EISSN: 2407-7690 https://ejournal3.undip.ac.id/index.php/jmr

## Pengaruh Pertumbuhan Spirulina platensis terhadap Kandungan Pigmen beda Salinitias

## Dieng Widawati*, Gunawan Widi Santosa, Ervia Yudiati
Departemen Ilmu Kelautan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Diponegoro Jl. Prof.H.Soedarto S.H, Tembalang,Semarang, Jawa Tengah 50275 Indonesia *Corresponding author, e-mail: diengwidawati98@gmail.com
ABSTRAK: Spirulina  platensis merupakan  mikroalga  hijau-kebiruan  dalam  kelas Cyanophyceae yang  mengandung  klorofil- a dan  fikobiliprotein.  Faktor  lingkungan  yang  dapat  mempengaruhi pertumbuhan dan pigmen Spirulina platensis salah satunya yaitu salinitas. Penelitian ini bertujuan untuk  mengetahui  pertumbuhan  dan  kandungan  pigmen  mikroalga Spirulina  platensis pada salinitas  yang  berbeda.  Metode  penelitian  yang  digunakan  adalah  eksperimental  laboratoris dengan  menggunakan  Rancangan  Acak  Lengkap.  Hasil  penelitian  menunjukkan  kepadatan mikroalga  tertinggi  pada  (salinitas  15  ppt)  sebesar  211.875±1994  unit/mL  dan  terendah  pada salinitas 25 sebesar 141.539±5872 unit/mL. Laju pertumbuhan tertinggi didapat pada salinitas 20 ppt  sebesar  0,327±0,019  unit/hari  dan  terendah  pada  salinitas  25  ppt  sebesar  0,246±0,012 unit/hari.  Kandungan  klorofil- a berkisar  antara  10,622±1,322  µg/mL pada  salinitas  30  ppt  dan 8,176±2,426  µg/mL  pada  salinitas  15  ppt.  Kandungan  fikosianin  berkisar  antara  0,105  ±  0,041 mg/mL  (salinitas  20  ppt)  sampai  0,058  ±  0,005  mg/mL  (salinitas  30  ppt).  Allofikosianin  berkisar antara  0,069±0,010  mg/mL  pada  salinitas  20  ppt  sampai  0,042±0,007  mg/mL  pada  salinitas  30 ppt.  Kisaran  fikoeritrin  antara    0,384±0,159  mg/mL  pada  salinitas  20  ppt  sampai  0,239±0,014 mg/mL  pada  salinitas  30  ppt.  Berdasarkan  hasil  penelitian  disimpulkan  bahwa  salinitas  memiliki pengaruh  signifikan  terhadap  pertumbuhan  dan  laju  pertumbuhan,  namun  tidak  pada  kandungan pigmen  mikroalga Spirulina  platensis. Kandungan  klorofil a dan  fikobiliprotein  yang  terdiri  dari fikosianin,  allofikosianin  dan  fikoeritrin,  tidak  menunjukkan  perbedaan  yang  signifikan  pada salinitas yang berbeda.

## Kata kunci: Pertumbuhan; Pigmen; Spirulina platensis; Salinitas

## Growth and Pigment Content of Microlaga Spirulina platensis at Different Salinity
ABSTRACT: Spirulina  platensis is  a  blue-green  microalga  in  the Cyanophyceae class  that contains chlorophyll- a and phycobiliprotein.  One of the environmental factors  affecting the growth and pigment of Spirulina platensis is salinity. This study aims to determine the growth and pigment content of Spirulina platensis at different level of salinity. The research was carried out from March till  April  2020  at  the  Marine  Biology  Laboratory  and  Marine  Chemistry  Laboratory,  Building  E, Faculty  of  Fisheries  and  Marine  Sciences,  Diponegoro  University,  Semarang.  The  research method  used  was  a  laboratory  experiment  using  a  completely  randomized  design.  The  results showed that the highest microalgae density achieved at salinity 15 ppt as 211.875±1994 units/mL, meanwhile  the  lowest  was  gained  at  salinity  25  ppt  at  141.539  ±  5872  units/mL.  The  highest growth rate was obtained at 0.327 ± 0.019 unit/day at salinity 20 ppt, and the lowest was achived at  0.246 ± 0.012 unit/day at  salinity  25 ppt.  The chlorophyll content ranged from 10.622 ± 1.322 µg/mL  at  salinity  30  ppt  and  8.176  ±  2.426  µg/mL  at  salinity  15  ppt.  The  phycocyanin  content ranged  from  0.105  ±  0.041  mg/mL  at  salinity  20  ppt  to  0.058  ±  0.005  mg/mL  at  salinity  30  ppt. Allophycocyanin  ranged  from  0.069  ±  0.010  mg/mL  at  salinity  20  ppt  to  0.042  ±  0.007  mg/mL  at salinity  30  ppt,  and  phycoerythrin  ranged from  0.384 ±  0.159 mg/mL  at  salinity  20  ppt to  0.239 ± 0.014 mg/mL at salinity 30 ppt. The results suggested that salinity had a significant effect (p<0.05) on  density  biomass  and  growth  rate  of Spirulina  platensis microalgae,  but  did  not  influence  on pigment  concentration.  Measurements  of  chlorophyll- a and  phycobiliprotein  content,  including phycocyanin,  allophycocyanin,  and phycoerythrin  indicated that salinity did not affect the pigment concentration of microalgae Spirulina platensis .
Keywords: Growth; Pigment ; Spirulina platensis; Salinity

## PENDAHULUAN
Mikroalga merupakan produsen primer dalam rantai makanan pada perairan (Cahyaningsih &  Subyakto,  2009)  sehingga  memiliki  peranan  yang  penting  dalam  keberlangsungan  berbagai proses ekologis di perairan. Spirulina platensis merupakan mikroalga hijau-biru yang mengandung klorofil  dan  dapat  bertindak  sebagai  organisme  yang  dapat  melakukan  fotosintesis  sendiri  untuk membuat  makanan. Spirulina  platensis memiliki  kemampuan  untuk  tumbuh  pada  media  yang memiliki  alkalitas  tinggi  (pH  8,5 –  11).  Suhu  terendah  untuk Spirulina yaitu  antara  1 5 ̊ C  dan pertumbuhan yang optimal yaitu 35-4 0 ̊ C dengan salinitas yang optimum yaitu 15-20 ppt (Hariyati, 2008). Alasan penggunaan Spirulina platensis dibandingkan dengan mikroalga yang lainnya yaitu karena Spirulina  platensis memiliki  kualitas  yang  baik,  dengan  produktifitas  yang  tinggi  dan merupakan mikroalga yang menghasilkan pigmen biru ( phycocyanin ) ± mencapai 20% dari bobot keringnya (Jos et al ., 2011).
Ulya et  al .  (2018)  berpendapat  mikroalga  merupakan  salah  satu  biota  yang  dapat dimanfaatkan  sebagai  pakan  alami. Spirulina  platensis banyak  dimanfaatkan  dalam  pembenihan ikan  sebagai  makanan  untuk  zooplankton  dengan  alasan  mempunyai  kandungan  nutrisi  yang tinggi (Sussana et al ., 2007). Komponen utama penyusun mikroalga yaitu berupa protein, karena didalam  selnya  mengandung  50%  protein  dan  7-10 %  nitogren.  Menurut  pendapat  Chistwardana dan  Hadiyanto,  (2011)  mikrolaga Spirulina  platensis mengandung  protein  sebesar  55 –  70  %. Mikroalaga Spirulina  platensis dapat  tumbuh  dan  berkembang  biak  secara  cepat.  Terdapat  tiga tahap  utama  dalam  siklus  hidup Spirulina  platensis yaitu  pembelahan  trikoma,  pemanjangan hormogonia,  dan  proses  pematangan  yang  memanjangkan  trikoma.  Setelah  trikoma  yang  telah dewasa  dapat  terbagi  menjadi  filamen  dan  hormogonia  dan  sel  hormoginianya  akan memperbanyak dengan pembelahan biner dan tumbuh memanjang untuk membentuk helix (spiral) siklus hidup.
Pola  pertumbuhan  mikrolaga  berbentuk  kurva  sigmoid  dengan  4  fase  yaitu  fase  lag, eksponensial,  stasioner,  dan  kematian. Spirulina  platensis memiliki  3  tipe  pigmen  pada penangkapan  cahaya  yaitu klorofil, fikobiliprotein,  dan karoten.  Klorofil  merupakan  pigmen  utama yang berperan sebagai pusat fotosintesis yang meneyerap cahaya merah, biru, dan ungu. Klorofil a merupakan bentuk spesifik dari klorofil yang digunakan dalam proses fotosintesis. Fikobiliprotein merupakan  pigmen  aksesoris  untuk  fotosintesis  yang  dominan  terdapat  pada Cyanophyceae . Terdapat 3 kelas utama dari fikobiliprotein yaitu allofikosianin, fikosianin dan fikoeritrin.
Faktor  lingkungan  menentukan  kandungan  pigmen  dalam  sel.  Salinitas  sangat  penting karena  berpengaruh  terhadap  produktivitas  dan  daya  adaptasi  mikroalga  pada  lingkungannya. Salinitas  merupakan  faktor  yang  penting  dalam  pembentukan  pigmen,  produksi  biomassa  dan pertumbuhan  sel  Adenan et  al .,  (2013).  Klorofil  dapat  dipengaruhi  diantaranya  oleh  salinitas, cahaya,  dan  suhu.  Salinitas  yang  berubah  akan  menyebabkan  perubahan  osmotik  pada  sel mikroalga (Adi et al ., 2015). Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui pertumbuhan dan kandungan  pigmen  klorofil- a serta  fikobiliprotein  mikroalga Spirulina  platensis yang  dikultur  pada salinitas yang berbeda.

## MATERI DAN METODE
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  bulan  Maret –  April  2020.  Materi  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  kultur  murni  mikroalga Spirulina  platensis yang  diperoleh  dari  Laboratorium Pakan  Alami  BBPBAP  (Balai  Besar  Perikanan  Budidaya  Air  Payau)  Jepara.  Metode  penelitian yang  digunakan  yaitu  Eksperimental  Laboratoris.  Menurut  Suryabrata,  (1992)  metode Eksperimental Laboratoris adalah metode yang memiliki tujuan untuk mengetahui hubungan sebab akibat  dari  suatu  eksperimen  melalui  suatu  perlakuan  dengan  membandingkan  hasilnya  dengan kontrol. Rancangan percobaan yang dipakai dalam penelitian ini adalah Rancangan Acak Lengkap satu  faktor  (Perbedaan  Salinitas)  dengan  4  taraf  perlakuan  15  ppt,  20  ppt,  25  ppt  dan  30  ppt dengan 3 ulangan (Dewi et all ., 2018).
Strerilisasi  bertujuan  untuk  membunuh  atau  mematikan  mikroorganisme  yang  tidak diinginkan  di  alat  dan  media  yang  digunakan.  Peratalan  yang  perlu  disterilisasikan  diantaranya

## Journal of Marine Research Vol 11, No.1 Februari 2022, pp. 61-70
toples kaca, selang aerasi, dan pipet, sedangkan untuk media yang perlu disterilkan yaitu air tawar dan  air  laut.  Sterilisasi  ruangan  yaitu  dengan  membersihkan  ruang  kultur  lalu  dilakukan penyemprotan dengan menggunakan alkohol 70%, kemudian UV dinyalakan dan ruangan ditutup ± 2 jam. Sterilisasi dilakukan dengan 2 tahap yaitu mencuci dengan menggunakan sabun cui dan air tawar, kemudian dikeringkan dan dibungkus dengan plastik wrap. Peratalan di UV ± 2 jam. Media  air  laut  diberi  kaporit  untuk  mengendapkan  kotoran  selama  1x24  jam.  Air  laut  yang sudah 24 jam kemudian diberi Na-Tiosulfat selama 1x 6 jam untuk menyeimbangan pH dan diberi aerasi terus-menerus. Air laut disaring dengan menggunakan saringan yang dilapisi dengan kassa dan  kapas  untuk  kemudian  direbus  hingga  mendidih.  Media  air  laut  diencerkan  dengan mengguankaan  air  tawar  untuk  mendapatkan  salinitas  yang  dikehendaki,  setelah  itu  dimasukan kedalam toples. Selang aerasi, pipet, dan toples kaca ditutup menggunakan plastik wrap kemudian dilakukan strerilisasi dengan menggunakan lampu UV ± 2 jam.
Media kultur yang diguanakan yaitu air laut streril dengan salinitas 45 ppt. Untuk keperluan penelitian  dengan  perbedaan  salinitas,  maka  salintas  air  laut  awal  diencerkan  dengan  air  tawar untuk mendaptkan  salinitas  yang  dikehendaki  pada  salinitas  15  ppt,  20  ppt,  25  ppt,  30  ppt,  yang dihitung dengan menggunakan rumus perhitungan (Bangun et al ., 2015).
Sebanyak  12  toples  kaca  berukuran  3L  berii  media  kultur  dan  ditambahkan  pupuk  walne dengan dosis 1 mL/L ,media diletakkan pada tempat kultur dan diberi pencahayaan  ± 25 cm dari atas dengan menggunakan 2 lampu TL Philips 36 watt. Kultur diberi aerasi sedang dengan terus- menerus  dengan  posisi  berada  ditengah  toples  kaca.  Pencahayaan  dilakukan  dengan  kontinyu selama 24 jam.
Pengukuran  kualitas  media  dilakukan  setiap  hari  pada  pukul  08.30  WIB,  dengan  mengambil sampel  menggunakan  suntikan  yang  diberi  selang  aerasi  lalu  dimasukan  pada  salah  satu  lubang pertukaran udara. Pengukuran kulaitas media meliputi pH dan suhu.
Perhitungan  kepadatan  bertujuan  untuk  mengetahui  pertumbuhan  mikroalga  setiap  hari. Spirulina platensis dihitung kepadatannya dengan menggunakan Sedgwick rafter. Kepadatan unit/mL (N) dihitung dengan menggunakan rumus (Anggorowati et al., 2018)
Panen Spirulina  platensis dilakukan  pada  saat  sudah  mencapai  puncak  populasi. Pemanenan dilakukan saat Spirulina platensis berada pada fase eksponensial akhir ± pada hari ke 10. Penyaringan dilakukan dengan mematikan selang aerasi, kemudian mengambil semua media dan  menyaringnya  dengan  menggunakan  saringan  yang  dilapisi  dengan  jaring  plankton  net  25 mikron. Sampel Spirulina platensis yang sudah disaring kemudian di bilas menggunakan air tawar dan dipindahkan kedalam cawan petri setelah itu dikeringkan pada suhu ruangan ± 21 o C selama ± 4  hari  (Suminto,  2009).  Laju  pertumbuhan  didapat  dari  jumlah  kepadatan  mikroalga  selama kultivasi. Dihitung menurut Hirata et al ., (1981)
Gambar 1 . Layout kultur Spirulina platensis
Keterangan A1, A2, A3  = Perlakuan salinitas 20 ppt; B1, B2, B3 = Perlakuan salinitas 15 ppt; C1, C2, C3 = Perlakuan salinitas 25 ppt; D1, D2, D3 = Perlakuan salinitas 30 ppt
A2 A1 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 D1 D2 D3 Blower Selang aerasi Lampu TL Wadah kultur

## Analisis Pigmen Klorofil-a
Sebanyak  10  mg  sampel  dihaluskan  dengan  mortar,  kemudian  ditambahkan  dengan  80% aseton  sebanyak  10  mL,  dimasukkan  kedalam  botol  sentrifuge  10  mL  dibungkus  rapat  dengan menggunakan alumunium foil untuk menghindari cahaya. Sampel kemudian dimasukkan ke dalam refrigerator  selama  semalam,  setelah  itu  sampel  didiamkan  suhu  kamar  kemudian  disentrifugasi selama 20 menit dengan kecepatan 3000 rpm (Rahmawati, 2017). Analisis pigmen dibantu dengan spektrofotometr  (Uv  Vis)  menggunakan  panjang  gelombang  663  nm  dan  645  nm.  Kandungan klorofil dihitung menggunakan persamaan (Porra, 2002) :

## Analisis Pigmen Fikobiliprotein
Sebanyak 10 mg sampel dihaluskan dengan mortar, kemudian ditambahkan dengan pelarut dengan  aquadest  sebanyak  10  mL.  Kemudian  sampel  dimasukkan  ke  tabung  sentrifugasi  untuk diinkubasi  selama  14-16  jam  dalam  refrigerator.  Sampel  kemudian  disentrifugasi  dengan kecepatan  3000  rpm  selama  30  menit,  kemudian  diukur  absorbansinya  menggunakan Spektofotometer  pada  panjang  gelombang  562  nm,  615  nm,  dan  652  nm  (Agustini,  2012). Penghitungan fikobiliprotein diadaptasi dari metode Bennett dan Bogorad (1973)

## Analisis Data
Data  hasil  penelitian  dicatat,  ditabulasi,  dan  divisualisaikan  dalam  bentuk  grafik  diolah dengan  menggunakan  program  Microsoft  Excel ® serta  diolah  secara  statistik  menggunakan program  SPSS  16 ® .  Analisis  pada  program  SPSS  16  yang  digunakan  adalah  analiasis  varian. Analisa varian adalah cara untuk menganalisis variasi respon dan menerapkan porsi varian pada setiap kelompok dari variable independen. Tujuannya adalah menemukan variasi independen dan menentukan  bagaimana  variabel-variabel  tersebut  mempengaruhi  perlakuan.  Sedangkan  uji Normalitas  dan  Homogenitas  dilakukan  sebagai  syarat  untuk  uji  ANOVA  dan  uji  Tukey  HSD adalah untuk mengetahui perbedaan antar variabel (Hartono, 2004).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Kultivasi  mikroalga Spirulina  platensis pada  penelitian  ini  menggunakan  perlakuan perbedaan  salinitas.  Menurut  Armis,  (2017)  salinitas  merupakan  kadar  garam  terlarut  di  air. Salinitas adalah bagian dari sifat fisik maupun kimia dari suatu perairan dan salinitas merupakan gambaran kandungan garam dalam suatu perairan. Mikroalga merupakan sumber biomassa yang mengandung  komponen  penting  seperti  pigmen,  asam  lemak,  protein,  dan  karbohidrat  yang bervariasi  sesuai  media  tumbuh,  faktor  lingkungan,  teknik  pemanenan,  dan  metode  pengeringan yang digunakan.
Hasil  pengamatan  kultivasi  mikroalga Spirulina  platensis mengalami  pertumbuhan  ditandai dengan  adanya  perubahan  warna  yang  terjadi  selama  10  hari.  Perubahan  warna  terjadi  pada masing-masing  perlakuan  kultur.  Kultivasi  pada  hari  pertama  memiliki  warna  hijau  bening, ditunjukkan pada (Gambar 2a) yang berada di fase lag (adaptasi), kemudian warna menjadi hijau pekat pada fase eskponensial (Gambar2 b)
Gambar 2. Biomassa Spirulina platensis (a) Hari ke-1 ; (b) Hari ke-10
Kultivasi mengalami perubahan intensitas warna hijau selama pertumbuhan pada masing- masing  perlakuan.  Kultur  pada  hari  ke-0  sampai  hari  ke-2  memiliki  warna  hijau  muda  (bening) kemudian hari ke-3 sampai hari ke-10 warna kultur menjadi semakin pekat. Perubahan warna itu terjadi karena mikroalga mengalami penambahan jumlah biomassa. Warna kultur pada hari ke-10 sampai hari ke-12 menjadi kuning kecoklatan yang dibarengi dengan penurunan jumlah mikroalga.

## Pertumbuhan Spirulina platensis
Perhitungan  kepadatan  kultur  dilakukan  untuk  mengetahui  pertumbuhan  dan  laju pertumbuhan.  Pertumbuhan Spirulina  platensis dapat  diketahui  dari  warna  kultur  yang  semakin pekat  menunjukkan  pertambahan  jumlah  sel.  Pada  diatas,  hasil  analisis  data  terhadap pertumbuhan  biomassa Spirulina  platensis yang  telah  dilakukan,  diperoleh  hasil  pertumbuhan biomassa  yang  berbeda  pada  setiap  perlakuan.  Berdasarkan  pertumbuhan  biomassa  biomassa tertinggi  didapat  pada  salinitas  15  ppt  21.1875±1994  unit/mL,  kemudian  salinitas  30  ppt 15.7215±29359 unit/mL, salinitas 20 ppt 15.1582±16660 unit/mL, dan populasi biomassa terendah didapat  salinitas  25  ppt  14.4211±1639  unit/mL.  Tingkat  pertumbuhan  biomasaa  pada  salinitas yang berbeda selama 10 hari disajikan dalam bentuk grafik, pada (Gambar 3).
Berdasarkan  Gambar  3  pada  penelitian  ini  biomassa Spirulina  platensis memiliki pertumbuhan pada umumnya yaitu fase lag (adaptasi), fase eksponensial, fase stasioner dan fase kematian.  Pertumbuhan Spirulina  platensis pada  masing-masing  perlakuan  terlihat  perbedaan. Pada  hari  ke-1  sampai  hari  ke-3  pertumbuhan  mengalami  fase lag (adaptasi).  Menurut  (Hariyati, 2008)  fase lag (adaptasi)  merupakan  fase  perkenalan  pada  lingkungan  dan  jika  hasil  kepadatan populasi dari Spirulina platensis meningkat maka berat biomassa yang dihasilkan akan meningkat pula. Pertumbuhan pada hari ke-4 salinitas 15 ppt mengalami penurunan akan tetapi pada hari ke- 5  naik  kembali.  Pertumbuhan  pada  salinitas  20  ppt,  salinitas  30  ppt  dan  salinitas  25  ppt  hampir sama. Pada hari ke-4 sampai dengan hari ke-7 mengalami fase eksponensial. Fase eksponensial ditandai dengan pembelahan yang relatif konstan dan cepat. Menurut (Madigan et al ., 2011) fase eksponensial  adalah  fase  yang  pertumbuhan  yang  cepat  karena  aktivitas  fotosintesis  yang meningkat sehingga menghasilkan biomassa yang tinggi. Pertumbuhan pada hari ke-8 sampai ke- 10 mengalami fase stasioner pada masing-masing perlakuan. Fase stasioner disebut juga sebagai puncak populasi (Sari et al ., 2012). Pertumbuhan terjadi secara lambat pada fase stasioner karena Fase  stasioner  merupakan  keseimbangan  antara  laju  pertumbuhan  dengan  faktor  pembatas Menurut  (Pelczar et  al .,  1986)  pertumbuhan  pada  fase  stasioner  terhenti  ditandai  dengan terjadinya  kesemimbangan  antara  laju  pertumbuhan  dan  kematian  pada  sel.  Fase  yang  terakhir yaitu  fase  kematian  pada  mikroalga,  semakin  berkurangnya  nutrient  yang  tidak  cukup  untuk meneruskan pertumbuhan sehingga menyebabkan penumpukan sisa metabolit yang beracun.
0 50000 100000 150000 200000 250000 1 2 3 4
5 6 7 8 9
10
P ert umbuha n S pi rul ina pl atensi s (un it /m l)
Hari Ke- Salinitas 15 Salinitas 20 Salinitas 25 Salinitas 30
Journal of Marine Research Vol 11, No.1 Februari 2022, pp. 61-70
Laju  pertumbuhan  merupakan  parameter  kecepatan  pertambahan  sel  dalam  satuan  waktu (Budiardi et  al. ,  2010).  Menurut  Simamora et  al .  (2011)  laju  pertumbuhan  merupakan penggambaran  kecepatan  pertambahan  sel-sel  mikroalga  persatuan  waktu  yang  dapat  dipakai sebagai  tolok  ukur  untuk  mengetahui  daya  dukung  medium  atau  nutrien  pertumbuhan  dan pembelahan  sel  mikroalga.  Dari  hasil  penelitian  didapatkan  hasil  salinitas  tertinggi  ada  pada salinitas  20  ppt  sebesar  0,327±0,019  unit/hari,  kemudian  salinitas  15  ppt  sebesar  0,299±0,030 unit/hari,  salinitas  30  ppt  0,272±0,046  unit/hari  dan  terendah  pada  salinitas  25  ppt  0,246±0,012 unit/hari. Grafik hasil laju pertumbuhan Spirulina platensis tersaji pada (Gambar 4).
Hasil  uji  statistik  (ANOVA)    pada  pertumbuhan  dan  laju  pertumbuhan  menunjukkan  antar perlakuan  memilki  pengaruh  yang  berbeda  nyata.  Menurut  penjelasan  (Rosly et  al .,  2013) kepadatan  sel  mikroalga  memiliki  perbedaan  antar  perlakuan  yang  disebabkan  oleh  perbedaan kondisi  pertumbuhan  kultur  mikroalga.  Menurut  (Astiani et  al .,  2016)  pesatnya  laju  pertumbuhan menyebabkan kepadatan suatu populasi meningkat. Meningkatnya populasi terjadi karena adanya pengaruh  nutrien  yang  berbeda  pada  setiap  media  kultur Spirulina  platensis .  Besarnya  laju pertumbuhan  menggambarkan  tingkat  kesuksesan  relatif  suatu  mikroalga  dalam  beradaptasi terhadap lingkungan alaminya atau media kultur buatan (Rosly et al ., 2013).
Pigmen  merupakan  zat  kimia  berwarna  yang  merupakan  bagian  dari  sistem  fotosintesis mikroalga.  Pigmen  dibedakan  menjadi  tiga  kelas  yaitu  karotenoid,  klorofil  dan  phycobiliprotein (Barra et al ., 2014). Salinitas adalah faktor eksternal yang dapat menjadi pemicu utama stress dan penghambat  pertumbuhan  biota  darat  dan  air.  Salinitas  yang  ekstrim  menyebabkan  tekanan osmotik  atau  pertukaran  ion  yang  berpengaruh  terhadap  metabolisme  organisme  fotosintetik (Djunaedi et al ., 2017). Klorofil- a adalah klorofil primer yang hampir dijumpai pada mikroalga, dan satu-satunya klorofil yang dimiliki oleh mikroalga cyanobacteria dan rhodophyta (Azimatun, 2014). Kandungan  pigmen  klorofil  - a berkisar  antara  10,622±1,322  µ/mL  (salinitas  30  ppt)  sampai 8,176±2,426 µg/mL (salinitas 15 ppt). kandungan pigmen klorofil- a Spirulina platensis tersaji pada Gambar 5.
Hasil uji statistik klorofil- a pada penelitian ini menunjukkan bahwa salinitas tidak berpengaruh terhadap  kandungan  klorofil- a (p>0,05).  Menurut  (Sedjati et  al .,  2012)  nutrisi  yang  kurang  pada media  tumbuh  akan memiliki  pengaruh terhadap  pertumbuhan klorofil a . Swandewi et  al .,  (2017) menjelaskan  bahwa  pembentukan  klorofil  oleh  mikroalga  dipengaruhi  oleh  kandungan  nitrogen dalam  media  tumbuh  yang  digunakan  selama  kultur.  Queiroz et  al .,  (2017)  melaporkan  dalam penelitiannya,  pelarut  saat  ekstraksi  juga  berperan  penting  untuk  ekstraksi  pada  jenis  atau  sifat pigmen yang  akan  diekstraksi  sehingga  memudahkan permeabilitas dinding sel mikroalga untuk
0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4 15 20 25 30 La ju Pe rt umbu ha n Salinitas (ppt)
Gambar 5. Kandungan Pigmen Klorofil - a Spirulina platensis pada Perlakuan salinitas yang berbeda larut pada pelarut. Menurut Indrastuti et al ., (2014) Faktor lainnya yaitu adalah lama pencahayaan dan intensitas cahaya terlalu tinggi yang akan menyebabkan pudarnya kandungan klorofil a pada Spirulina platensis .
Menurut Rohmat et al ., (2014) pigmen klorofil selama masa penyimpanan selain berinteraksi dengan  CO 2 yang  berada  di  udara  menyebabkan  pemecahan  klorofil  sehingga  mempengaruhi kestabilan  dari  pigmen  klorofil.  Ditambahakan  oleh  Arisasmita et  al .,  (1997)  penyimpanan  klorofil yang  bersinggungan  dengan  udara  sekitar  yang  mengandung  oksigen  menyebabkan  intensitas warnanya memudar. Ditambahakan Christiana et al ., (2008) fotodegradasi klorofil a terjadi sangat cepat dan dipengaruhi juga oleh oksigen dalam aseton yang cukup tinggi, yaitu sekitar 10 kali dari kelarutan dalam air.

## Pigmen Fikobiliprotein
Fikobiliprotein  adalah  pigmen  aksesoris  fotosintesis  yang  dapat  larut  di  dalam  air  yang banyak ditemukan pada alga Cyanophyceae , Rhodophyta , Cryptophyta dan Glaukophyta. Menurut Susanto et al ., (2013) Fikobilin menyerap cahaya pada panjang gelombang 450-650 nm, dengan tiga  puncak  pada  pola  spektranya,  fikoeritrin menyerap  cahaya  pada  daerah  hijau  (495-570  nm), fikosianin  pada  daerah  hijau  kuning  (550-630  nm)  dan  allofikosianin  di  daerah  orange  merah dengan  panjang  gelombang  650-670  nm  (Kawsar et  al .,  2011;  Pugalndren., et  al .,  2012).  Hasil kandungan fikobiliprotein Spirulina platensis tersaji pada .
Kandungan  pigmen  fikobiliprotein  berkisar  antara  0,105  ±  0,041  sampai  0,239  ±  0,014 mg/mL  dengan  kandungan  fikosianin  berkisar  antara  0,105  ±  0,041  mg/mL  (salinitas  20  ppt) sampai 0,058 ± 0,005 mg/mL (salinitas 30 ppt). Allofikisianin antara 0,069 ± 0,010 mg/mL (salinitas 20 ppt) sampai 0,042 ± 0,007 mg/mL (salinitas 30 ppt), dan fikoeritrin antara  0,384 ± 0,159 mg/mL (salinitas 20 ppt) sampai  0,239 ± 0,014 mg/mL (salinitas 30 ppt). Grafik kandungan fikobiliptotein tersaji pada (Gambar 6).
Hasil uji statistik menunjukkan bahwa perlakuan salinitas tidak memberi pengaruh terhadap kandungan  pigmen  (p>0,05).  Hal  ini  disebabkan  ketidakstabilan  pada  pigmen  dapat  dipengaruhi oleh cahaya, pH, suhu, oksigen dan pelarut alkohol (Fretes et al ., 2012). Pada salinitas yang tinggi akan  mengakibatkan  cahaya  yang  masuk  tidak  optimal,  sehingga  menyebabkan  turunnya kandungan  pigmen  fikobiliprotein.  Menurut  Manirafashaet et  al .,  (2016)  kebanyakan  mikroalga mengakumulasi  dari  pigmen  fikobiliprotein  pada  saat  terjadi  stressing  faktor  lingkungan  pada medianya  dan  produksi  pigmen  fikobiliprotein  akan  semakin  tinggi  bila  intesnistas  cahaya  yang masuk  optimal.  Sujatha  dan  Nagarajan,  (2013)  menyatakan  faktor  lain  yang  juga  mempengaruhi pigmen  adalah  komposisi  media.  Media  pertumbuhan  yang  mengandung  jumlah  nitrogen  sedikit cenderung mempengaruhi mikroalga dalam membentuk pigmen.
0.000 2.000 4.000 6.000 8.000 10.000 12.000 14.000 1 2 3 4 k an du ng an k lorof il- a ( µg /mL ) Perlakuan

## Parameter Lingkungan
Parameter  kualitas  air  yang  dikur  dalam  penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  kultur mikroalga Spirulina  platensis .  Pertumbuhan  mikroalga  selain  dipengaruhi  oleh  nutrien  juga dipengaruhi  oleh  faktor  lingkungan  pada  media  pertumbuhan.  Hasil  parameter  kualitas  air  dapat dilihat pada (Tabel 1).
Faktor  lingkungan  yang  mempengaruhi  pertumbuhan  diantaranya:  suhu,  salinitas,  dan cahaya. Suhu merupakan faktor lingkungan yang berpengaruh terhadap proses metabolisme dan fotosintesis. Salinitas sangat penting untuk mempertahankan tekanan osmotik antar sel dengan air sebagai lingkungan hidupnya. Peranan cahaya dalam pertumbuhan yaitu untuk proses fotosintesis dengan  menyediakan  energi  untuk  diubah  menjadi  energy  kimia  dengan  bantuan  klorofil (Rafaelina et  al .,  2015).  Menurut  (Yusuf et  al .,  2012)  faktor  penting  yang  mempengaruhi pertumbuhan  selama  kultur  adalah  kualitas  air  dianataranya  yaitu  kondisi  fisika  dan  kimia  dari suatu  media.  Kondisi fisika meliputi  suhu,  intensitas  cahaya,  dan  aerasi sedangkan kondisi kimia meliputi  salinitas,  pH.  Parameter  yang  diukur  sebagai  faktor  pendukung  pemelitian  diantaranya suhu dan pH.
Table 1 .  Data Kisaran Kualitas Air Media yang Diukur Selama Kultur
Parameter Perlakuan Salinitas (ppt) Optimum (*) Salinitas 15 20 25 30 4-27 ppt (1) 15-20 ppt (2) 25 ppt (3) Suhu 23,4 - 25 23,4 - 25 23,4 - 25 23,4 - 25 25-30 ̊ C (4) 35-38 ̊ C 5)
20-30 ̊ C (2) pH 8-9 8-9 8-9 8-9 7,9-8,2 (2) 7,2-9,5 (4)
Sumber : (1) Widianingsih et  al .,  (2018); (2) Hariyati,  (2008); (3) Richmond,  (2004); (4) Isnansetyo  dan Kurniastuty, (1995); (5) Goksan et al ., (2006)
0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4 0.45 0.5 0.55 0.6 15 20 25 30 K an du ng an Fi k ob ili prot ei n (µ g /m L)
Perlakuan (ppt) Fikosianain Allofikosinain Fikoeritrin

## KESIMPULAN
Hasil  penelitian  menunjukkan  mikroalga Spirulina  platensis dapat  tumbuh  pada  salinitas berbeda  yang  diberikan  (15  ppt,  20  ppt,  25  ppt,  dan  30  ppt)  dengan  salinitas  15  ppt  memiliki pengaruh  yang  signifikan.  Hal  ini  dikarenakan  salinitas  memberikan  pengaruh  nyata  (p<0,05) terhadap  pertumbuhan  dan  laju  pertumbuhan,  sedangkan  salinitas  tidak  memberikan  pengaruh nyata (p>0,05) terhadap kandungan pigmen klorofil- a dan fikobiliprotein pada mikroalga Spirulina platensis .

## DAFTAR PUSTAKA
Adenan, N.S., Yusoff, F.M., & Shariff, M. 2013. Effect of Salinity and Temperature on the Growth of Diatoms and Green Algae. Journal of Fisheries and Aquatic Science , 8(2):397-404. Adi,  I.A.,  Anggreni,  A.A.M.D.  &  Arnata,  I.W.  2015.  Optimasi  Salinitas  dan  pH  Awal  Media  BG-11 Terhadap  Konsentrasi  Biomassa  dan  Klorofil Tetraselmis  chuii . Jurnal  Rekayasa  dan Manajemen Agroindustri, 3(4): 51-62 Anggorowati, D., Muyassaroh., & Dewi, R.K. 2018. Kultivasi Mikroalga Spirulina platensis Dengan Variasi  Pencahayaan  Menggunakan  Lampu  TL  dan  Matahari. Prosiding  Seminar  Nasional Aplikasi Sains & Teknologi 2018, pp 381-386 Armis,  A.  2017.  Analisis  Salinitas  Air  Pada  Down  Stream  Dan  Middle  Stream  Sungai  Pampang Makassar. Fakultas Teknik, Universits Hasanuddin, 10 hlm.
Arisasmita,  J.H.,  Kuswardani,  I.  &  Tjahjani,  L.  1997.  Ekstraksi  dan  Karakterisasi  Zat  Warna  Kulit Buah  Manggis  ( Garciania  mangostana L. ).  Dalam  : Prosiding  Seminar  Teknologi  Pangan. Jurusan Teknologi Pangan dan Gizi , Universitas Katolik Widya Mandala, Surabaya, pp 509 –516. Astiani, F., Dewiyanti I., &  Mellisa,  S. 2016. Pengaruh Media Kultur  Yang Berbeda TerhadapLaju Pertumbuhan  dan  Biomassa Spirulina sp. Jurnal  Ilmiah  Mahasiswa  Kelautan  dan  Perikanan Unsyiah . 1(3): 441-447.
Azimatun,  N.M.M.  2014.  Potensi  Mikroalga  sebagai  Sumber  Pangan  Fungsiaonal  di  Indonesia (Overview). Eksergi, 11(2):01-06
Barra,  L.,  Chandrasekaran,  R.,  Corato,  F.,  C,  Brunet.,  2014.  The  Challenge  Of  Ecophysiological Biodiversity For Biotechnological Applications Of Marine Microalgae. Marine drugs , 12(3): 641- 1675.
Bennett, A. & Bogorad, L. 1973. Complementary Chromatic Adaption in A Filamentous Bluegreen Alga. Journal of Cell Biology , 58: 419-435.
Budiardi,  T.N.B.P.,  Utomo,  N.B.P.  &  Santosa,  A.,  2010.  Pertumbuhan  dan  Kandungan  Nutrisi Spirulina sp. Pada Fotoperiode Yang Berbeda. Jurnal Akuakultur Indonesia, 9(2): 146-156 Cahyaningsih, S. & Subyakto, S. 2009. Kultur  Masal Scenedesmus sp. Sebagai Upaya  Penyedia Pakan Rotifera dalam Bentuk Alami Maupun Konsentrat. Jurnal Perikanan dan Kelautan. 1(2): 143-147.
Christiana, R., Kristopo, H. & Limantara, L. 2008. Photodegradation and  Antioxidant  Activity  of Chlorophyll A from Spirulina ( Spirulina sp .)  Powder. Indonesian  Journal  of  Chemistry 8(2): 236 –241.
Dewi,  M.S.,  Samiaji,  J.,  &  Nurrachmi,  I.,  2018.  Pengaruh  Perbedaan  Salinitas  Terhadap Pertumbuhan  Biomassa  Kultivasi  Mikroalga Spirulina  platensis Pada  Skala  Semi  Outdoor. Program Studi Sarjana Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Riau.
Djunaedi,  A.,  Suryono,  C.A.,  Dan  Sardjito.,  2017.  Kandungan  Pigmen  Polar  dan  Biomassa  Pada Mikroalga Dunaliella Salina Dengan Salinitas Yang Berbeda. Jurnal Kelautan Tropis , 20(1): 1-6 Hariyati, R. 2008. Pertumbuhan dan Biomassa Pada Spirulina sp Dalam Skala Laboratoris. Bioma, 10(1):19-22.
Hartono, 2004. Statistika untuk penelitian. Lembaga studi filsafat, kemasyarakatan, Kependidikan dan Perempuan, Pekanbaru.
Hirata, H., I Andarias., Dan S. Yamasaki. 1981. Efeect of Salinity Temperature on The Growth of The  Marine  Phytoplankton Chrolella  saccharophila .  Faculty  of  Fisheries  at  Kagoshima University, 3 : 257-262.
Madigan,  M.T.,  Martiko,  J.M.,  Stahl,  D.A.,  &  Clark,  D.P.  2011.  Brock  Biology  of  Microorganisms. 13 th ed. San Francisco (USA): Pearson Education Inc.
Pelczar,  Michael,  &  Chan,  E.C.S.  1986.  Dasar-Dasar  Mikrobiologi  Jilid  I.  UI-Press,  Jakarta (diterjemahkan oleh Ratna Siri Hadioetomo, Teja Imas,Sutarmi, Tjitrosomo, Sri Lestari  A). Porra,  J.  &  Robert.  2002.  The  Chequered  History  of  The  Development  and  Use  of  Simultsneous Equations for The Accurate Determination of Chlorophylls a and b. Photosynthesis Research . 73:149-156.
Queiroz,  M.I,  Fernandes,  A.S.,  Depra,  M.C.,  Jacob-lopes,  E.  &  Zepka,  L.Q.  2017.  Introductory Chapter: Chlorophyll Molecules and Their Tecnological Relevance. Intech Rafaelina,  M.,  Yoswita.  R.,  &  Amini,  S.  2015.  Pertumbuhan  dan  Aktivitas  Antioksidan  dari Mikroalga Porphyridium cruentum dan Chlorella sp. Bioma , 11(1): 12-21.
Rohmat, N., Ibrahim, R. & Riyadi, P.H. 2014. Pengaruh Perbedaan Suhu dan Lama Penyimpanan Rumput Laut Sargassum polycystum terhadap Stabilitas Ekstrak Kasar Pigmen Klorofil. Jurnal Pengolahan dan Bioteknologi Hasil Perikanan, 3(1):118 – 126. Sari, F.Y.A., Suryajaya, I.M.A. & Hadiyanto, H. 2012. Kultivasi Mikroalga Spirulina platensis Dalam Media  Pome  Dengan  Variasi  Konsentrasi  Pome  Dan  Komposisi  Jumlah  Nutrien. Jurnal Teknologi Kimia Dan Industri, 1(1): 487-494.
Sedjati,  S.,  Yudiati,  E.,  &  Suryono.  2012.  Profil  Pigmen  Polar  dan  Non  Polar  Mikroalga  Laut Spirulina sp. Dan Potensinya Sebagai Pewarna Alami. Ilmu Kelautan, 17(3): 176-181. Suminto, 2009. Penggunaan Jenis Media Kultur Teknis Terhadap Produksi Dan Kandungan Nutrisi Sel Spirulina platensis . Jurnal Saintek Perikanan 4(2): 53-61.
Sujatha,  K.,  &  Nagarajan,  P.  2013,  Optimization  of  growth  conditions  for  carotenoid  production from Spirulina  platensis (Geitler). International  Journal  of  Current  Microbiology  and  Applied Sciences , 2(10):325-328.