## PENGARUH TANAMAN INANG DAN MEDIA TANAM PADA PRODUKSI FUNGI MIKORIZA ARBUSKULAR
Maria Viva Rini 1 dan Vida Rozalinda 2
(1) Dosen pada Jurusan Budidaya Pertanian Fakultas Pertanian Universitas Lampung (2)  Research and Development Malaysian Agri Hi-Tech Sdn. Bhd. Malaysia,

## ABSTRACT
EFFECT  OF  HOSTS  AND  MEDIA  ON  ARBUSCULAR  MYCORRHIZA  FUNGI  PRODUCTION. Host plant and medium are factors that affecting Abusrcular Mycorrhiza Fungi (AMF) production.  Therefore, for maximum FMA inoculums production, four different host (mays, sorghum, Centrosema pubescens  [CP], and Calopogonium mucunoides [CM]) and two medium (zeolit P-1 and zeolit P-3) were tested. The results showed that host from graminae (mays and sorghum) are better for AMF inoculums production as they gived higher root  infection  and  spore  production  compared  to  legume  (CP  and  CM).    No  significant  effect  was  detected between P-1 and P-3, hence both medium can be used for AMF production.  Furthermore, data obtained also showed that the effect of host on AMF production  was not affected by medium used.
Key words: Arbuscular Mycorrhiza Fungi, inoculums production, host, medium

## PENDAHULUAN
Berbagai  upaya  perbaikan  tanah  jenis Podsolik  Merah  Kuning  (PMK)  yang  mendominasi tanah  di  Indonesia  berupa  konservasi  tanah  dan  air secara  fisik,  kimia,  dan  biologi  telah  banyak dilakukan.    Sebagai  upaya  pelengkap  dari  usaha- usaha konservasi yang banyak menarik minat peneliti adalah penggunaan pupuk hayati dengan memanfaatkan  Fungi  Mikoriza  Arbuskular  (FMA) yang  diyakini  mampu  memperbaiki  kondisi  tanah dan  yang  paling  utama  meningkatkan  penyerapan unsur hara tanaman.
Fungi  Mikoriza  Arbuskular  adalah  suatu bentuk  simbiosis  mutualistik  antara  fungi  ( mykes ) dan perakaran ( rhiza ) tumbuhan tingkat tinggi (Imas et  al. ,  1989).    Simbiosis  antara  FMA  dengan perakaran  tanaman  bersifat  mutualistik  atau  saling menguntungkan  karena  tanaman  inang  memberi sebagian  fotosintat  pada  fungi,  sebaliknya  tanaman inang mendapatkan nutrien dari fungi.
Menurut  Lakitan  (1995),  keuntungan  dari keberadaan  FMA  adalah  meningkatkan  serapan fosfat oleh tanaman walaupun sesungguhnya serapan unsur-unsur  hara  yang  lain  dan  air  juga  ikut meningkat.    Salisbury  dan  Ross  (1995)  menyatakan bahwa  keuntungan  FMA  yang  paling  besar  pada tumbuhan  adalah  dalam  meningkatkan  penyerapan ion  yang  biasanya  berdifusi  secara  lambat  menuju akar  atau  yang  dibutuhkan  dalam  jumlah  banyak, terutama  fosfat,  NH 4 + ,  K + ,  dan  NO 3 - .    Oleh  karena beragamnya keuntungan yang diperoleh, maka sangat penting  mengenalkan  pupuk  hayati  fungi  mikoriza arbuskular  kepada  petani  untuk  pertanian  organik masa depan yang ramah lingkungan.
Fungi mikoriza arbuskular dalam asosiasinya mempunyai  kisaran  inang  yang  sangat  luas,  tetapi tingkat  efektivitasnya  berbeda,  beberapa  jenis  FMA
tertentu  menunjukkan  spesifikasi  untuk  memilih  dan berasosiasi dengan suatu jenis tanaman inang tertentu (Setiadi,  1990  yang  dikutip  oleh  Husna  2004).  Rini (1996)  melaporkan  bahwa  pemberian  campuran spesies Glomus mosseae dan Scutellospora calospora pada bibit kakao menghasilkan pertumbuhan  bibit  terbaik  dibandingkan  dengan pemberian G. mosseae saja atau S. calospora saja. Cara  yang  paling  umum  dipakai  dalam memroduksi  inokulan  FMA  adalah  dengan  metode kultur  pot  yaitu  FMA  yang  telah  diketahui keefektifannya  diinokulasikan  pada  tanaman  inang tertentu pada medium padat yang steril (Simanungkalit,  2004).  Untuk  memroduksi  FMA yang  akan  digunakan  sebagai  inokulan  di  lapangan dalam  bentuk  pupuk  hayati,  diperlukan  teknik  yang paling sesuai terutama dalam memilih tanaman inang dan  media  tanam  yang  digunakan.    Oleh  karena  itu, pemilihan  tanaman  inang  di  antara  tanaman  jagung dan  sorgum  (yang  memiliki  perakaran  luas),  serta Centrosema  pubescens (CP)  dan Calopogonium mucunoides (CM)  yang  memiliki  bintil  akar  untuk menghasilkan inokulum  yang banyak, perlu diujikan pada  media  zeolit  P-1  dan  P-3  agar  ditemukan kombinasi  yang  paling  efektif  untuk  produksi inokulum FMA.

## BAHAN DAN METODE PENELITIAN
Percobaan  ini  dilaksanakan  di  Rumah  Kaca dan  Laboratorium  Produksi  Perkebunan  Fakultas Pertanian,  Universitas  Lampung  Bandar  Lampung dari  bulan  Desember  2005  sampai  dengan  April 2006.
Perlakuan  diterapkan  dalam  rancangan perlakuan  faktorial  (4x2)  dengan  3  ulangan.    Faktor pertama adalah tanaman inang yaitu jagung, sorgum, Centrosema pubescens (CP), Calopogonium
mucunoides (CM)  dan  faktor  kedua  adalah  media tanam yaitu zeolit P-3 dan zeolit P-1.   Setiap satuan percobaan diterapkan pada petak percobaan menurut rancangan  kelompok  teracak  sempurna  (RKTS). Kehomogenan ragam antarperlakuan dan kemenambahan  model  diuji  dengan  uji  Bartlett  dan Tukey,  pemisahan  nilai  tengah  dilakukan  dengan menggunakan uji Beda Nyata Jujur (BNJ) 5%.

## Media Tanam
Media  tanam  yang  digunakan  sesuai  dengan perlakuan  yaitu  zeolit  P-1  dan  zeolit  P-3.    Sebelum dimasukkan ke dalam pot, zeolit dicuci sampai bersih dengan air kran kemudian dimasukkan ke dalam pot berukuran  1 liter  sebanyak  48  pot (24  pot  zeolit  P-1 dan 24 pot zeolit P-3).

## Inokulasi Mikoriza dan Penanaman
Fungi  Mikoriza  Arbuskular  yang  digunakan adalah Mycofer® (mengandung Gigaspora margarita,  Glomus  manihotis,  Glomus  etunicatum, dan Acaulospora tuberculata dengan jumlah spora ± 203  spora/50  g  Mycofer®)  yang  didapatkan  dari Laboratorium  Bioteknologi  Hutan  dan  Lingkungan IPB  Bogor.    Aplikasi  FMA  dilakukan  pada  saat penanaman benih.  Pada bagian tengah pot yang telah berisi  media  zeolit  dibuat lubang  dengan  diameter ± 5  cm  dengan  kedalaman  ±  10  cm,  lalu  pada  lubang tersebut  dimasukkan  inokulum  FMA  (Mycofer®) sebanyak  50  g/pot,  kemudian  lubang  ditutup  dengan media  zeolit  setinggi  ±  2  cm.    Selanjutnya,  benih tanaman  inang  yang  akan  ditanam  (sesuai  dengan perlakuan)  diletakkan  di  atas  zeolit  tersebut, kemudian  ditutup  kembali  dengan  zeolit  sehingga mencapai  volume  bahan  tanam  yang  diinginkan. Setelah  selesai  penanaman  dan  pelabelan  perlakuan, pot-pot  disusun  di  atas  meja  dalam  rumah  kaca mengikut  Rancangan  Kelompok  Teracak  Sempurna dan dipelihara sampai berumur 3 bulan.

## Pemeliharaan
Selama  pemeliharaan  tanaman  3  bulan  di rumah  kaca  dilakukan  pemupukan,  penyiraman, penyiangan  gulma,  dan  pengendalian  hama.    Pupuk yang  digunakan  adalah  Hyponex®  merah  (25:5:20= N:P:K)  dengan  konsentrasi  2,5  g/liter  dan  masing- masing  pot  mendapatkan  20  ml  setiap  2  hari  sekali. Penyiraman  dilakukan  setiap  pagi  dan  sore  hari  dan setiap  pot  memperoleh  volume  air  yang  sama. Pengendalian gulma dilakukan secara manual dengan mencabut gulma di dalam pot, sedangkan pengendalian  hama  dilakukan  dengan  menggunakan Decis® dengan dosis 0,4 ml/liter.
Peubah-peubah yang diamati dalam penelitian ini (3 bulan setelah tanam) adalah  sebagai berikut:
1. Jumlah  spora  dengan  metode  penyaringan  basah (Brudrett  et  al.,  1996).  Sampel  media  zeolit sebanyak 50 g dimasukkan ke dalam gelas ukur 1 liter,  kemudian  ditambahkan  air  keran  sebanyak lebih  kurang  500  ml,  setelah  itu  diaduk  supaya spora  yang  tertahan  dalam  partikel  tanah  lepas dan  mengambang  di  dalam  larutan.  Larutan selanjutnya dituangkan ke saringan mikro dengan ukuran  350  dan  45  µm  (yang  disusun  secara bertingkat dengan ukuran besar di atas).  Hal yang sama  dilakukan  sebanyak  5  kali  supaya  semua spora  yang  ada  dalam  sampel    menambang  di dalam  larutan.    Spora-spora  yang  tertahan  pada masing-masing  saringan  kemudian  dipindahkan ke  dalam  cawan  petri  dan  spora  selanjutnya dihitung secara manual dengan bantuan mikroskop stereo.
2. Bobot  kering  akar.  Mula-mula  akar  dibongkar, kemudian akar dipisahkan dari tajuk, dioven pada suhu  70 o C  hingga  bobotnya  konstan,  baru ditimbang.
3. Bobot kering tajuk. Bobot kering tajuk (daun dan batang) ditimbang setelah dioven pada suhu 70 o C hingga bobotnya konstan, kemudian ditimbang. 4. Persen  infeksi  akar  oleh  FMA.  Sampel  akar diambil secara acak ± 1 g/sampel kemudian dicuci sampai  bersih  dan  dimasukkan  ke  dalam  botol film.    Secara  ringkas,  akar  dibersihkan  dari sitoplasma  dengan  larutan  KOH  10%,  kemudian diasamkan dengan larutan HCl 1% dan selanjutnya  diwarnai  dengan  trypan  blue  0,05%. Akar  yang  sudah  diwarnai  dipotong-potong sepanjang  ±  2  cm,  disusun  di  atas  gelas  preparat sebanyak  15  lembar,  kemudian  diamati  dibawah mikroskop  majemuk.  Penghitungan  infeksi  akar dilakukan dengan rumus berikut:

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Salah satu faktor yang menentukan produksi FMA  adalah  pemilihan  tanaman  inang.    Pemilihan tanaman  inang  untuk  produksi  CMA  dalam  kultur pot  memberikan  pengaruh  yang  besar  pada pembentukan  spora  FMA  dan  infeksi  akar  (Struble dan  Skipper,  1988  dan  Simpsone  dan  Daft,  1990 yang    dikutip    oleh    Brundrett et  al., 1996).      Hasil penelitian   menunjukkan   bahwa   tanaman  inang
sorgum,  CP,  dan  CM  tidak  mempengaruhi  persen infeksi  akar  pada  bulan  ke-2.    Keempat  tanaman  ini menghasilkan rata-rata persen infeksi akar yang sama tinggi (Tabel 1).  Persen infeksi rata-rata di atas 90% yang berarti lebih dari 90% akar sudah terinfeksi oleh FMA  pada  bulan  ke-2.    Pada  bulan  ke-3  persen infeksi akar semakin tinggi.  Keempat tanaman inang baik  dari  golongan  Graminae  maupun  Leguminosae memiliki persen infeksi akar di atas 90%.  Tanaman jagung  misalnya  telah  mencapai  persen  infeksi  akar hingga 100%.
Tingginya  persen  infeksi  akar  pada  keempat tanaman  inang  membuktikan  bahwa  spesies  FMA yang  diinokulasikan  cocok  untuk  keempat  tanaman tersebut.    Seperti  yang  diungkapkan  Suhardi  (1989), tanaman  inang  yang  sesuai  akan  berpengaruh  pada ada atau tidaknya koloni FMA dan produksi spora.
Selain  adanya  kecocokan  antara  tanaman inang  dengan  spesies  FMA  yang  diinokulasikan, kemungkinan  persen  infeksi  akar  sama  tinggi dikarenakan media tanam yang kurang hara.  Seperti yang  dituliskan  Suhardi  (1989)  bahwa  infeksi  akar akan  maksimum  pada  kondisi  tanah  yang  kurang subur.    Infeksi  akar  pada  tanaman  jagung,  sorgum, CP,  dan  CM  pada  bulan  ke-2  dan  ke-3  dapat  dilihat pada gambar 1, 2, 3, dan 4.
Berdasarkan  waktu,  pada  bulan  ke-3  jumlah spora  tanaman  jagung,  sorgum,  CP,  dan  CM mengalami peningkatan dibandingkan pada bulan ke- 2.    Tanaman  jagung  atau  sorgum  memiliki  rata-rata 23  dan  33  spora/50  g  media  (bulan  ke-2)  dan  pada bulan ke-3 meningkat menjadi 333 dan 254 spora/50 g  media.    Sama  halnya  dengan  jagung  dan  sorgum rata-rata jumlah spora pada CP dan CM yang hanya 4 dan 3 spora/50 g media pada bulan ke-2, menjadi 30 dan 60 spora/50 g media pada bulan ke-3 (Tabel 2).
Tingginya  jumlah  spora  pada  bulan  ke-3 kemungkinan  lebih  dipengaruhi  oleh  ketuaan  hifa dan  tanaman  inang  yang  semakin  tua.    Menurut
Suhardi (1989), perkembangan spora biasanya terjadi karena  reaksi  terhadap  pertumbuhan  akar,  tetapi produksi spora akan semakin banyak setelah tanaman inang menjadi dewasa bahkan mendekati tua.  Selain itu  pada  bulan  ke-3  pembentukan  spora  dipengaruhi oleh  kondisi  lingkungan.    Pembentukan  spora dirangsang oleh kondisi yang kering (tanaman dibuat stress dengan cara tidak disiram selama satu minggu sebelum  tanaman  dibongkar)  yang  bertujuan  untuk merangsang  pembentukan  spora.    Hal  ini  sejalan dengan  pernyataan  Sieverding  (1991)  bahwa  spesies FMA,  tanaman  inang,  media  tanam,  dan  kondisi lingkungan semuanya mempengaruhi waktu pembentukan  spora.    Spora  yang  dihasilkan  pada bulan ke-3 dapat di lihat pada Gambar 5.
Persen  infeksi  akar  keempat  tanaman  inang sangat  tinggi  dan  tidak  berbeda  antartanaman  tetapi setiap  tanaman  inang  memiliki  perbedaan  dalam  hal kemampuan  menghasilkan  spora.    Hubungan  antara persen infeksi bulan ke-3 dengan jumlah spora bulan ke-3  menunjukkan  tingkat  korelasi  yang  rendah dengan  nilai  R 2 =  0,0855  (Gambar  6).    Hal  ini menunjukkan  bahwa  persen  infeksi  akar  yang  tinggi tidak  selalu  diiringi  oleh  jumlah  spora  yang  tinggi pula.    Hal  yang  sama  juga  didapati  pada  kasus agregat  liat  ( expanded  clay )  sebagai  media  dalam produksi  inokulum  FMA  yaitu  infeksi  akar  tidak selalu  diiringi  dengan  jumlah  spora  yang  tinggi (Feldmann dan Idczak , 1992).  Menurut Ratnayake et al. (1978),  infeksi  FMA  pada  tanaman  inang  juga ditentukan  oleh  eksudat  akar  yang  dikeluarkan berupa  gula,  asam  organik,  dan  asam  amino  yang merupakan  makanan  bagi  FMA.    Setiap  tanaman mengeluarkan  eksudat  akar  yang  berbeda  sehingga respons  FMA  terhadap  tanaman  inang  juga  tidak sama.
Suhardi  (1989)  juga  melaporkan  bahwa jumlah  spora    belum  bisa  menunjukkan  secara langsung  jumlah  koloni  akar  yang  terbentuk.
Tabel 1. Pengaruh tanaman inang dan media tanam pada persen infeksi akar bulan ke-2 dan ke-3
Perlakuan Infeksi akar bulan ke-2 Infeksi akar bulan ke-3 ---------------------------- % --------------------------- Tanaman inang Jagung 99,75 a 100,00 a Sorgum 98,93 a 97,99 ab Centrosema pubescens 97,99 a 95,38 b Calopogonium mucunoides 99,04 a 97,88 ab BNJ 5 % 2,43 3,76 Media tanam Zeolit P-3 99,04 a 99,29 a Zeolit P-1 98,82 a 97,34 a BNJ 5 % 1,27 1,96
Keterangan:  Nilai tengah yang diikuti dengan huruf yang sama tidak berbeda menurut uji BNJ 5%
Gambar 1. Infeksi akar bulan ke-2 pada tanaman jagung (kiri) dan sorgum (kanan)
Gambar 2. Infeksi akar bulan ke-2 pada tanaman C, pubescens (kiri) dan C. mucunoides (kanan)
Gambar 3. Infeksi akar bulan ke-3 pada tanaman jagung (kiri) dan sorgum (kanan)
Gambar 4 .  Infeksi akar bulan ke-3 pada tanaman C. pubescens (kiri) dan C. mucunoides (kanan)
Gambar 5. Spora yang dihasilkan pada bulan ke-3
Gambar 6 . Hubungan antara persen infeksi akar dan jumlah spora pada bulan ke-3
Tabel 2. Pengaruh tanaman inang dan media tanam pada jumlah spora bulan ke-2 dan ke-3
Perlakuan Jumlah spora bulan ke-2 transformasi √x+0,5 Nilai tengah jumlah spora bulan ke-2 Jumlah spora bulan ke-3 ------------------------ spora/50 g --------------------- Tanaman inang Jagung 4,61 ab 23,4 333,0 a Sorgum 5,58 a 28,4 254,0 a Centrosema pubescens 1,86 bc 4,0 30,0 b Calopogonium mucunoides 1,91 c 3,4 60,6 b BNJ 5 % 19,65 169,9 Media tanam Zeolit P-3 3,71 a 17,5 177,4 a Zeolit P-1 3,27 a 12,2 161,4 a BNJ 5 % 10,26 88,7 Tabel 3. Pengaruh tanaman inang dan media tanam pada bobot kering akar Perlakuan Bobot kering akar tanaman ----------- g----------- Tanaman inang Jagung 6,58 a Sorgum 6,13 a Centrosema pubescens 2,63 b Calopogonium mucunoides 3,26 b BNJ 5 % 1,38 Media tanam Zeolit P-3 4,78 a Zeolit P-1 4,55 a BNJ 5 % 0,72 Keterangan:  Nilai tengah yang diikuti dengan huruf yang  sama  tidak  berbeda  menurut  uji BNJ 5%
Produksi  spora  yang  rendah  dapat  saja  terjadi walaupun persentase akar yang terinfeksi tinggi.  Hal ini  dapat  disebabkan  karena  fotosintat  yang digunakan oleh FMA hanya cukup untuk perkembangan hifa sehingga persen infeksi akar yang tinggi tidak diiringi dengan pembentukan spora yang tinggi  pula.    Kemungkinan  lain  dapat  juga disebabkan  spora  yang  terbentuk  berkecambah kembali  seperti  yang  ditulis  oleh  Sieverding  (1991), bahwa  pembentukan  spora  merupakan  proses  yang dinamis  sehingga  ada  spora  yang  terbentuk  dan sebagian  yang  lain  berkecambah  dalam  waktu bersamaan.
Berdasarkan  jumlah  spora  yang  banyak  dan persen  infeksi  akar  yang  tinggi  pada  bulan  ke-3, dapat  disimpulkan  bahwa  tanaman  inang  yang  lebih sesuai  untuk  produksi  FMA  adalah  tanaman  dari golongan  Graminae.    Dalam  penelitian  ini  jumlah spora menjadi acuan utama pada pemilihan tanaman inang  bagi  produksi  FMA  karena  sebagai  sumber inokulum  spora  masih  dapat  bertahan  dalam  waktu
yang  lama.    Seperti  yang  dinyatakan  oleh Sieverding  (1991),  spora  tetap  dapat  bertahan selama  beberapa  tahun  dalam  tanah,  sementara potongan akar terinfeksi dari tanaman inang hanya dapat  bertahan  selama  2—4  minggu  setelah tanaman  inang  dipanen.    Apabila  potongan  akar terinfeksi disimpan ditempat dingin dengan suhu 4 0 C dalam air atau vermikulit lembab, keaktifannya dapat dijaga hanya sampai 2 bulan.
Persen  infeksi  akar  yang  tinggi  dengan jumlah  spora  yang  banyak  didukung  juga  oleh bobot  kering  akar  tanaman  yang  tinggi.    Bobot kering  akar  tanaman  jagung  dan  sorgum  dari golongan  Graminae  lebih  tinggi  daripada  bobot kering  akar  tanaman  CP  dan  CM  dari  golongan Leguminosae  (Tabel  3).    Oleh  karena  itu,  bobot kering akar yang tinggi dapat menunjukkan bahwa akar  yang  terbentuk  lebih  panjang  atau  semakin banyak  jumlahnya.    Oleh  sebab  itu,  walaupun persen  infeksi  akar  yang  dihasilkan  keempat tanaman  inang  sama  tinggi,  karena  akar  tanaman golongan  Graminae  lebih  panjang  maka  jumlah hifa  yang  dihasilkan  tanaman  dari  golongan  ini pun  lebih  banyak  sehingga  jumlah  spora  yang dihasilkan  juga  lebih  banyak.    Seperti  yang diungkapkan  oleh  Suhardi  (1989),  syarat  dalam pemilihan  tanaman  inang  untuk  produksi  FMA adalah  tanaman  tumbuh  cepat  dan  menghasilkan banyak  akar.    Struble  dan  Skipper  yang  dikutip oleh  Brundrett et  al. (1996)  menyatakan  bahwa tanaman  jagung  dan  sorgum,  sering  digunakan sebagai  tanaman  inang  karena  tanaman  ini memiliki  sistem  perakaran  yang  luas  yang menghasilkan lebih banyak FMA.
Akar  terinfeksi  juga  dapat  digunakan sebagai  sumber  inokulum  karena  akar  terinfeksi merupakan  sumber  inokulum  yang  memiliki keefektifan  yang  tinggi  terutama  bila  digunakan pada 2—4 minggu setelah tanaman inang dipanen. Menurut  Anas  dan  Tampubolon  (2004),  akar tanaman inang yang banyak dengan derajat infeksi akar  oleh  FMA  yang  tinggi  merupakan  indikator sumber inokulum FMA yang baik.
Faktor  lain  yang  mempengaruhi  produksi FMA  adalah  media  tanam.    Dalam  penelitian  ini zeolit  digunakan  sebagai  media  tanaman  karena bersifat  stabil,  tidak  mudah  berubah  atau  rusak karena  siraman  air,  dan  memiliki  kapasitas  tukar kation  yang  tinggi.    Menurut  Suhardi  (1989), media  tanam  yang  baik  digunakan  adalah  yang memiliki  tekstur  kasar,  berpasir,  dengan  kapasitas tukar kation yang tinggi yang mampu mengurangi tersedianya P.
Dua  jenis  media  zeolit  yang  digunakan dalam  penelitian  ini  tidak  berpengaruh  pada produksi  FMA  karena  respons  setiap  tanaman
inang  terhadap  media  zeolit  P-3  maupun  P-1 adalah  sama.    Yang  membedakan  kedua  jenis zeolit ini hanyalah pada ukuran butiran.  Zeolit P-3 lebih  kasar  dibandingkan  dengan  Zeolit  P-1. Ukuran  butiran berpengaruh  pada luas  permukaan zeolit  yang  mempengaruhi  penyerapan  unsur  hara oleh  akar  tanaman  inang.    Media  yang  memiliki luas permukaan lebih tinggi seperti media zeolit P- 1 tentunya memiliki KTK yang lebih tinggi pula.
Dalam  penelitian  ini  kedua  media  tanam yang  digunakan  tidak  berbeda.    Hal  ini  terjadi karena  jumlah  pupuk  yang  diberikan  pada  setiap tanaman  yang  ditanam  pada  kedua  media tersebut adalah  sama  dan  pada  saat  aplikasi  dijaga  agar tidak  ada  pupuk  yang  menetes  ke  bagian  bawah pot.    Oleh  karena  itu,  walaupun  kedua  media memiliki  tekstur  yang  berbeda  namun  karena jumlah  pupuk  yang  diserap  sama  maka  tanaman yang  ditanam  pada  kedua  media  tersebut  juga memberikan  respons  yang  sama.    Hasil  penelitian juga  menunjukkan  bahwa  infeksi  antarkedua perlakuan  yaitu  tanaman  inang  dan  jenis  media tidak  nyata.    Artinya  pengaruh  tanaman  inang terhadap  produksi  spora  FMA  tidak  ditentukan oleh  jenis  media  yang  digunakan.    Hal  ini menunjukkan  bahwa  semua  tanaman  inang memberikan  respons  yang  sama  untuk  setiap media yang digunakan.

## KESIMPULAN
Berdasarkan data yang diperoleh dari hasil penelitian  maka  dapat  dibuat  kesimpulan  sebagai berikut:
1. Tanaman  inang  dari  golongan  Graminae  lebih sesuai  untuk  produksi  FMA  karena  memiliki persen  infeksi  akar  yang  tinggi  dan  jumlah spora  lebih  banyak  daripada  tanaman  dari golongan Leguminosae.
2. Produksi  FMA  pada  media  tanam  zeolit  P-3 dan  media  tanam  zeolit  P-1  tidak  berbeda sehingga  kedua  media  dapat  digunakan  untuk perbanyakan FMA.
3. Pengaruh  tanaman  inang  pada  produksi  FMA tidak  ditentukan  oleh  media  yang  digunakan karena  setiap  tanaman  inang  memperlihatkan respons  yang  sama  untuk  kedua  media  tanam yang digunakan.

## DAFTAR PUSTAKA
Anas,  I.  dan  J.  L.  O.  Tampubolon.    2004.    Media Campuran Tanah-Pasir dan Pupuk Anorganik untuk  Memproduksi  Inokulan  Cendawan Mikoriza  Arbuskula  (CMA). Buletin Agronomi 32(1): 26—31.
Brundrett, M., N. Bougher, B. Dell, T. Grove, and N.  Malajczuk.    1996. Working  with Mycorizas  in  Forestry  and  Agriculture. CSIRO.  Australia.  10 pp. Feldmann,  F.  and  E.  Idczak.    1992.    Inoculum Production of Vesicular-arbuscular
Mycorrhizal  Fungi  for  Use  in  Tropical
Nurseries.  In J. R. Norris, D. J. Read, and A. K. Varma (Editors).
Methods in
Microbiology  Vol  24. Academic  Press. London.  Pp. 339—357.
Husna.    2004.    Studi  Diversitas  Cendawan Mikoriza  Arbuskula  (CMA)  asal  Sulawesi Tenggara.  Prosiding Seminar Mikoriza yang berjudul Teknologi dan Pemanfaatan Inokulan Endo-Ektomikoriza untuk
Pertanian,  Perkebunan,  dan  Kehutanan tanggal  16  September  2003.    Universitas Padjadjaran.  Bandung.  Hlm. 55—59.
Imas,  T.,  R.  S.  Hadiatomo,  A.  W.  Gunawan,  dan Y.  Setiadi.    1989. Mikrobiologi  Tanah  II.
Institute  Pertanian  Bogor.    Jawa  Barat.    144 hlm.
Lakitan,  B.    1995. Dasar-dasar  Fisiologi Tumbuhan .    PT  Raja  Grafindo  Persada. Jakarta.  203 hlm.
Ratnayake,  M.,  R.  T.  Leonard,  and  J.  A.  Menge.
1978.  Root Exudation in Relation to Supply
of  Phosphorus  and  its  Possible  Relevance  to Mycorrhizal Formation. New Phytol
81:543—552.
Salisbury, F. B. and C. W. Ross.  1995. Fisiologi Tumbuhan jilid I. Penerbit Institut Teknologi Bandung.  241 hlm. Sieverding,  E.    1991. Vesicular  Arbuscular
Mycorrhiza Management in Tropical Agrosystems. Deutsche  Gesellschaft  fur Technische  Zusammenarbeit  (GTZ)  GmbH. Eschborn Germany.  371 pp.
Simanungkalit,  R.  D.  M.    2004.    Teknologi Cendawan  Mikoriza  Arbuskular:  Produksi Inokulan dan Pengawasan Mutunya. Prosiding  Seminar  Mikoriza Teknologi  dan Pemanfaatan  Inokulan  Endo-Ektomikoriza untuk Pertanian, Perkebunan, dan Kehutanan tanggal  16  September  2003.    Universitas Padjadjaran.  Bandung.  Hlm. 7—17.
Suhardi.    1989. Pedoman  Kuliah  Mikoriza Vesikular  Arbuskular  (MVA). Universitas Gajah Mada.  Yogyakarta.  178 hlm.