Jurnal Vitek Bidang Kedokteran Hewan  Vol.9,  November 2019

## PERHITUNGAN TELUR TOXOCARA CATI DAN JUMLAH SEL DARAH PUTIH
PADA KUCING LIAR ( Felis catus ) DI DUKUH KUPANG SURABAYA
Roeswandono 1 , Olan Rahayu Puji Astuti Mussa 1 , Micco Joshua Apriano Pangaribuan 1 Bagus Uda Palgunadi 1*
1 Fakultas Kedokteran Hewan, Universitas Wijaya Kusuma Surabaya *Email: udapalgunadi@yahoo.com

## Abstract
The research aimed to know the degree of infection from egg calculated and increased numbers of  white  blood  cells  (eosinophils  and  lymphocytes)  in  wild  cats  (Felis  catus).  The  samples  of  the research as many as 30 wild cats around the Around of Dukuh Kupang Surabaya . The examination was done by  Mc Master method with 100x magnification and the calculated of white blood cells (eosinophil and lymphocytes). The results showed the degree of toxocariasis infection in wild cats (Felis catus) in Surabaya  in  Dukuh  Kupang  was  seen  from  the  average  value  of  the  468.3  egg  examination  and  the calculated of  white  blood  cells  (eosinophilic and  lymphocytes)  with  an average  value  of  eosinophilic 0.73  x103/μl  and  lymphocytes  10.72  x103/μl.  This  study  used  descriptive  method.  Toxocariasis infection was included in the degree of moderate infection in wild cats (Felis catus) in Dukuh Kupang Surabaya with moderate degree.
Keywords : Toxocariasis, degree of infection, wild cats (Felis catus), Eosinophil, lymphocytes

## PENDAHULUAN
Dukuh kupang merupakan sebuah kelurahan  di  wilayah  Kecamatan  Dukuh  Pakis Kota Surabaya Provinsi Jawa Timur. Kecamatan Dukuh  Pakis  terbagi  menjadi  empat  kelurahan terdiri dari Kelurahan Dukuh Kupang, Kelurahan  Dukuh  Pakis,  Kelurahan    Gunung Sari  dan  Kelurahan  Pradah  Kalikendal  (BMKG, 2015).  Seiring  dengan  perkembangan  zaman, jumlah populasi kucing liar di kelurahan Dukuh Kupang  tampak  meningkat.  Kucing  merupakan hewan kesayangan dalm kehidupan  manusia.
Manusia  telah  memelihara  kucing  sejak ribuan tahun  yang  lalu melalui proses domestikasi.  Kucing  memiliki  hubungan  yang erat  dengan  manusia  karena  sifat  kucing  yang mudah dipelihara dan mudah menyesuaikan diri. Saat  ini  kucing  dipelihara  tidak  hanya  sebagai hobi  namun  telah  menjadi  gaya  hidup.  Kucing dapat berperan dalam penyebaran berbagai jenis penyakit  parasit  termasuk  cacing  (Sardjono 2017).
Kucing  yang  dipelihara  tidak  terlepas  dari penyakit  infeksius,  salah  satunya  adalah penyakit  parasit  yang  bisa  menginfeksi  kucing adalah  infeksi  cacing Toxocara  cati yang menyerang  anak  kucing  dan  kucing  dewasa (Estuningsih,  2005).  Infeksi  dari Toxocara  cati dapat  menimbulkan  masalah  bagi  kesehatan manusia karena Toxocara cati bersifat zoonosis, kejadian dari toxocariasis sering sering menyerang anak-anak karena bermain di pasir
atau tanah yang sudah terdapat telur infektif dari Toxocara cati (Magnaval et al ,  2001).
Manusia dapat tertular toksokariasis melalui  termakan  telur  infektif  yang  terdapat dalam  feses  kucing  dan  tanah  terkontaminasi. Toksokariasis  pada  manusia  menyebabkan viceral  larva  migrans  (VLM)  dan  ocular  larva migran (OLM) (Gillespie, 2006). Pada  manusia, larva  tersebut  dapat  mencapai  otak  sehingga dapat  menimbulkan  gangguan  yang  sangat  berat pada anak-anak maupun pada dewasa.
Visceral  larva  migrans  dapat  menyebabkan pembengkakan  organ  tubuh  atau  sistem  saraf pusat.  Organ  yang  dapat  terserang  antara  lain hati, paru-paru, ginjal, dan otak sedangkan pada OLM  terjadi  saat  larva  memasuki  mata, menyebabkan inflamasi dan pembentukan jaringan  ikat  pada  retina.  Kelukaan  pada chamber bola mata menyebabkan granulomatous renitis, perlekatan retina, kehilangan  daya  lihat,  atau  pada  kasus  berat kebutaan pemanen (Gillespie, 2006).
Faktor  yang  bisa  mempengaruhi  terhadap kejadian  prevalensi  infeksi  parasit  adalah  faktor lingkungan dan faktor internal hewan (Nealma,dkk.,  2013).  Kondisi  lingkungan  yang sangat  berpengaruh  terhadap  parasit  kucing, lingkungan tinggal kucing yang tidak bersih atau kotor  memungkinkan adanya cemaran oleh  telur infektif Toxocara  cati (Guilherme et  al ,  2013). Berdasarkan studi penelitian yang dilakukan
Nealma,  dkk.  (2013),  hasil  pemeriksaan  dari  80 feses kucing di wilayah Denpasar didapatkan 39 positif  terinfeksi  cacing Toxocara  cati atau prevalensinya sebesar 48,8%.
Berdasarkan  sistem  pemeliharaan,  kucing yang dipelihara di wilayah Denpasar didapatkan 13 positif terinfeksi cacing Toxocara cati dari 40 sampel  yang  terperiksa  dengan  prevalensi sebesar  32,5%.  Pada  kucing  liar  didapatkan  26 positif  terinfeksi  cacing T.  cati dari  40  sampel feses  kucing  liar  yang  terperiksa  dengan prevalensi sebesar 65%.
Manifestasi klinis penyakit parasit seringkali  bersifat  umum  dengan  gejala  dan keluhan  penderita  mirip  satu  dengan  yang lainnya.  Oleh  karena  itu  gejala  klinis  penyakit parasitik  tidak  selalu  dapat  dijadikan  pegangan untuk  menentukan  diagnosis  penyakit  parasitik. Pemeriksaan  laboratorium  yang  tepat  sangat  di perlukan untuk menegakkan diagnosis laboratorium adalah pasti penyebab penyakitnya (Soedarto, 2009). Diagnosa dengan pemeriksaan feses di  yang paling  sering  dilakukan  (Soulsby, 1982).
Kucing  yang  terinfeksi  cacing Toxocara spp memperlihatkan  gejala  kelemahan  umum. Ekspresi  muka  tampak  sayu,  mata  berair,  dan mukosa  mata  maupun  gusi    tampak    memucat. Hal  itu  dipicu  oleh  anemia  yang  diderita (Subronto,  2006).  Sesuai  dengan  hasil  studi penelitian yang dilakukan Resende et al (2015), analisa  pada  sel  darah  merah  menunjukkan adanya  pengurangan  jumlah  total  eritrosit  dan level  hemoglobin  yang  sangat  signifikan  pada hari ke lima pasca infeksi. Sedangkan  tingginya limfosit  (limfositosis)  menandakan  penyakit yang  berlangsung  kronis  dan  eosinofilia  dapat menggambarkan adanya infeksi parasit (Dharmawan, 2002).
Zaman (2014)  menyatakan Setelah  menelan telur  berembrio  larva  menetas  di  usus,  masuk sirkulasi  dan  migrasi  ke  berbagai  organ  dalam tubuh.  Kemudian  tidak  mencapai  dewasa  dan keadaan  ini  dikenal  sebagai visceral  larva migrans . Kondisi lingkungan sangat mempengaruhi tingginya resiko terinfeksi
Toxocara spp . Dengan mengetahui derajat infeksi
Toxocariasis  maka  dapat  diketahui  potensi penularan visceral  larva  migrans antar  kucing atau  manusia.  Mengingat  sejauh  ini  belum  ada penelitian mengenai peningkatan sel darah putih (eosinofil dan limfosit) pada kasus Toxocariasis maka  dari  itu  perlu  dilakukan  penelitian  ini . Tujuan dari penelitian ini adalah untuk
meningkatkan  kewaspadaan  terhadap  parasit zoonotik  dengan  mengetahui  derajat  infeksi cacing Toxocara,spp di  Dukuh  kupang  dan gambaran  darah  yang  terjadi  apabila  terinfeksi Toxocara sp.

## MATERI DAN METODE
Penelitian  dilakukan  dengan  pengambilan feses dan darah pada kucing liar yang ditangkap dari  Kelurahan  Dukuh  Kupang,    Surabaya. Untuk pemeriksaan feses dilakukan di Laboratorium  Parasitologi  Fakultas  Kedokteran Hewan  Universitas  Wijaya  Kusuma  di  Surabaya dan pemeriksaan darah dilakukan di laboratorium  Pacar  Surabaya Jl.  Karang Menjangan No.18 , untuk Sampel yang digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah  30  ekor kucing liar.

## Perhitungan Telur Cacing
1gram  feses  dilarutkan  dengan  15  ml  air, kemudian  dihomogenkan.  Siapkan  double  deck glass.  Masukkan  0,3  ml  gula  jenuh  dan  0,3  ml larutan  tinja  ke  dalam  double  deck  glass.  Aduk dengan  menggunakan  jarum.  Biarkan  3  –  5 menit  lalu  diamati  dibawah  mikroskop.  Lalu dihitung menggunakan rumus:
Telur Cacing per Gram Tinja = N x 50 Keterangan :
N = Jumlah telur cacing dalam satu double deck glass.

## Metode Mc Master
Metode  pengapungan  sederhana  dilakukan terhadap  sampel  yang  dinyatakan  pada metode  McMaster,  untuk  memastikan keberadaan telur cacing. Sampel feses yang telah  ditambahkan  larutan  gula  jenuh  pada metode Mc Master dituang ke dalam tabung reaksi sampai penuh dan terbentuk miniskus.  Gelas  penutup  diletakan  pada ujung  tabung  reaksi  dan  didiamkan  selama 10  menit,  kemudian  gelas  penutup  diambil dan diletakkan pada gelas objek. Pengamatan  dilakukan  dibawah  mikroskop dengan pembesaran 100 kali.

## Pengambilan Darah
Pengambilan  darah  bisa  diambil  pada  bagian vena  Cephalica  Antibrachii  Anterior  pembuluh ini  terletak  pada  bagian  distal  anterior  kaki depan. Proses pengambilan darah adalah sebagai berikut, Rambut di sekitar pembuluh darah
dicukur  bila  perlu,  Pembuluh  darah  dibendung pada  bagian  siku,  Setelah  darah  terbendung, daerah  tersebut  diusap  dengan  kapas  yang dibasahi  alkohol,  Tujuannya  untuk  desinfektan Jarum  suntik  steril  disuntikkan,  Setelah  jarum masuk,  dilakukan  aspirasi  untuk  mengambil darah  yang  dibutuhkan,  Diusapkan  kembali kapas yang dibasahi alkohol, Darah dimasukkan kedalam  tabung  Edta,  Sample  darah  dibawa  ke laboratorium Pacar.

## Analisa Data
Analisis  data  dilakukan  secara  deskriptif  dari hasil  perhitungan  telur  per  gram  tinja  dan peningkatan  sel  darah  putih  (eosinofil  dan limfosit).

## HASIL

## Derajat Infeksi Toxocariasis pada Kucing Liar di Dukuh Kupang
Hasil pemeriksaan feses terhadap 30 sampel feses  kucing  liar  di  Kelurahan  Dukuh  Kupang menunjukkan  bahwa  30  sampel  feses  dari  25 sampel feses dinyatakan positif. Hasil perhitungan  Telur  Cacing  Per  Gram  Tinja (TCPGT)  dari  30  feses  positif  cacing Toxocara spp .  didapatkan  derajat  infeksi  Toxocariasis sebesar  0  –  950 telur  cacing  per  gram tinja  dan rata  –  rata  468,3  yang  menggambarkan  derajat infeksi Toxocaris pada kucing liar di  Kelurahan Dukuh  Kupang  tergolong  sedang.  Derajat infeksi  terberat  yaitu  pada  angka  TCPGT  950. Tabel  1 .  Derajat  infeksi  Toxocariasis  pada kucing liar di Dukuh Kupang.
Total sampel Total TCPGT rata- rata Std. dev. sampel 30 14050 468,33 294,9235241
Hasil  penelitian  yang  menunjukkan  bahwa kucing  di  Kelurahan Dukuh  Kupang terinfenksi cacing Toxocara,spp dengan  derajat  sedang dengan  rata-rata  nilai  TTGT  468,3  sesuai dengan  standar  Menurut  Bowman et  al. (2002),
Jumlah  telur  tiap  gram  tinja  (TTGT)  dapat digunakan sebagai penduga berat atau ringannya derajat infestasi.Infestasi ringan memiliki jumlah  TTGT1-199,  infestasi  sedang  memiliki jumlah  TTGT200-999  dan  infestasi  berat memiliki jumlah TTGT>1.000, derajat keparahan  infestasi  tergantung  jumlah  cacing yang menginfestasi. Keadaan ini memungkinkan terjadi apabila  lingkungan
(tanah)telah tercemar oleh telur  cacing Toxocara, spp .
Kucing  liar  dapat  terinfeksi  T.cati  melalui tertelan  telur  infektif  dikarenakan  pola  hidup yang  makan  tanpa  adanya  tempat  makan  seperti pada  kucing  rumahan,  terkadang  makanan  yang dikonsumsi  kucing  liar  terkontaminasi  dengan tanah  yang  mengandung  telur  T.cati    Sesuai menurut  Hartaningrum  (2003)  bahwa  kucing yang  hidupnya  tidak  terpelihara  dengan  baik seperti  makan  dan  minum  di  sembarang  tempat serta sanitasi lingkungan yang tidak bersih dapat memudahkan terinfeksi oleh cacing. Selanjutnya menurut  (Guilherme et  al., 2013)  lingkungan yang  ideal  bagi  perkembangbiakan  cacing- cacing  yang  ditularkan  melalui  tanah  Transmisi terjadi  melalui  tertelannya  telur T.canis atau T.cati dari anjing dan kucing, dapat juga melalui tanah dan pasir yang sudah terkontaminasi feses dari hewan.
Siklus  hidup T.  cati dimulai  dari  stadium infektif  yaitu  larva stadium  ke  dua  yang  berada di  dalam  telur.  mereka  menetas  di  dalam lambung setelah kucing memakan telur tersebut, dan  sebagian  besar  larva  berpindah  melalui sistem  portal  hati,  hati  dan  paru  paru  menuju trakea  dan  kembali  ke  lambung  kemudian menjadi  stadium  ke  empat,  dan  kembali  ke dalam  lumen  usus  untuk  menjadi  dewasa (Levine, 1996). Kebanyakan penderita toxocariasis  tidak  menunjukkan  gejala  klinis (Camparoto et  al,. 2008),  pada  negara  tropis penderita  toxocariasis  dapat  dilihat  melalui gejala  kulit  seperti  bulu  kusam/rontok  yang diakibatkan  perasit  ini  (Joob  and  Wiwanitkit, 2016).
Pengaruh Toxocariasis terhadap peningkatan  sel  darah  putih  ( Eosinofil dan Limfosit )
Infeksi Toxocariasis memiliki gambaran yang memungkinkan terjadinya peningkatan pada sel darah putih (Eosinofil dan Limfosit). Tabel 2 . Nilai pemeriksaan sel darah putih (Eosinofil dan  Limfosit).
jenis pemeriksa an Tot. samp el Total (x10 3 /µ L) rata- rata (x10 3 /µ L) Std. dev. sampe l eosinofil 30 21,91 0,73 0,38 limfosit 30 321,8 10,72 4,7
Data  yang  diperoleh  dari  penelitian  ini menunjukkan  bahwa  dari  ke  30  sample  dengan rata-rata 0,73 x10 3 /µL tidak ada yang dinyatakan peningkatan  eosinophil  atau  dalam  hal  ini normal  dan  25  sample  dinyatakan  adanya peningkatan limfosit dengan nilai rata-rata 10,72 x10 3 /µL.  Penelitian  ini  mendapatin  hasil eosinophil  dalam  keadaan  normal  selanjutnya pada  hasil  lemfosit  didapatin  25  sample dinyatakan  adanya  peningkatan  dari  normal. Penilaian  tinggi  rendahnya  dapat  dibandingkan menurut Reference  Intervals  for  Hematology values  in  Domestic  Animals (Harvey,  2012) Batasan  normal  eosinophil  kucing  (0-1.8  x 10 3 /µL)  dan  normal  limfosit  kucing  (0,9-5,5  x 10 3 /µL).
Dalam  penelitian  ini  hasil  pemeriksaan eosinophil  masih  dalam  batas  normal  jika didapat hasil diatas batas normal maka, Menurut Schalm (2010), peningkatan jumlah eosinofil di dalam sirkulasi darah diatas nilai interval normal disebut  sebagai  eosinofilia.  Eosinofilia  bisa terjadi  karena  meningkatnya  produksi  dalam sumsum tulang, meningkatnya pelepasan cadangan  dari  sumsum  tulang,  redistribusi  sel- sel  dari  pool  marginal,  daya  hidup  intravaskuler diperpanjang. Beberapa kausa eosinofilia diantaranya adalah penyakit parasitik (ektoparasit,  endoparasit)  dan  respons  alergik (alergen).
Sebaliknya,  kondisi  menurunnya  jumlah eosinofil  dalam sirkulasi  di  bawah  nilai  interval normal disebut sebagai eosinopenia. Eosinopenia terjadi karena menurunnya pelepasan  dari  sumsum  tulang,  adanya  lisis intravaskuler,  meningkatnya  migrasi  ke  dalam jaringan. Kondisi eosinopenia biasa terlihat pada stres  leukogram.  Namun  demikian,  relevansi klinis  keadaan  eosinopenia  sangat  sedikit (Stockham & Scott 2008).
Sedangkan  dalam  pemeriksaan  limfosit dadapati  hasil  peningkatan  diatas  batas  normal maka  dapat  disebut  limfositosi,  Limfositosis merupakan  keadaan  dimana  jumlah  limfosit  di dalam  sirkulasi  darah  meningkat  diatas  nilai interval  normal.  Peningkatan  jumlah  limfosit dapat  terjadi  pada  kondisi  fisiologis  maupun patologis.  Kausa  limfositosis  fisiologis  meliputi exercise,  stres  fisik  maupun  emosi,  excitement (pada  kucing),  dan  kondisi  takut  (Jain  1993). Terjadi  limfositosis  patologis  akibat  adanya, stimulasi  antigenik  (misalnya    peradangan kronis, vaksinasi). Gambaran umum limfositosis patologis  merupakan  penyakit  inflamasi  yang bersifat kronis. Biasanya disertai pula  dengan
neutrofilia dan monositosis (Stockham and Scott 2008).

## KESIMPULAN
Derajat  infeksi  Toxocariasis  pada  kucing liar  di  Dukuh  Kupang  adalah  Sedang  dan  Pada pemeriksaan  sel  darah  putih  (Eosinofil  dan Limfosit)  hanya  didapatin  nilai  eosinophil yang normal dan limfosit 25 sample dengan nilai diatas batas normal.

## REFERENSI
Badan Meteorologi, Klimatologi  dan Geofisika. 2015. Stasiun Geofisika Kota Surabaya Bowman, D.D., C.M. Hendrix, D.S. Lindsay and
S.C. Barr. 2002. Feline Clinical Parasitology . 1st ed. Iowa State University Press. Iowa. 281.
Bijanti R, Yuliati M.G.A, Wahjuni R.S, Utomo R.B.  2010.  Buku  Ajar  Patologi  Klinik Veteriner. Cetakan Pertama. Surabaya(ID): Pusat Penerbit dan Pecetakan Unair.
Camparoto,  M.L.,  B.  Fulan,  C.M.  Colli,  M.L. paludo,  A.L.F.  Guilherme,  and  M.A. Fernandez. 2008. Initial stage of development  and  migratory  behavior  of Toxocara  canis  larvae  in  BALB/c  mouse experimental  model.  Gene  Mol  Res,  7(2): 444-450.
Cardillo,  N.,  I.  Sommerfelt.,  F.  Fariña.,  M. Pasqualetti., M. Pérez., M. Ercole., A. Rosa and  M.  Ribicich.  2014. A  Toxocara  cati eggs  concentration  method  from  cats faeces,  for  experimental  and  diagnostic purposes . Elsevier. 144: 73.
Dharmawan NS. 2002. Pengantar Patologi Klinik Veteriner . Denpasar: Udayana Press. Estuningsih, S.E. 2005. Toxocariasis Pada Hewan dan Bahayanya Pada Manusia .J Wartazoa 15 (3): 136-142.
Fan,  C.K.,  C.W.  Liao  and  Y.C.  Cheng.  2013.
Factors  affecting  disease  manifestation  of toxocarosis  in  humans:  Genetics  and environment . J. Vetpar. 193: 342 – 352.
Gallas,  M.  and  E.  F.  Silveira.  2013. Toxocara cati  (  Schrank,  1788  )  (Nematoda, Ascarididae) in different wild feline species inBrazil:  new  host  records .  Revista Biotemas. 26 (3): 119 – 121.
Gillespie, T.R. 2006. Noninvasive assessment of gastrointestinal parasite infections in free
ranging  primates.  J.  Primatol.  27:1129- 1143.
Guilherme E.V, A.A. Marchioro, S.M. Arauju,
D.L.M.  Falavigna,  C. Adamai,  G.F. Guilherme,  G.R.  Elefant,  A.L.F.  guilhere. 2013. Toxocariasis In Children Attending A Public  Health  Service  Pneumology  In Parana  Atata ,  Brazil.  Rev  Inst  Med  Trop Sao Paulo, 55(3): 189-192.
Hartaningrum,  B.D.  (2003).  Identifikasi  Cacing Pita pada Saluran Pencernaan Kucing Lokal dari  Beberapa  Lokasi  Di  Bali.  S.KH. Skripsi, Fakultas Kedokteran Hewan. Universitas Udayana. Denpasar.
Hodgkins,  E.M.  2008. Your  Cat:  Simple  new secret  to  a  longer,  stronger  life. Thomas dunne books. New york. 24 – 25.
Huidekoper,  R.S.,  K.  Wilson  and  I.M.  Mellen. 2011. The Anatomy of the Cat:  A Collection of Historical Articles on Feline Physiology . British  Library  Cataloguing-in-Publication Data UK. 24 – 25.
Jain  NC.  1993.  Essential  of  Veterinary
Hematology. Philadelphia: Lea & Febiger.
John  W.H  2012. Veterinary  Hematology  A Diagnostic  Guide  and  Color  Atlas .  3251 Riverport  St.  Louis,  Missouri  63043.  Peg 329.
Joob,  B.,  and  V.  Wiwanitkit.  2016.  Toxocara canis and Chronic  Urticaria. Iran J Allergy Asthma Immunol, 15(2): 166.
Levine, N.D. 1996. Parasitologi  Veteriner . Gadjah mada university press. Yogyakarta.
Linnaeus, C. 1758. Systema Naturae per regna tria naturae, secundum  classis,  ordines, genera, species cum characteribus,
differentiis, synonymis, locis. 10 th edition, vol. 1. Holmiae: Laurentii Salvii. 62.
Magnaval J.F, L.T Glickman P Dorchies, and B
Morrasin. 2001. Highlight of HumanToxicariassis .Korean  J  parasitol,
39(1): 1-11.
Mehta A.B, Hoffbrand A.V. 2014, Haematology
at a Glance .Fourth Edition. London(UK):Wiley-Blackwell
Mikaeili,  F.,  H.  Mirhendi,  M.  Hosseini,  Q. Asgari,  and  E.B.  Kia.  2013. Toxocara nematodes  in  stray  cats  from  Shiraz, southern  Iran:  intensity  of  infection  and molecular identification of the isolates. Iran J. Parasitol. 8(4): 593600.
Nealma, S., I. M. Dwinata. dan I. B. Made oka. 2013. Prevalensi  Infeksi  Cacing  Toxocara
cati pada Kucing Lokal di Wilayah
Denpasar. Indonesia  Medicus  Veterinus. 2(4): 432 – 434.
Playfair  J.H.L,  Chain  B.M.  2009. At  a  Glance Imunologi .Ninth  Edition.  London  (UK):
Blackwell.
Resende, N.M.,  P.H.  Guimarães,  F.S. Barbosa,
L.M. Oliveira, D.S. Nogueira, A.C. Guimarães,  M.T.  P.  Gonçalves,  C.C.O. Amorim,   F.M.S.   Oliveira,   M.V.  Caliari, M.A.  Rachid,  G.T.  Volpato,  L.L.   Bueno, S.M. Geiger and R.T. Fujiwara. 2015. New insights into the immunopathology of early Toxocara  canis  infection  in  mice .  J.  Par Vec. 8:354.
Sardjono  TW.  2017. Hematologi  Kedokteran dan Veteriner . Malang (ID): UB Press.
Santos, S.V., S.Z. Lescano, J.M. Castro and P.P. Chieffi. 2009. Larval recovery of Toxocara  cati  in    experimentally infected  Rattus  norvegicus  and  analysis of  the  rat  as  potential  reservoir  for ascarid  this .  Mem  Inst  Oswaldo  Cruz. 104(6): 933 – 934.
Schalm OW. 2010. Veterinary Hematology.Ed ke–6. USA: Wiley-Blackwell.
Shree,  V.M,  T.  Vithya,  P.  Shankar,  R.R.H. Shobha. 2016. A Study on Blood and Blood Components Transfusion, Adverse Reaction at  a  Tertiary  Care  Teaching  Hospital, Bangalore . J Blood Disord Transfus. 7. Soulsby,  E.J.L.  1982. Helminths,  Arthropods and  Protozoa  of  Domesticated  Animals . Academic Press. New York.
Soedarto.  2009. Pengobatan  penyakit  parasit  : Amubiasis,  Malaria,  Cacing  Tambang, Filariasis dan Penyakit Parasit lainnya . CV Sagung seto. Jakarta. 1 - 3.
Stockham,  S.L.  and  Scott,  M.A.  2008.
Fundamentals of veterinary clinical pathology . Blackwell.
Storer, I.T., R.L. Usinger, R.C. Stebbins and J.W. Nybakken. 1972. General Zoology . 5 th ed. Mcgraw-hill bookcompany. New York. St. Louis. San Fransisco. 781-782.
Subronto.  2006. Infeksi  Parasit  dan  Mikroba pada  Anjing  dan  Kucing. Gadjah  Mada University Press. Yogyakarta.
Woodhall,  D.M.  and  A.  E.  Fiore.  2013.
Toxocariasis:  A  Review  for  Pediatricians. In:  Journal  of  the  Pediatric  Infectious Diseases Society. 3(2): 154.
Zaman, V. 2014. Atlas Parasitologi Kedokteran :Atlas Protozoa, Cacing, dan Athropoda penting . Hipokrates. Jakarta. 201.
Zibaei,  M.  and  S.M.  Sadjjadi.  2017. Trend of  toxocariasis  in  Iran:  a  review  on human  and  animal  dimensions .  Iranian Journal  of  Veterinary  Research.  18(4): 233-242.