Abstrak —Penelitian bertujuan untuk membandingkan prevalensi  dan  intensitas  endoparasit  pada  usus  ikan  Gabus (Channa  striata)  budidaya  air  tawar  dan  tangkapan  alam.  Usus didapatkan  dari  20  ekor  Ikan  Gabus  budidaya  air  tawar  dan  20 ekor  dari  alam  (panjang  total  25±3  cm)  yang  diambil  dan diawetkan  dengan  buffer  formalin  0,5%,  kemudian  diamati menggunakan  mikroskop  stereo  dan  compound  yang  terhubung dengan  kamera  fotomikroskop  OptiLab.  Identifikasi  endoparasit mengacu  pada  studi  referensi.  Prevalensi  (prev.),  dan  intensitas (I)  endoparasit  dihitung  berdasarkan  jumlah  endoparasit  yang ditemukan di dalam usus ikan. Hasil menunjukkan bahwa jumlah endoparasit, prevalensi, dan intensitas pada ikan Gabus dari alam memiliki  nilai  yang  lebih  tinggi,  yaitu  Pallisentis  sp. (prev=65%; I=  34.3  ind.  per  ikan  dan  Camallanus  sp.  (prev=35%;  I=6.1  ind. per  ikan)  dibandingkan  dengan  ikan  Gabus  budidaya  air  tawar yang  terinfeksi  Pallisentis  sp.  saja  (prev=30%;  I=10.  ind.  per ikan).
Kata  Kunci —Channa  striata,  ikan  Gabus  budidaya,  ikan Gabus  tangkapan  alam,  intensitas  endoparasit,  prevalensi endoparasit..

## I. PENDAHULUAN
KAN Gabus (C. striata) merupakan jenis ikan air tawar yang terdapat  di  Indonesia  dan  termasuk  sebagai  sumber  daya pesisir  di  Jawa  Timur  yang  mendominasi  [1].  Ikan  Gabus  (C. striata)  memiliki  beberapa  manfaat,  seperti  dalam  bidang kesehatan  yang  diketahui  mengandung  protein  dan  albumin yang  sangat  penting  bagi  kesehatan  [2].  Potensi  tersebut menyebabkan  permintaan  dan  nilai  ekonomis  ikan  Gabus  (C. striata)  dipasar  semakin  tinggi  serta  permintaan  pun  semakin banyak [2]. Salah satu upaya untuk memenuhi kebutuhan ikan di  masyarakat  dapat  dilakukan  melalui  budidaya  dan  melalui tangkapan  alam.    Intensifnya  penangkapan  ikan  Gabus  (C. striata) berdampak terhadap menurunnya populasi ikan Gabus (C. striata) di alam. Perlunya penyediaan stok ikan dalam skala budidaya  perlu  dikembangkan  [3].  Tujuan  utama  budidaya yaitu untuk memperoleh hasil produksi yang tinggi [4].
Hasil  produksi  budidaya  yang  tinggi  dan  berkelanjutan memerlukan  usaha-usaha,  salah  satunya  pengendalian  hama dan  penyakit  [4].  Penelitian  pendahuluan  mengenai  parasit, khususnya  endoparasit  pada  ikan  Gabus  (C.  striata)  belum banyak  dilakukan.  Berdasarkan  penelitian  [5]  megenai endoparasit  pada  ikan  Gabus  (C.  striata),  ditemukan  larva parasit  pada  usus  ikan  Gabus  (C.  striata)  dengan  prevalensi sebesar 9% dan berdasarkan [6]  ditemukan parasit Nematoda
dan  Acanthocephala  pada  usus  ikan  genus  Channa.  Menurut [7]  keberadaan  parasit  pada  ikan  akan  berdampak  pada pengurangan  konsumsi,  penurunan  kualitas  pada  usaha  usaha budidaya,  penurunan  berat  badan  ikan  konsumsi  dan penurunan  nilai  ekonomis.  Pada  budidaya,  parasit  juga  dapat meningkatkan  kematian  larva  secara  massal  dan  dapat menyebabkan kerugian [8].
Berdasarkan  manfaat  ikan  Gabus  (C.  striata)  yang  penting dan sedikitnya penelitian mengenai endoparasit ikan Gabus (C. striata)  tersebut  maka  perlu  dilakukan  penelitian  mengenai infeksi  parasit  pada  ikan  Gabus  (C.  striata),  baik  budidaya maupun  tangkapan  alam.  Pengetahuan  tentang  prevalensi  dan intensitas endoparasit pada ikan merupakan hal yang mendasar dan  penting,  karena  jenis  penyakit  yang  seringkali  berpotensi menjadi  kendala  pada  budidaya  dan  tangkapan  alam. Berdasarkan  hal  tersebut  maka  penelitian  ini  untuk mendapatkan  nilai  prevalensi  dan  intensitas  endoparasit  pada usus  ikan  Gabus  (C.  striata)  budidaya  serta  perbandingannya dengan tangkapan alam.

## II. METODOLOGI

## A. Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian  dilaksanakan  pada  bulan  April-Juni  2016. Pengambilan sampel dilakukan di tempat budidaya ikan Gabus (C. striata) Sidoarjo dan Sungai Porong Sidoarjo serta analisa di  Laboratorium  Zoologi  dan  Rekayasa  Hewan  Jurusan Biologi,  Fakultas  Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam, Institut Teknologi Sepuluh Nopember, Surabaya.

## B. Alat dan Bahan
Alat-alat  yang  digunakan  adalah  papan  morfometri, seperangkat alat bedah (dissecting kit), pipet tetes, mikroskop stereo,  mikroskop  compound,  cawan  Petri,  neraca  analitik, botol  flakon,  sedgwick  rafter  yang  dimodifikasi  yaitu  dibuat dengan gelas objek dan fiber, fotomikroskop OptiLab, kamera, kertas label, alat tulis, dan referensi identifikasi parasit.
Bahan-bahan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah

## Prevalensi dan Intensitas Endoparasit pada Ikan Gabus ( Channa striata ) dari Budidaya dan Alam
Sabila Ghassani, Dewi Hidayati dan Nurlita Abdulgani
Jurusan Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS)
Jl. Arief Rahman Hakim, Surabaya 60111 Indonesia
e-mail : dewi_hidayati@ymail.com
I
Tabel 1.
Hasil Prevalensi endoparasit pada ikan Gabus ( Channa striata ) dari budidaya dan alam
Lokasi Endoparasit Jumlah sampel diperiksa Jumlah sampel terinfeksi Jumlah sampel tidak terinfeksi Prev (%) Budi- daya Pallisentis sp. 20 6 14 30% Alam Pallisentis sp. 20 13 7 65% Camallanus sp 20 7 13 35%
Keterangan: Prev = Prevalensi
Tabel 2.
Hasil intensitas endoparasit pada ikan Gabus ( Channa striata ) dari budidaya dan alam Lokasi Endoparasit Jumlah sampel diperiksa Jumlah sampel terinfeksi Jumlah parasit I Budi- daya Pallisentis sp. 20 6 63 10.5 Alam Pallisentis sp. 20 13 446 34.3 Camallanus sp 20 7 43 6. 1 Keterangan: I = Intensitas
20  sampel  ikan  Gabus  (C.  striata)  budidaya,  20  sampel  ikan Gabus  (C.  striata)  tangkapan  alam,  aquades,  larutan  fisiologis (NaCl 0,9%), dan buffer formalin 0,5%.

## C. Preparasi Sampel
Ikan  Gabus  (C.  striata)  diambil  sebanyak  20  ekor  dari tempat  budidaya  dan  20  ekor  tangkapan  alam  dengan  kisaran ukuran  panjang  total  25  ±  3  cm.  Ikan  diukur  berat  tubuhnya dengan neraca analitik. Ikan dibedah dengan membuat sayatan pada bagian ventral ikan. Sayatan dimulai dari kloaka ke arah anterior sampai operkulum untuk diambil saluran pencernaannya.  Saluran  pencernaan  ikan  yang  telah  diambil, selanjutnya  diletakkan  ke  dalam  cawan  Petri.  Bagian  usus disayat  dan  dikeluarkan  isinya  dengan  cara  dikerok menggunakan  spatula  dan  diberi  larutan  fisiologis  (NaCl 0,9%)  [9].  Usus  ikan  yang  telah  dikerok  dan  dibersihkan, dimasukkan  ke  dalam  botol  flakon  dan  ditambahkan  buffer formalin 0,5%.

## D. Pengamatan dan Identifikasi
Sampel yang telah diawetan diamati dengan cara diteteskan sebanyak  1  ml  ke  dalam  sedgwick  rafter.  Pengamatan menggunakan mikrokop stereo dengan perbesaran 40 dan 100 kali  serta  didokumentasikan  menggunakan  fotomikroskop OptiLab  dan  menggunakan  mikroskop  compound  ketika sampel  yang  ditemukan  berukuran  makroskopis.  Endoparasit yang ditemukan diidentifikasi menggunakan referensi identifikasi parasit.

## E. Analisa Hasil Prevalensi dan Intensitas Endoparasit
Identifikasi  endoparasit  yang  ditemukan,  menggunakan referansi  identifikasi  parasit.  Data  yang  diperoleh  yakni  jenis dan jumlah parasit kemudian dianalisis secara deskriptif untuk dihitung prevalensi parasit dengan rumus sebagai berikut [10]:
Gambar 1. Pengamatan karakteristik jenis endoparasit 1: Camallanus sp.  a  =  morfologi  bentuk  seluruh  tubuh,  b  =  bagian  anterior  tubuh, terdiri dari : buccal-cavity (bc), esophagus (es), intestine (in) Berikut merupakan klasifikasi dari Camallanus sp. [15]: Kingdom  : Animalia Filum     : Nematoda Kelas    : Chromadorea Ordo     : Spirurida Famili    : Camallanidae Genus     : Camallanus Spesies  : Camallanus sp
Gambar  2.  Hasil  pengamatan Pallisentis sp.  dibandingkan  dengan referensi. a = bagian tubuh anterior, terdiri dari: proboscis (pr), leher (le), trunk / badan (t); b;c = egg stadia.
Berikut merupakan klasifikasi dari Pallisentis sp. [16]: Kingdom  : Animalia Filum     : Acanthocephala Kelas    : Eoacanthocephala Ordo     : Gyracanthocepala Famili    : Quadrigiridae Subfamili  : Pallisentinae Genus     : Pallisentis Spesies  : Pallisentis sp.
Prevalensi =
Jumlah ikan sampel yang terinfeksi × 100% Jumlah ikan sampel yang diperiksa
Data  yang  diperoleh  juga  dihitung  intensitas  infeksi  dengan rumus sebagai berikut [21]:
Intensitas =
Jumlah total endoparasit Sp yang menginfeksi Jumlah sampel ikan yang terinfeksi endoparasit
Prevalensi = Jumlah ikan sampel yang terinfeksi × 100%

## III. HASIL DAN DISKUSI
A. Karakterisasi  Jenis  Endoparasit  pada  Ikan  Gabus  (C. striata)
Karakteristik  morfologi  parasit  pada  usus  ikan  Gabus  (C. striata) berdasarkan referensi menurut [11], [12], [13], [5] dan
a b a b
c
[14], ditemukan 2 jenis endoparasit, yaitu: (1) Camallanus sp. pada  stadia  larva  dan  (2)  Pallisentis  sp.  pada  stadia  larva  dan telur.  Karakteristik  kedua  spesies  tersebut  dijelaskan  sebagai berikut:
1) Hasil Pengamatan Jenis Endoparasit Camallanus sp.
Gambar  mikroskopis  dan  pengamatan  karakteristik  jenis endoparasit  1  ditunjukkan  dalam  Gambar  1.  Endoparasit  1 ditemukan dalam bentuk larva yang menunjukkan karakteristik tubuh  ramping  dan  transparan  (Gambar  1a).  Karakteristik tersebut sesuai dengan karakteristik Filum Nematoda [11].
Berdasarkan  pengamatan  morfologi,  bagian  ujung  anterior (Gambar  1b  dan  1c)  hingga  posterior  (Gambar  1d  dan  1e). Larva  endoparasit  1  menunjukkan  karakteristik  sesuai  dengan spesies Camallanus sp. menurut [12] dan [11]. Camallanus sp. memiliki  rongga  mulut  (buccal-cavity)  (Gambar  1b)  terlihat jelas  di  bagian  ujung  anterior  (Gambar  1b).  Rongga  mulut berbentuk  membulat,  bagian  lubang  tengahnya  sempit  dan bagian tepinya terdapat struktur seperti celah (slit-like). Bagian posterior  meruncing  terdapat  anus  di  bagian  ujungnya (Gambar  1d  dan  1e).  Camallanus  sp.  yang  teramati  dalam penelitian ini memiliki ukuran panjang antara 1494 µm hingga 3132.6  µm.  Ukuran  tersebut  sesuai  dengan  pengukuran panjang  larva  Camallanus  sp  menurut  [11]  yaitu  786  µm hingga 3937 µm dengan diameter 43 µm hingga 168 µm.
2) Hasil Pengamatan Jenis Endoparasit Pallisentis sp.
Gambar  mikroskopis  dan  pengamatan  karakteristik  jenis endoparasit  kedua  ditunjukkan  dalam  Gambar  2.  Endoparasit kedua  ditemukan  dalam  stadia  larva  dan  telur,  yang menunjukkan  karakteristik  larva memiliki proboscis di bagian ujung  anterior  tubuhnya  (Gambar  2a  dan  2b).  Karakteristik tersebut  menunjukkan  bahwa  endoparasit  kedua  termasuk Filum Acanthocephala [13].
Berdasarkan  pengamatan  morfologi bagian ujung anterior (Gambar 2a dan 2b) hingga bagian ujung posterior (Gambar 2c dan  2d)  larva  endoparasit  kedua  menunjukkan  karakteristik sesuai  dengan  spesies  Pallisentis  sp.  Menurut  [5],  spesies Pallisentis  memiliki  tubuh  berbentuk  silindris memanjang dan sedikit pipih. Pallisentis sp. teramati berukuran panjang 1065,7 µm hingga 1700 µm hal ini sesuai dengan [16] bahwa panjang tubuh  Pallisentis  sp.  betina  dewasa    mencapai  panjang  1700 µm.  [14]    menemukan  Pallisentis  sp.  dengan  ukuran   panjang tubuh 2500 µm hingga 5700 µm.
Karakteristik  telur  Pallisentis  sp.  (Gambar  2e-h)  yang ditemukan memiliki membran luar yang tipis dan menggembung.  Embrio  terlihat  jelas  di  dalam  membran  yang transparan. Berdasarkan pengukuran stadia tersebut menunjukkan  rata-rata  ukuran  panjang  80  µm  hingga  95  µm dan  lebar  45  hingga  50  µm.  Karakter  dan  ukuran  tersebut, sesuai dengan referensi menurut  [5] yang menyatakan panjang 92 µm dan diameter telur 48 µm.

## B. Perbandingan  Prevalensi  Endoparasit  Ikan  Gabus (Channa striata) dari Budidaya dan Alam
Berdasarkan  perhitungan  prevalensi  endoparasit  (Tabel  1) diketahui bahwa Pallisentis sp. menginfeksi kedua ikan Gabus (C.  striata)  baik  dari  budidaya  maupun  tangkapan  alam,
sedangkan  Camallanus  sp.  hanya  menginfeksi  ikan  Gabus  (C. striata)  tangkapan  alam  saja.  Jika  dibandingkan,  nilai prevalensi  Pallisentis  sp.  yang  menginfeksi  usus  ikan  Gabus (C. striata) budidaya (30%), lebih rendah dibandingkan dengan nilai  prevalensi  Pallisentis  sp.  pada  usus  ikan  Gabus  (C. striata)  tangkapan  alam  (65%).  Camallanus  sp.  yang  hanya menginfeksi  usus  ikan  Gabus  (C.  striata) tangkapan alam saja memiliki  nilai  prevalensi  sebesar  35%.    Hal  ini  menunjukkan bahwa populasi ikan Gabus (C. striata) dari alam lebih banyak terinfeksi endoparasit dibandingkan dari budidaya.
Tingginya prevalensi endoparasit di alam menurut [17] dan [18], dapat disebabkan oleh berbagai faktor, seperti polusi atau ketidakseimbangan  antara  inang  dan  patogen.  Kehadiran parasit  juga  dipengaruhi  oleh  kesintasan  telur  parasit  [19]. Kehadiran  telur  dalam  ikan  Gabus  (C.  striata)  budidaya  lebih sedikit (63 telur) dibandingkan dengan telur dalam ikan Gabus (C. striata) tangkapan alam (419 telur). Adanya pergantian air yang rutin pada budidaya intensif ikan Gabus (C. striata) dapat menurunkan  kehadiran  telur  dari  parasit  sehingga  persebaran rendah.  Berdasarkan  observasi  yang  dilakukan  pada  tempat budidaya  ikan  Gabus  (C.  striata)  di  Sidoarjo,  pergantian  air dilakukan  minimal  2  kali  dalam  24  jam  dan  dalam  24  jam biasa  dilakukan  sebanyak  3  hingga  4  kali  pergantian  air. Faktor  kualitas  air,  baik  fisik,  kimia  dan  biologi,  juga mempengaruhi persebaran parasit [20].
C. Perbandingan Intensitas  Endoparasit  Ikan  Gabus (Channa Striata) dari Budidaya dan Alam
Intensitas  merupakan  jumlah  rata-rata  parasit  per  sampel ikan  yang  terinfeksi.  Hasil  perhitungan  intensitas  endoparasit disajikan dalam tabel berikut:
Berdasarkan  hasil  yang  disajikan  pada  Tabel  2,  diketahui bahwa  Pallisentis  sp.  menginfeksi  kedua  ikan  Gabus  (C. striata) baik dari budidaya maupun tangkapan alam, sedangkan Camallanus  sp.  hanya  menginfeksi  ikan  Gabus  (C.  striata) tangkapan  alam    saja.  Jika  dibandingkan  nilai  intensitas Pallisentis sp. yang terdapat pada usus ikan Gabus (C. striata) budidaya dan tangkapan alam, maka nilai intensitas Pallisentis sp.  ikan  Gabus  (C.  striata)  tangkapan  alam  lebih  tinggi  (34.5 individu  parasit  per  ikan)  dari  pada  nilai  intensitas  Pallisentis sp. ikan Gabus (C. striata) budidaya (10.5  individu parasit per ikan).  Sedangkan  Camallanus  sp.  memiliki  nilai  intensitas sebesar  6.1  individu  parasit  per  ikan  yang  hanya  menginfeksi ikan  Gabus  (C.  striata)  tangkapan  alam  saja.  Berdasarkan observasi  yang  dilakukan  pada  tempat  budidaya  ikan  Gabus (C. striata) di Sidoarjo, pergantian air dilakukan minimal 2 kali dalam  24  jam  dan  dalam  24  jam  biasa  dilakukan  sebanyak  3 hingga  4  kali  pergantian  air.  Tingginya  nilai  intensitas  juga dipengaruhi  oleh  faktor  kesintasan  telur  endoparasit  [19]. Kehadiran  telur  dalam  ikan  Gabus  (C.  striata)  budidaya  lebih sedikit (63 telur) dibandingkan dengan telur dalam ikan Gabus (C. striata) tangkapan alam (419 telur).

## IV. KESIMPULAN
Kesimpulan  dari  penelitian  ini  yaitu  Jumlah  spesies
Endoparasit,  prevalensi  dan  intensitas  yang  ditemukan  pada ikan  Gabus  dari  alam  yaitu:  1)  Camallanus  sp.  (prevalensi= 35%;  intensitas  =  6,1  ind. per ikan);Pallisentis sp. (prevalensi =  65%;  intensitas  =  34.3  ind.  per  ikan),    lebih  tinggi dibandingkan  dari  budidaya  yaitu:  Pallisentis  sp.  (prevalensi= 30%; intensitas= 10.5 ind. per ikan).

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis S.G. mengucapkan terima kasih kepada orang tua dan adik-adik yang selalu memberikan dukungan dan doa. Penulis juga  mengucapkan  terima  kasih  kepada  Dr.  Dewi  Hidayati, M.Si. selaku pembimbing, Dr. Awik Puji Dyah N. S.  Si. M. Si dan  Indah  Trisnawati  D.  T,  M.  Si.  Ph.  D  selaku  tim  penguji yang juga memberikan dukungan dan bimbingannya.

## DAFTAR PUSTAKA
[1] Pusat  Data  Statistik  dan  Informasi  Sekertariat  Jendral  Kementrian Kelautan  dan  Perikanan.  Profil  Kelautan  dan  Perikanan  Provinsi  Jawa Timur untuk Mendukung Industrialisasi KP. Pusat Datam Dtatistik dan Informasi. Jakarta. (2013).
[2] N.  K.  D.  Zakaria.  Pengaruh  Ekstrak  Ikan  Gabus  (Channa  striata) Terhadap Penyembuhan Luka Pasca Operasi Bedah Laparatomi Kucing (Felis  domestica).  Skripsi.  Program  Studi  Kedokteran  Hewan  Fakultas Kedokteran Universitas Hasanuddin Makasar (2015).
[3] Muslim. Perikanan Rawa Lebak Lebung Sumatera Selatan. Palembang. Unsri Press (2012).
[4] B.  Cahyono.  Budidaya  Ikan  Air  Tawar:  Ikan  Gurami,  Ikan  Nila,  Ikan Mas. Yogyakarta (2000).
[5] Adil. Umara, et al. Identifikasi Parasit pada Ikan Gabus (Channa striata) di  Desa  Meunasah  Manyang  Lamlhom  Kecamatan  Lhoknga  Acah Besar. Jurnal Medika Veterinaria. Vol 8:No. 2. (2014).
[6] J.  Courtenay,  J.,  R.  Walter  and  D.  W.  James.  Channa  gachua Snakeheads  (Pisces,  Channidae)  -  A  Biological  Synopsis  and  Risk
Assessment. USGS Circular 1251. Colorado (2004).
[7] C.  J.  Sindermann.  Disease  of  Marine  Fish  in  Principal  Diseases  of Marine Fish and Shelfish. Vol. 1. Second Edition. Academic Press, Inc.
San Diego. California. (1990).
[8] J,  Grabda.  Marine  Fish  Parasitology.  An  Outline.  Polish  Scientific Publisher. New York. 306 pp.. (1991).
[9] E.  Setyobudi,  Soeparno,  dan  S.  Helmiati.  Infection  of  Anisakis  sp. larvae  in  some  marine  fishes  from  the  southern  coast  of  Kulon  Progo,
Yogyakarta. Biodiversitas, Volume 12, Number 1(2010).
[10] E.  Yudhistira.  Ektoparasit  crustacea  pada  ikan  kerapu  merah (Plectropomus  sp)  dari  kepulauan  Pangkajene  perairan  Barat  Sulawesi Selatan. Skripsi. Bogor : Institut Pertanian Bogor. (2004).
[11] AJ.  Pechenik.  Biology  of  The  Invertebrates.  Fourth  Edition.  Tufts University: United States of America. Hlm.: 411. (2000).
[12] Yurly,  Kuzmin,  et  al.  Camallanus  Raolliet  et  Henry,  1915  (Nematoda, Camallanidae)  from  Australian  freshwater  turtles  with  description  of two  new  species  and  molecular  differentiation  of  known  taxa.  56(2), 213–226; ISSN 1230-2821. W. Stefariski Institute of Parasitology, PAS.
(2011)
[13] B.  Vykusová  et  al.  Diagnositics,  Prevention  and  Therapy  of  Fish Diseases  and  Intoxication.  Research  Institute  of  Fish  Culture  and Hydrobiology. Vodňany, Czechoslovakia. (1991).
[14] Thanapon Yooyen. et al.A New Record of Clinostomum Philippinensis (Valasquez,  1959)  in  Trichogaster  Microlepis  (Gunther,  1861)  from Bung Borapet, Nakhon Sawan, Thailand (2006).
[15] Mark  Ribgy,  et  al.  Two  New  Species  of  Camallanus  (Nematoda  : Camallanidae)  from  Freshwater  Turtles  in  Queensland,  Australia. Journal of Parasitology. American Society of Parasit. (2008).
[16] Omar  Amin.  Classification  of  the Acanthocephala. Folia Parasitologica 60  [4]:  273–305,  Institute  of  Parasitic  Diseases,  Scottsdale,  Arizona, USA (2013).
[17] Malcom  Beveridge.  Cage  Aquaculture  Third  Edition.  Blackwell Publishing Ltd. Page : 244. Oxford. UK. (2004).
[18] A.  Surono.  Deskripsi  Hama  dan  Penyakit  Ikan  Karantina  Golongan Bakteri. Buku 2. Pusat Karantina Pertanian. Fakultas Pertanian Jurusan Perikanan, Universitas Gadjah Mada, Yogyakarta (1993).
[19] Woolmark. online book.
http://sydney.edu.au/vetscience/sheepwormcontrol/topics/parasites/envir on.html. (2002)
[20] N.  Muhammad.  2003.  Parasitic  Infestation  In  Different  Fresh  Water Fishes Of Mini Dams Of Potohar Region, Pakistan. Pakistan J. of Biol. Sci. (6) 13: 1092-1095. (2003)
[21] Y. Hadiroseyani, Hariyadi, P., dan Nuryati, S. Inventarisasi Parasit  Lele Dumbo  (Clarias  sp.)      di      Daerah      Bogor.  Akuakultur        Indonesia. Departemen    Budidaya    Perikanan    Fakultas    Perikanan    dan    Ilmu Kelautan  Institut  Pertanian Bogor, Bogor. (2006).