## INVENTARISASI JAMUR PATOGEN TULAR-BENIH PADA LIMA VARIETAS PADI
Sifa Sobianti 1) , Loekas Soesanto 1*) , Suciati Hadi 2)
1) Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian Universitas Jenderal Soedirman
Jl. Dr. Soeparno 73, Purwokerto, 53123
2) Peneliti Balai Karantina Pertanian Kelas I Semarang
1*) Email korespondensi: lukassusanto26@gmail.com
Abstract. This research aimed to know (1) various species of seed-borne pathogenic fungi in five paddy  varieties,  and  (2)  germination  percentage  of  five  paddy  varieties.  The  research  was conducted at the Laboratory of Class I Agricultural Quarantine Institute Semarang, from March until May 2019. This research used completely Randomized Design with  five treatments and  five replicates. The treatments were Inpago Unsoed 1, Inpago Unsoed Parimas, IR64, Ciherang, and Situ  Bagendit  varieties.  Isolation  and  identification  of  seed-borne  pathogenic  fungi  was  carried out on blotter test and PDA observed under stereo and compound microscope, then compared to literatures.  Variables  observed  were  pathogenic  colonies  morphology,  fungal  pathogen morphology, and germination percentage. Result of the research showed that (1) in all varieties of paddy  seeds  there  are  seed-borne  pathogenic  fungi,  but  not  all  fungi  are  found  in  each  variety. Various  type  of  seed-borne  pathogenic  fungi  found  were  Alternaria  padwickii  Ganguly, Aspergillus  flavus  Link,  Aspergillus  niger  van  Tieghem,  Curvularia  lunata  (Wakker)  Boedjin, Curvularia pallescens Boedjin, Drechslera oryzae Breda de Haan, Fusarium semitectum Berk. & Rav.  [W&R,  G,B,J],  Rhizoctonia  solani  J.  G.  Kuhn,  Rhizopus  oryzae  Went  &  Prins.  Geerl.,  dan Tilletia barclayana Bref., and (2)  every paddy  variety differed seed germination percentage. The germination  percentage  was  found  from  IR64  to  Ciherang,  Inpago  Unsoed  1,  Inpago  Unsoed Parimas, and Situ Bagendit as 85.75, 81.75, 80.25, 76.5, and 70%, respectively.
Keywords: inventory, seed-borne pathogenic fungi, paddy varieties .
Abstrak . Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui (1) beragam spesies jamur patogen tular-benih pada  lima  varietas  padi,  dan  (2)  persentase  daya  kecambah  lima  varietas  padi.  Penelitian dilaksanakan  di  Laboratorium  Karantina  Pertanian  Kelas  I  Semarang,  dari  bulan  Maret  sampai dengan Mei 2019. Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap dengan 5 perlakuan dan 5  ulangan,  perlakuan  terdiri  atas  Varietas  Inpago  Unsoed  1,  Inpago  Unsoed  Parimas,  IR64, Ciherang,  dan  Situ  Bagendit.  Isolasi  dan  identifikasi  jamur  patogen  tular-benih  dilakukan  pada blotter  test dan  medium  PDA,  dengan  pengamatan  di  bawah  mikroskop  stereo  dan  kompon, kemudian  dibandingkan  dengan  pustaka.  Variabel  yang  diamati  yaitu  morfologi  koloni  patogen, morfologi  patogen,  dan  daya  kecambah.  Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  (1)  pada  semua varietas benih padi terdapat jamur patogen tular-benih, tetapi tidak semua jamur tersebut dijumpai pada  setiap  varietas.  Jenis  jamur  patogen  tular-benih  yang  dijumpai,  yaitu Alternaria  padwickii Ganguly, Aspergillus  flavus Link, Aspergillus  niger van  Tieghem, Curvularia  lunata (Wakker) Boedjin, Curvularia pallescens Boedjin, Drechslera oryzae Breda de Haan, Fusarium semitectum Berk.  &  Rav.  [W&R,  G,B,J], Rhizoctonia  solani J.  G.  Kuhn, Rhizopus  oryzae Went  &  Prins. Geerl.,  dan Tilletia  barclayana Bref.,  dan  (2)  uji  daya  kecambah  menunjukkan  bahwa  masing- masing  varietas  benih  padi  memilki  persentase  daya  kecambah  benih  yang  berbeda.  Daya kecambah  benih  berturut-turut  pada  varietas  IR64,  Ciherang,  Inpago  Unsoed  1,  Inpago  Unsoed Parimas, dan Situ Bagendit sebesar 85,75, 81,75, 80,25, 76,5, dan 70%. Kata kunci: inventarisasi, jamur patogen tular-benih, varietas padi.

## PENDAHULUAN
Tanaman  padi  ( Oryza  sativa L.)  merupakan  tanaman  pangan utama  di  Indonesia,  karena  sebagian
besar penduduk Indonesia menjadikan  beras  sebagai  bahan makanan pokok. Upaya untuk meningkatkan produktivitas padi
telah banyak dilakukan, tetapi
terdapat kendala yang dapat menurunkan produktivitas padi. Salah  satu  kendala  adalah  kurang tersedianya  benih  padi  bermutu (Saylendra, 2010). Benih bermutu merupakan benih  yang  memiliki  mutu  genetika, fisiologi,  dan  status  kesehatan  yang baik. Salah satu faktor yang menentukan  status  kesehatan  benih yaitu  bebas  dari  patogen  tular-benih baik  jamur,  bakteri,  maupun  virus patogen. Benih yang terinfeksi patogen akan tumbuh menjadi kecambah  dan  tanaman  yang  tidak sehat, sehingga tidak mampu berproduksi  optimum  (Hausufa  &
Rusae, 2018).
Upaya untuk mendapatkan benih  bebas  dari  kontaminasi  jamur patogen  perlu  dilakukan.  Salah  satu upaya  yang  dapat  dilakukan  adalah dengan  pengujian  kesehatan  benih.
Uji kesehatan benih dilakukan dengan teknik isolasi, dilanjut dengan  identifikasi.  Deteksi  dan identifikasi merupakan kegiatan penting  dalam  pengelolaan  penyakit tanaman, karena dengan diketahuinya  status  kesehatan  benih dan  identitas  patogen  terbawa  benih akan dapat ditentukan strategi pengendalian  lebih  awal  dan  tepat waktu  untuk  mencegah  terjadinya penyebaran, epidemi, dan kehilangan hasil (Cram & Fraedrich, 2010).
Informasi  tentang  identifikasi jamur  tular-benih,  khususnya  benih padi  masih  perlu  dikembangkan untuk meningkatkan kualitas benih di Indonesia. Berdasarkan
uraian tersebut, maka perlu dilakukan penelitian  untuk  inventarisasi  jamur patogen tular-benih dan untuk mengetahui  daya  kecambah  benih padi pada beberapa varietas.
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui  beragam  jenis  jamur patogen tular-benih pada lima varietas  padi,  dan  persentase  daya kecambah  benih  pada  lima  varietas padi.

## METODE PENELITIAN
Penelitian  ini  dilaksanakan  di Laboratoium Balai Karantina Pertanian  Kelas  I  Semarang,  yang dilakukan  pada  bulan  Maret  sampai dengan Mei 2019.

## Penyiapan Benih Padi
Benih  padi  yang  terdiri  atas  5 varietas  padi  (Inpago  Unsoed  1, Inpago  Unsoed  Parimas,  Ciherang, IR  64,  dan  Situ  Bagendit)  diambil masing-masing  sebanyak  400  benih secara  acak,  kemudian  diinkubasi dengan metode Blotter test . Sebanyak  40  benih  pada  masing- masing varietas diambil untuk diinkubasi pada medium PDA. Isolasi pada Kertas Saring Isolasi pada kertas saring ditujukan  untuk  mendapatkan  jamur yang menempel di bagian luar benih. Benih  padi  diambil  sebanyak  400 benih  dari  setiap  varietas.  Benih disterilkan permukaan dengan
direndam  NaOCL  1%  selama  3 menit,  kemudian  dibilas  dengan aquades dan dikering-anginkan. Sebanyak  3  lembar  kertas  saring steril  dilembapkan  dengan  air  steril, kemudian  dimasukkan  ke  dalam cawan  Petri.  Benih  diletakkan  pada masing-masing cawan Petri di Laminar  Air  Flow (LAF).  Cawan
Petri yang berisi benih padi kemudian  diinkubasi  selama  7  hari pada suhu ruang. Setelah 7 hari benih yang  diinkubasi  tersebut  diamati  di bawah mikroskop stereo dan
mikroskop  kompon  (Pratiwi et  al.,
2016).

## Isolasi dan Pemurnian Jamur
Benih  padi  diambil  sebanyak 40  benih  setiap  varietas.  Benih  padi disterilkan  permukaannya  dengan cara  direndam  NaOCl  1%  selama  3 menit  dan  dibilas  dengan  larutan aquades  steril  1  menit.  Benih ditiriskan  pada  kertas  tisu,  setelah kering  benih  diletakkan  ke  dalam cawan  Petri  berisi  medium  PDA yang  diperkaya  dengan  antibiotika. Peletakan  benih  dilakukan  secara aseptis, kemudian cawan Petri ditutup  dengan seal dan  diinkubasi
selama  7  hari  pada  suhu  ruang hingga jamur tumbuh (Sucipto et al. , 2015).  Koloni  jamur  yang  tumbuh selanjutnya  direisolasi  terpisah  atau dimurnikan pada medium PDA baru, diinkubasi  selama  7  hari  pada  suhu ruang,  sehingga  diperoleh  isolat murni,  yang  siap  digunakan  untuk identifikasi.
Variabel yang Diamati Pengamatan dilakukan  untuk mengetahui  beberapa  variabel  yaitu morfologi  jamur  secara  makroskopis dan  mikroskopis,  dan  menghitung persentase  perkecambahan  setiap varietas padi.
1. Morfologi koloni patogen (Makroskopis) Pengamatan makroskopis dilakukan  secara  visual  dengan menggunakan  mata  secara  langsung dan  mikroskop  stereo  untuk  melihat pertumbuhan  jamur  meliputi  warna dan bentuk permukaan koloni (Ningsih et al. , 2012).
2. Morfologi jamur patogen (Mikroskopis) Pengamatan mikroskopis dilakukan dengan diawali pembuatan preparat  setiap  jamur  yang  tumbuh
pada  padi.  Biakan  murni  secara aseptis dengan jarum ose diambil dan diletakkan  ke  permukaan gelas preparat dan diamati dengan mikroskop  (Ningsih et  al .,  2012). Pengamatan  mikroskopis  dilakukan dengan melihat  bentuk  fialid,  bentuk miselium, bentuk makrop dan mikrokonidium, serta ukuran konidium (Ngittu et al. , 2014).
3. Daya kecambah benih (%)
Perhitungan  persentase  daya kecambah dilakukan pada benih yang berkecambah normal dengan menggunakan rumus (ISTA, 1996):
Daya Kecambah=

## Analisis Data
Analisis pada tahap identifikasi dilakukan  secara  deskriptif  dengan mengamati ciri-ciri khas setiap isolat jamur  hasil  isolasi  dari  benih  padi dan  dibandingkan  dengan  pustaka Common  Laboratory  Seed  Health Testing Methods for Detecting Fungi
(Mathur & Kongsdal, 2003), Dematiaceous  Hyphomycetes (Ellis,
1997), A  Pictorial  Guide  for  the Identification  of  Mold  Fungi  on Sorghum  Grain (Navi et  al. ,  1999), dan  pustaka  lainnya.  Data  daya kecambah  yang  diperoleh  dianalisis menggunakan uji F dan bila menunjukkan hasil yang berpengaruh nyata  dilanjutkan  dengan  uji  BNJ pada taraf kesalahan 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Jamur Patogen Tular-Benih Padi Hasil pengamatan dan identifikasi  terhadap  isolat  jamur
yang  tumbuh  pada  metode blotter test dan medium agar di lima varietas benih  padi  menunjukkan  beragam jenis  jamur  tular-benih  (Tabel  1). Berdasarkan  pembanding  pustaka acuan, jamur tular-benih yang diidentifikasi adalah Alternaria padwickii Ganguly, Aspergillus flavus Link, Aspergillus  niger van Tieghem, Curvularia lunata (Wakker) Boedjin, Curvularia pallescens Boedjin, Drechslera oryzae Breda  de  Haan, Fusarium semitectum Berk.  &  Rav.  [W&R, G,B,J], Rhizoctonia  solani J.  G. Kuhn, Rhizopus  oryzae Went  & Prins. Geerl., dan Tilletia barclayana Bref.  Sebaran  jamur  tersebut  di  lima varietas benih padi dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel  1.  Jamur-jamur  tular-benih  di lima varietas benih padi. Jamur Varietas V1  V2  V3  V4  V5 Alternaria padwickii + + + + +
Aspergillus flavus + - - - + A. niger - + - + + Curvularia lunata - + - - - C. pallescens - + - - + Drechslera oryzae - - + - + Fusarium semitectum + + + + -
Rhizoctonia solani + + - - + Rhizopus oryzae + - - + + Tilletia barclayana - + - - - Keterangan:  +  =  dijumpai,  -  =  tidak dijumpai.  V1  =  Inpago  Unsoed 1, V2 = Inpago Unsoed Parimas, V3 = IR 64, V4 = Ciherang, dan
V5 = Situbagendit.
Dari  tabel  tersebut  diketahui
bahwa jamur tular-benih yang
dominan dijumpai adalah A. padwickii , A.  niger , F.  semitectum ,
R.  solani ,  dan Rhizopus  oryzae di lima  varietas  padi.  Hal  ini  diduga jamur  tersebut  merupakan  kelompok jamur tular-benih yang banyak ditemukan di daerah penanaman padi baik  sawah  maupun  lahan  kering, dan  dapat  menimbulkan  penyakit tanaman padi sejak di lapangan, juga dapat  menginfeksi  benih  dalam penyimpanan.  Infeksi Alternaria dan Fusarium dapat terjadi sejak tanaman padi  di  lapangan  karena  mikroba tersebut  merupakan  patogen  penting pada tanaman padi (Desjardins et al., 2000;  Quintana, et  al. ,  2017). Aspergillus dan Rhizopus hampir selalu  ditemukan  pada  benih  karena jamur tersebut adalah parasit fakultatif  yang  lebih  dikenal  dengan nama jamur gudang, karena ditemukan  pada  benih  di  tempat penyimpanan (Ibeabuchi & Olawuni, 2011; Uma & Wesely, 2013). Karakteristik Jamur Patogen Tular-Benih 1. Alternaria padwickii Ganguly Jamur Alternaria  padwickii menyebabkan  penyakit Stackburn pada tanaman padi (Mew & Gonzalez,  2002).  Hasil  pengamatan menunjukkan bahwa morfologi koloni  jamur  tular-benih  berwarna putih  dengan  permukaan  berbentuk rata,  bagian  tepi  koloni  rata  dan bertekstur  lengket  (Gambar  1a). Jamur  ini  mempunyai  konidium lurus,  memiliki  3-5  septa,  berbentuk paruh panjang, dan tanwarna. Konidiofor tanwarna dan panjang 95- 170  μm  (Gambar  2a).  Berdasarkan ciri-ciri  morfologi  yang  diamati, jamur  tersebut  diduga A.  padwickii , yang sesuai dengan Gambar 2b.
Menurut Mathur dan Kongsdal,
2003,  koloni A.  padwickii berwarna
putih,  pada  benih  yang  terinfeksi terkadang  dikelilingi  oleh  noda merah  muda-ungu  yang  merupakan indikasi  infeksi  oleh A.  padwickii (Gambar  1b).  Menurut  Quintana  et al.  (2017), konidiofor A.  padwickii
berwarna gelap, pendek atau panjang,  konidium  berwarna  gelap dan  terkadang  tanwarna  dengan  3-5
septa dan berbentuk kerucut (Gambar 2b) (Quintana et al. , 2017).
Gambar 1. Koloni Alternaria padwickii . Keterangan: a). A. padwickii perbesaran  50x;  b. A. padwickii (Mathur  &  Kongsdal,
2003) .
Gambar  2.  Konidium Alternaria padwickii . Keterangan: a). A. padwickii perbesaran  400x;  b. A. padwickii (Quintana et al. , 2017).
2. Aspergillus flavus Link
Aspergillus flavus dikelompokkan sebagai jamur gudang  yang  mampu  memproduksi mikotoksin  berbahaya,  dan  banyak mengkontaminasi bahan pangan (Alcaide-Molina et  al. ,  2009).  Hasil pengamatan  menunjukkan  bahwa jamur  tular-benih  ini  membentuk koloni  berwarna  hijau,  berbentuk bulat  dan  tepi  koloni  rata  (Gambar 3a). Morfologi jamur patogen menunjukkan  bentuk  seperti  pohon,
terdapat konidiofor, vesikel
berbentuk bulat, fialid, dan konidium tanwarna, berbentuk bulat, berukuran 800  x  (15–20)  µm,  dengan  vesikel berbentuk  bulat  sampai  agak  bulat. Konidiofor tanwarna, tegak dan tidak bercabang (Gambar 4a). Berdasarkan ciri-ciri  morfologi  yang  diamati, jamur tersebut diduga A. flavus . Pertumbuhan jamur pada benih yang  terinfeksi A.  flavus ditandai dengan  koloni  biasanya  menyebar dan berwarna kuning kehijauan pada benih, konidiofor berbentuk panjang, konidium bulat (Gambar 3b) (Mathur &  Kongsdal,  2003).  Konidiofor panjang, vesikel bulat dan didalamnya  terdapat  spora,  fialid timbul langsung dari seluruh
permukaan  vesikel.  Konidium  bulat dan menjadi bundar lonjong (Gambar 4b) (Campbell et al. , 2013).
Gambar 3.  Koloni Aspergillus  flavus dipermukaan  benih.  Keterangan:  a).
A. flavus perbesaran 50x (Dokumentasi  pribadi,  2019);  b. A.
flavus (Mathur & Kongsdal, 2003).
Gambar  4.  Konidium Aspergillus flavus .  Keterangan:  a). A.  flavus perbesaran 400x (Dokumentasi pribadi, 2019); b. A. flavus (Campbell et al. , 2013)).
3. Aspergillus niger van Tieghem
a b a b a b a b
Aspergillus  niger merupakan spesies yang dapat membuat pembusukan saat
pascapanen
(Dijksterhuis  &  Wosten,  2013).
Pengamatan  morfologi  koloni  jamur tular-benih  tampak  koloni  berbentuk bulat, tekstur lembut, tepi koloni rata, serta berwarna hitam. Koloni tumbuh dalam  waktu  tiga  hari  dengan pertumbuhan yang menyebar (Gambar  5a).  pengamatan  jamur patogen di bawah mikroskop
menunjukkan  konidium  berbentuk bulat dan berwarna hitam, konidiofor tanwarna,  panjang  berukuran  400- 3000 µm, lembut, dan tidak bersekat. Konidium  berwarna  coklat  sampai hitam,  sangat  kasar,  berbentuk  bulat, dengan  diameter  4-5  µm  (Gambar 6a). Berdasarkan  ciri-ciri  morfologi yang  diamati,  jamur  tersebut  diduga A. niger . Koloni A.  niger pada  benih tumbuh  perlahan,  miselium  basal berwarna  putih  sampai  hitam  samar. Struktur konidium, biasanya berwarna hitam atau berwarna coklat kehitaman,  menutupi  keseluruhan benih  (Gambar  5b)  (Navi et  al .,
1999).  Jamur A.  niger memiliki tekstur  butiran,  kepala  konidium berbentuk  bulat  berwarna  hitam, dinding  konidiofor  tebal,  halus,  dan tanwarna merupakan ciri khas jamur. Vesikel  berbentuk  bulat  hingga  semi bulat.  Fialid  terbentuk  pada  metula. Konidium  berbentuk  bulat  hingga semibulat,  berukuran  3,5  sampai  5 µm,  dan  berwarna  coklat  (Gambar 6b) (Campbell et al ., 2013).
Gambar  5.  Koloni Aspergillus  niger di  permukaan  benih.  Keterangan:  a). A. niger perbesaran 50x (Dokumentasi  pribadi,  2019);  b. A. niger (Navi et al ., 1999).
Gambar  6.  Konidium Aspergillus niger .  Keterangan:  a). A.  niger perbesaran 400x (Dokumentasi pribadi, 2019); b. A. niger (Campbell et al. , 2013).
4. Curvularia lunata (Wakker)
Boedjin
Curvularia  lunata merupakan jamur  yang  menyebabkan  penyakit kernel hitam (Ou, 1985). Pengamatan koloni jamur tular-benih menunjukkan koloni berwarna kelabu kehitaman, dengan
permukaan  halus  seperti  kapas, bagian  tepi  koloni  tidak  rata. Kecepatan  pertumbuhan  miselium dalam 5 hari pada suhu pertumbuhan 27 o C  (Gambar  7a).  Pengamatan morfologi  di  bawah  mikroskop menunjukkan  konidium  berbentuk melengkung,  berwarna  pucat  hingga hitam,  memiliki  3  septa,  sel  ketiga memiliki  ukuran  paling  besar  dan paling gelap (Gambar 8a). Berdasarkan  karakter  yang  telah diamati,  jamur  tersebut  diduga C. lunata .
a b a b
Hal ini didukung dengan pernyataan  Navi et  al .  (1999), C. lunata memiliki karakter makroskopis  berupa  koloni  pada benih berwarna coklat, abu-abu, atau hitam,  berbulu,  seperti  kapas  dan menyebar  bebas  (Gambar  7b).  Ciri mikroskopis C.  lunata memiliki konidium  3  septa.  Bentuk  konidium sebagian besar lengkung dan berwarna  hitam,  sel  ketiga  dari pangkalan  biasanya  yang  paling gelap,  ini  merupakan  ciri  khas  dari jamur C. lunata (Gambar 8b) (Benoit & Mathur, 1970).
Gambar 7. Koloni Curvularia lunata di  permukaan  benih.  Keterangan:  a).
C. lunata perbesaran 50x (Dokumentasi  pribadi,  2019);  b. C.
lunata (Navi et al ., 1999).
Gambar 8.  Konidium Curvularia lunata .  Keterangan:  a). C.  lunata perbesaran 400x (Dokumentasi pribadi,  2019);  b. C.  lunata (Benoit & Mathur, 1970).
5. Curvularia pallescens Boedjin Jamur Curvularia  pallescens
menunjukkan  warna  hitam  pada bebijian,  sehingga  mengurangi  nilai pasarnya  (Mew  &  Gonzalez,  2002).
Pengamatan koloni
jamur menunjukkan  koloni  berwarna  hitam dengan  permukaan  halus  seperti
kapas,  bagian  tepi  koloni  tidak  rata (Gambar  9a).  Pengamatan  morfologi jamur patogen menunjukkan konidium beberapa melengkung, memiliki 3 septa, sel ketiga memiliki ukuran  paling  besar,  sel  akhir berwarna  lebih  pucat.  Konidiofor tanwarna (Gambar 10a). Berdasarkan  karakteri  yang  telah diamati,  jamur  tersebut  diduga C.
pallescens .
Hal ini didukung dengan
pernyataan  Navi et  al .  (1999), C. pallescens memiliki  karakteristik
makroskopis  berupa  koloni  pada benih berwarna coklat, abu-abu, atau hitam, tingkat pertumbuhan miselium 7,0-7,7  cm  setelah  empat  hari (Gambar  9b).  Ciri  mikroskopis menunjukkan  konidium  berwarna coklat  pucat,  tidak  berkelompok, biasanya  lurus  atau  hanya  sedikit melengkung  dan  memiliki  3-4  septa. Konidiofor  berwarna  kelabu  atau kelabu  pucat  (Gambar  10b)  (Salleh, et al. , 1996).
Gambar 9. Koloni Curvularia pallescens di  permukaan  benih.
Keterangan: a). C. pallescens perbesaran 50x (Dokumentasi pribadi, 2019); b. C. pallescens (Navi et al ., 1999) . a b a b a a b b
Gambar  10.  Konidium Curvularia pallescens . Keterangan: a). C. pallescens perbesaran 400x (Dokumentasi  pribadi,  2019);  b. C. pallescens (Salleh et al ., 1996).
6. Drechslera oryzae Breda de
Haan Drechslera  oryzae merupakan jamur  yang  dapat  menyebabkan penyakit bercak coklat pada tanaman padi  (Abadi,  2003).  Pengamatan koloni jamur tular-benih menunjukkan  miselium  berwarna putih  dan  berubah  menjadi  kelabuan dengan pertumbuhan lambat (Gambar 11a). Pengamatan morfologi  di  bawah  mikroskop menunjukkan  konidium  berbentuk sedikit melengkung memiliki 9 septa, berukuran  30,4  ×  14,1  µm,  dan tanwarna (Gambar 12a). Berdasarkan karakteristik  yang  telah  diamati, jamur tersebut diduga D. oryzae . Drechslera  oryzae memiliki miselium  berwarna  kelabuan  hingga kelabu  kehijauan.  Miselium  tumbuh dengan  penyebaran  lambat  (Gambar 11b).  Ciri  mikroskopis  konidiofor tidak berkelompok, lurus atau terkadang  membungkuk,  tanwarna dan  membawa  konidium  di  ujung dan  samping.  Konidium  berwarna coklat  tua,  berbentuk  melengkung (sedikit  bengkok  di  satu  sisi),  dan berukuran (29-33) × (13,5-14,8) µm. Konidium  memiliki  7-10  septa, konidium  terbesar  memiliki  13  septa (Gambar  12b)  (Mew  &  Gonzalez,
2002). Gambar  11.  Koloni Drechslera oryzae di permukaan benih.
Keterangan: a). D. oryzae perbesaran 50x  (Dokumentasi  pribadi,  2019);  b. D. oryzae (Gonzales et al., 2014).
Gambar  12.  Konidium Drechslera oryzae .  Keterangan:  a). D.  oryzae perbesaran 400x (Dokumentasi pribadi, 2019); b. D. oryzae (Mew & Gonzalez, 2002).
7. Fusarium semitectum Berk. &
Rav. [W&R, G,B,J] F. semitectum dilaporkan dapat menyebabkan  layu  dan  rebah  semai pada  bibit  padi  (Agarwal et  al. , 1989).  Pengamatan  koloni  jamur tular-benih,  pada  seluruh  permukaan benih  terdapat  miselium  berwarna putih hingga oranye seiring pertumbuhan dan menimbulkan gejala  infeksi  berwarna  coklat  tua pada benih (Gambar 13a). Pengamatan morfologi jamur patogen menunjukkan konidium lurus atau sedikit melengkung, tanwarna  dan  memiliki  7  septa. Bentuk  apikal  konidium  meruncing atau melengkung secara mikroskopis hifa  tanwarna  dan  bersekat  (Gambar 14a).  Berdasarkan  karakter  yang telah  diamati,  jamur  tersebut  diduga F. semitectum . Ciri makroskopis F. semitectum memiliki  koloni  pada benih  berwarna  putih  dan  berubah menjadi  merah  muda  atau  oranye. Permukaan  bawah  koloni  berwarna coklat  (Navi et  al .,  1999)  (Gambar 13b). Ciri mikroskopis F. semitectum a
a b b
terdapat konidiofor yang terbentuk di miselium memiliki struktur percabangan yang longgar. Konidium  tanwarna  memiliki  3-7 septa. Bentuk apikal konidium berlekuk  dengan  sel  basal  berbentuk lurus (Gambar 14b) (Booth, 1971). Gambar 13. Koloni Fusarium semitectum di  permukaan  benih.
Keterangan: a). F. semitectum perbesaran 50x (Dokumentasi pribadi,  2019);  b. F.  semitectum
(Navi et al ., 1999).
Gambar 14. Makrokonidium Fusarium  semitectum .  Keterangan:
a). F.  semitectum perbesaran  400x (Dokumentasi  pribadi,  2019);  b. F. semitectum (Booth, 1971).
8. Rhizoctonia solani J. G. Kuhn. Jamur R.  solani menyebabkan penyakit hawar pelepah pada tanaman  padi  (Nuryanto,  2017). Pengamatan  morfologi  jamur  tular- benih,  memiliki  miselium  berwarna hitam  keputihan,  seperti  benang,
pada  benih  terdapat  noda  hitam (Gambar 15a). Pengamatan morfologi  di  bawah  mikroskop menunjukkan percabangan hifa membentuk  90 0 dan  tidak  berwarna,
hifanya panjang dan bercabang, pada titik percabangannya terdapat lekukan, dan bersekat (Gambar 16a).
Berdasarkan  karakteristik  yang  telah diamati,  jamur  tersebut  diduga R. solani . Ciri  makroskopis  dapat  dilihat jamur  menghasilkan  miselium  tebal, coklat  hingga  coklat  tua  yang menyebar  secara  memancar  dari benih  yang  terinfeksi  pada  kertas saring  dan  bahkan  dapat  menutupi seluruh  cawan  Petri  seperti  yang terlihat  pada  gambar  15b  (Mathur  & Kongsdal,  2003).  Ciri  mikroskopis menunjukkan Hifa R. solani memiliki  percabangan  pada  sudut 90°  yang  merupakan  ciri  khas  jamur (Gambar 16b), pada titik percabangannya  terdapat  lekukan, lebar  hifa  6–10  µm,  tanwarna, bersekat (Sumartini, 2011).
Gambar  15.  Koloni Rhizoctonia solani di permukaan benih.
Keterangan:  a). R.  solani perbesaran 50x  (Dokumentasi  pribadi,  2019);  b. R.  solani (Mathur  &  Kongsdal, 2003).
Gambar 16. Hifa Rhizoctonia solani . Keterangan:  a). R.  solani perbesaran 400x  (Dokumentasi  pribadi,  2019);
b. R. solani (Sumartini, 2011).
9. Rhizopus oryzae Went & Prins.
Geerl.
Rhizopu s  merupakan  jamur yang  menyebabkan  penyakit  pada
a b a a b b a b
malai  atau  gabah.  Gabah  yang terserang  terdapat  bercak  coklat sampai kehitaman dan gabah menjadi hampa (Semangun, 2008). Pengamatan  morfologi  jamur  tular- benih,  memiliki  koloni  berwarna putih  menutupi  seluruh  benih  dan meluas  ke  kertas  blotter,  sifat penyebaran  jamur  cepat.  Koloni berwarna  putih  dan  menjadi  abu-abu dengan  bertambahnya  usia  biakan (Gambar 17a). Pengamatan morfologi  di  bawah  mikroskop terdapat  kolumella,  sporangium,  dan sporangiofor.  Spora  berwarna  hitam dan  bentuk  spora  menyerupai  bulat sampai oval. Sporangiofor bertangkai tumbuh keatas mengandung sporangium.  Sporangium  berwarna hitam  dan  columella  berbentuk  bulat (Gambar 18a). Berdasarkan karakteristik  yang  telah  diamati, jamur tersebut diduga R. oryzae .
R.  oryzae memiliki  koloni berwarna  putih  dan  menjadi  kebuan dengan  bertambahnya  usia  biakan (Gambar  17b).  Ciri  mikroskopis R. oryzae memiliki  sporangiofor  yang tegak, bercabang berwarna kekuningan hingga coklat tua, rhizoid terhubung langsung ke sporangiofor, yang mengandung
sporangium.  Sporangium  berbentuk bulat berwarna coklat tua kehitaman, columella  berbentuk  bulat  (Gambar 18b) (Watanabe, 2018).
Gambar 17. Koloni Rhizopus oryzae . Keterangan: a). R. oryzae di permukaan  benih,  perbesaran  50x
(Dokumentasi  pribadi,  2019);  b. R. oryzae (Watanabe, 2018).
Gambar  18.  Kolumela Rhizopus oryzae .  Keterangan:  a). R.  oryzae perbesaran 400x (Dokumentasi pribadi, 2019); b. R. oryzae (Kwon et al. , 2010).
10. Tilletia barclayana Bref.
Kernel  smut  adalah  penyakit jamur  pada  padi  yang  disebabkan oleh Tilletia barclayana (Cheraghian,  2019).  Penyakit  ini terlihat  pada  saat  panen.  Bebijian yang terinfeksi dapat hancur seluruhnya  atau  sebagian  (Elshafey, 2018).
Pengamatan  morfologi  jamur tular-benih,  terdapat  spora  berwarna hitam berbentuk bulat. Benih berubah  warna  menjadi  kehitaman dan hampa (Gambar
19a).
Pengamatan  morfologi  di  bawah mikroskop  terdapat  konidium  bulat, teliospore  berduri  dan  berwarna hitam, berukuran 18-32,9 µm (Gambar 20a). Berdasarkan karakteristik  yang  telah  diamati, jamur tersebut diduga T. barclayana .
Hal ini didukung dengan pernyataan (NAPPO, 2014), makroskopis T.  barclayana ditandai dengan penggantian endosperma kernel  dengan  massa  spora  hitam. Benih  menjadi  hampa  dan  terdapat pustula hitam (Gambar 19b). Karakteristik mikroskopis T.
barclayana memiliki konidium berwarna  kemerahan  atau  coklat. a b a b
Berbentuk  bulat.  Teliospore  berduri dan panjang (Gambar 20b).
Gambar 19. Koloni Tilletia barclayana di  permukaan  benih.
Keterangan: a). T. barclayana perbesaran 50x (Dokumentasi pribadi,  2019);  b. T.  barclayana (NAPPO, 2014). Gambar 20. Konidium Tilletia barclayana . Keterangan: a). T.
barclayana perbesaran 400x (Dokumentasi  pribadi,  2019);  b. T.
barclayana (NAPPO, 2014).

## Daya Kecambah Benih
Tabel 2. Daya kecambah benih Perlakuan Daya Kecambah Benih (%) V1 80,25 b V2 76,5   b V3 85,75 c V4 81,75 bc V5 70      a Keterangan:  Angka  diikuti  huruf yang  berbeda  pada  kolom  sama menunjukkan berbeda nyata pada  uji BNJ  dengan  taraf  kesalahan  5%. V1=  varietas  Inpago  Unsoed  1,  V2= varietas  Inpago  Unsoed  Parimas, V3=  varietas  IR64,  V4=  varietas
Ciherang,  dan  V5=  varietas  Situ Bagendit.
Berdasarkan  hasil  penelitian pada Tabel 2, masing-masing varietas  padi  mempunyai  persentase perkecambahan yang berbeda. Perbedaan daya kecambah ini diduga disebabkan  oleh  faktor  genetika tanaman  dan  faktor  luar atau lingkungan.  Hal  ini  sesuai  dengan pendapat  Vidotto  &  Ferrero  (2000) dan  Miransari  &  Smith  (2014), bahwa  kemampuan  benih  untuk berkecambah dipengaruhi oleh tindakan  budidaya  benih,  kondisi lingkungan, dan status dormasi benih untuk mengelola perkecambahan benih. Daya kecambah benih berturut-turut  pada  varietas  IR64, Ciherang,  Inpago  Unsoed  1,  Inpago Unsoed  Parimas,  dan  Situ  Bagendit sebesar  85,75;  81,75;  80,25;  76,5;
dan 70%.
Hal ini sesuai dengan pernyataan Amteme dan Tefa (2018), bahwa  sertifikasi  untuk  benih  padi mensyaratkan  nilai  standar  daya berkecambah  yang  tergolong  tinggi yaitu  minimum  80%.  Halindra et  al. (2017)  menambahkan,  sekitar  58,3% dari lahan Kalimantan Barat ditanami varietas  unggul  seperti  IR  64,  padi gogo,  dan  Ciherang  yang  memiliki keunggulan yaitu mutu benih berkualitas tinggi dengan daya tumbuh  minimum  80%,  malai  yang panjang  dan  lebar,  rasa  nasi  pada umumnya  pulen,  dan  beberapa  di antaranya mengeluarkan aroma.
Pengamatan  benih  padi  yang
tidak mampu berkecambah, umumnya menunjukkan gejala berupa diselimutinya permukaan benih oleh jamur patogen tular-benih
a b
a b
berupa miselium (Gambar 21a). Pada benih yang berkecambah dan terserang  jamur  menunjukkan  gejala benih menjadi kehitaman dan diselimuti  oleh  miselium  (Gambar 21b).
Gambar  21.  Gejala  penyakit  pada perkecambahan benih: a). Permukaan benih  diselimuti  oleh  miselium sehingga  tidak  berkecambah;  b. Benih  berkecambah  dan  terdapat bercak (Dokumentasi pribadi, 2019).
Keberadaan  jamur  pada  benih dapat menimbulkan terjadinya penyakit mulai fase benih,
persemaian,  tanaman  muda  dan dewasa.  Deteksi  jamur  pada  benih dapat  digunakan  untuk  mendapatkan tindakan apa yang paling tepat untuk penanganan jamur tular-benih, supaya  benih  dapat  tumbuh  dan menghasilkan  tanaman  yang  sehat.
Gejala infeksi jamur memiliki dampak  yang  berbeda  pada  benih (Ramdan dan Kalsum, 2017).

## SIMPULAN
Simpulan  hasil  penelitian  ini  adalah:
1) Jenis  jamur  patogen  tular-benih yang dijumpai pada benih padi, yaitu
Alternaria padwickii Ganguly, Aspergillus  flavus Link, Aspergillus niger van  Tieghem, Curvularia lunata (Wakker) Boedjin, Curvularia pallescens Boedjin, Drechslera oryzae Breda  de  Haan, Fusarium semitectum Berk.  &  Rav.  [W&R, G,B,J], Rhizoctonia  solani J.  G.
Kuhn, Rhizopus  oryzae Went  & Prins. Geerl., dan Tilletia barclayana Bref. 2) Hasil  uji  daya  kecambah menunjukkan  bahwa  masing-masing varietas benih padi memilki persentase  daya  kecambah  benih yang berbeda. Persentase daya kecambah  benih yang  tertinggi secara  berturut-turut  terdapat  pada varietas  IR64,  Ciherang,  Inpago Unsoed  1,  Inpago  Unsoed  Parimas,
dan  Situ  Bagendit  sebesar  85,75; 81,75; 80,25; 76,50; dan 70,00%.

## DAFTAR PUSTAKA
Abadi,  A.  (2003). Ilmu  Penyakit Tumbuhan . Bayu Media.
Agarwal, P. C., Mortensen, C. N., &
Mathur,  S.  B.  (1989). Seed- borne Diseases and Seed Health Testing of Rice . Commonwealth Mycological  Institute.  UK.  106 pp. Alcaide-Molina,  M.,  Ruiz-Jiménez, J.,  Mata-Granados,  J.  M.,  & Luque de Castro, M. D. (2009).
High through-put aflatoxin determination  in  plant  material by automated solidphase extraction  on-line  coupled  to laser-induced fluorescence screening  and  determination  by liquid chromatography-triple quadrupole  mass  spectrometry. J  Chromatogr  A , 1216 (7),
1115–1125.
Amteme,  K.,  &  Tefa,  A.  (2018).
Identifikasi  Cendawan  Patogen pada  Beberapa  Varietas  Benih Padi  Sawah Berdasarkan Model Penyimpanan. Savana Cendana ,
3 (01),
4–7. https://doi.org/10.32938/sc.v3i0 1.150
Benoit,  M.  A.,  &  Mathur,  S.  B.
a b
(1970). Identifiacation of Curvularia  on  rice  seed. Proc.
Int.  Seed  Test.  Ass. , 35 (1),  99–
119.
Booth,  C.  (1971). The  Genus Fusarium . Commonwealth Mycological  Institute.  England. 128 pp. Campbell,  C.  K.,  Jhonson,  E.  M.,  & Warnock, D. (2013). Identification of Pathogenic
Fungi, (Second  Edi).  Wiley- Blackwell. Hoboken. 337 pp. Cheraghian,  A.  (2019). A  Guide  for Diagnosis  and  Direction  of Quarantine Pests Black Smut of Rice  Tilletia  barclayana  (Bref.) Sacc.  & P. Syd. Basidiomycota: Tilletiaceae. Bureau  of  Plant Pest  Surveillance  and  Pest  Risk Analysis.
Cram,  M.  M.,  &  Fraedrich,  S.  W.
(2010). Seed diseases and seedborne  pathogens  of  North America. Tree  Planters’  Notes , 53 (2), 35–44.
Desjardins, A. E., Manandhar, H. K., Plattner,  R.  D.,  Manandhar,  G. G.,  Poling,  S.  M.,  &  Maragos, C.  M.  (2000).  Fusarium  species from nepalese rice and production  of  mycotoxins  and gibberellic  acid  by  selected species. Applied and Environmental Microbiology , 66 (3),
1020–1025. https://doi.org/10.1128/AEM.66 .3.1020-1025.2000 Dijksterhuis,  J.,  &  Wosten,  H. (2013). Development of
Aspergillus niger . CBS-KNAW. Netherlands. 96 pp. Ellis,  M.  B.  (1997). Dematiaceous
Hypomycetes .  Commonwealth
Mycological  Institute.  England.
604 pp.
Elshafey, R. A. S. (2018). Biology of rice  kernel  smut  disease  causal organism  Tilletia  barclayana and  its  molecular  identification.
Journal  of  Phytopathology  and Pest  Management , 5 (2),  108–
128.
Gonzales,  P.,  Gonzales,  E.,  Huelma, C., Almodiel, M., & Dumlao, J. (2014). Fungi – rice . IRRI, Seed Health Unit, Los Banos, Philippines. Halindra,  Y.  M.,  Rusmiyanto,  E.,  & Linda, R. (2017). Perkecambahan Benih Padi (Oryza  sativa  L.)  Lokal  Asal Kalimantan  Barat  Berdasarkan Tingkat Salinitas. Jurnal Protobiont , 6 (3), 295–302. Hausufa,  A.,  &  Rusae,  A.  (2018). Cendawan Patogen pada Beberapa  Varietas  Jagung  di Kabupaten Timor Tengah Utara.
Savana  Cendana , 3 (02),  21–23.
https://doi.org/10.32938/sc.v3i0 2.153 Ibeabuchi,  C.,  &  Olawuni,  I.  (2011).
Isolation  and  identification  of spoilage  fungi  associated  with rice  (Oryzae  sativa),  millet (Pennisetum  americanum)  and soybean. International  Journal of Agriculture and Rural
Development , 14 (2), 614–616.
ISTA. (1996). International Rules for
Seed  Testing,  Rules  1996 .  Seed Science  and  Technology  24 (supplement). Zurich, Switzerland. Kwon,  J.-H.,  Kim,  J.,  Lee,  Y.-H.,  & Shim, H.-S. (2010).  Soft Rot on
Cucumis  melo  var.  makuwa Caused  by  Rhizopus  oryzae  .
Mycobiology , 38 (4), 336.
https://doi.org/10.4489/myco.20 10.38.4.336
Mathur,  S.  B.,  &  Kongsdal,  O. (2003). Common  Laboratory Seed  Health  Testing  Methods for  Detecting  Fungi .  Bassedorf (CH): International Seed Testing Assosiation. 275 pp. Mew, T. W., & Gonzalez, P. (2002). A Handbook of Rice Seed-borne
Fungi . IRRI. Los Banos. 83 pp. Miransari,  M.,  &  Smith,  D.  L. (2014).  Plant  hormones  and
seed germination. Environmental and Experimental Botany , 99 ,
110=121.
https://doi.org/0.1016/j.envexpb ot.2013.11.005
NAPPO.  (2014). NAPPO  Standards for  Phytosanitary  Measures  ( RSPM ) A Harmonized Procedure  for  Morphologically Distinguishing  Teliospores  of Karnal  Bunt  from  Ryegrass Bunt  ,  Rice  Smut  and  Similar Smuts .  The  Secretariat  of  the North American Plant Protection Organization. America 12 p. Navi,  S.  S.,  Singh,  S.  D.,  Lenne,  J. M., Kirk, P. M., & Brayford, D.
(1999).  New  grain  mold  fungi of  sorghum  in  India. Journal  of Mycology  and  Plant  Pathology , 27 , 104–105.
Ngittu,  Y.  S.,  Mantiri,  F.  R.,  Tallei, T. E., Febby, D.,  & Kandou, E.
F.  (2014).  Identifikasi  genus jamur Fusarium yang menginfeksi eceng gondok (Eichhornia crassipes) di  Danau
Tondano. Pharmacon  Jurnal
Ilmiah  Farmasi , 3 (3),  2302– 2493.
Ningsih,  R.,  Mukarlina,  &  Linda,  R.
(2012).  Isolasi  dan  identifikasi jamur dari organ bergejala sakit
pada tanaman jeruk siam (Citrus nobilis var.
microcarpa).
Probiont , 1 (1), 1–7.
Nuryanto, B. (2017). Penyakit Hawar Pelepah  (Rhizoctonia  solani) pada Padi dan Taktik Pengelolaannya. Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia , 21 (2), 63. https://doi.org/10.22146/jpti.224 94 Ou,  S.  H.  (1985). Rice  Diseases . Commonwealth Mycological
Institute.  Kew  Surrey.  England. 411 pp. Pratiwi,  N.  W.,  Juliantari,  E.,  & Napsiyah, L. K. (2016). Identifikasi  Jamur  Penyebab Penyakit Pascapanen pada Beberapa Komoditas Bahan Pangan. Jurnal  Riau  Biologia ,
1 (14), 86–94.
Quintana, L., Gutierrez, S., Maidana,
M.,  Arriola,  M.,  &  Ortiz,  A.
(2017). Morphological characterization  of  Alternaria padwickii  in  rice  leaves  (Oryza sativa  L.)  and  its  prevalence  in the  departments  of  itapua, misiones  and  caazapa. IJAR ,
5 (15), 1109–1112. Ramdan, E. P., & Kalsum, U. (2017). Inventarisasi  cendawan  terbawa benih  padi,  kedelai,  dan  cabai. Jurnal  Pertanian  Presisi , 1 (1),
48–58.
Salleh,  B.,  Safinat,  A.,  Julia,  L.,  & Teo,  C.  H.  (1996).  Brow  spot caused by Curvularia spp. a new disease  of  asparagus. Biotropia , 90 (9), 26–37. Saylendra,  A.  (2010).  Identifikasi cendawan  terbawa  benih  padi dari Kecamatan Ciruas Kabupaten Serang Banten. Jurnal Agroekotek , 2 (2), 24–27.
Semangun,  H.  (2008). Penyakit- Penyakit  Tanaman  Pangan  di Indonesia . Gadjah Mada University  Press.  Yogyakarta. 449 hal. Sucipto, I., Munif, A., Suryadi, Y., & Tondok, E. T. (2015). Eksplorasi  Cendawan  Endofit Asal Padi Sawah sebagai Agens Pengendali  Penyakit  Blas  pada Padi Sawah. Jurnal Fitopatologi Indonesia , 11 (6), 211–218.
https://doi.org/10.14692/jfi.11.6 .211 Sumartini.  (2011).  Penyakit  tular tanah  (Sclerotium  rolfsii  dan Rhizoctonia solani) pada tanaman  kacang-kacangan  dan umbi-umbian serta cara pengendaliannya. Jurnal Litbang  Pertanian , 31 (1),  27–
34.
Uma, V., & Wesely, E. (2013). Seed borne  fungi  of  rice  from  South
Tamil  Nadu. J.  Acad.  Indus.
Res , 1 (March), 612–614.
Vidotto,  F.,  &  Ferrero,  A.  (2000).
Germination  behaviour  of  red rice  (Oryza  sativa  L.)  seeds  in field  and  laboratory  conditions.
Agronomie, EDP Sciences , 20 (4), 375–382. https://doi.org/10.1051/agro:200 0134. Watanabe,  T.  (2018). Pictorial  Atlas of Soilbone Fungal Plant Pathogens  and  Diseases .  CRC Press. Florida. 298 pp.