## Profil Strongylids pada Kuda di Jawa Timur

## Strongylids Profile on Horses in East Java
Sesa Puput 1 , Lucia Tri Suwanti 2,4 , Mufasirin 2,4 *, Muchammad Yunus 2 , Endang Suprihati 2 , Eduardus Bimo Aksono 3,4 , Heni Puspitasari 4
1 Magister Ilmu Penyakit dan Kesehatan Masyarakat Veteriner, Universitas Airlangga, Surabaya, Indonesia,
2 Divisi Parasitologi Veteriner, Universitas Airlangga, Surabaya, Indonesia, 3 Divisi Ilmu Kedokteran Dasar Veteriner, Universitas Airlangga, Surabaya, Indonesia, 4 Lembaga Penyakit Tropis, Universitas Airlangga, Surabaya, Indonesia.
* Corresponding author : mufasirin@fkh.unair.ac.id

## Abstrak
Strongylids merupakan golongan cacing yang menginfeksi saluran pencernaan kuda yang terdiri dari Strongylus  vulgaris , Strongylus  equinus , Strongylus  edentates dan  Cyathostomes.  Infeksi  Strongylids  pada kuda  di  Jawa  Timur  belum  ada  data  prevalensi  yang  dilaporkan.  Penelitian  tentang  Strongylids  sangat diperlukan karena cacing ini merupakan salah satu penyebab penyakit zoonosis. Penelitian ini bertujuan untuk mengidentifikasi  Strongylids  yang  menginfeksi  kuda  secara  morfologis.  Identifikasi  Strongylids  dalam penelitian  ini  menggunakan  metode  morfologi.  Sebanyak  65  kotoran  kuda  di  Jawa  Timur  yaitu  di  kota Surabaya, Malang, Kediri, dan Pasuruan diperiksa secara mikroskopis setelah ditampung dengan formalin 10%. Tiga sampel yang positif secara mikroskopis menunjukkan prevalensi 4,6% dengan ukuran rata-rata 60-70µm x 50-60µm dan terjadi perkembangan larva di dalam telur cacing.
Kata kunci: Strongylids, kuda, Jawa Timur, zoonosis

## Abstract
Strongylids  are  a  group  of  worms  that  infect  the  digestive  tract  of  horses  consisting  of  Strongylus vulgaris, Strongylus equinus, Strongylus edentates and Cyathostomes. There is no reported prevalence data on Strongylids infection in horses in East Java. Study on Strongylids is urgently needed because this worm is one of the causes of zoonotic diseases. This study aimed to identify Strongylids that infect horses morphologically. Identification of Strongylids in this study using morphological methods. A total of 65 horse faeces in East Java, i.e. in the cities of Surabaya, Malang, Kediri and Pasuruan were examined microscopically after being  fixed in 10% formalin. Three microscopically positive samples showed a prevalence of 4,6% with an average size of 60-70µm x 50-60µm and larvae developed inside the worm eggs.
Keywords: Strongylids, horse, East Java, zoonotic
Received: 26 November 2022 Revised: 22 December 2022 Accepted: 25 February 2023

## PENDAHULUAN
Strongylids  merupakan  golongan  cacing yang  menginfeksi  saluran  pencernaan  kuda  dan menyebabkan  diare  akut  pada  anak  kuda. Beberapa  praktisi  menggunakan  ivermectin maupun  oxibendazole  untuk  mengobati  jenis cacing ini. Tindakan yang dilakukan bisa berhasil tetapi  beberapa  kasus  tidak  menunjukkan  hasil yang  baik  dikarenakan  terjadinya  resistensi anthelmintik  (Lyons  dan  Tolliver,  2015). Kejadian  Strongylids  masih  banyak  terjadi  pada
kuda di Indonesia dan di Jawa Timur belum ada data prevalensi terhadap jenis cacing Strongylids. Penelitian  Strongylids  sangat  dibutuhkan  di berbagai  belahan  dunia  dikarenakan  cacing  ini salah  satu  penyebab  penyakit  zoonosis  (Taufik dan Hermawan, 2018).
Strongylids merupakan helminthiasis dengan  kebanyakan  kasus  tanpa  gejala  atau asimptomatis  dengan  predileksi  di  usus  halus mamalia.  Kejadian  Strongylids  sebagai  penyakit zoonosis  telah  mempengaruhi  100  juta  orang  di seluruh  dunia.  Manusia  dapat  terinfeksi  jenis
cacing  Strongylids  melalui  perkutan  yaitu  salah satunya  dengan  berjalan  kaki  tanpa  alas  kaki  di daerah yang terkontaminasi larva Strongylids (Ly et al ., 2003).
Di  Indonesia  menunjukkan  prevalensi Strongylids  pada  kuda  cidomo  yang  memiliki sanitasi  kebersihan  yang  buruk  sebesar  12%  di Lombok Timur, tetapi hanya sebatas identifikasi morfologis dan menghitung prevalensi (Setiawan et  al .,  2015).  Beberapa  laporan  menunjukkan prevalensi infeksi Strongylids di Kentucky adalah 30% (156/513 anak kuda). Penelitian Wannas et al .  (2012)  di  distrik  Al-Diwaniyah,  Irak, menemukan prevalensi Strongylids 22,72%.
Pemeliharaan  kuda  di  stable  Jawa  Timur bersifat semi intensif meskipun kadang dilepaskan  untuk  merumput.  Lantai  kandang terbuat dari semen yang dilapisi serbuk kayu dan dibersihkan  setiap  pagi  dan  sore  hari.  Namun beberapa  kuda  yang  dipelihara  terdapat  kuda- kuda  delman  yang  tidak  rutin  diberikan anthelmintik.  Didasari  dari  kenyataan  tersebut perlu  dilakukan  penelitian  mengenai  identifikasi dan  untuk  mengetahui  prevalensi  infeksi  cacing nematoda khususnya golongan Strongylids yang berpotensi zoonosis pada kuda sehingga memudahkan  perencanaan  strategi  pencegahan dan pengobatan serta pengendaliannya.

## METODE PENELITIAN

## Sampel
Sampel  feses  diambil  dari  65  ekor  kuda  di Jawa Timur menggunakan formalin 10%. Sampel dikumpulkan  dari  kotoran  segar  (<12  jam). Sampel  feses  dikumpulkan  secara  oportunistik dan  non  invasif  dari  tanah,  segera  setelah  feses didefekasikan.

## Pemeriksaan Sampel
Pemeriksaan  adanya  Strongylids  secara mikroskopis  dilakukan  secara  bertahap  selama satu  minggu.  Untuk  mengetahui  adanya  telur cacing  pada  sampel  dilakukan  pemeriksaan dengan  menggunakan  metode  natif,  metode sedimentasi,  dan  metode  apung.  Metode  natif memiliki prosedur antara lain, mengambil sedikit feses dengan menggunakan ujung pengaduk kecil
kemudian dioleskan pada kaca objek. Tambahkan setetes  air  dan  ratakan,  tutup  dengan  penutup kaca.  Kemudian  diperiksa  di  bawah  mikroskop dengan  perbesaran  100x-400x  (Subekti et  al ., 2007).
Metode sedimentasi adalah feses dimasukkan  ke  dalam  gelas  plastik  kemudian ditambahkan air dengan perbandingan 1:1. Feses dan  air  diaduk  hingga  rata  lalu  disaring,  hasil saringan dimasukkan ke dalam tabung centrifuge kemudian disentrifugasi selama 2-5 menit dengan kecepatan  1500  rpm.  Supernatan  dibuang, sedangkan  endapan  ditambahkan  air  lagi  seperti langkah  sebelumnya  kemudian  disentrifugasi selama  2-5  menit  dengan  kecepatan  1500  rpm. Proses  ini  diulang  sampai  supernatan  jelas. Setelah  dibersihkan,  supernatan  dibuang  dan dibiarkan  sedikit,  endapan  diaduk  dan  diambil sedikit dengan pipet Pasteur kemudian diletakkan pada  objek  kaca  penutup  dengan  kaca  penutup dan  diperiksa  di  bawah  mikroskop  dengan perbesaran 100x-400x (Mumpuni et al ., 2007). Metode pengapungan yaitu feses dimasukkan  ke  dalam  gelas  plastik  kemudian ditambahkan air dengan perbandingan 1:10. Feses dan  air  diaduk  hingga  rata  lalu  disaring,  hasil saringan dimasukkan ke dalam tabung centrifuge kemudian disentrifugasi selama 2-5 menit dengan kecepatan  1500  rpm.  Supernatan  dibuang, endapan  ditambahkan  air  lagi  seperti  langkah sebelumnya kemudian disentrifugasi lagi selama 2-5 menit dengan kecepatan 1500 rpm. Proses ini diulang  sampai  supernatan  jelas.  Setelah  jernih, supernatan  dibuang  dan  dibiarkan  sedikit, ditambahkan larutan gula jenuh setinggi 1 cm dari mulut  tabung,  kemudian  disentrifugasi  dengan cara  yang  sama.  Setelah  sentrifugasi,  tabung sentrifugasi  diletakkan  pada  rak  tabung  dan ditetesi larutan gula jenuh secara bertahap hingga cairan  terlihat  cembung  pada  mulut  sentrifugasi dan  diletakkan  kaca  penutup  pada  permukaan tabung sentrifugasi selama 5 menit. Kaca penutup diangkat  dan  diletakkan  di  atas  kaca  objek  dan diperiksa di bawah mikroskop dengan perbesaran 100x (Mumpuni et al ., 2007).
Pengukuran  telur  cacing  menggunakan software optilab viewer untuk memperbesar hasil mikroskop  di  komputer  dan  image  raster  untuk
pengukuran  Panjang  dan  lebar  telur.  Bila  pada pemeriksaan sampel feses positif ditemukan telur cacing  maka  untuk  mengetahui  prevalensinya dihitung dengan menggunakan rumus:
Prevalensi = Jumlah sampel positif x 100% Jumlah sampel yang diuji

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Dari  total  65  sampel  feses  yang  diuji, terdapat tiga sampel positif yang berasal dari kota Surabaya (Tabel 1). Dari perhitungan prevalensi 4,6%  lebih  rendah  jika  dibadingkan  dengan
prevalensi Strongylids di Lombok Timur dengan besar prevalensi 12% (Setiawan et al ., 2015), dan di Irak sebesar 22% (Wanans et al , 2012).
Perbedaan prevalensi juga dipengaruhi oleh letak  geografis  suatu  wilayah  dan  sanitasi  di kandang tersebut (Hasegawa et al. , 2009). Sampel positif di dapat dari kuda dengan umur relatif tua yaitu  rentang  usia  5-10  tahun  sehingga  infeksi yang  didapat  termasuk  infeksi  ringan  hingga sedang.  Sesuai  dengan  penelitian  Oka  (2014), menyatakan  bahwa  kuda  dengan  usia  diatas  4 tahun  memiliki  imunitas  lebih  tinggi  sehingga jika terjadi infeksi akan terjadi infeksi ringan.
Tabel 1. Hasil pemeriksaan cacing golongan Strongylids secara mikroskopis
Kota Jumlah Sampel Pemeriksaan Positif Negatif Surabaya 30 3 (4,61%) 27 (41,54%) Malang 10 0 10 (15,38%) Kediri 11 0 11 (16,92%) Pasuruan 14 0 14 (21,54%) Total 65 3 (4,61%) 62 (95,38%)
Gambar 1. Telur cacing Strongylids dengan ukuran 60µm x 50µm pada feses kuda di Jawa Timur. (A1) pembelahan blastomere, (A2) pembentukan larva, (A3) pembentukan larva bergerak, (B1) telur cacing Strongylids dengan ukuran 70µm x 60µm.
Penelitian di Kentucky Tengah menyatakan prevalensi  Strongylids  pada  kuda  tahun  2014 berdasarkan  keberadaan  telur  Strongylids  dalam feces  anak  kuda  Thoroughbred,  prevalensinya adalah  0-46%  dengan  rata-rata 28%  untuk  kuda jantan, 16-59% dengan rata-rata 33% untuk kuda betina,  dan  data  gabungan  untuk  kedua  jenis kelamin  adalah  15-49%  dengan  rata-rata 30%. Prevalensi  yang  berkurang  kemudian  dikaitkan dengan penggunaan anthelmintik yang efektif
secara  ekstensif  seperti  thiabendazole  dan ivermectin (Lyons dan Tolliver, 2014).
Telur cacing Strongylids yang di dapat dari pemeriksaan  mikroskopis  memiliki  ukuran  rata- rata 60-70µm x 50-60µm dengan terdapat larva di dalamnya (Gambar 1). Hal tersebut sesuai dengan penelitian yang dilakukan Andersen et al . (2013), tentang  perkembangan  Strongylids  dimulai  dari perkembangan embrio yang memulai pembelahan blastomere  untuk  berubah  menjadi  larva  hingga
larva  bergerak  dan  pada  akhirnya  larva  terlepas dari  telur.  Terlepasnya  larva  1  dari  telur  cacing dibutuhkan  waktu  selama  4  jam  pada  suhu  20- 30°C (Anderson et al ., 2012). Tidak ada indikasi klinis  diare  yang  disebabkan  oleh  Strongylids yang  diamati  dalam  beberapa  penelitian.  Tiga sumber larva dapat berkembang menjadi dewasa pada anak kuda parasit L3 dalam air susu induk dan  L3  tertelan  bersama  makanan  atau  masuk melalui  kulit.  Tidak  ada  bukti  infeksi  prenatal Strongylids  yang  terdeteksi  dalam  penelitian ekstensif (Lyons dan Tolliver, 2015).
Infeksi endoparasit cacing atau helminthiasis dari hewan ternak memiliki angka kematian yang rendah,  namun  memiliki  efek  langsung  pada produktivitas  peternakan  dan  dampak  zoonosis helminthiasis  terhadap  kesehatan  masyarakat yang besar (Abbas et al. , 2021). Kesehatan pada hewan  ternak  termasuk  kuda  perlu  diperhatikan, karena  berkaitan  dengan  tujuan  pemeliharaan serta aspek resiko penularan penyakit dari hewan ke  manusia  atau  bersifat  zoonosis  (Triakoso, 2009).

## KESIMPULAN
Jenis cacing Strongylids pada kuda di Jawa Timur terdapat dua jenis ukuran telur dengan rata- rata  ukuran  60-70µm  x  50-60µm  dan  memiliki prevalensi sebesar 4,61% (3/65).

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis  ingin  mengucapkan  terima  kasih kepada pemilik stable troter, stable pandesa, dan beberapa  pemilik  kuda  dokar  di  wilayah  Jawa Timur  yang  mengizinkan  mengambil  sampel feses kuda sehingga terlaksana penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Abbas, G., Ghafar, A., & Koehler, K. H. (2021).
Molecular  detection  of  Strongyloides  in Australian  Thoroughbred  foals. Parasites Vectors , 5(2), 14-44.
Andersen, U., Haakansson, I. T., Roust, T., Rhod,
M., & Baptiste, K. M. (2013).
Developmental  stage  of  strongyle  eggs affects  the  outcome  variations  of  real-time PCR analysis. Veterinary Parasitology , 191,
1-2.
Anderson, J., Upadhayay, R., Sudimack, D., Nair,
S.,  Leland,  M.,  &  Williams,  J.  T.  (2012). Trichuris sp . and Strongylids infections in a free-ranging baboon colony. Journal Parasitology , 98(1), 205-8.
Hasegawa, H., Hayashida, S., Ikeda, Y., & Sato,
H.  (2009).  Hyper-variable  regions  in  18S rDNA  of Strongylids  spp .  as  markers  for species-specific  diagnosis. Parasitology Research , 104(4), 869-74.
Ly,  M.  N.,  Bethel,  S.  L.,  Usmani,  A.  S.,  &
Lambert, D. R. (2003). Cutaneous Strongylids stercoralis infection: an unusual presentation. Journal  American  Academy Dermatology , 157, 60.
Lyons,  E.  T.,  &  Tolliver,  S.  C.  (2014).
Strongyloides westeri and Parascaris equorum :  Observations  in  field  studies  in Thoroughbred  foals  on  some  farms  in Central  Kentucky,  USA. Helminthologia , 51(7), 304-312.
Lyons, E. T., & Tolliver, S. C. (2015). Review of some features of the biology of Strongylids westeri with  emphasis  on  the  life  cycle.
Helminthologia , 25(3), 286-292.
Mumpuni,  S.,  Subekti,  S.,  Setiawan,  K., Puspitawati,  H.,  &  Kusnoto.  (2007).
Penuntun Praktikum Ilmu Penyakit
Helminth  Veteriner.  Fakultas  Kedokteran Hewan Universitas Airlangga. Surabaya.
Oka, D. I. B. M. (2014). Identifikasi Jenis Cacing Nematoda  Pada  Saluran  Gastrointestinal Kuda Penarik Cidomo di Kecamatan Selong,
Lombok Timur. Indonesia Medicus Veterinus , 19(1), 6-11.
Setiawan,  D.  K.,  Made,  D.,  &  Ida,  O.  (2015).
Identifikasi  Jenis  Cacing  Nematoda  Pada Saluran  Gastrointestinal  Kuda  Penarik Cidomo  di  Kecamatan  Selong,  Lombok Timur. Indonesia Medicus Veterinus . 22(5),
2477-6637.
Subekti, S., Sosiawati, S. M., & Kusnoto. (2007).
Ilmu Penyakit Nematoda Veteriner. Departemen  Pendidikan  dan  Kebudayaan.
Fakultas  Kedokteran  Hewan  Universitas
Airlangga. Surabaya.
Taufik, I, & Hermawan, H.  (2018). Anemia and Eosinophilia  in  Traditional  Goat  Farmers:
Early  Markers  of  Strongyle  Zoonoses.
Jurnal Veteriner , 19(3).
Triakoso, N. (2009). Aspek Klinik dan Penularan
pada Pengendalian Penyakit Ternak. Departemen Klinik Veteriner PKH Universitas Airlangga. Wannas, H. Y., Dawood, K. A., & Gassem, G. A.
(2012).  Prevalence  of  Gastro-  intestinal
Parasites  in  Horses  and  Donkeys  in  Al Diwaniyah Governorate. AL-Qadisiya Journal of Veterinary Medical Science , 6(4),
37-45.
***