Jurnal Matematika, Sains, dan Pembelajaannya
ISSN 2622-8904 (online)

## Respon Hematologi Ikan Nila (Oreochromis Niloticus) pada Suhu Pemeliharaan yang Berbeda

## Saparuddin
Program Studi Pendidikan Biologi Fakultas Keguruan dan Ilmu Pendidikan Universitas Sembilanbelas November Kolaka, Indonesia
e-mail : saparuddin.pbio@usn.ac.id

## Abstrak
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  pengaruh  suhu  media  pemeliharaan  yang  berbeda terhadap  respon  hematologi  ikan  nila  (Oreochromis  niloticus)  meliputi  jumlah  kadar  glukosa  darah, eritrosit,leukosit, dan trombosit. Metode yang digunakan dalam penelitian ini adalah metode eksperimental yang  terdiri  dari  empat perlakuan  yaitu  kontrol  (suhu  29 o C), A  (suhu  31 o C), B  (suhu  33 o C)  dan  C  (35 o C) dengan  masing-masing  perlakuan  diulang  tiga  kali.Berdasarkan  hasil  uji  yang  dilakukan  pada  suhu pemeliharaan  yang  berbeda  diketahui  bahwa  ikan  nila  mengalami  stres  pada  perlakuan  A,  B  dan  C dibandingkan  dengan  ikan  kontrol.  Hal  ini  ditandai  dengan  tingginya  kadar  glukosa  darah  hingga  akhir pemeliharaan terdapat pada perlakuan C (35 o C) sebesar145,04 mg/dL. Nilai tertinggi total eritrositterdapat pada perlakuan A (31 o C) sebesar 3,36 x 10 6 sel/ml. Total leukosit tertinggi terdapat pada perlakuan C (35 o C) sebesar7,08 x 10 4 sel/ml. Nilai tertinggi trombosit pada perlakuan B (33 o C) sebesar 1,74 x 10 5 sel/ml. Dapat disimpulkan bahwa peningkatan suhu air pada akuarium dapat menyebabkan stres pada ikan nila sehingga dapat mempengaruhi fisiologi hematologi normal ikan.
Kata Kunci: Hematologi, ikan Nila, Suhu

## 1. PENDAHULUAN
Ikan nila (Oreochromis niloticus) yang populer dengan sebutan ‘tilapia” merupakan salah satu jenis ikan yang dibudidayakan di  dunia.  Salah  satu  contoh  ikan  yang  sukses  dibudidayakan  di dunia  adalah  ikan  nila  yang berada  pada  urutan  ketiga  setelah  salmon  dan  udang  menurut  Departemen  Perikanan  dan  Akuakultur  FAO ( Food  and  Agriculture  Organization) (Kordi,  2010).  Ikan  nila  cocok  dipelihara  di  dataran  rendah  sampai dataran tinggi 500 m dari permukaan laut (Cahyono, 2001). Kini ikan nila banyak dibudidayakan diberbagai daerah di Indonesia karena kemampuan adaptasi yang bagus di berbagai jenis air. Ikan nila dapat hidup di air tawar,  air  payau,  dan  air  asin.  Ikan  nila  juga  tahan  terhadap  perubahan  lingkungan, bersifat  omnivora,  dan mampu mencerna makanan secara efisien (suyanto, 2010).
Ikan nila dapat tumbuh dan berkembang dengan baik pada lingkungan perairan dengan kadar oksigen terlarut  ( dissolved  oxygen )  antara  2,0-2,5  mg/l.  Menurut  Mjoun  dan  Kurt  (2010),  suhu  optimal  bagi pertumbuhan ikan nila adalah antara 22-29 o C. Ikan nila terkenal sebagai ikan yang tahan terhadap perubahan lingkungan hidup (Suyanto, 2005). Joseph dan Sujatha (2010) melaporkan bahwa efek kenaikan suhu air pada 34 o C selama 2 jam dapat menyebabkan stres pada ikan. Stres akibat peningkatan suhu air pada ikan berdampak terhadap performans dan kesehatan ikan berupa gangguan fungsi sel-sel darah (El-Sherif dan El-Feky, 2009). Menurut  Docan et  al .  (2011)  stres  karena  suhu  tinggi  berpengaruh  terhadap  hematologi  ikan.  Suhu  juga berpengaruh  terhadap  parameter  hematologi  dan  daya  tahan  terhadap  penyakit  (Engelsma et  al .,  2003). Hematologi sering digunakan untuk mendeteksi perubahan fisiologis yang disebabkan oleh stres lingkungan dan juga berhubungan dengan status kesehatan ikan (Al-Attar, 2005).
Iwama dan Nakanishi (1996)  menyatakan bahwa nilai hematologi sangat berhubungan dengan kondisi patologis, terutama untuk memperoleh gambaran kondisi kesehatan ikan dalam keadaan sehat  atau sakit.
https://jurnal.unsulbar.ac.id/index.php/saintifik
Penanganan dalam budidaya yang kurang baik dapat menyebabkan ikan mengalami stres, sehingga daya tahan tubuhnya menurun dan mudah terserang penyakit (Baticados dan Paclibare, 1992). Joseph dan Sujatha (2010)  melaporkan  bahwa  efek  kenaikan  suhu  air  pada  34°  C  selama  2  jam  dapat  menyebabkan  stres  pada ikan. Stres akibat peningkatan suhu air pada ikan berdampak terhadap performans dan kesehatan ikan berupa gangguan fungsi sel-sel darah (El-Sherif dan El-Feky, 2009).
Wilayah Indonesia memiliki suhu dan kelembaban udara yang relatif tinggi. Pada tahun 2010 rata-rata suhu  maksimum  kabupaten  Aceh  Besar  adalah  33,50°C  dan  suhu  minimum  21°  C  (Badan  Pusat  Statistik, 2011).Suhu  optimal  bagi  pertumbuhan  ikan  nila  adalah  antara  22-29°  C  (Mjoun  dan  Kurt,  2010).  Suyanto (2005)  menyatakan  bahwa  suhu  optimal  untuk  pertumbuhan  ikan  nila  antara  25-30°C.  Perubahan  suhu dilingkungan media pemeliharaan dapat mempengaruhi kehidupan ikan bahkandapat menyebabkan stres. Suhu yang  tinggi  dapat  menyebabkan dissolved  oxygen menurun  dan  mengurangi  selera  makan  ikan  (Kelabora, 2010).  Meskipun  ikandapat  beraklimatisasi  pada  suhu  yang  relatif  tinggi,  tetapi  pada  suatu  derajattertentu kenaikan  suhu  dapat  menyebabkan  kematian  ikan.  Perubahan  drastis  suhusampai  mencapai  5 o C  dapat menyebabkan  stres  pada  ikan  atau  membunuhnya  (Cholik  dkk.,  1986).  Kubilay  and  Ulukoy  (2002) menyatakan  bahwa  stres  adalahketidak  mampuan  suatu  organisme  mempertahankan  kondisi  homeostasis akibatterganggunya individu tersebut oleh adanya rangsangan dari luar yang dinamaidengan stressor. Hematologi sering juga digunakan untuk mendeteksi perubahan fisiologis yang disebabkan oleh stres lingkungan  dan  juga  berhubungan  dengan  status  kesehatan  ikan  (Al-Attar,  2005).  Parameter  yang  biasa menjadi  indeks  dalam  menentukan  status  kesehatan  ikan  adalah  total  sel  darah  merah,  sel  darah  putih, trombosit,  sedangkan  untuk  melihat  tingkat  stres  biasanya  juga  diukur  kadar  kortisol,  dan  glukosa  darah. Kortisol, glukosa darah, hematokrit, jumlah sel darah merah dan jumlah sel darah putih merupakan indikator stres  pada  ikan.Berdasarkan  latarbelakang  yang  telah  dipaparkan  maka  perlu  dilakukanpenelitian  untuk mengetahui  perubahan  fisiologi  hematologi  ikan  nilayang  diberi  perlakuan  berupa  peningkatan  suhu media pembelajaran.

## 2. METODE PENELITIAN
Metode  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah  metode  eksperimental  yang  terdiri  dari  empat perlakuan  yaitu,  Kontrol  (K),  A,  B  dan  C  dengan  masing-masing  perlakuan  diulang  sebanyak  tiga  kali kemudian data  yang  diperoleh  disajikan  secara  deskriptif.  Ikan  nila  pada  Kontrol  (K)  dipelihara  pada  suhu ruangan (29 o C), pada perlakuan A ikan nila dipelihara pada suhu 31 o C, pada perlakuan B ikan nila dipelihara pada  suhu  33 o C  dan  pada  perlakuan  C  ikan  nila  dipelihara  pada  suhu  35 o C.  Pemeliharaan  ikan  nila  pada penelitian  ini  dilakukan  selama  15  hari.  Ikan  nila  diberikan  pakan  komersil  pada  pagi,  siang  dan  sore  hari sebanyak 3% dari bobot badan. Air akuarium diganti setiap tiga hari sekali sebanyak 30% dari total volume akuarium. Suhu dalam akuarium ditingkatkan secara bertahap dengan menggunakan heater selama 4 jam.

## 2.1 Persiapan Akuarium dan Ikan Sampel
Akuarium yang digunakan berukuran (40 x 30 x 30 cm) diisi dengan menggunakan air tawar dengan volume  ¾bagian. Akuarium  diberi  aerasi  dan  diisi  ikan nila  sebanyak  5  ekor/akuarium  dengan  berat  badan berkisar  antara  40-50  gram.  Namun,  sebelum  dipindahkan  pada  masing-masing  akuarium  terlebih  dahulu dilakukan aklimatisasi selama 7 hari dan beri pakan ad libitum.

## 2.7 Analisis Data
Respon  hematologi  ikan  terhadap  suhu  media  pemeliharaan  yang  berbeda,    dianalisis  secara  sidik ragam (ANOVA). Jika analisis menunjukkan  berpengaruh nyata atau F hitung > F tabel , maka dilanjutkan dengan menggunakan Uji Beda Nyata Terkecil (BNT) pada taraf kepercayaan 95%.

## 3. HASIL DAN PEMBAHASAN
Parameter hematologi yang diukur meliputi kadar glukosa darah, jumlah eritrosit, jumlah leukosit, dan jumlah trombosit. Selama pemaparan suhu yang berbeda pada perlakuan perlakuan A (31 o C), perlakuan B (33
https://jurnal.unsulbar.ac.id/index.php/saintifik
o C) dan perlakuan C (35 o C). Sedangkan Perlakuan kontrol diberikan sihu optimum (29 o C). Hasil pengamatan hematologi dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1 Rata-rata jumlah kadar glukosa darah, jumlah eritrosit, jumlah leukosit, dan jumlah trombosit ikan nila setelah 15 hari pemaparan dengan suhu yang berbeda . Suhu Media Kadar Glukosa darah (mg/dL) Eritrosit Leukosit Trombosit (10 6 sel/ml) (10 6 sel/ml) (10 5 sel/ml Kontrol (29 o C) 113,38 +3,10 a 3,56+ 0,02 a 4,79 + 0,55 a 1,48 + 0,04 a A (31 o C) 136,42 + 1,30 ab 3,16+ 0,17 b 6,13 + 0,11 b 1,49 + 0,14 b B (33 o C) 135,46 + 3,51 bc 3,06 + 0,07 bc 6,07 +0,54 b 1,57 + 0,18 bc C (35 o C) 142,60 + 2,44 c 3,10+ 0,05 c 6,72 +0,36 bc 1,56 + 0,18 c

## 3.1 Jumlah Kadar Glukosa Darah
Glukosa darah merupakan sumber pasokan bahan bakar utama dan substrat esensial untuk metabolisme sel  terutama  sel  otak  (stewar,  1991).  Pada  hewan  poikilotermik  termasukm  ikan  nila,  perubahan  suhu lingkungan akan berpengaruh langsung terhadap  proses metabolisme. Volume darah pada ikan berkisar 1,5-3 %  dari  bobot  tubuh.  Kadar  glukosa  darah  ikan  yang normal  mengandung  40-90  mg/dl, kandungan  glukosa darah tersebut hampir sama dengan glukosa darah pada manusia yaitu 70-110 mg/dl (Rahardjo, e t al ., 2011). Hasil  pengukuran  kadar  glukosa  darah  ikan  nila  yang  dipeliharapada  suhu  yang  berbeda  mengalami peningkatan. Kadar glukosa darah ikan yangdipelihara pada perlakuan A(31 o C), B (33 o C) dan C (35 o C) lebih tinggi dibandingkan ikan yang dipelihara pada suhu perlakuan kontrol (suhu 29 o C). Peningkatan kadar glukosa darah ikan uji pada perlakuan A (31 o C) hingga hari ke-15 mencapai 137,56 mg/dL, pada perlakuan B (33 o C) mencapai 138,98 mg/dL, dan perlakuan C (35 o C) mencapai 145,04 mg/dL.
Gambar 1 Rata-rata jumlah kadar glukosa darah selama 15 hari pada peningkatan suhu media pemeliharaan.

## 3.2 Jumlah Eritrosit
Eritrosit adalah cakram bikonkaf tidak berinti yang berdiameter + 8 µm, tebal bagian tepi 2 µm dan ketebalan bagian tengah menjadi 1 µm. Komponen utama eritrosit adalah hemoglobin protein yang mengangkut sebagian besar oksigen (O 2 ) dan sebagian kecil fraksi karbon dioksida (CO 2 ). Hasil pengukuran eritrosit ikan nila pada perlakuan A (31 o C), B (33 o C) dan C (35 o C) mengalami penurunan pada  hari  ke-5,  ke-10  dan  ke-15.  Nilai  rata-rata  eritrosit  dari  perlakuan  kontrol  (29 o C)  3,56  x  10 6 sel/ml.  Nilai  rata-rata  pada  perlakuan  A  (31 o C),  B  (33 o C),  dan  Perlakuan  C  (35 o C)  berturut-turut sebesar 3,16 x 10 6 sel/ml, 3,06 x 10 6 sel/ml, dan 3,10 x 10 6 sel/ml,  lebih rendah dari perlakuan kontrol. Dari  hasil  penelitian  ini  menunjukkan  bahwa  rata-rata  jumlah  eritrosit  ikan  yang  diperoleh  dari
0,00 25,00 50,00 75,00 100,00 125,00 150,00 175,00 0 5 10 15 Gl u kosa D ar ah m g/ d L Waktu Pengamatan (Hari) Kontrol (29 oC ) A (31 oC) B (33oC) C (35oC)
https://jurnal.unsulbar.ac.id/index.php/saintifik
perlakuan kontrol (29 o C) berada pada kisaran normal. Hal ini sesuai dengan yang dilaporkan oleh andayani, S. dkk., (2008) bahwa jumlah rata-rata ikan nila yaitu sekitar 3,56 x 10 6 sel/ml. Hasil penelitian ini berbeda dengan hasil yang diteliti oleh Bozorgnia et al . (2011) menyebutkan bahwa meningkatnya suhu maka jumlah eritrosit meningkat. Ketika suhu meningkat maka aktivitas penyerapan  oksigen  oleh  eritrosit  meningkat.  Tubuh  ikan  mengompensasi  perubahan  kekurangan oksigen tersebut dengan meningkatkan jumlah eritrosit. Pendapat dari Bozorgnia et al . (2011) juga sesuai dengan pendapat dari Ravichandra (2012) yang menyatakan bahwa pada suhu tinggi jumlah eritrosit pada ikan meningkat karena untuk mengurangi keadaan stress maka ikan akan menyesuaikan kondisi fisiologisnya dengan meningkatkan jumlah eritrosit dalam darah.
Gambar 2 Rata-rata jumlah eritrosit ikan nila selama 15 hari pada peningkatan suhu media pemeliharaan.
Perbedaan  hasil  penelitian  ini  diduga  disebabkan  karena  adanya  perbedaan  perlakuan.  Pada perlakuanyang  dilakukan  oleh  Bozorgnia et  al .  (2011)  dan  Ravichandra  (2012)  merupakan  perlakuan peningkatan  suhu  panas  secara  akut,  sedangkan  yang  peneliti  lakukan  merupakan  peningkatan  suhu  panas secara berkelanjutan dan bertahap selama 15 hari. Rendahnya rata-rata jumlah eritrosit pada perlakuan P2 dan P3 diduga karena ada faktor lain yang memengaruhi kondisi fisiologis ikan. 3.3 Jumlah Leukosit Leukosit pada ikan teleostei merupakan salah satu bagian dari  sistem pertahanan tubuh yang bersifat non-spesifik  (Uribe  dkk.,  2011).  Menurunya  jumlah  leukosit  disebut  leukopenia  sedangkan  meningkatnya jumlah  leukosit  disebut  leukositosis.  Leukosit  yang  diproduksi  akan  tinggi  jika  terdapat  infeksi  virus  pada tubuh ikan dan terdapat upaya dari tubuh ikan tersebut untuk melawan (Azhar, 2013).
Hasil  pengukuran  leukosit  ikan  nila  pada  perlakuan  A  (31 o C),  B  (33 o C)  dan  C  (35 o C)  selama pemeliharaan  mengalami  peningkatan  dibandingkan  dengan  kontrol  (K),  jumlah  total  leukosit  tertinggi diperoleh dari ikan perlakuan C (35 o C) pada pengamatan hari ke-15 yaitu sebesar 6,72 x10 4 sel/ml.
Gambar 3 Rata-rata jumlah leukosit ikan nila selama 15 hari pada peningkatan suhu media  pemeliharaan.
0,00 1,00 2,00 3,00 4,00 5,00 0 5 10 15 Ju m la h E ri tr os it ( 1 0 6 sel /m L Waktu Pengamatan (Hari) Kontrol (29 oC ) A (31 oC) B (33oC) C (35oC) 0,00 2,00 4,00 6,00 8,00 10,00 0 5 10 15
Ju m la h L e u kosi t 1 0 4 sel /m L Waktu Pengamatan (Hari) Kontrol (29 oC ) A (31 oC) B (33oC)
C (35oC)
https://jurnal.unsulbar.ac.id/index.php/saintifik
Nilai  rata-rata  leukosit  dari  perlakuan  kontrol  (29 o C)  sebesar  4,79  x  10 4 sel/ml.  Nilai  rata-rata  pada perlakuan  A  (31 o C),  B  (33 o C),  dan  Perlakuan  C  (35 o C)  berturut-turut  sebesar  6,13 x 10 4 sel/ml,  6,07  x  10 4 sel/ml,  dan  6,72  x  10 4 sel/ml,    lebih  tinggi  dari  perlakuan  kontrol.  Peningkatan  jumlah  leukosit  ini  terkait dengan kinerja sistem imun ikan dalam mereduksi tekanan media pemeliharaan yang panas. Rata-rata jumlah leukosit ikan yang diperoleh dari perlakuan kontrol (29 o C) berada pada kisaran normal. Hal ini sesuai dengan yang dilaporkan oleh andayani, S. dkk., (2010) bahwa jumlah rata-rata leukosit ikan nila yaitu sekitar 4,65 x 10 4 sel/ml.

## 3.4 Jumlah Trombosit
Trombosit atau keping-keping darah berperan penting dalam proses pembekuan darah. Roberts dan Richards (1978)  menyatakan  bahwa  trombosit  mengeluarkan  tromboplastin  yaitu  enzim yang  membuat  polimeri  dan fibrinogen yang berperan penting dalam pembekuan darah. Ketika endotelium pembuluh  dan jaringan ikat rusak  maka  trombosit  menempel  keserat  kolagen  dalam  jaringan  ikat  tersebut  dan  mengeluarkan  zat  yang membuat trombosit yang saling berdekatakan menjadi lengket dan membentuk sumbat sehingga darah tidak keluar. Penggumpalan membentuk aktivator yang disebut protrombin kebentuk aktifnya disebut trombin.
Gambar 4 Rata-rata jumlah eritrosit ikan nila selama 15 hari pada peningkatan suhu media  pemeliharaan.
Hasil  yang  ditunjukkan  memperlihatkan  bahwa  jumlah  trombosit  pada  ikan nila  tidak  ada  perbedaan yang  signifikan  antar  perlakuan  setelah  diberikan  suhu  media  pemeliharaan  yang  berbeda.Kenyataan  ini menunjukkan  bahwa  jumlah  trombosit  ikan  nila  tidak  terpengaruh  oleh  adanya  penambahan  suhu  media pemeliharaan.Hal  ini  berdasarkan  hasil  penelitian  Saparuddin,  dkk  (2017)  menyatakan  bahwa  peningkatan atau  penurunan  jumlah  trombosit  berhubungan  dengan  pendarahan  pada  organ  ikan.  sehingga  penambahan suhu media pemeliharaan ikan nila tidak menyebabkan peningkatan atau penurunan jumlah trombosit.

## 4. KESIMPULAN
Dari hasil penelitian ini dapat disimpulkan bahwa peningkatan suhu 31 o C, 33 o C dan 35 o C selama 15 hari dapat meningkatkan kadar glukosa darah, jumlah leukosit, dan menurunkan jumlah eritrosit ikan nila .

## DAFTAR PUSTAKA
Al-Attar, A.M. 2005. Changes in haematological parameters of the fish, Oreochromis niloticus treated with sublethal concentration of cadmium. Pakistan J. of Biol. Sciences . 8(3):421-424.
Andayani, Marsoedi, Sanoesi, wilujeng, dan Suprastiani. (2008) : Profil hematologi beberapa species ikan air tawar budidaya . Jurusan MSP, Fakultas Perikanan dan Kelautan UB Malang.
Azhar, F. (2013) : Pengaruh pemberian probiotik dan prebiotik terhadap performan juvenil ikan kerapu bebek (cromileptes altivelis). Laboratorium kesehatan ikan, Institut Pertanian Bogor. Bogor 16680.
0,00 0,50 1,00 1,50 2,00 2,50 0 5 10 15 Ju m la h T rom b os it x 1 0 5 sel /m l Waktu Pengamatan (Hari) Kontrol (29 oC ) A (31 oC) B (33oC) C (35oC)
https://jurnal.unsulbar.ac.id/index.php/saintifik
Bozorgnia, A., A. Alimohammadi, and M. Hosseinifard. 2011. Acute Effects of Different Temperature in the Blood  Parameters  of  Common  Carp (Cyprinus  carpio) . Second  International  Conference  on Environmental Science and Technology IPCBEE vol.6. IACSIT Press, Singapore:V252-V255.
Cahyono, B. 2001. Budidaya Ikan di Perairan Umum . Penerbit Kanisius, Yogyakarta.
Docan, A.V., V. Cristea, and D. Lorena. 2011. Influence of Thermal Stress on the Hematological Profile of  Oncorhynchus  mykiss  Heldin  Different  Stocking  Densitiesin  Recirculating  Aquaculture  Systems . Environmental Sciences and Cadastre Department, “Dunarea de Jos” University of Galati, Romania.
El-Sherif, M.S. dan A.M.I. El-Feky. 2009. Performanceof nile tilapia (Oreochromis niloticus) fingerlings. II. Influence of different water temperature . Int. J. Agric. Biol .11:301-305.
Engelsma, M.Y., S. Hougee, D. Nap, M. Hofenk, J. Rombout, and W.B. Muiswinkel. 2003. Multiple acute temperature stress affects leucocyte populations and antibody responses in common carp, Cyprinus carpio L. J. Fish. Shellfish. Immunol . 15:397410.
Iwama, G. dan T. Nakanishi. 1996. The Fish Immune System. Academic Press, London.
Joseph, J.B and S.S. Sujatha. 2010. Real-time quantitative (PCR) applications to quantify and  the expression profiles of heat shock protein (HSP70) genes in Nile tilapia, Oreocrhomisniloticus (L.) and Oreocrhomis mossambicus (P.). Int. J. Fish. Aquac . 2(1):044-048.
Kordi, M.G.H. 2010. Budi Daya Ikan Nila di Kolam Terpal. Edisi 1. Penerbit Andi, Yogyakarta.
Mjoun,  K.  and  A.R.  Kurt.  2010.  Tilapia:  Profile  and  Economic  Importance. South  Dakota  Cooperative Extension Service . 1:1-4.
Rahardjo, M. F., Sjafei, D. S., Affandi, R., & Sulistiono (2011). Ikhtiologi .  Jakarta : Lubuk Agung.
Ravichandra,  J.  A.  2012.  Influence  of  acute  temperature  stress  on  hemoglobin  content  in snakeheaded  fish ( Channa punctatus ) Gavari River, Nanded, India. Int. J. Biomed. Adv. Res. 3(11):1-5.
Roberts, R.J. dan Richards, R.H. (1978) : The Bacteriology of Teleost in Fish Pathology . Roberts RJ, editor. Bailliere Tindal Book Publ, London. 205-308p.
Saparuddin,  A.  Ridwan  dan  Z.  Arham.  2017.  Efektivitas  Ekstrak  Daun Macaranga  tanarius Dalam Menginaktifasi Viral Nervous Necrosis Ikan Kerapu Tikus. Biowallancea, Vol.4 No. 1. Hal 519-526.
Steward, M. 1991. Animal Physiology. Thomson Litho Ltd., London. 486 p.
Suyanto, S.R. 2005. Nila . Penerbit Swadaya, Bogor.
Suyanto, S.R. 2010. Pembenihan dan Pembesaran Ikan Nila .Penerbit Swadaya, Jakarta.
Uribe, C., Folch, H., Enriquez, R. dan Moran, G. (2011) : Innate and adaptive immunity in teleost fish: a review . Veterinarni Medicina 56 (10) : 486-503.