Limbah Berlignoselulosa Sebagai Media Produksi Xilanase Kapang Asal Jerami Padi Sawah Pantai
Using Lignosellulose Waste as a Xylanase Production Media of Mold Isolated from Rice Straw of Coastal-field
Esti Utarti *) , Siswanto Jurusan Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Jember * E-mail: adiest.95@gmail.com

## ABSTRACT
Hemicellulose  is  one  of  lignocellulose  waste  component,  so  that  xylanase  is  one  of  importance enzyme of lignocellulose waste biodegradation. Molds as main decomposer lignosellulose waste has enzyme activities higher than yeast and bacteria. The aim of the research is to find mold that have xylanolitic activity using lignocellulose waste as media production. The research consist of isolations and screening mols from coastal-field of watu Ulo Jember, xylanase production using lignocellulose waste and idntification of mold which has the highes xylanase activity. A total of 66 molds isolated from rice straw in coastal-field of Watu Ulo Jember. There were screened for their xylanase activity. In semiquantitatively screen on Oat Spelt Xylan plate, the result showed that 62 have xilanolytic activities. Based on clearing zone production, isolates ESW A1 (3.2), ESW A5 (3.1), ESW C 16 (3.26), ESW D4 (3.0) and ESW D15 (3.21) have xilanase activity index higher than others. Furthermore, quantitative analysis using wheat bran, rice straw and baggase in basic salt Mandel’s modification media showed that xylanase activity of isolate ESW D4 was higher on rice  straw  3%  as  substrate  production  with  activity  2.66  U/mL.  Isolate  ESW  D4  identified  as Aspergillus foetidus so that called as Aspergillus foetidus ESW D4.
Keywords: Rice straw, Coastal-field, Aspergillus foetidus ESW-D

## PENDAHULUAN
Xilanase  merupakan  kelompok  enzim  yang memiliki kemampuan menghidrolisis hemiselulosa, dalam hal ini xilan atau polimer dari xilosa dan xilooligosakarida. Xilanase dan mikroba  yang  menghasilkannya  biasanya digunakan  dalam  pengelolaan  sampah  untuk mendegradasi xilan menjadi produk daur ulang, industri  makanan,  industri  kertas  dan  pulp sehingga  mengurangi  pemakaian  bahan  kimia yang  berpengaruh  buruk  bagi  lingkungan. Oligosakarida  yang  dihasilkan  dari  aktivitas xilanase  bahkan  dapat  berperan  sebagai makanan  tambahan  dan  pemanis  makanan (Goswami  dan  Pathak, 2013; Motta et  al.
2013). Xilanase juga berperan dalam produksi pakan broiler, suplemen pada pakan ayam serta proses deinking (Adam, 2000). Pada  industri  pulp  dan  kertas,  xilanase digunakan sebagai pengganti klorin, yang dapat menyebabkan pencemaran lingkungan. Peranan xilanase pada industri pulp dan kertas berkaitan dengan  hidrolisis  xilan  sehingga  ikatan  antara lignin  dan  karbohidrat  terputus  tanpa  merusak selulosa.  Reaksi  ini  akan    membuka  struktur pulp dan menghasilkan  dihasilkan kertas yang lebih cerah  serta berkualitas tinggi  (Motta et
al. 2013).  Penggunaan  xilanase  dalam  proses pra  pemutihan  kertas  pada  pulp  selulosa merupakan alternatif pengurangan penggunaan klorin  proses  pemutihan  kertas.  Sejumlah kajian pengaruh xilanase dari Trichoderma sp. pada  pemutihan  kertas  ternyata  mengurangi penggunaan  klorin  hingga  mencapai  20-30% (Viikari et.  al. ,  1994).  Klorin  akan  bereaksi dengan  senyawa  organik  dalam  kayu membentuk  senyawa  toksik  seperti  dioksin. Dioksin  ditemukan  dalam  proses  pembuatan kertas,  air  limbah  dan  produk  kertas  (Rini, 2002). Xilanase  dapat  dihasilkan  oleh  bakteri, alga, khamir, kapang, protozoa, gastropoda dan anthropoda.  Sebagai  mikrob  penghasil xilanase,  kapang  memiliki  tingkat  hidrolisis xilan yang lebih tinggi dari khamir dan bakteri. Kapang  berfilamen  mempunyai  kemampuan hidrolitik  pada  dinding  sel  tanaman,  karena mampu  mensekrsikan  enzim  lebih  tinggi  pada media kulturnya.
Faktor  utama  untuk  efisiensi  produksi enzim  adalah  komposisi  media  dan  pemilihan substrat  yang  mampu  menginduksi  mikroba untuk  menginduksi  dan  mensekresikan  enzim. (Goswani  dan  Pathak,  2013).Adanya  substrat tertentu  dalam  media  produksi  akan  memacu

## Limbah Berlignoselulosa Sebagai Media …                              (Utarti, dkk)
mikrob  untuk  mensekresi  metabolit  selnya, sehingga  keberadaan  xilan  dalam  media produksi  akan  memacu  mikrob  untuk menghasilkan  xilanase  ekstraseluler.  Xilan merupakan  komponen  utama  hemiselulosa pada  dinding  sel  tanaman  dengan  kadar    25- 30% berat kering tanaman (Perez et al. , 2002) yang  terikat  secara  kovalen  dan  nonkovalen pada  selulosa,  pectin,  lignin  dan  polisakarida lainnya  untuk  membentuk  dinding  sel. β-1.4 xilan  merupakan  polisakarida  heterogen  yang banyak  ditemukan  sebagai  hasil  samping  dari tanaman  pertanian  seperti,  jerami  padi,  dedak padi,  dedak  gandum,  tongkol  jagung,  tangkai jagung dan ampas tebu.
Limbah  berlignoselulosa  yang  tinggi potensinya  di  Indonesia  antara  lain  jerami, ampas  tebu,  ampas  tapioka,  bonggol  jagung, kulit jagung dan dedak gandum seringkali tidak tertangani  sehingga  menyebabkan  pencemaran lingkungan.  Pada  umumnya  limbah  tidak memiliki  nilai  ekonomi,  namun  jika  ditelaah limbah  lignoselulolitik  tersebut  merupakan bahan  organik sehingga  dengan  penanganan yang  benar  akan  lebih  bermanfaat,  misalnya sebagai media produksi xilanase.
Penelitian ini bertujuan untuk mendapatkan kapang  yang  mempunyai  aktivitas  xilanolitik terbaik, mendapatkan jenis media produksi dan konsentrasi  optimal  yang  paling  sesuai  untuk produksi  xilanase  dan  mengidentifikasi  satu kapang  yang  mempunyai  aktivitas  xilanolitik terbaik. METODE Penapisan Kapang Xilanolitik Secara Semikuantitatif.
Sampel  kapang  berasal  dari  jerami  padi  sawah pantai  Watu  Ulo  Jember. Isolasi  kapang  dilakukan pada  media  PDA  yang  sebelumnya  ditambahkan streptomisin  0,01%  untuk  mencegah  pertumbuhan bakter.  Isolat  murni  yang  didapatkan  selanjutnya diremajakan pada  media Potato  Dextrosa  Agar (PDA)  miring  sebelum  digunakan  untuk  perlakuan. Analisis  aktivitas  secara  semi  kuantitatif  dilakukan pada  media Oat  Spelt  Xylan  Agar dalam  basal mineral  Paul  Mayerhoff      pada  pH  sesuai  habitat kapang, yang dibuat dengan dua lapis ( two layer ). Penentuan indeks aktivitas xilanase secara semi kuantitatif  dilakukan  dengan  metode congo  red . Congo red akan berikatan dengan polisakarida yang mengandung  ikatan
β-(1-4)-D-Glukopriranosil
(Theather  dan  Wood,  1981).  Xilan  yang  sudah terhidrolisis  akan  terlihat  jernih  pada  pewarnaan congo red (terbentuk zona bening) sedangkan  yang belum  terhidrolisis berwarna  ungu.  Indeks  aktivitas xilanase  dihitung  berdasarkan  perbandingan diameter zona bening dan diameter koloni.
Seleksi  Kapang  Xilanolitik  Secara  Kuantitatif . Pembuatan  inokulum  diawali  dengan  pengukuran kepadatan spora. Lima isolat kapang diinokulasikan secara  merata  pada  media  PDA  miring  dan diinkubasi  pada  suhu  30ºC.  Pengukuran  kepadatan spora dilakukan dengan hemasitometer berdasarkan cara Hadioetomo (1993) yang dilakukan setiap hari berturut-turut  sampai  hari  ketujuh.  Spora  yang digunakan sebagai sumber inokulum adalah sebesar 10 8 . Seleksi  kapang  xilanolitik  secara  kuantitatif dilakukan  dengan  menginokulasikan  kelima  isolat dalam  media  produksi  jerami  padi,  dedak  gandum dan  ampas  tebu  pada  konsentrasi  1,  2  dan  3%. Sebanyak    2.5  ml  inokulum  ditumbuhkan  masing- masing  pada  media  produksi  jerami  padi,  dedak gandum  dan  ampas  tebu,  dalam  basal  mineral modifikasi  Mandel  pada  pH  sesuai  pH  habitat  asal isolat  dan  diinkubasi  pada  inkubator  bergoyang  90 U/min pada suhu 30°C selama 96 jam.
Ekstraksi xilanase dilakukan setelah inkubasi 96 jam, dengan sentrifugasi 10.000 rpm pada suhu 4°C selama 10 menit. Substrat yang digunakan untuk uji aktivitas xilanase adalah Birchwood xylan (Mandels et  al., 1976),  selanjutnya  produksi  gula  (gula reduksi) dideteksi dengan metode DNS berdasarkan Miller  (1959). Pengukuran  aktivitas  xilanase dilakukan  dengan  menggunakan Birchwood  xylan 1%  dalam  pH  habitat  asal  isolat  pada  suhu  30ºC selama  60  menit.  Pembacaan  absorbansinya dilakukan  dengan  spektrofotometer  pada  panjang gelombang  540  nm.  Satu  unit  aktivitas  xilanase merupakan  banyaknya  xilanase  yang  dapat memproduksi  1 μmol  xilosa  dalam  1  menit pada kondisi  uji  tertentu.  Penentuan  aktivitas  xilanase berdasarkan kurva standar xilosa. Identifikasi Kapang Xilanolitik. Satu isolat kapang dengan aktivitas xilanase terbaik diidentifikasi  baik  secara  makroskopis  maupun mikroskopis  untuk identifikasi  primer.  Identifikasi makroskopis  meliputi  diameter  koloni,  warna pigmentasi, warna koloni, ada tidaknya eksudat dan warnanya,  garis  radial,  ada  tidaknya  zonasi,  ada tidaknya  bau yang  khas.  Pengamatan  mikroskopis meliputi  bentuk  dan  ukuran  seluruh  organ. Identifikasi  dilakukan  berdasarkan  Samson  dan Hoekstra  (1995)  dalam  bukunya Introduction  to Food-Borne Fungi serta Klich dan Pitt (1988) dalam A  Laboratory  Guide  To  Common  Aspergillus Species  And  Their  Telemorphs. Medium  yang digunakan  untuk  identifikasi  kapang  adalah  CYA ( Czapek Yeast Extract Agar ),  Sukrosa, MEA ( Malt Extract Agar ), dan Czapek konsentrat.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Seleksi  Kapang  Xilanolitik  secara  Semi Kuantitatif. Sebanyak  66    kapang  telah  berhasil  diisolasi dari 5 lokasi tanah sawah pasca tanam padi di pantai  Watu  Ulo  Jember.  Selanjutnya dilakukan seleksi aktivitas xilanolitiknya secara
semi  kuantitatif.  Seleksi  kapang  secara semikuantitatif dapat dilihat dengan mengamati indeks  aktivitas  xilanase,  yaitu  perbandingan antara  diameter  zona  bening  dengan  metode ‘congo red’. Beguin (1983) menyatakan bahwa congo  red berikatan  kuat  dengan  polisakarida yang  mengandung  ikatan β(1-4)  D- glukopiranosil.  Hidrolisis  xilan  oleh  kapang xilanolitik menyebabkan tidak terjadi pengikatan  oleh congo  red pada  proses pewarnaannya, sehingga menyebabkan penampakan  zona  bening. Indeks  aktivitas selulase  ditentukan  berdasarkan  perbandingan diameter zona bening terhadap diameter koloni.
Hasil seleksi  secara  semi  kuantitatif terhadap  66  isolat  kapang  yang  pada menunjukkan  bahwa  terdapat  62  isolat  yang mempunyai  aktivitas  xilanolitik  (Tabel  1). Kemampuan  kapang  untuk  bersifat  xilanolitik dipengaruhi oleh kondisi lingkungan pertumbuhannya.  Kapang yang  diisolasi  dari jerami  dengan  kandungan  hemiselulosa  cukup tinggi  (26%)  dapat menstimulasi terbentuknya xilanase, yaitu sebagai substrat atau induser.
Tabel  1.  Hasil  Pengukuran  Indeks  Aktivitas Xilanolitik 62 Kapang Nama Isolat Diamete r koloni Diameter zona bening Indeks xilanase ESW A-1 0.78 2.50 3.20 ESW A-2 2.07 3.60 1.74 ESW A-3 1.76 2.97 1.69 ESW A-4 2.80 3.60 1.30 ESW A-5 0.70 2.20 3.14 ESW A-7 1.10 1.70 1.55 ESW A-8 1.20 2.50 2.06 ESW B-1 3.50 3.80 1.09 ESW B-2 5.00 5.40 1.08 ESW B-3 1.23 2.33 1.89 ESW B-5 1.90 2.20 1.16 ESW B-6 1.45 2.50 1.72 ESW B-7 2.00 2.50 1.25 ESW B-8 1.30 2.10 1.62 ESW B-9 1.38 2.00 1.45 ESW B-10 1.10 1.70 1.55 ESW B-11 1.07 1.74 1.62 ESW B-14 0.85 1.50 1.76 ESW B-15 1.90 2.30 1.22 ESW C-2 1.70 2.80 1.65 ESW C-3 1.60 2.65 1.66 ESW C-4 0.50 1.20 2.40 ESW C-5 9.60 10.00 1.04 ESW C-6 2.10 3.30 1.57 ESW C-7 2.80 3.30 1.18 ESW C-8 1.18 3.10 2.64 ESW C-9 2.60 3.07 1.18 ESW C-10 4.80 5.40 1.13 ESW C-11 2.10 3.60 1.72
ESW C-12 2.60 3.20 1.23 ESW C-13 3.60 2.40 1.50 ESW C-14 3.45 3.75 1.09 ESW C-15 0.55 0.90 1.64 ESW C-16 0.78 2.53 3.26 ESW C-17 2.10 2.40 1.14 ESW C-18 0.98 2.80 2.88 ESW C-20 1.15 1.80 1.57 ESW C-22 0.30 0.40 1.33 ESW C-23 2.00 2.40 1.20 ESW C-24 0.97 2.63 2.72 ESW C-25 4.20 5.00 1.19 ESW D-1 1.60 2.80 1.75 ESW D-2 1.95 3.30 1.69 ESW D-3 2.00 2.20 1.10 ESW D-4 1.00 3.00 3.00 ESW D-5 1.90 2.20 1.16 ESW D-6 1.10 1.30 1.18 ESW D-7 1.10 2.35 2.13 ESW D-8 1.20 2.60 2.16 ESW D-9 1.23 2.85 2.31 ESW D-10 0.60 0.75 1.25 ESW D-11 1.00 1.20 1.20 ESW D-12 6.00 6.20 1.03 ESW D-13 2.50 3.10 1.24 ESW D-14 1.45 2.90 2.00 ESW D-15 0.70 2.25 3.21 ESW E-1 2.45 2.97 1.22 ESW E-3 0.45 0.65 1.44 ESW E-4 2.47 3.43 1.39 ESW E-5 2.45 2.65 1.08 ESW E-6 2.35 3.35 1.43 ESW E-7 3.28 3.50 1.07 Berdasarkan  hasil  pengukuran  indeks aktivitas  xilanase  tersebut  juga  didapatkan  5 isolat  kapang  yang  mempunyai  aktivitas xilanolitik  lebih  baik          daripada  isolat  yang lain.  Isolat-isolat  tersebut  adalah  ESW-A1, ESW A-5, ESW C16, ESW-D4 dan ESW-D15 dengan  indeks  aktivitas  xilanase  masing- masing  3.20  ;    3.15;    3.26;    3.0    dan  3.21. Selanjutnya dilakukan seleksi secara kuantitatif terhadap kelima isolat tersebut.
Gambar  1.  Aktivitas  xilanolitik  kapang  pada media Oat Spelt Xylan agar yang diuji dengan Congo Red Seleksi Kapang Xilanolitik secara Kuantitatif. Seleksi  secara  kuantitatif  diawali  dengan
penghitungan  kepadatan  spora.  Pertumbuhan kapang  dapat  dilihat  dari  germinasi  kepadatan spora  (Fardiaz,  1992),  sehingga  untuk mengetahui pola  pertumbuhan  kapang  dapat dilakukan  dengan  penghitungan  kepadatan spora (Suriawiria, 1999). Gambar 2. Hubungan antara jumlah spora lima isolat  terpilih  (sel/ml)  dengan waktu perhitungan spora (hari) Jumlah  spora  yang  digunakan  sebagai sumber  inokulum  untuk  produksi  xilanase adalah  10 8 .  Hasil  penelitian  menunjukkan bahwa sebagai sumber inokulum, kelima isolat diambil dari pertumbuhan pada waktu inkubasi 2  hari.  Hal  ini  dilakukan  karena  pada  waktu inkubasi dua hari jumlah spora dari isolat-isolat EWS-A1,  ESW-A2,  ESW-C16,  ESW-D4  dan ESW-D15 masing-masing sebesar 7.67x10 8 +2.3x10 8 , 2.11x10 9 +5.08x10 8 ,
2.25x10 8 +6.60x10 7 ,  2.06x10 9 +4.88x10 8 dan
8.06x10 8 +3.56x10 8 sel/ml. Produksi xilanase Aktivitas  xilanase  terbaik  kelima  isolat  pada umumnya terdapat pada media produksi jerami padi.  Hal  ini  kemungkinan  terjadi  karena isolat-isolat  tersebut  berasal  dari  jerami  pasca tanam  padi.  Jika  suatu  mikrob  ditumbuhkan pada  suatu  media  yang  sama  dengan  habitat asalnya,  maka  mikrob  tersebut  tidak membutuhkan waktu  lama  untuk  beradaptasi. Mikrob  akan  lebih  cepat  mencapai  fase  aktif tumbuh  sehingga  akan  mengaktifkan  sintesis xilanase.  Xilanase  merupakan  enzim  yang bersifat indusible, sehingga  keberadaan  xilan dalam  medium  akan menstimulasi sintesis xilanase. . Xilan  sebagai  polimer  berukuran besar  dan  tidak  dapat  melakukan  penetrasi  ke dinding sel tanaman. Induksi enzim distimulasi oleh  fragmen  molekul  kecil  seperti  xilobiosa, xilotriosa,  xilooligosakarida  dari  xilosa  dan glukosa  yang  diproduksi  oleh  sel,  dalam
jumlah  kecil  secara  konstitutif    (Walia et  al. 2017). Xilanase  digunakan  oleh  mikrob  untuk merombak  xilan  menjagi  gula  yang  lebih sederhana sehingga  dapat  digunakan  untuk pertumbuhan. Hasil  uji  aktivitas  xilanase  (Gambar 3) menunjukkan  bahwa  isolat ESW-D4 mempunyai  nilai  aktivitas  xilanase  tertinggi (2.66  U/ml) pada  media  jerami  padi  dengan konsentrasi  3%  (D4J3),  yang  lebih  baik dibandingkan empat isolat lainnya.
Gambar 3.  Aktivitas  xilanase  lima  isolat terpilih  yang  diproduksi  pada media jerami padi
Keterangan : (a) A1J1; (b) A1J2; (c) A1J3; (d) A5J1; (e) A5J2; (f) A5J3; (g) C16J1;   (h) C16J2; (i) C16J3; (j) D4J1; (k) D4J2; (l) D4J3;
(m) D15J1; (n) D15J2; (o) D15J3 Hasil uji aktivitas xilanase yang diproduksi pada  media  dedak  gandum  (Gambar 4) juga menunjukkan  bahwa  isolat    ESW-D4 mempunyai  nilai  aktivitas  xilanase  tertinggi (0.61 U/ml) yaitu pada konsentrasi 1% (D4P1) yang lebih baik daripada empat isolat lainnya .
Gambar 4.  Aktivitas  xilanase  lima  isolat terpilih  yang  diproduksi  pada media dedak gandum
Keterangan : (a) A1P1;(b) A1P2; (c) A1P3; (d) A5P1; (e) A5P2; (f) A5P3; (g) C16P1; (h) C16P2;  (i)  C16P3;  (j)  D4P1;  (k)  D4P2;  (l) D4P3;(m) D15P1;(n) D15P2; (o) D15P3
0 0.5 1 1.5 2 2.5 3 a b c d e f g h i j k l m n o Perlakuan A kt iv ita s xi la na se (U /m l) 0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 a b c d e f g h i j k l m n o Perlakuan A kt iv it as x ila n as e (U /m l) -10 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 0 2 4 6 8 lama inkubasi (hari) ju m la h sp or a (s el /m l x 1 0 8 ) ESW A-1 ESW A-5 ESW C-16 ESW D-4 ESW D-15
Hasil uji aktivitas xilanase yang diproduksi pada  media  ampas  tebu  (Gambar 5) menunjukkan  bahwa  isolat    isolat  ESW-A1 mempunyai  nilai  aktivitas  xilanase  tertinggi (0.126  U/ml) yaitu  pada  konsentrasi    3% (A1T3). yang lebih baik daripada empat isolat lainnya .
Gambar 5.  Aktivitas  xilanase  lima  isolat terpilih  yang  diproduksi  pada media ampas tebu Keterangan  :  (a)  A1P1;  (b)  A1P2;  (c) A1P3;  (d)  A5P1;  (e)  A5P2;  (f)  A5P3;  (g) C16P1;  (h)  C16P2;(i)  C16P3;(j)  D4P1;(k) D4P2;  (l)D4P3;(m)D15P1;(n)  D15P2;  (o) D15P3 Hasil  analisis  terhadap  produksi  xilanase pada  media  jerami  padi,  dedak  gandum dan ampas tebu menunjukkan bahwa isolat kapang yang  dapat  memproduksi  xilanase  dengan aktivitas  lebih  tinggi  adalah  ESW-D4,  yaitu sebesar  2.66  U/ml.  Media  yang  paling  baik untuk  produksi  xilanase  bagi  isolat  ESW-D4 adalah jerami padi dengan konsentrasi 3%.

## Identifikasi Kapang Selulolitik
Hasil identifikasi primer isolat ESW-A1, ESW- A5, ESW-D4 dan ESW-D15 merupakan genus
Aspergillus ,  sedangkan  isolat  ESW-C16 merupakan Basidiomycetes Selanjutnya berdasarkan kunci Identifikasi genus Aspergillus (Klich  dan  Pitt,  1988),  hasil pengamatan  makroskopis  dan  mikroskopis (Tabel 2)  menunjukkan  bahwa  ESW-D4 merupakan Aspergillus foetidus .
Gambar  6.  Morfologi  permukaan  atas  isolat ESW-D4  pada  media  MEA,
CY20S dan CYA
Gambar 7. Morfologi permukaan bawah isolat ESW-D4  pada  media  MEA,
CY20S dan CYA Gambar 8. Slide Culture isolat ESW-D4
0 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1 0.12 0.14 a b c d e f g h i j k l m n o Perlakuan A kt iv it as x il an as e (U /m l)

## Limbah Berlignoselulosa Sebagai Media …                              (Utarti, dkk)
Tabel 2. Karakteristik makroskopis dan mikroskopis  isolat ESW-D4
No Me dia Makroskopis Mikroskopis Diam eter (mm) Warna Konidia Solubl e pigme n
Reve rse Miseli um Karakte r Bentu k Panjan g (  m) Leb ar (  m ) Warna 1 CY A 25 o C
38 – 41 Cokelat Kunin g- kehija uan Krem Putih Stipe - > 200 6.25 - 7,5 Tidak berwar na Vesikel Sperik al 15 - - Metulae - 5 2,5 - Phialide - 7.5 2,5 - Konidia Bulat 2.5 2,5 Kehija uan 2 CY A 37° C 58 – 71 Cokelat - Krem Putih Stipe - > 200 6.25 - 7,5 - Vesikel Sperik al 15 - - Metulae - 5 2,5 - Phialide - 7.5 2,5 - Konidia Bulat 2.5 2,5 Kehija uan 3 ME A 25 o C 35 – 36 Cokelat Kunin g kecokl atan Kuni ng cokla t Putih Stipe - > 200 6.25 - 7,5 - Vesikel Sperik al 15 - - Metulae - 5 2,5 - Phialide - 7.5 2,5 - Konidia Bulat 2.5 2,5 Kehija uan 4 CY 20S 25 o C 64 – 68
Cokelat - - Putih Stipe - > 200 6.25 - 7,5 -
Vesikel Sperik al 15 - - Metulae - 5 2,5 - Phialide - 7.5 2,5 - Konidia Bulat 2.5 2,5 Kehija uan Keterangan Aspergilla: Radiate dan Biseriate

## KESIMPULAN
Berdasarkan  hasil  seleksi  secara  semi kuantitatif  terhadap  66  isolat  kapang  yang berhasil diisolasi dari jerami pasca tanam padi sawah  pantai  Watu  Ulo  Jember,  terdapat  62 isolat kapang yang bersifat xilanolitik, dimana 5  isolat  kapang  mempunyai  indeks  aktivitas xilanase terbaik, yaitu isolat ESW-A1, ESW A-
5, ESW C16, ESW-D4  dan ESW-D15 dengan indeks aktivitas xilanase masing-masing 3.20 ; 3.15;  3.26;  3.0  dan 3.21. Selanjutnya seleksi secara  kuantitatif  terhadap  5  isolat  tersebut menunjukkan  bahwa  kapang  isolat  ESW-D4 mempunyai  aktivitas  xilanase  lebih  baik  (2.66 U/ml)  dibandingkan  4  isolat  lainnya.  Media yang  paling  sesuai  untuk  produksi  xilanase isolat  ESW-D4  adalah  jerami  padi  dengan
konsentrasi 3%. Identifikasi terhadap ESW-D4 menunjukkan  bahwa  spesies  kapang  tersebut diduga adalah Aspergillus foetidus .

## DAFTAR PUSTAKA
Adams,  C.  2000. Feed  Mix  Special (Online). http://www.siauliole.tripod.com/art-012- 07.html. diakses pada 9 September 2004. Beguin, P. 1983. Detection of cellulase activity in  polyacrylamide  gels  using  congo  red- stained agar replicas. Analytical Biochemestry. 131: 333 – 336. Goswami,  G.K and  Pathak,  R.R.  2013. Microbial xylanases and their biomedhical applications:  a  review. Intl.  Journal  of
Basic & Clinical Pharm . 2: 237-246. Hadioetomo,  R.S.  1993.
Mikrobiologi  Dasar
Dalam Praktek . Jakarta : Gramedia Pustaka Utama Klich,  M.A.  and  Pitt  J.I.  1988. A  Laboratory Guide To Common Aspergillus Species And Their Telemorphs. Commonwealth Scientific and Industrial Research Organization.  North  Ryde,  New  South Wales. Mandel, M.   Adreotti  R., and Roche  C. 1976. Measurement  of  saccharifying  cellulase. Biotechnol Bioeng. Symp . 6:21-33. McCleary,  B.V  and  McGeough  P.  2015.  A comparison  of  polysaccharide  substrates and  reducing  sugar  methods  for  the measurements  of endo -1,4- β -xylanase.
Appl. Biochem. Biotechnol. 2015:1-12.
Motta  F.L,  Andrade,  C.C.P  and  Santana  H.A. 2013. A Review of xylanase production by the  fermentation  of  xylan:  classification, characterization and applications. http://dx.doi.org.10.5772/53544 Perez,  J.,  Munoz-Dorado  J.,  De  La  Rubia  T., and Martinez J. 2002. Biodegradation and biological  treatments  of  cellulose, hemicelullose  and  lignin.  Int.  Microbiol. 5:53-63.
Rini,  D.S.  2002.  Minimasi  limbah  dalam industri  pulp  and  paper. Lembaga  Kajian Ekologi dan Konservasi lahan Basah Samson,  R.A  dan  Hoekstra  E.S. 1995.
Introduction to Food-Borne Fungi . Ponsen and Looyen. Wageningen, Netherlands. Theather,  R.M.  and  Wood  P.J.  1981.  Use congo  red-polysaccharide  interactions  in enumeration  and  characterization  of cellulolytic  bacteria  from the  bovine rumen. Appl.  Environ.  Microbiol .  43:777- 780. Viikari,  L.,  Kantelinen  A.,  Sundquist  J.  and Linko M. Xylanase in bleaching: from an idea to the industry. FEMS Microbiol. Rev. 13:335-350. Walia,  A.,  Guleria,  S.,Metha  P.,  Chauhan  A. and  Parkash  J. 2017.  Microbial  xylanases and their industrial application in pulp and paper  biobleaching:  a  review. Biotech. 7:
1-12.

## Limbah Berlignoselulosa Sebagai Media …                              (Utarti, dkk)