grosso modo con il giorno solare (24 ore). I mutanti di Konopka e Benzer 
invece mostravano ritmi più rapidi o più lenti, e in alcuni casi del tutto 
irregolari: i moscerini mutanti riposavano ed erano attivi per periodi di 
tempo del tutto casuali. I lavori dei successivi 30 anni hanno dimostrato 
che queste mutazioni (e altre simili) interessano un gruppo di geni e di 
loro prodotti che formano un orologio biologico o molecolare. Questo 
orologio biologico è stato trovato in molte cellule del moscerino, ma quelle 
determinanti per il ciclo attività/riposo sono alcune dozzine di cellule nel 
cervello centrale della Drosophila.
 
Da allora Benzer, i suoi studenti e molti altri hanno usato maschere 
comportamentali per isolare geni coinvolti in visione, olfatto, udito, 
apprendimento e memoria, corteggiamento, dolore e altri processi biologici 
come la longevità.
 
La visione nella Drosophila
 
Coppia stereoscopica di immagini ricostruite secondo la visuale di un 
moscerino
 
L'occhio composto del moscerino della frutta contiene 800 unità oculari o 
ommatidi, ed è uno dei più sofisticati fra tutti gli insetti. Ogni ommatide 
contiene 8 cellule fotorecettrici (R1-8) ed alcune cellule di supporto, 
cellule pigmentate e una cornea. I moscerini normali hanno cellule 
pigmentate rossastre, per assorbire l'eccesso di luce blu e non venire 
accecati dalla luce del giorno.
 
Ogni fotorecettore consiste di due sezioni principali, il corpo cellulare e 
il rabdomero. Il corpo cellulare contiene il nucleo della cellula mentre il 
rabdomero è fatto di ammassi di membrane dette microvilli che lo rendono 
simile ad uno spazzolino da denti. Ogni microvillo è lungo da 1 mm a 1,5 mm 
ed ha un diametro di 50 nm. La membrana del rabdomero contiene circa 100 
milioni di molecole di rodopsina, la proteina visuale che assorbe la luce. 
Il resto delle proteine della visione sono concentrate nello spazio 
microvillare, lasciando poco spazio al citoplasma.
 
I fotorecettori in Drosophila secernono molte varietà di forme di rodopsina. 
Le cellule fotorecettrici R1-R6 sintetizzano la Rodopsina1 (Rh1) che assorbe 
luce blu (480 nm). Le cellule R7 e R8 sintetizzano le forme Rh3 o Rh4 che 
assorbe luce ultravioletta (345 nm e 375 nm), e Rh5 o Rh6 che assorbono 
rispettivamente luce blu (437 nm) e verde (508 nm). Ogni molecola di 
rodopsina consiste di una proteina chiamata opsina legata in modo covalente 
ad un cromoforo carotenoide.
 
Come nella visione dei vertebrati, anche negli invertebrati la trasduzione 
visiva avviene tramite un cammino di proteine G accoppiate. Però nei 
vertebrati la proteina G è la transducina, mentre negli invertebrati è la Gq 
(dgq in Drosophila). Quando la rodopsina (Rh) assorbe un fotone, il suo 
cromoforo carotenoide si isomerizza, producendo in Rh un cambiamento 
conformazionale verso la sua forma attiva, la metarodopsina. Essa attiva la 
Gq, che a sua volta attiva una fosfolipasi Cβ (PLCβ) nota come NorpA.
 
PLCβ idrolizza il fosfatidilinositolo-4,5-bisfosfato (PIP2), un fosfolipide 
presente nella membrana cellulare, in inositolo-trifosfato (IP3) e 
diacilglicerolo (DAG). DAG, molecola idrofobica, rimane nella membrana, 
generando l'apertura di un canale ionico selettivo per il calcio (noto come 
TRP, transient receptor potential) e, a valle, l'ingresso nella cellula di 
ioni calcio e sodio. Il destino di IP3 è invece quello di legare specifici 
recettori (IP3 receptors) presso specifiche cisterne del reticolo 
endoplasmatico, generando l'uscita nel citoplasma di altri ioni calcio, 
sebbene questo processo non sia ritenuto essenziale per la normale visione.
 
Gli ioni calcio legano proteine come la calmodulina (CaM) e protein chinasi 
C (PKC) specifiche per la visione, note come InaC. Le InaC interagiscono poi 
con altre proteine a valle e sono ritenute le principali responsabili del 
segnale acceso/spento della visione. Hanno un certo ruolo nello spegnimento 
del processo visivo anche le arrestine, proteine in grado di inibire 
l'interazione della metarodopsina con le Gq, inibendo la trasduzione a 
monte.
 
Lo spegnimento avviene attraverso uno scambiatore sodio/calcio di membrana 
dipendente dal potassio (noto come NCKX30C), che pompa il calcio al di fuori 
della cellula. Ciò è permesso dai gradienti transmembrana favorevoli di 
sodio e potassio. Per ogni ione Ca++ estruso, 4 di Na+ entrano ed un di K+ 
esce dalla cellula.
 
La proteina InaD funge da supporto per tutte le proteine chiave della via di 
trasduzione: contiene cinque domini di legame (domini PDZ) per la regione 
C-terminale di molecole come TRP, InaC e PLC. Mutazioni a carico dei domini 
PDZ generano notevoli problemi nella trasduzione stessa. Ad esempio, un calo 
dell'interazione tra InaC e InaD genera una inattivazione tardiva della 
risposta alla luce.
 
A differenza della metarodopsina dei Vertebrata, la metarodopsina di 
Drosophila (e degli Invertebrata) viene riconvertita a rodopsina con il 
semplice assorbimento di un fotone di luce arancione (580 nm).
 
Circa due terzi del cervello di Drosophila (circa 200 000 neuroni) sono 
dedicati al processo visivo. Sebbene la risoluzione spaziale sia 
notevolmente minore di quella umana, la velocità della risposta visiva è 
quasi dieci volte maggiore.
 
Il volo nella Drosophila
 
Le ali di una mosca come Drosophila possono battere fino a 250 volte al 
secondo. Il volo è essenzialmente composto di lunghi tratti lineari, 
intervallati da rapidi cambi di direzione chiamati saccade. Durante queste 
"svolte", è in grado di ruotare di 90 gradi in meno di 50 millisecondi.
 
Drosophila, e probabilmente molte altre mosche, presenta nervi ottici 
collegati direttamente ai muscoli delle ali (mentre in altri insetti c'è in 
ogni caso un passaggio attraverso il cervello), rendendo se possibile ancora 
minore il tempo di reazione.
 
Si è creduto per lungo tempo che le caratteristiche del volo di Drosophila 
fossero sottoposte più alla viscosità dell'aria che all'inerzia del corpo 
dell'animale. Recenti ricerche di Michael Dickinson e Rosalyn Sayaman hanno 
invece indicato che è l'inerzia la forza dominante
 
Determinazione del sesso in Drosophila
 
Il sesso in Drosophila similmente a pochi altri individui è un carattere 
quantitativo, questo è cioè determinato dal rapporto tra il numero di 
cromosomi X ed il numero di corredi aploidi, se il rapporto è uguale o 
maggiore a uno allora l'individuo è femmina, se è minore o uguale di 0.5 
allora l'individuo è maschio, se è compreso tra 0,5 e 1 è un intersesso. 
 

Nel suo scritto precedente, Topolaccio ha sostenuto :

T.V.B.