## IDENTIFIKASI DAN UJI SENSITIVITAS BAKTERI PADA PLAK GIGI PASIEN DI PUSKESMAS RANOTANA WERU MANADO TERHADAP ANTIBIOTIK GOLONGAN PENISILIN DAN KUINOLON
Rahmiati Muhtar 1) , Fatimawali 1) , Widdhi Bodhi 1)
1) Program Studi Farmasi FMIPA UNSRAT Manado, 95115

## ABSTRACT
Dental  plaque  is  a  soft  layer  consists  of  a  collection  of  bacteria  which  can  cause  a  wide variety  of  dental  and  oral  diseases,  such  as  gingivitis,  dental  caries  and  periodontal  disease. Periodontal treatment is often done with systemic antibiotic therapy. The purpose of this study were to determine the type of bacteria and the level of sensitivity of bacteria which grow on LB media were isolated and identified in dental plaque of patients against the penicillins and quinolones antibiotics. This research used descriptive explorative methods with the study prospective approach. The bacteria obtained from three samples of dental plaque were identified by biochemical tests, physiological tests and gram stain. Bacterial sensitivity was tested using disc diffusion method. As a results, 8 kinds of bacteria were obtained from this study, namely Streptococcus sp., Lactobacillus sp., Actinomyces sp., Veillonella sp., Staphylococcus sp., Actinobacillus sp., Fusobacterium sp., and Escherichia sp., with the highest sensitivity to ciprofloxacin (93,75%) and the highest resistance to amoxicillin (93,75%), so that  the  ciprofloxacin  antibiotic  can  be  used  as  one  of  appropriate  antibiotic  therapy  against  the problem of dental plaque.

## Keywords : Dental Plaque, Bacteria, Sensitivity, Antibiotics

## ABSTRAK
Plak  gigi  adalah  suatu lapisan  lunak  terdiri  atas  kumpulan  bakteri  yang  dapat  menyebabkan berbagai  macam  penyakit  gigi  dan  mulut,  terutama  gingivitis,  karies  gigi  dan  penyakit  periodontal. Perawatan periodontal sering dilakukan terapi dengan antibiotik sistemik. Tujuan penelitian ini untuk mengetahui jenis bakteri dan tingkat  sensitivitas bakteri yang tumbuh pada media LB yang diisolasi dan  diidentifikasi  pada  plak  gigi  pasien  terhadap  antibiotik  golongan  penisilin  dan  kuinolon. Penelitian ini menggunakan metode deskriptif eksploratif dengan pendekatan studi prospektif. Bakteri diperoleh dari 3 sampel plak gigi dan diidentifikasi dengan uji biokimia, uji fisiologi dan pewarnaan gram.  Uji  sensitivitas  bakteri  menggunakan  metode  difusi  cakram.  Hasil  penelitian  ini  diperoleh  8 jenis  bakteri,  yaitu Streptococcus  sp., Lactobacillus  sp. , Actinomyces  sp. , Veillonella  sp. , Staphylococcus  sp., Actinobacillus  sp. , Fusobacterium  sp. , dan Escherichia sp., dengan  sensitivitas tertinggi  terhadap  siprofloksasin  (93,75%)  dan  resisten  tertinggi  terhadap  amoksisilin  (93,75%), sehingga  antibiotik  siprofloksasin  dapat  dijadikan  sebagai  salah  satu  pilihan  terapi  antibiotik  yang tepat untuk masalah plak gigi.
Kata kunci : Plak Gigi, Bakteri , Sensitivitas, Antibiotik

## PENDAHULUAN
Plak gigi adalah suatu lapisan lunak terdiri  atas  kumpulan  bakteri yang berkembang  biak  di  atas  suatu  matriks, terbentuk dan melekat erat pada permukaan  gigi  yang  tidak  dibersihkan, merupakan  salah  satu  faktor  terjadinya proses karies dan inflamasi jaringan lunak. Bakteri  di  dalam  plak  yang  berakumulasi dapat  menyebabkan  terjadinya  berbagai macam  penyakit  gigi  dan  mulut,  terutama gingivitis,  karies  gigi  dan  penyakit periodontal (Notohartojo, 2005).
Plak  gigi  selain  menyebabkan masalah  di  rongga  mulut,  dapat  juga mengganggu penampilan seseorang.
Pembentukan  plak  gigi  bermula  dari adanya  pelikel  yang  merupakan  lapisan aseluler  berprotein  yang  melapisi  gigi, terdiri dari salivary glycoproteins, phosphoproteins ,  lemak,  komponen  dari gingival crevicular  fluid ,  sisa  dinding  sel bakteri  yang  mati,  dan  produk  hasil mikroba  lain.  Komposisi  pelikel  tersebut berperan penting dalam menentukan komposisi  mikroflora  awal  (Lindhe et  al , 2008).
Mikroorganisme awal yang berperan  dalam  pembentukan  plak  gigi adalah  bakteri  yang  mampu  membentuk polisakarida ekstrasel dari genus Streptococcus ,  yang  didominasi  oleh
Streptococcus mutans . Bakteri ini merupakan  flora  normal  dalam  rongga mulut  dan  dapat  berubah  menjadi  patogen apabila  terjadi  peningkatan  jumlah  koloni yang berlebihan, sehingga pertumbuhannya harus dihambat agar tidak menjadi patogen (Putri dkk, 2011).
Semakin tua usia, jenis bakteri plak gigi  pada  jaringan  periodontal  sehat  akan berubah  dengan  semakin  banyaknya  gram negatif  seperti Fusobacterium  nucleatum,
Porphyromonas gingivalis, Prevotella intermedia dan EikeIla  corodens, jadi umur  individu  sangat  menentukan  jenis bakteri plak gigi pada jaringan periodontal sehat (Darveau et al , 2000).
Dalam  praktek  kedokteran  gigi tidak  semua  jenis  antibiotik  digunakan, hanya  beberapa  jenis  saja  yang  umum digunakan.  Terapi  antibiotik  sistemik untuk  perawatan  periodontal  biasanya monoterapi meliputi amoxicillin, metronidazole,  tetracyclines  (tetracycline, doxycycline,  minocycline),  clindamycin dan ciprofloxacin (Andriani, 2012).

## METODOLOGI PENELITIAN Waktu dan Tempat
Penelitian  ini  dilaksanakan  dari bulan  November  2016  sampai  bulan  Juni 2017.  Tempat  pelaksanaan  dilakukan  di poli  gigi  Puskesmas  Ranotana  Weru  dan laboratorium
Mikrobiologi dan Biomolekuler  Program  Studi  Farmasi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Sam
Ratulangi.

## Jenis Penelitian
Penelitian yang dilakukan
menggunakan metode deskriptif eksploratif dengan pendekatan studi prospektif. Pengambilan  sampel dilakukan dengan cara mengambil 3 sampel plak gigi pasien  dengan  rentang  usia  sampel  1 (Anak) 7-10 tahun, sampel 2 (Dewasa) 40- 45  tahun  dan  sampel  3  (Lansia)  70-75 tahun  di  poli  gigi  Puskesmas  Ranotana Weru  dari  tanggal  2  September  –    9 September 2016.

## Alat dan Bahan
Alat yang digunakan dalam penelitian ialah cawan petri ( Normax ), vial sampel plak gigi, lampu bunsen, inkubator ( Incucell ),  tabung  reaksi  ( Pyrex ),  kaca
objek,  mikroskop  ( Olympus ),  jarum  ӧse, erlenmeyer  ( Approx ),  gelas  ukur  ( Pyrex ), gelas  kimia  ( Approx ),  rak  tabung  reaksi, plastik wrap ,  aluminium  foil,  kapas,  kasa, timbangan  analitik  ( Kern ),  pinset,  laminar air flow ( Biotek ), autoklaf (ALP),
mikropipet  ( Ecopipette ), L-Glass ,  vortex ( Benchmark ),  mistar  berskala  dan  alat fotografi.  Sampel  yang  digunakan  ialah plak  gigi.  Bahan  kimia  yang  digunakan ialah  lugol,  alkohol  96%,  kristal  violet, aquades,  safranin,  NaCl  0,9%,  H 2 SO 4 dan BaCl 2 .  Antibiotik  yang  digunakan  ialah Amoksisilin  dan  Siprofloksasin  dalam bentuk  cakram.  Media  yang  digunakan ialah Luria  Bertani  Agar ( yeast  extract, agar bacteriological, dan tripton ), Simmon’s  Citrate  Agar ( Oxoid ), Lysine Iron Agar ( Oxoid ), Triple Sugar Iron Agar ( Oxoid ).

## Prosedur Kerja
A. Sterilisasi Alat Alat-alat  yang  digunakan  dalam penelitian aktivitas antibakteri ini disterilkan  terlebih  dahulu.  Alat-alat  gelas dan media disterilkan dalam autoklaf pada suhu  121 C  selama  15  menit.  Sedangkan jarum  ӧse  dan  pinset  dan L-Glass dipijarkan  dengan  pembakaran  diatas  api langsung (Lay dan Hastowo, 1992).

## B. Pembuatan Media
Pembuatan Media Luria Bertani Agar
Media LB dibuat dengan menimbang tripton sebanyak 2 gram, NaCl sebanyak 2 gram, yeast extract sebanyak 1 gram dan agar bacteriological sebanyak 3 gram,  kemudian  dimasukan  kedalam Erlenmeyer dan dilarutkan bersama aquades  sebanyak  200  mL  kemudian dihomogenkan. Media yang sudah homogen  ini  disterilkan  dalam  autoklaf pada  suhu  121 C  selama  15  menit,
kemudian dituangkan pada masing-masing cawan  petri  sebanyak  20  mL  dan didinginkan  sampai  memadat.  Media  ini digunakan  untuk  inokulasi  bakteri  dan  uji kepekaan terhadap antibiotik.
Pembuatan  Media Luria  Bertani  Agar Miring
Media
LB dibuat dengan menimbang  tripton  sebanyak  0.5  gram,
NaCl  sebanyak  0.5  gram, yeast  extract sebanyak 0.25 gram dan agar bacteriological sebanyak  0.75  gram, kemudian dimasukan kedalam Erlenmeyer dan  dilarutkan  bersama  aquades  sebanyak 50  ml  kemudian  dihomogenkan.  Media yang sudah homogen ini disterilkan dalam autoklaf  pada  suhu  121 C  selama  15 menit, kemudian dituangkan pada masing- masing  tabung  reaksi  sebanyak  5  mL  dan didinginkan sampai memadat pada kemiringan 30 .
C. Inokulasi Bakteri Pada Media
Pengenceran  dilakukan  sebanyak  4 kali  pada  tiap  sampel  dengan  mengambil plak  gigi  sebanyak  1  mL  kemudian dimasukkan  pada  tabung  reaksi  pertama yang  telah  berisi  9  mL  NaCl  0,9%. Kemudian  diambil  lagi  1  mL  suspensi bakteri dari tabung pertama dimasukkan ke tabung reaksi kedua dan seterusnya sampai tabung  reaksi  ke  4.  Selanjutnya  dipipet sebanyak  1000  μL  suspense  bakteri  pada masing-masing pengenceran dan dituangkan  keatas  media Luria  Bertani Agar Plate yang sudah memadat. Selanjutnya  di Seal Cawan  petri  dengan Plastik Wrap.
Plak gigi yang mengandung bakteri yang  telah  ditanamkan  pada  media Luria Bertani  Agar  Plate selanjutnya  diinkubasi dalam  inkubator  pada  suhu  35-36 C.
Biakan  diamati  setelah  inkubasi  selama minimal 18 jam, tetapi reinkubasi tambahan selama 24 jam diindikasikan jika
pada  pertumbuhannya  kurang  dari  yang perkiraan,  atau  jika  hanya  terdapat  sedikit koloni (Vandepitte et al , 2010).
D. Isolasi Bakteri Setiap koloni yang telah
ditanamkan  pada  media Luria  Bertani Agar  Plate diambil  menggunakan  jarum ӧse  untuk  dipindahkan  ke  media  agar  di dalam  cawan  petri  dengan  membentuk garis zig-zag selanjutnya diinkubasi dalam inkubator pada suhu  35-36 C selama ± 18 – 24 jam. Setelah itu, bakteri yang tumbuh dalam  media  agar  dalam  cawan  petri tersebut kemudian dipindahkan
menggunakan jarum ose dengan membentuk  garis  zig-zag  ke  media  agar miring  untuk  mendapatkan  isolat  bakteri selanjutnya  diinkubasi  dalam  inkubator pada  suhu  35-36 C  selama  ±  18  –  24  jam (Vandepitte et al, 2010).
E. Identifikasi Bakteri
Hasil yang diperoleh akan dibandingkan dengan petunjuk yang terdapat
dalam Bergey’s Manual
Determinative of Bacteriology.
Uji Biokimia
Identifikasi bakteri secara uji biokimia  menggunakan  uji  indol,  uji katalase, uji H 2 S, uji fermentasi karbohidrat,  uji  lisin,  uji  sitrat,  dan  uji motilitas.

## Uji Morfologi (Pewarnaan Gram)
Uji  morfologi  dilakukan  dengan pewarnaan  gram  yang  bertujuan  untuk memudahkan  melihat  bakteri  dengan mikroskop, memperjelas ukuran dan bentuk  bakteri,  melihat  struktur  luar  dan struktur  dalam  seperti  dinding  sel  dan vakuola, menghasilkan sifat-sifat  fisik  dan kimia  yang  khas  dari  bakteri  dengan  zat warna,  serta  menentukan  bentuk  bakteri apakah berupa basil, kokus atau spiral. Berikut ini adalah tahap pewarnaan gram :
1. Kaca  objek  dibersihkan  dengan  kapas yang  telah  diberi  alkohol  lalu  diberi label.  Biakan bakteri pada media agar miring  diambil  dengan  menggunakan jarum  ose,  kemudian  ditotol  pada bagian tengah kaca objek
2. Preparat  selanjutnya  diberikan  satu tetes  aquades  kemudian  difiksasi diatas lampu bunsen.
3. Kemudian  preparat  diberikan  satu tetes larutan cristal violet dan dibiarkan  selama  1  menit,  lalu  dicuci dengan  air  mengalir  lalu  dikeringkan dengan kertas tisu
4. Kemudian  preparat  diberikan  satu tetes  larutan  lugol  dan  dibiarkan selama  1  menit,  lalu  dibilas  dengan alkohol  kemudian  dicuci  dengan  air mengalir  dan  dikeringkan  dengan kertas tisu (jangan digosok)
5. Setelah itu, diberikan satu tetes larutan safranin  selama  1  menit  dan  dicuci kembali  dengan  air  mengalir  dan dikeringkan dengan kertas tisu
6. Preparat  kemudian  diberikan  minyak imersen lalu diperiksa dibawah mikroskop pada perbesaran 400 kali.
Hasil pengamatan dicatat kemudian difoto.  Bakteri  yang  tetap  berwarna  ungu meskipun  disertai  pewarna  oleh  zat  warna kontras  merupakan  bakteri  gram  positif. Sedangkan  bakteri  yang  tidak  dapat menahan  zat  warna  setelah  dikolorisasi dengan  alkohol  akan  menjadi  tidak berwarna  dan  bila  diberikan  pewarnaan dengan warna kontras akan berubah sesuai dengan  zat  warna  kontras  (merah  muda), bakteri  tersebut  merupakan  bakteri  gram negatif (Fatimawali, 2016).
F. Uji Sensitivitas
Bakteri Terhadap Antibiotik Pembuatan Larutan Mc Farland 0,5
Larutan  H 2 SO 4 1  %  sebanyak  9,95 mL  dicampurkan  dengan  larutan  BaCl 2
1,175  %  sebanyak  0,05  mL  dalam  tabung reaksi. Kemudian dikocok sampai terbentuk  larutan  yang  keruh.  Kekeruhan ini  dipakai  sebagai  standar  kekeruhan suspense  bakteri  uji  (Bresson  dan  Borges, 2004).

## Pembuatan Suspensi Bakteri Uji
Bakteri  uji  yang  telah  diinokulasi diambil  dengan  jarum  ӧse  steril  lalu disuspensikan ke dalam tabung yang berisi 5 mL larutan NaCl 0,9% hingga diperoleh kekeruhan  yang  sama  dengan  standar kekeruhan  larutan Mc.  Farland 0,5.
Perlakuan  yang  sama  dilakukan  pada setiap  jenis  bakteri  uji  (Davis  and  Stout, 1971).

## Penanaman Cakram Antibiotik
Dipipet suspensi bakteri uji
sebanyak  200  μL  dan  dituangkan  ke seluruh  permukaan  media Luria  Bertani Agar s Plate selanjutnya diratakan menggunakan L-Glass dan diamkan selama  5  menit.  Tempatkan  cakram amoxicilin  25  μg  dan  siprofloxacin  5  μg, pada  permukaan  media Luria  Bertani Agar s Plate. Cakram  Antibiotik  ditekan menggunakan pinset agar dapat menempel secara  sempurna  di  permukaan  agar. Selanjutnya  diinkubasi  pada  suhu  37 C selama 18-24 jam. Dibuat tiga kali ulangan pada  cawan  petri  yang  berbeda  (Kumala dkk, 2010).
Pengukuran dan Penetapan Zona

## Hambat
Setelah  inkubasi,  diamati  zona pertumbuhan  bakteri  di  sekitar  cakram antibiotik  amoksisilin  dan  siprofloksasin. Tingkat resistensi bakteri dibedakan menjadi 3 yakni : sensitif, intermediet, dan resisten.  Bakteri  bersifat  sensitif  adalah jika  terbentuk  zona  bening  di  sekitar cakram antibiotik. Bakteri bersifat resisten adalah jika tidak terbentuk  zona bening di sekitar  cakram  antibiotik,  dan  intermediet
adalah  jika  terbentuk  zona  bening  dengan diameter  yang  kecil  di  sekitar  cakram antibiotik.  Daerah  hambatan  antibiotik terhadap  pertumbuhan  bakteri  diukur menggunakan  mistar  berskala  atau  jangka sorong dengan satuan mm. Kemudian zona hambatan dibandingkan berdasarkan pedoman  CLSI  ( Clinical  and  Laboratory Standards Institute ).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil isolasi dan identifikasi dari 3 sampel plak gigi diperoleh 16 isolat bakteri yang dapat dilihat dalam Tabel berikut : Tabel 1.  Hasil Identifikasi Isolat Bakteri
Kode Isolat Hasil Identifikasi bakteri S1.10 1 .1 Streptococcus sp. S1.10 2 .1 Lactobacillus sp. S1.10 3 .1 Actinomyces sp. S1.10 4 .1 Streptococcus sp. S2.10 1 .1 Veillonella sp. S2.10 2 .1 Staphylococcus sp. S2.10 3 .1 Actinobacillus sp. S2.10 3 .2 Actinobacillus sp. S2.10 4 .1 Fusobacterium sp. S3.10 1 .1 Actinobacillus sp. S3.10 1 .2 Lactobacillus sp. S3.10 2 .1 Staphylococcus sp. S3.10 2 .2 Escherichia sp. S3.10 3 .1 Actinobacillus sp. S3.10 3 .2 Escherichia sp. S3.10 4 .1 Actinobacillus sp.
Hasil Isolasi dan Identifikasi bakteri  yang  diperoleh  dari  sampel  plak gigi  pasien  di  Puskesmas Ranotana Weru Manado dengan uji morfologi, uji biokimia,  dan  uji  fisiologi  terdapat  8  jenis bakteri  yang  teridentifikasi  berdasarkan buku Bergey’s  Manual  of  Determinative Bacteriology ,  yaitu Streptococcus  sp., Lactobacillus sp. , Actinomyces sp. , Veillonella sp. , Staphylococcus sp., Actinobacillus sp. , Fusobacterium sp. , dan
Escherichia sp. Dari  hasil  penelitian  ini juga  dapat  dilihat  bahwa  sampel  plak  gigi pasien  dengan  rentang  usia  sampel  1 (Anak)  7-10  tahun  semua  jenis  bakterinya adalah  gram  positif,  sampel  2  (Dewasa) 40-45  tahun  didominasi  oleh  bakteri  gram negatif dan sampel 3 (Lansia) 70-75 tahun didominasi  oleh  bakteri  gram  negatif.  Hal ini sesuai dengan data yang dilaporkan dari Darveau et  al ,  2000  bahwa  bakteri penyebab  plak  gigi  diantaranya :  Pada individu  berusia  muda  dengan  jaringan periodontal  sehat,  plak  gigi  didominasi oleh bakteri gram positif seperti Streptococcus dan Actinomyces sp . Semakin  tua  usia,  jenis  bakteri  plak  gigi pada  jaringan  periodontal  sehat  akan berubah  dengan  semakin  banyaknya  gram negatif  seperti Fusobacterium  nucleatum, Porphyromonas gingivalis, Prevotella intermedia dan EikeIla  corodens. Pada penderita  periodontitis,  komposisi  bakteri plak  gigi  akan  semakin  kompleks  dan lebih  didominasi  oleh  gram  negatif anaerob  total.  Diketahui  bahwa  bakteri seperti P. gingivalis, Bacteroides forsythus dan Actinobacillus actinomycetemcomitans merupakan  bakteri  penyebab  kerusakan jaringan lunak periodontal maupun
jaringan  tulang  alveolar. Jadi umur individu  juga  menentukan  jenis  bakteri plak  gigi  pada  jaringan  periodontal  sehat. Penyakit periodontal lebih banyak dijumpai pada orang tua, meskipun kondisi ini  lebih  sering  dihubungkan  sebagai kerusakan jaringan kumulatif selama hidup (proses  penuaan)  dan  perubahan  fisiologis yang terjadi.
Uji  Sensitivitas  Bakteri  Terhadap
Antibiotik Sensitivitas bakteri terhadap
antibiotik  diperoleh  melalui  pengukuran diameter  zona  hambatan  yang  terbentuk setelah  penempelan  cakram  antibiotik. Hasil pengukuran zona hambat selanjutnya dibandingkan  dengan  standar  diameter zona  hambatan  berdasarkan  pedoman CLSI  ( Clinical  and  Laboratory  Standards Institute ). Pada uji sensitivitas digunakan 2 jenis cakram antibiotik, yaitu Siprofloksasin  dan  Amoksisilin.  Berikut merupakan  Tabel  yang  memuat  hasil  uji sensitivitas  bakteri  terhadap  antibiotik Siprofloksasin  dan  Amoksisilin.  Untuk distribusi  frekuensi  pola  sensitivitas bakteri  terhadap  siprofloksasin  dapat dilihat pada Tabel 2 berikut :
Tabel 2. Distribusi Frekuensi Pola Sensitivitas Terhadap Siprofloksasin
Bakteri Siprofloksasin Sensitif                       Intermediet                     Resisten Streptococcus sp. 2 0 0 Lactobacillus sp. 2 0 0 Actinomyces sp. 1 0 0 Veillonella sp. 1 0 0 Staphylococcus sp. 2 0 0 Actinobacillus sp. 5 0 0 Fusobacterium sp. 1 0 0 Escherichia sp. 1 1 0 Total 15 (93,75%) 1 (6,25%) 0 (0%)
Antibiotik  siprofloksasin  memiliki tingkat sensitif sebesar 93,75%,
intermediet  sebesar  6,25%  dan  resisten sebesar 0%. Hal ini menunjukan antibiotik siprofloksasin  sensitif  terhadap  bakteri yang  diisolasi  dari  plak  gigi  pasien  di Puskesmas Ranotana Weru Manado. Hasil yang diperoleh ini sesuai dengan penelitian (Yadav et  al ,  2015)  dimana  sensitivitas bakteri  gram  positif  terhadap  antibiotik siprofloksasin sebesar 94,27% dan
sensitivitas  bakteri  gram  negatif  terhadap siprofloksasin  sebesar  100%.  Terjadinya
sensitivitas bakteri terhadap siprofloksasin yang  merupakan  antibiotik  golongan kuinolon  ini  disebabkan  karena  golongan ini  menghambat  kerja  enzim  DNA  girase pada  kuman  dan  bersifat  bakterisidal. Penghambatan  suatu  antibiotika  terhadap bakteri  penyebab  infeksi  juga  bergantung pada spektrum antibiotik. Spektrum adalah luas aktivitas obat  anti-mikrobial terhadap suatu  jenis  bakteri.  Antibiotika  dengan spektrum luas efektif baik terhadap bakteri gram  negatif  maupun  bakteri  gram  positif (Soekardjo, 2000).
Tabel 3. Distribusi Frekuensi Pola Sensitivitas Terhadap Amoksisilin
Bakteri Amoksisilin Sensitif                      Intermediet                     Resisten Streptococcus sp. 0 0 2 Lactobacillus sp. 0 0 2 Actinomyces sp. 0 1 0 Veillonella sp. 0 0 1 Staphylococcus sp. 0 0 2 Actinobacillus sp. 0 0 5 Fusobacterium sp. 0 0 1 Escherichia sp. 0 0 2 Total 0 (0%) 1 (6,25%) 15 (93,75%)
Antibiotik  amoksisilin  memiliki tingkat  sensitif  sebesar  0%,  intermediet sebesar  6,25%  dan  resisten  sebesar 93,75%.    Hal  ini  menunjukan  antibiotik amoksisilin  resisten  terhadap  bakteri  yang diisolasi dari plak gigi pasien di Puskesmas Ranotana Weru Manado. Hasil yang diperoleh ini sesuai dengan penelitian (Rodriguez et  al ,  2014)  dimana  bakteri yang  diisolasi  sudah  mengalami  resistensi terhadap  antibiotik  amoksisilin.  Resistensi terhadap  amoksisilin  yang  merupakan antibiotik  golongan  penisilin  disebabkan oleh  beberapa  mekanisme  resistensi,  yaitu :  pembentukan  enzim  yang  merusak penisilin  yaitu  enzim  β-laktamase  dimana enzim  ini  akan  menyebabkan  terbukanya cincin  β–laktam  pada  penisilin  dan
sefalosporin  sehingga  merusak  aktivitas antimikroba,  enzim  autolisin  kuman  tidak bekerja  sehingga  timbul  sifat  toleran kuman  terhadap  obat,  kuman  tidak mempunyai dinding sel (misalnya mikoplasma),  dan  perubahan  PBP  atau obat  tidak  dapat  mencapai  PBP  (Syarif  A dkk, 2007).

## KESIMPULAN
Berdasarkan  hasil  penelitian  yang telah dilakukan dapat disimpulkan bahwa :
Bakteri  yang  teridentifikasi  dari plak  gigi  pasien  di  Puskesmas  Ranotana Weru  Manado  yang  ditumbuhkan  pada media LB adalah bakteri Streptococcus sp., Lactobacillus sp. ,  Actinomyces sp. , Veillonella  sp. , Staphylococcus  sp.,
Actinobacillus sp. , Fusobacterium sp. , dan Escherichia sp .
Bakteri  yang  sensitif  terhadap Siprofloksasin  yaitu  : Streptococcus  sp. , Lactobacillus sp.,  Actinomyces sp. ,
Veillonella  sp. , Staphylococcus  sp. ,
Actinobacillus  sp. , Fusobacterium  sp. dan Escherichia  sp. ,  bakteri  yang  intermediet terhadap Siprofloksasin yaitu : Escherichia sp. , dan tidak terdapat bakteri yang resisten terhadap  Siprofloksasin.  Bakteri  yang resisten  terhadap  Amoksisilin  yaitu  :
Streptococcus  sp. , Lactobacillus  sp., Veillonella  sp. , Staphylococcus  sp. , Actinobacillus  sp. , Fusobacterium  sp. dan Escherichia  sp. ,  bakteri  yang  intermediet terhadap  Amoksisilin  yaitu  : Actinomyces sp. , dan tidak terdapat bakteri yang sensitif terhadap  Amoksisilin.  Sehingga  pilihan antibiotik  yang  tepat  untuk  masalah  plak gigi adalah Siprofloksasin.

## Saran
Dalam
penggunaan terapi antibiotik diusulkan kepada Instansi terkait untuk  dapat  menjadikan  Siprofloksasin sebagai  salah  satu  pertimbangan  dalam penatalaksanaan  terapi  antibiotik  pada masalah  plak  gigi  pasien  dengan  tetap didasarkan  pada  kultur  bakteri  dan  uji sensitivitas bakteri.
Perlu  dilakukan  penelitian  lebih lanjut  dengan  jumlah  sampel  yang  lebih banyak  dengan  menggunakan  antibiotik yang  berbeda  untuk  mengetahui  antibiotik yang tepat dalam terapi pada plak gigi.

## DAFTAR PUSTAKA
Andriani,  I.  2012. Efektivitas  Antara
Scaling  Root  Planing  (Srp)  Dengan dan  Tanpa  Pemberian  Ciprofloxacin Per Oral Pada Penderita Periodontitis . IDJ. 1(2): 70-77.
Bresson,  W.  &  M.T.  Borges.  2004.
Delivery  Methods  for  Introducing
Endophitic  Bacteria  into  Maize . Biocontrol . 49 : 315-322.
Darveau  RP,  Tanner  A,  Page  RC.  2000.
The Microbial challenge in periodontitis . Periodontology 14 : 12-
32.
David,  W.W  and  Stout,  T.R.  1971. Disc
Plate  Methods  of  Microbiological Antibiotic Assay . Microbiology. Fatimawali. 2016. Toksikologi : Detoksifikasi  Merkuri .  Unsrat  Press,
Manado.
Kumala,  S.,  D.A.M.  Pasanema,  dan Mardiastuti.  2010. Pola  Resistensi Antibiotik  Terhadap  Isolat  Bakteri Sputum  Penderita  Tersangka  Infeksi Saluran Nafas Bawah . Jurnal Farmasi Indonesia . 5: 24-32.
Lay,  B.  W.,Hastowo  Sugyo.  1992.
Mikrobiologi. Rajawali Pres.Jakarta.
Lindhe  J,  Karring  T,  Lang  NP.  2008.
Clinical  Periodontology  and  Implant Dentistry . Blackwell Munksgaard Oxford, 5th ed., p. 183.
Notohartojo,  I.T.,  Lely,  S.N.A.  2005.
Hubungan  Kebersihan  Gigi  Dan Mulut  Dengan  Pengetahuan  Dan Sikap Responden Di Beberapa Puskesmas  Di  Provinsi  Jawa  Barat . Media  Litbang  Kesehatan.  P.  14  No. 4.
Putri, M.H., Herijulianti, E., Nurjannah, N. 2011. Ilmu  Pencegahan  Penyakit
Jaringan Keras Dan Jaringan
Pendukung  Gigi ,  3th  ed,  Jakarta:
EGC., P. 91-110.
Rodriguez,  L.  Cortes,  G.  Martinez,  M.
Marin,  P.  Castanon,  M.  Alonso,  Z. Amano, A. 2014.
Molecular identification  and  antibiotic  resistant bacteria  isolated  from  primary dentition infections . Australian Dental Journal 59 : 497–503.
Soekardjo.  2000. Kimia  Medisiinal . Airlangga University Press. Surabaya. Syarif.A,  Ascobat.  P,  Estuningtyas.  A, Setiabudy.  R,  Setiawati.  A,  Muchtar.
A.
2007.
Farmakologi dan terapi .Edisi 5. Gaya Baru: Jakarta.
Vandepitte,  J.,  K.  Engbaek,  P.  Rohner,  P. Piot.,  C.C.  Heuck.  2010. Prosedur Laboratorium Dasar Untuk Bakteriologi Klinis. Edisi 2. Terjemahan L. Setiawan. Buku Kedokteran EGC, Jakarta.
Yadav, K.  Prakash, S. 2015. Antibiogram profiles against polymicrobial pathogens  among  dental  caries patients  at  Janaki  Medical  College teaching hospital, Nepal . International Journal  of  Applied  Dental  Sciences 1(4): 156-162.