BioEksakta: Jurnal Ilmiah Biologi Unsoed Volume 2, Nomor 2 (2020): 186 - 193 E-ISSN: 2714-8564
Pemberian Inokulum Fungi Mikoriza Arbuskula (FMA) Campuran terhadap Kemunculan Penyakit Busuk Pangkal Batang Sclerotium pada Tanaman Cabai Rawit dan Cabai Merah

## Wira Dhyaksa Pradana*, Uki Dwiputranto, Juni Safitri Muljowati
Fakultas Biologi, Universitas Jenderal Soedirman Jalan dr Suparno 63 Purwokerto 53122 Email : juni.muljowati@unsoed.ac.id
Rekam Jejak Artikel:
Diterima  : 29/08/2019 Disetujui  : 21/01/2020
Abstract Cayenne pepper ( Capsicum frutescens ) and red chili ( Capsicum annuum ), including vegetables and fruit are widely consumed by the public, and also have many benefits. At present, the market demand  for  cayenne  pepper  and  red  chili  is  very  high,  so  equalization  must  be  made  from  the production sector. The conventional way of handling such as the administration of pesticides or other chemicals is less effective because it causes side effects that have a large enough impact, so an  alternative  technique  is  used  that  is  to  use  Arbuscular  Mycorrhizal  Fungi  (FMA)  thus, research  on  the  administration  of  Arbuscular  Mycorrhoid  Fungi  Inoculum  is  thus  carried  out (FMA) Mixture of Sclerotium Stem Rot Rotation in C. frutescens and C. annuum . The purpose of this study was to determine the effect of mixed FMA inoculums in suppressing the intensity of sclerotium  stem  rot  rot  disease  in  cayenne  pepper    and  red  chili  peppers  and  to  determine  the optimal dose of mixed AMF in suppressing the intensity of sclerotium stem rot rot on cayenne plants  and  red  chili  plants.  This  study  used  a  Completely  Randomized  Design  (CRD)  with different  doses  of  mixed  AMF  inoculums;  0,  10,  15,  20,  25  g  FMA  with  zeolite/plant  carrier medium.  The  results  of  this  study  indicate  that  the  treatment  of  mixed  AMF  inoculums  on  the intensity of sclerotium stem rot disease in cayenne and red chili plants can reduce the intensity of Sclerotium stem rot disease by 22% and in red chili plants by 11%.
Keyword : Arbuscular Mycorrhizal Fungi (AMF,) Cayenne Pepper, Red Chilli, Sclerotium.

## Abstrak
Cabai rawit ( Capsicum frutescens ) dan Cabai merah ( Capsicum annuum ) termasuk sayuran dan buah   yang   banyak   dikonsumsi oleh  masyarakat, dan juga memiliki banyak manfaat. Saat ini, permintaan  pasar  untuk  cabai  rawit  dan  cabai  merah  sangat  tinggi  maka  harus  dilakukan penyetaraan  dari  sektor  produksi  tersebut.  Cara  penanganan  yang  konvensional  seperti pemberian  pestisida  atau  pemberian  zat  kimiawi  lainnya  kurang  efektif  dikarenakan mengakibatkan  efek  samping  yang  memiliki  dampak  yang  cukup  besar,  sehingga  digunakan teknik  alternatif  yaitu  dengan  menggunakan  Fungi  Mikoriza  Arbuskular  (FMA)  dengan demikian  maka  dilakukan  penelitian  tentang  Pemberian  Inokulum  Fungi  Mikoriza  Arbuskula (FMA)  Campuran  Terhadap  Kemunculan  Penyakit  Busuk  Pangkal  Batang  Sclerotium  pada Tanaman  Cabai  Rawit  dan  Cabai  Merah.  Tujuan  penelitian  ini  adalah  untuk  mengetahui pengaruh  pemberian  inokulum  FMA  campuran  dalam  menekan  intensitas  penyakit  busuk pangkal  batang  sclerotium  pada  tanaman  cabai  rawit  dan  tanaman  cabai  merah  dan  untuk mengetahui  dosis  optimal  FMA  campuran  dalam  menekan  intensitas  penyakit  busuk  pangkal batang  sclerotium  pada  tanaman  cabai  rawit  dan  tanaman  cabai  merah.  Penelitian  ini menggunakan  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  dengan  dosis  berbeda  dari  inokulum  FMA campuran; 0, 10, 15, 20, 25 g FMA dengan  medium pembawa zeolit/tanaman. Hasil penelitian ini  menunjukkan  bahwa  perlakuan  pemberian  inokulum  FMA  campuran  terhadap  intensitas penyakit  busuk  pangkal  batang  sclerotium  pada  tanaman  cabai  rawit  dan  cabai  merah  dapat menurunkan  intensitas  penyakit  busuk  pangkal  batang  Sclerotium  sebesar  22%  dan  pada tanaman cabai merah sebesar 11%.
Kata kunci : Arbuscular Mycorrhizal Fungi (AMF,), Cabai rawit, , Cabai merah,, Sclerotium.

## PENDAHULUAN
Cabai  merah  ( Capsicum  annuum L.)  dan  dan Cabai  rawit  ( Capsicum frutescens)  merupakan tanaman  hortikultura  yang  banyak  dimanfaatkan untuk kebutuhan pangan dan merupakan salah satu jenis  sayuran  yang  memilki  nilai  ekonomi  tinggi.
Cabai rawit yang banyak dibudidayakan oleh petani di  Indonesia  memiliki  harga  jual  yang  tinggi (Prabowo et  al. ,  2018).  Menurut  Rukmana  dan Oesman  (2006),  pemanfaatannya  dalam  industri menjadikan  cabai  sebagai  komoditas  bernilai ekonomi  tinggi.  Berdasarkan  data  Badan  Pusat Statistik  dan  Direktorat  Jenderal  Hortikultura
(2017),  luas  areal  panen  cabai  merah  di  Indonesia pada  tahun  2016  tercatat  seluas  109.178  ha  dan pada  tahun  2017  meningkat  menjadi  120.275  ha, 22.706  ha  di  antaranya  terdapat  di  propinsi  Jawa Tengah.  Produksi  cabai  di  Indonesia  belum  dapat memenuhi  kebutuhan  cabai  nasional  sehingga pemerintah harus mengimpor cabai yang mencapai lebih dari 16.000 ton per tahun. Rata- rata produksi cabai besar nasional baru mencapai 0,04 ton/ha dan cabai  rawit  sebesar  5,29  ton/ha,  sementara  potensi produksi  cabai  dapat  mencapai  lebih  10  ton/ha. Bertambahnya  luas  areal  tersebut  disebabkan kebutuhan cabai meningkat sejalan dengan bertambahnya jumlah penduduk dan berkembangnya  industri  yang  menggunakan  cabai sebagai bahan baku. Faktor-faktor yang menyebabkan  produksi  tanaman  cabai  rawit menurun yakni, rendahnya tingkat kesuburan tanah, tingginya  penguapan  air  yang  disebabkan  oleh temperatur  udara  serta  serangan  Organisme Pengganggu Tanaman (OPT) yang dapat mengganggu tanaman (Rukaman, 2002).
Mikroba  patogen  penyebab  penyakit  pada tanaman  merupakan  salah  satu  kendala  bagi produktivitas  pertanian  terutama  bagi  tanaman hortikultura.  Salah  satunya  berasal  dari  kelompok cendawan. Sclerotium  rolfsii merupakan  salah  satu cendawan  patogen  tanaman  yang  memiliki  kisaran inang yang luas dan merupakan penyebab penyakit serius  pada  sayuran  penting  seperti  tanaman  cabai, tomat,  bawang,  dan  tanaman  sayuran  lainnya. Mikroba  patogen  memiliki  struktur  istirahat, sehingga  penyakit  yang  ditimbulkannya  menjadi sulit dikendalikan. Penyakit tanaman yang disebabkan  oleh Sclerotium  rolfsii ini  menyerang pada  bagian  pangkal  batang  tanaman,  yang menyebabkan  jaringan  luar  pada  tanaman  menjadi lunak.  Selanjutnya  serangan  mengakibatkan  daun menjadi  kekuningan  dan  layu.  Bagian  tanaman yang  terserang  tertutup  sekumpulan  miselium berwarna putih dengan sclerotium sebesar biji sawi berwarna  cokelat  pada  bagian  pangkal  batang tanaman.  Ketika  tanaman  mati  dicabut,  maka tampak sekelompok sclerotium sering melekat pada akar (Doolittle, 1953; Papuangan, 2013).
Salah  satu  alternatif  pengendalian  patogen yang dapat dilakukan adalah dengan memanfaatkan beberapa  jenis  mikroorganisme  yang  mampu memberikan ketahanan tanaman, mampu beradaptasi  dengan  lingkungan,  dan  meningkatkan perkembangan  tanaman.  Mikroorganisme  ramah lingkungan  tersebut  adalah  mikoriza  ( mycorrhiza ).
Mikoriza  adalah  asosiasi  mutualistik  antara  fungi dan  akar  tanaman  yang  membentuk  struktur simbiotik.  Melalui  simbiosis  dengan  tanaman, mikoriza  berperan  penting  dalam  pertumbuhan tanaman,  perlindungan  terhadap  penyakit,  dan peningkatan  kualitas  tanah  (Prasasti et  al .,  2013). Fungi  Mikoriza  Arbuskula  (FMA)  memiliki  peran fungsional yang sangat penting bagi tanaman yakni
sebagai  bioprosesor,  bioprotektor,  bioaktifator  dan bioagregator.  Peranan  fungsional  dari  FMA  dapat dimanfaatkan  untuk  berbagai  kepentingan  yakni meningkatkan  jumlah  dan  mutu  hasil  tanaman, mengurangi  kebutuhan  akan  pupuk  dan  pestisida, mengurangi  erosi,  mereduksi  emisi  CO 2 dan meningkatkan  kesuburan  tanah  (Sharma,  2002). Mekanisme  kerja  dari  FMA  ini  sendiri  yaitu dipengaruhi  oleh  tingkat  populasi  dan  komposisi jenis  FMA  yang  sangat  beragam  dan  dipengaruhi oleh  karakteristik  tanaman,  faktor  lingkungan seperti  suhu,  pH  tanah,  kelembaban  tanah,  dan kandungan  fosfor  dan  nitrogen.  (Adewole et  al., 2010). Berdasarkan    uraian    latar  belakang,  maka permasalahan  yang  muncul  adalah  apakah    ada pengaruh  pemberian  inokulum  FMA  campuran dalam  menekan  intensitas  penyakit  busuk  pangkal batang  sclerotium  pada  tanaman  cabai  rawit  dan tanaman  cabai  merah  dan  juga  berapakah  dosis optimal  FMA  campuran  dalam  menekan  intensitas penyakit  busuk  pangkal  batang  sclerotium  pada tanaman cabai rawit dan tanaman cabai merah.

## MATERI DAN METODE
Penelitian  ini  dilakukan  di green  house dan Laboratorium  Mikologi  dan  Fitopatologi,  Fakultas Biologi Universitas Jenderal Soedirman. Penelitian dilaksanakan pada bulan Maret-Juni 2019.
Bahan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini adalah  benih  cabai  rawit,  benih  cabai  merah, inokulum  FMA  campuran  ( Glomus sp., G. manihotis , G.  etunicatum , Gigaspora  margarita , Acaulospora  spinosa )  dengan  carrier  zeolit  yang berisi  20-30  spora/gram, Sclerotium  rolfsii dari Laboratorium  Mikologi  &  Fitopatologi  Fakultas Biologi  Universitas  Jenderal  Soedirman,  jagung giling,  larutan  tinta  cuka  5%, alumunium  foil , kapas, korek api, spirtus, tanah steril, dan pupuk. Penelitian  menggunakan  Rancangan  Acak Lengkap  (RAL).  Variabel  bebas  yaitu  pemberian dosis  FMA  campuran  yang  berbeda.  Variabel terikat  yaitu  kemunculan  penyakit  busuk  pangkal batang sclerotium dan intensitas penyakit. Parameter utama yaitu intensitas penyakit, sedangkan  parameter  pendukungnya  adalah  masa inkubasi  penyakit,  derajat  infeksi,  pH  tanah, temperatur, dan kelembapan.
Pembuatan  Media Potato  Dextrose  Agar (PDA) (Fardiaz, 1989)
Sebanyak  200  g  kentang  dikupas,  dicuci bersih  kemudian  dipotong  membentuk  dadu  kecil. Potongan  kentang  direbus  dalam  500  ml  air distilasi  sampai  lunak  dan  terbentuk  ekstrak kentang.  Kemudian  `15  g  agar-agar,  20  g  dextrose dan  ekstrak  kentang  di  campur  hingga  homogen dan  di  tampung  dalam beaker  glass .  Campuran tersebut ditambah dengan akuades hingga mencapai  1000  ml,  selanjutnya  media  dimasukkan
ke  dalam  labu  Erlenmeyer  250  ml,  ditutup  dengan cotton plug dan ditutup lagi dengan alumunium foil . Disterilisasi  menggunakan  autoklaf  pada  suhu  121 ºC dengan tekanan 2 atm selama 15 menit
Peremajaan isolat Sclerotium rolfsii
Isolat  murni S.  rolfsii sebanyak  1  plug  dari medium  PDA  lama  dipindahkan  ke  media  PDA baru  di  dalam  cawan  petri  kemudian  diinkubasi selama 7-14 hari dalam suhu ruang .
Pembuatan  inokulum  jamur S.  rolfsii
(Buhaira & Aswinta, 2009)
Jagung  giling  sebanyak  ¾  volume  botol  kaca disterilkan  dengan  autoklaf  selama  15  menit dengan  temperatur  121  ºC  dan  tekanan  2  Atm. Sebanyak  3  plug  miselium S.  rolfsii diameter  0,5 cm hasil peremajaan pada medium PDA diinokulasikan ke dalam botol  yang berisi  medium jagung  kemudian  ditutup  kembali  dengan  kapas dan  alumunium  foil  dan  diinkubasi  sampai miselium tumbuh dan memenuhi botol.

## Persiapan inokulum FMA campuran
Inokulum FMA campuran carier zeolit yang berisi 20-30 spora/gram inokulum ditimbang sesuai perlakuan.

## Sterilisasi tanah
Tanah  diambil  dari  lahan  Fakultas  Biologi Universitas Jenderal Soedirman, kemudian disterilisasi  dalam  drum  dengan  suhu  100  ºC selama 6 jam dan di diamkan selama 1 hari.

## Inokulasi FMA campuran (Ertanti, 2011)
Inokulum FMA campuran diinokulasikan saat bibit  cabai  rawit  dan  cabai  merah  ditanamkan  ke media  tanah  dalam  polibag.  Inokulasi  dilakukan dengan cara  meletakkan inokulum  FMA campuran dengan  jarak  kurang  lebih  2  cm  di  bawah  akar tanaman cabai rawit dan cabai merah menggunakan dosis sesuai perlakuan yang telah ditentukan.
Inokulasi jamur S. rolfsii (Purnomowati, 1996) Inokulasi  jamur S.  rolfsii dilakukan  setelah tanaman  berumur  30  hari  dengan  menempatkan inokulum  di  sekitar  perakaran  tanaman.  Inokulum jamur  yang  diinokulasikan  adalah  10  g  tiap  3  kg tanah.

## Pemeliharaan tanaman
Pemeliharaan  tanaman  meliputi  penyiraman yang dilakukan setiap hari (pagi atau sore hari).

## Pengamatan masa inkubasi penyakit
Pengamatan masa inkubasi penyakit dilakukan  1  hari  setelah  inokulasi  (HSI)  jamur S. rolfsii selama  21  hari  dengan  cara  mencatat  hari munculnya gejala busuk pangkal batang sclerotium pada setiap perlakuan.

## Perhitungan intensitas penyakit
Perhitungan  intensitas  penyakit  dilakukan  21 hari  setelah  inokulasi S.  rolfsii dengan  rumus Suhardi (1987):
I = ∑(𝒏𝒙𝒗) 𝒁𝒙𝑵 𝒙 𝟏𝟎𝟎%
Keterangan: I  = intensitas penyakit n = jumlah tanaman yang terserang tiap kategori v=  nilai  kategori  pada  setiap  tanaman  yang terserang
Z = nilai kategori yang tertinggi N= jumlah tanaman yang diamati
Nilai  skala  serangan  berdasarkan  tanaman yang diserang menurut Yusnita et al. (2005) adalah sebagai berikut:
0  =   tidak ada gejala
1  =   nekrosis  dengan  kurang  dari  50%  lingkar batang
2  =   nekrosis dengan 50% - 75% lingkar batang
3  =   nekrosis  telah  melingkari  batang  yang terinfeksi
4  =   seperti  pada  skor  3  dan  batang  yang terinfeksi mulai terkulai serta sejumlah daun mulai layu
5  =   tanaman mati
Pengukuran  pH  tanah,  suhu  dan  kelembapan udara di green house Pengukuran pH tanah dilakukan di awal dan akhir penelitian sedangkan temperatur dan kelembapan  udara  diukur  setiap  pagi  siang  sore sejak penanaman benih hingga akhir penelitian
Pengamatan  derajat  infeksi  (Nusantara et  al ., 2012)
Pengamatan derajat infeksi dilakukan di akhir penelitian  dengan  menggunakan  metode clearing and  staining .  Akar  dari  setiap  tanaman  dicuci bersih  dengan  akuades,  dipotong  dengan  ukuran 1cm  lalu  akar  direndam  dalam  tabung  reaksi  yang berisi  KOH  selanjutnya  dimasukkan  kedalam penangas  air  selama  10  menit.  Larutan  KOH  10% dibuang  dan  akar  dibilas  dengan  air  distilasi sebanyak  3-5  kali  hingga  warnanya  jernih. Potongan  akar  direndam  dengan  larutan  tinta  cuka 5 % selama 12 jam, kemudian akar direndam dalam larutan destaining untuk  menghilangkan  kelebihan larutan pewarna dan diletakkan berjajar pada object glass, selanjutnya  di  amati  di  bawah  mikroskop untuk pengamatan derajat infeksi.

## Derajat infeksi ditentukan dengan rumus :

## % Derajat infeksi
= 𝑗𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑎𝑘𝑎𝑟 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑡𝑒𝑟𝑖𝑛𝑓𝑒𝑘𝑠𝑖 𝑗𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑎𝑘𝑎𝑟 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑑𝑖𝑎𝑚𝑎𝑡𝑖 x 100%
𝑨𝒌𝒕𝒊𝒗𝒊𝒕𝒂𝒔 𝒆𝒏𝒛𝒊𝒎 = (Abs/6500) x (V campuran /10 6 ) x 10 6 x (60/t) (V enzim/10 3 )

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Pengamatan masa inkubasi penyakit dilakukan  1  hari  setelah  inokulasi  (HSI)  jamur  S. rolfsii hingga hari ke-21 dengan cara mencatat hari munculnya gejala busuk pangkal batang sclerotium pada setiap perlakuan. Berdasarkan Gambar 1 rata-
rata  periode  inkubasi  terpanjang  pada  tanaman cabai  rawit  dan  cabai  merah  adalah  perlakuan M3BR dan M4BM dengan rata-rata 7,6 hari setelah inokulasi  (HSI).  Rata-rata  periode  inkubasi terpendek  adalah  perlakuan  M0BR  dan  M0BM yaitu  2  hari  setelah  inokulasi  (HSI).  Oleh karenanya,  aplikasi  FMA  dapat  memperpanjang masa  inkubasi  penyakit  oleh  patogen  S.  rolfsii selama 6 hari pada kedua spesies tanaman cabai ini. Hal  ini  didukung  oleh  pernyataan  Magenda et  al.
(2011) yang menyatakan bahwa proses perkecambahan  sklerotia  pada  S.  rolfsii  terlihat pada  hari  kedua  dan  ukuran  sclerotia  terbesar terlihat pada hari ketujuh. Faktor yang mempengaruhi  masa  inkubasi  penyakit  yaitu lingkungan, kerentanan tanaman inang, dan tingkat patogenisitas yaitu tingkat virulensi dan agresivitas (Pattanapipitpaisal & Kamlandharn, 2012).
Gambar 1. Diagram garis masa inkubasi penyakit busuk pangkal batang sclerotium pada tanaman cabai rawit dan cabai merah.
Keterangan: M0BR : tanpa inokulasi FMA campuran saat bibit cabai rawit ditanam M0BM  : tanpa inokulasi FMA campuran saat bibit cabai merah ditanam M1BR : inokulasi FMA campuran 5 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M1BM  : inokulasi FMA campuran 5 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam M2BR : inokulasi FMA campuran 10 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M2BM  : inokulasi FMA campuran 10 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam M3BR : inokulasi FMA campuran 15 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M3BM  : inokulasi FMA campuran 15 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam M4BR : inokulasi FMA campuran 20 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M4BM  : inokulasi FMA campuran 20 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam
Pengamatan intensitas penyakit pada tanaman cabai  rawit  dan  cabai  merah  dihitung  berdasarkan kategori  yang  diamati  pada  hari  ke-21  setelah inokulasi S . rolfsii yaitu  pada  hari  terakhir  dari penelitian  ini.  Perhitungan  intensitas  penyakit  ini dilakukan  untuk  mengetahui  ketahanan  tanaman
cabai  rawit  dan  cabai  merah  terhadap  patogen  S. rolfsii  sebagai  aktualisasi  dari  kemunculan  gejala busuk  pangkal  batang  sclerotium.  Pengamatan intensitas  penyakit  pada  tanaman  cabai  rawit  dan cabai merah dapat dilihat pada Gambar.2
2.0 2.0 4.3 6.3 6.3 7.6
7.0 7.6 7.3 7.3 - 1.0 2.0 3.0 4.0 5.0 6.0 7.0 8.0 M 0 B M M 0 B R M 1 B M M 1 B R M 2 B M M 2 B R M 3 B M M 3 B R M 4 B M M 4 B R Ra taa n M asa In k u b asi (h ari ) Perlakuan
Gambar 2. Diagram garis intensitas penyakit busuk pangkal batang sclerotium pada tanaman cabai rawit dan
cabai merah. Keterangan: M0BR : tanpa inokulasi FMA campuran saat bibit cabai rawit ditanam M0BM : tanpa inokulasi FMA campuran saat bibit cabai merah ditanam M1BR : inokulasi FMA campuran 5 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M1BM : inokulasi FMA campuran 5 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam M2BR : inokulasi FMA campuran 10 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M2BM : inokulasi FMA campuran 10 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam M3BR : inokulasi FMA campuran 15 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M3BM : inokulasi FMA campuran 15 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam M4BR
: inokulasi FMA campuran 20 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M4BM : inokulasi FMA campuran 20 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam
Pada  gambar  2  menunjukkan  bahwa  rata-rata tertinggi  intensitas  penyakit  busuk  pangkal  batang sclerotium  pada  tanaman  cabai  rawit  dan  cabai merah  adalah  M1BM  yaitu  92,7%  Rata-  rata terendah  intensitas  penyakit  busuk  pangkal  batang sclerotium  pada  tanaman  cabai  rawit  M3BR  yaitu 67,7%  dan  cabai  merah  pada  perlakuan  M4BM sebesar  78%.  Hasil  tersebut  menunjukkan  pada tanaman  cabai  rawit  dapat  menurunkan  intensitas penyakit  sebesar  22%  dan  tanaman  cabai  merah sebesar  11%  jika  dibandingkan  dengan  perlakuan rata rata kontrol yaitu 89%.
Berdasarkan  analisis  sidik  ragam  dapat diketahui  bahwa  terdapat  pengaruh  yang  sangat signifikan  pada  perlakuan  terhadap  intensitas penyakit  busuk  pangkal  batang  sclerotium  pada tanaman  cabai  rawit  dan  cabai  merah.  Perlakuan yang  paling  berpengaruh  untuk  mengurangi intensitas penyakit busuk pangkal batang sclerotium  dapat  diperoleh  dengan  menggunakan uji  BNT  dengan  kesalahan  5%  yang  dapat  dilihat pada tabel 1.
Tabel 1.  Uji  BNT  pengaruh  pemberian  inokulum FMA  terhadap  intensitas  penyakit  busuk  pangkal batang  sclerotium  pada  tanaman  cabai  rawit  dan cabai merah
No Perlakuan Rataan (%) 1 M3BR 607,67a 2 M2BR 71,33ab 3 M4BM 78,00bc 4 M4BR 81,67bc 5 M1BR 85,33cd 6 M2BM 85,33cd 7 M0BM 89,00d 8 M0BR 89,00d 9 M3BM 89,00d 10 M1BM 92,67d Uji BNT menunjukkan bahwa pada perlakuan  M3BR,  M2BR,  M4BM,  M4BR  berbeda nyata dengan M0BM, M0BR, M3BM, dan M1BM. Perlakuan  M1BR  dan  M2BM  tidak  berbeda  nyata dengan  M2BR,  M4BM,  M4BR,  M0BM,  M0BR, dan  M3BM.  Perlakuan  M3BR  tidak  berbeda  nyata dengan  M2BR,  M4BM,  dan  M4BR.  Perlakuan yang  paling  berpengaruh  untuk  mengurangi intensitas penyakit busuk pangkal batang sclerotium pada tanaman cabai rawit adalah M3BR
89.0 89.0
92.7 85.3 85.3 71.3 89.0 67.7 78.0 81.7 0.0 10.0 20.0 30.0 40.0 50.0 60.0 70.0 80.0 90.0 100.0 M0BM M0BR M1BM
M1BR M2BM M2BR M3BM M3BR M4BM M4BR R a ta a n In te n si ta s p en y a k it ( % ) Perlakuan
(inokulasi  FMA  campuran  15  g/tanaman  saat  biji cabai  rawit  ditanam  ke  polybag  dan  inokulum  S. rolfsii  10  g/tanaman)  dengan  rata-rata  intensitas penyakit  sebesar  67,67%  dan  cabai  merah  adalah M4BM  (inokulasi  FMA  campuran  20g/tanaman saat  biji  cabai  merah  ditanam  ke  polybag  dan inokulum  S.rolfsii  10g/tanaman)  dengan  rata-rata intensitas penyakit sebesar 78,00%.
Intensitas penyakit tanaman inang dipengaruhi oleh  keberadaan  patogen,  agresivitas  dan  virulensi patogen,  faktor  lingkungan,  kemampuan  patogen
untuk  beradaptasi,  dan  kerentanan  tanaman  inang itu  sendiri  (Keane  &  Kerr,  1997).    Data  intensitas penyakit  busuk  pangkal  batang  sclerotium  pada tanaman  cabai  rawit  dan  cabai  merah  didukung oleh  pengamatan  masa  inkubasi  penyakit  pada perlakuan  M3BR  dan  M4BM  sebesar  8  hari    yang masing-  masing  dapat  memperpanjang  masa inkubasi  penyakit  selama  6  hari  jika  dibandingkan dengan  perlakuan  kontrol  selama  2  hari  dan  juga didukung  oleh  pengamatan  derajat  infeksi  dari FMA campuran yang dapat dilihat pada Gambar 3.
Gambar 3. Diagram garis derajat infeksi FMA pada tanaman cabai rawit dan cabai merah Keterangan: M0BR : tanpa inokulasi FMA campuran saat bibit cabai rawit ditanam M0BM
: tanpa inokulasi FMA campuran saat bibit cabai merah ditanam
M1BR : inokulasi FMA campuran 5 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M1BM : inokulasi FMA campuran 5 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam M2BR : inokulasi FMA campuran 10 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M2BM
: inokulasi FMA campuran 10 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam
M3BR : inokulasi FMA campuran 15 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M3BM
: inokulasi FMA campuran 15 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam
M4BR : inokulasi FMA campuran 20 g/tanaman saat bibit cabai rawit ditanam M4BM : inokulasi FMA campuran 20 g/tanaman saat bibit cabai merah ditanam
Perhitungan  derajat  infeksi  dilakukan  untuk mengetahui  tingkat  infeksi  FMA  campuran  pada akar  tanaman  cabai  rawit  dan  cabai  merah. Berdasarkan  Gambar  3.  didapatkan  hasil  rata-rata tingkat  infeksi  tertinggi  pada  perlakuan  M4BM yaitu 90% dan M4BR sebesar 83%. Hasil ini sesuai dengan pernyataan pernyataan Adetya et al. (2018) yang  menyatakan  bahwa  seiring  bertambahnya dosis FMA yang diberikan persentase infeksi FMA
pada tanaman yang diinfeksi tersebut akan semakin besar.  Rata-rata  tingkat  infeksi  terendah  dalam perlakuan  M0BR  dan  M0BM  yaitu  0%.  Infeksi FMA  pada  perlakuan  M0BR  dan  M0BM  tidak terdeteksi  dikarenakan  sterilisasi  tanah  yang mengakibatkan mikroorganisme dalam tanah termasuk  mikoriza  yang  secara  alami  terkandung dalam tanah yang disterilkan telah mati.

## CC
Gambar 4. Akar tanaman cabai rawit (A) dan cabai merah (B) yang terinfeksi mikoriza dalam perbesaran 400x. Keterangan : a = vesikel, b = arbuskula, c = hifa internal, d = hifa external.
0.0 0.0 1.6 3.3 5.3 6.0 6.0 7.3 9.0 8.3 0.0 2.0 4.0 6.0 8.0 10.0 M 0 B M M 0 B R M 1 B M M 1 B R M 2 B M M 2 B R M 3 B M M 3 B R M 4 B M M 4 B R Ra taa n De ra jat In fe k si (% ) Perlakuan b a c d A B
Pengamatan  derajat  infeksi  yang  disajikan pada  gambar  4  setelah  dilakukan  pewarnaan  pada akar  tanaman  yang  telah  di  infeksikan  FMA campuran  menunjukkan  adanya  struktur  vesikel yang  berbentuk  persegi  panjang  ke  arah  bawah. Ditemukan pula struktur yang dinamakan arbuskula yang  berbentuk  oval  dan  berwarna  biru  kegelapan yang disebabkan karena struktur tersebut menyerap larutan  pewarna  yang  berwarna  biru  pula. Ditemukannya struktur-struktur tersebut menandakan  bahwa  akar  tanaman  tersebut  telah terinfeksi  oleh  FMA  campuran.  Hal  ini  sesuai dengan  pernyataan  Adetya et  al. (2018)  yang menyatakan  bahwa  pada  tanaman  yang  telah terinfeksi mikoriza terdapat spora, hifa, vesikel dan arbuskula.  Keadaan  tersebut  merupakan  tanda bahwa mikoriza telah menginfeksi bagian dari akar tanaman. Vesikel berfungsi sebagai tempat penyimpanan  nutrisi  serta  Arbuskula  memiliki fungsi  untuk  meningkatkan  respirasi  dan  aktivitas enzim  inang  tanaman.  Nusantara et  al. (2012) mengatakan  bahwa  keberadaan  mikoriza  pada tanaman dipengaruhi oleh beberapa faktor lingkungan  seperti  cahaya,  suhu,  kandungan  air tanah,  pH  tanah,  bahan  organik  serta  logam  berat dan unsur lainnya.
Fungi
Mikoriza
Arbuskula (FMA)
meningkatkan  zona  penyerapan  dan  ketersediaan hara  serta  penyerapan  khususnya  unsur  P  terhadap air  yang  menyebabkan  tahannya  tanaman  terhadap cekaman  air  dan  serangan  hama  penyakit (Prafithriasari  dan  Nurbaity,  2010).  Sementara  itu, akar  yang  terinfeksi  mikoriza  memperlihatkan pertumbuhan  tanaman  yang  lebih  baik  bila dibandingkan dengan tanaman yang tidak terinfeksi mikoriza.  Akar  yang  terinfeksi  mikoriza  dapat menyerap  air  dan  unsur  hara  dari  tanah  pada konsentrasi dimana akar tanaman tidak bermikoriza tidak dapat menjangkaunya (Prasasti et al ., 2013). Menurut  (Trouvelot et  al .,  2016)  peran  FMA yang telah berasosiasi dengan akar tanaman adalah sebagai berikut :(1) FMA meningkatkan pertumbuhan  dan  nutrisi  tanaman  dengan  akses yang lebih baik ke unsur hara tanah  dan mengatur regulasi  protein  transpor  nabati  untuk  fosfor  (P), nitrogen  (N),  dan  elemen  lainnya.  (2)  FMA meningkatkan  toleransi  terhadap  tekanan  abiotik seperti tekanan air, salinitas tanah, dan racun logam berat. (3) FMA melindungi dari stres biotik seperti pada  penyakit  pada  bagian  perakaran.  (4)  FMA menghasilkan  glikoprotein  dan  jaringan  hifa  padat yang meningkatkan stabilitas tanah dan menghemat nutrisi  tanah,  dan  juga  jika  FMA  sudah  memiliki miselium  yang  sudah  terbentuk  di  dalam  tanah, zona  pengambilan  nutrisi  pada  tanaman  akan diperluas  oleh  miselium  tersebut  (Avio et  al.,
2006). Selain  dapat  bersimbiosis  dengan  akar tanaman inang FMA memiliki peran penting dalam
menghindari  tanaman  dari  serangan  patogen, dimana  FMA  dapat  memproduksi  antibiotik  yang mengakibatkan perubahan konsentrasi eksudat akar tanaman inang yang dapat mempengaruhi perubahan  dalam  rhizosfer  yang  mengakibatkan meningkatnya ketahanan dan juga dapat menghindari  tanaman  terhadap  serangan  patogen. Fungi  Mikoriza  Arbuskula  mempunyai  pengaruh yang  luas  terhadap  mikroba  patogen  yang menyerang tanaman (Talanca, 2010).  Penelitian ini menggunakan  FMA  campuran  yang  terdiri  dari  5 spesies berbeda, yaitu Glomus sp, G. manihotis , G. etunicatum , Gigaspora margarita , Acaulospora spinosa . Masing-masing genus mikoriza mempunyai fungsi dan cirinya tersendiri.

## SIMPULAN
Pemberian  inokulum  FMA  pada  tanaman cabai  rawit  dan  cabai  merah  dapat  menurunkan intensitas penyakit busuk pangkal batang Sclerotium  sebesar  22%  dan  pada  tanaman  cabai merah sebesar 11%.

## DAFTAR REFERENSI
Adetya,  V.,  Nurhatika,  S.,  Muhibuddin,  A.  2019.
Pengaruh Pupuk Mikoriza Terhadap Pertumbuhan Cabai Rawit ( Capsicum frutescens ) di Tanah Pasir. Jurnal sains dan seni ITS 7, (2), pp. 2337-3520.
Adewole  MB,  Awotoye  OO,  Ohiembor  MO,
Salami  AO.  2010.  Influence  of  micorrhizal fungi  on  phytoremidiating  potential  and yield  of  sunflower  in  Cd  and  Pb  poluted soils. J Agric Sci , 55(1), pp. 17-28.
Avio, L., Pellegrino, E., Bonari, E., Giovannetti, M. 2006.  Functional  diversity  of  arbuscular mycorrhizal  fungal  isolates  in  relation  to extraradical mycelial networks. New Phytol, 172, pp. 347–357.
Buhaira,  &  Aswinta.  2009.  Universitas  Jambi,
Jambi.  Studi  Pengaruh  Aplikasi  Berbagai Konsentrasi  Sclerotium  rolfsii  terhadap kehilangan  hasil  pada  kacang  tanah. Jurnal Agronomi , 13(2), pp. 1 – 4.
Chet,  I.,  Y.  Henis,  and  Kislev.  1969.  Ultra- structure  of  sclerotia  and  hyphae  of Sclerotium rolfsii Sacc. Gen. Microbiol , 57, pp. 143– 147.
Direktorat  Jenderal  Bina  Produksi  Hortikultura [DBPH].  2017. Statistik  Pertanian  2017 Agricultural  Statistics .  Jakarta:  Departemen Pertanian.
Domsch,  K.H.,  W.  Gams,  and  T.H.  Anderson.
1980. Compendium  of  Soil  Fungi .  London: Academic Press.
Doolittle,  S.P.  1953. Diseases  of  peppers . Washington:  Yearbook  of  Agricultural USDA.
Ertanti,  A.  2011.  Pertumbuhan  tanaman  semangka ( Citrullus vulgaris ) pada tanah masam yang diinokulasi  Mikoriza  Vesikula  Arbuskula (MVA) campuran dengan cara inokulasi dan dosis berbeda. Skripsi . Purwokerto: Fakultas Biologi Universitas Jenderal Soedirman. Fardiaz,  S.  1989. Penuntun  praktek  mikrobiologi pangan . Bogor: IPB Press. Haryantini,  B.A.,  M.  Santoso.  2001.  Pertumbuhan dan  hasil  cabai  merah  pada  andosol  yang diberi  mikoriza,  pupuk  fosfor  dan  zat pengatur tumbuh. Biosain ,  3, pp. 50-57. Hildebrandt,  U.,  K.  Janetta,  H.  Bothe.  2002. Towards  growth  of  arbuscular  mycorrhizal fungi  independent  of  a  plant  host.  Appl. Environ. Microbiol ,  68, pp. 1919-1924.
Kerr  A,  &  Keane,  P.  1997. Prediction  of  disease outbreaks.  In:  Brown  JF,  Ogle  HJ  eds.,  ed. Plant  pathogens  and  diseases .  Armidale, NSW:  University  of  England  Print.  287– 298.
Magenda,  S.,  Kandou,  F.E.F.,  Umboh,  S.D.  2011. Karakteristik Isolat Jamur Sclerotium rolfsii dari  Tanaman  Kacang  Tanah  ( Arachis hypogaea Linn.). Jurnal  bioslogos .  1  (1), pp. 1-7.
Mosse, B.,
1981. Vesicular-Arbuscular Mycorrhizal Research for Tropical Agriculture. Res, Bull.
Nusantara,    A.  D.,  Bertham,  Y.  H.,  &  Mansur,  I. 2012. Bekerja  Dengan  Fungi  Mikoriza Arbuskula . Bogor : SEAMEO BIOTROP. Papuangan,  N.  2013.  Aktivitas  Penghambatan Streptomyces  Spp.  Terhadap Sclerotium Rolfsii Secara In Vitro. Jurnal
BIOEDUKASI , 2(1), pp. 185-191. Pattanapipitpaisal,  P  &  Kamlandharn,  R.  2012. Screening  of  chitinolytic  actinomycetes  for biological control of Sclerotium rolfsii stem rot  disease  of  chilli. Songklanakarin  J.  Sci. Technol., 34 (4), pp. 387-393.
Prabowo,  S.H.,  Dewi,  S.A.,  Susilarto,  D.  2018. Efektivitas  penggunaan  EM4  terhadap pertumbuhan cabai rawit ( Capsicum frutescens l.). Jurnal  Ilmu  Pertanian AGRIC. 30(1), pp. 15-24. Prafithriasari, M dan A. Nurbaity. 2010. Infektivitas Inokulan  Glomus  sp.  dan  Gigaspora  sp. pada  Berbagai  Komposisi  Media  Zeolit- Arang  Sekam  dan  Pengaruhnya  terhadap Pertumbuhan  Sorgum  (Sorghum  bicolor) . 21(1), pp. 39–45. Prajnanta,  F.  2007. Agribisnis  Cabai  Hibrida . Jakarta: Penebar Swadaya. Prasasti,  O.H.,  Kristanti,  I.P.,  &  Sri,  N.  2013. Pengaruh  Mikoriza Glomus  fasciculatum Terhadap  Pertumbuhan  Vegetatif  Tanaman Kacang  Tanah  yang  terinfeksi  Sclerotium rolfsii. Jurnal Sains dan Seni POMITS, 2 (2), pp. 2337-3520.
Prayudi,  B.  2010. Budidaya  dan  Pasca  Panen Cabai  Merah ( Capsicum  annuum L).  Jawa tengah: Badan Penelitian dan Pengembangan  Pertanian,  Balai  Pengkajian Teknologi Pertanian.
Purnomowati.  1996.  Inokulum  Mikoriza  Vesikula Arbuskula  (MVA) Glomus sp.  Dan G. margarita sebagai  upaya  untuk  menekan penyakit  busuk  batang  sclerotium  pada tanaman  kedelai  ( Glycine  max (L)  merr). Laporan  Hasil  Penelitian .  Purwokerto:
Fakultas Biologi Universitas Jenderal Soedirman.
Rukaman,  2002. Usaha  Tani  Cabai  Rawit .
Yogyakarta: Kanisius.
Rukmana,  R  &  Oesman,  Y.Y.  2006. Bertanam cabai dalam pot . Yogyakarta: Kanisius. Setiadi, Y. 2000. Arbuscular Mycorrhizal Inoculum Production.  Dalam  Prosiding:  Teknologi Produksi  dan  Pemanfaatan  Inokulan  Endo- Ektomikoriza  untuk  Pertanian,  Perkebunan dan Kehutanan . Asosiasi Mikoriza
Indonesia-Jawa Barat. Suhaemi,  Z.  2011. Diktat  Metode  Penelitian  dan Rancangan Percobaan . Universitas Tamansiswa Padang.
Suhardi,  1987. Pemanfaatan  mikoriza  bagi pengembangan  pertanian  dan  kehutanan  di Indonesia.  Makalah  Seminar  Bioteknologi Indonesia 17–19 Februari 1987, Yogyakarta: UGM Press.
Sumartini. 2012. Penyakit Tular Tanah ( Sclerotium rolfsii Dan Rhizoctonia  solani )  Pada Tanaman  Kacang-  Kacangan  Dan  Umbi- Umbian Serta Cara Pengendaliannya. Jurnal litbang pertanian . 31(1), pp. 27-34.
Talaca,  H.  2010.  Status  Cendawan  Mikqoriza
Vesikular Arbuskular (MVA) Pada Tanaman. Prosiding Seminar Pekan Serealia Nasional. Balai Penelitian
Tanaman Serealia, Sulawesi Selatan, 2010 . Trouvelot,  S.,  Bonneau,  L.,  Redecker,  D.,  Tuinen, D.V., Adrian, M., Wipf, D. 2016.
Arbuscular mycorrhiza symbiosis in viticulture: a review. Agronsustain, (35), pp.
1449-1467.
Yusnita,  Widodo  dan  Sudarsono.  2005.  In  vitro selection  of  peanut  somatic  embryos  on media containing culture filtrate of sclerotium  rolfsii  and  plantlet  regeneration . Hayati ,  12 (2), pp. 50-56.