## EKSPLORASI CENDAWAN ENDOFIT ISOLAT LOKAL DAN PENGARUHNYA TERHADAP PERKECAMBAHAN BENIH CABAI (Capsicum annuum)

## Asniwita dan Islah Hayati
Fakultas Pertanian Universitas Jambi, Jambi 36361 Email: asniwita @yahoo.com

## ABSTRAK
Cendawan  endofit  hidup  di  dalam  jaringan  tanaman,  tanpa  menimbulkan  gejala  penyakit, bersimbiosis  mutualisme  dengan  tanaman  inang. Tujuan  penelitian  ini  adalah mendapatkan cendawan endofit isolat lokal yang potensial dalam meningkatkan perkecambahan benih dan pertumbuhan  bibit  cabai  . Untuk  pencapaian  tujuan  tersebut  pendekatan  yang  diterapkan adalah  pengumpulan  cendawan  endofit  pada  pertanaman  cabai, pengujian patogenesitas cendawan  cendofit,  dan  pengujian  pada  perkecambahaan  benih  cabai. Metode  yang digunakan  dalam  penelitian  ini  terdiri  atas  mengumpulkan  cendawan  endofit  dari  lapangan, menguji  perkecambahan  benih  cabai  pada  masing-masing  isolat  cendawan,  dan identifikasi makroskopis  dan  mikroskopis.  Berdasarkan  penelitian  yang  telah  dilakukan  diperoleh  65 isolat  cendawan,  43  isolat  diantaranya  potensi  sebagai  patogen,  22  isolat  diantaranya  non patogen  dan  dapat  meningkatkan  perkecambahan  benih  serta  pertumbuhan  bibit  cabai. Cendawan  endofit  yang  diperoleh  termasuk  genus Fusarium,  Gliocladium,  Geotrichum, Penicillium,  Aspergillus,  Alternaria, Curvularia,  dan  hifa  steril. Selanjutnya  22  isolat cendawan  endofit  akan  diuji  kemampuannya  menginduksi  ketahanan  cabai terhadap  infeksi virus,  dalam upaya  pengendalian  virus  secara  terpadu  (PHT)  untuk  mengatasi  permasalahan infeksi virus pada tanaman cabai.
Kata kunci: Cabai, Cendawan Endofit.

## PENDAHULUAN
Cabai  (Capsicum  annuum L)  merupakan  salah  satu  komoditas  unggulan  hortikultura. Tanaman  cabai  ditanam  hampir  di  seluruh  provinsi  di  Indonesia    dan  memiliki    nilai    yang baik  sehingga  mendapat  prioritas  untuk  dikembangkan  (Direktorat  Jenderal  Bina  Produksi Hortikultura, 2009). Cabai merupakan komponen penting dalam resep masakan dan tidak bisa di substitusi dengan komoditas lain.
Di Indonesia, luas tanam cabai 176.261 ha menempati urutan ke dua terluas di Asia setelah China  dengan  luas  tanam  602.503  ha  (Ali,  2006). Produktivitas  cabai  nasional 7,93 ton/ha (Badan Pusat Statistika, 2013), masih rendah dibandingkan dengan produktivitas cabai China 19,13 ton/ha (Ali, 2006).
Rendahnya produktivitas cabai salah  satunya  disebabkan  oleh  hama  dan  penyakit tanaman, kerugian yang ditimbulkan sekitar 35-90%, hal ini merupakan masalah serius yang dihadapi  petani  (RAA,  2007).  Penyakit  pada  tanaman  umumnya  disebabkaan  oleh mikroorganisme  seperti  cendawan,  virus,  bakteri,  dan  nematoda,  namun  disisi  lain  ada mikroorganisme yang tidak menimbulkan penyakit pada tanaman, walaupun mikroorganisme tersebut  hidup  di  dalam  tanaman  seperti  cendawan  endofit.    Cendawan  endofit  bersimbiosis mutualisme  dengan  tanaman  inang  (Schardl,  2004),  menghambat  pertumbuhan  patogen,
mengurangi  keparahan penyakit,  memacu  pertumbuhan  tanaman,  dan  meningkatkan  nutrisi tanaman, (Mei dan Flinn, 2010; Shoresh et al., 2010; Zabalgogeazcoa, 2008).
Endofit memiliki kelebihan antara lain terhindar dari stress abiotik karena  endofit berada dan  hidup  dalam  tanaman,  menempati  relung  yang  sama  dengan  patogen,  mampu mengkolonisasi  jaringan  tanaman,  dan  proses  translokasi  senyawa  metabolit  ke  dalam tanaman  lebih  baik  (Yue.,  2000). Penelitian  tentang  cendawan  endofit  penting  dilakukan untuk  mempelajari  interaksi  cendawan  endofit  dengan  tanaman  cabai.  Sebagai  produksi pertanian  yang  berkelanjutan  dan  terbarukan  (termasuk biofuel dan  bioenergi  tanaman  saat ini),    cendawan  endofit  berperanan  penting  dan  menawarkan  metode  pengendalian  penyakit yang  ramah  lingkungan,  meningkatkan  produktivitas  tanaman  sekaligus  mengurangi  biaya pengendalian  dan  pembelian  pupuk. Tujuan    penelitian  adalah mempelajari  keragaman cendawan, endofit yang terdapat pada pertanaman cabai, mempelajari cendawan non patogen, dan mempelajari cendawan yang dapat meningkatkan perkecambahan dan pertumbuhan bibit cabai.

## METODE PENELITIAN

## Pengumpulan sampel tanaman dan isolasi cendawan endofit
Cendawan endofit diisolasi dari akar, batang, daun cabai yang dikumpulkan dari beberapa pertanaman cabai. Sampel dimasukkan ke dalam plastik polythene lalu disimpan dalam kotak pendingin sebelum dibawa ke laboratorium.
Isolasi  cendawan  endofit  mengikuti  metode  yang  dikemukakan  oleh  Rodrigues  (1994) yang  dimodifikasi.  Potongan  akar,  batang,  daun yang telah  steril  masing-masing  sebanyak 3 potongan diletakkan pada cawan petri yang telah berisi media Potato Dextrosa Agar (PDA; Difco, Sparks, MD, USA), dan di inkubasi pada suhu 25 C.
Miselium yang tumbuh dipindahkan ke media PDA untuk memperoleh koloni yang murni, Cendawan  diidentifikasi  secara  makroskopis  dan  mikroskopis,  hasil  identifikasi  dicocokkan dengan  kunci  identifikasi  menurut  Alexopoulus  dan  Mims  (1996)  dan  Watanabe  (2002). Selanjutnya  isolat  murni  cendawan  endofit  dibuat  awetan  dalam  agar  miring  dan  disimpan pada suhu 4 C, untuk digunakan sebagai sumber cendawan endofit.

## Pengujian patogenesitas cendawan pada bibit cabai
Benih cabai disterilisasi permukaan dengan NaOCl, selanjutnya benih disemai pada cawan petri yang berisi isolat cendawan endofit. Sebanyak 90 benih cabai disemai pada media yang berisi  masing-masing  cendawan  endofit.  Apabila  benih  cabai  dapat  tumbuh  dengan  baik berarti  isolat  cendawan  endofit  tersebut  bukan  patogen,  sebaliknya  bila  benih  cabai  tidak berkecambah menandakan isolat cendawan endofit tersebut bersifat patogen.  Sebagai kontrol adalah benih cabai disemai pada media hanya berisi PDA.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Pengumpulan sampel tanaman, isolasi dan pemurnian cendawan endofit
Cendawan endofit diambil dari akar, batang, dan daun cabai, diperoleh 65 isolat cendawan endofit. Isolat  cendawan  endofit  lebih  banyak  terdapat  pada  bagian  akar  untuk  pengambilan
dari  daerah  kabupaten Kerinci,  sebaliknya  cendawan  endofit  lebih  banyak  terdapat  pada batang  di  Kodya  Jambi,  secara  keseluruhan  cendawan  endofit  lebih  banyak  diperoleh  dari batang, disusul dari akar, kemudian dari daun (Tabel 1).
Tabel 1. Keberadaan isolat cendawan endofit pada bagian tanaman  cabai dari  setiap daerah pengambilan sampel.
Masing-masing  isolat  cendawan  di  karakterisasi  secara  makroskopis  dan  mikroskopis, 65  cendawan  endofit  yang  berasal  dari  pertanaman  cabai  menunjukkan  karakteristik  koloni yang berbeda-beda.  Berdasarkan  warna  koloni  diperoleh  23  morfotipe  yang  berbeda  yaitu koloni  cendawan  berwarna  putih,  putih  kekuningan,  putih  kemerahan,  putih  keabu-abuan, putih kecoklatan, putih kehitaman, hialin, kuning muda, kuning kehijauan, kuning kecoklatan, merah muda, ungu muda, hijau, hijau kekuningan, abu- abu, abu-abu muda, abu-abu tua, abu- abu  kehitaman,  coklat  muda,  coklat  tua,  coklat  kehitaman,  hitam  muda,  dan  hitam.  Warna koloni  yang  dominan  adalah  warna  putih  (10  isolat),  hitam  (10  isolat),  dan  warna  coklat (7 isolat).

## Pengujian patogenesitas cendawan endofit pada bibit cabai
Berdasarkan  pengujian  patogenesitas  cendawan  endofit  pada  kecambah  cabai  diketahui ada cendawan endofit yang menghambat perkecambahan benih atau benih berkecambah tidak normal,  tidak  mempengaruhi  perkecambahan  benih,  dan  menguntungkan  terhadap perkecambahan  benih.  Jadi  interaksi  antara  cendawan  endofit  dengan  cabai  dapat meningkatkan, mengurangi, atau tidak berpengaruh terhadap perkecambah benih.
Pengujian  65  cendawan  endofit  terhadap  perkecambahan  benih  cabai  diperoleh  43 cendawan  endofit  menyebabkan  persentase  perkecambahan  benih  dan  atau  persentase kecambah normal dibawah persentase perkecambahan benih dan atau perkecambahan normal pada kontrol (tanpa cendawan endofit), dengan demikian dapat dikatakan bahwa 43 cendawan endofit  berpotensi  sebagai  patogen,  Infeksinya  bersifat  laten  pada  pengambilan  sampel tanaman cabai dari lapangan.
Tabel 2. Respon benih cabai terhadap masing-masing cendawan endofit.
Kode isolat Benih berkecambah Benih berkecambah normal Benih berkecambah tidak normal Benih tidak berkecambah Kontrol 87 (96,67%) 87 (96,67%) 0 (0,00%) 3 (3,33%) KCL 11 84 (93,33%) 84 (93,33%) 0 (0,00%) 6 (6,67%) KCL 12 81 (90,00%) 69 (76,67%) 12 (13,33%) 9 (10,00%) KCL 13 87 (96,67%) 84 (93,33%) 3 (3,33%) 3 (3,33%) Bagian tanaman cabai Asal cendawan endofit Jumlah cendawan endofit Kerinci Kodya Jambi Akar Batang Daun 18 (27,69%) 6 (9,23%)
7 (10,77%)
5 (7,69%) 20 (30,77%) 9 (13,85%) 23 (35,38%) 26 (40,00%) 16 (24,62%) Jumlah 31 (47,69%) 34 (52,31%) 65
KCL 14 74 (82,22% 60 (66,67%) 14 (15,56%) 16 (17,78%) KCL 15 61 (67,78%) 40 (44,44%) 21 (23,33% 29 (32,22%) KCR 11 87 (96,67%) 87 (96,67%) 0 (0,00%) 3 (3,33%) KCR 12 90 (100,%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) KCR 13 90 (100%) 87 (96,67%) 0 (0,00%) 3 (3,33%) KCR 14 90 (100%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) KCR 15 90 (100,%) 84 (93,33%) 6 (6,67%) 0 (0,00%) KCR 16 90 (100%) 84 (93,33%) 6 (6,67%) 0 (0,00%) KCR 17 90 (100%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) KCR 18 70 (77,78%) 55 (61,11%) 15 (16,67%) 20 (22,22%) KCR 19 68 (75,56%) 54 (60,00%) 14 (15,56%) 22 (24,44%) KCS 11 90 (100%) 87 (96,67%) 3 (3,33%) 0 (0,00%) KCS 12 87 (96,67%) 87 (96,67%) 0 (0,00%) 3 (3,33%) KCL 21 78 (86,67%) 66 (73,33%) 12 (13,33%) 12 (13,33%) KCL 22 90 (100%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) KCR 21 90 (100%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) KCR 22 36 (40,00%) 21 (23,33%) 15 (16,66%) 54 (60,00%) KCR 23 90 (100%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) KCR 24 84 (93,33%) 36 (40,00%) 48 (53,33%) 6 (6,67%) KCR 25 87 (96,67%) 84 (93,33%) 3 (3,33%) 3 (3,33%) KCR 26 71 (78,89%) 60 (66,67%) 11 (12,22%) 19 (21,11%) KCR 27 80 (88,89%) 65 (72,22%) 15 (16,67%) 10 (11,11%) KCR 28 74 (82,22%) 40 (44,44%) 34 (37,78%) 16 (17,78%) KCR 29 76 (84,44%) 46 (51,11%) 30 (33,33%) 14 (15,56%) KCS 21 78 (86,67%) 78 (86,67%) 0 (0,00%) 12 (13,33%) KCS 22 90 (100%) 75 (83,33%) 15 (16,67%) 0 (0,00%) KCS 23 90 (100%) 88 (97,78%) 2 (2,22%) 0 (0,00%) KCS 24 75 (83,33%) 60 (66,67%) 15 (16,67%) 15 (16,67%) JCL 11 90 (100%) 87 (96,67%) 3 (3,33%) 0 (0,00%) JCL 12 72 (80,00%) 50 (55,56%) 12 (13,33%) 18 (20,00%) JCL 13 58 (64,44%) 51 (56,67%) 7 (7,78%) 32(35,56%) JCL 14 64 (71,11%) 58 (64,44%) 6 (6,67%) 26 (28,89%) JCL 15 70 (77,78%) 60 (66,67%) 10 (11,11%) 20 (22,22%) JCR 11 42 (46,66%) 36 (40,00%) 6 (6,67%) 48 (53,33%) JCS 11 84 (93,33%) 72 (80,00%) 12 (13,33%) 6 (6,67%) JCS 12 72 (80,00%) 65 (72,22%) 7 (7,78%) 18 (20,00%) JCS 13 90 (100%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) JCS 14 60 (66,67%) 54 (60,00%) 6 (6,67%) 30 (33,33%) JCS 15 87 (96,67%) 87 (96,67%) 0 (0,00%) 3 (3,33%) JCS 16 87 (96,67%) 87 (96,67%) 3 (3,33%) 0 (0,00%) JCS 17 74 (82,22%) 30 (33,33%) 44 (48,89%) 16  (17,78%) JCS 18 68 (75,56%) 45 (50,00%) 23 (25,56%) 22 (24,44%) JCS 19 61 (67,78%) 50 (55,56%) 11 (12,22%) 29 (32,22%) JCS 111 79 (87,78%) 65 (72,22%) 14 (15,56%) 11 (12,22%) JCS 112 78 (86,87%) 70 (77,78%) 8 (8,89%) 12 (13,33%) JCS 113 63 (70,00%) 15 (16,66%) 48 (53,33%) 27 (30,00%) JCL 21 90 (100%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) JCL 22 63 (70,00%) 24 (26,67%) 39 (43,33%) 27 (30,00%) JCL 23 80 (88,89%) 70 (77,78%) 10 (11,11%) 10 (11,11%) JCL 24 79 (87,70% 69 (76,67%0 10 (11,11%) 11 (12,22%)
JCR 21 87 (96,67%) 87 (96,67%) 0 (0,00%) 3 (3,33%) JCR 22 12 (13,33%) 6 (6,67%) 6 (6,67%) 78 (86,67%) JCR 23 87 (96,67%) 87 (96,67%) 0 (0,00%) 3 (3,33%) JCR 24 90 (100%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) JCS 21 87 (96,67%) 78 (86,67%) 9 (10,00%) 3 (3,33%) JCS 22 87 (96,67%) 39 (43,33%) 48 (53,33%) 3 (3,33%) JCS 23 78 (86,67%) 50 (55,56%) 28 (31,11%) 12 (13,33%) JCS 24 90 (100%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) JCS 25 84 (93,33%) 24 (26,67%) 60 (66,67%) 6 (6,67%) JCS 26 87 (96,67%) 84 (93,33%) 3 (3,33%) 3 (3,33%) JCS 27 90 (100%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%) JCS 28 90 (100%) 90 (100%) 0 (0,00%) 0 (0,00%)
Sementara  22  cendawan  menunjukkan  persentase kecambah  benih  dan  persentase kecambah normal sama dengan  kontrol  atau  diatas  kontrol,  ke  22  cendawan  endofit  dapat dikelompokkan sebagai cendawan non patogen (Tabel 2), Carrol (2008) menyatakan interaksi antara  cendawan  endofit  dengan  tanaman  bersifat  saling  menguntungkan  (simbiosis mutualisme). Pada penelitian sebelumnya Linares (2010) berhasil mendapatkan 51 cendawan endofit  dari  tanaman  tomat  di  Colombia,  14  diantaranya  merupakan  cendawan  endofit potensial mengkolonisasi akar dan meningkatkan pertumbuhan tanaman.
Dari  22  cendawan  endofit  non  patogen,  6  cendawan  endofit (KCR  11,  KCS  12,  JCS  15, JCS 16, JCR 21, dan JCR 23) menunjukkan efek netral, persentase kecambah dan persentase kecambah normal sama dengan kontrol 3 cendawan endofit (KCR 13, KCS 11, dan JCL 11) dapat  meningkatkan  persentase  kecambah  tetapi  persentase  kecambah  normal  sama  dengan kontrol, 13 cendawan endofit (KCR 12, KCR 14, KCR 17, KCL 22, KCR 21, KCR 23, KCS 23,  JCS  13,  JCL  21,  JCR  24,  JCS  24,  JCS  27,  dan  JCS  28) dapat  meningkatkan  persentase kecambah benih dan meningkatkan persentase kecambah normal dibanding kontrol.
Hasil penelitian ini sejalan dengan Zhenhua (2012) menyatakan bahwa cendawan endofit berpotensi  meningkatkan  pertumbuhan  tanaman  melalui  peningkatan  perkecambahan  benih. Menurut  Suryanarayanan  (2009)  cendawan endofit    baik  secara in  vitro maupun in  planta dapat  menghasilkan  senyawa  bio  aktif  karena  berinteraksi  dengan  tanaman  (inang)  dan lingkungan,  interaksi  metabolit  ini  penting  untuk  simbiosis  antara  cendawan  endofit  dengan tanaman.
Khan (2009)  menyatakan  kelebihan  cendawan  endofit  adalah  mendukung  pertumbuhan tanaman  melalui  peningkatan  produksi  hormon,  Nassar  (2005)  cendawan  endofit menghasilkan  hormon  etilen,  IAA,  sitokinin.  Malinowski  dan  Belesky  (2000)  menyatakan Neotyphodium  coenophialum menyebabkan  pengembangan  sistem  akar  menjadi  lebih  luas sehingga  memungkinkan  tanaman  lebih  banyak  memperoleh  air  dan  nutrisi,  disamping  itu cendawan  endofit  dapat  meransang  pembentukan  rambut  akar  dan  meningkatkan  eksudasi senyawa fenol ke rizosfir sehingga meningkatkan penyerapan fosfor dari tanah.
Hasil  identifikasi  terhadap  22  cendawan  endofit  non  patogen,  berdasarkan  pengamatan secara mikroskopis terhadap hifa dan spora  diperoleh cendawan endofit dari genus Fusarium, Gliocladium,  Geotrichum,  Penicillium,  Aspergillus,  Alternaria,    Curvularia,  dan  hifa  steril (tidak teridentifikasi) karena tidak membentuk spora.
Ajlan  dan  Potter  (1991),  Obura  (2010),  Paul  (2012)  menyatakan  keberadaan  cendawan endofit pada tanaman  dapat  mempengaruhi  pertumbuhan  dan  perkembangan  tanaman sehingga meningkatkan kebugaran (fitness) tanaman.

## KESIMPULAN
Diperoleh 65 isolat cendawan yang terdapat pada akar, batang, dan daun cabai. Cendawan banyak  terdapat  pada  batang dan  akar  daripada  di  daun  tanaman  cabai,  22  isolat  cendawan diantaranya  non  patogen  pada  kecambah  cabai,  Cendawan  endofit  non  patogen  termasuk dalam  genus Fusarium,  Gliocladium,  Geotrichum,  Penicillium,  Aspergillus,  Alternaria, Curvularia, dan hifa steril (tidak teridentifikasi).

## DAFTAR PUSTAKA
Ali M.  2006.  Chili (Capsicum annuum L.) Food chain analysis: setting research priorities in Asia.  Shanhua, Taiwan: AVRDC- The World Vegetable Centre. Tech. Bull. 38 : 178- 253.
Ajlan  AM, Potter  DA.  1991.  Does immunization of  cucumber  against  anthracnose  by Colletotrichum lagenarium affect host suitability for arthropods? Entomol Exp Appl. 58: 83-91.
Alexopoulun  CJ,  Mims  CW.  1996.  Introductory  mycology.  Fourth  edition.  John  Wiley  & Son. Inc. New York.
Badan Pusat Statistik. 2013. Luas Panen, Produksi dan Produktivitas Cabai,  009. [Internet].
[diunduh 2011 Agustus 13]. Tersedia pada: http://www.bps.go.id.
Direktorat  Jenderal  Bina  Produksi  Hortikultura.  2009.  Luas  panen,  Rata-rata  Hasil  dan Produksi Tanaman Hortikultura di Indonesia. Jakarta (ID): Departemen Pertanian.
Khan J, Ooka JJ, Miller SA, Madden LV,  Hoitink HAJ. 2004 Systemic resistance induced by Trichoderma hamatum 382 in cucumber against Phytophthora
crown rot and leaf blight. Plant Disease 88: 280-286.
Linares  DRA.   2010. Characterization of tomato  root-endophytic  fungi and analysis of their effects  on  plant  development,  on  fruit  yield  and  quality  and on  interaction with  the pathogen Verticillium dahliae [Dissertation]. Potsdam. Universität Potsdam.
Mei C, Flinn BS.    2010.  The  use  of  beneficial  microbial  endophytes  for  plant  biomass  and stress tolerance improvement. Recent Patents on Biotechnol. 4: 81-95.
Obura BO. 2010. Root endophytic fungi of tomato and their role as biocontrol agents of root- knot  nematodes Meloidogyne  incognita (Kofoid  and  white)  Chitwood  and  growth promotion  in  tomato  plants  (Lycopersicon  esculentum Mill.). [disertasi].  Bogor  (ID): Institut Pertanian Bogor.
Paul NC, Deng JX, Sang HK, Choi YP, Yu SH. 2012. Distribution and antifungal activity of endophytic  fungi  in  different  growth  stages  of  chili  pepper  (capsicum  annuum L)  in Korea. Plant Pathol 28 (1): 10-19.
RAA  report.  2007.    Integrated  diseases  management  project  report.  AVRDC.  The  World Vegetable Center. Taiwan.
Rodriguez RJ, White JF,  Arnold AE, Redman RS. 2009. Fungal  endophytes:  diversity  and functional roles. New Phytologist: 1-17.
Schardl CL, Leuchtmann A, Spiering MJ. 2004. Symbioses of grasses with seedborne fungal endophytes. Ann Rev Plant Biol 55: 315-340.
Shoresh M, Harman GE, Mastouri F. 2010. Induced systemic resistance and plant responses to fungal biocontrol agents. Annu Rev Phytopathol 48:1-23.
Suryanarayanan TS, Thirunavukkarasu N, Govindarajulu MB, Sasse F, Jansen R, Murali TS.
2009. Fungal endophytes and bioprospecting. Fungal Biol Rev. 23(1): 9-19.
Watanabe T.  2002. Pictorial atlas af soil and seed fungi. Ed ke-2. CRC. Washington. Yue  C,  Miller  CJ,  White  JFJ,  Richardson  M.  2000. Isolation  and characterization  of  fungal inhibitors from Epichloe festucae. J. Agricultural and Food Chemistry 48: 4687 – 4692.
Zabalgogeazcoa  I.  2008.  Fungal  endophytes  and  their  interaction  with  plant  pathogens.
Spanish J Agric Res. 6:138-146.
Zhenhua  X,  Dongmei  G,  Xiuli  S,  Ying  X.  2012.    A  Review  of  Endophyte  and  Its  Use  and Function.  International  Conference  on  Environmental  Engineering  and  Technology. Advances in Biomedical Engineering. 8: 124- 130.