## KARAKTERISASI BAKTERI TANAH PERTANIAN ORGANIK DAN TANAH PERTANIAN ANORGANIK DAN UJI ANTAGONIS TERHADAP
JAMUR AKAR PUTIH ( Rigidoporus microporus )

## Widya Lestari, Kamsia Dorliana Sitanggang, Budi Syahputra Munthe
Program Studi Agroteknologi, Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Labuhanbatu Jl. SM. Raja No. 126A Rantauprapat, Sumatera Utara E-mail : widyalestari1688@gmail.com

## ABSTRACT
Research  on  the  Characterization  and  Antagonist  Test  of  Organic  Soil  Bacteria  and Inorganic  Farm  Soils  Against  White  Root  Fungi  (Rigidoporus  microporus),  was  studied  at the USU FMIPA Microbiology Laboratory, Medan, in May 2018. The method used was the characterization  of  agricultural  soil  bacteria  with  scatter  plates  and  Yeast  media.  Extract 1%, obtained 3  soil bacterial isolates namely Sp01, Sp02 and Sp03 and 3 isolates from the inorganic agricultural soils Spa1, Spa2, and Spa3 which were characterized by shape, color, elevation edge and edge of the colony. Sp02 and Sp03 bacteria have greater ability to inhibit the growth of Rigidoporus microporus than Sp01 with inhibition zones of 2.5 and 3.5 mm. Sp a1  bacterium  has  the  highest  inhibitory  ability  of  30  mm  against Rigidoporus  microporus compared to Spa2 and Spa3.

## Keywords: Bacteria, Rigidoporus microporus, Faarm soils

## PENDAHULUAN

## 1.1.Latar Belakang
Petani di indonesia selalu menggunakan bahan kimia dalam pengendalian  penyakit  jamur  akar  putih, maka  peneliti  ingin  melakukan  penelitian dengan  menggunakan  isolat  bakteri  dari tanah pertanian organik dan tanah pertanian anorganik. secara umum didalam tanah pertanian organik dan tanah pertanian anorganik terdapat banyak bakteri,  sementara  jamur  akar  putih berkembang  di  dalam  tanah  dengan  cara menyerang  pada  bagian  akar  tanaman, maka  peneliti  ingin  mengkarakterisasi
bakteri  yang  ada  pada  tanah  pertanian organik  dan  tanah  pertanian  anorganik untuk  menghambat  pertumbuhan  jamur akar putih. penyakit akar putih disebabkan oleh  jamur  yang  lazimnya  disebut  jamur akar  putih.  Nama  ilmiah  jamur  ini  adalah ( Rigidoporus microporus ) (Klotzsch)
Imazeki atau R.  microporus ,  meskipun sampai  sekarang  jamur  ini  sering  dikenal dengan  nama Fomes  lignosus  (Klotzsch) Bres (Semangun, 2000).
Pengendalian  penyakit  JAP  yang lebih  ramah  lingkungan  telah  dilaporkan
sebelumnya misalnya penggunaan tanaman  penutup  tanah  dan  pemanfaatan agens  biokontrol  (ABK). Trichoderma
spp. pernah digunakan pada tanaman karet sebagai  pupuk  biologis  dan  dilaporkan dapat meningkatkan produksi karet hingga 25%. Pemanfaatan agens biokontrol
seperti Trichoderma spp (Nurhayati, 2011).
Sumatera  Utara  memiliki  luas lahan  perkebunan  karet  sebesar  419.097 hektar dengan total produksi 387.366,04
ton.  Terdapat  25  kabupaten  di
Sumatera  Utara  yang  membudidayakan tanaman karet. Dari daerah-daerah tersebut ada  beberapa  kabupaten  yang  menjadi daerah budidaya terluas diantaranya adalah Mandailing  Natal,  Langkat,  Tapanuli Tengah,  Tapanuli  Selatan,  Nias,  Padang Lawas  Utara,  Asahan,  Serdang  Berdagai, Labuhan  Batu  dan  Simalungun  (Badan Pusat  Statistik,  2013) . Kabupaten  Asahan merupakan  salah  satu  sentra  perkebunan karet  di  Sumatera  Utara.  Produksi  karet mengalami  penurunan  dari  7.934,88  ton pada  tahun  2011  menjadi  5.073,79  ton pada  tahun  2014  dengan  luas  lahan 5.252,21  ha  (Dinas  Kehutanan  dan Perkebunan  Kabupaten  Asahan,  2015). Penurunan hasil produksi karet disebabkan karena  adanya  penyakit  jamur  akar  putih pada tanaman karet. Untuk itu dicari suatu alternatif  pengendalian  hayati  dengan
menggunakan  bakteri  yang  diisolasi  dari tanah pertanian organik dan anorganik.

## 1.2. Tujuan Penelitian
1. Untuk  mendapatkan  isolat  bakteri dari  tanah  pertanian  organik  dan tanah pertanian anorganik.
2. Mengetahui kemampuan isolat bakteri dari tanah pertanian organik dalam  menghambat  pertumbuhan jamur  akar  putih  ( Rigidoporus microporus ).

## 1.3 . Manfaat Penelitian
Sebagai  bahan  informasi  dan  data awal  bagi  peneliti  dan  petani  untuk pengendalian  jamur  akar  putih  secara biologi.

## METODOLOGI PENELITIAN

## 2.1. Tempat Dan Waktu
Penelitian ini dilakukan pada bulan Mei 2018 sampai Juni 2018 di Laboratorium Mikrobiologi FMIPA Universitas Sumatera Utara (USU) Medan.

## 2.2. Bahan Dan Alat
Alat  yang digunakan adalah cawan petri,  tabung  reaksi,  spatula,  timbangan analitik,  magnetik  stirel,  aluminium  foil, kapas,  benang  wol,  kertas  bekas,  kertas lebel,  cling  warp,  gelas  ukur,  beker  gelas, pipet  tetes,  autoclave,  vorteks,  inkubator, oven, jarum ose lurus, jarum ose bengkok.
Bahan  yang  digunakan  adalah  aquades, media  NA  (Natrium  Agar),  blank  disk oxoid,  alkohol,  spiritus,  antibiotik  dan ketoconazole.

## 2.3 Metode Analisa
Data  –  data  yang  didapatkan  dari penelitian  ini  selanjutnya  dianalisa  secara deskirptif.

## PELAKSANAAN PENELITIAN

## 3.1. Lokasi Pengambilan Sampel
Sampel tanah  organik  diambil  dari lahan  pertanian  organik  yang  berada  di Desa  Tebing  Tinggi  Kec.  Pangkatan  Kab. Labuhan  Batu,  Sumatera  Utara  dan sampel  tanah  anorganik  di  ambil  dari pertanian  yang  berada  di  Desa  Sumber Mulyo,  Kec.  Marbau,  Kab.  Labuhanbatu Utara, Sumatera Utara.

## 3.2. Pembuatan Media
Media  Nutrient  Agar  (NA)  di timbang  2,8  gram  dimasukkan  ke  dalam erlenmeyer, ditambahkan 100 ml aquades , diaduk  dan  dipanaskan  diatas  hotplate sampai mendidih , setelah itu ditutup pakai kapas  yang  dibungkus  aluminium  foil diikat  pakai  benang  wol,  dibungkus  pakai kertas  dan  dimasukkan  ke  autoclave, siapkan  petri  steril,  tuang  media  kedalam petri dan diamkan hingga memadat.

## 3.3. Sterilisasi Alat dan Bahan
Sterilisasi  alat  dilakukan  dengan mencuci  bersih  dan  keringkan  alat-alat yang  terbuat  dari  kaca  dan  keringkan dengan kertas. Kemudian alat-alat tersebut disusun  kedalam  autoclave.  Bahan-bahan yang perlu dilakukan proses sterilisasi juga ikut  dimasukan  di  dalam au  toklaf  dengan suhu  121 0 C  selama  20  menit  dengan tekanan 15 psi.

## 3.4.  Pembuatan  Aquadest  Steril  Untuk Pengenceran
Disediakan erlenmeyer yang berukuran  1000  ml  dimasukan  600  ml  air aquadest  kemudian  ditutup  dengan  kapas yang  telah  dilapisin  alumunium  foil kemudian  diikat  dengan  benang  wol kemudian diberi label dimasukan ke dalam outoclave.

## 3.5. Isolasi Bakteri Dari Tanah Organik dan Anorganik
Ditimbang  tanah  organik  sebanyak 10  gram  kemudian  dimasukan  kedalam tabung  reaksi  pertama  yang  berisi  air aquadest  steril  10  ml  kemudian  divorteks sampai  homogen,  kemudian  ambil  1  ml masukan  kedalam  tabung  reaksi  yang kedua  berisi  air  aquadest  sebanyak  9  ml, lakukan  berulang  sampai  tabung  yang  ke 6,  dari  tabung  ke  6  diambil  sebanyak  0,1 ml  dimasukan  ke  dalam  cawan  petri  yang berisi media Na dan disebar dengan hocky
stick,  ditutup  dengan  kertas  dan  diberi label kemudian di inkubasi.
Ditimbang tanah anorganik sebanyak  10  gram  kemudian  dimasukan kedalam tabung reaksi pertama yang berisi air  aquadest  steril  10  ml  kemudian divorteks  sampai  homogen,  kemudian ambil  1  ml  masukan  kedalam  tabung reaksi  yang  kedua  berisi  air  aquadest sebanyak  9  ml,  lakukan  berulang  sampai tabung yang ke 6, dari tabung ke 6 diambil sebanyak  0,1  ml  dimasukan  ke  dalam cawan  petri  yang  berisi  media  Na  dan disebar dengan hocky stick, ditutup dengan kertas dan diberi label kemudian diinkubasi.

## 3.6. Uji  Antagonis  Bakteri  Tanah

## Organik dan Anorganik
Ditimbang  media Nutrient  Agar NA 2,8 gram ke dalam erlenmeyer, setelah itu  ditambahkan  aquadest  100  ml,  di  aduk dipanaskan  diatas  hote  plate.  Setelah  itu dimasukan  ke  dalam  autoclave  untuk diseterilkan.
Disiapkan  petri  steril,  dituang media  NA    ke  dalam  petri  didiamkan hingga  memadat  setelah  itu  dibuat  garis kuadrat. Siapkan jamur akar putih diambil dengan  cork  boror,  setelah  itu  di inokulasikan jamur akar putih ( Rigidoporus  microporus )    ke  dalam  petri yang  mau  di  uji  antagonis.  Setelah diinkubasi  di  dalam  inkubator,  hari  ke-3
baru  di  inokulasikan  bakteri  hasil  isolasi dari tanah organik dan anorganik dilakukan pengamatan.

## 3.7. Karakterisasi Morfologi Isolat Bakteri
Isolat  bakteri  yang  diperoleh  dari tanah pertanian organik dan tanah pertanian  anorganik  dikarakterisasi  secara morfologi meliputi bentuk, warna, elevasi, tepi koloni.

## 3.8. Subkultur Bakteri
Ditimbang  media Nutrien  Agar (NA)  2,8  gram  masukkan  ke  dalam erlenmeyer Setelah itu tambahkan Aquadest  100  ml  dimasukan  ke  dalam erlenmeyer  diaduk  dipanaskan  diatas  hote plate,  kemudian  dimasukan  ke  kedalam autoclave  untuk  disterilkan.  Disiapkan petri  steril,  dituang  media Nutrient  Agar (NA)  ke  dalam  petri  di  diamkan  hingga memadat  setelah  itu  diambil  bakteri  dari petri  isolasi  awal  untuk  disubkultur  agar mendapatkan biakan murni.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1.  Hasil  Isolasi  Bakteri  Dari  Tanah

## Organik
Dari hasil isolasi diperoleh sebanyak  3  isolat  bakteri  dari  tanah organik  yaitu  Spo1,  Spo2,  dan  Spo3, selanjutnya dilakukan karakterisasi morfologi bakteri (Tabel 4.1.1).

## Tabel 4.1.1. Karakterisasi Morfologi Tanah Organik
No.   Spesies        Bentuk                 Tepi                  Elevasi                 Warna
1       Spo 1            Bulat                    Rata                 Cembung              Kuning ( Circular )             ( Entire )             ( Raised )
2       Spo 2       Berbenang           Bergelombang       Datar                Putih Susu
( Filamentous ( Undulate )            ( Flat )
3       Spo 3    Tidak Beraturan       Berlobus              Datar                Putih Susu
( Iregular )              ( Lobate )               ( Flat )

## Isolasi Awal
Spo 1 Spo 2 Spo 3

## 4.2 Hasil Isolasi Bakteri Dari Tanah Anorganik
Dari hasil isolasi diperoleh sebanyak 3 isolat bakteri dari tanah anorganik yaitu Spa1, Spa2, dan Spa3, selanjutnya dilakukan karakterisasi morfologi bakteri (Tabel 4.2.1).

## Tabel 4.2.1 Karakterisasi Morfologi Tanah Anorganik
No    Spesies         Bentuk             Tepi             Elevasi                  Warna
1        Spa1        Seperti Akar Curled Datar          Putih Kekuningan ( Rhizoid )                                    ( Flat )
2         Spa2           Bulat                  Rata                Datar                    Putih ( Circuar )            ( Entire )            ( Flat )
3         Spa3           Bulat                  Rata               Cembung             Kuning ( Circular )          ( Entire )            ( Raised )

## Isolat Awal

## Spa1                              Spa2                             Spa3

## 4.3. Identifikasi Morfologi Bakteri
Isolasi bakteri ini dilakukan bertujuan untuk memisahkan dan membiakkan  bakteri  yang  terdapat  di dalam  campuran  dengan  menggunakan media  kultur  sehingga  diperoleh  isolat bakteri  atau  biakkan  murni  dari  bakteri tersebut (Darwis dan Sukar, 1999).
Pada  proses  isolasi  ini  media  isolasi spesifik yang digunakan adalah media NA ( Nutrient  Agar ), Media  selektif  ini digunakan untuk menumbuhkan dan memelihara  bakteri  tertentu,  dengan  sifat kekhususannya  tersebut,  maka  media  ini
akan  menyeleksi  bakteri  yang  ingin ditumbuhkan yaitu Bakteri  Tanah Organik dan Anorganik.
4.4. Hasil Uji Antagonis Bakteri Tanah Organik ( TO ) Dan Anorganik ( TA )
Kemampuan antagonis bakteri tanah  organik  dan  anorganik  terhadap jamur  akar  putih  ( R.  microporus )  isolat bakteri  Spa1,  Spa2,  dan  Spa3  digunakan pada uji antagonis untuk melihat kemampuannya dalam menghambat pertumbuhan  jamur  akar  putih  ( R.
microporus ) (Gambar 4.4.1).
TO Spo1

## TO Spo2 TO Spo3
Gambar 4.4.1   Zona hambat isolat bakteri tanah organik, (a) merupakan zona hambat isolat bakteri tanah organik Spo1 terhadap jamur R. microporus dengan zona hambat sebesar Y 90 mm  dan  X  90  mm.  (b)  merupakan  zona  hambat  isolat  bakteri  tanah  organik  Spo2  terhadap jamur R.  microporus dengan  zona  hambat  sebesar  Y  31  mm  dan  X  26  mm.  (c)  merupakan zona  hambat  isolat  bakteri  tanah  organik  Spo3  terhadap  jamur R.  microporus dengan  zona hambat sebesar Y 40 mm dan X 33 mm.

## Tabel 4.4.2 Hasil Uji Antagonis Bakteri Tanah Organik
No.   Spesies      Diameter       Diameter               Y-X              Indeks Zona Y (mm)        X (mm)                    2                Hambat (mm)
1.     Spo1             90                  90                       90-90                      0 2 2 .    Spo2             31                  26                       31-26                     2,5 2 3.     Spo3             40                  33                       40-33                     3,5 2
Dari  Tabel  4.4.2    dapat  dilihat  bahwa zona  hambat  hasil  uji  antagonis  dari masing  masing  isolat  bakteri  tanah pertanian  organik  terhadap  jamur  akar putih R.  microporus bervariasi.  Hal  ini mungkin  disebabkan  karena  bakteri  tanah pertanian  organik  menghasilkan  senyawa metabolit  sekunder  yang  berbeda  beda. Mikroba  yang  memiliki  kemampuan sebagai  antimikroba  dapat  menghasilkan senyawa  antimikroba  yang  merupakan
metabolit  sekunder  yang  tidak  digunakan lagi  untuk  proses  pertumbuhan  (Schlegel, 1993),  tetapi    untuk  pertahanan  diri  dan kompetisi  dengan  mikroba  lain  dalam mendapatkan  nutrisi,  habitat,  oksigen  dan lain-lain.  Senyawa  antimikroba  tersebut dapat  dikelompokkan  sebagai  antibakteri dan antifungi (Cook & Baker 1974).
Mikroba  khususnya  bakteri  memiliki kemampuan  menghambat  pertumbuhan mikroba  lain  disebabkan  karena  bakteri
dapat  menghasilkan  senyawa  metabolit sekunder  seperti  senyawa  antimikroba, antibiotik  (Wright et  al .,  2001),  enzim pelisis  (Zhang  &  Yuen,  2000;  Kim et  al ., 2008) dan protein penghambat lain (Berdy,
2005; Borodina et al ., 2005; Lestari, 2001;
Price et al ., 1999).
Bakteri  yang  memiliki  zona  hambat paling besar adalah bakteri Sp3 yang dapat
menghambat jamur akar putih R. microporus dengan  zona  hambat  yang berkisar  3.5  mm.  Menurut  Bakri  (2009), Isolat bakteri tersebut memiliki kemampuan  antagonistik  yang  ditandai dengan  adanya  penghambatan  miselium jamur patogen tanaman dan pada akhirnya pertumbuhan hifa menipis, mengering dan mengalami abnormalitas.

## Gambar TA Spa.1           Gambar TA Spa.2       Gambar TA Spa.3
Gambar 4.4.3   Zona hambat isolat bakteri tanah organik, (a) merupakan zona hambat isolat bakteri tanah organik Spa1 terhadap jamur R. microporus dengan zona hambat sebesar Y 89 mm  dan  X  29  mm.  (b)  merupakan  zona  hambat  isolat  bakteri  tanah  organik  Spa2  terhadap jamur R.  microporus dengan  zona  hambat  sebesar  Y  66  mm  dan  X  48  mm.  (c)  merupakan zona  hambat  isolat  bakteri  tanah  organik  Spa3  terhadap  jamur R.  microporus dengan  zona hambat sebesar Y 30 mm dan X 22 mm.

## Tabel 4.4.4 Hasil Uji Antagonis Bakteri Tanah Anorganik
No.    Spesies      Diameter      Diameter               Y-X               Indeks Zona Y (mm)         X (mm)                   2                 Hambat (mm)
1.        Spa1              89                   29                     89-29                     30
2 1. Spa2              66                   48                     66-48                      9 2
2. Spa3              30                   22                     30-22                      4 2
Dari  Tabel  4.4.4    dapat  dilihat bahwa zona hambat hasil uji antagonis dari masing  masing  isolat  bakteri  tanah
pertanian  anorganik  terhadap  jamur  akar putih R.  microporus bervariasi.  Hal  ini mungkin  disebabkan  karena  bakteri  tanah
pertanian  organik  menghasilkan  senyawa metabolit  sekunder  yang  berbeda  beda. Mikroba  yang  memiliki  kemampuan sebagai  antimikroba  dapat  menghasilkan senyawa  antimikroba  yang  merupakan metabolit  sekunder  yang  tidak  digunakan lagi  untuk  proses  pertumbuhan  (Schlegel, 1993),  tetapi    untuk  pertahanan  diri  dan kompetisi  dengan  mikroba  lain  dalam mendapatkan  nutrisi,  habitat,  oksigen  dan lain-lain.  Senyawa  antimikroba  tersebut dapat  dikelompokkan  sebagai  antibakteri dan antifungi (Cook & Baker 1974).
Mikroba khususnya bakteri memiliki kemampuan menghambat pertumbuhan  mikroba  lain  disebabkan karena bakteri dapat menghasilkan senyawa metabolit sekunder seperti senyawa antimikroba, antibiotik (Wright et al .,  2001),  enzim  pelisis  (Zhang  &  Yuen, 2000;  Kim et  al .,  2008)  dan  protein penghambat  lain  (Berdy,  2005;  Borodina et  al .,  2005;  Lestari,  2001;  Price et  al .,
1999).
Isolat bakteri yang diujikan menunjukkan  kemampuan  menghambat jamur  patogen R.  Microporus .  Hal  ini mungkin  disebabkan  karena  pegaruh perbedaan dinding sel penyusun dari jamur
yang  digunakan  dalam  uji  antagonis. Bakteri yang memiliki zona hambat paling besar  adalah  bakteri  Spa1  yang  dapat menghambat jamur akar putih R. microporus dengan  zona  hambat  yang berkisar  30  mm.  Menurut  Bakri  (2009), Isolat bakteri tersebut memiliki kemampuan  antagonistik  yang  ditandai dengan  adanya  penghambatan  miselium jamur patogen tanaman dan pada akhirnya pertumbuhan hifa menipis, mengering dan mengalami abnormalitas.
Belum  seluruhnya  dapat  dijelaskan dengan  cara  bagaimana  mikroorganisme antagonis mempengaruhi populasi patogen,  tetapi  umumnya  mekanisme tersebut  dihubungkan  dengan  salah  satu dari  empat  pengaruh  yaitu  (1)  parasitisme dan  membunuh  patogen  secara  langsung; (2)  berkompetisi  dengan  patogen  dalam hal  makanan;  (3)  toksin  yang  langsung mempengaruhi patogen dengan zat antibiotic  yang  dilepaskan  oleh  antagonis; dan  (4)  toksin  yang  tidak  langsung mempengaruhi  patogen  melalui  zat  yang mudah  menguap,  seperti  etilen,  yang dilepaskan oleh aktivitas metabolic antagonis (Agrios, 1997).

## KESIMPULAN DAN SARAN

## 5.1. Kesimpulan
1. Diperoleh  3  isolat  bakteri  dari
isolasi  tanah  organik  yaitu  Sp  01, Sp  02,  Sp  03.  Sp  01  berbentuk bulat tepiannya rata elevasi cembung  dan  berwarna  kuning. Sp 02 berbentuk berbenang tepiannya  bergelombang  elevasi data  dan  berwarna  putih  susu.  Sp 03 berbentuk tidak beraturan tepiannya  berlobus  elevasi  datar dan berwarna putih susu.
2. Diperoleh  3  isolat  bakteri  dari isolasi tanah anorganik yaitu Sp a1, Sp  a2,  Sp  a3.  Sp  a1  berbentuk
seperti akar tepiannya bergelombang  elevasi  datar  dan berwarna putih kekuningan. Sp  a2 berbentuk  bulat  tepiannya  rata elevasi  datar  dan  berwarna  putih. Sp  a3  berbentuk  bulat  tepiannya rata elevasi cembung dan berwarna kuning.
5.2 Saran
Perlu  dilakukan  uji  antagonis terhadap  jamur Ganoderma  boninense yang  menyebabkan  penyakit  tanaman kelapa sawit.

## DAFTAR PUSTAKA
Agrios,  G.  N.  1997.  Plant  Pathology 4Edition.  Academic  Press,  New York.
Baker,  K.F  dan  Cook,  R.J.  1999.  The
Nature  dan  Practice  of  Biological Control  of  Plant  Pathogens.  3rd Edition: The American Phytopathology Society.
Bakri, M. 2009. Isolasi dan Uji
Kemampuan  Antifungal  Fungi
Endofit  dari  Tanaman  Andaliman ( Zanthoxylum acanthopodium DC.)  Terhadap  Fungi  Perusak Makanan. Skripsi . USU. Medan.
Borodina,  I.,  Krabben,  P  dan  Nielsen,  J.
2005.  Genome  Scale  Analysis  of Streptomyces  coelicolor A3(2) Metabolism . Genome Research. 15: 820-829.
Badan  Pusat  Statistik  (BPS).  2013. Sumatera  Utara  dalam  Angka
2013. Medan
Darwis   dan Sukara. 1999. Isolasi Purifikasi dan Karakterisasi Enzim. Bogor: IPB.
Dinas   Kehutanan dan Perkebunan Kabupaten  Asahan.  2015.  Daftar luas  Areal  dan  Produksi  Tanaman Karet Kapupaten Asahan, Asahan.
Nurhayati,  2011.  Penggunaan  jamur  dan bakteri dalam pengendalian penyakit  tanaman  secara  hayati yang  ramah  lingkungan.  Prosiding Semirata Bidang Ilmu-Ilmu Pertanian BKS-PTN Wilayah Barat
316-321.
Semangun,  Haryono,  2000.  Pengantar Ilmu  Penyakit  Tumbuhan.  Gadjah Mada University. Yogyakarta.
Zhang, Z and  Yuen, G.Y. 2000. Effects of
Culture  Fluids  and  Preinduction of Chitinase Production on Biocontrol of Bipolaris lLeaf Spot by Stenotrophomonas  maltophilia
C3. Biol Contr 18: 277–286.