Serie Generale n. 197 del 24-8-1990
DECRETI, DELIBERE E ORDINANZE MINISTERIALI
MINISTERO DELLA SANITA'
MINISTERO DELLA SANITA'
DECRETO 31 luglio 1990
Modificazioni al decreto ministeriale 22 dicembre 1986 concernente modalita' di prelevamento e trattamento dei campioni di prodotti cosmetici e approvazione di alcuni metodi di analisi necessari per controllare la composizione di tali preparati. (GU Serie Generale n.197 del 24-08-1990)

IL MINISTRO DELLA SANITÀ
Vista la legge 11 ottobre 1986, n. 713, recante norme per
l'attuazione delle direttive della Comunità economica europea sulla
produzione e la vendita dei cosmetici;
Visti, in particolare, i commi 2 e 3 dell'art. 7 di detta legge, i
quali stabiliscono che il Ministro della sanità, tenendo conto delle
direttive comunitarie, determina con proprio decreto, fra l'altro, i
metodi necessari per controllare la composizione dei prodotti
cosmetici, nonchè le modalità da seguire per il prelievo dei
campioni;
Visto il decreto ministeriale 22 dicembre 1986, pubblicato nel
supplemento ordinario alla Gazzetta Ufficiale n. 18 del 23 gennaio
1987, con cui, in esecuzione delle predette disposizioni di legge,
sono state stabilite le modalità di prelevamento e trattamento dei
campioni di prodotti cosmetici e sono stati approvati alcuni metodi
di analisi necessari per controllare la composizione di tali
prodotti, secondo quanto previsto dalle direttive della
Commissione delle Comunità europee n. 80/1335/CEE del 22 dicembre
1980, n. 82/434/CEE del 14 maggio 1982, n. 83/514/CEE del 27
settembre 1983 e n. 85/490/CEE dell'11 ottobre 1985;
Considerato che con direttiva adottata il 4 aprile 1990 (direttiva
90/207/CEE) la Commissione delle Comunità europee ha apportato
modifiche al testo della citata direttiva n. 82/434/CEE;
Ritenuto di modificare, conseguentemente, il richiamato decreto
ministeriale 22 dicembre 1986;
Visti i suggerimenti tecnici forniti dall'Istituto superiore di
sanità con lettera datata 11 giugno 1990;
Decreta:
1. Il testo del capitolo IX dell'allegato 2 del decreto
ministeriale 22 dicembre 1986, pubblicato nel supplemento ordinario
alla Gazzetta Ufficiale n. 18 del 23 gennaio 1987, è sostituito dal
testo allegato al presente decreto.
2. Il presente decreto, unitamente all'allegato, che fa parte
integrante dello stesso, sarà pubblicato nella Gazzetta Ufficiale
della Repubblica italiana.
Roma, 31 luglio 1990
Il Ministro: DE LORENZO

ALLEGATO 1

IV. IDENTIFICAZIONE E DOSAGGIO DELLA FORMALDEIDE LIBERA

1. SCOPO E CAMPO DI APPLICAZIONE
Il metodo descrive l'identificazione e due dosaggi della formaldeide
libera a seconda o no della presenza di donatori di formaldeide. Esso
è applicabile a tutti i prodotti cosmetici.
1.1. Identificazione
1.2. Dosaggio colorimetrico globale con acetilacetone
Questo metodo si applica quando la formaldeide è usata da sola o con
altri conservanti che non cedano formaldeide.
In caso contrario e se il risultato ottenuto con tale metodo supera
la concentrazione massima autorizzata nel prodotto finito, si
utilizza il metodo successivo.
1.3. Dosaggio in presenza di prodotti che cedono formaldeide
Nel metodo precedente al momento della derivatizzazione le sostanze
che cedono formaldeide sono idrolizzate e conducono a risultati
troppo elevati (formaldeide libera e formaldeide liberata).
È quindi obbligatorio separare la formaldeide libera con una
cromatografia liquida.
2. DEFINIZIONE
Il contenuto di formaldeide libera nel campione determinato secondo
questo metodo viene espresso in percentuale di massa di formaldeide.
3. IDENTIFICAZIONE
3.1. Principio
In ambiente di acido solforico, la formaldeide libera e quella
combinata danno una colorazione rosa o malva in presenza di reattivo
di Schiff.
3.2. Reattivi
Tutti i reattivi devono essere di purezza analitica e l'acqua deve
essere demineralizzata.
3.2.1. Fucsina
3.2.2. Solfito di sodio eptaidrato
20
3.2.3. Acido cloridrico concentrato (d = 1,19)
4
3.2.4. Acido solforico, circa IM
3.2.5. Reattivo di Schiff
In un beker pesare 100 mg di fucsina (3.2.1), solubilizzarla alla
temperatura di 80C con 75 ml di acqua demineralizzata. Raffreddare e
aggiungere 2,5 g di solfito di sodio (3.2.2) e 1,5 ml di acido
cloridrico (3.2.3). Portare a 100 ml.
Tempo di conservazione: 2 settimane.
3.3. Modo di operare
3.3.1. Versare, in un beker da 10 ml, circa 2 g di campione.
3.3.2. Aggiungere 2 gocce di H2SO4 (3.2.4) e 2 ml di reattivo di
Schiff (3.2.5). Al momento dell'uso questo reattivo deve essere
assolutamente incolore.
Agitare e lasciare riposare per cinque minuti.
3.3.3. Se entro cinque minuti si nota una colorazione rosa o malva,
la quantità di formaldeide presente è superiore allo 0,01%.
Procedere allora al dosaggio della formaldeide libera e di quella
combinata come descritto al punto 4, ed eventualmente al punto 5.
4. DOSAGGIO COLORIMETRICO GLOBALE CON ACETILACETONE
4.1. Principio
In presenza di acetato di ammonio la formaldeide reagisce con
acetilacetone per formare la 3,5 diacetil-1,4-diidrotoluidina, che
viene estratta con n-butanolo. Si misura quindi a 410 nm l'assorbanza
dell'estratto butanolico.
4.2. Reattivi
Tutti i reattivi devono essere di purezza analitica e l'acqua deve
essere demineralizzata.
4.2.1. Ammonio acetato anidro
20
4.2.2. Acido acetico (d = 1,05)
4
4.2.3. Acetilacetone distillato di recente sotto vuoto 25 mm Hg 25o e
tale da non presentare assorbanza a 410 nm
4.2.4. n-butanolo
4.2.5. Acido cloridrico M
4.2.6. Acido cloridrico, circa 0,1 M
4.2.7. Idrossido di sodio M
4.2.8. Salda d'amido: preparata di fresco secondo la Farmacopea
europea (1 g/50 ml di acqua) 2 edizione 1980, parte I-VII-1-1
4.2.9. Soluzione di formaldeide al 37-40%
4.2.10. Soluzione titolata di iodio 0,05 M
4.2.11. Soluzione titolata di sodio tiosolfato 0,1 M
4.2.12. Reattivo all'acetilacetone
In un matraccio tarato da 1000 ml sciogliere:
- 150 g di acetato di ammonio (4.2.1)
- 2 ml di acetilacetone (4.2.3)
- 3 ml di acido acetico (4.2.2)
Portare a volume con acqua (pH della soluzione circa 6,4).
Questo reattivo deve essere stato preparato di recente.
4.2.13. Reattivo (4.2.12) senza acetilacetone
4.2.14. Soluzione di riferimento di formaldeide: soluzione madre
Introdurre 5 g di formaldeide (4.2.9) in un matraccio tarato da 1000
ml e portare a volume con acqua.
Determinare il titolo della soluzione madre:
Prelevare 10,00 ml, aggiungere 25,00 ml della soluzione titolata di
iodio (4.2.10) e 10 ml di soluzione d'idrossido di sodio (4.2.7).
Lasciare a riposo per cinque minuti.
Acidificare con 11 ml di HCI (4.2.5) e dosare l'eccesso di iodio con
una soluzione titolata di tiosolfato di sodio (4.2.11) in presenza di
salda d'amido come indicatore.
1,00 ml di soluzione di iodio (4.2.10) corrisponde a 1,5 mg di
formaldeide.
4.2.15. Soluzione di riferimento di formaldeide diluita
Pipettare 5,00 ml di soluzione 4.2.14 in un matraccio tarato da 100
ml e portare a volume con acqua.
Pipettare 5,00 ml della suddetta soluzione in un matraccio tarato da
500 ml e portare a volume con acqua.
1 ml di quest'ultima soluzione contene circa 1 (mgreco g) di
formaldeide.
Questo titolo va controllato esattamente.
4.3. Apparecchiatura
4.3.1. Materiale comune di laboratorio
4.3.2. Filtro "separatore di fasi" Whatman 1 PS o analogo
4.3.3. Centrifuga
4.3.4. Bagnomaria con termostato a 60C
4.3.5. Spettrofotometro
4.3.6. Cellette di vetro con cammino ottico di 1 cm
4.4. Modo di operare
4.4.1. Soluzione campione
In un matraccio tarato da 100 ml pesare con la precisione di 0,001 g
una quantità (m espressa in g) di campione da analizzare, tale da
contenere circa 150 (mgreco g) di formaldeide.
Portare a volume con acqua e mescolare (soluzione S). Verificare che
il pH sia prossimo a 6, in caso contrario effettuare la diluizione
nella soluzione di acido cloridrico (4.2.6).
Versare in una beuta da 50 ml:
- 10,00 ml di soluzione S
- 5,00 ml di reattivo all'acetilacetone (4.2.12)
- acqua sino ad un volume totale di 30 ml
4.4.2. Soluzione di riferimento
Le possibili interferenze di un colore di fondo presente nel campione
in esame possono essere eliminate con questa soluzione di riferimento
Porre in un beuta conica da 50 ml:
10,00 ml di soluzione S
5,00 ml del reattivo (4.2.13)
- acqua sino ad un volume totale di 30 ml
4.4.3. Soluzione per la prova in bianco
Porre in una beuta da 50 ml:
- 5,00 di reattivo all'acetilacetone (4.2.12)
- acqua sino ad un volume totale di 30 ml
4.4.4. Dosaggio
4.4.4.1. Agitare le soluzioni preparate come indicata ai punti 4.4.1,
4.4.2 e 4.4.3.
Immergere le beute in bagnomaria alla temperatura di 60C per dieci
minuti esatti.
Raffreddare poi tenendo le suddette beute per due minuti in bagno di
acqua ghiacciata.
4.4.4.2. Trasferire separatamente il contenuto di ogni beuta in un
imbuto separatore da 50 ml contenente 10,0 ml esatti di n-butanolo
(4.2.4). Lavare ogni beuta con 3-5 ml di acqua.
Agitare vigorosamente ogni imbuto separatore per 30 secondi esatti,
Lasciare decantare.
4.4.4.3. Filtrare la fase butanolica con un filtro "separatore di
fasi" (4.3.2) nelle cellette di misura.
Si può anche ricorrere ad un centrifugazione della fase organica
(3000 g per cinque minuti).
4.4.4.4. Misurare l'assorbanza A1 a 410 nm della fase organica della
soluzione (4.4.1) rispetto alla fase organica della soluzione
(4.4.2).
4.4.4.5. Analogamente misurare l'assorbanza A2 della fase organica
della soluzione (4.4.3) rispetto al n-butanolo.
NB: Queste operazioni devono avvenire entro 25 minuti dall'inizio
della termostatazione a 60C.
4.4.5. Curva di taratura
4.4.5.1. Porre in una beuta da 50 ml:
- 5,00 ml di soluzione di riferimento diluita (4.2.15)
- 5,00 ml di reattivo all'acetilacetone (4.2.12)
- acqua sino ad un volume totale di 30 ml
4.4.5.2. Continuare il procedimento analitico come descritto in
(4.4.4) e misurare l'assorbanza usando n-butanolo (4.2.4) come
riferimento.
4.4.5.3. Ripetere il procedimento con 10, 15, 20, 25 ml di soluzione
standard diluita (4.2.15).
4.4.5.4. Per ottenere il valore del punto 0 (corrispondente alla
colorazione dei reattivi) procedere come descritto al punto 4.4.4.5).
4.4.5.5. Costruire la curva di taratura dopo la sottrazione del
valore dell'assorbanza del punto 0 al valore di ogni assorbanza
ottenuta ai punti 4.4.5.1 e 4.4.5.3.
La legge Beer è rispettata per una quantità di formaldeide che non
superi i 30 (mgrecog.
4.5. Calcoli
4.5.1. Sottrarre il valore di A2 da A1 e leggere sulla curva di
taratura (4.4.5.5) la quantità C espressa in (mgrecog) di
formaldeide contenuta nella soluzione (4.4.1).
4.5.2. Il contenuto di formaldeide del campione (% m/m) si calcola
con la seguente formula:
C
% Formaldeide = ----
10(elevato a 3) x m
m: massa in grammi del campione da analizzare.
4.6. Ripetibilità (1)
Per un contenuto di formaldeide dello 0,2%, la differenza tra i
risultati di due determinazioni parallele effettuate sullo stesso
campione non deve superare 0,005% per il dosaggio colorimetrico con
acetilacetone.
Se con il dosaggio della formaldeide libera si ottengono valori
superiori a quelli previsti dalla direttiva 76/768/CEE, e cioe':
a) compresi tra 0,05% e 0,2% per prodotti non etichettati;
b) superiore allo 0,2% per prodotti etichettati o non: si deve
operare con il metodo descritto al paragrafo 5.
5. DOSAGGIO IN PRESENZA DI SOSTANZE CHE CEDONO FORMALDEIDE
5.1. Principio
La formaldeide separata per cromatografia liquida è trasformata in
derivato lutidinico con acetilacetone in un reattore postcolonna. Il
derivato formato viene identificato mediante assorbimento a 420 nm.
5.2. Reattivi
Tutti i reattivi devono essere di purezza analitica e l'acqua deve
essere demineralizzata.
5.2.1. Acqua per HPLC
5.2.2. Acetato di ammonio anidro
5.2.3. Acido scetico concentrato
5.2.4. Acetilacetone (conservato a 4C)
5.2.5. Fosfato disodico anidro
20
5.2.6. Acido ortofosforico all'85% (d = 1,7)
4
5.2.7. Metanolo
5.2.8. Diclorometano
5.2.9. Soluzione di formaldeide al 37 - 40%
5.2.10. Idrossido di sodio M
5.2.11. Acido cloridrico M
5.2.12. Acido cloridrico 0,002 M
5.2.13. Salda d'amido preparata di fresco secondo la Farmacopea
europea
5.2.14. Soluzione titolata di iodio 0,05 M
5.2.15. Soluzione titolata di sodio tiosolfato 0,1 M
5.2.16. Fase mobile
Soluzione acquosa di fosfato disodico (5.2.5) 0,006 M portata a pH
2,1 con acido ortofosforico (5.2.6).
5.2.17. Reattivo postcolonna
Disciogliere in una beuta tarata da 1000 ml:
- 62,5 g di acetato di ammonio (5.2.2)
- 7,5 ml di acido acetico (5.2.3)
- 5 ml di acetilacetone (5.2.4)
Portare a volume con acqua (5.2.1).
Mantenere questo reattivo al riparo della luce a 25C (conservazione:
3 giorni): non si devono evidenziare cambi di colore.
5.2.18. Soluzione di riferimento di formaldeide: soluzione madre
In un matraccio tarato da 1000 ml, introdurre 10 g di soluzione di
formaldeide (5.2.9) e portare a volume con acqua. Determinazione del
titolo in formaldeide di tale soluzione:
Prelevare 5,00 ml, aggiungere 25,00 ml della soluzione titolata di
iodio (5.2.14) e 10 ml di soluzione di idrossido di sodio (5.2.10).
Lasciare a riposo per cinque minuti. Acidificare con 11 ml di HCl
(5.2.11) e titolare l'eccesso di iodio con una soluzione titolata di
sodio tiosolfato (5.2.15) usando come indicatore salda d'amido
(5.2.13).
1,00 ml di soluzione di iodio 0,1 N corrisponde a 1,5 mg di
formaldeide.
(1) Secondo la norma ISO 5725.
5.2.19. Soluzione di riferimento di formaldeide: soluzione diluita
Diluire a 1/100 la soluzione madre nella fase mobile (5.2.16).
1 ml di tale soluzione contiene circa 37 (mgrecog) di formaldeide.
Questo titolo va controllato esattamente.
5.3. Apparecchiatura
5.3.1. Materiale comune di laboratorio
5.3.2. Una pompa HPLC senza pulsazioni
5.3.3. Una pompa a bassa pressione senza pulsazioni per il reattivo
(o una seconda pompa HPLC avente le stesse caratteristiche della
prima)
5.3.4. Una valvola di iniezione munita di un loop da 10 (mgrecol)
5.3.5. Il reattore postcolonna è costituito dai seguenti componenti:
un pallone a tre colli da 1 1
+ un riscaldatore per palloni da 1 1
+ 2 colonne Vigreux con un minimo di 10 piatti (refrigerante ad aria)
+ tubo inox (per scambio termico) da 1,6 mm - (diametro) interno 0,23
mm; L = 400 mm
+ tubo in Teflon da 1,6 mm - (diametro) interno 0,30 mm; L = 5 m
(vedere allegato 1)
+ 1 raccordo a T senza volume morto (Valco o equivalente)
+ 3 raccordi Union senza volume morto
È possibile utilizzare un modulo postcolonna (Applied Biosystems
PCRS 520 o equivalente) munito di un reattore da 1 ml.
5.3.6. Membrana filtrante da 0,45 (mgrecom) (Gelman o equivalente)
5.3.7. Cartuccia filtrante SEP PAK (R) C 18 o equivalente
5.3.8. Colonne pronte per l'uso
- Bischoff hypersil RP 18 (tipo NC rif C 25,46 1805)
(5 (mgrecom) - L = 250 mm - (diametro) interno = 4,6 mm), oppure
Dupont, Zorbax ODS (5 (mgrecom) - L = 250 mm - (diametro) interno =
4,6 mm), oppure Phase SEP, spherisorb ODS 2 (5 (mgrecom) - L = 250 mm
- (diametro) interno = 4,0 mm)
5.3.9. Precolonna
- Bischoff K, hypersil RP 18 (Rif K, G 6301 1805)
5 (mgrecom) - L = 10 mm, o equivalente
5.3.10. La colonna e la precolonna sono collegate con un sistema
Ecotube (rif. A 15020508 Bischoff) equivalente.
5.3.11. Effettuare il montaggio dell'apparecchiatura 5.3.5 secondo lo
schema riportato nell'appendice 2
I collegamenti dopo la valvola ad iniezione devono essere i più
corti possibile. In questo caso il tubo inossidabile inserito tra
l'uscita del reattore e l'entrata del rivelatore ha lo scopo di
raffreddare la miscela prima della rivelazione, La temperatura non è
nota, ma costante.
5.3.12. Rivelatore UV visibile
5.3.13. Registratore
5.3.14. Centrifuga
5.3.15. Bagno ad ultrasuoni
5.3.16. Agitatore oscillante (tipo Vortex o equivalente)
5.4. Modo di operare
5.4.1. Curva di taratura
Viene effettuata usando il valore dell'altezza dei picchi ottenuti in
funzione delle concentrazioni corrispondenti. Si preparano le
soluzioni standard per diluizione della soluzione di riferimento di
formaldeide (5.2.19) con la fase mobile (5.2.16).
- 1,00 ml di soluzione di riferimento (5.2.19) diluita a 20,00 ml
corrisponde a circa 185 (mgrecog)/100 ml
- 2,00 ml di soluzione di riferimento (5.2.19) diluita a 20,00 ml
corrisponde a circa 370 (mgrecog)/100 ml
- 5,00 ml di soluzione di riferimento (5.2.19) diluita a 25,00 ml
corrisponde a circa 740 (mgrecog)/100 ml
- 5,00 ml di soluzione di riferimento (5.2.19) diluita a 20,00 ml
corrisponde a circa 925 (mgrecog)/100 ml
Le soluzioni standard sono conservate per circa un'ora alla
temperatura di laboratorio e devono essere preparate di recente.
Si ha una buona linearità della curca di taratura per concentrazioni
comprese fra 100 e 1500 (mgrecog)/100 ml.
5.4.2. Preparazione dei campioni
5.4.2.1. Emulsioni (creme - fondi tinta - eyelliners)
Pesare in una beuta tappata da 100 ml con la precisione di 0,001 g,
una massa (m) del campione da esaminare (in g) corrispondente ad una
quantità di formaldeide che si suppone di circa 100 ug.
Aggiungere 20,00 ml di diclorometano (5.2.8) e 20,00 ml di acido
cloridrico (5.2.12).
Mescolare con l'agitatore oscillante (5.3.16) e con gli ultrasuoni
(5.3.15). Separare le due fasi per centrifugazione (3000 g per 2
minuti).
Lavare quindi una cartuccia filtrante (5.3.7) con 2,00 ml di metanolo
(5.2.7) e condizionarla con 5 ml di acqua (5.2.1). Far passare 4 ml
della fase acquosa dell'estratto attraverso la cartuccia
condizionata, eliminare i primi 2 ml e recuperare la frazione
successiva.
5.4.2.2. Lozioni e shampoo
Pesare con la precisione di 0,001 g una massa (m) del campione in
esame (in g) corrispondente ad una quantità di formaldeide che si
suppone di circa 500 (mgrecog).
Completare a 100 ml con la fase mobile (5.2.16) filtrare la soluzione
su un filtro (5.3.6) e iniettarla o farla passare attraverso una
cartuccia (5.3.7) come descritto precedentemente al 5.4.2.1. Tutte le
soluzioni vanno iniettate subito dopo essere state preparate.
5.4.3. Condizioni cromatografiche
- Flusso della fase mobile: 1 ml/min
- Flusso del reattivo: 0,5 ml/min
- Flusso totale all'uscita del rivelatore: 1,5 ml/min
- Volume iniettato: 10 (mgrecol)
- Temperatura di eluizione: nelle separazioni difficili la colonna è
immersa in un bagno di ghiaccio fondente: attendere che si raggiunga
l'equilibrio termico.
- Temperature di reazione postcolonna: 100C
- Rivelazione: 420 nm
NB: Dopo l'uso il gruppo sistema cromatografico e postcolonna deve
essere sciacquato con acqua 5.2.1. Nel caso di arresto di più di due
giorni a tale risciacquo deve seguirne un altro effettuato con
metanolo. Prima di ricondizionare il sistema effettuare un passaggio
con acqua per evitare ricristalizzazioni.

5.5. Calcolo
Emulsioni (5.4.2.1.)
Tenore di formaldeide % (m/m):
C x (10 elevato alla - 3) x 100 = C x (10 elevato alla - 4)
------------------------------- ------------------------
5 x m 5 x m

Lozioni e shampoo (5.4.2.2.)
Tenore in formaldeide % (m/m):
C x (10 elevato alla - 6) 100 = C x (10 elevato alla - 4)
----------------------------- ------------------------
m m
dove:
m = massa in g del campione in esame:
C = concentrazione in (mgrecog)/100 ml in formaldeide letta sulla
curca di taratura (5.4.1).
5.6. Ripetibilità (1)
Per un tenore di formaldeide dello 0,2% la differenza tra i risultati
di due dosaggi paralleli effettuati su un medesimo campione non deve
superare lo 0,005%.
Per un tenore di formaldeide dello 0,05%, la differenza tra i
risultati di due dosaggi paralleli effettuati su un medesimo campione
non deve superare lo 0,001%.
(1) Secondo la norma ISO 5725.
Appendice 1

PREPARAZIONE DELLA CAMERA DI REAZIONE MEDIANTE BOBINA DI LEGNO A

TUBO DI TEFLON ("TRICOTIN")

ACCESSORI NECESSARI PER LA REALIZZAZIONE DEL "TRICOTIN"
- 1 bobina di legno:
diametro esterno di 5 cm con al centro un foro da 1,5 cm. Piantare 4
chiodi di acciaio equidistanti fra di loro (vedere lo schema della
bobina in figura 1 e figura 2) in modo che ogni chiodo disti da
quello adiacente 1,8 cm e sia piantato a 0,5 cm di distanza dalla
circonferenza del foro.
- 1 asta rigida (del tipo ad uncino) per realizzare gli occhielli con
il tubo di Teflon.
- Tubicino di Teflon da 1,6 mm - (diametro) interno: 0,3 mm -
lunghezza: 5 m.

REALIZZAZIONE DEL "TRICOTIN"
Per realizzare il "Tricotin" occorre infilare il tubo di Teflon
dall'alto verso il basso nel foro centrale della bobina (lasciandolo
fuoriuscire dall'estremità inferiore della bobina di circa 10 cm;
ciò consentirà di tirare leggermente la catenella durante la
confezione); avvolgere quindi il tubicino attorno a ciascuno dei 4
chiodi per fare il primo giro (vedi figura 3).
L'entrata e l'uscita del Tricotin saranno provviste di ferule e di
viti di compressione, avendo cura di non schiacciare il Teflon quando
si effettua l'aggraffatura.
A partire dal secondo giro far passare il tubicino all'esterno di
ciascun chiodo per poter formare un occhiello nel modo seguente:
- far passare con l'aiuto dell'asta rigida il tubicino del giro
inferiore sul tubicino del giro superiore (vedi figura 4).
Ripetere l'operazione su ciascun chiodo rispettando l'ordine 1-2-3-4
fino a 5 m o alla lunghezza desiderata.
Lasciare circa 10 cm di tubo per chiudere la catenella. Passare il
tubo in ciascuno dei quattro occhielli e tirare leggermente: la
catenella si chiude.
NB: Esiste sul mercato un Tricotin confezionato per le reazioni
postcolonna.

----&gt; Vedere Immagini da Pag. 14 a Pag. 15 della G.U. &lt;----