## Prevalensi dan Intensitas Ektoparasit pada Ikan

## Gabus ( Channa striata ) dari Tangkapan Alam dan Budidaya
Bahruddin Salam dan Dewi Hidayati
Jurusan Biologi, Fakultas Matematikan dan Ilmu Pengetahuan Alam, Institut Teknologi Sepuluh Nopember Jl. Arief Rahman Hakim, Surabaya 60111 Indonesia
e-mail : dewi_hidayati@ymail.com
Abstrak —Penelitian  ini  bertujuan  untuk  memperoleh data  jenis-jenis  ektoparasit  serta  prevalensi  (P)  dan intensitas  (I)  ektoparasit  pada  ikan  gabus  dari  tangkapan alam  (TA) dan budidaya  (BD). Sampel ektoparasit diambil dari  ikan  gabus  tangkapan  alam  dan  budidaya  masing- masing 20 ekor dengan metode scraping (pengerokan) pada bagian  kulit  dan  insang.  Sampel  ektoparasit  ditampung pada  cawan  Petri  dan  ditambahkan  buffer  formalin  0,5%, lalu  dipindahkan  ke  botol  plakon  berlabel.  Selanjutnya diamati menggunakan mikroskop OpticLab, serta dilakukan  perhitungan  prevalensi  dan  intensitas.  Hasil pengamatan ditemukan 4 jenis ektoparasit, yaitu Oodinium sp. (P  TA=75%,  P  BD=70%  ;  [I  TA=4.4,  I  BD=8.3]  ind.  per ikan),  Trichodina sp. (P  TA=30%,  P  BD=15%;  [I  TA=1.3, I  BD=1]  ind.  per  ikan),  Ichthyophthirius  multifiliis  (P TA=65%,          P  BD=15%  ;  [I  TA=1.61,  I  BD=1.66]  ind.  per ikan),  Epistylis sp. (P  TA=50%  ;  [I  TA=1.6]  ind.  per  ikan) .
Prevalensi  ektoparasit  ikan  gabus  ( C.  striata )  pada tangkapan  alam  lebih  tinggi  dibandingkan  budidaya.  Nilai prevalensi tersebut lebih dipengaruhi faktor abiotik berupa suhu  yang  menghambat  perkembangan  fase  infektif parasit.
Kata  Kunci —Ektoparasit,  Ikan  gabus  ( C.  striata ), Intensitas, Prevalensi.

## I. P ENDAHULUAN
KAN  gabus  diketahui  mengandung  protein  dan albumin  yang  sangat  penting  bagi  kesehatan  [1]. Periode  1998-2008  jumlah  tangkapan  ikan  gabus  dari perairan  umum  mengalami  kenaikan rata-rata 2,75%  per tahun,  sementara  produksi  budidaya  ikan  gabus mengalami  peningkatan  sebesar  5.535  ton  pada  tahun 2008  [2].  Produksi  ikan  gabus  di  Provinsi  Jawa  Timur mencapai  1.037,6  ton  pada  tahun  2010  [3].  Oleh  karena itu,  potensi  ikan  gabus  sebagai  salah  satu  sumberdaya perikanan,  perlu  dikembangkan  dan  diteliti  lebih  lanjut biologisnya.  Budidaya  ikan  gabus  merupakan  upaya untuk memenuhi permintaan kebutuhan ikan gabus  yang semakin  meningkat.  Namun  demikian,  usaha  budidaya tidak  terlepas  dari  ancaman  bebagai  jenis  penyakit, contohnya parasit [4].
Ektoparasit  pada  ikan  umumnya  golongan  crustacea, cacing  dan  protozoa.  Ektoparasit  ini  menginfeksi  sirip, sisik,  operkulum  dan  insang  ikan  [5].  Tingkat  kematian infeksi  ektoparasit  yang  tinggi  dapat  mengakibatkan kematian  akut,  yaitu  mortalitas  tanpa  menunjukkan gejala  terlebih  dahulu  [6][7].  Berdasarkan  penelitian Umara  [8]  terdapat  ektoparasit Trichodina sp.  yang menginfeksi  ikan  gabus  yang  hidup  bebas  di  irigasi  Cot Balee  desa  Meunasah  Manyang  Lamlhom  Kecamatan Lhoknga Aceh Besar.
Ektoparasit  merupakan  permasalahan  klasik  yang merugikan, namun belum mendapat perhatian  yang baik. Pengetahuan tentang prevalensi dan intensitas ektoparasit pada  ikan  merupakan  hal  yang  mendasar  dan  penting, karena  jenis  penyakit  yang  dapat  berpotensi  menjadi kendala pada unit budidaya. Tujuan penelitian ini adalah memperoleh  data  jenis-jenis ektoparasit pada ikan gabus ( C.  striata ),  serta  memperoleh  data  prevalensi  dan intensitas  ektoparasit  pada  ikan  gabus  ( C.  striata )  dari tangkapan alam dan budidaya.

## II. M ETODE P ENELITIAN
Waktu dan Pelaksanaan A.
Penelitian  dilakukan  pada  bulan  Mei-Oktober  2016. Pengambilan sampel ikan gabus ( C.  striata ) di 2 lokasi, yaitu  anak  sungai  di  Porong,  Sidoarjo  (GPS  :  L 7 o 32'38.64"S,  B  112 o 42'33.32"T)  untuk  tangkapan  alam, dan Tambak Segara, Sedati, Juanda (GPS : 7°22'13.81"S, B  112°47'52.79"T) untuk  budidaya.  Selanjutnya, preparasi  dilakukan  di  Laboratorium  Zoologi  dan Rekayasa Hewan Biologi ITS Surabaya.
Pengambilan Sampel B.
Pengambilan sampel ikan  gabus ( C. striata ) dilakukan di 2 lokasi  yaitu budidaya dan tangkapan alam. Variabel kualitas  air  yang  diukur  berupa  suhu,  pH,  dan  salinitas pada air di lokasi pengambilan ikan.

## Preparasi Sampel C.
Sampel  ikan  gabus  diambil  sebanyak  20  ekor  ikan tangkapan  alam  dan  20  ekor  ikan  dari  budidaya  untuk dilakukan  pengukuran  morfometri.  Pengambilan  data berat tubuh ikan dilakukan dengan neraca analitik digital. Metode  pemeriksaan  ektoparasit  pada  ikan  gabus dilakukan  dengan  metode scraping (pengerokan) kemudian  dimasukkan  botol  plakon  berlabel  [9]. Pengerokan  dilakukan  pada  bagian  organ  kulit  atau permukaan  tubuh.  Hasil  pengerokan  tersebut  diletakkan pada  cawan  Petri  dan  diberikan  buffer  formalin  0,5%. Begitu  pula  dengan  insang,  setelah  diambil  dari  ikan gabus,  insang  diletakkan  pada  cawan  Petri,  dilakukan pengerokan  secara  perlahan  dengan  pinset,  kemudian dimasukkan  kedalam  botol  plakon  berlabel  dan ditambahkan buffer formalin 0,5%.

## Pengamatan dan Identifikasi D.
Pengamatan  dilakukan  dengan  pengambilan  larutan hasil scraping dari  kulit  dan  insang,  masing-masing diteteskan  pada sedwig  rafter modifikasi . Pengamatan dibantu  dengan  alat  mikroskop compound dengan
I
perbesaran  100  kali  yang  terhubung  dengan OptiLab . Identifikasi  parasit  menggunakan  buku  dan  jurnal identifikasi parasit [10][11][12][13][14][15].
Analisis Hasil Prevalensi dan Intensitas Ektoparasit E.
Berdasarkan  hasil  jenis  dan  jumlah  parasit,  kemudian dianalisis secara deskriptif untuk dihitung prevalensi dan intensitas parasit dengan rumus sebagai berikut :
Prevalensi = x 100% Intensitas = [16].

## III. H ASIL DAN D ISKUSI
Hasil Pengukuran Kualitas Air A.
Hasil  analisis  kualitas  air  di  tempat  pengambilan sampel ikan  gabus baik tangkapan alam maupun tambak budidaya (Tabel  1),  menunjukkan  kisaran suhu,  pH,  dan salinitas  yang  sesuai  untuk  kehidupan  ikan  gabus  ( C. striata )  [17][18][19].  Namun  demikian,  bagi  kehidupan ektoparasit, rentang suhu  dan pH nya lebih sempit.  Oleh karena  itu  perbedaan  suhu  dan  pH  di  lokasi sampling berpotensi  mempengaruhi  kehidupan  parasit.  Faktor  pH, terutama temperatur sangat mempengaruhi perkembangan ektoparasit [20][21][22][23][24].
T ABEL 1. K UALITAS A IR No. Parameter Lokasi Referensi TA BD 1.
Suhu 26 o C 30 o C 25-32 o C [17]. 2. pH 6,8 7,2 6,2 - 7,8 [18]. 3. Salinitas 0 ppt 0,3 ppt 0 – 0,5 ppt [19]. Keterangan : TA=Tangkapan Alam, BD=Budidaya
Hasil  Pengamatan  Jenis-Jenis  Ektoparasit  Ikan B.
Gabus   (C. striata)
Berdasarkan  hasil  pengamatan  diperoleh  4  jenis ektoparasit  yaitu Oodinium sp., Trichodina sp., Ichthyophthirius multifiliis , dan Epistylis sp.
Gambar 1. Hasil pengamatan ektoparasit; [A] Oodinium sp. (a) Cakram perlekatan, (b) Sitoplasma. [B] I. multifiliis (a) Macronucleus, (b) Micronucleus. [C] Trichodina sp. (a) Zona adoral, (b) Membran, (c) Radial pin. [D] Epistylis sp. (a) Operculum, (b) Micronucleus, (c) Macronucleus, (d) Stalked .
1) Oodinium sp.
Oodinium sp.  yang  ditemukan  memiliki  bentuk  oval dengan panjang 101.5µm. Bentuk Oodinium adalah oval, sub-oval    hingga fusiform dengan  panjang  30  –  150µm [10][11][12].  Oodinium  ditemukan dalam  dua fase  yaitu fase  tropont,  dengan  ciri-ciri  adanya  juluran  sitoplasma membentuk  cakram  perlekatan  [12]  dan  fase  mitosis, yang dicirikan dengan adanya segmentasi sel [10].
2) Ichthyophthirius multifiliis I.  multifiliis yang  ditemukan  memiliki  bentuk  bulat yang  berukuran  104.2  µm,  serta  memiliki macronucleus dan micronucleus . I. multifiliis berbentuk bulat atau oval, yang berukuran ±50-100 µm, terdapat macronucleus dan
micronuleu s  [13].  Parasit  ini  memiliki  makronukleus berbentuk  tapal  kuda  yang  transparan  dan  mikronukleus yang menempel pada makronukleus [25].
3) Trichodina sp.
Trichodina sp.  ditemukan  memiliki  bentuk  bundar dengan  ukuran  68,7  µm,  dan  memiliki  bagian-bagian tubuh  seperti radial  pin ,  membran,  dan  zona  adoral  di bagian  paling  luar. Trichodina sp.  berbentuk  bundar dengan zona adoral [14]. Trichodina sp. tergolong parasit berbentuk bulat berukuran antara 50-90 µm [26].
4) Epistylis sp. Epistylis sp.  ditemukan  memiliki  bentuk  tubuh  seperti lonceng yang berukuran 102,1 µm, dengan bagian-bagian tubuh berupa operculum, macronucleus dan micronucleus , serta adanya stalked . Ciri-ciri Epistylis sp. memiliki operculum , terdapat macronucleus dan micronucleus ,  serta  memiliki  tangkai  yang  berfungsi sebagai  alat  penempel  pada  substrat  inang  [15].  Parasit ini  berukuran  50-250  µm,  biasanya  membentuk  koloni dan tersusun pada tangkai [27].
Perbandingan  Jenis,  Prevalensi  dan  Intensitas C.
Ektoparasit  Ikan  Gabus  (C.  striata)  Tangkapan Alam dan Budidaya
T ABEL 2. H ASIL P REVALENSI DAN I NTENSITAS E KTOPARASIT I KAN G ABUS ( C. STRIATA ) PADA B UDIDAYA DAN T ANGKAPAN A LAM L Ektoparasit JSP JSI JE P I BD
Oodinium sp. 20 14 117 70% 8,3 I. multifiliis 20 3 5 15% 1,66 Trichodina sp. 20 3 3 15% 1 TA
Oodinium sp. 20 15 64 75% 4,2 I. multifiliis 20 13 21 65% 1,61 Trichodina sp. 20 6 8 30% 1,3 Epistylis sp. 20 10 16 50% 1,6
Keterangan : L = Lokasi, BD = Budidaya, TA = T angkapan Alam, JSP =  Jumlah  Sampel  Diperiksa,  JSI  =  Jumlah  Sampel  Terinfeksi,  JE  = Jumlah Ektoparasit, P = Prevalensi (%), I = Intensitas (individu/ikan)
Hasil perhitungan nilai prevalensi menunjukkan bahwa individu dalam populasi ikan gabus ( C. striata ) dari alam lebih  banyak  terinfeksi  ektoparasit  dibandingkan  dari budidaya.  Perbandingan  nilai  prevalensi I.  multifiliis antaraTA dan BD pada Tabel 2 menunjukkan selisih nilai prevalensi  yang  paling  tinggi,  yaitu  TA  =  65%  banding BD = 15%. Hal tersebut kemungkinan dipengaruhi faktor suhu,  di  mana  suhu  perairan  lokasi  sampel  TA  (26ºC) dan  BD  (30ºC).  Siklus  hidup I.multifiliis sangat tergantung  pada  suhu,  di  mana  pada  suhu  30ºC  fase tomont I. multifiliis mengalami penghambatan pembelahan [9]. Pengendalian populasi parasit I.multifiliis dapat dilakukan dengan cara mempertahankan  suhu  pada  29-30ºC  [16].  Berdasarkan hal tersebut, air lokasi sampling BD   yang menunjukkan suhu  30ºC  berpotensi  menghambat  perkembangan tomont I.multifiliis. Kondisi demikian dapat menyebabkan penurunan populasi pada tahap selanjutnya, yaitu tahap trophont (fase infektif), sehingga menurunkan  penularan  akibat  menurunnya  frekuensi interaksi antara hospes dengan fase infektif [28].
Trichodina sp.  tumbuh  subur  di  perairandengan rentang  suhu  air  25-30ºC  [29][30].  Semakin  rendah temperatur  akan  meningkatkan  prevalensi  parasit  pada ikan,  di  mana  terjadi  pertumbuhan  optimum  pada temperatur  21-26ºC  namun  jika  suhu  bertambah  tinggi (temperatur  27-32ºC)  terjadi  penurunan  nilai  prevalensi secara  bertahap  [31] . Berdasarkan  hal  tersebut,  faktor
suhu  juga  dimungkinkan  menyebabkan  prevalensi Trichodina sp. pada TA (P=30%, suhu 26ºC) lebih tinggi dibandingkan di perairan BD (P =15%, suhu=30ºC).
Epistylis sp. hanya ditemukan  menginfeksi ikan gabus ( C.  striata )  TA  dengan  nilai  prevalensi  (P=  50%). Epistylis sp.  dapat  bereproduksi  secara  optimum  pada perairan  dengan  suhu  10-25 o C  dan  pH  6,5-7  [32].  Hal tersebut dikarenakan faktor kualitas air di TA (suhu 26 o C dan pH 6,8) lebih sesuai untuk pertumbuhan Epistylis sp. dibandingkan dengan di lokasi BD yang suhu dan pH nya lebih tinggi (suhu 30 o C dan pH 7,2). Intensitas Oodinium sp.  di  BD  (I=8,3)  lebih  tinggi dibandingkan dengan TA  (I=4,2).  Hal tersebut mengindikasikan  bahwa  tiap  individu  ikan  gabus  ( C. striata )  pada  BD  terinfeksi  lebih  banyak  ektoparasit Oodinium sp.  dibandingkan  dengan  pada  TA.  Faktor yang  bisa  menyebabkan  parasit  berkembang  pada  ikan antara  lain  tejadinya  kompetisi  terhadap  ruang  dan perolehan  makanan  yang  memicu    terjadinya  stres  pada ikan  [33][34].  Ikan  yang  stres  dapat  memicu  terjadinya penyakit [35].
Parasit  pada  ikan  sangat  dipengaruhi  oleh  faktor abiotik  dan  biotik  [24].  Berdasarkan penelitian  ini  dapat dinyatakan bahwa prevalensi ektoparasit pada ikan gabus ( C.  striata )    lebih  dipengaruhi  faktor  abiotik  yaitu  suhu yang menghambat perkembangan fase infektif parasit.
Kelimpahan  Ektoparasit  Berdasarkan  Organ  Kulit D. dan Insang
Ektoparasit  yang  ditemukan  seperti Oodinium sp., Trichodina sp., I.  multifiliis dan Epistylis sp.  merupakan jenis-jenis  ektoparasit  yang  biasa  ditemukan  di permukaan  epitel  kulit  dan  insang  [36][37][32]. Berdasarkan  kelimpahan  ektoparasit  yang  ditunjukkan pada  Gambar 2 dan Gambar  3, terlihat  bahwa Oodinium sp.  memiliki  jumlah  yang  paling  tinggi.  Hal  tersebut disebabkan Oodinium sp.  membentuk  koloni. Oodinium sp.  merupakan  parasit  yang  hidup  berkoloni  dan menyebabkan velvet  disease pada  ikan  [38].  Selain  itu, jika  ditunjau  secara  keseluruhan,  ektoparasit  pada  ikan gabus  ( C. striata)  lebih  banyak  ditemukan    pada  bagian organ  kulit  daripada  insang,  baik  di  lokasi  budidaya maupun tangkapan alam.

## Gambar 2. Ektoparasit pada Ikan Gabus Budidaya
Gambar 3 . Ektoparasit pada Ikan Gabus Tangkapan Alam
Parasit  lebih  mudah  menempel  pada  organ  kulit dibandingkan  dengan  insang  yang  sering  tertutup  oleh
tutup  insang  ( opercullum )  [39][27].  Perilaku  ikan  gabus yang  sering  ditemukan  hidup  di  dasar  perairan[40], menyebabkan  kemungkinan  ektoparasit  fase  infektif yang menempel pada substrat mudah melakukan infeksi. Fase trophont parasit akan  membentuk fase tomont yang akan  menempel  pada  substrat  di  dasar  perairan, selanjutnya  tomont  mengalami  pembelahan  secara  aktif dan berubah menjadi stadia infektif theront [41].
Ikan  gabus  ( C.    striat a)  merupakan  jenis  ikan  yang mampu  bernafas  menggunakan  oksigen  dari  udara  ( air- breathing  fish )  [42].  Ikan  golongan  tersebut  dapat menggunakan air-breathing organ (ABO) untuk menyerap oksigen di udara dari atas permukaan air [43]. Adanya organ tersebut mengakibatkan organ insang pada ikan  gabus  tidak  berkembang  dengan  baik.  Chanidae termasuk air-breathing  fish dan    memiliki  ruang supra- branchial yang  kaya  akan epitelium  vascular sebagai ABO.  Chanidae  menunjukkan  perkembangan  ruang supra-branchial,  yang  menyebabkan  tereduksinya  organ insang [44].
Luas  permukaan  insang  yang  tereduksi  pada  ikan gabus,  menyebabkan  penurunan  luas  permukaan  kontak dengan  parasit,  sehingga    mengurangi  kemungkinan parasit  untuk  menempel  pada  insang.  Karena  ukuran kulit yang lebih besar dari insang, sehingga semakin luas permukaan  inang  maka  jumlah  parasit  juga  akan bertambah banyak [39][27].

## IV. K ESIMPULAN
Penelitian  ini  dapat  disimpulkan  bahwa  nilai prevalensi  ektoparasit  pada  ikan  gabus  ( C.  striata )  dari lokasi  tangkapan  alam  lebih  tinggi  dibandingkan  pada lokasi  budidaya,  dan  nilai  intensitas  ektoparasit Oodinium sp. pada ikan gabus ( C. striata ) lebih tinggi di lokasi  budidaya  dibandingkan  dengan  pada  lokasi tangkapan  alam.  Prevalensi  ektoparasit  pada  ikan  gabus ( C.  striata )  lebih  dipengaruhi  faktor  abiotik  yaitu  suhu yang menghambat perkembangan fase infektif.

## U CAPAN T ERIMA K ASIH
Terima  kasih  kepada  Ibu  Dr.  Dewi  Hidayati,  M.Si., selaku  dosen  pembimbing  tugas  akhir  yang  telah memberikan  bimbingan  dan  arahan  serta  dukungan. Terima  kasih  juga  kepada  orang  tua,  teman-teman seperjuangan  Mahasiswa  Biologi  ITS  angkatan  2012 (B15),  dan  seluruh  pihak  yang  telah  memberikan  doa, bantuan, dan semangat.

## D AFTAR P USTAKA
[1] N. K. D. Zakaria, “Pengaruh ekstrak ikan gabus ( Channa striata ) terhadap  penyembuhan  luka  pasca  operasi  bedah  laparatomi kucing  ( Felis  domestica ),”  Skripsi,  Program  Studi  Kedokteran Hewan,  Fakultas  Kedokteran,  Universitas  Hasanuddin,  Makasar (2015).
[2] Fadli,  “Bagusnya  ikan  gabus,”  Warta  Pasar  Ikan,  Ed.  No.86, (2010) 4-5.
[3] Profil  Kelautan  dan  Perikanan  Propinsi  Jawa  Timur  untuk Mendukung Industrialisasi KP, Pusat Data Statistik dan Informasi Sekretariat Jendral KKP (2013).
[4] B. Cahyono, Budidaya Ikan Air Tawar , Cetakan Kelima. Kanisius (2005).
[5] Winaruddin  dan  Eliawardani,  “Inventarisasi  ektoparasit  yang menyerang  ikan  mas  yang  dibudidaya  dalam  jaring  apung  di
83 2 3 34 1 2 Oodinium sp. Trichodina sp.
Ichtyophtirius multifiliis
Budidaya Kulit Insang 33 4 19 10 31 4 2 6 Oodinium sp. Trichodina sp. Ichthyopthirius
multifilis Epistylis sp.
Tangkapan Alam Kulit Insang
danau laut air tawar Kabupaten Aceh Tengah”. Jurnal Kedokteran Hewan , Vol. 1, No. 2 (2007) 66-69.
[6] C.  Sommervile.  “Parasite  of  farmed  fish,”  In  Biology  of  farmed fish ed. K. D. Black and A. D. Pickering, Ed. Sheffeild Academic Press (1998) 146-179.
[7] W.  M.  Lestari,  “Identifikasi  ektoparasit  ikan  nila  ( Orechromis nilaticus Tremavas)  pada  kolam  IPAL  (Instalasi  Pengolahan  Air Limbah)  pabrik  susu  di  Jawa  Tengah,”  Skripsi,  Program  Studi Biologi,  Fakultas  Sains  dan  Teknologi,  UIN  Sunan  Kalijaga, Yogyakarta (2015).
[8] A.  Umara,  M.  Bakri,  dan  M.  Hambal,  “Identifikasi  parasit  pada ikan  gabus  ( Channa  striata )  di  Desa  Meunasah  Manyang Lamlhom  Kecamatan  Lhoknga  Aceh  Besar”. Jurnal  Medika Veterinaria , Vol. 8, No. 2, (Agustus 2014).
[9] E. J. Noga, Fish Disease Diagnosis and Treatment , 2 nd ed. USA: Wiley- Balckwell (2010).
[10] F.  Gomez  dan  A.  Skovgaard,  “The  molecular  phylogeny  of  the type-species  of Oodinium Chatton,  1912  (dinoflagellata: oodiniaceae), a highly divergent parasitic dinoflagellate with non- dinokaryotic characters”. Syst Parasitol , Vol. 90 (2015) 125–135.
[11] T.  Horiguchi  dan  S.  Otshuka,  “ Oodinium  inlandicum sp.  nov. (Blastodiniales,  Dinophyta),  A  new  ectoparasitic  dinoflagellate infecting  a  chaetognath, Sagitta  crassa ”. Plankton  Biol.  Ecol. , Vol. 48, No. 2, (2001) 85-95.
[12] J.  Lom,  “Fish  invading  dinoflagellates  :  A  synopsis  of  existing and  newly  proposed  genera”. Folia  Parasitologica ,  Vol.  28 (1981) 3 – 11.
[13] R. Francis-Floyd dan P. Reed, “ Ichthyophthirius multifiliis (white spot)  infection  in  fish,”  Department  of  Fisheries  and  Aquatic Science, Florida  Cooperative Extension Service, Insitute of Food and Agriculture Science, University of Florida (May 1997).
[14] A.  Alminah,  “Pengendalian  ektoparasit  pada  benih  ikan  mas ( Cyprinus carpio L.) dengan penambahan garam dapur (NaCl) di Balai  Benih  Perikanan  Plalangan  Kalisat  Kabupaten  Jember,”
Jurusan Biologi, FMIPA, Universitas Jember (2015) .
[15] R.  M.  Duborow,  “Protozoan  parasites.  Southern  Regional Aquaculture Center”. SRAC Publication , No. 4701 (2003).
[16] Y.  Hadiroseyani,  P.  Hariyadi,  dan  S.  Nuryati,  “Inventarisasi parasit  lele  dumbo  ( Clarias sp.)  di  Daerah  Bogor”.  Akuakultur Indonesia, Departemen Budidaya Perikanan, IPB (2006).
[17] I. Fitriliyani, “Pembesaran larva ikan gabus ( Channa striata ) dan efektifitas induksi hormon gonadotropin untuk pemijahan induk,” Tesis, Fakultas Pasca Sarjana, Institut Pertanian Bogor (2005).
[18] M. Syafran, “Biologi reproduksi, makanan, dan pertumbuhan ikan gabus  ( Channa  stiata Bloch)  di  Daerah  Banjiran  Sungai  Musi Sumatera Selatan,” Tesis, Institut Pertanian Bogor (2003).
[19] D.  Muthmainah,  S.  Nurdawati, dan  S.  Aprianti,   “Budidaya  ikan gabus  ( Channa  striata )  dalam  wadah  karamba  di  Rawa  Lebak,” dalam Prosiding InSINas (2012).
[20] D.  J.  Marcogliese,  dan  D.  K.  Cone,  “On  the  distribution  and abundance  of  eel  parasites  in  Nova  Scotia:  Influence  of  pH,” J. Parasitol ., Vol. 82 (1996) 389–399.
[21] J.  P.  Carney  dan  T.  A.  Dick,  “Helminth  communities  of  yellow perch ( Perca flavescens (Mitchill): Determinants of pattern,” Can. J. Zool. , Vol. 78 (2000) 538–555.
[22] A.  Halmetoja,  E.  T.  Valtonen,  dan  E.  Koskenniemi,  “Perch ( Perca fluviatilis L.) parasites reflect ecosystem conditions:  A  comparison  of  a  natural  lake  and  two  acidic reservoirs  in  Finland,” Int.  J.  Parasitol. ,  Vol.  30  (2000)  1437– 1444.
[23] C.  P.  Goater,  R.  E.  Baldwin,  dan  G.  J.  Scrimgeour,  “Physico- chemical  determinants  of  helminth  component  community structure  in  whitefish  ( Coregonus  clupeaformes )  from  Adjacent Lakes  in  Northern  Alberta,  Canada,” Parasitology ,  Vol.  131 (2005) 713–722.
[24] A.  Karvonen,  K.  K. Bjarni,  Sk. U.  Skuli,  L.  Maiju, R.  Christian, dan  J.  Jukka, “ Water  temperature,  not  fish  morph,  determines parasite  infections  of  sympatric  icelandic  threespine  sticklebacks
( Gasterosteus  aculeatus ),” Ecology and  Evolution , Vol. 3,  No.  6 (2013) 1507–1517.
[25] G.  L.  Hoffman, Parasites  of  North  American  freshwater  fishes , Berkeley and  Los Angeles: University of California Press (1967) 486.
[26] A.  T.  A.  Ahmed,  “Morphology  and  life  history  of Trichodina reticulate from goldfish,” Fish  Pathology ,  Vol.  12,  No. 1 (1977)
21-31.
[27] M.  Alifuddin,  Y.  Hadiroseyani,  dan  I.  Ohoiulun,  “Parasit  pada ikan hias air tawar (ikan cupang, gapi rainbow ),” Jurnal , Vol. 2,
No. 2 (2003) 93-100.
[28] J.  E.  H.  Patterson  dan  K.  E.  Ruchstuhl,  “Parasite  infection  and host  group  size:  A  meta-analytical  review,” Parasitology ,  Vol. 140 (2013) 803–813.
[29] Zulmarham,  “Intensitas  parasit Trichodina sp.  yang  menginfeksi ikan  nila  ( Oreochromis  nilotica )  pada  ukuran  yang  berbeda,” Skripsi, Fakultas Ilmu, Ilmu Pertanian (2011).
[30] S.  K.  Ali,  Y.  Koniyo,  dan  Mulis,  “Identifikasi  ektoparasit  pada ikan  nila  ( O.  nilotica )  di  Danau  Limboto  Provinsi  Gorontalo,” (2013).
[31] Majumder,  S.,  Somerita  P.,  Bandyopadhyay,  P.K.  2015.  “Effect of  Temperature  on  the  Prevalence  of  Different  Parasites  in Cirrhinus  mrigala Hamilton  of  West  Bengal”.  Parasitology Laboratory,  Department  of  Zoology,University  of  Kalyani, Kalyani,  West  Bengal,  India.J  Parasit  Dis  (Jan-Mar  2015) 39(1):110–112.
[32] L.  S.  Sarjito  dan  A.  H.  C.  Haditomo,  “Identifikasi  ektoparasit pada  kepiting  bakau  ( Scylla  serrata )  yang  dibudidayakan  di Tambak Pesisir Pemalang,” Journal of  Aquaculture Management and Technology , Vol. 3, No. 3, (2014).
[33] J.  Talunga,  “Tingkat  infeksi  dan  patologi  parasit  Monogenea ( Cleidodistus sp.)  pada  insang  ikan  patin  ( Pangasius sp.),” Skripsi,  Program  Studi  Budidaya  Perairan,  Jurusan  Perikanan, Fakultas  Ilmu  Kelautan  dan  Perikanan,  Universitas  Hasanuddin Makassar (2007).
[34] E.  Yuliartati,  “Tingkat  serangan  ektoparasit  pada  ikan  patin ( Pangasius  djambal )  pada  beberapa  pembudidaya  ikan  di  Kota Makasar,” FAPERIKA, Universitas Hasanudin (2011) .
[35] P.  B.  Moyle  dan  Jr.  J.  J.  Cech, Fishes  An  Introduction  to Ichthyology . Upper Saddle River: Prentice Hall (2004).
[36] C.  Purbomartono,  “Identify  of  helminth  and  crustacean ectoparasites  on Puntius  javanicus fry  at  Local  Hatchery  Center Sidabowa  and  Kutasari,” Sains  Akuatik ,  Vol. 10,  No.2,  (2010)
134-140.
[37] G.  Bassleer, Internal  Worm  Infections.  Diseases  in  Marine Aquarium  Fish .  Westmeerbeek,  Belgium:  Bassleer  Biofish, Statiostr (1996) 72-75.
[38] G. A. Lewbart, Self-Assessment Colour Review of Ornamamental Fish . U. S.: Manson Publishing, The Veterinary Press (1998).
[39] C.  R.  Kennedy, Ecological  Animal  Parasitology .  Oxford: Blackwell Scientific Publications (1975).
[40] K.  Iriana,  R. Gustiano,  V.  A.  Prakoso,  dan  M.  H.  F.  Ath-thar, Budidaya Ikan Gabus . Bogor: Penebar Swadaya (2016).
[41] H.  W.  Dickerson,  “ Ichthyopthirius  multifiliis and Cryptocaryon irritans (Phylum Ciliophora),” dalam PTK Woo, 2 nd ed. London,
UK: Protozoan and Metazoan Infection (2006) 117– 146.
[42] G.  H.  Huwoyon,  dan  R.  Gustiano,  “Peningkatan  produktivitas budidaya  ikan  di  lahan  gambut,  Balai  Penelitian  dan Pengembangan Budidaya Air Tawar,” Media Akuakultur , Vol. 8, No. 1, (2013).
[43] E.  W.  Taylor,  C.  A.  C.  Leite,  D.  J.  McKenzie  dan  T.  Wang, “Control of respiration in fish, amphibians and reptiles,” Brazilian Journal of Medical and Biological Research , Vol. 43 (2010) 409- 424.
[44] FAO.  (2016)  River  fisher  and  riverine  system.  [Online]. Available:
http://www.fao.org/docrep/003/T0537E/T0537E05.htm