Serie Generale n. 296 del 19-12-1998
DECRETI, DELIBERE E ORDINANZE MINISTERIALI
MINISTERO DELLA SANITA'
MINISTERO DELLA SANITA'
DECRETO 14 ottobre 1998
Modificazioni all'allegato al decreto legislativo 30 dicembre 1992, n. 530, e successive modifiche, in attuazione della direttiva 97/61/CE. (GU Serie Generale n.296 del 19-12-1998)

IL MINISTRO DELLA SANITÀ
Visto il decreto legislativo 30 dicembre 1992, numero 530
concernente attuazione della direttiva 91 492 CEE, che stabilisce
norme sanitarie applicabi alla produzione e commercializzazione dei
molluschi bivalvi vivi;
Vista la legge 20 novembre 1995, n. 490, recante conversione in
legge, con modificazioni, del decreto-legge 20 settembre 1995, n.
390, concernente provvedimenti urgenti in materia di prezzi di
specialità medicinali, nonchè in materia sanitaria;
Visto il decreto legislativo 15 marzo 1996, n. 249, recante
modificazioni al decreto legislativo 30 dicembre 1992, n. 530,
concernente attuazione della direttiva 91 492 CEE che stabilisce
norme sanitarie applicabili alla produzione e commercializzazione dei
molluschi bivalvi vivi;
Vista la direttiva 97 61 CE del 20 ottobre 1997, che modifica
l'allegato alla direttiva 91 492 CEE, che stabilisce norme sanitarie
applicabili alla produzione e commercializzazione dei molluschi
bivalvi vivi;
Visto il decreto del Ministero della sanità 31 luglio 1995
concernente metodiche di analisi per la determinazione dei coliformi
fecali, di Escherichia coli, delle salmonelle, delle biotossine PSP
(Paralytic Shellfish Poison), delle tossine DSP (Diarrhetic Shellfish
Poison), del mercurio e del piombo nei molluschi bivalvi (pubblicato
nella Gazzetta Ufficiale della Repubblica italiana n. 279, del 29
novembre 1995);
Vista la decisione del Consiglio 93/383/CEE del 14 luglio 1993 in
materia di laboratori di riferimento per il monitoraggio delle
biotossine marine;
Considerato che la direttiva 97 61 CEE apporta modifiche tecniche
alla direttiva 91 492 CEE;
Visto l'art. 17 del decreto legislativo 30 dicembre 1992, n. 530;
Visto l'art. 20 della legge 16 aprile 1987, n. 183, concernente il
coordinamento delle politiche riguardanti l'appartenenza dell'Italia
alle Comunità europee e l'adeguamento dell'ordinamento interno agli
atti normativi comunitari;
Decreta:
Art. 1.
1. All'allegato del decreto legislativo 30 dicembre 1992, n. 530,
sono apportate le seguenti modificazioni:
a) il testo del punto 6 del capitolo II è sostituito dal seguente:
"6. Un documento di registrazione per identificare i lotti di
molluschi bivalvi vivi deve accompagnare ogni lotto durante il
trasporto dalla zona di produzione al centro di spedizione, al centro
di depurazione, alla zona di stabulazione o allo stabilimento di
trasformazione. Il documento è rilasciato dall'autorità competente
su richiesta del produttore. Il produttore deve compilare per ciascun
lotto, in caratteri leggibili e indelebili, le sezioni pertinenti del
documento di registrazione, in cui devono essere riportate le
seguenti indicazioni:
a) identità e indirizzo del produttore;
b) data di raccolta;
c) ubicazione della zona di produzione, definita in maniera
circostanziata, oppure con un numero di codice;
d) status sanitario della zona di produzione come previsto al
capitolo I;
e) precisa indicazione della specie di molluschi bivalvi vivi e
della relativa quantità;
f) numero di riconoscimento e luogo di destinazione per il
confezionamento, la stabulazione, la depurazione o la trasformazione.
Il documento di registrazione deve essere datato e firmato dal
produttore.
I documenti di registrazione devono essere numerati in maniera
continua e in ordine di successione. L'autorità competente tiene un
registro in cui figurano il numero dei documenti di registrazione e
il nome delle persone che raccolgono i molluschi bivalvi vivi a cui
sono stati rilasciati. Il documento di registrazione deve riportare
la data di consegna dello stesso al centro di spedizione, al centro
di depurazione, alla zona di stabulazione o allo stabilimento di
trasformazione e deve essere conservato dai responsabili dei suddetti
centri, zone o stabilimenti per almeno dodici mesi. Il produttore è
ugualmente tenuto a conservare il documento per lo stesso periodo di
tempo. Tuttavia se la raccolta è effettuata da addetti del centro di
spedizione, del centro di depurazione, della zona di stabulazione o
dello stabilimento di trasformazione di destinazione, il documento di
registrazione può essere sostituito da un'autorizzazione permanente
di trasporto rilasciata dall'autorità competente. Un modello
standardizzato del documento di registrazione, contenente un
riferimento ai vari requisiti che devono figurarvi e menzionati ai
capitolo II, III e IV del presente allegato, sarà stabilito con
decreto del Ministro della sanità in conformità a decisioni
comunitarie";
b) il testo del punto 9 del capitolo III è sostituito dal
seguente:
"9. Durante il trasporto dalla zona di stabulazione, dove sono
stati raccolti, al centro di spedizione, al centro di depurazione,
allo stabilimento di trasformazione riconosciuti, i lotti devono
essere accompagnati da un documento di registrazione contenente in
particolare, oltre alle indicazioni previste al Capitolo II, punto 6
del presente allegato, l'ubicazione e il numero di riconoscimento
della zona di stabulazione e l'indicazione della durata della
stabulazione effettuata, nonchè qualsiasi altra indicazione
necessaria per l'identificazione e la rintracciabilità del prodotto.
Tale requisito non è necessario nel caso in cui, sia nella zona di
stabulazione che nel centro di spedizione, nel centro di depurazione
o nello stabilimento di trasformazione, operino gli stessi addetti";
c) il testo del secondo comma del punto 13 della sezione III del
capitolo IV è sostituito dal seguente:
"I centri di depurazione che inviano lotti di molluschi bivalvi
vivi a centri di spedizione devono fornire un documento di
registrazione contenente in particolare, oltre alle indicazioni
previste al Capitolo II, punto 6 del presente allegato, il numero di
riconoscimento e l'indirizzo del centro di depurazione e
l'indicazione della durata del processo di depurazione effettuata, le
date di ingresso e uscita dal centro di depurazione nonchè qualsiasi
altra indicazione necessaria per l'identificazione e la
rintracciabilità del prodotto".
d) il testo del punto 4 della sezione IV del capitolo IV è
sostituito dal seguente;
"I centri di spedizione devono tenere a disposizione dell'autorità
competente i seguenti dati:
a) i risultati degli esami microbiologici dei molluschi bivalvi
vivi provenienti da una zona di produzione riconosciuta o da una zona
di stabulazione o da un centro di depurazione:
b) la data e la quantità di molluschi bivalvi vivi consegnati al
centro di spedizione e i documenti di registrazione pertinenti;
c) dati particolareggiati sulle spedizioni, inclusi i nomi e gli
indirizzi dei destinatari, la data e la quantità di molluschi
bivalvi vivi spediti e il/i numero/i del/i documento/i di
registrazione d'ingresso corrispondente/i alle spedizioni di
molluschi.
Tali dati devono essere classificati cronologicamente e archiviati
per un periodo di almeno dodici mesi, che dovrà essere precisato
dall'autorità competente".
e) al capitolo V è aggiunto il seguente punto;
"7-bis) il tenore di ''Amnesic Shellfish Poisoning'' (ASP) nelle
parti commestibili dei molluschi (corpo intero o parti commestibili
separatamente) non deve superare i 20 microgrammi di acido domoico
per grammo secondo il metodo di analisi HPLC".

Art. 2.
1. Ai fini della determinazione delle biotossine algali ASP è
approvato il metodo di analisi riportato in allegato.

Art. 3.
1. Il laboratorio nazionale di riferimento per il monitoraggio
delle biotossine marine è il Centro ricerche marine, viale A.
Vespucci 2 - Cesenatico (Forli').
2. Il presente decreto è trasmesso alla Corte dei conti per la
registrazione ed entra in vigore il giorno dopo la sua pubblicazione
nella Gazzetta Ufficiale della Repubblica italiana.
Roma, 14 ottobre 1998
Il Ministro: Bindi
Registrato alla Corte dei conti il 23 novembre 1998
Registro n. 2 Sanità, foglio n. 105

ALLEGATO
METODO PER L'IDENTIFICAZIONE E LA DETERMINAZIONE DELL'ACIDO
DOMOICO NEI MOLLUSCDI EDULI LAMELLIBRANCIII
1. Scopo e campo di applicazione
Il metodo descritto permette l'identificazione e la determinazione
dell'acido domoico nei molluschi eduli lamellibranchi. Il limite di
rivelazione del metodo è di 0,2 micron g di acido domoico per g di
tessuto edibile.
2. Principio del metodo
L'acido domoico è estratto dalla polpa dei molluschi con soluzione
metanolo: acqua, 1 : 1 (v : v), e, dopo ultrafiltrazione, è
determinato mediante cromatografia liquida ad alta risoluzione (HPLC)
su colonna C18 con rivelazione spettrofotometrica UV, alla lunghezza
d'onda di 242 nm.
3. Reagenti
3.1 Tutti i reagenti impiegati devono essere di qualità analitica.
3.2 L'acqua usata deve essere bidistillata.
3.3 Acetonitrile.
3.4 Acido domoico.
3.5 Metanolo.
3.6 Acido trifluoroacetico (TFA) per spettroscopia.
4. Apparecchiature
4.1 Vetreria di laboratorio.
4.2 Bilancia tecnica.
4.3 Bilancia analitica.
4.4 Omogeneizatore a lame rotanti.
4.5 Omogeneizatore ad immersione.
4.6 Centrifuga.
4.7 Unità filtro di tipo Millipore Ultrafree-MC, membrana PLGC, a
basso assorbimento, da 10.000 NMWL, o unità filtro equivalenti.
4.8 Sistema per degassaggio eluenti.
4.9 Pompa per HPLC.
4.10 Valvola d'iniezione con loop fisso.
4.11 -Sistema di termostatazione colonne.
4.12 Pre-colonna-per HPLC impaccata con 5 micron m di ODS.
4.13 Colonna analitica per HPLC (250 x 4.6 mm), impaccata con 5
micron m di ODS, termostatata a 40 C (4.11).
4.14 Rivelatore spettrofotometrico UV.
4.15 Sistema per l'acquisizione e l'elaborazione dei dati.
5. Soluzioni
5.1 Soluzione acetonitrile : acqua, 10 : 90 (v : v).
5.2 Soluzione concentrata di acido domoico (100 micron g/mL).
Pesare 0,5 mg di acido domoico (3.4) e disciogliere in 5,0 mL di
soluzione acetonitrile : acqua, 10 : 90 (v : v) (5.1).
5.3 Soluzioni di riferimento. Diluire la soluzione concentrata di
acido domoico (5.2) con soluzione acetonitrile : acqua, 10 : 90 (v :
v) (5.1) in modo da ottenere soluzioni di concentrazioni di 0,4
micron g/mL, 2,0 micron g/mL, 4,0 micron g/mL e 8,0 micron g/mL di
acido domoico.
5.4 Soluzione estraente di acqua : metanolo, 1 : 1 (v : v).
5.5 Fase mobile. Miscelare 100 mL acetonitrile (3.3) con 400 mL di
acqua (3.2); aggiungere 0,2 mL TFA (3.6), e portare a volume con
acqua (3.2) in matraccio tarato da 1000 mL Assicurare il degassaggio
della fase mobile.
6. Procedimento
6.1 Preparazione del campioni
6.1.1 Pulire esternamente, lavandoli con acqua, i molluschi da
analizzare.
6.1.2 Aprire i molluschi tagliando i muscoli adduttori e rimuovere i
tessuti molli (polpa) del mollusco dalla conchiglia. Non si devono
usare nè calore, nè anestetici prima di aprire il mollusco e nel
corso dell'operazione bisogna evitare di danneggiare o tagliare il
corpo.
6.1.3 Prelevare un campione di ca. 100 9 di polpa (6.1.2) e
trasferirlo su una retina di plastica, lasciando scolare per 5
minuti.
6.1.4 Omogeneizare il campione (6.1.3) con omogeneizzatore a lame
rotanti (4.4).
Conservare la polpa residua (6.1.3) a temperatura &lt;= -10 C.
6.2 Estrazione
6.2.1 Pesare accuratamente un'aliquota di 4 9 di campione
omogeneizzato (6.1.4) e trasferirla in un tubo da centrifuga
graduato.
6.2.2 Aggiungere all'omogeneizzato (6.2.1) 16,0 mL di soluzione
estraente (5.4) ed estrarre con omogeneizatore ad immersione (4.5)
per 3 min a 10.000 rpm.:
6.2.3 Centrifugare (4.6) l'estratto (6.2.2) a 3000 rpm per 10 min.
6.3 Ultrafiltrazione
6.3.1 Prelevare dalla fase liquida (6.2.3) un'aliquota di 0,1 mL e
trasferirla nell'unità di ultrafiltrazione (4.7).
6.3.2 Ultrafiltrare centrifugando per 30 minuti a 9000 rpm.
Note: Analizare l'estratto filtrato (6.3.2) in un breve intervallo
di tempo.
Conservare gli estratti residui (6.3.1) a temperatura &lt;= -10 C.
6.4 Determinazione HPLC-UV
6.4.1 Condizioni cromatografiche
- separazione mediante eluizione isocratica, a 40 C (4.11);
- fase mobile: (5.5);
- flusso: 1 mL/min;
- volume iniettato 20 micron L;
- rivelazione spettrofotometrica a 242 nm.
6.4.2 Costnuzione della curva di taratura.
Iniettare le soluzioni di riferimento (5.3);
costruire una curva di taratura di tipo y = ax + b,
dove: y = area del picco dell'acido domoico; x = concentrazione
della soluzione di riferimento (5.3) in micron g/mL; a = coefficiente
angolare; b = intercetta sull'asse delle y.
6.4.3 Analisi dei campioni per la ricerca di acido domoico:
iniettare 20 micron L di estratto filtrato (6.3.2) per la
determinazione HPLC-UV.
Nota: Eseguire prima di ogni serie analitica la determinazione del
"bianco- reagente", applicando l'intero metodo di analisi omettendo
la porzione di campione per l'analisi. Nel cromatogramma del
bianco-reagente non dovrebbero essere presenti picchi interferenti
con l'acido domoico, oppure presenti a livelli trascurabili.
7. Identificazione;
7.1 L'identificazione dell'acido domoico si ottiene per confronto
del tempo di ritenzione del picco del campione ed il tempo di
ritenzione del picco dello standard di acido domoico.
7.2 Per informazioni supplementari ricorrere alla co-cromatografia.
7.2.1 Ripartire l'estratto (6.3.2) in 2 aliquote:
a) su un aliquota effettuare direttamente la determinazione HPLC-UV
(6.4);
b) addizionare all'altra aliquota un volume trascurabile di
soluzione standard di acido domoico (5.2 o 5.3) in modo tale da
ottenere una concentrazione finale di acido domoico nell'estratto
pari a circa il doppio della conceratrazione che si ritiene presente
nell'estratto in esame.
7.2.2 L'identificazione del picco dell'acido domoico nell'aliquota
(7.2.1.b) è basata sulla presenza di un picco, la cui area
incrementa rispetto all'area del picco dell'estratto non addizionato
(7.2.1, a) in modo proporzionale alla quantità di analita
addizionato. La larghezza del picco (7.2.1, b), misurata a metà
altezza, deve essere 90-110 % della larghezza ottenuta per il picco
dell'estratto non addizionato (7.2.1, a) ed il tempo di ritenzione
deve coincidere con quello del picco ottenuto per l'estratto non
addizionato (7.2.1, a).
8. Determinazione
8.1 La determinazione quantitativa è realizzata mediante
interpolazione dell'area del picco dell'acido domoico nell'estratto
campione sulla curva di taratura (6.4 2).
8.2 Per campioni ad elevate concentrazioni di acido domoico è
opportuno procedere a diluizioni dell'estratto filtrato (6.3.2):
prima della determinazione cromatografica, al fine di ottenere una
concentrazione di analita compresa nell'intervallo di linearità
verificato (6.4.2).
8.3 Espressione dei risultati
La concentrazione C di acido domoico, espressa in 1l9 di acido
domoico per g di polpa, è calcolata secondo la seguente equazione:
y-b 100 V
C --- x --- x --- x D
= a Rm m
dove:
y = Area del picco di acido domoico dell'estratto campione (6.4.3).
b = Intercetta della curva (6.4.2) sull'asse delle y.
a = Coeffficiente angolare della curva di taratura (6.4.2).
Rm = Recupero medio (%), calcolato come al punto 9.2.9.
V = Volume finale dell'estratto (6.2.2).
m = Massa in g dell'aliquota di campione (6.2.1).
D = Fattore di diluizione (se è stata operata una diluizione
dell'estratto) (8.2).
9. Valutazione del metodo
9.1 Limite di rivelazione.
Il limite di rivelazione del metodo, calcolato con un S/N = 5 : 1,
è pari a 0,2 micron g di acido domoico per g di polpa.
9.2 Calcolo del recupero
9.2.1 Valutare il recupero del metodo effettuando prove di recupero
su "bianco-campione" di molluschi per il quale attraverso precedenti
determinazioni cromatografiche sia stata dimostrata l'assenza del
picco dell'acido domoico o di picchi interferenti nell'intorno del
tempo di ritenzione dell'acido domoico.
9.2.2 Preparare il bianco-campione come descritto in 6.1 fino ad
ottenere un omogeneizzato di bianco-campione.
9.2.3 Suddividere il bianco-campione omogeneizzato (9.2.2) in un
numero di aliquote corrispondenti ai livelli di fortificazione, più
un'aliquota per la prova in bianco.
9.2.4 Fortificare le aliquote (9.2.3)1 ad eccezione dell'aliquota
destinata alla prova in bianco, con ridotti volumi di soluzione
concentrata di acido domoico (5.2) in modo da ottenere in ogni
aliquota una diversa concentrazione di acido domoico (livello di
fortificazione). I livelli di firtificazione devono essere almeno 2.
9.2.5 Procedere con l'estrazione e l'analisi dei campioni
fortificati e della prova in bianco come descritto in 6.2 - 6.4.
9.2.6 Verificare l'assenza di picchi nell'intorno tempo di
ritenzione dell'acido domoico nella prova in bianco.
9.2.7 Calcolare il recupero in percentuale (R), sui campioni
fortificati, come segue:
y-b 100 V
R --- x --- x ---
= a Cf m
dove:
y = Area del picco di acido domoico dell'estratto campione (6.4.3).
b = Intercetta della curva (6.4.2) sull'asse delle y.
a = Coefficiente angolare della curva di taratura (6.4.2).
Cf = Concentrazione teorica di acido domoico nell'aliquota
di campione fortificato (9.2.4).
V = Volume finale dell'estratto (6.2.2).
m = Massa in g dell'aliquota di campione (6.2.1).
9.2.8 Eseguire le prove di recupero, per ciascun livello di
fortificazione, in triplicato, per due giorni consecutivi (n &gt;= 12).
9.2.9 Stima dell'accuratezzab precisione.
Analizzare statisticamente i valori di recupero (9.2.7) ottenuti
nelle diverse prove (9.2.8) per ottenere il recupero medio (Rm) e la
deviazione standard del metodo.
Nota: Valori indicativi di recupero medio (%) per i livelli di
fortificazione di 2 e 20 micron g/g sono rispettivamente di 91,9 +=
6,2 e 96,3 += 3,8 con un valore medio di 94,3 += 5,3..
10. Sicurezza
L'acido domoico è una neurotossina e deve essere maneggiata con
cautela.
Acetonitrile e metanolo sono solventi tossici e volatili.
L'acido trifluoroacetico è tossico, volatile e corrosivo e deve
essere maneggiato sotto cappa.
Tutte queste sostanze sono nocive se ingerite, inalate o assorbite
per via cutanea.
12. - Riferimenti
Quilliam, M. A., Xie, M., and Hardstoff, W. R. (1995) J. AOAC Int.
78, 543-554.