## SURVEI KEBERADAAN VIRUS WHITE SPOT SYNDROME (WSS) PADA CACING POLYCHAETA DI TAMBAK UDANG: STUDI KASUS DI KENDAL
(Occurrence of  White Spot Syndrome Virus  (WSSV) in Polychaetes in Shrimp ponds: Case study in Kendal )
Desrina, A.H. Condro Haditomo, S.B. Prayitno
Jurusan Perikanan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Diponegoro

## ABSTRACT
White  Spot  Syndrome  (WSS)  disease,  caused  by  White  Spot  Syndrome  Virus (WSSV), is an  important shrimp disease in Kendal, one of many shrimp production area in Central Java Province.  It has been indicated that polychaetes may be one of many  vectors of WSSV.  The objective of this research is to determine the occurrence  and  prevalence of WSSV infection in polychaetes  obtained from shrimp pond with various culture condition. Pond  A  (semi  intensive,  monoculture    P.  Vannamei,  pond  size    2000  m 2 ;  2);    Pond  B (extensive, monoculture P. Vannamei, pond size 5000  m 2 ) and   C (extensive, polyculture P. vannamei  and tilapia Tilapia  nilotica pond size 6000 m 2 ). Sediment  was obtained with PVC  and  sieved  through  a  series  of  sieve  shaker.  Polychaetes  found  were  counted  and identified.  Polychaetes  was  tested  for  WSSV  infection  with  1-step  nested  PCR  and prevalence  of  infection  was  calculated.    Polychaetes  found  consisted  of  2  species  namely Dendronereis sp and Nereis sp Polychaetes density (individu/ m 2 )  for pond A, B and C are 102,1168  and  207  respectively.  Prevalence  of  WSSV  infection  in  Polychaetes  from individual ponds is  29,4 % (A); 20% (B); and 12, 94 % (C). This prevalence is considered low compare to other similar research.

## PENDAHULUAN
Budidaya  udang  telah  merupakan sumber  devisa  negara  sejak  awal  tahun 1980, ketika pemerintah Indonesia mencanangkan Program Intensifikasi
Tambak  (InTam).    merupakan  salah  satu daerah  produser  utama  udang  sampai awal  tahun  1990an,  ketika  produksi budidaya  udang  di  pantai  utara  Jawa Tengah mulai menurun karena penyakit.
Sampai  saat  ini  penyakit  virus utama  yang  menyerang  udang  di  Jawa Tengah adalah White Spot Virus
Syndrome (WSSV) (Sunarto et al. 2004) .
Penyakit ini disebabkan  oleh virus White Spot  Syndrome  yang  merupakan  virus berbentuk    batang  yang  besar.  WSSV termasuk  penyakit  baru  yang  muncul
pada  budidaya  udang  di  tahun  1992. WSSV  dilaporkan  pertama  kali  di Indonesia  tahun  1994,  menyebabkan kematian  di  Jawa  mencapai  100%,  yang berakibat  pada  hanya  20%  dari  tambak yang  masih  beroperasi  pada  tahun  1999 (Sunarto et al 2004).
WSSV  adalah  penyakit  virus udang  yang  ganas  dengan  risiko  relatif  4 (Woolhouse  2002),  dan  sampai  saat  ini belum  ada  metoda  yang  efektif  untuk mengobati  penyakit  ini.  Oleh  sebab  itu, (Lotz  1997)  memasukkannya  ke  dalam kategori  patogen  C1  yaitu  patogen  yang sangat  patogenis  dan  tidak  bisa  diobati. Penyakit  ini  menyerang  udang  penaeid segala  tingkatan  dan  ukuran.  Akan  tetapi, ada kecendrungan bahwa larva P.
vannamei yang lebih tua dari 30 hari lebih rentan dari yang usia lebih muda (Perez et al.  2005).  Di  tambak,  serangan  penyakit biasanya  terjadi  pada  bulan  kedua pemeliharaan  (PL  42-50).  Serangan WSSV  cendrung  berulang,  walaupun sudah  diterapkan biosecurity .    Dilain pihak,  densitas  dan  manajemen  budidaya yang  diterapkan  sangat  menentukan timbulnya  serangan  penyakit    WSS. Subashingshe (2006) pelaksanaan BMP’s (Best  Management  Practices)  mampu menghindarkan  budidaya  dari  resiko kerugian akibat penyakit WSS.
WSSV  mempunyai  rentang  inang yang  lebar  meliputi  berbagai  hewan avertebrata air seperti kepiting (Supamattaya 1998, Kanchanaphum 1998),  cacing  polychaeta  (Vijayan  et  al. 2005),  kopepoda,  rotifera  dan  telurnya yang  dormant  (Yan  et  al.  2004,  Zhang  et al. 2006) dan mikroalga (Liu et al. 2007). ada kemungkinan cara pengendalian yang digunakan  sekarang  ini  belum  meliputi semua  inang  dan  vektor  yang  potensial untuk menjadi sumber penyebaran
WSSV. Virion virus ini di dalam sedimen bersifat infektif sampai 4 hari, memungkinkan  virus  masuk  ke  berbagai hewan  invertebrata  yang  hidup  di sedimen  tambak  dan  umumnya  adalah pemakan  detritus  melalui  makanan  dan berperan sebagai vektor.
Cacing  polychaeta  adalah  fauna bentos yang banyak ditemukan di tambak udang  terutama  terdiri  (Boyd  1995, Fujioka  et  al  2007),    yang  juga  berperan sebagai makanan alami (Martinez- Cordova  et  al.  1998).  Peran  polychaeta dalam  perkembangan  penyakit  di  tambak udang  belum  sepenuhnya  diketahui,  tapi ada  indikasi  bahwa  binatang  tersebut berperan sebagai kerir dan vektor patogen udang (Vijayan et al. 2005, Flegel 2006), Dengan  mempertimbangkan  niche  dan cara  makan  cacing  polychaeta  serta kemampuan  virus  WSS  bertahan  di
sedimen,  memungkinkan  cacing ini terinfeksi  WSS  dan  menjadi  vektor  yang potensial  untuk  menjadi  salah  satu sumber infeksi.
Salah satu ukuran untuk menentukan  keberadaan  suatu  penyakit adalah prevalensi ( point prevalence ) yang menunjukkan proporsi animal yang terserang  penyakit  pada  waktu  tertentu. Berdasarkan  point  prevalence  dapat dihitung  Prevalensi  yang  sebenarnya dengan menggunakan rumus yang diformulasikan oleh Cameron (2002).
Tambak  di  Jawa  Tengah  yang pada  umumnya  adalah  liat  berpasir  dan kaya  akan  bahan  organik,  menyebabkan banyak cacing polychaeta hidup  di  dasar. Oleh  sebab  itu  untuk  pengendalian penyakit  WSSV  yang  lebih  menyeluruh, perlu  diketahui  prevalensi  infeksi  WSSV pada  vektor  dan  kerir  yang  ada  di sedimen  di  tambak  di  sentra  produksi udang di Jawa Tengah. Kami memulainya dengan  meneliti  prevalensi  WSSV  pada cacing  Polychaeta  di  sentra  produksi udang di Kendal.
Tujuan  penelitian  adalah  untuk menentukan  prevalensi  WSSV  pada polychaeta  yang  potensial  sebagai  vektor dalam  perkembangan  penyakit  WSSV  di tambak.  Manfaat  penelitian  adalah  untuk menyediakan informasi tentang keberadaan  WSSV  di  vektor  yang  ada  di dasar  dan  dapat  digunakan  untuk  lokasi yang  kondisi  alam  dan  budidayanya sama. Informasi ini sangat berguna dalam menentukan  metoda  pengendalian  yang efektif,  ekonomis  dan  ramah  lingkungan sehingga budidaya udang berkelanjutan di Jawa  Tengah  dapat  terwujud  dan  dalam jangka  panjang,  ketahanan  pangan  di Jawa Tengah dapat tercapai.

## MATERI DAN METODA Lokasi survei
Survei  dilaksanakan  di  kompleks pertambakan  Barokah  yang  merupakan
salah  satu  pusat  budidaya  udang  di Kendal.  Pemilihan Kendal sebagai lokasi penelitian adalah karena memenuhi persyaratan secara sains  dan teknis  yaitu: mempunyai  sejarah  yang  panjang  di bidang  budidaya  udang,  terjadi  serangan WSS  yang  berulang  dan  memungkinkan untuk dilaksanakan survei. Lokasi penelitian dipilih berdasarkan hasil survei pendahuluan  yang  dibantu  oleh  petugas pendamping revitalisasi tambak
Kabupaten Kendal.
Prosedur sampling Dari kompleks pertambakan Barokah  ditentukan  3  tambak  yang  akan dijadikan lokasi  sampling dengan kriteria tambak  pernah  mengalami  serangan penyakit  WSSV  secara  berulang  dan terpaksa panen dini, tanpa memperhatikan intensitas budidayanya. Informasi tentang morfometri tambak, konstruksi, manajemen budidaya udang, produksi dan sejarah  serangan  penyakit  (case  history) diperoleh  melalui  wawancara  dengan pemilik tambak atau pengelola.
Tambak  lokasi  penelitian  terdiri atas:  1)  Tambak  A  adalah  tambak    semi intensif,  monokultur  udang P.  vannamei dengan  luas  2000  m 2 ;  2)  Tambak  B adalah  tambak  ekstensif,  monokultur udang P.  Vannamei dengan  luas  5000 m 2 ;  3)  Tambak  C  adalah  tambak ekstensif,  polikultur  udang P.  vannamei dan  ikan  nila Tilapia  nilotica dengan ukuran  6000  m 2 .  Pada  waktu  sampling, semua  tambak  sedang  atau  baru  saja  di panen  dengan  masa  pemeliharaan  2 bulan.
Tiap  tambak    dibagi  atas  petakan yang sama besar  yang berukuran 10 x 10 m 2 .  Masing  masing  petakan  mewakili titik  sampling  (Boyd,  1996).    Sampel tanah  dan  sedimen  beserta  Polychaeta yang terdapat didalamnya  diambil dari 9 titik  dengan    tiga  kali  ulangan  /titik. Sampel  tanah  dan  sedimen  diambil
menurut    Hussenot  and  Martin  (1995) dengan  menggunakan  modifikasi  “core” yaitu  pipa  paralon  berdiameter  10  cm yang dilengkapi dengan tutup dan tongkat pendorong  untuk  mendorong  sampel  ke luar.  Selanjutnya  sampel  di  saring menggunakan  sieve  shaker  berdiameter 500 µm. Cacing Polychaeta yang ditemukan  dihitung,  dibersihkan  dengan kuas dan diawetkan dalam larutan ethanol 70  %  (untuk  keperluan  udentifikasi)  dan 96%  untuk  uji  PCR  untuk  mendeteksi keberadaan  virus  WSSV.    Cacing Polychaeta  yang  ditemukan  diidentifikasi sampai  tingkatan  taksonomi  terendah yang bisa dilakukan.

## Pemeriksaan WSSV menggunakan PCR
Sampel  cacing  Polychaeta  (15 sampel)  di  periksa  dengan  “one-step nested  PCR”.  Metoda  Ekstraksi  DNA mengacu  pada  Dixit  et  al  (1998).  Secara ringkas  prosedurnya  adalah  sebagai berikut:  Jaringan  dari  tubuh  Polychaeta bagain depan diambil lebih kurang 30 mg dan di gerus di lumpang steril. Selanjutnya, ditambahkan 300  µl  buffer ekstraksi,  divortex  dan  di  tambahkan  30 µl  SDS  20  %.  Selanjutnya,  ditambahkan 10 µl  Proteinase-K, diinkubasi pada suhu 55 0 C  selama  2  jam,dan  disentrifuse  ( 4.000  rpm,  15  menit).  Supernatant diambil,    ditambahkan  300  µl    5M Kalium Asetat, disimpan di dalam freezer selama  10  menit  dan  disentrifuse    pada 4.000  rpm  selama  10  menit.  Selanjutnya supernatan  dipindah  ke  tube  yang  baru dan  dilakukan  ekstraksi  DNA  dengan metoda  phenol. Pellet DNA yang terbentuk  dilarutkan  dalam  50  –  100    µl TE  buffer.  Amplifikasi  dan  deteksi menggunakan  Nugen  WSSV  PCR  Test Kit  (PT.  Nugen  Bioscience  Indonesia) dilakukan  sesuai  dengan  protokol  yang direkomendasikan.    Hasil  PCR    dianalisa dengan  menggunakan  1,5  %  agarose  gel
dan pita yang terbentuk adiwarnai dengan ethidium bromide dan dilihat dengan UV
transilluminator.
Prevalensi dihitung menurut Cameron (2002) yaitu:
Jumlah sampel yang positif WSSV X 100% Total jumlah sampel
Prevalensi sebenarnya dihitung menggunakan Survey Toolbox Software (Cameron 2002).

## HASIL Jenis dan Jumlah Polychaeta
Cacing Polychaeta yang ditemukan terdiri atas 2 spesies yaitu Dendronereis sp yang  ditemukan  di  tambak  ekstensif  dan
Nereis sp yang ditemukan di tambak semi
intensif.  Jenis  dan  kepadatan  cacing polychaeta  pada  masing  masing  tambak yang di teliti tercantum dalam tabel 1. Tabel 1. Jenis dan densitas rata rata cacing Polychaeta di masing masing tambak yang diteliti No Tambak Jenis Kepadatan rata  (ekor/m 2 ) 1. A Nereis sp 102 2. B Dendronereis sp 1168 3. C Dendronereis sp 207 Keterangan:   A: Tambak semi intensif, monokultur B: Tambak ekstensif, monokultur C: Tambak ekstensif, polikultur
Dari  tabel  tersebut  terlihat  adanya perbedaan  jenis  cacing  polychaeta  yang ditemukan pada tambak  yang  diteliti. Pada tambak  ekstensif  jenis  yang  ditemukan adalah  Dendronereis  sp  sedangkan  pada tambak  semi  intensif  adalah  Nereis  sp. Kepadatan cacing polychaeta yang tertinggi adalah  di  tambak  ekstensif  dan  yang terendah adalah tambak semi intensif.

## Prevalensi WSSV pada Polychaeta
Hasil deteksi keberadaan virus WSS pada cacing Polychaeta  dari tambak yang diteliti yang dilakukan dengan nested PCR tercantum gambar 1 dan tabel 3.
Gambar  3.  Hasil  deteksi  WSSV  dengan  one  step  nested-PCR  pada  cacing  polychaeta  dari tambak udang di Kendal.
Keterangan M= Marker; NTC= Kontrol Negative; += Kontrol Positive Sampel berwarna merah= positif WSSV
Tabel 3. Keberaadaan  Virus WSS pada cacing polycaheta dari tambak yang diteliti.
No Tambak/ Titik Sampling Jenis Polychaeta Keberadaan wssv 1. A/1 Nereis sp Negatif 2. A/2 Nereis sp Positif 3. A/3 Nereis sp Negatif 4. B/1 Dendronereis sp Negatif 5. B/2 Dendronereis sp Negatif 6. B/3 Dendronereis sp Negatif 7. B/4 Dendronereis sp Negatif 8. B/5 Dendronereis sp Negatif 9. B/6 Dendronereis sp Positif 10. B/7 Dendronereis sp Negatif 11. B/8 Dendronereis sp Positif 12. B/9 Dendronereis sp Negatif 13. C/1 Dendronereis sp Negatif 14. C/2 Dendronereis sp Negatif 15. C/3 Dendronereis sp Negatif 16. C/5 Dendronereis sp Negatif 17. C/7 Dendronereis sp Positif 18. C/9 Dendronereis sp Negatif Keterangan:   A: Tambak semi intensif, monokultur B: Tambak ekstensif, monokultur
C: Tambak ekstensif, polikultur
Dari  tabel  3  terlihat  bahwa  WSSV ditemukan  hanya  pada  sebagian  kecil cacing  Polychaeta  yang  di  periksa.  Secara umum  Prevalensi  sebenarnya    infeksi
WSSV pada cacing Polychaeta adalah 20% dan  prevalensi  infeksi  wssv  pada  cacing Polycheta  dari  masing  masing  tambak tercantum dalam tabel 4.
Tabel 4. Prevalensi WSSV pada cacing Polychaeta di tambak yang diteliti
No Tambak Prevalensi (%) Prevalensi sebenarnya (%) 1. A: Semi Intensif 33 29,4 2. B: Ekstensif, monokultur 22, 2 20 3. C: Ekstensif, polikultur 16,67 12,94 Dari tabel 3 terlihat bahwa prevalensi  infeksi  di  tambak  semi  intensif relatif  lebih  tinggi  dari  tambak  ekstensif
walaupun  densitas  cacing  Polychaetanya relatif  lebih  rendah  dan  hampir  sama
dengan  yang  ditemukan  pada  tambak ekstensif polikultur.

## Riwayat serangan penyakit
Penyakit  utama  yang  menyerang udang L. vanamei  selama5 tahun terakhir adalah WSSV, adapun penyebab kematian  udang  yang  lain  yaitu  gagal molting.  Serangan  penyakit  WSSV  di tambak  tradisional  terakhir  kali  terjadi pada  bulan  Maret  2009  yaitu  tambak dengan  metode  budidaya  monokultur, sedangkan  pada  tambak  semi  intensif terjadi sekitar tahun 2008. Untuk memberantas  hama  dan  vektor  WSSV yaitu kepiting dan udang jambret digunakan  saponin.  Serangan  WSSV biasanya  terjadi  pada  waktu  pergantian musim,  dari  musim  kemarau  ke  musim penghujan ataupun sebaliknya dari musim hujan  ke  musim kemarau. Metode budidaya polykultur dan pola tanam (crop rotation)  dimulai  sekitar  tahun  2007. Setelah  metode  budidaya  dirubah  dari tradisional monokultur menjadi polykultur (vaname+nila)  dan  pola  tanam,  serangan WSSV lebih jarang terjadi.  Selama tahun 2007  –  2009  terjadi  penurunan  kasus peneyerangan  wssv,  yaitu  hanya  terjadi kira-kira  1  kali  yaitu  pada    bulan  Maret 2009.

## PEMBAHASAN
Cacing Dendronereis sp dan Nereis sp  (Famili  Nereidae)  2    spesies polychaeta  yang  ditemukan  di  tambak pada  penelitian  ini.  Yuwono  et  al  (1998) melaporkan  bahwa  cacing  Dendronereis banyak  dijumpai  di  daerah  estuari  dan menyukai  substrat  liat  berpasir.    Hasil penelitian  Boyd  (1995)  dan  Fujioka et  al (2007),    menunjukkan  Polychaetes  and Oligochaetes adalah salah satu fauna yang dominan  di  tambak    yang  juga  berperan sebagai makanan alami (Martinez- Cordova et  al .  1998).  Cacing  lain  dari family  Nereidae  yang  pernah  dilaporkan
ditemukan  di  tambak  adalah  Perinereis  sp di Thailand (Fujioka et al (2007).
Prevalensi digunakan
untuk mengukur  keberadaan  penyakit  disuatu area  untuk  menentukan  sebaran  penyakit tersebut  (Cameron  2002).    Prevalensi sesaat  maupun  prevalensi  sebenarnya infeksi  WSSV  pada  cacing  polychaeta yang  ditemukan  dalam  penelitian  ini relatif  rendah  dari  penelitian  lain  yang sejenis.  Prevalensi  WSSV  pada  vektor  liar yang  ditangkap  dari  alam  bervariasi  yaitu pada  kepiting  bakau  (Scylla  serrata)  di Taiwan  60  %  (Chen  et  al.,  2000);  79,3  % pada  blue  crab  (Portunus  trituberculatus) (Meng et al. 2009); 16,7 – 75% pada cacing polychaeta  di  India  (Vijayan  et  al.,  2005). Dilaporkan  juga  bahwa  prevalensi  infeksi lebih  tinggi  pada  polychaeta  dari  daerah yang dekat dengan tambak udang.
Dari  tabel  3  terlihat  adanya  sedikit perbedaan  prevalensi  infeksi  WSSV  pada polychaeta  antara  ke  3  sistem  budidaya. Kemungkinan  perbedaan  ini  berkaitan dengan kepadatan udang dan
kehomogenan dari kultivan karena prevalensi  infeksi  sedikit  lebih  tinggi  di tambak  yang  melaksanakan  monokultur. Jika pada suatu poplulasi terdapat patogen, probabilitas perpindahan patogen ke populasi lain meningkat dengan meningkatnya  kontak  yang  efektif  baik langsung  maupun  memalui  media  (air) antara  ke  2  populasi  tersebut  (Lotz  et  al., 2005)  yang  antara  lain  ditentukan  oleh densitas  dan  keragaman  inang  yang potensial.
Hasil  penelitian  Shangkar  dan Shangkar  (2005)  menunjukkan  ada  kaitan antara  kualitas  sedimen  dan  kelimpahan cacing  Polychaeta,  karena  cacing  ini sensitif terhadap kondisi sedimen. Walaupun  hasil  penelitian  yang  kami lakukan    menunjukkan  adanya  kaitan antara  jumlah  bahan  organik  dan  pH dengan  densitas  kedua  cacing  polychaeta yang  ditemukan  (data  tidak  ditampilkan),
namun  bahan  organik  dan  pH    bukanlah satu  satunya  faktor  yang  menentukan densitas  cacing.  Hasil  monitoring  selama satu siklus produksi yang pernah dilaporkan  menunjukkan  kepadatan  cacing cendrung menurun seiring dengan bertambahnya waktu budidaya. Diduga, hal ini  disebabkan  predasi  oleh  udang  dan menurunnya  kondisi  lingkungan  di  dasar tambak  (Shishechian  et  al.,    2001).    Pada penelitian  ini,  terlihat  adanya  perbedaan densitas polychaeta di ke 3 tambak yang di teliti.  Diduga  hal  ini  disebabkan  karena sistem budidaya yang diterapkan. Tingginya densitas polychaeta pada tambak udang  ekstensif  monokultur  diduga  karena predasi  yang  terjadi  lebih  sedikit  dari  ke  2 tambak lainnya.
Terdeteksinya  WSSV  pada    cacing polychaeta  dalam  penelitian  ini  walaupun dengan prevalensi yang rendah menunjukkan  bahwa  sistem  budidaya tersebut  masih  rentan  terhadap  serangan penyakit  WS.  Prevalensi  infeksi  mungkin akan meningkat jika ada faktor resiko yang menunjang untuk berkembangnya penyakit. WSSV dapat dikategorikan virus patogen yang generalis karena mempunyai rentang  inang  yang  lebar.  Inang  utama wssv adalah udang Penaeid, dan merupakan  kelompok  yang  paling  rentan terhadap  infeksi  WSSV.  Disamping  itu, WSSV  punya  rentang  inang  dan  vektor yang  sangat  beragam,  sebagian  besar adalah dari kelompok krustase, yang lebih tahan  terhadap  infeksi  virus  ini  namun berperan  sebagai  inang  resrervoir  dan vektor  dalam  timbulnya  penyakit  WSS  di tambak  (Leu  2008).  Sampai  saat  ini metoda pengendalian wssv lebih menekankan pada eliminasi inang reservoir  golongan  krustase  di  tambak dengan menggunakan desinfektan maupun jaring.  Walaupun  demikian,    serangan WSS  tetap  terjadi  bahkan  di  tambak  yang sudah menggunakan sistem biosekuriti dan larva  Specific  Pathogen  Free  (SPF).  Hasil
peneitian  ini  juga  membuktikan  bahwa pemberian  bahan  kimia  (saponin)  tidak membunuh  cacing  polychaeta  dan  tidak menghilangkan  keberadaan  WSS  di  dalam sistem  tambak  tersebut.  Oleh  sebab  itu pendekatan  yang  digunakan  yaitu  dengan polikultur  dengan  ikan  nila  merupakan metoda  pengendalian  yang  layak  untuk diteliti lebih lanjut.
Virus  adalah  patogen  obligat  yang tidak mampu bertahan lama di lingkungan tanpa  inang.  Menurut  Chang  et  al.  (1998) virus  WSS  masih  infektif  di  sedimen selama  4  hari  tanpa  inang.  Sifat  dapat dimanfaat  kan  dalam  mengendalikan WSSV  yaitu  dengan  tidak  menyediakan atau  meminimalkan    inang  yang  rentan terhadap  infeksi  WSSV  (yaitu  udang penaeid) (Flegel 2006a) melalui polikultur dan pola tanam. Oleh sebab itu menerapkan  pola  tanam  dan  polykultur dengan  ikan  omnivor  yang  merupakan ”bottom dweller”seperti yang dilaksanakan merupakan alternatif pengendalian penyakit yang ramah lingkungan.  Watanabe  et  al  (2002) mengemukakan polikultur ikan nila dengan udang telah dilakukan di beberapa negara untuk mengurangi insiden penyakit udang.  Metoda  ini  memberikan  beberapa keuntungan  antara  lain:  (1)  Ikan  nila memakan  udang  yang  sakit  atau  mati, sehingga  meminimalisir  kanibalisme  pada udang  yang  merupakan  cara  utama penularan  WSSV  dari  udang yang sakit/mati  ke  udang  yang  sehat  (Soto  dan Lotz  2001).  (;  (2)  Ikan  nila  memakan udang  udang  kecil  yang  merupakan vektor;  (3)  ikan  nila  mengaduk” dasar”tambak  ketika  mencari  makan meningkatkan  oksidasi  dari  sedimen  dan meminimalkan  adanya  bagian  tambak yang  anaerob  seperti  yang  disarankan Baliao and  Tookwinas  (2002)  dan
Subashingshe (2005) sebagai upaya menyediakan  lingkungan  yang  baik  bagi udang. Chinabut et al (2006) menyarankan
menggunakan organisme filter-feeder untuk membantu
membantu membersihkan  sisa  sisa  yang  bersifat organik di kolam sedimentasi pada tambak dengan  sistem  resirkulasi.  Penurunan penyerangan  wssv  yang  terjadi  (sesuai dengan hasil wawancara dengan pengelola tambak)  diduga  karena  system  budidaya yang  asalnya  hanya  monokultur  saja  telah dirubah dengan system polikultur dan crop rotation.

## SIMPULAN
Berdasarkan  hasil  yang  sudah diperoleh  dalam  konteks  penelitian  ini dapat  disimpulkan    Cacing  polychaeta Dendronereis sp Nereis sp  dari  tambak
udang di Kendal  terinfeksi WSSV dengan prevalensi  infeksi  rata  rata  yang  relatif rendah yaitu  20 %.   Kondisi ini berkaitan dengan  pengelolaan  tambak  dengan  sistim ekstensif dan semi intensif dengan menerapkan  pola  tanam  dan    polikultur udang  dan  ikan  nila,  sehingga  kerugian akibat penyakit WSS berkurang.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Peneliti  mengucapkan  terimakasih pada  bapak  Mulyono  sebagai  pemilik tambak  Barokah.  Terima  kasih  juga disampaikan  pada  Pemerinatah  Propinsi Jawa  Tengah  yang  telah  membiayai penelitian  ini  melalui  program  Riset Unggulan Daerah tahun 2009.

## DAFTAR PUSTAKA
Arthur, J.R. 2005. A historical overview of pathogen  introductions  and  their transboundary spread in Asia. P 21- 39.  In:  Subasinghe,  R.P.;  Arthur, J.R.  (eds).  Regional  workshop  on preparedness and response to aquatic  animal  health  emergencies in  Asia.  Jakarta,  Indoneosia,  21-23 September  2004.  FAO  Fisheries Proceedings. No. 4. Rome, FAO.178 p.
Avnimelech, Y., G. Ritvo, and M. Kochva. 2004.  Evaluating  the  active  redox and  organic  fractions  in  pond bottom soils: EOM, easily oxidized material.  Aquaculture  233:  283- 292.
Baliao, D.D., Tookwinas, S. 2002. Manajemen  budidaya  udang  yang baik  dan  ramah  lingkungan  di daerah mangrove. Aquaculture extension manual No. 35- November 2002. SEAFDEC. 50 pp. Boyd,  C.E.  1995.  Bottom  soils,  sediment and  pond  aquaculture.  Chapman Hall, New York, NY. 348 pp. Cameron,  A.  2002.  Survey  Toolbox  for Aquatic Animal Diseases. A
Practical  Manual  and  Software. ACIAR, Canberra. 375 pp. Corsin,  F.,  Thakur,  P.C.,  Padiyar,  P.A., Madhusudan,  M.,  Turnbull,  J.F., Mohan,  C.V.,  Hao,  N.V.,  Morgan, K.L.  2003.  Relationship  between white  spot  syndrome  virus  and indicator  of  quality  in Penaeus monodon postlarvae  in  Karnataka,
India. Diseases of Aquatic Organisms 54: 97-104.
Chinabut,  S.,  T.  Somsisri,  C.  Limsuwan and  S.  Lewis.  2006.  Problems associated  with  shellfish  farming. Review  Science  and  Technolgy Office  of  International  of  de Epizootics 25 (2):627-635. Delgado, P.C., Y. Avnimelech, R. McNeil,
D.  Bratvold,  C.L.Browdy  and P.Sandiver. 2003. Physical, chemical and biological
characteristics of distinctive regions in  paddlewheel  aerated  shrimp ponds. Aquaculture 217: 235-248.
Flegel,  T.W.  2006a.  Detection  of  major penaeid  shrimp  viruses  in  Asia,  a major  historical  perspective  with emphasis on Thailand. Aquaculture 258: 1-33.
Fujioka,  Y.,  T.  Shimoda  and  C.  Srithong. 2007.  Diversity  and  community structure  of  macrobenthic  fauna  in shrimp  aquaculture  ponds  of  the Gulf of Thailand. Japan Agricultural  Research  Quarterly  41 (2) : 163-172. Granja,  C.B.,  Vidal,  O.M.,  Parra,  G., Salazar,  M.  2006.  Hyperthermia reduces  viral  load  of  white  spot syndrome virus in Penaeus
vannamei.  Diseases  of  Aquatic Organisms 68:175-180. Jayaraj,  K.A.,  P.  Sheeba,  J.  Jacob,  C. Revichandran,  P.K.  Arun,  K.S. Praseeda, P.A. Nisha,
K.A. Rasheed. 2008. Response of infaunal macrobenthos to the sediment granulometry in a tropical continental  margin-southwest  coast of  India.  Estuarine,  Coastal  and Shelf Science 77: 743-754.
Jiang,  G.,  Yu,  R.,  Zhou,  M.  2004.
Modulatory  effects  of  ammonia-N on  the  immune  system  of Penaeus japonicus to virulence of white spot syndrome  virus.  Aquaculture  241: 61-75.
Kanchanapum,  P.,  Wongteerasupaya,  C., Sitidilokratana,  N.,  Boonsaeng,  V.,
Panyim,  S.,  Tassanajakon,  A., Withyachumnarnkul,  B.,  Flegel, T.W. 1998. Experimental transmission of White Spot
Syndrome  Virus  (WSSV)  from crabs  to  shrimp  P enaeus  monodon . Diseases of Aquatic  Organisms 34:
1-7.
Liu,  B.,  Yu,  X.,  Song,  X.,  Guan,  Y.,  Jian, X., He, J. 2006. The effect of acute salinity  change  on  white  spot syndrome  (WSS)  outbreaks  in
Fenneropenaeus chinensis.
Aquaculture 253: 163-170.Pages 3- 1.
Liu,  B.,  Z.  Yu,  X.    Song,  and  Y.  Guan.
2007.  Studies  on  the  transmission of  WSSV  (White  Spot  Syndrome Virus)  in  juvenile Marsupeneus Japonicus via  marine  microalgae. Journal  of  Invertebrate  Pathology (in Press)
Lotz,  J.M.  1997.  Special  topic  Review: viruses,  biosecurity  and  specific pathogen-free  stocks  in  shrimp aquaculture.  World  Journal  of Microbiology  and  biotechnology 13: 405-413.
Lotz,  J.M.,  Overstreet,  R.M  and  Grimes, D.J.  2005.  Aquaculture  and  animal pathogens in the marine
environment  with  emphasis  on marine  shrimp  viruses.  Page  431- 352 in Belkin and Cowell (Editors). Oceans  and  Health:  Pathogens  in the  Marine  Environment.  Springer, New York.
Martinez-Cordova,  L.  R.,  Pasten-Miranda, N.    and  Barbara-Guardado,  R. 1998.  Effect  of  fertilization  on growth,  survival,  food  conversion ratio,  and  production  of  pacific white  shrimp  Penaeus  vannamei  in earthen  ponds  in  Sonora,  Mexico. Progressive  Fish-Culturist 60 (2): 101-108.
Maeda,  M.,  Kasonchandra,J.,  Itami,  T., Suzuki, N., Hennig, O., Kondo, M., Albaladejo,  J.D.,  and  Takeshi,  Y. 1998.  Effect  of  various  treatments on  white  spot  syndrome  virus (wssv)  from  Penaeus  japonicus (Japan)  and    Penaeus  monodon (Thailand).  Fish  Pathology,  33  (4): 381-387 (abstract).
Meksumpun, C., and S. Meksumpun. 1999. Polychaete-sediment  relations  in Rayong,  Thailand.  Environmental Pollution 105: 447-456.
Nunes,  A.J.P.  and  G.J.  Parsons.  2000. Effects  of  the  Southern  brown shrimp,  Penaeus  subtilis,  predation and  artificial  feeding  on  the population  dynamics  of  benthic polychaetes in tropical pond enclosures.  Aquaculture  183:  125- 147.
Peinado-Guevara,  L.,  and  Meyer,  M.L. 2006. Detailed monitoring of white spot  syndrome  virus  (WSSV)  in shrimp commercial ponds in Sinaloa,  Mexico  by  nested  PCR. Aquaculture 251 (1): 33-45. Perez,  F.,  F.A.M.  Volckaert,  J.  Colderon. 2005.  Pathogenicity  of  white  spot syndrome  virus  on  post  larvae  and juveniles  of  Penaeus  (Litopenaeus) vannamei.  Aquaculture  250:  586- 591.
Power,  A.G.  and  C.  E.  Mitchell.  2004. Pathogen spillover in disease epidemics. The American Naturalist 164: S79-S89.
Rahman,  M.M.,  Escobedo-Bonilla,  C.M., Corteel,  M.,  Dantas-Lima,  J.J.,
Wille,  M.,  Sanz,  V.A.,  Pensaert,
M.B.,  Sorgeloos,  P.,  Nauwynck,
H.J. 2006. Effect of high temperature (33 o C) on the clinical and virological outcome of experimental  infections  with  white spot  syndrome  virus  (WSSV)  in specific pathogen-free (SPF) Litopenaeus vannamei.
Aquaculture 261: 842-849. Sarkar,  S.K.,  A.  Bhattacharya,  S.  Giri,  B. Bhattacharya,  D.  Sarkar,  D.C. Nayak  and  A.  K.  Chattopadhaya. 2005.  Spatiotemporal  variation  in benthic polychaetes (Annelida) and relationships  with  environmental variables  in  a  tropical  estuary. Wetlands Ecology and Management 13: 55-67. Shishechian, F., F.M. Yusoff and
M.Shariff.  2001.  The  effects  of
commercial  bacterial  products  on macrobenthos community in shrimp culture ponds. Aquaculture International 9:429-436. Subashinghe,  R.P.  2005.  Epidemiological approach  to  aquatic  animal  health management:  opportinisties  and challenges for developing countries to  increase  aquatic  production through  aquaculture.  Preventive Veterinary Medicine 67: 117-124. Sunarto, A.,
Widodo, Taukhid, Koesharyani,  I.,  Supriyadi,  H., Gardenia, L., and Sugianti, B. 2004. Current status of transboundary fish diseases  in  Indonesia:  Occurrence, surveillance, research and training. Tsai, M.,  Kou,  G.,  Liu,  H.,  Liu,K., Chang, C., Peng, S., Hsu, H., wang, C., Lo, C.  1999.  Long  term  presence  of white spot syndrome virus (WSSV) in  a  cultivated  shrimp  population without disease outbreaks. Diseases of Aquatic Organisms 38:107-114.
Vijayan,  K.,  Raj,  V.S.,  Balasubramanian, C.P.,  Alavandi,  S.V.,  Sekhar,  V.T., Santiago,  T.C.  2005.  Polychaete worms-  a  vector  for  white  spot syndrome virus (wssv). Diseases of Aquatic Organisms 63: 107-111. Watanabe,  W.O.,  T.M.  Losordo,  K. Fitzsimmons,  and  F.  Hanley.  2002. Tilapia production system in Americas:  technological  advances, trends,  and  challenges.  Reviews  in Fisheries  Science  10  (3&4):  465- 498.
Withyachumnarnkul, B. 1999. Results from black tiger shrimp Penaeus monodon culture  ponds  stocked with  postlarvae  PCR-positive  or  – negative  for  white-spot  syndrome virus (WSSV). Diseases of Aquatic Organisms 39:21-27.
Woolhouse,  M.E.J.  2002.  Population biology of emerging and reemerging pathogens. Review
Trends  in  Microbiology  10  (10 Suplemen) S3-S7. Yan, D., Dong, S., Huang, J., Yu, X, Feng, M.,  and  Liu,  X.  2004.  White  Spot syndrome  virus  (WSSV)  detected by  PCR  in  rotifers  and  rotifer resting  eggs  from  shrimp  pond sediments.  Diseases  of  Aquatic Organisms 59: 69-73. Yoganandhan,  K.,  Thirupathi,  S.,  and
Hameed, A.S.S. 2003. Biochemical,
physiological  and  hematological changes  in  white  spot  syndrome virus-infected shrimp, Penaeus indicus .  Aquaculture 221: 1-11.
Zhang, J., S. Dong, S., Tian, X., Dong, Y., Liu,  X.,  and  Yan  D.  2006.  Studies on  rotifer  ( Brachionus urceus Linnaeus,  1758)  as  a  vector  in white spot syndrome virus (WSSV) transmission. Aquaculture 261: 1181-1185