1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 1
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►B VERORDNUNG (EWG) Nr. 2568/91 DER KOMMISSION
vom 11. Juli 1991
über die Merkmale von Olivenölen und Oliventresterölen sowie die Verfahren zu ihrer Bestim-
mung
(ABl. L 248 vom 5.9.1991, S. 1)
Geändert durch:
Amtsblatt
Nr. Seite Datum
►M1Verordnung (EWG) Nr. 3682/91 der Kommission vom 17. Dezember
1991L 349 36 18.12.1991
►M2Verordnung (EWG) Nr. 1429/92 der Kommission vom 26. Mai 1992 L 150 17 2.6.1992
►M3Verordnung (EWG) Nr. 1683/92 der Kommission vom 29. Juni 1992 L 176 27 30.6.1992
►M4Verordnung (EWG) Nr. 1996/92 der Kommission vom 15. Juli 1992 L 199 18 18.7.1992
►M5Verordnung (EWG) Nr. 3288/92 der Kommission vom 12. November
1992L 327 28 13.11.1992
►M6Verordnung (EWG) Nr. 183/93 der Kommission vom 29. Januar 1993 L 22 58 30.1.1993
►M7geändert durch die Verordnung (EWG) Nr. 826/93 der Kommission
vom 6. April 1993L 87 6 7.4.1993
►M8Verordnung (EWG) Nr. 620/93 der Kommission vom 17. März 1993 L 66 29 18.3.1993
►M9Verordnung (EG) Nr. 177/94 der Kommission vom 28. Januar 1994 L 24 33 29.1.1994
►M10Verordnung (EG) Nr. 2632/94 der Kommission vom 28. Oktober 1994 L 280 43 29.10.1994
►M11Verordnung (EG) Nr. 656/95 der Kommission vom 28. März 1995 L 69 1 29.3.1995
►M12Verordnung (EG) Nr. 2527/95 der Kommission vom 27. Oktober 1995 L 258 49 28.10.1995
►M13Verordnung (EG) Nr. 2472/97 der Kommission vom 11. Dezember 1997 L 341 25 12.12.1997
►M14Verordnung (EG) Nr. 282/98 der Kommission vom 3. Februar 1998 L 28 5 4.2.1998
►M15Verordnung (EG) Nr. 2248/98 der Kommission vom 19. Oktober 1998 L 282 55 20.10.1998
►M16Verordnung (EG) Nr. 379/1999 der Kommission vom 19. Februar 1999 L 46 15 20.2.1999
►M17Verordnung (EG) Nr. 455/2001 der Kommission vom 6. März 2001 L 65 9 7.3.2001
Berichtigt durch:
►C1Berichtigung, ABl. L 347 vom 28.11.1992, S. 69 (2568/91)
►C2Berichtigung, ABl. L 290 vom 6.10.1992, S. 15 (1429/92)
►C3Berichtigung, ABl. L 176 vom 20.7.1993, S. 26 (183/93)
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VERORDNUNG (EWG) Nr. 2568/91 DER KOMMISSION
vom 11. Juli 1991
über die Merkmale von Olivenölen und Oliventresterölen sowie die
Verfahren zu ihrer Bestimmung
DIE KOMMISSION DER EUROPÄISCHEN GEMEINSCHAFTEN —
gestützt auf den Vertrag zur Gründung der Europäischen Wirtschaftsge-
meinschaft,
gestützt auf die Verordnung Nr. 136/66/EWG des Rates vom 22.
September 1966 über die Errichtung einer gemeinsamen Marktorgani-sation für Fette(
1), zuletzt geändert durch die Verordnung (EWG)
Nr. 3577/90(2), insbesondere auf Artikel 35a,
in Erwägung nachstehender Gründe:
Im Anhang der Verordnung Nr. 136/66/EWG sind die Bezeichnungen
und Begriffsbestimmungen für Olivenöle und Oliventresteröle zurVermarktung im innerstaatlichen und innergemeinschaftlichen Handelsowie im Handel mit Drittländern festgelegt.
Unbeschadet der bereits geltenden einschlägigen Bestimmungen
müssen zur Unterscheidung der Olivenölkategorien die entsprechendenchemisch-physikalischen Merkmale sowie die organoleptischen Merk-male nativer Olivenöle festgelegt werden, damit Reinheit und Qualitätder betreffenden Erzeugnisse gewährleistet sind.
Die Merkmale der einzelnen Olivenöle müssen gemeinschaftsweit
einheitlich bestimmt werden. Daher müssen gemeinschaftlicheVerfahren für die chemische Analyse und die organoleptische Prüfungfestgelegt werden. Allerdings sollten während einer Übergangszeit auchandere in den Mitgliedstaaten übliche Analyseverfahren zulässig sein,
wobei jedoch vorzusehen ist, daß bei abweichenden Ergebnissen die
nach dem gemeinschaftlichen Verfahren erzielten Ergebnisse gelten.
Die Festlegung der chemisch-physikalischen Merkmale von Olivenölen
und der Analyseverfahren erfordert eine Anpassung der Zusatzvor-schriften zu Kapitel 15 der Kombinierten Nomenklatur.
Zur Bewertung der organoleptischen Merkmale nativer Olivenöle
müssen Gruppen von ausgewählten und geschulten sensorischenPrüfern gebildet werden; dafür ist eine ausreichende Zeitspanne vorzu-sehen. Da einige Mitgliedstaaten solche Prüfergruppen nicht ohneweiteres zusammenstellen können, muß ihnen die Möglichkeit einge-räumt werden, die in anderen Mitgliedstaaten eingesetzten
Prüfergruppen zu befassen.
Damit das einwandfreie Funktionieren der für die Einfuhr von Oliven-
tresteröl geltenden Abschöpfungsregelung gewährleistet ist, muß eineinheitliches Verfahren zur Bestimmung des Ölgehalts dieser Erzeug-nisse vorgesehen werden.
Um Nachteile für den Handel auszuschließen, sollte Olivenöl, das vor
Inkrafttreten dieser Verordnung abgefüllt wurde, während einerbestimmten Zeit noch vermarktet werden dürfen.
Die Verordnung (EWG) Nr. 1058/77 der Kommission(
3), zuletzt
geändert durch die Verordnung (EWG) Nr. 1858/88(4), ist aufzuheben.
Der Verwaltungsausschuß für Fette hat nicht innerhalb der ihm von
seinem Vorsitzenden gesetzten Frist Stellung genommen —1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 2
(1) ABl. Nr. 172 vom 30. 9. 1966, S. 3025/66.
(2) ABl. Nr. L 353 vom 17. 12. 1990, S. 23.
(3) ABl. Nr. L 128 vom 24. 5. 1977, S. 6.
(4) ABl. Nr. L 166 vom 1. 7. 1988, S. 10.
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HAT FOLGENDE VERORDNUNG ERLASSEN:
Artikel 1
(1) Native Olivenöle im Sinne der Nummer 1 Buchstaben a), b) und
c) des Anhangs der Verordnung Nr. 136/66/EWG sind Öle, derenMerkmale mit den in Anhang I Nummern 1, 2 und 3 dieser Verord-nung genannten Merkmalen übereinstimmen.
(2) Natives Lampantöl im Sinne der Nummer 1 Buchstabe d) des
Anhangs der Verordnung Nr. 136/66/EWG ist Öl, dessen Merkmale
mit den in Anhang I Nummer 4 dieser Verordnung genannten Merk-
malen übereinstimmen.
(3) Raffiniertes Olivenöl im Sinne der Nummer 2 des Anhangs der
Verordnung Nr. 136/66/EWG ist Olivenöl, dessen Merkmale mit den inAnhang I Nummer 5 dieser Verordnung genannten Merkmalen überein-stimmen.
(4) Olivenöl im Sinne der Nummer 3 des Anhangs der Verordnung
Nr. 136/66/EWG ist Öl, dessen Merkmale mit den in Anhang I
Nummer 6 dieser Verordnung genannten Merkmalen übereinstimmen.
(5) Rohes Oliventresteröl im Sinne der Nummer 4 des Anhangs der
Verordnung Nr. 136/66/EWG ist Olivenöl, dessen Merkmale mit den in
Anhang I Nummer 7 dieser Verordnung genannten Merkmalen überein-stimmen.
(6) Raffiniertes Oliventresteröl im Sinne der Nummer 5 des
Anhangs der Verordnung Nr. 136/66/EWG ist Olivenöl, dessen Merk-male mit den in Anhang I Nummer 8 dieser Verordnung genanntenMerkmalen übereinstimmen.
(7) Oliventresteröl im Sinne der Nummer 6 des Anhangs der
Verordnung Nr. 136/66/EWG ist Olivenöl, dessen Merkmale mit den
in Anhang I Nummer 9 dieser Verordnung genannten Merkmalen über-
einstimmen.
(8) Für die Wirtschaftsjahre 1998/99 bis 2000/01 gelten jedoch auch
als native Olivenöle im Sinne von Nummer 1 Buchstaben a), b), c)oder d) des Anhangs der Verordnung Nr. 136/66/EWG nichtabgefüllteÖle oder in unmittelbare Umschließungen eines Nettoinhalts von
mindestens 100 kg abgefüllte Öle, die auschließlich aus Marokko
stammen, deren Merkmale den Angaben gemäß Anhang I Nummern1, 2, 3 und 4 dieser Verordnung entsprechen und deren Linolengehaltabweichend von den Bestimmungen der Absätze 1 und 2 höchstens1,0 % beträgt.
Artikel 2
(1) Die Merkmale der Öle gemäß Anhang I dieser Verordnung
werden nach folgenden Analysenverfahren bestimmt:
— freie Fettsäuren, berechnet in Prozent Ölsäure, nach dem Verfahren
des Anhangs II;
— Peroxidzahl nach dem Verfahren des Anhangs III;
— aliphatische Alkohole nach dem Verfahren des Anhangs IV;— Sterinfraktion nach dem Verfahren des Anhangs V;
— Erythrodiol nach dem Verfahren des Anhang VI;
— gesättigte Fettsäuren in 2-Stellung der Triglyceride nach dem
Verfahren des Anhangs VII;
— Trilinoleingehalt nach dem Verfahren des Anhangs VIII;— spektrophotometrische Analyse nach dem Verfahren des Anhangs
IX;
— Fettsäurezusammensetzung nach dem Verfahren der Anhänge XA
und XB;
— flüchtige halogenierte Lösungsmittel nach dem Verfahren des
Anhangs XI;1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 3
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— Bestimmung der organoleptischen Merkmale nativer Olivenöle nach
dem gemäß Absatz 2 angewandten Verfahren des Anhangs XII;
— Raffinationsnachweis nach dem Verfahren des Anhangs XIII;
— Stigmasterinnachweis nach dem Verfahren des Anhangs XVII;
— Bestimmung der Zusammensetzung der Triglyceride mit ECN42
nach dem Verfahren des Anhangs XVIII.
(2) Die organoleptischen Merkmale werden ►M3von einem mit
der sensorischen Analyse vertrauten Prüfer oder unter Hinzuziehung
von Sensorikern ◄nach dem im Prüfbogen gemäß Anhang XII vorge-
sehenen Verfahren bewertet. Stellt der Analytiker Abweichungenzwischen den von ihm erfaßten und den aufgrund der Produktbezeich-nung zu erwartenden organoleptischen Merkmalen fest, so muß er dieProbe von einer Gruppe von sensorischen Prüfern gemäß den Bestim-
mungen des Anhangs XII prüfen lassen.
Die Kontrollanalysen werden von der Gruppe nach denselben Bestim-
mungen durchgeführt.
Die Prüfergruppe bewertet die organoleptischen Eigenschaften im
Zusammenhang mit Interventionsmaßnahmen nach den Vorschriftendes Anhangs XII.
(3) Bei der Überprüfung der Merkmale der in Absatz 1 genannten
Öle durch die nationalen Behörden oder ihre Vertreter erfolgen die
Probenahmen gemäß den internationalen Normen EN ISO 661 betref-
fend die Vorbereitung der Untersuchungsproben und EN ISO 5555betreffend die Entnahme der Proben. Jedoch werden die Proben beiPartien, die aus Olivenöl in unmittelbaren Umschließungen mit einemVolumen von höchstens 100 l bestehen, abweichend von Nummer 6.8
der Norm EN ISO 5555 gemäß den Bestimmungen von Anhang Ia
dieser Verordnung entnommen.
Unbeschadet der Bestimmungen der Norm EN ISO 5555 und des Kapi-
tels 6 der Norm EN ISO 661 werden die Proben unverzüglich vor Licht
geschützt und spätestens am fünften Arbeitstag nach der Probenahme
zur Analysein das Labor ge schickt.
(4) Bei der Überprüfung gemäß Absatz 3 erfolgen die Analysen
gemäß den Anhängen II, III, IX und XII der Verordnung (EWG) Nr.
2568/91 sowie gegebenenfalls die in den einzelstaatlichen Rechtsvor-
schriften vorgesehenen Gegenanalysen vor Erreichen desMindesthaltbarkeitsdatums. Erfolgt die Probenahme mehr als vierMonate vor dem Mindesthaltbarkeitsdatum, so müssen die Probenspätestens im vierten Monat nach der Probenahme analysiert werden.
Für die übrigen in der genannten Verordnung vorgesehenen Analysen
gelten keine Fristen.
Entsprechen die Analyseergebnisse nicht den Merkmalen der angemel-
deten Kategorie Olivenöl bzw. Oliventresteröl, so wird der Beteiligte
davon spätestens einen Monat vor Ablauf der in Unterabsatz 1
genannten Frist in Kenntnis gesetzt, es sei denn, die Probenahme istweniger als einen Monat vor dem Mindesthaltbarkeitsdatum erfolgt.
Artikel 3
Unbeschadet der Einführung der Analysenverfahren gemäß Artikel 2
dürfen die Mitgliedstaaten bis ►
M628. Februar 1993 ◄andere
erprobte und wissenschaftlich begründete Verfahren verwenden, soweitder freie Verkehr mit den in Anwendung der Gemeinschaftsverfahrenals vorschriftsmäßig anerkannten Erzeugnissen nicht behindert wird.Die betreffenden Mitgliedstaaten notifizieren der Kommission dieseanderen Verfahren vor ihrer Verwendung.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 4
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Führt eines dieser anderen Verfahren zu einem anderen Ergebnis als
das Gemeinschaftsverfahren, so gilt das nach dem Gemeinschaftsver-fahren erzielte Ergebnis.
Artikel 3a
Bei Meinungsverschiedenheiten in bezug auf die organoleptischen
Merkmale eines Olivenöls, das Gegenstand eines Handelsgeschäfts ist,
können sich die betreffenden Parteien an eine zugelassene Prüfergruppe
ihrer Wahl wenden.
Artikel 3b
Werden Abweichungen zwischen den festgestellten und den aus der
Produktkennzeichnung zu erwartenden organoleptischen Merkmalenfestgestellt, so verhängt der betreffende Mitgliedstaat unbeschadetetwaiger anderer Sanktionen administrative finanzielle Sanktionen,deren Höhe sich nach der Schwere der festgestellten Unregelmäßigkeit
richtet.
Zur Beurteilung der Unregelmäßigkeit wird die natürliche Entwicklung
der Merkmale von unter normalen Bedingungen aufbewahrten Ölenberücksichtigt.
Die Mitgliedstaaten teilen der Kommission zu Beginn eines jeden
Halbjahres Anzahl und Art der festgestellten Unregelmäßigkeiten undder im Laufe des vorhergehenden Halbjahres verhängten Sanktionen
mit.
Artikel 4
(1) Zur Beurteilung der organoleptischen Merkmale bilden die
Mitgliedstaaten Prüfergruppen, die mit der amtlichen Kontrolle dieserMerkmale beauftragt sind und
— sich aus ausgewählten und gemäß den Regeln des in Anhang XII
beschriebenen Verfahrens geschulten sensorischen Prüfern zusam-
mensetzen;
— die gemäß den Regeln des genannten Verfahrens erforderlichen
Einrichtungen und Hilfsmittel für die organoleptische Bewertung
besitzen;
— die spezifischen Begriffe für die sensorische Prüfung von Olivenöl,
die Profilbeschreibung und die Bewertungstabelle verwenden, diefür dieses Verfahren vorgesehen sind;
— sich verpflichten, bei regelmäßigen Kontrollen und Zusammen-
künften zur Harmonisierung der sensorischen Kriterien die aufGemeinschaftsebene und internationaler Ebene vorgesehenen orga-noleptischen Bewertungen vorzunehmen;
— sich verpflichten, der Kommission jährlich sämtliche Angaben über
Änderungen in der Zusammensetzung jeder Prüfergruppe und die
Zahl der von ihr als zugelassener Prüfergruppe vorgenommenenBewertungen mitzuteilen.
Jeder Mitgliedstaat läßt die auf seinem Hoheitsgebiet gebildeten, die
oben beschriebenen Bedingungen erfüllenden Prüfergruppen zu. Erbestimmt, welche dieser Prüfergruppen mit Revisionsanalysen beauf-tragt werden.
Prüfergruppen, die in den Mitgliedstaaten vor dem 1. November 1992
gemäß den im Anhang XII vorgesehenen Regeln eingeführt wurden,gelten als im Sinne dieses Artikels zugelassen.
Jeder Mitgliedstaat übermittelt der Kommission und den anderen
Mitgliedstaaten das Verzeichnis der zugelassenen Prüfergruppen.
(2) Ergeben sich in einem Mitgliedstaat Schwierigkeiten bei der
Zulassung von Prüfergruppen, kann eine Prüfergruppe eingeschaltet
werden, die in einem anderen Mitgliedstaat zugelassen ist.
(3) Jeder Mitgliedstaat erstellt ein Verzeichnis der von Organisa-
tionen des Berufsstands oder mehrerer Berufsstände unter den1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 5
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Bedingungen des Absatzes 1 eingeführten Prüfergruppen und achtet auf
die Einhaltung dieser Bedingungen.
Artikel 5
Die zusätzlichen Anmerkungen 2, 3 und 4 des Kapitels 15 der Kombi-
nierten Nomenklatur im Anhang I der Verordnung (EWG) Nr. 2658/87
des Rates(1) erhalten die Fassung des Wortlauts gemäß Anhang XIV
dieser Verordnung.
Artikel 6
(1) Der Ölgehalt von Trester und anderen Rückständen der Olivenö-
lextraktion (KN-Codes 2306 90 11 und 2306 90 19) wird nach demVerfahren des Anhangs XV bestimmt.
(2) Der Ölgehalt gemäß Absatz 1 wird in Massenprozenten, bezogen
auf die Trockenmasse, berechnet.
Artikel 7
Für andere als im Anhang XI aufgeführte unerwünschte Stoffe gelten
die entsprechenden Gemeinschaftsvorschriften.
Artikel 8
(1) Die Mitgliedstaaten teilen der Kommission die Maßnahmen mit,
die sie zur Durchführung dieser Verordnung getroffen haben.
(2) Die Mitgliedstaaten übermitteln der Kommission zu Beginn
jedes Halbjahres eine Zusammenstellung der analytischen Daten derim vorangegangenen Halbjahr durchgeführten Bestimmungen.
Diese Ergebnisse werden vom Verwaltungsausschuß für Fette nach
dem Verfahren des Artikels 39 der Verordnung Nr. 136/66/EWGgeprüft.
Artikel 9
Die Verordnung (EWG) Nr. 1058/77 wird aufgehoben.
Artikel 10
(1) Diese Verordnung tritt am dritten Tag nach ihrer Veröffentli-
chung im Amtsblatt der Europäischen Gemeinschaften in Kraft.
Das Verfahren des Anhangs XII ist jedoch, außer wenn es sich um
Interventionsmaßnahmen handelt, ab ►
M11. November 1992 ◄
anwendbar.
Diese Methode findet keine Anwendung auf native Olivenöle, die vor
dem 1. November 1992 abgefüllt wurden.
(2) Diese Verordnung gilt nicht für Olivenöl und Oliventresteröl, das
vor dem Tag des Inkrafttretens dieser Verordnung abgefüllt und bis
zum 31. Oktober 1992 vermarktet wurde.
Diese Verordnung ist in allen ihren Teilen verbindlich und gilt unmit-
telbar in jedem Mitgliedstaat.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 6
(1) ABl. Nr. L 256 vom 7. 9. 1987, S. 1.▼M6
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ANHÄNGE
Inhalt
Anhang I: Merkmale von Olivenölen …
Anhang Ia: Entnahme von Proben bei Partien von Olivenöl oder Oliven-
tresteröl in unmittelbaren Umschließungen mit einem Inhalt
von höchstens 100 l …
Anhang II: Bestimmung der freien Fettsäuren …
Anhang III: Bestimmung der Peroxidzahl …
Anhang IV: ►M6Kapillargaschromatographische Bestimmung des
Wachsgehalts ◄…
Anhang V: Bestimmung der Zusammensetzung und des Gehalts an
Sterinen mit der Kapillar-Gaschromatographie …
Anhang VI: Bestimmung des Erythrodiols und des Uvaols …
Anhang VII: Bestimmung von Fettsäuren in 2-Stellung der Triglyceride …
Anhang VIII: Bestimmung des Trilinoleingehalts …Anhang IX: UV-spektrophotometrische Analyse …
Anhang XA: Gaschromatographische Analyse der Fettsäuremethylester …
Anhang XB: Vorbereitung der Fettsäuremethylester …Anhang XI: Bestimmung des Gehalts an flüchtigen halogenierten
Lösungsmitteln in Olivenöl …
Anhang XII: Organoleptische Prüfung von nativem Olivenöl …Anhang XIII: ►
M6Neutralisierung und Bleichung von Olivenöl im
Laboratorium ◄…
Anhang XIV: Zusätzliche Anmerkungen 2, 3 und 4 zu Kapitel 15 der
Kombinierten Nomenklatur
Anhang XV: Ölgehalt der Oliventrester …Anhang XVI: Bestimmung der Iodzahl …
Anhang XVII: Bestimmung der Stigmastadiene in pflanzlichen Ölen …Anhang XVIII: Bestimmung der Zusammensetzung der Triglyceride mit
ECN42 …1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 7
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ANHANG I
MERKMALE VON OLIVENÖLEN
KategorieGehalt an
freien Fett-
säuren (%)
(*)Peroxidzahl
meq 02/kg
(*)Halogenierte
Lösungsmitt-
el mg/kg
(*) (1)Wachsemg/
kgGesättigte
Fettsäure in
2-Stellung
der Triglyce-
ride(%)Stigmastadie-
nemg/kg (2)ECN42-
Differenz
zwischen
HPLC-
Meßwert und
theoretischer
BerechnungK232(*) K270(*)K270nach
Behandlung
mit Alumi-
niumoxid (3)Delta-K (*)Panel-Test
(*)
1. Natives Olivenöl extra ≤1,0 ≤20 ≤0,20 ≤250 ≤1,3 ≤0,15 ≤0,2 ≤2,50 ≤0,20 ≤0,10 ≤0,01 ≥6,5
2. Natives Olivenöl ≤2,0 ≤20 ≤0,20 ≤250 ≤1,3 ≤0,15 ≤0,2 ≤2,60 ≤0,25 ≤0,10 ≤0,01 ≥5,5
3. Gewöhnliches natives
Olivenöl ≤3,3 ≤20 ≤0,20 ≤250 ≤1,3 ≤0,15 ≤0,2 ≤2,60 ≤0,25 ≤0,10 ≤0,01 ≥3,5
4. Lampantöl > 3,3 > 20 > 0,20 ≤350 ≤1,3 ≤0,50 ≤0,3 ≤3,70 > 0,25 ≤0,11 — < 3,5
5. Raffiniertes Olivenöl ≤0,5 ≤5 ≤0,20 ≤350 ≤1,5 — ≤0,3 ≤3,40 ≤1,20 — ≤0,16 —
6. Olivenöl ≤1,5 ≤15 ≤0,20 ≤350 ≤1,5 — ≤0,3 ≤3,30 ≤1,00 — ≤0,13 —
7. Rohes Oliventresteröl > 0,5 — — — ≤1,8 — ≤0 , 6 —————
8. Raffiniertes Oliventre-
steröl ≤0,5 ≤5 ≤0,20 — ≤2,0 — ≤0,5 ≤5,50 ≤2,50 — ≤0,25 —
9. Oliventresteröl ≤1,5 ≤15 ≤0,20 > 350 ≤2,0 — ≤0,5 ≤5,30 ≤2,00 — ≤0,20 —
(1) Höchstgehalt für die Summe aller halogenierten Verbindungen bei Nachweis mittels Elektroneneinfangdetektor.
Für jede einzelne Verbindung beträgt der Höchstgehalt 0,10 mg/kg.
(2) Summe der Isomeren, die mittels Kapillarsäule getrennt (oder auch nicht getrennt) werden können.
(3) Mit Hinblick auf die Überprüfung des Vorhandenseins von raffiniertem Olivenöl, wenn K270den Grenzwert der entsprechenden Kategorie überschreitet, muß zur Festellung der Reinheit K270nach Behandlung mit Aluminiumoxid
bestimmt werden.
Anmerkung:
Die Analyseergebnisse sind mit der gleichen Anzahl signifikanter Stellen anzugeben wie sie für den jeweiligen Grenzwert vorgesehen sind.
Die letzte signifikante Stelle ist dabei auf die nächste Stelle aufzurunden, wenn die nachfolgende nichtsignifikante Stelle größer als 4 ist.Auch wenn nur ein einziges Merkmal nicht mit dem vorgeschriebenen Grenzwert übereinstimmt, muß das Öl einer anderen Kategorie zugeordnet oder als ni cht seinen Reinheitskriterien entsprechend erklärt werden.
Die mit einem Sternchen (*) gekennzeichneten Qualitätsmerkmale der Öle bedeuten
— im Fall von Lampantöl, daß die betreffenden Grenzwerte (außer K
232) nicht alle gleichzeitig erfüllt werden müssen;
— im Fall anderer nativer Olivenöle, daß die Nichterfüllung des Grenzwerts auch eienes einzigen Merkmals eine Umstuffung innerhalb der Kategorie de r nativen Olivenöle zur Folge hat.▼M131991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 8
KategorieGehalt an
Summe
trans-
Isomere
Ölsäure
(%)Summe
trans-
Isomere
Linol-
und Lino-
lensäure
(%)Chole-
sterin (%)Brassica-
sterin (%)Campe-
sterin (%)Stigma-
sterin (%)Betasito-
steri-
n(1)(%)Delta-7-
Stigma-
stenol
(%)Gesamt-
steringe-
halt (mg/
kg)Erythro-
diol und
Uvaol
(%)Myristin-
säure(%)Linolen-
säure(%)Arachin-
säure(%)Eicosen-
säure(%)Behensä-
ure(%)Lignoce-
rinsäure
(%)
1. Natives Olivenöl
extra ≤0,05 ≤0,9≤0,6≤0,4≤0,2≤0,2≤0,05≤0,05 ≤0,5≤0,1≤4,0 < Camp. ≥93,0 ≤0,5≥1000 ≤4,5
2. Natives Olivenöl ≤0,05 ≤0,9≤0,6≤0,4≤0,2≤0,2≤0,05≤0,05 ≤0,5≤0,1≤4,0 < Camp. ≥93,0 ≤0,5≥1000 ≤4,5
3. Gewöhnliches
natives Olivenöl ≤0,05 ≤0,9≤0,6≤0,4≤0,2≤0,2≤0,05≤0,05 ≤0,5≤0,1≤4,0 < Camp. ≥93,0 ≤0,5≥1000 ≤4,5
4. Lampantöl ≤0,05 ≤0,9≤0,6≤0,4≤0,2≤0,2≤0,10≤0,10 ≤0,5≤0,1≤4,0 — ≥93,0 ≤0,5≥1000 ≤4,5
5. Raffiniertes
Olivenöl ≤0,05 ≤0,9≤0,6≤0,4≤0,2≤0,2≤0,20≤0,30 ≤0,5≤0,1≤4,0 < Camp. ≥93,0 ≤0,5≥1000 ≤4,5
6. Olivenöl ≤0,05 ≤0,9≤0,6≤0,4≤0,2≤0,2≤0,20≤0,30 ≤0,5≤0,1≤4,0 < Camp. ≥93,0 ≤0,5≥1000 ≤4,5
7. Rohes Oliventre-
steröl ≤0,05 ≤0,9≤0,6≤0,4≤0,3≤0,2≤0,20≤0,10 ≤0,5≤0,2≤4,0 — ≥93,0 ≤0,5≥2500 ≥12
8. Raffiniertes
Oliventresteröl ≤0,05 ≤0,9≤0,6≤0,4≤0,3≤0,2≤0,40≤0,35 ≤0,5≤0,2≤4,0 < Camp. ≥93,0 ≤0,5≥1800 ≥12
9. Oliventresteröl ≤0,05 ≤0,9≤0,6≤0,4≤0,3≤0,2≤0,40≤0,35 ≤0,5≤0,2≤4,0 < Camp. ≥93,0 ≤0,5≥1600 > 4,5
(1) Summe aus Delta-5,23-Stigmastadienol, Clerosterin, Sitosterin, Sitostanol, Delta-5-Avenasterin, Delta-5,24-Stigmastadienol.
Anmerkung
Die Analyseergebnisse sind mit der gleichen Anzahl signifikanter Stellen anzugeben wie sie für den jeweiligen Grenzwert vorgesehen sind.
Die letzte signifikante Stelle ist dabei auf die nächste Stelle aufzurunden, wenn die nachfolgende nichtsignifikante Stelle größer als 4 ist.Auch wenn nur ein einziges Merkmal nicht mit dem vorgeschriebenen Grenzwert übereinstimmt, muß das Öl einer anderen Kategorie zugeordnet oder als ni cht seinen Reinheitskriterien entsprechend erklärt werden.▼M131991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 9
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ANHANG Ia
Entnahme von Proben bei Partien von Olivenöl oder Oliventresteröl in
unmittelbaren Umschließungen mit einem Inhalt von höchstens 100 l
Diese Methode der Probenahme wird für Partien von Olivenöl oder Oliventre-
steröl von bis zu 125 000 l angewendet, das in unmittelbare Umschließungen
mit einem Inhalt von höchstens 100 l abgefüllt wurde.
Umfasst die betreffende Partie mehr als 125 000 l, so wird sie in annähernd
gleich große Teilpartien von jeweils bis zu 125 000 l unterteilt. Die Methode
wird dann auf jede dieser Teilpartien angewendet.
1. Inhalt einer Einzelprobe
Jede Einzelprobe besteht:
a) bei unmittelbaren Umschließungen mit einem Inhalt von mindestens 6 l:
aus dem Öl aus einer unmittelbaren Umschließung, das auf mindestens
sechs Behältnisse à 1 l aufgeteilt wird, wobei
— ein Behältnis für die Analysen gemäß den Anhängen II, III, IX und
XII und
— ein weiteres Behältnis für die übrigen Analysen bestimmt ist und
— die übrigen Behältnisse für eventuelle Gegenanalysen aufbewahrt
werden;
b) bei unmittelbaren Umschließungen mit einem Inhalt von mindestens 2 l
und weniger als 6 l: aus dem Öl aus vier unmittelbaren Umschließungen,
wobei
— eine unmittelbare Umschließung für die Analysen gemäß den
Anhängen II, III, IX und XII und
— ein Drittel einer weiteren unmittelbaren Umschließung für die übrigen
Analysen bestimmt sind und
— das restliche Öl für eventuelle Gegenanalysen aufbewahrt wird;
c) bei unmittelbaren Umschließungen mit einem Inhalt von mindestens 0,75 l
und weniger als 2 l: aus dem Öl aus sechs unmittelbaren Umschließungen,
wobei
— eine unmittelbare Umschließung für die Analysen gemäß den
Anhängen II, III, IX und XII und
— eine weitere für die übrigen Analysen bestimmt ist und— das restliche Öl für eventuelle Gegenanalysen aufbewahrt wird;
d) bei unmittelbaren Umschließungen mit einem Inhalt von weniger als
0,75 l: aus dem Öl in der Mindestanzahl von Umschließungen, deren
Gesamtvolumen 4,5 l übersteigt; dabei gilt folgende Aufteilung:
— das Öl in der Mindestanzahl von Umschließungen, deren Gesamtvo-
lumen 0,75 l übersteigt, ist für die Analysen gemäß den Anhängen II,
III, IX und XII bestimmt,
— noch einmal die gleiche Menge ist für die übrigen Analysen bestimmt
und
— das restliche Öl wird für eventuelle Gegenanalysen aufbewahrt.
2. Zahl der Einzelproben
Die Mindestanzahl der Einzelproben ist abhängig von der Größe der Partie
und entspricht der folgenden Übersicht:
Größe der Partie (l) unter Mindestanzahl der Einzelproben
7 500 2
25 000 3
75 000 4
125 000 5
Die unmittelbaren Umschließungen einer Einzelprobe müssen aus nebenein-
ander liegenden Stellen der Partie stammen.
In Zweifelsfällen erhöht der Mitgliedstaat die Zahl der zu entnehmenden
Einzelproben.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 10
▼M17
3. Analysen und Ergebnisse
Soweit möglich, muss das Öl bis zur Durchführung der Analysen in den
Originalbehältnissen aufbewahrt werden.
a) Jede Einzelprobe wird gemäß Nummer 2.5 der Norm EN ISO 5555 in
Laborproben unterteilt, die folgenden Analysen unterzogen werden:
— Bestimmung der freien Fettsäuren gemäß Artikel 2 Absatz 1 erster
Gedankenstrich,
— Bestimmung der Peroxidzahl gemäß Artikel 2 Absatz 1 zweiter
Gedankenstrich,
— spektrophotometrische Analyse gemäß Artikel 2 Absatz 1 achter
Gedankenstrich,
— Fettsäurezusammensetzung gemäß Artikel 2 Absatz 1 neunter Gedan-
kenstrich.
b) Stimmen für mindestens eine Einzelprobe derselben Partie nicht alle
Analyseergebnisse gemäß Buchstabe a) mit den Merkmalen der angemel-
deten Olivenölkategorie überein, so wird die gesamte Partie als nicht
konform eingestuft.
Sind bei jeder der Einzelproben derselben Partie alle Analyseergebnisse
gemäß Buchstabe a) unter Berücksichtigung der Merkmale der Wiederhol-
barkeit der betreffenden Methoden homogen und stimmen sie mit den
Merkmalen der gemeldeten Olivenölkategorie überein, so wird eine
Einzelprobe der vorgenannten Partie den übrigen Analysen unterzogen.
c) Stimmt eines der Analyseergebnisse gemäß Buchstabe b) Unterabsatz 2
nicht mit den Merkmalen der gemeldeten Olivenölkategorie überein, so
wird die gesamte Partie als nicht konform eingestuft.
Stimmen alle Analyseergebnisse gemäß Buchstabe b) Unterabsatz 2 mit
den Merkmalen der gemeldeten Olivenölkategorie überein, so wird die
gesamte Partie als konform eingestuft.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 11
▼B
ANHANG II
BESTIMMUNG DER FREIEN FETTSÄUREN
1. ANWENDUNGSBEREICH
Bestimmung der freien Fettsäuren in Olivenölen. Der Gehalt an freien
Fettsäuren wird über den Gehalt an freien Säuren in konventioneller
Weise berechnet.
1.1.Prinzipder Methode
Die Probe wird in einem geeigneten Lösungsmittelgemisch gelöst. Dann
werden die vorhandenen freien Säuren mit einer ethanolischen Kaliumhy-
droxidlösung titriert.
1.2.Reagenzien
Alle Reagenzien müssen anerkannte Anaylsenqualität aufweisen; als
Wasser ist destilliertes Wasser oder Wasser gleicher Reinheit zu
verwenden.
1.2.1. Diethylether/Ethanol 95%ig (V/V), Mischung 1:1.
Vorsicht: Diethylether ist leicht brennbar und kann explosive Peroxide
bilden. Es muß daher unter besonderen Vorsichtsmaßnahmen
verwendet werden.
Das Diethylether/Ethanol-Gemisch muß unmittelbar vor dem Gebrauch
mit einer Kaliumhydroxidlösung (1.2.2) unter Zusatz von 0,3 ml
Phenolphthaleinlösung (1.2.3) pro 100 ml Lösungsmittelgemisch neutrali-
siert werden.
Anmerkung: Wenn Diethylether nicht benutzt werden kann, so kann auch
eine Mischung aus Ethanol und Toluol verwandt werden.
Eventuell kann auch Ethanol durch 2-Propanol ersetzt
werden.
1.2.2. Kaliumhydroxid, ethanolische Lösung, 0,1 molar oder, falls erforderlich,
0,5 molar.
Die genaue Konzentration der ethanolischen Kaliumhydroxidlösung muß
bekannt sein und unmittelbar vor der Verwendung überprüft werden. Die
Lösung sollte mindestens 5 Tage vorher hergestellt und in eine braune
Flasche, die mit einem Gummistopfen verschlossen wird, dekantiert
werden. Sie muß farblos oder nur schwach gefärbt sein.
Anmerkung: EinestabilefarbloseKaliumhydroxidlösung kann wiefolgt
hergestellt werden: 1 000 ml Ethanol mit 8 g Kaliumhy-
droxid und 0,5 g Aluminiumspänee ineStundeam
Rückflußkühler kochen. Sofort destillieren. Die erforderliche
Menge Kaliumhydroxid in dem destillierten Ethanol lösen
und mehrere Tage stehen lassen. Die klare Lösung von
dem ausgefallenen Karbonat abdekantieren.
Die Lösung kann auch ohne Destillation wie folgt herge-
stellt werden: 1 000 ml Ethanol mit 4 ml Aluminiumbutylat
mehrere Tage stehen lassen. Die überstehende Flüssigkeit
abdekantieren und die erforderliche Menge Kaliumhydroxid
darin lösen. Diese Lösung ist gebrauchsfertig.
1.2.3. Phenolphthalein, Lösung von 10 g/l in 95-96%igem Ethanol oder Alkali-
blau (bei sehr stark gefärbten Fetten), Lösung von 20 g/l in 95-96%igem
Ethanol.
1.3.Geräte
ÜblicheLaborge räteu. a.:
1.3.1. Analysenwaage,1.3.2. 250-ml-Erlenmeyerkolben,
1.3.3. 10-ml-Bürette mit 0,05-ml-Graduierung.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 12
▼B
1.4.Verfahren
1.4.1. Die Bestimmung erfolgt mit der filtrierten Probe. Beträgt der Gesamtge-
halt an Wasser und Verunreinigungen weniger als 1 %, so wird die
Bestimmung mit der unfiltrierten Probe durchgeführt.
1.4.2. Probe
Die Größe der Einwaage richtet sich nach dem zu erwartenden Gehalt an
freien Fettsäuren (Angaben in der nachstehenden Tabelle).
Erwarteter Gehalt an
freien FettsäurenEinwaage
(in g)Genauigkeit der
Einwaage
(in g)
< 1 20 0,05
1—4 10 0,024—15 2,5 0,01
15—75 0,5 0,001
> 75 0,1 0,0002
Die Probe in den Erlenmeyerkolben (1.3.2) einwiegen.
1.4.3. Durchführung der Bestimmung
Die Probe (1.4.2) in 50 bis 150 ml der neutralisierten Diethylether/
Ethanol-Mischung (1.2.1) lösen. Mit der 0,1 molaren Kaliumhydroxidlö-
sung (1.2.2) (Anmerkung 2) unter Schütteln bis zum Umschlag des
Indikators titrieren. (Die Rosafärbung des Phenolphthaleins muß
mindestens 10 Sekunden anhalten.)
Anmerkungen: 1. Diee thanolischeKaliumhydroxidlösung (1.2.2) kann
durch eine wäßrige Kaliumhydroxid- oder Natriumhydro-
xidlösung ersetzt werden, wenn die zugeführte
Wassermenge keine Phasentrennung bewirkt.
2. Werden zur Titration mehr als 10 ml der 0,1 molaren
Kaliumhydroxidlösung benötigt, so ist eine 0,5 molare
Lösung zu verwenden.
3. Wird die Lösung während der Titration trübe, so ist eine
ausreichende Menge Lösungsmittelmischung (1.2.1) zuzu-
fügen, bis die Lösung wieder klar ist.
1.5.Berechnung des Gehalts an freien Fettsäuren in % Ölsäure
Der Gehalt an freien Fettsäuren in Gewichtsprozent ist
V/C2c/C2M
1000/C2100
m¼V/C2c/C2M
10/C2m
Dabei sind:
V = Verbrauch an Kaliumhydroxidlösung in ml,
c = genaue Konzentration der Kaliumhydroxidlösung in mol/l,
M = Molekulargewicht in g der Säure, die für die Berechnung
zugrunde gelegt wird (= 282),
m = Probeneinwaage in g.
Als Ergebnis gilt das arithmetische Mittel ►M6zweier
Bestimmungen ◄.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 13
▼C1
▼B
▼B
ANHANG III
BESTIMMUNG DER PEROXIDZAHL
1. ZWECK
Diese Norm beschreibt ein Verfahren für die Bestimmung der Peroxidzahl
von Ölen und Fetten.
2. ANWENDUNGSBEREICH
Diese Norm gilt für tierische und pflanzliche Öle und Fette.
3. DEFINITION
Die Peroxidzahl ist die Gesamtmenge solcher Substanzen in der Probe,
ausgedrückt in Milliäquivalenten aktiven Sauerstoffs pro kg, die unter den
beschriebenen Arbeitsbedingungen Kaliumiodid oxidieren.
4. PRINZIP
Behandlung der in Essigsäure und Chloroform gelösten Probe mit einer
Kaliumiodidlösung. Titration des freigesetzten Iods durch eine eingestellte
Natriumthiosulfatlösung.
5. GERÄTE
Die Geräte müssen frei von reduzierenden oder oxidierenden Substanzen
sein.
Anmerkung: Schliffflächen nicht einfetten.
5.1. Mikrobechergläschen, 3 ml.5.2. 250-ml-Schliffkolben mit Stopfen, die zuvor getrocknet und mit einem
reinen, trockenen Inertgas (Stickstoff oder vorzugsweise Kohlendioxid)
gefüllt wurden.
5.3. 25- oder 50-ml-Bürette, mit 0,1-ml-Graduierung.
6. REAGENZIEN
6.1. Chloroform, analytisch rein, durch Einleiten von reinem, trockenem
Inertgas von Sauerstoff befreit.
6.2. Eisessig, analytisch rein, durch Einleiten von reinem, trockenem Inertgas
von Sauerstoff befreit.
6.3. Kaliumiodid, gesättigte wäßrige Lösung, frisch zubereitet, frei von Iod und
Iodaten.
6.4. Natriumthiosulfat, genau 0,01 oder 0,002 N wäßrige Lösung, unmittelbar
vor der Verwendung eingestellt.
6.5. Stärkelösung, wäßrige Dispersion, von 10 g/l, aus natürlicher löslicher
Stärke frisch hergestellt.
7. PROBE
Die Probe ist unter Lichtabschluß zu entnehmen und zu lagern und kühl in
vollständig gefüllten Glasgefäßen, die mit Glas- oder Korkstopfen
verschlossen sind, aufzubewahren.
8. VERFAHREN
Die Bestimmung soll bei diffusem Tageslicht oder künstlichem Licht
durchgeführt werden. In ein Mikrobechergläschen (5.1) oder aber in einen
Kolben (5.2) die Probemenge auf 0,001 g genau einwiegen, unter Berücks-
ichtigung der erwarteten Peroxidzahl gemäß nachstehender Tabelle:1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 14
▼B
Erwartete Peroxidzahl
(meq O2/kg)Probemenge
(g)
0 bis 12 5,0 bis 2,0
12 bis 20 2,0 bis 1,220 bis 30 1,2 bis 0,830 bis 50 0,8 bis 0,5
50 bis 90 0,5 bis 0,3
Den Stopfen von dem Kolben (5.2) abnehmen und den Mikrobecher mit
der Probemenge einführen. 10 ml Chloroform (6.1) hinzufügen. Die Probe
schnell unter Rühren auflösen, 15 ml Essigsäure (6.2), dann 1 ml Kalium-
iodidlösung (6.3) hinzufügen. Den Stopfen rasch einsetzen, eine Minute
schütteln und genau fünf Minuten unter Lichtabschluß bei einer Temperatur
von 15 bis 25 ºC stehenlassen.
Etwa 75 ml destilliertes Wasser zugeben. Das freigesetzte Iod mit Natrium-
thiosulfatlösung (6.4) unter kräftigem Schütteln titrieren (0,002-N-Lösung
für erwartete Werte unter 12 und 0,01-N-Lösung für erwartete Werte über
12). Stärkelösung (6.5) als Indikator verwenden.
Zwei Bestimmungen mit derselben Probe durchführen.
Zur gleichen Zeit einen Blindversuch durchführen. Übersteigt das Ergebnis
des Blindversuchs 0,05 ml einer 0,01-N-Natriumthiosulfatlösung (6.4), so
sind die unreinen Reagenzien zu ersetzen.
9. ABFASSUNG DER ERGEBNISSE
Die Peroxidzahl (P. V.), ausgedrückt in Milliäquivalenten aktiven Sauer-
stoffs pro kg, wird nach folgender Formel errechnet:
P:V:¼
V/C2T/C21000
m
Dabei sind:
V = die Anzahl ml der eingestellten Natriumthiosulfatlösung (6.4), die
für die Bestimmung verbraucht werden, korrigiert durch den entspre-
chenden Wert des Blindversuchs,
T = die genaue Normalität der Natriumthiosulfatlösung (6.4),
m = das Gewicht der Probe in g.
Als Ergebnis gilt das arithmetische Mittel der beiden so durchgeführten
Bestimmungen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 15
▼M6
ANHANG IV
KAPILLARGASCHROMATOGRAPHISCHE BESTIMMUNG DES
WACHSGEHALTS
1. ANWENDUNGSBEREICH
Diese Arbeitsvorschrift beschreibt ein Verfahren zur Bestimmung des
Wachsgehalts verschiedener Fette ►C3und Öle ◄unter Versuchsbe-
dingungen.
Dieses Verfahren kann insbesondere zur Unterscheidung zwischen
abgepreßtem und extrahiertem Olivenöl (Oliventresteröl) verwendet
werden.
2. KURZBESCHREIBUNG
Das Fett wird mit einem geeigneten internen Standard versetzt und
chromatographisch über eine Kieselgelsäule fraktioniert; die unter
Versuchsbedingungen zuerst eluierte Fraktion (schwächerer Polarität
als Triglyceride) wird rückgeführt und sofort kapillargaschromatogra-
phisch analysiert.
3. GERÄTE UND HILFSMITTEL
3.1. 25-ml-Erlenmeyerkolben,
3.2. Chromatographiesäule aus Glas, Innendurchmesser 15,0 mm, Höhe 30
—4 0c m ,
3.3. Gaschromatograph, geeignet für die Verwendung von Kapillarsäulen,
mit Direkteinspritzung, umfassend:
3.3.1. thermostatregelbaren Säulenofen, einstellbar auf die gewünschte
Temperatur mit einer Genauigkeit von ± 1 ºC,
3.3.2. Kalteinspritzsystem für die Direktbeschickung der Säule,
3.3.3. Flammenionisationsdetektor mit Konversionsverstärker,
3.3.4. Integrator mit Schreiber, mit Konversionsverstärker (3.3.3) zu koppeln,
Ansprechzeit max. 1 Sekunde, variabler Papiervorschub,
3.3.5. Glaskapillarsäule oder Fused-silica-Säule, ►C310 — 15 m ◄, Innen-
durchmesser 0,25 — 0,32 mm, Innenwand belegt mit flüssigem SE-52
oder SE-54 oder gleichwertiger Phase; gleichmäßige Schichtdicke 0,10
— 0,30 µm,
3.4. 10- µl-Mikroliterspritze mit gehärteter Nadel für Direkteinspritzung.
4. REAGENZIEN
4.1. Kieselgel 70 — 230 mesh, Artikel 7754 Merck. Das Kieselgel wird im
Muffelofen vier Stunden bei einer Temperatur von ►C3500oC
getrocknet ◄und nach dem Abkühlen mit 2 % Wasser versetzt. Durch
gründliches Schütteln homogenisieren. Vor Gebrauch mindestens 12
Stunden im Dunkeln aufbewahren.
4.2. n-Hexan für die Chromatographie,
4.3. Ethylether für die Chromatographie,
4.4. n-Heptan für die Chromatographie,
4.5. Standardlösung aus Laurylarachidat 0,1 % (m/v) in Hexan (interner
Standard),
4.6. Trägergas: Wasserstoff, rein, für die Gaschromatographie,
4.7. Hilfsgase:
— Wasserstoff, rein, für die Gaschromatographie;
— Luft, rein, für die Gaschromatographie.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 16
▼M6
5. VERFAHREN
5.1. Trennen der Wachsfraktion
5.1.1. Vorbereiten der Chromatographiesäule
15 g Kieselgel werden mit 2 % Wasser versetzt, in wasserfreiem n-
Hexan suspendiert und der Säule aufgegeben.
Nach der Spontansedimentation wird die Phase mit einem Elektrorühr-
werk nachbehandelt, um eine möglichst homogene
Chromatographieschicht zu erzielen, und zur Entfernung etwa enthal-
tener Verunreinigungen mit 30 ml n-Hexan gespült.
5.1.2. Säulenchromatographische Analyse
►C3Genau 500 mg der Probe ◄werden in den 25-ml-Erlenmeyer-
kolben eingewogen und entsprechend dem vermuteten Wachsgehalt
mit der geeigneten Menge interner Standardlösung versetzt. So werden
bei Olivenöl 0,1 mg Laurylarachidat und bei Oliventresteröl 0,25 bis
0,5 mg zugesetzt.
Die derart gewonnene Probe wird unter Verwendung von je zwei Teilen
2m l►C3n-Hexan ◄in die gemäß 5.1.1 vorbereitete Chromatogra-
phiesäule übergeführt.
Das Lösungsmittel bis zu einem Stand von 1 mm über der oberen
Absorbensgrenzfläche ablaufen lassen. An dieser Stelle ist mit der chro-
matographischen Eluierung zu beginnen: es sind 140 ml n-Hexan/
Ethylether-Gemisch (99:1) bei einem Durchsatz von etwa 15 Tropfen/
10 Sekunden (2,1 ml/min) aufzufangen.
Die derart gewonnene Fraktion wird im Rotationsverdampfer so lange
getrocknet, bis das Lösungsmittel nahezu restlos verdampft ist, wobei
die letzten 2 bis 3 ml im schwachen Stickstoffstrom ausgetrieben
werden; der Trocknungsrückstand wird ►C3mit 10 ml n-Heptan
versetzt. ◄
5.2. GaschromatographischeAnalyse
5.2.1. Vorarbeiten, Einfahren der Säule
5.2.1.1. Die Säule in den Gaschromatographen einsetzen, wobei ►C3der
Säulenanfang ◄andasOn-column-Systemund ►C3dasSäulenende ◄
an den Detektor angeschlossen wird.
Sodann ist der Gaschromatograph auf Dichtigkeit der Gasleitungen,
Betriebsbereitschaft des Detektors und des Schreibers usw. zu über-
prüfen.
5.2.1.2. Wird die Säule erstmals verwendet, ist es ratsam, sie einzufahren. Einen
schwachen Gasstrom durch die Säule geben, den Gaschromatographen
einschalten und allmählich auf eine Temperatur von mindestens 20 ºC
über der Arbeitstemperatur (Anmerkung) aufheizen. Die Temperatur ist
mindestens 2 Stunden konstant zu halten; sodann sind die Analysebe-
dingungen einzustellen (Gasstrom, Zünden der Flamme, Anschluß an
den elektronischen Schreiber, Säulenofentemperatur, Detektor usw.).
Anschließend ein Signal mit einer Empfindlichkeit aufzeichnen, die
mindestens doppelt so groß ist wie bei Durchführung der Analyse. Die
Grundlinie muß linear verlaufen, ohne Peaks oder Drifts.
Eine negative Drift ist ein Indiz für einen undichten Anschluß der
Säule, eine positive deutet auf ein mangelhaftes Einfahren der Säule
hin.
Anmerkung: Die Einfahrtemperatur muß in jedem Fall mindestens 20
ºC►C3unter der für die verwendete Phase ◄vorgese-
henen Höchsttemperatur liegen.
5.2.2. Wahl der Arbeitsbedingungen
5.2.2.1. Anhaltspunkte für die Arbeitsbedingungen:
— Säulentemperatur: anfangs 80 ºC, dann stufenweise um 30 ºC pro
Minute bis auf 120 ºC ansteigend, anschließend programmierter
Temperaturanstieg um 5 ºC pro Minute bis auf 340 ºC;
— Detektortemperatur: 350 ºC,— Strömungsgeschwindigkeit des Trägergases: Wasserstoff 20 — 35
cm/s,
— Geräteempfindlichkeit: 4- bis 16-fache der Mindestdämpfung,— Detektorempfindlichkeit: 1 — 2 mV f.s.,— Papiervorschub: 30 cm/Stunde,— Einspritzvolumen: 0,5 bis 1 µl Lösung.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 17
▼M6
Diese Bedingungen können entsprechend den Kenndaten der Säule und
des Gaschromatographen derart geändert werden, daß die damit aufge-
zeichneten Chromatogramme folgende Bedingungen erfüllen: die
Retentionszeit des internen Standards C32muß 25 Minuten ± 2 Minuten
betragen, und ►C3der größte Wachspeak ◄muß 60 bis 100 % des
Vollausschlags erreichen.
5.2.2.2. Die Parameter für die Peakintegration sind so zu wählen, daß für die in
Betracht kommenden Peaks korrekte Werte erzielt werden.
5.2.3. Durchführung der Analyse5.2.3.1. Mit der 10- µl-Spritze1- µl Probelösung aufziehen und dabei den Kolben
der Spritze so weit einziehen, daß die Nadel leer ist. Die Nadel
►
C3in den Injektor einführen, ◄nach 1 bis 2 Sekunden schnell
einspritzen, dann nach etwa 5 Sekunden die Nadel langsam heraus-
ziehen.
5.2.3.2. Das Chromatogramm aufzeichnen, bis alle vorhandenen Wachse eluiert
sind.
Die Grundlinie muß stets den vorgeschriebenen Anforderungen
►C3 ◄(5.2.1.2) genügen.
5.2.4. Identifizierung der Peaks
Die Peakflächen werden anhand der Retentionszeiten durch Vergleich
mit Wachsgemischen identifiziert, deren Retentionszeiten bekannt sind
und die unter denselben Bedingungen analysiert wurden.
Abbildung 1 zeigt ein Chromatogramm der Wachsfraktion eines nativen
Olivenöls.
5.2.5. QuantitativeBe stimmung
5.2.5.1. Die Peakflächen des internen Standards und der aliphatischen C40- bis
C46-Ester werden mit Hilfe eines Integrators ermittelt.
5.2.5.2. Der Wachsgehalt jedes einzelnen Esters in mg/kg Fett wird nach
folgender Formel berechnet:
Ester (mg/kg) =Ax·ms·►M91 000◄
As·m
Hierin bedeuten:
Ax= jeweilige Ester-Peakfläche,
As= Peakfläche von Laurylarachidat,
ms= Masse des zugesetzten Laurylarachidats in mg,
m = Masse der zur Bestimmung entnommenen Probe in g.
6. ERGEBNISSE
Die Gehalte an den einzelnen Wachsen sowie ihre Summe werden in
mg/kg Fett angegeben.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 18
▼M6
ANLAGE
Bestimmung der Strömungsgeschwindigkeit des Gases
In den auf Normalbedingungen eingestellten Gaschromatographen werden 1 bis
3µl Methan (oder Propan) eingespritzt und die Säulendurchlaufzeit des Gases
vom Zeitpunkt des Einspritzens bis zum Peak-Austritt (tM) gemessen.
Die Gasströmungsgeschwindigkeit in cm/s ist durch die Beziehung L/tMdefi-
niert; dabei ist L die Länge der Säule in cm und tMdie gemessene Zeit in
Sekunden.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 19
▼M61991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 20
▼B
ANHANG V
BESTIMMUNG DER ZUSAMMENSETZUNG UND DES GEHALTS AN
STERINEN MIT DER KAPILLAR — GASCHROMATOGRAPHIE
1. UMFANG UND ANWENDUNGSBEREICH
Diese Methode beschreibt das Verfahren zur Bestimmung der Sterinzu-
sammensetzung und des Steringehalts von Fetten.
2. KURZBESCHREIBUNG
Das Fett wird mit α-Cholestanol als innerem Standard versetzt und mit
ethanolischer Kaliumhydroxidlösung verseift. Die Sterinfraktion wird
aus dem Unverseifbaren dünnschicht-chromatographisch über basische
Kieselgelplatten abgetrennt.
Die aus dem Kieselgel isolierten Sterine werden in Trimethylsilylether
überführt und mit Hilfe der Kapillar-Gaschromatographie untersucht.
3. GERÄTE UND HILFSMITTEL
3.1. Kolben, 250 ml, mit Rückflußkühler und Schliffstopfen,
3.2. Scheidetrichter, 500 ml,
3.3. Kolben, 250 ml,3.4. komplette Apparatur für die Dünnschichtchromatographie mit Glas-
platten 20 × 20 cm,
3.5. UV-Lampe, Wellenlänge 366 oder 254 nm,
3.6. Mikroliterspritzen, 100 und 500 µl,3.7. Glasfiltertiegel mit Porenfilter G 3 (Porosität 15—40 µm), etwa 2 cm
Durchmesser, 5 cm Höhe, mit geeignetem Anschlußstück für die
Vakuumfiltration und Schliffmuffe12/21,
3.8. Vakuumflasche, 50 ml, mit Schliffmuffe 12/21, für Glasfiltertiegel
(3.7),
3.9. 10-ml-Röhrchen mit konischem Boden und dicht schließendem Stopfen,3.10. Gaschromatograph, geeignet für die Verwendung von Kapillarsäulen,
mit Splitsystem, bestehend aus:
3.10.1. einem thermostatisierbaren Säulenofen, einstellbar auf die gewünschte
Temperatur mit einer Genauigkeit von ± 1 ºC,
3.10.2. einer temperaturregelbaren Verdampfereinrichtung mit Verdampfer aus
persilanisiertem Glas,
3.10.3. einem Flammenionisations-Detektor mit Verstärker,
3.10.4. einem Integrator mit Schreiber, mit Verstärker zu koppeln,
3.11. einer Kapillarsäule aus Glas oder fused silica, 20—30 m Länge,
0,25—0,32 mm Innendurchmesser, Innenwand belegt mit SE-52 oder
SE-54 oder einer gleichwertigen stationären Phase, Schichtdicke
0,10—0,30 µm,
3.12. Mikroliterspritze für die Gaschromatographie, 10 µl, mit gehärteter
Nadel.
4. REAGENZIEN
4.1. Kaliumhydroxid, ethanolische Lösung 2 N: 130 g Kaliumhydroxid
(Titer mindestens 85 %) in 200 ml destilliertem Wasser unter Kühlen
lösen und mit Ethanol auf 1 Liter auffüllen. Die Lösung ist in gut
verschlossenen Braunglasflaschen haltbar (Ethanol 95 % V/V),
4.2. Ethylether, analysenrein,
4.3. wasserfreies Natriumsulfat, analysenrein,
4.4. kieselgelbeschichtete Glasplatten ohne Fluoreszenzindikator, Schicht-
dicke 0,25 mm (gebrauchsfertig im Handel erhältlich),
4.5. Kaliumhydroxid, ethanolische Lösung 0,2 N: 13 g Kaliumhydroxid
werden in 20 ml destilliertem Wasser gelöst und mit Ethanol auf 1 Liter
aufgefüllt,1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 21
▼B
4.6. Benzol für die Chromatographie (siehe 5.2.2),
4.7. Aceton für die Chromatographie (siehe 5.2.2),
4.8. Hexan für die Chromatographie (siehe 5.2.2),4.9. Ethylether für die Chromatographie (siehe 5.2.2),4.10. Chloroform, analysenrein,4.11. Referenzlösung für die Dünnschichtchromatographie: Cholesterin oder
Phytosterole, ►
M62 %ige ◄Lösung in Chloroform,
4.12. 2 ′,7′-Dichlorfluorescein, 0,2%ige ethanolische Lösung, leicht alkalisch
durch Zusatz einiger Tropfen alkoholischer 2-N-Kaliumhydroxid-
Lösung,
4.13. wasserfreies Pyridin für die Chromatographie,4.14. Hexamethyldisilazan,4.15. Trimethylchlorsilan,
4.16. Standardlösung von Sterin-Trimethylsilylethern unmittelbar vor
Gebrauch ansetzen mit reinen Sterinen oder Sterinmischungen aus
Ölen, in denen sie enthalten sind,
4.17. α-Cholestanol, 0,2%ige Lösung (m/V) in Chloroform (interner
Standard),
4.18. Trägergas: Wasserstoff oder Helium, rein, für die Gaschromatographie,
4.19. Hilfsgase: Wasserstoff und Luft, rein, für die Gaschromatographie.
5. VERFAHREN5.1.Herstellung des Unverseifbaren
5.1.1. Mit einer 500-µl-Mikroliterspritze so viel der 0,2%igen α-Cholesta-
nollösung in Chloroform (4.17) in einen 250-ml-Kolben geben, daß die
Menge an Cholestanol etwa 10 % des Steringehalts des zur Analyse
verwandten aliquoten Teils der Probe entspricht. So werden z. B. für
5 g Olivenöl 500 µl der 0,2%igen α-Cholestanollösung benötigt,
1 500 µl für ►
M6 ◄Oliventresteröl. Im Stickstoff-
strom bis zur Trocknung abdampfen. In den gleichen Kolben genau 5 g
der trockenen und filtrierten Probe einwiegen.
Bei►M6Ölen◄, die größere Mengen an Cholesterin enthalten, kann
ein Peak mit der gleichen Retentionszeit wie Cholestanol auftreten. In
diesem Fall ist die Sterinfraktion einmal mit und einmal ohne internen
Standard zu analysieren. ►M6Anstelle von Cholestanol kann auch
Betulin verwendet werden. ◄
5.1.2. Die Probe bei aufgesetztem Rückflußkühler mit 50 ml 2-N-ethanoli-
scher Kaliumhydroxidlösung versetzen, auf dem Wasserbad erhitzen
und unter kräftigem Schütteln und schwachem Sieden verseifen (wobei
sich die Lösung klärt). Die Probe weitere 20 Minuten am Sieden halten
und dann durch den Rückflußkühler mit 50 ml destilliertem Wasser
versetzen, den Rückflußkühler entfernen und den Kolben auf etwa
30 ºC abkühlen.
5.1.3. Den Kolbeninhalt quantitativ in einen 500-ml-Scheidetrichter über-
führen, wobei mehrfach mit insgesamt 50 ml destilliertem Wasser
nachgespült wird. Die Probe mit etwa 80 ml Ethylether versetzen, 30
Sekunden kräftig schütteln und absetzen lassen (vgl. Hinweis 1).
Die wäßrige Phase in einen anderen Scheidetrichter ablassen und dann
noch zweimal nach dem gleichen Verfahren mit 60—70 ml Ethylether
extrahieren.
Hinweis 1: Etwaige Emulsionen können mit Hilfe einer Waschflasche
durch Zusatz kleiner Mengen Ethyl- oder Methylalkohol
zerstört werden.
5.1.4. Die Etherauszüge in einem Scheidetrichter vereinigen und mehrmals
mit jeweils 50 ml destilliertem Wasser waschen, bis das Waschwasser
neutral reagiert.
Das Waschwasser ablassen, die Etherphase mit wasserfreiem Natrium-
sulfat trocknen, über wasserfreiem Natriumsulfat in einen zuvor
gewogenen 250-ml-Kolben filtrieren. Scheidetrichter und Filter mit
kleinen Mengen Ethylether nachspülen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 22
▼B
5.1.5. Den Ether bis auf wenige ml abdestillieren, den Rückstand unter
leichtem Vakuum oder im Stickstoffstrom trocknen, ¼ Stunde im Trok-
kenschrank bei 100 ºC nachtrocknen, im Exsikkator abkühlen lassen
und wiegen.
5.2.Trennung der Sterinfraktion
5.2.1. Herstellung der basischen Platten
Die Kieselgelplatten (4.4) vollständig ca. 10 Sekunden lang in eine 0,2-
N-ethanolische Alkalihydroxidlösung (4.5) eintauchen, dann unter
einem Abzug 2 Stunden trocknen lassen, anschließend noch 1 Stunde
bei 100 ºC im Trockenschrank.
Die Platten aus dem Trockenschrank nehmen und in einem Exsikkator
über Calciumchlorid bis zum Gebrauch aufbewahren. (Derart behan-
delte Platten müssen innerhalb von 15 Tagen gebraucht werden.)
Hinweis 2: Bei Verwendung von alkalischen Kieselgelplatten zur Tren-
nung der Sterinfraktion erübrigt sich die Behandlung des
Unverseifbaren mit Aluminiumoxid. Auf diese Weise
bleiben sämtliche sauren Verbindungen (Fettsäuren und
andere) an der Startlinie. So erhält man eine saubere Tren-
nung der Sterinzone von denen der aliphatischen Alkohole
und Terpenalkohole.
5.2.2. Die Entwicklerkammer bis zu einer Höhe von etwa 1 cm mit einem
Benzol/Aceton-Gemisch 95:5 (V/V) beschicken. Statt dessen kann
auch ein Hexan/Ethylether-Gemisch 65:35 (V/V) verwandt werden.
Die Kammer mit einem geeigneten Deckel verschließen und mindestens
eine halbe Stunde stehen lassen, damit sich ein Gleichgewicht zwischen
Flüssigkeit und Dampfphase einstellt. An der Innenwand der Kammer
können Filterpapierstreifen befestigt werden, die in das Fließmittel
eintauchen. Dadurch kann die Laufzeit um ein Drittel verkürzt und
eine gleichmäßige Elution der Komponenten erzielt werden.
Hinweis 3: Das Gemisch ist jedesmal frisch anzusetzen, damit die
Wiederholbarkeit gewährleistet ist.
5.2.3. Von einer 5%igen Lösung des Unverseifbaren (5.1.5) in Chloroform
mit einer 100-µl-Spritze 0,3 ml als durchgehenden, gleichmäßigen
Strich 2 cm vom unteren Plattenrand entfernt auf die Dünnschichtplatte
(5.2.1) auftragen. In der Verlängerung der Startlinie werden am Rande
2—3 µl der Sterin-Standardlösung (4.11) aufgetragen, um die Sterin-
zone nach der Entwicklung zu identifizieren.
5.2.4. Die Platte in die nach 5.2.2 vorbereitete Entwicklerkammer stellen. Die
Temperatur der Umgebung sollte 15—20 ºC betragen. Die Kammer mit
dem Deckel verschließen und die Platte so lange entwickeln, bis die
Fließmittelfront bis 1 cm unter den oberen Plattenrand gestiegen ist.
Dann die Platte aus der Entwicklerkammer nehmen und das Lösungs-
mittel in einem warmen Luftstrom abdampfen oder die Platte eine
geraume Zeit unter dem Abzug liegen lassen.
5.2.5. DiePlattevorsichtig und gle ichmäßig mit 2 ′,7′-Dichlorfluoresceinlö-
sung besprühen. Die Lage der Sterinzone mit Hilfe des Flecks der
Standardlösung bestimmen und mit einem schwarzen Stift den fluores-
zierenden Bereich markieren.
5.2.6. Das in der markierten Zone liegende Kieselgel mit einem Metallspatel
abkratzen, fein mahlen und in einen Glasfiltertiegel (3.7) überführen.
Mit 10 ml warmem Chloroform versetzen, mit Hilfe des Metallspatels
gründlich vermischen und unter Vakuum filtrieren. Das Filtrat in der
an dem Glasfiltertiegel angeschlossenen Vakuumflasche (3.8)
auffangen.
Den Rückstand im Glasfiltertiegel dreimal mit je 10 ml Ethylether
waschen und das Filtrat wiederum in der Vakuumflasche auffangen.
Das Filtrat bis auf ein Volumen von etwa 4—5 ml eindampfen und
den Rest der Lösung in das zuvor gewogene 10-ml-Probenglas (3.9)
überführen. Durch vorsichtiges Erhitzen unter einem schwachen Stick-
stoffstrom bis zur Trocknung eindampfen. Mit einigen Tropfen Aceton
versetzen, wieder bis zur Trocknung eindampfen, etwa 10 Minuten im
Trockenschrank auf 105 ºC erhitzen, anschließend im Exsikkator
abkühlen lassen und wiegen.
Der Rückstand in dem Probengläschen besteht aus der Sterinfraktion.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 23
▼B
5.3.Herstellung der Trimethylsilylether (TMSE)
5.3.1. Dem Probengläschen mit der Sterinfraktion werden je Milligramm
Sterin 50 µl Silanisierungsreagenz, bestehend aus einem Gemisch aus
Pyridin, Hexamethyldisilazan und Trimethylchlorsilan im Verhältnis
9:3:1 (V/V/V), zugesetzt (Hinweis 4) unter Ausschluß von Feuchtigkeit
(Hinweis 5).
Hinweis 4: Gebrauchsfertige Lösungen sind im Handel erhältlich;
daneben gibt es auch andere Silanisierungsreagenzien, z.
B. N,O-bis-Trimethylsilyltrifluoracetamid + 1 % Trime-
thylchlorsilan, das mit gleichen Teilen wasserfreiem
Pyridin gemischt werden muß.
5.3.2. Das Probengläschen verschließen und gründlich (nicht zu stark) schüt-
teln, bis sich die Sterine gelöst haben. Die Probe mindestens 15
Minuten bei Raumtemperatur stehen lassen und dann einige Minuten
zentrifugieren. Die klare Lösung kann gaschromatographisch untersucht
werden.
Hinweis 5: Die Beobachtung einer leichten Opaleszenz ist normal und
bedeutet keine Störung. Die Bildung eines weißen Nieder-
schlags oder der Eindruck einer Rosafärbung sind
Anzeichen der Anwesenheit von Feuchtigkeit oder der
Zersetzung des Reagens. In diesem Fall soll der Test
wiederholt werden.
5.4.Gaschromatographische Analyse
5.4.1. Vorbereiten, Einfahren der Säule5.4.1.1. Die Säule in den Gaschromatographen einsetzen, wobei das Einlaßteil
an den mit dem Trennsystem verbundenen Verdampfer und das Auslaß-
teil an den Detektor angeschlossen wird.
Überprüfung des Gaschromatographen (Dichtigkeit der Gasleitungen,
Betriebsbereitschaft des Detektors, des Trennsystems, des Schreibers
usw.).
5.4.1.2. Wird die Säule zum erstenmal verwendet, ist es ratsam, sie einzufahren.
Einen schwachen Gasstrom durch die Säule geben, den Gaschromato-
graphen einschalten und allmählich auf eine Temperatur von
mindestens 20 ºC über der Arbeitstemperatur (Hinweis 6) aufheizen.
Diese Temperatur ist mindestens 2 Stunden konstant zu halten, und
dann sind die Analysenbedingungen einzustellen (Gasstrom, Split,
Zünden der Flamme, Schreiberanschluß, Einstellen der Ofentemperatur,
Injektor, Detektor). Dann eine Empfindlichkeit wählen, die mindestens
doppelt so groß ist wie bei der Durchführung der Analyse. Die Grund-
linie muß linear verlaufen, ohne Peaks oder Drift.
Eine negative Drift ist ein Indiz für einen undichten Anschluß der
Säule, eine positive deutet auf ein mangelhaftes Einfahren der Säule
hin.
Hinweis 6: Die Einfahrtemperatur muß in jedem Fall 20 ºC unter der
für die stationäre Phase angegebenen Maximaltemperatur
liegen.
5.4.2. Wahl der Arbeitsbedingungen5.4.2.1. Anhaltspunkte für die Arbeitsbedingungen:
Säulentemperatur: 260 ºC ± 5 ºC,
Verdampfertemperatur: 280 ºC,Detektortemperatur: 290 ºC,Strömungsgeschwindigkeit: Helium 20—35 cm/s; Wasserstoff
30—50 cm/s,
Splitverhältnis: 1:50—1:100,
Geräteempfindlichkeit: das 4- bis 16fache der Mindestdämpfung,
Detektorempfindlichkeit: 1—2 mV f. s.,Papiervorschub: 30—60 cm/Std.,Einspritzvolumen: 0,5—1 µl TMSE-Lösung.Diese Bedingungen können entsprechend den Charakteristiken der
Säule und des Gaschromatographen derart geändert werden, daß die1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 24
▼B
damit aufgezeichneten Chromatogramme folgende Bedingungen
erfüllen:
— die Retentionszeit von β-Sitosterin muß 20 ± 5 Minuten betragen;
— der Campesterin-Peak muß bei Olivenöl (Durchschnittsgehalt 3 %)
15 ± 5 % des Skalenbereichs und bei Sojaöl (Durchschnittsgehalt
20 %) 80 ± 10 % des Skalenbereichs betragen;
— alle enthaltenen Sterine müssen getrennt werden; die anderen Peaks
müssen ebenfalls völlig aufgelöst sein, d. h. der Peakverlauf muß
auf die Grundlinie zurückführen, bevor der nächste Peak beginnt;
eine unvollständige Auflösung ist nur unter der Bedingung akzep-
tabel, daß der RRT-1,02-Peak mit Hilfe der Senkrechten quantitativ
zu bestimmen ist.
5.4.3. Durchführung der Analyse
5.4.3.1. Mit der 10-µl-Mikroliterspritze 1 µl Hexan entnehmen, 0,5 µl Luft und
anschließend 0,5—1 µl Probenlösung aufziehen; dabei den Kolben der
Spritze so weit einziehen, daß die Nadel leer ist. Die Nadel in die
Membran des Injektors einführen, nach 1—2 Sekunden schnell
einspritzen, dann nach etwa 5 Sekunden die Nadel langsam heraus-
ziehen.
5.4.3.2. Das Chromatogramm aufzeichnen, bis alle Sterin-TMS-Ether eluiert
sind.
Die Grundlinie muß stets den vorgeschriebenen Anforderungen (5.4.1.2)
genügen.
5.4.4. Identifizierung der Peaks
Die einzelnen Peaks werden anhand der Retentionszeiten und durch
Vergleich mit dem unter denselben Bedingungen analysierten TSME-
Gemisch der Sterine bestimmt.
Die Sterine werden in folgender Reihenfolge eluiert: Cholesterin, Bras-
sicasterin, 24-Methylen-Cholesterin, Campesterin, Campestanol,
Stigmasterin, ∆7-Campesterin, ∆5, 23-Stigmastadienol, Chlerosterin, β-
Sitosterin, Sitostanol, ∆5-Avenasterin, ∆5, 24-Stigmastadienol, ∆7-Stig-
mastenol, ∆7-Avenasterin.
In Tabelle I sind die Retentionszeiten relativ zu β-Sitosterin für eine
SE-52- und SE-54-Säuleaufge führt.
Die Abbildungen 1 und 2 zeigen die typischen Chromatogramme
einiger Öle.
5.4.5. QuantitativeBe stimmung
5.4.5.1. Mit Hilfe des Integrators werden die Peak-Flächen von α-Cholestanol
und der Sterine berechnet. Dabei sind etwa auftretende Peaks von
Substanzen, die in Tabelle I nicht aufgeführt sind, nicht zu berücksich-
tigen. Der Responsefaktor von ►C1α-Cholestanol ◄soll gleich 1,00
gesetzt werden.
5.4.5.2. Der Gehalt an den einzelnen Sterinen in mg/100 g Fett wird nach
folgender Formel berechnet:
Sterin x =Ax·ms· 100
As·m
Darin bedeuten:
Ax= Peakfläche des Sterins x ►M6 ◄,
As= Peakfläche von α-Cholestanol ►M6 ◄,
ms= zugesetzte Menge an α-Cholestanol in mg,
m = Menge der für die Bestimmung entnommenen Probe in g.
6. ERGEBNISSE
6.1. Der Gehalt an den einzelnen Sterinen wird in mg/100 g Öl angegeben,
ihre Summe als „Gesamtsterine“.
6.2. Der prozentuale Anteil jedes einzelnen Sterins errechnet sich aus dem
Quotienten der Peakfläche des entsprechenden Peaks und der Summe
der Peakflächen aller Sterine nach der Formel
►C1% Sterin x = ◄Ax
ΣA. 1001991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 25
▼B
Darin bedeuten:
Ax= Peakfläche des Sterins x,
ΣA = Summe der Peakfläche aller Sterine.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 26
▼B
ANLAGE
Bestimmung der linearen Strömungsgeschwindigkeit
In den auf Normalbedingungen eingestellten Gaschromatographen werden 1 bis
3 µl Methan (oder Propan) eingespritzt und bis zum Peak-Austritt (tM) gemessen.
Die lineare Strömungsgeschwindigkeit in cm/s ist durch die Beziehung L/tMdefiniert; dabei ist L die Länge der Säule in cm und tMdie gemessene Zeit in
Sekunden.
Tabelle I
Relative Retentionszeit der Sterine
Pe-
akIdentifizierungRelative Retentions-
zeit
SE 54 SE 52
1 Cholesterin ∆-5-Cholesten-3 β-ol 0,67 0,63
2 Cholestanol 5 α-Cholestan-3 β-ol 0,68 0,64
3 Brassicasterin [24S]-24-Methyl- ∆-5,22-cholestadien-3 β-ol 0,73 0,71
4 24-Methylen-Cholesterin 24-Methylen- ∆-5,24-cholestadien-3 β-ol 0,82 0,80
5 Campesterin [24R]-24-Methyl- ∆-5-cholesten-3 β-ol 0,83 0,81
6 Campestanol [24R]-24-Methyl-cholestan-3 β-ol 0,85 0,82
7 Stigmasterin [24R]-24-Ethyl- ∆-5,22-cholestadien-3 β-ol 0,88 0,87
8 ∆-7-Campesterol [24R]-24-Methyl- ∆-7-cholesten-3 β-ol 0,93 0,92
9 ∆-5,23-Stigmastadienol [24R,S]-24-Ethyl- ∆-5,23-cholestadien-3 β-ol 0,95 0,95
10 Chlerosterin [24S]-24-Ethyl- ∆-5,25-cholestadien-3 β-ol 0,96 0,96
11►C1B-Sitosterin ◄► C1[24R]-24-Ethyl- ∆-5-cholestan-3B-
ol◄1,00 1,00
12►C1Sitostanol ◄► C124-Ethyl-cholestan-3B-ol ◄ 1,02 1,02
13 ∆-5-Avenasterin [24Z]-24-Ethyliden- ∆-5-cholesten-3 β-ol 1,03 1,03
14 ∆-5,24-Stigmastadienol [24S,R]-24-Ethyl- ∆-5,24-cholestadien-3 β-ol 1,08 1,08
15 ∆-7-Stigmastenol [24S,R]-24-Ethyl- ∆-7,24-cholestadien-3 β-ol 1,12 1,12
16 ∆-7-Avenasterin [24Z]-24-Ethyliden- ∆-7-cholesten-3 β-ol 1,16 1,161991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 27
▼B
Abbildung 1
Gaschromatogramm der Sterinfraktion von rohem Oivenöl
1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 28
▼B
Abbildung 2
Gaschromatogramm der Sterinfraktion von raffiniertem Olivenöl
1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 29
▼B
ANHANG VI
BESTIMMUNG DES ERYTHRODIOLS UND DES UVAOLS
EINLEITUNG
Das (üblicherweise als Summe von Erythrodiol und Uvaol angegebene)
Erythrodiol ist ein Bestandteil des Unverseifbaren, das für verschiedene
Fette charakteristisch ist. Seine Konzentration ist in extrahierten
Olivenölen erheblich höher als in anderen Ölen (Olivenöl aus Pressung,
Traubenkernöl), in denen es auch vorkommt. Deshalb kann es zum Nach-
weis für das Vorhandensein von extrahiertem Olivenöl dienen.
1. ZWECK UND ANWENDUNGSBEREICH
Die Methode beschreibt ein Verfahren für die Bestimmung des Erythro-
diolgehalts in Fetten.
2. PRINZIP DER METHODE
Das Fett wird mit einer ethanolischen Kaliumhydroxidlösung verseift,
dann das Unverseifbare mit Ethylether extrahiert und über eine Aluminiu-
moxidsäule gereinigt.
Die Fraktionierung des Unverseifbaren wird durch Dünnschichtchromato-
graphie auf Kieselgelplatten durchgeführt, anschließend werden die
Zonen der Sterinfraktion und der Erythrodiolfraktion isoliert. Die von
der Platte isolierten Sterine und das Erythrodiol werden in Trimethylsily-
lether überführt, dann wird die Mischung gaschromatographisch
untersucht. Das Ergebnis wird angegeben als Prozent Erythrodiol der
Gesamtmenge von Erythrodiol plus Sterine.
3. GERÄTE
3.1. Die im Anhang V (Bestimmung des Steringehalts) beschriebenen Geräte.
4. REAGENZIEN
4.1. Die im Anhang V (Bestimmung des Steringehalts) vorgeschriebenen
Reagenzien.
4.2. Referenzlösung von 0,5 % Erythrodiol in Chloroform.
5. VERFAHREN
5.1.Herstellung des Unverseifbaren
Es wird gemäß 5.1.2 des in Anhang V beschriebenen Verfahrens vorge-
gangen.
5.2.Abtrennung des Erythrodiols und der Sterine
5.2.1. Vergleiche 5.2.1 in Anhang V.
5.2.2. Vergleiche 5.2.2 in Anhang V.5.2.3. Eine 5%ige Lösung des Unverseifbaren in Chloroform herstellen. Mit
einer 0,1-ml-Mikroliterspritze 0,3 ml dieser Lösung auf eine Dünnschicht-
platte 1,5 cm vom unteren Plattenrand entfernt in einem möglichst
dünnen und gleichmäßigen Strich auftragen. An einem Ende der Platte
werden als Referenzsubstanzen einige Mikroliter der Lösungen von
Cholesterin und Erythrodiol aufgetragen.
5.2.4. Die Platte in die nach 5.2.2 vorbereitete Entwicklerkammer geben. Die
Raumtemperatur soll etwa 20 ºC betragen. Die Kammer sofort mit dem
Deckel verschließen und so lange entwickeln, bis die Lösungsmittelfront
1 cm unter dem oberen Plattenrand angekommen ist. Die Platte aus der
Entwicklerkammer nehmen und das Lösungsmittel in einem warmen
Luftstrom abdampfen.
5.2.5. Die Platte gleichmäßig mit der alkoholischen 2 ′,7′-Dichlorfluoresceinlö-
sung besprühen. Unter UV-Licht den Verlauf der Sterin- und
Erythrodiolzone an Hand der Referenzsubstanzen identifizieren und etwas
außerhalb der fluoreszierenden Zonen markieren.
5.2.6. Die markierten Kieselgelzonen mit einem Metallspatel abkratzen. Das
von der Platte isolierte Material in ein 50-ml-Becherglas geben, 15 ml1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 30
▼B
warmes Chloroform zugeben, gut schütteln und in einen Glasfiltertiegel
füllen. Dreimal mit je 10 ml warmem Chloroform auswaschen und die
Filtrate in einem 100-ml-Rundkolben sammeln. Bis auf ein Volumen
von 4—5 ml eindampfen, in ein vorher gewogenes, konisches 10-ml-
Zentrifugenröhrchen geben, im warmen Stickstoffstrom trocknen und
anschließend wiegen.
5.3. Herstellung der Trimethylsilylether
Nach dem in Anhang V unter 5.3 beschriebenen Verfahren vorgehen.
5.4. GaschromatographischeAnalyse
Nach der Beschreibung unter 5.4 des vorgenannten Verfahrens vorgehen.Die Bedingungen der gaschromatographischen Analyse müssen so
gewählt werden, daß nicht nur die TMS-Ether der Sterine, sondern auch
die TMS-Ether von Erythrodiol und Uvaol getrennt werden.
Nach dem Einspritzen das Schreiberpapier ablaufen lassen, bis alle
Sterine, Erythrodiol und Uvaol eluiert sind. Identifizieren der Peaks
(Erythrodiol und Uvaol haben im Vergleich zu β-Sitosterin relative
Retentionszeiten von etwa 1,45 und 1,55) und Berechnung der Flächen-
prozente, wie für Sterine beschrieben.
6. ABFASSUNG DER ERGEBNISSE
% Erythrodiol =A
1+A2
A1+A2+ΣASterine× 100
Hierin bedeuten:
A1= Fläche des Erythrodiolpeaks ►M6 ◄,
A2= Fläche des Uvaolpeaks ►M6 ◄,
ΣASterine= Summe der vorhandenen Sterinpeaks
►M6 ◄.
Das Ergebnis wird mit einer Dezimale nach dem Komma angegeben.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 31
▼B
ANHANG VII
BESTIMMUNG VON FETTSÄUREN IN 2-STELLUNG DER TRIGLYCE-
RIDE
1. ZWECK
Diese Methode beschreibt ein Verfahren zur Bestimmung der Zusammen-
setzung des Teils der Fettsäuren eines Öles oder Fettes, die in 2-Stellung
(βoder innere Stellung) des Glycerins verestert sind.
2. ANWENDUNGSBEREICH
Diese Methode gilt für Öle und Fette mit einem Schmelzpunkt unter 45 ºC,
bedingt durch die Besonderheiten der Wirkungsweise der Pankreaslipase.
Sie ist nicht uneingeschränkt anwendbar auf Öle und Fette mit höheren
Anteilen an Fettsäuren mit zwölf oder weniger Kohlenstoffatomen
(Kokos- und Palmkernöl, Butterfett), hoch ungesättigten Fettsäuren (mit
mehr als vier Doppelbindungen), die zwanzig oder mehr Kohlenstoff-
atome enthalten (Fisch- und Seetieröle), oder Fettsäuren mit
sauerstoffhaltigen Gruppen außer der Säuregruppe.
3. PRINZIP
Wenn nötig, Neutralisierung von sauren Ölen und Fetten in einem
Lösungsmittel. Reinigung über eine Aluminiumoxidsäule. Teilhydrolyse
der Triglyceride durch Pankreaslipase in einer vorgegebenen Zeit. Abtren-
nung der gebildeten Monoglyceride durch Dünnschichtchromatographie
und Umesterung dieser Monoglyceride mit Methanol. Die gewonnenen
Methylester werden gaschromatographisch analysiert.
4. GERÄTE
4.1. 100-ml-Rundkolben.4.2. 25-ml-Rundkolben mit Schliff.4.3. 1 m langes Steigrohr mit Schliffansatz für den Kolben 4.2.4.4. 250-ml-Kolben.4.5. 50-ml-Becherglas.4.6. 500-ml-Scheidetrichter.4.7. Glassäule für die Säulenchromatographie, 13 mm Innendurchmesser,
400 mm Länge, mit Hahn und gläsernem Frittenboden.
4.8. 10-ml-Zentrifugenglas, mit Schliffstopfen.
4.9. 5-ml-Bürette, Graduierung 0,05 ml.4.10. 1-ml-Injektionsspritze, mit dünner Kanüle.4.11. Mikroliterspritze, zur Abgabe von Tropfen von jeweils 3—4 µl.4.12. Beschichtungsgerät für Dünnschichtplatten.4.13. Glasplatten für Dünnschichtchromatographie, 20 × 20 cm.4.14. Entwicklerkammer für die Dünnschichtchromatographie, mit Schliffrand,
für 20 × 20 cm Platten.
4.15. Sprüher für die Dünnschichtchromatographie.4.16. Trockenschrank, einstellbar auf 103 ± 2 ºC.
4.17. Thermostat, regulierbar zwischen 30 und 45 ºC ± 0,5 ºC.
4.18. Rotationsverdampfer.4.19. Elektrisches Schüttel- und Vibriergerät zum kräftigen Schütteln des
Zentrifugenglases.
4.20. Ultraviolettlampe zur Betrachtung der Dünnschichtplatten.
Und für die Kontrolle der Lipasetätigkeit:
4.21. Ein pH-Meßgerät.
4.22. Propellerrührer.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 32
▼B
4.23. 5-ml-Bürette.
4.24. Stoppuhr.
Und für die eventuelle Zubereitung der Lipase:
4.25. Laborrührgerät zum Zerkleinern und Mischen heterogener Materialien.
5. REAGENZIEN
5.1. n-Hexan oder, falls nicht verfügbar, Petrolether (Kp. 30—50 ºC), für die
Chromatographie.
5.2. 2-Propanol oder Ethanol 95 %ig (V/V), analytisch rein.
5.3. 2-Propanol oder Ethanol, 1:1 wäßrige Lösung.5.4. Diethylether, peroxidfrei.
5.5. Aceton.
5.6. Ameisensäure, mindestens 98 %ig (m/m).5.7. Fließmittel: Mischung aus n-Hexan (5.1), Diethylether (5.4) und Ameisen-
säure(5.6) im Ve rhältnis von 70:30:1 (V/V/V).
5.8. Aktiviertes Aluminiumoxid für die Chromatographie, neutral, Aktivi-
tätsstufeBrockmann 1.
5.9. Kieselgel, mit Bindemittel für die Dünnschichtchromatographie.5.10. Pancreaslipase mit ausreichender Aktivität (Anmerkungen 1 und 2).
5.11. Natriumhydroxid, 120 g/l wäßrigeLösung.
5.12. Salzsäure, 6 N.5.13. Kalziumchlorid (CaCl
2), 220 g/l wäßrigeLösung.
5.14. Natriumcholat (Enzymqualität), 1 g/l wäßrigeLösung.
5.15. Pufferlösung: 1 M wäßrige Lösung von tris-Hydroxymethylaminomethan
durch Zusatz von Salzsäure (5.12) auf pH 8 gebracht (durch Potentiometer
überprüfen).
5.16. Phenolphthalein, Lösung von 10 g/l in 95 %igem (V/V) Ethanol.
5.17. 2′,7′-Dichlorfluorescein, Lösung von 2 g/l in 95 %igem (V/V) Ethanol,
schwach alkalisch durch Zusatz eines Tropfens 1-N-Natriumhydroxidlö-
sung pro 100 ml.
Und für die Kontrolle der Lipasetätigkeit:
5.18. Neutralisiertes Öl.5.19. Natriumhydroxid, 0,1 N wäßrigreLösung.
5.20. Natriumcholat (Enzymqualität), wäßrigeLösung von 200 g/l.
5.21. Gummiarabikum, wäßrigeLösung von 100 g/l.
6. VORBEREITUNG DER PROBE
Liegt der Gehalt an freien Fettsäuren nach einer Bestimmung gemäß
Anhang II unter 3 %, so ist direkt über Aluminiumoxid, wie unter 6.2
beschrieben, zu reinigen. Weist die Probe einen Gehalt an freien Fett-
säuren von über 3 % gemäß Anhang II auf, so ist sie in Gegenwart eines
Lösungsmittels gemäß 6.1 mit Alkali zu neutralisieren und dann über
Aluminiumoxid gemäß 6.2 zu geben.
6.1.Neutralisierung durch Alkali in Gegenwart eines Lösungsmittels
Etwa 10 g rohes Öl in einen Scheidetrichter (4.6) geben und 100 ml
Hexan (5.1), 50 ml 2-Propanol (5.2), einige Tropfen Phenolphthaleinlö-
sung (5.16) und so viel Natriumhydroxidlösung (5.11) hinzufügen, wie
dem Gehalt des Öls an freien Fettsäuren zuzüglich 0,3 % Überschuß
entspricht. Eine Minute lang kräftig schütteln, 50 ml destilliertes Wasser
zugeben, erneut schütteln und absetzen lassen.
Nach dem Absetzen die untere, die Seifen enthaltende Schicht sowie
etwaige Zwischenschichten (Schleim, unlösliche Stoffe) entfernen. Die
Hexanlösung des neutralisierten Öls mehrmals mit25—30 ml der 2-Propa-
nollösung (5.3) waschen, bis die Rosafärbung des Phenolphthaleins
verschwindet.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 33
▼B
Den größten Teil des Hexans unter Vakuum im Rotationsverdampfer
(4.18) abdestillieren, das Öl bei 30—40 ºC unter Vakuum in einem Stick-
stoffstrom trocknen, bis das Hexan vollständig entfernt ist.
6.2.Reinigung über Aluminiumoxid
Eine Suspension von 15 g aktiviertem Aluminiumoxid (5.8) in 50 ml
Hexan (5.1) herstellen und unter Rühren in die Chromatographiesäule
(4.7) gießen. Das Aluminiumoxid gleichmäßig absetzen lassen und
warten, bis das Lösungsmittel auf 1—2 mm über dem Absorptionsmittel
abgelaufen ist. Auf die Säule vorsichtig eine Lösung von 5 g Öl in 25 ml
Hexan (5.1) gießen; die gesamte aus der Säule ablaufende Flüssigkeit in
einem Rundkolben (4.1) sammeln.
7. HERSTELLUNG DER DÜNNSCHICHTPLATTEN
Die Glasplatten (4.13) sorgfältig mit Ethanol, Petrolether und Aceton
reinigen, um jeden Fettrest zu beseitigen. In einen Erlenmeyerkolben
(4.4) 30 g Kieselgel (5.9) geben, 60 ml destilliertes Wasser hinzufügen,
verschließen und eine Minute kräftig schüttteln. Die Suspension sofort in
das Beschichtungsgerät (4.12) geben und eine 0,25 mm dicke Schicht auf
die Platten auftragen. Die Platten 15 Minuten an der Luft und eine Stunde
im Trockenschrank (4.16) bei 103 ± 2 ºC trocknen. Die Platten vor
Verwendung in einem Exsikkator auf Raumtemperatur abkühlen.
Fertigplatten sind im Handel erhältlich.
8. VERFAHREN8.1.Hydrolyse durch Pancreaslipase
In das Zentrifugenglas (4.8) etwa 0,1 g der vorbereiteten Probe einwiegen;
handelt es sich um ein festes Fett, muß es in 0,2 ml Hexan (5.1), evtl.
unter schwachem Erwärmen, gelöst werden.
20 mg Lipase (5.10) und 2 ml der Pufferlösung (5.15) hinzufügen.
Sorgfältig und vorsichtig schütteln und dann 0,5 ml der Natriumcholatlö-
sung (5.14) und 0,2 ml der Kalziumchloridlösung (5.13) hinzufügen. Das
Glas mit dem Schliffstopfen verschließen, vorsichtig schütteln
(Befeuchten des Stopfens vermeiden), das Glas sofort bei 40 ± 0,5 ºC in
den Thermostaten (4.17) stellen und genau eine Minute mit der Hand
schütteln.
Das Glas aus dem Thermostaten nehmen und mit Hilfe des Vibriergeräts
(4.19) genau 2 Minuten lang kräftig schütteln.
Sofort in fließendem Wasser abkühlen; 1 ml Salzsäure (5.12) und 1 ml
Diethylether (5.4) hinzufügen. Verschließen und kräftig mit dem elektri-
schen Schüttelgerät schütteln. Stehen lassen und die organische Phase
mit Hilfe der Spritze (4.10), gegebenenfalls nach Zentrifugieren,
abnehmen.
8.2.Abtrennung der Monoglyceride durch Dünnschichtchromatographie
Den Extrakt mit der Mikroliterspritze (4.11) auf die Dünnschichtplatte
auftragen, und zwar 1,5 cm vom unteren Rand entfernt, als dünnen,
einheitlichen Strich. Die Platte in die gut gesättigte Entwicklerkammer
(4.14) stellen und mit dem Fließmittel (5.7) bei etwa 20 ºC bis 1 cm
vom oberen Plattenrand entfernt entwickeln.
Die Platte an der Luft bei der gleichen Temperatur wie in der Entwickler-
kammer trocknen und mit 2 ′,7′-Dichlorfluoresceinlösung (5.17)
besprühen. Die Zone der Monoglyceride (Rf etwa 0,035) unter UV-Licht
(4.20) markieren.
8.3.Analyse der Monoglyceride durch Gaschromatographie
Die nach 8.2 erhaltene Kieselgelzone mit einem Spatel abkratzen
(vermeiden, daß auch die auf der Startlinie verbleibenden Bestandteile
mit erfaßt werden) und in das Methylierungskölbchen (4.2) überführen.
Das gesammelte Kieselgel, so wie es vorliegt, nach dem Verfahren gemäß
Anhang XB behandeln, die Monoglyceride in Methylester überführen,
dann die Ester gaschromatographisch nach dem Verfahren gemäß Anhang
XA untersuchen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 34
▼B
9. FORMULIERUNG DER ERGEBNISSE
Die Zusammensetzung der Fettsäuren in 2-Stellung auf eine Dezimalstelle
genau angeben (Anmerkung 3).
10. ANMERKUNGEN
Anmerkung 1: Prüfung der Lipasetätigkeit
Aus einem Gemisch von 165 ml Gummiarabikumlösung
(5.21), 15 g gemahlenem Eis und 20 ml neutralisiertem
Öl (5.18) mit einem geeigneten Rührgerät eine Ölemulsion
herstellen.
10 ml dieser Emulsion in ein Becherglas (4.5) geben,
anschließend 0,3 ml Natriumcholatlösung (5.20) und 20 ml
destilliertes Wasser hinzufügen.
Das Becherglas bei 37 ± 0,5 ºC (Anmerkung 4) in einen
Thermostaten stellen; die Elektroden eines pH-Meters
(4.21) und einen Spiralrührer (4.22) einsetzen.
Mit Hilfe einer Bürette (4.23) tropfenweise Natriumhydro-
xidlösung (5.19) hinzufügen bis zu einem pH-Wert von
8,5.
Eine ausreichende Menge der wäßrigen Lipasesuspension
(siehe nachstehend) hinzufügen. Sobald das pH-Meter 8,3
anzeigt, die Stoppuhr anstellen (4.24) und Natriumhydro-
xidlösung (5.19) so zutropfen lassen, daß der pH-Wert bei
8,3 gehalten wird. Das Volumen der pro Minute
verbrauchten Alkalilösung notieren.
Die Werte in ein Koordinatensystem eintragen, und zwar
die Zeitablesungen als Abszisse und die Anzahl ml Alkali-
lösung zur Konstanthaltung des pH-Werts als Ordinate.
Dabei muß sich eine Gerade ergeben.
Die vorstehend erwähnte Lipasesuspension ist eine Suspen-
sion von eins zu Tausend in Wasser. Für jeden Versuch
soviel der Suspension verwenden, daß in 4 bis 5 Minuten
etwa 1 ml Alkalilösung verbraucht wird. Normalerweise
werden etwa 1—5 mg Lipasepulver gebraucht. Die Lipase-
einheit wird als die Menge Enzym definiert, die 10
Mikroäquivalente Säure pro Minute freisetzt. Damit ergibt
sich die Aktivität A des verwendeten Pulvers, ausgedrückt
als Lipaseeinheiten in mg, anhand folgender Formel:
A¼V/C210
m
Dabei entspricht V der Anzahl der pro Minute
verbrauchten ml Natriumhydroxidlösung (5.19), berechnet
aus der graphischen Darstellung, m ist das Gewicht der
Lipaseprobe in mg.
Anmerkung 2: Herstellung der Lipase
Lipasen mit ausreichender Lipasetätigkeit sind im Handel
erhältlich. Sie können aber auch im Labor wie folgt herge-
stellt werden: 5 kg frisches Schweinepankreas auf 0 ºC
abkühlen; das umhüllende feste Fett und die anhängenden
Gewebe entfernen und im Mixer zerkleinern, bis ein flüs-
siger Brei ensteht. Diesen Brei mit dem Rührgerät (4.25)
4—6 Stunden mit 2,5 l wasserfreiem Aceton rühren,
anschließend zentrifugieren. Den Rückstand noch dreimal
mit dem gleichen Volumen Aceton, dann zweimal mit
einer Mischung von Aceton und Diethylether 1: 1 (V/V)
und zweimal mit Diethylether extrahieren. Den Rückstand
im Vakuum 48 Stunden lang trocknen, bis ein stabiles
Pulver entsteht, das im Kühlschrank aufbewahrt werden
sollte.
Anmerkung 3: In jedem Fall ist es ratsam, die Zusammensetzung der
Gesamtfettsäuren der gleichen Probe zu bestimmen, da ein
Vergleich mit den Fettsäuren in 2-Stellung bei der Interpre-
tation der Werte von Nutzen ist.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 35
▼B
Anmerkung 4: Die Hydrolysentemperatur wird auf 37 ºC eingestellt, wenn
ein flüssiges Öl verwendet wird. Sie wird jedoch für die
Untersuchungsproben auf 40 ºC festgelegt, um auch die
Untersuchung von Fetten mit Schmelzpunkten bis zu 45 ºC
zu ermöglichen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 36
▼B
ANHANG VIII
BESTIMMUNG DES TRILINOLEINGEHALTS
1. ZWECK
Die vorliegende Norm beschreibt ein Verfahren zur Trennung und quantita-
tiven Bestimmung der Zusammensetzung von Triglyceriden in
Abhängigkeit von Molekulargewicht und Grad der Ungesättigtheit, ausge-
drückt in „äquivalenten Kohlenstoffzahlen“ (siehe Anmerkung 1).
2. ANWENDUNGSBEREICH
Diese Norm gilt für alle pflanzlichen Öle, die Triglyceride langkettiger
Fettsäuren enthalten. Das Verfahren eignet sich insbesondere zum Nach-
weis von kleinen Mengen linolsäurereicher halbtrocknender Öle in den
Ölen, die überwiegend Ölsäure als ungesättigte Fettsäure enthalten, wie z.
B. Olivenöl.
3. PRINZIP
Trennung der Triglyceride durch Umkehrphasenchromatographie in
Abhängigkeit von ihren äquivalenten Kohlenstoffzahlen und Auswertung
der Chromatogramme.
4. GERÄTE
4.1. Flüssigchromatograph, der so ausgestattet ist, daß die Temperatur der Säule
über einen Thermostaten kontrolliert werden kann.
4.2. Einspritzsystem mit einer 10-µl-Probenschleife.
4.3. Detektor: Differentialrefraktometer. Im Bereich der höchsten Empfindlich-
keit sollten wenigstens 10−4Einheiten des Brechungsindexes erreicht
werden.
4.4. Säule: Säule aus rostfreiem Stahl von 250 mm Länge und 4,5 mm Durch-
messer, gefüllt mit Kieselgelpartikeln, die mit Oktadecylsilan belegt sind
(Durchmesser 5 µm). Die durchschnittliche Kohlenstoffbelegung sollte bei
etwa 22—23 % liegen (siehe Anmerkung 2).
4.5. Schreiber und/oder Integrator.
5. REAGENZIEN
Die Reagenzien müssen analytisch rein sein. Die Fließmittel sollten entgast
sein. Sie können mehrere Male wiederverwendet werden, ohne daß dadurch
die Trennleistungen beeinflußt werden.
5.1. Chloroform.
5.2. Aceton.
5.3. Acetonitril.5.4. Fließmittel: Aceton/Acetonitril. Das Mischungsverhältnis ist so einzu-
stellen, daß damit die gewünschte Trennung erzielt wird. Man geht
zunächst von einem Mischungsverhältnis von 1:1 aus.
5.5. Lösungsmittel: Aceton oder eine Mischung von Aceton/Chloroform im
Verhältnis 1:1.
5.6. Triglyceride als Referenzsubstanzen. Entweder mit Hilfe der im Handel
verfügbaren Triglyceride (Tripalmitin, Triolein usw.) ein Diagramm aus
den Retentionszeiten und den äquivalenten Kohlenstoffzahlen aufzeichnen
oder ein Referenzchromatogramm des Sojaöls verwenden (siehe Anmer-
kungen 3 und 4 sowie Abbildungen 1 und 2).
6. VORBEREITUNG DER PROBEN
Von der zu analysierenden Probe wird eine 5 %ige Lösung hergestellt,
indem genau 0,5 g ± 0,001 g der Probe in einen 10-ml-Meßkolben einge-
wogen und mit dem Lösungsmittel (5.5) auf 10 ml aufgefüllt werden.
7. VERFAHREN
7.1. Das HPLC-Gerät in Betrieb setzen. Das Fließmittel (5.4) wird mit einer
Strömungsgeschwindigkeit von 1,5 ml/min durch die Säule gepumpt, um
das gesamte System zu reinigen. Es wird so lange gewartet, bis eine stabile1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 37
▼B
Grundlinie erreicht ist. Anschließend werden 10 µl der gemäß Ziffer 6
hergestellten Probe eingespritzt.
8. BERECHNUNG UND ABFASSUNG DER ERGEBNISSE
Es wird die Methode der inneren Standardisierung angewandt, d. h. man
geht davon aus, daß die Summe der Peakflächen, die den verschiedenen
Triglyceriden entsprechen, 100 % darstellen. Der relative prozentuale
Anteil eines jeden Triglycerids wird berechnet nach der Formel
% Triglycerid =Peakfläche
Summe der Peakflächen× 100
Das Ergebnis ist auf eine Stelle nach dem Komma anzugeben.
Anmerkung 1: Die Reihenfolge der Elution kann durch die Berechnung der
„äquivalenten Kohlenstoffzahlen“ (NCE) ermittelt werden.
Diese sind wie folgt definiert:
NCE = NC − 2n.Dabei ist NC die Zahl der Kohlenstoffatome und n die Zahl
der Doppelbindungen.
Wenn n
o,n1und n1ndie Zahlen der Doppelbindungen sind,
die von der Öl- bzw. der Linol- und Linolensäure stammen,
so kann die äquivalente Kohlenstoffzahl berechnet werden
nach der Formel
NCE = NC − dono−d1n1−d1nn1n.
Die Koeffizienten do,d1und d1nkönnen mit Hilfe der
Triglyceride, die als Referenzsubstanzen benutzt wurden,
berechnet werden. Unter den in dieser Methode beschrie-
benen Bedingungen gilt etwa folgende Beziehung
NCE = NC − 2,60 no− 2,35 n1− 2,17 n1n.
Anmerkung 2: Beispiele: Lichrosorb RP 18 (Merck) Art 50333,
Lichrospher 100 CH-18 (Merck) Art 50377 oder
ähnliches Füllmaterial.
Anmerkung 3: Man kann ebenfalls mit mehreren Triglyceriden als Refe-
renzsubstanzen und mit Hilfe der korrigierten
Retentionszeit TR ′=T R−T RLösungsmitteldie Selektivität in
bezug auf Triolein wie folgt berechnen:
α=TR′
TR′Olein
DiegraphischeDarste llung von log α= f (Zahl der Doppel-
bindungen) ermöglicht es, die Retention von allen
Triglyceriden zu bestimmen, die die Fettsäuren enthalten,
die in den als Referenzsubstanzen verwendeten Triglyce-riden vorkommen (siehe Abbildung 2).
Anmerkung 4: Die Trennfähigkeit der Säule muß eine klare Trennung des
Trilinolein-Peaks (LLL) auch von den Peaks der Triglyce-
ride ermöglichen, die eine nur wenig unterschiedliche
Retentionszeit besitzen.
Anmerkung 5: Rohes naturreines Olivenlampantöl und rohes Oliventre-
steröl müssen zur Erzielung einer sauberen Trennung des
Trilinoleinpeaks vom linken und rechten Nachbarpeak oder
von den Peaks etwaiger Verunreinigungen zunächst gemäß
folgendem Verfahren gereinigt werden:
200µl Öl werden unverdünnt auf eine Fest-Flüssig-Extrak-
tions-Kieselgelsäule (Type SEP PAK silica cartridge-waters
part. Nr. 51900) aufgegeben.
Die Triglyzeride werden innerhalb von höchstens 20
Sekunden mit 20 ml wasserfreiem Hexan für die HPLC
eluiert.
Das Eluat wird im Stickstoffstrom abgeblasen und in Isopro-
panol oder Aceton (5 ml) gelöst. 10 bis 20 µl davon werden
der HPLC-Säule aufgegeben. Es ist darauf zu achten, daß
die Zusammensetzung der Fettsäuren vor und nach der1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 38
▼M11
▼M11
Reinigung gleich ist, wobei der Fehlergrenze des verwen-
deten Analyseverfahrens Rechnung getragen wird.
Abbildung 1
Chromatogramm eines Sojaöls
Anmerkung: P = Palmitinsäure; St = Stearinsäure; O = Ölsäure; L = Linol-
säure; Ln = Linolensäure.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 39
▼B
▼B
Abbildung 2
Graphische Darstellung von log αals Funktion von f (Zahl der Doppelbin-
dungen)
Anmerkung: La = Laurinsäure; My = Myristinsäure; P = Palmitinsäure; St
= Stearinsäure; O = Ölsäure; L = Linolsäure; Ln = Linolen-
säure.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 40
▼B
ANHANG IX
UV-SPEKTROPHOTOMETRISCHE ANALYSE
EINLEITUNG
Die spektrophotometrische Untersuchung im Ultraviolettlicht kann
Angaben über die Qualität eines Fettes, seine Haltbarkeit und die infolge
technologischer Verfahren eingetretenen Veränderungen erbringen.
Die Absorption bei den in dem Verfahren vorgesehenen Wellenlängen ist
bedingt durch das Vorkommen konjugierter Dien- und Triensysteme. Die
Absorption wird als spezifische Extinktion E1cm1 % angegeben (Extinktion
einer 1 %igen Lösung des Fettes in dem vorgeschriebenen Lösungsmittel
bei einer Schichtdicke von 1 cm). Sie wird üblicherweise als K bezeichnet
(auch Extinktionskoeffizient genannt).
1. ANWENDUNGSBEREICH
Das Verfahren beschreibt die Durchführung der spektrophotometrischen
Untersuchung von Fetten im Ultraviolettlicht.
2. PRINZIP
Das zu untersuchende Fett wird in dem vorgeschriebenen Lösungsmittel
gelöst, anschließend wird die Extinktion der Lösung bei der vorgeschrie-
benen Wellenlänge im Vergleich zum reinen Lösungsmittel bestimmt. Die
spezifischen Extinktionen werden mit Hilfe der abgelesenen spektrophoto-
metrischen Werte errechnet.
3. GERÄTE
3.1. Spektrophotometer, geeignet zum Messen der Extinktionen im UV-Licht
zwischen 220 und 360 nm und mit der Möglichkeit, einzelne nanometrische
Einheiten ablesen zu können.
3.2. Rechteckige Quarzküvetten mit Deckel und einer optischen Länge von
1 cm. Die Extinktionen der mit Wasser oder einem geeigneten Lösungs-
mittel gefüllten Küvetten dürfen nicht mehr als 0,01 Einheiten
voneinander abweichen.
3.3. 25-ml-Meßkolben.
3.4. Chromatographiesäule mit einem oberen Teil von 270 mm Länge und 35
mm Durchmesser sowie einem unteren Teil von 270 mm Länge und 10
mm Durchmesser.
4. REAGENZIEN
4.1. — Isooktan (2,2,4-Trimethylpentan), spektrophotometrisch rein: es muß im
Vergleich zu destilliertem Wasser eine Durchlässigkeit von mindestens
60 % bei 220 nm und mindestens 95 % bei 250 nm haben; oder
— Cyclohexan, spektrophotometrisch rein: es muß im Vergleich zu destil-
liertem Wasser eine Durchlässigkeit von mindestens 40 % bei 220 nm
und mindestens 95 % bei 250 nm haben.
4.2. Basisches Aluminiumoxid zur Säulenchromatographie, das gemäß Anlage 1
vorbereitet und geprüft wurde.
4.3. n-Hexan, zur Chromatographie.
5. VERFAHREN
5.1. Die zu untersuchende Probe muß absolut homogen und frei von suspen-
dierten Verunreinigungen sein. Die bei Raumtemperatur flüssigen Öle
werden bei einer Temperatur von etwa 30 ºC über Papier filtriert. Die
festen Fette werden homogenisiert und bei einer Temperatur von höchstens
10 ºC über ihrem Schmelzpunkt filtriert.
5.2. Etwa 0,25 g der so vorbereiteten Probe in einen 25-ml-Meßkolben
einwiegen, mit dem vorgeschriebenen Lösungsmittel auffüllen und homo-1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 41
▼M6
▼B
▼M6
▼B
▼B
genisieren. Die so hergestellte Lösung muß absolut klar sein. Wenn die
Lösung trüb ist oder Verunreinigungen enthält, muß schnell über Papier
filtriert werden.
5.3. Mit der so hergestellten Lösung wird eine Küvette gefüllt und die Extink-
tion bei der entsprechenden Wellenlänge zwischen 232 und 276 nm
gemessen, wobei das Lösungsmittel als Referenzlösung verwendet wird.
Die abgelesenen Extinktionen müssen im Bereich von 0,1 bis 0,8 liegen;
andernfalls müssen die Messungen unter Verwendung von entsprechend
stärker konzentrierten oder verdünnten Lösungen wiederholt werden.
5.4. Wird eine Bestimmung der spezifischen Extinktion nach Behandlung mit
Aluminiumoxid verlangt, so ist wie folgt zu verfahren: 30 g basisches
Aluminiumoxid werden in einer Hexansuspension in die Säule gegeben.
Nach dem Absetzen des Adsorbens wird überschüssiges Hexan bis auf
1 cm oberhalb der Aluminiumoxidfüllung entfernt.
10 g Fett, das wie unter 5.1 beschrieben homogenisiert und filtriert wurde,
wird in 100 ml Hexan gelöst und die Lösung auf die Säule gegeben. Das
Eluat wird gesammelt und das Lösungsmittel im Vakuum bei Temperaturen
unter 25 ºC entfernt.
Mit dem so erhaltenen Fett wird sofort weiter verfahren wie unter 5.2
beschrieben.
6. ABFASSUNG DER ERGEBNISSE
6.1. Angegeben werden die bei den verschiedenen Wellenlängen bestimmten
spezifischen Extinktionen (Extinktionskoeffizienten), die wie folgt zu
berechnen sind:
Kλ¼Eλ
c/C1s
Dabei bedeuten:
Kλ= die spezifische Extinktion (Extinktionskoeffizient) bei der
Wellenlängeλ,
Eλ= die bei der Wellenlänge λgemessene Extinktion,
c = die Konzentration der Lösung in g/100 ml,
s = die Länge der Küvette in cm.
Die Ergebnisse werden mit zwei Dezimalstellen angegeben.
6.2. Die spektrophotometrische Untersuchung von Olivenöl nach dem amtlichen
Verfahren der EWG-Verordnungen sieht die Bestimmung der spezifischen
Extinktion in einer Isooktanlösung bei den Wellenlängen 232 und 270 nm
sowiedieBe stimmung von ∆K gemäß folgender Formel vor:
∆K¼Km/C0Km/C04þKmþ4
2
Dabei ist Kmdie spezifische Extinktion bei der Wellenlänge m, bei der im
Bereich von 270 nm das Maximum der Absorption liegt.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 42
▼B
ANLAGE I
Vorbereitung des Aluminiumoxids und Prüfung seiner Aktivität
A.1.1. Vorbereitung des Aluminiumoxids
Das zuvor im Trockenschrank bei 380—400 ºC 3 Stunden lang getroc-
knete Aluminiumoxid in ein gut verschließbares Gefäß geben, je 100 g
Aluminiumoxid 5 ml destilliertes Wasser zugeben, das Gefäß rasch
verschließen, mehrfach schütteln und vor der Verwendung mindestens
12 Stunden stehen lassen.
A.1.2. Überprüfung der Aktivität des Aluminiumoxids
EinechromatographischeSäulemit 30 g Aluminiumoxid fülle n und
weiter wie unter 5.4 beschrieben verfahren. Über die Säule gibt man
eine Mischung bestehend aus
— 95 % nativem Olivenöl mit einer spezifischen Extinktion bei 268 nm
von weniger als 0,18 und
— 5 % Erdnußöl, das bei der Raffination mit Bleicherde behandelt
wurde und eine spezifische Extinktion bei 268 nm von mindestens 4
aufweist.
Weist die Mischung nach dem Passieren der Säule eine spezifische
Extinktion bei 268 nm von mehr als 0,11 auf, so ist das Aluminiumoxid
geeignet, anderenfalls ist der Wasserzusatz zu erhöhen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 43
▼B
ANLAGE II
Eichung des Spektrophotometers
A.2. Das Gerät muß regelmäßig (mindestens alle 6 Monate) im Hinblick auf
die Einstellung der Wellenlänge und die Genauigkeit der Anzeige über-
prüft werden.
A.2.1. Die Überprüfung der Einstellung der Wellenlänge kann mit Hilfe einer
Quecksilberdampflampe oder geeigneter Filter erfolgen.
A.2.2. Zur Überprüfung der photoelektrischen Zelle und des Photomultipliers
wird wie folgt verfahren: 0,2 g reines Kaliumchromat für die Spektro-
photometrie einwiegen und in einer 0,05-N-Kaliumhydroxidlösung
lösen, dann in einen Meßkolben geben und auf 1 000 ml auffüllen.
Anschließend genau 25 ml der so hergestellten Lösung in einen 500-ml-
Meßkolben überführen und mit der gleichen Kaliumhydroxidlösung
auffüllen. Die Extinktion der so hergestellten Lösung bei 275 nm messen
und dabei die Kaliumhydroxidlösung als Referenzlösung verwenden. Die
mit einer 1-cm-Küvette gemessene Extinktion muß 0,2 ± 0,005 betragen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 44
▼B
ANHANG XA
GASCHROMATOGRAPHISCHE ANALYSE DER FETTSÄUREMETHY-
LESTER
1. ANWENDUNGSBEREICH
Diese Norm enthält allgemeine Anweisungen zur Anwendung der
Gaschromatographie mit gepackten Säulen oder mit Kapillarsäulen zur
Bestimmung der qualitativen und quantitativen Zusammensetzung einer
Mischung von Fettsäuremethylestern, die nach dem in Anhang XB
beschriebenen Verfahren hergestellt wurden.
Das Verfahren eignet sich nicht für polymerisierte Fettsäuren.
2. REAGENZIEN.2.1.Trägergas
Inertgas (Stickstoff, Helium, Argon, Wasserstoff usw.), vollständig
getrocknet und mit einem Sauerstoffgehalt unter 10 mg/kg.
Anmerkung 1: Der ausschließlich in Kapillarsäulen als Trägergas
verwendete Wasserstoff kann die Analysengeschwindig-
keit verdoppeln, ist aber gefährlich.
Sicherheitsvorrichtungen sind verfügbar.
2.2.Hilfsgase
2.2.1. Wasserstoff (Reinheit über 99,9 %), frei von organischen Verunreini-
gungen.
2.2.2. Luft oder Sauerstoff, frei von organischen Verunreinigungen.
2.3.Referenzstandard
Eine Mischung aus reinen Fettsäuremethylestern oder die Methylester
eines Fetts mit bekannter Zusammensetzung, die möglichst der Zusam-
mensetzung des zu analysierenden Fetts ähnlich sind.
Eine Oxidation der mehrfach ungesättigten Fettsäuren muß vermieden
werden.
3. GERÄTE
Die vorliegenden Instruktionen gelten für die übliche Ausrüstung für
die Gaschromatographie mit gepackter Säule oder Kapillarsäule und
Flammenionisationsdetektor. Jedes Gerät, das die in 4.1.2 beschriebene
Leistung und Trennung erbringt, ist geeignet.
3.1.Gaschromatograph
Der Gaschromatograph muß über folgende Bestandteile verfügen:
3.1.1. Einspritzsystem
Verwendet wird ein Einspritzsystem entweder in Verbindung
a) mit gepackten Säulen und möglichst geringem Totvolumen (es muß
in diesem Fall auf Temperaturen erhitzt werden können, die um
20—50 ºC über der Säulentemperatur liegen) oder
b) mit Kapillarsäulen. In diesem Fall muß das Einspritzsystem speziell
für diese Säulen vorgesehen sein. Es kann das Split-System oder das
System der splitlosen „On Column“-Injektion sein.
Anmerkung 2: Sind Fettsäuren mit weniger als 16 Kohlenstoffatomen
nicht vorhanden, so kann ein Injektor mit beweglicher
Nadel verwendet werden.
3.1.2. Ofen
Der Ofen sollte so ausgelegt sein, daß die Säule auf mindestens 260 ºC
aufgeheizt und die Temperatur bei gepackten Säulen auf 1 ºC und bei
Kapillarsäulen auf 0,1 ºC genau konstant gehalten werden kann. Letz-
tere Bedingung ist vor allem dann wichtig, wenn eine „Fused Silica“-
Säule verwendet wird.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 45
▼B
In jedem Fall, besonders aber bei Fettsäuren mit weniger als 16 Kohlen-
stoffatomen, wird eine Heizung mit Temperaturprogramm empfohlen.
3.1.3. Gepackte Säule3.1.3.1. Säule aus einem Material, das unempfindlich ist gegenüber den zu
analysierenden Substanzen (z. B. Glas oder rostfreier Stahl).
Größe der Säule:
a) Länge: 1—3 m. Eine relativ kurze Säule sollte verwendet werden,
wenn langkettige Fettsäuren (über C
20) vorkommen. Bei der Analyse
von Säuren mit 4 oder 6 Kohlenstoffatomen wird eine 2 m lange
Säule empfohlen;
b) Innendurchmesser: 2—4 mm.
Anmerkung 3: Sind mehrfach ungesättigte Bestandteile mit mehr als
drei Doppelbindungen vorhanden, so können sie in einer
Säule aus rostfreiem Stahl zersetzt werden.
Anmerkung 4: Es kann ein System mit zwei gepackten Säulen
verwendet werden.
3.1.3.2. Füllung, bestehend aus folgenden Bestandteilen:
a)Trägermaterial: Mit Säure gewaschenes und silanisiertes Kieselgur
oder sonstiges geeignetes neutrales Trägermaterial mit einem engen
Korngrößenbereich (Schwankungsbereich 25 µm innerhalb der
Grenzwerte von 125 bis 200 µm), wobei die durchschnittliche
Korngröße auf den Innendurchmesser der Säule abgestimmt wird.
b)Stationäre Phase: Polare Flüssigkeit vom Typ Polyester (z. B.
►C1Diethylenglykolpolysuccinat ◄, Butandiolpolysuccinat, Ethy-
lenglykolpolyadipat usw.), Cyanosilicone oder sonstige
Flüssigkeiten, die die erforderliche chromatographische Trennung
ermöglichen (siehe Ziffer 4). Die stationäre Phase sollte 5—20 %
(m/m) der Füllung ausmachen. Für bestimmte Trennungen kann
eine nichtpolare stationäre Phase verwendet werden.
3.1.3.3. Vorbereitung der Säule
Nachdem die Säule vom Detektor getrennt worden ist, den Ofen
allmählich auf 185 ºC aufheizen und einen Inertgasstrom von
20—60 ml/min mindestens 16 Stunden bei 185 ºC sowie weitere 2
Stunden bei 195 ºC durch die frisch hergestellte Säule leiten.
3.1.4. Kapillarsäule3.1.4.1. Kapillare aus einem Material, das nicht mit den zu analysierenden
Stoffen reagiert (üblicherweise Glas oder „Fused Silica“). Der Innen-
durchmesser sollte zwischen 0,2 und 0,8 mm liegen. Die Innenflächen
müssen vor dem Auftragen der stationären Phase einer geeigneten
Behandlung unterzogen werden (beispielsweise Oberflächenvorberei-
tung, Desaktivierung). In den meisten Fällen ist eine Länge von 25 mausreichend.
3.1.4.2. Die stationäre Phase ist üblicherweise vom Typ Polyglykol (Polyethy-
lenglykol 20 000), Polyester (Butandiolpolysuccinat) oder polarem
Polysiloxan (Cyanosilicon). Vernetzte (cross linked) Säulen sind
geeignet.
Anmerkung 5: Bei Verwendung von polaren Polysiloxanen können bei
der Identifizierung und Trennung von Linolensäure und
C
20-Säuren Schwierigkeiten auftreten.
Die Beschichtung sollte dünn, beispielsweise nur 0,1 bis 0,2 µm, sein.
3.1.4.3. Einbau und Vorbereitung der Säule
Beim Einbau der Kapillarsäule müssen die üblichen Vorsichtsmaß-
nahmen, wie Anordnung der Säule im Ofen (Träger), Auswahl und
Zusammenbau der Verbindungsstücke (Abdichtung), Ausrichten der
Säulenenden in dem Einspritzsystem und im Detektor (Verringerung
von Totvolumen), getroffen werden. Die Säule wird mit dem Trägergas-
strom gespült (z. B. bei einer Säulenlänge von 25 m und einem
Innendurchmesser von 0,3 mm mit 0,3 bar (30 kPa)).
Zur Vorbereitung der Säule wird das Temperaturprogramm des Ofens
auf 3 ºC/min eingestellt und die Säule, ausgehend von der Raumtempe-
ratur, auf eine Temperatur von 10 ºC unter der Zersetzungsgrenze der
stationären Phase erhitzt. Diese Ofentemperatur wird 1 Stunde beibe-
halten, bis die Grundlinie stabilisiert ist. Dann auf 180 ºC
zurückschalten und unter isothermen Bedingungen weiterarbeiten.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 46
▼B
Anmerkung 6: Entsprechend vorbehandelte Fertigsäulen können im
Handel bezogen werden.
3.1.5. Der Detektor sollte auf eine höhere Temperatur als die Säulentempe-
ratur erhitzt werden können.
3.2.Spritze
Die Spritze sollte eine maximale Kapazität von 10 µl und eine Graduie-
rung in 0,1 µl haben.
3.3.Schreiber
Wird die von dem Schreiber aufgezeichnete Kurve zur Berechnung der
Zusammensetzung der analysierten Mischung verwendet, so wird ein
mit dem verwendeten Gerät kompatibler Schreiber von hoher Präzision
benötigt. Der Schreiber sollte folgende Merkmale aufweisen:
a) Ansprechgeschwindigkeit unter 1,5 s, vorzugsweise 1 s (die
Ansprechgeschwindigkeit ist die Zeit, die der Schreiber benötigt,
um nach plötzlicher Auslösung eines Signals (100 %) von 0 % auf
90 % auszuschlagen);
b) Papierbreite mindestens 20 cm;
c) Vorschubgeschwindigkeit einstellbar zwischen 0,4 und 2,5 cm/min.
3.4.Integrator oder Rechner (fakultativ)
Eine schnelle und genaue Berechnung ist mit Hilfe eines elektronischen
Integrators oder Rechners möglich, der eine lineare Reaktion bei ange-
messener Empfindlichkeit liefern soll. Dabei muß die Korrektur bei
Abweichungen von der Grundlinie zufriedenstellend sein.
4. VERFAHREN
Die in 4.1 bis 4.3 beschriebenen Verfahren beziehen sich auf den
Gebrauch eines Flammenionisationsdetektors.
Alternativ kann auch ein Gaschromatograph mit einem Katharometer-
Detektor (der auf dem Prinzip der Änderungen der Wärmeleitfähigkeit
beruht) verwendet werden. In diesem Fall müssen die Betriebsbedin-
gungen entsprechend Ziffer 6 geändert werden.
4.1.Versuchsbedingungen
4.1.1. Ermittlung der optimalen Betriebsbeding ungen
4.1.1.1. Gepackte Säule
Bei der Ermittlung der Versuchsbedingungen müssen folgende Varia-
blen berücksichtigt werden:
a) Länge und Durchmesser der Säule;
b) Art und Menge der stationären Phase;
c) Säulentemperatur;
d) Trägergasstrom;
e) erforderliche Trennleistung;
f) Größe der zu untersuchenden Probe, die so ausgewählt sein muß,
daß Detektor und Elektrometer eine lineare Anzeige ergeben;
g) Analysendauer.
Im allgemeinen führen die in den Tabellen 1 und 2 genannten Werte zu
dem gewünschten Ergebnis, d. h. mindestens 2 000 theoretische Böden
pro Meter Säulenlänge für Methylstearat und dessen Elution innerhalb
von 15 Minuten.
Sofern die Geräte es erlauben, sollte das Einspritzsystem etwa 200 ºC
und der Detektor mindestens genauso heiß wie die Säule sein.
Im allgemeinen liegt das Verhältnis der Strömungsgeschwindigkeit des
Wasserstoffs für den Flammenionisationsdetektor und der des Träger-
gases zwischen 1:2 und 1:1 je nach Säulendurchmesser. Der
Sauerstoffstrom beträgt etwa das 5- bis 10-fache des Wasserstoffstroms.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 47
▼B
Tabelle 1
Innendurchmesser der Säule in mm Trägergasstrom in ml/min
2 15 bis 25
3 20 bis 40
4 40 bis 60
Tabelle 2
Konzentration der stationären Phase
in % (m/m)Säulentemperatur in ºC
5 175
10 180
15 185
20 185
4.1.1.2. Kapillarsäule
Die Eigenschaften der Kapillarsäule, nämlich Leistungsfähigkeit und
Durchlässigkeit, bedingen, daß die Trennung der Bestandteile und die
Analysendauer weitgehend von der Strömungsgeschwindigkeit des
Trägergases in der Säule abhängen. Daher ist eine Optimierung der
Betriebsbedingungen durch Einwirkung auf deren Parameter (einfacher
ausgedrückt: auf den Druckverlust der Säule) notwendig, je nachdem,
ob eine bessere Trennung oder eine schnellere Analyse gewünscht wird.
4.1.2. Bestimmung der Zahl der theoretischen Böden (Leistungs-
fähigkeit) und der Auflösung (siehe Abbildung 1)
Die Analyse wird mit einer Mischung aus etwa gleichen Teilen Methyl-
stearat und Methyloleat (beispielsweise Methylestern der Kakaobutter)
durchgeführt.
Die Säulentemperatur und der Trägergasstrom sind so zu wählen, daß
das Maximum des Methylstearat-Peaks etwa 15 Minuten nach dem
Lösungsmittelpeak aufgezeichnet wird. Dabei muß eine ausreichende
Menge Methylestermischung verwendet werden, damit der Methyl-
stearat-Peak etwa Dreiviertel des vollen Skalenanschlags erreicht.
Die Zahl der theoretischen Böden n wird nach folgender Formel
berechnet:
n¼16drIðÞ
ωIðÞ/C20/C21
2
Die Auflösung R wird berechnet nach der Formel:
R¼2∆
ωIðÞþωIIðÞ
Dabei sind:
dr(I)= die Retention in Millimetern, vom Start des Chromato-
gramms bis zum Maximum des Methylstearat-Peaks;
ω(I)+ω(II)= die Breite des Methylstearat- bzw. Methyloleat-Peaks
in Millimeters, gemessen zwischen den Schnittpunkten
der Wendetangenten mit der Grundlinie;
∆ = die Entfernung zwischen den Maxima des Methyl-
stearat- und des Methyloleat-Peaks in Millimetern.
Der Auflösungsindex Ir wird berechnet nach der Formel:
a
b
Dabei sind:
a = Höhe des kleinsten Peaks, gemessen von der Grundlinie;1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 48
▼M2
▼C2
▼C2
b = Höhe des niedrigsten Punktes im Tal zwischen den beiden
angrenzenden Peaks, gemessen von der Grundlinie.
Abbildung 1
Chromatogramm zur Bestimmung der Zahl der theoretischen Böden (Leistungs-
fähigkeit) und der Auflösung
Die Betriebsbedingungen sind so zu wählen, daß sich für Methylstearat
wenigstens 2 000 theoretische Böden pro Meter Säule ergeben und eine
Auflösung von wenigstens 1,25 erreicht wird.
4.2.Zu untersuchende Probe
Mit Hilfe der Spritze (3.2) werden 0,1 bis 2 µl der nach Anhang XB
hergestellten Methylester auf die Säule gespritzt. Sind die Ester nicht
gelöst, so sind 100 mg/ml in chromatographisch reinem Heptan zu
lösen und davon etwa 0,1 bis 1 µl einzuspritzen.
Müssen Bestandteile bestimmt werden, die lediglich in Spuren
vorkommen, so kann die Probengröße gesteigert werden (bis zum Zehn-
fachen).
4.3.Analyse
Im allgemeinen soll unter den in 4.1.1 beschriebenen Bedingungen
gearbeitet werden. Es kann jedoch mit einer niedrigeren Säulentempe-
ratur gearbeitet werden, wenn eine Bestimmung von Fettsäuren mit
weniger als 12 Kohlenstoffatomen erforderlich ist. Bei der Bestimmung
von Fettsäuren mit mehr als 20 Kohlenstoffatomen kann die Temperatur
erhöht werden. In beiden Fällen kann auch mit Temperaturprogramm
gearbeitet werden. Beispiel: Enthält die Probe Fettsäuremethylester mit
weniger als 12 Kohlenstoffatomen, so wird die Probe bei 100 ºC (oder
bei 50—60 ºC falls Buttersäure vorkommt) eingespritzt und die Tempe-
ratur sofort mit einer Anstiegsrate von 4—8 ºC/min bis zum Optimum
erhöht. In manchen Fällen können die beiden Verfahren kombiniert
werden.
Nach dem programmierten Aufheizen wird die Elution bei gleichblei-
bender Temperatur fortgesetzt, bis alle Bestandteile eluiert sind.
Verfügt das Gerät über keine programmierbare Heizung, so ist bei1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 49
▼B
▼B
zwei festliegenden Temperaturen zwischen 100 ºC und 195 ºC zu
arbeiten. Gegebenenfalls ist es ratsam, die Analyse mit zwei Phasen
von unterschiedlicher Polarität durchzuführen, um die Abwesenheit
von verdeckten Peaks beispielsweise bei gleichzeitigem Vorkommen
von C18:3und C20:0oder C18:3und C18:2konjugiert, sicherzustellen.
4.4.Herstellung von Referenzchromatogrammen und Referenzkurven
Die Referenz-Standardmischung (2.3) wird unter den gleichen Arbeits-
bedingungen wie die Probe analysiert und die Retentionszeiten oder die
Retention der vorkommenden Fettsäuren bestimmt. Für jeden Grad der
Ungesättigtheit wird auf halblogarithmischem Papier eine graphische
Darstellung angefertigt, die den Logarithmus der Retentionszeit oder
der Retention als Funktion der Zahl der Kohlenstoffatome zeigt. Unter
isothermen Bedingungen müßten die graphischen Darstellungen der
geradzahligen Säuren mit dem gleichen Grad der Ungesättigtheit gerade
Linien ergeben. Die Geraden sollten annähernd parallel verlaufen.
Es müssen Bedingungen vermieden werden, unter denen verdeckte
Peaks auftreten, d. h. Bedingungen, unter denen die Auflösung zugering ist, um zwei Bestandteile zu trennen.
5. DARSTELLUNG DER ERGEBNISSE
5.1.Qualitative Analyse
Die Methylester-Peaks der Probe werden aus der nach 4.4 erstellten
graphischen Darstellung identifiziert, wenn nötig durch Interpolation.
5.2.Quantitative Analyse
5.2.1. Bestimmung der Zusammensetzung
Abgesehen von Ausnahmefällen wird die Methode der inneren Norma-
lisierung angewandt, d. h. man geht davon aus, daß alle Bestandteile
der Probe auf dem Chromatogramm erscheinen, so daß die Gesamtheit
der Peakflächen 100 % der Bestandteile darstellt (vollständige Elution).
Enthält das Gerät einen Integrator, so sind dessen Daten zu verwenden.
Andernfalls muß die Fläche unter jedem Peak durch Multiplikation der
Peakhöhe mit der Breite auf halber Höhe bestimmt werden. Gegebenen-
falls sind auch die verschiedenen während der Aufzeichnung
verwendeten Abschwächungen zu berücksichtigen.
5.2.2. Berech nung
5.2.2.1. Allgemeiner Fall
Der Gehalt eines Bestandteils i (ausgedrückt in Massenprozent Methy-
lester) wird durch Bestimmung des prozentualen Anteils der jeweiligen
Peakfläche im Verhältnis zur Summe aller Peakflächen berechnet. Dazu
wird folgende Formel verwendet:
Ai
ΣA/C2100
Hierbei sind:
Ai= die Peakfläche, die dem Bestandteil i entspricht,
ΣA = die Summe aller Peakflächen.
Das Ergebnis ist auf eine Stelle nach dem Komma anzugeben.
Anmerkung 7: In diesem allgemeinen Fall wird davon ausgegangen,
daß das auf relative Flächen bezogene Berechnungser-
gebnis den jeweiligen Massenprozenten entspricht. Für
die Fälle, in denen diese Annahme nicht zulässig ist,
siehe 5.2.2.2.
5.2.2.2. Anwendung von Korrekturfaktoren
In bestimmten Fällen, beispielsweise in Gegenwart von Fettsäuren mit
weniger als 8 Kohlenstoffatomen oder von Fettsäuren mit sekundären
Gruppen, bei Verwendung eines Wärmeleitfähigkeits-Detektors oder
wenn eine besonders hohe Genauigkeit erforderlich ist, sollten Korrek-
turfaktoren angewandt werden, um die prozentualen Peakflächen in
Massenprozente der Bestandteile umzurechnen. Die Korrekturfaktoren
werden mit Hilfe eines Chromatogramms bestimmt, das durch Analyse
einer Referenzmischung von Methylestern bekannter Zusammensetzung1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 50
▼B
unter den gleichen Bedingungen wie bei der Analyse der Probe erstellt
wurde.
Für diese Referenzmischung ergibt sich der prozentuale Massenanteil
des Bestandteiles i aus der Formel:
mi
Σm/C2100
Hierin sind:
mi= die Masse des Bestandteils in der Referenzmischung,
Σm = die Gesamtheit aller Massen der verschiedenen Bestandteile
der Referenzmischung.
Aus dem Chromatogramm der Referenzmischung (4.4) wird der prozen-
tuale Anteil (Fläche/Fläche) des Bestandteils i wie folgt berechnet:
Ai
ΣA/C2100
Hierin sind:
Ai= die Peakfläche des Bestandteiles i,
ΣA = die Summe aller Peakflächen.
Der Korrekturfaktor ergibt sich aus der Formel
Ki¼mi/C2ΣA
Ai/C2Σm
Im allgemeinen werden die Korrekturfaktoren auf KC16bezogen, so daß
die relativen Faktoren nach folgender Formel berechnet werden:
K0
i¼Ki
KC16
Der Gehalt der Probe an jedem Bestandteil i, ausgedrückt in Massen-
prozent Methylester, ist:
K0
i/C2Ai
ΣK0
i/C2Ai/C0/C1 /C2100
Die Ergebnisse sind auf eine Stelle nach dem Komma anzugeben.
5.2.2.3. Verwendung eines inneren Standards
In bestimmten Fällen ist es erforderlich, einen inneren Standard zu
verwenden (beispielsweise, wenn nicht alle Fettsäuren quantitativ
bestimmt werden sollen, wie beim Vorkommen von Säuren mit 4 und
6 Kohlenstoffatomen neben Säuren mit 16 oder 18 Kohlenstoffatomen,
oder wenn die absolute Menge an Fettsäuren in der Probe bestimmt
werden soll). Dazu werden häufig Fettsäuren mit 5, 15 oder 17 Kohlen-
stoffatomen verwendet.
Auch für den inneren Standard sollte der Korrekturfaktor bestimmt
werden (sofern einer verwendet wird).
Der Anteil des Bestandteils i in Massenprozent, ausgedrückt als Methy-
lester, ergibt sich dann aus der Formel:
ms/C2K0
i/C2Ai
m/C2K0
s/C2As/C2100
Hierin ist:
Ai= die Peakfläche des Bestandteils i,
As= die Peakfläche des inneren Standards,
K′i= der Korrekturfaktor für den Bestandteil i (bezogen auf KC16),
K′s= der Korrekturfaktor für den inneren Standard (bezogen auf
KC16),
m = die Masse der zu untersuchenden Probe in Milligramm,
ms= die Masse des inneren Standards in Milligramm.
Das Ergebnis ist auf eine Stelle nach dem Komma anzugeben.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 51
▼M2
6. SONDERFALL, BESTIMMUNG VON TRANS-ISOMEREN
Der Gehalt an trans-Isomeren in Fettsäuren mit 10-24 Kohlenstoff-
atomen kann durch Trennung der Methylester bestimmt werden, wobei
Kapillarsäulen mit besonderer Polarität verwendet werden.
6.1. Kapillarsäulen (fused silica) mit einem Innendurchmesser von 0,25 -
0,32 mm, einer Länge von 50 m und belegt mit einer Cyanopropylsili-
conschicht von 0,1 bis 0,3µm (Typ SP 2340, SP 2380, CP Sil 88, Silar
10 und ähnlichen Typen).
6.2. Die Methylester werden nach dem im Anhang XB unter B beschrie-
benen Verfahren hergestellt. Fette mit einem Gehalt an freien
Fettsäuren von mehr als 3 % müssen nach dem im Anhang VII unter
Punkt 6.1 beschriebenen Verfahren neutralisiert werden.
6.3. Die Arbeitsbedingungen für die Gaschromatographie sind wie folgt:
— Säulentemperatur programmiert von 150-220 ºC (z. B. 15 Minuten
bei 165 ºC, danach Anstieg von 5 ºC/Minute auf 200 ºC;
— Injektortemperatur: 250 ºC bei Verwendung eines Split-Systems
oder Anfangstemperatur der Säule bei Verwendung eines „on
column“-Systems;
— Detektortemperatur: 260 ºC;
— Trägergasstrom: (Helium oder Wasserstoff) 1,2 ml/min.
Abbildung 1
Musterchromatogramm einer kapillargaschromatographischen Bestimmung von
trans-Fettäuren
Die Einspritzmenge soll so bemessen sein, daß unter den gegebenen
Empfindlichkeitsbedingungen die Höhe des Peaks für Arachinsäureme-
thylester 20 % oder mehr des Vollausschlags beträgt.
6.4. Die Identifizierung der verschiedenen Methylester erfolgt mit Hilfe der
Retentionszeiten, die mit denen eines Referenzgemisches verglichen
werden (vgl. 2.3).
Die Ester der trans-Fettsäuren werden vor den entsprechenden cis-
Isomeren eluiert. In Abbildung 2 wird ein Beispiel eines entspre-
chenden Chromatogramms gezeigt.
6.5. Die Leistungsfähigkeit der Säule, bestimmt nach Punkt 4.1.2, soll die
Trennung bestimmter kritischer Paare ermöglichen. So soll z. B. die
Gruppe der trans-Isomere der Ölsäuren von dem Peak der Ölsäure
getrennt werden (trans C18:1/cis C18:1), und zwar mit einem
Auflösungsindex, der über 2 liegt.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 52
▼C2
▼C2
6.6. Der prozentuale Gehalt der verschiedenen trans-Fettsäuren wird
berechnet aus dem Verhältnis der entsprechenden Peakfläche zur
Summe der Flächen aller vorkommenden Peaks.
Bestimmt werden die prozentualen Gehalte nachstehender Fettsäuren:
— „trans“-Oktadecensäuren (T 18:1), im Anhang I dieser Verordnung
als Summe der trans-Isomere der Ölsäure bezeichnet;
— „cis-trans“- und „trans-cis“-Oktadecadiensäure (CT/TC 18:2), im
Anhang I dieser Verordnung als Summe der trans-Isomere der
Linolsäure bezeichnet;
— „trans-cis-trans“-, „cis-cis-trans“-, „cis-trans-cis“-, „trans-cis-cis“-
Oktadecatriensäure [(TCT + CCT + CTC + TCC) 18:3], im Anhang
I dieser Verordnung als Summe der trans-Isomere der Linolensäure
bezeichnet.
Anmerkung 8:
Im Hinblick auf die Besonderheiten dieser Methode sind die Ergebnisse mit
zwei Dezimalstellen anzugeben.
►M27.◄SONDERFALL — VERWENDUNG EINES KATHAROMETER-
DETEKTORS (BASIERT AUF DEM PRINZIP DER ÄNDERUNG
DER WÄRMELEITFÄHIGKEIT)
Zur Bestimmung der qualitativen und quantitativen Zusammensetzung
eines Gemisches von Fettsäuremethylestern kann auch ein Gaschroma-
tograph mit einem Detektor verwendet werden, der auf der Grundlage
von Änderungen der Wärmeleitfähigkeit (Katharometer) arbeitet. In
diesem Fall müssen die in den Ziffern 3 und 4 beschriebenen Arbeits-
bedingungen gemäß der Tabelle 3 geändert werden.
Für die quantitative Analyse sind die in 5.2.2.2 beschriebenen Korrek-
turfaktoren anzuwenden.
Tabelle 3
Variable Daten/Arbeitsbedingungen
SäuleLänge : 2—4 m
Innendurchmesser: 4 mm
Trägermaterial Korngröße zwischen 160 und
200 µm
Konzentration der stationären
Phase15 % (m/m) bis 25 % (m/m)
Trägergas Helium oder, wenn nicht
vorhanden, Wasserstoff, mit
möglichst geringem Sauerstoffge-
halt
HilfsgaseKe ine
Temperatur des Einspritzsystems 40—60 ºC höher als die der Säule
Säulentemperatur 180—200 ºC
Strömungsgeschwindigkeit des
TrägergasesIm allgemeinen zwischen 60 und
80 ml/min
Menge der eingespritzten Probe Im allgemeinen zwischen 0,5 und
2µ l
►M28.◄UNTERSUCHUNGSBERICHT
Im Untersuchungsbericht müssen das zur Herstellung der Methylester
angewandte Verfahren, das gaschromatograpische Verfahren und die
Ergebnisse genau angegeben werden. Darüber hinaus sind alle Arbeits-
bedingungen zu nennen, die einen Einfluß auf die Ergebnisse gehabt
haben können, auch wenn sie nicht in dieser Internationalen Norm
aufgeführt wurden oder als fakultativ gelten.
Der Untersuchungsbericht muß alle zur vollständigen Identifizierung
der Probe notwendigen Informationen enthalten.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 53
▼B
▼B
ANHANG XB
VORBEREITUNG DER FETTSÄUREMETHYLESTER GEMÄSS
ANHANG VI ABSCHNITTE I UND II DER VERORDNUNG (EWG)
Nr. 72/77 ODER GEMÄSS DEM NACHSTEHEND BESCHRIEBENEN
VERFAHREN
EINLEITUNG
Die Wahl der Methode ist abhängig von der Zusammensetzung der Fett-
säuren, vom Gehalt an freien Fettsäuren des zu untersuchenden Fettes und
von der auszuführenden gaschromatographischen Analyse.
In Fragekomme n
— für Fette mit Fettsäuren unter C12 nur Verfahren in geschlossenen
Ampullen oder mit Dimethylsulfat,
— für Fette mit einem Gehalt an freien Fettsäuren von über 3 % nur
Verfahren mit Methanol-Salzsäure oder Dimethylsulfat,
— für gaschromatographische Bestimmungen von trans-Isomeren nur
Verfahren mit Natriummethylat oder Dimethylsulfat,
— das Verfahren mit Methanol-Hexan-Schwefelsäure muß angewandt
werden für die Herstellung von Methylestern aus kleinen Fettmengen
nach deren dünnschichtchromatographischer Abtrennung.
Das Unverseifbare kann vernachlässigt werden, wenn es einen Gehalt von
3 % nicht überschreitet; anderenfalls müssen die Methylester aus den Fett-
säuren hergestellt werden.
1. METHODEN
Im folgenden werden 5 Methoden für die Herstellung der Methylester aus
Fetten beschrieben:
a) mit Natriummethylat,
b) mit Natriummethylat in einer verschlossenen Ampulle,
c) mit Methanol-Salzsäure in einer verschlossenen Ampulle,
d) mit Dimethylsulfat,
e) mit Methanol-Hexan-Schwefelsäure.
Methode A
2. PRINZIP DER METHODE
Das zu untersuchende Fett wird unter Rückfluß mit Methanol und Natrium-
methylat erhitzt. Die gewonnenen Methylester werden mit Ethylether
extrahiert.
3. GERÄTE
3.1. 100-ml-Kolben mit Rückflußkühler, oben mit einem Calciumchloridrohr
verschlossen, mit Schliffanschlüssen.
3.2. 50-ml-Meßzylinder.
3.3. 5-ml-Meßpipette, mit 0,1-ml-Graduierung.
3.4. 250-ml-Scheidetrichter.3.5. 200-ml-Kolben.
4. REAGENZIEN
4.1. Wasserfreies Methanol.4.2. Natriummethylat, etwa 1%ige Lösung in Methanol; Herstellung durch
Auflösen von 0,34 g metallischem Natrium in 100 ml wasserfreiem
Methanol.
4.3. Ethylether.
4.4. Natriumchlorid, 10%igeLösung.4.5. Petrolether, Kp 40º — 60 ºC.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 54
▼B
5. VERFAHREN
5.1. In den 100-ml-Kolben 2 g des über Natriumsulfat getrockneten und
filtrierten Fettes einwiegen; 35 ml Methanol hinzufügen, den Kühler
aufsetzen und unter Rückfluß einige Minuten kochen lassen.
5.2. Das Erwärmen unterbrechen, die Kühlung abstellen und schnell 3,5 ml
Natriummethylatlösung zugeben. Die Kühlung wieder anstellen und unter
Rückfluß mindestens 3 Stunden sieden lassen. Die Methylierung ist
beendet, wenn das gesamte Fett in Lösung gegangen ist und das Reaktions-
gemisch bei Raumtemperatur klar bleibt.
5.3. Abkühlen lassen und das Reaktionsgemisch in einen 250-ml-Scheidetrichter
überführen, 30 — 40 ml Ethylether, 100 ml Wasser und 5 — 6 ml 10%ige
Natriumchloridlösung zugeben. Schütteln und die Schichten absetzen
lassen. Die wäßrige Phase in einen zweiten Scheidetrichter ablassen und
erneut mit 25 ml Ethylether extrahieren. Die vereinigten Etherfraktionen
mit 50 ml Petrolether Kp 40 — 60ºC versetzen — dadurch erfolgt eine
Abtrennung von Wasser, das dann entfernt wird. Die Etherphase dreimal
mit je 10 — 15 ml Wasser waschen, über Natriumsulfat trocknen, durch
ein Filter in einen 200-ml-Kolben filtrieren.
Das Lösungsmittel auf dem Wasserbad abdestillieren und den Rückstand in
einem Strom von reinem Stickstoff trocknen.
Methode B
2. PRINZIP DER METHODE
Das zu untersuchende Fett wird mit einer methanolischen Natriummethy-
latlösung in einer verschlossenen Ampulle bei 85—90 ºC umgesetzt.
3. GERÄTE
3.1. DickwandigeGlasampulle , ca. 5 ml Inhalt (Länge40—45 mm, Durch-
messer 14—16 mm).
3.2. 1-ml-Meßpipette, mit 0,1-ml-Graduierung.
4. REAGENZIEN
4.1. Natriummethylat, 1,5%ige Lösung in Methanol, hergestellt durch Auflösen
von 0,50 g metallischem Natrium in 100 ml wasserfreiem Methanol.
5. VERFAHREN
5.1. In die Ampulle 2 g des über Natriumsulfat getrockneten und filtrierten
Fettes einwiegen, 0,3 g (ca. 0,4 ml) Natriummethylatlösung hinzufügen
und die Ampulle über der Flamme zuschmelzen.
5.2. Die Ampulle zwei Stunden in ein Wasserbad von 85—90 ºC stellen und
von Zeit zu Zeit schütteln. Das Ende der Veresterung in der Ampulle zeigt
sich darin, daß der Inhalt nach Absetzen des Glycerins und des Rückstands
der Reagenzien klar wird.
5.3. Auf Raumtemperatur abkühlen. Die Ampulle erst öffnen, wenn die Methy-
lester gebraucht werden. Sie brauchen für die Verwendung im
Gaschromatographen nicht weiter behandelt zu werden.
Methode C
2. PRINZIP DER METHODE
Das zu untersuchende Fett wird mit Methanol-Salzsäure in einer verschlos-
senen Ampulle bei 100 ºC umgesetzt.
3. GERÄTE
3.1. DickwandigeGlasampulle , ca. 5 ml Inhalt (Länge40—45 mm, Durch-
messer 14—16 mm).
3.2. Geeichte Pipetten von 1 und 2 ml.
4. REAGENZIEN
4.1. 2%ige methanolische Salzsäure. Herstellung mit gasförmiger Salzsäure und
wasserfreiem Methanol (Anmerkung 1, Methode E).
4.2. Hexan für die Gaschromatographie.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 55
▼B
5. VERFAHREN
5.1. In die Ampulle 2 g des über Natriumsulfat getrockneten und filtrierten
Fettes einwiegen, 2 ml der methanolischen Salzsäurelösung hinzufügen
und die Ampulle über der Flamme zuschmelzen.
5.2. Die Ampulle 40 Minuten in ein Wasserbad von 100 ºC stellen.5.3. Unter fließendem Wasser abkühlen, öffnen, 2 ml destilliertes Wasser und
1 ml Hexan hinzufügen. Zentrifugieren und die Hexanphase abnehmen, sie
ist fertig zum Gebrauch.
Methode D
2. PRINZIP DER METHODE
Das zu untersuchende Fett wird mit methanolischer Kaliumhydroxidlösung
verseift, dann mit Dimethylsulfat behandelt. Nach Zusatz von Salzsäure
erfolgt eine Abtrennung der Methylester. Durch anschließende Behandlung
mit Aluminiumoxid erhält man sehr reine Methylester.
3. GERÄTE
3.1. Reaktionsgefäß aus dickwandigem Glas, etwa 20 ml Inhalt, mit Schliff-
stopfen 10/19 und Sicherheitshaken.
3.2. Rückflußkühler mit Schliff 10/19.
3.3. Glasfiltertiegel G 2, 20 mm Durchmesser.3.4. Glasröhrchen, etwa 10 ml Inhalt, mit konischem Boden.3.5. 1- und 5-ml-Spritzen.
4. REAGENZIEN
4.1. Kaliumhydroxid, 10%ige Lösung in Methanol für die Gaschromatographie.
4.2. Indikator aus Bromkresolgrün: 0,05%ige Lösung in Methanol.4.3. Dimethylsulfat (d = 1,335 bei 15 ºC).4.4. Konzentrierte Salzsäure, d = 1,19, Verdünnung 1:1 mit Methanol für die
Gaschromatographie.
4.5. Aluminiumoxid, standardisiert nach Brockmann, für die Adsorptionschro-
matographie.
5. VERFAHREN
5.1. In das 20 ml fassende Reaktionsgefäß etwa 2 g (ungefähr 2,2 ml) des über
Natriumsulfat getrockneten und filtrierten Fettes einfüllen, 5 ml Kaliumhy-
droxidlösung und einige Siedesteinchen zugeben. Den Rückflußkühler
aufsetzen und auf kleiner Flamme 5 Minuten unter Schütteln erhitzen. Die
Verseifung ist vollständig, wenn die Lösung klar aussieht. Unter flie-
ßendem Wasser abkühlen und den Rückflußkühler entfernen.
5.2. Zwei Tropfen Indikatorlösung zugeben, dann langsam mit einer Spritze 1 ml
Dimethylsulfat. Das Reaktionsgefäß fest verschließen und 2—3 Minuten
schütteln, während das untere Ende in ein siedendes Wasserbad getaucht
wird. Die Reaktion ist beendet, wenn der Indikator von blau nach gelb
umschlägt. Unter fließendem Wasser abkühlen, öffnen und 5 ml methanoli-
sche Salzsäure zugeben.
5.3. Einige Sekunden schütteln, das Gefäß schräg halten und durch leichtes
Klopfen das Absetzen der Methylester in Form einer öligen Masse
beschleunigen (Anmerkung A). Die Methylester mit Hilfe einer Spritze,
die bis auf den Boden des Gefäßes reicht, aufnehmen, so viel Aluminiu-
moxid zugeben, wie etwa ¼ des Volumens der Methylester entspricht,
schütteln und durch ein Papierfilter filtrieren.
Anmerkung A: Sofern keine sofortige Abtrennung der Methylester erfolgt,
5 ml Wasser in das Gefäß geben und schütteln.
Methode E
2. PRINZIP DER METHODE
Das zu untersuchende Fett wird unter Rückfluß mit einer Mischung aus
Methanol, Hexan und Schwefelsäure erhitzt. Die dabei entstehenden
Methylester werden mit Petrolether extrahiert.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 56
▼B
3. GERÄTE
3.1. Reaktionsgefäß von etwa 20 ml Inhalt, mit Steigrohr von etwa 1 m Länge
und Schliffverschluß.
3.2. 5-ml-Pipette, graduiert.
3.3. 50-ml-Scheidetrichter.3.4. 10- und 25-ml-Meßzylinder.3.5. Versuchsgefäß, 15 ml Inhalt, mit konischem Boden.
4. REAGENZIEN
4.1. Methylierungsreagenz: wasserfreies Methanol, Hexan und Schwefelsäure (d
= 1,84) im Verhältnis 75:25:1 (V/V/V) gemischt.
4.2. Petrolether, Kp. 40—60 ºC.
4.3. Wasserfreies Natriumsulfat.
5. VERFAHREN
5.1. In das 20-ml-Reaktionsgefäß das von einer Dünnschichtplatte gewonnene
Material einfüllen und 5 ml Methylierungsreagenz zufügen.
5.2. Den Rückflußkühler anschließen und im siedenden Wasserbad 30 Minuten
erhitzen (Anmerkung 2).
5.3. Die Mischung quantitativ mit Hilfe von 10 ml destilliertem Wasser und
10 ml Petrolether in einen 50-ml-Scheidetrichter überführen. Kräftig schüt-
teln, die Phasen absetzen lassen, die wäßrige Schicht ablaufen lassen und
die Petroletherschicht zweimal mit je 20 ml destilliertem Wasser waschen.
In den Scheidetrichter eine kleine Menge wasserfreies Natriumsulfat geben,
schütteln, einige Minuten stehen lassen und abfiltrieren. Das Filtrat in das
15-ml-Gefäß mit konischem Boden füllen.
Das Lösungsmittel im Wasserbad unter Einleiten von Stickstoff abdampfen.
Anmerkung 1: Kleinere Mengen gasförmiger Salzsäure können im Labor
leicht hergestellt werden, indem man in eine käufliche Salz-
säure( ρ= 1,18) konzentrierte Schwefelsäure ( ρ= 1,84)
eintropfen läßt. Das freigesetzte Gas kann leicht getrocknet
werden, indem man es über konzentrierte Schwefelsäure
leitet. Salzsäure wird schnell von Methanol absorbiert,
deshalb müssen beim Lösen Vorkehrungen getroffen
werden, z. B. indem man das Gas umgekehrt durch einen
kleinen Trichter leitet, dessen Rand die Oberfläche der Flüs-
sigkeit berührt. Größere Mengen an methanolischer
Salzsäure lassen sich auf Vorrat herstellen, da die Lösung
in dunklen Glasflaschen mit Glasstöpsel haltbar ist.
Anmerkung 2: Zur Kontrolle des Siedevorgangs sollte man einen Glasstab
in das Reaktionsgefäß stellen und die Temperatur des
Wasserbades nicht über 90 ºC ansteigen lassen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 57
▼B
ANHANG XI
BESTIMMUNG DES GEHALTS AN FLÜCHTIGEN HALOGENIERTEN
LÖSUNGSMITTELN IN OLIVENÖL
1. PRINZIP
Gaschromatographische Headspace-Analyse.
2. GERÄTE
2.1. Gaschromatograph mit Elektroneneinfangdetektor (ECD).
2.2. Headspace-Vorrichtung.2.3. Gaschromatographische Glassäule von 2 m Länge und 2 mm Durchmesser.
Stationäre Phase: 10 % OV 101 oder eine gleichwertige Phase, aufgezogen
auf mit Säure gewaschenem und silanisiertem Kieselgur mit einer
Korngrößevon 80—100 Me sh.
2.4. Träger- und Hilfsgas: Stickstoff für die Gaschromatographie, geeignet für
Elektroneneinfangdetektoren.
2.5. Glasfläschchen 10—15 ml, versehen mit einem Verschluß aus Aluminium
und Teflon, der eine Entnahme mit Hilfe einer Spritze ermöglicht.
2.6. Klemmen für absolut dichten Verschluß.
2.7. Spritzen 0,5 bis 2 ml, zum Einspritzen von Gas.
3. REAGENZIEN
Standard: Flüchtige halogenierte Lösungsmittel mit einem für die Gaschro-
matographie geeigneten Reinheitsgrad,
Pentan mit einem für die Gaschromatographie geeigneten Reinheitsgrad.
4. ANALYSENVERFAHREN
4.1. Etwa 3 g Öl in ein Glasfläschchen (das nicht wieder verwendet werden
darf) genau einwiegen und das Fläschchen mit dem Verschluß absolut dicht
verschließen. Das Fläschchen bei 70 ºC eine Stunde in einen Thermostaten
stellen. Mit Hilfe einer Spritze genau ein Volumen von 0,2 bis 0,5 ml aus
dem Dampfraum entnehmen und auf die Säule des Gaschromatographen
spritzen. Der Gaschromatograph ist wie folgt einzustellen:
— Verdampfungstemperatur: 150 ºC,
— Säulentemperatur: 70 bis 80 ºC,— Detektortemperatur: 200 bis 250 ºC.
Es können auch andere Temperaturen eingestellt werden, sofern dabei
gleichwertige Ergebnisse erziehlt werden.
4.2. Referenzlösungen: Standardlösungen mit unterschiedlichen Konzentrationen
von flüchtigen halogenierten Lösungsmitteln zwischen 0,05 und 1 mg/kg
herstellen unter Verwendung von Olivenöl, das frei von Lösungsmittel-
spuren ist. Falls erforderlich, werden die halogenierten Lösungsmittel mit
Pentan verdünnt.
4.3. Quantitative Auswertung. Das Verhältnis bilden zwischen den Peakflächen
oder den Peakhöhen der Probe und der Standardlösung, deren Konzentra-
tion der erwarteten Konzentration am nächsten liegt. Liegt der relative
Unterschied über 10 %, so muß die Analyse mit einer neuen Standar-
dlösung wiederholt werden, bis ihre Konzentration innerhalb des
obengenannten relativen Unterschieds liegt. Der Gehalt wird auf der Basis
des Mittelwerts einzelner Einspritzungen ermittelt.
4.4. Abfassung der Ergebnisse. Die Ergebnisse werden in mg/kg (ppm) ange-
geben. Die Nachweisgrenze des Verfahrens liegt bei 0,01 mg/kg.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 58
▼B
ANHANG XII
ORGANOLEPTISCHE PRÜFUNG VON NATIVEM OLIVENÖL
1. UMFANG UND ANWENDUNGSBEREICH
Diese Arbeitsvorschrift bestimmt die Kriterien zur Bewertung des
Flavours von nativem Olivenöl und beschreibt die dafür zu verwendende
Methodik.
2. KURZBESCHREIBUNG
Das beschriebene Verfahren gilt nur für die organoleptische Bewertung
und Einstufung von nativem Olivenöl für den direkten Genuß. Dabei
wird das native Olivenöl von einer Gruppe ausgewählter Prüfer mit Hilfe
eines Prüfbogens nach einer Bewertungstabelle gemäß den von ihm
hervorgerufenen Sinneseindrücken eingestuft.
3. SENSORISCHE PRÜFUNG: GRUNDBEGRIFFE
Siehe Kapitel „Sensorische Prüfung: Grundbegriffe“.
4. SPEZIFISCHE BEGRIFFE FÜR OLIVENÖL
4.1. Angenehme Sinneseindrücke, die durch folgende typische Qualitätsmerk-
male nativen Olivenöls hervorgerufen werden:
Fruchtig: In Aroma und Bukett an gesunde, frische und erntereife Früchte
erinnernd.
Nach reifen Früchten: Bezeichnung für Olivenöl aus vollreifen Früchten,
allgemein mit schwachem Bukett und süßem Aroma.
Nach grünen Früchten: Bezeichnung für Öl aus grünen Früchten.
4.2. Sinneseindrücke, die je nach Intensität als mehr oder weniger angenehm
empfunden werden und die keine Fehlermerkmale bedeuten, aber die die
Harmonie der Fruchtigkeit beeinflussen.
Apfelartig: Flavour von an Äpfel erinnerndes Olivenöl.
Süß:Bezeichnung für den Wohlgeschmack von Olivenöl ohne aufdring-
liche Süße und ohne hervortretende Bitterkeit, Adstringenz und Schärfe.
Grasig: Bezeichnung für das typische, an frisch gemähtes Gras erin-
nernde Aroma mancher Olivenöle.
Nach grünen Blätter (bitter): Bezeichnung für das von zu grünen Oliven
oder von mitvermahlenen Blättern und Stengeln herrührende Flavour von
Olivenöl.
Bitter:Bezeichnung für den typischen Geschmack von Olivenöl grüner
oder grünlicher Oliven. Je nach Intensität als mehr oder weniger ange-
nehm empfunden.
Adstringierend: Bezeichnung für die Adstringenz mancher Olivenöle.
Scharf: Typische stechende Geschmacksempfindung bei Ölen, die zu
Beginn des Wirtschaftsjahres aus zumeist grünen Oliven erzeugt werden.
Sie entsteht, wenn Phenolverbindungen die über die ganze Mundhöhle
verteilten Enden des Trigeminusnervs reizen.
Mandelartig: Dieser Begriff bezeichnet zweierlei: einmal das typische
Flavour frischer Mandeln und zum zweiten das Flavour getrockneter,
gesunder Mandeln, das mit einem ranzigen Anklang verwechselt werden
kann. Im Kontakt mit Zunge und Gaumen als Abgang wahrnehmbar,
erinnert an süßliche Olivenöle mit verhaltenem Bukett.
Fad oder schal: Flavour von Olivenöl mit schwach ausgeprägten organo-
leptischen Eigenschaften infolge des Verlusts seiner Aromastoffe.
Heuartig: Bezeichnung für das typische, an mehr oder weniger trockenes
Heu erinnernde Flavour mancher Olivenöle.
4.3. Sinneseindrücke, die stets — auch wenn sie kaum wahrnehmbar sind —
als unangenehm empfunden werden und ein organoleptisches Fehler-
merkmal bedeuten.
Espartoartig: Bezeichnung für das typische Flavour von Olivenöl aus
Oliven, die mit Hilfe neuer Espartograskörbe gepreßt wurden. Dieses1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 59
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Aroma kann in verschiedenen Nuancen auftreten, je nachdem, ob Körbe
aus grünem oder trockenem Espartogras verwendet wurden.
Erdig:Bezeichnung für das typische Flavour von Olivenöl, das von
anhaftender Erde oder Schlamm ungewaschener Oliven herrührt. Dieses
Flavour kann in Einzelfällen von modrigen Anklängen begleitet sein.
Alt:Bezeichnung für das typische Flavour von zu lange in Lagerbehältern
aufbewahrtem Olivenöl. Kann auch durch zu langes Aufbewahren in
Verpackungsbehältern auftreten.
Wurmstichig: Bezeichnung für das typische Flavour von Olivenöl aus
stark von Larven der Olivenfliege (Dacus oleae) befallenen Oliven.
Metallisch: An Metall erinnerndes Flavour. Typisch für Olivenöl, das
beim Vermahlen, Schlagen, Pressen oder Lagern unter unsachgerechten
Bedingungen zu lange mit Lebensmitteln oder Metalloberflächen in
Kontakt stand.
Muffig: Bezeichnung für das typische Flavour von Olivenöl mit erhebli-
chem Schimmel- und Hefepilzbefall infolge mehrtägiger feuchter
Lagerung.
Ranzig: Bezeichnung für das durch Autoxidation infolge des zu langen
Kontakts mit der Luft entstehende typische Flavour von Fetten und
Ölen. Dieses Flavour ist unerwünscht und irreversibel.
Stichig („atrojado“): Bezeichnung für das typische Aroma von Öl aus
Oliven, die sich bereits in einem fortgeschrittenen Zustand der Zersetzung
durch Gärung befanden.
Lakig:Bezeichnung für das Flavour von Olivenöl aus in Salzlake aufbe-
wahrten Oliven.
Tresterartig: Bezeichnung für das typische Flavour von Oliventrestern.
Seifig:Bezeichnung für ein Flavour, das einen schmierseifenartigen
Sinneseindruck vermittelt.
Fruchtwasserartig: Bezeichnung für das typische Flavour von Olivenöl,
das von mangelhaftem Dekantieren und zu langem Kontakt mit Frucht-
wasser herrührt.
Wein- oder Essigartig: Bezeichnung für das typische Flavour von an
Wein oder Essig erinnerndes Olivenöl, das vor allem durch die anomal
starke Bildung von Essigsäure, Ethylacetat und Ethanol verursacht wird.
Gurkenartig: Durch zu langes Lagern in luftdichten Behältnissen, insbe-
sondere in Dosen, hervorgerufenes Flavour von Olivenöl, das von 2,6-
Nonadienal herrührt.
Brandig oder erhitzt: Bezeichnung für das typische Flavour von Olivenöl,
das durch übermäßige und/oder zu lange Erwärmung bei der Gewinnung
verursacht wird, insbesondere durch unsachgemäße warme Behandlung
bei der Herstellung der Paste.
Schlammig: Bezeichnung für das typische Aroma von Olivenöl, das aus
dekantiertem Ölschlamm aus unterirdischen Becken oder Behältern
gewonnen wurde.
Nach Preßmatten: Bezeichnung für das typische Flavour von Olivenöl,
das mit Hilfe von Preßmatten gewonnen wurde, die mit vergorenen
Rückständen verschmutzt werden.
Schmierölartig: Bezeichnung für den Geruch von Olivenöl aus einer
Ölmühle, deren Ausrüstung nicht sachgerecht von Benzin-, Fett- oder
Mineralölresten gereinigt wurde.
Roh:Bezeichnung für Olivenöl, das im Mund einen dickflüssigen
pastösen Sinneseindruck hinterläßt.
5. PRÜFGLAS FÜR ÖLE
Siehe Kapitel „Prüfglas für Öle“.
6. PRÜFRAUM
Siehe Kapitel „Leitlinien für die Einrichtung des Prüfraums“.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 60
▼B
▼B
7. HILFSMITTEL
Jedem Prüfer sind in seiner Kabine die zur Erfüllung seiner Aufgabe
notwendigen Hilfsmittel zur Verfügung zu stellen. Diese Hilfsmittel
umfassen:
— Gläser (genormt) mit den Proben, die nach einem Zufallsschlüssel mit
einem Ziffernpaar oder einem Ziffern-Buchstaben-Paar gekenn-
zeichnet sind. Die Kennzeichnung ist mit einem unverwischbaren
und geruchlosen Stift anzubringen;
— Uhrgläser mit identischer Markierung zum Abdecken der Gläser;— Prüfbogen, vgl. Abbildung 2, mit Ausfüllhinweisen;— Bleistift oder Kugelschreiber;— Schälchen mit Apfelstücken;— Glas Wasser von Raumtemperatur.
8. VERFAHREN
Dieser Abschnitt regelt die Vorkenntnisse für die Durchführung der
sensorischen Prüfung von nativem Olivenöl; ferner dient er der Regle-
mentierung des Verhaltens und der Arbeitsweise der an der Prüfung
teilnehmenden Prüfer, die sowohl den allgemeinen als auch den beson-
deren Empfehlungen für das Verkosten von Olivenöl Rechnung zu
tragen haben.
8.1.Aufgaben des Prüfungsleiters bzw. des Vorsitzenden der Gruppe
(bzw. des Panels)
Der Prüfungsleiter muß ausreichend vorgebildet sein und über die nötige
Sach- und Fachkunde für die zur Beurteilung anstehenden Olivenöle
verfügen. Er ist die Schlüsselfigur der Prüfergruppe und trägt die Verant-
wortung für Organisation und Ablauf der Prüfungsarbeit. Er lädt die
Prüfer rechtzeitig ein und klärt sie über die Durchführung der Prüfungen
auf, enthält sich aber jedweder Meinungsäußerung über die Proben.
Er ist verantwortlich für das Vorhandensein der Hilfsmittel, deren pein-
liche Sauberkeit, die Vorbereitung und Verschlüsselung der Proben,
deren Übergabe an die Prüfer gemäß der geeigneten Prüfungsfolge sowie
für das Einsammeln und die statistische Auswertung der Prüfdaten, damit
gewährleistet ist, daß mit möglichst geringem Aufwand möglichst zuver-
lässige Ergebnisse erzielt werden.
Die Arbeit des Prüfungsleiters erfordert sensorisches Feingefühl, Sorgfalt
bei der Prüfungsvorbereitung, strengste Ordnung hinsichtlich ihrer Durch-
führung sowie Geschick und Geduld bei der Planung und Durchführung
der Prüfungen. Aufgabe des Prüfungsleiters ist es, die Mitglieder zu moti-
vieren und bei ihnen Interesse, Neugier und Wettbewerbsgeist zu wecken.
Er hat sich einer Meinungsäußerung zu enthalten und muß sicherstellen,
daß möglicherweise tonangebende Prüfer die anderen nicht beeinflussen.
Ihm obliegen ferner Schulung, Auswahl und Überwachung der Prüfer auf
ihre gebotene Eignung.
8.2.Prüfbedingungen
8.2.1. Probenumfang
Jedes Glas muß 15 ml Öl enthalten.
8.2.2. Temperatur der Probe
Die zur Prüfung anstehenden Proben sind im Glas auf einer Temperatur
von 28 ºC ± 2 ºC zu halten. Die gewählte Temperatur gestattet am besten
die Erfassung der organoleptischen Unterschiede bei Normaltemperatur,
wenn Öle als Zutaten verwendet werden. Bei tieferen oder höheren
Temperaturen kommen entweder die Aromastoffe kaum zur Entfaltung
oder aber es entfalten sich die für erhitzte Öle typischen Aromastoffe.
8.2.3. Prüf ungszeiten
Die für das Verkosten von Olivenöl geeignetste Tageszeit ist der
Vormittag. Geruchs- und Geschmackssinn sind zu bestimmten Tages-
zeiten nachweislich besonders empfindlich.
So ist die Empfindlichkeit von Geruchs- und Geschmackssinn vor den
Mahlzeiten besonders groß und geht danach zurück.
Übertreibung ist aber auch hier zu vermeiden, da Hungergefühle die
Prüfer ablenken, ihr Unterscheidungsvermögen beeinträchtigen und insbe-
sondere ihre Präferenz- und Akzeptanzschwelle herabsetzen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 61
▼B
9. PRÜFER
Die an der organoleptischen Prüfung von Speiseolivenöl als Prüfer teil-
nehmenden Personen sind zu schulen und entsprechend ihrer Eignung
zur Unterscheidung ähnlicher Proben auszuwählen, wobei zu berücksich-
tigen ist, ob und inwieweit ihre Urteilsfähigkeit im Zuge der Schulung
zunimmt (vgl. entsprechenden Absatz).
Zur Prüfung benötigt man 8 bis 12 Prüfer nebst einigen Reserveprüfern
zur Deckung von Ausfällen.
9.1.Allgemeine Verhaltensmaßregeln für Kandidaten und Prüfer
Diese Empfehlungen gelten für das Verhalten der Kandidaten und Prüfer
bei ihrer Arbeit.
Wer vom Prüfungsleiter zur Teilnahme an einer organoleptischen Prüfung
aufgefordert wurde, muß zu der ihm genannten Uhrzeit zur Teilnahme in
der Lage sein und hat dazu folgende Vorschriften zu beachten:
9.1.1. Er stellt mindestens 30 Minuten vor der festgesetzten Uhrzeit das
Rauchen ein.
9.1.2. Parfüm, Kosmetika oder Seife, deren Geruch bei der Prüfung noch wahr-
nehmbar ist, darf nicht verwendet werden. Zum Händewaschen ist
unparfümierte oder schwachparfümierte Seife zu verwenden; dabei sind
die Hände so lange mit Wasser nachzuspülen und abzutrocknen, bis
jedweder Geruch beseitigt ist.
9.1.3. Der Prüfer muß bei Prüfungsantritt seit mindestens einer Stunde nüchtern
sein.
9.1.4. Wer an einer Unpäßlichkeit und insbesondere einer Beeinträchtigung des
Geruchs- oder Geschmacksempfindens oder an einer die Konzentrations-
fähigkeit beeinflußenden psychischen Belastung leidet, hat dies dem
Prüfungsleiter mitzuteilen, damit dieser ihn von seiner Aufgabe entbindet
oder aber die geeigneten Maßnahmen trifft, wobei auch eine mögliche
Abweichung von den Durchschnittswerten der übrigen Mitglieder der
Gruppe zu berücksichtigen ist.
9.1.5. Der die vorstehenden Vorschriften erfüllende Prüfer sucht die ihm zuge-
wiesene Kabine auf; dies hat so leise und diskret wie möglich zu
geschehen.
9.1.6. Nachdem er darin Platz genommen hat, prüft er, ob alle erforderlichen
Hilfsmittel vorhanden und ordentlich vorbereitet sind und vergewissert
sich, ob die Kennzeichnung des Glases mit der Kennzeichnung des damit
abgedeckten Uhrglases übereinstimmt.
9.1.7. Er liest die Hinweise auf dem Prüfbogen sorgfältig durch und beginnt erst
dann mit der Prüfung der Proben, wenn er sich über seine Aufgabe voll-
ends im klaren ist. Unklarheiten sind mit dem Prüfungsleiter unter vier
Augen zu klären.
9.1.8. Der Prüfer nimmt das Glas zur Hand, hält es dabei mit dem Uhrglas
bedeckt schräg und schwenkt es dabei einmal ganz um, damit die Innen-
seite möglichst ganz benetzt wird. Er lüftet das Uhrglas und inhaliert das
Bukett der Probe in leichten, ruhigen und langen Zügen durch die Nase
so lange, bis er sich ein Urteil über die zur Prüfung anstehende Probe
gebildet hat. Das eigentliche Riechen darf nicht länger als 30 Sekunden
dauern. Gelangt er nach dieser Zeit nicht zu einem Urteil, legt er eine
kleine Pause ein und macht einen weiteren Versuch. Nach dem Riechen
prüft er das Flavour (Gesamtsinneseindruck aus Geruchs-, Geschmacks
und Tastempfindung). Dazu nippt er einen kleinen Schluck Öl von etwa
3 ml. Sehr wichtig ist, daß alle geschmacksempfindlichen Teile des
Mundes mit dem Öl benetzt werden, vom vorderen Teil des Mundes
und der Zungenspitze über die Ränder des Zungenrückens bis zum
Gaumen und zur Zungenwurzel, da die Grundgeschmacke süß, salzig,
sauer und bitter an verschiedenen Stellen der Zunge und des Gaumens
unterschiedlich stark wahrgenommen werden.
Es ist unbedingt darauf zu achten, daß genügend Olivenöl von der
Zungenspitze bis zum Gaumen und zur Kehle langsam verteilt wird,
wobei auf die Reihenfolge des Auftretens der Bitterkeit und der Schärfe
zu achten ist. Anderenfalls kann es bei manchen Olivenölen vorkommen,
daß beide Sinneseindrücke nicht wahrgenommen werden oder die Bitter-
keit von der Schärfe verdeckt wird.
Durch kurzes, wiederholtes Einsaugen von Luft durch den Mund wird die
Probe in der gesamten Mundhöhle verteilt, so daß die flüchtigen Aroma-
stoffe über den Gaumen in die Nase gelangen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 62
▼B
Auch die Tastempfindungen sind zu erfassen; so müssen die Merkmale
Fließfähigkeit, Dickflüssigkeit, Schärfe oder Stechen erfaßt und je nach
den Erfordernissen der Probe quantifiziert werden.
9.1.9. Bei der organoleptischen Prüfung von nativem Olivenöl wird in jedem
Prüfgang eine einzige Probe bewertet, damit keine Kontrastwirkungen
durch das sofortige Verkosten anderer auftreten.
Da es bei aufeinanderfolgenden Prüfgängen zu Ermüdungserscheinungen
oder zur Dämpfung der Sinneswahrnehmung durch die vorangehenden
Eindrücke kommt, sind die Ölreste des vorherigen Prüfgangs mit einem
geeigneten Mittel aus dem Mund zu entfernen.
Dazu empfiehlt sich ein kleines Stück Apfel von etwa 15 g, das nach dem
Kauen ausgespuckt werden kann; anschließend ist der Mund mit Wasser
von Zimmertemperatur zu spülen. Zwischen dem Ende eines Prüfgangs
und dem Beginn des nächsten müssen mindestens 15 Minuten vergehen.
9.2.Vorauswahl der Kandidaten
Der Prüfungsleiter führt eine Vorauswahl der Kandidaten in Einzelgesprä-
chen durch, um ihre Persönlichkeit und ihr Umfeld kennenzulernen. An
die physiologischen und psychologischen Voraussetzungen werden keine
sehr hohen Anforderungen gestellt, da jeder Gesunde diese Aufgabe
wahrnehmen kann. Alter, Geschlecht und bestimmte Gewohnheiten
(Rauchen) usw. bleiben in der Bedeutung hinter anderen Gesichtspunkten
wie Gesundheit, persönliches Interesse und Abkömmlichkeit für diese
Arbeit zurück.
Der Prüfungsleiter klärt den Kandidaten im einzelnen über die von ihm
wahrzunehmende Aufgabe auf und unterrichtet ihn über den Zeitaufwand
dafür. Anschließend sammelt er Anhaltspunkte zur Prüfung des Interesses
und der Motivation des Kandidaten sowie seiner tatsächlichen Abkömm-
lichkeit. Der folgende Fragebogen kann dabei als Grundlage verwendet
werden.
1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 63
▼B
Der Prüfungsleiter nimmt anhand dieser Daten eine Vorauswahl vor,
wobei er die Kandidaten aussondert, die an dieser Arbeit wenig Interesse
zeigen, wenig Zeit aufbringen können oder nicht in der Lage sind, ihre
Vorstellungen zu artikulieren.
9.3.Bestimmung der „Durchschnittsschwelle der Gruppe“ für „typische
Merkmale“
Es werden vier Öle ausgewählt, welche die Merkmale „stichig“ („atro-
jado“), „weinartig“, „ranzig“ und „bitter“ jeweils typgerecht und so
deutlich wie möglich verkörpern.
Mit aliquoten Mengen jedes Typs und einem geeigneten Substrat werden
Verdünnungsreihen in Abstufungen um den Faktor 2 angesetzt, bis bei
den zwei oder drei letzten Verdünnungsstufen kein Unterschied gegen-
über dem Glas mit dem reinen Substrat mehr wahrnehmbar ist. Zwei
Gläser mit dem reinen Substrat bilden den Abschluß der Reihe.
Die Reihe wird mit Verdünnungen höherer Konzentration bis auf 8 aufge-
stockt.
Es werden so viele Muster der verschiedenen Konzentrationen angesetzt,
daß jedem der Kandidaten für jedes Merkmal vollständige Verdünnungs-
reihen bereitgestellt werden können.
Zur Ermittlung der „Durchschnittsschwelle“ der Kandidaten sind jedem
von jeder Verdünnungsstufe ein Glas mit 15 ml der Verdünnung sowieein Glas mit 15 ml des reinen Substrats bereitzustellen. Der Kandidat
muß nach Durchführung der Prüfung angeben, ob sie identisch oder
verschieden voneinander sind.
Die gleiche Prüfung wird mit Verdünnungsreihen der verbleibenden Prüf-
merkmale durchgeführt.
Die Zahl der richtigen Antworten aller Kandidaten für die jeweilige
Verdünnungsstufe wird aufgezeichnet und als Prozentsatz der Anzahl der
durchgeführten Prüfungen angegeben.
In einem Koordinatensystem werden die Prozentsätze der richtigen
Antworten für die jeweilige Verdünnungsstufe auf der Ordinate und die
geprüften Verdünnungsstufen in ansteigender Reihenfolge auf der
Abszisse eingetragen.
Abbildung 1 zeigt ein praktisches Beispiel für diese Darstellung. Als
Wahrnehmungsschwelle gilt die Verdünnungsstufe, für die zu 75 % rich-
tige Beurteilungen abgegeben wurden. Sie wird ermittelt durch
Extrapolation dieses Punktes von der Kurve auf die Abszisse.
Diese Schwellenkonzentration, die je nach Intensität des Merkmals für
jedes geprüfte Olivenöl unterschiedlich ausfallen kann, dürfte für die
einzelnen Gruppen von Kandidaten ähnlich sein; sie ist unabhängig von
Gebräuchen, Gewohnheiten oder persönlicher Präferenz und infolge-
dessen ein gemeinsamer Bezugspunkt für jede Gruppe von
Durchschnittsmenschen, so daß sie zur Harmonisierung der verschiedenen
Prüfergruppen hinsichtlich der Geruchs- und Geschmacksempfindlichkeit
verwendet werden kann.
Anhand der ermittelten Schwellenkonzentration der Gruppe ist wie folgt
zu verfahren:
Es wird eine Verdünnungsreihe mit zunehmender und abnehmender
Konzentration in der Weise angesetzt, daß die Schwellenkonzentration
mit dem Platz 10 dieser Reihe zusammenfällt. Daraus ergibt sich folge-
richtig, daß die Verdünnungen 11 und 12 stärker verdünnt sind, so daß
sehr schwer festzustellen ist, daß sie Öl mit dem entsprechenden
Merkmal enthalten.
Ausgehend von der Konzentration C
10können die übrigen Verdünnungen
nach folgender Formel angesetzt werden:
C10·an
Darin bedeuten:a = Konstante für den Verdünnungsfaktor 1,5,
n = Exponent mit einem Wert von 9 bis − 2.
Beispiel:Gegeben sei ein Schwellenwert für ranziges Olivenöl von 0,32. Mit C
10= 0,32 und a = 1,5 ergeben sich folgende Verdünnungsstufen:1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 64
▼B
Probe1 23456789 1 0 1 1 1 2
Konzentration 12,30 8,20 5,47 3,65 2,43 1,62 1,08 0,72 0,48 0,32 0,21 0,14
Durch Ansetzen von Verdünnungsreihen nach dieser Arbeitsvorschrift
anhand der nach diesem Berechnungsverfahren bestimmten Schwellen-
werte für die übrigen Merkmale erhält man für alle Laboratorien Skalen
mit gleicher Reizabstufung für jedes einzelne Merkmal, selbst wenn die
Fehler der verwendeten Olivenöle unterschiedlich stark festzustellen sind.
9.4.Auswahl der Prüfer nach dem Verfahren der „Intensitätseinstufung“
Zur Auswahl sind zwei- bis dreimal so viele Kandidaten heranzuziehen,
wie zur Bildung der Prüfergruppe erforderlich sind, damit die mit der
höchsten Sinnenschärfe und dem größten Unterscheidungsvermögen
ausgewählt werden können. Die Prüfung sollte immer mit dem gleichen
Erzeugnis wie das später zu Prüfende durchgeführt werden (daher wird
immer Olivenöl verwendet).
Abbildung 1
Bei der Auswahl des Verfahrens ist unabhängig von seiner Leistungs-
fähigkeit auch seine Wirtschaftlichkeit hinsichtlich der Ölmenge, der
Anzahl der Proben und des Zeitaufwands zu berücksichtigen. Ein
Auswahlverfahren ist umso wirksamer, je besser es gelingt, das optimale
Niveau der folgenden drei abhängigen Variablen zu bestimmen: a)
„Kosten“ in Abhängigkeit von der Anzahl der Prüfungen, b) „Anteil“
der möglicherweise geeigneten Kandidaten, die durch Zufall leider ausge-
sondert werden, und c) „Anzahl“ der ungeeigneten Kandidaten, die das
Glück hatten, das Auswahlverfahren dennoch zu bestehen.
Für die Auswahl wird das Verfahren der „Intensitätseinstufungsprüfung“
(intensity rating test) gemäß den Normen ASTM (American Society for
Testing and Materials), STP (Special Technical Publication) Nr. 440, S.
53, verwendet, das in folgenden Punkten abgeändert wurde:
1. Verringerung der Zahl der Proben in der Prüfreihe;1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 65
▼B
2. Erweiterung der Reizstoffpalette durch Aufnahme weiterer Geruchs-
und Geschmacksnoten für die Auswahl, um den häufigsten wahrnehm-
baren Fehlern von Olivenöl Rechnung zu tragen;
3. Variation des Konzentrationsverhältnisses in der Prüfreihe und4. statistische Auswertung der Ergebnisse.
Geräte und Hilfsmittel:— Flaschen oder Kolben, 1 500 ml,
— dunkelfarbige Prüfgläser,
— Reagenzgläser, 10 ml, 15 ml, 1 000 ml und 1 500 ml.
Reagenzien:— Merck-Paraffin (Nr. 7.160, DAB 6, USP XX) oder geruch- und
geschmackloses Ölsubstrat (frisch raffiniertes Oliven- oder anderes
Öl)
— Olivenöle: stichig („atrojado“), weinartig, ranzig und bitter.
9.4.1. Verfahren
Nach dem Ansetzen der Verdünnungen wird, ausgehend von 25 Kandi-
daten, mit dem Auswahlverfahren begonnen. Die Auswahl wird nach
dem nachstehend beschriebenen Verfahren für jede Geschmacksnote
durchgeführt.
1. Verdünnungsreihen mit 12 verschlüsselt gekennzeichneten Gläsern
(eine Reihe pro Kandidat) werden vorbereitet. In jedes Prüfglas
werden 15 ml Probe mit der nach der Formel C
10·anjeweils herge-
stellten Konzentration gegeben.
2. Nach dem Füllen werden die Gläser mit aufliegendem Uhrglasdeckel
mindestens eine Stunde vor Beginn der Prüfungen bei einer Tempe-
ratur von 20—22 ºC im Prüfungsraum stehen gelassen, um sie auf
Raumtemperatur zu bringen.
3. Die 12 Gläser werden vom Prüfungsleiter in absteigender Reihenfolge
der Konzentrationen in einer Reihe aufgestellt.
Anschließend wird jeder Kandidat aufgefordert, die Prüfung einzeln
durchzuführen; dazu sind ihm folgende Anweisungen zu erteilen:
9.4.2. Anweisungen für die Kandidaten
Die 12 vor dem Kandidaten aufgestellten Gläser enthalten jeweils
Verdünnungen der Reize „stichig“ („atrojado“), „weinartig“, „ranzig“
und „bitter“. Die Gläser unterscheiden sich hinsichtlich der Intensität des
Geruchs, wobei das mit dem stärksten Geruch ganz links steht und die
Konzentrationen stufenweise nach rechts abnehmen. Das ganz rechts
stehende Glas kann so wenig von dem Geruchsstoff enthalten, daß er
nicht mehr wahrnehmbar ist.
Gehen Sie bitte wie folgt vor: Machen Sie sich mit den Gerüchen der
einzelnen Gläser der Reihe vertraut. Beginnen Sie dabei mit dem Geruch
des rechten Glases (Nr. 12) und versuchen Sie, sich die Intensität des
Geruchs zu merken. Sinnenermüdung ist zu vermeiden.
Sobald Sie sich die Reihenfolge der Verdünnungsstufen gemerkt haben,
verlassen Sie den Prüfraum.
Anschließend nimmt der Prüfungsleiter ein Glas aus der Reihe heraus,
stellt es gleichauf mit dem ganz rechts stehenden und schließt die Lücke
durch Verschieben der übrigen Gläser. Sie betreten darauf wieder den
Prüfstand und setzen die Prüfung fort.
Die Prüfung besteht aus folgender Aufgabe:
Das herausgenommene Glas ist an seinen ursprünglichen Platz in der
Reihe zurückzustellen. Dazu kann beliebig oft ein Geruchsvergleich der
Gläser durchgeführt werden. Zu beachten ist, daß das Glas bei korrekter
Plazierung stärker als das unmittelbar rechts daneben stehende und
schwächer als das unmittelbar links daneben stehende riechen muß. Diese
Prüfung wird mit drei weiteren Gläsern wiederholt.
Zur Erleichterung der Prüfung und der Abgabe der Antworten erhalten
die Kandidaten zusammen mit den vorstehenden Anweisungen folgendes
Formblatt.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 66
▼B
9.4.3. Ergebnisse
Der Übersichtlichkeit halber notiert der Prüfungsleiter die von den
einzelnen Kandidaten gemachten Angaben wie folgt:
9.4.4. Statistische Auswertung der Antworten
Im vorliegenden Fall sind die an ihren ursprünglichen Platz zurückzustel-
lenden Gläser für alle Kandidaten gleich; nach den statistischen
Berechnungen für diesen Fall muß es sich dabei um die folgenden Gläser
mit den für das jeweilige Merkmal aufgeführten Seriennummern handeln:
Stichig
(„atrojado“) (St)Weinartig (W) Ranzig (R) Bitter (B)
Glas Nr. Glas Nr. Glas Nr. Glas Nr.
(10, 5, 7, 2) (11, 3, 8, 6) (7, 4, 10, 2) (6, 3, 11, 9)
Die der entsprechenden Position des Glases in der Reihe entsprechende
Nummer darf nicht variieren, da die statistischen Berechnungen für
diesen Fall auf der Wahrscheinlichkeit beruhen, mit der die Gläser durch
Zufall an ihren rechten Platz zurückgestellt werden.
Damit die Kandidaten keine Informationen untereinander austauschen
können, hat der Prüfungsleiter folgende Regeln zu beachten:
1. Es muß ausgeschlossen sein, daß die Kandidaten Informationen
austauschen können. Für jeden Kandidaten müssen unterschiedliche
Aufschriften verwendet werden.
2. Es muß ausgeschlossen sein, daß die Kandidaten in Erfahrung bringen
können, welche Gläser herausgenommen wurden.
3. Jedem Kandidaten sind die Gläser mit den vorstehenden Nummern in
einem anderen Prüfungsgang zu präsentieren.
Die Ergebnisse jedes Kandidaten werden wie folgt benotet:
Die 12 Gläser mit den entsprechenden Verdünnungsstufen des Merkmals
i seien in abnehmender Reihenfolge ihrer Konzentration mit ei
1,ei
2,…ei
12bezeichnet (i = ein beliebiges der Merkmale stichig („atrojado“), wein-
artig, ranzig und bitter).
Es seien ei
kein beliebiges Glas und K ′der von dem Kandidaten gewählte
Platz des betreffenden Glases in der Reihe. Die Werte für K und K ′sind
demnach ganze Zahlen zwischen 1 und 12 einschließlich und bezeichnen
den tatsächlichen und den vom Kandidaten gewählten Platz des betref-
fenden Glases in der Reihe.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 67
▼B
T (maximal zulässige Abweichung) sei ein vorab auf einen bestimmten
Betrag, in unserem Fall auf den Betrag 3, festgesetztes Kriterium, das
bei K′−K > T den automatischen Ausschluß des Kandidaten zur Folge
hat(1).
Ist dagegen K ′−K≤T, so wird der Kandidat allgemein nicht ausge-
schlossen, sondern kann weiter an der Prüfung teilnehmen, da er in der
Lage ist, das herausgenommene Glas an den richtigen Platz zurückzu-
stellen, zumindest aber an zwei unmittelbar benachbarte Plätze.
In diesem Fall ist die Note, die ein Kandidat erhält, der ein bestimmtes
Geschmacksmerkmal (Konzentration) beurteilt hat (z. B. stichig („atro-
jado“), gleich dem Quadrat aus der Differenz zwischen der richtigen
Stelle in der Reihenfolge der Gläser und der Stelle, an die der Kandidat
das Glas gestellt hat
Phst=( K′−K)2
Da ein Kandidat anhand von vier Intensitätsstufen (Verdünnungsstufen)
jedes einzelnen Merkmals geprüft wird, bestimmt sich die Einzelbewer-
tung für das folgende Merkmal (z. B. „stichig“ („atrojado“)) wie folgt:
ZSt=PSt
h+PSt
j+PSt
l+PSt
m
Zum besseren Verständnis nachstehend einige Beispiele:
Beispiel 1:
Nehmen wir an, der Kandidat A habe die Fragen nach den vier Inten-
sitätsstufen der Versuchsreihe des Merkmals (i) wie folgt beantwortet:
Richtiger Platz des
Glases in der Reihe
(K)Gewählter Platz
(K′)Differenz zu dem richtigen Platz
(K′−K)
7 7 7−7 = 0
4 5 4−5 = −1
10 6 10−6 = 4 (1)
2 4 2−4 = −2
(1) Dieser Kandidat scheidet aus, da er bei der Prüfung nur einen Wert von T > 3
erreicht hat.
Beispiel 2:
Nehmen wir an, der Kandidat ordnet die Verdünnungsstufen eines Merk-
mals wiefolgt zu:
Richtiger Platz des
Glases in der Reihe
(K)Gewählter Platz
(K′)Differenz zu dem richtigen Platz
(K′−K)
7 7 7−7 = 0
4 4 4−4 = 0
10 7 10−7 = 3
2 3 2−3 = −1
Dieser Kandidat scheidet nicht aus. Er hat für dieses Auswahlmerkmal
folgende Benotung erreicht:
Zi=O2+O2+32+( −1 )2=1 0
Die Gesamtbewertung für die Auswahl oder das Ausscheiden des Kandi-
daten aufgrund seiner Antworten zu den vier Auswahlmerkmalen
geschieht wie folgt:1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 68
(1) Der Prüfungsleiter muß den Kandidaten unbedingt veranlassen, die Prüfung mit
Bedacht zu absolvieren, damit sein Geruchssinn nicht abstumpft.▼C1
▼B
▼B
PSt
h+PSt
j+PSt
i+PSt
m=ZSt
PW
h+PW
j+PW
i+PW
m=ZW
PR
h+PR
j+PR
i+PR
m=ZR
PB
h+PB
j+PB
i+PB
m=ZB
Z Gesamt = ZSt…+ZB
Darin bedeutet:
St = stichig („atrojado“),
W = weinartig,
R = ranzig,
B = bitter.
Es stellt sich nun die Frage, bis zu welchem Betrag von Z davon auszu-
gehen ist, daß der Kandidat über Sinnenschärfe, Geruchsgedächtnis und
Zuordnungsvermögen in dem Maße verfügt, wie es zur richtigen Beant-
wortung im Hinblick auf die vier Merkmale erforderlich ist. Z ist
definitionsgemäß nie negativ, und ein Betrag Z = 0 bedeutet, daß der
Kandidat alle 16 ihm präsentierten Verdünnungsstufen (vier für jedes
Merkmal) erkannt und richtig zugeordnet hat. Ist der Betrag von Z von
Null verschieden, so bedeutet dies, daß der Kandidat die Bereiche, zu
denen die ausgewählten Verdünnungen gehören, zwar erkannt hat, den
genauen Platz jedoch nicht feststellen konnte, da er über kein gutes
Unterscheidungsvermögen hinsichtlich der Verdünnungsreihe, die ihm
für ein oder mehrere Merkmale präsentiert wurden, verfügt.
Es empfiehlt sich daher, einen kritischen Wert Zcfestzulegen, für den bei
ausschließlich zufälliger Platzbewertung durch den Kandidaten innerhalb
der von ihm zuvor erkannten Bereiche die Wahrscheinlichkeit eines
Gesamtwerts Z < Zcein hinreichend kleiner Wert αist, der vorher fest-
gelegt werden kann. Mit anderen Worten, die Wahrscheinlichkeit, daß
mit diesem Verfahren ein Prüfer ausgewählt wird, dessen Unterschei-
dungsvermögen für die bei der Auswahl herangezogenenen Merkmale
unzureichend ist, ist kleiner als α.
Bei gegebenem α,das in unserem Fall auf 0,05 festgelegt wurde, ergibt
sich Zcaus der Wahrscheinlichkeitsverteilung der Variablen Z, die sich
ihrerseits aus den Wahrscheinlichkeitsverteilungen der Variablen P ergibt
(K′).
Aus der statistischen Berechnung ergibt sich für Zcein Betrag von 34.
Nachdem der von jedem Kandidaten erreichte Wert Z feststeht, scheiden
all jene Kandidaten aus, die einen Wert von über 34 erreicht haben.
So erhalten die Kandidaten A und B folgende Bewertungen:
Merkmal Kandidat A Kandidat B
Stichig („atrojado“) (St) ZSt=1 0 ZSt=1 2
Weinartig (W) ZW=1 0 ZW=1 1
Ranzig (R) ZR=1 0 ZR=1 5
Bitter (B) ZB=4 ZB=0
Σ=3 4 Σ=3 8
Die Kandidaten A und B kommen auf jeweils 34 bzw. 38 Punkte;
demnach hat der Kandidat A die Prüfung bestanden, B dagegen nicht
und scheidet aus. Nachdem die Kandidaten mit über 34 Punkten ausge-
schieden sind, werden die übrigen in der Reihenfolge der von ihnen
erzielten Punkte in einer Eignungsliste aufgelistet und die zwölf besten
ausgewählt.
9.5.Schulung
Die Schulung verfolgt hauptsächlich folgende Ziele:
a) Die Prüfer sollen mit den zahlreichen Geruchs- und Geschmacksnoten
von nativem Olivenöl vertraut gemacht werden.
b) Die Prüfer sollen mit den spezifischen sensorischen Methoden vertraut
gemacht werden.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 69
▼B
c) Die Fähigkeit jedes einzelnen, die sensorischen Merkmale wahrzu-
nehmen, zu identifizieren und quantitativ zu bestimmen, soll geschult
werden.
d) Sinnenschärfe und Gedächtnis für die verschiedenen Merkmale sollen
verbessert werden, damit eine zuverlässige Beurteilung gewährleistet
ist.
Entsprechend den Möglichkeiten der Teilnehmer sowie der Untersuchung
umfaßt die Schulung gewöhnlich eine Reihe von Prüfungsgängen, bei
denen die Prüfer die Öle einzeln prüfen und anschließend die dabei ange-
troffenen Schwierigkeiten gemeinsam mit dem Leiter diskutieren und die
Bewertungen erläutern, um Kriterien und Meinungsbildung zu vereinheit-
lichen.
Der nach einer bestimmten Zahl von Prüfungsgängen erreichte Stand der
Schulung wird anhand der Zunahme des Prozentsatzes richtiger Bewer-
tungen bei Unterscheidungsprüfungen oder anhand der Analyse der
Varianz der durchschnittlichen Einzelbewertungen der Gruppe bei
Skalenprüfungen ermittelt.
Der praktische Nutzen dieser Schulung wurde eingehend erörtert; heute
gilt sie als sehr effizient und sogar als unverzichtbar zur Erzielung zuver-
lässiger, richtiger sensorischer Daten.
9.6.Leistungskontrolle
Erfahrene Prüfer nehmen gewöhnlich regelmäßig an sensorischen
Prüfungen teil, die ihnen sehr viel abverlangen. Ihre Bewertungen sind
in technischer und gewerblicher Hinsicht oft von großer Tragweite; dahermüssen sie sich nach ihrer Auswahl und Schulung Leistungskontrollen
unterziehen, damit die Verläßlichkeit der Ergebnisse gewährleistet ist.
Daher müssen die an Routineprüfungen teilnehmenden Prüfer regelmäßig
in bestimmten Abständen ihre Leistungsfähigkeit nachweisen.
10. VERFAHREN FÜR DIE BEWERTUNG DER ORGANOLEPTISCHEN
EIGENSCHAFTEN VON NATIVEM OLIVENÖL
Nach Erfüllung der Bedingungen und Bereitstellung der erforderlichen
Mittel entsprechend den vorstehenden Normen sowie nach Auswahl der
Prüfergruppe unterzieht jeder Prüfer das ihm zur Prüfung bereitgestellte
Glas mit dem Prüfmuster einer Geruchs- und Geschmacksprüfung(
1);
dabei prüft er die olfaktorischen, gustatorischen, taktilen und kinästheti-
schen Merkmale anhand des in Abbildung 2 abgebildeten Prüfbogens, in
den er das Vorhandensein und die Intensität der Merkmale einträgt.
Alsdann bewertet er die Qualität des Öls.
10.1.Verwendung des Prüfbogens in Abbildung 2 (Flavourbeschreibung
und Qualitätsbewertung)
In der linken Hälfte des Bogens sind einige der typischsten sensorischen
Merkmale aufgeführt, die bei Olivenöl am häufigsten auftreten und für
sein Flavour kennzeichnend sind. Werden außer den aufgeführten Merk-
malen weitere Merkmale wahrgenommen, so sind diese mit dem oder den
treffendsten Begriff(en) dafür in der Rubrik „Andere“ zu vermerken.
Die wahrgenommenen Merkmale sind entsprechend ihrer Intensität durch
Ankreuzen (+) des dafür vorgesehenen Kästchens entsprechend der nach-
stehenden Bewertungstabelle zu bewerten:
1 = kaum wahrnehmbar,
2 = schwach,
3 = mittel,
4 = stark,5 = extrem.
Die rechte Hälfte des Bogens enthält eine Neun-Punkte-Bewertungsta-
belle (9 = außergewöhnliche Qualität, 1 = ungenügend), anhand derer
der Prüfer eine einheitliche Gesamtbewertung der Ölmerkmale vornimmt.
Bei dieser Bewertung ist den guten Eigenschaften und den Fehlern, die
bereits in der linken Hälfte im einzelnen vermerkt wurden, Rechnung zu
tragen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 70
(1) Sofern er bei der Geruchsprobe ein extrem oder stark unangenehm vorschmeckendes
Merkmal feststellt, kann er ausnahmsweise darauf verzichten und dies auf dem Prüf-
bogen vermerken.
▼B
Die erste Spalte (Fehler) der Bewertungstabelle umfaßt fünf Rubriken,
wonach Olivenöle hauptsächlich aufgrund des völligen Fehlens oder des
mehr oder weniger ausgeprägten Auftretens von Flavourfehlern beurteilt
werden; da die Bewertungstabelle jedoch neun Punkte umfaßt, sind die
in der zweiten Spalte (Merkmale) aufgeführten Nuancen und Aspekte zu
berücksichtigen, die zu der Gesamtbewertung der Qualität entscheidend
beitragen.
10.2.Endgültige Bewertung
Der Prüfungsleiter sammelt die von den einzelnen Prüfern abgegebenen
Bewertungen ein und überprüft, ob die wahrgenommenen und die in der
„Profilbeschreibung“ vermerkten Merkmale und Intensitäten mit der in
der „Bewertungstabelle“ erteilten Bewertung in Einklang stehen.
Bei deutlichen Abweichungen muß der Prüfungsleiter den Prüfer auffor-
dern, seinen Bewertungsbogen zu überprüfen.
Erforderlichenfalls muß der Prüfer die Untersuchung wiederholen.
Schließlich stellt der Prüfungsleiter die Bewertungen durch die Gesamt-
gruppe in einer Tabelle zusammen und berechnet das arithmetische
Mittel und die Art des Fehlers (des Mittelwerts).
Wenn die Art des Fehlers größer ist als der Fehler der Methode, so muß
er die Untersuchung durch die gesamte Gruppe wiederholen lassen.
Nur im Fall von Revisionsanalysen müssen die Untersuchungen so oft
wiederholt werden, bis drei Bewertungen je Probe vorliegen. Die endgül-
tige Bewertung ist der Mittelwert von drei Bewertungen, wobei das
Ergebnis auf eine Dezimalstelle angegeben wird.
Wenn der Mittelwert für die Intensität von bitter und/oder pikant über 2,5
liegt, so wird dem Öl die entsprechende Bewertung gegeben, wobei
zusätzlich angegeben wird, daß es besonders bitter und/oder pikant ist.
Abfassung der Ergebnisse: Der Prüfungsleiter bestimmt anhand des
Mittelwerts die Kategorie, in die die Probe entsprechend den in Anhang
I vorgesehenen Grenzwerten eingeordnet wird. Zu diesem Zweck
berücksichtigt er
— im Wirtschaftsjahr 1992/93 einen Toleranzwert von + 1,5,
— ab dem Wirtschaftsjahr 1993/94 einen Toleranzwert von + 1,
wenn der Mittelwert mindestens 5 Punkte erreicht.
Im Fall von Olivenölen, die Gegenstand von Interventionsmaßnahmen
sind, wird jedoch kein Toleranzwert angewandt.
Die in den vorstehenden Absätzen genannten Toleranzwerte berücksich-
tigen den statistischen Unterschied zwischen dem Analyseergebnis und
dem vorgeschriebenen Grenzwert hinsichtlich Wiederholbarkeit und
Vergleichbarkeit.
Wird Olivenöl in den genannten Wirtschaftsjahren ohne Berücksichtigung
der vorgesehenen Toleranzwerte klassifiziert, so kann auf der unmittel-
baren Umschließung des Erzeugnisses die organoleptische
Mindestbenotung angegeben werden, die bis zum Haltbarkeitsdatum über-
prüft werden kann.
Der Prüfungsleiter gibt im Untersuchungsbericht nur die Kategorie an, in
die die Probe eingeordnet wird. Wird die Prüfung durch einen Prüfer
gemäß Artikel 2 Absatz 2 erster Unterabsatz durchgeführt, so bestimmt
dieser die Kategorie nach dem gleichen Verfahren.
Anmerkung: Die Proben sind bis zu ihrer Untersuchung verschlossen im
Kühlschrank aufzubewahren und sind jedesmal wieder dort
hinzubringen, bis die dritte Untersuchung abgeschlossen ist.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 71
▼M12
▼M9
▼M5
▼B
▼M3
Abbildung 2
Natives Olivenöl
SENSORISCHE PRÜFUNG: GRUNDBEGRIFFE
1. UMFANG UND ANWENDUNGSBEREICH
Diese Norm enthält eine Zusammenstellung der bei der sensorischen
Prüfung zu verwendenden Begriffe und ihrer Definitionen.
2. BEGRIFFE2.1.Allgemeine Begriffe
Sensorische Prüfung (Substantiv):
Sinnenprüfung der organoleptischen Eigenschaften.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 72
▼B
▼B
Wahrnehmung (Substantiv):
Sinnliches Erfassen äußerer Gegenstände und Vorkommnisse.Organoleptisch (Adjektiv) (Merkmal oder Eigenschaft):
Bezeichnet Eigenschaften eines Erzeugnisses, die mit Hilfe der Sinnesor-
gane wahrgenommen werden können.
Sachverständiger (Substantiv) (auf dem Gebiet der Prüfung der organo-
leptischen Eigenschaften):
Auf die sensorische Prüfung eines bestimmten Erzeugnisses speziali-
sierter Prüfer, der über Grundkenntnisse über dessen Herstellung und die
Marktpräferenzen verfügt.
Prüfer(Substantiv):
Ausgewählte und geschulte Person mit Unterscheidungsvermögen und
Sinnesschärfe zur sensorischen Prüfung der organoleptischen Eigen-
schaften eines Lebensmittels.
Prüfergruppe (Substantiv):
Gruppe von eigens ausgewählten und geschulten Prüfern, die zur sensori-
schen Prüfung des Erzeugnisses unter kontrollierten Bedingungen
zusammentritt.
Empfindung (Substantiv):
Durch einen Sinnesreiz verursachtes subjektives Phänomen. Dieses
Phänomen ist hinsichtlich seiner Art, seiner Bewertung sowie seiner
Intensität subjektiv unterscheidbar und objektiv über das betreffende
Sinnesorgan beschreibbar.
Sinnenschärfe (Substantiv):
Fähigkeit der Sinnesorgane zur qualitativen und quantitativen Wahrneh-
mung eines schwach ausgeprägten Sinnesreizes oder von geringen
Unterschieden zwischen Sinnesreizen.
Verkostung (Substantiv):
Vorgang des Wahrnehmens, Prüfens und Beurteilens organoleptischer
Eigenschaften, insbesondere der olfaktorischen, gustatorischen, taktilen
und kinästhetischen Eigenschaften eines Lebensmittels.
Akzeptanz (Substantiv):
Positive Reaktion eines einzelnen oder einer Gruppe, die ein Erzeugnis
aufgrund seiner organoleptischen Eigenschaften auslöst.
Harmonie (Substantiv):
Eigenschaft eines Erzeugnisses, die eine angenehme Gesamtempfindung
verursacht. Diese Empfindung wird verursacht durch die Wahrnehmung
ihrer Einzelbestandteile in Form von olfaktorischen, gustatorischen,
taktilen und kinästhetischen Reizen, da die Einzelbestandteile in jeweils
geeigneten Konzentrationsverhältnissen vorliegen.
Anklang (Substantiv):
Tatbestand der bereitwilligen Aufnahme eines Erzeugnisses aufgrund
seiner organoleptischen Eigenschaften durch den einzelnen oder eine
Gruppe.
Unterscheidung (Substantiv):
Qualitative und/oder quantitative Unterscheidung zweier oder mehrerer
Reize.
Kompensation (Substantiv):
Ergebnis des Zusammenwirkens mehrerer Sinnesreize derart, daß ein
jeder davon schwächer wahrnehmbar ist, als wenn er allein vorläge.
Aussehen (Substantiv):
Mit den Augen wahrgenommenes Gesamtbild der organoleptischen
Eigenschaften: Größe, Form, Farbe, Erscheinungsbild, Trübheit, Klarheit,
Fließvermögen, Schaum und Efferveszenz. Dieser Begriff ist dem Begriff
Erscheinungsbild vorzuziehen.
Eigenschaft (Substantiv):
Wahrnehmbares Merkmal.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 73
▼B
2.2.Physiologische Begriffe
Reizstoff (Substantiv):
Physikalisch oder chemisch beschreibbarer Stoff, der eine spezifische
Reaktion der externen oder internen Sinnesrezeptoren hervorruft.
Geschmack (Substantiv) (Geschmackssinn):
Einer der Sinne, dessen Rezeptoren sich im Mund und insbesondere auf
der Zunge befinden und auf verschiedene gelöste Verbindungen
reagieren.
Gustatorisch (Adjektiv):
Bezeichnet die Eigenschaft eines Erzeugnisses zur Reizung des
Geschmackssinns und Hervorrufung einer oder mehrerer der vier Grund-
geschmacke: süß, salzig, sauer und bitter.
Rezeptor (Substantiv):
Auf die Aufnahme von Reizen spezialisierter Teil eines Sinnesorgans, der
in der Lage ist, Reize zu empfangen und an die Nervenzellen weiterzu-
leiten.
Anmerkung: Die Rezeptoren werden nach der Art der Energie, die den
entsprechenden Sinnesreiz auslösen, unterschieden (Licht,
Wärme, Schall usw.).
Geruch (Substantiv):
Funktion der Geruchsorgane hinsichtlich der Wahrnehmung und Unter-
scheidung von Molekülen, die in der Gasphase von außen mittelbar oder
unmittelbar durch die Nase mit ihm in Berührung kommen.
Intensität (Substantiv):
Stärke der Energie einer Eigenschaft, die oberhalb der Schwelle mit Hilfe
einer quantitativen Werteskala bestimmt werden kann.
Anpassung (Substantiv):
Vorübergehende Änderung der Sinnesschärfe bei der Wahrnehmung von
sensorischen Reizstoffen als Ergebnis einer ständigen, wiederholten
Einwirkung eines bestimmten oder eines diesem ähnlichen Reizstoffs.
Hemmung (Substantiv):
Ausbleiben der Reaktion eines Sinnesorgans oder eines seiner Teile unter
der Einwirkung eines geeigneten Reizstoffs, dessen Intensität oberhalb
der Schwelle liegt.
Reaktion (Substantiv):
Wirkung, mit der die Sinneszellen auf einen oder mehrere Reize eines
bestimmten Sinns reagieren.
Körper(Substantiv):
In der Mundhöhle wahrgenommene taktile Empfindung, die ein Gefühl
für die Dichte, Viskosität, Konsistenz oder Kompaktheit eines Erzeug-
nisses liefert.
Duftigkeit (Substantiv):
Frischer, weicher und milder Geruch.Riechen (Verb) (Fähigkeit des Geruchssinns):
Fähigkeit der Geruchswahrnehmung.
Objektiv (Adjektiv):
a) Bezeichnung für die Vermittlung einer wirklichkeitsgetreuen und
überprüfbaren Darstellung eines Sachverhalts unter Vernachlässigung
menschlicher Faktoren (z. B. Vorlieben, Gewohnheiten, Affekte);
b) Bezeichnung für eine Technik, die es trotz der Verwendung sensori-
scher oder instrumentaler Verfahren erlaubt, selbstverursachte Fehler
zu vermeiden.
Anmerkung: Von der Verwendung des Begriffs instrumentell als
Synonym wird abgeraten.
Subjektiv (Adjektiv):1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 74
▼B
Bezeichnung für die Vermittlung einer Wahrnehmung, die nicht allein
durch den Reizstoff hervorgerufen wird, sondern auch durch unser
Denken und Fühlen.
Kinästhetik:Gesamtheit der Empfindungen, die sich beim Pressen der Probe bei der
Bewegung in der Mundhöhle oder beim Pressen zwischen den Fingern
ergeben (Beispiel: Zerdrücken von Käse zwischen den Fingern).
Schwelle (Substantiv):
—absolute Schwelle
Mindestmenge eines Reizstoffes,
— die eine Empfindung hervorruft (Wahrnehmungsschwelle) oder
— bei der diese Empfindung identifiziert wird (Identifizierungs-
schwelle);
—Unterscheidungsschwelle
Mindestmenge eines Reizstoffs, bei der ein merklicher Unterschied in
der Intensität der Empfindungen feststellbar ist;
—Oberschwelle
Höchststärke eines Reizstoffs, oberhalb derer eine Zunahme der
Stärke nicht mehr wahrgenommen wird;
—Präferenzschwelle
Mindestmenge eines Reizstoffs oder kritische supraliminare Konzen-
tration dieses Reizstoffs, die im Vergleich zu einem neutralenReizstoff angenehme bzw. unangenehme Empfindungen hervorruft,
z. B. bei der Wahl zwischen einer Zuckerlösung und Wasser.
Anmerkung: Es ist zu unterscheiden zwischen absoluter Präferenz-
schwelle und Unterscheidungspräferenzschwelle.
Subliminar (Adjektiv):
Unterhalb der absoluten Schwelle.
Supraliminar (Adjektiv):
Oberhalb der absoluten Schwelle.Sinnenermüdung:
Besonderer Fall der Sinnengewöhnung, bei dem ein Rückgang der
Sinnesschärfe zu verzeichnen ist.
Kompensation (Substantiv):
Ergebnis des Zusammenwirkens mehrerer Reizstoffe derart, daß jeder
schwächer wahrgenommen wird, als wenn er alleine vorkäme.
Synergistisch (Adjektiv):
Ergebnis des Zusammenwirkens bestimmter Stoffe in der Weise, daß die
Intensität der durch ihre Mischung hervorgerufenen organoleptischen
Eigenschaften stärker ist als die Summe der einzeln wirkenden Kompo-
nenten.
Kontrastwirkung (Substantiv):
Steigerung der Reaktion auf die Unterschiede zweier gleichzeitig oder
nacheinander wirkender Reizstoffe. Gegenteil von Konvergenzwirkung.
Konvergenzwirkung (Substantiv):
Abschwächung der Reaktion auf die Unterschiede gleichzeitig oder nach-
einander wirkender Reizstoffe. Gegenteil von Kontrastwirkung.
2.3.Begriffe für organoleptische Eigenschaften
Sauer(Adjektiv):
a) Bezeichnung für den vorherrschenden Geschmack verdünnter
wässriger Lösungen der meisten Säuren (z. B. Zitronensäure, Milch-
säure, Traubensäure);
b) Bezeichnung für die Eigenschaft von Stoffen, im Reinzustand oder als
Gemisch diesen Grundgeschmack hervorzurufen.
Das zugehörige Substantiv lautet: Azidität.
Säuerlich (Adjektiv):1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 75
▼B
Bezeichnung für die Geruchs- und Geschmackswirkung von vor allem bei
der Fermentierung freiwerdenden Säuren sowie von Lebensmitteln, die
diese Empfindungen hervorrufen.
Einige Faktoren, die zu dieser Empfindung beitragen, stehen in Bezie-
hung zur Fermentierung, zum Beispiel die Milchsäure- oder
Essigsäurebildung eines Lebensmittels.
Bitter(Adjektiv):
a) Bezeichnung für den vorherrschenden Geschmack verdünnter wäßriger
Lösungen von verschiedenen Stoffen wie Chinin, Koffein sowie
bestimmter Alkaloide;
b) Bezeichnung für die Eigenschaft von Stoffen, im Reinzustand oder als
Gemisch diesen Grundgeschmack hervorzurufen.
Das zugehörige Substantiv lautet: Bitterkeit.
Salzig(Adjektiv):
a) Charakteristische Geschmacksempfindung, wie sie in typischer Weise
von einer Natriumchloridlösung hervorgerufen wird;
b) Bezeichnung für die Eigenschaft von Stoffen, im Reinzustand oder als
Gemisch diesen Grundgeschmack hervorzurufen.
Das zugehörige Substantiv lautet: Salzigkeit.Süß(Adjektiv):
a) Bezeichnung für den vorherrschenden Geschmack wäßriger Lösungen
verschiedener Stoffe, z. B. Saccharose;
b) Bezeichnung für die Eigenschaft von Stoffen, im Reinzustand oder als
Gemisch diesen Grundgeschmack hervorzurufen.
Das zugehörige Substantiv lautet: Süße.
Adstringierend (Adjektiv):
a) Bezeichnung für eine komplexe Empfindung, wie sie von einer
verdünnten wäßrigen Lösung mancher Stoffe, z. B. von bestimmten
Tanninen (Kaki- oder Schlehentannin), hervorgerufen wird;
b) Bezeichnung für die Eigenschaft von Stoffen, im Reinzustand oder als
Gemisch diese Empfindung hervorzurufen.
Das zugehörige Substantiv lautet: Adstringenz.Flavour (Substantiv):
Als Flavour bezeichnet man den durch das Zusammenwirken von olfakto-
rischen, gustatorischen, taktilen und kinästhetischen Empfindungen
hervorgerufenen Gesamtsinneseindruck, der für ein Lebensmittel kenn-
zeichnend ist und als mehr oder weniger angenehm oder unangenehm
empfunden wird.
Geschmack (Substantiv):
a) Empfindung, die durch die von bestimmten löslichen Substanzen
hervorgerufene Reizung der Geschmackspapillen hervorgerufen wird;
b) Bezeichnung für die von solchen Stoffen hervorgerufene besondere
Empfindung.
Grundgeschmack (Substantiv):
a) Beim Einatmen bestimmter flüchtiger Stoffe über das Riechorgan
wahrgenommener Gesamtsinneseindruck;
b) Bezeichnung für die von solchen Stoffen hervorgerufene besondere
Empfindung.
Geruch (Substantiv):
a) Kombination von Empfindungen, die durch das Geruchsorgan wahr-
genommen werden beim Einziehen bestimmter flüchtiger Substanzen
durch dieNase ;
b) Eigenschaft einer spezifischen Empfindung, die von den obenge-
nannten Substanzen herrührt.
Aroma(Substantiv):
a) Beim Verkosten eines Lebensmittels indirekt über das Riechorgan
wahrgenommene angenehme Empfindungen;1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 76
▼B
b) in der Parfümerie sowie in der Umgangssprache wird der Begriff auch
für dieselben direkt über die Nase wahrgenommenen Empfindungen
verwendet.
Nachgeschmack (Substantiv):
Von den zuerst wahrgenommenen Empfindungen abweichender Gesamt-
sinneseindruck, der sich einstellt, nachdem der Reizstoff den Mund
verlassen hat.
Aromatisch (Adjektiv):
a) Bezeichnung für den von manchen Stoffen im Reinzustand oder als
Gemisch beim Verkosten hervorgerufene, als Aroma bezeichnete
Empfindung;
b) Bezeichnung für Stoffe, die bei der Geruchsprüfung durch die Nase
eine duftige, frische Empfindung hervorrufen.
Textur(Substantiv):
Eigenschaften eines Erzeugnisses im festen oder rheologischen Zustand,
welche die mechanischen Rezeptoren insbesondere der Mundregion beim
Verkosten anregen können.
Hinweis: Mit diesem Begriff werden ausschließlich objektiv vorhandene
Eigenschaften bezeichnet, nicht aber hervorgerufene Empfin-
dungen, die mit allgemeinen Begriffen wie Konsistenz,
Faserigkeit, Geschmeidigkeit usw. bezeichnet werden.
Kauen:Vorgang, bei dem das Lebensmittel mit allen geschmacksempfindlichen
Teilen des Mundes in Berührung gebracht wird, damit die von ihm
hervorgerufenen Empfindungen im Mund wahrgenommen werden
können.
Hinweis: Dieses Glossar kann ergänzt werden unter Heranziehung der
Normen ISO 5492/I-V und anderer Veröffentlichungen, wie
beispielsweise die von J. L. Magnen unter dem Titel „Les
Cahiers techniques du Centre National de Coordination des
Etudes et Recherches sur la Nutrition et l'Alimentation“ usw.
PRÜFGLAS FÜR ÖLE
1. UMFANG UND ANWENDUNGSBEREICH
Diese Vorschrift beschreibt die Eigenschaften des Glases zur organolepti-
schen Prüfung von Speiseölen (Geruch, Geschmack, Flavour).
Sie beschreibt ferner die Vorrichtung zum Anwärmen und Temperieren
auf die für diese Prüfung geeignete Temperatur.
2. BESCHREIBUNG
In Abbildung 1 ist ein Prüfglas mit den am besten für diesen Zweck
geeigneten Merkmalen dargestellt; diese lassen sich wie folgt zusammen-
fassen:
a) höchstmögliche Standfestigkeit, um ein Umstoßen und Vergießen des
Inhalts zu verhindern;
b) Standfläche paßt in die Öffnungen des Anwärmblocks hinein, was
eine gleichmäßige Erwärmung des Glasbodens ermöglicht;
c) eine Form, die am Boden am weitesten ist, so daß die flüchtigen
Bestandteile der Öle vollständig freigesetzt werden. Sie verengt sichim Mundbereich, so daß die gleichen Verbindungen konzentriert
werden, wodurch sichergestellt wird, daß sie durch die Nase besser
wahrgenommen und identifiziert werden können;
d) dunkles Glas. Es verhindert, daß der Prüfer die Farbe des Öles
erkennt, dadurch voreingenommen wird und sich möglicherweise von
einer objektiven Bestimmung ablenken läßt.
2.1.Maße
Das in Abbildung 1 dargestellte Glas hat folgende Maße:
— Gesamtvolumen …............................. 130 ml ± 10 ml,
— Gesamthöhe …................................. 60 mm ± 1 mm,— Durchmesser der Kelchöffnung ….............. 50 mm ± 1 mm,1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 77
▼B
— größter Kelchdurchmesser …................... 70 mm ± 1 mm,
— Durchmesser des Kelchbodens … ............... 35 mm ± 1 mm,
— Wandstärke…................................. 1,5 mm ± 0,2 mm,
— Stärke des Glasbodens … ....................... 5mm±1mm.
Zu jedem Glas gehört ein Uhrglas mit einem um 10 mm größeren Durch-
messer als der der Kelchöffnung. Dieses Glas dient als Deckel, damit
nichts von dem Aroma verloren geht und kein Staub eindringen kann.
2.2.Fertigungsdaten
Das Glas muß aus resistentem, dunklem, blasen- und kratzerfreiem Glas
gefertigt sein, so daß die Farbe des Inhalts nicht erkennbar ist.
Der Glasrand muß gleichmäßig, glatt und leicht umgebogen sein.
Das Glas muß getempert sein, damit es den bei den Prüfungen auftre-
tenden Temperaturschwankungen standhält.
2.3.Vorschriften für den Gebrauch
Zur Reinigung der Gläser ist geruchsfreie Seife bzw. Spülmittel zu
verwenden und anschließend ausreichend mit Wasser nachzuspülen, um
jedwede Rückstände von Reinigungsmittel zu entfernen. Schließlich
werden sie mit destilliertem Wasser nachgespült, man läßt abtropfen und
trocknet sie in einem Trockenschrank.
Konzentrierte Säuren oder gar Chromsäuregemische dürfen nicht
verwendet werden.
Die Gläser sind bis zum Gebrauch im Trockenschrank oder in einem
Schrank zum Schutz gegen Fremdgeruch aufzubewahren.
Vor jeder Verwendung ist jedes Glas durch Riechen auf Fremdgeruch zu
prüfen. Bei der Versuchsvorbereitung sind die Kennzeichen eines jeden
Glases sowie das enthaltene Ölmuster sorgfältig aufzuzeichnen. Nur der
Prüfungsleiter darf wissen, welches Kennzeichen welcher Ölprobe
entspricht.
3. VORRICHTUNG ZUM ANWÄRMEN DER PROBEN
Die organoleptische Prüfung der Proben muß bei einer bestimmten
Temperatur geschehen, die bei Speiseölen 28 ± 2 ºC betragen muß. Damit
dies gewährleistet ist, muß sich in jeder Kabine in Reichweite des Prüfers
eine Anwärmvorrichtung gemäß Abbildung 2 befinden. Sie besteht aus
einem Aluminiumblock in einem thermostatisch gesteuerten Wasserbad
und gewährleistet eine gleichmäßige Temperatur. Dieser Block weist
eine Reihe von paßgenauen Vertiefungen für den Boden auf. Der Unter-
schied zwischen der Temperatur der Anwärmvorrichtung und dem Öl in
den Gläsern in den Vertiefungen der einzelnen Blöcke darf höchstens
± 2 ºC betragen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 78
▼B
Abbildung 1 — Prüfglas
Maße(in mm)1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 79
▼B
Abbildung 2 — Vorrichtung zum Anwärmen der Proben
(Maße in mm)
LEITLINIEN FÜR DIE EINRICHTUNG EINES PRÜFRAUMS
1. EINLEITUNG
Der Prüfraum soll den an der sensorischen Prüfung teilnehmenden
Prüfern zweckmäßige, bequeme und genormte Arbeitsbedingungen
bieten, um ihnen die Arbeit zu erleichtern und die Wiederholbarkeit und
Vergleichbarkeit der Ergebnisse zu gewährleisten.
2. UMFANG UND ANWENDUNGSBEREICH
Diese Vorschriften regeln die Grundvoraussetzungen für die Einrichtung
eines Prüfraums.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 80
▼B
3. ALLGEMEINE SPEZIFIKATION DER EINRICHTUNG
Der Raum muß ungeachtet seiner Fläche (3.1) folgenden Anforderungen
genügen:
Der Raum muß angenehm und gut ausgeleuchtet (3.2), aber neutral
gehalten sein. Daher empfiehlt sich ein beruhigender, glatter und heller
Wandanstrich zur Schaffung einer entspannten Atmosphäre(1).
Der Raum muß leicht zu reinigen und darf keinen Geräuschquellen
ausgesetzt sein; daher ist er nach Möglichkeit mit einer Schallisolierung
zu versehen. Ferner darf er keinerlei Fremdgeruch ausgesetzt sein und
ist nach Möglichkeit mit einer geeigneten Lüftungsanlage auszurüsten.
Sofern die Umgebungstemperaturen es verlangen, ist der Prüfraum mit
einer Klimaanlage auszustatten, die eine konstante Temperatur von 20
bis 22 ºC gewährleistet.
3.1.Maße
Die Maße hängen stark von den Möglichkeiten der Laboratorien bzw.
Unternehmen ab. Allgemein muß der Raum zur Aufnahme von etwa 10
Kabinen und einem Bereich zur Vorbereitung der Proben ausreichen.
Je größer der Raum ist, desto besser ist es natürlich, da in diesem Fall
Nebenräume beispielsweise für die Reinigung des Materials, die Herrich-
tung von Speisen und das Zusammentreten „offener Prüfgruppen“
eingerichtet werden können.
3.2.Beleuchtung
Die allgemeine natürliche oder künstliche Beleuchtung (z. B. mit Tages-
licht-Röhrenleuchten) muß gleichmäßig, regelbar und diffus sein.
3.3.Lufttemperatur und -feuchtigkeit
Der Raum muß ständig angenehme Lufttemperatur und -feuchtigkeit
aufweisen. Es empfiehlt sich eine Temperatur von 20—22 ºC und eine
relative Luftfeuchtigkeit von 60 bis 70 %, sofern keine besonderen
Bedingungen gelten.
4. BESCHREIBUNG DER KABINEN4.1.Allgemeine Merkmale
Die Kabinen sind nebeneinander angeordnet, gleich ausgestattet und
durch Trennwände so voneinander getrennt, daß die Prüfer beim Sitzen
keinen Kontakt zueinander haben. Sie können aus jedwedem geeigneten,
reinigungsfreundlichen und haltbaren Material gefertigt werden (z. B.
Holz, glasierte Sperrholzplatten, Walzplatten usw.). Bei Verwendungvon Anstrichen müssen diese nach dem Trocknen völlig geruchlos sein.
Die in jeder Kabine aufgestellten Stühle müssen bequem und höhenver-
stellbar sein.
Außerdem muß jede Kabine über eine richtungs- und helligkeitsverstell-
bare Einzelbeleuchtung verfügen.
Jede Kabine sollte ferner über einen Schalter mit einer außerhalb der
Kabine gelegenen Lichtquelle verbunden sein, mit der der Prüfer dem
Betreuer diskret melden kann, daß er mit der Prüfung fertig ist, weitere
Proben wünscht, ein Hilfsmittel benötigt, eine Unregelmäßigkeit festge-
stellt hat oder eine Information benötigt usw.
4.2.Maße
Die Kabinen müssen genügend Platz bieten und bequem sein.
Allgemein sind folgende Maße vorzusehen:Länge:0,75 m (ohne Spülbecken),
0,85 m (mit Spülbecken);
Tiefe:0,50 m (Tisch),1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 81
(1) Farbe und Beleuchtung können die Ergebnisse der sensorischen Prüfung beeinflussen.
▼B
0,20 m (Trennwandaufmaß);
Trennwandhöhe:
mindestens 0,60 m ab Tischhöhe;Tischhöhe:
0,75 m.
4.3.Anordnung
Die Tischplatte muß leicht zu reinigen sein.Ein Teil dieser Tischplatte ist für ein Spülbecken mit fließendem Wasser
vorgesehen. Sofern dies nicht möglich sein sollte, ist dieser Bereich für
eine Schüssel, einen Spucknapf oder ähnliches vorzusehen.
Falls die Proben während der Prüfung auf einer konstanten Temperatur
über oder unter der Raumtemperatur gehalten werden müssen, ist eine
geeignete Einrichtung dafür vorzusehen (Wasserbad, Heizplatte usw.).
In einer Höhe von etwa 1,10 Metern kann auch ein Regal angebracht
werden, um verschiedene Hilfsmittel (Gläser, kleine Geräte usw.)
abstellen zu können.
Sofern die Anordnung der Kabinen in dem Raum es erlaubt, sollte eine
Einrichtung für die Bereitstellung der Proben vorgesehen werden. Diese
könnte als Schiebefenster (Abbildung 1), Drehfenster mit vertikaler
Achse für Standgläser (hohe Gläser) (Abbildung 2) oder mit horizontaler
Achse für Probengefäße geringer Höhe (Abbildung 3) vorgesehen
werden. Es kommt lediglich darauf an, daß die Öffnung groß genug ist,
daß die Tabletts mit den Probengefäßen hindurchpassen.
5. NEBENRÄUME
Sofern genügend Platz vorhanden ist, sind getrennte Räumlichkeiten für
die Vorbereitung der Proben (Versuchsküche für den Fall der Durchfüh-
rung von Prüfungen mit Speisen o. a.), Regale für das Abstellen der
Gläser oder Hilfsmittel sowie für Besprechungen vor oder nach den
Prüfungen vorzusehen. Diese Räumlichkeiten sind sauber zu halten und
dürfen keinesfalls so gelegen oder beschaffen sein, daß die Arbeit der
Prüfer im Prüfraum durch Gerüche, Geräusche oder Gespräche
beeinträchtigt werden kann.
Abbildung 4 zeigt ein Beispiel eines Prüfraums mit Nebenräumen.
Hinweis: Bei den beschriebenen Verhältnissen handelt es sich um Ideal-
bedingungen; sollte es nicht möglich sein, eine vergleichbare
Einrichtung ausschließlich für die sensorische Prüfung bereitzu-
stellen, könnten die Prüfungen in einem Raum durchgeführt
werden, der die beschriebenen Mindestbedingungen (Licht,
Temperatur, Schall-Isolierung, Gerüche) erfüllt und in dem
transportable Kabinen aus Faltelementen so aufgestellt werden,
daß zumindest die Prüfer voneinander getrennt sind.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 82
▼B
EINRICHTUNG DER KABINE
Abbildung 1
1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 83
▼B
DREHFENSTER MIT VERTIKALER ACHSE
Abbildung 2
1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 84
▼B
DREHFENSTER MIT HORIZONTALER ACHSE
Abbildung 3
1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 85
▼B
LABOR FÜR DIE SENSORISCHE PRÜFUNG
Abbildung 4 — Beispiel eines Prüfraums
1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 86
▼B
ANHANG XIII
NEUTRALISIERUNG UND BLEICHUNG VON OLIVENÖL IM LABO-
RATORIUM
1. NEUTRALISIEREN UND BLEICHEN DES OLIVENÖLS IM LABO-
RATORIUM
1.1.Neutralisieren des Öls
1.1.1. Geräte
— hohes 300-ml-Becherglas,
— Laborzentrifuge mit 100-ml-Gläsern,— 250-ml-Becherglas,— 100-ml-Rundkolben,— 1-Liter-Scheidetrichter.
1.1.2. Reagenzien
— 12%igewäßrigeNatriumhydroxidlösung,
— 1%ige Lösung von Phenolphthalein in Äthylalkohol,— Hexan, analysenrein,— Isopropylalkohol, analysenrein.
1.1.3. Verfahren
a)Öle mit einem Gehalt an freien Fettsäuren, berechnet als Ölsäure, von
weniger als 30 %
Man gibt 50 g rohes Öl in ein hohes 300-ml-Becherglas und erwärmt
im Wasserbad auf 65 ºC. Unter langsamem Rühren gibt man — mit
einem Überschuß von 5 % — so viel 12%ige Natriumhydroxidlösung
hinzu, wie dem Gehalt des Öls an freien Fettsäuren entspricht. Unter
Aufrechterhaltung der Temperatur von 65 ºC wird 5 Minuten weiter-
gerührt.
Das Ganze wird in 100-ml-Zentrifugengläser überführt und die Seifen-
masse durch Zentrifugieren abgetrennt. Das dekantierte Öl wird in ein
250-ml-Becherglas gegeben und mit 50 bis 60 ml kochendem destil-
liertem Wasser gewaschen. Die wäßrige Phase wird mit Hilfe eines
Saughebers entfernt. Die Waschungen werden wiederholt, bis auch
Spuren von Seifenresten entfernt sind (Verschwinden der Rosafärbung
des Phenolphthaleins).
Zur Entfernung der geringen Restwassermengen wird das Öl zentri-
fugiert.
b)Öle mit einem Gehalt an freien Fettsäuren, berechnet als Ölsäure, von
mehr als 30 %
In einen 1-Liter-Scheidetrichter gibt man 50 g rohes Öl, 200 ml
Hexan, 100 ml Isopropylalkohol und — mit einem Überschuß von
0,3 % — so viel 12%ige Natriumhydroxidlösung, wie dem Gehalt
des Öls an freien Fettsäuren entspricht.
Eine Minute lang kräftig rühren. 100 ml destilliertes Wasser hinzu-
geben, erneut rühren und stehen lassen. Nach der Phasentrennung
wird die untere seifenhaltige Schicht abgelassen. In vielen Fällen
bildet sich zwischen den beiden Phasen (ölhaltige obere und wäßrige
untere Schicht) eine Zwischenschicht, die Schleimstoffe und unlös-
liche Substanzen enthält und die ebenfalls entfernt werden muß.
Anschließend wird die Hexanlösung des neutralen Öls mit Portionen
von jeweils 50 bis 60 ml einer Lösung aus Isopropylalkohol und
destilliertem Wasser im Verhältnis 1:1 (Volumenteile) bis zum
Verschwinden der Rosafärbung des Phenolphthaleins gewaschen.
Darauf wird das Hexan durch Abdestillieren im Vakuum (z. B. mit
Hilfe eines Rotationsverdampfers) vollständig entfernt.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 87
▼M6
▼B
▼B
1.2.Bleichen des neutralisierten Öls
1.2.1. Geräte
— 250-ml-Dreihalskolben mit Schliffansätzen für:
a) Thermometer mit Unterteilung in 1 ºC für Messungen bis 90 ºC,
b mechanisches Rührwerk, 250 bis 300 Umdrehungen/min, geeignet
zum Betrieb im Vakuum,
c) Anschluß für dieVakuumpumpe ;
— Vakuumpumpe für 15 bis 30 Millibar Endvakuum, mit Manometer.
1.2.2. Verfahren
In den Dreihalskolben werden etwa 100 g neutralisiertes Öl eingewogen.
Thermometer und Rührwerk einführen, Vakuumpumpe anschließen und
auf 90 ºC unter Umrühren erwärmen; die Temperatur wird unter
ständigem Rühren so lange aufrechterhalten, bis das zu untersuchende
Öl vollständig vom Wasser befreit ist (etwa 30 Minuten).
Danach wird das Vakuum unterbrochen und 2 bis 3 g aktivierte Blei-
cherde zugegeben.
Dann wird wieder ein Vakuum mit einem Druck von 15 bis 30 Millibar
hergestellt, wobei über eine Zeit von 30 Minuten die Temperatur auf
90 ºC und die Drehzahl des Rührwerks bei etwa 250 Umdrehungen/min
gehalten werden. Danach wird in einem thermostatisch regulierten Trok-
kenschrank warm filtriert (50—60 ºC).1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 88
▼M6
ANHANG XIV
ZUSÄTZLICHE ANMERKUNGEN 2, 3 UND 4 ZU KAPITEL 15 DER
KOMBINIERTEN NOMENKLATUR
2. A. Als Olivenöl im Sinne der Positionen 1509 und 1510 gelten ausschließ-
lich die aus der Verarbeitung von Oliven gewonnen Öle, soweit deren
Sterin- und Fettsäurezusammensetzung den Werten der nachstehenden
Tabellen entsprechen:
Tabelle I: Fettsäuregehalt in Prozent des Gesamt-
fettsäuregehaltsTabelle II: Steringehalt in Prozent des Gesamtste-
ringehalts
Myristinsäure M 0,1 Cholesterin M 0,5
Linolensäure M 0,9 Brassicasterin M 0,2
Arachinsäure M 0,7 Campesterin M 4,0
Eicosensäure M 0,5 Stigmasterin (1) < Campesterin
Behensäure M 0,3 Beta-Sitosterin (2) m 93,0
Lignocerinsäure M 0,5 Delta-7-Stigmasterin M 0,5
m = Mindestgehalt.
M = Höchstgehalt.
(1) Gilt weder für Lampantöle (Unterposition 1509 10 10) noch für rohe Oliventresteröle (Unterposition
1510 00 10).
►C3(2) Delta-5,23-Stigmastadienol + Chlerosterin + Beta-Sitosterin + Sitostanol + Delta-5-Avenasterin
+ Delta-5,24-Stigmastadienol. ◄
Zu den Positionen 1509 und 1510gehören weder chemisch modifizierte
(insbesondere wiederveresterte) Öle noch Mischungen von Olivenöl mit
anderen Ölen. Die Anwesenheit von wiederverestertem Olivenöl oder
von anderen Ölen wird mit den Verfahren der Anhänge V, VII, XA
►C3und XB der Verordnung (EWG) Nr. 2568/91 nachgewiesen. ◄
B. Zur Unterposition 1509 10 gehören nur die in den nachstehenden
Abschnitten I und II definierten Olivenöle, die aus Oliven ausschließlich
durch mechanische oder andere physikalische Verfahren und unter Bedin-
gungen, insbesondere Temperaturbedingungen, gewonnen wurden, die
nicht zur Verschlechterung der Öle führen, und die keine andere Behand-
lung erfahren haben als Waschen, Dekantieren, Zentrifugieren und
Filtrieren. Mit Lösungsmitteln gewonnene Olivenöle werden in die Posi-
tion 1510 eingereiht.
I. Als „Lampantöl“ im Sinnede r ►C3Unterposition ◄1509 10 10
gilt ein Olivenöl, das — unabhängig von seinem Gehalt an freien Fett-
säuren — folgende Merkmale aufweist:
a) Gehalt an ►M9Wachs◄höchstens ►M9350◄mg/kg,
b) Gehalt an Erythrodiol und Uvaol höchstens 4,5 %,
c) Gehalt an gesättigten Fettsäuren in 2-Stellung der Triglyceride
höchstens 1,3 %,
d) Summe der trans-Ölsäureisomeren kleiner als 0,10 % und Summe
der trans-Linolsäureisomeren und trans-Linolensäureisomeren
kleiner als ►C30,10 % ◄,
und
e) eines oder mehrere der folgenden Merkmale:
1. Peroxidzahl größer als 20 meq aktiver Sauerstoff/kg,
2. Gesamtgehalt an flüchtigen halogenierten Lösungsmitteln
größer als 0,2 mg/kg oder Gehalt an einem einzigen davon
jeweils größer als 0,1 mg/kg,
3. Extinktionskoeffizient K270größer als 0,25 und nach Behand-
lung der Ölprobe mit aktiviertem Aluminiumoxid höchstens
0,11. Bestimmte Öle mit einem als Ölsäure berechneten Gehalt
an freien Fettsäuren von mehr als 3,3 g/100 g können nach
Behandlung mit aktiviertem Aluminiumoxid gemäß dem
Verfahren des Anhangs IX ►C3der Verordnung (EWG) Nr.
2568/91 ◄einen Extinktionskoeffizienten K270von über 0,10
aufweisen; in diesem Fall muß die Ölprobe nach dem Neutrali-
sieren und Bleichen im Labor gemäß dem Verfahren des1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 89
▼M6
Anhangs XIII ►C3der vorerwähnten Verordnung ◄folgende
Merkmale aufweisen:
— Extinktionskoeffizient K270höchstens 1,20,
— Schwankung des Extinktionskoeffizienten (Delta K) im
Bereich von 270 nm von mehr als 0,01 und höchstens 0,16:
Delta K = Km− 0,5 (Km−4+Km+4)
Km= bezeichnet den Extinktionskoeffi-
zienten für die im Bereich von 270
nm liegende Wellenlänge, die im
Maximum der Absorptionskurve
liegt,
Km−4und Km+4= bezeichnen die Extinktionskoeffi-
zienten für eine um 4nm niedrigere
bzw. höhere Wellenlänge als Km;
4. sensorische Merkmale mit wahrnehmbaren unannehmbaren
Geschmacksfehlern, mit einem Bewertungsergebnis von
weniger als 3,5 gemäß Anhang XII ►C3der Verordnung
(EWG) Nr. 2568/91 ◄.
II. Als „anderes nicht behandeltes Olivenöl“ im Sinne der Unterposition
1509 10 90 gilt Olivenöl, das folgende Merkmale aufweist:
a) Gehalt an freien Fettsäuren, berechnet als Ölsäure, höchstens 3,3 g/
100 g,
b) Peroxidzahl höchstens 20 meq aktiver Sauerstoff/kg,
c) Gehalt an ►M9Wachs◄höchstens ►M9250◄mg/kg,
d) Gehalt an flüchtigen halogenierten Lösungsmitteln insgesamt
höchstens 0,2 mg/kg bzw. einzeln jeweils höchstens 0,1 mg/kg,
e) Extinktionskoeffizient K270höchstens 0,25 und nach Behandlung
mit aktiviertem Aluminiumoxid höchstens 0,10,
f) Schwankung des Extinktionskoeffizienten (Delta K) im Bereich
von 270 nm höchstens 0,01,
g) sensorische Merkmale, auch mit wahrnehmbaren, jedoch noch
akzeptablen Geschmacksfehlern und einem Bewertungsergebnis
von mindestens 3,5 gemäß Anhang XII ►C3der Verordnung
(EWG) Nr. 2568/91 ◄,
h) Gehalt an Erythrodiol und Uvaol höchstens 4,5 %,
i) Gehalt an gesättigten Fettsäuren in 2-Stellung der Triglyceride
höchstens 1,3 %,
j) Summe der trans-Ölsäureisomere kleiner als 0,03 % und Summe
der trans-Linolensäure- und trans-Linolsäureisomere kleiner als
0,03 %.
C. Als Öle der Unterposition 1509 90 00 gelten Olivenöle, die durch Behan-
deln von Ölen der Unterpositionen 1509 10 10 und/oder 1509 10 90
gewonnen wurden, auch vermischt mit nativem Olivenöl, und die
folgende Merkmale aufweisen:
a) Gehalt an freien Fettsäuren, berechnet als Ölsäure, höchstens 3,3 g/
100 g,
b) Gehalt an ►M9Wachs◄höchstens 350 mg/kg,
c) Extinktionskoeffizient K270von höchstens 1,2,
d) Schwankung des Extinktionskoeffizienten ( ∆K) im Bereich von
270 nm von höchstens 0,16,
e) Gehalt an Erythrodiol und Uvaol höchstens 4,5 %,
f) Gehalt an gesättigten Fettsäuren in 2-Stellung der Triglyceride
höchstens 1,5 %,
g) Summe der trans-Ölsäureisomere kleiner als 0,20 % und Summe der
►C3trans-Linolsäureisometre ◄und trans-Linolensäureisomere
kleiner als 0,30 %.
D. Als „rohe Öle“ im Sinne der Unterposition 1510 00 10 gelten Öle, insbe-
sondere Oliventresteröle, die folgende Merkmale aufweisen:
a) Gehalt an freien Fettsäuren, berechnet als Ölsäure, mindestens 2 g/100
g,
b) Gehalt an Erythrodiol und Uvaol mindestens 12 %,1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 90
▼M9
▼M6
▼M6
c) Gehalt an gesättigten Fettsäuren in 2-Stellung der Triglyceride
höchstens 1,8 %,
d) Summe der trans-Ölsäureisomere weniger als 0,20 % und Summe der
trans-Linolsäure- und trans-Linolensäureisomere weniger als 0,10 %.
E. Als Öle der Unterposition 1510 00 90 gelten Öle, die durch Behandeln
von Ölen der Unterposition 1510 00 10 gewonnen wurden, auch
vermischt mit nativem Olivenöl, sowie diejenigen, die nicht die Merk-
male von Olivenölen gemäß den zusätzlichen Anmerkungen 2.B, 2.C
und 2.D aufweisen. Die Öle dieser Unterposition müssen einen Gehalt
an gesättigten Fettsäuren in 2-Stellung der Triglyceride von nicht mehr
als 2 % aufweisen, wobei die Summe der trans-Ölsäureisomere kleiner
als 0,40 % und die Summe der trans-Linolsäureisomere und trans-Lino-
lensäureisomere kleiner als 0,35 % sein muß.
3. Nicht zu den Unterpositionen 1522 00 31 und 1522 00 39 gehören:
a) Rückstände aus der Verarbeitung von Fettstoffen, die Öl enthalten, dessen
Iodzahl, bestimmt nach dem Verfahren des Anhangs XVI ►C3der
Verordnung (EWG) Nr. 2568/91 ◄, kleiner als 70 oder größer als 100
ist;
b) Rückstände aus der Verarbeitung von Fettstoffen, die Öle mit einer
Iodzahl zwischen 70 und 100 enthalten, bei dem jedoch die gemäß
Anhang V ►C3der Verordnung (EWG) Nr. 2568/91 ◄bestimmte
Fläche des Peaks, der der Retentionszeit des Beta-Sitosterins
►C3(1)◄entspricht, kleiner ist als 93 % der Gesamtfläche der Sterin-
peaks.
4. Für die Bestimmung der Merkmale der obengenannten Erzeugnisse sind die
in den Anhängen ►C3der Verordnung (EWG) Nr. 2568/91 ◄beschrie-
benen Analyseverfahren anzuwenden.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 91
(1) Delta-5,23-Stigmastadienol + Chlerosterin + Beta-Sitosterin + Sitostanol + Delta-5-
Avenasterin + Delta-5,24-Stigmastadienol.
▼B
ANHANG XV
1. ÖLGEHALT DER OLIVENTRESTER
1.1.Geräte
— Geeigneter Extraktionsapparat mit 200- bis 250-ml-Kolben,
— elektrisch beheiztes Bad (Sandbad, Wasserbad usw.) oder Heizplatte,— Analysenwaage,— Trockenschrank, eingestellt auf höchstens 80 ºC,— elektrischer Trockenschrank mit Thermostat, eingestellt auf 103 ºC
± 2 ºC, der unter Einblasen von Luft oder unter vermindertem Druck
betrieben werden kann,
— mechanische Mühle, leicht zu reinigen, mit der die Trester ohne Erwär-
mung und ohne merkliche Verringerung ihres Gehalts an Wasser und
Öl zerkleinert werden können,
— Extraktionshülse und Watte oder Filterpapier, frei von mit Hexan extra-
hierbaren Stoffen,
— Exsikkator,— Sieb, Maschendurchmesser 1 mm,— Siedesteinchen, zuvor getrocknet.
1.2.Reagenzien
— technisches n-Hexan; Rückstand bei vollständiger Verdampfung unter
0,002 g/100 ml.
2. ARBEITSVORSCHRIFT2.1.Vorbereitung der Probe
Die Probe wird, wenn nötig, in der zuvor gut gereinigten mechanischen
Mühle so weit gemahlen, daß die Teilchen vollständig das Sieb passieren
können.
Etwa ein Zwanzigstel der Probe ist zur Reinigung der Mühle zu benutzen;
dieses Mahlgut ist zu verwerfen. Der Rest ist fein zu mahlen, das Mahlgut
aufzufangen, sorgfältig zu mischen und unverzüglich zu analysieren.
2.2.Untersuchungsprobe
Etwa 10 g der Probe werden nach dem Mahlen auf 0,01 g genau für die
Untersuchung abgewogen.
2.3.Vorbereitung der Extraktionshülse
Die Probe wird in die Hülse gegeben und diese mit einem Wattebausch
verschlossen. Bei Verwendung von Filterpapier wird das Mahlgut darineingeschlagen.
2.4.Vertrocknung
Wenn die Trester sehr feucht sind (Gehalt an Wasser und flüchtigen
Stoffen größer als 10 %), ist vorzutrocknen, wobei die gefüllte Hülse
(bzw. das Filterpapier) so lange wie nötig in den auf höchstens 80 ºC
geheizten Trockenschrank gestellt wird, um den Gehalt an Wasser und
flüchtigen Stoffen auf unter 10 % zu senken.
2.5.Vorbereitung des Kolbens
Der Kolben, der 1 bis 2 Siedesteinchen enthält und zuvor im Trocken-
schrank bei 103 ºC ± 2 ºC getrocknet und danach mindestens 1 Stunde
lang im Exsikkator abgekühlt wurde, wird auf 1 mg genau gewogen.
2.6.Erste Extraktion
Die Hülse (bzw. das Filterpapier) mit der Probe wird in den Extraktionsap-
parat gestellt, die benötigte Menge Hexan in den Kolben gegeben, der
Kolben an den Extraktionsapparat angeschlossen und das Ganze auf das
elektrische Heizbad gestellt. Die Heizung ist so einzustellen, daß der Rück-
fluß mindestens 3 Tropfen in der Sekunde beträgt (mäßiges, nicht heftiges
Sieden).1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 92
▼B
Nach 4stündiger Extraktion läßt man abkühlen. Die Hülse wird aus dem
Extraktionsapparat genommen und in einen Luftstrom gestellt, um den
größten Teil des Lösungsmittels, mit dem sie durchtränkt ist, zu entfernen.
2.7.Zweite Extraktion
Die Hülse wird in die Mikrokugelmühle entleert, und es wird so fein wie
möglich gemahlen. Das Mahlgut wird quantitativ in die Hülse zurückge-
geben und diese wieder in den Extraktionsapparat gestellt.
Es wird nochmals 2 Stunden extrahiert, wobei der die erste Extraktion
enthaltene Kolben verwendet wird.
Die im Extraktionskolben enthaltene Lösung muß klar sein. Wenn nicht, ist
sie über Filterpapier zu filtrieren, wobei der erste Kolben und das Filterpa-
pier mehrmals mit Hexan gewaschen werden. Das Filtrat und die
Waschflüssigkeit werden in einem zweiten, zuvor getrockneten und auf
1 mg abgewogenen Kolben aufgefangen.
2.8.Entfernung des Lösungsmittels und Wiegen des Extrakts
Durch Destillieren auf dem elektrischen Heizbad wird der größte Teil des
Lösungsmittels entfernt. Die letzten Lösungsmittelspuren werden durch
20minütiges Erhitzen des Kolbens im Trockenschrank bei 103 ºC ± 2 ºC
beseitigt. Die Beseitigung der Lösungsmittelreste wird durch zeitweiliges
Einführen eines Luftstroms oder besser eines Inertgasstroms oder durch
Arbeiten unter vermindertem Druck erleichtert.
Den Kolben läßt man wenigstens 1 Stunde im Exsikkator abkühlen und
wiegt ihn dann auf 1 mg genau.
Danach wird der Kolben erneut 10 Minuten unter den gleichen Bedin-
gungen erhitzt, im Exsikkator abgekühlt und gewogen.
Der Unterschied zwischen den Ergebnissen der zwei Wägungen darf
höchstens 10 mg betragen. Wenn nicht, ist erneut 10 Minuten zu erhitzen,
dann wieder abkühlen zu lassen und zu wiegen, bis der Gewichtsunter-
schied höchstens 10 mg beträgt. Das letzte Gewicht des Kolbens wird
notiert.
Für jede Untersuchung werden mit der gleichen Probe zwei Bestimmungen
durchgeführt.
3. ERGEBNISSE
3.1.Berechnung und Formel
a) Der Extrakt des Rohprodukts läßt sich in Gewichtsprozenten durch
nachstehende Formel berechnen:
S=m1×100
m0
Dabei sind:
S = Gewichtsprozente des Extrakts des Rohprodukts,
m0= Gewicht der Untersuchungsprobe in g,
m1= Gewicht des Extrakts nach der Trocknung in g.
Als Ergebnis ist das arithmetische Mittel aus den beiden Bestimmungen
zu nehmen, falls die Bedingungen der Wiederholbarkeit erfüllt sind.
Das Ergebnis wird auf eine Dezimalstelle angegeben.
b) Der Extrakt, bezogen auf den Trockenstoff, läßt sich berechnen durch
dieForme l:
S×100
100 − U= Extrakt in % Fett, bezogen auf den Trockenstoff.
Dabei sind:
S = Gewichtsprozente des Extrakts des Rohprodukts (vgl. a)),
U = sein Gehalt an Wasser unf flüchtigen Stoffen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 93
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3.2.Wiederholbarkeit
Die Differenz zwischen den Ergebnissen von zwei gleichzeitig oder schnell
nacheinander von ein und demselben Analytiker vorgenommenen Bestim-
mungen darf nicht mehr als 0,2 g Hexan-Extrakt je 100 g Probe betragen.
Andernfalls ist die Analyse mit zwei weiteren Untersuchungsproben zu
wiederholen. Liegt die Differenz wieder über 0,2 g, so ist als Ergebnis das
arithmetische Mittel aus allen vier Bestimmungen zu nehmen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 94
▼B
ANHANG XVI
BESTIMMUNG DER IODZAHL
1. ANWENDUNGSBEREICH
Diese Internationale Norm beschreibt ein Verfahren zur Bestimmung der
Iodzahl von tierischen und pflanzlichen Fetten und Ölen, nachfolgend als
„Fette“ bezeichnet.
2. DEFINITION
In dieser Internationalen Norm gilt folgende Definition:
2.1. Iodzahl: Iodmenge, die unter den in dieser Internationalen Norm beschrie-
benen Versuchsbedingungen von der Probe aufgenommen wird.
Die Iodzahl wird in Gramm Iod pro 100 g Probe angegeben.
3. PRINZIP
Die zu untersuchende Probe wird in dem Lösungsmittel gelöst und mit dem
Wijs-Reagens versetzt. Nach einer bestimmten Zeit werden Kaliumiodidlö-
sung und Wasser zugegeben und das freigesetzte Iod mit einer
Natriumthiosulfatlösung titriert.
4. REAGENZIEN
Alle Reagenzien müssen von anerkannter analysenreiner Qualität sein.
4.1. Kaliumiodidlösung, 100 g/l, die kein Iodat oder freies Iod enthält.4.2. Stärkelösung
5 g lösliche Stärke mit 30 ml Wasser mischen und in 1 000 ml kochendes
Wasser geben; 3 Minuten kochen und abkühlen lassen.
4.3. Natriumthiosulfat, eingestellte Standardlösung c (Na
2S2O3·5 H2O) = 0,1
mol/l, höchstens 7 Tage vor der Verwendung eingestellt.
4.4. Lösungsmittel, hergestellt durch Mischen gleicher Volumenteile Cyclo-
hexan und Essigsäure.
4.5. Wijs-Reagens, das Iodmonochlorid in Essigsäure enthält. Es soll das im
Handel erhältliche Wijs-Reagens verwendet werden.
Anmerkung: Das Reagens enthält 9 g ICl3+ 9 g I in Essigsäure.
5. GERÄTE
Übliche Laboreinrichtung und insbesondere nachstehende Geräte:
5.1. Mikrobechergläschen, die sich für die zu untersuchende Probe und zum
Einführen in die Kolben (5.2) eignen.
5.2. 500-ml-Erlenmeyerkolben mit Schliffstopfen, vollständig trocken.
6. VORBEREITUNG DER ANALYSEPROBE
Die homogenisierte Probe wird über Natriumsulfat getrocknet und filtriert.
7. VERFAHREN7.1.Probemenge
Die Menge der zu untersuchenden Probe hängt von der erwarteten Iodzahl
ab (Tabelle 1).1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 95
▼B
Tabelle 1
Erwartete Iodzahl Masse der zu untersuchenden Probe
weniger als 5 3,00 g
5—20 1,00 g
21—50 0,40 g
51—100 0,20 g
101—150 0,13 g
151—200 0,10 g
Die zu untersuchende Probe wird in einem Mikrobechergläschen (5.1) auf
0,1 mg genau eingewogen.
7.2.Bestimmung
Die Probe wird in einen 500-ml-Kolben (5.2) gegeben und mit 20 ml
Lösungsmittel (4.5) versetzt, um das Fett zu lösen. Genau 25 ml Wijs-
Reagens (4.6) zugeben, den Kolben mit dem Stopfen verschließen,
schwenken und dunkel stellen. Für das Wijs-Reagens sollen keine Pipetten
verwendet werden, die mit dem Mund aufgezogen werden müssen.
Dann wird in ähnlicher Weise eine Blindprobe vorbereitet; die das
Lösemittel und das Reagens, nicht aber die Probe enthält.
Bei Proben mit Iodzahlen unter 150 muß der Kolben 1 Stunde dunkel
gestellt werden; bei Iodzahlen über 150 sowie bei polymerisierten oder
stark oxidierten Erzeugnissen sind es 2 Stunden.
Nach Ablauf dieser Zeit wird in jeden Kolben 20 ml Kaliumiodidlösung
(4.1) und 150 ml Wasser gegeben.
Nun mit der eingestellten Natriumthiosulfat-Standardlösung (4.3) titrieren,
bis die durch Iod bedingte Gelbfärbung kaum noch sichtbar ist. Einige
Tropfen Stärkelösung (4.2) zugeben und weiter titrieren, bis die Blau-
färbung unter starkem Schütteln verschwindet.
Anmerkung: Eine potentiometrische Bestimmung des Endpunkts ist
zulässig.
7.3.Zahl der Bestimmungen
Es werden zwei Bestimmungen mit der gleichen Probe durchgeführt.
8. DARSTELLUNG DER ERGEBNISSE
Die Iodzahl wird nach folgender Gleichung berechnet:
12;69 c V 1/C0V2 ðÞ
m
Hierin bedeuten:
c = die genaue zahlenmäßige Angabe der Konzentration der verwen-
deten Natriumthiosulfat-Standardlösung (4.3) in mol pro Liter;
V1= Volumen der für den Blindversuch verwendeten Natriumthiosulfat-
Standardlösung (4.3) in Millilitern;
V2= Volumen der zur Bestimmung verwendeten Natriumthiosulfat-
Standardlösung (4.3) in Millilitern;
m = Masse der untersuchten Probe (7.1) in Gramm.
Als Ergebnis ist das arithmetische Mittel der beiden Bestimmungen anzu-
geben.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 96
▼M11
ANHANG XVII
METHODE ZUR BESTIMMUNG VON STIGMASTADIENEN IN
PFLANZLICHEN ÖLEN
1. ZWECK
Bestimmung von Stigmastadienen in pflanzlichen Ölen, die diese Kohlen-
wasserstoffe nur in geringer Konzentration enthalten, insbesondere in
nativen Olivenölen und rohem Oliventresteröl.
2. ANWENDUNGSBEREICH
Das Verfahren läßt sich auf alle pflanzlichen Öle anwenden. Die Bestim-
mungen sind allerdings nur zuverlässig bei einer Konzentration dieses
Kohlenwasserstoffs von 0,01 bis 4,0 mg/kg. Die Methode eignet sich
besonders zum Nachweis von raffinierten pflanzlichen Ölen (Olivenöl,
Oliventresteröl, Sonnenblumenöl, Palmöl usw.) in nativem Olivenöl, da
raffinierte Öle im Gegensatz zu nativen Ölen Stigmastadien enthalten.
3. PRINZIP
Isolierung der unverseifbaren Bestandteile. Abtrennung der Steroid-Frak-
tion durch Säulenchromatographie an Kieselgel und Analyse durch
Kapillargaschromatographie.
4. GERÄTE
4.1. 250-ml-Stehkolben, zur Verwendung mit Rückflußkühler geeignet.4.2. 200-ml-Scheidetrichter.4.3. 100-ml-Rundkolben.
4.4. Rotationsverdampfer.
4.5. Chromatographiesäule aus Glas (innerer Durchmesser 1,5 bis 2,0 cm,
Länge 50 cm) mit Teflonhahn und Glaswattebausch oder Sinterglas-
scheibe am unteren Ende. Zur Vorbereitung der Kieselgelsäule mit
Chromatographiesäule bis zu einer Höhe von etwa 5 cm mit Hexan füllen
und dann eine Suspension von 15 g Kieselgel in 40 ml Hexan mit Hilfe
von mehreren Anteilen Hexan einschlämmen und unter leichtem Klopfen
vollständig absetzen lassen. Anschließend wasserfreies Natriumsulfat bis
zu einer Höhe von rund 0,5 cm zugeben und das überschüssige Hexan
ablaufen lassen.
4.6. Gaschromatograph mit Flammenionisationsdetektor, Split- oder cold On-
column-Injektor und Ofen mit einer Einstellgenauigkeit von ± 1 ºC.
4.7. Fused-Silica-Kapillarsäule für Gaschromatographie (0,25 oder 0,32 mm
Innendurchmesser und 25 m Länge), belegt mit 5 % Phenylmethylsilicon,
Filmdicke0,25 µm.
Anmerkung 1:
Andere Säulen mit vergleichbarer oder geringerer Polarität können eben-
falls verwendet werden.
4.8. Aufzeichnungsgerät mit Integrator mit Möglichkeit der Integration
zwischen zwei Minima.
4.9. 5-10- µl-Mikrospritze für Gaschromatographie mit fester Nadel.
4.10. Pilzheizhaube oder Heizplatte.
5. REAGENZIEN
Alle Reagenzien müssen, sofern nicht anders angegeben, von Analyse-
qualität sein. Es ist destilliertes Wasser oder Wasser von mindestens
gleichem Reinheitsgrad zu verwenden.
5.1. Hexan oder Alkanmischung mit einem Siedebereich von 65-70 ºC, destil-
liert in einer Rektifiziersäule.
Anmerkung 2:
Das Lösungsmittel muß zur Entfernung von Verunreinigungen destilliert
werden.
5.2. Ethanol, 6%ig (v/v).1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 97
▼M11
5.3. Wasserfreies Natriumsulfat.
5.4. Ethanolische Kalilauge, 10 %ige Lösung. 10 ml Wasser zu 50 g Kalium-
hydroxid geben, umrühren und die Mischung durch Zugabe von Ethanol
lösen und mit Ethanol auf 500 ml auffüllen.
Anmerkung 3:
Ethanolische Kalilauge wird beim Stehen braun. Sie sollte täglich frisch
zubereitet und in dunklen Glasflaschen gut verschlossen aufbewahrt
werden.
5.5. Kieselgel 60 für Säulenchromatographie, 70-230 mesh (Merck, Art. Nr.
7734 o. ä.).
Anmerkung 4:
Gewöhnlich kann Kieselgel direkt aus dem Behälter ohne Vorbehandlung
verwendet werden. Manche Kieselgelpartien weisen jedoch eine geringe
Aktivität auf, was zu unbefriedigenden chromatographischen Trennungen
führt. In solchen Fällen ist wie folgt vorzugehen: das Kieselgel durch
mindestens vierstündiges Erhitzen auf 550 ºC aktivieren, nach dem
Erhitzen in einen Exsikkator stellen und nach dem Abkühlen in einen
verschließbaren Kolben überführen; 2 % Wasser zugeben und schütteln,
bis keine Klumpen mehr sichtbar sind und das Pulver frei rieselt.
Kieselgelpartien, die Chromatogramme mit sich überlappenden Peaks
ergeben, sind wie oben beschrieben zu behandeln. Eine Alternative ist
die Verwendung von extrareinem Kieselgel 60 (Merck, Art. Nr. 7754).
5.6. Stammlösung (200 ppm) von Cholesta-3,5-dien (Sigma, 99 % rein) in
Hexan (10 mg in 50 ml).
5.7. Standardlösung von Cholesta-3,5-dien in Hexan in einer Konzentration
von 20 ppm. Dazu die obengenannte Lösung verdünnen.
Anmerkung 5:
Bei Temperaturen unter 4 ºC halten sich die Lösungen 5.6 und 5.7
mindestens vier Monate lang.
5.8. Lösung aus n-Nonacosan in Hexan mit einer Konzentration von rund
100 ppm.
5.9. Trägergas für die Gaschromatographie: Helium oder Wasserstoff
(99,9990 % rein).
5.10. Brenngase für den Flammenionisationsdetektor: Wasserstoff (99,9990 %
rein) und gereinigte Luft.
6. VERFAHREN
6.1.Herstellung des Unverseifbaren:
6.1.1. 20 ± 0,1 g Öl in einen 250-ml-Kolben (4.1) einwiegen, 1 ml der Stand-
ardlösung von Cholesta-3,5-dien (20 µg) und 75 ml 10 %igee thanolische
Kalilauge zugeben, Rückflußkühler anschließen und 30 Minuten köcheln
lassen. Den Kolben mit der Probe von der Hitzequelle nehmen und leicht
abkühlen lassen (nicht vollständig abkühlen lassen, da die Probe sonst
fest wird). 100 ml Wasser zugeben und die Lösung mit Hilfe von 100 ml
Hexan in einen Scheidetrichter (4.2) geben. Die Mischung 30 Sekunden
kräftig schütteln und zur Phasentrennung stehen lassen.
Anmerkung 6:
Bei Bildung einer Emulsion, die nicht gleich wieder verschwindet, kleine
Mengen Ethanol zugeben.
6.1.2. Die untere, wäßrige Phase in einen zweiten Scheidetrichter überführen
und wiederum mit 100 ml Hexan extrahieren. Die untere Phase erneut
ablaufen lassen und die Hexanextrakte zusammen in einem weiteren
Scheidetrichter dreimal mit je 100 ml einer Ethanol-Wassermischung (1:
1) waschen, bis diese pH-neutral reagiert.
6.1.3. Die Hexanlösung durch wasserfreies Natriumsulfat (50 g) laufen lassen,
mit 20 ml Hexan waschen und in einem Rotationsverdampfer bei 30 ºC
im leichten Vakuum vollständig eindampfen.
6.2.Abtrennung der Steroid-Fraktion:
6.2.1. Den Rückstand mit Hilfe von zwei Volumenanteilen Hexan (jeweils 1 ml)
auf die Trennsäule aufgeben und soweit einziehen lassen, bis sich die
Flüssigkeitsoberfläche bis über die Natriumsulfatschicht abgesenkt hat.
Dann die Elution mit Hexan mit einer Flußrate von 1 ml/Minute1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 98
▼M11
beginnen. Die ersten 25 bis 30 ml des Eluats verwerfen, die folgenden
40 ml auffangen. Diese Fraktion in einen 100-ml-Rundkolben (4.3) über-
führen.
Anmerkung 7:
Die erste Fraktion enthält gesättigte Kohlenwasserstoffe (Abbildung 1a),
die zweite Steroide. Danach werden Squalen und verwandte Verbin-
dungen eluiert. Für eine gute Trennung zwischen den gesättigten
Kohlenwasserstoffen und den Steroiden müssen die Fraktionsvolumina
optimiert werden. Hierzu ist das Volumen der ersten Fraktion so zu regu-
lieren, daß bei der Analyse der zweiten Fraktion nur kleine Peaks für
gesättigte Kohlenwasserstoffe auftreten (siehe Abbildung 1c). Treten
keine solchen Peaks auf und hat der Standardpeak gleichzeitig nur eine
geringe Größe, so ist das Volumen der ersten Fraktion zu reduzieren. Im
übrigen ist eine vollständige Trennung zwischen den Komponenten der
ersten und zweiten Fraktion nicht erforderlich, da während der GC-
Analyse unter den in Punkt 6.3.1 beschriebenen Arbeitsbedingungen eine
Überlappung der Peaks nicht vorkommt. Eine Optimierung des Volumens
der zweiten Fraktion ist in der Regel nicht notwendig, da sich die
weiteren Komponenten gut abtrennen lassen. Ein großer Peak mit einer
Retentionszeit von rund 1,5 Minuten unter dem des Standards ist jedoch
auf das Vorhandensein von Squalen zurückzuführen und zeigt eine
schlechte Trennung an.
6.2.2. Die zweite Fraktion im Rotationsverdampfer bei 30 ºC im leichten
Vakuum vollständig eindampfen und den Rückstand sofort in 0,2 ml
Hexan auflösen. Die Lösung bis zur Analyse im Kühlschrank aufbe-
wahren.
Anmerkung 8:
Die Rückstände 6.1.3 und 6.2.2 sollten nicht trocken und nicht bei
Zimmertemperatur aufbewahrt werden. Nach Gewinnung des Rückstands
sofort das Lösungsmittel zugeben und die Lösung im Kühlschrank aufbe-
wahren.
6.3.Gaschromatographie
6.3.1. Arbeitsbedingungen für Split-Injektion:
— Injektortemperatur: 300 ºC,
— Detektortemperatur: 320 ºC,
— Integrator: (Die Parameter für die Integration sind so zu wählen, daß
die Peakflächen richtig beurteilt werden können. Empfohlen wird die
Integration zwischen zwei Minima),
— Empfindlichkeit: rund das 16-fache der Mindestdämpfung,
— Einspritzvolumen: 1 µm Lösung,
— Temperaturprogramm: 6 Minuten isotherm bei 235 ºC, dann mit 2 ºC/
min auf 285 ºC,
— Injektor mit Stromteilventil (Splitverhältnis 1: 15),
— Trägergasvordruck: ca. 120 kPa Helium oder Wasserstoff.
Diese Bedingungen können entsprechend den Kenndaten des Chromato-
graphen und der Säule derart geändert werden, daß die damit
aufgezeichneten Chromatogramme folgende Bedingungen erfüllen: Der
Peak des internen Standards muß innerhalb von 5 Minuten vor oder
nach der unter 6.3.2 genannten Zeit erscheinen und mindestens 80 %
Vollausschlag erreichen.
Das GC-System ist durch Einspritzen einer Mischung aus der Cholesta-
dien-Stammlösung (5.6) und der n-Nonacosan-Lösung (5.8) zu
überprüfen. Der Cholesta-3,5-dien-Peak muß vor dem n-Nonacosan-Peak
erscheinen (Abbildung 1c). Ist dies nicht der Fall, so kann die ursprüng-
liche Ofentemperatur verringert und/oder die GC-Säule durch eine
weniger polare Säule ersetzt werden.
6.3.2. Identifizierung der Peaks
Der Peak der internen Standards erscheint nach rund 19 Minuten, derje-
nige von Stigmastadienen nach einer relativen Retentionszeit von rund
1,29 (Abbildung 1b). Das Stigmasta-3,5-dien tritt zusammen mit geringen
Mengen eines Isomers auf; beide ergeben normalerweise aber nur einenPeak. Ist die Säule jedoch zu polar, oder hat sie eine große Trennleistung,
kann das Isomer als kleiner Peak dicht vor dem des Stigmasta-3,5-dien
erscheinen (Abbildung 2). Um sicherzugehen, daß die Stigmastadiene als
ein Peak eluiert werden, empfiehlt es sich, die Säule durch eine weniger
polare Säule oder eine Säule mit größerem Innendruchmesser zu ersetzen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 99
▼M11
Anmerkung 9:
Ein Referenzchromatogramm für Stigmastadien erhält man durch die
Analyse eines raffinierten pflanzlichen Öls mit einer kleineren Probe.
Stigmastadiene rufen einen signifikanten, leicht identifizierbaren Peak
hervor.
6.3.3. QuantitativeAnalyse
Der Gehalt an Stigmastadienen wird nach folgender Formel berechnet:
mg/kg Stigmastadienen =As/C2Mc
Ac/C2Mo
Hierin bedeuten: As= Peakfläche von Stigmastadienen (wenn der
Peak geteilt ist, Summe der Flächen beider
Isomere),
Ac= Peakfläche des internen Standards (Cholesta-
dien),
Mc= Masse des zugesetzten Standards in Mikro-
gramm,
Mo= Masse des eingewogenen Öls in Gramm.
Nachweisgrenze: rund 0,01 mg/kg.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 100
▼M11
Abb. 1:
Gaschromatogramme von Olivenölproben, analysiert auf einer Fused-
Silica-Kapillarsäule (0,25 mm Innendurchmesser und 25 m Länge), belegt
mit 5 % Phenylmethylsilicon (Filmdicke 0,25 µm).
a) Erste Fraktion (30 ml) eines nativen Olivenöls, mit dem Standard
versetzt.
b) Zweite Fraktion (40 ml) eines Olivenöls mit 0,10 mg/kg Stigmasta-
dienen.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 101
▼M11
c) Zweite Fraktion (40 ml) mit einem kleinen Anteil der ersten Fraktion.
Abb. 2:
Gaschromatogramm einer Probe raffinierten Olivenöls, analysiert auf
einer DB-5-Säule, auf dem das Isomer von Stigmasta-3,5-dien zu
erkennen ist.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 102
▼M13
ANHANG XVIII
BESTIMMUNG DER ZUSAMMENSETZUNG DER TRIGLYCERIDE
MIT ECN42 (DIFFERENZ ZWISCHEN HPLC-DATEN UND THEORETI-
SCHEM GEHALT)
1.Zweck
Bestimmung der Zusammensetzung der in Olivenöl enthaltenen Trigly-
ceride (TAG) hinsichtlich ihrer äquivalenten Kohlenstoffzahl (ECN)
anhand der Unterschiede zwischen den Analyseergebnissen der Hoch-
leistungsflüssigkeitschromatographie (HPLC) und dem auf der
Grundlage der Fettsäurezusammensetzung berechneten theoretischen
Gehalt.
2.Anwendungsbereich
Diese Norm ist anwendbar auf Olivenöle. Das Verfahren dient dem
Nachweis kleiner Mengen von (linolsäurereichen) Saatölen in
Olivenölen aller Kategorien.
3.Prinzip
Der mit Hilfe der HPLC-Analyse bestimmte Gehalt an Triglyceriden
mit ECN42 und der (auf der Grundlage der gaschromatographisch
bestimmten Fettsäurezusammensetzung berechnete) theoretische Gehalt
an Triglyceriden mit ECN42 stimmen bei reinen Ölen bis zu einem
gewissen Grad überein. Unterschiede, die über den in der Verordnung
für jeden Typ angegebenen Werten liegen, deuten darauf hin, daß das
Öl Saatöl enthält.
4.Verfahren
Die Methode für die Berechnung des theoretischen Gehalts an Triglyce-
riden mit ECN42 und der Differenz zwischen diesem und den HPLC-
Daten besteht im wesentlichen aus dem Vergleich von Analysedaten,
die mit Hilfe anderer Methoden gewonnen wurden. Drei Verfahren-
sstufen sind zu unterscheiden: Bestimmung der Fettsäurezusammenset-
zung durch Kapillarsäulengaschromatographie, Berechnung der
theoretischen Zusammensetzung der Triglyceride mit ECN42 und
HPLC-Bestimmung der Triglyceride mit ECN42.
4.1.Geräte
4.1.1. 250-ml- und 500-ml-Rundkolben.4.1.2. 100-ml-Bechergläser.4.1.3. Chromatographiesäule aus Glas, 21 mm innerer Durchmesser, 450 mm
Länge, mit Hahn und Normschliffhülle am oberen Ende.
4.1.4. Scheidetrichter 250 ml Inhalt, mit Normschliffkern am unteren Ende,
geeignet zum Verbinden mit dem oberen Ende der Säule.
4.1.5. Glasstab, 600 mm Länge.4.1.6. Glastrichter, 80 mm Durchmesser.4.1.7. 50-ml-Meßkolben.4.1.8. 20-ml-Meßkolben.4.1.9. Rotationsverdampfer.4.1.10. Hochleistungsflüssigchromatograph mit Säulenofen zur Regelung der
Säulentemperatur.
4.1.11. Einspritzsystem mit 10- µl-Probenschleife.
4.1.12. Detektor: Differentialrefraktometer. Im Bereich der höchsten Empfind-
lichkeit sollten wenigstens 10
−4Einheiten des Brechungsindex erreicht
werden.
4.1.13. Säule: Säule aus rostfreiem Stahl, 250 mm Länge und 4,5 mm Innen-
durchmesser, gefüllt mit Kieselgel (5 µm Partikelgröße) mit einer
durchschnittlichen Kohlenstoffbelegung von 22—23 % in Form von
Octodecylsilan (Anmerkung 2).
4.1.14. Schreiber und/oder Integrator.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 103
▼M13
4.2.Reagenzien
Die Reagenzien müssen analysenrein sein.
Die Fließmittel müssen entgast sein. Sie können mehrere Male wieder-
verwendet werden, ohne daß dadurch die Trennleistungen beeinflußt
werden.
4.2.1. Petrolether (40—60 ºC) für die Chromatographie.4.2.2. Diethylether, peroxidfrei, frisch destilliert.4.2.3. Elutionsmittel für die Säulenchromatographie: Mischung aus Petrolether
und Diethylether im Verhältnis 87/13 (v/v).
4.2.4. Kieselgel, 70—230 mesh, TypE Merck 7734, standardisiert auf einem
Wassergehalt von 5 % (w/w).
4.2.5. Glaswatte.
4.2.6. Aceton.
4.2.7. Acetonitril.4.2.8. HPLC-Fließmittel: Acetonitril + Aceton (Das Mischungsverhältnis ist
so einzustellen, daß damit die gewünschte Trennung erzielt wird; man
beginnt mit einem Mischungsverhältnis von 1:1).
4.2.9. Lösungsmittel: Aceton.4.2.10. Als Referenztriglyceride können handelsübliche Triglyceride (Tripal-
mitin, Triolein usw.) verwendet werden, wobei ein Diagramm aus den
Retentionszeiten und den äquivalenten Kohlenstoffzahlen aufgezeichnet
wird, oder es werden Referenzchromatogramme von Sojaöl, einer
Mischung von Sojaöl/Olivenöl (30:70) und reinem Olivenöl erstellt
(siehe Anmerkungen 3 und 4 und Abbildungen 1, 2, 3 und 4).
4.3.Vorbereitung der Proben
Da einige störende Substanzen zu falschen positiven Ergebnissen führen
können, muß die Probe immer nach der IUPAC-Methode 2.507, die für
die Bestimmung polarer Stoffe in oxidierten Ölen verwendet wird,
gereinigt werden.
4.3.1. Vorbereitung der Chromatographiesäule
Etwa 30 ml Fließmittel (4.2.3) in die Säule (4.1.3) geben, Glaswatte-
bausch (4.2.5) einführen und mit Hilfe des Glasstabs (4.1.5) bis auf
den Grund der Säule schieben.
In einem 100-ml-Becherglas 25 g Kieselgel (4.2.4) in 80 ml Elutions-
mittel (4.2.3) suspendieren, dann mit Hilfe eines Glastrichters (4.1.6)
in die Säule geben.
Zur restlosen Überführung des Kieselgels in die Säule ist das Becher-
glas mit dem Elutionsmittel zu spülen und die Spülflüssigkeit ebenfalls
in die Säule zu geben.
Hahn öffnen und soviel Fließmittel ablaufen lassen, bis der Fließmittel-
spiegel etwa 1 cm über dem Kieselgel liegt.
4.3.2. Säulenchromatographie
In einem 50-ml-Meßkolben (4.1.7) werden auf 0,001 g genau 2,5 ± 0,1 g
filtriertes, homogenisiertes und erforderlichenfalls entwässertes Öleingewogen. Die Einwaage wird in etwa 20 ml Elutionsmittel (4.2.3)
gelöst; erforderlichenfalls leicht erwärmen, damit sich das Öl besser
löst. Auf Raumtemperatur erkalten lassen und mit Elutionsmittel
auffüllen.
Mit Hilfe einer Meßpipette werden 20 ml der Lösung in die gemäß
4.3.1 vorbereitete Säule gegeben; Hahn öffnen und das Elutionsmittel
bis zur Kieselgelschicht ablaufen lassen.
Mit Hilfe von 150 ml Elutionsmittel (4.2.3) bei einer Durchlaufge-
schwindigkeit von etwa 2 ml/Minute eluieren, so daß 150 ml die Säule
in 60 bis 70 Minuten durchströmen.
Eluat in einem zuvor im Ofen austarierten und genau gewogenen 250-
ml-Rundkolben (4.1.1) auffangen. Lösungsmittel unter Unterdruck
(Rotavapor) entfernen und Rückstand wägen, der zur Herstellung der
Lösung für die HPLC-Analyse und für die Bereitung der Methylesterzu-
bereitung verwendet wird.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 104
▼M13
Nach Durchlaufen der Säule muß im Fall von nativem Olivenöl extra,
nativem Olivenöl, gewöhnlichem nativem Olivenöl, raffiniertem
Olivenöl und Olivenöl die Probe zu 90 %, im Fall von Lampantöl und
Tresteröl mindestens zu 80 % zurückgewonnen werden.
4.4.HPLC-Analyse
4.4.1. Vorbereitung der Proben für die Chromatographieanalyse
Von der zu analysierenden Probe wird eine 5 %ige Lösung hergestellt,
indem 0,5 g ± 0,001 g der Probe in einen 10-ml-Meßkolben einge-
wogen und mit dem Lösungsmittel (4.2.9) auf 10 ml aufgefüllt werden.
4.4.2. Verfahren
Das HPLC-Gerät in Betrieb setzen. Das Fließmittel (4.2.8) mit einer
Strömungsgeschwindigkeit von 1,5 ml/Minute durch die Säule pumpen,
um das gesamte System zu spülen. Sobald eine stabile Basislinie erre-
icht ist, werden 10 µl der gemäß 4.3 hergestellten Proben eingespritzt.
4.4.3. Berech nung und Abfassung der Ergebnisse
Es wird vorausgesetzt, daß die Summe der Peakflächen aller Triglyce-
ride mit ECN42 bis ECN52 100 % entspricht (Flächenprozentmethode).
Der relative Anteil eines jeden Triglycerids berechnet sich nach
folgender Formel:
% Triglycerid = Peakfläche × 100/Summe der Peakflächen.Die Ergebnisse sind auf mindestens zwei Stellen nach dem Komma
anzugeben.
Anmerkung 1: Die Reihenfolge der Elution kann durch Berechnung der
äquivalenten Kohlenstoffzahlen (ECN) bestimmt werden, die häufig
durch die Beziehung ECN = CN − 2n definiert sind. Hierbei ist CN
die Zahl der Kohlenstoffatome und n die Zahl der Doppelbindungen.
Durch Berücksichtigung des Ursprungs der Doppelbindungen kann sie
noch genauer bestimmt werden. Wenn n
o,nlund nlndie Zahlen der
Doppelbindungen sind, die der Öl-, Linol- bzw. Linolensäure zuge-
ordnet sind, so kann die äquivalente Kohlenstoffzahl nach folgender
Formel berechnet werden:
ECN = CN − dono−dlnl−dlnnln
Die Koeffizienten do,dlund dlnkönnen mit Hilfe der Referenztriglyce-
ride berechnet werden. Unter den in dieser Methode beschriebenen
Bedingungen gilt näherungsweise folgende Beziehung:
ECN = CN − (2,60 no) − (2,35 nl) − (2,15 nln)
Anmerkung 2: Beispiele: LiChrosorb RP18 (Merck Art 50333),
LiChrospher 100 CH18 (Merck Art 50377)
oder gleichwertiges Material.
Anmerkung 3: Mit Hilfe verschiedener Triglyceride kann die Auflösung
für Triolein unter Verwendung der reduzierten Retentionszeit RT' = RT −
RT Lösungsmittel wie folgt berechnet werden:
α= RT' / RTriolein
Der Graph von log αgegen f (Zahl der Doppelbindungen) ermöglicht
es, die Retentionswerte aller Triglyceride zu bestimmen, die Fettsäuren
enthalten, die in den Referenztriglyceriden vorkommen (siehe Abbil-
dung 2).
Anmerkung 4: Die Trennfähigkeit der Säule muß eine klare Trennung
des Trilinolein-Peaks von den Peaks der Triglyceride mit wenig unter-
schiedlicher Retentionszeit ermöglichen. Die Elution wird bis zum
ECN52-Peak durchgeführt.
Anmerkung 5: Eine korrekte Bestimmung der Flächen aller für die
Bestimmung interessierenden Peaks wird dadurch sichergestellt, daß
der zweite Peak mit ECN50 50 % des Vollausschlags des Rekorders
erreicht.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 105
▼M13
4.5.Berechnung der Triglyceridzusammensetzung (Mol %) anhand der
GLC-Daten (Flächen %)
4.5.1. Bestimmung der Fettsäurezusammensetzung
Die Fettsäurezusammensetzung wird nach dem EG-Verfahren gemäß
Anhang X A der Verordnung (EWG) Nr. 2568/91 unter Verwendung
einer Kapillarsäule gaschromatographisch bestimmt. Die Fettsäureme-
thylester werden gemäß Anhang X B der genannten Verordnung
vorbereitet (Reaktion mit Natriummethylat in Methanollösung).
4.5.2. Berech nungsrelevante Fettsäuren
Die Triglyceride werden nach ihrer äquivalenten Kohlenstoffzahl
(ECN) unter Berücksichtigung folgender ECN/Fettsäureäquivalenzen
zusammengefaßt. Nur Fettsäuren mit 16 und 18 Kohlenstoffatomen
werden berücksichtigt, da nur sie bei Olivenöl von Bedeutung sind.
Fettsäure (FS) AbkürzungMolekularge-
wicht (MG)ECN
PalmitinsäureP 256,4 16
Palmitoleinsäure Po 254,4 14Stearinsäure S 284,5 18ÖlsäureO 282,5 16LinolsäureL 280,4 14Linolensäure Ln 278,4 12
4.5.3. Umrech nung der prozentualen Fläche in Mol für alle Fett-
säuren
Mol P ¼
%F l ¨acheP
MG PMol S ¼%F l ¨acheS
MG SMol Po ¼%F l ¨achePo
MG Po/C148/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C149/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C150(1)
Mol O ¼
%F l ¨acheO
MG OMol L ¼%F l ¨acheL
MG LMol Ln ¼%F l ¨acheLn
MG Ln
4.5.4. Normalisierung der Fettsäuren auf 100 %
Mol % P 1 ;2;3 ðÞ ¼Mol P /C3100
Mol P þSþPoþOþLþLn ðÞ/C148/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C149/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C150(2)Mol % S 1 ;2;3 ðÞ ¼
Mol S /C3100
Mol P þSþPoþOþLþLn ðÞ
Mol % Po 1 ;2;3 ðÞ ¼Mol Po /C3100
Mol P þSþPoþOþLþLn ðÞ
Mol % O 1 ;2;3 ðÞ ¼Mol O /C3100
Mol P þSþPoþOþLþLn ðÞ
Mol % L 1 ;2;3 ðÞ ¼Mol L /C3100
Mol P þSþPoþOþLþLn ðÞ
Mol % Ln 1 ;2;3 ðÞ ¼Mol Ln /C3100
Mol P þSþPoþOþLþLn ðÞ
Als Ergebnis erhält man den prozentualen Anteil jeder Fettsäure in
Molprozent in (1,2,3-) Positionen der TAG.
Anschließend wird die Summe der gesättigten Fettsäuren P und S
(SFA) sowie der ungesättigten Fettsäuren Po, O, L und Ln (UFA)
berechnet:
Mol % SFA = Mol % P + Mol % S/C148/C147/C147/C147/C147/C147/C149/C147/C147/C147/C147/C147/C150(3)Mol % UFA = 100 − Mol % SFA1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 106
▼M13
4.5.5. Berech nung der Fettsäurezusammensetzung in 2- und 1,3-
Stellung der TAG
Die Fettsäuren werden wie folgt in drei Gruppen eingeteilt: zwei
gleiche Gruppen für 1- und 3-Stellung und eine Gruppe für 2-Stellung,
wobei unterschiedliche Koeffizienten für gesättigte (P und S) und unge-
sättigte Fettsäuren (Po, O, L und Ln) verwendet werden.
4.5.5.1. Gesättigte Fettsäuren in 2-Stellung (P(2) und S(2))
Mol % P(2) = Mol % P (1,2,3) * 0,06/C148/C147/C147/C147/C147/C147/C149/C147/C147/C147/C147/C147/C150(4)Mol % S(2) = Mol % S (1,2,3) * 0,06
4.5.5.2. Ungesättigte Fettsäuren in 2-Stellung (Po(2), O(2), L(2) und Ln(2))
Mol % Po 2 ðÞ ¼Mol % Po 1 ;2;3 ðÞ
Mol % UFA/C3100/C0Mol % P 2 ðÞ /C0Mol % S 2 ðÞ ðÞ/C148/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C149/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C150(5)Mol % O 2 ðÞ ¼
Mol % O 1 ;2;3 ðÞ
Mol % UFA/C3100/C0Mol % P 2 ðÞ /C0Mol % S 2 ðÞ ðÞ
Mol % L 2 ðÞ ¼Mol % L 1 ;2;3 ðÞ
Mol % UFA/C3100/C0Mol % P 2 ðÞ /C0Mol % S 2 ðÞ ðÞ
Mol % Ln 2 ðÞ ¼Mol % Ln 1 ;2;3 ðÞ
Mol % UFA/C3100/C0Mol % P 2 ðÞ /C0Mol % S 2 ðÞ ðÞ
4.5.5.3. Fettsäuren in 1,3-Stellung (P(1,3), S(1,3), Po(1,3), O(1,3), L(1,3) und
Ln(1,3))
Mol % P 1 ;3ðÞ ¼Mol % P 1 ;2;3 ðÞ /C0 Mol % P 2 ðÞ
2þMol % P 1 ;2;3 ðÞ/C148/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C149/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C150(6)Mol % S 1 ;3ðÞ ¼
Mol % S 1 ;2;3 ðÞ /C0 Mol % S 2 ðÞ
2þMol % S 1 ;2;3 ðÞ
Mol % Po 1 ;3ðÞ ¼Mol % Po 1 ;2;3 ðÞ /C0 Mol % Po 2 ðÞ
2þMol % Po 1 ;2;3 ðÞ
Mol % O 1 ;3ðÞ ¼Mol % O 1 ;2;3 ðÞ /C0 Mol % O 2 ðÞ
2þMol % O 1 ;2;3 ðÞ
Mol % L 1 ;3ðÞ ¼Mol % L 1 ;2;3 ðÞ /C0Mol % L 2 ðÞ
2þMol % L 1 ;2;3 ðÞ
Mol % Ln 1 ;3ðÞ ¼Mol % Ln 1 ;2;3 ðÞ /C0 Mol % Ln 2 ðÞ
2þMol % Ln 1 ;2;3 ðÞ
4.5.6. Berech nung der Triglyceride (TAG)
4.5.6.1. TAG mit einer Fettsäure (AAA, hier LLL, PoPoPo)
Mol % AAA ¼Mol % A 1 ;3ðÞ /C3 Mol % A 2 ðÞ/C3Mol % A 1 ;3ðÞ
10000(7)
4.5.6.2. TAG mit zwei Fettsäuren (AAB, hier PoPoL, PoLL)
Mol % AAB ¼Mol % A 1 ;3ðÞ /C3 Mol % A 2 ðÞ/C3Mol % B 1 ;3ðÞ /C3 2
10000/C148/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C149/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C150(8)
Mol % ABA ¼
Mol % A 1 ;3ðÞ /C3 Mol % B 2 ðÞ/C3Mol % A 1 ;3ðÞ
100001991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 107
▼M13
4.5.6.3. TAG mit drei verschiedenen Fettsäuren (ABC, hier OLLn, PLLn,
PoOLn,PPoLn)
Mol % ABC ¼Mol % A 1 ;3ðÞ /C3 Mol % B 2 ðÞ/C3Mol % C 1 ;3ðÞ /C3 2
10000/C148/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C149/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C147/C150(9) Mol % BCA ¼
Mol % B 1 ;3ðÞ /C3 Mol % C 2 ðÞ/C3Mol % A 1 ;3ðÞ /C3 2
10000
Mol % CAB ¼Mol % C 1 ;3ðÞ /C3 Mol % A 2 ðÞ/C3Mol % B 1 ;3ðÞ /C3 2
10000
4.5.6.4. ECN42-haltigeTriglyce ride
Die folgenden Triglyceride mit ECN42 werden nach den Formeln 7, 8
und 9 in der Reihenfolge der bei der HPLC erwarteten Elution (norma-
lerweise nur drei Peaks) berechnet.
LLLPoLL und das Positionsisomer LPoLOLLn und diePositionsisome reOLnL und LnOLPoPoL und das Positionsisomer PoLPoPoOLn und diePositionsisome reOPoLn und OLnPoPLLn und diePositionsisome reLLnP und LnPLPoPoPoSLnLn und das Positionsisomer LnSLnPPoLn und diePositionsisome rePLnPo und PoPLnDie Triglyceride mit ECN42 ergeben sich aus der Summe der neun
Triacylglyceride einschließlich ihrer Positionsisomere. Die Ergebnisse
sind auf mindestens zwei Stellen nach dem Komma anzugeben.
5.Auswertung der Ergebnisse
Der rechnerisch bestimmte theoretische Gehalt und der durch die
HPLC-Analyse bestimmte Gehalt werden verglichen. Liegt die Diffe-
renz zwischen HPLC-Daten und theoretischen Daten über den in der
Verordnung für die jeweilige Ölkategorie angegebenen Werten, so
enthält die Probe Saatöl.
Anmerkung: Die Ergebnisse sind auf eine Stelle nach dem Komma
anzugeben.
6.Beispiel (Die Zahlen beziehen sich auf die betreffenden Textab-
schnitte des Verfahrens)
4.5.1. Berech nung der Molprozente der Fettsäuren aus den GLC-
Daten (Flächenprozente)
Die Gaschromatographie ergibt folgende Fettsäurezusammensetzung:
FS
MGP
256,4S
284,5Po
254,4O
282,5L
280,4Ln
278,4
% Fläche10,0 3,0 1,0 75,0 10,0 1,0
4.5.3. Umrech nung der prozentualen Fläche in Mol für alle Fett-
säuren
Mol P ¼10
256 ;4¼0;03900 Mol P Vgl. Formel (1)
Mol S ¼3
284 ;5¼0;01054 Mol S Vgl. Formel (1)1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 108
▼M13
Mol Po ¼1
254 ;4¼0;00393 Mol Po Vgl. Formel (1)
Mol O ¼75
282 ;5¼0;26549 Mol O Vgl. Formel (1)
Mol L ¼10
280 ;4¼0;03566 Mol L Vgl. Formel (1)
Mol Ln ¼1
278 ;4¼0;003594 Mol Ln Vgl. Formel (1)
Insgesamt = 0,35822 Mol TAG
4.5.4. Normalisierung der Fettsäuren auf 100 %
Mol % P 1 ;2;3 ðÞ ¼0;03900 Mol P /C3100
0;35822 Mol¼10;888 % Vgl. Formel (2)
Mol % S 1 ;2;3 ðÞ ¼0;01054 Mol S /C3100
0;35822 Mol¼2;944 % Vgl. Formel (2)
Mol % Po 1 ;2;3 ðÞ ¼0;00393 Mol Po /C3100
0;35822 Mol¼1;097 % Vgl. Formel (2)
Mol % O 1 ;2;3 ðÞ ¼0;26549 Mol O /C3100
0;35822 Mol¼74;113 % Vgl. Formel (2)
Mol % L 1 ;2;3 ðÞ ¼0;03566 Mol L /C3100
0;35822 Mol¼9;956 % Vgl. Formel (2)
Mol % Ln 1 ;2;3 ðÞ ¼0;00359 Mol Ln /C3100
0;35822 Mol¼1;003 % Vgl. Formel (2)
Mol % insgesamt = 100,0 %
Summe der gesättigten und ungesättigten Fettsäuren in 1,2,3-Stellung
der TAG
Mol % SFA = 10,888 % + 2,944 % = 13,831 % Vgl. Formel (3)
Mol % UFA = 100,000 % − 13,831 % = 86,169 % Vgl. Formel (3)
4.5.5. Berech nung der Zusammensetzung der Fettsäuren in 2- und
1,3-Stellung der TAG
4.5.5.1. Gesättigte Fettsäuren in 2-Stellung (P(2) und S(2))
Mol % P(2) = 10,888 % * 0,06 = 0,653 % Mol Vgl. Formel (4)
Mol % S(2) = 2,944 % * 0,06 = 0,177 % Mol Vgl. Formel (4)
4.5.5.2. Ungesättigte Fettsäuren in 1,3-Stellung (Po(1,3), O(1,3), L(1,3) und
Ln(1,3))
Mol % Po 2 ðÞ ¼1;097 %
86;169 %/C3100/C0/C00;659/C00;177 ðÞ ¼ 1;263 % Mol Vgl. Formel
(5)
Mol % O 2 ðÞ ¼74;113 %
86;169 %/C3100/C0/C00;659/C00;177 ðÞ ¼ 85;295 % Mol Vgl. Formel
(5)
Mol % L 2 ðÞ ¼9;956 %
86;169 %/C3100/C0/C00;659/C00;177 ðÞ ¼ 11;458 % Mol Vgl. Formel
(5)
Mol % Ln 2 ðÞ ¼1;003 %
86;169 %/C3100/C0/C00;659/C00;177 ðÞ ¼ 1;154 % Mol Vgl. Formel
(5)1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 109
▼M13
4.5.5.3. Fettsäuren in 1,3-Stellung (P(1,3), S(1,3), Po(1,3), O(1,3), L(1,3) und
Ln(1,3))
Mol % P 1 ;3ðÞ ¼10;888/C00;659
210;888¼16;005 % Mol Vgl. Formel (6)
Mol % S 1 ;3ðÞ ¼2;944/C00;177
22;944¼4;327 % Mol Vgl. Formel (6)
Mol % Po 1 ;3ðÞ ¼1;097/C01;263
21;097¼1;015 % Mol Vgl. Formel (6)
Mol % O 1 ;3ðÞ ¼74;113/C085;295
274;113¼68;522 % Mol Vgl. Formel (6)
Mol % L 1 ;3ðÞ ¼9;956/C011;458
29;956¼9;205 % Mol Vgl. Formel (6)
Mol % Ln 1 ;3ðÞ ¼1;003/C01;154
21;003¼0;927 % Mol Vgl. Formel (6)
4.5.6. Berech nung der Triglyceride (TAG)
Anhand der berechneten Zusammensetzung der Fettsäuren in sn-2- und
sn-1,3-Stellung (vgl. oben)
FS in 1,3-Stellung 2-Stellung
P 16,005 % 0,653 %
S 4,327 % 0,177 %
Po 1,015 % 1,263 %
O 68,522 % 85,295 %L 9,205 % 11,458 %Ln 0,927 % 1,154 %
Insgesamt 100,0 % 100,0 %
werden folgende Triglyceride rechnerisch bestimmt:
LLL
PoPoPo
PoLL mit 1 Positionsisomer
SLnLn mit 1 PositionsisomerPoPoL mit 1 PositionsisomerPPoLn mit 2 Positionsisomeren
OLLn mit 2 Positionsisomeren
PLLn mit 2 PositionsisomerenPoOLn mit 2 Positionsisomeren
4.5.6.1. TAG mit einer Fettsäure (LLL, PoPoPo) Vgl. Formel (7)
Mol % LLL ¼
9;205 % /C311;458 % /C39;205 %
10000= 0,09708 Mol LLL
Mol % PoPoPo ¼1;015 % /C31;263 % /C31;015 %
10000= 0,00013 Mol PoPoPo
4.5.6.2. TAG mit zwei Fettsäuren (PoLL, SLnLn, PoPoL) Vgl. Formel (8)
Mol % PoLL þLLPo ¼1;015 % /C311;458 % /C39;205 % /C32
10000= 0,021411991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 110
▼M13
Mol % LPoL ¼9;205 % /C31;263 % /C39;205 %
10000 = 0,01070
0,03211 Mol PoLL
Mol % SLnLn þLnLnS ¼4;327 % /C31;154 % /C30;927 % /C32
10000= 0,00093
Mol % LnSLn ¼0;927 % /C30;177 % /C30;927 %
10000= 0,00002
0,00095 Mol SLnLn
Mol % PoPoL þLPoPo ¼1;015 % /C31;263 % /C39;205 % /C32
10000= 0,00236
Mol % PoLPo ¼1;015 % /C311;458 % /C31;015 %
10000= 0,00118
0,00354 Mol PoPoL
4.5.6.3. TAG mit drei verschiedenen Fettsäuren (PoPLn, OLLn, PLLn, PoOLn)
Vgl. Formel (9)
Mol % PPoLn ¼16;005 % /C31;263 % /C30;927 % /C32
10000= 0,00375
Mol % LnPPo ¼0;927 % /C30;653 % /C31;015 % /C32
10000= 0,00012
Mol % PoLnP ¼1;015 % /C31;154 % /C316;005 % /C32
10000= 0,00375
0,00762 Mol PPoLn
Mol % OLLn ¼68;522 % /C311;458 % /C30;927 % /C32
10000= 0,14577
Mol % LnOL ¼0;927 % /C385;295 % /C39;205 % /C32
10000= 0,14577
Mol % LLnO ¼9;205 % /C31;154 % /C368;522 % /C32
10000= 0,14577
0,43671 Mol OLLn
Mol % PLLn ¼16;005 % /C311;458 % /C30;927 % /C32
10000= 0,03400
Mol % LnPL ¼0;927 % /C30;653 % /C39;205 % /C32
10000= 0,00111
Mol % LLnP ¼9;205 % /C31;154 % /C316;005 % /C32
10000= 0,03400
0,06911 Mol PLLn
Mol % PoOLn ¼1;015 % /C385;295 % /C30;927 % /C32
10000= 0,01605
Mol % LnPoO ¼0;927 % /C31;263 % /C368;522 % /C32
10000= 0,01605
Mol % OLnPo ¼68;522 % /C31;154 % /C31;015 % /C32
10000= 0,01605
0,04815 Mol PoOLn
ECN42 = 0,69540 Mol TAG1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 111
▼M14
Abbildung 1: Graphische Darstellung von log αalsFunktion von f
(Zahl der Doppelbindungen)
Anmerkung: La = Laurinsäure; My = Myristinsäure; P = Palmitinsäure;
St = Stearinsäure; O = Ölsäure; L = Linolsäure; Ln =
Linolensäure.1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 112
▼M14
Abbildung 2: Sojaöl
Abbildung 3: Sojaöl/Olivenöl 30/70
1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 113
▼M14
Abbildung 4: Olivenöl
1991R2568 — DE — 01.07.2001 — 017.001 — 114