## Peran Hormon  Kortisol dalam Osmoregulasi Ikan Sidat, Anguilla bicolor, pada Lingkungan Bersalinitas
Untung Susilo, Farida Nur Rachmawati, dan

## Sorta Basar Ida Simanjuntak
Fakultas Biologi Universitas Jenderal Soedirman, Purwokerto

## Abstract
The osmoregulatory capacity of Anguilla bicolor in the sea water is influenced by  hormonal activities.  Therefore, the aim of this study was to know the influence of cortisol on osmoregulation of the eel at the different levels of salinity medium. An experimental method with six treatments on randomized  completely design was used in this study. The treatments were (1) fish  acclimated  at water salinity 15 ppt without hormone injection; (2) fish acclimated at water salinity of 30 ppt without hormone injection; (3) fish acclimated  at  water salinity  of 15 ppt and injected with  4  µg cortisol/gr body  weight;  (4)  fish  acclimated  at  water  salinity  15  ppt  and  injected  with  8  µg  cortisol/gr  body weight;  (5) fish aclimated at water salinity  of 30 ppt and  injected with  4  µg  cortisol/g  body weight; (6) fish acclimated at water salinity of 30 ppt and injected with 8 µg cortisol/g body weight. All of the treatments  were  replicated  four  times.  Data  were  analyzed  using  One  way  ANOVA  followed  by Least Significant Difference.  The results  showed  that the cortisol has significant  effect (P<.05) on plasma osmolality only at the early of acclimation on medium 30 ppt after injection, especially at 6 and  12  hours  after  cortisol  treatment,  and  there  was  no  significant  efffect  of  cortisol  treatment (P>.05)  if  the  acclimation  increased.  Osmoregulatory  capacity  on  medium  of  15  ppt  and  30  ppt were  influenced  by  cortisol  treatment  at  6  hours  acclimation  (P<.05),  but  only  that  aclimated  in medium  opf  5  ppt  was  influenced  by  cortisol  treatment  at  12  hours  acclimation.  Increased acclimation  on  medium  of  15  ppt  and  30  ppt  was  not  influenced  by  cortisol  treatment  (P>.05). Water body content was not influenced by cortisol treatment (P>.05) at all medium acclimation. At six  hour  acclimation,  treatment  cortisol  has  significant  difference  (P<.05)  on  hematocrite  only  at medium 30 ppt, but cortisol treatment has significant difference (P<.05) at medium 15 ppt and 30 ppt  in  12  hours  acclimation.  Increased  acclimation  has  no  significant  difference  (P>.05)  on treatment cortisol. Cortisol injection  has no significant difference (P>.05) on plasma glucose on  all medium and only on 7 days aclimation, the plasma glucose has significant difference (P<.05) after injected  by cortisol. It  could be concluded that cortisol treatment has a role on  eel osmoregulation at early acclimation. Haematocrite account was also influenced by cortisol injection, but only at the early acclimation. Water body content, blood glucose and total body energy were not influenced by cortisol.
Keywords : cortisol, Anguilla bicolor , osmoregulation, acclimation

## Pendahuluan
Sebagian besar ikan bersifat stenohalin, baik yang hidup di perairan tawar maupun yang  hidup  di  laut,  dan  tidak  bermigrasi  di  antara  air  dengan  salinitas  berbeda  selama siklus  hidupnya.  Akan  tetapi,  beberapa  spesies  ikan  bersifat  eurihalin,  hidup  di  estuari dengan  variasi  salinitas  atau  bermigrasi  di  antara  sungai  dan  laut  (Takei  and  Hirose, 2001).  Pada  ikan  eurihalin  ini  pengaturan  cairan  tubuh  dicapai  terutama  melalui pengaturan intake  oral ,  absorpsi  intestinal,  aliran  insang,  dan  ekskresi  ginjal.  Jadi, euharilinitas  dihasilkan  dari  pengaturan  terintegrasi  organ-organ  osmoregulasi  (Evans, 1984 dalam Takei  and  Hirose,  2001).  Oleh  karena  itu,  ikan-ikan  eurihalin  sering digunakan untuk menganalisis mekanisme adaptasi osmotik.
Pada  proses  osmoregulasi,  mekanisme  transpor  aktif  dalam  upaya  menjaga konsentrasi  osmotik internal  homeostatis,  ikan  memanfaatkan  protein  membran  (seperti, Na + K + ATPase) untuk melakukan transport aktif ion yang terjadi di insang, esofagus dan intestin  (Seidelin  dan  Madsen,  1999;  Jensen et  al .,  1998).  Kemampuan  adaptasi  ikan terhadap  perubahan  salinitas berkorelasi  dengan  peningkatan  aktivitas protein  membran
Na + K + ATP  ase,  untuk  melakukan  transpor  aktif  ion  sodium  pada  organ  osmoregulasi (Collie  and  Bern,  1982).  Peningkatan  aktivitas  protein  membran  yang  memfasilitasi traspor  ion  pada  umumnya  berhubungan  dengan  adanya  stimulus  hormonal  (Randall et al ., 2002; Takei dan Hirose, 2001).
Menurut  Takei  dan  Hirose  (2001)  hormon  osmoregulasi  dapat  dikatagorikan  ke dalam  dua  grup. Fast-acting  hormones adalah  hormon  amina  atau  oligopeptida  yang disekresi  segera  (dalam  detik  atau  menit)  setelah  transfer  ikan  ke  medium  osmotik berbeda  dan  cepat  hilang  dari  sirkulasi. Slow-acting  hormones adalah  hormon  steroid atau  polipeptida  yang  disekresi  lambat  (biasanya  dalam  hari)  dan  berpartisipasi  dalam adaptasi  ke  lingkungan  baru.  Hormon  pertumbuhan  dan  kortisol  yang  terlibat  dalam adaptasi  di  lingkungan  laut  pada  ikan  salmon  dan  nila  merupakan  contoh  di  antara hormon ini (Madsen, 1990; Sakamoto et al ., 1990), sedangkan hormon prolaktin penting untuk adaptasi di perairan tawar (Hirano et al ., dalam Takei dan Hirose, 2001). Pengkajian tentang peran hormon osmoregulasi telah banyak dilakuan, antara lain oleh Madsen (1990) pada ikan “sea trout”, Salmotruta truta , densitas sel klorida dan Na + K + ATPase  meningkat  karena  perlakuan  hormon  kortisol  dan  pertumbuhan,  tetapi  yang paling  signifikan  adalah  perlakuan  kombinasi  hormon  pertumbuhan  dan  kortisol.  Ion plasma dan kadar air otot tidak dipengaruhi ketika di perairan tawar, dan pada ikan kontrol kadar  ion  sodium  dan  klorida  plasma  meningkat  secara  dramatis  dan  kadar  air  otot menurun pada hari kedua setelah transfer ke air laut.
Pengaturan plasma juga lebih baik pada ikan yang mendapatkan perlakuan hormon pada aklimasi di air laut. Jadi, perlakuan hormon kortisol dan pertumbuhan dengan nyata dapat  menjaga  homeostatis ion-osmotik setelah  ditransfer  ke  air  laut.  Pada  ikan  “brown trout”, Salmo  truta ”,  penampilan  hipo-osmoregulator  meningkat  oleh  perlakuan  hormon pertumbuhan  dan  digagalkan  oleh  perlakuan  hormon  prolaktin  melalui  perubahan osmolaritas plasma, Na + , Cl - , Mg ++ dan kadar air otot setelah transfer ke air laut (Seidelin and  Madsen,  1999).  Untuk  mengetahui  aplikasi  hormon  pada  ikan Anguilla  bicolor juga mempunyai  pola  yang  sama  atau  tidak,  perlu  untuk  dikaji.  Oleh  karena  itu,  tujuan penelitian  ini  adalah  mengetahui  peran  hormon  kortisol  dalam  osmoregulasi  ikan  sidat, Anguilla bicolor , pada medium dengan salinitas berbeda.

## Materi dan Metode
Objek penelitian yang digunakan adalah ikan sidat dengan bobot ± 100 g/ekor. Ikan uji  diperoleh  dari  pengepul  ikan  sidat  di  Kecamatan  Kawunganten,  Kabupaten  Cilacap. Bahan  dan  alat  yang  digunakan  meliputi  hormon  kortisol  ( hydrocortisone  hemisuccinate , Sigma),“vapour  pressure  osmometer”  Wescor  (Metode  Seidelin  and  Madsen,  1999  ), akuarium,  termostat  dan  pompa  resirkulasi.  Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  skala laboratorium di Laboratorium Fisiologi Hewan Fakultas Biologi Unsoed, Purwokerto.
Penelitian  dilakukan  dengan  metode  eksperimen  pada  skala  laboratorium. Rancangan  dasar  yang  digunakan  berupa  rancangan  acak  lengkap  lengkap  (RAL) dengan enam perlakuan dan tiap perlakuan diulang sebanyak empat kali. Perlakuan yang dicoba adalah (1) ikan diaklimasi pada salinitas air 15  ppt tanpa diinjeksi hormon; (2) ikan diaklimasi pada salinitas air 30  ppt tanpa diinjeksi hormon;
(3) ikan diaklimasi pada salinitas air 15  ppt dan diinjeksi 4 µg kortisol/g bobot badan;
(4) ikan diaklimasi pada salinitas air 30  ppt dan diinjeksi 4 µg kortisol/g bobot badan; (5) ikan diaklimasi pada salinitas air 15  ppt dan  diinjeksi 8 µg kortisol/g bobot badan; (6) ikan diaklimasi pada salinitas air 30  ppt dan  diinjeksi 8 µg kortisol/g bobot badan.
Variabel  yang  diamati  dalam  penelitian  ini  adalah  osmoregulasi  ikan  sidat  dengan parameter  yang  diukur  berupa  osmolalitas  plasma,  osmolalitas  media,  kapasitas osmoregulasi, kadar air tubuh, nilai hematokrit, dan kadar glukosa darah.
Aklimasi  ikan  uji  sebelum  digunakan  untuk  keperluan  penelitian  dilakukan  di Laboratorium  Fisiologi  Hewan,  Fakultas  Biologi  Unsoed  selama  dua  minggu.  Selama aklimasi  ikan  diberi  pakan  berupa  potongan  daging  ikan  sebanyak  3%  dari  bobot  ikan
perhari, dan diberikan sekali pada  sore hari. Bila  aklimasi ikan uji telah dianggap cukup, maka  dilakukan  seleksi  untuk  memilih  ikan  yang  seragam.  Ikan  terpilih  selanjutnya ditempatkan  pada  akuarium  fiber  dengan  kepadatan  tiap  akurium  adalah  dua  ekor  yang sebelumnya  akuarium  telah  diisi  air  dengan  salinitas  sesuai  dengan  perlakuan  yaitu  15 dan  30  ppt.  Ikan  uji  yang  ditempatkan  pada  akuarium  uji,  sebelumnya  telah  mendapat injeksi  hormon  kortisol  yang  dilakukan  secara  intramuskuler  pada  bagian  punggung. Jumlah hormon kortisol yang diberikan adalah 4 dan 8 µg/g bobot badan ikan uji.
Pengamatan  kapasitas  osmoregulasi  ikan  sidat  dilakukan  dengan  mengambil sampel  darah  ikan  uji  yang dilakukan  setelah  ikan  diaklimasi  selama  6,  12,  24,  48  jam, dan  7  hari  pada  perairan  bersalinitas.  Darah  diambil  dari  pembuluh  pada  pangkal  ekor dengan  cara  memotong  ekor  dan  darah  yang  keluar  ditampung  dengan  kapiler hematokrit.
Nilai  osmotik  plasma  darah  diukur  menggunakan  vapour  osmometer  “Wescor” (Metode  Seidelin  and  Madsen,  1999).  Plasma  darah  diperoleh  dengan  cara  melakukan sentrifugasi sampel darah yang telah diperoleh pada kecepatan 3000 rpm selama 3 menit dengan  hematokrit  elektronik    Plasma  darah  kemudian  dicuplik  sebanyak  10  mikroliter untuk  digunakan  dalam  pengukuran  nilai  osmolaritas  plasma.  Osmolaritas  media  ikan juga  diukur  menggunakan  osmometer  “Wescor”.  Nilai  osmolaritas  plasma  darah  dan media,  kemudian  digunakan  untuk  menghitung  kapasitas  osmoregulasi.  Kapasitas osmoregulasi  merupakan  rasio  antara  nilai  osmotik  plasma  dengan  nilai  osmotik  media (Lignot et al ., 2000). Kadar  air tubuh ikan sidat diukur dengan cara mengeringkan tubuh ikan  dalam  oven  pada  temperatur  70 o C  hingga  bobotnya  konstan.  Selisih  bobot  tubuh sebelum  dan  setelah  pengeringan  diestimasi  sebagai  kadar  air  tubuh.  Nilai  hematokrit diperoleh  dari  hasil  pengukuran  menggunakan  skala  hematokrit reader pada  tabung mikrohematokrit berisi darah yang telah disentrifugasi pada kecepatan 3000 rpm selama 3 menit. Nilai hematokrit akan merupakan prosentase sel darah dan keping darah terhadap cairan darah. Kadar glukosa darah ikan juga diukur untuk melihat ada tidaknya perubahan titer  glukosa  darah,  sebagai  parameter  perubahan  mobilisasi  cadangan  makanan. Glukosa  darah  diukur  pada  2,  6,  24,  48  jam,  serta  7  hari  setelah  perlakuan.  Data  yang diperoleh selanjutnya dianalisis dengan program SPPS 11.

## Hasil dan Pembahasan
Hasil  pengamatan  regulasi  osmotik  ikan  sidat  pada  medium  dengan  salinitas berbeda  setelah  diinjeksi  dengan  hormon  kortisol  dapat  dilihat  pada  Gambar  1.    Pada gambar  tersebut  terlihat  bahwa  pada  pengamatan  selama  enam  jam  aklimasi  injeksi hormon  kortisol  pada  ikan  sidat  yang  diaklimasi  pada  medium  dengam  salinitas  15  ppt tidak  terdapat  perbedaan  yang  signifikan  (P>05),  tetapi  injeksi  hormon  kortisol  dan pemaparan di medium bersalinitas 30 ppt menghasilkan perbedaan signifikan (P<.05) nilai osmolalitas plasma.  Injeksi  hormon  kortisol  sebanyak 8  µg/g  bobot  tubuh  menyebabkan penurunan  osmolalitas  plasma  bila  dibandingkan  dengan  yang  tidak  diinjeksi  kortisol  di medium salinitas 30 ppt. Pada aklimasi 12 jam injeksi hormon kortisol tidak menghasilkan perbedaan  signifikan  (P>.05)  pada  medium  salinitas  15  ppt,  tetapi  menghasilkan perbedaan signifikan  (P<.05) di medium bersalinitas 30 ppt. Pada salinitas 30 ppt injeksi hormon  sebesar  8  µg/g  bobot  tubuh  menyebabkan  osmolalitas  plasma  berbeda  secara signifikan dengan ikan yang tidak dinjeksi (Gambar 1).  Pada pemaparan  selama 24 jam injeksi hormon kortisol tidak menghasilkan perbedaan yang signifikan (P>.05) osmolalitas plasma ikan sidat, baik pada yang diaklimasi di salinitas 15 ppt maupun 30 ppt (Gambar 1).
0 50 100 150 200 250 300 350 400 450 6 12 24 48 168 Lama aklimasi (jam) Osm o la lit a s p lasm a (mOs m/ k g ) S15K00 S15K04 S15K08 S30K00 S30K04 S30K08
Gambar  1.  Osmolalitas    Plasma    ikan    sidat    di    medium    bersalinitas  setelah  diinjeksi hormon kortisol
Figure 1.   Plasm Osmolality of A bicolor in saline media after Cotisol injection.
Pemaparan  selama  48  jam  dan  7  hari  (168  jam)  juga  tidak  menghasilkan perbedaan signifikan (P>.05) terhadap  osmolalitas plasma ikan sidat di antara perlakuan yang dicoba baik pada ikan di salinitas 15 ppt maupun salinitas 30 ppt ( Gambar 1).  Hasil percobaan  ini  mengindikasikan  bahwa  injeksi  hormon  kortisol  cukup  berperan  dalam menurunkan osmolalitas plasma, terutama pada ikan di medium dengan salinitas 30 ppt, pada aklimasi selama 6 dan 12 jam. Namun, pada pengamatan 24 hingga 168 jam atau 7 hari  peran  hormon  kortisol  tidak  nampak  karena  osmolalitas  plasma  sudah  mendekati normal.  Efek  kortisol  pada  osmoregulasi  ikan  ini  juga  serupa    dengan  hasil  percobaan Mancera et al. (2002) pada ikan “seabream”, Sparus aurata L., yang dalam hal ini injeksi kortisol menginduksi adaptasi ikan di perairan laut dengan meningkatnya aktivitas Na + -K + ATPase  dan  menurunkan  osmolalitas  plasma  dan  ion  plasma.  Pada  perairan  payau injeksi  hormon  kortisol  meningkatkan  aktivitas  Na + -K + ATPase,  osmolalitas  plasma  dan ion  plasma.    Fenomena  peran  kortisol  ini  berbeda  dengan  pengamatan  Whiteley  dan Wilson (tahun) dalam Randall et al. (2002) pada ikan salmon, yang pada awal pemaparan kortisol  memicu  peningkatan  aktivitas  enzim  Na + -K + ATPase  untuk  menurunkan  sodium plasma  dan  baru  pada  hari  ke  empat  aklimasi  sodium  plasma  mengalami  penurunan. Pada Ictalurus punctatus injeksi “Growth Hormone” dan kortisol juga tidak mempengaruhi osmolalitas plasma dan aktivitas Na + -K + ATPase insang bila hormon ini diberikan selama aklimasi  di  perairan  payau  (Eckert et  al .,  2001).  Pada  aklimasi  24  jam  hingga  7  hari osmolalitas  plasma  telah  mengalami  pengaturan  lebih  baik,  baik  pada  ikan  yang  tidak diinjeksi  kortisol  maupun  yang  diinjeksi  kortisol,  sehingga  peran  kortisol  menjadi  tidak nampak. Fenomena pengaturan konsentrasi  osmotik pada percobaan ini selaras dengan percobaan terdahulu pada ikan sidat, Anguilla bicolor (Susilo dan Sukmaningrum, 2005). Jadi,  nampakanya  ikan  sidat  memiliki  kemampuan  adapatasi  yang  cukup  baik  di lingkungan perairan bersalinitas.
Kapasitas  osmoregulasi  adalah  rasio  nilai  osmolalitas  plasma  terhadap  nilai osmolalitas media (Lignot, et al ., 2000). Perubahan nilai kapasitas osmoregulasi ini dapat digunakan  untuk  memprediksi  perubahan  kemampuan  mengatur  konsentrasi  osmotik plasma.  Perhitungan  terhadap  kapasitas  osmoregulasi  ikan  sidat  yang  diinjeksi  dengan hormon kortisol dan dipaparkan pada salinitas berbeda, hasilnya tertera pada Gambar 2.
0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8 0.9 6 12 24 48 168 Lama aklimasi (jam) K apasit as osm or egu las i S15K00 S15K04 S15K08 S30K00 S30K04 S30K08
Gambar 2. Kapasitas osmoregulasi  ikan  sidat  di  medium  bersalinitas   setelah diijeksi hormon kortisol Figure 2.  Osmoregualtion capacity of A bicolor in saline media after cortisol injection
Pada  aklimasi  selama  6  jam,  injeksi  hormon  kortisol  menghasilkan  perubahan kapasitas osmoregulasi secara signifikan (P<.05). Jadi, injeksi hormon kortisol, baik pada ikan  di  salinitas 15  ppt maupun  di  salinitas 30, meningkatkan  kemampuan  osmoregulasi ikan sidat yang tercermin dengan menurunnya nilai kapasitas osmoregulasi (Gambar 2.). Pada  aklimasi  selama  12  jam,  injeksi  hormon  kortisol  menyebabkan  perbedaan  yang signifikan  (P<.05) di medium dengan salinitas 15 ppt, tertapi tidak demikian dengan ikan di  salinitas  30  ppt.    Pada  pemaparan  selama  24  jam  injeksi  hormon  kortisol  tidak menyebabkan perbedaan yang signifikan (P>.05) kapasitas osmoregulasi ikan di medium dengan salinitas 15 ppt, namun pada salinitas 30 ppt, injeksi hormon kortisol sebanyak 8 µg/g  bobot  badan  menyebabkan  peningkatan  kapasitas  osmoregulasi  ikan  sidat. Pemaparan  selama  48  jam  dan  7  hari  (168  jam)  di  medium  bersalinitas,  injeksi  hormon kortisol  tidak  menyebabkan  perbedaan  yang  signifikan  (P>.05)  kapasitas  osmoregulasi ikan sidat baik di medium salinitas 15 maupun 30 ppt (Gambar 2.).
Hasil  percobaan  ini  (Gambar  2)  memperlihatkan  bahwa  injeksi  hormon  kortisol berperan meningkatkan kapasitas osmoregulasi ikan sidat pada awal aklimasi, yaitu pada aklimasi 6 jam, baik di medium 15 maupun 30 ppt.  Namun, fenomena ini tidak nampak pada  ikan  yang  diaklimasi  selama  24  jam  hingga  7  hari.  Nampaknya,  lama  aklimasi berpengaruh  terhadap  kemampuan  pengaturan  ulang  ikan  untuk  menjaga  homeostatis cairan tubuh. Hal ini tercermin dengan kapasitas osmoregulasi yang tidak berbeda antara ikan  yang  diinjeksi  kortisol  dan  yang  tidak  diinjeksi.  Hasil  percobaan  ini  selaras  dengan pendapat  peneliti  sebelumnya  bahwa  ikan  sidat  akan  kembali  normal  pada  satu  hingga dua hari setelah  aklimasi di perairan bersalinitas (Randall et al ., 2002). Percobaan pada ikan  nila  ( Oreochromis sp.)  juga  menunjukkan  fenomena  serupa,  yaitu  kapasitas osmoregulasi ikan nila bersifat hipoosmotik di salinitas 20 ppt dan isoosmotik di salinitas 10 ppt (Susilo dan Rachmawati, 2006).
Kadar air tubuh ikan sidat setelah diinjeksi hormon kortisol kemudian dipaparkan di medium dengan salinitas 15 dan 30 ppt tertera pada Gambar 3.
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 6 12 24 48 168 Lama a klimasi (jam) Ka dar ai r tu b uh (%) S15K00 S15K04 S15K08
S30K00 S30K04 S30K08
Gambar 3. Kadar  air tubuh ikan   sidat  di  medium  bersalinitas   setelah  diijeksi hormon kortisol
Figure 3. Water contents of A bicolor body in saline media after cortisol injection
Pada  Gambar  3  terlihat  bahwa  ikan  sidat  yang  diinjeksi  kortisol  kemudian dipaparkan di medium dengan salinitas 15 ppt dan 30 ppt selama 6, 12, 24, 48 dan 168 jam (7 hari) tidak menghasilkan perubahan yang signifikan (P>.05) kadar  air tubuh. Hasil percobaan  ini  mengindikasikan  bahwa  injeksi  hormon  kortisol  tidak  nampak  memiliki peran signifikan dalam pengaturan kadar air tubuh, baik pada ikan di medium 15 maupun 30  ppt.  Fenomena  ini  tidak  berbeda  dengan  percobaan  terdahulu  pada  ikan  sidat  yang dipaparkan  di  medium  bersalinitas  hingga  30  ppt  selama  satu  hingga  tujuh  hari  juga memiliki  kadar  air  tubuh  yang  tidak  berbeda  (Susilo  dan  Sukmaningrum,  2005).  Hasil yang sama juga dijumpai pada ikan nila, Oreochromis sp. (Susilo dan Rachmawati, 2006). Pada  ikan Salmo  trusta  trusta ,  injeksi  hormon  kortisol  dan  hormon  pertumbuhan  juga menyebabkan pengaturan lebih baik ion plasma dan kadar air otot di perairan bersalinitas dari pada ikan yang tidak mendapat injeksi hormon (Madsen, 1990).
0 10 20 30 40 50 60 70 6 12 24 48 168 Lama aklimasi (jam) Ni lai hem atokr it (% ) S15K00 S15K04 S15K08 S30K00
S30K04 S30K08
Gambar  4.  Nilai  hematokrit  darah    ikan    sidat    di    medium    bersalinitas   setelah  diijeksi hormon kortisol
Figure  4.  Persentage  of  hematocrites  of A  bicolor blood  in  saline  media  after  cortisol injection
Pada Gambar 4 ikan yang diaklimasi selama 6 jam di medium bersalinitas setelah injeksi  hormon  kortisol  tidak menghasilkan  perbedaan  signifikan  (P>.05)  pada  ikan  yang diinjeksi  kortisol  dan  diaklimasi  di  medium  15  ppt.  Namun,  pada  salinitas  30  ppt  injeksi
hormon  kortisol  menyebabkan  perubahan  yang  signifikan  (P<.05)  untuk  nilai  hematokrit ikan  sidat,  yaitu  injeksi  8  µg/g  bobot  tubuh  menghasilkan  nilai  hematokrit  lebih  rendah daripada  ikan  kontrol  pada  salinitas yang  sama.  Pemaparan  selama  12  jam  (Gambar  4) menghasilkan  perubahan  yang  signifikan  untuk  nilai  hematokrit  (P<.05)  ikan  sidat  baik yang  berada  di  medium  15 maupun  30  ppt.  Pemaparan  selama  24,  48  dan  168  jam  (7 hari)  ikan  sidat  setelah  injeksi  kortisol  tidak  menghasilkan  perbedaan  yang  signifikan (P>.05)  pada  nilai  hematokrit  baik  yang  diaklimasi  di  medium  15  maupun  30  ppt.  Hasil percobaan ini memperlihatkan bahwa injeksi hormon kortisol hanya nampak mempunyai peran pada  awal  aklimasi, yaitu pada lama  aklimasi 6 dan 12 jam, sedangkan bila lama aklimasi ditingkatkan injeksi hormon tidak menyebabkan perubahan nilai hematokrit.
0 20 40 60 80 100 120 140 160 6 12 24 48 168 Lama aklimasi (jam) Gk u losa dar ah ( mg /d l) S15K00 S15K04 S15K08
S30K00 S30K04 S30K08
Gambar  5.  Kadar  glukosa  darah    ikan    sidat    di    medium    bersalinitas    setelah  diijeksi hormon kortisol
Figure 5. Blood glucose contents of A bicolor in saline media after cortisol injection
Pada  Gambar  5  terlihat  bahwa  ikan  yang  dipaparkan  selama  6  jam  di  medium bersalinitas  setelah  sebelumnya  diinjeksi  kortisol,  kadar  glukosa  darahnya  tidak mengalami perubahan yang signifikan (P>.05) baik di medium salinitas 15 maupun 30 ppt. Pada pemaparan 12, 24 dan 48 jam, injeksi kortisol juga tidak menghasilkan perubahan kadar glukosa darah secara signifikan (P>.05) baik pada ikan sidat di medium 15 maupun 30  ppt.    Pemaparan  selama  168  jam  (7  hari)  injeksi  hormon  kortisol  menghasilkan perubahan  kadar  glukosa  darah  secara  signifikan  (P<.05)  baik pada  ikan  di  salinitas  15 maupun  30  ppt.  Hasil  percobaan  ini  memperlihatkan  injeksi  hormon  kortisol  hingga aklimasi 48 jam tidak menyebabkan perubahan yang signifikan pada kadar glukosa darah. Hal  ini  menunjukkan  bahwa  ikan  sidat  tidak  mengalami  perubahan  fisiologi  yang  berarti berkaitan dengan perubahan salinitas medium. Hasil percobaan ini berbeda dengan yang terjadi  pada  ikan Sparus  auratus .  Pada  ikan  ini  injeksi  hormon  kortisol  menyebabkan peningkatan  glukosa  darah  dan  asam  laktat  sebagai  indikasi  adanya  aktivitas glukoneogenik (Laiz-Carrion et al ., 2002).

## Kesimpulan
Hormon kortisol berperan dalam osmoregulasi ikan sidat pada  awal  aklimasi, yaitu 6 dan 12 jam, terutama pada medium 30 ppt, tetapi peran hormon ini tidak nampak bila lama aklimasi diperpanjang baik di medium 15 maupun 30 ppt.

## Ucapan Terimakasih
Peneliti mengucapkan terima kasih kepada Proyek Pengkajian dan Penelitian Ilmu Pengetahuan  dan  Teknologi  Direktorat  Jenderal  Pendidikan  Tinggi,  Departemen
Pendidikan  Nasional  melalui  program  kompetisi Penelitian  Fundamental  tahun  anggaran 2006 atas dukungan dana yang diberikan bagi peneltian ini.

## Daftar Pustaka
Collie,  N.L  and  H.A.  Bern.  1982.  Change  in  intestinal  fluids  transport  associated  with smoltification and seawater in Coho salmon (Oncorhynchukisuth (Wlbaum). Journal of Fish Biology 21: 337-382
Eckert,  S.M.,  Yada  T.,  Shepher  B.S.,  Stetson,  M.H.,  Hirano  T.  and  E.G.  Grav.  2001. Hormonal control of osmoregulation in the channel catfish, Ictalurus punctatus. Gen. Comp. Endocrinol.122 (3): 270–286.
Jensen,  M.K.,  Madsen,  S.S.  and  K.  Kristiansen,  1998.  Osmoregulation  and    salinity effects on the  expression  and  activity of Na+,K(+)-ATPase in the gills  of  European sea bass, Dicentrarchus labrax (L.). J Exp Zool. 282 (3): 290-300.
Laiz-Carrión1,  R.,  Sangiao-Alvarellos,  S.,Guzmán,  J.M.,  Martín  del  Río,M.P.,  Míguez, J.M,  Soengas,  J.M.  and  J.M.  Mancera,    2002. Energy Metabolism  in Fish  Tissues Related  to  Osmoregulation  and  Cortisol  Action.  Fish  Physiology  and  Biochemistry 27 (3-4): 179–188.
Lignot, J.H., C.S. Pierot and G. Charmantier. 2000. Osmoregulatory capacity as a tool in monitoring  the  physiological  condition  and  the  effect  of  stress  in  Crustaceans. Aquaculture 191 : 209–245.
Madsen, S.S., 1990. The Role  of Cortisol  and Growth Hormone in Seawater Adaptation and  Development  of  Hypoosmoregulatory  Mechanisms  in  Sea  Trout  Parr  ( Salmo trutta trutta ). Gen Comp Endocrinol. 79 (1): 1-11.
Mancera,  J.M.,  Laiz-Carrion,  R.  del-Pilar  M.,  and  M.  del-Rio.  2002.  Osmoregulatory Action  of  PRL,  GH  and  Cortisol  in  the  Gilthead  sebream, Sparus  aurata L . Gen Comp Endocrinol 129 (2): 95-103.
Randall, D., Burggren, W.  and K. French, 2002. Eckert, Animal Physiology Mechanisms and Adaptations . W.H. Freeman and Company, New York, pp : 588 – 621.
Sakamoto,  T.,  Ogasawara,  T.  and  T.  Hirano,  1990.  Growth  Hormone  Kinetics  During Adaptation to  a Hyperosmotic Environment in Rainbow Trout. J. Comp. Physiol. B. Biol. Sci . 160 :1–60.
Seidelin, M. And S.S. Madsen, 1999.Endocrine Control  of Na + , K + -ATPase  and Chloride Cell  Development  in  Brown  Trout,  Salmo  trutta:  Interaction  of  Insulin-like  Growth Factor-1  with Prolactin  and  Growth  Hormone.  Journal  of  Endocrinology 162:  127– 135.
Susilo,  U.  dan  S.  Sukmaningrum,  2005.  Studi  Respon  Osmotiik  Plasma  dan Karaktyeristik  Darah  Ikan  Sidat,  Angilla  bicolor,  Yang  Diaklimasi  Pada  Medium Dengan  Salinitas  Berbeda. Laporan  Penelitian  (tidak  dipublikasi). Fakultas  Biologi Universitas Jenderal Soedirman, Purwokerto.
Susilo,  U.  dan  F.N.  Rachmawati,  2006.  Regulasi  Osmotik  dan  Pertumbuhan  Ikan  Nila Gift, Oreochromis  sp .,  yang  Diaklimasi  Pada  Medium  dengan  Sallinitas  Berbeda. Laporan  Penelitian  (tidak  dipublikasi). Fakultas  Biologi  Universitas  Jenderal Soedirman, Purwokerto.
Takei  Y.  And  S.  Hirose,  2001.  The  natriuretic  peptide  system  in  eel:  a  key  endocrine system for  euryhalinity. Am. J. Physiol. Regulatory Integrative Comp. Physiol . 282:
R940–R951.