## EKSTRAKSI DAN UJI STABILITAS BETASIANIN DALAM EKSTRAK BUAH KAKTUS
( Opuntia elatior Mill.)
[Extraction and Stability Test of Betacyanin in Cactus ( Opuntia elatior Mill.) Extract]
Patrisia Marcevin Rengku 1 , Ahmad Ridhay 1* , Prismawiryanti 1
1 Jurusan Kimia Fakultas MIPA, Universitas Tadulako Jl. Soekarno Hatta Km.9, Kampus Bumi Tadulako Tondo Palu, Telp. 0451- 422611
Diterima  2 April 2017, Disetujui 19 Juni 2017

## ABSTRACT
Research  on  extraction  and  stability  test  of  betacyanin  in  cactus  ( Opuntia  elatior Mill.)  extract  has  been done. This study aimed  is to determined the effect of solvent ratio (ethanol, a mixture of ethanol :  water and  water) on  levels  betacyanin cactus fruit extract.  The extraction  was done by maceration method for 72 hours on all variation solvent. The best results from treatment and betacyanin stability test to light and pH.  Betacyanin stability against of light testing is done with the exposure betacyanin cactus fruit extract under  direct  sunlight  for  5  hours  with  a  variety  of  storage  containers,  namely  bottles  brown  and  clear bottles.  Betacyanin  content  analysis  was  done  every  1  hour  .  Betacyanin  stability  against  pH  testing  is was  done  by  sample  storage  for  72  hours  at  various  pH  3,  4,  5,  6,  7,  and  8.  The  highest  levels  of betacyanin  using  solvent  water  is  15.42  mg/100g  .  Betacyanin  unstable  on  exposure  to  sunlight  which betacyanin levels decreased by 47.35 % on a brown bottle and 66.93 % in clear bottles  after 5 hours of storage . Betacyianin stable at pH 4, 5 and 6 with reduced levels of betacyanin by 15.82 %, 14.25 % and 15.71 % respectively.
Keywords : Cactus (Opuntia elatior Mill.), Extraction, Betacyanin Stability

## ABSTRAK
Telah dilakukan penelitian  tentang ekstraksi dan uji stabilitas ekstrak buah kaktus ( Opuntia elatior Mill.). Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh variasi pelarut (etanol; campuran etanol : air; dan air) terhadap  kadar  betasianin  dalam  ekstrak  buah  kaktus.  Ekstraksi  dilakukan  dengan  metode  maserasi selama  72  jam  pada  semua  variasi  pelarut.  Hasil  terbaik  dari  perlakuan  di  atas  kemudian  dilakukan pengujian stabilitas betasianin terhadap cahaya dan pH. Pengujian stabilitas terhadap cahaya dilakukan dengan  pemaparan  betasianin  ekstrak  buah  kaktus  dibawah  sinar  matahari  langsung  selama  5  jam dengan  variasi  wadah  penyimpan,  yaitu  botol  cokelat  dan  botol  bening.  Analisis  kadar  betasianin dilakukan setiap 1 jam. Pengujian stabilitas betasianin terhadap pH dilakukan dengan cara penyimpanan sampel  selama  72  jam  dengan  variasi  pH  3,  4,  5,  6.  7  dan  8.  Kadar  betasianin  tertinggi  diperloleh menggunakan pelarut air yaitu sebesar 15,42 mg/100g. Betasianin tidak stabil terhadap paparan cahaya matahari  dimana  kadar  betasianin  berkurang  sebanyak  47,35%  pada  botol  cokelat  dan  66,93%  pada botol bening setelah 5 jam penyimpanan. Betasianin stabil pada kondisi pH 4, 5 dan 6 dengan penurunan kadar betasianin masing-masing sebesar 15,82%, 14,25% dan 15,71%.
Kata Kunci : Buah Kaktus ( Opuntia elatior Mill.), Ekstraksi, Stabilitas Betasianin
*) Coresponding author: ahmadridhay@yahoo.co.id

## LATAR BELAKANG
Buah  Kaktus  ( Opuntia  elatior Mill.) diketahui  mengandung  betasianin  sebesar 47,10  mg/100  ml  (Chauhan et  al., 2013). Betasianin  adalah  zat  warna  alami  yang berwarna  merah.  Zat  warna  betasianin  ini bersifat  polar  sehingga  larut  dalam  pelarut polar (Soewandi dalam Khuluk et al., 2007). Ekstrak  betasianin  dimanfaatkan  sebagai pewarna alami. Betasianin dapat diekstraksi menggunakan  pelarut  air,  etanol,  dan metanol,  tetapi  penggunaan  pelarut  air dalam proses pemekatan perlu diperhatikan karena penggunaan panas dapat mengakibatkan kerusakan senyawa betasianin  sebab  titik  didih  air  cukup  tinggi (100 o C). Betasianin sangat tidak stabil pada pemanasan  suhu  70 0 dan  80 o C  (Havlikova dalam Khuluk et al., 2007). (Azeredo, 2006).
Faktor-faktor yang mempengaruhi kestabilan  betasianin  adalah  pH,  suhu, cahaya matahari, sinar lampu dan oksidator.  Sutrisno  dalam  Khuluk et  al.,
(2007), menyatakan bahwa suhu tinggi dan waktu pemanasan yang lama dapat menyebabkan  terjadinya  dekomposisi  dan perubahan struktur pigmen betasianin sehingga  terjadi  pemucatan.  Berdasarkan hal  tersebut,  maka  diharapkan  penentuan kondisi  pH  betasianin  yang  tepat  dapat mengurangi  tingkat  kerusakan  betasianin selama  masa  penyimpanan  serta  pengaruh paparan  cahaya  terhadap  pengurangan kadar betasianin.

## METODE PENELITIAN Bahan dan Peralatan
Bahan yang digunakan dalam penelitian  ini  adalah  buah  kaktus  ( Opuntia elatior Mill.),  akuades,  etanol  95%,  HCl, NaOH, dan kertas saring.
Peralatan  yang  digunakan  adalah Spektrofotometer  UV-Vis  (Parkin  Elmer) dan alat gelas yang umum digunakan dalam laboratorium.

## Rancangan Penelitian
Penelitian ini menggunakan Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  yang disusun  dengan  variasi  pelarut  (etanol; campuran etanol : air (1 : 1); dan air). Hasil terbaik  kemudian  dilakukan  uji  lanjutan dengan  pengujian  kestabilan  betasianin terhadap paparan cahaya matahari dan pH.

## Prosedur Penelitian
Proses  Ekstraksi  Betasianin  dari  Buah Kaktus (Modifikasi metode  Khuluk et  al., 2007)
Proses  ekstraksi  dilakukan  dengan menggunakan metode maserasi yaitu sebanyak  100  g  jus  buah  kaktus  ( Opuntia elatior Mill.)  dimasukan  ke  dalam  bejana maserasi  kemudian  ditambahkan  pelarut etanol,  campuran  etanol  :  air  (1  :  1)  dan pelarut air masing-masing sebanyak 250 ml kemudian  dilakukan  perendaman    selama 72 jam yang diletakan dalam wadah tertutup pada  suhu  ruang.  Setelah  72  jam  masing- masing sampel kemudian disaring menggunakan  penyaring  vakum.  Filtrat
yang  diperoleh  dipekatkan  menggunakan rotari vakum evaporator  untuk memisahkan pelarut dari ekstrak.
Uji  Kualitatif  Betasianin  dalam  Ekstrak Buah Kaktus
Betasianin ditambahkan dengan NaOH  2  M  tetes  demi  tetes  dan  diamati perubahan  warna.  Uji  positif  ditandai dengan  adanya  perubahan  warna  larutan menjadi  warna kuning. Pengujian  dilakukan sebanyak  3  kali.  Kemudian  dilanjutkan dengan analisis menggunakan spektroskopi Fourier  Transform  Infrared (FTIR)  untuk mengidentifikasi  senyawa  betasianin  dalam ekstrak buah kaktus ( Opuntia elatior Mill.).
Uji  Kuantitatif  Betasianin  dalam  Ekstrak Buah Kaktus
Satu  ml  betasianin  ekstrak  buah kaktus dilarutkan dalam pelarut buffer fosfat pH  5  hingga  volume  100  ml  kemudian diukur serapannya menggunakan spketrofotometer  UV-Vis  pada  panjang gelombang  maksimum  yakni  pada  panjang gelombang  531  nm.  Selanjutnya  dilakukan penentuan  kadar  betasianin  menggunakan persamaan  (Lim et al., 2011) :
Kadar betasianin (mg/100g) =
Keterangan :
A =  Absorbansi MW =  Berat molekul betanin (550 g/mol) Df =  Faktor pengenceran (100) ε =  koefisien  eksistensi  molar  (6x10 4 L/mol cm) L =  Tebal kuvet (1 cm) W =  Berat sampel (100g)
V =  Volume ekstrak (27 ml)
Uji Stabilitas Betasianin (Modifikasi metode Reshmi et al., 2012)
a.  Pengaruh paparan cahaya matahari.
Pada  perlakuan  ini  betasianin  ekstrak buah  kaktus  yang  digunakan  merupakan hasil  ekstrak  menggunakan  pelarut  air. Betasianin ekstrak buah kaktus dimasukkan dalam botol I (botol kaca bening) dan dalam botol  II  (Botol  kaca  berwarna  cokelat) masing-masing 6  ml. Kedua sampel diletakan  pada  luar  ruangan  yang  terpapar sinar  matahari  secara  langsung.  Paparan terhadap  cahaya  matahari  berlangsung selama  5  jam.  Setiap  1  jam  dilakukan analisis sampel menggunakan spektrofotometer  UV-Vis  sampai  5  jam. Perlakuan dilakukan sebanyak 2 kali.
b.  Pengaruh pH selama penyimpanan.
Ekstrak betasianin dibuat dalam kondisi  pH  yang  berbeda-beda  yakni  pH 3,4,5,6,7  dan  8  dengan menambahkan  HCl 0,1  M  dan  NaOH  0,1  M  kemudian ditambahkan  larutan  buffer  sitrat  -  fospat. Sampel  disimpan  dalam  botol  kedap  udara serta kedap cahaya dengan waktu penyimpanan  selama  72  jam  pada  suhu ruang,  pH  sampel  diukur  menggunakan  pH meter sebelum dan sesudah masa penyimpanan untuk memastikan tidak adanya  perubahan  pH  pada  sampel. Selanjutnya dilakukan analisi menggunakan spektrofotometer UV-Vis.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Kadar  betasianin  dalam  Ekstrak  Buah Kaktus (Opuntia elatior Mill.)
Kadar  betasianin  dalam  ekstrak  buah kaktus disajikan pada gambar berikut ini :

## Gambar 1. Pengaruh  jenis  pelarut  terhadap kadar betasianin
Ekstrak  yang  diperoleh  menunjukan adanya  perbedaan  yang  signifikan  antara kadar  total  betasianin  yang  menggunakan pelarut  air,  etanol  serta  pelarut  campuran etanol  :  air.  Kadar  betasianin  tertinggi diperoleh menggunakan pelarut air sebesar 15,43  mg/100g  (Gamba  1).  Hal  ini  sesuai dengan  teori  yang  mengatakan  bahwa betasianin  merupakan  zat  warna  yang bersifat  polar  sehingga  dapat  larut  dalam pelarut polar (Soewand dalam Khuluk et al., 2007). Hasil  penelitian  yang  dilakukan  oleh Chauhan et  al., (2013)  menyatakan  bahwa buah kaktus ( Opuntia elatior Mill.) mengandung  betasianin  sebanyak  47,10 mg/100  ml.  Kadar  betasianin  total  yang
diperoleh  dalam  penelitian  ini  menunjukan kadar  total  betasianin  dalam  buah  kaktus ( Opuntia elatior Mill.) sebesar 15,43 mg/100g.  Hasil  yang  diperoleh  sedikit berbeda.  Hal  ini  dapat  terjadi  karena  kadar betasianin dalam suatu tumbuhan dipengaruhi  olh  beberapa  faktor.  Menurut Rukmana  dan  Yunarsih  (1998)  mencatat bahwa  kadar  betasianin  dalam  suatu tanaman dapat dipengaruhi beberapa faktor diantaranya suhu (temperatur), kelembapan udara,  curah  hujan,  sinar  matahari  dan angin.

## Hasil Uji Kualitatif Betasianin
Ekstrak  buah  kaktus  ( Opuntia  elatior Mill.)  positif  mengandung  betasianin  yang ditandai  dengan  adanya  perubahan  warna menjadi warna kuning dengan penambahan NaOH 2 M. Hal ini sesuai dengan teori yang menyatakan  bahwa  penambahan  basa (NaOH)  pada  betasianin  menyebabkan perubahan  warna  menjadi  warna  kuning (Harborne,  1987).  Menurut  Vargas et  al., (2010)  penurunan  pH  akan  menyebabkan perubahan  pigmen  merah  menjadi  warna ungu, sedangkan kenaikan pH menyebabkan  perubahan  menjadi  kuning kecokelatan. Hasil analisis menggunakan spektroskopi Fourier  Transform  Infrared (FTIR) disajikan dalam gambar berikut ini :
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 1 2 3 k a da r be ta s ia ni n (m g/ 1 0 0 g) Pelarut Etanol         Etanol : Air         Air
Gambar 2. Spektrum FTIR senyawa betasianin dalam ekstrak buah kaktus
Menurut hasil identifikasi
menggunakan  spektroskopi  FTIR  (Gambar 2)  menunjukan  adanya  interaksi  molekul dengan radiasi elektromagnetik yang berada  pada  panjang  gelombang  4000 – 500 cm -1 . Pada daerah frekuensi 3393 cm -1 merupakan  gugus  OH  dengan  vibrasi  ulur. Pada  daerah  ini  biasanya  juga  terdapat gugus  NH.  Karena  menurut  Hargis  (1988), pada  daerah  bilangan  gelombang  3700- 2700  cm -1 merupakan  daerah  serapan hydrogen.  Field et  al., (2008)  menyatakan bahwa  nilai  serapan  O-H  berada  pada bilangan gelombang antara 3600-3200 cm -1 .
Ikatan  hydrogen  menyebabkan  puncak melebar  dan  terjadi  pergeseran  ke  arah bilangan  gelombang  yang  lebih  pendek. Pada  bilangan  gelombang  1408,43  cm -1 merupakan  daerah  serapan  C-H  alifatik, 1645  cm -1 merupakan  C=O  dengan  vibrasi ulur  dari  asam  karboksilat,  1363,02  cm -1 merupakan  C=N  vibrasi  ulur,  1074  cm -1
merupakan  ikatan  C-O-C  dengan  vibrasi ulur simetri, 1036 cm -1 merupakan ikatan C- O-C  dengan  vibrasi  ulur asimetri,  706,33 cm -1 merupakan  C-H  yang  terdapat  dalam cincin  benzen.  Hal  ini  sesuai  dengan  teori yang  mengatakan  bahwa  daerah  serapan C-H  cincin  benzen  berada  pada  bilangan gelombang antara 870-675 cm -1 . Berdasarkan  hasil  indentifikasi  spectrum tersebut  dapat  diasumsikan  bahwa  dalam ekstrak  buah  kaktus  ( Opuntia  elatior Mill.) mengandung betasianin.

## Hasil Uji Kuantitatif Betasianin
Uji  kuantitatif  ekstrak  buah  kaktus dilakukan  dengan  analisis  menggunakan spektrofotometer  UV-Vis  diperoleh  nilai serapan maksimum pada panjang gelombang 531 nm. Menurut hasil penelitian  yang  dilakukan  oleh  Chauhan et al., (2013),  betasianin  yang  berasal  dari tanaman  yang  sama  memiliki  nilai  serapan maksimum  pada  panjang  gelombang  538
nm.  Selain  itu,  Cai et  al., (1998)  mencatat bahwa  nilai  serapan  maksimum  ekstrak betasianin  yang  berasal  dari  tanaman  bit ( Beta  vulgaris L.)  memiliki  nilai  serapan maksimum  pada  panjang  gelombang  537 nm.  Hal  ini  sesuai  dengan  teori  yang menyatakan bahwa senyawa betalain menyerap  cahaya  dengan  kuat  pada panjang  gelombang  antara  532-554  nm (Harborne,  1987)  yang merupakan  serapan warna  hijau  sehingga  warna  yang  tampak adalah ungu kemerahan (warna komplementer)  (Tiley  dalam  Moss,  2002). Kadar  betasianin  yang  diperoleh  dengan menggunakan  pelarut  etanol,  campuran etanol  :  air  dan  pelarut  air  masing-masing sebesar 4,94 mg/100g; 11,95 mg/100g; dan 15,42 mg/100g.
Hasil  Uji  Stabilitas  Betasianin  Terhadap Paparan Cahaya Matahari
Perubahan  kadar  betasianin  selama masa penyimpanan ditunjukan dalam gambar berikut ini :
Gambar 3. Grafik  Penurunan  kadar  betasianin selama penyimpanan
Hasil  yang  diperoleh  menunjukan adanya  pengaruh  pada  kadar  betasianin terhadap penyinaran cahaya matahari selama 5 jam pemaparan (Gambar 3). Hasil analisis yang dilakukan pada setiap 1jam, 2 jam, 3 jam, 4 jam dan 5 jam waktu paparan menunjukkan  adanya  penurunan  kadar betasianin  pada  botol  kaca  berwarna cokelat  yaitu  masing –  masing  sebesar 16,92%;  29,09%;  35,31%;  43,47%;  dan 47,35%. Sedangkan  penurunan  kadar betasianin  pada  botol  bening  masing – masing  sebesar  28,23%;  44,37%;  56,85%; 62,09%; dan 66,93%.
Berdasarkan  data  tersebut  dapat dilihat  bahwa  sampel  yang  disimpan  dalam botol  kaca  berwarna  cokelat  mengalami penurunan  kadar  betasianin  lebih  sedikit dibandingkan sampel yang di simpan dalam botol  kaca  bening  (transparan)  selama  5 jam  pemaparan.  Hal  ini  disebabkan  oleh botol kaca yang berwarna cokelat cenderung  menghalangi  sinar  ultraviolet yang beinteraksi dengan betasianin. Sehingga  tingkat  kerusakan  betasianin berkurang  di  bandingkan  pada  botol  kaca yang  bening.  Sehingga  dapat  disimpulkan bahwa  betasianin  tidak  stabil  terhadap paparan  cahaya  matahari.  Hal  ini  sesuai dengan teori yang menyatakan bahwa sinar UV maupun sinar tampak mampu mengeksitasi  electron  π  dari  gugus kromofor ke tingkat  energi yang lebih tinggi (π * ) karena adanya energi yang
16.8 29.05 35.28 43.39 47.28 28.15 44.3 56.81 62.06 66.86 0 10 20 30 40 50 60 70 80 0 1 2 3 4 5 6 P enu ru n an Kadar Bet as ianin ( % ) Waktu Simpan (jam)
botol cokelat botol bening
dipancarkan  oleh  sinar  tersebut  (Azeredo, 2006). Selain itu, Attoe dan von Elbe (1981) mengatakan bahwa oksigen berperan penting sebagai fotokatalis dalam perusakan pigmen betalain. Dengan demikian  energi  yang  dipancarkan  oleh cahaya  matahari  dapat  merusak  struktur betalain  (dalam  hal  ini  betanin)  dan  terurai menjadi asam betalamat dan siklo DOPA. Hasil  Uji  Stabilitas  Betasianin  Terhadap pH Selama Penyimpanan
Hasil  yang  diperoleh  setelah  3  hari penyimpanan menunjukkan adanya penurunan  kadar  betasianin  pada  masing- masing  pH.  Penurunan  kadar  betasianin disajikan dalam grafik berikut ini :
Gambar 4. Grafik  penurunan  kadar  betasianin selama penyimpanan
Data  tersebut  menunjukkan  adanya penurunan  kadar  betasianin  terhadap  pH sampel  selama  masa  penyimpanan.  Hal  ini ditandai  dengan  adanya  perubahan  kadar ekstrak betasianin yang berbeda-beda pada masing-masing pH. Penurunan kadar betasianin  pada  setiap  sampel  yang disimpan pada kondisi pH 3, 4, 5, 6, 7 dan 8
yaitu  masing –  masing  sebesar  16,95%; 15,82%;  14,255;  15,71%;  19,27%;  dan 35,11%  (Gambar  4).    Jackman  dan  Smith (1996) mencatat bahwa betalain relatif stabil diatas  pH  antara  3  sampai  7  dengan mempertimbangkan pemanfaatannya terhadap  tingkat  keasaman  makanan.  Dari hasil yang diperoleh dapat dikatakan bahwa betasianin cenderung stabil pada kondisi pH 4,5  dan  6.  Pada  kondisi  pH  tersebut penurunan kadar betasianin relative sedikit. Adanya  penurunan  kadar  betasianin  ini terjadi akibat rusaknya molekul betasianin.
Von  Elbe  dalam  Vargas et  al., (2010) menyatakan  bahwa  pH  terlalu  rendah  atau terlalu tinggi akan menimbulkan ketidakstabilan  struktur  gugus  kromofor, sehingga  mempengaruhi  intensitas  warna merah  pada  senyawa  betalain.  Penurunan pH  akan  menyebabkan  perubahan  pigmen merah  menjadi  warna  ungu,  sedangkan kenaikan  pH  menyebabkan  perubahan menjadi  kuning  kecokelatan.  Selain  itu kondisi  penyimpanan  yang  tidak  vakum serta  suhu  yang  tidak  konstan  juga  dapat mempengaruhi  kadar  betasianin.  Dimana menurut Herbach et al., (2006) peningkatan pH,  intensitas  cahaya,  oksigen  dan  ion logam  dapat  mempengaruhi  kestabilan betasianin .

## KESIMPULAN
Kadar  betasianin  tertinggi  terdapat dalam  ekstrak  buah  kaktus  ( Opuntia  elatior mill.)  diperoleh  menggunakan  pelarut  air.
16.86 15.82 14.2 15.62 19.26 35.02 0 5 10 15 20 25 30 35 40 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 P enu ru n an

## Kadar
Bet as ianin ( % ) pH
Kadar  betasianin  sangat  dipengaruhi  oleh paparan cahaya matahari selama penyimpanan.  Kadar  betasianin  berkurang sebesar  66,86%  pada  botol  bening  dan 47,28%  pada  botol  cokelat  selama  5  jam penyimpanan.  Betasianin  cenderung  stabil pada  kondisi  pH  4,5  dan  6  selama  3  hari penyimpanan.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Secara  khusus  peneliti  mengucapkan terima  kasih  kepada  Laboran  Kimia  FMIPA Universitas Tadulako.

## DAFTAR PUSTAKA
Attoe,  E.L.  dan  von  Elbe,  J.H.  1981, Photocemical degradation of Betanine and  Selected  Anthocyanins. Journal of Food Science , 46. 1934-1937.
Azeredo, H.M.C., 2006, Betalains:
Properties,  Source,  Applications,  and Stability –  a  Review, International Journal Food Science and Technology . 44:2365-2376.
Cai  Y.,  Sun  M.,  Corke  H.  1998.  Colourant Properties and Stability of Amaranthus betacyanin  piments, Journal  of  Food Aglicultural  and  Food  Chemistry. 46: 4491-4495.
Chauhan  S.P.,  Sheth  N.R.,  Rathod  I.S., Suhagia  B.N.,  Maradia  R.B.    2013. Phytochemical  Screening  of  Fruits  of Opuntia elatior Mill. American Journal of
Pharmatech Research , 3(2): 2249-3387.
Field  L.D.,  Strenhel  S.,  Kalman  J.R.  2008.
Organic  Structures  From  Spectra , Fourth  edition.  England:  John  Wiley and Sons LTD.
Harborne  J.B.  1987. Metode  Fitokimia Penuntun  Cara  Modern  Menganalisis Tumbuhan ,  Edisi  II,  diterjemahkan oleh  Padmawinata  K.,  Sudiro  I., Bandung: ITB.
Hargis  L.G.  1988. Analytical  Chemistry: Principles  And  Technigues. New Jersey: Prentice Hall Inc.
Herbach K.M., Stinizing F.C., Carle R. 2006. Betalain  stability  and  Degradation Structural  and  Chromatic  Aspect, Journal of Food Sience .  71: 41-50. Jackman R.L., Smith, J.L. 1996.
Anthocyanin  and  Betalains,  in  Natural food  colourants ,  pp  244-309,  London:
Blackie Academic and Professional.
Khuluk  A.D.,  Widjarmoko  S.B.,  Murtini  E.S.
2007. Ekstraksi dan Stabilitas Betasianin Daun Darah ( Althernathera dentate )  Kajian  Pelarut  Etanol  :  Air dan  Suhu  Ekstraksi, Jurnal  Teknologi Pertanian . 8(3).
Lim S.D., Yusof Y.A., Chin N.L., Talib R.A.,
Edjan  J.,  Azis  M.G.  2011.  Effect  of
Extraction  Parameters  on  the  Yield  of Betacianins from Pitaya Fruit ( Hylocereus  polyrhizus )  Pulps .  Food,
Agriculture  and  Environment .  9(2):
158-162.
Moss  B.W.  2002. Improving  Quality,  dalam Macdougall,  D.B.  (Ed) Color  in  Food.
145-175. New York: CRC Press LLC.
Reshmi S.K., Aravindhan K.M., Suganya P.
2012. Then Effect of Light,
Temperature,  pH,  on  Stability  of Betacyanin  Pigments  in  Basella  alba Fruit. Asian Journal of Pharmaceutical dan Clinical Research. 5(4): 107-110.
Rukmana R., Yuniarsih Y.O. 1998. Tanaman  Hias  Kaktus, Bandung: Kanisius.
Vargas  F.D.,  Jimenez  A.R.,  Lopez  O.P. 2010.  Natural  Pigments:  Carotenoids,
Anthocyanins, and Betalains - Characteristics, Biosynthesis, Processing,  and  Stability. Critical Reviews in Food Science and Nutrition , 40(3):173-289.