# Korespondensi:  Balai  Riset  Perikanan  Budidaya  Air  Payau  dan Penyuluhan  Perikanan.  Jl.  Makmur  Dg.  Sitakka  No.  129,  Maros 90511,  Sulawesi  Selatan,  Indonesia Tel.:  +  62  411  371544 E-mail:  samuellante98@yahoo.co.id
Tersedia  online  di:  http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/ma

## PENGARUH  SUMBER  SPERMATOFORA  PADA  INSEMINASI  BUATAN
INDUK  BETINA  UDANG  WINDU  TURUNAN  PERTAMA  (F-1)  TERHADAP  PEMIJAHAN, KUALITAS TELUR,  DAN LARVA  TURUNANNYA (F-2)
Samuel  Lante # dan  Usman
Balai Riset Perikanan Budidaya Air Payau dan Penyuluhan Perikanan Jl. Makmur Dg. Sitakka No. 129, Maros 90511, Sulawesi Selatan
(Naskah diterima: 12 Oktober 2018; Revisi final: 31 Mei 2019; Disetujui publikasi: 31 Mei 2019)

## ABSTRAK
Penelitian  ini  bertujuan  mengevaluasi  pemijahan  udang  windu  betina  F-1  dan  mutu  telur,  serta  larva turunannya  (F-2)  dengan  inseminasi  buatan  menggunakan  sumber  spermatofora  udang  jantan  yang berbeda.  Perlakuan  yang  dicobakan  adalah  induk  udang  windu  betina  F-1  diinseminasi  menggunakan spermatofora dari sumber induk jantan berbeda yaitu: spermatofora induk jantan F-1 hasil budidaya (S-1), dan  spermatofora induk  jantan  alam (S-A).  Data pemijahan  induk  betina, kualitas  telur,  dan profil  asam amino pada daging dan hepatopankreas jantan, serta morfologi larva dianalisis secara deskriptif, sedangkan data uji vitalitas larva dianalisis uji t. Hasil penelitian menunjukkan bahwa induk udang windu betina F-1 yang diinseminasi dengan perlakuan S-1 memiliki tingkat pemijahan 67%; fekunditas 179.257 butir/induk; total  produksi  telur  1.434.053  butir;  tingkat  pembuahan  telur  86,2%;  daya  tetas  telur  59,8%;  dan  total produksi nauplii 738.439 ekor yang lebih rendah dibandingkan pada induk udang F-1 yang diinseminasi perlakuan S-A yang memiliki tingkat pemijahan 75%; fekunditas 215.489 butir/induk; total produksi telur 1.939.399 butir; tingkat pembuahan telur 88,9%; daya tetas telur 62,7%; dan total produksi nauplii 1.081.140 ekor. Sementara diameter telur (248-255 µm) dan mutu larva relatif sama di antara kedua perlakuan. Profil asam amino hepatopankreas  dan daging pada induk  udang jantan alam lebih  tinggi dibandingkan pada induk udang jantan F-1. Penggunaaan spematofora jantan alam masih lebih baik daripada jantan budidaya pada inseminasi induk betina F-1 udang windu.
KATA KUNCI: fertilitas; inseminasi buatan; spermatofora; udang windu F-1
ABSTRACT: The effects of different spermatophores in artificial insemination of the first derivative (F-1) of tiger  shrimp female  broodstock  on their  spawning rate  and  egg quality  and  on their  larvae derivative (F-2). By: Samuel Lante and Usman
This study was aimed at evaluating the spawning rate of F-1 female tiger shrimp and the quality of their egg and larvae derivatives (F-2) by artificial insemination using different sources of male shrimp spermatophore. The treatments consisted of broodstock of F-1 female tiger shrimp inseminated with different male spermatophores, namely: cultivated F-1 male spermatophore (S-1), and wild male spermatophore (S-A). Data on spawning performance of F-1 female tiger shrimp and amino acid profile in the hepatopancreas and muscle of male tiger shrimp and larval morphology were analyzed descriptively.The vitality of larvae was analyzed using t-test. The results showed that the broodstock of F-1 female tiger shrimp inseminated with S-1 treatment had spawning rate of 67%; fecundity of 179,257 egg; total egg production of 1,434,053 eggs; egg fertilization rate of 86.2%; hatching rate of 59.8%; and total nauplii production of 738,439 ind. Broodstock of F-1 female inseminated with S-A treatment had higher values for spawning rate of 75%, fecundity of 215,489 egg; total egg production of 1,939,399 egg; egg fertilization rate of 88.9%; hatching rate of 62.7%; and total nauplii production of 1,081,140 ind. The produced egg diameter (248-255 ¼m) and larva quality were relatively same between the two treatments. Amino acid profiles in the hepatopancreas and muscle were higher in the wild male broodstock compared to the cultivated (F-1) male broodstock. In conclusion, wild male spermatophore is generally better than the cultivated F-1 male spermatophore for artificial insemination of female broodstock F-1.
KEYWORDS: fertility; artificial insemination; spermatophores; tiger shrimp F-1

## PENDAHULUAN
Produksi  induk  udang  windu  (Penaeus  monodon) hasil budidaya telah berhasil dilakukan. Induk betina hasil budidaya dapat mencapai bobot  100 g dan induk jantan  dapat  mencapai  bobot  70  g.  Induk  udang windu hasil budidaya telah berhasil memproduksi telur. Namun telur yang dipijahkan tidak terbuahi. Telur yang tidak dibuahi disebabkan induk betina tidak membawa spermatofora pada telikumnya. Hal ini diduga karena tidak terjadi perkawinan antara induk betina dan jantan secara alami di tambak atau bak pemeliharaan (Coman et al., 2005; Hoa, 2009). Tidak terjadinya pembuahan alami  antara  lain  disebabkan  spermatofora  belum matang  atau  kualitas  rendah  yang  ditandai  dengan warna spermatofora cenderung bening (Laining et al., 2015).  Pongtippatee  et  al.  (2007)  mengemukakan bahwa  tingkat  pembuahan  alami  yang  rendah berhubungan dengan kondisi fertilitas induk jantan. Untuk mendapatkan  telur yang terbuahi,  salah satu caranya  adalah  melakukan  inseminasi  buatan. Inseminasi buatan pada udang windu hasil budidaya telah berhasil dilakukan (Bart et al., 2006; Coman et al., 2007; Hoa, 2009; Arnold et al., 2012; dan Laining et  al.,  2013).  Teknik  inseminasi  buatan  dapat menghasilkan telur yang terbuahi (Lante et al., 2018). Namun  jumlah  larva  yang  dihasilkan  masih  relatif sedikit.  Hal  ini  diduga  karena  spermatofora  yang dimasukkan  terlepas  dari  telikum  udang  betina sebelum proses pembuahan pada saat pemijahan.
Inseminasi  buatan  pada  udang  windu  alam menggunakan sumber dan jumlah spermatofora yang berbeda  menghasilkan  daya  tetas  telur  yang  tidak berbeda  (Lante  &  Laining,  2016).  Demikian  pula performa  reproduksi  udang  windu  transgenik pascainseminasi  buatan  menggunakan  sumber spermatofora  yang  berbeda  menunjukkan  bahwa inseminasi buatan dan reproduksi induk betina (jumlah telur,  diameter  telur,  total  telur  terbuahi,  dan  daya tetas  telur)  dan  mutu  larva  yang  dihasilkan  tidak dipengaruhi oleh sumber spermatofora induk jantan (Lante et al., 2018). Informasi keberhasilan pemijahan udang  windu  betina  (F-1)  hasil  budidaya  dengan inseminasi  buatan  menggunakan  sumber spermatofora yang berbeda sangat terbatas. Sumber spermatofora  (induk  jantan  yang  berbeda)  dapat menyebabkan perbedaan  kualitas sperma,  terutama terkait dengan kualitas nutrisi pakan yang dikonsumsi oleh induk udang. Banyak komponen nutrisi dari pakan yang terlibat dalam menentukan kualitas sperma antara lain  protein  dan  asam  amino  penyusunnya.  Asam amino ini sangat penting dalam proses pembentukan dan  penguatan  jaringan  organ  reproduksi, vitelogenesis, penyusun, dan motilitas sperma, serta tingkat pembuahan (Cheah & Yang, 2011; Fernandez-
Palacios et al., 2011). Oleh karena itu, penelitian ini bertujuan untuk mengevaluasi keberhasilan pemijahan induk betina F-1 hasil budidaya dan mutu telur, serta larva  turunannya  (F-2)  melalui  inseminasi  buatan menggunakan  spermatofora  induk  jantan  F-1  hasil budidaya dan jantan dari alam.

## BAHAN DAN METODE

## Hewan  Uji
Hewan  uji  yang  digunakan  adalah  induk  udang windu betina turunan pertama (F-1) hasil budidaya di tambak  yang  telah  berumur  18  bulan.  Inseminasi buatan  pada  induk  udang  betina  F-1  menggunakan spermatofora dari induk udang windu jantan berbeda sebagai  perlakuan  yaitu:  spermatofora  dari  induk jantan  F -1  hasil  budidaya  tambak  (S-1),  dan spermatofora dari induk jantan alam perairan Sulawesi Selatan (S-A). Bobot dan panjang udang windu betina dan jantan yang digunakan disajikan pada Tabel 1.
Tahap  awal  proses  inseminasi  buatan  adalah mengeluarkan  spermatofora  udang  jantan  dengan memberikan  kejutan  listrik  (Sandifer  et  al.,  1984). Kejutan listrik dilakukan dengan menggunakan trans- former elektrik yang dilengkapi dua elektroda. Kedua elektroda  ditempelkan  dekat  kaki  renang  ke-5  di bagian  bawah  tubuh  udang  jantan.  Adanya  kejutan listrik 15 volt/7 mA selama 2-3 detik secara teratur, akan  menyebabkan  udang  jantan  mengeluarkan spermatoforanya secara perlahan-lahan. Spermatofora yang dikeluarkan tersebut diambil menggunakan pinset kemudian dimasukkan ke dalam telikum udang windu betina  secara  hati-hati.  Aplikasi  inseminasi  buatan dilakukan di hari kedua pada udang windu betina yang baru ganti kulit moulting. Kemudian dilakukan ablasi mata pada udang windu betina yang telah diinseminasi dengan  tujuan  untuk  mempercepat  pematangan gonad (Nurdjana, 1985).
Pemeliharaan induk udang windu betina F-1 selama pematangan gonad dilakukan menggunakan bak beton volume 3 m 3 , ketinggian air 70 cm, serta pergantian air sebanyak 100% per hari. Udang windu betina F-1 diberi pakan kombinasi cacing laut, cumi, dan kerang sebanyak 15% dari biomassa udang dengan frekuensi pemberian tiga kali perhari yaitu pada pagi, siang, dan sore hari. Pakan tambahan berupa moist pellet komersial sebanyak 0,5% dari total bobot badan udang diberikan pada malam hari. Udang windu betina F-1 mengalami perkembangan kematangan gonad dalam kurun waktu 14-21  hari  setelah  ablasi.  Pengamatan  harian perkembangan  kematangan  gonad  induk  dilakukan setelah 10 hari ablasi setiap pukul 16.30-17.00 WITA. Induk matang (TKG-III) dipindahkan ke bak pemijahan volume 200 L. Pemijahan induk  terjadi pada malam
hari.  Jumlah  induk  yang  memijah  dihitung,  dan selanjutnya  dikembalikan  ke  bak  pematangan. Penghitungan  jumlah  telur  dilakukan  dengan  cara volumetri  yaitu  mengambil  sampel  60  mL  air  berisi telur sebanyak  tiga kali. Jumlah telur  rata-rata yang diperoleh dikonversi  ke total volume air  dalam bak pemijahan.  Penetasan  telur  dilakukan  dalam  bak pemijahan setelah dilakukan pembersihan. Panen nau- plii  dilakukan  pada  hari  berikutnya  setelah penghitungan. Sebelum digunakan sebagai hewan uji selanjunya, nauplii ditampung dalam ember 10 liter dan didesinfeksi dengan menggunakan iodine 100 mg/ L selama lima menit.
Pemeliharaan nauplii dilakukan dalam bak volume 1 ton sebanyak empat buah mewakili dua perlakuan dan dua ulangan dengan kepadatan naupli adalah 75 ekor/L pada salinitas 30-32 ppt. Pakan alami berupa Chaetoceros sp. diberikan pada stadia naupli-6 sampai zoea-3 sebanyak 5.000-20.000 sel/mL, sedangkan pada stadia  mysis-1  sampai  postlarva-3  (PL-3)  diberikan Skeletonema sp. dengan kepadatan 25.000-35.000 sel/ mL dan naupli Artemia salina sebanyak 5-15 naupli/larva, serta pakan  komersial untuk larva  zoea, mysis,  dan postlarva. Pergantian air pada pemeliharaan larva mulai dilakukan pada stadia zoea-3 hingga stadia PL sebanyak 15%-50%. Panen larva dilakukan setelah  mencapai PL- 12. Beberapa ekor induk jantan F-1 hasil budidaya (S- 1) dan induk jantan alam (S-A) dibedah dan diambil hepatopankreas  dan  dagingnya,  lalu  dikeringkan dengan freezer dryer untuk selanjutnya dianalisis profil asam aminonya.
Parameter  yang  diamati  meliputi:  tingkat pemijahan  induk  betina  F-1,  fekunditas  telur,  total produksi telur, tingkat pembuahan telur, diameter telur, daya tetas telur, jumlah produksi nauplii, mutu larva, profil asam amino hepatopankreas, dan daging udang jantan,  dan  kualitas  air  media  pemeliharaan.
Pengamatan kualitas air dilakukan di bak pematangan dan  bak  pemeliharaan  larva  meliputi:  suhu,  pH, salinitas,  dan  oksigen  terlarut.  Tingkat  pemijahan adalah  persentase  jumlah  induk  yang  memijah  dari jumlah induk yang diinseminasi. Tingkat pembuahan telur  dihitung  berdasarkan  persentase  jumlah  telur yang terbuahi oleh sperma, sedangkan daya tetas telur dihitung  berdasarkan  persentase  jumlah  telur  yang menetas  menjadi  nauplii  terhadap  jumlah  produksi telur dan terhadap jumlah telur yang terbuahi.
Fekunditas merupakan jumlah telur yang dihasilkan oleh  seekor induk  udang  windu (Yano  et  al.,  1996), yang dihitung dengan rumus:
di mana: F = fekunditas (butir) Vb= volume air di dalam bak pemijahan (L) Vg = volume air sampel dalam beaker glass (mL) n = jumlah telur sampel yang ada di dalam beaker glass
(butir)
Pengamatan mutu postlarva (PL-12) menggunakan uji  vitalitas  larva. Pengamatan  vitalitas  larva  (PL-12) dilakukan secara kimiawi yaitu dengan perendaman formalin konsentrasi berbeda (150; 175; 200 mg/L), dan secara fisik yaitu dengan perendaman air tawar dan pengeringan dengan waktu berbeda. Pengamatan respons  larva  normal  dan  larva  stress  setelah  uji dilakukan. Uji morfologi larva dengan cara meletakkan PL satu per satu pada objek gelas dan secara teratur dilakukan  pengamatan  morfologinya,  penampakan morfologi larva normal diberi kode positif dan larva tidak normal diberi kode negatif (Lante et al., 2018). Persentase bobot morfologi larva meliputi: antenulla, hepatopankreas,  usus  depan,  usus  belakang,  ekor kipas, otot ekor, kromatofor, penempelan jamur pada kulit, dan larva stres, mengacu pada metode yang telah
S-1 S-A Jumlah udang betina (ekor)/Number of female (ind.) 12 12 Bobot udang betina/Female body weight  (g) 114.6 ± 14.4 119.8 ± 20.9 Panjang udang betina/Female body length  (cm) 22.8 ± 1.3 22.6 ± 1.1 Jumlah udang jantan (ekor)/Number of male (ind.) 12 12 Bobot udang jantan/Male body weight  (g) 81.0 ± 6.4 79.2 ± 10.1 Panjang udang jantan/Male body length  (cm) 20.5 ± 0.8 20.7 ± 0.8 Perlakuan (Treatments ) Variabel (Variable ) Tabel 1. Bobot  dan  panjang (±  SD)  udang  windu  yang digunakan  dalam  inseminasi buatan menggunakan spermatofora F-1 (S-1) dan alam (S-A)
Table 1. Body weight and total length (± SD) of tiger shrimp used for artificial insemination using of F-1 male spermatophore (S-1) and wild male spermatophore (S-A)
  n x Vg : Vb F 
dikembangkan Haryanti et al. (2005). Nilai morfologi larva diperoleh dengan menggunakan persamaan Lante et al. (2018) sebagai berikut:
di mana: N M = nilai morfologi LN = jumlah larva normal yang diamati TL = total larva yang diamati PBM= persentase bobot morfologi
Analisis  kandungan  asam  amino  pada hepatopankreas dan daging udang jantan S-1 dan S-A dilakukan di Laboratorium Terpadu Institut Pertanian Bogor (IPB), Bogor. Sebagai data penunjang dilakukan pengamatan kualitas air pada bak pematangan induk dan pemeliharaan larva meliputi: pH, oksigen terlarut, salinitas,  dan  suhu.  Data  performa  reproduksi (pemijahan) induk udang betina F-1, profil asam amino hepatopankreas dan daging udang jantan S-1 dan S-A, serta morfologi larva yang diperoleh disajikan dalam bentuk  tabel  dan  dianalisis  secara  deskriptif. Sedangkan  data  uji  vitalitas  lar va  dianalisis menggunakan uji t.

## HASIL DAN BAHASAN

## Performa  Reproduksi
Hasil pemijahan udang windu betina F-1 setelah inseminasi buatan menggunakan spermatofora udang perlakuan S-1 dan S-A disajikan pada Tabel 2.
Tabel 2 memperlihatkan bahwa dari 12 ekor induk betina F-1 yang diiseminasi, sebanyak 67% (delapan
ekor)  yang  memijah  pada  perlakuan  S-1,  dan  75% (sembilan ekor) yang memijah pada perlakuan SA. Pada perlakuan S-1 didapatkan fekunditas telur sebanyak 179.257 butir/induk (total produksi telur 1.434.053 butir),  lebih  rendah  daripada  perlakuan  S-A  dengan fekunditas telur sebanyak 215.489 butir/induk (total produksi telur 1.939.399 butir). Sementara diameter telur yang dihasilkan reatif sama dari kedua perlakuan tersebut.
Pada  perlakuan  S-1,  jumlah  induk  yang  telurnya menetas adalah 75% dengan tingkat pembuahan telur sebesar  86,2%;  sementara  pada  perlakuan  SA didapatkan jumlah induk yang telurnya menetas adalah 78% dengan tingkat pembuahan telur sebanyak 88,9%. Tingkat pemijahan dan pembuahan telur yang lebih tinggi  pada  perlakuan  S-A  dibandingkan  dengan perlakuan  S-1  secara  langsung  memengaruhi  total nauplii  yang  dihasilkan  pada  kedua  perlakauan. Perlakuan  S-A  menghasilkan  nauplii  lebih  banyak (1.081.140  ekor)  daripada  perlakuan  S-1  (738.439 ekor).  Apabila  derajat  penetasan  telur  dihitung berdasarkan total telur terbuahi, maka perlakuan S-A menghasilkan  derajat  penetasan  telur  lebih  banyak (62,7%) daripada perlakuan S-1 (59,8%). Daya tetas telur terbuahi yang diperoleh pada penelitian ini relatif sama dengan daya tetas telur terbuahi berkisar 61,6%-61,7% pada udang windu alam (Lante & Laining, 2016). Daya tetas  telur  terbuahi  pada  penelitian  ini  lebih  tinggi daripada daya tetas telur terbuahi udang windu alam lainnya yaitu 52,0% yang dilaporkan oleh Laining et al. (2015), dan udang windu transgenik dengan daya tetas telur terbuahi berkisar 53%-55% (Lante et al., 2018). Namun daya tetas telur terbuahi pada penelitian ini
PBM x TL LN NM 
Tabel 2. Pemijahan, telur, dan larva yang dihasilkan oleh induk udang windu betina F-1 dengan inseminasi buatan menggunakan spermatofora S-1 dan S-A
Table 2. Spawning,  egg,  and  larvae  produced  by  F-1  female  broodstock  of  tiger  shrimp  after  inseminated  with spermatophores S-1 and S-A
S-1 S-A Jumlah induk betina diinseminasi (ekor)/Number of female inseminated (ind.) 12 12 Tingkat pemijahan induk betina (Spawning rate of female broodstock ) (%) 67 75 Fekunditas  (telur)/Fecundity (egg) 179,257 215,489 Total produksi telur (butir)/Total egg production 1,434,053 1,939,399 Diameter telur (Egg diameter ) (µm) 248 ± 8.7 (n=160) 255 ± 11 (n=180) Jumlah induk betina memijah yang menetas telur Number of spawned female that hatch egg  (%) 75 78 Tingkat pembuahan telur (Egg fertility rate ) (%) 86.2 88.9 Daya tetas dari total telur (Hatching rate of total egg ) (%) 51.5 55.8 Daya tetas telur terbuahi (Hatching rate of egg fertility ) (%) 59.8 62.7 Jumlah produksi nauplii (ekor)/Total production of nauplii (ind.) 738,439 1,081,140 Variabel Variable Perlakuan (Treatments )
lebih rendah bila dibandingkan dengan daya tetas telur terbuahi pada udang windu domestikasi berkisar 81%- 84% yang dilaporkan oleh Hoa (2009).
Perbedaan daya tetas telur terbuahi udang windu ini diduga disebabkan mutu spermatofora udang jantan yaitu  bobot  spermatofor  dan  jumlah  sperma  yang diinseminasikan berbeda. Meskipun kualitas sperma yang  digunakan  untuk  inseminasi  buatan  pada percobaan ini tidak diamati, tetapi pada pengamatan sebelumnya diketahui bahwa kepadatan sperma dalam spermatofora  udang  windu  hasil  budidaya  adalah 90.222  x  10 3 sel/induk  dan  udang  jantan  alam  asal perairan Takalar dan Polman berturut-turut 196.263 x 10 3 dan 159.438 x 10 3 sel/induk (Lante et al., 2014). Hal ini menunjukkan bahwa performa pemijahan udang windu betina F-1 dengan inseminasi buatan perlakuan S-A lebih baik daripada perlakuan S-1. Hal ini diduga berkaitan dengan konsumsi nutrisi makanan alami oleh induk udang windu di alam yang beranekaragam dan cukup tinggi, dibandingkan konsumsi pakan oleh induk udang  windu  di  tambak  yang  mengandalkan  pakan buatan. Hal ini tergambar pada profil kandungan asam amino dalam hepatopankreas dan daging induk udang jantan S-1 dan S-A (Tabel 3). Pada Tabel 3, terlihat bahwa
jumlah kandungan asam amino hepatopankreas lebih rendah pada udang jantan S-1 yaitu 28,2% dibandingkan dengan jumlah kandungan asam amino hepatopankreas pada  udang  jantan  S-A  yaitu  39,6%.  Demikian  pula jumlah kandungan asam amino dalam daging udang jantan S-1 lebih rendah (64,3%) dibandingkan jumlah kandungan asam amino dalam daging udang jantan S- A  (67,0%).  Kandungan  asam  amino  khususnya  yang bersifat esensial (histidine, threonine, arginine, methion- ine, valine, phenylalanine, iso-leucine, leucine, dan lysine) sangat dipengaruhi kandungan asam amino dari pakan yang dikonsumsi dan tingkat pemanfaatan asam amino tersebut dalam proses metabolismenya (Mambrini & Guillaume, 2001; Halver & Hardy, 2002). Asam amino sebagai  komponen  utama  protein  sangat  penting dalam proses pembentukan dan penguatan jaringan organ  reproduksi,  vitelogenesis,  dan  penyusun sperma (Fernandez-Palacios et al., 2011). Selanjutnya menurut Wu et al. (2009), jumlah asupan asam amino arginin  berpengaruh  terhadap  proses  spermatogen- esis dan motilitas sperma. Selain itu, L-carnitin yang merupakan senyawa ammonium kation yang disintesis dari asam amino lycine dan methionine, juga sangat berperan dalam meningkatkan laju spermatogenesis
Tabel 3. Profil asam amino  (% bobot kering) hepatopankreas dan  daging udang windu jantan S-1 dan S-A
Table 3. Amino acid profile (% dry weight) of hepatopancreas and muscle of male broadstock shrimp for S-1 and S-A
Hepatopankreas Hepatopancreas Otot Muscle Hepatopankreas Hepatopancreas Otot Muscle Aspartic acid 3.35 6.65 4.64 6.78 Glutamic acid 4.22 11.38 6.22 11.83 Serine 0.97 2.51 1.36 2.59 Histidine 0.80 1.02 1.05 1.24 Glycine 2.57 5.02 2.87 5.42 Threonine 1.31 2.8 1.84 2.96 Arginine 2.28 6.99 2.98 7.72 Alanine 1.82 4.06 2.65 3.99 Tyrosine 1.27 2.25 1.71 2.16 Methionine 0.64 1.96 0.98 2.07 Valine 1.83 3.30 2.74 3.41 Phenylalanine 1.42 2.86 2.12 2.99 I-Leucine 1.49 3.13 2.29 3.25 Leucine 2.29 5.15 3.44 5.39 Lycine 1.98 5.22 2.74 5.21 Total 28.23 64.30 39.64 67.00 Asam amino (Amino acid ) Parameter Parameters
Perlakuan (Treatments )
S-1 S-A
dan motilitas sperma, menyediakan energi untuk sper- matozoa,  serta  melindungi  membrane  sel  dan  DNA dari  kerusakan  yang  diinduksi  oleh  radikal  bebas (Cheah & Yang, 2011). Adanya kandungan asam amino tersebut yang tinggi dalam hepatopankreas dan daging induk jantan SA mengindikasikan adanya proses sper- matogenesis dan kualitas sperma yang dihasilkan lebih baik.  Hal  tersebut  menyebabkan  terjadinya  tingkat pembuahan dan penetasan telur yang lebih tinggi pada induk  F-1  yang  diinseminasi  dengan  perlakuan  S-A dibandingkan dengan perlakuan S-1.

## Uji Vitalitas Post Larva-12 (PL-12)
Pengamatan  uji  vitalitas  postlarva  (PL) menggunakan perendaman formaldehyde, perendaman air tawar dan pengeringan disajikan pada Tabel 4.
Hasil pengamatan PL pada perlakuan S-1 dan S-A dengan pengujian menggunakan perendaman forma- lin,  perendaman  air  tawar,  dan  pengeringan menunjukkan  bahwa  tingkat  stres  PL  meningkat dengan  meningkatnya  konsentrasi  formalin,  lama perendaman air tawar, dan pengeringan. Kondisi stres PL pulih kembali setelah dipindah ke dalam air laut tanpa  perlakuan  dan  diaerasi.  Uji  vitalitas  PL menggunakan  perendaman  formalin  konsentrasi berbeda selama 30 menit, perendaman air tawar dan pengeringan  dengan  waktu  berbeda  menghasilkan sintasan  normal  PL  tidak  berbeda  antara  kedua perlakuan (P>0,05). Mutu PL relatif sama dikarenakan kemampuannya  merespons  formalin,  air  tawar,  dan
tanpa  air  selama  beberapa  saat  kemudian  kembali dikondisikan  pada  air  laut  tanpa  perlakuan  masih diperoleh sintasan PL pascauji vitalitas masing-masing 100%  untuk  kedua  perlakuan.  Kemampuan  PL merespons secara kimiawi dan secara fisik pasca uji dilakukan menunjukkan bahwa PL turunan udang windu F-1 dapat beradaptasi terhadap tekanan lingkungan pemeliharaan.
Sintasan PL pascauji perendaman formalin selama 30 menit pada penelitian ini lebih tinggi dari sintasan PL  dengan  perendaman  formalin  konsentrasi  yang sama yaitu 93% oleh Haryanti et al. (2003). Perbedaan sintasan PL yang diperoleh diduga disebabkan stadiadan mutu  PL  yang  digunakan  berbeda.  Pada  penelitian Haryanti et al. (2003) menggunakan udang windu sta- dia PL-10,  sedangkan pada penelitian  ini digunakan stadia  PL-12.  Stadia  PL  berukuran  lebih  besar kecenderungan memiliki daya tahan tubuh lebih kuat terhadap  faktor  lingkungan  dibandingkan  stadia  PL lebih  kecil.  Perbedaan  kemampuan  PL  dalam merespons  uji  vitalitas  yang  diberikan  diduga  pula berhubungan dengan perlakuan yang diterapkan selama pemeliharaan larva. Oleh karena itu, hasil pengamatan ini memperlihatkan bahwa kualitas PL turunan udang betina  F-1  yang  diinseminasi  spermatofora  udang jantan S-1 dan S-A tidak berbeda.

## Uji Morfologi Post Larva-12
Uji morfologi postlarva (PL) udang dilakukan untuk mengetahui kualitas PL sebagai salah satu syarat bahwa

## Tabel 4. Uji  vitalitas  postlarva  dengan  perendaman  formalin,  perendaman  air  tawar,  dan pengeringan
Table 4. Vitality of tiger shrimp postlarvae after treated by formaldehyde, dry, and freshwater tests
Keterangan: Nilai dalam baris yang sama diikuti oleh superscript yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata
(P>0,05)
Remarks: Means  in  the  same row  followed by  the same  superscript are  not significantly  different (P>0,05) Sehat
Normal  (%)
Stres Stress  (%)
Sehat
Normal  (%) Stres Stress  (%) 150 mg/L 91 ± 3.5 a 9 ± 3.5 91 ± 3.5 a 9 ± 3.5 175 mg/L 73 ± 6.5 b 26 ± 6.5 85 ± 4.0 a 15 ± 4.0 200 mg/L 71 ± 3.5 b 29 ± 3.5 73 ± 6.5 a 27 ± 6.9 5 menit (minute ) 64 ± 10.3 a 36 ± 10.3 62 ± 10 a 38 ± 10 10 menit (minute ) 47 ± 13.3 a 53 ± 13.5 69 ± 7.5 a 31 ± 7.5 15 menit (minute ) 51 ± 3.5 a 49 ± 3.5 55 ± 4.0 a 45 ± 4.0 Perendaman formaldehyde (Formaldehyde immersion ) Perendaman air tawar (Freshwater immersion ) Uji vitalitas larva Larvae vitality test Perlakuan (Treatments )
S-1 S-A
PL yang dihasilkan bermutu  dan sehat. Pengamatan PL diamati secara mikroskopis mulai dari bagian luar seperti  antenulla,  kepala,  penempelan  sampai  ekor, dan bagian dalam meliputi: hepatopankreas dan saluran pencernaan  PL.  Hasil  pengamatan  secara  morfologi turunan udang betina F-1 pada penelitian ini diperoleh nilai morfologi adalah 89 pada perlakuan S-1 dan 90 pada perlakuan S-A disajikan pada Tabel 5.
Perbedaan nilai morfologi PL pada percobaan ini diperoleh pada organ hepatopankreas, penempelan, dan tingkat stres PL kedua perlakuan. Nilai morfologi hepatopankreas  lebih  tinggi  pada  perlakuan  S-1 disebabkan hepatopankreasnya bersih dan transparan, namun  ada  bintik  hitam  pada  hepatopankreas  PL perlakuan S-A. Demikian pula nilai penempelan pada PL perlakuan S-1 lebih tinggi (15) dari nilai PL perlakuan SA yaitu 10. Bobot nilai penempelan PL perlakuan S-1 lebih  tinggi  daripada  PL  perlakuan  S-A  disebabkan jumlah protozoa yang menempel di kulit PL perlakuan S-1  lebih  sedikit  daripada  yang  menempel  di  PL perlakuan S-A. Tetapi tingkat stres PL turunan udang betina F-1 perlakuan S-1 lebih tinggi daripada tingkat stres  PL  perlakuan  SA  sehingga  menghasilkan  nilai morfologi yang rendah (10). Keragaan nilai morfologi PL  yang  diperoleh  dari  sampel  sebanyak  15  ekor/ perlakuan memperlihatkan bahwa nilai morfologi PL relatif sama antar perlakuan S-1 dan S-A.
Nilai morfologi PL yang diperoleh pada penelitian ini relatif sama dengan nilai morfologi PL udang hasil pemijahan ablasi dan diinduksi hormon pematangan tanpa ablasi masing-masing 87 dan 91 (Lante et al., 2015), tetapi lebih tinggi daripada nilai morfologi PL udang  P.  merguiensis  dan  udang  L.  vannamei  selama pemeliharaan larva dengan aplikasi dan tanpa aplikasi bakteri  Alteromonas  sp.  BY-9  yaitu  65,7  dan  75,0 (Haryanti  et  al.,  2003).  Nilai  morfologi  PL  pada
Tabel 5. Nilai morfologi larva perlakuan S-1 dan S-A Table 5. Larvae morfology value of S-1 and S-A treatments
percobaan ini lebih tinggi dari nilai morfologi PL udang transgenik  berkisar  75-85  (Lante  et  al.,  2018).  Uji vitalitas  dan  morfologi  PLmerupakan  salah  satu indikator untuk mengetahui performa PL udang windu yang  bermutu.  Oleh  karena  itu,  uji  vitalitas  dan morfologi PL mutlak dilakukan secara berkelanjutan pada perbenihan udang windu.
Hasil pemantauan kualitas air selama pematangan pemijahan meliputi pH 7,8-7,9; oksigen terlarut 4,5- 5,5  mg/L;  salinitas  34,2-34,8  ppt;  dan  suhu  28,2°C- 29,8°C; serta pada pemeliharaan larva antara lain pH 8,2-8,9; oksigen terlarut 4,5-5,7 mg/L; salinitas 34,2- 34,4 ppt; dan suhu 28,9°C-30,9°C. Parameter kualitas air tersebut mendukung pemijahan udang betina F-1 dan pemeliharaan larva turunannya selama penelitian berlangsung. Bila melihat performa reproduksi udang betina  F-1  hasil  budidaya  mengindikasikan  relatif berbeda antara yang diinseminasi spermatofora udang jantan  S-1  dan  S-A,  namun  hasil  analisis  mutu  PL turunannya tidak berbeda, maka pada penelitian ini didapatkan gambaran bahwa sperma udang jantan alam (S-A)  memiliki  mutu  lebih  baik  dari  sperma  udang jantan  F-1  hasil  budidaya  (S-1),  tetapi  mutu  larva turunan udang betina F-1 relatif sama antara udang betina  F-1  yang  diinseminasi  spermatofora  udang jantan F-1 (perlakuan S-1) dengan udang betina F-1 yang  diinseminasi  spermatofora  udang  jantan  alam (perlakuan SA).

## KESIMPULAN
Inseminasi  buatan  pada  induk  udang  betina  F-1 menggunakan  spermatofora  jantan  S-A  memiliki tingkat  pemijahan,  fekunditas,  tingkat  pembuahan telur, daya tetas telur, dan total produksi nauplii, lebih tinggi  daripada  yang  dimiliki  oleh  induk  betina  F-1 yang  diinseminasi  dengan  spermatofora  jantan  S-1.
S 1
SA Antenulla (Antenulla ) 5 5 Hepatopankreas (Hepatopancreas ) 20 16 Usus depan (Midgut ) 15 15 Usus belakang (Intestine ) 6 7 Otot ekor (Telson ) 10 10 Uropoda (Uropode ) 4.5 4.5 Kromatofor (Chromatophore ) 4.5 4 Penempelan (Attachment ) 15 10 Stres (Stress ) 9 13.5 Total 89 90 Parameter morfologi
Morphology parameter
Perlakuan (Treatments )*
Namun diameter telur (248-255 µm) dan kualitas larva yang dihasilkan relatif sama di antara kedua perlakuan. Profil asam amino hepatopankreas dan daging pada induk udang jantan alam lebih tinggi dibandingkan pada induk  udang  jantan  F-1.  Penggunaaan  spematofora jantan  alam  masih lebih  baik  daripada  spematofora jantan  F-1  pada  inseminasi  induk  betina  F-1  udang windu.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Terima kasih disampaikan kepada semua peneliti dan teknisi pada Instalasi Pembenihan Udang Windu (IPUW) di Barru yang telah membantu penelitian ini. Penelitian ini merupakan kegiatan yang didanai oleh DIPA-APBN tahun 2015.

## DAFTAR  ACUAN
Arnold,  S.J.,  Coman,  G.J.,  Burridge,  C.,  &  Rao,  M.
(2012). A novel approach to evaluate the relation- ship between measures of male fertility and egg fertilization  in  Penaeus  monodon.  Aquaculture, 338, 181-189.
Bart,  A.,  Choosuk,  S.,  &  Thakur,  D.P.  (2006).  Sper- matophore cryopreservation and artificial insemi- nation  of  black  tiger  shrimp,  Penaeus  monodon (Fabricus). Aquaculture Research, 37, 523-528.
Cheah,  Y.  &  Yang,  W.  (2011).  Functions  of  essential nutrition  for  high  quality  spermatogenesis.  Ad- vances in Bioscience and Biotechnology, 2, 182-197.
Coman,  G.J.,  Crocos,  P.J.,  Arnold,  S.J.,  Keys,  S.J., Murphy,  B., &  Preston, N.P.  (2005). Growth,  sur- vival  and  reproductive  performance  of  domesti- cated Australian  stock of  the giant  tiger prawn, Penaeus  monodon  reared  in  tanks  and  raceways. Journal of World Aquaculture Society, 36, 464-479.
Coman, G.J., Arnold, S.J., Callaghan, T.R., & Preston,
N.P. (2007). Effect of two maturation diet combi- nations on reproductive performance of domes- ticated Penaeus monodon. Aquaculture, 263, 75-83. Fernandez-Palacias, H., Norberg, B., Izquierdo, M., & Hamre, K. (2011). Effects of  broodstock diet on eggs and larvae. In Holt, G.J. (Ed.). Larva Fish Nu- trition.  Iowa,  USA:  John  Wiley  &  Sons,  Inc., p. 153-182.
Halver,  J.E.  &  Hardy,  R.W.  (2002).  Nutrient  flow  and retention. In Halver, J.E. & Hardy, R.W. (Eds.). Fish Nutrition. New York: Academic Press, p. 755-770. Haryanti, Permana, I G.N., Sembiring, S.B.M., Sugama, K.,  &  Murtini,  J.T.  (2003).  Penerapan  bakteri, Alteromonas sp. BY-9 awetan untuk produksi benih udang  windu,  Penaeus  monodon.  Jurnal  Penelitian Perikanan Indonesia, 9(2), 47-55.
Har yanti,  Sembiring,  S.B.M.,  Permana,  I  G.N., Wardana,  K.,  &  Muzaki,  A.  (2005).  Pembenihan Penaeus  semisulcatus/Penaeus  merguiensis  serta pemantapan  teknik  pembenihan  Litopenaeus vannamei  melalui  kontrol  biologi.  Laporan  Balai Besar  Riset  perikanan  Budidaya  Laut,  Gondol, 17 hlm.
Hoa, N.D.  (2009). Domestication  of black  tiger  shrimp (Penaeus monodon) in recirculation systems in Viet- nam.  Ph.D.  thesis.  Ghent  University,  Belgium, 183 pp.
Laining,  A.,  Usman,  &  Syah,  R.  (2013).  The  use  of seawormmeal  in  maturation  diet  as  partial  sub- stitution of fresh diet for pond reared tiger shrimp broodstock,  Penaeus  monodon.  Indonesian Aaquaculture Journal, 9(1), 125-135.
Laining,  A.,  Lante,  S.,  &  Usman.  (2015).  Induksi pematangan  gonad  dan  peningkatan  tingkat pembuahan  telur  induk  udang  windu,  Penaeus monodon melalui rangsangan hormonal tanpa ablasi mata. Jurnal Riset Akuakultur, 10(1), 61-68.
Lante,  S.,  Laining,  A.,  &  Parenrengi,  A.  (2014). Performa  induk  udang  windu  (Penaeus  monodon Fab.)  jantan  alam  dan  domestikasi  tambak. Prosiding Forum Inovasi Teknologi Akuakultur, hlm. 693-700.
Lante,  S.,  Trismawanti,  I.,  &  Laining,  A.  (2015). Performa post larva udang windu, Penaeus monodon hasil pemijahan induk yang diablasi dan diinduksi hormon pematangan gonad tanpa ablasi pascauji vitalitas dan morfologi. Prosiding Seminar Nasional Perikanan  Indonesia.  Pusat  Penelitian  dan Pengembangan  Masyarakat.  Sekolah  Tinggi Perikanan. Jakarta, hlm. 367-374.
Lante,  S.  &  Laining,  A.  (2016).  Aplikasi  inseminasi buatan pada udang windu, Penaeus monodon alam menggunakan sumber  dan jumlah  spermatofora yang berbeda. Jurnal Riset Akuakultur, 11(3), 271- 280.
Lante,  S.,  Tenriulo,  A.,  &  Parenrengi,  A.  (2018). Performa  reproduksi  udang  windu,  Penaeus monodon  transgenik  pascainseminasi  buatan menggunakan sumber spermatofora yang berbeda. Jurnal Riset Akuakultur, 3(1), 11-20.
Mambrini,  M.  &  Guillaume,  J.  (2001).  Protein  nutri- tion.  In  Guillaume,  J.,  Kaushik,  S.,  Bergot,  P.,  & Metailler,  R.  (Eds.).  Nutrition  and  Feeding  of  Fish and  Crustaceans.  Chishester,  UK:  Praxis  Publish- ing Ltd., p. 81-109.
Nurdjana, M.L. (1985). Pengaruh ablasi mata terhadap perkembangan telur dan embrio serta kualitas larva udang  windu  (Penaeues  monodon  Fab.).  Disertasi.
Fakultas  PascaSarjana,  Universita  Gadjah  Mada. Yogyakarta, 470 hlm.
Pongtippatee,  P.,  Vanichhviriyakit,  R.,  Chavadej,  J., Plodpai,  P.,  Pratoomchart,  B.,  Sobhon,  B.,  & Withyachumnarkul, B. (2007). Acrosome reaction in  the  sperm  of  the  black  tiger  shrimp,  Penaeus monodon  (decapoda,  Penaidae).  Aquaculture  Re- search, 38, 1635-1644.
Sandifer, P.A., Lawrence, A.L., Harris, S.G., Chamber- lain, G.W., Stokes, A.D., & Bray, W.A. (1984). Elec- trical stimulation of spermatophore expulsion in marine shrimp. Aquaculture, 41, 181-187.
Wu,  G.,  Bazer,  F.W.,  Davis,  T.A.,  Kim,  S.W.,  Li,  P., MarcRhoads,  J.,  Satterfield,  M.C.,  Smith,  S.B., Spencer, T.E., & Yin, Y. (2009). Arginine metabo- lism and nutrition in growth, health and disease. Amino Acids, 37, 153-168.
Yano,  I.,  Ruchimat.  T., Sutarmat,  T.,  Tridjoko,  Lante, S.,  Hutapea,  J.H.,  Makinouchi,  S.,  &  Kuma,  C. (1996).  Effects  of  vitamin  E  on  maturation  and spawning in giant tiger prawn, Penaeus monodon. Suisanzoshoku, 44(4), 497-502.