## Jurnal Pendidikan Fisika dan Sains (JPFS)
Journal homepage: http://journal.unucirebon.ac.id/index.php/jpfs

## Kelimpahan dan Kandungan Gizi Biofilm Sebagai Alternatif Pakan Alami
Nurul Ekawati * 1
1 Fakultas Teknologi Kelautan dan Perikanan, Universitas Nahdlatul Ulama Cirebon, Kota Cirebon 45134, Indonesia E-mail: e86xa.nta@gmail.com

## ABSTRAK
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  kelimpahan  dan  kadungan  gizi  yang  terdapat  dalam biofilm.  Metode  penelitian  yang  digunakan  yaitu  deskriptif  dengan  cara  membadingkan  data  dan literatur  yang  ada.  Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  kelimpahan  tertinggi  pada  kelas Bacillariophyceae dan biofilm memiliki kandunga gizi sebesar 80,18% kadar air, 19,05% protein, dan 2,92% lemak. Kandungan gizi tersebut baik untuk pertumbuhan ikan.
Kata kunci: kandungan gizi biofilm, kelimpahan biofilm dan pakan alami
@2020 Pendidikan Fisika FKIP Universitas Nahdlatul Ulama Cirebon __________________________________________________________________________________

## PENDAHULUAN
Pesatnya  usaha  budidaya  ikan  menyebabkan  peranan  pakan  semakin  besar.  Pada  benih  ikan pakan  yang  digunakan  adalah  pakan  alami,  seperti  plankton,  ganggang  atau  tumbuhan  air  lainnya. Pakan  alami  merupakan  salah  satu  input  penting  yang  mempengaruhi  keberhasilan  budidaya (Masyamsir  2001).  Pakan  alami  mengandung  nilai  gizi  yang  lengkap  dan  mudah  dicerna  oleh  larva ikan serta tidak mencemari wadah pemeliharaan.
Meningkatnya kebutuhan pakan alami untuk usaha budidaya menyebabkan harga pakan alami di pasaran  menjadi  tinggi,  sedangkan  kebutuhan  pakan  mempengaruhi  biaya  operasional.  Sehingga dibutuhkan pakan alami yang terjangkau bagi usaha budidaya ikan.  Salah satu alternatif pakan alami yang dapat digunakan adalah Biofilm.
Biofilm terbentuk secara cepat dalam sistem yang mengalir dimana suplai nutrisi tersedia secara teratur  bagi  mikroorganisme.  Pertumbuhan  mikroorganisme  disertai  oleh  sejumlah  besar  polimer ekstraseluller sehingga  menyebabkan  pembentukan  lapisan berlendir  (Jamilah  2003).  Perkembangan biofilm  merupakan  proses  akumulasi,  yaitu  proses  peningkatan  biomassa  dengan  bertambahnya waktu.  Pola  akumulasi  diakibatkan  oleh  adanya  interaksi  sifat-sifat  fisika  dan  kimiawi  lingkungan dengan  berbagai  proses  biologis  termasuk  kolonisasi,  pertumbuhan,  reproduksi,  kompetisi,  predasi, dan  kematian.  Proses  kolonisasi  merupakan  pembentukan  koloni  biofilm  pada  substrat  yang berlangsung setelah biofilm menempel pada substrat (Nasriana 2003).
Dampak positif biofilm yaitu dapat memurnikan air dengan cara menguraikan senyawa-senyawa berbahaya  dalam  perairan. Manfaat  biofilm  dalam  kegiatan  budidaya  yaitu  dapat  digunakan  sebagai pakan alami ikan, tidak mencemari wadah budidaya, dan dapat meningkatkan imunitas (Irianto 2007).
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  kelimpahan  dan  kadungan  gizi  yang  terdapat  dalam biofilm, sehingga dapat menjadi alternatif pakan alami.

## METODE

## Tempat Penelitian
Penelitian  dilaksanakan  di  Laboratorium  Basah  Instalasi  Riset  Plasma  Nutfah  Perikanan  Air Tawar, Balai Riset Perikanan Budidaya Air Tawar, Cijeruk- Bogor.

## Alat dan Bahan
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah kolam pengendapan berukuran (8 x 5 x 1,8) m3. Bambu dengan panjang 6 meter sebanyak 12 buah untuk penyangga dalam perendaman biofilm di kolam pengendapan. Tali raffia. Mikroskop merk olympus, untuk mengidentifikasi organisme yang menempel  pada  lapisan  biofilm.  Objek  glass  dan  cover  glass,  untuk  membuat  preparat  dan  penutup preparat.  Botol  film.  Pipet  tetes.  Timbangan  elektrik  dengan  ketelitian  0,1  gram  digunakan  untuk menimbang bobot biofilm. Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah biofilm, yang tersusun dari  plastik  mika  transparan  (bening)  ukuran  legal  (21,5  x  33  cm2)  sebagai  lapisan  untuk  biofilm sebanyak 200 lembar. Pupuk anorganik (N 10,26%, P 6,98%, K 0,34%). Lugol 5%. Aquades.

## Metode Penelitian
Metode penelitian yang digunakan adalah metode deskriptif.

## Prosedur Penelitian
Prosedur pembuatan biofilm yaitu persiapan kolam perendaman biofilm. Kolam diisi air dengan ketinggian  90  cm,  kemudian  kolam  dipupuk  sebanyak  240  gram.  Pemupukan  dilakukan  setiap  lima hari  sekali.  Pemupukan  dilakukan  dengan  tujuan  untuk  meningkatkan  produksi  alami  kolam (Djajasewaka  et  al.,  2007).  Pembuatan  biofilm  dengan  cara  merendam  plastik  mika  dalam  kolam pengendapan selama 10 hari. Satu kali perendaman sebanyak 20 lembar plastik mika. Perendaman ke dua  dilakukan  tiga  hari  setelah  peredaman  pertama,  sehingga  biofilm  dapat  dipanen  setiap  tiga  hari sekali.  Pengamatan  mikroorgaisme  yag  menempel  dan  kelimpahan  biofilm  diambil  20%,  yaitu sebanyak  4  buah  lapisan  biofilm.  Untuk  mengetahui  kandugan  gizi  dari  pakan  alami  biofilm  ini dilakukan analisis proksimat, dengan sampel seberat 5 gram.

## Parameter Pengamatan Komposisi dan Kelimpahan Biofilm
Mengamati  jenis-jenis  organisme  apa  saja  yang  menempel  pada  plastik  mika  yang  direndam dalam  kolam  pengendapan.  Pengamatan  ini  dilakukan  setiap  pemanenan  lapisan  biofilm  yaitu  tiga hari sekali. Kelimpahan Biofilm dihitung atas dasar perhitungan plankton, yaitu berdasarkan Inverted Microscope Method Counts (APHA 2012).
As x Vs x Ac Vt x At x n N  APHA 2012 Keterangan: N = jumlah biofilm (ind/cm2) n = jumlah biofilm yang tercacah (ind) At = luas cover glass (18 x 18 mm) Vt = volume konsentrat pada botol contoh (30 ml) Vs = volume pada objek glass (0,05 ml) As = luas plastik mika yang dikerik (cm2) Ac = luas amatan (3,14 x 9 x 3 mm)

## Bobot biofilm
Bobot biofilm dihitung dengan cara mengurangi bobot basah plastik mika yang sudah ditempeli biofilm dengan bobot basah plastik mika sebelum ditempeli biofilm.

## Kandungan Gizi
Untuk mengetahui kadar air, protein, lemak, serat, mineral, kadar abu, dan fosfat maka dilakukan analisis proksimat.

## Kualitas air
Pengukuran  kualitas  air  dilakukan  tiga  kali  yaitu  pada  awal,  tengah  dan  akhir  penelitian. Parameter kualitas air yang diamati antara lain suhu, DO, pH, dan kecerahan (Tabel 1).
Tabel 1 . Metode Pengukuran Parameter Kualitas Air No Parameter Satuan Alat 1 Suhu o C Thermometer air raksa 2 DO mg/L DO meter 3 pH - pH meter 4 Kecerahan cm Sechidish

## Analisis Data
Analisis data komposisi biofilm dilakukan dengan cara mengamati jenis organisme dan analisis data  kelimpahan  biofilm  dihitung  menggunakan  rumus  APHA.  Bobot  biofilm  dianalisi  dengan  cara menimbang bobot biofilm dan kandungan gizi biofilm dilakukan dengan cara analisis proximat.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Komposisi dan Kelimpahan Biofilm
Organisme  yang  menepel  pada  lapisan  biofilm  beraneka  ragam,  antara  lain  Bacillariophyceae, Chlorophyceae,  dan  Cyanophyceae.  Kelas  Bacillariophyceae  pada  setiap  sampel  biofilm  antara  lain Nitzschia, Navicula, Cymbella, Cyclotella, Gyrosigma, Diatom, Pinularia, dan Tabellaria. Genus yang mendominasi  ialah  Nitzschia.  Kelas  Chlorophyceae  pada  setiap  sampel  biofilm  antara  lain Coelastrum,  Spirogyra,  Scenedesmus,  Pediastrum,  Ankistrodesmus,  dan  Eudorina,  Genus  yang mendominasi  ialah  Scenedesmus.  Kelas  Cyanophyceae  pada  setiap  sampel  biofilm  antara  lain Oscilatoria, Spirulina, dan Microcystis. Genus yang mendominasi pada biofilm ke 1, 2, 3, 8, 9 dan 10 ialah  Oscilatoria,  sedangkan  genus  yang  mendominasi  pada  biofilm  ke  4,  5,  6,  dan  7  ialah Microcystis. Kelimpahan yang terbesar yaitu pada kelas Bacillariophyceae, hingga penelitian berakhir kelimpahan yang tertinggi masih pada kelas Bacillariophyceae (Gambar 1).

## Gambar 1. Kelimpahan Biofilm
Bacillariophyceae  memiliki  kelimpahan  tertinggi  dari  kelas  lainnya,  hal  ini  disebabkan  biofilm dari  kelas  Bacillariophyceae  merupakan  biofilm  yang  umum  dijumpai  di  perairan  dan  memiliki kemampuan untuk mentolelir keadaan lingkungan serta suhu dalam kolam perendaman sangat cocok untuk pertumbuhan biofilm dari kelas Bacillariophyceae tersebut (Junda et. al 2013). Effendi (2003) menyatakan  bahwa  alga  dari  filum  Chlorophyta  dan  acillariophyta  akan  tumbuh  baik  pada  kisaran suhu  30-35oC  dan  20-30oC,  sedangkan  jenis  Chyanophyta  lebih  dapat  bertoleransi  terhadap  kisaran suhu yang lebih tinggi.
Kelimpahan biofilm terus mengalami penurunan, hal ini diduga karena semakin banyak subtract yang  direndam  sehingga  nutrisi  yang  ada  pada  kolam  perendaman  tidak  mencukupi.  Menurut Aprisanti  et.  al  (2013)  fosfat  merupakan  unsur  penting  diperairan  untuk  proses metabolisme  diatom dan fosfat juga merupakan faktor pembatas bagi kelimpahan dan pertumbuhan diatom.

## Bobot biofilm
Bobot  biofilm  selama  penelitian  mengalami  penurunan  terus  menerus  (Tabel  2),  hal  ini  diduga karena semakin banyak substrat yang dimasukkan ke dalam kolam sehingga nutrien yang terkandung dalam  kolam  tersebut  tidak  mencukupi.  Pada  umumnya  kesuburan  kolam  ditandai  dengan  adanya bahan  organik,  bakteri,  phytoplankton  dan  zooplankton  yang  dapat  dimanfaatkan  oleh  ikan-ikan berukuran kecil (Djajasewaka et. al 2007).
Tabel 2 . Bobot Biofilm Biofilm ke- Bobot Biofilm (gram) 1 3,5 2 3,5 3 3,1 4 3,1 5 2,8 6 2,5 7 2,2 8 1,9 9 1,8 10 1,5

## Kandungan Gizi
Kandungan  protein  dalam  pakan  akan  mempengaruhi  pertumbuhan  ikan.  Menurut  Lukito  dan Prayugo  (2007),  protein  dalam  pakan  berperan  untuk  pembentukan  jaringan  dan  bahan  pembentuk energi. Apabila kandungan protein dalam pakan rendah, maka diperlukan pemberian pakan yang lebih banyak  untuk  menghasilkan  laju  pertumbuhan  yang  sama  dengan  pakan  yang  mengandung  kadar protein  yang  lebih  tinggi  (Buwono  2000).  Kadungan  gizi  pada  biofilm  dapat  dilihat  pada  tabel  3  di bawah ini.
Tabel 3. Kadungan Gizi Biofilm Komposisi Nutrisi Kadungan gizi (%) Kadar Air Protein Kasar Serat Kasar Lemak Kasar Abu Kalsium Fosfor 80,18 19,05 2,92
Balareddy  et.al  (2002),  dalam  Niken  et.  al  (2007),  menyatakan  bahwa  perifiton  atau  biofilm memiliki  peran  yang  sangat  penting  dalam  ekosistem  perairan.  Disampaikan  bahwa  biofilm  dapat dimanfaatkan  sebagai  pakan  alami  biota  komersial,  yaitu  tilapia  dan  abalone  yang  dilakukan  oleh petani  ikan  di  Sri  Langka.  Sebagai  pakan  alami,  perifiton  memiliki  keunggulan  diantaranya  karena memiliki nutrisi yang lengkap terutama trace element dan asam-asam amino (Niken et. al 2007).
Kandungan  protein  biofilm  mencapai  19,05.  Protein  merupakan  unsur  terpenting  untuk pertumbuhan  ikan,  dan  juga  untuk  menghasilkan  tenaga.  Umumnya  ikan  membutuhkan  protein sebesar 20-60% (Putranti et. al 2015).

## Kualitas Air
Pengukuran kualitas air dilakukan di kolam perendaman biofilm. Kualitas air kolam yang diukur meliputi suhu, pH, oksigen terlarut, dan kecerahan (Tabel 4).
Tabel 4. Kisaran Parameter Kualitas Air Kolam Perendama Biofilm Parameter yang Diukur Nilai Kualitas Air Sumber Penelitian Optimal Suhu Derajat Keasaman (pH) Oksigen Terlarut (DO) Kecerahan 24,3-24,5 o C 8,03-8,81 7,54-8,62 mg/L 10,5-13,8 cm 20-35 o C 8-9 > 5 mg/L 10-25 cm Suparlina 2003 Weitzel 1979 Hutagalung 1988 Weitzel 1979
Kisaran suhu dalam kolam perendaman adalah 24,3-24,5 oC. Suhu dalam kisaran tersebut masih dapat  digunakan  oleh  biofilm  untuk  melakukan  proses  fotosintesis  sehingga  biofilm  masih  dapat tumbuh  dengan  baik.  Suhu  optimal  untuk  pertumbuhan  biofilm  khususnya  Bacillariophyceae  adalah 20-35 oC (Junda et. al 2013). Nilai derajat keasaman (pH) yang optimal untuk perkembangan biofilm adalah 8-9 dan mulai menurun perkembangannnya pada pH 4,6-7,5 (Weitzel 1979). Nilai pH dalam kolam perendaman berkisar antara 8,03-8,81, hal ini dapat dikatakan cukup baik untuk perkembangan biofilm.  Oksigen  terlarut  (DO)  dalam  suatu  perairan  digunakan  untuk  proses  respirasi  biofilm. Kandungan  oksigen  terlarut  dalam  kolam  perendaman  yaitu  7,54-8,62  mg/L  masih  memenuhi persyaratan  batas  minimun  kadar  oksigen  terlarut  yang  terdapat  dalam  badan  perairan  yaitu  lebih
besar  dari  5  mg/L  (Hutagalung  1988).  Biofilm  membutuhkan  cahaya  untuk  proses  fotosintesis. Kisaran  nilai  kecerahan  yang  optimal  untuk  pertumbuhan  biofilm  adalah  10-25  cm  (Weitzel  1979). Nilai kecerahan dalam kolam perendaman adalah 10,5-13,8 cm, artinya cahaya hanya bisa menembus suatu perairan hanya sampai kedalam 13,8 cm saja sehingga biofilm pada kedalaman lebih dari 13,8 cm sulit untuk melakukan  fotosintesis dan menyebabkan bobot biofilm menurun. Parameter kualitas air  ini  sangat  penting  karena  jika  kualitas  airnya  sesuai  dengan  pertumbuhan  biofilm,  maka ketersediaan biofilm akan stabil sehingga dapat dijadikan alternatif pakan alami ikan.

## SIMPULAN
Kesimpulan  penelitian  ini  yaitu:  1)  kelimpahan  biofilm  yang  tertinggi  ada  pada  kelas Bacillariophyceae;  2)  bobot  biofilm  mengalami  penurunan;  3)  kadungan  gizi  biofilm  baik  untuk pertumbuhan ikan; 4) kualitas air kolam perendaman sesuai untuk pertumbuhan biofilm. Penelitian ini sebaiknya dilakukan penelitian kembali agar bobot biofilm tidak meurun.

## DAFTAR PUSTAKA
APHA  (American  Public  Health  Association).  (2012). Standart  Method  for  the  Examinition  of  Water  and Wastewater . APHA, AWWA ad WPCP. 20 th en. Washington D.C. 1527p.
Aprisanti,  R.,  Mulyadi,  A.,  dan  Siregar,  S.  H.  (2013).  Struktur  Komunitas  Diatom  Epilitik  Perairan  Sungai Senapelan dan Sungai Sait, Kota Pekanbaru. Jurnal Ilmu Lingkungan . 7, (2), 241-252.
Buwono, I. D. 2000. Kebutuhan Asam Amino Essensial dalam Ransum Ikan. Yogyakarta: Kanasius.
Djajasewaka,  H.,  Winarlin.,  R.  Samsudin.,  U.  Purwaningsih.,  dan  Z.  I.  Azwar.(2007). Perbaikan  Manajemen KolamPendederan  Ikan Nilem(Osteochillus hasselti) dengan Kedalaman Air 120 cm.
Effendi,  H.  (2003). Telaah  Kualitas  Air  bagi  Pengelolaan  Sumberdaya  dan  Lingkungan  Perairan .  Jakarta: Kanisius.
Hutagalung, H. P. (1988).  Pengaruh Air Terhadap Organisme Laut. Oseana. 13, (4), 153-164.
Irianto,  A.  (2007).  Potensi  Mikroorganisme  :  Diatas  Langit  Ada  Langit. Orasi  Ilmiah. Download  tanggal  15 Maret 2008.
Jamilah.  (2003).  Biofilm  sebagai  Mikrolingkungan  Bakteri  yang  Unik  :  Seberapa  Jauh  Kita  Mengenalnya?. Makalah Falsafah Sains . Institut Pertanian Bogor. Download tanggal 21 Maret 2008.
Junda, M., Hijriah., dan Y. Hala. (2013). Identifikasi Perifiton sebagai Penentu Kualitas Air pada Tambak Ikan Nila ( Oreochromis Niloticus ). Jurnal Bionature. 14, (1), 16-24.
Lukito, A., dan S. Prayugo. (2007). Panduan Lengkap Lobster Air Tawar. Jakarta: Penebar Swadaya.
Masyamsir.    (2001).    Budidaya  Pakan  Alami.  Modul    Program    Keahlian  Budidaya  Ikan.    Departemen Pendidikan  Nasional.    Proyek  Pengembangan  Sistem  dan  Standar  Pengelolaan  SMK.    Direktorat Pendidikan Menengah Kejuruan.  Jakarta. 45hlm.
Nasriana.  (2003).  Struktur  Komunitas  Mikrofauna  Perifiton  pada  Beberapa  Substrat  di  Tambak  Semi  Intensif Berkonstruksi  Beton  di  PT.  Hosana,  Tanggerang. Skripsi. Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu  Kelautan, Institut Pertanian Bogor. 26 hlm.
Niken,  T.  M.,  Enan,  M.  A.,  Bambang,  W.,  dan  Dedi,  S.  (2007).  Produktivitas  Diatom  Perifitik  yang Ditumbuhkan  pada  Tipe  Substrat  Berbeda  Setiap  Alternatif  Penyediaan  Pakan  Udang  Galah. Jurnal Biologi Indonesia. 4, (3), 177-191.
Putranti,  G.  P.,  Subandiyono,  dan  Pinandoyo.  (2015).  Pengaruh  Protein  dan  Energi  yang  Berbeda  pada Pakan Buatan terhadap Efisiensi Pemanfaatan Pakan dan Pertumbuhan Ikan Mas ( Cyprinus carpio ). Journal of Aquaculture Management and Technology, 4, (3), 38-45.
Weitzel,  R.L.  (1979).  Periphyton  Measurements  and  Application. Methodes  and  Measurements  of  periphyton Communities: A Review, ASTM STP 690. American Society for Testing and Materials. 3-33p.