Hal 313-323 Disetujui: 28 Desember 2023

## PEMANFAATAN EKSTRAK BATANG PISANG SEBAGAI PEMBIUS UNTUK MENSEPARASI NILA
Utilization of Banana Stem Extract as an Anesthetic for Separating Tilapia
Oleh:
Gondo Puspito 1 , Mustaruddin 1 * , Mega Kusuma 1 , Retno Muninggar 1 , M. Dahri Iskandar 1 , Tri Nanda Citra Bangun 1
1 Departemen Pemanfaatan Sumberdaya Perikanan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB University, Bogor, Indonesia
* Korespondensi penulis: mus_m03@yahoo.com, mustaruddin@apps.ipb.ac.id

## ABSTRAK
Penelitian ditujukan untuk menentukan konsentrasi pembius ekstrak batang pisang yang dapat membius  nila  ( Oreochormis  niloticus).  Indikator  keberhasilannya  didasarkan  atas  waktu  kolaps tercepat dan waktu pulih terlama. Sebanyak 29 ikan belum layak konsumsi berukuran panjang total antara 12,6-18,5 cm dan 25 ikan layak konsumsi (18,6-24,5 cm) dijadikan sebagai sampel penelitian. Pembiusan difokuskan terutama pada ikan belum layak konsumsi yang akan diseparasi, karena lebih rentan terhadap zat pembius dibandingkan dengan ikan layak konsumsi. Konsentrasi pembius yang digunakan terdiri atas 1%, 2%, dan 3%. Respon ikan terhadap pembiusan disesuaikan dengan tabel McFarland (1959). Hasilnya adalah zat pembius yang terkandung dalam batang pisang berupa saponin. Konsentrasi pembius 3% lebih baik dibandingkan dengan 2% dan 1%, karena ikan lebih cepat kolaps dan lebih lama pulih. Ikan belum layak konsumsi akan kolaps setelah pembiusan selama 25-60 menit dengan waktu pulih antara 28-50 menit. Adapun ikan layak konsumsi akan kolaps setelah dibius selama 82-93 menit dan akan pulih kembali antara 58-90 menit.
Kata kunci: batang pisang, layak konsumsi, nila, saponin, waktu kolaps, waktu pulih

## ABSTRACT
This research aims to determine the anesthetic concentration of banana stem liver extract which can anesthetize tilapia (Oreochormis niloticus). Success indicators are based on the fastest collapse time and the longest recovery time. A total of 29 fish not fit for consumption with a total length between 12.6-18.5 cm and 25 fish fit for consumption (18.6-24.5 cm) were used as research samples. Anesthesia is focused mainly on fish that are not yet fit for consumption which will be separated, because they are more  susceptible  to  anesthetic  agents  compared  to  fish  fit  for  consumption.  The  anesthetic concentration used consisted of 1%, 2%, and 3%. The fish response to anesthesia was adjusted according to McFarland's table (1959). The result is an anesthetic substance contained in the banana stem in the form of saponins. Anesthetic concentration of 3% is better than 2% and 1%, because fish collapse faster and take longer to recover. Fish not fit for consumption will collapse after anesthetic application for 25-60  minutes  with  recovery  time  between  28-50  minutes.  Fish  that  are  fit  for  consumption  will collapse after being anesthetized for 82-93 minutes and will recover between 58-90 minutes.
Key words: banana stem, collapse time, fit for consumption, recovery time, saponins, tilapia

## PENDAHULUAN
Pembiusan terhadap ikan merupakan upaya untuk menjadikan ikan kehilangan kesadarannya,
karena aktivitas respirasi dan metabolisme-nya diperlambat. Penggunaannya banyak dilakukan untuk menjaga kesegaran ikan yang akan diangkut ke suatu tempat. Bahan pembiusnya bisa berupa bahan alami maupun kimia. Beberapa jenis bahan alami yang umum dimanfaatkan meliputi daun singkong karet (Munandar et al. 2022), minyak cengkeh (Madyowati et al. 2021), dan ekstrak akar tuba (Tobigo et al. 2017). Adapun jenis bahan kimia yang dipakai sebagai pembius adalah tricaine methane sulfonate atau MS-222 (Daud et al. 1997) dan potassium sianida atau KCN (Nugraha dan Insafitri 2010). Menurut Purwanto (1994), pembiusan ikan menggunakan bahan alami jauh lebih baik dibandingkan dengan bahan kimia, karena dapat mengurangi kematian ikan. Kesehatan dan kualitas ikan juga akan tetap terjaga.
Aktivitas pembiusan ikan menggunakan bahan pembius alami ternyata telah lama diterapkan oleh masyarakat untuk melakukan penangkapan atau pemanenan ikan air tawar. Permasalahan muncul ketika  ekosistem  perairan  mulai  rusak  setelah  aktivitas  pembiusan  dilakukan.  Aliran  air  yang mengandung racun akan mematikan ikan-ikan lain yang hidup di sepanjang sungai yang dilaluinya. Pemerintah akhirnya menerbitkan UU Nomor 31 tahun 2004 mengenai Perikanan pasal 8 ayat 1 yang melarang  penangkapan  ikan  dengan  pembiusan  kecuali  untuk  tujuan  penelitian  (pasal  8  ayat  5). Kenyataannya, masyarakat tetap melakukan pembiusan ikan secara sembunyi-sembunyi. Upaya yang harus dilakukan sebenarnya bukan pelarangan, tetapi sosialisasi mengenai konsentrasi racun pembius yang sebaiknya digunakan. Puspito et al. (2023) meneliti penggunaan racun tuba untuk penangkapan ikan di sungai. Hasilnya membuktikan bahwa pemakaian konsentrasi racun pembius yang terkendali akan menghindari kerusakan lingkungan. Aliran air yang mengandung racun pembius juga tidak akan membahayakan organisme lain yang berada di sepanjang aliran sungai, karena konsentrasi racunnya semakin berkurang. Daya racunnya di dalam air, menurut Puspito (2010), akan musnah setelah 2-3 hari.
Pembius alami dari ekstrak hati batang pisang berpeluang dimanfaatkan oleh masyarakat untuk menangkap atau memanen ikan. Penyebabnya adalah batang pisang tersedia dalam jumlah banyak di alam,  mudah  didapatkan,  dan  mudah  diekstrak  menjadi  racun  pembius.  Menurut  Hawley  (1981), saponin yang terkandung dalam hati batang pisang dapat digunakan sebagai membius ikan.
Penelitian  mencoba  memanfaatkan  ekstrak  hati  batang  pisang  raja  ( Musa paradisiaca) untuk membius nila ( Oreochormis niloticus) yang dipelihara di kolam pembudidayaan. Nila dikenal sebagai jenis ikan ekonomis yang sangat disukai oleh masyarakat. Pembiusan dimaksudkan untuk menseparasi nila berdasarkan ukurannya, sehingga proses pembesarannya dapat dilakukan secara terpisah dengan lebih baik dan mudah. Menurut Marie et al. (2018), ukuran ikan nila dalam satu kolam pemeliharaan tidak seragam, meskipun waktu pemeliharaannya sama. Salah satu penyebabnya adalah beberapa ikan kalah bersaing dalam mendapatkan makanan, sehingga pertumbuhannya terhambat. Kondisi ekstrim- nya  adalah  kematian  ikan-ikan  kecil  akan  meningkat  karena  mendapat  serangan  dari  ikan-ikan berukuran  besar.  Solusinya  adalah  memisahkan  ikan-ikan  berukuran  kecil  dari  ikan  besar  dan memeliharanya di dalam kolam terpisah. Puspito et al. (2023) menjelaskan bahwa ikan berukuran kecil akan lebih mudah terpengaruh oleh racun pembius alami. Adapun tujuan yang ingin dicapai adalah menentukan konsentrasi pembius nila dari ekstrak hati batang pisang tanpa menyebabkan kematian.
Penelitian  mengenai  pembiusan  ikan  dengan  ekstrak  hati  batang  pisang  untuk  tujuan menseparasi ukurannya masih sulit didapatkan. Beberapa pustaka yang ditemukan hanya mengenai metode pembiusan dengan ekstrak hati batang pisang untuk tujuan transportasi benih koi ( Cyprinus carpio) (Anggraini et al. 2014), nila (Oreochromis niloticus) (Puspitasari 2017), dan baung (Hemibagrus nemurus) (Wulandari et al. 2022).

## METODE PENELITIAN
Penelitian dilangsungkan di Laboratorium Bahan Alat Penangkapan Ikan (TAP), Departemen Pemanfaatan Sumberdaya Perikanan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor
dengan memakai metode percobaan. Dua perlakuan yang diuji berupa panjang total nila (Gambar 1) dan  konsentrasi  ekstrak  hati  batang  pisang  raja.  Waktu  pelaksanaannya  dilakukan  antara  Januari- Februari 2021.
Urutan  penelitian  terbagi  atas  5  tahapan,  yaitu  penentuan  proporsionalitas  antara  ukuran panjang dan berat ikan, selang panjang ikan, konsentrasi dan pembuatan bahan pembius dari batang pisang, serta pembiusan. Penentuan proporsionalitas antara panjang dan berat ikan ditujukan untuk mengetahui  kewajaran  ukuran  ikan  yang  dijadikan  sebagai  bahan  penelitian.  Caranya  adalah memplotkan  data  panjang  dan  berat  ikan  dalam  bentuk  grafik  dan  persamaan  regresi  linier sederhananya ditentukan menggunakan perangkat lunak ‘Microsoft Excel’. Keeratan hubungan antara panjang dan berat ikan ditentukan berdasarkan koefisien korelasinya r.
Penentuan  selang  kelas  panjang  ikan  dimulai  dengan  mengukur  panjang  total  ikan  berikut bobotnya. Sugiyono (2013) menjelaskan bahwa selang kelas panjang ditentukan dengan cara:
1. Mengurutkan panjang ikan dari ukuran terendah sampai tertinggi;
2. Menentukan panjang terendah dan tertinggi ikan;
3. Menghitung wilayah data W = nilai tertinggi – terendah;
4. Menggunakan persamaan Sturges (1926), yaitu K = 1 + 3,3 log n (n adalah jumlah data) untuk hitung jumlah kelas;
5. Menghitung lebar kelas, atau c = wilayah data dan W : jumlah kelas K;
6. Menentukan batas bawah kelas pertama dari nilai terendah;
7. Menentukan kelas interval pertama dengan cara menambahkan batas bawah kelas dengan panjang interval kelas dan dikurangi 1;
8. Menentukan batas bawah kelas kedua yang merupakan lanjutan batas atas kelas pertama; dan
9. Selang kelas berikutnya dilakukan dengan cara yang sama dengan sebelumnya.
Penentuan berapa konsentrasi pembius yang digunakan dilakukan dengan cara membius ikan berukuran kecil dengan konsentrasi tinggi hingga menyebabkan kematian dengan cepat. Respon akibat pembiusan  disesuaikan  dengan  Tabel  1  (McFarland  1959).  Selanjutnya,  konsentrasi  pembius diturunkan hingga hanya menyebabkan ikan menjadi kolaps (level 3) dan dijadikan sebagai konsentrasi tertinggi. Konsentrasi pembius diturunkan sedikit demi sedikit hingga ikan tidak terpengaruh (level 0) dan dijadikan sebagai konsentrasi pembius terendah. Adapun konsentrasi pembius menengah (level 2a) berada di antara konsentrasi pembius terendah dan tertinggi. Ketiga konsentrasi pembius dijadikan sebagai perlakuan. Setiap pengujian menggunakan ikan kecil yang berbeda.
Pembuatan  konsentrasi  ekstrak  pembius  dimulai  dengan  mencacah  hati  batang  pisang, ditimbang sesuai kebutuhan, dicampur dengan air, dan dihaluskan. Ekstrak pembius didapatkan dari hasil perasannya. Perhitungannya mengacu pada formula berikut (Helrich 1990):
1. Kandungan air = berat hati batang pisang (g)× kadar air (%);
2. Bobot kering = berat hati batang pisang (g) − berat air (g);
3. Jumlah air = air (l) + kandungan air (l); dan
4. Konsentrasi ekstrak = (berat kering/jumlah air)×100%.
Gambar 1. Nila ( Oreochormis niloticus)
Tabel 1. Pengaruh pembiusan terhadap respon ikan (McFarland 1959)
Level Respon Deskripsi 0 Normal Badan tegak dan sirip bergerak teratur. 1a Kolaps ringan Badan agak miring dan tutup insang bergerak lemah. 1b Gelisah Ikan bergerak cepat, sirip melebar, dan badan agak menyamping. 2a Kehilangan keseimbangan Keseimbangan mulai hilang, mulut menyembul ke permukaan air dan terbuka lebar, sirip digerakkan dengan cepat, dan posisi badan horizontal. 2b Nyaris kolaps Badan kaku, tidak merespon rangsang, dan badan terbalik dengan sedikit pergerakan. 3 Kolaps Tidak ada pergerakan 4 Rebah Ikan mati
Pembiusan  terhadap  ikan  didasarkan  atas  panjang  ikan.  Selanjutnya,  pengaruh  pembiusan terhadap  reaksi  ikan  dicocokkan  dengan  Tabel  1.  Prosedur  pembiusan  dilakukan  melalui  tahapan berikut:
1. Mencampur pembius konsentrasi terendah dengan air di dalam akuarium pembiusan berukuran 40 ×  40  ×  40  (cm).  Volume  air  akuarium  sebanyak  3  l  merupakan  campuran  antara  cairan  larutan ekstrak pembius dan air yang berada di dalam akuarium;
2. Memasukkan 3 ikan dengan ukuran berbeda ke dalam akuarium bersamaan dengan menghidupkan stopwatch yang dianggap sebagai waktu awal pembiusan hingga ikan menjadi kolaps;
3. Mengamati reaksi ikan dan disesuaikan dengan Tabel 1 untuk melihat pengaruh pembiusan level 0, 2a, dan 3;
4. Menghentikan pembiusan ketika keadaan ikan berada pada level 3;
5. Memindahkan ikan ke dalam bak pemulihan dengan ukuran 60 × 60 × 40 (cm);
6. Menghitung waktu pulih yang dimulai sejak ikan dipindahkan ke dalam bak pemulihan ber-aerator sampai ikan tersadar kembali;
7. Melanjutkan pembiusan terhadap ukuran ikan yang berbeda; dan
8. Mengulangi pembiusan dengan konsentrasi pembius menengah dan tinggi.
Ikan dengan panjang yang sama dibius 3 kali pada konsentrasi air yang sama. Air tawar yang dimasukkan  ke  dalam  akuarium  disesuaikan  dengan  konsentrasi  ekstrak  pembius  untuk  pengujian berikutnya.
Pengaruh pemberian ekstrak pembius terhadap waktu kolaps dan pulih dianalisis menggunakan uji Anova. Syaratnya adalah data harus homogen dan normal (Sastrosupadi 2007). Selanjutnya, uji BNT dilakukan untuk mengetahui pengaruh antar variabel. Jenis data yang diuji berupa waktu kolaps dan pulih ikan berdasarkan konsentrasi pembius dan panjang ikan. Selanjutnya, hipotesa dianalisis dengan rancangan  acak  lengkap  (RAL).  Syarat  pengujiannya  adalah  data  bersifat  homogen  dan  jumlah perlakuan terbatas. Rumusnya, menurut Mattjik dan Sumertajaya (2000), adalah 𝑌𝑖𝑗 = 𝜇𝑖 + 𝑟𝑖 + 𝜀𝑖𝑗 atau 𝑌𝑖𝑗 = 𝜇𝑖 + 𝜀𝑖𝑗 . Yij adalah waktu kolaps dan pulih pada perlakuan ke-i dan ulangan ke-j; μ rataan umum waktu kolaps dan pulih; i konsentrasi 1, 2, 3, …, t; j ulangan 1, 2, 3, …, r; τi pengaruh perlakuan ke-i; dan ulangan ke-j; dan εij pengaruh acak pada perlakuan ke-i dan ulangan ke-j. Kaidah keputusannya adalah 1. H 0 diterima jika nilai signifikansinya lebih dari a (0,05) dan H 0 ditolak jika nilai signifikansinya kurang dari a (0,05); dan 2. H0 di tolak atau ada pengaruh perlakuan jika Fhitung > Ftabel dan H 0 diterima atau tidak terdapat adanya pengaruh perlakuan jika Fhitung < Ftabel.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Tanaman Pisang
Pisang merupakan tanaman yang hanya hidup dalam satu musim. Batang dan daunnya biasanya dibuang begitu saja dan dibiarkan membusuk, padahal batangnya dapat dimanfaatkan sebagai bahan alami  untuk  membius  ikan.  Priosoeryanto et  al.  (2006)  menerangkan  bahwa  bahan  pembius  dapat dihasilkan dari hati batang pisang. Zat yang terkandung di dalamnya berupa 90% air, 0,30% protein, 4% karbohidrat, 1,70% abu, dan 4% serat. Menurutnya, beberapa jenis fitokimia yang terkandung di dalam  hati  batang  meliputi  tanin,  flavanoid,  alkaloid,  steroid,  triterpenoid,  dan  saponin.  Senyawa saponin  terkandung  dalam  jumlah  yang  paling  banyak  di  dalam  hati  batang  pisang  dibandingkan dengan jenis senyawa lainnya.
Karakteristik saponin, menurut Hawley (1981), berwarna putih, berbusa, dan larut dalam air. Puspito (2010) menjelaskan bahwa saponin dapat dimanfaatkan sebagai pestisida dan pembius ikan. Cara kerja saponin adalah melumpuhkan sistem saraf dan respirasi. Efektivitasnya sebagai pembius ikan akan berkurang dengan menurunnya kandungan oksigen terlarut, temperatur, dan salinitas air. Evans (2014)  menginformasikan  bahwa  saponin  sangat  beracun  terhadap  hewan  berdarah  dingin,  karena merusak  aliran  darah.  Namun  demikian,  racun  saponin  tidak  berarti  jika  termakan  oleh  manusia, karena pencernaan manusia tidak dapat mengabsorbsinya.

## Kewajaran Ukuran Ikan
Jumlah  ikan  yang  dijadikan  sebagai  sampel  penelitian  untuk  menentukan  hubungan  antara panjang dan beratnya sebanyak 54 ekor. Gambar 2 menunjukkan grafik hubungan antara keduanya yang dijelaskan dengan persamaan B = 15,65P – 169,98 dan koefisien korelasi r = 0,9692. Wicaksono (2006) menyebutkan bahwa jika nilai koefisien korelasi r > 0,6, maka hubungan antar variabelnya erat dan sebaliknya. Oleh karenanya, sampel ikan penelitian mempunyai ukuran panjang dan berat yang wajar.

## Selang panjang
Penggunaan rumus Sugiyono (2013) terhadap 54 ikan yang diuji menghasilkan 6 selang panjang. Masing-masing adalah selang panjang 1 antara 12,6-14,5 cm, selang panjang 2 (14,6-16,5 cm), selang panjang 3 (16,6-18,5 cm), selang panjang 4 (18,6-20,5 cm), selang panjang 5 (20,6-22,5 cm), dan selang panjang 6 (22,6-24,5 cm). Gambar 3 menunjukkan jumlah ikan berdasarkan selang panjangnya.
Gambar 2. Hubungan antara panjang P dan berat B nila yang dijadikan sebagai sampel penelitian
Separasi terhadap ukuran panjang didasarkan atas ikan yang belum dan sudah layak konsumsi, karena pembiusan diupayakan untuk memisahkan keduanya. Menurut Amri dan Khairuman (2008), nila layak konsumsi memiliki berat antara 150-250 g/ekor. Hasil perhitungan dengan persamaan regresi linear sederhana pada Gambar 2 mendapatkan nila layak konsumsi memiliki panjang antara 18,86- 28,56 cm, atau berada pada selang panjang 4, 5, dan 6. Nila yang memiliki panjang pada selang kelas 1, 2, dan 3 tergolong belum layak konsumsi dan menjadi target untuk diseparasi.

## Gambar 3. Jumlah nila berdasarkan selang panjang

## Waktu Kolaps
Hasil penentuan konsentrasi pembiusan mendapatkan bahwa pembiusan dengan konsentrasi pembius 5% dan 4% mengakibatkan ikan mati dengan cepat. Adapun konsentrasi 3% hanya dapat membuat ikan kolaps atau level 3 dan selanjutnya dijadikan sebagai konsentrasi pembius tertinggi. Konsentrasi pembius < 1% ternyata tidak menimbulkan pengaruh apa pun, atau level 0. Ikan baru mulai terpengaruh dan mengalami kolaps, atau level 1a setelah dibius dengan konsentrasi pembius 1%. Oleh karenanya,  konsentrasi  pembius  3%  dan  1%  masing-masing  dijadikan  sebagai  konsentrasi  tertinggi (level 3) dan terendah (level 1). Konsentrasi yang menyebabkan ikan berada pada kondisi level 2a adalah 2%.
Hasil yang diinginkan dari pembiusan adalah ikan cepat menjadi kolaps, karena sistem saraf pusat tidak terkendali, sehingga kepekaan dan responnya terhadap rangsang luar menurun. Kecepatan kolaps  ternyata  sangat  dipengaruhi  oleh  konsentrasi  pembius  (Agustina  2012).  Adapun  proses terjadinya pembiusan terhadap ikan, menurut Puspito (2010), melalui tiga tahapan berikut:
1. Penyerapan senyawa pembius oleh sistem respirasi ikan dari media air;
2. Penyerapan senyawa pembius ke dalam darah dengan proses difusi melalui permukaan kulit ikan; dan
3. Penyebaran senyawa pembius ke seluruh bagian tubuh melalui difusi jaringan dan aliran darah.
Hubungan  yang  menjelaskan  pengaruh  pembiusan  dengan  tiga  konsentrasi  ekstrak  batang pisang terhadap kapan waktu kolaps ikan ditunjukkan pada Gambar 4. Waktu kolaps ikan dihitung semenjak ikan dimasukkan ke dalam akuarium berisi larutan pembius hingga ikan menjadi kolaps. Waktu kolaps ikan akibat pembiusan dengan konsentrasi pembius 1%, 2%, dan 3% masing-masing dijelaskan dengan persamaan tk-1% = 9,0857 P + 113,2 dengan nilai koefisien korelasi r = 0,9940, tk- 2% = 12,457 P + 61,4 (r=0,9909), dan tk-3% = 14,971 P + 11,933 (r=0,9709). Seluruh nilai r ternyata lebih dari 0,6, atau kedua variabel memiliki hubungan yang sangat erat (Wicaksono 2006). Maksudnya adalah pengaruh pembiusan sangat berhubungan dengan panjang ikan.
9 9 11 8 9 8 0 3 6 9 12 12,6-14,5 14,6-16,5 16,6-18,5 18,6-20,5 20,6-22,5 22,6-24,5 Ju m lah ( ek or ) Selang kelas panjang (cm) Layak konsumsi
Gambar 4. Waktu kolaps (tk) berdasarkan panjang ikan (P) akibat pembiusan dengan tiga konsentrasi pembius
Konsentrasi  pembius  ternyata  memberikan  efek  yang  berbeda  terhadap  waktu  kolaps  ikan. Pembiusan dengan konsentrasi 1% mengakibatkan waktu kolaps lebih lama dari 2% dan 3%. Menurut Abid et al. (2014), konsentrasi pembius yang tinggi akan mempercepat waktu kolaps ikan. Ukuran panjang ikan juga ternyata mempengaruhi waktu kolapsnya. Peningkatan ukuran panjang ikan akan mengakibatkan waktu kolaps ikan juga akan bertambah. Penyebabnya adalah ikan besar mempunyai ukuran usus yang lebih panjang dan besar. Akibatnya adalah ikan tidak segera kolaps jika dibius dengan konsentrasi pembius yang tinggi (Rudiyanti dan Ekasari 2009).
Proses pembiusan ditujukan untuk memisahkan ikan belum layak konsumsi yang hidup dalam satu kolam yang sama dengan ikan berukuran layak konsumsi. Oleh karenanya, ikan berukuran belum layak konsumsi yang berada pada selang kelas panjang 1 antara 12,6-14,4 cm, selang kelas 2 (14,5-16,5 cm), dan selang kelas 3 (16,6-18,5 cm) harus diseparasi dan dipisahkan dari ukuran di atasnya. Adapun ikan berukuran panjang pada selang kelas 4 atau antara 18,6-20,5 cm, selang kelas 5 (20,6-22,5) cm, dan selang kelas 6 (22,6-24,5 cm) dibiarkan tetap berada di kolam.
Pembiusan dengan konsentrasi 1% mengharuskan proses pembiusan maksimal dihentikan pada menit ke-138. Ikan berukuran belum layak konsumsi yang berada pada selang kelas panjang 1, 2, dan 3 harus segera diangkat dan dipindahkan ke kolam lain. Selanjutnya, kolam diisi air agar konsentrasi pembius menjadi semakin menurun dan ikan-ikan berukuran layak konsumsi 4, 5, dan 6 tidak akan terpengaruh  oleh  sisa  ekstrak  pembius.  Adapun  proses  pembiusan  dengan  konsentrasi  2%  dan  3% masing-masing harus dihentikan maksimal pada menit ke-102 dan 60. Penambahan waktu pembiusan melebihi batas waktu maksimal akan menyebabkan ikan-ikan berukuran belum layak konsumsi akan mengalami kematian.

## Waktu Pulih
Waktu pulih ditentukan sejak ikan berada di dalam kolam pemulihan hingga menjadi pulih atau sadar,  yaitu  ikan  dapat  berenang  dengan  badan  tegak  dan  merespon  jika  disentuh.  Gambar  5 menjelaskan waktu pulih ikan berdasarkan panjangnya akibat pembiusan dengan konsentrasi berbeda. Hubungan antara waktu pulih dengan panjang ikan pada konsentrasi 1% diterangkan dengan formula tp-1% = 8,9429 P + 0,8667 dan nilai koefisien korelasi r = 0,9870, 2% (tp-2% = 10,571 P + 9; r = 0,9974); dan 3% (tp-3% = 10,886 P + 18,733; r = 0,9707). Hubungan kedua variabel sangat erat, karena nilai r > 0,6 atau mendekati 1 (Wicaksono 2006). Artinya adalah waktu pulih sangat tergantung pada panjang ikan.
tk- 1% = 9,0857 P + 113,2 r = 0,9940 tk- 2% = 12,457 P + 61,4 r = 0,9909
tk -3% = 14,971 P + 11,933 r = 0,9709 20 60 100 140 180 12,6-14,4 14,5-16,5 16,6-18,5 18,6-20,5 20,6-22,5 22,6-24,5 Wa kt u ko la ps tk (m en it) Selang panjang P (cm) 1% 2% 3%
Berdasarkan Gambar 5, perbedaan konsentrasi pembius akan berpengaruh terhadap waktu ikan menjadi pulih. Peningkatan konsentrasi pembius dan panjang tubuh ikan akan menghambat waktu pulih  ikan  (Abid et  al.  2014).  Menurutnya,  penyebabnya  adalah  ikan  besar  memiliki  kemampuan menyerap pembius lebih banyak, sehingga waktu untuk menetralisir racun yang terkandung di dalam tubuhnya menjadi lebih lama. Willford (1970) menerangkan bahwa waktu pulih sangat tergantung pada kemampuan ikan untuk menetralisir senyawa pembius dari tubuhnya. Sisa-sisa senyawa pembius yang  berada  di  dalam  tubuh  dan  insang  akan  dibersihkan  oleh  aliran  air  yang  masuk  ke  dalam mulutnya. Adapun oksigen yang masuk melalui insang akan dibawa oleh darah ke seluruh badan ikan.
Gambar 5. Waktu pulih (tp) berdasarkan panjang ikan (P) akibat pembiusan dengan tiga konsentrasi pembius
Proses  pembiusan  hanya  ditujukan  untuk  pengangkatan  ikan-ikan  berukuran  belum  layak konsumsi. Masing-masing berada pada selang kelas 1 dengan kisaran panjang 12,6-14,5 cm, selang kelas 2  (14,5-16,5  cm),  dan  selang  kelas  3  (16,6-18,5  cm).  Pembiusan  dengan  konsentrasi  pembius  1% memberikan  waktu  pulih  maksimal  28  menit  untuk  melakukan  pengangkatan  ikan  dari  kolam pembesaran, sedangkan 2% (40 menit), dan 3% (50 menit). Waktu pulih yang cepat mengindikasikan bahwa pengangkatan nila dari kolam harus dilakukan sesegera mungkin sebelum ikan tersadar. Adapun populasi  ikan  belum  layak  tangkap  yang  cukup  besar  memerlukan  waktu  pemanenan  yang  lama, sehingga pembiusan sebaiknya menggunakan konsentrasi 3%.

## Konsentrasi Pembius Pilihan
Pemanfaatan ekstrak hati batang pisang sebagai pembius ikan masih belum banyak diketahui oleh masyarakat. Jenis pembius yang umum digunakan berasal dari bahan kimia yang sangat berbahaya. Subasinghe (1997) menjelaskan bahwa residu yang tertinggal di dalam badan ikan sangat beracun dan berbahaya jika dikonsumsi oleh manusia. Ikan akan aman dikonsumsi setelah didiamkan selama lebih dari 30 hari. Adapun ekstrak hati batang pisang merupakan pembius alami yang aman. Puspitasari (2017) membuktikan bahwa pencampuran ekstrak hati batang pisang ke dalam genangan air dengan pH rata-rata 7,2 hanya akan mengakibatkan terjadinya penurunan pH dari 1,2 menjadi 6. Menurut Suyanto  (1994),  perairan  dengan  pH  6-8  sangat  cocok  sebagai  habitat  nila.  Perkembangannya berlangsung pada pH 7-8, suhu optimum 25-33 o C dan kadar oksigen terlarut <10 ppm. Artinya adalah nila  memiliki  kemampuan  untuk  dapat  mentoleransi  perubahan  kondisi  perairan  setelah  diberi senyawa pembius.
tp -1% = 8,9429 P + 0,8667 r = 0,9870 tp- 2% = 10,571 P + 9 r = 0,9974 tp- 3% = 10,886 P + 18,733 r = 0,9707 10 30 50 70 90 110 12,6-14,5 14,5-16,5 16,6-18,5 18,6-20,5 20,6-22,5 22,6-24,5 Wa kt u pu lih tp (m en it) Selang panjang P (cm) 1% 2% 3%
Pengaruh pembiusan dengan tiga konsentrasi berbeda ditunjukkan pada Tabel 1. Hasil yang diharapkan adalah waktu kolaps lebih cepat dan waktu pulih lambat, sehingga waktu yang dibutuhkan untuk  mengangkat  ikan  berukuran  belum  layak  konsumsi  lebih  lama.  Pembiusan  juga  hanya  akan membuat  ikan  belum  layak  konsumsi  menjadi  kolaps  dan  dapat  segera  normal  kembali  ketika dimasukkan ke dalam kolam terpisah.
Tabel 2. Waktu kolaps dan pulih nila
No.  Selang panjang Konsentrasi pembius 1% 2% 3% Kolaps Pulih Kolaps Pulih Kolaps Pulih 1. 12,6 – 14,5 124 10 70 21 25 28 2. 14,6 – 16,5 132 16 87 29 36 47 3. 16,6 – 18,5 138 28 102 40 60 50 4. 18,6 – 20,5 148 40 115 52 82 58 5. 20,6 – 22,5 158 48 123 60 90 68 6. 22,6 – 24,5 170 51 133 74 93 90
Hasil pengujian menunjukkan adanya perbedaan yang nyata terhadap waktu kolaps dan pulih ikan akibat pembiusan dengan tiga konsentrasi pembius yang berbeda. Berdasarkan uji lanjut BNT, konsentrasi  1%  memberikan  pengaruh  yang  berbeda  nyata  terhadap  waktu  kolaps  dan  pulih  ikan dibandingkan dengan dua konsentrasi lainnya. Namun demikian, konsentrasi pembius 3% lebih sesuai digunakan untuk membius nila, karena nila lebih cepat kolaps dan lambat pulih.

## KESIMPULAN DAN SARAN
1. Konsentrasi  pembius  ekstrak  hati  batang  pisang  1%,  2%  dan  3%  sebaiknya  digunakan  untuk membius nila; dan
2. Konsentrasi pembius 3% lebih baik digunakan sebagai pembius nila, karena nila lebih cepat kolaps dan lebih lama pulih dibandingkan dengan 1% dan 2%. Waktu kolaps ikan berukuran panjang 12,6- 14,5 cm adalah 25 menit dan waktu pulih 28 menit, 14,6-16,5 cm (36; 47), dan 16,6-18,5 cm (60;50).

## DAFTAR PUSTAKA
Abid.  M.  S.,  Masithah,  E.  D.,  &  Prayogo.  2014.  Potensi  Senyawa  Metabolit  Sekunder  Infusum  dan Durian ( Durio zibethinus) terhadap Kelulus-hidupan Ikan Nila (Oreochormis niloticus) pada Transportasi Ikan Hidup Sistem Kering. Jurnal Ilmiah Perikanan dan Kelautan 6(1): 93-99.
Agustina,  S.  S.  2012.  Penggunaan  Perlakuan  Anestesi  Terhadap  Masa  Siuman  Ikan  Mas  ( Cyprinus carpio Linn.). Jurnal Ilmiah Mutiara Muhammadiyah 1(2): 86-90.
Amri, K., & Khairuman. 2008. Budi Daya Ikan Nila Secara Intensif. PT Agromedia Pustaka. Jakarta. 144 Hal.
Anggraini, D., Taqwa, F. H., & Yulisman, Y. 2014. Mortalitas Benih Ikan Koi ( Cyprinus carpio) pada Ketinggian  Dasar  Media  Gabus  Ampas  Tebu  dan  Lama  Waktu  Pengangkutan  yang  Berbeda. Jurnal Perikanan dan Kelautan 19(1): 78-89.
Daud, R., Suwardi, S., Yacob, M. J., & Utojo, U. 2017. Penggunaan MS. 222 ( Tricaine) untuk Pembiusan Bandeng ( Chanos chanos) Umpan. Jurnal Penelitian Perikanan Indonesia 3(3): 41-51.
Evans, W. C. 2014. Trease and Evans’ Pharmacognosy. 16 th edition. Elsevier Health Sciences. St. Louis, England. 603p.
Hawley, G. 1981. The Condensed Chemical Dictionary, 10 th edition. Van Nastrand Reinhold Company.
New York. 1135p.
Helrich,  K.  1990.  Official  Methods  of  Analysis  of  the  Association  of  Official  Analytical  Chemists.
Association of Official Analytical Chemists. Arlington: VA Association of Official Analytical Chemists United States.
Madyowati,  S.  O.,  Kusyairi,  A.,  &  Hidayatullah,  Y.  W.  2021.  Efek  Minyak  Cengkeh  ( Eugenia aromaticum)  terhadap  Survival  Rate  Benih  Clarias  gariepinus  untuk  Pembiusan  pada Transportasi Basah dengan Sistem Tertutup. Juvenil: Jurnal Ilmiah Kelautan dan Perikanan 2(4): 264-270.
Marie, R., Syukron, M. A., & Rahardjo, S. S. P. 2018. Teknik Pembesaran Ikan Nila ( Oreochromis niloticus) dengan Pemberian Pakan Limbah Roti. Jurnal Sumberdaya Alam dan Lingkungan 5(1): 1-6.
McFarland, W. N. 1959. A Study of the Effects of Anesthetics on the Behavior and Physiology of Fishes. Publications of the Institute of Marine Science. Texas (US).
Mattjik, A. A., & Sumertajaya, I. M. 2000. Perancangan Percobaan dengan Aplikasi SAS dan Minitab Jilid I. IPB Press. Bogor. 148 Hal.
Munandar, V. A., Dewantoro, E., & Alfian, R. 2022. Pengaruh Pembiusan dengan Daun Singkong Karet ( Manihot glaziovii) terhadap Tingkat Kelangsungan Hidup Ikan Mas (Cyprinus carpio. L) selama pengangkutan. Borneo Akuatika 4 (2): 74-80.
Nugraha, W. A., & Insafitri, I. 2010. Perbandingan Kecepatan Pembiusan dan Recovery Ikan Hias Zebra Jakarta Menggunakan Sianida dan Minyak Cengkeh. Indonesian Journal of Marine Science and Technology 3(2): 168-172.
Priosoeryanto,  B.  P.,  Huminto,  H.,  Wientarsih,  I.,  &  Estuningsih,  S.  2006.  Aktivitas  Getah  Batang Pohon Pisang dalam Proses Persembuhan Luka dan Efek Kosmetiknya pada Hewan. Lembaga Penelitian dan Pemberdayaan Masyarakat. Institut Pertanian Bogor 11(2): 70-73.
Purwanto, S. 1994. Membius Ikan dengan Minyak Cengkeh. Trubus 229: 55-56.
Puspitasari, D. 2017. Kelulusan Hidup Ikan Nila ( Oreochromis niloticus) Selama Penyimpanan dalam Media  Serbuk  Gergaji  Menggunakan  Air  Rendaman  Hati  Batang  Pisang  Ambon  ( Musa paradisiaca). Jurnal Ilmiah Simantek 1(2): 19-23.
Puspito, G. 2010. Pembiusan Ikan. Bogor: Departemen Pemanfaatan Sumberdaya Perikanan. Fakultas Perikanan dan ilmu Kelautan, IPB. Bogor. 62 Hal.
Puspito, G., Mustaruddin, Wijayanti, H. D., & Purwangka, F. 2023. Konsentrasi Ekstrak Akar Tuba ( Derris elliptica) sebagai Racun Patin (Pangasius pangasius). Albacore 7 (1): 209-219.
Rudiyanti, S., & Ekasari, A. D. 2009. Pertumbuhan dan Survival Rate Ikan Mas (Cyprinus carpio Linn) pada Berbagai Konsentrasi Pestisida regent 0,3 g. Jurnal Saintek Perikanan 5(1): 49-54.
Sastrosupadi,  A. 2007. Rancangan Percobaan Praktis Bidang Pertanian . Kanisius. Yogyakarta. 276 Hal.
Sturges, H. 1926. The Choice of A Class-Interval. Journal of American Statistical Association 21: 65-66. Subasinghe, S. 1997. Livefish-Handling And Transportation. Infofish International 2: 39-43.
Sugiyono, A. N. 2013. Statistika untuk penelitian . Alfabeta. Bandung. 306 Hal.
Suyanto, R. 1994. Usaha Budidaya Ikan Nila. Penebar Swadaya. Jakarta. 105 Hal.
Tobigo, D. T., Madinawati, & Mariana. 2017. Pengaruh Pemberian Ekstrak Akar Tuba ( Derris elliptica) terhadap Lama Waktu Pembiusan Benih Ikan Mas ( Cyprinus carpio). Jurnal Agrisains 18(2): 84- 88.
Wicaksono,  Y.  2006.  Aplikasi  Excel  Dalam  Menganalisa  Data.  Seri  solusi  bisnis  berbasis  teknologi informasi. PT Elex Media Komputindo. Jakarta. 118 Hal.
Willford, W. A. 1970. Effect of MS-222 on Electrolyte and Water Content in the Brain of Rainbow Trout. Investigations in Fish Control 43. Bureau of Sport Fisheries and Wildlife. 7p
Wulandari, V. S., Jailani, A. Q., & Sari, A. N. 2022. Dry System Live Fish Transport Simulation Test in Beong Fish ( Hemibagrus nemurus) Using Plantain Stem Liver Extract (Musa paradisiaca) with the Different Dose. Asian Journal of Aquatic Sciences 5(2): 184-190.