## PENGARUH PERBEDAAN WARNA CAHAYA TERHADAP PERTUMBUHAN KULTUR
Spirulina sp.
THE EFFECT OF LIGHT COLOUR TO GROWTH CULTURE OF Spirullina sp .
Rahayu Kusdarwati, Reista Herwiyanti Bustaman dan Muhammad Arief
Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga Kampus C Mulyorejo - Surabaya, 60115 Telp. 031-5911451

## Abstract
Spirulina sp. is a microalgae that has spread widely, and can live in brackish waters, marine and freshwater.  Spirulina  is  often  the  dominant  species  and  can  cause  bloom  (Ciferri,  1983  in  Hu,  2004). Spirulina sp.  have  the  ability  to  photosynthesize  and  convert  light  energy  into  chemical  energy  in  the form of carbohydrates. The best environmental conditions for growth are in areas rich in sunlight, rainfall is,  rich  in  carbon  dioxide  and  temperature  in  the  range  of  25-35  °  C  and  pH  ranging  from  7.2  to  9.5. Spirulina sp. able to survive at salinity between 20-70 ppt, pH between 9 - 11 (Ciferri, 1983 in Richmond, 1986). This study  aimed to know To know the color of  light affect the growth of Spirulina sp. and the light color is best in promoting the growth of Spirulina sp.   Effect of different colors of light can affect the growth of Spirulina sp. Methods The study is an experiment with the experimental design used was CRD (Completely Randomized Design) with  five treatments and three replications with different colors of  light  that  is  A  (white),  B  (green),  C  (blue),  D  (red),  E  (yellow).  The  color  of  light  have  different wavelengths, absorption by the different pigments and different penetration capabilities.
Keywords : Spirulina sp., light colour, growth

## Pendahuluan
Dalam  bidang  akuakultur  mikroalga pada  umumnya  telah  dikenal  dan  digunakan sebagai  pakan  alami  pada  kegiatan  budidaya seperti  dalam  kegiatan  budidaya  ikan  dan udang.  Perkembangan  produk  hasil  budidaya mikroalga  tidak  hanya  bisa  digunakan  sebagai pakan  alami,  namun  telah  banyak  digunakan sebagai bahan pangan untuk manusia. Beberapa mikroalga  digunakan  sebagai  bahan  baku  obat- obatan  untuk  kesehatan  manusia,  bahkan  telah diketahui memiliki kemampuan dalam memanfaatkan  bahan-bahan  anorganik  yang terdapat  dalam  pengolahan  limbah  perairan. Perkembangan inilah yang kemudian menjadikan  budidaya  mikroalga  menjadi  salah satu industri akuakultur yang potensial, sehingga  proses  budidayanya  perlu  terus dikembangkan (Pramudia, 2009).
Salah  satu  mikroalga  yang  telah banyak  dibudidayakan  adalah Spirulina sp. Spirulina sp. berasal dari golongan Cyanophyta atau alga hijau biru (Isnansetyo dan Kurniastuty,  1995). Spirulina sp. mempunyai kandungan  protein  60-71%  (dari  berat  kering), lemak  8%,  karbohidrat  16%,  vitamin  1,6%, chlorophyll-a  18%,  C-phycocyanin  17%,  β- carotene 17% dan 20-30% γ-linoleaic (dari total as.lemak). Spirulina sp.  memiliki  kandungan nutrisi yang baik seperti kandungan vitamin dan
mineral  sehingga  digunakan  sebagai  bahan makanan  kesehatan.  Beberapa  fungsi  dari spirulina diantaranya dapat meningkatkan aktivitas antivirus,  mengurangi  kadar kolesterol dalam  tubuh  manusia,  menjaga  sistem  imunitas tubuh (Anonim,2008).
Cahaya  merupakan  salah  satu  faktor lingkungan  yang  sangat  berpengaruh  dalam budidaya  mikroalga,  karena  cahaya  merupakan bagian yang sangat penting dalam  pigmen  fotosintetik  yang  menyediakan energi  bagi  kehidupan  mikroalga.  Kekurangan cahaya dapat mengakibatkan proses fotosintesis tidak  berlangsung  normal  sehingga  akan mempengaruhi  pertumbuhan Spirulina sp. Penelitian  mengenai  pengaruh  warna  cahaya terhadap  pertumbuhan  kultur  murni Spirulina sp. dilatar belakangi uraian di atas.
Ekawati  (2005)  mengatakan  bahwa cahaya  merupakan  sumber  energi  pada  proses fotosintesis,  oleh  karena  itu  intensitas,  kualitas dan  periode  penyinaran  perlu  diperhatikan. Intensitas  cahaya  berperan  sangat  penting, kebutuhannya sangat besar tergantung kedalaman  budidaya  dan  kepadatan  budidaya alga.  Cahaya  dapat  berasal  dari  alam  atau  dari lampu (Govindjee and Braun,1974),

## Materi dan Metode
Penelitian  ini  telah  dilaksanakan  pada
bulan Januari 2011 di Laboratorium Pendidikan Perikanan  Fakultas  Perikanan  dan  Kelautan
Universitas Airlangga Surabaya. Materi penelitian yang digunakan terdiri dari bahan dan alat penelitian. Bahan penelitian yang digunakan  adalah  inokulan Spirulina sp.,  ZA sebanyak  4  gram,  TSP  sebanyak  6  gram,  urea sebanyak  16  gram,  air  tawar  dan  air  laut, aquades,  alkohol  70%,  khlorin  dan  Na Thiosulfat.
Peralatan  yang digunakan adalah  botol kultur  bervolume  3  liter  dengan  jumlah  15 botol,  gelas  ukur,  plastik  hitam  sebagai  sekat, rak kultur, lampu TL 32 Watt berjumlah 5 buah, aerator, selang aerasi, pipet tetes, pipet volume, corong air, kertas saring, kasa, alumunium  foil, kapas,  tissue, haemocytometer, autoclave , handcounter , pH paper, lux meter,
refraktometer, termometer dan mikroskop. Data  hasil  penelitian  disajikan  secara
deskriptif yaitu penyajian data dengan memaparkan  data  dalam  bentuk  penjelasan, angka  dan  gambar  yang  dideskriptifkan  dan juga  dapat  secara  grafis  yaitu  dalam  bentuk ataupun  grafik  guna  mendapatkan  gambaran tentang  data  –  data  penelitian  sehingga  lebih mudah  di  baca  dan  di  pahami  (Dergibson  dan Sugianto,  2002).  Berikut  ini  adalah  perlakuan warna cahaya dan lama penyinaran.
1. 12  Jam  Terang  :  12  Jam  Gelap  +  cahaya putih.
2. 12  Jam  Terang:12  Jam  Gelap  +  cahaya merah.
3. 12  Jam  Terang  :  12  Jam  Gelap  +  cahaya hijau.
4. 12  Jam  Terang  :  12  Jam  Gelap  +  cahaya kuning.
5. 12 Jam Terang : 12 Jam Gelap + cahaya biru.
Penentuan perbandingan lama
pencahayaan terang dan gelap berdasarkan hasil penelitian  Santosa  (2010)  yang  menyatakan bahwa  pertumbuhan  optimal Spirulina sp.
diperoleh pada perlakuan 12T:12G (Terang:Gelap). Penentuan warna cahaya
berdasarkan sifat Spirulina sp. yang  merupakan golongan blue  green  algae atau  alga  hijau-biru (Santosa, 2010).
Kultur  skala  laboratorium  merupakan kultur  fitoplankton  murni  atau  monospesies, sehingga diperlukan kesterilan media kultur dan peralatan.  Air  laut  yang  akan  digunakan  untuk kultur disterilisasi menggunakan larutan khlorin. Air laut terlebih dahulu disaring dengan kapas  yang  diletakkan  dalam  corong  air, kemudian  disterilkan  dengan  khlorin  60  ppm selama  24  jam  dan  diberi  aerasi.  Kadar  khlorin dapat  dinetralisir  dengan  ditambahkan  Na Thiosulfat  20  ppm.  Air  laut  yang  sudah  steril
disimpan  dalam  wadah  yang  tidak  tembus cahaya dan tertutup rapat.
Peralatan  kultur  yang  akan  digunakan dicuci sampai bersih kemudian dibilas air tawar dan  dikeringkan.  Peralatan  yang  terbuat  dari kaca  tahan  panas  harus  ditutup  dengan  kapas dan kasa, kemudian dibungkus dengan aluminium  foil  dan  disterilisasi  menggunakan autoclave pada  suhu  121°C  selama  15  menit.
Peralatan  yang  tidak  tahan  panas  disterilkan dengan  larutan khlorin 150 ppm selama 24  jam kemudian dibilas dengan air tawar hingga bersih dan bau khlorin hilang.
Peralatan  yang  telah  disiapkan  dan dicuci,  dirangkai  sesuai  dengan  fungsi  dan keperluan.  Botol-botol  kultur  diletakkan  pada rak yang telah disiapkan. Penempatan perlakuan seperti  pada  Gambar  5.  Diperlukan  masing- masing  tiga  wadah  untuk  setiap  perlakuan warna  hijau,  biru,  merah,  kuning  serta  untuk warna  putih  dibutuhkan  tiga  wadah  sebagai kontrol.  Aerasi  dengan  menggunakan  aerator masing-masing  menggunakan  satu  batu  aerasi per wadah.
Menurut  Vijaya  and  Anand  (2009) Sumber  pencahayaan  digunakan  lampu  TL  32 watt dengan  intensitas cahaya 1800  -  1900  lux. Penggunaan lampu TL 32 watt dikarenakan jika menggunakan  lampu  TL  16  watt  kualitas klorofil  pada  spirulina  baik  tetapi  untuk phycocyanin dan allophycocyanin yang terdapat pada spirulina kualitasnya akan buruk sedangkan  dengan  penggunaan  lampu  TL  40 watt kualitas klorofil pada spirulina akan buruk karena terlalu tingginya  intensitas cahaya tetapi untuk  phycocyanin  dan  allophycocyanin  pada spirulina ini kualitasnya baik.  Perlakuan lampu TL  menggunakan  lampu  berwarna  hijau, kuning,  biru,  merah,  putih.  Kontrol  adalah lampu  TL  yang  menggunakan  lampu  warna putih.  Penataan  lampu  TL  dapat  dilihat  pada Gambar 6. Jarak antara sumber cahaya ke media kultur sama untuk semua perlakuan yaitu 30 cm. Selama  penelitian  lampu  dinyalakan  12  jam terang dan 12 jam gelap sampai dengan selesai yang dinyalakan pada pukul 06.00-18.00 WIB,  dan  dimatikan  pada  pukul  18.00-06.00 WIB (Santosa, 2010).
Media  kultur  yang  digunakan  dalam penelitian adalah air laut sebanyak 500 mL yang dimasukkan  dalam  toples  kaca.  Media  kultur diberi  aerasi  dan  siap  dimasukkan  bibit Spirulina sp. dengan kepadatan yang diinginkan. Lingkungan kultur dapat mempengaruhi  pertumbuhan Spirulina sp,  oleh karena  itu  dikondisikan  sama  setiap  perlakuan. Lingkungan kultur Spirulina sp. yang
diharapkan  dalam  penelitian  adalah  suhu  28  –
30 °C, salinitas 30 – 35 ppt, pH 8 – 9, intensitas cahaya 1800 - 1900 lux dan photoperiod 12 jam dalam  keadaan  terang  dan  12  jam  dalam keadaan  gelap  (Santosa,  2010;  Weng et  al ., 2008).
Kultur Spirulina sp.  dilakukan dengan pemberian  beberapa  nutrien  seperti  TSP, UREA,  ZA,  EDTA.  Pembuatan  larutan  nutrien yang diperlukan untuk kultur dapat menggunakan  rumus  (Satyantini  dan  Masithah,
2008) : Q = V x K P
Keterangan:
Q =  berat  bahan  kimia  yang  akan  dilarutkan
(mg,gr)
V =  volume pelarut (aquades) (ml, L)
P =  volume  penggunaan  dalam  media  kultur
(ml/L)
K =  konsentrasi  pupuk  yang  diketahui  (ppm, mg/L)
Spirulina sp.  murni  diperoleh  dari Balai  Besar  Budidaya  Air  Payau  Situbondo. Bibit Spirulina sp. dimasukkan ke dalam toples kaca yang telah diisi air laut dan pupuk dengan kepadatan  yang  diinginkan  10.000  unit/mL. (Suryati,  2002).  Volume  media  kultur  yang dikehendaki  500mL.  Perhitungan  jumlah  bibit Spirulina sp.  yang  diperlukan  untuk  kultur, dapat menggunakan rumus (Ekawati, 2005) :
N2 x V2
V1 =                  x 100%
N1
Keterangan:
- V1    = Volume  bibit  untuk  penebaran  awal (mL)
- N1    = Kepadatan  bibit/stok Spirulina sp. (unit/mL)
- V2    = Volume media kultur yang dikehendaki (L)
- N2    =  Kepadatan  bibit Spirulina sp.  yang dikehendaki
Pengamatan pertumbuhan Spirulina sp. dilakukan  setiap  hari  sampai  terjadi  penurunan kepadatan  jumlah  populasi  setelah  penebaran awal. Penghitungan dilakukan dengan
menggunakan haemocytometer dan untuk memudahkan penghitungan digunakan handcounter . Penghitungan menggunakan metode “Big Block” karena ukuran sel Spirulina sp. lebih dari 6 µm.  Cara penghitungan sebagai berikut  :  Sel  fitoplankton  dihitung  mulai  dari sisi  kiri  kotak  ke  arah  kanan  kotak  dan menghitung sel yang berada di dalam garis atau yang mendekati garis batas bagian dalam kotak, kemudian  penghitungan  pada  blok  A,  B,  C,  D pada  bidang  penghitungan  bagian  atas  dan bagian bawah pada haemocytometer dijumlahkan dan kepadatan fitoplankton (sel/ml)  dihitung  dengan  menggunakan  rumus
“Big Block” :
Kep. fito. (sel/ml) =  nA + nB + nC + nD  x 104
4
(Satyantini dan Masithah, 2008)
Keterangan : Kep. fito. = kepadatan fitoplankton nA, nB, nC, nD   = jumlah sel fitoplankton pada blok A, B, C, D 4 = jumlah blok yang dihitung
Parameter  utama  dalam  penelitian  ini adalah  populasi Spirulina sp.  Perhitungan populasi Spirulina sp.  dilakukan  setiap  hari sampai  populasinya  menurun.  Parameter  utama digunakan  untuk  mencari  populasi  maksimum selama pemeliharaan.
Parameter pendukung dalam penelitian adalah suhu, pH, dan salinitas. Pengukuran suhu menggunakan  termometer,  pengukuran  pH menggunakan  pH  universal,  dan  pengukuran salinitas menggunakan refraktometer. Pengukuran  terhadap  suhu,  pH,  dan  salinitas dilakukan  setiap  hari  pada  pukul  09.00  wib. Parameter pendukung digunakan untuk melengkapi data dari parameter utama. Data  hasil  penelitian  disajikan  secara deskriptif yaitu penyajian data dengan memaparkan  data  dalam  bentuk  penjelasan, angka  dan  gambar  yang  dideskriptifkan  dan juga  dapat  secara  grafis  yaitu  dalam  bentuk ataupun  grafik  guna  mendapatkan  gambaran tentang  data  –  data  penelitian  sehingga  lebih mudah  dibaca  dan  dipahami  (Dergibson  dan
Sugiarto, 2002). Hasil penentuan zona dilakukan  secara  kuantitatif  yaitu  data  yang diperoleh  dari  pengukuran  diameter  zona hambat (mm) dari masing – masing perlakuan.

## Hasil dan Pembahasan
Hasil  pengamatan  penelitian  berupa populasi Spirulina sp. digunakan untuk mengetahui    pengaruh  pemberian  perbedaan warna  lampu  terbaik  dan  waktu  penyinaran  12 jam  terang  dan  12  jam  gelap  terhadap  populasi
Spirulina sp. Populasi perlakuan A (putih)
meningkat mulai hari ketiga sampai hari kelima dan  menurun  pada  hari  keenam,  tetapi  jumlah populasi  paling  tinggi  pada  hari  keempat.  Hari ketiga  sampai  hari  kelima  merupakan  populasi tertinggi  dari Spirulina sp.  yang diperoleh pada perlakuan C (Biru) dan terendah pada perlakuan E (Kuning).
Data populasi pada Tabel 1. dan grafik populasi  pada  Gambar  8.  tampak  bahwa  hari keempat  merupakan  hari  puncak  populasi Spirulina sp . pada  perlakuan  A  (Putih),  B (Hijau), D (Merah), dan E (Kuning), sedangkan pada perlakuan C (Biru) hari ketiga.
Dari perhitungan jumlah populasi yang terdapat  pada  tabel  1  terlihat  bahwa  pada  awal penebaran inokulan sampai 24 jam mulai terjadi peningkatan  jumlah sel. Populasi tertinggi pada fase  eksponensial  diperoleh  pada  perlakuan  A (Putih)  yaitu  9.83  x  104  sel/ml  dan  populasi terendah pada  fase eksponensial diperoleh pada perlakuan  D  (Merah)  yaitu  1.67  x  104  sel/ml. Fase  kematian  pada  perlakuan  A(Putih),  B (Hijau),  C  (Biru),  dan  E  (Kuning)  terjadi  pada hari ke 6, sedangkan pada perlakuan D (Merah) terjadi  pada  hari  ke  5.  Populasi  tertinggi  atau fase  eksponensial  diperoleh  pada  perlakuan  A (Putih) dan terendah diperoleh pada perlakuan E (Kuning). Pada hari keenam perlakuan tertinggi pada perlakuan B dan  perlakuan terendah pada perlakuan E (Kuning). Grafik populasi Spirulina sp . per  hari  selama  penelitian  dapat dilihat pada Gambar 2.
Pertumbuhan Spirulina sp.  selain dipengaruhi  oleh  ketersediaan  nutrien  juga
Gambar 1. Diagram alir penelitian
dipengaruhi  faktor  lingkungan.  Ketersediaan nutrisi  dapat  berasal  dari  air  laut  dan  nutrien yang  ditambahkan  didalam  media  kultur. Pengukuran  kualitas  air  dilakukan  setiap  hari selama  penelitian.  Hasil  pengukuran  rata-rata kualitas air selama penelitian dapat dilihat pada lampiran  2.  pengukuran  suhu  air  selama penelitian  yaitu  DO,  pH,  suhu  dan  salinitas. Suhu selama penelitian berkisar antara 28-30°C, salinitas  berkisar  antara  30  ppt,  pH  selama penelitian  berkisar  antara  7  hingga  8  dan  DO berkisar antara 4 hingga 6 ppm.
Pertumbuhan Spirulina sp.  dengan penambahan warna cahaya yang berbeda terdiri dari  4  fase  yaitu,  fase  adaptasi  (istirahat), eksponensial  dan  kematian.  Fase  adaptasi  pada semua  perlakuan  terjadi  pada  hari  ke  0  sampai hari  ke  2.  Fase  eksponensial  pada  perlakuan putih, hijau, merah dan kuning terjadi pada hari
ke  4,  sedangkan  pada  perlakuan  biru  terjadi pada  hari  ke  3.  Fase  kematian  pada  semua perlakuan  terjadi  pada  hari  ke  6.  Hasil menunjukkan bahwa penambahan warna cahaya merah,  biru,  hijau,  kuning  dalam  media  kultur menghasilkan  populasi Spirulina sp yang  tidak berbeda  nyata  pada  masing-masing  perlakuan. Warna putih memberikan pertumbuhan populasi yang  paling  baik  dibandingkan  dengan  cahaya warna merah, hijau, biru dan kuning, dikarenakan  cahaya  dan  nutrien  yang  didapat oleh kultur tersebut digunakan untuk pembentukan  klorofil  agar  efektifitas  dalam menangkap cahaya relatif lebih tinggi, sehingga untuk  pertumbuhannya  populasinya  terhambat. (Irwan, 2002).
Pada  awal  penebaran  inokulan  sampai 24  jam  mulai  terjadi  peningkatan  jumlah  sel. Isnansetyo  dan  Kurniastuty  (1995)  menyatakan
Tabel  1.  Jumlah  populasi Spirulina sp.  (unit/ml)  setelah  dilakukan  penyinaran  dengan  lampu  warna TL pada hari ke-1 sampai hari ke-6
Gambar 2. Grafik pertumbuhan populasi harian Spirulina sp. dengan penggunaan 5 warna cahaya dari hari pertama hingga hari keenam
bahwa  pada  fase  ini  ukuran  sel  meningkat, fitoplankton  menjadi  aktif  dan  terjadi  sintesis protein.  Organisme  mengalami  metabolisme, tetapi  belum  mengalami  pembelahan.  Fase eksponensial  ditandai  dengan  meningkatnya pembelahan sel  sehingga populasi Spirulina sp. akan  mengalami  puncak  pertumbuhan.  Pada hari  keempat  pada  perlakuan  A  merupakan puncak populasi atau fase eksponensial Spirulina sp  karena  warna  putih  paling berpengaruh daripada warna – warna yang lain, sedangkan  populasi  untuk  semua  perlakuan menurun pada hari keenam . Warna cahaya putih (kontrol) memiliki komponen  cahaya  yang  paling  lengkap  karena merupakan  gabungan  dari  beragam  sinar  dan intensitas yang paling tinggi, sehingga mengandung energi paling besar diantara warna cahaya  yang  diujikan  dan  panjang  gelombang yang  dihasilkan  pada  waktu  penelitian  sebesar 2500  lux  (Steenbergen,  1975).  Warna  cahaya hijau, biru, kuning dan  merah  membawa energi cahaya  serta  intensitas  yang  tidak  terlalu  jauh berbeda.  Panjang  gelombang  yang  dihasilkan oleh warna hijau berkisar antara 495 nm hingga 570 nm, warna biru sebesar 450 nm hingga 495 nm,  warna  kuning  sebesar  570  nm  hingga  590 nm sedangkan warna merah sebesar 620 hingga 750  nm,  sehingga  tidak  memberikan  pengaruh yang  nyata  terhadap  perbedaan  keragaman pertumbuhan  populasi Spirulina sp.  (Govindjee dan  Braun,  1974). Pada  ruang  kultur,  intensitas cahaya berkisar antara 500 lux hingga 5000 lux. Grahame  (1987)  menyatakan  bahwa  antara intensitas  cahaya  dengan  proses  fotosintesis memiliki  hubungan  yang  erat,  walaupun penambahan  intensitas  cahaya  tidak  selalu diikuti  dengan  peningkatan  proses  fotosintesis. Setiap warna cahaya memiliki panjang gelombang  yang  berbeda,  serta  memiliki kemampuan  penetrasi  dan  daya  serap  yang berbeda.
Perlakuan  warna  biru  mengalami penurunan  secara  drastis  bila  dibandingkan dengan  penurunan  jumlah  sel  pada  kontrol  dan semua perlakuan. Penurunan populasi disebabkan  karena  cahaya  warna  biru  memiliki
panjang  gelombang  cahaya  paling  rendah (Yaznil,  1997).  Saputro  (2008)  menyatakan semakin  kecil  panjang  gelombang  cahaya, semakin  kecil  daya  tembus  ke  dalam  perairan, sehingga  cahaya  biru  cukup  sulit  untuk diadaptasi. Warna merah memberikan
pertumbuhan  populasi  yang  kurang  baik,  bila dibandingkan  dengan  warna  cahaya  kuning, hijau, biru dan putih. Warna merah mempunyai panjang  gelombang  tertinggi  dibanding  dengan warna  lainnya  yaitu  sebesar  700nm,  sehingga frekuensi  cahaya  lampunya  paling  rendah diantara  cahaya  lampu  lainnya  (Merdiono, 2009).
Perlakuan  warna  kuning  mengalami penurunan  cukup  drastis.  Penurunan  setelah mencapai  jumlah  maksimal  disebabkan  karena media kultur telah mencapai batas daya dukung. Cahaya  yang  dipancarkan  oleh  warna  kuning kurang  diserap  baik  oleh Spirulina sp. Meningkatnya  jumlah  sel  pada  wadah  kultur, persaingan  untuk  memperoleh  makanan  juga meningkat.  Kondisi  ini  mengakibatkan  tidak terjadi  pertumbuhan,  waktu  untuk  mencapai puncak  populasi  lebih  cepat  dan  tingkat kepadatannya rendah, (Irwan, 2002).
Kualitas  air    adalah  salah  satu  faktor yang  mendukung  keberhasilan  kultur Spirulina sp . Parameter  kualitas  air  yang  mendukung pertumbuhan  populasi  diantaranya  salinitas, suhu  air,  DO  dan  pH.  Parameter  kualitas  air selama  penelitian  masih  berada  pada  batas toleransi.  Fitoplankton  umumnya  tumbuh  pada air laut dengan salinitas berkisar antara 25  – 35 ppt (Jemiati, 2002). Pengukuran salinitas selama penelitian berkisar antara 30 ppt, ini menunjukkan  bahwa salinitas  ini sesuai  dengan kehidupan Spirulina sp.,  hal  ini  terjadi sebaliknya  bila  salinitas  lingkungan  lebih rendah.
Suhu  selama  penelitian  berkisar  antara 28  -  30°  C.  Hal  ini  sesuai  dengan  Richmond (1986)  menyatakan  bahwa Spirulina sp. termasuk  ke  dalam  mikroalga  mesofilik,  yang dapat  tumbuh  optimum  pada  temperatur  antara 35 – 40 °C. Kultur Spirulina sp. di laboratorium
Tabel 2. Kisaran kualitas air media kultur Spirulina sp. dari hari ke-1 kultur sampai hari ke-6
Perlakuan
suhu  optimumnya  berkisar  antara  35  –  37  °C, sedangkan suhu minimumnya antara 18 – 20 °C dan  maksimum  40  °C.  Suhu  air  akan mempengaruhi  proses  pertukaran  zat,  kadar oksigen  dan  laju  reaksi  kimia.  Suhu  air dipengaruhi oleh intensitas cahaya yang berasal dari  lampu  dan  juga  radiasi  sinar  matahari. Suhu selama penelitian sesuai untuk pertumbuhan Spirulina sp. karena berada dalam kisaran  yang  normal.  Derajat  Keasaman  (pH) medium  pemeliharaan  berkisar  antara  7  -  8. Rafiqul et  al .,  (2005)  menyatakan  bahwa pertumbuhan  optimum S.  fusiformis tercapai pada pH 10.

## Kesimpulan
Penambahan  warna  cahaya  ke  dalam media  kultur  tidak  berpengaruh  terhadap pertumbuhan populasi Spirulina sp. Penambahan  warna  cahaya  selama  6  hari menggunakan warna putih menghasilkan populasi Spirulina sp.  tertinggi  sebesar  98.300 unit/ml  pada  hari  ke-4.  Pertumbuhan  populasi Spirulina sp.  yang  dikultur  pada  media  dengan penambahan  warna  cahaya  dapat  ditingkatkan dengan  menggunakan  warna  cahaya  putih. Namun  masih  perlu  dilakukan  penelitian  lebih lanjut  mengenai  kandungan  nutrisi Spirullina sp. yang  dikultur  dengan  penambahan  warna cahaya putih.

## Daftar Pustaka
Anonim.  2008. Spirulina Multivitamin  yang Terbaik.  http://www.Spirulina.com    20 September 2008.
Balai Budidaya Laut Lampung. 2002. Budidaya Fitoplankton  dan  Zooplankton.  Balai Budidaya  Laut  Lampung  Direktorat Jendral Perikanan Budidaya Departemen  Kelautan  dan  Perikanan. Lampung. hal. 3 – 77. Christiana,  R.,  2007.  Fotodegradasi  dan Aktivitas Antioksidan Klorofil a dan C- Fikosianin dari Serbuk Spirulina (Spirulina sp). FSM.UKSW.
Costa,  J.  A.,  V.  Colla,  L.  M.  and  Filho,  P.  D. 2003.  Spirulina  platensis  Growth  in Open  Raceway  Ponds  Using  Fresh Water  Supplemented  with  Carbon, Nitrogen, and Metal Ions. Laboratio de Engenharia  Bioquimica,  Departemento de  Quimica,  Fundacao  Universidade Federal do Rio Grande, RS, Brasil. pp.
1-5. Siregar 2004. Cohen  Z.  1997.  Mass  Culture  of Spirulina. Didalam Vonshak, A. (editor). Spirulina platensis ( Arthrospira ): Physiology, Cell-Biology and
Biotechnology.  Taylor  &  Francis  Ltd.,
Bristol, USA. Hlm. 175-204.
Dergibson,  S.  dan  Sugiarto.  2002.  Metode
Statistika  Untuk  Bisnis  dan  Ekonomi.
Gramedia  Pustaka  Utama.  Jakarta.  hal 4-6.
Ekawati, A. W. 2005. Diktat Kuliah Budidaya
Pakan  Alami.  Fakultas  Perikanan Universitas  Brawijaya.  Malang.  Hal.  3 – 48. Fogg, G.E. 1975. Algae Culture and phytoplankton Ecology. Biotech- nology,  1st  Ed.  M.  A.  Borowitzka  and T. Borowitzka (tds). Gideon,  O.A.,  K.  H.  Ogbonda  and  R.  E. Aminigo.  2007.  Optimization  Studies of  Biomass  Production  and  Protein Biosynthesis in a Spirulina sp. Isolated From  and  Oil  Polluted  Flame  Pit  In The  Niger  Delta.  Departement  of Microbiologi. Port Harcourt Univercity. Nigeria. Govindjee  and  B.  Z.  Braun.  1974.  Light Absorption,  Emission  and  Photo- synthesis  in  Botanical  Monograph, Alga  Physiology  Scientific  Publica- tions. London.
Goksan,  T.,  Z.  Aysegul  and  Ilknur.  2006.  The Growth  of
Spirulina  platensis in Different Culture System Under Greenhouse Condition. Departement of Aquaculture,  Faculty  of  Fisheries, Canakkale  Onsekiz  Mart  University.
Turkey. Pp 47 – 52.
Grahame,  J.  1987.  Plankton  and  Fisheries.
University  of  Leeds.  Edward  Arnold. London.
Hu  Q.  2004.  Industrial  Production  of Microalgal  Cell-mass  and  Secondary Products  –  Major  Industrial  Species  : Arthrospira  (Spirulina ) platensis .  Di dalam: Richmond AE, editor. Handbook  of  MIcroalgal  Culture, Biotechnology And Applied Phycology.  Blackwell  Publishing  Ltd., Iowa, USA. hlm. 264-272. Irwan,  A.,  2002.  Pengaruh  Warna  Cahaya
Terhadap Pertumbuhan Scenedesmus . Skripsi.  Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu Kelautan Institut Pertanian Bogor.
Isnansetyo,  A.  dan  Kurniastuty.  1995.  Teknik Kultur  Fitoplankton  dan  Zooplankton. Kanisius. Yogyakarta. Hal. 22-25.
Jemiati.  2002.  Pengaruh  Perbedaan  Salinitas Terhadap  Pertumbuhan Chlorella sp.
pada  Media  yang  Diperkaya  Dengan Limbah  Pabrik  Gula.  Skripsi.  Fakultas Perikanan Universitas Brawijaya.
Malang. hal. 1 – 46. Kuswati,  T.  M.,  S.  R.  N.  Ratih,  E. Sofyatiningrum  dan  N.  Kartini.  2004. Sains Kimia SMA Kelas 1b Kurikulum 2004.  PT  Bumi  Aksara.  Jakarta.  p.  1-
35. Kusriani  dan  E.  Yuli.  2005.  Buku  Ajar Planktonologi. Fakultas Perikanan Universitas  Brawijaya.  Malang.  hal.  1 – 41. Mohanty  P,  Srivastava  M,  Krishna  KB.  1997. The Photosynthetic Apparatus of Spirulina: Electron transport and Energi Transfer. Didalam:  Vonshak  A, editor. Spirulina platensis ( Arthrospira ): Physiology, Cell- biology  and  Biotechnology.  Taylor  & Francis Ltd., Bristol, USA. hlm. 1 – 15.
Panji,  T  dan  S.  A.  Suminar.  2000.  Growth  of Spirulina platensis on Media
Containing  Latex  Concentrate Effluent and  its  Potential  Use  for  Ornamental Fish Feed. International Symposium on
Marine  Biotechnology.  Jakarta.  hal. 190 – 195. Pramudya,  G.  R.  2009.  Pemanfaatan  Kotoran Ayam Sebagai Pupuk Untuk Pertumbuhan Populasi Dunaliella salina.  Skripsi.  Fakultas  Perikanan  dan Kelautan Universitas Airlangga. Surabaya. hal. 5 – 10. Prescott,  G.W.  1964.  The  Algae:  A  Review.
Houghton  Mifflin  Company,  Boston. New  York,  Atlanta,  Geneva,  Dallas, Polo Alto.
Rosales,  M.  1982.  Preparation  of  Various Culture  Media  and  Stok  Solutions. SEAFDEC  Aquaculture  Department. In :  R.  D.  Guerrero  and  C.  T.  Villegas (Eds).  Report  of  the  Training  Course on  Growing  Food  Organism  for  Fish Hatcheries. Tigbauan, Iloilo, Philippines. Richmond,  A.  1986.  CRC  Handbook  of Mikroalgal  Mass  Culture.  CRC  Press Ino.Florida. p. 156 – 190. Rafiqul  IM,  Jalal  KCA,  Alam  MZ.  2005. Environmental Factors for Optimisation  of Spirulina Biomass  in
Laboratory Culture. Asian Network for Scientific  Information, Biotechnology
4(1): 19 – 22. Saputro,  A.,  2008.  Pengaruh  Perbedaan  Warna Lampu  Terhadap  Laju  Pertumbuhan Spesifik Benih Ikan Gurami ( Osphronemous  Gouramy )  Umur  17 Hari.  Skripsi.  Fakultas  Perikanan  dan Kelautan Universitas Brawijaya
Malang. Santosa,  A.  2010.  Produksi Spirulina sp.Yang Dikultur Dengan Perlakuan Manipulasi
Fotoperiod. Skripsi. Fakultas Perikanan dan Kelautan Institut Pertanian Bogor. Sanchez.  M.,  Castillo,  J.B.,  Rozo  and  C. Rodriguez, I. 2002. Spirulina (Arthrospira): An-  Edible  Micro- organism. A Review. Departamento de Quimica Facultad de Ciencias Pontificia  Universidad  Javeriana  Cra. Bogota, pp. 1 – 13. Satyantini,  W.  H  dan  E.  D.  Masithah  2008.
Pemilihan  Jenis  dan  Nilai  Nutrisi Pakan  Alami.  Universitas  Airlangga. Surabaya.
Senge  M.  and  Senger  H.  1991.  Adaption  of Photosynthetic  Apparatus  of  Chlorella and  Ankistrodesmus  to  Blue  and  Red
Light. Subarijanti,  H.  U.  2002.  Unsur  Karbon, Nitrogen  dan  Fosfor  sebagai  Kunci Eutrofikasi. Fakultas Perikanan Universitas Brawijaya Malang. Hal 6 Smith,  G.  M.  1950.  The  freshwater  Algae  Of United States. McGraw Hill Book, Inc.
London. pp. 15 – 20.
Steenbergen,  C.  L.  M.  1975.  Light  Dependent Morphogenesis  of  Unicellular  Stages In Synchronized Culture of Scenedesmus  quadricauda (Chloro- phyceae).  Acta  Bot.  Neerl.  Vol.  24, 391. Sylvester,  B.  D.,  Nelvy  D  dan  Sudjiharno. 2002. Persyaratan Budidaya Fitoplankton. dalam budidaya Fitoplankton  dan  Zooplankton.  2002. Balai Budidaya Laut, Direktoral Jendral Perikanan Budidaya Departemen  Kelautan  dan  Perikanan. Bandar Lampug. Hal. 24 – 36. Moerdiyono,  T., 2009. Pengaruh Lama Penyinaran  Yang  Berbeda  Terhadap Tingkat  Kematangan  Gonad  Ikan Gabus  ( Channa  Gachua ).  Fakultas Perikanan Universitas Brawijaya Malang. Thomaselli, L. 2002. Morphology, Ultrastructure and Taxonomy of Arthrospira  ( Spirulina ) maxima and Arthrospira  ( Spirulina ) platensis . In Spirulina platensis ( Arthrospira ) physiology, cell-biology and biotechnology. 2002. Ben-Gurion University  of  the  Negev.  Taylor  and Francis. Israel. pp. 1 – 10. Vijaya  V.  and  Anand  N.  2009.  Blue  Light
Enhance  The  Pigment  Synthesis  In
Cyanobacterium  Anabaena  Ambigua Rao. Vidiana,  R.  H.  2009.  Pengaruh  Penambahan Vitamin  B12  Pada  Media  Blotong Kering Terhadap Pertumbuhan Populasi Spirulina  platensis .  Skiripsi.
Program  Studi  Budidaya  Perairan. Fakultas  Perikanan  dan  Kelautan.
Universitas Airlangga. Surabaya. 24-31
hal.
Vonshak, A. 1997. Spirulina platensis ( Arthrospira ). Physiology, Cell- Biology  and  Biotechnology.  Ben- Guion Universitas Diponegoro. Semarang. Hal 6     -16. Winarti. 2003. Pertumbuhan Spirulina platensis
yang  dikultur  Dengan  Pupuk  Komersil (Urea,  TSP,  dan  ZA)  dan  Kotoran Ayam.  [Skripsi].  Jurusan  Budidaya Pertanian, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan,  Institut  Pertanian  Bogor,
Bogor.
Weng,  H.,  X.  Sun,  J.  Weng,  Y.  Qin  and  H. Dong.  2008.  Crucial  Roles  of  Iron  in The  Growth  of Prorocentrum  micans Ehreberg Dinophyceae. Forida. Journal of coastal Research, 24: 176-183. Yaznil. 1997. Pengaruh Perbedaan Warna Sinar Terhadap  Pertumbuhan  Kultur  Murni Chlorella sp. Skripsi. Fakultas Perikanan Institut Pertanian Bogor.