ISSN:25282956
Jurnal Agro Indragiri

## ZAT PENGATUR TUMBUH KINETIN UNTUK

## PERTUMBUHAN SUB KULTUR PISANG BARANGAN ( Mussa paradisiaca L ) DENGAN METODE KULTUR JARINGAN
Yoyon Riono 1 , 1 Jurusan Agroteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Islam Indragiri, Tembilahan Email: yoyonriono353@gmail.com

## Abstract
"Kinetin  Growth  Regulatory  Substances  for  Growth  of  Dragon  Fruit  Sub  Culture (Hylocerus  undatus  L)  with  the  Tissue  Culture  method"  has  been  carried  out  at  the Laboratory of Plant Biotechnology, Faculty of Agriculture, Riau Islamic University, Pekanbaru. The duration of the study was three months starting from November 2014 to January 2015. With the aim of the study was to determine the effect of Kinetin concentration on the growth of Barangan banana sub-culture in vitro. The design used in this study was a Non Factorial experiment in a Completely Randomized Design (CRD) and three replications. Kinetin factor, consisting of four levels, namely: K0 (0 ppm), K1 (4 ppm), K2 (5 ppm), and K3 (6 ppm).
The parameters observed were the age of shoots, number of shoots, shoot height, number  of  roots and  root  length.  The  results showed  that  the  treatment  of  giving  various concentrations of Kinetin had a significant effect on all parameters observed with the best K3 treatment (6 kpm kinetin administration), namely the age of buds (9.22 days), number of K0 shoots (3.94 pieces), height of K3 shoots (7.36 cm) , the number of K2 roots (15.44 pieces) and the length of K2 roots (5.66 cm).
Keywords : Growth Regulating Substances, Kinetin, Tissue Culture, Barangan Banana

## Abstrak
“Zat Pengatur Tumbuh Kinetin untuk Pertumbuhan Sub Kultur Buah Naga (Hylocerus undatus L) dengan metode Kultur Jaringan”telah dilaksanakan di Laboratorium Bioteknologi Tanaman  Fakultas  Pertanian  Universitas  Islam  Riau  Pekanbaru.  Waktu  pelaksanaan penelitian selama tiga bulan yang dimulai dari Nopember 2014 sampai dengan Januari 2015. Dengan  tujuan  penelitian  untuk  mengetahui  pengaruh  konsentrasi  Kinetin  terhadap pertumbuhan sub kultur pisang barangan secara in vitro. Rancangan yang digunakan dalam penelitian  ini  adalah  percobaan    Non  Faktorial  dalam  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  dan tiga ulangan. Faktor  Kinetin, terdiri dari empat taraf yaitu: K0 (0 ppm), K1 (4 ppm), K2 (5 ppm), dan K3 (6 ppm).
Parameter  yang  diamati  adalah  umur  muncul  tunas,  jumlah  tunas,  tinggi  tunas, jumlah akar dan panjang akar. Hasil penelitian menunjukan  Perlakuan pemberian berbagai konsentrasi  Kinetin  memberikan  pengaruh  yang  nyata  terhadap  semua  parameter pengamatan  dengan  perlakuan  terbaik  K3  (pemberian  kinetin  6  ppm)  yaitu  umur  muncul tunas (9.22 hari), jumlah tunas K0 (3.94 buah), tinggi tunas K3 (7.36 cm), jumlah akar K2 ( 15.44 buah) dan panjang akar K2 (5.66 cm).
Kata kunci: Zat Pengatur Tumbuh, Kinetin, Kultur Jaringan, pisang barangan

## 1. PENDAHULUAN
Produksi  buah  pisang  di  Indonesia menduduki  urutan  pertama  diantara  buah- buahan  tropika  yang  lain  (BPS  2008), walaupun  pernah  mengalami  penurunan drastis dari 3.805.431 ton pada tahun 1995
menjadi  3.023.485  ton  di  tahun  1996  dan 3.376.660  ton  di  tahun  2000.  Hal  tersebut berpengaruh  pada  volume  ekspor  pisang; dari  76.982  ton  di  tahun  1998  menurun menjadi  2.222  ton  di  tahun  2000  (BPS 2000). Dari tahun 2001 sampai 2005 terjadi
ISSN : Jurnal BAPPEDA
Jurnal BAPPEDA
peningkatan  produksi  pisang  berturut-turut adalah  4.300.422,  4.384.384,  4.177.155, 4.874.439  dan  5.177.608  ton  (BPS  2005). Produksi  pisang  tahun  2008  meningkat menjadi  6.004.615  ton/tahun  (BPS  2008) dan  tahun  2009  menjadi  6.373.533 ton/tahun.
Konsumsi  pisang  di  Indonesia  cukup tinggi,  pada  tahun  2005  konsumsi  buah pisang  perkapita  sebanyak  8.889  kg  per tahun.
Konsumsi
ini lebih besar dibandingkan  dengan  konsumsi  perkapita jeruk 6.24 kg per tahun dan papaya 3.28 kg per  tahun  (Suyanti  dan  Supryadi,  2008). Nilai ekspor pisang di Indonesia pada tahun 2006  adalah  sebesar  Rp.  15.923.313.840,-. Nilai  ini  merupakan  jumlah  yang  besar sebagai  pendapatan  negara  dari  komoditas pisang sehingga pisang merupakan komoditas  yang  prospek  pengembangannya masih terbuka lebar. Menurut  Cahyono  (1995),  permintaan komoditas  pisang  dalam  negeri  akan  terus mengalami  peningkatan  seiring  dengan bertambahnya jumlah penduduk, meningkatnya  pendidikan,  meningkatnya pendapatan dan kesadaran akan pentingnya gizi masyarakat Dewasa  ini,  kendala  pengadaan  bibit unggul  secara  konvensional  adalah  sulit mendapatkan  bibit  yang  berkualitas  dalam jumlah  besar  dalam  waktu  yang  singkat, dengan  demikian  salah  satu  teknik  yang terapkan  adalah  teknik  kultur  jaringan, dimana  teknik  ini  merupakan  keunggulan perbanyakan tanaman, melalui teknik kultur jaringan sangat dimungkinkan mendapatkan bahan  tanam  dalam  jumlah  besar  dalam jumlah singkat (Priyono et al., 2000). Ada  dua  cara  untuk  menyediakan  bibit, yaitu  konvensional  dan  kultur  jaringan  ( in vitro ).  Perbanyakan  secara  konvensional melalui  anakan  ( sucker ),  bonggol  dan belahan  bonggol  membutuhkan  waktu  yang lama,  bibit  yang  dihasilkan  sedikit,  tidak seragam  dan  kesehatannya  tidak  terjamin. Sedangkan  teknik  kultur  jaringan  ( in  vitro ) dapat menghasilkan bibit pisang yang sehat dan  seragam  dalam  jumlah  besar  dalam kurun  waktu  yang  relatif  singkat  dan  tidak tergantung  iklim,  sehingga  ketersediaan bibit terjamin.
Teknik  kultur  jaringan  akan  berhasil dengan  baik  apabila  syarat-syarat  yang diperlukan  bagi proses pembiakan tersebut dapat  terpenuhi.  Syarat-syarat  tersebut meliputi beberapa hal berikut ini : Pemilihan eksplan  atau  bahan  tanaman,  penggunaan media  yang  cocok,  keadaan  aseptik  dan pengaturan  udara  yang  baik  (Nugroho  dan Sugito, 2002).
Menurut  Gunawan  (1990),  dari  sekian banyak  jenis  media  dasar  yang  digunakan dalam  teknik  kultur  jaringan,  tampaknya media  MS  (Murashige-Skoog)  mengandung jumlah  hara  organik  yang  layak  untuk memenuhi  kebutuhan  banyak  jenis  sel tanaman dalam kultur jaringan.
Media tanam memberikan pengaruh yang besar terhadap keberhasilan kultur jaringan. Dalam media tanam kultur jaringan terdapat penambahan zat pengatur tumbuh. Tanaman  membutuhkan zat  pengatur tumbuh  alami  (fitohormon)  untuk  proses pertumbuhan,  yaitu  zat  pengatur  tumbuh auksin  dan  sitokonin.  Zat  pengatur  tumbuh berfungsi merangsang pertumbuhan tanaman,  misalnya  pertumbuhan  akar, tunas,  perkecambahan  dan  sebagainya (Hendrayono dan Wijayani, 1994). Kinetin  (6-fufury  amino  purine) tergolong  zat  pengatur  tumbuh  dalam kelompok sitokonin. Kinetin adalah kelompok  sitokinin  yang  berfungsi  untuk pengaturan pembelahan sel dan morfogenesis.  Dalam  pertumbuhan  jaringan tanaman,  sitokinin  bersama-sama  dengan auksin  memberikan  pengaruh  interaksi terhadap  deferensiasi  jaringan  (Sriyanti  dan Wijayani, 1994) Berdasarkan  hal  tersebut  diatas, penulis  memandang  dan  tertarik  untuk mengadakan suatu penelitian dengan  judul” Zat  Pengatur  Tumbuh  Kinetin  Untuk Pertumbuhan  Sub  Kultur  Pisang  Barangan ( Mussa Paradisiaca L ) Dengan Metode Kultur Jaringan
2. TINJAUAN PUSTAKA
2.1. Tinjauan Umum Tanaman Pisang
Pisang yang memiliki nama latin Mussa paradisiaca L  adalah  tanaman  herba  yang berasal  dari  kawasan  Asia  Tenggara (termasuk  Indonesia).  Tanaman  buah  ini kemudian  tersebar  luas  dikawasan  Afrika (Madagaskar), Amerika Selatan dan Amerika Tengah. Penyebaran tanaman ini selanjutnya hampir  merata  diseluruh  dunia,  yaitu meliputi  daerah  tropik  dan  subtropik,  mulai dari  Asia  Tenggara  ke  timur  melalui  Lautan Teduh sampai ke Hawai. Selain itu, tanaman pisang  tersebar  dibarat  melalui  Samudra Atlantik,  Kepulauan  Kanari,  sampai  Benua Amerika (Suyanti dan Supriyadi, 2008).
Klasifikasi botani tanaman pisang adalah sebagai  berikut  :  Divisi; Spermatophyta (tanaman berbiji), Sub divisi; Angiospermae (biji berada dalam buah), Kelas;
Monocotyledonae (biji  berkeping  satu), Famili; Musaceae, Genus; Musa, Spesies; Musa spp. (Simmonds 1970)
ISSN:25282956 Jurnal Agro Indragiri Famili  Musaceae  terdiri  dari  dua  genera yaitu  genus  Musa  dan  Ensete.  Genus  Musa terbagi atas empat kelompok yaitu Australimusa, Callimusa, Eumusa dan Rhodochlamys.  Kelompok  Callimusa  dan Rhodochlamys  banyak  digunakan  sebagai tanaman  hias,  sedangkan  Australimusa  dan Eumusa  banyak  dimanfaatkan  untuk  buah, serat dan sayuran. (Simmonds, 1970) Kelompok Eumusa paling banyak dibudidayakan  dan  tersebar  luas.  Kelompok ini  memiliki  banyak  jenis  yang  buahnya dapat  dimakan.  Pisang  yang  dikonsumsi sekarang  berasal  dari  dua  spesies  liar  yang merupakan  kelompok  Eumusa,  yaitu Musa acuminata (A)  dan Musa  balbisiana (B). Persilangan  alami  kedua  spesies  tersebut menghasilkan Musa paradisiaca (Simmonds, 1970). Kelompok  Eumusa  memiliki  jumlah kromosom dasar 11. Jenis-jenis pisang yang ada  memiliki  jumlah  kromosom  beragam, ada  yang  bersifat  diploid  (22),  triploid  (33) dan tetraploid (44). Kultivar yang mempunyai  anggota  paling  banyak  adalah yang  bersifat  triploid,  sedangkan  yang anggotanya  paling  sedikit  adalah  yang bersifat tetraploid (Simmonds, 1970).
Genom dari kultivar yang bersifat diploid adalah  AA  (pisang  Mas  dan  pisang  Seribu) dan  AB,  yang  bersifat  triploid  adalah  AAA (pisang  Ambon,  pisang  Ambon  Lumut, pisang  Badak  dan  pisang  Raja  Sereh),  AAB (pisang  Rajabulu  dan  pisang  Tanduk),  dan ABB  (pisang  Kepok)  dan  yang  bersifat tetraploid adalah AAAA dan ABBB (Simmonds, 1970). Simmonds  (1970)  juga  menyatakan bahwa  pisang  merupakan  tanaman  herba tahunan  dengan  sistem  perakaran  dan batang  di  bawah  tanah  (bonggol).  Bonggol pisang  memiliki  tunas-tunas  samping  yang disebut  anakan  ( sucker ).  Batang  yang terlihat  di  atas  permukaan  tanah  adalah batang  semu  yang  merupakan  kumpulan pelepah  daun  yang  saling  membungkus rapat.  Akar  pisang  dimulai  dari  bonggol dengan  ketebalan  5-8 mm,  berwarna  putih, berdaging,  jika  sudah  tua  akan  mengeras. Daun  berkembang  dari  bagian  tengah batang semu dalam keadaan rapat membuka penuh. Bakal daun pisang tumbuh dari  bonggol  pisang  dan  dengan  tekanan yang  kuat  meneroboskan  gulungan  daun keluar  dari  batang  semu.  Jika  satu  daun telah keluar maka di dalam batang terbentuk lagi satu daun muda.
Pada  dasarnya  semua  varietas  pisang dapat  diolah  menjadi  pati.  Namun,  tidak semua  varietas  pisang  menghasilkan  pati dengan mutu yang baik. Buah pisang kapok
menghasilkan  pati  yang  bermutu  baik dengan  warna  lebih putih  jika dibandingkan dengan  pati  dari  pisang  ambon  dan  siem yang  menghasilkan  pati  bewarna  coklat kehitaman  (Satuhu  dan  Supriyadi,  2000; Prabawati,  dkk  2008).  Jenis-jenis  pati  yang demikian  tidak  menarik  walaupun  aroma pisangnya lebih kuat dibandingkan pati yang terbuat dari pisang kepok.
Pisang  kepok  termasuk  pisang  berkulit tebal  dengan  warna  kuning  yang  menarik kalau sudah matang. Satu tandan terdiri dari 10-16  sisir  dengan  berat  14-22  kg.  Setiap sisir  terdapat  lebih  kurang  20  buah. Kandungan  nutrisi  tiap  100  gram  daging buah  pisang  mengandung  zat  gizi  sebagai berikut  :  kalori  79  kkal,  karbohidrat  21,2 gram, protein 1,1 gram, lemak 0,2 gram, air 75,5 gram, vitamin A 0,022 gram, vitamin C 0,0094  gram  dan  riboflavin  0,002  gram. (Anonim, 2003) Pohon  pisang  akan  berbunga  setelah berumur  kira-kira  8  bulan  misalnya  pisang raja,  ada  juga  baru  berbunga  kira-kira  10 bulan  yaitu  salah  satunya  pisang  kepok. Setelah bunga pisang muncul dari pohonya, baru  mengeluarkan  buah  kira-kira  berumur 4-10  hari,  baru bunga  pisang  dapat diambil setelah 15-20  hari, umur bunga pisang atau kira-kira  setelah  terbentuk  tangkai  bunga sepanjang 10-20 cm.
Daun  pisang merupakan  daun  yang cukup banyak penggunanya, mulai dari daun muda  sampai  daun  tua,  bahkan  sampai kering  dapat  digunakan.  Di    waktu  musim kering,  jarang  terdapat  rumput  hijau. Sebagai  bahan  makanan  ternak,  daun pisang  muda  juga  dipergunakan  sebagai makanan  ternak.  Daun  pisang  yang  sudah tua (mulai mengering) setelah berumur kira- kira  2  bulan  lebih,  umumnya  dipergunakan sebagai pembungkus. (Semangun, H 1989) Batang  pisang  mempunyai  manfaat cukup  banyak,  tidak  hanya  dipergunakan sebagai  landasan  tempat  berpijak  wayang dalam resepsi, tetapi dapat pula dipergunakan  sebagai  bahan  makanan tambahan  bagi  ternak  dimusim  kering,  dan dapat  juga  digunakan  sebagai    bahan  baku pupuk  kompos,  yang  nantinya  akan mempunyai nilai-nilai ekonomi yang baik.
Kulit  pisang  merupakan  bahan  buangan (limbah  buah  pisang)  yang  cukup  banyak jumlahnya,  yaitu  kira-kira  1/3  dari  buah pisang yang belum dikupas. Pada umumnya kulit  pisang  ini  juga  dimanfaatkan  untuk pakan  ternak,  selain  itu  kulit  pisang,  salah satunya  pisang  kepok  juga  dimanfaatkan sebagai  bahan  baku  minuman  beralkohol (anggur),  karena  pisang  ini  memiliki  aroma yang tajam.

## ISSN : Jurnal BAPPEDA
Jurnal BAPPEDA Buah  pisang  dapat  diolah  menjadi bentuk  lain  yang  memungkinkan  akan mempertinggi nilai tambah. Hal ini disebabkan karena pisang kepok, pisang raja dan  pisang  muli  memiliki  rasa  yang  enak, salah  satunya  pisang  kepok  mengandung bahan  kering  (daging  pisang  kering)  yang tinggi,  menyusul  pisang  raja,  pisang  gabu, pisang kidang, dan pisang susu.

## 2.2. Syarat Tumbuh Tanaman Pisang.
Tanaman pisang dapat tumbuh pada iklim  tropis  basah,  lembab  dan  panas  yang mendukung  pertumbuhan.  Pisang  masih dapat  tumbuh  didaerah  subtropis,  pada kondisi  tanpa  air,  pisang  masih  tetap tumbuh  karena  air  disuplai  dari  batangnya yang  berair  tetapi  produksinya  tidak  dapat diharapkan.
2.2.1. Iklim Menurut  Terra,  bahwa  tanaman pisang di seluruh dunia kebanyakan terdapat didaerah  tropis,  negara  penghasil  pisang letaknya  disebelah  Utara  dan  Selatan  garis katulistiwa. Walaupun demikian tidak ditiap- tiap  daerah  tersebut  dapat  menghasilkan pisang dengan baik. Faktor-faktor  iklim  dan tanah  sangat  erat  hubunganya  satu  sama lain  seperti  ketinggian  daerah,  angin  dan curah hujan.
Ketinggian  daerah  tiap-tiap  jenis pisangpun  dapat  tumbuh  ditempat-tempat yang  sama.  Di  Indonesia  tanaman  pisang juga  dapat  tumbuh  didaerah  pegunungan hingga  ketinggian  2000  m,  yang  hawanya rata-rata  dingin.  Salah  satunya  pisang kepok,  pisang  muli  dan  pisang  raja  juga dapat  tumbuh  didataran  rendah  hingga ditempat-tempat  yang  ketinggianya  lebih dari 1000 m. Lain-lain jenis pertumbuhanya lebih memuaskan dibawah ketinggian tersebut. (Anonim, 2003) Tanaman  pisang  rata-rata  dapat tahan terhadap
kekeringan, karena batangnya  dapat  dan  banyak  mengandung air.  Walaupun demikian  jangan    diharapkan hasil yang lebih baik dari pohon pisang yang kekeringan.  Saat  kekeringan  sebaliknya dapat diatasi, bila  keadaan  air  dalam  tanah tidak  begitu  dalam  atau  dengan  pengairan. Di  negara  Siam  misalnya,  didataran  rendah didaerah  aliran  sungai  Mekong,  tanaman pisang  jenis  “Raja  Siem),  dengan  baiknya dapat  tumbuh  dan  menghasilkan,  walaupun terdapat  iklim  5-6  bulan  kering  tetapi dengan air dibawah tanah 6-10 m.
Faktor  iklim  yang  tidak  kurang pentingya  adalah  angin.  Di  Indonesia  angin kumbang  (gending)  adalah  angin  yang  ada
pada  musim  kemarau.  Angin  ini  tidak lembab, sangat kering, dan deras mengalirnya.  Tanaman  pisang  daunya  tidak begitu  kuat  menahan  angin  yang  deras, hingga daunya robek-robek. Keadaan tersebut tidak sedikit mempengaruhi pertumbuhan,  maupun  hasilnya.  Faktor angin  ini  masih  dapat  diatasi,  dengan diusahakan adanya tumbuh-tumbuhan penahan  angin.  Misalnya  pekarangan- pekarangan  tumbuhnya  pisang  rata-rata tidak menderita akibat dari derasnya angin. Terra,  juga  menyimpulkan  bahwa, tanaman  pisang dapat  tumbuh  dengan  baik dengan  keadaan  iklim  sebagai  berikut:  (1). Curah hujan dalam 1 tahun harus diimbangi dengan  keadaan  air  didalam  tanah.  (2). Curah  hujan dalam  12  bulan terus-menerus basah, diimbangi dengan air dalam tanah 50 cm hingga sangat dalam. (3). Kurang dari 9- 12  bulan  basah  dan  2-1  bulan  kering, diimbangi  dengan  air  didalam  tanah  50  - 200cm.  (4).  Kurang  dari  7  bulan  basah dengan 4 bulan kering, diimbangi dengan air didalam  tanah  50-150  cm.  (hujan  basah sama  dengan  curah  hujan  jumlahnya  lebih dari  100  mm  dalam  satu  bulan,  dan  bulan kering sama dengan 100 mm kebawah).
2.2.2. Tanah Tanaman pisang dipekarangan biasanya hidupnya subur karena tumbuhnya dekat  tempat  pembuangan  sampah,  atau memang ditanam ditempat bekas pesampahan. Di daerah pegunungan dimana kadar  humusnya  didalam  tanah  masih tinggi,  tanaman  pisang  tumbuhnya  juga sehat-sehat dan baik pula hasilnya.
Tanaman  pisang  tumbuhnya  sangat subur  didataran  rendah,  ditanah  lempung yang  warnanya  sawo  matang,  dimana tanaman  tebu  juga  dapat  hidup  dengan subur.
Jelaslah bahwa tanah-tanah perkebunan tebu pada saat itu masih banyak mengandung humus. Tanah  untuk  tanaman  pisang  harus dapat  mengandung  air  tetapi  tidak  boleh menggenang,  seperti  halnya  didataran- dataran rendah dekat pantai pada umumnya. Di daerah-daerah yang tanahnya merupakan tanah lempung berat dan airnya mudah  menggenang  harus  diusahakan adanya  pembuangan  air.  Tanaman  pisang yang  sering  tergenang  oleh  air  dan  tidak mudah
dibuang akan mengalami pembusukan akar dan serangan penyakit. Tanah  yang  mengandung  kapur tergolong  tanah  yang  baik  untuk  dapat menghasilkan pisang yang baik, seperti buah pisang  keluaran  pulau  Madura  yang  banyak bukit-bukit  kapurnya.  Pada  umumnya  agar tanaman  pisang dapat berhasil  dengan baik
ISSN:25282956 Jurnal Agro Indragiri
menghendaki  tanah  kemasaman  tersebut, dinyatakan  dengan  angka  pH  6  –  pH  8. Tanaman  pisang  ditanah  yang  masam mudah diserang penyakit jamur.
Dapat  disimpulkan  bahwa,  tanah yang  baik  untuk  penanaman  pisang  adalah sebagai  berikut  :  (1).  tanah  cerul,  yaitu tanah  yang  banyak  mengandung  humus dengan pH 6 – pH 8. (2). untuk tanah yang telah mengalami erosi (larut) sehingga tanah bagian atas sudah hilang atau tinggal sedikit saja,  tidak  akan  menghasilkan  pisang  yang baik. (3). tanahnya harus yang agak dalam, air  hujan  dapat  dengan  mudah  meresap kebawah.  (4).  tanahnya  harus  yang  subur dalam  arti  cukup  banyak  mengandung  zat- zat yang diperlukan. 2.3. Perbanyakan Tanaman Pisang Secara Konvensional Pisang yang dapat dimakan umumnya  tidak  berbiji  atau  berbiji  steril, sehingga  diperbanyak  secara  vegetatif. Secara konvensional tanaman pisang diperbanyak  dengan  menggunakan  bonggol ( corm ),  belahan  bonggol  dan  anakan ( sucker ). Petani-petani tradisional di Indonesia  umumnya  menggunakan  anakan sebagai  bahan  perbanyakan  tanaman. Masing-masing induk tanaman menghasilkan 1-2 anakan sehingga sangat terbatas jumlah bibit yang dapat dikembangkan dari anakan. Para petani di Sukamekar (Kabupaten Cianjur) memperbanyak anakan pisang  dengan  cara  menimbun  bonggol dengan  tanah.  Bonggol  yang  ditimbun, dikelupas pelepah-pelepah daun atau batang semunya  terlebih  dahulu  sehingga  seluruh bonggol terbuka. Dari bonggol tersebut akan tumbuh tunas atau anakan sekitar 4 anakan dalam waktu 6 bulan. Akan  tetapi,  perbanyakan  tanaman secara  konvensional  memiliki  kelemahan: (1) waktu yang diperlukan untuk memperbanyak  anakan  atau  mata  tunas sangat  lama,  (2)  jumlah  bibit  yang dihasilkan  sedikit,  (3)  hasil  perbanyakan memungkinkan  bagi  meluasnya  patogen, yang  akan  sangat  nyata  menurunkan produksi. 2.4. Sub kultur Jaringan Sub  kultur  merupakan  salah  satu kegiatan  penting  dalam  metode  kultur jaringan ( in vitro ). Menurut Gunawan (1992) sub kultur adalah pemindahan kultur aseptik dari satu media kultur ke dalam media kultur yang lain, baik yang sama maupun berbeda jenis  atau  komposisi  media  kulturnya, dengan  jangka  waktu  tertentu.  Masa  saat kultur aseptik berada didalam media disebut masa inkubasi. Setiap masa inkubasi disebut passage . Passage pertama adalah sub kultur
pertama  dari  jaringan  yang  terbentuk  dari eksplan  awal.  Sedangkan passage kedua berarti  adalah  sub  kultur  kedua,  demikian seterusnya.  Masa  inkubasi  tiap  kultur berbeda  untuk  tiap  spesies  yang  berbeda pula.  Demikian  pula  untuk  jumlah passage . Bahan  yang  diambil  dari  setiap  sub  kultur disebut inokulan . Inokulan dapat  berupa eksplan  maupun  tunas  steril.  Sub  kultur eksplan  dilakukan  dengan  memindahkan eksplan  yang  diinginkan  yang  sebelumnya dipotong  terlebih  dahulu,  yang  berarti ukuran eksplan  lebih  kecil  dari  sebelumnya, sehingga ruang untuk tunas baru yang akan terbentuk  bertambah.  Inilah  salah  satu tujuan dilakukan  sub  kultur, sedangkan  sub kultur  tunas  steril  dilakukan  dengan memindahkan tunas yang sebelumnya telah dipotong  daunnya.  Tujuannya  adalah  untuk mengurangi resiko kontaminasi pada kultur.
Tujuan  sub  kultur  yang  lain  adalah  untuk pemantapan klon (Gunawan, 1992).
Beberapa peneliti terdahulu melakukan  teknik  sub  kultur  dalam  metode kultur  jaringan.  Armini  (1992)  melakukan sub  kultur  sebanyak  dua  kali  untuk multiplikasi  tunas  pisang  dengan  selang antara  sub  kultur  12  minggu,  sub  kultur sebanyak  dua  kali  dengan  selang  empat minggu  terhadap  eksplan  tunas  melon ( Cucumis melo L.). Hasil penelitian Krisnaningtyas  (2003)  menunjukkan  bahwa perlakuan  sub  kultur  berulang  merangsang pertumbuhan  dan  perkembangan  anyelir secara in  vitro .  Semakin  banyak  frekuensi sub kultur dapat meningkatkan jumlah tunas dan tinggi tunas Dianthus caryophyllus L. 2.5. Kultur Jaringan (In Vitro)
Pada Pisang Kultur jaringan ( in vitro) pada pisang saat  ini  banyak  dilakukan.  Eksplan  ujung tunas  ( shoot  tip )  dapat  digunakan  sebagai bahan tanaman yang dapat menghasilkan 8 tunas  per  30  hari.  Dalam  360  hari  dapat diperoleh  kurang  lebih  1.000.000  tunas. Penerapan  kultur in  vitro pada  pisang ditujukan  untuk  perbanyakan  tunas  dan perlindungan tanaman dari penyakit. Menambah  ukuran  optimal  eksplan  yang digunakan tergantung dari tujuannya. Untuk perbanyakan  cepat,  ukuran  eksplan  3-  10 mm, sedangkan jika untuk tujuan menghilangkan bakteri ukuran eksplan 0.5-1 mm. Media untuk perbanyakan mikro pisang adalah  MS  +  30-40  g/l  sukrosa,  2.25  mg/l BA + 0.175 mg/l IAA (untuk inisiasi tunas), dan pemadat agar 5-8 g/l.
Penerapan  kultur in  vitro pada pisang  Rajabulu  dewasa  ini  juga  telah banyak  dilakukan.  Menurut  Sukma  (1994) perlakuan  yang  terbaik  pada  pisang
ISSN : Jurnal BAPPEDA

## Jurnal BAPPEDA
Rajabulu, dengan eksplan tunas in vitro dari sucker , adalah pada 10.5 mg/l BAP +
3.0  mg/l  IAA  yang  menghasilkan  rata-rata 7.68 tunas. Hasil penelitian Ernawati et
al .,  (1994),  dengan  menggunakan  eksplan dari sucker pisang Rajabulu, tunas terbanyak  yaitu  rata-rata  7.17  tunas dihasilkan  pada  perlakuan  7.0  mg/l  BAP  + 3.0 mg/l  IAA.  Eksplan  yang  biasa  digunakan dalam  perbanyakan  pisang  berasal  dari anakan ( sucker ).
Inisiasi  tunas  pisang  Rajabulu  tidak sulit.  Pada  umur  2  minggu  setelah  inisiasi, eksplan  sudah  memperlihatkan  warna  hijau (hidup). Namun, hasil percobaan Kasutjianingati  (2004)  yang  sama  dengan hasil  percobaan  Ernawati et al .,  (2000) menunjukkan bahwa dormansi apikal pisang Rajabulu/AAB  lebih  susah  mengalami break
dan memerlukan inisiasi lebih lama dibanding pisang mas/AA, Ambon Kuning/AAA dan Barangan/AAA. Percobaan Kasutjianingati juga menunjukkan  bahwa  penggandaan  tunas dan kemampuan berakar pisang Rajabulu/AAB lebih rendah dibanding pisang mas/AA, Ambon Kuning/AAA dan Barangan/AAA.  Sedangkan  kombinasi  BAP dan IAA yang dianjurkan untuk menghasilkan tunas layak pisang Rajabulu/AAB dan Kepok Kuning/AAB adalah BAP 5 mg/l dan IAA 3 mg/l.
Sementara  itu,  Isnaeni  (2008) melaporkan bahwa pada tahap inisiasi tunas pisang  Rajabulu,  penggunaan  Thiadiazuron (TDZ) memberikan hasil yang lebih baik bila dibandingkan  dengan  BAP.  Jumlah  tunas hidup tertinggi dihasilkan oleh media dengan penambahan  TDZ  0.04  mg/l.  Namun, penggunaan  TDZ  berpengaruh  lebih  buruk pada
multiplikasi pisang Rajabulu dibandingkan dengan media MS0. 2.1. Zat Pengatur Tumbuh Kinetin
Adapun  kinetin  (6-furfury  amino purine)  tergolong  zat  pengatur  tumbuh dalam  kelompok  sitokinin.  Menurut  Anonim (2010)  sitokinin  adalah  hormon  tumbuhan turunan adenin berfungsi untuk merangsang pembelahan  sel  dan  diferensiasi  mitosis, disintesis  pada  ujung  akar  dan  ditranslokasi melalui  pembuluh  xylem.  Aplikasi  untuk merangsang  tumbuhnya  tunas  pada  kultur jaringan atau tanaman induk, namun sering tidak  optimal  untuk  tanaman  dewasa. Sitokonin  dapat  mengatur  keseimbangan sel.  Penambahan  sitokinin  dalam  jumlah banyak dapat mengakibatkan batang bertambah besar, daun kecil dan pucat.
Peranan  sitokinin  antara  lain:  1) bersama  dengan  auksin  dan  giberelin merangsang  pembelahan  sel-sel  tanaman, 2) merangsang morfogenesis (inisiasi/pembentukan  tunas)  pada  kultur jaringan,  3)  merangsang  perluasan  daun yang  dihasilkan  dari  pembelahan  sel  atau merangsang pemanjangan titik tumbuh daun dan merangsang pembentukan akar cabang, 4)  meningkatkan  membuka  stomata  pada beberapa  spesies  tanaman,  5)  mendukung konversi  etioplastis  ke  kloroplas  melalui stimulasi  sintesisi  klorofil,  6)  menghambat proses  penuaan  (senescence)  daun,  7) mematahkan dormansi biji. Kinetin  merupakan  suatu  turunan dari basa adenin yang berfungsi meningkatkan  pembelahan  sel  ( cytokineisi) (Wattimena, 1988 dan Dwijoseputro, 1980). Menururt  Wetherell  (1982)  kinetin  bersifat memacu  pertumbuhan  tunas  lateral  yang biasanya  tidak terlihat  nyata akibat pengaruh dari tunas apical pucuk. Hal inilah yang selanjutnya menjadi dasar fisiologi dari upaya  meningkatkan  jumlah  cabang  lateral, yang  seperti  diketahui  sangat  penting artinya bagi pembiakan secara in vitro. Menurut Pierik (1987) saat tumbuhnya akar juga dipengaruhi pertumbuhan  tunas:  tunas  tumbuh  dengan baik  memacu  pertumbuhan  akar,  apabila pertumbuhan tunas terhambat maka pertumbuhan akar pun terhambat. Terhambatnya  pertumbuhan  akar  juga disebabkan  oleh  tingginya  konsentrasi kinetin  dalam  media.  Pada  tembakau ( Nicotiana tabacum) kalus tidak berdiferensiasi  jika  medium  mengandung  2 mg/l IAA dan 0.001 mg/l Kinetin. Bila kinetin diturunkan  sampai  0.002  mg/l  tanpa merubah  IAA,  dari  kalus  akan  terbentuk banyak  akar  (Skoog  dan  Miler,  1957) (Soepraptopo,  1981, dalam Ambarwati,
1987) Hasil  penelitian  Domoreo  dan  Barba (1984)  dalam  Ambarwati et  all., (1994) terhadap pisang saba menghasilkan 200.000 bibit  dalam  waktu  10  bulan  dengan eksplan dari  belahan  bonggol  pada  media  MS  dan penambahan 10 mg/l kinetin.
Pada  hasil  penelitian  Avivi  dan Ikrarwati  (2003)  terhadap  pisang  abaca pada  media  MS  dengan  perlakuan  zat perangsang tumbuh yaitu Kinetin, BAP, NAA. Pada  perlakuan  BAP  6  ppm  memberikan pengaruh  baik  terhadap  parameter  jumlah tunas  (9  tunas)  dan  tinggi  tunas  2,62  cm, untuk  kinetin  pada  konsentrasi  7  ppm memberikan  pengaruh  yang  paling  baik terhadap  parameter  jumlah  tunas  (9  tunas) dan  tinggi  tunas  2,76  pada  tahap
ISSN:25282956 Jurnal Agro Indragiri
pengakaran  tunas  mikro,  perlakuan  NAA  1 ppm  memberikan  pengaruh  paling  baik terhadap  parameter  jumlah  akar  (6,67  akar per eksplan).
Hasil  penelitian  Isnaini  (2008) menunjukan  bahwa  pemberian  kinetin  pada berbagai  sumber  eksplan  (tunas,  pucuk, buku pertama, buku kedua) belum diperoleh konsentrasi  yang  optimal  untuk  semua peubah pengamatan.  Jumlah  tunas  tertinggi diperoleh  pada  eksplan  yang  berasal  dari buku pertama krisan yaitu 2,47 tunas/eksplan  dan  jumlah  buku  12,97 buku/eksplan  yang  berasal  dari  buku  kedua krisan.  Jumlah  daun  terbanyak  diperoleh pada  eksplan  berasal  dari  buku  pertama dengan  konsentrasi    3  ppm  kinetin  yaitu 17,41  daun/eksplan.  Jumlah  akar  dan  berat basah  tanaman  tertinggi  diperloeh  pada konsentrasi  0  ppm  kinetin  yaitu  8,14 akar/eksplan dan 0,944.
3. METODOLOGI PENELITIAN 3.1. Tempat dan Waktu Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Bioteknologi Fakultas Pertanian  Universitas  Islam  Riau  Jalan Kaharudin  Nasution  Km  113  Kelurahan Simpang  Tiga,  Kecamatan  Bukit  Raya, Marpoyan, Kota Pekanbaru. 3.2. Bahan dan Alat Bahan yang digunakan dalam penelitian  ini  adalah  tunas  subkultur  pisang kepok  (hasil  inisiasi  dari  tim  laboratorium bioteknologi  UIR),  bahan  kimia  Media Murashige-Skoog,  aquades  steril,  Alkohol, tepung  agar,  gula,  Kinetin,  deterjen,  kertas tisu,  kertas  label,  karet  gelang  dan  bahan- bahan lain  yang mendukung penelitian ini.
Alat-alat  yang  digunakan  adalah Laminar  air  flow  cabinet,  autoclave, timbangan  analitik,  erlenmeyer,  gelas  ukur, gelas  piala,  petridish,  jarum  injeksi,  pipet, pengaduk  kaca,  pinset,  scapel,  lampu spritus, hand sprayer, pisau, pH meter, botol kultur,  kompor  gas,  panci  berlapis  enamel, lemari  penyimpan  bahan  kimia,  tabung reaksi, labu ukur, gunting, rak kultur, ember plastik,  alat  tulis  dan  alat-alat  lain  yang mendukung penelitian ini. 3.3. Rancangan Penelitian Rancangan  yang  akan  digunakan dalam penelitian ini adalah Rancangan Acak Lengkap  (RAL)  NonFaktorial  yang  terdiri pemberian  Kinetin  (K)  yang  terdiri  dari  4 taraf K0 : Tanpa pemberian Kinetin = 0 ppm/100 ml K1 : Pemberian Kinetin 1 ppm = 0.4 ppm/100 ml K2 : Pemberian Kinetin 2 ppm = 0.5 ppm/100 ml K3 : Pemberian Kinetin 3 ppm = 0.6 ppm/100 ml 3.1. Pelaksanaan Penelitian 3.1.1. Sterilisasi Alat
Alat-alat  yang  digunakan  untuk penanaman  harus  dalam  keadaan  steril. Alat-alat  logam  dan  gelas  ada  yang disterilkan  dalam autoklaf ,  dan  ada  pula yang  disterilkan  dalam  oven.  Alat-alat tersebut dibungkus dengan kertas kemudian disterilisasi  pada  suhu  121°C  selama  1  jam pada  tekanan  17.5  psi  (jika  memakai autoklaf)  dan  selama  1  jam  pada  suhu 170°C (jika memakai oven). Sterilisasi botol dilakukan  setelah  botol  dicuci  terlebih dahulu.  Botol  kultur  steril  selanjutnya disimpan pada tempat yang bersih dan siap digunakan.  Alat-alat  tanam  seperti  pinset dan skalpel dapat disterilkan kembali dengan pemanasan  di  atas  api  spiritus,  setelah dicelupkan  pada  alkohol  90%  sebelum penanaman dilakukan.
3.1.2. Sterilisasi  Air  Suling  dan Ruang Inokulasi (LAFC)
Air  suling  yang  digunakan  terlebih dahulu disterilkan dalam autoklaf . Air suling disterilisasi  dengan  menggunakan  botol kultur  yang  berisi  100  ml  air  suling  dan ditutup  dengan  plastik,  dan  diautoklaf selama  1  jam  pada  suhu  121°C  dengan tekanan 17.5 psi.
3.1.3. Sterilisasi Ruang.
Bagian  dalam laminar  air  flow disemprot  dengan  alkohol  70%,  kemudian lampu  ultraviolet  (UV)  dinyalakan  selama  1 jam,  saat  akan  digunakan  lampu  neon  dan kipas dinyalakan (Zulkarnaen, 2009)
3.1.4. Pemasangan label
Pemasangan  label  dilakukan  satu hari  sebelum  pemberian  perlakukan,  yang bertujuan  untuk  memudahkan  pada  saat pemberian perlakuan  dan  disesuaikan dengan lay out penelitian (lampiran 3).
3.1.5. Pembuatan media
a. Pembuatan Media Kultur (Media MS) Media yang digunakan adalah media
MS dengan kombinasi IAA dan Kinetin sesuai dengan  perlakuan.  Bahan-bahan  nutrisi media  MS  yang  ditimbang  sesuai  dengan komposisi
masing-masing, selanjutnya bahan-bahan  tersebut  dilarutkan  dalam aquades  steril  sesuai  dengan  daftar  larutan stoknya.
Larutan  stok  hara  dipipet  sesuai dengan volume yang ditetapkan yaitu untuk hara makro 20 ml/l, mikro 10 ml/l, zat besi 10 ml/l, vitamin 2 ml/l dan mioinositol 5 ml/l dimasukan  kedalam  gelas  kimia  ukuran

## ISSN : Jurnal BAPPEDA
Jurnal BAPPEDA
1000  ml  setelah  itu  ditambahkan  atau campurkan  dengan  aquades  sampai  1000 ml. karena media yang digunakan adalah ½ MS, maka stok hara yang dipipet dibagi dua, misalnya 20 ml/l bearti 10 ml/l. Selanjutnya baru  dimasukan  agar-agar  powder  swallow sebanyak  7  gr/l  dan  diaduk.  Tahap berikutnya diberi  perlakuan  IAA  dan  Kinetin sesuai  konsentrasi  dan  diukur  pH  nya dengan alat pengukur pH meter. pH  larutan  ditetapkan  5.8  dengan cara  menambahkan  HCL  apabila  pH  nya tinggi  dan  menambahkan  NaOH  untuk menaikan  pH  sambil  diaduk.  Setelah  pH sampai  5.8,  maka  media  dimasukan kedalam  panci  dan  dimasak  menggunakan kompor  gas  dan  diaduk  menggunakan pengaduk kaca sehingga tidak menggumpal, setelah  mendidih  baru  media  dituangkan kedalam  botol  kultur  sebanyak  25  ml  dan ditutup  dengan  plastik  yang  diikat  dengan karet gelang tahan panas. Botol yang sudah berisi
media disterilisasi dengan menggunakan  autoklaf  pada  tekanan  17.5 psi  dan  suhu  121  C  selama  15  menit. Setelah  dingin  media  disimpan  didalam ruang yang ber AC selama tiga hari sebelum digunakan,  hal  ini  bertujuan  untuk  melihat kesterilan media yang ditandai dengan tidak adanya kontaminasi media tersebut b. Pemberian Perlakuan IAA Sebelum  pemberian  perlakuan  IAA, telah  disiapkan  larutan  IAA  sesuai  dengan konsentrasi yang ditetapkan. Untuk
membuat 1 perlakuan membutuhkan 100 ml media  stok  karena  untuk  1  perlakuan terdapat 4 botol. Untuk perlakuan IAA yaitu :  A0  :  0  ppm/100  ml/l,  A1  :  0.4  ppm/100 ml/l,  A2  :  0.5  ppm/100  ml/l  dan  A3  :  0.6 ppm/100 ml/l.
3.1.6. Penanaman Eksplan Penanaman eksplan dilakukan
didalam laminar  air  flow dengan  kondisi yang  aseptik.  Sebelum  bekerja,  tangan disemprot  dahulu  dengan  menggunakan alkohol  96%.  Laminar  juga  disemprot menggunakan alkohol
dan dilap menggunakan tissue.  Eksplan diambil dalam botol kultur menggunakan pinset yang telah disterilkan.  Selanjutnya  eksplan  diletakkan dalam  Petridis  dan  dipotong–potong  sesuai dengan ukuran eksplannya 0,5 cm. Selanjutnya  diambil  media  yang  telah disiapkan,  dipanaskan  diatas  api  sambil diputar–putar  setelah  itu  baru  dibuka plastiknya dan eksplan dimasukkan kedalam botol  media  menggunakan  pinset.  1  botol kultur ditanam 4 eksplan pisang kepok yang posisi  dan  letaknya  disesuaikan  setelah  itu botol  ditutup  kembali  menggunakan  plastik
yang telah dipanaskan didekat api dan baru diikat  menggunakan  karet  gelang  bening dan tahan panas.
Setelah ditanam dalam  botol  kultur, kemudian  botol  diputar  diatas  api  lampu spritus  selanjutnya  plastik  juga  dipanaskan diatas  api  dan  baru  botol  ditutup  kembali dengan  menggunakan  plastik  yang  telah dipanaskan, plastik dirapatkan atau ditegangkan  dengan  tangan  dan  diikat dengan  karet  gelang,  kemudian  bagian plastik  yang  pinggir  botol  dirapikan  dengan gunting. Setelah itu botol kultur dikeluarkan dari laminar air flow cabinet dan dimasukkan dalam  ruang  kultur  yang  selanjutnya dilakukan parameter pengamatan.
3.1.7. Pemeliharaan Eksplan
Pemeliharaan  meliputi  pemeliharaan media  ruang  kultur  dengan  menjaga  suhu ruangan  antara  21–25 0 C  dan  memberikan penyinaran  dengan  lampu  neon  20  watt. Menjaga  agar  ruangan  kultur  tetap  steril dengan  cara  mengepel  ruangan  dan memisahkan  eksplan  yang  terkontaminasi oleh  bakteri  atau  jamur.  Ruangan  kultur disemprot  dengan  formalin  0,4%  bila  perlu yang berfungsi untuk mensterilkan ruangan. Dan juga kalau ada karet yang putus diganti dengan  karet  yang  baru  tetapi  sebelum  di ikatkan  ke  botol  maka  karet  harus disemprotkan  terlebih  dahulu  menggunakan alkohol. 3.2. Pengamtan 3.2.1. Umur Muncul Tunas (hari) Pengamatan  terhadap  umur  muncul tunas dilakukan dengan cara melihat eksplan dari  luar  botol  kultur,  yaitu  terhitung  dari jumlah  hari  sejak  penanaman,  hasil pengamatan  dianalisis  secara  statistik  dan disajikan dalam bentuk tabel.
3.2.2. Jumlah Tunas (buah) Pengamatan  jumlah tunas dilakukan dengan cara melihat eksplan pisang dari luar botol  kultur.  Pengamatan  terhadap  jumlah tunas  dilakukan  pada  akhir  penelitian dengan cara menghitung jumlah keseluruhan tunas yang tumbuh pada setiap eksplan.  Hasil  pengamatan  ini  dianalisa secara  statistik  dan  disajikan  dalam  bentuk tabel.
3.2.3. Tinggi tunas (cm) Pengamatan  terhadap  tinggi  tunas dilakukan  dengan  cara  melihat  eksplan pisang  dari  luar  botol  kultur  yaitu  dengan mengukur tunas mulai pangkal muncul tunas hingga pada ujung tunas dengan menggunakan  rol.  Pengamatan  terhadap tinggi tunas dilakukan pada akhir penelitian.
Hasil  pengamatan  ini  dianalisa  secara statistik dan disajikan dalam bentuk tabel.
ISSN:25282956 Jurnal Agro Indragiri 3.2.4. Jumlah Akar Pengamatan  terhadap  jumlah  akar dilakukan  dengan  cara  melihat  eksplan pisang  dari  luar  botol  kultur  yaitu  dengan cara  menghitung  jumlah  keseluruhan  akar yang tumbuh pada setiap eksplan. Pengamatan terhadap jumlah akar dilakukan pada  akhir  penelitian.  Hasil  pengamatan dianalisis  secara  statistik  dan  disajikan dalam bentuk tabel.
3.2.5. Panjang Akar (cm) Pengamatan panjang  akar  dilakukan dengan  cara  mengambil  dan  mengeluarkan eksplan dari botol  kultur.  Akar  dicuci bersih dengan  cara  menyemprotkan  air  ke  akar sampai  sisa  media  tanam  (agar)  hilang dan akar  menjadi  bersih,  setelah  itu  dikering- anginkan.  Kemudian  pengukuran  dilakukan mulai  dari  pangkal  batang  sampai  ujung akar  terpanjang.  Pengamatan  panjang  akar dilakukan  pada  akhir  penelitian.  Data  hasil pengamatan  dianalisis  secara  statistik kemudian disajikan dalam bentuk tabel
4. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1. Umur  Bertunas (Hari) Berdasarkan  hasil  analisis  sidik ragam  (lampiran  4c)  dari  data  parameter Umur Bertunas, pemberian utama konsentrasi  kinetin,  berpengaruh  nyata terhadap  umur  bertunas  eksplan  pisang barangan Tabel 1.   Rerata  Umur  Bertunas  (HST) Eksplan  Pisang  Kepok  dengan perlakuan konsentrasi kinetin Konsentrasi kinetin (ppm) Umur Muncul Tunas (h) K0 10,58  b K1 9,45  a K2 11,25  b K3 9,25  a Angka-angka  pada  baris  dan  kolom  yang  diikuti  oleh huruf  kecil  yang  sama  tidak  berbeda  nyata  menurut  Uji lanjut BNJ pada taraf  5%.
Dari  tabel  juga  dapat  dilihat  bahwa pemberian  Kinetin  K3  (6  ppm)  dan  K1  (4 ppm)  berbeda  nyata  dengan  K0  (tanpa Kinetin)  dan  K2  (5  ppm).  Perlakuan  terbaik untuk  umur  tunas  terdapat  pada  perlakuan K3  yaitu  9.25  hari  pada  penelitian  ini konsentrasi  Kinetin  yang  tinggi  dapat mempercepat  pertumbuhan  tunas  dan tunas-tunas yang dihasilkan dengan konsentrasi  6  ppm  9.25  hari,  K1  (2  ppm) 9.45  hari,  menghasilkan  tunas  yang  lebih kokoh  bila  dibandingkan  dengan  perlakuan K0 (10.58 hari). Sedangkan perlakuan K2 (4 ppm)  pertumbuhan  tunasnya  terganggu karena  kinetin  yang  diberikan  jumlahnya lebih rendah dan tunas-tunas yang dihasilkan  lebih  pendek,  hal  ini  diduga
konsentrasi  kinetin  4  ppm  tidak    mampu untuk  pembelahan  sel,  ini  jelas  terlihat bahwa  dalam  kultur  jaringan  pisang  kepok menginginkan  konsentrasi  relative  tinggi yaitu  6  ppm,  hal  ini  menunjukan  bahwa semakin tinggi pemberian kinetin maka akan semakin meningkat pula pertumbuhan tunas eksplan pisang kepok.
Sitokinin digunakan untuk merangsang  pembelahan  sel,  terutama  bila ditambahkan bersama-sama dengan auksin.
Penambahan  Konsentrasi  sitokinin  dalam ukuran  yang  berbeda  dapat  mendorong pembentukan  tunas  dan  menghambat pembentukan  akar.  Pembentukan  tunas aksiler  meningkat  karena  menurunnya dominansi apikal (Pierik, 1984).

## 4.2. Jumlah Tunas (buah)
Berdasarkan  hasil  analisis  sidik ragam  (lampiran  5b)  dari  data  hasil pengamatan parameter Jumlah Tunas, maka perlakuan secara tunggal kinetin berpengaruh  nyata  terhadap  jumlah  tunas pisang barangan Tabel 2.   Rerata jumlah tunas (buah) Eksplan  Pisang  Kepok  dengan perlakuan konsentrasi kinetin Konsentrasi kinetin (ppm) Jumlah tunas (buah) K0 3,94  a K1 3,33  b K2 2,75  c K3 3,03  bc Angka-angka  pada  baris  dan  kolom  yang  diikuti  oleh huruf  kecil  yang  sama  tidak  berbeda  nyata  menurut  Uji lanjut BNJ pada taraf  5%.
Pemberian  konsentrasi  Kinetin  pada perlakuan  K0  (tanpa  kinetin)  dan  K3  (6 ppm) berbeda nyata dengan K1 (4 ppm) dan K2  (5  ppm).  Dilihat  dari  angka,  perlakuan yang paling banyak jumlah tunasnya adalah K0  dengan  jumlah  tunas  3.94  buah  dan diikuti  oleh  K3  dengan  jumlah  tunas  3.03 buah  kemudian  K1  dengan  jumlah  tunas 3.33  buah  dan  yang  paling  sedikit  jumlah tunasnya  adalah  K2  dengan  jumlah  tunas 2.72  buah.  Perlakuan  terbaik  terdapat  pada perlakuan  K0  (tanpa  kinetin)  hal  ini  diduga fitohormon  yang  terdapat  didalam  tanaman mampu  membentuk  tunas  walaupun  tidak ditambahkan zat pengatur tumbuh Utami (1998) mengemukakan bahwa sitokinin  berperan  memacu  terjadinya sintesis RNA dan protein pada jaringan yang selanjutnya  dapat  mendorong  terjadinya pembelahan  sel.  Selain  itu  juga  dapat memacu  jaringan  untuk  menyerap  air  dari sekitarnya  sehingga  proses  sintesis  protein dan  pembelahan  sel  dapat  berjalan  dengan baik.
ISSN : Jurnal BAPPEDA
Jurnal BAPPEDA

## 4.3. Tinggi tunas (cm)
Berdasarkan  hasil  analisis  sidik ragam  (lampiran  5b)  dari  data  hasil pengamatan  parameter  tinggi  Tunas,  maka perlakuan kinetin berpengaruh nyata terhadap tinggi tunas pisang barangan Tabel 3.   Rerata  tinggi  tunas  (cm)  Eksplan Pisang barangan dengan perlakuan konsentrasi kinetin Konsentrasi kinetin (ppm) Tinggi tunas (cm) K0 5,25  c K1 5,91  B K2 5,86  c K3 7,36  a
Angka-angka  pada  baris  dan  kolom  yang  diikuti  oleh huruf  kecil  yang  sama  tidak  berbeda  nyata  menurut  Uji lanjut BNJ pada taraf  5%.
Pemberian  konsentrasi  Kinetin  pada perlakuan K3 (6 ppm) berbeda nyata dengan K1  (4  ppm),  K2  (5  ppm)  dan  K0  (tanpa Kinetin). Perlakuan Kinetin yang paling tinggi tunasnya adalah K3 yaitu 7.36 cm diikuti K1 dengan  tinggi  tunas  5.91  cm  dan diikuti  K2 dengan  tinggi  tunas  5.85  cm  dan  yang paling rendah adalah K0 (tanpa Kinetin) Tinggi  tunas  dengan  konsentrasi Kinetinnya  6  ppm  pertumbuhan  tunas sangat  baik  dan  pertumbuhan  daun-daun eksplan  pisangnya  panjang  dan  tersusun rapi. Tinggi tunas yang konsentrasi kinetinnya  2  ppm  pertumbuhan  tunasnya cenderung mengarah kesamping dan setelah itu baru naik keatas dan begitu juga dengan perlakuan  4  ppm,  kinetin  2  ppm  kalau dibandingkan  dengan  kinetin  4  ppm pertumbuhan  tunasnya  agak  sedikit  bagus. Hal  ini  diduga  akibat  tekanan  osmotik  yang terlalu tinggi, sehingga menyebabkan pecahnya dinding-dinding sel sehingga lebih mengarah  pada  pembelahan  sel.  Tanpa pemberian  kinetin  akan  menyebabkan terhambatnya eksplan pisang dalam membentuk tunas. Dari  hasil  penelitian  Wilkins (1992) dalam Sutriana (2010) mengemukakan  bahwa  pertumbuhan  tunas tanaman  terutama  tinggi  merupakan  hasil pendayagunaan fotosintesis yang ada didalam tanaman, kemudian pada sel terjadi proses metabolisme sehingga sel-sel tanaman  terus  berkembang  dan  bertambah tunasnya,  kegiatan  tersebut  dapat  aktif dengan  adanya  pemberian  zat  pengatur tumbuh pada tanaman.
Panjaitan  (2005)  mengemukakan bahwa  pemberian  zat  pengatur  tumbuh golongan sitokinin yang semakin meningkat, akan menyebabkan semakin meningkat pula pertambahan tinggi planlet tanaman. Terjadinya peningkatan tinggi planlet karena
pemberian  kinetin  yang  semakin  meningkat disebabkan kinetin merupakan ZPT golongan sitokinin yang dapat mendorong pembelahan sel,  membantu  perkecambahan  embrio secara  teratur  pada  perkecambahan  biji, menghambat degradasi klorofil dan menghambat penuaan. Dengan meningkatnya pembelahan sel pada jaringan tanaman  maka  akan  semakin  meningkat pula tinggi tanaman.

## 4.4. Jumlah akar (buah)
Berdasarkan  hasil  analisis  sidik ragam  (lampiran  5b)  dari  data  hasil pengamatan  parameter  jumlah  akar,  maka perlakuan kinetin berpengaruh nyata terhadap jumlah akar pisang barangan Tabel 4.   Rerata jumlah akar (buah) Eksplan Pisang barangan dengan perlakuan konsentrasi kinetin Konsentrasi kinetin (ppm) Jumlah akar K0 13,80  b K1 10,08  d K2 15,44  a K3 12,39  c Angka-angka  pada  baris  dan  kolom  yang  diikuti  oleh huruf  kecil  yang  sama  tidak  berbeda  nyata  menurut  Uji lanjut BNJ pada taraf  5%.
Pemberian  konsentrasi  Kinetin  pada perlakuan K2 (5 ppm) berbeda nyata dengan K0 (tanpa kinetin) dan K3 (6 ppm) dan K1 ( 4  ppm).  Angka  tertinggi  pada  jumlah  akar K2  yaitu  15.44  buah  dan  menginginkan kinetin  yang  sedang  untuk  pertumbuhan jumlah  akarnya  dan  jumlah  akar  yang dihasilkan  dengan  konsentrasi  K2  (4  ppm) menunjukan pertumbuhan yang baik, akarnya  banyak  dan  bagus-bagus  kalau dilihat  dan  dibandingkan  dengan  K0  (tanpa kinetin) 13.30 buah yang sifat pertumbuhannya  sedikit.  Sedangkan  K1  (4 ppm)  10.08  buah,  K3  (6  ppm)  12.39  buah pertumbuhan  jumlah  akarnya  terganggu  , ternyata  untuk  pertumbuhan  jumlah  akar tidak  cocok  untuk  diberikan  dalam  jumlah sedang.
Dimana  Kinetin  (sitokinin)  dalam berbagai  konsentrasi  telah  memberikan respon  pertumbuhan  akar.  Wattimena (2000),  pada  konsentrasi  yang  tinggi, sitokinin  mampu  mendorong  proliferasi tunas,  dan  sebaliknya  dapat  menghambat pembentukan akar.
4.5. Panjang akar (cm)
Berdasarkan  hasil  analisis  sidik ragam  (lampiran  5b)  dari  data  hasil pengamatan parameter panjang akar, maka perlakuan kinetin berpengaruh nyata terhadap panjang akar pisang barangan
ISSN:25282956 Jurnal Agro Indragiri
Tabel 5.   Rerata  panjang  akar  (cm)  Eksplan
Pisang barangan dengan perlakuan konsentrasi kinetin Konsentrasi kinetin (ppm) Panjang akar (cm) K0 4,40  b K1 5,46  a K2 5,66  a K3 5,41  a Angka-angka  pada  baris  dan  kolom  yang  diikuti  oleh huruf  kecil  yang  sama  tidak  berbeda  nyata  menurut  Uji lanjut BNJ pada taraf  5%.
Pemberian  konsentrasi  Kinetin  pada perlakuan K2 (5 ppm/l), K1 (4 ppm/l), K3 ( 6  ppm/l)  berbeda  nyata  dengan  K0  (tanpa kinetin). Perlakuan yang paling tinggi jumlah akarnya  adalah  K2  yaitu  5.66  cm    diikuti oleh  K1  yaitu  5.49  cm  kmudian  K3  dengan panjang  akar  5.41  cm  dan  yang  rendah adalah K0 dengan panjang akar 4.40 cm Pemberian  Kinetin  (4  ppm)  sedang, rendah  dan  tinggi  tidak  menyebabkan terganggunya  pertumbuhan  panjang  akar melainkan  dapat  memperpanjang  akar pisang  kepok,  sedangkan  tanpa  pemberian Kinetin  dapat  menghambat  pertumbuhan panjang  akar  pisang  kepok.  Jadi  dapat disimpulkan,  bahwa  pemberian  kinetin sedang,  pemberian  kinetin  rendah  dan pemberian kinetin tinggi dapat mempercepat pertumbuhan  panjang  akar  pada  eksplan pisang barangan 5. KESIMPULAN DAN SARAN 5.1. Kesimpulan Pemberian perlakuan Kinetin berpengaruh  nyata  terhadap  parameter Umur  muncul  tunas  yaitu  K3  (9.22  hari), jumlah  tunas  yaitu  K0  (3.94  buah),  tinggi tunas yaitu K3 (7.36 cm), jumlah akar yaitu (15.44  buah)  dan  panjang  akar  yaitu  (5.66 cm). 5.2. Saran Untuk penelitian lanjutan, konsentrasi Kinetin bisa diberikan konsentrasi  yang  berbeda-beda  untuk mendapatkan hasil yang terbaik. DAFTAR PUSTAKA [1] Rahmaniar,
A. 2007. Pengaruh Macam  Eksplan  dan  Konsentrasi  2,4-D- Dichlorophenoxyacetic Acid (2,4-D) terhadap Pertumbuhan Anthurium (Anthuriumm  plowmanii  Croat)  pada Medium  MS .  Skripsi  Fakultas  Pertanian UNS. Surakarta.
[2] Salisbury,  F.  B.  dan  Ross,  1992. Fisiologi  Tumbuhan  Jilid  3.  Terjemahan
oleh  Lukman  dan  Samaryono.  ITB. Bandung
[3] Satuhu,  S.  dan  A.  supriyadi,  2000. Pisang,  Budidaya,  Pengolahan  dan Prospek  Pasar. Penebar  Swadaya, Jakarta.
[4] Semangun,  H.  1989. Penyakit-penyakit Tanaman  Holtikultura  di  Indonesia. Jokjakarta : Fakultas Pertanian UGM.
[5] Simmonds,  N.  W.  1970. Bananas. Longman. London.
[6] Suyanti dan  A.  Supriyadi. 2008.  Pisang : Budidaya  Pengolahan,  dan  Prospek Pasar . Penebara Swadaya. Jakarta
[7] Sukma, D. 1994. Pengaruh IAA dan BAP Terhadap  Perbanyakan  Tunas  Mikro Pisang Mas ( Musa acuminate AA. Grup) Pisang  Ambon  dan  Barangan  ( Musa acuminate. L.AAA  grup)  dan  Raja  Bulu ( Musa  paradisiacal LAAB  grup)  secara in-vitro.  Skripsi  Jurusan  Budidaya Pertanian Faperta. IPB Bogor
[8] Sutriana,  S.  2010.  Kombinasi  BAP (Benzil  amino  purin) dan  IAA (indol asam  asetat) Pada  eksplan  Anthurium (Anthurium  sp)  Dalam  Kultur  Jaringan. Skripsi  Pertanian  Universitas  Islam Riau. Pekanbaru.
[9] Sriyanti.  D.  P.  dan  A  Wijayani  1994. Teknik Kultur Jaringan. Yayasan Kanisius. Yokyakarta.
[10] Street,  N.  E.  1979.  Embryogenesis and chemically  induced  organogenesis. In : Plant  cell  and  tissue  culture  principles and applications. Ohio State Uris. Press.
Columbus. [11] Utami ESW. 1998. Pengaruh Penambahan Ragi Roti Sebagai Alternatif  Pengganti  Zat  Pengatur Tumbuh  BA  Untuk  Diferensiasi  Pada Kultur  Jahe  Merah (Zingiber  officinale var. sunti val). Fakultas MIFA
Universitas Airlangga.
[12] Wattimena,  G.  A.  1988,  1991,  2000. Zat  Pengatur  Tumbuh  Tanaman .  Pusat Antar  Universitas.  Institut  Pertanian Bogor. Bogor
[13] Wetherell,  D,  F,  1982. Pengantar Progasasi  Tanaman  Secara  In  Vitro. IKIP Semarang Press. Semarang.
[14] Willkins,  1992.  Bioteknologi  Tanaman PAU IPB. Bogor.
[15] Yusnita.  2003.  Kultur  Jaringan  Cara Memperbanyak Tanaman Secara Efisien. Agromedia Pustaka, Jakarta.