Abstrak — Permasalahan  mengenai lindi sampah  merupakan salah  satu  dampak  dari  timbulan  sampah.  Timbulan  sampah menghasilkan  lindi  yang  dapat  mencemari  lingkungan.  Salah satu  cara  untuk  mengurangi  dampak  adanya  lindi  adalah dengan memanfaatkannya menjadi pupuk.
Dalam pemanfaatannya
menjadi
pupuk
organik, lindi difermentasikan  menggunakan  bakteri  penambat  N,  yaitu Azospirillum .  Tujuan  penelitian  ini  adalah  untuk  mengetahui pengaruh pengenceran lindi dengan konsentrasi bakteri starter terhadap  laju  pertumbuhan  tanaman  pangan  yang  baik. Variabel  yang  digunakan  adalah  pengenceran  lindi  dan konsentrasi  penambahan  bakteri  starter.  Pengenceran  yang digunakan  yaitu  50x,  75x,  100x,  dengan  volume  sampel sebanyak  10  ml.  penelitian  ini  dilakukan  dalam  skala laboratorium dengan tanaman uji berupa Sorghum bicolor dan Zea  mays. Proses  fermentasi  pada  masing-masing  reaktor  uji dilakukan  selama  14  hari.  Analisis  dilakukan  pada  jumlah koloni bakteri, BOD 5 , COD, amonium, nitrat, serta parameter fisik  berupa  pH  dan  suhu.  Hasil  dari  penelitian  berupa besarnya  pertambahan  batang  dan  daun  tanaman  uji. Pertambahan  tinggi  batang  tanaman  yang  terbaik  adalah penambahan  dari  pupuk  D1  untuk  tanaman Sorghum  bicolor dan  D2  untuk  tanaman Zea  mays. Kedua  pupuk  tersebut memberikan pengaruh yang signifikan terhadap pertumbuhan tanaman uji.
Kata  Kunci — bakteri,  lindi,  pupuk ,  Sorghum  bicolor , Zea mays

## I. PENDAHULUAN
ERTAMBAHAN jumlah penduduk yang diikuti dengan bertambahnya  volume,  jenis  serta  karakteristik  sampah telah  menjadi  sebuah  permasalahan.  Sehingga  perlu dilakukan pengelolaan yang baik. Ada beberapa pengelolaan sampah  yang  dapat  dilakukan.  Diantaranya  adalah pengurangan  dan  penanganan  sampah.  Salah  satu  sarana penanganan sampah adalah Stasiun Peralihan Antara (SPA). Salah  satu SPA  yang terdapat di Surabaya dan aktif hingga saat  ini  adalah  SPA  Rangkah.  Pada  SPA  Rangkah  terdapat unit  pereduksi  volume.  Unit  ini  berupa  alat  pemadat  yang dapat  mereduksi  volume  sekaligus  mengurangi  kadar  air  di dalam  sampah.  Dalam  ketentuan  Kementerian  Pekerjaan Umum,  pada  pengoperasian  SPA  disyaratkan  minimal menyediakan bak penampung lindi. Bak ini berfungsi untuk menampung kadar air dari sampah yang telah melalui proses pemadatan.
Lindi  berbentuk  cairan  dan  dapat  mengandung  bibit penyakit.  Lindi  merupakan  air  yang  terbentuk  dalam timbunan  sampah  yang  melarutkan  banyak  senyawa  [1]. Sehingga  memiliki  kandungan  pencemar  khususnya  zat organik  yang sangat tinggi.  Oleh sebab itu, lindi berpotensi menimbulkan  pencemaran,  baik  pencemaran  air  tanah maupun  air  permukaan.  Disamping  memiliki  dampak
negatif  berupa  adanya  pencemaran,  lindi  juga  memiliki dampak positif. Lindi memiliki unsur-unsur yang dibutuhkan  oleh  tanaman.  Unsur  tersebut  antara  lain, organik  Nitrogen  (10-600  mg/L),  Amonium  Nitrogen  (10- 800  mg/L),  Nitrat  (5-40  mg/L),  Fosfor  Total  (1-70  mg/L), Total  besi  (50-600  mg/L)  [2].  Sehingga,  air  lindi  memiliki potensi  untuk  dimanfaatkan  sebagai  pupuk  organik.  Pada penelitian  ini  dilakukan  pemanfaatan  lindi  yang  dihasilkan oleh  sampah-sampah  di  SPA  Rangkah.  Lindi  dimanfaatkan dengan  cara  fermentasi.  Fermentasi  dilakukan  dengan penambahan  bakteri  penambat  N.  Penambahan  bakteri starter  penambat  N  ditujukan  untuk  menyediakan  unsur  N yang cukup bagi tanaman uji. Hasil dari fermentasi tersebut kemudian  dimanfaatkan  sebagai  pupuk  organik  untuk tanaman  pangan,  yaitu  sorgum  ( Sorghum  bicolor) dan jagung ( Zea mays ).
Azospirillum yang merupakan bakteri penambat N mampu menambat  nitrogen  (N 2 )  40-80%  dari  total  nitrogen  [3]. Bakteri  ini  mampu  menambat  nitrogen  bebas  lebih  baik daripada  bakteri  tanah  penambat  nitrogen  lainnya  [4]. Penggunaan  bakteri  penambat  N  ( Azospirillum )  ditujukan untuk  membantu  pertumbuhan  vegetatif  tanaman  uji, terutama pada pertumbuhan  batang  tanaman serta pertumbuhan daun.
Berdasarkan  latar  belakang  di  atas,  maka  teknik pemanfaatan  lindi  dilakukan  dengan  fermentasi  lindi menggunakan bakteri Azospirillum. Pada penelitian ini juga terdapat variasi penambahan bakteri Azospirillum pada lindi yang  telah  diencerkan.  Hal  tersebut  dilakukan  untuk mengetahui konsentrasi yang paling baik dalam pembentukan  pupuk  organik  cair.  Hasil  dari  proses fermentasi  yang  berupa  pupuk  organik,  diberikan  ke tanaman  uji  dengan  pengukuran  tinggi  batang  dan  jumlah daun tanaman pangan yang diuji.
.
II. METODE PENELITIAN
Pada  penelitian  ini  reaktor  yang  digunakan  berupa  botol kaca  berukuran  1  liter.  Sebanyak  10  mL  lindi  dimasukkan ke  dalam  reaktor  uji  kemudian  diencerkan  dengan  variasi 50,  75,  dan  100.  Setelah  pengenceran  pada  lindi,  kemudian juga dimasukkan bakteri starter dengan variasi 0,5 gram dan 2 gram untuk bakteri starter  yang berbentuk  serbuk, serta 5 mL  dan  10  mL  untuk  bakteri  starter  yang  berbentuk  cair. Terdapat  2  macam  perlakuan  pada  penelitian  ini,  yaitu kontrol  dan  reaktor  uji.  Kontrol  merupakan  reaktor  dengan perlakuan  variasi  pengenceran  tanpa  penambahan  bakteri starter.  Sedangkan  reaktor  uji  lain  menggunakan  variasi pengenceran  lindi  sekaligus  penambahan  bakteri  penambat N ( Azospirillum ).

## Pengaruh Pengenceran Lindi Dan Penambahan Bakteri Starter Terhadap Pertumbuhan Tanaman Pangan
Nur Diana Safitri dan Wahyono Hadi Departemen Teknik Lingkungan, Fakultas Teknik Sipil dan Perencanaan, Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS) Jl. Arief Rahman Hakim, Surabaya 60111 Indonesia e-mail : wahyonohadi@yahoo.com
P
Proses fermentasi pada penelitian ini dilakukan selama 14 hari.  Pada  awal  penelitian,  sebelum  proses  fermentasi, dilakukan  uji  parameter  BOD 5 ,  COD,  amonium,  dan  nitrat. Sedangkan  selama  penelitian  berlangsung,  dilakukan perhitungan  pada  jumlah  koloni  bakteri  pada  hari  ke-7  dan ke-14  proses  fermentasi.  Analisis  jumlah  koloni  bakteri dilakukan dengan metode TPC ( Total Plate Count ). Adapun analisis  lain  yang  dilakukan  setelah  proses  fermentasi berlangsung  adalah  analisi  pada  nilai  amonium,  nitrat, BOD 5 , dan COD hasil fermentasi.
Pupuk  yang  telah  terbentuk  dari  proses  fermentasi diberikan ke tanaman uji berupa tanaman sorgum ( Sorghum bicolor )  dan  jagung  ( Zea  mays ).  Kemudian  dilakukan pengamatan tiap 3 hari sekali pada tinggi batang dan jumlah daun  tanaman  uji.  Setelah  itu,  dilakukan  uji  statistik  untuk mengetahui signifikansi terhadap pertumbuhan tanaman.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN
Selama  14  hari  proses  fermentasi  dilakukan  perhitungan jumlah  koloni  bakteri.  Sedangkan  parameter  yang  berupa parameter  fisika  dan  kimiawi  di  uji  pada  awal  dan  akhir proses fermentasi. Pupuk yang telah mengalami prosesfermentasi  kemudian  diberikan  ke  tanaman  uji  dan dilakukan  pengamatan  tiap  3  hari  sekali  pada  tinggi  dan daun tanaman uji.

## A. Jumlah Koloni Bakteri
Pengamatan  jumlah  koloni  bakteri  dilakukan  untuk mengetahui  jumlah  bakteri  yang  hidup  selama  proses fermentasi  berlangsung.  Perhitungan  jumlah  koloni  bakteri dilakukan  menggunakan  metode  TPC  ( Total  Plate  Count ). Pengamatan jumlah koloni bakteri dilakukan pada hari ke-7, dan  ke-14.  Adapun  hasil  perhitungan  jumlah  koloni  bakteri selama  proses  fermentasi  dapat  dilihat  pada  Gambar  1  dan Gambar 2.
Berdasarkan  Gambar  1  dan  Gambar  2  dapat  diketahui bahwa  rata-rata  bakteri  pada  reaktor  uji  mengalami penurunan  dari  hari  ke-7  hingga  hari  ke-14  (akhir fermentasi),  kecuali  pada  reaktor  uji  B1  yang  mengalami kenaikan  jumlah  koloni  bakteri.  Reaktor  B1  merupakan reaktor  yang  mendapat  perlakuan  penambahan  bakteri sebanyak  1  gram  dan  pengenceran  lindi  sebanyak  50  kali. Hal  ini  disebabkan  oleh  fase  pertumbuhan  bakteri  yang mulai  menurun  akibat  berkurangnya  nutrisi  yang  tersedia pada reaktor uji. Selama proses fermentasi hingga hari ke-7, jumlah koloni terbesar ada pada reaktor dengan penambahan biaoktivator  serbuk  1  gram  dengan  pengenceran  100  kali (Reaktor  B3).  Perlakuan  pengenceran  dan  penambahan bioaktivator  yang  dilakukan  berpengaruh  pada  jumlah koloni  bakteri  yang  ada  pada reaktor  uji.  Selain  itu,  jumlah koloni  bakteri  juga  dipengaruhi  oleh  adanya  bakteri  bakteri pada  sampel  air  lindi.  Dari  keenam  reaktor  uji  yang ditambahkan bioaktivator serbuk, bakteri masih dapat hidup dan berkembang biak hingga hari ke-14 proses fermentasi.
Sedangkan  pada  reaktor  dengan  penambahan  bioaktivator cair  (Gambar  2),  dapat  diketahui  bahwa  hampir  semua reaktor  uji  mengalami  penurunan  jumlah  koloni  bakteri kecuali  pada  reaktor  uji  D1  dan  D2.  Reaktor  D1  adalah reaktor  uji  yang  mendapatkan  perlakuan  penambahan bioaktivator  cair  10  mL  dengan  pengenceran  lindi  sebesar 50  kali.  Sedangkan  reaktor  D2  adalah  reaktor  yang mendapat  perlakuan  penambahan  bioaktivator  cair  10  mL dengan  pengenceran  lindi  sebesar  75  kali.  Fluktuasi  jumlah koloni  bakteri  tersebut  dipengaruhi  oleh  beberapa  faktor
antara  lain  nutrisi  makanan,  suhu,  dan  derajat  kemasaman (pH).
Gambar 1. Jumlah Koloni Bakteri Pada Reaktor Uji Dengan Penambahan Bioaktivator Serbuk
Gambar 2. Jumlah Koloni Bakteri Pada Reaktor Uji Dengan Penambahan Bioaktivator Cair
Mikroorganisme  dalam  reaktor  uji  memanfaatkan  bahan organik  dalam  lindi  untuk  berkembang  biak.  Hal  ini  sesuai dengan  rujukan  [5],  yang  menyatakan  bahwa  pemanfaatan bahan  organik  dalam  limbah  cair  mengakibatkan  jumlah mikroorganisme  di  dalamnya  juga  mengalami  fluktuasi. Sedangkan  menurut  rujukan  [6], Azospirillum termasuk bakteri  yang  tumbuh  lambat.  Sehingga  pada  pengamatan dan  perhitungan  jumlah  koloni  bakteri  yang  dilakukan  oleh peneliti, hasilnya tidak terlalu besar.
Perhitungan  jumlah  koloni  bakteri  juga  dilakukan  pada reaktor  uji  kontrol  di  akhir  proses  fermentasi.  Hasil perhitungan  jumlah  koloni  bakteri  dapat  dilihat  pada Gambar 3.
Gambar 3. Jumlah Koloni Bakteri Pada Reaktor Kontrol
Dari  Gambar  3,  dapat  diketahui  bahwa  jumlah  bakteri yang  teramati  pada  penelitian  masih  sedikit  jika dibandingkan  dengan  reaktor  uji  lain.  Hal  ini  menandakan
7,5 7,5 9,5 8,5 10,2 9,5 7,1 6,9 7,5 8,5 8,5 9,5 6,5 7,0 7,5 8,0 8,5 9,0 9,5 10,0 10,5 A1 A2 A3 B1 B2 B3 L og Ju m lah K ol on i B ak te ri Fermentasi Hari ke-7 Fermentasi Hari ke-14 Keterangan: A1  =  Reaktor  0,5  gr  bakteri Azospirillum dan
pengenceran 50x A2  =  Reaktor  0,5  gr  bakteri Azospirillum dan pengenceran 75x A3  =  Reaktor  0,5  gr  bakteri Azospirillum dan pengenceran 100x
B1  =  Reaktor  1  gr  bakteri Azospirillum dan pengenceran 50x B2  =  Reaktor  1  gr  bakteri Azospirillum dan pengenceran 75x B3  =  Reaktor  1  gr  bakteri Azospirillum dan pengenceran 100x 8,7 8,7 9,7 7,6 7,6 7,8 6,9 8,2 8,5 9,7 7,8 7,8 6,5 7,0 7,5 8,0 8,5 9,0 9,5 10,0 10,5 C1 C2 C3 D1 D2 D3 L og Ju m lah K ol on i B ak te ri Fermentasi Hari ke-7 Fermentasi Hari ke-14 5,5 4,6 4,9 0,0 0,8 1,6 2,4 3,2 4,0 4,8 5,6 6,4 L1 L2 L3 L o g Jum la h K o lo n i B akt er i Pengamatan Akhir Fermentasi Keterangan: C1  =  Reaktor  5  mL  bakteri Azospirillum dan
pengenceran 50x C2  =  Reaktor  5  mL  bakteri Azospirillum dan
pengenceran 75x C3  =  Reaktor  5  mL  bakteri Azospirillum dan
pengenceran 100x D1  =  Reaktor  10  mL  bakteri Azospirillum
dan pengenceran 50x D2  =  Reaktor  10  mL  bakteri Azospirillum dan
pengenceran 75x D3  =  Reaktor  10  mL  bakteri Azospirillum dan pengenceran 100x Keterangan: L1  =  Reaktor  pengenceran 50x L2  =  Reaktor  pengenceran 75x L3  =  Reaktor  pengenceran 100x
bahwa  pada  lindi  tidak  mengandung  terlalu  banyak  bakteri. Pada  reaktor  kontrol  tidak  dilakukan  penambahan  bakteri penambat N ( Azospirillum) . Sehingga jumlah koloni bakteri yang teramati pada uji koloni bakteri tidak terlalu banyak.

## B. Parameter Fisika
Parameter  fisika  merupakan  parameter  fisik  yang  diukur pada reaktor uji yang meliputi nilai pH dan suhu. Parameter ini  diukur  pada  akhir  proses  fermentasi  sebelum  pupuk diberikan  ke  tanaman  uji.  Parameter  pH  pada  reaktor  uji diukur  pada  akhir  proses  fermentasi  (hari  ke-14).  Hasil pengukuran  pH  pada  reaktor  uji  dapat  dilihat  pada  Gambar 4.

## Gambar 4. pH Hasil Pengukuran
Berdasarkan Gambar 4, dapat diketahui bahwa reaktor uji dengan  penambahan  bioaktivator  cair  dan  reaktor  kontrol sudah  memenuhi  persyaratan  minimal  pH  pupuk  yang disyaratkan  oleh  Menteri  Pertanian,  yaitu  peraturan  Nomor 70/Permentan/SR.140/10/2011  dengan  nilai  pH  yang disyaratkan  adalah  5  hingga  8.  Sedangkan  pada  reaktor  uji dengan  penambahan  bioaktivator  serbuk  belum  memenuhi nilai pH yang disyaratkan. Sebelum pupuk cair yang berasal dari  reaktor  uji  dengan  perlakuan  penambahan  bioaktivator serbuk  diberikan  ke  tanaman  uji,  dilakukan  proses pengenceran  terlebih  dahulu.  Hal  ini  ditujukan  untuk menurunkan  nilai  pH  pupuk.  Hasil  pengukuran  pH  pada reaktor  uji  dengan  penambahan  bioaktivator  serbuk  dapat dilihat pada Gambar 5.
Gambar 5. pH Hasil Pengukuran Setelah Pengenceran
Berdasarkan  Gambar  5,  dapat  diketahui  bahwa  pH beberapa  pupuk  belum  sesuai  dengan  peraturan  yang berlaku.  Pada  akhir  fermentasi,  pH  pada  raktor  uji  masih dianggap baik dan dalam ambang batas normal, karena tidak mempengaruhi  aktivitas  bakteri Azospirillum dan  bakteri Azospirillum dapat  bertahan  hidup  dan  berkembang  biak pada kondisi pH basa.
Suhu  diukur  pada  akhir  proses  fermentasi  menggunakan terrmometer. Hasil pengukuran suhu pada reaktor fermentasi dapat  dilihat  pada  Gambar  6.  Suhu  pada  reaktor  uji  adalah antara  31°C  -32°C.  Sehingga  pada  akhir  fermentasi,  suhu pada  reaktor  uji  masih  dianggap  baik  dan  tidak mempengaruhi aktivitas bakteri dalam reaktor uji.
Gambar 6. Suhu Hasil Pengukuran

## C. Parameter Kimiawi
Parameter  kimiawi  meliputi  uji  amonium,  nitrat,  BOD 5 dan  COD  pada  reaktor  uji  dilakukan  di  awal  dan  akhir proses  fermentasi.  Tanaman  pada  umumnya  menyerap nitrogen  dalam  bentuk  NH 4 + atau  NO 3 - .  Oleh  kareana  itu perlu dilakukan uji amonium dan nitrat pada reaktor uji. Uji amonium  yang  dilakukan  di  awal  proses  fermentasi menunjukkan  hasil  60,2  mg/L.  Sedangkan  hasil  perubahan amonium  pada  akhir  proses  fermentasi  dapat  dilihat  pada Gambar 7.
Dari  Gambar  7  dapat  diketahui  bahwa  amonium mengalami  kenaikan  dari  nilai  amonium  awal  pengukuran (sebelum  fermentasi).  Hal  ini  sejalan  dengan  tujuan  dari proses  fermentasi.  Yaitu  menaikkan  nilai  nitrogen  yang diserap  tanaman.    Amonium  dapat  terbentuk  melalui peristiwa  penguraian  organisme  yang  sudah  mati  baik tumbuhan  ataupun  hewan  oleh  mikroorganisme  [7].  Selain itu, lindi mengandung sisa-sisa organik dari sampah organik di  SPA  Rangkah,  sehingga  terbentuk  amonium  yang  tinggi pada reaktor uji.
Gambar 7. Perubahan Nilai Amonium
Uji  nitrat  yang  dilakukan  pada  awal  proses  fermentasi terukur sebanyak 5,028 mg/L. Sedangkan pada akhir proses fermentasi, perubahan nitrat dapat dilihat pada Gambar 8.
0 2 4 6 8 10 12 14 A1 A2 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 D1 D2 D3 L1 L2 L3 pH H as il P en g u ku ra n pH Hasil Pengukuran pH Minimum pH maksimum 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 A1 A2 A3 B1 B2 B3 pH H as il P en g u ku ra n pH Hasil Pengukuran pH Minimum pH maksimum 30,4 30,6 30,8 31 31,2 31,4 31,6 31,8 32 32,2 A1 A2 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 D1 D2 D3 L1 L2 L3 S u h u H asi l P en g u k u ra n ( ° C) Reaktor 0,0 50,0 100,0 150,0 200,0 250,0 300,0 350,0 400,0 450,0 A1 A2 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 D1 D2 D3 L1 L2 L3 A m o n iu m ( m g/L ) Reaktor

## Gambar 8. Perubahan Nilai Nitrat
Dari  Gambar  8,  dapat  diketahui  bahwa  nitrat  mengalami kenaikan  dari  nilai  awal  pengukuran  (sebelum  fermentasi). Amonium  akan  membentuk  reaksi  keseimbangan  dengan amonia  [8].  Sehingga  sebagian  amonia  dioksidasi  oleh bakteri  pada  keadaan  anaerobik  dan  berlangsung  proses nitrifikasi  menghasilkan  nitrat.  Sehingga  pada  proses fermentasi  ini,  amonium  akan  mengalami  proses  nitrifikasi dan  membentuk  nitrit  dan  nitrat.  Pada  proses  anaerobik, akan  terjadi  penurunan  kandungan  amonium  ditandai dengan  adanya  oksidasi  amonium  oleh  nitrit  [9].  Amonium ini yang kemudian mengalami proses nitrifikasi membentuk nitrit  dan  nitrat  [10].  Terdapat  2  proses  dekomposisi  bahan organik yaitu tahap pertama berupa degradasi bahan organik menjadi  bahan  anorganik,  kemudian  tahap  kedua  yaitu perubahan bahan anorganik tidak stabil menjadi bentuk yang lebih  stabil  seperti  amonia  menjadi  nitrit  dan  nitrat  [11]. Sehingga,  nitrat  akan  mengalami  kenaikan  pada  prosesnya [12].  Hal  ini  disebabkan  terjadinya  proses  nitrifikasi  yang membentuk nitrat.
Uji  BOD 5 dan  COD  juga  dilakukan  pada  awal  dan  akhir proses  fermentasi.  hasil  uji  BOD 5 dan  COD  dapat  dilihat pada Gambar 9 dan Gambar 10.
Gambar 9. Penurunan Nilai BOD 5
Dari  Gambar  9  dan  Gambar  10  dapat  diketahui  bahwa nilai  BOD 5 dan  COD  hasil  pengukuran  mengalami penurunan  jika  dibandingkan  dengan  sebelum  dilakukan proses fermentasi. Proses penurunan BOD 5 dan COD terjadi pada  semua  reaktor  uji.  Penurunan  kandungan  senyawa organik  dapat  menurunkan  nilai  BOD 5 [13].  Penurunan kandungan  senyawa  organik  tersebut,  disebabkan  oleh aktivitas  mikroorganisme  di  dalam  reaktor.  Selain  itu, penurunan  nilai  BOD 5 terjadi  karena  menurunya  jumlah bahan organik dan jumlah bakteri  yang  menguraikan bahan organik  dalam  lindi  [14].  Sedangkan  pada  COD,  proses pemecahan  atau  degradasi  senyawa  organik  yang  terjadi pada reaktor uji menjadi senyawa yang lebih sederhana akan menurunkan nilai COD [13].
Nilai BOD 5 pada akhir proses fermentasi telah  memenuhi baku  mutu  yang  disyaratkan  oleh  Peraturan  Menteri Lingkungan  Hidup  dan  Kehutanan  Nomor  P.59/Menlhk/ Setjen/Kum.1/7/2016,  yaitu  sebesar  150  mg/L.  Begitu  juga dengan COD yang telah memenuhi baku mutu, yaitu sebesar 300  mg/L  O 2 .  Nilai  BOD 5 dan  COD  hasil  pengukuran menunjukkan  bahwa  air  lindi  pada  semua  reaktor  uji  dapat dikembalikan ke lingkungan.

## D. Pengamatan Tanaman Uji
Pemberian  pupuk  ke  tanaman  uji  dilakukan  seminggu sekali  dengan  pengamatan  3  hari  sekali.  Pengamatan  yang dilakukan  adalah  pengukuran  terhadap  tinggi  batang  dan jumlah  daun  tanaman  uji.  Pengamatan  terhadap  perubahan tinggi  batang  tanaman  sorgum  dapat  dilihat  pada  Gambar 11.
Pada  Gambar  11,  dapat  diketahui  bahwa  tinggi  batang tanaman  sorgum  terbesar  yaitu  pada  tanaman  yang  diberi pupuk  kimia.  Sedangkan  pada  tanaman  yang  diberi  pupuk lindi,  pertumbuhan  tanaman  tertinggi  pada  tanaman  yang diberi  pupuk  D1  (penambahan  bakteri  starter  cair).  Hal  ini sesuai  dengan  rata-rata  nilai  amonium,  nitrat,  dan  jumlah koloni bakteri terbesar adalah pada reaktor D1. Berdasarkan uji  ANOVA  untuk  mengetahui  signifikansi  pupuk  terhadap tanaman,  dapat  diketahui  bahwa  pupuk  yang  memberikan pengaruh  yang  signifikan  terhadap  petumbuhan  tinggi batang tanaman sorgum adalah pupuk D1 dan D2.
Gambar 11. Perubahan Tinggi Batang Tanaman Sorgum
Respon  yang  baik  dari  tanaman  sorgum  menunjukkan bahwa kebutuhan N tanaman tersebut mampu dipenuhi oleh pupuk  organik.  Lindi  yang  mengandung  bahan-bahan organik  serta  penambahan  bakteri  starter  penambat  N, mampu  menyediakan  unsur  hara  yang  cukup  untuk pertumbuhan  batang  tanaman  sorgum  pada  reaktor  D1  dan D2.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  tanaman  sorgum memberikan  respon  yang  baik  pada  pengenceran  dibawah 100  kali  dengan  konsentrasi  bakteri Azospirillum yang
0,0 50,0 100,0 150,0 200,0 250,0 300,0 A1 A2 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 D1 D2 D3 L1 L2 L3 Ni tr at (m g /L ) Reaktor 0 100 200 300 400 500 600 A1 A2 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 D1 D2 D3 L1 L2 L3 B OD ( m g/L ) Reaktor Awal BOD Akhir Fermentasi Baku Mutu 0 500 1000 1500 2000 2500 A1 A2 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 D1 D2 D3 L1 L2 L3 C OD ( m g/L ) Reaktor Awal COD Akhir Fermentasi Baku mutu 0 10 20 30 40 50 60 70 80 Perubahan Tinggi Tanaman T in ggi T an am an ( cm ) A1 A2 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 D1 D2 D3 L1 L2 L3 K
cukup  untuk  menunjang  penambatan  N  bagi  tanaman sorgum.  Pupuk  organik  yang  diberikan  ke  tanaman  uji memiliki fungsi kimia yang penting seperti penyediaan hara makro (N, P, K, Ca, Mg, dan S) dan mikro (Zn, Cu, Mo, Co, B, Mn, dan Fe) [15].
Sedangkan  untuk  pengamatan  terhadap  jumlah  daun sorgum dapat dilihat pada Gambar 12.

## Gambar 12. Perubahan Jumlah Daun Tanaman Sorgum
Pada  Gambar  12,  dapat  diketahui  bahwa  jumlah  daun tanaman  sorgum  terbesar  yaitu  pada  tanaman  yang  diberi pupuk  kimia.  Sedangkan  pada  tanaman  yang  diberi  pupuk lindi, pertambahan jumlah daun tertinggi pada tanaman yang diberi  pupuk  D1  (penambahan  bakteri  starter  cair).  Hal  ini sesuai  dengan  rata-rata  nilai  amonium,  nitrat,  dan  jumlah koloni  bakteri  terbesar  adalah  pada  reaktor  D1.  Untuk mengetahui  signifikansi  pupuk  terhadap  tanaman,  maka dilakukan uji ANOVA dengan P< 0,05. Hasil menunjukkan bahwa semua jenis pupuk memberikan pengaruh yang tidak signifikan  terhadap  pertambahan  daun  tanaman  sorgum. Hara  N  terlibat  langsung  dalam  pembentukan  asam  amino, protein,  asam  nukleat,  enzim,  nucleoprotein,  dan  alkaloid, yang sangat dibutuhkan untuk proses pertumbuhan tanaman, terutama  perkembangan  daun,  meningkatkan  warna  hijau daun,  serta  pembentukan  cabang  atau  anakan  [16].  Namun pada  perkembangan  daun  sorgum,  hara  N  yang  tersedia belum  mampu  memenuhi  kebutuhan  hara  N  tanaman  uji untuk daun.
Pengamatan  terhadap  tinggi  tanaman  jagung  dapat  dilihat pada Gambar 13.
Gambar 13. Perubahan Tinggi Batang Tanaman Jagung
Pada  Gambar  13,  dapat  diketahui  bahwa  tinggi  batang tanaman  jagung  terbesar  yaitu  pada  tanaman  yang  diberi pupuk  kimia.  Sedangkan  untuk  tanaman  yang  diberi  pupuk dari lindi adalah dengan penambahan pupuk D2. Kemudian dilakukan  uji  ANOVA  untuk  mengetahui  signifikansi  jenis pupuk  terhadap  pertumbuhan  tanaman.  Hasil  signifikansi menunjukkan  bahwa  beberapa  pupuk  yang  memberikan pengaruh signifikan yaitu pada pupuk jenis A1, B1, D2, dan D3.
Suatu  tanaman  akan  tumbuh  dengan  subur  apabila  unsur yang  dibutuhkan  tersedia  cukup  [17].  Jenis  pupuk  A1,  B1, D2,  dan  D3  menyediakan  unsur  hara  yang  cukup  untuk tanaman  jagung  sehingga  batang  tanaman  jagung  tumbuh lebih  tinggi.  Interaksi  antara Azospirillum serta  unsur  hara yang  tersedia  pada  lindi  di  pupuk  organik  baik  dari  bakteri starter  serbuk  maupun  cair  menyebabkan  tersedianya  hara, khususnya  N  untuk  tanaman.  Adanya  aktivitas  bakteri starter dalam tanah menyebabkan terjadinya mobilisasi hara dalam tanah sehingga tersedia bagi tanaman [18]. Selain itu, bakteri  starter  di  tanah  juga  menghasilkan  hormon  tumbuh yang  sangat  mempengaruhi  interaksi  dengan  tanaman. Keempat  jenis  pupuk  yang  signifikan  tersebut  mampu memberikan  hara  yang  cukup  untuk  pertumbuhan  tanaman jagung.  Hal  ini  dimungkinkan  karena  adanya  bakteri  tanah atau  mikroba  tanah  pada  jagung  ditambah  dengan  pupuk organik  dari  reaktor  uji  yang  memiliki  bakteri  starter penambat N. Pemberian pupuk dengan dosis yang tepat akan berperan  dalam  meningkatkan  ketersediaan  unsur  hara  di dalam  tanah,  sehingga  akan  mempengaruhi  tingkat pertumbuhan dan produksi tanaman [19].
Pengamatan  terhadap  jumlah  daun  tanaman  jagung dilakukan  dapat  dilihat  pada  Gambar  14.Pada  Gambar  14, dapat diketahui bahwa jumlah daun tanaman jagung terbesar yaitu  pada  tanaman  yang  diberi  pupuk  D2.  Adapun  untuk mengetahui tingkat signifikansi jenis pupuk terhadap jumlah daun  tanaman  jagung,  maka  dilakukan  uji  signifikansi. Berdasarkan  uji  ANOVA  yang  telah  dilakukan  dapat diketahui  bahwa  semua  pupuk  memberikan  pengaruh  yang sama  terhadap  pertumbuhan  daun  tanaman  sorgum. Sehingga  semua  jenis  pupuk  memberikan  pengaruh  yang tidak signifikan terhadap pertumbuhan daun tanaman uji.

## Gambar 14. Perubahan Jumlah Daun Tanaman Jagung
Pengaruh  yang  lambat  dan  tidak  signifikan  tersebut, mungkin  disebabkan  karena  kemampuan  akar  tanaman untuk menyerap pupuk belum berfungsi sempurna akibatnya pupuk  tidak  terserap  maksimal.  Penyebab  lain  adalah  sifat dari  pupuk  organik  hayati  yang “ slow  release ” sehingga membutuhkan  waktu  yang  agak  lama  untuk  melihat pengaruh  dari  pupuk  organik  [20].  Selain  pengaruh penambahan pupuk, pertumbuhan tanaman dipengaruhi oleh adanya cahaya matahari yang membantu proses fotosintesis, sera pengaruh penyiraman. Selain itu, pertumbuhan tanaman uji  juga  dipengaruhi  oleh  tersedianya  unsur  hara,  terutama nilai N pada tanah dan selama pemberian pupuk.

## IV. KESIMPULAN
Berdasarkan  penelitian  yang  telah  dilakukan,  maka  dapat diambil kesimpulan sebagai berikut:
1. Konsentrasi penambahan bakteri starter serta pengenceran  lindi  dalam  menghasilkan  pupuk  yang
0 1 2 3 4 5 6 7 Perubahan Jumlah Daun Jum la h Da un Reaktor A1 A2 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 D1 D2 D3 L1 L2 L3 K 0 20 40 60 80 100 120 140 A1 A2 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 D1 D2 D3 L1 L2 L3 K P er ub ah an T in ggi ( cm ) Reaktor 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Perubahan Jumlah Daun Jum la h Da un A1 A2 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 D1 D2 D3 L1 L2 L3 K
baik  yaitu  D1  (reaktor  dengan  penambahan  bakteri starter  cair  sebanyak  10  mL  dan  pengenceran  sebesar 50  kali)  dan  B3  (reaktor  dengan  penambahan  bakteri starter  serbuk  sebanyak  1  gram  dan  pengenceran sebesar 100 kali).
2. Pertumbuhan  tinggi  batang  tanaman  sorgum  paling cepat  terjadi  pada  pemberian  pupuk  cair  D1. Sedangkan  pada  tanaman  jagung  pada  pemberian pupuk  cair  D2.  Kedua  pupuk  tersebut  berpengaruh signifikan  pada  tanaman  sorgum  dan  jagung  menurut hasil  ANOVA.  Sedangkan  pada  jumlah  daun,  semua jenis  pupuk  memberikan  pengaruh  yang  tidak signifikan menurut hasil ANOVA.
UCAPAN TERIMA KASIH Penulis  mengucapkan  terimakasih  kepada  Stasiun Peralihan  Antara  Rangkah,  Laboratorium  Teknologi Pengolahan  Air,  Laboratorium  Limbah  Padat  dan  B3,  dan semua  pihak,  atas  bantuan  dan  arahan  yang  telah  diberikan kepada penulis selama penelitian berlangsung.

## DAFTAR PUSTAKA
[1] Darmasetiawan,  Martin.  2004. Perencanaan  Tempat  Pembuangan Akhir (TPA) . Jakarta: Ekamitra Engineering
[2] Tchobanoglous,  G.,  Vigil,  S.  1993. Integrated  Solid  Wastes
Management Issues . New York: International Edition Mc Grow Hill [3] Samekto,  R.  2008. Bioteknologi dan  Keharaan Tanaman (Mikroorganisme, Nitrogen, dan Fosfor). J. Inov. Pertan. 7:66-85
[4] Traversi  D,  Romanazzi  V,  Degan  R,  Lorenzi  E,Carraro  E,  Gilli  G. 2015. Microbialchemical indicator for anaerobic digester performance assessment in full-Scale waste water treatment plants for biogas production . J Biores Technol. 186: 179 – 191.
[5] Widawati., Muharram. 2012.  Uji  Laboratorium Azospirillum  sp yang Diisolasi dari Beberapa Ekosistem. J. Hort. 22(3):258-267, 2012
[6] Pandey,  S.  N.,  Sinha  B.  K.  1990. Plant  Physiologi  2nd  Revised Edition . Kanpur: Vikas Publishing House
[7] Li H, Zhou S, Mae W, Huang P, Huang G, Qin Y, Xu B, Ouyang H. 2014. Long-term  performance  and  microbial  ecology  of  a  two-stage PN – ANAMMOX  process  treating  mature  landfill  leachate .  J  Biores Technol. 159: 404 – 411.
[8] Nindrasari  GV,  Meitiniarti  I,  Jubhar  C,  Mangimbulude.  2010. Pengurangan  ammonium  dengan  metode  nitrifikasi  dan  anammox pada  air  lindi  dari  tempat  pembuangan  sampah  Jati  Barang Semarang . Seminar Nasional VIII Pendidikan Biologi. Biologi, Sains, Lingkungan  dan  Pembelajarannya  Menuju  Pembangunan  Karakter. Semarang: 21-23 September 2010.
[9] Damsir,  Suprihatin,  M  Romli,  M  Yani,  Arie  H.  2016. Karakteristik Lindi Hasil Fermentasi Anaerobik Sampah Kota dalam Lisimeter dan Potensi  Pemanfaatannya  Menjadi  Pupuk  Cair. Jurnal  Teknologi Pertanian 26 (2):125-133 (2016)
[10] Chen  ,Y.,  Cheng,  J.J.,  Creamer,  K.S.  2008. Inhibition  of  anaerobic digestion process : A review. J Biores Technol. 99(10): 4044- 4060
[11] Iswanto,  B.,  Widyo  Astono,  Sunaryati.2007. Pengaruh  Penguraian Sampah  Terhadap  Kualitas  Air  Ditinjau  Dari  Perubahan  Senyawa Organik dan Nitrogen dalam  Reaktor  Kontinyu Skala  Laboratorium. Jakarta: Universitas Trisakti
[12] Avlenda,  E.  2009. Penggunaan  tanaman  kangkung  (Ipomoea aquatica)  Forsk.)  dan  genjer  (Limnocharis  Flava  (L.)  Buch.)  dalam pengolahan  limbah  cair  pabrik  kelapa  sawit. [Tesis].  Bandung. Institut Teknologi Bandung
[13] Eko,  M.,  Wiryanto,  Sajidan.  2006. Pengolahan  Limbah  Domestik dengan Aerasi dan Penambahan Bakteri Pseudomonas putida. Jurnal
Bioteknologi 3 (2): 42-49, Nopember 2006
[14] Simanungkalit,  R.D.M.  2006. Pupuk  Organik  dan  Pupuk  Hayati . Bogor: Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Sumberdaya Lahan Pertanian
[15] Nasreen, S, Haque, MM, Hosain, MA & Farid, ATM .2007. Nutrient uptake  and  yield  of  onion  as  influenced  by  nitrogen  and  sulphur fertilization, Bangladesh. J. Agril. Res., vol. 32, no. 3, pp. 413-20.
[16] Abdissa, Y, Tekallign, T & Pant, LM. 2011. Growth, bulb yield, and quality  of  onion  (Allium  cepa  L.)  as  influenced  by  nitrogen  and phosphorus  fertilization  on  vertisol.  I.  growth  attributes,  biomass production  and  bulb  yield. Afr.  J.  Agric.  Res.,  vol.  6,  no.  14,  pp. 3252-8
[17] Dwidjoseputro.  1990. Pengantar  FIsiologi  Tumbuhan .  Jakarta:  PT. Gramedia Pustaka Utama
[18] Rao,  N.M.S.  1982. Biofertilizers  in  Agriculture .  New  Delhi:Oxford and BH Publishing Co
[19] Marsono  dan  P.  Sigit.  2000. Pupuk  AkarJenis  dan  Aplikasinya . Jakarta: Penebar Swadaya.
[20] Gubali,  H.,  M.  I.  Bahua,  N.  Musa.  2013. Uji  Efektivitas  Pupuk Organik  Hayati  untuk  Meningkatkan  Pertumbuhan  dan  Hasil Tanaman Kangkung Darat . Gorontalo:Universitas Negeri Gorontalo