El objetivo de este estudio fue determinar la distribución sanguínea de linfocitos T CD4, CD8, LT γδ (WC1) en carneros infectados experimentalmente con Brucella ovis. Se utilizaron 18 carneros de 1 a 4 años y libres de B. ovis distribuidos en tres grupos: Control (n=6); Inoculado en las mucosas ocular y prepucial (n=6); Inoculados vía endovenosa (n=6). Se realizó el seguimiento serológico desde el día de la inoculación hasta el 189 dPI (día pos-inoculación). Se inmunotipificaron las poblaciones de linfocitos CD4 y CD8 a los 120, 150 y 189 y de WC1 (linfocitos Tγδ) a los 120 dPI por citometría de flujo. Los carneros, a partir del tercer dPI comenzaron a seroconvertir; a los 21 y 28 dPI todos los animales de los grupos inoculados por vía endovenosa y mucosa, respectivamente, resultaron positivos; asimismo, el 50% de los animales de los grupos desafiados se presentaron como positivos o sospechosos a la prueba de ELISA a los 189 dPI. Se encontraron diferencias en las Medias de Intensidad de Fluorescencia (MIF) de los linfocitos CD8 entre el grupo control (1027.4) y el grupo inoculado por vía endovenosa (499.6) a los 120 dPI (p<0.05) y en las MIF de los linfocitos CD4 entre grupos a los 189 dPI (p<0.05). Las poblaciones linfocitarias T γδ (WC1) presentaron diferencias en MIF entre el grupo control y los grupos inoculados a los 120 dPI (p<0.05). Los resultados indican que B. ovis puede modular la respuesta inmune del hospedero, que los linfocitos CD4 y CD8 son importantes para la defensa del hospedero ante esta infección, y que las poblaciones de CD4 como de CD8 pueden fluctuar durante el periodo de infección por B. ovis. Así mismo, la participación de los linfocitos T γδ podría ser un factor importante en el control de la infección causada por B. ovis

The objective of this study was to determine the blood distribution of CD4, CD8, and T γδ lymphocytes (WC1) in rams experimentally infected with Brucella ovis. Eighteen rams from 1 to 4 years old and free from B. ovis were distributed in three groups: Control (n=6); Inoculated in the ocular and preputial mucosa (n=6); Inoculated intravenously (n=6). Serological follow-up was carried out from the day of inoculation until 189 dPI (post-inoculation day). CD4 and CD8 lymphocyte populations were immunotyped at 120, 150 and 189 and WC1 (Tγδ lymphocytes) at 120 dPI by flow cytometry. The rams, from the third dIP began to seroconvert; at 21 and 28 dPI all animals of the inoculated intravenously and in the mucosa groups, respectively, were positive; likewise, 50% of the animals of the challenged groups were presented as positive or suspect to the ELISA test at 189 dPI. Differences were found in the Mean Fluorescence Intensity (MFI) of the CD8 lymphocytes between the control group (1027.4) and the group inoculated intravenously (499.6) at 120 dPI (p<0.05) and in the MFI of the lymphocytes CD4 between groups at 189 dPI (p<0.05). The T γδ lymphocyte populations (WC1) presented differences in MFI between the control group and the groups inoculated at 120 dPI (p<0.05). The results indicated that B. ovis can modulate host immune response, that CD4 and CD8 lymphocytes are important for host defence against this infection, and that populations of CD4 and CD8 can fluctuate during the period of B. ovis infection. Besides, the participation of T γδ lymphocytes could be an important factor in the control of the infection caused by B. ovis