## MODEL KINETIKA EKSTRAKSI FLAVONOID DARI BAYAM MERAH
( Alternanthera amoena voss )

## EXTRACTION KINETICS MODEL OF FLAVONOID FROM  RED SPINACH (Alternanthera amoena voss)
Iriany, Irsa Septiawan*, Salwa Jody Gustia Departemen Teknik Kimia, Fakultas Teknik, Universitas Sumatera Utara Pusat Unggulan Produk Natural Berbasis Teknologi Jl. Almamater Kampus USU Medan 20155, Indonesia *Email : irsa.septiawan@yahoo.com

## Abstrak
Bayammerah ( Alternanthera amoena voss ) mengandung antara  lain  vitamin, protein,  dan flavonoid. Flavonoid adalah senyawa polifenol yang diketahui memiliki sifat sebagai penangkap radikal bebas. Tujuan penelitian ini adalah mengetahui laju kinetik perpindahan massa flavonoid dari bayam merah. Ekstraksi merupakan salah satu cara untuk mengambil flavonoid yang terkandung dalam bahan padatan dengan bantuan pelarut. Perpindahan massa pada ekstraksi padat cair terjadi secara difusi. Koefisien perpindahan massa (K C ) ditentukan untuk mengetahui laju perpindahan massa flavonoid dari padatan. Pada penelitian ini, diamati pengaruh temperatur terhadap ekstraksi flavonoid dari bayam merah dengan pelarut air. Ekstraksi dilakukan pada temperatur 50 o C, 60 o C, dan 70 o C. Penentuan kadar total flavonoid, koefisien  perpindahan  massa,  dan  aktivitas  antioksidan  menggunakan  spektrofotometri  FT-IR  dan spektrofotometri UV-VIS. Penelitian  ini  menunjukkan  bahwa peningkatan  waktu  ekstraksi dan suhu ekstraksi  meningkatkan  perolehan  kadar  flavonoid  dan  rendemen  ekstrak.Persamaan  koefisien perpindahan massa pada penelitian ini adalah K = 3078645 𝑒 45,0561/𝑅𝑇 . Antioksidan pada bayam merah termasuk dalam golongan antioksidan yang sangat kuat.
Kata kunci : Antioksidan, bayam merah,ekstraksi, flavonoid, koefisien perpindahan masa

## Abstract
Red  spinach  ( Alternanthera  amoena  vos s)  contains  vitamins,  protein,  and  flavonoids.  Flavonoid  is polyphenol  compounds  having properties as a free radical  catcher. The purpose of this research  is to obtain the kinetic rate of flavonoid mass transfer from red spinach. Extraction is one of the way to take flavonoids contained in solids with the assist of solvents. Mass transfer in liquid solid extraction occurs by diffusion. The determination of mass transfer coefficient (K C ) is to conduct the rate of mass transfer of flavonoids from solids. In this study, the effect of temperature on the extraction of flavonoids from red spinach with water solvent is observed. The temperatures extraction in this research are of 50°C, 60°C,  and  70°C  respectively.  Determinationof  total  flavonoid,  mass  transfer  coefficient,  and antioxidant activity carried out using FT-IR Spectrophotometry and UV-VIS Spectrophotometry. This study concluded that the increase in extraction time and temperature will increase the total content of flavonoids  and  extract  rendement.Mass  transfer  coefficient  equation  in  this  study  is  K  =  3078645 𝑒 45,0561/𝑅𝑇 . Antioxidants in red spinach are included in the group of very strong antioxidants.
Keywords : Antioxidant, red spinach, extraction, flavonoid,mass transfer coefficient

## Pendahuluan
Berkembangnya pengetahuan manusia dalam  pembuatan  berbagai  bahan  makanan  dan bahan.  Untuk  mengurangi  pemakaian  bahan kimia  sebagai  dasar  pembuatannya  maka diperlukan bahan alami yang banyak mengandung  nilai  gizi  dan  vitamin,  seperti sayur-sayuran  dan  buah-buahan.  Salah  satu sayur-sayuran  yang  mengandung  banyak  nilai gizi adalah bayam  merah. Namun bayam merah kerap  dimasak  dengan  suhu  tinggi  yang menyebabkan senyawa antioksidan yang terkandung di dalam bayam merah dapat rusak.
Bayam merah ( Alternanthera amoena voss ) mengandung  antara  lain  vitamin,  protein,
karbohidrat,  mineral,  zat  besi,  magnesium, mangan,  kalium,  kalsium,  dan  flavonoid. Vitamin  yang  terkandung  dalam  bayam  merah adalah  vitamin  A,  vitamin  C,  dan  vitamin  E. Kandungan  senyawa  flavonoid  pada  bayam merah  lebih  tinggi dibandingkan dengan  bayam hijau.  Adanya  kandungan  senyawa  metabolit sekunder  seperti  flavonoid  pada  bayam  merah dapat dijadikan sebagai sumber antioksidan yang dapat menghambat radikal bebas [26].
Antioksidan  adalah  molekul  yang  dapat menetralkan  radikal  bebas  dengan  menerima atau menyumbangkan elektron untuk mengeliminasi radikal bebas yang tidak
berpasangan  [13].  Secara  kimia  senyawa antioksidan  adalah  senyawa  pemberi  elektron (elektrondonor).  Salah  satu  contoh  antioksidan adalah flavonoid . Flavonoid adalah golongan senyawa polifenol  yang  diketahui  memiliki  sifat  sebagai penangkap  radikal  bebas,  penghambat  enzim hidrolisis  dan  oksidatif,  dan  bekerja  sebagai antiinflamasi  [16].  Kadar  total  flavonoid  dapat ditentukan  dengan  cara  ekstraksi  padat  cair ( leaching ).
Ekstraksi  padat  cair  atau leaching merupakan perpindahan difusi komponen terlarut  dari  padatan  inert  ke  dalam  pelarut  [4]. Difusi  adalah  gerakan  suatu  kompone  nmelalui suatu  campuran  karena  suatu  rangsangan  fisika yang  berlangsung  dengan  suatu  kecepatan tertentu.  Perpindahan  massa  secara  difusi bergantung  pada  besarnya  gradien  konsentrasi. Gradien  konsentrasi  cenderung  menyebabkan terjadinya  gerakan  komponen  itu  ke  arah  yang menyamakan  konsentrasi  danmenghapuskan gradien.  Koefisien  perpindahan-massa  (K C ) didefinisikan sebagai laju perpindahan massa per satuan  luas  per  satuan  beda  konsentrasi. Beberapa  faktor yang dapat  mempengaruhi  laju ekstraksi  adalah  ukuran  padatan,  pelarut, temperatur, dan waktu kontak [25].
Penelitian-penelitian terdahulu tentang bayam  merah  hanya  sebatas pengujian aktivitas antioksidan.  Pengukuran  kadar  total  flavonoid pada bayam merah serta hubungan suhu ekstraksi dengan  koefisien  perpindahan  massa  pada ekstraksi  bayam  merah  belum  pernah  diteliti sebelumnya. Oleh karena itu, pada penelitian ini ingin  diketahui  kadar  total  flavonoid  dan hubungan suhu dengan nilai koefisien perpindahan massa pada ekstraksi bayam merah.

## Teori
Bayam  merah  merupakan  sayuran  yang telah lama dikenal dan dibudidayakan secara luas oleh  petani  di  seluruh  wilayah  Indonesia  [26]. Bayam  merah  memiliki  kandungan  saponin, flavonoida, tanin, dan vitamin seperti vitamin C dan vitamin E [17].
Antioksidan  merupakan  molekul  yang mampu  memperlambat  atau  mencegah  oksidasi dari  molekul  lain.  Oksidasi  adalah  reaksi  kimia yang mentransfer elektron dari substansi ke agen oksidasi. Reaksi oksidasi tersebut dapat menghasilkan radikal bebas, yang akan membentuk reaksi berantai  yang dapat merusak sel.  Antioksidan  akan  memutus  reaksi  berantai tersebut dan menghambat reaksi oksidasi [1].
Flavonoid  terdiri  dari  kelompok  gabungan polyphenolic yang memiliki struktur
benzopyrone dan  banyak  terdapat  di  bagian-
bagian  tumbuhan  [24].  Telah  diketahui  bahwa aktifitas  antioksidan  dari  tumbuhan  karena adanya senyawa fenol [20]. Flavonoid
mempunyai  bioaktivitas  sebagai  antialergi, antitumor, antioksidan, estrogenik, dan insektisida [10]. Flavonoida merupakan senyawa yang dapat larut dalam pelarut polar sepertietanol (EtOH),  metanol  (MeOH),  butanol  (BuOH), aseton,
dimetilsulfoksida
(DMSO),
dimetilformamida (DMF), air, dan lain-lain [15].
Gambar  1  menunjukkan  struktur  umum  dari flavonoid.

## Gambar 1. Rumus Struktur Umum Flavonoid
Ekstraksi merupakan suatu proses
pemisahan dari bahan padat maupun cair dengan bantuan  pelarut.  Pelarut  yang  digunakan  harus dapat  mengekstrak  substansi  yang  diinginkan tanpa  melarutkan  material  lainnya.  ekstraksi padat  cair  atau  leaching  merupakan  transfer difusi  komponen  terlarut  dari  padatan  inert  ke dalam pelarutnya. Proses ini bersifat fisik karena komponen  terlarut  kemudian  dikembalikan  lagi ke keadaan semula tanpa  mengalami perubahan kimiawi.  Ekstraksi  dari  bahan  padat  dapat dilakukan jika bahan yang diinginkan dapat larut dalam pelarut pengekstraksi [4]. Proses leaching sering  digunakan  untuk  mengekstrak  bagian tanaman  yang  mengandung  obat  seperti  akar, daun,  dan  batang  [12].  Faktor  penting  yang mempengaruhi leaching antara  lain  ukuran partikel, jenis pelarut, temperatur dan pengadukan [2].
Perpindahan  massa  pada  ekstraksi  padat cair  terjadi  secara  difusi.  Difusi  yaitu  gerakan suatu komponen melalui suatu campuran karena suatu  rangsangan  fisika  yang  berlangsung dengan  suatu  kecepatan  tertentu.  Perpindahan massa  secara  difusi  bergantung  pada  besarnya gradien konsentrasi. Gradien konsentrasi cenderung  menyebabkan  terjadinya  gerakan komponen  itu  ke  arah  yang  menyamakan konsentrasi  dan  menghapuskan  gradien.  Pada proses  ekstraksi  padat-cair  laju  perpindahan massa zat (N A ) terlarut ke pelarut dengan volume V  dapat  dihubungkan  dengan  suatu  koefisien perpindahan  massa  (K C ),  luas  permukaan  (A), dan perbedaan konsentrasi (C AS dan C A ), dimana C AS adalah  konsentrasi  jenuh  dan  C A adalah
konsentrasi  pada  waktu tertentu  [5].  Persamaan laju  perpindahan  massa  (N A )  dapat  dihitung menggunakan Persamaan 1.
N A A = K C (C AS – C A ) (1)
Persamaan  1  dapat  ditulis  ulang  menjadi Persamaan 2.
V d(C A ) dt = 𝑁 𝐴 = A K C (C AS − C A ) (2)
Persamaan  2  diintegrasikan dengan syarat batas dari t = 0 dan C A = 0 sampai t = t dan C A = C A sehingga diperoleh Persamaan 3.
∫ d(C A ) dt = A K C V C A C A0 ∫ dt t 0 ln C AS −C A C AS −C A0 =   − ( K C A V ) t (3)
Dengan  membuat  grafik  hubungan ln 𝐶 𝐴𝑆 −𝐶 𝐴 𝐶 𝐴𝑆 −𝐶 𝐴0 pada  sumbu  y  dan  t  pada  sumbu  x,  maka  K C sebagai koefisien perpindahan zat terlarut (A) ke pelarut  (B)  yang  diam  dapat  ditentukan. Hubungan  nilai  koefisien  perpindahan  massa dengan  suhu  dapat  dilihat  pada  persamaan Arrhenius [22].
K = A 𝑒 𝐸𝑎/𝑅𝑇 (4)
Linierisasi  Persamaan  4  menjadi  Persamaan  5 dan diasumsikan bahwa nilai K = K C
ln K C = ln A –Ea/RT (5)
Dari Persamaan 5 dibuat grafik hubungan antara ln  K C dan  1/T,  sehingga  nilai  A  dapat  dihitung dari intercept dan nilai Ea dari slope.

## Bahan dan Metode Alat
Alat  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini antara lain peralatan gelas, motor pengaduk, hot plate ,  dan  termometer  dan  alat  yang  digunakan untuk  analisis  adalah  spektrofotometri  UV- Visibel spektrofotometri FT-IR.

## Bahan
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah bayam merah, aquadest , kuersetin, DPPH (1,1-difenil-1-pikril-hidrazil), alumunium klorida (AlCl 3 ), Na-asetat, dan metanol.

## Prosedur Ekstraksi Bayam Merah
Sebanyak  25  gram  daun  bayam  merah dimasukkan  ke  dalam beaker glass  dan ditambahkan pelarut air sebanyak 500 ml. Motor
pengaduk dinyalakan lalu diekstraksi pada suhu 50 oC , 60 oC , dan 70 o C pada kecepatan pengadukan 300  rpm.  Setiap  5  menit  sampel  diambil sebanyak  10  ml  dan  ekstraksi  dibiarkan  sampai keadaan  setimbang  (konsentrasi  ekstrak  telah konstan).  Setelah  keadaan  setimbang  tercapai, hot plate dimatikan dan hasil ekstraksi dituang ke dalam beaker  glass dan  disaring  menggunakan kertas  saring.  Filtrat  yang  diperoleh  merupakan ekstrak dan residu yang tertahan di kertas saring dibuang.  Dihitung  konsentrasi  flavonoid  pada filtrat dengan analisa pada spektrofotometri UV- Visibel pada panjang gelombang 415 nm.

## Analisis
Analisis  yang  dilakukan  meliputi  analisis kualitatif  dan  analisis  kuantitatif.  Analisis kualitatif meliputi penentuan aktivitas antioksidan  metode  DPPH  [6]  dan  karakteristik FTIR flavonoid bayam merah. Analisa kuantitatif  meliputi  perhitungan  rendemen  dan kadar  flavonoid.  Rendemen  dihitung  dengan persamaan 6:
Rendemen = (M 2 / M 1 ) x 100% (6) Dimana  M 1 adalah  berat  bahan  baku  awal dan  M 2 adalah  berat  ekstrak  yang  didapat. Analisis  kuantitatif  dilakukan  menggunakan spektrofotometer uv-visible .  Ekstrak  yang  telah diencerkan  dimasukkan  ke  spektrofotometer, lalu  skala  absorbansinya  dibaca  pada  panjang gelombang  415  nm,  dan  dicatat.  Konsentrasi flavonoid  dihitung  dengan  grafik  kuersetin standar  absorbansi  vs  konsentrasi.  Untuk perhitungan koefisien perpindahan massa dilakukan sampling tiap 5 menit.

## Hasil dan Pembahasan

## Pengaruh Waktu Ekstraksi terhadap Kadar Total Flavonoid
Gambar 2 menunjukkan hubungan waktu ekstraksi  terhadap  konsentrasi  flavonoid  pada suhu  ekstraksi  50 o C,  60 o C,  dan  70 o C.  Pada Gambar  2  dapat  dilihat  bahwa  semakin  lama waktu ekstraksi maka konsentrasi flavonoid yang diperoleh  semakin  meningkat  dan  dalam  waktu tertentu  konsentrasi  flavonoid  dalam  pelarut  air tidak  bertambah  seiring  dengan  bertambahnya waktu  yang  disebabkan  kesetimbangan  padat- cair pada ekstraksi telah tercapai.
Hal  ini  disebabkan  karena  semakin  lama proses  ekstraksi,  maka  kontak  antara solvent dengan solute akan  semakin  lama  sehingga proses  pelarutan solute oleh solvent akan  terus terjadi sampai solvent jenuh dengan solute [21].
Setelah waktu tertentu, konsentrasi zat terlarut di dalam  padatan  dan  cairan  akan  mengalami kesetimbangan  sehingga  pertambahan  waktu
ekstraksi seterusnya  sudah  tidak  mempengaruhi konsentrasi zat terlarut [8].
Gambar 2. Hubungan Konsentrasi Flavonoid terhadap  Waktu  Ekstraksi  dengan  Variasi Suhu Ekstraksi
Pengaruh  Suhu  Ekstraksi  terhadap  Kadar Total Flavonoid
Dari hasil penelitian yang ditunjukkan pada Gambar  2,  dapat  dilihat  bahwa  semakin  tinggi suhu  ekstraksi  maka  semakin  tingg  ikadar  total flavonoid yang
didapat, dan waktu kesetimbangan semakin sedikit. Hal ini disebabkan  penggunaan  suhu  tinggi  untuk melakukan  ekstraksi  meningkatkan  kelarutan dari solute .  Suhu  tinggi  mampu  melepaskan senyawa solute yang  terikat  disebabkan  oleh rusaknya  unsur  –  unsur  sel,  menyebabkan semakin  banyak  senyawa  yang  dapat terekstrak [3].

## Koefisien Perpindahan Massa
Koefisien perpindahan massa dapat dihitung  melalui  hubungan  konsentrasi  dengan waktu yang dapat dinyatakan dengan Persamaan 3.  Hubungan  antara  waktu  ekstraksi  dengan
ln 𝐶 𝐴𝑆 −𝐶 𝐴 𝐶 𝐴𝑆 −𝐶 𝐴0 pada  suhu  ekstraksi  70 o C  dapat dilihat pada Gambar 3. Dengan membuat grafik hubungan antara ln 𝐶 𝐴𝑆 −𝐶 𝐴 𝐶 𝐴𝑆 −𝐶 𝐴0 pada sumbu y dan t pada  sumbu  x,  maka  koefisien  perpindahan massa (K C ) sebagai koefisien perpindahan massa zat terlarut  (A)  ke  pelarut  (B)  yang  diam  dapat dihitung  dari  slope  pada  Persamaan  3  yaitu
( K C A V ) ,  dimana  A  =  luas  permukaan  dan  V  = volume  pelarut.  Koefisien  perpindahan  massa untuk ekstraksi pada suhu 50 o C dan 60 o C dapat dihitung menggunakan cara yang sama.
Gambar 3. Hubungan 𝐥𝐧 𝑪 𝑨𝑺 −𝑪 𝑨 𝑪 𝑨𝑺 −𝑪 𝑨𝟎 dengan
Waktu Ekstraksi pada Suhu 70 o C
Hubungan  antara  suhu  ekstraksi  terhadap koefisien  perpindahan  massa  (Kc)  dapat  dilihat pada  Gambar  4.  Pada  suhu  ekstraksi  50 o C diperoleh nilai Kc sebesar 0,158 cm/s. Pada suhu ekstraksi 60 o C diperoleh  nilai  Kc sebesar 0,270 cm/s.  Pada  suhu  ekstraksi  70 o C  diperoleh  nilai K C sebesar 0,420 cm/s.

## Gambar 4. Hubungan Koefisien Perpindahan Massa dengan Suhu Ekstraksi
Dari  Gambar  4  terlihat  bahwa  nilai  K C semakin  besar  dengan  meningkatnya  suhu ekstraksi.  Hal  ini  disebabkan  semakin  tinggi suhu  ekstraksi  maka  semakin  banyak  senyawa yang  dapat  terekstrak.  Hal  ini  menyebabkan koefisien  perpindahan  massa  akan  semakin meningkat.Dari  Persamaan  3  dibuat  grafik hubungan antara ln K C dan 1/T, sehingga nilai A dapat  dihitung dari intercept dan nilai 𝐸𝑎 dapat dihitung dari slope. Hubungan antara ln Kc dan 1/T dapat dilihat pada Gambar 5.
Dari persamaan regresi linear dari Gambar 5  diperoleh  nilai  A  sebesar  3.078.645  dan  nilai 𝐸𝑎 sebesar  45,0561  J/mol.  Maka  Persamaan  5
dapat ditulis menjadi
K = 3078645 𝑒 45,0561/𝑅𝑇
(7)
0 10 20 30 0 10 20 30 40 50 60 K o n se n tr a si F la v o n o id (p p m ) Waktu  (menit) 50 60 70 y = -0.1011x R² = 0.979 -3.0 -2.5 -2.0 -1.5 -1.0 -0.5 0.0 0 10 20 30 ln (C AS - C A ) / (C AS - C AO ) t (menit) 0.0 0.2 0.4 0.6 40 50 60 70 80 K c (c m /s ) T ( o C)

## Gambar 5. Hubungan ln Kc dengan 1/T
Dari persamaan 7 dapat dilihat bahwa diperlukan energi aktivasi minimum sebesar 45,0561 J/mol agar  perpindahan  massa  dapat  terjadi  dengan faktor frekuensi sebesar 3.078.645.

## Pengaruh Suhu Ekstraksi terhadap Aktivitas Antioksidan
Gambar 6 menunjukkan hubungan aktivitas antioksidan dengan suhu ekstraksi, dimana pada suhu  ekstraksi  50 o C  memiliki  nilai  aktivitas antioksidan  sebesar  42,79%,  kemudian  pada suhu  ekstraksi  60 o C  menurun  menjadi  36,71%, dan  pada  suhu  ekstraksi  70 o C  naik  menjadi 45,97% dengan vitamin C sebagai kontrol positif atau pembanding.
Gambar  6.  Hubungan  Aktivitas  Antioksidan pada  Berbagai  Suhu  dengan    Kecepatan Pengadukan 300 rpm
Vitamin  C  digunakan  untuk  mengetahui seberapa kuat potensi antioksidan yang ada pada ekstrak. Apabila % aktivitas antioksidan sampel sama  atau  mendekati  nilai  aktivitas  antioksidan pembanding  maka  dapat  dikatakan  bahwa sampel  berpotensi  sebagai  salah  satu  alternatif antioksidan  [18].    Menurut  penelitian  yang dilakukan Scapin, dkk [9], hubungan temperatur dengan  IC 50 berbanding  terbalik,  dimana semakin  tinggi  temperatur  maka  nilai  IC 50 semakin  rendah  yang  mengakibatkan  aktivitas antioksidan semakin besar. Temperatur ekstraksi yang  semakin  tinggi  akan  meningkatkan
kelarutan solute sehingga  kandungan  senyawa antioksidan semakin tinggi [27]. Hasil penelitian yang  diperoleh  menunjukkan  fluktuasi,  hal  ini disebabkan karena terdapat senyawa penganggu yang  menghalangi  proses  penangkapan  radikal bebas. Adanya senyawa protein dan ekstrak yang tidak murni dapat menganggu proses penangkapan radikal bebas oleh senyawa fenolik atau flavonoid [7].
Nilai  aktivitas  antioksidan  dapat  dihitung berdasarkan  nilai  IC 50 .  Sampel  yang  bernilai IC 50 <50  ppm  memiliki  antioksidan  yang  sangat kuat, sampel yang bernilai 50-100 ppm memiliki aktivitas  antioksidan  yang  kuat,  sampel  yang bernilai  101-150  ppm  memiliki  aktivitas antioksidan sedang, sedangkan aktivitas antioksidan  lemah  dengan  IC 50 >  150  ppm  [11].
Maka  pada  hasil  penelitian  ini,  ketiga  sampel pada  suhu  ekstraksi 50 o C,  60 o C,  dan  70 o C memiliki aktivitas antioksidan yang sangat kuat.

## Hasil Analisa Spektrum FT-IR
Karakterisasi  FTIR  ( Fourier  Transform Infra Red)  flavonoid  terhadap  ekstraksi  bayam merah bertujuan untuk mengidentifikasi senyawa flavonoid yang terpadat dalam ekstraksi bayam  merah.  Karakteristik  FTIR  flavonoid terhadap  ekstraksi  bayam    merah  dapat  dilihat pada Gambar 7.
Gambar  7.  Karakteristik  FTIR  ( Fourrier Transform Infra Red ) Flavonoid dari Ekstraksi  Bayam Merah  Suhu  60 o C  dengan Kecepatan Pengadukan 300 rpm
Karakteristik  FTIR  di  atas  menunjukkan beberapa  puncak  serapan  ( peak )  kunci  yang dapat  mengindikasi  suatu  gugus  sebagai  cirri khusus  dari  suatu  senyawa.  Uji  FTIR  yang dilakukan  pada  ekstrak  bayam  merah  diperoleh puncak serapan kunci pada bilangan gelombang 3268,37 cm -1 (gugus O-H), 1637,29 cm -1 (gugus C=C  aromatik),  dan  558,34  (gugus  C-H aromatik) [23].
y = -5.4194x + 14.946 R² = 0.9985 -2.2 -1.8 -1.4 -1.0 -0.6 2.90 3.00 3.10 3.20 ln K c 1/T (K) (10 3 ) 15.77 42.80 36.72 45.97 0 10 20 30 40 50 Vitamin C Ekstrak Suhu 50 °C Ekstrak Suhu 60 °C Ekstrak Suhu 70 °C IC 50
Gugus  -  gugus  fungsi  seperti  O-H,  C-H alifatik,  C-H  aromatik,  C=C  aromatik,  C-O alkohol,  C=O  dan  C-O  eter  merupakan  gugus fungsi  yang  dimiliki  senyawa  flavonoid  [19]. Jadi,  dapat  diindikasikan  bahwa  terdapat senyawa flavonoid pada ekstrak bayam  merah.

## Pengaruh Suhu Ekstraksi terhadap Rendemen Ekstrak
Pada  Gambar  8  dapat  dilihat  bahwa rendemen  ekstrak  yang  dihasilkan  untuk berbagai  macam  suhu  ekstraksi  cenderung meningkat dengan peningkata nsuhu.
Gambar  8.  Hubungan  Rendemen  Ekstrak dengan Suhu Ekstraksi
Ekstraksi pada suhu 70 o C (6,44%) mengasilkan  rendemen  ekstrak  yang  lebih banyak  dibandingkan  dengan  ekstraksi  pada suhu 60 o C (5,08%) dan pada suhu 50 o C (3,32%). Hal ini disebabkan karena suhu merupakan salah satu  faktor  yang  mempengaruhi  kecepatan perpindahan  massa.  Peningkatan  suhu  dapat menyebabkan  peningkatan  solubilitas  pelarut dan  dapat  memperbesar  pori  padatan,  sehingga pelarut  masuk  melalui  pori  –  pori  padatan  dan melarutkan  komponen  padatan  yang  terjerap kemudian zat terlarut berdifusi keluar permukaan partikel  padatan  dan  bergerak  kelapisan  film sekitar padatan, selanjutnya kelarutan [14].

## Kesimpulan
Pada tiap variasi ekstraksi, konsentrasi flavonoid dan rendemen ekstrak meningkat seiring dengan bertambahnya suhu ekstraksi, dimana kadar total flavonoid tertinggi diperoleh pada ekstraksi suhu 70 o C  yaitu  23,72  ppm  dengan  nilai  koefisien transfer perpindahan  massa  sebesar 0,420 cm/s. Persamaan  koefisien  perpindahan  massa  pada ekstraksi flavonoid dari bayam merah adalah K = 3078645  e 45,061/RT dan  aktivitas  antioksidan  dari ketiga  variasi  ekstraksi  memiliki  aktivitas antioksidan yang sangat kuat.
Daftar Pustaka
[1]. A.  A.  Hamid,  O.  O.  Aiyelaagbe,  L.  A. Usman,  O.  M.  Ameen,  and  A.  Lawal, Antioxidants: Its Medicinal and Pharmacological Applications,African Journal  of  Pure  and  Applied  Chemistry, (2010), 4(8), 142-151.
[2]. C.J.Geankoplis,  Transport  Processes  and Separation Process Principles, Prentice Hall PTR : New Jersey,2003.
[3]. D.  Wazir,  S.  Ahmad,  R.  Muse,  M.
Mahwood, dan M. Y. Shukor, Antioxidant Activities of Different Parts of Gnetumgnemon L, Journal Plant Biochem, (2011), 20(7), 234 - 240.
[4]. E.  Budiyati  dan  A.  Tridayana,  Pengaruh Kecepatan  Putaran  Pengaduk  terhadap Konsentrasi  Polifenol,  K c a,  dan  De  pada Ekstraksi  Polifenol  dari  Kulit  Apel Malang,Simposim  Nasional  RAOI,  XII
(2013), 82 - 88.
[5]. E. L. Cussler,  Diffusion, Mass Transfer  in Fluid Systems, Cambridge University Press : New York, 1984.
[6]. F.  Conforti,  S.  Sosa,  M.  Marrelli,  F. Menichini,  G.  A.  Statti,  D  Uzunov,  A.
Tubaro, F. Menichini, and R. D. Loggia,In Vivo  Anti-inflammatory  and  In  Vitro Antioxidant  Activities  of  Mediterranean Diatery Plants, Journal of Ethnopharmacology 116, (2007), 144 - 151.
[7]. F.  Diantika,  S.  M.  Sutan,  dan  R. Yulianingsih,  Pengaruh  Lama  Ekstraksi dan  Konsentrasi  Pelarut  Etanol  terhadap Ekstraksi Antioksidan Biji Kakao
(Theobroma  cacao  L.),  Jurnal  Teknologi Pertanian, (2014), 15(3), 159 - 164.
[8]. G.G.  Brown,  Unit  Operation,  Manila: Webster School and Office Supplier, 1950.
[9]. G.  Scapin,  M.  M.  Schmidt,  R.  C.  Prestes, dan  C.  S.  Sosa,  Phenolic  Compounds,
Flavonoids,  and  Antioxidant of  Chia  Seed Extract  (Salvia  hispanica)  Obtained  by Different Extraction Conditions, International  Food  Research  Journal, (2016), 23(6), 2341 - 2346.
[10]. H.  S.  Bashir,  A.  M.  Mohammed,  A.  S. Magsoud,  A.  M.  Shaoub,  Journal  and Identification  of  Two  Flavonoids  from Acacia  Nilotica  (  Leguminosae)  Leaves, Journal  of  Forest  Products  &  Industries, (2014), 3(5), 211-215.
[11]. I.  Fidrianny,  I.  Rahmayani,  K.  R. Wirasutisna,  Antioxidant  Capasities  From
Various  Leaves  Extracts of  Four  Varieties Mangoes Using DPPH, ABTS Assays, and Correlations With Total Phenolic, Flavonoid, Carotenoid, International
0 1 2 3 4 5 6 7 50 60 70 T ( o C) Re n d em en E k st rak ( % )
Journal  of  Pharmacy  and  Pharmaceutical Sciences, (2013), 5(4), 189 - 194.
[12]. J.  M.  Coulson,  and  J.  F.  Richardson, Chemical Engineering Particle Technology and  Separation  Process,  (2).  Edisi  ke  -  5 Butterworth Heinemann : New York, 2002.
[13]. J. M. Lu, P. H. Lin, Q. Yao, and C. Chen, Chemical  and  Molecular  Mechanisms  of Antioxidants  :  Experimental  Approaches and  Model  Systems,J.  Cell.  Mol.  Med, (2009), 14(4), 840 – 860.
[14]. Jayanudin, A. Z. Lestari, dan F. Nurbayanti, Pengaruh Suhu dan Rasio Pelarut Ekstraksi terhadap Rendemen dan Viskositas
Natrium Alginat dari Rumput Laut Cokelat (Sargassum  sp),  Jurnal  Integrasi  Proses, (2014), 5(1), 51 - 55.
[15]. K.R.  Markham.  Cara  Mengidentifikasi Flavonoid. Terjemahan Kosasi
Padmawinata.  (ITB  Press  :  Bandung, 1998).
[16]. K.  Sayuti  dan  R.  Yenrina,Antioksidan, Alami  dan  Sintetik,  Andalas  University Press, 2015.
[17]. L.  Lingga,  Cerdas  Memilih  Sayuran, Penerbit  PT  AgroMedia  Pustaka  :  Jakarta, 2010.
[18]. L. N. Wachidah, Uji Aktifitas Antioksidan Serta  Penentuan  Kandungan  Fenolat  dan Flavonoid  Total  dari  Buah  Parijoto
(Medinilla  speciosa  Blume),    Skripsi, Fakultas  Kedokteran  dan  Ilmu  Kesehatan, Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah : Jakarta, 2013.
[19]. M. A. Ekawati, I. W. Suirta, dan S. R. Santi, Isolasi dan Identifikasi Senyawa Flavonoid
pada Daun Sembukan  (Paedaria foetida L) Serta Uji Aktivitasnya
Sebagai
Antioksidan,  Jurnal  Kimia,  (2017),  11(1), 43-48.
[20]. M. Haris, Penentuan Kadar Flavonoid Total dan Aktifitas Antioksidan dari Daun Dewa (Gynura  pseudochina  [Lour]  DC)  dengan Spektrofotometer  UV-VISIBEL,  Skripsi, Fakultas  Farmasi,  Universitas  Andalas  :
Padang, 2011.
[21]. Maulida dan Naufal, Ekstraksi Antioksidan (Likopen)  Dari  Buah  Tomat  Dengan Menggunakan Solven Campuran, n- heksana,  Aseton  dan  Etanol,  Skripsi, Jurusan  Teknik  Kimia  ,  Fakultas  Teknik,
Universitas Diponegoro : Semarang, 2010. [22]. O. Levenspiel, Chemical Reaction Engineering. Edisi ke – 3, : John Wiley &
Sons : New York, 1999.
[23]. R. M. Silverstein, F. X. Webster, dan D. J. Kiemle,  Spectrometric  Identification  of Organic  Compounds,  Edisi  ke-7,  United
States  of  America  :  John  &  Wiley, Inc.1976. [24]. S. Kumar and A. K. Pandey, Chemistry and Biological  Activities  of  Flavonoids  :  An Overview,  The  Scientific  World  Journal, 2013.
[25]. J.  Suhartono,  D.  S.  Pertiwi,  A.Faslah,  dan Y.  F.  Saputra,  Penentuan  Koefisien
Perpindahan Massa pada Dekafeinasi Kopi dengan Pelarut Methylene Chloride, Prosiding  Seminar  Nasional  Rekayasa Kimia dan Proses, 2005.
[26]. Syaifuddin,  Uji  Aktivitas  Antioksidan
Bayam  Merah  (Alternanthera  amoena
Voss.)  Segar  dan  Rebus  dengan  Metode
DPPH (1,1-diphenyl-2-picylhydrazyl),
Skripsi, Pendidikan Biologi, Fakultas Ilmu
Tarbiyah dan Keguruan,  Universitas  Islam
Negeri Walisongo :Semarang, 2015.
[27]. Z.  Zekovic,  A.  Cvetanovic,  B.  Pavlic,  J.
Svarc-Gajic, dan M. Radojkovic, Optimization of the Polyphenolics Extraction  from  Chamomile  Ligulate Flowers Using Response Surface Methodology,  International  Journal  of Plant Research, (2014), 4(2), 43 - 50.