Pengangkutan juvenil ikan gabus Channa striata (Bloch 1793) dengan kepadatan berbeda pada media bersalinitas 3 ppt
[Transportation of juvenile striped snakehead (Bloch 1793) with different densities in 3 ppt salinity media]
Jannesa Nasmi 1 , Kukuh Nirmala 1 dan Ridwan Affandi 2
1 Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan - Institut Pertanian Bogor
2 Departemen Manajemen Sumber Daya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan - Institut Pertanian Bogor Jalan Agatis Kampus IPB Dramaga 16680
Diterima: 08 April 2016; Disetujui: 31 Januari 2017

## Abstrak
Tujuan penelitian ini adalah untuk menganalisis pengaruh pemberian garam 3 ppt dalam media pengangkutan terhadap perubahan kualitas air dan laju sintasan selama pengangkutan, laju pertumbuhan harian, glukosa darah, dan pH darah pascapengangkutan. Penelitian ini terdiri atas dua tahap kegiatan, yaitu tahap satu adalah pengangkutan selama 24 jam dan tahap dua adalah pemeliharaan pascapengangkutan selama 21 hari. Pada tahap satu kantong plastik diisi air 1 L dan dilakukan pengepakan sesuai dengan perlakuan, yaitu perlakuan kontrol tanpa garam (kepadatan 30 ekor L -1 ) dan perla- kuan penambahan garam 3 ppt (kepadatan 30, 45, 60, dan 75 ekor L -1 ).  Penelitian ini menggunakan metode rancangan acak lengkap dengan lima perlakuan dan empat ulangan. Hasil penelitian menunjukkan perlakuan dengan penambahan garam dalam media pengangkutan dapat mempertahankan kondisi kualitas air dan menghasilkan laju sintasan yang le- bih tinggi  dibandingkan  pada perlakuan  tanpa  garam.  Tahap  dua  adalah  pemeliharaan  pascapengangkutan  selama  21 hari. Setelah masa pengangkutan juvenil dari setiap perlakuan dan ulangan dipelihara 30 ekor per akuarium pada media bersalinitas 0 ppt. Hasil penelitian menunjukkan laju sintasan dan laju pertumbuhan pascapengangkutan tidak berbeda nyata pada setiap perlakuan. Glukosa darah dan pH darah perlahan kembali normal hingga pemeliharaan hari ke-21.
Kata penting: Channa striata , garam, glukosa darah, kepadatan, pengangkutan, sintasan

## Abstract
The  present  study  aimed  to  ensure  the  effect  3  ppt  of  salt  addition  into  the  transportation  media  water  to  the  water quality, suvival rate, daily growth rate, and stress level after transportation. This study was consisted of two phase, the first phase was fish transportation for 24 hours and the second phase was 21 days rearing after-transportation. Snake-
L-1 as the control, and four transportation media with 3 ppt salt addition at different densities (30, 45, 60, and 75 larvae L-1). During the transportation, the water quality and survival rate were determined. The first phase experiment showed that salt addition in transportation media maintained the water quality and higher survival rate than control. After 24 hours, 30 larvae of each treatment were stocked into tank with 0 ppt salinity media. The results showed no significant differences in the survival rate and growth rate at the different densities without salt addition. The pH and blood glucose levels were slowly back to normal in day 21.
Keywords: Channa striata , salt, blood glucose, density, transportation, survival rate

## Pendahuluan
Ikan  gabus  ( Channa  striata) merupakan komoditas  budi daya  ekonomis. Selain  sebagai ikan  konsumsi,  dalam  dunia  medis  daging  ikan gabus  dipercaya  berkhasiat  untuk  mempercepat pengeringan luka pascaoperasi dan meningkatkan daya tahan tubuh (Rahmawanty et al. 2014).
Pasokan benih  ikan  gabus  (stadia juvenil) umumnya berasal dari hasil tangkapan alam di
Kalimantan  Selatan  dan  Kalimantan  Timur.  Ke- giatan  pembesaran  juvenil ikan  gabus  telah  ba- nyak  dilakukan  di  daerah  Jawa  Barat  dan  Jawa Timur.  Pengangkutan ikan  dalam  jumlah  yang banyak,  jarak  yang  jauh, dan  waktu  yang  relatif lama  dilakukan  dengan  sistem  tertutup.  Pada pengangkutan sistem  tertutup,  ikan  dimasukkan dalam  wadah  yang  tertutup  dengan  pemberian gas O 2 dalam jumlah terbatas yang telah diperhi- tungkan  sesuai  dengan  kebutuhan  selama  peng- angkutan.
_____________________________ Penulis korespondensi
Alamat surel: nesa.nasmi@yahoo.com
Salah  satu  upaya untuk  mengefisiensikan biaya  pengangkutan  adalah  dengan  menambah kepadatan  ikan dalam  media  pengangkutan.  Ke- padatan  ikan  yang  tinggi  dalam  media  menjadi masalah karena kebutuhan oksigen (O 2 ) juga se- makin meningkat. Kebutuhan O 2 yang meningkat menyebabkan  karbondioksida  (CO 2 ) di  dalam media  semakin  meningkat  karena  proses  respi- rasi.  Tingginya  kadar  CO 2 menyebabkan  pH  air menurun,  karena  CO 2 yang  bereaksi  dengan  air menghasilkan asam karbonat (H 2 CO 3 ).
Perubahan  kualitas  air  di  dalam  media pengangkutan  menyebabkan  ikan  mengalami stress sehingga ikan mengalami perubahan fisio- logis  di  dalam tubuhnya,  yaitu  perubahan bioki- mia darah. Perubahan biokimia darah yang terja- di  seperti  perubahan  gambaran  darah  (Witeska 2005,  Supriyono et  al .  2010,  Supriyono et  al . 2011,  Witeska  2013).  Dari  penelitian  Wahyu (2015), pengangkutan ikan gabus selama 24 jam dengan kepadatan 75 ekor L -1 menghasilkan laju sintasan  sebesar  69%  dan  mengalami  kematian total  pada  pemeliharaan  hari  ke-21.  Kegagalan ikan  dalam  beradaptasi  dan  mengatasi  kondisi stres yang dialami dapat menyebabkan terjadinya kematian (Humairani 2015).
Perlu adanya teknologi untuk mengurangi tingkat  stres  tersebut  agar  mampu  mengangkut ikan  gabus  sebanyak  mungkin  dengan  kematian sekecil mungkin dalam waktu yang dicapai sela- ma  mungkin,  serta  tidak  mengganggu  fisiologis ikan  pascapengangkutan. Pada  penelitian  Emu (2010)  penambahan  garam  di  dalam  media pengangkutan  ikan  patin  ( Pangasius sp.)  dapat mempertahankan  kondisi  kualitas  air,  mengu- rangi tingkat stres, mempertahankan laju sintasan dan laju pertumbuhan tetap tinggi setelah dilaku- kannya pengangkutan.
Teknologi  penambahan  garam  di  dalam media  dapat  membantu  ikan  dalam  mengurangi
penggunaan  energi  untuk  osmoregulasi,  karena apabila  salinitas  lingkungan  mendekati  salinitas cairan tubuh ikan, maka energi hasil metabolisme hanya sedikit yang digunakan untuk penyesuaian diri dengan tekanan osmotik lingkungan (Affandi & Tang 2002). Ketika ikan membutuhkan energi untuk proses osmoregulasi,  maka ikan akan me- manfaatkan sumber energi yang ada di dalam tu- buhnya, yakni glukosa dan oksigen untuk oksida- sinya. Gradien osmotik yang rendah akan meng- hemat  energi,  begitu  pula  konsumsi  oksigen (Marlina 2011).
Konsentrasi salinitas yang digunakan pada penelitian ini mengacu pada penelitian Purnama- wati (2016) yang menyatakan bahwa salinitas air yang baik untuk pertumbuhan ikan gabus adalah sebesar 3 ppt. Tujuan penelitian ini untuk menga- nalisis  pengaruh  penambahan  garam  ke  dalam media  pengangkutan  dengan  kepadatan  ikan yang  berbeda  terhadap  perubahan  kondisi  kuali- tas air, sintasan ikan gabus, dan dan tingkat stres selama 21 hari pemeliharaan pascapengangkutan.

## Bahan dan metode
Penelitian ini terdiri atas dua tahap kegiat- an. Pada tahap 1 dilakukan kegiatan pengangkut- an ikan gabus dan tahap 2 dilakukan pemelihara- an ikan gabus pascapengangkutan.

## Tahap 1
Kegiatan  penelitian  pengangkutan  dilaku- kan  selama  24  jam  pada  tanggal  15 16  Novem- ber 2015. Rancangan percobaan  yang digunakan adalah  Rancangan  Acak  Lengkap  dengan  lima perlakuan dan empat ulangan, yaitu :
K = 30 ekor juvenil ikan gabus (tanpa garam) A = 30 ekor juvenil ikan gabus + 3 ppt garam B = 45 ekor juvenil ikan gabus + 3 ppt garam C = 60 ekor juvenil ikan gabus + 3 ppt garam D = 75 ekor juvenil ikan gabus + 3 ppt garam
Biota  uji  yang  digunakan  adalah  ikan  ga- bus dengan ukuran bobot rata-rata 2,6±0,2 g dan panjang 6,6±0,2 cm. Ikan gabus berasal dari hasil budi daya pembenihan
-
digunakan  adalah juvenil  yang sehat, bugar, dan tidak  cacat  fisik.  Sebelum  diangkut  ikan  gabus dipuasakan  selama  dua  hari,  hal  ini  bertujuan mengurangi  pembuangan  feses  dan  mengurangi kebutuhan konsumsi oksigen. Kantong plastik di- isi air 1 L dan diisi ikan dengan kepadatan sesuai dengan  rancangan  penelitian  dan  diberi  penam- bahan garam dengan dosis 3 ppt. Setiap kantong diinjeksi oksigen murni dengan perbandingan 1:3 (air:oksigen).  Kantong  diikat  dengan  karet  lalu dimasukkan ke dalam kotak styrofoam. Pada se- tiap styrofoam diberi  es  batu  dan  ditutup  rapat.
Proses  pengangkutan  dilakukan  dari  tempat
- karta  ke  stasiun  kota  Yogyakarta  dengan  meng- gunakan  mobil.  Lalu  dari  stasiun  Yogyakarta menuju stasiun Senen Jakarta dengan mengguna- kan kereta api. Dari stasiun Senen Jakarta menu- ju  kampus  IPB  Dramaga  dengan  menggunakan mobil.  Pengangkutan  dilakukan  selama  24  jam dengan  pengamatan  kualitas  air  (suhu,  oksigen terlarut,  NH 3, karbondioksida, dan  pH).  Sampel air  diambil  sebanyak  30  mL  per  kantong  pada jam ke-0, 6, 12, 18, dan 24 selama pengangkutan.
Pengukuran suhu pada media air menggu- nakan  termometer  air  raksa  (Hg)  dengan  satuan °C.  Parameter  oksigen  terlarut  diukur  dengan menggunakan DO-meter. Nilai pH diukur dengan menggunakan pH-meter.
Perhitungan  amonia  dilakukan  dengan mencampurkan  1  tetes  amonia  cair  dengan  kon- sentrasi  70%  ke  dalam  1  L  air  (amonia  induk). Kemudian,  air  tersebut  diukur  nilai  amonia menggunakan  spektrofotometer.  Konsentrasi- konsentrasi  yang  ingin  digunakan  selama  pene-
litian,  didapat  dengan  melakukan  pengenceran. Setelah  itu,  larutan  tersebut  dihitung  kembali menggunakan  spektrofotometer  agar  konsentrasi yang  digunakan  sesuai  dengan  konsentrasi  yang telah ditentukan.
Pengukuran karbondioksida dilakukan de- ngan metode titrasi. Perhitungan dengan rumus:
Pengamatan  laju  sintasan  dilakukan  pada jam  ke  24  pengangkutan.  Laju  sintasan dihitung berdasarkan Ricker (1975):
Keterangan:  LS=  laju  sintasan (%),  N t =  jumlah  ikan pada akhir pengangkutan (ekor), N 0 = jumlah ikan pa- da awal pengangkutan (ekor)
Data  kualitas  air  (suhu,  oksigen  terlarut, NH 3, karbondioksida, dan  pH)  dianalisis  secara deskriptif. Data laju sintasan selama pengangkut- an  ditabulasi  dengan  Microsoft  Excel  2010  ke- mudian  dianalisis  ragam  (ANOVA)  pada  selang kepercayaan  95%  dengan  bantuan  perangkat  lu- nak SPSS 17.0. Apabila data berbeda nyata maka dilanjutkan dengan uji Duncan.
Pengamatan laju pertumbuhan harian dihi- tung dengan menggunakan rumus Ricker (1975):
Keterangan: LPH= laju pertumbuhan harian (%), W t = berat  rata-rata  pada  akhir  pemeliharaan,  W 0 =  berat rata-rata pada awal pemeliharaan, t= periode penelitian (hari)

## Tahap 2
Setelah diangkut ikan dibongkar dan dipe- lihara  untuk  mengetahui  adanya  efek  pengang- kutan.  Masing-masing  kantong  pengangkutan yang berisi ikan dipindahkan ke dalam 20 akua- rium pemeliharaan. Dari setiap perlakuan dipeli- hara 30 ekor per akuarium. Akuarium yang digu- nakan  berukuran  1,0x0,5x0,5  m 3 dengan  padat
LPH =
tebar awal 30 ekor ikan per akuarium dan salini- tas media air pemeliharaan sebesar 0 ppt. Peme- liharaan  ini  dilakukan  selama  21  hari.  Juvenil ikan  gabus  dipelihara  dan  diberi  pakan  berupa pelet dengan metode at satiation .
Selama  21  hari  pemeliharaan  dilakukan pengamatan  parameter  performa  ikan  (laju  sin- tasan dan laju pertumbuhan harian), tingkat stres (gradien  osmotik,  glukosa  darah,  pH  darah,  he- matologi  dan  aktivitas  lisozim)  dan  fisika-kimia air (suhu, oksigen terlarut, NH 3 , CO 2 dan pH air).
Pengukuran  gradien  osmotik  dilakukan dengan  mengukur  cairan  osmolaritas  darah  dan air media, lalu dilakukan pengukuran mengguna- kan alat Osmometer Automatik Roebling dengan menggunakan  rumus  menurut  Anggoro  (1992), yaitu :
GO (Osmol kg -1 ) = OP   OM
Keterangan: GO= gradient osmotik, OP= nilai tekanan osmotik plasma, OM= nilai tekanan osmotik media
Glukosa darah diukur dengan metode We- demeyer  &  Yasutake  (1977).  Plasma  sebanyak
ortho-toluidin dalam  asam  asetat  glasial.  Cairan tersebut dimasukkan ke dalam tabung yang berisi air mendidih dan didiamkan selama 10 menit. Se- telah didinginkan dalam suhu ruang, nilai absorb- sinya diukur  dengan spektrofotometer pada pan- jang gelombang 635 nm. Kadar glukosa darah di- hitung dengan rumus sebegai berikut :
GD = x GSt
Keterangan: GD= konsentrasi glukosa darah (mg dL -1 ) AbsSp=  absorbansi  sampel,  AbsSt=  absorbansi  baku, GSt= konsentrasi glukosa baku (mg dL -1 )
Pengamatan  glukosa  darah  dan  performa ikan dilakukan pada hari ke-0, hari ke-1, hari ke- 4, hari ke-7, hari ke-14 dan hari ke-21. Parameter gradien  osmotik  dilakukan  pascapengangkutan (hari ke-0).
Uji  statistik  dilakukan  terhadap  beberapa parameter, yaitu: laju sintasan, laju pertumbuhan harian, gradien  osmotik,  glukosa  darah  dan  pH darah.  Data yang diperoleh ditabulasi dan diana- lisis secara statistik menggunakan analisis ragam (ANOVA) dengan uji F pada selang kepercayaan 95% menggunakan  MS. Excel  dan SPSS 17 un- tuk  menentukan  apakah  perlakuan  berpengaruh terhadap parameter yang diamati. Apabila berpe- ngaruh nyata, dilakukan  uji lanjut  menggunakan uji Duncan untuk  melihat  perbedaan  antarperla- kuan yang diuji.

## Hasil
Tahap 1 (pengangkutan)
Kualitas air
Pengamatan  terhadap  parameter  kualitas air  pada  pengangkutan  selama  24  jam  disajikan pada Gambar 1.
Suhu  pada  jam  ke-6  menurun  akibat  pe- nambahan es batu dan pada jam berikutnya perla- han  mengalami  kenaikan.  Suhu  dalam  media pengepakan selama 24 jam berkisar 22-27 o C.
Oksigen terlarut pada jam ke-6 naik kare- na  terjadi  difusi  oksigen  akibat  goncangan  saat pengangkutan  dan  pada  jam  berikutnya  mulai menurun.  Konsentrasi  nilai  oksigen  terlarut  per- lakuan  30  ekor  (tanpa  garam)  pada  jam  ke-24 memiliki nilai terkecil sebesar 4,70±0,19 mg L -1 . Menurunnya    nilai  oksigen  terlarut  juga  seiring semakin tingginya kepadatan  pada  suatu  media pengangkutan,  yaitu  pada  perlakuan  75  ekor  se- besar 5,4±0,1 mg L -1 , perlakuan 60 ekor sebesar
6,30±0,14  mg  L -1 ,  perlakuan  45  ekor  sebesar
6,80±0,13  mg  L -1 dan  perlakuan  30  ekor  (3  ppt garam) sebesar 6,80±0,06 mg L -1 .
Nilai pH dalam media pengangkutan sela- ma 24 jam berkisar antara 6,8-7,1.
(a) (b)

## (c)                                                                      (d)

## (e)
Gambar 1. Parameter kualitas air selama pengangkutan juvenil ikan gabus; (a) suhu ; (b) oksigen terlarut; (c) NH 3 ; (d) CO 2 ; (e) pH air
Konsentasi NH 3 setiap perlakuan  mening- kat seiring dengan semakin lamanya waktu peng- angkutan.  Pada  jam  ke-24  dapat  dilihat  bahwa konsentrasi NH 3 terendah pada perlakuan 30 ekor
(3 ppt garam) sebesar 0,025±0,001 mg L -1 diikuti oleh  perlakuan  45  ekor  sebesar  0,026±0,001  mg L -1 ,  perlakuan  60  ekor  sebesar  0,028±0,000  mg L -1 ,  perlakuan  75  ekor  sebesar  0,031±0,001  mg L -1 , dan perlakuan 30 ekor (tanpa garam) memi- liki konsentrasi NH 3 tertinggi yaitu sebesar 0,031
±0,001 mg L -1 .
Konsentrasi  karbondioksida dalam  media air  pengangkutan  terus  mengalami  peningkatan dari jam ke-0 hingga jam ke-24. Pada jam ke-24 konsentrasi  karbondioksida tertinggi  terdapat pada  perlakuan  30  ekor  (tanpa  garam)  sebesar 37,40±0,02  mg  L -1 .  Konsentrasi  karbondioksida tertinggi pada  perlakuan 75  ekor sebesar 31,24± 0,03  mg  L -1 ,  perlakuan  60  ekor  sebesar  25,30±
0,03  mg  L -1 ,  perlakuan  45  ekor  sebesar  21,78±
0,03 mg L -1 dan terkecil pada perlakuan 30 ekor sebesar 15,40±0,02 mg L -1 .
0 7 14 21 28 0 6 12 18 24 Jam ke- 0 2 4 6 8 10 0 6 12 18 24 O ks ig en ( m g L -1 ) Jam ke- 0.00 0.01 0.02 0.03 0.04 0 6 12 18 24 N H 3 ( m g L -1 ) Jam ke- 0 10 20 30 40 0 6 12 18 24 C O 2 (m g L -1 ) Jam ke- 0 2 4 6 8 10 0 6 12 18 24 pH Jam ke-
Laju sintasan juvenil ikan selama pengangkutan Laju sintasan ikan gabus selama pengang- kutan dapat dilihat pada Gambar 2. Laju sintasan pengangkutan  tertinggi  pada  perlakuan  30  ekor (3 ppt garam) dan 45 ekor sebesar 100%, kemu- dian laju sintasan pada perlakuan 60 ekor dan 75 ekor sebesar 99,58±0,83% dan 97,67±2,00% dan laju  sintasan  terendah  pada  perlakuan  30  ekor (tanpa garam) sebesar 92,50±4,19%. Pengamatan nilai laju sintasan pada perlakuan yang diberi ga- ram  3 ppt dengan  kepadatan  yang berbeda tidak beda nyata (p>0,05), namun beda nyata (p<0,05) pada perlakuan tanpa pemberian garam.

## Tahap 2 (pemeliharaan pascapengangkutan)
Parameter yang diamati pada tahap 2 ada- lah  laju  sintasan  pascapengangkutan,  laju  per- tumbuhan, gradien osmotik, dan glukosa darah.

## Laju sintasan pascapengangkutan
Laju sintasan selama 21 hari pemeliharaan pascapengangkutan dapat dilihat pada Gambar 3. Pada pemeliharaan ikan gabus pascapengangkut- an terdapat kematian yang tinggi pada perlakuan 30 ekor (tanpa garam) dengan laju sintasan sebe- sar 82,00±8,49%, selanjutnya pada perlakuan 45 ekor sebesar 90,00±2,83%, perlakuan 30 ekor (3 ppt  garam)  (3  ppt  garam)  sebesar  92,00±5,66%
Gambar 2.  Laju sintasan juvenil ikan gabus selama pengangkutan. Huruf  kecil yang berbeda dalam grafik menunjukkan beda nyata (p<0,05)
Gambar 3.  Laju sintasan juvenil ikan gabus pascapengangkutan.  Huruf kecil yang sama dalam grafik menunjukkan tidak beda nyata (p<0,05).
a b b b b 0 20 40 60 80 100 K A B C D L aj u si nt as an ( % ) Perlakuan a a a a a 0 20 40 60 80 100 K A B C D L aj u si nt as an (% ) Perlakuan
Gambar 4. Juvenil ikan gabus yang hidup selama 21 hari pemeliharaan pascapengangkutan dan perlakuan 60 ekor sebesar 92,00±0,00% dan nilai  laju  sintasan  tertinggi  pada  perlakuan  75 ekor sebesar 94,00±8,49%. Hasil analisis statistik menunjukkan  laju  sintasan  pengangkutan  pada setiap  perlakuan  tidak  berbeda  nyata  (p>0,05), namun jika dilihat pada grafik (Gambar 4) terda- pat jumlah kematian yang tinggi pada hari perta- ma pascapengangkutan. Kematian  tertinggi pada perlakuan  30  ekor  (tanpa  garam)  sebanyak  7 ekor,  selanjutnya  pada  perlakuan  75  ekor  seba- nyak  3  ekor.  Pada  perlakuan  60  ekor,  45  ekor, dan 30 ekor (3 ppt garam) terdapat jumlah kema- tian  yang sama sebanyak 2 ekor.  Pada hari ke-4 hing-ga hari ke-21 tidak terdapat banyak kemati- an  ka-rena  ikan  telah  beradaptasi  terhadap  kon- disi lingkungan pemeliharaan.
Laju pertumbuhan harian
Laju pertumbuhan  harian  juvenil ikan  ga- bus  selama  21  hari  pemeliharaan  pascapengang- kutan dapat dilihat pada Gambar 5. Laju partum- buhan harian tertinggi pada perlakuan 30 ekor (3 ppt garam) sebesar 1,99±0,15%, kemudian secara berturut-turut  diikuti  oleh perlakuan  75  ekor,  45
ekor, 30 ekor (tanpa garam) dan 60 ekor sebesar 1,91±0,07%,  1,78±0,11%,  1,64±0,26%  dan  1,62 ±0,19%. Hasil analisis statistik menunjukkan laju pertumbuhan  harian  pada  setiap  perlakuan  tidak beda nyata (p>0,05).

## Gradien osmotik
Hasil  pengukuran  gradien  osmotik  pada ikan gabus normal (sebelum perlakuan) dan pas- capengangkutan  dapat  dilihat  pada  Gambar  6. Nilai  gradien  osmotik  pada  ikan  gabus  normal sebesar  0,301±0,002  osmol  kg -1 .  Nilai  gradien osmotik  tertinggi pada perlakuan 30 ekor (tanpa garam) sebesar  0,335±0,002 osmol kg -1 , sedang- kan  perlakuan  30  ekor  (3  ppt  garam)  sebesar 0,240±0,014 osmol kg -1 , perlakuan 45 ekor sebe- sar  0,242±0,020  osmol  kg -1 ,  perlakuan  60  ekor sebesar 0,246±0,020 osmol kg -1 dan perlakuan 75 ekor  sebesar  0,233±0,030  osmol  kg -1 .  Perlakuan
(30  ekor)  tanpa  garam  berbeda  nyata  (p<0,05) dibandingkan  dengan  perlakuan  menggunakan garam 3 ppt yaitu pada perlakuan 30, 45, 60 dan 75 ekor.
0 5 10 15 20 25 30 0 1 4 7 14 21 Ik an g ab us y an g hi du p (e ko r) Hari ke-
Gambar 5. Laju pertumbuhan harian juvenil ikan gabus pada pemeliharaan 21 hari pascapeng-angkutan. Huruf kecil yang sama dalam grafik menunjukkan tidak beda nyata (p>0,05).
Gambar 6.  Gradien osmotik juvenil ikan gabus pada semua perlakuan selama penelitian. Huruf kecil yang berbeda dalam grafik menunjukkan beda nyata (p<0,05).
Respons glukosa darah
Hasil pengukuran konsentrasi glukosa da- rah  ikan  gabus  normal,  pascapengangkutan  dan pemeliharaan dapat dilihat pada Gambar 7. Nilai glukosa  darah  pada  ikan  gabus  normal  sebesar 28,048±0,230  mg  dL -1 .  Nilai  glukosa  darah  ter- tinggi pada hari ke-0 pascapengangkutan terdapat pada  perlakuan  30  ekor  (tanpa  garam)  sebesar 66,806±1,310  mg  dL -1 ,  kemudian  perlakuan  75 ekor sebesar 60,414±2,170 mg dL -1 , perlakuan 60 ekor sebesar 58,491±0,490 mg dL -1 , perlakuan 45 ekor sebesar 56,357±0,840 mg dL -1 dan terendah pada  perlakuan  30  ekor  (3  ppt  garam)  sebesar 54,412±2,640  mg  dL -1 .  Hasil  analisis  statistik
menunjukkan nilai glukosa darah hari ke-0 pada setiap  perlakuan  berbeda  nyata  (p<0,05).  Pada hari  ke-4  hingga  hari  ke-21  nilai  glukosa  darah telah mendekati normal, hal ini berarti ikan sudah tidak mengalami stres.
Respons pH darah
Hasil pengukuran nilai pH darah  ikan ga- bus normal, pascapengangkutan dan pemelihara- an  dapat  dilihat  pada  Gambar  8. Pengamatan pada hari ke-0 pascapengangkutan  menunjukkan nilai  pH  darah  semua  perlakuan  mengalami  pe- nurunan dibandingkan nilai pH darah ikan gabus
a a a a a 0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 K A B C D L aj u p er tu m bu ha n h ar ia n (% ) Perlakuan a b b b b 0.0 0.1 0.2 0.3 0.4 Ikan normal K A B C D G ra d ie n os m ot ik ( os m ol k g -1 ) Perlakuan
Gambar 7.  Kadar glukosa darah juvenil ikan gabus pada semua perlakuan selama penelitian. Huruf kecil yang berbeda dalam grafik menunjukkan beda nyata (p<0,05).
Gambar 8.  Kadar pH darah juvenil ikan gabus selama 21 hari pemeliharaan pascapengangkutan. Huruf kecil yang berbeda dalam grafik menunjukkan beda nyata (p<0,05).
normal.  Nilai pH  darah  pada  ikan  gabus normal sebesar 7,75±0,007. Nilai pH darah terendah pa- da  hari  ke-0  pascapengangkutan  terdapat  pada perlakuan  30  ekor  (tanpa  garam)  sebesar  6,65± 0,07, kemudian perlakuan 75 ekor sebesar  6,85± 0,07, perlakuan 60 ekor sebesar 7,05±0,07, perla- kuan 45 ekor sebesar 7,15±0,07 dan perlakuan 30 ekor (3 ppt garam) sebesar 7,30±0,00. Hasil ana- lisis  statistik  menunjukkan  nilai  pH  darah  hari ke-0 pada  setiap perlakuan beda nyata  (p<0,05). Pada hari ke-7 hingga  hari ke-21 nilai  pH darah telah mendekati  normal,  yang berarti ikan  sudah tidak mengalami stres.

## Pembahasan
Suhu merupakan parameter penting dalam kegiatan pengangkutan ikan karena memengaruhi laju metabolisme ikan, proses biologis, proses ki- miawi,  dan  parameter  kualitas  air  lainnya. Fluk- tuasi suhu selama pengangkutan ikan gabus sebe- sar 0,2 o C selama satu jam. Fluktuasi suhu terse- but  masih  dalam  kondisi  yang  normal  dan  tidak membahayakan bagi sintasan juvenil ikan gabus. Menurut Boyd (2012), fluktuasi suhu yang mem- bahayakan bagi ikan adalah 5 o C dalam satu jam. Nilai oksigen terlarut mengalami kenaikan pada  jam  ke-6  pengangkutan.  Hal  ini  dikarena- kan  kerasnya  goncangan  yang  mengakibatkan
c
a a a a a a a a a a a ab a a a a a ab a a a a a b a a a a a 0 10 20 30 40 50 60 70 80 Ikan Normal 0 1
4 7 14 21 G lu ko sa d ar ah ( m g dL -1 ) Hari ke- a a ab a a a d b b a a a cd b ab a a a c b a a a a b b ab a a a 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 Ikan Normal 0 1
4 7 14 21 Hari ke- p H D ar ah
terjadinya  difusi  oksigen  antara  air dan  udara di dalam  media  pengepakan (Humairani  2015).
Konsentrasi  oksigen  terlarut  perlakuan  tanpa garam  (30  ekor)  pada  jam  ke-24  memiliki  nilai terkecil.  Menurunnya  nilai  oksigen  terlarut  sei- ring dengan tingginya jumlah kepadatan ikan ga- bus dalam suatu media pengangkutan. Nilai oksi- gen  terlarut  selama  pengangkutan  berkisar  4,7- 8,3  mg  L -1 .  Nilai  oksigen  terlarut  dalam  kisaran yang  baik  yaitu  >5  mg  L -1 (Boyd  2012).  Pada jam ke 24 pengangkutan perlakuan 30 ekor (tan- pa garam) memiliki nilai oksigen terlarut sebesar 4,7 mg L-1. Rendahnya nilai oksigen terlarut pa- da perlakuan 30 ekor (tanpa garam) dikarenakan media  pengangkutan  tanpa  penambahan  garam. Garam  berfungsi  untuk  menjaga  keseimbangan konsentrasi  cairan  tubuh  dan  konsentrasi  ling- kungan,  sehingga  penggunaan  energi  dapat  di- mat.  Jika  kebutuhan  energi  meningkat  maka penggunaan  oksigen  meningkat,  yang  berarti berkurangnya  ketersediaan  oksigen  di  dalam media.  Ikan  gabus  memiliki  alat  pernapasan tambahan  berupa  sepasang  ruang  suprabrankial yang  terbaring  pada  bagian  faring dorsal  hingga lengkungan insang (Banerjee 2007). Keberadaan organ  tersebut  menyebabkan  oksigen bukan  me- rupakan  faktor  pembatas  keberhasilan  pengang- kutan juvenil ikan.
Konsentrasi  NH 3 pada  setiap  perlakuan mengalami  kenaikan  seiring  dengan  tingginya kepadatan  dalam  media  pengangkutan.  Wahyu (2015)  menyatakan  bahwa  konsentrasi  NH 3 me- ningkat  seiring  dengan  bertambahnya  kepadatan ikan yang digunakan. Konsentrasi NH 3 yang baik untuk  juvenil  ikan,  yaitu  <0,02  mg  L -1 (Boyd 1982). Perlakuan 30 ekor (tanpa garam) memiliki nilai NH 3 yang lebih tinggi dibandingkan dengan perlakuan dengan penambahan garam  3 ppt. Se- suai dengan penelitian Nirmala et al . (2012) bah- wa penambahan garam akan meningkatkan keku-
atan ion yang dapat menurunkan toksisitas amo- nia.  Tingginya  konsentrasi  amonia  di  dalam  air menyebabkan ekskresi amonia di insang terham- bat. Hambatan tersebut membuat amonia teraku- mulasi sehingga mengurangi afinitas hemoglobin mengikat oksigen. Kondisi tersebut dapat memi- cu kematian ikan saat pengangkutan. Tersedianya ion Na + di  media berfungsi  untuk pertukaran ion NH 3 dari dalam darah ikan melintasi sel-sel bran- kial (Maetz 1973). Selain itu  kondisi ikan gabus dengan  penambahan  garam  3  ppt  menjadi  lebih tenang dikarenakan menurunnya gradien osmotik yang  berdampak  pada  menurunnya  penggunaan energi ikan, sehingga laju metabolisme lebih ren- dah dan bahan buangan  metabolisme  yang diha- silkan pun menjadi lebih sedikit.
Konsentrasi  CO 2 dalam  media  air  peng- angkutan  terus  meningkat  dari  jam  ke-0  hingga jam ke-24. Konsentrasi CO 2 yang baik untuk ju- venil  ikan,  yaitu  <  0,02  mg  L -1 (Boyd  1982). Konsentrasi  CO 2 pada  setiap  perlakuan  di  luar ambang  batas  yang  direkomendasikan  untuk ikan.  Kadar  CO 2 yang  tinggi  ( hipercapnia )  me- nyebabkan pH darah menjadi lebih asam ( acido- sis )  sehingga  kadar  O 2 darah  menurun  melalui mekanisme efek Root. Kedua kondisi ini menye- babkan  ikan  meningkatkan  laju  ventilasi insang. Selanjutnya  ikan  akan  mati  karena  kekurangan O 2, meskipun  kandungan  O 2 di  air  media  peng- angkutan  tinggi.  Tersedianya  ion  Cl - di  dalam media berfungsi untuk pertukaran ion HCO 3 - dari dalam darah ikan melintasi insang (Smith 1982). Hal  ini  berarti  penggunaan  garam  3  ppt  dalam media pengangkutan dapat mengurangi kandung- an CO 2 di dalam darah.
Nilai  pH  air  selama  pengangkutan  masih dalam  pada  kisaran  yang  baik  untuk  ikan  gabus yaitu 6-8,6 (Boyd 1982). Penurunan nilai pH dis- ebabkan  peningkatan  konsentrasi  CO 2 pada  me- dia pengangkutan. Senyawa CO 2 selama respirasi
akan bereaksi dengan air sehingga menghasilkan asam  karbonat (H 2 CO 3 )  yang dapat  menurunkan pH air (William & Robert 1992).
Kematian ikan  yang terjadi pada kegiatan pengangkutan  tertutup  salah  satunya  disebabkan oleh kandungan NH 3 dan CO 2 yang melebihi ba- tas  toleransi  ikan.  Dari  hasil  data  fisik-kimiawi air tersebut di atas, perlakuan 30 ekor (tanpa ga- ram) memiliki nilai NH 3 dan CO 2 lebih tinggi di- bandingkan dengan perlakuan dengan penambah- an  garam  3 ppt.  Kandungan  amonia  yang  tinggi akan  memengaruhi  permeabilitas  ikan  terhadap air dan menurunkan konsentrasi ion dalam tubuh, sehingga meningkatkan konsumsi oksigen jaring- an  dan  menyebabkan  kerusakan  insang  serta mengurangi  kemampuan  darah  dalam  transpor oksigen (Boyd 1990). Tingginya kandungan CO 2 di  dalam  air  menyebabkan  ekskresi  CO 2 di  in- sang terhambat. Kandungan CO 2 yang tinggi (hi- percapnia) yang menyebabkan pH darah menjadi lebih  asam (acidosis) sehingga  kadar  O 2 darah menurun melalui mekanisme efek Root.
Kematian  saat  pengangkutan  disebabkan ikan  gagal  mengatasi  dan  beradaptasi  terhadap stres akibat memburuknya kualitas air. Kematian saat  pascapengangkutan  merupakan  pengaruh lanjutan dari stres saat pengangkutan. Stres yang terlalu  tinggi  menyebabkan  ikan  sulit  memulih- kan keseimbangan  fisiologis  di dalam tubuhnya, kemudian  berakibat  kematian  saat  pemeliharaan pascapengangkutan.  Kematian  pada  pascapeng- angkutan  disebut  juga  dengan delayed  mortality atau hauling  loss (Wedemeyer  1996).  Kematian tertinggi  terdapat  pada  pemeliharaan  pascapeng- angkutan  hari  ke-1.  Tingginya  kematian  juvenil ikan gabus ini diakibatkan tingginya tingkat stres pascapengangkutan dan juvenil yang tidak dapat beradaptasi  dengan  lingkungan  baru  (Humairani 2015). Pada hari ke-4 hingga hari ke-21 tidak ter- dapat  banyak  kematian,  karena  ikan  telah  bera-
daptasi  pada  kondisi  lingkungan.  Hal  ini  dibuk- tikan  dari  hasil  pengukuran  nilai  glukosa  darah juvenil  yang  mendekati  nilai  glukosa darah ikan gabus normal.
Kepadatan  ikan  saat  pengangkutan  tidak berpengaruh  terhadap  laju  pertumbuhan  harian. Hal  tersebut  disebabkan  ikan  yang  bertahan  hi- dup  telah  mampu  mengatasi  stres  saat  pengang- kutan  dan  beradaptasi  dengan  kondisi  wadah pemeliharaan.  Hasil  penelitian  Procarione et  al .
(1999) pada ikan rainbow trout ( Salmo gairdneri ) juga menunjukkan kondisi stres tidak selalu me- nyebabkan laju pertumbuhan ikan menurun. Me- nurunnya  laju  pertumbuhan  akibat  stres  dan  te- kanan  lainnya  tidak  berlaku  secara  umum  pada seluruh ikan (McCormick et al. 1998).
Hasil  penelitian  ini  menunjukkan  bahwa kepadatan ikan gabus dalam media pengangkutan tidak  memengaruhi nilai gradien osmotik.  Perla- kuan 30 ekor, 45 ekor, 60 ekor, dan 75 ekor de- ngan menggunakan garam 3 ppt merupakan kon- disi  isosmotik (nilai  osmolaritas  cairan  tubuh mendekati nilai osmolaritas cairan media). Gradi- en osmotik yang semakin rendah membuat energi yang  digunakan  untuk  proses  osmoregulasi  ma- kin sedikit, sehingga penggunaan energi dapat di- alihkan  untuk  pertumbuhan  dan  juga  dapat  me- ningkatkan  sintasan  (Setiyoningsih  2014).  Seba- liknya  perlakuan  tanpa  garam  (30  ekor)  menun- jukkan  bahwa  juvenil  ikan  gabus  bersifat  hiper- osmotik, yang  berarti semakin  besarnya  energi yang digunakan untuk proses osmoregulasi (Cor- rion et  al. 2005).  Hal  yang  sama  dikemukakan oleh Arjona et al. (2009) bahwa gradien osmotik yang  semakin  tinggi,  dapat  menyebabkan  peng- gunaan energi untuk osmoregulasi akan semakin tinggi pula. Ketika ikan membutuhkan energi un- tuk  proses  osmoregulasi,  maka  ikan  akan  me- manfaatkan sumber energi yang ada di dalam tu- buhnya, yakni oksigen untuk oksidasinya (Marli-
na  2011).  Hasil  penelitian  ini menunjukkan  gra- dien  osmotik  yang  rendah  akan  menghemat energi  dan  mengurangi  konsumsi  oksigen.  Hal ini  sesuai  dengan  perlakuan  30  ekor  (tanpa  ga- ram) memiliki nilai oksigen terlarut lebih rendah dibandingkan perlakuan dengan penambahan ga- ram  3  ppt,  artinya  ikan  lebih  banyak  mengon- sumsi oksigen untuk proses osmoregulasi.
Ikan  yang  bersifat  hiperosmotik  harus mengembangkan  mekanisme  fisiologisnya untuk mencegah kelebihan aliran air yang masuk ke da- lam tubuh dan juga mengembangkan mekanisme untuk  mencegah  kehilangan  zat  terlarut  sebagai kelebihan  air  yang  diekskresikan  melalui  proses osmoregulasi. Hal ini juga dijelaskan oleh Evans (2008)  yaitu  pada  ikan  air  tawar  yang  memiliki tekanan  osmotik  cairan  tubuh  yang  lebih  tinggi daripada  tekanan  osmotik  medianya  aliran  air akan  meningkat  ke  dalam  tubuh  dan  menyebab- kan  kehilangan  NaCl  secara  difusi  melalui  epi- thel  insang  permeabel.  Untuk  mencegah  kon- sentrasi cairan tubuh internal menjadi terlalu en- cer  maka  ikan  mengekskresikan  urin  hipotonik dalam  volume  yang  relatif  besar  dan  menyerap NaCl secara aktif melintasi epitel insang.
Peningkatan  glukosa  darah  pada  setiap perlakuan  hari  ke-0  pascapengangkutan  menun- jukkan  ikan  mengalami  stres  saat  pengangkutan (Abreu et al. 2008). Mekanisme terjadinya peru- bahan performa glukosa darah selama stres yaitu adanya  perubahan  lingkungan  yang  akan  diteri- ma  oleh  organ  reseptor.  Informasi  tersebut  di- sampaikan  ke  otak  bagian  hipotalamus  melalui sistem saraf, dan selanjutnya sel kromaffin mene- rima  perintah  melalui  serabut  saraf  simfatik  un- tuk mensekresikan hormon katekolamin. Hormon ini akan mengaktifkan enzim-enzim yang terlibat dalam  katabolisme  simpanan  glikogen  hati  dan otot  serta  menekan  sekresi  hormon  insulin,  se- hingga  glukosa  darah  mengalami  peningkatan.
Selanjutnya  pada  saat  yang  bersamaan  hipotala- mus  otak  mensekresikan  CRF  ( corticoid  releas- ing factor ) yang mengatur kelenjar pituitari untuk mensekresikan  ACTH  ( adrenocorticotropic  hor- mone ),  MSH  ( melanophore-stimulating  hor- mone )  dan  p-End  ( p-endorphin ).  Hormon  terse- but  akan  mengatur  sekresi  hormon  kortisol  dari sel  internal.  Diketahui  bahwa  kortisol  akan mengaktifkan  enzim-enzim  yang  terlibat  dalam glukoneogenesis yang menghasilkan peningkatan glukosa darah yang bersumber dari non karbohi- drat.
Penurunan  nilai  pH  darah  menunjukkan ikan  mengalami  stres  saat  pengangkutan  (Wood et al. 1997). Tingginya nilai gradien osmotik pa- da pada perlakuan 30 ekor (tanpa garam) menye- babkan  ikan  lebih  banyak  membutuhkan  energi untuk osmoregulasi sehingga ikan menjadi hiper- aktif  dan  aktivitasnya  meningkat.  Energi  yang dihasilkan dari pemecahan glikogen melalui jalur metabolisme  anaerob  menyebabkan  produksi asam laktat  meningkat dan lepasnya  CO 2 ke da- lam darah (Wahyu 2015). Keberadaan asam lak- tat dan CO 2 menyebabkan pH darah menurun se- hingga  terjadi  asidosis.  Asidosis  menyebabkan afinitas  hemoglobin  mengikat  oksigen  menjadi berkurang (Bohr  effect) dan  menurunnya  kapa- sitas  darah  dalam  mengangkut  oksigen (Root effect) (Delince et al. 1987). Nilai pH darah ikan normal  pada  umumnya  berkisar  7,6-7,8  (Wede- meyer  1996).  Saat  nilai  pH  darah  berada  pada kisaran 6,5-7,5 kandungan  oksigen di dalam da- rah menurun dengan cepat seiring terjadinya asi- dosis (Berenbrink 2011). Penurunan nilai pH da- rah  sebesar  satu  unit  menyebabkan  afinitas  he- moglobin  mengikat  oksigen  tereduksi  hampir sebesar  50%  (Wedemeyer  1996).  Kondisi  terse- but  menyebabkan  ikan  mengalami  kekurangan oksigen di  dalam tubuh atau hipoksia,  yang  me-
nyebabkan  suplai  oksigen  untuk  proses  metabo- lisme energi berkurang.

## Simpulan
Penambahan garam 3 ppt ke dalam media pengangkutan dengan kepadatan berbeda mampu mempertahankan  kualitas  air  dan  menekan  ting- kat  stres  dibandingkan  dengan    perlakuan  tanpa garam.

## Daftar pustaka
Affandi  R,  Tang  UM.  2002. Fisiologi  Hewan Air . UNRI Press, Pekanbaru. 217 hlm.
Anggoro S. 1992. Efek osmotik berbagai tingkat salinitas  media  terhadap  daya  tetas  telur dan  vitalitas  larva  udang  windu Penaeus monodon Fabricius Disertasi . Institut Perta- nian Bogor. Bogor, 128 hlm.
Abreu  JS,  Sanabaria-Ochoa  AI,  Goncalves  FD, Urbinati  EC.  2008.  Stress  responses  of juvenile  matrinxã  ( Brycon  amazonicus ) after  transport  in  a  closed  system  under different  loading  densities. Ciencia  Rural , 38(5): 1413-1417.
Arjona JF, Chacoff LV, Jarabo IR, Gonçalves O, Páscoa  I,  María  P,  Río  MD,  Mancera  JM. 2009. Tertiary stress responses in Senegal- ese sole ( Solea senegalensis Kamp.1858) to osmotic challenge: implication for osmore- gulation,  energy  metabolism  and  growth.
Aquaculture, 287(2): 419-426.
Banerjee  TK.  2007.  Histopathology  of  respira- tory  organs  of  certain  air-breathing  fishes of India. Fish Physiology and Biochemistry , 33(4): 441-454.
Berenbrink M. 2011. Evolution of root effect. In: Farrell  AP,  editor. Encyclopedia  of  Fish Physiology:  From  Genome  to  Environ- ment .  London  (UK):  Academic  Press.  pp.
921-928.
Boyd CE. 1982. Water  Quality Management  for Pond  Fish  Culture .  Elsevier  Science  Pu- blishing Company Inc. New York. 318 p.
Boyd  CE.  1990. Water  Quality  in  Ponds  for Aquaculture. Alabama  Agriculture  Experi- ment Station, Auburn University. Birming- ham Publishing Co. Alabama. 482 p.
Boyd  CE.  2012.  Water  quality. In :  Lucas  JS, Southgate PC (Editor). Aquaculture: Farm- ing  Aquatic  Animals  and  Plants .  2nd  edit-
ion. (UK): John Wiley & Sons. Oxford. pp. 52-82.
Corrion RL, Alvarellos
2005.  Growth  performance  of  gilthead  sea bream conditions : Implication for osmore- gulation  and  energy  metabolism. Aquacu- lture , 250(3-4): 849-861.
Delince  GA,  Campbell  D,  Janssen  JAL,  Kutty MN. 1987. Seed Production. African Regi- onal  Aquaculture  Centre.  Port  Harcourt, Nigeria. Food and Agriculture Organization of the United Nations. Rome 118 p.
Emu S. 2010. Pemanfaatan garam pada pengang- kutan  sistem  tertutup  benih  ikan  patin Pangasius sp.  berkepadatan  tinggi  dalam media  yang  mengandung zeolite dan arang aktif. Tesis .  Sekolah  Pascasarjana,  Institut Pertanian Bogor. 82 hlm.
Evans  DH.  2008.  Teleost  fish  osmoregulation: What have we learned since August Krogh, Homer  Smith,  and  Ancel  Keys. American Journal  of  Physiology-  Regulatory  Com- parative  Integrative  and  Physiology , 295(1):704-713.
Humairani.  2015.  Respon  stres  benih  udang  ga- lah Macrobrachium  rosenbergii terhadap penambahan  zeolit,  karbon  aktif,  minyak cengkeh dan garam pada transportasi tertu- tup. Tesis .  Sekolah  Pascasarjana,  Institut Pertanian Bogor. 42 hlm.
Maetz J. 1973. Na + /NH 4 + , Na + /H + exchanges and NH 3 movement across the gill of Carassius auratus . Journal  of  Experimental  Biology , 58(4): 255-275.
Marlina  E.  2011.  Optimasi  osmolaritas  media dan  hubungannya  dengan  respon  fisiologis benih  ikan  baung  ( Hemibagrus  nemurus ). Tesis .  Sekolah  Pascasarjana,  Institut  Perta- nian Bogor. 107 hlm.
McCormick SD, Shrimpton JM, Carey JB, O'dea MF, Sloan KE, Moriyama S, Björnsson BT. 1998. Repeated acute stress reduces growth rate of Atlantic salmon parr and alters plas- ma  levels  of  growth  hormone,  insulin-like growth  factor  I  and  cortisol .  Aquaculture,
168(1): 221-235.
Nirmala K, Hadiroseyani Y, Widiasto RP. 2012. Penambahan  garam  dalam  air  media  yang berisi  zeolit  dan arang  aktif  pada  transpor- tasi  sistem  tertutup  benih  ikan  gurami Osphronemus  goramy Lac. Jurnal  Akua- kultur Indonesia , 11(2): 190-201.
Procarione LS, Barry TP, Malison JA. 1999. Ef- fects  of  high  rearing  densities  and  loading
rates on the growth and stress responses of juvenile  rainbow  trout. North  American Journal of Aquaculture, 61(2): 91 96.
Purnamawati. 2016. Respon kelangsungan hidup dan pertumbuhan benih ikan  gabus ( Chan- na  striata Blkr.)  pada  berbagai  tingkat  sa- linitas  media  air  sulfat  masam Disertasi .
Sekolah  Pascasarjana,  Institut  Pertanian Bogor. 95 hlm.
Rahmawanty D, Anwar E, Bahtiar A. 2014. For- mulasi gel menggunakan daging ikan haru- an ( Channa striata ) sebagai penyembuh lu- ka. Media Farmasi , 11(1) : 29-40.
Ricker  WE.  1975.  Computation  and  interpreta- tion of biological statistics of fish populati- ons.  Canada  (CAN): Bulletin  of the  Fishe- ries Research Board of Canada , 191: 382 p Setiyoningsih  PR.  2014.  Respon  gelondongan ikan bandeng ( Chanos chanos ) akibat peru- bahan  salinitas  dengan  penambahan  kalsi- um klorida (CaCl 2 ) pada durasi yang berbe- da. Jurnal Penelitian UNISLA , 5(2): 6-17 Smith LS. 1982. Introduction to Fish Physiology . Neptune  City,  New  Jersey,  Publications Inc. 320 p.
Supriyono E,  Budiyanti,  Budiardi  T.  2010.  Res- pon  fisiologi  benih  ikan  kerapu  macan Ephinephelus  fuscoguttatus terhadap  peng- gunaan  minyak  sereh  dalam  transportasi tertutup  dengan  kepadatan  tinggi. Jurnal Kelautan , 15(2): 103-112.
Supriyono E, Syahputra R, Ghozali  MFR, Wah- juningrum  D,  Nirmala  K,  Kristanto  AH. 2011.  Efektivitas  pemberian  zeolit,  arang aktif,  dan  minyak  cengkeh  terhadap  hor- mone  kortisol  dan  gambaran  darah  benih ikan  patin Pangasionodon  hypopthalmus
pada  pengangkutan  dengan  kepadatan tinggi. Jurnal  Iktiologi  Indonesia ,  11(1):
67-75.
Wahyu. 2015. Respons fisiologis juvenil ikan ga- bus Channa striata pada transportasi sistem tertutup. Tesis. Sekolah  Pascasarjana  Insti- tut Pertanian Bogor. 58 hlm.
Wedemeyer GA, Yasutake WT. 1978. Prevention and treatment of nitrite toxicity in juvenile steelhead trout ( Salmo gairdneri ). Journal of  Fisheries  Research  Board  of  Canada .
35(6): 822-827
Wedemeyer GA. 1996. Transportation and hand- ling. In : Pennel W, Barton BA (ed). Princi- ples  of  Salmonid  Culture . Development  in Aquaculture  and  Fisheries  Science  29 . Elsevier. Amsterdam. pp. 727-755.
Wendelaar  BSE.  1997.  The  stress  response  in fish. Physiological  Reviews ,  77(1):  591- 625.
William  AW,  Robert  MD.  1992.  Interaction  of pH,  carbon  dioxide,  alkalinity  and  hardnes in fish ponds. J . SRAC Publication , 464: 1- 4.
Witeska  M.  2005.  Stress  in  fish:  hematological and immunological effects of heavy metals. Electronic  Journal  of    Ichthyology ,  15(1): 35-41.
Witeska M.  2013. Erythrocytes in teleost fishes: a  review. Zoology  and    Ecology ,  23(4): 275-281.
Wood CM, McMahon BR, McDonald DG. 1977. An  analysis  of  changes  in  blood  pH following exhausting activity in the starry flounder, Platichthys stellatus.  Journal of Experimental Biology , 69(1):173-185.