2.

Sorveglianza dei sierotipi di Salmonella di pertinenza per la sanità animale 2.1. Identificazione dell’infezione da parte degli agenti: a) Salmonella Pullorum: comprende Salmonella enterica, sottospecie enterica serovar Gallinarum variante biochimica (biovar) Pullorum; b) Salmonella Gallinarum: comprende Salmonella enterica, sottospecie enterica serovar Gallinarum variante biochimica (biovar) Gallinarum; c) Salmonella arizonae: comprende Salmonella enterica sottospecie arizonae sierogruppo K (O18) arizonae. 2.2. Specie bersaglio di pollame: a) per Salmonella Pullorum e Salmonella Gallinarum: Gallus gallus, Meleagris gallopavo, Numida meleagris, Coturnix coturnix, Phasianus colchicus, Perdix perdix, Anas spp; b) per Salmonella arizonae: Meleagris gallopavo. 2.3. Esami: ciascun gruppo deve essere sottoposto ad esame clinico ad ogni periodo di deposizione o produzione nel momento più opportuno per l’individuazione della malattia in questione. 2.4. Matrice di campionamento: a) devono essere prelevati campioni da ciascun gruppo nello stabilimento che detiene pollame, a seconda dei casi: i) per le prove sierologiche: sangue; ii) per le prove batteriologiche: — tessuti prelevati post mortem, in particolare fegato, milza, ovaia, ovidotto e giunzione ileocecale, — campioni ambientali, — tamponi cloacali di volatili vivi, in particolare prelevati da quelli che sembrano malati o che sono stati identificati come altamente sieropositivi; b) campioni da prelevare nell’incubatoio per le prove batteriologiche: i) pulcini che non nascono (vale a dire gli embrioni morti nel guscio); ii) pulcini di seconda scelta; iii) meconio di pulcini; iv) calugine o polvere dalle incubatrici e dalle pareti dell’incubatoio. 2.5. Base di campionamento e frequenza di campionamento: a) nello stabilimento che detiene pollame: i) campionamento per Salmonella Pullorum e Salmonella Gallinarum: Specie Tempo del campionamento Numero di volatili da sottoporre a campionamento/numero di campioni ambientali Pollame riproduttore Pollame da reddito Gallus gallus, Meleagris gallopavo, Numida meleagris, Coturnix coturnix, Phasianus colchicus, Perdix perdix e Anas spp Prima che inizi la deposizione Durante la produzione almeno una volta all’anno 60 ii) campionamento per Salmonella arizonae: Specie Tempo del campionamento Numero di volatili da sottoporre a campionamento/numero di campioni ambientali Pollame riproduttore Pollame da reddito Meleagris gallopavo Prima che inizi la deposizione Durante la produzione almeno una volta all’anno 60 iii) il numero di volatili da sottoporre a campionamento conformemente ai punti i) e ii) può essere adattato dall’autorità competente in funzione della prevalenza conosciuta dell’infezione nello Stato membro interessato e della sua incidenza in passato nello stabilimento. In ogni caso occorre sempre prelevare un numero statisticamente valido di campioni per le prove sierologiche/batteriologiche per rilevare l’infezione; b) nell’incubatoio i campioni devono essere prelevati ed esaminati almeno una volta ogni sei settimane. La prove devono almeno comprendere: i) un campione aggregato di calugine e meconio di pulcini di ciascuna incubatrice; e ii) un campione di: — 10 pulcini di seconda scelta e 10 pulcini morti nel guscio di ogni gruppo di origine presente in un’incubatrice il giorno del prelievo dei campioni, o — 20 pulcini di seconda scelta di ogni gruppo di origine presente in un’incubatrice il giorno del prelievo dei campioni. 2.6. Trattamento dei campioni e metodi di prova: a) i campioni prelevati devono essere sottoposti a: i) prove sierologiche (1); ii) prove batteriologiche in alternativa o in aggiunta alle prove sierologiche di cui al punto i); i campioni per le prove batteriologiche non vanno tuttavia prelevati da pollame o uova che sono stati trattati con medicinali antimicrobici dalle due alle tre settimane precedenti le prove; b) i campioni prelevati devono essere trattati nel modo seguente: i) arricchimento diretto in brodo selenite-cisteina per i campioni fecali/di meconio e intestinali o altri mezzi adeguati qualora sia prevista competizione tra la flora nei campioni; ii) pre-arricchimento non selettivo seguito da un arricchimento selettivo in brodo di soia Rappaport Vassiliadis (RVS) o in brodo di Müller-Kauffmann al tetrationato-novobiocina (MKTTn) qualora sia prevista una competizione minima tra la flora nei campioni (ad esempio gli embrioni morti nel guscio); iii) isolamento diretto in piastra in un agar minimamente selettivo, come l’agar MacConkey, di tessuti prelevati asetticamente; iv) la Salmonella Pullorum e la Salmonella Gallinarum non crescono facilmente nel mezzo semisolido modificato Rappaport Vassiliadis (MSRV) utilizzato per il monitoraggio della Salmonella spp. zoonotica nell’Unione, ma tale mezzo è adatto per la Salmonella arizonae; v) le tecniche di rilevamento devono essere in grado di distinguere le risposte sierologiche all’infezione da Salmonella Pullorum e Salmonella Gallinarum dalle risposte sierologiche causate dall’impiego del vaccino contro la Salmonella Enteritidis, qualora sia usato tale vaccino (2). Non si deve pertanto utilizzare questo tipo di vaccino se si prevede un monitoraggio sierologico. Se è stata effettuata la vaccinazione, vanno impiegate prove batteriologiche, ma il metodo di conferma usato deve essere in grado di distinguere tra ceppi vaccinali vivi e ceppi di campo. 2.7. Risultati: un gruppo è considerato positivo se, dopo aver ottenuto risultati positivi alle prove effettuate conformemente ai punti da 2.3 a 2.6, una seconda prova appropriata conferma l’infezione da parte degli agenti patogeni.