## UJI EFEKTIVITAS PESTISIDA TERHADAP BEBERAPA PATOGEN PENYEBAB PENYAKIT
PENTING PADA BUAH NAGA ( Hylocereus sp.) SECARA IN VITRO
IN VITRO TEST OF PESTICIDES EFFECTIVENESS AGAINST SOME PATHOGENS OF IMPORTANT DISEASES IN DRAGON FRUIT ( Hylocereus sp. )
Ani Widiastuti * , Wahyu Agustina, Arif Wibowo, dan Christanti Sumardiyono Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan, Fakultas Pertanian Universitas Gadjah Mada Jln. Flora 1 Bulaksumur, Yogyakarta, 55281
*Penulis untuk korespondensi. E-mail: aniwidiastuti@ugm.ac.id

## ABSTRACT
Problem caused by pathogen in Dragon Fruit ( Hylocereus sp.) cultivation became very important because it de- creased significantly the quantity and quality of the fruit production. This study aims to determine the effectiveness of some pesticides against pathogens that cause diseases of dragon fruit in several plantations in the DIY (Sleman and Kulon Progo) and Central Java (Magelang and Batang). Test of fungicide effectiveness was done in vitro on PDA medium (potato dextrose agar) by poisoned food technique. The fungicides were mancozeb 80 %, methyl tiofanat 70 %, copper hydroxide 80 %, chlorotalonil 75 %, mancozeb 64 % + metalaxyl 4 %, mancozeb karbendazim 73.8 % + 6.8 %, benomyl 50 % at a concentration of 1g/L. The bactericides used were streptomycin sulfate 20 % and oxytetra- cycline 150 AL with each concentration of 1 g/L and 1 mL /L. The results showed that benomyl 50 % was the most ef- fective  fungicide  to  suppress  the  growth  of Fusarium sp.  (brown  spot), Colletotrichum sp.  (anthracnose)  and Pestalotiopsis sp. (scab), followed by mancozeb 73.8 % +karbendazim 6.8 % and 73.8 % mancozeb. Bactericide which was able to suppress the growth of Erwinia sp. (stem rot) was streptomycin sulfate 20 %.
Key words: benomil, chemical control, diseases in dragon fruit, streptomycin sulfate

## INTISARI
Gangguan patogen pada buah naga ( Hylocereus sp.) saat ini menjadi masalah penting karena secara signifikan menurunkan kuantitas dan kualitas hasil panen. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui keefektivan beberapa pestisida terhadap patogen penyebab penyakit-penyakit penting pada tanaman buah naga yang ditanaman pada beber- apa sentra pertanaman di Propinsi DIY (Sleman dan Kulon Progo) dan Jawa Tengah (Magelang dan Batang). Uji keefektivan pestisida dilakukan secara in vitro pada medium PDA ( potato dextrose agar ) dengan metode teknik makanan beracun ( poisoned food technique ). Fungisida yang dipergunakan adalah mankozeb 80%, tiofanat metil 70%, tembaga hidroksida 80%, klorotalonil 75%, mankozeb 64% + metalaksil 4%, mankozeb 73,8% + karbendazim 6,8%, benomil 50% dengan konsentrasi 1g/L, sedangkan bakterisida yang dipergunakan adalah streptomisin sulfat 20% dan oksitetrasiklin 150 AL dengan konsentrasi masing-masing 1 g/L dan 1 mL/L. Hasil penelitian menunjukkan bahwa dari enam jenis fungisida yang dipergunakan, benomil 50% merupakan fungisida yang paling efektif untuk menekan pertumbuhan Fusarium sp. (bercak cokelat), Colletotrichum sp. (antraknos), dan Pestalotiopsis sp. (kudis), diikuti oleh mankozeb 73,8% + karbendazim 6,8% serta mankozeb 73,8%. Untuk fungisida yang lain, efektifitasnya tidak terlalu tinggi jika dibandingkan dengan perlakuan kontrol. Bakterisida yang mampu menekan perkembangan Erwinia sp. (busuk batang) adalah streptomisin sulfat 20%.
Kata kunci: benomil, pengendalian kimiawi, penyakit buah naga, streptomisin sulfat

## PENGANTAR
Serangan  organisme  pengganggu  tanaman (OPT) pada suatu pertanaman merupakan salah satu faktor pembatas penting untuk mendapatkan pro- duksi  yang  optimal.  Gangguan  patogen  yang muncul di beberapa pertanaman buah naga saat ini sudah  menjadi  suatu  masalah  yang  meresahkan karena kuantitas dan kualitas hasil panen turun se- cara signifikan. Gangguan patogen tersebut dapat terjadi karena buah naga ditanam dalam skala luas dengan sistem monokultur.
Di Malaysia telah dilaporkan bahwa ada beber- apa jenis penyakit yang dapat menginfeksi tanaman buah naga, yaitu penyakit batang busuk yang dise- babkan oleh bakteri Xanthomonas campestris dan penyakit antraknos (Anonim, 2008). Penyakit antra- knos pada buah naga pernah ditemukan di Okinawa pada tahun 2002. Hasil identifikasi menunjukkan bahwa patogen penyebab penyakit tersebut adalah Colletotrichum gloeosporioides . Sedangkan di kota Itoman Okinawa, penyakit pascapanen busuk buah pada  buah  naga  pernah  ditemukan  pada  gudang penyimpanan produk pertanian. Patogen penyebab
Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia, Vol. 17, No. 2, 2011: 73–76
penyakit tersebut adalah Bipolaris cactivora (Taba et al., 2006). Tanaman buah naga ditanam secara besar-besaran di Mexico. Pada tahun 2001 dan 2002 ditemukan tanaman dengan bercak-bercak cokelat pada batang. Gejala awal berupa bintik-bintik yang akan menjadi semakin besar hingga berdiameter 0,5 cm. Hasil identifikasi menunjukkan bahwa penye- bab penyakit tersebut adalah jamur Botryosphaeria dothidea (Botin et al ., 2003). Hasil penelitian terhadap penyakit-penyakit pen- ting yang umum terdapat di pertanaman buah naga di beberapa sentra pertanaman di DIY dan Jawa Tengah  menunjukkan  bahwa  beberapa  penyakit penting yang umum dijumpai adalah busuk batang yang  disebabkan  oleh  bakteri Erwinia sp., kudis  yang  disebabkan  oleh Pestalotiopsis sp. bercak  cokelat  ( Fusarium sp.),  dan  antraknos
( Colletotrichum sp.). Sampai saat ini belum banyak laporan ilmiah mengenai penyakit-penyakit pada buah naga dan metode pengendaliannya di Indone- sia. Oleh karena itu, penelitian ini bertujuan untuk mengetahui jenis fungisida dan bakterisida yang se- cara in vitro efektif untuk menekan pertumbuhan patogen penyakit penting pada buah naga.

## BAHAN DAN METODE
Rancangan percobaan dan analisis data untuk uji keefektifan fungisida dan bakterisida secara in vitro dilakukan  dengan  menggunakan  analisis  varian Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan 7 perla- kuan dan satu kontrol, masing- masing terdiri dari 3 ulangan untuk uji fungisida, serta dengan 2 perla- kuan dan satu kontrol, masing- masing terdiri dari 3 ulangan untuk uji bakterisida. Apabila terdapat beda nyata, analisis dilanjutkan dengan uji DMRT de- ngan signifikansi 5 %.
Uji Keefektifan Fungisida dan Bakterisida Uji di laboratorium dilakukan dengan teknik ma- kanan  beracun  ( poisoned  food  technique ).  Isolat jamur yang diuji dengan fungisida adalah Fusarium sp., Colletotrichum sp. , dan Pestalotiopsis sp. yang diisolasi dari tanaman buah naga yang ditanam di sentra pertanaman di Propinsi DIY (Sleman dan Kulon  Progo)  dan  Jawa  Tengah  (Magelang  dan Batang). Bakteri yang diuji adalah Erwinia sp. Bahan aktif fungisida yang digunakan adalah: (1) Mankozeb 80 %; (2) Tiofanat metil 70 %; (3) Tembaga hidroksida 80 %; (4) Klorotalonil 75 %; (5) Mankozeb (64 %)+metalaksil(4%); (6) Manko- zeb (73,8%)+Karbendazim(6,8%); (7) Benomil 50 %. Konsentrasi fungisida dibuat sesuai dengan kon- sentrasi  anjuran yaitu 1 g/L. Bakterisida yang di-
gunakan adalah Streptomisin sulfat 20 % dengan konsentrasi  1 g/l dan Oksitetrasiklin 150 AL dengan konsentrasi 1 ml/l.
Pada perlakuan fungisida, medium PDA cair se- banyak  9  ml  dicampur  dengan  1  ml  larutan fungisida, dihomogenkan, selanjutnya dituangkan ke dalam cawan petri steril, dan dibiarkan mema- dat.  Biakan  murni  jamur  dilubangi  dengan  bor gabus dengan garis tengah 1 cm. Biakan diletakkan tepat  di  tengah  cawan  petri  yang  sudah  berisi medium bercampur dengan fungisida. Biakan di- inkubasi dalam suhu kamar. Parameter yang diamati adalah  diameter  koloni  jamur  sampai  diameter koloni pada perlakuan kontrol memenuhi cawan petri. Pada perlakuan bakterisida, medium PDA dalam tabung reaksi sebanyak 9 ml dicairkan, dicampur dengan 1 µl bakteri, dihomogenkan dan dituangkan ke dalam cawan petri steril. Kertas saring steril den- gan diameter 1 cm dicelupkan ke dalam larutan bak- terisida  yang  telah  dibuat  dan  diletakkan  pada bagian tengah cawan petri. Biakan diinkubasikan dalam suhu kamar. Parameter yang diamati adalah diameter zona yang tidak ditumbuhi koloni bakteri pada perlakuan dengan bakterisida. Pengamatan di- lakukan sampai hari ke-3.
Daya hambat fungisida terhadap diameter per- tumbuhan koloni jamur dan bakterisida terhadap pertumbuhan koloni bakteri pada masing-masing perlakuan ditentukan dengan menggunakan rumus DH = ((a-b)/a) × 100%

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Pengaruh  Fungisida  terhadap  Pertumbuhan Fusarium sp. Perlakuan fungisida tembaga hidroksida, cam- puran mankozeb-metalaksil, tiofanat metil, dan klo- rotalonil belum mampu menghambat perkembang- an koloni jamur secara nyata. Pengaruh pemberian fungisida dapat terlihat pada pemberian fungisida benomil,  mankozeb,  dan  campuran  mankozeb- karbendazim  yang  menyebabkan  koloni  jamur tidak dapat berkembang (Tabel 1). Hal ini menun- jukkan bahwa fungisida benomil, mankozeb, dan campuran mankozeb-karbendazim efektif meng- hambat pertumbuhan koloni Fusarium sp. Agrios (2003)  menyebutkan  bahwa  fungisida  benomil
Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia                                                                Vol. 17 No. 2 74
DH = Daya hambat fungisida terhadap diameter koloni jamur atau bakterisida terhadap per- tumbuhan koloni bakteri,
a = Diameter koloni pada kontrol, b = Diameter koloni pada perlakuan formulasi fungisida atau bakterisida.
memang efektif untuk pengendalian Rhizoctonia , Thielviopsis , Ceratocystis , Fusarium, dan Verticillium . Pengaruh  Fungisida  terhadap  Pertumbuhan Colletotrichum sp. Fungisida yang paling efektif menghambat per- tumbuhan miselium Colletotrichum sp. berturut- turut  adalah  benomil,  tiofanat  metil,  campuran mankozeb  karbendazim,  campuran  mankozeb- metalaksil, klorotalonil, mankozeb, dan tembaga hidroksida. Hal ini dapat juga dilihat pada hasil ana- lisis data rerata diameter jamur pada Tabel 1 yang menunjukkan  bahwa  setiap  fungisida  memiliki respons  yang  beragam  terhadap  perkembangan miselium jamur. Tembaga hidroksida merupakan pestisida  yang  dikenal  efektif  mengendalikan Colletotrichum sp., namun hasil uji in vitro menun- jukkan bahwa fungisida tembaga hidroksida memi- liki  daya  hambat  yang  paling  rendah  terhadap pertumbuhan jamur.
Pengaruh  Fungisida  terhadap  Pertumbuhan Pestalotiopsis sp. Beberapa fungisida yang diuji mampu meng- hambat pertumbuhan miselium jamur Pestalotiopsis sp., namun daya hambat fungisida tembaga hidrok- sida, klorotalonil, campuran mankozeb-metalaksil lebih rendah dibandingkan dengan fungisida beno- mil, mankozeb, tiofanat metil, dan campuran man- kozeb-karbendazim. Hal ini didukung dengan hasil uji DMRT diameter koloni hari ke-7 yang menun- jukkan bahwa diameter koloni jamur yang diperla- kukan  dengan  fungisida  benomil,  mankozeb, tiofanat metil, dan campuran mankozeb-karbenda- zim sangat berbeda nyata dengan kontrol (Tabel 1).
Benomil  merupakan  fungisida  sistemik  yang memiliki spektrum luas golongan benzimidazole. Sebagian  besar  benzimidazole  pada  permukaan tumbuhan berubah menjadi metilbenzidamizol kar-
Tabel 1. Pengaruh fungisida terhadap diameter koloni Fusarium sp ., Colletotrichum sp. dan Pestalotiopsis sp ., pada hari ketujuh
Perlakuan Rerata diameter koloni (cm) Fusarium sp. Colletotrichum sp. Pestalotiopsis sp. Kontrol 6,86 a 8,55 a 5,10 a Tembaga hidroksida 5,13 ab 6,98 b 4,26 b Mankozeb+Metalaksil 4,55 b 3,98 d 3,76 c Klorotalonil 3,93 b 5,31 c 4,00 bc Tiofanatmetil 4,15 b 2,00 e 1,00 d Mankozeb 1,00 c 6,55 b 1,00 d Mankozeb+Karbendazim 1,00 c 2,56 e 1,00 d Benomil 1,00 c 1,00 f 1,00 d
Keterangan: Angka-angka yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan tidak beda nyata pada uji DMRT pada taraf 5 %.
Widiastuti et al. : Uji Efektivitas Pestisida terhadap Patogen Penyebab Penyakit Penting pada Buah Naga
bamat (MBC) atau sering disebut sebagai karben- dazim. Senyawa ini mengganggu pembelahan  inti pada  jamur-jamur yang  sensitif. Senyawa benomil dapat mengganggu proses sintesis DNA (Agrios, 2005).  Menurut  Marsh  (1977),  dalam  larutan benomil  akan  terhidrolisa  menjadi  karbendazim yang mampu menghambat mitosis karena  pemben- tukan  kompleks  karbendazim  dengan  subunit mikrotubulus  menyebabkan  mikrotubulus  tidak dapat menyusun benang-benang gelendong penarik inti kromosom.
Fungisida  mankozeb  merupakan  fungisida kontak  yang  berfungsi  mencegah  infeksi  jamur dengan menghambat perkecambahan spora yang menempel dipermukaan tanaman (Djojosumarto, 2004). Mankozeb merupakan fungisida dari golong- an ditiokarbamat, berupa maneb (Mn- etilenbisditio- carbamate ) yang ditambah ion zink. Penambahan zink (seng) mengurangi fitoksisitas maneb (man- gan)  dan  meningkatkan  sifat  fungisidalnya  serta menambah ion seng pada tanaman yang kekurang- an  hara  (Agrios,  2005).  Namun  kelemahan fungisida sistemik yang perlu diwaspadai adalah memiliki  sasaran  bunuh  yang  spesifik  sehingga mengakibatkan munculnya resistensi dari patogen. Resistensi adalah keadaan alami yang timbul seba- gai reaksi perlawanan dari patogen yang terpapar suatu senyawa kimia secara terus menerus, terutama senyawa yang memiliki sasaran bunuh yang spesi- fik  (Georgopoulos,  1982).  Hal  ini  dapat  diatasi dengan menggunakan fungisida campuran sistemik yang spesifik dengan fungisida kontak yang ber- spektrum luas. Campuran mankozeb-karbendazim merupakan salah satu contoh penggunaan fungisida sistemik dan fungisida kontak secara bersamaan. Hal ini dilakukan untuk mencegah terjadinya re- sistensi.
Pengaruh  Bakterisida  terhadap  Pertumbuhan Koloni Erwinia sp. Streptomisin memiliki daya hambat yang lebih tinggi terhadap koloni bakteri Erwinia sp. diban- dingkan oksiterasiklin. Bakterisida dengan bahan aktif oksitetrasiklin tidak mampu menghambat per- tumbuhan  koloni  bakteri Erwinia sp.  (Tabel  2). Namun  demikian  penggunaan  streptomisin  juga perlu diwaspadai karena pemakaian antibiotik terus menerus dapat menyebabkan munculnya strain bak- teri  yang  resisten  (Agrios,  2005).  Resistensi E. amylovora, penyebab hawar api pada pir, terhadap streptomisin telah dilaporkan pada tahun 1991. Epi- demi penyakit hawar api pada pir di Washington ter- jadi  pada  tahun  1988  dan  streptomisin  umum digunakan untuk mengendalikan penyakit tersebut, namun dua tahun kemudian telah ditemukan strain bakteri yang resisten. Diduga karena mekanisme kerja antibiotik bersifat spesifik (Loper et al. , 1991).

## KESIMPULAN
Hasil penelitian menunjukkan bahwa secara in vitro fungisida benomil dan campuran mankozeb- karbendazim  efektif  menghambat  pertumbuhan miselium Fusarium sp., Colletotrichum sp.  dan Pestalotiopsis sp., patogen penyebab penyakit pen- ting pada tanaman buah naga. Bakterisida berbahan aktif  streptomisin  sulfat  dapat  menghambat  per- tumbuhan Erwinia sp. penyebab penyakit busuk kuning pada tanaman buah naga.
Tabel 2. Pengaruh bakterisida terhadap pertumbuhan koloni Erwinia sp. pada hari ke-3
Keterangan : Angka-angka yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan tidak beda nyata pada uji DMRT pada taraf 5 %.
Perlakuan Persentase penghambatan (%) Kontrol 0,00  b Streptomisin sulfat 69,63  a Oksitetrasiklin 0,00  b
Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia                                                                Vol. 17 No. 2
76

## DAFTAR PUSTAKA
Agrios, G.N. 2003. Plant Pathology, 4 th edition . Academic Press, San Diego, California. 635 p.
Agrios , G. N. 2005. Plant Pathology , 5 th edition . Academic Press, New York. 922 p.
Anonim. 2008. Penampilan Eksotis Sang Naga di Pot . http://farmerstore.blogspot.com, diakses 22/2/ 08. Botin,  A.,  J.  Valencia,  J.S.  Sandoval-Islas,  E. Cárdenas-Soriano, T.J. Michailides, & G. Rendón- Sánchez. 2003. Botryosphaeria dothidea Causing Stem  Spots  on Hylocereus  undatus in  Mexico. http://www.bspp.org.uk/ndr/july2003/2003-30.asp, diakses 22/2/08.
Djojosumarto, P. 2004. Teknik Aplikasi Pestisida Pertanian . Kanisius, Yogyakarta. 211 p. Georgopoulos, S. G. 1982. Detection and Measure- ment of Fungicide Resistance, p. 24–31. In J. Dekker & S.G. Georgopoulos (eds.), Fungicide Resistance in  Crop  Protection .  Center  for  Agricultural Publishing and Documentation, Wageningen. Loper,  J.E.,  M.D.  Henkels,  R.G.  Robert,  G.G. Grove, M.J. Willett, & T.J. Smith, 1991. Evaluation of Streptomycin, Oxytetracycline, and Copper Re- sistance of Erwinia amylovora Isolated from Pear Orchards in Washington State. Plant Disease 75: 287−290.
Marsh, R.W. 1977. Systemic Fungicides . 2 nd edition . Longman Inc. New York. 401 p.
Taba, S., D. Mikami, K.Takaesu, A. Ooshiro, Z. Moromizato,  S.  Nakasone,  &  S.  Kawano.  2006. Anthracnose  of  Pitaya  ( Hylocereus  undatus )  by Colletotrichum gloeosporioides . Japan Journal of Phytopathology 72: 25–27.