## Potensi Antimikroba Ekstrak Daun Kemangi dan Daun Kelor Pada Bakteri
Salmonella typhi
Ali Napiah Nasution 1* , Farida Meisari Harahap 1 , Sri Wahyuni Nasution 1
1 Departemen Kedokteran Tropis, Universitas Prima Indonesia, Medan, Sumatera Utara, Indonesia

## A R T I C L E   I N F O
O R I G I N A L   A R T I C L E Article Type: Research ABSTRACT
Introduction: Pharmacological treatment of typhoid fever faces major challenges, including microbial  resistance  to conventional drugs.  Therefore,  it  is necessary to develop alternative treatments to produce  treatments  that are more effective, efficient and  safe in inhibiting the growth of Salmonella typhi bacteria. With the many benefits of moringa and basil leaves, this study aims to compare the efficacy of moringa and basil leaves against S. typhi bacteria. This study is a descriptive study using the disc diffusion method. The research was conducted at the Microbiology Laboratory of the Faculty of Medicine, Universitas Sumatera Utara in April- May  2023.  The  samples  used  in  this  study  were  basil  and  moringa  leaf  extracts.  The antibacterial  efficacy  test  of  moringa  leaf  extract  against  S.  typhi  was  carried  out  with  5 concentrations, namely 15%, 30%, 45%, 60%, 75%, with chloramphenicol as positive control and aquabidest as negative control, with 3 replicates. The results showed that ethanol extract of basil leaves was effective in inhibiting the growth of S. typhi bacteria, while ethanol extract of moringa leaves was less effective against S. typhi bacteria. Based on the classification of inhibition zone, ethanol extract of basil leaves has a strong inhibitory response to the growth of S. typhi, the best concentration is 15% with an average inhibition zone diameter of 12.06 mm. While in the ethanolic extract of moringa leaves, the best concentration is 15% with an average inhibition zone diameter of 10.7 mm.
Keywords: Inhibition, Moringa Leaves, Basil Leaves, Salmonella typhi.
Article History: Received: 08/09/2023 Accepted: 12/09/2023
Corresponding author Email:
alinapiahnasution@unprimdn.ac.id

## ABSTRAK
Pendahuluan: Terapi farmakologi pada penyakit demam tifoid menghadapi tantangan besar seperti resistensi mikroba pada obat-obatan konvensional. Oleh karena itu, diperlukan pengembangan  alternatif  pengobatan  agar  menghasilkan  pengobatan  yang  lebih  efektif, efisien  dan  aman  dalam  menghambat  pertumbuhan  bakteri  Salmonella  typhi.  Dengan banyaknya  manfaat  daun  kelor  dan  daun  kemangi,  studi  ini  bertujuan  membandingkan efektivitas daun kelor dan daun kemangi terhadap bakteri S. typhi. Penelitian ini merupakan penelitian  deskriptif  yang  menggunakan  metode  difusi  dengan  kertas  cakram.  Penelitian dilaksanakan di laboratorium Mikrobiologi Fakultas Kedokteran Universitas Sumatera Utara, pada  April-Mei  2023.  Sampel  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah  ekstrak  daun kemangi  dan  daun  kelor.  Uji  efektivitas  antibakteri  ekstrak  daun  kelor  terhadap  S.  typhi dilakukan dengan 5 konsentrasi, yaitu 15%, 30%, 45%, 60%, 75%, dengan chloramphenicol sebagai kontrol positif dan aquabidest sebagai kontrol negatif, dengan 3 kali pengulangan. Hasil  penelitian  menunjukkan  ekstrak  etanol  daun  kemangi  efektif  dalam  menghambat pertumbuhan bakteri S. typhi sedangkan ekstrak etanol daun kelor kurang efektif terhadap bakteri S. typhi. Berdasarkan klasifikasi zona hambat, ekstrak etanol daun kemangi memiliki respon  daya  hambat  yang  kuat  terhadap  pertumbuhan  S.  typhi,  konsentrasi  terbaiknya adalah 15% dengan rata-rata diameter zona hambatnya 12,06 mm. Sedangkan pada ekstrak etanol  daun  kelor,  konsentrasi  terbaiknya  adalah  15%  dengan  rata-rata  diameter  zona hambatnya 10,7 mm.
Kata Kunci: Daya Hambat, Daun Kelor, Daun Kemangi, Salmonella typhi.

## AHMAR METASTASIS HEALTH JOURNAL
Available online at: http://journal.ahmareduc.or.id/index.php/AMHJ Vol. 3. No. 3. Desember 2023, Halaman 154-160 P-ISSN: 2797-6483  E-ISSN: 2797-4952

## PENDAHULUAN
Demam tifoid atau tifus merupakan penyakit yang disebabkan oleh infeksi bakteri Salmonella typhi ( S. typhi ) dan biasanya ditularkan melalui konsumsi makanan atau air yang terkontaminasi (Barnett, 2016). Tifoid memiliki gejala utama berupa demam tinggi dan gejala lain termasuk mual, sakit perut dan buang air besar yang tidak normal (Subhan & Sadiq, 2017). Tifoid menjadi beban penyakit  pada  sebagian  besar  negara-negara  berpenghasilan  rendah  dan  menengah  di  mana kondisi  air  dan  sanitasi  yang  buruk,  terutama  di  kawasan  miskin  (Crump,  Sjölund-Karlsson, Gordon, & Parry, 2015; Wain, Hendriksen, Mikoleit, Keddy, & Ochiai, 2015). Diperkirakan selama beberapa tahun terakhir, demam tifoid menyebabkan sekitar 21 juta kasus dan 200.000-600.000 kematian setiap tahunnya, 90% di antaranya terjadi di Asia. Negara-negara dengan endemisitas tinggi,  yang  diklasifikasikan  sebagai  daerah  berisiko  tinggi  (insiden  >100  kasus  per  100.000 penduduk  per  tahun),  termasuk  Asia  Selatan,  Asia  Tengah,  dan  Asia  Tenggara  (Saporito, Colomba, & Titone, 2017).
Penatalaksanaan  demam  tifoid  biasanya  menggunakan  antibiotik  seperti  kloramfenikol, ciprofloxacin,ofloxacin,  atau  azithromycin.  Terapi  kombinasi  fluoroquinolon,  sefalosporin,  dan makrolida  telah  digunakan  pada  mereka  yang  gagal  merespons  terapi  standar  (Bhutta,  2006; Crump  et  al.,  2015).  Munculnya  resistensi  antibiotik  pada  mikroba S.  typhi ,  terutama  di  daerah endemik,  menyebabkan  berkurangnya  pilihan  pengobatan  yang  efektif,  peningkatan  biaya pengobatan dan komplikasi serius serta kematian (Saporito et al., 2017). Beberapa waktu terakhir, penggunaan terapi non farmakologi berkembang cukup pesat pada berbagai jenis penyakit. Salah satu yang populer adalah pengobatan menggunakan bahan-bahan herbal. Indonesia yang kaya akan  berbagai  jenis  tumbuhan  menjadi  potensi  yang  menjanjikan  untuk  pengembangan  obat alternatif. Pada konteks studi ini, daun kelor ( Moringa oleifera Lamk ) dan daun kemangi ( Ocinum basilicum  L. )  menjadi  fokus  penelitian  untuk  mengetahui  potensi  daya  hambat  pertumbuhan S. typhi.
Di Indonesia, tanaman kelor banyak tumbuh dan banyak digunakan oleh masyarakat karena mulai  dari  akar,  batang,  daun,  buah  dan  bijinya  memiliki  banyak  manfaat.  Salah  satu  yang dimanfaatkan adalah daunnya (Salim & Eliyarti, 2019) . Setiap daerah di Indonesia tanaman kelor dikenal  dengan  nama  yang  berbeda  seperti  kelor  (di  Jawa,  Sunda,  Bali,  Lampung),  barunggai (Sumatera),  keloro  (Bugis),  maronggih  (Flores).  Tanaman  kelor  merupakan  genus Moringa , spesies Moringa  oleifera  Lamk ,  daun  kelor  berbentuk  bulat  telur  dengan  tepi  yang  rata  dan ukurannya kecil, tersusun majemuk dalam satu tangkai (Aminah, Tezar, & Yanis, 2015) . Daun kelor diteliti  memiliki  kandungan  flavonoid,  saponin,  tanin  dan  polifenol  yang  berfungsi  sebagai antimikroba  (Veronika,  Purwijantiningsih,  &  Pranata,  2014).  Selain  itu,  daun  kelor  mengandung fenol cukup tinggi, yaitu 3,4% pada daun kelor segar dan 1,6% pada daun yang telah diekstrak yang berguna sebagai antioksidan (Aminah et al., 2015).
Tanaman  kemangi  ( Ocinum  basilicum  L. )  merupakan  tanaman  liar  yang  tidak  sulit  untuk tumbuh di alam liar dan biasanya dibudidayakan khususnya oleh masyarakat. Secara tradisional tanaman  kemangi  biasa  digunakan  untuk  mengobati  sakit  perut,  demam,  menghilangkan  bau mulut,  dan  sebagai  sayur  mayur.  Tumbuhan  kemangi  mempunyai  zat  aktif  seperti  Methyl cinnamate,  minyak  linalool, α-cubebene,  α-farnesene,  1,8-cineol , Eugenol,  β-ocimene  dan caryophyllene (Zahra  &  Iskandar,  2017).  Tanaman  kemangi  juga  memilki  efek,  antibakteri, antidiabetik  dan  antihiperglikemik  serta  memiliki  efektifitas  antioksidan.  Tanaman  kemangi  ini memiliki kandungan fenol, saponin, tannin, alkaloid, steroid dan flavonoid yang bersifat antibakteri (Chandra, Sari, Misfadhila, Azizah, & Asra, 2019). Flavonoid yang dikandung memiliki mekanisme yang  merusak  bagian  dinding  sel  bakteri  yang  mengakibatkan  luruhnya  sel  serta  menghambat proses sintesa protein yang serupa dengan cara kerja dari antibiotik (Threenesia & Ramadhian, 2019).  Selain  kandungan  flavonoid,  kandungan  fenol  juga  mempunyai  mekanisme  anti  bakteri dengan  cara  menghilangkan  mekromolekul  serta  kation  dari  sel  sehingga  pertumbuhan  dari  sel akan terganggu dan mungkin mati (Larasati & Apriliana, 2016).
Berkembangnya  resistensi  antiobiotik  membuka  peluang  pengembangan  alternatif pengobatan  agar  menghasilkan  pengobatan  yang  lebih  efektif,  efisien  dan  aman  dalam menghambat pertumbuhan bakteri Salmonella typhi . Penelitian ini bertujuan untuk mengidentifikasi potensi  ekstrak  daun  kemangi  dan  daun  kelor  dalam  menghambat  pertumbuhan  bakteri Salmonella typhi.

## METODE PENELITIAN
Penelitian  ini  merupakan  penelitian  deskriptif  yang  menggunakan  metode  difusi  dengan kertas  cakram.  Penelitian  dilaksanakan  di  laboratorium  Mikrobiologi  Fakultas  Kedokteran Universitas  Sumatera  Utara,  pada  April-Mei  2023.  Sampel  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini adalah  ekstrak  daun  kemangi  dan  daun  kelor  sebanyak  20  gram.  Data  yang  diambil  selama penelitian merupakan data primer yaitu zona hambat yang terbentuk pada berbagai konsentrasi dari ekstrak daun kemangi dan daun kelor dalam menghambat pertumbuhan bakteri S. typhi . Alat  yang  digunakan  dalam  penelitian  terdiri  dari  cawan  petri,  timbangan  analitik,  labu erlenmeyer,  tabung  reaksi, autoclave,  inkubator,  rotary  evaporator ,  batang  pengaduk,  ose  dan pinset, mikropipet, pipet tetes, kain saring, ketas label, wadah, waterbath, spidol, spiritus, jangka sorong, rak tabung reaksi, laminar air flow, gelas ukur. Sedangkan bahan yang digunakan antara lain bakteri S. typhi , muller hinton agar, etanol 96%, daun kemangi 23000 gram dan daun kelor 22000 gram, NaCl 0,9%, aquadest, chloramphenicol (antibiotik), aquabidest, aluminium foil, plastik wrap, blank disk, sarung tangan karet, cotton swab.
Alat yang digunakan dalam penelitian aktivitas anti bakteri ini disterilkan terlebih dahulu, alat- alat gelas dan media disterilkan dalam autoclave pada suhu 121ºC selama 15 menit dengan cara cawan petri dan media dibungkus dengan aluminium foil, sedangkan untuk jarum ose dan pinset dengan cara dibakar di atas api langsung menggunakan spritus. Persiapan sampel dimulai dengan menyiapkan  23000  gr  daun  kemangi  dan  22000  gr  daun  kelor  yang  dicuci  bersih  dengan  air mengalir sampai bersih dan keringkan, kemudian daun kemangi dan daun kelor yang sudah kering dihaluskan  dengan  blender  hingga  menjadi  serbuk  yang  halus.Hasilnya  dimasukkan  kedalam wadah gelas tertutup.
Ekstraksi  daun  kemangi  yang  dilakukan  pada  penelitian  ini  adalah  menggunakan  teknik maserasi.  Hal  ini  dikarenakan  teknik  maserasi  merupakan  teknik  penyaringan  yang  paling sederhana (Indraswari, 2008). Etanol 96% adalah pelarut dalam teknik maserasi pada penelitian ini,  hal  ini  dikarenakan  etanol  memiliki  daya  tarik  bahan  aktif  yang  baik  didalam  suatu  ekstrak dibanding pelarut lainnya (Prasonto, Riyanti, & Gartika, 2017). Daun kelor yang telah dihaluskan dimaserasi dengan dimasukkan ke dalam erlenmeyer, kemudian direndam dengan larutan etanol 96% sebanyak 3,7L, kemudian ditutup dengan aluminium foil dan didiamkan selama 4 harisambil sesekali  diaduk.  Setelah 4 hari,  sampel yang  telah direndam  disaring dengan  kertas saring dan didapatkan filtrat 1 dan residu 1. Residu 1 yang di saring kemudian di tambah dengan 3.5L etanol 96% dan ditutup dengan aluminuim foil, diamkan selama 4 hari sambil sesekali diaduk. Setelah 3 hari  sampel  disaring  dan  menghasilkan  filtrat  2  dan  residu  2.  Filtrat  1  dan  filtrat  2  di  campur. Kemudian  rendam  kembali  residu  2  dengan  etanol  96%  sebanyak  3,5L.Setelah  4  hari,  saring kembali  dan  didapatkan  filtrat  3  dan  residu  3.Campur  filtrat  1,  filtrat  2,  dan  filtrat  3  kemudian dievaporasi dengan rotary evaporator sehingga diperoleh ekstrak kental daun kelor. Ekstrak kental kemudian  diuapkan  ke  dalam waterbath (oven)  agar  etanol  menguap  kemudian  hasil  nya  akan ditimbang dan disimpan dalam wadah gelas tertutup.
Muller  Hinton  Agar (MHA)  sebanyak 38  gram  dilarutkan ke  1 liter  aquadest  dalam  tabung erlenmeyer kemudian dihomogenkan dan ditutup dengan aluminium foil. Media disterilkan dalam autoclave pada suhu 121º selama 15 menit. Kemudian media dituang ke tiap cawan petri sebanyak 15-20  mL  dan  dibiarkan  sampai  memadat,  siap  untuk  digunakan.  Konsentrasi  yang  dibuat menggunakan  ekstrak etanol  daun kemangi  dan  daun kelor  adalah 5%,  10%,  15%.  Pembuatan konsentrasi menggunakan labu ukur yang berukuran 10 mL. Pembuatan konsentrasi ekstrak 5% dilakukan  dengan  rumus  pengenceran  0,5  mL  ekstrak  daun  kemangi  dilarutkan  bersama-sama dengan aquadest dengan media labu ukur berukuran 10 mL. Pembuatan konsentrasi ekstrak 10% dilakukan  dengan  rumus  pengenceran  1  mL  ekstrak  daun  kemangi  dilarutkan  bersama-sama dengan aquadest dengan media labu ukur berukuran 10 mL. Pembuatan konsentrasi ekstrak 15% dilakukan  dengan  rumus  pengenceran  1,5  mL  ekstrak  daun  kemangi  dilarutkan  bersama-sama dengan  aquadest  dengan  media  labu  ukur  berukuran  10  mL.  Kontrol  negatif  yang  digunakan adalah aquadest. Kontrol positif yang digunakan adalah sediaan chloramphenicol yang memiliki efek antimikroba.
Dengan pinset steril, 5 konsentrasi ekstrak masing-masing direndam dengan kertas cakram. Kemudian masukkan 5 blank disk dengan berbagai konsentrasi ke dalam cawan petri yang berisi Muller  Hinton  Agar .  Dan  1  kertas  cakram  direndam  kedalam  aquadest  sebagai  kontrol  negatif (aquabidest)  dan  1  kertas  cakram  yang  mengandung  antibiotik  chloramphenicol  kemudian
disusundi dalam cawan petri. Setelah itu 6 cawan petri tersebut diinkubasi pada inkubator pada suhu  37ºC  selama  ±36-48  jam.  Selanjutnya,  diamati  dan  diukur  diameter  zona  hambat  dengan melihat zona bening yang terbentuk disekitar kertas cakram menggunakan jangka sorong.

## HASIL PENELITIAN
Uji  efektivitas  antibakteri  ekstrak  daun  kelor  terhadap S.  typhi dilakukan  dengan  5 konsentrasi, yaitu 15%, 30%, 45%, 60%, 75%, dengan chloramphenicol sebagai kontrol positif dan aquabidest sebagai kontrol negatif, dengan 3 kali pengulangan. Uji efektivitas dilakukan dengan metode disc diffusion , yaitu kertas cakram ditetesi setiap konsentrasi ekstrak, kontrol negatif dan kontrol positif lalu kemudian diletakkan pada cawan petri yang telah diinokulasi dengan bakteri S. typhi , kemudian di inkubasi selama 36-48 jam.
Diameter Zona Hambat Ekstrak Etanol Daun Kelor Terhadap S. typhi
Dalam  menguji  efektivitas  daun  kelor  terhadap  bakteri S.  typhi, perlu  dilakukan  inkubasi selama  36-48  jam.  Setelah  diinkubasi,  akan  terbentuk  zona  hambat  atau  zona  bening  yang terbentuk  dalam  cawan  petri  dan  kemudian  diukur  dengan  jangka  sorong,  dan  hasil  yang didapatkan di rata-ratakan dan dibandingkan dengan zona hambat konsentrasi yang lain.
Tabel 1. Diameter Zona Hambat yang Terbentuk pada Berbagai Konsentrasi Ekstrak Daun Kelor Terhadap S. typhi.
Konsentrasi Diameter Zona Hambat (mm) I II III IV V Rata-Rata 5% 0 0 0 0 0 0 10% 7 6,95 7 7 6,95 5,58 15% 10,1 10,45 11 10,85 11,1 10,7 Kontrol Positif 29,4 29,4 29,4 29,4 29,4 29,4 Kontrol Negatif 0 0 0 0 0 0
Gambar 1. Diameter Zona Hambat Ekstrak Daun Kelor Terhadap S. typhi
Tabel  1  dan  gambar  1  dapat  dilihat  bahwa  rata-rata  zona  hambat  yang  terbentuk  pada konsentrasi 5% adalah 0 mm, pada konsentrasi 10% dengan rata-rata 5,58 mm, pada konsentrasi 15% dengan rata-rata 10,7 mm. Zona hambat maksimum terlihat pada konsentrasi 15% dengan rata-rata 10,7mm dan zona hambat minimum terlihat pada konsentrasi 5% dengan rata-rata 0 mm. dan untuk kontrol positif, rata-rata zona hambat yang terbentuk adalah 29,4 mm dan pada kontrol negatif tidak ada zona hambat yang terbentuk.
Diameter Zona Hambat Ekstrak Etanol Daun Kemangi Terhadap S. typhi.
Daya hambat yang dihasilkan oleh ekstrak etanol daun kemangi dengan menggunakan uji sensitivitas  dengan  ditunjukannya  terdapat  zona  hambat  (zona  bening)  disekitar  kertas  cakram yang telah di beri konsentrasi. Pengukuran zona hambat tersebut dilkaukan dengan menggunakan jangka  sorong  dengan  cara  mengukur  bagian  vertikal  lalu  dilihat  hasil  pengukurannya,  hal  ini dilakukan  pada  setiap  perlakuan  sehingga  didapat  zona  hambat  seperti  digambar  dan  tabel  di bawah. pengujian ini melakukan pengulangan sebanyak tiga kali dengan antibiotik sebagai kontrol (+) dan aquadest sebagai kontrol (-).
Tabel  2. Diameter  Zona  Hambat  yang  Terbentuk  pada  Berbagai  Konsentrasi  Ekstrak  Daun Kemangi Terhadap S. typhi. Pengulangan Diameter Zona Hambat (mm) 5% 10% 15% Kontrol (+) Kontrol (-) Pengulangan 1 6,9 7,95 11,1 29,4 0 Pengulangan 2 7,05 9,1 12,2 29,4 0 Pengulangan 3 6,95 9,05 12,2 29,4 0 Pengulangan 4 7 9,1 12,5 29,4 0 Pengulangan 5 7 9,0 12,3 29,4 0
Gambar 2. Diameter Zona Hambat Ekstrak Daun Kemangi Terhadap S. typhi
Zona  hambat  yang  terbentuk  pada  konsentrasi  5%  yang  tertinggi  adalah  7,05  mm.  Pada konsentrasi 10%, zona hambat tertinggi adalah 9,1 mm. Sedangkan pada konsentrasi 15%, zona hambat  yang  terbentuk  paling  tinggi  adalah  12,5  mm.  Untuk  kontrol  positif,  zona  hambat  yang terbentuk adalah 29,4 mm dan pada kontrol negatif tidak ada zona hambat yang terbentuk.

## PEMBAHASAN
Berdasarkan  hasil  pengukuran  zona  hambat  maksimum  ekstrak  daun  kelor  terlihat  pada konsentrasi 15% dengan rata-rata 10,7 mm dan zona hambat minimum terlihat pada konsentrasi 5%  dengan  rata-rata  0  mm.  Untuk  kontrol  positif,  rata-rata  zona  hambat  yang  terbentuk  adalah 29,4 mm dan pada kontrol negatif tidak ada zona hambat yang terbentuk. Chloramphenicol (kontrol positif) yang digunakan memiliki cara kerja bakteriostatik, dengan mengikat ribosom pada bakteri menyebabkan pembentukan protein terhambat. Sehingga pada zona hambat terlihat zona bening yang menunjukkan reaksi chloramphenicol terhadap bakteri S. typhi (Dian, Fatimawali, & Budiarso, 2015).
Pada  penelitian ini  pemberian ekstraki  etanol  daun kemangi  kepada bakteri S.  typhi memiliki zona hambat dengan diameter rata-rata 12,6 mm memiliki potensi kuat dan menunjukan bahwa ekstrak etanol daun kemangi efektif terhadap bakteri S. typhi . Berdasarkan klasifikasi zona hambat pertumbuhan bakteri oleh Davis & Stout (1971) menunjukkan hasil pengukuran zona hambat yang kita dapat pada konsentrasi 5%,10%,15% dikategorikan respon hambatan pertumbuhan yang kuat. Hal  ini  menunjukkan  bahwa ekstrak daun kemangi  memiliki  efektivitas kuat  dalam  menghambat pertumbuhan bakteri S. typhi.
Hasil pengukuran diameter zona hambat menunjukkan semakin tinggi konsentrasi ekstrak yang digunakan, semakin tinggi juga daya hambat ekstrak daun kemangi terhadap bakteri S. typhi. Hal ini  dipengaruhi  oleh  tingkat  kepekatan  konsentrasi  ekstrak,  jenis  bakteri  yang  digunakan,  jenis pelarut yang dipakai, serta sensitivitas setiap bakteri yang berbeda-beda (Sudarwati & Sumarni, 2016). Jenis pelarut yang digunakan memiliki pengaruh besar terhadap efektivitas ekstrak daun kemangi. Etanol memiliki fungsi menarik senyawa aktif pada daun kelor (Dima, Fatimawali, & Lolo, 2016).  Ekstrak  daun  kelor  memiliki  aktivitas  dalam  menghambat  pertumbuhan  bakteri  hal  ini dipengaruhi  oleh  senyawa  metabolit  sekunder  seperti  saponin,  tanin,  polifenol,  flavonoid,  dan alkaloid yang memiliki peran penting pada perbedaan efektivitas dalam menghambat pertumbuhan bakteri  (Priono,  Yanti,  &  Darlian,  2016) . Senyawa  metabolit  sekunder  yang  paling  aktif  adalah flavonoid.  Hal  ini  dipengaruhi  oleh  sifat  senyawa  flavonoid  yang  polar,  dimana  senyawa  yang bersifat polar lebih mudah menembus lapisan peptidoglikan pada membran sel bakteri (Sudarwati & Sumarni, 2016).
Senyawa  alkaloid  memiliki  mekanisme  kerja  yang  membuat  lapisan  membran  sel  bakteri terbentuk tidak utuh sehingga bakteri memiliki struktur yang tidak utuh yang menyebabkan bakteri lebih mudah mati. Senyawa saponin memiliki mekanisme kerja dengan membuat kebocoran enzim dan protein daripada sel bakteri dengan menurunkan permeabilitas dinding sel sehingga proses metabolism bakteri terganggu. Golongan senyawa tanin memiliki cara kerja merusak membran sel bakteri  dan  berikatan  dengan  protein  fungsional  bakteri  dengan  demikian  pertumbuhan  bakteri terhambat  (Ningsih,  Zusfahair,  &  Kartika,  2016) . Sehingga  daun  kelor  yang  memiliki  metabolit sekunder seperti senyawa alkaloid, saponin dan tanin memiliki manfaat sebagai antimikroba.

## KESIMPULAN
Hasil  penelitian  menunjukkan  ekstrak  etanol  daun  kemangi  efektif  dalam  menghambat pertumbuhan bakteri S. typhi sedangkan ekstrak etanol daun kelor kurang efektif terhadap bakteri S. typhi. Berdasarkan klasifikasi zona hambat, ekstrak etanol daun kemangi memiliki respon daya hambat  yang  kuat  terhadap  pertumbuhan S.  typhi, konsentrasi  terbaiknya  adalah  15%  dengan rata-rata  diameter  zona  hambatnya  12,06  mm.  Sedangkan  pada  ekstrak  etanol  daun  kelor, konsentrasi  terbaiknya  adalah  15%  dengan  rata-rata  diameter  zona  hambatnya  10,7  mm. Disarankan pada peneliti selanjuitnya untuk melakukan penelitian lebih lanjut mengenai efektivitas antibakteri ekstrak etanol daun kemangi terhadap bakteri gram positif atau gram negatif.

## REFERENSI
Aminah, S., Tezar, R., & Yanis, M. (2015). Kandungan Nutrisi dan Sifat Fungsional Tanam an Kelor (M oringa oleifera). Buletin Pertanian Perkotaan , 5 (30), 35 –44.
Barnett, R. (2016). Typhoid fever. The Lancet , 388 (10059), 2467. https://doi.org/10.1016/S0140- 6736(16)32178-X
Bhutta,  Z.  A.  (2006).  Current  concepts  in  the  diagnosis  and  treatment  of  typhoid  fever. BMJ ,
333 (7558), 78 –82. https://doi.org/10.1136/bmj.333.7558.78
Chandra, B., Sari, R. P., Misfadhila, S., Azizah, Z., & Asra, R. (2019). Skrining fitokimia dan aktivitas antioksidan ekstrak metanol daun kemangi (Ocimum tenuiflorum L.) dengan metode DPPH (1,1-difenil-2-pikrilhidrazil). Journal  of  Pharmaceutical  And  Sciences , 2 (2),  1 –8. https://doi.org/10.36490/journal-jps.com.v2i2.20
Crump, J. A., Sjölund-Karlsson, M., Gordon, M. A., & Parry, C. M. (2015). Epidemiology, Clinical Presentation,  Laboratory  Diagnosis,  Antimicrobial  Resistance,  and  Antimicrobial Management of Invasive Salmonella Infections. Clinical Microbiology Reviews , 28 (4), 901 – 937. https://doi.org/10.1128/CMR.00002-15
Davis, W. W., & Stout, T. R. (1971). Disc Plate Method of Microbiological Antibiotic Assay. Applied Microbiology , 22 (4), 659 –665. https://doi.org/10.1128/am.22.4.659-665.1971 Dian, R., Fatimawali, & Budiarso, F. (2015). Uji Resistensi Bakteri Escherichia Coli Yang Diisolasi Dari  Plak  Gigi  Terhadap  Merkuri  Dan  Antibiotik  Kloramfenikol. Jurnal  E-Biomedik , 3 (1). https://doi.org/10.35790/ebm.3.1.2015.6607 Dima,  L.  L.  R.  .,  Fatimawali,  &  Lolo,  W.  A.  (2016).  Uji  Aktivitas  Antibakteri  Ekstrak  Daun  Kelor (Moringa  Oleifera  L.)  Terhadap  Bakteri  Escherichia  Coli  Dan  Staphylococcus  Aureus. Pharmacon , 5 (2), 282 –289. https://doi.org/10.35799/pha.5.2016.12273
Indraswari,  A.  (2008).  Optimasi  Pembuatan  Ekstrak  Daun  Dewandaru  (Eugenia  uniflora  L.) Menggunakan  Metode  Maserasi  Dengan  Parameter  Kadar  Total  Senyawa  Fenolik  Dan Flavonoid. Fakultas Farmasi Universitas Muhammadiyah Surakarta Surakarta , 5 –8.
Larasati,  D.  A.,  &  Apriliana,  E.  (2016).  Efek  Potensial  Daun  Kemangi  (  Ocimum  basilicum  L  .) sebagai  Pemanfaatan  Hand  Sanitizer  The  Potential  Effect  of  Basil  Leaves  (  Ocimum basilicum L .) as Utilization of Hand Sanitizer. Majority , 5 (5), 124 –129.
Ningsih,  D.,  Zusfahair,  &  Kartika,  D.  (2016).  Identifikasi  Senyawa  Metabolit  Sekunder  Serta  Uji Aktivitas Ekstrak Daun Sirsak Sebagai Antibakteri. Molekul , 11 (1), 101 –111. Retrieved from https://ojs.jmolekul.com/ojs/index.php/jm/article/viewFile/199/201
Prasonto,  D.,  Riyanti,  E.,  &  Gartika,  M.  (2017).  Uji  Aktivitas  Antioksidan  Ekstrak  Bawang  Putih (Allium sativum). ODONTO : Dental Journal , 4 (2), 122. https://doi.org/10.30659/odj.4.2.122- 128 Priono, A., Yanti, N., & Darlian, L. (2016). Perbandingan efektivitas antibakteri ekstrak etanol daun kelor  (MoringaoleiferaLamck.)  dan  ekstrak  daun  kirinyuh  (Chromolaenaodorata  L.). J.
AMPIBI , 1 (2), 1 –6.
Salim, R., & Eliyarti, E. (2019). Aktivitas Antioksidan Infusa Daun Kelor (Moringa Oleifera Lam.) Terhadap Warna Daun. Jurnal Katalisator , 4 (2), 91. https://doi.org/10.22216/jk.v4i2.4210 Saporito,  L.,  Colomba,  C.,  &  Titone,  L.  (2017).  Typhoid  Fever.  In International  Encyclopedia  of Public Health (pp. 277 –283). Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-803678-5.00475-6 Subhan,  M.,  &  Sadiq,  W.  (2017).  Case  of  Enteric  Fever  with  Bicytopenia. Cureus , 9 (12). https://doi.org/10.7759/cureus.1910
Sudarwati, D., & Sumarni, W. (2016). Uji Aktivitas Senyawa Antibakteri pada Ekstrak Daun Kelor dan Bunga Rosella. Indonesian Journal of Chemical Science , 5 (1), 1 –4.
Threenesia,  A.,  &  Ramadhian,  M.  (2019).  Perbandingan  Efek  Pemberian  Ekstrak  Etanol  Daun Kemangi  (Ocimum  sanctum  L.)  terhadap  Daya  Hambat  Pertumbuhan  Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi secara In Vitro. Jurnal Kedokteran Unila , 6 (1), 120 –124. Veronika,  M.,  Purwijantiningsih,  E.,  &  Pranata,  S.  (2014). Efektivitas  ekstrak  daun  kelor (Moringaoleifera) sebagai bio-sanitizer tangan dan daun selada (Lactuca sativa) (Universitas Atmajaya). Universitas Atmajaya. https://doi.org/10.1128/AAC.03728-14
Wain, J., Hendriksen, R. S., Mikoleit, M. L., Keddy, K. H., & Ochiai, R. L. (2015). Typhoid fever.
The Lancet , 385 (9973), 1136 –1145. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(13)62708-7 Zahra,  S.,  &  Iskandar,  Y.  (2017).  Review  Artikel:  Kandungan  Senyawa  Kimia  dan  Bioaktivitas Ocimum Basilicum L. Farmaka , 15 (3), 143 –152.