## NAA Lebih Efektif Dibanding IBA untuk Pembentukan Akar pada Cangkok Jambu Bol
(Syzygium malaccense (L.) Merr & Perry)
NAA Was More Effective Than IBA in Root Formation of Malay Apple (Syzygium malaccense (L.) Merr & Perry) Airlayers
Agustiansyah 1* , Jamaludin 2 , Yusnita 1 , dan Dwi Hapsoro 1
Diterima 24 Mei 2017/Disetujui 8 Januari 2018

## ABSTRACT
A  study  to  determine  the  effect  of  auxin  talcum  on  rooting  of  air  layered  malay  apple (Syzygium malaccense (L.) Merr. & Perry) was conducted from March to May 2016. The experiment was  arranged  in  a  randomized  complete  block  design  with  three  replications,  five  branches  per experimental unit. Auxin talcum treatment consisting of 7 level of auxin concentrations, i.e., (in ppm) 0  (control),  2000  IBA, 4000  IBA, 2000  NAA, 4000  NAA, 1000  NAA + IBA  1000  and 2000  IBA  + 2000 NAA in the form of talcum-paste were applied in the upper region of the girdled branches prior to  being  covered  with  soil  medium.  The  results  showed  that  after  two  months,  all  treatments containing  NAA,  either  singly  or  in  combination  with  IBA  produced  100%  rooting,  whereas  the control treatment was only 22%. The IBA treatments singly at 2000 and 4000 ppm produced 44.4% and 55.6% rooting, respectively. The superiority of NAA upon IBA treatments was also shown by the higher number and length of primary roots as well as earlier root formation. The best treatment for Malay apple rooting was 4000 ppm NAA which produced 33.3 roots, and formed roots three weeks earlier than the control treatment.
Key words: air layering, auxin, IBA, NAA, rooting

## ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan mempelajari pengaruh formulasi pasta auksin yang mengandung IBA, NAA atau kombinasi keduanya terhadap pengakaran cangkok jambu bol ( Syzygium malaccense L.) Merr. & Perry). Percobaan dilaksanakan dari bulan Maret sampai Mei 2016 menggunakan rancangan acak kelompok dengan tiga ulangan, 5 cabang cangkokan per unit percobaan. Perlakuan terdiri atas 7 taraf  konsentrasi  auksin  (dalam  ppm)  yaitu  0  (kontrol),  2000  IBA,  4000  IBA,  2000  NAA,  4000 NAA,  1000  NAA  +  IBA  1000  dan  2000  IBA  +  2000  NAA.  Hasil  pengamatan  pada  dua  bulan setelah  perlakuan,  semua  perlakuan  yang  mengandung  NAA,  baik  secara  tunggal  maupun  dalam kombinasi  dengan  IBA  menghasilkan  100%  cangkok  berakar,  sementara  kontrol  hanya menghasilkan  22%,  dan  perlakuan  IBA  saja  pada  2000  dan  4000  ppm  menghasilkan  44.4%  and 55.6%  cangkok  berakar.  NAA  yang  lebih  tinggi  dibandingkan  IBA  juga  ditunjukkan  oleh  lebih tingginya  jumlah  akar,  panjang  akar  dan  waktu  terbentuknya  akar  yang  lebih  awal  dibandingkan kontrol.  Perlakuan  auksin  terbaik  didapatkan  pada  4000  ppm  NAA  yang  menghasilkan  33.3  akar primer  dan  mempercepat  terbentuknya  akar  hingga  tiga  minggu  lebih  awal  dibandingkan  dengan pada cangkok tanpa auksin.
Kata kunci: auksin, cangkok, IBA, NAA, pengakaran
1 Jurusan Agronomi dan Hortikultura, Fakultas Pertanian Universitas Lampung
2 Mahasiswa Program Studi Magister Agronomi, Fakultas Pertanian Universitas Lampung Jl. Prof. Soemantri Brodjonegoro No.1, Bandar Lampung 35145, Indonesia Email: agustiansyah.1972@fp.unila.ac.id (*Penulis korespondensi)

## PENDAHULUAN
Jambu  bol  ( Syzygium  malaccense L.) Merr  &  Perry (sinonim: Eugenia  malaccensis L.) merupakan salah satu tanaman buah anggota famili  Myrtaceae  yang  berasal  dari  Asia Tenggara,  dan  termasuk  spesies  tanaman  asli Indonesia.  Jambu  bol  mempunyai  nama-nama daerah lain, yaitu jambu bol (Indonesia), otaheite cashew (Jamaica)  atau Malay  apple (Inggris). Pohon  jambu  bol  mempunyai  tajuk  berbentuk piramid atau silindris, tingginya  dapat  mencapai 20  m,  memiliki  cabang  horisontal  yang  banyak dan berpotensi menghasilkan buah 21-85 kg per pohon  (Whistler  dan  Elevitch,  2006; Blench, 2008; Orwa et  al .,  2009).  Nilai  gizi  yang terkandung  dalam  buah  jambu  bol  yang  masak cukup  tinggi,  yaitu  dalam  setiap  100  g  buah segar  terkandung  0.5-0.7  g  protein,  0.6-0.8  g serat, 5.6-69 mg kalsium, 3-10 I.U vitamin A dan 6.5-17  mg  vitamin  C.  Bagian  lain  tanaman  ini seperti  daun  dan  kulit  dapat  digunakan  sebagai obat  tradisional  untuk beberapa penyakit seperti sakit  perut,  gatal,  penurun  suhu  tubuh,  hingga penyakit diabetes.
Perbanyakan  jambu  bol  dengan  biji mempunyai  beberapa  kendala,  yaitu  karakter buah  yang  dihasilkan  belum  tentu sama dengan karakter  tanaman  induknya,  masa  juvenil tanaman  yang  lama  (5  tahun  atau  lebih)  dan dalam satu buah jambu bol yang besar umumnya hanya dihasilkan satu atau dua biji, bahkan tidak semua  buah  jambu  bol  menghasilkan  biji.  Di samping  itu,  biji  jambu  bol  cepat  kehilangan viabilitas  benihnya  (Whistler  dan  Elvevitch, 2006; Orwa et al ., 2009).
Cangkok  merupakan  teknik  perbanyakan vegetatif  yang  mudah,  murah  dan  relatif  efisien untuk  menghasilkan  bibit  jambu  bol  unggul, karena dapat menghasilkan bibit true-to-type dan dapat memangkas fase juvenil tanaman sehingga bibit  yang  dihasilkan  lebih  cepat  berproduksi. Namun  demikian,  beberapa  tanaman  anggota Myrtaceae seperti Syzygium javanica dan jambu biji  ( Psidium  guajava L.)  telah  dilaporkan sebagai  tanaman  yang  sulit  berakar  dengan persentase  berakar  hanya  20-30%  ketika dicangkok  atau  disetek  tanpa  menggunakan  zat perangsang akar (Paul dan Aditi, 2009; Sardoei, 2014;  Yusnita, et  al. ,  2018).  Keberhasilan pengakaran pada cangkok atau setek dipengaruhi oleh  banyak  faktor  yang  mungkin  saling berinteraksi  satu  sama  lain,  di  antaranya  ialah faktor  genotipe  (Zaczek et al., 2006;  Denaxa et
al .,  2011),  umur  fisiologi  bahan  tanaman (Santoso,  2014),  umur  ontogenetik  tanaman (Zaczek et  al., 2006),  musim,  temperatur, fotoperiodisitas  (Singh et  al .,  2011),  media pengakaran  yang  digunakan  (Shadparvar et  al ., 2011; Ansari, 2013; Benti, 2014; Rahmania dan Kurniawati,  2014),  ukuran  bahan  perbanyakan (Rahmania  dan  Kurniawati,  2014;  Apriani  dan Suhartanto,  2015),  dan  zat  pengatur  tumbuh (ZPT).  Zat  Pengatur  Tumbuh,  terutama  dari golongan  auksin  merupakan  salah  satu  faktor penentu  dalam  keberhasilan  pengakaran  pada cangkok  berbagai  tanaman  yang  sulit  berakar (Dirr  dan  Junior,  2006;  Hartmann et  al .,  2011). Namun,  efektifitas  ZPT  untuk  merangsang pembentukan  akar  tergantung  pada  jenis, konsentrasinya,  serta  spesies  tanaman  yang diakarkan.
ZPT  auksin  yang  saat  ini  paling  banyak digunakan  untuk  menginduksi  akar  pada  setek atau  cangkok  ialah indole-3-butyric acid (IBA), dan α-napthalene-acetic  acid (NAA).  Auksin juga dapat menghambat pertumbuhan tunas, dan pada  konsentrasi  tinggi  dapat  berefek  herbisida (Blythe et  al .,  2007).  IBA  dan  NAA  dapat diaplikasikan baik secara tunggal atau dikombinasikan untuk mendapatkan efek pengakaran  pada  cangkok  secara  aditif  atau sinergistik  (Dessalegn  dan  Reddy,  2003).  Pada setek  tanaman  zaitun,  IBA  pada  konsentrasi 3000 ppm  merupakan  konsentrasi  terbaik untuk menghasilkan  persentase  setek  berakar,  jumlah akar, panjang tunas, berat kering dan rasio antara akar  dan  tunas  tertinggi  (Khajehpour et  al. , 2014).  Rebin  (2013)  mendapatkan  bahwa  IBA pada  konsentrasi  500  ppm  terbukti  efektif merangsang  pengakaran  setek  jambu  citra.  Yan et  al .  (2014),  melaporkan  bahwa  konsentrasi NAA  200  ppm  menghasilkan  persentase  setek berakar,  jumlah  dan  bobot  akar  tertinggi  pada setek rumput pakan ternak Hemarthria compressa. Penelitian  mengenai  pengaruh  auksin terhadap  pengakaran  pada  cangkok  jambu  bol sejauh  ini  belum  dilaporkan,  namun  pada penyetekan  jambu  bol,  Ryadin et  al .  (2004), mendapatkan  bahwa  aplikasi  IAA  atau  NAA pada  konsentrasi  1000  ppm,  masing-masing dapat  merangsang  pembentukan  akar.  Pada penelitian tersebut NAA dilaporkan lebih efektif dibanding  IAA,  namun  tidak  dijelaskan  berapa persen  keberhasilan  penyetekannya.  Penelitian ini  bertujuan  mengetahui  pengaruh  NAA,  IBA, dan  kombinasinya  terhadap  pengakaran  pada cangkok jambu bol.

## BAHAN DAN METODE
Percobaan dilaksanakan di Desa Banjar Rejo,  Kecamatan  Batang  Hari,  Kabupaten Lampung  Timur  dari  bulan  Februari  sampai April  2016.  Percobaan  ini  dilakukan  dengan menggunakan rancangan acak kelompok lengkap  ( randomized  complete  block  design ) dengan tiga kelompok berdasarkan pohon induk yang  dicangkok.  Perlakuan  yang  dicobakan adalah tujuh konsentrasi auksin yang terdiri atas kontrol  (tanpa  auksin),  IBA  2000  ppm,  IBA 4000  ppm,  NAA  2000  ppm,  NAA  4000  ppm, IBA  1000  ppm  +  NAA  1000  ppm,  dan  IBA 2000 ppm + NAA 2000 ppm.
Bahan  tanaman  yang  akan  dicangkok dipilih  pohon  induk  jambu  bol  yang  sudah pernah  berbuah,  dengan  pertumbuhan  yang sehat  dan  kuat,  dan  berumur  8-10  tahun. Cabang  yang  akan  dicangkok  dipilih  dari cabang  sekunder  yang  sehat  pertumbuhannya, pada  posisi  ±  50  cm  dari  ujung  cabang berdiameter  ±  1.5-2.0  cm.  Media  yang digunakan  untuk  pengakaran  cangkok  ialah campuran antara tanah dengan kompos dengan perbandingan 1:1 (v/v) yang dibungkus dengan plastik bening/ transparan. NAA dan IBA yang digunakan  merupakan  auksin  murni.  Auksin tersebut dicampur dengan talk dengan perbandingan sesuai konsentrasi yang akan dicoba. Pada saat akan  diaplikasikan  campuran  auksin  dan talk tersebut  ditambahkan  air  secukupnya  sehingga menjadi  bentuk  pasta , diaplikasikan  dengan cara dioleskan pada cabang terpilih.
Pengamatan  dilakukan  pada  umur  2 bulan  setelah  pencangkokan,  untuk  variabel persentase  cangkok  yang  berakar,  rata-rata jumlah akar, dan rata-rata panjang akar dengan membongkar  media  tanam.  Pengamatan  waktu munculnya  akar  hanya  dilakukan  untuk perlakuan  kontrol,  4000  ppm  NAA,  dan  4000 ppm IBA. Pengamatan dilakukan setiap minggu dimulai  dari  akhir  minggu  pertama  hingga minggu ke-8 dengan mengamati akar yang telah menembus media cangkok.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Persentase Cangkok Berakar
Hasil  percobaan  menunjukkan  bahwa semua  jenis  dan  konsentrasi  auksin  yang
dicobakan pada cangkok jambu bol meningkatkan  persentase  cangkok  berakar, namun NAA dan IBA + NAA jauh lebih efektif dibanding  IBA.  Pada  Gambar  1  dapat  lihat bahwa  kontrol  (tanpa  auksin),  persentase cangkok jambu bol yang berakar hanya 22.2%. Aplikasi 2000 dan 4000 ppm IBA menghasilkan berturut-turut persentase cangkok berakar  44.4%  dan  55.6%,  sedangkan  aplikasi 2000  dan  4000  ppm  NAA  maupun  kombinasi IBA  +  NAA  dengan  total  konsentrasi  yang sama  semuanya menghasilkan  persentase cangkok 100% (Gambar 1). Hasil penelitian ini membuktikan bahwa jambu bol yang merupakan salah satu anggota famili Myrtaceae termasuk  spesies  yang  sulit  berakar,  karena tanpa  aplikasi  auksin,  persen  berakar  cangkok sangat  rendah,  yaitu  hanya  22.2%.  Hasil tersebut konsisten dengan yang didapatkan oleh Paul  dan  Aditi  (2009),  yaitu  bahwa  cangkok jambu air ( Syzygium javanica L.) hanya berakar 30%  tanpa  aplikasi  auksin,  sedangkan  aplikasi IBA  1000  ppm  dan  NAA  1000  ppm menghasilkan  persentase  cangkok  berakar berturut-turut  sebesar  75%  dan  62.5%.  Pada cangkok  jambu  air  tersebut,  NAA  juga  lebih efektif  dibanding  dengan    IBA  untuk pembentukan  akar.  Chawla et  al .  (2012), melaporkan  bahwa  pada  cangkok Litchi chinensis Sonn.,  aplikasi  IBA  5000  ppm meningkatkan  persentase  berakar  dari  60.3% tanpa auksin menjadi 86%.

## Jumlah Akar Primer
Hasil  percobaan  menunjukkan  bahwa aplikasi  NAA  atau  kombinasi  NAA  +  IBA secara  signifikan  meningkatkan  jumlah  akar primer  pada  cangkok  jambu  bol,  sedangkan pemberian  IBA  saja  tidak  berpengaruh. Cangkok  tanpa  auksin  atau  dengan  perlakuan IBA  2000  dan  4000  ppm  menghasilkan  rata- rata jumlah akar yang tidak berbeda, yaitu pada kisaran  2.3-4.7.  Pemberian  NAA  2000  ppm meningkatkan  jumlah  akar  menjadi  16.1  dan jika  NAA  ditingkatkan  menjadi  4000  ppm, jumlah  akar  meningkat  lagi  menjadi  paling banyak,  yaitu  33.3.  Selanjutnya,  pemberian kombinasi  IBA  1000  ppm  +  NAA  1000  ppm menghasilkan  rata-rata  11.1  akar,  sedangkan perlakuan  2000  ppm  IBA  +  2000  ppm  NAA menghasilkan 20.1 akar (Gambar 2).
Gambar  1.  Persentase  berakar  pada  cangkok  jambu  bol  pada  perlakuan  pasta  IBA,  NAA,  dan campuran keduanya pada 8 minggu setelah aplikasi.
Gambar 2. Rata-rata jumlah akar primer pada cangkok jambu bol setelah diaplikasikan dengan IBA, NAA, dan kombinasi keduanya, 8 minggu setelah aplikasi.
Hasil  ini  menunjukkan  bahwa  NAA lebih  efektif  merangsang  inisisasi  akar  pada cangkok jambu bol dibandingkan dengan IBA, dan  peningkatan  konsentrasinya  dari  1000, 2000  hingga  4000  ppm  menghasilkan  jumlah akar  yang  terus  meningkat,  sedangkan  IBA tidak  efektif  untuk  merangsang  pembentukan akar. Pada Gambar 2 terlihat bahwa pemberian IBA dan NAA secara bersama-sama menghasilkan respon akar lebih aditif, dengan efek  NAA  yang  lebih  efektif  dibanding  IBA. Hal ini terlihat pada perlakuan IBA 1000 ppm +  NAA  1000  ppm  yang  menghasilkan  11.1 akar.  Jumlah  akar  yang  dihasilkan  ini  lebih banyak  dibanding  kontrol, namun masih lebih sedikit  daripada  yang  dihasilkan  oleh  2000 ppm  NAA  (16.1),  sedangkan  pemberian  IBA 2000  +  NAA  2000  ppm  menghasilkan  20.8 akar.  Jumlah  akar  tersebut  lebih  banyak dibanding  yang  dihasilkan  oleh  2000  ppm NAA,  namun  lebih  sedikit  dibanding  dengan yang  dihasilkan  oleh  4000  ppm  NAA  (33.1).
Hasil  penelitian  ini  sejalan  dengan  yang dilaporkan  oleh  Ryadin et  al .  (2014),  yaitu bahwa  NAA  lebih  efektif  untuk  pengakaran pada  setek  jambu  bol  dibandingkan  dengan IBA.  Abu-Zahra et  al. (2013)  mendapatkan bahwa  konsentrasi  NAA  terbaik  untuk pengakaran  setek  berbagai  tanaman  hias berbeda-beda,  yaitu  untuk  setek Syngonium 1000  ppm,  rosemary  dan Hedera  helix 3000 ppm, dan Gardenia 4000 ppm. Pengaruh stimulasi NAA dalam menginduksi  akar  kemungkinan  berkaitan dengan  penghambatan  aktivitas  enzim  IAA- oksidase  (IAAO),  serta  peningkatan  aktivitas enzim peroksidase (POD) dan polifenol oksidase (PPO) sebagaimana dilaporkan oleh Yan et al.
(2014),  pada  pengakaran  setek Hemarthria compressa yang  diberi  NAA.  Enzim  IAAO mengkatalisis oksidasi IAA sehingga mengganggu  kerja  auksin  (Hartmann et  al. , 2011).  Jadi  jika  IAAO  terhambat  aktivitasnya oleh  NAA,  maka  kerja  auksin  endogen  lebih
22.2 c 44.4 b 55.6 b 100.0 a 100.0 a 100.0 a 100.0 a 0 20 40 60 80 100 Kontrol IBA 2000 IBA 4000 NAA 2000 NAA 4000 IBA 1000 + NAA 1000 IBA 2000 + NAA 2000 P er se n ta se b er aka r (% ) Konsentrasi auksin (ppm) 4.7 e 2.3 e 3.5 e 16.1 c 33.3 a 11.1 d 20.8 b 0 5 10 15 20 25 30 35 Kontrol IBA 2000 IBA 4000 NAA 2000
NAA 4000 IBA 1000 + NAA 1000 IBA 2000 + NAA 2000 Jum la h a ka r pr im er
Konsentrasi auksin (ppm)
efektif.  Aktivitas  POD  diketahui  berperan dalam metabolisme  auksin dan proses lignifikasi  pada  waktu  sintesis  dinding  sel yang  terjadi  selama  pembentukan  akar  (Rout, 2006).  Selain  itu,  PPO  mengkatalisis  oksidasi senyawa  polifenol  dan  hidroksilasi  senyawa monophenol  serta  terbentuknya  lignin  dalam sel tumbuhan (Khorsheduzzaman et al ., 2010).

## Panjang Akar
Cangkok  jambu  bol  tanpa  pemberian auksin  tidak  hanya  menghasilkan  persentase pengakaran  yang  rendah  (22.2%)  dan  jumlah akar yang sedikit (4.7), namun juga menghasilkan  rata-rata  panjang  akar  paling kecil,  yaitu  1.0  cm.  Pemberian  IBA  secara tunggal  pada  konsentrasi  2000 dan  4000 ppm
tidak  mempengaruhi  jumlah  akar  yang terbentuk,  namun  meningkatkan  panjang  akar menjadi yang tertinggi yaitu 9.8 dan 11.1 cm. Pemberian  NAA  2000  dan  4000  ppm, kombinasi NAA 1000 ppm +  IBA 1000 ppm, dan  NAA  2000  ppm  +  IBA  2000  ppm  juga meningkatkan  rata-rata  panjang  akar  secara signifikan  menjadi  5.2-7.4  cm  (Gambar  3). Representasi  massa  akar  yang  terbentuk  pada cangkok  jambu  bol  pada  perlakuan  NAA disajikan  pada  Gambar  4,  yang  menunjukkan bahwa perlakuan NAA pada semua level baik secara  sendiri  maupun  yang  dikombinasikan dengan  IBA  menghasilkan  massa  akar  yang lebih  banyak  dibanding  kontrol,  sedangkan IBA  menghasilkan  massa  akar  yang  lebih sedikit.
Gambar 3. Rata-rata panjang akar pada cangkok jambu bol setelah diaplikasikan dengan IBA, NAA, dan campuran keduanya, 8 minggu setelah aplikasi.
Gambar 4. Penampilan massa akar pada cangkok jambu bol yang diinduksi dengan NAA, IBA dan kombinasinya 8 minggu setelah aplikasi (a); dan massa akar pada semua cangkok yang diberi 4000 ppm NAA (b).
1.0d 9.8a 11.1a 6.5bc 5.9c 7.4b 5.2c 0 2 4 6 8 10 12 Kontrol IBA 2000 IBA 4000 NAA 2000
NAA 4000 IBA 1000 + NAA 1000 IBA 2000 + NAA 2000 P an ja n g aka r (c m ) Konsentrasi auksin (ppm) b Kontrol IBA 2000 NAA 2000 IBA 4000
NAA 4000
IBA 1000 + NAA 1000 IBA 2000 + NAA 4000 NAA 4000 a

## Waktu Muncul Akar
Efektivitas  NAA  yang  lebih  tinggi dibanding  IBA  untuk  merangsang  pengakaran pada cangkok jambu bol tidak hanya terlihat dari jumlah akar primer yang terbentuk, namun juga pada  kecepatan  waktu  munculnya  akar.  Pada Gambar 5 terlihat bahwa aplikasi auksin  yaitu 4000  ppm  NAA  tidak  hanya  menghasilkan persentase  cangkok  berakar  yang  lebih  besar dibanding  kontrol  pada  minggu  ke-8,  namun juga  mempercepat  terbentuknya  akar.  Pada perlakuan  kontrol,  akar  mulai  muncul  pada minggu  ke-6  dengan  persentase  yang  amat rendah,  yaitu  6.7%  dan  hingga  minggu  ke-8 hanya  mencapai  33.3%,  sedangkan  pada perlakuan  4000  ppm  NAA  munculnya  akar mulai teramati pada minggu ke-3 yaitu sebesar 6.7%  lalu  meningkat  menjadi  73.3%  pada minggu  ke-4  dan  pada  minggu  ke-5  sudah mencapai 100%.
Berdasarkan  waktu  munculnya  akar, 4000  ppm  NAA  lebih  efektif  dibanding  4000 ppm  IBA.  Hal  tersebut  kemungkinan  karena kandungan auksin endogen pada cabang jambu bol  yang  dicangkok  terlalu  sedikit.  Ketika bagian  atas  cabang  yang  dikerat  dan  dikupas floemnya diberi perlakuan NAA pada konsentrasi  4000  ppm,  kemungkinan  auksin endogen (IAA) pada cangkok dapat ditingkatkan  pada  level  yang  lebih  tinggi dibandingkan  dengan  efek  yang  ditimbulkan oleh  IBA  pada  konsentrasi  yang  sama, sehingga  akar  lebih  cepat  terbentuk.  Proses pembentukan  akar  pada  cangkok  secara
fisiologi  dan  anatomi  hampir  sama  dengan pada setek batang.
Menurut  Hartmann et  al .  (2011), pembentukan  akar  adventif  pada  setek  batang terdiri  atas  dua  tahap  yaitu  tahap  inisiasi akar (pembentukan bakal akar) dan tahap pemanjangan  primordia  akar.  Tahap  inisiasi akar  dapat  dibagi  menjadi  tahap  auksin-aktif yang  berlangsung  sekitar  4  hari,  yang  mana ketersediaan  auksin  secara  terus  menerus esensial  untuk  pembentukan  bakal  akar. Setelah bakal akar terbentuk, tahap berikutnya adalah  tahap  auksin  inaktif,  yaitu  ketika keberadaan  auksin  tidak  lagi  berpengaruh terhadap  pembentukan  akar.  Selama  tahap pemanjangan  primordia  akar,  ujung  akar tumbuh  keluar  melalui  korteks,  dan  akhirnya muncul dari epidermis batang.
Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa efektivitas  auksin  untuk  menstimulasi  akar pada  cangkok  jambu  bol  dari  yang  paling efektif  hingga  yang  kurang  efektif  adalah NAA  4000  ppm  >  IBA  2000  ppm  +  NAA 2000 ppm > NAA 2000 ppm > IBA 1000 ppm + NAA 1000 ppm > IBA 4000 atau 2000 ppm. Pada  setek  beberapa  tanaman,  IBA  lebih efektif dibandingkan NAA untuk pembentukan akar,  misalnya  pada  setek Pongamia  pinnata L. (Kesari et al. , 2008), dan setek batang lunak Psidium  guajava (Rahman et  al. ,  2004), namun pada setek Abies fraseri efektifitas IBA dalam menstimulasi akar tidak berbeda dengan NAA, walaupun NAA cenderung lebih efektif (Rosier et al. , 2004).
Gambar  5.  Perkembangan  munculnya  akar  berdasarkan  waktu  (minggu)  pada  cangkok  jambu  bol tanpa auksin dan dengan 4000 ppm IBA atau NAA.
Pada setek Cordyline terminalis , kombinasi  IBA  +  NAA  menghasilkan  bobot segar,  bobot  kering  dan  panjang  akar  yang lebih tinggi dibanding IBA atau NAA (Rahdari et  al .,  2014).  Kombinasi  IBA  +  NAA  juga lebih  efektif  dibanding  IBA  atau  NAA  pada setek Ficus  carica L.  (Reddy et  al. ,  2008). Sejalan dengan hasil penelitian ini, Yusnita et al .  (2018)  melaporkan  bahwa  NAA  atau kombinasi IBA +  NAA pada konsentrasi total 4000 ppm lebih efektif menstimulasi akar pada setek jambu bol dibanding 4000 ppm IBA. Hal ini  membuktikan  bahwa  efektifitas  ZPT tanaman  dalam  menginduksi  perakaran  sangat dipengaruhi  oleh  spesies  tanaman,  jenis  dan konsentrasi ZPT.

## KESIMPULAN
Jambu bol merupakan spesies yang sulit berakar,  karena  tanpa  auksin  persentase cangkok  berakar  hanya  22%  dengan  rata-rata jumlah  akar  primer  4.7.  Aplikasi  NAA  atau kombinasi  IBA  +  NAA  dalam  bentuk  pasta pada cangkok jambu bol semuanya menghasilkan 100%  cangkok  berakar,  dengan jumlah  akar  terbanyak  (33.3)  dihasilkan  pada NAA  4000  ppm,  diikuti  oleh  kombinasi  IBA 2000  ppm  +  NAA  2000  ppm  (20.8),  NAA 2000  ppm  (16.1)  dan  IBA  1000  ppm  +  NAA 1000 ppm (11.1). Aplikasi IBA 2000 dan 4000 ppm meningkatkan persentase cangkok berakar  menjadi  44.4%  dan  55.6%  dan panjang  akar,  namun  tidak  berpengaruh terhadap  jumlah  akar.  Aplikasi  NAA  4000 ppm  juga  mempercepat  terbentuknya  akar hingga  tiga  minggu  lebih  awal  dibandingkan dengan cangkok tanpa auksin.

## DAFTAR PUSTAKA
Abu-Zahra,  T.R.,  A.N.  Al-Shadaideh,  S.M.
Abubaker, I.M. Qrunfleh. 2013. Influence  of  auxin  concentrations  on different ornamental plants rooting. Int.
J. Bot. 9(2): 96-99.
Ansari, K. 2013. Effects of different collecting time  and  different  medium  on  rooting of  pomegranate  cv.  Malas  Torsh cuttings. Bull. Environ. Pharmacol. Life Sci. 2(12): 164-168. Apriani, P., M.R. Suhartanto. 2015. Peningkatan  mutu  bibit  torbangun ( Plectranthus amboinicus Spreng.) dengan  pemilihan  asal stek dan pemberian  auksin.  J.  Hort.  Indonesia. 6(2): 109-115.
Benti,  T.  2014.  Effect  of  potted  media mixtures  on  rooting  ability  of  stem cuttings  of  F1  arabica  coffee  hybrid. Greener J. Plant Breed.  Crop  Sci.  2(3):
62-66.
Blench,  R.  2008.  A  History  of  Fruits  on  the Southeast  Asian  Mainland.  Edited  by
Toshiki  OSADA  and  Akinori  Uesugi. Research  Institute  for  Humanity  and Nature, Kyoto, Japan. Blythe,  E.K.,  J.L.  Sibley,  K.M.  Tilt,  J.M. Ruter. 2007. Methods of auxin application  in  cutting  propagation:  a review  of  70  years  of  scientific discovery  and  commercial  practice.  J.
Environ. Hort. 25(3): 166-185.
Chawla,  W.,  K.  Mehta,  N.  Chauhan.  2012. Influence of plant growth regulators on rooting of litchi ( Litchi chinensis Sonn.) air layers. Asian J. Hort. 7(1): 160-164.
Denaxa,  N.K.,  S.N.  Vemmos,  P.A.  Roussos, G. Kostelenos. 2011. The effect of IBA and NAA and carbohydrates on rooting capacity of leafy cuttings in three olive cultivars  ( Olea  europaea L.).  Acta Hortic.  924:  101-109.  DOI:  10.17660/ ActaHortic.2011.924.12.
Dessalegn,  Y.,  Y.N.  Reddy.  2003.  Effects  of different  concentrations  of  auxins  on rooting  and  root  characters  of  air  and ground  layers  of  jojoba  ( Simmondsia chinensis (Link.)  C.K.  Schneider).
Ethiop. J. Sci. 26(2): 155-159. Dirr,  M.A.,  C.W.H.  Junior.  2006.  The Reference  Manual  of  Woody  Plant Propagation. 2nd. Timber Press. Portland.
Hartmann, H.T., D.E. Kester, F.T. Davies, Jr.,
R.L.  Geneve.  2011.  Plant  Propagation:
Principles and Practices 8 th ed. Prentice Hall International Inc. New Jersey.
Kesari,  V.,  A.  Krishnamachari,  L.  Rangan. 2008.  Effect  of  auxins  on  adventitious rooting from stem cuttings of candidate plus  tree Pongamia  pinnata (L.),  a potential  biodiesel  plant.  Trees.  DOI 10.1007/s00468-008-0304-x.
Orwa,  C.,  A.  Mutua,  R.  Kindt,  R.  Jamnadass,
S. Anthony. 2009. Agroforestree
Database: a tree reference and selection guide  version  4.0.  World  Agroforestry Centre,  S yzygium  malaccencse (L.)
Merr  &  Perry .  Agroforestry  Database 4.0.  http://www.worldagroforestry.org/
treedb2/speciesprofile.php?Spid=18099
[2 November 2016].
Khajehpour, G., V. Jam’eizadeh, N. Khajehpour.  2014.  Effect  of  different concentrations  of  IBA  (Indolebutyric
Acid)  hormone  and  cutting  season  on the  rooting  of  the  cuttings  of  olive ( Olea  europea var.  Manzanilla).  Int.  J. Adv. Biom. Res. 12(2): 2920-2924.
Khorsheduzzaman, A.K.M., M.Z. Alam, M.M. Rahman,  M.M.A.  Khaleque,  H.M.M Ismail . 2010.  Biochemical  basis  of resistance in eggplant ( Solanum
melongena L.)  to  Leucinodes  and  their correlation with  shoot and fruit infestation.  Bangladesh  J.  Agric.  Res.
35: 149-155.
Paul,  R.,  C.  Aditi.  2009.  IBA  and  NAA  of 1000  ppm  induce  more  improved rooting  characters  in  air-layers  of waterapple  ( Syzygium  javanica L.). Bulgarian J. Agric. Sci. 15(2): 123-128.
Rahdari,  P.,  M.  Khosroabadi,  K.  Delfani. 2014.  Effect  of  different  concentration of  plant  hormones  (IBA  and  NAA)  on rooting  and  growth  factors  in  root  and stem cuttings of Cordyline terminalis . J. Med. Bioeng. 3(3): 190-194.
Rahman, N., T.G. Nabi, T. Jan. 2004. Effect of different  growth  regulators  and  type  of cuttings  on  rooting  of  guava  ( Psidium
guajava L.). Quarterly Sci. Vision. 9(1- 2): 1-5.
Rahmania, R. Kurniawati, A. 2014. Penentuan ukuran stek kumis kucing ( Orthosiphon aristatus Bl.  Miq.)  dan  dosis  pupuk kandang  pada  cara  tanam  langsung.  J. Hort. Indonesia 5(3):189-202.
Rebin,  2013.  Teknik  perbanyakan  jambu  air Citra  melalui  stek  cabang.  Iptek Hortikultura 9: 6-10.
Reddy, K.V. Rajeswara, C. Pulla Reddy, P.V. Goud.  2008.  Effect  of  auxins  on  the rooting  of  fig  ( Ficus  carica L.) hardwood and semi hardwood cuttings. Indian J. Agric. Res. 41(1): 75-78.
Rosier,  C.L.,  J.  Frampton,  B.  Goldfarb,  F.A. Blazich,  F.C.  Wise.  2004.  Growth stage,  auxin  type,  and  concentrartions influence  rooting  of  stem  cuttings  of fraser fir. HortSci. 39(6): 1397-1402.
Rout,  G.R.  2006.  Effect  of  auxins  on adventitious  root  development  from single node cuttings of Camelia sinensis (L.) Kuntze and associated biochemical changes.  Plant  Growth  Reg.  48:  111- 117.
Ryadin, A.R, S.L. Ranamukaarachchi, P. Soni, R.  P.  Shrestha.  2014.  Vegetative propagation  of  five  local  cultivars  of malay  apple  ( Syzygium  malaccense spp. )  in  Ternate  Island.  Intern.  J. Advanced  Sci.  Engineer.  Inform.Tech. 4(2): 35-39.
Santoso,  B.B.  2014.  Seedling  growth  from stem cutting with different physiological  ages  of Jatropha  curcas
L.  of  West  Nusa  Tenggara  genotypes. International J. App. Sci. Tech. 4(6): 5- 10.
Sardoei,  A.S.  2014.  Effect  of  different  media of  cuttings  on  rooting  of  guava ( Psidium  guajava L.).  Euro.  J.  Exp.
Bio. 4(2): 88-92.
Shadparvar,  V.,  M.A.  Torkashvand,  A.H. Alamshiri. 2011. Effect of IBA and soil
mixture  on  rooting  of Hibiscus  rosa- sinensis .  Euro.  J.  Exp.  Bio.  1(4):  142- 146.
Singh,  K.K.,  J.M.S.  Rawat.,  Y.K.  Tomar. 2011.  Influence  of  IBA  on  rooting  of Torch  Glory Bougainvillea  glabra
during  winter  season.  J.  Hort.  Sci.
Ornament. Plants. 3(2): 162-165.
Whistler, W.A., C.R. Elevitch. 2006. Syzygium malaccense (Malay  apple).  Species profiles  for  Pacific  island  agroforestry. www.traditionaltree.org.  [2  November 2016].
Yan, Y. H., J.L. Li., X.Q. Zhang, W.Y., Yang, Y. Wan, Y.M., Ma, Y.Q. Zhu, Y. Peng, L.K. Huang. 2014. Effect of naphthalene acetic acid  on adventitious root development and associated physiological changes in stem cutting of Hemarthria  compressa. 9(3):  1-6. PLOS ONE. www.plosone.org. Yusnita, Jamaludin, Agustiansyah, D. Hapsoro.  2018.  Effects  of  IBA,  NAA and  their  combination  on  rooting  and shoot  sprouting of Malay apple
( Syzygium  malaccense (L.)  Merr.  &
Perry)  stem  cuttings.  Agrivita  J.  Agric. Sci. 40(1): 80-90.
Zaczek,  J.J.,  K.C.  Steiner,  C.W.  Heuser,  Jr.,
W.  Tzilkowski.  2006.  Effects  of  serial grafting,  ontogeny  and  genotype  on rooting of Quercus rubra cuttings. Can. J. Forest Res. 36(1): 123-131.