Jurnal SainHealth Vol. 3 No. 2 Edisi September 2019 © Fakultas Ilmu Kesehatan Universitas Maarif Hasyim Latif Sidoarjo p-ISSN : 2548-8333 e-ISSN : 2549-2586

## PERBANDINGAN METODE STANDAR NASIONAL INDONESIA DAN NON STANDAR NASIONAL INDONESIA DALAM PENENTUAN KADAR KARBOHIDRAT TOTAL
Nurfadilah 1) , Anton Yuntarso 2) , Dheasy Herawati 3)
Program Studi D3 Ahli Teknologi Laboratorium Medik, FakultasIlmuKesehatan, Universitas Maarif Hasyim Latif Email : dheasy_herawati@dosen.umaha.ac.id

## ABSTRACT
Carbohydrates  are  a  source  of  energy  needed  by  the  body  because  carbohydrates  are  an important food component. According to SNI (Standar Nasional Indonesia), carbohydrate content in food  must  not  be  less  than  60%.  In  this  study,  researchers  wanted  to  compare  the  method  of determining  carbohydrate  content  according  to  SNI  and  according  to  AOAC  (Non-SNI),  both methods  used  Luff  Schoorl,  in  the  SNI  method there  was  an  addition  of  CH 3 COOH,  whereas  the Non-SNI  method  did  not  add  CH 3 COOH.  In this  study  a  sample  of  a  mixture of  glucose,  sucrose and NaCl was used.  From the research results obtained  indicate that  there is a difference  between the SNI method and Non-SNI method, where the Non-SNI method is better used at a 10% sample concentration  with  250X  dilution  and  20%  sample  concentration  at  500x  dilution,  whereas  on the SNI method is better used at 30% sample concentration with 500X dilution, and the accuracy value obtained is 94.14% to 97.23%.
Keywords : Total Carbohydrates, SNI Methods, Non-SNI Methods.

## PENDAHULUAN
Karbohidrat  memegang  peranan  penting dalam  alam  karena  merupakan  sumber  energi utama  bagi  manusia  dan  hewan.  Sumber-sumber karbohidrat berasal dari padai-padian atau serelia, umbi-umbian,  kacang-kacangan  kering  dan  gula (Siregar, 2014).
Karbohidrat  penting  untuk  kontraksi  otot, maka  konsumsi  karbohidrat  60-70%  menjadi energi  total.  Konsumsi  karbohidrat  yang  tinggi akan  meningkatkan  simpanan  glikogen  pada tubuh dan semaikn tinggi simpanan glikogen akan semakin  tinggi  pula  aktivitas  yang  dapat dilakukan, sehingga akan mempengaruhi kesegaran jasmani (Koswara, 2008)
Semua karbohidrat terdiri atas unsur karbon (C), hydrogen (H)m dan oksigen (O). Karbohidrat memiliki  rumus  umum  C n (H 2 O) n atau  (CH 2 O) n . Secara  alami  ada  tiga  bentuk  karbohidrat  yang terpenting, yaitu  monosakarida, oligosakarida dan polisakarida.  Polisakarida  merupakan  kelompok
yang paling banyak terdapat di alam (Sudarmadji, dkk., 1989).
Karbohidrat  dapat  ditentukan  kadarnya menggunakan  banyak  metode,  salah  satunya memakai  metode  SNI  dan  non-SNI,  dimana terdapat  perbedaan  prosedur  serta  pereaksi  dalam menentukan kadar karbohirdrat. Pada uji karbohidrat dengan cara Luff Schoorl menggunakan  metode  SNI,  terdapat  penambahan CH 3 COOH 3%, namun metode non-SNI tidak ada penambahan  CH 3 COOH  3%.  Sedagkan  yang diketahui  selama  ini  bahwa  analisa  gula  berjalan pada suasana basa.
Berdasarkan  latar  belakang  tersebut  perlu dilakukan  penelitian  perbedaan  metode  SNI  dan non-SNI dalam penentuan  kadar karbohidrat serta keakurasiannya  dengan  menggunakan  sampel karbohidrat buatan yang telah diketahui konsentrasinya.
Jurnal SainHealth Vol. 3 No. 2 Edisi September 2019 © Fakultas Ilmu Kesehatan Universitas Maarif Hasyim Latif Sidoarjo p-ISSN : 2548-8333 e-ISSN : 2549-2586

## METODOLOGI PENELITIAN

## Jenis Penelitian
Penelitian ini merupakan penelitian eksperimental  dan  dilakukan  di  Laboratorium Kimia  Makanan  dan  Minuman  Fakultas  Ilmu Kesehatan  Universitas  Maarif  Hasyim  Latif Sidoarjo pada Februari – April 2019

## Alat Penelitian
Alat  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini adalah  buret,  statif,  blub,  Erlenmeyer,  labu  ukur, gelas ukur, gelas beaker, pipet volume, pipet ukur, pipet tetes, neraca analitik, hot plate , refluk.

## Bahan Penelitian
Bahan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini adalah  larutan Na 2 S 2 O 3 0.1N, HaOH 30%, NaOH 45%,  HCl  30%,  HCl  3%,  CH 3 COOH  3%,  H 2 SO 4 25%,  H 2 SO 4 26.5%,  KI  20%,  aquadest,  indikator PP, larutan amilum 1%, Luff Scoorl. Sampel yang digunakan  adalah  campuran  glukosa  sukrosa  dan NaCl. Konsentrasi sampel 10% (Campuran 1.25 g glukosa  :  1.25  g  sukrosa  :  22.5  g  NaCl). Konsentrasi  sampel  20%  (Campuran  2.5  g glukosa : 2.5 g sukrosa : 20 g NaCl). Konsentrasi 30%  (Campuran  7.5  g  glukosa  :  7.5  g  sukrosa  : 35 g NaCl).

## Prosedur Penelitian Persiapan Sampel
Sampel  karbohidrat  total  konsentrasi  10%, 20% dan 30%  dengan campuran glukosa, sukrosa dan  NaCl  di  add  pada  labu  ukur  250  mL  dan 500 mL.

## Analisa Karbohidrat Metode SNI
Penentuan  kadar  karbohidrat  sesuai  dengan SNI  01-2891-1992.  Dipipet  50  ml  sampel kedalam  Erlenmeyer  ditambahkan  200  ml  HCl 3%,  panaskan  pada  refluk  dengan  suhu hotplate 100 0 C  selama  1,5  jam,  kemudian  didingingkan dan  ditambah  indicator  PP  Kurang  lebih  0,5  ml dan  NaOH  30%  sampai  warna  larutan  berubah menjadi  pink,  ditambahkan  juga  CH 3 COOH  3% sampai  warna  larutan  menjadi  bening.  Tuang semua dalam labu ukur 500 ml, diambil 10 ml dan ditambahkan  25  ml  Luff  Schoorl,  dididihkan
kembali  dengan  refluk  selama  12  menit  dengan suhu  hotplate  200 0 C  selanjutnya  didinginkan  dan ditambah  15  ml  KI  20%  dan  25  ml  H 2 SO 4 25%, selanjutnya dilakukan titrasi dengan Na Thio 0,1N sampai  terbentuk  warna  kuning  muda  dan ditambahkan  amilum  1%  sebanyak  Kurang  lebih 0,5  ml,  kemudian  dititrasi  kembali  sampai  Titik Akhir Titrasi (TAT) berwarna putih susu.

## Analisa Karbohidrat Metode Non SNI
Penentuan  kadar  karbohidrat  sesuai  dengan AOAC  1970.  Dipipet  50  ml  sampel  kedalam Erlenmeyer  kemudian  ditambahkan  10  ml  HCl 30%,  selanjutnya  dipanaskan  pada  refluk  dengan suhu hotplate 100°C  selama  1.5  jam,  kemudian didinginkan  dan  ditambahkan  dan  dilakukan penambahan indicator PP Kurang lebih 0,5 ml dan NaHO  45%  sampai  warna  larutN  BERUBAH MENJADI  PINK  DAN  DITUANG  SEMUA DALAM  LABU  UKUR  500  ML.  DIAMBIL  10 ML  DAN  DITAMBAH  25  ML  Luff  Schoorl, selanjutnya  didihkan  kembali  dengan  refluk selama  12  menit  pada  suhu hotplate 200°C kemudian  didinginkan  dan  ditambah  15  ml  KI 20%  dan  25  ml  H 2 SO 4 26,5%,  dilakukan  titrasi dengan  Na  Thio  0.1  N  sampai  terbentuk  warna kuning  muda  kemudian  ditambah  amilum  1% Kurang lebih 0,5 ml lalu dilakukan titrasi kembali sampai  Titik  Akhir  Titrasi  (TAT)  berwarna  putih susu.
Kadar Karbohidrat Total:
= Mg gula Mg bahan × D × 100%
Keterangan: Mg gula : mg hasil konversi Mg bahan : mg bahan yang digunakan D : pengenceran

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Untuk  mengetahui  persentase  hasil  kadar total karbohidrat adalah Sebagai berikut:
Jurnal SainHealth Vol. 3 No. 2 Edisi September 2019 © Fakultas Ilmu Kesehatan Universitas Maarif Hasyim Latif Sidoarjo p-ISSN : 2548-8333 e-ISSN : 2549-2586

## Tabel 1. Hasil Total Karbohirat
Hasil Total Karbohidrat Metode Konsentrasi fp1250  fp1/500 SNI 10% 8.61% 3.99% 20% 14.16%  18.25% 30% 16.38%  28.24% Non-SNI 10% 9.69% 6.19% 20% 14.37%  19.45% 30% 22.75%  25.00%
Data dari 84 replikasi sampel yang dianalisa didapatkan  hasil    pada  konsentrasi  sampel  10% dengan  metode  non-SNI  pada  pengenceran  250X (1/250),  didapatkan  hasil  lebih  baik  juga  pada konsentrasi  sampel  20%  dengan  pengenceran 500X  (1/500)  menunjukkan  hasil  lebih  baik. Sedangkan  metode  SNI  pada  konsentrasi  sampel 30% dengan pengenceran 500X (1/500), didapatkan hasil yang baik.
Berikut  tabel  untuk  mengetahui  presisi  dan akurasi  antara  metode  SNI  dan  non-SNI  dalam menentukan kadar karbohidrat total.
Tabel 2. Tabel presisi % RSD dan HorRat
Hasil Presisi dengan % RSD Metode Konsentrasi  fp1/250  fp1/500 SNI 10% 4.52 31.45 20% 0.91 2.84 30% 1.14 4.09 Non-SNI 10% 2.68 19.34 20% 0.89 2.78 30% 3.89 1.75 Hasil Presisi dengan % RSD Metode Konsentrasi  fp1/250  fp1/500 SNI 10% 2.95 18.51 20% 0.68 2.2 30% 0.82 3.21 Non-SNI 10% 1.78 12.06 20% 0.63 2.05 30% 2.94 1.34
Tabel 3. Tabel Akurasi dengan % Recovery Hasil % Recovery Metode Konsentrasi 250X 500X SNI 10% 89.09 39.94 20% 70.79 91.24 30% 54.61 94.14 Non-SNI 10% 96.86 61.91 20% 71.86 97.23 30% 75.84 83.34
Untuk  memperkuat  hasil  adanya  perbedaan yang  signifikan  antara  metode  SNI  dan  non-SNI, maka  dilakukan  uji  statistik  Independent  T-test dan  Mann-whitney.  Namun  sebelum  itu  harus dilakukan uji normalitas dan homogenitas terlebih dahulu. Data uji normalitas disajikan pada Tabel 4
Tabel 4. Tabel Uji Normalitas Distribusi Data Normal
Konsentrasi Dilution Sig. (Shapiro-Wilk) SNI Non-SNI 10% 250X 0.053 0.286 500X 0.428 0.413 20% 500X 0.141 0.486 30% 500X 0.638 0.333
Distribusi Data Tidak Normal Konsentrasi Dilution Sig. (Shapiro-Wilk) SNI Non-SNI 20% 250X 0.001 0.001 30% 250X 0.018 0.017
Berdasarkan  tabel  di  atas  dapat  dijelaskan bahwa  jika  distribusi  data  yang  didapat  normal dengan  syarat  p  >  0.05,  maka  data  akan  dilanjut ke  uji  parametric  independent  T-test,  tapi  jika didapat  distribusi  data  tidak  normal  dengan  nilai p  <  0.05  maka  dilanjut  pada  uji  non  parametric Mann-Whitney. Berikut adalah tabel uji independent T-test dan uji Mann-Whitney.
Tabel 5. Tabel Uji Independent T-test Uji Independent T-test Konsentrasi Dilution Sig. (2-tailed) SNI Non-SNI 10% 250X 0.000 0.000 500X 0.006 0.006 20% 500X 0.001 0.001 30% 500X 0.000 0.000
Jurnal SainHealth Vol. 3 No. 2 Edisi September 2019 © Fakultas Ilmu Kesehatan Universitas Maarif Hasyim Latif Sidoarjo p-ISSN : 2548-8333 e-ISSN : 2549-2586
Tabel 6. Tabel Uji Mann-Whitney Uji Mann-Whitney Konsentrasi Dilution Sig. (2-tailed) SNI Non-SNI 20% 250X 0.000 0.000 30% 250X 0.000 0.000
Syarat  adanya  perbedaan  yang  signifikan adalah  nilai  p  <  0.05  dan  pada  tabel  di  atas menunjukkan bahwa hasil uji statistik Independent  T-tes  dan  Mann-Whitney  terdapat perbedaan  yang  signifikan,  hal  ini  ditunjukkan dari nilai sig. 2-tailed Kurang dari 0.05.

## Pembahasan
Dalam  penelitian  ini  tidak  menggunakan sampel  standar,  dikarenakan  standard  untuk analisa  gula  hanya  standar  glukosa  saja. Sedangkan  kandungan  karbohidrat  total  bukan hanya  glukosa,  tetapi  juga  mengandung  sukrosa, maltose,  fruktosa,  dan  sebagainya.  Penelitian  ini menggunakan  sampel  campuran  glukosa,  sukrosa dan  NaCl  karena  bahan-bahan  tersebut  mudah didapat  dan  harganya  terjangkau.  Ketiga  bahan tersebut  diasumsikan  Sebagai  makanan  yang mengandung karbohidrat total.
Berdasarkan  hasil  penelitian  yang  telah dilakukan  dan  data  perhitungan  yang  telah disajikan  dapat  diketahui  bahwa  konsentrasi  10% menggunakan  metode  SNI  maupun  non-SNI dengan  pengenceran  250X  dan  500X  hasil  yang didapatkan  jauh  lebih  baik  jika  menggunakan pengenceran 250X, dikarekan hasil yang didapatkan  mendekati  nilai  konsentrasi  yang sebenarnya,  yaitu  10%.  Dibandingkan  dengan pengenceran  500X  yang  hasilnya  jauh  dari  target yang ditentukan. Untuk sampel dengan konsentrasi  10%  dengan  metode  SNI  maupun non-SNI lebih disarankan menggunakan pengenceran  250X,  sedangkan  sampel  dengan konsentrasi  20%  dan  30%  menggunakan  metode SNI  maupun  non-SNI  dengan  pengenceran  250X dan  500X  hasil  yang  didaptkan  jauh  lebih  baik menggunakan  pengenceran  500X,  dikarekan  hasil yang didapatkan mendekati nilai konsentrasi yang sebenarnya,  yaitu  20%  dan  30%  dibandingkan dengan pengenceran 250X yang hasilnya jauh dari target yang ditentukan.
Jadi  untuk  konsentrasi  sampel  20%  dan 30%  metode  SNI  dan  non-SNI  lebih  disarankan menggunakan  pengenceran  500x,  pada  sampel dengan  konsentrasi  20%  dan  30%  pengenceran yang digunakan adalah 500X. Hal ini dikarenakan konsnetrasi  20%  dan  30%  termasuk  konsentrasi tinggi  dan  pekat,  jadi  pengenceran  yang disarankan  harus lebih tinggi juga agar hasil yang didapatkan sesuai dengan target.
Pada  tabel  tersebut  juga  terlihat  bahwa dengan  konsentrasi  10%  dengan  pengenceran 250X lebih disarankan menggunakan metode non- SNI.  Begitu  oula  dengan  konsentrasi  20% pengenceran  500X,  disarankan  menggunakan metode  non-SNI,  karena  hasil  yang  didapatkan melebihi  target  dan  nilai  beda  lebih  rendah  dari metode SNI. Sedangkan sampel dengan konsentrai  30%  menggunakan  pengenceran  500X metode yang bagis digunakan adalah metode SNI, dikarenakan  nilai  beda  dengan  nilai  yang diperoleh  saat  analisa  lebih  rendah  dibandingkan dengan metode non-SNI.
Untuk  melihat  keakurasian  dari  metode SNI  dan  non-SNI  dapat  dilihat  dari  nilai %Recovery  mendekati  100%,  dikatakan  memiliki akurasi  yang  baik.  Sedangkan  untuk  mengetahui presisi metode SNI dan non-SNI dapat menggunakan  perhitungan  %RSD  dan  HorRat. Menurut  Sunardi  (2005)  keseksamaan  dinyatakan dengan  %RSD  dengan  batas  yang  masih  diterima berdasarkan  ketelitiannya,  sebagai  berikut:  RSD ≤1%, berarti sangat teliti. 1% < RSD ≤ 2% artinya teliti.  2%  <  RSD  <  5%  artinya  ketelitian  sedang dan  RSD  >  5%  artinya  ketelitian  rendah.  Namun menurut  Horwitz  et  al,  1980  dikatakan  suatu metode memiliki presisi yang baik dan diperbolehkan jika nilainya 0.3 ≤ HorRat ≤ 1, nilai hor  rat  masih  diperbolehkan  tetapi  dengan  alasan yang tepat, jika nilainya 1 < Hor Rat ≤ 2 dan Hor Rat  ditolak  jika  nilai  Hor  Rat  >  2.  Pada  analisa statistik  dapat  diketahui  bahwa  metode  SNI  dan non-SNI  terdapat  perbedaan  yang  signfikan,  hal ini ditunjukkan dengan nilai t hasil lebih kecil dari t  tabel,  maka  H 0 ditolak  dan  H 1 diterima,  karena hasil karena p≤ α =0.05.
Jurnal SainHealth Vol. 3 No. 2 Edisi September 2019 © Fakultas Ilmu Kesehatan Universitas Maarif Hasyim Latif Sidoarjo p-ISSN : 2548-8333 e-ISSN : 2549-2586

## KESIMPULAN
Berdasarkan  hasil  penelitian  perbandingan metode  SNI  dan  non-SNI  dalam  penentuan  kadar karobohidrat  total  yang  telah  dilakukan,  dapat disimpulkan:
1. Ada  perbedaan  hasil  analisa  karbohidrat  total antara  metode  SNI  dan  non-SNI,  dibuktikan dengan hasil uji statistik diperoleh p ≤ α=0.05
2. Metode  non-SNI  baik  digunakan  untuk  anlisa karbohidrat  total  konsentrasi  sampel  10% dengan  pengenceran  250X  dan  konsentrasi 20% menggunakan pengenceran 500X.
Sedangkan  metode  SNI  baik  digunakan  pada konsentrasi  sampel  30%  pengenceran  500X. dengan  nilai  % Recovery berkisar  antara 94.14% hingga 97.23%.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Ucapan  terimakasih  penulis  persembahkan untuk Bapak Anton Yuntarso, ST.,M.Si yang telah banyak  membantu  dan  membimbing,  Ibu  Hj Dheady  Herawati  S.SI.,M.Si  yang  memberikan pengarahan selama penelitian.

## DAFTAR PUSTAKA
AOAC.  1970. The  Determination  of  saccharose with Luff Schoorl , Washington, DC.
Anonim.  2006. Definisi  Validasi  Metode  Analisis Badan POM RI . Jakarta.
Anonim.  2008. Definition  of  Validation  of Analytical  methods  andRequirements  for Method  Verification  According  to  ISO 17025 .  Diakses  pada  tanggal  13  Agustus 2019. http://www.aoac.org/al
acc_guide_2008.pdf. Kurniawan,  S.  2013 .  Klasifikasi  karbohidrat Gambar Monosakarida Disakarida, Oligosakarida  Dan  Polisakarida .  Diakses pada tanggal 20 November 2018.
http://organiksmakma3d28.blogspot.com
Gandjar,  I.G.  2007. Kimia  Farmasi  Analisis . Yogyakarta: PustakaPelajar.
Gandjar,  I.G  dan  Rohman.  2014. Kimia  Farmasi Analisis .  Yogyakarta:  PustakaPelajar.  Hal 323-417 Harmita.  2004. Petunjuk  Pelaksanaan  Validasi Metode  dan  Cara  Perhitungannya .  Majalah Ilmu Kefarmasian. Vol.1 No.3 Hal. 117-135 Horwitz,  et  al.  1980. The  Horwitz  Equation . Association of Chemists. Germany. Koswara. 2008. Konsumsi Lemak Yang Ideal Bagi Kesehatan .  Diakses  pada  tanggal  28 November 2018. http://www.Ebookpangan.com.
Poedjiadi,  A.  dkk.    2009. Dasar-dasar  Biokimia. Jakarta: Universitas Indonesia (UI-Press). Riyanto  Ph.D.  2004. Validasi  dan  Verifikasi Metode  Uji  Sesuai  Dengan  1SO/IEC 17025  Laboratorium  Pengujian  Dan Kalibrasi . Deepublish Siregar  S,  Nurhamida.  2014. Jurnal  Ilmu Karbohidrat. Medan:  Universitas  Negeri Medan. Hal 38 – 44.
SNI  01-2891-1992. Cara  Uji  Makanan  Dan Minuman . Hal 18 – 21.
Sudarmadji,  dkk.  1989. Analisa  BahanMakanan
Dan  Pertanian .  Yogyakarta  :  Liberty Yogyakarta. Hal 71 – 90. Sudarmadji, dkk. 1997. ProsedurAnalisa
UntukBahanMakanan  Dan  Pertanian . Yogyakarta  :  Liberty  Yogyakarta.  Hal  37
– 39.
Sunardi.  2005. Penuntun  Praktikum  Kimia Analisa Instrumentasi . Universitas
Indonesia. FMIPA UI. Depok.
Supriyanti, F.M.T dan Poedjiadi, A. 2009. Dasar- dasar  Biokimia .  Jakarta:  Universitas Indonesia (UI-Press).
Yuwono.  M  dan  Indrayanto.  G.  2005. Validation of  Chromatographic  Method  of  Analysis . Profiles  of  Drug  Subtances,  Excipients, and  Related  Methdology.  Vol.  32.  Hal 243-259.