## Halimursyadah
∙ S. Hafsah ∙ S.N. Nasution ∙ Zuraida

## Pengaruh rizobakteri indigenous terhadap serangan penyakit budok, enzim peroksidase, dan pertumbuhan setek nilam Aceh
Sari. Rizobakteri adalah kelompok mikroba yang aktif dan agressif mengkolonisasi area rizosfir. Mikroba ini  mampu  berperan  sebagai  biofertilizer,  biostimulan,  dan  bioprotektan.    Tujuan  penelitian  ini  adalah untuk  mengetahui  jenis  isolat  rizobakteri  indigenous  yang  berpotensi  sebagai  agen  biokontrol  pada patogen Synchytrium pogostemonis penyebab penyakit budok pada tanaman nilam Aceh ( Pogostemon cablin Benth.).  Penelitian  dilaksanakan  di  Laboratorium  Ilmu  dan  Teknologi  Benih  Jurusan  Agroteknologi, Fakultas  Pertanian,  Universitas  Syiah  Kuala  dan  Kebun  Percobaan  Sektor  Timur  Fakultas  Pertanian, Darussalam Banda Aceh. Waktu pelaksanaan penelitian dimulai pada bulan Januari sampai dengan Mei 2021. Percobaan ini disusun berdasarkan Rancangan Acak Lengkap dengan 15 perlakuan yang terdiri atas 14  perlakuan  isolat  rizobakteri  dan  perlakuan  kontrol  (tanpa  rizobakteri).  Setiap  perlakuan  diulang sebanyak 3 kali. Hasil penelitian menunjukkan bahwa isolat rizobakteri PS 4/5 dan PS 5/6PK merupakan perlakuan  cenderung  terbaik  sebagai  agen  biokontrol  terhadap  patogen S.  pogostemonis ,  penyebab penyakit  budok,  pada  tanaman  nilam  berdasarkan  peubah  masa  inkubasi  penyakit,  intensitas  serangan penyakit,  berat  brangkasan  basah,  dan  berat  brangkasan  kering.  Hasil  uji  aktivitas  enzim  peroksidase menunjukkan  aktivitas  tertinggi  pada  tanaman  nilam  yang  diberi  perlakuan  isolat  rizobakteri  PS  6/3A dengan nilai absorban sebesar 1,66 U mg -1 .
Kata kunci: Budok ∙ Patchouli ∙ Peroksidase ∙ Rizobakteri ∙ Tanaman

## Effect of of indigenous rhizobacteria on budok disease, peroxidase enzim and growth of aceh patchouli cuttings
Abstract . Rhizobacteria  are  a  group  of  microbes  that  are  active  and  aggressive  in  colonizing  the rhizosphere area. These microbes are able to act as biofertilizer, biostimulant and bioprotectant. The purpose of this study was to determine the type of indigenous rhizobacteria isolates that potentially served  as biocontrol  agents on  the  pathogen Synchytrium  pogostemonis that  causes budok  disease  on Aceh patchouli ( Pogostemon cablin Benth.) cuttings. The research was carried out at the Seed Science and Technology  Laboratory,  the  Department  of  Agrotechnology,  Faculty  of  Agriculture,  Syiah  Kuala University  and  the  Experimental  Garden  of  the  Sektor  Timur,  Faculty  of  Agriculture,  Darussalam Banda Aceh. The study was carried out from January to May 2021 and it was arranged in a completely randomized  design  with  a  non-factorial  pattern  of  15  treatments  levels,  i.e.,  application  of  14 indigenous rhizobacterial isolate and control (without rhizobacteria application). Each treatment was repeated three times. The result showed that rhizobacteria isolates, namely PS 4/5 and PS 5/6PK were determined as the best treatment of biocontrol agents against the pathogen S. pogostemonis based on disease incubation period,  intensity of disease attack, weight of wet stover, and weight of dry stover. The peroxidase enzyme activity test showed the highest activity in patchouli cuttings treated with PS 6/3A rhizobacteria isolates with an absorbance value of 1.66 U ml-1.
Keywords: Budok ∙ Patchouli ∙ Peroxidase ∙ Rhizobacteria ∙ Plant
Diterima : 31 Oktober 2021, Disetujui : 28 Maret 2022, Dipublikasikan : 15 April 2022 DOI: 10.24198/kultivasi.v21i1.36316
Halimursyadah ∙ S. Hafsah ∙ S.N. Nasution ∙ Zuraida 1 Prodi Agroteknologi Fakultas Pertaninan Universitas Syiah Kuala, Jl. Tgk. Hasan Krueng Kalee No.3, Kopelma Darussalam, Kec. Syiah Kuala, Kota Banda Aceh, 23111
2 Prodi Ilmu Tanah Fakultas Pertanian Universitas Syiah Kuala, Jl. Tgk. Hasan Krueng Kalee No.3, Kopelma Darussalam, Kec. Syiah Kuala, Kota Banda Aceh, 23111 Korespondensi: sitihafsah@unsyiah.ac.id

## Pendahuluan
Tanaman  nilam  ( Pogostemon sp.)  merupakan salah satu tanaman penghasil minyak atsiri yang dimanfaatkan dalam industri kosmetik, parfum, sabun,  antiseptik,  dan  insektisida.    Keunggulan minyak  nilam  dalam  industri  parfum  yakni bersifat  fiksatif  (pengikat)  dan  belum  dapat dibuat  secara  sintetik  (Nurmansyah,  2011). Indonesia merupakan negara penyuplai kebutuhan  minyak  nilam  terbesar  di  dunia, yaitu  sekitar  90%  setiap  tahunnya.  Hal  ini menyebabkan  nilam  memiliki  peranan  penting dalam  meningkatkan  devisa  negara  yang disebabkan  tingginya  tingkat  permintaan  dunia (Chakrapani et al ., 2013).
Di Indonesia terdapat tiga kelompok nilam, yaitu  nilam  Aceh  ( Pogostemon  cablin Benth), nilam  Jawa  ( Pogostemon  heyneanus Benth),  dan nilam  sabun  ( Pogostemon  hortensis Backer). Nilam  Aceh  mempunyai  kandungan  minyak nilam  yang  tinggi,  yaitu  >2,5%  dan  kadar patchouli  alkohol  >30%  jika  dibandingkan dengan  nilam  Jawa  dan  nilam  sabun.  Hal  ini menyebabkan  kualitas  minyak  nilam  Aceh memenuhi  standar  mutu  perdagangan  dunia dengan kadar patchouli alkohol yang tinggi.
Prospek  tanaman  nilam  terlihat  cerah, namun  terdapat  beberapa  masalah  pada pengembangan  nilam  di  lapangan.  Salah  satu kendala  utama  dalam  pengembangan  nilam adalah  adanya  penyakit  yang  mengganggu pertumbuhan  tanaman,  salah  satunya  adalah penyakit budok (Sukamto et al ., 2014).
Penyakit  budok  disebabkan  oleh  jamur Synchytrium  pogostemonis yang  merupakan patogen  tular  tanah  dan  termasuk  parasit obligat,  artinya  hanya  dapat  hidup  pada jaringan  tanaman  yang  hidup,  sedangkan  pada jaringan yang mati sifatnya tidak aktif dan tetap hidup  membentuk  spora  istirahat  ( resting  spore ) yang  berdinding  tebal  (Wahyuno,  2015). Penyakit  budok  saat  ini  menjadi  permasalahan utama  pada  berbagai  sentra  pertanaman  nilam di  Sumatera,  Jawa,  dan  Kalimantan  (Wahyuno dan Sukamto, 2013).
Penyakit budok dapat menurunkan produksi  terna  sebesar  16,74%  dan  produksi minyak  nilam  11,15 – 50,38%  (Nurmansyah, 2011).    Teknik  pengendalian  yang  dilakukan oleh  petani  nilam  di  Indonesia  adalah menggunakan fungisida berbahan aktif Benomil dan  Oksitembaga  (Sumardiyono et  al .,  2013). Pengendalian  secara  kimiawi  untuk  saat  ini
tidak  dianjurkan  karena  dapat  menyebabkan beberapa  masalah  pada  agroekosistem  dan kondisi kesehatan manusia. Alternatif pengendalian  yang  tepat  adalah  dengan menggunakan agen biotik.
Nilam kultivar Tapak Tuan merupakan salah satu  yang  sangat  diminati  oleh  petani  karena keunggulannya  menghasilkan  patchouli  alkohol yang  lebih  tinggi.  Namun,  kultivar  ini  memiliki kerentanan  yang  tinggi  terhadap  serangan penyakit  budok.    Aktivitas  rizobakteri  dalam mengendalikan  patogen  penyebab  penyakit  yang dapat  secara  langsung  sebagai  antagonis  atau secara  tidak  langsung  dengan  menginduksi ketahanan  tanaman  (Ghorbanpour et  al .,  2018). Populasi patogen dapat dikurangi dengan adanya rizobakteri  yang  berkompetisi  dengan  penyakit serta memproduksi senyawa antimikroba sehingga  memberikan  perlindungan  terhadap tanaman dari serangan fitopatogen (Komang et al ., 2013).  Mekanisme  pengendalian  patogen  secara langsung  oleh  rizobakteri  adalah  dengan menghasilkan  metabolit  sekunder  yang  dapat menekan  perkembangan  penyakit  budok  dengan menghasilkan  enzim  kitinase  yang  berperan sebagai  agen  biokontrol  pada  tanaman  nilam (Sukamto et  al .,  2014).  Bakteri  penghasil  enzim kitinase  menjadi  perhatian  dalam  bidang pertanian  karena  kemampuannya  sebagai  agen biokontrol patogen tanaman, khususnya cendawan  patogen  yang  memiliki  kitin  pada dinding selnya termasuk Synchytrium pogostemonis (Apine dan Jadhav, 2011).
Beberapa  jenis  rizobakteri  telah  digunakan dalam  mengendalikan  penyakit  tanaman, diantaranya seperti Bacillus sp . dan Pseudomonas sp .,  yang  memiliki  spektrum  yang  luas  dan efektif  untuk  mengendalikan  beberapa  patogen tular  tanah. Bacillus  sp .  dapat  mengendalikan Fusarium  oxysporum  f.sp . ciceri pada  tanaman buncis  (Karthick et  al .,  2017), F.  graminearum Schabe  pada  gandum  (Baffoni et  al .,  2015)  dan penyakit  layu  bakteri R.  solanacearum pada tanaman  tembakau  (Arwiyanto et  al .,  2007). Sementara itu, Pseudomonas sp. dilaporkan dapat mengendalikan F.  oxysporum  f.sp.  cubense pada tanaman  pisang    (Pushpavathi  dan  Dash,  2017) dan F. circinatum pada tanaman pinus  (Iturritxa et  al .,  2017).  Penelitian  ini  bertujuan  untuk mengetahui  jenis  isolat  rizobakteri  indigenous yang berasal dari rizosfir nilam yang berpotensi sebagai  agen  biokontrol  pada  patogen S. Pogostemonis yang  menyebabkan  penyakit budok pada tanaman nilam.

## Bahan dan Metode
Penelitian  dilaksanakan  di  Laboratorium  Ilmu dan  Teknologi  Benih  serta  Kebun  Percobaan Sektor  Timur,  Fakultas  Pertanian  Universitas Syiah  Kuala,  Darussalam,  Banda  Aceh.  Waktu pelaksanaan  penelitian  dimulai  pada  bulan Januari 2021 sampai dengan bulan Mei 2021.
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini  adalah  laminar  air  flow,  autoclave,  oven listrik,  spektrofotometer,  timbangan  analitik, lampu  bunsen,  petridish,  erlenmeyer,  tabung reaksi,  gelas  ukur,  jarum  ose,  spatula,  kompor gas,  pipet  volume  (oxford),  ayakan  8  mesh, mortar,  vortex,  saringan,  baskom,  blender, cangkul,  paranet,  selang  air,  ajir,  hand  sprayer, meteran,  jangka  sorong  digital,  pipa  besi, kamera,  dan  alat  tulis.  Bahan-bahan  yang digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah    90  stek pucuk nilam kultivar Tapak Tuan berukuran 20 cm  dengan  3  mata  tunas  yang  diperoleh  dari Desa  Alue  Abed,  Kecamatan  Panga,  Kabupaten Aceh  Jaya.  Patogen  penyebab  penyakit  budok ( Synchytrium  pogostemonis )  diperoleh  dari penelitian  tanaman  nilam  yang  berumur  8 – 10 bulan  di  Kebun  Kelompok  Tani  Sapeu  Pakat, Desa  Ranto  Sabon,  Kecamatan  Sampoiniet, Kabupaten  Aceh  Jaya.  Sebanyak  14  isolat rizobakteri  indigenous  terpilih  yang  telah melalui  uji  kitinolitik  sebagai  uji  pendahuluan, yaitu CL 4/1 yang berasal dari Desa Alue Abed, Kecamatan  Panga,  Kabupaten  Aceh  Jaya  (Kode CL=  Calang),  KI  8/4  dari  desa  Krueng  Itam, Kecamatan Tadu Raya (Kode KI = Krueng Itam), PS 4/5, PS 5/1, PS 5/6, PS 5/6PK, PS 6/3A, PS 6/3C, PS 6/4, PS 6/5, PS 8/1, PS 8/2, PS 8/8PK, dan  PS  8/12  dari  Desa  Purwosari  Kecamatan Kuala Pesisir, Kabupaten Nagan Raya (Kode PS =  Purwosari),  kentang,  agar,  dextrose,  alkohol 96%,  pyrogallol,  Na 2 HPO 4 ,  Na 2 HPO 4 , plastic wrap ,  karet  gelang,  aluminium  foil,  aquades steril,  tisu,  spiritus,  Basamid-G  dengan  bahan aktif  dazomet,  polybag  ukuran  30  cm  x  35  cm, tanah, pupuk kandang yang berasal dari kotoran sapi  yang  telah  terdekomposisi  sempurna, kertas label, kertas saring (0,2 mm), dan amplop kertas.
Rancangan  percobaan  yang  digunakan dalam  penelitian  ini  adalah  Rancangan  Acak Lengkap  dengan  perlakuan  adalah  isolat rizobakteri indigenous, yang terdiri dari 15 taraf perlakuan,  yaitu:  tanpa  pemberian  rizobakteri (kontrol), CL 4/1, KI 8/4, PS 4/5, PS 5/1, PS 5/6
C, PS 5/6PK, PS 6/3A, PS 6/3C, PS 6/4, PS 6/5, PS  8/1,  PS  8/2,  PS  8/8PK,  dan  PS  8/12.  Setiap taraf  perlakuan  diulang  sebanyak  3  kali  dan masing-masing  plot  terdiri  dari  2  tanaman. Analisis  data  menggunakan  ANOVA  dan dilanjutkan  dengan  Uji  Duncan  New  Multiple Range Test (DNMRT) pada taraf nyata 5%.
Pelaksanaan  Penelitian. Persiapan  media tanam  diawali  dengan  mempersiapkan  tanah alluvial  ditambah  pupuk  kandang  dengan perbandingan 2:1, lalu disterilkan menggunakan Basamid-G.  Setiap  1000  kg  tanah  diberikan Basamid-G  sebanyak  100  gram.  Selanjutnya, dimasukkan ke dalam polybag berukuran 30 cm x  35  cm.  Bibit  nilam  berumur  4  minggu  yang berasal  dari  setek  pucuk  dapat  dipindah  tanam ke dalam polybag.
Isolat rizobakteri yang digunakan merupakan  hasil  isolasi  dan  karakterisasi  yang dilakukan  di  Laboratorium  Ilmu  dan  Teknologi Benih Jurusan Agroteknologi, Fakultas Pertanian Universitas Syiah Kuala, yang berasal dari  Desa  Alue  Abed,  Kecamatan  Panga, Kabupaten  Aceh  Jaya;  Desa  Krueng  Itam, Kecamatan  Tadu  Raya;  dan  Desa  Purwosari, kecamatan  Kuala  Pesisir,  Kabupaten  Nagan Raya.  Isolat  kemudian  disuspensi  ke  dalam aquades  steril  50  mL,  lalu  dihitung  kerapatan populasi larutan suspensi dengan menggunakan spektrofotometer hingga 10 9 cfu mL -1 atau setara dengan  pembacaan  nilai  absorban  OD  600  = 0,192  (Bai et  al .,  2002).  Rizobakteri  indigenous diaplikasikan  30  mL  untuk  setiap  tanaman sebanyak  satu  kali,  yaitu  satu  minggu  setelah bibit nilam pindah tanam.
Inokulasi  pathogen  dilakukan  dengan  cara menyiapkan  inokulum  dari  tanaman  bergejala, kemudian  ditimbang  sebanyak  300  g  lalu dipotong-potong dan dihancurkan menggunakan  blender  dengan  menambahkan aquades  sebanyak  3000  mL  (konsentrasi  0,1 g/mL).  Setelah  itu,  suspensi  disaring  dan diambil  airnya.  Cairan  ekstrak  cendawan patogen diaplikasikan sebanyak 30 mL/tanaman  pada  satu  minggu  setelah pengaplikasian rizobakteri. Daun yang diinokulasi  adalah  2  daun  teratas  yang  telah membuka sempurna. Sebelum diinokulasi, daun tersebut  dilukai  dengan  cara  ditusuk  sebanyak 15  tusukan  menggunakan  jarum  pentul  yang telah  disterilisasi  menggunakan  alkohol  95% hingga menembus permukaan daunnya. Kemudian,  cairan  ekstrak  sebanyak  30  ml diinokulasikan  pada  seluruh  permukaan  daun
dengan  cara  disemprot  menggunakan  hand sprayer (Yuliyanti et al ., 2017).
Pemeliharaan tanaman
meliputi penyiraman, pembumbunan, penyiangan gulma,  dan  pengendalian  hama.  Pemeliharaan dilakukan  berdasarkan standard  operational procedure budidaya nilam.
Parameter  Pengamatan. Masa  inkubasi penyakit dan Intensitas Serangan Penyakit Masa  inkubasi  penyakit  dan  aktivitas enzim peroksidase diukur menurut Vidhyasekaran et al . (2001), sementara Intensitas Serangan  Penyakit  berdasarkan  Rahardjo  dan Suhardi (2008) dengan formula:
I=(∑ 〖 (n x v) 〗 )/(Z x N) X 100%
Keterangan: I = intensitas serangan penyakit n = jumlah daun dari setiap kategori serangan v = nilai skor setiap kategori serangan Z = nilai skor dari kategori serangan tertinggi N = jumlah seluruh daun yang diamati
Pengamatan  intensitas  penyakit  dilakukan dengan  cara  skoring  pada  setiap  tanaman mengikuti  metode  Kusnanta  (2005)  sebagai berikut:
Tabel  1.  Skor  gejala  serangan  tanaman  dalam pengamatan intesintas serangan penyakit
Skor Intensitas Serangan Kriteria 0 Tidak ada gejala Sehat 1 Daun terserang 1 – 25% Ringan/mild 2 Daun terserang 26 – 50% Sedang 3 Daun terserang 51 – 75% Berat 4 Daun terserang > 75% Sangat berat

## Berat Brangkasan Basah Tanaman (g)
Pengamatan  berat  brangkasan  basah tanaman  dilakukan  pada  akhir  penelitian  yaitu 90 hari setelah pindah tanam (HSPT)

## Berat Brangkasan Kering Tanaman (g)
Pengamatan  berat  brangkasan  kering tanaman  dilakukan  pada  akhir  penelitian,  yaitu 90 HSPT, dengan cara diovenkan menggunakan suhu 60 0 C selama 3 x 24 jam.
___________________________________________

## Hasil dan Pembahasan

## Masa Inkubasi dan Intensitas Serangan Budok.
Gejala  penyakit  terlambat  dijumpai  pada  isolat rizobakteri  PS  4/5  (R3)  dengan  masa  inkubasi selama  40,17  hari,  yang  tidak  berbeda  nyata dengan  perlakuan  PS  5/6PK  (R6),  namun berbeda  nyata  dengan  perlakuan  jenis  isolat rizobakteri lainnya (Tabel 2).
Lamanya  masa  inkubasi  yang  dibutuhkan patogen  untuk  menginfeksi  tanaman  disebabkan penggunaan  rizobakteri  yang  sudah  bersimbiosis secara  mutualisme  dengan  tanaman  yang dilindunginya.  Kemampuan  rizobakteri  dalam menekan  perkembangan  patogen  berkaitan dengan  produksi  senyawa  metabolit  sekunder, seperti  enzim  kitinase,  yang  efektif  dalam mendegradasi  kitin  yang  merupakan  penyusun komponen  dinding  sel  patogen  (Khaeruni  dan Rahman, 2012).
Tabel  2.  Rata-rata  masa  inkubasi  dan  intensitas serangan  penyakit  budok  akibat  aplikasi biokontrol rizobakteria
Jenis Isolat Rizobakteri Masa Inkubasi Penyakit (hari) Intensitas Serangan Penyakit (%) Kontrol (R 0 ) 11,67 a* 41,31h* CL 4/1 (R 1 ) 21,33 bcde 22,96defg KI 8/4 (R 2 ) 27,00 fgh 13,14abcd PS 4/5 (R 3 ) 40,17 j 6,79a PS 5/1 (R 4 ) 16,83 ab 30,26fgh PS 5/6C (R 5 ) 17,67 bc 27,05efg PS 5/6PK (R 6 ) 38,00 ij 9,07ab PS 6/3A (R 7 ) 16,33 ab 31,44gh PS 6/3C (R 8 ) 29,50 gh 12,13abc PS 6/4 (R 9 ) 25,67 efg 16,23bcde PS 6/5 (R 10 ) 19,17 bcd 24,30defg PS 8/1 (R 11 ) 32,50 hi 10,79ab PS 8/2 (R 12 ) 21,50 cdef 21,15cdefg PS 8/8PK (R 13 )  23,17 def 18,05bcdef PS 8/12 (R 14 ) 17,33 bc 28,32efgh
Keterangan:  Angka-angka  yang  diikuti  oleh  huruf yang  sama  pada  kolom  yang  sama  tidak  berbeda nyata berdasarkan uji DNMRT pada taraf nyata 5%.  * data telah ditransformasi Arcsin √x .CL: Calang; KI: Krueng Itam; PS: Purwosari.
Perlakuan  isolat  rizobakteri  indigenous terhadap  intensitas  serangan  penyakit  yang  lebih rendah  dijumpai  pada  perlakuan  PS  4/5  (R3) dengan  intensitas  sebesar  6,79%  yang  tidak berbeda  nyata  dengan  perlakuan  KI  8/4  (R2),  PS 5/6PK  (R6),  PS  6/3C  (R8),  PS  8/1  (R11),  namun
berbeda  nyata  dengan  perlakuan  jenis  isolat rizobakteri  lainnya.  Tanaman  nilam  yang mendapatkan perlakuan isolat rizobakteri memiliki  intensitas  serangan  penyakit  yang  lebih rendah dibandingkan dengan kontrol.
Hasil  penelitian  ini  sejalan  dengan penelitian  (Sukamto et  al .,  2014)  bahwa perlakuan rizobakteri perakaran tanaman nilam menunjukkan  intensitas  penyakit  yang  lebih rendah dengan nilai 8,33%. Rendahnya serangan patogen S.  pogostemonis pada  perlakuan rizobakteri mengindikasikan bahwa pengaplikasian  rizobakteri  indigenous  mampu menghambat perkembangan patogen. Perbedaan  efektivitas  rizobakteri  terhadap perkembangan  patogen  melibatkan  banyak mekanisme (Madyasari et al ., 2018).
Aktivitas  Enzim  Peroksidase. Enzim peroksidase  merupakan  kelompok  PR-protein (Pathogenesis  Related-protein)  dari  golongan PR-9 yang terakumulasi pada saat tanaman sakit atau  sejenisnya,  dan  berhubungan  dengan serangkaian  Induced  System  Resistence  (ISR). Elsima et  al .  (2019)  melaporkan  bahwa  isolat rizobakteri yang menghasilkan senyawa peroksidase  mampu  menekan  perkembangan patogen Rigidosporus lignosus Klotzsch. pada fase bibit tanaman pala.
Tabel  3.  Pengaruh  rizobakteri indigenous pada tanaman  nilam  terhadap  aktivitas  enzim peroksidase
Jenis isolat rizobakteri Nilai peroksidase (U mg -1 protein) Kontrol (R 0 ) 0,61 a CL 4/1 (R 1 ) 1,21 cde KI 8/4 (R 2 ) 1,34 ef PS 4/5 (R 3 ) 1,41 f PS 5/1 (R 4 ) 1,11 c PS 5/6C (R 5 ) 1,30 ef PS 5/6PK (R 6 ) 1,22 cde PS 6/3A (R 7 ) 1,66 g PS 6/3C (R 8 ) 0,89 b PS 6/4 (R 9 ) 0,85 b PS 6/5 (R 10 ) 0,76 b PS 8/1 (R 11 ) 1,13 cd PS 8/2 (R 12 ) 1,28 def PS 8/8PK (R 13 ) 1,21 cde PS 8/12 (R 14 )
1,21 cde
Keterangan:  Angka-angka  yang  diikuti  oleh  huruf yang  sama  pada  kolom  yang  sama  tidak  berbeda nyata  berdasarkan  uji  DNMRT  pada  taraf  nyata 5%.  CL: Calang; KI: Krueng Itam; PS: Purwosari.
Tabel  3  menunjukkan  bahwa  perlakuan  isolat rizobakteri indigenous terhadap aktivitas enzim peroksidase  yang  terbaik  dijumpai  pada perlakuan  PS  6/3A  (R7)  dengan  nilai  absorban sebesar 1,66 U ml-1 protein yang berbeda nyata dengan  perlakuan  jenis  isolat  rizobakteri lainnya.  Keberadaan  enzim  peroksidase  yang bersifat  antimikroba  diatur  oleh  adanya  asam jasmonat  dan  etilen  yang  diaktifkan  oleh mikroorganisme  yang  bersifat  saprofit,  seperti rizobakteri.  Peroksidase  berperan  sebagai pengkatalisis  akhir  dalam  pembentukan  lignin dan  fenol  lain  yang  berhubungan  dengan penguatan  dinding  sel  (Agustiansyah et  al ., 2013).

## Berat Brangkasan Basah dan Berat Brangkasan Kering
Perlakuan  isolat  rizobakteri  indigenous terbaik terhadap peubah berat brangkasan basah dijumpai  pada  perlakuan  isolat  rizobakteri  PS 4/5  (R3)  dengan  berat  113,33  g  yang  tidak berbeda nyata dengan perlakuan CL 4/1 (R1), KI 8/4  (R2),  PS  5/6PK  (R6),  PS  6/3C  (R8),  PS  6/4 (R9), PS 8/1 (R11), PS 8/2 (R12), dan PS 8/8PK (R13),  namun  berbeda  nyata  dengan  perlakuan isolat rizobakteri lainnya (Tabel 4).
Tabel  4.  Rata-rata  berat  brangkasan  basah  dan berat brangkasan kering dengan perlakuan isolat rizobakteri indigenous
Jenis isolat rizobakteri Berat Brangkasan Basah (g) Berat Brangkasan Kering (g) Kontrol (R 0 ) 40,83 a 4,72 a CL 4/1 (R 1 ) 76,67 abcde 12,01 bcdef KI 8/4 (R 2 ) 96,67 de 14,60 ef PS 4/5 (R 3 ) 113,33 e 16,70 f PS 5/1 (R 4 ) 51,67 ab 8,47 abcd PS 5/6C (R 5 ) 67,50 abcd 9,49 abcde PS 5/6PK (R 6 ) 101,67 de 15,44 ef PS 6/3A (R 7 ) 51,67 ab 6,94 ab PS 6/3C (R 8 ) 83,33 bcde 13,06 cdef PS 6/4 (R 9 ) 95,00 cde 13,51 cdef PS 6/5 (R 10 ) 62,50 abcd 9,78 abcde PS 8/1 (R 11 ) 96,67 de 14,11 def PS 8/2 (R 12 ) 85,83 bcde 11,23 bcdef PS 8/8PK (R 13 ) 95,83 cde 13,85 cdef PS 8/12 (R 14 ) 55,00 abc 8,23 abc
Keterangan:  Angka-angka  yang  diikuti  oleh  huruf yang  sama  pada  kolom  yang  sama  tidak  berbeda nyata  berdasarkan  uji  DNMRT  pada  taraf  nyata 5%.  CL: Calang; KI: Krueng Itam; PS: Purwosari.
Hasil penelitian ini sejalan dengan penelitian Anggraini  (2020),  bahwa  introduksi  rizobakteri berpengaruh  nyata  terhadap  penambahan  berat basah  tajuk  tanaman  mentimun  sebesar  85,982 – 124,03  g.  Besarnya  nilai  berat  brangkasan  basah menunjukkan  kemampuan  tanaman  memberi respons yang baik dalam menginduksi ketahanan sistemik  akibat  pemberian  rizobakteri.  Aktivitas rizobakteri  di  dalam  tanah  pada  daerah  rizosfer tanaman  sangat  berperan  dalam  menyediakan unsur hara sebagai penyedia nutrisi bagi tanaman. Hasil analisis kimia tanah pada media tanam yang digunakan  adalah  C  organik  1,65%,  KTK  31,1 me/100 g, dengan fraksi tekstur pasir : debu : liat 58,2  :  16,4  :  25,4  yaitu  kelas  G  atau  lempung  liat berpasir  (data  dari  Laboratorium  Kimia  Tanah Fakultas  Pertanian  Universitas  Syiah  Kuala). Menurut  Husnihuda et  al .  (2017),  bahwa  akar menentukan kemampuan tanaman untuk menyerap  unsur  hara  dan  air,  sehingga mempengaruhi  pertumbuhan  tanaman  dan meningkatkan  kemampuan  fotosintesis  tanaman. Keberadaan unsur hara N, P, dan K yang optimal mampu meningkatkan bobot segar tanaman nilam sehingga  menghasilkan  produksi  dan  kadar minyak nilam yang tinggi (Djazuli, 2013).
Organ  utama  pada  tanaman  yang menyerap  radiasi  matahari  lebih  banyak  yaitu pada  bagian  daun.  Semakin  optimal  kerja fotosintesis  maka  semakin  tinggi  nilai  berat kering.  Tanaman  nilam  yang  memiliki  berat kering  yang  rendah  menyebabkan  turunnya minyak  nilam  yang  diperoleh  dari  hasil penyulingan.  Tanaman  nilam  yang  terinfeksi patogen S.  pogostemonis mengalami  penekanan pertumbuhan  tanaman,  sehingga  nilai  kadar minyak  nilam  menjadi  rendah  dan  kehilangan produksi minyak mencapai 50% jika dibandingkan dengan tanaman sehat (Nurmansyah, 2011).

## Kesimpulan
Berdasarkan hasil penelitian dapat disimpulkan bahwa  perlakuan  isolat  rizobakteri  indigenous sebagai  agen  biokontrol  berpengaruh  sangat nyata  terhadap  masa  inkubasi  penyakit, aktivitas enzim peroksidase, intensitas serangan penyakit,  berat  brangkasan  basah,  dan  berat brangkasan kering. Isolat rizobakteri PS 4/5 dan 5/6PK  merupakan  perlakuan  terbaik  sebagai agens biokontrol terhadap patogen S. pogostemonis penyebab  penyakit  budok  pada
tanaman  nilam  berdasarkan  peubah  masa inkubasi penyakit, intensitas serangan penyakit, berat  brangkasan  segar,  dan  berat  brangkasan kering.  Hasil  uji  aktivitas  enzim  peroksidase didapatkan  aktivitas  tertinggi  pada  tanaman nilam  yang  diberi  perlakuan  isolat  rizobakteri PS  6/3A  dengan  nilai  absorban  sebesar  1,66  U mg -1 .

## Ucapan Terima Kasih
Terimakasih  kepada  Rektor  dan  Ketua  LPPM Universitas Syiah Kuala yang telah memberikan dana  penelitian  melalui  Hibah  Lektor  Kepala PNBP Tahun 2021
___________________________________________

## Daftar Pustaka
Agustiansyah,  S.  Ilyas,  Sudarsono,  dan  M. Machmud.  2013.  Karakterisasi  rizobakteri yang berpotensi dan meningkatkan pertumbuhan tanaman padi. J. HPT Tropika,
13(1): 42 – 51. Anggraini,  S.  2020.  Potensi  rizobakteri  sebagai biofertilizer  dalam  memacu  pertumbuhan mentimun  (Cucumis  sativus  L.).  Jurnal Agrohita, 5(2): 155 – 167.
Apine, O.A. and J.P. Jadhav. 2011. Optimization of medium  for  indole-3-acetic  acid  production using  Pantoea  agglomerans  strain  PVM. Journal  of  Applied  Microbiology,  110(5): 1235 – 1244.  https://doi.org/  10.1111/j.1365- 2672.2011.04976.x
Arwiyanto,  T.,  R.  Asfanudin,  A.  Wibowo,  T. Martoredjo,  dan  G.  Dalmadiyo.  2007.  Peng- gunaan  Bacillus  isolat  lokal  untuk  menekan penyakit  lincat  tembakau  temanggung. Berkala Penelitian Hayati, 13: 79-84.
Baffoni,  L.,  F.  Gaggia,  N.  Dalanaj,  A.  Prodi,  P.
Nipoti,  A.  Pisi,  B.  Biavati,  and  D.D.  Gioia. 2015.  Microbial  inoculants  for  the  biocontrol of  Fusarium  spp.  in  durum  wheat.  BMC Microbiology, 15(1): 8 – 10.
https://doi.org/10.1186/s12866-015-0573-7
Bai, Y., B. Pan, T.C. Charles, and D.L. Smith. 2002. Coinoculation dose and root zone temperature  for  plant  growth  promoting rhizobacteria  on  soybean  [Glycine  max  (L.) Merr]  grown  in  soil-less  media.  Soil  Biol. Biochem. 34: 1953-1957
Chakrapani, K.V., P. Kumar, and A.R. Rani. 2013. Review  article  phytochemical,  pharma-
cological importance of patchouli. International  Journal  of  Pharmaceutical Sciences Review and Research, 21(2): 7 – 15. Djazuli,  M.  2013.  Pengaruh  pemupukan  kompos limbah  nilam  dan  NPK  terhadap  pertum- buhan dan produksi nilam. Buletin Penelitian Tanaman Rempah dan Obat, 24(2): 87-92.
Elsima,  A.,  R.S.  Ferniah,  dan  H.P.  Kusumaning- rum.  2019.  Ekspresi  gen  penyandi  perok- sidase  cabai  merah  ( Capsicum  annuum L.) sebagai  respons  terhadap  fusarium  oxy- sporum. J. Akademika Biologi, 8(2): 30 – 35. Ghorbanpour,  M.,  M.  Omidvari,  P.  Abbaszadeh- Dahaji,  R.  Omidvar,  and  K.  Kariman.  2018. Mechanisms underlying the protective effects of  beneficial  fungi  against  plant  diseases.
Biological Control, 117: 147 – 157. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2017.11.006 Husnihuda, M.I., R. Sarwiti, Y.E. Susilowati. 2017. Respon pertumbuhan dan hasil kubis ubnga (Brassica  oleracea  var.  botrytis,L.)  pada pemberian PGPR akar bambu dan komposisi media tanam. Jurnal Ilmu Pertanian Tropika Dan Subtropika, 2(1): 13 – 16.
Iturritxa,  E.,  T.  Trask,  N.  Mesanza,  R.  Raposo,  M. Elvira-Recuenco,  and  C.L.  Patten.  2017. Biocontrol  of  Fusarium  circinatum  infection of young Pinus radiata Trees. Forests, 8(2): 1 – 12. https://doi.org/ 10.3390/f8020032
Karthick,  M.,  C.  Gopalakrishnan,  E.  Rajeswari, V.K. Pandi. 2017. In vitro efficacy of Bacillus spp. against Fusarium oxysporum f. sp. ciceri, the causal agent of fusarium wilt of chickpea. International  Journal  of  Current  Micro- biology  and  Applied  Sciences,  6(11):  2751 – 2756. https://doi.org/10.20546/ijcmas.2017.611.325 Khaeruni,  A.  dan  A.  Rahman.  2012.  Penggunaan bakteri  kitinolitik  sebagai  agens  biokontrol penyakit  busuk  batang  oleh  Rhizoctonia solani pada  tanaman kedelai. J.  Fitopatologi, 8(2): 37 – 43.
Komang, M., K. Khamilhi, dan A.G. Ngurah. 2013. Uji  efektivitas  rizobakteri  sebagai  agen antagonis  terhadap  Fusarium  oxysporum F.Sp.  capsici  penyebab  penyakit  layu Fusarium  pada  tanaman  cabai  rawit (Capsicum frutescens L.).
E-Jurnal
Agroekoteknologi  Tropika  (Journal  of Tropical Agroecotechnology), 2(3): 145 – 154.
Kusnanta, M.A. 2005. Identifikasi dan pengendalian  penyakit  karat  palsu  pada tanaman  nilam  (Pogostemon  cablin  Benth) dengan fungisida. [Tesis]. Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta, Indonesia.
Madyasari,  I.,  C.  Budiman,  D.  Manohara,  dan  S.
Ilyas.  2018.  Efektivitas  seed  coating  dan biopriming  dengan  rizobakteri  dalam mempertahankan  viabilitas  benih  cabai  dan rizobakteri  selama  penyimpanan.  Jurnal Hortikultura
Indonesia, 8(3): 192. https://doi.org/10.29244/jhi.8.3.192-202
Nurmansyah.  2011.  Pengaruh  penyakit  budok terhadap  produksi  tanaman  nilam.  B.  Littro, 22(1): 65 – 73.
Pushpavathi, Y., S.N. Dash. 2017. Use of biocontrol agents:  a  potential  alternative  to  fungicides for  Fusarium  wilt  management  of  banana. International  Journal  of  Current  Microbio- logy  and  Applied  Sciences,  6(7):  651 – 655. https://doi.org/10.20546/ijcmas.2017.607.07 9
Rahardjo,  I.  dan  S.  Suhardi.  2008.  Insidensi  dan intensitas serangan penyakit karat putih pada beberapa  klon  krisan.  J.  Hortikultura,  18(3): 136764. https://doi.org/10.21082/jhort.v18n3.2008.p
Sukamto,  M.  Syakir,  dan  M.  Djazuli.  2014. Pengendalian penyakit budok pada tanaman nilam dengan agensia  hayati  dan pembenah tanah. Prosiding Seminar Nasional Pertanian Organik, 3: 321 – 328.
Sumardiyono,  C.,  S.  Hartono,  Nasrun,  dan Sukamto.  2013.  Pengendalian  penyakit budok  dengan  fungisida  dan  deteksi  residu pada  daun  nilam.  Jurnal  Fitopatologi Indonesia, 9 (3): 89-94.
Vidhyasekaran, P., N. Kamala, A. Ramanathan, K. Rajappan,  V.  Paranidharan,  R.  Velazhahan. 2001.  Induction  of  systemic  resistance  by Pseudomonas  fluorescens  Pf1  against Xanthomonas  oryzae  pv.  oryzae  in  rice leaves.  Phytoparasitica,  29(2):  155 – 166. https://doi.org/10.1007/BF02983959
Wahyuno, D. 2015. Pengelolaan perbenihan nilam untuk mencegah penyebaran penyakit budok (Synchytrium  pogostemonis).  Perspektif: Review Penelitian Tanaman Industri, 9(1): 1 – 11. https://doi.org/10.21082/p.v9n1.2010.
Wahyuno, D. dan Sukamto. 2013. Identifikasi dan karakterisasi Sclerotium rolfsii Sacc. penyebab  penyakit  busuk  batang  nilam (Pogostemon cablin Benth). Jurnal Bul.Littro, 24(1): 35 – 41. Yuliyanti, T., S.Y. Hartati, dan R. Indrayanti. 2017. Uji  ketahanan  nilam  terhadap  Synchytrium pogostemonis penyebab penyakit budok dan potensi  pengendaliannya  dengan  pestisida nabati.
Bioma, 13(2): 31 – 40. https://doi.org/10.21009/bioma13(2).5