Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665
APLIKASI PLANT GROWTH PROMOTING RHIZOBACTERIA (PGPR) TERHADAP INFEKSI Chrysanthemum mild mottle virus (CMMV), PERTUMBUHAN, DAN PRODUKSI TANAMAN KRISAN ( Chrysanthemum sp.)
Krisan ( Chrysanthemum sp.) adalah tanaman florikultura yang memiliki nilai ekonomi tinggi dan berpotensi besar untuk dikembangkan. Budidaya krisan tidak lepas dari kendala penyakit yang menyebabkan  penurunan  produksi  salah  satunya  adalah  serangan  penyakit Chrysanthemum  mild mottle  virus (CMMV)  yang  menyebabkan  gejala  rusaknya  bunga,  tanaman  kerdil,  dan  malformasi. Pengendalian  CMMV  masih  menggunakan  insektisida  yang  bertujuan  untuk  menekan  populasi serangga vektor. Pengurangan penggunaan insektisida dapat menggunakan alternatif pengendalian yang lebih aman yaitu Plant Growth Promoting Rhizobacteria (PGPR). Bacillus subtilis , Pseudomonas fluorescens , dan Azotobacter sp. merupakan rizobakteri yang biasa digunakan sebagai PGPR karena memiliki  peranan  yang  penting  dalam  mengendalikan  serangan  patogen  dan  bermanfaat  untuk memacu pertumbuhan dan produksi tanaman.  Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui pengaruh  pemberian  PGPR  isolat B.  subtilis , P . fluorescens , Azotobacter sp.,  dan  kombinasinya terhadap serangan CMMV, pertumbuhan, dan produksi pada tanaman krisan.
Rancangan  penelitian  menggunakan  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  9  perlakuan.  P0 + : Kontrol  positif  (tanpa  pemberian  PGPR,  dengan  inokulasi  virus);  P0 - :  Kontrol  negatif  (tanpa pemberian  PGPR,  tanpa  inokulasi  virus);  P1:  Inokulasi  virus  +  PGPR  isolat B.  subtilis ;  P2:  Inokulasi virus  +  PGPR  isolat P.  fluorescens ;  P3:  Inokulasi  virus  +  PGPR  isolat Azotobacter sp.;  P4:  Inokulasi virus  +  PGPR  isolat B.  subtilis + P.  fluorescens ;  P5:  Inokulasi  virus  +  PGPR  isolat B.  subtilis + Azotobacter sp.; P6: Inokulasi virus + PGPR isolat P. fluorescens + Azotobacter ; P7:  Inokulasi virus + PGPR  isolat P.  fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp.  Berdasarkan  hasil  penelitian,  diketahui bahwa tanaman krisan yang diberi perlakuan PGPR tiga kombinasi yaitu P. fluorescens + B. subtilis + Azotobacter sp.  menunjukkan  hasil  yang  berbeda  nyata  dengan  perlakuan  yang  lain.  Setelah dikombinasikan, P.  fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp.  mampu  memberikan  hasil  terbaik dalam hal menunda masa inkubasi CMMV, menekan intensitas serangan CMMV, serta meningkatkan pertumbuhan dan produksi tanaman krisan.
Kata kunci : PGPR, Chrysanthemum, Chrysanthemum mild mottle virus, krisan

## ABSTRACT
Chrysanthemum  ( Chrysanthemum sp.)  is  floriculture  commodity  with  high  economic  value and  has  great  potential  to  be  developed.  Chrysanthemum  cultivation  can  not  be  separated  from pests  and  diseases,  one  of  them  is Chrysanthemum  mild  mottle  virus (CMMV).  Virus  can  caused  a broken flowers, dwarf, and malformation. CMMV control is still focused on vector control. Necessary efforts  to  reduce  impact  of  insecticide.   The  control effort that  are  currently  being  developed  is  a Plant  Growth  Promoting  Rhizobacteria  (PGPR). Bacillus  subtilis , Pseudomonas  fluorescens, and Azotobacter sp.  used  as  PGPR  because  it  has  an  important  role  in  controlling  pathogens,  spur growth,  and  production.  The  purpose  of  the  research  is  to  know  the  effect  of  PGPR  isolates  of B. subtilis , P. fluorescens , Azotobacter sp., and the combinations against incubation period, intensity of the attacks CMMV, growth, and production of the chrysanthemum plant.
ABSTRAK Email: feryac@ub.ac.id
Fery Abdul Choliq, Mintarto Martosudiro, Safira Candra Jalaweni Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian Universitas Brawijaya
Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665
The research design using a completely randomized design (RAL) 9 treatments.P0 + : Positive Control  (without  the  granting  of  PGPR,  with  the  inoculation  of  the  virus);  P0-:  Negative  Control (without the granting of PGPR, without inoculation of the virus); P1: CMMV + B. subtilis ; P2: CMMV + P. fluorescens ; P3: CMMV + Azotobacter sp.; P4: CMMV + B. subtilis + P. fluorescens ; P5: CMMV + B. subtilis + Azotobacter sp.; P6: CMMV + P. fluorescens + Azotobacter sp.; P7: CMMV + P. fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp.  Based on  this  research,  it  is known  that  chrysanthemum  treated  with PGPR  three  combinations  ( P.  fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp.)  showed  significantly different  results  with  other  treatments.After  combined,  capable  of  providing  the  best  results  in terms  of  delaying  the  incubation  period,  pressing  attacks  of  CMMV,  as  well  as  the  growth  and production of chrysanthemum.
Keywords : PGPR, Chrysanthemum, Chrysanthemum mild mottle virus, krisan.

## PENDAHULUAN
Krisan  ( Chrysanthemum sp.)  adalah tanaman  florikultura  yang  memiliki  nilai ekonomi  tinggi  dan  berpotensi  besar  untuk dikembangkan.  Tanaman  krisan  memiliki bentuk  dan  tipe  yang  beragam.  Selain  itu warna  bunganya  pun  sangat  bervariasi dengan  kombinasi  warna  yang  indah.  Krisan juga  memiliki  berbagai  manfaat  diantaranya selain  sebagai  tanaman  hias  juga  ada  yang memanfaatkan  sebagai  campuran  obat tradisional serta ada pula yang mengkonsumsinya  dalam  bentuk  teh  krisan. Hal  tersebut  menyebabkan  permintaan konsumen  terhadap  komoditas  ini  cukup tinggi.  Proyeksi  permintaan  krisan  tahun 2014-2019  diperkirakan  terus  meningkat sampai  dengan  tahun  2019  hingga  mencapai 70.676  ton,  dengan  rata-rata  peningkatan permintaan  12,40%  per  tahun  (Ekanantari, 2014).
Budidaya  krisan  tidak  lepas  dari kendala  penyakit  salah  satunya  adalah penyakit yang disebabkan
oleh Chrysanthemum  mild  mottle  virus (CMMV) atau  lebih  dikenal  dengan Tomato  Aspermy Virus (TAV) (Hammod dan Kaper, 1986). Virus ini  telah  tersebar  pada  pertanaman  krisan  di seluruh  dunia.  Infeksi  virus  ini  pada  tanaman krisan  menyebabkan  gejala  rusaknya  bunga, tanaman  kerdil,  dan  malformasi.  Kejadian CMMV  di  dunia  terutama  di  Indonesia  masih belum  mendapatkan  perhatian.  Pengetahuan petani  terhadap  penyakit  ini  masih  kurang padahal  serangan  CMMV  dapat  menurunkan produksi  yang  sangat  merugikan  produsen. Mengingat  krisan  merupakan  salah  satu
tanaman hias yang tidak  menolelir kerusakan sedikitpun  terhadap  tanaman  karena  dapat menurunkan  minat  konsumen  dan  nilai  jual dari  tanaman  krisan,  maka  seharusnya pengendalian  OPT  (Organisme  Pengganggu Tanaman)  khususnya  penyakit  CMMV  harus lebih diperhatikan.
Petani  krisan  masih  menggunakan insektisida  yang  bertujuan  untuk  menekan populasi  serangga  vector  yaitu Myzus persicae .  Kennedy  dkk.,  (1962)  menjelaskan bahwa  CMMV  dapat  ditularkan  secara  non persisten oleh kutu daun Myzus  persicae dan beberapa  spesies  aphididae.  Penggunaan insektisida  secara  berlebihan  tentunya  akan menyebabkan  resistensi  hama.    Resistensi atau  ketahanan  hama  terhadap  pestisida merupakan  masalah  penting  yang  harus dihadapi  oleh  petani.  Suatu  organisme pengganggu tumbuhan (OPT) disebut resisten jika  OPT  di  suatu  daerah  menjadi  tahan terhadap  pestisida  yang  diberikan  sehingga pestisida  tersebut  tidak  efektif  untuk menekan keberadaan hama.
Dampak  resistensi  OPT  terhadap pestisida  secara  ekonomi  dan  sosial  sangat besar.  Petani  harus  mengeluarkan  biaya pengendalian  lebih  besar,  karena  mereka terpaksa menggunakan dosis yang lebih tinggi atau  membeli  pestisida  baru  yang  lebih mahal.  Resistensi  hama  tersebut  merupakan dampak dari perilaku petani dalam mengaplikasikan pestisida yang tanpa dilandasi oleh pengetahun tentang sifat dasar pestisida  dan  OPT  sasaran.  Oleh  karena  itu perlu dilakukan pengurangan terhadap penggunaan pestisida dalam menekan keberadaan OPT.
Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665
Alternatif  pengendalian  yang  dapat diterapkan adalah pengendalian yang berdasarkan pada konsep Pengendalian Hama Terpadu  (PHT)  karena  konsep  ini  bertujuan untuk  meminimalisir  penggunaan  pestisida dan  tetap  menyelamatkan  kehilangan  hasil tanaman  budidaya  terhadap  serangan  OPT. Konsep PHT bukanlah memberantas, membasmi  secara  brutal  dengan  pestisida, atau  memusnahkan  hama,  akan  tetapi dilakukan  dengan  pengontrolan  teratur  dan rutin,  sehingga  bila  terdapat  sesuatu  pada tanaman  tersebut  dapat  dilakukan  tindakan yang  sesuai  dengan  kondisi  hama  penyakit yang menyerang.
Salah satu pengendalian yang termasuk  komponen  dalam  konsep  PHT adalah  pengendalian  ramah  lingkungan  yang didasarkan  pada  informasi  dan  pengalaman status  OPT  pada  waktu  sebelumnya  serta bertujuan untuk mengupayakan agroekosistem  yang  toleran  terhadap  OPT. Strategi operasional semacam ini lebih dikenal dengan  strategi  preemtif  (Untung,  1993). Pengendalian  dengan  strategi  preemtif  dapat diterapkan  dengan  memanfaatkan  agens hayati.  Mikroorganisme  yang  sudah  banyak dilaporkan  mampu  sebagai  agens  hayati adalah rizobakteria. Mekanisme pengendalian patogen  oleh  rizobakteria  dapat  secara langsung  yaitu  dengan  cara  berkompetisi, menghasilkan  antibiotik,  menghasilkan  enzim kitinase,  dan menyebabkan  lisis  pada  dinding hifa  pathogen  seta  dapat  pula  dengan  cara tidak  langsung  (induksi  ketahanan  dan meningkatkan pertumbuhan tanaman) (Habazar  dan  Yaherwandi,  2006).  Salah  satu diantaranya  adalah Plant  Growth  Promotimh Rhizobacteria (PGPR).
Secara  umum,  fungsi  PGPR  dalam meningkatkan  pertumbuhan  tanaman  dibagi dalam tiga kategori yaitu : (1) sebagai pemacu atau  perangsang  pertumbuhan  (biostimulan) dengan mensintesis dan mengatur konsentrasi  berbagai  zat  pengatur  tumbuh (fitohormon)  seperti  IAA,  giberelin,  sitokinin dan etilen dalam lingkungan akar; (2) sebagai penyedia hara (biofertilizer) dengan menambat  N 2 dari  udara,  melarutkan  hara  P yang  terikat  di  dalam  tanah,  mengoksidasi
sulfur, memobilisasi kalium dan pengkhelatan ion  besi;  (3)  sebagai  pengendali  patogen berasal dari tanah (bioprotektan) dengan cara menghasilkan berbagai senyawa atau metabolit  anti  patoogen  seperti  siderophore, β-1,3-glukanase,  kitinase,  antibiotik  dan sianida (Millan, 2007).
Terdapat beberapa rhizobacteria yang berperan sebagai PGPR. Beberapa genus yang termasuk  dalam  PGPR  tersebut  adalah Pseudomonas ,
Serratia , Azotobacter , Azospirillum , Acetobacter , Burkholderia , Enterobacter , Rhizobium , Erwinia , Flavobacterium dan Bacillus (Husen  dkk.,
2006).  Masing-masing  isolat rhizobacteria memiliki  peranan  yang  penting  dalam mengendalikan serangan patogen dan memicu pertumbuhan.
Isolat Bacillussubtilis dilaporkan mampu  mensintesis  asam  indol  asetat  (IAA) dan  giberelin  (Salamiah  dan  Wahdah,  2015). Fungsi  hormon  IAA  bagi  tanaman  antara  lain meningkatkan perkembangan sel, merangsang pembentukan akar baru, memacu pertumbuhan, merangsang
pembungaan  dan  meningkatkan  aktivitas enzim  (Rahni,  2012).  Sedangkan,  isolat Pseudomomas fluorescens selain menghasilkan IAA juga menghasilkan sitokinin (Salamiah dan Wahdah, 2015). Selain itu juga terdapat Azotobacter yang mampu meningkatkan  ketersediaan  nitrogen  dalam tanah  (Nurmas,  2014).  Berdasarkan  hal tersebut,  perlu  dilakukan  uji  kemampuan isolat rizhobacteria yaitu Bacillus  subtilis , Pseudomomas  fluorescens ,  dan Azotobacter sp.  sebagai  PGPR  dalam  mengendalikan intensitas serangan CMMV, serta pertumbuhan,  dan  produksi  pada  tanaman krisan.

## METODE PENELITIAN

## Tempat dan Waktu
Penelitian dilaksanakan di
Laboratorium  Penyakit,  Jurusan  Hama  dan Penyakit  Tumbuhan,  Fakultas  Pertanian, Universitas  Brawijaya,  Malang  dan  rumah kawat Universitas Widyagama Malang. Pelaksanaan  penelitian  dimulai  pada  bulan Juni 2016 sampai dengan September 2016.
Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665
Alat dan Bahan Alat-alat yang digunakan pada penelitian  di  lapang  adalah  cangkul,  sekop, cetok, meteran, gunting, jangka sorong, kertas label,  plastik,  tali  rafia,  gembor, sprayer ,  alat tulis  dan  kamera.  Alat  yang  digunakan  untuk penelitian di laboratorium adalah cawan petri, lampu  ultra  violet,  timbangan  analitik,  pipet, gelas ukur, autoclave , laminar air flow cabinet (LAFC), microwave , botol media 250 ml, stik L , bunsen,  korek,  plastik,  plastik wrapping , kertas  saring,  sprayer,  gunting,  alumunium foil,  kapas,  tisu  steril, mortar  dan  penumbuk, gelas ukur (vol. 100 ml), dan label.
Bahan yang digunakan yaitu inokulum CMMV  yang  menginfeksi  tanaman  krisan  di lapang.  Bahan  tanam  yang  digunakan  berupa stek  tanaman  yang  berasal  dari  pucuk tanaman  krisan  yang  sehat  jenis  standar varietas Cocobeach .  Tanaman  indikator  yang digunakan adalah Chenopodium amaranthicolor .  Cocopeat  dan  sekam  yang sudah disterilisasi dengan formalin 5% sebagai media tanam, kompos, ZA, NPK, fungisida b.a Propineb,  karborundum  600  mesh,  aquades steril,  dan  buffer  fosfat  0,01  M  pH  7,  PGPR isolat B.  subtilis , Pseudomomas  fluorescens , dan Azotobacter sp. dalam bentuk cair dengan kerapatan  10 8 yang  diproduksi  oleh  jurusan hama dan penyakit tumbuhan (HPT), Fakultas Pertanian,  Universitas  Brawijaya,  aquades, alkohol,  spirtus,  klorok,  dan  sabun  cair.  Serta media  biakan  bakteri King’s  B yang merupakan media selektif untuk pertumbuhan  bakteri P.  fluorescens , Ashby yang  merupakan  media  selektif  untuk pertumbuhan  bakteri Azotobacter sp.,  dan media Nutrient  Agar (NA)  sebagai  media pertumbuhan Bacilus subtilis .
Rancangan Penelitian Penelitian ini menggunakan Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  9  perlakuan (Tabel  1)  dengan  3  ulangan  sehingga diperoleh  27  tanaman.  Perlakuan  tersebut adalah  P0 + :  Kontrol  positif  (tanpa  pemberian PGPR,  dengan  inokulasi  virus);  P0 - :  Kontrol negatif  (tanpa  pemberian  PGPR,  tanpa inokulasi  virus);  P1:  Inokulasi  virus  +  PGPR isolat B.  subtilis ;  P2:  Inokulasi  virus  +  PGPR isolat P.  fluorescens ;  P3:  Inokulasi  virus  +
PGPR  isolat Azotobacter sp.;  P4:  Inokulasi virus + PGPR isolat B. subtilis + P. fluorescens ; P5:  Inokulasi  virus  +  PGPR  isolat B.  subtilis + Azotobacter sp.;  P6:  Inokulasi  virus  +  PGPR isolat P.  fluorescens + Azotobacter ;  P7: Inokulasi  virus  +  PGPR  isolat P.  fluorescens + B. subtilis + Azotobacter sp.

## Persiapan Penelitian
Penyediaan Inokulum dan Identifikasi Virus Inokulum  CMMV  berasal  dari  lokasi ditemukannya tanaman yang terinfeksi CMMV  yaitu  di  Desa  Bumiaji,  Batu.  Tanaman yang  terserang  CMMV  dicirikan  dengan adanya  gejala  serangan  seperti mottle atau belang  pada  daun,  malformasi  pada  daun, serta  kerusakan  pada  bunga.  Inokulum  yang digunakan  yaitu  daun  tanaman  krisan  yang menunjukkan  gejala  belang  atau mottle .
Sebelum  penelitian,  dilakukan  identifikasi virus  CMMV  dengan  menggunakan  tanaman indikator.  Tanaman  indikator  yang  digunakan untuk  identifikasi  vurus  CMMV  adalah Chenopodium  amaranthicolor. Identifikasi virus  pada  tanaman  indikator  dilakukan dengan  cara  diinokulasi  mekanis.  Virus tersebut  akan  menunjukkan gejala  serangan CMMV pada C.amaranthicolor yaitu lesio lokal klorotik atau nekrotik tanpa gejala sistemik.

## Persiapan Media Tanam
Media  yang  digunakan  adalah  sekam sebagai  media  persemaian  serta  campuran cocopeat  dan  kompos  yang  digunakan  untuk media  tanam.  Cara  sterilisasi  media  yaitu pertama media disiram menggunakan formalin  5%  dengan  konsentrasi  5  cc/liter  air secara  merata.  Tujuannya  adalah  untuk membersihkan media tanam dari mikroorganisme  yang  dapat merugikan tanaman.  Setelah  cairan  formalin  merata pada media tanam selanjutnya media ditutup dengan plastik selama 7 hari dan dibolak-balik selama 3 hari kemudian media dikeringanginkan  selama  7  hari  atau  sampai formalin tidak berbau. Media yang sudah siap digunakan  kemudian  dipindahkan  ke  wadah persemaian  dan polybag .  Pemilihan  media tanam  ini  mempertimbangkan  sifat  fisik media  yaitu  harus  ringan,  gembur,  dan memiliki  aerasi  yang  cukup  baik.  Adriani
Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665
(2015)  menjelaskan  bahwa,  kebanyakan krisan  ditanam  dengan  media  tanpa  tanah. Media  krisan  yang  baik  harus  dapat memegang  air,  mempunyai  drainase  yang baik  dan  bersih  atau  bebas  dari  hama, penyakit, dan gulma. Media tanam yang padat dan berdrainase buruk tidak dapat memberikan  kondisi  pertumbuhan  akar  yang optimal.  Perbandingan  media  tanam  yang digunakan  adalah  4  :  1  dengan  komposisi cocopeat dan kompos.

## Pembibitan Tanaman Krisan
Tanaman  krisan  diperbanyak  dengan bahan  tanam  dari  stek  pucuk.  Bahan  tanam berupa  stek  pucuk  disemaikan  dalam  media persemaian  menggunakan  media  arang sekam.  Kemudian  setelah  tanaman  sudah berusia 14 hari setelah semai (HSS), bibit siap dipindahkan pada polybag yang berukuran 30 x 30 cm. Bibit krisan siap dipindahkan apabila sudah muncul akar.

## Perbanyakan Inokulum CMMV
CMMV  diperbanyak  pada  tanaman krisan  varietas Cocobeach dengan  cara menginokulasikannya secara mekasnis. Inokulasi dilakukan setelah tanaman berumur ±  14  hst.  Sap  yang  mengandung  CMMV diinokulasikan  pada  daun  muda  yang  telah membuka  sempurna.  Kemudian  daun  krisan yang  menunjukkan  gejala  diambil  dan diawetkan dengan cara disimpan dalam botol kaca  (100ml)  yang  sebelumnya  sudah  diisi dengan  CaCl 2 .  Penggunaan  CaCl 2 berfungsi sebagai bahan pengering atau desikator pada daun yang bergejala.

## Penyediaan Bakteri PGPR
Isolat  bakteri  PGPR  yang  didapatkan berasal  dari  koleksi  Laboratorium  Penyakit, Jurusan  Hama  dan  Penyakit  Tumbuhan Universitas  Brawijaya  Malang.  Bakteri  yang digunakan yaitu
Bacillus
subtilis , Pseudomonas fluorescens dan Azotobacter sp. dalam bentuk cair dengan kerapatan 10 8 yang diproduksi  oleh  jurusan  Hama  dan  Penyakit Tumbuhan,  Fakultas  Pertanian,  Universitas Brawijaya.

## Pelaksanaan Penelitian

## Aplikasi PGPR
Bibit  tanaman  krisan  yang  sudah berusia  14  HSS  selanjutnya  dipindahkan  ke polybag untuk  ditanam.  Bibit  dicabut  dari media semai lalu akar dicuci dengan aquades. Akar  yang  sudah  bersih  dari  media  semai kemudian direndam di PGPR selama 10 menit. Konsentrasi  larutan  yang  digunakan  untuk merendam  adalah  10ml  PGPR/liter  air. Terdapat  21  pot  yang  diberi  perlakuan  PGPR sedangkan  6  tanaman  sebagai  kontrol  tanpa diberi perlakuan PGPR.

## Penanaman
Media  tanam  yang  sudah  disiapkan dan  telah  disterilkan  dimasukkan  dalam polybag berukuran  30  x  30  berjumlah  27 buah.  Pengisian  tanah  sejumlah  4/5  bagian dari  tinggi polybag .  Bibit  krisan  yang  sudah tumbuh  normal  pada  persemaian  kemudian dipindahkan pada polybag .

## Inokulasi CMMV pada Tanaman Krisan
Penularan  inokulum  CMMV  pada tanaman  krisan  dilakukan  secara  mekanis menggunakan  sap.  CMMV  diinokulasikan pada  tanaman  krisan  saat  berumur  7  hari setelah tanam (HST). Inokulasi dilakukan pada daun  muda  yang  telah  membuka  sempurna. Tanaman  krisan  dilukai  secara  mekanis menggunakan  karborundum  600  mesh  pada bagian permukaan daun kemudian sap CMMV dioleskan menggunakan tangan pada permukaan  daun  yang  telah  dilukai.  Daun yang  telah  diinokulasi  dibiarkan  dua  menit, kemudian  dibilas  dengan  air  dengan  kapas atau tisu bersih. Pembilasan setelah perlakuan  inokulasi  ini  dimaksudkan  untuk menghilangkan sisa karborundum yang masih menempel pada bagian permukaan daun.

## Pemeliharaan Tanaman Krisan
Pemeliharaan  tanaman  uji  meliputi penyiraman,  pemberian  hari  panjang  atau penyinaran, pemangkasan pucuk atau pinching ,  pemupukan,  pemasangan  tali penyangga  atau  ajir,  penyiangan  gulma,  dan pengendalian hama penyakit tanaman. Penyiraman  dilakukan  setiap  dua  hari  sekali atau  jika  kondisi  media  tanam  pada polybag
Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665
kering. Pemberian hari panjang atau penyinaran diberikan sejak awal tanam hingga 21  hst.  Setelah  1  minggu  pemberian  hari panjang  dilakukan  pemangkasan  pucuk  yang bertujuan untuk memperbanyak tunas.
Pemupukan dilakukan setiap 1 minggu  sekali  sejak  stek  dipindah  ke polybag hingga 2 minggu sebelum panen. Pupuk yang digunakan  adalah  urea  dengan  konsentrasi  2 g/l.  Pemasangan  tali  penyangga  atau  ajir dilakukan  pada  saat  tanaman  berumur  21 HST.
Tujuannya
adalah untuk mempertahankan kondisi tanaman agar tidak rebah.  Tali  penyangga  yang  digunakan  bisa dengan  tali  rafia  yang  diikatkan  pada  kawat. Sanitasi  gulma  dilakukan  secara  manual dengan  melakukan  pencabutan  jika  terdapat gulma yang dapat mengganggu pertumbuhan dan  perkembangan  dari  tanaman  penelitian. Pengedalian  OPT  juga  dilakukan  secara manual  dengan  mengambil  hama  dan diletakkan  pada  botol  air  mineral  agar  tidak menyerang  pada  tanaman  uji,  sedang  jika terdapat  tanda  tanaman  terserang  oleh patogen lain selain virus dilakukan perompesan bagian tanaman yang terserang.

## Variabel Pengamatan
Variabel pengamatan dalam penelitian  ini  meliputi  masa  inkubasi  serta kenampakan gejala CMMV, intensitas serangan,  pertumbuhan  tanaman  (tinggi tanaman  dan  jumlah  daun),  dan  produksi
tanaman (waktu munculnya primordia bunga, jumlah bunga total, dan diameter bunga).

## Masa Inkubasi dan Kenampakan Gejala
Masa  inkubasi  adalah  periode  waktu dari  inokulasi  sampai  munculnya  gejala  pada tanaman  krisan.  Pengamatan  masa  inkubasi dihitung mulai dari satu hari setelah inokulasi sampai  dengan  munculnya  gejala  pertama pada  semua  perlakuan  dalam  satuan  hari. Kenampakkan  gejala  yang  diamati  meliputi perubahan  bentuk  dan  warna  daun  yang diinokulasikan CMMV.
Intensitas serangan Pengamatan intensitas serangan penyakit pada tanaman krisan yang terinfeksi CMMV, terlebih dahulu dilakukan dengan cara menentukan skala kerusakan. Kerusakan yang terjadi akibat serangan penyakit dapat dilihat dari  kondisi  fisik  tanaman  seperti  daun, bunga,  dan  kondisi  tanaman  tanaman  sesuai dengan  gejala  penyakit  CMMV.  Rumus  untuk menghitung  intensitas  serangan  CMMV  pada tanaman  uji  dan  skor  tiap  kategori  serangan (Tabel  1)  ditentukan  menurut  metode Zubaidah  dkk  (2006) dalam Suryanto,  dkk . (2015) yaitu:
I = ∑ x 100%
Keterangan: I  : intensitas serangan tiap tanaman n  : jumlah daun dari setiap kategori serangan v  : nilai skor dari setiap kategori serangan
N  : jumlah daun yang diamati tiap tanaman V  : nilai skor dari kategori serangan tertinggi Tabel 1. Skoring Serangan CMMV pada Daun Tanaman Krisan Gejala Serangan Skor Tanaman sehat tanpa gejala infeksi 0 Tanaman tampak sehat namun terdapat sedikit mottle , tetapi tidak jelas 1 Tampak mottle dan tidak berkerut 2 Tampak mottle , sedikit berkerut, sedikit mosaik 3 Tampak mottle , berkerut, mosaik 4 Tampak mottle , berkerut, mosaik, nekrosis pada permukaan dan bagian bawah daun, malformasi, daun kerdil, melengkung ke bawah atau ke atas 5

## Pertumbuhan dan Produksi Tanaman Krisan
Pengamatan  pertumbuhan  tanaman krisan  dilakukan  pada  7,  14,  21,  28,  35  HST. Adapun  indikator  pertumbuhan  tanaman krisan yang diamati sebagai variabel
perngamatan  adalah  tinggi  tanaman,  jumlah daun,  waktu  munculnya  primordia  bunga, jumlah bunga total dan diameter bunga.
Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665

## Analisis Data
Analisis  sidik  ragam  atau Analysis  of Variance (ANOVA)  pada  data  hasil  penelitian mengenai  masa  inkubasi  CMMV,  intensitas serangan  CMMV  pada  tanaman  krisan, pertumbuhan  dan  produksi  tanaman  krisan dilakukan dengan menggunakan uji F. Aplikasi yang digunakan adalah perangkat lunak excel dan  DSAASTAT  ver.  1.101.  Masing-masing  F hitung  dibandingkan  dengan  F  tabel  pada level nyata 5%. Apabila F hitung < F tabel 5% berarti perlakuan tersebut tidak  berpengaruh nyata  terhadap  variabel  yang  diamati.  Jika  F hitung  >  F  tabel  5%  berarti  perlakuan berpengaruh  nyata  terhadap  variabel  yang diamati. Apabila data  yang dianalisis berbeda nyata, maka akan diuji lanjut menggunakan uji lanjut Duncan  Multiple  Range  Test (DMRT) taraf 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Pengaruh  PGPR  terhadap  Masa  Inkubasi CMMV pada Tanaman Krisan
Masa  inkubasi  virus  merupakan tenggang  waktu  antara  masuknya  virus sampai  tampaknya  gejala.  Masa  Inkubasi tanaman krisan (Tabel 1) pada pengamatan di lapang memiliki masa yang berbeda mulai dari 3  hari  hingga  11  hari  setelah  masa  inokulasi. Berdasarkan analisis ragam mengenai pengaruh  PGPR  terhadap  masa  inkubasi CMMV  pada  tanaman  krisan  di  lapang diperoleh hasil yang berbeda nyata.
Masa inkubasi pada perlakuan kontrol cenderung  lebih  singkat  dibandingkan  pada tanaman  krisan  yang  diberi  perlakuan  PGPR baik  itu  PGPR  tunggal  maupun  kombinasi. Tanaman  krisan  yang  diberi  perlakuan  PGPR tunggal B.  subtilis memiliki  rerata  masa
inkubasi  selama  6,67  HIS  dan  nilai  tersebut tidak memiliki hasil yang berbeda nyata ketika dibandingkan  dengan  PGPR  tunggal  yang  lain yaitu P. fluorescens (6,33 HSI) dan Azotobacter sp.  (7,33  HIS).  Nilai  ini  tidak berbeda  nyata  dengan  perlakuan  PGPR  isolat B.  subtilis yang  dikombinasikan  dengan P. fluorescens (7,00  HIS)    maupun  dengan B. subtilis yang dikombinasikan dengan Azotobacter sp  (8,67  HSI)  namun  berbeda nyata dengan B. subtilis yang dikombinasikan bersama-sama  dengan P.  fluorescens dan Azotobacter sp  (10,67  HSI).  Hal  ini  sesuai dengan  hasil  penelitian  Choliq  dkk.  (2019) yang  menyatakan  bahwa  masa  inkubasi serangan  virus  pada  perlakuan  paling  cepat jika dibandingkan dengan perlakuan pemberian pupuk hayati.
Perlakuan  PGPR P.  fluorescens (6,33 HSI)  menunjukkan  hasil  yang  berbeda  nyata ketika  dibandingkan  dengan  PGPR  perlakuan tunggal  yang  lain. P.  fluorescens yang dikombinasikan dengan Azotobacter sp. (8,67 HSI)  tidak  menunjukkan  hasil  yang  berbeda nyata  ketika  dibandingkan  dengan  perlakuan PGPR  dua  kombinasi B.  subtilis + P. fluorescens. dan  PGPR  tiga  kombinasi P. fluorescens + B. subtilis + Azotobacter sp. Perlakuan  PGPR Azotobaacter sp. tidak tampak berbeda nyata jika dibandingkan dengan  perlakuan  PGPR  tunggal  yang  lain. Begitu  pula  ketika  dibandingkan  dengan perlakuan  PGPR  dua  kombinasi  yaitu B. subtilis + Azotobacter sp.  (8,67  HSI)  dan P. fluorescens + Azotobacter sp.  (8,67  HSI).
Namun  akan  tampak  berbeda  nyata  ketika dibandingkan  dengan  perlakuan  PGPR  tiga kombinasi P.  fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp.
Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665
Tabel 1.  Pengaruh PGPR terhadap Masa Inkubasi CMMV pada Tanaman Krisan
Perlakuan Masa Inkubasi (HSI) Kontrol (tanpa PGPR) 4,33  a B. subtilis 6,67  bc P. fluorescens 6,33  b Azotobacter sp. 7,33  bc B. subtilis + P. fluorescens 7,00  bc B. subtilis + Azotobacter sp. 8,67  cd P. fluorescens + Azotobacter sp. 8,67  cd P. fluorescens + B. subtilis + Azotobacter sp. 10,67  d Keterangan :
angka  yang  diikuti  dengan  huruf  yang  sama  dalam  kolom  menunjukkan  tidak  berbeda  nyata  pada  uji Duncan taraf 5%
Masa  inkubasi  CMMV  pada  tanaman krisan  yang  diamati  memiliki  kisaran  rerata antara  4  hingga  11  hari.  CMMV  memiliki rentang  waktu  tertentu  untuk  melakukan invasi  sampai  menimbulkan  gejala.  Hal  ini dipengaruhi oleh beberapa faktor internal dan eksternal. Faktor internal merupakan ketahanan  tanaman  itu  sendiri  kemudian faktor  luar  adalah  dari  pengaruh  lingkungan tempat  tumbuh  tanaman  meliputi  naungan, suhu  dan  musim.  Menurut  Sastrahidayat (2011),  mengatakan  bahwa  penyebaran  virus pada  tanaman  bervariasi  bergantung  pada jenis  virus  tersebut,  tanaman  dan  interaksi yang  terjadi  diantara  keduanya.  Bos  (1990) menambahkan bahwa perbedaan waktu masa inkubasi pada tanaman dipengaruhi pula oleh jenis  tanaman  dan  keberhasilan  virus  untuk memperbanyak  diri  atau  bermultiplikasi dalam  jaringan  inang  yang  berbeda  pula, sehingga  didapatkan  masa  inkubasi  yang berbeda pula.
Pengaruh PGPR terhadap Intensitas
Serangan CMMV pada Tanaman Krisan
Berdasarkan  pengamatan  yang  telah dilakukan mengenai pengaruh PGPR terhadap intensitas  serangan  CMMVpada  tanaman
krisan  dapat  diketahui  bahwa  persentase intensitas  serangan  memiliki  nilai  yang berbeda  pada  masing-masing  perlakuan. Tinggi  atau  rendahnya  intensitas  penyakit pada  suatu  tanaman  dapat  dipegaruhi  oleh beberapa  faktor,  diantaranya  adalah  inang, patogen dan lingkungan (Agrios, 2005).
Berdasarkan  grafik  laju  intensitas serangan  CMMV  diketahui  bahwa  masing- masing tanaman krisan yang diberi perlakuan PGPR memberikan respon yang berbeda-beda terhadap intensitas serangan CMMV.
Tanaman  krisan  yang  menjadi  kontrol perlakuan  menunjukkan  hasil  intensitas  yang lebih tinggi dibandingkan tanaman krisan yang diberi  perlakuan  PGPR.  Intensitas  serangan yang  paling  rendah  tampak  pada  tanaman krisan  yang  diberi  perlakuan  PGPR  tiga kombinasi P.  fluorescens + B.  subtilis  + Azotobacter sp.
Analisis  ragam  yang  dilakukan  untuk mengetahui pengaruh PGPR terhadap intensitas  serangan  CMMV  pada  tanaman krisan  menunjukkan  hasil  yang  berbeda sangat  nyata.  Hal  ini  terbukti  setelah dilakukan  uji  lanjut  sehingga  diperoleh  hasil yang tertera pada Tabel 2.
Tabel 2. Pengaruh PGPR terhadap Intensitas Serangan CMMV pada Tanaman Krisan Perlakuan Intensitas Serangan (%) Kontrol (tanpa PGPR + inokulasi virus) 19,32  d B. subtilis 13,12  c P. fluorescens 14,04  c Azotobacter sp. 8,51  ab B. subtilis + P. fluorescens 7,70  a B. subtilis + Azotobacter sp. 12,26  bc P. fluorescens + Azotobacter sp. 8,62  ab P. fluorescens + B. subtilis + Azotobacter sp. 5,41  a
Keterangan : angka  yang  diikuti  dengan  huruf  yang  sama  dalam  kolom  menunjukkan  tidak  berbeda  nyata  pada  uji Duncan taraf 5%.
Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665
Berdasarkan  tabel  tersebut  diperoleh hasil  yang  berbeda  nyata  amtara  perlakuan kontrol dengan tanaman yang diberi perlakuan  PGPR.  Intensitas  pada  perlakuan
kontrol  cenderung  lebih  tinggi  dibandingkan dengan  intensitas  serangan  pada  tanaman yang diberi perlakuan PGPR (Gambar 1).
Gambar 1. Perbandingan Intensitas Serangan CMMV. (a. diberi perlakuan PGPR dan

## b. perlakuan kontrol)
Perlakuan yang diberi perlakuan PGPR tunggal isolat B. subtilis tampak tidak berbeda nyata jika dibandingkan dengan PGPR tunggal isolat P.  fluorescens (14,04%)  dan  tampak berbeda  nyata  ketika  dibandingkan  dengan PGPR  tunggal  isolat Azotobacter sp.  (8,51%). Selanjutnya ketika dibandingkan dengan PGPR isolat B.  subtilis yang  dikombinasikan  dengan Azotobacter sp.  (12,26%)  tidak  tampak berbeda nyata  namun  tampak  berbeda nyata jika  dibandingkan  dengan  PGPR B.  subtilis yang  dikombinasikan  dengan P.  fluorescens (7,70%)  dan  PGPR  tiga  kombinasi P. fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp.
(5,41%).  Kemudian  ketika  PGPR B.  subtilis yang  dikombinasikan  dengan P.  fluorescens dan  PGPR  tiga  kombinasi P.  fluorescens + B. subtilis + Azotobacter sp.  dibandingkan  tidak menunjukkan hasil yang berbeda nyata.
PGPR  isolat  tunggal P.  fluorescens menunjukkan  hasil  yang  berbeda  nyata  jika dibandingkan  dengan  PGPR  isolat  tunggal Azotobacter sp.  (8,51%).  Hasil  yang  berbeda nyata juga tampak pada PGPR dua kombinasi yaitu P.  fluorescens yang  dikombinasikan dengan B. subtilis (7,70%) maupun kombinasi P.  fluorescens yang  dikombinasikan  dengan Azotobacter sp.  (8,62%).  Begitu  pula  ketika dibandingkan  dengan  PGPR  tiga  kombinasi P. fluorescens + B. subtilis + Azotobacter sp. juga menunjukkan  hasil  yang  berbeda  nyata.
Namun, ketika PGPR dua kombinasi B. subtilis + P.  fluorescens,  P.  fluorescens + Azotobacter sp., dan PGPR tiga kombinasi P. fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp.  dibandingkan justru  menunjukkan  hasil  yang  tidak  berbeda nyata.
Perlakuan PGPR isolat tunggal Azotobacter sp. tidak menunjukkan hasil yang berbeda  nyata  jika  dibandingkan  dengan PGPR Azotobacter sp.  yang  dikombinasikan dengan B.  subtilis (12,26%)  maupun  yang dikombinasikan dengan P. fluorescens (8,62%).  Begitu  pula  ketika  dibandingkan dengan  PGPR  tiga  kombinasi P.  fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp.  Namun,  ketika PGPR dua kombinasi B. subtilis + Azotobacter sp. dibandingkan dengan PGPR tiga kombinasi P.  fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp. menunjukkan hasil yang berbeda nyata.
Hasil  yang  dipaparkan  pada  tabel diatas  menunjukkan  bahwa  semua  perlakuan PGPR  diduga  dapat  menurunkan  intensitas penyakit CMMV pada tanaman krisan. Bakteri antagonis  yang  dijadikan  PGPR  dapat menghasilkan senyawa antibiotik atau memiliki  kemampuan  menghasilkan  enzim tertentu yang mampu menekan perkembangan  penyakit  CMMV.  Antibiotik berasal  dari  kata  “anti”  yang  berarti  lawan dan  “bios”  yang  berarti  hidup,  merupakan senyawa-senyawa  kimia  yang  dihasilkan  oleh
a
b
Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665
mikroorganisme  terutama  jamur  dan  bakteri yang memiliki sifat mematikan dan menghambat
pertumbuhan kuman (mikroorganisme  yang  merugikan)  (Panagan, 2011).

## Pengaruh  PGPR  terhadap  Pertumbuhan Tanaman Krisan
Indikator  yang  digunakan  untuk mengetahui  pengaruh  perlakuan  terhadap
pertumbuhan  adalah  tinggi  tanaman  dan jumlah  daun.  Secara  umu  terlihat  perbedaan antara  tanaman  krisan  yang  diberi  perlakuan PGRP  dan  kontrol  (tanpa  pemberian  PGPR). Perbandingan  perbedaan  tersebut  dapat dilihat pada Gambar 2.
Gambar 2. Perbandingan Kondisi Tanaman Krisan. (a. diberi perlakuan PGPR dan b. perlakuan kontrol)
Tinggi  tanaman  Pertumbuhan  tinggi tanaman  krisan  selama  kurun  waktu  35  HST, cenderung  mengalami  peningkatan.  Hal  ini dapat  dilihat  dari  data  hasil  pengamatan tinggi  tanaman  krisan  yang  menunjukkan peningkatan tinggi tanaman setiap minggunya
baik  pada  perlakuan  kontrol  maupun  pada tanaman  yang  diberi  perlakuan  PGPR. Meskipun tanaman krisan mengalami peningkatan  setiap  minggu  pengamatan, tetapi  jumlah  peningkatan  tinggi  tanaman krisan tidak seragam (Tabel 3).
Tabel 3. Pengaruh PGPR terhadap Tinggi Tanaman Krisan
Perlakuan Tinggi Tanaman (cm) Kontrol A (tanpa PGPR + tanpa inokulasi CMMV) 10,70  ab Kontrol B (tanpa PGPR + inokulasi CMMV) 6,97  a B. subtilis 11,33  b P. fluorescens 12,23  b Azotobacter sp. 13,80  bc B. subtilis + P. fluorescens 16,53  cd B. subtilis + Azotobacter sp. 16,77  cd P. fluorescens + Azotobacter sp. 19,07  d P. fluorescens + B. subtilis + Azotobacter sp.
25,90  e
Keterangan :  angka  yang  diikuti  dengan  huruf  yang  sama  dalam  kolom  menunjukkan  tidak  berbeda  nyata pada uji Duncan taraf 5%
Setelah  dilakukan  analisis  ragam terhadap tinggi tanaman (Tabel 6, Lampiran 3, tabel  lampiran  1-5)  diketahui  bahwa  tidak terdapat  perbedaan  yang  nyata  antar  dua perlakuan  kontrol  baik  pada  kontrol  A  (10,70 cm)  maupun  kontrol  B  (6,97  cm).  Ketika perlakuan  kontrol  B  dibandingkan  dengan seluruh  perlakuan  PGPR  tampak  berbeda nyata. Antar perlakuan PGPR yang
menunjukkan hasil berbeda nyata dibandingkan  perlakuan  PGPR  lain  adalah PGPR  tiga  kombinasi B.  subtilis  +  P. fluorescens  +  Azotobacter sp.  (25,90  cm). Masing-masing  PGPR  perlakuan  tunggal, ketika  dibandingkan  tidak  menunjukkan  hasil yang  berbeda  secara  nyata  baik  itu  PGPR tunggal  isolat B.  subtilis (11,33  cm) ,  P.
a b
florescens (12,23  cm) , maupun Azotobacter sp. (13,80 cm).
Perlakuan  PGPR  isolat  tunggal B. subtilis menunjukkan  hasil  yang  berbeda nyata  jika  dibandingkan  dengan B.  subtilis yang  kombinasikan  dengan P.  fluorescens (16,53  cm)  maupun  yang  dikombinasikan dengan Azotobacter sp.  (16,77  cm)  namun ketika  PGPR  dua  kombinasi B.  subtilis + P. fluorescens dan B. subtilis + Azotobacter sp. dibandingkan  diperoleh  hasil  yang  tidak berbeda  nyata.  Kejadian  yang  hampir  sama juga  tampak  pada  PGPR  isolat  tunggal P. fluorescens yang  menunjukkan  hasil  yang berbeda  nyata  jika  dibandingkan  dengan B. subtilis (16,53 cm) maupun yang dikombinasikan  dengan Azotobacter sp. (13,80  cm),  namun  ketika  PGPR  dua kombinasi B.  subtilis + P.  fluorescens dan P. fluorescens + Azotobacter sp.  dibandingkan, hasil yang diperoleh tidak berbeda nyata.
Perlakuan
PGPR
tunggalisolat Azotobacter sp. tidak menunjukkan hasil yang berbeda  nyata  ketika  dibandingkan  dengan
PGPR Azotobacter sp.  yang  dikombinasikan dengan B.  subtilis (16,77  cm)  namun menunjukkan hasil yang berbeda nyata ketika dikombinasikan  dengan P.  fluorescens (19,07 cm).  Ketika  kedua  perlakuan  kombinasi tersebut dibandingkan ternyata menunjukkan hasil yang tidak berbeda nyata.

## Jumlah daun.
Pengukuran  jumlah  daun  tanaman krisan  merupakan  bagian  dari  pengambilan data  vegetatif  pada  tanaman  uji  untuk mengetahui adanya perubahan pada tanaman setelah  tanaman  diinokulasikan  CMMV. Berdasarkan  hasil  analisa  ragam,  diketahui bahwa masing-masing perlakuan memberikan hasil  yang  beragam  untuk  jumlah  daun. Setelah  dilakukan  analisa  statistik,  dapat diketahui  jika  PGPR  berpengaruh  nyata terhadap  pertumbuhan  jumlah  daun  pada tanaman  krisan  hal  ini  terlihat  dari  jumlah daun  pada  tanaman  perlakuan  kontrol berbeda  nyata  dengan  tanaman  yang  diberi perlakuan PGPR (Tabel 4).

## Tabel 4.
Pengaruh PGPR terhadap Jumlah Daun Tanaman Krisan Perlakuan Jumlah Daun Kontrol A (tanpa PGPR + tanpa inokulasi CMMV) 13,33  ab Kontrol B (tanpa PGPR + inokulasi CMMV) 12,33  a B. subtilis 20,33  bcd P. fluorescens 18,33  abc Azotobacter sp. 17,33  abc B. subtilis + P. fluorescens 22,00  cde B. subtilis + Azotobacter sp. 26,00  de P. fluorescens + Azotobacter sp. 27,67  e P. fluorescens + B. subtilis + Azotobacter sp. 28,33  e Keterangan :
angka  yang  diikuti  dengan  huruf  yang  sama  dalam  kolom  menunjukkan  tidak  berbeda  nyata pada uji Duncan taraf 5%
Setelah  dilakukan  analisa  statistik dapat  di  ketahui  bahwa  tidak  ada  pengaruh yang berbeda nyata  antara perlakuan kontrol A  (13,33  helai)  maupun  perlakuan  kontrol  B (12,33  helai).  Ketika  dilakukan  perbandingan antara  perlaku  an  kontrol  dengan  tanaman yang diberi perlakuan PGPR tampak hasil yang berbeda  nyata  pada  keseluruhan  perlakuan PGPR kecuali pada perlakuan PGPR tunggal P. fluorescens (18,33  helai)  dan Azotobacter sp. (17,33 helai). Perlakuan  PGPR  tungga B.  subtilis
(20,33  helai)  menunjukkan  hasil  yang  tidak
berbeda  nyata  ketika  dibandingkan  dengan perlakuan  PGPR  tunggal  yang  lain  seperti P. fluorescens dan Azotobacter sp.  Selanjutnya ketika  dibandingkan  dengan B.  subtilis yang dikombinasikan  dengan P.  fluorescens (22,00 helai)  dan Azotobacter sp.  (26,00  helai) menujukkan  hasil  yang  tidak  berbeda  nyata pula namun menunjukkan hasil yang berbeda nyata  ketika  dibandingkan  dengan  perlakuan tiga  kombinasi P.  fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp. (28,33 helai).
Perbandingan  selanjutnya  dilakukan pada  PGPR  isolat P.  fluorescens dengan
perlakuan  PGPR  tunggal  yang  lain  dan  hasil yang  diperoleh  tidak  berbeda  nyata.  Hasil yang  tidak  berbeda  nyata  juga  tampak  jika dibandingkan dengan perlakuan P. fluorescens yang  dikombinasikan  dengan B.  subtillis (22,00  helai).  Sedangkan  ketika  dibandingkan dengan  perlakuan P.  fluorescens yang dikombinasikan  dengan Azotobacter sp. (26,00  helai)  begitu  pula  ketika  dibandingkan dengan perlakuan tiga kombinasi P. fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp. Namun,  ketika  ketiga  perlakuan B.  subtillis yang  dikombinasikan  baik  itu  dua  kombinasi maupun  tiga  kombinasi  dibandingkan,  hasil yang diperoleh adalah tidak berbeda nyata.
Perlakuan PGPR isolat Azotobacter sp. menunjukkan  hasil  yang  tidak  berbeda  nyata dibandingkan  dengan  perlakuan  PGPR  isolat tunggal yang lain. Ketika dibandingkan dengan Azotobacter sp.  yang  dikombinasikan  dengan B.  subtilis,  P.  fluorescens, maupun  yang
dikombinasikan  menjadi  tiga  kombinasi P. fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp. menunjukkan hasil yang berbeda nyata.

## Pengaruh PGPR terhadap Produksi Tanaman
Krisan

## Waktu muncul primordia bunga
Berdasarkan  analisis  ragam  mengenai pengaruh  PGPR  terhadap  waktu  muncul primordia  bunga  pertama  dapat  diketahui bahwa  tidak  tampak  perbedaan  yang  nyata antara kontrol A (5,33 MST) maupun kontrol B (6,67  MST).  Hasil  yang  tidak  berbeda  nyata juga tampak pada kontrol B dengan beberapa perlakuan  PGPR  yaitu  PGPR  tunggal  isolat B. subtilis (5,33  MST)  dan Azotobacter sp.  (5,33
MST).  Setelah  dilakukan  analisa  statistik, dapat  diketahui  pula  bahwa  hasil  dari perbandingan  keseluruhan  perlakuan  PGPR tidak tampak perbedaan yang nyata.

## Tabel 5. Pengaruh PGPR terhadap Waktu Muncul Primordia Bunga Pertama
Perlakuan Waktu Muncul Primordia Bunga Pertama (MST) Kontrol A (tanpa PGPR + tanpa inokulasi CMMV) 5,33  ab Kontrol B (tanpa PGPR + inokulasi CMMV) 6,67  b B. subtilis 5,33  ab P. fluorescens 5,00  a Azotobacter sp. 5,33  ab B. subtilis + P. fluorescens 4,67  a B. subtilis + Azotobacter sp. 5,00  a P. fluorescens + Azotobacter sp. 4,00  a P. fluorescens + B. subtilis + Azotobacter sp. 4,00  a
Keterangan :*angka yang diikuti dengan huruf yang sama dalam kolom menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji
Duncan taraf 5%.
*MST: Minggu Setelah Tanam

## Jumlah bunga total
Jumlah bunga dilakukan selama 5 kali pengamatan  yaitu  sejak  tanaman  berusia  6 MST  tepatnya  ketika  terdapat  bunga  yang sudah  mekar  hingga  10  MST.  Berdasarkan hasil  pengamatan,  diketahui  bahwa  jumlah bunga pada saat pengamatan pada keseluruhan  perlakuan  memberikan  hasil
yang beragam meskipun secara umum jumlah bunga  total  meningkat.  Hanya  saja  pada perlakuan kontrol terdapat penurunan jumlah bunga  total,  hal  ini  dikarenakan  terdapat bunga  yang  gagal  membuka  sempurna. Tanaman  membentuk  kuncup  tetapi  kuncup tersebut  tidak  bisa  membuka  sempurna  dan justru mati (Gambar 3).
Gambar 3. Kuncup Bunga Tanaman Krisan. (a. kuncup mati dan b. tidak dapat membuka sempurna)
Laju pertambahan jumlah bunga total pada  tanaman  krisan  yang  diamati  dapat dilihat  juga  pada  grafik  (Gambar  4)  yang menampilkan  hasil  tentang  pertambahan jumlah  bunga  dari  tanaman  krisan.  Grafik
tersebut  menunjukkan  bahwa  jumlah  bunga yang  dihasilkan  memiliki  keterkaitan  dengan perlakuan PGPR yang diberikan.
Gambar  4.  Grafik  Jumlah  Bunga  Total  pada  Tanaman  Krisan  (Kontrol  Positif:  dengan  inokulasi  virus,  Kontrol Negatif: tanpa inokulasi virus, B.s: B. subtilis ,  P.f: P. fluorescens , dan Az: Azotobacter sp.)
Berdasarkan  hasil  analisa  statistik dapat  diketahui  bahwa  antar  perlakuan kontrol  cenderung  menunjukkan  perbedaan yang  nyata.  Selanjutnya  ketika  perlakuan kontrol  B  dibandingkan  dengan  perlakuan PGPR  menunjukkan  hasil yang  berbeda  nyata secara statistik. Kemudian jika antar pelakuan PGPR dibandingkan,  maka hasil  yang diperoleh  tidak  berbeda  nyata  pada  masing- masing  perlakuan  kecuali  pada  PGPR  tiga kombinasi P.  fluorescens + B.  subtilis + Azotobacter sp.

## Diameter Bunga
Pengamatan  untuk  diameter  bunga dilakukan  sebanyak  tiga  kali  yaitu  pada  saat tanaman  berusia  10  MST  hingga  12  MST. Berdasarkan hasil pengamatan dapat diketahui  bahwa  ukuran  diameter  bunga krisan  sejak  pengamatan  pertama  hingga pengamatan  terakhir  cenderung  meningkat (Gambar  4).  Tanaman  krisan  yang  diberi perlakuan PGPR cenderung memiliki diameter bunga  yang  lebih  besar.  Berdasarkan  hasil tersebut dapat diasumsikan pula bahwa PGPR juga  berperan  dalam  pertumbuhan  diameter bunga.
0.0 2.0 4.0 6.0 8.0 10.0 12.0 14.0 16.0 6 MST 7 MST 8 MST 9 MST 10 MST J u m la h B u n g a Waktu Pengamatan Kontrol A Kontrol B B.s P.f Az B.s + P.f B.s + Az P.f  + Az P.f  + B.s + Az a b
Tabel 6. Pengaruh PGPR terhadap Diameter Bunga pada Tanaman Krisan
Perlakuan Diameter Bunga (cm), pada umur tanaman MST 10 11 12 Kontrol A 4,17  b 5,47  b 5,87  B Kontrol B 2,74  a 3,20  a 3,50  a B. subtilis ( B.s ) 4,77  bc 5,94  b 7,17  bc P. fluorescens (P.f) 4,29  b 6,57  b 7,47  bc Azotobacter sp. ( Az ) 4,57  bc 6,57  b 7,23  bc B.s + P.f 5,41  bc 6,36  b 8,53  bc B.s + Az 4,44  bc 6,78  b 7,13  c P.f + Az 5,14  bc 6,27  b 7,40  bc P.f + B.s + Az 6,03  c 7,19  b 8,33  c
Keterangan : Pengamatan diameter bunga tanaman krisan dilakukan pada 10-12 Minggu Setelah Tanam (MST).
* Angka yang diikuti dengan huruf yang sama dalam kolom menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji Duncan taraf 5%.
* Kontrol A: tanpa PGPR + tanpa inokulasi CMMV, Kontrol B: tanpa PGPR + tanpa inokulasi virus, B.s: B. subtilis ,  P.f: P. fluorescens , dan Az: Azotobacter sp.
Berdasarkan  hasil  analisa  ragam terhadap  dapat  diketahui  bahwa  perlakuan PGPR  berpengaruh  dalam  perningkatan ukuran  diameter  bunga  krisan.  Hal  ini  dapat dilihat  pada  tabel  10  yang  menunjukkan bahwa  perlakuan  kontrol  menunjukkan  hasil
yang  berbeda  nyata  dengan  perlakuan  PGPR baik itu perlakuan tunggal maupun kombinasi. Selanjutnya  setelah  dilakukan  perbandingan antar  perlakuan,  diperoleh  hasil  yang  tidak berbeda  nyata  baik  pada  PGPR  isolat  tunggal maupun PGPR kombinasi.
Gambar 5. Perbandingan Bunga Tanaman Krisan. (a. Diberi perlakuan PGPR dan b. Perlakuan kontrol)

## Pembahasan Umum
Berdasarkan  hasil  penelitian  yang telah  dilakukan,  dapat  diketahui  bahwa tanaman  krisan  yang  diberi  perlakuan  PGPR, dapat  menunda  masa  inkubasi  CMMV  yang menyerang  tanaman  krisan.  Selain  menunda masa  inkubasi  CMMV,  PGPR  diduga  juga mampu  menekan  intensitas  serangan  CMMV pada tanaman krisan. Hal ini dikarenakan nilai intensitas pada tanaman yang diberi perlakuan  PGPR  cenderung  lebih  kecil  jika dibandingkan dengan tanaman yang dijadikan kontrol  yaitu  tanpa  perlakuan  PGPR.  Hasil yang diperoleh dari pengaruh PGPR terhadap masa inkubasi dan intensitas serangan CMMV
pada  tanaman  krisan  tersebut  memunculkan asumsi  bahwa  meskipun  kondisi  lingkungan mendukung  untuk  pertumbuhan  CMMV  dan tanaman  inang  termasuk  kedalam  kategori varietas  yang  rentan  terhadap  penyakit CMMV,  diduga  aplikasi  agens  hayati  yaitu PGPR  berpengaruh  dalam  menunda  masa inkubasi  virus  pada  tanaman  krisan  dan menekan intensitas serangan sehingga keparahan  penyakit  tidak terlalu  tinggi.  PGPR memiliki  sifat  sebagai  bioprotektan  yang mampu  melindungi  tanaman  dari  serangan patogen. Baker dan Snyder (1995) menambahkan  bahwa  mekanisme  ketahanan yang  diberikan  oleh  PGPR  yaitu  dari  sifat a a
antagonis  yang  dimiliki  dengan  adanya pengeluaran  senyawa  antibiotik  tertentu untuk menekan pertumbuhan patogen.
Terdapat  beberapa  bakteri  yang digunakan sebagai perlakuan untuk mengetahui  bagaimana  pengaruh  masing- masing  bakteri  tersebut  apabila  diaplikasikan pada  tanaman  krisan  dalam  menekan intensitas serangan penyakit CMMV. Beberapa  bakteri  yang  digunakan  sebagai perlakuan  terhadap  tanaman  krisan  yaitu B. Subtilis , P.  fluorescens ,  dan Azotobacter sp. Bakteri-bakteri  tersebut  setelah  diujijan ternyata memiliki peran masing-masing dalam melindungi tanaman dari serangan patogen.
Bakteri Bacillus sp.  tergolong  bakteri yang  memiliki  mekanisme  antagonis  berupa antibiosis (Abidin dkk . , 2015). Spesies Bacillus dapat  melindungi  tanaman  dari  patogen melalui  beberapa  mekanisme,  termasuk induksi  resistensi  sistemik.  Lusiyantri  (2001) menambahkan bahwa rhizobakteria termasuk Bacillus sp. dapat menginduksi ketahanan fisik dengan  cara  penebalan  dinding  sel  atau secara kimiawi dengan meningkatkan senyawa  fenol  dan  fitoaleksin  yang  dapat memberikan  ketahanan  tanaman  terhadap serangan  patogen.  Penebalan  dinding  sel pada tanaman menyebabkan patogen terhambat  dalam  proses  penetrasinya  ke dalam  jaringan  tanaman  sehingga  munculnya gejala  awal  serangan  patogen  menjadi  lebih lama.  Desmawati  (2006)  juga  melaporkan bahwa  keberadaan Bacillus sp.  dapat menginduksi  ketahanan  sistemik  tanaman terhadap  serangan  patogen  yang  selanjutnya akan  mempengaruhi  masa  inkubasi  atau munculnya  gejala  pada  tanaman. Bacillus sp. mengendalikan patogen secara tidak langsung yaitu melalui kemampuannya dalam menginduksi ketahanan tanaman.
Bakteri  perakaran  lain  yang  diujikan adalah P.  fluorescens .  Bakteri P.  fluorescens diketahui sebagai agens antagonis yang dapat melindungi  tanaman  dari  patogen  tanah melalui  kompetisi  nutrisi  dengan  cara memproduksi senyawa antimikroba. Hasanudin  dkk.  (2009)  melaporkan  bahwa bakteri P. flourescens mampu  mengendalikan penyakit  karat  pada  krisan  dengan  senyawa
antibiotik  yang  dihasilkan. P.  fluorescens mempunyai  tipe  interaksi  dengan  patogen berupa  pesaing  hara,  penghasil  antibiotika, dan  siderofor.  Siderofor  yang  dihasilkan  oleh bakteri Pseudomonas yang  berfluorescensi dihubungkan  dengan  kemampuan  bakteri tersebut mampu hidup pada kondisi lingkungan  Fe  yang  terbatas.  Siderofor ( siderophore )  adalah  senyawa  pengompleks Fe 3+ atau  penghelat  besi  spesifik  yang dihasilkan oleh beberapa jenis mikroba untuk menyembunyikan  unsur  besi  di  lingkungan rhizosfer ,  sehingga  tidak  tersedia  bagi perkembangan mikroba patogen. Pada kondisi  ini  bakteri  akan  memproduksi siderofor diantaranya pioverdin, pioselin, dan asam  salisilat.  Produksi  asam  salisilat  oleh bakteri Pseudomonas yang  berfluorescensi pada rhizofer dapat  menimbulkan  induksi ketahanan  secara  sistemik.  Asam  salisilat merupakan  salah  satu  sinyal  transduksi  yang berakhir  dengan systemic  acquired  resistance (SAR).  Asam  salisilat  merupakan  senyawa penting bagi tanaman berperan dalam proses pertahanan  terhadap  patogen.  Menurut Murphy  dkk.  (2000)  dan  Viot  dkk . (2009), asam  salisilat  diketahui  merupakan  sinyal endogenous pada ketahanan sistemik.
Bakteri  lain  yang  diujikan  adalah Azotobacter sp.  Sama  halnya  dengan  peran dari  bakteri P.  fluorescens,  Azotobacter sp. juga  memiliki  peran  dalam  bioprotektan. Rendahnya intensitas serangan CMMV disebabkan  karena  adanya  siderofor  yang menyebkan  peningkatan  ketahanan  tanaman terhadap  OPT.  Siderofor  yang  dihasilkan memiliki  afinitas  yang  sangat  tinggi  terhadap besi  sehingga  akan  mengurangi  ketersediaan besi  di  lingkungan  dan  berdampak  pada terhambatnya pertumbuhan patogen tanaman (Duffy dan Defago, 1999).
Bakteri diujikan secara tunggal maupun  secara  kombinasi.  Berdasarkan  hasil penelitian  diketahui  bahwa  baik  bakteri  yang diaplikasikan secara tunggal maupun kombinasi ternyata mampu menekan intensitas  serangan  CMMV  pada  tanaman krisan.  Hasil  penelitian  telah  menunjukkan bahwa  tanaman  krisan  yang  diberi  perlakuan PGPR  tunggal  yaitu Azotobacter sp.  saja
Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665
ternyata mampu memperlambat masa inkubasi  dan  menekan  intensitas  serangan CMMV.  Hal  ini  dibuktikan  dari  perbandingan hasil  antara  perlakuan  kontrol  dengan perlakuan  PGPR  yang  tampak  berbeda  nyata. Namun,  tidak  menutup  kemungkinan  jika menginginkan hasil yang lebih baik lagi dalam pengendalian  CMMV  dapat  mengaplikasikan Azotobacter sp.  secara  kombinasi  dengan bakteri  lain  yaitu P.  fluorescens atau B. subtilis atau dapat pula dengan tiga kombinasi bakteri  yaitu B.  subtilis + P.  fluorescens + Azotobacter sp.
Hasil  yang  diberikan  dari  perlakuan PGPR  yang  diaplikasikan  secara  kombinasi tampak  lebih  baik  dibandingkan  dengan perlakuan  tunggal  dikarenakan  konsorsium mikroba  dapat  menghasilkan  beberapa  jenis antibiotik yang berbeda-beda. Jenis antibiotik lebih  dari  satu  jenis  diduga  mampu  memiliki kemampuan  lebih  signifikan  dalam  menekan pertumbuhan  penyakit  CMMV  bandingkan dengan  jenis  perlakuan  lainnya.  Hal  ini didukung  oleh  pernyataan  Raupach  dan Klopper  (1998)  yang  menyatakan  bahwa konsorsium  mikroba  memiliki  penekanan terhadap  penyakit  lebih  baik  dan  lebih konsisten dalam penekanan penyakit tanaman  dibandingkan  dengan  penggunaan agens  hayati  secara  tunggal.  Konsorsium mikroba  juga  dapat  memperluas  spektrum sebagai  agens  pengendali  hayati,  karena keberadaannya  yang  beragam  memiliki kedekatan dengan kondisi alam yang memiliki konsep keberagaman.
Jenis penginduksian yang  ditunjukkan oleh PGPR adalah Induced Systemic Resistance (ISR).  Mekanisme  ini  terjadi  sebagai  akibat dari  infeksi  patogen  sehingga  tanaman memberikan  respon  berupa  reaksi-reaksi pertahanan  seperti  HR  yang  menyebabkan terjadinya  lesion  nekrotik  pada  daerah terserang.  Beberapa  faktor  yang  dapat mempengaruhi  ISR  adalah  senyawa  kimia (siderofor,  antibiotik,  dan  ion  Fe)  yang dihasilkan  rizobakteria  dan  komponen  sel bakteri  (dinding  sel  mikroba,  flagella,  filli, membran lipopolisakarida (LPS)) dapat sebagai elicitor dalam menginduksi ketahanan secara  sistemik  (Erbs  and  Newman,  2003).
Selain  pengujian  PGPR  terhadap  intensitas serangan  CMMV  pada  tanaman  krisan,  pada penelitian  ini  juga  dilakukan  pengujian  PGPR terhadap  pertumbuhan  dan  produksi  pada tanaman krisan. Hasil pengamatan menunjukkan  pengaruh  yang  berbeda  nyata antara  perlakuan  kontrol  dengan  tanaman yang diberi perlakuan PGPR baik itu terhadap pertumbuhan  maupun  produksi  tanaman. Berdasarkan hasil tersebut dapat diasumsikan bahwa  PGPR  memiliki  pengaruh  yang  nyata terhadap pertumbuhan dan produksi tanaman  krisan.  Konsentrasi  SA  dalam tanaman  mampu  menentukan  aktivasi  gen ketahanan dalam tanaman.
Indikator  pertumbuhan  yang  diamati pada penelitian ini adalah tinggi tanaman dan jumlah  daun.  Berdasarkan  hasil  pengamatan mengenai  pengaruh  PGPR  terhadap  tinggi tanaman  dan  jumlah  daun  diperoleh  hasil bahwa  tanaman  yang  diberi  perlakuan  PGPR baik  secara  tunggal  maupun  kombinasi memberikan hasil yang lebih tinggi dibandingkan perlakuan kontrol. Sama halnya pada pengamatan terhadap intensitas serangan penyakit,
PGPR kombinasi memberikan hasil yang lebih baik dibandingkan  PGPR  tunggal.  PGPR  kombinasi yang  terdiri  dari  bakteri B.  Subtilis , P. fluorescens ,  dan Azotobacter sp.  mampu memacu  partumbuhan  tinggi  tanaman  dan jumlah daun.
PGPR yang digunakan dalam penelitian  tersebut  ternyata  memiliki  peran penting dalam pertumbuhan tanaman. Berdasarkan  penyataan  Wardanah  (2007) yang menyatakan bahwa hormon pertumbuhan  yang  dihasilkan  oleh  PGPR adalah  giberellin,  auksin,  dan  sitokinin sehingga tanaman yang diberi PGPR umumnya  memiliki  pertumbuhan  yang  lebih baik.
Tjondronegoro, dkk (1989)
menambahkan bahwa PGPR mampu
meningkatkan  pertumbuhan  tanaman  secara langsung melalui
hormon-hormon pertumbuhan yang dihasilkan seperti Giberelin (Gac) dan indole 3-acetic acid (IAA). IAA merupakan hormon pertumbuhan kelompok  auksin  yang  berguna  untuk merangsang  pertumbuhan  tanaman.  Auksin
berguna  untuk  meningkatkan  pertumbuhan sel batang, menghambat proses pengguguran daun,  merangsang  pembentukan  buah, merangsang  pertumbuhan  kambium,  dan menghambat  pertumbuhan  tunas  ketiak. Hormon pertumbuhan ini mampu merangsang pertumbuhan akar lateral.
Ketiga  bakteri  yang  digunakan  dalam penelitian  memiliki  peran  masing-masing dalam  pertumbuhan  tanaman.  Bakteri B. subtilis dan P. fluorescens memiliki peran yang sama dalam memacu pertumbuhan tanaman. Kedua  bakteri  ini  mampu  menghasilkan hormon  auksin,  giberelin,  dan  sitokinin  yang dapat  memacu  pertumbuhan.  Selanjutnya Bustamam (2006) menambahkan pula bahwa Bacillus sp.  dapat  membantu  dekomposisi bahan  organik  dalam  tanah  sehingga dihasilkan nutrisi untuk meningkatkan pertumbuhan  tanaman. Bacillus sp.  juga memiliki  kemampuan  sebagai  pelarut  fosfat sehingga  menyebabkan  unsur  fosfat  lebih tersedia untuk diserap oleh tanaman sehingga pertumbuhan  tanaman  menjadi  optimal. Mikroba pelarut fosfat bersifat menguntungkan karena mengeluarkan berbagai  macam  asam  organik  seperti  asam format,  asetat,  propional,  laktat,  glikolat, fumarat, dan suksinat. Asam-asam organik ini dapat  membentuk  khelat  organik  dengan kation  Al,  Fe,  atau  Ca  yang  mengikat  P sehingga  ion  H 2 PO 4 2- ,  menjadi  bebas  dari ikatannya  dan  tersedia  bagi  tanaman  untuk diserap.
Selain itu, bakteri lain yang digunakan adalah Azotobacter sp.  Bakteri  ini  dilaporkan juga  mampu  menghasilkan  hormon  auksin (Kholoda  dan  Zulaika,  2015). Azotobacter sp. berfungsi untuk melindungi atau menyelimuti hormon tumbuhan dan juga berfungsi sebagai mikroba  penambat  N  dari  udara  bebas. Pemanfaatan  bakteri  fiksasi  N 2 mampu meningkatkan efisiensi pemupukan N. Azotobacter sp.  merupakan  bakteri  fiksasi  N yang  mampu  menghasilkan  substansi  zat pemacu tumbuh giberelin, sitokinin, dan asam indol  asetat,  sehingga  dapat  memacu pertumbuhan  akar.  Selain  itu  juga  dapat mempercepat perkecambahan bila diaplikasikan  pada  benih  dan  merangsang
regenerasi bulu-bulu akar sehingga penyerapan  unsur  hara  melalui  akar  menjadi optimal (Alexander, 1977).
Hasil  penelitian  mengenai  pengaruh PGPR  terhadap  produksi  tanaman  krisan diperoleh  bahwa  tanaman  krisan  yang  diberi perlakuan PGPR memiliki hasil yang lebih baik pada  waktu  muncul  primordia  bunga,  jumlah bunga  total,  dan  diameter  bunga.  Hal  ini dikarenakan  PGPR  mampu  menghasilkan hormon  giberelin  yang  berfungsi  dalam  hal merangsang  pembungaan.  Giberelin  dapat berpengaruh  terhadap  pemanjangan  batang, pembungaan,  dan  pembuahan.  Kusumo (1984)  menambahkan  jika  giberelin  mampu mempengaruhi  pembesaran  sel  (peningkatan ukuran)  dan  mempengaruhi  pembelahan  sel (peningkatan  jumlah).  Pertambahan  ukuran sel menghasilkan pertambahan ukuran jaringan,  organ  dan  akhirnya  meningkatkan ukuran tubuh tanaman secara keseluruhan.
Penelitian  terdahulu  menyebutkan bahwa pada tanaman hari panjang yang tidak dapat  berbunga  pada  hari  pendek,  dapat dirangsang pembungaannya dengan menggunakan  giberelin  (Kusumo,  1984). Penelitian  tersebut  dapat  diterapkan  pada tanaman krisan yang diujikan karena tanaman krisan  merupakan  salah  satu  jenis  tanaman hari  panjang.  Tanaman yang  diberi  perlakuan P.  fluorescens secara  tunggal  maupun kombinasi  dengan  bakteri  lain  terbukti  lebih baik  dalam  produksinya.  Hal  ini  dikarenakan bakteri tersebut mampu memproduksi fitohormon,  yaitu  auksin,  sitokinin,  giberelin, etilen  dan  asam  absisat.  Beberapa  karakter penting  dari  rizobakteri Pseudomonas dalam meningkatkan  pertumbuhan  tanaman  adalah menghasilkan  hormon  tumbuh  seperti  IAA, giberelin,  memfiksasi,  dan  melarutkan  P. Hormon  auksin  akan  bekerja  secara  sinergis dengan  dua  hormon  lain,  yaitu  sitokinin  dan giberelin sehingga ketika bakteri tunggal yang mampu menghasilkan giberelin akan memberikan  hasil  produksi  yang  lebih  baik ketika  dikombinasikan  dengan  bakteri  lain yang  mampu  menghasilkan  sitokinin  dan auksin.
Berdasarkan hasil penelitian diketahui bahwa  pengaplikasian  PGPR  isolat  tunggal
telah  mampu  meningkatkan  pertumbuhan tanaman  krisan  yaitu  tinggi  tanaman  dan jumlah  daun.  Misalnya  saja  pada  perlakuan PGPR  isolat  tunggal P.  fluorescens yang secara umum mampu meningkatkan pertumbuhan  dan  produksi  tanaman  krisan. Hasil penelitian menunjukkan setelah dibandingkan  dengan  perlakuan  kontrol diketahui  bahwa  dengan  pemberian P. fluorescens secara  tunggal  memberikan pengaruh  yang  nyata  terhadap  pertumbuhan dan  produksi  dari  tanaman  krisan.  Namun, apabila  menginginkan  hasil  yang  lebih  baik lagi  dapat  pula  dikombinasikan  dengan bakteri  lain  misalnya P.  fluorescens yang dikombinasikan  dengan B.  subtilis atau Azotobacter sp.atau juga dapat
dikombinasikan  menjadi  tiga  kombinasi  yaitu P. fluorescens + B. subtilis + Azotobacter sp.

## KESIMPULAN
Perlakuan  PGPR  tunggal  maupun kombinasi  mampu  menunda  masa  inkubasi, menekan intensitas serangan CMMV, meningkatkan  pertumbuhan,  dan  produksi pada tanaman  krisan lebih baik dibandingkan perlakuan tanpa PGPR.

## DAFTAR PUSTAKA
Abidin,  Z.,  L.  Q.  Aini.,  dan  A.  L.  Abadi.  2015.
Pengaruh  Bakteri Bacillus sp.  dan Pseudomonas sp. Terhadap Pertumbuhan Jamur Patogen Sclerotium rolfsii Sacc. Penyebab
Penyakit  Rebah  Semai  Pada  Tanaman Kedelai. J. HPT. 3(1):1-10.
Agrios,  G.  N.  2005.  Plant  Pathology.  Fifth Edition. Academic Press. New York. 922 p.
Alexander,  M.  1977.  Introduction  to  Soil Mycrobiology.  2 nd Ed.  John  Wiley  and Sons. New York. 467 p.
Baker, K. F. dan W. C Snyder. 1965. Ecology of Soil-Borne  Plant  Pathogens:  Prelude  to
Biological Control. University of California Press. Berkeley.
Boss,  L.  1990.  Pengantar  virologi  tumbuhan, Gadjah  Mada  Press,  Yogyakarta,  226 hlm.
Bustamam,  H.  2006.  Seleksi  Mikroba  Rizosfer Antagonis  terhadap  Bakteri Ralstonia solanacearum Penyebab  Penyakit  Layu Bakteri  pada  Tanaman  Jahe  di  Lahan Tertindas.  Jurnal  Ilmu-Ilmu  Pertanian Indonesia 8 (1):12-18.
Choliq,  F.A.,  Martosudiro, M.,  Apriliana,  Q.A., Istiqomah, I., 2019. Pengaruh Pemberian Urin  Kelinci  Terhadap  Serangan  Turnip Mosaic  Virus  (TuMV)  Pada  Tanaman Kailan (Brassica oleraceae var.
alboglabra)  yang  Dibudidayakan  Secara Organik.  AGRORADIX  J.  Ilmu  Pertan.  2,
18–31.
Duffy, B.K., dan G. Défago. 1999.
Environmental factors modulating antibiotic and siderophore biosynthesis by Pseudomonas fluorescens biocontrol strains.  Applied  and  Environmental Microbiology 65: 2429-2438.
Ekanantari.
2014. Outlook Komoditi Krisan.Jakarta.  Pusat  Data  dan  Sistem Informasi Pertanian. Kementrian Pertanian. 6 hlm.
Erbs, G. dan M. A Newman. 2003, The role of lipopolysacharides in induction of plant defence  responses.  Mol.  Plant  Pathol. 4:421-425.
Habazar, T. dan Yaherwandi. 2006.
Pengendalian Hayati Hama dan
Penyakit Tumbuhan. Andalas University
Press. Padang. 390 hlm.
Hasanudin,  W.N.,  E.  Silvia,  I.  Djatnika,  dan  B. Marwoto.  2010.  Formulasi  Biopestisida
Berbahan Aktif Bacillus subtilis, Pseudomonas
fluorescens , dan
Corynebacterium Non  Patogenik  Untuk Mengendalikan  Penyakit  Karat  Pada Krisan. J. Hort. 20(3):247-261.
Kennedy,  J.  S.,  M.  F.  Day,  dan  V.  F.  Eastop. 1962.  A  Conspectus  of  Aphids  as
Vectors  of  Plant  Viruses.  Comm.  Inst.
Ent., London. 428 p.
Agroradix Vol. 3 No.2 ISSN : 2621-0665
Kholida,  F.  T.,  dan  E.  Zulaika.  2015.  Potensi Azotobacter sebagai  Penghasil  Hormon IAA  ( Indole-3-Acetic  Acid ).  Jurnal  Sains Dan Seni ITS. 4(1):2337-3520.
Kusumo,  S.  1984.  Zat  Pengatur  Tumbuh Tanaman. Jakarta. CV. Yasaguna.
Lusiyantri, N. 2011. Uji pengimbasan ketahanan  dengan Bacillus sp.  dan kultur  filtratnya  terhadap  serangan jamur Ganoderma  boninense dan pertumbuhan  bibit  kelapa  sawit  di pembibitan  awal.  Skripsi  Fakultas Pertanian Universitas Riau. Pekanbaru.
Murphy, J. F., G. W. Zehnder, D. J. Schuster, E.
J.  Sikora,  J.  E.  Polston,  dan  J.  W. Kloepper.
2000. Plant growth-
promoting rhizobacterial mediated protection  in  tomato  against  tomato mottle virus. Plant Dis. 84:779-784.
Nurmas,  A.,  R.  Nofianti,  Abdul,  dan  K.  Andi.
2014.  Eksplorasi  dan  Karakterisasi
Azotobacter indigenous
untuk
Pengembangan  Pupuk  Hayati  Tanaman Padi  Gogo  Lokal  di  Lahan  Marjinal. Jurnal Agroteknos. 4(2).127-133.
Panagan, A. T. 2011. Isolasi Mikroba Penghasil Antibiotika  dari  Tanah  Kampus  Unsri Indralaya  Menggunakan  Media  Ekstrak Tanah. Jurnal Penelitian Sains. 4(3):143- 148.
Rahni,  N.  M.  2012.  Efek  Fitohormon  PGPR Terhadap Pertumbuhan Tanaman
Jagung  ( Zea  Mays ).  Jurnal  Agribisnis dan Pengembangan Wilayah. 3(2):4-8.
Raupach,  G.  S.  dan  J.  W.  Kloepper.  1998.
Mixtures  of  Plant  Growth  Promoting Rhizobacteria Enhance Biological
Control of Multiple Cucumber
Pathogens.  Phytopathology.  88:1158- 1164.
Salamiah dan R. Wahdah. 2015. Pemanfaatan Plant  Growth  Promoting  Rhizobacteria (PGPR)  dalam  pengendalian  penyakit tungro  pada  padi  lokal  Kalimantan Selatan.  Pros  Sem  Nas  Masy  Biodiv Indon1 (6): 1448- 1456.
Sastrahidayat,  I.  R.  2011.  Penyakit  Tanaman Sayur-sayuran. UB Press. Malang.
Suryanto,  A.,  Kuswanto.,  S.  M.  Sitompul,  dan A.  Kasno.  2015.  Heritability  estimation in  resistant  soybean  towards cowpea mild mottle virus (CPMMV). International  Journal  of  Biosciences. ISSN: 2220-6655. 6(6):29-36.
Tjondronegoro,  P.  D.,  M.  Natasaputra,  A.  W. Gumawan,  M.  Djaelani,  dan  A. Suwanto.  1989.  Botani  Umum.  PAU Ilmu  Hayati  Institut  Pertanian  Bogor, Bogor. 581 hlm.
Untung,K. 1993. Pengantar Pengelolaan Hama Terpadu,  Gajah  Mada  University  Press. Yoyakarta.273 hlm.
Vlot,  A.  C.,  D.  A.  Dempsey,  dan  D.  F.  Klessig. 2009.  Salicylic  acid,  a  multifacated hormone  to  combat  disease.  Jurnal Phytopathology. 47:177 - 206.
Wardanah,  T.  2007.  Pemanfaatan  bakteri perakaran pemacu pertumbuhan tanaman ( Plant Growth-Promoting Rhizobacteria )  untuk  mengendalikan penyakit  mosaik  tembakau  ( Tobacco Mosaic  Virus )  pada  tanaman  cabai. Skripsi.  Fakultas  Pertanian  Institut Pertanian Bogor.