Jurnal Hutan Tropika (Tropical Forest Journal) e-ISSN: 2656-9736  / p-ISSN: 1693-7643
Vol. XV No.2 / Desember 2020.  Hal. 51-61
UJI KESEHATAN BENIH KENANGA
YLANG-YLANG ( Cananga odorata Lam. Hook.f. &
Thomson) forma genuina
(Health test of Kenaga Ylang-Ylang Seed (Cananga odorata Lam. Hook.f. & Thomson ) forma genuina)
Yunik Istikorini, Arum Sekar Wulandari, Wahyu Krisna
Departemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan dan Lingkungan, IPB University Jl.Raya Dramaga Kampus IPB Dramaga Bogor, 16680, Jawa Barat.
CP:  Yunik Istikorini, email:  yunik.istikorini@apps.ipb.ac.id

## ABSTRACT
Ylang-ylang  (Cananga  odorata  Hook.F.&  Thomson)  is  one  of  the  defense  plants  with various  benefits  and  advantages.  One  of  the  challenges  in  ylang-ylang  Cananga cultivation  is  the  contribution  of  high-quality  seed.  The  study  aimed  to  determine  the health of seeds and identify fungi carried by ylang-ylang seeds. The seed health test used an incubation method on potato dextrose agar (PDA) media. Results showed that ylang- ylang seeds associated with five fungal for 11 months of age and newly harvested seeds were  the  same  fungal.  Those  isolated  fungal  were  Aspergillus  niger,  A.  flavus, Penicillium  sp.,  Botryodiplodia  sp.  and  Paecilomyces  sp.  The  fungus  A.  niger  is  the dominant  fungus.  Fungi  Paecilomyces  sp.  and  Botryodiplodia  sp.  The  fungus  A.  niger identified  most  frequently.  Fungi  Paecilomyces  sp.  and  Botryodiplodia  sp.  had  a  fast growth rate, whereas Penicillium sp. had slower growth compared with other isolates. Keywords: Fungus, seed health, ylang-ylang seeds

## PENDAHULUAN
Tanaman kenanga termasuk keluarga Anonaceae dan  tumbuh  subur  di Asia  tenggara  khususnya  di  wilayah Indonesia  dengan  ketinggian  daerah  di bawah  1.200  m  dpl  (Pujiarti et  al .  2015). Tanaman  kenanga  yang  terdapat  di Indonesia  adalah  jenis Cananga  odorata (Lam.)  Hook.F.  &  Thomson . Ada  dua forma  kenanga,  yakni C.  odorata forma macrophylla , yang dikenal sebagai kenanga biasa atau kenanga Jawa, serta C.
odorata forma genuina atau  kenanga ylang- ylang. Dalam penelitian ini yang digunakan  adalah C . odorata forma genuina atau kenanga ylang-ylang.
Tanaman kenanga ylang-ylang merupakan salah satu jenis tanaman penghasil minyak atsiri yang diperoleh dengan cara penyulingan bunga kenanga. Minyak atsiri ylang-ylang  banyak  dimanfaatkan  dalam industri  parfum,  kosmetik,  sabun,  dan aromaterapi  sehingga  memiliki  nilai ekonomi  yang  tinggi  (Sari  dan  Supartono 2014).
Menurut  Anggia  (2014),  minyak kenanga  juga  dapat  digunakan  sebagai antibakteri  karena  mengandung  gugus hidroksil  (-OH)  dan  karbonil.  Sementara itu, minyak atsiri bunga kenanga memiliki sifat  antibakteri  karena  mengandung komponen aktif berupa kariofilen (Erindyah  2002).  Senyawa  kariofilen merupakan  senyawa  golongan  seskuiter- pen yang memiliki sifat sebagai antiinflamasi  antibakteri,  dan  pencegah kuman.  Bunga  kenanga  mengandung minyak atsiri, flavanoid, dan saponin yang bermanfaat  sebagai  antibakteri  alami (Dusturia et  al .  2016).  Minyak  atsiri kenanga  memiliki  efek  antidepresan  dan obat penenang bagi manusia ( Zhang et al. 2016).
Budidaya  tanaman  kenanga  ylang- ylang perlu dilakukan supaya ketersediannya  di  alam  tetap  tersedia, Dalam  budidaya  kenanga  ylang-ylang, produk yang dipanen petani adalah bunga. Bunga  merupakan  produk  utama  yang dipetik  untuk  dijadikan  produk  turunan maupun digunakan langsung untuk keperluan bahan ritual budaya. Pemetikan bunga dilakukan secara rutin, menyebabkan  perkembangan  bunga  tidak sampai  menjadi  buah,  akibatnya  produksi benih  terhambat.  Selain  itu  perbanyakan kenanga  juga  dapat  dilakukan  dengan menggunakan  benih  atau  anakan  alam. Akan tetapi, dalam pelaksanaan perkembangbiakannya sering terjadi hambatan, terutama dalam hal ketersediaan  benih  yang  bermutu  tinggi dan dalam jumlah yang banyak (Handayani 2018).
Kerusakan benih diketahui
disebabkan  oleh  kerusakan  fisik  dan fisiologi. Kerusakan fisiologi dapat terjadi karena  gangguan  organisme  lain  yang hidup dan berkembang pada benih baik di
permukaan  maupun  dalam  embrio  benih. Cendawan adalah salah satu mikroorganisme yang dapat menyebabkan kerusakan  fisiologis  pada  suatu  benih. Cendawan  dapat  menyerang  tanaman secara  langsung,  atau  cendawan  tersebut terbawa  oleh  benih  (Monajjem et  al . 2014).  Adanya  cendawan  pada  benih terjadi  atas  dua  cara  yaitu  infeksi  dan kontaminasi. Infeksi terjadi ketika cendawan dan bakteri berada dalam benih karena  tertular  di  lapangan  sedangkan kontaminasi ialah ketika cendawan tersebut  berada  pada  permukaan  yang terjadi karena melekatnya kotoran bersama  benih.  Harahap et  al. (2015) menyatakan  salah  satu  kasus  benih  yang tertular  cendawan  yaitu  pada  benih Brassicaceae. Pada  benih  yang  tertular ditemukan tiga cendawan yaitu
Aspergillus  flavus,  Curvularia  lunata dan
A. niger .
Teknik  pengujian  kesehatan  benih dapat  dilakukan  dengan  metode  secara langsung  maupun  secara  tidak  langsung. Metode  uji  kesehatan  langsung  dapat dilakukan dengan menggunakan air cucian benih,sedangkan  metode  uji  kesehatan secara tidak langsung yaitu dapat dilakukan  dengan  beberapa  cara  yaitu  uji blotter  testn  (uji  diatas  kertas),selanjutnya dengan  metode  inkubasi  dengan  media agar dekstrose kentang (ADK).
Kesehatan  benih  menjadi  perhatian utama dalam pengelolaan budidaya tanaman  kehutanan  maupun  hortikultura. Benih yang sehat akan menghasilkan bibit yang  sehat  pula.  Oleh  karena  itu,  uji kesehatan  benih  kenanga  ylang-ylang perlu dilakukan untuk menjamin budidaya kenanga  ylang-  ylang  lebih  baik.  Tujuan dari  penelitian  ini  adalah  untuk  menguji kesehatan  benih  dan  mengidentifikasi
Jurnal Hutan Tropika (Tropical Forest Journal) e-ISSN: 2656-9736  / p-ISSN: 1693-7643
Vol. XV No.2 / Desember 2020.  Hal. 51-61
cendawan  yang  terbawa  benih  kenanga ylang-ylang.

## Manfaat Penelitian
Penelitian  ini  diharapkan  dapat menghasilkan dan menyediakan informasi mengenai kesehatan benih kenanga ylang- ylang.  Hasil  penelitian  ini  diharapkan dapat  digunakan  sebagai  rekomendasi untuk  bahan  acuan  masyarakat  dalam menguji kesehatan benih kenanga

## METODE PENELITIAN

## Waktu dan Tempat
Penelitian  dilaksanakan  pada  bulan Januari sampai dengan April 2020. Lokasi penelitian di Laboratorium Patologi Hutan Departemen Silvikultur Fakultas
Kehutanan  Institut Pertanian Bogor.

## Alat dan Bahan
Alat yang digunakan dalam penelitian  ini  adalah    labu  erlenmeyer, cawan  petri,  gelas  obyek  dan  gelas penutup, kertas saring steril, jarum isolasi, pinset,  alat  tulis,  mikroskop  dan  galah. Adapun  bahan  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  benih  kenanga  umur 11  bulan  dan  benih  baru  panen,  akuades, spiritus,  air  steril  dan  media  agar dekstrosa  kentang  (ADK),  dan  larutan NaClO (natrium hipoklorit/kloroks).

## Prosedur Penelitian

## Persiapan benih kenanga
Benih  kenanga  ylang-ylang  yang digunakan  dalam  penelitian  ini  diunduh dari  salah  satu  pohon  kenanga  yang
berada  di  halaman  Asrama  putri  IPB University
(koordinat: 6 o 33’23.0”S 106 o 43’55.0”E).  Pengunduhan  dilakukan dengan cara memetik buah langsung  yang sudah masak dari pohon dengan menggunakan  galah.  Buah  yang  dipilih adalah buah yang masih utuh, tidak busuk, dan  berwarna  hijau  tua  atau  ungu kehitaman.  Kriteria  buah  kenanga  ylang- ylang  sehat  yaitu  bentuk  buah  oval  dan memiiki  warna  hijau  ketika  masih  muda dan  berwarna  ungu  kehitaman  dengan daging  buah  yang  lembek  ketika  telah masak.  Buah  kenanga  ylang-ylang  yang tidak sehat yaitu buah memiliki cacat dari bentuk, maupun buah yang berbeda warna dari buah sehat.
Benih  kenanga  ylang-ylang  yang digunakan  untuk  uji  kesehatan  benih adalah  (1)  benih  yang  sudah  disimpan selama 11 bulan dalam refrigerator. Benih ini merupakan koleksi benih dari Laboratorium  Silvikultur.  (2)  benih  yang langsung  diekstrak  dari  buah  kenanga setelah  diunduh.  Kedua  benih  yang  diuji tersebut  diambil  dari  pohon  induk kenanga ylang-ylang yang sama.

## Pemeriksaan  benih  dengan  metode inkubasi
Pada metode inkubasi, contoh benih kenanga  diinkubasi  pada  media  ADK. Benih-benih  kenanga  yang  diperoleh disterilisasi permukaan dengan mencelupkannya  ke  dalam  NaClO  1% selama  3  menit,  kemudian  benih  dibilas dengan  air  steril  sebanyak  3  kali  dengan waktu  1-2  menit  setiap  pembilasan. Perlakuan  kontrol  dilakukan  pada  benih yang  tidak  disterilkan,  hanya  direndam dalam akuades selama 3 menit. Selanjutnya  benih  dikeringkan  di  atas kertas  saring  yang  sudah  steril  dan
disemai  di  atas  ADK  di  dalam  cawan petri. Setiap perlakuan pengujian menggunakan 50 benih (10 benih/cawan). Benih  kemudian  diinkubasi  selama  7  hari pada suhu kamar.
Pengamatan  dilakukan  setiap  hari dengan  menghitung  jumlah  benih  yang terinfeksi  cendawan  dan  jenis  cendawan yang muncul. Jumlah benih yang terinfeksi  cendawan  kemudian  dihitung persentase  infeksinya  per  hari.  Persentase infeksi  (PI)  dihitung  berdasarkan  rumus Permana  dan  Rustiani  (2016)  sebagai berikut:
Setiap jenis cendawan yang ditemukan dihitung frekuensi
kemunculannya  pada  benih  pada  hari  ke- pengamatan.  Frekuensi  serangan  (FS) pada  benih  dihitung  berdasasrkan  rumus sebagai berikut:
FS =
x100 %
Isolasi,  pemurnian  dan  identifikasi cendawan
Cendawan  yang  tumbuh  pada  benih kenanga  ylang-ylang diisolasi  pada media ADK,  kemudian  diinkubasi  pada  suhu kamar  selama  3-7  hari.  Cendawan  yang tumbuh  dimurnikan  untuk  diidentifikasi. Identifikasi  dilakukan secara makroskopis dan  mikroskopis.  Pengamatan  secara makroskopis  isolat  cendawan  dilakukan selama 8 hari. Pengamatan yang dilakukan adalah  mengamati  perkembangan  dan pertumbuhan  isolat  meliputi  diameter koloni, tingkat pertumbuhan, warna koloni,  dan  profil  koloni.  Identifikasi secara  mikroskopis  dilakukan  dengan
pembuatan  preparat  atau  sub  kultur  yang bertujuan  melihat  struktur  hifa  (ada tidaknya  sekat  dan  cabang),  warna  dan bentuk  konidia.  Pembuatan  sub  kultur yang  dilakukan  dalam  penelitian  ini menggunakan  2  cara  yaitu  pembuatan preparat  secara  langsung,  dan  pembuatan preparat  menggunakan  metode Riddle. Pembuatan  preparat  secara  langsung dilakukan  dengan  mengambil  bagian isolat  berupa  hifa  untuk  diamati  pada mikroskop. Pembuatan preparat ini bertujuan melihat morfologi isolat cendawan  berdasarkan  umur  biakan, sedangkan metode Riddl e bertujuan mengamati  struktur  mikroskopis  isolat secara  utuh  (Sanjaya  2010).  Metode Riddle  juga  digunakan  untuk  mengamati pertumbuhaan morfologi seperti pembentukan  hifa  dari  sebelum  bersekat menjadi sudah bersekat dan perkecambahan  konidia.  Masing-masing preparat  diamati  di  bawah  mikroskop  dan komputer serta optilab.

## Rancangan Percobaan dan Analisis Data
Rancangan  penelitian  yang  digunakan adalah  rancangan  acak  lengkap  dengan  satu faktor.  Faktor yang  dicobakan  adalah persentase  infeksi  cendawan  pada  benih kenanga  ylang-ylang,yang  terdiri  atas  dua taraf  yaitu  benih  tanpa  sterilisasi  permukaan dan  sterilisasi  permukaan.  Masing-masing taraf  terdiri  atas  lima  ulangan,  satu  ulangan terdiri atas 10 benih kenanga ylang-ylang.
Data  yang  diperoleh  dari  pengamatan kuantitatif diuji dengan analisis ragam (uji F). Perbedaan yang berpengaruh nyata pada uji F diuji  lanjut  dengan  menggunakan Duncan Multiple  Range  Test (DMRT)  pada  taraf kesalahan  5%.  Pengolahan  data  dilakukan dengan  menggunakan software SAS  9.1.3 portable .
Jurnal Hutan Tropika (Tropical Forest Journal) e-ISSN: 2656-9736  / p-ISSN: 1693-7643
Vol. XV No.2 / Desember 2020.  Hal. 51-61

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Persentase  Infeksi  Cendawan  pada Benih Kenanga Ylang-ylang
Mutu  benih  yang  baik  merupakan salah satu faktor keberhasilan
pengusahaan  hutan.  Kondisi  benih  tidak benar-benar  terbebas  dari  mikrob  dapat menyebabkan kerusakan benih. Cendawan merupakan  salah  satu  mikrob  penyebab utama  kerusakan  biji  ataupun  benih. Cendawan  dapat  berada  di  dalam  dan  di luar  kulit  biji,  di  dalam  gametofit,  dan  di dalam embrio (Rahayu 1998.
Benih  kenanga  ylang-ylang  yang digunakan  dalam  penelitian  berumur simpan  11  bulan  dan  benih  baru  panen. Persentase serangan cendawan pada benih kenanga  ylang-ylang  pada  benih  umur simpan 11 bulan tidak berbeda nyata baik pada benih yang tidak disterilisasi maupun benih  yang  disterilisasi  permukaan.  Pada benih yang baru dipanen, kedua perlakuan berbeda  nyata  hingga  pada  hari  ke-4, sedangkan  pada  hari  ke-5  tidak  berbeda nyata. Persentase rata-rata infeksi cendawan  pada  benih  kenanga  ylang- ylang  pada  benih  yang  tidak  disterilisasi lebih  tinggi  daripada  benih  yang  diberi perlakuan sterilisasi permukaan, baik pada benih umur simpan 11 bulan maupun pada benih baru panen (Tabel 1).

## Cendawan Terbawa Benih Ylang-ylang
Berdasarkan  hasil  isolasi  dari  benih ylang-ylang  umur  simpan  11  bulan  dan benih  baru  panen  yang  tidak  disterilisasi dan  disterilisasi  diperoleh  lima  isolat cendawan  yang  sama,  yaitu  cendawan A. niger, A. flavus, Penicillium sp., Paecilomyces sp.  dan Botryodiplodia sp. (Gambar 1). Cendawan yang paling
Tabel 1. Persentase infeksi cendawan terbawa  benih  kenanga  ylang- ylang Perlakuan Rata rata infeksi hari ke- 1 2 3 4 5 Benih umur 11 bulan Tanpa Sterilisasi 30a  93a 100a  100a  100a Sterilisasi Permukaan  10a  70a 100a  100a  100a Benih baru panen Tanpa Sterilisasi 40a  100a  100a  100a  100a Sterilisasi Permukaan 14b  58b 70b 86b 100a
*Angka-angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama pada  kolom  yang  sama,  tidak  berbeda  nyata pada taraf 5%.
banyak  menginfeksi  benih  kenanga ylang-ylang adalah A. niger. Hal ini dapat dilihat  dari  banyaknya  koloni  cendawan A. niger pada benih umur simpan 11 bulan yaitu  sebanyak  72  koloni  pada  perlakuan tanpa  sterilisasi  dan  64  koloni  pada perlakuan  sterilisasi  permukaan.  Begitu juga  pada  benih  yang  baru  dipanen diketemukan 70 koloni cendawan A. niger pada  benih  yang  tidak  disterilisasi  dan  68 koloni  pada  benih  yang  disterilisasi permukaan.  Koloni  cendawan Aspergillus spp.  tersebut  diketahui  mudah  menyebar dan  merupakan  cendawan  paling  banyak ditemukan  atau  terbawa  benih  (Pamekas 2013; Hasanah2017).
Hasil pengamatan menunjukkan jumlah  koloni  cendawan A.  niger,  A. flavus , Penicillium sp.  pada  benih  yang daripada  benih  yang  diberi  perlakuan sterilisasi     permukaan,   baik  pada benih
tidak disterilisasi lebih tinggi
Gambar 1.  Frekuensi kemunculan  cenda- wan  yang  terbawa  benih kenanga ylang-ylang pada umur simpan 11 bulan (a) dan
0 bulan (b)
umur  11  bulan  maupun  pada  benih  baru panen. Hal tersebut dikarenakan perlakuan
sterilisasi  permukaan  pada  benih  dapat menyebabkan  pelambatan  infeksi  benih, dan menyebabkan matinya mikrooganisme di permukaan benih kenanga  ylang-ylang.  Hal  ini  sesuai dengan  Harahap  et  al.  (2015),  sterilisasi permukaan dapat mengurangi kontaminasi oleh  cendawan  pada  permukaan  benih. Cendawan A.  niger,  A.  flavus ,  dan Penicillium sp.  diketahui  merupakan cendawan  gudang  ( storage  fungi )  dan cendawan      lapangan            ( field fungi ).
Cendawan  gudang  merupakan  kelompok cendawan  yang  berkembang  selama  biji dalam  penyimpanan  dan  dapat  tumbuh tanpa adanya air bebas pada media dengan tekanan  osmotik  tinggi.  Cendawan  ini sudah  terdapat  pada  biji  di  lapangan dengan  persentase  yang  sangat  rendah (kurang  dari  1%)  dan  merupakan  sumber inokulum potensial yang dapat berkembang  di  penyimpanan  (Rahayu 1998).  Cendawan  gudang  juga  dapat menginfeksi  jaringan  benih  melalui  luka pada  pericarp  atau  testa  (Agarwal  dan Sinclair 1996).
Karakter makroskopis
dan mikroskopis  cendawan  terbawa  benih kenanga  ylang-ylang  dapat  dilihat  pada Gambar 2 dan Tabel 2. Ciri-ciri cendawan
A. niger yaitu mempunyai koloni berwarna  hitam,  hifa  bersekat,  memiliki konidia berbentuk  bulat (3.62 x 3.45 μm) dan terbentuk di atas vesikula.
Cendawan A. flavus memiliki koloni berwarna  hijau,  kasar,  memiliki  hifa bersekat, konidia berwarna hijau, konidiofor hialin, dan konidia dengan tipe pertumbuhan  radial,  yang  berbentuk globose dengan diameter berukuran 3.66 x 3.38 μm.
Koloni Penicillium sp.  tampak  atas berwarna  berwarna  hijau  gelap  dengan halo berwarna kuning, struktur koloni
70 44 12 24 4 68 42 4 34 6 0 10 20 30 40 50 60 70 80 Fr e ku e n si k e m u n cu lan (% ) Tanpa Sterilisasi Sterilisasi Permukaan (a) 72 46 14 22 6 64 38 8 34 4 0 10 20 30 40 50 60 70 80 Fre k u en si k em u n cu la n (% ) Tanpa Sterilisasi Sterilisasi Permukaan (b)
Jurnal Hutan Tropika (Tropical Forest Journal) e-ISSN: 2656-9736  / p-ISSN: 1693-7643
Vol. XV No.2 / Desember 2020.  Hal. 51-61
seperti  tepung  dan  mudah  menyebar, bagian  pinggir  koloni  merata  dan  halus. Cendawan Penicillium sp. memiiki ukuran konidia  2.5  x  2.44  μm.  Cendawan A. niger,  A.  flavus dan Penicillium sp.  juga bersifat  patogen  pada  benih  sengon.  Uji patogenisitas secara in vitro menunjukkan cendawan A.  flavus dan A.  niger mampu menyebabkan  kejadian  penyakit  pada benih sengon sebesar 100%. Benih sengon bahkan  tidak  mampu  berkecambah  akibat serangan A.  niger .  Gejala  serangan A. niger yang  ditimbulkan  yaitu  dengan melingkupi  seluruh  benih  dengan  spora sehingga  sebagian  besar  benih  busuk  dan tidak  mampu  berkecambah  serta  gagal berkecambah.  Gejala  serangan A.  flavus juga  sama,  melingkupi  seluruh  bagian benih sengon dengan spora. Benih sengon yang  terserang A.  flavus hanya  mampu berkecambah 10% dengan gejala nekrosis pada  bagian  akar  (Istikorini  et  al.  2020). Cendawan A.  niger,  A.  flavus ,  dan Penicillium sp. diketahui merupakan
Cendawan  gudang  merupakan  kelompok cendawan  yang  berkembang  selama  biji dalam  penyimpanan  dan  dapat  tumbuh tanpa adanya air bebas pada media dengan tekanan  osmotik  tinggi.  Cendawan  ini sudah  terdapat  pada  biji  di  lapangan dengan  persentase  yang  sangat  rendah (kurang  dari  1%)  dan  merupakan  sumber inokulum potensial yang dapat berkembang  di  penyimpanan  (Rahayu 1998).  Cendawan  gudang  juga  dapat menginfeksi  jaringan  benih  melalui  luka pada  pericarp  atau  testa  (Agarwal  dan Sinclair 1996).
Cendawan Paecilomyces
sp., memiliki  karateristik  mikroskopis  mirip dengan Penicillium sp.  Koloni  cendawan Paecilomyces sp., berwarna kuning dengan pertumbuhan koloni yang melingkar,  konidiofor  yang  hialin,  dan konidia bulat (4.07 x 3.30 μm). Cendawan Paecilomyces sp.,  memiliki  karateristik mikroskopis  mirip  dengan Penicillium sp. Koloni Paecilomyces sp.  Diketahui  tidak
Gambar 2 Karakteristik makroskopik (atas) dan mikroskopik (bawah) cendawan terbawa benih  kenanga  ylang-ylang.  Cendawan A.  niger (A), A.  flavus (B), Penicillium sp., Paecilomyces sp. (D) dan Botryodiplodia sp. (E)
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 1 2 3 4 5 6 7 8 D ia m ete r (c m ) Lama inkubasi ( hari) Aspergillus niger Aspergillus flavus Penicillium sp. Paecilomyces sp.
Botryodiplodia sp.
pernah  hijau.  Warna  koloni  ini  yang membedakan  dengan  koloni  Penicillium sp.  yang  berwarna  hijau.  Cendawan Paecilomyces sp.  biasanya  dianggap sebagai  kontaminan.  Menurut  Agrios (2005), Penicillium sp. memasuki jaringan tanaman melalui luka namun bisa menyebar  dari  buah  atau  biji  yang terinfeksi  dan  kemudian  kontak  dengan biji yang sehat melalui kulit biji.
Cendawan
Botryodiplodia sp. memiliki warna koloni abu-abu kehitaman pada  permukaan  atas  pada  media  ADK, dan  warna  hitam  berserat  pada  bagian bawah  media  ADK. Botryodiplodia sp. memiliki      spora      berbentuk    kerucut.
Cendawan
Botryodiplodia
sp. termasuk  dalam  golongan  cendawan parasit  lemah  yang  menginfeksi  melalui luka  yang  dapat  berasosiasi  dengan  biji tanaman kehutanan. Cendawan ini
diketahui  terdapat  pada  benih  sengon, pinus dan gmelina (Rahayu 1998; Semangun  2007;  Istikorini  et  al.  2020).
Inokulum cendawan tersebut dapat ditemukan  di  dalam  bagian  tanaman seperti biji, kulit buah, cabang dan ranting tanaman (Salamiah 2008). Gejala
serangan  Botryodiplodia  sp.  pada  benih sengon  yaitu  dengan  melingkupi  kulit benih  sehingga  benih  menjadi  busuk, gumosis,  dan  nekrosis  pada  bagian  akar. Sebesar  20%  benih  mampu  berkecambah dengan  baik  akibat  miselium  yang melingkupi  kulit  benih  tidak  sampai menyerang  kecambah  sengon.  Serangan Botryodiplodia sp.  pada  benih  dapat menyebabkan  busuk  akar,  lodoh,  layu, gumosis,  dan  kematian  pada Pinus spp. dan Mangifera  indica dan  secara  umum serangan Botryodiplodia sp.  menurunkan potensi  perkecambahan  (Maciel et  al . 2015: Istikorini et al . 2020).
Tabel 2   Data    mikroskopis    morfologi cendawan patogen yang terbawa benih kenanga ylang-ylang Cendawan Diameter Miselium (µm) Konidia (µm) Panjang (X) Lebar (Y) Aspergillus niger 8,74 3.62 3.45 A. flavus 7,71 3.66 3.38 Penicillium sp. 7,02 2.45 2.44 Paecilomyces sp. 11,64 4.07 3.30 Botryodiplodia sp. 6,39 11,84 13,10
Gambar  3.  Pertumbuhan    diameter  rata- rata  isolat  cendawan  terbawa benih kenanga ylang-ylang
Jurnal Hutan Tropika (Tropical Forest Journal) e-ISSN: 2656-9736  / p-ISSN: 1693-7643 Vol. XV No.2 / Desember 2020.  Hal. 51-61
Cendawan A.  niger,  A.  flavus, dan Penicillium sp.  diketahui  merupakan cendawan gudang ( storage fungi ). Cendawan  gudang  merupakan  kelompok cendawan  yang  berkembang  selama  biji dalam  penyimpanan  dan  dapat  tumbuh tanpa adanya air bebas pada media dengan tekanan  osmotik  tinggi.  Cendawan  ini sudah  terdapat  pada  biji  di  lapangan dengan  persentase  yang  sangat  rendah (kurang  dari  1%)  dan  merupakan  sumber inokulum potensial yang dapat berkembang  di  penyimpanan  (Rahayu
1998).  Cendawan  gudang  juga  dapat menginfeksi  jaringan  benih  melalui  luka pada  pericarp  atau  testa  (Agarwal  dan Sinclair 1996).
Pertumbuhan diameter rata-rata
kelima  isolat  cendawan  benih  kenanga ylang-ylang  diamati  selama  8  hari (Gambar 3). Isolat yang memiliki pertumbuhan  yang  sangat  cepat  yaitu isolat  cendawan Botryodiplodia sp.  dan Paecilomyces sp. Sedangkan isolat cendawan Penicillium sp. memiliki pertumbuhan  yang  lambat  dibandingkan dengan cendawan lainnya.

## KESIMPULAN DAN SARAN

## Kesimpulan
Jenis  cendawan  yang  ditemukan terbawa  benih  kenanga  ylang-ylang  umur simpan 11 bulan dan 0 bulan adalah sama, yaitu  cendawan Aspergillus  niger,  A .flavus, Penicillium sp ., Botryodiplodia sp. dan Paecilomyces sp.  Cendawan A.  niger merupakan  cendawan  yang  dominan, sedangkan  cendawan  yang  paling  sedikit yaitu Botryodiplodia sp. Cendawan Paecilomyces sp.  dan Botryodiplodia sp.
memiliki  pertumbuhan  cepat,  sedangkan Penicillium sp. memiliki kecepatan pertumbuhan yang lebih lambat dibandingkan dengan isolat yang lainnya.

## Saran
Penelitian  selanjutnya  yang  perlu dilakukan  adalah  uji  patogenesitas  kelima cendawan tersebut, dan uji viabilitas benih kenanga  ylang-ylang  yang  terinfeksi  oleh cendawan tersebut.

## DAFTAR PUSTAKA
Agarwal VK, Sinclair JB. 1996. Principles of  Seed  Pathology  Second  Edition. New York (US): CRC Press.
Agrios  GN.  2005. Plant  Pathology .
California  (US):  Elsevier  Academic Pr.
Amalia  RU,  Rurini  R,  Unggul  PJ.  2013.
Pengaruh konsentrasi minyak kenanga  ( Cananga  odorata )  terhadap aktivitasnya sebagai antiradikal bebas. J.  Kimia  Student 1(2):  264- 268.
Anggia  FT,  Yuharmen  N,  Balatif.  2014.
Perbandingan  isolasi  minyak  atsiri dari bunga kenanga ( Cananga odorata (Lam.)  Hook.f  dan  Thoms)
cara  konvensional  dan  microwave serta  uji  aktivitas  antibakteri  dan antioksidan. Jurnal Online
Mahasiswa Fakultas Matematika dan Ilmu  Pengetahuan  Alam .  1(2):344- 345.
Dutsuria  N,  Hikamah  SR,  Sudiarti  D. 2016.  Efektivitas  antibakteri  bunga kenanga  ( Cananga  odorata )  dengan metode konvensional terhadap
pertumbuhan Staphylococcus  aureus. Bioshell . 5(1):324-332.
Erindyah  R,  Maryati  W.  2002.  Aktivitas antibakteri minyak atsiri pinus terhadap S. aureus dan  E.coli. Jurnal Farmasi Indonesia . 4(1):20-24.
Handayani  T.    2018.    Diversity,  potential and  conservation  of  Annonaceae  in bogor  botanical  gardens  indonesia. Jurnal Biodiversitas. 19(2):546–558. Harahap  AS,  Yuliani  TS,  Widodo.  2015.
Deteksi  dan  identifikasi  cendawan terbawa  benih  Brassicaceae. Jurnal Fitopatologi  Indonesia .  11(3):  97- 103.
Hasanah,N.2017.  Deteksi  dan  identifikasi cendawan  terbawa    benih    bawang merah Allium  cepa  var  aggregatum [skripsi]. Bogor (ID): IPB.
Istikorini  Y,  Wulandari  AS,  Sari  OY.
2020. Fungi assoasiated with Falcataria  moluccana (L.)  seed. IOP Conference Series : Earth and Environmental Science 468:1-5.
Maciel  CG,  Muniz  MFB,  Mezzomo  R,
Reiniger  LRS.  2015. Lasiodiplodia theobromae associated  with  seeds  of
Pinus spp.  originated  from  the northwest  of  Rio  Grande  do  Sul Brazil. Scientia Forestalis.
43(107):639-646.
Agarwal VK, Sinclair JB. 1996. Principles of  Seed  Pathology  Second  Edition. New York (US): CRC Press.
Agrios  GN.  2005.  Plant  Pathology  . California  (US):  Elsevier  Academic Pr. Amalia RU, Rurini R, Unggul PJ. 2013.  Pengaruh  konsentrasi  minyak kenanga  (Cananga  odorata)  terhadap aktivitasnya sebagai antiradikal
bebas.  J.  Kimia  Student  1(2):  264-
268.
Anggia  FT,  Yuharmen  N,  Balatif.  2014. Perbandingan  isolasi  minyak  atsiri
dari bunga kenanga (Cananga odorata (Lam.)  Hook.F  dan  Thoms)  cara konvensional dan microwave serta uji aktivitas  antibakteri  dan  antioksidan. Jurnal  Online  Mahasiswa  Fakultas Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan Alam. 1(2):344-345.
Dutsuria  N,  Hikamah  SR,  Sudiarti  D. 2016.  Efektivitas  antibakteri  bunga kenanga  (Cananga  odorata)  dengan metode konvensional terhadap pertumbuhan  Staphylococcus  aureus. Bioshell. 5(1):324-332.
Erindyah  R,  Maryati  W.  2002.  Aktivitas antibakteri minyak atsiri pinus terhadap  S.  aureus  dan  E.coli.  Jurnal Farmasi Indonesia. 4(1):20-24.
Handayani  T.  2018.  Diversity,  potential and  conservation  of  Annonaceae  in Bogor  botanical  gardens  indonesia. Jurnal Biodiversitas. 19(2):546–558.
Harahap  AS,  Yuliani  TS,  Widodo.  2015. Deteksi  dan  identifikasi  cendawan terbawa  benih  Brassicaceae.  Jurnal Fitopatologi Indonesia. 11(3): 97-103. Hasanah,N.2017.  Deteksi  dan  identifikasi cendawan  terbawa  benih  bawang merah  Allium  cepa  var  aggregatum [skripsi]. Bogor (ID): IPB.
Istikorini  Y,  Wulandari  AS,  Sari  OY. 2020. Fungi assoasiated with Falcataria  moluccana  (L.)  seed.  IOP Conference Series: Earth and Environmental Science 468:1-5.
Maciel  CG,  Muniz  MFB,  Mezzomo  R, Reiniger  LRS.  2015.  Lasiodiplodia theobromae  associated  with  seeds  of Pinus  spp.  originated  from  the northwest  of  Rio  Grande  do  Sul Brazil. Scientia Forestalis. 43(107):639-646.
Monajjem S, Zainali E, Ghaderi F, Soltani E, Chaleshtari MH, Khoshkdaman M. 2014.  Evaluation  seed-born  fungi  of
Jurnal Hutan Tropika (Tropical Forest Journal) e-ISSN: 2656-9736  / p-ISSN: 1693-7643
Vol. XV No.2 / Desember 2020.  Hal. 51-61
rice Oryza sativa L. and that effect on seed  quality.  Jurnal  Nigeria  Plant Pathol Microb.5 (4) : 1-7.
Pamekas  T.  2013.  Penyakit  Pascapanen Fisiologi  Patologi  dan  Pengendalian.
Jakarta(ID): Pertelon Media. Permana ND, Rustiani US. 2016. Identifikasi Cendawan Penyebab
Penyakit  Tanaman.  Jakarta  (ID): Depublish. Pitt  JI,  Hocking  AD.  1985.  Fungi  and Food Spoilage. Sydney (US): Academic  Pr.  Pujiarti  R,  Widowati, Kasmudjo,  Sunarta.  (2015).  Kualitas komposisi kimia dan aktivitas antioksidan minyak kenanga (Cananga odorata). Jurnal Ilmu Kehutanan. 9(1):3–11.
Kakde RB, Badar KV, Pawar SM, Chavan AM.  2012.  Storage  mycoflora  of oilseed: a review. Jurnal Int
Multidiscip Res. 2 (3):39–42. Rahayu S. 1998. Penyakit Tanaman Hutan di  Indonesia  (Gejala,  Penyebab,  dan Teknik Pengendaliannya). Yogyakarta (ID): Penerbit Kanisius. Salamiah.  2008.  Studi  sumber  inokulum dan cara penyebaran
patogen
Botryodiplodia  theobromae  penyebab penyakit  kulit  diplodia  pada  jeruk siambanjar.  Jurnal  Agrin.  12(1):86-
99.
Samson RA. 2017. Training course for the
identification of Aspergillus, Penicillium and Talaromyces. Netherlands  (NL):  Westerdijk  Fungal
Biodiversity  Institute.  Sanjaya  Y, Nurhaeni H, Halima M. 2010. Isolasi, identifikasi,  dan  karakteristik  jamur entomopatogen  dari  larva  Spodoptera litura  (fabricus).  Jurnal  Ilmu-ilmu Hayati dan Fisik 12(3):136-141.
Sari  GWP,  Supartono.  2014.  Ekstraksi minyak  kenanga  (Cananga  odorata) untuk  pembuatan  skin  lotion  penolak serangga. Jurnal MIPA 37(1): 62-70.
Semangun  H.  2007.  Penyakit-penyakit Tanaman  Hortikultura  di  Indonesia Edisi  ke-2.  Yogyakarta  (ID):  UGM Pr.
Shehu  KM,  Bello  T.  2011.  Effect  of environmental  factors  on  the  growth of Aspergillus species associated with stored  millet  grains  in  sokoto. Nigerian
Journal  of  Basic  and  Applied  Science.19 (2) : 218 – 223.
Suryaranarayanan  TS,  Kumaresan  V, Johson JA. 2001. Fungal endophytes:the  tropical  dimension. In.  Tricomycetes  and  other  fungal groups  New  Hamphire  (US):  Science Publisher.
Zhang N, Zhang L, Feng L, Yao L. 2016. The  anxiolytic  effect  of  essential  oil of Cananga odorata exposure on mice and  determination  of  its  major  active constituents.  Phytomedicine  23:1727- 1734.