## Peningkatan Pertumbuhan Tanaman Cabai dan
Pengendalian Busuk Phytophthora melalui Biopriming Benih dengan Rizobakteri Asal Pertanaman Cabai Jawa Timur
Improve Plant Growth of Chilli and Control Phytophthora Blight with Biopriming of Seed Using Rhizobacteria from Chili Plants in East Java
Aulia Zakia 1 , Satriyas Ilyas 2* , Candra Budiman 2 , Syamsuddin 3 , dan Dyah Manohara 4
Diterima 07 November 2016/Disetujui 18 Oktober 2017

## ABSTRACT
The  objectives  of  this  study  was  to  evaluate  biopriming  of  chili  seed  with  rhizobacteria  to improve  plant  growth  and  control  Phytophthora  blight  disease  in  a  greenhouse.  This  experiment used  three  isolates  of  rhizobacteria,  i.e.  E1,  E3C2  and  F2B1,  and  isolate  Phytophthora  capsici (Cb6)  isolated  from  the  production  center  of  chili  in  East  Jawa.  Laris  variety  from  PT. East  West was used in this experiment. This experiment used randomized block design with one factor, i.e. 11 levels  of  seed  treatment  (E1  rhizobacteria,  E3C2  rhizobacteria,  F2B1  rhizobacteria,  E1+E3C2 rhizobacteria,  E1+F2B1  rhizobacteria,  E1+E3C2+F2B1  rhizobacteria,  seed  soaking  in  water, without  soaking,  metalaxyl,  positive  control  and  negative  control).  The  result  showed  that  seed treatment with combination of E1+F2B1 isolates when grown in nursery, significantly increased the height and number of leaves in chilli. Besides, seed treatment with F2B1 isolate and combination of E1+F2B1  isolates  after  transplanting  were  capable  to  improve  plant  growth  and  control Phytophthora blight disease in greenhouse.
Keywords: greenhouse, isolate rhizobacteria, Phytophthora capsici

## ABSTRAK
Tujuan penelitian ini ialah mengevaluasi perlakuan biopriming benih cabai dengan rizobakteri dalam meningkatkan pertumbuhan bibit dan mengendalikan kejadian busuk Phytophthora di rumah kaca. Perlakuan biopriming benih dengan rizobakteri menggunakan tiga isolat rizobakteri E1, E3C2 dan F2B1 dan isolat Phytophthora capsici Cb6 hasil eksplorasi pertanaman cabai Jawa Timur. Benih yang  digunakan  dalam  percobaan  merupakan  benih  varietas  Laris  produksi  PT.  East  West. Percobaan  menggunakan  rancangan  acak  kelompok  satu  faktor,  masing-masing  perlakuan  diulang empat kali, dengan 11 taraf perlakuan, antara lain R0+ (kontrol positif, benih direndam dalam PDB tanpa perlakuan rizobakteri dengan inokulasi P. capsici ), R0- (kontrol negatif, benih direndam dalam PDB tanpa perlakuan rizobakteri dan tanpa inokulasi P. capsici ), R1 (perlakuan benih dengan isolat E1),  R2  (isolat  E3C2),  R3  (isolat  F2B1),  R4  (kombinasi  isolat  E1+E3C2),  R5  (kombinasi  isolat E1+F2B1),  R6  (kombinasi  isolat  E1+E3C2+F2B1),  R0RA  (benih  direndam  dalam  air  24  jam), R0TR  (benih  tanpa  rendam),  R0M  (benih  direndam  dalam  metalaksil).  Tanah  inokulum P.  capsici diberikan 28 hari setelah pindah-tanam di sekitar pangkal batang tanaman cabai di bawah permukaan tanah. Hasil percobaan menunjukkan, perlakuan dengan kombinasi isolat E1+F2B1 saat persemaian di rumah kaca nyata meningkatkan tinggi dan jumlah daun tanaman cabai. Perlakuan benih dengan isolat  F2B1  maupun  kombinasi  isolat  E1+F2B1  setelah  pindah-tanam  di  rumah  kaca  memiliki kemampuan meningkatkan pertumbuhan tanaman serta mengendalikan penyakit busuk Phytophthora.
Kata kunci: isolat rizobakteri, Phytophthora capsici , rumah kaca
1 Mahasiswa Program Studi Ilmu dan Teknologi Benih, Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor
2 Departemen Agronomi dan Hortikultura, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor (Bogor Agricultural University), Jl. Meranti, Kampus IPB Darmaga, Bogor 16680, Indonesia
3 Departemen Agroekoteknologi Fakultas Pertanian, Universitas Syah Kuala, Kampus Darussalam, Banda Aceh, Indonesia
4 Balai Penelitian Tanaman Obat dan Aromatik, Jl. Tentara Pelajar No. 3A Menteng, Bogor Barat Email: satriyas252@gmail.com (*penulis korespondensi)

## PENDAHULUAN
Invigorasi merupakan upaya memperbaiki mutu  fisiologis  benih  dengan  meningkatkan performa benih yang telah mengalami kemunduran  (deteriorasi).  Invigorasi  benih sebelum  tanam  dapat  dilakukan  dengan mekanisme  penyerapan  air  oleh  benih  secara terkontrol, yaitu dengan cara priming ( osmopriming/  osmoconditioning )  dan solid matrix  priming / matriconditioning (Ilyas,  2012). Perbedaan  antara priming dengan matri- conditioning adalah  media  yang  digunakan. Priming menggunakan media cairan, sedangkan matriconditioning menggunakan media  padat  dalam  keadaan  lembab  dengan potensial  matrik  rendah  (daya  ikat  air  yang tinggi)  (Sutariati et  al., 2014).  Kedua  media yang  digunakan  dalam  perlakuan  tersebut harus memiliki sifat tidak beracun bagi benih.
Priming dengan mengintegrasikan agens hayati  dalam  larutan  perlakuan  disebut biopriming (Ilyas et  al .,  2015). Biopriming menggunakan  rizobakteri  yang  memiliki kemampuan  sebagai biofertiliser atau  PGPR, serta  berperan  menjadi  antagonis  dipilih sebagai  perlakuan  benih  untuk  mendapatkan hasil  yang  maksimal.  Menurut  Sutariati et  al . (2014), selain memberikan perbaikan, perlakuan biopriming juga  berperan  sebagai media  inokulasi  rizobakteri  terhadap  benih. Invigorasi  benih  melalui biopriming dengan rizobakteri memberikan manfaat bagi tanaman,  serta  terbukti  efektif  meningkatkan viabilitas  dan  vigor  benih  (Ilyas et  al .,  2002; Sutariati et al ., 2014). Pengendalian penyakit busuk
Phytophthora, yang disebabkan oleh cendawan Phytophthora  capsici umumnya  dilakukan dengan  mengaplikasikan  fungisida  sintetik, bahan  aktif  metalaksil  dan  mefanoksam (Hausbeck  dan  Lamour,  2004).  Pengendalian dengan  cara  tersebut  menyebabkan  adanya residu  yang  tertinggal  dan  merusak  lingkungan. Cendawan P.  capsici bersifat soil  borne dan water  borne (Wahyuno,  2009),  serta seed borne (Agarwal dan Sinclair, 1997). Biopriming benih  dengan  menambah  rizobakteri  dapat menjadi alternatif
perlakuan
untuk mengendalikan  penyakit  busuk  Phytophthora. Hasil  penelitian  Syamsuddin  (2010),  Ibrahim et  al .  (2014),  dan  Rosadiah et  al .  (2015), menunjukkan bahwa rizobakteri sebagai
perlakuan benih mampu meningkatkan pertumbuhan  tanaman  dan  mengendalikan penyakit  busuk  Phytophthora  yang    disebabkan oleh patogen P. capsici . Kemampuan rizobakteri sebagai agen biokontrol inilah yang secara  tidak  langsung  dapat  meningkatkan mutu kesehatan benih. Berdasarkan penjelasan tersebut, penelitian ini bertujuan mengevaluasi perlakuan biopriming benih dengan rizobakteri yang  efektif  meningkatkan  pertumbuhan tanaman  cabai  dan  mengendalikan  penyakit busuk Phytophthora di rumah kaca.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Hama  dan  Penyakit  Balittro  (Balai  Penelitian Tanaman  Rempah  dan  Obat)  Cimanggu, Laboratorium  Kesehatan  Benih  dan  rumah kaca  Leuwikopo,  Departemen  Agronomi  dan Hortikultura, Fakultas Pertanian Institut Pertanian  Bogor.  Penelitian  dimulai  bulan Oktober 2015 sampai Februari 2016.

## Benih Cabai
Percobaan  menggunakan  benih  cabai varietas  Laris  yang  diproduksi  dan  diperoleh dari  PT.  East  West  Indonesia.  Benih  cabai dipanen  tanggal  19  November  2014.  Benih disimpan  selama  7  bulan  dalam  ruang  simpan benih  dengan  suhu  20 0 C  (setelah  benih didapatkan dari PT. East West Indonesia pada Maret  2015,  sampai  benih  digunakan  dalam percobaan).  Benih  cabai  sebelum  digunakan dalam  percobaan  terlebih  dahulu  diuji  daya berkecambah,  indeks  vigor,  keserempakan tumbuh  (metode  uji  di  atas  kertas stensil , ISTA, 2014), dan kadar air (metode oven suhu rendah,  ISTA,  2014).  Hasil  pengujian  mutu benih  pada  6  Oktober  2015  menunjukkan bahwa daya berkecambah sebesar 64%, indeks vigor  0%,  keserempakan  tumbuh  10.8%,  dan kadar  air  5.5%.  Indeks  vigor  nol,  disebabkan oleh  kadar  air  benih  rendah  saat  pengujian, sehingga  membutuhkan  waktu  yang  relatif lama dalam periode imbibisi benih, ditunjukkan  dengan  tidak  ada  kecambah normal  pada  hitungan  pertama  (7  hari  setelah tanam).  Benih  cabai  varietas  Laris  dipilih karena  menurut  Yunianti et  al .  (2007),  rentan terhadap serangan P. capsici .
Tabel 1. Tiga isolat rizobakteri terpilih dan memiliki kemampuan untuk menghambat P. capsici Sampel Keterangan Asal Isolat Media Isolasi E1 Berasal dari lokasi E (Desa Tegalgondo, Kec. Dau, Kab. Malang, Jawa Timur) (kode isolat Eana3) Rizoplan NA E3C2 Berasal dari lokasi E (Desa Tegalgondo, Kec. Dau, Kab. Malang, Jawa Timur) (kode isolat Eatsap1) Rizoplan TSAP F2B1 Berasal dari lokasi F (Desa Gayam, Kec. Gurah, Kab. Kediri, Jawa Timur) (kode isolat Fana9) Rizoplan NA
Keterangan:   rizoplan  =  rizosfer  yang  menempel  pada  perakaran  tanaman;  NA  =  media  isolasi  rizobakteri natrium agar ; TSAP = media isolasi rizobakteri tryptic soy agar (TSA), yang dimodifikasi dengan memanaskan suspensi  tanah  rizosfer  dalam waterbath pada  suhu  80 0 C  selama  30  menit  sebelum  digunakan  dalam isolasi rizobakteri.
Isolat Rizobakteri dan Phytophthora capsici
Tiga  isolat  rizobakteri  yang  digunakan merupakan  isolat  yang  memiliki  daya  hambat tertinggi hasil penelitian ( in vitro ) sebelumnya, diperoleh  dari  hasil  eksplorasi  pertanaman cabai  Jawa  Timur,  yaitu  isolat  E1,  E3C2  dan F2B1  (Tabel  1).  Isolat P.  capsici juga merupakan  isolat  koleksi  hasil  eksplorasi pertanaman  cabai  Jawa  Timur  dengan  kode Cb6, berasal dari Desa Tegalgondo,
Kecamatan  Dau,  Kabupaten  Malang,  Jawa Timur.

## Perlakuan Benih
Biopriming dan priming sebagai perlakuan  benih  mengacu  pada  metode Ibrahim et al. (2014) dan Syamsuddin (2010). Benih cabai sebelum perlakuan terlebih dahulu diberi  disinfektan  dengan  merendam  benih dalam  alkohol  70%  selama  3  menit.  Benih dicuci  tiga  kali  dengan  akuades  yang  telah disterilkan  dalam  autoklaf  pada  suhu  121 0 C dengan  tekanan  1.02  MPa  selama  15  menit, kemudian  dikering-anginkan  dalam laminar air  flow  cabinet (LAFC)  selama  1  jam. Sebanyak  450  benih  yang  telah  dikeringkan, diberi  perlakuan  dengan  cara  direndam  dalam 50  mL  suspensi  isolat  rizobakteri  selama  24 jam  pada  suhu  20 0 C.  Benih  yang  telah direndam,  kemudian  ditiriskan  dan  dikering- anginkan  dalam  LAFC  selama  1  jam  sebelum disemai (Ibrahim et al., 2014). Suspensi isolat rizobakteri dibuat dengan menambahkan 10 mL akuades steril ke dalam  cawan  petri  berisi  media potato dextrose  agar (PDA)  dan  isolat  rizobakteri (umur  3-4  hari  setelah  inokulasi).  Sebanyak  1
mL  suspensi  tersebut  ditambahkan  ke  dalam 50 mL potato dextrose broth (PDB) kemudian dicampur menggunakan shaker dengan kecepatan 100  rpm  selama  48  jam  (Syamsuddin,  2010). Suspensi  isolat  rizobakteri  dihitung  kerapatan populasinya,  menggunakan  spektrofotometer pada  OD 600 .  Suspensi  kombinasi  isolat rizobakteri  dibuat  dengan  mencampurkan  2-3 suspensi  isolat  rizobakteri,  masing-masing perbandingan 1:1 v/v.
Priming benih  cabai  menggunakan larutan  metalaksil  konsentrasi  800  ppm (Rosadiah et  al .,  2015).  Larutan  metalaksil dibuat  dengan  cara  mengencerkan  0.04  g metalaksil (Saromil, 35% metalaksil) dalam 50 mL  akuades.  Benih  cabai  yang  telah  diberi desinfektan, kemudian direndam dalam larutan metalaksil  selama  24  jam  pada  suhu  20 0 C. Benih yang telah direndam, kemudian ditiriskan dan dikering-anginkan dalam LAFC selama 1 jam sebelum disemai.

## Rancangan Percobaan
Percobaan disusun menggunakan rancangan  acak  kelompok  satu  faktor,  yang mana biopriming dengan  rizobakteri  sebagai faktor  perlakuan.  Perlakuan  benih biopriming dan priming terdiri  atas  11  taraf  sebagai berikut:
1. R0-
:  kontrol  negatif  (benih  direndam dalam PDB tanpa rizobakteri dan tanpa inokulasi P. capsici )
2. R0+ :  kontrol  positif  (benih  direndam dalam PDB tanpa rizobakteri dan diinokulasi P. capsici )
3. R0RA  :  kontrol benih direndam dalam air
24 jam (suhu 20 0 C)
4. R0TR : kontrol benih tanpa rendam
5. R0M  : Priming dengan metalaksil (50 mL, konsentrasi 800 ppm) 6. R1 : Biopriming dengan isolat rizobakteri 1 7. R2 : Biopriming dengan isolat rizobakteri 2 8. R3 : Biopriming dengan isolat rizobakteri 3 9. R4 : Biopriming dengan kombinasi isolat rizobakteri 1 dan 2 10. R5 : Biopriming dengan kombinasi isolat rizobakteri 1 dan 3 11. R6 : Biopriming dengan kombinasi isolat rizobakteri 1, 2, dan 3
Masing-masing  perlakuan  diulang  empat  kali, sehingga terdapat 44 satuan percobaan.

## Penyemaian Benih Cabai
Benih  yang  telah  diberi  perlakuan disemai  dalam seed  tray ,  dengan  media pembibitan  berupa  campuran  tanah,  pasir, arang  sekam, cocopit (1:1:1:1  v/v/v/v).
Persemaian  cabai  dalam  rumah  kaca  dan pemeliharaan dilakukan secara kontinu. Setiap unit percobaan terdiri atas 100 benih, sehingga terdapat 4400 satuan pengamatan.
Variabel pengamatan fase pengecambahan (pembibitan)  meliputi  daya  berkecambah (DB),  potensi  tumbuh  maksimum  (PTM), kecepatan  tumbuh  (K CT ),  indeks  vigor  (IV), keserempakan  tumbuh  (K ST ),  tinggi  bibit  dan jumlah daun.

## Penanaman dan pertumbuhan tanaman cabai
Benih  yang  telah  disemai  (45  hari setelah  tanam)  dipilih  secara  acak  untuk dipindah-tanam  bersamaan  dengan  media semainya,  ke  dalam  polibag  (satu  bibit  per polibag)  dengan  media  tanam  berupa  tanah, pupuk  kandang,  dan  arang  sekam  steril  (2:1:1 v/v/v).  Masing-masing  satuan  percobaan terdiri atas 15 tanaman, sehingga terdapat 660 satuan  pengamatan.  Pemeliharaan  tanaman cabai  secara  kontinu  meliputi  penyiraman, penyiangan,  pemupukan  pertama  (3.4  g  per  3 kg media tanam, 7 hari setelah pindah tanam) dan  pemupukan  kedua  (2.4  g  per  3  kg  media tanam,  21  hari  setelah  pindah  tanam) menggunakan pupuk NPK majemuk 15:15:15, pengendalian  hama  (penyemprotan  insektisida apabila  memang  benar-benar  diperlukan),  dan pemangkasan daun wiwilan (tunas air).

## Pembuatan dan  Inokulasi  Tanah  Inokulum Phytophthora capsici
Tanah  inokulum P.  capsici ditambahkan ke dalam media tanam cabai berumur 4 minggu setelah  pindah  tanam.  Penambahan  tanah inokulum dilakukan dengan cara menyebar 10 g tanah  inokulum  di  sekeliling  pangkal  batang (tanpa  pelukaan)  pada  setiap  polibag  kecuali kontrol negatif. Tanah inokulum dibuat berdasarkan  metode  Manohara  (1988)  dengan cara  2  kg  tanah  (kering  dan  diayak)  ditambah  1 kg pasir (kering dan diayak), kemudian dicampur dengan  4%  oatmeal  (halus),  dan  diberi  air secukupnya (± 15 mL per 50 g campuran tanah, pasir dan oatmeal). Selanjutnya, tanah inokulum distrerilisasi  sebanyak  dua  kali  dengan  autoklaf pada suhu 120 0 C selama 20 menit (jeda  waktu sterilisasi  pertama  dan  kedua  adalah  24  jam). Potongan  biakan P.  capsici umur  5  hari  setelah inokulasi  diinvestasikan  ke  tanah  yang  sudah steril dan diinkubasi pada suhu ruang (23-25 0 C) selama 2 minggu.
Variabel  pengamatan  setelah  pindah tanam (fase  pertumbuhan  tanaman)  meliputi kejadian penyakit (Babadoost et al ., 2008), tinggi tanaman, jumlah daun, dan diameter batang.
Analisis  data  menggunakan  uji  F,  dan apabila  terjadi  pengaruh  nyata  dilanjutkan dengan  uji  DMRT  pada  taraf  5%.  Data variabel  kejadian  penyakit  juga  diuji  Kontras Ortogonal pada taraf 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Kondisi Umum Lokasi Percobaan
Percobaan dilakukan dalam  rumah kaca Kebun  Percobaan  Leuwikopo,  Kecamatan Dramaga, Kabupaten Bogor dengan ketinggian 240  meter  di  atas  permukaan  laut  (m  dpl). Rumah  kaca  memiliki  jendela  yang  terbuat dari kawat sehingga tidak tertutup rapat. Suhu siang hari di dalam rumah kaca berkisar antara 28-33 0 C.  Paranet  dengan  kerapatan  sekitar 40%  dipasang  di  sekeliling  jendela  rumah kaca, untuk mengurangi serangan hama. Hama yang  sering  dijumpai  selama  percobaan berlangsung  antara  lain  ulat  ( Spodoptera litura ), kutu daun ( Myzus persicae ), kutu putih ( Bemisia  tabaci ),  dan  trip  ( Thrips sp.). Pengendalian hama dengan cara menyemprotkan insektisida, bahan aktif
Abamektin dan Karbosulfan secara bergantian.
Tabel 2. Pengaruh biopriming benih  terhadap  daya  berkecambah  (DB),  potensi  tumbuh  maksimum (PTM), kecepatan tumbuh (K CT ), indeks vigor (IV), dan keserempakan tumbuh (K ST ) Perlakuan DB (%) PTM (%) K CT (% etmal -
1 ) IV (%) K ST (%) R0 66.5  a 67.5  a 8.2  a 32.0  a 49.5  a R1 39.3  dc 39.8  cd 4.5  bc 12.3  bc 26.8  bcd R2 40.3  bcd 42.8  bcd 4.6  bc 15.5  b 27.3  bcd R3 59.8  ab 60.8  ab 7.6  a 29.5  a 49.5  a R4 55.5  abc 56.8  abc 6.4  ab 19.3  ab 38.5  abc R5 31.3  d 32.8  d 3.4  c 6.5  cd 22.3  cd R6 30.3  d 30.5  d 3.5  c 11.3  bc 21.0  cd R0RA 58.5  ab 59.3  ab 7.8  a 33.3  a 45.8  ab R0TR 58.0  ab 60.3  ab 5.9  ab 6.8  cd 31.0  abcd R0M 49.5  abc 50.3  abc 4.5  bc 2.8  d 16.3  d KK 12.5 12.2 12.8 21.9 20.0
Keterangan:   Angka pada kolom  yang sama dengan huruf  yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada taraf  α=  5%.  R0  (kontrol,  benih  direndam  dalam  PDB  tanpa  perlakuan  rizobakteri),    R1  (perlakuan benih  dengan  isolat  E1),  R2  (isolat  E3C2),  R3  (isolat  F2B1),  R4  (kombinasi  isolat  E1+E3C2),  R5 (kombinasi isolat E1+F2B1), R6 (kombinasi isolat E1+E3C2+F2B1), R0RA (benih direndam dalam air 24  jam),  R0TR  (benih  tanpa  rendam),  R0M  (benih  direndam  dalam  metalaksil).  Sebelum  diolah  data ditransformasikan dengan rumus
Evaluasi Biopriming dengan  Rizobakteri terhadap  Pertumbuhan  Tanaman  Cabai dan Kejadian Penyakit Busuk Phytophthora
Pengaruh biopriming dengan rizobakteri terhadap  viabilitas  dan  vigor  benih  dapat dilihat  dalam  Tabel  2.  Berdasarkan  hasil penelitian  diketahui  bahwa biopriming benih R3  (isolat  F2B1)  memiliki  nilai  yang  relatif tinggi  baik  pada  variabel  daya  berkecambah (DB),  potensi  tumbuh  maksimum  (PTM), kecepatan  tumbuh  (K CT ),  indeks  vigor  (IV), dan  keserempakan  tumbuh  (K ST ),  meskipun tidak berbeda nyata bila dibandingkan dengan kontrol tanpa rizobakteri (R0) maupun perlakuan benih dengan merendam dalam air (R0RA). Perlakuan  R3  (isolat  F2B1)  nyata memiliki  kemampuan  untuk  meningkatkan pertumbuhan kecambah, meskipun nilai tersebut  belum  menunjukkan  pencapaian maksimal.  Hal  ini  kemungkinan  disebabkan oleh  penyesuaian  rizobakteri  yang  menempel pada  permukaan  benih  (atau  bahkan  terserap dalam  benih)  selama  proses biopriming berlangsung  dan  setelah  ditanam  pada  media semai.  Aktivitas  bakteri  dalam  beradaptasi inilah  yang  diduga  menyebabkan  pengaruh terhadap hasil dari setiap variabel pengamatan. Kontrol  perlakuan  benih  tanpa  rendam (R0TR)  pada  Tabel  2  ditujukan  untuk mengoreksi  hasil  pengujian  DB,  IV,  dan  K CT benih  sebelum  perlakuan.  Hasil  tersebut
menunjukkan bahwa viabilitas dan vigor benih rendah,  bahkan  di  bawah  standar  benih bermutu  (standar  pemerintah  yang  tercantum dalam  kemasan  75-80%).  Menurut  Siri et  al . (2013), perkecambahan benih paprika melebihi  90%  tidak  memerlukan  restorasi (invigorasi),  sedangkan  perkecambahan  benih lebih rendah dari 80% tidak dapat dikembalikan lebih besar dari 80%. Berdasarkan  nilai  K CT ,  IV,  K ST pada  kontrol perlakuan  benih  rendam  dalam  air  (R0RA), kontrol  perlakuan- priming dalam  media  PDB tanpa rizobakteri (R0), dan biopriming dengan isolat  F2B1  (R3)  (Tabel  2),  membuktikan bahwa perlakuan priming nyata meningkatkan vigor  benih  dibandingkan  kontrol  benih  tanpa rendam (R0TR). Perlakuan biopriming memiliki  nilai  K CT ,  IV,  dan  K ST lebih  rendah dibanding  dengan  kontrol  (baik  R0  maupun R0RA),  diduga  disebabkan  oleh  perbedaan potensial  larutan priming .  Larutan priming berupa  media  PDB  yang  telah  ditambah dengan  rizobakteri  kemungkinan  memiliki potensial  larutan  yang  lebih  rendah  (larutan lebih pekat) dibandingkan air dan media PDB tanpa  rizobakteri.  Benih  yang  digunakan dalam  perlakuan  memiliki  kadar  air  sebesar 5.5%,  sehingga  untuk  mencapai  kesetimbangan antara  potensial  air  dalam  benih  dengan potensial larutan priming membutuhkan waktu yang relatif lama. Menurut Jeller et al. (2003), semakin  rendah  nilai  potensial  air  dalam
benih,  waktu  yang  dibutuhkan  dalam  proses osmoconditioning semakin  lama.  Disamping itu, adanya aktivitas rizobakteri  menyesuaikan diri pada lingkungan baru diduga berpengaruh terhadap viabilitas dan vigor benih.
Berdasarkan  hasil  ini,  dapat  disimpulkan bahwa media PDB sebagai larutan priming dan media hidup bagi rizobakteri, tidak menghambat perkecambahan benih.
Daya  berkecambah  (DB)  perlakuan biopriming dengan  rizobakteri  secara  umum lebih  rendah  dibanding  dengan  kontrol  tanpa rizobakteri  (R0),  kontrol  rendam  dalam  air (R0RA)  maupun  kontrol  tanpa  rendam (R0TR).  Hal  tersebut  diduga  disebabkan  oleh viabilitas  benih  rendah  sebelum  perlakuan (sebesar  58%  pada  perlakuan  tanpa  rendam/ R0TR).  Menurut  Zaghdani  (2002),  viabilitas benih rendah dapat disebabkan oleh kerusakan mekanis  berupa  retakan  pada  testa  selama penyimpanan, sehingga menyebabkan kebocoran benih. Kebocoran benih menyebabkan kerusakan benih  selama  proses  imbibisi.  Proses  imbibisi yang  terlalu  cepat  dan  tidak  terkontrol  atau disebut imbibition  damage / imbibition  injury , didukung  oleh  kadar  air  benih  rendah  sebesar 5.5%, sehingga beda potensial air dalam benih dengan  larutan priming terlalu  besar.  Hal  ini ditunjukkan  oleh nilai  DB  yang  tidak  berbeda
nyata dengan nilai potensi tumbuh  maksimum (PTM).  Ward  dan  Powell  (1983)  menyatakan bahwa  benih  dengan  kelembaban  rendah  sangat rentan terhadap stres selama penyerapan air.
Imbibisi  merupakan  periode  awal  benih menyerap  air  yang  ditentukan  oleh  mutu benih.  Zaghdani  (2002)  menjelaskan  bahwa imbibisi  air  berfungsi  sebagai  aktivitas enzimatik dan transportasi reaktan. Banyak air yang diserap benih tergantung pada komposisi benih,  jenis  benih,  kadar  air  benih  sebelum imbibisi,  kondisi  kulit  benih,  serta  faktor  dari luar benih seperti suhu dan status air.
Biopriming dengan  kombinasi  isolat  E1 dan  F2B1  (R5)  menunjukkan  hasil  terbaik pada  variabel  tinggi  bibit  dan  jumlah  daun selama  di  persemaian  (Tabel  3  dan  Tabel  4). Peran  rizobakteri  terbukti  mempengaruhi pertumbuhan bibit di persemaian. Benih dapat tumbuh dalam kondisi optimal, memanfaatkan nutrisi  dari  media  persemaian  dan  air  yang diberikan  secara  maksimal,  mengingat  selama pemeliharaan tanaman belum diberikan pupuk tambahan. Hal ini seperti yang dijelaskan oleh Mendes et  al. (2013),  bahwa  rizobakteri memiliki  kemampuan  sebagai biofertilizer , menstimulasi  pertumbuhan  akar,  mengontrol stres abiotik, dan mengendalikan penyakit.
Tabel 3. Pengaruh biopriming benih terhadap tinggi bibit 21-42 hari setelah tanam (HST) di persemaian
Perlakuan Tinggi Bibit (cm) 21 HST 28 HST 35 HST 42 HST R0 4.37  cd 6.25  bc 8.42  bcd 12.12  bc R1 4.74  bcd 6.28  bc 8.28  bcd 10.01  cd R2 4.14  d 5.96  c 6.92  d 8.64  d R3 4.89  bc 6.99  b 9.86  b 13.05  ab R4 4.74  bcd 6.61  bc 8.41  bcd 11.39  bcd R5 5.63  a 8.17  a 11.75  a 15.12  a R6 5.23  ab 6.23  bc 7.85  cd 9.90  cd R0RA 4.42  cd 5.85  c 7.47  cd 9.17  d R0TR 4.48  cd 6.40  bc 8.91  bc 12.25  bc R0M 4.15  d 6.01  c 7.26  cd 9.19  d KK 7.9 9.0 12.8 15.2
Keterangan:   Angka pada kolom  yang sama dengan huruf  yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada taraf α = 5%. R0 (kontrol, benih direndam dalam PDB tanpa perlakuan rizobakteri),  R1 ( biopriming benih  dengan  isolat  E1),  R2  (isolat  E3C2),  R3  (isolat  F2B1),  R4  (kombinasi  isolat  E1+E3C2),  R5 (kombinasi isolat E1+F2B1), R6 (kombinasi isolat E1+E3C2+F2B1), R0RA (benih direndam dalam air 24 jam), R0TR (benih tanpa rendam), R0M (benih direndam dalam metalaksil).
Tabel 4. Pengaruh biopriming benih terhadap jumlah daun 21-42 hari setelah tanam (HST) di persemaian
Perlakuan Jumlah Daun (helai) 21 HST 28 HST 35 HST 42 HST R0 2.0 3.0  bc 4.2  bc 5.6  bc R1 2.0 3.2  bc 4.0  c 5.0  bc R2 2.1 2.9  bc 3.7  c 4.8  bc R3 2.0 3.3  b 4.8  b 6.0  b R4 2.2 2.9  bc 4.3  bc 5.3  bc R5 2.0 4.2  a 5.5  a 6.9  a R6 2.0 3.0  bc 3.9  c 5.3  bc R0RA 2.0 3.2  bc 4.0  c 4.9  bc R0TR 2.0 2.9  bc 4.2  bc 5.5  bc R0M 2.1 2.8  c 3.8  c 4.7  c KK 5.6 9.8 10.8 12.7
Keterangan:   Angka pada kolom  yang sama dengan huruf  yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada taraf α = 5%. R0 (kontrol, benih direndam dalam PDB tanpa perlakuan rizobakteri),  R1 ( biopriming benih  dengan  isolat  E1),  R2  (isolat  E3C2),  R3  (isolat  F2B1),  R4  (kombinasi  isolat  E1+E3C2),  R5 (kombinasi isolat E1+F2B1), R6 (kombinasi isolat E1+E3C2+F2B1), R0RA (benih direndam dalam air 24 jam), R0TR (benih tanpa rendam), R0M (benih direndam dalam metalaksil).
Biopriming R5 (isolat E1+F2B1) berpengaruh  nyata  terhadap  tinggi  bibit  dan jumlah daun 28-42 HST (Tabel 3 dan Tabel 4). Hal  ini  ditunjukkan  oleh  selisih  tinggi  bibit seluruh  kontrol  dan  perlakuan  pada  21  HST berkisar antara 0.01-0.4 cm, sedangkan selisih tinggi  bibit  pada  42  HST  sebesar  0.5-2  cm. Menurut Amrullah (2000), kandungan klorofil daun  berpengaruh  positif  terhadap  komponen pertumbuhan  seperti  jumlah  daun,  tinggi tanaman,  dan  jumlah  cabang.  Disamping  itu, pertumbuhan tanaman sangat bergantung pada dominasi  apikal.  Faktor  yang  mempengaruhi dominasi  apikal  adalah  hormon,  transport  air
dan  nutrisi  dari  tanah,  fotosintesis  dan  alokasi hasil asimilasi.
Pertumbuhan  tanaman  cabai  setelah pindah  tanam  menunjukkan  peningkatan  yang nyata. Pada variabel tinggi tanaman, kombinasi isolat E1 dan F2B1 (perlakuan R5) menunjukkan nilai yang relatif tinggi meskipun  tidak  berbeda  nyata  dengan  kontrol positif  dan  kontrol  negatif  (Tabel  5). Biopriming benih  tidak  berpengaruh  nyata terhadap  variabel  jumlah  daun  (Tabel  6). Biopriming benih  berpengaruh  nyata  terhadap diameter  batang,  dan  perlakuan  rizobakteri (R1-R6) tidak berbeda nyata (Tabel 7).
Tabel 5. Pengaruh biopriming benih terhadap tinggi tanaman 7-35 hari setelah pindah tanam (HSP) di polibag
Perlakuan Tinggi Tanaman (cm) 7 HSP 14 HSP 21 HSP 28 HSP 35 HSP R0+ 16.17  a 19.82  a 25.14  a 33.90  ab 44.81  ab R0- 14.73  abc 19.06  ab 25.40  a 36.02  a 49.22  a R1 12.14  bc 16.07  abc 22.07  ab 31.39  ab 45.16  ab R2 11.28  c 14.86  bc 20.56  ab 30.07  ab 43.82  ab R3 13.96  abc 17.10  abc 21.47  ab 29.92  ab 40.39  ab R4 13.60  abc 17.23  abc 21.75  ab 29.70  ab 40.67  ab R5 15.84  ab 19.30  a 25.01  a 34.03  ab 44.62  ab R6 11.97  c 15.83  abc 22.27  ab 31.60  ab 43.72  ab R0RA 12.19  bc 15.72  abc 20.33  ab 27.46  b 36.73  b R0TR 14.42  abc 18.43  ab 23.98  ab 32.06  ab 42.40  ab R0M 10.97  c 14.13  c 19.27  b 27.50  b 38.04  b KK 17.2 14.9 14.3 14.8 15.3
Keterangan: Angka pada kolom yang sama dengan huruf yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada taraf α = 5%. R0+ (kontrol positif, benih direndam dalam PDB tanpa perlakuan rizobakteri dengan inokulasi P. capsici ), R0- (kontrol  negatif,  benih  direndam  dalam  PDB  tanpa  perlakuan  rizobakteri  dan  tanpa  inokulasi P.  capsici ),  R1 ( biopriming benih  dengan  isolat  E1),  R2  (isolat  E3C2),  R3  (isolat  F2B1),  R4  (kombinasi  isolat  E1+E3C2),  R5 (kombinasi isolat E1+F2B1), R6 (kombinasi isolat E1+E3C2+F2B1), R0RA (benih direndam dalam air 24 jam), R0TR (benih tanpa rendam), R0M (benih direndam dalam metalaksil). Tanah inokulum P. capsici diberikan pada 28 hari setelah pindah tanam di sekitar pangkal batang tanaman cabai dibawah permukaan tanah.
Tabel 6. Pengaruh biopriming benih terhadap jumlah daun 7-35 hari setelah pindah tanam (HSP) di polibag Perlakuan Jumlah Daun (helai) 7 HSP 14 HSP 21 HSP 28 HSP 35 HSP R0+ 9.4 12.6 15.5 23.3 41.0 R0- 8.6 11.7 15.5 24.8 42.4 R1 8.2 12.5 14.6 22.6 40.8 R2 8.3 11.9 14.6 23.5 39.4 R3 8.1 10.3 13.3 20.2 34.5 R4 7.4 11.6 14.2 22.0 35.1 R5 9.0 11.7 15.1 23.2 39.0 R6 9.7 13.0 15.7 23.8 38.7 R0RA 8.2 11.1 14.2 20.5 32.0 R0TR 8.9 12.0 14.4 23.2 38.1 R0M 9.2 10.5 13.6 20.0 32.2 KK 7.8 7.6 5.6 8.4 12.1
Keterangan:   Angka pada kolom yang sama dengan huruf yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada taraf α =  5%.  R0+  (kontrol  positif,  benih  direndam  dalam  PDB  tanpa  perlakuan  rizobakteri  dengan  inokulasi P. capsici ), R0- (kontrol negatif, benih direndam dalam PDB tanpa perlakuan rizobakteri dan tanpa inokulasi P. capsici ), R1 ( biopriming benih dengan isolat E1), R2 (isolat E3C2), R3 (isolat F2B1), R4 (kombinasi isolat E1+E3C2), R5 (kombinasi isolat E1+F2B1), R6 (kombinasi isolat E1+E3C2+F2B1), R0RA (benih direndam dalam air 24 jam), R0TR (benih tanpa rendam), R0M (benih direndam dalam metalaksil). Tanah inokulum P. capsici diberikan  pada  28  hari  setelah  pindah  tanam  di  sekitar  pangkal  batang  tanaman  cabai  dibawah permukaan tanah. Sebelum diolah data ditransformasikan dengan rumus
.
Pertumbuhan  tanaman  diduga  tidak hanya  dipengaruhi  oleh  faktor  dari  dalam benih  (dalam  hal  ini  termasuk biopriming benih dengan rizobakteri), tetapi juga terdapat pengaruh dari luar benih/ lingkungan.
Lingkungan pertumbuhan tanaman erat kaitannya  dengan  ketersediaan  hara  dalam media  tanam,  kebutuhan  air,  cahaya  serta penambahan nutrisi melalui pemupukan dalam jumlah  yang sama. Hal tersebut menyebabkan pertumbuhan cabai tidak menunjukkan banyak perbedaan.
Karakteristik  rizobakteri  sebagai  PGPR ditunjukkan  dengan  kemampuannya  dalam sintesis  fitohormon  terutama  IAA,  siderofor, dan  ACC  deaminase  yang  akan  memicu kegiatan  enzim  tertentu.  Selain  itu  beberapa Bacillus spp.  memiliki  kemampuan  sebagai bakteri  pelarut  fosfat  sehingga  meningkatkan penyerapan  hara  melalui  akar  tanaman (Rajkumar et  al .,  2005;  Lee et  al., 2008). Fitohormon  1-aminocyclopropane-1-carboxylate deaminase, disingkat ACC deaminase, mampu meningkatkan  pertumbuhan  dan  daya  tahan tanaman terhadap cekaman lingkungan ekstrim serta  serangan  patogen  (Glick et  al .,  2007). Menurut  Mendes et  al .  (2013),  koloni  bakteri berperan  penting  dalam  melepaskan  kation dari mineral tanah yang diperlukan tidak hanya
untuk  bakteri  sendiri  melainkan  juga  nutrisi bagi tanaman.
Hasil  penelitian  Syamsuddin  (2010), perlakuan  benih  dengan  rizobakteri Bacillus spp., Pseudomonas spp.,  dan Serratia spp. nyata meningkatkan jumlah daun cabai pada 6 MSP. Ibrahim et al . (2014) menyatakan bahwa perlakuan  benih  dengan  rizobakteri  isolat ST116B  meningkatkan  jumlah  daun.  Menurut Rosadiah et  al .  (2015),  perlakuan  benih dengan isolat ST116B, CM8 maupun kombinasi  keduanya  mampu  meningkatkan jumlah  daun  tanaman  cabai.  Hasil  tersebut berbeda  dengan hasil  penelitian  ini,  perlakuan biopriming tidak  berpengaruh  nyata  terhadap jumlah  daun. Biopriming dengan  rizobakteri nyata  mempengaruhi  tinggi  tanaman  dan diameter  batang  cabai.  Hal  ini  diduga  akibat akumulasi  fitohormon  IAA  yang  dihasilkan oleh  rizobakteri  maupun  dari  tanaman  itu sendiri, banyak terkonsentrasi pada pertumbuhan tanaman, terutama perpanjangan sel batang.
Perlakuan biopriming dengan  isolat E1+F2B1 (perlakuan R5) menunjukkan persentase kejadian penyakit busuk Phytophthora relatif  lebih  rendah  6.1%  dibanding  kontrol positif  (R0+)  sebesar  13.3% , 5  HSI  tanah inokulum P. capsici (Tabel 8).
Tabel 7. Pengaruh biopriming benih  terhadap  diameter  batang  7-35  hari  setelah  pindah  tanam (HSP) di polibag Perlakuan Diameter Batang (mm) 7 HSP 14 HSP 21 HSP 28 HSP 35 HSP R0+ 2.0 2.5  ab 3.0 3.9  ab 4.0  b R0- 2.0 2.6  a 3.1 4.3  a 4.7  a R1 2.0 2.4  ab 3.0 3.9  ab 4.4  ab R2 2.0 2.3  b 3.0 3.9  ab 4.1  b R3 2.0 2.3  ab 2.9 3.7  ab 4.0  b R4 2.0 2.4  ab 3.1 3.8  ab 4.1  b R5 2.0 2.5  ab 3.0 3.8  ab 4.0  b R6 2.0 2.4  ab 3.1 3.9  ab 4.2  ab R0RA 2.0 2.4  ab 2.8 3.5  b 3.8  b R0TR 2.0 2.4  ab 3.1 3.5  b 4.0  b R0M 2.0 2.2  b 2.8 3.7  ab 4.1  ab KK 1.0 6.8 10.1 10.1 8.4
Keterangan:   Angka pada kolom  yang sama dengan huruf  yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada taraf  α  =  5%.  R0+  (kontrol  positif,  benih  direndam  dalam  PDB  tanpa  perlakuan  rizobakteri  dengan inokulasi P. capsici ), R0- (kontrol negatif, benih direndam dalam PDB tanpa perlakuan rizobakteri dan tanpa  inokulasi P.  capsici ),  R1  ( biopriming benih  dengan  isolat  E1),  R2  (isolat  E3C2),  R3  (isolat F2B1),  R4  (kombinasi  isolat  E1+E3C2),  R5  (kombinasi  isolat  E1+F2B1),  R6  (kombinasi  isolat E1+E3C2+F2B1), R0RA (benih direndam dalam air 24 jam), R0TR (benih tanpa rendam), R0M (benih direndam dalam metalaksil). Tanah inokulum P. capsici diberikan pada 28 hari setelah pindah tanam di sekitar pangkal batang tanaman cabai dibawah permukaan tanah.
Tabel  8.  Pengaruh biopriming benih  terhadap  kejadian  penyakit  busuk  Phytophthora  5-20  hari setelah inokulasi (HSI)*
Perlakuan Kejadian Penyakit (%) 5 HSI 8 HSI 11 HSI 14 HSI 17 HSI 20 HSI R0+ 13.3  ab 13.3  b 29.4  ab 37.2   a 44.4  a 45.6  a R0- 0.0  d 0.0  c 0.0  c 0.0   b 0.0  b 0.0  b R1 20.0  a 22.8  a 46.1  a 46.1   a 48.3  a 50.6  a R2 11.1  bc 15.6  ab 27.8  ab 30.0   a 39.4  a 40.6  a R3 15.0  ab 18.9  ab 27.2  ab 35.6   a 42.8  a 43.9  a R4 12.2  ab 14.4  ab 28.3  ab 35.0   a 42.2  a 42.2  a R5 6.1  c 13.3  b 22.8  b 30.0   a 37.2  a 37.8  a R6 13.9  ab 17.2  ab 27.2  b 34.4   a 40.6  a 41.1  a R0RA 15.0  ab 17.2  ab 37.8  ab 37.8   a 45.0  a 46.1  a R0TR 17.8  ab 25.0  a 33.9  ab 38.9   a 43.3  a 44.4  a R0M 17.8  ab 21.1  ab 35.0  ab 41.1   a 45.6  a 46.1  a KK 17.7 13.7 10.9 11.0 8.0 8.1
Keterangan:   Angka pada kolom  yang sama dengan huruf  yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada taraf  α  =  5%.  R0+  (kontrol  positif,  benih  direndam  dalam  PDB  tanpa  perlakuan  rizobakteri  dengan inokulasi P. capsici ), R0- (kontrol negatif, benih direndam dalam PDB tanpa perlakuan rizobakteri dan tanpa  inokulasi P.  capsici ),  R1  ( biopriming benih  dengan  isolat  E1),  R2  (isolat  E3C2),  R3  (isolat F2B1),  R4  (kombinasi  isolat  E1+E3C2),  R5  (kombinasi  isolat  E1+F2B1),  R6  (kombinasi  isolat E1+E3C2+F2B1), R0RA (benih direndam dalam air 24 jam), R0TR (benih tanpa rendam), R0M (benih direndam dalam metalaksil). Tanah inokulum P. capsici diberikan pada 28 hari setelah pindah tanam di sekitar  pangkal  batang  tanaman  cabai  dibawah  permukaan  tanah.  *33-48  hari  setelah  pindah  tanam (HSP). Sebelum diolah data ditransformasikan dengan rumus ln ( x +1).
Mahartha et  al .  (2013)  menyatakan rizobakteri yang berasal dari rizosfer memiliki mekanisme  resistensi  alami  serta  mampu memberikan  perlindungan  terhadap  tanaman dari  serangan  patogen.  Rizobakteri  sebagai
biokontrol,  dipilih  berdasarkan  kemampuannya sebagai antagonis langsung terhadap cendawan patogen,  kemampuan  adaptasi  di  lingkungan, dan  induksi  resistensi  bagi  tanaman  inang (Aravind et  al .,  2008).  Menurut  Babalola
(2010),  strain  biokontrol  yang  dapat  melindungi tanaman inang dari patogen memiliki kemampuan kolonisasi yang kuat dan menghasilkan  senyawa  beracun  bagi  patogen seperti HCN, phenazine , pyrrolnitrin , pyoluteorin ,  dan  2.4-diacetylphloroglucinol (2.4-DAPG).  Produksi  HCN  lebih  banyak ditemukan  pada Pseudomonas spp.  (88.89%) dibanding Bacillus spp.  (50%)  (Ahmad et  al ., 2008).  Hasil  penelitian  Gleeson et  al .  (2010) menyatakan  bahwa  2.4-DAPG  mengganggu fungsi  mitokondria  dalam Saccharomyces cereviseae .
Perlakuan priming dengan  metalaksil tidak  efektif  mengendalikan  penyakit  busuk Phytophthora  (Tabel  8).  Semua  perlakuan biopriming belum  efektif  mengendalikan penyakit  busuk  Phytophthora  karena  tidak berbeda  nyata  dengan  kontrol  positif,  akan tetapi biopriming R5  menunjukkan  persentase kejadian  penyakit  busuk  Phytophthora  nyata lebih  rendah  dibandingkan  perlakuan priming dengan  metalaksil  (R0M),  5  HSI  tanah inokulum P.  capsici .  Hasil  uji  kontras ortogonal menunjukkan biopriming
R5
(kombinasi isolat E1+F2B1) umur 5 HSI tanah inokulum P.  capsici lebih  baik  dibanding penggunaan metalaksil (P- value = 0.025), dan perlakuan biopriming lainnya  (P- value = 0.013).  Hasil  ini  sesuai  dengan  penelitian Rosadiah et  al. (2015)  bahwa biopriming dengan  rizobakteri  menurunkan  kejadian penyakit  busuk  Phytoptora  lebih  rendah  (3- 7%)  dibanding  perlakuan  metalaksil  (10%). Penggunaan fungisida metalaksil dan mefenoksam  efektif  mengendalikan  penyakit busuk  Phytophthora  pada  fase  pembibitan, namun kurang efektif saat fase pertumbuhan di lapangan (Keinath, 2007). Menurut Syamsuddin  (2010),  rizobakteri  memberikan hasil lebih baik dibanding fungisida metalaksil yang memiliki durasi singkat, karena
rizobakteri
mampu berperan sebagai biokontrol dan menginduksi ketahanan sistemik tanaman cabai lebih lama. Efektivitas rizobakteri sebagai
biokontrol terhadap P. capsici belum menunjukkan hasil yang maksimal pada 14-20 HSI.  Hal  ini  diduga  disebabkan  oleh  tiga faktor. Pertama, strain P. capsici yang diisolasi dari  sentra  produksi  cabai  di  Jawa  Timur relatif  lebih  virulen.  Hal  ini  dibuktikan  dari gejala busuk Phytophthora yang mulai tampak 4-5 HSI (Tabel 8). Pada penelitian sebelumnya
dengan  isolat P.  capsici yang  berbeda,  gejala busuk  Phytophthora  baru  terlihat  dua  minggu setelah  inokulasi  (Syamsuddin,  2010;  Ibrahim et  al .,  2014;  Rosadiah et  al .,  2015).  Kedua, diduga  jumlah  tanah  inokulum  (10  g  per polibag)  yang  diberikan  pada  tanaman  cabai terlalu  banyak.  Jumlah  inokulan P.  capsici yang  terlalu  banyak  tidak  dapat  diimbangi dengan jumlah rizobakteri yang diberikan saat perlakuan biopriming benih. Kontrol
perlakuan priming dengan fungisida metalaksil juga tidak mampu mengendalikan inokulum P. capsici . Ketiga, kemungkinan populasi rizobakteri  yang diaplikasikan terhadap benih, jumlahnya  berkurang  setelah  berada  di  dalam rizosfer.  Menurut  Mendes et  al .  (2013), sebagian besar spesies rizobakteri memperoleh energi  dari  asimilasi  senyawa  organik, sehingga  ketersediaan  senyawa  organik  dan karbon  yang  terbatas  dalam  sebagian  besar tanah, merupakan faktor pembatas yang paling umum untuk pertumbuhan bakteri tanah.

## KESIMPULAN
Biopriming benih cabai dengan kombinasi isolat E1+F2B1 (kerapatan
rizobakteri  berturut-turut  sebesar  1.06x10 9 cfu mL -1 dan  1.20x10 9 cfu mL -1 ),  meningkatkan tinggi bibit dan jumlah daun umur 21-42 HST di persemaian. Biopriming benih cabai dengan isolat  F2B1  atau  kombinasi  isolat  E1+F2B1 meningkatkan  tinggi  tanaman  pada  umur  14- 21 HSP di rumah kaca. Biopriming benih cabai dengan kombinasi isolat E1+F2B1 menurunkan kejadian penyakit busuk
Phytophthora  dari  13.3%  (kontrol  positif) menjadi  6.1%,  5  HSI  tanah  inokulum P. capsici .  Perlakuan priming dengan  metalaksil 800 ppm tidak efektif mengendalikan penyakit busuk Phytophthora.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Ucapan terima kasih disampaikan kepada  Kemenristekdikti  melalui  program Penelitian  Strategi  Nasional  Tahun  Anggaran 2015 atas dana penelitian yang telah diberikan, PT.  East  West  atas  benih  varietas  Laris,  dan Balai  Penelitian  Tanaman  Rempah  dan  Obat (Balittro)  atas  fasilitas  yang  telah  disediakan,
serta  kepada  semua  pihak  yang  telah membantu dalam menyelesaikan penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Agarwal,  V.K.,  J.B.  Sinclair.  1997.  Principle of  Seed  Pathology.  Second  edition. Boca  Raton  Florida  (US):  CRC  Press Inc.
Ahmad,  F.,  I.  Ahmad,  M.S.  Khan.  2008.
Screening  of  free-living  rhizospheric bacteria  for  their  multiple  plant  growth promoting  activities.  Microbiol  Res. 163(2): 173-181.
Amrullah.  2000.  Tingkat  kandungan  klorofil daun  dan  kontribusinya  serta  pengaruh pemupukan  NPKMg  dan  pemberian metanol  terhadap  kandungan  klorofil, pertumbuhan dan produktivitas tanaman cabai  merah  ( Capsicum  annuum L.) [Tesis].  Bogor  (ID):  Institut  Pertanian Bogor.
Aravind,  R.,  A.  Kumar,  S.J.  Eapen,  K.V. Ramana.  2008.  Endophytic  bacterial flora  in  root  and  stem  tissues  of  black pepper  ( Piper  nigrum L.)  genotype: isolation,  identification  and  evaluation against Phytophthora  capsici .  Applied Microbiology. 48: 58-64.
Babadoost, M., D. Tian, S.Z. Islam, C. Pavon.
2008.  Challenges  and  options  in managing Phytophthora blight ( Phytophthora  capsici )  of  cucurbits. Pitrat M, editor. Proceedings of the Ixth EUCARPIA  Meeting  on  Genetics  and Breeding  of  Cucurbitaceae.  Avignon (FR): INRA.
Babalola,  O.O.  2010.  Beneficial  bacteria  of agricultural importance. Biotechnol Lett. 32: 1559-1570. Gleeson,  O.,  F.  O’Gara,  J.P.  Morrissey.  2010. The  Pseudomonas  fluorescens  secondary metabolite  2.4  diacetylphloroglucinol impairs mitochondrial function in
Saccharomyces cerevisiae . Springer Science 97: 261-273.
Glick,  B.R.,  B.  Todorovic,  J.  Czarny,  Z.
Cheng,  J.  Duan  2007.  Promotion  of plant growth by bacterial ACC deaminase.  Crit.  Rev.  Plant  Sci.  26: 227-242. Hausbeck, M.K., K.H. Lamour. 2004.
Phytophthora  capsici on  vegetable crops: research progress and management challenges.  Plant  Diseases.  88(12): 1292-1303.
Ibrahim,  A.,  S.  Ilyas,  D.  Manohara.  2014. Perlakuan benih cabai ( Capsicum annuum L . )  dengan  rizobakteri  untuk mengendalikan Phytophthora  capsici , meningkatkan vigor benih dan pertumbuhan  tanaman.  Bul.  Agrohorti. 2(1): 22-30.
Ilyas.  S.  2012.  Ilmu  dan  Teknologi  Benih (Teori  dan  Hasil-hasil  Penelitian).
Bogor (ID): IPB press.
Ilyas.  S.,  K.V.  Asie,  G.A.K.  Sutariati, Sudarsono.  2015.  Biomatriconditioning or  biopriming  with  biofungicides  or biological  agents  applied  on  hot  pepper ( Capsicum  annuum L.)  seeds  reduced seedborne Colletotrichum  capsici and increased  seed  quality  and  yield.  Acta Hortic. 1105: 89-96.
Ilyas,  S,  G.A.K.  Sutariati,  F.C.  Suwarno, Sudarsono. 2002. Matriconditioning improved  quality  and  protein  level  of medium  vigor  hot  pepper  seed.  Seed Technol. 24: 65-75.
[ISTA]  International  Seed  Testing  Association. 2014.  International  Rules  for  Seed Testing. Basserdorf (CH): ISTA.
Jeller,  H.,  S.C.J.G.A.  Perez,  J.  Raizer.  2003. Water  uptake,  priming,  drying  and storage effects in Cassia excelsa Schrad seeds. Braz. J. Biol. 63(1): 61-68.
Keinath, A.P. 2007. Sensitivity of populations of  phytophthora  capsici  from  south carolina  to  mefenoxam,  dimethomorph, zoxamide,  and  cymoxanil.  Plant  Disease. 91(6): 743-748.
Lee,  K.J.,  S.  Kamala-Kannan,  H.S.  Sub,  C.K.
Seong,  G.W.  Lee.  2008.  Biological control  of  Phytophthora  blight  in  red pepper  ( Capsicum  annuum L.)  using Bacillus  subtilis .  World  J.  Microbiol Biotechnol. 24: 1139-1145.
Mahartha, K.A., K. Khalimi, G.N.A.S. Wirya. 2013. Uji efektivitas rizobakteri sebagai agen  antagonis  terhadap Fusarium oxysporum f.  sp.  capsici  penyebab penyakit  layu  fusarium  pada  tanaman cabai rawit ( Capsicum frutescens L.). e- J. Agro Tropika. 2(3): 145-154.
Manohara,  D.  1988.  Ekologi Phytophthora palmivora (Bulter),  penyebab  penyakit busuk  pangkal  batang  lada  ( Piper nigrum L.) [Disertasi]. Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Mendes,  R.,  P.  Garbeva,  J.M.  Raaijmakers. 2013.  The  rhizosphere  microbiome: significance  of  plant  beneficial,  plant pathogenic,  and  human  pathogenic microorganisms.  FEMS  Microbiol  Rev. 37: 634-663.
Rajkumar,  M.,  W.H.  Lee,  K.J.  Lee.  2005. Screening  of  bacterial  antagonists  for biological  control  of  Phytophthora blight  of  pepper.  J.  Basic  Microbiol. 45(1): 55-63.
Rosadiah,  N.F.,  S.  Ilyas,  D.  Manohara.  2015. Perlakuan benih cabai ( Capsicum annuum L.)  dengan  rizobakteri  secara tunggal atau kombinasi dapat mengendalikan Phytophthora  capsici dan meningkatkan pertumbuhan tanaman. J. Hort. Indonesia. 6(1): 1-10. Siri,  B.,  K.  Vichitphan,  P.  Kaewnaree,  S. Vichitphan, P. Klanrit. 2013. Improvement  of  quality,  membrane integrity  and  antioxidant  systems  in sweet pepper ( Capsicum annuum Linn.) seeds  affected  by  osmopriming.  AJCS. 7(13): 2068-2073.
Sutariati,  G.A.K.,  L.O.  Safuan,  A.  Khaeruni, F.  Handayani.  2014.  Uji  efektivitas teknik  biopriming  dan  sumber  benih terhadap  viabilitas  dan  vigor  bibit kakao. Agriplus. 24(2): 111-122.
Syamsuddin.  2010.  Perlakuan  benih  untuk pengendalian penyakit busuk Phytophthora,  peningkatan  hasil  dan mutu  benih  cabai  merah  ( Capsicum annuumm L). [Disertasi]. Institut
Pertanian Bogor. Bogor.
Wahyuno,  D.  2009.  Pengendalian  terpadu busuk  pangkal  batang  lada.  Perspektif.
8(1): 17-29.
Ward,  F.H.,  A.A.  Powell.  1983.  Evidence  for repair  processes  in  onion  seeds  during storage  at  high  seed  moisture  contents. J. Expert. Bot. 34: 277-282.
Yunianti,  R.,  S.  Sastrosumarjo,  S.  Sujiprihati, M.  Surahman,  S.H.  Hidayat.  2007. Ketahanan 22 genotipe cabai ( Capsicum spp.)  terhadap Phytophthora  capsici Leonian  dan  keragaman  genetiknya.
Bul. Agron. 35(2): 103-111.
Zaghdani,  A.S.  2002.  Effect  of  pre-sowing seed treatments for quality of cucumber, pepper, tomato and pea seed [Disertation].  Hongaria  (HU):  Budapest
Hungary.