APLIKASI KULIT LABU Curcubitaeae sp. SEBAGAI SUMBER STIMULASI UNTUK PROSES NITRIFIKASI DAN DENITRIFIKASI DI LINGKUNGAN BUDIDAYA UDANG VANAME (Litopenaeus vannamei)

## APPLICATION OF PUMPKIN SKIN Cucurbitaceae sp. AS SOURCE OF STIMULATION FOR NITRIFICATION AND DENITRIFICATION PROCESS IN VANAME SHRIMP CULTIVATION Litopenaeus vannamei
Yuni Puji Hastuti 1 , Muhammad Saifuddin 2 , Eddy Supriyono 1 , Wildan Nurussalam 1 Dudi Lesmana 3 , Andri Hendriana 4 , Ima Kusumanti 4
1 Staf Pengajar Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB University, Jalan Raya Dramaga Kampus IPB-16680
2 Lulusan Mahasiswa S1 Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB University, Jalan Raya Dramaga Kampus IPB-16680
3 StafPengajar Program Studi Akuakultur, Fakultas Pertanian, Universitas Djuanda Bogor Jalan Tol Ciawi No. 1, PO Box 3516720
4 Staf pengajar Sekolah Vokasi IPB University, Jalan Kumbang, Babakan Tengah, Bogor-16128 Korespondensi: Wildan Nurussalam, E-mail: wildan0501@apps.ipb.ac.id

## Abstrak
Aplikasi  tepung  kulit labu Curcubitaeae sp. untuk  meningkatkan  performa  kualitas  air  budidaya  dan pertumbuhan udang vaname perlu dianalisis. Kulit labu Curcubitaeae sp sebagai sumber stimulan yang dibutuhkan  bakteri  untuk  bertahan  pada  proses  nitrifikasi  dan  denitrifikasi  di  lingkungan  budidaya sebagai salah satu alternatif ujicoba sistem bioremediasi yang ramah lingkungan. Sifat yang cenderung mesofilik dan sumber ion organik untuk pertumbuhan bakteri, kulit labu dapat mendukung pertumbuhan dan aktivitas bakteri nitrifikasi denitrifikasi di lingkungan. Penelitian ini bertujuan  menentukan dosis terbaik tepung kulit labu sebagai bahan biostimulasi untuk pertumbuhan bakteri nitrifikasi denitrifikasi pada  pengelolaan  kualitas  air  sehingga  mendukung  pertumbuhan  udang  vaname.  Perlakuan  yang digunakan  yaitu  pemberian  tepung  kulit  labu  dengan  dosis  2%,  4%,  6%  per  20  L  air  dan  perlakuan kontrol. Pemberian tepung kulit labu dapat meningkatkan kinerja bakteri dan kelimpahan dalam proses nitrifikasi dan denitrifikasi. Aktivitas bakteri nitrifikasi terlihat dari adanya nilai ammonia yang relatif lebih stabil dibandingkan dengan perlakuan lain. Ammonia paling baik pada perlakuan 6% nitrit paling baik di perlakuan 4%. Perlakuan tepung labu 4% efektif dalam pemeliharaan selama 30 hari yang dapat menjaga kualitas air tetap stabil dan pertumbuhan udang vaname yang meningkat.
Kata kunci : Curcubitaeae sp, Denitrifikasi, Nitrifikasi, Stimulan, Litopenaeus vannamei

## Abstract
Aplication of pumpkin skin flour Curcubitae sp. to improve of the water quality performance and support shrimp Litopenaeus vannamei growth, it necessary to do an analysis. Pumpkin skin Curcubitae sp. as a source  of  stimulants  needed  by  bacteria  to  survive  in  the  nitrification  denitrification  processes  in aquaculture  as  an  alternative  to  environmental  friendly  with  bioremediation  system  evaluation.  Its mesophilic nature and a organic ions source for bacterial growth. Pumpkin skin can support the growth and activity of nitrifying denitrifying bacteria in the environment. This study aims to determine the best of dose of pumpkin skin as a biostimulator of nitrifying denitrifying bacteria growth. The treatments used were pumpkin doses of 0%, 2%, 4%, 6% for 20 L culture water. Giving pumpkin flour can improve the  performance  of  abundance  and  activity  of  nitrification  denitrification  bacteria.  The  activity  of
nitrifying  bacteria  can  be  seen  from  the  presence  of  ammonia  value  which  is  relatively  more  stable compared to other treatments. The best oxidation of ammonia in 6%, and reduction nitrite in the 4% treatments.  The  treatment  of  4%  was  effective  in  maintenance for 30  days  which  could maintain the stability of water quality and increase the growth of vaname shrimp.
Keywords : Curcubitaeae sp, Denitrification, Litopenaeus vannamei , Nitrification, Stimulant.
Yuni Puji Hastuti, Muhammad Saifuddin, Eddy Supriyono, Wildan Nurussalam, Dudi Lesmana, Andri Hendriana,  Ima  Kusumanti.  2022.  Aplikasi  Kulit  Labu Curcubitaeae sp.  sebagai  Sumber Stimulasi  untuk  Proses  Nitrifikasi  dan  Denitrifikasi  di  Lingkungan  Budidaya  Udang  Vaname ( Litopenaeus vannamei ). Jurnal Mina Sains 8(2): 60 – 78.

## PENDAHULUAN
Produksi  udang  vaname  ( Litopenaus vannamei )  di  Indonesia  setiap  tahunnya diharapkan  terus  meningkat.  Sebelum pandemi covid 19 di Indonesia, pada tahun 2018  produksi  udang  pernah  mencapai 919.587  ton  (KKP  2019).  Keunggulan pengembangan  komoditas  udang  vaname memiliki  tingkat  kelangsungan  hidup tinggi,  ketahanan  terhadap  penyakit  dan pencapaian produktivitas  yang lebih tinggi (Hukom et al. 2020).
Salah  satu  faktor  yang  menentukan keberhasilan budidaya udang adalah kestabilan dan kualitas air budidaya udang. Kualitas  air  yang  baik  dapat  menjaga kondisi kesehatan dan pertumbuhan udang yang  diperlihara.  Salah  satu  parameter dalam  kualitas  air  yang  dianggap  penting adalah  kelimpahan bakteri terutama bakteri nitrifikasi  dan  bakteri  denitrifikasi  dalam rangka  pengelolaan  lingkungan.  Bakteri nitrifikasi dan bakteri denitrifikasi merupakan  bakteri  menguntungkan  yang dipertahankan keberadaannya dalam lingkungan budidaya untuk mengelola sisa pakan  dan  limbah  budidaya,  karena kemampuannya dalam mendegradasi senyawa  nitrogen  (Kumar et  al. 2013). Hasil  akhir  aktivitas  bakteri  nitrifikasi adalah  senyawa  nitrat  anorganik  dalam media  pemeliharaan  budidaya  udang. Secara keseluruhan proses yang berlangsung  adalah  perubahan  senyawa ammonia/  ammonium  menjadi  (NH 3 / NH 4 + )  menjadi  senyawa  nitrit  (NO 2 - ) dengan  senyawa  perantara  hidroksilamin
(NH 2 O ), dan  selanjutnya  menjadi  nitrat (NO 3 - ) yang terjadi  dalam suasana aerobik (Hastuti et  al. 2020).  Bakteri  denitrifikasi merupakan  agen  mikroba  dalam  proses proses denitrifikasi yang merupakan proses utama  dalam  pendegradasian  senyawa nitrogen  dalam  kondisi  tidak  ada  oksigen atau  anaerob  (Hastuti  2011)  dengan  hasil akhir nitrogen bebas (N 2 ) penerima electron senyawa  nitrat  atau  nitrit  (Hastuti et  al. 2021). Proses denitrifikasi berupa konversi biologi,  senyawa  nitrat  (NO 3 - )  menjadi nitrit  (NO 2 - ),  nitrous  oksida  (N 2 O)  dan nitrogen (N 2 ). Proses denitrifikasi dijalankan secara teratur dan bertahap oleh beberapa  bakteri  anaerobic  atau  fakultatif anaerob.  Bakteri  memerlukan  karbon organik  seperti  gliserol,  asam  asetat,  dan glukosa  untuk  pertumbuhannya  (Texeira dan Oliviera 2002, Hastuti et al. 2021).
Salah satu upaya untuk mempertahankan kelimpahan bakteri nitrifikasi  dan  denitrifikasi  di  lingkungan budidaya  adalah  menambahkan  nutrien spesifik yang berperan sebagai penstimulan bakteri,  baik  yang  bersifat  makro  dan mikro.  Bakteri  nitrifikasi  membutuhkan makro  dan  mikro  nutrien  berupa  nitrogen dan fosfor di lingkungan budidaya (Effendi et  al .  2015).  Biostimulasi  bagian  proses dalam teknologi bioremediasi yang merupakan  proses  yang  dilakukan  dengan penambahan zat gizi tertentu yang dibutuhkan oleh mikroorganisme di lingkungan sehingga mikroorganisme tumbuh dan beraktivitas dengan baik (Jekti 2018). Penambahan bahan stimulasi dalam lingkungan budidaya udang vaname
diharapkan  dapat  membantu  pertumbuhan bakteri  nitrifikasi  dan  denitrifikasi  dan meningkatkan  aktivitas  di  dalamnya  yang kemudian  dapat  menjaga  kualitas  air  pada lingkungan (Batista et al. 2017).
Salah  satu  bahan  yang  prospektif untuk  digunakan  sebagai  biostimulasi adalah  tepung  kulit  labu.  Kulit  labu merupakan  salah  satu  produk  yang  selama ini tidak banyak digunakan dan cenderung dijadikan  limbah  pangan.  Kulit  labu mengandung nilai gizi yang tinggi (Batista et al . 2017). Menurut See et al. (2007) labu kuning  yang  telah  dibuat  menjadi  tepung memiliki  kadar  air  10.96%,  lemak  0.80%, protein  9.65%,  karbohidrat  72.41%,  abu 5.37%,  serat  0.81%,  dan  beta  karoten 4857µg.  Tepung  labu  memiliki  senyawa kimia  antioksidan  yang  dapat  mencegah terjadinya proses oksidasi (Wahyono et al. 2018). Penambahan tepung dilakukan untuk menstimulasi  bakteri  dari  kerusakan  yang disebabkan  oleh  lingkungan.  Pemberian kulit  labu  yang  dalam  bentuk  powder/ tepung  diharapkan  dapat  menstimulasi bakteri nitrifikasi dan denitrifikasi indigenous  di  lingkungan  udang,  terutama kinerja  bakteri  dalam  proses  perubahan senyawa  nitrat  menjadi  gas  nitrogen  dapat ditingkatkan. Penelitian bertujuan menentukan  dosis  terbaik  penambahan tepung kulit labu sebagai bahan biostimulasi dan mengevaluasi kelimpahan dan  aktivitas  bakteri  nitrifikasi  dan denitrifikasi di lingkungan budidaya udang.

## METODE PENELITIAN

## Waktu dan Lokasi Penelitian
Penelitian  dilakukan  pada  bulan Agustus-September  2020  bertempat  di
Laboratorium Teknik Produksi dan Manajemen Akuakultur, Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan
Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor.

## Rancangan Penelitian
Rancangan penelitian yang
digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah
Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL),  terdiri dari  empat  perlakuan  dan  tiga  ulangan, yaitu:
A (K) :  Pemeliharaan udang vaname tanpa pemberian  tepung  kulit  labu (kontrol) B (2%) :  Pemeliharaan udang vaname pada pemberian  tepung  kulit  labu sebanyak 2% per 20 L air C
(4%) :  Pemeliharaan udang vaname pada pemberian  tepung  kulit  labu sebanyak 4% per 20 L air D
(6%) :  Pemeliharaan udang vaname pada pemberian  tepung  kulit  labu sebanyak 6% per 20 L air

## Prosedur Penelitian
Wadah  pemeliharaan  udang  yang digunakan adalah akuarium berukuran 30 x 30  x  30  cm 2 sebanyak  12  unit.  Wadah pemeliharaan  untuk  perlakuan  A  (K),  B (2%),  C  (4%)  dan  D  (6%)  dilengkapi dengan  aerasi  kemudian  diisi  air  sebanyak 20  L.  Tepung  kulit  labu  dibuat  dari  kulit buah  labu  kuning  ( Curcubitaeae sp.)  yang dikeringkan  diterik  matahari  sampai  tidak ada  cairan  yang  terkandung  dalam  kulit buah  labu  kuning.  Setelah  dikeringkan (kadar  air  <12%)  kulit  tepung  labu dihaluskan  sampai  berbentuk  powder/ tepung  (Gambar  1).  Telah  dilakukan pengujian  di  laboratorium  dihasilkan informasi  kandungan  dalam  tepung  kulit labu sebagai bahan uji adalah protein 12%, fosfor  3424  mg/kg,  natrium  130mg/kg, kalium 14044 mg/kg, kalsium 1722 mg/kg, vitamin B1 <0,25 mg/kg, vitamin B2 <0,25 mg/kg, dan magnesium 2021 mg/kg.
Gambar 1. Kulit labu kuning dalam kondisi kering (1A), kulit labu kuning yang telah di buat powder/ tepung (1B)

## Persiapan Biota Uji
Biota  uji  yang  digunakan  adalah udang vaname ( L. vannamei ) DOC 30 yang diperoleh dari PT. Suri Tani Pemuka Anyer, Banten,  Jawa  Barat.  Jumlah  udang  yang ditebar  pada  setiap  perlakuan  sebanyak  15 ekor setiap wadah. Udang vaname dipelihara  selama  30  hari  penelitian  dan proses  pemberian  pakan  dilakukan  setelah udang dipuasakan selama 24 jam pada awal penebaran.  Pakan  yang  diberikan  selama masa  pemeliharaan  yaitu  berupa  pakan komersil  dengan  ukuran  diameter  0,2  mm dan  memiliki  kandungan  protein  minimal 43%.  Pakan  diberikan  dengan  mengacu pada  FR  5%  sebanyak  4  kali  sehari  pada jam 07.00, 13.00, 17.00, dan 22.00.

## Pengukuran respon produksi Biota Uji
Respon  produksi  yang  diukur  dari biota  uji  terdiri  atas  bobot  dan  panjang tubuh  udang vaname  diukur  setiap  15  hari sekali.  Sebelum  dilakukan  pengambilan ikan, dilakukan pemuasaan selama 24 jam. Pengambilan  contoh  dilakukan  pada  jam 07.00  WIB.  Pengukuran  bobot  udang menggunakan  timbangan  digital  dengan ketelitian  0,01  g  dan  pengukuran  panjang
udang  menggunakan  kertas  milimeter block.

## Analisa Parameter Kualitas air
Kelimpahan  Bakteri  Nitrifikasi  dan Denitrifikasi
Bakteri nitrifikasi dan denitrifikasi di tumbuhkan  media  spesifik.  Kelimpahan bakteri dihitung menggunakan metode TPC ( Total  Plate  Count ).  Bakteri  yang  telah dihitung  dinyatakan  dengan  satuan  CFU mL-1  ( Colony  Forming  Unit mL -1 ). Penghitungan jumlah koloni yang terbentuk pada  media  di  cawan  petri  menggunakan rumus (Madigan et al 2003):
Total bakteri (CFU mL -1 ) = Jumlah koloni bakteri 𝑥 1 𝑓𝑝 𝑥 1 𝑆
Keterangan Jumlah Koloni  : Jumlah  koloni  bakteri yang  terbentuk  di  cawan petri (CFU mL -1 ) Fp :  Faktor pengencer S : Sampel (mL)

## Pengelolaan Kualitas Air
Pengukuran  parameter  kualitas  air  yang diukur  setiap  hari  meliputi  suhu,  oksigen terlarut,  salinitas,  dan  pH.  Sedangkan parameter kualitas air yang diukur setiap 10 hari  sekali  sesuai  dengan  alat  ukur  adalah Total  Ammonia  Nitrogen  (TAN),  nitrat, nitrit,  amonia,  dan  ammonium  (APHA 2005).
Tabel 1  Parameter  kualitas  air  yang  akan diukur  pada  pemeliharaan  udang vaname (L. vannamei) Parameter Satuan  Alat Ukur Suhu °C Thermometer pH - pH meter Oksigen terlarut mg/L DO meter Total ammonia nitrogen (TAN) mg/L Spektofotometer Nitrit mg/L Spektofotometer Nitrat Amonia Amonium mg/L mg/L mg/L Spektofotometer Spektofotometer
Spektofotometer
1B

## Tingkat Kelangsungan Hidup
Nilai  kelangsungan  hidup  yang dinyatakan  dalam  persen  (%).  Perhitungan kelangsungan  hidup  dilakukan  pada  akhir perlakuan dengan rumus (Huissman 1987):
TKH (%) = Nt No x100
Keterangan:
Nt : Jumlah ikan akhir (ekor)
No : Jumlah ikan awal (ekor)

## Laju Pertumbuhan Spesifik
Laju  pertumbuhan  spesifik  ( specific growth  rate /SGR)  merupakan  tingkat bertambahnya  biomassa  dari  populasi  per unit  konsentrasi  biomassa.  Perhitungan SGR  udang  dilakukan  dengan  menimbang sampel udang pada setiap perlakuan dengan menggunakan rumus (Bhatia 2015):
SGR = ln 𝑊𝑡−ln 𝑊𝑜
𝑡 x 100 %
Keterangan :
SGR  :  pertumbuhan spesifik harian
(%/hari)
W0  :  berat tubuh rata-rata awal pemeliharaan (g)
Wt  :  berat tubuh rata-rata akhir pemeliharaan (g)
t :   waktu pemeliharaan (hari)

## Pertumbuhan Bobot Mutlak
Pertumbuhan bobot mutlak merupakan  pertumbuhan  bobot  akhir pemeliharaan dikurangi bobot awal pemeliharaan. Perhitungan bobot dilakukan dengan  menimbang  sampel  udang  pada awal  dan  akhir  pemeliharaan  kemudian dihitung  dengan  menggunakan  rumus (Weatherley 1972) :
W = Wt – Wo Keterangan:
W : Pertumbuhan bobot mutlak (g)
Wt  : Bobot udang pada akhir percobaan Wo  : Bobot udang pada awal percobaan

## Pertumbuhan Panjang Mutlak
Pertumbuhan panjang mutlak merupakan  pertumbuhan  panjang  akhir pemeliharaan  dikurangi  panjang  awal
pemeliharaan. Perhitungan panjang dilakukan  dengan  menimbang  sampel udang  pada  awal  dan  akhir  pemeliharaan kemudian  dihitung  dengan  menggunakan rumus (Zonneveld et al. 1991) :
L = Lo – Lt
Keterangan:
L :   Pertambahan panjang mutlak (cm)
Lt  :   Panjang  tubuh  udang  pada  akhir percobaan (cm)
Lo  :   Panjang  tubuh  udang  pada  awal percobaan (cm)

## Kadar Glukosa Darah
Pengukuran  kadar  glukosa  darah dengan  cara  mengambil  plasma  darah sebanyak  0,05  mL,  kemudian  standar glukosa, dan blanko dimasukkan ke dalam tabung uji yang terpisah berisi 3,5 mL color reagent .  Tabung  uji  dimasukkan  ke  dalam water bath yang mendidih selama 10 menit kemudian didinginkan kurang lebih selama 1 jam. OD plasma dan standar glukosa pada λ  =  635  nm.  Kalorimeter  kemudian dinolkan dengan reagent blanko. Perhitungan kadar glukosa darah menggunakan  rumus  (Wedemeyer  dan Yasutake 1977):
Glukosa (mg/L -1 ) = 𝐴𝑢 (𝐶𝑠)
𝐴𝑠 Keterangan :
Au : Absorbansi sampel Cs : Konsentrasi sampel As : Absorbansi standar

## Kadar Kolestrol
Pengukuran  kadar  kolestrol  dengan cara  mengambil  plasma  darah  sebanyak 0,01  mL,  kemudian  standar  kolestrol,  dan blanko  dimasukkan  ke  dalam  tabung  uji yang  terpisag  berisi  1,0  mL reagent. Tabung uji divortex dan diinkubasi di dalam water  bath dengan  suhu  37°C  selama  10 menit.  Volume  air  dalam water  bath tidak boleh lebih tinggi daripada volume reagent . Nilai  absorbansi  diukur  λ  =  500  nm. Pengukuran optimal tidak boleh melebihi 1
jam. Perhitungan kadar kolestrol menggunakan rumus (Sahu et al . 2005) :
Kolesterol (mg/L -1 ) = 𝐴𝑢 (𝐶𝑠)
𝐴𝑠 Keterangan:
Au : Absorbansi sampel Cs : Konsentrasi sampel As : Absorbansi standar

## Analisis Data
Data  yang  telah  diperoleh  kemudian akan dianalisis menggunakan metode yang telah ditentukan
sebelumnya.
Data
parameter  uji  seperti  derajat  kelangsungan hidup, laju pertumbuhan spesifik, pertumbuhan mutlak, rasio konversi pakan dan produktivitas dianalisis dengan menggunakan  analisis  ragam  (ANOVA) pada  selang  kepercayaan  95%.  Apabila hasilnya  adalah  berpengaruh  nyata,  maka dilanjutkan dengan uji Duncan pada selang kepercayaan 95% untuk melihat perbedaan antar  perlakuan  yang  diuji.  Analisis deskripsi  kuantitatif  digunakan  untuk menjelaskan kelayakan media pemeliharaan  yang  digunakan  terhadap kehidupan  udang  vaname  yang  disajikan dalam bentuk tabel. Analisis data menggunakan bantuan perangkat lunak Ms. Excel 2013 dan SPSS 25.0.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil Kelimpahan Bakteri Nitrifikasi
Kelimpahan bakteri
nitrifikasi dihitung  dengan  menggunakan  metode Total  Plate  Count (TPC)  pada  awal pemeliharaan (H0) dan akhir pemeliharaan (H30). Kelimpahan  bakteri nitrifikasi pada hari ke 0 dan hari ke 30 disajikan pada tabel 3.1.  Kelimpahan  bakteri  nitrifikasi  setiap perlakuan  mengalami  peningkatan  jumlah koloni bakteri. Perlakuan pemberian tepung kulit  labu  2%  menunjukkan  kelimpahan bakteri paling banyak dibandingkan dengan perlakuan  lainnya  yakni  32,6  x  10 7 CFU mL -1 .  Sedangkan  bakteri  terendah  pada perlakuan  kontrol  dan  6%  yakni  42  x  10 6 CFU mL -1 .
Tabel 2  Nilai kelimpahan bakteri nitrifikasi pada media pemeliharaan budidaya udang vaname  yang  diberi  penambahan tepung kulit labu
Perlakuan  Awal Pemeliharaan (CFU mL -1 ) Akhir Pemeliharaan (CFU mL -1 ) Kontrol 52 x 10 5 42 x 10 6 2% 68 x 10 5 32,6 x 10 7 4% 94 x 10 5 66 x 10 6 6% 74 x 10 5 42 x 10 6

## Kelimpahan Bakteri Denitrifikasi
Kelimpahan bakteri denitrifikasi dihitung  dengan  menggunakan  metode Total  Plate  Count (TPC)  pada  awal pemeliharaan (H0) dan akhir pemeliharaan (H30). Kelimpahan  bakteri nitrifikasi pada hari ke 0 dan hari ke 30 disajikan pada Tabel 3.2. Kelimpahan bakteri denitrifikasi setiap perlakuan  mengalami  peningkatan  jumlah koloni bakteri. Perlakuan pemberian tepung kulit  labu  6%  menunjukkan  kelimpahan bakteri paling banyak dibandingkan dengan perlakuan lainnya yakni 154 x 10 6 CFU mL - 1 .  Sedangkan  bakteri  terendah  pada perlakuan kontrol yakni 42 x 10 6 CFU mL - 1 .
Tabel 3. Nilai kelimpahan bakteri denitrifikasi pada media pemeliharaan budidaya udang vaname  yang  diberi  penambahan tepung kulit labu
Perlakuan  Awal Pemeliharaan (CFU mL -1 ) Akhir Pemeliharaan (CFU mL -1 ) Kontrol 62 x 10 5 42 x 10 6 2% 116 x 10 5 48 x 10 6 4% 50 x 10 5 112 x 10 6 6% 176 x 10 5 154 x 10 6

## Kualitas Air
Hasil  pengukuran  kualitas  air  DO,  suhu, salinitas,  dan  pH  selama  pemeliharaan udang  vaname  berada  dalam  kisaran  nilai optimal.  Berdasarkan  hasil  pengukuran menurut (FAO 2011) nilai DO pada setiap
perlakuan  berada  di  bawah  kisaran  nilai optimal  sedangkan  suhu,  salinitas,  dan  pH berada dalam kisaran optimal

## Tabel 3.3 Hasil pengukuran kualitas air
Parameter Uji Perlakuan Nilai Optimal K 2% 4% 6% (FAO 2011) DO (mg L -1 ) 3,02 – 7,60 4,04 – 7,48 3,48 – 7,64 3,16 – 7,88 ≥ 5 Suhu ( o C) 26,1 – 29,4 26,3 – 29,9 26,1 – 29,9 26,3 – 29,9 25 - 35 Salinitas (g L -1 ) 23 -29 23 – 29 23 – 30 23 – 30 20 - 35 pH 7,7 – 8,1 7,6 – 8,2 7,7 – 8,2 7,8 – 8,2 7,5 – 8,5

## Amonium
Konsentrasi amonium pada
pemeliharaan udang vaname dengan pemberian  tepung  kulit  labu  menunjukkan hasil pada hari ke 10 paling tertinggi yakni 0,492±0,005 mgL -1 pada perlakuan 6% dan paling  terendah  yakni  0,273±0,04  mgL -1 pada  perlakuan  2%.  Konsentrasi  amonium tertinggi  pada  hari  ke  20  yaitu  pada perlakuan kontrol sebesar 0,468±0,02 mgL - 1 dan  terendah  pada  perlakuan  4%  sebesar 0,444±0,01 mgL -1 . Sedangkan pada hari ke
30  konsentrasi  amonium  tertinggi  yaitu pada  perlakuan  2%  sebesar  0,431±0,01 mgL -1 dan  terendah  pada  perlakuan  4% sebesar 0,289±0,03 mgL -1 .

## Amonia
Konsentrasi  amonia  pada  pemeliharaan udang  vaname  dengan  pemberian  tepung kulit labu menunjukkan hasil pada hari ke- 10 paling tertinggi yakni 0,046±0,001 mgL -
1 pada  perlakuan  4%  dan  paling  terendah yakni  0,009±0,002  mgL -1 pada  perlakuan kontrol. Konsentrasi amonia tertinggi pada hari ke-20 yaitu pada perlakuan 6% sebesar 0,042±0,008  mgL -1 dan  terendah  pada perlakuan  4%  sebesar  0,03±0,001  mgL -1 . Sedangkan  pada  hari  ke-30  konsentrasi amonia  tertinggi  yaitu  pada  perlakuan kontrol  sebesar  0,035±0,008  mgL -1 dan terendah  pada  perlakuan  6%  sebesar 0,027±0,002 mgL -1 .
Gambar 3.1 Konsentrasi amonium pada media pemeliharaan budidaya udang vaname yang diberi penambahan tepung kulit labu 0,0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6 H0 H10 H20 H30 Amonium mg L -1 Waktu (10 hari) K 2% 4% 6% b
Gambar 3.2 Konsentrasi amonia pada media pemeliharaan budidaya udang vaname yang diberi penambahan tepung kulit labu.

## Total Amonia Nitrogen (TAN)
Konsentrasi  total  amonia  nitrogen pada  pemeliharaan  udang  vaname  dengan pemberian  tepung  kulit  labu  menunjukkan hasil berbeda nyata pada pemeliharaan hari ke-0, ke-10, ke-20, dan ke-30. Pemeliharaan udang vaname pada hari ke-0 tidak berbeda nyata untuk semua perlakuan. Konsentrasi total amonia nitrogen pada hari ke-10 tertinggi sebesar 0,531±0,018 mg L -1 pada  perlakuan  6%  dan  terendah  sebesar 0,288±0,015  mg  L -1 pada  perlakuan  2%.
Konsentrasi total amonia nitrogen pada hari ke-20 semua perlakuan tidak berbeda nyata.
Konsentrasi total amonia nitrogen pada hari ke-30  nilai  tertinggi  sebesar  0,461±0,017 mg  L -1 pada  perlakuan  2%  dan  nilai
terendah sebesar 0,319±0,036 mg L -1 pada perlakuan 4%.
Nitrit
Konsentrasi nitrit (NO 2 - ) pada pemeliharaan udang vaname dengan pemberian  tepung  kulit  labu  menunjukkan hasil berbeda nyata pada pemeliharaan hari ke-0, ke-10, ke-20, dan ke-30.
Pemeliharaan udang vaname pada hari ke-0 dan ke-10 tidak berbeda nyata untuk semua perlakuan.  Konsentrasi  nitrit  pada  hari  ke- 30 perlakuan kontrol berbeda nyata dengan perlakuan 2% dan 6%, namun tidak berbeda nyata  dengan  perlakuan  4%.  Konsentrasi nitrit  tertinggi  pada  hari  ke-30  yaitu perlakuan  2%  sebesar 1,374±0,252  mg  L -1 dan  terendah  pada  perlakuan  kontrol sebesar 0,788±0,023 mg L -1 .
Gambar 3.3 Konsentrasi TAN pada media pemeliharaan budidaya udang vaname yang diberi penambahan tepung kulit labu
0,00 0,01 0,02 0,03 0,04 0,05 0,06 H0 H10 H20 H30 Amonia mg L -1 Waktu (10 hari) K 2% 4% 6%
0,000 0,100 0,200 0,300 0,400 0,500 0,600 H0 H10 H20 H30 TAN mg L -1 Waktu (10 hari) K 2% 4% 6%
Gambar 3.4 Konsentrasi nitrit pada media pemeliharaan budidaya udang vaname yang diberi penambahan tepung kulit labu.

## Nitrat
Konsentrasi nitrat (NO 3 - ) pada pemeliharaan udang vaname dengan pemberian  tepung  kulit  labu  menunjukkan hasil berbeda nyata pada pemeliharaan hari ke-0, ke-10, ke-20, dan ke-30. Konsentrasi nitrat pada hari ke-10 dan hari ke-30 tidak berbeda  nyata.  Konsentrasi  nitrat  tertinggi
pada hari ke-20 sebesar 0,441±0,023 mg L - 1 pada  perlakuan  4%  dan  nilai  terendah sebesar 0,320±0,016 mg L -1 pada perlakuan 6%. Konsentrasi nitrat tertinggi pada hari ke 30  sebesar  0,398±0,102  mg  L -1 pada perlakuan  4%  dan  nilai  terendah  sebesar 0,326±0,033 mg L -1 pada perlakuan kontrol.
Gambar 3.5 Konsentrasi nitrat pada media pemeliharaan budidaya udang vaname yang diberi penambahan tepung kulit labu.

## Glukosa Darah
Kadar glukosa darah yang diuji pada hari  ke-30  pada  pemeliharaan  udang vaname  dengan  pemberian  tepung  kulit labu menunjukkan hasil berbeda nyata pada
pemeliharaan.  Perlakuan  kontrol  paling tinggi  yaitu  49,54±0,655  mg  L -1 dan  nilai terendah pada perlakuan 2% yaitu
42,13±0,655 mg L - . 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 1,2 1,4 1,6 H0 H10 H20 H30 Nitrit mg L -1 Waktu (10 hari) K 2% 4% 6% ab 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 H0 H10 H20 H30 Nitra t mg L -1 Waktu (10 hari) K 2% 4% 6% ab
Gambar 3.6 Konsentrasi glukosa darah pada media pemeliharaan budidaya udang vaname yang diberi penambahan tepung kulit labu.

## Kolesterol
Kolesterol  pada  pemeliharaan  udang vaname pada hari ke-30 dengan pemberian tepung  kulit  labu  menunjukkan  hasil  tidak berbeda nyata pada pemeliharaan.
Perlakuan 2% memiliki nilai tertinggi yaitu 81,82±4,285  mg/dL  dan  perlakuan  4% memiliki  nilai  terendah  yaitu  69,70±1,428 mg/dL.
Gambar 3.7 Konsentrasi kolesterol pada media pemeliharaan budidaya udang vaname yang diberi penambahan tepung kulit labu.

## Tingkat Kelangsungan Hidup
Tingkat  kelangsungan  hidup  pada pemeliharaan udang vaname dengan pemberian tepung kulit labu pada hari ke-15 menunjukkan  tingkat  kelangsungan  hidup masih  100%.  Tingkat  kelangsungan  hidup
pada  hari  ke-30  menunjukkan  perlakuan kontrol  paling  rendah  yaitu  sebesar 64%±27,135,  perlakuan  4%  yang  paling tinggi  sebesar  96%±7,506,  perlakuan  2% sebesar  67%±6,506,  dan  perlakuan  6% sebesar 84%±7,506.
0 10 20 30 40 50 60 Kontrol 2% 4% 6% Glukosa ( mg /100m l) Perlakuan (%) 0 20 40 60 80 100 Kontrol 2% 4% 6% Ko lest er o l (mg /d l) Perlakuan (%)
Gambar 3.8 Tingkat kelangsungan hidup pada media pemeliharaan budidaya udang vaname yang diberi penambahan tepung kulit labu.

## Laju Pertumbuhan Spesifik
Laju  pertumbuhan  spesifik  ( specific growth  rate /SGR)  pada  pemeliharaan udang  vaname  dengan  pemberian  tepung
kulit  labu  menunjukkan  perlakuan  2% paling  kecil  0,019±0,06  yakni  gr/hari  dan pada perlakuan 4% menunjukkan hasil yang paling tinggi yakni 0,032±0,005 g/hari.
Gambar 3.9 Laju pertumbuhan spesifik pada media pemeliharaan budidaya udang vaname yang diberi penambahan tepung kulit labu.

## Pertumbuhan Bobot Mutlak
Pertumbuhan  bobot  mutlak  pada pemeliharaan udang vaname dengan pemberian  tepung  kulit  labu  menunjukkan hasil  berbeda  nyata  pada  perlakuan  2%
dengan  kontrol.  Perlakuan  2%  terendah dengan  nilai  1,17±0,307  g  sedangkan perlakuan  tertinggi  pada  perlakuan  4% dengan nilai 2,75±0,404 g.
0 20 40 60 80 100 120 K 2% 4% 6% S R (% ) Perlakuan H0 H15 H30 a ab b ab
0 0,005 0,01 0,015 0,02 0,025 0,03 0,035 0,04 K 2% 4% 6% S GR (g r/ha ri) Perlakuan K 2% 4% 6% ab a b ab

## Gambar 3.10 Pertumbuhan bobot mutlak pada media pemeliharaan budidaya udang vaname yang diberi penambahan tepung kulit labu

## Pertumbuhan Panjang Mutlak
Pertumbuhan  panjang  mutlak  pada pemeliharaan udang vaname dengan pemberian  tepung  kulit  labu  menunjukkan hasil  berbeda  nyata  perlakuan  2%  dengan
kontrol. Perlakuan kontrol terendah dengan nilai  1,46±0,802  cm  sedangkan  perlakuan tertinggi  pada  perlakuan  4%  dengan  nilai 2,94±0,394 cm.
Gambar 3.11 Pertumbuhan panjang mutlak pada media pemeliharaan budidaya udang vaname yang diberi penambahan tepung kulit labu
Keberadaan  populasi  bakteri  yang memadai dalam  perairan  budidaya penting sekali  untuk  menjalankan  proses  siklus nitrogen dalam mengolah limbah perairan(Iswantari et al. 2014). Keberadaan bakteri  nitrifikasi  dan  denitrifikasi  dapat diamati  jumlahnya  melalui  parameter kelimpahan  bakteri.  Kelimpahan  bakteri nitrifikasi tertinggi pada akhir pemeliharaan udang  vaname  dengan  pemberian  tepung kulit labu yaitu terdapat pada perlakuan 2% sebesar  32,6  x  10 7 CFU  mL -1 ,  sedangkan kelimpahan bakteri terendah pada perlakuan kontrol dan perlakuan 6% yakni sebesar  42  x  10 6 CFU  mL -1 .  Kelimpahan bakteri  denitrifikasi  tertinggi  pada  akhir
pemeliharaan udang vaname dengan pemberian  tepung  kulit  labu yaitu  terdapat pada perlakuan 6% yakni sebesar 154 x 10 6 CFU  mL -1 ,  sedangkan  kelimpahan  bakteri terendah  pada  perlakuan  kontrol  yakni sebesar  42  x  10 6 CFU  mL -1 .  Kelimpahan bakteri  ini  didukung  oleh  jumlah  oksigen, jumlah  dan  jenis  bakteri,  jumlah  nutrien, pH,  suhu,  dan  salinitas  yang  terdapat  di perairan  (Subagiyo et  al. 2015;  Gultom 2005).  Kelimpahan  bakteri  yang  lebih tinggi di perlakuan tepung kulit labu dapat disebabkan  oleh  kandungan  tepung  labu yang  memiliki  senyawa  kimia  antioksidan (Wahyono et  al. 2018).  Tepung  kulit  labu tersebut membuktikan bahwa dapat
0 0,5 1 1,5 2 2,5 3 3,5 K 2% 4% 6% P ertumbuhan bobot m utl ak (g r) Perlakuan K 2% 4% 6% a a b ab b 0 1 2 3 4 K 2% 4% 6% P ertum buha n pa njang mut lak ( cm) Perlakuan a a b ab
meningkatkan kinerja bakteri dalam proses nitrifikasi  dan  denitrifikasi  secara  efektif. Budidaya udang akan menghasilkan limbah organisme akuatik berupa feses, sisa pakan yang  terbuang,  dan  proses  metabolisme protein.  Limbah  tersebut  akan  terombak menjadi  amonium  (NH 4 + )  dan  amonia (NH 3 )  dalam  perairan  (Coldebella et  al . 2018).  Konsentrasi  amonium  yang  dapat ditoleransi untuk pertumbuhan dan kelangsungan hidup udang yaitu <0,91 mg L -1 (Wasielesky et  al. 2017).  Amonium yang  terdapat  pada  penelitian  ini  masih dalam  batas  aman  untuk  pertumbuhan  dan kelangsungan hidup udang. Amonia (NH 3 ) pada  budidaya  biota  akuatik  berasal  dari proses  amonifikasi  bahan  organik  yang terdapat  pada  sisa  pakan  dan  ekskresi amonia secara  langsung  oleh biota  akuatik (Yudiati et al . 2010). Menurut Boyd (1990) kandungan  amonia  0,45  mgL -1 dapat menghambat  pertumbuhan  pada  udang sampai  50%,  mengingat  senyawa  non  ion (NH 3 )  relatif  lebih  toksik  pada  udang daripada  yang  berbentuk  ion  (NH 4 + ). Amonia  yang  dihasilkan  dalam  penelitian ini  masih  dapat  dikategorikan  aman  untuk pertumbuhan udang yang diberi perlakuan. Walau  kadar  ammonia  masih  dapat dikategorikan dalam rentang optimal, kadar amonia pada perlakuan kontrol lebih tinggi dibandingkan  perlakuan  pemberian  tepung kulit  labu  hal  ini  menunjukkan  bahwa penggunaan  probiotik  bakteri  mampu meningkatkan penghilangan amonia (Ghosh et al . 2008).
Jumlah  nilai  amonia  (NH 3 )  dan amonium  (NH 4 + )  dalam  perairan  dapat dihitung  melalui  TAN  ( Total  Amonia Nitrogen ).  Nilai  konsentrasi  maksimum TAN  yang  dapat  diterima  pada  budidaya udang yaitu 2 mg L -1 sehingga konsentrasi TAN  masih  dalam  batas  wajar  untuk budidaya  (Boyd  1990).  Nilai  konsentrasi TAN dari semua perlakuan pada hari ke-20 sampai  hari  ke-30  mengalami  penurunan dikarenakan konsentrasi TAN dapat dimanfaatkan  sebagai  nutrisi  untuk  proses metabolisme  dan  pertumbuhan  sel  bakteri (Avnimelech  2006).  Nilai  amonium  dan
amonia mengalami penurunan pada hari ke 30. Hal ini disebabkan aktivitas bakteri dan proses  nitrifikasi  meningkat  sehingga konsentrasi  amonia  turun  (Hargraves  dan Kucuk 2004) dapat diamati pada perlakuan pemberian tepung kulit labu dapat menurunkan amonia.
Bakteri  nitrifikasi  berperan  dalam mengoksidasi  amonium  menjadi  nitrit (NO 2 - )  (Hastuti  2011).  Nitrit  merupakan senyawa  anorganik  yang  berbahaya  bagi udang  jika  terdapat  dalam  jumlah  yang tinggi.  Konsentrasi  nitrit  yang  tinggi memiliki sifat beracun karena
kemampuannya dalam mengikat
haemoglobin sehingga mengganggu absorbsi oksigen dalam darah (Juliette et al . 1993).  Menurut  Widanarni et  al. (2010) konsentrasi nitrit yang aman bagi pertumbuhan  udang  sebaiknya  tidak  lebih dari  4,5  mg  L -1 .  Konsentrasi  nitrit meningkat dari H-0 tetapi cenderung stabil di  H-10  H-20  dan  H-30,  konsentrasi  nitrit selama  pemeliharaan  berfluktuatif  diduga karena  adanya  akumulasi  bahan  organik yang  berasal  dari  pakan  yang  tidak termakan,  dan  pengaruh  dari  DO  perairan (Komarawidjaja 2006).
Nitrat (NO 3 - ) merupakan proses akhir dari  nitrifikasi  dan  termasuk  senyawa anorganik  yang  tidak  berbahaya  bagi kehidupan  udang  dibandingkan  dengan amonia dan nitrit (Hastuti 2011). Konsentrasi nitrat mengalami penurunan di setiap  minggunya.  Pemanfaatan  nitrat dengan  penurunan  konsentrasi  nitrat  pada pemeliharaan  udang  diduga  akibat  bakteri nitrifikasi  dan  bakteri  denitrifikasi  bekerja optimal  mengubah  nitrat  menjadi  nitrogen bebas.  Menurut  Jose et  al. (2013) konsentrasi nitrat yang aman yakni 0,4-0,8 mg L -1 sehingga konsentrasi nitrat termasuk masih aman.
Bakteri  nitrifikasi  dan  denitrifikasi memiliki  peran  penting  merombak  bahan organik  dalam  siklus  nitrogen  di  perairan akuatik  yang  terbentuk  seperti  amonium amonia, nitrit dapat menganggu pertumbuhan  dan  kelangsungan  hidup udang  jika  dalam  konsentrasi  tertentu.
Konsentrasi  yang  melewati  ambang  batas dapat  menyebabkan  stress  pada  udang. Stress  dapat  dijadikan  indikator  kesehatan karena dapat mempengaruhi proses fisiologi dan daya tahan terhadap penyakit. Respons  stress  terjadi  jika  udang  berada pada kondisi lingkungan yang mempengaruhi  perubahan  di  luar  batas kemampuan toleransi fisik. Menurut Hastuti et  al. (2003)  stress  dapat menyebabkan  peningkatan  kadar  glukosa hemolim  (hiperglisemia).  Glukosa  darah yang  dihasilkan  selama  pemeliharaan berbeda  nyata  (P<0,05)  pada  setiap perlakuan,  nilai  glukosa  tertinggi  pada perlakuan kontrol sebesar 49,54±0,655 mg L - dan  nilai  glukosa  terendah  pada perlakuan  2%  sebesar  42,13±0,655  mg  L - . Menurut Aparicio et al. (2010) nilai glukosa optimum sebesar 45 mg/dL dan diduga pada perlakuan  kontrol  mengalami  stress  yang melebihi  nilai  optimum.  Perlakuan  2% memiliki  nilai  tertinggi  yaitu  81.82±4.285 mg/dL  dan  perlakuan  4%  memiliki  nilai terendah  yaitu  69,70±1,428  mg/dL  yang dimana  adanya  respons  dari  luar  tubuh dapat  merangsang  kelenjar  otak  yang memproduksi hormon steroid yang kemudian akan dapat meningkatkan kolesterol  tubuh  sebagai  bentuk  respons stres  yang  ditimbulkan  (Pramudya et  al.
2013). Tingkat  kelangsungan  hidup  (TKH) dan pertumbuhan biota akuatik merupakan parameter  utama  dalam  kegiatan  budidaya untuk  memproduksi  hasil  dari  suatu komoditas dan sebagai penentu keberhasilan  produksi  suatu  komoditas. Perlakuan dengan penambahan tepung kulit labu  memiliki  kelangsungan  hidup  yang lebih tinggi dibandingkan dengan perlakuan kontrol.  TKH  paling  rendah  yaitu  pada kontrol  sebesar  64±27,13%  dan  TKH tertinggi sebesar 96±7,51% pada perlakuan pemberian tepung kulit labu 4%. Pemberian tepung  kulit  labu  juga  mempengaruhi  laju pertumbuhan spesifik (LPS) udang dengan pemberian tepung kulit labu 4% menghasilkan nilai tertinggi sebesar
0,032±0,003  gr/hari  dan  menghasilkan
bobot  mutlak  (BM)  tertinggi  sebesar 2,75±0,40  g  dan  panjang  mutlak  (pm) tertinggi  dengan  nilai  2,94±0,39  cm.  Jika hasil  pertumbuhan  perlakuan  pemberian tepung kulit labu berbeda nyata (P < 0,05) dibandingkan  dengan  hasil  pertumbuhan dari  kontrol,  yaitu  BM  kontrol  sebesar 1,53±0,38  g,  dan  PM  kontrol  sebesar 1,46±0,80  cm,  hal  tersebut  menunjukkan adanya dugaan pemberian tepung kulit labu dapat  menstimulasi  bakteri  yang  berperan dalam  proses  nitrifikasi  dan  denitrifikasi. Keberadaan bakteri nitrifikasi dan denitrifikasi  berpengaruh  positif  terhadap perbaikan  kondisi  kualitas  air,  yang ditunjukkan  dengan  kondisi  kualitas  air selama  pemeliharaan  di  semua  perlakuan masih dalam rentang optimal pemeliharaan budidaya udang, yang kemudian mendukung  pertumbuhan  dan  produksi udang (Herdianti et al. 2015).
Budidaya  udang  akan  menghasilkan limbah organisme akuatik berupa feses, sisa pakan yang terbuang, dan proses metabolisme protein. Limbah tersebut akan terombak  menjadi  amonium  (NH 4 + )  dan amonia  (NH 3 )  dalam  perairan  (Coldebella et  al .  2018).  Konsentrasi  amonium  yang dapat  ditoleransi  untuk  pertumbuhan  dan kelangsungan hidup udang yaitu <0,91 mg L -1 (Wasielesky et  al. 2017).  Amonium yang  terdapat  pada  penelitian  ini  masih dalam  batas  aman  untuk  pertumbuhan  dan kelangsungan hidup udang. Amonia (NH 3 ) pada  budidaya  biota  akuatik  berasal  dari proses  amonifikasi  bahan  organik  yang terdapat  pada  sisa  pakan  dan  ekskresi amonia secara  langsung  oleh biota  akuatik (Yudiati et al . 2010). Menurut Boyd (1990) kandungan  amonia  0,45  mgL -1 dapat menghambat  pertumbuhan  pada  udang sampai  50%,  mengingat  senyawa  non  ion (NH 3 )  relatif  lebih  toksik  pada  udang daripada  yang  berbentuk  ion  (NH 4 + ).
Amonia  yang  dihasilkan  dalam  penelitian ini  masih  dapat  dikategorikan  aman  untuk pertumbuhan udang yang diberi perlakuan. Walau  kadar  ammonia  masih  dapat dikategorikan dalam rentang optimal, kadar amonia pada perlakuan kontrol lebih tinggi
dibandingkan  perlakuan  pemberian  tepung kulit  labu  hal  ini  menunjukkan  bahwa penggunaan  probiotik  bakteri  mampu meningkatkan penghilangan amonia (Ghosh et al . 2008).
Jumlah  nilai  amonia  (NH 3 )  dan amonium  (NH 4 + )  dalam  perairan  dapat dihitung  melalui  TAN  ( Total  Amonia Nitrogen ).  Nilai  konsentrasi  maksimum TAN  yang  dapat  diterima  pada  budidaya udang yaitu 2 mg L -1 sehingga konsentrasi TAN  masih  dalam  batas  wajar  untuk budidaya  (Boyd  1990).  Nilai  konsentrasi TAN dari semua perlakuan pada hari ke-20 sampai  hari  ke-30  mengalami  penurunan dikarenakan konsentrasi TAN dapat dimanfaatkan  sebagai  nutrisi  untuk  proses metabolisme  dan  pertumbuhan  sel  bakteri (Avnimelech  2006).  Nilai  amonium  dan amonia mengalami penurunan pada hari ke 30. Hal ini disebabkan aktivitas bakteri dan proses  nitrifikasi  meningkat  sehingga konsentrasi  amonia  turun  (Hargraves  dan Kucuk 2004) dapat diamati pada perlakuan pemberian tepung kulit labu dapat menurunkan amonia.
Bakteri  nitrifikasi  berperan  dalam mengoksidasi  amonium  menjadi  nitrit (NO 2 - )  (Hastuti  2011).  Nitrit  merupakan senyawa  anorganik  yang  berbahaya  bagi udang  jika  terdapat  dalam  jumlah  yang tinggi.  Konsentrasi  nitrit  yang  tinggi memiliki sifat beracun karena kemampuannya dalam mengikat haemoglobin sehingga mengganggu absorbsi oksigen dalam darah (Juliette et al . 1993).  Menurut  Widanarni et  al. (2010) konsentrasi nitrit yang aman bagi pertumbuhan  udang  sebaiknya  tidak  lebih dari  4,5  mg  L -1 .  Konsentrasi  nitrit meningkat dari H-0 tetapi cenderung stabil di  H-10  H-20  dan  H-30,  konsentrasi  nitrit selama  pemeliharaan  berfluktuatif  diduga karena  adanya  akumulasi  bahan  organik yang  berasal  dari  pakan  yang  tidak termakan,  dan  pengaruh  dari  DO  perairan (Komarawidjaja 2006).
Nitrat (NO 3 - ) merupakan proses akhir dari  nitrifikasi  dan  termasuk  senyawa anorganik  yang  tidak  berbahaya  bagi
kehidupan  udang  dibandingkan  dengan amonia dan nitrit (Hastuti 2011). Konsentrasi nitrat mengalami penurunan di setiap  minggunya.  Pemanfaatan  nitrat dengan  penurunan  konsentrasi  nitrat  pada pemeliharaan  udang  diduga  akibat  bakteri nitrifikasi  dan  bakteri  denitrifikasi  bekerja optimal  mengubah  nitrat  menjadi  nitrogen bebas.  Menurut  Jose et  al. (2013) konsentrasi nitrat yang aman yakni 0,4-0,8 mg L -1 sehingga konsentrasi nitrat termasuk masih aman.
Bakteri  nitrifikasi  dan  denitrifikasi memiliki  peran  penting  merombak  bahan organik  dalam  siklus  nitrogen  di  perairan akuatik  yang  terbentuk  seperti  amonium amonia, nitrit dapat menganggu pertumbuhan  dan  kelangsungan  hidup udang  jika  dalam  konsentrasi  tertentu. Konsentrasi  yang  melewati  ambang  batas dapat  menyebabkan  stress  pada  udang. Stress  dapat  dijadikan  indikator  kesehatan karena dapat mempengaruhi proses fisiologi dan daya tahan terhadap penyakit.
Respons  stress  terjadi  jika  udang  berada pada kondisi lingkungan yang mempengaruhi  perubahan  di  luar  batas kemampuan toleransi fisik. Menurut Hastuti et  al. (2003)  stress  dapat menyebabkan  peningkatan  kadar  glukosa hemolim  (hiperglisemia).  Glukosa  darah yang  dihasilkan  selama  pemeliharaan berbeda  nyata  (P<0,05)  pada  setiap perlakuan,  nilai  glukosa  tertinggi  pada perlakuan kontrol sebesar 49,54±0,655 mg L - dan  nilai  glukosa  terendah  pada perlakuan  2%  sebesar  42,13±0,655  mg  L - . Menurut Aparicio et al. (2010) nilai glukosa optimum sebesar 45 mg/dL dan diduga pada perlakuan  kontrol  mengalami  stress  yang melebihi  nilai  optimum.  Perlakuan  2% memiliki  nilai  tertinggi  yaitu  81.82±4.285 mg/dL  dan  perlakuan  4%  memiliki  nilai terendah  yaitu  69,70±1,428  mg/dL  yang dimana  adanya  respons  dari  luar  tubuh dapat  merangsang  kelenjar  otak  yang memproduksi hormon steroid yang kemudian akan dapat meningkatkan kolesterol  tubuh  sebagai  bentuk  respons
stres  yang  ditimbulkan  (Pramudya et  al. 2013).
Tingkat  kelangsungan  hidup  (TKH) dan pertumbuhan biota akuatik merupakan parameter  utama  dalam  kegiatan  budidaya untuk  memproduksi  hasil  dari  suatu komoditas dan sebagai penentu keberhasilan  produksi  suatu  komoditas. Perlakuan dengan penambahan tepung kulit labu  memiliki  kelangsungan  hidup  yang lebih tinggi dibandingkan dengan perlakuan kontrol.  TKH  paling  rendah  yaitu  pada kontrol  sebesar  64±27,13%  dan  TKH tertinggi sebesar 96±7,51% pada perlakuan pemberian tepung kulit labu 4%. Pemberian tepung  kulit  labu  juga  mempengaruhi  laju pertumbuhan spesifik (LPS) udang dengan pemberian tepung kulit labu 4% menghasilkan nilai tertinggi sebesar
0,032±0,003  gr/hari  dan  menghasilkan bobot  mutlak  (BM)  tertinggi  sebesar 2,75±0,40  g  dan  panjang  mutlak  (pm) tertinggi  dengan  nilai  2,94±0,39  cm.  Jika hasil  pertumbuhan  perlakuan  pemberian tepung kulit labu berbeda nyata (P < 0,05) dibandingkan  dengan  hasil  pertumbuhan dari  kontrol,  yaitu  BM  kontrol  sebesar 1,53±0,38  g,  dan  PM  kontrol  sebesar
1,46±0,80  cm,  hal  tersebut  menunjukkan adanya dugaan pemberian tepung kulit labu dapat  menstimulasi  bakteri  yang  berperan dalam  proses  nitrifikasi  dan  denitrifikasi. Keberadaan bakteri nitrifikasi dan denitrifikasi  berpengaruh  positif  terhadap perbaikan  kondisi  kualitas  air,  yang ditunjukkan  dengan  kondisi  kualitas  air selama  pemeliharaan  di  semua  perlakuan masih dalam rentang optimal pemeliharaan budidaya udang, yang kemudian mendukung  pertumbuhan  dan  produksi udang (Herdianti et al. 2015).

## KESIMPULAN
Pemberian tepung kulit labu mempengaruhi  laju  pertumbuhan  spesifik (LPS)  udang  dengan  pemberian  tepung kulit  labu  4%  menghasilkan  nilai  tertinggi sebesar 0,031±0,006 gr/hari dan menghasilkan bobot mutlak (BM) tertinggi sebesar  2,62±0,630  g  dan  panjang  mutlak
(pm) tertinggi dengan nilai 2,94±0,394 cm. Jika hasil pertumbuhan perlakuan pemberian  tepung  kulit  labu  dibandingkan dengan  hasil  pertumbuhan  dari  kontrol, yaitu BM kontrol sebesar 1,53±0,388 g, dan PM kontrol sebesar 1,46±0,802 cm berbeda nyata  (P  <  0,5)  hal  tersebut  menunjukkan adanya dugaan pemberian tepung kulit labu dapat  menstimulasi  bakteri  yang  berperan dalam  proses  nitrifikasi  dan  denitrifikasi sehingga  pemberian  tepung  kulit  labu sangat efektif untuk pertumbuhan udang

## DAFTAR PUSTAKA
Aparicio SB, Pinon M, Racotta R, Racotta IS. 2010. Neuroendocrine and metabolic responses of pasific whiteleg shrimp
Litopenaeus vannamei exposed  to  acute  handling stress. Aquaculture . 289: 308 - 314.
[APHA] American Public Health Association. 2005. Standard Methods for  the  Exaination  of  Water  and Wastewater. Amer. Publ. 17th Edition.  New  York  (US):  Health Association.
Arta  AP,  Maidie  A,  Septiani  G.  2009.
Pengaruh kerapatan vegetasi mangrove  terhadap  populasi  bakteri Vibrio sp. di Pesisir Bontang. Jurnal Kehutanan  Tropika  Humida .  2(2):
133 - 143.
Avnimelech Y. 2006. Bio-filters:  The need for an new comprehensive approach.
Aquaculture  Engineering .  34:  172  - 178.
Batista ALD, Silva R, Cappato LP, Ferreira
MVS, Nascimento KO. 2017. Developing  a  synbiotic  fermented milk  using  probiotic  bacteria  and organic  green  banana  flour. Journal of Functional Foods . 38: 242 - 250.
Bhatia S. 2015. Plant tissue culture. Modern apllications of plant biotechnology in pharmaceutical sciences. 31 - 107.
Biggs J, Williams P, Withfield M, Pascale N,  Weatherbi  A.  2005.  15  years  of pond  assessment  in  Britain:  results and lessons learned from the work of
Pond Conservation.
Aquatic
Conservation:  Marine  and  Freesh water Ecosystem. (15): 693 - 714.
Boyd CE. 1990. Water Quality in Ponds for Aqua Culture. Alabama(US):
Agricultural Experiment Station. 359
P.
Coldebella  A,  Gentelini  AL,  Piana  PA,
Coldebella  PF,  Boscolo  WS,  Feiden A. 2018. Effluents from fish farming ponds: A view from the perspective of its main components. Journal Sustainability . 10(3): 1 - 16.
Effendi H, Utomo BA, Darmawangsa GM,
Sulaeman  N.  2015.  Combination  of water  spinach  ( Ipomoea  aquatica ) and  bacteria  for  freshwater  crayfish red  claw  ( Cherax  quadricarinatus ) culture  wastewater  treatment  in aquaponic system. Journal of Advances Biology . 6(3): 1072 - 1078.
Fang F, Liu X, Xu J, YU HQ, Li Y. 2009. Formation  of  aerobic  granules  and their  PHB  production  at  various substrate and ammonium concentration. Biosenresour Technol . 34: 421 - 428.
[FAO] Food and Agriculture Organization. 2011.  The  State  of  Word  Fisheries and Aquaculture. Rome(IT):
FAO.207.
Ghosh  S,  Sinha  A,  Sahu  C.  2008. Bioaugmentation  in  the  growth  and water quality of livebearing ornamental fishes. Aquaculture International . 16: 393 – 403.
Hastuti  S,  Supriyono  E,  Mokoginta  I, Subandiyono.  2003.  Respon  glukosa darah  ikan  gurami  ( Osphronemus
gouramy ,  LAC.)  terhadap  stres perubahan  suhu  lingkungan. Jurnal Akuakultur Indonesia . 2(2): 73 - 77.
Hastuti YP., Syarifuddin NI., Tridesianti S., Fatma  YS.,  Supriyono  E.  2020. Application of Halomonas sp. HIB-F to Litopenaeus vannamei aquaculture system. AACL Bioflux. (13): 4: 2116- 2126.
Hastuti  YP.,  Rusmana  I.,  Nirmala  K., Affandi  R.,  Fatma  YS.  2021. Characterization  of  Denitrfying  and Dissimilatory  nitrat  reduction  to ammonium (DNRA) bacteria isolated from  mud  crab  culture  environment. Microbiol. Biotechnol.Lett. 49(3)1-8.
Hastuti YP. 2011. Nitrifikasi dan denitrifikasi di tambak. Jurnal Akuakultur Indonesia . 10(1): 89 – 98.
Huissman  EA.1987. Principle  of  Fish
Production . Wageningen (NE): Wageningen Agriculture University.
Hukom  V,  Nielsen  R,  Asmild  M,  Nielsen M.  2020.  Do  aquaculture  farmers have  an  incentive  to  maintain  good water quality? the case of small-scale shrimp farming in Indonesia. Ecological Economics . 176: 1 - 9.
Herdiati L, Soewardi K, Hariyadi S. 2015.
Efektivitas penggunaan bakteri untuk perbaikan kualitas air media budidaya udang vaname ( Litopenaeus vannamei ) super intensif. Jurnal Ilmu Pertanian  Indonesia .  20(3):  265  - 271.
Iswantari  A,  Wardiatno  Y,  Pratiwi  NTM, Rusmana I.  Fluks  bentik  dan potensi aktivitas bakteri terkait siklus nitrogen di Sedimen Perairan Mangrove Pulau Dua, Banten. Jurnal Biologi Indonesia. 10(1): 109 - 117.
Jose  CHJ,  Luis  SFP,  Luis  VVA,  Jesus
COA, Jose MTF. 2013. Water quality assessment in shrimp culture using an analytical hierarchical process.
Journal  Ecological  Indicators .  29: 148-158.
Juliette  LY,  Hyman  MR,  Arp  DJ.  1993. Inhibition  of  ammonia  oxidation  in
Nitrosomonas  europaea  by  sulfur compounds: thioethers arc oxidized to sultoxides by Ammmonia monooxygenase. Applied and Environ. Microbiology . 59(11): 3718
- 3727.
[KKP]. Kementrian Kelautan dan Perikanan 2019. Produktivitas Perikanan  Indonesia.  Disampaikan pada Workshop
Pembangunan
Perikanan  budidaya  berkelanjutan yang  diselenggarakan  Kementrian PPN/BAPPENAS. Jakarta.
Kumar  VJR,  Sukumaran  V,  Achuthan  C, Joseph V, Philip R, Singh SB. (2013). Molecular  characterization  of  the nitrifying bacterial consortia employed  for  the  activation  of bioreactors  used  in  brackish  and marine aquaculture systems.
International Biodeterioration & Biodegradation . 78: 74 – 81.
Komarawidjaja W. 2006. Pengaruh perbedaan dosis oksigen terlarut (DO)
pada  degradasi  amonium  kolam kajian budidaya udang. Jurnal Hidrosfir . 1(1): 32 – 37.
Madigan MT, Martinko JM, Parker J. 2003.
Brock  Biology  of  Microorganism Tenth  Edision.  Prentice-Hall  Inc.
USA.
Pramudya TP, Suryono CA, Supriyantini E.
2013. Kandungan kolesterol kepiting bakau  ( Scylla  serrata )  jantan  dan betina  pada  lokasi  yang  berbeda.
Journal of Marine Research . 2(1): 48 - 53.
Raa J. 2006. The use immune stimulants in fish  and  shellfish  feeds.  Mexico (ME): University of Tromso.
Sahu  S,  Chawla  R,  Uppai  B.  2005. Comparison  of  two  methods  of estimation of low density lipoprotein cholesterol, the direct versus friedwald estimation.
Clinical Biochemistry . 20(2): 54 – 61. Sari  SG.  2007.  Kualitas  sungai  maron dengan  perlakuan  keramba  ikan  di Kecamatan Trawas, Kabupaten
Mojokerto,  Jawa  Timur. Biocent .
4(1): 29 - 35.
See  EF,  Wan  NWA,  Noor  AAA.  2007.
Physico-chemical and sensory evaluation  of  breads  supplemented with  pumpkin  folur. ASEAN  Food Jurnal . 14(2): 123-130.
Subagiyo,  Margino  S,  Triyanto.  2015. Pengaruh penambahan berbagai jenis sumber karbon, nitrogen, dana fosfor pada  medium  deMan,  rogosa  and sharpe (MRS) terhadap pertumbuhan bakteri  asam  laktat  terpilih  yang diisolasi dari intestium udang penaeid. Jurnal  Kelautan  Tropis . 18(3): 127-132.
Texeira P, Oliveira R 2002. Metabolism of alcaligenes denitrificans in biofilm vs planctonic  cells. Journal  Of  Applied Microbiology . 92: 256 – 260.
Wahyono A, Kurniawati E, Kasutjianingati,
Park KH, Kang WW. 2018. Optimasi proses pembuatan tepung labu kuning menggunakan Response Surface Methodology untuk  meningkatkan aktivitas antioksidannya. Jurnal Teknologi  dan  Industri  pangan .
29(1): 29 – 38
Wasielesky  WJ,  Poersch  LH,  Martins,
Miranda,  Filho  KC.  2017.  Chronic effects of nitrogenous compounds on survival  and  growth  of  juvenile  pink shrimp. Brazilian Journal of Biology .
77(3): 558 - 565.
Weatherley AH. 1972. Growth and Ecology of  Fish  Populations.  Academic  Press New York (US): Amerika Serikat.
Wedemeyer  GA,  Yasutake  WT.  1977. Clinical methods for the assesment of the effects of environmental stress of fish  health.  Tecnichal  paper  of  the US.  Fish  and  wildlife  service. Washington. 18pp.
Widanarni, Rajab F, Sukenda, Setiawati M. 2010.  Isolasi  dan  seleksi  bakteri probiotik dari lingkungan tambak dan hatcheri untuk pengendalian penyakit vibriosis  pada  larva  udang  windu, Penaeus  mondon . Jurnal  Riset  Akua kultur . 5(1): 103 - 113.
Yudiati  E,  Arifin  Z,  Riniatsih  I.  2010. Pengaruh  aplikasi  probiotik  terhadap laju sintasan dan pertumbuhan tokolan udang vanamei ( Litopeaneus vannamei ),  populasi  bakteri  vibrio, serta  kandungan  amoniak  dan  bahan organik media budidaya. Ilmu Kelautan . 15(3): 153 - 158.
Zonneveld N, Huisman EA, Boon JH. 1991 .
Prinsip-prinsip budidaya ikan. Jakarta (ID): Gramedia Utama.