1)

w załączniku II wprowadza się następujące zmiany: a) w rozdziale II wprowadza się następujące zmiany: (i) w sekcji A pkt 2 lit. e) otrzymuje brzmienie: „e) Jaja muszą być: (i) często zbierane, przynajmniej raz dziennie, jak najszybciej po ich zniesieniu; (ii) jak najszybciej oczyszczone i zdezynfekowane, chyba że dezynfekcja ma miejsce w wylęgarni w tym samym państwie członkowskim; (iii) umieszczone w nowym lub czystym i zdezynfekowanym opakowaniu.”; (ii) w sekcji B pkt 2 lit. e) tiret pierwsze otrzymuje brzmienie: „— jaja, w okresie między momentem ich przywozu do wylęgarni a procesem inkubacji lub w czasie ich wysyłki na handel wewnątrz Unii lub wywozu do państwa trzeciego, chyba że były one wcześniej zdezynfekowane w zakładzie hodowli pochodzenia.”; b) rozdziały III i IV otrzymują brzmienie: „ROZDZIAŁ III PROGRAM NADZORU CHOROBY Bez uszczerbku dla środków ochrony zdrowia oraz dla art. 16 i 17, program nadzoru choroby musi przynajmniej obejmować nadzór nad zakażeniami i gatunkami wymienionymi w sekcjach A–D. A. Zakażenia Salmonellą pullorum (1), Salmonellą Gallinarum (2) i Salmonellą arizonae (3) 1. Gatunki, których dotyczą zakażenia: a) Salmonellą Pullorum i Salmonellą Gallinarum: kury domowe, indyki, perliczki, przepiórki, bażanty, kuropatwy i kaczki; b) Salmonellą arizonae: indyki. 2. Program nadzoru choroby a) Testy serologiczne lub bakteriologiczne są stosowane do określenia, czy zakażenie wystąpiło (4). b) Próbki do testów są pobierane, w zależności od przypadku, z krwi, zarodków, które się nie wykluły (tj. zarodków zmarłych w skorupce), od kurcząt drugiej kategorii, ze smółki, z poubojowych tkanek, szczególnie wątroby, śledziony, jajnika/jajowodów i połączenia krętniczo-kątniczego (5). c) W przypadku próbek kału/smółki i jelita należy zastosować bezpośrednie wzbogacanie podłoża bulionem z seleninem i cysteiną. W przypadku próbek (takich jak zarodki zmarłe w skorupce), w których poziom konkurencyjnej flory jest minimalny, można zastosować wstępne, nieselektywne wzbogacanie podłoża, a następnie wzbogacanie selektywne bulionem RVS wg Rappaport-Vassiliadis z soją lub bulionem MKTTn wg Mullera-Kauffmanna z czterotionianem i nowobiocyną (6), (7). d) Kiedy próbki krwi pobierane są ze stada do badań serologicznych na Salmonellę Pullorum i Salmonellę Gallinarum lub Salmonellę arizonae, informacja na temat rozpowszechniania się choroby w danym państwie członkowskim i jej dotychczasowa częstotliwość występowania w zakładzie jest udostępniana dla określenia liczby próbek do pobrania. Niemniej jednak, aby wykryć zakażenie, zawsze musi zostać pobrana statystycznie istotna liczba próbek do badań serologicznych lub bakteriologicznych. e) Stada muszą być kontrolowane w każdym okresie nieśności, w najlepszym czasie do wykrycia choroby. f) Próbki do badań bakteriologicznych nie mogą być pobierane od drobiu lub z jaj, wobec których zastosowano przeciwdrobnoustrojowe produkty lecznicze na 2–3 tygodnie przed badaniem. g) Techniki wykrywania muszą umożliwić rozróżnienie reakcji serologicznej na zakażenie Salmonellą Pullorum i Salmonellą Gallinarum od reakcji serologicznej spowodowanej szczepionką przeciwko Salmonelli Enteritidis, w przypadku gdy zastosowano tę szczepionkę (8). Nie wolno zatem stosować takiej szczepionki, jeśli ma być wprowadzone monitorowanie serologiczne. Jeżeli zastosowano szczepionkę, musi zostać przeprowadzone badanie bakteriologiczne, ale metoda potwierdzenia musi umożliwić rozróżnienie żywych szczepów szczepionkowych od szczepów dzikich. B. Zakażenia bakterią Mycoplasma gallisepticum i Mycoplasma meleagridis 1. Gatunki, których dotyczą zakażenia: a) bakterią Mycoplasma gallisepticum: kury domowe i indyki; b) bakterią Mycoplasma meleagridis: indyki. 2. Program nadzoru choroby a) Obecność zakażenia musi zostać zbadana w drodze zatwierdzonych badań serologicznych, bakteriologicznych lub molekularnych. Obecność zmian w worku powietrznym u jednodniowych piskląt i młodych indyków sugeruje wystąpienie zakażenia Mycoplasma i wymaga dalszej analizy. b) Próbki do badań na obecność zakażenia bakterią Mycoplasma muszą być pobrane, odpowiednio, z krwi, od jednodniowych piskląt i młodych indyków, z nasienia, lub z wymazu pobranego z tchawicy, kloaki lub worka powietrznego; w szczególności próbki do badania na obecność bakterii Mycoplasma meleagridis muszą być pobrane z jajowodu lub prącia indyka. c) Badania na obecność bakterii Mycoplasma gallisepticum lub Mycoplasma meleagridis są przeprowadzane na reprezentatywnej próbce, aby umożliwić stały nadzór nad zakażeniem w czasie chowu i w okresie nieśności, tj. tuż przed rozpoczęciem okresu nieśności i później co trzy miesiące. C. Wyniki i wprowadzane środki Jeżeli żaden ptak nie wykazuje reakcji dodatniej, wynik badania uważa się za ujemny. W przeciwnym razie istnieje podejrzenie choroby w stadzie i należy zastosować środki określone w rozdziale IV. D. W przypadku gospodarstw składających się z przynajmniej dwóch oddzielnych jednostek produkcyjnych, właściwy organ weterynaryjny może odstąpić od środków określonych w pkt 3 lit. b) rozdziału IV wymaganych do przywrócenia zatwierdzenia w odniesieniu do wolnych od choroby jednostek produkcyjnych w gospodarstwie, które jest zakażone, pod warunkiem że zatwierdzony lekarz weterynarii potwierdzi, że struktura i wielkość tych jednostek produkcyjnych i podjęte w nich działania zapewniają zupełnie oddzielne urządzenia do zakwaterowania i karmienia tak, aby choroba, o której mowa, nie mogła się przenosić z jednej jednostki produkcyjnej do drugiej. ROZDZIAŁ IV KRYTERIA ZAWIESZENIA LUB COFNIĘCIA ZEZWOLENIA DLA ZAKŁADU 1. Zezwolenie przyznane dla zakładu jest zawieszane w przypadku: a) gdy warunki ustanowione w rozdziale II nie są już spełniane; b) gdy nie zostało zakończone dochodzenie właściwe danej chorobie: jeżeli: — istnieje podejrzenie, że w zakładzie wystąpiło ognisko grypy ptaków lub rzekomego pomoru drobiu, — zakład otrzymał drób lub jaja wylęgowe z gospodarstwa podejrzanego o wystąpienie ogniska grypy ptaków lub rzekomego pomoru drobiu lub w którym ognisko takie wystąpiło, — ujawnił się kontakt odpowiedzialny za przenoszenie zakażenia między zakładem a ogniskiem grypy ptaków lub rzekomego pomoru drobiu; c) do czasu wykonania nowych badań, jeśli wyniki nadzoru przeprowadzonego zgodnie z warunkami ustanowionymi w rozdziale II i III na zakażenie Salmonellą Pullorum, Salmonellą Gallinarum, Salmonellą arizonae, bakterią Mycoplasma gallisepticum lub Mycoplasma meleagridis dały powód do podejrzenia wystąpienia ogniska; d) do czasu zakończenia wprowadzania właściwych środków wymaganych przez urzędowego lekarza weterynarii, jeśli stwierdzi się, że zakład nie spełnia wymogów rozdziału I pkt 1 lit. a), b) i c). 2. Zezwolenie powinno być cofnięte, jeżeli: a) potwierdzono, że w zakładzie wystąpiło ognisko grypy ptaków lub rzekomego pomoru drobiu; b) drugie badanie odpowiedniego typu potwierdza wystąpienie ogniska zakażenia Salmonellą Pullorum, Salmonellą Gallinarum, Salmonellą arizonae, bakterią Mycoplasma gallisepticum lub Mycoplasma meleagridis; c) po drugim ostrzeżeniu osoby odpowiedzialnej za zakład przez urzędowego lekarza weterynarii nie zostały podjęte działania, by doprowadzić zakład do stanu zgodnego z wymogami rozdziału I pkt 1 lit. a), b) i c). 3. Warunki przywrócenia zezwolenia: a) jeśli zezwolenie zostało cofnięte z powodu wystąpienia grypy ptaków lub rzekomego pomoru drobiu, może być ono przywrócone 21 dni po przeprowadzeniu czyszczenia i dezynfekcji, w przypadku jeśli został przeprowadzony ubój sanitarny; b) jeśli zezwolenie zostało cofnięte w wyniku wystąpienia ogniska spowodowanego przez: — Salmonellę Pullorum i Salmonellę Gallinarum lub Salmonellę arizonae, może zostać ono przywrócone po otrzymaniu negatywnych wyników podczas dwóch badań przeprowadzonych w zakładzie w odstępie co najmniej 21 dni po sanitarnym uboju zakażonego stada i po dezynfekcji, której skuteczność została sprawdzona odpowiednim badaniem na suchej powierzchni, — bakterię Mycoplasma gallisepticum lub Mycoplasma meleagridis, może zostać ono przywrócone po otrzymaniu negatywnych wyników odnotowanych podczas dwóch badań przeprowadzonych na całym stadzie w odstępie co najmniej 60 dni lub po otrzymaniu negatywnych wyników podczas dwóch badań przeprowadzonych w zakładzie w odstępie co najmniej 21 dni po dezynfekcji przeprowadzonej po sanitarnym uboju całego zakażonego stada.”;