DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215

## PENGEMBANGAN PRODUKSI SORGUM DI LAHAN RAWA: KAJIAN PEMANFAATAN ALELOPATI SEBAGAI BIOHERBISIDA
(Extensification of Sorghum in Swamp Land: Reviews on Utilization Allelopathy as Bioherbicide )
Edi Susilo *1 , Fahrurrozi 2 , Sumardi 2
1 Mahasiswa Program Doktor Ilmu Pertanian, Fakultas Pertanian, Universitas Bengkulu.
Jl. WR. Supratman Kandang Limun Bengkulu 38371
1 Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Ratu Samban, Bengkulu Utara.
Jl. Jenderal Sudirman No. 87 Arga Makmur Kabupaten Bengkulu Utara 38611
2 Program Studi Agroekoteknologi, Jurusan Budidaya Pertanian, Fakultas Pertanian, Universitas Bengkulu. Jl. WR. Supratman Kandang Limun Bengkulu 38371
* Corresponding Author: susilo_agr@yahoo.com

## ABSTRACT
Efforts to fulfill food demands for Indonesian to comply with population increases endorse to extend  production areas  to marginal lands.  Sorghum  which  has  an  ability  to  adapt  with  less favourable growing environments almost has nutritional values as good as corn, but this crop is  less  cultivated  by  farmers.  Adaptation  mechanisms  of  sorghum  to  environmental  stresses are  by  p roducing  natural allelopathies.  Those  allelochemicals  could  be  properly  managed  as natural  herbicides  for  shorghum  production  in  swamp  lands.  This  review  aimed  to  describe the potential uses of allelochmicals produced by sorghum for sustainable sorghum production in swamp lands. Reviews concluded that (1) sorghum is most likey suitable for swamp lands due  to  its  wide  range  abilities  to  cope  biotic  and  abiotic  stressors,  (2)    sorghum  is  able  to increase  the  production  of  sorgoleone,  dhurrin  and  phenolic  allelochemicals,  and  (3)  those allelochemical  extracts  could  be  developed  as  bioherbicide  compounds  for  sustainable production of various crops.
Keywords : allelopathy, bioherbicide, marginal land, sorghum, swampland

## PENDAHULUAN
Di  Indonesia  memerlukan  upaya pengembangan  ke  lahan  marginal  sebagai akibat penurunan luas lahan pertanian dalam rangka pemenuhan pangan untuk mengimbangi pertambahan penduduk. Lahan pertanian  beralih  fungsi  ke  nonpertanian terus  berlanjut,  sehingga  pengembangan pertanian dapat memanfaatkan lahan marginal  yang  terdiri  lahan  kering,  lahan luapan,  dan  rawa  (Effendi et  al., 2014). Produksi  pangan  secara  nasional  masih bertumpu  pada  lahan  sawah  irigasi  terutama
di Pulau Jawa, sedangkan lahan pasang surut, rawa  lebak,  maupun  lahan  marginal  lainnya belum dimanfaatkan secara optimal (Suryana,  2016).  Lahan  rawa  skala  nasional berperan semakin penting dan strategis untuk pengembangan  pertanian  terutama  dalam rangka mendukung ketahanan pangan nasional.  Hal  ini  didukung  adanya  potensi dan  produktivitas  lahan  serta  teknologi  yang sudah  cukup  mumpuni.  Luasan  lahan  rawa pasang  surut  yang  berpotensi  dimanfaatkan sebagai  lahan  pertanian  tanaman  pangan cukup  luas  tersedia  (Khodijah,  2015).  Lahan
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
rawa  di  Indonesia  sekitar  35,0  juta  ha  atau 18,3  %  luas  daratan,  yang  tersebar  di Sumatera  12,9  juta  ha,  Jawa  0,9  juta  ha, Kalimantan 10,0  juta  ha,  Sulawesi  1,1  juta ha, Maluku 0,2 juta ha, dan Papua 9,9 juta ha (BBSDLP 2014 ; Suryana, 2016). Luas lahan pasang  surut  20  juta  ha  dan  13,4  juta  ha merupakan  lahan  rawa  lebak  (Sudana,  2005; Suprianto et  al., 2010).  Lahan  rawa  pasang surut  berkategori  yaitu  lahan  potensial  (2,1 juta  ha),  sulfat  masam  (6,7  juta  ha),  gambut (10,9  juta  ha),  dan  lahan  bergaram  (0,4  juta ha)  (Haryono et  al., 2013  ;  Ridho  Djafar, 2015).  Potensi  lahan  rawa  baru  digunakan sekitar  4,5  juta  ha  (22  %)  untuk  pertanian. Wilayah  sebaran  lahan  rawa  lebak  di Sumatera 2,8 juta ha, Kalimantan 3,6 juta ha, Sulawesi  0,6  juta  ha,  dan  Papua  6,3  juta  ha. Lahan  rawa  lebak  mempunyai  3  tipe  yang terdiri  lebak  dangkal  4,17  juta  ha,  lebak tengahan  6,03  juta  ha,  dan  lebak  dalam  3,04 juta ha (Daulay, 2003 ; Haryono et al., 2013 ; Ridho Djafar, 2015).
Kegiatan  budidaya  di  lahan  rawa mempunyai  beberapa  hambatan  yaitu  fisiko- kimianya  berupa  genangan  air  atau  banjir yang  datangnya  tidak  terjadwal,  datang  tiba- tiba,  sedangkan  pada musim  kemarau  terjadi permasalahan  defisit  air  sehingga  potensi lahan dapat digunakan budidaya hanya sekali per  setahun,  kondisi  tanah  masam  dengan kesuburan  tanah  rendah,  dan  masalah organisme  pengganggu  tanaman  (gulma, hama  dan  penyakit),  topografi  air  mikro lahan masih beragam dan belum tertata  baik, dan  sebagian  lahan  bergambut  sehingga produktivitas  rendah  (Sudaryanto,  2009  ; Yasin,  2013).  Pada  lahan  pasang  surut permasalahan  hampir  sama  di  lahan  rawa. Menurut Khodijah, (2015) permasalahan dan kendala budidaya di lahan rawa pasang surut antara  lain  :  1)  kesuburan  tanah  rendah  ;  2)
belum  berfungsinya  infrastruktur  secara optimal;  3)  umumnya  tingkat  pendidikan petani  kurang;  4)  indeks  panen  per  tahun kecil,  dan  5)  tingkat  serangan  organisme pengganggu  tanaman  (OPT)  cukup  tinggi. Selanjutnya menurut Suryana (2016) permasalahan  lahan  rawa  yaitu  miskin  hara, kondisi  anaerob,  banyak  bergambut  dalam, terdapat  pirit  yang  berpotensi  meracuni tanaman  (sulfida,  besi  fero,  dan  asam organik),  dan  pH  tanah  rendah.  Namun demikian kontribusi lahan rawa pasang surut di  masa  mendatang  terhadap  produksi pertanian  akan  semakin  tinggi  karena  :  1) potensi  menjadi  lahan  sawah  masih  luas;  2) peningkatan  produktivitas  lahan;  3)  indeks panen bisa meningkat; 4) penurunan kehilangan  hasil  dapat  ditekan  (Khodijah, 2015).  Salah  satu  tanaman  yang  dapat dikembangkan di lahan rawa adalah sorgum. Sorgum  merupakan  tanaman  serealia  yang mengandung  gizi  yang  hampir  sama  dengan jagung. Masalah  utama pengembangan tanaman  sorgum  yaitu  nilai  komparatif  dan kompetitif masih rendah, penanganan pascapanen  masih  ada  kendala,  dan  usaha tani  sorgum  di  lingkungan  petani  belum intensif.  Untuk  mengatasi  problema  tersebut diperlukan  pengelolaan  sistem  budidaya sorgum secara total, yaitu: 1) wilayah (lokasi tanam);  2)  ekonomi  (nilai  komparatif  dan kompetitif  sorgum  terhadap  komoditas  lain penting); 3) sosial (sikap dan persepsi petani terhadap  sorgum  sebagai  bagian  dari  usaha agribisnisnya),  dan  4)  industri  (nilai  fungsi sorgum sebagai bahan baku industri makanan,  dan  pakan)  (Sirappa,  2003). Indonesia  belum  berperan  dalam  pasar sorgum dunia maupun Asia karena pengembangan sorgum masih terbatas. Sorgum  sebagai  bahan  pangan  alternatif  di Indonesia cukup potensial untuk

## DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
dikembangkan dalam rangka program diversifikasi pangan lokal sehingga berdampak mengurangi ketergantungan terhadap  konsumsi  terigu  sebagai  bahan pangan  impor  (Susilowati et  al., 2014), maupun mengurangi ketergantungan terhadap konsumsi beras.
Tumbuhan,  termasuk  sorgum  pada dasarnya  memiliki  senyawa  kimia  kompleks dan bermacam jenisnya. Kandungan senyawa dikelompokkan  menjadi  senyawa  metabolit primer  dan  metabolit  sekunder.  Senyawa metabolit  primer  adalah  senyawa  hasil metabolisme  yang  digunakan  organisme untuk mempertahankan kelangsungan hidupnya,  umumnya  berupa  molekul  besar seperti karbohidrat, lemak, protein, dan asam nukleat.  Senyawa  metabolit  sekunder  adalah molekul kecil dan merupakan hasil metabolisme  didapatkan  secara  terbatas  oleh organisme.  Umumnya  metabolit  sekunder mempunyai bioaktivitas spesifik dan berfungsi  sebagai  pertahanan  terhadap  hama atau penyakit dan sebagai kosmetik  (Nofiani 2008  ;  Setyorini  dan  Yusnawan,  2016). Selanjutnya  Mariska  (2013)  menjelaskan untuk menghasilkan metabolit sekunder tidak sama  dengan  metabolit  primer,  senyawa metabolit  sekunder  dihasilkan  bukan  di dalam  jalur  biosintesis  karbohidrat  dan protein.  Umumnya  terdapat  tiga  jalur  utama dalam proses pembentukan metabolit sekunder,  yaitu  jalur  asam  malonat,  asam mevalonat,  dan  asam  shikimat.  Metabolit sekunder  dihasilkan  oleh  tanaman  dalam jumlah  tertentu  pada  kondisi  cekaman. Senyawa  fenolik,  misalnya  diproduksi  dari tanaman  adaptif  maka  akan  menghambat pertumbuhan S.  ascospores yang  lebih  kuat dibanding  tanaman  rentan.  Demikian  juga kandungan tanin  tinggi pada kedelai varietas Mutiara  menyebabkan  tanaman  lebih  tahan
terhadap  serangan  lalat  bibit Ophiomyia phaseoli (Muliani,  2013).  Tanaman  yang menghasilkan  senyawa  metabolit  sekunder akan  berpotensi  dijadikan  sebagai  sumber gen  tahan  terhadap  hama  atau  penyakit tertentu, hal ini berpeluang sebagai biopestisida  (Leiss et  al., 2011).  Pada kelangsungan hidup tanaman ternyata senyawa  metabolit  sekunder  tidak  berperan secara langsung, namun berkontribusi dengan beberapa  keuntungan,  seperti  berfungsi sebagai pertahanan diri internal tanaman dari cekaman  biotik  maupun  abiotik.  Cekaman biotik disebabkan oleh organisme pengganggu tanaman seperti hama, penyakit, dan  gulma.  Senyawa  metabolit  sekunder terhadap  manusia  fungsinya  bisa  bersifat racun,  namun  juga  bisa  sebagai  zat  yang menguntungkan  tergantung  jenis  senyawa yang terbentuk. Senyawa metabolit sekunder yang  bermanfaat  untuk  kepentingan  manusia berupa  sebagai  obat,  pestisida,  dan  bahan baku  kosmetik  (Setyorini  dan  Yusnawan, 2016). Selanjutnya Mariska (2013) menyebutkan  senyawa  metabolit  sekunder pada  tanaman  mempunyai  beragam  fungsi yaitu,  sebagai  atraktan  (penarik  serangga), sebagai  pelindung  dari  cekaman  lingkungan, pelindung dari hama atau penyakit ( fitoaleksin) ,  melindungi  dari  ultra  violet, berfungsi  zat  pengatur  tumbuh  dan  sebagai senyawa  alelokimia.  Beberapa  senyawa fenolik  memiliki  aktivitas  sebagai  alelopati dan bisa mempengaruhi tanaman yang hidup berdampingan (Mariska 2013).
Produktivitas tanaman untuk menghasilkan  senyawa  metabolit  sekunder dapat  ditingkatkan  dengan  beberapa  strategi, yaitu mengoptimalkan faktor fisiologi lingkungan  hidup  sel  seperti  memanipulasi zat  nutrisi  media,  zat  pengatur  tumbuh, prekusor  dan  elisitor  untuk  menyusun
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
metabolit  sekunder.  Pemberian  polietilen glikol  akan  berdampak  kekurangan  air sehingga  berlanjut  menginduksi  protein, mengkode  gen-gen  penyusun  enzim  yang terlibat dalam biosintesis metabolisme sekunder.  Meningkatnya  kandungan  enzim pada  jaringan  tanaman  maka  kandungan metabolit  sekunder  bisa  meningkat.  Kondisi cekaman  merupakan  salah  satu  faktor eksternal  yang  mempengaruhi  dan  dapat meningkatkan  metabolit  sekunder  (Zulhilmi dan  Surya,  2012).  Metabolit  sekunder  bisa ditingkatkan  produksinya  dengan  cekaman abiotik  maupun  biotik  (Einhellig  1996). Tanaman  akan  aktif  dengan  pertahanannya saat adanya serangan hama, penyakit maupun adanya stres biotik atau abiotik. Pembentukan  fitoaleksin  yang  merupakan salah  satu  sebagai  respon  hipersensitif  dan menebalnya lignin yang terbentuk di dinding sel sebagai cara pertahanan mekanik (Namdeo 2007). Senyawa flavonoid merupakan  salah  satu  yang  berfungsi melindungi  tanaman  dari  cekaman  biotik ataupun abiotik. Senyawa lain yang dihasilkan sebagai dampak terhadap cekaman biotik  dan  abiotik  adalah  asam  absisat (Atkinson dan Urwin 2012), etilen, dan asam jasmonat  pada  tanaman  tingkat  tinggi (Creelman  dan  Mullet  1995).  Manfaat mengetahui  produksi  metabolit  sekunder yaitu  bisa  mengetahui  mekanisme  produksi metabolit  sekunder  sehingga  ke  depannya dapat memanfaatkan peluang untuk budidaya yang  lebih  efektif  dan  efisien  untuk  menuju pertanian  berkelanjutan.  Tujuan  penulisan artikel  ini  adalah  untuk  mendiskripsikan peluang serta potensi pengembangan budidaya  sorgum  di  lahan  rawa  dengan pemanfaatan alelopati dalam teknik budidaya yang ramah lingkungan.

## Karakteristik Lahan Rawa Untuk

## Produksi Tanaman
Lahan  marginal  yang  terdiri  atas lahan  rawa  lebak,  pasang  surut  dan  lahan kering  masam  umumnya  tidak  subur. Ketersediaan  lahan  rawa  cukup  luas  namun masih  sedikit  pengelolaan  secara  optimal. Lahan  rawa  (lebak)  merupakan  suatu kawasan  alam  yang  terbentuk  secara  alami maupun  akibat  dibuat  oleh  manusia  yang mempunyai fungsi penting terhadap ekosistem. Ekosistem rawa merupakan cekungan  baik  di  dataran  rendah  maupun dataran  tinggi,  dan  bahan  induknya  bisa berupa bahan mineral ataupun bahan organik. Ekosistem  rawa  sangat  dipengaruhi  oleh keberadaan air yang merupakan  faktor kunci dalam pemanfaatan, pengelolaan, dan karakteristik  rawa.  Kondisi  keberadaan  air akan  menentukan  sifat  tanah  di  lahan  rawa, dinamika ketersediaan hara, maupun kelarutan  unsur  beracun  disaat  kondisi tergenang  (Fahmi,  2018).  Lahan  rawa merupakan  lahan  basah,  atau ”wetland” adalah salah satu aset sumberdaya tanah yang semakin  penting  peranannya  di  masa mendatang.  Pengembangan  laha  rawa  untuk pertanian,  selain  memiliki  potensi  dan prospek  yang  besar,  juga  menghadapi berbagai  kendala,  baik  biofisik,  sosial ekonomi,  maupun  kelembagaan  (Kurniawan et al., 2017 ; Khodijah, 2015).
Lahan  rawa  lebak  pada  dasarnya mempunyai  dua  jenis  tanah  yaitu  tanah mineral  dan  tanah  gambut.  Tanah  mineral didapat dari endapan saat limpasan air sungai meluap (saat hujan), sedangkan tanah gambut berupa  lapisan  gambut  utuh  atau  lapisan gambut  berselang  seling  susunannya  dengan tanah mineral. Ciri tanah mineral mempunyai faksi  liat  dengan  tingkat  kesuburan  secara alami sedang hingga tinggi dengan kemasaman  tanah  pH  4-5  dan  tingkat
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
drainase  terhambat  hingga  sedang.  Setiap periode  tahunan  lahan  lebak  memperoleh endapan berasal dari daerah di hulu, sehingga meskipun  tingkat  kesuburan  sedang,  namun keragamannya  cukup  tinggi  antar  lokasi (Yasin,  2013).  Susunan  dan  karakteristik kimia lahan gambut ditentukan oleh kandungan  mineral,  ketebalan,  jenis  mineral dasar  gambutnya,  dan  tingkat  pembusukan gambut.  Pada  umumnya  kandungan  mineral gambut  kurang  5  %  dan  didominasi  bahan organik. Karakteristik gambut sangat masam, dengan pH 4 - 5 yang dipengaruhi oleh asam organik,  sedangkan  pada  pH  <  4  karena adanya  kontribusi  H + dari  oksidasi  pirit (Yasin, 2013).
Berdasarkan tinggi dan lama genangan  air,  lahan  rawa  lebak  terdapat  tiga kategori,  yaitu  lebak  dangkal  (pematang), lebak tengahan, dan lebak dalam. Permasalahan  pada  teknik  budidaya  di  lahan rawa  lebak  diantaranya:  1)  lama  dan ketinggian genangan; 2) terjadinya kekeringan saat musim kemarau; 3) penggunaan  satu  varietas  terus-menerus;  4) tidak  menggunakan  benih  unggul;  5) keterbatasan  varietas  memadai,  dan  6) penerapan  pupuk  kimia  tidak  sesuai  aturan (Suparwoto  dan  Waluyo,  2019).  Lahan  rawa lebak  mempunyai  karakteristik  sebagai berikut  :  keberadaanya  di  kiri  dan  kanan sungai  besar  atau  anak  sungai,  topografi datar, tergenang air di musim penghujan, dan kering  saat  musim  kemarau.  Kendala penggunaan lahan rawa lebak (lebak dangkal)  yaitu  lahan  baru  bisa  dimanfaatkan saat  air  macak-macak  sampai  ketinggian  air sekitar  30  cm  (tanam  padi),  sedangkan  saat kondisi  kering  kebanyakan  tidak  dilakukan penanaman  sehingga  frekuensi  penanaman hanya satu kali per tahun (Djamhari, 2009a), namun demikian masih ada peluang
penanaman  palawija.  Satu-satunya  kategori lahan rawa lebak yang berpotensi dikembangkan  untuk  tanaman  pangan  yaitu rawa  lebak  dangkal  (Helmi,  2015;  Yasin, 2013 ; Balitbangtan 2007a).
Masalah utama yang sering muncul di lahan  rawa  lebak  adalah  kondisi  air  yang sering  berubah  sehingga  perlu  pengendalian air, dipengaruhi curah hujan, sering mendapatkan  luapan  banjir  dari  hulu, topografi  air  beragam  dan  belum  ditata dengan  baik,  pH  tanah  masam,  dan  unsur hara  tersedia  relatif  rendah,  dan  tingkat kesuburan  tanah  rendah  hingga  sedang. Namun demikian, pengembangan rawa lebak untuk  pertanian  khususnya  tanaman  pangan masih  bisa  dilakukan  dalam  skala  luas (Effendi  dan  Abidin,  2013  ;  Haryono et  al ., 2013  ;  Djamhari,  2009a).  Pada  umumnya produktivitas  lahan  rawa  yang  rendah disebabkan  oleh  teknologi  budidaya  secara konvensional  yang  belum  bisa  mengatasi pirit  dan  kelarutan  Al,  Fe,  dan  Mn  yang tinggi  (Bachtiar et  al., 2016).  Selanjutnya Maas  (2002)  melaporkan  bahwa  terdapat kendala  pada  lahan  rawa  untuk  agribisnis antara  lain  bahan  induk  rendah  hara, lingkungan anaerob, ketebalan gambut dalam,  mengandung  pirit,  dan  bila  dikelola untuk budidaya tanaman maka akan meracuni  tanaman,  dan  pH  tanah  masam. Tingginya  Kandungan unsur  Al dan  Fe  yang tinggi  menyebabkan  reaksi  tanah  bersifat masam  dengan  pH  tanah  rendah  (Helmi, 2015).  Pengembangan  dan  eksplorasi  lahan rawa  harus  berpedoman  pada  jenis  tipologi lahan  dan  tipe  genangannya.  Jenis  tipologi lahan  maupun  tipe  genangan  air,  akan mempengaruhi  cara  pengelolaan  sumber daya lahan. Manajemen kelola lahan termasuk  pengelolaan  pola  tanam  dengan jenis komoditas yang cocok, perlu
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
mempertimbangkan  biofisik,  tata  air,  dan kemampuan  modal  swadaya  petani  (Sudana, 2005).
Lahan  rawa  menjadi  salah  satu pilihan  dalam  pengembangan  pertanian  di masa mendatang berkenaan kondisi berkurangnya  lahan  subur,  bertambahnya populasi  penduduk,  dan  adanya  alih  fungsi lahan  (Irianto  2006).  Pemanfaatan  lahan pertanian  rawa  untuk  budidaya  tanaman pangan  merupakan  tindakan  yang  tepat karena  keberadaan  lahan  yang  luas  dengan penggunaan  yang  belum  intensif  (Sudana 2005  ;  Effendi et  al., 2014).  Pemanfaatan secara  optimal  lahan  rawa  untuk  bidang pertanian  membutuhkan  suatu  teknologi pengelolaan  terpadu  lahan  dan  air  dengan penerapan teknologi lengkap budidaya tanaman  yang  tepat  untuk  memperoleh  hasil yang  optimal,  selain  faktor  sosial  ekonomi masyarakat,  tata  kelola  kelembagan,  dan dukungan  prasarana  yang  memadai  (Effendi et  al., 2014).  Pada  umumnya  pengembangan lahan rawa diterapkan empat subsistem, yaitu pengembangan  sumberdaya  lahan,  sistem budidaya, penerapan mekanisasi dan pascapanen,  serta  pengelolaan  kelembagaan. Inovasi  teknologi  pertanian  bisa  diterapkan dalam rangka untuk percepatan pengembangan  dan  pembangunan  pertanian di  lahan  rawa.  Kontribusi  dari  institusi terkait,  diperlukan  guna  mempermudah koordinasi dari perencanaan hingga pelaksanaan  di  lapangan  (Effendi et  al., 2013).
Potensi lahan rawa lebak cukup besar dalam  peningkatan  kesejahteraan  petani karena  lahan  rawa  lebak  ini  bisa  berfungsi untuk produksi pertanian, peningkatan penghasilan masyarakat, dan untuk kelestarian  lingkungan  setempat,  sehingga lahan rawa cukup potensial untuk
pengembangan  produksi  pangan  (Ridho Djafar,  2015).  Pengembangan  lahan  rawa bisa dilakukan dengan pola ekstensifikasi dan intensifikasi,  dengan  pengelolaan  tata  air yang  baik  dimana  kondisi  lahan  rawa  dijaga tetap basah atau lembab. Optimasi tata kelola air  dan  peningkatan  kesuburan  lahan  untuk budidaya tanaman pangan merupakan strategi dalam rangka meningkatkan pendapatan masyarakat (Ridho Djafar, 2015). Menurut Suryana (2016) dan Pujiharti (2017) untuk  meningkatkan  hasil  dan  produktivitas pangan, perhatian pemerintah dimasa mendatang lebih prioritas pada pengembangan  wilayah  tertinggal  maupun pinggiran,  seperti  daerah  perbatasan  dan lahan  marginal  (rawa  pasang  surut  dan  rawa lebak),  lahan  kering  (lahan  kering  masam maupun  lahan  kering  beriklim  kering),  serta lahan  terlantar  (lahan  tidur  dan  lahan  bekas tambang).  Kondisi  tanah  yang  demikian, maka  untuk  eksplorasi  lahan  rawa  lebak untuk agribisnis khususnya komoditas tanaman  pangan  dan  hortikultura  skala  luas, membutuhkan  penataan  lahan  dan  jaringan tata  kelola  air  yang  sesuai  dengan  kondisi wilayah  setempat  supaya  diperoleh  hasil yang  optimal  (Yasin,  2013).  Keberadaan lahan  rawa  merupakan  potensi  sumber  daya alam  yang  dapat  digunakan  secara  bijak. Potensi  lahan  rawa  bisa  menjadi  sumber untuk mendorong laju pembangunan perekonomian  dan  kesejahteraan  masyarakat khususnya  petani.  Oleh  karena  itu,  dalam pengelolaan lahan rawa harus mengedepankan  kondisi  dan  karakteristik lahan  yang  unik,  yaitu  dengan  cara  tidak melakukan  pengelolaan  lahan  yang  merubah lingkungan secara drastis yang bisa berdampak menurunnya  kualitas  lahan  rawa. Pengelolaan lahan rawa untuk pengembangan  pertanian  perlu  diarahkan

## DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
kepada  agribisnis secara terpadu  dan berkelanjutan sehingga berdampak terjaminnya produksi dan kelestarian lingkungan. Untuk mencapai cita-cita tersebut  maka  diperlukan  strategi  yaitu  1) pemetaan  potensi  sumberdaya  lahan  secara terperinci;  2)  penjajakan  kesesuaian  lahan untuk  pengembangan  tanaman  unggulan;  3) perbaikan  fungsi  jaringan  tata  kelola  air;  4) memunculkan  teknologi  spesifik  lokasi setempat;  5)  peningkatan  pemberdayaan masyarakat,  dan  6)  peningkatan  sarana  dan kelembagaan agribisnis. Implementasi strategi ini tentunya membutuhkan sinergisitas dan koordinasi yang efektif antar lembaga  terkait  mulai  dari  perencanaan hingga  pelaksanaan  (Ar-Riza  dan  Alkasuma, 2008).
Strategi  optimasi  lahan  marginal lahan  rawa  bisa  dilakukan  melalui  1) perluasan  lahan;  2)  Indeks  Pertanaman  (IP) ditingkatkan dengan cara manajemen air dan penggunaan varietas unggul, dan 3) peningkatan  potensi  hasil  dengan  cara  tata kelola  lahan,  pengolahan  tanah,  pemberian amelioran (lokal) dan pemupukan, pengendalian  gulma  terpadu,  hama  dan penyakit  terpadu  (PHT),  serta  penguatan kelembagaan yang ada. Dengan dilakukannya  optimasi  lahan  rawa  dengan dukungan teknologi pengelolaan dan budidaya yang baik serta peningkatan indeks pertanaman maka keberhasilan tidak mustahil  akan  tercapai  (Susilawati et  al.,
2016). Jumakir dan Endrizal, (2017) melaporkan  bahwa  penerapan  teknologi  di lahan rawa lebak berupa pengelolaan tata air, penataan  lahan,  pengelolaan  kesuburan tanah,  dan  pemilihan  tanaman  unggul  pada sistem surjan dapat meningkatkan produktivitas  lahan  dan  diversifikasi  jenis tanaman.

## Potensi Budidaya Sorgum Di Lahan Rawa
Sorgum  merupakan  tanaman  serealia dunia lama yang didomestikasi di Afrika dan menyebar  ke  seluruh  penjuru  dunia  untuk menjadi salah satu tanaman bermanfaat yang diketahui  manusia  (Dahlberg et  al., 2011). Sorgum  merupakan  tanaman  yang  potensial untuk  dikembangkan  di  lahan  marginal  di Indonesia  dan  termasuk  sebagai  salah  satu tanaman pangan penting dunia yang menduduki peringkat kelima setelah gandum, beras,  jagung,  dan  barley  (Ruminta et  al., 2018). Sorgum merupakan komoditas ekspor sebagai bahan pangan, pakan, bioenergi/bioetanol  terbarukan,  bahan  baku industri,  dan  mempunyai  daya  adaptasi  yang luas (Sirappa, 2003; Galuh Puspitasari et al., 2013;  Suminar et  al., 2018;  Subagio et  al., 2013 Aqil, 2013 dan Suarni, 2017).
Keunggulan  sorgum  adalah  tanaman ini  bisa  diratoon,  dan  hasil  ratoon  satu  kali masih  sama  dengan  hasil  pada  sorgum  yang tidak  diratoon,  sedangkan  hasil  sebagai bioetanol maupun pakan ternak pada sorgum yang  diratoon  menghasilkan  lebih  tinggi yang  diratoon  satu  kali.  Kemampuan meratoon dan produksi ratoon bisa mencapai 49-66  %  dari  hasil  tanaman  utama  atau pertama  (Meliala et  al., 2017).  Dengan pemanfaatan  daya  ratoon  yang  tinggi  maka menjadikan  budidaya  sorgum  lebih  efisien karena dapat mengurangi biaya tenaga kerja, periode waktu tanam, pengolahan tanah, dan penggunaan benih serta energi (Efendi et al., 2013).    Sorgum  mempunyai  potensi  untuk energi  terbarukan,  sehingga  bisa  menghemat sumber  daya  berbahan  fosil  yang  dapat mengurangi  emisi  gas  rumah  kaca.  Sorgum bisa  berfungsi  sebagai  pangan  fungsional sehingga  bisa  menjadi  sumber  pendapatan bagi masyarakat khususnya petani (Pabendon et  al., 2012  ;  Subagio et  al., 2013).
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
Selanjutnya  Purnomohadi,  (2006),  sorgum termasuk tanaman C4, mempunyai tinggi 3-5 m  yang  efisien  dengan  produk  fotosintesis cukup  tinggi  dan  efisien  dalam  pemanfaatan unsur  hara  tanah  serta  tahan  kekurangan  air. Tanaman  sorgum  hampir  seluruh  bagian bermanfaat yaitu 1) batang penghasil nira; 2) biji  sebagai  bahan  pangan,  pakan  dan industri;  3)  daun  hasil  panen  bisa  sebagai pakan,  dan  4)  limbah  ampas  batang  pada pembuatan  nira  bisa  sebagai  pakan  atau bahan  bakar  alternatif.  Adaptasi  tanaman sorgum  lebih  luas  dan  toleransi  terhadap berbagai  stres  abiotik  seperti  kekeringan (Tesso et  al., 2005),  dan  salinitas  (Zegada- Lizarazu dan Monti, 2012). Sorgum memerlukan kebutuhan air yang kecil sekitar 8 ribu m 3 ha -1 , sekitar 25 % yang dibutuhkan tanaman  tebu  (32  ribu  m 3 ha -1 )  dan  sekitar setengah dari kebutuhan air pada bit gula (16 ribu m 3 ha -1 ) (Umakanth et al., 2018).
Kemampuan  tanaman  sorgum  yang mampu  beradaptasi  di  lahan  marginal  (lahan kering,  lahan  masam,  dan  lahan  salin),  daya adaptasi  luas,  memerlukan  sedikit  air,  dan kebutuhan  input  yang  rendah,  serta  cocok ditanam  di  lahan  dengan  kondisi  kering  dan panas  sehingga  pengembangan  sorgum mempunyai masa depan yang cukup menjanjikan  karena  lahan  yang  sesuai  untuk tanaman ini cukup luas, bisa ditanam di lahan bongkor sehingga berpeluang lebih produktif, dan  tidak  bersaing  dengan  tanaman  pangan lain karena mampu tumbuh di lahan marginal (Suarni, 2017). Kegiatan budidaya sorgum di Indonesia  belum  intensif  oleh  masyarakat, padahal mempunyai potensi yang baik untuk memenuhi kecukupan pangan, bahan industri,  dan  pakan  ternak  yang  selama  ini masih  impor  (Sherly et  al., 2015).  Sorgum mempunyai sifat toleran terhadap kekeringan dan  genangan  air,  sehingga  tanaman  ini
mempunyai  keunggulan  jika  dibandingkan dengan komoditi lain untuk dikembangkan di Indonesia (Sungkono et al., 2009), dan relatif tahan  hama  dan  penyakit  (Pabendon et  al., 2012  ;  Sirappa,  2003).  Sorgum  dengan kemampuannya  untuk  beradaptasi  pada kondisi  cekaman  (kekeringan  dan  genangan) sehingga  menjadikan  tanaman  ini  mampu beradaptasi  terhadap  berbagai  jenis  lahan marginal  khususnya  lahan  rawa.  Lahan marginal  di  Indonesia  bisa  berkategori  lahan basah dan kering (Elvira et al., 2015).
Penelitian tentang kekurangan phosfor pada tanaman sorgum sudah dilakukan  oleh  Agustina et  al., (2010), Puspitasari et  al., (2012),  Isnaini et  al.,
(2014), Sulistyowati et al., (2015), Trikoesoemaningtyas et  al., (2017)  dan Lestari et al., (2017) dan hasilnya menunjukkan  bahwa  varietas  sorgum  yang tahan  terhadap  kekurangan  phosfor  adalah Numbu.  Genotipe  sorgum  yang  toleran terhadap defisiensi phosfor mampu mempertahankan  pertumbuhan  yang  lebih baik jika dibanding genotipe yang peka yang ditunjukkan  variabel  bobot  kering  tajuk  dan bobot  kering  akar  genotipe  toleran  lebih tinggi  jika  dibanding  genotipe  yang  peka (Agustina et  al., 2010).  Sorgum  merupakan tanaman yang tahan terhadap kondisi phosfor rendah  sehingga  potensi  pengembangannya sangat  tinggi  (Momongan et  al., 2019). Pengembangan tanaman sorgum juga diarahkan  pada  lahan-lahan  masam  (Saniaty et al., 2016). Pengembangan potensi genotipe sorgum  toleran  lahan  masam  merupakan upaya  untuk  mengoptimalkan  penggunaan lahan marginal di Indonesia (Sungkono et al., 2009).  Hal  ini  merupakan  peluang  besar dalam  pengembangan  sorgum  di  lahan marginal seperti lahan rawa yang mempunyai karakteristik lahan masam.
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215

## Produksi Alelopati Pada Lingkungan Tercekam Alelopati dan Cekaman Biotik
Senyawa metabolit
sekunder merupakan senyawa organik  yang dihasilkan dalam jumlah sedikit melalui jalur metabolisme  sekunder.  Fungsi  metabolit sekunder  bagi  tumbuhan  sebagai  pelindung terhadap  cekaman  maupun  serangan  OPT. Pemanfaatan metabolit sekunder yang diproduksi  oleh  tumbuhan  untuk  berbagai macam  tujuan  khususnya  untuk  pengobatan (Silalahi, 2017). Senyawa metabolit sekunder dihasilkan  melalui  jalur  di  luar  biosintesa karbohidrat dan protein. Pembentukan metabolit sekunder ada tiga lintasan, yakni 1) lintasan  asam  malonat  asetat,  2)  lintasan asam  mevalonat  asetat,  dan  3)  lintasan  asam shikimat.  Untuk  jalur,  1)  lintasan  asam malonat  asetat  terdiri  atas  asam  lemak (laurat,  miristat,  palmitat,  stearat,  oleat, linoleat,  linolenik),  fosfolipida,  glikolipida, gliserida,  poliasetilen;  2)  lintasan  asam mevalonat terdiri minyak esensial, sapogenin,  geraniol,  asam  absisat,  squalent, monoterpenoid, menthol, korosinoid, streoid, terpenoid, dan giberelin dan 3) lintasan asam sikhimat,  terdiri  atas  asam  benzoic,  lignin, koumarin,  tanin,  asam  amino  benzoic  dan quinon,  asam  sinamat,  dan  fenol  (Mariska, 2013).
Cekaman  lingkungan  abiotik  maupun cekaman biotik seringkali berimplikasi faktor-faktor penting yang mengubah manifestasi  alelopati  di  alam  (Einhelling, 1996  ;  Inderjit  dan  Keating  1999  ;  Inderjit dan  Nayyar,  2002).  Selain  itu  Einhellig (1999), Inderjit dan Nayyar (2002), menyatakan  bahwa  alelopati  lebih  jelas  dan bisa menjadi penting ketika akseptor dipengaruhi  oleh  cekaman  lingkungan  yang tinggi.  Dalam  hal  itu  alelopati  terlibat  dalam proses  adaptasi  tanaman  melalui  tahapan
evolusi dan memiliki dampak positif terhadap peningkatan toleransi dan ketahanan tanaman  terhadap  kondisi  yang  tidak menguntungkan.  Di  sisi  lain,  tanaman  di bawah  cekaman  alelopati  menjadi  kurang kuat,  mungkin  juga  kurang  toleran  terhadap kondisi  cekaman  lainnya  termasuk  cekaman alelopati  (Gawronska  dan  Golisz,  2006). Pada umumnya, cekaman lingkungan biasanya  meningkatkan  efektivitas  alelopati tanaman  target  dan  ini  dicapai  dengan peningkatan  konsentrasi  alelokimia  dan menurunkan ambang batas konsentrasi senyawa alelokimia (Einhellig, 1996).
Tumbuhan yang terpapar oleh cekaman  biotik  seperti  patogen,  herbivora, dan hewan kecil, merespon dengan mekanisme  pertahanan  yang  serupa  dengan mengalokasikan kerangka karbon dari produktivitas  tanaman  untuk  memproduksi dalam  konsentrasi  yang  lebih  tinggi  dan molekul  sintesis  dari mode  of  action , terutama  oleh  mayoritas  metabolit  sekunder. Metabolit ini sering terlibat  sebagai alelopati aktif  karena  diketahui  fungsi  ganda  atau multifungsi dari metabolit sekunder. Tanaman  setelah  terpapar  dengan  cekaman biotik berpotensi memiliki aktivitas alelopatik  yang  lebih  tinggi  tidak  hanya karena  konsentrasi  senyawa  alelokimia  yang lebih tinggi tetapi juga karena spektrum yang lebih luas dari senyawa tersebut  (Gawronska dan  Golisz,  2006).  Senyawa  ini  unik  dan berbeda setiap spesies serta diproduksi dalam jumlah  berlebih  pada  keadaan  tertentu  oleh tanaman.  Tanaman  memproduksi  senyawa metabolit  sekunder  sebagai  mekanisme pertahanan dari cekaman, baik biotik maupun abiotik.  Senyawa  metabolit  sekunder  yang bermanfaat  bisa  digunakan  sebagai  obat, pestisida, dan bahan baku kosmetik (Setyorini dan Yusnawan, 2016).
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
Alelopati yang merupakan bagian dari aktivitas  phytotoksik  adalah  cekaman  biotik untuk  organisme  akseptor  (penerima,  target atau  yang  menderita)  sebagai  sebuah fenomena  yang  luas.  Cekaman  biotik digunakan  dalam  arti  semuanya,  selain alelopati,  faktor  biotik  yang  secara  langsung atau  tidak  langsung  membuat  cekaman  bagi organisme yang terlibat dalam jalur transduksi  sinyal  yang  mengarah  pada  hasil lanjutan.  Alelopati  dan  cekaman  biotik digolongkan sebagai berikut yaitu : patogenesis, residu tanaman alelopatik dengan  cekaman  mikroba  dalam  tanah, autotoksisitas, infestasi herbivora, kompetisi, cekaman  invasi  gulma  eksotis,  dan  gulma parasit  (Gawronska  dan  Golisz,  2006). Autotoksisitas,  yaitu  sebagai  fenomena toksisitas  diri  dimana  bahan  kimia  sendiri menghambat  atau  menekan  pertumbuhan jenisnya  sendiri,  hal  ini  memainkan  peran penting  dalam  bidang  pertanian,  limbah, perkebunan,  dan  hutan.  Meskipun  proses tersebut  memiliki  sejumlah  implikasi  yang menyebabkan kerugian, namun proses tersebut memiliki beberapa signifikasi ekonomis  (Singh et  al., 1999).  Meskipun autotoksisitas  adalah  fenomena  alami  yang memberikan  manfaat  selektif  bagi  tanaman, namun bahan kimia yang bertanggung jawab yang  memiliki  potensi  yang  baik  untuk pengelolaan  gulma  dan  hama  (Singh et  al., 2001).

## Alelopati dan Cekaman Abiotik
Tumbuhan, jamur, dan
mikroorganisme
dilengkapi
dengan komponen mesin biosintesis untuk menghasilkan  banyak  metabolit  sekunder. Senyawa ini memiliki fungsi penting di alam sebagai  pertahanan  terhadap  predator  atau pesaing  dan  signifikansi  ekologis  lainnya. Pemanfaatan  senyawa-senyawa  ini  untuk
makanan,  obat-obatan,  dan  keperluan  lain. Membutuhkan pemahaman secara menyeluruh  tentang  struktur  dan  jalur biokimia  yang  berbeda  dari  produksinya dalam  sistem  seluler  (Nabavi et  al., 2020). Pendekatan  alelopatik  bisa  diterapkan  untuk mengendalikan  gulma  melalui  penggunaan alelokimia  (sebagai  bioherbisida).  Namun, efek  alelopatik  tanaman  tergantung  pada faktor  biotik  maupun  abiotik.  Pendekatan alelopatik akan berdampak terhadap pengurangan  ketergantungan  pestisida  kimia yang terbukti sebagai kontaminan lingkungan (Nornasuha  dan  Ismail,  2017).  Alelopati berperan  penting  dalam  ekosistem  pertanian yang  mengarah  pada  beragam  interaksi antara  tanaman  dengan  tanaman,  tanaman dengan  gulma,  gulma  dengan  tanaman,  dan tanaman  dengan  pohon.  Saat  ini  interaksi alelopati  secara  umum,  dan  alelokimia khususnya  dipandang  sebagai  komponen penting  untuk  pengelolaan  gulma  dan  hama atau  penyakit  yang  berkelanjutan  (Singh et al., 2001).
Metabolit  sekunder  pada  tanaman diketahui telah berkontribusi pada mekanisme  pertahanan  terhadap  herbivora dan  organisme  penyakit  atau  patogen. Konsentrasi  senyawa-senyawa  ini  sering ditingkatkan oleh adanya cekaman biotik dan abiotik. Peningkatan alelopati bisa ditingkatkan  di  bawah  cekaman  lingkungan. Cekaman air meningkatkan metabolit sekunder  fitotoksik  di  jaringan  tanaman  dan rhizosfer  (Tang et  al., 1994).  Selanjutnya Tongma et  al., (2001),  mengemukakan bahwa di lapangan pada kondisi cekaman air, pertumbuhan Tithonia  diversifolia berkurang tetapi  tanaman  mengandung  sejumlah  besar bahan  alelopatik  per  berat  kering  daripada tanpa  adanya  cekaman  air.  Alelopati  sangat erat dengan persaingan terhadap sumber daya
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
dan  cekaman  oleh  penyakit,  suhu  ekstrem, kelembaban  rendah,  dan  adanya  herbisida. Cekaman  seperti  itu  sering  meningkatkan produksi alelokimia (Einhellig, 1994).
Kemajuan  dalam  studi  alelopati  akan lebih  pesat  jika  alelopati  diselidiki  dalam konteks ekologi tanah terutama ekologi kimia tanah, daripada menekankan pencarian interaksi  kimia  tanaman  dengan  tanaman secara  langsung  (Inderjit  dan  Weiner  Jacob, 2001).  Tanaman  dapat  mempengaruhi  atau merugikan  tanaman  lain  melalui  senyawa alelokimia,  yang  dapat  dilepaskan  secara langsung  maupun  tidak  langsung  dari tanaman  hidup  ataupun  mati  (termasuk mikroorganisme). Karena peningkatan jumlah gulma tahan herbisida dan permasalahan  lingkungan  dalam  penggunaan herbisida  sintetik,  sehingga  ada  banyak upaya dalam merancang strategi pengelolaan gulma  alternatif  (Bhowmik  dan  Inderjit, 2003).  Tanaman  mengandung  alelopatik memancarkan  beragam  dan  banyak  jenis alelokimia  dengan  potensi  untuk  menekan gulma  dan  hama  tanaman.  Tanaman  yang mengandung  alelopati  tinggi  diantaranya gandum,  jagung,  barley,  alfalfa,  brassica spp.,  padi,  bunga  matahari,  dan  sorgum. Potensi  alelopatik  dari  tanaman  memiliki implikasi yang relevan dalam sistem pertanian.  Tanaman  dibantu  oleh  alelopati dalam  sistem  pertahanan  terutama  saat  stres biotik  maupun  stres  abiotik,  demikian  juga dalam  suplai  unsur  hara.  Potensi  tanaman alelopatik  dapat  dimanipulasi  secara  bijak dengan  menyesuaikan  tanaman  ini  sebagai tanaman rotasi, tanaman penutup permukaan, atau  tanaman sela untuk mengurangi cekaman  hama  dan  manajemen  nutrisi  yang bijaksana (Jabran dan Farooq, 2013).
Alelopati Pada Tanaman Sorgum
Alelopati  tanaman  sorgum  dapat dieksploitasi  dalam  praktik  yang  berbeda (sebagai tanaman penutup, tanaman pendamping, tanaman campuran untuk mengendalikan  gulma,  dan  penghambatan nitrifikasi)  dan  penerapan  ekstrak  airnya  di lahan  untuk  mengendalikan  gulma  sehingga bisa  meningkatkan  produktivitas  tanaman (Alsaadawi  dan  Dayan,  2009  ;  Alsaadawi, 2013).  Eksudat  akar  yang  mengandung metabolit  spesifik  pada  akar  memiliki dampak  ekologis  yang  kritis  terhadap  makro tanah dan mikrobiota serta terhadap keseluruhan  tanaman  itu  sendiri.  Melalui eksudasi berbagai senyawa dari akar berdampak  terhadap  komunitas  mikroba tanah  di  sekitarnya,  dapat  mempengaruhi ketahanan terhadap hama, mendukung simbiosis  yang  bermanfaat,  dapat  mengubah sifat  kimia  dan  fisik  tanah,  dan  dapat menghambat  pertumbuhan  tanaman  yang berkompetisi (Bertin et al., 2003).
Beberapa  hasil  penelitian  yang  telah dilaksanakan dan menunjukkan bahwa sorgum mempunyai alelopati yang menghambat  gulma  dan  meningkatkan  hasil tanaman  budidaya.  Residu  gulma  mampu menekan gulma di ladang sebesar 70 – 98 %. Sorgum dewasa ketika diaplikasikan ke tanah pada  2  -  6  Mg  ha -1 mengurangi  gulma sebesar  40  –  50  %  dan  meningkatkan  hasil gandum  sebesar  15  %.  Semprotan 'sorgaab' (ekstrak  air  dari  tanaman  dewasa  yang diperoleh setelah direndam air selama sehari) mengurangi  kepadatan  gulma  dan  biomassa sebesar  35  –  49  %  dan  meningkatkan  hasil gandum  sebesar  10  –  21  %. Sorgaab dari gulma  dapat  digunakan  sebagai  penghambat gulma  alami  pada  pertanaman  gandum beririgasi  (Singh et  al., 2003).  Berdasarkan Tabel  1  menunjukkan  bahwa  alelokimia utama  yang  terkandung  di  dalam  alelopati
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
sorgum  berupa  Sorgoleone,  Dhurrin  dan Fenolik.  Sorgoleone  merupakan  alelokimia yang  berasal  dari  sorgum  dan  paling  banyak diteliti sebagai alelokimia untuk pengendalian gulma yang ramah lingkungan. Penelitian  tentang  alelokimia  utama  sorgum telah  dilakukan  mulai  Netzly  dan  Butler (1986)  sampai  yang  terbaru  Tibugari, Chiduza, et  al., (2019).  Alelokimia  dalam sorgum  berikutnya  adalah  Dhurrin  dan  telah dilaporkan  mulai  Haskins  dan  Gorz  (1984) dan  terakhir  oleh  Bajwa et  al .,  (2013a)  dan Maqbool et  al., (2013).  Selanjutnya  asam Fenolik  yang  relatif  baru  dan  telah  diteliti oleh Sene et al., (2001), Uddin et al., (2010), dan  Jabran  dan  Farooq  (2013).  Penelusuran pustaka  yang  terkait  alelokimia  yang terkandung  pada  alelopati  sorgum  menjadi sangat penting guna memperbaharui khasanah  keilmuan  yang  bermanfaat  untuk penyempurnaan  hasil  temuan  alelopati  pada tanaman sorgum. Alelokimia yang terkandung  di  dalam  alelopati  sorgum mempunyai  peranan  terhadap  pengendalian gulma.

## Alelokimia Sorgoleone
Di  beberapa  bagian  belahan  dunia, perubahan dalam sistem budidaya diinginkan karena faktor-faktor seperti perubahan iklim, evolusi  resisten  tahan  herbisida  pada  gulma, dan  pencemaran  lingkungan.  Sistem  tanam baru  harus  disesuaikan  untuk  memiliki tanaman  alelopatik  seperti  sorgum  dalam bentuk  rotasi  tanaman  dan  sistem  lainnya. Selain  itu,  ada  keperluan  untuk  genotipe sorgum baru yang memiliki potensi alelopatik  tinggi.  Formulasi  sorgoleone dalam bentuk produk dapat menjadi pengembangan  yang  baik  untuk  menangani masalah  seperti  evolusi  resistensi  herbisida pada  gulma,  pencemaran  lingkungan,  dan pencemaran makanan karena residu
herbisida.  Menurut  Uddin et  al., (2014),  di mana  sorgoleone  dalam  bentuk  formulasi menunjukkan hasil yang menjanjikan terhadap gulma karena daya pengendaliannya.  Namun,  produk  tersebut akan  dilakukan  pengujian  terhadap  berbagai gulma  dengan  berbagai  kondisi  iklim  dan tanah.  Komersialisasi  produk  ini  akan meningkat  seiring  waktu  dan  berkontribusi secara nyata terhadap keberlanjutan pengendalian gulma (Jabran, 2017b).
Meningkatnya  populasi  masyarakat dunia adalah ancaman bagi ketahanan pangan dan  keberlanjutan  pertanian.  Alelopati  telah muncul  sebagai  pendekatan  pragmatis  untuk menyelesaikan  berbagai  masalah  dalam pertanian  modern.  Berbagai  pendekatan termasuk  rotasi  tanaman,  tanaman  penutup, tumpangsari,  mulsa,  penggabungan  sisa tanaman,  dan  aplikasi  ekstrak  air  sedang digunakan  untuk  mengeksplorasi  alelopati untuk  pengelolaan  hama,  mitigasi  cekaman, dan  peningkatan  pertumbuhan  dan  produksi tanaman  (Bajwa et  al., 2013a).  Iklim  global dunia  memprediksi  kenaikan  suhu  rata-rata harian,  perubahan  pola  hujan,  peningkatan lama  kekeringan,  banjir  di  masa  yang  akan datang,  dan  cekaman  abiotik.  Semua  ini merupakan  ancaman  terhadap  produksi tanaman  dan  keamanan  pangan.  Identifikasi gen yang bertanggung jawab untuk memproduksi alelokimia, dan pengembangan tanaman transgenik dengan  pemanfaatan gen tersebut menjadi pilihan yang menarik untuk meningkatkan  ketahanan  terhadap  tekanan abiotik (Maqbool et al., 2013).
Sorgum  adalah  tanaman  alelopatik yang  paling  banyak  dipelajari  mengenai aplikasi  ekstrak  air  ( sorgaab )  dan  implikasi lain dari alelokimia (Weston dan Duke, 2003 ;  Alsaadawi  dan  Dayan,  2009).  Sorgum memiliki sorgoleone (2-hydroxy-5- methoxy-
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
3 - [(80Z, 110Z) -8, 11, 14-pentadecatriene] - p-benzoquinone)  (Netzly  dan  Butler,  1986  ; Nimbal et  al., 1996),  5-ethoxysorgoleone, 2,5-dimethoxysorgoleone  (Czarnota et  al . 2003),  fenolik  (Lehle  dan  Putnam,  1983; Einhellig  dan  Souza,  1992;  Einhellig et  al., 1993)  seperti  asam  vanilik,  asam  p- hidroksibenzoat,  p-hydroxybenzaldehyde,  p- coumaric  acid,  asam  ferulik  (Sene et  al., 2001) mulai dari 1,1 hingga 2,2 % di bagian tanaman yang berbeda. Semua alelokimia ini memiliki potensi sebagai pemacu pertumbuhan bila digunakan pada konsentrasi  yang  lebih  rendah  (Bajwa et  al., 2013a). Akumulasi bobot akar dan sorgoleone  paling  tinggi  setelah  aplikasi asam  jasmonik  dan  methyl  jasmonate  pada konsentrasi  5,0  μM,  dan  kemudian  menurun dengan meningkatnya konsentrasi jasmonate. Hal  ini  membuka  penelitian  bagi  biosintesis sorgoleone  yang  lebih  efektif,  alelokimia yang  penting  dan  berguna  yang  diperoleh dari  berbagai  spesies  tanaman  (Uddin et  al., 2013).
Residu sorgum melepaskan sorgoleone,  cyanogenic  glycosides  dhurrin, dan  sejumlah  produk  pemecahan  fenolik yang  menekan  gulma  (Guenzi  dan  McCalla, 1966  ;  Nicollier et  al., 1983 ;  Weston et al., 1989  ;  Weston,  1996).  Sorgoleone  biasanya mengacu  pada  1  (2-hidroksi-5-metoksi-3  - [(80Z,110Z)  -  80.110.140-pentadecatriene]- p-benzoquinone  [CAS  105018-  76-6]),  salah satu  komponen  utama  zat  minyak  yang keluar  dari  akar  sorgum  ( Sorghum  bicolor (L.) Moench)  (Dayan et al., 2010). Senyawa sorgoleone lain yang berkaitan erat, termasuk 5-ethoxysorgoleone, 2,5 -
dimethoxysorgoleone.  Beberapa  senyawa  ini memiliki  aktivitas  phytotoxic  yang  kuat sebagai  penghambat  fotosistem  II,  sehingga sorghum spp. bersifat allelopatik (Czarnota et
al., 2003). Genotipe sorgum sangat bervariasi dalam  jumlah  sorgoleone  yang  dihasilkan. Eksudat akar umumnya mengandung 85-90% sorgoleone murni berdasarkan analisis HPLC (Nimbal, Pedersen, et al., 1996). Selanjutnya Uddin et  al., (2012)  sorgoleone  adalah penghambat  potensial  transpor  elektron fotosintesis  dan  mengikat  yang  sama  dari protein  D1  seperti  diuron,  atrazin,  atau metribuzin.
Sorgoleone  adalah  p-benzoquinone yang  dikeluarkan  dari  akar  beberapa  spesies sorgum  pertama  kali  diisolasi  oleh  Netzley dan  Butler  (1986)  dari  eksudat  akar S. bicolor (L.) Moensch. Einhellig et al., (1993) dan  Nimbal et  al., (1996)  melaporkan fitotoksisitas  sorgoleone  pada  sejumlah tanaman dan gulma. Hambatan pertumbuhan disebabkan  oleh  menghambat  fotosintesis (transportasi  elektron  PS  II)  dan  respirasi. Sorgoleone  bila  diterapkan  pada  tingkat  0,6 a.i.  kg  ha -1 pada  gulma  umur  14  hari menyebabkan  penurunan  yang  signifikan dalam  pertumbuhan  dan  perkembangan gulma, terutama yang berdaun lebar. Sepuluh hari  setelah  penghambatan  lebih  lanjut klorosis  parah  diikuti  nekrosis,  dan  efeknya mirip  dengan  herbisida  sintetik.  Para  penulis menyimpulkan  bahwa  sorgoleone  memiliki sifat  pra  dan  post  emergence  ketika diterapkan  pada  tanah  atau  pada  daun  muda atau bibit (Singh et al., 2003).
Alelokimia  sorgoleone  diproduksi dan  dilepaskan  dari  rambut  akar  sorgum. Studi telah mengkonfirmasi bahwa pelepasan sorgoleone yang menyebabkan sifat phytotoxic  dari  sorgum,  dan  sorgoleone memiliki  potensi  untuk  menjadi  herbisida alami,  atau  aktivitas  penekan  gulma  dari sorgum  dapat  digunakan  dalam  pengelolaan gulma  terintegrasi  (Gimsing et  al., 2009). Selanjutnya  Uddin et  al., (2012)  sorgoleone
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
dapat  dianggap  sebagai  pendekatan  yang efektif dan berkelanjutan secara ekologis dan lingkungan  untuk  mengendalikan  ganggang yang  berbahaya.  Meningkatnya  insiden cekaman  abiotik  menyebabkan  generasi reactive oxygen species (ROS) yang mungkin bertanggung  jawab  atas  efek  buruk  pada pertumbuhan dan morfologi tanaman budidaya.  Lebih jauh, pengurangan hasil dan produktivitas tanaman mungkin terkait dengan peningkatan jumlah ROS (Hasanuzzaman, 2020). Perlakuan benih pra- tanam dapat dimanfaatkan untuk mengurangi cekaman  alelopati  pada  jagung  melalui induksi  antioksidan  enzimatik  (Khaliq et al., 2013).  Pengurangan  daun  sorgum  akan mengurangi  total  luas  permukaan  daun  yang dapat  mengurangi  cahaya  untuk  fotosintesis maksimum,  dan  berdampak  pengurangan volume  akar  dan  selanjutnya  pengurangan sorgoleone (Tibugari, et al., 2019).
Efek  alelopatik  dari  sorgum  dapat menekan keberadaan gulma dan meningkatkan  hasil  panen  jika  kultivar tersebut  mampu  menghasilkan  bahan  kimia alami  yang  efektif  dalam  menekan  gulma. Sorgum liar ( S. Helepance ) memiliki potensi tinggi  untuk  digunakan  dalam  pengendalian gulma  dengan  pemanfaatan  alelopatinya (Tibugari, Chiduza, et al., 2019). Sorgoleone dari berbagai kultivar menunjukkan bervariasi  yaitu  mulai  dari  0,67  -  17,8  mg sorgoleone  per  g  berat  segar  akar.  Produksi sorgoleone optimal pada suhu antara 25 – 35 o C  dan  menurun  secara  nyata  di  luar  kisaran ini.  Tingkat  produksi  sorgoleone  berkurang hampir  50  %  setelah  terpapar  cahaya  biru (470  nm)  dan  sebesar  23  %  dengan  lampu merah  (670  nm)  (Cook et  al., 2006). Sorgoleone  mengandung  alelokimia  dan gulma  sangat  rentan  terhadap  alelokimia ini. Kemampuan  menekan  gulma  yang  kuat  dari
sorgoleone  maka  sargoleone  bisa  menjadi herbisida  yang  ramah  lingkungan  yang efektif  untuk  pengelolaan  gulma  (Uddin et al., 2010).  Tabel  2  menunjukkan  bahwa alelokimia  pada  jenis  alelopati  sorgum  telah diteliti  dengan  sasaran  utamanya  adalah gulma  atau  tanaman.  Alelokimia  sorgoleone lebih  mendominasi  untuk  penekanan  atau mempunyai  daya  hambat  terhadap  gulma maupun  tanaman.  Penelitian  ini  telah dilakukan  mulai  dari  Netzley  dan  Butler (1986) sampai Jahangeer (2011).

## Alelokimia Dhurrin
Alternatif biorasional semakin mendapat  perhatian  untuk  pengendalian gulma  karena  maraknya  produk  tidak berlabel.  Alelopati  menawarkan  potensi untuk pengendalian gulma biorasional melalui  produksi  dan  pelepasan  alelokimia melalui  daun,  bunga,  biji,  batang,  dan  akar dari  bahan  tanaman  yang  hidup  atau  yang sudah terurai. Alelokimia sering menunjukkan  selektivitas,  mirip  dengan herbisida  sintetik.  Dua  pendekatan  utama untuk menekan gulma, pertama ; penggunaan  tanaman  sebagai  rotasi  tanaman atau mulsa. Kedua adalah penggunaan residu tanaman  penutup  atau  mulsa  hidup  untuk menekan pertumbuhan gulma. Residu tanaman  penutup  secara  selektif  dapat memberikan penekanan gulma melalui keberadaan fisiknya di permukaan tanah dan melepaskan alelokimia (Weston, 1996).
Sorgum melepaskan glikosida sianogen dan menekan pertumbuhan tanaman lain.  Dhurrin  mempunyai  sebuah  sianogen glikosida ada di beberapa bagian sorgum dan setelah  hidrolisis  menghasilkan  hidrogen sianida,  glukosa,  dan  p-hidroksibenzaldehida (Weston, 1996). Terdapat dua jalur pergantian  dhurrin  endogen  di  sorgum, mengidentifikasi  gen  yang  diduga  terlibat
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
dalam  transformasi  dan  dhurrin  mempunyai sifat  pencegah  serangga,  selain  itu  berfungsi sebagai  bentuk  penyimpanan  nitrogen  yang berkurang.  Dalam  proses  pematangan  biji sorgum,  proanthocyanidins  menggantikan dhurrin sebagai senyawa pertahanan (Nielsen et al., 2016).
Kandungan  dhurrin  pada  daun  tua tanaman  sorgum  adalah  ukuran  kuantitatif tingkat  toleransi  kekeringan  sebelum  dan sesudah  penanaman,  dengan  kandungan dhurrin  tinggi  yang  diekspresikan  dalam garis  toleran  kekeringan  pasca-penanaman (Emendack et al., 2017). Sorghum halapance merupakan  gulma  merupakan  permasalahan serius  di  Amerika  Serikat  bagian  tenggara, dengan  melepaskan  senyawa  beracun  ke tanaman  tingkat  tinggi. Phytotoxins dan taxiphyllin yang  telah  diisolasi  dari  ekstrak metanol rimpang Sorghum halapence (Nicollier et  al., 1983).  Banyak  tanaman pangan  penting  menghasilkan  sianogen glukosida  sebagai  senyawa  pertahanan  alami untuk  melindungi  dari  serangan  herbivora atau  patogen.  Metabolit  sekunder  berbasis nitrogen  ini  bertindak  sebagai  cadangan penyimpanan nitrogen. Dhurrin melalui jalur endogen  untuk  pemulihan  nitrogen  sehingga menunjukkan  enzim  mana  yang  mungkin terlibat dalam jalur tersebut (Blomstedt et al., 2016).
Curto et  al., (2012),  melaporkan  sel epidermis  daun  dan  akar  sorgum, S. sudanensis dan  hibrida  sorgum-sudangrass ( S.  bicolor  x  S.  sudanensis )  mengandung sianogenik  glukosida  dhurrin  yang  dapat terdegradasi menjadi hidrogen sianida (HCN),  terkenal  karena  toksisitasnya  bagi banyak  organisme  termasuk  nematode. Dhurrin,  sianogenik  glukosida  menyebabkan toksisitas  mamalia  pada  saat  konsentrasi tertinggi  pada  sorgum  muda.  Ketika  sorgum
terluka  atau  stres,  dhurrin  dihidrolisis menjadi HCN, glukosa, dan p- hydroxybenzaldehyde dan atau p- hydroxybenzoic  acid  (Weston et  al., 1989). Rosati et  al., (2019),  melaporkan  sorgum menghasilkan  dhurrin  sianogenik  glukosida, suatu  metabolit  sekunder  untuk  pertahanan tanaman  dan  respon  dari  cekaman.  Produksi dhurrin diatur baik saat pertumbuhan maupun lingkungan  dengan  variasi  tingkat  tinggi  di dalam dan di antara lini.
Meskipun glukosida sianogenik dianggap  memainkan  peran  penting  dalam pertumbuhan,  perkembangan,  dan  ketahanan tanaman  terhadap  cekaman  abiotik  dan biotik, kehadirannya dalam konsentrasi tinggi dalam  pakan  dan  makanan  dapat  berakibat berbahaya bagi hewan dan manusia. Sorgum bersifat  sianogenik,  dan  potensi  sianida bervariasi menurut faktor lingkungan, manajemen,  dan  latar  belakang  genetik. Sorgum  muda  kandungan  sianita  lebih rendah dari pada yang lebih tua. Cekaman air pra-tanam yang singkat dan pada pembungaan  menurunkan  dhurrin  daun  dan kadar  gula  terlarut,  sedangkan  cekaman  air setelah pembungaan singkat atau cekaman air pra tanam yang berkepanjangan meningkatkan dhurrin dan kadar gula terlarut (Emendack et al., 2018 ; Burke et al., 2013).

## Alelokimia Fenolik
Taylor et  al., (2014)  melaporkan  ada hal  penting  yang  cukup  besar  pada  sorgum untuk  kandungan  fitokimia,  potensi  nutrisi dan  penggunaannya  dalam  produk  bebas gluten.  Pada  umumnya  kaya  beberapa fitokimia  fenolik.  Fenolat  dalam  biji-bijian ini  mungkin  memiliki  beberapa  sifat  yang meningkatkan kesehatan yang penting seperti pencegahan  dan  pengurangan  stres  oksidatif, anti kanker, anti diabetes, anti inflamasi, anti hipertensi, dan pencegahan penyakit
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
kardiovaskular.  Sorgum  merupakan  sumber yang  baik  bagi  fenolik  seperti  halnya  tannin dan flavonoid lainnya (Barros et al., 2012). Senyawa fenolik dan aktivitas antioksidan  lebih  berkorelasi  positif  pada varietas yang tidak berkecambah dibandingkan  dengan  yang  berkecambah. Biji  sorgum  dengan  lapisan  testa  berpigmen, dan  tanaman  merah  memiliki  kandungan yang  lebih  tinggi,  keanekaragaman  senyawa fenolik  yang  lebih  besar,  dan  aktivitas antioksidan  yang  lebih  tinggi  daripada sorgum  jenis  lainnya.  Penanda  biokimiawi yang  ditentukan  merupakan  indikator  yang berguna  untuk  pemilihan  varietas  sorgum sebagai  bahan  pangan  dan  mengetahui  sifat agronomis (Dicko, et al ., 2005). Svensson et al., (2010) melaporkan penelitiannya bertujuan untuk mengidentifikasi asam fenolik  dan  flavonoid  pada  varietas  sorgum merah  PAN  3860  dan  untuk  menentukan perubahan  konsentrasi  selama  fermentasi dengan  lactobacilli,  menunjukkan  bahwa fermentasi  mikroba  sorgum  mempengaruhi kandungan polifenol dan dapat mempengaruhi  nilai  nutrisi  dan  aktivitas antimikroba  sorgum.  Kadar  fenol  dan aktivitas  antioksidan  paling  tinggi  bila sorgum  memiliki  warna  tanaman  ungu  / merah ; pericarp hitam atau merah tua, tebal; dan testa berpigmen. Temuan ini memberikan  pedoman  yang  berguna  untuk menghasilkan sorgum dengan tingkat antioksidan terbesar, yang berpotensi sebagai sumber  penting  komponen  sehat  dalam makanan (Dykes et al., 2005).
Cekaman  suhu  meningkatkan  inisiasi alelokimia dan menunjukkan bahwa interaksi dengan lingkungan merupakan pertimbangan penting untuk memahami alelopati (Einhellig dan  Eckrich,  1984).  Kandungan  senyawa fenolik  dan  enzim  terkait  sebelum  dan
sesudah perkecambahan biji sorgum dibandingkan  antara  varietas  yang  resisten atau  rentan  terhadap  stres  biotik  dan abiotik. Varietas  sorgum  yang  resisten  terhadap cekaman biotik dan abiotik rata-rata memiliki kandungan proanthocyanidins (PA), 3- deoxyanthocyanidins  (3-A),  dan  flavan-4-ols yang  lebih  tinggi  daripada  varietas  yang rentan.  Senyawa  fenolik  total  dan  aktivitas enzim  terkait,  bukan  penanda  yang  baik untuk  ketahanan  terhadap  stres  pada  sorgum (Dicko et al., 2005).
Cekaman  abiotik  seperti  kekeringan, lama  penyinaran,  dan  penyimpanan  telah membatasi produksi sorgum di Afrika  Barat. Ketahanan tanaman terhadap cekaman abiotik  dan  biotik  seringkali  diatur  oleh metabolisme  senyawa  fenolik.  Senyawa fenolik  sorgum,  misalnya  phytoalexins  (3- deoxyantho-cyanidins)  atau  allelochemicals (p-hydroxybenzoates, p-coumarate, dan flava-nols), terlibat dalam resistensi tanaman terhadap  semua  jenis  cekaman,  baik  biotik (jamur,  serangga,  virus,  dan  lain-lain)  dan abiotik  (kekeringan,  suhu,  stres  lama penyinaran,  defisiensi  nutrisi,  dan  lain-lain) menginduksi  sintesis  fenilalanin  amonia (Dicko, et  al., 2005).  Potensi  alelopati ekstrak  daun  sorgum,  dievaluasi  untuk pengelolaan  gulma  berkelanjutan  dalam pertanian organik. Bibit berumur 2 sampai 15 hari  mengandung  lebih  banyak  senyawa fenolik  daripada  tanaman  yang  lebih  tua.  Di antara  6  metode  fisik  ekstraksi  yang digunakan, ekstrak dari penggilingan ditambah perebusan memberikan pengendalian  gulma  yang  baik,  namun ekstrak  metanol  daun  sorgum  terbukti  yang terbaik. Ekstrak daun sorgum dapat memberikan pengendalian gulma yang efektif  dan  ramah  lingkungan  (Won et  al., 2013).
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215

## Pemanfaatan  Alelopati  Sorgum  Untuk Produksi Tanaman Berkelanjutan
Gulma diketahui menyebabkan kerugian  besar  karena  pengaruhnya  terhadap ekosistem  pertanian.  Gulma  menimbulkan masalah  lingkungan  dan  kesehatan  manusia, upaya  di  seluruh  dunia  sedang  dilakukan untuk  mengurangi  ketergantungan  terhadap herbisida  sintetik  yang  digunakan  untuk mengendalikan  gulma.  Dalam  hal  ini fenomena  alelopati,  yang  diekspresikan melalui pelepasan bahan kimia oleh tanaman, telah  disarankan  sebagai  salah  satu  alternatif untuk mencapai pengelolaan gulma berkelanjutan (Singh et al., 2003).
Ancaman  terhadap  ketahanan  pangan dan  keberlanjutan  pertanian  salah  satunya ditentukan oleh peningkatan jumlah penduduk.  Pendekatan  untuk  menyelesaikan permasalahan pertanian modern salah satunya dengan penggunaan alelopati, dengan  berbagai  aplikasi  di  lapangan diantaranya  rotasi  tanaman,  pemanfaatan tanaman  penutup  tanah,  sistem  tumpangsari, penggunaan  mulsa,  pemanfaatan  limbah tanaman  dan  pemanfaatan  ekstrak  air ( sorgaap ). Semua ini bertujuan mengeksplorasi  alelopati  untuk  pengelolaan hama,  mitigasi  cekaman,  dan  peningkatan pertumbuhan  dan  produksi  tanaman  (Bajwa et  al., 2013b).  Budidaya  tanaman  yang mengandung  alelopati  merupakan  fenomena yang  baik  dalam  menekan  gulma  sekaligus menjadi pengelolaan tanaman secara terintegrasi.  Penggunaan  tanaman  alelopati sebagai  penutup  tanah,  berbagai  jenis tanaman yang mengandung alelopati, penggunaan  serasah  sebagai  mulsa,  praktek ini  semua  merupakan  untuk  pengelolaan gulma  ramah  lingkungan  dalam  sistem pertanian (Jabran et al., 2015).
Alelopati merupakan fenomena biologis  yang  umum  dimana  satu  organisme menghasilkan  biokimia  yang  mempengaruhi pertumbuhan, kelangsungan hidup, perkembangan,  dan  reproduksi  organisme lain. Biokimia ini dikenal sebagai alelokimia dan  mempunyai  efek  menguntungkan  atau merugikan pada organisme sasaran. Alelopati tanaman merupakan salah satu cara interaksi antara  tanaman  penerima  dan  pemberi  dan dapat  memberikan  efek  positif  (seperti, pengelolaan  pertanian,  pengendalian  gulma, perlindungan  tanaman,  atau  penanaman kembali)  maupun  efek  negatif  (misalnya, autotoksisitas,  penyakit  tanah,  atau  invasi biologis). Untuk peranan dalam pembangunan pertanian berkelanjutan, penting untuk mengeksploitasi sistem budidaya  yang  mengambil  keuntungan  dari pengaruh  stimulasi  /  penghambatan  tanaman alelopatik  untuk  mengatur  pertumbuhan  dan perkembangan tanaman dan untuk menghindari autotoksisitas alelopatik (Cheng dan  Cheng,  2015).  Tabel  3  menunjukkan pengaruh  ekstrak alelopatik  tanaman  sorgum terhadap pengendalian gulma dan peningkatan  hasil  tanaman  pada  berbagai budidaya  tanaman  yang  dilakukan  oleh beberapa peneliti. Dari hasil ini menunjukkan bahwa  ekstrak  alelopatik  mampu  menekan berbagai spesies gulma yang ditandai dengan menurunnya kepadatan gulma dan menurunnya  bobot  kering  gulma  serta meningkatkan hasil tanaman budidaya dibandingkan  kontrol.  Ini  merupakan  bukti nyata bahwa ekstrak sorgum mampu menekan dan mengendalikan gulma diberbagai  pertanaman  budidaya.  Alelopati memiliki  potensi  besar  dalam  meningkatkan produktivitas  penanaman,  jika  digunakan secara  bijaksana.  Fenomena  ini  dapat digunakan  dalam  pertanian  organik  untuk

## DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
meningkatkan hasil panen dan untuk pengelolaan  organik  gulma,  hama  serangga, dan  penyakit  untuk  melindungi  lingkungan dari  bahaya  bahan  kimia.  Pengembangan kultivar  tanaman  dengan  potensi  alelopatik yang  kuat  mungkin  cukup  kuat  untuk mengendalikan  pengaruh  cekaman  biotik (gulma,  hama  serangga,  dan  penyakit)  dan cekaman  abiotik  (kekeringan,  salinitas, panas, dan lain-lain). Dimasukkannya tanaman  alelopatik  dalam  rotasi  pertanaman juga  dapat  membantu  dalam  meminimalkan cekaman oleh hama. Pemanfaatan ekstrak air tanaman  alelopatik  dikombinasikan  dengan pengurangan  dosis  herbisida  bisa  menjadi strategi  yang  menjanjikan  untuk  pengelolaan gulma  berkelanjutan  (Cheema et  al., 2013). Alelopati merupakan fenomena alami dimana tanaman  beralelopati  melepaskan  senyawa kimia  (dikenal  sebagai  alelokimia)  ke lingkungan  melalui  dekomposisi,  pencucian (oleh air hujan), volatilisasi dan eksudat akar. Alelokimia dari tanaman beralelopati merangsang dan atau menghambat perkecambahan  dan  pertumbuhan  tanaman sasaran.  Efek  alelopati  dapat  dikategorikan sebagai  efek  gulma  pada  tanaman,  efek gulma  pada  gulma  lain,  efek  tanaman  pada gulma,  dan  efek  pohon  pada  gulma  atau tanaman.  Metode  penelitian  alelopati  selama ini berupa bioassay, aplikasi serasah, aplikasi tanah  rhizosfer,  metode  sandwich,  metode piring  dan  metode  kotak  tanaman.  Namun, efek  alelopati  tanaman  tergantung  pada faktor  biotik  dan  abiotik.  Pemanfaatan alelopati  akan  menyebabkan  pengurangan ketergantungan  pada  pestisida  kimia  yang terbukti  sebagai  kontaminan  lingkungan (Nornasuha dan Ismail, 2017).
Efek penghambatan tanaman terhadap gulma  terutama  pada  gulma  daun  lebar,  hal tersebut  terjadi  karena  adanya  alelopati
sorgum  yang  mempunyai  daya  hambat  pada area  tanam  pertanian  yang  cukup  lama.  Hal ini memiliki implikasi untuk strategi pengelolaan  gulma  di  pertanian  (Einhellig dan  Rasmussen,  1989).  Meskipun,  tanaman alelopatik ini tidak memberikan pengendalian  gulma  yang  lengkap,  namun dapat mengelola populasi gulma pada tingkat ambang  ekonomi.  Ini  dapat  menghilangkan atau  meminimalkan  penggunaan  herbisida saat  ini  dan  dengan  demikian  mengatasi semua  masalah  utama  yang  terkait  dengan herbisida  (Narwal  dan  Haouala,  2013). Alelopati  menawarkan  pengendalian  gulma, hama  serangga,  dan  penyakit  secara  alami. Biosintesis  metabolit  sekunder  dengan  laju lebih tinggi dan perannya dalam pensinyalan stres  memberikan  pertahanan  yang  sangat baik  terhadap  cekaman  abiotik.  Alelokimia yang  dipancarkan  dalam  rhizosfer,  tanaman meningkatkan  perolehan  nutrisi  melalui proses  pelarutan,  penghambatan  nitrifikasi biologis, pengkelatan dan retensi. Alelokimia pada konsentrasi rendah  meningkatkan pertumbuhan tanaman, namun pada konsentrasi tinggi akan menekan pertumbuhan  tanaman.  Ekstrak  air  alelopati konsentrasi  rendah  dari  sorgum,  kubis kubisan,  bunga  matahari,  padi,  gandum, jagung dan kelor meningkatkan pertumbuhan tanaman.  Pemanfaatan  alelopati  dengan bijaksana  dalam  produksi  tanaman  maka akan  cukup  efektif  dalam  mengelola  hama pertanian  dan  meningkatkan  produktivitas pertanian (Bajwa et al., 2013b). Diagram alir pemanfaatan alelopati untuk produksi tanaman  berkelanjutan  ditunjukkan  pada Gambar 1.

## KESIMPULAN
Sorgum
berpeluang besar dibudidayakan di lahan rawa karena mempunyai kemampuan adaptasi luas
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
terhadap  berbagai  cekaman  lingkungan  baik biotik  maupun  abiotik,  seperti  kekeringan, genangan dan toleran terhadap kondisi tanah dengan fosfor rendah.
Proses  adaptasi  tanaman  sorgum dengan  lingkungan  tumbuh  yang  kurang menguntungkan  terjadi  dengan  peningatan produksi alelokimia  sorgoleone, dhurrin, dan fenolik.
Ekstrak  alelokimia  tanaman  sorgum dapat dimanfaatkan menjadi bahan bioherbisida  untuk  produksi  berbagai  jenis tanaman secara berkelanjutan.

## DAFTAR PUSTAKA
Agustina,  K.,  Sopandie,  D.,    Desta  Wirnas,
D.  (2010).  Tanggap  Fisiologi  Akar Sorgum  ( Sorghum  bicolor L.  Moench) terhadap  Cekaman  Aluminium  dan Defi  siensi  Fosfor  di  dalam  Rhizotron.
In J. Agron. Indonesia Vol. 38, (2).
Alsaadawi,  I.  S. (2013). Allelopathic potential of sorghum in agroecosystems. In Allelopathy: Current Trends and Future Applications (pp.  321–336). Springer Berlin
Heidelberg .
https://doi.org/10.1007/978-3-642-
30595-5_13
Alsaadawi,  I.  S.,  Dayan,  F.  E.  (2009). Potentials  and  prospects  of  sorghum allelopathy  in  agroecosystems.  In International  Allelopathy  Foundation . Vol. 24, (2).
Aqil, M. (2013). Pengelolaan Proses Pascapanen  Sorgum  untuk  Pangan. Seminar Nasional Serealia .
Ar-Riza,  I.,  Alkasuma.  (2008).  Pertanian Lahan Rawa Pasang Surut dan Strategi Pengembangannya dalam Era Otonomi Daerah. Jurnal  Sumberdaya  Lahan Vol. 2 No. 2.
Atkinson,  N.J.  and  P.E.  Urwin.  (2012).  The interaction  of  plant  biotic  and  abiotic stresses: fom genes to the field. Journal of  Experimental  Botany 63(10):  3523-
3544
Bachtiar,  Ghulamahdi,  M.,  Melati,  M.,
Guntoro,  D.,    Sutandi,  A.  (2016). Kebutuhan  Nitrogen  Tanaman  Kedelai pada  Tanah  Mineral  dan  Mineral Bergambut  dengan  Budidaya  Jenuh Air. Penelitian  Pertanian  Tanaman Pangan. Vol 35 No 3.
Bajwa, A. A., Cheema, S. A., Cheema, Z. A. (2013a).  Application  of  allelopathy  in crop production. Int. J. Agric. Biol , 15 , 1367–1378.
http://www.fspublishers.org
Bajwa,  A.  A.,  Cheema,  S.  A.,    Cheema,  Z. A.(  2013b).  Application  of  allelopathy in  crop  production. Int.  J.  Agric.  Biol , 15 , 1367–1378.
http://www.fspublishers.org
Balitbangtan.  2007.  Pengelolaan  Tanaman
Terpadu  (PTT).  Padi  Lahan  Rawa Lebak. Badan Penelitian dan Pengembangan  Pertanian, Jakarta.  49 hlm.
Barros,  F.,  Awika,  J.  M.,    Rooney,  L.  W. (2012). Interaction of tannins and other sorghum  phenolic  compounds  with starch  and  effects  on  in  vitro  starch digestibility. Journal  of  Agricultural and  Food  Chemistry ,  60  (46),  11609– 11617.
https://doi.org/10.1021/jf3034539
BBSDLP.  (2014).  Sumber  daya  lahan pertanian  Indonesia,  luas,  penyebaran dan  potensi  ketersediaan.  Laporan Teknis Nomor 1. Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Sumberdaya Lahan Pertanian, Bogor
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
Bertin, C., Yang, X.,   Weston,  L.  A.  (2003).
The  role  of  root  exudates  and allelochemicals  in  the  rhizosphere.  In
Plant and Soil . Vol. 256.
Bhowmik, P. C.,  Inderjit. (2003). Challenges and  opportunities  in  implementing allelopathy for natural weed management. Crop  Protection , 22 (4), 661–671. https://doi.org/10.1016/S0261- 2194(02)00242-9
Blomstedt,  C.  K.,  O’Donnell,  N.  H.,
Bjarnholt,  N.,  Neale,  A.  D.,  Hamill,  J. D.,  Møller,  B.  L.,    Gleadow,  R.  M. (2016).  Metabolic  consequences  of knocking  out  UGT85B1,  the  gene encoding the glucosyltransferase required  for  synthesis  of  dhurrin  in Sorghum  bicolor (L.  Moench). Plant and  Cell  Physiology , 57 (2),  373–386. https://doi.org/10.1093/pcp/pcv153
Burke,  J.  J.,  Chen,  J.,  Burow,  G.,  Mechref, Y.,  Rosenow,  D.,  Payton,  P.,  Xin,  Z., Hayes,  C.  M.  (2013).  Leaf  dhurrin content is a quantitative measure of the level  of  pre-  and  post  flowering drought  tolerance  in  sorghum. Crop Science ,
53 (3), 1056–1065.
https://doi.org/10.2135/cropsci2012.09. 0520
Cheema, Z.A. and   Khaliq, A.(2000). Use of sorghum  allelopathic  properties  to control  weeds  in  irrigated  wheat  in semi  arid  region  of  Punjab.  Agric. Ecosyst. Environ., 79: 105–112
Cheema,  Z.A.,  Asim,  M.    and  Khaliq,  A. (2000).  Sorghum  allelopathy  for  weed control in cotton (Gossypium arboreum L.). Int. J. Agric. Biol., 2: 37–41
Cheema,  Z.A.,  Khaliq,  A.    and  Akhtar,  S. (2001).  Use  of  sorghum  water  extract
as  a  natural  weed  inhibitor  in  spring mungbean. Int. J.  Agric.  Biol., 3:  515– 518
Cheema,  Z.A.,  Khaliq,  A.    and  Tariq,
M. (2002). Evaluation of concentrated sorghum water extract  alone  and  in  combination with  reduced  rates  of  three  pre- emergence  herbicides  for  weed control  in  cotton  (Gossypium hirsutum  L.). Int.  J.  Agric.  Biol .,
4: 549–552
Cheema  ZA,  Iqbal,  M,  Ahmad  R.  (2002a). Response  of  wheat  varieties  and  some Rabbi  weeds  to  allelopathic  effects  of sorghum  water  extract. Int.  J.  Agri. Biol. 52-55.
Cheema  ZA,  Khaliq,  A.,  Tariq,  M.(2002b). Evaluation  of  concentrated  Sorgaab alone and in combination with reduced rates of three pre- emergence herbicides  for  weed  control  in  cotton ( Gossypium hirsutum L.). Int. J. Aggri. and Biol. 4(4): 549-552.
Cheema,  Z.A.,  Khaliq,  A.  and  Tariq,  M.
(2002c).  Evaluation  of  concentrated sorghum  water  extract  alone  and  in combination with reduced rates of three pre-emergence  herbicides  for  weed control  in  cotton  ( Gossypium  hirsutum L.). Int. J. Agric. Biol., 4: 549‒552
Cheema,  Z.  A.,  Farooq,  M.,    Khaliq,  A. (2013).  Application  of  allelopathy  in crop  production:  Success  story  from Pakistan.  In Allelopathy:  Current Trends  and  Future  Applications (pp. 113–143).  Springer  Berlin  Heidelberg. https://doi.org/10.1007/978-3-642- 30595-5_6
Cheng,  F.,    Cheng,  Z.  (2015).  Research progress on the use of plant allelopathy
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
in agriculture and the physiological and ecological  mechanisms  of  allelopathy. In Frontiers  in  Plant  Science Vol.  6,
(November).  Frontiers  Media  S.A. https://doi.org/10.3389/fpls.2015.01020
Cook,  D.,  Dayan,  F.  E.,  Rimando,  A.  M., Pan,  Z.,  Duke,  S.  O.,    Baerson,  S.  R. (2006).  Molecular  and  biochemical investigations of
sorgoleone
biosynthesis.  In Recent  Advances  in Phytochemistry . Vol. 40, (C), pp. 157– 177. Elsevier Inc. https://doi.org/10.1016/S0079-
9920(06)80041-9
Creelman,  R.A.  and  Mullet.  J.E.  (1995).
Jasmonic acid distribution and action in plants:  Regulation  during  development and  response  to  biotic  and  abiotic stress. Proc. Natl. Acad. Sci . 92: 4114- 4119. USA.
Curto,  G.,  Dallavalle,  E.,  De  Nicola,  G.  R., Lazzeri,  L.  (2012).  Evaluation  of  the activity  of  dhurrin  and  sorghum towards Meloidogyne incognita.
Nematology , 16 (PART6),  759–769. https://doi.org/10.1163/156854112X62 7291
Czarnota,  M.  A.,  Rimando,  A.  M.,    Weston, L.  A.  (2003).  Evaluation  of  Root
Exudates of Seven Sorghum Accessions.  In Journal  of  Chemical Ecology . Vol. 29, (9).
Dahlberg,  J.,  Berenji,  J.,  Sikora,  V., Latković,  D.  (2011).  Open  Access Assessing  sorghum [Sorghum  bicolor (L) Moench] germplasm for new traits: food, fuels & unique uses.
Daulay,  A.  (2003),”Penumbuhan  Kantong Penyangga Padi Di Lahan Rawa Lebak Tahun  2003”  Pertemuan  Nasional Penumbuhan  Kantong  Penyangga  Padi
Di  Lahan  Rawa  Lebak  2003,  tanggal 25  –  26  Februari  2003,  Departemen Pertanian
Dayan,  F.  E.,  Rimando,  A.  M.,  Pan,  Z.,
Baerson, S. R., Gimsing, A. L.,  Duke, S. O. (2010). Sorgoleone. In
Phytochemistry .  Vol.  71,  (10),  pp. 1032–1039. Elsevier Ltd. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.20 10.03.011
Dicko,  M.  H.,  Gruppen,  H.,  Barro,  C., Traore,  A.  S.,  Van  Berkel,  W.  J.  H., Voragen,  A.  G.  J.  (2005).  Impact  of phenolic compounds and related enzymes  in  sorghum  varieties  for resistance  and  susceptibility  to  biotic and  abiotic  stresses. Journal  of Chemical Ecology , 31(11), 2671–2688. https://doi.org/10.1007/s10886-005- 7619-5
Dicko,  M.  H.,  Gruppen,  H.,  Traore,  A.  S., Van Berkel, W. J. H.,   Voragen,  A.  G. J.  (2005).  Evaluation  of  the  effect  of germination  on  phenolic  compounds and  antioxidant  activities  in  sorghum varieties. Journal  of  Agricultural  and Food  Chemistry , 53 (7),  2581–2588. https://doi.org/10.1021/jf0501847
Djamhari,  S.  (2009a).  Penerapan  Teknologi Pengelolaan  Air  di  Rawa  Lebak sebagai  Usaha  Peningkatan  Indeks Tanam  di  Kabupaten  Muara  Enim .  J. Hidrosfir Indonesia Vol. 4 No. 1.
Dykes,  L.,  Rooney,  L.  W.,  Waniska,  R.  D., Rooney,  W.  L.  (2005).  Phenolic compounds  and  antioxidant  activity  of sorghum  grains  of  varying  genotypes. Journal  of  Agricultural  and  Food Chemistry , 53 (17), 6813–6818.
https://doi.org/10.1021/jf050419e
Efendi,  R.,  Aqil,  M.,  Pabendon,  M.,
Penelitian,  B.,  Serealia,  T.,  Ratulangi, J.,    Selatan,  S.  (2013).  Evaluasi Genotipe  Sorgum  Manis (Sorghum bicolor (L.) Moench) Produksi Biomas dan Daya Ratun Tinggi.
Effendi,  D.  S.,  Abidin,  Z.,    Prastowo,  B. (2014). Model Percepatan Pengembangan  Pertanian  Lahan  Rawa Lebak Berbasis Inovasi. In
Pengembangan Inovasi Pertanian . Vol. 7, (4).
Einhellig,  F.  A.  (1994).  Allelopathy: Current Status  and  Future  Goals  (pp.  1–24). https://doi.org/10.1021/bk-1995- 0582.ch001.
Einhellig, F. A. (1996). Interactions involving  allelopathy  in  cropping systems. Agron J 88: 886-893 223
Einhellig,  F.  A.,    Eckrich,  P.  C.  (1984). Interactions of Temperature and Ferulic Acid  Stress    on  Grain  Sorghum  ang Soybeans.  In Journal  of  Chemical Ecology . Vol. 10, (l).
Einhellig,  F.  A.,    Rasmussen,  J.  A.  (1989). Prior  Cropping  with  Grain  Sorghum Inhibits Weeds. In Journal of Chemical Ecology . Vol. 15, (3).
Einhellig FA, Souza IF (1992). Phytotoxicity of  sorgoleone  found  in  grain  sorghum root exudates. J Chem Ecol 18:1–11
Einhellig,  F.  A.,  Rasmussen,  J.  A.,  Hejl,  A. M.,    Souza,  I.  F.  (1993).  Effects  of
Root Exudate Sorgoleone on Photosynthesis1. In Journal of Chemical Ecology. Vol. 19, (2).
Einhellig,  FA.  (1999). An integrated view of allelochemicals  amid  multiple  stresses. In  Inderjit,  Dakshini  KMM,  Foy,  CL. (eds.)  Principles  and  practices  in  plant ecology allelochemical interactions. pp.
479-494 CRC Press  LLC, Boca Raton,
USA
Einhellig,  FA.  (2002).  The  physiology  of allelochemicals action: clues and views.  In  Reigosa,  MJ.  and  Pedrol,  N. (eds)  Allelopathy  from  molecules  to ecosystems, pp. 1-23. Science Publisher Inc. Enfield, NH.
Elvira,  Muhamad,  Y.,    Maiyuslina.  (2015).
Karakter  Agronomi  Beberapa  Varietas Sorgum  pada  Lahan  Marginal  di  Aceh Utara. Jurnal Agrium , 12 (1), 1–4.
Emendack, Y., Burke, J.,  Laza,  H., Sanchez, J.,    Hayes,  C.  (2018).  Abiotic  stress effects  on  sorghum  leaf  dhurrin  and soluble sugar contents throughout plant development. Crop  Science , 58 (4),
1706–1716.
https://doi.org/10.2135/cropsci2018.01. 0059
Emendack, Y. Y., Hayes, C. M., Chopra, R.,
Sanchez,  J.,  Burow,  G.,  Xin,  Z., Burke,  J.  J.  (2017).  Early  seedling growth  characteristics  relate  to  the staygreen  trait  and  Dhurrin  levels  in Sorghum. Crop  Science ,  57  (1),  404– 415.
https://doi.org/10.2135/cropsci2016.04. 0284
Fahmi, A. (2018). Karakteristik Lahan Rawa. https://www.researchgate.net/publicatio n/328800813
Galuh  Puspitasari,  Kastono,  D.,    Waluyo,  S.
(2013). Pertumbuhan dan Hasil Sorgum  Manis (Sorghum  bicolor (L.)
Moench ) Tanam Baru dan Ratoon pada Jarak Tanam Berbeda.
Gawronska,  H.,    Golisz,  A.  (2006). Allelopathy:  A  Physiological  Process with Ecological Implications.
Gimsing,  A.  L.,  Bælum,  J.,  Dayan,  F.  E.,
Locke, M. A., Sejerø, L. H.,  Jacobsen, C.  S.  (2009).  Mineralization  of  the allelochemical  sorgoleone  in  soil. Chemosphere , 76 (8), 1041–1047. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere. 2009.04.048
Guenzi WD, Kehr WR, McCalla TM. (1964).
Water-soluble phytotoxic substances in alfalfa  forage:  variation,  with  variety, cutting,  year  and  stage  of  growth. Agron J 56:499–500
Haryono,  Noor,  M., Syahbuddin, H.,
Sarwani,  M.  (2013).  Lahan  rawa : Penelitian  dan  Pengembangan.  Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian Kementerian Pertanian.
IAARD Press .
Hasanuzzaman,  M.  (2020).  Agronomic Crops.  In Agronomic  Crops .  Springer Singapore.  https://doi.org/10.1007/978- 981-15-0025-1
Haskins, F.A., Gorz, H.J., Hill, R.M., Brakke Youngquist,  J.  (1984).  Influence  of sample treatment on apparent hydrocyanic  acid  potential  of  sorghum leaf tissue. Crop Sci. 24:1158- 1163.
Hejl AM, Koster KL. (2004). The allelochemical  sorgoleone  inhibits  root H+-ATPase  and  water  uptake. J  Chem Ecol 3:2181–2191
Helmi.  (2015).  Peningkatan  Produktivitas Padi  Lahan  Rawa  Lebak  melalui Penggunaan  Varietas  Unggul  Padi Rawa. Jurnal  Pertanian  Tropik Vol.2, 2 (2), 78–92.
Hussain, I., Singh, N. B., Singh, A., & Singh, H. (2017). Allelopathic potential of sesame plant leachate against Cyperus rotundus L. Annals of Agrarian Science , 15(1), 141–147. https://doi.org/10.1016/j.aasci.2016.10.
003
Inderjit and K.I. Keating.(1999). Allelopathy: principles,  procedures,  processes,  and promises  for  biological  control.  In: Sparks  DL  (ed). Adv  Agron Vol  67.
San Diego: Acad Pr. P 141-231.
Inderjit, WeinerJacob. (2001). Plant allelochemical  interference  or  soil chemical  ecology  In Perspectives  in
Plant Ecology . Vol. 4, (1).
http://www.urbanfischer.de/journals/pp ees
Inderjit,  Nayyar,  H.  (2002).  Shift  in allelochemical functioning with selected  abiotic  stress  factors.  In Inderjit,  Mallik,  AU.  (eds.),  Chemical Ecology  of  Plants:  Allelopathy  in Aquatic  and  Terrestrial  Ecosystems. pp. 199-218
Iqbal,  J.  and  Cheema,  Z.A.  and  An,  M.
(2007).  Intercropping  of  field  crops  in cotton  for  the  management  of  purple nutsedge  ( Cyperus  rotundus L.).  Plant
Soil, 300: 163–171
Irianto, G. (2006). Kebijakan pengelolaan air dalam  pengembangan  lahan  rawa lebak.
http://balittra.litbang.pertanian.go.id/
prosiding06/Utama-2.pdf.
Isnaini,  Trikoesoemaningtyas,  D.  Wirnas. (2014).  Pewarisan  karakter  toleransi aluminium  tanaman  sorgum  manis [ Sorghum  bicolor (L.)  Moench.]  pada stadia bibit. J. Agrotek. Trop. 3:52-57.
Jabran,  K.,    Farooq,  M.  (2013).  Implications of  potential  allelopathic  crops  in agricultural  systems.  In Allelopathy: Current Trends and Future Applications (pp.  349–385). Springer Berlin Heidelberg. https://doi.org/10.1007/978-3-642-
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
30595-5_15
Jabran, Khawar. (2017a). Allelopathy: Introduction  and  Concepts  (pp.  1–12). https://doi.org/10.1007/978-3-319- 53186-1_1
Jabran, Khawar. (2017b). Sorghum Allelopathy for Weed Control (pp. 65– 75).  https://doi.org/10.1007/978-3-319- 53186-1_8
Jabran,  Khawar,  Mahajan,  G.,  Sardana,  V.,
Chauhan, B. S. (2015). Allelopathy for weed control in agricultural systems. In Crop  Protection .  Vol.  72,  pp.  (57–65). Elsevier Ltd. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2015.0
3.004.
Jahangeer,  A.,  (2011).  Response  of  maize
( Zea  mays L.)  to  foliar  application  of three plant water extracts. MSc Thesis, Department  of  Agronomy,  University of Agriculture, Faisalabad, Pakistan
Jamil,  M.,  Cheema,  Z.A.,  Mushtaq,  M.N., Farooq, M.  and Cheema, M.A. (2009). Alternative  control  of  wild  oat  and canary  grass  in  wheat  fields  by allelopathic plant water extracts. Agron. Sustain. Dev. , 29: 475–482
Khaliq A, Aslam Z and Cheema, ZA. 2002). Efficacy of different weed management strategies  in  mungbean  (Vigna  radiata L.). International
Journal
of
Agriculture & Biology 2, 237-
Khaliq,  A.,  A.  Matloob,  M.S.  Irshad,  A.
Tanveer  and  M.S.I.  Zamir,  (2010). Organic  weed  management  in  maize through integration of allelopathic crop residues.  Pak. J.  Weed  Sci.  Res. ,  16: 409–420
Khaliq,  A.,  Matloob,  A.,  Mahmood,  S., Wahid, A. (2013). Seed Pre-Treatments Help  Improve  Maize  Performance
Under  Sorghum  Allelopathic  Stress. Journal  of  Crop  Improvement , 27 (5),
586–605.
https://doi.org/10.1080/15427528.2013.
812051 Khodijah,  N.  (2015).  Hubungan  antara Perubahan Iklim dan Produksi Tanaman Padi di Lahan Rawa Sumatera  Selatan. Enviagro,  Jurnal Pertanian  Dan  Lingkungan , 8 (2),  83– 91. http://kalsel.litbang.
Kurniawan,  W.,  Has,  H.,    Rahman.  (2017).
Evaluasi  Awal  Efektivitas  Biochar pada  Produktivitas  Sorgum  BMR  di Lahan  Rawa  yang  Dipanen  Umur  75 Hari .  Seminar  Nasional  Peternakan  3 tahun  2017  Universitas  Hasanuddin Makassar .
Lehle  FR,  Putnam  AR.  1984.  Allelopathic potential of sorghum ( Sorghum bicolor ):  isolation  of  seed  germination inhibitors. J Chem Ecol 10:693
Leiss,  K.A.,  Y.H.  Choi,  R.  Verpoorte,  and G.L.K.  Peter.  (2011).  An  overview  of NMR-based  metabolomics  to  identify secondary plant compounds involved in host  plant  resistance.  Phytochem  Rev. 10:205-216.
Lestari,  T.,  Trikoesoemaningtyas,  S.W.
Ardie,  D.  Sopandie.  (2017).  Peranan fosfor  dalam  meningkatkan  toleransi tanaman  sorgum  terhadap  cekaman aluminium. J. Agron. Indonesia 45:43- 48.
Maas,  A.  (2002).  Lahan  rawa  sebagai  lahan pertanian masa depan. Prosiding
Seminar  Nasional  Pertanian  Lahan
Kering  dan  Lahan  Rawa.  Banjarbaru, 18–19 Desember 2002. P usat
Penelitian  Sosial  Ekonomi  Pertanian , Bogor. hlm. 9-19.
Maqbool,  N.,  Wahid,  A.,  Farooq,  M.,
Cheema,  Z.  A.,    Siddique,  K.  H. (2013).  Allelopathy  and  abiotic  stress interaction in crop plants. In Allelopathy: Current Trends and Future  Applications (pp.  451–468). Springer Berlin Heidelberg . https://doi.org/10.1007/978-3-642- 30595-5_19
Mariska, I. (2013). Metabolit Sekunder: Jalur pembentukan dan kegunaannya. http://biogen.litbang.deptan.go.id/index .php/2013/08/metabolit-sekunder-jalur- pembentukan-dan-kegunaannya.
Meliala, M. G., , T.,  Sopandie, D. D. (2017).
Keragaan  dan  Kemampuan  Meratun Lima Genotipe Sorgum. Jurnal Agronomi Indonesia , 45 (2), 154.
https://doi.org/10.24831/jai.v45i2.1239
1
Momongan,  J.  D.,  Trikoesoemaningtyas,  T.,
Wirnas,  D.,    Sopandie,  D.  D.  (2019). Potensi Hasil dan Toleransi Galur-galur Inbrida  Sorgum  pada  Tanah  dengan Hara  Fosfor  Rendah. Jurnal  Agronomi Indonesia.
47(1), 39–46. https://doi.org/10.24831/jai.v47i1.2262
9.
Muliani, Y.(2013). Karakter biokimia tanaman  kedelai  yang  berperan  dalam resistensi terhadap lalat bibit
Ophiomyia  phaseoli  Tryon.  CEFARS: Jurnal  Agribisnis  dan  Pengembangan Wilayah 4(2):31-39.
Nabavi,  S.  M.,  Šamec,  D.,  Tomczyk,  M., Milella,  L.,  Russo,  D.,  Habtemariam, S.,  Suntar,  I.,  Rastrelli,  L.,  Daglia,  M., Xiao,  J.,  Giampieri,  F.,  Battino,  M., Sobarzo-Sanchez,  E.,  Nabavi,  S.  F., Yousefi,  B.,  Jeandet,  P.,  Xu,  S., Shirooie, S. (2020). Flavonoid
biosynthetic pathways in plants: Versatile targets for metabolic engineering. In Biotechnology
Advances (Vol.  38).  Elsevier  Inc. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.20 18.11.005
Namdeo,  A.G.  (2007).  Review  article:  plant cell  elicitation  for  production  of secondary metabolites. Pharmacognosy Reviews 1(1):69-79.
Narwal,  S.  S.,    Haouala,  R.  (2013).  Role  of allelopathy  in  weed  management  for sustainable  agriculture.  In Allelopathy: Current Trends and Future Applications (pp.  217–249).  Springer Berlin Heidelberg. https://doi.org/10.1007/978-3-642- 30595-5_10
Netzly  DH,  Butler  LG.  (1986).  Roots  of sorghum exudates hy- drophobic droplets  containing  biologically  active compo- nents. Crop Sci 26:775–778
Nicollier, G.  F., Pope, D.  F.,  Thompson,  A.
C.  (1983).  Biological  Activity  of Dhurrin  and  Other  Compounds  from Johnson Grass ( Sorghum halepense ). In J. Agric. Food Chem .
Nielsen,  L.  J.,  Stuart,  P.,  Pičmanová,  M., Rasmussen,  S.,  Olsen,  C.  E.,  Harholt, J., Møller, B. L.,  Bjarnholt, N. (2016). Dhurrin  metabolism  in  the  developing grain  of Sorghum  bicolor (L.)  Moench investigated  by  metabolite  profiling and  novel  clustering  analyses  of  time- resolved  transcriptomic  data.  In BMC Genomics .  Vol.  17,  (1). BioMed Central Ltd.
https://doi.org/10.1186/s12864-016- 3360-4
Nimbal, C. I., Pedersen, J. F., Yerkes, C. N.,
Weston,  L.  A.,    Weller,  S.  C.  (1996).

## DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
Phytotoxicity  and  Distribution  of Sorgoleone in Grain Sorghum
Germplasm.
Nimbal, C. I., Yerkes, C. N., Weston,  L.  A.,
Weller,  S.  C.  (1996).  Herbicidal Activity  and  Site  of  Action  of  the Natural Product Sorgoleone 1.
Nofiani,  R.  (2008).  Artikel  ulas  balik:
Urgensi  dan  mekanisme  biosintesis metabolit sekunder mikroba  laut. Jurnal Natur Indonesia 10(2):120-125.
Nornasuha,  Y.,    Ismail.  (2017).  Sustainable Weed  Management  Using  Allelopathic Approach.  In Malays.  Appl.  Biol .  Vol. 46, (2).
Pabendon,  M.,  Aqil,  M.,  Mas’ud,  S.  (2012). Kajian  Sumber  Bahan  Bakar  Nabati Berbasis Sorgum Manis Iptek Tanaman Pangan Vol 7 No 2 .
Pabendon, M. B., Mas’ud, S., Sarungallo, R.
S.,    Nur,  A.  (2012).  Penampilan
Fenotipik dan Stabilitas Sorgum Manis untuk Bahan Baku Bioetanol. Penelitian Pertanian Tanaman
Pangan.
Pujiharti,  Y.  (2017).  Peluang  Peningkatan
Produksi  Padi  di  Lahan  Rawa  Lebak
Lampung. Jurnal Penelitian dan Pengembangan  Pertanian ,  36  (1),  13– 20.
https://doi.org/10.21082/jp3.v36n1.201
7.p13-20
Purnomohadi, M. (2006). Potensi Penggunaan Beberapa Varietas Sorgum
Manis (Sorghum  bicolor (L.)  Moench) Sebagai  Tanaman  Pakan. Berk.  Penel. Hayati .
Puspitasari,  W.,  S.  Human,  D.  Wirnas, Trikoesoemaningtyas.
(2012).
Evaluating genetic variability of
sorghum  mutant  lines  tolerant  to  acid soil. Atom Indonesia 38:83-88.
Rasmussen,  J.  A.,  Hejl,  A.  M.,  Einhellig,  F. A.,    Thomas,  J.  A.  (1992).  Sorgoleone from root exudate inhibits mitochondrial  functions. Journal  of Chemical Ecology , 18, 197–207.
Rehman,  A.,  Z.A.  Cheema,  A.  Khaliq,  M.
Arshad  and  S.  Mohsan,  (2010). Application of sorghum, sunflower and rice  water  extract  combinations  helps in  reducing  herbicide  dose  for  weed management in rice. Int. J. Agric. Biol., 12: 901–906
Ridho  Djafar,  Z.  (2015).  Pengembangan  dan Pemanfaatan  Potensi  Lahan  Rawa untuk  Meningkatkan  Kesejahteraan Masyarakat.  In Prosiding  Seminar Nasional Lahan Suboptimal .
Rosati, V. C., Quinn, A. A., Fromhold, S. M.,
Gleadow, R.,  Blomstedt, C. K. (2019). Investigation  into  the  role  of  DNA methylation in cyanogenesis in sorghum ( Sorghum bicolor L.
Moench). Plant  Growth  Regulation . https://doi.org/10.1007/s10725-019- 00489-z
Ruminta,  Wahyudin,  A.,    Ramdani,  A.
(2018). Respon Hasil Tanaman Sorgum
(Sorghum bicolor L. Moench) Terhadap  Pupuk  Organik  Cair  dan Jarak Tanam di Jatinangor Jawa Barat. Vol. 22, (2).
Saniaty,  A.,  Trikoesoemaningtyas,    Wirnas,
D. (2016). Keragaan Karakter
Morfologi  dan  Agronomi  Galur-Galur Sorgum pada Dua Lingkungan Berbeda. J.  Agron.  Indonesia , 44 (3), 271–278.
Sene  M,  Gallet  C,  Dore  T.  (2001).  Phenolic compounds  in  a  Sahelian  sorghum
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
(Sorghum  bicolor)  genotype  (CE145-
66)  and  associated  soils. J  Chem  Ecol 27:81–92
Setyorini,  S.  D.,    Yusnawan,  E.  (2016). Peningkatan Kandungan Metabolit Sekunder  Tanaman  Aneka  Kacang sebagai Respon Cekaman Biotik.
Sherly, A. P., Sunyoto, Kamal, M.,  Hidayat,
K.  F.  (2015).  Pengaruh  Kerapatan
Tanaman  Terhadap  Pertumbuhan  dan Hasil Beberapa Varietas Sorgum ( Sorghum  bicolor (L.)  Moench).  In Jurnal Agrotek Tropika . Vol. 3, (1).
Silalahi,  M.  (2017).  Boesenbergia  rotunda (L.).  Mansfeld:  Manfaat  dan  Metabolit Sekundernya.  In Jurnal  EduMatSains . Vol. 1, (2).
Singh,  H.  P.,  Batish,  D.  R.,    Kohli,  R.  K. (1999). Autotoxicity: Concept, organisms, and ecological significance. In Critical  Reviews  in  Plant  Sciences . Vol. 18, (6), pp. 757–772). https://doi.org/10.1080/0735268999130 9478
Singh,  H.  P.,  Batish,  D.  R.,    Kohli,  R.  K.
(2001). Allelopathy in agroecosystems: An  overview.  In Journal  of  Crop Production .  Vol.  4,  (2),  pp.  1–41). https://doi.org/10.1300/J144v04n02_01
Singh,  H.  P.,  Batish,  D.  R.,    Kohli,  R.  K. (2003).  Allelopathic  interactions  and allelochemicals:  New  possibilities  for sustainable  weed  management.  In Critical Reviews in Plant Sciences Vol. 22,  (3–4),  pp.  239–311.  CRC  Press LLC. https://doi.org/10.1080/713610858
Sirappa, M. P. (2003). Prospek Pengembangan  Sorgum  di  Indonesia sebagai  Komoditas  Alternatif  untuk Pangan,  Pakan,  dan  Industri. Jurnal
Litbang Pertanian , 22 (4).
Suarni,  S.  (2017).  Peranan  Sifat  Fisikokimia
Sorgum  dalam  Diversifikasi  Pangan dan Industri serta Prospek
Pengembangannya. Jurnal  Penelitian dan  Pengembangan  Pertanian , 35 (3),
99.
https://doi.org/10.21082/jp3.v35n3.201 6.p99-110.
Subagio, H., Aqil, M. (2013). Pengembangan Produksi  Sorgum  di  Indonesia.  In Seminar  Nasional  Inovasi  Teknologi Pertanian .
Sudana,  W.  (2005).  Potensi  dan  Prospek
Lahan Rawa Sebagai  Sumber Produksi Pertanian. Analisis Kebijakan Pertanian , 3 (2), 141–151.
Sudaryanto, D. (2009). Peningkatan Produksi Padi di Lahan Lebak Sebagai Alternatif dalam  Pengembangan  Lahan  Pertanian ke  Luar  Pulau  Jawa Jurnal  Sains  dan Teknologi Indonesia Vol. 11 No. 1.
Suminar, R., , S., Purnamawati, D. H. (2018).
Pertumbuhan  dan  Hasil  Sorgum  di Tanah  Latosol  dengan  Aplikasi  Dosis Pupuk  Nitrogen  dan  Fosfor  yang Berbeda. Jurnal  Agronomi  Indonesia ,
45 (3),
271.
https://doi.org/10.24831/jai.v45i3.1451 5
Sungkono,  Trikoesoemanigntyas,  D.  Wirnas, D.  Sopandie,  S.  Human  dan  M.A. Yudiarto. (2009). Pendugaan parameter genetik  dan  seleksi  galur  mutan Sorgum (Sorghum bicolor (L.)
Moench)  di  tanah  masam. J.  Agron. Indonesia 37 (3):220-225.
Suparwoto, S., Waluyo, W. (2019). Budidaya dan  Adaptasi  Varietas  Unggul  Baru Padi Pada Lahan Rawa Lebak
Sumatera  Selatan. Jurnal  Penelitian

## DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
dan  Pengembangan  Pertanian , 38 (1), 13–22. https://doi.org/10.21082/jp3.v38n1.201 9.p13-22.
Suprianto,  H.,  E.  Ravaie,  S.G.  Irianto,  R.H.
Susanto,  B.  Schultz,  F.X.  Suryadi, A.V.D. Eelaart. (2010). Land and water management of tidal lowlands:
Experiences in Telang and Saleh, South
Sumatra. Irrig. Drain. 59:317-335. Suryana. (2016). Potensi Peluang
Pengembangan  Usaha  Tani  Terpadu Berbasis  Kawasan  di  Lahan  Rawa. Jurnal  Penelitian  dan  Pengembangan Pertanian , 35(2), 57–68. https://doi.org/10.21082/jp3.v35n2.201
6.p57-68
Susilawati,  A.,  Nursyamsi,  D.,  Syakir,  M.
(2016). Optimalisasi Penggunaan Lahan Rawa Pasang Surut Mendukung Swasembada  Pangan  Nasional.  In Jurnal Sumberdaya Lahan Vol. 10 No.
1.
Susilowati,  H.  S.,  Saliem,  P.  H.,    (2014).
Perdagangan  Sorgum  di  Pasar  Dunia dan Asia serta Prospek Pengembangannya di Indonesia.
Inovasi Teknologi dan Pengembangan . Svensson,  L.,  Sekwati-Monang,  B.,  Lutz,  D. L., Schieber, R.,  Gänzle, M. G. (2010). Phenolic  acids  and  flavonoids  in nonfermented and fermented red
sorghum ( Sorghum bicolor (L.) Moench). Journal  of  Agricultural  and Food  Chemistry , 58 (16),  9214–9220. https://doi.org/10.1021/jf101504v
Tang, C.-S., Cai, W.-F., Kohl, K., Nishimoto,  R.  K.  (1994). Plant  Stress and Allelopathy (pp. 142–157). https://doi.org/10.1021/bk-1995-
0582.ch011
Taylor,  J.  R.  N.,  Belton,  P.  S.,  Beta,  T.,
Duodu,  K.  G.  (2014).  Increasing  the utilisation  of  sorghum,  millets  and pseudocereals:  Developments  in  the science of their phenolic phytochemicals,  biofortification  and protein  functionality.  In Journal  of
Cereal  Science .  Vol.  59,  (3),  pp.  257– 275. Academic Press. https://doi.org/10.1016/j.jcs.2013.10.00 9
Tesso, T.T., L.E. Claflin, and M.R. Tuinstra. (2005).  Analysis  of  stalk  rot  resistance and  genetic  diversity  among  drought tolerant  sorghum  genotypes. Crop  Sci. 45: 645-652.
Tibugari,  H.,  Chiduza,  C.,  Mashingaidze,  A. B.,    Mabasa,  S.  (2019).  Quantification of  sorgoleone  in  sorghum  accessions from  eight  southern  African  countries. South  African  Journal  of  Plant  and Soil , 36 (1), 41–50. https://doi.org/10.1080/02571862.2018.
1469794
Tibugari,  H.,  Manyeruke,  N.,  Mafere,  G., Chakavarika,  M.,  Nyamuzuwe,  L., Marumahoko,  P.,    Mandumbu,  R. (2019).  Allelopathic  effect  of  stressing sorghum  on  weed  growth. Cogent Biology , 5 (1). https://doi.org/10.1080/23312025.2019. 1684865
Tongma, S., Kobayashi, K., Usui, K. (2001). Allelopathic activity of Mexican sunflower [ Tithonia diversifolia
(Hemsl.) A. Gray] in soil under natural field  conditions  and  different  moisture conditions. Weed Biology and
Management , 1 , 115–119.
Trikoesoemaningtyas, D. Wirnas, E.L. Saragih,  E.P.  Rini,  M.  Sari,  S.

## DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
Marwiyah, D. Sopandie. (2017). Kendali genetik karakter morfologi dan agronomi  pada  tiga  populasi  sorghum [Sorghum  bicolor  (L.)  Moench.]. J. Agron. Indonesia 45:285-291.
Uddin, M. R., Min, S. K., Kim, J. D., Park, S. U.,    Pyon,  J.  Y.  (2012).  Sorgoleone,  a sorghum root exudate: Algicidal activity  and  acute  toxicity  to  the ricefish Oryzias latipes. Aquatic Botany , 98 (1), 40–44. https://doi.org/10.1016/j.aquabot.2011.
12.008
Uddin, M. R., Thwe, A. A., Kim, Y. B., Park, W. T., Chae, S. C.,  Park, S. U. (2013). Effects  of  Jasmonates  on  Sorgoleone Accumulation and Expression of Genes for Sorgoleone Biosynthesis in Sorghum  Roots. Journal  of  Chemical Ecology , 39 (6), 712–722.
https://doi.org/10.1007/s10886-013- 0299-7
Uddin,  R.,  Won,  O.  J.,  Pyon,  J.  Y.,  (2010). Herbicidal Effects and Crop Selectivity of  Sorgoleone,  a  Sorghum  Root Exudate  under  Greenhouse  and  Field Conditions  Sorgoleone.  In Kor.  J. Weed Sci . Vol. 30 (4).
Umakanth,  A.  V.,  Kumar,  A.  A.,  Vermerris, W.,  Tonapi,  V.  A.  (2018).  Sweet sorghum  for  biofuel  industry.  In Breeding  Sorghum  for  Diverse  End Uses (pp. 255–270). Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-08- 101879-8.00016-4
Wazir, I., M. Sadiq, M.S. Baloch, I.U. Awan, E.A.  Khan,  I.H.  Shah,  M.A.  Nadim, A.A.  Khakwani  and  I.  Bakhsh,(2011). Application of bio- herbicide alternatives  for  chemical  weed  control
in rice. Pak. J. Weed Sci. Res. , 17: 245– 252
Weston,  L.  A.  (1996).  Utilization  of Allelopathy  for  Weed  Management  in Agroecosystems.
Weston,  L.  A.,  Harmon,  R.,  Mueller,  S.
(1989). Allelopathic Potential of Sorghum Sudangrass Hybrid (SUDEX) 1.  In Journal  of  Chemical  Ecology . Vol. 15, (6).
Weston,  L.A.  S.  Duke  D.  O,  (2003).  Weed and  crop  allelopathy.  Crit.  Rev. Plant Sci ., 22: 367–389
Won, O. J., Uddin, M. R., Park, K. W., Pyon,
J.  Y.,    Park,  S.  U.  (2013).  Phenolic compounds  in  sorghum  leaf  extracts and  their  effects  on  weed  control. https://www.researchgate.net/publicatio n/235008797
Yasin,  M.  (2013).  Kajian  Pengembangan Tanaman  Jagung  pada  Lahan  Rawa Lebak  di  Kalimantan  Selatan.  In Seminar Nasional Serealia .
Zegada-Lizarazu  W,  Monti.  A.  (2012).  Are we ready to cultivate sweet sorghum as a  bioenergy  feedstock  A  review  on field  management  practices. Biomass
Bioenergy 2012;40:1– 12https://doi.org/10.1016/j.biombioe.0 1.048. Zulhilmi, S., Surya, N. W. (2012). Pertumbuhan dan Uji Kualitatif
Kandungan  Metabolit  Sekunder  Kalus
Gatang  ( Spilanthes  acmella Murr.) dengan Penambahan PEG untuk
Menginduksi  Cekaman  Kekeringan.  In Jurnal  Biologi  Universitas  Andalas  (J. Bio. UA.) Vol. 1, (1).
Tabel 1. Alelokimia pada sorgum yang telah dilaporkan
Alelokimia Pustaka Sorgoleone Netzly  dan  Butler  (1986),  Czarnota et  al., (2003),  Jabran  dan  Farooq  (2013a), Tibugari,  Chiduza, et  al., (2019),  Uddin, et al., (2013), Einhellig et al., (1993), Cook et al., (2006), Gimsing et al., (2009), Nimbal,
Yerkes, et al., (1996), Dayan et al., (2010),
Jabran,  (2017a),  Alsaadawi  dan  Dayan
(2009),  Bajwa et  al., (2013a),  Maqbool et al., (2013),  Jabran,  (2017b),  Rasmussen et al., (1992), Nimbal et al., (1996). 5-ethoxysorgoleone, 2,5-dimethoxysorgoleone Czarnota et al., (2003) Sorgoleone (2-hydroxy-5-methoxy-3-[(80Z,110Z)- 80,110,140- pentadecatriene]-p-benzoquinone) Netzly  dan  Butler  (1986),  Nimbal et  al., (1996) Dhurrin, p-hydroxybenzaldehyde Haskins dan Gorz (1984), Jabran dan Farooq (2013a), Bajwa et al., (2013a), Maqbool et al., (2013), Nimbal et al., (1996). Vanillic acid, p-hydroxybenzoic acid, p- hydroxybenzaldehyde, p-coumaric acid, Ferulic acid Sene et al., (2001), Jabran dan Farooq (2013a), Uddin et al., (2010).
Tabel 2. Pengaruh alelopati dari alelokimia sorgum pada gulma dan tanaman Alelokimia Sasaran gulma atau tanaman Pengaruhnya pada Pustaka Sorgoleone A. retroflexus, E. crus- galli, Setaria viridis (L.) P. Beauv., Abutilon theophrasti Medik., Datura stramonium L., D. sanguinalis Penghambatan pertumbuhan Einhellig dan Souza (1992) Sorgoleone Jagung, kacang polong, kedelai Penghambatan dalam fotosintesis dan fungsi mitokondria Einhellig et al., (1993); Rasmussen et al., (1992) Sorgoleone Kedelai, jagung Mengurangi penyerapan air dan aktivitas H + -ATPase di akar Hejl dan Koster (2004) Sorgoleon, dhurrin, vanillic acid, juglone, sorgolactone Gandum, jagung Pengembangan dinding sel, stimulasi sintesis protein dan enzim aktivasi anti-oksidatif Netzley dan Butler (1986), Nimbal et al., (1996),
Jahangeer (2011)

## Tabel 3. Pengaruh ekstrak alelopatik sorgum terhadap gulma dan hasil tanaman
Ekstrak alelopati Tanaman Gulma yang dikendalikan Pengendalian gulma Meningkatkan hasil dibanding kontrol (%) Pustaka Menurunkan kepadatan gulma (%) Menurunkan bobot gulma kering (%) Sorgum Gandum Fumaria indica, Phalaris minor, Rumex dentates, Chenopodium album 21,6-44,2 35,4-49,0 11,0-20,0 Cheema dan Khaliq (2000) Kapas Trianthema portulacastrum, Cynodon dactylon, Cyperus rotundus 47,0 29,0-40,1 17,7-59,0 Cheema et al., (2002) Kacang hijau Cyperus rotundus, Chenopodium album, Convolvulus arvensis 17,5-31,6 23,7-59,6 4,0-17,7 Cheema et al., (2001) Padi Echinocloa colonum, Cyperus rotundus, Cyperus iria 40,4 12,5 Wazir et al. (2011) Sorgum + bunga matahari Sorgum + kubis
Sorgum + tembakau Avena fatua, Phalaris minor 10,0-62,0 18,55-62,0 Jamil et al., (2009) Sorgum Gandum Phalaris minor, Chenopodium album 48,0-56,0 16,0-17,0 Cheema dan Khaliq (2000) Sorgum Kapas Trianthema portulacastrum, Convolvulus arvensis, Cynodon dactylon, Cyperus rotundus 5,0-96,6 69,2-119,3 Cheema et al., (2000) Bunga matahari + padi + kubis Jagung Trianthema portulacastrum 60,1 41,0 Khaliq et al., (2010) Sorgum + kapas Jagung Trianthema portulacastrum, Convolvulus arvensis 92,0 23,7 Iqbal et al., (2007) Sorgum Jagung 22,0-42,0 Jahangeer (2011) Sorgum Kapas Trianthema portulacastrum 47,0 29,0 45,0 Cheema et al., (2002c) Sorgum Gandum Fumariaindica Phalarisminor 21,6 35,5 11,0 Cheema dan Khaliq, (2000)
DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
Tabel 3. Lanjutan........ Ekstrak alelopati Tanaman Gulma yang dikendalikan Pengendalian gulma Meningkatkan hasil dibanding kontrol (%) Pustaka Menurunkan kepadatan gulma (%) Menurunkan bobot gulma kering (%) Sorgum Gandum Rumexdentatus Chenopodium album 23,1 38,7 15,0 Cheema dan Khaliq, (2000) Sorgum Kacang hijau Convolvulus arvensis Cyperus rotundus Chenopodium album 17,54 23,73 8,23 Cheema et al., (2002c) Sorgum Kapas Convolvulus arvensis Trianthema portulacastrum 32,6 17,7 Cheema et al., (2002a, 200b) Sorgum Kapas C .rotundus . Cynodon dactylon 35,2 59,0 Sorgum + bunga matahari + padi Padi Dactyloctenum aegyptium Echinocloa crusgalli Cyperus iria Menurunkan Echinocloa 18 %, Cyperus 10% dan Dactyloctenum 17% 29 Rahman et al., 2010 Sorgum Padi Dactyloctenum aegyptium Cyperus rotundusL. Cyperus iria Echinocloa crusgalli Echinocloa colonum 40,45 12,5 Wazir et al., 2011 Sorgum Kacang hijau Convolvulus arvensis Cyperus rotundus Chenopodium album 59,62 4 Khaliq et al., 2002 Sorgum Gandum Phalaris minor Avena fatua Phalaris minor 23-41% Avena fatua 21- 41% 39 Jamil et al., 2009 Sorgum Gandum Phalaris minor Avena fatua Phalaris minor 13-28% Avena fatua 28- 32% 47,5 Jamil et al., 2009 Sorgum Gandum Phalaris minor Avena fatua Phalaris minor 30-35% Avena fatua 24- 39% 62 Jamil et al., 2009

## DOI: 10.32663/ja.v%vi%i.1215
Gambar 1. Diagram alir pemanfaatan alelopati untuk produksi tanaman berkelanjutan
 Membunuh tanaman
 Toksisitas bukan target
 Bahaya terhadap kesehatan manusia
 Beberapa tidak dapat terurai secara hayati
 Menyebabkan polusi
 Mempromosikan ketahanan genetik
 Berdampak tumpang sari yang tidak baik (Hussain et al., 2017)
 Menekan pertumbuhan gulma  Tidak ada ancaman toksisitas
 Tidak ada bahaya kesehatan
 Ramah lingkungan
 Terurai secara hayati
 Tidak ada ancaman perkembangan resisten
 Mempromosikan sistem tumpang sari baru baik
(Hussain et al., 2017) Herbisida Sintetik Herbisida Bioherbisida ( alelopati/alelokimia)
Gulma Masalah serius pada lingkungan dan manusia Dunia : upaya mengurangi ketergantungan herbisida sintetik Ancaman
ketahanan  pangan
Jumlah penduduk Pertanian modern
Pemanfaatan alelopati (alelopati/alelokimia)
 Rotasi tanaman
 Pemanfaatan tanaman penutup tanah
 Sistem tumpang sari
 Penggunaan mulsa
 Pemanfaatan limbah tanaman
 Pemanfaatan
ekstrak air ( sorgaap ).
Bajwa et al., (2013b), bertujuan mengeksplorasi alelopati untuk :  pengelolaan hama  mitigasi cekaman  peningkatan produksi Pengelolaan gulma ramah lingkungan (Jabran et al., 2015).
Cheng dan Cheng, (2015), cara interaksi tanaman penerima dan pemberi.
Efek positif :  pengelolaan pertanian
 pengendalian gulma
 perlindungan tanaman
 penanaman kembali
Efek negatif :
 autotoksisitas
 penyakit tanah
 invasi biologis
Caranya :
 Melepaskan senyawa alelokimia ke lingkungan melalui dekomposisi, pencucian (oleh air hujan), volatilisasi dan eksudat akar.
Bukti manfaat alelokimia sorgum :  Tabel 3 (pengaruh ekstrak sorgum = pengendalian gulma dan peningkatan hasil)  Pertanian organik (meningkatkan hasil dan pengelolaan organik gulma, hama serangga, dan penyakit = melindungi lingkungan dari bahan kimia)  Ekstrak air alelopatik + dosis herbisida rendah =strategi pengelolaan gulma berkelanjutan (Cheema et al., 2013).  Meskipun, alelopatik tidak memberikan pengendalian gulma lengkap, namun dapat mengelola gulma pada tingkat ambang ekonomi = ini dapat menghilangkan atau meminimalkan herbisida = mengatasi masalah utama yang terkait herbisida (Narwal dan Haouala, 2013).  Dengan demikian cita-cita produksi secara berkelanjutan bisa terwujud