Evaluasi penambahan kunyit (Curcuma longa) dalam pakan sebagai antioksidan terhadap kinerja pertumbuhan ikan lele Clarias gariepinus Burchell 1822 yang dibudidaya tanpa pergantian air
[The evaluation of turmeric ( Curcuma longa ) supplementation within feed as an antioxidant towards growth performance of catfish Clarias gariepinus Burchell 1822 in zero water exchange condition]
Thoy Batun Citra Rahmadani 1 ; Dedi Jusadi 2 ; Mia Setiawati 2 ; Yuni Puji Hastuti 2
1 Mahasiswa Pascasarjana Institut Pertanian Bogor; thoybatun@gmail.com
2 Departemen Budidaya Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu KelautanInstitut Pertanian Bogor dedidj@apps.ipb.ac.id, miasetiawati25@yahoo.com , yuniha@ipb.ac.id
Diterima: 25 November 2019; Disetujui: 28 April 2020

## Abstrak
Tujuan penelitian ini adalah untuk mengevaluasi penambahan kunyit ke dalam pakan sebagai antioksidan dan kinerja pertumbuhan ikan lele Afrika ( Clarias  gariepinus ). Penelitian ini menggunakan rancangan acak lengkap  dengan 4 perlakuan dan 4 ulangan. Setiap perlakuan terdiri atas penambahan dosis kunyit sebanyak 0; 2,5; 5 dan 7,5 g kg -1 pakan. Seratus benih ikan lele (5,95±0,05 g) dipelihara dalam tangki Intermediate Bulk Container (IBC)  (1×1×1 m 3 ) dan dipelihara tanpa pergantian air selama 60 hari. Ikan lele diberi pakan secara at  satiation dua kali sehari. Hasil penelitian menunjukkan bahwa terjadi peningkatan kandungan antioksidan pada ikan lele yang diberi pakan dengan penambahan  kunyit  di  dalamnya,  yang  secara  bersamaan  juga  mengurangi  persentase  kerusakan  hati.  Parameter kerusakan hati dapat  dilihat dari beberapa parameter, seperti hati pucat, droplet lemak dan kandungan lemak pada perlakuan penambahan kunyit lebih rendah dibandingkan tanpa penambahan kunyit. Namun ikan lele yang diberikan pakan dengan penambahan kunyit tidak menunjukkan hasil yang signifikan dari segi pertumbuhannya.
Kata penting : antioksidan, lele, kunyit, tanpa pergantian air

## Abstract
The objective of this research was to evaluate the supplementation of turmeric in the diet on antioxidant status and growth  performance  of  African  catfish  ( Clarias  gariepinus )  in  zero  water  exchange  condition.  This  study  used  a completely randomized design with 4 treatments and 4 replications. Each treatment consisted of feed supplementation turmeric  at  dosage  of  0;  2.5;  5  or  7.5  g  kg -1 diet.  One  hundred  catfish  juvenile  (5.95±0.05  g)  were  stocked  in intermediate bulk container (IBC ) tank (1×1×1 m 3 ) and rearing in zero water exchange condition for 60 days. Catfish were fed at satiation twice a day, in the morning and evening.  The results showed that an increase in antioxidant content  in  catfish  fed  with  the  addition  of  turmeric,  which  simultaneously  also  reduced  the  percentage  of  liver damage.  The  parameters  of  liver  damage  can  be  seen  from  several  parameters  i.e.  pale  liver,  droplet  fat  and  fat content in the addition of turmeric treatment is lower than without the addition of turmeric. However, catfish fed with the addition of turmeric did not show significant results in terms of growth performances.
Keywords: antioxidant, catfish, turmeric, zero water exchange

## Pendahuluan
Ikan  lele  ( Claria s gariepinus )  merupakan komoditas  budi  daya  yang  banyak  dibudida- yakan di Indonesia. Salah satu sistem budidaya yang  digunakan  adalah  tanpa  pergantian  air selama  masa  pemeliharaan.  Kondisi  ini  dapat menyebabkan  NH 3 (amonia)  yang  berasal  dari sisa  pakan  dan  feses  meningkat  dalam  wadah pemeliharaan (Zhang et al . 2018).
Amonia  merupakan  nitrogen  tidak  terion- isasi (Camargo & Alonso 2006), saat masuk ke dalam  tubuh  akan  menyebabkan  konsentrasi amonia darah menjadi tinggi, dan meningkatkan aktivitas enzim glutamin sintetase (GS), aspartat aminotransaminase  (AST)  serta  alanin  amino- transminase  (ALT)  (Saha et  al .  2002).  Selain itu,  GS  dapat  menyebabkan  nilai phosphate-
activates  glutaminase (PAG)  menjadi  tinggi.
PAG  yang  terlalu  tinggi  dapat  memicu  terjadi- nya transisi permeabilitas mitokondria, sehingga terjadi  pembentukan reactive  oxygen  species
(ROS).  ROS  merupakan  suatu  molekul  yang sangat  reaktif  terhadap  membran  lipid,  protein dan DNA (El- Beltagi & Mohamed 2013).
ROS yang diakibatkan amonia tinggi dapat merusak sel hati yang ditandai dengan mening- katkan  kadar  ALT  dan  AST  (Ngaddi  2019; Arisa  2019).  Li et  al. (2018)  juga  melaporkan bahwa  keberadaan  amonia  di  tubuh  menye- babkan peningkatan indeks hepatosomatik pada hati, malonadialdehyde (MDA)  (Chen et  al.
2019),  pembengkakan,  degenerasi  hidropobik
(Benly et  al .  2008),  warna  hati  menjadi  pucat
(Ngaddi  2019),  yang  merupakan  indikator kerusakan  hati.  Kerusakan  hati  akan  meng- ganggu  keseluruhan  proses  metabolisme  dan detoksifikasi toksin, sehingga pertumbuhan ikan menjadi lebih lamban (Wang et al. 2017; Foss et al . 2009; Guan et al. 2010; Schram et al. 2010) serta nilai konversi pakan menjadi tinggi (Li et
al . 2018).
Kerusakan  di  hati  akibat  ROS  dapat  dice- gah  dengan  memberikan  antioksidan.  Kunyit merupakan  salah  satu  bahan  yang  dapat digunakan  sebab  memiliki  banyak  senyawa antioksidan  yang  dapat  meningkatkan  respon imun  dan  aktivitas  antioksidan  di  dalam  tubuh (Geijer et  al . 2002). Beberapa bahan aktif yang terdapat  dalam  kunyit  diantaranya  adalah, α- Turmerone (21,4%), α-santalene (7,2 %) (Singh
et  al .  2011),  cineol  (1%),  borneol  (0,5%)
(Chattopadhyay et  al .  2004)  dan  kurkumin (0,58-3,14%)  (Tayyem et  al .  2006).  Senyawa aktif dalam kunyit terhadap radikal bebas dapat terjadi dengan beberapa cara, diantaranya yaitu dapat mengikat ROS dan senyawa nitrogen yang dapat memodulasi aktivitas glutationin, katalase,
dan  enzim superoxide  dismutase (SOD)  yang aktif dalam menetralkan radikal bebas (Tung et al . 2019).
Penelitian yang telah dilakukan, baik secara in-vitro maupun in-vivo, telah membuktikan ke- mampuan  bahan  aktif  dalam  kunyit  sebagai senyawa anti inflamasi dan antioksidan (Tung et al .  2019).  Penelitian  yang  dilakukan  oleh Mahmoud et  al. (2014)  menunjukkan  bahwa pemberian kunyit 0,50% mampu meningkatkan protein tubuh dan menjaga ikan nila dari bakteri
Pseudomonas  fluorescens .  Kunyit  juga  mampu meningkatkan pertumbuhan ikan patin (Dewi et al .  2017)  dan  menghambat  proses  peroksidasi lipid pada tikus (Shukla et  al . 2003). Kurkumin dari kunyit juga mampu meningkatkan aktivitas enzim SOD di hati ikan mas dengan dosis 0,5- 1%  (Giri et  al .  2011).  Berdasarkan  uraian  di atas,  maka  penelitian  ini  dilakukan  dengan tujuan  untuk  mengevaluasi  penambahan  kunyit dalam  pakan  sebagai  antioksidan  terhadap pertumbuhan  ikan  lele  yang  dibudidaya  tanpa pergantian air.

## Bahan dan metode
Penelitian ini menggunakan rancangan acak lengkap dengan 4 perlakuan dan 4 ulangan. Per- lakuannya  adalah  pemberian  pakan  yang  telah ditambah kunyit pada dosis 0; 2,5; 5 dan 7,5 g kg -1 untuk ikan lele.

## Pakan uji
Pakan  uji  yang  digunakan  adalah  pakan komersial untuk ikan lele dan ditambahkan bu- buk kunyit komersial sesuai dengan dosis perla- kuan.  Kunyit  yang  digunakan  terlebih  dahulu diuji  untuk  mengetahui  komposisi  bahan aktifnya  dan  diperoleh  komposisi  bahan  aktif (Tabel 1).
Kunyit kemudian dicampurkan dengan cara dilapisi  Kunyit  sesuai  dengan  dosis  perlakuan ditambahkan  putih  telur  dari  satu  butir  telur serta  1/5  sendok  teh  kuning  telur,  yang sebelumnya  sudah  ditambahkan  air  100  ml. Campuran  bahan  tersebut  disemprotkan  ke pakan  secara  merata.  Pakan  lalu  dikeringkan dalam  oven  suhu  60  C  selama  ±4  jam.  Pakan yang  telah dicoating dengan  kunyit  lalu  diuji proksimat  (Tabel  2)  menggunakan  metode
Association  of  Official  Analytical  Chemist (2019).

## Pemeliharaan ikan
Ikan lele ukuran 5,95±0,05 g ditebar seba- nyak  seratus  ekor  pada  setiap  tangki
Intermediate  Bulk  Container (IBC)  ukuran 1x1x1 m 3 dan ditempatkan di Kolam Percobaan, Departemen  Budidaya  Perairan,  Institut Pertanian  Bogor.  Ikan  dipelihara  dalam  16 tangki IBC selama 60 hari tanpa pergantian air. Pemberian  pakan  dilakukan  dua  kali  pada  pagi dan  sore  hari  secara at  satiation .  Pengukuran kualitas air yang terdiri dari kandungan oksigen
Tabel 1 Kandungan senyawa aktif pada kunyit Senyawa Aktif Kandungan (%) Cychlohexena 3 1,5 dimetyl 1,4-6 methylene Turmerone Benzene 1-(1,5 dimethyl hexenyl) 1,7 dehidroksil methane 1,8-9-Methyl-Hexapholic 3 proxyl hydro butyrate Kurkumin 29,01 22,09 19,21 17,21 7,81 3,18 1,05
Tabel 2  Komposisi proksimat pakan perlakuan (%) yang diberi penambahan kunyit dengan dosis berbeda
Kandungan nutrien pakan Perlakuan (%) 0 0,25 0,5 0,75 Air (%) Abu (%) Protein (%) Lemak (%) Serat kasar (%) BETN (%) 8,87 8,19 29,17 4,83 5,44 43,5 8,16 8,09 29,83 4,35 5,51 44,06 8,20 7,98 30,69 4,12 6,39 42,62 8,17 8,02 30,39 4,47 6,63 42,32 Keterangan : BETN= bahan ekstrak tanpa nitrogen Tabel 3 Data kualitas air pada semua tangki selama pemeliharaan 60 hari Parameter Perlakuan penambahan kunyit (%) 0 0,25 0,5 0,75 Suhu (  C) 25,5-30 26-30 25,5-30 25,5-30 pH 7,2-7,7 7,3-7,8 7,2-7,7 7,2-7,8 Oksigen terlarut (mg L -1 ) 0,6-4,7 0,6-4,7 0,7-5,8 0,7-4,6 TAN (mg L -1 ) 10,58-49,74 9,08-42,17 11,22-39,29 9,40-46,22 Amonia (mg L -1 ) 0,13-1,37 0,13-0,41 0,12-0,66 0,07-0,53
terlarut,  total  amonia  nitrogen  (TAN),  dan  pH dilakukan setiap 10 hari (Tabel 3).

## Parameter uji
Laju  pertumbuhan  harian  dihitung  dengan menggunakan  rumus  yang  dikemukakan  oleh Hopkins (1992):
𝐿𝑃𝐻 = ( 𝑡√Wt
Wo − 1) 𝑥 100
Keterangan: LPH  = laju pertumbuhan harian (%) W t = berat tubuh rata-rata pada akhir pemeliharaan (g) W o = berat tubuh rata-rata pada awal pemeliharaan (g)
Jumlah  Konsumsi  Pakan  =  Jumlah  pakan  awal (g) – Jumlah pakan akhir (g)
Nisbah  konversi  pakan  dihitung  menggu- nakan rumus:
NKP= F ( Bt+Bd ) - B0
Keterangan:
NKP  = nisbah konversi pakan
B t = bobot ikan pada akhir penelitian (g) B o = bobot ikan pada awal penelitian (g) B d = bobot ikan yang mati selama penelitian (g)
F = jumlah pakan yang dikonsumsi selama
penelitian (g)
Retensi  protein  dihitung  menggunakan rumus berikut (Watanabe 1988):
RP (%)= Jmlh prot. akhir –Jmlh prot . awal Jumlah protein yang dikonsumsi ×100
Sintasan  dihitung  menggunakan  rumus berikut:
TKH= Nt No ×100%
Keterangan: TKH   = sintasan (%) Nt = jumlah individu pada akhir penelitian No = jumlah individu pada awal penelitian
Pengamatan  organ  hati  dilakukan  dengan mengamati  histologi  hati,  menghitung  lemak dan indeks hepatosomatik ( hepatosomatic index HSI).  Pengamatan  histologi  dilakukan  pada akhir  penelitian.  Pengamatan  hati  dilakukan pada  dua  tipe  hati,  yaitu  hati  merah  dan  hati pucat. Hati merah dan hati pucat dibedakan dari tampilan  visualnya,  yakni  pada  hati  pucat terdapat  warna  putih  yang  memudar  seperti lemak  sementara  hati  merah  tidak  terdapat  hal tersebut. Hati yang telah diambil lalu disimpan dalam  formalin neutral  buffer (Bouin).  Sampel kemudian  dimasukkan  ke  dalam  paraffin, dipotong  dengan  ketebalan  kurang  lebih  5  µm, dan dicelupkan pada zat warna hematoxylin dan Eosin.  Selanjutnya  preparat  dikeringkan  dan diamati  dibawah  mikroskop  (Slaoui  &  Fiette 2011).  HSI  dihitung  menggunakan  rumus sebagai berikut
HSI = (LW × BW -1 ) × 100 Keterangan: HSI = indeks hepatosomatik (%) LW = bobot hati (g) BW = bobot tubuh ikan (g)
Analisis  Superoksida  Dismutase  (SOD) dilakukan  pada  organ  hati  dengan  mengambil
0,3 g  sampel.  Sampel  dianalisis  dengan menggunakan  SOD colorimetric  test  kit merk Abcam, United Kingdom (Ali et al . 2015).
Analisis  Malondialdehida  (MDA)  dilaku- kan  untuk  melihat  kondisi  stres  oksidatif. Analisis  dilakukan  pada  organ  hati,  sebanyak 0,3  g.  Sampel  dianalisis  menggunakan  MDA
lipid  peroxidation  colorimetric  test  kit merk Abcam, United Kingdom (Ali et al . 2015).
Pengamatan  darah  ikan  meliputi  enzim aspartate aminotransaminase (AST)  dan
alanine  aminotransaminase (ALT),  trigliserida (TG), high  density  lipoprotein (HDL) dan low density  lipoprotein (LDL).  Darah  diambil  pada
saat  akhir  pemeliharaan  menggunakan syringe yang  telah  dibilas  menggunakan  antikoagulan. Darah dimasukkan ke dalam mikrotube lalu di- sentrifugasi  selama  15  menit  dengan  kecepatan 3000  rpm.  Selanjutnya  plasma  darah  diambil dan disimpan dalam mikrotube steril berukuran 1 ml. Pengukuran TG, HDL dan LDL dilakukan menggunakan  metode enzymatic  colorimetric test  for  cholestrol  with  lipid  clearing  factor dengan kit cholestrol liquicolor , merk HUMAN.
Konsentrasi  kimia  darah  dinyatakan  sebagai berikut:
Kimia Darah= absorban sampel absorban standar ×200mg/dL Analisis proksimat dilakukan pada ikan dan pakan, meliputi kandungan protein, lemak, abu, air,  BETN  (bahan  ekstrak  tanpa  nitrogen)  dan serat (AOAC 2019)

## Analisis data
Analis  data  dilakukan  dengan  mengguna- kan Microsoft  Excel 2016  dan  Minitab  16. Semua  data  dianalisis  menggunakan  ANOVA, sedangkan histologi dilakukan secara deskriptif. Tingkat  beda  nyata  antar  nilai  tengah  di  uji dengan  menggunakan  Tukey  dengan  tingkat kepercayaan P < 0,05.

## Hasil
Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa, kinerja  pertumbuhan  ikan  lele  yang  dipelihara selama  60  hari  tanpa  pergantian  air  tidak ditemukan perbedaan yang signifkan (Tabel 4). Hal tersebut dapat dilihat dari nilai bobot akhir dan  laju  pertumbuhan  harian  (LPH)  yang  tidak berbeda nyata pada ikan lele yang diberi pakan perlakuan  mengandung  kunyit  dengan  dosis
berbeda.  Hasil  serupa  ditemukan  juga  pada jumlah konsumsi pakan (JKP),  nisbah konversi pakan  (NKP),  retensi  protein,  dan  sintasan (TKH).
Hasil pengukuran nilai MDA pada ikan lele yang  diberi  pakan  dengan  penambahan  kunyit memberikan  perbedaan  yang  signifikan.  Pakan yang  ditambahkan  kunyit  menyebabkan  nilai MDA menjadi lebih rendah dibandingkan perla- kuan  pada  ikan  yang  diberi  pakan  tanpa penambahan  kunyit.  Kunyit  juga  memberikan dampak positif pada nilai aktivitas enzim SOD. Perlakuan  yang  diberi  penambahan  kunyit dalam  pakan  menghasilkan  nilai  SOD  yang tinggi  dibandingkan  dengan  yang  tidak  diberi penambahan  kunyit.  Hal  yang  sama  juga  dite- mukan pada nilai HSI, ikan yang diberi penam- bahan  kunyit  memiliki  nilai  HSI  yang  lebih rendah  dibandingkan  dengan  ikan  yang  tidak diberi  penambahan  kunyit.  Penelitian  ini  juga menemukan  dua  warna  hati  lele  yang  berbeda, yaitu pucat dan merah. Hasilnya adalah dengan penambahan kunyit mampu menghasilkan jum- lah warna merah yang lebih banyak dibanding- kan tanpa penambahan kunyit.
Analisis histologi dilakukan juga pada hati yang  pucat  dan  merah.  Hati  yang  pucat menunjukkan  terjadinya macrovesicular  steo- tasis, menggambarkan banyaknya droplet lemak (Gambar  1).  Penambahan  kunyit  dalam  pakan mampu  mengurangi  luas  permukaan  droplet lemak  di  hati.  Hal  ini  sangat  berbeda  dengan jaringan  hati  yang  berwarna  merah,  histologi hati tersebut menunjukkan lebih sedikit droplet lemak (Gambar 2).
Pengukuran lemak hati dilakukan pada hati yang pucat dan hati merah. Hati merah menun- jukkan  bahwa  tidak  ada  perbedaan  diantara semua  perlakuan,  sedangkan  untuk  hati  pucat menunjukkan  bahwa  dengan  penambahan kunyit  mampu  mengurangi  nilai  lemak  di  hati (Tabel 6)
Hasil  pengukuran  kimia  darah  menunjuk- kan  bahwa  penambahan  kunyit  dalam  pakan dengan dosis 0,75% mampu menurunkan trigli-
serida  dan  memiliki  perbedaan  yang  nyata  di- bandingkan dengan perlakuan lainnya (P<0,05). Nilai kolestrol, HDL dan LDL pada semua per- lakuan menunjukkan hasil yang sama (Tabel 7).
Ikan  lele  yang  diberi  pakan  perlakuan dengan dosis kunyit yang berbeda pada kondisi tanpa  pergantian  air  tidak  memengaruhi  nilai enzim AST dan  ALT (Tabel 8).
Tabel 6 Kadar lemak hati merah dan pucat ikan lele yang diberi penambahan kunyit dengan dosis berbeda
Parameter Perlakuan penambahan kunyit (%) 0 0,25 0,5 0,75 Hati merah (%) 3,06±2,07 a 3,76±1,26 a 2,20±0,64 a 2,21±1,72 a Hati pucat (%) 7,20±0,07 a 3,86±0,35 b 3.70±0,42 b 4,48±0,60 b Keterangan : Huruf cetak atas yang berbeda di belakang nilai rata-rata (± simpangan baku) menunjukkan perbedaan nyata (P<0,05). Tabel 7 Kimia darah ikan lele yang diberi penambahan kunyit dengan dosis berbeda Parameter Dosis Perlakuan penambahan kunyit (%) 0 0,25 0,5 0,75 TG (mg dl -1 ) 134,06±3,99 a 135,24±2,65 a 132,65±3,38 a 109,51±6,13 b Kolesterol (mg dl -1 ) 263,81±5,97 a 260,85±4,41 a 266,82±1,37 a 210,51±7,56 a HDL (mg dl -1 ) 88,01±6,47 a 83,85±10,18 a 84,82±3,31 a 74,35±1,45 a LDL (mg dl -1 ) 42,19±3,41 a 44,50±7,02 a 44,98±5,60 a 35,49±2,46 a Keterangan:  Huruf cetak atas yang berbeda di belakang nilai rata-rata (± simpangan baku) menunjukkan perbedaan nyata (P<0,05). TG=trigliserida, HDL=high density lipoprotein, LDL=low density lipoprotein Tabel 8 Kadar enzim ALT dan AST pada darah ikan lele yang diberi penambahan kunyit dengan dosis berbeda Parameter Perlakuan penambahan kunyit (%) 0 0,25 0,5 0,75 ALT (U/ml) 12,45±0,98 a 12,74±1,67 a 15,55±2,21 a 14,76±4,29 a AST (U/ml) 28,17±8,30 a 35,61±7,38 a 31,20±6,01 a 26,46±8,57 a
Keterangan:  Huruf cetak atas yang berbeda di belakang nilai rata-rata (±simpangan baku) menunjukkan perbedaan nyata (P<0,05). Alt=alanine transaminase, Ast=aspartate transaminase. Tabel 4. Kinerja pertumbuhan dan pakan ikan lele yang diberi penambahan kunyit  dalam pakan dengan dosis berbeda Parameter Perlakuan penambahan kunyit (%) 0 0,25 0,5 0,75 W 0 (g) 5,95±0,03 a 5,94±0,04 a 5,96±0,06 a 5.92±0.06 a W t (g) 83,32±4,97 a 8,.06±5,71 a 79,63±6,79 a 77.47±5.57 a Bo (g) 595,23±3,50 a 594,85±4,57 a 59,58±6,51 a 592.75±6.20 a B t (g) 8040,40±5,02 a 7970,9±6,05 a 7611,5±7,30 a 7414,50±8.20 a JKP (g ikan -1 ) 100,87±3,12 a 100,10±2,54 a 95,70±4,04 a 93,58±5,11 a FCR 1,21±0,42 a 1,21±0,01 a 1,21±0,05 a 1,20±0,02 a RP (%) 56,52±1,01 a 53,57±3,13 a 52,41±1,68 a 55,95±.2,52 a TKH (%) 96,50±1,73 a 96,00±1,41 a 95,50±1,29 a 95,50±4,20 a LPH (%) 2,19±0,01 a 2,19±0,01 a 2,18±0,02 a 2,17±0,02 a Keterangan:
Huruf cetak atas yang berbeda di belakang nilai rata-rata (± simpangan baku) menunjukkan perbedaan nyata (P<0,05). W 0 =bobot individu ikan awal, W t =bobot individu ikan akhir, B 0 =biomasa ikan awal B t =biomasa ikan akhir, JKP=jumlah konsumsi pakan, FCR=nilai nisbah konversi pakan ikan, RP=retensi protein, TKH=sintasan, LPH=laju pertumbuhan harian.
Tabel 5  Kadar malanodialdehida (MDA), superoksida dismutase (SOD), indeks hepatosomatik (HSI),
dan persentase jumlah hati merah Parameter Perlakuan penambahan kunyit (%) 0 0,25 0,5 0,75 MDA (umol/L) 5,48±0,48 a 2,52±0,45 c 3,62±0,43 b 3,48±0,47 bc SOD (U/g protein) 3,58±0,21 b 4,62±0,46 a 4,35±0,44 ab 5,15±0,43 a HSI (%) 2,78±0,13 a 2,35±0,06 b 2,34±0,10 b 2,56±0,12 ab Jumlah hati merah (%) 52,50±0,12 c 60,00±0,10 b 62,50±0,08 a 62,50±0,07 a
Keterangan: Huruf cetak atas yang berbeda di belakang nilai rata-rata (± simpangan baku) menunjukkan perbedaan nyata (P<0,05).

## Pembahasan
Hasil  budidaya  ikan  lele  yang  dipelihara dengan  sistem  tanpa  pergantian  air  mengha- silkan  TAN  yang  tinggi  pada  akhir  peme- liharaan,  dengan  rentang  39,29-49,74  mg  L -1
(Tabel  3).  TAN  yang  tinggi  di  lingkungan berasal  dari  sisa  pakan  dan  ekskresi  ikan. Amonia  yang  ada  di  lingkungan  dapat  masuk
dalam  tubuh  dan  menyebabkan  terbentuknya reactive  oxygen  species  (ROS) Murthy et  al . 2001).
ROS  dapat  menyebabkan  peroksidasi  lipid pada  membran  sel  yang  ditandai  dengan meningkatnya  nilai malonadialdehyde (MDA) dalam  hati.  MDA  adalah  hasil  akhir  dari peroksidasi  lipid  (Sun et  al .  2012).  Hasil
Gambar 1. Histologi hati pucat ikan lele dengan perbesaran 250 kali.
Keterangan: A= perlakuan 0% (tanpa penambahan kunyit), B= perlakuan penambahan kunyit 0,25%, C= perlakuan penambahan kunyit 0,5%, D= perlakuan penambahan kunyit 0,75%. Skala bar 1000 µm.
Tanda panah menunjukkan  droplet lemak.
Gambar 2. Histologi hati merah ikan lele dengan perbesaran 250 kali.
Keterangan: A= perlakuan 0% (tanpa penambahan kunyit), B= perlakuan penambahan kunyit 0,25%,
C= perlakuan penambahan kunyit 0,5%, D= perlakuan penambahan kunyit 0,75%.
penelitian  menunjukkan  bahwa,  ikan  lele  yang diberi  pakan  dengan  penambahan  kunyit memiliki nilai MDA yang rendah dibandingkan dengan tanpa penambahan kunyit (Tabel 5). Hal yang  sama  dilaporkan  juga  oleh  Singh et  al. (2011),  bahwa  dengan  penambahan  kunyit mampu  menghasilkan  nilai  MDA  yang  rendah pada  tikus.  Ikan  lele  yang  diberi  penambahan kunyit  dalam  pakannya  mampu  menurunkan MDA sebab kunyit memiliki senyawa antioksi- dan (Tung et  al . 2019). Nilai MDA yang turun memiliki  hubungan  dengan  enzim  antioksidan dalam  menangkal  ROS  yaitu superoksida dismutase (SOD).  Hasil  penelitian  yang  telah dilakukan  menunjukkan  bahwa  penambahan kunyit  dalam  pakan  mampu  meningkatkan enzim  SOD  di  dalam  hati  (Tabel  5).  Hal  ini sejalan  dengan  penelitian  Yarru et  al .  (2009) bahwa  dengan  pemberian  kunyit  mampu meningkatkan  enzim  SOD  pada  ayam  broiler. Menurut Alrawaiq dan Abdullah (2014), kunyit memiliki  senyawa  yang  mampu  memberikan sinyal  kepada  gen  Nrf2.  Nrf2  mampu  mengin- duksikan  sel  untuk  memproduksi  enzim  SOD. Oleh  sebab  itu,  kunyit  mampu  meningkatkan aktivitas enzim SOD di dalam hati.
Hasil pengamatan HSI pada ikan lele yang diberi  pakan  dengan  penambahan  kunyit  juga menunjukkan  adanya  perbedaan  dengan  yang tidak  diberi  kunyit  (Tabel  5).  Menurut  Ngaddi (2019)  ikan  lele  yang  dibudidayakan  dalam tanpa  pergantian  air  memiliki  HSI  yang  lebih berat, dan berdasarkan hasil penelitian ini dapat dilihat  bahwa  terjadi  penurunan  HSI  pada perlakuan  penambahan  kunyit  dalam  pakan. Penurunan  HSI  sejalan  juga  dengan  persentase jumlah  hati  merah  yang  ditemukan  (Tabel  5). Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  penam- bahan  kunyit  dalam  pakan  mampu  mengha-
silkan persentase jumlah hati merah yang lebih banyak. Menurut Ngaddi (2019) kerusakan hati dicirikan  dengan  ukuran  hati  yang  besar  dan warna hati yang pucat.
Kerusakan  pada  hati  dapat  juga  dilihat berdasarkan histologi. Histologi pada penelitian ini  dilakukan  pada  hati  merah  dan  pucat. Hasilnya adalah histologi pada hati yang merah cenderung memiliki droplet lemak yang sedikit, sedangkan  pada  hati  yang  pucat  droplet  lemak di hati lebih banyak. Droplet lemak merupakan organel dinamis yang berfungsi untuk menyim- pan  lipid  ketika  energi  berlebih  dan  disiapkan sebagai  cadangan  energi  ketika  dibutuhkan (Gluchowski et  al . 2017). Saat ROS meningkat terjadi kerusakan sel yang mengakibatkan meta- bolisme  lemak  terganggu,  akibatnya  adalah  le- mak tidak dapat terdistribusikan dan tertumpuk dalam  hati  sehingga  droplet  lemak  menjadi membesar  seperti  yang  ditunjukkan  pada Gambar 1. Hal yang sama ditemukan pada pene- litian  Dyk et  al (2012),  bahwa  ikan  lele  yang hidup di lingkungan berpolusi memiliki banyak droplet lemak di hatinya. ROS merupakan salah satu pemicu terjadinya droplet lemak (Jin et  al . 2018),  dan  dengan  penambahan  kunyit  dapat dilihat bahwa droplet lemak cenderung semakin mengecil. Penurunan ukuran droplet lemak pada hasil histologi memiliki hubungan dengan kadar lemak  hati  pada  ikan  lele  (Tabel  6).  Hasil pengamatan  menunjukkan  bahwa  penambahan kunyit  dalam  pakan  mampu  mengurangi  kadar lemak  di  dalam  hati  ikan  lele.  Hal  ini  menun- jukkan  bahwa  kunyit  mampu  mengatasi  keru- sakan  yang  disebabkan  oleh  ROS  karena peranannya  sebagai  antioksidan.  Kunyit  meng- hambat pembentukan ROS dengan menghambat sinyal  pembentuan  ROS  itu  sendiri,  Pengham- batan  sinyal  dilakukan  dengan  pemberian  satu
atom oksigen dari kurkumin untuk menstabilkan reaksi.  Selanjutnya  melalui  jalur  NRf-1  kurku- min  memerintahkan  otak  untuk  memproduksi SOD yang berfungsi menekan ROS (Kocaadam & Sanlier 2015).
Sejalan  dengan  hasil  di  atas,  penambahan kunyit  dalam  pakan  dengan  dosis  0,75%    juga mampu menurunkan trigliserida di dalam darah ikan lele (Tabel 7). Hasil yang sama juga dila- porkan oleh Daneshyar et al . (2011) pada ayam broiler, yang menemukan bahwa dengan penam- bahan kunyit yang tinggi menyebabkan rendah- nya nilai trigliserida. Hal ini disebabkan rendah- nya  lipogenesis  hati  yang  disebabkan  oleh  ku- nyit, sebab trigliserida diproduksi di hati melalui lipogenesis  hati  dan  disekresikan  ke  dalam plasma.
Meskipun  pemberian  kunyit  sudah  mampu menunjukkan  hasil  yang  berbeda  nyata  pada parameter  kinerja  hati,  tetapi  kinerja  pertum- buhan (Tabel 4) ikan lele yang diberikan pakan dengan penambahan kunyit pada berbagai dosis yang  berbeda,  tidak  menunjukan  hasil  yang berbeda nyata terhadap perlakuan tanpa penam- bahan kunyit pada pakan. Hal ini diduga bahwa dosis  kunyit  yang  ditambahkan  dalam  pakan masih kurang optimal untuk meningkatkan laju pertumbuhan  ikan  lele  pada  kondisi  tanpa  per- gantian  air.  Hasil  ini  didukung  dengan  enzim ALT  dan  AST  yang  juga  menunjukkan  tidak ada  perbedaan  pada  semua  perlakuan.  Menurut Arisa (2019) enzim ALT dan AST adalah salah satu  indikator  masih  tingginya  kinerja  hati. Kinerja  hati  yang  tinggi  menyebabkan  alokasi energi  yang  seharusnya  digunakan  untuk  per- tumbuhan dipakai untuk menunjang kinerja hati yang  berat.  Oleh  sebab  itu  masih  perlu  dila- kukan  penelitian  lanjutan  terkait  peningkatan dosis kunyit.

## Simpulan
Kunyit  mampu  meningkatkan  antioksidan di dalam tubuh ikan lele yang dibudidaya pada kondisi  tanpa  pergantian  air.  Kondisi  tersebut berpengaruh  pada  tampilan  histologis  hati  dan parameter  terkait  antioksidan  yang  signifikan antarperlakuan. Namun, penambahan kunyit pa- da pakan yang diberikan pada lele tanpa dengan pemeliharaan tanpa ganti air belum mampu me- ningkatkan  kinerja  pertumbuhan  ikan  tersebut. Perlu  dilakukan  penelitian  lanjutan  mengenai peningkatan  dosis  untuk  dapat  meningkatkan pertumbuhan ikan lele.

## Daftar pustaka
Ali TM, Esawy BHE, Elmorsy EA. 2015. Effect of  combining  an  angiotensin  enzyme inhibitor and a vitamin D receptor activator on  renal  oxidative  and  nitrosative  stress  in diabetic  rats. National Journal of Physiology,  Pharmacy  and  Pharmacology , 5(3): 222-231.
Alrawaiq  NS,  Abdullah  A.  2014.  A  review  of antioxidant  polyphenol  curcumin  and  its role in detoxification. Review . International Journal  of  Pharmacy  and  Technology Research , 6(1): 280-289.
Arisa  AA.  2019.  Peran  monosodium  glutamat dalam  pakan  pada  produksi  ikan  lele Clarias  gariepinus yang  dibudidayakan pada air mengalir dan air tergenang. Tesis . Sekolah  Pascasarjana.  Institut  Pertanian Bogor. Bogor.
Association  of  Official  Analytical  Chemist (AOAC).  2019. Official Method of Analysis .  21st Edition. Washington D.C Benly  ACK.,  Köksal  G.,  Özkul  A.  2008.
Sublethal  ammonia  exposure  of  Nile Tilapia  ( Oreochromis  niloticus L.):  effects on  gill,  liver  and  kidney  histology.
Chemosphere , 72(9): 1355–1358.
Camargo  JA,  Álonso  A.  2006.  Ecological  and toxicological  effects  of  inorganic  nitrogen pollution  in  aquatic  ecosystems:  a  global assessment. Environmental  International, 32(6): 831–849.
Chattopadhyay I, Biswas K, Bandyopadhyay U,
Banerjee  RK.  2004.  Turmeric  and curcumin: biological actions and medicinal applications. Current Science , 87(1): 44-53.
Chen S, Yu Y, Gao Y, Yin P, Tian L, Niu J, Liu Y.  2019.  Exposure  to  acute  ammnonia stress influences survival, immune response and  antioxidant  status  of  pacific  white shrimp ( Litopenaeues  vannamei ) pretreated with  diverse  levels  of  inositol. Fish  and Shellfish Immunology , 89: 248-256.
Daneshyar  M,  Ghandkanlo  MA,  Bayeghra  FS, Farhangpajhoh, Aghaei M, 2011. Effects of dietary turmeric supplementation on plasma lipoproteins,  meat  quality  and  fatty  acid composition  in  broilers. South  African Journal of Animal Science , 41(4): 420- 428 Dewi  CD,  Ekastuti  DR,  Sudrajat  AO,  Manalu
W.  2017.  Imroved  vitellogenesis,  gonad development  and  egg  diameter  in  catfish ( Pangasianodan  hypophthalamus )  supple- mented  with  turmeric  ( Curcuma  longa ) powder. Aquaculture Research , 49(2): 651- 658.
Dyk JCV, Cochrane MJ, Wagenaar GM. 2012. Liver  histopathology  of  the  sharptooth catfish Clarias gariepinus as a biomarker of aquatic  pollution. Chemosphere ,  87(4): 301-311.
El-Beltagi  H,  Mohamed  H.  2013.  Reactive oxygen  species,  lipid  peroxidation  and antioxidative  defense  mechanism. Notulae
Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca , 41(1): 44-57.
Foss  A,  Imsland  AK,  Roth  B,  Schram  E, Stefansson  SO.  2009.  Effects  of  chronic and  periodic  exposure  to  ammonia  on growth  and  blood  physiology  in  juvenile turbot  ( Scophthalmus  maximus ). Aqua- culture , 296(1-2): 45-50.
Geijer  A,  Kim  SK,  Gerloff  T,  Dietrich  CG, Lammert F, Karpen SJ. 2002. Hepatobiliary organic anion transporters are differentially regulated in acute toxicliver injury induced by  carbon  tetrachloride. Journal of Hepatology , 37(2) 198-205.
Giri SS, Sukumaran V, Park SC. 2011. Effect of bioactive  substance  from  turmeric  on growth,  skin  mucosal  immunity  and antioxidant  factors  in  common  carp,
Cyprinus  carpio . Fish  and  Shellfish
Immunology , 92: 612-620.
Gluchowski  NL,  Becuwe  M,  Walther  TC, Farese  RV.  2017.  Lipid  droplets  and  liver disease:  from  basic  biology  to  clinical implications.  A  review. Nature  Reviews Gastroenterology  &  Hepatology ,  14(6):
343-355.
Guan  B,  Hu  W,  Zhang  T,  Duan  M,  Li  DL, Wang Y, Zhu Z. 2010. Acute  and  chronic un-ionized  ammonia  toxicity  to  ‘all-fish’ growth  hormone  transgenic  common  carp ( Cyprinus  carpio L.). Chinese  Science
Bulletin , 55(35): 4032-4036.
Hopkins  KD.  1992.  Reporting  fish  growth;  a review of the basics. Journal  of  the  World Aquaculture Society , 23(3): 173-179.
Jin  Y,  Tan  Y,  Chen  L,  Liu  Y,  Ren  Z.  2018. Reactive  oxygen  species  induces  lipid droplet  accumulation  in  HepG2  cells  by increasing  perilipin  2  expression. Inter- national  Journal  of  Molecular  Sciences , 19(11): 3445
Kocaadam,  B, Şanlier,  N.  2015. Curcumin,  an active  component  of  turmeric  (Curcuma longa),  and  its  effects  on  health .  Critical Reviews  in  Food  Science  and  Nutrition, 57(13): 2889 – 2895.
Li C, Zhang M, Li M, Zhang Q, Qian Y, Wang R. 2018. Effect of dietary alanyl-glutamine dipeptide  against  chronic  ammonia  stress induced  hyperammonemia  in  the  juvenile yellow  catfish  ( Pelteobagrus  fulvidraco ). Comparative  Biochemistry  and  Physiology Part  C:  Toxicology  &  Pharmacology , 213: 55-61.
Mahmoud  MMA,  El-Lamie  MMM,  Dessouki AA,  Yusuf  MS.  2014.  Effect  of  turmeric ( Curcuma longa )  supplementation  on growth  performance,  feed  utilization,  and resistance  of  nile  tilapia  ( Oreochromis niloticus )  to Pseudomonas  fluorescens challenge. Global  Research  Journal  of Fishery  Science  and  Aquaculture ,  1(12):
26-33.
Murthy CRK, Rama Rao KV, Bai G, Norenberg
MD.  2001.  Ammonia-induced  production of  free  radicals  in  primary  cultures  of  rat astrocytes. Journal of Neuroscience
Research , 66(2): 282-288 Ngaddi  A.  2019.  Evaluasi  penggunaan monosodium  glutamate  terhadap  respons fisiologis,  kinerja  pertumbuhan,  dan  pe- manfaatan  pakan  pada  ikan  lele Clarias
gariepinus.  Tesis .  Sekolah  Pascasarjana Institut Pertanian Bogor.
Saha N, Dutta S, Bhattacharjee A. 2002. Role of amino  acid  metabolism  in  an  air-breathing catfish, Clarias  batrachus in  response  to exposure  to  a  high  concentration  of exogenous ammonia . Comparative Biochemistry  and  Physiology  Part  B Biochemistry  and  Molecular  Biology ,
133(2): 235-250.
Schram  E,  Roques  JAC,  Abbink  W,  Spanings T, de Vries P, Bierman S, Vis HVD, Flik G.  2010.  The  impact  of  elevated  water ammonia  concentration  on  physiology, growth  and  feed  intake  of  African  catfish ( Clarias  gariepinus ).  Aquaculture,  306(1): 108-115.
Shukla PK, Khanna VK, Khan MY, Srimal RC. 2003. Protective effect of curcumin against lead  neurotoxicity  in  rat. Human  & Experimental Toxicology , 22(12): 653-668.
Singh  H,  Bedi  PS,  Singh  B.  2011.
Hepatoprotective  activity  of  turmeric  and garlic  against  7-12,  dimethylbenzan- thracene  induced  liver  damage  in  wistar albino rats. European Journal of Medicinal Plants , 1(4): 162-170.
Slaoui  M,  Fiette  L.  2011.  Histopathology procedures:  from  tissue  sampling  to histopathological  evaluation. Methods  in Molecular Biology , 691: 69-82.
Sun H, Lu K, Minter EJA, Chen YY, Montages
D. 2012. Combined effects of ammonia and microcystin  on  survival,  growth,  anti- oxidant responses, and lipid peroxidation of bighead  carp  Hypophthalmythys  nobilis
larvae. Journal  of  Hazardous  Materials ,
221-222: 213-219
Tayyem RF, Hetah DD, Al-Delaimy KA, Rock CL.  2006.  Curcumin  content  of  turmeric and  curry  powders. Nutrition  and  Cancer , 55(2): 126-131.
Tung  BT,  Nham  DT,  Hai  NT,  Thu  DK.  2019. Curcuma longa, the  polyphenolic curcumin compound  and  pharmacological  effects  on liver (Chapter  3).  Dietary  Interventions  in Liver Disease: Foods, Nutrients and Dietary Supplements. Academic Press. 428 p.
Wang  HJ,  Xu-Cheng  X,  Hong-ZhuW,  Yan  L, Qing  Y,  Xiao-Min  L,Wei-Song  F,  Jian- Chun S, Marcus D, Erik J. 2017. Effects of high  ammonia  concentrations  on  three cyprinid  fish:  Acute  andwhole-ecosy  stem chronic tests. Science of Total Environment , 598: 900-909.
Watanabe  T.  1988. Fish  Nutrition  and Mariculture .  Departement  of  Aquatic Bioscience, Tokyo University, Tokyo.
Yarru LP, Settivari RS, Gowda NKS, Antoniou
E,  Ledoux  DR,  Rottinghaus  GE.  2009. Effects of turmeric ( Curcuma longa ) on the expression of hepatic genes associated with biotransformation, antioxidant, and immune system  in  broiler  chicks  fed  aflatoxin.
Poultry Science, 88(12): 2620-2627.
Zhang W, Silei X, Zhu J, Miao X, Ren M, Lin Y,  Ge  X,  Sun  S.  2018.  Growth performance,  physiological  response  and histology  changes  of  juvenile  blunt  snout bream, Megalobrama amblycephala exposed to chronic ammonia.
Aquaculture , 506: 424-436.