## ISSN: 0215-7950
*Alamat penulis korespondensi: Balai Penelitian Tanaman Rempah dan Obat. Jalan Tentara Pelajar No. 3, Bogor 16111. Tel: 0251-321879, Faks: 0251-327010, Surel: retnomuslim@yahoo.com

## Volume 17, Nomor 5, September 2021
Halaman 195–202 DOI: 10.14692/jfi.17.5. 195–202

## Perlakuan Benih dengan Pestisida, Bubur Bordo dan Agens Hayati untuk Penekanan Penyakit Terbawa Rimpang Jahe
Seed Treatment with Pesticide, Bordeaux Mixture and Biological Agent for Ginger Rhizome-Borne Disease Suppression
Sri Rahayuningsih dan Setyowati Retno Djiwanti * Balai Penelitian Tanaman Rempah dan Obat, Bogor 16111

## ABSTRAK
Penyakit puru akar yang disebabkan oleh nematoda dan busuk rimpang karena infeksi berbagai patogen banyak dijumpai pada rimpang jahe. Penelitian dilakukan untuk mengevaluasi pengaruh beberapa perlakuan benih terhadap penekanan kerusakan rimpang yang disebabkan oleh penyakit tersebut. Penelitian disusun menggunakan rancangan acak kelompok dengan 7 perlakuan rimpang, masing-masing diulang sebanyak 4 kali.  Perlakuan rimpang jahe sebelum tanam terdiri atas perendaman dalam pestisida 1.5% (campuran streptomisin sulfat dan benomil), bubur Bordo (1% dan 2%), rizobakteri 10% ( Bacillus pantotkenticus dan Trichoderma lactae ) selama 24 jam; serta pelapisan dengan tepung karbosulfan ST (500 g untuk 4 kg rimpang) dan formula talk Fusarium non-patogenik (NP) (500 g untuk 4 kg rimpang). Rimpang jahe yang sudah diberi perlakuan ditanam pada medium tanam steril yang terdiri atas campuran tanah dan bubur Bordo 1% dan diamati sampai tanaman berumur 5 bulan. Perendaman rimpang dalam larutan pestisida dan formula rizobakteri, serta pelapisan rimpang dengan tepung karbosulfan ST dan formula Fusarium NP dapat menekan puru nematoda Meloidogyne dan busuk rimpang, serta umumnya menghasilkan viabilitas benih  dan bobot segar dan atau bobot kering rimpang yang lebih baik. Kecuali bubur Bordo, empat perlakuan benih tersebut dapat dikembangkan untuk usaha penyediaan benih rimpang jahe sehat bermutu.
Kata kunci: Bacillus pantotkenticus , Fusarium , nematoda puru akar, patogen busuk rimpang, Trichoderma lactae

## ABSTRACT
Root knot caused by nematodes and rhizome rot due to infection by various pathogens is commonly found in ginger rhizomes. A study was conducted to evaluate the effect of several seed treatments on suppression of rhizome damage caused by these diseases. The experiment was arranged using a randomized block design with 7 rhizome treatments, each repeated 4 times. Ginger rhizome were given treatment before planting, i.e. soaking in 1.5% pesticides (a mixture of streptomycin sulfate and benomyl), Bordeaux mixture (1% and 2%), 10% rhizobacteria (Bacillus pantotkenticus and Trichoderma lactae) for 24 hours; and coating with carbosulfan ST flour (500 g for 4 kg rhizomes) and non-pathogenic Fusarium (NP) talc formula (500 g for 4 kg rhizomes). Ginger rhizomes were than planted in sterile planting medium consisting of a mixture of 1% Bordeaux mixture and soil; and observed until the plants reach 5 months old. Soaking the rhizomes in a solution of pesticides and rhizobacterial formulas, as well as coating the rhizomes with carbosulfan ST flour and Fusarium NP formulas could suppress root knot and rhizome rot; Those seed treatments also enhanced seed viability and plant growth (plant fresh weight and or rhizome dry weight). With the exception of Bordeaux mixture, these four seed treatments can be further used in the production of qualified and healthy ginger rhizome seed.
Keywords: Bacillus pantotkenticus , Fusarium , rhizome rot pathogen, root knot nematode, Trichoderma lactae

## PENDAHULUAN
Jahe ( Zingiber  officinale ) merupakan salah satu komoditas tanaman rempah dan obat penting. Jahe digunakan sebagai bahan baku lebih dari 40 produk obat tradisional (Balitbangtan 2009). Usaha pengembangan jahe menghadapi kendala gangguan organisme pengganggu tumbuhan (OPT) seperti bakteri layu Ralstonia solanacearum (Asman et al. 1991), nematoda buncak/puru akar Meloidogyne spp. (Djiwanti et al. 2019), dan cendawan Fusarium sp., Pythium spp., serta Rhizoctonia sp. (Soesanto et al. 2003). Infeksi nematoda dapat me- nurunkan ketahanan tanaman jahe terhadap serangan bakteri layu dan cendawan busuk rimpang (Mustika dan Nurawan 1992; Rai 2006). Upaya penyediaan benih jahe bermutu masih dibatasi oleh tingginya kontaminasi OPT tular benih. Kesehatan rimpang merupakan salah satu faktor penting dalam budi daya dan produksi jahe. Penelitian ini bertujuan menentukan kemampuan beberapa perlakuan rimpang jahe menggunakan pestisida, bubur Bordo, dan formula rizobakteri/mikroba endofit untuk menekan kerusakan oleh nematoda puru akar Meloidogyne spp. dan patogen busuk rimpang.

## BAHAN DAN METODE
Bahan tanam yang digunakan berupa rimpang-rimpang jahe putih besar berumur 7–8 bulan yang diambil dari daerah yang endemik terserang nematoda. Rimpang jahe tersebut dipotong-potong seberat 30–40 g dengan 2 mata tunas potensi (Rostiana et al. 2007). Potongan rimpang jahe selanjutnya ditanam pada medium tanam dalam pot plastik berkapasitas  ± 10 kg, yang telah disiapkan sebelumnya.
Sebelum ditanam, potongan rimpang jahe tersebut diberi perlakuan seperti pada Tabel 1. Potongan rimpang jahe yang sudah diberi perlakuan ditanam pada pot plastik. Pada penelitian ini tidak dilakukan inokulasi buatan menggunakan telur maupun larva nematoda karena bahan tanaman yang digunakan telah terinfestasi nematoda secara alami. Selanjutnya, pot plastik diletakkan di kebun percobaan Balai Penelitian Tanaman Rempah dan Obat (Balittro) Cimanggu, Bogor. Medium tanam yang digunakan pada penelitian ini merupakan campuran tanah, pasir, dan pupuk kandang dengan perbandingan 2:1:1 yang disiapkan dengan cara disterilisasi dengan menyiramkan larutan bubur bordo 1%
Tabel 1  Jenis perlakuan benih, konsentrasi/dosis, dan metode aplikasi perlakuan benih Perlakuan benih Konsentrasi/Dosis Metode aplikasi Tanpa perlakuan - Tanpa perlakuan benih Larutan pestisida Larutan campuran antibiotik streptomisin sulfat dan fungisida benomil (1.5 g L -1 ) Rimpang direndam dalam larutan pestisida selama 24 jam sebelum tanam Tepung karbosulfan ST 500 g untuk 100 benih rimpang (bobot rimpang rata-rata 40 g) Rimpang dilapisi dengan tepung karbosulfan ST Bubur Bordo 2% Larutan campuran terusi:kapur tohor:air = 2:2:10 Rimpang direndam dalam larutan bubur bordo 2% selama 24 jam sebelum tanam Bubur Bordo 1% Larutan campuran terusi:kapur tohor:air = 1:1:10 Rimpang direndam dalam larutan bubur bordo 1% selama 24 jam sebelum tanam Formula Rizobakteri Larutan 1.0% formula molas rizobakteri ( Bacillus pantotkenticus J2 dan
Trichoderma lactae TB1) (2-3 x 10 8 cfu mL - 1 ) Rimpang direndam dalam larutan molas rizobakteri selama 24 jam sebelum tanam Formula ”talk” Fusarium NP (non patogenik) 500 g formula ”talk” Fusarium NP (2 x 10 8 cfu.g -1 ) untuk melapisi 100 benih rimpang Rimpang dilapisi pasta formula talk Fusarium NP (500 g tepung formula untuk 100 benih rimpang)

## Jurnal Fitopatologi Indonesia

## Rahayuningsih dan Djiwanti
sebanyak 200 mL untuk tiap pot, dan didiamkan selama 6 minggu untuk menghindari pengaruh bubur bordo pada tanaman saat digunakan sebagai medium tanam.
Peubah yang diamati ialah insidensi penyakit busuk rimpang dan infeksi nematoda puru akar ( M. incognita ), serta gejala fitotoksik pada tanaman. Insidensi penyakit busuk rimpang dan puru akar ( M. incognita ) dihitung meng- gunakan rumus:
IP, insidensi penyakit busuk dan puru akar; n, jumlah cabang rimpang jahe bergejala busuk dan puru; dan N, jumlah cabang rimpang jahe yg diamati.
Persentase penekanan insidensi busuk (busuk basah oleh bakteri maupun busuk kering oleh cendawan/nematoda) dan puru akar rimpang jahe dihitung menggunakan rumus:
PP, persentase penekanan; K, rata-rata insidensi busuk dan puru pada rimpang kontrol; P, rata-rata busuk dan puru pada rimpang yang diberi perlakuan.
Gejala  fitotoksik  diamati  berupa  ada tidaknya gejala menguning pada tanaman atau gejala penghambatan viabilitas benih dan pertumbuhan tanaman (tinggi tanaman, bobot segar tanaman, dan bobot kering rimpang) (Dadang et al . 2009; Djiwanti et al. 2019).
Pengaruh perlakuan terhadap viabilitas benih dihitung berdasarkan persentase tanaman yang tumbuh pada umur 2 bulan setelah tanam. Tinggi tanaman diukur saat tanaman berumur 2 bulan setelah tanam dan bobot segar serta bobot kering rimpang jahe diukur saat panen (5 bulan setelah tanam). Bobot kering rimpang ialah bobot rimpang setelah dikeringanginkan pada suhu ruangan selama 2 bulan.

## Rancangan Percobaan dan Analisis Data
Percobaan ini disusun dalam rancangan acak kelompok dengan faktor tunggal, yaitu 6 jenis perlakuan benih. Perlakuan diulang sebanyak 4 kali, dan setiap ulangan terdiri dari 10 tanaman. Analisis data dilakukan menggunakan Anova dan perlakuan yang berpengaruh nyata diuji lanjut dengan DMRT pada taraf 5%. Perlakuan benih dikatakan efektif apabila perlakuan benih yang diujikan dapat menekan insidensi busuk rimpang dan puru pada rimpang, tetapi tidak menyebabkan penekanan viabilitas benih dan pertumbuhan tanaman.

## HASIL
Insidensi  puru akar dan busuk rimpang jahe  dengan perlakuan benih nyata lebih rendah dibandingkan dengan tanpa perlakuan. Perlakuan pada rimpang jahe dapat menekan gejala puru sebesar 60.89%–89.20%, dan busuk rimpang sebesar 41.94%–100% (Tabel 2).
N IP = × 100%, dengan n P PP = × 100%, dengan K–P
Tabel 2  Insidensi puru akar dan busuk pada rimpang berdasarkan perlakuan benih rimpang sebelum tanam
Perlakuan benih Insidensi puru pada rimpang* (%) Penekanan Insidensi puru** (%) Insidensi busuk pada rimpang* (%) Penekanan Insidensi busuk** (%) Tanpa Perlakuan 36.77 a 0.00 44.12 a 0.00 Larutan Pestisida 11.19 cd 69.57 1.85 d 95.81 Tepung karbosulfan ST 7.51 cd 79.58 0.00 d 100.00 Bubur Bordo 2% 3.97 d 89.20 19.50 bcd 55.81 Bubur Bordo 1% 8.65 cd 76.47 8.17 cd 81.47 Formula rizobakteri 1% 14.38 bc 60.89 6.91 cd 84.33 Formula ”talk” Fusarium NP 10.19 cd 72.27 25.62 abc 41.94
*Angka pada kolom yang sama diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT pada taraf 5%. ** Penekanan gejala puru (%) merupakan nilai pengurangan insidensi puru/ busuk pada rimpang tanpa perlakuan terhadap insidens puru/ busuk pada rimpang perlakuan.
Tabel 3  Tingkat viabilitas benih jahe dua bulan setelah tanam berdasarkan jenis perlakuan benih sebelum tanam Perlakuan benih Daya tumbuh  (%)* Tanpa Perlakuan 82.5 a Larutan Pestisida 97.5 a Tepung karbosulfan ST 87.5 a Bubur Bordo 2% 82.5 a Bubur Bordo 1% 92.5 a Formula  rizobakteri 100.0 a Formula talk Fusarium NP
97.5 a *Angka pada kolom yang sama diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT pada taraf 5%.
Tabel 4  Pertumbuhan tanaman jahe berdasarkan jenis perlakuan benih pada 5 bulan setelah tanam
Perlakuan benih Tinggi tanaman (cm) Bobot segar tanaman a (g) Bobot kering rimpang a (g) Tanpa perlakuan 47.50 a 96.82 ab 27.25 ab Larutan Pestisida 40.69 a 103.58 a 23.55 ab Tepung karbosulfan ST 48.67 a 109.50 a 32.94 a Bubur Bordo 2% 26.41 b 52.73 c 20.96 ab Bubur Bordo 1% 22.67 b 51.73 c 8.98 c Formula molas rizobakteri 49.85 a 139.37 a 42.37 a Formula talk Fusarium NP 52.49 a 97.00 ab 32.64 a
Keterangan: Data  merupakan nilai rata-rata dari 40 tanaman uji untuk setiap jenis perlakuan benih. a Angka pada kolom yang sama diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT pada taraf 5%.

## Hasil pengamatan menunjukkan bahwa
perlakuan benih yang diuji umumnya memper- tahankan dan meningkatkan viabilitas benih. Walaupun tidak berbeda nyata, viabilitas benih pada perlakuan benih larutan pestisida tepung carbosulfan ST, bubur Bordo 1%, formula rizobakteri, formula talk Fusarium NP, lebih baik dibandingkan dengan tanpa perlakuan (Tabel 3). Perlakuan benih tepung carbosulfan ST, formula rizobakteri, formula talk Fusarium NP, dan perlakuan benih larutan pestisida tidak menyebabkan penghambatan tinggi, dan atau bobot segar, dan atau bobot kering tanaman; sedangkan perlakuan benih dengan Bubur Bordo (BB 2% dan 1%) menyebabkan penekanan pertumbuhan tanaman. Perlakuan benih Bubur Bordo (BB 2% dan 1%) menekan secara nyata tinggi tanaman, bobot segar tanaman, dan bobot kering rimpang (Tabel 4).

## PEMBAHASAN
Dalam pengendalian OPT, aplikasi pestisida kadang-kadang menyebabkan keracunan pada tanaman, seperti menguningnya daun  atau terhambatnya pertumbuhan (Dadang et al . 2009; Djiwanti et al. 2019).  Aplikasi pestisida dinilai efektif jika dapat menekan infeksi OPT tetapi tidak bersifat fitotoksik.
Perlakuan rimpang jahe dengan  perendaman formula rizobakteri ( B. pantotkenticus dan T. lactae ) dan pelapisan tepung carbosulfan ST, serta formula talk Fusarium NP dapat me- nekan gejala puru dan busuk rimpang secara signifikan,  selain  meningkatkan  viabilitas benih dan pertumbuhan tanaman. Perlakuan perendaman rimpang dalam larutan pestisida (streptomisin sulfat dan benomil) dapat menurunkan bobot rimpang. Ukuran rimpang yang sedikit lebih kecil ini dapat ditoleransi karena dalam produksi jahe tidak selalu berprinsip bahwa rimpang yang besar adalah yang lebih baik, tetapi lebih pada pertimbangan kualitas secara komersial dan keuntungan secara ekonomi (Xizhen et al. 2004). Walaupun perlakuan benih larutan Bubur Bordo (BB) 1% dan BB 2% dapat menekan gejala puru dan busuk rimpang secara nyata tetapi perlakuan ini juga menekan pertumbuhan tanaman sehingga berakibat menekan produksi rimpang. Aplikasi dengan bubur bordo pada benih jahe perlu dievaluasi ulang karena bubur bordo adalah pestisida alami yang potensial untuk pengendalian penyakit bakteri dan cendawan.

## Jurnal Fitopatologi Indonesia

## Rahayuningsih dan Djiwanti
Perlakuan perendaman rimpang dalam larutan pestisida, serta pencampuran anti- biotik streptomisin dan fungisida benomil, dimaksudkan untuk menekan gejala busuk rimpang oleh bakteri layu maupun cendawan busuk rimpang, tetapi perlakuan benih ini juga efektif menekan gejala puru oleh nematoda. Hal ini kemungkinan disebabkan oleh waktu perendaman (24 jam) yang  menyebabkan pestisida tersebut menjadi toksik terhadap kontaminan nematoda parasit (telur atau larva). Beberapa jenis perlakuan benih dengan pestisida pada konsentrasi dan waktu perendaman yang berbeda telah banyak diteliti untuk menekan inokulum patogen terbawa rimpang. Perendaman rimpang dalam 0.1% larutan raksa (II) klorida selama 24 jam, efektif menekan busuk rimpang oleh cendawan Pythium spp. (Kothari 1966), dan  larutan  fungisida benomil (2.5 g L -1 air selama 10 menit) efektif menekan  busuk kering rimpang oleh cendawan Fusarium (Pegg et al . 1974). Hartati dan Supriadi (1994), dan Karuppiyan et al. (2018) melakukan perendaman rimpang dalam larutan antibiotik agrimisin (2.5 g L -1 selama 1–2 jam), dan streptocyclin (0.20 g L -1 air selama 15 menit) untuk menekan kontaminasi bakteri layu pada permukaan rimpang.
Pelapisan rimpang menggunakan tepung karbosulfan ST  efektif mengendalikan nematoda puru akar Meloidogyne spp. pada kentang dan nematoda  pelubang akar Radopholus similis pada pisang. Karbosulfan diketahui  bersifat insektisida, akarisida, dan nematisida dengan daya racun sistemik, racun kontak dan lambung (Direktorat Pupuk dan Pestisida 2014). Keefektifan karbosulfan dalam menekan gejala busuk rimpang oleh bakteri dan cendawan kemungkinan disebabkan adanya interaksi sinergis  antara infeksi nematoda dengan infeksi bakteri layu dan cendawan busuk rimpang. Infeksi nematoda dapat memfasilitasi infeksi bakteri dan cendawan serta mempercepat keparahan infeksi kedua patogen tersebut (Mustika dan Nurawan 1992, Rai 2006) sehingga tertekannya infeksi nematoda oleh pestisida karbosulfan, berakibat tertekannya infeksi oleh patogen busuk rimpang.
Kemampuan agens hayati dalam menekan patogen dapat melalui beberapa mekanisme, antara lain: produksi senyawa antimikroba, produksi senyawa HCN, dan induksi ketahanan inang terhadap patogen (Noveriza et al. 2005,  Harni et al. 2012, Octaviani 2015, Jalaluldeen et al. 2015, Kumar 2015, Waruwu et al. 2016). Pemanfaatan formula rizobakteri ( B. pantotkenticus dan T. lactae )  untuk pengendalian busuk rimpang melalui pem- berian pupuk kandang dapat mengurangi intensitas infeksi bakteri layu rimpang pada jahe sebesar 54% (Hartati et al. 2009). Pelapisan rimpang jahe dan kunyit dengan formula campuran Bacillus subtilis OTPB1 and Trichoderma harzianum OTPB3 dapat menghambat busuk lunak rimpang selain merangsang pertumbuhan dan menginduksi ketahanan sistemik tanaman di lapangan secara signifikan (Kumar et al. 2015).  Arwiyanto et al . (2007) melaporkan bahwa penggunaan Bacillus spp.  dengan cara perendaman akar benih tembakau mampu menekan penyakit lincat yang disebabkan oleh infeksi ganda bakteri R. solanacearum dan nematoda Meloidogyne incognita pada tembakau Temanggung. Bacillus spp. dapat bersifat toksik terhadap nematoda parasit, yaitu dengan mekanisme antagonis langsung atau meng- induksi ketahanan sistemik (Bacon 1998, Yu et al. 2002, Kloepper et al. 2004, Harni et al . 2012). Berbagai senyawa antimikroba yang berhasil diisolasi dari beberapa spesies Trichoderma spp. seperti viridiofungin A (VFA) dari T. viride (El-Hasan et al . 2009), peptaibols dari T. asperellum TR356 (Brito et al . 2014) dan trichorzianol dari T. harzianum F031 (Jeerapong et al. 2015); umumnya mempunyai spektrum luas, yang mampu menghambat perkembangan berbagai jenis patogen. Asam asetat yang dihasilkan T. harzianum efektif menekan pertumbuhan cendawan patogen Botryodiplodia sp. secara in vitro sebesar 52.5% (Octaviani 2015). Asam 5,10-diethoxy- 2,3,7,8-tetrahydro-1h,6hdipyrrolo[1,2-a; 1’,2’-d]pyrazine dan asam 3-pyrrolidin-2-yl- propionic yang berasal dari cendawan endofit mampu menekan pertumbuhan F. oxysporum (patogenik) hingga 70% (Jalaluldeen et al. 2015).
Agens hayati Fusarium NP merupakan cendawan  endofit  yang  banyak  digunakan untuk mengendalikan penyakit cendawan tular tanah seperti, busuk pucuk vanili dan busuk batang lada oleh Phytophthora capsici , dan busuk batang vanili oleh F. oxysporum (Tombe et al . 1999, Noveriza et al. 2005, Taufiq et al . 2007).  Efektivitas Fusarium NP terhadap penekanan nematoda parasit pernah dilaporkan untuk R. similis pada pisang (Lisnawita et al . 2013), M. incognita pada tomat (Hallmann dan Sikora 1994), dan M. graminicola pada padi (Le et al . 2009). Mekanisme penghambatan patogen oleh Fusarium NP umumnya berupa kompetisi ruang dan nutrisi serta menginduksi ketahanan tanaman terhadap patogen (Mandeel 2007, Isniah dan Widodo 2015). Mekanisme penekanan terhadap infeksi busuk rimpang dan nematoda dari perlakuan benih yang diuji bersifat sterilisasi permukaan rimpang untuk membunuh patogen yang mencemari permukaan rimpang, walaupun tidak dapat membunuh patogen yang meng- infeksi jaringan dalam rimpang, tetapi dapat melindungi benih dari infeksi baru. Menurut Hartati dan Supriadi (1994), perendaman rimpang dalam larutan antibiotik bertujuan untuk membunuh patogen yang mungkin terbawa pada permukaan benih rimpang jahe karena antibiotik tidak dapat terserap dalam rimpang. Berbeda  dengan metode perlakuan benih melalui induksi panas seperti perendaman benih  rimpang  dalam  air  panas,  faktor  fisik panas dapat meresap ke dalam jaringan rimpang dan mencapai serta membunuh patogen dalam jaringan tersebut (McGrath et al . 2013). Rimpang jahe yang tampak sehat dapat juga terkontaminasi patogen busuk rimpang sehingga perlakuan benih jahe sebelum tanam perlu dilakukan. Empat perlakuan benih yang diujikan dan efektif terhadap penekanan infeksi nematoda puru akar dan insiden busuk rimpang (larutan pestisida, formula rizobakteri, tepung karbosulfan ST, formula Fusarium NP) umumnya memberikan viabilitas benih dan pertumbuhan tanaman (bobot segar tanaman) yang lebih baik, sehingga teknologi tersebut dapat dikembangkan untuk upaya perbaikan mutu benih jahe yang ramah lingkungan.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Ucapan terima kasih disampaikan kepada bapak Prof. Dr. Mesak Tombe atas saran-saran yang diberikan dalam penyiapan dan aplikasi formula rizobakteri dan Fusarium NP pada perlakuan benih rimpang jahe.

## DAFTAR PUSTAKA
Arwiyanto T, Asfanudin R, Wibowo A, Martoredjo T, Dalmadiyo G. 2007. Penggunaan Bacillus isolat lokal untuk menekan penyakit lincat tembakau Temanggung. Berk Penelit Hayati 13(1): 79–84. DOI: https://doi.org/10.23869/ bphjbr.13.1.200713.
Asman A, Nurawan A, Sitepu D. 1991. Penyakit tanaman jahe dan cara penanggulangannya. Edsus Littro. 7(1):43–48.
Bacon CW. 1998. The use of Bacillus subtilis as an endophyte for control of corn seedling blight disease caused by Fusarium moniliforme . Georgia (US): Russell Research Center.
[Balitbangtan] Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian. 2010. Standar Prosedur Operasional Budidaya Jahe, Kencur, Kunyit dan Temulawak . Bogor (ID): Balittro. Brito JP, Ramada MH, de Magalhães MT, Silva LP, Ulhoa CJ. 2014. Peptaibols from Trichoderma asperellum TR356 strain isolated from Brazilian soil. SpringerPlus. 3:600. DOI: https://doi.org/10.1186/2193- 1801-3-600.
Dadang, Fitriasari ED, Prijono D. 2009. Effectiveness of two botanical insecticide formulations to two major cabbage insect pests  on  field  application.  J  ISSAAS. 15(1):42–51.
Direktorat Pupuk dan Pestisida. 2014. Pestisida pertanian dan kehutanan tahun 2014.  Jakarta (ID): Dirjen Prasarana dan Sarana Pertanian, Kementan Republik Indonesia. https:// id.scribd.com/doc/270752207/Pestisida- Pertanian-Dan-Kehutanan-Terdaftar-2014. Djiwanti S R, Supriadi, Wiratno. 2019.
Effectiveness of some clove and citronella

## Jurnal Fitopatologi Indonesia
Rahayuningsih dan Djiwanti
oil based-pesticide formulas against root- knot nematode on ginger. IOP Conf Ser: Earth Environ Sci 250:012090. DOI: https://doi.org/10.1088/1755-1315/250/1/
012090.
El-Hasan A, Walker F, Schöne, J, Buchenauer
H. 2009. Detection of viridiofungin A and other antifungal metabolites excreted by Trichoderma harzianum active against different  plant  pathogens.  Eur  J  Plant Pathol. 124(3):457–470. DOI: https://doi. org/10.1007/s10658-009-9433-3.
Hallmann  J,  Sikora  RA.  1994.  Influence  of Fusarium oxysporum , a mutualistic fungal endophyte on Meloidogyne incognita infection of tomato. J Plant Dis Prot. 101(4):475–481.
Harni R, Supramana, Sinaga MS, Giyanto, Supriadi. 2012. Mekanisme bakteri endofit mengendalikan nematoda Pratylenchus brachyurus pada tanaman nilam. Bul Littro. 23(1):102–114.
Hartati SY, Supriadi. 1994. Systemic action of bactericide containing oxytetracycline and streptomycin sulphate in treated ginger rhizomes. J Spice Medic Crops. 3(1):7–11.
Hartati SY, Supriadi, Harni  R, Gusmaini, Maslahah  N, Karyani  N. 2009. Pemanfaatan agensia dan pupuk hayati untuk mengendalikan penyakit layu pada tanaman jahe. Di dalam: Prosiding Simposium V: Penelitian dan Pengembangan Perkebunan ; 2009 Agu 14; Bogor (ID): Puslitbangbun. hlm 451–454. Isniah US, Widodo W. 2015. Eksplorasi Fusarium nonpatogen untuk pengendalian penyakit busuk pangkal pada bawang merah. J Fitopatol Indones 11(1):14–22. DOI: https://doi.org/10.14692/jfi.11.1.14 . Jalaluldeen AM, Sijam K, Othman R, Ahmad ZAM. 2015. Growth characteristic and production of secondary metabolites from selected Streptomyces species isolated from the rhizosphere of chili plant. IJERSTE. 4(1):1–8.
Jeerapong C, Phupong W, Bangrak P, Intana W,
Tuchinda P.  2015. Trichoharzianol, a new antifungal from Trichoderma harzianum F031. J Agric Food Chem. 63(14):
3704–3708. DOI: https://doi.org/10.1021/ acs.jafc.5b01258.
Karuppiyan R, Rahman H, Avasthe RK, Kalita H, Singh M, Ramesh K, Panda PK, Kumar A, Borah TR. 2018. Pests and diseases management in ginger. Sikkim (IN): ICAR Research complex for NEH Region. Kloepper JW, Ryu CM, Zhang S.  2004. Induced systemic resistance and promotion of plant growth by Bacillus spp. Phytopathol. 94(11):1259–1266. DOI:  https://doi.org/10. 1094/PHYTO.2004.94.11.1259.
Kothari KL. 1966. Effect of fungicides on the germination and growth of ginger plants. Sci Cult. 32(1):48–49.
Kumar SPM, Chowdappa P, Krishna V. 2015. Development of seed coating formulation using consortium of Bacillus subtilis OTPB1 and Trichoderma harzianum OTPB3 for plant growth promotion and induction of systemic resistance in field and horticultural crops. Indian Phytopathol. 68(1):25–31.
Le TH, Padgham LJ, Sikora RA. 2009. Biological control of the rice root-knot nematode Meloidogyne graminicola on rice, using endophytic and rhizosphere fungi. Int J Pest Manag. 55(1):31–36. DOI: https:// doi.org/10.1080/09670870802450235.
Lisnawita  A,  Tantawi  R, Pinem  MI. 2013. Aplikasi  cendawan  endofit  terhadap perkembangan populasi nematoda Radopholus similis pada tanaman pisang Barangan. J Fitopatol Indones. 9(5):133– 138. DOI: https://doi.org/10.14692/jfi.9.5. 133. Mandeel QA. 2007. Modeling competition for infection sites on roots by nonpathogenic strains of Fusarium oxysporum . Mycopathologia. 163(1):9–20. DOI: https://doi.org/10.1007/s11046-006-0080-3.
McGrath M, Wyenandt A, Holmstrom K. 2013. Managing pathogens inside seed with hot water. New York (US): Department of Plant Pathology, Cornell University.
Mustika I, Nurawan A. 1992. Pengaruh Radopholus similis dan Pseudomonas solanacearum terhadap pertumbuhan jahe. Bul Littro 4:37–41.
Noveriza R, Tombe M, Rialdy H, Manohara D. 2005. Aplikasi Fusarium oxysporum Non Patogenik (FONP) untuk menginduksi ketahanan bibit lada terhadap Phytophthora capsici L. Bul Littro. 16(1):27–37. Octaviani EA. 2015. Potensi Trichoderma harzianum dan Gliocladium sp. untuk pengendalian Botryodiplodia sp.  pada jabon ( Anthocephalus cadamba ) [tesis]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor. Pegg KG, Melda L, Meffett ML, Colbran RC. 1974. Disease of ginger in Queensland. Queensland Agric J. 5:611–614. Rai S.  2006.  Management of ginger ( Zingiber officinale Rosc.) rhizome rot in Darjeeling and Sikkim Himalayan Region, India. http://lib.icimod.org/record/13347/files/ 1679.pdf
Rostiana O, Effendi DS, Bermawie N. 2007. Teknologi unggulan jahe . Bogor (ID): Pusat Penelitian dan Pengembangan Jahe. Soesanto L, Soedarmono, Prihatiningsih
N, Manan A, Iriani E, Pramono J. 2003. Penyakit busuk rimpang jahe di sentra produksi jahe Jawa Tengah: 1. Identifikasi dan Sebaran. Tropika 11(2):107–220. Taufiq  E,  Hasim,  Soekarno  BPW,  Surahman M. 2017. Keefektifan Trichoderma sp. dan Fusarium non patogenik dalam
mengendalikan penyakit busuk pucuk vanili berwawasan lingkungan. J Littri. 23(1):18–25. DOI: https://doi.org/10.21082/ littri.v23n1.2017.18-25.
Tombe  M,  Sukamto,  Taufik  E,  Zulhisnain. 1999. Penggunaan Fusarium oxysporum non patogenik (FoNP) untuk memperoleh bibit vanili yang bebas pathogen BBV. Didalam: Prosiding Simposium Hasil Penelitian dan Pengembangan Tanaman Perkebunan . Bogor (ID): Puslitbangbun. hlm 152–159. Waruwu AAS, Soekarno BPW, Munif A. 2016. Metabolit cendawan endofit tanaman padi sebagai alternatif pengendalian cendawan patogen terbawa benih padi. J Fitopatol Indones. 12(2):53–61. DOI: https://doi.org/ 10.14692/jfi.12.2.53 . Xizhen A, Jinfeng S, Xia X. 2004. Ginger production in Southeast Asia. Di dalam: Ravindran PN, Babu KN, editor. Ginger the Genus Zingiber . Florida (US): CRC Press.
Yu GY, Sinclair JB, Hartman GL, Bertagnolli BL. 2002. Production of iturin A by Bacillus amyloiquefaciens suppressing Rhizoctonia solani . Soil Biol Biochem. 34(7):955–963. DOI:  https://doi.org/10.1016/S0038-0717 (02)00027-5.