Agro Estate , 3 (2) Desember 2019   ISSN : 2580-0957 (Cetak)   ISSN : 2656-4815 (Online)

## AGRO ESTATE
Jurnal Budidaya Perkebunan Kelapa Sawit dan Karet
Available online https: //ejurnal.stipap.ac.id/index.php/JAE
PENGARUH VARIASI KERAPATAN SPORA Beauveria bassiana DAN

## KONSENTRASI LCPKS TERHADAP MORTALITAS LARVA Oryctes rhinoceros
Effect of Beauveria bassiana Spore Density Variation and Palm Oil Mill Effluent Concentration on Larva Mortality of Oryctes rhinoceros
Muhammad Arif Fadhillah (1) , Nur Ariyani Agustina (1) &Julaili Irni (1)
1)Prodi Agroekoteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Prima, Indonesia
*Coresponding Email: agustinaninanur@gmail.com

## Abstract
Oryctes rhinoceros beetle is one of the pests that attacksimmature oil palm plants.This pest attacks oil palm plants  in  larvae  or  imago  phase.  This  pest  is  usually  damaging  the  respiratory  roots,  trunk  bark,  dry petiole,or  periphery  crown  of  oil  palm  leaves  which  can  interferes  the  leaf  growth  and  finally  reduce  the production  even collapse  the  tree.  Chemically  pest  control have  the  positive  impact  with  faster  pest  death beside the negative impacts such as resistance, resurgence, disturbing human health and also environmental and ecosystem pollution. Biological control is one alternative pest control that is safe for the environment and can  reduce  chemical  residues  in  agricultural products and environment.  This  study  was  conducted  in Medan  Denai  district  on  July  –  Agustus  2019.  This  study  aimed  to  determine  the  effect  of  the  use  of Beauveria bassiana and palm oil mill effluent to control Oryctes rhinoceros larvae. The method used in this study is a two factorial randomized block design (RBD), with 2 replications. The results of this study showed that the best density of Beauveria bassiana spores in controlling Oryctes rhinoceros larvae was 109 spores / ml and 50ml LCPKS  (I 2 Q 2 ) with death time of 40 hours, daily mortality 60%, total mortality 100%.
Keywords: Beauveria bassiana, Oryctes rhinoceros, Spore Density, Oil Palm Effluent, Mortality
How  to  Cite :  Fadhillah,  M.A.,  N.A.  Agustina,  J.  Irni.  (2019).  Pengaruh  Variasi  Kerapatan Beauveria  bassiana dan  Konsentrasi  LCPKS  Terhadap  Mortalitas  Larva Oryctes rhinoceros. Jurnal Agro Estate vol. 3 (2): 63-72

## PENDAHULUAN
Kelapa  sawit  merupakan  tanaman dengan  produksi  minyak  tertinggi  per hektarnya dibandingkan tanaman penghasil minyak nabati lainnya. Produksi minyak kelapa sawitIndonesia merupakanyang  terbesar.  Sebanyak  lebih dari  85%  pasar  dunia  kelapa  sawit dikuasai  oleh  Indonesia  dan  Malaysia.
Komoditas  kelapa  sawit  baik  berupa bahan  mentah  maupun  hasil  olahannya merupakan penyumbang devisa non-migas terbesar bagi Indonesia (Pahan, 2010).
Salah  satu  penentu  hasil  panen kelapa  sawit  yang  berkualitas  adalah adanya  pemeliharaan  tanaman  yang  baik. Pengendalian hama dan penyakit merupakan salah satu kegiatan
pemeliharaan tanaman, yang sangat penting  untuk  menjaga  pertumbuhan  dan produktivitas  tanaman.  Salah  satu  hama yang  merugikan  pada  budidaya  kelapa sawit  adalah  kumbang  tanduk  atau Oryctes  rhinoceros (Ditjenbun,  2008).
Hama  kumbang  tanduk  merupakan  salah satu  hama  yang  menyerang  tanaman kelapa  sawit,  terutama  pada  fase  tanaman belum  menghasilkan  (TBM).  Hama  ini merusak pupus daun kelapa sawit sehinggamengganggu  pertumbuhan  daun dan  dapat  menurunkan  produksi  Tandan Buah  Segar  bahkan  dapatmengakibatkan kematian  pada  tanaman  (Prawirosukarto, 2003).
Pengendalian  kimiawi  merupakan salah satu cara yang sering dilakukan oleh petani kelapa sawit. Kelebihan pengendalian secara kimiawi
adalahkematian  hamayang  lebih  cepat, namun  juga  memiliki  beberapa  dampak negatif yaitu terjadinya resistensi, resurgensi, mengganggu kesehatan manusia dan  juga pencemaran  lingkungan dan ekosistem (Erawati, 2009).
Salah  satu  alternatif  pengendalian hama  yang  lebih  aman  bagi  lingkungan dan  dapat  menekan  residu  kimia  pada produk pertanian adalah dengan pengendalian hayati. Pengembangan agensia hayati seperti cendawan Beauveia  bassiana untuk  mengendalikan hama  mempunyai  prospek  yang  baik
karena  bersifat  spesifik  inang  sehingga tidak  berbahaya  bagi  manusia,  musuh alami  maupun  lingkungan.  Jamur B. bassiana bersifat  patogenik  terhadap berbagai  spesies  serangga  dan  telah banyak digunakan. (Tafoya et al ., 2004).
Hasil  penelitian  Nankinga et  al .,
(1994)  menyatakan  bahwa B.  bassiana dapat  menginfeksi  telur,  larva,  dan  imago O. rhinoceros dengan mortalitas 80-100% dalam  waktu  dua  minggu. B.  bassiana bersifat  lebih  mudah  terurai  dan  hama yang  telah  terinfeksi  dapat  menular  pada hama  yang  lain  dengan  cara  bersentuhan atau terbawa oleh angin. Biaya pengendalian dapat ditekan karena pengendalian  hayati  dapat  diperbanyak sendiri  yaitu  menggunakan  bahan  organik (Erawati  dan  Wardati,  2016;  Wahyudi, 2008).
Limbah cair pabrik kelapa sawit(LCPKS) mengandung senyawa organik  dan  anorganik,  sehingga  dapat digunakan  sebagai  media  perbanyakan agen  hayati.  Disamping  itu,  LCPKS  juga mengandung  unsur  hara  yaitu    450  mg N/l, 80 mg P/l, 1.250 mg K/l, dan 215 mg Mg/l (Naibaho, 2003).
Pengembangan pengendalian hayati B. bassiana yang efektif dan efisien sebagai  pengendali  hama O.  rhinoceros sangat penting untuk meningkatkan produktivitas  kelapa  sawit  dengan  tetap
memperhatikan  kualitas  lingkungan  hidup (Erawati dan Wardati, 2015).
Tujuan  dari  penelitian  ini  adalah untuk  mendapatkan  formulasi  terbaik dalam hal variasi kerapatan spora B. bassiana dan konsentrasi  LCPKS  yang paling  efektif  dalam  pengendalian O. rhinoceros.

## METODE PENELITIAN
Penelitian dilaksanakan di Kecamatan  Medan  Denai,  Kelurahan Denai, Sumatra Utara, pada Juli - Agustus 2019.
Alat yang digunakan dalam penelitian ini ialah  sprayer (500 ml), gelas ukur  (25  ml),  timbangan  neraca  analitik, kotak  (media  pengamatan)  dan  alat  bantu lainnya.
Bahan  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  jamur  ( B.bassiana ) dengan variasi kerapatan spora 10 7 spora/g dengan merek dagang (METARIZEP), 10 9 spora/ml  yang  diperoleh  dari  BPTP Medan, 10 10 spora/g dengan merek dagang (NASA),  larva  kumbang  tanduk  ( O. rhinoceros ),  limbah  cair  pabrik  kelapa sawit  (LCPKS),  200g  serasah  batang pohon kelapa sawit, dan tanah.
Rancangan  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  Rancangan  Acak Kelompok  (RAK)  Faktorial,  dengan  2 faktor, yaitu:
a) Faktor  I:  Kerapatan  spora B.  bassiana
untuk pengendalian larva O. rhinoceros
dengan  3  taraf  yaitu:I 0 (Kontrol); I 1 (10 7 spora/g); I 2 (10 9 spora/ml); I 3 (10 10 spora/g).  Semua  taraf  kerapatan spora di atas akan di aplikasikan dengan konsentrasi 15g dan 15ml B. bassiana .
b) Faktor II : Taraf konsentrasi limbah cair pabrik  kelapa  sawit  sebagai  campuran dalam pengendalian larva O. rhinoceros dengan  3  taraf  konsentrasiyaitu:Q 0 (Kontrol);  Q 1 (100ml);  Q 2 (75ml);Q 3 (50ml).
Kombinasi  dari  perlakuan  4x4  dan 2  ulangan  sehingga  terdapat  32  plot penelitian, dengan jumlah larva O.  rhinoceros per  sampel  sebanyak  10 ekor, sehingga total larva uji sebanyak 320 ekor.
Tahapan penelitian sebagai berikut: 1. Pengambilan  larva O.  rhinoceros di PTPN  IV  Kebun  Adolina  Afdeling  I, sebanyak 400 larva.
2. Penyediaan serasah batang kelapa sawit dan LCPKS
3. Pembuatan  plot-plot  yang  digunakan, berupa kotak sebanyak 32 plot dan diisi dengan campuran serasah batang kelapa sawit 200g dan tanah 300g.
4. Larva O.  rhinoceros dimasukan  ke dalam tiap plot sebanyak 10 ekor .
5. Pembuatan  larutan  pestisida  hayati dengan  campuran B.  bassiana sebanyak 15g  atau  15ml  untuk  masing-masing kerapatan  dan  konsentrasi  LCPKS sebanyak 100ml, 75ml dan 50ml.
6. Aplikasi larutan pestisida hayati dengan menggunakan hand sprayer. Selanjutnya data dianalisa menggunakan analisa sidik ragam (ANOVA),  dan  dilanjutkan  dengan  uji rataan  lanjutan DuncanMultiple  Range Test (DMRT) pada taraf 5%.
Parameter pengamatan pada penelitian ini antara lain:
a. Perubahan tingkah laku
Mengamati  perubahan  tingkah  laku larva  setelah  aplikasi  bioinsektisida setiap 4 jam selama 14 hari.
b. Waktu kematian serangga (Jam) Mengamati  waktu  kematian  larva  di jam berapakah larva tersebut mati, yang
akan  diamati  setiap  4  jam  selama  14 hari,
c. Mortalitas Total (%) dengan perhitungan:
Mortalitas = 𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ ℎ𝑎𝑚𝑎 𝑦𝑎𝑛𝑔 𝑚𝑎𝑡𝑖 𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑠𝑒𝑙𝑢𝑟𝑢ℎ ℎ𝑎𝑚𝑎 x 100%

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Perubahan Tingkah Laku Larva

## O. rhinoceros
Hasil  pengamatan  terdapat  pada Tabel  1.  Hasil  pengamatan  menunjukkan terjadi  perubahan  tingkah  laku  larva
O. rhinoceros setelah dilakukan aplikasi B.  bassiana .  Perubahan  tingkah laku yang terjadi pada larva setelah 2 hari aplikasi  yaitu pergerakan  mulai  melambat dan  aktifitas  makan  mulai  menurun.
Penurunan  nafsu  makan  pada  larva disebabkan  oleh  terganggunya  jaringan tubuh O.  rhinoceros akibat  toksisitas spora  yang menyebabkan  kerusakan saluran  pencernaan,  sistem  pernafasan sehingga  nafsu  makan  larva O.  rhinoceros menjadi  berkurang  bahkan    mati.  Hal  ini sesuai  pernyataan  Priyanti  (2009)  bahwa ciri  perilaku  yang  terjadi  dikenal  sebagai summit disease .
Tabel  1.  Perubahan  Perilaku  Larva O. rhinoceros
Keterangan: HAS (Hari Setelah Aplikasi)
HSA Deskripsi Gambar
1 Tubuh larva berwarna putih kekuningan dan pergerkaan larva masih aktif 2 Tubuh larva berwarna kuning pucat dan pergerakan melambat 3 Tubuh larva berwarna kuning kecoklatan dan pergerakan melumpuh 4 Tubuh larva berwarna coklat tua dan mengeluarkan cairan dari mulut berwarna coklat kemerahan 5 Tubuh larva berwarna coklat kehitaman, lunak, dan mati 6 dan 7 Tubuh larva berwarna hitam dan agak mengeras dan tumbuh spora
Menurut  Inglis  (2001)  bahwa perubahan tingkah laku larva O.
rhinoceros berupa  pergerakan  melambat dikarenakan  matinya  sistem  saraf  pada tubuh larva sehingga mengalami kelumpuhan pada tubuh larva tersebut dan keluarnya enzim seperti protease, lipolitik, amylase, dan kitinase dari mulut, kulit dan saluran  pencernaan,  perubahan  warna tubuh larva dimulai dari putih kekuningan,kuning  kemerahan,  kuning pucat.  Sehingga  larva  tersebut  akan  mati dengan warna tubuh coklat kehitaman dan tubuh  mulai  mengeras  dengan  warna tubuh hitam.
Hal ini juga sesuai dengan penelitian  Boucias  dan  Pandland  (1998) dalam Desita et  al .,  (2015)  menyatakan perubahan  warna  kulit  hitam  yang  terjadi pada  tubuh    larva  disebabkan  oleh  proses melanisasi  yang  merupakan  suatu  bentuk pertahanan tubuh larva melawan patogen.
Pada  tahap  akhir,    miselium muncul  antara  ruas-ruas  tubuh  larva  pada bagian  abdomen.    Setelah  itu  permukaan tubuh  larva  yang  terinfeksi  ditutupi  oleh miselium  yang  berwarna  putih  (Inglis, 2001).  Hal  ini  sejalan    dengan  pendapat Kershaw et  al .  (1999)  bahwa  pada umumnya hifa    akan  tumbuh  ke permukaan  tubuh  larva  melalui  spirakel, mulut dan membran antara segmen.
Aplikasi  spora B.  bassiana pada berbagai  konsentrasi  LCPKS  setelah  2
hari  telah  menunjukan  peubahan  tingkah laku.
Hal  ini  disebabkan  karena  konidia cendawan  yangmelekat  pada  tubuh  larva telah melakukan penetrasi. Spora B.  bassiana mampu  menyerang  larva dengan  cara  menembus  langsung    tubuh larva.  Penembusan  dilakukan  secara mekanis atau kimiawi dengan mengeluarkan enzim yang disebut kitinase.  Menurut  Trizelia  (2005)  bahwa akibat  terjadinya mekanisme infeksi serangga secara enzimatis dan kimia akan menyebabkan  terjadinya  kenaikan  pH darah, penggumpalan darah dan berhentinya peredaran darah pada serangga  sehingga  akan  menyebabkan kematian  dan  larva  yang  sudah  mati ditumbuhi oleh miselium.
Waktu Kematian Larva O. rhinoceros Hasil  sidik  ragam  menunjukan bahwa  perlakuan  beberapa  kerapatan B. bassiana berpengaruh sangat nyata terhadap  waktu  awal  kematian  larva O.  rhinoceros .  Rata-rata  waktu  kematian larva O.  rhinoceros setelah  diuji  lanjut dengan Duncan taraf  5%    hasil  dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel  1.  Rata-rata  waktu  kematian  larva O.  rhinoceros dengan  beberapa perlakuan  spora B.  bassiana dan konsentrasi LCPKS. Perlakuan
Rata-rata (Jam)
I 0 Q 0 168a I 0 Q 1 168ab I 0 Q 2 168ab I 0 Q 3
168ab I 1 Q 0 168ca I 1 Q 1 62,5 cb I 1 Q 2 60,5cb I 1 Q 3 60cb I 2 Q 0 168ba I 2 Q 1 49b I 2 Q 2 46b I 2 Q 3 40b I 3 Q 0 168ca I 3 Q 1 62cb I 3 Q 2 60cb I 3 Q 3

## 52cb
Ket:  Angka-angka  yang  diikuti  oleh  huruf  kecil yang tidak sama adalah berbeda nyata menurut uji lanjut Duncan pada taraf 5%.
Tabel  1.  Menujukan  bahwa  waktu kematian  larva  tercepat  pada  perlakuan I 2 Q 3 yaitu  selama  40  jam.  Perlakuan  I 2 Q 3 berbeda nyata  dengan perlakuan I 0 Q 0 .
Konidia  yang  menempel  pada tubuh  larva  akan  membentuk  tabung kecambah (apresorium) dan menghasilkan enzim kitinase yang dapat menghancurkan kutikula  larva.  Prayogo et  al .,  (2005) menyatakan  bahwa  dengan  tingginya jumlah kerapatan jamur akan menyebabkan  semakin  banyak  konidia yang  menempel  pada  tubuh  larva  uji  dan melakukan penetrasi ke dalam haemocoel. Pada  saat  spora B.  bassiana berada  di dalam tubuh larva, spora akan mengeluarkan racun beauvericin. Menurut Soetopo  dan  Indrayani  (2007)  spora B.
bassiana menghasilkan toksin beauvericin yang  dapat menyebabkan  kerusakan jaringan  tubuh  akibat  terinfeksi  secara menyeluruh  sehingga  dapat  menyebabkan kematian pada larva.
Perlakuan  I 1 Q 1 menunjukan  hasil berbeda tidak nyata dengan perlakuan lain dan  lebih  lama  mematikan  larva  yaitu selama    62,5  jam.  Hal  ini  di  duga  karena spora  dalam  bentuk  tepung  (padat)  dan tingkat kerapatan spora yang rendah. I 1 Q 1 memiliki  tingkat  kerapatan  yang  lebih rendah  yaitu  10 7 spora/g.    Apabila kerapatan  konidianya  rendah  maka  daya kecambah  juga  rendah  dan  racun  yang dihasilkan  juga  sedikit,  sehingga  spora tidak efektif mematikan larva.
Heriyanto  dan  Suharno  (2008) dalam Desita et  al .,  (2015)  menyatakan pemberian  tingkat  kerapatan  yang  rendah dan  racun  menyebabkan  rendahnya  daya kecambah  pada  kedua  perlakuan  tersebut untuk  menginfeksi  larva O.  rhinoceros . Pendapat  ini diperkuat dengan pernyataan Neves  dan  Alves  (2004) dalam Desita et al .  (2015)  bahwa  waktu  awal  kematian serangga  dipengaruhi  oleh  patogenitas dari  perbedaan  kerapatan  jamur  pada  saat aplikasi.  Perlakua  I 0 Q 0 terlihat  tidak  ada larva  yang  mati.  Hal  ini  disebabkan karena tidak adanya perlakuan B. bassiana dan LCPKS.
Persentase  mortalitas  harian  dapat  dilihat pada Gambar 1.
Gambar  1.  Fluktuasi  mortalitas  harian  larva O.
rhinoceros
Pada  hari  ke-  1  dan  2  setelah aplikasi  terlihat  belum  adanya  pengaruh pemberian B. bassiana terhadap mortalitas larva.  Pada  hari  ke  3  pada  perlakuan I 2 Q 3 terjadi mortalitas sebesar 30%.
Mortalitas O. rhinoceros terus mengalami peningkatan pada perlakuan I 2 Q 3 , I 2 Q 2 dan I 2 Q 1 pada  hari  ke  4  dengan  mortalitas sebesar  35%  ,  25%  dan  15%.  Hal  ini disebabkan  karena  jumlah  konidia    yang sama  dan  konsentrasi  LCPKS  yang berbeda  dari  masing-masing  perlakuan sehingga dapat mempengaruhi mekanisme dan kecepatan masing-masing entomopatogen
terhadap larva O. rhinoceros .
Mortalitas Total Larva
Oryctes rhinoceros (%)
Hasil  sidik  ragam  menunjukan beberapa  perlakuan  berpengaruh  nyata
terhadap mortalitas total larva O. rhinoceros setelah  diuji  lanjut  dengan Duncan taraf  5% terpada Tabel 2.
Tabel 2. Rata-rata mortalitas total larva O. rhinoceros dengan beberapa perlakuan Perlakuan Mortalitas total (%) I 0 Q 0
0a I 0 Q 1
0ab I 0 Q 2
0ab I 0 Q 3
0ab I 1 Q 0
0ba I 1 Q 1
90b I 1 Q 2 80b I 1 Q 3 95b
I 2 Q 0 0ca
I 2 Q 1 100cb I 2 Q 2 100cb
I 2 Q 3 100cb
I 3 Q 0 0ca
I 3 Q 1 95cb I 3 Q 2 90cb
I 3 Q 3

## 100cb
Ket  :  Angka-angka  pada  yang  diikuti  oleh  huruf kecil  yang  tidak  sama  berbeda  nyata  menurut  uji lanjut Duncan pada taraf 5%.
Tabel  2  menunjukan  bahwa  nilai persentase  mortalitas  total  terbesar  pada perlakuan  I 2 Q 1 ,  I 2 Q 2 ,  I 2 Q 3 dan  I 3 Q 3 yaitu sebesar  100%.  Perlakuan  I 1 Q 1 berbeda tidak  nyata  dengan  perlakuan  I 3 Q 1 dan I 3 Q 2 dengan nilai persentase  yaitu sebesar 90%  dan  95%.  Persentase  mortalitas  total pada perlakuan I 3 Q 3 lebih tinggi dibandingkan  dengan  perlakuan  I 0 Q 0 , I 0Q 1 ,  I 0 Q 2 ,  I 0 Q 3 ,  I 1 Q 0 ,  I 1 Q 1 ,  I 1 Q 2 ,  I 1 Q 3 , I 2 Q 0 dan  I 3 Q 0 hal  ini  diduga  karena perlakuan  yang  diaplikasikan  kerapatan konidia  lebih  tinggi  dan  kandungan  racun yang  dihasilkan  juga  lebih  banyak  untuk menginfeksi  larva O.  rhinoceros .  Trizelia dan  Nurdin  (2008)  dan  Prasasya  (2008)
0 20 40 60 80 100 120 1 2 3 4 5 6 7 M o rt a lit a s La rv a Hari Kematian I0Q0 I0Q1 I0Q2
I0Q3 I1Q0 I1Q1 I1Q2 I1Q3 I2Q0 I2Q1 I2Q2 I2Q3 I3Q0 I3Q1 I3Q2
I3Q3
menyatakan bahwa sedikit atau banyaknya racun  beauvericin  yang  dihasilkan  oleh spora  tergantung  dari  tingkat  kerapatan spora yang diinfeksikan terhadap serangga sasaran.
Perlakuan  I 2 Q 0 terlihat  tidak adanya  larva  yang  mati  atau  0%  dan perlakuan  ini  memiliki  waktu  terlama dalam  menyebabkan  kematian  pada  larva (168  jam).  Hal  tersebut  dikarenakan  tidak adanya campuran LCPKS dalam perlakuan tersebut, sehingga mengekibatkan lamanya penyerapan spora ke  dalam  media  pakan  dan  tubuh  larva O. rhinoceros tersebut. Pendapat ini diperkuat  oleh  Kershaw et  al .,  (1999)
dalam Desita et  al ., (2015) bahwa  jumlah spora sangat penting dalam proses  infeksi serangga secara perlahan akan  mengalami kematian. Prayogo (2006) dalam Desita et al .,  (2015)  dan  Utomo et  al. (2008)  juga menambahkan kerapatan spora merupakan salah  satu  syarat  untuk  meningkatkan efektivitas B. bassiana di lapangan.
Suhu  dan  kelembaban  juga  akan mempengaruhi perkembangan B. bassiana dalam menginfeksi larva, selain perbedaan konsentrasi  adapun  batasan  suhu  yang dapat mempengaruhi keberhasilan
penelitian  yang  dilakukan.  Suhu  pada ruang  penelitian  rata-rata  28 o C.  Menurut Rosfiansyah  (2009) dalam Desita et  al .,
(2015) cendawan entomopatogen B.
bassiana mampu berkembang pada
kisaran suhu 15-35 o C dengan kelembaban 95,5%. Hal ini sesuai dengan suhu tempat penelitian .

## KESIMPULAN
1. Variasi kerapatan spora
B. bassiana memiliki pengaruh dalam pengendalian  larva O.  rhinoceros yang dapat  dilihat  dari  persentase  perlakuan I 2 Q 1 ,  I 2 Q 2 ,  I 2 Q 3 dan  I 3 Q 3 yaitu  sebesar 100%  dimulai  dari  hari  ke  3-7  yang signifikan  dalam  pengendalian  larva O. rhinoceros.
2. Perlakuan terbaik terhadap waktu kematian  larva O.  rhinoceros tercepat yaitu perlakuan I 2 Q 2 (40 jam).
3. Persentase mortalitas total terbesar pada perlakuan  I 2 Q 1 ,  I 2 Q 2 ,  I 2 Q 3 dan  I 3 Q 3 yaitu sebesar 100%.

## DAFTAR PUSTAKA
Boucias D. G. And J. C. Pendland. 1998. Priciple of insect pathology . Kluwer
Academic Publisher. Boston. DITJENBUN [Direktorat Jenderal Perkebunan].  2008. Hama  dan Penyakit yang Mengganggu Tanaman  Kelapa  Sawit. Jakarta: Direktorat Jenderal Perkebunan.
Erawati,  D.N  dan  Irma  Wardati,  2016. Potensi  Cendawan  Entomopatogen
Indigenus Sebagai Pengendali Hayati  Hama  Penggerek  Buah KakaoConomorpha Cramerella
SNELL.  Jurnal  Manggaro  Vol.  12 (2) 75-80.
Erawati,  D.N  dan  Irma  Wardati.  2015.
Formulasi  B.  bassiana  Isolat  Lokal Sebagai Pengendalian Hayati Hama  Utama  Kapas .  Jurnal  Ilmiah Inovasi Vol. 15 (1) 21-26.
Erawati, D.N. 2009. Infeksi Agens Hayati
Entomopatogen  terhadap  Gejala kematian  dan  PerilakuSpodoptera litura F. Prosiding Seminar
Nasional Peran Agroteknologi Untuk Meningkatkan Produksi Tanaman Perkebunan . Fakultas Pertanian Universitas Jember.
Hara,  A.  H.  2014. Coconut  Rhinoceros Beetle,  O.  rhinoceros  A  Major Threat  to  Hawaii’s  Coconut  and Palm Trees. Makalah dipresentasikan  pada  Seminar  & Tradeshow Corp Production Services,  University  of  Hawaii,  23 Mei. Heriyanto  dan  Suharno,  2008. Studi Patogenitas Metarhizium anisopliae (Meth.) Sor hasil
Perbanyakan  medium  cair  alami terhadap  larva  Oryctes  rhinoceros .
Jurnal  Ilmu-ilmu  Pertanian  Vol.  4 (1): 47-54.
Inglis,  G.D,  Goettel,  M.S,  Butt,  T.M.,  & Strasser, H. 2001. Use of hyphomycetous fungsi for managing insect pests , In: Butt, T.M, Jackson, C.W.,  &  Magan,  N.  (Eds). Fungsi as  Biocontrol  Agents,  Progress, Problems  and  Potential .  CABI Publishing, London.
Kershaw M.J,E.R. Moorhause, R. Bateman,  S.E.  Reynolda,  and  A.K. Charney. 1999. The role of desruxin
in the pathogenecity of Metarhiziumanisopliae  for  three species  of  insect. Journal  of invertebrate  pathology.  74:  213- 223.
Naibaho,  P.  2003.  Teknologi  Pengolahan Kelapa  Sawit.  Pusat  Penelitian Kelapa Sawit. Medan.
Neves,  P.M.O.J.  Alves,  S.B.  2004. External  Events  Related  to  the
Infection  Process  of  Comitermes
Cumulans (Kollar) (Isoptera: Termitidae) by the Entomopatogenic  fungi  Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae . Journal of the
Neotrapical  Entomol.  Vol.  33  (1)  :
051-056.
Pahan, I. 2010. Kelapa Sawit :
Manajemen  Agribisnis  dan  Hulu hingga  Hilir .  Jakarta:  Penebar
Swadaya.
Prasasya,  A.  2008. Uji  efikasi  cendawan entomopatogen  Beauveria  bassiana Balsamo dan Metarhizium anisopliae (Metch.) Sorokin terhadap Mortalitas Larva Phragmatoecia  castanae Hubner di Laboratorium.  (Skripsi).  Medan.
Universitas Sumatra Utara.
Prawirosukarto,  S.,  Y.P.  Roerrha,  U.
Condro dan Susanto. 2003. Pengenalan dan Pengendalian Hama  Penyakit  Tanaman  Kelapa Sawit . Medan: PPKS. Prayogo Y, 2006. Upaya mempertahankan keefektivan cendawan  entomopatogen  untuk mengendalikan hama tanaman pangan .  Jurnal  Litbang  pertanian. Vol. 25(2):47-56
Priyanti  S,  2009. Kajian  patogenitas cendawan  Metarhizium  anisopliae pada media kaolin untuk pengendalian hama Oryctes rhinoceros. Dalam Prosiding Simposium  I.  Badan  Penelitian  dan Pengembangan Pertanian Pusat
Penelitian, Bogor 20 Januari 2009 : 150.
Rosfiansyah,  2009. Pengaruh  aplikasi
Beauveria bassiana (Balsamo) Vuillemin  dan  Heterorhabditis  sp. Terhadap  serangan  hama  ubi  jalar Cylas formicarius (Fabr.) (Coleoptera; Brentidae) . Tesis
Sekolah  Pasca  Sarjana.  Institut
Pertanian Bogor. Bogor.
Soetopo,  D,  dan  IGAA  Indrayani.  2007. Status teknologi dan prospek Beauveria bassiana untuk
pengendalian serangga hama tanaman  perkebunan  yang  ramah lingkungan . Perspektif. Vol.
6(1):29-46.
Tafoya,  F.,  M.  Zuniga-Delgadillo,  R.
Alatorre,  J.  Cibrian-Tovar,  and  D.
Stanley.  2004. Pathogenicity  of Beauveria bassiana (Dueteromycota: Hyphomycetes) against  cactus  weevil,  Metamasius spinolae (Coleoptera: Curculionidae)under laboratory
conditions .  Florida  Entomologist. Vol. 87(4): 533-536.
Trizelia  dan  Nurdin,  2008, Peningkatan persistensi  dan  transmisi  isolate
unggul  cendawan  entomopatogen
Beauveria bassiana untuk pengendalian  hama  Crocidolomia pavonana (Lepidoptera: Pryalidae). Penelitian  Hibah  Bersaing:  Bidang Ilmu Pertanian . Universitas Andalas Padang.
Trizelia, 2005. Cendawan entomopatogen Beauveria  bassiana  (Bals.)  Vuill. (Deuteromycota: Hyphomycetes), karakterisasi fisiologi, dan virulensinya terhadap Crocidolomia pavonana (F.) (Lepidoptera:  Pryralidae). Tesis Sekolah  Pasca  Sarjana.  Institut
Pertanian Bogor. Bogor.
Utomo  &  Rukmana,  2008. Pengaruh aplikasi isolat cendawan entomopatogen  Beauveria  bassiana dari daerah yang berbeda terhadap intensitas  serangan  dan  produksi ulat bawangSpodoptera exiqua hubner ( Lepidoptera : Noctuidae ).
Wahyudi,  P.  2008. Enkapsulasi  propagul jamur  entomopatogen  Beauveria bassiana  menggunakan  alginate dan  pati  jagung  sebagai  produk mikoinsektisida . Jurnal Ilmu Kefarmasian Indonesia.Vol. 6 (2):51-56.