Agrinimal Jurnal Ilmu Ternak dan Tanaman, April 2023, 11(1): 45-50       e-ISSN: 2723-2697, p-ISSN: 2088-3609 homepage: http://ojs3.unpatti.ac.id/index.php/agrinimal DOI: https://doi.org/10.30598/ajitt.2023.11.1.45-50 Accredited by: Ministry of Education, Culture, Research, and TechnologyNumber 164/E/KPT/2021

## DAYA HIDUP SPERMATOZOA KAMBING PERANAKAN ETAWAH YANG DIPRESERVASI DENGAN PENGENCER AIR TEBU
Jodi Aulia Ramadhan 1 , Muhammad Riyadhi 1 , Nursyam Andi Syarifuddin 1 , Anis Wahdi 1 , Muhammad Rizal 1 *
Program Studi Peternakan, Fakultas Pertanian, Universitas Lambung Mangkurat Jl. Jenderal Ahmad Yani Km. 36 Banjarbaru, Indonesia 70714 *Koresponden Author: mrizal@ulm.ac.id
(Submitted: 07-04-2023; Revised: 20-04-2023; Accepted: 28-04-2023 )

## ABSTRAK
Air tebu dapat dimanfaatkan sebagai pengencer semen karena mengandung berbagai nutrien yang dapat menunjang kehidupan  spermatozoa  selama  preservasi.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  menguji  kemampuan  air  tebu  dalam mempertahankan  daya  hidup  spermatozoa  kambing  PE  selama  preservasi  pada  suhu  3-5 o C.  Semen  ditampung menggunakan  vagina  buatan  dan  segera  dievaluasi  secara  makroskopis  dan  mikroskopis.  Semen  segar  dibagi  ke dalam lima buah  tabung reaksi kemudain  masing-masing diencerkan dengan 80% pengencer dasar  laktosa + 20% kuning telur sebagai kontrol (P0), 20% air tebu + 60% akuabidetislata + 20% kuning telur (P1), 30% air tebu + 50% akuabidestilata + 20% kuning telur (P2), 40% air tebu + 40% akuabidestilata + 20% kuning telur (P3), dan 50% air tebu + 30% akuabidestilata + 20% kuning telur (P4). Semen yang telah diencerkan disimpan di dalam refrigerator lemari es pada suhu 3-5 o C. Motilitas dan daya hidup spermatozoa masing-masing perlakuan dievaluasi setiap hari hingga motilitas mencapai 40%. Hasil penelitian diperoleh karakteristik semen segar kambing PE yaitu volume 1,15 ml,  konsentrasi  3.870  juta/ml,  motilitas  80%,  spermatozoa  hidup  87,75%,  dan  spermatozoa  abnormal  7,5%. Persentase  motilitas  dan  spermatozoa  hidup  pada  hari  keempat  preservasi  perlakuan  P2  (41,25%  dan  50%)  nyata (P<0,05) lebih tinggi dibandingkan dengan P0 (37,5% dan 47%), P1 (32,5% dan 44%), P3 (30% dan 36,25%), dan P4  (18%  dan  29,25%).  Dapat  disimpulkan  bahwa  Kombinasi  pengencer  terbaik  untuk  semen  kambing  PE  adalah terdiri atas 30% air tebu + 50% akuabidestilata + 20% kuning telur.
Kata kunci: Air tebu, preservasi, semen, kambing PE

## VIABILITY OF ETAWAH CROSSBREED GOAT SPERMATOZOA PRESERVED WITH SUGARCANE JUICE

## ABSTRACT
Sugarcane juice can be used as an alternative semen extender because it contains various nutrients that can support the life of spermatozoa during preservation. This study aimed to examine the ability of sugarcane juice to maintain the  ability  of  Etawah  crossbreed  goat  spermatozoa  during  preservation  at  3-5 o C.  Semen  was  collected  using  an artificial  vagina  and  immediately  evaluated  macroscopically  and  microscopically.  Fresh  semen  was  divided  into five tubes and diluted with 80% lactose-based extender + 20% egg yolk as a control (T0), 20% sugarcane juice + 60% aquabidestilata + 20% egg yolk (T1), 30% sugarcane juice + 50% aquabidestilata + 20% egg yolk (T2), 40% sugarcane juice + 40% aquabidestilata + 20% egg yolk (T3), and 50% sugarcane juice + 30% aquabidestilata + 20% egg yolk (T4), respectively. The diluted-semen was stored in the refrigerator at 3-5 o C. The motility and viability of spermatozoa were evaluated every day until the motility reached 40%.The results showed that the characteristics of fresh  semen  of  Etawah  crossbreed  goat  were  volume  1.15  ml  volume,  spermatozoa  concentration  3,870  million cells/ml, spermatozoa motility 80%, live spermatozoa 87.75%, and abnormal spermatozoa 7.5%. The percentage of motility  and  live  spermatozoa  on  the  fourth  day  of  preservation  for  T2  (41.25%  and  50%)  was  significantly (P<0.05) higher than T0 (37.5% and 47%), T1 (32.5% and 44%), T3 (30% and 36.25%), and T4 (18% and 29.25%). It  can  be  concluded  that  the  best  extender  combination  for  Etawah  crossbreed  goat  semen  is  composed  of  30% sugarcane juice + 50% aquabidestilata + 20% egg yolk.
Key words: Sugarcane juice, preservation, semen, Etawah crossbreed goat

## PENDAHULUAN
Salah  satu  teknologi  reproduksi  yang  dapat diaplikasikan  untuk  mempercepat  pengembangan kambing  peranakan  Etawah  (PE)  adalah  teknologi pengolahan  semen  dan  inseminasi  buatan  (IB). Program  IB  diharapkan  dapat  mengoptimalkan penggunaan  semen,  karena  semen  seekor  pejantan dapat digunakan untuk mengawini lebih banyak betina (Rizal et al ., 2018). Guna meningkatkan volume semen dan menjaga kualitas semen agar tetap baik maka perlu adanya  penambahan  bahan  pengencer  untuk  dapat mempertahankan  kualitas  spermatozoa.    Pengencer semen  yang  umum  digunakan  saat  ini  adalah pengencer  semen  berbasis  bahan  kimiawi  sintetik seperti: tris amino metan, asam sitrat, laktosa, fruktosa, raffinosa,  dan  lain-lain  (Hafez  &  Hafez,  2000).  Air tebu  berpotensi  dimanfaatkan  sebagai  pengencer alternatif  berbasis  bahan  alami,  karena  air  tebu mengandung  berbagai  nutrien  yang  dapat  menunjang kehidupan  spermatozoa  selama  preservasi  (Riyadhi et al ., 2020). Bahan berbasis alami menguntungkan untuk menjadi  pengencer  alternatif  dalam  preservasi  semen karena  mudah  diperoleh  dan  harga  yang  lebih terjangkau  dibandingkan  bahan  kimiawi  sintetik (Siswandoko et al ., 2017).
Air tebu mengandung 20-25% bahan kering dan mengandung  karbohidrat,  yang  berupa  sukrosa  (gula tebu) (Casu et al ., 2003).  Air tebu mengandung salah satunya  sukrosa  yang  terbangun  dari  glukosa  dan fruktosa  yang  akan  dimanfaatkan  oleh  spermatozoa dalam  pergerakan  sebagai  sumber  energi  (Pramono  & Tagama,  2008).    Karbohidrat  yang  terkandung  di dalam  air  tebu  tidak  mampu  melindungi  spermatozoa dari  temperatur  dingin  secara  mandiri,  oleh  karena  itu perlu  ditambahkan  kuning  telur.    Kuning  telur mengandung  lipoprotein  dan  lesitin  yang  berfungsi sebagai  pelindung  ekstraseluler  spermatozoa  dari kejutan  dingin  saat  preservasi  pada  suhu  rendah (Dwitarizki et al ., 2015).
Beberapa peneliti telah melaporkan penggunaan air  tebu  sebagai  pengencer  semen  pada  sapi  bali (Bardan et  al .,  2009;  Anwar et  al .,  2014;  Tanii et  al ., 2022), spermatozoa epididimis sapi peranakan (Riyadhi et  al .,  2020),  dan  semen  ayam  hutan  merah (Arsyad et  al .,  2021).  Hasil  beberapa  penelitian tersebut  diperoleh  bahwa  air  tebu  dapat  digunakan sebagai  bahan  pengencer  alternatif  dalam  proses preservasi  semen.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk menguji  kemampuan  air  tebu  dalam  mempertahankan daya  hidup  spermatozoa  kambing  PE  selama preservasi pada suhu 3-5 o C.

## BAHAN DAN METODE
Semen  ditampung  dengan  vagina  buatan  dari dua  ekor  kambing  PE  jantan  yang  berumur  sekitar  3
tahun.  Semen  segar  dievaluasi  secara  makroskopis meliputi: volume, warna, bau, kekentalan (konsistensi), dan  derajat  keasaman  (pH)  semen,  sedangkan  secara mikrokopis meliputi: konsentrasi, motilitas, hidup, dan abnormalitas spermatozoa. Semen segar yang memenuhi  syarat  dengan  kecepatan  3.000  rpm  selama 20  menit.  Supernatan  (plasma  semen)  dibuang, sedangkan  endapan  (spermatozoa)  diencerkan  dengan larutan NaCl fisiologis hingga mencapai volume 5 ml. Sebanyak  1  ml  spermatozoa  yang  telah  diencerkan ditambahkan  ke  dalam  masing-masing  lima  buah tabung reaksi yang telah diisi dengan pengencer semen sesuai  perlakuan.  Perlakuan  penelitian  adalah:  P0  = 80%  pengencer  dasar  laktosa  +  20%  kuning  telur sebagai  kontrol,  P1  =  20%  air  tebu  +  60% akuabidetislata+ 20% kuning telur, P2 = 30 % air tebu +  50%  akuabidestilata  +  20%  kuning  telur,  P3  =  40% air tebu + 40% akuabidestilata + 20% kuning telur, dan P4  =  50%  air  tebu  +  30%  akuabidestilata  +  20% kuning  telur.  Semua  perlakuan  ditambahkan  dengan antibiotik  berupa  1.000  µg  streptomisin  dan  1.000  µg penisilin  per  milliliter  pengencer.  Pengencer  dasar laktosa  terdiri  atas  9  g  laktosa  dilarutkan  dengan akuabidestilata hingga mencapai volume 100 ml.
Semen  yang  sudah  diencerkan  dievaluasi kualitasnya,  dan  jika  memenuhi  syarat  disimpan  di dalam  refrigerator  lemari  es  pada  suhu  3-5 o C.  Tabung reaksi berisi semen masing-masing perlakuan dimasukkan  ke  dalam  gelas  piala  yang  telah  diisi dengan  air  bersih.  Semen  masing-masing  perlakuan dievaluasi  kualitasnya  meliputi  motilitas  dan  viabiltas spermatozoa  setiap  hari  hingga  motilitas  mencapai minimum 40% sesuai standar nasional Indonesia (SNI 4869.3:2014).
Peubah yang diamati adalah persentase motilitas  dan  persentase  hidup  spermatozoa  selama penyimpanan  pada  suhu  3-5 o C.  Persentase  motilitas spermatozoa  adalah  persentase  spermatozoa  yang bergerak  progresif  (bergerak  ke  depan).  Motilitas dievaluasi  secara  subyektif  pada  delapan  lapang pandang  yang  berbeda  dengan  mikroskop  pembesaran 400x (Rasul et al ., 2001).
Persentase hidup spermatozoa adalah persentase spermatozoa  yang  hidup.  Evaluasi  spermatozoa dilakukan dengan pewarnaan differensial menggunakan  eosin-nigrosin  (Felipe-Perez et  al ., 2008).  Spermatozoa  yang  hidup  ditandai  oleh  kepala berwarna  putih,  sedangkan  yang  mati  ditandai  oleh kepala  berwarna  merah.  Sebanyak  minimum  200 spermatozoa dievaluasi dengan mikroskop pembesaran 400x.
Penelitian  dirancang  dengan  rancangan  acak lengkap  (RAL)  lima  perlakuan  dan  empat  ulangan. Perbedaan  antarperlakuan  diuji  dengan  uji  beda  nyata terkecil  (BNT).  Data  diolah  menggunakan  program SAS statistical software (SAS 9.1, 2001).
Agrinimal Jurnal Ilmu Ternak dan Tanaman, April 2023, 11(1): 45-50       e-ISSN: 2723-2697, p-ISSN: 2088-3609 homepage: http://ojs3.unpatti.ac.id/index.php/agrinimal DOI: https://doi.org/10.30598/ajitt.2023.11.1.45-50 Accredited by: Ministry of Education, Culture, Research, and TechnologyNumber 164/E/KPT/2021

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Karakteristik Semen Segar Kambing Peranakan Etawah
Hasil  penelitian  diperoleh  volume  semen kambing  PE  sebanyak  rata-rata  1,15  ml  (Tabel  1). Peneliti  sebelumnya  melaporkan  volume  semen kambing  PE  yang  berbeda,  yakni  rata-rata  0,95  ml ( Tambing et  al .,  2001) dan  rata-rata  1,05  ml (Ardiansyah et  al., 2020).  Warna  semen  yang diperoleh  pada  penelitian  ini  adalah  putih  susu. Menurut  Heriyanta et  al .  (2013)  warna  semen  yang normal  berkisar  antara  putih  susu  dan  krem.  Bau semen  yang  diperoleh  menunjukkan  bau  khas  semen. Hal  ini  menunjukkan  bahwa  semen  yang  diejakulasi dalam  keadaan  yang  normal  dan  tidak  terdapat kontaminasi.
Tabel 1. Karakteristik Semen Segar Kambing PE
Unsur Rataan ± SEM Volume semen (ml) 1,15 ± 0,13 Warna semen Putih susu Bau semen Khas Kekentalan (konsistensi) semen Kental Derajat keasaman (pH) semen 6,7 ± 0,29 Konsentrasi spermatozoa (juta/ml) 3.870 ± 96,8 Persentase motilitas spermatozoa (%) 80,00 ± 0,00 Persentase hidup spermatozoa (%) 87,75 ± 2,22 Persentase abnormalitas spermatozoa (%) 7,50 ± 2,52
Kekentalan  (konsistensi)  semen  yang  diperoleh pada  penelitian  ini  adalah  kental.  Konsistensi  semen mempunyai  korelasi  dengan  warna,  misalnya  semen yang  berwarna  krem  bisaanya  konsistensinya  kental, sedangkan  yang  warnanya  lebih  pucat  biasanya konsistensinya encer (Hafez & Hafez, 2000). Rata-rata derajat  keasaman  (pH)  semen  kambing  PE  yang diperoleh pada penelitian ini adalah 6,7. Sesuai dengan pendapat  Hafez  &  Hafez  (2000)  menyatakan  bahwa sperma  ternak  domba/kambing  mempunyai  pH kambing normal antara 5,9-7,3.
Gerakan  massa  spermatozoa  hasil  pengamatan rata-rata  +++.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  semen memiliki  kualitas  spermatozoa  yang  baik  sehingga layak untuk diproses lebih lanjut. Riyadhi et al. (2017) menyatakan  bahwa  semen  segar  yang  baik  harus memiliki  gerakan  massa  spermatozoa  sangat  baik (+++),  yakni  terlihat  adanya  gelombang  besar,  gelap, tebal, dan aktif bergerak cepat.
Konsentrasi spermatozoa yang didapatkan pada penelitian  ini  rata-rata  3.870  juta/ml.  Hasil  ini  lebih rendah  daripada  yang  dilaporkan  peneliti  sebelumnya, yakni 4.148  juta  sel/ml  (Souhoka et  al .,  2009) ,  tetapi lebih  tinggi  dibandingkan  dengan  hasil  penelitian
Tambing et  al. (2001) sebanyak 2.940  juta  sel/ml, 2.806 juta sel/ml (Yusuf et al ., 2005), 3.140-3.770 juta sel/ml  (Qisthon  &  Suharyati,  2007),  dan  3.340  juta sel/ml (Winarto & Isnaini, 2008) . Rataan persentase motilitas spermatozoa kambing  PE  yaitu  80,00%.  Hasil  penelitian  ini  lebih tinggi  dibandingkan  dengan  hasil  penelitian  yaitu. Peneliti  sebelumnya  melaporkan  hasil  berbeda,  yakni 72,79%  (Tambing et  al ., 2001),  77,5%  (Yusuf et  al ., 2005),  74,61-83,73%  (Qisthon  &  Suharyati,  2007), 79%  (Winarto  &  Isnaini,  2008),  70%  (Souhoka et  al ., 2009), 70,75%  (Heriyanta et  al .,  2013),  dan  90%
(Ardiansyah et  al .,  2020).  Hasil  penelitian  ini menunjukkan  bahwa  nilai  motilitas  spermatozoa tersebut  baik  dan  berada  dalam  kisaran  normal. Menurut  Hafez  &  Hafez  (2000)  persentase  motilitas spermatozoa yang baik yaitu antara 60% dan 80%.
Persentase hidup spermatozoa kambing PE pada penelitian  ini  rata-rata  87,75%.  Penelitian  sebelumnya dilaporkan  hasil  yang  bervariasi,  yakni 83,43% (Tambing et  al .,  2001), 83,95%  (Yusuf et  al ., 2005), 82,17-88,34%  (Qisthon  &  Suharyati,  2007),  90,75% (Winarto  &  Isnaini,  2008), 83,37%  (Hartono,  2009), 83,89%  (Souhoka et  al .,  2009),  dan 95,82%
(Ardiansyah et al ., 2020).
Rataan  persentase  abnormalitas  semen  segar kambing  PE  dalam  penelitian  ini  adalah  7,50%. Berdasarkan  hasil  beberapa  penelitian  dilaporkan persentase  abnormalitas  spermatozoa  kambing  PE yang  bervariasi,  yakni  9,57%  (Sutama et  al ., 200 0),
4,59%  (Yusuf et  al .,  2005),  2,46-2,84%  (Qisthon  & Suharyati,  2007),  15,78%  (Winarto  &  Isnaini,  2008), 7,12%  (Souhoka et  al .,  2009),  dan  6,38% (Rosmaidar et  al .,  2013).  Menurut  Hafez  &  Hafez  (2000) abnormalitas  spermatozoa  pada  semen  kambing sebesar 8-10% tidak berpengaruh pada fertilitas, tetapi apabila  abnormaltas  melebihi  25%  akan  berpengaruh pada fertilitas.
Secara  umum  kuantitas  dan  kualitas  semen segar  kambing  dipengaruhi  oleh  genetik,  umur pejantan,  pakan  yang  dikonsumsi,  dan  frekuensi penampungan.  Berdasarkan  hasil  penelitian  ini  dapat disimpulkan  bahwa  semen  segar  memenuhi  syarat untuk  diproses  lebih  lanjut  menjadi  semen  cair  dingin atau  semen  beku.  Semen  segar  yang  memenuhi  syarat harus memiliki  motilitas  progresif  minimum  70% (Sundararaman & Edwin, 2008), konsentrasi spermatozoa  >  2.000  juta  sel/ml,  dan  abnormalitas spermatozoa 6-15% (Delgadillo et al . , 1992).

## Kualitas Spermaozoa selama Preservasi
Hasil penelitian menunjukkan bahwa persentase motilitas dan hidup spermatozoa mengalami penurunan seiring  dengan  bertambahnya  durasi  penyimpanan (Tabel  2  dan  Tabel  3).  Hasil  analisis  ragam menunjukkan bahwa rata-rata persentase  motilitas  dan persentase  hidup  spermatozoa  kambing  PE  perlakuan P2  mulai  hari  kedua  hingga  hari  keempat  preservasi
nyata  (P<0,05)  lebih  tinggi  dibandingkan  dengan perlakuan  P0  (kontrol)  dan  perlakuan  P1,  P3,  dan  P4 (Tabel  2  dan  Tabel  3).  Hal  ini  menunjukkan  bahwa kombinasi  pengencer  semen  yang  terdiri  atas  30%  air tebu + 50% akuabidestilata + 20% kuning telur adalah yang  terbaik  dalam  melindungi  spermatozoa  kambing
PE  selama  preservasi  pada  suhu  3-5 o C.  Bardan et  al . (2009)  juga  melaporkan  hal  yang  sama  bahwa pemanfaatan pengencer semen yang mengandung 30% air  tebu  dan  20%  kuning  telur  dapat  mempertahankan motilitas  dan  daya  hidup  spermatozoa  sapi  bali  yang dipreservasi pada suhu 3-5 o C.
Tabel 2. Persentase Motilitas Spermatozoa Kambing PE selama Preservasi
Perlakuan Persentase motilitas spermatozoa (%) hari ke- 1 2 3 4 P0 80,00 ± 0,00 62,50 ± 2,89 c 48,75 ± 4,79 d 37,50 ± 2,89 d P1 80,00 ± 0,00 62,50 ± 2,89 c 46,25 ± 6,29 c 32,50 ± 4,08 c P2 80,00 ± 0,00 63,75 ± 2,50 d 56,25 ± 4,08 e 41,25 ± 2,50 e P3 80,00 ± 0,00 60,00 ± 4,08 b 41,25 ± 2,50 b 30,00 ± 4,08 b P4 80,00 ± 0,00 51,25 ± 2,50 a 35,00 ± 4,08 a 18,75 ± 4,79 a
Keterangan: superskrip yang berbeda dalam kolom yang sama menunjukkan berbeda nyata (P<0,05).
Tabel 3. Persentase Hidup Spermatozoa Kambing PE selama Preservasi
Perlakuan Persentase spermatozoa hidup (%) hari ke- 1 2 3 4 P0 87,75 ± 2,22 73,25 ± 2,87 cd 59,25 ± 5,56 d 47,00 ± 2,60 d P1 87,75 ± 2,22 73,00 ± 6,63 c 56,25 ± 5,12 c 44,00 ± 5,16 c P2 87,75 ± 2,22 74,25 ± 3,77 d 63,75 ± 4,79 e 50,00 ± 3,92 e P3 87,75 ± 2,22 71,50 ± 5,80 b 52,25 ± 2,99 b 36,25 ± 4,99 b P4 87,75 ± 2,22 64,00 ± 2,94 a 39,25 ± 2,63 a 29,25 ± 4,27 a
Keterangan: superskrip yang berbeda dalam kolom yang sama menunjukkan berbeda nyata (P<0,05).
Air  tebu  mengandung  beberapa  nutrien  seperti karbohidrat  yang  mampu  mempertahankan  motilitas dan  daya  hidup  spermatozoa  selama  preservasi  pada suhu  3-5 o C.  Menurut  Erwinda  &  Wahono  (2014)  air tebu  mengandung  18,08%  sukrosa,  dan  gula  invest berupa  glukosa  dan  fruktosa  yang  dapat  dimanfaatkan oleh  spermatozoa  sebagai  sumber  energi.  Karbohidrat termasuk  sukrosa  memiliki  arti  penting  di  dalam pengencer karena berfungsi sebagai sumber energi dan krioprotektan  ekstraseluler  (Herdis et  al .,  2016),  dan pelindung  ekstraseluler  spermatozoa  terhadap  kejutan dingin  (Dwitarizki et  al ., 2015). Karbohidrat  berperan sebagai  senyawa  krioprotektan  ekstraseluler,  yang berfungsi melindungi membran plasma sel spermatozoa  dari  proses  kerusakan  akibat  pengaruh kejutan dingin ( cold shock ) selama penyimpanan pada suhu rendah (3-5 o C). Menurut White (1993), pengaruh kejutan  dingin  berkaitan  dengan  perubahan  fosfolipid yang menyusun membran plasma sel, yakni perubahan bentuk dari cair ke gel yang terjadi pada suhu di bawah 20 o C. Perubahan tatanan rantai asam lemak dan protein pada  membran  plasma  menyebabkan  kebocoran  atau selektivitas membran plasma rusak, yang menyebabkan ion-ion seperti ion kalsium bebas masuk ke  sel.  Oleh  karena  itu,  preservasi  spermatozoa  pada suhu  yang  mendekati  0 o C  diperlukan  zat  pelindung  di dalam  pengencer,  seperti  fosfolipid  kuning  telur  dan krioprotektan, serta proses pendinginan harus dilakukan secara bertahap (Kayser et al ., 1992).
Persentase  motilitas  dan  hidup  spermatozoa pada  perlakuan  P1  lebih  rendah  dibandingkan  dengan P2 diduga karena konsentrasi air tebu yang digunakan lebih rendah, sehingga kemampuannya dalam melindungi  spermatozoa  selama  preservasi  juga  lebih rendah.  Hal  sama  juga  terjadi  pada  perlakuan  P3  dan P4  (konsentrasi  air  tebu  lebih  tinggi).  Semakin  tinggi konsentrasi air tebu semakin tinggi juga konsentrasi zat terlarut  di  dalamnya,  sehingga  pengencer  semen semakin  pekat  dan  menyebabkan  pengencer  menjadi hipertonik.  Pengencer  semen  yang  hipertonik  akan berpengaruh  buruk  terhadap  membran  plasma  sel  dan sel  secara  keseluruhan,  sehingga  mengganggu  proses metabolisme yang  berakibat  pada  menurunnya motilitas  dan  daya  hidup  spermatozoa. Zat  terlarut yang  terlalu  banyak  akan  meningkatkan  tekanan osmotik  media,  sehingga  berdampak  buruk  terhadap daya  hidup  spermatozoa  (Kulaksiz et  al .,  2013). Menurut  Anwar et  al .  (2014)  rendahnya  motilitas spermatozoa  pada  penggunaan  air  tebu  dengan konsentrasi tinggi kemungkinan disebabkan oleh tidak mampunya  air  tebu  sebagai  media  penyangga  bagi spermatozoa.
Hasil penelitian  menunjukkan bahwa perlakuan P2  mampu  mempertahankan  kualitas  spermatozoa yang  memenuhi  syarat  digunakan  dalam  program  IB selama tiga  hari preservasi, sedangkan pada perlakuan yang lain hanya selama dua hari. Hal ini karena hingga hari keempat preservasi persentase motilitas
Agrinimal Jurnal Ilmu Ternak dan Tanaman, April 2023, 11(1): 45-50       e-ISSN: 2723-2697, p-ISSN: 2088-3609 homepage: http://ojs3.unpatti.ac.id/index.php/agrinimal DOI: https://doi.org/10.30598/ajitt.2023.11.1.45-50 Accredited by: Ministry of Education, Culture, Research, and TechnologyNumber 164/E/KPT/2021
spermatozoa  pada  perlakuan  P2  lebih  dari  40%, sedangkan pada perlakuan yang lain kurang dari 40%. Berdasarkan  ketentuan  SNI  4869.3:2014,  semen  yang memenuhi  syarat  digunakan  dalam  program  IB  harus memiliki motilitas spermatozoa minimum 40%.

## SIMPULAN DAN REKOMENDASI
Berdasarkan  hasil  penelitian  dapat  disimpulkan bahwa  air  tebu  dapat  digunakan  sebagai  bahan pengencer  alternatif  bagi  semen  kambing  PE. Kombinasi  pengencer  terbaik  untuk  semen  kambing PE  adalah  terdiri  atas  30%  air  tebu  +  50% akuabidestilata + 20% kuning telur.
Berdasarkan  hasil  penelitian  direkomendasikan menggunakan pengencer alternatif berupa 30% air tebu +  50%  akuabidestilata  +  20%  kuning  telur  dalam preservasi semen kambing PE untuk keperluan aplikasi IB.

## DAFTAR PUSTAKA
Anwar,  P.,  Ondho,  Y.  S.,  &  Samsudewa,  S.  (2014).
Pengaruh  Pengencer  Ekstrak  Air  Tebu  dengan Penambahan  Kuning  Telur  terhadap  Kualitas Spermatozoa  Sapi  Bali. Jurnal  Peternakan, 11(2), 48-58.
Ardiansyah,  Saili,  T.,  &  Rahadi,  S.  (2020).  Kualitas Semen  Kambing  Peranakan  Etawah  dengan Penambahan  Lesitin  Kedelai  dalam  Pengencer Tris  Aminomethane  Kuning  Telur  pada Penyimpanan  Suhu  3-5ºC .  Jurnal  Ilmiah Peternakan Halu Oleo, 2(1), 30-35. Arsyad, Kurniawan, M. E., Khaeruddin, & Syamsuryadi,  B.  (2021).  Karakteristik  semen segar  dan  motilitas  spermatozoa  ayam  hutan merah  ( Gallus  gallus )  dalam  pengencer  yang mengandung air tebu. Tarjih Tropical Livestock Journal, 1(2), 43-50.
Bardan,  Feradis,  &  Adelina,  T.  (2009).  Penggunaan Air Tebu yang Dikombinasikan dengan Kuning Telur  sebagai  Pengencer  Semen  Sapi  Bali. Jurnal Peternakan, 6(2), 36-43.
Casu, R. E., Grof, C. P. L., Rae, A. L., Mclntyre, C. L., Dimmock,  C.  M.,  &  Manners,  J.  M.  (2003). Identification  of  a  Novel  Sugar  Transporter Homologue  Strongly  Expressed  in  Maturing Stem  Vascular  Tissues  of  Sugarcane  by Expressed  Sequence  Tag  and  Micro  Array Analysis. Plant Molecular Biology, 10, 1-16. Dwitarizki,  N. D., Ismaya,  &  Asmarawati, W. (2015). Pengaruh  Pengenceran  Sperma  dengan  Air Kelapa  dan  Aras  Kuning  Telur  Itik  serta  Lama Penyimpanan  terhadap  Motilitas  dan  Viabilitas Spermatozoa  Domba  Garut  pada  Penyimpanan 5°C. Buletin Peternakan, 39(3), 149-156.
Delgadillo,  J.  A.,  Leboeuf,  B.,  &  Chemineau,  P. (1992).  Abolition  of  Seasonal  Variations  in
Semen  Quality  and  Maintenance  of  Sperm Fertilizing  Ability  by  Photoperiodic  Cycles  in Goat  Bucks. Small  Ruminant  Reserach, 9(1), 47-59.
Erwinda, M. D.,  & Wahono,  H. (2014). The Effect of Lime  Concentration  Addition  and  Cane  Juice pH  Value  on  Brown  Sugar  Quality. Jurnal Pangan dan Agroindustri, 2, 54-64.
Felipe-Perez,  Y.  E.,  Juarez-Mosqueda,  M.  L., Hernandez-Gonzalez,  E.  O.,  &  Valencia,  J.  J. (2008).  Viability  of  Fresh  and  Frozen  Bull Sperm Compared by Two Staining Techniques. Acta Veterinaria Brasilica, 2, 123-130. Hafez,  E.  S.  E.,  &  Hafez,  B.  (2000). Reproduction  in Farm Animals. 4th Edition. Philadelphia: Lea & Febiger.
Hartono,  M.  (2009).  Kualitas  Semen  Kambing Peranakan  Boer. Jurnal  Penelitian  Pertanian Terapan, 10(1), 52-58. Herdis,  Darmawan,  I.  W.  A.,  &  Rizal,  M.    (2016).
Penambahan  Beberapa  Jenis  Gula  dapat Meningkatkan Kualitas  Spermatozoa Beku asal Epididimis  Ternak  Domba. Jurnal  Kedokteran Hewan, 10(2), 200-204.
Heriyanta,  E.,  Ihsan,  M.  N.,  &  Isnaini,  N.  (2013). Pengaruh  Umur  Kambing  Peranakan  Etawah (PE)  terhadap  Kualitas  Semen  Segar. Ternak Tropika, 14(2), 1-5.
Kayser, J.P., Amann, R. P., Shideler, R. K., Squires, E. L., Jasko, D. J., & Pickett, B. W. (1992). Effects of Linear Cooling Rate on Motion Characteristics of Stallion Spermatozoa. Theriogenology, 38(4), 601-614.
Kulaksiz,  R.,  Ari,  U.  C.,  Daskin,  A.,  &  Uner,  A.G. (2013).  The  Effect  of  Different  Glycerol Concentrations on Freezeability of Semen from Angora,  Kilis,  and  Saanen  Goats. Slovak Journal of Animal Science, 46, 39-44.
Pramono,  E.,  &  Tagama,  T.  R.  (2008).  Pengaruh
Penambahan  Adenosin  Triphosphat  ke  dalam Pengencer Semen terhadap Kualitas
Spermatozoa  Domba  Ekor  Gemuk. Animal Production, 10(3), 151-156.
Qisthon,  A.,  &  Suharyati,  S.  (2007).  Pengaruh
Penggunaan Naungan terhadap Kualitas  Semen Kambing Peranakan Ettawa. Animal Production, 9, 73-78.
Rasul, Z., Ahmad, N., & Anzar, M. (2001). Changes in Motion  Characteristics,  Plasma  Membrane Integrity  and  Acrosome  Morphology  during Cryopreservation  of  Buffalo  Spermatozoa. Journal of Andrology , 22, 278-283.
Riyadhi, M., Setiawan, A., Herdis, & Rizal, M. (2017).
Epididymal  Spermatoza  Quality  of  Etawa Crossbreed
Goat in Tris Extender Supplemented with Various Lactose
Concentration. Jurnal  Kedokteran  Hewan, 11, 15-18.
Riyadhi, M., Rizal, M., & Thahir, M. (2020). Motilitas dan  Daya  Hidup  Spermatozoa  asal  Epididimis Sapi  Persilangan  yang  Diencerkan  dengan  Air Tebu. Jurnal  Ilmu  dan  Teknologi  Peternakan Tropis, 7(1), 70-76.
Rizal,  M.,  Riyadhi,  M.,  &  Sulaiman,  A.  (2018).  The Quality  of  Boer  Goat  Semen  Preserved  with Sugar  Palm  Juice. Buletin  Peternakan, 42(2), 97-102.
Rosmaidar,  Dasrul,  &  Triva,  M.  L.  (2013).  Pengaruh Penambahan  Sari  Buah  Tomat  dalam  Media Pengencer  terhadap  Motilitas  dan  Viabilitas Spermatozoa  Kambing  Boer  yang  Disimpan pada  Suhu  3-5 o C. Jurnal  Ilmiah  Peternakan, 5(1), 12-15.
Souhoka,  D.  F.,  Matatula,  M.  J.,  Mesang-Nalley,  W. M., & Rizal, M. (2009). Laktosa Mempertahankan  Daya  Hidup  Spermatozoa Kambing  Peranakan  Etawah  yang  Dipreservasi dengan Plasma Semen Domba Priangan. Jurnal Veteriner, 10, 135-142. SAS Institute. (2001). SAS State Software: Change and Enhancement  through  Release  9.1 .  Cary,  NC: SAS Institute Inc.
Siswandoko,  B.,  Zaenab,  S.,  &  Husamah,  H.  (2017). Penambahan Ekstrak Kulit Buah Naga ke dalam
Pengencer Tris Kuning Telur untuk Meningkatkan  Kualitas  Semen  Beku  Kambing Peranakan Ettawa. Scripta Biologica, 4(4), 247- 251.
Standar  Nasional  Indonesia  (SNI)  4869,3.  (2014). Semen  Beku-Bagian  3:  Kambing  dan  Domba . Jakarta: Badan Standarisasi Nasional.
Sundararaman,  M.  N.,  &  Edwin,  M.  J.    (2008). Changes  in  Motility  Characteristics  of  Goat
Spermatozoa  during  Glycerol-equilibration  and Relevance  to  Cryopreservation. Asian  Journal of Cell Biology, 3(1), 22-33.
Sutama,  I.  K.,  Setiadi,  B.,  Situmorang,  P.,  Adiati,  U., Budiarsana, I. G. M., Kostaman, T., Mulyawan, M., & Sukmana, R. (2000). Uji Kualitas Semen Beku Kambing Peranakan Ettawah dan Kambing  Boer. Laporan  Bagian  Proyek Rekayasa  Teknologi  Peternakan  ARMP-II .  88- 111.
Tambing,  S.  N.,  Toelihere,  M.  R.,  Yusuf,  T.  L.,  & Sutama,  I.  K.  (2001).  Kualitas  Semen  Beku Kambing Peranakan Etawah setelah Ekuilibrasi. Hayati, 8, 70-75.
Tanii,  R.Y.,  Dethan,  A.  A.,  &  Purwantiningsih,  T.  I. (2022).  Pengaruh  pengencer  ekstrak  air  tebu dalam sitrat-kuning telur terhadap viabilitas dan abnormalitas spermatozoa, serta pH semen sapi Bali. Journal  of  Tropical  Animal  Science  and Technology, 4(1), 56-65.
White, I. G. (1993). Lipid and Ca Uptake of Sperm in Relation  to  Cold  Shock  and  Preservation:  a Review. Reproduction
Fertility and Development, 5(6), 639-658.
Winarto,  A.,  &  Isnaini,  N.  (2008).  Pengaruh  Tingkat Pengenceran  terhadap  Kualitas  Spermatozoa Kambing  PE  setelah  Penyimpanan  pada  Suhu Kamar. Ternak Tropika, 9(2), 72-80. Yusuf,  T.  L.,  Arifiantini,  R.  I.,  &  Rahmiwati,  N. (2005).  Daya  Tahan  Hidup  Semen  Cair Kambing  Peranakan  Etawah  dalam  Pengencer Kuning Telur dengan Kemasan dan Konsentrasi Spermatozoa yang Berbeda. Jurnal
Pengembangan  Peternakan  Tropis, 30,  217- 223.
Available online at journal homepage: http://ojs3.unpatti.ac.id/index.php/agrinimal