## Kinerja sistem pencernaan dan pertumbuhan larva ikan lele
Clarias gariepinus (Burchell, 1822) yang dipelihara pada sistem bioflok dengan penambahan Chlorella sp.
[Digestive system and growth performance of African catfish larvae Clarias gariepinus ,
(Burchell, 1822) maintained with biofloc technology with the addition of Chlorella sp.]
Sujaka Nugraha 1 , Julie Ekasari 2* , M Zairin Junior 2 , Widanarni 2
1 Program Studi Ilmu Akuakultur, Sekolah Pascasarjana IPB
2 Departemen Budidaya Perairan,FPIK-IPB Kampus IPB Dramaga, Jalan Agastis 16680 sujakanugraha@gmail.com ; j_ekasari@apps.ipb.ac.id.; zairinjr@apps.ipb.ac.id; widanarni@apps.ipb.ac.id;
Diterima: 12 Juli 2020; Disetujui: 13 Oktober 2020

## Abstrak
Produksi  ikan  lele  dalam  budidaya  masih  dibatasi  oleh  rendahnya  pasokan  benih  yang  berkualitas  baik,  karena permasalahan  ketersediaan  nutrisi  yang  berkualitas  selama  pemeliharaan  larva.  Salah  satu  solusi  meningkatkan ketersediaan  dan  kualitas  larva  adalah  dengan  menggunakan  teknologi  bioflok  serta  penambahan Chlorella sp. Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengevaluasi  kinerja  sistem  pencernaan,  pertumbuhan  dan  ketahanan  larva  ikan  lele yang dipelihara pada sistem bioflok dengan penambahan Chlorella sp. Penelitian ini menggunakan rancangan   acak lengkap yang terdiri atas tiga perlakuan dan  tiga ulangan, yaitu larva yang dipelihara dengan penggantian air sebagai perlakuan kontrol (K), larva yang dipelihara dengan sistem bioflok (BF), dan larva yang dipelihara dengan perlakuan bioflok  dengan  penambahan Chlorella sp.  (BFC)  dengan  lama  pemeliharaan  selama  15  hari.  Hasil  penelitian  ini menunjukkan bahwa pertumbuhan panjang, laju pertumbuhan spesifik, faktor kondisi, aktivitas protease, amilase, dan lipase antar perlakuan tidak berbeda nyata antarperlakuan (P>0,05). Vili larva ikan lele pada perlakuan BF (136 μm) lebih  panjang daripada BFC (121μm) dan K (105μm). Ukuran  partikel  bioflok  pada  media  BF  (0,44  ±  0,025  mm) lebih rendah daripada bioflok yang terdapat pada media BFC (0,79 ± 0,048 mm). Tingkat sintasan larva ikan lele pada perlakuan BFC mencapai 51 ± 0,32% lebih tinggi (P<0,05) daripada perlakuan K sebesar 45 ± 0,52% dan BF sebesar 45 ± 0,15%. Hasil uji stres salinitas pada larva ikan lele menunjukkan bahwa larva yang dipelihara dalam media BFC memiliki  tingkat  sintasan  tertinggi  (63  ±  3,33%)  dibandingkan  perlakuan  lainnya  (P<0.05).  Hasil  penelitian  ini menunjukkan  bahwa  penambahan Chlorella sp.  dapat  meningkatkan  kinerja  pertumbuhan  dan  ketahanan  larva  lele terhadap uji stres menggunakan salinitas.
Kata penting: bioflok, enzim, partikel, salinitas, vili

## Abstract
The production of catfish in aquaculture is still limited by the low supply of good quality seeds. One solution that can be  done  to  overcome  this  problem  is  by  the  application  of  biofloc  technology  with  microalgae  addition.  This  study aims to evaluate the performance of digestive system, growth and robustness of the African catfish larvae maintained with  biofloc  technology  and  the  addition  of Chlorella sp.  This  research  applied  a  completely  randomized experimental design consisted of three treatments and triplicates, i.e larvae maintained with regular water exchange as the  control  (K),  larvae  maintained  biofloc  system  (BF)  and  larvae  reared  with  biofloc  treatment  and Chlorella sp. addition (BFC) with a rearing period of 15 days. Length growth, specific growth rate, condition factor, the activity of protease,  amylase  and  lipase  were  not  significantly  different  between  treatments  (P>0.05).  The  villi  length  in  fish maintained in BF treatmen (136µm), was higher than those of BFC (121µm) and K treatments (105µm). The particle size of floc in BF and BFC were 0.44±0.025 and BFC 0.79±0.048 mm, respectively. The survival of catfish larvae in the  BFC  treatment  was  (51  ±  0,32) b ,  which  was  significantly  higher  (P<0.05)  than  those  of  K  (45±0.52) a and  BF (45±0.15) a . The results of stress test using 15 g L -1 water salinity demonstrated that the fish maintained in BFC has a higher  survival  (63%)  than  those  of  BF  (47%)  and  K  (43%).  Overall  results  of  the  present  study  showed  that  the addition  of Chlorella sp.  could  improve  the  growth  performance  and  robustness  of  African  catfish  larvae  against salinity stress.
Keywords: biofloc, enzyme, particle, salinity, villi

## Pendahuluan
Ikan  lele Clarias  gariepinus merupakan salah satu komoditas ikan air tawar yang banyak
diminati masyarakat Indonesia sehingga produk- sinya cenderung meningkat dari waktu ke waktu (DJPB 2018). Produksi ikan lele masih mengha-
dapi  berbagai  permasalahan,  salah  satunya  ada- lah  ketersediaan  dan  kualitas  benih  yang  masih belum  mencukupi  kebutuhan  pembudidaya.  Sa- lah  satu  faktor  yang  memengaruhi  ketersediaan dan  kualitas  benih  adalah  ketersediaan  nutrisi yang  memadai  sepanjang  waktu.  Salah  satu solusi yang dapat dilakukan untuk meningkatkan  ketersediaan  dan  kualitas  larva adalah  dengan  aplikasi  sistem  bioflok  dengan penambahan Chlorella sp.
Teknologi  bioflok  memanfaatkan  limbah nitrogen (N)  yang berasal dari sisa pakan,  feses dan  produk  samping  metabolisme  dengan  cara mengonversinya  menjadi  biomassa  mikroba  se- hingga membentuk flok yang dapat dimanfaatkan  oleh  ikan  untuk  memenuhi kebutuhan  nutrisi  ikan  (Ekasari  2009).  Pada produksi  pembenihan,  teknologi  bioflok  sudah mulai dilakukan pada larva ikan nila dan udang. Penggunaan teknologi bioflok dapat
meningkatkan  pertumbuhan  dan  meningkatkan sintasan  larva  ikan  nila  ( Oreochromis  niloticus ) (Ekasari et  al. 2015).  Penggunaan  teknologi bioflok  pada  udang  ( Litopenaeus  vannamei )
dapat meningkatkan pertumbuhan benih
(Widanarni et  al .  2010).  Bioflok  dilaporkan kaya akan nutrien yang penting bagi pertumbuhan  organisme  akuakultur  seperti protein,  lipid,  asam  amino  dan  asam  lemak  (Ju et  al .  2008,  Ekasari et  al .  2014a,  Gao et  al.
2019). Bioflok yang terbentuk diharapkan dapat dimanfaatkan oleh larva ikan lele sebagai pakan alami  yang  dapat  menunjang  pertumbuhan  dan sintasannya.  Selain  itu,  organisme  budi  daya yang  hidup  dalam  lingkungan  yang  kaya  akan mikroba  dan  memanfaatkan  mikroba  sebagai pakan alami memiliki kinerja imunitas organisme  yang  lebih  baik  (Rollo et  al .  2006,
Ekasari et al. 2014a, dan Ekasari et al . 2014b).
Menurut  Ju et  al. (2008)  bioflok  yang mengandung  mikroalga  memiliki  kandungan senyawa-senyawa bioaktif  yang lebih baik dari- pada  bioflok  yang  didominasi  oleh  bakteri.  Se- lain itu mikroalga yang terdapat di bioflok dapat merangsang pertumbuhan zooplankton yang da- pat  menjadi  sumber  makanan  tambahan  untuk larva ikan (Bakar et al. 2015). Chlorella sp. Me- rupakan  fitoplankton  yang  termasuk  jenis  or- ganisme  uniseluler  yang  memiliki  keragaman, pertumbuhan  cepat,  mengandung  lipid,  protein dan kemampuan beradaptasi yang baik (Wij ﬀ els
&  Barbosa  2010). Chlorella sp.  kaya  akan  pro- tein,  asam  amino  esensial,  vitamin,  mineral (kalium,  natrium,  magnesium,  besi,  dan  kalsi- um),  β -karoten,  klorofil,  serta  zat-zat  yang menguntungkan  untuk  kesehatan  (Bauer et  al . 2017).  Dengan  profil  nutrisi  yang  baik, penambahan Chlorella sp.  diharapkan  dapat meningkatkan  kualitas  bioflok  sebagai  pakan alami  untuk  larva.  Berdasarkan  informasi tersebut  maka  penelitian  ini  bertujuan  untuk mengevaluasi  pengaruh  aplikasi  sistem  bioflok dengan  penambahan Chlorella sp.  terhadap kinerja  sistem  pencernaan,  pertumbuhan  dan ketahanan larva ikan lele terhadap stres.

## Bahan dan metode

## Waktu dan tempat penelitian
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  bulan Oktober  hingga  Desember  2019  di  Kolam Percobaan  Departemen  Budidaya  Perairan Institut Pertanian Bogor.

## Rancangan penelitian
Penelitian ini menggunakan rancangan acak lengkap  dengan  tiga  perlakuan,  yaitu  perlakuan kontrol  (perlakuan  K)  berupa  pemeliharaan larva  ikan  lele  dengan  penggantian  air  secara
teratur  dan  tanpa  penambahan  sumber  karbon, perlakuan  BF  berupa  pemeliharaan  larva  ikan lele  dalam  media  bioflok  dengan  penambahan sumber  karbon  (molase);  dan  perlakuan  BFC berupa  pemeliharaan  larva  ikan  lele  dalam media  bioflok  dengan  penambahan  sumber karbon  (molase)  dan Chlorella sp.  Masing- masing  perlakuan  tersebut  dilakukan  dengan tiga ulangan.

## Prosedur percobaan

## Persiapan wadah pemeliharaan
Wadah  pemeliharaan yang  digunakan adalah akuarium berukuran 30 cm x 30 cm x 30 cm  sebanyak  9  unit.  Akuarium  dibersihkan  dan didesinfeksi menggunakan larutan klorin sebanyak  5  ml  L -1 selama  24  jam  lalu  dibilas dan dikeringudarakan. Setiap akuarium dilengkapi  dengan  lampu  TL  berdaya  24  watt yang  dipasang  di  atas  akuarium  percobaan sebagai  tambahan  cahaya  untuk  mendukung pertumbuhan Chlorella sp.

## Persiapan media bioflok dan Chlorella sp.
Media  bioflok  untuk  larva  ikan  lele  diper- siapkan  terlebih  dahulu  selama  tujuh  hari  pada akuarium yang telah diisi 22,5 L air sebelum pe- nebaran  larva  ikan  lele  ke  akuarium  pemeliha- raan.  Untuk  menumbuhkan  bioflok  pada  media tersebut  larva  ikan  lele  ukuran  1-2  cm  ditebar sebanyak 450 ekor di akuarium kemudian diberi pakan  sebesar  10%  biomassa  dan  dilakukan penambahan  sumber  karbon  (molase)  dengan estimasi  nisbah C/N 10. Setelah tujuh  hari dila- kukan  pengambilan  media  bioflok  sebanyak 10% kemudian ditambahkan ke dalam akuarium perlakuan.  Selama  pemeliharaan,  pemberian molase  dilakukan  dengan  nisbah  C/N  10 (Avnimelech  1999)  setiap  tiga  hari  sekali.
Chlorella sp.  Dikultur  di  Laboratorium  Pakan Alami  Departemen  Budidaya  Perairan,  Institut Pertanian  Bogor  dengan  menggunakan  media Walne  (Lavens  &  Sorgeloos  1996). Chlorella sp.  ditambahkan  pada  awal  pemeliharaan  dan setiap  5  hari  sekali  pada  akuarium  perlakuan Chlorella sebanyak  1  L  dengan  kepadatan inokulan rata-rata sekitar 2 x 10 7 sel mL -1 .

## Pemeliharaan larva
Larva  ikan  lele  berumur  tiga  hari  setelah menetas dengan panjang rata-rata awal 7,18 mm dan bobot rata-rata awal 3 mg didistribusikan ke dalam  masing-masing  akuarium  percobaan  de- ngan  kepadatan  20  ekor  L -1 dan  dipelihara selama 15 hari. Setiap akuarium diberi pemanas ( Waterheater  thermostat )  yang  diatur  untuk mendapatkan suhu air sekitar 28 O C. Larva diberi pakan  alami  cacing  sutera  ( Tubifex sp.)  seba- nyak 22% bobot biomassa (0,3 g) selama 2 hari dilanjutkan  dengan  pemberian  pakan  buatan dengan  kadar  protein  40%.  Pakan  diberikan dengan  cara at  satiation pada  pukul  08.00, 12.00, 16.00 dan 20.00.

## Parameter uji
Parameter  yang  diukur  dalam penelitian ini adalah  pertumbuhan  panjang,  laju  pertumbuhan spesifik,  faktor  kondisi,  koefisien  keragaman, sintasan, aktivitas enzim,  histologi usus, ukuran partikel  flok,  kualitas  air  dan  uji  stres  menggu- nakan salinitas tinggi.
Pertumbuhan  panjang  dihitung  dengan menggunakan rumus Effendie (2002):
Pertumbuhan panjang = Panjang rata-rata akhir
– Panjang rata-rata awal
Laju pertumbuhan spesifik ( specific growth rate SGR)  dihitung  menggunakan  rumus Zonneveld et al . (1991):
SGR= ln bobot akhir - ln bobot awal Lama pemeliharaan
x 100%
Faktor  kondisi  dihitung  dari  hubungan  an- tara  bobot  dan  panjang  ikan,  dengan  maksud melihat kondisi ikan. Perhitungan menggunakan rumus Ali et al . (2007):
K= Bobot ikan Panjang ikan 3 x 100
Variasi  ukuran  dalam  penelitian  ini  berupa variasi  panjang  ikan  yang  dinyatakan  dalam koefisien  keragaman  (KK)  yang  dihitung menggunakan rumus Steel & Torrie (1993):

## KK= Simpangan baku panjang Rata-rata panjang
x 100
Tingkat  sintasan  adalah  persentase  dari jumlah  ikan  yang  hidup  pada  setiap  wadah diukur berdasarkan rumus Effendie (2002):
Tingkat sintasan= Jumlah ikan akhir Jumlah ikan awal ×100%
Pada  penelitian  ini  dilakukan  evaluasi  ak- tivitas  enzim  pada  larva  ikan  lele  dan  aktivitas enzim  pada  bioflok  yang  terdiri  atas  protease, amilase  dan  lipase.  Pengamatan  perkembangan aktivitas  enzim  pada  larva  ikan  lele  dilakukan pada  awal  dan  akhir  penelitian  dan  pengamatan aktivitas  enzim  pada  bioflok  dilakukan  pada akhir  penelitian.  Aktivitas  enzim  protease diukur berdasarkan metode yang dilakukan oleh Bergmeyer  &  Grassi  (1983),  aktivitas  enzim amilase diukur berdasarkan metode yang dilaku- kan  oleh  Worthington  (1993)  dan  aktivitas enzim  lipase  diukur  berdasarkan  metode  yang dilakukan oleh Borlongan (1990).
Pengamatan  histologis  yang  bertujuan untuk  melihat  perkembangan  organ  pada  larva ikan  lele  dilakukan  pada  akhir  pemeliharaan. Sampel  yang  diambil  berupa  larva  ikan  lele secara  utuh  dan  dilakukan  pemotongan  secara membujur.  Sampel  diambil  pada  pagi  hari kemudian difiksasi dalam larutan Normal Buffer
Formalin (NBF)  10%.  Selanjutnya  dilakukan
pembuatan preparat histologis dengan
pewarnaan hematoksilin dan eosin (Angka et al . 1990).
Pengukuran  partikel  flok  dilakukan  dengan cara  mengambil  gambar  hasil  pengamatan menggunakan  mikroskop  pada  pembesaran 100x, kemudian dianalisis dengan menggunakan perangkat lunak komputer Image-J.
Jumlah sel Chlorella sp. yang telah dida-pat kemudian  dihitung  nilai  kepadatan  selnya dengan menggunakan persamaan Kawaroe et al.
2010) :
Kepadatan sel=jumlah sel yang teramati× 25 5 ×10 4
Parameter  kualitas  air  diukur  pada  hari  ke- 1,  5,  10  dan  15.  Parameter  yang  diamati  adalah kandungan  oksigen  terlarut,  pH,  total  amonia nitrogen  (TAN),  nitrit  (NO 2 ),  nitrat  (NO 3 ), alkalinitas, dan TSS ( total suspended solid ).
Tingkat ketahanan larva diuji pada akhir pe- meliharaan dengan memberi perlakuan Salinitas tinggi.  Sebanyak  10  ekor  larva  uji  dimasukkan ke  dalam  akuarium  yang  berisi  air  dengan salinitas 15 g L -1 selama 1 jam. Setelah itu larva ikan  lele  dipindahkan  ke  dalam  akuarium  yang berisi air tawar. Tingkat sintasan larva ikan lele dihitung  setelah  larva  ikan  lele  dipindahkan  ke dalam air tawar selama 1 jam.

## Analisis statistik
Data  yang  diperoleh  dalam  penelitian  dita- bulasi  menggunakan  perangkat  lunak  komputer Microsoft  Excel  2010.  Selanjutnya,  data parameter  pertumbuhan,  keragaman  pan-jang, sintasan, kondisi  faktor , aktivitas  enzim  dan kesehatan larva dianalisis secara statistik dengan menggunakan  analisa  sidik  ragam  (ANOVA) dengan selang kepercayaan 95%. Jika hasil yang diperoleh berbeda nyata (P<0,05), dilakukan uji
-15 BF ± 0,001 a
4,28 ± 0,44 a ± 0,005 a
perbandingan  berganda  dengan  Uji  Duncan menggunakan  perangkat  lunak  komputer  SPSS 16.  Data  kualitas  air,  ukuran  flok,  dan  histologi saluran  pencernaan  larva  dianalisis  secara deskriptif.

## Hasil

## Kinerja pertumbuhan
Kinerja pertumbuhan larva ikan lele selama pemeliharaan 15 hari dapat dilihat pada Tabel 1. Pada akhir penelitian tingkat sintasan larva ikan lele  pada  perlakuan  BFC  lebih  tinggi  (P<0,05) daripada perlakuan K dan BF. Bobot akhir larva ikan  lele  antarperlakuan  tidak  berbeda  nyata (P>0,05), sedangkan pertumbuhan panjang larva
ikan  lele  pada  perlakuan  BF  dan  BFC  lebih tinggi (P<0,05) daripada perlakuan K. Koefisien keragaman  panjang  larva  ikan  lele  pada perlakuan  BFC  berbeda  nyata  (P<0,05)  dari perlakuan K dan BF. Laju pertumbuhan spesifik (SGR)  dan  faktor  kondisi  (CF)  antar  perlakuan tidak berbeda nyata (P>0,05).

## Kinerja sistem pencernaan
Aktivitas  enzim  pencernaan  larva  ikan  lele yang  diambil  pada  awal  (hari  ke-3)  dan  akhir (hari  ke-15)  pemeliharaan  dapat  dilihat  pada Tabel 2. Aktivitas enzim pencernaan cenderung menurun  pada  hari  ke-15,  namun  tidak  terlihat perbedaan nyata antarperlakuan (P>0,05).
Tabel 1 Kinerja pertumbuhan larva ikan lele yang dipelihara dalam sistem kontrol (K), bioflok (BF) dan bioflok (+) Chlorella sp. (BFC) setelah 15 hari masa pemeliharaan Pengamatan K BF BFC Tingkat sintasan (%) 45 ± 0,52 a 45 ± 0,15 a 51 ± 0,32 b Panjang akhir (mm) 11.46 ± 0,20 a 12,02 ± 0,18 b 11,98 ± 0,13 b Bobot akhir (mg) 11 ± 0,00 a 12 ± 0,00 a 12 ± 0,00 a Pertumbuhan panjang mutlak (mm) 4,29 ± 0,20 a 4,84 ± 0,26 a 4,80 ± 0,20 a Koefisien keragaman (%) 11,64 ± 1,36 a 9,99 ± 0,14 a 6,76 ± 0,65 b Laju pertumbuhan spesifik(%/hari) 9,64 ± 0,14 a 10,03 ± 0,13 a 9,89 ± 0,26 a Faktor kondisi (k) 0,7 ± 0,21 a 0,7 ± 0,34 a 0,7 ± 0,01 a
Keterangan:  Huruf  tika  atas  yang  berbeda  di  belakang  nilai  rata-rata  ±  simpangan  baku  pada  baris  yang  sama menunjukkan perbedaan nyata  (P<0,05).
Tabel 2 Aktivitas enzim pencernaan larva ikan lele yang dipelihara dalam sistem kontrol (K), bioflok (BF) dan bioflok (+) Chlorella sp. (BFC) pada hari ke-3 dan ke-15 Parameter Aktivitas enzim pada hari ke-3 Aktivitas enzim pada hari ke-15 K BF BFC Protease (IU/mL) 0,025 0,018 ± 0,001 a 0,021 ± 0,001 a 0,019 ± 0,001 a Amilase (IU/mL) 7,05 4,24 ± 0,37 a 4,28 ± 0,44 a 4,27 ± 0,37 a Lipase (IU/mL) 0,091 0,077 ± 0,002 a 0,087 ± 0,005 a 0,080 ± 0,002 a
Keterangan:  Huruf  tika  atas  yang  berbeda  di  belakang  nilai  rata-rata  ±  simpangan  baku  pada  baris  yang  sama menunjukkan perbedaan nyata (P>0,05).
Pengamatan  histologi  usus  larva  ikan  lele (Gambar  1)  pada  umur  15  hari  menunjukkan bahwa  panjang  vili  usus  larva  ikan  lele  yang dipelihara  dengan  perlakuan  BF  sebesar  136 µm,  lebih  tinggi  daripada  larva  pada  perlakuan BFC  yang  mencapai  121  µm  dan  perlakuan  K yang sebesar 105 µm.

## Kualitas bioflok
Hasil  pengukuran  aktivitas  enzim  pada bioflok  yang  dikumpulkan  dari  setiap  akuarium percobaan  dapat  dilihat  pada  Tabel  3.  Aktivitas enzim  protease  dan  lipase  bioflok  pada  perla- kuan  BF  dan  BFC  relatif  sama,  sedangkan aktivitas  enzim  amilase  perlakuan  BF  lebih tinggi daripada perlakuan BFC. Ukuran partikel bioflok  pada  perlakuan  BF  lebih  kecil  daripada perlakuan BFC.

## Parameter kualitas air
Parameter  kualitas  air  suhu,  pH,  oksigen terlarut, TAN, nitrat, nitrit, dan alkalinitas  yang diamati  pada  penelitian  ini  ditunjukkan  dalam Tabel  4.  Nilai  parameter  kualitas  air  antarper- lakuan tersebut secara umum relatif sama.

## Uji ketahanan larva
Tingkat ketahanan larva ikan lele setelah uji stres  menggunakan  salinitas  15  gL -1 menunjuk- kan bahwa tingkat  sintasan  larva ikan lele  yang dipelihara pada perlakuan K tidak berbeda nyata (P>0,05) dari perlakuan BF dan tingkat sintasan larva  ikan  lele  perlakuan  BFC  lebih  tinggi (P<0,05) daripada perlakuan K dan BF (Gambar 2).
Gambar  1  Histologi  usus  bagian  medial  larva  ikan  lele  yang  dipelihara  dengan  perlakuan  kontrol  (K), bioflok (BF) dan bioflok(+) Chlorella sp. (BFC) pada hari ke 15. Tanda panah menunjukkan gambar vili usus.
Tabel 3 Aktivitas enzim dan ukuran partikel bioflok pada perlakuan bioflok (BF) dan bioflok (+)
Chlorella sp. (BFC) Parameter Aktivitas enzim pada flok BF BFC Protease (IU/mL) 0,010 0,012 Amilase (IU/mL) 0,38 0,22 Lipase (IU/mL) 0,056 0,059 Ukuran partikel (mm) 0,44±0,03 0,79±0,05
Keterangan :  Huruf  tika  atas  yang  berbeda  di  belakang    nilai  rata-rata  ±  simpangan  baku  pada  baris  yang  sama menunjukkan perbedaan nyata (P>0,05). Pengukuran partikel flok menggunakan pembesaran 100x.
K 105 µm
BF 136 µm BFC 121µm
Tabel 4 Kisaran parameter kualitas air pada pemeliharaan larva ikan lele selama 15 hari masa pemeliha- raan pada perlakuan kontrol (K), bioflok (BF) dan bioflok(+) Chlorella sp. (BFC) Parameter Perlakuan K BF BFC Suhu ( o C) 28 - 29 28 - 30 28 - 30 Oksigen terlarut (mg L -1 ) 6,2 - 7,9 6,2 - 7,7 6,2 - 7,7 pH 7,7 - 8,2 7,7 - 8,2 7,7 - 8,3 Nitrit (mg L -1 ) 0,1 - 1,4 0,08 - 1,3 0,1 - 1,4 Nitrat (mg L -1 ) 0,9 - 1,3 1,1 - 1,4 1,0 - 1,6 TAN (mg L -1 ) 0,1 - 0,5 0,1 - 0,4 0,2 - 0,4 Alkalinitas (mg CaCO 3 L -1 ) 28 - 48 36 - 48 40 - 48 TSS (mg L -1 ) 3,50- 14,86 6,40-28,80 9,60-32,80
Keterangan:  Nilai  yang  tertera  merupakan  angka  terendah  dan  tertinggi  selama  pemeliharaan,  TAN=  total  amonia nitrogen, dan TSS=total suspended solid.
Gambar 2 Tingkat sintasan larva ikan lele setelah diuji stres menggunakan salinitas 15 g L -1 pada media kontrol (K), Bioflok (BF), dan Bioflok+ Chlorella sp. (BFC).

## Pembahasan
Pertumbuhan  panjang  larva  ikan  lele  pada perlakuan  media  BF  dan  BFC  menunjukkan hasil yang berbeda nyata dari perlakuan K. Hasil ini  menunjukkan  bahwa  larva  memanfaatkan bioflok selama pemeliharaan. Penelitian Ekasari et al. (2015)  menunjukkan  bahwa  bioflok  dapat meningkatkan  pertumbuhan  dan  meningkatkan sintasan larva ikan nila ( Oreochromis niloticus ).
Penggunaan  bioflok  pada  pemeliharaan  benih udang vanamei ( Litopenaeus vannamei ) juga da- pat  meningkatkan  pertumbuhan  (Widanarni et
al .  2010).  Bioflok  adalah  sumber  pakan  alami yang kaya protein dan lipid serta selalu tersedia dalam  media  budidaya  (Avnimelech  2007). Pemeliharaan larva ikan lele pada media bioflok yang  ditambah Chlorella sp.  memberikan tingkat  sintasan  dan  keseragaman  ukuran  ikan yang  lebih  tinggi  dibandingkan  dengan  kontrol dan  bioflok  tanpa Chlorella sp.  Nilai  koefisien keseragaman  yang  rendah  pada  media  BFC dibandingkan  dengan  media  K  dan  BF menjelaskan  bahwa  ukuran  larva  ikan  pada media BFC mempunyai keseragaman yang sama
43 ± 3,33 a 47 ± 3,33 a
63 ± 3,33 b 0 10 20 30 40 50 60 70 80 K BF BFC T ing k a t K ela ng sun g a n H idu p (%)
sehingga  tingkat  kanibalisme  pada  media  BFC rendah  dan  tingkat  sintasan  pada  media  BFC menjadi  lebih  tinggi  dibandingkan  dengan perlakuan  yang  lain.  Hal  ini  diduga  karena bioflok  yang  mengandung  mikroalga  lebih  baik dibandingkan  dengan  bioflok  yang  didominasi oleh bakteri (Ju et al. 2008). Chlorella sp. kaya akan  protein,  asam  amino  esensial,  vitamin, mineral (kalium, natrium, magnesium, besi, dan kalsium), lipid, β -karoten,  klorofil,  serta  zat-zat yang mengu-ntungkan untuk kesehatan (Wij ﬀ els & Barbosa 2010, Bauer et al . 2017).
Partikel  flok  dengan  media  bioflok  ditam- bah Chlorella sp.  memiliki  ukuran  yang  lebih besar  daripada  perlakuan  BF.  Ukuran  partikel bioflok  memengaruhi nilai  nutrisi  yang terdapat pada  flok  dan  aksesibilitas  partikel  bioflok untuk dikonsumsi oleh larva ikan (Ekasari et al.
2014). Hasil penelitian aktivitas enzim eksogenus  terutama  amilase  pada  bioflok  dari perlakuan BF menunjukkan lebih tinggi daripada  bioflok  pada  perlakuan  BFC,  hasil  ini diduga  karena  komposisi  yang  berbeda  dari bioflok  pada  perlakuan  BF  dan  BFC. Aktivitas enzim  pencernaan  endogenus  pada  larva  ikan lele  menunjukkan  nilai  yang  lebih  tinggi dibanding  kan  dengan  perlakuan  K  dan  ukuran panjang  vili  pada  usus  larva  ikan  lele  pada perlakuan BF dan BFC menunjukkan nilai yang lebih tinggi dibandingkan perlakuan K.
Perkembangan  usus  pada  ikan  dipengaruhi  oleh suhu, oksigen terlarut, pH,  energi  yang diserap oleh  tubuh  dari  pakan  dan  ketersediaan  pakan (Smith  1982)  sehingga  penggunaan  media bioflok  dan  penambahan Chlorella sp.  pada penelitian  ini  memberikan  ukuran  panjang  vili yang  tinggi  pada  usus  larva  ikan  lele dibandingkan  dengan  media  kontrol.  Hal  ini mengindikasikan  bahwa  penyerapan  nutrien
pada  perlakuan  BF  dan  BFC  lebih  optimal dibandingkan dengan perlakuan K.
Kontribusi  bioflok  pada  perlakuan  BFC juga  terlihat  pada  ketahanan  larva  ikan  lele. Ketahanan larva ikan lele terhadap stres salinitas menunjukkan  bahwa  perlakuan  BFC  memiliki nilai  tingkat  sintasan  yang  tertinggi  dibanding- kan dengan perlakuan yang lain. Hal ini menun- jukkan bahwa larva ikan lele yang dipelihara pa- da sistem bioflok dengan penambahan Chlorella sp.  lebih  tahan  terhadap  stres salinitas  daripada perlakuan  yang  lain. Chlorella sp.  diketahui juga dapat meningkatkan sistem imun, mempertahankan
homeostasis
terhadap
rangsangan  stres  dari  luar  dan  menghambat peningkatan  kadar  kortikosteroid  dalam  darah (Hasegawa et  al .  2000). Chlorella vulgaris adalah  mikroalga  kaya  akan  senyawa  bioaktif termasuk  karoten,  astaxanthin,  lutein  dan fucoxanthin;  selain  itu Chlorella  vulgaris juga mengandung Eicosa-pentaenoic acid (EPA) dan Docosahexaenoic  acid (DHA)  (Aizzat et  al.
2010) sehingga
Chlorella sp. dapat berkontribusi pada pening-katan kapasitas antioksidan yang  diperlukan  ketika  ikan menghadapi stres.
Hasil  pengamatan  parameter  kualitas  air menunjukkan  bahwa  kualitas  air  masih  berada dalam  batas  toleransi  untuk  pemeliharaan  larva ikan  lele  ((Gunadi  2012).  Penerapan  teknologi bioflok  pada  pemeliharaan  larva  ikan  lele  me- nunjukkan kualitas air yang relatif sama dengan media kontrol  dengan  penggantian air. Menurut Hargreaves  (2006)  bakteri  heterotrof  dalam  sis- tem  bioflok  dapat  mengonversi  amonia  jauh lebih  cepat  daripada  bakteri  nitrifikasi  sehingga dapat meminimalkan akumulasi limbah nitrogen dalam  media  pemeliharaan  ikan.  Penambahan Chlorella sp.  pada  penelitian,  berperan  juga
sebagai  agen  bioremediasi  (Niczyporuk et  al.
2012)  sehingga  dapat  menjaga  kualitas  air dalam pemeliharaan larva ikan lele.

## Simpulan
Larva  ikan  lele  yang  dipelihara  dalam sistem  bioflok  dan  bioflok  yang  ditambah dengan Chlorella sp.  memiliki  vili  yang  lebih panjang, sehingga menghasilkan kinerja pertumbuhan yang lebih tinggi daripada kontrol. Ketahanan  larva  terhadap  stres  salinitas  pada perlakuan  bioflok  yang  ditambah Chlorella sp. lebih  tinggi  daripada  perlakuan  kontrol  dan perlakuan  bioflok  tanpa  penambahan Chlorella sp.

## Daftar pustaka
Aizzat  O,  Yap  SW,  Sopiah  H,  Madiha  MM, Hazreen  M,  Shailah  A,  Wan  Junizam  WY, Nur  SA,  Srijit  D,  Musalmah  M,  Yasmin AMY. 2010. Modulation of oxidative stress by Chlorella  vulgaris in  streptozotocin (STZ)  induced  diabetic  Sprague-Dawley rats. Advances  in  Medical  Sciences ,  55(2): 281-288
Ali  A.  Al-Ogaly  SM.  Asgah  NA.  Goddard  JS. Ahmed SI. 2007. Effect of feeding different protein to energy (P/E) ratios on the growth performance  and  body  composition  of
Oreochromis  niloticus fingerlings. Journal of Applied Ichthyology . 24(1): 31- 37.
Angka SL, Mokoginta I, Hamid H. 1990. Anato- mi dan histologi banding beberapa ikan air tawar  yang  dibudidayakan  di  Indonesia . Departemen  Pendidikan  dan  Kebudayaan. Direktorat  Jendral  Pendidikan  Tinggi. Institut Pertanian Bogor. 212 hlm.
Avnimelech Y. 1999. Carbon nitrogen ratio as a control  element  in  aquaculture  systems.
Aquaculture , 176(3): 227 – 235.
Avnimelech  Y.  2007.  Feeding  with  microbial flocs  by  tilapia  in  minimal  discharge bioflocs  technology  ponds. Aquaculture. 264(1): 140 – 147.
Bakar  NSA,  Nasir  NM,  Lananan  F,  Hamid SHA, Lam SS, Jusoh A. 2015. Optimization of  C/N  ratios  for  nutrient  removal  in aquaculture system culturing African catfish, ( Clarias gariepinus ) utilizing Bioflocs Technology. International Biodeterioration  and  Biodegradation ,  102:
100-106.
Bauer  LM,  Costa  JAV,  da  Rosa  APC,  Santos LO. 2017. Growth stimulation and synthesis of  lipids,  pigments  and  antioxidants  with magnetic  ﬁelds  in  Chlorella  kessleri cultivations . Bioresource Technology ,
244(2): 1425 – 1432.
Bergmeyer  HU,  Grassi  M.  1983. Methods  of Enzymatic  Analysis  Vol.  2 .  Verlag  Chemie. Berlin .
Borlongan  LG.  1990.  Studies  on  the  digestive lipases  of  milkfish, Chanos  chanos.
Aquaculture , 89(3): 315-325.
[DJPB]  Direktorat  Jendral  Perikanan  Budidaya. 2018. Subsektor perikanan budidaya sepanjang tahun 2017 menunjukkan kinerja positif. Direktorat Jenderal Perikanan
Budidaya. Tersedia dalam https://kkp.go.id/ djpb/artikel/3113-subsektor-perikanan-budi daya-sepanjang-tahun-2017-menunjukkan- kinerja-positif
Ebeling  JM,  Timmons  MB,  Bisogni  JJ.  2006. Engineering analysis of thestoichiometry of photoautotrophic,  autotrophic,  and  he- terotrophic removel of ammonia-nitrogen in aquaculture  system. Aquaculture. 257(1):
346-358.
Effendie MI. 2002. Biologi Perikanan . Yayasan
Pustaka Nusatama, Yogyakarta. 163 p.
Ekasari  J.  2009.  Teknologi  bioflok:  teori  dan aplikasi  dalam  perikanan  budidaya  sistem intensif. Jurnal Akuakultur Indonesia , 8(2): 117-126.
Ekasari  J,  Angela  D,  Waluyo  SH,  Bachtiar  T,
Surawidjaja  EH,  De  Schryver  P.  2014a. The  size  of  biofloc  determines  the nutritional  composition  and  the  nitrogen recovery by aquaculture animals.
Aquaculture, 426: 105-111.
Ekasari J, Azhar MH, Surawidjaja EH., Nuryati S,  De  Schryver  P.,  Bossier  P,  2014b.
Immune  response  and  disease  resistance  of shrimp  fed  biofloc  grown  on  different carbon sources. Fish & Shellfish Immunology , 41(2): 332 – 339.
Ekasari J, Rivandi DR, Firdausi AP, Surawidjaja EH,  Zairin  JrM,  Bossier  P,  De  Schryver  P. 2015.  Biofloc  technology  positively  affects
Nile  tilapia Oreochromis  niloticus larvae performance. Aquaculture , 441: 72 – 77.
Gao  F,  Liao  S,  Liu  S,  Bai  H,  Wang  A,  Ye  J. 2019.  The  combination  use  of  Candida tropicalis  HH8  and  Pseudomonas  stutzeri LZX301  on  nitrogen  removal,  biofloc formation  and  microbial  communities  in aquaculture. Aquaculture , 500: 50-56
Gunadi  B.  2012.  Minimalisasi  limbah  nitrogen dalam budidaya ikan lele Clarias gariepinus dengan sistem akuakultur berbasis  jenjang  rantai  makanan. Disertasi .
Sekolah  Pascasarjana  Institut  Pertanian Bogor.
Hargreaves JA. 2006. Photosynthetic suspended -growth  systems  in  aquaculture. Aqua- cultural Engineering , 34(3): 344 – 363.
Hasegawa  T,  Noda  K,  Kumamoto  S,  Ando  Y, Yamada Akira, Yoshikai Y.2000. Chlorella vulgaris culture  supernatant  (CVS)  reduces psychological  stress-induced  apoptosis  in thymocytes  of  mice. International  Journal of Immunopharmacology , 22(11): 877-885.
Ju  ZY,  Forster  I,  Conques  L,  Dominy  W,  Kuo WC,  Horgen  FD.  2008.  Determination  of microbial  community  structures  of  shrimp floc  cultures  by  biomakers  and  analysis  of floc  amino  acid  profiles. Aquaculture Research 39(2): 118-133.
Kawaroe M, Prartono T, Sunuddin A, Sari DW, Augustine D. 2010. Mikroalga: Potensi dan Pemanfaatannya untuk Produksi Bio Bahan Bakar . IPB Press. Bogor
Lavens  P,  Sorgeloos  P.  1996.  Manual  on  the production  and  use  of  live  food  for aquaculture.  FAO  Fisheries  Technical Paper. No 361: 295 p.

## Niczyporuk  AP,  Bajguz  A,  Zambrzycka  E,
Żyłkiewiczb  GB.  2012.  Phytohormones  as regulators  of  heavy  metal  biosorption  and toxicity  in  green  alga Chlorella  vulgaris (Chlorophyceae). Plant  Physiology  and Biochemistry , 52: 52-65
Rollo  A,  Sulpizio  R,  Nardi  M,    Silvi  S, Orpianesi  C,    Caggiano  M,    Cresci  A, Carnevali  O.  2006.  Live  microbial  feed supplement  in  aquaculture  for  improve- ment  of  stress  tolerance. Fish  Physiology and Biochemistry , 32: 167 – 177.
Smith  LS.  1982. Introduction  to  Fish  Physio- logy . T.F.H Publication. 350 p.
Steel  RGD,  Torrie  JH.  1993. Prinsip  dan Prosedur  Statistika:  Suatu Pendekatan Biometrik.  Edisi Kedua .  Diterjemahkan oleh  Bambang  Sumantri..  PT  Gramedia Pustaka Utama. Jakarta
Widanarni,  Yuniasari  D,  Sukenda,  Ekasari  J. 2010.  Nursery  culture  performance  of Litopenaeus  vannamei with  probiotics addition  and  different  c/n  ratio    under laboratory  condition. HAYATI    Journal  of Biosciences , 17(3): 115-119.
Wij ﬀ els RH, Barbosa MJ. 2010. An outlook on microalgal biofuels. Science , 329: 796 – 799.
Worthington  V.  1993.  Worthington  Enzyme Manual.  Enzymes  and  Related  Bio- chemicals  Worthington  Chemical.  New Jersey. US. 399 p.
Zonneveld  N,  Huisman  EA,  Boon  JH.  1991. Prinsip-prinsip Budidaya Ikan . PT Gramedia Pustaka Utama. Jakarta. 318 hlm.