## Perbandingan Uji Kapasitas Total Antioksidan Ekstrak Daun Kelor dengan Metode DPPH, FRAP, dan ABTS
Nawaika Shafira Putri 1* , David Limanan 2 , Eny Yulianti 3 , Frans Ferdinal 4 Universitas Tarumanagara, Jakarta, Indonesia Email: nawaika.405210082@stu.untar.ac.id , davidl@fk.untar.ac.id

## ABSTRAK
Kata Kunci: Reaksi  oksidasi  adalah  proses  alami  dalam  tubuh  manusia  yang terjadi selama metabolisme sel dan respirasi, menghasilkan reactive oxygen species (ROS) atau radikal bebas. Ketidakseimbangan antara produksi  ROS  yang  berlebihan  dan  pertahanan  antioksidan  yang tidak memadai dapat menyebabkan stres oksidatif, yang berdampak negatif pada molekul biologis seperti karbohidrat, protein, lipid, dan DNA.  Stres  oksidatif  ini  berkontribusi  pada  berbagai  penyakit, termasuk  radang  sendi,  aterosklerosis,  diabetes,  kanker,  dan gangguan neurodegeneratif, serta mempercepat penuaan. Antioksidan berperan penting dalam menetralkan radikal bebas dan memperbaiki kerusakan akibat stres oksidatif. Daun kelor ( Moringa oleifera L)  dikenal  kaya  akan  nutrisi  dan  antioksidan,  termasuk vitamin C, vitamin E, flavonoid dan tanin. Penelitian ini bertujuan untuk  mengevaluasi  kapasitas  total  antioksidan  dari  ekstrak  daun kelor  menggunakan  tiga  metode  yang  berbeda,  yaitu  DPPH  (2,2- difenil-1-pikrilhidrazil),  FRAP  ( Ferric  Reducing  Antioxidant Power ), dan ABTS (2,2'-azinobis-( 3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid )).  Pengukuran  absorbansi  dilakukan  dengan  menggunakan spektrofotometer Genesys 30-vis, dan data dianalisis menggunakan grafik dari program GraphPad Prism versi 7.0 ( La Jolla, California , USA). Hasil penelitian menunjukkan bahwa nilai IC50 ekstrak daun kelor dengan metode DPPH adalah 71,011 μg/mL, yang tergolong antioksidan kuat (50-100 μg/mL). Dengan metode FRAP, nilai IC50 16,943  μg/mL,  dengan  metode  ABTS  nilai  IC50  sebesar  25,533 μg/mL; keduanya termasuk dalam kategori antioksidan sangat kuat (<50  μg/mL).  Hasil  ini  menunjukkan  bahwa  metode  FRAP  dan ABTS lebih sensitif dalam mendeteksi kapasitas antioksidan ekstrak daun kelor dibandingkan metode DPPH. Penelitian ini menunjukkan potensi  ekstrak  daun  kelor  sebagai  sumber  antioksidan  alami  yang berpotensi mencegah penyakit terkait stres oksidatif.

## ABSTRACT
Oxidation reactions are natural processes in the human body that  occur  during  cellular  metabolism  and  respiration, producing reactive oxygen species (ROS) or free radicals. An imbalance between excessive ROS production and inadequate antioxidant  defense  can  lead  to  oxidative  stress,  which negatively impacts biological molecules such as carbohydrates, proteins, lipids and DNA. This oxidative stress contributes  to  a  variety  of  diseases,  including  arthritis, atherosclerosis,  diabetes,  cancer,  and  neurodegenerative disorders,  and  accelerates  aging.  Antioxidants  play  an important  role  in  neutralizing  free  radicals  and  repairing damage caused by oxidative stress. Moringa leaves (Moringa oleifera L) are known to be rich in nutrients and antioxidants,
Antioksidan;  DPPH;  FRAP; ABTS;  Kelor

## Keywords:
Antioxidant; DPPH;  FRAP;
ABTS; Moringa
including vitamin C, vitamin E, flavonoids, and tannins. This study  aims  to  evaluate  the  total  antioxidant  capacity  of Moringa  leaf  extract  using  three  different  methods,  namely DPPH (2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl), FRAP (Ferric Reducing  Antioxidant  Power),  and  ABTS  (2,2'-azinobis-  (3- ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)). Absorbance measurements  were  carried  out  using  a  Genesys  30-vis spectrophotometer, and data were analyzed using graphs from the  GraphPad  Prism  program  version  7.0  (La  Jolla, California,  USA).  The  research  results  showed  that  the  IC 50
value  of  Moringa  leaf  extract  using  the  DPPH  method  was 71.011 μg/mL, which is classified as a strong antioxidant (50-
100 μg/mL). With the FRAP method, the IC 50 value is 16.943
μg/mL, and with the ABTS method, the IC 50 value  is  25.533 μg/mL; both are included in the powerful antioxidant category (<50 μg/mL). These results indicate that the FRAP and ABTS methods  are  more  sensitive  in  detecting  the  antioxidant capacity of Moringa leaf extract than the DPPH method. This research  shows  the  potential  of  Moringa  leaf  extract  as  a source  of  natural  antioxidants  that  have  the  potential  to prevent diseases related to oxidative stress.

## Coresponden Author: Nawaika Shafira Putri
Email: nawaika.405210082@stu.untar.ac.id Artikel dengan akses terbuka dibawah lisensi

## Pendahuluan
Dalam  kehidupan  sehari-hari,  reaksi  oksidasi  sering  terjadi.  Sebagai  contohnya adalah metabolisme sel dan respirasi terjadi di dalam tubuh manusia (Tariq dkk., 2022). Proses  oksidasi  ini  menghasilkan  zat  yang  dikenal  sebagai Reactive  Oxygen  Species (ROS),  atau  juga  yang  dikenal  sebagai  radikal  bebas.  Ketika  produksi  ROS  yang berlebihan dan/atau pertahanan antioksidan yang tidak memadai, keseimbangan alami ini terganggu,  sehingga  terjadi  peningkatan  jumlah  ROS  yang  dapat  mengakibatkan terjadinya stres oksidatif (Ogbunugafor dkk., 2011a). Reactive Oxygen Species memiliki kemampuan  untuk  menyerang  dan  menyebabkan  kerusakan  oksidatif  pada  berbagai molekul  biologis,  yaitu  karbohidrat,  protein,  lipid,  dan  DNA(2,3).  Kondisi  seperti  ini memiliki potensi untuk memicu berbagai jenis penyakit, seperti radang sendi, gangguan hati, aterosklerosis, diabetes, kanker, gangguan neurodegeneratif, dan juga mempercepat proses penuaan. Salah satu strategi untuk mengatasi ROS yang berlebih adalah dengan memanfaatkan antioksidan (Schieber & Chandel, 2014b).
Antioksidan memiliki kemampuan untuk melawan radikal bebas melalui berbagai mekanisme, termasuk mencegah terbentuknya radikal bebas, menetralkan radikal bebas yang  ada,  menginduksi  sinyal  dalam  sel,  dan  memperbaiki  kerusakan  akibat  stres
oksidatif (Abdal Dayem dkk., 2017; Schieber & Chandel, 2014b). Klasifikasi antioksidan dapat  dibagi  menjadi  2  jenis,  yaitu  non-enzimatik  dan  enzimatik  seperti superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT),  dan glutathione  peroxidase (GPx).  Sumber-sumber alami seperti dari tanaman merupakan cara untuk memperoleh antioksidan dalam tubuh (Alimsyah, 2020; Xu dkk., 2017).
Pohon kelor ( Moringa oleifera L ) sudah terbukti secara ilmiah sebagai sumber gizi yang memberikan manfaat yang penting. Kelor dikenal dengan beberapa sebutan, antara lain The miracle Tree, Tree for life , dan Amazing Tree . Sebutan tersebut dicetuskan karena semua elemen dari pohon kelor seperti daun, buah, biji, bunga, kulit batang hingga akar memiliki manfaat yang istimewa (Saputra dkk., 2021). Salah satu bagian yang memiliki manfaat yang paling signifikan dari kelor adalah daunnya. Hasil penelitian sebelumnya menunjukan bahwa daun kelor kaya akan mineral, asam amino essensial, serta berbagai antioksidan  seperti  vitamin  C,  vitamin  E,  flavonoid,  tanin,  dan  masih  banyak  lainnya. Bahkan, kemampuan antioksidan daun kelor segar mencapai 7 kali lipat dari vitamin C (Oduro  dkk.,  2008).  Daun  kelor  juga  mengandung  flavonoid  jenis  kuersetin,  yang memiliki kekuatan antioksidan 4 sampai 5 kali lebih besar dibandingkan dengan vitamin C dan vitamin E (Daba, 2016).
Menyadari  potensi  antioksidan  serta  khasiat  yang  terdapat  pada  daun  kelor ( Moringa oleifera L ), peneliti tertarik untuk mengeksploarasi lebih lanjut total kapasitas antioksidan dari ekstrak daun kelor menggunakan tiga metode yang berbeda yaitu, DPPH ( 2,2-difenil-1-pikrilhidrazil ),  FRAP (Ferric  Reducing  Antioxidant  Power) ,  dan ABTS (2,2'-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic  acid)). Tujuan  penelitian  ini  adalah membandingkan  kapasitas  antioksidan  yang  diperoleh  dari  ketiga  metode  berbeda tersebut  guna  menentukan  metode  mana  yang  memberikan  nilai  kapasitas  antioksidan tertinggi.

## Metode Penelitian
Penelitian  eksperimental  yang  bersifat in  vitro dengan  tujuan  untuk  menguji kapasitas total antioksidan menggunakan dengan tiga metode yaitu, DPPH, FRAP, dan ABTS  dengan  mengukur  nilai inhibitor  concentration (IC 50 ).  Data  diambil  absorbansi menggunakan  Spektrofotometer  genesys  30-Vis  dan  disajikan  dalam  format  tabel  dan kurva.  Kemudian  data  dianalisis  dengan  aplikasi GraphPad prism  v.7.0.  Penelitian dilaksanakan  di  Laboratorium  Biokimia  dan  Biologi  Molekuler,  Gedung  J  Lantai  1, Fakultas  Kedokteran,  Universitas  Tarumanagara,  Jl.  S.  Parman,  No.1  Grogol,  Jakarta Barat.

## Alat dan Bahan
Selama  proses  studi  digunakan  alat  dan  bahan.  Peralatan  studi  berupa  blender, lemari pendingin, timbangan digital, Alumunium foil , kertas saring, kapas, plastic wrap , corong perkolasi, batang pengaduk, gelas ukur, gelas kimia, labu ukur, labu erlenmeyer, tabung  reaksi,  saringan,  penjepit  kayu,  rak  tabung  reaksi, micropipette , microtube , spatula,  pipet  tetes, vortex  mixer ,  Spektrofotometer  genesys  30-Vis , dan Rotatory
evaporator. Bahan  yang  digunakan  yaitu  ekstrak  daun  kelor  ( Moringa  oleifera  L ) meliputi  air,  air  suling,  DPPH,  ABTS,  FRAP,  larutan  metanol,  larutan  etanol, sodium acetate trihydrate, TPTZ, FeCl 3 .6H 2 O, asam asetat, kalium persulfate.

## Pembuatan Ekstrak Daun Kelor
Pembuatan esktrak daun kelor dimulai dengan dipisahkan daun dengan batangnya dan dibiarkan mengering pada suhu ruang di tempat yang terlindung dari sinar matahari untuk  mencegah  oksidasi.  Setelah  daun  kering,  daun  digiling  menjadi  bentuk  serbuk (simplisia). Simplisia kemudian diekstrak menggunakan metode dingin, yaitu maserasi dan  perkolasi  dengan  campuran  metanol.  Setelah  didapatkan  ekstrak  selanjutnya dievaporasi menggunakan rotatory evaporator hingga menjadi bentuk pasta.

## Penelitian
1. Pembuatan Larutan DPPH
1,97 mg bubuk DPPH ditimbang, kemudian dilarutkan dalam 100 mL metanol dalam labu  takar  untuk  membuat  larutan  DPPH.  Setelah  itu  dihomogenisasi  dan  ditutup dengan alumunium foil agar cahaya tidak masuk.
2. Pembuatan Larutan FRAP
Untuk  membuat  larutan  FRAP,  pertama-tama  timbang  187  mg  sodium  acetate trihydrate  dan  campurkan  dengan  16  mL  asam  asetat.  Tambahkan  air  suling (aquades)  hingga  mencapai  volume  total  250  mL  dalam  labu  ukur.  Selanjutnya, larutkan 150 mg TPTZ dalam 40 mL HCl, lalu tambahkan air suling hingga volume larutan mencapai 50 mL. Untuk larutan ketiga, larutkan 270 mg FeCl₃·6H₂O dengan air suling hingga mencapai volume 100 mL dalam labu ukur. Setelah ketiga larutan ini siap, campurkan 25 mL larutan sodium acetate, 2,5 mL larutan TPTZ, dan 2,5 mL larutan  FeCl₃·6H₂O  ke  dalam  satu  labu  ukur.  Tambahkan  air  suling  hingga  total volume  campuran  mencapai  100  mL.  Larutan  FRAP  yang  sudah  dibuat  ini  siap digunakan untuk pengujian lebih lanjut.
3. Pembuatan Larutan ABTS
Larutan  ABTS  dibuat  dengan  membagi  ABTS  (28,4  mg)  dan  kalium  persulfat (14 mg) menjadi dua wadah yang sama besar. Masing-masing wadah kemudian dicampur dengan 20 mL etanol. Mereka dihomogenisasi dan diinkubasi selama 12 jam di ruangan dingin. Setelah itu kedua larutan tersebut ditempatkan dalam wadah segar dan dicampur dengan etanol hingga volumenya mencapai 100 mL.
4. Pengukuran Aktivitas Antioksidan Metode DPPH
Sebanyak  0,01  gram  ekstrak  daun  kelor  dilarutkan  dalam  10  mL  metanol menggunakan  gelas  ukur.  Selanjutnya,  ekstrak  ini  dimasukkan  ke  dalam  tabung reaksi dengan konsentrasi masing-masing 50 µg/mL, 100 µg/mL, 150 µg/mL, dan 200 µg/mL (Tabel 1). Metanol kemudian ditambahkan hingga total volume dalam tabung  reaksi  mencapai  10  mL.  Dalam  tabung  reaksi  baru,  campurkan  masing- masing 0,5 mL larutan sampel dengan 3,5 mL larutan DPPH. Setelah itu, campuran ini  dihomogenkan  dan  didiamkan  di  ruangan  gelap  selama  30  menit,  kemudian
analisis  dilakukan  menggunakan  spektrofotometer  Genesys  30-Vis  pada  panjang gelombang 517 nm.
Tabel 1 Konsentrasi, % Inhibisi, dan Nilai IC 50 Ekstrak Daun Kelor
dengan Metode DPPH Konsentrasi Ekstrak (µg/mL) Rata – rata Absorbansi (µg/mL) Persentase Inhibisi (%) IC 50 (µg/mL)
50 0,323 40,842
71,011 100 0,2 63,370 150 0,154 71,795 200 0,079 85,531

## 5. Pengukuran Aktivitas Antioksidan Metode FRAP
Sebanyak 0,02 gram ekstrak daun kelor ditimbang dan dilarutkan dalam 10 mL air suling (aquades). Selanjutnya, larutan ini diatur dalam berbagai konsentrasi yaitu 5 µg/mL, 10 µg/mL, 15 µg/mL, dan 20 µg/mL sebagaimana tercantum pada Tabel 2. Kemudian, aquades ditambahkan hingga volume total mencapai 10 mL. Pada tabung reaksi, larutan ekstrak ini dicampur dengan larutan FRAP dalam perbandingan 1:3, artinya  1  mL  sampel  dicampur  dengan  3  mL  larutan  FRAP.  Campuran  tersebut kemudian dianalisis menggunakan spektrofotometer Genesys 30-Vis pada panjang gelombang 593 nm untuk menghasilkan kurva standar.
Tabel 2 Konsentrasi, % Inhibisi, dan Nilai IC 50 Ekstrak Daun Kelor
dengan Metode FRAP Konsentrasi Ekstrak (µg/mL) Rata – rata Absorbansi (µg/mL) Persentase Inhibisi (%) IC 50 (µg/mL) 5 0,323
18,750 16,943 10 0,2 34,177 15 0,154 45,883 20 0,079 56,667

## 6. Pengukuran Aktivitas Antioksidan Metode ABTS
Sebanyak 0,02 gram ekstrak daun kelor dilarutkan dalam 10 mL etanol. Ekstrak ini kemudian disiapkan dalam lima tabung reaksi dengan konsentrasi masing-masing 10 µg/mL,  20  µg/mL,  30  µg/mL,  40  µg/mL,  dan  50  µg/mL (Tabel  3). Selanjutnya, setiap ekstrak tersebut dicampurkan dengan larutan ABTS dalam tabung reaksi baru dengan rasio 1:1, yaitu 1 mL ekstrak dicampur dengan 1 mL larutan ABTS. Hasil campuran ini kemudian  dianalisis menggunakan  spektrofotometer  Genesys 30-Vis pada panjang gelombang 734 nm untuk membuat kurva standar.
Tabel 3 Konsentrasi, % Inhibisi, dan Nilai IC 50 Ekstrak Daun Kelor dengan Metode ABTS
Konsentrasi Ekstrak (µg/mL) Rata – rata Absorbansi (µg/mL) Persentase Inhibisi (%) IC 50
(µg/mL)
10 0,056 26,316 25,553 20 0,045 40,789 30 0,03 60,526 40 0,023 69,737 50 0,011 85,526

## Hasil Dan Pembahasan
Hasil Uji Kapasitas Antioksidan dengan Metode DPPH
Penentuan  kapasitas  antioksidan  total  menggunakan  metode  DPPH  dilakukan dengan  menghitung  nilai  IC 50 ,  yaitu  konsentrasi  sampel  yang  dibutuhkan  untuk menurunkan aktivitas DPPH sebesar 50%. Perubahan warna dari ungu menjadi kuning digunakan  sebagai  indikator  utama  dalam  penentuan  ini.  Kurva  standar  untuk  ekstrak daun  kelor  menunjukkan  nilai  R²  sebesar  0,9637 (Gambar  1). Hasil  yang  diperoleh menunjukkan  bahwa  nilai  IC50  untuk  metode  DPPH  adalah  71,011  µg/mL (Tabel  1) , yang menunjukkan bahwa ekstrak ini memiliki aktivitas antioksidan yang kuat. Dalam penelitian  yang  dilakukan  oleh  Alimsyah et  al ,  nilai  IC50  untuk  ekstrak  daun  kelor ditemukan  sebesar  79  µg/mL.  Sementara  itu,  penelitian  Asisi  dkk.  (2021) mengindikasikan  bahwa  ekstrak  daun  kelor  memiliki  kapasitas  antioksidan  sebesar 68,321  µg/mL.  Hal  ini  menegaskan  bahwa  ekstrak  daun  kelor  memiliki  kapasitas antioksidan  yang  kuat  menurut  metode  DPPH  dan  berpotensi  besar  sebagai  sumber antioksidan.

## Gambar 1 Kurva Persentase Inhibisi Ekstrak Daun Kelor dengan Metode DPPH

## Hasil Uji Kapasitas Antioksidan dengan Metode FRAP
Pengukuran  aktivitas  antioksidan  menggunakan  metode  FRAP  berkaitan  dengan kemampuan  campuran  antioksidan  untuk  mereduksi  zat  besi  melalui  transfer  elektron. Dalam  lingkungan  asam,  antioksidan  mengubah  ion  Fe³⁺  menjadi  Fe²⁺,  yang  ditandai dengan  perubahan  warna  dari  kuning  menjadi  biru.  Kurva  standar  untuk  ekstrak  daun kelor menunjukkan nilai R² sebesar 0,9927 ( Gambar 2). Nilai IC₅₀ ekstrak daun kelor adalah 16,934 μg/mL (Tabel 2), yang menunjukkan bahwa ekstrak ini memiliki kapasitas
antioksidan yang sangat kuat. Penelitian ini konsisten dengan hasil yang dilaporkan oleh Jaiswal  dkk.  (2017),  di  mana  nilai  IC₅₀  untuk  ekstrak  daun  kelor  adalah  28,65  μg/mL, juga  termasuk  dalam  kategori  antioksidan  yang  sangat  kuat.  Dalam  studi  lain  oleh Wangcharoen dan Gomolmanee (2011), nilai IC₅₀ ekstrak daun kelor ditemukan sangat kuat pada 5,44 μg/mL. Hasil-hasil ini menunjukkan bahwa ekstrak daun kelor memiliki potensi  yang  signifikan  sebagai  sumber  antioksidan  alami.  Aktivitas  antioksidan  yang tinggi  ini  dapat  memberikan  perlindungan  terhadap  sel-sel  dari  kerusakan  yang disebabkan oleh radikal bebas oksidatif.

## Gambar 2 Kurva Persentase Inhibisi Ekstrak Daun Kelor dengan Metode FRAP

## Hasil Uji Kapasitas Antioksidan dengan Metode ABTS
Pengujian antioksidan menggunakan metode ABTS didasarkan pada prinsip pengukuran pengurangan warna kation ABTS, yang digunakan untuk menilai kapasitas antioksidan dalam bereaksi langsung dengan radikal kation ABTS. Aktivitas antioksidan dievaluasi melalui perubahan warna dari biru-hijau menjadi transparan. Standar kurva ekstrak daun kelor menunjukkan nilai R² sebesar 0,9908 (Gambar 3). Nilai IC₅₀ untuk ekstrak daun kelor adalah 25,533 μg/mL (Tabel 3), yang tergolong dalam kategori antioksidan yang sangat kuat. Hasil ini sejalan dengan penelitian oleh Asisi dkk. (2021), yang mendapatkan nilai IC₅₀ sebesar 11,73 μg/mL untuk ekstrak daun kelor. Penelitian lain oleh  Peñalver dkk.  (2022)  juga  menunjukkan  nilai  IC₅₀  sebesar  41,40  μg/mL.  Konsistensi  hasil penelitian  ini  dengan  penelitian  sebelumnya  menunjukkan  bahwa  ekstrak  daun  kelor mengandung senyawa aktif yang efektif dalam menghambat radikal bebas.

## Gambar 3 Kurva Persentase Inhibisi Ekstrak Daun Kelor dengan Metode ABTS

## Kesimpulan
Berdasarkan  hasil  penelitian  ini,  dapat  disimpulkan  bahwa  kapasitas  total antioksidan  ekstrak  daun  kelor (Moringa  oleifera  L) bervariasi  secara  signifikan tergantung  pada  metode  pengujian  yang  digunakan.  Metode  FRAP (Ferric  Reducing Antioxidant  Power) menunjukkan  kapasitas  antioksidan  tertinggi,  diikuti  oleh  metode ABTS (2,2'-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)) , sedangkan metode DPPH (2,2-difenil-1-pikrilhidrazil) menunjukkan kapasitas antioksidan terendah. Perbedaan ini menunjukkan  bahwa  ekstrak  daun  kelor  lebih  efektif  dalam  sistem  yang  melibatkan reduksi ion besi  (seperti yang diukur oleh metode FRAP) dibandingkan dengan sistem yang melibatkan reaksi  dengan radikal  kation (seperti yang diukur oleh  metode ABTS dan DPPH). Dengan demikian, ekstrak daun kelor memiliki potensi besar sebagai sumber antioksidan  alami  yang  dapat  digunakan  dalam  berbagai  aplikasi,  khususnya  yang memerlukan  aktivitas  antioksidan  kuat  untuk  melindungi  sel  dari  kerusakan  oksidatif yang disebabkan oleh radikal bebas.

## Daftar Pustaka
Abdal Dayem, A., Hossain, M., Lee, S., Kim, K., Saha, S., Yang, G.-M., Choi, H., & Cho, S.-G. (2017). The Role of Reactive Oxygen Species (ROS) in the Biological Activities of Metallic Nanoparticles. International Journal of
Molecular Sciences , 18 (1), 120. https://doi.org/10.3390/ijms18010120
Alimsyah, F. (2020). Optimalisasi Campuran Ekstrak Etanol Buah Pepaya (Carica papaya L.) dan Ekstraks  Etanol  Daun  Kelor  (Moringa  oleifera)  dalam  Krimsebagai  Antiaging  . Moring.
Jurnal Kesehatan STIKES Darul Azhar Batulicin , 9 (1).
Asisi, N., Uliyah, U., Nurul, F. A., & Hasrawati, H. (2021). Aktivitas Antioksidan Ekstrak Daun Kelor (Moringa  oleifera  L.)  dan  Pengembangannya Menjadi  Bentuk  Sediaan  Gel. Jurnal As-Syifaa , 13 (1), 1–6.
Daba,  M.  (2016).  Miracle  Tree:  A  Review  on  Multi-purposes  of  Moringa  oleifera  and  Its Implication for Climate Change Mitigation. Journal of Earth Science & Climatic Change ,
7 (8). https://doi.org/10.4172/2157-7617.1000366
Jaiswal,  S.  G.,  Patel,  M.,  Saxena,  D.  K.,  &  Naik,  S.  (2017).  Comparison  of  Measurements  of Antioxidant Activity in the Selected Leafy Vegetables Depending on Extraction Solvent. Journal of Horticultural Research , 25 (2), 75–80. https://doi.org/10.1515/johr-2017-0023 Oduro,  I.,  Ellis,  W.  O.,  &  Owusu,  D.  (2008).  Nutritional  potential  of  two  leafy  vegetables:
Moringa oleifera and Ipomoea batatas leaves. Scientific Research and Essay , 3 (2), 57–60. Ogbunugafor, H. A., Eneh, F. U., Ozumba, A. N., Igwo-Ezikpe, M. N., Okpuzor, J., Igwilo, I. O.,
Adenekan,  S.  O.,  &  Onyekwelu,  O.  A.  (2011a).  Physico-chemical  and  Antioxidant Properties of Moringa oleifera Seed Oil. Asian Network for Scientific Information , 10 (5),
409–414.
Ogbunugafor, H. A., Eneh, F. U., Ozumba, A. N., Igwo-Ezikpe, M. N., Okpuzor, J., Igwilo, I. O., Adenekan,  S.  O.,  &  Onyekwelu,  O.  A.  (2011b).  Physico-chemical  and  Antioxidant Properties of Moringa Oleifera Seed Oil. Pakistan Journal of Nutrition , 10(5) , 409–14. Peñalver, R., Martínez-Zamora, L., Lorenzo, J. M., Ros, G., & Nieto, G. (2022). Nutritional and Antioxidant Properties of Moringa oleifera Leaves in Functional Foods. Foods , 11 (8), 1107. https://doi.org/10.3390/foods11081107
Saputra, R. A., Santoso, U., Heiriyani, T., Jumar, J., Wahdah, R., Syarifuddin, N. A., Putri, K. A.,
Navira,  A.,  &  Aisyah,  N.  (2021).  The Miracle  Tree:  Manfaat  Kelor  Terhadap  Kesehatan Masyarakat. Jurnal  Pengabdian  ILUNG  (Inovasi  Lahan  Basah  Unggul) , 1 (2),  54. https://doi.org/10.20527/ilung.v1i2.3959
Schieber,  M.,  &  Chandel,  N.  (2014a).  Ros  function  in  redox  signaling  and  oxidativestress.
Current Biology , 24(10) , 453–462.
Schieber, M., & Chandel, N. S. (2014b). ROS Function in Redox Signaling and Oxidative Stress.
Current Biology , 24 (10), R453–R462. https://doi.org/10.1016/j.cub.2014.03.034 Tariq, S., Umbreen, H., Noreen, R., Petitbois, C., Aftab, K., Alasmary, F. A., Almalki, A. S., &
Mazid,  M.  A.  (2022).  Comparative  Analysis  of  Antioxidants  Activity  of  Indigenously Produced  Moringa  Oleifera  Seeds  Extracts. BioMed  Research  International , 2022 ,  1–11. https://doi.org/10.1155/2022/4987929
Wangcharoen, W., & Gomolmanee, S. (2011). Antioxidant Capacity and Total Phenolic Content of Moringa oleifera Grown in Chiang Mai, Thailand. Thai Journal of Agricultural Science , 44 (5), 118–124.
Xu,  D.-P.,  Li,  Y.,  Meng,  X.,  Zhou,  T.,  Zhou,  Y.,  Zheng,  J.,  Zhang,  J.-J.,  &  Li,  H.-B.  (2017). Natural Antioxidants in Foods and Medicinal Plants: Extraction, Assessment and Resources.
International Journal of Molecular Sciences , 18 (1), 96. https://doi.org/10.3390/ijms18010096