208 Jurnal Agrotek Tropika 2(2):208-214, 2014 J.  Agrotek    Tropika.    ISSN  2337-4993 Vol.  2,    No.  2:  208-214,  Mei  2014

## PENGARUH  Trichoderma  spp.  DAN  FUNGISIDA  SINTETIS TERHADAP PERTUMBUHAN  Sclerotium  rolfsii  DAN  KETERJADIAN PENYAKIT REBAH KECAMBAH KACANG TANAH
Anisah  Fajar  Mahabbah,  Titik  Nur  Aeny  &  Tri  Maryono
Jurusan Agroteknologi, Fakultas Pertanian Universitas Lampung Jl. Prof. Soemantri Brodjonegoro, No.1, Bandar Lampung, 35145
Email: anisafajar91@gmail.com

## ABSTRAK
Kacang tanah ( Arachis hypogaea L.) merupakan salah satu tanaman jenis  kacang-kacangan yang penting.  Produksi kacang tanah di Indonesia terus  mengalami penurunan dari tahun ke tahun.  Salah satu penyebab rendahnya produksi kacang tanah adalah masih rendahnya ketahanan tanaman kacang tanah  terhadap penyebab penyakit rebah kecambah.  Salah satu metode pengendalian rebah kecambah pada kacang tanah adalah menggunakan agen hayati.  Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui keefektifan Trichoderma spp., fungisida karbendazim dan mankozeb terhadap pertumbuhan Sclerotium rolfsii patogen rebah kecambah dan keterjadian penyakit rebah kecambah pada kacang tanah.  Penelitian ini terdiri atas dua sub percobaan yaitu percobaan in vitro dan pengujian in planta. Perlakuan disusun dalam Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan tiga ulangan. Data yang diperoleh dianalisis dengan sidik ragam dan dilanjutkan dengan uji BNT pada taraf  nyata 5%.  Hasil penelitian menunjukkan bahwa Trichoderma spp. mampu menekan pertumbuhan Sclerotium rolfsii secara in vitro maupun in planta , sedangkan perlakuan fungisida tidak dapat menekan pertumbuhan S. rolfsii.
Kata kunci : Kacang tanah, karbendazim, mankozeb, rebah kecambah, Trichoderma spp.

## PENDAHULUAN
Kaca ng  tana h  ( Arachis  hypogaea L.) merupakan salah satu tanaman jenis  kacang-kacangan yang  penting  selain  kedelai.    Tanaman  ini    berpotensi untuk dikembangkan karena memiliki nilai ekonomi tinggi dan peluang pasar dalam negeri yang cukup besar.  Biji kacang tanah dapat digunakan langsung sebagai bahan pangan atau secara tidak langsung sebagai bahan baku industri.    Brangkasan  tanaman  kacang  tanah  dapat dimanfaatkan untuk bahan  pakan ternak dan pupuk hijau (Marzuki, 2007).   Kandungan nutrisi biji  kacang tanah antara  lain  berupa  protein  (40%),  lemak    (40-50%), karbohidrat serta vitamin (A,B,C,D,E dan K.  Luas areal pertanaman  dan  produksi    kacang  tanah  di  Indonesia terus  mengalami penurunan dari tahun ke tahun. Pada tahun  2010,  diketahui  bahwa  luas  areal  pertanaman kacang tanah di berbagai provinsi di Indonesia 620.563 ha  dan  produksinya  sekitar  779.228  ton,    tahun berikutnya  (2011)  luasnya  menurun  menjadi  539.459 hektar  dan  produksinya  691.289  ton  (BPS,  2010). Produksi  kacang  tana h  yang  t erus  menurun menyebabkan  tidak  terpenuhinya  kebutuhan  dalam negeri.   Penurunan  luas  panen antara  lain  disebabkan
masih  rendahnya  ketahanan  tanaman  kacang  tanah terhadap  penyebab  penyakit.    Salah  satu  penyebab penyakit  yang  sering  mengganggu    tanaman  kacang tanah  adalah Sclerotium  rolfsii (Hayati,  2009). Sclerotium  rolfsii pada  tanaman  kacang  tanah  dapat menyebabkan penyakit rebah kecambah ataupun busuk batang yang menjadi masalah penting dalam budidaya kacang tanah  dan tersebar luas di Indonesia (Semangun, 2004).  Secara umum penyakit rebah kecambah  pada tanaman  kacang  tanah  sulit  dikendalikan,  karena patogennya memiliki kemampuan bertahan hidup cukup lama  di  dalam  tanah  berbentuk sclerotia (sklerosia) meskipun tidak ada tanaman inangnya (Semangun, 1996). Pengendalian  yang  telah  dilakukan  terhadap  penyakit rebah kecambah atau penyakit busuk batang ini antara lain  adalah  penggunaan  varietas  tahan,  pergiliran tanaman, dan penggunaan fungisida (Semangun, 2004), tetapi  hasilnya belum memuaskan.   Fungisida  sintetis banyak  digunakan  untuk  mengendalikan  penyakit tanaman, tetapi penggunaan yang tidak bijaksana akan menimbulkan berbagai dampak negatif seperti terjadinya resistensi  patogen,  terbunuhnya  mikroorganisme bermanfaat  serta  pencemaran  lingkungan  (Sumartini, 2012).    Oleh  karena  itu,  untuk  mengurangi  dampak

## Mahabbah et al.:  Pengaruh Trichoderma spp. dan Fungisisda Sintetis
209 nega tif  fungisida  sintetik,  perlu  adanya  cara pengendalian alternatif  yang tidak menimbulkan dampak negatif tetapi lebih efektif dari fungisida sintetik dalam menghambat  pertumbuhan S.  rolfsii .      Penelitian  ini bertujuan  untuk  mengetahui  pengaruh Trichoderma spp. dan fungisida karbendazim dan mankozeb terhadap pertumbuhan S.  rolfsii dan  keterjadian penyakit rebah kecambah  pada kacang  tanah.

## BAHAN  DAN  METODE
Percobaan  dilakukan  di  Laboratorium  Penyakit Tumbuhan Jurusan Agroteknologi   Fakultas Pertanian Universitas Lampung.  Penelitian ini dilaksanakan dari Maret  sampai  dengan  September    2013.    Percobaan disusun dalam Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan tiga  ulangan.    Penelitian  ini  terdiri  dari  dua  sub percobaan.    Percobaan  pertama    adalah  pengujian in vitro kemampuan Trichoderma spp.  dan  fungisida dalam menghambat pertumbuhan S. rolfsii , yang terdiri dari  enam  perlakuan    yaitu T.  harzianum (P1), T. koningii (P2), T.viride (P3), fungisida berbahan aktif karbendazim & mankozeb (P4), fungisida berbahan aktif arbendazim  (P5),  fungisida  berbahan  aktif  mankozeb (P6) . Percobaan  kedua  adalah  pengujian in  planta kemampuan Trichoderma spp.    dan  fungisida  dalam menghambat perkembangan penyakit rebah kecambah kacang  tanah  yang  disebabkan  oleh  jamur S.  rolfsii. Percobaan ini terdiri dari delapan perlakuan dengan dua kontrol   yaitu T. harzianum (P1), T. koningii (P2), T. viride (P3),  fungisida  berbahan  aktif  karbendazim+ mankozeb  (P4),  fungisida  berbahan  aktif  arbendazim (P5), fungisida berbahan aktif mankozeb  (P6), sebagai kontrol  positif  tanpa Trichoderma maupun  fungisida (P7),  sebagai  kontrol  negatif  tanpa S.  rolfsii , Trichoderma spp.  dan  fungisida    (P8).    Data  yang diperoleh dianalisis dengan sidik ragam dan dilanjutkan dengan uji BNT pada taraf  nyata 5%.
Sclerotium  rolfsii diisolasi  dari tanaman kacang tanah yang menunjukkan gejala layu atau  tanda penyakit berupa sclerotia . Sclerotia diambil dan didensifeksi permukaannya dengan  cara merendam dalam  kloroks dan aquades dengan perbandingan 1:9  selama 3 menit, selanjutnya  ditumbuhkan  pada  media  PDA.    Untuk pengujian in  planta biakan S.  rolfsii disiapkan  dalam bentuk suspensi.  Suspensi S. rolfsii dibuat dengan cara menambahkan 20 ml air steril dalam biakan S. rolfsii berumur 10 hari dalam cawan petri.  Selanjutnya biakan tersebut  dikeruk    agar  miselia S.  rolfsii terlepas  dan kemudian dipindahkan ke dalam erlenmayer dan digojok sampai tercampur rata (homogen).
Isolat Trichoderma yang digunakan merupakan isolat koleksi Klinik Tanaman   Jurusan Agroteknologi Fakultas  Pertanian  Universitas  Lampung    yaitu T. harzianum ¸ T.  koningii ,    dan T  .viride .    Isolat-isolat tersebut diremajakan dan diperbanyak dalam media PDA sebelum digunakan dalam pengujian.  Untuk  pengujian in planta suspensi biakan Trichoderma dibuat dengan cara  menambahkan  20  ml  air  steril  ke  dalam  cawan petri  berisi  biakan Trichoderma berumur  10  hari. Selanjutnya  biakan  tersebut  dikeruk    agar  miselia Trichoderma terlepas  dan  dipindahkan  ke  dalam erlenmayer  lalu  digojok sampai  tercampur  rata (homogen).
Pengujian in vitro dilakukan dengan metode kultur ganda  yaitu  pada  satu  cawan  petri  ditumbuhkan  dua jamur secara berlawanan,  bagian belakang cawan petri dibuat garis yang saling berpotongan pada tengah cawan petri dengan menggunakan spidol permanen.  Kemudian pada garis tersebut ditentukan dua titik yang berjarak 2 cm dari  tepi secara  berlawanan.  Titik –  titik tersebut digunakan  sebagai  tempat  infestasi  cuplikan  jamur diameter  4  mm  (Gambar  1).    Untuk    perlakuan  yang menggunakan fungisida, aplikasi  fungisida  dicampurkan ke dalam media PDA kemudian dituang ke dalam cawan petri,  selanjutnya media tersebut dipotong menggunakan bor  gabus  dengan  diameter  4  mm  dengan    masing- masing  konsentrasi  yang    digunakan  yaitu campurankarbendazim  dan  mankozeb  0,1  g/100  ml, karbendazim 0,375 g/100 ml, mankozeb 0,2 g/100 ml  ke dalam media PDA. Trichoderma spp. , fungisida,  dan S. rolfsii diinfestasikan pada titik-titik tersebut.
Perlakuan  dalam  percobaan  ini  sama  dengan perlakuan pada percobaan in vitro .   Media tanam yang digunakan  adalah  tanah  yang  telah  disterilkan  dalam autoklaf.    Tanah  yang  telah  disterilkan  kemudian dimasukkan  dalam  wadah  plastik  sebanyak  0,5  kg/ wadah.    Media  tanam    tersebut  kemudian  diberikan suspensi S.  rolfsii sebanyak  20  ml/wadah dan dicampurkan ke dalam 0,5 kg tanah dalam wadah plastik berukuran diameter 20 cm dan diinkubasi selama satu minggu  dalam  kondisi  lembab.    Setelah  satu  minggu, sebanyak 20ml  suspensi masing-masing Trichoderma diaplikasikan ke setiap wadah dengan cara  dicampurkan, kemudian diinkubasi lagi selama satu minggu. Setelah satu minggu benih kacang tanah ditanam 10 benih per wadah.    Penyiraman  dilakukan  secara  teratur  untuk menjaga  kelembaban  tanah.    Untuk  perla kuan menggunakan  fungisida,  sebelum  benih  kacang  tanah ditanam,  terlebih  dahulu  direndam  dalam  larutan fungisida  sesuai  konsentra si  yang  diguna kan. Perendaman  dilakukan  untuk  mengetahui  pengaruh
Gambar 1.   Tata letak jamur Trichoderma spp. fungisida dan S. rolfsii pada uji antagonisme  dalam   cawan  petri.
(P = biakan S. rolfsii , A = biakan Trichoderma spp. atau fungisida).
benih kacang tanah  pada fase vegetatif  dari serangan patogen.
Pengamatan pengujian in vitro dilakukan setiap hari mulai dari hari kedua setelah inokulasi dan dihentikan pada  hari  ke  tujuh  atau  sampai  pertumbuhan  jamur antagonis memenuhi cawan petri.   Peubah yang diamati adalah  persentase  penghambatan Trichoderma dan fungisida terhadap S. rolfsii .  Persentase penghambatan Trichoderma dan    fungisida    dihitung  dengan  rumus (Muksin et al., 2013):
Keterangan  : P =   Persentase  penghambatan r 1 = Jari-jari koloni patogen yang tumbuh berlawanan dengan pusat koloni   antagonis r 2 = Jari-jari koloni patogen yang tumbuh menuju pusat koloni  antagonis.
Pada  percobaan  kedua,  peubah  yang  diamati adalah jumlah tanaman yang sakit, tinggi tanaman, jumlah daun, bobot basah tanaman dan bobot kering tanaman. Pengamatan pada tinggi tanaman,  jumlah daun, bobot basah  dan  bobot  kering  digunakan  sebagai  data penunjang  untuk mengetahui  efek perlakuan terhadap pertumbuhan tanaman.  Bobot basah tanaman ditimbang pada 15 hsi yaitu dilakukan langsung pada saat tanaman baru dicabut dan masih segar, sedangkan bobot kering tanaman ditimbang setelah penjemuran di bawah sinar matahari selama 10 hari.  Pengamatan  dilakukan setiap hari  selama  30  hari  atau  sampai  dengan  semua
tanaman pada kontrol (+)  mati.  Keterjadian  penyakit dihitung dengan rumus:
Keterangan  : KT = Keterjadian penyakit (%) n    = Jumlah tanaman yang sakit N   = Jumlah tanaman yang diamati

## HASIL  DAN  PEMBAHASAN
Hasil pengamatan menunjukkan bahwa pada hari pertama  setelah  inokulasi  semua  perlakuan  dapat menghambat pertumbuhan Sclerotium rolfsii meskipun persentase penghambatan antara satu perlakuan dengan perlakuan  lainnya  tidak  berbeda  nyata  (Tabel  1). Selanjutnya,  pada  pengamatan 3,5 dan 7 hari setelah inkubasi hanya perlakuan Trichoderma spp. saja yang dapat  menghambat  pertumbuhan Sclerotium  rolfsii sedangkan  perlakuan    fungisida  tidak  dapat  menekan pertumbuhan S. rolfsii (Tabel 1, Gambar 2).  Hal  ini menunjukkan bahwa Trichoderma spp.  yang digunakan mempunyai  kemampuan  antagonis.      Mekanisme antagonis Trichoderma spp.  dapat  terjadi melalui empat cara yaitu, kompetisi, antibiosis, lisis, dan mikoparasit (Harman dan Kubicek, 1998).  Kompetisi ruang terjadi, yaitu  kecepatan tumbuh Trichoderma spp. yang  lebih cepat  dari S.  rolfsii menyebabkan Trichoderma spp. lebih  cepat  memenuhi    ruang  di  dalam  cawan  petri, sehingga ruang untuk pertumbuhan S. rolfsii menjadi berkurang.  Mekanisme antibiosis terlihat dengan adanya
100%
r1 r2) - (r1 P   100% N n KT  

## Mahabbah et al.:  Pengaruh Trichoderma spp. dan Fungisisda Sintetis

## 211
Tabel 1.   Persentase penghambatan pertumbuhan Sclrotium rolfsii oleh Trichoderma spp. dan  fungisida secara in  vitro .
Perlakuan Persentase penghambatan (%) 1 hsi 3 hsi 5 hsi 7 hsi T. harzianum 14,81 a 23,53 a 23,53 a 23,53 a T. koningii 7,41 a 23,80 a 24,97 a 24,97 a T. viride 6,67 a 23,38 a 23,38 a 23,38 a Karbendazim &  mankozeb 4,17 a 0,00 b 0,00 b 0,00 b karbendazim 12,17 a 0,00 b 0,00 b 0,00 b ma nkozeb 10,83 a 0,00 b 0,00 b 0,00 b BNT 0,05 9,51 8,36 8,68 8,68
Keterangan :    Angka-angka yang diikuti huruf  yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata berdasarkan   uji BNT 5%, hsi = hari setelah inokulasi.
Gambar 2.  Pertumbuhan koloni S. rolfsii 3 hari setelah infestasi pada berbagai perlakuan, (A) T. harzianum , (B) T. koningii , (C) T. viride , (D) karbendazim dan mankozeb, (E) karbendazim, (F) mankozeb.
zona bening di antara Trichoderma spp. dan S. rolfsii . Sclerotium  rolfsii berhenti tumbuh pada zona tersebut, hal ini diduga adanya suatu senyawa yang menghalangi S. rolfsii tumbuh kearah Trichoderma spp.  mikoparasit terlihat tumbuh hifa Trichoderma spp. di atas biakan S. rolfsii (Gambar 4) .
Keefektifa n  jamur Tri choderma spp.   dan fungisida  dalam  mengendalikan  penyakit  rebah kecambah diamati berdasarkan keterjadian penyakit pada setiap    perlakuan.    Hanya  aplikasi Trichoderma spp. yang    efektif  menekan  keterjadian  penyakit  rebah
kecambah  sampai  dengan  0  %  (Tabel  2,  Gambar  3). Hasil pengamatan gejala rebah kecambah pada 3 sampai 7 hsi menunjukkan bahwa pada perlakuan ketiga spesies Trichoderma spp.  yang  berbeda,  keterjadian  penyakit sebesar 0% atau semua tanamannya sehat, sama seperti pada  kontrol  negatif.    Hal  ini  menunjukkan  bahwa penggunaan agensi hayati mampu melindungi tanaman dari serangan patogen.
Hasil  pengamatan  pada  8  hsi  sampai  14  hsi menunjukkan  bahwa  perlakuan Trichoderma spp. meningkatkan  tinggi  tanaman,  sedangkan  aplikasi

## Tabel 2.  Keterjadian penyakit  persentase rebah kecambah
Keterangan :   Angka-angka yang diikuti huruf  yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata berdasarkan  uji BNT
5%, hsi = hari setelah inokulasi.
Perlakuan Keterjadia n penyakit (%) 3 hsi 4 hsi 5 hsi 6 hsi 7 hsi T. harzianum 0,00 c 0,00 d 0,00 d 0,00 d 0,00 b T. koningii 0,00 c 0,00 d 0,00 d 0,00 d 0,00 b T. viride 0,00 c 0,00 d 0,00 d 0,00 d 0,00 b Ka rbendazim & mankozeb 30,00 b 53,33 b 76,67 ab 83,33 c 100,00 a karbendazim 26,67 b 46,67 c 66,67 c 90,00 a 97,00 a mankozeb 36,67 a 50,00 bc 73,33 b 86,67 b 100,00 a kontrol positif 26,67 b 76,67 a 80,00 a 90,00 a 100,00 a kontrol negatif 0,00 c 0,00 d 0,00 d 0,00 d 0,00 b BNT 0,05 4,99 4,99 3,53 2,88 2,04
Gambar 3.  Pertumbuhan benih kacang tanah setelah perlakuan Trichoderma spp. dan Fungisida (A) T. harzianum , (B) T. koningii , (C) T. viride , (D)  tanpa S. rolfsii Trichoderma spp. dan fungisida, (E)karbendazim dan  mankozeb,  (F)  karbendazim,    (G)  mankozeb,  (H)  tanpa Trichoderma spp.  dan  fungisida Trichoderma spp. dan fungisida.
fungisida  tidak    meningkatkan  tinggi  tanaman  karena semua  benih  terserang S.  rolfsii dan  mati.  Di  antara ketiga  spesies Trichoderma spp.  yang  digunakan, T. harzianum dan T. koningii menunjukkan tinggi tanaman lebih tinggi dibandingkan perlakuan T. viride (Tabel 3).
Hasil pengamatan pada 8 - 14 hsi menunjukkan bahwa    perlakuan Tri choderma spp.    da pat
meningkatkan jumlah daun, sedangkan  aplikasi fungisida tidak  dapat  meningkatkan  jumlah  daun  karena  semua benih terserang Sclerotium rolfsii dan mati  (Tabel 4). Hasil  pengamatan  terhadap  bobot  basah  dan bobot kering  brangakasan menunjukkan bahwa aplikasi spesies Trichoderma yang berbeda tidak mempengaruhi bobot  basah  maupun  bobot  kering  brangkasan  (Tabel

## Mahabbah et al.:  Pengaruh Trichoderma spp. dan Fungisisda Sintetis
Gambar 4.  Mikoparasitisme Trichoderma spp. pada Sclerotium rolfsii .
Tabel 3.  Tinggi tanaman kacang tanah setelah perlakuan Trichoderma spp. dan fungisida
Keterangan :   Angka-angka yang diikuti huruf  yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata berdasarkan  uji BNT 5%, hsi = hari setelah inokulasi.
Perlakuan Tinggi tana man (cm) 8 hsi 10 hsi 12 hsi 14 hsi T. harzianum 3,07 a 4,66 a 14,33 a 18,20 a T. koningii 3,53 b 4,97 a 14,79 a 19,12 a T. viride 2,95 b 4,17 b 11,35 b 15,73 b Ka rbendazim & mankozeb 0,00 c 0,00 c 0,00 d 0,00 d karbendazim 0,00 c 0,00 c 0,00 d 0,00 d mankozeb 0,00 c 0,00 c 0,00 d 0,00 d kontrol positif 0,00 c 0,00 c 0,00 d 0,00 d kontrol negatif 2,90 b 3,97 b 9,37 c 13,30 c BNT 0,05 0,43 0,34 0,83 0,96
Tabel 4.  Jumlah daun kacang tanah setelah perlakuan Trichoderma spp. dan  fungisida Perlakuan Jumlah daun 8 hsi 10 hsi 12 hsi 14 hsi T. harzianum 2,00 ab 3,13 a 4,77 b 6,17 b T. koningii 2,13 a 3,20 a 5,10 a 6,40 a T. viride 1,90 ab 2,90 b 4,70 b 6,13 b Karbendazim & mankozeb 0,00 c 0,00 c 0,00 d 0,00 d karbendazi m 0,00 c 0,00 c 0,00 d 0,00 d mankozeb 0,00 c 0,00 c 0,00 d 0,00 d kontrol positif 0,00 c 0,00 c 0,00 d 0,00 d kontrol negatif 1,87 b 2,87 b 4,47 c 5,37 c BNT 0,05 0,25 0,19 0,21 0,10
Keterangan : Angka-angka yang diikuti huruf  yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata  berdasarkan  uji BNT 5%, hsi = hari setelah inokulasi
Tabel 5. Bobot basah brangkasan kacang tanah setelah perlakuan Trichoderma spp. dan fungisida.
Keterangan :   Angka-angka  yang diikuti huruf  yang sama  menunjukkan tidak berbeda nyata  berdasarkan   uji BNT 5%, hsi = hari setelah inokulasi
Perlakuan Bobot basah (g) Bobot kering (g) T. harzianum 35,87 b 4,50 a T. koningii 42,13 a 4,60 a T. viride 35,83 b 4,47 a Ka rbendazim & mankozeb 0,00 c 0,00 b Ka rbendazim 0,00 c 0,00 b mankozeb 0,00 c 0,00 b kontrol positif 0,00 c 0,00 b kontrol negatif 35,37 b 4,43 a BNT 0,05 2,41 0,24
5).  Secara umum pengamatan terhadap aspek agronomi merupakan  sebagai  data  penunjang  untuk  melihat pertumbuhan tanaman kacang tanah setelah perlakuan Trichoderma spp.  dan  fungisida.    Hasil  pengamatan menunjukkan bahwa pada aplikasi Trichoderma spp. tinggi  tanaman,  jumlah  daun,  bobot  basah,dan  bobot kering  brangkasan  lebih  tinggi  dibandingkan  dengan kontrol.  Hasil ini sejalan dengan laporan Harman et al ( 2004a) yang menunjukan bahwa  aplikasi Trichoderma spp.  dalan  tanah  dapat  meningkatkan  pertumbuhan tanaman.  Kolonisasi Trichoderma spp. pada akar dapat meningkatkan penyerapan nutrisi yang dibutuhkan oleh tanaman, seperti P, Fe, Cu, Mn, dan Zn. Selain itu, Jamur ini  mampu  menyelubungi  sepanjang  permukaan  akar, mengoloni perakaran tanaman, dan meningkatkan berat kering  dan  segar  akar  dan  bagian  tanaman  lainnya (Soesanto, 2008).

## KESIMPULAN
Dari hasil penelitian ini dapat disimpulkan bahwa Trichoderma spp.  dapat  menekan  pertumbuhan Sclerotium  rolfsii secara in  vitro maupun in  planta , dan  meningkatkan  pertumbuhan  tanaman  (tinggi tanaman,  jumlah  daun,  bobot  basah,  bobot  kering). Fungisida berbahan aktif karbendazim (0,375 g/100ml, mankozeb (0,2 g/100ml), dan gabungannya (0,1 g/100ml) tidak  dapat  menekan  pertumbuhan Sclerotium  rolfsii secara in vitro maupun in  planta .

## DAFTAR  PUSTAKA
Badan Pusat Statistik.  2010.   Produksi tanaman pangan/ Kacang  tanah/  tersedia  pada  www.bps.go.id diakses pada 3 Februauri 2013.
Harman, G. E. & C. P. Kubicek. (1998). Trichoderma and  Gliocladium,  Vol.  2.Enzymes,  Biological Control  and  Commercial  Applications .  Taylor and Francis, London, UK.
Harman, G. E., C. R. Howell, A. Viterbo, I. Chet & M.
Lorit o.  (2004a). Trichoderma  species – opportunistic, avirulent plant symbionts. Nature Rev. Microbiol .  2:43-56.
Hayati,  I.    2009.    Evaluasi  penyakit  rebah  kecambah pada kacang tanah Yang diaplikasikan    inokulum Sclerotium  rolfsii sacc.   Pada  ber bagai konsentrasi. Jurnal Agronomi .  (13)1 : 33-37.
Marzuki, R.  2007. Bertanam Kacang Tanah. Jakarta
:  Penebar  Swadaya.
Muksin,  R.  Rosmini,  &  J.  Panggeso.    2013.    Uji Antagonisme Trichoderma sp.  Terhadap  Jamur Patogen Alternaria  porri Penyebab  Penyakit Bercak  Ungu  Pada  Bawang  Merah  Secara  In vitro. Jurnal Agrotekbis .  1(2) : 140-144.
Semangun,  H.    1996. Pengantar  Ilmu  Penyakit Tumbuhan .  UGM Press, Yogyakarta.
Semangun, H.  2004. Penyakit-penyakit Tanaman Pangan di Indonesia .  UGM Press, Yogyakarta.
Soesanto,  L.    2008. Pengantar  Pengendalian Hayati  Penyakit  Tanaman .    Rajawali  Pers. Jakarta..
Sumartini.  2012.  Penyakit Tular Tanah ( Sclerotium rolfsii dan Rhizoctonia solani )  Pada Tanaman Kacang-kacangan Dan Umbi-umbian serta Cara pengendaliannya. Jurnal Litbang Pertanian . 3(1) : 27-34.