identificadas e em seguida determinadoo estado fisiologico (nuliparas ou pariparas), puxando-se os ultimos segmentosabdominais com ajuda de estiletes (Kamm & Ritcher, 1972). As femeasnuliparas, sao virgens que ainda nao produziram ovos, as pariparas jarealizaram repasto sanguineo anterior e ja produziram ovos (Detinova, 1968).Apos a analise do estado fisiologico, os simulideos eram colocados em tubos deensaio com alcool 70%, sendo etiquetados (data, local, hora, estadofisiologico, topologia de picada) para estudos posteriores em laboratorio.No laboratorio era retirado todo o alcool contido no tubo deensaio, onde encontravam-se as femeas coletadas, com ajuda de uma pipeta, sendoas femeas lavadas posteriormente, com agia destilada, para retirar o excesso dealcool, em seguida, retirava-se a agua destilada e era adicionada ahematoxilina acida para a coloracao por periodo de 48 horas. Este metodo visanao so a coloracao dos musculos dos simulideos, como tambem a colocacao dasfilarias (Nelson, 1958). Passando este periodo, retirava-se a hematoxilina comajuda de uma pipeta e sendo lavados novamente com agua destilada, sendoposteriormente retirada a agua e estando os exemplares prontos para disseccao epreparo das laminas.As disseccoes foram feitas utilizando-se estiletes finos,onde os simulideos foram divididos em tres partes (cabeca, torax e abdomen)colocadas sobre tres pequenas gotas de glicerina (uma parte do exemplar paracada gota) sobre uma lamina para a retirada das cuticulas, deixando-se apenasos musculos e partes internas, sendo em seguidas postas as laminulas. A laminaestava pronta para leitura e identificacao da presenca de filarias e seusestadios (Davies & Crosskey, 1991).A leitura das laminas foi feita sob microscopio optico, ondese constatava se as femeas estavam ou nao infectadas por microfilarias. Aidentificacao das fases de tanto da O. volvulus como da M.ozzardi (MF, L1, L2, L3) foi feitasegundo Ramirez-Perez (1977). Apos a avaliacao da lamina, os dados referentes apresenca ou nao de O. volvulus / M.ozzardi, eram anotados os resultadosem planilha.Apos a identificacao dos estadios larvais (MF, L1,L2, L3), era obtida, para cada localidade estudada, aTaxa de Infeccao Parasitaria (TIP). A TIP era obtida a partir das seguintesformulas: Figura 1. Formulas para calcular as Taxas (TIP1 /TIP2).RESULTADOSDENSIDADE DE PICADASA densidade de picadas das femeas de simulideos, foiobservada durante os oito dias de coletas, totalizando 11.074 femeas capturadasna somatoria dos resultados das oito localidades estudadas. Densidade de picadae definida como sendo o numero femeas capturadas em atividade de picada porunidade de tempo (Narbaiza, 1987).Dastres especies capturadas, nas oito localidades estudadas, a especie Cerqueirellumoyapockense foi a mais abundante, exercendo maior densidade de picadaem todas as oito areas coletadas, com um total de 11.051 (99,8%) das femeascapturadas. A especie Psaroniocompsa incrustata apresentouapenas 17 exemplares (0,15%) coletados, apenas na localidade Maloca Paapiu. Thyrsopelmaguianense foram coletados apenas 6 exemplares (0,05%), sendo cinco nalocalidade do Alto Mucajai (Missao Mucajai) e um (1) exemplar na regiao deWaikas (Tabela 3.)Tabela 3. Distribuicao e percentual de coleta dastres especies de simulideos coletadas nas oito localidades estudadas na TerraIndigena Yanomami (Ye kuana).Em Waikas, a especie C. oyapockense, mostrouatividade de picada durante todo o dia, com maior pico no horario de 13:30h. Amenor atividade de picada foram nos periodo de 06:00h e 18:15h. A outra especiecoletada nesta localidade foi T. guianense, onde apenas foicoletado um exemplar no periodo