Vol. 3. No. 3 November 2019 p-ISSN: 2598-9944 e-ISSN: 2656-6753

## UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI INFUSA DAUN DUDUK ( DESMODIUM TRIQUETRUM (L.) DC.) TERHADAP STAPHYLOCOCCUS AUREUS DAN

## ESCHERICHIA COLI
Dedent Eka Bimmahariyanto S 1 , Adriyan Suhada 2 , Ade Sukma Hamdani 3
Program Studi S1 Farmasi Fakultas kesehatan Universitas Nahdlatul Ulama NTB dedenthariyanto@gmail.com, adriyan_suhada@yahoo.com, ade.sukmahamdani18@gmail.com
Abstrak.  Daun  duduk    (Desmodium  triquetrum  (L.)  DC.)  mengandung  tanin,  alkaloid hipaforin,  trigonelin,  bahan  penyamak,  asam  silikat,  dan  K 2 O.  Tanin  mempunyai  efek  sebagai antibakteri.  Tujuan  dari  penelitian  ini  adalah  untuk  mengetahui  aktivitas  daun  duduk (Desmodium triquetrum (L.) DC.) sebagai antibakteri dan untuk mengetahui kadar hambat yang sebanding dengan kloramfenikol. Jenis penelitian ini adalah penelitian eksperimental murni. Uji aktivitas  senyawa  antibakteri  menggunakan  metode  difusi  yaitu  metode  cakram.  Sampel  yang digunakan adalah infusa daun duduk (Desmodium triquetrum (L.) DC.) dengan kadar 4%, 6%, 8%,  dan  10%,  Kontrol  negatif  menggunakan  aquadest,  dan  kontrol  positif  menggunakan kloramfenikol.  Bakteri  uji  yang  digunakan  Staphylococcus  aureus  dan  Escherichia  coli.  Kadar hambat  yang  sebanding  dengan  kloramfenikol  sebagai  antibakteri  terhadap  Staphylococcus aureus adalah 4% (3,784 ± 0,197); 6% (4,168 ± 0,177); 8% (4,596 ± 0,100) dan 10% (5,365 ± 0,221) cm, sedangkan pada Escherichia coli adalah 4% (3112 ± 0,024); 6% (4,124 ± 0,144) ; 8% (4,936  ±  0,243)  dan  10%  (5,272  ±  0,075)  cm.  Perlu  dilakukan  penelitian  lebih  lanjut  uji  daya antibakteri dari daun duduk dengan menggunakan bentuk sediaan dan bakteri lain.
Kata  kunci: Desmodium  triquetrum  (L.)  DC,  Kloramfenikol,  Staphylococcus  aureus, Escherichia coli, antibakteri
Abstract . Desmodium  triquetrum(L.)  DC.)  contains  are  tannin,  alkaloid  hipaphorin, trigonelin, tanner material, silica acid and K2O. Tannin has an anti bacterial effect. The aim of this research is to know the activity of Desmodium triquetrum (L.) DC.) as an antibacterial and also  the  inhibitory  concentration  that  comparable  with  chloramphenicol.  The  research  is  a  true experimental research. The activity test of anti bacterial compound uses diffusion method is disc method. Desmodium triquetrum (L.) DC, is used as sample with concentration 4%, 6%, 8% and 10%,  negative  control  uses  aquadest,  and  positive  control  uses  chloramphenicol,  that  tasted Staphylococcus  aureus  and  Escherichia  coli  are  used  as  bacterial  test.  Inhibitory  concentration which  equal  with  chloramphenicol  as  an  antibacterial  towards  Staphylococcus  aureus  are  4% (3,784 ± 0,197); 6% (4,168 ± 0,177); 8% (4,596 ± 0,100) dan 10% (5,365 ± 0,221) cm, and for Escherichia  coli  are  4%  (3112  ±  0,024);  6%  (4,124  ±  0,144)  ;  8%  (4,936  ±  0,243)  dan  10% (5,272  ±  0,075)  cm.  It  is  needed  a  deeply  research  for  anti  bacterial  test  from  Desmodium triquetrum (L.) DC.), uses other dosage form and bacterial.
Keywords : Desmodium  triquetrum  (L.)  DC.,  Chloramphenicol,  Staphylococcus  aureus, Escherichia coli, antibacterial.

## PENDAHULUAN
Infeksi  merupakan  penyebab  utama penyakit  di  dunia  terutama  di  daerah  tropis, seperti Indonesia karena keadaan udara yang banyak berdebu dan temperatur yang hangat serta  lembab  sehingga  mendukung  mikroba untuk  dapat  tumbuh  subur.  Infeksi  dapat
disebabkan  oleh  berbagai  mikroorganisme dan  dapat  disebabkan  munculnya  strain bakteri  yang  resisten  terhadap  antibiotik (Gibson,  1996).  Cara  pengobatan  dengan menggunakan kombinasi berbagai antibiotik juga  dapat  menimbulkan  masalah  resisten (Tjay dan Raharja, 2007).
Vol. 3. No. 3 November 2019 p-ISSN: 2598-9944 e-ISSN: 2656-6753
Patogenesis  infeksi  bakteri  meliputi awal  proses  infeksi  hingga  timbulnya  tanda dan  gejala  penyakit.  Beberapa  bakteri penting  yang  dapat  menyebabkan  penyakit diantaranya  adalah Staphylococcus  aureus dan Escherichia coli (Jawetz dkk, 2001). Hampir setiap orang pernah mengalami  berbagai  infeksi Staphylococcus aureus selama  hidupnya,  dari  keracunan makanan  yang  berat  atau  infeksi  kulit  yang kecil.  Infeksi Staphylococcus  aureus juga dapat berasal dari kontaminasi langsung dari luka,  dan  jika  infeksi  ini  menyebar  dan terjadi  bakterimia,  yang  akan  menyebabkan endokartitis,  meningitis,  dan  infeksi  paru- paru. Escherichia  coli merupakan  penyebab paling  banyak  dari  infeksi  sistem  saluran kencing dan juga dapat menyebabkan diare, sepsis, dan meningitis (Jawetz dkk, 2001).
Salah  satu  masalah  serius  yang  kini dihadapi  adalah  terjadinya  resistensi  bakteri terhadap  antibiotik  yang  digunakan  (Volk dan Wheeler,1993). Berkembangnya populasi bakteri yang resisten, menyebabkan antibiotik  yang  pernah  efektif  untuk mengobati penyakit tertentu kehilangan nilai kemoterapeutiknya.  Sejalan  dengan  hal tersebut, maka kebutuhan akan pengembangan  obat-obat  baru  dan  berbeda untuk  menggantikan  obat-obat  yang  telah menjadi  tidak  efektif.  Dengan  ini  dicari alternatif pengobatan untuk penyakit infeksi menggunakan  tanaman  obat(Pelczar  dan Chan, 1988).
Tumbuhan  berkhasiat  obat  di  sekitar kita  ada  yang  berfungsi  bumbu  dapur, tanaman  buah,  tanaman  hias  dan  tanaman sayur,  selain  itu  adapula  yang  berupa tanaman liar (Muhlisah, 1999).
Dengan mencoba-coba, secara empiris  orang  jaman  dulu  mendapatkan berbagai  macam  daun  dan  akar  untuk mengobati penyakit. Pengetahuan ini disimpan  dan  dikembangkan,  sehingga muncul  ilmu  pengobatan  rakyat  seperti pengobatan  tradisional  jamu  di  Indonesia atau lebih dikenal obat tradisional (Tjay dan Raharja, 2007).
Obat  tradisional  adalah  bahan  atau ramuan  bahan  yang  berasal  dari  tumbuh-
tumbuhan,  hewan,  dan  mineral,  sediaan sarian  (galenik)  atau  campuran  dari  bahan tersebut  yang  secara  turun  temurun  telah digunakan  untuk  pengobatan  (Depkes, 2000).  Obat  tradisional  selain  murah  dan mudah  juga  memiliki  efek  samping  yang jauh  lebih  rendah  tingkat  bahayanya dibanding obat-obat kimia (Muhlisah, 1999).
Daun  duduk  mengandung  tanin, alkaloid hipaforin, trigonelin, bahan penyamak,  asam  silikat,  dan  K 2 O,  buahnya mengandung  saponin,  dan  flavonoid  dan akarnya  mengandung  saponin,  flavonoid, dan  tanin.  Herbal  ini  rasanya  sedikit  pahit dan sejuk(Anonim, 2008).
Tanin  mempunyai  aktivitas  sebagai antibakteri.  Sejauh  pengetahuan  peneliti untuk  penelitian  yang  melibatkan  zat  aktif tanin dari daun duduk ( Desmodium triquetrum (L.)  DC.)  sebagai  antibakteri belum  ditemukan.  Oleh  karena  itu  perlu dibuktikan  dengan  dilakukan  penelitian terhadap  senyawa  aktif  dari  daun  duduk ( Desmodium triquetrum (L.) DC.).

## METODOLOGI
A.  Alat :  blender,  termometer,  panci  infusa, corong,  kain  flannel,  kompor  listrik, tabung  reaksi,  pipet  tetes,  cawan  petri, jarum  ose,  disk,  autoklaf,  inkubator, lampu  spirtus,  batang  pengaduk,  gelas ukur, erlenmeyer, jangka sorong,
timbangan digital
B. Bahan:
1.Bahan  utama  yang  digunakan  pada penelitian  ini  adalah  daun  duduk ( Desmodium  triquetrum (L.)  DC)  yang diperoleh dari BPTO Karanganyar.
2.Bahan untuk uji daya antibakteri adalah NA  (Nutrient  Agar),  NB  (Nutrien Broth),  kloramfenikol  dengan  dosis 30μg/ml,  aquades,  bakteri  uji  yang digunakan adalah Staphylococcus aureus dan Escherichia coli .
3.Bahan  uji  senyawa  tanin  adalah    infus daun duduk, FeCl 3 , Kalium ferrisianida, Amonia.
C. Prosedur penelitian:
1. Determinasi  tanaman  daun  duduk ( Desmodium triquetrum (L.) DC)
Vol. 3. No. 3 November 2019 p-ISSN: 2598-9944 e-ISSN: 2656-6753
Determinasi  dilakukan  di  laboratorium Ekologi  dan  Biosistematik  Fakultas  MIPA Jurusan  Biologi  Universitas  Diponegoro Semarang  untuk  mengetahui  kebenaran  dari tanaman daun duduk Desmodium triquetrum (L.) DC).
2. Pembuatan serbuk daun duduk
Daun duduk dicuci dengan menggunakan  air  mengalir  sampai  bersih, kemudian  dijemur  di  bawah  sinar  matahari langsung  dengan  ditutup  kain  berwarna hitam atau dikeringkan oleh oven kemudian digiling  atau  dihaluskan  dengan  cara diblender  dan  diayak  dengan  nomor  ayakan 30 mesh.
3. Pembuatan infusa daun duduk
Infusa  daun  duduk  dibuat  sesuai dengan konsentrasinya masing-masing  yaitu 4%,  6%,  8%,  dan  10%.  Untuk  konsentrasi 4%  diambil  serbuk  daun  duduk  sebanyak  4 g,  6%  diambil  6  g,  8%  diambil  8  g,  10% diambil  10  g.  Infusa  dibuat  dengan  cara  : serbuk  daun  duduk  dimasukkan  ke  dalam panci,  ditambah  aquadest  100  ml.  Panaskan selama  15  menit,  terhitung  mulai  suhu  di dalam  panci  mencapai  90⁰C,  sesekali diaduk.  Penyaringan  dilakukan  selagi  panas melalui  kain  flanel.  Apabila  volume  air belum  mencapai  100  ml,  ditambahkan  air panas,  melalui  ampasnya  sampai  diperoleh volume 100 ml.
4. Pengujian Senyawa Tanin :
a. Infusa + FeCl 3  Warna biru  Pirogalatanin
b. Infusa + FeCl 3  Hitam kehijauan  Katekol
c. Infusa  +  Kalium  ferrisianida  + Amonia  Coklat  Tanin umum. Pada  pengujian  senyawa  tanin,  infusa daun  duduk  ditambah  FeCl 3 akan  terjadi perubahan  warna  biru,  perubahan  warna  ini menunjukkan  bahwa infusa  termasuk  dalam tanin golongan pirogalantanin. Untuk infusa daun duduk ditambah FeCl 3 terjadi perubahan warna hitam kehijauan, perubahan  warna  ini  menunjukkan  bahwa infusa  termasuk  tanin  golongan  katekol. Identifikasi tanin secara umum menunjukkan  bahwa  infusa  daun  duduk ditambah  Kalium  ferrisianida  dan  amonia
akan  terjadi  perubahan  warna  coklat (Harborne, 1987)
5. Uji Aktivitas Antibakteri
a. Sterilisasi alat dan media
Alat dan media yang digunakan dalam uji aktivitas  antibakteri  disterilisasi  dengan autoklaf  pada  temperatur  121˚C  selama  15 menit pada tekanan 1 atm.

## b. Pembuatan media
Pada  proses  inokulasi  kuman  diambil  8 gram Nutrient Broth (NB) dilarutkan dengan 1000  ml  aquades  steril,  kemudian  untuk penanaman  kumannya  diambil  23  gram Nutrient  Agar  (NA)  ditambahkan  aquades sebanyak  1000  ml  lalu  dipanaskan  dan diaduk  sampai  larut.  Setelah  itu,  disterilkan di  autoklaf  selama  15  menit  pada  suhu 121˚C  dengan  tekanan  1  atm.  Nutrien  agar didinginkan kemudian dimasukkan ke dalam cawan  petri  masing-masing  15  ml  dan dibiarkan memadat.
c. Pembiakan bakteri Biakan  bakteri Staphylococcus  aureus dan Escherichia  coli ditanam  pada  medium Nutrien  Agar  (NA)  miring  dan  diinkubasi pada  suhu  37˚C    selama  24  jam.  1  ose  dari biakan  di  inokulasikan  kedalam  Nutrien Broth (NB) dan di inkubasi pada suhu 37˚C selama 24 jam.
d. Pengujian antibakteri
Medium nutrient agar sebelum digunakan dipanaskan  terlebih  dahulu  hingga  larut. Nutrient  agar  yang  telah  larut  disterilkan menggunakan  autoklaf  selama  15  menit, kemudian  nutrien  agar  yang  telah  steril didinginkan,  namun  diusahakan  jangan sampai  memadat.  Setelah  dingin  suspensi bakteri  dimasukkan  dan  dicampur  dalam medium  NA  hingga  homogen.  Medium yang sudah mengandung bakteri dituangkan ke  dalam  cawan  petri  hingga  memadat. Kertas  disk  dilumuri  dengan  infusa  daun duduk    ( Desmodium  triquetrum (L.)  DC) sesuai  konsentrasi  yang  ditentukan  yaitu 4%, 6%, 8% dan 10%. Untuk kontrol negatif kertas  disk  dilumuri  aquadest.  Sedangkan untuk  kontrol  positif  digunakan  kertas  disk yang  sudah  terisi  antibiotik  kloramfenikol dengan  dosis  30μg/ml.  Kemudian  semua
Vol. 3. No. 3 November 2019 p-ISSN: 2598-9944 e-ISSN: 2656-6753
kertas  disk  diletakkan  diatas  medium  yang sudah memadat sesuai kelompoknya. Kelompok  I:  Cawan  petri  berisi  bakteri Escherichia  coli untuk      pengujian  kontrol positif  kloramfenikol  30μg/ml  dan  kontrol negatif berupa aquadest.
Kelompok  II:  Cawan  petri  berisi  bakteri Staphylococcus  aureus untuk  pengujian kontrol  positif  kloramfenikol  30μg/ml  dan kontrol negatif berupa aquadest.
Kelompok  III:  Cawan  petri  berisi  bakteri Escherichia  coli untuk  pengujian  infusa daun  duduk  ( Desmodium  triquetrum (L.) DC)  dengan  konsentrasi  4%,  6%,  8%  dan 10%.
Kelompok  IV:  Cawan  petri  berisi  bakteri Staphylococcus  aureus untuk  pengujian infusa  daun  duduk( Desmodium  triquetrum (L.)  DC)  dengan  konsentrasi  4%,  6%,  8% dan 10%.
Setelah  itu  medium  diinkubasi  pada 37°C  selama  24  jam  dengan  posisi  terbalik. Pada  tiap  perlakuan  dilakukan  perulangan sebanyak 3 kali.
Hasilnya diperoleh dengan
mengukur  zona  hambatan  pertumbuhan bakteri Escherichia coli dan Staphylococcus aureus. pada  masing-masing  cawan  petri menggunakan  jangka  sorong.  Kemudian untuk tiap konsentrasi dihitung rata-rata dari hasil yang diperoleh.

## D. Analisa data
Data  hasil  pengujian  dianalisis  dengan uji  non  parametrik  Kruskal-Wallis,  karena data  terdistribusi  normal  tetapi  tidak homogen.  Kemudian  dilanjutkan  dengan  uji Mann-Whitney.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Determinasi tanaman dilakukan di Laboratorium  Ekologi  dan  Biosistematik Jurusan Biologi Fakultas MIPA
Universitas  Diponegoro  Semarang.  Hasil determinasi  tanaman  daun  duduk  sebagai berikut: 1b, 2b, 3b, 4b, 6b, 7b, 9b, 10b, 11b, 12b,  13b,  14a,  15a,  Golongan  8.  Tanaman dengan  daun  tunggal  dan  tersebar.  119b, 120b,  128b,  129b,  135b,  136b,  139b,  140b, 142b,  143b,  146b,  154b,  155b,  156b,  162b, 163b,  167b,  169b,172b,  173a,  Famili  60: Papilionaceae.  1b,  5a,  6b,  7b,  9a,  3.
Desmodium.
Species:
Desmodium triquetrum (L.) DC (Daun duduk).
Berdasarkan  hasil  determinasi  dapat diperoleh  kepastian  bahwa  tumbuhan  yang digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah Desmodium  triquetrum (L.)  DC  atau tanaman  daun  duduk.  Surat  dan  keterangan mengenai  determinasi  yang  telah  dilakukan dapat dilihat pada lampiran 1.
A. Pembuatan larutan uji
1. Sediaan bakteri
Bakteri  yang digunakan dalam penelitian ini  adalah Staphylococcus  aureus dan Escherichia coli . Bakteri didapat dari bagian laboratorium mikrobiologi Universitas Diponegoro Semarang, dengan media inokulasi NA (Nutrient Agar).
2. Pembuatan simplisia daun duduk
Simplisia  daun  duduk  dibuat  dengan mengambil  1  kg  daun  duduk  yang  sudah dicuci,  setelah  itu  dikeringkan  dengan menggunakan  oven  pada  suhu  60˚C  selama 20  jam.  Hal  ini  bertujuan  agar  proses pengeringan  lebih  cepat  dan  merata.  Suhu 60˚C  selama  20  jam  dipilih  agar  zat  aktif dalam daun duduk tidak rusak karena proses pengeringan  tersebut.  Setelah  daun  duduk benar-benar  kering,  kemudian  dibentuk menjadi  serbuk  dengan  bantuan  blender. Pemakaian  blender  bertujuan  agar  hasil serbuk  menjadi  homogen  selain  prosesnya cepat  dan  praktis.  Kemudian  serbuk  diayak dengan  ayakan  nomor  30M  dan  hasil  yang masih  kasar  diblender  dan  diayak  kembali, semua  hasil  dikumpulkan  dan  siap  untuk dibuat infusa.
3. Pembuatan infusa daun duduk
Daun  duduk  yang  sudah  halus  dibuat infusa  sesuai  dengan  kadarnya  masing- masing  diambil  4  g,  6  g,  8  g,  dan10  g ditambah  aquadest  100  ml,  kemudian masukkan  kedalam  panci  infusa  dan panaskan  hingga  suhu  di  dalam  panci mencapai  90⁰  C,  dengan  sesekali  diaduk. Sediaan  disaring  selagi  panas menggunakan kain  flanel.  Apabila  volume  air  belum mencapai 100 ml, bilas ampasnya menggunakan  air  panas  hingga  diperoleh volume 100 ml.
Vol. 3. No. 3 November 2019 p-ISSN: 2598-9944 e-ISSN: 2656-6753
4. Identifikasi Tanin Tanaman Desmodium  triquetrum (L.) DC kaya akan kandungan kimia. Kandungan yang sudah diketahui antara lain daun  mengandung  tanin,  alkaloid  hipaforin, trigonelin,  bahan  penyamak,  asam  silikat, dan  K 2 O.  Buah  mengandung  saponin,  dan flavonoid.  Akar  mengandung  saponin, flavonoid,  dan  tanin.  Herbal  ini  rasanya sedikit pahit dan sejuk (Anonim, 2008).
Dalam  penelitian  ini  senyawa  yang digunakan adalah tanin yang terdapat dalam daun.  Oleh  karena  itu  dilakukan  pengujian secara  kualitatif  menggunakan  reaksi  kimia dengan  melihat  perubahan  warna  pada infusa  saat  ditambah  FeCl 3. Jika  infusa menghasilkan  warna  biru  maka  dikatakan tumbuhan tersebut mengandung tanin golongan  pirogalatanin,  Berbeda  jika  warna yang muncul saat penambahan  FeCl 3 adalah warna  hitam  kehijauan  ini  menunjukan bahwa  jenis  tanin  yang  ada  adalah  katekol. Untuk  identifikasi  tanin  secara  umum digunakan  penambahan  kalium  ferrisianida dan  amoniak  pada  infusa,  jika  memberikan warna  coklat  maka  ekstrak  tersebut  benar mengandung tanin.
Identifikasi tanin secara umum menunjukkan  bahwa  infusa  daun  duduk ( Desmodium  triquetrum (L.)  DC.)  memang benar mengandung senyawa tanin ditunjukkan dengan perubahan warna coklat pada  infusa  tersebut.  Berdasarkan  hasil reaksi  spesifik  yaitu  dengan  penambahan FeCl 3 padalarutan  infusa  daun  duduk ( Desmodium triquetrum (L.) DC.) diperoleh hasil  berupa  perubahan  warna  yang  pekat pada  infusa  daun  yaitu  warna  hitam kehijauan. Perubahan warna
ini
menunjukkan  bahwa infusa  termasuk  dalam tanin golongan katekol.
B. Pengujian infusa daun duduk terhadap bakteri Staphylococcus  aureus dan
Escherichia coli Uji aktivitas senyawa antibakteri menggunakan  metode  difusi  yaitu  metode cakram. Pengujian diawali dengan inokulasi bakteri  pada  media  cair  (NB)  dan diinkubasikan  hingga  24  jam.  Media  padat (NA)  yang  sudah  disterilkan  didinginkan
hingga  mencapai  suhu  dibawah  50 o C. Kemudian  dihomogenkan  dengan  NB  yang berisi  bakteri  uji.  Selanjutnya  Media  Agar yang  sudah  mengandung  bakteri  dituang dalam cawan petri steril dan didiamkan pada suhu  kamar  sehingga  memadat.  Dalam pengujiannya infusa dalam berbagai konsentrasi  dilumuri  pada  disk  kosong (Absorbance  disk)  yang  nantinya  ditaruh diatas  media  agar.  Untuk  perlakuan  kontrol negatif digunakan aquadest, sedangkan pada kontrol  positif  digunakan  disk  yang  sudah terisi  antibiotik  kloramfenikol.  Pemilihan jenis  antibiotik  didasarkan  pada  kesamaan mekanisme  kerja  pada  senyawa  tanin  yaitu menghambat sintesis protein kuman.
Cawan petri yang sudah terisi selanjutnya diinkubasikan  pada  suhu  37 o C  selama  24 jam.    Setelah  lewat  masa  inkubasi  diameter hambat  yang  terbentuk  berupa  daerah bening  diukur  sebagai  parameter  untuk menentukan  besarnya  aktivitas  antibakteri. Kemudian  dilakukan  pengukuran  zona hambatan yang terbentuk disekeliling lubang  dengan  menggunakan  jangka  sorong (ketepatan 0,02 mm).
Gambar 1. Uji aktivitas infusa daun duduk terhadap bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia coli.
A.kontrol positif, B.kontrol negatif, 1. 4 %, 2. 6%,  3. 8%, 4. 10%.
Vol. 3. No. 3 November 2019 p-ISSN: 2598-9944 e-ISSN: 2656-6753
Tabel  1.  Diameter  zona  hambatan  yang dihasilkan  oleh  perlakuan  infusa  daun duduk  ( Desmodium  triquetrum (L.)  DC) terhadap bakteri Escherichia coli
Tabel  2.    Diameter  zona  hambatan  yang dihasilkan  oleh  perlakuan  infusa  daun duduk  ( Desmodium  triquetrum (L.)  DC) terhadap bakteri Staphylococcus aureus Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa infusa  daun  duduk  ( Desmodium  triquetrum (L.)  DC).  ternyata  mampu  menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus maupun Escherichia  coli secara in-vitro, yang ditunjukkan dengan terbentuknya zona hambatan  di  sekitar  absorban  disc.  Hasil pengujian  aktivitas  antibakteri  daun  duduk terlihat dalam gambar 6.
Nilai  diameter  zona  hambat  hasil  uji aktivitas  infusa  daun  duduk    ( Desmodium triquetrum (L.)  DC)  terhadap Escherichia coli dapat dilihat pada Tabel 1, dan terhadap Staphylococcus  aureus dapat  dilihat  pada Tabel  2.  Zona  hambat  yang  terbentuk menunjukkan  bahwa  infusa  daun  duduk ( Desmodium triquetrum (L.) DC)
mempunyai efek sebagai antibakteri.

## KESIMPULAN
Penelitian  uji  daya  antibakteri  infusa daun  duduk  ( Desmodium  triquetrum (L.) DC.)  terhadap  bakteri E.  coli dan S.  aureus secara in  vitro dapat  disimpulkan  sebagai berikut :
1. Infusa daun duduk ( Desmodium
triquetrum (L.)  DC.)  memiliki  daya
hambat  antibakteri  terhadap Escherichia coli dan Staphylococcus aureus.
2. Daya hambat Infusa daun duduk ( Desmodium  triquetrum (L.)  DC.)  yang sebanding dengan kloramfenikol terhadap E.coli dan S.aureus adalah  4%,  6%,  8% dan  10%,  sedangkan  terhadap E.coli masing-masing  adalah  (3112  ±  0,024); (4,124  ±  0,144)  ;  (4,936  ±  0,243)  dan (5,272  ±  0,075)  cm , dan  pada S.aureus masing-masing  adalah  (3,784  ±  0,197); (4,168  ±  0,177);  (4,596  ±  0,100)  dan (5,365 ± 0,221) cm
SARAN 1. Perlu  dilakukan  penelitian  lebih  lanjut tentang  uji  daya  antibakteri  daun  duduk ( Desmodium  triquetrum (L.)  DC.)  dalam bentuk sediaan lain.
2. Perlu  dilakukan  penelitian  lebih  lanjut tentang  uji  daya  antibakteri  daun  duduk
( Desmodium triquetrum (L.) DC.) terhadap jenis bakteri lain.

## REFERENSI
Anonim, 2008, Buku Pintar Tanaman Obat , cetakan 1, Agromedia Pustaka. Depkes,  2000, Inventaris  Tanaman  Obat Indonesia , Jilid 1, Departemen Kesehatan  dan  Kesejahteraan  Sosial Republik Indonesia,Jakarta.
Gibson,  J.  M.,  1996, Mikrobiologi  dan Patologi  Modern  Untuk  Perawat ,
Cetakan  Pertama,  Buku  Kedokteran EGC, Jakarta.
Harborne.  J.  B.,  1996, Metode  Fitokimia Penuntun  Cara  Modern  Menganalisa Tumbuhan, diterjemahkan oleh
Padmawinata,  K.,  dan  Soediro,  I., penerbit ITB, Bandung.
Jawetz,  E.,  Melnick,  J.L.,  Adelberg,  E.A.,
2001, Mikrobiologi  Kedokteran ,  Edisi XXII,  diterjemahkan  oleh  Bagian
Mikrobiologi Fak.Kedokteran Universitas Airlangga, Penerbit Salemba Medika, Jakarta.
Jawetz,  E.,  Melnick,  J.L.,  Adelberg,  E.A.,
2001, Mikrobiologi  Kedokteran ,  Edisi XXII,  diterjemahkan  oleh  Bagian
Mikrobiologi Fak.Kedokteran Universitas Airlangga, Penerbit Salemba Medika, Jakarta.
Vol. 3. No. 3 November 2019 p-ISSN: 2598-9944 e-ISSN: 2656-6753
Muhlisah,  F.,  1999, Taman  Obat  Keluarga,
Penebar Swadaya, Jakarta. Pelczar,  J.M.,  dan  Chan,  E.C.S.,  1988. Dasar-dasar  Mikrobiologi  1 .  Penerbit UI Press, Jakarta. Tjay,  T.H.,  dan  Raharja,  K.,  2007, Obat  –
Obat  Penting  Khasiat,  Penggunaan dan Efek – Efek Sampingnya , edisi VI,
Penerbit  PT  Elex  Media  Komputindo, Jakarta. Volk  dan  Wheeler,  1993, Mikrobiologi Dasar , jilid I Edisi Kelima, Erlangga.