## PENGARUH PEMBERIAN PROBIOTIK IKAN TERHADAP KUALITAS AIR PADA PENDEDERAN IKAN LELE SANGKURIANG (Clarias gariepinus) DI DESA DURBUK, PAMEKASAN
THE EFFECT OF ADMINISTRATION OF FISH PROBIOTICS ON WATER QUALITY IN A RANCHING OF SANGKURIANG CATFISH (Clarias gariepinus) IN DURBUK VILLAGE,

## PAMEKASAN
Dwian Lumbangaol, Rifky Aryasatya, Muhammad Zainuri, dan Abdus Salam Junaedi*
Program Studi Manajemen Sumberdaya Perairan, Fakultas Pertanian, Universitas Trunojoyo Madura Jl. Raya Telang Kamal Bangkalan, Jawa Timur
*Corresponding author email: abdus.salamj@trunojoyo.ac.id
Submitted: 01 February 2024 / Revised: 13 May 2024 / Accepted: 21 May 2024 http://doi.org/10.21107/juvenil.v5i2.24575

## ABSTRAK
Indonesia merupakan negara maritim yang memiliki banyak pulau, pulau tersebut mempunyai sumber daya perairan yang melimpah. Indonesia memiliki potensi perairan yang sangat besar baik dalam sektor kelautan dan sektor perikanan. Jenis ikan air tawar yang cukup digemari oleh masyarakat yaitu ikan lele, selain karena harganya yang relatif murah, cara perkembangbiakannya sederhana, pertumbuhan cepat, dan memiliki kandungan gizi yang cukup. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh pemberian probiotik terhadap kualitas air meliputi suhu, pH, DO (Dissolved Oxygen) dan amonia pada kolam pendederan ikan lele sangkuriang. Penelitian dilaksanakan dengan menggunakan metode RAL (Rancangan Acak Lengkap) dengan 3 kolam dan 3 perlakuan diantaranya tanpa perlakuan probiotik, probiotik ke air dan probiotik ke pakan ikan. Data penelitian dikumpulkan dari bulan November hingga Desember 2023. Hasil pengukuran dan analisis di laboratorium menunjukkan hasil pengukuran suhu, pH dan DO yang paling optimal berdasarkan SNI 6484.3 Tahun 2014 yaitu suhu pagi pada kolam 2 yaitu 27,96 ℃ dan suhu sore 29,85 ℃ , pH pagi pada kolam 2 yaitu 8,11 dan pH sore 9,26, DO (Dissolved Oxygen)  pada  kolam  2  yaitu  pada  awal  2,51  mg/L  dan  akhir  3,11  mg/L  dan  amonia  terendah  yaitu kolam  1  dengan  nilai  2,385  mg/L  dan  2,050  mg/L.  Hasil  pengujian  ini  menunjukkan  bahwasanya probiotik yang diberikan kepada kolam perlakuan tidak berpengaruh nyata terhadap kualitas air yaitu suhu dan pH karena nilai signifikansi yang diperoleh >0,05. Hasil penelitian juga menunjukkan nilai Log TPC (CFU/ml) koloni bakteri yang ditemukan pada kolam ikan dengan perlakuan yang berbeda masing- masing memiliki nilai yang berbeda dari setiap seri pengenceran yang digunakan.
Kata Kunci : Ikan lele sangkuriang, probiotik dan kualitas air.

## ABSTRACT
Indonesia is a maritime country that has many islands, these islands have abundant water resources. Indonesia has enormous water potential both in the marine sector and the fisheries sector. A type of freshwater fish that is quite popular with the public is catfish, apart from its relatively cheap price, simple breeding  method,  fast  growth  and  sufficient  nutritional  content. This  research  aims  to  determine  the effect of providing probiotics on water quality including temperature, pH, DO (Dissolved Oxygen) and ammonia  in  Sangkuriang  catfish  nursery  ponds.  The  research  was  carried  out  using  the  RAL (Completely  Randomized  Design)  method  with  3  ponds  and  3  treatments  including  no  probiotic treatment,  probiotics  in  the  water  and  probiotics  in  the  fish  feed.  Research  data  was  collected  from November to December 2023. The results of measurements and analysis in the laboratory showed that the results of temperature, pH and DO measurements were the most optimal based on the 2014 6484.3 SNI, namely the morning temperature in pool 2 was 27.96 ℃ and the afternoon temperature was 29.85 ℃ . Morning pH in pool 2 is 8.11 and afternoon pH is 9.26, DO (Dissolved Oxygen) in pool 2 is 2.51 mg/L at the beginning and 3.11 mg/L at the end and the lowest ammonia is pool 1 with a value of 2.385 mg/L and 2,050 mg/L. The results of this test showed that the probiotics given to the treatment ponds did not significantly  affect  the  water  quality,  namely  temperature  and  pH  because  the  significance value
obtained was >0.05. The results also showed that the Log TPC (CFU/ml) value of bacterial colonies found in fish ponds with different treatments each had different values from each dilution series used.
Keywords : Sangkuriang catfish, probiotics and water quality.

## PENDAHULUAN
Indonesia  memiliki  potensi  perairan  yang sangat  besar,  dalam  sektor  kelautan  dan perikanan serta menjadi odyssey to prosperity yaitu  jalan  bagi  masyarakat  untuk  menuju kemakmuran  (Suman et  al .,  2017).  Jenis  ikan air tawar yang cukup digemari oleh masyarakat yaitu  ikan  lele,  selain  karena  harganya  yang relatif  murah,  cara  perkembangbiakannya sederhana,  pertumbuhan  cepat,  dan  memiliki kandungan  gizi  yang  cukup.  Ikan  lele  biasa hidup  di  perairan  tawar  seperti  rawa-rawa, kolam  pengembangbiakan,  sungai  berarus lemah  dan  di  area  sawah  yang  tergenang  air (Weking dan Wea, 2021).
Budidaya  ikan  lele  memiliki  prospek  yang sangat  baik  dikembangkan  dalam  bentuk pendederan,  pembenihan  dan  pembesaran. Ikan  lele  mempunyai  umur  panen  yang  relatif cepat,  yaitu  antara  3  bulan  dengan  bibit  dan dalam keadaan kolam yang minim air, ikan lele juga  bisa  hidup  (Sudaryati et  al .,  2017).  Ikan lele  sangkuriang  mempunyai  kemampuan bertelur ( fekunditas ) mencapai 40.000 – 60.000 per induk betina jika dibandingkan dengan lele dumbo  yang  hanya  20.000 –  30.000  dan derajat penetasan telur dari  ikan lele sangkuriang  lebih  dari  90%  sedangkan  lele dumbo lebih dari 80% (Faridah et al ., 2019).
Pengendalian  kualitas  air  selama  proses pemeliharaan adalah komponen penting dalam budidaya  yang  harus  diperhatikan  untuk mencapai  keberhasilan.  Semua  siklus  hidup dan pertumbuhan biota yang dibudidaya terjadi di  dalam  air,  jadi  kualitas  air  sangat  penting untuk budidaya. Ini terutama berlaku di Tambak Lele Sangkuriang. Untuk mencegah perubahan kualitas air melebihi ambang batas, pengelolaan  kualitas  air  sangat  penting dilakukan  karena  hal  ini  dapat  mempengaruhi perkembangan  ikan  lele  yang  dibudidayakan (Koniyo,  2020).  Dalam  tambak  budidaya,  tiga parameter  dapat  dipantau  untuk  menilai kualitas  air:  fisika,  kimia,  dan  biologi.  Namun, biasanya  hanya  parameter  fisika  dan  kimia yang  dipantau;  ini  termasuk  suhu,  proses pertukaran air, kedalaman, kecerahan, kandungan oksigen terlarut ( Dissolved Oxygen ),  derajat  keasaman  air  (pH),  dan kandungan logam berat dalam air (Supriatna et al ., 2020).
Mikroorganisme yang disebut probiotik memiliki kemampuan  untuk  mengubah  jenis  bakteri yang  ada  di  saluran  pencernaan,  air,  dan sedimen. Probiotik juga dapat digunakan untuk biokontrol  dan  bioremediasi  (Parlina et  al ., 2018).  Dalam  budidaya  ikan,  penggunaan probiotik memberikan hasil yang menguntungkan,  dan  saat  ini  merupakan bagian  penting  dari  manajemen  budidaya perikanan.  Probiotik  dapat  meningkatkan pertumbuhan,  respons  imun  non-spesifik, ketahanan terhadap penyakit, dan kelangsungan  hidup  ikan  (Dewi  dan  Tahapari, 2018). Bakteri yang terkandung dalam probiotik juga  dapat  meningkatkan  kesehatan  ikan, meningkatkan  kualitas  air,  dan  digunakan sebagai  pakan  tambahan  untuk  mendorong pertumbuhan  ikan  dan  mencegah  penyakit menyerang  ikan.  Suplemen  imun  seperti probiotik  dapat  membantu  ikan  memproses pakan dengan lebih baik (Hayati et al ., 2022).
Penelitian  yang  dilakukan  oleh  Atho ’illah et  al (2021)  tentang  pembuatan  probiotik  berbahan dasar  air  limbah  cucian  beras,  kulit  bawang putih  dan  fermentasi  ekstrak  daun  kelor menyatakan  bahwasanya  salah  satu  indikator keberhasilan  dalam  pembuatan  probiotik  yaitu dengan terbentuknya pellet yang menunjukkan adanya  aktivitas  mikroba  pada  probiotik  yang telah dibuat. Adanya gelembung gas juga dapat dijadikan  sebagai  salah  satu  indikator  adanya aktivitas  mikroba  pada  proses  pembuatan probiotik.  Gelembung  gas  terbentuk  sebagai akibat  dari  reaksi  kimia  yang  terjadi  selama proses fermentasi, yang menghasilkan karbondioksida, serta produk respirasi mikroba aerob.
Penelitian  ini  menggunakan  probiotik  yang mengandung bakteri yaitu Bacillus subttillis dan Bacillus megaterium . Bacillus adalah salah satu bakteri  yang  mampu  menghasilkan  enzim protease.  Enzim  protease  memiliki  peran fisiologis  penting  dalam  proses  sintesis  dan degradasi  (Arfiati et  al .,  2020).  Pengaruh pemberian  probiotik  dan  kemampuannya masing-masing dalam memperbaiki kualitas air secara  umum  akan  menunjukkan  hasil  yang berbeda.  Tujuan  dari  penelitian ini yaitu  untuk mengetahui pengaruh dari pemberian probiotik yang  berbeda  perlakuan  pada  kualitas  air kolam budidaya pendederan ikan lele sangkuriang  yang  berada  di  Desa  Durbuk, Kecamatan Pademawu, Kabupaten Pamekasan.

## Lumbangaol et al., Pengaruh Pemberian Probiotik Ikan

## MATERI DAN METODE Waktu dan Tempat
Penelitian  ini  dilaksanakan  di  Desa  Durbuk,
Kecamatan Pademawu, Kabupaten
Pamekasan.  Pengukuran  sampel  kualitas  air meliputi suhu, pH, DO ( Dissolved Oxygen ) dan
amonia.  Sampel  air  yang  diambil  untuk pengujian  amonia  kemudian  akan  diambil  dan diujikan  di  Laboratorium  Lingkungan  Prodi Manajemen Sumberdaya Perairan, Universitas Trunojoyo  Madura.  Kegiatan  penelitian  ini dilaksanakan  mulai  dari tanggal  02  November 2023 – 14 Desember 2023.
Gambar 1. Peta Lokasi Penelitian

## Ikan Uji
Ikan  uji  atau  ikan  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  yaitu  ikan  lele  sangkuriang.  Ikan lele  yang  digunakan  berukuran  sekitar  3-4  cm per  ekor.  Ikan  lele  yang  ditebar  pada  setiap kolam  yaitu  berjumah  500  ekor  ikan.  Ikan  lele yang  digunakan  sebelumnya  telah  di  cek kesehatannya dengan observasi dan dipuasakan  untuk  kemudian  dipindahkan  ke dalam kolam perlakuan.

## Perlakuan
Pada  penelitian  ini  dilakukan  perbandingan kualitas  air  antara  3  kolam  yang  diberikan perlakuan  yang  berbeda-beda.  Perlakuan  1 pada  kolam  1  yaitu  tanpa  diberikan  perlakuan
probiotik atau kontrol. Perlakuan 2 pada kolam 2 yaitu diberikan perlakuan probiotik ke dalam air  kolam  ikan  secara  langsung.  Perlakuan  3 yaitu  diberikan  perlakuan  pemberian  probiotik pada  pakan  fermentasi  ikan  lele.  Pemberian dosis probiotik ke dalam air kolam yaitu dengan menuangkan  sebanyak  139,5  mL  probiotik secara langsung ke dalam kolam. Pengaplikasian probiotik tersebut harus dilakukan  secara  merata  mulai  dari  pinggir, tengah  hingga  ujung  kolam  ikan.  Pemberian probiotik  ke  dalam  pakan  ikan  dilakukan dengan  cara  menuangkan  probiotik  langsung ke  pakan  ikan  untuk  kemudian  dapat difermentasi.  Pakan  ikan  harus  difermentasi terlebih  dahulu  agar  probiotik  yang  diberikan dapat  menyatu  dengan  pakan  setidaknya selama 1 malam.
Gambar 2. Ilustrasi Perlakuan Penelitian
Perlakuan 1
Kolam 1
Perlakuan 2 Kolam 2 Perlakuan 3 Kolam 3
Pemberian probiotik ke dalam air kolam terlebih dahulu  harus  mengetahui  ukuran  dari  kolam yang  akan  digunakan,  dalam  penelitian  ini menggunakan kolam berukuran 2 m x 2 m x 0.5 m.  Volume  air  yang  digunakan  dalam  kolam juga  harus  diketahui  terlebih  dahulu  untuk kemudian  dapat  diperhitungkan  bersamaan dengan  ukuran  kolam  yang  digunakan,  dalam kolam  penelitian  ini  menggunakan  volume  air
yaitu  930  liter  air/kolam.  Probiotik  yang  telah diketahui jumlahnya kemudian langsung dituang ke dalam kolam.

## Alat dan Bahan
Adapun alat dan bahan yang digunakan dalam penelitian ini yaitu disajikan dalam table berikut:
Tabel 1 . Alat dan bahan yang digunakan
No. Alat Bahan 1 Kolam beton Ikan lele sangkuriang 2 Water Quality Tester 3 in 1 Probiotik FiyshPro 3 Alat tulis Sampel air kolam ikan lele sangkuriang 4 Nampan Pakan 5 Botol sampel Akuades 6 Sarung tangan Alumunium foil 7 Baskom Kertas label 8 Pipa paralon Tissue 9 Ember Kapas 10 DO meter Masker 11 Spektrofotometer NH 4 CI 12 Timbangan analitik Fenol (C 6 H 5 OH) 13 Labu erlenmeyer Etil alcohol 95% 14 Labu ukur Natrium nitroprusida (C 5 FeN 6 Na 2 O) 0,5 % 15 Gelas ukur Alkalin sitrat (C 6 H 5 Na 3 O 7 ) 16 Pipet volume
Natrium hipoklorit (NaCIO) 5%
17 Pipet ukur 18 Gelas piala

## Prosedur Pengukuran

## Suhu
Adapun  prosedur  pengukuran  suhu  yaitu menyiapkan  alat  pengukur  suhu  yaitu Water Quality  Tester ,  memasukkan  sensor  alat kedalam  air  kolam,  menunggu  nilai  yang muncul  di  alat  sampai  stabil,  mencatat  hasil pengukuran suhu, membersihkan alat thermometer  menggunakan  air  bersih  dan mengeringkan  alat  thermometer  lalu  simpan pada tempatnya.

## pH
Adapun  prosedur  pengukuran  pH  yaitu menyiapkan  alat  pengukur  suhu  yaitu Water Quality  Tester ,  memasukkan  sensor  alat kedalam  air  kolam,  menunggu  nilai  yang muncul  di  alat  sampai  stabil,  mencatat  hasil pengukuran pH, membersihkan alat thermometer  menggunakan  air  bersih  dan mengeringkan  alat  thermometer  lalu  simpan pada tempatnya.

## DO (Dissolved Oxygen)
Adapun  prosedur  pengukuran  DO  yaitu menyiapkan alat pengukur DO yaitu DO Meter, kemudian  menyalakan  alat  dan  memastikan
angka berhenti di angka 0, kemudian celupkan sensor  alat  ke  dalam  kolam  lalu  tunggu  nilai muncul  di  monitor  sampai  benar-benar  stabil dan berhenti, selanjutnya catat nilai yang telah stabil  yang  muncul  di  monitor  dengan  benar, tarik  sensor  lalu  matikan  alat  kemudian bersihkan  menggunakan  air  bersih  kemudian keringkan alat lalu simpan pada tempatnya.

## Amonia
Adapun  prosedur  pengujian  amonia  yaitu pembuatan  larutan  induk  amonia  100  mg  N/L yaitu  dengan  melarutkan  3,819g  ammonium klorida  (yang  telah  dikeringkan  pada  suhu 100 ℃ )  dalam  labu  ukur  1000  ml,  dan mengencerkan dengan aquades sampai batas tera  dan  dihmogenkan.  Pembuatan  larutan baku  amonia  1000  mg  N/L  yaitu  dengan memipet  sebanyak  10  ml  larutan  standar amonia 100 mg/L memasukkan ke dalam labu takar  100  ml,  kemudian  melarutkan  dengan aquades sampai batas tera, kemudian dihomogenkan. Membuat larutan deret standar yaitu  dengan  memipet  0  ml;  1  ml;  2  ml;  3  ml; dan  5  ml  larutan  standar  amonia  10  mg/L memasukkan  ke  dalam  labu  takar  100  ml, kemudian  dilarutkan  dengan  aquades  sampai batas tera. Membuat larutan pengoksidasi yaitu dengan  memipet  sebanyak  100  ml  larutan
alkalin sitrat dan 25 ml larutan natrium hipoklorit 5% dan dihomogenkan dalam gelas piala.
Membuat kurva kalibrasi yaitu dengan memipet sebanyak 10 ml deret standar amonia dengan konsentrasi  0,00  mg/L;  1,00  mg/L;  2,00  mg/L; 3,00 mg/L dan 5,00 mg/L ke dalam erlenmeyer 250 ml,  kemudian menambahkan  1 ml larutan fenol, 1 ml larutan natrium nitropusida dan 1 ml larutan pengoksidasi, kemudian dihomogenkan dan  ditunggu  hingga  1  jam  lalu  diukur menggunakan spektrofotometer UV-Vis dengan panjang gelombang 640 nm. Prosedur kerja  uji  amonia  yaitu  dengan  memipet sebanyak  25  ml  sampel  uji  ke  dalam Erlenmeyer  250  ml,  lalu  menambahkan  1  ml larutan  fenol,  1  ml  larutan  natrium  nitropusida dan  2,5  ml  larutan  pengoksidasi,  kemudian dihomogenkan dan ditunggu hingga 1 jam, lalu diukur menggunakan  spektrofotometer  UV-Vis dengan panjang gelombang 640 nm. Perhitungan kadar amonia dengan menggunakan rumus sebagai berikut:
Kadar Amonia (mg N/L) = C x fp
Keterangan: C = Kadar yang didapatkan dari hasil pengukuran (mg/L)

## Total  Plate  Count  (TPC)  Bakteri  Heterotrof
Kolam Pendederan Ikan Lele Sangkuriang

## Sterilisasi Alat
Sterilisasi fisik dengan panas dengan menggunakan  api  bunsen,  autoklaf  dan  oven. Alat  dan  bahan  yang  digunakan  merupakan bahan  yang  tidak  mudah  rusak  dan  bahan bubuk.  Sterilisasi  dengan  menggunakan  api bunsen cukup panaskan alat pada api bunsen. Sterilisasi pada autoklaf dilakukan sampai suhu mencapai  121 ℃ setelah  20  menit  dikeluarkan dari  autoklaf.  Sterilisasi  alat  pasda  oven dilakukan selama 1-2 jam dengan kisaran suhu 160 ℃ -180 ℃ .
Sterilisasi  Jarum  Ose  (Loop)  dan  Jarum Inokulasi (Needle)
Bakar  ujung  jarum  pada  bunsen.  Posisikan jarum ose agak tegak pada api bunsen. Bakar jarum  hingga  ujung  jarum  berpijar  sampai dengan pangkal logam jarum.

## Sterilisasi Alat dari Gelas
Tutup  mulut  alat  gelas  dengan  menggunakan kapas. Tutup dan lapisi dengan alumunium foil. Lapisi  kembali  dengan  plastic  wrap.  Untuk Erlenmeyer cukup ditutup dengan menggunakan alumunium foil.

## Sterilisasi Pipet
Tutup  ujung  bagian  untuk  meniup  pada  pipet dengan  kapas.  Bungkus  seluruh  permukaan pipet dengan kertas atau sampul coklat.

## Sterilisasi Cawan Petri
Bungkus  cawan  petri  (bagian  bawah  dan tutupnya)  dengan  kertas  sampul  coklat  dan dilapisi plastik wrap. Letakkan cawan petri yang terbungkus  dalam  autoklaf  dengan  cara meletakkan bagian tutup di atas bagian bawah cawan.

## Pembuatan Larutan NaCI Fisiologis
Menimbang  NaCI  setiap  100  ml  aquades (membutuhkan  NaCI  0.9  gr).  Homogenkan larutan.  Menuang  larutan  ke  botol  kultur (sebagai  larutan  induk)  dan  ke  tabung  reaksi (sebagai  pengenceran)  setiap  tabung  berisi  9 ml  larutan.  Meletakkan  larutan  yang  telah dipindahkan ke autoklaf.

## Pembuatan Media Nutrient Agar (NA)
Menimbang  sebanyak  1  gr  media  NA  bubuk menggunakan  neraca  analitik.  Larutkan  1  gr media  NA  ke  dalam  aquades  sebanyak  50  ml dalam  botol  kultur  ukuran  100  ml.  Panaskan larutan di atas hot plate dengan menggunakan suhu  280 ℃ dan  dihomogenisasi  dengan menggunakan magnetic stirrer dengan kecepatan 1500 rpm sampai larutan homogen. Tutup  botol  kultur  menggunakan  kapas  dan lapisi dengan alumunium  foil. Larutkan sterilisasi media dengan menggunakan autoklaf  pada  suhu  121 ℃ selama  15  menit. Buka  autolaf  kemudian  keluarkan  botol  kultur lalu  letakkan  di  dalam  oven  pada  suhu  80 ℃ sampai  media  tersebut  hendak  digunakan. Tuang  ke  dalam  4  cawan  petri  (untuk pemurnian) dengan volume masing-masing 10 ml.  Biarkan  hingga  memadat  kemudian letakkan media ke dalam lemari.

## Metode Kelimpahan Bakteri (TPC)

## Metode Spread Plate
Menyiapkan  media  NA.  Menanam  bakteri  0,1 ml  menggunakan  mikropipet  100  nm  yang sudah dilakukan tahap pengenceran. Sebarkan dengan menggunakan spreader secara merata secara  aseptic.  Tutup  media  menggunakan cling wrap kemudian inkubasi selama 1x24 jam dengan posisi cawan dibalik.
Perhitungan  nilai  total  bakteri  menggunakan metode  TPC  ( Total  Plate  Count ).  Jumlah bakteri yang ditemukan pada cawan dinyatakan
sebagai  jumlah  koloni  bakteri.  Rumus  yang digunakan  untuk  menghitung  jumlah  koloni bakteri  menggunakan  metode Total  Plate Count (TPC) yaitu:
∑× 1 faktor pengenceran

## HASIL DAN PEMBAHASAN Suhu
Hasil pengukuran suhu pagi pada penelitian ini memperoleh  hasil  suhu  yaitu  berkisar  antara 27,96 ℃ untuk yang paling rendah dan berada dalam batas wajar yang terdapat pada kolam 2 dan 28,26 ℃ untuk yang paling tinggi yang juga masih berada dalam batas wajar yang terdapat pada kolam 1 yang mana masih optimal untuk pertumbuhan  dan  perkembangan  ikan  lele sangkuriang, hasil pengukuran suhu pada sore hari pada penelitian ini memperoleh hasil suhu yaitu berkisar antara 29,44 ℃ untuk yang paling rendah yang terdapat pada kolam 3 dan 30,41 ℃ untuk  yang  paling  tinggi  yang  berada  pada kolam  1.  Nilai  suhu  tersebut  masih  optimal untuk  pertumbuhan  dan  perkembangan  ikan lele  sangkuriang  berdasarkan  kepada  SNI 6484.3 Tahun 2014 yaitu berkisar antara 25-30
℃ . Sumardiono et al (2020) menyatakan bahwa suhu air kolam dipengaruhi oleh keadaan waktu sekitar  dimana  semakin  sore  hari  maka  suhu akan  semakin  menurun.  Efendy et  al (2023) dalam  penelitiannya  pada  pengukuran  suhu sebelum  dan  sesudah  pemberian  probiotik yang  dilakukan  pada  pagi  dan  sore  hari  pada kolam  MinaPro  berkisar  antara  28,9-31,12 pada  seluruh  pengulangan,  pada  kolam Konsorsium  YEB  berkisar  antara  28,32  pada seluruh  pengulangan  dan  pada  kolam  kontrol berkisar  antara  28,18-30,98  pada  seluruh
pengulangan.  Grafik  nilai  suhu  pada  pagi  dan sore  hari  dapat  dilihat  pada Gambar  3 dan Gambar 4 .
Berdasarkan Pengujian One Way Anova yang dilakukan  berdasarkan  data  yang  diperoleh menunjukkan bahwasanya data yang diperoleh berdistribusi  normal  dengan  variasi  data  yang juga  homogen.  Hasil  yang  didapatkan  setelah melakukan  uji One  Way  Anova menunjukkan bahwasanya tidak terdapat pengaruh pemberian  probiotik  terhadap  suhu  kolam pendederan  ikan  lele  sangkuriang  dengan  3 perlakuan  yang  diberikan.  Nilai  signifikansi suhu  kolam  pada  pagi  hari  >0,05  yaitu  0,109 dan nilai signifikansi suhu kolam pada sore hari >0,05  yaitu  0,113  yang  berarti  tidak  berbeda nyata  dan  tidak  ada  pengaruh  yang  signifikan terhadap kolam perlakuan.
Pemberian  perlakuan  probiotik  yang  berbeda pada  penelitian  ini  tidak  berpengaruh  dan berbeda  nyata  karena  pada  umumnya  suhu dipengaruhi oleh cuaca, curah hujan, penguapan,  kelembaban  udara,  suhu  udara, kecepatan  angin  dan  intensitas  cahaya matahari  yang  masuk  menembus  badan  air. Penelitian  yang  dilakukan  oleh  Pratama et  al (2017)  yang  memberikan  perlakuan  probiotik yang berbeda terhadap kualitas air mendapatkan hasil bahwasanya hasil pemberian  probiotik  yang  berbeda  tidak berpengaruh  dan  berbeda  nyata  dengan kisaran  nilai  suhu  28-30 ℃ .  Hal  ini  sesuai dengan  pernyataan  Muarif  (2016)  yang menyatakan  bahwasanya  faktor-faktor  yang mempengaruhi  suhu  secara  langsung  adalah keberadaan  naungan  (pohon  atau  tanaman air), air buangan, radiasi matahari, suhu udara, cuaca serta iklim.
Gambar 3. Nilai suhu pagi pada kolam pendederan ikan lele sangkuriang
26,5 27 27,5 28 28,5 29 29,5 (℃) Suhu Pagi Total Kolam 1 Kolam 2 Kolam 3 ……………………….. (1)
Gambar 4. Nilai suhu sore pada kolam pendederan ikan lele sangkuriang

## pH
Hasil  pengukuran  pH  pagi  pada  penelitian  ini memperoleh hasil pH yaitu berkisar antara 8,03 untuk  yang  paling  rendah  dan  berada  dalam nilai  batas  wajar  yang  terdapat  pada  kolam  3 dan 8,11 untuk nilai pH yang paling tinggi yang juga masih berada dalam nilai batas wajar yang terdapat  pada  kolam  2  yang  mana  masih optimal untuk pertumbuhan dan perkembangan ikan lele sangkuriang, hasil pengukuran nilai pH pada sore hari pada penelitian ini memperoleh hasil pH yaitu berkisar antara 9,26 untuk yang paling rendah yang terdapat pada kolam 2 dan 9,43 untuk yang paling tinggi yang berada pada kolam  1.  Nilai  pH  tersebut  telah  melewati  nilai ambang batas berdasarkan SNI 6484.3 Tahun 2014  yaitu  nilai  pH  berkisar  antara  6,5-8,5. Dapat  dilihat  pada  grafik  pada  kolam  2  terus mengalami penurunan nilai pH sampai kepada minggu  ke-5  yang  masih  optimal  untuk pertumbuhan  dan  perkembangan  ikan  lele sangkuriang  yaitu  8,63.  Kusumawati et  al (2018) menyatakan bahwasanya nilai pH yang optimum untuk pertumbuhan dan perkembangan ikan lele yaitu berkisar dengan nilai  6-8,5 . Grafik  nilai  pH  pada  pagi  dan  sore hari dapat dilihat pada Gambar 5 dan Gambar 6 .
Berdasarkan Pengujian One Way Anova yang dilakukan  berdasarkan  data  yang  diperoleh
menunjukkan bahwasanya data yang diperoleh berdistribusi  normal  dengan  variasi  data  yang juga  homogen.  Hasil  yang  didapatkan  setelah melakukan  uji One  Way  Anova menunjukkan bahwasanya tidak terdapat pengaruh pemberian  probiotik  terhadap  pH  kolam pendederan  ikan  lele  sangkuriang  dengan  3 perlakuan yang diberikan. Nilai signifikansi pH kolam pada pagi hari >0,05 yaitu 0,944 dan nilai signifikansi  suhu  kolam  pada  sore  hari  >0,05 yaitu  0,493  yang  berarti  tidak  berbeda  nyata dan  tidak  ada  pengaruh  yang  signifikan terhadap kolam perlakuan.
Pemberian  perlakuan  probiotik  yang  berbeda pada  penelitian  ini  tidak  berpengaruh  dan berbeda  nyata  karena  pada  umumnya  pH dipengaruhi  oleh  jumlah  karbondioksida  (CO 2 ) yang  terlarut  di  dalam  air.  Nilai  pH  juga berkaitan  erat  dengan  nilai  alkalinitas,  karena nilai  pH  ditentukan  oleh  alkalinitas  karbonat, semakin  tinggi  alkalinitas  maka  nilai  pH  juga akan  semakin  tinggi.  Nilai  pH  dalam  air dipengaruhi  oleh  konsentrasi  karbondioksida pada  siang  hari  karena  terjadi  proses fotosintesis  maka  konsentrasi  karbondioksida menurun sehingga pH air meningkat, sebaliknya  pada  malam  hari  organisme  yang ada  di  air  akan  melepaskan  karbondioksida hasil respirasi sehingga pH air menurun.
26,00 27,00 28,00 29,00 30,00 31,00 32,00 33,00 ( ℃) Suhu Sore Total Kolam 1 Kolam 2 Kolam 3
Gambar 5. Nilai pH pagi pada kolam pendederan ikan lele sangkuriang
Gambar 6. Nilai pH sore pada kolam pendederan ikan lele sangkuriang

## DO (Dissolved Oxygen)
Hasil  pengukuran  DO  yang  dilakukan  pada penelitian  ini  memperoleh  hasil  DO  yaitu  nilai DO awal diperoleh rata-rata dari kolam 1 yaitu 1,92  mg/L,  kolam  2  2,51  mg/L,  dan  kolam  3 2.13  mg/L  yang  menunjukkan  nilai  DO  pada awal penelitian yang paling tinggi terdapat pada kolam 2 yaitu 2,51 mg/L. Hasil pengukuran DO akhir diperoleh rata-rata dari kolam 1 yaitu 2,52 mg/L, kolam 2 3,11 mg/L dan kolam 3 yaitu 2,47 yang menunjukkan bahwasanya nilai DO pada setiap kolam mengalami kenaikan namun nilai DO yang tertinggi terdapat pada kolam 2 yaitu 3,11  mg/L.  Nilai  DO  yang  diperoleh  tersebut optimal untuk pertumbuhan dan perkembangan ikan lele sangkuriang berdasarkan SNI 6484.3
Tahun 2014 yaitu >3 mg/L. Penelitian Cahyani dan Hafiludin (2022) memperoleh nilai DO yaitu 8  mg/L  dan  8,2 mg/L,  dimana  kadar  DO  yang tinggi disebabkan karena aktvitas mikroorganisme seperti fitoplankton, mikroalga serta  tumbuhan  air  yang  ada  di  kolam melakukan proses fotosintesis sehingga menghasilkan  O 2 .  Penelitian  yang  dilakukan oleh Syawallita et al (2024) yang mengukur nilai oksigen  terlarut  pada  tambak  ikan  lele sangkuriang  memperoleh  nilai  rata-rata  yaitu 3,92 mg/L pada perlakuan MinaPro, 3,85 mg/L pada perlakuan Konsorsium NB dan 1,96 mg/L pada  perlakuan  kontrol  (tanpa  perlakuan probiotik). Grafik nilai DO pada awal dan akhir penelitian  dapat  dilihat  pada Gambar  7 dibawah ini.
7 7,2 7,4 7,6 7,8 8 8,2 8,4 8,6 8,8 9 (pH ) pH Pagi Total Kolam 1 Kolam 2 Kolam 3 8 8,2 8,4 8,6 8,8 9 9,2 9,4 9,6 9,8 10 (pH ) pH Sore Total Kolam 1 Kolam 2 Kolam 3
Gambar 7. Nilai DO awal dan akhir pada kolam pendederan ikan lele sangkuriang
Berdasarkan Gambar 7 hasil pengukuran nilai DO  pada  ketiga  kolam  mempunyai  nilai  yang tidak jauh berbeda antara ketiga kolam, namun jika  dilihat  dari  ketiga  kolam  tersebut  yang mempunyai nilai DO terendah pada pengukuran  awal  yaitu  kolam  1  dan  yang tertinggi yaitu kolam 2. Nilai DO terendah pada pengukuran akhir yaitu terdapat pada kolam 3 dan  yang  tertinggi  yaitu  tetap  pada  kolam  2. Hasil  pengukuran  nilai  DO  yang  diukur menunjukkan bahwasanya nilai DO yang diukur pada  ketiga  kolam  berfluktuasi meningkat  dan menurun.  Kandungan  DO  dipengaruhi  oleh faktor pH, suhu, kecerahan dan CO 2 . Semakin tinggi  kandungan  nilai  oksigen  terlarut  yang adal dalam air maka akan semakin baik untuk pertumbuhan  dan  perkembangan  organisme atau biota yang ada di perairan tersebut.

## Amonia
Hasil  pengukuran  dan  analisa  ammonia  pada penelitian ini memperoleh hasil ammonia  awal yaitu pada kolam 1 diperoleh hasil 2,385 mg/L dan 2,050 mg/L, pada kolam 2 diperoleh hasil 4,394 mg/L dan 5,253 mg/L dan pada kolam 3 diperoleh  hasil  4,030  mg/L  dan  4,365  mg/L, hasil  pengujian  ammonia  akhir  yatiu  pada kolam 1 diperoleh hasil 30,71 mg/L dan 34,42 mg/L, pada kolam 2 diperoleh hasil 35,79 mg/L dan  49,35  mg/L  dan  pada  kolam  3  diperoleh hasil  4,52  mg/L  dan  3.30  mg/L.  Hasil  analisa dan pengujian pada ketiga kolam memperoleh nilai  ammonia  yang  tinggi  dan  melebihi  nilai
standar  dimana  nilai  yang  optimal  untuk pertumbuhan  dan  perkembangan  ikan  lele sangkuriang  berdasarkan  SNI  6484.3  Tahun 2014  yaitu  <  0,8 mg/L.  Penelitian Tuwitri et  al (2021)  memperoleh  hasil  ammonia  yaitu  2,87 mg/L-4,79  mg/L  yang  juga  melebihi  nilai standar  yang  ada  dimana  tingginya  kadar ammonia  dalam  air  dapat  diakibatkan  karena tingginya kadar bahan nitrogen dan anorganik, senyawa  organic  karbon  dan  sulfida  yang berasal dari sisa pakan ikan serta kotoran ikan yang menumpuk dan terjadi pemupukan jangka panjang  dalam  kolam.  Grafik  nilai  ammonia dapat dilihat pada gambar dibawah ini.
Berdasarkan Gambar  8 hasil  pengujian  nilai amonia  pada  ketiga  kolam  mempunyai  nilai yang  bervariasi  antara  ketiga  kolam.  Pada pengujian yang dilakukan pada awal dan akhir penelitian  diperoleh  nilai  amonia  mulai  dari kolam  1  sampai  kolam  3  berturut-turut  yaitu pada awal kolam 1, 2.385 mg/L dan akhir 30.17 mg/L, awal kolam 2, 4.394 mg/L dan akhir 35.79 mg/L  dan  awal  kolam  3  yaitu  5.253  mg/L  dan akhir  4.52  mg/L.  Berdasarkan  hasil  pengujian awal  dan  akhir  kolam  yang  memiliki  nilai amonia yang paling rendah yaitu pada kolam 1 dengan nilai 2.385 mg/L dan yang paling tinggi yaitu  pada  kolam  2  yaitu  49.35  mg/L.  Tinggi rendahnya kadar amonia dalam kolam budidaya  dipengaruhi  oleh  tingkat,  frekuensi dan  jumlah  pemberian  pakan  dan  jumlah protein yang ada di dalam pakan.
0,00 0,50 1,00 1,50 2,00 2,50 3,00 3,50 Kolam 1 Kolam 2 Kolam 3 (m g/ L) Dissolved Oxygen (DO) Awal Akhir
Gambar 8. Nilai ammonia awal dan akhir pada kolam pendederan ikan lele sangkuriang
Total  Kelimpahan  Bakteri  Heterotrof  Pada Kolam Pendederan Ikan Lele Sangkuriang
Total  Plate  Count (TPC)  adalah  salah  satu metode  yang  telah  dikembangkan  oleh  tim Association  of  Official  Analytical  Chemists (AOAC) serta American Public Health Association (APHA). Total Plate Count merupakan  metode  yang  digunakan  untuk menghitung  dan  mengetahui  jumlah  mikroba atau  bakteri  yang  terdapat  dalam  suatu  objek dengan  cara  menghitung  jumlah  total  koloni bakteri  yang  tumbuh  pada  media  agar  yang digunakan.  Prinsip  kerja  dari  metode Total Plate  Count ini  yaitu  sel  mikroba  atau  bakteri yang  masih  hidup  akan  ditumbuhkan  pada media  agar  hingga  mikroba  atau  bakteri tersebut  akan  berkembang  biak  dan  akan membentuk  koloni  yang  dapat  dilihat  dan diamati  secara  langsung  tanpa  menggunakan bantuan alat mikroskop (Rizki et al ., 2022).
Pada  awal  penelitian  atau  M0  menggunakan seri  pengenceran  10 -4 ,  pengenceran  10 -5 dan pengenceran  10 -6 .  Sedangkan  pada  akhir penelitian atau M5 menggunakan seri pengenceran  10 -7 ,  pengenceran  10 -8 dan pengenceran 10 -9 . Hal ini sesuai dengan prinsip pengenceran  pada  metode Total  Plate  Count (TPC)  yaitu  semakin  tinggi  seri  pengenceran yang digunakan, maka total kelimpahan bakteri yang  diperoleh  akan  semakin  rendah  atau sedikit.  Widiasti et  al (2020) menyatakan bahwasanya  mikroba  mampu  tumbuh  dan berkembang  pada  kondisi  tergantung  pada media  dan  pengencer  yang  digunakan. Pengenceran  adalah  proses  yang  dilakukan guna  melarutkan  serta  melepaskan  mikroba dari  substrat  (induk)  ke  dalam larutan  tertentu
sehingga  mikroba  tersebut  menjadi  lebih mudah untuk dihitung (ditangani).
Hasil penelitian menunjukkan bahwasanya nilai total kelimpahan bakteri heterotrof pada media Natrium  Agar (NA)  pada  sampel  air  kolam pendederan ikan lele sangkuriang pada kolam perlakuan  1  pada  awal  dan  akhir  penelitian yaitu  8,22  log  CFU/ml  dan  11,91  log  CFU/ml, pada  kolam  perlakuan  2  pada  awal  dan  akhir penelitian yaitu 8,35 log CFU/ml dan 11,68 log CFU/ml dan pada kolam perlakuan 3 pada awal dan akhir penelitian yaitu 8,15 log CFU/ml dan 11,77  log  CFU/ml.  Penelitian  yang  dilakukan oleh  Ariwinata et  al (2021) mendapatkan  hasil rata-rata  TPC  pada  air  tambak  mulai  dari  seri terendah sampai tertinggi yaitu pada perlakuan A  1,82  CFU/ml –  11,90  CFU/ml,  perlakuan  B 1,88 – 11,81 CFU/ml, perlakuan C 2,53 CFU/ml – 11,82 CFU/ml dan perlakuan D 6,43 – 11,67. Penelitian yang dilakukan oleh Laili et al (2022) pada air cucian garam melakukan perhitungan TPC  dan  mendapatkan  hasil  pada  seri pengenceran 10 -5 yaitu 416 CFU/ml, sementara pada  seri  pengenceran  10 -6 yaitu  157  CFU/ml dan  pada  seri  pengenceran  10 -7 yaitu  114 CFU/ml.  Penelitian  yang  dilakukan  oleh Junaedi et  al (2020)  yang  meneliti  tentang kualitas daging ikan kurisi yang juga melakukan perhitungan  TPC  pada  media Tryptone  Soya Agar mendapatkan hasil 8,59 CFU/g. Yunita et al (2015) menegaskan bahwa tujuan pengenceran bertingkat adalah untuk mengurangi  jumlah  mikroba  yang  akan tersuspensi  di  dalam  media  yang  akan digunakan, prinsip pengenceran dalam metode TPC  adalah  bahwa  seri  pengenceran  yang lebih  besar  digunakan  akan  menghasilkan koloni  yang  lebih  kecil  atau  lebih  sedikit,  dan seri pengenceran yang lebih rendah digunakan
0 5 10 15 20 25 30 35 40 Kolam 1 Kolam 2 Kolam 3 (m g/ L) Ammonia Awal Akhir
akan  menghasilkan  koloni  yang  lebih  besar atau lebih banyak.

## KESIMPULAN DAN SARAN
Pengukuran kualitas air pada kolam pendederan  ikan  lele  sangkuriang  ( Clarias gariepinus ) dapat diukur berdasarkan beberapa parameter kualitas air. Kualitas air yang diukur pada kolam pendederan ikan lele sangkuriang ( Clarias gariepinus ) di Desa Durbuk, Pamekasan  yaitu  meliputi  suhu,  pH,  DO ( Dissolved  Oxygen )  dan  ammonia.  Nilai  atau hasil  pengukuran  kualitas  air  disesuaikan berdasarkan  SNI  6484.3  Tahun  2014  tentang produksi  ikan  lele.  Nilai  suhu  yang  diperoleh yaitu  suhu  pagi  27,96 ℃ pada  kolam  2  dan 28,26 ℃ pada kolam 1, suhu sore 29,44 ℃ pada kolam 3 dan 30,41 ℃ pada kolam 1 sedangkan menurut standar baku mutu berkisar antara 25- 30 ℃ . Nilai pH yang diperoleh yaitu pH pagi 8,03 pada kolam 3 dan 8,11 pada kolam 2, pH sore 9,26  pada  kolam  2  dan  9,43  pada  kolam  1 sedangkan  menurut  standar  baku  mutu berkisar  antara  6,5-8,5.  Nilai  DO  ( Dissolved Oxygen )  awal  yang  diperoleh  yaitu  kolam  1 1,92 mg/L, kolam 2 yaitu 2,51mg/L dan kolam 3 yaitu  2,13  m/L,  DO  ( Dissolved  Oxygen )  akhir yang diperoleh yaitu kolam 1 2.52 mg/L, kolam 2 yaitu 3,11 mg/L dan kolam 3 yaitu 2,47 mg/L sedangkan  menurut  standar  baku  mutu berkisar  antara  >  3 mg/L.  Nilai  ammonia  awal yang  diperoleh  yaitu  kolam  1  diperoleh  hasil 2,385  mg/L  dan  2,050  mg/L,  pada  kolam  2 diperoleh hasil 4,394 mg/L dan 5,253 mg/L dan pada  kolam  3  diperoleh  hasil  4,030  mg/L  dan 4,365  mg/L,  hasil  pengujian  ammonia  akhir yatiu pada kolam 1 diperoleh hasil 30,71 mg/L dan 34,42 mg/L, pada kolam 2 diperoleh hasil 35,79 mg/L dan 49,35 mg/L dan pada kolam 3 diperoleh  hasil  4,52  mg/L  dan  3.30  mg/L sedangkan  menurut  standar  baku  mutu berkisar  antara  <  0,8  mg/L.  Hasil  pengujian statistic  menggunakan  SPSS  menunjukkan bahwasanya pemberian probiotik yang diberikan  kepada  kolam  perlakuan  tidak berpengaruh  nyata  terhadap  kualitas  air  yaitu suhu  dan  pH  karena  nilai  signifikansi  yang diperoleh  >0,05..  Saran  dalam  penelitian selanjutnya  yaitu  perlu  dilakukan  penelitian terhadap  kualitas  air  pada  budidaya  ikan  lele sangkuriang  menggunakan  probiotik  berjenis lain  dan  juga  melakukan  pengukuran  kualitas air  pada  parameter  yang  lain  juga  untuk memperbanyak data penelitian.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis  berterima  kasih  kepada  Bapak  Ismail S.Si atas ketersediaan beliau untuk memberikan  fasilitas  kolam  yang  digunakan
untuk  penelitian  ini.  Penulis  juga  berterima kasih  kepada  Bapak  Abdus  Salam  Junaedi S.Si, M.Si selaku dosen pembimbing yang telah membimbing dan megarahkan sehingga penelitian  ini  dapat  terlaksana  dengan  baik. Ucapan terima kasih juga disampaikan kepada rekan-rekan  yang  ikut  membantu  dalam pelaksanaan penelitian ini baik dalam mengumpulkan data lapangan dan melakukan analisa di laboratorium.

## DAFTAR PUSTAKA
Arfiati, D., Lailiyah, S., Dina, K., & Cokrowati, N.
(2020). Dinamika Jumlah Bakteri Bacillus Subtilis  dalam  Penurunan  Kadar  Bahan Organik Tom Limbah Budidaya Ikan Lele Sangkuriang  (Clarias  gariepinus). JFMR-
Journal of Fisheries and Marine Research , 4 (2), 222 –226.
https://doi.org/10.21776/ub.jfmr.2020.004
.02.6
Ariwinata, W. R. R., Junaedi, A. S., & Abida, I. W.  (2021).  Kajian  Kualitas  Air  Dan Kualitas  Daging  Ikan  Nila  (Oreochromis niloticus)  Pada  Perlakuan  Yang  Berbeda Dengan Dan Tanpa Pemberian Probiotik. Juvenil:Jurnal Ilmiah Kelautan Dan Perikanan , 2 (3), 212 –219.
https://doi.org/10.21107/juvenil.v2i3.1176 8
Atho’illah,  M.,  Fadila,  M.  D.,  &  Junaedi,  A.  S. (2021).  Uji  Baku  Mutu  Probiotik  Ikan Berbahan  Dasar  Air  Limbah  Cucian Beras,  Kulit  Bawang  Putih  (Allium sativum),  Dan  Fermentasi  Ekstrak  Daun Kelor (Moringa oleifera). Saintek
Perikanan : Indonesian Journal of Fisheries Science and Technology , 17 (4),
240 –246. https://doi.org/10.14710/ijfst.17.4.240-
246
Badan Standarisasi Indonesia. (2014). Ikan lele dumbo  (Clarias  sp.)  Bagian  3 :  Produksi induk. SNI 6484.3 2014. Badan Standarisasi Nasional. Jakarta
Cahyani,  L.  R.,  &  Hafiludin,  H.  (2022).
Manajemen  Pemberian  Pakan  Pada Pembesaran  Ikan  Lele  Mutiara  (Clarias gariepinus)  di  Karamba  Tancap  Balai Benih  Ikan  Pamekasan. Juvenil:Jurnal Ilmiah Kelautan Dan Perikanan , 3 (2), 19 – 26. https://doi.org/10.21107/juvenil.v3i2.1591
5 Dewi,  R.  R.  S.  P.  S.,  &  Tahapari,  E.  (2018). Pemanfaatan  Probiotik  Komersial  Pada Pembesaran Ikan Lele (Clarias gariepinus). Jurnal  Riset  Akuakultur , 12 (3), 275.
https://doi.org/10.15578/jra.12.3.2017.27 5-281 Efendy,  E.  N.,  Olnis,  R.,  &  Muhammad,  S.
(2023).  Aplikasi  Pemberian  Probiotik Yang  Berbeda  Ikan  Lele  Sangkuriang (Clarias  Gariepinus)  Di  Desa  Banyuajuh Kamal Bangkalan (Application of Different Probiotics In Sangkuriang Catfish (Clarias Gariepinus)  In  Banyuajuh  Kamal  Village Bangkalan). Journal of Indonesian Tropical  Fisheries  (JOINT-FISH):  Jurnal Akuakultur,  Teknologi  Dan  Manajemen Perikanan  Tangkap  Dan  Ilmu  Kelautan , 6 (2), 224 –235.
Faridah,  F.,  Diana,  S.,  &  Yuniati,  Y.  (2019). Budidaya  Ikan  Lele  Dengan  Metode
Bioflok Pada Peternak Ikan Lele Konvesional. CARADDE: Jurnal Pengabdian  Kepada  Masyarakat , 1 (2), 224 –227. https://doi.org/10.31960/caradde.v1i2.74 Hayati  Soeprapto,  Heri  Ariadi,  &  Kharismatul Khasanah.  (2022).  Pelatihan  Pembuatan
Probiotik Herbal Bagi Kelompok Pembudidaya Ikan. J-ABDI: Jurnal Pengabdian  Kepada  Masyarakat , 1 (8), 1929 –1934. https://doi.org/10.53625/jabdi.v1i8.1015 Junaedi, A. S., Riana, F., Sari, H. C. P., Witria, W., & Zainuri, M. (2020). Kualitas Daging Ikan  Kurisi  (Nemipterus  japonicus)  Hasil Tangkapan Nelayan di Pelabuhan Perikanan  Branta,  Pamekasan. Jurnal
Pengolahan  Hasil  Perikanan  Indonesia , 23 (2), 303 –319.
https://doi.org/10.17844/jphpi.v23i2.3116
9
Koniyo,  Y.  (2020).  Analisis  Kualitas  Air  Pada Lokasi  Budidaya  Ikan  Air  Tawar  di Kecamatan  Suwawa  Tengah. Jurnal Technopreneur  (JTech) , 8 (1),  52 –58. https://doi.org/10.30869/jtech.v8i1.527 Kusumawati, A. A., Suprapto, D., & Haeruddin, H. (2018). Pengaruh Ekoenzim Terhadap Kualitas Air Dalam Pembesaran Ikan Lele (Clarias  gariepinus). Management  of Aquatic Resources Journal (MAQUARES) , 7 (4), 307 –314. https://doi.org/10.14710/marj.v7i4.22564 Laili,  N.  H.,  Abida,  I.  W.,  &  Junaedi,  A.  S. (2022). Nilai Total Plate Count (TPC) Dan Jumlah  Jenis  Bakteri  Air  Limbah  Cucian Garam  (Bittern)  Dari  Tambak  Garam Desa  Banyuajuh  Kecamatan  Kamal Kabupaten Bangkalan. Juvenil:Jurnal Ilmiah Kelautan Dan Perikanan , 3 (1), 26 –
31.
https://doi.org/10.21107/juvenil.v3i1.1507
5
Parlina,  I.,  Miftahul  Ihsan,  I.,  Syaputra,  A.,
Budiani,  S.,  Hanif,  M.,  Pusat  Teknologi Lingkungan, P., Pengkajian dan Penerapan Teknologi Gedung, B., Puspiptek  Serpong,  K.,  Selatan,  T.,  - Sekolah  Tinggi  Perikanan  Serang,  B.,  & STP Raya Karangantu Kecamatan
Kasemen, J. (2018). Perbandingan Pengelolaan  Lingkungan  pada  Budidaya
Udang  Vaname  (Litopenaeus  vannamei) dengan  Aplikasi  Anorganik  Chelated dengan Probiotik
Comparison of
Environment  Management  of  Vaname Shrimp  Farming (Litopenaeus  vannamei) with  the  Application  of  Chelated. Jurnal Teknologi Lingkungan , 19 (1), 33 –40.
Rizki,  Z.,  Fitriana,  F.,  &  Jumadewi,  A.  (2022).
Identifikasi  jumlah  angka  kuman  pada dispenser  metode  TPC  (Total  Plate Count). Jurnal SAGO Gizi Dan Kesehatan , 4 (1), 38.
https://doi.org/10.30867/gikes.v4i1.1052
Sudaryati, D., Heriningsih, S., & Rusherlistyani,
R.  (2017).  Peningkatan  Produktivitas Kelompok  Tani  Ikan  Lele  dengan  Teknik Bioflok. Jppm:  Jurnal  Pengabdian  Dan Pemberdayaan  Masyarakat , 1 (2),  109.
https://doi.org/10.30595/jppm.v1i2.1695
Suman, A., Irianto, H. E., Satria, F., & Amri, K.
(2017). Potensi Dan Tingkat Pemanfaatan  Sumber  Daya  Ikan  Di Wilayah  Pengelolaan  Perikanan  Negara Republik Indonesia (Wpp Nri) Tahun 2015
Serta Opsi Pengelolaannya. Jurnal Kebijakan Perikanan Indonesia , 8 (2), 97. https://doi.org/10.15578/jkpi.8.2.2016.97- 100
Sumardiono,  A.,  Rahmat,  S.,  Alimudin,  E.,  & Ilahi,  N.  A.  (2020).  Sistem  Kontrol- Monitoring Suhu dan Kadar Oksigen pada Kolam Budidaya Ikan Lele. JTERA (Jurnal
Teknologi Rekayasa) , 5 (2), 231. https://doi.org/10.31544/jtera.v5.i2.2020. 231-236
Supriatna,  M.,  Mahmudi,  M.,  &  Musa,  M.
(2020).  Model  pH  dan  Hubungannya
Dengan  Parameter  Kualitas  Air  Pada Tambak Intensif
Udang Vaname
(Litopenaeus  vannamei)  di  Banyuwangi Jawa  Timur. JFMR-Journal  of  Fisheries and  Marine  Research , 4 (3),  368 –374. https://doi.org/10.21776/ub.jfmr.2020.004 .03.8
Syawallita, R. O., Effendy, E. N., Zainuri, M., & Junaedi,  A.  S.  (2024).  Aplikasi  Probiotik Ikan  Yang  Berbeda  Pada  Kegiatan Budidaya  Ikan  Lele(  Clarias  gariepinus  ) Di  Desa  Banyuajuh,  Kamal,  Bangkalan. BEST  Journal  (Biology  Education,  Sains and Technology) , 7 (1), 275 –281. Tuwitri, R., Irwanto, R., & Kurniawan, A. (2021).
Identifikasi  Parasit  Pada  Ikan  Lele (Clarias  sp.)  di  Kolam  Budidaya  Ikan Kabupaten  Bangka. Jurnal  Teknologi Perikanan Dan Kelautan , 11 (2), 189 –198. https://doi.org/10.24319/jtpk.11.189-198
Weking,  A.  O.,  & Wea,  E.  T.  (2021).  Laporan Sistem  Pakar  Diagnosa  Penyakit  Ikan
Lele  Dengan  Metode  Forward  Chaining Dan  Certainty  Factor  (Arnoldus  Ola Weking  1  ,  Engelbertus  T  Wea  2  ) Laporan Sistem Pakar Diagnosa Penyakit Ikan  Lele  Dengan  Metode  Forward Chaining  Dan  Certainty  Factor. Jurnal Sains Dan Teknologi , 3 (1), 24 –27. Widiasti, M., Putra, I. W. W. P., Duniaji, A. S., & Darmayanti, L. P. (2020). Analisis Potensi Beberapa  Larutan  Pengencer  Pada  Uji Antibakteri  Teh  Temu  Putih  (  Curcuma zedoaria  (  Berg  .)  Roscoe  )  Terhadap Escherichia coli. Scientific Journal of Food Technology , 6 (2), 117 –125. Yunita,  M.,  Hendrawan,  Y.,  Yulianingsih,  R., Keteknikan, J., Fakultas, P. –, & Kunci, K.
(2015).  Analisis  Kuantitatif  Mikrobiologi Pada  Makanan  Penerbangan  (Aerofood
ACS)  Garuda  Indonesia  Berdasarkan TPC (Total Plate Count) Dengan Metode
Pour  Plate. Jurnal  Keteknikan  Pertanian Tropis Dan Biosistem , 3 (3), 237 –248.