## PENDAHULUAN
Tanaman Kentang (Solanum
tuberosum  L.)  merupakan  tanaman  yang termasuk  ke  dalam  lima  kelompok  besar makanan  pokok  dunia  selain  gandum, jagung, beras, dan terigu. Adapun perbandingan  kandungan  gizi  kentang dengan  100  gram  ubi,  yaitu  protein  2  g, lemak 0,1 g, karbohidrat 19,1 g, kalsium 11 mg, fosfor 50 mg, besi 0,7 mg, serat 0,3 g, vitamin B1 0,09 mg, vitamin C 16 mg dan
kalori  83  kal  (Munggarani,  Suminar, Nuraini,  dan  Mubarok,  2018),  hal  ini membuat kentang sangat digemari sehingga permintaannya  terus  meningkat  searah dengan  peningkatan  jumlah  penduduk setiap  tahunnya.  Menurut  Badan  Pusat Statistik  (2020)  nilai  produksi  kentang sangat  berfluktuatif  dari  tahun  ke  tahun dimana pada tahun 2018 produksi  kentang mencapai  1.386.000  ton,  tahun  2019 sebesar  1.445.000  ton  namun  pada  tahun 2020  mengalami  kemerosotan  menjadi
Growth of Potato Mericlone Shoots (Solanum  tuberosum  L.) At Several Concentrations of  Kinetin  And  Coconut Water Pertumbuhan Tunas Meriklon Kentang  ( Solanum  tuberosum L.) Pada Beberapa Konsentrasi Kinetin dan Air Kelapa
Vistria Tambun 1) , Edy Fredy Lengkong 1*) , Semuel David
Runtunuwu 1) ,  Paula  C.  Supit 1) , Pemmy  Tumewu 1) ,  Annatje  E.  B. Inkiriwang 1) ,  Saartje  Sompotan 1) , Suzanne  Laura  Liwu 2) ,  Beatrix Doodoh 1) , Rinny Mamarimbing 1)
1 Fakultas  Pertanian,  Universitas  Sam Ratulangi
2 Pusat  Riset  Teknologi  dan  Proses Pangan, Badan Riset dan Inovasi Nasional, Gunungkidul, Yogyakarta 55861
*Corresponding author: fredylengkong.fl@unsrat.ac.id
Manuscript received: 9 Oct. 2023. Revision accepted: 18 Dec. 2023.

## Abstract
This  study  aims  to  determine  the  effect  and  concentration  of  kinetin  on potato mericlon shoots and to determine the best effect and concentration of coconut water on potato mericlon shoots. This research was conducted at  the  Plant  Genetics  Laboratory,  Faculty  of  Agriculture,  Sam  Ratulangi University,  Manado.  This  study  used  a  completely  randomized  design (CRD)  which  consisted  of  seven  treatments  namely  A0  (control/no treatment), A1 (Kinetin 0.5 ppm), A2 (Kinetin 1.5 ppm), A3 (Kinetin 1.5 ppm), A4 ( Coconut Water 5%), A5 (Coconut Water 7.5%), A6 (Coconut Water 10%). The variables observed were: shoot height, number of leaves, number of roots, and fresh weight. The results showed that the treatment of  kinetin  and  young  coconut  water  had  a  significant  effect  on  the parameters  of  shoot  height,  namely  A6  (6.74  cm),  number  of  leaves, namely A1 (8.2 strands) and A6 (8.2 strands), number of roots, namely A3 (11 .3 units) and a wet weight of A3 (0.4591 gram). In this study, a kinetin concentration of 0.5 ppm was good for increasing the number of leaves, and a concentration of 10% coconut water was good for increasing shoot height.
Keywords: Potato, Tissue Culture, PGR, Kinetin, Coconut Water.

## Abstrak
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh dan konsentrasi kinetin terhadap  tunas  meriklon  kentang  dan  untuk  mengetahui  pengaruh  dan konsentrasi  terbaik  air  kelapa  terhadap  tunas  meriklon  kentangPenelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Genetika Tanaman, Fakultas Pertanian, Universitas  Sam  Ratulangi  Manado.  Penelitian  ini  menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) yang terdiri dari tujuh perlakuan yaitu A0 (kontrol/tanpa perlakuan), A1 (Kinetin 0,5 ppm), A2 (Kinetin 1 ppm), A3 (Kinetin 1,5 ppm), A4 (Air Kelapa 5%), A5 (Air Kelapa 7,5%), A6 (Air Kelapa  10%).  Variabel  yang  diamati  adalah:  tinggi  tunas,  jumlah  daun, jumlah akar, dan berat basah.
Hasil  penelitian  menunjukan  pemberian  perlakuan  kinetin  dan  air  kelapa muda  berpengaruh  nyata  terhadap  parameter  tinggi  tunas  yaitu  A6  (6,74 cm), jumlah daun yaitu A1 (8,2 helai) dan A6 (8,2 helai), jumlah akar yaitu A3 (11,3 unit) dan berat basah yaitu A3 (0.4591 gram). Pada penelitian ini, konsentrasi  kinetin  0,5  ppm  sudah  baik  untuk  peningkatan  jumlah  daun, dan  konsentrasi  air  kelapa  10%  sudah  baik  untuk  meningkatkan  tinggi tunas.
Kata kunci: Kentang, Kultur Jaringan, ZPT, Kinetin, Air Kelapa.

## JURNAL  AGROEKOTEKNOLOGI TERAPAN

## Applied Agroecotechnology Journal
Agroteknologi Universitas Sam Ratulangi
e_ISSN:2797-0647
sebesar  1.262.000  ton.    Kemajuan  bidang plant  engineering  dalam  filosofi  dasar  dan lanjutan  mengenai  bioteknologi  tanaman, mekanisme  regulasi  terintegrasi  fungsi  sel tumbuhan  (Lengkong  E.F.,  &  Paat,  F.J. 2022; Paat F.J  et al 2021).
Salah  satu  varietas  kentang  yang dibudiyakan  di  Indonesia,  khususnya Sulawesi  Utara  ialah  Superjohn.  Budidaya kentang  kultivar  Superjohn  sudah  lama dilakukan  oleh  petani  di  Kecamatan Modoinding  Kabupaten  Minahasa  Selatan, dengan  penerapan  teknologi  oleh  petani, kentang Superjohn memiliki rata-rata hasil produksi  berkisar  antara  13-17  ton/ha. Walaupun demikian, kentang ini mempunyai  potensi  untuk  produksi  yang cukup  tinggi  yaitu  25  ton/ha,  dengan perkiraan penggunaan jarak tanam 80 x 20 cm dan hasil per tanaman 0,4 kg (4-5 umbi) (Runtunuwu, Rogi, dan Palendeng, 2011).
Salah satu faktor penentu keberhasilan  perbanyakan  tanaman  dalam kultur jaringan ialah media kultur. Adapun komponen media yang menentukan keberhasilan  kultur  jaringan  adalah  jenis dan konsentrasi zat pengatur tumbuh (ZPT) yang digunakan. Sitokinin adalah salah satu ZPT  yang  diperlukan  dalam  media  kultur jaringan  dan  diberikan  pada  konsentrasi yang  sesuai  untuk  pertumbuhan  yang diinginkan.
Konsentrasi hormon
pertumbuhan  dalam  media  kultur  jaringan berperan penting dalam proses morfogenesis  (Harahap,  2017).  Salah  satu bahan  alami  yang  dapat  meningkatan pertumbuhan  vegetatif  tanaman  adalah  air kelapa muda. Air kelapa merupakan cairan endosperm  buah  kepala  yang  mengandung senyawa  biologis  yang  aktif.  Air  kelapa mengandung  komposisi  kimia  yang  cukup lengkap yang terdiri dari mineral,  vitamin, gula,  asam  amino,  dan  fitohormon  yang berpengaruh  penting  serta  memiliki  efek signifikan  bagi  pertumbuhan  tanaman (Winarto, et al., 2015).
Berdasarkan uraian-uraian diatas terlihat bahwa pembudidayaan dan
pengembangan terhadap perbanyakan tanaman  kentang  secara  kultur  jaringan perlu  terus dilakukan  pengembangan khususnya pada media kultur jaringan.

## Tujuan Penelitian
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  1) Mengetahui  pengaruh  dan  konsentrasi kinetin terhadap tunas meriklon kentang, 2) Mengetahui  pengaruh  dan  konsentrasi terbaik  air  kelapa  terhadap  tunas  meriklon kentang.

## Manfaat Penelitian
Hasil  penelitian  ini  diharapkan  dapat menjadi bahan informasi mengenai penggunaan kinetin dan air kelapa terhadap induksi tunas meriklon tanaman kentang.

## METODOLOGI PENELITIAN Waktu dan Tempat Pelaksanaan
Penelitian  ini  dilaksanakan  selama  1 bulan mulai dari bulan Mei – Juni. Tempat penelitian  dilaksanakan  di  Laboratorium Genetika,  Fakultas  Pertanian,  Universitas Sam Ratulangi Manado.

## Bahan dan Alat
Bahan-bahan  yang  digunakan  adalah kentang varietas superjohn, air kelapa, gula pasir, alkohol 70%, dan 90%, NaOH, HCl, media MS (Murashige and Skoog), kinetin, agar, akuades dan spritus.
Alat-alat  yang  digunakan  adalah botol-botol  media,  plastik  tahan  panas, laminar  air  flow  cabinet  (LAFC),  gelas beaker, autoclave, panci, kertas label, karet, timbangan  analitik,  gelas  ukur,  kaca  tebal, pipet tetes, gunting, scalperl, pinset, lampu bunsen, pH meter, kompor gas, tisu dan alat tulis.

## Metode Penelitian
Metode yang digunakan pada penelitian  ini  adalah  Rancangan  Acak Lengkap (RAL), yaitu:
A0 = kontrol (tanpa perlakuan) A1 = Kinetin 0,5 ppm A2 = Kinetin 1 ppm A3 = Kinetin 1,5 ppm A4 = Air Kelapa 5% A5 = Air Kelapa 7,5% A6 = Air Kelapa 10%
Terdapat  7  perlakuan  dan  setiap perlakuan  terdiri  dari  5  ulangan,  sehingga diperoleh  35  unit  percobaan,  setiap  unit percobaan  terdiri  dari  2  tanaman  sehingga terdapat 70 eksplan.

## Prosedur Penelitian
(1)  Sterilisai Alat Seluruh botol kultur dilakukan sterilisasi dengan menggunakan oven pada suhu  1500C  selama  2  hari.  Untuk penggunaan  alat  tanam  (pinset,  scalpel, kaca  tebal,  tisu,  gunting)  dilakukan sterilisasi  dengan  dimasukkan  ke  dalam LAFC  dan  disemprotkan  dengan  alkohol 70%  lalu  dilakukan  penyinaran  sinar  UV selama  2  jam,  kemudian  pada  saat  akan digunakan  dicelupkan  kembali  ke  dalam alkohol 70% dan dibakar menggunakan api bunsen.
(2)  Pembuatan Media Kultur
a) Pembuatan Media Kontrol Pembuatan  media  dilakukan  dengan menimbang  media  MS  sebanyak  4,4  g, agar-agar 8 g, dan gula 30 g. Media MS dan gula  dimasukkan  kedalam  erlenmeyer  dan dilarutkan  dengan  akuades  sampai  volume larutan mencapai  1000 ml. Larutan diaduk sampai  tercampur  dengan  baik,  kemudian dilakukan  pengukuran  dan  pengaturan  pH sebesar  5,8.  Setelah  itu  ditambahkan  agar- agar  sebanyak  8  g  kedalam  larutan, selanjutnya larutan tersebut diaduk serta di didihkan  dengan  menggunakan  kompor gas. Media dituang ke botol kultur masing- masing  sebanyak  ±25  ml  per  botol.  Botol kemudian  ditutup  dengan  menggunakan plastik  dan  diikat  dengan  karet.  Media selanjutnya dilakukan sterilisasi menggunakan  autoclave  pada  suhu  1210C dengan tekanan 1,5 Psi  (kg/cm2) selama 2 jam.  Setelahnya,  botol-botol  diatur  pada rak-rak kultur.
b)Pembuatan Media Kinetin
•  Pembuatan  larutan  stok  Kinetin
Larutan  stok  kinetin  dibuat  dengan  cara menimbang  bubuk  ZPT  Kinetin  sebanyak 0,01 g dan dilarutkan dengan HCl beberapa tetes.  Kemudian  ditambahkan  aquades
sebanyak  100  ml,  menghasilkan  larutan stok Kinetin 100 ppm.
•  Pembuatan  media  Murashige  & Skoog  (MS)  +  ZPT  Pembuatan  media  A1 (Kinetin 0,5 ppm)
Rumus  pengenceran  Kinetin  :  M1  x V1 = M2 x V2 100 x /V1 = 0,5 x 1000 100V1 = 500
V1 = 500/100 = 5 ml
•  Pembuatan  media  A2  (Kinetin  1 ppm)  Rumus  pengenceran  Kinetin  :  M1  x V1 = M2 x V2 100 x V1 = 1 x 1000 100V1 = 1000
V1 = 1000/100 = 10 ml
•  Pembuatan  media  A3  (Kinetin  1,5
ppm)  Rumus  pengenceran  Kinetin  :  M1  x V1 = M2 x V2 100 x V1 = 1,5 x 1000 100V1 = 1500
V1 = 1500/100 = 15 ml
Selanjutnya  dilakukan  penimbangan media  MS  sebanyak  4,4  g,  agar-agar  8  g, dan  gula  30  g.  Media  MS  dan  gula dimasukkan  kedalam  erlenmeyer  dan dilarutkan dengan akuades sampai 200 ml, kemudian ditambahkan larutan kinetin stok sesuai  dengan  kebutuhan  masing-masing perlakuan (Perlakuan A1 Kinetin 0,5 ppm = 5 ml; perlakuan A2 kinetin 1 ppm = 10 ml; perlakuan A3 kinetin 1,5 ppm = 15 ml) dan ditambahkan  dengan  akuades  sampai volume larutan mencapai 1000 ml. Larutan diaduk sampai tercampur dengan baik, lalu dilakukan  pengukuran  dan  pengaturan  pH sebesar 5,8. Selanjutnya ditambahkan agar- agar  sebanyak  8  g  kedalam  larutan, selanjutnya larutan tersebut diaduk serta di didihkan  dengan  menggunakan  kompor gas.  Setelah  mendidih,  larutan  tersebut dituangkan ke botol kultur setiap botolnya. Botol kemudian ditutup dengan menggunakan  plastik  dan  diikat  dengan karet. Media selanjutnya dilakukan sterilisasi  menggunakan  autoclave  pada suhu  1210C  dengan  tekanan  1,5  Psi (kg/cm2) selama 2 jam.  Setelahnya, botol- botol diatur pada rak-rak kultur.
c) Pembuatan Media Air Kelapa
Pembuatan  media  dilakukan  dengan menimbang  media  MS  sebanyak  4,4  g, agar-agar 8 g, dan gula 30 g. Media MS dan gula  dimasukkan  kedalam  erlenmeyer  dan dilarutkan  dengan  akuades  kemudian ditambahkan air kelapa  yang telah melalui penyaringan  sesuai  dengan  masing-masing perlakuan (Perlakuan A4 air kelapa 5% = 50 ml; perlakuan A5 air kelapa 7,5% = 75 ml; perlakuan  A6  air  kelapa  10%  =  100  ml) ,kemudian  ditambahkan  akuades  sampai volume larutan mencapai 1000 ml. Larutan diaduk sampai tercampur dengan baik, lalu dilakukan  pengukuran  dan  pengaturan  pH sebesar 5,8. Selanjutnya ditambahkan agar- agar  sebanyak  8  g  kedalam  larutan, selanjutnya larutan tersebut diaduk serta di didihkan  dengan  menggunakan  kompor gas.  Setelah  mendidih,  larutan  tersebut dituangkan ke botol kultur setiap botolnya. Botol kemudian ditutup dengan menggunakan  plastik  dan  diikat  dengan karet. Media selanjutnya dilakukan sterilisasi  menggunakan  autoclave  pada suhu  1210C  dengan  tekanan  1,5  Psi (kg/cm2) selama 2 jam.  Setelahnya, botol- botol diatur pada rak-rak kultur.
(3)  Persiapan Ruang
Seluruh  bagian  laminar  air  flow cabinet  (LAFC)  sebelumnya  dibersihkan dengan  menggunakan  alkohol  70%,  lalu disterilkan  berserta  alat-alat  tanam  dengan sinar UV selama 2 jam.
(4)  Penanaman Eksplan
Penanaman eksplan dilakukan dengan cara  mengambil  tunas  hasil  multiplikasi yang  sebelumnya  telah  ditanam  dari  botol dengan menggunakan gunting dan meletakkannya  pada  kaca  tebal  dan dipotong  sesuai  dengan  ukuran  yang seragam ±1 cm dan ditanam secara aseptis ke dalam botol.
(5)  Pemeliharaan
Pemeliharaan  botol-botol  dilakukan dengan  cara  meletakkan  pada  rak-rak kultur,  dengan  penerangan  penuh,  dan untuk  mencegah  terjadinya  kontaminasi, botol-botol  kultur  disemprotkan  alkohol
70%  secara  berkala  sampai  eksplan bertumbuh dengan optimal.
Variabel Pengamatan (1) Tinggi Tunas (2) Jumlah Daun (3) Jumlah Akar (4) Berat Basah

## Analisis Data
Data  yang  didapatkan  dianalisis dengan  menggunakan  Microsoft  excel untuk  Analysis  of  Variance  (ANOVA), apabila  terdapat  pengaruh  nyata  maka dilanjutkan  dengan  uji  BNT  (Beda  Nyata Terkecil) pada taraf 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Tinggi Tunas Berdasarkan hasil sidik ragam menunjukkan bahwa pemberian kinetin dan air  kelapa  pada  media  kultur  jaringan berpengaruh  nyata  terhadap  tinggi  tunas setiap  minggunya.  Hasil  uji  BNT  5% ditampilkan pada Tabel 1.
Pengamatan  tinggi  tunas  merupakan salah satu cara untuk mengetahui pertumbuhan tanaman. ZPT yang ditambahkan  ke  dalam  media  kultur jaringan  untuk  mengatur  pertumbuhan  dan perkembangan planlet, salah satunya adalah tinggi tunas. Berdasarkan analisis, rata-rata tinggi tunas yang paling tinggi adalah pada perlakuan  A6  (Air  kelapa  10%)  yaitu  6,74 cm,  sedangkan  pengamatan  tinggi  tunas terendah  pada  A4  (Air  kelapa  5%)  yaitu 2,97 cm.
Berdasarkan  data  pengamatan,  tinggi tunas  terus  bertambah  setiap  minggunya menandakan pembelahan sel dan pemanjangan sel pada tunas yang terbentuk. Pemberian perlakuan A6 (Air kelapa 10%) merupakan  konsentrasi  terbaik  terhadap variabel  tinggi  tunas,  artinya  pemberian konsentrasi  tersebut  sudah  cukup  untuk memacu  tunas  tanpa  perlu  diberikan konsentrasi  yang  lebih  tinggi.  Menurut Wicaksono,  et  at.,  (2016)  menyatakan bahwa  sitokinin  atau  kinetin  juga  dapat meningkatkan  tinggi  tanaman  dengan  cara
mendorong pemanjangan sel. Dalam penelitian  ini  kinetin  dan  air  kelapa
merupakan bahan perangsang untuk pertumbuhan tanaman.
Tabel 1. Pengaruh kinetin dan air kelapa terhadap tinggi tunas
Perlakuan Minggu I II III IV A0 (Kontrol) 1.59 2.92 ab 3.62 abcd 5.58 bc A1 (Kinetin 0,5 ppm) 2 3.58 bc 4.38 bcd 5.96 bc A2 (Kinetin 1 ppm) 1.55 2.57 ab 3.21 abc 4.83 b A3 (Kinetin 1,5 ppm) 1.8 3.92 bc 4.61 cd 5.74 bc A4 (AK 5%) 1.3 1.84 a 2.37 a 2.97 a A5 (AK 7,5%) 1.53 2.6 ab 2.99 ab 4.23 ab A6 (AK 10%) 2.35 4.36 c 4.98 d 6.74 c BNT 5% = - 1,40 1,48 1,82
Keterangan: angka yang diikuti dengan huruf yang tidak sama, berbeda nyata berdasarkan uji BNT 5%.
Adapun rata-rata tinggi tunas paling rendah terdapat  pada  perlakuan  A4  (Air  kelapa 5%),  diduga  karena  rendahnya  pemberian konsentrasi  kinetin  untuk  menginduksi tinggi  tunas  pada  eksplan.  Berdasarkan hasil  penelitian  Yustisia  et  al.,  pemberian konsentrasi  air  kelapa  50  ml  memberikan rata-rata tinggi tunas tanaman kentang yang tidak  berbeda  nyata  dengan  pemberian konsentrasi  air  kelapa  25  ml  karena penggunaan konsentrasi  yang terlalu kecil, sehingga media belum mampu menyediakan  kebutuhan  nutrisi  untuk tanaman. Oleh karena itu, dalam penelitian mendatang  penambahan  konsentrasi  air kelapa mungkin dapat dinaikkan diatas 5% sehingga dapat memicu proses penambahan tinggi tunas.

## Jumlah Daun
Berdasarkan hasil sidik ragam menunjukkan bahwa pemberian kinetin dan air  kelapa  pada  media  kultur  jaringan berpengaruh  nyata  terhadap  jumlah  daun setiap  minggunya.  Hasil  uji  BNT  5% ditampilkan pada Tabel 2.
Pertumbuhan  daun  yang  terbanyak pada  4  MST  terjadi  pada  A1  (Kinetin  0,5 ppm)  dan  A6  (Air  kelapa  10%)  yaitu  8,2 helai.  Jumlah  daun  terendah  ditunjukkan
pada  perlakuan  A4  (Air  kelapa  5%)  yaitu 2,3  helai.  Daun  berperan  dalam  proses fotosintesis yang hasilnya sangat bermanfaat  bagi  perkembangan  eksplan. Semakin  banyak  jumlah  daun  yang dihasilkan,  diharapkan  semakin  memacu pertumbuhan  eksplan.  Pertumbuhan  daun terjadi pada semua perlakuan dan mengalami penambahan jumlah daun setiap minggunya.
Dalam  penelitian  ini  pada  umur eksplan  1  MST  daun  sudah  terbentuk dengan  jumlah  daun  tertinggi  diperoleh pada perlakuan A0 (Kontrol), hal ini diduga karena adanya auksin dan sitokinin endogen dalam jaringan yang cukup untuk memacu pertumbuhan  dan  morofgenesis  sehingga eksplan  mampu  berdiferensiasi  ke  arah pembentukan  daun.  Berdasarkan  data perlakuan  A1  (Kinetin  0,5  ppm)  dan  A6 (Air kelapa 10%) menunjukkan pertumbuhan daun terbanyak dibandingkan dengan  perlakuan  lainnya,  sehingga  pada perlakuan ini pemberian konsentrasi kinetin 0,5 ppm ataupun air kelapa 10% pada media kultur  jaringan  sudah  cukup  dalam peningkatan jumlah daun tanaman. Hasil ini menunjukkan  bahwa  penggunaan  sitokinin pada media kultur jaringan dapat
merangsang pertumbuhan daun. Zat pengatur  tumbuh  tanaman  sangat  berperan penting dalam mengatur proses pertumbuhan jaringan tanaman. Dan untuk membentuk daun dibutuhkan sitokinin yang ditranslokasikan  melalui  akar.  Pemberian konsentrasi  sitokinin  yang  baik  dan  tepat akan  memacu  pertumbuhan  daun  eksplan yang maksimal.
Jumlah  daun  yang  terendah  diduga karena  kurangnya  konsentrasi  pemberian
air kelapa ataupun gagalnya differensiasi sel pada  planlet.  Ridhawati  et  al.,  (2017) menyatakan  bahwa  keberhasilan  dalam suatu teknik kultur jaringan ditentukan oleh komposisi  media  termasuk  zat  pengatur tumbuh yang ditambahkan, sumber eksplan yang  sesuai  dan  cara  aklimatisasi  yang tepat.  Apabila  semua  unsur  tersebut  telah terpenuhi dengan maksimal maka kemungkinan  keberhasilan  dalam  kultur jaringan akan semakin baik. Tabel 2. Pengaruh kinetin dan air kelapa terhadap jumlah daun Perlakuan Minggu I II III IV A0 (Kontrol) 3.9 5.3 bc 5.7 bcd 7.9 c A1 (Kinetin 0,5 ppm) 3.6 6 c 6.5 cd 8.2 c A2 (Kinetin 1 ppm) 2.5 3.1 ab 3.2 a 3.7 ab A3 (Kinetin 1,5 ppm) 1.6 3.5 ab 4.2 abc 5.2 b A4 (AK 5%) 1.4 1.6 a 2 a 2.3 a A5 (AK 7,5%) 1.4 2.9 a 3.6 ab 4 ab A6 (AK 10%) 3.1 6.4 c 7.6 d 8.2 c BNT 5% = - 2,33 2,34 2,53
Keterangan: angka yang diikuti dengan huruf yang tidak sama, berbeda nyata berdasarkan uji BNT 5%.
Jumlah Akar
Berdasarkan hasil sidik ragam menunjukkan bahwa pemberian kinetin dan air  kelapa  sebagai  media  kultur  jaringan berpengaruh  nyata  terhadap  jumlah  akar tanaman  kentang.  Hasil  uji  BNT  5% ditampilkan pada Tabel 3.
Berdasarkan hasil pengamatan dalam penelitian  ini,  perlakuan  A3  (Kinetin  1,5 ppm)  menunjukkan  jumlah  akar  terbanyak dengan  rata-rata  11,3  akar  dan  yang terendah  pada  perlakuan  A4  (Air  kelapa 5%)  yaitu  rata-rata  4  akar.  Konsentrasi kinetin tertinggi 1,5 ppm mampu menghasilkan  jumlah  akar  yang  lebih banyak.  Hal  tersebut  diduga  terjadi  karena auksin  endogen  sudah  mampu  untuk merangsang pembentukan akar pada eksplan  dan  penambahan  sitokinin  dalam konsentrasi  kinetin  1,5  ppm  mampu memberikan respon terbaik terhadap pertumbuhan akar. Sitokinin mampu menstimulasi pembelahan sel dan
mempengaruhi lintasan diferensiasi,
sehingga apabila diberikan pada konsentrasi yang tepat dapat meningkatkan pertumbuhan akar.
Berdasarkan  hasil  penelitian  Riono
(2019)  menyatakan  bahwa  jumlah  akar eksplan  pisang  kepok  pada  perlakuan kinetin  5  ppm  mempunyai  hasil  terbaik dibandingkan  dengan  perlakuan  dengan konsentrasi yang lebih rendah. Avivi et al., (2013)  menyatakan  bahwa  penambahan auksin eksogen pada akar yang kandungan auksin  endogennya  sudah  cukup,  dapat menimbulkan  reaksi  negatif  sehingga  akar tidak  dapat  terbentuk.  Perakaran  dengan kualitas  yang  baik  sangat  menentukan keberhasilan  dalam  tahap  aklimatisasi. Pembentukan  akar  pada  proses  vegetatif dimulai  dari  proses  diferensiasi  sel  pada dbagian yang berbatasan dengan permukaan  potongan,  sehingga  sel-sel tersebut kembali bersifat meristematik. Sel-
sel  meristem  kemudian  membelah  dan berdiferensiasi membentuk primordia akar.

## Berat Basah
Berdasarkan hasil sidik ragam menunjukkan bahwa pemberian kinetin dan air  kelapa  sebagai  media  kultur  jaringan berpengaruh  nyata  terhadap  berat  basah tanaman  kentang.  Hasil  uji  BNT  5% ditampilkan pada Tabel 4.
Aktivitas metabolisme dan nilai berat basah tanaman yang dipengaruhi oleh unsur
hara,  kandungan  air  jaringan,  serta  hasil metabolisme  dapat  ditunjukan  oleh  berat basah tanaman. Berdasarkan hasil pengamatan dalam penelitian ini didapatkan bahwa  pemberian  perlakuan  A3  (Kinetin 1,5  ppm)  menghasilkan  berat  basah tertinggi  yaitu  pada  rata-rata  0,4591  g, adapun  berat  basah  terendah  yaitu  pada perlakuan A4 (Air kelapa 5%) dengan rata- rata 0,0417 g.
Tabel 4. Pengaruh kinetin dan air kelapa terhadap berat basah Perlakuan Rerata ………………………..gram………...………….. A0 (Kontrol) 0.1396 ab A1 (Kinetin 0,5 ppm) 0.2468 b A2 (Kinetin 1 ppm) 0.2615 bc A3 (Kinetin 1,5 ppm) 0.4591 c A4 (AK 5%) 0.0417 a A5 (AK 7,5%) 0.0837 ab A6 (AK 10%) 0.1709 ab

## BNT 5% = 0,20
Keterangan: angka yang diikuti dengan huruf yang tidak sama, berbeda nyata berdasarkan uji BNT 5%.
Adapun  hasil  rerat  bobot  berat  basah pada  planlet  kentang  setiap  perlakuan memiliki  hasil  yang  berbeda.  Bobot  basah pada  tanaman  secara  fisiologi  terdiri  dari dua  kandungan  yaitu  air  dan  karbohidrat (Indah  &  Dini  2016).  Peningkatan  jumlah daun serta tinggi tanaman akan mempengaruhi  berat  basah  tanaman,  yang dalam  pertambahannya  tidak  terlepas  dari peran akar dalam penyerapan air dan unsur hara  dalam  media.  Menurut  Rizal  et  al., (2018)  menyatakan  bahwa  bobot  basah kultur cenderung meningkat seiring dengan penambahan konsentrasi kinetin.
Penempatan  eksplan  dengan  kondisi  yang tegak  serta  aerasi  yang  baik  akan memungkinkan  eksplan  dapat  melakukan proses pertumbuhan secara optimal, sehingga  bila  pengambilan  air  sel  cukup maka  volume  sel  akan  bertambah  besar sehingga  akan  meningkatkan  berat  basah tanaman.

## KESIMPULAN DAN SARAN
Kesimpulan Terdapat pengaruh dalam pemberian kinetin  dan  air  kelapa  dalam  media  kultur jaringan  terhadap  variabel  tinggi  tanaman, jumlah daun, jumlah akar, dan berat basah pada  planlet  tanaman  kentang. Pada perbanyakan tanaman kentang secara kultur meriklon pemberian perlakuan kinetin pada konsentrasi  1,5  ppm  sudah  baik  untuk peningkatan  jumlah  akar  dan  berat  basah, dan konsentrasi air kelapa 10% sudah baik untuk  meningkatkan  tinggi  tunas  dan jumlah daun.

## Saran
Untuk melihat   pengaruh   yang lebih baik   pada   penelitian   lanjutan konsentrasi kinetin  dan  air  kelapa  terhadap  kultur meriklon kentang bisa diberikan konsentrasi dari 1,5 ppm dan konsentrasi air kelapa  dari  10%  atau  dengan  menambah
taraf penggunaannya
agar dapat
memberikan  peningkatan  pertumbuhan kentang yang lebih baik.
Masyarakat  di  Kabupaten  Bolaang Mongondow  Timur  masih  menggunakan gulma  sebagai  campuran  ramuan  obat tradisional.

## DAFTAR PUSTAKA
Afriana,
R. 2020. Induksi Dan
Pertumbuhan  Kalus  Pasak  Bumi (Eurycoma  longifolia  Jack)  Dengan Penambahan  Beberapa  Konsentrasi Bap Pada Media Ms+ Naa 1, 5 Ppm. Doctoral  Dissertation.  Uin  Sultan Syarif Kasim Riau.
Agampodi,  V.  A.  dan  Jayawardena,  B.
2009.  Effect  of  Coconut  (Cocos nucifera  L.)  Water  Extracts  on Adventitious  Root  Development  in Vegetative  Propagation  of  Dracaena purplecompacta L. Acta Physiol Plant Journal 31(5), 279-284.
Lengkong  E.F.,  &  Paat,  F.J.  2022.
Bioteknologi Tanaman. Penerbit. CV. Mineral  Mutiara  Bumi.  ISBN  978- 623-95524-5-9. 120 p.
Paat, F.J., Lengkong, E.F., Tumbelaka, S., Najoan,  J.  2021.  Plant  Physiology. Penerbit. CV. Mineral Mutiara Bumi. ISBN 978-623-88221-3-3. 77 p.
Paat,  F.J.,  Toding,  M.M.,  Tumbelaka,  S., Najoan, J. 2021. Plant Biochemistry. Penerbit. CV. Mineral Mutiara Bumi. ISBN 978-623-95524-4-2. 78 p.
Avivi,  S.,  Soedarmo,  S.  H.,  &  Prasetyo, P.A.  2013.  Multiplikasi  Tunas  dan Aklimatisasi  Tiga  Varietas  Pisang: Raja Nangka, Kepok, dan Mas. Jurnal Hortikultura  Indonesia,  4(2),  83-89. https://doi.org/10.29244/jhi.4.2.83-
89. Diakses: 7 Mei 2023.
Badan  Pusat  Statistik.  2020.  Statistik Konsumsi  Pangan  Tahun  2020. http://epublikasi.setjen.pertanian.go.i d/publikasi/Statistik  Pertanian/2020/ Statistik  Konsumsi_Pangan_Tahun_ 2020/files/assets/basic-html/page60.
Html. Diakses: 29 Juli 2023. Ferdous,  M.  H.,  A.  A.  M.  Billah.,  H. Mehraj., T. Taufique and A. F. M. J. Uddin. 2015. BAP And IBA Pulsing for In Vitro Multiplication of Banana Cultivars Through Shoot-Tip Culture. J.Bioscie, 3(2): 87-95.
George, E. F., Hall, M. A., & De Klerk, G. J. 2008. Plant Propagation by Tissue Culture 3rd Edition. The Netherland, The Back Ground Springer.
Harahap, M. Y. 2017. Pengaruh Konsentrasi  Indole  Acetic  Acid (IAA) dan Kinetin Terhadap
Pertumbuhan  Stek  Buku  Kentang (Solanum  tuberosum  L)  Pada  Media MS  Secara  In  Vitro.  Doctoral dissertation. Universitas
Muhammadiyah Sumatera Utara.
Harahap, R. A. 2018. Pengaruh Pemberian
NAA  (Naphtalene  Acetic  Acid)  dan TDZ (Thiadiazurone) terhadap
Pertumbuhan Planlet
Tanaman Kentang  (Solanum  tuberosum  L.). Doctoral  dissertation.  Universitas Muhammadiyah Sumatera Utara. Hirose,  N.,  K.  Takei.,  T.  Kuroha1.,  N.  T. Kamada.,  H.  Hayashi  and  H. Sakakibara.  2008.  Regulation  of
Cytokinin Biosynthesis, Compartmentalization and Translocation. Journal of Experimental Botany, 59, 75–83.
Indah,  P.,  dan  Dini.  2011.  Induksi  Kalus
Daun Nyamplung (Calophyllum inophyllum  Linn.)  pada  Beberapa Kombinasi Kosentrasi 6-
benzylaminopurine  (BAP)  dan  2,4- Dichorophenoxyacetic  Acid  (2,4-D). Jurnal Sains dan Seni Pomits, 2 (1) : 2337 – 3520.
Integrated Taxonomic Information System. 2023.  Taxonomy  and  Classification of Kingdom Plantae Checklist dataset.
https://doi.org/10.5066/f7kh0kbk diakses pada 23 Juni 2023.
Karjadi,  A.  K.  2016.  Kultur  Jaringan  dan Mikropropagasi  Tanaman  Kentang (Solanum tuberosum L). Iptek Tanaman Sayuran, (008).
Karjadi,  A.  K.,  &  Buchory,  A.  2008.
Pengaruh  Auksin  dan  Sitokinin Terhadap Pertumbuhan dan Perkembangan  Jaringan  Meristem Kentang  Kultivar  Granola.  Jurnal Hortikultura. Hal.380-384.
Khair,  M.,  &  Hamdani,  Z.  R.  2015.
Pengaruh Konsentrasi Ekstrak
Bawang  Merah  dan  Air  Kelapa terhadap Pertumbuhan Stek Tanaman Melati  Putih  (Jasminum  sambac  L.). Agrium, 18(2), 130 – 138.
Khazija,  S.  2021.  Pengaruh  Kinetin  dan NAA Terhadap Pertumbuhan Planlet Nenas  (Ananas  comosus  (L.)  Merr) Secara In Vitro. Doctoral dissertation. Universitas  Islam  Negeri  Sultan Syarif Kasim Riau.
Kristina,  N.  N.,  &  Syahid,  S.  F.  2012. Pengaruh  Air  Kelapa  Terhadap
Multiplikasi Tunas In Vitro, Produksi Rimpang, dan Kandungan Xanthorrhizol Temulawak di Lapangan.  Jurnal  Littri,  18(3),  125- 134. Lina, F. R., Ratnasari, E., & Wahyono, R.
2013. Pengaruh 6-Benzylamino Purine  (BAP)  dan  6-Furfuryl  Amino Purine  (Kinetin)  pada  Media  MS Terhadap  Pertumbuhan      Eksplan Ujung      Apikal      Tanaman      Jati Secara        In  Vitro.  LenteraBio,  2(1), 167-178.
Luthfiani,  A.  2021.  Pertumbuhan  Eksplan Kentang  (Solanum  Tuberrosum  L.) Var. Granola dengan Perlakuan Hara Makro dan Calsium Pantothenate Cap Secara  In  Vitro.  Bachelor's  thesis. Fakultas  Sains  dan  Teknologi  UIN Syarif Hidayatullah Jakarta.
Mandang, J. P., B. Doodoh dan D. Kojoh. 2017.  Kultur  Jaringan  Tanaman.  CV Patra Media Grafindo. Bandung.
Mohapatra,  P.  P.,  &  Batra,  V.  K.  2017.
Tissue  Culture  of  Potato  (Solanum Tuberosum L.): A Review. International  Journal  of  Current Microbiology  and  Applied  Sciences, 6(4), 489-495.
Munggarani, M., Suminar, E., Nuraini, A., &  Mubarok,  S.  2018.  Multiplikasi Tunas Meriklon Kentang pada
Berbagai  Jenis  dan  Konsentrasi Sitokinin. Agrologia, 7(2), 80-89.
Nana,  S.  A.,  &  Salamah,  Z.  2014.
Pertumbuhan Tanaman Bawang
Merah  (Allium  cepa  L.)  dengan Penyiraman  Air  Kelapa  (Cocos nucifera  L.)  sebagai  Sumber  Belajar Biologi  SMA  Kelas  XII.  Jupemasi- Pbio, 1(1), 82 – 86.
Naz, S., F. Aslam, S. Ilyas, K. Shahzadi and A. Tariq. 2012. In Vitro Propagation of  Tuberose  (Poliants  tuberosa). Journal of Medicinal Plants Research,
6 (24): 4107-4112.
Ni'mah, A. 2018. Multiplikasi Tunas Stevia (Stevia  Rebaudiana)  pada  Berbagai Macam Media Dasar dan Konsentrasi 6-Benzyl Amino Purin (BAP) Secara In  Vitro.  Doctoral dissertation. Universitas  Islam  Negeri  Maulana
Malik Ibrahim Malang. Purwanto, A.S.D. 2014. Modifikasi Media MS  dan  Perlakuan  Penambahan  Air Kelapa Untuk Menumbuhkan
Eksplan  Tanaman  Kentang.  Jurnal Penelitian  dan  Informasi  Penelitian. Jurusan Budidaya Pertanian. Fakultas Pertanian. Unsoed.
Rabbani,  M.A.,  M.S.  Masood,  Z.K.
Shinwari and K. Yamaguchi-
Shinozaki. 2010. Genetic Analysis of Basmati  and  Non-Basmati  Pakistani Rice  (Oryza  Sativa  L.)  Cultivars Using Microsatellite Markers. Pak. J. Bot. 42. Hal. 2551-2564.
Rahmatan, H. 2016. Pengaruh Penyiraman Air  Kelapa  (Cocus  nucifera  L.) Terhadap  Pertumbuhan  Vegetatif Lada (Piper Nigrum L.). Jurnal Ilmiah Mahasiswa  Pendidikan  Biologi  1(1).
Hal. 21.
Ridhawati, A, Anggraeni, T.D.A, Purwati, R.D.  2017.  Pengaruh  Komposisi Media  Terhadap  Induksi  Tunas  dan Akar Lima Genotipe Tanaman Agave Pada  Kultur  In  Vitro.  Jurnal  Buletin Tanaman  Tembakau,  Serat  dan Minyak Industri. Volume 9. Nomor 1. ISSN 2085-1717.
Riono,  Y.  2019.  Zat  Pengatur  Tumbuh Kinetin  Untuk  Pertumbuhan  Sub Kultur  Pisang  Barangan  (Musa
Paradisiaca  L.)  Dengan  Metode Kultur Jaringan. Jurnal Agro Indragiri, 1(2), 23–33. https://doi.org/10.32520/jai.v4i1.104
9. Diakses: 8 Mei 2023.
Rizal,  Syamsi,  Wisnu  Eko  Murdiono,  and Ellis  Nihayati.  2018.  Pengaruh Pemberian  Beberapa  Konsentrasi Kinetin  Terhadap  Induksi  Tunas Aksilar Tanaman Kakao (Theobroma cacao  L.)  Secara  In  Vitro.  Jurnal Produksi Tanaman 5.9.
Robbiani, D., T. Nurhidayati dan N. Jadid.
2010. Pengaruh
Kombinasi
Naphthalene Acetic Acid (NAA) dan
Kinetin pada Kultur In Vitro Eksplan Daun Tembakau (Nicotiana tabacum L.  var.  Prancak  95).  Skripsi.  Institut Teknologi Sepuluh November. Surabaya. Hal. 13.
Runtunuwu,  D.  S.,  Rogi,  J.  E.  X.,  & Palendeng,  J.  H.  2011.  Identifikasi Varietas Kentang Superjohn Berdasarkan Penanda RAPD (Random  Amplified  Polymorphic DNA). Eugenia, 17(1).
Sari,  D.  A.  2014.  Induksi  Tunas  Kentang
(Solanum tuberosum L.)
Menggunakan  BAP  (Benzil  Amino Purine). Skripsi. Universitas Jember. Sari,  N.  M.  2019.  Pengaruh  Penggunaan Air  Kelapa  terhadap  Pematahan Dormansi  Biji  Jarak  Pagar  (Jatropha curcas) sebagai Penunjang Praktikum Mata  Kuliah  Fisiologi  Tumbuhan. Doctoral dissertation. UIN Ar-Raniry
Banda Aceh. Sulistiani, E., dan Yani, S. 2012. Produksi Bibit Tanaman Dengan Menggunakan Teknik Kultur Jaringan. Seameo Biotrop. Tampubolon,  A.,  Mardiansyah,  M.,  dan Arlita,  T.  2016.  Perendaman  Benih Saga  (Adenanthera  pavonina  L.) dengan  Berbagai  Konsentrasi  Air Kelapa Untuk Meningkatkan
Kualitas  Kecambah.  Jurnal  Online Mahasiswa (JOM) Bidang Pertanian, 3(1), 1-6.
Wicaksono,  F.Y,  T  Nurmala,  A.W  Irwan, dan  A.S.U  Putri.  2016.  Pengaruh Pemberian  Giberelin  dan  Sitokinin pada  Konsentrasi  yang  Berbeda Terhadap  Pertumbuhan  dan  Hasil Gandum  (Triticum  aestivum  L.)  di Dataran  Medium  Jatinangor.  Jur. Kultivasi. Vol. 15(1). 52-58.
Winarto,  Budi,  and  Jaime  A  Teixeira  da Silva.  2015.  Use  of  Coconut  Water and Fertilizer for in Vitro Proliferation  and  Plantlet  Production of Dendrobium
‘Gradita  31.  In  Vitro  Cellular  &
Developmental Biology-Plant, 51(3),
303–314.