## Arwana Jurnal Ilmiah Program Studi Perairan
Induksi maturasi gonad ikan nilem ( Ostheochilus hasselti) menggunakan hormon OODEV dengan dosis yang berbeda [nduction of gonad maturation of nilem ( Ostheochilus hasselti) using different doses of OODEV hormone]
Mahdaliana 1* , Munawwar Khalil 1 , Nur Aklima 1
1 Program  Studi  Akuakultur,  Fakultas  Pertanian,  Universitas  Malikussaleh.  Kampus  utama  Reuleut, Kabupaten Aceh Utara, Aceh, Indonesia
ABSTRACT  This study aims to determine the best dose of the hormone Oodev to accelerate the induction of gonad maturation of the female mother of patchouli (Ostheochilus hasselti). This research was conducted at the Laboratory of the Faculty of Malikussaleh University, North Aceh from 18 August to 10 September 2020. The method used was a completely randomized design (CRD), using 12 test fish from 4 treatments, namely treatment A (0 ml/kg), B (0.3 ml/kg), C (0.5 ml/kg), D (0.7 ml /kg). ANOVA test results showed that the induction of gonad maturation in nilem fish (Ostheochilus hasselti) using oodev with treatment dose A (0 mL/kg) showed very significant differences with treatment D (0.7 ml/kg) on the level of gonad maturity, maturity index. gonads, fecundity, and egg diameter. The results of this study indicated that D treatment with a dose of 0.7 mL/kg produced the best values on the gonad maturity index (14,59 %), fecundity (39,923 eggs), and egg diameter (0,82 mm).
Key words  Nilem, Maturation, Hormone, Oodev
ABSTRAK  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  dosis  hormon  Oodev  yang  terbaik  untuk mempercepat proses induksi maturasi gonad induk betina ikan nilem (Ostheochilus hasselti). Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Fakultas Universitas Malikussaleh, Aceh Utara dari tanggal 18 Agustus sampai  10  September  2020.  Metode  yang  digunakan  adalah  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL),  dengan menggunakan 12 ekor ikan uji dari 4 perlakuan yaitu perlakuan A (0 ml/kg), B (0,3 ml/kg), C (0,5 ml/kg), D (0,7 ml/kg). Hasil uji ANOVA menunjukkan bahwa induksi maturasi gonad pada ikan nilem ( Ostheochilus hasselti) menggunakan Oodev dengan dosis perlakuan A (0 mL/kg) menunjukan hasil berbeda sangat nyata dengan perlakuan D (0,7 ml/kg) terhadap tingkat kematangan gonad, indek kematangan gonad, fekunditas, dan  diameter  telur.  Hasil  penelitian  ini  menunjukkan  bahwa  perlakuan  D  dengan  dosis  0,7  mL/kg menghasilkan  nilai  terbaik  pada  indek  kematangan  gonad  (14,59%),  fekunditas  (39,923  butir),  dan diameter telur (0,82 mm).
Kata kunci  Nilem, maturasi, hormon, Oodev
Received  27 April 2022, Accepted  25 Mei 2022, Published  29 Mei 2022. *Koresponden  Mahdaliana,  Program  Studi  Akuakultur,  Fakultas  Pertanian,  Universitas  Malikussaleh.  Kampus utama Reuleut, Kabupaten Aceh Utara, Aceh, Indonesia. Email: mahdaliana87@gmail.com Kutipan  Mahdaliana, M., Khalil, M., Aklima, N. (2022). Induksi maturasi gonad ikan nilem ( Ostheochilus hasselti) menggunakan hormon OODEV dengan dosis yang berbeda. Arwana: Jurnal Ilmiah Program Studi Perairan, 4(1), 34 – 42. p-ISSN (Media Cetak)  2657-0254 e-ISSN (Media Online)  2797-3530
© 2022 Oleh authors. Arwana: Jurnal Ilmiah Program Studi Perairan . Artikel ini bersifat open access yang  didistribusikan  di  bawah  syarat  dan  ketentuan Creative  Commons  Attribution-ShareAlike  4.0  International License .

## PENDAHULUAN
Ikan  nilem  (Osteochilus  hasselti)  adalah  salah satu  ikan  yang  banyak  dibudidayakan  dan banyak tertangkap di perairan umum di daerah Kabupaten  Aceh  Tengah.  Ikan  ini  mempunyai nilai  konsumsi  yang  tinggi,  kelestarian
lingkungan  serta  keuntungan  bagi  para pembudidaya  menjadikan  ikan  nilem  sangat potensial untuk dikembangkan menjadi produk unggulan  perikanan  budidaya.  Pengembangan ikan  nilem  saat  ini  sudah  dilakukan  di  Balai Benih  Ikan  (BBI)  Lukop  Badak,  Aceh  Tengah. Namun dalam pengembangannya masih
Research Article doi: 10.51179/jipsbp.v4i1.1199
terkendala dalam penguasaan teknologi pembenihan  seperti  pemijahan  musiman, kematangan induk
serta kurangnya ketersediaan benih.
Keberhasilan  pengembangan  budidaya  ikan nilem  ini  sangat  ditentukan  oleh  penyediaan benih  yang  memiliki  kualitas  dan  kuantitas yang  baik.  Apabila  ketersediaan  induk  yang matang gonad tidak memadai dapat menghambat ketersediaan benih secara berkelanjutan. Oleh karena itu, perlu dilakukan kajian  teknologi  yang  mampu  mempercepat kematangan gonad kembali ikan nilem. Strategi pematangan  gonad  dapat  dilakukan  dengan memanipulasi  faktor  lingkungan,  pakan  dan hormonal.  Selain  itu,  yang  berperan  penting dalam  pematangan  gonad  adalah  proses vitelogenesis  yang  berada  dibawah  pengaruh hormon-hormon  pituitary,  sehingga  sering digunakan  untuk  mempercepat  pematangan gonad. Salah satu hormon yang dapat digunakan dalam  manipulasi  hormonal  adalah  Hormon Oodev Oocyte developer (OODEV) yang berasal dari  kombinasi  pregnant  mare’s  serum gonadotropin  (PMSG)  dan  antidopamin  (AD) (Farastuti,  2014).  Hormon  Oodev  lebih  banyak mengandung  FSH  (folicle  stimulating  hormon) daripada  LH  (luteinizing  hormon)  yang  baik untuk  pematangan  gonad  awal  ikan.  Metode yang  digunakan  adalah  metode  penyuntikan, metode  ini  dianggap  lebih  efektif  karena pregnant  mare`s  serum  gonadotropin  (PMSG) dan antidopamin (AD) dapat langsung masuk ke pembuluh  darah  ikan  untuk  kemudian  dapat mempercepat  kematangan  gonad  (Sihaloho, 2014).  Antidopamin  pada  hormon  OODEV berfungsi  memblok  dopamin  sehingga  sekresi gonadotropin  di  otak  tidak  terhambat  (Ahlina, 2015). Pada penelitian Tinus (2013) sebelumnya pemberian  OODEV  berpengaruh  terhadap kematangan  gonad  ikan  patin  (Pangasianodon hypophthalmus) pemberian OODEV pada dosis 0.5  mL/kg  ikan  dapat  mengacu  kematangan gonad sampai fase vitelogenesis dan menunjukkan  hasil  terbaik  dibandingkan perlakuan  lain.  Penggunaan  hormon  OODEV telah diketahui mampu mempercepat kematangan  gonad  untuk  berbagai  ikan. Penelitian  ini  dilakukan  dengan  menyuntikan hormon  OODEV  pada  calon  induk  ikan  nilem (belum  pernah  memijah).  Penggunaan  hormon OODEV  ini  diharapkan  dapat  mempercepat kematangan  gonad  calon  induk  betina  ikan nilem sehingga dapat mengatasi kendala benih
ikan nilem sepanjang tahun.

## BAHAN DAN METODE
Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian  ini  akan  dilakukan  di  Laboratorium Fakultas  Pertanian,  Universitas  Malikussaleh, Aceh  Utara.  Waktu  penelitian  akan  dilakukan pada tanggal Agustus – September 2020.
Rancangan Percobaan Penelitian dilakukan dengan metode eksperimen  dengan  Rancangan  Acak  Lengkap (RAL) yang terdiri dari 4 taraf perlakuan dan 3 kali  ulangan  menggunakan  24  ekor  ikan  uji. Perlakuan dengan dosis hormon OODEV 0 ml/kg ikan,  perlakuan  dengan  dosis  hormon  OODEV 0,3 ml/kg ikan, perlakuan dengan dosis hormon OODEV  0,5  ml/kg  ikan  dan  perlakuan  dengan dosis hormon OODEV 0,7 ml/kg ikan. Dari hasil penelitian (Tinus, 2013) sebelumnya pemberian Oodev  berpengaruh  terhadap  kematangan gonad  ikan  patin  ( Pangasius  hypophthalamus) pemberian  OODEV  pada  dosis  0,5  mL/kg  ikan dapat mengacu kematangan gonad sampai fase vitelogenesis  dan  menunjukkan  hasil  terbaik dibandingkan perlakuan lain.

## Metode Penelitian
Penelitian  yang  dilakukan  menggunakan  24 ekor calon induk ikan nilem yang belum pernah memijah dan telah dipelihara di Unit Pelaksana Teknis  Balai  Benih  Ikan  (UPT  BBI)  Lukup Badak,  Dinas  Peternakan  dan  Perikanan Kabupaten Aceh Tengah. Umur calon induk ikan nilem  yang  diteliti  adalah  16  bulan  dan  bobot berkisar  antara  100  gram,  dibagi  ke  dalam empat  perlakuan  dengan  tiga  ulangan.  Ikan nilem  dimasukkan  ke  bak  aklimatisasi.  Ikan nilem dibiarkan terlebih dahulu satu hari tanpa diberi pakan. Pemberian pakan dilakukan pada hari berikutnya selama tiga minggu. Aklimatisasi dilakukan dengan tujuan adaptasi lingkungan dan pakan.  Pakan yang digunakan berupa pellet terapung yang diberikan sebanyak dua kali sehari yaitu pagi dan sore hari. Pakan diberikan secara ad satiation (pemberian pakan sesuai  dengan  ruang  lambung)  dengan  kadar protein 40%. Masing-masing ulangan terdiri dari 6 ekor ikan.
Sampling  data  bobot  untuk  mengetahui  TKG dan  IKG  dimulai  pada  hari  ke-1,  kemudian sampling dilakukan setiap 7 hari sekali hingga berakhir  masa  maturasi  (matang  gonad).
Mahdaliana et al (2022)|Arwana  Jurnal Ilmiah Program Studi Perairan  4(1), 34-42
Kematangan  gonad  ikan  dicirikan  dengan perkembangan diameter rata-rata telur dan pola distribusi  ukuran  telur (Chinabut et  al.,  1991). Sampling  diameter  telur  untuk  menentukan TKG  mulai  dilakukan  pada  hari  ke-7. Penyuntikan  dilakukan  secara intarmuscullar pada otot punggung. Pelaksanaan penyuntikan dimulai pada hari-1 dan selanjutnya dilakukan setiap  7  hari  sekali  mengacu  pada  penelitian Farastuti  (2014).  Kanuliasi  untuk  mengetahui perkembangan  diameter  telur  dilakukan  mulai hari  ke-7,  hari  ke-14,  dan  hari  ke-23. Penyuntikan  dihentikan  saat  ikan  telah mempunyai tanda-tanda mengalami kematangan  gonad.  Percobaan  berlangsung selama 23 hari.
Parameter yang Diamati Tingkat Kematangan Gonad (TKG) Tingkat kematangan gonad ikan dapat diamati setiap minggu, pengamatan tingkat kematangan gonad  diketahui  dengan  cara  pengamatan morfologi menggunakan bantuan lup, berdasarkan klasifikasi Arockiaraj, et al. (2004).
Indeks Kematangan Gonad (IKG) Nilai Indeks Kematangan Gonad dapat dihitung berdasarkan  (Effendie,  1979)  dengan  rumus, yaitu:
IKG = 𝐵𝑔 𝐵𝑡 x 100% Keterangan: IKG =Indeks Kematangan Gonad (%) Bg = Berat Gonad (gram) Bt = Berat Tubuh (gram) Fekunditas Penghitungan pendugaan
jumlah telur berdasarkan rumus Bagenal (1978) yaitu:
F= 𝑊𝑔 𝑊𝑠 x N
Keterangan :
F :  Fekunditas  (jumlah  telur  dalam  satuan  gonad/ ikan) Wg : Bobot gonad (g) Ws : Bobot sampel (g) N : jumlah telur dalam sampel

## Diameter Telur
Diameter telur ikan diukur  sebanyak 30 butir telur untuk 1 ikan sampel. Alat untuk mengukur diameter  telur  berupa  kertas  milimeter  blok (  Farastuti., et  al,  2014).  Selanjutnya  untuk mengukur pertambahan diameter telur menggunakan persamaan :
A= 𝐵/0,4𝑥0,01 𝑚𝑚 Keterangan :
A = Ukuran sebenarnya (mm) B = Angka yang terbaca pada micrometer 0,4 = Pembesaran lensa objektif 40x 0,01 = Nilai dari satuan yang ada pada preparat

## Analisa Data
Data  yang  diperoleh  dari  pengamatan  akan disajikan  dalam  bentuk  tabel  dan  grafik  , kemudian  dianalisa  dengan  uji  F  (Anova). Apabila  F hitung >  F tabel (berbeda  nyata),  maka selanjutnya  dilakukan  uji  lanjut  dengan menggunakan uji BNT (Beda Nyata Terkecil).

## HASIL
Tingkat Kematangan Gonad Gonad  adalah  organ  yang  berfungsi    dalam proses  reproduksi.  Pengamatan  morfologi merupakan  suatu  pengamatan  bagian  luar tubuh  ikan  nilem  ( Otheochilhillus  hasselti). Klasifikasi  tingkat  kematangan  gonad  ikan nilem secara morfologi dapat dilihat pada tabel di bawah ini.
Tabel 2. Morfologi tingkat kematangan gonad ikan nilem.
Perlakuan   TKG Deskriftif Gonad Mofologi Gonad Betina A II Ukuran  ovari  bertambah  besar, warna  ovari  menjadi  coklat muda.  Butiran  telur  belum terlihat.
B II Ukuran  ovari  bertambah  besar, warna  ovari  menjadi  coklat muda.  Butiran  telur  belum terlihat. C III Ukuran  ovari  relatif  besar  dan mengisi hampir sepertiga rongga perut, butiran-butiran telur terlihat  jelas  dan  berwarna kuning muda. D IV Gonad  mengisi  penuh  rongga perut, semakin penjal dan butian telur  bewarna  kuning  tua, butiran  telur  besarnya  hampir sama dan mudah dipisahkan,
Penyuntikan  PMSG+AD  mampu  memberikan rangsangan hormonal terhadap tingkat kematangan  gonad  sehingga  terjadi    ovulasi pada  ikan  nilem .  PMSG  memiliki  sifat biologis seperti Luteinizing  Hormone  (LH)  dan  folicle Stimulating Hormon (FSH). PMSG mempunyai daya  kerja  merangsang  terbentuknya  folikel. Hormon  PMSG  sangat  banyak  mengandung unsur-unsur daya kerja FSH dan sedikit unsur LH.  FSH  inilah  yang  berperan  dalam  proses pembentukan  telur  pada  ikan  sedangkan  LH berperan dalam merangsang proses pematangan gonad yang kemudian siap untuk diovulasikan.

## Indeks Kematangan Gonad
Pengamatan  gonad  meliputi  nilai  presentase IKG.  Pengamatan  ini  menjadi  sangat  penting dalam  proses  kematangan  gonad  tahap  awal yang  dipengaruhi  oleh  hormon  Oodev  karena aktivitas metabolisme reproduksi ikan sebagian besar  tertuju  pada  perkembangan  gonad. Pengamatan gonad dapat dilakukan dengan dua cara  yaitu  menghitung  nilai  IKG  dan  secara histologi  gonad,  namun  pada  penelitian  ini pengamatan  indeks  kematangan  gonad  hanya dilakukan dengan menghitung nilai IKG. Hasil analysis of variance (ANOVA)
menunjukkan  bahwa  setiap  perlakuan  induksi
hormon  Oodev  memberikan  pengaruh  yang berbeda  nyata  terhadap  indeks  kematangan gonad  ikan  nilem.  Hasil  uji  statistik selengkapnya dapat dilihat pada Tabel.
Tabel 3. Indeks kematangan gonad.
Pada perlakuan kontrol (tanpa induksi hormon Oodev)  terjadi  penurunan  yang  siginifikan terhadap indeks kematangan gonad yaitu I,26 %, sedangkan  pada  perlakuan  dosis  0,3  mL/kg hingga  0,7  mL/kg  terjadi  kenaikan,  perlakuan dosis  0,3  mL/kg  diperoleh  13,27  %,  perlakuan dosis  0,5  mL/kg  sebesar14,48%,  dan  perlakuan dosis 0,75 mL/kg didapatkan hasil 14,59 %. Pada penelitian  ini  terlihat  bahwa  penyuntikan hormon Oodev memberikan pengaruh terhadap perkembangan gonad. Diagram indeks kematangan  gonad  dapat  ditunjukkan  pada Gambar 3 :

## Gambar 3. Diagram indeks kematangan gonad (%)
Berdasarkan  uji  statistik  menunjukkan  bahwa induksi  hormon  Oodev  memberikan  pengaruh sangat  nyata  terhadap  indeks  kematangan gonad  yang  dihasilkan  oleh  induk  ikan  nilem dengan  nilai  F  hitung  (381,205)  >  F  tabel  0,01 (4,07). Dari hasil uji lanjut (BNT) diperoleh hasil bahwa  adanya  pengaruh  yang  berbeda  sangat nyata  antara  tiap  perlakuan.  Data  indeks kematangan  gonad  menunjukkan  perlakuan pemberian  hormon  oodev  dibanding  dengan kontrol.  Perlakuan  A  tidak  berbeda  nyata terhadap  perlakuan  B  (0,3  mL/kg),  tetapi perlakuan  A  berbeda  sangat  nyata  terhadap perlakuan  C  (0,5  mL/kg)  dan  D  (0,7  mL/kg). Perlakuan  B  (0,3  mL/kg)  tidak  berbeda  nyata terhadap  perlakuan  A    dan  perlakuan  C  (0,5 mL/kg),  tetapi  berbeda  sangat  nyata  terhadap perlakuan  D  (0,7  mL/kg).  Perlakuan  C  (0,5 mL/kg) tidak berbeda nyata terhadap perlakuan B  (0,3  mL/kg)  dan  perlakuan  D  (0,7  mL/kg), tetapi berbeda sangat nyata terhadap perlakuan A  (kontrol).    Perlakuan  D  (0,7  mL/kg)  tidak berbeda  nyata  terhadap  perlakuan  C  (0,5 mL/kg),  tetapi  berbeda  nyata  terhadap perlakuan  A  (kontrol)  dan  B  (0,3  mL/kg). Berdasarkan  hasil  penelitian  menunjukkan indeks  kematangan  gonad  (IKG)  ikan  nilem ( Otheochilhillus  hasselti)  yang  tertinggi  pada perlakuan D sebesar 14,59 %.
Fekunditas Fekunditas adalah jumlah telur yang dihasilkan dalam satu siklus reproduksi. Berdasarkan hasil penelitian  jumlah  telur  yang  dihasilkan  oleh ikan  nilem  berpengaruh  terhadap  pemberian hormon  Oodev.  Rara-rata  persentase  jumlah telur selama penelitian dapat dilihat pada tabel 4 :

## Tabel 4. Fekunditas
Perbedaan  fekunditas  tersebut  diduga  karena dipengaruhi oleh faktor kondisi lingkungan yang berbeda.  Menurut  Fujaya  (2001),  fekunditas pada  setiap  individu  betina  tergantung  pada umur,  ukuran,  spesies  dan  kondisi  lingkungan (suhu  air,  musim  dan  ketersediaan  makanan). Umumnya ikan yang berdiameter telur 0.50-1.00 mm  mempunyai  fekunditas  30,000 – 50,000 butir.  Diagram  jumlah  telur  yang  dihasilkan selama  penelitian  dapat  ditunjukkan  pada Gambar 4 :

## Gambar 4. Diagram Fekunditas ikan nilem betina
Berdasarkan Gambar 4 di atas hasil  penelitian Jumlah telur yang paling tinggi pada perlakuan D  dengan  jumlah  total  telur  39.923  butir  dan pada perlakuan C dengan jumlah total rata-rata 30.532  butir  dan  pada  perlakuan  B  dengan jumlah  rata-rata  27.914  butir  dan  selanjutnya pada perlakuan A dengan jumlah rata-rata 2.486 butir.
Berdasarkan  hasil  statistik  menunjukkan bahwa  induksi  hormon  Oodev  memberikan pengaruh  sangat  nyata  terhadap  jumlah  telur yang  dihasilkan  oleh  induk  ikan  nilem  dengan nilai F hitung (53,633) > F tabel 0,01 (4,07). Dari hasil  uji  (BNT)  diperoleh  hasil  bahwa  adanya pengaruh yang berbeda sangat nyata antara tiap perlakuan.  Data  fekunditas  menunjukkan perlakuan pemberian hormone Oodev dibanding dengan  kontrol.  Perlakuan  A  tidak  berbeda nyata terhadap perlakuan B (0.3 mL/kg), tetapi perlakuan  A  berbeda  sangat  nyata  terhadap perlakuan  C  (0,5  mL/kg)  dan  D  (0,7  mL/kg). Perlakuan  B  (0.3  mL/kg)  tidak  berbeda  nyata terhadap  perlakuan  A  dan  perlakuan  C  (0,5 mL/kg),  tetapi  berbeda  sangat  nyata  terhadap perlakuan  D  (0,7  mL/kg).  Perlakuan  C  (0,5
mL/kg) tidak berbeda nyata terhadap perlakuan B  (0,3  mL/kg)  dan  perlakuan  D  (0,7  mL/kg), tetapi berbeda sangat nyata terhadap perlakuan A  (kontrol).    Perlakuan  D  (0,7  mL/kg)  tidak berbeda  nyata  terhadap  perlakuan  C  (0,5 mL/kg),  tetapi  berbeda  nyata  terhadap perlakuan A (kontrol) dan B (0,3 mL/kg).
Diameter Telur Hasil  pengamatan  ukuran  diameter  telur berdasarkan  30  sampel  oosit  pada  setiap perlakuan  diperoleh  nilai  rata-rata  diameter telur. Hasil kanulasi dan pengamatan telur pada calon  induk  ikan  nilem  betina  yang  diinduksi hormon  Oodev  mengalami  fase  maturasi (matang  gonad)  mulai  terjadi  pada  hari  ke-10 untuk  perlakuan  4  pada  dosis  0,7  mL/kg,  lalu secara  berturut – turut  pada  perlakuan  3  dosis 0,5 mL/kg pada hari ke-14, perlakuan 2 dosis 0,3 mL/kg pada hari ke-21 sedangkan pada kontrol belum ditemukan butiran – butiran kuning telur pada gonad.
Analisis  statistik  menunjukkan  bahwa  induksi hormon  Oodev  berpengaruh  sangat  nyata terhadap  diameter  telur  yang  dihasilkan  oleh induk  ikan  nilem  dengan  nilai  F  hitung (10,852) > F tabel 0,01 (4,07). Dari hasil uji lanjut (BNT)  diperoleh  hasil  bahwa adanya  pengaruh sangat  nyata  antara  perlakuan  pemberian hormon  oodev  dibanding  dengan  kontrol. Perlakuan  A  tidak  berbeda  nyata  terhadap perlakuan  B  (0,3  mL/kg)  dan  perlakuan  C  (0,5 mL/kg) tetapi berbeda nyata terhadap perlakuan D  (0,7  mL/kg).  Perlakuan  B  (0,3  mL/kg)  tidak berbeda nyata terhadap perlakuan C (0,5 mL/kg) dan perlakuan A (kontrol), tetapi sangat berbeda nyata  terhadap  perlakuan  D  (0,7  mL/kg). Perlakuan  C  (0,75  mL/kg)  tidak  berbeda  nyata terhadap  semua  perlakuan.  Perlakuan  D  (0,7 mL/kg) tidak berbeda nyata terhadap perlakuan C  (0,5  mL/kg),  tetapi  berbeda  sangat  nyata terhadap  perlakuan  B  (0,3  mL/kg)  dan perlakuan  A.  Peningkatan  ukuran  diameter telur  ini  disebabkan  karena  penyerapan glikolipoprotein  dalam  jumlah  besar  yang disebut  vitelogenesis.  Glikopopretein  dibuat  di liver  di  bawah  kontrol  hormon  steroid  yang terdapat pada ovarian folikel. Glikopoprotein ini juga berperan dalam perkembangan telur. Pada keadaan  ini  telur  dalam  tahap  oosit  sekunder dan  dapat  terlihat  dengan  ukuran  beraneka macam.
Diameter telur pada penelitian ini berkisar 0,21 – 0.84  mm.  Telur  merupakan  hasil  akhir  dari
proses  gametogenesis  setelah  oosit  mengalami fase pertumbuhan yang sangat bergantung pada adanya hormon gonadotropin. Diameter tertinggi  terdapat  pada  perlakuan  dosis  0,75 mL/kg sebesar 0,82 mm dan terendah terdapat pada  perlakuan  kontrol  sebesar  0,21  mm. Diagram diameter telur dapat ditunjukkan pada Tabel 5 di bawah ini.

## Tabel 5. Diameter telur
Gambar  5. Ukuran  diameter  telur  calon  induk  ikan nilem betina
Pemberian  PMSG+AD  menghasilkan  nilai diameter  telur  tertinggi  di  perlakuan  dosis  0,7 ml/kg  yaitu  0,82  mm  dan  nilai  terendah  pada perlakuan  0  ml/kg  (kontrol)  yaitu  0,21  mm. Sesuai  dengan  pendapat  Effendie  (2002) semakin tinggi tingkat kematangan gonad maka diameter telur yang ada di dalam ovarium akan semakin  besar.  Pertambahan  diameter  telur sangat  dipengaruhi  oleh  aktifitas  hormonal, meningkatnya  diameter  telur  disebabkan  oleh penyerapan lumen  ovari  akibat  rangsangan hormonal  yang  sesuai,  perkembangan  folikel dipengaruhi  oleh  aktivitas  FSH  ( Folikel stimulating  hormone)  pada  pituitary  dan estrogen  pada folikel.

## PEMBAHASAN
Peningkatan  fekunditas  dipengaruhi  Faktor lingkungan juga berpengaruh terhadap fekunditas,  namun  hal  ini  sangat  sulit  untuk diketahui secara pasti. Menurut Bagenal (1963) bahwa  satu-satunya  faktor  lingkungan  yang sangat  berpengaruh  terhadap  fekunditas  ikan adalah  ketersediaan  makanan  yang  tinggi. kualitas induk betina serta efisiensi
pemanfaatannya. Selain itu aktifvitas prostaglandin  juga  diduga  berperan  dalam pembentukan butir-butir telur. Semakin banyak vitelogenin yang dibawa kegonad, maka semakin banyak  butir-butir  telur  yang  dibentuk  dalam gonad.  Semakin  tinggi  tingkat  kematangan gonad maka semakin besar nilai fekunditasnya (Tang dan Affandi, 2004). Hal ini juga di dukung oleh  Suwarno et  al.  (2002)  yang  menyatakan bahwa  jumlah  telur  yang  dihasilkan  oleh  ikan akan  meningkat  sejalan  dengan  semakin besarnya  gonad.  Sedangkan  Nikolsky  (1963) menyatakan  bahwa  pada  umumnya  fekunditas meningkat  dengan  meningkatnya  ukuran  ikan betina.  Selanjutnya  Andy  Harianti  (1973) menyatakan  bahwa  fekunditas  pada  setiap individu betina tergantung pada umur, ukuran, spesies,  dan  kondisi  lingkungan.  Djuhanda (1981)  menambahkan  bahwa  besar  kecilnya fekunditas  dipengaruhi  oleh  makanan,  ukuran ikan, dan kondisi lingkungan, serta dapat juga dipengaruhi oleh diameter telur.
Dalam proses tingkat kematangan gonad kadar estradiol  17β  akan  menurun menjelang kematangan  akhir.  Menurut  Singh  dan  Sigh (1990)  pada  saat  ovarium  mencapai  tingkat kematangan  akhir,  sintesis  estradiol  17β  akan menurun karena hal ini merupakan umpan balik negatif  estrogen  terhadap  hormon  yang menstimulasi sintesis estradiol 17 β, lebih lanjut Zohar  dan  Mylonas  (2001)  mengemukakan bahwa  secara  alami  konsentrasi  hormon estradiol 17β tinggi pada fase vitelogenesis dan mencapai puncaknya pada fase mGV ( migration Germinal  Vesicle)  dan  kemudian  mengalami penurunan pada fase pGV ( peripheral Germinal Vesicle).
Tingkat  kematangan  gonad  ikan  nilem  pada awal  penelitian  (hari  ke-0) 100%  ikan  nilem dalam  TKG  II,  dengan  ciri-ciri  organ  seksual sangat kecil, warna ovari menjadi coklat muda, dan  butiran  telur  belum  terlihat.  Menurut Effendie (2002) menyatakan bahwa TKG II yang ditandai  dengan  organ  seksual  sangat  kecil, berdekatan di bawah tulang punggung, ovarium transparan, tidak berwarna sampai abu-abu dan belum  terbentuk  telur. Tingkat  kematangan gonad  ikan  nilem  pada  masing-masing perlakuan munujukkan  hasil  antara  lain  TKG pada  perlakuan  D  dosis  0,7  mL/kg  telah menunjukkan  tahap  TKG  IV  pada  hari  ke-14, pada perlakuan C dosis 0,5 mL/kg menunjukkan tahap TKG IV pada hari ke-21, kemudian pada
perlakuan B dosis 0,3 mL/kg terjadi tahap TKG III  pada  hari  ke-23  dan  pada  hari  ke-23  di perlakuan  A  dosis  0,3  mL/kg  menunjukkan tahap TKG II. Tingkat kematangan gonad TKG IV  yaitu  tahap  bunting  dengan  ciri-ciri  gonad berwarna kuning dan terbentuk telur berdiameter  0,82    mm,  sedangkan  pada perlakuan 0 mL/kg atau kontrol hanya dominan pada  TKG  II.  Hasil  ini  menunjukkan  berbeda dosis  mengakibatkan  berbeda  waktu  untuk mencapai  kematangan  gonad  dan  induksi hormon  Oodev  terhadap  ikan  nilem dapat mempercepat kematangan gonad. Hal ini seperti hasil penelitian Farastuti (2014)  yang melakukan  penelitian  berbagai  dosis  dimulai  0 mL/kg,  0,50  mL/kg, 1,0  mL/kg  dan  1,5  mL/kg yang  mengalami  kematangan  gonad  ikan  tor soro  terbaik  menggunakan  dosis  1  mL/kg  pada dosis perlakuan 3 dalam waktu 1 minggu.
Vitelogenesis  merupakan  suatu  penggabungan protein-protein  vitelogenin  oleh  oosit  dan memprosesnya  menjadi  protein  kuning  telur sehingga  menyebabkan  peningkatan  ukuran gonad  ikan  betina  hingga  maturasi  akhir (Libzens et  al.,  2010).  Penggunaan  hormon Oodev yang mengandung PMSG dan antidopamin  ternyata  dapat  meningkatkan produksi telur dengan menginduksi kematangan gonad (Farastuti, 2014).
Pada  perlakuan  dosis  0  ml/kg  (A)  dengan pemberian  PMSG  +  AD  tidak  menunjukkan perkembangan tingkat kematangan gonad yang signifikan, masih dalam TKG II dimana dalam perlakuan  ini  menunjukan  ciri-ciri  ovarium jernih,  abu – abu  merah,  panjang  setengah  atau lebih sedikit panjang dari rongga bawah. Telur satu persatu dapat dilihat. Penggunaan PMSG + AD  pada  perlakuan  dosis  0,3  ml/kg  (B) berkembang  gonad  pada  tahap  TKG  II  dengan ciri-ciri  Ukuran  ovari  bertambah  besar,  warna coklat muda, butir telur belum terlihat dengan mata  telanjang,  Penggunaan  PMSG  +  AD terhadap  tingkat  kematangan  gonad  pada perlakuan dosis 0,5 ml/kg (C) berkembang pada tahap  TKG  III  dengan  ciri-ciri  Ukuran  ovari relatif  besar  dan  mengisi  hampir  sepertiga rongga perut, butiran-butiran telur terlihat jelas dan berwarna kuning muda.
Penggunaan PMSG + AD pada perlakuan dosis 0,7  ml/kg  (D)  berkembang  mencapai  matang gonad  hingga  TKG  IV  dengan  ciri-ciri  Gonad mengisi penuh rongga perut, semakin pejal dan butiran telur bewarna kuning tua, butiran telur
besarnya hampir sama dan mudah dipisahkan, ukuran ovari sama besar kedua sisinya (Sotolu dan  kigbu,  2011).  Faktor  utama  yang mempengaruhi  kematangan  gonad  ikan  yaitu ada  dua  faktor  dalam  seperti  jenis  ikan  dan hormon  dan  faktor  luar  meliputi  suhu,  cahaya dan  sebagainya.  Faktor  luar  yang  utama  yang mempengaruhi kematangan gonad induk adalah pakan dan lingkungan (Sitiady, 2008).
Hasil penelitian menunjukkan bahwa Pemberian hormon PMSG+AD pada induk ikan nilem  memberikan  respon  positif  terhadap tingkat  kematangan  gonad  ikan  nilem,  hal  ini diduga  karena  perkembangan  oosit  yang  terisi vitelogenin. Vitelogenin yaitu bakal kuning telur yang  merupakan  komponen  utama  dari  oosit yang  sedang  berkembang,  seiring  dengan adanya  perkembangan  oosit  yang  ditandai dengan  semakin  membesarnya  bobot  gonad induk betina. Hal ini terjadi karena saat proses vitelogenesis berlangsung maka granula kuning telur  bertambah  dalam  jumlah  dan  ukuran sehingga  volume  oosit  menjadi  membesar Tampubolon et  al  (2002).  Hasil  penelitian  dari pengamatan  morfologi  tingkat  kematangan gonad  tertinggi  terdapat  pada  perlakuan  dosis 0,7 ml/kg dan nilai terendah pada perlakuan 0 ml/kg (kontrol).

## KESIMPULAN
Induksi maturasi gonad ikan nilem
( Ostheochilus  hasselti)  menggunakan  hormon Oodev dengan dosis yang berbeda berpengaruh nyata  terhadap  tingkat  kematangan  gonad, indek  kematangan  gonad,  fekunditas  dan diameter  telur  ikan  nilem.  Hasil  penelitian menunjukkan  bahwa  perlakuan  terbaik  yaitu pada  perlakuan  D  (0,7  mL/kg)  dengan  TKG  IV pada  hari  ke-14,  indeks  kematangan  gonad (14,59 %), fekunditas (39,923 butir) dan diameter telur (0,82 mm).

## DAFTAR PUSTAKA
Ahlina, H. 2015. Induksi Maturasi Gonad Ikan Sidat ( Anguilla  bicolor  bicolor)  secara  Hormonal dengan  Menggunakan  PMSG,  AD  dan  rGH. Thesis. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor. and Lipid Level in The Fresh Water Female Catfish ( Heteropneustesfossils).  Journal  Fish  Biology. 37:  -802.
Andy  Omar, S. Bin. 2005.  Modul  Praktikum  Biologi
Perikanan. Jurusan Perikanan. Fakultas Ilmu Kelautan dan
Perikanan. Universitas
Hasanuddin. Makassar. 168 hal
Arockiaraj AJ, Haniffa MA, Seetharaman S, Singh S. 2004. Cyclic change in gonadal maturation and histological observation of threatened freshwater catfish ”narikeliru” Mystus montanus (Jerdon, 1849). Acta Ich-thyologica et Piscatoria, 34(2):253-266.
Bagenal, T. B. (1963). Variations in plaice fecundity in the Clyde area. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 43(2), 391-
399.
Bagenal, T.B. 1978. Variation inplaice fecundity in the
Clyde Area. Journal of Marine  Biological  Association  of  the  United Kindom. 43 : 391 – 399. Chinabut,  S.,  Chanratchakool,  P.,  &  Primpol,  M. (1991).  Histopathological  studies  of  infected walking catfish, Claria macrocephalus Gunther.  In Seminar  on  Fisheries  1991,
Bangkok (Thailand), 16-18 Sep 1991.
Djuhanda,  T.  1981.  Dunia  Ikan.  Armico.  Bandung Press. 190 hal Effendie  MI.  1979.  Metode  Biologi Perikanan. Yayasan Dewi Sri, Bogor halm 112 pp. Effendie,  M.  I.  2002.  Biologi  Perikanan.  Yayasan Pustaka Nusatama. Yogyakarta. 163 hal Farastuti, E.R. 2014. Hasil konsentrasi estradiol-17ß pada induksi maturasi gonad ikan torsoro ( Tor soro) dengan dosis yang berbeda. IPB. Bogor. Farastuti,  E.R.  Agus,  O.S.  Rudhy,  S.  2014.  Induksi maturasi  gonad,  ovulasi  dan  pemijahan  pada ikan  torsoro  ( Tor  soro)  menggunakan kombinasi  hormon.  LIMNOTEK.  IPB.  Bogor 21(1): 87-94.
Fujaya, Y. (2001). Biologi dan Teknologi
Teleostei. IPB. Bogor.
Harianti,  H.  Fekunditas  Dan  Diameter  Telur  Ikan Gabus (Channa Striata Bloch, 1793) Di Danau Tempe,  Kabupaten  Wajo  (Fecundity  and  Egg Diameter  of  Stripped  snakehead  (channa striata  bloch,  1793)  in  Tempe  Lake, Wajo). Saintek Perikanan: Indonesian Journal of  Fisheries  Science  and  Technology, 8(2),  18- 24.
Libzens E, Young G, Bobe J, Cerdà J. 2010. Oogenesis in Teleosts: Fish Eggs Are Formed. General and Comparative Endocrinology 165: 367-389. Nikolsky, G. V. 1963. The Ekology of Fishes. Academic Press. London. 352 p.
Oocyte Maturation and Spermiation in Basses of The Aquaculture. 202: 205 – 220. Genus Morone. Sihaloho,  Ovie  Indria  Serena.  2014.  Induksi Pematangan  Gonad  Calon  Induk  Ikan  Patin Siam ( Pangasianodon hypophthalmus) ukuran 3 Kg Menggunakan Oodev Melalui
Penyuntikan.  Tesis.  Departemen  Budidaya Perairan.  Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu
Mahdaliana et al (2022)|Arwana  Jurnal Ilmiah Program Studi Perairan  4(1), 34-42
Kelautan, Institut Pertanian Bogor, Bogor. Singh,  P.B.  and  Sigh,  V.  1990.  Seasonal  Correlaton Changes Between Sex Steroid Sitiady,  S.  2008.  Pengaruh  pemberian  Vitmin  E dengan dosis yang berbeda terhadp kematangan  gonas  ikan  selais  (  ompok hypophthlmus). Skripsi Suwarno, D., W. Pralampita dan M. Wahyono. 2002. Biologi Reproduksi Malalugis Biru, Decapyerus macarellus  di  Sulawesi  Utara.  Prossiding Seminar Hasil Penelitian Perikanan 1999/2000. Pusat Penelitian dan
Pengembangan Ekplorasi Laut Dan Peikanan.
Tampubolon  RV,  Sukimin  S,  Rahardjo  MF.  2002. Aspek  Biologi  Reproduksi  dan  Pertumbuhan Ikan  Lemuru Sardirtella  longiceps  CV  di perairan  teluk  Sibolga.  Jurnal  Ikhtiologi Indonesia. 2 : 1-7.
Tang U. M. dan Affandi R. 2004. Biologi Reproduksi Ikan.  Pusat  Peneliti  Pantai  dan  Perairan Universitas Riau. Pekanbaru. 110 pp.
Tinus,  A.  2013.  Kinerja  reproduksi  dengan  induksi oodev dalam vitelogenesis pada  rematurasi induk  ikan  patin  ( Pangasius  hypophthalmus) di dalam wadah. Fish   Scientiae 3(5):10-16.