https://journal.ipb.ac.id/index.php/jurnalikt
e-ISSN   : 2620-309X
PENAPISAN KAPANG ENDOFIT ASAL Thallasia hemprichii SEBAGAI

## PENGHASIL ANTIMIKROBA

## SCREENING OF ENDOPHYTIC FUNGI FROM Thallasia hemprichii AS A ANTIMICROBIAL PRODUCTION
Elma Alda Syahputri, Yulia Oktavia * , & Sri Novalina Amrizal Program Studi Teknologi Hasil Perikanan, Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan,
Universitas Maritim Raja Ali Haji, Tanjungpinang, 29115, Indonesia *E-mail : yuliaoktavia@umrah.ac.id

## ABSTRACT
Antibiotic  resistance  is  a  health  problem  experienced  by  living  things,  caused  by  long-term  use  of antibiotics. Thallasia hemprichii contains metabolites that have potential in the pharmaceutical field. Many  studies  show  that  seagrass  has  the  activity  of  natural  bioactive  compounds  as  antifouling, antibacterial,  and  anti-fungal.  The  purpose  of  this  study  was  to  determine  the  number  of  isolates, morphological  characteristics  of  endophytic  fungi  and  to  determine  the  antagonistic  activity  they produce against Staphylococcus aureus and Escherichia coli test bacteria. The study began on April- September  2021  using  samples  from  the  waters  of  Malang  Rapat  Village.  The  type  of  research conducted is descriptive. There were 4 stages of research, namely taking and preparation of roots and leaves  of  seagrass  as  hosts  for  endophytic  fungi,  isolation  of  endophytic  fungi  using  direct  planting method, observation of fungal morphology, and fungal antagonist test using the method of antagonist by  fungi  against test bacteria.  The  results  obtained  3 isolates  from  root  samples  and  7 isolates  from leaves,  with  isolates  with  septal  hyphae  belonging  to  D32.1,  D32.2,  A37,  A35,  A21,  and  D45.  The characteristics of white pigmentation were obtained by isolates D32.2, D31, D21, D22, D18, and A37. Antagonism test against E. coli and S. aureus showed that isolate D18 had the largest diameter of the inhibition zone, which was 27.7 mm, and isolate D32.1 showed the smallest diameter of the inhibition zone, which was 13.1 mm against E. coli bacteria. D22 isolate against S. aureus bacteria showed an inhibition zone diameter of 5.9 mm.
Keywords: antimicrobial, endophytic fungi, screening, Thallasia hemprichii

## ABSTRAK
Resistensi antibiotik merupakan masalah kesehatan yang dialami oleh makhluk hidup, disebabkan oleh penggunaan  antibiotik  jangka  panjang. Thallasia  hemprichii memiliki  kandungan  senyawa  metabolit yang  berpotensi  pada  bidang  farmasi.  Banyak  penelitian  menunjukkan  bahwa  lamun  memiliki aktivitas senyawa bioaktif alami sebagai antifouling , antibakteri, dan antikapang. Tujuan penelitian ini yaitu  untuk  mengetahui  jumlah  isolat,  dan  karakteristik  morfologi  kapang  endofit  serta  mengetahui aktivitas  antagonis  yang  dihasilkannya  terhadap  bakteri  uji Staphylococcus  aureus dan Escherichia coli . Penelitian dimulai bulan April-September 2021 menggunakan sampel dari perairan Desa Malang Rapat. Jenis penelitian yang dilakukan yaitu deskriptif. Terdapat 4 tahap penelitian yaitu pengambilan dan  preparasi  akar  serta  daun  lamun  sebagai  inang  kapang  endofit,  isolasi  kapang  endofit  lamun dengan  metode  isolasi  tanam  langsung,  pengamatan  morfologi  kapang,  dan  uji  antagonis  kapang menggunakan  metode uji antagonis oleh  kapang terhadap bakteri uji. Hasil penelitian  mendapatkan 3 isolat dari sampel akar dan 7 isolat asal daun, dengan isolat yang  memiliki  hifa septum  dimiliki  oleh D32.1,  D32.2,  A37,  A35,  A21,  dan  D45.  Karakteristik  pigmentasi  putih  dimiliki  oleh  isolat  D32.2, D31,  D21,  D22,  D18,  dan  A37.  Uji  antagonis  terhadap  bakteri E.  coli dan S.  aureus menunjukkan bahwa isolat D18 memiliki diameter zona hambat yang paling besar yaitu 27,7 mm, dan isolat D32.1 menunjukkan  diameter  zona  hambat  yang  paling  kecil  yaitu  13,1  mm  terhadap  bakteri E.  coli .  Isolat D22 terhadap bakteri S. aureus memperlihatkan diameter zona hambat sebesar 5,9 mm.
Kata kunci : antimikroba, kapang endofit, penapisan, Thallasia hemprichii

## I. PENDAHULUAN
Penyakit  infeksi  merupakan  masalah kesehatan  yang  dialami  pada  masyarakat yang  hidup  di  negara  maju  maupun  negara berkembang. Mikroorganisme  seperti bakteri dapat  bersifat  patogen  pada  makhluk  hidup, hal  ini  menjadi  salah  satu  penyebab  infeksi bakteri. Penggunaan antibiotik dapat mengobati  penyakit  infeksi.  Lamun  adalah salah  satu  tumbuhan  laut  yang  berpotensi menghasilkan senyawa bioaktif untuk antibiotik  alami  (Antonia et  al. ,  2019). Senyawa  antibakteri  yang  dihasilkan  dari Thalassia  hemprichii dapat  mengganggu pertumbuhan bakteri Pseudomonas aeruginosa,
Staphylococcus aureus, Salmonella  typhimurium, dan Vibrio  cholera (Idiawati et  al .,  2017) . Umumnya  metabolit sekunder  yang terkandung pada  lamun dapat berfungsi  sebagai  senyawa  bioaktif  yang digunakan pada bidang farmasi (Karim et al ., 2019).  Hasil  penelitian  Gustavina et  al . (2018) menunjukkan senyawa bioaktif seperti  alkoloid,  flavonoid,  saponin,  steroid, dan  tanin  terkandung  pada  ekstrak  akar lamun.  Seperti  halnya  menurut  Andhikawati et  al .  (2020)  bahwa  daun  lamun  juga mengandung  metabolit  sekunder  diantaranya alkaloid,  saponin,  tanin,  terpenoid,  dan flavonoid.
Ekstraksi  dan  isolasi  kapang  endofit merupakan cara dalam  memperoleh  senyawa bioaktif  antimikroba  pada  tanaman  lamun. Beberapa  penelitian  sudah  mendapatkan kandungan kapang yang menghasilkan senyawa  bioaktif  antimikroba.  Penelitian kapang  endofit  laut  asal  tumbuhan  pesisir terong  pungo  mendapatkan  isolat  kapang yang  memiliki  aktivitas  antibakteri  terhadap bakteri
Staphylococcus
aureus , Staphylococcus epidermidis , dan
Pseudomonas  aureginosa (Ukhty,  2015). Penelitian  Idiawati et  al .  (2017)  menyatakan bahwa  lamun Thalassia  hemprichii memiliki senyawa antibakteri yang menghambat pertumbuhan  bakteri Staphylococcus  aureus, Vibrio  cholera,  Pseudomonas  aeruginosa,
dan Salmonella typhimurium. Mikroba endofit memiliki kemampuan untuk memproduksi senyawa-senyawa bioaktif dengan  potensi  besar  untuk  diekploitasi  dan menghasilkan  sesuatu  yang  bermanfaat  pada bidang  kesehatan,  pertanian,  industri  dan sebagai sumber bahan baku obat, enzim,  dan senyawa  aktif  biologis  (Wathan,  2019).  Hal tersebut  yang  mendasari  perlunya  dilakukan penelitian isolasi  kapang  endofit  asal Thallasia  hemprichii sebagai  penghasil senyawa antimikroba.

## II. METODE PENELITIAN

## 2.1. Waktu dan Tempat Penelitian
Pelaksanaan  penelitian  dimulai  pada bulan  April-September  2021.  Pengambilan sampel T.  hemprichii sebagai  tanaman inangnya dilakukan di perairan Desa Malang Rapat. Sedangkan untuk isolasi, karakterisasi morfologi secara makroskopis dan mikroskopis serta pengujian antagonis kapang endofit terhadap bakteri uji dikerjakan di Laboratorium Biologi Universitas  Maritim  Raja  Ali  Haji,  Kota Tanjungpinang.

## 2.2. Alat dan Bahan
Penelitian  ini  menggunakan  alat diantarannya autoclave ,  laminar air  flow , timbangan  analitik,  cawan  petri,  alat  bedah, gelas  ukur,  labu  erlenmeyer,  jangka  sorong, vorteks,  pinset,  gunting,  inkubator,  jarum ose, hot  plate ,  serta  bunsen.  Bahan  yang digunakan diantaranya yaitu sampel Thallasia hemprichii , media Potato Dextrose Agar (PDA)  ( Oxoid ), Nutrient  Agar (NA) ( Merck ),  aquadest,  alkohol,  kloramfenikol, Nutrient  broth ( Merck ),  plastik  sampel,  dan bakteri  uji Staphylococcus  aureus dan Escherichia coli .
2.3. Pengambilan Sampel
Lokasi pengambilan sampel T. hemprichii yaitu  di  perairan  Desa  Malang Rapat, Kabupaten Bintan. Lamun  yang sehat dan  bebas dari penyakit tanaman dengan  ciri
warna  daun  hijau  cerah  dan  tidak  memiliki bintik  hitam  dipilih  sebagai  sampel  isolasi kapang  endofit.  Pemilihan  lamun  yang  sehat bertujuan untuk mendapatkan mikroba endofit yang terdapat pada jaringan tumbuhan  (Fani et  al .,  2022).  Sampel kemudian disimpan pada plastik sampel yang berisi air laut agar lamun terjaga kesegarannya  dan  kemudian  dibawa  ke laboratorium.  Potongan  sampel  daun  dan akar  dari  satu  individu  lamun  dibersihkan, dan dilakukan isolasi tanam langsung dengan dua kali ulangan pada setiap sampel.

## 2.4. Isolasi Kapang Endofit
Isolasi  kapang  endofit  dilakukan dengan  memotong  sampel  daun  dan  akar lamun berukuran ±5 cm dan celupkan sampel pada  larutan  alkohol  70%  selama  30  detik. Hal  ini  bertujuan  menghindari  kontaminasi bakteri epifit. Kemudian bersihkan menggunakan  aquadest  ±30  detik  dan diulang  sebanyak  3  kali.  Setelah  kering, sampel  dipotong  kembali  dengan  ukuran ±1x1 cm menggunakan gunting steril (Nawea et  al .,  2017).  Media  agar  PDA  padat  yang telah  ditambahkan  kloramfenikol  1  mg/L diletakkan sampel daun dan akar. Kloramfenikol  memiliki  fungsi  sebagai penghambat pertumbuhan bakteri (Andhikawati et al., 2014). Setelah itu cawan ditutup, kemudian diinkubasi selama 3-7 hari dan  terlihat  pertumbuhan  kapang  di  media agar.  Kapang  yang  telah  tumbuh  dilakukan beberapa kali pemurnian untuk mendapatkan isolat kapang endofit yang murni.

## 2.5. Karakterisasi Morfologi Kapang Endofit
Karakterisasi morfologi
kapang dilakukan  dengan  menggunakan  metode Sulistiyono  &  Mahyuni,  (2019)  yaitu pengamatan  makroskopis  dan  mikroskopis. Pengamatan  makroskopis  dilakukan  dengan mengamati warna koloni, bentuk permukaan, serta  garis  radial  pada  kapang  endofit. Pengamatan  mikroskopis  dilakukan  dengan mengambil  miselium kapang  yang kemudian
diletakkan  di  atas  kaca  preparat  dan  diberi sedikit aquadest, kemudian diamati menggunakan  mikroskop  digital,  diawali dengan perbesaran terkecil hingga perbesaran terbesar  yaitu  perbesaran  2000x.  Hal  yang diamati  berupa ada atau tidaknya dan bentuk yang dihasilkan pada spora atau konidia, dan tipe hifa (Gandjar et al ., 2000).

## 2.6. Uji Antagonis Kapang Endofit
Pengujian  antagonis  menggunakan metode  uji  antagonis  yg  dilakukan  oleh kapang  terhadap  bakteri  uji  yaitu  bakteri Staphylococcus  aureus dan Escherichia  coli untuk mengetahui kemampuan mikro- organisme  seperti  bakteri  atau  kapang  dalam menghambat pertumbuhan mikroba yang lain dengan menghitung zona hambat ( clear zone ) yang  terbentuk  akibat  suatu  senyawa  peng- hambat pertumbuhan mikroba yang mengacu pada  penelitian  Rahaweman et  al . (2016) dengan  memotong  media  agar  yang  berisi isolat  kapang  endofit  berdiameter  8,5  mm, kemudian  letakkan  pada  permukaan  media Nutrient  Agar yang  telah  tercampur  bakteri, inkubasi  sampel  di  inkubator  pada  suhu ruang  selama  24  jam.  Zona  hambat  yang dihasilkan  kapang  dilakukan  pengukuran diameternya, pada zona tersebut menunjukkan  bahwa  isolat  kapang  endofit menghasilkan aktivitas antimikroba. Diameter  zona  hambat  pada  aktivitas antimikroba  dibedakan  menjadi  4  kategori, yaitu  lemah  jika  diameter  yang  dihasilkan lebih  kecil  dari  5  mm,  menengah  apabila berdiameter 5-10 mm, zona kuat  ketika daya hambat  menghasilkan  diameter  10-20  mm, dan  diameter  20  mm  merupakan  kategori sangat kuat (Harborne, 1973).

## 2.7. Analisis Data
Data  yang  diperoleh  dituangkan dalam  bentuk  deskripsi  antara  lain  yaitu mengetahui  jumlah  isolat  kapang  yang dihasilkan,  bentuk  morfologi  kapang  secara makroskopis dan mikroskopis serta mengukur daya hambat per-tumbuhan bakteri uji terhadap kapang endofit.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1. Isolat Kapang Endofit Asal Thallasia hemprichii
Isolasi  sampel  akar  dan  daun T.
hemprichii selama  7-14  hari  pada  media PDA dan dilakukan beberapa kali permurnian  sehingga  mendapatkan  total  10 isolat kapang yang di antaranya yaitu 7 isolat dari  daun  dan  3  isolat  asal  akar.  Isolat tersebut  merupakan  isolat  kapang  endofit T . hemprichii karena  tumbuh  pada  potongan sampel lamun yang telah dilakukan sterilisasi permukaannya.  10  isolat  hasil  isolasi  sampel daun  (D)  dan  akar  (A) menghasilkan  isolat yang  di  antaranya  D32.1,  D32.2,  D22,  D45, D18, D31, D21, A21, A37, dan A35.

## 3.2. Morfologi Kapang Endofit
Karakterisasi morfologi kapang endofit  hasil  isolasi Thallasia  hemprichii dilakukan  setelah  mendapatkan  isolat  murni kapang. Pada isolat D32.1, D32.2, A37, A35, A21, dan D45 memiliki persamaan karakteristik  mikroskopis  yaitu  bertipe  hifa septum.  Pada  isolat  D32.2,  D31,  D21,  D22, D18,  dan  A37  memiliki  persamaan  pada
karakteristik  morfologi  secara  makroskopis yaitu  pada  warna  koloni  yang  berwarna putih.  Pengamatan  yang  dilakukan  pada masing-masing  isolat  sampel  kapang,  di antaranya  memiliki  spora  yang  berbeda bentuk.  Isolat  D21,  A37,  A21,  dan  D32.1 berspora  bulat  sedangkan  isolat  D32.2 memiliki bentuk spora yang lonjong. Tabel 1 menunjukkan gambar isolat yang diperoleh.
Hifa merupakan struktur kapang yang memiliki  bentuk  tabung,  seperti  benang panjang yang terbentuk dari permukaan spora atau konidia.  Fungsi  hifa dibagi  menjadi dua yaitu  menyerap  nutrisi  dari  lingkungan  dan pembentuk struktur selama reproduksi (Roosheroe et al ., 2014). Reproduksi seksual dan  aseksual  kapang  berkaitan  dengan pembentukan  spora.  Kapang  umumnya membentuk  spora  aseksual  tergantung  pada jenis kapang yaitu bentuk konidia, sporangiofora, dan arthrosfora. Konidiospora merupakan  spora  yang  dihasilkan  pada  hifa aerial  yang  disebut  konidiofor,  sedangkan sporangiospora  yaitu  spora  yang  dihasilkan dari semacam kantung yang disebut sporangium  pada  hifa  aerial  dan  dikenal sebagai sporangiosfor dan athospora
Tabel 1. Gambar isolat kapang endofit.
Isolat Makroskopis Mikroskopis Deskripsi D32.1 Makroskopis : Warna koloni hijau keabuan, tekstur seperti kapas dan memiliki tetes air ( exudate drop )
Mikroskopis :
Berhifa  septum  ( acoenocytic ),  memiliki  spora,  spora berbentuk bulat D45 Makroskopis : Warna koloni hitam, tekstur licin dan tidak rata, memiliki tetes air ( exudate drop ) Mikroskopis :
Berhifa septum ( acoenocytic ), tidak memiliki spora A35 Makroskopis : Warna koloni hijau kehitaman, bertekstur tebal dan memiliki tetes air ( exudate drop )
Mikroskopis :
Berhifa septum ( acoenocytic ), memiliki spora, spora berbentuk semi bulat ( elips )
Isolat Makroskopis Mikroskopis Deskripsi A21 Makroskopis : Warna koloni orange dan putih pada bagian tepi, tekstur granular Mikroskopis : Berhifa  septum  ( acoenocytic ),  memiliki  spora,  spora berbentuk bulat D18 Makroskopis : Warna koloni putih, tekstur halus dan licin Mikroskopis : Hifa tidak berseptum ( coenocytic ), tidak memiliki spora D31 Makroskopis : Warna koloni putih, tekstur seperti kapas. Mikroskopis : Hifa  tidak  berseptum  ( coenocytic ),  tidak  memiliki  spora,
memiliki inti D21 Makroskopis : Warna koloni putih pudar, tekstur halus dan rata Mikroskopis : Hifa  tidak  septum  ( coenocytic ),  memiliki  spora,  spora berbentuk bulat dan memiliki inti D22 Makroskopis : Warna koloni putih, tekstur seperti kapas dan memiliki garis radial Mikroskopis : Hifa  tidak  berseptum  ( coenocytic ),  tidak  memiliki  spora,
memiliki inti D32.2 Makroskopis : Warna koloni putih, tekstur seperti kapas Mikroskopis : Berhifa  septum  ( acoenocytic ),  memiliki  spora,  spora berbentuk lonjong A37 Makroskopis : Warna koloni putih, tekstur seperti kapas Mikroskopis : Berhifa  septum  ( acoenocytic ),  memiliki  spora,  spora berbentuk bulat
merupakan  spora  yang  dihasilkan  oleh fragmentasi  dari  hifa  vegetatif  (Subandi, 2014).

## 3.3. Aktivitas Antibakteri Kapang Endofit
Uji antagonis dilakukan untuk mengetahui  kemampuan  mikroorganisme menghambat  pertumbuhan  mikroba  patogen dengan  menghitung  diameter  zona  hambat yang  dihasilkan.  Metabolit  sekunder  alami dapat  terbentuk  pada  fase  stasioner  hingga menuju  fase  kematian  dan  terbentuknya metabolitme  sekunder  dikarenakan  suatu hubungan yang saling menguntungkan antara mikroorganisme  endofit  terhadap  tumbuhan inangnya  (Tisnadjaja,  2017).  Senyawa  yang dihasilkan oleh lamun dapat didasarkan pada berbagai  faktor  termasuk  lingkungan  dan predator  pada  habitatnya  Hal  tersebut  sesuai dengan  pendapat  Gustavina et  al .  (2018) bahwa  kondisi  habitat  lamun  yang  buruk akan  melepaskan  metabolit  sekunder  yang digunakan  untuk  bertahan  hidup.  Lamun cenderung  menghasilkan  senyawa  aktif biologis  sebagai  bentuk  perlindungan  diri
dari  predator.  Hasil  pengujian  antagonis mendapatkan  hasil  yang  ditunjukkan  pada Tabel  2  dan  hambatan  yang  terbentuk  dapat diamati pada Gambar 1 dan 2.
Pengujian  antagonis  terhadap  bakteri E.  coli menunjukkan  isolat  kapang  endofit dengan  kode  D32.1  menghasilkan  zona hambat  yang  berdiameter  13,1  mm,  isolat kapang  D22  memiliki  zona  hambat  sebesar 16,3  mm,  kapang  endofit  A21  berdiameter 17,2  mm,  dari  ketiga  kapang  tersebut menghasilkan  zona  hambat  yang  berkategori kuat dan kapang D18 menunjukkan diameter zona  hambat  yang  berkategori  sangat  kuat yaitu sebesar 27,7 mm. Isolat D22 membentuk  diameter  zona  hambat  sebesar 5,9 mm pada pengujian bakteri S. aureus , hal tersebut  dikategorikan  sebagai  zona  hambat lemah.  Perbandingan  zona  hambat  yang dihasilkan terhadap hasil penelitian Rahaweman et  al .  (2016)  yaitu  pada  isolasi kapang  endofit  asal Chlorophyta dan Phaeophyta menghasilkan  isolat  KHC0003 dan KHC0026 B memiliki aktivitas antimikroba  terhadap  bakteri S.  aureus dan E. coli dengan diameter masing-masing
(a) D18, (b) D22, (c) A21, (d) A37 (a) D32.2, (b) D21, (c) A35 (a)D31, (b) D32.1, (c) D45
Gambar 1. Aktivitas antimikroba kapang endofit terhadap bakteri E. coli .
(a) D18, (b) A21, (c) D37, (d) D22 (a)A35, (b) D21, (c) D32.2 (a)D31, (b) D32.1, (c) D45 (a)D32.2 (b) D22, (c) D21 (d) D45
Gambar  2.  Aktivitas  antimikroba  kapang  endofit  terhadap  bakteri S.  aureus.
Table 2.  Hasil uji antagonis kapang endofit terhadap bakteri uji.
No. Kode Isolat Bakteri E.coli Zona Hambat (mm) Bakteri S.aureus Zona Hambat (mm) 1. D32.1 + 13,1 - - 2. D32.2 - - - - 3. D22 + 16,3 + 5,9 4. D45 - - - - 5. D18 + 27,7 - - 6. D31 - - - - 7. D21 - - - - 8. A21 + 17,2 - - 9. A37 - - - - 10. A35 - - - - Keterangan : + = Terbentuknya zona hambat -
= Tidak terbentuk zona hambat
sebesar  11,0  mm  dan  4,0  mm.  Sedangkan pada  penelitian  Kasi et  al. (2015)  isolat kapang  endofit  hasil  isolasi  daun  mangrove menunjukkan  aktivitas  antimikroba  terhadap bakteri Staphylococcus  aureus dan Shigella dysenteriae masing-masing  memiliki  rata- rata  zona  hambat  21  mm  dan  27  mm. Perbedaan  tersebut  dapat  disebabkan  oleh lapisan  pada  dinding  sel  bakteri  yang berbeda. Dinding sel tersusun dari peptidoglikan  merupakan  struktur  dasar bakteri  yang  bersifat  kuat  dan  kaku. Kemanjuran  antimikroba  dipengaruhi  oleh beberapa faktor yaitu status bakteri (kerentanan dan resistensi, toleransi, persistensi) dan ukuran inoculum; konsentrasi antimikroba dan konsentrasi sub- penghambatan;  serta  faktor  inang  (Li, et  al., 2017). Ketidaksamaan diameter zona hambat yang  dihasilkan  isolat  disebabkan  karena metabolit  yang  dikeluarkan  pada  masing- masing  isolat  berbeda.  Secara  umum, kematian  mikroba  berhubungan  langsung dengan  konsentrasi  antimikroba.  Artinya, semakin tinggi konsentrasi antimikroba  yang digunakan,  semakin  cepat  mikroorganisme tersebut terbunuh.

## IV. KESIMPULAN
Pengujian  aktivitas  antimikroba  pada kapang  endofit  asal Thallasia  hemprichii menunjukkan adanya potensi senyawa antibakteri.  Isolat  kapang  endofit  pada sampel  daun  menghasilkan  zona  hambatan yang  dapat  berkembang  sebagai  antibakteri dan  mampu  menghambat  Gram  positif  dan Gram negatif.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Ucapan  terima  kasih  saya  sampaikan kepada  ibu  Yulia  Oktavia,  S.Pi.,  M.  Si  dan ibu  Dr.  Sri  Novalina  A,  S.Pt.,  MP  selaku dosen pembimbing yang memberikan banyak masukan  dan  arahan  selama  penelitian,  serta kepada  Balai  Karantina  Ikan  Pengendalian mutu  dan  Keamanan  Hasil  Perikanan  yang berada  di  Tanjungpinang  dan  Batam  atas isolat  bakteri E.  coli dan S.  aureus yang diberikan.

## DAFTAR PUSTAKA
Andhikawati,  A.,  Y.  Oktavia,  B.  Ibrahim,  & K. Tarman. 2014. Isolasi dan penapisan kapang laut endofit penghasil  selulase. J.  Ilmu  dan
Teknologi Kelautan Tropis, 6(1): 219- 227. http://doi.org/10.29244/jitkt.v61.8643 Andhikawati,  A.,  N.  Akbarsyah,  &  P.K.D.
Putra.  2020.  Identifikasi  senyawa bioaktif dan potensi aktivitas antioksidan  lamun Enhalus  acoroides (Linn.  F). J.  Akuatek ,  1(1):  66-72. https://doi.org/10.24198/akuatek.v1i1. 28045
Antonia,  R.,  N.  Idiawati,  &  M.S.J.  Sofiana.
2019.  Skrining  aktivitas  antibakteri bakteri  berasosiasi  lamun Thalassia hemprichii dari perairan Pulau Kabung. J.  Laut  Khatulistiwa, 2(3): 79-84. http://doi.org/10.26418/lkuntan.v2i3.3 4691
Fani,  E.  F.,  Rahmawati,  &  R.  Kurniatuhadi. 2022. Identifikasi dan deteksi aktivitas  proteolitik  bakteri  endofit yang  diisolasi  dari  daun Avicennia marina di  Mempawah Mangrove Center . LenteraBio ,  11(2):  293-299. https://doi.org/10.26740/lenterabio.v1 1n2.p293-299
Gandjar,  I.,  R.A  Samson,  K.  Tweel- Vermeulen,  Oetari,  Ariyanti,  &  I. Santoso.  2000. Pengenalan  kapang tropik  umum. Jakarta.  Yayasan  Obor Indonesia. 136 hlm.
Gustavina, N.L.G.W.B.,  I.G.B.S.  Dharma,  & E. Faiqoh. 2018. Identifikasi kandungan  senyawa  fitokimia  pada daun,  akar  lamun  pantai  Samuh  Bali. J.  of  Marine  Aquatic  Sciences, 4(2):
271-277.
https://doi.org/10.24843/jmas.2018.v4 .i02.271-277
Harborne, J.B. 1987. Phytochemical methode.  2nd  ed.  Padmawinata  K, Soediro  I  (translator).  Bandung.  ITB. 288 hlm.
Idiawati,  N.,  Sofiana,  S.J.  Mega,  Rousdy,  &
W.  Diah.  2017.  Potensi  antibakteri dari  bakteri  berasosiasi Thallasia hemprichii dari  perairan  Lemukutan. Buletin  Oseanografi  Marina ,  6(2):
130-133. https://doi.org/10.14710/buloma.v6i2. 16190
Karim,  F.Y.,  N.J.  Kawung,  &  B.T.  Wagey. 2019.  Uji  toksisitas  dari  ekstrak lamun  jenis Thallasia  hemprichii dari perairan Kalasey dengan menggunakan  metode  brine  shrimp lethality  test. J.  Pesisir  dan  Laut Tropis , 7(3): 265-270. https://doi.org/10.35800/jplt.7.3.2019. 26017
Kasi,  Y.A.,  J.  Posangi,  P.M.  Wowor,  &  R. Bara. 2015. Uji efek antibakteri jamur endofit  daun  mangrove Avicennia marina terhadap bakteri uji Staphylococcus  aureus dan Shigella dysenteriae . J. e-Biomedik , 3(1): 112-
117.
https://doi.org/10.35790/ebm.v3i1.66
32
Li, J., S. Xie, S. Ahmed, F. Wang, Y. Gu, C. Zhang,  X.  Chai,  Y.  Wu,  J.  Cai,  &  G. Cheng.  2017.  Antimicrobial  activity and  resistance:  influencing  factors.
Frontiers  in  pharmacology ,  8:  1-11. https://doi.org/10.3389/fphar.2017.00 364
Nawea, Y., Mangindaan, E.P. Remy, Bara, & A.  Robert.  2017.  Uji  antibakteri kapang endofit dari tumbuhan mangrove Sonneratia  alba yang tumbuh di perairan Pantai Tanawangko. J.  Pesisir  dan  Laut Tropis , 1(1): 24-35. https://doi.org/10.35800/jplt.5.1.2017.
14993
Rahaweman,  A.C.,  J.  Pamungkas,  H.
Madduppa,  C.  Thoms,  &  K.  Tarman. 2016.  Screening  of  endophytic  fungi Chlorophyta and Phaeophyta for antibacterial  activity.  IOP  Publishing Earth  and  Environmental  Science ,
31(1):
1-7. https://doi.org/10.1088/17551315/31/
1/012026
Roosheroe,  G.  I.,  W.  Sjamsuridzal,  &  A. Oetari.  2014. Mikologi  Dasar  dan
Terapan .  Jakarta.  Yayasan  Pustaka Obor Indonesia. 242 hlm.
Subandi.  2014. Mikrobiologi .  Bandung.  PT. Remaja rosdakarya. 209 hlm.
Sulistiyono,  F.D.  &  S.  Mahyuni,  2019.
Isolasi  dan  identifikasi  jamur  endofit pada  umbi  talas  ( Colocasia  esculenta (L.) Shoot). J. Sains Natural Universitas  Nusa  Bangsa ,  9(2):  66-
70.
https://doi.org/10.31938/jsn.v9i2.235
Tisnadjaja,  D.  2017.  Efek  antibakteri senyawa  metabolit  sekunder  yang diproduksi  oleh  kapang  endofitik  AT 32  dari Artemisia  annnua . J.  Sains
Natural  Universitas  Nusa  Bangsa, 1(1): 61-67. https://doi.org/10.31938/jsn.v1i1.14
Ukhty,  N.  2015.  Kapang  endofit  laut  dari tumbuhan pesisir terong pungo
( Solanum sp.) dan potensinya sebagai antibakteri. Jurnal  perikanan  tropis, 2(1): 91-102
https://doi.org/10.35308/jpt.v2i1.18
Wathan,  N.,  Imaningsih,  W.  2019.  Isolasi jamur  endofit  dari  akar  tumbuhan seluang  belum  ( Luvunga  sarmentosa (blume) kurz .). Jurnal Pharmascience, 6(1): 68-73. https://doi.org/10.20527/jps.v6i1.607 7 Submitted  :   14 January 2022
Reviewed  :   25 April 2022
Accepted  :  30 July 2022

## FIGURE AND TABLE TITLES
Figure 1.  Antimicrobial activity of endophytic fungi against E. coli. Figure 2.  Antimicrobial activity of endophytic fungi against S. aureus. Table 1.   Picture of endophytic fungi isolate.
Table 2.   Test results of endophytic fungi antagonists against test bacteria.