Abstrak — Plastik  merupakan  suatu  komoditi  yang  sering digunakan  dalam  kehidupan  sehari-hari  sehingga  tiap  tahunnya limbah  yang  dihasilkan  juga  semakin meningkat dan menyebabkan permasalahan lingkungan. Tujuan dalam penelitian  ini  adalah  mengetahui  pertumbuhan  dan  degradasi plastik kresek oleh isolat bakteri Bacillus PL01 dan Pseudomonas PL01  pada  medium  air  kolam  steril  dengan  penambahan  1  g/L MSG. Bakteri Bacillus PL01  dan Pseudomonas PL01  yang  telah terbukti  mampu  melakukan  degradasi  plastik. Bacillus sp.  dan Pseudomonas sp. merupakan bakteri yang dapat ditemukan pada sedimen  perairan  yang  memanfaatkan  nutrisi  dalam  sedimen dan  perairan  baik  berupa  organik  maupun  anorganik  untuk pertumbuhan  selnya.  Monosodium  glutamat  (MSG)  juga terbukti  dapat  meningkatkan  pertumbuhan  bakteri  dan membantu  dalam  proses  metabolisme  sel.  Hasil  Penelitian  ini adalah setelah minggu ke-12 masa inkubasi pertumbuhan biofilm Bacillus PL01  dengan  1  g/L  MSG  pada  plastik,  putih,  dan transparan  menurun  menjadii  0,108;  0,093;  0,107  AU. Sedangkan Pseudomonas PL01  meningkat  menjadi  0,187; 0,163; 0,163  AU  pada  minggu  ke-12  masa  inkubasi.  Velositas  pada plastik  hitam,  putih  dan  transparan  yang  telah  didegradasi  oleh Bacillus PL01 dan Pseudomonas PL01 dengan/tanpa 1 g/L MSG membutuhkan  waktu  apung  lebih  lama  dibandingkan  kontrol tanpa perlakuan.
Kata  Kunci — Air  kolam, Bacillus PL01,  Biodegradasi  Plastik, MSG, Pseudomonas PL01.

## I. PENDAHULUAN
LASTIK  adalah  senyawa  polimer  dengan  struktur  kaku yang  terbentuk  dari  polimerisasi  monomer  hidrokarbon yang  membentuk  rantai  panjang  [1].  Kantung  plastik  kresek merupakan  plastik  yang  sering  digunakan  karena  harganya yang  murah,  praktis,  dan  mudah  didapat.  Menurut  Inaplast (Asosiasi Industri Aromatik Olefin dan Plastik) memperkirakan bahwa pada tahun 2016 permintaan plastik di Indonesia mencapai 4,65 juta ton [2]. Peningkatan penggunaan plastik yang terjadi tiap tahunnya mengakibatkan limbah yang dihasilkan  juga  semakin  meningkat,  sehingga  menyebabkan permasalahan  lingkungan.  Usaha  untuk  mengurangi  limbah plastik  dengan  daur  ulang  masih  belum  optimal,  sehingga dibutuhkan  alternatif  lain  untuk  mengurangi  limbah  adalah dengan  biodegradasi  yang  menggunakan  mikroorganisme seperti bakteri [3][4], dan [5].
Isolat bakteri Bacillus sp. koleksi Laboratorium Mikrobiologi ITS telah teruji memiliki kemampuan biodegradasi.  Monosodium  glutamat  (MSG)  komersial
berpengaruh  terhadap  pertumbuhan  isolat Bacillus PL01. MSG  adalah  garam  natrium  yang  berikatan  dengan  asam amino  berupa  asam  glutamat  [6].  Asam  glutamat  dan  asam amino  dapat  meningkatkan  pertumbuhan  sel  bakteri  [7]. Penelitian  sebelumnya  melaporkan  degradasi  plastik  kresek dengan Bacillus PL01  dan  bakteri  indigenous  dengan  1  g/L MSG  pasir  dapat  mendegradasi  plastik  kresek  transparan, putih, dan hitam mencapai 5%,4%, dan 2% setelah 16 minggu masa inkubasi [8].
Dalam  penelitian  sebelumnya,  biodegradasi  plastik  dengan isolat  bakteri  menggunakan  mineral  salt  medium  (MSM) dimana  medium  tersebut  merupakan  medium  mineral  minim sumber  karbon.  Namun  dalam  aplikasinya  MSM  masih memiliki  harga  yang    relatif  mahal  sehingga  diperlukan aplikasi  yang  lebih  ekonomis  untuk  degradasi  plastik  dengan memanfaatkan  air  tawar. Bacillus sp.  dapat  ditemukan  pada sedimen  air  tawar  yang  memanfaatkan  nutrien  sedimen  dan perairan  baik  berupa  organik  maupun  anorganik  untuk pertumbuhan  selnya  [9].  Nutrien  di  perairan  terdapat  dalam bentuk  makro  maupun  mikro  [10].  Berdasarkan  hal  tersebut perlu  dikaji  tentang  pengaruh  air  kolam  steril  dengan penambahan 1 g/L MSG terhadap pertumbuhan dan degradasi plastik  kresek  oleh  bakteri  isolat Bacillus PL01  dalam  skala laboratorium. Dengan adanya penambahan 1 g/L MSG dalam medium  air  kolam  diharapkan  pertumbuhan  bakteri  dan degradasi plastik lebih optimal.

## II. METODOLOGI

## Waktu dan Tempat Penelitian
A.
Penelitian  dilakukan  di  laboratorium  Mikrobiologi  dan Bioteknologi Departemen Biologi FMIPA ITS Surabaya pada bulan Februari - Juni 2017.
Peremajaan Isolat dan Pembuatan Starter B.
Isolat Bacillus PL01 disubkulturkan pada medium Nutrient Agar (NA) dengan metode streak continuous. Isolat diinkubasi dalam inkubator dengan suhu 37°C selama 24 jam. Pembuatan starter  dilakukan  secara  bertingkat  yaitu  dengan  pengambilan inokulum  isolat  subkultur  bakteri  sebanyak  1  ose  dan dimasukkan ke dalam 10 ml medium Nutrient Broth (NB) dan diinkubasi  selama  24  jam.  Biakan  bakteri  dari  media  NB tersebut  diambil  1  ml  kemudian  dimasukkan  ke  dalam  9  ml NB  baru  dan  diinkubasi  selama  24  jam.  Berikutnya  biakkan bakteri    dmasukkan  ke  dalam  90  ml  NB  baru  dan  diinkubasi

## Degradasi Plastik oleh Bacillus PL01 pada Medium Air Kolam dengan Penambahan Monosodium Glutamat
Auliya Triasita Rizqy dan Maya Shovitri Departemen Biologi, Fakultas Ilmu Alam, Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS)
e-mail : maya@bio.its.ac.id
P
selama  24  jam.  Selanjutnya  biakan  bakteri  dimasukkan  ke dalam 900 ml NB baru dan diinkubasi selama 24 jam. Biakan bakteri pada NB tersebut merupakan starter dengan kepadatan sel 10 5 -10 8 sel/ml yang dihitung menggunakan Haemacytometer . Starter ini
dinamakan starter mikroorganisme.
Selanjutnya  dilakukan  pembuatatan  air  kolam  steril.  Air kolam  yang  digunakan  adalah  air  kolam  8  ITS.    Air  kolam  8 ITS diambil 6000 ml dan disaring dengan saringan. Kemudian air  kolam  disterilisasi  dengan  menggunakan  autoklaf  selama 15  menit  dengan  suhu  121 o C  dan  tekanan  1,5  atm.  Setiap inkubator  berisi  5130  ml  air  kolam  steril  dengan  atau  tanpa penambahan 1 g/L MSG dan 570 ml starter mikroorganisme.

## Preparasi Kantong Plastik
C.
Plastik  uji  yang  digunakan  berupa  plastik  pembungkus makanan  transparan.  Plastik  tersebut  dipotong  dengan  ukuran 6 x10 cm2 sebanyak 3 kali ulangan. Penelitian ini merupakan penelitian destruktif selama 12 minggu dengan interval waktu 3 minggu untuk pengambilan data
Plastik  disterilisasi  dengan  menggunakan  alkohol  70% selama kurang lebih 30 menit dan dikeringkan anginkan di UV pada  Laminar  Air  Flow  (Bio  60-M®)  selama  15  menit  dan selanjutnya plastik dimasukkan ke dalam oven pada suhu 80ºC selama  24  jam.    Setelah  itu  plastik  dimasukkan  ke  dalam desikator selama 24 jam. Plastik dilapisi kawat kassa nyamuk aluminium dengan ukuran 7 x 11 cm sebagai pemberat

## Biodegradasi Plastik
D.
Biodegradasi plastik dilakukan dengan menggunakan media air  kolam  steril.  Proses  biodegradasi  plastik  dilakukan  pada inkubator kaca berukuran 29 x 24 x 12 cm3. Plastik disusun 2 deret  secara  horizontal  di  dalam  inkubator  dengan  masing- masing  deret  berisi  18  susunan  plastik.  Susunan  plastik tersebut  dihubungkan  dengan  kawat  aluminium  dengan diameter 1 mm dan setiap plastik diberi jarak 1 cm. Kemudian starter aplikasi dimasukkan ke dalam inkubator.
Perlakuan  biodegradasi  ini  dilakukan  dalam  kondisi  gelap dengan  asumsi  bahwa  cahaya  selama  proses  degradasi  sangat minim.  Terdapat  2  kontrol  yang  digunakan  yaitu  adalah kontrol air kolam  steril dengan/tanpa penambahan MSG 1 g/l Proses biodegradasi dilakukan selama 12 minggu dan interval pengamatan  3  minggu  sekali  dengan  2  parameter  yaitu pembentukan biofilm dan proses degradasi plastik. Pembentukan  biofilm  diukur  dengan  pengamatan  visual biofilm dan pengukuran densitas bakteri uji. Proses degradasi plastik dapat diamati dengan uji velositas plastik.

## Pengukuran Kerapatan Sel dan Pewarnaan Sel pada E. Biofilm
Pembentukan  biofilm  dapat  diamati  dengan  pengukuran kerapatan  sel  biofilm  bakteri  yang  terbentuk  pada  permukaan plastik.  Sebelumnya  kawat  kassa  aluminium  dilepas  dari plastik.  Kerapatan  sel  pada  biofilm  dilakukan  dengan
pemisahan  biofilm  bakteri  pada  permukaan  plastik  dengan cara  plastik    dimasukkan  ke  dalam  botol  falcon  50  ml  yang berisi  20  ml  aquades  steril  dan  divortex  selama  10  detik sebanyak  3  kali.  Kemudian  2  ml  supernatant  diambil  dan dimasukkan ke dalam kuvet selanjutnya diukur absorbansinya menggunakan  spektrofotometer  pada  panjang  gelombang  600 nm.  Pengukuran  absorbansi  ini  dilakukan  sebanyak  3  kali pengulangan.  Perhitungan  kerapatan  sel  dilakukan  setiap  3 minggu selama 12 minggu. Sebagai pembanding kerapatan sel pada  kolom  air  dapat  diukur  dengan  cara  yang  sama. Kerapatan  sel  diukur  dengan  menentukan  3  titik  secara  acak pada kolom air.
Pewarnaan  biofilm  dilakukan  dengan  cara  sisa  supernatan yang  telah  diperoleh  dari  pengukuran  kerapatan  sel  pada biofilm  diambil  dengan  menggunakan  pipet.  Kemudian  satu tetes supernatan diletakkan pada kaca objek. Preparat difiksasi di  atas  Bunsen  dan  diberi  pewarna methylene  blue dan didiamkan  selama  1  menit.  Preparat  dibilas  dengan  aquades dan  dibiarkan  hingga  kering.  Preparat  yang  sudah  kering selanjutnya ditutup dengan  kaca penutup. Setelah  itu preparat diamati  dengan  menggunakan  mikroskop  dengan  perbesaran 1000x

## Velositas Plastik
F.
Plastik  yang  telah  dihitung  berat  keringnya  dapat dilanjutkan  untuk  uji  velositas  plastik.  Uji  velositas  plastik dapat dihitung berdasarkan waktu pergerakan yang dibutuhkan plastik  dari  dasar  inkubator  hingga  ke  permukaan  inkubator. Plastik  dimasukkan  ke  dalam  inkubator  yang  telah  diisi aquades sampai ketinggian 10 cm dengan spatula steril. Waktu pergerakan plastik dari dasar  inkubator sampai  ke permukaan inkubator dicatat sebagai waktu velositas [11].

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN
Pengaruh  Monosodium  Glutamat  (MSG)  Terhadap A.

## Pertumbuhan Bacillus PL01
Penelitian  ini  menggunakan  air  kolam  steril  sebagai mediumnya.  Proses  Degradasi  dilakukan  selama  12  minggu masa  inkubasi  dengan  interval  waktu  3  minggu  untuk pengambilan  data.  Gambar  1  merupakan  grafik  kepadatan  sel biofilm Bacillus PL01 dengan/tanpa penambahan 1 g/L MSG selama  12  minggu  masa  inkubasi.  Pertumbuhan  biomassa biofilm  menunjukkan Bacillus PL01  dapat  hidup  dan menempel  pada  permukaan  plastik.  Hal  ini  menunjukkan bahwa  kedua  bakteri  tersebut  dapat  beradaptasi  dan memanfaatkan  air  kolam  sebagai  nutrisi  alternatif  untuk pertumbuhannya.  Biofilm  adalah  kumpulan  bakteri  interaktif yang  dibungkus  dalam  matriks  eksopolisakarida  dan  melekat pada permukaan yang keras atau melekat satu sama lain. Satu spesies  bakteri  atau  lebih  dapat  terlibat  dan  berkumpul bersama untuk membentuk biofilm [12].
Gambar  1.  Hasil  Kepadatan  Sel Bacillus PL01  dan  pada  Permukaan  Plastik Transparan.
Gambar 2. Visualisasi Biofilm Plastik Transparan pada Bacillus PL01 dengan penambahan 1 g/L MSG dengan perbesaran 1000x.
Pertumbuhan  biofilm  berdasarkan  nilai  serapan  OD600nm, terlihat  pada Bacillus PL01  dengan  penambahan  1  g/L  MSG selama 12  minggu  masa inkubasi pertumbuhannya cenderung menurun.  Pada  minggu  ke-3  pertumbuhannya  pada  plastik transparan adalah 0,166 AU kemudian menurun menjadi 0,107 AU  pada  minggu  ke-12. Bacillus PL01  tanpa  penambahan  1 g/L  MSG  terlihat  pertumbuhannya  juga  menurun,  namun mengalami  kenaikan  kembali  pada  minggu  ke-12  masa inkubasi  yaitu  0,089  AU.  Pertumbuhan  biomassa  biofilm dengan  penambahan  1  g/L  MSG  masih  lebih  tinggi  jika dibandingkan dengan tanpa penambahan 1 g/L MSG.
Sedangkan  pada  kontrol  air  kolam  steril  dengan/tanpa penambahan  MSG  juga  terdeteksi  adanya  pertumbuhan biomassa  biofilm;  dengan  penambahan  1  g/L  MSG pertumbuhannya lebih tinggi dibandingkan tanpa 1 g/L MSG. Pertumbuhan  biofilm  kontrol  pada  permukaan  plastik transparan  dengan  penambahan  1  g/L  MSG  pada  minggu  ke- 12  adalah  0,109  AU.  Pertumbuhan  ini  menunjukkan  bahwa masih terdapat dan bertahan bakteri indigenous air kolam pada suhu  tinggi  walaupun  air  tersebut  sudah  disterilisasi    dengan autoclave pada  suhu  121 o C  pada  1,5  atm.  Bakteri  bertahan tersebut  diduga  dapat    tumbuh  dan  berkembang  biak  dalam inkubator  selama  12  minggu  masa  inkubasi.  Bakteri pembentuk  spora  merupakan  species  yang  dapat  bertahan hidup  setelah  dipanaskan  dengan  uap  100°  C  bahkan  lebih [13].  Spora  tahan  terhadap  temperatur  yang  mematikan  sel vegetatif,  seperti  contoh  spora  Clostridium  botulinum  tahan terhadap  temperatur  mendidih  selama  beberapa  jam  [14]. Meskipun  demikian  pertumbuhan  biofilm  pada  kontrol  tidak sebesar pertumbuhan Bacillus PL01
Dari  hasil  kepadatan  sel  biofilm  dapat  dikatakan  bahwa Bacillus PL01 dapat memanfaatkan MSG untuk pertumbuhannya,  meskipun  pertumbuhan  kedua  bakteri tersebut  menunjukkan  respon  yang  berbeda  terhadap  MSG sebagai nutrisi tambahan selain medium air kolam. Penurunan pertumbuhan Bacillus PL01  dengan  penambahan  1  g/L  MSG
seakan mengindikasi bahwa Bacillus PL01 dapat memanfaatkan  air  kolam  dan  MSG  sebagai  sumber  nutrisi secara  bersamaan  sehingga  ketika  nutrisi  tersebut  habis  maka pertumbuhannya  juga  menurun.  Air  tawar  (freshwater) menyediakan  nutrisi  baik  makronutrien  maupun  mikronutrien yang dapat dimanfaatkan mikroorganisme untuk pertumbuhannya  [15].  Sedangkan  Glutamat  dimanfaatkan sebagai  substrat  untuk  sintesis  protein  sehingga  dapat membentuk  material  sel.  Selain  itu  glutamat  merupakan prekursor  glutamin  yang  bermanfaat  dalam  metabolisme karbon dan nitrogen [16].
Dari  Gambar  2  dapat  dilihat  visualisasi  kerapatan  sel biofilm Bacillus PL01  dengan  penambahan  1  g/L  MSG  pada medium  air  kolam  pada  plastik  hitam.  Semakin  mencolok warna  biru  yang  dihasilkan  maka  diasumsikan  biofilm  yang terdapat  pada  permukaan  plastik  semakin  tebal.  Warna  biru tersebut merupakan indikator sel biofilm yang menempel pada permukaan  plastik.  Warna  biru  dihasilkan  dari  ikatan  antara dinding  sel  dengan  pewarna methylene blue yang menunjukkan  banyaknya  sel  bakteri.  Kenampakan  biofilm  di bawah mikroskop dengan menggunakan pewarnaan methylene blue memiliki korelasi sebanding dengan nilai OD600nm [17]. Nilai  serapan  OD600nm  yang  rendah  memiliki  struktur  yang lebih  renggang  dilihat  dari  warna  methylene  blue  yang  pudar dan  tidak  mencolok.  Sedangkan  nilai  serapan  OD600nm biofilm yang lebih tinggi terlihat memiliki struktur yang lebih rapat dan warna mencolok.
Penelitian  ini  juga  dilakukan  perbandingan  antara pertumbuhan Bacillus PL01  pada  permukaan  plastik  dan kolom  perairan.  Meskipun  pertumbuhan  sel  bakteri  pada kolom  perairan  dan  permukaan  plastik  menunjukkan  rentang pertumbuhan  yang  tidak  terlalu  berbeda,  namun  Gambar  3 dapat  menunjukkan  bahwa  pertumbuhan  biomassa  biofilm pada  permukaan  plastik  lebih  stabil.  Ketika  nutrisi  air  kolam habis  maka  bakteri  akan  mencari  nutrisi  alternatif  dengan lebih memilih menempel pada permukaan plastik.
Gambar  3.  Grafik  Perbandingan  Kerapatan  Sel  Biofilm  pada  Permukaan plastik dan Kolom Perairan Inkubator.
Gambar  4.  Velositas  Plastik  yang  Didegradasi  oleh Bacillus PL01  dan Pseudomonas PL01.
Pada  Gambar  3  menunjukan  bahwa  secara  umum pertumbuhan  sel Bacillus PL01  pada  kolom  perairan mengalami  penurunan  selama  12  minggu  masa  inkubasi. Pertumbuhan sel  kolom perairan Bacillus PL01 dengan  1 g/L MSG  pada  minggu  ke-3  adalah  0,28  AU  dan  turun  menjadi 0,041  pada  minggu  ke-12, Bacillus PL01  tanpa  1  g/L  MSG dari 0,144 AU menjadi  0,03 AU.  Secara umum bakteri lebih memilih  untuk  tumbuh  pada  suatu  permukaan  yang  tersedia daripada  di  sekitar  perairan  [18].  Mikroorganisme  yang menempel  pada  permukaan  suatu  substrat  biasanya  akan membentuk  biofilm  [19].  Pembentukan  biofilm  pada  suatu permukaan merupakan mekanisme bakteri untuk mendapatkan nutrien. Matriks polimer ekstraseluler pada biofilm terdiri atas EPS yang mampu menghimpun nutrien melalui absorpsi [20].

## Pengaruh  Bacillus  PL01  pada  Waktu  Apung  (Velositas) B. Plastik
Gambar  3  menunjukkan  bahwa  pertumbuhan  biofilm  pada plastik  lebih  tinggi  jika  dibandingkan  pada  kolom  perairan. Hal  ini  menunjukkan  ketika  nutrisi  air  kolam  habis  maka bakteri  akan  mencari  nutrisi  alternatif  lain  dengan  menempel pada  substrat.  Ketika  menempel  pada  plastik  maka  bakteri mampu  memanfaatkan  plastik  sebagai  sumber  karbon  dan energinya  dengan  memecah  polimer  plastik  secara  enzimatik. Penempelan  biofilm  dan  pemecahan  polimer  tersebut merupakan  salah  satu  proses  biodegradasi.  Sehingga  untuk mengetahui  terjadinya  degradasi  pada  plastik  tersebut dilakukan  parameter  waktu  apung  plastik  (velositas). Pengukuran  velositas  dilakukan  untuk  mengetahui  sifat hidrofobisitas plastik selama 12 minggu masa inkubasi. Plastik jenis  polietilen  bersifat  inert  karena  memiliki  rantai  molekul hidrofobik dan berat molekul yang besar  [21]. Polietilen yang tidak  didegradasi  memiliki  ikatan  non  polar  antar  monomer CH 2 oleh  sebab  itu  sifat  permukaannya  sangat  hidrofobik [22][23]. Aktivitas enzimatik yang dilakukan oleh mikroorganisme dalam mendegradasi menyebabkan menurunnya  berat  molekul  dan  hidrofobisitas  polimer  [24]. Pengukuran  velositas  tersebut  dapat  dilakukan  dengan membandingkan  lama  pengapungan  plastik  antara  sebelum dan  sesudah  perlakuan  di  dalam  air.  Untuk  mengetahui  sifat
awal plastik, pada pengukuran velositas terdapat kontrol awal yaitu plastik yang tidak diinkubasi.
Gambar  4  menunjukkan  plastik  kontrol  tanpa  perlakuan memiliki  waktu  apung  (velositas)  10,54 detik.  Velositas  pada plastik  yang  telah  didegradasi  selama  12  minggu  masa inkubasi  terlihat  lebih  lama  dibandingkan  dengan  kontrol. Pada Bacillus PL01 dengan 1 g/L MSG velositas pada plastik pada minggu ke-12 masa inkubasi mencapai  21,38 detik. Pada Bacillus PL01  tanpa  1  g/L  mencapai  19,48  detik.  Hal  ini membuktikan  bahwa  selama  masa  inkubasi Bacillus PL01 dapat  menurunkan  sifat  hidrofobisitas  plastik.  Pada  proses biodegradasi  terjadi  penambahan  gugus  hidroksil  untuk menurunkan tegangan permukaan plastik sehingga hidrofobisitas plastik akan menurun. Penurunan hidrofobisitas plastik tersebut juga akan mempengaruhi persebaran plastik di lingkungan perairan [11].
Hasil  pengukuran  velositas  ini  berkolerasi  pada  hasil kepadatan  sel  biofilm  pada  permukaan  plastik  (Gambar  1). Semakin  tingginya  pertumbuhan  biofilm  pada  permukaan plastik  maka  semakin  turun  hidrofobisitas  plastik  tersebut. Hidrofobisitas  pada  plastik  merupakan  sifat  penting  dari permukaan  plastik  dalam  proses  biodegradasi.  Hal  in disebabkan  karena  adanya  hubungan  antara  hidrofobisitas permukaan plastik dengan kemampuan mikroorganisme dalam berkolonisasi  pada  substrat  polimer.  Semakin  hidrofilik  suatu permukaan  maka  akan  lebih  mudah  suatu  mikroorganisme untuk  menempel  dan  berkolonisasi  [24].  Hasil  biodegradasi pada  polietilen  akan  semakin  efisien  jika  mikroorganisme pendegradasi  tersebut  dapat  membentuk  biofilm  pada permukaan  polietilen  [25].  Adanya  aktivitas  enzimatik  pada bakteri  akan  memecah  substrat  polimer  menjadi  oligomer yang memiliki berat molekul lebih rendah. Beberapa oligomer tersebut  selanjutnya  akan  berikatan  dengan  air  dan  menjadi produk  intermediet  organik  seperti  alkohol  dan  keton.  Dan masuknya  oksigen  pada  permukaan  plastik  akan  membentuk gugus  fungsi  baru  yaitu  karbonil  (C=O)  dan  hidroksil  (O-H) dimana  kedua  gugus  tersebut  lebih  mudah  didegradasi  [22]. Ketika  terjadi  kontak  dengan  air,  maka  gugus  karbonil  yang terdapat pada suatu polimer akan membentuk ikatan hidrogen dengan molekul air [26].

## IV. KESIMPULAN
Kesimpulan dari penelitian ini adalah  Pertumbuhan biofilm Bacillus PL01  dengan  1  g/L  MSG  pada  permukaan  plastik menurun  menjadi  0,107  AU.  Plastik  yang  telah  didegradasi membutuhkan  waktu  apung  lebih  lama  dibandingkan  kontrol tanpa perlakuan, yaitu pada Bacillus PL01 dengan 1 g/L MSG mencapai 21,38 detik dari kondisi semula selama 10.54 detik.

## DAFTAR PUSTAKA
[1]  H. Y. Darni and S. N. Arsiah, “ Peningkatan Hidrofobisitas dan Sfat Fisik Plastik Biodegradable Pati Tapioka dengan Penambahan Selulosa Residu Rumput Laut (Euchema spinossum ’ )., ” Universitas Lampung, 2010. [2]  E. Fitriani, “ Industri Plastik Raih Omzet Rp. 30 Triliun, ” 2016. [Online]. Available:  http://www.beritasatu.com/ekonomi/328416-industri-plastik- raup-omzet-rp-130-triliun.html/.
[3]  A. Ibiene, H. Stanley, and O. Immanuel, “ Biodegradation of Polyethylene by Bacillus sp. Indigenous to The Niger Delta Mangrove Swamp, ” Niger. J. Biotechnol. , vol. 26, pp. 68 – 79, 2013.
[4]  N. Lucas, C. Bienaime, C. Belloy, M. Queneudec, F. Silvestre, and J. E. Nava-Saucedo, “ Polymer  Biodegradation:  Mechanisms  and  Estimation Techniques-A review, ” J. Chemosph. , vol. 73, no. 4, pp. 429 – 442, 2008. [5]  K.  Leja  and  L.  G., “ Polymer  Biodegradation  and  Biodegradable Polymers-a  Review, ” Polish  J.  Environ.  Stud. ,  vol.  19,  no.  2,  pp.  225 –
226, 2009.
[6]  H. Nuryani and S. Jinap, “ Soy Sauce and its Umami Taste: A Link from The  Past  To  Current  Situation, ” J.  Food  Sci. ,  vol.  5,  no.  3,  pp.  71 – 76, 2010.
[7]  I.  Koike  and  Hattori, “ Growth  Yield  of  a  Denitrifying  Bacterium, Pseudomonas  denitrificans  under  Aerobic  an  denitrifying  conditions, ” J. Gen. Microbiol. , vol. 88, pp. 1 – 10, 1975.
[8]  L. Mufroh and M. Shovitri, “ Degradasi Plastik Oleh Bakteri Bacillus Pl01 dan  Pseudomonas  Pl01  dengan  Penambahan  1  G/L  Monosodium Glutamat (Msg), ” Institut Teknologi Sepuluh Nopember, 2016.
[9]  D. Jumiarni, “ Isolasi dan Identifikasi Bakteri Sedimen Waduk, ” 2007.
[10] H.  .  Bold  and  M.  .  Wayne, Introduction  to  Algae .  New  Jersey:  Prentice Hal, Inc, 1985.
[11] J.  Reisse,  B.  Slat.,  K.  Noble.,  D.  Pleises.,  and  M.  Epp, “ The  Vertical Distribution  of  Buoyant  Plastics  at  Sea :  an  observational  study  in  the
North Atlantic Gyre, ” J. Biogeosciences , vol. 12, pp. 1249 – 1256, 2015. [12] F. Brooks, G et al. , Medical Microbiology . Mc Graw Hill, 2010.
[13] R. Melliawati, “ Eschericia coli dalam kehidupan manusia, ” J. Bio Trends , vol. 4, no. 1, 2009.
[14] L. Waluyo, Mikrobiologi Umum . Malang: UPT Penerbit UMM, 2007.
[15] T.  Downs,  M.  Schallenberg,  and  C.  W.  Burns, “ Responses  of  Lake Phytoplankton  to  Micronutrient  Enrichment:  a  Study  In  Two  New Zealand  Lakes  and  an  Analysis  of  Published  data, ” Aquat.  Sci. ,  vol.  70, pp. 347 – 360, 2010.
[16] A. Meister, Biochemistry of Glutamate : Glutamine and Glutathione . New York: Raven Press, 1979.
[17] P. Thomen, J. Robert, A. Monmeyran, and H. N. Bitbol A-F, Douarche C,
“ Bacterial Biofilm Under  Flow:  First a Physical Struggle to  Stay, then a Matter of Breathing, ” PLoS One , vol. 12, no. 4, 2017.
[18] X.  Tang, “ Controlling  Biofilm  Development  on  Ultrafiltration  and Reverse Osmosis Membranes Used in Dairy Plants, ” Massey University, 2011.
[19] G.  A.  O ’ toole  and  R.  Kolter, “ Initiation  of  Biofilm  formation  in Pseudomonas  fluorescens  WCS365  Proceeds  Via  Multiple,  Convergent Signalling  Pathways:  A  Genetic  Analysis, ” Mol.  Microbiol. ,  vol.  28,  no. 3, pp. 449 – 461, 19998.
[20] M.  A.  Hamon  and  B.  A.  Lazazzera, “ The  Sporulation  Transcription Factor  Spo0A  is  required  for  Biofilm Development  in Bacillus  subtilis, ” Mol. Microbiol. , vol. 42, no. 5, pp. 1199 – 1209, 2011.
[21] B.  Suresh,  S.  Maruthamuthu,  and  M.  Kannan, “ Mechanical  and  Surface Properties  of  Low-Density  Polyethylene  Film  Modified  by  Photo- Oxidation, ” Polym. J. , vol. 43, pp. 398 – 406, 2011.
[22] J. Arutchelvi, M. Sudhakar, A. Arkatkar, M. Doble, S. BAdhuri, and P. V. Uppara, “ Biodegradation  of  Polyethylene  and  Polypropylene, ” Indian  J. Biotechnol. , vol. 7, no. 9 – 22, 2008.
[23] M.  B.  Kazimi,  I.  Ahmed,  and  C.  K.  .  Faizal, “ A  Short  Review  of Hydrophilic Surface Modification  Methods for Low Density Polyethylene, ” Int. Conf. Chem. Innov. , 2011.
[24] K. Sen and S. Raut, “ Microbial degradation of low density polyethylene (LDPE): A review, ” J. Environ. Chem. Eng. , vol. 3, pp. 462 – 473, 2015.
[25] D. Hadad, H. Geresh, and A. Sivan, “ Biodegradation of Polyethylene by the  Thermophilic  Bacterium  Brevibacillus  borstelensis, ” J.  Appl. Microbiol. , vol. 98, pp. 1093 – 1100, 2005.
[26] W.  J.  Lee,  J.  G.  Chang,  and  S.  P.  Ju, “ Hydrogen-Bond  Structure  at  the Interfaces  between  Water/Poly(methyl  methacrylate),  Water/Poly (methacrylic  acid),  and  Water/Poly(2-aminoethylmethacrylamnide), ” Langmuir , vol. 26, no. 15, pp. 12640 – 12647, 2010.