Abstrak — Kantong plastik sering digunakan karena sifatnya yang kuat,  ringan,  tahan  lama,  dan  inert.  Peningkatan  jumlah penggunaan  plastik  dapat  menjadi  polutan  bagi  lingkungan. Salah  satu  alternatif  penangannya  adalah  melalui  proses biodegradasi  oleh  bakteri.  Tujuan  dari  penelitian  ini  adalah mengetahui  pengaruh Pseudomonas PL01  dan  monosodium glutamat  (MSG)  terhadap  bakteri indigenous pasir  dalam mendegradasi  plastik  pada  skala  lapangan  dengan  metode penimbunan. Plastik  berukuran 6 x 10 cm  ditimbun pada tanah pasir  dengan  kedalaman  10  cm  lalu  ditambahkan Pseudomonas PL01  dan/atau  1  g/L  MSG  dalam polybag yang  diletakkan  di ruang  terbuka,  lalu  diinkubasi  selama  12  minggu.  Setiap  3 minggu  dilakukan  pengukuran  kepadatan  sel  biofilm  pada permukaan  plastik,  visualisasi  biofilm  menggunkan methylene blue dan  velositas.  Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa penambahan Pseudomonas PL01  dan/atau  1  g/L  MSG  dapat berpengaruh pada bakteri indigenous pasir dalam mendegradasi plastik.  Kepadatan  sel  pada  bakteri indigenous pasir  tanpa penambahan Pseudomonas PL01  dan/atau  1  g/L  MSG  pada plastik  hitam  mencapai  1,16  AU.  Pengukuran  velositas  juga menunjukkan  adanya  perubahan  waktu  apung  plastik  dari minggu  ke-3  yaitu  18,45  detik  menjadi  40,34  detik  pada  minggu ke-12.
Kata  Kunci — Biodegradasi,  Bakteri Indigenous Pasir,  MSG, Pseudomonas PL01, Hidrofilik.

## I. PENDAHULUAN
LASTIK merupakan polimer sintetik yang memiliki berat molekul  tinggi  dan  dibentuk  melalui  proses  polimerisasi [1]. Penggunaan plastik dalam kehidupan sehari-hari  semakin meningkat,  seiring  dengan  perkembangan  jaman  dan peningkatan  jumlah  penduduk  [2]. Salah  satu  jenis  plastik yang sering digunakan adalah kantong plastik, karena sifatnya yang  kuat,  ringan,  tahan  lama,  tahan  korosi,  tahan  panas, murah  dan  inert  [3].  Kantong  plastik  merupakan  plastik  jenis polietilena dengan polimer LDPE ( Low Density Polyethylene ). Polietilena  merupakan  polimer  sintetik  yang  terbentuk  dari rantai panjang monomer etilena [4].
Penggunaan  plastik  di  seluruh  dunia  terus  berkembang., yaitu  sekitar  140  juta  ton  polimer  sintetik  diproduksi  setiap tahunnya dengan penggunaan plastik jenis polietilena rata-rata 12%  per  tahun  [5].  Peningkatan  jumlah  penggunaan  plastik tersebut  dapat  menyebabkan  berbagai  masalah  lingkungan, karena  plastik  termasuk  salah  satu  jenis  polutan  yang  tidak dapat berubah bentuk dalam  waktu singkat di lingkungan  [3]. Oleh  karena  itu,  perlu  adanya  penanganan  terkait  masalah sampah  plastik  tersebut,  salah  satunya  melalui  proses biodegradasi. Biodegradasi merupakan proses dimana mikroorganisme seperti jamur dan bakteri mampu
mendegradasi  polimer  alami  (lignin,  selulosa)  dan  polimer sintetik  (polietilena,  polistirena)  [1].  Proses  biodegradasi plastik  di  dalam  tanah  dapat  dibantu  oleh  populasi  mikroba indigenous tanah.  Monosodium  Glutamat  (MSG)  merupakan garam  natrium  yang  berikatan  dengan  asam  amino  berupa asam  glutamat  dan  berbentuk  kristal  putih  yang  stabil  dan diketahui mampu meningkatkan pertumbuhan mikroorganisme [6]. Tanah jenis pasir merupakan salah satu sumber daya alam yang  paling  mudah  diakses  dan  merupakan  bahan  granular alami yang terdiri dari batuan halus dan partikel mineral. Dari segi  kimia,  tanah  pasir  cukup  mengandung  unsur  fosfor  (P) dan  kalium  (K),  tetapi  lahan  pasir  kekurangan  unsur  nitrogen (N),  sehingga  kandungan  nutrisi  bagi  tanaman  maupun mikroorganisme  pada  pasir  kurang  terpenuhi  [7].  Rendahnya nutrisi pada pasir tersebut, dapat dimanfaatkan  sebagai  media untuk  proses  biodegradasi  plastik,  dimana  mikroorganisme indigenous distimulus  untuk  menggunakan  plastik  sebagai sumber karbon.
Dengan  metode  penimbunan  ( soil  burial )  pada  skala laboraturium,  bakteri Pseudomonas PL01  dan  bakteri indigenous pasir  dengan  penambahan  1g/L  MSG  mampu bersinergi  dalam  mendegradasi  plastik  hitam,  putih  dan transparan  masing-masing  sebesar  7%,  12%  dan  14%  selama 16  minggu  masa  inkubasi  [8].  Penelitian  ini  merupakan penelitian lanjutan yang bertujuan untuk mengetahui pengaruh Pseudomona s  PL01  dan  monosodium  glutamat  terhadap bakteri indigenous pasir  saat  diaplikasikan  pada  skala lapangan  dengan  metode  penimbunan  di  dalam  kantong polybag .

## II. METODOLOGI

## Waktu dan Tempat Penelitian
A.
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  bulan  Februari-Mei  2017 di  lahan  terbuka  dan  Laboraturium  Mikrobiologi  dan Bioteknologi, Jurusan Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan  Alam,  Institut  Teknologi  Sepuluh  Nopember, Surabaya.

## Preparasi Kantong Plastik
B.
Plastik  uji  yang  digunakan  berupa  kantong  plastik  yang dipotong  dengan  ukuran  10  x  6  cm  sebanyak  3  kali pengulangan. Plastik direndam dengan alkohol 70% selama 30 menit dan dikeringanginkan di bawah sinar UV pada Laminar Air  Flow (Bio  60-M)  selama  15  menit.  Plastik  kemudian dimasukkan  ke  dalam  oven  (Memmert)  pada  suhu  80°C selama  24  jam.  Setelah  itu,  plastik  dimasukkan  ke  dalam desikator selama 24 jam [9].

## Pengaruh
Pseudomonas PL01 dan Monosodium Glutamat Terhadap Bakteri

## Indigenous Pasir dalam Mendegradasi Plastik
Intan Prima Sari dan Maya Shovitri Departemen Biologi, Fakultas Ilmu Alam, Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS)
e-mail : maya@bio.its.ac.id
P
Gambar  1.  Kepadatan  Sel  Bakteri Indigenous Pasir  dengan  Penambahan Pseudomonas PL01 dan/atau 1 g/L MSG pada Permukaan Plastik.
Gambar  2.  Visualisasi  Biofilm  Bakteri Indigenous Tanah  dan  Bakteri Pseudomonas PL01  pada  Plastik  Transparan  dengan  Perbesaran  1000x  :  A) OD 600nm =  0,60  AU  ;  B)  OD 600nm =  0,42  AU;  C)  OD 600nm =  0,47  AU  dan  D) OD 600nm = 0,74 AU.
Gambar.  3.  Perbandingan  Pertumbuhan  Bakteri  Kolom  Tanah  Pasir  dengan Biofilm Permukaan Plastik pada Bakteri Indigenous Pasir .
Gambar.  4.  Velositas  Plastik  Bakteri Indigenous Pasir  dengan  Penambahan Pseudomonas PL01 dan/atau 1 g/L MSG.

## Peremajaan Isolat dan Pembuatan Starter Bakteri C.
Isolat  diambil  sebanyak  1  ose  dan  digoreskan  secara  garis continue ke  permukaan  medium  NA  dalam  cawan  Petri  dan diinkubasi  pada  inkubator  dengan  suhu  37°C  selama  24  jam. Pembuatan strater dilakukan secara bertingkat, dimulai dengan pengambilan  inokulum  dari  isolat  subkulktur  sebanyak  1  ose dan  dimasukkan  ke  dalam  10  ml Nutrient  Broth (NB), kemudian  diinkubasi  selama  24  jam.  Biakan  bakteri  tersebut kemudian  diambil  sebanyak  1  ml,  dimasukkan  ke  dalam  9  ml NB baru dan diinkubasi  selama 24 jam. Biakan bakteri 10  ml tersebut selanjutnya dimasukkan ke dalam 90 ml NB baru dan diinkubasi  selama  24  jam.  Biakan  bakteri  100  ml  tersebut selanjutnya  dimasukkan  ke  dalam  900  ml  NB  baru  dan diinkubasi  selama  24  jam.  Pembiakan  bakteri  pada  media  NB ini  adalah starter yang  digunakan  untuk  proses  selanjutnya. Starter yang digunakan berisi isolat bakteri dengan  kepadatan sel 10 8 sel/ml yang dihitung menggunakan Haemacytometer .
Persipan Inokulum Aplikasi D.
Starter bakteri  yang  digunakan  sebanyak  10%  dari  volume total inokulum aplikasi. Air kolam diambil sebanyak 5400 ml, disaring  dan  disterilisasi  dengan  suhu  >100°C. Inokulum aplikasi  dibuat  dengan  cara  mencampurkan  600  ml starter bakteri  dengan  5400  ml  air  kolam  steril,  lalu  dihomogenkan dan  siap  untuk  diaplikasikan  pada  pasir.  Terdapat  2  jenis inokulum aplikasi yang digunakan, yaitu dengan penambahan 1 g/L MSG dan tanpa penambahan 1 g/L MSG.

## Biodegradasi Plastik E.
Biodegradasi  plastik  dilakukan  dengan  menggunakan metode  penimbunan  tanah  ( soil  burial  method )  [10].  Tanah yang  digunakan  merupakan  tanah  pasir  pantai  yang  berasal dari  Lumajang.  Digunakan  6000  ml  inokulum  aplikasi  untuk dicampurkan dengan 30 kg pasir pada setiap kantong polybag berdiameter  60  cm. Polybag diisi  dengan  pasir  yang  telah bercampur  dengan  inokulum  aplikasi  setinggi  10  cm  [11]. Masing-masing  plastik  hitam,  putih  dan  transparan  ditata sebanyak  1  lembar  dengan  jarak  setiap  plastik  selebar  3  cm, kemudian  ditimbun  kembali  dengan  pasir  setinggi  10  cm. Setiap  plastik  dilakukan  3  kali  pengulangan  pada  setiap polybag .  Kontrol  yang  digunakan  adalah  pasir  pantai  tanpa penambahan  isolat  bakteri Pseudomonas PL01  dan  MSG. Setiap  3  minggu  sekali,  plastik  dipanen  dengan  cara  digali tanah  pada  polybag  secara  perlahan  hingga  plastik  terlihat, kemudian  plastik  diambil  menggunakan  pinset  steril  dan dimasukkan  ke  dalam  botol  falcon  yang  terlah  berisi  aquades steril.  Selanjutnya  dilakukan  pengukuran Optical  Density (OD), visualisasi biofilm dan velositas.

## Pengukuran Optical Dencity (OD)
F.
Biofilm pada plastik dilepaskan dengan cara lembar plastik yang  telah dipanen, dimasukkan  ke dalam botol  falcon 50 ml yang  telah  berisi  20  ml  aquades  dan  divortex  dengan kecepatan 2500 rpm selama 30 detik sebanyak 3 kali. Larutan dari  pelepasan  biofilm  tersebut  kemudian  diukur  kepadatan
selnya.  Sebagai  pembanding,  dilakukan  pengukuran  densitas bakteri  pada  tanah  disekitar  area  penimbunan  plastik. Sebanyak  2  g  tanah  dicampur  dengan  10  ml  air,  kemudian diukur kepadatan selnya dengan cara yang sama.

## Deteksi Visual Biofilm G.
Sisa  larutan  dari  pelepasan  biofilm  diteteskan  pada  kaca objek  dan  dilakukan  fiksasi  di  atas  api  bunsen.  Kaca  objek yang telah difiksasi kemudian diwarnai dengan methylene blue selama  1-2  menit.  Kaca  objek  dibilas  dengan  aquades  secara perlahan  dan  dikeringanginkan.  Kaca  objek  diamati  dengan mikroskop  pada  perbesaran  1000x  dengan  bantuan  minyak imersi pada kaca penutup.

## Velositas H.
Pengukuran velositas dilakukan berdasarkan penelitian [11], yaitu  dengan  cara  plastik  yang  telah  diukur  berat  keringnya kemudian  dimasukkan  kedalam  inkubator  kaca  yang  telah berisi  aquades  dengan  ketinggian  10  cm,  menggunakan spatula  steril  sebagai  penahannya.  Spatula  diangkat  secara perlahan  dan  dilakukan  pengamatan  waktu  yang  dibutuhkan oleh plastik dari dasar inkubator hingga  mencapai permukaan menggunakan stopwatch.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN
Kepadatan Sel
A.
Kepadatan  sel  yang  diukur  dengan  serapan  (OD 600nm ) merupakan  biofilm  yang  terbentuk  pada  permukaan  plastik. Biodegradasi pada material sintetik dimulai dengan pembentukan  koloni  dari  mikroorganisme  pada  permukaan material  padat,  yang  disebut  biofilm  [12].  Menurut  [13] biofilm  merupakan  kumpulan  dari  sel  mikroba  yang  saling berasosiasi  dalam  suatu  permukaan  dan  tertutup  dalam  suatu matriks,  terutama  polisakarida.  Biofilm  akan  terbentuk  pada saat  kondisi  tercekam  seperti  kekurangan  nutrisi  pada lingkungan  sekitarnya  [14].  Pertumbuhan  mikroorganisme pada tanah pasir terbatas karena nutrisi yang tidak mencukupi dan  adanya  kompetisi  dengan  flora  mikroba  [15].  Secara umum,  pada  Gambar  1  terlihat  bahwa  kepadatan  sel  pada kontrol yang merupakan bakteri indigenous pasir, lebih tinggi dibandingkan  dengan  kepadatan  sel  bakteri indigenous pasir dengan  penambahan  bakteri Pseudomonas PL01  dan/atau  1 g/L  MSG.  Selama  12  minggu  masa  inkubasi,  kepadatan  sel bakteri indigenous pasir  dan Pseudomonas PL01  di permukaan  plastik  hitam  mencapai  0,91  AU,  sedangkan  bila tanpa Pseudomonas PL01  kepadatan  sel  terlihat  lebih  tinggi, yaitu  mencapai  1,16  AU.  Hal  ini  mungkin  berkaitan  dengan stabilitas  ekosistem  mikroorganisme,  dimana  penambahan Pseudomonas PL01  diduga  mengganggu  kestabilan  tersebut sehingga  ada  penurunan  kepadatan  sel.  Hubungan  antar organisme  merupakan  bentuk  dari  adaptasi  pada  lingkungan untuk  mendukung  metabolisme,  proteksi  atau  suplai  energi dan  dapat  distabilkan  oleh  organisme  tersebut  dengan  cara mengontrol  dan  mengkoordinasikan  interaksi  yang  dilakukan [16].  Stabilitas  ekosistem  dipengaruhi  oleh  konstruksi  niche suatu  mikroba  [17].  Jika  terlalu  banyak  tumpang  tindih  di ruang  niche,  dapat  menyebabkan  kepunahan  spesies  [18]. Penambahan Pseudomonas PL01 diduga mempengaruhi niche bakteri indigenous tanah  dan  membentuk  hungungan  yang
saling merugikan dengan bakteri indigenous tanah. Hubungan ini  dapat  berupa  kompetisi  atau  antagonisme  karena ketidaksesuaian  lingkungan  bagi Pseudomonas PL01  untuk beradaptasi. Genus Pseudomonas diketahui mampu menghasilkan  sejumlah  besar  metabolit  sekunder  dengan aktivitas  antibakteri  [19].  Senyawa  metabolit  sekunder merupakan senyawa yang dibentuk pada saat kondisi tercekam [20].  Penurunan  kepadatan  sel  yang  diduga  akibat  adanya Pseudomonas PL01  menyebabkan    rendahnya  pemanfaatan plastik oleh bakteri sebagai sumber karbon.
Kepadatan sel bakteri indigenous pasir dengan penambahan 1  g/L  MSG  pada  plastik  hitam  mencapai  0,99  AU.  Namun, bila  tanpa  MSG  kepadatan  selnya  juga  terlihat  lebih  tinggi. Hal  ini  diduga  karena  bakteri indigenous pasir  mampu memanfaatkan  sumber  nutrisi  alternatif  dari  air  kolam  steril dan  plastik  sebagai  sumber  karbon  untuk  pertumbuhannya. Unsur  penting  di  perairan  yang  mempengaruhi  ketersediaan nutrien  adalah  nitrogen,  fosfat  dan  karbon,  dimana  berperan penting  dalam  pembentukan  biomassa  mikroorganisme  yang menentukan  produktivitas  primer  perairan  [21].  Sedangkan dengan  adanya  MSG,  diduga  bakteri  indigenous  tanah  lebih memilih  memanfaatkan  kandungan  glutamat  untuk  sintesis protein  dalam  menghasilkan  enzim  dibandingkan  dengan pembentukan biomassa sel, sehingga kepadatan selnya rendah. Selanjutnya  ketika  bakteri indigenous pasir  ditambah  dengan bakteri Pseudomonas PL01  dan  1  g/L  MSG,  kepadatan  sel terlihat paling rendah, yaitu mencapai 0,67 AU.
Rendahnya  kepadatan  sel  pada  penambahan  bakteri Pseudomonas PL01  dan  1  g/L  MSG  juga  dapat  dipengaruhi oleh faktor lingkungan, yaitu faktor biotik dan  abiotik. Faktor biotik  yang  mempengaruhi  rendahnya  kepadatan  sel  diduga karena  adanya  kompetisi  antara  bakteri indigenous pasir dengan Pseudomonas PL01,  yang  dapat  berupa  persaingan dalam  mendapatkan  nutrisi.  Sedangkan  faktor  abiotik  yang dapat  mempengaruhi  pertumbuhan  sel  mikroorganisme diantaranya  pH,  temperatur,  tekanan,  kelembaban  [22].  Pada penelitian  ini,  faktor  abiotik  yang  diukur  adalah  pH  yang menunjukkan keadaan semakin asam selama 12 minggu masa inkubasi.  Kondisi  lingkungan  pH  dapat  mempengaruhi  sifat fisik  enzim  dan  organisasi  selular  terhadap  organisme  [23]. Pseudomonas merupakan bakteri  yang memiliki pH optimum 6,6-7  [24].  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  pertumbuhan Pseudomonas PL01  diduga  tidak  optimum  dalam  kondisi  pH 5-6.  Menurut  [25]  komunitas  bakteri  tanah  seringkali  sangat berkorelasi  dengan  pH  tanah,  sehingga  diduga  bakteri indigenous pasir  yang  mampu  hidup  pada  pH  5-6  hanya bakteri tertentu.
Kepadatan sel bakteri selain diukur dengan spektrofotometer (serapan OD 600nm ), juga dapat dilihat dengan cara  visualisasi  biofilm  menggunakan  pewarna methylene blue. Gambar 2 menunjukkan hasil visualisasi biofilm bakteri indigenous pasir  dan  bakteri Pseudomonas PL01  pada permukaan plastik selama 12 minggu masa inkubasi. Gambar  2  menunjukkan  pada  minggu  ke-12,  terlihat struktur biofilm yang berwarna biru dan paling tebal. Struktur biofilm  yang  terlihat  secara  umum  sesuai  dengan  nilai kepadatan  sel  pada  serapan  OD 600nm .  Semakin  tinggi  nilai kepadatan  sel,  maka  semakin  tebal  struktur  biofilm  yang ditunjukkan dengan  warna biru seperti gumpalan. Warna biru
yang  dihasilkan  merupakan  ikatan  antara  dinding  sel  dengan pewarna methylene blue .
Pengukuran  kepadatan  sel  pada  kolom  tanah  pasir  juga dilakukan  berdasarkan  nilai  OD 600nm yang  ditunjukkan  pada Gambar  3.  Hasil  menunjukkan  kepadatan  sel  biofilm  pada permukaan  plastik  terlihat  lebih  rendah  dibandingkan  dengan kepadatan  sel  mikroorganisme  kolom  pasir.  Hal  ini  dapat diasumsikan  bahwa  bakteri  yang  membentuk  biofilm  pada permukaan plastik merupakan mikroorganisme yang menggunakan  plastik  sebagai  sumber  karbon,  sedangkan bakteri  yang  tidak  menempel  pada  plastik  merupakan mikroorganisme  yang  mampu  tumbuh  dengan  memanfaatkan nutrisi  selain  plastik.  Berdasarkan  Gambar  3  tersebut, menunjukkan  bahwa  degradasi  plastik  menggunakan  sumber alternatif air  kolam steril di  kantong polybag yang diletakkan pada  ruang  terbuka  mengakibatkan  bakteri  cenderung menggunakan  sumber  nutrisi  lain  yang  diduga  berupa  air kolam  steril  sehingga  bakteri  lebih  menggunakan  nutrisi tersebut daripada menempel pada plastik untuk  menggunakan plastik sebagai sumber karbon.

## Velositas
B.
Pengukuran  velositas  merupakan  adaptasi  dari  pengujian perubahan  kecepatan  terhadap  perubahan  waktu  [26]. Velositas  pada  penelitian  ini  adalah  untuk  mengetahui hidrofilisitas  plastik  setelah  terdegradasi  [27].  Semakin  lama waktu  yang  dibutuhkan  plastik  untuk  mengapung  sampai permukaan  atas  inkubator  kaca,  maka  diasumsikan  plastik akan  semakin  bersifat  hidrofilik  atau  velositasnya  semakin rendah.  Berdasarkan  hasil  pengukuran  kepadatan  sel  pada Gambar 1, terlihat bahwa bakteri indigenous pasir dan bakteri Pseudomonas PL01  dapat membentuk  biofilm  pada permukaan  plastik.  Adanya  biofilm  diasumsikan  terjadi serangkaian  reaksi  enzimatik  oleh  bakteri  terhadap  polimer plastik  yang  menyebabkan plastik  semakin bersifat  hidrofilik. Sebagai  pembanding,  juga  dilakukan  pengukuran  velositas plastik  tanpa  perlakuan  degradasi  sebagai  kontrol  tanpa perlakuan.
Secara  umum,  selama  masa  inkubasi  dari  minggu  ke-3 sampai  minggu  ke-12  terlihat  adanya  pengurangan  sifat hidrofobik  pada  plastik  yang  ditunjukkan  dengan  semakin lama waktu yang dibutuhkan plastik untuk naik ke permukaan. Pengurangan sifat hidrofobik dapat diakibatkan karena adanya biofilm  yang  terbentuk.  Dari  data  velositas  terlihat  bahwa plastik  yang  sudah  terdegradasi  membutuhkan  waktu  yang lebih  lama  untuk  mengapung  ke  permukaan  dibandingkan dengan  kontrol  tanpa  perlakuan  yang  memiliki  velositas sebesar  18,45  detik.  Pada  grafik,  terlihat  bahwa  pada  kontrol bakteri indigenous pasir  menunjukkan  velositas  yang  lebih rendah dibandingkan dengan velositas bakteri indigenous pasir dengan Pseudomonas PL01. Velositas bakteri indigenous pasir mencapai  40,34  detik.  Sedangkan  velositas  pada  bakteri indigenous pasir  dengan Pseudomonas PL01  mencapai  22,60 detik.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  uji  velositas  berkorelasi positif  dengan  kepadatan  sel.  Selama  masa  inkubasi,  terlihat adanya  penurunan  sifat  hidrofobik.  Gambar  4  menunjukkan plastik  yang  terdegradasi  oleh  bakteri indigenous pasir, velositas  pada  minggu  ke-3  mencapai  29,38  detik,  sedangkan velositas  pada  minggu  ke-12  menurun  menjadi  40,34  detik. Hal ini menunjukkan selama 12 minggu masa inkubasi, terjadi
perubahan  struktur polimer  menjadi semakin  hidrofilik akibat proses  biodegradasi. Melekatnya bakteri  ke polimer merupakan  langkah  awal  pembentukan  biofilm,  dimana  sifat hidrofobik  permukaan  sel  mikroba  sangat  berperan  dalam perlekatan  terhadap  polimer  [28].  Ketika  mikroorganisme menempel  di  permukaan,  mereka  akan  tumbuh  dan memanfaatkan  polimer  sebagai  sumber  karbon  secara enzimatik  dan  menyebabkan  polimer  menjadi  hidrofilik. Polietilena  merupakan  polimer  sintesis  yang  memiliki hidrofobisitas  dan  berat  molekul  tinggi  dikarenakan  struktur polietilena yang memiliki ikatan kovalen antara C-C dan C-H [29]. Hidrofilik permukaan polimer dapat terjadi karna adanya pengenalan  gugus  fungsi  oleh  mikroorganisme  selama  proses degradasi.

## IV. KESIMPULAN DAN SARAN
Penambahan Pseudomonas PL01  dan  1  g/L  MSG  dapat mempengaruhi  bakteri indigenous pasir  dalam  mendegradasi plastik.  Selama  12  minggu  masa  inkubasi,  kepadatan  sel bakteri indigenous pasir  tanpa  penambahan Pseudomonas PL01 dan 1 g/L MSG pada permukaan plastik hitam yaitu 1,16 AU.  Pengukuran  velositas  juga  menunjukkan  adanya perubahan  waktu  apung  plastik  dari  minggu  ke-3  yaitu  18,45 detik menjadi 40,34 detik pada minggu ke-12.

## DAFTAR PUSTAKA
[1] H. Bhardwaj, R. Gupta, and A. Tiwari, “ Microbial Population Associated With Plastic Degradation. Open Access Scientific Reports, ” Open Access Sci. Reports , vol. 1, no. 5, 2012.
[2]  U.B. Surono, “ Berbagai Metode Konversi Sampah Plastik menjadi Bahan Bakar Minyak, ” J. Tek. , vol. 3, no. 1, pp. 32 – 40, 2013.
[3]  A. Muthukumar and S. Veerappapillai, “ Biodegradation of Plastics, ” Int. J. Pharm. Sci. Rev. Res. , vol. 36, pp. 204 – 209, 2015.
[4]  A. A. Hussein, I. K. Al-Mayaly, and S. H. Khudeir, “ Isolation, Screening and  Identification  of  Low  Density  Polyethylene  (LDPE)  Degrading Bacteria  From  Contaminated  Soil  with  Plastic  Wastes, ” Mesopotamia Environ. J. , vol. 1, no. 4, pp. 1 – 14, 2015.
[5]  S. Nanda, S. Sbigdha, and S. Sahu, “ Biodegradability of Polyethylene by Brevibacillus,  Pseudomonas  and  Rhodococcus  spp, ” New  York  Sci.  J. , vol. 3, pp. 95 – 98, 2010.
[6]  H. Nuryani and S. Jinap, “ Soy Sauce and its Umami Taste: A Link from The  Past  To  Current  Situation, ” J.  Food  Sci. ,  vol.  5,  no.  3,  pp.  71 – 76, 2010.
[7]  Sunardi  and  Y.  Sarjono, “ Penentuan  Kandungan  Unsur  Makro  Pada Lahan  Pasir  Pantai  Sasmas  Bantul  Dengan  Metode  Analisis  Aktivasi Neutron  (AAN), ” in Prosiding  PPI – PDIPTN.  Pustek  Akselerator  dan Proses Bahan , 2007.
[8]  R. Nafi ’ ah and M. Shovitri, “ Degradasi Plastik Isolat Bakteri Bacillus PL- 01  dan  Pseudomonas  PL-01  Dengan  Metode  Penimbunan  Dalam  Tanah (Soil Burial) dan Penambahan Monosodium Glutamat, ” 2015. [9]  E.  Zulaika,  U.  Sholikah,  and  A.  Prasetya, “ Potensi  Bakteri  Bacillus sebagai  Agensia  Bioremediasi  Limbah  Industri  yang  Mengandung Merkuri, ” Institut Teknologi Sepuluh Nopember, 2012. [10] K.  Kathiseran, “ Polythene  and  Plastics-Degrading  Microbes  From  The Mangrove Soil, ” Rev. Biol. Trop , vol. 51, no. 3, pp. 629 – 634, 2003.
[11] E.  B.  Okoh  and  E.  I.  Atuya, “ Impacts  of  Soil  Composting  and  Poultry Manure  on  Biodegradation  of  Polyethylene, ” Int.  J.  Appl.  Microbiol. Biotechnol. Res. , vol. 2, pp. 18 – 29, 2014.
[12] B. M. Kyaw, R. Champakalakshmi, M. K. Sakharkar, C. S. Lim, and K. R.  Sakharkar, “ Biodegradation  of  Low  Density  Polythene  (LDPE)  by Pseudomonas Species, ” Indian J. Microbiol. , vol. 52, no. 3, pp. 411 – 419, 2012.
[13] M.D.  Rodney, “ Biofilms:  Microbial  Life  on  Surface, ” Infect.  Dis. (Auckl). , vol. 8, no. 9, 2002.
[14] M. E. Olson, H. Ceri, D. W. Morck, A. . Buret, and R. R. Read, “ Biofilm Bacteria: Formation and Comparative Susceptibility to Antibiotics, ” Can.
J. Vet. Res. , vol. 66, pp. 86 – 92, 2002.
[15] E.  Velonakis,  D.  Dimitriadi,  E.  Papadogiannakis,  and  A.  Votopoulos,
“ Present Status of Effect of Microorganisms From Sand Beach on Public Healt, ” J. Coast. Life Med. , vol. 2, no. 9, pp. 746 – 756, 2014.
[16] G.  D.  A.  Werner,  W.  K.  C.  Well,  J.  H.  C.  Cornelissen, and  E.  T.  Kiers,
“ Evolutionary  signals  of  symbiotic  persistence  in  the  legume – rhizobia mutualism, ” PNAS , vol. 112, no. 3, 2015.
[17] N. Lennon and J. T. Fierer, “ The generation and maintenance of diversity in microbial communities, ” Am J Bot , vol. 98, pp. 439 – 448, 2011.
[18] J. T. Lennon and B. K. Lehmkuhl., “ A Trait-Based Approach to Bacterial Biofilms in Soil, ” J. Environ. Microbiol. , 2016.
[19] S.  Tayeb,  Z.  Chama,  A.  Tifrit,  F.  Z.  I.  Reffas,  and  B.  Abbouni.,
“ Antagonistic activity of Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 Against Pathogenic Bacteria, ” J. Chem. Pharm. Res. , vol. 7, no. 7, pp. 362 – 369, 2015.
[20] R.  Nofiani, “ Urgensi  dan  Mekanisme  Biosintesis  Metabolit  Sekunder Mikroba Laut, ” J. Natur Indones. , vol. 10, no. 2, pp. 120 – 125, 2008.
[21] J.  Horne  and  R.  Goldman, Limnology .  New  York:  The  McGraw-Hill Companies, 1994.
[22] K.  Zohreh, “ The  Effect  of  Biotic  and  Abiotic  Factors  on  Degradation  of Polycyclic  Aromatic  Hydrocarbons  (PAHs)  by  Bacteria  in  Soil, ”
University of Hertfordshire for the degree of Doctor of Philosophy, 2013. [23] A.D. Brown, “ Some General Properties of a Psychrophilic Pseudomonad: the  Effects  of  Temperature  on  some  of  these  Properties  and  the Utilization of Glucose by this Organism and Pseudomonas aeruginosa, ” J. gen. Microb. , vol. 17, pp. 640 – 648, 1957.
[24] K. Todar, “ Nutrition and Growth of Bacteria, ” 2013. [Online]. Available: http://textbookofbacteriology.net/nutgro_4.html.
[25] J. Rousk, E. Baath, P. C. Brookes, L. Lauber, C. Lozupone, and R. K. and N. F. J.G Caporaso, “ Soil Bacterial and Fungal Communities Across a pH Gradient in an Arable Soil, ” ISME J. , 2010.
[26] D.  A.  Wahyudi  and  I.  H.  Kartowisastro., “ Menghitung  Kecepatan Menggunakan Computer Vision, ” Universitas Binus, 2011.
[27] J.  W.  Reisser, “Bouyant  Plastics  at  Sea :  Concentration  and  Impacts,” 2015.
[28] P.  Tribedi  and  A.  K.  Sil., “ Cell  Surface  Hydrophobicity:  a  Key Component  in  The  Degradation  of  Polyethylene  Succinate  by Pseudomonas  sp.  AKS2, ” J.  Appl.  Microbiol. ,  vol.  116,  pp.  295 – 303, 2013.
[29] L.  H.  Gabriel,  O.  N.  Bennett,  and  B.  Schneier, “ Polyethylene  Pipe Specifications, ” Washington D.C., 1995.