## PENENTUAN KONDISI OPTIMUM HIDROLISIS PATIOLEH ASPERGILLUS NIGER DALAM LIMBAH KULIT KENTANG
Maria Tensiana Tima
Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian Universitas Flores Jln. Sam Ratulangi, Kel. Paupire, Kab. Ende tencyello@gmail.com

## ABSTRACT
Determination  of  optimum  condition  for  starch  hydrolysis  Aspergillus  niger  in shell potato waste. Shell Potato waste can be used as a raw material for making bioethanol because it contains carbohydrate ingredients, starch. The process of making bioethanol from starchy  materials  can  be  done  through  the  hydrolysis  process,  then  proceed  with  the fermentation process. The hydrolysis process is carried out to hydrolyze starch into glucose with  the  help  of  amylase  enzyme  produced  from  the Aspergillus  nigerbacterium. This research  was  carried  out  at  the  Chemistry  Laboratory  of  FMIPA  Malang  State  University. The purpose of this study was to determine the optimum conditions for hydrolysis of starch from potato skin which includes temperature, pH, time and amount of Aspergillus niger used. The  glucose  level  produced  from  the  hydrolysis  process  is  determined  using  the  Somogy- Nelson  method. The  results  showed  that  the  optimum  conditions  for  starch  hydrolysis  to produce optimum glucose levels were using 1.25 grams of Aspergillus niger (equivalent to 50 mL of  culture),  at pH 5  and temperature of 300C within 2 hours, with glucose produced as much as 0.0167 g of 100 g of shell potato waste flour.
Key words: Hydrolysis, Potatoes Shell, Bioethanol.

## PENDAHULUAN
Bioetanol merupakan cairan biokimia  pada  proses  fermentasi  gula  dari sumber  karbohidrat  yang  menggunakan bantuan  mikroorganisme. Bioetanol dapat diproduksi menggunakan bahan baku yang mengandung  gula,  pati,  atau  selulosa (Purwadi dkk, 2009). Pembuatan bioetanol yang  telah  banyak  dilakukan  diantaranya oleh  tim  peneliti  balaibesar  teknologi pati(B2TP)menggunakan  bahan berpati dari ubi kayu. Bahan berpati lain yang juga telah  dipelajari  menjadi  bahan  baku bioetanol  antara  lain  ubi  jalar  (Ariyanto, 2009) dan pati ganyong (Sukandar, 2008). Pemanfaatan bahan berpati menjadi
bioetanol  merupakan  teknologi  konversi yang cukup  sederhana  dan  menjanjikan, sehingga dapat dikembangkan  dari  bahan berpati lainnya.
Limbah  kulit  kentang memiliki potensi  untuk  digunakan sebagai  bahan baku  bioetanol,  kerena diduga  masih mengandung  pati  yang  cukup  besar. Lembaga Pati Internasional(2010)
mengatakan, umbi  kentang  mempunyai kadar  pati  sebesar  80%  dari  berat keringnya. Limbah  kulit  kentang  berasal dari  pemanfaatan  umbi  kentang  sebagai camilan  seperti  kripik  kentang  yang menjamur di sentra industri kripik kentang yang terdapat di kota Batu Malang. Setiap
bulan  satu  perusahaan  kripik  kentang mampu  mengolah  2,1 ton  kentang  mentah menjadi kripik kentang (Sutanmuda, 2007). Hal  ini berarti kulit kentang   yang tidak dimanfaatkan juga juga cukup besar, sehingga pemanfaatan limbah kulit kentang  sebagai  bahan  baku  pembuatan bioetanol  diharapkan  dapat  meningkatkan nilai  guna  dari  limbah  kulit  kentang, karena  selama  ini  limbah  kulit  kentang hanya  dijadikan  makanan  ternak,  bahkan dibuang begitu saja ke lingkungan.
Proses hidrolisis untuk menghasilkan  glukosa  dari  bahan  berpati dapat dilakukan  dengan  menggunakan katalis  anorganik  atau  biokatalis  (enzim) yang  sesuai.  Proses  hidrolisis secara enzimatik  lebih  dipilih  pada  produksi bioetanol, karena hidrolisis secara enzimatik memutus  rantai  pati  secara spesifik pada percabangan tertentu (Norman dalam Virlandia, 2008) sehingga menghasilkan  produk  spesifik,  sedangkan menggunakan  katalis  anorganik  bersifat acak. Keuntungan hidrolisis secara enzimatik  lainnya  adalah  menghasilkan limbah yang tidak berbahaya bagi lingkungan, sedangkan menggunakan katalis anorganik asam atau basa menghasilkan limbah yang sangat berbahaya, karena mengandung asam kuat (H 2 SO 4 )    atau  basa  kuat  yang  bersifat korosif (Prayadi dalam Ariyanto, 2009:11).
Hidrolisis  pati  secara  enzimatik dilakukan  dengan  menggunakan  enzim amilase  atau  mikroba  yang  mampu menghasilkan enzim amilase untuk memecahkan amilum (pati) menjadi glukosa (Purwadi, 2009).  Proses hidrolisis yang  dipilih  pada  penelitian  adalah  secara enzimatis  menggunakan  mikroba  yang dapat menghasilkan enzim amilase. Amilase  dapat  diisolasi  dari  mikroba
seperti Aspergillus niger, Bacillus subtilis,
dan Bacillus
sp (Assegaf,
2009).Aspergillus  niger dipilih  karena memiliki  kecepatan  tumbuh  yang  tinggi, serta  mudah  dikontrol,  sehingga  biaya produksinya  relatif murah,  dan  dapat disediakan  dalam  waktu  yang  singkat (Ariyanto,  2009). Borris dalam  Meliawati (1987)  melaporkan  bahwa Aspergillus niger dapat  menghasilkan  enzim  α -amilase dan  amiglukosidase dalammedia yang mengandung  pati. Aspergillus nigerjuga dilaporkan sebagai penghasil β - glukosidase,  baik  ekstraseluler  maupun intraseluler  dantelah  dipurifikasi  serta dikarakterisasi (Meliawati dkk, 2006)
Proses  hidrolisis  secara  enzimatis dipengaruhi  oleh  tingkat  keasaman  (pH), suhu,  waktu,  serta  jumlah  enzim  yang digunakan.  Perubahan  pH  lingkungan dapat menyebabkan perubahan kemampuan aktivitasnya. Peningkatan suhu  dapat  meningkatkan  aktivitas  enzim, tetapi  bila  suhu  meningkat  di  atas  suhu optimumnya  seperti  pada  suhu  lebih  dari 50 0 C,  enzim  dapat  mengalami  denaturasi yang  mengakibatkan  enzim  kehilangan aktivitasnya  (Suwono,  2001).  Enzim amilase  dari Aspergillus  niger memiliki suhu  optimum  30 0 C,dan  bekerja  pada  pH
4,8  (Komang 2004). Waktu  dan  jumlah biakan  optimum pada  proses  hidrolisis sangat  dipengaruhi oleh  jumlah  dan  jenis substrat yang  terlibat  dalam  proses hidrolisis  tersebut.  Penelitian  Ariyanto (2009) menunjukkan bahwa waktu hidrolisis  bubur  ubi  jalar  dengan  biakan Aspergillus niger yang terlalu lama (diatas dua  jam)  mengakibatkan  penurunan  kadar glukosa. Hal ini diduga karena pada waktu hidrolisis  yang  terlalu  lama  glukosa  yang terbentuk  digunakan  oleh Aspergillus niger sebagai  sumber  energi,  sehingga pada  kondisi  tersebut  konsentrasi  glukosa
menurun.  Oleh  karena  itu, penentuan kondisi  optimum hidrolisis  amilum  dari limbah  kulit  kentang  menjadi  glukosa dengan  bantuan Aspergilus  niger perlu dilakukan  untuk  menghasilkan  jumlah glukosa  yang    optimum,  khususnya mengenai pH hidrolisis, suhu, serta jumlah biakan Aspergillus niger yang digunakan.
Penelitian  ini  bertujuan untuk mengetahui  kondisi  optimum  hidrolisis pati dari kulit kentang yang meliputi suhu, pH,  waktu  dan  jumlah Aspergillus  niger yang digunakan.

## METODE PENELITIAN

## Tempat Penelitian
Penelitian dilakukan di laboratorium  FMIPA  UM Universitas
Negeri Malang

## Alat dan Bahan yang Digunakan
Alat – alat  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  meliputi  :  1)  peralatan  gelas seperti gelas piala 50, 100, 1000, dan 2000 mL; Erlenmeyer 250 mL; gelas ukur 5, 10, dan  25  mL;  gelas  arloji,  corong  kaca, pengaduk,  tabung  reaksi,  dan  pipet  tetes. 2) Alat penunjang lain seperti kertas saring ukuran  1  mikron,  neraca  analitik  merk Sartorius,  sumbat  karet  atau  gabus,  kapas, aluminium  foil,  autoklaf  serta  oven  merk Memmert.
Bahan – bahan yang digunakan dalam  penelitian  ini  dengan  kualitas proanalisis  (p.a)  meliputi  ;  NaCl,    AlPO 3 , NH 4 Cl,  KCl,  MgSO 4 .7H 2 O,  CaCl 2 ,yeast ekstrak,  agar,  (NH 4 ) 2 Ce(NO 3 ) 6 ,  (FeCl 3 ), HCl  pekat,  ammonium  molibdat,  H 2 SO 4 pekat,  Na 2 HAsO 4 .7H 2 O.  Bahan- bahan lain  berupa  aquades,  NaOH  0,5  M,  dan Aspergillus niger.
Tahapan Penelitian
Tahapan  penelitian  untuk  mencapai tujuan  tersebut  adalah:  (1)  pembuatan media  pertumbuhan Aspergillus  niger, (2) pembuatan kurva pertumbuhan Aspergillus niger,  (3) preparasi  kulit  kentang,  (4) Penentuan jumlah biakan Aspergillus niger optimum  untuk  proses  hidrolisis  limbah kulit  kentang,  (5) penentuan  kondisi hidrolisis optimum (pH  dan  suhu),  (6) penentuan  kurva  standar  glukosa,  (7) penentuan    kadar  glukosa  dengan  metode Somogy-Nelson,

## Teknik Analisis Data
Analisis  data  menggunakan  teknik deskriptif naratif. Penentuan kurva pertumbuhan dilakukan melalui pembuatan  kurva  hubungan  antara  waktu dengan jumlah sel Aspergilus niger berupa massa  kering.  Kurva  yang  dihasilkan menggambarkan  fase-fase  pertumbuhan yang dilalui Aspergillus niger.
Penentuan kondisi optimum sakarifikasi  berdasarkan  jumlah  glukosa yang diperoleh. Penentuan jumlah glukosa dilakukan dengan rumus :

## C x V
Dimana : C = konsentrasi glukosa V = volume hasil sakarifikasi
Nilai  C  dapat  diperoleh  dengan mengekstrapolasi  nilai  absorbansi  yang diperoleh  kedalam  kurva  standart  glukosa dengan  persamaan  Y  (absorbansi)  = aX  + bX = konsentrasi glukosa yang dihasilkan. Dari  hasil  konsentrasi  yang  diperoleh dapat  ditentukan  jumlah  glukosa  yang dihasilkan dengan rumus C x V.
HASIL
DAN PEMBAHAS
Pembuatan Kurva
Pertumbuhan

## Aspergillus niger
Pada penelitian  ini  digunakan media dekstrosa yang dimodifikasi dengan penambahan  garam  yaitu  NaCl,  AlPO 3 , NH 4 Cl,  KCL,  MgSO 4 .7H 2 O,  CaCl 2 .  Hasil penelitian  menunjukkan  bahwa  berat kering Aspergillus  niger selama  waktu pertumbuhan
membentuk
kurva pertumbuhan seperti  pada  gambar  di bawah ini.
Gambar. 1  Kurva  Pertumbuhan Aspergillus niger
Berdasarkan
gambar kurva
pertumbuhan  yang  diperoleh  maka  waktu pemanenan  biakan Aspergillus  niger yang akan  digunakan  untuk  proses  hidrolisis adalah hari ke-6.

## Penentuan  Kondisi Optimum  Hidrolisis
Limbah Kulit Kentang
Penentuan  Jumlah  Biakan Aspergillus niger Optimum
Penentuan jumlah biakan ini
bertujuan untuk mengetahui berapa jumlah
Aspergillus niger optimum yang digunakan  untuk  proses  hidrolisis  kulit kentang.  Hasil percobaan  menunjukkan bahwa  ada  pengaruh  antara  jumlah  biakan yang  digunakan  dengan  kadar  glukosa yang  dihasilkan  setelah  proses  hidrolisis, seperti ditunjukkan pada gambar di bawah ini
Gambar  2  Jumlah  Glukosa  Hasil  Hidrolisis pada  Berbagai  Variasi  Jumlah Aspergillus niger
Penentuan  waktu  optimum Aspergillus niger untuk hidrolisis kulit kentang
Penelitian  ini  bertujuan  untuk mengetahui berapa waktu optimum biakan Aspergillus  niger yang  digunakan  untuk proses  hidrolisis.  Dari  hasil  percobaan terdapat  pengaruh  antara  waktu  yang digunakan  dengan  kadar  glukosa  yang dihasilkan setelah proses hidrolisis, seperti ditunjukkan pada gambar di bawah ini.
Gambar 3 kurva  jumlah  glukosa  hasil hidrolisis  pada  berbagai  variasi  waktu hidrolisis optimum
Gambar  di  atas menunjukkan  bahwa pada jam ke- 2 dengan menggunakan 1,25 g Aspergillus  niger dapat  menghasilkan glukosa  yang  optimum  yaitu  sebanyak 0,01  g  dari  100  g  tepung  kulit  kentang

## Penentuan  pH  optimum Aspergillus
niger Untuk  Hidrolisis  Tepung  Kulit Kentang
Proses  hidrolisis  ini  dilakukan pada  kisaran  pH  3-7.  Tujuannya  untuk mengetahui pH optimum sakarifikasidalam menghidrolisis  pati  menjadi  glukosa. Dalam proses ini digunakan rasio
Aspergillusniger dengan  tepung  kulit kentang  sebesar  1,25  g  :  100  g.  pH optimum  dapat  diketahui  dengan  jumlah glukosa  terbanyak  yang  dihasilkan  pada berbagai  variasi  pH.  Gambar berikut menunjukkan bahwa pH optimum diperoleh pada pH 5.
Gambar 4 Jumlah glukosa hasil hidrolisis pada berbagai variasi pH
Penentuan Suhu Optimum Untuk Hidrolisis Tepung Kulit Kentang Pada proses
ini dengan menggunakan  rasio  antara Aspergillus niger dengan tepung kulit kentang sebesar 1,25 g : 100 g dapat menghasilkan jumlah glukosa  optimum  sebanyak  0,022  g  pada suhu 100°C. Gambar berikut menunjukkan hubungan  antara  suhu  dengan  kadar glukosa  yang  dihasilkan  pada  proses hidrolisis.
Gambar 5 Jumlah glukosa hasil hidrolisis pada berbagai variasi suhu
Pembuatan kurva pertumbuhan

## Aspergillus niger
Gambar 1 memperlihatkan  adanya empat  fase  pertumbuhan  yang  dialami Aspergillus  niger,  yaitu  (1)  fase  adaptasi, (2)  fase  eksponensial,  (3)  fase  stasioner, dan  (4)  fase  kematian.  Peningkatan  berat kering  dari  hari  ke -0  (nol)  hingga  ke-1 hanya  0.032  gram,  artinya  penambahan jumlah  sel  cenderung  lambat.  Hal  ini merupakan  ciri  khas  dari  fase  adaptasi. Pada  fase  ini  mulai  terjadi  metabolisme tetapi  belum  ada  pertumbuhan  populasi, biasanya  sebagai  akibat  dari  penyesuaian diri terhadap media baru.
Peningkatan nilai berat kering yang tajam  terjadi  dari  hari  ke-2  hingga  ke-5 yang  menunjukkan  bahwa Aspergillus niger berada  pada  fase  logaritmik  (fase log).Selama  fase  log,  sel-sel  mikroba menunjukkan ciri-ciri  yang jelas, terutama mengenai bentuk, warna, kerapatan (density)  dan  pengelompokan  koloni- koloni. Pada awal fase, hifa yang berwarna putih  kekuningan  mulai  terbentuk  dengan jelas dan terus membesar, serta menunjukkan  kerapatan  yang  semakin tinggi  hingga  akhir  fase.  Warna  hifa  juga mulai  mengalami  perubahan  dari  putih tulang  pada  awal  fase,  hingga  kehitaman pada  akhir  fase.  Fase  log  ini  juga merupakan  waktu  pada  saat  mikroba
paling giat aktivitasnya melakukan metabolisme (Tarigan,1998:132)
Fase  stasioner  ditunjukkan  pada hari  ke-5  dan  hari  ke-6  yang  ditandai dengan  peningkatan  berat  kering  sel (jumlah  sel)  yang  rendah  bahkan  boleh dikatakan  konstan.  Pada  fase  ini  jumlah populasi  sel  tetap  karena  jumlah  sel  yang tumbuh  sama  dengan  jumlah  sel  yang mati.  Darkuni  (2001)  menjelaskan  bahwa pada  fase  ini  ukuran  sel  menjadi  kecil karena  sel  tetap  membelah  walaupun ketersediaan  nutrisi  pada  medium  sudah sangat  kurang.  Pada  fase  ini  seluruh permukaan hifa telah dipenuhi oleh sel-sel mikroba  yang  ditandai  dengan  warna konidiospora  yang  hitam  pada  seluruh permukaannya.
Setelah  fase  stasioner,  maka  sel akan  mengalami  fase  kematian  yang ditunjukkan  melalui  terjadinya  penurunan jumlah  sel  sejak  hari  ke-7.  Pada  fase  ini densitas  hifa  telah  mengalami  penurunan, konidiospora  yang  berwarna  hitam  mulai terlepas dan jatuh ke medium cair. Hal ini dikarenakan  persediaan  nutrient  habis dikonsumsi,  dan  dimungkinkan    sel Aspergillus  niger mengalami  autolisis untuk  mempertahankan  diri  sehingga jumlah dan ukuran selnya mengecil.
Berdasarkan gambar kurva pertumbuhan  yang  diperoleh  maka  waktu pemanenan  biakan Aspergillus  niger yang akan  digunakan  untuk  proses  hidrolisis adalah  hari  ke-6,  karena  pada  fase  ini jumlah  sel  paling  banyak  dan  enzim amilase yang dihasilkan juga produktivitasnya tinggi, serta pada fase ini sel-sel  lebih  tahan  terhadap  keadaan ekstrim  seperti  panas, dingin,  radiasi  dan bahan-bahan kimia (Fardiaz, 1988).
Penentuan  Kondisi  Optimum  Hidrolisis Limbah Kulit Kentang
Kondisi  optimum  yang  digunakan untuk  hidrolisis  limbah  kulit  kentang antara  lain  jumlah  biakan,  waktu,  pH  dan suhu. Gambar  2 menunjukkan  jumlah biakkan Aspergillus  niger dengan  variasi berat  kering  0,625  g  sampai  1,25g mengalami  kenaikan  kadar  glukosa  yang semakin    tinggi. Aspergillus  niger dalam media  yang  mengandung  amilum  (kulit kentang)  menghasilkan  enzim  amilase. Semakin  banyak  jumlah Aspergillus  niger maka  aktivitas  amilase  semakin  tinggi. Jika  aktivitas  amilase  meningkat  dan jumlah  substrat  tetap  maka  jumlah  kadar glukosa  yang  dihasilkan  akan  semakin tinggi.
Akan  tetapi,  pada  jumlah  sel Aspergillus  niger diatas  1,  25g  yaitu  pada 1, 875 g menunjukkan hal yang berlawanan karena jumlah glukosa mengalami  penurunan  yang  sangat  tajam. Hal  ini  terjadi  karena  jumlah Aspergillus niger yang  terlalu  banyak.  Pada  kondisi tersebut diduga terjadi perebutan makanan antara Aspergillus  niger yang  jumlahnya sangat  banyak,  sehingga  produksi  amilase kurang optimal.
Berdasarkan  penelitian  ini  dapat disimpulkan  bahwa  hidrolisis  tepung  kulit kentang akan menghasilkan glukosa optimum  dengan  menggunakan  rasio antara  tepung  kulit  kentang  dengan Aspergillus  niger sebesar  1,25  g  :  100  g dengan  glukosa  yang  dihasilkan  sebesar 0,01  g. Sementara  itu,  untuk  waktu optimum memperlihatkan bahwa pada jam ke-0  belum  terbentuk  glukosa  yang menunjukkan bahwa pada jam ke-0 belum terjadi proses hidrolisis. Tetapi dari jam ke -1  hingga  jam  ke  2  terjadi  peningkatan jumlah  glukosa  yang  dihasilkan.  Jumlah glukosa  optimum  dihasilkan  pada  jam  ke- 2.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  pada  jam ke- 2  dengan  menggunakan  1,25  g
Aspergillus  niger dapat  menghasilkan glukosa  yang  optimum  yaitu  sebanyak 0,01  g  dari  100  g  tepung  kulit  kentang. Pada  waktu  2  jam  sampai  3  jam,  dengan jumlah biakan
Aspergillus tetap seharusnya  bentuk  grafik  yang  dihasilkan parabola,  karena  secara  teoritik  tidak terjadi penambahan jumlah produk. Berdasarkan  gambar  4.5  menunjukkan  hal yang  sebaliknya,  waktu  sakarifikasi  diatas 2  jam  mengakibatkan  penurunan  jumlah glukosa  yang  sangat  tajam.  Hal  ini disebabkan  karena  proses  hidrolisis  pada percobaan ini menggunakan mikroba yang menghasilkan  amilase  (Aspergillus  niger) bukan  langsung  menggunakan  enzim amilase. Akibatnya metabolisme Aspergillus  niger akan  mempengaruhi waktu  hidrolisis.  Waktu  hidrolisis  yang terlalu lama akan mengakibatkan penguraian  glukosa  yang  telah  terbentuk, menjadi  zat  lain  yang  lebih  sederhana sambil menghasilkan energi.Oleh sebab itu jumlah  glukosa  akan  menurun  karena digunakan Aspergillus niger sebagai sumber energi.
Penentuan  pH  optimum  dalam proses hidrolisis ini dilakukan pada kisaran pH  3-7.  Tujuannya  untuk  mengetahui  pH optimum  sakarifikasidalam  menghidrolisis pati  menjadi  glukosa.  Dalam  proses  ini digunakan  rasio Aspergillus  niger dengan tepung  kulit  kentang  sebesar  1,25  g  :  100 g.  pH  optimum  dapat  diketahui  dengan jumlah  glukosa  terbanyak  yang  dihasilkan pada  berbagai  variasi  pH. Hasil  penelitian menunjukkan bahwa pH optimum diperoleh pada pH 5. Hal ini sesuai dengan data  penelitian  yang  menyatakan  bahwa enzim  amilase  dari  kapang  (Aspergillus niger)  memiliki  pH  optimum  antara  4-5 (Ibrahim,  2010),  sehingga    pada  pH  5 dengan jumlah Aspergillus niger sebanyak 50  mL  (1,25  g  berat  keringnya)  dapat
menghasilkan  jumlah  glukosa  optimum yaitu  0,018  g  dari  100  g  tepung  kulit kentangTetapi pada pH diatas dan dibawah pH  optimumnya,  jumlah  glukosa  yang dihasilkan  mengalami  penurunan.  Kondisi ini  diduga  karena  pada  pH  tersebut aktivitas katalitik amilase menurun (Sukandar,  2002).  Berdasarkan  penelitian ini dapat disimpulkan bahwa hidrolisis 100 gram  kulit kentang  menjadi  optimal  pada pH  5  dengan  jumlah  glukosa  yang dihasilkan  sebanyak  0,018  g.Penentuan suhu  optimum  dalam  proses  ini  dilakukan dengan menggunakan rasio antara Aspergillus  niger dengan  tepung  kulit kentang  sebesar  1,25  g  :  100  g  dapat menghasilkan  jumlah  glukosa  optimum sebanyak  0,022  g  pada  suhu  100°C. Gambar 5 menunjukkan  bahwa  pada  suhu 30 0 C enzim amilase dari Aspergillus niger dapat  bekerja  secara  optimal  untuk menghidrolisis  amilum  menjadi  glukosa. Tetapi pada suhu diatas  suhu optimumnya yaitu  pada  suhu  40 0 C,  terjadi  penurunan jumlah  glukosa  yang  terbentuk.Penurunan jumlah  glukosa  ini  disebabkan  pada  suhu 40 0 C enzim amilase dari Aspergillus niger telah  mengalami  denaturasi  sehingga enzim  kehilangan  aktivitas  katalitiknya, hal  ini  menyebabkan  enzim  tidak  mampu menghidrolisis  amilum  menjadi  glukosa. Dengan  demikian  suhu  optimum  yang digunakan  untuk  menghidrolisis  tepung kulit  kentang  menjadi  glukosa  diperoleh pada  suhu  30 0 C.  Jumlah  glukosa  yang dihasilkan pada kondisi  optimum dari tiga kali  pengulangan  sebesar  0,0167  g  ± 0,0061 .

## SIMPULAN
Berdasarkan hasil penelitian, maka kesimpulan penelitian  ini  adalahkondisi optimum  untuk  menghidrolisis  100  g tepung  kulit  kentang  adalah  dengan
penambahan  1,25  g Aspergillus  niger (berat  kering)  atau  setara  dengan  50  mL biakan, pH 5 serta suhu 30 0 C selama 2 jam dengan  glukosa  yang  dihasilkan  sebesar 0,0167 g.

## UCAPA TERIMA KASIH
Pada  kesempatan  ini  penulis  ingin mengucapkan  terima  kasih  kepada  semua pihak  yang  telah  membantu  dengan caranya masing – masing dalam melengkapi tulisan ini

## DAFTAR PUSTAKA
Ariyanto,  M.  2009. Optimasi  Sakarifikasi pada  Pembuatan  Bioetanol  pada Ubi  Jalar  Putih  dan  Penentuan Rendemen Bioetanol dari Ubi Jalar Putih dan Ubi Jalar Kuning. Skripsi
tidak diterbitkan. Malang: Universitas Negeri Malang. Darkuni,  M.  Noviar.  2001. Mikrobiologi (Bakteriologi, Virologi dan mikologi). Malang: Universitas Negeri Malang. Dewi, F. F. 2009. Optimasi Perbandingan Aspergillus niger dan Saccharomyces cerevisiae srta Waktu Fermentasi  pada  Pembuatan
Bioetanol  dari  Ubi  Jalar  Putih (Ipomoea Batatas L) dengan Teknik Sakarifikasi  Fermentasi  Simultan. Skripsi  tidak  diterbitkan.  Malang. Universitas Negeri Malang.
Fardiaz.  1996. Mikrobiologi  Pangan.
Jakarta: Gramedia Pustaka Utama Iqbal,J.  dan  Ali,  S.  2002. Production  of Citric  Acid  by Aspergillus  niger Using  CaneMolassesin a Stirred Fermentor. ElectronicJournal  of
Biotechnology Vol 5 No 3.
Judoamidjoyo, M. Darwis, A dan Sa’id, E.
G.  1990. Teknologi  fermentasi. Bogor: PAU-Bioteknologi IPB.
Komang,  Hermin.  2004. Evaluasi  Daya Hidrolitik  Enzim  Glukoamilase  dari Filtrat  Kultur  Aspergillus  niger. Kendari  :  Jurusan  Kimia  FMIPA UNHALU
Kusmiyati  dan  Shitophyta,  L.  M.  2014.
Produksi bioetanol dari bahan baku singkong,  jagung  dan  iles-iles: pengaruh suhu fermentasi dan berat yeast  saccharomyces  cerevisiae. Reaktor,  15(2), 97-103 Lehninger, A. 2009. Dasar-dasar Biokimia Jilid2. Jakarta : Erlangga
Media Komunikasi Cabang Malang. 2007.
Aspergillus niger. (online). (http://permimalang.wordpress.com/ 2007/12/12/aspergillus-niger,
diakses 4 April 2010)
Poedjiadi,  A.  dan  Supriyanti,  T.  2006.
Dasar-Dasar Biokimia. Jakarta: UI Pretis, Steve.1990. Bioteknologi (Diterjemahkan oleh Megy Thenawidjaya). Jakarta: Erlangga
Prescott,  S.  C.  and  Dunn,  GG.1959.
Industrial Microbiology. New
York:Mc Graw-Hill Book Company Inc.
Purwadi, R. Amanta, C. dan Lan,  N. L. 2009. Pengaruh Nisbah C/N dan Laju Aerasi Terhadap ProduksiEnzim Amilase Menggunakan Aspergillus niger. (online).
(http://www.google.co.id/search nisbah+C%2FN+dan+laju+aerasi&o q=nisbah+C%2FN+dan+laju+aerasi
, diakses 6 juni 2011)
Retno,E. Enny, K. A. dan  Fadilah.  2009.
Studi Awal Reaksi Simultan Sakarifikasi Dan Fermentasi Tepung  Sorghum  (Sorghum  Bicolor L.  Moench)  dengan  Katalis  Enzim Glucoamylase
dan yeast
(saccharomyces cereviseae) ( online
).    (http://www.pdfqueen.com/html,
diakses 28 Maret 2010 )
Sa’id,  E.G. 1990. Teknologi  Fermentasi.
Jakarta: CV Rajawali. Sudarmaji, S. 1989. Mikrobiologi Pangan.
Yogyakarta:  Pusat  antar  Universitas
UGM Yogyakarta
Suhardi,
W. 2010. Isolasi dan Karakterisasi  Ekstrak  Kasar  Sistem Selulase  dari  Bacillus  circulans Strain Lokal. Skripsi tidak diterbitkan.  Malang:  Universitas
Negeri Malang.
Suwono,  H.  2001. Petunjuk  Praktikum
Biokimia.  Malang:  Jurusan  Biologi FMIPA  UM Tadeu, Gener. 2006. Solubiliza Of CaHPO 4 and  AlPO 4 by  Aspergillus niger  Cultur  Madia  With  Diferent Carbon  and  Nitrogen  Sources. Brazil: Jurnal Mikrobiologi Tarigan,
Jeneng. 1988. Pengantar Mikrobiologi. Jakarta: Erlangga.
Wardio,  S.  P.  1990. Petunjuk  Praktek
Kimia Industri. Jakarta: Depertemen Pendidikan dan Kebudayaan.