PENGARUH  KONSENTRASI  ZAT PENGATUR TUMBUH TERHADAP REGENERASIBAWANG PUTIH ( Allium sativum L)

## SECARA KULTUR JARINGAN
Ellok Dwi Sulichantini 1
1 Laboratorium Kultur Jaringan, Fakultas Pertanian Universitas Mulawarman Jl. Pasir Balengkong Kampus Gunung Kelua Samarinda, 75123. Fax. 0541-749313.
Kalimantan Timur, Indonesia E-Mail: ellokds@gmail.com

## ABSTRAK
Pengaruh  Konsentrasi  Zat Pengatur Tumbuh Terhadap Regenerasibawang Putih ( Allium sativum L) Secara  Kultur  Jaringan .  Bawang  putih  merupakan  salah  satu  bahan  bumbu  yang  dapat  digunakan  untuk bahan obat-obatan. perbanyakan bawang putih pikir kultur jaringan dipengaruhi oleh konsentrasi zat pengatur tumbuh  dalam  medium  kultur.  Tujuan  dari  penelitian  ini  adalah  untuk  mengetahui  pengaruh  konsentrasi NAA dan Kinetin untuk regenerasi bawang putih pikir budidaya. Eksplan itu disterilkan dari diinokulasi pada media, k0 (0 mg / l NAA + 0 mg / l kinetin); k1 (4 mg / l NAA + 0 mg / l kinetin); k2 (3 mg / l NAA + 1 mg / l kinetin); k3 (2 mg / l NAA + 2 mg / l kinetin); k4 (1 mg / l NAA + 3 mg / l kinetin); Dan k5 (0 mg / l NAA + 4 mg / l kinetin).
Hasil hasilnya menunjukkan bahwa perlakuan konsentrasi NAA + kinetin significally dilakukan pada tahap awal pertumbuhan, jumlah daun, tunas dan panjang akar. Pertumbuhan tanaman pengatur konsentrasi (NAA 1 mg / l + Kinetin 3 mg / l) mampu meningkatkan eksplan morfogenesis dalam membentuk planlet, seperti, daun, akar, serta kalus.
Kata kunci : Bawang putih, NAA, Kinetin, Kultur Jaringan.

## ABSTRACT
Effect of plant growth regulator Concentration Against Regeneration Garlic ( Allium sativum L) In the Tissue  Culture .  Garlic  is  one  of  seasoning  material  that  can  be  used  for  medicine  substance.    Garlic propagation  throught  tissue  culture      was    influenced  by  plant  growth  regulator  concentration  in    culture medium.    The  purpose  of  the  reseach  was  to  know  the  effect  of  NAA  and  Kinetin  concentration  to  the regeneration of garlic throught  microprapagation. Eksplant  was sterilized than inoculated on  medium,  k 0 (0 mg/l NAA + 0 mg/l kinetin);  k 1 (4 mg/l NAA + 0 mg/l kinetin); k 2 (3 mg/l NAA + 1 mg/l kinetin); k 3 (2 mg/l NAA + 2 mg/l kinetin); k 4 (1 mg/l NAA + 3 mg/l kinetin);  dan k 5 (0 mg/l NAA + 4 mg/l kinetin ). The result of the result shows that the treatment of NAA+Kinetin consentration significally effected on the early stage of growing, the number of leaves, bud and root lengths.  The plant growth regulator consentration (NAA 1 mg/l + Kinetin   3 mg/l) was able to enhance explant morphogenesis in forming planlet, such, leaves, roots, as well as callus.
Key words : Garlic, NAA, Kinetin, Tissue Culture .

## 1. PENDAHULUAN
Bawang putih termasuk salah satu famili  liliaceae  yang  mempunyai  nilai komersial  yang  tinggi  (Wibowo,  1989). Bawang  putih  termasuk  salah  satu  jenis tanaman  yang  dimanfaatkan  bagian
umbinya  sebagai  bumbu  dapur.  Umbi bawang  putih  mengandung  4,50  g protein; 0,20 g lemak; 23,10 g karbohidrat;  42  mg  kalsium;  134  mg fosfor; 1 mg besi; 0,22 mg vitamin B; 15 mg  vitamin  C;  71  g  air  dan  95  kalori
(Santoso,  1999).    Selain  dimanfaatkan sebagai bumbu dapur, bawang putih juga sering digunakan untuk mengobati berbagai  penyakit  seperti  kolesterol, tekanan  darah  tinggi,  dan  jantung koroner. Menurut Brewster (1994),
bawang    putih    juga  sering  digunakan untuk  meningkatkan    kekebalan    tubuh dan  mencegah  penyempitan  pembuluh darah. Menurut Rukmana    (1995);
Palungkun  dan  Budiarti  (1996),  bawang putih  mengandung  senyawa  Allicin  yang bermanfaat  sebagai    bakterisida    dan fungisida.
Kendala  pengadaan  bibit  unggul
secara konvensional adalah
sulit memperoleh bibit yang berkualitas dalam jumlah  besar  dalam  waktu  yang  singkat.
Dengan  menggunakan  teknik  kultur jaringan maka akan mendapatkan tanaman  dalam  jumlah  besar  dalam waktu  singkat.  Dari  beberapa  formula media  dasar  yang  digunakan  dalam teknik  kultur  jaringan,  media  MS (Murashige dan Skoog) merupakan media dasaryang dapat digunakan untuk memperbanyak  berbagai  jenis  tanaman. Dalam  kultur  jaringan,  dua  golongan  zat pengatur  tumbuh  yang  sangat  penting adalah  sitokinin  dan  auksin.  NAA (Naftaleine  Asetat  Acid)  adalah  zat pengatur  tumbuh  yang  tergolong  auksin. Pengaruh  auksin  terhadap  perkembangan sel  menunjukkan  bahwa  auksin  dapat meningkatkan  sintesa  protein.  Dengan adanya  kenaikan  sintesa  protein,  maka dapat  digunakan  sebagai  sumber  tenaga dalam  pertumbuhan.  Adapun  kinetin  (6- furfury  amino  purine)  tergolong  zat pengatur tumbuh dalam kelompok sitokinin. Kinetin adalah kelompok sitokinin yang berfungsi untuk pengaturan pembelahan sel dan
morfogenesis  (Gunawan, 1992; ). Auksin dan  sitokinin  berinteraksi    sedemikian rupa  sehingga  pemakainan  auksin  dan sitokinin
bersama-sama harus mempertimbangkan  konsentrasi  maupun
perbandingannya dalam media(Wetherell,
1982). Beberapa faktor yang dapat mempengaruhi    proses  morfogenesis suatu  eksplan  dalam  teknik  kultur jaringan    adalah  genotipe,  ukuran  dan bagian  eksplan;    jenis  dan  kosentrasi  zat pengatur tumbuh, komposisi media tumbuh dan lingkungan kultur. Berdasarkan  uraian  di  atas    maka dianggap  perlu  untuk  melakukan  suatu penelitian  tentang  respon  morfogenesis eksplan bawang putih terhadap NAA dan Kinetin.

## 2. METODA PENELITIAN
2.1. Tempat dan Waktu Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Kultur Jaringan Fakultas Pertanian Universitas Mulawarman.  Pada  Bulan  Oktober 2015 s.d Desember 2015. 2.2. Bahan dan Alat
Bahan yang digunakan meliputi umbi bawang  putih,  bahan  kimia  Media Murashige-Skoog  dimodifikasi,  zat pengatur  tumbuh,sterilant.  Peralatan yang  digunakan  adalah  botol  tanam, gelas  erlenmeyer,  gelas  ukur,  pipet, neraca,  pH-meter,  autoclave,  lup, oven,  laminar  air  flow,  hot  plate, magnetic  stirrer,  kamera  serta  alat- alat lainnya.
.
2.3. Rancangan Penelitian Penelitian dilaksanakan menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL).Perlakuan  penelitian  adalah konsentrasi  zat  pengatur  tumbuh
NAA+Kinetin  (K),  yang  terdiri  atas enam  taraf    yaitu:  k0  mg/l  NAA  +  0 mg/l  kinetin  (k0);    4  mg/l  NAA  +  0 mg/l  kinetin  (k1);      3  mg/l  NAA  +  1 mg/l  kinetin  (k2)  ;  2  mg/l  NAA  +  2 mg/l  kinetin  (k3);  1  mg/l  NAA  +  3
mg/l  kinetin  (k4);    0  mg/l  NAA  +  4 mg/l  kinetin  (k5).    Masing-masing perlakuan dengan delapan kali ulangan.    Apabila  terdapat  perbedaan yang  nyata  pada  sidik  ragam  maka akan  dilakukan  Uji  Beda  Nyata Terkecil (BNT) pada taraf 5%.

## 2.4. Pelaksanaan Penelitian
2.4.1. Sterilisasi  alat : alat-alat  gelas dicuci  bersih,  dikeringkan  dan disterilisasi  dengan  autoclave pada temperature 121 o C dengan tekanan 17,5 Psi
selama satu jam.
2.4.2. Pembuatanmedia : Penelitian ini  menggunakan  media  dasar Media  Murashige  dan  Skoog (MS),  ditambah  zat  pengatur tumbuh sesuai dengan perlakuan. Selanjutnya ditambah  gula  sebanyak  30  g/l dan sebagai pemadat digunakan  agar-agar  bubuk sebanyak    7  g/l.    derajat kemasaman (pH) media diukur sampai mencapai 5,6-5,8 dengan  menggunakan  KOH dan HCl. Mediadimasukkan  ke  dalam botol-botol kultur dengan volume  masing-masing  lebih kurang  20  ml,  mulut  botol ditutup aluminium foil kemudian diikat dengan gelang karet. Kemudian botol-botol itu disterilkan dengan otoklaf pada tekanan  17,5  atm,  suhu  121 o C selama 30 menit, setelah selesai disimpan dalam ruangan  dengan  suhu  ruang  23 – 28 o C.
2.4.3. Persiapan eksplan dan Penanaman. Bawang  putih dikupas  dan  dicuci  dengan
akuades  steril  dan  disterilisasi dengan alkohol 70% selama 60 detik, selanjutnya dibilas dengan akuades. Tunas bawang putih yang sudah steril dipotong dengan ukuran panjang 1 cm.  Bagian ini yang digunakan  sebagai  eksplan. Eksplan  ditanam  pada  media sesuai dengan perlakuan. Setiap  botol  kultur  berisi  2 eksplan.    Kultur  disimpan  di ruang  inkubasi  dengan  suhu ruang 23–28 o C.
2.4.4. Pemeliharaan.    Pemeliharaan kultur  dilakukan  dengan  cara melakukan  sub  kultur  setiap  2 minggu. Media yang digunakan sesuai dengan perlakuan masing-masing kultur. 2.5. Pengumpulan Data. Data yang diamati dalam penelitian ini adalah: a. Umur eksplan mulai mengalami  pembesaran  dan pemanjangan  (hari  setelah tanam/HST)
b. Jumlah  daun  per  eksplan  saat kultur  berumur  7,  14,  21  dan 28 HST
c. Tinggi  tunas  pada  kultur umur 28 HST
d. Jumlah  akar  per  eksplan  saat kultur  berumur  21  dan  28 HST
e. Panjang  akar  terpanjang  saat kultur berumur 28 HST
3. HASIL PENELITIAN

## DAN PEMBAHASAN
Hasil  sidik  ragam  menunjukkan bahwa  perlakuan  konsentrasi  NAA  dan Kinetin berbeda sangat nyata pada semua
parameter morfogenesis sejak awal pertumbuhan  yaitu  eksplan  mengalami pembesaran  dan  pemanjangan,  jumlah daun,  tinggi  tunas,  jumlah  akar,  dan panjang  akar.    Hal  ini  diduga  karena dalam  kultur  jaringan  morfogenesis  dari eksplan  sangat  tergantung  dari  interaksi antara auksin dan sitokinin.  zat pengatur tumbuh
tersebut
mempengaruhi morfogenesis  dalam  kultur  sel,  jaringan, dan  organ.    Interaksi  dan  perimbangan antara zat pengatur tumbuh yang diberikan  dalam  media  dan  diproduksi oleh  sel  endogen  menentukan  arah perkembangan suatu kultur.  Penambahan auksin  dan  sitokinin  eksogen,  mengubah level  zat  pengatur  tumbuh  endogen  sel. Zat  pengatur  tumbuh  endogen  ini kemudian  merupakan  faktor  pemacu untuk  proses-proses  yang  tumbuh  dan morfogenesis (Gunawan, 1992).
3.1. Umur  eksplan  mulai  mengalami pembesaran dan pemanjangan (HST) Pengaruh perimbangan auksin dan sitokinin  mempengaruhi  waktu  yang diperlukan untuk terjadinya morfogenesis suatu eksplan. Hasil penelitian menunjukkan bahwa peningkatan konsentrasi kinetin mempercepat terjadinya  morfogenesis.  Pada  parameter umur eksplan mulai mengalami pembesaran  dan  pemanjangan,  hasil  uji BNT  5%  menunjukkan  bahwa  kontrol (k 0 ) dan p 1 (4 mg/l NAA + 0 mg/l kinetin) menunjukkan
rata-rata waktu
pertumbuhan  yang  terlama  yaitu  2  hst sedangkan  yang  tercepat  pada  perlakuan k 3 (2mg/lNAA+2mg/l Kinetin) , k 4 (1mg/lNAA+3mg/l Kinetin)
dan k 5 (0mg/lNAA+4mg/l  Kinetin)  yaitu        1 hst,  kemudian  diikuti  oleh  perlakuan  k2
yaitu 1.7 hst. Pada k 3 , k 4 dan k 5 terjadinya terjadi  pembesaran  dan  pemanjangan memerlukan  waktu  yang  lebih  pendek daripada perlakuan k 0 , k 1 dan k 2 (Gambar 1).  Hal  tersebut  menunjukkan  bahwa  zat pengatur tumbuh kinetin sangat diperlukan untuk pembesaran dan pemanjangan eksplan bawang putih yaitu pada  konsentrasi  1-4  mg/l.  Konsentrasi NAA yang tinggi  yaitu 4 mg/l  (k 1 ) tidak mempengaruhi pemanjangan dan
pembesaran eksplan karena tidak berbeda nyata  dengan  kontrol  (k 0 ),  hal  tersebut menunjukkan  bahwa  pembesaran  dan pemanjangan  eksplan  tidak  dipengaruhi oleh konsentrasi NAA yang tinggi.
Perlakuan kontrol (k 0 ) dan k 1 merupakan perlakuan yang memerlukan waktu terlama untuk
pembesaran  dan  pemanjangan.  Pada kontrol,  hal  ini  diduga  disebabkan  oleh tidak  adanya  penambahan  zat  pengatur tumbuh  pada  perlakuan.      Menurut Sriyani  dan  Wijayani  (1994),  tanpa penambahan  zat  pengatur  tumbuh  pada dalam media, pertumbuhan sangat terhambat bahkan mungkin tidak tumbuh sama  sekali.  Sedangkan  pada  perlakuan k 1 diduga  disebabkan  oleh  tidak  adanya penambahan kinetin dalam media tumbuh,    yang  mana  kinetin  merupakan pemacu  pertumbuhan  tunas  sehingga pertumbuhan  tunas  terlambat.    Hal tersebut sesuai dengan pendapat Wetherell (1982), mengenai peran penting sitokinin yang merupakan perangsang pembelahan sel dalam jaringan  eksplan,  morfogenesis  dan merangsang  perkembangan  tunas.Hasil analisa  uji  sidik  ragam  menunjukkan bahwa  perlakuan  k 3 ,  k 4 dan  k 5 berbeda sangat nyata dengan k 0 , k 1 dan k 2 .
Gambar 1. Pengaruh Konsentrasi NAA+Kinetin terhadap Waktu Pembesaran dan Pemanjangan Eksplan
3.2. Jumlah Daun Pada  kultur  umur  7  hari  setelah tanam  daun  sudah  terbentuk  dengan rataan  0,4–1,8  helai,  jumlah  daun tertinggi  diperoleh  pada  kontrol,  hal  ini diduga  karena  adanya  auksin  dan sitokinin  endogen  dalam  jaringan  yang cukup  untuk  memacu  pertumbuhan  dan morfogenesis  sehingga  eksplan  mampu berdiferensiasi  ke  arah  pembentukan daun. Beberapa kultur mungkin tidakmemerlukan  zat  pengatur  tumbuh auksin lagi, karena auksin endogen sudah cukup untuk memenuhi  kebutuhan kultur yang bersangkutan (Sriyanti dan Wijayani,  1994).    Selain  faktor  tersebut juga    diduga  karena  eksplan  yang digunakan adalah jaringan meristem yang aktif  membelah  diriyang  kaya  akan  zat pengatur  tumbuh  endogen  sehingga mampu  memacu  pertumbuhan  kearah pembentukan daun.
Rata-rata  jumlah  daun  tertinggi pada  kultur  umur  14,  21  dan  28  hst didapat pada perlakuan k 4 (1 mg/l NAA + 3  mg/l  kinetin).  Diduga  perlakuan  k4 mampu memacu pembentukan daun lebih tinggi  dibanding  perlakuan  yang  lain dimana  konsentrasi  kinetin  lebih  tinggi daripada  konsentrasi  auksin  sehingga morfogenesis  yang  terjadi  ke  arah pembentukan  tunas  dan  daun.  Soetarmi (1994),  menyatakan  bahwa  mekanisme dasar  yang  mengatur  organogenesis melibatkan  keseimbangan  antara  auksin dan sitokinin dapat menyebabkan
terbentuknya  kalus,  akar  dan  tunas. Menutur Kusumo (1984), interaksi auksin dan  sitokinin  terjadi  dalam  menentukan bakal  pucuk,  batang  atau  akar.  Menurut Setyati  (1984)  jika  kadar  auksin  rendah dan sitokinin tinggi menimbulkan perkembangan tunas.
Hasil  uji  BNT  5%  pengaruh konsentrasi  zat  pengatur  tumbuh  NAA dan  kinetin  pada  rata-rata  jumlah  daun dari  kultur  umur  7  hst,  menunjukkan bahwa    perlakuan  kontrol  (k 0 )  berbeda nyata  dengan  k 1 ,  k 2 ,  k 3 ,  k 4 dan  k 5 . Perlakuan  k 1 tidak  berbeda  nyata  dengan k 4 dan  k 5 .  Perlakuan  k 2 juga  tidak berbedanyata dengan k 4 dan k 5 . Perlakuan k 3 menunjukkan  jumlah  daun  yang terendah (0,4 helai).
Pada  kultur  umur  14  hari  setelah tanam,jumlah  daun  terbanyak  diperoleh pada perlakuan k 4 (1 mg/l NAA + 3 mg/l kinetin) yaitu sebanyak 2,3 helai demikian  pula  pada  kultur  umur  28  hari setelah  tanam  yaitu  sebanyak  3,9  helai (Tabel  1).    Pada  kultur  umur  21  hst, diantara  perlakuan  k 1 ,  k 2 dan    k 3 tidak berbeda  nyata,  namun  ketiga  perlakuan tersebut  berbeda  nyata  dengan  perlakuan k 0 ,  k 4 dan  k 5 .  Jumlah  daun  tertinggi diperoleh pada perlakuan k 4 .  Pada kultur umur  21  hst  jumlah  daun  tertinggi  juga diperoleh  pada  perlakuan  k4  yaitu sebanyak  3.9  sedangkan  jumlah  terendah didapat pada perlakuan k 2 dan k 3 masing- masing sebanyak 2,5 helai (Tabel 1).
Tabel  1.    Pengaruh  Konsentrasi    Zat  Pengatur  Tumbuh  NAA  dan  Kinetin  terhadap  Rata-rata  Jumlah  Daun (helai)
3.3. Tinggi Tunas Hasil  uji  BNT  5%  terhadap  rata-rata tunas  umur  28  hst  menunjukkan  bahwa perlakuan perbedaan
konsentrasi
NAA+Kinetin pada media kultur mengakibatkan    terjadinya  perbedaan yang  nyata  pada  tinggi  tunas  umur  28 hari setelah tanam. Perlakuan kontrol/ k 0 (7,2  cm)  tidak  berbeda  dengan  k 1 (7,4 cm) dan k 2 (6,9 cm) tetapi berbeda nyata dengan  k 4 (11,0  cm)  dan  k 5 (5,7  cm). Perlakuan  k 4 berbeda  nyata  dengan semua  perlakuan,  demikian  pula  dengan perlakuan  k 5 .  Perlakuan  terbaik  untuk tinggi  tunas diperoleh pada perlakuan k 4 (1  mg/l  NAA  +  3  mg/l  kinetin)  yaitu
11,0 cm. Peningkatan konsentrasi kinetin pada perlakuan k 5 (0 mg/l NAA + 4 mg/l kinetin) menghambat pertumbuhan tinggi  tunas,  hal  tersebut  dapat  dilihat pada  tinggi  tunas  perlakuan  k 5 yaitu  5,7 cm  (Gambar  2).    Perlakuan  k 4 (1  mg/l NAA + 3 mg/l kinetin) memberikan hasil tertinggi pada parameter  rata-rata tinggi tunas  karena  pada  konsentrasi  tersebut mampu meningkatkan
aktivitas metabolisme  untuk  pertumbuhan  tinggi. Menurut  Wattimena  (1992),  kombinasi sitokinin  dan  auksin  mampu  mendorong pembelahan  sel  dan  menentukan  arah diferensiasi  sel tanaman.
Gambar 2. Tinggi Tunas Saat Kultur Berumur 28 Hari Setelah Tanam

## 3.4. Jumlah akar
Eksplan  baru  membentuk  akar setelah kultur berumur 21 hst.  Hasil sidik ragam  terhadap  rata-rata  jumlah  akar
umur  21  hst  dan  28  hst  menunjukkan berbeda nyata. Akar tidak terbentuk pada eksplan  yang  diberi  perlakuan  k 0 ,  k 1 ,  k 2 , dan  k 4 sampai  kultur  berumur  28  hst
Perlakuan Umur Kultur (Hari Setelah Tanam) 7 14 21 28 k 0 (0 mg/l NAA + 0 mg/l kinetin) 1,8a 2,0b 2,8ab 3,1b k 1 (4 mg/l NAA + 0 mg/l kinetin) 1,4c 2,0b 2,3c 3,1b k 2 (3 mg/l NAA + 1 mg/l kinetin) 1,5b 1,8c 2,4c 2,5d k 3 (2 mg/l NAA + 2 mg/l kinetin) 0,4d 1,4d 2,3c 2,5d k 4 (1 mg/l NAA + 3 mg/l kinetin) 1,3bc 2,3a 3,0a 3,9a k 5 (0 mg/l NAA + 4 mg/l kinetin) 1,3bc 2,0b 2,5b 3,0c
(Gambar  3).    Akar  hanya  terbentuk  pada eksplan  yang  diberi  perlakuank 3 (2  mg/l NAA  +  2  mg/l  kinetin)  dan  k 4 (1  mg/l NAA + 3 mg/l kinetin). Rata-rata jumlah akar  tertinggi  yang  terbentuk  diperoleh pada  perlakuan  k 3 yaitu  sebanyak  1,6 buah,  pada  umur  21  hst  dan  4,4  buah pada kultur umur 28 hst. Pada perlakuaan  k 4 (1  mg/l  NAA  +  3  mg/l kinetin)    rata-rata  akar  yang  terbentuk sebanyak  1,0  buah  pada  kultur  umur  21 hst dan 2,6 buah pada kultur umur 28 hst
(Gambar 3).   Hal ini diduga karena pada perlakuan  k 3 dan  k 4 pemberian  auksin dan sitokinin saling berinteraksi sehingga mampu  mendorong  morfogenesis  pada pembentukan  akar.    Menurut  Wetherel (1991),  konsentrasi  kinetin  yang  cukup dapat  mengaktifkan  peranan  auksin terhadap  pembentukan  dan  pemanjangan akar.    Menurut  Weaver  (1972),  auksin sangat efektif dalam menginisiasi pembentukan  akar  pada  banyak  spesies tanaman.
Gambar 3. Jumlah Akar Saat Kultur Berumur 28 Hari Setelah Tanam
3.5. Panjang akar Hasil  sidik  ragam  menunjukkan bahwa  perlakuan  konsentrasi  NAA  dan kinetin      terhadap  rata-rata  panjang  akar berbeda sangat nyata.  Pengukuran hanya dilakukan  pada  perlakuanpada  perlakuan k 3 (2 mg/l NAA + 2 mg/l kinetin) dan k 4 (1  mg/l  NAA  +  3  mg/l  kinetin)  karena sampai  kultur  berumur  28  hari  setelah tanam. pada perlakuan k 0 , k 1 , k 2 , k 5 tidak ada  akar  yang  terbentuk.    Akar  hanya terbentuk pada perlakuan k 3 (2 mg/l NAA + 2 mg/l kinetin) dan k 4 (1 mg/l NAA + 3 mg/l  kinetin).  Berdasarkan  uji  BNT  5% perlakuan  k 3 berbeda  nyata  dengan  k 4 . Panjang  akar  yang  terpanjang  terbentuk
pada  perlakuan k 3 (2 mg/l NAA + 2 mg/l kinetin)  yaitu  5,5  cm  kemudian  diikuti oleh  k 4 (1  mg/l  NAA  +  3  mg/l  kinetin) yaitu 2,4 cm (Gambar 4). Hasil penelitian menunjukkan bahwa peningkatan
konsentrasi  auksin  pada  media  mampu meningkatkan panjang akar.  Konsentrasi auksin  yang  rendah  dan  kinetin  yang tinggi  pada perlakuan k 4 mengakibatkan pertumbuhan  panjang  akar  yang  lebih rendah.  Hal  tersebut  sesuai  dengan pendapat Wetherell (1982) yang menyatakan  bahwa  kombinasi  antara sitokinin pada konsentrasi rendah dengan auksin pada konsentrasi tinggi baik untuk pertumbuhan akar.

## Gambar 4.  Panjang Akar Tunas Saat Kultur Berumur 28 Hari Setelah Tanam

## 4. KESIMPULAN
Berdasarkan  hasil  penelitian  dan pembahasan  dapat  diambil  kesimpulan,
yaitu sebagai berikut : Perlakuan kombinasi  konsentrasi  NAA  dan  Kinetin berbeda  sangat  nyata  terhadap  semua parameter  morfogenesis  eksplan  yaitu pembesaran  dan  pemanjangan  eksplan, jumlah  daun,  tinggi  tunas,  jumlah  akar dan  panjang  akar.  Pemberian  NAA  1 mg/l  NAA  +  3  mg/l  kinetin  pada  media kultur merupakan kombinasi zat pengatur tumbuh  terbaik  yang  mampu  memacu pertumbuhan eksplan, pembentukan daun, tinggi tunas dan pembentukan akar.

## DAFTAR PUSTAKA
[1] Bhojwani,  S.S.  (ed.).  1990.  Plant Tissue  Culture  :  Applications and Limitations. Elsevier, Amsterdam.
[2] Gunawan,  L.W.  1992.    Teknik Kultur  Jaringan  Tumbuhan. Departemen  Pendidikan  dan
Kebudayaan, Direktorat Jenderal  Pendidikan  Tinggi, Pusat Antar Universitas Bioteknologi IPB, Bogor. [3] Palungkun, R. dan A. Budiarti. 1992. Bawang  Putih  dataran  Rendah. Penebar Swadaya, Jakarta.
[4] Rukmana, R. 1995. Budidaya bawang Putih. Kanisius, Yogyakarta.
[5] Santoso,  H.B.  1999.    Bawang  Putih. Kanisius, Yogyakarta.
[6] Sriyanti,  D.P.  dan  A.  Wijayani. 1994.  Teknik  Kultur Jaringan,
Pengenalan dan Petunjuk Perbanyakan  Tanaman  secara Vegetatif  Modern.    Kanisius, Yogyakarta. [7] Wattimena, G.A. 1992.  Bioteknologi
Tanaman. Departemen Pendidikan  dan  Kebudayaan, Direktorat  Jenderal  Pendidikan Tinggi, Pusat Antar Universitas Bioteknologi IPB, Bogor.
[8] Weaver,R.J.  1972.    Plant  Growth
Substances in Agriculture. W.H.  Freeman  and  Company, San Francisco.
[9] Wetherell,  D.F.  dan  Constabell. 1991.  Metode Kultur Jaringan. Terjemahan  Mathilda.  ITB, Bandung.
[10] Wibowo,  S.    1989.    Budidaya Bawang, Bawang Putih, Bawang Merah, Bawang Bombay.    Penebar  Swadaya, Jakarta.