# Korespondensi:  Balai  Besar  Riset  Budidaya  Laut  dan Penyuluhan  Perikanan.  Jl.  Br.  Gondol  Kec.  Gerokgak
Kab.  Buleleng,  Kotak  Pos  140,  Singaraja,  Bali  88180,  Indonesia. Tel.  +  62  362  92272 E-mail:  kmahardika@yahoo.com
Tersedia  online  di:  http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/jra

## INTENSITAS PARASIT INSANG (TREMATODA MONOGENEA: Pseudorhabdosynochus sp.) PADA  IKAN  KERAPU  HIBRIDA  MELALUI  INFEKSI  BUATAN
Ketut Mahardika # ,  Indah  Mastuti,  dan  Zafran
Balai Besar Riset Budidaya Laut dan Penyuluhan Perikanan Jl. Br. Gondol Kec. Gerokgak Kab. Buleleng, Kotak Pos 140, Singaraja, Bali 88180
(Naskah diterima: 18 Desember 2017; Revisi final: 11 April 2018; Disetujui publikasi: 12 April 2018)

## Abstrak
Infeksi trematoda monogenea: Pseudorhabdosynochus sp. dapat menyebabkan kematian massal pada ikan kerapu. Prevalensi infeksi trematoda ini mencapai 100%, namun intensitasnya hingga menimbulkan gejala klinis dan kematian ikan belum diketahui. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui intensitas parasit insang (Pseudorhabdosynochus sp.) pada ikan kerapu hibrida “cantik” melalui infeksi buatan. Ikan uji direndam dalam air tawar dengan 100 mg/L formalin selama satu jam sebelum digunakan. Infeksi buatan dilakukan melalui (A) kohabitasi antara ikan sehat dengan ikan sakit dan (B) penempelan potongan lamella insang ikan yang terinfeksi parasit ke lamella insang ikan sehat. Pada perlakuan (A) sebanyak lima ekor ikan uji dipelihara bersama dengan dua ekor ikan sakit selama 3-4 hari, sedangkan perlakuan (B) penempelan lamella insang ikan sakit (1 g lamella insang/ikan) dilakukan pada lima ekor ikan uji selama lima menit. Masing-masing perlakuan diulang tiga kali. Pada Kontrol kepadatan ikan uji sehat sebanyak enam ekor dan lima  ekor.  Wadah  yang digunakan  berupa  bak  plastik  volume  100  L. Pengamatan  intensitas  parasit  dan telurnya pada setiap lamella insang bagian kanan dan kiri  dari lima ekor ikan uji dilakukan selama tiga minggu dengan interval waktu satu minggu. Hasil pengamatan menunjukkan bahwa kohabitasi antara ikan sehat dan  ikan sakit  menyebabkan intensitas  parasit Pseudorhabdosynochus  sp. dan  telurnya lebih  tinggi dibandingkan dengan penempelan lamella insang. Pada kontrol, Pseudorhabdosynochus sp. maupun telurnya tidak ditemukan selama tiga minggu pemeliharaan. Hasil ini menunjukkan penyebaran Pseudorhabdosynochus sp. dari ikan sakit ke ikan sehat lebih cepat dibandingkan dengan penempelan dari lamella insang ikan sakit.
KATA KUNCI: ikan kerapu hibrida “cantik”; Pseudorhabdosynochus sp.; kohabitasi; lamella insang
ABSTRACT: Intensity of gill parasites (monogenetic trematode: Pseudorhabdosynochus sp.) in hybrid grouper fish through experimental infection. By: Ketut Mahardika, Indah Mastuti, and Zafran
Monogenetic trematode (Pseudorhabdosynochus sp.) infection often leads to mass mortality in groupers, with prevalency reaching 100%. However, the intensity of this parasite to infect grouper fish has yet to be reported. The purpose of this research was to study the intensity of Pseudorhabdosynochus sp. in hybrid grouper “cantik” through experimental infection. The test fish were soaked with 100 mg/L of formalin in fresh water before used. The experimental infections were performed through: (A) cohabitation between healthy fish with sick fish and (B) infection with attached of gills lamella of sick fish to gill lamella of healthy fish. In treatment (A), a total of five test fish were cohabited with two sick fish for 3-4 days, while in treatment (B), attachment of gills lamella (1 g/fish) was done on five test fish for five minutes. Each treatment was repeated for three times. Six and five test fish were maintened as controls. The containers used were 100 L plastic tanks volume. Observation of intensity of the parasite infection and its egg production in each lamella along the right and left gills of five fish were conducted for three weeks with one week intervals. The result showed that the cohabitation between healthy and sick fish caused an increase in total of Pseudorhabdosynochus sp. and its eggs compared with the attachment of chopped-gills. In the control group, Pseudorhabdosynochus sp. and its eggs were not found for three weeks. These results indicate the spread of Pseudorhabdosynochus sp. from the sick fish to the healthy is fish faster than the attachment of gill lamella from the sick fish.
KEYWORDS: hybrid grouper; Pseudorhabdosynochus; cohabitation; gills lamella

## PENDAHULUAN
Kegiatan  budidaya  ikan  kerapu  di  Indonesia mengalami  perkembangan  yang  pesat.  Salah  satu kerapu  yang  banyak  dibudidayakan  saat  ini  adalah kerapu hibrida yang merupakan hasil persilangan antara ikan kerapu macan (Epinephelus fuscoguttatus) betina dan  ikan  kerapu  batik  (Epinephelus  polyphekadion) jantan. Kerapu hibrida ini dikenal dengan nama kerapu hibrida “cantik” di kalangan pembudidaya ikan kerapu. Ikan  kerapu  hibrida  cantik  mempunyai  sintasan, pertumbuhan,  dan  kualitas  lar va  lebih  baik dibandingkan dengan hasil produksi ikan kerapu macan dan ikan kerapu batik (Ismi et al., 2013). Pada tahap pembesaran, ikan kerapu hibrida dilaporkan memiliki pertumbuhan yang  lebih baik  dibandingkan dengan kerapu  macan  maupun  kerapu  batik  (James  et  al., 1999). Namun dalam perkembangan budidaya kerapu hibrida ini di keramba jaring apung masih dihadapkan dengan infeksi virus, parasit, dan bakteri yang sering menimbulkan kematian massal.
Di  Indonesia,  ikan  kerapu  dilaporkan  dapat terinfeksi  25  spesies  parasit  yang  berbeda  secara taksonomi  yaitu  Ciliata,  Microsporea,  Monogenea, Acanthocephala, dan Hirudinea masing-masing dengan satu spesies. Cestoda dan Nematoda, masing-masing mempunyai  empat  spesies bersifat  parasit,  Digenea (lima  spesies),  dan  Crustacea  (tujuh  spesies)  telah diidentifikasi  dapat  menginfeksi  ikan  kerapu (Kleinertz &  Palm, 2015;  Zafran et  al., 1998).  Pakan rucah merupakan salah satu media penyebaran parasit ke ikan budidaya. Infeksi parasit dari jenis cacing dapat pula terjadi melalui organisme yang hidup secara alami di dalam atau di sekitar wadah budidaya (keramba jaring apung). Terdapat 17 invertebrata yang dilaporkan dapat menjadi inang  perantara bagi  parasit. Risiko  infeksi parasit  dapat  dikurangi  dengan  pemberian  pakan tertentu yang memiliki beban parasit yang lebih rendah seperti pemberian pakan rucah pada bagian dagingnya saja,  atau  dengan  meminimalkan  kelimpahan invertebrata (fouling) pada jaring keramba (Rückert et al., 2009) dan penggunaan pakan buatan (pellet).
Semenjak  tahun  1998,  salah  satu  parasit  yang pernah  dilaporkan  menginfeksi  ikan  kerapu  bebek (Cromileptes altivelis) adalah parasit insang (monogenea trematoda) dari genus Haliotrema sp., Pseudorhabdosynochus sp., dan Diplectanum sp. Parasit tersebut  menyerang  dan  menginfeksi  insang  ikan, sehingga secara kasat mata sulit untuk menentukan apakah ikan tersebut terinfeksi parasit insang. Gejala klinis  kerapu  yang  terinfeksi  parasit  insang  seperti nafsu  makan  menurun,  berenang  abnormal  di permukaan air, dan tubuh menjadi pucat (Zafran et al., 1998).  Pada  bulan  Mei-Juli  2016  terjadi  kematian
massal pada pembesaran ikan kerapu hibrida “cantik” di  keramba  jaring  apung  di  Teluk  Pegametan,  Desa Sumberkima  Kecamatan  Gerokgak  Kabupaten Buleleng,  Bali.  Hasil  pemeriksaan  mikroskopis menunjukkan  adanya  infeksi  parasit  insang. Pengamatan  morfologi  parasit  insang  tersebut memiliki kesamaan dengan Pseudorhabdosynochus sp.
Pengamatan  tentang  prevalensi  dan  intensitas parasit lebih banyak dilakukan pada ikan yang dipelihara dalam satu daerah, teluk, danau, dan lainnya seperti prevalensi dan intensitas parasit insang Dactylogyrus sp. dan Gyrodactylus sp. pada ikan koi (Cyprinus carpio) (Juhariah  et  al.,  2012),  prevalensi  dan  intensitas ektoparasit pada ikan gabus (Channa striata) (Salam & Hidayati, 2017); pada ikan hias (Rosita et al., 2012); pada ikan betok (Anabas testudineus) (Maulana et al., 2017); identifikasi dan prevalensi parasit pada bandeng (Chanos  chanos)  (Fidyandini  et  al.,  2012;  Riko  et  al., 2012); dan pada ikan kerapu (Epinephelus sp.) (Sumino et al., 2017).
Adapun  tujuan  dari  penelitian  ini  adalah  untuk mengetahui intensitas parasit insang (Pseudorhabdosynochus sp.) pada  ikan kerapu hibrida “cantik” melalui infeksi buatan.

## BAHAN DAN METODE

## Ikan Uji
Ikan uji yang digunakan dalam penelitian ini berasal dari hasil perbenihan di Balai Besar Riset Budidaya Laut dan  Penyuluhan  Perikanan.  Sebanyak  66  ekor  ikan kerapu hibrida “cantik” (panjang total 9 ± 1,23 cm) terlebih  dahulu  di  desinfeksi  melalui  perendaman dengan 100 mg/L formalin dalam air tawar dan dengan aerasi kuat selama satu jam sebelum digunakan.

## Parasit  Insang,  Pseudorhabdosynochus  sp.
Parasit  insang,  Pseudorhabdosynochus  sp.  koleksi dari ikan kerapu hibrida “cantik” (panjang total: 13 ± 2,16 cm) yang berasal dari keramba jaring apung di Teluk  Pegametan,  Desa  Sumberkima,  Kabupaten Buleleng, Bali pada bulan Juni 2016. Tahap awal untuk perbanyakan ikan sakit dilakukan dengan memelihara bersama tiga ekor ikan kerapu hibrida yang terinfeksi parasit  insang  dengan  15  ekor  ikan  kerapu  hibrida “cantik”  sehat.  Setelah  dua  minggu  kohabitasi, dilakukan pemeriksaan insang pada dua ekor ikan di bawah  mikroskop.  Hasil  pengamatan  menunjukkan bahwa ikan sudah terinfeksi parasit insang (Tabel 1). Ikan-ikan  tersebut  selanjutnya  digunakan  untuk  uji intensitas parasit insang secara kohabitasi. Selain itu, sebanyak lima ekor ikan uji dieutanasi dengan cairan eugenol (1 mL per lima liter air laut) selama 10 menit
untuk diambil lamella-lamella insangnya. Lamella-lamella tersebut  selanjutnya  dipotong  kecil-kecil menggunakan gunting steril dan ditimbang masing- masing  satu  gram  untuk  uji  kohabitasi  melalui penempelan.

## Infeksi  Buatan
Infeksi buatan dilakukan dengan dua metode yaitu (A) kohabitasi antara ikan sehat dengan ikan sakit dan (B)  infeksi  dengan  menempelkan  potongan  lamella insang ikan yang terinfeksi parasit ke lamella insang ikan sehat. Perlakuan (A) menggunakan ikan uji kerapu hibrida  cantik  masing-masing  sebanyak  lima  ekor ditempatkan dalam bak plastik volume 100 liter dengan empat ulangan bak. Kemudian, setiap bak diisi dengan dua  ekor  ikan  yang  terinfestasi  parasit  insang  (dua minggu  setelah  kohabitasi).  Pada  perlakuan  (B), dilakukan dengan menempelkan satu gram potongan insang ikan sakit ke insang kanan dan kiri pada ikan sehat  selama  lima  menit.  Ikan-ikan  tersebut sebelumnya dianastesi dengan cairan eugenol (0,2 mL per lima  liter air  laut) sehingga  ikan tidak  bergerak selama  perlakuan.  Selanjutnya,  ikan-ikan  kerapu hibrida “cantik” yang telah terinfeksi parasit tersebut (masing-masing lima ekor) dimasukkan ke dalam bak plastik  volume  100  liter.  Potongan  insang  yang menempel  pada  ikan  sehat  dibiarkan  ikut  terbawa masuk  ke  dalam  bak  pemeliharaan,  dan  dilakukan pengambilan  dengan  shipon  setelah  tiga  hari.  Pada perlakuan kontrol, sebanyak enam dan lima ekor ikan uji yang sehat dimasukkan ke dalam dua bak plastik dengan  volume  yang  sama.  Ikan-ikan  tersebut dipelihara dengan air diam  (tidak mengalir), dan air peliharaan  tersebut  diganti  setiap  dua  hari  sekali sebanyak  50%.  Setiap  satu  bak  di  masing-masing perlakuan digunakan untuk pengamatan gejala klinis dan mortalitas ikan selama tiga minggu.

## Intensitas  Parasit  Insang
Tingkat  penularan  penyakit  pada  umumnya dinyatakan dengan prevalensi kejadian dan intensitas parasit.  Prevalensi  adalah  persentase  ikan  yang terinfeksi dibandingkan dengan seluruh ikan contoh yang diperiksa. Intensitas adalah salah satu deskriptor yang  paling  penting  yang  harus  digunakan  saat mengukur  jumlah  parasit  dalam  sampel  host  atau populasi.  Intensitas  didefinisikan  sebagai  jumlah parasit  yang  tinggal/hidup  di  (atau  pada)  host  yang terinfeksi (Rozsa et al., 2000).
Masing-masing lima ekor ikan uji pada perlakuan infeksi dan dua ekor pada kontrol diambil pada minggu ke-1,  ke-2,  dan  ke-3;  dan  dieutanasi  dengan  cairan eugenol. Setiap lembar lamella kanan dan kiri (masing- masing empat lembar) dari ikan uji dipotong dengan gunting steril dan ditempatkan pada kaca-objek (ob- ject  glass/slide  glass).  Pengamatan  intensitas  parasit insang  dilakukan  di  bawah  mikroskop  dengan pembesaran  100-200  kali.  Intensitas  parasit  insang pada satu ekor ikan uji dihitung dengan rumus:
di mana: Is     :  Intensitas parasit ikan
 P   :  Jumlah parasit insang
 Tp :  Jumlah telur parasit N      :  Jumlah ikan yang diamati
Analisis intensitas parasit insang dilakukan secara deskriptif dalam bentuk tabel dan grafik.

## HASIL DAN BAHASAN
Kohabitasi antara ikan kerapu hibrida “cantik” yang sakit dengan yang sehat hanya berlangsung selama 3-
1
2 3 4 1 Pseudorhabdosynochus  sp. 56 65 19 47 187 2 Pseudorhabdosynochus  sp. 31 28 59 52 170 Jumlah parasit pada setiap lembar lamella insang kanan Number of gill parasite in the each sheet of right gill lamella Parasit insang Gill parasite Nomor ikan Number of fish Total parasit insang/ekor
Total of gill parasite
Tabel 1. Intensitas parasit insang Pseudorhabdosynochus sp. pada lamella insang kanan dari ikan uji selama dua minggu kohabitasi dengan ikan yang terinfeksi parasit insang secara alami.
Table 1. Intensity of Pseudorhabdosynochus sp. in the gill lamella of healthy hybrid grouper after two weeks cohabited with naturally infected hybrid grouper
N Tp atau P Is   
4 hari.  Hal tersebut disebabkan oleh  kematian ikan yang  sakit  (terinfeksi  parasit  insang).  Namun demikian, metode kohabitasi dapat menularkan cacing insang dari ikan sakit ke ikan sehat dan menimbulkan kematian setelah dua minggu (14 hari) pemeliharaan yaitu sebanyak satu ekor (20%) diikuti dengan kematian dua ekor ikan  setelah delapan hari (total  60%). Dua ekor ikan masih bertahan hidup sampai tiga minggu pemeliharaan dengan kondisi ikan sangat kurus dan lemah.  Kondisi  sebaliknya  terjadi  pada  perlakuan infeksi buatan dengan menempelkan potongan insang ikan terinfeksi parasit ke insang ikan sehat, tidak ada kematian selama tiga minggu, demikian juga pada ikan kontrol masih sehat dengan nafsu makan tinggi sampai minggu ke-3 pemeliharaan (Gambar 1). Gejala klinis ikan  yang  terinfeksi  terlihat  nafsu  makan  menurun setelah satu minggu pascakohabitasi, berdiam lemah di dasar bak dan sesekali berenang ke permukaan air dekat aerasi, warna tubuh pucat atau agak gelap, dan lama-kelamaan ikan menjadi kurus dan mati. Gejala klinis dari hasil pengamatan ini sama dengan gejala klinis pada ikan kerapu bebek yang terserang parasit insang yang dilaporkan sebelumnya oleh Zafran et al. (1998).
Menurut Isshiki et al. (2007), ikan yang terinfeksi biasanya  menunjukkan  gejala  seperti  menggosok- gosokan  operkulum  insangnya  pada  dinding  tangki yang menyebabkan abrasi dan pendarahan pada kulit operkulum atau permukaan tubuh yang diikuti oleh infeksi sekunder sesekali dengan Vibrio spp. Ikan yang
terinfeksi  menjadi  lesu  dan  melayang  di  dekat permukaan air atau diam di dasar bak pemeliharaan. Ikan akan menghasilkan lendir keputihan di seluruh permukaan tubuh, ditambah insang pucat dan organ dalam  karena  berkurangnya  nafsu  makan.  Infestasi trematoda  monogenea  pada  insang  dapat menyebabkan  gangguan  pernapasan.  Insang  bisa membengkak  dan  pucat,  laju  pernapasan  bisa meningkat,  dan  ikan  akan  kurang  toleran  terhadap kondisi oksigen rendah. Pada ikan dengan gangguan pernapasan  parah  akan  terlihat  berenang  ke  atas permukaan  air  untuk  menghirup  udara  (gasping). Sejumlah besar trematoda monogenea pada kulit atau insang dapat menyebabkan kerusakan dan mortalitas yang signifikan (Reed et al., 2012).
Hasil pengamatan parasit insang Pseudorhabdosynochus  sp.  pada  ikan  kerapu  hibrida “cantik” dari uji kohabitasi antara ikan sakit dengan ikan sehat maupun infeksi buatan dengan penempelan potongan insang ikan sakit ke dalam insang ikan sehat menunjukkan bahwa parasit insang mampu berpindah dan  berkembang  biak  dari  ikan  sakit  ataupun  dari potongan insang ikan sakit ke ikan sehat secara cepat. Intensitas  parasit  insang  dan  telurnya  hampir  sama pada minggu pertama pascainfeksi buatan (Tabel 2). Pada kohabitasi antara ikan sakit dengan ikan sehat tampak  intensitas  parasit  insang  dengan  cepat meningkat sampai minggu kedua (122 ± 7,6—2.214 ±  65,9);  dan  mulai  menurun  di  minggu  ketiga pascakohabitasi (1.044 ± 18,6). Hal ini menunjukkan
Gambar 1. Sintasan ikan kerapu hibrida “cantik” pada uji kohabitasi antara ikan sakit dengan ikan sehat, maupun infeksi buatan melalui penempelan potongan insang ikan sakit ke insang ikan sehat selama tiga minggu pengamatan; A= perlakuan A, B= perlakuan B, dan C= kontrol.
Figure 1. Survival rate of test fish in both types of experimental infection for three weeks observation; A= treat- ment A, B= treatment B, and C= control.
0 20 40 60 80 100 1 4 7 10 13 16 19 Si n tas an (S ur vi va l r at e ) (% ) Waktu pengamatan (Day of  observation) A B C
bahwa intensitas parasit insang maksimal pada minggu kedua pascakohabitasi, ikan terlihat berenang lemah dan  diam  di  dasar  bak  pemeliharaan  karena  ikan kekurangan  darah  (anemia).  Parasit  insang  tersebut akan melepaskan diri dari inangnya dan akan mencari inang  baru.  Hal  tersebut  ditunjukkan  dengan menurunnya  intensitas  parasit  insang  pada  ikan  uji setelah minggu ketiga. Kondisi yang sama juga terjadi pada intensitas telur parasit insang yang meningkat sampai  minggu  pertama  (181  ±  4,60)  dan  mulai menurun  di minggu  kedua  dan ketiga  (137  ± 6,4  - 22  ±  4,0).  Hal  tersebut  kemungkinan  disebabkan karena telur cacing di minggu kedua dan ketiga telah banyak yang menetas.
Penularan parasit insang dari ikan yang terinfeksi ke  ikan  sehat  terutama  melalui  kontak  langsung. Monogenea cenderung memiliki siklus hidup langsung, yang  berarti  bahwa  tidak  ada  host  perantara  yang diperlukan  agar  parasit  dapat  bereproduksi.  Parasit dewasa  bersifat  hermaprodit,  yang  berarti  bahwa setiap organisme memiliki struktur reproduksi jantan dan betina. Siklus hidup langsung dapat menyebabkan ledakan  populasi  dalam  sistem  akuakultur,  yang mengakibatkan  penyakit  klinis  (Reed  et  al.,  2012). Parasit insang menempel pada lamella sekunder dengan hamulusnya (Gambar 2a dan b), dan berkembang biak dengan  bertelur.  Telur  parasit  insang  ini  berbentuk oval  dan  menempel  pada  lamella  insang  melalui filamennya  yang  berada  pada  salah  satu  ujungnya (Gambar 2c). Pembentukan embrio dimulai dari telur yang ditunjukkan adanya sepasang bintik mata dalam telur (Gambar 2c). Parasit muda terlihat memiliki ha- mulus yang kuat untuk melekatkan diri pada inangnya (Gambar  2d).  Parasit  muda  berkembang  menjadi parasit  dewasa  dengan  ukuran  yang  lebih  besar (Gambar  2e).  Erazo-Padagor  &  Cruz-Lacierda  (2010) mengatakan  bahwa  satu  parasit  dewasa  mampu menghasilkan telur  sebanyak 10-22  butir/hari. Telur berbentuk oval (0,021-0,120 mm) dengan filamen spi- ral pada salah satu ujungnya. Tingkat penetasan telur sangat bervariasi, yaitu beberapa telur menetas dalam dua hari, sedangkan yang lain memerlukan waktu enam hari. Telur menetas menjadi larva yang dapat berenang bebas (oncomiracidia) dalam waktu 2-6 hari pada suhu 30°C dengan salinitas 30 ppt. Oncomiracidium dapat menempel ke ikan kerapu dalam waktu delapan jam. Setelah  melekat,  oncomiracidium  bermetamorfosis ke  stadia  parasit  dewasa  selama  4-7  hari.  Parasit tersebut menjadi dewasa dan menghasilkan telur dalam tujuh  hari.  Siklus  hidup  Pseudorhabdosynochus lantauensis adalah 13-20 hari.
Infeksi  buatan  dengan  menempelkan  potongan lamella insang ikan terinfeksi parasit ke insang ikan sehat  menunjukkan  intensitas  parasit  insang  dan
telurnya lebih sedikit dibandingkan dengan intensitas parasit insang dan telurnya dengan kohabitasi antara ikan sakit dengan ikan sehat (Tabel 2). Hal tersebut kemungkinan  disebabkan  oleh  sedikitnya  jumlah parasit insang yang mampu berpindah dari potongan insang ikan sakit ke lembar lamella insang ikan sehat selama  lima  menit.  Walaupun,  potongan  insang tersebut masih berada di dasar bak pemeliharaan ikan karena  potongan  insang  tidak  diambil  setelah penempelan selama lima menit dan dibiarkan dalam bak bersama ikan uji. Namun demikian, parasit insang yang mungkin masih berada dalam potongan insang tidak mampu menginfestasi insang ikan sehat karena kondisi parasit insang dan telurnya sudah lemah saat didiamkan menempel  pada insang  ikan sehat  tanpa air laut. Parasit insang dan telurnya tidak ditemukan pada ikan kontrol selama tiga minggu pemeliharaan.
Sebagian  besar  parasit  insang  trematoda monogenia menggunakan haptors untuk menempel pada  filamen  insang.  Keterikatan  haptor  terutama dicapai  oleh  hamuli  yang  mampu  menembus  epitel interlamella jaringan insang. Efek patologis dari infeksi tersebut menyebabkan terjadinya  pemecahan epitel pelapis, nekrosis sel epitel, vakuolasi di dalam dan di luar  sel  inang,  peleburan  lamella  insang,  pecahnya kapiler darah, infiltrasi eritrosit dan degenerasi dan fibrosis pada epitel interlamella. Respons host  (ikan yang terinfeksi) meliputi munculnya limfosit, sekresi mukoid, dan hiperplasia jaringan di tempat pelekatan (Arafa  et  al.,  2009).  Telur  monogenea  memiliki ekstensi filamen perekat pada kedua ujungnya yang membantu  perlekatannya  ke  substrat.  Pada oncomiracidium  Pseudorhabdosinocus  lantauensis, pertama-tama menempel pada kulit untuk berkembang menjadi post-oncomiracidium, kemudian bermigrasi ke  insang  dan  berkembang  menjadi  parasit  dewasa (Erazo-Padagor & Cruz-Lacierda, 2010).
Jika dilihat dari intensitas parasit insang maupun telurnya pada perlakuan kohabitasi ikan sakit dengan ikan sehat, lamella insang kanan maupun insang kiri per ekor ikan pada minggu 1-3 menunjukkan nilai yang hampir sama. Nilai yang hampir sama juga ditunjukkan pada  intensitas  parasit  insang  dan  telurnya  pada perlakuan  penempelan  potongan  insang  sakit  ke insang ikan sehat. Hal tersebut menunjukkan bahwa parasit insang dapat hidup dan berkembang biak pada lamella insang kanan maupun lamella insang kiri dari ikan kerapu hibrida “cantik”.
Demikian  pula  jika dilihat  dari  intensitas  parasit insang dan telurnya pada setiap lembar lamella insang kanan maupun kiri menunjukkan bahwa lembar insang tengah  (lembar 2  dan  3)  dan lembar  lamella  insang dalam (lembar 4) pada insang kiri memiliki intensitas
parasit insang yang lebih tinggi dibandingkan dengan lembar lamella-1 (lamella luar) (Gambar 3). Akan tetapi intensitas  telur  parasit  insang  lebih  banyak  pada lembar lamella-1 di minggu pertama, dan intensitasnya lebih rendah di minggu ke-2 dan ke-3.
Dari  hasil  pengamatan  ini  dapat  diduga  bahwa parasit insang lebih nyaman berada dan menginfeksi lamella insang tengah dan dalam. Pada awal kohabitasi, parasit insang tersebut menempel pada lamella insang
luar dan beberapa saat kemudian bertelur. Telur-telur yang menetas dan berkembang menghasilkan parasit muda yang mungkin berlindung ke lamella lebih dalam agar terhindar dari pengaruh langsung dengan kondisi lingkungan perairan luar.
Namun  demikian,  intensitas  parasit  insang  dan telurnya  pada  infeksi  buatan  dengan  penempelan potongan  insang  sakit  ke  insang  ikan  sehat  lebih menyebar di setiap lembar lamella insang kanan maupun
Gambar 2. Infeksi parasit insang pada lamella insang kerapu hibrida “cantik”. a). Parasit insang (tanda panah) terlihat di antara lamella sekunder dari insang kerapu hibrida “cantik”. Parasit lebih banyak berada dekat pangkal lamella primer (100X), b). Parasit insang yang menempel pada salah satu lamella sekunder dengan hamulusnya (tanda panah). Parasit juga terlihat berkembang biak dalam insang dengan bertelur (anak panah). Lamella insang tampak mengalami perdarahan (200x), c). Telur-telur parasit  tampak  bergerombol  disalah  satu  lamella  sekunder  insang.  Telur-telur  tersebut  terlihat memiliki sepasang bintik mata. Telur parasit memiliki filamen yang panjang disalah satu ujungnya (insert) (200x), d). Parasit muda terlihat telah memiliki hamulus yang kuat untuk melekatkan diri pada inangnya (pewarnaan giemsa, 400x), e). Parasit dewasa pada lendir insang (pewarnaan giemsa, 200x).
Figure 2. Gill parasitic infections in the hybrid grouper “cantik”. a). Gill parasites (arrows) are seen between the secondary lamella from the gill of hybrid grouper “cantik”. The parasites are located near the base of the lamella primer (100x), b). Gill parasite attached the secondary lamella with its hamulus (arrows). Para- sites are also seen spawn (arrow heads). Lamella gills appear to have bleeding (200x), c). Parasite eggs appear  clustered  in  one  side  of  the  secondary  lamella.  The  eggs  are  seen  to  have  a  pair  of  eye  spots. Parasitic  eggs  have  long  filaments  at  one  end  (insert)  (200x),  d).  A  young  parasite  appears  to  have  a strong hamulus to attach the host (giemsa staining, 400x), e). An adult parasite in the gill mucus (giemsa staining,  200x).
Tabel 2. Intensitas  parasit  insang  dan  telurnya  pada  ikan  kerapu  hibrida  “cantik”  selama  tiga  minggu pemeliharaan pada dua perlakuan infeksi buatan
Table 2. Intensity of gill parasites and their eggs in hybrid grouper “cantik” for three weeks in two experimental infection
Keterangan (Remarks):  LR= lembar insang kanan (lamella sheet of right gill), LL= Lembar insang kiri (lamella sheet of left gill)
Gambar 3. Intensitas parasit insang (A) dan telurnya (B) dari setiap lembar lamella insang kanan dan kiri dari ikan uji hasil kohabitasi antara ikan sakit dengan ikan sehat selama tiga minggu pemeliharaan.
Figure 3. Intensity of gill parasite (A) and its egg (B) from each lamella sheet of the right and left gills of test fish which were cohabited with sick fish for three weeks observations.
Intensitas parasit/ikan Intensity of parasites/fish Intensitas telur parasit/ikan Intensity of parasitic eggs/fish Intensitas parasit/ikan Intensity of parasites/fish Intensitas telur parasit/ikan Intensity of parasitic eggs/fish Intensitas parasit/ikan Intensity of parasites/fish Intensitas telur parasit/ikan Intensity of parasitic eggs/fish Minggu 1 (1 st week ) 122 ± 7.6 181 ± 4.6 5 ± 0.8 8 ± 1.4 0 0 Minggu 2 (2 nd week ) 2,214 ± 65.9 137 ± 6.4 130 ± 3.7 6 ± 0.7 0 0 Minggu 3 (3 rd week ) 1,044 ± 18.6 22 ± 4.0 317 ± 11.5
3 ± 0.5 0 0 Waktu pengamatan (minggu)
Observation (weeks)
Kohabitasi ikan sakit dengan ikan sehat Cohabitation between sick fish with healthy fish Infeksi buatan melalui penempelan potongan insang ikan sakit Experimental infection through the attachment of chopped gills of sick fish Kontrol (Control ) 0 100 200 300 400 1 2 3 4 1 2 3 4 LR LL In te n si tas ( In te nsi ty ) 0 10 20 30 40 1 2 3 4 1 2 3 4 LR LL In te n si tas ( In te nsi ty ) Minggu 1 (1 st week)
Minggu 2 (2 nd week) Minggu 3 (3 rd week)
Minggu 1 (1 st week)
Minggu 2 (2 nd week) Minggu 3 (3 rd week)
kiri (Gambar 4). Hal ini mungkin karena jumlah dari parasit insang maupun telurnya lebih sedikit daripada intensitas parasit insang dan telurnya pada perlakuan kohabitasi ikan sakit dengan ikan sehat.

## KESIMPULAN
Infeksi buatan dengan metode kohabitasi antara ikan yang terinfeksi parasit insang, Pseudorhabdosynochus  sp.  dengan  ikan  sehat,  dan penempelan lamella insang ikan yang terinfeksi parasit insang ke lamella insang ikan sehat dapat menyebarkan parasit insang ke ikan sehat. Peningkatan intensitas Pseudorhabdosynochus sp. pada kohabitasi antara ikan sakit  dengan  ikan  sehat  lebih  cepat  sejak  minggu kedua dan menurun pada minggu ketiga dibandingkan
dengan penempelan potongan lamella insang ikan sakit ke insang ikan sehat yang perlahan meningkat pada minggu ketiga.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis mengucapkan terima kasih kepada Cynthia Ghaniyyu  Magda  dan  Ir wan  Prawira  Santoso, Mahasiswa PKL di BBRBLPP tahun 2016 dari Program Studi  Mikrobiologi,  Sekolah  Ilmu  dan  teknologi Hayati,  ITB,  dan  Ibu  Sri  Suratmi,  serta  Bapak  Ketut Ar ya  M.  Sudewa  selaku  teknisi  litkayasa  pada Laboratorium Patologi, BBRBLPP yang telah membantu dalam pelaksanaan penelitian dan pengamatan parasit insang.
Gambar 4. Intensitas parasit insang (A) dan telurnya (B) dari setiap lembar lamella insang kanan dan kiri dari ikan uji hasil infeksi buatan dengan penempelan potongan insang ikan sakit ke insang ikan sehat selama tiga minggu pemeliharaan.
Figure 4. Intensity of gill parasite (A) and its egg (B) of each lamella sheet of the right and left gills of test fish which were infected trought attached of chopped-gills lamella of sick fish to gill lamella of test fish for three weeks observation.
Keterangan (Remarks):  LR = lembar insang kanan (lamella sheet of right gill), LL = lembar insang kiri (lamella sheet of left gill) 0 20 40 60 80 1 2 3 4 1 2 3 4 LR LL In te n si tas (I nt en si ty ) 0 1 2 3 4 5 6 1 2 3 4 1 2 3 4 LR LL In te n si ta s (I nt en si ty ) Minggu 1 (1 st week) Minggu 2 (2 nd week)
Minggu 3 (3 rd week)
Minggu 1 (1 st week)
Minggu 2 (2 nd week) Minggu 3 (3 rd week)

## DAFTAR  ACUAN
Arafa, S.Z., El-Naggar, M.M., & El-Abbassy, S.A. (2009). Mode of attachment and histopathological effects of Macrogyrodactylus clarii, a monogenean gill para- site  of  the  catfish  Clarias  gariepinus,  with  a  re- port on host response. Acta Parasitologica, 54(2), 103-112.
Erazo-Pagador,  G.  &  Cruz-Lacierda,  E.R.  (2010).  The morphology and life cycle of the gill monogenean (Pseudorhabdosynochus lantauensis) on orange-spot- ted grouper (Epinephelus coioides) cultured in the Philippines.  Bull.  Eur.  Ass.  Fish  Pathol.,  30(2),  55- 64.
Fidyandini,  H.P.,  Subekti,  S.,  &  Kismiyati.  (2012). Identifikasi dan prevalensi ektoparasit pada ikan bandeng  (Chanos  chanos)  yang  dipelihara  di keramba  jaring  apung  UPBL  Situbondo  dan  di tambak  Desa  Bangunrejo  Kecamatan  Jabon, Sidoarjo. Journal of Marine and Coastal Science, 1(2), 91-112.
Ismi,  S.,  Asih,  Y.N.,  &  Kusumawati,  D.  (2013). Peningkatan  produksi  dan  kualitas  benih  ikan kerapu melalui program hibridisasi. Jurnal Ilmu dan Teknologi Kelautan Tropis, 5(2), 333-342.
Isshiki, T., Nagano, T., & Miki, K. (2007). Occurrence of a monogenean gill parasite Pseudorhabdosynochus  epinepheli  on  red  spotted grouper Epinephelus  akaara  and its  experimental treatment  by  hydrogen  peroxide  bathing.  Fish Pathology, 42(1), 71-74.
James, C.M., Al-Tohabaiti, S.A., Rasem, B.M., & Carlos, M.H.  (1999).  Potential  of  grouper  hybrid (Epinephelus fuscoguttatus >< E. polyphekadion) for aquaculture.  Naga,  The  ICLARM  Quarterly,  22(1), 19-23.
Juhariyah,  E.,  Mahasri,  G.,  &  Subekti,  S.  (2012). Prevalensi dan intensitas cacing ektoparasit pada ikan koi (Cyprinus carpio) di sentra budidaya ikan koi Kabupaten Blitar, Jawa Timur. Media Journal of Aquaculture and Fish Health, 1(3), 1-7.
Kleinertz,  S.  &  Palm,  H.W.  (2015).  Parasites  of  the grouper  fish  Epinephelus  coioides  (Serranidae)  as potential environmental indicators in Indonesian
coastal ecosystems. Journal of Helminthology, 89, 86–99.
Maulana, D.M., Muchlisin, Z.A., & Sugito, S. (2017). Intensitas dan prevalensi parasit pada ikan betok (Anabas  testudineus)  dari  perairan  umum  daratan Aceh bagian utara. Jurnal Ilmiah Mahasiswa Kelautan dan Perikanan Unsyiah, 2(1), 1-11.
Reed, P., Floyd, R.F., Klinger, R.E., & Petty, D. (2012). Monogenean  parasites  of  fish.  University  of Florida.  Florida.
Riko, Y.A., Rosidah, & Herawati, T. (2012). Intensitas dan  prevalensi  ektoparasit  pada  ikan  bandeng (Chanos chanos) dalam keramba jaring apung (KJA) di  Waduk  Cirata  Kabupaten  Cianjur,  Jawa  Barat. Jurnal Perikanan dan Kelautan, 3(4), 231-241.
Rosita,  Mangalik,  A.,  Adriani,  M.,  &  Mahbub,  M. (2012).  Identifikasi  dan  potensi  parasit  pada sumber daya ikan hias di Danau Lais, Kalimantan Tengah. Enviro Scienteae, 8, 164-174.
Rozsa, L., Reiczigel, J., & Majoros, G. (2000). Quanti- fying  parasites  in  samples  of  hosts.  J.  Parasitol., 86(2), 228-232.
Rückert,  S.,  Klimpel,  S.,  Al-Quraishy,  S.,  Mehlhorn, H., & Palm, H.W. (2009). Transmission of fish para- sites  into  grouper  mariculture  (Serranidae: Epinephelus coioides, Hamilton 1822) in Lampung Bay, Indonesia. Parasitol. Res., 104, 523-532.
Salam,  B.  &  Hidayati,  D.  (2017).  Prevalensi  dan intensitas  ektoparasit  pada  ikan  gabus  (Channa striata) dari tangkapan alam dan budidaya. Jurnal Sains dan Seni ITS, 6(1), 2337-3539 (E1-E4).
Sumino,  C.T.,  Anggraeni,  &  Tardiono.  (2017). Inventarisasi, prevalensi dan intensitas ektoparasit pada  ikan  kerapu  (Epinephelus  sp.)  di  keramba jaring apung perairan Teluk Hurun, Lampung. Jurnal Perikanan dan Kelautan, 7(1), 1-7.
Zafran, Roza, D., Koesharyani, I., Jhonny, F., & Yuasa, K.  (1998).  Manual  for  fish  diseases  diagnosis. Marine fish and crustacean diseases in Indonesia. Gondol  Research  Station  for  Coastal  Fisheries, Central  Research  Institute  for  Fisheries,  Agency for  Agriculture  Research  and  Development  and Japan International Cooperation Agency, p. 1-44.