## UJI KEPEKAAN BAKTERI YANG DIISOLASI DARI  SPUTUM PASIEN PENDERITA BRONKITIS KRONIK YANG MENJALANI RAWAT JALAN DI RSUP PROF. DR. R. D. KANDOU MANADO TERHADAP ANTIBIOTIK AMPICILIN, ERITROMISIN, DAN CIPROFLOXACIN
Kezia Novita Baharutan 1) , Fatimawali 1) dan Adeanne Wullur 1)
1) Program Studi Farmasi FMIPA UNSRAT Manado, 95115

## ABSTRACT
Antibiotic  use  in  hospitals  for  the  treatment  of  chronic  bronchitis  due  to  the  bacterial infection  is  still  based  on  empirical  experience  without  culture  results  and  bacterial sensitivity  test  to    antibiotics.  It  caused    a  lot  of    failure  of    therapy  and    widespread bacterial resistance to antibiotics. This study, aims to determine the types  of bacteria that cause  the  infection  in  the  sputum  of  patients  with  chronic  bronchitis    in  outpatient installation  of    Prof.  Dr.  R.  D.  Kandou  Manado  and  test  the  sensitivity  to  antibiotics Ampicillin,  Erythromycin  and  Ciprofloxacin.  Bacteria  isolated  from    three  samples  of sputum of patients with chronic bronchitis and identified using biochemical tests and gram stain.  The  Sensitivity  test  for  bacteria  use  disc  diffusion  of  antibiotics  Ampicillin, Erythromycin  and  Ciprofloxacin.  The  result  showed  that  there  are  5  kinds  of  bacteria, namely Bacillus  sp .  (37,5%), Escherichia  coli (25%), Klebsiella  pneumoniae (12,5%), Salmonella (12,5%),  and Bacteroides  gracilis (12,5%)  with  the  highest  sensitivity  is ciprofloxacin (62,5%) and the highest Resistance is Ampicillin (100%).
Keywords: Chronic Bronchitis, Isolation of Bacteria, Bacterial Sensitivity Test.

## ABSTRAK
Pola  penggunaan  antibiotik  di  rumah  sakit  untuk  pengobatan  bronkitis  kronik  akibat infeksi  bakteri  masih  berdasarkan  pada  pengalaman  empirik  tanpa    hasil  kultur  dan  tes sensitifitas  bakteri  terhadap  antibiotik.  Akibatnya  banyak  terjadi  kegagalan  terapi  dan meluasnya resistensi bakteri terhadap antibiotik. Penelitian ini bertujuan untuk menentukan jenis  bakteri  penyebab  infeksi  dalam  sputum  pasien  penderita  bronkitis  kronik    yang menjalani rawat jalan di RSUP Prof. Dr. R. D. Kandou Manado dan menguji kepekaannya terhadap  antibiotik  Ampicilin,  Eritromisin  dan  Ciprofloxacin.  Bakteri  di  isolasi  dari  3 sampel sputum  pasien bronkitis  kronik  dan di  identifikasi  menggunakan uji biokimia dan pewarnaan  gram.  Uji  Kepekaan  bakteri  menggunakan  difusi  cakram  dari  antibiotik Ampicilin, Eritromicin dan Ciprofloxacin. Hasilnya didapat 5 jenis bakteri, yaitu Bacillus sp. (37,5%), Escherichia coli (25%), Klebsiella pneumonia (12,5%), Salmonella (12,5%), dan Bacteroides gracilis (12,5%) dengan sensitifitas tertinggi Ciprofloxacin sebesar 62,5% dan Resisten tertinggi sebesar 100% oleh Ampicilin.
Kata Kunci: Bronkitis Kronik, Isolasi Bakteri, Uji Kepekaan Bakteri

## PENDAHULUAN
Bronkitis kronik merupakan keadaan  yang  berkaitan  dengan  produksi mukus yang berlebihan, sehingga menimbulkan  batuk  yang  terjadi  paling sedikit  selama  tiga  bulan  dalam  satu tahun  untuk  lebih  dari  dua  tahun  secara berturut-turut (Somantri, 2007).
Penyebab tersering terjadinya infeksi  adalah  infeksi  virus  pernapasan dan  infeksi  bakteri,  dengan  40  sampai 50%  disebabkan  oleh  bakteri,  30%  oleh virus,  dan  5  sampai  10%  oleh  bakteri atipikal.  Patogen  pernapasan  yang  khas dan  sering  ditemukan  dalam  sputum adalah Haemophilus influenzae ,
Streptococcus  pneumoniae , Moraxella catarrhalis (Sethi,  2000)  dan  organisme patogen  seperti klebsiella,  salmonella mycoplasma, legionella dan gram negatif lainnya  jarang  ditemukan  (Vandepitte et al, 2010).
Pengobatan bronkitis kronik dengan  infeksi  bakteri  salah  satunya adalah  dengan  terapi  menggunakan antibiotik  diantaranya  seperti  ampicilin, eritromisin  dan  ciprofloxacin.  Ampicilin merupakan antibiotik yang sering digunakan  untuk  terapi  empirik  atau terapi lini pertama pada bronkitis kronik. Eritromisin  sering  digunakan  sebagai alternatif  pengganti  penisilin  bagi  pasien yang  hipersensitif  terhadap  penisilin (Setiabudy,  2007).  Sedangkan  untuk ciprofloxacin  semakin  banyak  digunakan untuk  terapi  pengobatan  pada  bronkitis kronik  karena  bersifat  sangat  aktif, memiliki  spektrum  luas  yang  mencakup bakteri gram positif dan negatif (Soegito, 2004).
Pola  penggunaan  antibiotik  di rumah  sakit  biasanya  belum  berdasarkan pada  pola  kuman  dan  sensitivitas  dari antibiotik  (Dwiprahasto,  1995),  sehingga
semakin banyaknya pemakaian antibiotik tanpa  didukung  hasil  pemeriksaan  kultur bakteri dan tes kepekaan bakteri terhadap antibiotik,  pemakaian  antibiotik  yang tidak teratur, dan dosis yang kurang tepat akan  memberikan  derajat  resistensi  yang semakin  meningkat  terhadap  berbagai antibiotik (Scheld, 2003). Hal ini menyebabkan berbagai
masalah,
diantaranya meluasnya resistensi,
timbulnya  kejadian  superinfeksi  yang sulit diobati, meningkatkan beban ekonomi  pelayanan  kesehatan,  efek samping  yang  lebih  toksik  dan  kematian (Johnston,  2012),  sehingga  penentuan diagnosis  secara  cepat  dan  tepat  serta pemilihan  antibiotik  berdasarkan  uji kepekaan  bakteri  terhadap  antibiotik melalui  pemeriksaan  spesimen  sputum akan sangat membantu dalam penatalaksanaan  terapi  (Kumala et  al, 2010).

## METODOLOGI PENELITIAN Alat dan Bahan
Alat-alat  yang  digunakan  dalam penelitian  ialah  cawan  petri  ( Normax ), pot  sputum,  lampu  bunsen,  inkubator ( Incucell ),  tabung  reaksi  ( Pyrex ),  kaca objek,  mikroskop  ( Olympus )  jarum  ӧse, erlenmeyer (Approx), gelas ukur ( Pyrex ), gelas  kimia ( Approx ),  rak  tabung  reaksi, plastik wrap , aluminium foil, kapas, kasa, timbangan analitik ( Kern ), pinset, Laminar  Air  Flow ( Biotek ),  termometer, autoklaf (ALP),  mikropipet  ( Ecopipette ),
L-Glass ,  vortex  ( Benchmark ),  mistar berskala  dan  alat  fotografi.  Bahan-bahan yang digunakan dalam penelitian ini ialah sputum yang diambil dari pasien penderita bronkitis kronik yang menjalani rawat  jalan  di  RSUP  Prof.  Dr.  R.  D. Kandou  pada  bulan  April  –  Juli  2015, lugol,  alkohol  96%,  kristal  violet,
aquades,  safranin,  NaCl  0,9%,  BaCl 2 , H 2 SO 4, Ampicilin 10µg ( Oxoid ),
Eritromisin  15µg  ( Oxoid ),  Ciprofloxacin 5µg ( Oxoid ), NaCl , tripton ( Oxoid ), agar bacteriological ( Oxoid ), yeast  extract ( Oxoid )) , Nutrien Broth ( Oxoid ), Nutrien Agar ( Oxoid ), Simmon’s  Citrate  Agar ( Oxoid ), Lysine Iron Agar ( Oxoid ), Triple Sugar Iron Agar ( Oxoid ).

## Persiapan Sampel
Pada  pengambilan  sampel  berupa sputum,  diminta  kepada  pasien  agar memasukan  sputum  dalam  pot  sputum steril  dan  kemudian  pot  sputum  di  tutup dengan  rapat  dan  diberi  label  identitas pasien.  Setelah  itu  di  bawah  ke laboratorium mikrobiologi untuk diperiksa (WHO, 1995).

## Sterilisasi Alat
Alat-alat  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  disterilkan  terlebih  dahulu. Alat-alat  gelas  dan  media  disterilkan dalam  autoklaf  pada  suhu  121 o C  selama 15  menit.  Sedangkan  jarum  ӧse  dan pinset  dan L-Glass dipijarkan  dengan pembakaran diatas api langsung (Lay dan Hastowo, 1992).

## Pembuatan Media
a. Pembuatan  Media Luria  Bertani  Agar Plate
Media  LB  dibuat  dengan  menimbang tripton  sebanyak  2  gram,  NaCl sebanyak  2  gram, yeast  extract
sebanyak 1 gram dan agar
bacteriological sebanyak  3  gram, kemudian dimasukan kedalam erlenmeyer  dan  dilarutkan  bersama aquades  sebanyak  200  ml  kemudian dihomogenkan.  Media  yang  sudah homogen ini disterilkan dalam autoklaf  pada  suhu  121 0 C  selama  15
menit,  kemudian  dituangkan  pada masing-masing  cawan  petri  sebanyak 20  mL  dan  didinginkan  sampai memadat.  Media  ini  digunakan  untuk inokulasi  bakteri  dan  uji  kepekaan terhadap antibiotik.
b. Pembuatan  Media Luria  Bertani  Agar Miring
Media  LB  dibuat  dengan  menimbang tripton  sebanyak  0.5  gram,  NaCl sebanyak  0.5  gram, yeast  extract sebanyak 0.25 gram dan agar bacteriological sebanyak  0.75  gram, kemudian dimasukan kedalam erlenmeyer  dan  dilarutkan  bersama aquades  sebanyak  50  ml  kemudian dihomogenkan.  Media  yang  sudah homogen ini disterilkan dalam autoklaf  pada  suhu  121 o C  selama  15
menit,  kemudian  dituangkan  pada masing-masing tabung reaksi
sebanyak  5  mL  dan  didinginkan sampai memadat pada kemiringan 30 o .

## Inokulasi Bakteri Pada Media
Diambil  sputum  sebanyak  1  mL kemudian dimasukkan pada tabung reaksi yang  telah  berisi  10  mL  NaCl  0,9%  dan divortex.  Selanjutnya  dipipet  sebanyak 100  µL  suspense  bakteri  dan  dituangkan keatas  media Luria  Bertani Agar  Plate yang sudah memadat.  Selanjutnya cawan petri  di seal dengan  plastik wrap  dan diinkubasi dalam inkubator pada suhu 35- 36 o C.  Biakan  diamati  selama  ±  18  –  24 jam (Vandepitte et al, 2010).

## Isolasi Bakteri
Setiap  koloni  yang  timbul  pada media Luria  Bertani Agar  Plate diambil menggunakan jarum ӧse untuk dipindahkan  ke  media  agar  miring  untuk mendapatkan  isolat  bakteri  selanjutnya diinkubasi dalam inkubator pada suhu 35-
36 o C  selama  ±  18  –  24  jam    (Vandepitte et al, 2010).

## Identifikasi Bakteri
a. Uji Biokimia
Identifikasi  bakteri  secara  uji biokimia  menggunakan  uji  indol,  uji katalase,  uji  H 2 S,  uji  fermentasi karbohidrat,  uji  lysine,  uji  sitrat,  dan uji motilitas.
b. Pewarnaan Gram Kaca  objek  dibersikan  dengan kapas  yang  telah  diberi  alkohol  lalu diberi  label.  Biakan  bakteri  pada  agar miring  di  ambil  dengan  menggunakan jarum ӧse ,  kemudian  di  totol  pada bagian  tengah  kaca  objek  sampai merata  dan  ditambahkan  satu  tetes NaCl  0,9%.  Preparat  selanjutnya difiksasi  di  atas  lampu  Bunsen. Sediaan yang sudah direkatkan diwarnai  dengan  kristal  violet  selama 1  menit.  Kemudian  Kristal  violet dicuci  pada  air  mengalir  dan  di  ganti dengan  larutan  lugol  dan  dibiarkan selama  1  menit.  Larutan  lugol  dicuci pada  air  mengalir  dan  sediaan  dicuci dengan  alkohol  96%  selama  1  menit. Selanjutnya  sediaan  dicuci  dengan  air dan diwarnai dengan safranin selama 1 menit.  Sediaan  dicuci  pada  air  yang mengalir, dikeringkan dan diperiksa di mikroskop dengan menambahkan minyak  imerasi  (Staf  Pengajar  Bagian Mikrobiologi FKUI, 2002).
Uji kepekaan Bakteri Terhadap
Antibiotik
a. Pembuatan Larutan Mc Farland 0,5
Larutan  H 2 SO 4 1%  sebanyak
99,5  ml  dicampurkan  dengan  larutan BaCl 2 1,175 % sebanyak 0,5 ml dalam Erlenmeyer. Kemudian dikocok
sampai  terbentuk  larutan  yang  keruh. Kekeruhan ini dipakai  sebagai  standar kekeruhan suspense bakteri uji (Bresson dan Borges, 2004).
b. Pembuatan Suspensi Bakteri Uji Bakteri uji yang telah diinokulasi  diambil  dengan  jarum  ӧse steril  lalu  disuspensikan  ke  dalam tabung  yang  berisi  5  ml  larutan  NaCl 0,9%  hingga  diperoleh  kekeruhan yang  sama  dengan  standar  kekeruhan larutan Mc.  Farland 0,5.  Perlakuan yang sama dilakukan pada setiap jenis bakteri uji (Mpila et al, 2012).
c. Penanaman Cakram Antibiotik
Dipipet  suspensi  bakteri  uji sebanyak  200  µL  dan  dituangkan  ke seluruh permukaan media Luria Bertani Agar s Plate selanjutnya diratakan menggunakan L-Glass dan  diamkan selama  5  menit.  Tempatkan    cakram Ciprofloxacin  5  µg,  Ampicilin  10  µg, dan Eritromisin 15 µg, pada permukaan media Luria  Bertani  Agar s Plate. Cakram antibiotik ditekan menggunakan pinset  agar  dapat  memempel  secara sempurna di permukaan agar.
Selanjutnya  diinkubasi  pada  suhu  37 o C selama  18-24  jam.  Dibuat  tiga  kali ulangan  pada  cawan  petri  yang  berbeda (Kumala et al, 2010).
d. Pengukuran dan Penetapan Zona

## Hambat
Setelah  inkubasi,  d iamati  zona pertumbuhan bakteri di sekitar cakram antibiotik. Koloni bakteri yang sensitif terhadap antibiotik Ampicilin,
Eritromisin,  dan  Ciprofloxacin  dilihat dengan  adanya  zona  hambatan  berupa daerah  bening  di  sekitar  cakram antibiotik. Daerah hambatan antibiotik terhadap  pertumbuhan  bakteri  diukur menggunakan  mistar  berskala  atau
jangka  sorong  dengan  satuan  mm.
Kemudian zona hambatan dibandingkan  berdasarkan  pedoman CLSI ( Clinical and Laboratory
Standards Institute ) yang dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1. Zona penghambatan Antibiotik (CLSI, 2007)
Jenis Antibiotik Resisten Intermediet Sensitif Ampicilin 10 µg ≤ 13 mm 14-16 mm ≥ 17 mm Eritromisin 15 µg ≤13 mm 14-22 mm ≥ 23 mm Ciprofloxacin 5 µg ≤ 15 mm 16-20 mm ≥ 21 mm

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Isolasi  bakteri  dari  3  sampel sputum pasien yang terdiagnosa bronkitis kronik  yang  menjalani  rawat  jalan  di RSUP  Prof.  Dr.  R.  D.  Kandou  Manado
diperoleh  8  isolat  bakteri.  Isolat  bakteri yang  diperoleh  diidentifikasi  secara pewarnaan  Gram  dan  uji  biokimia sehingga  diperoleh  5  jenis  bakeri  yang dapat dilihat dalam Tabel 2.
Tabel 2. Bakteri yang diisolasi dari sputum
Nama Bakteri Gram Jumlah Presentase (%) Bacillus sp. Positif (Basil) 3 37.5 Klebsiella pneumoniae Negatif (Basil) 1 12.5 Salmonella Negatif (Basil) 1 12.5 Escherichia Coli Negatif (Basil) 2 25 Bacteroides gracilis Negatif (Kokus) 1 12.5 Jumlah 8 100 Hasil  isolasi  dan  identifikasi bakteri  yang  diperoleh  dari  sampel sputum masih kurang sesuai dengan yang dilaporkan Sethi (2000). Patogen pernapasan yang khas dan sering ditemukan dalam sputum adalah
Haemophilus  influenzae , Streptococcus pneumoniae , Moraxella catarrhalis
klebsiella, salmonella mycoplasma, legionella .  Hal  ini  sebabkan  karena rendahnya kualitas sputum yang diperoleh  disebabkan  belum  tepatnya cara pengambilan sputum sehingga terkontaminasi dengan flora normal  yang terdapat  dalam  mulut  dan  ternggorokan seperti Bacillus  sp. dan Bacteroides gracilis (Vandepitte et  al, 2010).    Selain
itu  media  pertumbuhan  juga  sangat mempengaruhi  hasil  isolasi  bakteri. Seperti  halnya Haemophilus  influenza termasuk  bakteri  yang  membutuhkan faktor  X,  yaitu  suatu  derivat  hemoglobin yang  termolabil  dan  memerlukan  NAD ( nicotimanide adenine dinucleotide ) yang termolabil  sebagai  faktor  V  untuk pertumbuhan  (Staf  Pengajar  Bagian Mikrobiologi FKUI , 2002).
Sensitivitas bakteri terhadap antibiotik  diperoleh  melalui  pengukuran diameter  zona  hambatan  yang  terbentuk setelah proses penempelan cakram antibiotik. Hasil pengukuran zona hambat selanjutnya  dibandingkan  dengan  standar diameter  zona  hambatan  berdasarkan
pedoman CLSI  ( Clinical and Laboratory Standards  Institute ).  Pada  uji  kepekaan digunakan  3  jenis  cakram  antibiotik,
yaitu Ampicilin, Eritromisin dan Ciprofloxacin. Berikut merupakan
distribusi  frekuensi  pola  sensitivitas bakteri  terhadap  Ampicilin,    Eritromisin dan Ciprofloxacin yang dapat dilihat pada Tabel 3, Tabel 4 dan Tabel 5 :
Tabel 3.   Distribusi Frekuensi Pola Sensitivitas Bakteri Terhadap Ampicilin
Kuman penyebab Ampicilin Sensitif Intermediet Resisten Klebsiella pneumonia 0 0 1 Bacillus sp. 0 0 3 Salmonella 0 0 1 Bacteroides gracilis 0 0 1 Escherichia coli 0 0 2 Total 0 (0%) 0 (0%) 8 (100%) Tabel 4.  Distribusi Frekuensi Pola Sensitivitas Bakteri Terhadap Eritromisin Kuman penyebab Eritromisin Sensitif Intermediet Resisten Klebsiella pneumonia 0 1 0 Bacillus sp. 0 1 2 Salmonella 0 1 0 Bacteroides gracilis 0 0 1 Escherichia coli 0 2 0 Total 0 (0%) 5 (62.5%) 3 (37.5%) Tabel 5. Distribusi Frekuensi Pola Sensitivitas Bakteri Terhadap Ciprofloxacin Kuman penyebab Ciprofloxacin Sensitif Intermediet Resisten Klebsiella pneumonia 0 1 0 Bacillus sp. 2 1 0 Salmonella 1 0 0 Bacteroides gracilis 0 1 0 Escherichia coli 2 0 0 Total 5 (62.5%) 3 (37.5%) 0 (0%)
Berdasarkan  hasil  uji  kepekaan bakteri  terhadap  antibiotik,  menunjukan bahwa  ampicilin  telah  resisten  terhadap semua  jenis  bakteri  yang  diisolasi  dari spesimen sputum pasien bronkitis kronik. Mekanisme  utama  resistensi  bakteri Gram  positif  dan  Gram  negatif  terhadap ampicilin,  yakni  dengan  menghasilkan enzim betalaktamase. Enzim betalaktamase  merupakan  enzim  perusak
penisilin  yang  dihasilkan  oleh  sejumlah bakteri gram negatif. Enzim ini membuka cincin  betalaktam  dari  pensilin  serta menghilangkan daya antibakterinya (Jawet et al., 2007). Klebsiella pneumoniae mengandung plasmid dengan gen extended-spectrum β-
lactamase (ESBLs). Enzim ini
menyebabkan resistensi terhadap
Ampicilin (Drlica and Perlin, 2011).
Pada uji kepekaan bakteri terhadap Eritromisin menunjukan
penghambatan  yang  intermediet  sebesar 62,5%  yaitu  pada  bakteri Klebsiella pneumonia , Bacillus sp , Salmonella , dan Escherichia  coli .  Intermediet  merupakan hasil  kepekaan  yang  menujukkan  zona tengah  antara  sensitif  dan  resisten terhadap  suatu  antibiotik  dan  dapat digunakan dengan menaikkan dosis terapi (Vandepitte et al, 2010).  Sehingga dalam hal ini Eritromisin masih dapat digunakan sebagai terapi bronkitis kronik berdasarkan kultur bakteri pada Klebsiella pneumonia , Bacillus sp ,
Salmonella ,  dan Escherichia  coli dengan menaikkan  dosis  terapi  namun  tetap memperhatikan keamanan terapi.
Eritromisin juga telah
menunjukkan  zona  penghambatan  yang resisten  sebesar  37,5%  pada  bakteri Bacteroides  gracilis dan Bacillus  sp. Sedangkan  eritromisin  tidak  menunjukan penghambatan  yang  sensitif  terhadap semua  bakteri.  Karena  Secara  umum aktivitas  antibakteri  eritromisin  bersifat bakteriostatik  terhadap  bakteri  Gram positif dengan cara penghambatan sintesis protein melalui pengikatan
reversibel  pada  ribosom  kuman  dan kurang aktif terhadap kebanyakan bakteri
Gram  negatif.  Hasil  uji  kepekaan  bakteri terhadap
Ciprofloxacin menunjukan
penghambatan  yang  intermediet  sebesar 37,5%  yaitu  pada  bakteri Klebsiella pneumonia , Bacteroides  gracilis dan Bacillus sp. serta menunjukan
penghambatan  yang  sensitif  sebesar 62,5%  yaitu  pada  bakteri Bacillus  sp. ,
Escherichia coli , dan Salmonella . Hal ini disebabkan karena Ciprofloxacin mempunyai  daya  antibakteri  yang  baik terhadap  bakteri  garam  positif  maupun gram negatif. Mekanisme kerjanya dengan  menghambat  topoisomerase  II (DNA girase) dan topoisomerase VI pada bakteri.  (Setiabudy,  2007).Penghambatan terhadap  enzim  yang  terlibat dalam replikasi,  rekombinasi  dan  reparasi  DNA
tersebut  mengakibatkan penghambatan terhadap  pertumbuhan  sel  bakteri.  Dan dari hasil uji kepekaan bakteri menunjukan  bahwa  semua  bakteri  tidak ada yang telah resisten dengan Ciprofloxacin  sehingga  Ciprofloxacin masih  dapat  digunakan  pada  terapi pengobatan bronkitis kronik.
Berdasarkan  distribusi  frekuensi pola kepakaan bakteri terhadap antibiotik Ampicilin, Eritromisin dan Ciprofloxacin, hasil penelitian menunjukan  bahwa  antibiotik  dengan kepekaan yang tertinggi adalah Ciprofloxacin sebesar 62,5% dan intermediet  tertinggi  adalah  Eritromisin sebesar 62,5%. Sedangkan angka resistensi tertinggi adalah Ampicilin yaitu sebesar  100%.  Hal  ini  menunjukan bahwa Ciprofloxacin masih dapat digunakan  sebagai  terapi  pengobatan Bronkitis  kronik  dengan  tetap  selalu  di dasarkan pada uji kepekaan dan pemeriksaan  kultur  bakteri.  Sedangkan untuk penggunaan Eritromisin dan Ampisilin  perlu  diperhatikan  dengan cermat  karena  telah  intermediet  dan resisten

## PENUTUP Kesimpulan
1. Terdapat  5  jenis  bakteri  penyebab infeksi,  yaitu Bacillus  sp. 3  (37,5%), Escherichia  coli 2  (25%), Klebsiella pneumonia 1  (12,5%), Salmonella 1 (12,5%),  dan Bacteroides  gracilis 1 (12,5%).
2. Antibiotik  dengan  sensitifitas  yang tertinggi  adalah  Ciprofloxacin  sebesar 62,5%  pada  bakteri Bacillus  sp. , Escherichia  coli ,  dan Salmonella dan intermediet sebesar 37.5% pada bakteri
Klebsiella pneumonia ,
Bacteroides  gracilis dan Bacillus  sp.
tanpa  adanya  resisten.  Intermediet tertinggi  adalah  Eritromisin  sebesar 62,5% pada bakteri Klebsiella
pneumonia , Bacillus  sp , Salmonella , dan Escherichia  coli dan  resisten sebesar 37,5% pada bakteri
Bacteroides  gracilis dan Bacillus  sp. tanpa  adanya  penghambatan  yang sensitif.  Sedangkan  angka  resistensi tertinggi adalah Ampicilin yaitu sebesar  100%  pada  semua  jenis bakteri.

## DAFTAR PUSTAKA
Bresson,  W.,  dan  M.T.  Borges.  2004. Delivery  Methods  for  Introducing Endophitic  Bacteria  into  Maize. Biocontrol . 49: 315-322.
Clinical and Laboratory Standards Institute. 2007. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility  Testing;  Seventeenth Informational  Supplement. M100- S17 . 27(1): 35.
Drlica,  K.  Perlin  D.S.  2011. Antibiotic Resistance Understanding and Responding to  an Emerging  Crisis . Pearson Education, New Jersey. Dwiprahasto. 1995. Penggunaan Antibiotik  Rasional.  Laboratorium Farmakologi  Fakultas  Kedokteran UGM, Yogyakarta. Jawetz, Melnick, Adelberg. 2007. Mikrobiologi Kedokteran. Edisi 23. Salemba Medika, Jakarta.
Johnston,  L.  2012.  Rational  Use  of
Antibiotic  in  Respiratory  Tract Infectious. S  Afr  Pharm  J , 79  (4):
34-39.
Kumala,  S.,  D.A.M.  Pasanema,  dan Mardiastuti.  2010.  Pola  Resistensi
Antibiotik  Terhadap  Isolat  Bakteri Sputum Penderita Tersangka
Infeksi  Saluran  Nafas  Bawah.
Jurnal  Farmasi  Indonesia . 5: 24- 32.
Lay,  B.W.  dan  Hastowo  Sugyo.  1992.
Mikrobiologi.
Rajawali Pers,
Jakarta.
Mpila,  Deby  A.,  Fatimawali,  Weny  I.
Wiyono. 2012. Uji Aktivitas
Antibakteri  Ekstrak  Etanol  Daun
Mayana  ( Coleus  atropurpures  [L] Benth ) terhadap Stapilococcus aureus, Escherichia coli dan Pseudomonas  aeruginosa Secara
In-Vitro.[skripsi].  Universitas  sam ratulangi, Manado. Scheld, W.M. 2003. Mantaining Fluoroquinolon Class Efficacy: Review  of  Influencing  Factors.
Emerging Infectious Disease . 10: 1. Sethi,  S.  2000.  Infectious  Etiology  of Acute  Exacerbation  of  Chronic Bronchitis. Chest . 117: 380S-385S Setiabudy,  R.  2007.  Farmakologi  dan Terapi.  Edisi  5.  Balai  Penerbit FKUI, Jakarta.
Soegito.  2004.  Pengobatan  Bronkitis Kronik  Eksaserbasi  Akut  dengan Ciprofloxacin dibandingkan dengan Co Amoxyclav. USU Digital Library, Sumatera Utara.
Somantri,  I.  2007.  Keperawatan  Medikal Bedah  :  Asuhan  Keperawatan  pada Pasien  dengan  Gangguan  Sistem Pernapasan. Salemba Mediaka, Jakarta. Staf Pengajar Bagian Mikrobiologi Fakultas  Kedokteran  Universitas Indonesia. 2002. Buku Ajar Mikrobiologi Kedokteran. Binapura Aksara Publisher, Jakarta..
Vandepitte, J., K. Engbaek, P. Rohner, P. Piot.,  C.C.  Heuck . 2010.  Prosedur Laboratorium Dasar Untuk Bakteriologi Klinis. Edisi 2.
Terjemahan  L.  Setiawan.  Buku Kedokteran EGC, Jakarta.
WHO  Regional  Office  for  the  Eastern Mediterranean.  1995. Specimen Collection and Transport for Microbiological Investigation . WHO Regional Publications, Eastern Mediterranean Series 8.