## OPTIMASI DOSIS DAN FREKUENSI PAKAN DALAM PRODUKSI ROTIFER
( Brachionus rotundiformis )

## OPTIMALIZATION OF FEED DOSAGE AND FREQUENCY IN PRODUCTION OF ROTIFER (Brachionus rotundiformis)
Rina P. Astuti*, Sophia L. Sagala, Gunawan, Gede S. Sumiarsa, dan Philip T. Imanto
Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Budidaya Laut, Balitbang KP-KKP, Gondol *Email: rpashodiq@gmail.com

## ABSTRACT
The  availability  of  rotifer  as  live  food  is  importance  in  a  larval  mariculture.  Therefore  a continuous  and  high  production  of  rotifer  is  needed.  The  study  was  aimed  to  determine  the frequency  and  dosage  of  the  best  food  in  rotifer  culture.  Nannochloropsis  oculata,  yeast  and scott’s emulsion are used as potential feeds for rotifer. Three dosages of  N. oculata (150,000; 250,000, and 350,000 cells/ind.rotifer/day) were applied in the study and were given twice per day. Meanwhile, yeast(0.5 g/10 6 ind./day) and Scott’s emulsion with different dosages (2, 4, and 8 µg/10 6 ind./day) were given with two different feeding frequencies (two and four times a day) for each dosages. Each treatment was done in triplicates. Sampling of rotifer was conducted in the  morning  (AM)  and  afternoon  (PM).  Water  quality  (temperature,  dissolved  oxygen  and ammonia)  was  also  measured.  Growth  and  productivity  of  rotifer  were  determined  from  the number  of  rotifer  and  the  number  of  rotifer  eggs,  respectively.  The  results  showed  that  the optimum productivity of rotifer was achieved by giving N. occulata of 250,000 sel/ind/day, twice a  day  in  four  days  culture.  Meanwhile,  treatment  with  yeast  and  Scott’s  emulsion  gave  best performance when applying  0.5 g/10 6 and 2 µg/10 6 ind./day twice per day, respectively. Yeast and scott’s emulsion treatment yielded optimum production in two days of culture.
Keywords : rotifer, productivity, yeast, Scott’s emulsion, foodd dosage

## ABSTRAK
Ketersediaan  pakan  alami  rotifer  ditingkatkan  ketersediaannya  seiring  dengan  meningkatnya jumlah  larva  ikan  laut,  untuk  itu  diperlukan  usaha  guna  meningkatkan  produktifitasnya. Penelitian  ini  bertujuan  untuk  menentukan  dosis  dan  frekuensi  pakan  terbaik  dalam  kultur rotifer. Nannochloropsis  oculata ,  ragi  dan  scott’s  emulsion  digunakan  sebagai  pakan  rotifer. Dosis  masing-masing  pakan N.  oculata adalah  150.000,  250.000  dan  350.000  sel/ind. rotifer/hari  diberikan  dua  kali  sehari.  Sedangkan  ragi  sebanyak  0.5gr/10 6 ind./hari  dan  scott’s emulsion dengan dosis 2, 4, dan 8 µg/10 6 ind./hari diberikan dengan frekuensi 2 kali sehari dan 4  kali  sehari.  Masing-masing  perlakuan  dikerjakan  dengan  tiga  kali  ulangan.  Sampling dilakukan  pada  pagi  dan  sore  hari.  Dilakukan  analisa  kualitas  air  meliputi  suhu,  amoniak  dan DO.  Pertumbuhan  dan  produktifitas  rotifer  dianalisa melalui jumlah  individu  dan  jumlah  telur rotifer  yang  dihasilkan.  Data  yang  diperoleh  dianalisa  secara  diskriptif.  Hasil  Penelitian menunjukkan  bahwa  pakan N.oculata sebanyak  250.000  sel/ind./hari  dengan  frekuensi pemberian  pakan  2  kali  sehari  merupakan  dosis  terbaik  pada  kultur  rotifer  dengan  pakan N. oculata ,  pada  kultur  ini  4  hari  merupakan  waktu  optimal  untuk  produksi.  Sedangkan  ragi sebanyak 0.5 gr/10 6 ind./hari dan scott sebanyak 2 µg/10 6 ind./hari dengan frekuensi pemberian pakan  2  kali  sehari  merupakan  dosis  terbaik  pada  kultur  rotifer  dengan  pakan  ragi  dan  scott’s emulsion,  waktu optimal  produksi dengan metode ini  selama 2 hari.
Kata kunci : rotifer, produktifitas, ragi, scott’s emulison, dosis pakan

## I.  PENDAHULUAN
Pembenihan  ikan  laut  merupakan mata rantai pertama dari upaya pengembangan budidaya ikan laut. Keberhasilan  produksi  benih  ikan  laut baik dari segi kuantitas dan kualitas sangat dipengaruhi oleh keberhasilan penyediaan jasad  pakan  dan  manajemen  pakan  untuk larva  ikan  laut  secara  tepat  dan  effisien. Rotifer  merupakan  salah  satu  jenis zooplankton  yang  sangat  penting  pada kegiatan perbenihan ikan laut dan peranannya hingga hari ini belum tergantikan.  Menurut  Sulkin  dan  Epifanio (1975) dalam Christiansen  dan  Yang (1976) rotifer mampu memberikan kelangsungan  hidup  yang  lebih  tinggi pada  larva  kepiting  sampai  fase  zoea  III dan  secara  nyata  mempercepat  proses molting  ke  fase  zoea  II.  Melianawati  dan Imanto    (2004)  menyimpulkan  bahwa rotifer  merupakan  pakan  alami  yang dominan dipilih oleh larva Lutjanus sebae pada  umur  4-8  hari.  Rotifer  juga merupakan pakan utama larva
Epinephelus sp. dan Plecoglossus altivelis (Liao et  al. ,  1991).  Keunggulan  rotifer sebagai  jasad  pakan  adalah  ukurannya kecil  (150-220  m)  dan  berenang  lambat sehingga  mudah  dimangsa  oleh  larva (Rusdi,  1997),  waktu  kultur  yang  relatif singkat  serta  mempunyai  laju  reproduksi yang  tinggi  (Giliberto  and  Mazzola, 1981).
Nannochloropsis oculata
merupakan pakan utama bagi zooplankton rotifer,  selain  itu  juga  terdapat  pakan  lain seperti  yang  dikemukakan  oleh  Arnold dan  Holt  (1997)  bahwa  terdapat  variasi pakan yang berupa single sel fitoplankton, diantaranya  Tetraselmis,  Chlorella  dan Isochrysis,  dan  pakan  substitusi  lainnya berupa  baker’s  dan  torula  yeast,  minyak yang diperkaya dan pakan tiruan. Fitoplankton sangat berperan dalam pertumbuhan  rotifer  maupun  bagi  larva. Kultur dengan menggunakan pakan fitoplankton  memiliki  kelebihan  yaitu
menghemat  waktu  dan  tenaga  dimana frekuensi pemberian pakan hanya dua kali dalam  sehari,  namun  produktifitasnya belum  dapat  mencapai  maksimum  yaitu lebih  dari  150  individu/ml.  Sedangkan kultur rotifer dengan menggunakan pakan substitusi  yakni  ragi  dan  suplemen  kaya protein, mampu meningkatkan produktifitas  rotifer,  namun  memerlukan biaya  yang  tinggi  dan  tidak  hemat  waktu dan  tenaga,  dimana  frekuensi  pemberian pakan  empat  kali  dalam  sehari  dengan interfal  6  jam  sekali.  Berbagai  kegiatan penelitian  dan  pengembangan  produksi rotifer telah diupayakan, baik penggunaan pakan  fitoplankton  dan  vitamin  B 12 (Sumiarsa et al ., 1996), dengan awetan N. oculata dan  Vitamin  B 12 (Ismi  and Wardoyo,  1997),  Pemberian  -Tokoferol (vitamin  E)  (Hendry,  1993),  pemberian ragi  roti,  minyak  ikan  dan  kuning  telur (Waspada et  al .,  1991),  pemberian  ragi, Chlorella dan Tetraselmis sp . (Rachmasari,  1989),  pemberian  vitamin
B 12 pada  dosis  berbeda  (Utyani,  1992), dan  penggunaan  ragi  roti,  scott’s emulsion,  Vitamin  B 12 (Wati  &  Imanto, 2009),  namun  produktifitas  maksimum belum dapat dicapai oleh karena itu, perlu dilakukan  optimasi  dosis  dan  frekuensi pakan  pada  kultur  rotifer  dengan  strain dan  kondisi  lingkungan  yang  berbeda. Penelitian ini bertujuan untuk menentukan dosis  dan  frekuensi  pakan  terbaik  dalam kultur rotifer .

## II.  METODE PENELITIAN
Penelitian  ini  dikerjakan  di  Balai Besar  Penelitian  dan  Pengembangan Budidaya laut, Gondol-Bali. Terdapat dua kegiatan  kultur  rotifer  yakni  dengan penggunaan pakan Nannochloropsis oculata dan  pakan  substitusi  berupa  ragi dan scott’s emulsion.
2.1.  Kultur  Rotifer  dengan  Pakan N . oculata Rotifer dikultur dengan menggunakan  pakan  fitoplankton N. occulata . Sebanyak 20 individu/mL diinokulasikan  ke  dalam  bak  dengan volume 30 L. Kultur tersebut diberi pakan fitoplankton N. occulata sebanyak
150.000  –  350.000  sel/ind/hari    dengan frekuensi pemberian 2 kali sehari, masing- masing  sebanyak  50%  dosis.  Dosis 150.000, 250.000, dan 350.000
sel/ind/hari  merupakan  perlakuan  dalam kegiatan  ini,  kultur  tersebut  dipelihara selama  4  hari  secara  semikontinyu. Pertumbuhan  dan  reproduksinya  diukur dari  jumlah  individu  dan  telur  yang dihasilkan, menggunakan cawan arloji dan proyektor.

## 2.2.  Kultur  Rotifer  dengan  Pakan  Ragi dan Scott’s Emulsion
Rotifer  sebanyak  20  individu/ml dikultur  dalam  volume  30  L,  dikultur dengan  pakan  ragi  dan  Scott’s  emulsion, dimana  merupakan  sumber  minyak  ikan. Ragi  sebanyak  0.5  g/10 6 ind./hari  dan scott’s  emulsion  2,  4  dan  8  µg/ind./hari diberikan  dengan  frekuensi  pemberian pakan  dua  kali  sehari.    Kultur  tersebut diberi  aerasi  lebih  besar,  Kemudian dianalisa perkembangannya untuk menentukan  waktu  produksi  maksimal rotifer  dan  dosis  yang  terbaik.  Analisa kualitas  air  meliputi  amoniak,  oksigen terlarut (DO) dilakukan setiap hari.

## III.  HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1.  Kultur  Rotifer  dengan  Pakan Nannochloropsis oculata
Perkembangan  rotifer  dengan  pakan N.  ooculata pada  (Gambar  1  dan  2), paling  baik  dicapai  dengan  pemberian pakan  dengan  dosis  250.000  sel/ind/hari (158 ind/ml) dibandingkan dengan pemberian  pakan  dengan  dosis  150,000 dan  350,000  ribu  sel/ind./hari.  Hasil
produksi  tersebut  termasuk  baik  jika dibandingkan  dengan  hasil  produksi harian  rotifer  (150  ind/ml),  mengingat inokulan  hanya  20  ind/ml  sedangkan inokulan  pada  produksi  harian  secara semikontinyu  diperkirakan  lebih  dari  20 ind/ml.  Jika  dihitung  rata-rata  kecepatan perkembangan  dapat  mencapai  ±  35 ind/hari.  Fukusho  (1989)  mengatakan bahwa  laju  rata-rata  pemangsaan  rotifer diperkirakan 100.000 – 150.000 sel/ind./hari.  Jumlah N.  oculata sebanyak 250.,000  sel/ind/hari  merupakan  dosis yang  terbaik  bagi  rotifer.  Hal  ini dimungkinkan  dengan  jumlah  tersebut, rotifer  dapat  memenuhi  kebutuhan  akan pakannya,  dan  ketika  kebutuhannya  telah tercukupi  (100.000-150.000  sel/ind/hari)  , di dalam media masih terdapat sedikit sisa pakan  (kurang  lebih  100.000  sel/ind/hari) sehingga tidak sampai kekurangan pakan.
Sedangkan  dengan  jumlah  pakan 150,000 sel/ind/hari, dimungkinkan pakan telah  habis  dalam  sehari,  dan  tidak  ada sisa  pakan  yang  dapat  digunakan  untuk menyokong perkembangannya. Pada perlakuan pemberian pakan dengan jumlah 300,000 sel/ind/hari, memperlihatkan  perkembangan  rotifer yang  lebih  baik  dari  pada  150,000 sel/ind/hari. Pada kenyataannya perlakuan pakan  dengan  dosis  300,000  sel/ind/hari ditemukan  sisa  pakan  dalam  jumlah  yang cukup  banyak  (padat)  di  dalam  media.
Kondisi terlalu padat pakan mempengaruhi kekeruhan dan ketersediaan ruang  gerak bagi  rotifer,  dan dimungkinkan juga mempengaruhi kandungan  amoniak  di  dalam  kultur, seperti  terlihat  pada  (Tabel  1).  Antara perlakuan pakan 150.000  sel/ind/hari dan 350,000  sel/ind/hari  memiliki  pengaruh yang hampir sama terhadap perkembangan rotifer, namun berpengaruh sangat  berbeda  terhadap  kondisi  media, dimana  memperlihatkan  kadar  amoniak yang  sangat  berbeda  (0,587-0,904  dan 0,676-1,651 mg/L), hal ini
menggambarkan bahwa jumlah sisa pakan yang  berlebih  menaikkan  kadar  amoniak di  dalam  media.  Sedangkan  pada  dosis pakan 250,000 sel/ind/hari, kadar amoniak lebih  tinggi  dari  pada  kedua  perlakuan tersebut, hal ini dimungkinkan karena sisa pakan  yang  ada mengalami degradasi  dan merusak  media,  serta  utamanya  karena terjadi laju pertumbuhan rotifer yang lebih cepat,  dimana  bahan  organik  yang dihasilkan juga lebih banyak.
Frekuensi  pemberian  pakan  juga berpengaruh  terhadapp  pertumbuhan  dan laju reproduksi.
Pemberian pakan sebanyak 250.000 sel/ind/hari yang
diberikan  dua  kali  sehari,  dimungkinkan memberi  pengaruh  yang  lebih  baik daripada frekuensi pemberian pakan 1 kali dalam  sehari.  Hal  ini  disebabkan  oleh karena  pemberian  pakan  bertahap  dapat menurunkan kemungkinan terjadinya
blooming pakan  dalam  kultur,  disamping itu  juga  dapat  menjaga  kontinyuitas ketersediaan  pakan,  sehingga  proses reproduksi dan kembang biak rotifer dapat berlangsung  secara  kontinyu.  Hal  ini seperti  yang  diungkapkan  oleh  Hirata, 1980;  lubzens,  1987;  lubzens et  al., 1989 dalam fulks  dan  mind  (1991),  bahwa cepat  hilangnya  bahan  organik  dalam kultur  rotifer  merupakan  faktor  utama penyebab buruknya perkembangan rotifer.
Produktifitas rotifer mencapai maksimal  pada  perlakuan  jumlah  pakan 250.000  sel/ind/hari.  Pada  umumnya  laju reproduksi  berbanding  lurus  dengan  laju perkembangan  rotifer,  semakin  tinggi densitas  rotifer  dalam  kultur  semakin tinggi pula laju reproduksinya, sebab pada kondisi  lingkungan  yang  normal,  rotifer berkembang  biak  secara  amiktik  dengan menetaskan telur dengan anakan betina.
Gambar 1.  Pertumbuhan rotifer dengan pakan Nannochloropsis oculata.
Tabel 1. Kualitas air kultur rotifer dengan pakan nannochloropsis sculata. Kepadatan N.oculata
(cells/mL) Suhu (°C) DO (mg/L) Amoniak (mg/L) 150,000 24,0-25,3 7,7-8,5 0,587-0,904 250,000 24,1-24,9 7,9-8,0 0,738-1,698 350,000 24,1-25,0 7,9-8,3 0,676-1,651 0 20 40 60 80 100 120 140 160 180 AM PM AM PM AM PM AM PM AM PM 0 1 2 3 4 Dens itas (ind/mL) Hari Ke- N. oculata 150,000cells/mL N.oculata 250,000cells/mL
N. oculata 350,000cells/mL
Gambar 2. Produktifitas rotifer dengan pakan Nannochloropsis oculata. (a) dosis pakan 150,000 sel/ind/hari, (b). dosis pakan 250,000  sel/ind/hari, (c) dosis pakan 350,000 sel/ind/hari.
3.2.  Kultur  Rotifer  dengan  Pakan substitusi (Ragi dan Scott’s emulsion)
Pakan  subtitusi  digunakan  untuk meningkatkan  nilai  gizi  rotifer.  Dengan pemberian  pakan  yang  berupa  scott’s emulsion  (minyak  hati  ikan)  diharapkan dapat meningkatkan nilai gizi rotifer yang berupa  omega3  HUFA.  Omega3  HUFA ini  didapatkan  dari  minyak  hati  ikan, dimana  kandungan  tersebut  bersifat  baik untuk  perkembangan  larva.  Sedangkan ragi  secara  fungsional  diyakini  tidak memiliki  nilai  gizi  bagi  rotifer,  kecuali hanya sebagai  pengikat nutrient  uji dalam hal  ini  scott’s  emulsion.    Kombinasi  ragi dan  suplemen  lain  seperti  minyak  hati cumi  dan  vitamin  B12  terbukti  dapat meningkatkan perkembangan rotifer, disamping  itu  juga  berpengaruh  baik  bagi pertumbuhan larva (Satuito dan Hiramaya, 1991; Satuito dan Hiramaya,1986).
Pada  penelitian  ini  perkembangan rotifer  dengan  pakan  ragi  dan  scott  hanya dapat  mencapai  maksimum  112  ind/ml pada  dua  hari  pemeliharaan,  sedangkan rata-rata  laju  perkembangannya  mencapai ± 45 ind/hari. Kondisi optimal ini  dicapai
dengan  pemberian  dosis  pakan  sebanyak 0.5  gr/10 6 ind/hari  ragi  dan  2  µg/ind/hari scott’s  emulsion.    Sedangkan  pada  dosis lainnya  (4  dan  8  µg/ind./hari  scott’s emulsiondan  0.5  gr/10 6 ind/hari  ragi) hanya dapat  meningkatkan perkembangan rotifer  sampai  pada  densitas  100  dan  101 ind./ml (Gambar 3). Seperti pada penelitian sebelumya, pada penelitian kali ini  juga  diketahui  bahwa  laju  reproduksi rotifer  berbanding  lurus  dengan  laju perkembangan rotifer (Gambar 4).
Frekuensi  pemberian  pakan  dua kali  per  hari  pada  setiap  dosisnya merupakan frekuensi yang optimal dibandingkan  dengan  4  kali  pemberian pakan,  hasil  ini  diketahui  dari  penelitian yang  telah  dilakukan  sebelumnya  (data tidak  dipublikasi).  Pada  kegiatan  ini diketahui  bahwa  dengan  pakan  ragi  dan scott’s  memicu  tumbuhnya  protozoa  di dalam  media  kultur.  Protozoa  ini  bersifat dimana mengganggu pertumbuhan rotifer. Kultur  ini  mencapai  puncak  pada  hari  ke dua,  dan  mengalami crush pada  hari  ke empat.  Oleh  karena  hal    tersebut  diatas, kultur  tersebut  sebaiknya  merupakan bagian  dari  kultur  rotifer  dengan  pakan
0 20 40 60 80 100 120 140 AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM 0 1 2 3 4 0 1 2 3 4 0 1 2 3 4 N. oculata (150,000 sel/mL) N. oculata (250,000 sel/mL) N. oculata (350,000 sel/mL) Ju ml ah i nd iv idu ( ind ./ mL) Hari Ke- tanpa telur telur 1 telur 2 telur 3 (a) (c) (b)
campuran, dimana salah satunya menggunakan N.oculata sebagai pakan. Pada  kultur  ini,  nilai  amoniak, suhu berada pada kondisi aman dan dapat ditolelir  oleh  rotifer,  namun  nilai  DO mengalami penurunan di semua
perlakuan,  dimana  dimulai  dari  hari  ke
tiga.  Hal  dimungkinkan  dipengaruhi  oleh hadirnya  kontaminan  protozoa.  Sehingga terjadi  persaingan  dalam  penggunaan oksigen.    Kondisi  yang  buruk  ini menyebabkan  menurunnya  ketahanan  dan produktifitas rotifer.
Gambar 3. Perkembangan rotifer dengan pakan Nannochloropsis oculata.
Gambar 4. Reproduksi rotifer dengan pakan Nannochloropsis oculata.
0 20 40 60 80 100 120 AM  PM  AM  PM  AM  PM  AM  PM  AM  PM  AM  PM  AM  PM 0 1 2 3 4 5 6 D e n si tas (i n d ./m L) Hari Ke Scott 2ug/ind./hari Scott 4ug/ind./hari Scott 8ug/ind./hari 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM  AM 0 1 2 3 4 5 6 0 1 2 3 4 5 6 0 1 2 3 4 5 6 Scott (2µg/ind)/hari Scott (4µg/ind)/hari Scott (8µg/ind)/hari
Ju m lah te lu r ( in d ./m L) Hari Ke tanpa telur telur 1
Tabel 2.  Kualitas air kultur rotifer dengan pakan ragi dan scott’s emulsion.
Hari ke- Scott’s (2µg/ind)/hari Scott’s (4µg/ind)/hari Scott’s (8µg/ind)/hari T ( o C) DO (mg/L) Amoniak (mg/L) T ( o C) DO (mg/L) Amoniak (mg/L) T (°C) DO (mg/L) Amoniak (mg/L) 0 28.6 5.7 0.031 28.5 5.6 0.03 29.1 5.7 0.032 1 25.5 6.3 0.559 25.5 6.1 0.163 25.5 6.2 0.025 2 25.4 5.7 0.05 25.4 5.4 0.033 25.4 5 0.026 3 25.7 3.9 0.1 25.7 3.3 0.088 25.7 2.6 0.057 4 25.7 3.6 0.07 25.8 3.5 0.037 25.8 2.8 0.042 5 25.6 3.6 0.5 25.7 3.6 0.315 25.7 3.1 0.245 6 24.9 4.2 0.587 24.8 4.2 0.326 26.1 3.9 0.073
Pada  Tabel  2  terlihat  bahwa kualitas air mengalami  penurunan dimana ditengarai  dengan  adanya  penurunan  DO dan  kenaikan  kandungan  amoniak  yang dimulai  pada  hari  ke  tiga  pemeliharaan. Kondisi ini menandakan bahwa kebutuhan akan  oksigen  meningkat,  dan  timbulnya gas amoniak sebagai
hasil dari perombakan  senyawa  yang  mengandung protein.  Sedangkan  pada  kenyataannya produktifitas rotifer menurun sejak hari ke tiga  pada  semua  perlakuan.  Secara  fisik pada  saat  yang  bersamaan,  protozoa melimpah  jumlahnya  di  dalam  media. Scott’s emulsion yang mengandung lemak dan  protein  diduga  merupakan  sumber pakan  yang  diperebutkan  oleh  rotifer  dan protozoa, dan protozoa tersebut merupakan  pencetus  kerusakan  media kultur.
Perbaikan metode pemberian pakan  sebaiknya  dilakukan  agar  kultur dapat berlangsung secara kontinyu,
produktifitas  dan  kandungan  gizi  rotifer tetap  terjaga.  Hal  ini  dapat  diupayakan dengan menkombinasikan
pakan N.oculata dan  scott’s  emulsion  baik mengenai dosis dan waktu pemberiannya.

## IV.  KESIMPULAN
Dosis N.  oculata 250.000  sel/ind./ hari  dengan  frekuensi  pemberian  pakan dua  kali  sehari  merupakan  dosis  terbaik bagi    perkembangan  rotifer  dengan  pakan
N. oculata (158 ind./ml) dicapai pada hari ke  4  pemeliharaan  dengan  kultur  20 ind/ml.  Dosis  pakan  substitusi  sebanyak 0.5  gr/10 6 ind/hari  ragi  dan  2  µg/ind./hari scott’s, diberikan dua kali sehari merupakan  dosis  terbaik,  waktu  optimal produksi 2 hari.

## DAFTAR PUSTAKA
Arnold,  C.R.  and  G.J.  Holt.    1991. Various methods for the culture of rotifer, Brachionus  plicatilis ,  in Texas.  Proceedings  of  a  U.S-Asia Workhsop, Hawaii. 119-124pp.
Christiansen, M.E. and W.T. Yang.  1976.
Feeding experiment on the larva of Fiddler crab Uca pugilatot
(Brachyura,  Ocypodidae),  reared in the hatchery. Aquaculture , 8:91- 98.
Fukusho,  K.    1989.    Biology  and  mass production of the rotifer,
Brachionus  plicatilis.  Int.  J.  Aqu. Fish. Technol ., 1:232-240.
Giliberto,  S.  and  Mazzola.    1981.    Mass culture  of Brachionus  plicatilis with  an  integrated  system  of tetraselmis suecica and Saccharomyces cerevisiae . J. Word Maricul. Soc ., 12(2):61-62.
Hendry.    1993.    Pengaruh  dosis  - tokoferol  yang  berbeda  terhadap pertumbuhan  populasi Brachionus plicatilis. Skripsi.  Program  Studi
Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan. Institut Pertanian Bogor. 140hlm. Hirata, H.  1980.   Culture methods of the marine rotifer, Brachionus plicatilis . Min.  Rev.  Data  File
Fish. Res ., 1: 27-46.
Ismi,  S.  dan  Wardoyo.  1997.  Penggunaan
Nannochloropsis  oculata awetan dan  yang  diperkaya  untuk  kultur rotifer. J.  Penelitian  Perikanan Indonesia , 3(4):67-72.
Liao,  I.C.,  M.S  Su,  and  H.M  Su.    1991. An overview of live feed production system design in
Taiwan. In: Fulks  and  W.K.L. Main  (eds.).  Rotifer  and  micro- algae  system.  Proceeding  of    a U.S.-  Asia  Workshop.  Honolulu- Hawaii. 135-150pp.
Lubzens,  E.    1987.    Raising  rotifers  for use in aquaculture. Hydrobiologia , 147:245-255.
Lubzens,  E., A.  Tandler,  and G. Minkoff.
1989.    Rotifers  as  food  in aquaculture.
Hydrobiologia , 186/187:387-400.
Melianawati,  R.  dan  P.T.  Imanto.    2004. Pemilihan  pakan  alami  larva  ikan kakap  Merah. Lutjanus  sebae. J.
Penelitian  Perikanan  Indonesia ,
10(1):21-24. Rahmasari, M.  1989.  Studi Pertumbuhan Rotifer Brachionus plicatilis
dengan pakan chlorella sp,
tetraselmis,  dan  ragi  roti.  Skripsi. Fakultas Perikanan, Institut Pertanian Bogor. 72hlm. Rusdi,  I.    1997.    Pertumbuhan  populasi rotifer  ( Brachionus  rotundiformis)
Type-S pada suhu yang berbeda di Laboratorium. J. Penelitian Perikanan Indonesia , 3(4):62-66.
Satuito,  C.G.  and  K.  Hiramaya.    1986.
Fat-soluble  vitamin  requirements of the rotifer Brachionus plicatilis . In : Maclean, J.L., L.B. Dizon, and L.V.  Hostillos  (eds.).  The  first
Asian  fisheries  forum.  Asian Fisheris Society, Manila, Philippines. 619-622pp. Satuito,  C.G.  and  K.  Hiramaya.    1991. Supplementary  effect  of  vitamine
C  and  squit  liver  oil  on  the nutritional  value  of  baker’s  yeast for  the  population  growth  of  the rotifer Brachionus  plicatilis . Bull.
Fac.  Fish . Nagasaki  Univ .,  69:7-
11.
Sulkin,  S.D.  and  C.E  Epifiano.    1975.
Comparison  of  rotifers  diets  for rearing  early  larvae  of  the  blue crab, Callinectss sapidus Rathbun . Est. Coast. Mat. Sci ., 3:109-113.
Sumiarsa,  G.S.,  D.  Makatutu,  I.  Rusdi.
1996.  Pengaruh  vitamin  B- 12 dan pengkayaan  fitoplankton  kepa- datan  tinggi  terhadap  kepadatan dan  kualitas  rotifer Brachionus plicatilis.  J.  Penelitian  Perikanan Indonesia, 2(2):30-36.
Utyani.    1992.    Pengaruh  pemberian
vitamin  B- 12 pada    berbagai  dosis terhadap populasi rotifer Brachionus  plicatilis yang  diberi pakan Chlorella  sp .  pada  salinitas 17  ppt  dan  37  ppt.  Skripsi.
Program  Studi  Budidaya  Perairan, Fakultas Perikanan. Institut Pertanian Bogor. 54hlm. Waspada, Mayunar, dan T. Fatoni.  1991. Upaya  peningkatan  gizi  rotifer Brachionus plicatilis untuk menunjang  keberhasilan  pembe- nihan kerapu Macan E. Fuscoguttatus.  J.  Penel.  Budidaya Pantai , 7(2):73-80.
Wati, M. dan P.T.  Imanto.   2009.    Kultur rotifer  dengan  beberapa  jenis pakan  dan  kombinasinya. J.  Riset
Aquakultur , 4(3):349-359.