Cell Density Of Microalgae Tetraselmis chuii, With Lead Acetate Compound (Pb(Ch3COO)2) at Different Concentrations
(Kepadatan Sel Mikroalga Tetraselmis Chuii Dengan Pemberian Senyawa Timbal Asetat (Pb(Ch 3 coo) 2 ) Pada Konsentrasi Yang Berbeda)
Nurfadillah Kadang 1 , Kurniati Kemer* 2 , Desy M.H Mantiri 2 , Erly Yosef Kaligis 2 , Natalie D.C. Rumampuk 2 , Wilmy E. Pelle 2
1 Marine Science Study Program, Faculty of Fisheries and Marine Sciences, Sam Ratulangi University, Manado 95115 North Sulawesi, Indonesia
2 Teaching Staff of the Faculty of Fisheries and Marine Sciences, Sam Ratulangi University Jl. Unsrat Bahu Campus, Manado 95115 North Sulawesi, Indonesia
*Corresponding author: kurnikemer@unsrat.ac.id
Manuscript received: 24 July 2023. Revision accepted: 5 June 2024

## Abstract
Microalgae  are  a  group  of  microscopic  plants,  included  in  the  algae  class,  with  a  diameter  of between 3-30 µm, single cells, and colonies that can live in all areas of fresh water and seawater. Microalgae contain active components that can be used in the cosmetic, food, pharmaceutical, and  nutraceutical  industries.  This  study  aimed  to  determine  the  density  of  marine  microalgae Tetraselmis chuii cells in culture media before treatment and to determine the density of T.chuii microalgae  cells  by  administering  lead  acetate  compounds  at  different  concentrations.  The method used in this study was culturing marine microalgae cells in balanced containers with lead acetate administration at concentrations of 30 ppm, 50 ppm, and 70 ppm, then observations were made  by  counting  the  number  of  cells  under  an  Olympus  microscope  with  10x  magnification using  a  hemocytometer.  Observations  were  made  every  day  at the  same  hour  until  the  death phase. Microalgae culture uses a Light Emitting Diode (LED) lamp with 6,840 lux lighting. The results  showed  that  the  growth  of  T.chuii  microalgae  cells  after  administration  of  lead  acetate compound showed unstable growth compared to the untreated container (control).
Keywords : Microalgae; Tetraselmis chuii ; Culture; Lead Acetate.

## Abstrak
Mikroalga merupakan kelompok tumbuhan yang berukuran sangat kecil termasuk dalam kelas alga,  memiliki  diameter  antara  3- 30  μm  baik  sel  tunggal  maupun  koloni  yang  dapat  hidup  di seluruh wilayah perairan air tawar maupun air laut. Mikroalga mengandung komponen aktif yang dapat  digunakan  dalam  bidang  industri  kosmetik,  makanan,  farmasetika  dan  nutrasetikal . Adapun  tujuan  dari  penelitian  ini  yaitu  untuk  mengetahui  kepadatan  sel  mikroalga  laut Tetraselmis  chuii dalam  media  kultur  sebelum  perlakuan  dan  mengetahui  kepadatan  sel mikroalga T.chuii dengan  pemberian  senyawa  timbal  asetat  pada  konsentrasi  yang  berbeda. Metode  yang  digunakan  pada  penelitian  ini  yaitu  mengkultur  sel  mikroalga  laut  pada  wadah terkontrol dengan pemberian timbal asetat pada konsentrasi 30 ppm, 50 ppm, 70 ppm, kemudian dilakukan  pengamatan  melalui  perhitungan  jumlah  sel  di  bawah  mikroskop  olympus  dengan pembesaran 10x menggunakan haemocytometer. Pengamatan dilakukan setiap hari pada jam yang  sama  sampai  pada  fase  kematian.  Kultur  mikroalga  menggunakan  lampu  Light  Emitting Diode (LED) dengan pencahayaan 6.840 lux. Hasil penelitian menunjukkan bahwa pertumbuhan mikroalga  mikroalga T.chuii mengalami  penurunan  sel  secara  signifikan  setelah  pemberian senyawa timbal asetat dibandingkan dengan kontrol yang tidak diberi perlakuan.
Kata kunci : Mikroalga; Tetraselmis chuii ; Timbal Asetat.

## PENDAHULUAN
Mikroalga adalah kelompok tumbuhan  berukuran  sangat  kecil  yang
termasuk  dalam  kelas  alga.  Ukuran mikroalga  bervariasi  antara  3  hingga  30 μm,  baik  sel  tunggal  maupun  koloni  yang ditemukan  di  seluruh  wilayah  perairan  air
tawar  maupun  air  laut.  Secara  ekologi, mikroalga berfungsi sebagai sumber makanan  dan  produsen  primer  dalam ekosistem laut (Bowale dkk, 2017). Selain berperan dalam rantai makanan, mikroalga juga  merupakan  bahan  organik  dalam sedimen  laut  dan  dianggap  sebagai  salah satu  komponen  minyak  di  dasar  laut (Kawaroe dkk, 2010).  Mikroalga  memiliki kandungan komponen aktif yang bermanfaat  dalam  berbagai  industry, seperti  kosmetik,  makanan,  farmasi,  dan nutrasetika. T.chuii merupakan  jenis  dari kelas Chlorophyceae yang dapat digunakan sebagai pakan dalam budidaya. Kelebihan
T.chuii antara lain
ketersediaannya secara alami di alam dan ukurannya yang sesuai bukaan mulut larva. Selain  itu, T.chuii juga  dapat  digunakan sebagai  bioindikator  untuk  menentukan kualitas  suatu  perairan  (Ferianita dkk, 2005).
Mikroalga  ini  mampu  berkembang biak  di  lingkungan  yang  terkontaminasi logam  berat  seperti  timbal,  dan  memiliki toleransi terhadap faktor lingkungan seperti suhu,  cahaya, salinitas dan pH (Maisyara, 2019).  Timbal  asetat merupakan  senyawa kimia yang terbentuk dari kombinasi antara timbal  dan  asetat.  Timbal  asetat  memiliki efek beracun pada manusia dan lingkungan.  Paparan  jangka  panjang  atau konsentrasi  tinggi  dapat  menyebabkan keracunan  dari  timbal,  yang  berdampak negatif pada sistem saraf, ginjal dan organ tubuh  lainnya  (Jannah dkk. 2019).  Timbal asetat  mudah  larut  dalam  air  sehingga dapat  digunakan  sebagai  perantara  untuk melihat pengaruh timbal terhadap mikroalga.  Berdasarkan  latar  belakang  di atas,  maka  dalam  penulisan  ini  penulis mempelajari  kepadatan  sel  mikroalga T.chuii dengam  pemberian  timbal  asetat pada konsentrasi yang berbeda.

## METODE PENELITIAN
Mikroalga T.chuii yang  digunakan dalam  penelitian  ini  berasal  dari  Balai Besar  Perikanan  Budidaya  Jepara  dan kemudian  dibawa  di  Laboratorium  Biologi Molekuler  dan  Farmasetika  Laut,  FPIK UNSRAT. Kultur mikroalga ini menggunakan  empat  Erlenmeyer  dengan
volume 1000 ml sebagai wadah kultur, diisi dengan 1000 ml air laut yang telah disaring. Setelah  itu,  dilakukan  sterilisasi  dalam autoclave  selama  20  menit  pada  suhu 121 ℃ . Mikroalga T.  chuii kemudian  ditambahkan  ke dalam erlenmeyer yang sudah berisi air laut sebanyak 1000 µl, diikuti dengan penambahan media walne sebanyak 1000 µl  sebagai  sumber  nutrisi  bagi  mikroalga. Proses kultur mikroalga dilakukan selama 8 hari  dalam  ruangan  tertutup  dengan pencahayaan  sebesar  6.840  lux,  suhu ruangan  24 ℃ dan  salinitas  30  ppt.
Pertumbuhan  awal  mikroalga  dihitung setiap hari menggunakan haemocytometer dengan  5  kali  pengambilan  sampel  untuk mengamati kepadatan selnya.
Selanjutnya  mikroalga  yang  sedang dikultur ini diberikan perlakuan menggunakan  tiga  konsentrasi  berbeda, yaitu 30 ppm, 50 ppm, dan 70 ppm. Setelah perlakuan  diberikan,  sampel  tersebut dimasukkan kembali ke dalam lemari kultur dan  diamati  kepadatan  selnya  selama  18 hari  pada  waktu  yang  sama.  Penentuan konsentrasi  studi  pendahuluan  yang  di awali dengan konsentrasi 1 ppm, 2 ppm, 3 ppm tidak berpengaruh terhadap pertumbuhan mikroalga dan mulai berpengaruh  pada  konsentrasi  30  ppm (Balaira dkk., 2017).

## Analisis Data
Penjumlahan  individu  dalam  suatu populasi dapat diestimasi dengan mengukur kepadatan (Krebs,1989).
Kepadatan  adalah  besarnya  populasi dalam  suatu  unit  ruang  dinyatakan  dalam sejumlah individu dari populasi dalam suatu unit (Odum, 1971).Kepadatan sel mikroalga  dihitung  dengan  menggunakan haemocytometer.  Dalam  haemocytometer atau ruang hitung terdiri dari 9 kotak besar dengan  luas  1  mm².  Satu  kotak  besar  di tengah,  dibagi  menjadi  25  kotak  sedang dengan  panjang  0,2  mm.  Satu  kotak sedang  dibagi  menjadi  16  kotak  kecil, dengan demikian satu kotak besar tersebut berisi  400  kotak  kecil.  Data  yang  telah dikumpulkan  kemudian  diolah  ke  dalam Microsoft Excel. Proses ini bertujuan untuk
mendapatkan  hasil  dan  grafik  yang menggambarkan kepadatan sel mikroalga.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Pengamatan Awal Kultur
Dalam  penelitian  ini,  kepadatan mikroalga T.chuii diamati tanpa pemberian senyawa  timbal  asetat  sebagai  kontrol.
Pengamatan  dilakukan  hingga  mencapai fase eksponensial pada hari ke 8. Grafik 1 menunjukkan  bahwa  terjadi  pembelahan sel,  dimana  kepadatan  sel  meningkat seiring  waktu.  Pada  hari  pertama,  jumlah rata-rata  sel1.4  x  10 4 sel/ml,  sedangkan pada  hari  kedelapan  jumlah  rata-rata  sel 6.8 x 10 4 sel/ml. .
Gambar 1.Kepadatan Sel Tetraselmis chuii
Pada  hari  pertama  hingga  hari  ke-3, pengamatan  pertumbuhan  kepadatan  sel mikroalga  T.chuii  menunjukkan  bahwa  sel mengalami proses metabolisme dan penyesuaian  sebelum  terjadi  pembelahan sel.  Pada  hari  keempat,  sel  mulai memasuki  fase  pembelahan.  Mikroalga tersebut menggunakan nutrisi yang tersedia dalam media walne yang diberikan pada wadah kultur, sehingga pertumbuhan sel  secara  perlahan  mulai  meningkat. Pembelahan  sel  setiap  hari  mengalami peningkatan hingga memasuki fase eksponensial  pada  hari  ke  8,  kemudiaan dilanjutkan dengan perlakuan timbal asetat. Dari  hasil  pengamatan  awal  kultur,  fase eksponensial  berbeda  pada  penelitian Sanep  dkk.,  (2023)  dimana  fase  tersebut terjadi pada hari ke 11. Menurut Tewal dkk., (2021),  fase  pertumbuhan  tertinggi  pada mikroalga  berada  pada  hari  ke  9, sedangkan fase eksponensial dalam penelitian  Tamalonggehe  dkk.  (2020), berada  pada  hari  ke  7  dalam  wadah kontrolnya. Perbedaan dalam fase eksponensial terjadi karena setiap
mikroalga  mengalami  masa  penyesuaian yang berbeda untuk beradaptasi, sedangkan dalam mencapai fase pertumbuhan eksponensial dilihat tergantung  pada  kondisi  lingkungan  yang diberikan dalam media kultur mikroalga.

## Pemberian Senyawa Timbal Asetat
Kurva pertumbuhan mikroalga T.chuii berdasarkan pada konsentrasi 30 ppm, 50 ppm dan 70 ppm tampak pada Gambar 2.
Berdasarkan grafik yang ditampilakan,  terlihat  bahwa  mikroalga T.chuii yang  diberi  perlakuan  senyawa timbal asetat mengalami penurunan jumlah sel  yang  berbeda  dibandingkan  dengan wadah kontrol. Penurunan jumlah sel mulai terjadi  sejak  awal  pengamatan  setelah pemberian perlakuan timbal asetat dengan tiga  konsentrasi  yang  berbeda,  yaitu  30 ppm,  50  ppm,  dan  70  ppm.  Pada  hari pertama,  jumlah  sel  pada  konsentrasi  30 ppm adalah 6.2 x 10 4 sel/ml, konsetrasi 50 ppm  adalah  6  x  10 4 sel/ml,  dan  pada konsentrasi 70 ppm adalah 5.6 x 10 4 sel/ml. Sementara  itu,  wadah  kontrol  memiliki
jumlah  sel  sebesar  6.6  x  10 4 sel/ml. Pertumbuhan  sel  mikroalga T.chuii yang diberi  perlakuan  timbal  asetat  mengalami penurunan  yang  cukup  drastis  karena adanya  pemberian  konsentrasi  senyawa
timbal asetat yang bersifat toksik terhadap mikroalga, serta nutrient pada wadah kultur mulai berkurang sehingga dapat mempengaruhi pertumbuhan sel mikroalga tersebut.
Gambar 2. Pertumbuhan Tetraselmis chuii saat pemberian perlakuan
Kontrol Hasil pengamatan pada wadah kontrol  (tanpa  perlakuan)  menunjukkan mikroalga T. chuii berbeda seperti pertumbuhan  mikroalga  pada  umumnya, dimulai  dari  laju  pertumbuhan  yang  baik dikarenakan sel dapat bereproduksi
dengan
cepat hingga mencapai pertumbuhan kepadatan yang relatif tinggi karena  adanya  nutrisi  dari  media  walne yang tersedia dalam wadah kultur.
Kepadatan sel mikroalga T.chuii pada hari pertama sampai pada hari terakhir pengamatan  mengalami  penurunan  sel secara perlahan-lahan. Penurunan pertumbuhan sel dapat dilihat karena rata- rata jumlah sel pada hari pertama yaitu 6.6 x  104  sel/ml  dan  pada  hari  ke  18  dengan jumlah rata-rata sel 2.2 x 104 sel/ml.

## Timbal Asetat Konsentrasi 30 ppm
Pengamatan  yang  dilakukan  pada mikroalga dengan pemberian timbal asetat konsentrasi  30  ppm  menunjukkan  adanya penurunan  signifikan  dalam  pertumbuhan mikroalga. Jumlah sel diketahui menggunakan  haemocytometer,  dengan jumlah  rata-rata  sel  pada  hari  pertama sebesar  6.2  x  104  sel/ml,  dan  pada  hari terakhir jumlah  rata-rata  sel  turun menjadi 2  x  104  sel/ml.  Menurut  Lamohammd
dkk.(2021),  penurunan  jumlah  kepadatan sel  mikroalga  yang  diberi  perlakuan konsentrasi 30 ppm timbal asetat hal yang wajar  terjadi.  Hal  ini  disebabkan  oleh pemberiasn  timbal  asetat  dalam  wadah kultur,  yang  mempengaruhi  pertumbuhan sel  mikroalga  hingga  mencapai  fase kematian.

## Timbal Asetat Konsentrasi 50 ppm
Pemberian  senyawa  timbal  asetat pada wadah ketiga dengan konsentrasi 50 ppm  mengakibatkan  penurunan  yang drastic  dalam  jumlah  sel.  Dibandingkan dengan  perlakuan  konsentrasi  30  ppm, penurunan  jumlah  sel  ini  jauh  lebih signifikan.  Perbedaan  tersebut  dapat disebabkan  oleh  perbedaan  konsentrasi timbal  asetat  yang  diberikan,  yang  dapat secara  efektif  menghambat  pertumbuhan mikroalga  T.chuii.  Lamohammad  dkk. (2021), menyatakan bahwa apabila semakin  besar  pemberian  konsentrasi pada  mikroalga maka  semakin  besar  pula tingkat kematian yang terjadi pada pertumbuhan  mikroalga.  Sedangkan  pada penelitian Kemer dkk.,(2020) bahwa pengamatan  menggunakan  Transmission electron  mikroskop  (TEM)  menunjukkan adanya  kerusakan  sel  pada  mikroalga
Dunaliella  sp.  dengan  pemberian  timbal asetat konsentrasi 50 ppm.
Timbal Asetat Konsentrasi 70 ppm Pada  wadah  keempat,  ketika  diberikan dengan  konsentrasi  yang  cukup  besar, yaitu 70 ppm, terlihat bahwa pertumbuhan sel  mikroalga  mengalami  penurunan  yang hampis  sebanding  dengan  perlakuan konsentrasi 50 ppm.
Penurunan pertumbuhan ini jelas terlihat karena pada hari pertama pengamatan, rata-rata jumlah sel 5.6 x104 sel/ml, namun pada pengamatan terakhir, sel mengalami penurunan  jumlah  sel  yang  signifikan, mencapai  rata-rata  sel  1  x  104.  Menurut Kusuma dan Zulaika (2014), jika jumlah zat beracun masuk ke dalam sel sangat tinggi dan  tidak  lagi  dapat  lagi  diikat  oleh pengikat, maka sel tidak dapat menetralkan sifat  racun  tersebut.  Dampaknya  adalah terjadi  kerusakan  pada  sistem  tubuh
organisme, termasuk gangguan pertumbuhan dan perkembangan, kelainan pada sel atau organel sel, serta kerusakan fungsi organel sel.

## Pengukuran Kualitas Air
Pengukuran  kualitas  air pada  wadah kultur  mikroalga T.  chuii menunjukan bahwa  parameter  suhu,  salinitas,  pH  dan cahaya  berada  pada  kisaran  optimal seperti  pertumbuhan  mikroalga  pada umumnya.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa penurunan laju pertumbuhan pada mikroalga T.chuii bukan  berasal  dari  dari faktor  suhu,  salinitas,  pH  dan  cahaya melainkan  nutrien  yang  ada  pada  wadah yang  mulai  berkurang  serta  pengaruh logam  timbal  yang  diberikan  dengan konsentrasi yang berbeda. Penurunan juga bisa  terjadi  karena  penyebab  lainnya  lihat Tabel 1.

## Tabel 4. Analisis Faktor IFAS dan EFAS
No. Parameter Kualitas Air Hasil Pengukuran Kisaran Optimal 1. Suhu 24 ℃ 15-25 ℃ (Sutherland dkk , 2015) 2. Salinitas 30 ppt 25-35 ppt ((Adi dkk , 2002) 3. Derajat Keasaman 7 7-8 Adi dkk. (2020) 4. Cahaya 8.640 Lux 4500-8000 Lux (Adi dkk , 2002) Pembahasan
Kapadatan sel mikroalga merupakan salah satu ukuran atau parameter pertumbuhan  yang  bisa  dijadikan  sebagai acuan  untuk  menentukan  pertumbuhan mikroalga. Pada awal pengamatan kepadatan sel mikroalga diamati setiap hari dengan  5  kali  pengambilan  sampel  pada hari  yang  sama.  Pengamatan  sebelum perlakuan senyawa timbal asetat dilakukan selama  8  hari.  Mikroalga  mengalami  fase lag  pada  hari  ke  1  sampai  pada  hari  ke  3 dimana  mikrolaga  beradaptasi  dengan lingkungannya.  Menurut  Negara  dkk. (2019) mikraolga T. chuii dapat beradaptasi selama 1-3 hari dan apabila masa adaptasi mikrolaga  lama  maka  itu  disebabkan karena  harus  menyesuaiknan  dengan nutrisi  yang  ada.  Data  pengamatan  yang diperoleh bahwa fase lag yang terjadi pada mikroalga T. chuii sesuai dengan pendapat
Negara dkk. (2019). Pertumbuhan mikroalga  ini  mengikuti  pola  umum  pada mikroalga. Mulai dari hari ke-4 hinngga ke- 7, pertumbuhan tetap relative stabil karena nutrien  yang  ada  di  dalam  wadah  telah dimanfaatkan.  Setelah  itu,  pada  hari  ke-8, mikroalga memasuki fase eksponensial, di mana laju pertumbuhan dan kepadatan sel T.chuii meningkat secara signifikan. Kemudian,  dilakukan  perlakuan  dengan pemberian  senyawa  timbal  asetat  pada konsentrasi  yang  berbeda,  yaitu  30  ppm, 50  ppm,  70  ppm,  dan  kontrol.  Observasi dilakukan selama 18 hari untuk melihat laju pertumbuhan dan kepadatan sel dari setiap konsentrasi  perlakuan  yang  diberikan. Menurut  Simanjuntak  dkk.,  (2016)  bahwa pemberian logam berat dapat mempengaruhi
pertumbuhan dan
kepadatan  sel  mikroalga  salah  satunya senyawa merkuri (HgCl2) pada konsentrasi
yang  rendah  yaitu  2  ppm  mengalami kematian  yang  signifikan.  Dibandingkan dengan  pemberian  senyawa  timbal  asetat pada  konsentrasi  30  ppm  baru  dapat mempengaruhi kematian sel mikroalga.
Fase pertumbuhan eksponensial pada kontrol dimulai sejak awal pengamatan
bersamaan dengan perlakuan.  Pengamatan  dilakukan  setiap hari  bersamaan  dengan  tiga  perlakuan konsentrasi lainnya. Pertumbuhan kepadatan  sel  mikroalga  T.  chuii  pada wadah kontrol memasuki fase dimana laju pertumbuhan sel mulai menurun disebabkan  oleh  beberapa  faktor  seperti kekurangan nutrien dan adanya kontaminasi  terhadap  lingkungan  sekitar. Pertumbuhan pada wadah yang tidak diberi perlakuan memasuki fase kematian dimana sel  pada  mikroalga  mengalami  tingkat kematian dengan jumlah rata-rata sel pada fase tersebut sangat sedikit yaitu 1.4 x 104 sel/ml dibandingkan dengan laju produksinya.  Perbedaan  pada  penelitian jeheskiel dkk., (2022), menunjukkan bahwa jenis mikroalga chorella vulgaris pada fase kematian  hari  ke  20  dengan  jumlah  rata- rata sel 6 x 104.
Pada wadah yang diberikan perlakuan timbal asetat dengan konsentrasi 30 ppm memberikan pengaruh terhadap  kepadatan  mikroalga  T.chuii dimana  pada  hari  ke  1  sampai  hari  ke  10 pertumbuhan  kepadatan  sel  mikroalga mengalami  penurunan  secara  perlahan- lahan dengan angka kematian yang sedikit, namun  pada  saat  memasuki  hari  ke  11 sampai hari ke 18 pertumbuhan mikroalga mulai  mengalami  penurunan  yang  cukup banyak  diakibatkan  oleh  berkurangnya nutrient  serta  sifat  beracun  dari  senyawa timbal asetat terhadap mikroalga.
Wadah ketiga yang diberi konsentrasi 50  ppm  menunjukkan  bahwa  pemberian perlakuan dapat mempengaruhi laju pertumbuhan dan kepadatan sel mikroalga mulai  dari  hari  ke  1  sampai  hari  ke  8 kepadatan sel mikroalga mengalami penurunan  yang  cukup  stabil  dengan jumlah  kematian  cukup  sedikit.  Kemudian pada hari ke 9 sampai hari ke 18 kepadatan sel  mikroalga  pada  data  pengamatan
mengalami fase penurunan laju pertumbuhan  kemudian  memasuki  fase kematian  disebabkan  oleh  sifat  toksik  dari senyawa timbal asetat.
Pada  wadah  terakhir  yang  diberikan pelakuan  timbal  asetat  konsentrasi  yang cukup  tinggi  yaitu  70  ppm,  menunjukkan penurunan  jumlah  yang  sangat  drastis dibandingkan  dengan  konsentrasi  30  ppm dan  50  ppm.  Data  pengamatan  yang diperoleh,  jumlah  kepadatan  sel  yang diamati dari pertama sampai pada hari ke 7 jumlah  kepadatan  sel  mikroalga  perlahan- lahan mengalami penurunan. Pada hari ke 9  sampai  hari  ke  18,  terjadi  penurunan yang  drastis  hingga  mencapai  fase kematian  mikroalga  T.chuii  dalam  jumlah yang  relatif  banyak.  Hal  ini  menunjukkan bahwa  pemberian  timbal  asetat  dengan konsentrasi  tinggi  memiliki  dampak  yang signifikan terhadap kematian sel mikroalga. Penurunan jumlah sel disebabkan oleh sifat toksik  dari  senyawa  timbal  asetat  yang merugikan  mikroalga  dan  menghambat pertumbuhan juga.
Penelitian Lamohammad dkk. (2021) menjelaskan  bahwa  fitoplankton  memiliki kemampuan  untuk  memanfaatkan  sel-sel yang  sudah  mati  untuk  pembelahan  sel. Fosfat  merupakan  salah  satu  nutrisi  yang penting  untuk  pertumbuhan  dan  berperan dalam  transfer  energy  serta  makanan. Dengan  demikian,  dapat  disimpulkan bahwa  semakin  tinggi  konsentrasi  timbal asetat  yang  diberikan,  semakin  tinggi tingkat kematian yang terjadi.

## KESIMPULAN
Pertumbuhan  kepadatan  sel  mikroalga T.chuii mengikuti pola pertumbuhan umum yang  terjadi  dari  beberapa  tahap.  Tahap pertama adalah fase lag, dimana pertumbuhan mikroalga beradaptasi dengan lingkungannya. Tahap selanjutnya adalah fase eksponensial, dimana pertumbuhan mikroalga mencapai puncaknya. Setelah itu, dilakukan perlakuan  dengan  memberikan  senyawa timbal asetat pada mikroaga tersebut.
Pemberian  senyawa  timbal  asetat  dengan konsentrasi  berbeda  pada  mikroalga T.
Chuii
menyebabkan penurunan pertumbuhan dan kepadatan sel.

## DAFTAR PUSTAKA
Adi,  A.  I.,  A.  A.  M.  D.  Angreni  dan  I.W.
Arnata. 2002. Optimasi Salinitas dan pH  Awal  Media  BG-  11  terhadap Konsentrasi  Biomassa  Tetraselmis chuii.  Tesis  .  Jurusan  Teknologi Indusrti Pertanian Fakultas Teknologi
Pertanian. Universitas Udayana. Denpasar.
Bowale,  H.,  Rompas,  R.,  &  Ginting,  E.
2017.  Ekstraksi  Hidrokarbon  dari Beberapa Mikroalga.
Jurnal Pesisir dan Laut Tropis, 5(1),18-23. Balaria, G., Kemer, K., & Mantiri, D., 2017.
Pemisahan  Pigmen  Pada  Mikroalga Dunaliella  salina  yang  Telah  Diberi
Senyawa Timbal Asetat. Jurnal
Pesisir  dan  Laut  Tropis,  5(1).  41-49 hal.
Ferianita,  M.,  Fachrul.,  Haeruman,  H.,
Listari, C., dan Sitepu. 2005. Komunitas Fitoplankton Sebagai Bio- Indikator  Kualita  Perairan  Teluk Jakarta.
Jeheskiel,  A.V.,  Kemer,  K.,  &  Mantiri,
D.M.H. Paulus J. Rompas R.M. 2022 Effec of Lead Acetate (Pb(Ch3COO)2 on  The  Growth  of  Marine  Microalga Chlorella  vulgaris  (Beijerink,  1890).
Jurnal  Ilmiah  Platax  10(2):  364-371 hal.
Kawaroe,  M.,  Prartono,  T.,  Sunuddin,  A.,
Sari,  D.W.,  &  Augustine,  D.,  2019. Mikroalga Potensi dan Pemanfaatannya  untuk  Produksi  Bio Baham Bakar. PT Penerbit IPB Press. Kemer,  K., Mantiri,  D. M.  H.,  Rompas,  R.
M., Rimper, J. R., Margyaningsih, N.I. 2020. Transmission
Electron Microscope Analysis Upon Growth of Lead  Acetate  Treated  Microalga, Dunaliella  sp.  Jurnal  Aquacultur, Aquarium, Conservation and Legislation, 13(2), 849-856.
Kusuma,  R.  W.A.,  &  Zulaika,  E.,  2014.
Potensi Chorella sp. Sebagai Bioakumulator Logam Berat Kadmium. Jurnal Sains dan Seni ITS
3(2), 71-74.
Krebs, C.J. 1989. Experimental Analysis of Distribition  and  Abundanc.  Third Edition,  New  York.  Lamohammad, O.M.,  Kemer,  K.,  Mantiri,  D.M.H., Angkow, E., Paulus, J., & Wantasen, A.S.
2021. Ekstraksi Pigmen Klorofil Total Pada Mikroalga  Dunaliella  sp.  Yang  Telah Diberi  Perlakuan  Timbal  Asetat. Jurnal  Pesisir  dan  Laut  Tropis,  9(1), 1-10 hal.
Meisyara,  M.  A.  R.,  2019.  Potensi Mikroalga  Tetraselmis  chuii  Buchter Dalam  Bioremediasi  Logam  Berat Timbal  (Pb)  Dari  Limbah  Batik (DoctorL Dissertation, AUJY).
Negara,  B.F.S.P.’  Nursalim,  N.,  Herliany,
N.E.,  Retna,  P.P.,  Purnama,  D.,  & Utami,  M.A.  F.  2019.  Peranan  dan Pemanfaatan  Mikroalga  Tetraselmis chuii Sebagai Bioetanol. Jurnal Enggano, 4(2), 136-147 hal.
Odum,  E.P.,  1971,  Fundamental  of Ecology.  W.B.  Sounders  Company, Philadelphia.
Tamalonggehe,  J.,  Kemer,  K.,  Paransa,
D.S.J.,  Mantiri,  D.M.H.,  Kawung,  N. J.,  &  Undap,  S.  L.  2020.  Efek Senyawa  Timbal  Asetat  Terhadap Pertumbuhan
Dan Kandungan
Pigmen  Klorofil  Mikroalga  Dunaliella sp.  Jurnal  Pesisir  dan  Laut  Tropis, 8(2). 1-10 hal.
Sanep,  J.V.,  Kemer,  K.,  Mantiri,  D. M.H.,Paulus,  J.J.H.,  Mamuaja,  J.M., Tombokan  J.L.  2023.  Effect  of  Lead Asetat  (Pb(Ch3COO)  2  on  The
Growth of Marine Microalga Porphyridium cruentum. Jurnal Pesisir dan Laut Tropis, 9(1): 253-258 hal. Simanjuntak,  G.  Mantiri,  D.,  Kemer,  K., 2016.  Pengaruh  Senyawa  Merkuri Klorida (HgCl2) Terhadap Pertumbuhan dan Kandungan Pigmen Klorofil Mikroalga
Botryococcus  braunii.  Jurnal  Pesisir dan Laut Tropis, 4 (2), 23-29 hal.
Sutherland,  D.  L.,  Howard-Williams,  C.,
Turnbull,  M.  H.,  Broady,  P.  A.,  & Craggs,  R.  J.  2015.  Enhancing
microalga photosynthesis and
productivity  in  wastewater  treatment high  rate  alga  pinds  for  biofuel production.  Bioresource  technology,
184, 222-229.
Tewal, F., Kemer, K., Rimper, J. R., Mantiri,
D.M.H., Pelle, W.E., & Mudeng, J. D.
2021. Laju Pertumbuhan dan
Kepadatan  Mikroalga  Dunaliella  sp. Pada  Pemberian  Timbal  Asetat dengan  Konsentrasi  Yang  Berbeda. Jurnal  Pesisir  dan  Laut  Tropis,  9(1), 30-37 hal.