## MITIGASI KEKERINGAN PADA PERKEBUNAN KARET
(Hevea brasiliensis Müll. Arg.) MELALUI PENDEKATAN PHYTOBIOME
Drought Mitigation of  Rubber (Hevea brasiliensis Müll. Arg.)

## Plantation through Phytobiome Approach
1 2 2
Andi Nur Cahyo , Rudi Hari Murti , dan Eka T. S. Putra
1 Pusat Penelitian Karet, Jl. Palembang-Pangkalan Balai km.29 Po Box 1127, Palembang 30001
2 Fakultas Pertanian UGM, Jl. Flora, Bulaksumur, Depok, Sleman, Yogyakarta
Email : nurcahyo.andi@yahoo.co.uk
Diterima 24 Februari 2020 / Direvisi 27 April 2020 / Disetujui 19 Mei 2020

## Abstrak
El-Nino  menimbulkan  dampak  musim kemarau yang berkepanjangan di wilayah Asia Tenggara  termasuk  Indonesia.  Kekeringan yang terjadi pada saat musim kemarau dapat menurunkan  produksi  karet  hingga  50%. Mitigasi  untuk  meminimalisir  dampak kekeringan  tersebut  dapat  dilakukan  dengan p e n d e k a t a n p hy t o b i o m e . Pe n d e k a t a n phytobiome diharapkan  dapat  meningkatkan ketahanan tanaman karet terhadap kekeringan baik  dengan  mekanisme drought  tolerance maupun drought  avoidance . Selain itu, dengan lingkungan  biotik  dan  abiotik  yang mendukung,  lengas  tanah  juga  semakin tersedia  untuk  tanaman.  Upaya  mitigasi dengan  pendekatan phytobiome dilakukan secara komprehensif  baik terhadap tanaman, lingkungan  hidup  tanaman,  maupun organisme  yang  hidup  di  sekitar  tanaman tersebut.  Mitigasi  dampak  kekeringan terhadap  tanaman  karet  dengan  pendekatan phytobiome dapat dilakukan dengan perakitan dan  adopsi  klon-klon  unggul  toleran kekeringan,  penggunaan root  trainer untuk memperbaiki arsitektur akar, aplikasi senyawa osmoregulator,  aplikasi  asam  humat,  irigasi, penggunaan  LCC  sebagai  mulsa,  pembuatan rorak, dan inokulasi jamur mikoriza atau DSE. Penelitian  tentang  upaya  mitigasi  tersebut pada  tanaman  karet  masih  tergolong  minim, sehingga  diperlukan  penelitian  lebih  lanjut agar  pertumbuhan  dan  produksi  karet  tetap stabil selama terjadi kekeringan.
Kata  kunci  : Hevea  brasiliensis ,  kekeringan, mitigasi, phytobiome

## Abstract
El-Nino  causes  prolonged  dry  season  in  South East  Asia  including  Indonesia. This  situation  has led  to  the  drop  of   rubber  yield  up  to  50%  by  the normal yield. To cope the drought effect on rubber growth and yield, the mitigation using phytobiome approach  is  required  to  conduct.  By  phytobiome approach,  rubber  tree  is  expected  to  survive  from drought  through  drought  tolerance  or  drought avoidance adaptation mechanism. Furthermore, by biotic  and  abiotic  approach,  soil  moisture  will  be more  available  for  the  plant.  In  the  phytobiome approach,  the  entire  aspects  including  plant, environment, as well as the surrounding organism should  be  involved  in  the  assessment.  Phytobiome approach in rubber plantation is probably applied by breeding and adoption of  drought tolerance rubber clones, production of  rubber planting material using root  trainer,  osmoregulator  application,  utilization of   humic  acid,  irrigation,  mulching  using  LCC, application  of   silt  pit,  and  inoculation  of mycorrhiza  and  DSE  fungi.  The  comprehensive study  about  these  mitigation  approach  is  still limited,  therefore  further  researches  are  needed  to maintain the growth and yield of  rubber tree during drought condition.
Keywords: Hevea  brasiliensis ,  mitigation, phytobiome

## Pendahuluan
Tanaman  karet  sangat  rentan  terhadap kekeringan. Kekeringan yang terjadi pada saat musim  kemarau  dapat  menurunkan  hasil hingga 50% dibandingkan dengan hasil karet pada bulan-bulan basah (Wijaya et al ., 2011). Pada  saat  terjadi  kekeringan,  tanaman melakukan  adaptasi  dengan  menurunkan bukaan  stomata.  Hal  ini  berakibat  pada penurunan jumlah CO  yang masuk ke dalam 2 kloroplast. Penurunan konsentrasi CO  dalam 2 kloroplast  yang  merupakan  substrat  dalam reaksi  gelap  ini  menyebabkan  reaksi  gelap terhambat, namum reaksi terang tetap berjalan dengan normal karena cahaya matahari tetap tersedia.  Hal  ini  berakibat  kelebihan  energi ya n g   d i h a s i l k a n   d a r i   r e a k s i   t e r a n g menyebabkan  molekul  O   tereksitasi  dan 2 berubah menjadi ROS ( reactive oxygen spesies ),
- -
misalnya O , H O , dan OH Akumulasi ROS 2 2 2 . dapat  merusak  jaringan  dan  menyebabkan stres  oksidatif   (Hamim et  al .,  2017).  ROS dibentuk  dalam  rantai  transport  elektron mitokondria  dan  kloroplas  (Kholová et  al ., 2011).  Konsentrasi  ROS  yang  terlalu  tinggi dapat  menyebabkan  kebocoran  membran  sel jaringan  fotosintesis.  Hal  ini  menyebabkan produksi  sukrosa  yang  merupakan  hasil  dari proses  fotosintesis  menurun.  Sukrosa  adalah sumber  karbon  dalam  biosintesis  lateks  (cis- 1,4-polyisoprene)  yang  dibentuk  dalam  sel laticifer  pada  bagian  kulit  tanaman  karet (Putranto et  al .,  2015).  Oleh  karena  itu, penurunan  laju  fotosintesis  menyebabkan penurunan produksi lateks tanaman karet.
Penurunan produksi karet biasanya terjadi p a d a   s a a t   mu s i m   k e m a r a u   d i m a n a ketersediaan  air  terbatas.  Hal  ini  diperparah dengan  adanya  musim  kemarau  yang berkepanjangan  akibat  adanya  fenomena  El- Nino  yang  dalam  periode  tertentu  melanda wilayah-wilayah  di  Asia  Tenggara  termasuk Indonesia  (Saputra et  al .,  2016).  Pada  tahun 2019, secara umum diperkirakan bahwa terjadi El-Nino lemah di awal tahun namun berubah menjadi normal di akhir tahun, sehingga tidak terjadi  musim  kemarau  yang  panjang.  Pada tahun-tahun  yang  akan  datang,  perubahan
iklim tetap harus diwaspadai karena diprediksi o terjadi  peningkatan  suhu  mencapai  1,5 C antara 2030 dan 2052, serta terjadi kekeringan dan  defisit  curah  hujan  di  beberapa  daerah (IPCC,  2018).  Tulisan  ini  bertujuan  untuk mengulas  upaya  mitigasi  yang  dapat dilaksanakan  untuk  meminimalisir  dampak buruk kekeringan terhadap pertumbuhan dan hasil  tanaman  karet  melalui  pendekatan phytobiome .
Pendekatan Phytobiome dalam  Mitigasi Kekeringan
Upaya  mitigasi  kekeringan  tidak  cukup hanya  dengan  pendekatan  parsial  seperti perlakuan terhadap tanamannya saja, namun akan  lebih  efektif   apabila  dilakukan pendekatan dari  segala  aspek. Phytobiome merupakan  pendekatan  secara  komprehensif meliputi  tanaman  itu  sendiri,  lingkungan tumbuh  tanaman,  maupun  makhluk  hidup b a i k   m a k r o o r g a n i s m e   m a u p u n mikroorganisme yang ada di sekitar tanaman tersebut (Leach et al ., 2017).
D a l a m   k o n s e p p hy t o b i o m e , s e l a i n pendekatan  terhadap  tanaman,  untuk melakukan  mitigasi  terhadap  dampak kekeringan  juga  perlu  dilakukan  upaya konservasi  air  di  daerah  perakaran  tempat tanaman  tersebut  tumbuh.  Upaya  mitigasi tersebut misalnya dapat dilakukan dengan cara irigasi,  penggunaan  mulsa,  penanaman penutup  tanah  ( cover  crop) ,  dan  penggunaan rorak.  Dengan  beberapa  tindakan  tersebut, diharapkan  kebutuhan  air  tanaman  dapat tercukupi  dengan  baik.  Secara  umum ketersediaan  air  sebanyak  5  mm/hari  telah mencukupi  kebutuhan  air  tanaman  karet menghasilkan dengan umur lebih dari 5 tahun (Cahyo et al ., 2011).
Upaya  mitigasi  kekeringan  melalui pendekatan  terhadap  tanaman  karet  dapat dilakukan  agar  tanaman  menyerap  air  yang cukup  dan  sedikit  mungkin  kehilangan  air, antara lain melalui modifikasi dan pengaturan perakaran  dan  stomata  baik  secara  fisik, fisiologis,  maupun  genetis.  Secara  genetis, upaya  mitigasi  kekeringan  dapat  dilakukan
dengan  perakitan  klon-klon  unggul  tahan kering (Karyudi, 2001). Klon-klon yang tahan kering akan lebih toleran terhadap kekeringan apabila  secara  fisik  pertumbuhan  akarnya diatur dan dirancang agar tumbuh lebih dalam dan  menjangkau  daerah  yang  lebih  luas. Manajemen  pertumbuhan  akar  ini  dapat dilakukan  dengan  menggunakan  kontainer (pot) khusus untuk menumbuhkan bibit karet yang disebut root trainer (Ardika & Herlinawati, 2014;  Cahyo et  al. ,  2016).  Pertumbuhan  akar agar lebih cepat dapat dipacu dengan aplikasi asam  humat  (Cahyo et  al .,  2014). Selain manajemen pertumbuhan akar, upaya mitigasi kekeringan  pada  tanaman  karet  juga  dapat dilakukan dengan pengaturan bukaan stomata agar  laju  transpirasi  tidak  terlalu  tinggi  yang mengakibatkan  efisiensi  penggunaan  air menjadi  rendah.  Pengaturan  bukaan  stomata ini dapat dilakukan dengan senyawa-senyawa yang berpengaruh terhadap osmoregulasi daun tanaman karet ( osmoregulator ) (Karyudi, 2001).
Selain  pendekatan  tehadap  tanaman  dan lingkungan,  upaya  mitigasi  kekeringan  pada perkebunan  karet  akan  lebih  efektif   apabila dilakukan  pendekatan  terhadap  makhluk hidup  terutama  mikroorganisme  di  sekitar tempat tumbuh tanaman karet tersebut. Hal ini disebabkan  beberapa  mikroorganisme  dapat membantu tanaman untuk bertahan pada saat musim  kemarau  yang  berkepanjangan, misalnya  jamur  mikoriza  (Herrmann et  al ., 2016; Symanczik et al ., 2015; Ulfa et al ., 2015) dan DSE ( dark septate endophyte ) (Mandyam & Jumpponen,  2005;  Porras-Alfaro et  al. ,  2008; Santos et al. , 2017).

## Penggunaan Klon-klon Toleran Kekeringan
Pemilihan  klon  karet  sangat  berpengaruh terhadap  fluktuasi  produksi  pada  musim kemarau  atau  saat  terjadi  anomali  iklim. B e b e r a p a   k l o n   d i l a p o r k a n   m e m i l i k i karakteristik  yang  berbeda  dalam  merespon kekeringan.  Mekanisme  adaptasi  tanaman dalam merespon kekeringan dapat dibedakan menjadi drought escape , drought tolerance , drought
avoidance ,  dan drought  recovery . Drought  escape adalah mekanisme adaptasi tanaman terhadap kekeringan  dengan  cara  penyesuaian timing fenologi  tanaman  yang  berhubungan  dengan ketersediaan  air  tanah,  oleh  karena  itu tanaman  tidak  terpengaruh  oleh  kejadian kekeringan  karena  siklus  hidupnya  telah berakhir  ketika  terjadi  kekeringan. Drought avoidance adalah mekanisme adaptasi terhadap kekeringan  dengan  cara  pemeliharaan  status air tanaman. Status air tanaman yang terjaga pada  level  yang  tinggi  dihasilkan  dari kemampuan  tanaman  menyerap  maupun menahan  air  untuk  tetap  berada  di  dalam tubuh tanaman. Sebagai contoh, peningkatan kemampuan  tanaman  dalam  menyerap  air pada  saat  terjadi  kekeringan  didapatkan  dari adanya sistem perakaran yang dapat masuk ke dalam  tanah  hingga  mencapai  daerah  yang dalam  yang  kadar  air  tanah  berada  di  antara kapasitas  lapang  dan  titik  layu  permanen. Selain itu, air yang sudah diserap dalam tubuh tanaman  juga  dapat  ditahan  untuk  tetap berada  dalam  tubuh  tanaman  dengan  cara p e n g a t u r a n   b u k a a n   s t o m a t a   u n t u k mengurangi  laju  transpirasi. Drought  tolerance a d a l a h   k e m a m p u a n   t a n a m a n   u n t u k memelihara  fungsi  organ  tanaman  dalam keadaan  status  air  tanaman  yang  rendah. Contoh  dari  mekanisme drought  tolerance adalah pengaturan tekanan osmotik sel untuk memelihara turgor tanaman maupun produksi antioksidan untuk meminimalisir efek negatif dari  kekeringan. Drought  recovery adalah kemampuan tanaman untuk pulih dari kondisi tercekam  ketika  terjadi  kekeringan  (Fang  & Xiong, 2015; Lawlor, 2013; Luo, 2010)..
Mekanisme  adaptasi  terhadap  cekaman kekeringan  yang  berupa  pengaturan  tekanan osmotik  mer upakan  sifat  yang  dapat diturunkan  sehingga  sifat  tersebut  dapat dipakai  dalam  program  pemuliaan  tanaman untuk merakit klon karet yang toleran terhadap kekeringan  (Turner,  1986).  Beberapa  klon karet ditemukan dapat melakukan mekanisme adaptasi  terhadap  kekeringan  dengan  cara mengurangi  laju  transpirasi  melalui
Mitigasi kekeringan pada perkebunan karet (hevea brasiliensis müll. Arg.) melalui pendekatan phytobiome
mekanisme  peningkatan  tahanan  stomata. Mekanisme adaptasi yang tergolong ke dalam drought avoidance ini ditemukan pada klon RRII 105 (Devakumar et al ., 1988). Selain itu, klon RRII 414, RRII 105, dan RRII 208 berturut- turut  dilaporkan  memiliki  toleransi  yang rendah,  sedang,  dan  tinggi  terhadap kekeringan  (Luke et  al .,  2015). Selain mekanisme drought  avoidance ,  pada  tanaman karet  juga  ditemukan  mekanisme drought tolerance yang  terjadi  pada  klon  GT1. Membran sel pada klon karet GT1 dilaporkan lebih tahan terhadap kekeringan dibandingkan dengan klon RRIM 600 (Bahari & Samsuddin, 1984).  Selain  itu,  Wijaya  &  Lasminingsih (1994) juga menyatakan bahwa klon  GT1 juga menunjukkan  ketahanan  terhadap  cekaman k e k e r i n g a n   m e l a l u i   m e k a n i s m e penghambatan  proses  transpirasi  melalui p e n i n g k a t a n   r e s i s t e n s i   s t o m a t a   d a n penyesuaian  potensial  osmotik  daun. Sebaliknya,  klon  PB260  dilaporkan  lebih sensitif  terhadap cekaman kekeringan (Inonu et al ., 2011).
Pemilihan  komposisi  klon  di  perkebunan karet sangat menentukan produksi karet pada waktu  musim  kemarau.  Perbedaan  fluktuasi produksi antara klon yang satu dengan lainnya disebabkan  karena  perbedaan  waktu  gugur daun karet. Titik terendah produksi lateks oleh tanaman  karet  terjadi  pada  saat  fase  mulai terbentuknya  daun  baru  pada  pergantian antara musim kemarau dan musim penghujan yang  biasanya  terjadi  pada  bulan  September (Cahyo et  al .,  2011).  Ardika et  al .  (2011) menyebutkan  bahwa  klon  GT1  adalah  yang paling  akhir  menggugurkan  daunnya dibandingkan  klon  PB260,  BPM24,  dan RRIC100,  sehingga  produksi  lateksnya  pada saat musim kemarau adalah yang paling stabil dibandingkan  dengan  klon  lainnya.  Gugur daun  adalah  mekanisme avoidance dalam menghadapi  cekaman  kekeringan.  Dampak negatif   dari  peristiwa  gugur  daun  sebagai mekanisme  adaptasi  terhadap  cekaman kekeringan  ini  adalah  turunnya  produksi tanaman  yang  dapat  mencapai  50%  dari produksi  tanaman  pada  saat  musim  hujan (Wijaya et al ., 2011).
Penggunaan Root  Trainer dalam  Pembibitan Karet
Root trainer adalah pot beralur vertikal yang dapat digunakan untuk membentuk akar agar tidak  menggulung,  lebat,  serta  mengarah  ke bawah.  Pada  mulanya,  untuk  mengatasi masalah terbentuknya akar yang melingkar di dasar  polibag,  digunakan  kontainer  plastik yang  digantung  dan  berlubang  di  sebelah bawah  agar  pertumbuhan  akar  terhenti  dan tidak  menggulung  di  dasar  polibag.  Hal  ini dimungkinkan  karena  terjadi  mekanisme air pruning pada akar yang bertemu udara di dasar kontainer. Pada perkembangannya, lubang di dasar  kontainer  ini  dapat  mencegah penggulungan akar di bagian dasar kontainer, namun  pada  bagian  tengah  kontainer  masih terbentuk  akar  yang  spiral.  Untuk  mengatasi masalah tersebut, pada dinding sebelah dalam kontainer ditambahkan alur setebal 1 – 2 mm agar akar yang tumbuh terarah ke bawah dan tidak  membentuk  spiral  (Mullan  &  White, 2001).
Root  trainer untuk  tanaman  karet  didesain khusus dengan bentuk silindris yang mengecil di bagian bawah. Diameter bagian atas silinder tersebut sekitar 6 – 7,5 cm dan diameter bagian bawahnya 1,5 – 2 cm dengan panjang (tinggi) silinder  sekitar  30  cm.  Dengan  dimensi tersebut, root  trainer yang  berbentuk  silindris tersebut  mempunyai  volume  sekitar  800  cc. Selain itu, root trainer juga dilengkapi dengan sekat yang menonjol vertikal dengan ketebalan sekitar  2  mm  di  sebelah  dalam root  trainer . Sekat ini dimaksudkan agar arah pertumbuhan akar  menjadi  lurus  ke  arah  bawah  dan  tidak menggulung di dinding pot root trainer . Dengan arah  pertumbuhan  akar  yang  lurus  ke  arah bawah,  diharapkan  akar  dapat  menembus lapisan tanah yang lebih dalam dari pada yang dapat  ditembus  oleh  bibit  karet  yang dikembangkan  dalam  polibeg.  Dengan jangkauan  akar  tanaman  yang  lebih  dalam tersebut,  diharapkan  tanaman  karet  yang dikembangkan  dengan  penataan  akar menggunakan root  trainer ini  lebih  tahan terhadap  kondisi  kering  ketika  musim kemarau terjadi dan tidak mudah tumbang.
Media tanam dalam root trainer yang sesuai diperlukan agar didapatkan pertumbuhan akar yang  optimal.  Sifat  fisik  media  tanam berpengaruh  terhadap  arsitektur  akar, misalnya  diameter  akar,  perkembangan rambut akar, dan pola percabangan akar lateral (Al-Zalzelah,  2013;  Lucas,  1987).  Akar cenderung  memanjang  apabila  tumbuh  pada tanah  berpasir.  Sebaliknya  akar  cenderung pendek  dan  membentuk  percabangan  yang banyak apabila tumbuh pada media bertekstur liat  (Al-Zalzelah,2013;  Muthana et  al .,  1984; Perry,  1982).  Dengan  memperhatikan pengaruh  tekstur  media  tanam  terhadap arsitektur  perakaran  tersebut  tersebut, sebaiknya media tanam untuk menumbuhkan tanaman  karet  dalam root  trainer mempunyai kapasitas  pegang  air,  drainase,  aerasi,  dan kandungan  bahan  organik  yang  tinggi,  tidak terlalu  masam,  bebas  dari  spora  jamur,  biji gulma,  dan  serangga  (Ingram et  al .,  1993).
Salah  satu  media  tanam  yang  cocok  dengan spesifikasi tersebut adalah cocopeat . Cocopeat sebenarnya  adalah  limbah  dari industri  pengolahan  kelapa  (Arenas  et  al., 2002). Cocopeat merupakan bagian dari sabut kelapa  yang  berupa  serbuk  yang  telah dipisahkan dari serat sabut kelapa. Serat sabut kelapa  kebanyakan  digunakan sebagai  bahan jok mobil maupun tali, sedangkan serbuk sabut kelapa  yang  dinamakan  cocopeat  saat  ini banyak  dimanfaatkan  sebagai  media  tanam tanpa tanah (Evans & Stamps, 1996). Cocopeat merupakan  media  tanam  yang  ideal  bagi
tanaman  karena  sifat  fisiknya  yang menguntungkan, yaitu memilik total pori yang tinggi,  tingkat  penyusutan  yang  rendah,  dan bobot  volume  yang  rendah  (Treder,  2008). Nazari et  al. (2011)  menyebutkan  bahwa cocopeat mempunyai  jumlah  pori  total,  bobot isi,  dan  kapasitas  pegang  air  sekitar  87%;
3 0,13g/cm ,  dan  715%  b/b  berturut-turut. Rendahnya  berat  volume cocopeat ini  juga memberikan  kemudahan  bagi  transport  dan pendistribusian di lapangan.
Tabel  1  menunjukkan  bahwa  pada perlakuan campuran antara cocopeat dan tanah, didapatkan bahwa penggunaan cocopeat 100% dapat meningkatkan bobot segar dan volume akar  sebesar  lebih  dari  100%  dari  pada  akar dengan media tanam 100% tanah (Cahyo et al ., 2019).  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  media tanam cocopeat cocok digunakan sebagai media tanam  pada root  trainer yang  memang bertujuan  memperbaiki  dan  mengarahkan pertumbuhan akar.
Menurut  Ardika  &  Herlinawati  (2014); Soman  &  Saraswathyamma  (2005),  bibit tanaman  asal root  trainer yang  ditanam  di lapangan,  tingkat  kesintasannya  lebih  tinggi daripada  bibit  yang  dikembangkan  dalam polibeg (Tabel 2). Hal ini menunjukkan bahwa tanaman  karet  yang  berasal  dari  bibit  dalam root  trainer lebih  toleran  terhadap  kekeringan yang  terjadi  pada  saat  musim  kemarau  dari pada  tanaman  karet  yang  berasal  dari  bibit dalam polibeg.
Tabel 1. Pengaruh rasio campuran tanah dan cocopeat terhadap bobot segar dan volume akar
Mitigasi kekeringan pada perkebunan karet (hevea brasiliensis müll. Arg.) melalui pendekatan phytobiome
Media Tanam Berat segar akar (g) Volume akar (cc) Tanah 100% 14,33 13,33 Cocopea t 20%; tanah 80% 20,00 20,83 Cocopeat 40%; tanah 60% 18,00 16,67 Cocopeat 60%; tanah 40% 29,33 26,83 Cocopeat 80%; tanah 20% 26,00 26,67 Cocopeat 100% 36,66 33,67

## Aplikasi Asam Humat
Akar merupakan salah satu organ tanaman yang  mempengaruhi  kemampuan  tanaman dalam  beradaptasi  pada  kondisi  kekeringan. Dengan  perakaran  yang  dalam,  tanaman dapat  menjangkau  lengas  tanah  yang  berada pada lapisan tanah yang dalam. Oleh karena itu dengan pertumbuhan akar tanaman karet yang  optimal,  diharapkan  tanaman  karet menjadi  lebih  tahan  terhadap  kekeringan. Pertumbuhan  akar  tanaman  karet  dapat dipacu dengan aplikasi asam humat (Cahyo et al ., 2014).
Pengaruh  asam  humat  terhadap  tanaman telah  banyak  dilaporkan.  Chen et  al .(2002) melaporkan  bahwa  terjadi  peningkatan pertumbuhan  tanaman  karena  aplikasi  asam dan  Nardi et  al. (2002) humat  sebagai pembenah tanah yang meningkatkan beberapa nutrisi  (zat  besi  dan  seng).  Aplikasi  asam humat  pada  daun  juga  dapat  meningkatkan pertumbuhan  beberapa  jenis  tanaman, misalnya tomat, kapas, dan anggur (Brownell et  al. ,  1987;  Fernández-Escobar et  al. ,  1996).
Penelitian  lain  menemukan  bahwa  asam humat  dapat  mempengaruhi  metabolisme tanaman secara langsung (Nardi et al ., 2002).
Beberapa sumber mengatakan bahwa asam humat  dapat  mempengaruhi  pertumbuhan tanaman  sebagai  zat  seperti  hormon (Bottomley,  1917;  Muscolo et  al. ,  1998). Penelitian yang dilakukan Trevisan et al . (2011) membuktikan  bahwa  zat  humat  dapat meningkatkan  metabolisme  fotosintesis  di daun jagung. Kemudian dihipotesiskan bahwa zat humat mungkin berpengaruh pada fisiologi tanaman  sebagai  hormon  seperti  auksin. Selain itu, efek positif  pemberian asam humat
dapat  meningkatkan  metabolisme  tanaman misalnya  meningkatkan  fungsi  membran  sel dan  merangsang  serapan  hara  (Nardi et  al. , 2002; Varanini & Pinton, 1995).
Selain  penelitian  pengaruh  asam  humat, penelitian mengenai konsentrasi asam humat bagi peningkatan pertumbuhan tanaman juga telah  dilakukan.  Arancon et  al .  (2003), menyebutkan bahwa asam humat dari kotoran sapi  dapat  meningkatkan  berat  kering  akar marigold dan strowberi secara signifikan pada konsentrasi  500  mg/kg.  Asam  humat  dari kompos  cacing  pada  konsentrasi  250  -  1000 mg/kg  juga  bisa  meningkatkan  berat  kering akar tomat. Atiyeh et al . (2002)   menemukan bahwa biasanya pada konsentrasi rendah (50- 500 mg/kg), asam humat dapat meningkatkan per tumbuhan  tanaman,  tetapi  ketika diterapkan pada konsentrasi yang lebih tinggi (500-1000  mg/kg)  tidak  dapat  meningkatkan pertumbuhan  tanaman  secara  signifikan. Pengaruh  aplikasi  asam  humat  terhadap per tumbuhan  tanaman  menunjukkan pertumbuhan  yang  tajam  seiring  dengan peningkatan konsentrasi asam humat sampai mencapai  puncak  dan  kemudian  biasanya menurun pada konsentrasi asam humat yang lebih tinggi (Atiyeh et al .,2002; Chen & Aviad, 1990).
Pengaruh  asam  humat  dalam  memacu pertumbuhan  tanaman  diperkirakan  karena substansi asam humat bersifat seperti hormon auksin, sitokinin, dan giberelin (Atiyeh et al ., 2002; Muscolo et al ., 1999). Selain itu, Atiyeh et al .  (2002)  dan  Cahyo et  al .  (2014)  juga melaporkan  bahwa  asam  humat  lebih b e r p e n g a r u h   t e r h a d a p   p e n i n g k a t a n pertumbuhan  akar  daripada  tajuk.  Hal  ini diperkirakan  karena  hormon  auksin  dapat
Tabel 2. Perbandingan pertumbuhan bibit karet asal root trainer dan polibeg
Parameter Root Trainer Polibeg Rasio tinggi dan diameter batang 67,02 74,47 Jumlah akar lateral 18,09±2,09 5,61±1,46 Bibit mati di lapangan (%) - 4,66 Sumber:  Ardika & Herlinawati (2014); Soman & Saraswathyamma (2005)
Sumber : Ardika & Herlinawati (2014); Soman & Saraswathyamma (2005)
menginisiasi  permbentukan  akar,  sedangkan hormon  sitokinin  dapat  meningkatkan pertumbuhan akar (Gardner et al ., 1991).
Selain  karena  peningkatan  pertumbuhan akar,  pengaruh  positif   asam  humat  dalam mitigasi  kekeringan  pada  perkebunan  karet adalah  karena  kemampuannya  dalam meningkatkan  aktivitas  enzim-enzim  yang mampu  menurunkan  konsentrasi reactive oxygen  species (ROS)  dalam  tubuh  tanaman. Penelitian Elmongy et al . (2018) menunjukkan bahwa  pemberian  asam  humat  sebanyak  1 mg/l  dapat  meningkatkan  aktivitas  enzim SOD, APX, dan CAT pada tanaman evergreen - azalea. SOD adalah enzim yang mengubah O 2 yang  dapat  terbentuk  saat  terjadi  proses  foto respirasi karena cekaman kekeringan menjadi H O (Leclercq et al. , 2012). CAT adalah enzim 2 2 yang  berperan  mengubah  H O menjadi  H O
2 2 2 dan  O (Fikret et  al .,  2013).    Selain  itu,  APX 2 berfungsi untuk mengubah H O menjadi H O
2 2
2 dan  MDHA  (monodehydroascorbate)  (Singh et  al .,  2017).  Peranan  asam  humat  sebagai antioksidan  pernah  dikemukan  sebelumnya oleh  (Moghadam,  2015)  dan  sebagai antioksidan  sekaligus  auksin  aktivator  oleh (Cordeiro et al. , 2011).

## Aplikasi Osmoregulator
Salah satu efek cekaman kekeringan adalah terjadinya  penurunan  tekanan  turgor  dan potensial  air  sel  tanaman  (Shao et  al .,  2008).
Hal  ini  menyebabkan  proses  fisiologis tanaman  terganggu.  Efek  kekeringan  pada proses  fisiologis  tanaman  karet  dipengaruhi oleh tingkat keparahan dan durasi kekeringan serta  kemampuan  tanaman  dalam  mengatasi kondisi  kekeringan.  Oleh  karena  itu pemulihan  status  air  tanaman  yang  cepat diperlukan  sebagai  mekanisme  toleransi tanaman terhadap kekeringan (Falqueto et al ., 2017;  Waseem et  al .,  2011).  Mekanisme toleransi  tanaman  dalam  menghadapi kekeringan misalnya adalah dengan menekan laju  transpirasi  serta  penyesuaian  tekanan osmotik  sel.  Penyesuaian  tekanan  osmotik dapat dilakukan dengan mengakumulasi solut yang  kompatibel  seperti  sorbitol,  manitol,
sukrosa,  fruktan,  oligosakarida,  dan  prolin (Rhodes  &  Hanson,  1993;  Wang,  2014). Osmoregulasi  adalah  kemampuan  tanaman untuk  menurunkan  tekanan  osmotik  sebagai akumulasi  solut  dalam  jaringan  tanaman. Klon karet dengan kemampuan osmoregulasi yang tinggi memiliki tingkat tekanan osmotik y a n g   t i n g g i   s e h i n g g a   m a m p u mempertahankan turgiditas sel dan kadar air relatif   daun  selama  berada  dalam  kondisi kekeringan  (Karyudi,  2001).  Wang  (2014) menyebutkan bahwa pada tanaman karet, gula terlarut  lebih  berperan  dalam  osmoregulasi daun  tanaman  karet  dalam  menghadapi kekeringan  dibandingkan  dengan  prolin. P r o l i n   b e r p e r a n   s e b a g a i   s e n y a w a osmoregulator  yang  memelihara  integritas membran  dan  mempengaruhi  kelarutan  dari berbagai  protein  sehubungan  dengan interaksinya  dengan  residu  hidrofobik  pada permukaan protein dalam kondisi kekurangan air (Din et al ., 2011).
Aplikasi senyawa osmoregulator pada daun karet  lebih  mudah  dilaksanakan  pada  fase pembibitan dan tahun pertama penanaman di lapangan.  Setelah  fase  tersebut,  aplikasi osmoregulator  pada  daun  tanaman  karet sangat  sulit  dilaksanakan  karena  selain biayanya mahal, posisi daun karet juga sudah lebih  dari  dua  meter,  sehingga  menjadi  sulit d i j a n g k a u   o l e h   a p l i k a t o r   s e n y aw a osmoregulator.  Untuk  mengatasi  masalah tersebut,  dapat  digunakan  pupuk  KCl  yang + diaplikasikan  di  tanah.  Unsur  K dapat berfungsi  sebagai  osmoregulator  yang membantu tanaman dalam mengatur tekanan turgor sel penjaga pada stomata (Cochrane & Cochrane,  2009a,  2009b;  Khanna-Chopra et al .,  1994;  Yu  &  Assmann,  2016).  Ketika + - konsentrasi K dan Cl pada sel penjaga tinggi, cairan  dalam  sel  penjaga  menjadi  hipertonis. Sifat cairan dalam sel yang hipertonis tersebut menyebabkan  air  di  luar  membran  sel  yang hipotonis  cenderung  terosmosis  masuk    ke dalam sel penjaga. Pada keadaan lingkungan yang kekeringan, perbedaan potensial osmosis tersebut menyebabkan air tetap berada dalam sel penjaga sehingga tekanan turgor sel penjaga tetap  terjaga.  Tingginya  tekanan  turgor  ini
Mitigasi kekeringan pada perkebunan karet (hevea brasiliensis müll. Arg.) melalui pendekatan phytobiome
menyebabkan  bukaan  stomata  tetap  terjaga selama terjadi kekeringan dan produksi reactive oxygen  species yang  berlebihan  dapat  ditekan (Taiz  &  Zeiger,  2002).  Oleh  karena  itu pemupukan  ekstra  KCl  dapat  membantu mengurangi  dampak  kemarau  pada  tanaman karet.  Hasil  penelitian  tentang  aplikasi berbagai  dosis  K  pada  tanaman  karet  belum m e n g h a s i l k a n   s a a t   mu s i m   k e m a r a u menunjukkan  bahwa  pemupukan  K  dengan dosis dua kali lipat dosis rekomendasi secara signifikan  meningkatkan  ketahanan  tanaman terhadap kekeringan. Hal ini dapat dilihat dari pertumbuhan lilit batang karet yang lebih baik pada  perlakuan  pemupukan  K  dengan  dosis dua  kali  lipat  dosis  rekomendasi  dibanding perlakuan  dosis  yang  lain  saat  mengalami cekaman  kekeringan  (Samarappuli,  1992; Saputra et al. , 2016).

## Irigasi pada Pembibitan dan TBM Karet
Irigasi  adalah  salah  satu  cara  untuk memenuhi  kebutuhan  air  tanaman  selama periode  kering.  Pada  saat  musim  kemarau curah  hujan  tidak  cukup  untuk  memenuhi kebutuhan  air  tanaman  karet,  sehingga diperlukan pemberian tambahan air ke daerah perakaran  karet  hingga  kadar  air  tanahnya mencapai kapasitas lapang. Dengan kadar air tanah yang berkisar antara titik layu permanen hingga kapasitas lapang, tanaman karet akan dapat menyerap air dengan optimal sehingga proses  fisiologis  dalam  tubuh  tanaman  karet dapat berlangsung dengan normal.
Penggunaan  sistem  irigasi  teknis  pada perkebunan  karet  di  Indonesia  sangat  jarang ditemukan  kecuali  pada  lahan  pembibitan. Penelitian  tentang  berbagai  macam  sisitem i r i g a s i   d i   p e m b i b i t a n   k a r e t   p e r n a h dilaksanakan  di  Malaysia.  Dari  penelitian tersebut  didapatkan  bahwa  perlakuan  irigasi dengan  menggunakan capilary  wick  irrigation system dapat menghasilkan bobot kering akar dan  luas  daun  yang  lebih  tinggi  dibanding perlakuan irigasi dengan menggunakan sistem drip dan overhead sprinkler (Nabayi et al. , 2016).
Selain irigasi di pembibitan, irigasi di kebun produksi  baik  pada  tanaman  belum menghasilkan  (TBM)  maupun  tanaman
menghasilkan  (TM)  dapat  juga  dilakukan namun  tidak  efisien  karena  biayanya  sangat mahal.  Penelitian  tentang  irigasi  pada tanaman  belum  menghasilkan  di  kebun produksi pernah dilaksanakan di Thailand dan India.  Mak et  al .(2008)  menyebutkan  bahwa total  produksi  pada  blok  yang  diirigasi mencapai 2.469,4 kg/ha yang secara signifikan jauh  lebih  tinggi  dibanding  blok  yang  tidak d i i r i g a s i .   Pe n g a r u h   i r i g a s i   t e r h a d a p pertumbuhan  lilit  batang  dan  hasil  karet  per sadap per pohon berturut-turut   dapat dilihat pada Tabel 3 dan 4.
Tabel 3 dan 4 menunjukkan bahwa irigasi secara  signifikan  dapat  meningkatkan pertumbuhan  dan  hasil  tanaman  terutama pada  daerah  dengan  musim  kemarau  yang panjang. Selain itu, penelitian tentang irigasi di India juga didapatkan hasil bahwa pemberian irigasi  dengan  sistem  basin  dan  tetes  dapat meningkatkan  biomassa  tanaman  dengan hasil yang terbaik dapat meningkat sebesar 2,8 kali  lipat  dari  biomassa  tanaman  yang  tidak mendapatkan irigasi (Tabel 5). Pada penelitian ini juga disimpulkan bahwa pada tanah oxisol pemberian  irigasi  dengan  sistem  basin  lebih efektif  dibanding sistem tetes. Dengan adanya peningkatan  pertumbuhan  tanaman  tersebut masa TBM karet dapat diperpendek menjadi enam tahun dengan adanya perlakuan irigasi (Vijayakumar et al ., 1998). Hasil penelitian ini sejalan  dengan  penelitian  Carr  (2012)  dan Jessy et  al .  (1994)  yang  mendapatkan  bahwa setelah  lima  tahun  pemberian  irigasi,  lilit batang  karet  yang  diberi  perlakuan  irigasi sistem tetes dan basin berturut-turut 364 dan 347 mm. Lilit batang ini secara signifikan lebih tinggi dari pada lilit batang tanaman yang tidak diberi perlakuan irigasi yang hanya mencapai 300  mm.  Selain  itu,  perlakuan  irigasi  juga diketahui  dapat  meningkatkan  indeks  luas daun  dan  intersepsi  cahaya  oleh  kanopi tanaman karet (Carr, 2012; Devakumar et al. , 1988).
Salah satu kendala dalam melakukan irigasi pembibitan karet baik batang bawah maupun bibit dalam polibeg dengan luasan yang besar adalah  kebutuhan  volume  air  irigasi  yang tinggi.  Hal  ini  menyebabkan  irigasi  sulit dilaksanakan  pada  musim  kemarau  apabila
Bulan Pertambahan lilit batang Jan-05 Okt-05 Jan-06 selama 16 bulan Irigasi 54,3 55,7 58,0 7,6 Non irigasi 50,3 51,6 53,4 3,5 Rerata 52,3 53,7     55,7 5,5 cv (%) 2,30 2,40       0,4 13,60 F test * * ** ** LSD 0.05 2,443 2,567   0,498 1,509 Sumber : Mak et al .(2008)

## Tabel 4. Pengaruh irigasi terhadap hasil karet (gram/pohon/sadap)

## Tabel 3. Pengaruh irigasi terhadap lilit batang tanaman karet (cm)
Perlakuan Months Nov Dec Apr May Jul Sep Oct Nov Dec Jan Irrigation treatment 2004 2004 2005 2005 2005 2005 2005 2005 2005 2006 Irigasi 55,4 67,1 47,5 72,0 87,4 76,9 87,2 85,6 71,5 56,8 Non irigasi 50,6 53,0 26,8 42,3 66,7 89,3 87,8 84,5 63,2 65,7 Rerata 53,0 60,1 37,2 57,1 77,0 83,1 87,5 85,0 67,4 61,3 cv(%) 0,2 0,4 0,8 0,7 4,7 1,3 0,1 0,5 0,3 0,9 F test * ** ** ** * * ns ns * * LSD 0.05 3,4 5,2 2,3 8,5 14,5 8,9 - - 5,3 7,6 Sumber : Mak et al .(2008)
sumber  air  yang  ada  (embung,  danau)  juga mengalami kekeringan. Untuk mengatasi hal ini,  sebaiknya  pembibitan  ditempatkan  pada lokasi  di  mana  tersedia  air  yang  berlimpah sepanjang tahun. Sebagai contoh, untuk kebun percobaan  Pusat  Penilitian  Karet,  sebaiknya kebun pembibitan ditempatkan di daerah yang dekat dengan Sungai Musi yang airnya selalu mengalir sepanjang tahun. Dengan demikian biaya irigasi dapat ditekan secara signifikan.

## Penggunaan  Seresah  LCC  sebagai  Mulsa Organik
Salah satu upaya mitigasi kemarau panjang sebagai  dampak  El-Nino  adalah  dengan penanaman tanaman kacangan penutup tanah (LCC) di antara gawangan karet dengan tujuan sebagai  mulsa  untuk  menekan  evaporasi tanah. Selain untuk menekan evaporasi, LCC dengan  produksi  biomassa  yang  tinggi  juga berfungsi  untuk  menekan  kemungkinan
Tabel 5. Pengaruh beberapa perlakuan irigasi terhadap lilit batang (cm) dan biomassa (kg/tanaman) tanaman karet ( Hevea brasiliensis ).
113 abc
Perlakuan Lilit Batang Biomassa ETc Irigasi (cm) (kg/tanaman) Kontrol 34,3 c 49 d 0,50 basin 46,6 ab 0,75 basin 49,5 a 134 ab 1,00 basin 49,9 a 137 a 0,25 drip 41,6 b 83 c 0,50 drip 45,0 ab 103 bc 0,75 drip 46,3 ab 111 abc CD (0,01) 5,3 30
Keterangan : Angka yang diikuti oleh huruf  yang berbeda pada kolom yang sama berbeda nyata pada P<0,01 Sumber : Vijayakumar et al . (1998)
terjadinya  erosi,  memperbaiki  struktur  fisik dan  kimia  tanah,  serta  untuk  membatasi pertumbuhan gulma. LCC yang dahulu umum dipakai di perkebunan karet adalah campuran dari Pueraria  phaseoloides,  Calopogonium mucunoides,  Centrosema  pubescens, dan Calopogonium caeruleum . Namun pada saat ini Mucuna  bracteata lebih  banyak  digunakan  di perkebunan-perkebunan  besar  karena mempunyai  beberapa  kelebihan.  Kelebihan dari Mucuna bracteata antara lain pertumbuhan cepat sehingga menekan pertumbuhan gulma, produksi  biomassa  dan  kapasitas  fiksasi nitrogen  cukup  tinggi,  toleran  terhadap naungan,  tahan  kekeringan,  bebas  dari serangan  hama  dan  penyakit  serta  tidak disukai oleh ternak (Siagian, 2011).
Mucuna  bracteata adalah  salah  satu  jenis LCC merayap yang ditemukan pertama kali di areal  hutan  negara  bagian  Tripura,  India Utara, dan sudah ditanam secara luas sebagai penutup tanah di perkebunan karet di Kerala, India  Selatan. Mucuna  bracteata dengan  laju pertumbuhan  yang  tinggi  mampu  menutup 2 lahan seluas 20 m  pada umur 10 bulan setelah tanam  sehingga  pada  awal  tahun  kedua seluruh areal sudah tertutup dengan ketebalan 39 - 90 cm (Siagian, 2001). Dalam satu tahun Mucuna  bracteata dapat  membentuk  bahan kering  hingga  mencapai  3.786  kg/ha, sementara bahan kering yang dapat terbentuk oleh  LCC  konvensional  hanya  sekitar  1.048 kg/ha (Nugroho et al ., 2006).
Tebalnya  seresah Mucuna  bracteata yang terbentuk  tersebut  berdampak  positif,  yaitu sebagai  penyedia  nutrisi  tanaman  sekaligus berfungsi sebagai mulsa yang dapat menahan penguapan  air  dari  tanah  dan  meningkatkan efisiensi  penggunaan  air  terutama  pada  saat m u s i m   k e m a r a u .   B e b e r a p a   s u m b e r menyebutkan bahwa penggunaan mulsa pada perkebunan  karet  dapat  mengurangi kehilangan  air  tanah  karena  evaporasi  yang b e r l e b i h a n   p a d a   s a a t   mu s i m   k e r i n g (Samarappuli,  1992;  Saputra et  al. ,  2016). Selain  itu,  aplikasi  mulsa  setebal  3,8  cm dilaporkan  dapat  menurunkan  evaporasi hingga  sekitar  35%  dibandingkan  dengan lahan yang tidak diberi mulsa (Chalker-Scott,
2007).  Dengan  adanya  mulsa  yang  berupa seresah  tanaman  maupun  mulsa  lainnya,  air yang  terbatas  pada  musim  kemarau  dapat digunakan dengan lebih efisien oleh tanaman. Selain  pada  tanaman  karet,  penggunaan seresah  sebagai  mulsa  juga  dilaporkan  dapat meningkatkan  efisiensi  penggunaan  air  dan pertumbuhan beberapa jenis tanaman, antara lain kedelai (Xue et al ., 2013), ara (Jafari et al .,
2012),  dan  padi  (Qin et  al .,  2010).  Dalam penggunaan Mucuna  bracteata sebagai  LCC pada  perkebunan  karet,  pertumbuhan  sulur Mucuna bracteata harus dikendalikan agar tidak terlalu  dekat  dan  mengganggu  pertumbuhan tanaman karet.

## Penggunaan Rorak
Rorak  adalah  lubang  dengan  ukuran tertentu  yang  sengaja  dibuat  di  lahan perkebunan  dengan  tujuan  untuk  konservasi air,  tanah,  maupun  nutrisi  tanah  agar  tidak langsung tercuci dari lahan perkebunan akibat limpahan air hujan yang berlebihan. Air hujan yang  masuk  dalam  rorak  akan  mengalami seepage (aliran  lateral)  dan infiltrasi (aliran vertikal) yang tertunda. Ini akan menyebabkan lebih  lama  ketersediaannya  dalam  tanah sehingga  dapat  dimanfaatkan  oleh  tanaman karet dalam jangka waktu yang lebih panjang (Hutasoit et al ., 2015; Noeralam et al ., 2003). Dengan tertahannya air tersebut, rorak dapat menunda  kekeringan  tanah (soil  dryness) selama  3,5  bulan  (Murtilaksono et  al. ,  2007; Nugroho, 2017).
Rorak dapat dibuat dengan ukuran sekitar 120  x  45  x  75  cm.  Rorak  dapat  diisi  dengan bahan  organik  yang  berupa  seresah  tanaman maupun  pupuk  kandang  yang  telah d i k o m p o s k a n .   B e b e r a p a   p e n e l i t i a n m e n u n j u k k a n   b a h w a   t a n a h   d e n g a n kandungan  bahan  organik  yang  tinggi  lebih banyak  menyimpan  air  dibanding  tanah dengan  kandungan  bahan  organik  yang rendah (Achmad & Putra, 2016) ; (Sukmana et al .,  1986).  Achmad  &  Putra  (2016)  juga mengatakan bahwa rorak dengan   kedalaman 16-30 cm lengas tanahnya lebih tinggi 8,89% dan  2,4%  apabila  dibandingan  dengan
perlakuan kontrol tanpa vegetasi dan dengan vegetasi  berturut-turut.  Selain  itu,  rorak  juga terbukti  dapat  meningkatkan  kadar  air  tanah sekitar 5% pada kedalaman 30-60 cm. Hal ini sangat  bermanfaat  bagi  tanaman  karet  yang akar lateralnya berada pada kedalaman sekitar 30 cm. Idealnya, rorak dibuat dengan jumlah sekitar 200 lubang/ha. Dengan aplikasi rorak pada  perkebunan  karet  sebanyak  250 lubang/ha, produksi karet dapat ditingkatkan sekitar 15%. Aplikasi rorak sebanyak 100 – 250 lubang/ha juga terbukti dapat mengkonservasi tanah  sebanyak  4,58  –  10,42  ton/ha  dengan jumlah  nutrisi  yang  diselamatkan  adalah  12- 29, 6-13, dan 27-62 untuk unsur N, P, dan K berturut-turut (George et al ., 2005).
Bahan organik sebagai materi pengisi rorak dapat  diperoleh  dari  dalam  kebun  ( in  situ ) seperti rumput dan seresah tanaman maupun dari luar kebun ( ex situ ) seperti kompos, pupuk kandang, maupun materi yang berupa produk sampingan  dari  industri  kelapa  sawit.  Kebun karet  yang  mendapatkan  tambahan  bahan organik  ber upa  tandan  kosong  sawit menunjukkan  hasil  yang  positif   berupa peningkatan bobot kering akar (Susetyo et al ., 2017).  Selain  itu,  Hutasoit et  al .  (2015)  juga menyebutkan  bahwa  pemberian  tandan kosong sawit pada kebun karet sebanyak 300 kg  per  rorak  dapat  meningkatkan  N  tanah sebesar 14,84 %.
Kandungan  bahan  organik  tanah  yang meningkat  akibat  pemberian  tandan  kosong sawit  dapat  memperbaiki  sifat  fisik  tanah sehingga struktur tanah semakin mantap dan kemampuan tanah menahan air semakin baik. Rorak dengan bahan organik dan lengas yang memadai  akan  efektif   dalam  meningkatkan pertumbuhan  tanaman  terutama  akarnya. Rorak  yang  baik  ditandai  dengan  banyaknya feeder root berwarna putih (aktif) yang berada di rorak tersebut.

## Inokulasi Jamur Mikoriza dan DSE
Untuk  meningkatkan  kemampuan  akar dalam  menyerap  air  dan  hara  dalam  kondisi lingkungan yang kurang ideal, perakaran bibit tanaman karet dapat diinokulasi dengan jamur mikoriza.  Mikoriza  adalah  suatu  bentuk
hubungan simbiosis mutualistik antara jamur dan  perakaran  tanaman.  Mikoriza  dapat bersimbiosis  dengan  lebih  dari  80%  spesies tanaman  di  alam  (Bonfante  &  Genre,  2010; Rozek et al ., 2018).
Beberapa  penelitian  menunjukkan  bahwa jamur  mikoriza  ditemukan  pada  tanaman karet (Basumatary et al ., 2014; Herrmann et al ., 2015,2016; Sahar & Guci,2016). Spesies jamur mikoriza  yang  dapat  berasosiasi  dengan tanaman  karet  antara  lain Glomus sp., Acaulospora sp., Scutellospora sp., Gigaspora sp., dan Diversispora sp.  (Herrmann et  al .,  2016).
Selain  itu,  mikoriza  juga  terbukti  dapat meningkatkan  pertumbuhan  tanaman  dan kandungan nutrisi daun karet (Herrmann et al ., 2016; Ikram et al ., 1992; Sosa-Rodriguez et al ., 2013).
M i k o r i z a   j u g a   d i k e t a h u i   m a m p u melindungi tanaman pada saat musim kering yang berkepanjangan (Herrmann et al ., 2016; Symanczik et  al .,  2015),  serta  meningkatkan serapan  air  pada  lahan  yang  ketersediaan airnya  terbatas  sekaligus  meningkatkan persentase tanaman yang hidup di persemaian dan lapangan (Ulfa et al ., 2005). Peningkatan ketahanan  tanaman  pada  kondisi  kekeringan ini  dimungkinkan  melalui  mekanisme peningkatan  mobilisasi  nutrisi  pada  tanah yang kering, peningkatan jangkauan terhadap air yang terbatas di dalam tanah, peningkatan porositas  tanah,  ser ta  infiltrasi  dan penyimpanan air (Herrmann et al ., 2015; Yang et al ., 2014). Oleh karena itu, inokulasi jamur mikoriza pada perakaran bibit tanaman karet d a l a m   p o l i b a g   d i h a r a p k a n   d a p a t meningkatkan  pertumbuhan  dan  ketahanan tanaman karet terhadap kekeringan.
Dalam  perkembangan  penelitian  tentang simbiosis  antara  jamur  dan  perakaran tanaman,  terdapat  sekelompok  spesies  jamur dalam  filum  Ascomycetes  yang  dapat bersimbiosis  dengan  perakaran  tanaman inang,  namun  sebagian  bukan  termasuk  ke dalam kelompok mikoriza. Sekelompok jamur ini  disebut  sebagai  jamur Dark  Septate Endophyte ( DSE )  (Jumpponen,  2001). DSE dicirikan  dengan  adanya  pigmen  gelap,  hifa bersekat (Zhan et al ., 2011), dan microscleretia
Mitigasi kekeringan pada perkebunan karet (hevea brasiliensis müll. Arg.) melalui pendekatan phytobiome
yang menginfeksi epidermis dan korteks akar tanaman  inang  secara  inter-  dan  intraseluler (Jumpponen, 2001; Mandyam & Jumpponen, 2005; Santos et al. , 2017; Vergara et al. , 2018).
Seperti halnya pada simbiosis antara mikoriza dan tanaman inangnya, simbiosis antara jamur DSE dengan  tanaman  inangnya  ini  juga dilaporkan dapat meningkatkan pertumbuhan tanaman inang melalui peningkatan serapan P (Majewska et  al. ,  2015;  Priyadharsini et  al. , 2012) dan air (Mandyam & Jumpponen, 2005; Porras-Alfaro et al. , 2008; Santos et al. , 2017) dari dalam tanah ke dalam jaringan tanaman inang.

## Kesimpulan
Dampak  dari  fenomena  El-Nino  adalah musim  kemarau  yang  berkepanjangan  di I n d o n e s i a   d a n   s e k i t a r n y a .   U n t u k meminimalisir  dampak  kekeringan  terhadap pertumbuhan  dan  hasil  tanaman  karet, diperlukan  langkah-langkah  mitigasi  dengan pendekatan phytobiome. Mitigasi  dengan pendekatan phytobiome dilakukan  secara komprehensif   baik  terhadap  tanaman, lingkungan  hidup  tanaman,  maupun organisme  yang  hidup  di  sekitar  tanaman tersebut.  Upaya  mitigasi  tersebut  misalnya dengan  penggunaan  klon-klon  unggul  tahan kering,  penggunaan root  trainer untuk memproduksi  bibit,  aplikasi  senyawa osmoregulator,  aplikasi  asam  humat,  irigasi, penggunaan  LCC  sebagai  mulsa,  pembuatan rorak, dan inokulasi jamur mikoriza atau DSE. Penelitian  tentang  upaya  mitigasi  tersebut pada  tanaman  karet  masih  tergolong  minim, sehingga  diperlukan  penelitian  lebih  lanjut agar  pertumbuhan  dan  produksi  karet  tetap stabil walaupun terjadi fenomena El-Nino.

## Daftar Pustaka
Achmad,  S.  R.,  &  Putra,  R.  C.  (2016). Pengelolaan  lengas  tanah  dan  laju pertumbuhan  tanaman  karet  belum menghasilkan  pada  musim  kemarau  dan penghujan. Warta Perkaretan, 35 (1), 1-10.
Al-Zalzelah, H. (2013). The effect of  container type  and  soil  substrates  on  growth  and establishment  of   selected  landscape  trees. cientific  Papers.  Series  B,  Horticulture,  57 , 255–260.
Arancon,  N.  Q.,  Lee,  S.,  Edwards,  C.  A.,  & Atiyeh,  R.  (2003).  Effects  of   humic  acids derived  from  cattle,  food  and  paperwaste vermicomposts  on  growth  of   greenhouse plants. Pedobiologia, 47 (5-6), 741-744.
Ardika, R., Cahyo, A. N., & Wijaya, T. (2011).
Wintering  and  yield  dynamics  on  various rubber clones and their relationship to soil water content. Indonesian Journal of  Natural Rubber Research, 29 (2), 102-109.
Ardika,  R.,  &  Herlinawati,  E.  (2014).
Alternative  of   rubber  planting  material supply  with  root  trainer  system. Warta Perkaretan, 33 (2), 73–78.
Arenas,  M.,  Vavrina,  C.  S.,  Cornell,  J.  A., Hanlon, E. A., & Hochmuth, G. J. (2002). Coir as an alternative to peat in media for tomato transplant production. HortScience, 37 (2), 309–312.
Atiyeh, R., Lee, S., Edwards, C. A., Arancon, N.  Q.,  &  Metzger,  J.  D.  (2002).  The influence  of   humic  acids  derived  from earthworm-processed  organic  wastes  on plant growth. Bioresour Technol, 84 (1), 7-14.
Bahari, Z. A., & Samsuddin, Z. (1984). Possible usage  of   photosynthetic  rates  and  drought resistance  in  early  selection  of   hevea : Compte-
Rendu Du Colloque.   Exploitation-Physiologie et  Amelioration  de  l'Hevea .  Diakses  dari Montpellier-France IRCA, CIRAD.
Basumatary,  N.,  Parkash,  V.,  Tamuli,  A.  K., Saikia,  A.  J.,  &  Teron,  R.  (2014). Arbuscular mycorrhizal inoculation affects g r ow t h   a n d   r h i z o s p h e r i c   nu t r i e n t availability in Hevea brasiliensis (Willd. ex A.  Juss.)  Mull.  Arg.  clones. International Journal of  Current Biotechnology, 2 (7), 14-21. Bonfante, P., & Genre, A. (2010). Mechanisms underlying  beneficial  plant–fungus interactions in mycorrhizal symbiosis. Nat C o m m u n ,   1 ( 4 ) ,   1 - 1 1 .   d o i : 1 0 . 1 0 3 8 /ncomms1046.
Bottomley,  W.  B.  (1917).  Some  effects  of o r g a n i c p r o m o t i o n   s u b s t a n c e s (auxinomones)  on  the  growth  of   Lemna minor  in  mineral  cultural  solutions. Proceedings  of   the  Royal  Society  of   London. Series  B,  Containing  Papers  of   a  Biological Character, 89 (621), 481–507.
Brownell, J. R., Nordstrom, G., Marihart, J., & Jorgensen, G. (1987). Crop responses from two new leonardite extracts. Science of  The Total Environment, 62 , 491-499.
Cahyo,  A.  N.,  Ardika,  R.,  Saputra,  J.,  & Wijaya,  T.  (2014).  Acceleration  on  the growth  of   rubber  planting  materials  by using  foliar  application  of   humic  acid. AGRIVITA  Journal  of   Agricultural  Science,
36 (2),  112-119.  doi:10.17503/Agrivita- 2014-36-2-p112-119.
Cahyo, A. N., Ardika, R., & Wijaya, T. (2011).
Water consumption and rubber production on  various  planting  space  arrangement system and their relationship with soil water content. Indonesian Journal of  Natural Rubber R e s e a r c h ,   2 9 ( 2 ) ,   1 1 0 - 1 1 7 . doi:10.22302/jpk.v29i2.243.
Cahyo,  A.  N.,  Sahuri,  Nugraha,  I.  S.,  &
Ardika,  R.  (2019).  Cocopeat  as  Soil Substitute  Media  for  Rubber  (Hevea brasiliensis  Müll.  Arg.)  Planting  Material. Journal of  Tropical Crop Science, 6 (1), 24-29. Cahyo, A. N., Saputra, J., Stevanus, C. T., & Sahuri.  (2016).  Penggunaan  root  trainer untuk  meningkatkan  pertumbuhan  bibit karet. Jurnal  Penelitian  Dan  Pengembangan P e r t a n i a n ,   3 5 ( 1 ) ,   1 7 – 2 4 . doi:10.21082/jp3.v35n1.2016.p17-24.
Carr, M. K. V. (2012). The water relations of rubber  (hevea  brasiliensis  ):  A  review.
Experimental  Agriculture,  48 (02),  176–193. doi:10.1017/S0014479711000901.
Chalker-Scott,  L.  (2007).  Impact  of   mulches on landscape plants and the environment-a review. Journal of  Environmental Horticulture,
5 (4), 239–249.
Chen, Y., & Aviad, T. (1990). Effects of  humic substances  on  plant  growth.  In  P. MacCarthy, C. E. Clapp, R. L. Malcolm, & P. R. Bloom (Eds.), Humic substances in soil and  crop  sciences:  Selected  readings Madison, WI: ASA and SSSA.
Chen, Y., De Nobili, M., & Aviad, T. (2004). Stimulatory effects of  humic substances on plant growth.  Soil  Organic  Matter  in  Sustainable Agriculture .  Boca  Raton,  Florida:  CRC Press.
Cochrane,  T.  T.,  &  Cochrane,  T.  A.  (2009a). Differences in the way potassium chloride and  sucrose  solutions  effect  osmotic potential  of   significance  to  stomata aperture  modulation. Plant  Physiology  and B i o c h e m i s t r y ,   4 7 ( 3 ) ,   2 0 5 – 2 0 9 . doi:10.1016/j.plaphy.2008.11.006.
Cochrane,  T.  T.,  &  Cochrane,  T.  A.  (2009b). The vital role of  potassium in the osmotic m e c h a n i s m   o f   s t o m a t a   a p e r t u r e modulation  and  its  link  with  potassium deficiency. Plant  signaling  &  behavior,  4 (3), 240–243. doi:10.4161/psb.4.3.7955.
Cordeiro,  F.  C.,  Santa-Catarina,  C.,  Silveira, V., & Souza, S. R. d. Humic acid effect on catalase  activity  and  the  generation  of reactive oxygen species in corn (zea mays). Biosci  Biotechnol  Biochem,  75 (1),  70–74. doi:10.1271/bbb.100553.
Devakumar, A. S., Rao, G. G., Rajagopal, R.,
Rao, P. S., George, M. J., Vijayakumar, K. R.,  &  Sethuraj,  M.  R.  (1988).  Studies  on soil-plant-atmosphere system in Hevea:  II. Seasonal  effects  on  water  relations  and yield. Indian  Journal  of   Natural  Rubber Research, 1 (2), 45–60.
Din, J., Khan, S. U., Ali, I., & Gurmani, A. R. (2011).  Physiological  and  agronomic response  of   canola  varieties  to  drought stress. The Journal of  Animal & Plant Sciences,
21 (1), 78-82.
Mitigasi kekeringan pada perkebunan karet (hevea brasiliensis müll. Arg.) melalui pendekatan phytobiome
Elmongy, M. S., Zhou, H., Cao, Y., Liu, B., & Xia, Y. (2018). The effect of  humic acid on e n d o g e n o u s   h o r m o n e   l e ve l s   a n d antioxidant enzyme activity during in vitro rooting  of   evergreen  azalea. Scientia H o r t i c u l t u r a e ,   2 2 7 ,   2 3 4 – 2 4 3 . doi:10.1016/j.scienta.2017.09.027.
Evans, M. R., & Stamps, R. H. (1996). Growth of   bedding  plants  in  sphagnum  peat  and coir  dustbased  substrates. Journal  of Environmental Horticulture, 14 , 187-190. Falqueto, A. R., da Silva Júnior, R. A., Gomes, M. T. G., Martins, J. P. R., Silva, D. M., & Partelli,  F.  L.  (2017).  Effects  of   drought stress on chlorophyll a fluorescence in two rubber  tree  clones. Scientia  Horticulturae,
2 2 4 ,   2 3 8 – 2 4 3 .   d o i : 1 0 . 1 0 1 6 / j.scienta.2017.06.019.
Fang,  Y.,  &  Xiong,  L.  (2015).  General mechanisms of  drought response and their a p p l i c a t i o n   i n   d r o u g h t   r e s i s t a n c e improvement  in  plants. Cellular  and Molecular  Life  Sciences,  72 (4),  673–689. doi:10.1007/s00018-014-1767-0.
Fernández-Escobar,  R.,  Benlloch,  M.,
Barranco,  D.,  Duefias,  A.,  Fernández- Escobar,  R.  M.,  Benlloch,  D.,  .  .  . GutérrezGañán, J. A. (1996). Response of olive  trees  to  folk  application  of   humic substances  extracted  from  leonardite. Scientia Horticulturae, 66 (191-200).
Fikret, Y., Manar, T., Ş ebnem, E., Ş ebnem, K., & Özlem,  U. (2013). Sod, cat, gr  and apx enzyme  activities  in  callus  tissues  of susceptible  and  tolerant  eggplant  varieties under  salt  stress. Research  Journal  of Biotechnology, 8 (11), 45–51.
Gardner, F. P., Pearce, R. B., & Mitchel, R. L. (1991). Physiology  of   Crop  Plant  (Fisiologi Tanaman  Budidaya,  translation  H.  Susilo) . Jakarta, Indonesia: UI Press.
George, S., John, J., Joseph, P., Philip, A., &
Punnoose,  K.  I.  (2005).  Impact  of conservation  pits  on  growth  and  yield  of mature  rubber. Journal  of   Rubber  Research,
10 (1), 44-53.
Hamim,  H.,  Violita,  V.,  Triadiati,  T.,  & Miftahudin,  M.  (2017).  Oxidative  stress and photosynthesis reduction of  cultivated (glycine  max  l.)  and  wild  soybean  (g. Tomentella  l.)  exposed  to  drought  and paraquat. Asian  Journal  of   Plant  Sciences,
16 (2), 65-77. doi:10.3923/ajps.2017.65.77. Herrmann,  L.,  Bräu,  L.,  Robin,  A.,  Robain, H.,  Wiriyakitnateekul,  W.,  &  Lesueur,  D. (2015).  High  colonization  by  native arbuscular  mycorrhizal  fungi  (AMF)  of rubber trees in small-holder plantations on low  fertility  soils  in  North  East  Thailand. Archives of  Agronomy and Soil Science, 62 (7), 1 0 4 1 – 1 0 4 8 .
doi:10.1080/03650340.2015.1110238.
Herrmann, L., Lesueur, D., Bräu, L., Davison, J.,  Jairus,  T.,  Robain,  H.,  .  .  .  Öpik,  M. (2016).  Diversity  of   root-associated a r b u s c u l a r   m y c o r r h i z a l   f u n g a l communities  in  a  rubber  tree  plantation chronosequence  in  Northeast  Thailand. M y c o r r h i z a ,   2 6 ( 8 ) ,   8 6 3 – 8 7 7 . doi:10.1007/s00572-016-0720-5.
Hutasoit, J., Hanum, C., & Ginting, J. (2015).
Kadar n tanah dan daun serta klorofil karet umur sembilan tahun dengan penempatan mulsa  vertikal  pada  rorak. Jurnal  Online Agroekoteknologi, 3 (4), 1266-1270.
Ikram,  A.,  Mahmud,  A.  W.,  Ghani,  M.  N., Ibrahim,  M.  T.,  &  Zainal,  A.  B.  (1992). Field  nursery  inoculation  of   Hevea brasiliensis Muell. Arg. seedling rootstock with  vesicular-arbuscular  mycorrhizal (VAM) fungi. Plant and soil, 145 , 231–236. Ingram, D. L., Henley, R. W., & Yeager, T. H. (1993). Growth media for container grown ornamental  plants. University  of   Florida Bulletin, 241 , 1-16.
Inonu, I., Budianta, D., Umar, M., Yakup, & Wiralag,  A.  Y.  A.  (2011).  ubber  clone response  on  irrigation  frequency  in  sand tailing medium post thin mining. Journal of Agronomy Indonesia, 39 (2), 131-136.
Jafari,  M.,  Haghighi,  J.  A.  P.,  &  Zare,  H.
(2012).  Mulching  impact  on  plant  growth and  production  of   rainfed  fig  orchards under drought conditions. Journal of  Food, Agriculture & Environment, 10 (1), 428–433.
Jessy,  M.  D.,  Mathew,  M.,  Jacob,  S.,  &
Punnoose,  K.  I.  (1994).  Comparative evaluation  of   basin  and  drip  irrigation systems  of   irrigation  in  rubber. Indian Journal Natural Rubber Research, 7 (1), 51–56. Jumpponen,  A.  (2001).  Dark  septate endophytes  -  are  they  mycorrhizal? M y c o r r h i z a ,   1 1 ( 4 ) ,   2 0 7 – 2 1 1 . doi:10.1007/s005720100112.
Karyudi.  (2001).  Rubber  (Hevea  brasiliensis) osmoregulation  as  the  respons  to  water stress I : Variation between recommended, expected,  and  germplasm. Indonesian Journal  of   Natural  Rubber  Research,  19 (1-3),
1–17.
Khanna-Chopra,  R.  M.,  Yasudev,  S., Maheswari,  M.,  Srivastava,  A.,  & B a h u k h a n d i ,   D .   ( 1 9 9 4 ) .   K + , Osmoregulation  and  Drought  Tolerance  - An Overview. Proceeding of  Indian National Science Academy, 61 (1), 51-56.
Kholová,  J.,  Hash,  C.  T.,  Ko č ová,  M.,  & Vadez, V. (2011). Does a terminal drought tolerance QTL contribute to differences in R O S   s c a v e n g i n g   e n z y m e s   a n d photosynthetic  pigments  in  pearl  millet exposed  to  drought? Environmental  and Experimental  Botany,,  71 (1),  99–106. doi:10.1016/j.envexpbot.2010.11.001.
Lawlor, D. W. (2013). Genetic engineering to improve plant performance under drought: physiological  evaluation  of   achievements, limitations,  and  possibilities. Journal  of Experimental Botany, 64 (1), 83–108.
Leach, J. E., Triplett, L. R., Argueso, C. T., & Trivedi,  P.  (2017).  Communication  in  the Phytobiome. Cell,,  169 (4),  587-596. doi:10.1016/j.cell.2017.04.025.
Leclercq,  J.,  Martin,  F.,  Sanier,  C.,  Clément- Vidal,  A.,  Fabre,  D.,  Oliver,  G.,  .  .  . Montoro,  P.  (2012).  Over-expression  of   a cytosolic isoform of  the HbCuZnSOD gene in Hevea brasiliensis changes its response to a water deficit. Plant Molecular Biology, 80 (3), 255–272. doi:10.1007/s11103-012-9942-x. Lucas, W. J. (1987). Functional aspects of  cells in root apices. In P. J. Gregory, J. V. Lake, & A.  Rose  (Eds.), Root  Development  and Functions (pp.  123-136).  Cambridge, England: Cambridge University Press.
Luke, L. P., Mohamed Sathik, M. B., Thomas,
M.,  Kuruvilla,  L.,  Sumesh,  K.  V.,  & Annamalainathan, K. (2015). Quantitative expression  analysis  of   drought  responsive genes in clones of  Hevea with varying levels of   drought  tolerance. Physiology  and Molecular Biology of  Plants, 21 (2), 179–186. doi:10.1007/s12298-015-0288-0.
Luo,  L.  J.  (2010).  Breeding  for  water-saving and  drought-resistance  rice  (WDR)  in China. Journal  of   Experimental  Botany,
6 1 ( 1 3 ) , 3 5 0 9 – 3 5 1 7 . doi:10.1093/jxb/erq185.
Majewska, M. L., B ł aszkowski, J., Nobis, M., Rola, K., Nobis, A., Ł akomiec, D., .
.  .  Zubek,  S.  (2015).  Root-inhabiting fungi in alien plant species in relation to invasion  status  and  soil  chemical properties. Symbiosis,  65 (3),  101-115. doi:10.1007/s13199-015-0324-4.
Mak,  S.,  Chinsathit,  S.,  Pookpakdi,  A.,  & Kasemsap, P. (2008). The effect of  fertilizer and irrigation on yield and quality of  rubber (hevea  brasiliensis)  grown  in  chanthaburi province  of   Thailand. Kasetsart  Journal (Natural Science), 42 , 226–237.
Mandyam,  K.,  &  Jumpponen,  A.  (2005). Seeking  the  elusive  function  of   the  root- colonising  dark  septate  endophytic  fungi. S t u d i e s   i n   M y c o l o g y,   5 3 ,   1 7 3 – 1 8 9 . doi:10.3114/sim.53.1.173.
Mitigasi kekeringan pada perkebunan karet (hevea brasiliensis müll. Arg.) melalui pendekatan phytobiome
Moghadam, H. R. T. (2015). Humic acid as an ecological  pathway  to  protect  corn  plants against  oxidative  stress. Biological  Forum  – An International Journal, 7 (1), 1704–1709. Mullan, G. D., & White, P. J. (2001). Seedling Quality: Making informed choices . Wheatbelt,
Australia: Bushcare and the Department of Conservation and Land Management. Murtilaksono,  K.,  Siregar,  H.  H.,  & Darmosarkoro,  W.  (2007).  Water  balance model  in  oil  palm  plantation. Jurnal Penelitian Kelapa Sawit, 15 (1), 21-35.
Muscolo,  A.,  Bovalo,  F.,  Gionfriddo,  F.,  & Nardi, S. (1999). Earthworm humic matter produces  auxin-like  effects  on  Daucus carota cell growth and nitrate metabolism. Soil Biology and Biochemistry, 31 , 1303–1311. Muscolo, A., Cutrupi, S., & Nardi, S. (1998).
IAA  detection  in  humic  substances. Soil Biology  and  Biochemistry,  30 (8/9),  1199- 1201.
Muthana, K. D., Meena, G. L., Bhatia, N. S., &
Bhatia, O. P. (1984). Root system of  desert tree species. My Forest, 3 , 27-36.
Nabayi,  A.,  Teh,  C.  B.  S.,  Husni,  M.  H.  A.,
Jaafar,  A.  H.,  &  Isnar,  M.  S.  (2016).
Comparison of  three irrigation systems for the  bx-1  system  for  nursery  seedlings. Malaysian Journal of  Soil Science, 20 , 19-36.
Nardi,  S.,  Pizzeghello,  D.,  Muscolo,  A.,  & Vianello, A. (2002). Physiological effects of humic  substances  on  higher  plants. Soil Biology and Biochemistry, 34 (11), 1527–1536. Nazari, F., Faarahmand, H., Kosh-Khui, M.,
&  Salehi,  H.  (2011).  Effects  of   coir  as component  of   potting  media  on  growth, flowering a physiological characteristics of hyacinth  (Hyacinthus  orientalis  L.  cv. Sonbol-e-Irani). International  Journal  of Agriculture and Food Science, 1 (2), 34-38.
Noeralam,  A.  S.,  Arsyad,  S.,  &  Iswandi.
(2003).  Teknik  pengendalian  aliran permukaan  yang  efektif   pada  usaha  tani lahan  kering  belerang. Jurnal  Tanah  dan Lingkungan, 5 (1), 3-16.
Nugroho,  P.  A.,  Istianto,  Siagian,  N.,  & Karyudi.  (2006,  4-5  September). Potensi (Mucuna bracteata) dalam Pengembalian Hara pada  Areal  Karet  TBM. Tulisan  disajikan pada  okakar ya  Nasional  Budidaya Tanaman Karet, Medan.
Nugroho,  P.  A.  (2017).  Pembangunan  rorak dan  aplikasi  tankos  di  areal  perkebunan karet. Inovasi, 14 (2), 155–161.
Perry, T. O. (1982). The ecology of  tree roots and  practical  significance. Journal  of Arboriculture, 8 (8), 197-211.
Porras-Alfaro, A., Herrera, J., Sinsabaugh, R. L., Odenbach, K. J., Lowrey, T., & Natvig, D. O. (2008). Novel root fungal consortium associated  with  a  dominant  desert  grass. Applied  and  Environmental  Microbiology, 7 4 ( 9 ) ,   2 8 0 5 – 2 8 1 3 .   d o i : 1 0 . 1 1 2 8 / AEM.02769-07.
Priyadharsini, P., Pandey, R., & Muthukumar, T. (2012). Arbuscular mycorrhizal and dark septate  fungal  associations  in  shallot (Allium  cepa  L.  var.  aggregatum)  under conventional  agriculture. Acta  Botanica C r o a t i c a ,   7 1 ( 1 ) ,   1 5 9 – 1 7 5 . doi:10.2478/v10184-011-0058-1.
Putranto,  R.-A.,  Herlinawati,  E.,  Rio,  M., Leclercq, J., Piyatrakul, P., Gohet, E., . . . Montoro,  P.  (2015).  Involvement  of ethylene  in  the  latex  metabolism  and tapping panel dryness of  hevea brasiliensis. International  Journal  of   Molecular  Sciences, 1 6 ( 8 ) ,   1 7 8 8 5 – 1 7 9 0 8 .   d o i : 1 0 . 3 3 9 0 / ijms160817885.
Qin,  J.,  Wang,  X.,  Hu,  F.,  &  Li,  H.  (2010). Growth  and  physiological  performance responses  to  drought  stress  under  non- flooded  rice  cultivation  with  straw mulching. Plant, Soil and Environment, 56 (2),
51–59. doi:10.17221/157/2009-PSE.
Rhodes,  D.,  &  Hanson,  A.  D.  (1993). Quaternary  ammonium  and  tertiary sulfonium  compounds  in  higher  plants. Annual Review of  Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 44 , 357-384.
Ro ż ek, K., Rola, K., B ł aszkowski, J., & Zubek, S.  (2018).  Associations  of   root-inhabiting fungi  with  herbaceous  plant  species  of temperate forests in relation to soil chemical properties. Science of  The Total Environment,
649 ,  1573–1579.  doi:10.1016/j.scitotenv. 2018.08.350.
Sahar,  A.,  &  Guci,  H.  (2016).  Effect  of vesicular  arbuscular  mycorrhiza  and organic matter on growth of  rubber stump ( H eve a   b r a s i l i e n s i s   M u e l l .   A r g. ) .
International  Journal  of   Agronomy  and Agricultural Research, 9 (4), 31–35.
Samarappuli,  L.  (1992).  Some  agronomic practices  to  overcome  moisture  stress  in Hevea  brasiliensis . Indian  Journal  of   Natural Rubber Research, 5 (1&2), 127–132.
Santos, S. G., dos Silva, P. R. A., da Garcia, A.
C., Zilli, J. É., & Berbara, R. L. L. (2017). Dark septate endophyte decreases stress on rice plants. Brazilian Journal of  Microbiology,
4 8 ( 2 ) , 3 3 3 - 3 4 1 . doi:10.1016/j.bjm.2016.09.018.
Saputra,  J.,  Stevanus,  C.  T.,  &  Cahyo,  A.  N. (2016). The Effect of  El-Nino 2015 on The Rubber  Plant  (Hevea  brasiliensis)  Growth in  The  Experimental  Field  Sembawa Research  Centre. Widyariset,  2 (1),  37–46. doi:10.14203/widyariset.2.1.2016.37-46.
Shao, H.-B., Chu, L.-Y., Jaleel, C. A., & Zhao, C.-X.  (2008).  Water-deficit  stress-induced anatomical  changes  in  higher  plants. Comptes  Rendus  Biologies,  331 (3),  215–225. doi:10.1016/j.crvi.2008.01.002.
Siagian, N. (2001). Potency and Utilization of
Mucuna bracteata as legume cover crop in rubber plantation. Warta Perkaretan, 20 (1-3), 32–43.
Singh, V. P., Singh, S., Prasad, S. M., & Parihar, P. (2017). Uv-b radiation: From environmental stressor  to  regulator  of   plant  growth .  Oxford, UK: Wiley-Blackwell.
Soman,  T.  A.,  &  Saraswathyamma,  C.  K.
(2005, 6-8 November). Root trainer planting technique  for  Hevea  and  the  initial  field performance  of   root  trainer  plant. Tulisan disajikan  pada  International  Natural Rubber Conference, Cochin.
Sosa-Rodriguez,  T.,  Dupré  de  Boulois,  H.,
Granet,  F.,  Gaurel,  S.,  Melgarejo,  L.-M., Carron,  M.-P.,  &  Declerck,  S.  (2013).  In vitro  mycorrhization  of   the  rubber  tree Hevea brasiliensis Müll Arg. In Vitro Cellular & Developmental  Biology  -  Plant,  49 (2), 207–215. doi:10.1007/s11627-012-9485-5.
Sukmana,  S.,  Suwardjo,  H.,  Abdurachman, A., & Dai, J. (1986). Prospect of  Flemingia congesta  Roxb.  for  reclamation  and conservation  of   volcanic  skeletal  soils. Pemberitaan  Penelitian  Tanah  dan  Pupuk,  4 , 50–54.
Susetyo, I., Nugroho, P. A., & Stevanus, C. T. (2017,  18-20  Oktober). Potency  and management  of   organic  materials  in  rubber plantation  in  Indonesia. Tulisan  disajikan pada  International  Rubber  Conference  & IRRDB Annual Meetings 2017, Jakarta.
Symanczik,  S.,  Courty,  P.-E.,  Boller,  T., Wiemken, A., & Al-Yahya'ei, M. N. (2015). I m p a c t   o f   wa t e r   r e g i m e s   o n   a n experimental  community  of   four  desert arbuscular  mycorrhizal  fungal  (AMF) species, as affected by the introduction of  a non-native AMF species. Mycorrhiza, 25 (8), 639–647. doi:10.1007/s00572-015-0638-3. Taiz, L., & Zeiger, E. (2002). Plant physiology (3rd  ed) .  Sunderland,  U.K  Sinauer Associates Inc.
Treder, J. (2008). The effects of  cocopeat and fertilization on the growth and flowering of oriental  lily  “star  gazer.”. Journal  of   Fruit and Ornamental Plant Research, 16 , 361–370. Trevisan, S., Botton, A., Vaccaro, S., Vezzaro, A.,  Quaggioti,  S.,  &  Nardi,  S.  (2011). Humic  substances  affect  Arabidopsis physiology  by  altering  the  expression  of genes  involved  in  primary  metabolism, growth and development. Environmental and Experimental Botany, 74 , 44-45.
Turner,  N.  C.  (1986).  Crop  water  deficits:  A decade  of   progress. Advances  in  Agronomy, 39 , 1-45.
Mitigasi kekeringan pada perkebunan karet (hevea brasiliensis müll. Arg.) melalui pendekatan phytobiome
Ulfa, M., Martin, E., & Waluyo, E. A. (2005, 7 Desember  ). Pemanfaatan  mikoriza  dalam meningkatkan  kualitas  bibit  jenis  prioritas Sumatera  Selatan. Tulisan  disajikan  pada Seminar  Hasil-Hasil  Penelitian  Hutan Tanaman, Banyuasin.
Varanini,  Z.,  &  Pinton,  R.  (1995).  Humic substances and plant nutrition. In U. Lüttge (Ed.), Progress  in  Botany Berlin,  Germany: Springer.
Vergara,  C.,  Araujo,  K.  E.  C.,  Alves,  L.  S., Souza, S. R., de, S., L. A , Santa-Catarina, C., . . . Zilli, J. É. (2018). Contribution of dark septate fungi to the nutrient uptake and growth  of   rice  plants. Brazilian  Journal  of M i c r o b i o l o g y ,   4 9 ( 1 ) ,   6 7 - 7 8 . doi:10.1016/j.bjm.2017.04.010.
V i j a y a k u m a r,   K .   R . ,   D e y,   S.   K . , Chandrasekhar,  T.  R.,  Devakumar,  A.  S., Mohankrishna, T., Rao, P. S., & Sethuraj, M.  R.  (1998).  Irrigation  requirement  of rubber  trees  Hevea  brasiliensis  in  the subhumid  tropics. Agricultural  Water M a n a g e m e n t ,   3 5 ( 3 ) ,   2 4 5 - 2 5 9 . doi:10.1016/S0378-3774(97)00019-X.
Wang, L. (2014). Physiological and molecular responses  to  drought  stress  in  rubber  tree (Hevea  brasiliensis  Muell.  Arg.). Plant Physiology  and  Biochemistry,  83 ,  243–249. doi:10.1016/j.plaphy.2014.08.012.
Waseem, M., Ali, A., Tahir, M., Nadeem, M. A., Ayub, M., Tanveer, A., . . . Hussain, M.
(2011). Mechanism of  drought tolerance in plant and its management through different methods. Continental Journal of  Agricultural Science, 5 (1), 10-25. Wijaya, T., Cahyo, A. N., & Ardika, R. (2011). Anticipation  and  effort  to  cope  with  la  nina climate anomaly in rubber plantation. Tulisan disajikan  pada  Sriwijaya  University Agricutural Department Seminar: Role of Science  and  Technology  on  Climate Change  Anticipation  on  The  Perspective Sustainable Agriculture. , Palembang.
Wijaya,  T.,  &  Lasminingsih,  M.  (1994). Respons of  some rubber clones on drought.
Warta Perkaretan, 12 (3), 1–4.
Xue, L., Wang, L., Anjum, S. A., Saleem, M. F.,  Saeed,  A.,  &  Bilal,  M.  F.  (2013).  Gas exchange  and  morpho-physiological response  of   soybean  to  straw  mulching under drought conditions. African Journal of Biotechnology, 12 (18), 2360–2365.
Yang,  C.,  Ellouze,  W.,  Navarro-Borrell,  A., Taheri,  A.  E.,  Klabi,  R.,  Dai,  M.,  .  .  . Hamel, C. (2014). Mycorrhizal Fungi: Use in  Sustainable  Agriculture  and  Land Restoration. In M. Solaiman, L. K. Abbott,
&  A.  Varma  (Eds.), Management  of   the Arb uscular  Mycor rhizal  Symbiosis  in Sustainable  Crop  Production .  Berlin, G e r m a n y :   S p r i n g e r - Ve r l a g   B e r l i n Heidelberg.
Yu, Y., & Assmann, S. M. (2016). The effect of NaCl on stomatal opening in Arabidopsis wild  type  and  agb1  heterotrimeric  G- protein  mutant  plants. Plant  signaling  & behavior, 11 (2), 1-3.
Zhan,  F.,  He,  Y.,  Zu,  Y.,  Li,  T.,  &  Zhao,  Z. (2011).  Characterization  of   melanin isolated  from  a  dark  septate  endophyte (DSE), Exophiala pisciphila . World Journal of Microbiology  and  Biotechnology,  27 (10). doi:10.1007/s11274-011-0712-8.