Abstrak—Pengaruh  bibit  asal,  umur,  dan  ukuran  umbi terhadap  kadar  glukomannan  dan  kadar  oksalat  pada  umbi porang  (Amorphophallus  onchophyllus)  telah  dilakukan. Analisa  kadar  glukomannan  dilakukan  dengan  metode gravimetri.  Bibit  asal  berpengaruh  secara  signifikan  terhadap kadar  glukomannan  dan  kadar  oksalat  dalam  umbi  porang. Umbi  porang  dengan  bibit  kathak  memiliki  kandungan glukomannan  lebih  tinggi  dari  bibit  spora  dengan  kadar glukomannan  sebesar  51,40–54,41%  sedangkan  bibit  spora memiliki kadar glukomannan sebesar 43,86–45,84%. Umur dan ukuran  umbi  porang  tidak  memberikan  pengaruh  secara signifikan  terhadap  kandungan  glukomannan.  Analisa  kadar oksalat  dilakukan  dengan  metode  titrasi  permanganometri. Kadar  oksalat  pada  bibit  kathak  lebih  tinggi  dari  konsentrasi asam  oksalat  pada  umbi  spora.  Umbi  porang  dengan  bibit kathak memiliki kadar oksalat sebesar 524,16-1039,5ppm. umbi porang  dengan  bibit  spora  memiliki  kadar  oksalat  sebesar 483,84-635,04ppm. Bibit asal, umur, dan ukuran porang tidak berpengaruh  secara  signifikan  terhadap  kadar  oksalat  dalam umbi porang.
Kata  Kunci—Kadar  Glukomannan,  Kadar  Oksalat,  Umbi Porang (Amorphophallus Onchophyllus).

## I. PENDAHULUAN
ANAMAN  porang  ( Amorphophallus  onchophyllus ) merupakan tanaman umbi-umbian yang banyak tumbuh di  hutan  hujan  tropis  khususnya  di  Indonesia.  Tanaman  ini biasanya  tumbuh  secara  liar  dibawah  naungan.  Klasifikasi tanaman porang termasuk kedalam famili Araceae yang sama dengan tanaman konjac ( Amorphophallus konjac ). Tanaman ini  memiliki  siklus  hidup  yang  berbeda  dari  tanaman  pada umumnya.  Tanaman  porang  memiliki  dua  siklus  hidup  dan satu fase dorman.
Dua  siklus  hidup  pada  tanaman  porang  adalah  siklus vegetatif  dimana  tanaman  porang  berkembang  biak  secara aseksual dengan bubil atau kathak yang tumbuh disela daun dan  siklus  generatif  dimana  tanaman  porang  berkembang biak secara seksual dengan spora yang terdapat pada bunga [1]. Tanaman porang memasuki siklus vegetatif pada musim hujan dan masuk kedalam fase dorman pada musim kemarau. Tanaman porang yang memasuki fase dorman memiliki umur 2  musim.  Setelah  melewati  fase  dorman  pertama,  tanaman porang dapat memasuki siklus vegetatif atau siklus generatif setelah  masuk  ke  musim  hujan.  Tanaman  porang  kembali menjadi fase dorman pada musim kemarau yang menandakan umbi porang menjadi umur 3 musim [2].
Umbi porang memiliki potensi sebagai sumber glukomannan  karena  kandungan  glukomannannya  yang tinggi [3]. Umbi porang memiliki kadar glukomannan yang
cukup tinggi yaitu sekitar 65% yang membuat umbi porang lebih  unggul  dari  spesies  lain  dalam  genus  yang  sama  [4]. Glukomannan sendiri merupakan senyawa karbohidrat yang termasuk  dalam  polisakarida  mannan.  Polisakarida  ini berfungsi  sebagai  hemiselulosa  yang  digunakan  sebagai cadangan  karbohidrat  non  pati  pada  dinding  sel  tanaman. Tanaman porang menyimpan senyawa ini pada umbi ketika memasuki  fase  dorman  di  m  usim  kemarau.  Senyawa glukomannan  memiliki  potensi  sebagai  alternatif  sumber pangan  di  Indonesia  [2].  Glukomannan  banyak  digunakan pada  industri  makanan,  kesehatan,  kosmetik,  dan  industri lainnya. Senyawa ini banyak digunakan karena bagus untuk program  diet,  memiliki  nilai  kolesterol  yang  rendah,  dapat mencegah penyakit  jantung, dan  mengurangi  tekanan  darah tinggi. Senyawa    ini juga  telah banyak digunakan di pabrik sebagai salah satu bahan tambahan dalam pembuatan kertas, tekstil, karet, cat, kulit sintetis, plastik, film, lem, pemurnian mineral, dan pemurnian air [5].
Masyarakat  Indonesia  tidak  mengkonsumsi  umbi  porang secara  langsung.  Hal  tersebut  disebabkan  oleh  kandungan oksalat dalam bentuk asam oksalat dan kalsium oksalat yang terkandung dalam umbi porang dapat menyebabkan rasa gatal dan terbakar ketika dikonsumsi. Kalsium oksalat merupakan salah satu penyebab utama penyakit batu ginjal [6]. Menurut Knudsen, kadar aman kalsium oksalat yang dapat dikonsumsi oleh tubuh dalam sehari adalah tidak lebih dari 1,25 g kalsium oksalat perhari selama enam minggu berturut-turut [7]. Umbi

## Pengaruh Bibit Asal, Umur, dan Ukuran Umbi Porang terhadap Kadar Glukomannan dan Oksalat dalam Umbi Porang
Ismail Azizi dan Fredy Kurniawan Departemen Kimia, Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS) e-mail : fredy@chem.its.ac.id
T
Tabel 1.
Variasi umbi porang berdasarkan bibit asal, umur, dan ukuran Variasi Umbi Porang Nama Sampel Bibit kathak, umur 2 musim, ukuran kecil K2A Bibit kathak, umur 2 musim, ukuran besar K2B Bibit kathak, umur 3 musim, ukuran kecil K3A Bibit kathak, umur 3 musim, ukuran besar K3B Bibit spora, umur 2 musim, ukuran kecil SP2A Bibit spora, umur 2 musim, ukuran besar SP2B Bibit spora, umur 3 musim, ukuran kecil SP3A Bibit spora, umur 3 musim, ukuran besar SP3B Tabel 2.
Rata-rata kadar glukomannan dalam 1 gram tepung porang
Sampel Rata-rata Kadar Glukomanan Tanpa Pencucian Dengan Pencucian K2A 34,41% 52,98% K2B 37,33% 51,40% K3A 42,41% 54,51% K3B 41,42% 54,19% SP2A 36,91% 44,06% SP2B 37,98% 43,86% SP3A 30,97% 45,84% SP3B 38,53% 44,23%
porang  memerlukan  perlakuan  terlebih  dahulu  untuk  dapat dikonsumsi [4].
Menurut Ulfa dan Nafi’ah, yield rendemen glukomannan yang  didapatkan  meningkat  seiring  dengan  berkurangnya kadar oksalat [8]. Kadar glukomannan dan asam oksalat pada umbi  porang  yang  ditanam  dengan  bibit  kathak  dan  bibit spora belum pernah diteliti sebelumnya. Penelitian mengenai pengaruh ukuran umbi porang terhadap kadar glukomannan dan  asam  oksalat  juga  belum  pernah  diteliti  sebelumnya. Penelitian ini mempelajari pengaruh dari bibit asal, umur, dan ukuran  umbi  terhadap  kandungan  glukomannan  dan  asam oksalat dalam umbi porang.

## II. URAIAN PENEL ITIAN

## A. Alat dan Bahan
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini antara lain adalah hotplate ,  sentrifus, miller ,  timbangan  analitik,  gelas beker  300  mL,  gelas  volume  100  mL,  labu  ukur  500  mL, erlenmeyer 250 mL, pipet ukur 10 mL, pipet tetes, buret 50 mL,  kertas sari    ng,  kaca  arloji, magnetic  stirrer ,  pengaduk besi,  pengaduk  kaca,  corong,  dan  tabung Falcon . A Umbi  Porang  ( Amorphophallus  onchophyllus )  digunakan sebagai raw  material dengan  variasi  bibit  asal,  musim,  dan ukuran.  Umbi  porang  yang  digunakan  diperoleh  dari kelompok  tani  Desa  Kepel,  Madiun,  Jawa  Timur.  Variasi umbi  porang  yang  digunakan  sebagai  sampel  analisa  dan nama sampel dapat dilihat pada Tabel 1. Bahan-bahan yang digunakan  dalam  penelitian  ini  antara  lain  adalah  HCl (Merck, 37%), H 2 SO 4 pekat (Merck, 97%), aqua DM, garam alumuniun  sulfat  Al 2 (SO 4 ) 3 ,  Etanol (SIP,  96%),  dan  kalium permanganat KMnO 4 (SIP, 99%).
B. Pengolahan Umbi Porang Menjadi Tepung Porang
Umbi porang mula-mula dibersihkan dari kotoran dengan air  mengalir  hingga  bersih.  Umbi  porang  yang  telah
dibersihkan  kemudian  dikupas  kulitnya.  umbi  porang  yang sudah  dikupas  kemudian  dipotong  menjadi chips porang dengan  ketebalan  3-4  mm. Chips porang  kemudian  di  cuci dengan  aqua  DM  dengan  perbandingan  berat  chips  (g)  dan volume (mL) aqua DM 1:1 (berat:volume) selama 60 menit. Sebagian chips porang tidak dicuci untuk mengetahui kadar glukomannan  dan  kadar  oksalat  pada chips porang  tanpa pencucian. Chips porang  yang  telah  dicuci  kemudian dikeringkan didalam oven dengan suhu 50 o C selama 12 jam hingga  kering. Chips porang  kering  kemudian  digiling dengan miller hingga halus menjadi tepung porang.

## C. Analisa Glukomannan dengan Metode Gravimetri
Analisa  kandungan  glukomannan  pada  umbi  porang dilakukan  dengan  metode  gravimetri.  Tepung  porang sebanyak  1  g  dan  Alumunium  Sulfat  sebanyak  0,1  g dilarutkan kedalam aqua DM dengan suhu 60-70 o C. Larutan diaduk dengan magnetic stirrer sambil dijaga suhunya selama 35  menit.  Larutan  yang  didapatkan  kemudian  di  sentrifuse dengan kecepatan 4000 rpm selama 1 jam. Larutan yang telah di  sentifuse  kemudian  diambil  supernatannya.  Supernatan yang  diambil  ditambahkan  etanol  96%  sebanayak  100  mL hingga terbentuk endapan glukomannan. Endapan glukomannan difiltrasi dengan kertas saring lalu dikeringkan dengan oven pada suhu 55 o C hingga kering. Kemudian kertas saring ditimbang untuk mengetahui kadar glukomannan yang didapatkan.

## D. Pembuatan Larutan Sampel Oksalat
Analisa kadar oksalat pada umbi porang dilakukan dengan metode titrasi permanganometri. Tepung porang sebanyak 1 g dilarutkan kedalam larutan mendidih 190 mL aqua DM dan HCl  6M  10  mL.  Larutan  diaduk  dengan magnetic  stirrer dalam keadaan mendidih selama 1  jam. Larutan sampel yang diperoleh  kemudian  di  filtrasi  dengan  kertas  saring  untuk menghilangkan  sisa  tepung  yang  tidak  larut.  Larutan  yang telah difiltrasi kemudian diencerkan kedalam labu ukur 500
(a)
(b)
Gambar 1. (a) Umbi porang setelah dilakukan pengupasan, (b) Tepung umbi porang.
mL dengan menggunakan aqua DM hingga tanda batas.
E. Standarisasi  Larutan  KMnO 4 dengan  Larutan  Standar Asam Oksalat
Standarisasi  KMnO 4 dilakukan  dengan  larutan  standar asam oksalat 0,05 M.  Larutan  standar  asam  oksalat 0,05 M sebanyak  20  mL  dimasukan  kedalam  erlenmeyer  250  mL. Larutan H 2 SO 4 4N sebanyak 20 mL kemudian ditambahkan kedalam  erlenmeyer  berisi  larutan  standar  asam  oksalat. Erlenmeyer  dipanaskan  diatas hotplate hingga  larutan bersuhu 70 o C.
Larutan standar kemudian di titrasi dengan larutan KMnO 4 hingga  larutan  mencapai  titik  kesetimbangan.  Titik kesetimbangan  tercapai  setelah  larutan  berubah  dari  tidak berwarna menjadi berwarna merah muda.
F. Analisa  Larutan  Sampel  Oksalat  dengan  Kalium Permanganat
Larutan  sampel  diuji  dengan  titrasi  permanganometri. Larutan KMnO 4 digunakan sebagai titran dan larutan sampel sebagai  titrat.  Larutan  sampel  mula-mula  diambil  sebanyak 50 mL dan dimasukan kedalam erlenmeyer 250 mL. Larutan sampel  kemudian ditambahkan larutan H 2 SO 4 4N sebanyak 10 mL. Larutan kemudian dipanaskan diatas hotplate hingga bersuhu  70 o C.  Larutan  kemudian  dititrasi  dengan  larutan KMnO 4 hingga  larutan  mencapai  titik  kesetimbangan.  Titik kesetimbangan  tercapai  setelah  larutan  berubah  dari  tidak berwarna menjadi berwarna merah muda.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN
Penelitian ini menggunakan delapan sampel umbi porang dengan variabel bibit asal, umur, dan ukuran yang berbeda. Variabel bibit asal diperoleh dari 2 macam umbi porang yaitu umbi  porang  dengan  bibit  asal  kathak  dan  umbi  porang dengan  bibit  asal  spora.  Bibit  kathak  merupakan  bibit perkembangbiakan  tanaman  porang  secara  generatif,
sedangkan  bibit  spora  merupakan  bibit  perkembangbiakan tanaman porang secara vegetatif.
Variabel  umur  digunakan  untuk  membandingkan  umbi porang  dengan  umur  2  musim  dan  3  musim.  Umbi  porang dipanen  pada  saat  tanaman  masuk  kedalam  fase  dormnasi. Umbi porang dengan umur 2 musim adalah umbi porang yang baru masuk ke fase dormansi pertama kali. Sedangkan umbi porang  dengan  umur  3  musim  adalah  umbi  porang  yang masuk ke fase dormansi kedua kali.
Pengaruh ukuran  umbi porang  yaitu kecil dan  besar  juga diteliti  pada  penelitian  ini.  Ukuran  kecil  yang  dimaksud adalah umbi porang dengan berat dibawah 300 g dan dibawah 500 g untuk umbi porang dengan umur 2 musim dan 3 musim secara berurutan. Ukuran besar yang dimaksud adalah umbi porang dengan berat diatas 300 g dan diatas 500 g untuk umbi porang dengan umur 2 musim dan 3 musim secara berurutan. Pada penelitian ini semua sampel umbi porang dengan variasi yang berbeda-beda diolah dan dianalisa dengan metode yang sama.
A. Hasil Pengolahan Umbi Porang Menjadi Tepung Porang Umbi  porang  ( Amorphophallus  onchophyllus )  diolah menjadi  tepung  porang  melalui  beberapa  tahapan.  Tahap
Tabel 3. Kadar glukomannan dalam sampel porang tanpa pencucian
Sampel Kadar Glukomannan Pengulangan Rata-rata 1 2 3 K2A 35,77% 33,00% 34,45% 34,41% K2B 37,15% 38,74% 36,12% 37,33% K3A 39,41% 43,65% 44,17% 42,41% K3B 41,00% 39,34% 43,91% 41,42% SP2A 37,32% 38,50% 34,91% 36,91% SP2B 38,09% 37,88% 37,98% 37,98% SP3A 28,40% 35,95% 28,57% 30,97% SP3B 38,23% 38,26% 39,09% 38,53% Tabel 4. Kadar glukomannan pada umbi porang dengan pencucian
Sampel
Kadar Glukomanan
Pengulangan Rata-Rata 1 2 3 K2A 47,05% 52,93% 58,96% 52,98% K2B 51,82% 50,92% 51,46% 51,40% K3A 54,32% 53,37% 55,84% 54,51% K3B 54,37% 54,93% 53,26% 54,19% SP2A 44,14% 42,77% 45,27% 44,06% SP2B 43,90% 43,90% 43,78% 43,86% SP3A 44,40% 45,52% 47,60% 45,84% SP3B 44,82% 43,31% 44,56% 44,23%
Gambar  2.  Kadar  glukomannan  pada  umbi  porang  ( Amorphophallus onchophyllus ) dengan pencucian dan tanpa pencucian.
Gambar  3.  Kadar  oksalat  pada  umbi  porang  (Amorphophallus onchophyllus) dengan pencucian dan tanpa pencucian.
0 200 400 600 800 1000 1200 Kon se n trasi asam oks alat (p p m) Variasi Sampel tanpa pencuci an dengan pencuci an
pertama adalah pengupasan umbi porang. Umbi porang yang telah  dikupas  berwarna  kuning  kecoklatan  (Gambar  1a). Tahap  kedua  adalah  pemotongan  umbi  porang  menjadi beberapa  bagian  sehingga  diperoleh chips porang.    Umbi porang  dipotong  secara  vertical  dari  dasar  umbi  dengan ketebalan  ±4mm.  Hal  ini  dilakukan  untuk  mendapatkan pesebaran glukomanan yang seragam dari tiap bagian umbi.
Tahap  ketiga  merupakan  tahap  pencucian chips porang. Pencucian  dilakukan  dengan  cara  merendam chips porang dalam  aqua  DM  dengan  perbandingan  1:1  selama  1  jam. Pencucian umbi porang dilakukan untuk menurunkan kadar oksalat  umbi  porang  untuk  menghasilkan  kandungan glukomannan  yang  lebih  seragam. Kadar  glukomannan  dan kadar  oksalat  dari chips porang  yang  dicuci  dibandingkan dengan  kadar  glukomannan  dan  kadar  oksalat  dari chips porang tanpa pencucian. Tahap keempat adalah pengeringan chips porang dengan suhu 50 o C selama 12 jam. Chips porang yang  telah  dikeringkan  kemudian  diolah  menjadi  tepung porang. Tepung porang yang dihasilkan memiliki warna putih kekuningan. (Gambar 1b).

## B. Analisa Kadar Glukomannan pada Umbi Porang
Analisa  kadar  glukomannan  dilakukan  dengan  metode gravimetri. Kadar glukomannan merupakan presentase berat bersih  glukomannan  murni  terhadap  1  g  tepung  porang. Kadar glukomannan dari dari masing-masing sampel porang ditunjukan  pada  Tabel  2.  Uji  t  dan  uji  f  dilakukan  untuk mengetahui  perbedaan  tiap  variabel.  Variabel  yang  diuji adalah bibit asal, umur, dan ukuran umbi porang.
Gambar  2  menunjukan  perbedaan  yang  signifikan  antara sampel  yang  dicuci  dan  tidak  dicuci.  Hal  ini  membuktikan bahwa  pencucian  dengan  air  dapat  meningkatkan  hasil rendemen  glukomannan.  Menurut  penelitian  Ulfa  dan Nafi’ah,  kadar  glukomanan  meningkat  seiring  dengan berkurangnya kadar oksalat [8].
Presentase  kadar  glukomanan  pada  sampel  dengan pencucian  (Tabel  4)  menunjukan  hasil  yang  lebih  seragam daripada  sampel  tanpa  pencucian  (Tabel  3).  Hal  ini dikarenakan sampel umbi porang  tanpa pencucian memiliki kadar  oksalat  yang  berbeda-beda.  Pencucian  diperlukan untuk mendapatkan kadar glukomannan yang lebih seragam.
Variabel bibit asal, umur, dan ukuran di analisa berdasarkan kadar glukomannan yang didapatkan dengan pencucian.
Pada Gambar 2 dapat dilihat bahwa kadar glukomannan yang didapatkan dari bibit kathak memiliki presentase 51,40– 54,41%  sedangkan  bibit  spora  memiliki  presentase  43,86– 45,84%. Hal ini menunjukan bahwa kadar glukomannan dari bibit  kathak  menghasilkan  rata-rata  glukomannan  lebih banyak dari bibit spora. Hasil uji f untuk variasi menunjukan adanya  perbedaan  yang  signifikan  pada  kepresisian  antara bibit asal kathak dan bibit asal spora. Dari hasil uji f dilakukan uji t antara dua sampel yang memiliki variasi yang berbeda. Hasil  uji  t  menunjukan  perbedaan  yang  signifikan.  Hal  ini menunjukan  bahwa  bibit  asal  mempengaruhi  kadar glukomannan pada umbi porang  (Tabel 5).
Gambar  2  juga  memperlihatkan  grafik  mengalami penurunan  kecil  kadar  glukomannan  pada  sampel  umbi porang  berukuran  kecil  ke  sampel  umbi  porang  berukuran besar.  Hal  tersebut  dapat  terjadi  dikarenakan    pesebaran glukomannan yang kurang merata pada umbi porang dengan ukuran kecil. Sebaliknya terjadi kenaikan kadar glukomannan dari sampel umbi porang berumur 2 musim ke sampel  umbi  porang  3  musim.  Hal  ini  sejalan  dengan penelitian  Syaefulloh  dimana  semakin  tua  umur  tanaman semakin tinggi kadar glukomannannya [8].
Tabel  5  menunjukan  hasil  uji  f  pada  variabel  umur  dan ukuran  yang  menunjukan  tidak  adanya  perbedaan  yang signifikan  terhadap  kepresisian  antara  sampel  umbi  porang umur 2 musim dengan 3 musim dan umbi porang berukuran kecil dengan umbi porang berukuran besar. Uji t dua sampel dengan variasi yang sama juga dilakukan pada variabel umur dan ukuran yang menunjukan tidak adanya perbedaan antara kadar glukomannan pada umbi porang umur 2 musim dengan 3 musim dan umbi porang ukuran kecil dengan umbi porang ukuran  besar.  Hal  ini  menunjukan  bahwa  umur  dan  ukuran umbi  porang tidak memiliki pengaruh yang besar terhadap kadar glukomannan dalam umbi porang.

## C. Analisa Kadar Oksalat pada Umbi Porang
Kalsium  oksalat  dan  asam  oksalat  diuji  dengan  metode titrasi  permanganometri.  Larutan  sampel  dibuat  dengan melarutkan  1  g  sampel  tepung  porang  dalam  larutan  HCl mendidih.  Tepung  porang  dilarutkan  dalam  HCl  mendidih
Tabel 5.
Hasil uji t dan uji f kadar glukomannan dari masing-masing variabel
Variabel Uji f Uji t Bibit asal H0 ditolak H0 ditolak Umur H0 diterima H0 diterima Ukuran H0 diterima H0 diterima Pencucian H0 diterima H0 ditolak Tabel 6.
Kadar oksalat pada umbi porang dan penurunan kadar oksalat setelah pencucian Konsentrasi Oksalat (ppm) Penuran Kadar Oksalat (%)
Sampel Tanpa Pencucian
Dengan Pencucian K2A 1039,50 756,00 27,27% K2B 882,00 609,00 30,95% K3A 786,24 619,50 21,21% K3B 524,16 342,72 34,62% SP2A 483,84 262,08 45,83% SP2B 609,00 504,00 17,24% SP3A 635,04 534,24 15,87% SP3B 574,56 463,68 19,30%
Tabel 7.
Kadar oksalat pada sampel umbi porang dengan pencucian
Sampel
Kadar Oksalat (ppm) Pengulangan Rata-Rata 1 2 3 K2A 725,76 756,00 786,24 756,00 K2B 598,50 630,00 598,50 609,00 K3A 598,50 630,00 630,00 619,50 K3B 272,16 362,88 393,12 342,72 SP2A 272,16 272,16 241,92 262,08 SP2B 504,00 535,50 472,50 504,00 SP3A 483,84 574,56 544,32 534,24 SP3B 453,60 514,08 423,36 463,68 Tabel 8.
Hasil uji f & uji t kadar oksalat dari masing-masing variabel
Variabel Uji f Uji t Bibit asal H0 ditolak H0 ditolak Umur H0 ditolak H0 ditolak Ukuran H0 ditolak H0 ditolak Pencucian H0 diterima H0 ditolak
bertujuan  untuk  mereaksikan  HCl  dengan  kalsium  oksalat yang sukar larut dalam air.
Menurut  Wardani  dan  Hardianto,  kalsium  oksalat  dapat larut  dalam  larutan  asam.  Penelitian  mereka  dengan  topik yang  sama  menunjukan  bahwa  tepung  porang  yang mengandung kalsium oksalat dapat dilarutkan dalam larutan HCl  mendidih.  Hal  ini  dapat  terjadi  karena  kalsium  oksalat bereaksi  dengan  HCl  menjadi  asam  oksalat  melalui persamaan berikut [6]:
𝐶𝑎𝐶 2 𝑂 4 +  𝐻𝐶𝑙  →  𝐶𝑎𝐶𝑙 2 +   𝐻 2 𝐶 2 𝑂 4
Standarisasi  larutan  KMnO4  perlu  dilakukan  terlebih dahulu  dengan  larutan  standar  asam  oksalat  setiap  hari sebelum dilakukan pengujian. Hal ini perlu dilakukan karena ion  permanganat  yang  larut  dalam  air  dapat  tereduksi  oleh beberapa senyawa organik yang mungkin terkandung dalam air. Hal ini dapat mengakibatkan penguraian ion permanganat seiring  dengan  lamanya  penyimpanan  larutan.  Penguraian sendiri  ion  permanganate  terjadi  berdasarkan  reaksi  berikut [9].
4 𝑀𝑛𝑂 4 − +  2 𝐻 2 𝑂  ↔  4 𝑀𝑛𝑂 2 +  3 𝑂 2 +  4 𝑂𝐻 −
Pengujian kadar oksalat kemudian dilakukan dengan titrasi permanganometri  dengan  larutan  sampel  sebagai  titrat  dan larutan  KMnO4  sebagai  titran.  Kadar  oksalat  merupakan konsentrasi asam oksalat dalam ppm yang terkandung pada 1 g  tepung  porang.  Tabel  5  menunjukan  kadar  oksalat  yang terkandung dalam sampel umbi porang pada berbagai variasi.
Tabel  5  menunjukan  hasil  pengujian  kadar  oksalat  pada sampel umbi porang. Kadar oksalat yang terkandung dalam sampel umbi porang memiliki konsentrasi yang berbeda-beda ditiap  sampelnya.  Kadar  oksalat  dapat  terlihat  mengalami penurunan  dari  sampel  umbi  porang  tanpa  pencucian  ke sampel umbi porang dengan pencucian . Hal ini menunjukan pencucian  dengan  aqua  DM  selama  satu  jam  dapat melarutkan sebagian senyawa oksalat yang terkandung dalam daging  umbi  porang.  Presentase  penurunan  kadar  oksalat berbeda-beda pada tiap sampel. Penurunan asam oksalat dari sampel  tanpa  pencucian  (Tabel  6)  dengan  tanpa  pencucian (Tabel  7)  yang  berbeda-beda  dapat  terjadi  dikarenakan terjadinya  gelling  dari  bertemunya  glukomannan  dengan aqua DM. Gel glukomannan tersebut membuat asam oksalat terjebak  di  dalam  daging  umbi.  Uji  f  menunjukan  tidak adanya  perbedaan  yang  signifikan  dari  presisi.  Hal  ini menunjukan  bahwa  penurunan  kadar  oksalat  dengan  dan tanpa  pencucian  memiliki  kepresisian  yang  tidak  berbeda secara  signifikan.  Uji  t  antara  dua  sampel  yang  memiliki variasi  yang  sama  dilakukan  antara  kadar  oksalat  tanpa pencucian  dan  dengan  pencucian.  Hasil  uji  t  menunjukan adanya  perbedaan  yang  signifikan  pada  kadar  oksalat  pada umbi porang tanpa pencucian dan dengan pencucian. Hal ini menunjukan  adanya  penurunan  kadar  oksalat  dari  sampel tanpa pencucian ke sampel dengan pencucian.
Pada  Gambar  3  menunjukan  kadar  oksalat  pada  sampel dengan  bibit  asal  kathak  memiliki    konsentrasi  sebesar 524,16-1039,5 ppm. Kadar oksalat pada umbi porang dengan bibit spora memiliki konsentrasi sebesar 483,84-635,04ppm. Uji  f  menunjukan  adanya  perbedaan  yang  signifikan  dari kepresisian  antara  sampel  bibit  kathak  dengan  sampel  bibit spora. Kadar oksalat pada sampel umbi porang dengan bibit kathak  lebih  tinggi  dari  kadar  oksalat  pada  sampel  umbi
porang dengan bibit spora. hal ini dibuktikan dari hasil uji t antara  konsentrasi  asam  oksalat  pada  sampel  bibit  kathak dengan  sampel  bibit  spora  (Tabel  8).  Kedua  uji  tersebut menunjukan  bahwa  variabel  bibit  asal  tidak  mempengaruhi kadar oksalat dalam umbi porang.
Sampel umbi porang dengan umur 2 musim dan 3 musim tidak terlihat mengikuti sebuah pola tertentu.  Kadar oksalat dalam  umbi  porang  terlihat  acak  pada  variabel  umur  umbi porang. Uji f dilakukan pada kadar oksalat pada umbi porang berumur  2  musim  dan  3  musim.  Hasil  uji  f  menunjukan adanya  perbedaan  yang  signifikan  pada  kepresisian  kadar oksalat  pada  umbi  porang  tanpa  pencucian  dan  dengan pencucian. Dilakukan uji t dua sampel yang memiliki variasi berbeda dari hasil uji f pada umbi porang tanpa pencucian dan dengan pencucian. Hasil uji t menunjukan adanya perbedaan yang  signifikan  antara  kadar  oksalat  pada  umbi  porang dengan  umur  2  musim  dan  3  musim.  Hal  ini  menunjukan bahwa kadar oksalat tidak dipengaruhi oleh umur dari umbi porang.
Sampel umbi porang dengan ukuran kecil dan ukuran besar juga  tidak  menunjukan  suatu  pola  tertentu.  Umbi  porang dengan  ukuran  kecil  dan  ukuran  besar  menunjukan konsentrasi  asam  oksalat  yang  berbeda-beda.  Hal  ini  juga dibuktikan  dalam  uji  f  yang menunjukan  adanya  perbedaan secara signifikan dari kepresisian antara umbi porang dengan ukuran kecil dan ukuran besar. Uji t antara dua sampel dengan variasi berbeda dilakukan antara sampel umbi porang dengan ukuran kecil dan ukuran besar. Hasil uji t menunjukan adanya perbedaan yang signifikan antara sampel umbi porang dengan ukuran  kecil  dan  ukuran  besar.  Dari  ketiga  hasil  tersebut dapat disimpulkan bahwa bibit asal, umur, dan ukuran umbi porang  tidak  berpengaruh  secara  langsung  dengan  kadar oksalat yang terkandung dalam umbi porang.

## IV. KESIMPULAN
Pengaruh  bibit  asal,  umur,  dan  ukuran  terhadap  kadar glukomannan  dan  asam  oksalat  pada  umbi  porang  telah dianalisa.  Hasil  analisa  menunjukan  bahwa  bibit  asal mempengaruhi  kadar  glukomannan.    Kadar  glukomannan paling  tinggi  adalah  pada  umbi  porang  dengan  bibit  asal kathak.  Kadar  glukomannan  pada  sampel  umbi  porang dengan  bibit  asal  kathak  memiliki  presentase  kadar glukomannan  sebesar  51,40–54,41%  sedangkan  bibit  spora memiliki presentase 43,86–45,84%. Umur dan ukuran umbi porang tidak mempengaruhi kadar glukomannan dalam umbi porang.  Kadar  oksalat  pada  bibit  kathak  lebih  tinggi  dari kadar  oksalat  pada  umbi  spora.  Umbi  porang  dengan  bibit kathak  memiliki  kadar  oksalat  sebesar  524,16-1039,5  ppm. umbi  porang  dengan  bibit  spora  memiliki  kadar  oksalat sebesar 483,84-635,04ppm. Bibit asal, umur dan ukuran umbi porang tidak mempengaruhi kadar oksalat secara signifikan.

## DAFTAR PUSTAKA
[1]  B. H. Kusumo, A. A. Bakti, and others, “Penguatan kapasitas kelompok tani dalam budidaya porang berbasis pertanian konservasi-agroforestry di Desa Sambi Elen, Lombok Utara,” J. Siar Ilmuwan Tani , vol. 1, no. 2, pp. 67–74, 2020.
[2]  N.  Chairiyah,  N.  Harijati,  and  R.  Mastuti,  “Pengaruh  waktu  panen terhadap kandungan glukomannan pada umbi porang (Amorphophallus muelleri Blume) periode tumbuh ketiga,” Res. J. life Sci. , vol. 1, no. 1, pp. 37–42, 2014.
[3]  A.  Yanuriati,  D.  W.  Marseno,  E.  Harmayani,  and  others, “Characteristics of glucomannan isolated from fresh tuber of Porang (Amorphophallus muelleri Blume),” Carbohydr. Polym. , vol. 156, pp. 56–63, 2017.
[4]  T.  Estiasih,  W.  D.  R.  Putri,  and  E.  Waziiroh, Umbi-umbian  dan Pengolahannya , 1st ed. Malang: Universitas Brawijaya Press, 2017.
[5]  D. Gusmalawati, E. L. Arumingtyas, R. Azrianingsih, and R. Mastuti, “LC-MS  analysis  of  carbohydrate  components  in  Porang  tubers (Amorphophallus  muelleri  Blume)  from  the  second  and  the  third growth period,” in IOP Conference Series: Earth and Environmental
Science , 2019, vol. 391, no. 1, p. 12022.
[6]  R. K. Wardani and P. Handrianto, “Analisis kadar kalsium oksalat pada tepung  porang  setelah  perlakuan  perendaman  dalam  larutan  asam (Analisis dengan metode titrasi permanganometri),” J. Res. Technol. ,
vol. 5, no. 2, pp. 144–153, 2019.
[7]  I. Knudsen, I. Søborg, F. Eriksen, K. Pilegaard, and J. Pedersen, “Risk management  and  risk  assessment  of  novel  plant  foods:  concepts  and principles.,” Food Chem. Toxicol.  an Int. J. Publ. Br.  Ind. Biol. Res. Assoc. ,  vol.  46,  no.  5,  pp.  1681–1705,  May  2008,  doi: 10.1016/j.fct.2008.01.022.
[8]  D. A. N. Ulfa and R. Nafi’ah, “Pengaruh perendaman NaCl terhadap kadar glukomanan dan kalsium oksalat tepung iles-iles (Amorphophallus variabilis Bi),” Cendekia J. Pharm. , vol. 2, no. 2, pp. 124–133, 2018.
[9]  A.  Mursyidi  and  A.  Rohman, Pengantar  Kimia  Farmasi  Analisis; Volumetri dan Gravimetri , 1st ed. Yogyakarta: Gajah Mada University Press, 2008.