JurnalPharmascience, Vol. 11, No.1, Maret 2024, hal: 88-97 ISSN-Print. 2355 – 5386 ISSN-Online. 2460-9560 https://ppjp.ulm.ac.id/journal/index.php/pharmascience Research Article

## Aktivitas Antibakteri Ekstrak Daun Kesambi Terhadap Pertumbuhan Pseudomonas aeruginosa dan Staphylococcus aureus
Rezki Febriani*, Alfrida Monica Salasa, St. Ratnah
Program Studi Sarjana Terapan Farmasi, Jurusan Farmasi, Politeknik Kesehatan Makassar, Makassar, Sulawesi Selatan, Indonesia
Email: rezkifebriani0@gmail.com

## ABSTRAK
Penyakit  infeksi  merupakan  penyakit  dengan  pravalensi  tinggi  di  Indonesia. Bakteri  merupakan  penyebab  infeksi  kulit.  Ekstrak  daun  kesambi  mengandung metabolit sekunder sebagai agen antibakteri. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui aktivitas antibakteri ekstrak daun kesambi (Schleicher aoleosa) terhadap pertumbuhan bakteri P. aeruginosa dan S. aureus berdasarkan zona hambat. Penelitian ini dilakukan dengan metode eksperimental menggunakan daun kesambi yang diproses dengan cara maserasi kemudian dilanjutkan dengan uji fitokimia. Uji aktivitas antibakteri dilakukan dengan metode difusi cakram dengan variasi konsentrasi yaitu 5%, 10%, dan 15% untuk mengetahui  zona  hambat.  Hasil  penelitian  menunjukkan  rata-rata  zona  hambat  P. aeruginosa adalah 13,3 mm pada konsentrasi 5%, 15,3 mm pada konsentrasi 10%, dan 17,3  mm  pada  konsentrasi  15%,  hasil  kontrol  positif  38,3  mm,  dan  kontrol  negatif diperoleh 0 mm. S. aureus pada konsentrasi 5% adalah 10,6 mm, konsentrasi 10% yaitu 12 mm, dan pada konsentrasi 15% yaitu 25 mm, kontrol positif 25 mm, dan pada kontrol negatif didapatkan 0 mm, yang berarti tidak memiliki zona hambatan. Konsentrasi 15% merupakan  konsentrasi  yang  memiliki  daya  hambat  terbesar  dalam  menghambat pertumbuhan P. aeruginosa dan S. aureus (p=0,046 <0,05).
Kata Kunci: Zona hambat, Uji fitokimia, Bakteri, Maserasi, Schleicheraoleos

## ABSTRACT
Infectious disease is a disease with high prevalence in Indonesia. Bacteria are the cause  of  skin  infections.  Kesambi  leaf  extract  contains  secondary  metabolites  as antibacterial agents. This study aims to determine the antibacterial activity of kesambi leaf extract (Schleichera oleosa) on the growth of P. aeruginosa and S. aureus bacteria based on the  inhibition  zone.  This  research  was  conducted  using  an  experimental  method  using kesambi  leaves  which were  processed  by  maceration  and  then  followed  by  phytochemical tests.  Antibacterial  activity  test  was  carried  out  by  disc  diffusion  method  with  various
concentrations,  namely  5%,  10%,  and  15%  to  determine  the  inhibition  zone.  The  results showed that the average inhibition zone of P. aeruginosa was 13.3 mm at a concentration of 5%, 15.3 mm at a concentration of 10%, and 17.3 mm at a concentration of 15%, a positive control  result  was  38.3  mm,  and  the  control  negative  is  obtained  0  mm.  S.  aureus  at  a concentration of 5% is 10.6 mm, at a concentration of 10% is 12 mm, and at a concentration of 15% is 25 mm, the positive control is 25 mm, and the negative control is 0 mm, which means it has no inhibition zone. The concentration of 15% was the concentration that had the  greatest  inhibition  in  inhibiting  the  growth  of  P.  aeruginosa  and  S.  aureus  (p=0.046 <0.05).
Keywords: Inhibition zone, Phytochemical test, Bacteria, Maceration, Schleicheraoleos

## I. PENDAHULUAN
Penyakit  infeksi  merupakan  suatu masalah penyakit penyebab kematian yang sering diderita oleh masyarakat di Indonesia.  Penyakit  infeksi  berkembang ketika  interaksi  dengan  bakteri  merusak tubuh inang dan kerusakan ini menghasilkan  berbagai  tanda  dan  gejala klinis  (Novard  et  al.,  2019).  Ada  berbagai infeksi yang menginvasi tubuh, diantaranya adalah infeksi kulit. Pseudomonas aeruginosa dan Staphylococcus  aureus merupakan  dua  contoh  mikroorganisme berbahaya yang dapat menyebabkan infeksi kulit (Ekawati et al ., 2018).
Zat  antibakteri  diperlukan  untuk pengobatan penyakit yang disebabkan oleh bakteri karena dapat mencegah pertumbuhannya yang menyebabkan kematian  (Puspawati et  al., 2018).  Untuk pengobatannya dapat menggunakan senyawa  kimia  atau  bahan  alami.  Daun kesambi merupakan salah satu bahan alam yang  dapat  menghentikan  pertumbuhan bakteri.
Penelitian Situmeang et al., (2016) juga  menyatakan  bahwa  tanaman  kesambi merupakan tanaman yang telah dimanfaatkan untuk melawan radang kulit, bisul,  gatal,  jerawat,  dan  infeksi  kulit. Selain itu, berdasarkan informasi masyarakat  di  Selayar,  daun  kesambi ( Schleichera  oleosa) secara  tradisional telah digunakan sebagai obat luka berdarah dengan cara daunnya digerus dan ditempelkan pada kulit yang terluka. Dalam penelitian Holil & Griana, (2020) membuktikan  adanya  komponen  fenol, flavonoid,  dan  tanin  sebagai  antioksidan pada  ekstrak  Daun  Kesambi  ( Schleichera oleosa ).    Semua  komponen  ini  bisa digunakan sebagai agen antibakteri.
Menurut  penelitian  Jose  and  Sinha (2016),  konsentrasi  hambat  minimum (KHM)  untuk Salmonella  typhi oleh ekstrak daun kesambi ( Schleichera oleosa ) pada  konsentrasi  16%.  Temuan  KHM  ini didukung  oleh  penelitian  Prasetyo  (2020) mengenai aktivitas antibakteri ekstrak daun kesambi  ( Schleichera  oleosa )  terhadap
Salmonella  thypi ,  KHM  pada  konsentrasi 10%  mampu  menghambat  pertumbuhan Salmonella thypi .
Merujuk dari latar belakang diatas, peneliti  ingin  menganalisis  menggunakan metode  difusi  cakram  untuk  menguji apakah  ekstrak  etanol  daun  kesambi ( Schleichera  oleosa )  dapat  menghambat pertumbuhan P. aeruginosa dan S. aureus.

## II. METODE

## A. Sampel
Sampel dalam penelitian ini menggunakan  daun  kesambi  yang  berasal dari Kabupaten Kepulauan Selayar.

## B. Alat dan bahan
Alat: beaker ( IWAKI  CTE33 ) , corong kaca  ( PYREX  ), laminary  air  flow ( ESCO  ) , labu  ukur  ( PYREX  ),  batang pengaduk  ( ROFA  ), autoklaf ( GEA  ), erlenmeyer ( IWAK  I CTE33 ),  gelas  ukur kimia  ( IWAKI  CTE33 ), hotplate /kompor ( Rinnai  ), incubator ( nuve  ),  lampu spiritus ( ROFA  ), petri dish ( tradeRKImark  ) , pinset ( ONEMED  ), ose ( MEDILAB  ),  pipet  tetes  ( ONEMED  ), oven ( memmert  ), tabung reaksi ( PYREX  ),  rak  tabung  ( Cakrawala  ), rotary  evaporator ( heidolph  ),  timbangan analitik  ( FUJITSU  ),  sendok  tanduk ( Medicare  ).
Bahan : daun kesambi,
Pseudomonas
aeruginosa dan Staphylococcus aureus diisolasi  dari sampel  klinik , NA  ( Merck  ),  MHA ( Merck  ), ciprofloxacin ( Hexpharm Jaya  ),  clindamisin  ( Indofarma  ),  asam sulfat, aquadest ,  DMSO,  etanol  96%,
FeCl₃,  HCl,  kloroform,  NaCl  Fisiologis, NaOH, paper  disk, pereaksi dragendorf , pereaksi Lieberman-Bouchardat.

## C. Pembuatan ekstrak daun kesambi
Setelah ditimbang, serbuk simplisia sebanyak 1.300 gram dimasukkan ke dalam wadah  maserasi.  Sepuluh  bagian  pelarut etanol  96%  ditambahkan,  dan  campuran didiamkan  selama  18  jam  setelah  6  jam pertama  dihabiskan  perendaman  dengan pengadukan  berkala.  Ulangi  prosedur filtrasi sampai diperoleh larutan yang jernih menggunakan  jenis  pelarut  yang  sama, dengan jumlah total pelarut dibagi dua dari volume yang digunakan pada  penyaringan awal.  Untuk  mendapatkan  ekstrak  kental, dikumpulkan  semua  maserasi  kemudian diuapkan menggunakan rotary evaporator . Setelah  itu,  dihitung  rendeman  yang diperoleh. Rendeman dapat dihitung dengan  rumus  bobot  ekstrak  kental  (g) /bobot  simplisia  awal  (g)  ×  100%
( Farmakope Herbal Indonesia , 2016).
D. Skirning fitokimia
1. Uji alkaloid Sebanyak 0,5 g ekstrak ditambahkan dengan ammonia
berkloroform dan 1 ml H 2 SO 4 2N kemudian dimasukkan kedalam 3 tabung reaksi. Pada tabung reaksi pertama, ditambahkan 2 tetes pereaksi  Mayer  (positif  alkaloid,  tampak endapan  putih),  ditambahkan  2  tetes pereaksi  Dragendorf  ke  tabung  reaksi kedua  (positif  tampak  endapan  coklat kemerahan),  dan  ditambahkan  2  tetes Wagner  ke  Reagen  tabung  reaksi  ketiga (positif alkaloid, endapan coklat kemerahan) (Endarini, 2016).

## 2. Uji flavonoid
Sebanyak1 ml ekstrak ditambahkan
5  ml  HCl  pekat  dan  bubuk  Mg  dikocok.
Positif flaonoid ditandai dengan terbentuknya warna kuning-oranye-merah- ungu (Depkes RI, 2020).

## 3. Uji saponin
Sebanyak1 ml ekstrak+ditambahkan  10  ml  air  dikocok kuat  untuk  membentuk  busa  yang  stabil. Campuran  ditambahkan  1  tetes  HCl  2N. Positif saponin ditandai dengan  busa yang tidak hilang (Depkes RI, 2020).

## 4. Uji tannin
Ekstrak+ditambahkan100  ml  air dipanaskan  hingga  mendidih, disaring dan
ditambahkan  larutan  FeCl 3 .  Positif  tannin, ditunjukkan warna hijau kebiruan (Endarini, 2016).

## 5. Uji terpenoid
Sebanyak1
ml ekstrak+ditambahkan 2 tetes CH 3 COOH + dan 1 tetes H 2 SO 4 pekat (positif terpenoid, tampak warna merah keunguan atau warna hijau kebiruan) (Enerijiofi & Isola, 2019).

## 6. Uji steroid
Ekstrak  dikeringkan  diatas  papan spot  ditambahkan+  3 tetes anhidra  asetat+ dan  1  tetes  H 2 SO 4 pekat.  Positif  steroid ditandai  dengan  warna  biru  (Endarini, 2016).

## E. Uji Aktivitas Antibakteri
Ekstrak  etanol  96%  daun  kesambi ( Schleichera  oleosa) yang  telah  dibuat dengan  konsentrasi  5%,  10%,  dan  15%, dilakukan  perendaman  kertas  cakram,  lalu didiamkan beberapa  saat.  Sebanyak  20  ml media  MHA  steril  ditambahkan  secara aseptik  ke  dalam  cawan  petri,  kemudian didiamkan  hingga  memadat.  Selanjutnya, suspense bakteri uji Pseudomonas aeruginosa diulas  pada  media  MHA tersebut.  Kertas  cakram  diletakkan  diatas mediua  MHA  yang  telah  diinokulasi bakteri  dan diinkubasi selama 24 jam pada suhu  37°C.  Dilakukan  hal  yang  sama
terhadap Staphylococcus  aureus (Salasa, 2019).

## F. Analisis data
Program  data Statistical  Program for Social Science (SPSS) menggunakan uji Kruskal  Wallis  dilanjutkan  dengan  uji Mann  Whitney  untuk  menganalisis  data yang diperoleh.

## III.HASIL DAN PEMBAHASAN
A. Hasil skrining fitokimia
Skrining fitokimia dilakukan untuk mendeteksi  dan  mengidentifikasi  molekul metabolit sekunder spesifik yang ada dalam bahan  alam  yang  akan  diteliti  (Vifta  & Advistasari, 2018). Penelitian ini menunjukkan berbagai komponen metabolit  sekunder,  termasuk  alkaloid, flavonoid,  saponin,  tannin,  dan  steroid dalam  ekstrak  etanol  daun  kesambi.  Hasil yang  diperoleh  dari  identifikasi  senyawa aktif dapat dilihat pada Tabel I.
Tabel I. Hasil skrining fitokimia ekstrak daun kesambi ( Schleichera oleosa ) Golongan Senyawa Pereaksi Hasil Pengamatan Literatur Ket. Alkaloid Mayer Wagner Terdapat endapan Endapan coklat kemerahan Endapan putih Endapan coklat kemerahan + Flavonoid Magnesium + HCl pekat Merah Merah + Saponin Aquadest + HCl 2N Busa tidak hilang setelah pengocokan Busa yang tidak hilang + Tannin Aquadest panas + FeCl₃ Hijau kebiruan Hijau kebiruan + Terpenoid CH₃COOH + H₂SO₄ pekat Tidak terdapat perubahan warna Hijau kebiruan - Steroid Anhidra asetat + H₂SO₄ Larutan berwarna biru Berwarnabiru +

## B. Hasil Uji Aktivitas Antibakteri
Daun  kesambi  ( Schleicheraoleosa ) merupakan  komponen  tumbuhan  yang secara tradisional digunakan untuk menyembuhkan  beraneka  ragam  penyakit
seperti luka dan infeksi kulit akibat bakteri. Penelitian ini dilakukan dengan tujuan guna mengetahui  apakah  ekstrak  daun  kesambi ( S.oleosa) memiliki  sifat  antibakteri  yang dapat menghambat pertumbuhan
P.aeruginosa dan S.  aureus. Penelitian  ini terlebih  dahulu  dilakukan  pembuatan simplisia  daun  kesambi  ( S.oleosa) yang diperoleh  dari  Kabupaten  Kepulauan Selayar.  Metode  maserasi  dengan  pelarut etanol  96%  digunakan  untuk  melakukan proses  ekstraksi.  Metode  ini  memiliki kelebihan yaitu lebih praktis, membutuhkan peralatan yang lebih sedikit, dan  tidak  memerlukan  pemanasan  untuk mencegah  disintegrasi  metabolit  sekunder dalam ekstrak (Yulianti & Santoso, 2020). Etanol merupakan jenis pelarut yang dapat menarik zat kimia, baik polar maupun non polar,  sehingga  etanol  dengan  konsentrasi 96% dipilih sebagai pelarut dalam penelitian ini (Salasa, 2017).
Penelitian  selanjutnya  dilakukan pengujian  aktivitas  antibakteri  terhadap P. aeruginosa dan S. aureus berdasarkan zona bening  yang  terbentuk  pada  area  sekitar paper disc yang sebelumnya telah dilakukan perendaman terhadap sampel uji ekstrak  etanol  dibuat  dalam  berbagai variasi  konsentrasi  yaitu  5%,  10%,  15%. Setelah  dilakukan  perendaman paper  disc di  dalam  sampel  uji  dengan  berbagai konsentrasi  serta  dilakukan  perendaman pada  kontrol  positif  yaitu  siprofloksasin untuk bakteri P. aeruginosa dan klindamisin  untuk  bakteri S.  aureus dan kontrol  negative  yaitu  DMSO,  setelah direndam paper disc ditiriskan.
Perendaman  ini  bertujuan  agar  sampel  uji
beserta  kontrol  meresap  ke  dalam paper disc. Kontrol  negatif  DMSO  digunakan untuk  melarutkan  ekstrak  daun  kesambi ( S.oleosa )  karena  DMSO  juga  melarutkan senyawa polar dan non-polar . Ciprofloxacin  digunakan  sebagai  konrol positif  pada  bakteri P.  aeruginosa karena merupakan  golongan  fluoroquinolon  yang dapat mengakibatkan sintesis DNA bakteri terhambat akibatnya resistensi mikroba pun terhambat  dan  termasuk  antimikroba  yang memiliki spektrum yang luas (Hasanuddin &  Salnus,  2020).  Sebaliknya,  klindamisin biasanya  dipilih  karena  dapat  digunakan untuk  mengobati  infeksi  yang  disebabkan oleh  bakteri  aerob  atau  bakteri  anaerob gram  positif  (Rizki  et  al.,  2021). Klindamisin  digunakan  sebagai  kontrol positif karena S. aureus merupakan bakteri gram positif. Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak  daun  Kesambi  dapat  dilihat    pada Tabel II dan III.
Berdasarkan hasil yang didapatkan, rata-rata zona hambat yakni P. aeruginosa pada konsentrasi 5% dengan diameter 13,3 mm, konsentrasi 10% dengan diameter 15,3 mm,  dan  konsetrasi  15%  dengan  diameter 17,3  mm,  dan  pada  kontro  lpositif didapatkan  diameter  38,3  mm,  serta  pada kontrol  negative  didapatkan  0  mm. Sementara  pengukuran  diameter  zona hambat S.  aureus pada  konsentrasi  5% menghasilkan rata-rata 10,6 mm, konsentrasi 10% menghasilkan rata-rata 12
mm,  konsentrasi  15%  menghasilkan  rata- rata 13,3 mm, kontrol positif menghasilkan diameter  25  mm,  dan  kontrol  negative menghasilkan  diameter  0  mm,  yang menandakan  tidak  adanya  zona  hambat. Berdasarkan  diameter  zona  hambat  yang diperoleh menandakan bahwa ekstrak daun
kesambi  ( Schleichera  oleosa) memiliki sifat bakteriostatik terhadap P. aeruginosa dan S. aureus ditandai dengan  tertutupnya kembali zona hambat setelah pengamatan 1 x 24 jam. Dapat dilihat pada gambar I dan II.
Tabel II. Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak daun kesambi ( Schleichera oleosa ) terhadap pertumbuhan Pseudomonas aeruginosa Bakteri Uji Replikasi Zona HambatPertumuhanBakteri (millimeter) 5% 10% 15% Kontrol (+) Ciprofloxacin Kontrol (-) DMSO Pseudomonas aeruginosa 1 2 3 14 13 13 15 16 15
19 16 17
37 40 38 0 0 0 Rata-rata 13,3 15,3 17,3 38,3 0

## Sumber : Data Primer, 2023
Tabel III. Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak daun kesambi ( Schleichera oleosa ) terhadap pertumbuhan Staphylococcus aureus Bakteri Uji Replikasi Zona HambatPertumuhanBakteri (millimeter) 5% 10% 15% Kontrol (+) Clindamisin Kontrol (-) DMSO Staphylococcus aureus 1 2 3 11 11 10 12 12 12 14 13 13 24 25 26 0 0 0 Rata-rata 10.6 12 13.3 25 0 Sumber : Data Primer, 2023
Gambar  1. Zona  hambat  ekstrak  daun kesambi
terhadap
Pseudomonas aeruginosa Gambar  2. Zona  hambat  ekstrak  daun kesambi terhadap Staphylococcus aureu

## C. Analisis Mann Whitney Ekstrak Daun Kesambi
Pengujian Statistica  Produce  and
Service  Solution (SPSS)  digunakan  untuk pengujian lanjutan dari penelitian ini. Hasil analisis  statistic  dengan  menggunakan  tes normalitas memaparkan bahwa nilai sign. = 0,000  –  0,637  ini  berarti  bahwa  terdapat data  dengan  nilai  sign.  <  0,05  yang mengindikasikan  adanya  data  yang  tidak normal.  Selain  itu,  tes  homogenitas menunjukkan  nilai  sign.  =  0,009  –  0,012 atinya  ada  data  yang  tidak  homogen, sehingga perlu dilakukan uji Kruskal Wallis dilanjutkan dengan uji Mann Whitney.
Berdasarkan analisis Mann Whitney
terhadap P. aeruginosa , konsentrasi ekstrak daun  kesambi  ( Schleichera  oleosa )  5% berbeda nyata antara 10%, 15% dan kontrol positif  (sig  0.043=p<0.05).  Sedangkan, aktivitas  pada  konsentrasi  10%  tidak berbeda nyata dengan 15% (sig
0.072=p>0.05).  Akan  tetapi,  konsentrasi 15% menunjukkan tidak terdapat perbedaan nyata dengan kontrol positif (sig 0.050=p>0.05). Hasil analisis Mann Whitney  disimpulkan  bahwa  konsentrasi 15%  merupakan  konsentrasi  terbaik  untuk P.  aeruginosa karena  tidak  berbeda  nyata dari kontrol positif siprofloksasin. Namun, analisis Mann  Whitney terhadap S.  aureus menemukan adanya perbedaan yang signifikan  pada  tiap  konsentrasi  yang
digunakan. Oleh karena itu, konsentrasi S. aureus yang  terbaik adalah 15%.

## IV. KESIMPULAN
Ekstrak  etanol  96%  daun  kesambi ( S.  oleosa )  memiliki  aktivitas  antibakteri. Konsentrasi  15%  merupakan  konsentrasi yang memiliki daya hambat terbesar dalam menghambat  pertumbuhan P.  aeruginosa dan S. aureus (p=0,046 <0,05).

## KONFLIK KEPENTINGAN
Seluruh peneliti menyatakan bahwa tidak  ada  konflik  kepentingan  dalam penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Ekawati,  E.  R.,  Husnul  Y.,  S.  N.,  & Herawati,  D.  (2018).  Identifikasi Kuman Pada Pus Dari Luka InfeksiKulit. JurnalSainHealth , 2 (1),
31.
https://doi.org/10.51804/jsh.v2i1.174 .31-35 Endarini, L. H. (2016). Farmakognosi dan Fitokimia .  Kementerian  Kesehatan RI. https://library.unissula.ac.id/opac/ind ex.php?p=show_detail&id=57790 Enerijiofi,  K.E.  and  Isola,  O.  .  (2019).
Preliminary Phytochemical screening  and  invitro  antibactreial activities  of  aqueous  and  ethanol extract  of  Ageratum  conyzoides  L. Leaf, stem, Flower and Root on some Bacterial  isolates  associated  with Diarrhoea . Depkes  RI.  (2016). Farmakope  Herbal Indonesia (II). Kementerian
Kesehatan RI.
Depkes  RI.  (2020). Farmakope  Indonesia (VI). Kementerian Kesehatan RI.
Hasanuddin, A. R. P., &Salnus, S. (2020).
Uji BioaktivitasMinyakCengkeh (Syzygiumaromaticum).pdf. Bioma:
JurnalBiologi  Makassar , 5 (2),  241– 250. https://www.neliti.com/id/publicatio ns/326562/uji-bioaktivitas-minyak- cengkeh-syzygium-aromaticum- terhadap-pertumbuhan-bakteri Holil,  K.,  &Griana,  T.  P.  (2020).
AnalisisFitokimia dan AktivitasAntioksidanEkstrak Daun
Kesambi  (Schleiraoleosa)  Metode
DPPH. Journal of Islamic Pharmacy ,
5 (1), 28.
https://doi.org/10.18860/jip.v5i1.938 7
Jose,  S.,  and  Sinha,  M.  P.  (2016). Phytochemistry  and  Antibactreial Efficacy  of  Schleicheraoleosa  on Some  Human  Pathogenic  Bacteria. IntrenationalQuerterly  Journal  of Environmental Science , 9 , 221–227. Novard, M. F. A., Suharti, N., & Rasyid, R. (2019).
Gambaran BakteriPenyebabInfeksi  Pada  Anak Berdasarkan Jenis Spesimen dan Pola
Resistensinya di Laboratorium RSUP Dr.  M.  Djamil  Padang  Tahun  2014- 2016. Jurnal  Kesehatan  Andalas ,
8 (2S), 26. https://doi.org/10.25077/jka.v8i2s.95 5 Prasetyo, W. S. (2020). Uji AktivitasAntibakteriEkstrak Daun Kesambi (Schleicheraoleosa) TerhadapPertumbuhanBakteri
Salmonella  thypi .  http://etheses.uin- malang.ac.id/20998/
Puspawati,  N.  M.,  Yasa,  I.  G.  T.  M.,
&Suirta, I. W. (2018). AktivitasAntibakteriEkstrakMetanol Daun Cendana ( Santalum album L .) TerhadapBakteri
Staphylococcus
aureus  dan  Escherichia  coli. Cakra Kimia , 6 (2), 116–122. https://ojs.unud.ac.id/index.php/cakr a/article/view/46702 Rizki,  S.  A.,  Latief,  M.,  Fitrianingsih,  &
Rahman, H. (2021).
Uji
AktivitasAntibakteriEkstrak
N- Heksan, Etil Asetat, dan Etanol Daun Durian  (Durio  zibethinus  Linn.) TerhadapBakteri  Propionibacterium acnes dan Staphylococcus epidermidis. JMJ,  Special  Issues, JAMHESIC , Spesial Issues , 444–445.
https://online-
journal.unja.ac.id/kedokteran/article/ view/14668/13872 Salasa, A. M. (2017). AktivitasEkstrakKulitBuah Nanas (Ananas coosus L.) TerhadapPertumbuhan Pseudomonas aeruginosa. Media Farmasi , 87 (1,2),
149–200. https://doi.org/10.32382/mf.v13i2.78 6 Salasa, A. M. (2019). AktivitasAntibakteriRebusanKulitBu ah Manggis (garcinia mangostana L) terhadappertumbuhan staphylococcus aureus dan salmnellathypi. Journal  of  Chemical Information  and  Modeling , 53 (9),
1689–1699.
https://doi.org/https://doi.org/10.323
82/mf.v14i1.79
Situmeang,  B.,  Nuraeni,  W.,  Malik Ibrahim,  A.,  &SaronomSilaban,  D. (2016). Analysis of secondary metabolite  compounds  from  leaves extract  kesambi  (Schleicheraoleosa) and  antioxidant  activity  test. Jurnal Pendidikan  Kimia , 8 (3),  164–168. https://doi.org/https://doi.org/10.241 14/jpkim.v8i3.4479
Vifta,  R.  L.,  &Advistasari,  Y.  D.  (2018).
SkriningFitokimia, Karakterisasi, dan Penentuan  Kadar  Flavonoid  Total Ekstrak dan Fraksi- FraksiBuahParijoto (Medinilla speciosa  B.). Prosiding  Seminar Nasional Unimus , 1 , 8–14.
https://prosiding.unimus.ac.id/index. php/semnas/article/view/19 Yulianti,  I.,  &  Santoso,  J.  (2020). Identifikasi Tanin dan AktivitasAntioksidanEkstrak  Daun Benalu Mangga
(Dendrophthoepetandra) Menggunakan  Metode  Maserasi  dan
Sokletasi. JurnalParapemikir  PHB ,
10 (10),
1–6. http://eprints.poltektegal.ac.id/107/