Jurnal Unitek Vol.15 No.2 Juli - Desember 2022 e-ISSN : 2580-2582, p-ISSN: 2089-3957

## Pengaruh Metode Ekstraksi Terhadap Kualitas Ekstrak Kulit Manggis ( Garcinia mangostana L)
Rizki Tri 1 , * Sedarnawati Yasni 2 , Tjahja Muhandri 3 , dan Sri Yuliani 4 1,2,3) Departemen Ilmu dan Teknologi Pangan, IPB University, Bogor
4) Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Pascapanen Pertanian, Bogor
* email: tririzki.dn@gmail.com

## ABSTRAK
Manggis merupakan salah satu hasil pertanian utama penyumbang devisa tahunan terbesar dari buah-buahan. Manggis menempati urutan pertama ekspor buah segar nasional  ke  mancanegara.  Kulit  buah  manggis  mengandung  senyawa  aktif  yang disebut  xanthone  yang  didapat  melalui  berbagai  metode  ekstraksi.  Perbedaan metode ekstraksi berpengaruh terhadap kualitas senyawa xanthone. Ekstraksi kulit manggis  dapat  dilakukan  dengan  metode  konvensional  dan  non-konvensional. Kualitas  ekstraksi  senyawa  xanthone  dapat  diukur  melalui  parameter  rendemen, total xanthone, total alpha-mangosteen, total fenol dan nilai IC50. Metode ekstraksi menggunakan  soxhlet  dan  maserasi  adalah  metode  yang  paling  banyak  digunakan pada  ekstraksi  kulit  manggis.  Metode  non-konvensional  memberikan  hasil  yang lebih  baik  dibandingkan  dengan  metode  konvensional  pada  parameter  rendemen, total xanthone, total alpha-mangosteen, total fenol dan nilai IC50.
Kata kunci: manggis, ekstraksi, xanthone, alpha-mangosteen, antioksidan

## ABSTRACT
Mangosteen  is  one  of  the  main  agricultural  products  that  contribute  to  the  largest annual foreign exchange from the fruit. Mangosteen ranks first in national fresh fruit exports  to  foreign  countries.  Mangosteen  rind  contains  active  compounds  called xanthones  which  are  obtained  through  various  extraction  methods.  Differences  in extraction  methods  affect  the  quality  of  xanthone  compounds.  Mangosteen  peel extraction can be done by conventional and non-conventional methods. The extraction quality  of  xanthone  compounds  can  be  measured  through  yield  parameters,  total xanthones,  total  alpha-mangosteen,  total  phenol,  and  IC50  value.  The  non- conventional  method  gave  better  results  than  the  conventional  method  on  yield parameters, total xanthones, total alpha-mangosteen, total phenol, and IC50 values.
Keywords: mangosteen, extraction, xanthone, alpha-mangosteen, antioxidant

## Pendahuluan
Manggis  ( Garcinia  mangostana L.)  termasuk  keluarga Cluciaceae ,  tumbuh  di negara-negara  Asia  Tenggara  beriklim  tropis  seperti  Malaysia,  Indonesia,  dan Thailand.  Manggis  menjadi  salah  satu  hasil  pertanian  utama  negara-negara  ini karena nilai ekonomi yang tinggi di berbagai belahan dunia termasuk Cina, Jepang, Eropa, dan negara-negara Timur Tengah serta Amerika Serikat  (Matra et al. 2016;
Aizat et  al. 2019).  Ekspor  buah  manggis  pada  tahun  2018  sebesar  38.84  ribu  ton menjadi penyumbang devisa terbesar dari buah-buahan tahunan dengan nilai US$ 33.278.463 (Badan Pusat Statistik 2018).
pohon manggis dapat mencapai  tinggi hingga 20-25meter dengan warna kulit kayu  cokelat  gelap.  Pohon  ini  menghasilkan  sedikit  buah  selama  5-10  tahun  tetapi hasil panen kemudian meningkat menjadi 3000 buah per pohon pada usia 30 tahun. pohon  manggis  membutuhkan  cuaca  yang  hangat  sepanjang  tahun  dan  iklim  yang lembab (Failla dan Gutiérrez 2017).
Buah  manggis  terdiri  dari  bagian  kulit  luar  yang  tipis  dan  berwarna  ungu, bagian  kulit  dalam  yang  berwarna  merah  dan  tebal  (pericarp),  dan  bagian  daging buah (aril) yang berwarna putih menyumbang sekitar sepertiga dari total berat total buah manggis. Daging buah manggis dibagi menjadi empat hingga delapan segmen, masing-masing  berisi  biji,  dan  memiliki  aroma  khas  yang  dihasilkan  dari  senyawa volatil  seperti  hexyl  acetate,  hexanol,  dan  α-copaene.  Daging  buah  manggis  dapat dimakan  dengan  rasa  yang  manis  dan  sedikit  asam  (Brunner  dan  Morales-Payan 2010).
Kulit buah manggis mengandung senyawa aktif yang disebut xanthone  (Chin et  al.  2008)  yang  terdiri  dari  beberapa  komponen  yaitu  α,  dan  γ  -mangostin  serta senyawa  lain  termasuk  tanin,  flavonoid,  proanthocyanidins,  anthocyanin,  dan senyawa fenolik (Chin dan Kinghorn 2008; A. S. Zarena dan Sankar 2009; Widowati et  al.  2014;  Abuzaid  et  al.  2016).  Xanthone  mengandung  alpha-mangostin  (69,01%) sebagai  senyawa  xanthone  utama,  gamma-mangostin  (17,86%),  dan  senyawa xanthone  minor  (13,13%),  antara  lain:  gartanin,  8-deoxygartanin,  garcinon  E,  1,7- dihidroksi-3-metoksi-2-(3-2-enil)-xanthone,  dan  1,3,7-tri-hidroksi-2,8-di  (3-metilbut- 2-enil)-xanthone (Wittenauer et al. 2012). Secara tradisional, penggunaan kulit buah manggis  dalam  bentuk  infus dan decoctions  untuk  mengobati  infeksi  kulit,  saluran kemih, dan pencernaan (Muhsinin et al. 2016; Ovalle et al. 2017).
Ekstrak xanthone yang dihasilkan dari kulit buah manggis sangat dipengaruhi oleh  metode  dan  pelarut  yang  digunakan  pada  saat  ekstraksi  (Suttirak  dan Manurakchinakorn  2014;  Kusmayadi  et  al.  2018).  Pemilihan  metode  ekstraksi menjadi  hal  yang  penting  untuk  diperhatikan  untuk  mendapatkan  rendemen  yang maksimum,  kemurnian  senyawa  target  (Shirsath  et  al.  2012),  dan  menentukan kualitas ekstrak yang diperoleh (Sravan et al. 2020).

## Hasil dan Pembahasan
Ekstraksi  adalah  langkah  pertama  untuk  memisahkan  produk  alami  yang diinginkan  dari  bahan  baku  (Q.W.  Zhang  et  al.  2018).  Metode  ekstraksi  terbagi menjadi dua, yaitu metode konvensional dan non-konvensional. Metode konvensional adalah  metode  sederhana  yang  sering  digunakan  dan  mudah  untuk  dilakukan karena  hanya  menggunakan  pelarut  dan  pemanas  konvensional.  Metode  ekstraksi ini  masih  memiliki  beberapa  kelemahan,  yaitu  membutuhkan  banyak  pelarut  dan waktu  yang  lama,  tetapi  rendemen  yang  diperoleh  sedikit  (Tjahjani  et  al.  2014). Selain  itu  metode  ini  dapat  menyebabkan  senyawa  termolabil  terdegradasi. Penggunaan  metode  konvensional  khususnya  yang  menggunakan  banyak  pelarut memiliki  kelemahan  yaitu  berpotensi  menghasilkan  emisi  zat  beracun  selama ekstraksi.  Pelarut  yang  digunakan  dalam  sistem  ekstraksi  harus  memiliki
kemurnian  tinggi  yang  dapat  menambah  biaya.  Penggunaan  ini  dianggap  tidak ramah  lingkungan  dan  dapat  berkontribusi  pada  masalah  polusi  (Daniels  et  al. 2020).
Berbeda dengan metode konvensional, metode non-konvensional atau modern memiliki  beberapa  keunggulan,  yaitu  rendemen  tinggi,  waktu  ekstraksi  cepat,  dan pelarut  yang  digunakan  lebih  sedikit.  Metode  modern  ini  telah  dilakukan  dalam skala  industri  (Bagherian  et  al.  2011;  Guo  et  al.  2012;  Buanasari  et  al.  2017; Megawati et al. 2019).
Metode konvensional yang paling umum digunakan adalah maserasi, refluks, perkolasi dan soxhletasi (Damayanti dan Fitriana 2012). Metode nonkonvesional yan sering  digunakan  adalah  super  critical  fluid  extraction  (SFC),  ultrasonic  assisted extraction  (UAE)  dan  microwave  assisted  extraction  (MAE).  Ekstraksi  bahan  alam dilakukan  melalui  4  tahapan,  yaitu:  penetrasi  pelarut  ke  dalam  sampel,  ekstrak larut ke dalam pelarut,  ekstrak terdifusi keluar dari matriks padatan bahan,  dan pengumpulan  ekstrak  (Zhang  et  al.  2018).  Kelebihan  dan  kekurangan  beberapa metode ekstraksi dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1. Kelebihan dan kekurangan beberapa metode ekstraksi (danlami et al. 2014; azmin et al. 2016; zhang et al. 2018)
Metode Esktraksi Kelebihan Kekurangan Pressured  liquid extraction  Mudah dioperasikan  Waktu ekstraksi singkat  Biaya mahal  Hanya  dapat  digunakan untuk analisis Supercritical  fluid extraction (SFE)  Pelarut  (CO2)  tidak mahal  Pelarut  dapat  didaur ulang  Waktu ekstraksi singkat  Dapat digunakan secara otomatis  Tidak memerlukan penyaringan lanjutan  Kehilangan  senyawa  target karena  pemilihan  pelarut yang tidak tepat
 Membutuhkan peralatan khusus  Memerlukan  kemampuan khusus  Tidak cocok untuk senyawa thermolabile Microwave- assisted extraction (MAE)  Dapat digunakan untuk  skala  industri dan laboratorium  Waktu ekstraksi singkat  Keuntungan yang lebih tinggi pada skala industri  Efisiensi yang rendah terhadap  senyawa  atau pelarut non-polar dan pelarut  dengan  viscositas tinggi  Tidak cocok untuk senyawa
thermolabile
 Biaya  yang  mahal  dan memerlukan  kemampuan khusus untuk dioperasikan Sonication extraction  Efisiensi  yang  tinggi pada penggunaan  Tidak cocok digunakan pada ekstraksi minyak
Perbedaan metode ekstraksi secara umum mempengaruhi rendemen, total xanthone, alpha-mangosteen, total fenol dan nilai IC50 (Tabel 2). Metode ekstraksi konvensional yang digunakan  pada  ekstraksi  manggis  adalah  metode  ekstraksi  dengan.  magnetic  stirrer, shaking  waterbath  extraction,  orbital  shaker  extraction,  maserasi,  soxhlet,  perkolasi, sealed tube extraction, dan continuous extraction. Metode ekstraksi non-konvensional yang digunakan  adalah  supercritical  fluid  extraction  (SFC),  microwave-assisted  extraction (MAE), dan ultrasonic-assisted extraction (UAE).
Penggunaan metode ekstraksi konvensional memberikan hasil rendemen yang lebih tinggi,  tetapi  kandungan  xanthone  dan  alpha-mangostin  lebih  rendah  dibandingkan dengan ekstraksi dengan metode MAE, SFC dan UAE. Menurut (Aun et al. 2011), hal ini disebabkan karena metode ekstraksi secara konvensional menggunakan waktu yang lama dan  temperatur  yang  tinggi.  Waktu  ekstraksi  yang  lama  menyebabkan  rendemen  yang lebih banyak, dan suhu yang tinggi menyebabkan penurunan kandungan alpha-mangostin selama proses ekstraksi. Sedangkan pada metode MAE, terdapat perputaran pelarut (dipol solvent  rotation),  dalam  medan  gelombang  mikro,  sehingga  meningkatkan  kandungan xanthone dan alpha-mangostin yang dapat menyerap energi gelombang mikro dan dengan cepat dipindahkan ke dalam pelarut. Pada ekstraksi MAE terjadi iradiasi gelombang mikro yang  mempercepat  pecahnya  sel  dengan  menyebabkan  kenaikan  suhu  mendadak  dan peningkatan  tekanan  internal  di  dinding  sel  tanaman  (Inoue  et  al.  2010;  Ahmad  dan Langrish  2012)  yang  mengubah  sifat  fisik  jaringan  biologis  dan  meningkatkan porositasnya.  Hal  ini  memungkinkan  penetrasi  pelarut  yang  lebih  baik  melalui  matriks yang  memfasilitasi  ekstraksi  flavonoid  (Kratchanova  et  al.  2004;  Mandal  et  al.  2007). Ultrasonik  memiliki  kemampuan  untuk  menembus  dinding  sel,  memperkecil  ukuran partikel,  dan  meningkatkan  perpindahan massa  antara  dinding  sel  dan  luar  (Entezari  et al.  2004;  Asgarpanah  dan  Ramezanloo  2012).  Hal  ini  dikarena  pada  metode  ultrasonic assited extraction (UAE) terjadi tekanan gelombang ultrasonik yang melewati pelarut dan fenomena  kavitasi  (Rombaut  et  al.,  2014).  Gelombang  ultrasonik  membuat  gelembung kavitasi  (cavitation  bubbles)  pada  sampel  yang  dapat  pecah  dan  membentuk  gelombang
skala besar  Waktu ekstraksi singkat  Mudah dioperasikan  Penggunaan  pelarut yang sedikit Hydro-distilation dan steam- distilation extraction  Biaya murah  Tidak  menggunakan pelarut organik  Waktu ekstraksi lama  Tidak cocok untuk senyawa thermolabile  Tidak  dapat  menggunakan agitasi (pengadukan) untuk mempercepat ekstraksi Ekstraksi menggunakan pelarut  (solvent); maserasi, perkolasi,  refluks, soxhlet  Mudah dioperasikan  Variasi  sampel  yang dapat diekstrak banyak  Waktu ekstraksi lama  Tidak  dapat  digunakan pada senyawa thermolabile  Penggunaan pelarut tinggi  Tidak dapat dilakukan secara otomatis
kejut dengan pancaran cairan (liquid jets) sehingga membuat dinding sel pecah. Pecahnya dinding sel membuat komponen di dalam sel keluar bercampur dengan pelarut (Khoddami et al. 2013; Rombaut et al. 2014).
Penggunaan  metode  ekstraksi  konvensional  menghasilkan  nilai  IC50  yang  lebih rendah  dan  total  fenol  yang  lebih  rendah  dibandingkan  metode  non-konvensional  (MAE, SFC,  dan  UAE).  Menurut  (Desai  et  al.  2010)  penggunaan  metode  MAE  memberikan kekuatan  penetrasi  yang  kuat  ke  sampel  kulit  manggis  untuk  mengekstrak  senyawa fenolik secara efisien dibandingkan metode konvensional. MAE dapat menurunkan panas gelombang mikro dari energi elektromagnetik dan menyebabkan terjadinya konduksi ionik dan  perputaran  pelarut  (dipol  solvent  rotation)  yang  memungkinkan  gelombang  mikro mengenai  bagian  dalam  sampel  sedangkan  metode  waterbath  extraction  (WBE)  terjadi konduksi dan konveksi yang transfer energi panas ke sampel. Salah satu dampak negatif dari  penggunaan  ekstraksi  menggunakan  WBE  adalah  degradasi  senyawa  fenolik  yang disebabkan karena waktu ekstraksi yang lebih lama daripada MAE.
Kandungan  TPC  yang  rendah  pada  metode  konvensional  dikarenakan  proses pemanasan  yang  tinggi  pada  penguapan  pelarut  menggunakan  rotary  evaporator.  Setiap senyawa  fenolik  memiliki  suhu  maksimum  yang  dapat  digunakan  pada  proses  ekstraksi. Suhu 50°C adalah suhu yang relatif aman untuk mencegah kerusakan metabolit sekunder tertentu,  terutama  flavonoid  yang  memiliki  senyawa  aromatik  terkonjugasi  yang  mudah rusak (M’hiri et al. 2015; Sa`adah et al. 2017).
Jurnal Unitek Vol.15 No.2 Juli - Desember 2022 e-ISSN : 2580-2582, p-ISSN: 2089-3957
Tabel 2. Pengaruh Metode Ekstraksi terhadap Rendemn, Kadar Xanthone, Kadar Alpha-mangosteen, Nilai IC50 dan Total Fenol No Metode Esktraksi Pelarut Rendemen (%) Kadar Xanthone (mg/ g sampel) Kadar alpha- mangostin (mg/g sampel) Nilai IC50 (µg/mL Total Fenol (mg GAE/g) Catatan Sumber 1 Ekstraksi dengan magnetic stirrer PG - Tidak Tedeksi 0.46 1210 4.76 - (Sungpud et al. 2020) Etanol 95% - 0.0936 0.66 3310 3.60 - Etanol 95% 24.24 - 114.70 19.55 199 - (Pothitirat et al. 2010) 2 Shaking waterbath extraction Etanol 95% 16.57 - 458.30 - - - (Aun et al. 2011) 3 Orbital shaker extraction Metanol - - - - 67.41 - (Palakawong et al. 2013) 4 Maserasi Etanol 95% - - 37.5 210,45 90 - (Melia et al. 2019) Etanol 95% 11.27 30.11 - - - Ekstraksi selama 36 jam (Kusmayadi et al. 2018) Aseton 10.34 31.02 - - - Ekstraksi selama  36 jam Metanol 10.43 31.70 - - - Ekstraksi selama 48 jam Etanol 95% - - - 5,03 - - (Pratiwi et al. 2016) Etil Acetat - - - 41,56 - - Etanol 70% 21.04 277 - - - - (Andayani 2015) Etanol 95% - 0.06 - - - Ekstraksi selama 2 jam (Yoswathana 2013) Etanol 95% 24.04 - 133.20 14.24 243 - (Pothitirat et al. 2010)
Jurnal Unitek Vol.15 No.2 Juli - Desember 2022 e-ISSN : 2580-2582, p-ISSN: 2089-3957
No Metode Esktraksi Pelarut Rendemen (%) Kadar Xanthone (mg/ g sampel) Kadar alpha- mangostin (mg/g sampel) Nilai IC50 (µg/mL Total Fenol (mg GAE/g) Catatan Sumber 5 Soxhlet Etanol 95% 38.09 - 21.75 - - - (Lee et al. 2019) Etil Acetat 40.36 - 36.65 - - - Etanol 70% 28.34 304 - - - - (Andayani 2015) Etanol 70% - - - 1199,85 119.95 - (Manasathien dan Khanema 2015) Etanol 95% - 0.12 - - - Ekstraksi selama 2 jam (Yoswathana 2013) Etanol 95% 24.45 - 348.20 - - - (Aun et al. 2011) Etanol 95% 26.60 - 135.10 14.88 248 - (Pothitirat et al. 2010) Etil Acetat 15.4 - - 30.01 269.9 - (Zarena dan Sankar 2009) Aseton 12.0 - - 33.32 205.2 - Metanol 18.8 - - 52.62 315.7 - Etanol 95% 14.8 - - 69.43 431. - 6 Perkolasi Etanol 70% 20.10 378 - - - - (Andayani 2015) Etanol 95% 24.81 - 127.10 15.07 224 - (Pothitirat et al. 2010) 7 Sealed tube extraction - - - 26 - - Penambahan Natural Deep Eutectic Solvents (NADES) (Mulia et al. 2015)
Jurnal Unitek Vol.15 No.2 Juli - Desember 2022 e-ISSN : 2580-2582, p-ISSN: 2089-3957
No Metode Esktraksi Pelarut Rendemen (%) Kadar Xanthone (mg/ g sampel) Kadar alpha- mangostin (mg/g sampel) Nilai IC50 (µg/mL Total Fenol (mg GAE/g) Catatan Sumber 8 Continuous extraction Etanol 95% 24.33 - 0.93 - - - (Limphapayom et al. 2017) Metanol 22.8 - 1.08 - - - Etil Acetat 10.36 - 0.78 - - - 9 Microwave- assisted extraction (MAE) Air destilasi 19.43 45.01 - - 39.54 - (Hiew et al. 2021) Etanol 71% - - - - 320.31 Dari Hasil RSM (Mohammad et al. 2019) Etil Acetat - - 121.01 20.64 368 Dari Hasil RSM (Ghasemzadeh et al. 2018) Etanol 95% 17.09 - 497.90 - - - (Aun et al. 2011) 10  Supercritical carbon dioxide extraction - 17.55 - 92.49 - - Penambahan VCO 20% (Lee et al. 2019) - - 587 - - - (Hamid et al. 2018) - 39.90 - - - 220 Pimediasi dengan hidrotermal (Chhouk et al. 2016) Etanol 5% 15.14 752.90 510.90 - - - (Zarena et al. 2012) - 7.56 659.30 430.40 - - - (Zarena dan Sankar 2011) 11 Subcritical water treatment - - 24.87 - - 179.54 Penambahan 30 % deep eutectic solvent addition (Machmudah et al. 2018) 12 Ultrasonic Assisted Metanol - 0.59 - - - - (Suryono et al. 2019)
Jurnal Unitek Vol.15 No.2 Juli - Desember 2022 e-ISSN : 2580-2582, p-ISSN: 2089-3957
No Metode Esktraksi Pelarut Rendemen (%) Kadar Xanthone (mg/ g sampel) Kadar alpha- mangostin (mg/g sampel) Nilai IC50 (µg/mL Total Fenol (mg GAE/g) Catatan Sumber Extraction (UAE) - - - - 245.78 - (Cheok et al. 2013) Etanol 95% - 0.18 - - - Waktu ekstraksi selama 30 menit (Yoswathana 2013) Etanol 95% 25.75 - 101.40 19.25 207 - (Pothitirat et al. 2010)

## Simpulan
Metode  ekstraksi  dapat  dilakukan  dengan  metode  konvensional  dan  non- konvensional.  Metode  konvensional  adalah  metode  sederhana  yang  sering  dan  mudah digunakan, tetapi membutuhkan banyak pelarut, waktu ekstraksi lama, rendemen sedikit dan  dapat  menyebabkan  senyawa  termolabil  terdegradasi.  Metode  non-konvensional adalah metode modern yang memiliki beberapa keunggulan, yaitu rendemen tinggi, waktu ekstraksi  cepat,  dan  pelarut  yang  digunakan  lebih  sedikit,  tetapi  membutuhkan  biaya ekstraksi  yang  mahal.  Metode  konvensional  antara  lain  metode  maserasi,  refluks, perkolasi dan soxhletasi. Metode non-konvesional antara lain super critical fluid extraction (SFC),  ultrasonic  assisted  extraction  (UAE)  dan  microwave  assisted  extraction  (MAE). Penggunaan  metode  non-konvensional  atau  modern  memberikan  hasil  yang  lebih  baik dibandingkan dengan metode konvensional.Metode ekstraksi soxhlet dan maserasi adalah metode  yang  paling  banyak  digunakan  pada  ekstraksi  kulit  manggis.  Perbedaan  metode ekstraksi  berpengaruh  terhadap  rendemen,  total  xanthone,  alpha-mangosteen,  total  fenol dan nilai IC50.

## Daftar Pustaka
Abuzaid  A,  Iskandar  E,  Kurniati  N,  Adnyana  I.  2016.  Preventive  effect  on  obesity  of mangosteen (Garcinia mangostana L.) pericarp ethanolic extract by reduction of fatty acid  synthase  level  in  monosodium  glutamate  and  high-calorie  diet-induced  male wistar rats. Asian J Pharm Clin Res . 9(3):257–260. doi:10.1038/ejcn.2015.89.
Ahmad  J,  Langrish  TAG.  2012.  Optimisation  of  total  phenolic  acids  extraction  from mandarin peels using microwave energy: The importance of the Maillard reaction. J Food Eng . 109(1):162–174. doi:10.1016/J.JFOODENG.2011.09.017. Aizat  WM,  Jamil  IN,  Ahmad-Hashim  FH,  Noor  NM.  2019.  Recent  updates  on  metabolite composition  and  medicinal  benefits  of  mangosteen  plant. PeerJ .  7. doi:10.7717/peerj.6324.
Andayani  R.  2015.  Pengaruh  Metode  Ekstraksi  terhadap  Kadar  Xanton  Total  dalam Ekstrak  Kulit  Buah  Manggis  Matang  (Garcinia  mangostana  L.)  dengan  Metode Spektrofotometri  Ultraviolet.  Di  dalam: Perkembangan  Terkini  Sains  Farmasi  dan Klinik 5 . Padang. hlm 353–361.
Asgarpanah J, Ramezanloo F. 2012. Chemistry, pharmacology and medicinal properties of Peganum harmala L. undefined . 6(22). doi:10.5897/AJPP11.876.
Aun WS, Assawarachan R, Noomhorm A. 2011 Jun. The Influence of Drying Temperature and  Extraction  Methods  on  α-Mangostin  in  Mangosteen  Pericarp. J  Food  Sci  Eng ., siap terbit.
Azmin  SNHM,  Manan  ZA,  Alwi  SRW,  Chua  LS,  Mustaffa  AA,  Yunus  NA.  2016.  Herbal processing  and  extraction  technologies. Sep  Purif  Rev .  45(4):305–320. doi:10.1080/15422119.2016.1145395.
Badan  Pusat  Statistik  [BPS].  2018.  Statisitk  Tanaman  Buah-buahan  dan  Sayuran Tahunan Indonesia 2018. Jakarta.
Bagherian  H,  Zokaee  Ashtiani  F,  Fouladitajar  A,  Mohtashamy  M.  2011.  Comparisons between conventional, microwave- and ultrasound-assisted methods for extraction of pectin  from  grapefruit. Chem  Eng  Process  Process  Intensif .  50(11–12):1237–1243. doi:10.1016/J.CEP.2011.08.002.
Brunner BR, Morales-Payan JP. 2010. Soils, plant growth and crop production: mangosteen and rambutan. In: Encyclopedia of Life Support Systems. Paris.
Buanasari B, Eden WT, Sholichah AI. 2017. Extraction of phenolic compounds from petai leaves (parkia speciosa hassk.) Using microwave and ultrasound assisted methods. J Bahan Alam Terbarukan . 6(1):25–31. doi:10.15294/JBAT.V6I1.7793. Cheok CY, Chin NL, Yusof YA, Talib RA, Law CL. 2013. Optimization of total monomeric anthocyanin  (TMA)  and  total  phenolic  content  (TPC)  extractions  from  mangosteen (Garcinia mangostana Linn.) hull using ultrasonic treatments. Ind Crops Prod . 50:1– 7. doi:10.1016/J.INDCROP.2013.07.024.
Chhouk  K,  Quitain  AT,  Gaspillo  PAD,  Maridable  JB,  Sasaki  M,  Shimoyama  Y,  Goto  M. 2016.  Supercritical  carbon  dioxide-mediated  hydrothermal  extraction  of  bioactive compounds  from  Garcinia  Mangostana  pericarp. J  Supercrit  Fluids .  110:167–175. doi:10.1016/J.SUPFLU.2015.11.016.
Chin  Y-W,  Kinghorn  AD.  2008.  Structural  Characterization,  Biological  Effects,  and Synthetic Studies on Xanthones from Mangosteen (Garcinia mangostana), a Popular
Botanical Dietary Supplement. Mini Rev Org Chem . 5(4):355.
doi:10.2174/157019308786242223.
Chin  YW,  Jung  HA,  Chai  H,  Keller  WJ,  Kinghorn  AD.  2008.  Xanthones  with  quinone reductase-inducing  activity  from  the  fruits  of  Garcinia  mangostana  (Mangosteen). Phytochemistry . 69(3):754–758. doi:10.1016/J.PHYTOCHEM.2007.09.023.
Damayanti  A,  Fitriana  AF.  2012.  Pemungutan  minyak  atsiri  mawar  (Rose  oil)  dengan metode maserasi. J Bahan Alam Terbarukan . 1(2):1–1.
doi:10.15294/JBAT.V1I2.2543.
Daniels  KD,  Park  M,  Huang  Z,  Jia  A,  Flores  GS,  Lee  HK,  Snyder  SA.  2020.  A  review  of extraction  methods  for  the  analysis  of  pharmaceuticals  in  environmental  waters. https://doi.org/101080/1064338920191705723 . 50(21):2271–2299. doi:10.1080/10643389.2019.1705723.
Danlami JM, Arsad A, Zaini MAA, Sulaiman H. 2014. A comparative study of various oil extraction techniques from plants. Rev Chem Eng . 30(6):605–626. doi:10.1515/REVCE-2013-0038.
Desai M, Parikh J, Parikh PA. 2010. Extraction of Natural Products Using Microwaves as a
Heat Source. http://dx.doi.org/101080/15422111003662320 . 39(1–2):1–32. doi:10.1080/15422111003662320.
Entezari MH, Nazari SH, Haddad Khodaparast MH. 2004. The direct effect of ultrasound on  the  extraction  of  date  syrup  and  its  micro-organisms. Ultrason  Sonochem . 11(6):379–384. doi:10.1016/J.ULTSONCH.2003.10.005.
Failla  ML,  Gutiérrez  FO.  2017.  Mangosteen  Xanthones:  Bioavailability  and  Bioactivities. Di  dalam: Fruit  and  Vegetable  Phytochemicals .  Volume  ke-1.  Chichester,  UK:  John Wiley & Sons, Ltd. hlm 165–182.
Ghasemzadeh  A,  Jaafar  HZE,  Baghdadi  A,  Tayebi-Meigooni  A.  2018.  Alpha-Mangostin-
Rich Extracts from Mangosteen Pericarp: Optimization of Green Extraction Protocol and Evaluation of Biological Activity. Molecules . 23(8).
doi:10.3390/MOLECULES23081852.
Guo  H,  Ma  S,  Wang  X,  Ren  E,  Li  Y.  2012.  Microwave-Assisted  Extraction  of  Chlorophyll from  Filter  Mud  of  Sugercane  Mill  and  Component  Analysis. Adv  Mater  Res .  518– 523:430–435. doi:10.4028/WWW.SCIENTIFIC.NET/AMR.518-523.430.
Hamid MA, Bakar AN, Park SC, Ramli F, Wan R. 2018. Optimisation of Alpha Mangostin Extraction  Using  Supercritical  CO 2 from  Garcinia  Mangostana. Chem  Eng  Trans . 63:577–582. doi:10.3303/CET1863097.
Hiew  C-W,  Lee  L-J,  Junus  S,  Tan  Y-N,  Chai  T-T,  Ee  K-Y.  2021  Jul  9.  Optimization  of microwave-assisted  extraction  and  the  effect  of  microencapsulation  on  mangosteen (Garcinia mangostana L.) rind extract. Food Sci Technol ., siap terbit. Inoue T, Tsubaki S, Ogawa K, Onishi K, Azuma J ichi. 2010. Isolation of hesperidin from peels of thinned Citrus unshiu fruits by microwave-assisted extraction. Food Chem . 123(2):542–547. doi:10.1016/J.FOODCHEM.2010.04.051.
Khoddami  A,  Wilkes  MA,  Roberts  TH.  2013.  Techniques  for  analysis  of  plant  phenolic compounds. Molecules . 18(2):2328–2375. doi:10.3390/MOLECULES18022328.
Kratchanova  M,  Pavlova  E,  Panchev  I.  2004.  The  effect  of  microwave  heating  of  fresh orange  peels  on  the  fruit  tissue  and  quality  of  extracted  pectin. Carbohydr  Polym . 2(56):181–185. doi:10.1016/J.CARBPOL.2004.01.009.
Kusmayadi  A,  Adriani  L,  Abun  A,  Muchtaridi  M,  Tanuwiria  UH.  2018.  The  effect  of solvents and extraction time on total xanthone and antioxidant yields of mangosteen peel (Garcinia mangostana L.) extract. Drug Invent Today . 10(12):2572–2576.
Lee WJ, Ng CC, Ng JS, Smith RL, Kok SL, Hee YY, Lee SY, Tan WK, Zainal Abidin NH,
Halim  Lim  SA, et  al. 2019.  Supercritical  carbon  dioxide  extraction  of  α-mangostin from  mangosteen  pericarp  with  virgin  coconut  oil  as  co-extractant  and  in-vitro  bio- accessibility measurement. Process Biochem . 87:213–220.
doi:10.1016/J.PROCBIO.2019.09.009.
Limphapayom  W,  Satayawut  K,  Wattanavichit  W,  Pisalwadcharin  A,  Sukhasem  S.  2017. Development  of  technologies  for  xanthone  powder  production  from  mangosteen.  Di dalam: Acta  Horticulturae .  Volume  ke-1186.  International  Society  for  Horticultural Science. hlm 185–187.
M’hiri  N,  Ioannou  I,  Mihoubi  Boudhrioua N,  Ghoul  M.  2015.  Effect  of  different  operating conditions  on  the  extraction  of  phenolic  compounds  in  orange  peel. Food  Bioprod Process . 96:161–170. doi:10.1016/J.FBP.2015.07.010. Machmudah S, Lestari SD, Widiyastuti, Wahyudiono, Kanda H, Winardi S, Goto M. 2018. Subcritical  water  extraction  enhancement  by  adding  deep  eutectic  solvent  for extracting  xanthone  from  mangosteen  pericarps. J  Supercrit  Fluids .  133:615–624. doi:10.1016/J.SUPFLU.2017.06.012.
Manasathien  J,  Khanema  P.  2015.  Antioxidant  and  cytotoxic  activities  of  mangosteen garcinia  mangostana  pericarp  extracts. Asia-Pacific  J  Sci  Technol .  20(4):381–392. doi:10.14456/KKURJ.2015.32.
Mandal  V,  Mohan  Y,  Hemalatha  S.  2007.  Microwave  Assisted  Extraction-An  Innovative and Promising Extraction Tool for Medicinal Plant Research. undefined ., siap terbit. Matra DD, Poerwanto R, Santosa E, Sobir, Higashio H, Anzai H, Inoue E. 2016. Analysis of Allelic Diversity and Genetic Relationships Among Cultivated Mangosteen (Garcinia mangostana L.) in Java, Indonesia Using Microsatellite Markers and Morphological Characters. Trop Plant Biol . 9(1):29–41. doi:10.1007/s12042-016-9161-8. Megawati,  Fardhyanti  DS,  Sediawan  WB,  Hisyam  A.  2019.  Kinetics  of  mace  (Myristicae arillus)  essential  oil  extraction  using  microwave  assisted  hydrodistillation:  Effect  of microwave power. Ind Crops Prod . 131:315–322. doi:10.1016/J.INDCROP.2019.01.067.
Melia  S,  Novia  D,  Juliyarsi  I,  Purwati  E.  2019.  The  characteristics  of  the  pericarp  of garcinia  mangostana (mangosteen)  extract  as  natural  antioxidants  in  rendang. IOP Conf Ser Earth Environ Sci . 287(1). doi:10.1088/1755-1315/287/1/012028. Mohammad NA, Abang Zaidel DN, Muhamad II, Abdul Hamid M, Yaakob H, Mohd Jusoh YM.  2019.  Optimization  of  the  antioxidant-rich  xanthone  extract  from  mangosteen (Garcinia  mangostana  L.)  pericarp  via  microwave-assisted  extraction. Heliyon . 5(10):e02571. doi:10.1016/J.HELIYON.2019.E02571.
Muhsinin  S,  Hayati  S,  Supriadi  D.  2016.  Isolation  Endophytic  Bacteria  of  Mangosteen (Garcinia  mangostana  L.)  Skin  Fruit  as  of  Escherichia  coli  Antibacterial. Indian  J Pharm Biol Res . 4(04):04–09. doi:10.30750/ijpbr.4.4.2.
Mulia K, Krisanti E, Terahadi F, Putri S. 2015. Selected natural deep eutectic solvents for the  extraction  of  α-Mangostin  from  mangosteen  (Garcinia  mangostana  L.)  pericarp. Int J Technol . 6(7):1211–1220. doi:10.14716/IJTECH.V6I7.1984. Ovalle  BM,  Eugenio-Pérez  D,  Pedraza-Chaverri  J.  2017.  Medicinal  properties  of mangosteen (Garcinia mangostana L.): A comprehensive update. Food Chem Toxicol . 109:102–122. doi:10.1016/j.fct.2017.08.021.
Palakawong  C,  Sophanodora  P,  Toivonen  P,  Delaquis  P.  2013.  Optimized  extraction  and characterization  of  antimicrobial  phenolic  compounds  from  mangosteen  (Garcinia mangostana  L.)  cultivation  and  processing  waste. J  Sci  Food  Agric .  93(15):3792– 3800. doi:10.1002/JSFA.6277.
Pothitirat  W,  Chomnawang  MT,  Supabphol  R,  Gritsanapan  W.  2010.  Free  radical scavenging  and  anti-acne  activities  of  mangosteen  fruit  rind  extracts  prepared  by different extraction methods. Pharm Biol . 48(2):182–186.
doi:10.3109/13880200903062671.
Pratiwi L, Fudholi A, Martien R, Pramono S. 2016. Ethanol Extract, Ethyl Acetate Extract,
Ethyl  Acetate  Fraction,  and  n-Heksan  Fraction  Mangosteen  Peels  (Garcinia mangostana L.) As Source of Bioactive Substance Free-Radical Scavengers. JPSCR  J Pharm Sci Clin Res . 1(2):82. doi:10.20961/JPSCR.V1I2.1936.
Rombaut  N,  Tixier  AS,  Bily  A,  Chemat  F.  2014.  Green  extraction  processes  of  natural products  as  tools  for  biorefinery. Biofuels,  Bioprod  Biorefining .  8(4):530–544. doi:10.1002/BBB.1486.
Sa`adah H, Nurhasnawati H, Permatasari V. 2017. Pengaruh Metode Ekstraksi terhadap Kadar  Flavonoid  Ekstrak  Etanol  Umbi  Bawang  Dayak  (Eleutherine palmifolia(L.)Merr)  dengan  Metode  Spektrofotometri  . Borneo  J  Pharmascientech . 1(1). [diakses 2022 Feb 12]. http://jurnalstikesborneolestari.ac.id/index.php/borneo/article/view/46. Shirsath  SR,  Sonawane  SH,  Gogate  PR.  2012.  Intensification  of  extraction  of  natural products using ultrasonic irradiations—A review of current status. Chem Eng Process Process Intensif . 53:10–23. doi:10.1016/J.CEP.2012.01.003. Sravan KP, Akila C, Vinaya B, Dinesh BJ. 2020. Variation of the antioxidant activity with the extraction method and solvent selection. Int Res J Pharm Appl Sci . 10(4):39–42. doi:10.26452/IRJPAS.V10I4.1383.
Sungpud  C,  Panpipat  W,  Sae-Yoon  A,  Chaijan  M.  2020.  Polyphenol  extraction  from mangosteen (Garcinia mangostana Linn) pericarp by bio-based solvents. Int Food Res J . 27(1):111–120.
Suryono  S,  Hadiyanto  H,  Yasin  M,  Widyowati  R,  Muniroh  M,  Amalia  A.  2019.  Effect  of frequency,  temperature,  and  time  of  sonication  on  xanton  content  of  mangosteen (Garcinia  mangostana  L.)  peel  extract  through  ultrasound  assisted  extraction. E3S Web Conf . 125:25006. doi:10.1051/E3SCONF/201912525006. Suttirak W, Manurakchinakorn S. 2014. In vitro antioxidant properties of mangosteen peel extract. J Food Sci Technol . 51(12):3546–3558. doi:10.1007/s13197-012-0887-5. Syah  M.  2009.  Teknologi  Pengendalian  Getah  Kuning  pada  Buah  Manggis.  .  Jakarta: Puslitbanghorti.
Tjahjani  S,  Widowati  W,  Khiong  K,  Suhendra  A,  Tjokropranoto  R.  2014.  Antioxidant Properties  of  Garcinia  Mangostana  L  (Mangosteen)  Rind. Procedia  Chem .  13:198– 203. doi:10.1016/J.PROCHE.2014.12.027.
Widowati  W,  Darsono  L,  Suherman  J,  Yelliantty  Y,  Maesaroh  M.  2014  Nov.  High Performance Liquid Chromatography (HPLC) Analysis, Antioxidant, Antiaggregation of  Mangosteen  Peel  Extract  (Garcinia  mangostana  L.). Int  J  Biosci  Biochem Bioinforma ., siap terbit.
Wittenauer  J,  Falk  S,  Schweiggert-Weisz  U,  Carle  R.  2012.  Characterisation  and quantification  of  xanthones  from  the  aril  and  pericarp  of  mangosteens  (Garcinia mangostana L.) and a mangosteen containing functional beverage by HPLC-DAD-MS n. Food Chem . 134(1):445–452. doi:10.1016/j.foodchem.2012.02.094. Yoswathana N. 2013. Accelerated extraction of Xanthone from Mangosteen pericarp using ultrasonic technique. African J Pharm Pharmacol . 7(6):302–30.
doi:10.5897/AJPP12.1135.
Zarena  AS,  Sachindra  NM,  Udaya  Sankar  K.  2012.  Optimisation  of  ethanol  modified supercritical  carbon  dioxide  on  the  extract  yield  and  antioxidant  activity  from
Jurnal Unitek Vol.15 No.2 Juli - Desember 2022 e-ISSN : 2580-2582, p-ISSN: 2089-3957
Garcinia mangostana L. Food Chem . 130(1):203–208.
doi:10.1016/J.FOODCHEM.2011.07.007.
Zarena  AS,  Sankar    kadimi  udaya.  2011.  Xanthones  enriched  extracts  from  mangosteen pericarp  obtained  by  supercritical  carbon  dioxide  process. Sep  Purif  Technol . 80(1):172–178. doi:10.1016/J.SEPPUR.2011.04.027.
Zarena  Arasali  Sulaiman,  Sankar  KU.  2009.  A  study  of  antioxidant  properties  from Garcinia mangostana L. pericarp extract. Acta Sci Pol Technol . 8(1):23–34. Zarena  A.  S.,  Sankar  KU.  2009.  Screening  of  xanthone  from  mangosteen  (Garcinia mangostana  L.)  peels  and  their  effect  on  cytochrome  c  reductase  and phosphomolybdenum activity.
Zhang  Q-W,  Lin  L-G,  Ye  W-C.  2018.  Techniques  for  extraction  and  isolation  of  natural products: a comprehensive review. Chin Med . 13:20. doi:10.1186/s13020-018-0177-x. Zhang  QW,  Lin  LG,  Ye  WC.  2018.  Techniques  for  extraction  and  isolation  of  natural products:  A  comprehensive  review. Chinese  Med  (United  Kingdom) .  13(1):1–26. doi:10.1186/S13020-018-0177-X/FIGURES/13.