Intek Akuakultur. Volume 7. Nomor 1. Tahun 2023. E-ISSN 2579-6291. Halaman 31-43
Kelangsungan  Hidup  Larva  Yellow  Fin  Tuna  ( Thunnus  albacares )  Yang Dipelihara Dengan Desain Aerasi Berbeda Pada Bak Bundar Yuliana Asri 1* , Kukuh Nirmala 2 , Tri Heru Prihadi 2 , John Harianto Hutapea 3
1 Program Studi Budidaya Perairan, Universitas Mataram
2 Departemen Budidaya Perairan, FPIK - IPB University
2 Balai Riset Perikanan Budidaya Air Tawar dan Penyuluhan Perikanan
3 Balai Besar Riset Budidaya Laut dan Penyuluhan Perikanan
Naskah Diterima : 8 Februari 2023, Disteujui publikasi : 7 Maret 2023
INFO NASKAH

## ABSTRAK
Kata Kunci: Yellowfin tuna , tegangan permukaan, tenggelam, larva, aerasi, kelangsungan hidup . Tingkat  kelangsungan  hidup  yang  sangat  rendah  pada  larva  merupakan  faktor pembatas dalam produksi benih ikan tuna sirip kuning. Larva mengalami kematian massal  pada  hari  ke  sepuluh  hingga  juvenil,  dengan  nilai  kelangsungan  hidup kurang  dari  0,05%.  Faktor  utama  penyebab  kematian  larva  ikan  tuna  adalah lingkaran  arus  air  dalam  bak  pemeliharaan  yang  mengakibatkan  terjadinya kematian  karna  tegangan  permukaan  dan  larva  yang  tenggelam.  Maksud  dari penelitian ini yaitu untuk mengetahui apakah larva yellow fin tuna yang dipelihara dengan  beberapa  desain  aerasi  di  dalam  bak  pemeliharaan  memiliki  dampak terhadap kelangsungan hidup larva. Penelitian dirancang menggunakan Rancangan Acak  Lengkap (RAL) dengan tiga perlakuan dan tiga ulangan: empat batu aerasi ditengah  bak  A,  empat  batu  aerasi  di  bawah  B  dan  gabungan  dua  batu  aerasi  di tengah  dan  dua  batu  aerasi  di  bagian  bawah  C.  Larva  umur  satu  hari  ditebar  di dalam  bak  bundar  bervolume  700  L  dengan  kepadatan  10.000  ekor  per  bak. Pengamatan  terhadap  kelangsungan  hidup,  laju  pertumbuhan  harian,  koefisien keragaman dan kualitas air dilakukan selama 13 hari pemeliharaan. Hasil penelitian menunjukkan pemeliharaan dengan desain aerasi pada bagian bawah dan gabungan memberikan pengaruh nyata pada kelangsungan hidup larva yellow fin tuna yakni 0,31±0,04%  (Perlakuan  B)  dan  0,30±0,06%  (perlakuan  C).  Laju  pertumbuhan panjang  harian,  koefisien  keragaman  dan  parameter  kualitasa  air  pada  ketiga perlakuan  tidak  berpengaruh  nyata.  Nilai  laju  pertumbuhan  panjang  harian  pada perlakuan A, B dan C sebesar 6 %, 5,69% dan 5,62%. Nilai koefisien keagaman sebesar 4,66%, 4,34% dan 4,79%.
Program Studi Budidaya Perairan Universitas Mataram, Jalan Pendidikan Nomor 37 Kota Mataram, NTB. *Email: yulianaasri@unram.ac.id
Survival Rate of Yellow Fin Tuna Larvae Reared with Different Aeration Designs in Round Tanks
Yuliana Asri 1* , Kukuh Nirmala 2 , Tri Heru Prihadi 2 , John Harianto Hutapea 3
1 Program Studi Budidaya Perairan, Universitas Mataram
2 Departemen Budidaya Perairan, FPIK - IPB University
2 Balai Riset Perikanan Budidaya Air Tawar dan Penyuluhan Perikanan
3 Balai Besar Riset Budidaya Laut dan Penyuluhan Perikanan
ARTICLE INFO

## ABSTRACT
Keywords
Yellowfin tuna , surfacing death, sinking  death,  larvae,  aeration, survival rate. The  very  low  survival  rate  of  larvae  is  a  limiting  factor  in  seed  production  for yellow fin tuna. Larvae die mass on day ten to juveniles, with a survival value of less than 0.05%. The main factor causing the death of tuna larvae is the circle of water  currents  in  the  rearing  tank  which  results  in surfacing  death and sinking death . This study aims to determine whether yellowfin tuna (YFT) larvae reared at different aeration designs in rearing tanks have an impact on larvae survival. The
Intek Akuakultur. Volume 7. Nomor 1. Tahun 2023. E-ISSN 2579-6291. Halaman 31-43
studi  was  designed  using  a  Completely  Randomized  Design  (CRD)  with  three treatments  and  three  replications:  four  aeration  points  in  the  middle  as  A,  four aeration points at the bottom of B and a combination of two middle aeration points and two aeration points at the bottom C. One day old larvae were stocked in round tanks  with  a  volume  of  700  L  at  a  density  of  10.0000  individuals  per  tanks. Observations  survival,  daily  growth  rate,  diversity  coefficient  and  water  quality were carried out for 13 days of rearing. Research result show Rearing larvae with aeration  design  at  the  bottom  and  a  combination  has  a  significant  effect  on  the survival of yellow fin tuna with survival 0,31±0,04% and 0,30±0,06%. Daily length growth  rate,  coefficient  of  variation  and  water  quality  parameters  in  the  three treatment  had  no  significant  effect.  Treatments  A,  B  and  C  extended  value  of growth  rate  of  length  6%,  5,69%  and  5,62%.  Value  of  coefficient  of  diversity 4,66%, 5,69% and 4,79%.
Program Studi Budidaya Perairan Universitas Mataram, Jalan Pendidikan Nomor 37 Kota Mataram, NTB. *Email: yulianaasri@unram.ac.id

## PENDAHULUAN
Kebijakan  Kementerian  Kelautan  dan  Perikanan  (KKP)  terkait  embargo pendayagunaan  tuna dan restriksi wilayah  tangkapan, menjadikan kegiatan budidaya sebagai langkah untuk menjaga kelestarian dan meningkatkan produksi. yellow fin tuna atau tuna sirip kuning yang dikenal dengan nama latin Thunnus albacares sebagai salah satu penyumbang devisa bagi  Indonesia dan termasuk produk  ekspor terbesar kedua setelah  udang.  Nilai  dan  volume  ekspor  ikan  tuna  setiap  tahun  terus  mengalami peningkatan, terlihat dari data ekspor lima tahun terakhir dari tahun 2018 hingga 2022 sebesar 713,9 juta USD dan sebesar 865,7 juta USD (KKP, 2022).
Ikan yellow fin tuna memijah sepanjang tahun, sehingga sangat potensial untuk dibudidayakan.  Teknologi  budidaya  untuk  pemeliharaan  larva  tuna  hingga  saat  ini belum  banyak  mengalami  kemajuan  dikarenakan  tingkat  kelangsungan  hidup  yang sangat rendah, dimana pada saat 10 hari pasca menetas nilai  kelangsungan hidupnya dibawah  0,05%,  yang  menjadi  masalah  utama  kegiatan  pendederan  (Patridge et  al., 2011).  Fase kritis pada larva ikan  tuna adalah pada hari ke tiga sampai ke lima saat kuning telur habis dan hari ke lima sampai hari ke sembilan disaat gelembung renang mulai berkembang, ini menjadi kendala dalam usaha peningkatan budidaya ikan tuna secara masal (Sawada et al., 2005). Oleh karena itu dibutuhkan lebih banyak penelitian dan  perbaikan  untuk  dapat  meningkatkan  kelangsungan  hidup  larva yellow  fin  tuna (Buentello et al ., 2011).
Kualitas telur, penanganan selama pemindahan larva, ukuran pakan dan nutrisi, serta  lingkungan  yang  tidak  mendukung  merupakan  beberapa  faktor  penyebab tingginya kematian larva tuna selama 10 hari pertama kehidupan. Parameter kualitas air seperti salinitas, DO (Dissolved Oxygen), perputaran arus dan pergerakan air, serta suhu pada media pemeliharaan termasuk ke dalam beberapa kondisi lingkungan yang harus diperhatikan selama pemeliharaan larva yellow fin tuna (Partridge et al ., 2011). Kematian pada stadia awal, berkaitan dengan kulaitas air dan tegangan permukaan air (Aslianti et  al., 2020). Pola  kematian  larva  pada  hari  ke  10  pasca  penetasan  (D10) adalah  larva  terperangkap  tegangan  permukaan  dan  mati  tenggelam  atau  terbentur dinding  dan  dasar  bak.  Faktor  yang  mempengaruhi  adalah  berat  jenis  tubuh  dan
Intek Akuakultur. Volume 7. Nomor 1. Tahun 2023. E-ISSN 2579-6291. Halaman 31-43
peningkatan  kecepatan  berenang  larva  (Sakamoto et  al., 2005).  Metode menggembungkan  kantung  renang  berperan  penting  dalam  mengontrol  berat  badan larva tuna sirip biru di dalam air, sehingga larva dapat mengapung (Nakagawa et al., 2011). Faktor utama penyebab stress pada larva tuna adalah lingkaran arus air dalam bak pemeliharaan, bentuk stress yang ditimbulkan adalah stress fisik pada larva ikan. Terbentuknya arus dan perputaran dari aerasi dapat mencegah stratifikasi (lapisan) air pada bak, menghasilkan oksigen dan mengedarkan nutrisi dari pakan.
Penelitian  dan  kajian  ilmiah  terkait  desain  penempatan  aerasi  untuk meningkatkan  kelangsungan  hidup  larva  tuna  masih  belum  banyak  dilakukan  di Indonesia.  Kelangsungan  hidup  larva  tuna  sirip  biru  yang  dipelihara  dengan  desain aerasi  di  tengah  dasar  bak  menghasilkan  sintasan  sebesar  43,2±4,5%  –  48,6±4,2% (Nakagawa et al ., 2011). Hasil yang lebih baik ditemukan pada penelitian Sakakura et al .  (2006)  yang  menunjukkan  nilai  kelangsungan  hidup  larva Epinepelus septemfasciatus 61,5±5,1% selama 10 hari dipelihara dengan desain aerasi diletakkan pada tengah dasar bak. Kelangsungan hidup larva kerapu pada perlakuan aerasi yang di desain di berbagai titik secara sembarang menghasilkan kelangsungan hidup sebesar 21,2±13,7%.  Penelitian  ini  bermaksud  untuk  mengetahui  efektivitas  pemeliharaan larva yellow  fin  tuna yang  di  desain  dengan  titik  aerasi  berbeda  di  dalam  bak pemeliharaan  terhadap  peningkatan  kelangsungan  hidup  benih.  Hasil  penelitian  ini diharapkan  mampu  meningkatkan  kelangsungan  hidup  dan  menjadi  acuan  dalam penempatan posisi titik aerasi pada pemeliharaan larva.

## BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian
Pemeliharaan larva dilakukan di hatchery tuna Balai Besar Riset Budidaya Laut dan Penyuluhan Perikanan (BBRBLPP) Gondol, Kabupaten Buleleng - Bali. Penelitian dilakukan pada bulan Juli – Oktober 2015.

## Prosedur Penelitian
1. Persiapan Bak Pemeliharaan
Wadah  yang  digunakan  untuk  pemeliharaan  berupa  bak  bundar  berwarna  biru dengan tinggi 1 m dan diisi air sebanyak 700 L. Sebelum digunakan bak dibersihkan terlebih dahulu dengan mencuci bak kemudian dikeringkan dan mendesain aerasi pada bak. Masing – masing wadah di desain dengan posisi aerasi berbeda (Ilustrasi desain aerasi  dapat  dilihat  pada  gambar  1).  Penempatan  wadah  penelitian  dilakukan  secara acak dan di beri label dengan huruf A, B dan C. Penelitian dilakukan di dalam ruangan untuk menjaga kestabilan suhu.
B3 B1 C2 A3

## Gambar 1. Desain letak bak perlakuan.
2. Penanganan Telur dan Pemeliharaan Larva Biota yang digunakan berupa larva yellow fin tuna ( Thunnus albacares ) yang baru menetas,  telur  didapatkan  dari  induk  tuna  yang  memijah  secara  alami  di  KJA BBRBLPP. Telur ditetaskan pada bak khusus penetasan telur. Larva yang baru menetas (D0)  ditebar  pada  sembilan  wadah,  dalam  satu  wadah  pemeliharaan  larva  ditebar dengan  kepadatan  10.000  ekor/700  L,  penentuan  padat  tebar  larva  mengacu  pada penelitian Partridge et al . (2011). Nannochloropsis sp., sebagai pakan alami diberikan pada  hari  kedua  setelah  kuning  telur  habis  (D2),  jumlah Nannochlropsis sp.  yang diberikan sebanyak 2–3 × 10 5 sel/mL. Rotifer mulai diberikan saat larva berumur 10 hari  sejumlah  5–10  individu/mL bersamaan  dengan  artemia  0,25–0,50  individu/mL (Patridge et al . 2011). Waktu pemberian pakan dilakukan pada pukul 08.00 dan 14.00 WITA.  Larva  dipelihara  dan  diamati  dari  umur  nol  hari  hingga  umur  13  hari. Pergantian  air  dilakukan  dua  kali  selama  pemeliharaan,  yang  pertama  saat  larva berumur lima hari dilakukan pergantian air sebanyak lima persen dan pada saat larva berumur 12 hari dilakukan pergantian air sebanyak 10 %.

## Desain Penelitian
Penelitian  ini  dilakukan  dengan  menggunakan  metode  penelitian  eksperimental Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL).  Fokus  pengamatan  berupa  pengaruh  desain  titik aerasi yang berbeda pada setiap wadah pemeliharaan dengan tiga kali perlakuan dan tiga kali ulangan, sehingga didapatkan sembilan unit percobaan.
Perlakuan A:   batu  aerasi  diletakkan  pada  keempat  sisi bak  dan  30 cm  dari  bagian bawah wadah pemeliharaan (secara menggantung).
Perlakuan B:   empat  batu  aerasi  didesain  pada  bagian  bawah  wadah  pemeliharaan dengan posisi horizontal.
Perlakuan C: gabungan  perlakuan  desain  aerasi  A  dan  B,  yaitu  dua  batu  aerasi ditempatkan  30 cm  dari  bagian  bawah  wadah  (secara  menggantung) dan  dua  batu  aerasi  lainnya  di  desain  dengan  posisi  horizontal  pada bagian bawah wadah pemeliharaan.
Desain  penempatan  titik  aerasi  dipasang  sesuai  perlakuan  yang  diberikan.  Berikut gambar desain model aerasi pada setiap perlakuan.
C3 A2
B2 C1
A1

## Gambar 2. Desain penempatan titik aerasi dalam bak

## Parameter yang Diamati
1. Tingkat Kelangsungan Hidup (TKH)
Tingkat kelangsungan hidup (TKH) adalah jumlah perbandingan larva yang hidup di akhir pemeliharaan yaitu hari ke 13. TKH dihitung menggunakan rumus Goddard (1996):
TKH (%) = 𝑁𝑡 𝑁𝑜 ×100 Keterangan: TKH  = Tingkat kelangsungan hidup larva YFT (%)
Nt = Jumlah larva YFT yang hidup di akhir pemeliharaan (ekor)
No = Jumlah larva YFT yang hidup di awal pemeliharaan (ekor)
2. Laju Pertumbuhan Panjang Harian
Larva YFT pada awal dan akhir penelitian dihitung panjang rata-ratanya kemudian dihitung laju pertumbuhan panjang hariannya menggunakan rumus Huisman (1987):
α (%) = ( √ 𝐿𝑡 𝐿𝑜 𝑡 − 1 )  × 100 Keterangan:
α = Laju pertumbuhan harian larva YFT (%) Lt = Panjang rata–rata larva di hari ke 13 (mm)
Lo = Panjang rata–rata larva pada hari pertama pemeliharaan (mm)
t = Lama pemeliharaan larva YFT (hari)
3. Koefisien Keragaman Panjang (KK)
Tampak posisi batu aerasi dari samping
Tampak posisi batu aerasi dari atas 30cm dari dasar bak 30cm dari dasar bak
Koefisien  keragaman  merupakan  penghitungan  panjang  larva  yang  bervariasi, dihitung dengan rumus Steel dan Torrie (1981):
KK (%) = S/Y × 100
Keterangan :
KK = Koefisien keragaman larva YFT (%)
S = Simpangan baku Y = Rata–rata panjang YFT

## 4. Parameter Kualitas Air
Kualitas  air  sebagai  salah  satu  faktor  yang  sangat  penting  dalam  proses pemeliharaan larva YFT, dalam penelitian ini beberapa parameter yang diukur  yaitu kecepatan arus, salinitas, oksigen terlarut, suhu, NH 3 dan pH (Tabel 1).
Tabel 1. Parameter kualitas air pemeliharaan larva YFT pada perlakuan A, B dan C Parameter Satuan Alat ukur/ Metode Suhu o C Termometer batang Oksigen terlarut mg/L DO meter pH - pH meter NH 3 mg/L Spektrofotometer Salinitas ppt Refraktometer Kecepatan arus cm/detik Stopwach dan strofoam Kecepatan aerasi ml/menit Stopwach dan baker glass

## Analisis Data
Data  ditabulasi  menggunakan  Microsoft  Excel  2007.  Parameter  kelangsungan hidup,  laju  pertumbuhan  panjang  harian  dan  koefisien  keragaman  dianalisis  ragam (ANOVA) dengan selang kepercayaan 95% dan SPSS 17.0. Data yang berbeda nyata diuji lanjut menggunakan uji Duncan. Parameter kualitas air dianalisis secara deskriptif dan ditampilkan dalam bentuk tabel.

## HASIL
Hasil penelitian berupa nilai kelangsungan hidup, pertumbuhan panjang harian dan koefisien keragaman larva YFT pada hari ke-13 yaitu:

## Tingkat Kelangsungan Hidup
Tingkat  kelangsungan  hidup  larva  YFT  dengan  perlakuan  desain  aerasi  yang berbeda  memberikan  pengaruh  nyata  terhadap  kelangsungan  hidup  larva yellow  fin tuna . Hasil perhitungan nilai kelangsungan hidup ditunjukkan oleh Gambar 3.
Intek Akuakultur. Volume 7. Nomor 1. Tahun 2023. E-ISSN 2579-6291. Halaman 31-43

## Gambar 3. Grafik tingkat kelangsungan hidup larva YFT
Nilai kelangsungan hidup larva YFT lebih tinggi pada perlakuan B dan C dibanding perlakuan A (P<0,05) yaitu sebesar 0,31% dan 0,30%. Perlakuan B dan C tidak berbeda nyata  (P>0,05)  terhadap  kelangsungan  hidup  larva.  Kelangsungan  hidup  pada perlakuan A sebesar 0,19%.

## Laju Pertumbuhan Panjang Harian
Perlakuan dengan titik aerasi tidak menunjukkan perbedaan signifikan terhadap laju pertumbuhan  panjang  larva  YFT  antara  semua  perlakuan.  Data  laju  pertumbuhan panjang  harian  pada  perlakuan  A  sebesar  6%,  perlakuan  B  sebesar  5,69%  dan  pada perlakuan C sebesar 5,62%.

## Gambar 4. Grafik laju pertumbuhan panjang harian larva YFT

## Koefisien Keragaman
Tingkat  keragaman  panjang  larva  digambarkan  dengan  koefisien  keragaman, tingginya  nilai  KK  menandakan  rendahnya  tingkat  keseragaman  panjang  larva  dan
0.00 0.05 0.10 0.15 0.20 0.25 0.30 0.35 0.40 A B C K el an gs u n gan Hi d u p ( % ) Perlakuan 0.00 1.00 2.00 3.00 4.00 5.00 6.00 7.00 8.00 A B C L aj u P er tu m b u h an P an jan g Har ian ( % ) Perlakuan 6,00  0,2
5,69  0,1 5,62  0,1 0,19  0,04 a 0,31  0,04 b 0,30  0,06 b
sebaliknya. Nilai KK larva YFT selama 13 hari pemeliharaan tidak berbeda nyata pada semua perlakuan, hasilnya ditunjukkan pada gambar berikut.
Gambar 5. Grafik koefisien keragaman panjang larva YFT Hasil  analisis  data  menunjukkan  nilai  koefisien  keragaman  pada  ketiga perlakuan  dalam  kisaran  empat.  Hal  ini  dikarenakan  pada  umur  larva  baru  menetas (D0) hingga larva umur 13 hari setelah menetas (D13) memiliki variasi pertumbuhan yang seragam antar individu.

## Parameter Kualitas Air
Kisaran suhu pada wadah pemeliharaan selama penelitian adalah 29–30,7 o C. Hasil pengukuran pH air dalam wadah pemeliharaan berkisar antara 8,13 – 8,3. Selanjutnya kisaran nilai konsentrasi NH 3 yaitu 0,0028 – 0,01 mg/L.
Tabel 2. Kualitas Air Pemeliharaan Larva YFT
Parameter Perlakuan A B C Suhu ( o C) 29 - 30 29 - 30 29 – 30 pH 8,14 – 8,30 8,14 – 8,28 8,13 – 8,25 NH 3 (ppm) 0,007 – 0,035 0,007 – 0,028  0,011 – 0,049 Oksigen terlarut (ppm) 6,86 – 7,02 6,70 – 7,01 6,92 – 6,97 Salinitas (ppt) 32 - 33 32 - 33 32 - 33 Kecepatan arus (mL min) 500 500 500 Kecepatan aerasi (cm detik) 3,5 3,5 3,5

## PEMBAHASAN
Berdasarkan  hasil  penelitian  tingkat  kelangsungan  hidup  larva  YFT  pada perlakuan  B  dan  C  lebih  baik  jika  dibandingkan  tingkat  kelangsungan  hidup  pada perlakuan A. Arah arus yang dihasilkan oleh aerasi perlakuan B dan C dapat mencegah larva  untuk  tidak  sampai  bagian  bawah.  Setelah  kuning  telur  habis  dan  larva  mulai
4.00 4.10 4.20 4.30 4.40 4.50 4.60 4.70 4.80 4.90 A B C K oe fis ien k er agam an p an jan g (% ) Perlakuan 4,66  1,2 4,34  1,0 4,79  0,06
Intek Akuakultur. Volume 7. Nomor 1. Tahun 2023. E-ISSN 2579-6291. Halaman 31-43
makan, larva akan berenang pada kolom air. Aerasi yang diletakkan pada perlakuan B dan  C  menghasilkan  arus  vertikal  sampai  ke  bagian  atas.  Sampai  di  atas,  arus  akan berubah dari tegak lurus ke atas atau sebaliknya dan  membentuk arus sejajar dengan bagian  atas  permukaan  air,  kemudian  melalui  bagian  atas  setiap  sisi  wadah  terus mengalir turun ke bawah melewati dinding wadah. Arus akan mengalami perpindahan ke  bagian  tengah  begitu  mencapai  dasar  wadah,  sehingga  terbentuk  perputaran  atau sirkulasi air (Gambar 6). Aerasi yang di desain di bagian bawah wadah pemeliharaan menghasilkan  arus  dari  bawah  ke  atas  melewati  permukaan  air  (Sakakura,  2006). Terbentuknya sirkulasi air akan meningkatkan suplai udara yang  dapat mempercepat sirkulasi dan mengurangi ketebalan pada daerah benturan di sekitar wadah (Nakagawa et  al .,  2011). Surfacing  death dan sinking  death merupakan  dua  peristiwa  yang menyebabkan  tingginya  kematian  larva  pada  hari  ke-10  (D10)  setelah  menetas (Sakamoto et  al .,  2005). Surfacing  death adalah  peristiwa  ketika  larva  mengalami kematian karena terperangkap oleh tegangan permukaan air pemeliharaan, biasanya ini terjadi setelah kuning telur habis. Yamaoka (2000), menyatakan bahwa surfacing death diketahui sebagai salah satu hambatan yang paling berperan dalam memproduksi benih secara massal, fenomena ini terjadi pada sebagian besar larva ikan laut termasuk ikan tuna.
Nilai  kelangsungan  hidup  larva  YFT dengan desain  aerasi  pada  perlakuan  A adalah  yang  paling  rendah.  Diduga  karena  pada  bagian  bawah  wadah  pemeliharaan tidak terjangkau oleh sirkulasi atau arus yang terbentuk dari gelembung aerasi sehingga terbentuk  titik  mati.  Hal  tersebut  menyebabkan  larva  tertarik  ke  bagian  bawah  dan akhirnya  tenggelam.  Kondisi  tersebut  berbeda  dengan  aerasi  yang  di  desain  pada perlakuan B dan C yang mampu membuat larva tetap bertahan pada bagian kolom air sehingga tidak tenggelam membentur bagian bawah bak. Gelembung yang dihasilkan oleh aerasi berperan dalam terbentuknya arus dari atas ke bawah dan kondisi ini sesuai untuk larva.  Larva mati karena berbenturan dengan dasar wadah, konsentrasi bakteri dan pathogen disekitarnya (Miyashita, 2006) atau karena kurangnya kadar oksigen di dasar  wadah  (Kayaba,  2003).  Terjadinya Sinking  death ketika  larva  tenggelam  dan terbentur ataupun menyentuh dinding bagian bawah bak. Hasil penelitian dari Tanaka et  al., (2009), sinking  death terjadi  saat  larva blue  fin  tuna tenggelam  ke  dasar  bak pemeliharaan  pada  saat  malam  hari.  Hal tersebut  dipengaruhi  oleh  berat  jenis  tubuh larva tuna dan gelembung renangnya yang sedang mengalami perkembangan. Menurut Ina et al ., (2020), perilaku renang larva blue fin tuna pada siang hari berbeda dengan malam hari, larva tuna yang diamati pada siang hari akan mengempiskan gelembung renangnya dan pada saat malam hari gelembung renang akan mengembang.
Intek Akuakultur. Volume 7. Nomor 1. Tahun 2023. E-ISSN 2579-6291. Halaman 31-43
Gambar 7. Sirkulasi arus yang terbentuk pada perlakuan A, B dan C Graham  dan  Dickson  (2004)  menyatakan  bahwa  tingkah  laku  larva  yang berenang pada kolom air  berhubungan dengan kebiasaan tuna secara fisiologis  yaitu selalu berenang dan bergerak, tujuannya agar tubuhnya tetap panas. Jika berdiam diri dan  tidak  bergerak  atau  tidak  berenang  maka  ikan  tersebut  akan  mati  karena  tidak mampu menghasilkan panas dan mempertahankan panas tubuhnya. YFT adalah ikan yang  sangat  aktif,  kemampuannya  menyimpan  panas  dalam  tubuh  sangat  baik,  oleh karena  itu  disebut  perenang  cepat  dan  berenang  secara  terus  menerus  (Graham  dan Dickson, 2004).
Hasil yang sama diperoleh pada penelitian Nakagawa (2011) yang menunjukkan adanya  hubungan  antara  pola  sirkulasi  air,  kecepataan  aerasi,  perkembangan gelembung  renang  serta  kelangsungan  hidup  dari  larva blue  fin  tuna .  Larva  yang dipelihara  dengan  aerasi  rendah  dan  tidak  ada  pola  arus  dalam  bak  pemeliharaan menyebabkan  terjadinya sinking  death pada  larva blue  fin tuna .  Larva blue  fin  tuna yang dipelihara dengan kecepatan aerasi tinggi  serta terbentuknya pola aerasi dalam bak pemeliharaan dapat meningkatkan angka kelangsungan hidup. Kayaba (2003), juga melaporkan bahwa aerasi mampu mengurangi tingkat kematian pada larva ikan barfin flounder ( Verasper moseri ). Hasil yang sama diperoleh Nakagawa (2011), kemampuan untuk  bertahan  hidup  serta  terjadinya sinking  death pada  larva Epinephelus septemfasciatus berhubungan  dengan  distribusi  aerasi,  suplai  oksigen,  dan  pola sirkulasi yang terbentuk pada bak pemeliharaan. Tanaka (2009), adanya percampuran air dari aerasi dapat mengurangi sinking death pada larva blue fin tuna .
Pemeliharaan larva tuna dengan  desain aerasi  yang  berbeda tidak  berpengaruh nyata terhadap laju pertumbuhan panjang harian dan koefisien keragaman larva YFT. Pertumbuhan  panjang  harian  pada  perlakuan  A  sebesar  6%,  B  5,69%  dan  C  5,62%. Hasil  penelitian  Kobayashi  (2005)  menunjukkan  bahwa  larva  YFT  yang  dipelihara selama 10 hari dan 14 hari setelah menetas memiliki nilai pertumbuhan panjang total sebesar 5,0 mm dan 6,2 mm. Penelitian yang dilakukan oleh Buentello et al ., (2011) menghasilkan nilai panjang total sebesar 7mm dengan lama pemeliharaan selama 13 hari  setelah  menetas.  Nurhidayat  (2001)  menyatakan  bahwa  jika  pakan  yang dikonsumsi  cukup  untuk  perkembangan  organ,  larva  akan  tumbuh  dan  berkembang. Pada tahap larva, energi yang diperoleh dari pakan digunakan untuk perkembangan dan perbaikan organ. Koefisien keragaman panjang larva YFT berkisar antara 4%, menurut
Dhini (2014) koefisien keragaman larva gurame putih yang sesuai dengan kriteria yaitu berkisar  antara  5%  -  10%.  Populasi  larva  ikan  yang  memiliki  nilai  keragaman  yang tinggi akan lebih mudah dalam proses memperoleh pakan dan sebaliknya.
Selama penelitian parameter fisik kimia air terkategorikan dalam ambang batas normal  untuk  pertumbuhan  dan  kelangsungan  hidup  larva  YFT  (Wexler  dan Nakagawa,  2011).  Kandungan  DO  pada  bak  pemeliharaan  untuk  semua  perlakuan berkisar  antara  6,70  –  7,02  mg/L,  nilai  ini  masih  termasuk  dalam  kisaran  optimum kebutuhan larva YFT berdasarkan Wexler et al ., (2011) yaitu >2,2 mg/L. Suhu optimal untuk pemeliharaan larva YFT adalah 21 – 33 O C. Kadar NH 3 termasuk rendah, dan tidak membahayakan larva yang dipelihara yaitu sebesar 0,0028 – 0,01 mg/L. Nilai pH berkisar 8,13 – 8,3 masih dalam kisaran optimal untuk pemeliharaan larva. Nakagawa et  al .,  (2011)  menyatakan  bahwa  nilai  pH  optimal  untuk  pemeliharaan  larva  YFT adalah 7,96 – 8,31.

## KESIMPULAN
Kesimpulan dari hasil penelitian bahwa penempatan titik aerasi yang berbeda berpengaruh nyata terhadap kelangsungan hidup larva YFT. Desain titik aerasi yang diletakkan  di  bagian  bawah  (Perlakuan  B)  dan  desain  gabungan  (perlakuan  C) menghasilkan  nilai  kelangsungan  hidup  yang  lebih  tinggi  dibandingkan  penempatan titik aerasi secara menggantung (perlakuan A).

## UCAPAN TERIMAKASIH
Terimakasih  kepada  Balai  Besar  Riset  Budidaya  Laut  dan  Penyuluhan Perikanan  Gondol  atas  seluruh  dukungan  dan  sarana  prasarana  selama  pelaksanaan penelitian.

## DAFTAR PUSTAKA
Aslianti  T,  Gunawan,  Ananto  S,  John  H,  Bedjo  S.  2020.  Perkembangan  tulang belakang  benih  ikan  tuna  sirip  kuning Thunnus  albacares (Bonnaterre, 1788). Media Akuakultur . 15 (1) 2020: 23-28.
Buentello JA, Camilo P, Daniel M, Vernon P, Scholey, Jeanne B, Wexler, Dariel TR, William H, Neill, Patricia HB, Delbert M, Gatlin. 2011. Preliminary study of digestive enzyme activities and amino acid composition of early juvenile yellowfin  tuna  ( Thunnus  albacares ). Aquaculture . 312:205– 211.
Dhini,  Hardaningsih,  Sukardi.  2014.  Keragaman  pertumbuhan  larva  gurami  putih ( Osphronemus  goramy )  pada  segmentasi budidaya  tahap  2  dengan  padat tebar berbeda. Prosiding Seminar Nasional Perikanan Indonesia .
Goddard S. 1996. Feed Management in Intensive Aquaculture. New York (US): Chapman and Hall.
Graham  JB,  Dickson  KA.  2004.  Tuna  comparative  physiology. The  Journal  of Experimental Biology . 207:4015–4024
Huisman  EA.  1987. The  Principles  of  Fish  Culture  Production . Chapman and Hall. New York.
Ina  Y.  Takagi  T,  Miyashita  S,  Kuratae  M,  Honryoe  T,  Sawadae  Y,  Fukudaf  H,
Torisawaa  S.  2020.  Analysis  of  sinking  death  using  video  images  of  the swimming  performance  of  Pacific  Bluefin  tuna  ( Thunnus  orientalis ) larvae. Aquacultural Engineering . https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2020.102099. Kobayashi  T,  Honryo  T,  Agawa  Y,  Sawada  Y.  2015.  Gonadogenesis  and  slow proliferation of germ cells in juveniles of cultured yellowfin tuna, Thunnus albacares. Science Direct . 106–112.
Kayaba  T,  Sugimoto  T,  Matsuda  T.  2003.  Mass  mortality  associated  with  sudden sinking of larval barfin flounder, Verasper Moseri. Suisanzosyoku, 51: 443 – 450.
Kohno H, Hora S, Taki Y. 1986. Early larval development of seabass, Lates calcalifer, with emphosis on the transition of energy sources. Bull. Jap. Soc. Ser. Fish , 52(10): 1719-1725.
Kohno  H,  Durai  M,  Gallego  A.  1988.  Transition  from  endogenous  to  exogenous nutrition  sources  in  larval  rabbit  fish  Siganus  gutttatus. Nippon  Suisan Gakkaishi . 54 (7): 1083 – 1091.
[KKP] Kementerian Kelautan dan Perikanan. 2022. Statistik KKP. Data ekspor impor. https://statistik.kkp.go.id. Diakses pada 3 Februari 2022.
Melianawati  R,  Astuti  NWW,  Slamet  B. 2012.  Pola  pertumbuhan  larva  ikan  kerapu raja sunu (Plectropoma laevis LACEPEDE,1801) dan tingkat konsumsinya terhadap zooplankton rotifer ( Branchionus rotundiformis ). Jurnal Ilmu dan Teknologi Kelautan Tropis , 4 (2): 217 – 228.
Miyashita  S.  2006.  Surfacing  and  Bottoming  Death  in  Seedling  Production.  Nippon Suisan Gakkaishi, 72: 947-948.
Nakagawa Y, Michio K, Yoshifumi S, Wataru S. 2011. Enhancement of survival rate of pacific  bluefin  tuna  (Thunnus  orientalis)  larvae  by  aeratio  control  in rearing. Aquatic Living Resource, 24: 403-410.
Nurhidayat  K.  2001.  Pengaruh  perbedaan  peningkatan  persentase  pergantian  air terhadap kelangsungan hidup dan pertumbuhan larva ikan kerapu bebek (Cromileptes altivelis) pada sistem air mengalir [Skripsi]. Bogor: Institut Pertanian Bogor.
Partridge GJ, Benetti DD, Stieglitz JD, Hutapea J, Mcintyre  A, Chen B,  Hutchinson W, Scholey VP. 2011. The effect of a 24-hour photoperiod on the survival, growth and swim bladder inflation of pre-flexion yellowfin tuna ( Thunnus albacares ) larvae. Aquaculture , 318: 471–474.
Sakakura Y, Shegeaki S, Hishashi C, Atsushi H. 2006. Improvement of the survival rate  in  the  seven-band  grouper  Epinephelus  septemfasciatus  larvae  by optimizing aeration and water inlet in the mass-scale rearing tank. Fisheries Science , 72: 939-947.
Intek Akuakultur. Volume 7. Nomor 1. Tahun 2023. E-ISSN 2579-6291. Halaman 31-43
Sakamoto W, Okamoto K, Uehabu T, Kato K, Murata O. 2005. Specipic gravity change of bluefin tuna larvae. Nippon Suisan Gakkaishi , 71: 80 – 82.
Shah MAM, Badrul AMZ. 2013. Novelty of mechanical surface aerator using flexible beam to generate dissolved oxygen in water. Advancements in Marine and Freshwater Sciences .
Sawada Y, Okada T, Miyashita S, Murata O, Kumai H. 2005. Completion of the pacific bluefin  tuna  Thunnus  orientalis  (Themminck  and  Schlegel)  life  cycle. Aquaculture , 36: 413 – 421.
Steel RGD, Torrie JH. 1981. Principles and Procedures of Statistics. McGraw-  Hill, Book Company, INC. London.
Tanaka Y., Kumon K., Nishi A., Eba T., Nikaido H. Shiozawa S. 2009. Status of the sinking of hatchery-reared larval Pacific bluefin tuna on the bottom of the mass culture tank with different aeration design. Aquac. Sci . 57: 587–593. Waynarovich E, Horvath L. 1980. The Artificial Propagation of Warm Water Fin Fish – A Manual for Extention. FAO. Fish tech . Prop, Rome.183 p. West Pacipic East Asia Oceanic  Fisheries Management. 2012.  National tuna fishery profile  on  the  celebes  sea  (fma  -716)  and  pacific  ocean  (fma  717). In : Ministry of Marine Affairs and Fisheries Directorate General for Capture Fisheries Jakarta and Western and Central Pacific Fisheries Commission.
Wexler  J,  Daniel  M,  Vernon  V,  Scholey.  2011.  Temperature  and  dissolved  oxygen requirements  for  survival  of  yellowfin  tuna, Thunnus  abacares larvae, Journal of Experimental Marine Biology and Ecology . 404:63-72. Yamaoka  K.,  Nanbu  T.,  Miyagawa  T.,  Isshiki  T.,  Kusaka  A.,  2000,  Water  surface tension-related deaths in prelarval red-spotted grouper. Aquaculture 189, 165–176. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(00)00354-9