## EKSTRAKSI DAN KARAKTERISASI GLUKOMANAN DARI TEPUNG BIJI SALAK
( Salacca edulis Reinw.)
[EXTRACTION AND CHARACTERIZATION OF GLUCOMANNAN FROM SALAK
( Salacca edulis Reinw.) SEED FLOURS]
Faradisa Anindita 1*) , Syaiful Bahri 1) , Jaya Hardi 1)
1) Jurusan Kimia, Fakultas MIPA Universitas Tadulako, Palu
Diterima 13 Desember 2015, Disetujui 2 Februari 2016

## ABSTRACT
This research aims to determine the shaking time and ratio of salak seed flour : anti-solvent isopropyl alcohol  to  produce  glucomannan  extract  with  high  yield  and  high  quality.  Glucomannan  extraction process from salak seed flour is done by aquadest solvent at temperature of 95 °C with shaking speed of 700 rpm for 30, 60, 90, 120, 150, and 180 minutes. Glucomannan precipitate was gained with anti- solvent isopropyl alcohol 95% with salak seed flour : anti-solvent ratio is 1:9, 1:11, 1:13, 1:15, and 1:17 (w/v).  Then  research  using  Completely  Randomized  Design  (CRD)  at  the  level  of  95%.  The  results showed  the  best  extraction  time  was  obtained  at  shaking  time  of  120  minutes  with  yield  of    21.47% and  the  best  ratio  of  salak  seed  flour  :  isopropyl  alcohol  is  1:  17  (w/v)  with  yield  of  40.19%. Characteristics of glucomannan is a water content of 11.18%, ash content of 1.2%, and the molecular weight 2.057 x 10 4 g/mol.
Keywords : salak seed flour, shaking time, glucomannan.

## ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui waktu pengocokkan dan rasio tepung biji salak : anti-solvent isopropil alkohol terbaik dalam menghasilkan ekstrak glukomanan dengan rendemen dan mutu tinggi. Proses  ekstraksi  glukomanan  dari  tepung  biji  salak  dilakukan  dengan  pelarut  aquades  pada  suhu 95 o C dengan kecepatan pengocokan 700 rpm selama 30, 60, 90, 120, 150, dan 180 menit. Endapan glukomanan diperoleh dengan menggunakan anti-solvent isopropil alkohol 95% dengan perbandingan tepung  biji  salak  : anti-solvent 1:9,  1:11,  1:13,  1:15,  dan  1:17  (b/v).  Penelitian  menggunakan Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  pada  taraf  kepercayaan  95%.  Hasil  penelitian  menunjukkan  waktu pengocokan  terbaik  diperoleh  pada  120  menit  dengan  rendemen  glukomanan  21,47%  dan  rasio tepung  biji  salak  : anti-solvent isopropil  alkohol  terbaik  yaitu  1  :  17  (b/v)  dengan  rendemen glukomanan  40,19%.  Hasil  karakterisasi  terhadap  glukomanan  adalah  kadar  air  11,18%,  kadar  abu 1,2%, dan berat molekul 2,057 x 10 4 g/mol.
Kata kunci : tepung biji salak, waktu pengocokan, glukomanan.
*)Coresponding Author: faradisaanindita@gmail.com

## LATAR BELAKANG
Salak  merupakan  salah  satu  buah lokal  yang  ditemukan  hampir  disetiap daerah  di  Indonesia.  Bagian  buah  salak yang  dapat  dikonsumsi hanya  sekitar  56- 65%,  sehingga  menghasilkan  limbah  35- 44%. Salah satu bagian limbah salak yang belum banyak dimanfaatkan adalah bagian  biji,  karena  mempunyai  tekstur yang  keras  dan  tidak  mudah  hancur, sehingga pengolahan biji salak cukup sulit (Supriyadi  dkk.,  2002).  Biji  salak  memiliki kandungan kimia utama berupa karbohidrat  terdiri  dari  28,98%  selulosa dan 59,37% hemiselulosa berupa glukomanan,  serta  dalam  satu  gram  biji salak mengandung 0,1637 gram mannosa dan  0,0089  gram  glukosa  (Nugroho, 2014).
Glukomanan  merupakan  senyawa polisakarida yang  tersusun dari D- mannosa    +  67  persen  dan  D-glukosa  + 33  persen  serta  memiliki  sifat  antara selulosa  dan  galaktomanan,  sehingga dapat mengkristal dan membentuk struktur serat halus. Pemanfaatan glukomanan telah menyebar pada beberapa  industri  diantaranya  industri edibel film, bahan perekat, isolasi, industri makanan,  cat,  payung,  kosmetik,  obat- obatan,  dan  lain-lain  (Koswara,  2009). Pada  bidang  kesehatan,  glukomanan digunakan  untuk  mencegah  penyakit jantung  dengan  menurunkan  kolesterol dan  mengurangi  respon  glukemik  (Singh dan Shelley, 2007).
Beberapa  penelitian  telah  dilakukan untuk  mendapatkan  glukomanan  dari beberapa tumbuhan seperti iles-iles ( Amorphophallus. Sp)  (Koswara,  2009), bungkil  inti  sawit  (Yopi,  dkk.,  2006),  dan lidah  buaya  (Retnowati  dan  Kumoro, 2012).  Rendemen  glukomanan  yang diperoleh dari tumbuhan tersebut dipengaruhi oleh varietas, metode ekstraksi,  jenis  anti-solvent/pengendap (Retnowati  dan  Kumoro,  2014),  suhu (Rohimi,  F  dan  Ninghidayati,  S,  2013), perbandingan pelarut dan massa padatan, waktu ekstraksi (Fadilah, dkk, 2009), serta rasio  anti-solvent  dan  massa  padatan (Saputro dkk., 2014).
Beberapa  penelitian  tentang  waktu ekstraksi  glukomanan  dilaporkan  bahwa waktu  ekstraksi  terbaik  pada  glukomanan dari  umbi  iles-iles  yaitu  selama  3  jam (Fadilah,  dkk,  2009).  Selain  itu  Istianah, dkk.  (2012)  melaporkan  bahwa  waktu ekstraksi  terbaik  pada  glukomanan  dari lidah buaya yaitu selama 2 jam. Berdasarkan  penelitian  tersebut,  maka perlu  dilakukan  kajian  untuk  mengetahui kondisi terbaik pada ekstraksi glukomanan dari tepung biji salak.

## METODE PENELITIAN

## Bahan dan Peralatan
Bahan dasar yang digunakan dalam penelitian  ini  adalah  biji  salak.  Bahan – bahan lainnya: aquadest, isopropil alkohol 95%,  etanol  95%,  HCl  2  %,  NaOH  10%, arang  aktif,  fenilhidrazin  hidroklorida,  dan Na-asetat.
Peralatan yang digunakan : blender, gelas kimia, hot plate WiseStir MSH 20-D, homogenizer, kertas saring, oven Memmert ,  neraca  analitik Adventure  TM Ohaus ,  desikator,  cawan  porselen,  tanur Nabertherm gmBh , spektrofotometer FTIR, sentrifugasi, viscometer ostwald dan alat-alat gelas lainnya.

## Rancangan Penelitian
Penelitian ini menggunakan Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  dengan variabel  bebas  waktu  pengocokan  dan rasio  tepung  biji  salak  terhadap anti- solvent isopropil  alkohol  95%  dengan variabel  tetap  rendemen  glukomanan. Variabel  waktu  pengocokan  terdiri  dari  6 taraf  (30,  60,  90,  120,  150,  dan  180 menit),  sedangkan  variabel  rasio  tepung biji  salak  : anti-solvent isopropil  alkohol 95%  terdiri  dari  5  taraf  (1:9,  1:11,  1:13, 1:15,  dan  1:17  (b/v))  dan  masing-masing dilakukan secara duplo.

## Prosedur Penelitian

## Preparasi Sampel
Biji  salak  dipisahkan  dari  kulit  dan dagingnya, kemudian biji dicuci dengan air mengalir    hingga  bersih.  Setelah  itu,  biji dipecah dan digiling kemudian dikeringkan dengan  menggunakan  sinar  matahari. Serbuk  biji  salak  kering  diblender  dan diayak  dengan  ayakan  60  mesh  hingga diperoleh  tepung  biji  salak.  Tepung  biji salak selanjutnya ditentukan kadar glukomanannya  dengan  menggunakan metode pembentukan kristal phenylhidrazin (Ohtsuki, 1968).
Penentuan  Waktu  Pengocokan  Pada

## Ekstraksi Glukomanan
Ekstraksi glukomanan menggunakan metode Whistler dan Richards    (Syaefullah,  1990).  Sebanyak 20 g tepung biji salak dicampurkan sedikit demi  sedikit  pada  aquades  dengan perbandingan  1:30  (b/v)  sambil  diaduk pada  kecepatan  700  rpm,  suhu  95 O C selama waktu tertentu (sesuai perlakuan). Filtrat  campuran  diperoleh  setelah  proses sentrifugasi  pada  kecepatan  3000  rpm selama 15 menit yang selanjutnya dipekatkan hingga setengah volume awal. Glukomanan yang terkandung dalam filtrat diendapkan  menggunakan anti-solvent isopropil alkohol 95 % dengan perbandingan  1:13  (b/v).  Glukomanan yang  terbentuk  dicuci  dengan  etanol  95% dan  dikerikan  untuk  memperoleh  serbuk glukomanan.
Penentuan  Rasio  Tepung  Biji  Salak terhadap Anti-Solvent Isopropil Alkohol pada Ekstraksi Glukomanan
Sebanyak  20  g  tepung  biji  salak dicampurkan  sedikit  demi  sedikit  pada aquades  dengan  perbandingan  1:30  (b/v) sambil  diaduk  pada  kecepatan  700  rpm, suhu  95 O C  selama  120  menit.  Filtrat campuran diperoleh setelah proses sentrifugasi  pada  kecepatan  3000  rpm selama 15 menit yang selanjutnya dipekatkan hingga setengah volume awal. Glukomanan yang terkandung dalam filtrat diendapkan  menggunakan anti-solvent isopropil alkohol 95 % dengan perbandingan sesuai perlakuan.
Glukomanan yang terbentuk dicuci dengan  etanol  95%  dan  dikerikan  untuk memperoleh serbuk glukomanan.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Kadar Glukomanan Biji Salak
Glukomanan  merupakan  komponen karbohidrat  yang  paling  banyak  dalam tepung  biji  salak.  Pengukuran  kadar glukomanan  dilakukan  dengan  metode phenylhidrazin.  Prinsip uji phenylhidrazine adalah  berdasakan  gugus  karbonil  dari aldosa  dan  ketosa  yang  bereaksi  dengan adanya penambahan larutan phenylhidrazine akan membetuk senyawa osazon berwarna kuning jingga.
Mekanisme  pembentukan  osazon  terjadi karena  gugus  aldehid  ataupun  keton  dari
karbohidrat
berikatan dengan phenilhidrazine.  Reaksi  antar  senyawa tersebut merupakan reaksi oksidasi reduksi,  dimana  atom  C  nomor  satu  dan dua  dari  aldosa  atau  ketosa  mengalami reaksi.  Fruktosa,  glukosa,  dan  manosa menunjukan osazon yang sama (Sudarmadji,  1989).  Berdasarkan  metode tersebut  diperoleh  kadar  glukomanan pada tepung biji salak sebesar 72,83 %.
Widjanarko  dan  Megawati  (2015) melaporakan  kadar  glukomanan  pada tepung  konjak  adalah  63,49%  dengan metode  gravimetri.  Selain  itu,  Wigoeno (2013)  melakukan  analisis  glukomanan pada umbi porang ( Amorphopallu muelleri Blume)  dengan  metode  phenylhidrazin diperoleh  rata-rata  kadar  glukomanan 50,84 –  70,70%.  Akbar,  dkk.,  (2013) juga
mengukur kadar glukomanan pada tepung konjak  pada  tanaman  iles-iles  dengan metode  phenylhidrazin  diperoleh  kadar glukomanan  sebesar  30,56%.  Ini  berarti glukomanan  pada  biji  salak  jauh  lebih tinggi  jika  dibandingkan  dengan  umbi konjak  atau  porang  yang  selama  ini menjadi sumber glukomanan. Oleh karena itu,  biji  salak  memiliki  potensi  sebagai sumber glukomanan.
Tinggi rendahnya kadar glukomanan pada  tumbuhan  dipengaruhi  oleh  kadar pati,  kadar  serat,  dan  kadar  oksalat. Sebagaimana  yang  dikemukakan  oleh Faridah  dkk.,  (2012)  bahwa  peningkatan kadar glukomanan sejalan dengan menurunnya  komponen  non-glukomanan lainnya,  seperti  oksalat,  protein,lemak, abu, dan pati.

## Waktu  Pengocokan  Terseleksi  pada Ekstraksi Glukomanan
Untuk  mengetahui  pengaruh  waktu pengocokan  tepung  biji  salak  yang menghasilkan rendemen glukomanan tertinggi diterapkan variasi waktu pengocokan. Rasio tepung biji salak : anti- solvent isopropil  alkohol  95%  yang diterapkan  adalah  1  :  13  (b/v)  yang merupakan rasio terbaik dari hasil penelitian Ohtsuki (1968).
Rendemen glukomanan tertinggi yang  diperoleh  adalah  21,57%  diperoleh pada  waktu  pengocokan  150  menit, sedangkan  rendemen  terendah  adalah 15,26%  pada  waktu  pengocokan  30 menit.
Gambar 1  Grafik hubungan waktu pengocokan terhadap rendemen glukomanan Rendemen  glukomanan  biji  salak mengalami peningkatan dari waktu pengocokan  30  menit  hingga  120  menit (Gambar  1),  hal  ini  menunjukkan  bahwa semakin  lama  ekstraksi  berlangsung, maka  rendemen  yang  diperoleh  akan semakin meningkat. Hal tersebut disebabkan karena semakin lama ekstraksi  berlangsung,  maka  semakin banyak  pula  kontak  antara  tepung  biji salak  dengan  pelarut,  namun  pada  waktu pengocokan  120  menit  sampai  180  menit cenderung stabil. Jika dibandingkan dengan beberapa penelitian tentang waktu  ekstraksi  glukomanan  dilaporkan bahwa  waktu  ekstraksi  terbaik  pada glukomanan  dari  umbi  iles-iles  yaitu selama 3 jam (Fadilah, dkk, 2009). Selain itu  Istianah,  dkk.  (2012)  melaporkan bahwa  waktu  ekstraksi  terbaik  pada glukomanan dari lidah buaya yaitu 2 jam.
Hasil analisis sidik ragam menunjukkan  bahwa  waktu  pengocokan berpengaruh  nyata    terhadap  rendemen glukomanan yang dihasilkan. Berdasarkan hasil  uji    lanjut Duncan dengan  taraf
kepercayaan  95%  (α  =  0,05),  diperoleh bahwa  waktu  30,  60,  dan  90  menit berbeda tidak nyata, tetapi berbeda nyata dengan  waktu  120,  150,  dan  180  menit. Dengan  demikian  waktu  pengocokan  120 menit  dapat  direkomendasikan  untuk diaplikasikan dalam ekstraksi glukomanan dari tepung biji salak.
Rasio Terbaik Tepung  Biji Salak : Anti- solvent Isopropil  Alkohol  95%  Pada Ekstraksi Glukomanan
Untuk  mengetahui  pengaruh  rasio tepung  biji  salak  terhadap anti-solvent isopropil alkohol yang menghasilkan rendemen glukomanan tertinggi diterapkan  berbagai  variasi  volume anti- solvent . Hasil yang diperoleh menunjukkan  bahwa  rendemen  tertinggi adalah  40,19%  yang  didapatkan  pada perlakuan  dengan  rasio  1  :  17  (b/v), sedangkan  rendemen  terendah  adalah 18,83%  yang  didapatkan  pada  perlakuan dengan rasio 1 : 9 (b/v).
Gambar 2  Grafik  hubungan  rasio  tepung biji salak : anti-solvent isopropil alkohol (b/v) terhadap rendemen glukomanan
Pada  Gambar  2,  memperlihatkan bahwa  rendemen  glukomanan  tepung  biji
15,26 16,91 17,57 21.47  21,57 21,56 0 4 8 12 16 20 0 30 60 90 120 150 180 210 R e n d e m e n (% ) Waktu Pengocokan (Menit)
18,83  20,77 23,16 37,18 40,19 0 10 20 30 40 1:06 1:09 1:12 1:14
1:17
Re n d em en (% )
Rasio tepung : isopropil alkohol (b/v)
salak  berkorelasi  positif  bertambahnya volume anti-solvent isopropil  alkohol  95% yang ditambahkan. Hal tersebut disebabkan  karena  semakin  banyak anti- solvent yang  ditambahkan  pada  filtrat maka  semakin  banyak  air  yang  akan ditarik  oleh anti-solvet tersebut  dari  filtrat yang  mengakibatkan  glukomanan  yang memiliki  bobot  molekul  lebih  besar  akan mengendap.
Penggunaan isopropil alkohol sebagai anti-solvent ini  lebih  efisien  dan menguntungkan jika dibandingkan dengan jenis  alkohol  lainnya  seperti  metanol  dan etanol. Isopropil alkohol lebih bersifat non- polar  daripada  metanol  dan  etanol  jika dilihat  dari  nilai  konstanta  dielektiknya. Sifat  lebih  non-polar  ini  yang  akan membuat  kelarutan  glukomanan  terhadap pelarut menurun, karena molekul air telah tertarik oleh isopropil alkohol, dan akibatnya  glukomanan  yang  berbobot molekul  besar  akan  mengendap.  Selain itu  isopropil  alkohol  bersifat  aman  dan tidak  toksik  terhadap  bahan  pangan  jika dibandingkan dengan metanol.
Berdasarkan  hasil  analisis  sidik ragam  menunjukkan  bahwa  rasio  tepung biji salak : isopropil alkohol (b/v) berpengaruh  nyata  terhadap  rendemen glukomanan yang dihasilkan. Dari hasil uji lanjut Duncan dengan  taraf  kepercayaan 95% (α = 0,05), diperoleh bahwa rasio 1 : 9 dan 1 : 11 berbeda tidak nyata dan rasio 1 : 11 dan 1 : 13 juga berbeda tidak nyata, sedangkan  pada  rasio  1  :  15  dan  1  :  17 berbeda nyata. Dengan demikian, rasio 1 :
17  (b/v)  dapat  direkomendasikan  untuk diaplikasikan dalam ekstraksi glukomanan dari tepung biji salak.
Rendemen  glukomanan  dari  hasil penelitian  ini  lebih  tinggi  dibandingkan dengan rendemen glukomanan pada umbi iles-iles  dari  hasil  penelitian  yang  ada antara lain  24,90 %  (Pramathana, 2013), 38.17%  (Dwiyono,  2014).  Perbedaan rendemen  glukomanan  yang  diperoleh disebabkan oleh perbedaan jenis tamanan.  Selain  itu,  penggunaan anti- solvent dan  proses  sentrifugasi  diduga mampu  menghasilkan  glukomanan  yang lebih  murni  dan  meningkatkan  jumlah rendemennya.

## Karakteristik Glukomanan

## Kadar Air
Umur  simpan  suatu  bahan  pangan dapat diperpanjang dengan menghilangkan  sebagian  kandungan  air hingga  mencapai  kadar  tertentu  sehingga menghindari pertumbuhan mikroba, reaksi pencoklatan dan hidrolisis lemak. Menurut Fardiaz  (1989),  batas  kadar  air  minimum dimana  mikroorganisme  masih  dapat tumbuh adalah 14 - 15 %. Kadar air yang terlalu tinggi dapat menyebabkan penurunan mutu produk yang dihasilkan.
Berdasarkan hasil pengukuran kadar  air  pada  penelitian  diperoleh  kadar air glukomanan adalah 11,18 %. Kadar air hasil  analisis  tepung  di  atas  cukup  baik karena  telah  mencapai  kisaran  kadar  air tepung yang aman yaitu kurang dari 14 %. Jika  dibandingkan  dengan  kadar  air  pada
penelitian  sebelumnya,  kadar  air  tersebut tidak  jauh  berbeda  dibandingkan  hasil penelitian Nurjanah (2010) yaitu 11,10%.

## Kadar Abu
Manfaat  utama  penentuan  kadar abu  suatu  bahan  pangan  adalah  untuk mengetahui banyaknya kandungan mineral  yang  terdapat  dalam  bahan (Sudarmadji, 1989).
Berdasarkan  hasil  analisis  kadar abu  pada  tepung  glukomanan  biji  salak, didapatkan  kadar  abu  sebesar  1,2%. Kadar  abu  pada  tepung  glukomanan  biji salak  ini  telah  memenuhi  standar  mutu yang  ditetapkan  oleh  Asosiasi  Konyaku Jepang  (1976)  yaitu  kurang  dari  3%.  Jika dibandingkan  dengan  hasil  penelitian sebelumnya  kadar  abu  glukomanan  yang diekstrak  dari  umbi  iles-iles  lebih  tinggi dibandingkan dari penelitian yang dilakukan, yaitu 3,33 % (Nurjanah, 2010).

## Berat Molekul
Penentuan  berat  molekul  (BM)  dari glukomanan  dilakukan  dengan  metode kapiler  atau  Ostwald.  Prinsip  dari  metode ini yaitu mengukur waktu yang dibutuhkan bagi  cairan  yang  diukur  untuk  melewati dua  tanda  batas  karena  gaya  gravitasi pada viskometer ostwald. Viskositas adalah  ukuran  hambatan  suatu  fluida untuk mengalir. Semakin besar viskositas, maka makin lambat aliran cairan.
Perbandingan  antara  viskositas  larutan polimer  terhadap  pelarut  murni  dapat digunakan untuk menentukan berat polimer.
Penentuan berat molekul glukomanan bertujuan untuk penggunaannya dalam industri baik makanan  maupun  yang  lainnya.    Polimer yang memiliki berat molekul besar diaplikasikan  untuk  bahan  tambahan makanan, obat-obatan, dan bahan perekat. Sedangkan polimer yang memiliki bobot  molekul  yang  lebih  kecil  memiliki aplikasi yang lebih luas contohnya sebagai antibakteri dan prebiotik.
Berdasarkan hasil penelitian diperoleh  berat  molekul  glukomanan  biji salak  adalah  2,057  x  10 4 g/mol. Berat molekul  glukomanan  dari  umbi  porang hasil  penelitian  Teramoto  dan  Fuchigami (2000) adalah sekitar 1,0 x 10 4 – 1,2 x 10 4 g/mol, sedangkan dari hasil penelitian Mei, dkk. (2012) yaitu sekitar 2,508x10 5 g/mol.

## Spektrum FTIR
Identifikasi gugus fungsional glukomanan dilakukan
dengan menggunakan spektrofotometer infra merah.  Pada  spektrum  infra  merah glukomanan,  serapan    vibrasi    ulur  gugus –OH  terdapat pada  bilangan  gelombang 3431,00  cm -1 .    Data  ini  diperkuat  dengan pernyataan  Zhang,  dkk., (2001) yang menyatakan  bahwa  spektra  glukomannan didominasi oleh pita spektra yang berkaitan  dengan  vibrasi  ulur  gugus –OH dan air pada kisaran spektrum 3396 cm -1 , data  ini  juga  didukung  hasil  penelitian Irawan,  dkk  (2013)  serapan  ulur –OH terletak  di  daerah  3438,84  cm -1 .  Serapan pada  bilangan  gelombang  2924,15  cm -1
menunjukkan    vibrasi    ulur  gugus    gugus C –H  alkana  (-CH 3 atau -CH 2 -). Xiao, dkk
(1999) menyatakan bahwa puncak
spektra gugus metil dari –CH berada pada spektrum 2920 cm -1 .
Gambar 3. Spektrum FTIR Glukomanan Biji Salak
Pita serapan pada bilangan gelombang  1649,19  cm -1 menunjukkan adanya  gugus  C=O,  Xiao,  dkk.,  (1999) menyatakan  bahwa  puncak  serapan  pita spektra pada gugus karbonil glukomannan yang  ditambahkan  akrilamida  berada pada  1671  cm -1 ,  Irawan,  dkk  (2013) menemukan  pita  serapan  gugus  C=O pada    bilangan  gelombang  1647,10  cm -1 .
Puncak  pada  1628  cm -1 disebabkan karbonil dari kelompok asetil (Zhang, dkk., 2001).  Pita  serapan  pada  bilangan gelombang  1021.58    cm -1 menunjukkan adanya gugus fungsi C-O-C dan pada pita serapan pada bilangan gelombang 850,65 cm -1 menunjukkan  vibrasi  tekukan  gugus
–CH.  Hua,  dkk.,  (2004)  menyatakan bahwa gugus manosa dan glukosa terlihat melalui  kenampakan  pita  pada  814  dan 873  cm -1 yang  berkaitan  dengan  vibrasi tekukan gugus –CH.
Berdasarkan  hasil  penelitian  dapat disimpulkan  bahwa  waktu  pengocokan terbaik  diperoleh  pada  120  menit  dengan rendemen  glukomanan  21,47%  dan  rasio tepung  biji  salak  : anti-solvent isopropil alkohol  terbaik  yaitu  1  :  17  (b/v)  dengan rendemen  glukomanan  40,19%.  Hasil karakterisasi terhadap glukomanan adalah kadar  air  11,18%,  kadar  abu  1,2%,  dan berat molekul 2,057 x 10 4 g/mol.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Terima kasih kepada Pranata Laboratorium Jurusan Kimia FMIPA
Universitas Tadulako yang telah membantu dalam pelaksanaan penelitian.

## DAFTAR PUSTAKA
Akbar H., Supriyanto A., Haryani K. 2013.
Karakterisasi  Tepung  Konjak  dari Tanaman  Iles-Iles (Amorphopallus Oncophyllus) di  Daerah  Gunung Kreo  Semarang  Jawa  Tengah.
Jurnal  Teknologi  Kimia  dan  Industri ,
2 (4): 1-47.
Dwiyono  K.  2014. Perbaikan  Proses Pengolahan Umbi Iles-Iles (Amorphophallus  muelleri Blume )
Untuk Agroindustri  Glukomanan.
[Disertasi]. Bogor: Sekolah Pascasarjana IPB.
Fadilah,  Distantina  S.,  Prihani  K.,  Wulan
N.  2009.  Koefisien  transfer  massa volumetris  (Kca)  pada  ekstraksi glukomanan  dari  umbi  iles-iles.
Pemanfaatan  Potensi  Lokal  Meunju
Indonesia Produktif . Prosiding
Simposium  Nasional  RAPI  VIII;
Surakarta,  17  Desember  2009. Surakarta: Fakultas Teknik UMS.
Fardiaz  S.  1989. Mikrobiologi  Pangan  I .
PAU  Pangan  Gizi.  Bogor:  Institut Pertanian Bogor.
Faridah  A.,  Widjanarko  SB.,  Sutrisno  A,
Susilo  B.  2012.  Optimasi  Produksi Tepung  Porang  dari  Chip  Porang Secara  Mekanis  dengan  Metode
Permukaan  Respons. Jurnal  Teknik Industri . 13(2): 158 –166.
Hua  Y-fen,  Zhang  M,  Fu  C-xin,  Chen,  Z- hui,  Chan  GYS.  2004.  Structural Characterization of a 2-O- acetylglucomanan  from Dendrobium officinale Stem. Carbohydrate  Res . (339): 2219-2224.
Irawan  SS.,  Widjanarko.  2013.    Metilasi Pada Tepung Porang ( Amorphophallus muelleri ) Menggunakan Pereaksi Dimetil Sulfat  Berbagai  Variasi  Konsentrasi. Jurnal  Pangan  dan  Agroindustri ,  1 (1): 148-156.
Istianah  M.,  Mahadi  S.,  Retnowati  D. 2012. Isolasi manan dari lidah buaya ( Aloe  vera )  dengan  proses  ektraksi sebagai  bahan  dasar  pembuatan edible coating berbasis polisakarida.
Jurnal  Teknologi  Kimia  dan  Industri,
1 (1): 396-400.
Koswara  S.  2009. Modul  Teknologi Pengolahan  Umbi-Umbian,  Bagian
2. Pengolahan Umbi Porang . Bogor:
SEAFAST  Center  Research  and Community Service Institution IPB.
Mei  Xu.,  Dong-Sheng  Li.,  Bin  Li.,  Chao Wang.,  Yu-Peng  Zhu.,  Wen-Ping Lv.,  Bi-Jun  Xie.  2012.  Comparative study on molecular  weight  of konjac glucomannan  by  gel  permeation chromatography-laser light scattering-refractive  index  and  laser light-scattering  methods. Journal  of Spectroscopy, 2013: 1-4.
Nugroho  DA.  2014. Studi  Potensi  Biji
Salak (Salacca edulis Reinw ) Sebagai Sumber Alternatif Monosakarida Dengan Cara Hidrolisis Menggunakan Asam Sulfat. [Skripsi]. Yogyakarta: Fakultas Teknologi Pertanian Universitas Gadjahmada. Nurjanah Z. 2010. Kajian Proses Pemurnian Tepung Glukomanan Dari Umbi Iles-Iles Kuning (Amorphophallus oncophyllus) Dengan  Menggunakan  Enzim  α- Amilase .  [Skripsi].  Bogor:  Fakultas
Teknologi Pertanian Institut Pertanian Bogor. Ohtsuki  T.  1968.  Studies  on  reserve carbohydrates of flour Amorphophallus
species, with special reference to manan. Botanical Magazine Tokyo. (81): 119
– 126.
Pramathana    A.  2013. Karakteristik Tepung  Porang  (Amorphophallus oncophyllus) Dengan Variasi Perendaman Abu dan Garam Dapur Dalam Rangka Pengurangan Kandungan  Asam  Oksalat. [Skripsi]. Jember: Fakultas Teknologi Pertanian Universitas Jember.
Retnowati  S,  Kumoro  C.  2012.  Manan precipitation from aloe vera leaf pulp juice  using  methanol  and  isopropyl alcohol as anti-solvent: experimental and  empirical  modelling  approach.
Reaktor, 14 (1): 46-50
Rohimi F., Ninghidayati S. 2013. Pengaruh Temperatur Ekstraksi Terhadap Kualiatas Tepung Glukomanan  dari  Tanaman  Porang (Amorphopallus  Muelleri Blume).
[Skripsi].  Surabaya:  Jurusan  Teknik Kimia Institut Teknologi Surabaya.
Saputro  E.,  Lefiyanti  O.,  Mastuti  E.  2014.
Pemurnian  tepung  glukomanan  dari umbi porang (Amorphopallus muelleri Blume) menggunakan
proses  ekstraksi/leaching  dengan larutan  etanol. Inovasi  Keteknikan untuk  Pembangunan  Berkelanjutan. Prosiding Simposium Nasional RAPI XIII;  Surakarta,  4  Desember  2014. Surakarta:  Fakultas  Teknik  UMS. hlm K-7 – K-13.
Singh  RB.,  Shelley.  2007.  Polysaccharide structure  of  degraded  glucomanan from Abrus precatorius Linn. Seeds. Journal of Environmental Biology . 28 (2): 461-464.
Sudarmadji  S.  1989. Analisa  Bahan Makanan  dan  Pertanian .  Libert. Yogyakarta.
Supriyadi, Suhardi, Suzuki M., Yoshida K., Muto  T.,  Fujita  A.,  Watanabe  N.
2002.  Changes  in  The  Volatile Compounds  and  in  The  Chemical and  Physical  Properties  Of  Snake Fruit  ( Salacca  edulis Reinw)  Cv.
Pondoh  during  maturation. J  Agric Food Chem , 50 (26): 7627-7633.
Syaefullah  M.  1990. Studi  Karakteristik Glukomanan dari Sumber “Indegenous” iles-iles (Amorphophallus oncophyllus)
dengan  Variasi  Proses Pengeringan dan  Dosis  Perendaman .  [Tesis].
Bogor: Fakultas Pascasarjana IPB.
Teramoto A., Fuchigami M. 2000.
Changes in temperature, texture and structure of konnyaku (Konjac
Glucomannan  Gel)  during  high- pressure-freezing. Journal  of  Food
Science , 65 (3): 491 - 497
Whistler RL., Richards EL. 1970. Hemicelluloses, Dalam Pigman,
W.D. The Carbohydrates, Chemistry and  Biochemistry ,  2nd  ed.  New
York: Academic Press.
Widjanarko S., Megawati J. 2015. Analisis metode  kalorimetri  dan  gravimetri pengukuran kadar glukomanan pada konjak (Amorphopallus Konjac) .
Jurnal  Pangan  dan  Agroindustri ,  3
(4): 1584-1588.
Wigoeno YA. 2013. Analisis kadar glukomanan  pada  umbi  porang ( Amorphophallus muelleri Blume) menggunakan  refluks  kondensor.
Jurnal Biotropika , 1 (5): 191 – 195.
Xiao  CB.,  Gao  SJ.,  Li  GR.,  Zhang  QC.
1999. Preparation of konjac glucomannan and acrylamide
grafted konjac glucomannan . J. Natl.
Sci ., (4): 459-462.
Yopi, Purnawan A., Thontowi A., Hermansyah H., Wijarnako A. 2006.
Preparasi  mannan  dan  mannanase kasar  dari  bungkil  kelapa  sawit.
Jurnal Teknologi, (4): 312-319.
Zhang  H.,  Yoshimura  M.,  Nishinari  K.,
Williams  MAK.,  Foster  TJ.,  Norton IT.  2001.  Gelation  behaviour  of konjac  glucomanan  with  different molecular weight. Biopolymers, (59): 38-50.