## AGROLAND: JURNAL ILMU-ILMU PERTANIAN
Vol. 27, No. 3 Desember (2020), 256 - 264
P-ISSN : 0854-641X & E-ISSN : 2407-7607, Diterbitkan Universitas Tadulako
PERTUMBUHAN Aspergillus sp PADA MEDIA LIMBAH CAIR TEMPE DAN AIR KELAPA
Aspergillus sp Growth on Tempe Liquid Waste and Coconut Water
Abdul Rahim Thaha 1) , Damayanti 2) ,  Asrul 1) dan Umrah 2)
1) Program Studi Agroteknologi Fakultas Pertanian Universitas Tadulako
2) Program Studi Biologi Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Tadulako, Kampus Bumi Tadulako Tondo - Palu, Sulawesi Tengah 94118
*) Corresponding author, e-mail: abdulrahim.thaha@gmail.com
Submit: 7 December 2020, Revised: 17 December 2020, Accepted: December 2020

## ABSTRACT
The study aim was to investigate fungus growth in tempe liquid wastes (TLW) and coconut water  (CW)  media.      It  was  carried  out  at  the  Biotechnology  Unit  Laboratory,  Department  of Biology,  Faculty  of  Mathematics  and  Natural  Sciences,  Tadulako  University.  This  study  was designed  in  completely  randomized  design  (CRD)with  six  treatments  and  three  replicates.    Data was  analysed  using  F  test  and  continued  with  Duncan  multiple  range  test  (DMRT  at  P05)  and processed using excel 2018 program. The treatments were (i) 100% TLW with no CW added  (P1), (ii) P2 80% TLW + 20% CW (P2), (iii) 60% TLW + 40 % CW (P3), (iv) 40% TLW + 60% CW (P4),  (v)  20%  TLW  +  80%  CW  (P5),  (vi)  100%  CW,  with  no  TLW  added  (P6).  Parameters observed consisted of pH, number of colonies, wet biomass and dry biomass. Aspergillus sp. can grow well in all treatments, but the best one is in P2 treatment with the number of colonies was 19 × 10 10 CFU / mL, pH 6.2,  wet biomass, 9.57 g and dry biomass. 3.87 g.
Keywords : Aspergillus sp . , Coconut Water, and Tempe Liquid Waste.

## ABSTRAK
Penelitian  bertujuan  untuk  mengkaji  pertumbuhan  fungi  pada  media  limbah  cair  tempe (TLW) dan limbah air kelapa (CW) telah dilakukan di unit laboratorium bioteknologi, departemen biologi Fakultas Matematika dan Ilmu Alam Universitas Tadulako.  Penelitian ini bertujuan untuk mempelajari  pertumbuhan Aspergillussp pada  media  limbah  cair  tempe  dan  air  kelapa  di laboratorium.   Dirancang dengan menggunakan rancangan acak lengkap  (RAL), jika Uji F  nyata, nilai  tengah  perlakuan  diuji  dengan  uji  jarak  berganda  Duncan  (DMRT).  Data  dianalisis  dengan analisis  monovariat  dengan  program  excel  2018.  Terdiri  dari  enam  perlakuan  dan  tiga  ulangan. Perlakuan-perlakuan  tersebut  meliputi  perlakuan  media  P1  (100%  TLW,  tanpa  CW),  P2  (80% TLW+20%),  P3 (60% TLW+  40%  CW),  P4  (40% TLW+60%  CW),  P5 (20%  TLW +  80%  CW) dan P6 (100% CW, tanpa TLW). Parameter pengamatan adalah pH, jumlah koloni, biomassa basah dan kering. Hasil Penelitian ini menunjukkan bahwa Aspergillussp dapat tumbuh baik pada semua
Original Research
Open Access
perlakuan media, namunperlakuan terbaik adalah P2 (80% TLW+ 20% CW) dengan jumlah koloni 19 x 10 10 CFU/ml, pH 6,2 , biomassa basah 9,57 g dan biomassa kering 3,87 g.
Kata Kunci : Aspergillus sp , Limbah Cair Tempe dan Limbah Air Kelapa.

## PENDAHULUAN
Penggunaan  pupuk  dan  pestisida kimia sintetik dalam dalam rangka meningkatkan produktivitas lahan pertanian selama  ini  sudah  menjadi  hal  biasa,  yang tidak  memikirkan  dampak  negatif  terhadap kesehatan  manusia  dan  lingkungannya (Srivastav,  2020;  Tripathi et  al .,  2020). Dampak  negatif  akibat  penggunaan  bahan kimia sintetik baik terhadap manusia, ternak maupun terhadap lingkuangan telah dilaporkan sejak era tahun delapan puluhan. Ketergantungan  petani  terhadap  produk  ini merupakan  salah  satu  hal  yang  tidak diperhitungkan  oleh  pelopor  revolusi  hijau sehingga  produk  ini  hingga  saat  ini  masih digunakan  oleh  petani  untuk  meningkatkan kesuburan tanah dan mengendalikan penurunan  hasil  akibat  serangan  organisme pengganggu tanaman (Khaling et al ., 2020; Lundin et al ., 2020).
Jamur Aspergillus sp .  telah  banyak dikenal  sebagai  saprofit,  parasit,  dekomposer sehingga  penting  dalam  kesuburan  tanah, agen  pengendali  hayati  hingga  penghasil mikotoksin (de Amorim et al ., 2020; Liu et al. ,  2020).  Lebih  dari  dari  300  jenis Aspergillus dapat  diseleksi  sebagai  jamur yang dapat berdayaguna, diantaranya  berpotensi sebagai  biofertilizer  dan  biopestisida  (Sahin, 2011;  Saritha  and  Prasad  Tollamadugu, 2019). Penelitian lebih lanjut tentang hal ini perlu direncanakan dan dilakukan.
Pengendalian  penyakit  tanaman  yang ramah  lingkungan  dapat  dikembangkan sebagai  alternatif  dengan  cara  memanfaatkan mikorganisme. Aspergillus sp . mempunyai kemampuan  untuk  menghambat  pertumbuhan cendawan  patogen  karena  dapat  menghasilkan enzim  hidrolitik  seperti  lipase,  protease, selulase, pektinase (Schuster et. al ., 2002). Aspergillus sp . juga dapat menghasilkan enzim  seperti    enzim  kitinase,  laktase  dan
invertase.  Menurut  Umrah et  al .,  (2019) enzim kitinase mampu menyebabkan kerusakan  sel  cendawan  patogen  yang akhirnya  dapat  menyebabkan  kematian  sel cendawan patogen. Menurut Dimitrios et al ., (2012), Aspergillus spp .  dapat  memproduksi mikotoksin  yang  berguna  untuk  menghambat pertumbuhan  cendawan  patogen.  Jamur Aspergillu  s sp . juga  dapat  menghasilkan senyawa  aspergillin  dan  memproduksi  zat yang  dapat  menghambat  perkembangan pada  jamur  patogenik. Aspergillus sp . berpotensi  sebagai  agen  biologi  karena memiliki  aktivitas  seperti  menghambat asetilkolinesterase  (Fujiwara et  al .,  2010; Lima  et  al.,  2018;  Nath et  al .,  2020) memiliki  senyawa  sitotoksik  (Huo et  al ., 2008) dan aktivitas  antioksidan (Takamatsu et al ., 2003).
Kemampuan  fungi  mendegradasi aneka substrat di alam dalam kelangsungan hidupnya  memiliki  potensi  sebagai  agen yang  dapat  memanfaatkan  limbah  organik untuk  sumber  nutrisi  (Ahuja et  al .,  2020; Jain and Kalamdhad, 2020; Raksasat et al ., 2020;  Thaha et  al .,  2020 ).  Suatu  limbah organik  yang  belum  dimanfaatkan  dan masih  mengandung  unsur-unsur  nutrisi terutama  N  dan  zat  perangsang  tumbuh (auxin  dan  sitokoni)  dapat  menjadi  substrat untuk  pertumbuhan  fungi  adalah  limbah cair tempe dan air kelapa.
Limbah cair tempe termasuk limbah hasil  pengolahan  dari  kedelai  cenderung mencemari  lingkungan  kalau  tidak  tertangani dengan  baik,  tetapi  jika  dimanfaatkan  secara tepat  maka  akan  menghilangkan  sumber penyakit  dan  mengurangi  pencemaran lingkungan.  Air  rebusan  kedelai  memiliki komposisi  kimia,  yaitu;  protein  sebesar 5,29%,  lemak  0,54%,  air  72,08%  dan  abu 3,38% (Riyanto, 2006).
Air  kelapa  mengandung  hormon auksin  dan  sitokinin  (Surachman,  2011).
Selain  itu  air  kelapa  kaya  akan  mineral yaitu  Kalium  (K),  Kalsium  (Ca),  Natrium (Na),  Magnesium  (Mg),  Ferum  (Fe),  Cuprum (Cu) dan Sulfur (S) (Tiwery, 2014).
Limbah  cair  tempe  dan  air  kelapa yang  mengandung  nutrisi untuk  pertumbuhan mikroba. Aspergillus sp . berpotensi sebagai biofertilizer  dan  agen  pengendalian  hayati. Formulasi kedua bahan tersebut memungkinkan biokonversi menjadi media tumbuh Aspergillus sp untuk produksi bio fertizer dan biopestisida. Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mempelajari pertumbuhan Aspergillus  sp pada  media limbah tahu dan air kelapa di laboratorium.

## METODE PENELITIAN
Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Bioteknologi  Jurusan  Biologi  Fakultas Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam Universitas Tadulako, Palu Sulawesi
Tengah.
Alat yang digunakan adalah mikropipet, timbangan  analitik,  erlenmeyer,  cawan  petri, bunsen,  gelas  ukur,  aerator,  botol  kultur kafasitas volume 1000 mL, laminar air flow (LAF), Colony  Counter ,  mikroskop,  pH meter, oven, jarum ose, dan hotplate . Bahan yang digunakan pada penelitian ini  adalah  akuades,  inokulum Aspergillus sp. ,  limbah  air  kelapa  (LAK)  dari  pasar Masomba Kota Palu, PSA (“potato sukrosa agar”),  limbah  cair  tempe  (LCT)  dari industri  tempe  Kecamatan  Dolo,  kertas saring, dan alkohol (Umrah, et al. , 2009). Jamur  Aspergillus  sp  yang  digunakan berasal  dari  koleksi  laboratorium  Jurusan Biologi  Unit  Bioteknologi  FMIPA  UNTAD. Aspergillus  sp  yang  digunakan  dalam bentuk  sediaan granuler.
Penelitian ini didesain dalam Rancangan Acak Lengkap (RAL) yang  terdiri  dari  enam perlakuan  dan  tiga  kali  ulangan.  Susunan perlakuan,  yaitu  ;  media  P1  (100%  LCT, tanpa  AK),    media  P2  (80%  LCT  +  20% AK),  media  P3  (60%  LCT  +  40%  AK), media P4 (40% LCT + 60% AK), media P5 (20%  LCT  +  80%  AK),  media  P6  (100% AK,  tanpa  LCT).  Pengamatan  meliputi  ;
jumlah koloni (CFU), berat biomassa segar, berat  biomassa  kering,  pH,  makroskopik dan mikroskopik jamur Aspergillus sp. Jika uji  Fisher  (F)  menunjukkan  pengeruh signifikan,  nilai  tengah  perlakuan  diuji dengan  menggunakan  uji  jarak  berganda Duncan (Duncans Multiple Range Test).

## Prosedur Penelitian
Pembuatan    Media  Potato  Sukrosa  Agar (PSA). Pembuatan media PSA yaitu dengan menyiapkan  kentang  200  g,  agar  20  g  dan gula  20  g  dan  1000  mL  akuades. Kentang dicuci,  dipotong  dan  direbus  hingga  diperoleh sari  kentang.  Selanjutnya  ditambahkan  gula dan  agar,  lalu  disterilkan  menggunakan Autoclave  dengan  suhu  121⁰C  (Medigan et al . 2002; Umrah et al. , 2009)
Pembuatan  Media  Formula. Media  yang digunakan  yaitu  limbah  cair  tempe  dan limbah  air  kelapa,  komposisi  media  yang digunakan secara berturut-turut yaitu Media P1  (100%  LCT  dalam  volume  500  mL), media  P2  (80%  LCT  +  20%  AK  dalam volume 500 mL), media P3 (60% mL  LCT +  40%  AK  dalam  volume  500  mL),  media P4  (40%  LCT  +  60%  AK  dalam  volume 500  mL)  media  P5  (20%  LCT  +  80%  AK dalam  volume  500  mL),  media  P6  (100% AK  dalam  volume  500  mL).  Masing- masing  media  disterilkan  menggunakan autoclave pada  suhu  121˚C  dan  media  siap untuk  diinokulasi  jamur Aspergillus  sp . (Sukma, 2010)
Inokulum  Jamur Aspergillus sp. Inokulum jamur Aspergillus sp. dalam bentuk sediaan granul 50 g, dibuat suspensi  menggunakan akuades steril 500 mL. Inokulum diinokulasikan ke dalam botol kultur sebanyak 5 mL. Botol kultur  ditutup  kemudian  diberi  aerasi dengan  menggunakan  aerator  dan  selang yang  dimasukkan  ke  dalam  botol  kultur melalui  lubang  penutup  botol.    Proses inkubasi  dilakukan  sampai  akhir  masa pengamatan  selama  96  jam.    (Yulia et  al. , 2020, modifikasi)
Pengamatan  Jumlah  Koloni. Jumlah koloni  dihitung  dengan  cara  mengambil  1
ml  media  formula  Kemudian  dilakukan metode pengenceran dengan tingkat pengenceran sampai 10 -8 . Pada pengenceran 10 -8 tersebut  kemudian  dituang  ke  dalam cawan  petri  yang  berisi  media  PSA  setelah itu di inkubasi pada suhu ruangan selama 2 x  24  jam  dan  dihitung  jumlah  koloni menggunakan colony  counter dalam  satuan CFU (Schuster et al ., 2002, modifikasi)
Derajat  Keasaman  (pH). Pengukuran  pH (derajat  keasaman)  pada  media  tumbuh jamur Aspergillus sp . dengan menggunakan alat  pH  meter.  Pengukuran  dil  akukan selama priode 96 jam inkubasi (Dimitrios et al ., 2012)
Biomassa  Segar. Pengukuran  biomassa segar  setelah  kultur  jamur Aspergillus  sp. dipanen  saat  berumur  96  jam  dan  disaring menggunakan  kertas  saring  yang  telah diketahui berat awalnya. Kemudian ditimbang menggunakan neraca analitik (Jannah et al., 2012).
Biomassa  Kering. Biomassa  kering  diukur dengan  cara  media  formula  jamur  yang telah  ditimbang  biomassa  segar  (Jannah  et al., 2012) kemudian di  masukkan ke dalam oven  dengan  suhu    80˚C  selama  48  jam, setelah  48  jam  biomassa Aspergillus sp. pada  cawan  petri  ditimbang  hingga  diperoleh berat keringnya.
Pengamatan Makroskopis Aspergillus sp. Pengamatan  makroskopis Aspergillus sp  dilakukan  dengan  mengambil  satu  ose miselium Aspergillus sp. yang telah tumbuh saat perhitungan jumlah koloni dan kemudian  dimurnikan  menggunakan  kertas saring  dan  diletakkan  dimedia  PSA  untuk ditumbuhkan  dan  diinkubasi  selama  7  hari. Pengamatan  makroskopis  meliputi  warna koloni  dan  bentuk  koloni  (Neher et  al ., 2013)
Pengamatan Mikroskopis Aspergillus sp. Pengamatan  secara  mikroskopis. dilakukan dengan metode mikrokultur (slide kultur) (Gusnawaty et al ., 2014 )
Analisis  Data. Data  hasil  pengamatan  secara kuantitatif diolah  dengan  analisis monovariat dengan menggunakan program excel 2018.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Jumlah Koloni
Jumlah  koloni  dihitung  mulai  dari 24  jam  setelah  inkubasi  sampai  96  jam inkubasi.  Menurut  Sukma  (2010)  miselia dari  jamur Aspergillus sp.  mulai  tumbuh sejak  2  hari  setelah  inkubasi  yang  berupa koloni-koloni  kecil  berwarna  putih  yang menyebar dipermukaan media. Pada Perlakuan  P2  menunjukkan  jumlah  koloni tertinggi  yaitu  19×10 10 CFU/mL  dan  berbeda nyata dengan perlakuan P1 (1,3×10 10 CFU/mL), P3 (2,3×10 10 CFU/mL), P4 (2,3×10 10 CFU/mL), P5  (2,3×10 10 CFU/mL)  dan  P6  (2,7×10 10 CFU/mL).
Gambar 1.  Kurva Pertumbuhan Koloni Aspergillus sp. Hasil pengamatan menunjukkan bahwa Aspergillus  sp dapat  tumbuh  dan berkembang  biak  pada  limbah  cair  tempe dan  limbah  air  kelapa  karena  pada  setiap perlakukan  terdapat  miselium  jamur  yang merupakan  jalinan  hifa  berbentuk  benang. Hasil pengamatan jumlah konidia setelah 24 jam, semua perlakuan masih dalam keadaan stabil atau masih dalam tahap adaptasi yang disebut  dengan  fase  lag.  Meningkatnya jumlah koloni pada kisaran waktu antara 48 dan  72  jam  karena  setelah  mengalami  fase adaptasi  selanjutnya  jamur  mengalami
proses  pertumbuhan  eksponensial.    Pada waktu  inkubasi  96  jam  terlihat  bahwa koloni Aspergillus sp mengalami penurunan disebabkan karena nutrisi di dalam medium telah  berkurang  sehingga  dihasilkannya metabolis  sekunder  (idiofase)  yang  bersifat toksit  sehingga  dapat  meracuni  tubuhnya yang  mengakibatkan  autolysis  (Purwitasari et  al.,  2004).  Perlakuan  P2  menghasilkan jumlah  koloni  tertinggi,  yaitu  19x10 10
CFU/ml.  Komposisi  kimia  perlakuan  P2 dapat dilihat pada Tabel 1.
Komposi  kimia    pada  perlakuan  P2 adalah merupakan komposisi nutrisi optimal yang  menghasilkan  jumlah  koloni  tertinggi dibandingkan  dengan  perlakuan  lainnya dalam percobaan ini.  Hal ini berarti bahwa kombinasi  media  80%  LCT+20%  AK paling  baik  digunakan  sebagai  media perbanyakan Aspergillus  sp yang  dapat digunakan  sebagai  decomposer  atau  bahan aktif  biofertilizer  dan  biofestisida  untuk mewujudkan sistem pertanian berkelanjutan.
Derajat Keasaman (pH) pH  media  formula  diamati  mulai dari 0 jam sampai 96 jam masa pengamatan. Kisaran  pH  media  formula  mulai  dari  3,6- 7,1 (Gambar 2.)
Aspergillus sp bersifat aerob sehingga  pada  pertumbuhannya  merlukan oksigen  (O2)  dalam  jumlah  yang  cukup banyak dan pada kisaran  antara 2,8 hingga 8,8  sedangkan  temperatur  optimum  untuk pertumbuhannya  adalah  37 o C.  Kisaran  pH yang  diperoleh  melalui  pengukuran  (pH- meter) berkisar antara 3,6 hingga 7,1.
Gambar 2. Kurva Hasil Pengukuran pH
Kurva  pH  menunjukkan  bahwa terjadi  peningkatan  pada  berbagai  media perlakuan  karena  enzim  ekstra  yang diproduksi  oleh  mikroorganisme  akan memperepat  pemecahan  senyawa  organik kompleks  menjadi  senyawa  yang  lebih sederhana  yang  bersifat  asam,  namun senyawa-senyawa organik yang terdekomposisi segera  digunakan  oleh mikroorganisme sebagai  nutrisi,  sumber  energi,  pembentuk sel  dan  sebagai  aseptor  elektron  untuk menghasilkan energi sehingga akan  menaikkan pH karena kandungan senyawa organik akan semakin berkurang (Chalimatus, 2013).

## Biomassa Segar
Hasil  analisis  ragam  menunjukkan bahwa  perlakuan  pada  berbagai  komposisi media  perlakuan  berpengaruh  nyata  terhadap berat biomassa segar. Hasil uji Duncan pada taraf  0,05  menunjukkan  bahwa  pada perlakuan  P2  berbeda  nyata  dengan  semua
Tabel 1.  Hasil Analisis Komposisi Kimia Perlakuan  P2  Yang  Memiliki  Jumlah Koloni Tertinggi No Parameter Kandungan Satuan 1. Kadar Karbohidrat 0,42 % 2. Kadar Protein 0,34 % 3. Kadar Lemak 0,19 % 4. N-Total 0,24 % 5. Pospor (P) 0,002 % 6. Kalium (K) 0,11 % 7. Calcium (Ca) 0,02 % 8. Natrium (Na) 0,01 %
perlakuan.  Perlakuan  P2  memiliki  berat biomassa  basah  tertinggi  yaitu  9,57  g    per 500 ml  kultur kemudian P1 (7,90 g per 500 ml  kultur), P3 (7,77 g per 500 ml  kultur), P4  (7,83  g  per  500  ml    kultur),  P5  (6,43  g per 500 ml  kultur) dan P6 (6,5 g per 500 ml kultur).
Perlakuan P2 menunjukkan pertumbuhan Aspergillus  sp terbaik,  menghasilkan  berat biomassa  segar  dan  berat  biomassa  kering tertinggi  dibandingkan  perlakuan  P1,  P3, P4,  P5  dan  P6.  Perbedaan  pH  dan  komposisi kimia  media  tumbuh  dapat  mempengaruhi pertumbuhan jamur (Marthin dan Talahuturuson, 2014).
Karbohidrat  merupakan  substrak utama  untuk  metabolisme  karbon  pada jamur.  Menurut Madigan et al. (2002) dan Urailal et  al. (2012)  pertumbuhan  fungi sangat tergantung pada ketersediaan karbohidrat, protein, lipid, dan asam  nukleat.  Penggunaan karbohidrat  yang  tinggi  akan  mendorong pertumbuhan  vegetatif  fungi,  selain  itu pembentukan  konidia  dipengaruhi  oleh kandungan  protein  dalam  media.    Menurut Martin  dan  Talahaturuson  (2014)  unsur unsur kimia juga dapat membantu pertumbuhan jamur  seperti  kalium,  kalsium  dan  natrium. Fungsi utama nutrisi tersebut adalah sebagai sumber  energi,  bahan  pembentuk  sel  dan sebagai  aseptor  electron  untuk  menghasilkan energi.
Gambar 3. Berat Biomassa Basah

## Biomassa Kering
Hasil  analisis  ragam  menunjukkan bahwa  perlakuan  pada  berbagai  komposisi media  perlakuan  berpengaruh  nyata  terhadap berat  biomassa  kering.  Hasil  uji  Duncan pada  taraf  0,05  menunjukkan  bahwa  pada perlakuan  P2  berbeda  nyata  dengan  semua perlakuan.  P2  memiliki  berat  biomassa kering    tertinggi  yaitu  3,87  g  kemudian  P1 (3,67  g  per  500  ml    kultur),  P3  (3,67  g  per 500  ml    kultur),  P4  (3,57  g  per  500  ml kultur),  P5  (2,73  g  per  500  ml    kultur)  dan P6 (2,87 g per 500 ml  kultur).
Pengamatan Makroskopis Aspergillus sp. Hasil pengamatan makroskopis jamur Aspergillus sp.  pada  media  PSA ( Potato  Sukrose  Agar )  terlihat  pada inkubasi hari pertama masih berwarna putih terbentuk  koloni  miselium  yang  tersusun oleh hifa. Pada hari ke dua telah mengalami sporulasi  berwarna  hijau,  bahwa  miselium semula  berwarna  putih  kemudian  akan membentuk  kondia  menjadi  warna  coklat kekuning-kuningan,  hijau  atau  kehitam- hitaman.  Bentuk  koloni  tidak  teratur, permukaan  kasar  terdapat  titik-titik  hijau yang  merupakan  spora  jamur  dan  mudah menyebar  ke  segala  arah  (Medigan et  al. , 2002)
Gambar 4. Berat biomassa kering
Pengamatan mikroskopis Aspergillus sp. Hasil  pengamatan  secara  mikroskopis jamur Aspergillus sp . mempunyai  konidia berwarna  hijau  berbentuk  bulat,  konidiofor hyaline dan  tidak  bersekat. Aspergillus flavus membentuk  koloni  yang  berwarna hijau.  Miselium  bersekat,  tidak  berwarna dan  percabangannya  tidak  teratur.  Konidiofor tidak  bersekat,  tidak  berwarna  dan  berdinding halus.  Konidum  bulat,  tidak  berwarna  dan berdinding halus.

## KESIMPULAN
Aspergillus  sp. dapat  tumbuh  baik pada  semua  kombinasi  media  limbah  cair tempe (LCT) dan   air kelapa (AK), namun terbaik pada perlakuan P2 (terdiri dari 80% limbah  cair  tempe  +  20%  air  kelapa). Jumlah koloni, 19×10 10 CFU/ml.  biomassa segar  9,57  g  dan  biomassa  kering.  3,87  g, serta pH 6,2.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Direktorat Riset dan Pengabdian kepada Masyarakat  Direktorat  Jenderal  Penguatan  Riset dan  Pengembangan  Kementrian  Riset, Teknologi  dan  Pendidikan  Tinggi  Sesuai dengan  Perjanjian  Penugasan  Pelaksanaan Program  Pengabdian  Masyarakat  Nomor: 091/SP2H/PPM/DRPM/2020,  16  Maret  2020 Skema Program Pengembangan Desa Mitra (PPDM), Universitas Tadulako, Palu.

## DAFTAR PUSTAKA
Ahuja, I., Dauksas, E., Remme, J.F.,
Richardsen, R., Løes, A.-K., 2020. Fish and  fish  waste-based  fertilizers  in organic  farming  –  With  status  in Norway: A review. Waste Management 115, 95–112. https://doi.org/10.1016/j.wasman.2020. 07.025
Chalimatus, H. 2013. Efektifitas Jamur Trichoderma  harzianum  dan  mikroba kotoran sapi pada pengomposan limbah sludge  pabrik  kertas.  Skripsi.  Fakultas MIPA.  Universitas  Negri  Semarang.
Semarang.
de Amorim, M.R., Wijeratne, E.M.K., Zhou, S., Arnold,  A.E.,  Batista,  A.N.L.,  Batista, J.M.,  dos  Santos,  L.C.,  Gunatilaka, A.A.L.,  2020.  An  epigenetic  modifier induces production of 3-(4-oxopyrano)- chromen-2-ones  in  Aspergillus  sp. AST0006,  an  endophytic  fungus  of Astragalus  lentiginosus.  Tetrahedron 76, 131525. https://doi.org/10.1016/j.tet.2020.13152 5
Dimitrios  I,  Tsitsigiannis,  Dimakopoulou  M, Antaniou  PP,  Tjamos  EC.  2012. Biological control strategies of mycotoxigenic  fungi  and  associated mycotoxin  in  Mediteterranean  basin crop. Phytopathol  Mediterran ,  51(1),
158–174.
Fujiwara,  M.,  Yagi,  N.,  and  Miyazawa,  M.
2010.  Acetylcholinesterase  inhibitory activity of volatile oil from Peltophorum  dasyrachis  Kurz  ex  Bakar (yellow  batai)  and  bisabolane-type sesquiterpenoids. J.  Agric. Food  Chem. 58. 2824–2829.
Gusnawaty,  HS.,  Taufik,  M.,  Triana,  L.,  dan Asniah.  2014.  Karakterisasi  Morfologis Trichoderma spp  .  Indigenus  Sulawesi Tenggara. Agroteknos , 4 (2), 88–94.
Huo, J., Yang, S.P.,  Xie, B.J., Liao, S.G., Lin,
L.P.,  Ding,  J.,  and  Yue,  J.M.  2008. Cytotoxic Sesquiterpenoids from
Gambar  5.  a)  makroskopis Aspergillus sp . b) Mikroskopis Aspergillus sp . 1. Konidia  2.  Konidiofor  (Perbesaran 400x)
Vernonia bockiana . J. Asian Nat. Prod. Res . 10, 571–575.
Jain,  M.S.,  Kalamdhad,  A.S.,  2020.  Soil revitalization  via  waste  utilization:
Compost  effects  on  soil  organic properties,  nutritional,  sorption  and physical properties. Environmental Technology  &  Innovation  18,  100668. https://doi.org/10.1016/j.eti.2020.10066 8
Jannah, A., Nurwantoro, dan Pramono, Y. 2012. Kombinasi  Susu  dengan  Air  Kelapa pada  Proses  Pembuatan  Drink  Yogurt terhadap Kadar Bahan Kering , Kekentalan  dan  pH. Jurnal  Aplikasi
Teknologi Pangan , 1 (3), 69–71.
Khaling, E., Agyei, T., Jokinen, S., Holopainen, J.K., Blande, J.D., 2020. The phytotoxic air-pollutant  O3  enhances  the  emission of  herbivore-induced  volatile  organic compounds  (VOCs)  and  affects  the susceptibility of black mustard plants to pest  attack.  Environmental  Pollution 265, 115030. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2020.1 15030
Lima,  M.T.N.S.,  Santos,  L.B.  dos,  Bastos, R.W.,  Nicoli,  J.R.,  Takahashi,  J.A.,
2018. Antimicrobial activity and acetylcholinesterase inhibition by extracts  from  chromatin  modulated fungi. Brazilian Journal of Microbiology 49, 169–176. https://doi.org/10.1016/j.bjm.2017.06.0 04
Liu,  Y.,  Ding,  L.,  Zhang,  Z.,  Yan,  X.,  He,  S.,
2020.  New  antifungal  tetrahydrofuran derivatives  from  a  marine  sponge- associated fungus Aspergillus sp. LS78. Fitoterapia 146, 104677. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2020.104 677
Lundin,  O.,  Malsher,  G.,  Högfeldt,  C.,
Bommarco, R., 2020. Pest management and yield in spring oilseed rape without neonicotinoid  seed  treatments.  Crop Protection 137, 105261.
https://doi.org/10.1016/j.cropro.2020.10 5261
Madigan,  M.T.,  J.M.  Martinko  and  J.Parker.
2002. Brock Biology of Microorganisms. Prentice Hall International Inc., Englewood Cliff.
Marthin,  A.,  dan  Talahaturuson,  A.  2014. Perbanyakan Trichoderma  harzianum pada  Media  Berbasis  Ela  Sagu, J. Agroekotek, 6 (2), 105 – 113.
Nath, R., Pathania, S., Grover, G., Akhtar, M.J., 2020. Isatin containing heterocycles for different  biological  activities:  Analysis of structure activity relationship. Journal  of  Molecular  Structure  1222, 128900. https://doi.org/10.1016/j.molstruc.2020. 128900
Neher,  D.A.,  Weicht  T.  R.,  Bates  S.T.  2013. Change in bacterial and fungal communities  across  compost  recipes, prearation  methods,  and  composting time. PLoS One 8(11):e79512.
Raksasat,  R.,  Lim,  J.W.,  Kiatkittipong,  W., Kiatkittipong, K., Ho, Y.C., Lam, M.K., Font-Palma,  C.,  Mohd  Zaid,  H.F., Cheng, C.K., 2020. A review of organic waste enrichment for inducing palatability  of  black  soldier  fly  larvae: Wastes to valuable resources. Environmental  Pollution  267,  115488. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2020.1 15488
Riyanto.  H.  2006.  Pemanfaatan  Limbah  Air Rebusan  Kedelai  untuk  Pembuatan
Nata De  Soya (Kajian  Penambahan Sukrosa dan Ekstrak Kecambah).
University of Muhammadiyah Malang.
Sahin,  F.,  2011.  Development  and  application of  biofertilizers  and  biopesticides  for crop production and protection. Current Opinion in Biotechnology 22, S29–S30. https://doi.org/10.1016/j.copbio.2011.0 5.060
Saritha,  M.,  Prasad  Tollamadugu,  N.V.K.V., 2019.  The  Status  of  Research  and
Application of Biofertilizers and Biopesticides:  Global  Scenario,  in: Recent Developments in Applied Microbiology and Biochemistry. Elsevier, pp. 195–207. https://doi.org/10.1016/B978-0-12 816328-3.00015-5
Schuster  E,  N.D.  Coleman,  J.C.    Frisvad,  and P.W.M. Van Dijck. 2002. On the safety of Aspergillus  niger . Appl  Microbiol Biotechnol, 59, 426–435.
Srivastav,  A.L.,  2020.  Chemical  fertilizers  and pesticides: role in groundwater contamination, in: Agrochemicals Detection,  Treatment  and  Remediation. Elsevier, pp. 143–159. https://doi.org/10.1016/B978-0-08-
103017-2.00006-4
Sukma,  T.A.  2010.  Hidrolisis  Pati  dari  Tepung Ubi  Jalar  Ungu  ( Ipomoea  batatas Var. Ayamurasaki)  Menggunakan  Ekstrak Kasar  Amilase  dari Aspergillus  niger sebagai Bahan Baku Pembuatan Wine.
Surachman,  D.  2011.  Teknik  pemanfaatan  air kelapa  untuk  perbanyakan  nilam  secara In  Vitro. Buletin  Teknik  Pertanian , 16 (1), 31–33.
Takamatsu,  S.,  Hodges,  T.W.,  Rajbhandari,  I., Gerwick,  W.H.  Hamann,  M.T.,  and Nagle,  D.G.  2003.  Marine  natural products as novel antioxidant prototypes. J. Nat. Prod . 66, 605–608.
Thaha, A. R., Asrul, Halmia and Umrah. 2020. The  Biofertilizer  Formulation  from Coconut Fiber  Waste  and  Oyster Mushroom  Waste  as  Basic  Substrate, the  Active  Agent  of Aspergillus  sp. International  Journal  of  Advenced
Science and Technology Vol.29 No.5,(2020) , pp 8601-8610
Thaha,  A.  R.  Umrah,  Asrul,  Abdul  Rahim, Pajrah  and  Nurzakia. 2020.  The role  of
local  isolates  of Trichoderma  sp. as decomposer in the subtrate of cacao pod rind  ( Theobroma  cacao L.).  AIMS Agriculture and Food, 5 (4): 825-834
Tiwery,  R.  R.  2014.  Pengaruh  penggunaan  air kelapa ( Cocos nucifera ) terhadap pertumbuhan  tanaman  sawi  ( Brassica juncea L.). Biopendix , 1 (1), 83–91.
Tripathi,  S.,  Srivastava,  P.,  Devi,  R.S., Bhadouria,  R.,  2020.  Influence  of synthetic  fertilizers  and  pesticides  on soil  health  and  soil  microbiology,  in: Agrochemicals  Detection,  Treatment and  Remediation.  Elsevier,  pp.  25–54. https://doi.org/10.1016/B978-0-08- 103017-2.00002-7
Umrah,  Angraeni, T., Esyanti, R. R., Aryantha,
I.. N. P., 2009.  Pengembangan Formula Substrat Inokulum Trichoderma sp. sebagai  Agen  Pengendali  Hayati
Terhadap  Penyakit  Busuk  Buah  Kakao ( Phytophthora  palmivora E.  J.  Butler). J.Agrisains, 10(2), 72-82.
Umrah,    Anggraeni,  T.,  Esyanti,  R.  R., Aryantha,  I.  N.  P.,  2019.  Antagonisitas dan    efektivitas Trichoderma sp  dalam menekan    perkembangan Phytophthora palmivora pada    buah    kakao.  J.
Agroland 16 (1) : 9 – 16.
Urailal, C., Kalai, A. M., Kaya, E., dan Siregar, A.  2012.  Pemanfaatan  Kompos  Ela Sagu, Sekam dan Dedak Sebagai Media Perbanyakan Agens Hayati Trichoderma harzianum Rifai. J.Agrologia, 1 (1), 21-30.
Yulia,  A.,  Umrah,  dan  Abdul  Rahim  Thaha. Pengamatan  Pertumbuhan  Tanaman Bayam  ( Amaranthus  tricolor  L. )  Pasca Aplikasi  Biofertilizer  (bahan  aktif Aspergillus  sp )  Sediaan  Cair. J. Biocelebes,  2020.Vol.14.No.  2.,  119- 209 ISSN P: 1978-6417; ISSN-E: 2580- 5991.