{{위키데이터 속성 추적}}
[[파일:Antibiotic_disk_diffusion.jpg|대체글=세균이 뿌옇게 자란 원형 배지에 흰 종이 원반이 9개 올려져 있고, 각 원반 주위에 서로 다른 넓이의 빈 영역이 형성되어 있다.|섬네일|디스크 확산법을 이용하여 세균의 감수성을 검사하는 장면. 세균을 배지에 도말한 후 여러 종류의 항생제를 함유하는 작은 디스크를 올려두었다. 세균이 항생제에 감수성을 가질 경우 생장이 억제되고 원형의 억제 영역을 통해 알아낼 수 있다.]]
[[미생물학]]에서 '''디스크 확산법'''(Disk diffusion method) 또는 '''커비-바우어 검사'''(Kirby-Bauer test)는 [[세균]]의 [[항생제 감수성]]을 측정하는 방법([[항생제 감수성 검사]])의 하나다. [[항생제]]가 포함된 디스크를 [[배지 (미생물학)|배지]]에 올려두면 디스크 주위로 항생제 성분이 [[농도 기울기]]를 형성하면서 [[확산]]한다. 세균이 항생제 감수성을 가질 경우, 항생제 성분이 특정 농도 이상인 부분에서 세균의 생장이 억제되어 고리 모양의 '''억제 영역'''을 관찰할 수 있다. 억제 영역의 지름을 측정하여 세균이 항생제에 어느 정도의 감수성을 가지는지 판별할 수 있다. 이 방법을 통해 적은 비용으로 여러 종류의 항생제에 대한 세균의 감수성을 알아낼 수 있다.

== 목적 ==
세균에 의한 감염을 어떠한 항생제를 이용하여 치료할지를 결정하기 위해서는 그 세균의 특정 항생제에 대한 감수성을 알아야 한다. CLSI가 설정한 기준에 따르면, 항생제 감수성은 다음과 같이 크게 세 단계로 분류된다.<ref>{{저널 인용|제목=NCCLS guidelines: revised performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests|저널=Antimicrobic Newsletter|성=Jones|이름=R.N.|url=http://dx.doi.org/10.1016/0738-1751(84)90027-3|날짜=1984-08|권=1|호=8|쪽=64–65|doi=10.1016/0738-1751(84)90027-3|issn=0738-1751}}</ref>

# 감수성을 가짐(S, Susceptible)
# 어느 정도 감수성을 가짐(I, Intermediate)
# 내성을 가짐(R, Resistant)

표준화된 디스크 확산법을 이용하면 기준에 따라 항생제 감수성을 판별할 수 있다. 
{| class="wikitable"
|+
항생제 내수성 판별기준<ref>{{저널 인용|제목=BSAC standardized disc susceptibility testing method (version 8)|저널=Journal of Antimicrobial Chemotherapy|성=Andrews|이름=J. M.|url=https://academic.oup.com/jac/article/64/3/454/776408|날짜=2009-09-01|권=64|호=3|쪽=454–489|언어=en|doi=10.1093/jac/dkp244|issn=0305-7453}}</ref><ref>{{웹 인용|url=http://www.vetlab.com/Antibiotic%20Zone%20Interpretation%20Guide.pdf|제목=Antibiotic zone interpretation guide|성=|이름=|날짜=|웹사이트=Vetlab Supply|출판사=|확인날짜=}}</ref>
! rowspan="2" |항생제
! rowspan="2" |성분량
! colspan="3" |억제반경(mm)
|-
!R ≤
!I
!S ≥
|-
|[[노보바이오신]]
|30µg
|17
|—
|22
|-
|[[반코마이신]]
|30µg
|9
|—
|12
|-
|[[겐타마이신]]
|10µg
|12
|—
|15
|-
|[[시프로플록사신]]
|5µg
|15
|—
|21
|-
|[[클린다마이신]]
|2µg
|15
|—
|19
|}

== 원리 ==
[[항생제]]가 포함된 디스크를 [[배지 (미생물학)|배지]]에 올려두면 디스크 주위로 항생제 성분이 [[농도 기울기]]를 형성하면서 [[확산]]된다. 세균이 항생제 감수성을 가질 경우, 항생제 성분이 특정 농도 이상인 부분에서 세균의 생장이 억제되어 고리모양의 '''억제 영역'''을 관찰할 수 있다. 억제 영역의 지름을 측정하여 세균이 항생제에 어느 정도의 감수성을 가지는지 판별할 수 있다.

== 과정 ==
세균의 감수성을 정량적으로 측정하고 다른 실험 결과와 비교하기 위해서는 일관된 기준이 필요하다. 정확하고 재현 가능한 실험을 위해 실험실에서는 Bauer와 Kirby가 표준화한 방법을 따라야 한다. Kirby-Bauer 검사의 과정은 다음과 같다.<ref>{{저널 인용|제목=Antibiotic Susceptibility Testing by a Standardized Single Disk Method|저널=American Journal of Clinical Pathology|성=Turck|이름=M.|성2=Sherris|이름2=J. C.|url=https://academic.oup.com/ajcp/article/45/4_ts/493/4821085|날짜=1966-04-01|권=45|호=4_ts|쪽=493–496|언어=en|doi=10.1093/ajcp/45.4_ts.493|issn=0002-9173|성3=Kirby|이름3=W. M. M.|성4=Bauer|이름4=A. W.}}</ref>

=== 세균 시료 ===
액체배지를 0.5 McFarland 기준에 맞추어 희석한다. 이 농도는 1mL당 약 1억 5000만개의 세포가 있는 것과 비슷하다.

=== 배지 ===
배지는 100mm 또는 150mm 페트리 접시에 Mueller-Hinton 한천을 4mm 두께로 부어 제작한다. 한천의 산성도는 pH 7.2~7.4 내에 있어야 한다.

=== 접종, 배양 및 관찰 ===
다음 과정을 따른다.

# 세균이 배양된 액체배지에 멸균한 면봉을 담근 후, 여분의 배지를 튜브의 벽을 눌러 제거한다.
# 면봉으로 [[뮐러 힌튼 배지]]에 [[획선도말]]한다.
#* 배지 전체에 균일하게 미생물이 자라도록 한번에 배지 전체에 도말하고, 90° 회전하여 다시 도말한다. 모든 방향에서 이 과정을 반복한다.
# 배지가 마르도록 5분동안 가만히 둔다.
# 배지에 디스크를 올린다. 각 디스크 사이에 24mm정도의 간격을 둔다.
# 배양기에서 37℃에서 18~24시간동안 배양한다.
# 억제대의 지름을 mm단위로 측정한다.

== 각주 ==

#
<references />

[[분류:미생물학]]
[[분류:실험 기술]] 코딩