Държавен вестник, бр. 28, 2007 г., стр. 58

С Т Р .  58
Д Ъ Р Ж А В Е Н   В Е С Т Н И К
Б Р О Й  28
by rep-PCR fingerprinting to rapidly classify
Xanthomonas campestris pv. vesicatoria. Phytopathology
85; 528-536.
19. Opina, N., F. Tavner, G. Holloway, J.-F Wang,
T.-H Li, R. Maghirang, M. Fegan, A.C. Hayward, V.
Krishnapillai, W.F. Hong, B.W. Holloway, J.N. Timmis.
1997. A novel method for development of species and
strain-specific DNA probes and PCR primers for
identifying Burkholderia solanacearum (formerly
Pseudomonas solanacearum). As Pac. J. Mol. Biol.
Biotechnol. 5; 19-33.
20. Pastrik, K.H. and Maiss, E. 2000. Detection of
R. solanacearum in potato tubers by polymerase chain
reaction. J. Phytopathology 148; 619-626.
21. Pastrik, K.H., Elphinstone, J.G. and Pukall, R.
2002. Sequence analysis and detection of Ralstonia
solanacearum by multiplex PCR amplification of 16S-
23S ribosomal intergenic spacer region with internal
positive control. European Journal of Plant Pathology
108, 831-842.
22. Robinson-Smith, A., Jones, P., Elphinstone,
J.G. and Forde, S.M.D. (1995) Production of
antibodies to Pseudomonas solanacearum, the
causative agent of bacterial wilt. Food and Agricultural
Immunology 7, 67-79.
23. Schaad, W. 2001. Laboratory guide for
identification of plant pathogenic bacteria. Schaad
[Hrsg.].—3. ed.; St. Paul, Minnesota: 373 pp.
24. Seal, S.E., L.A. Jackson, J.P.W. Young, and
M.J. Daniels. 1993. Detection of Pseudomonas
solanacearum, Pseudomonas syzygii, Pseudomonas
pickettii and Blood Disease Bacterium by partial 16S
rRNA sequencing: construction of oligonucleotide
primers for sensitive detection by polymerase chain
reaction. J. Gen. Microbiol. 139: 1587-1594.
25. Smith, J.J., Offord, L.C., Holderness, M. and
Saddler, G.S. 1995. Genetic diversity of Burkholderia
solanacearum (synonym Pseudomonas solanacearum)
race 3 in Kenya. Applied and Environmental
Microbiology 61; 4262-4268.
26. Stead, D.E. 1992. Grouping of plant pathogenic
and some other Pseudomonas spp. using cellular fatty-
acid profiles. International Journal of Systematic
Bacteriology 42; 281-295.
27. Taghavi, M., Hayward, A.C., Sly, L.I., Fegan,
M. 1996. Analysiss of the phylogenetic relationships of
strains of Burkholderia solanacearum, Pseudomonas
syzygii, and the blood disease bacterium of banana based
on 16S rRNA gene sequences. International Journal of
Systematic Bacteriology 46; 10-15.
28. Van Der Wolf, J.M., Bonants, P.J.M., Smith,
J.J., Hagenaar, M., Nijhuis, E., Van Beckhoven, J.R.C.,
Saddler, G.S., Trigalet, A., Feuillade, R. 1998. Genetic
diversity of Ralstonia solanacearum Race 3 in Western
Europe as determined by AFLP, RC-PFGE and rep-
PCR. In: Prior, P., Allen, C. and Elphinstone, J. (eds.)
Bacterial wilt disease: Molecular and Ecological
Aspects. Springer (Berlin) pp. 44-49.
29. Weller, S.A., Elphinstone, J.G., Smith, N., Stead,
D.E. and Boonham, N. 1999. Detection of Ralstonia
solanacearum strains using an automated and quantitative
flourogenic 5’ nuclease TaqMan assay. Applied and
Environmental Microbiology 66; 2853-2858.
30. Wullings, B.A., A.R. van Beuningen, J.D. Janse
and A.D.L. Akkermans. 1998. Detection of R.
solanacearum, which causes brown rot of potato, by
fluorescent in situ hybridization with 23s rRNA-targeted
probes. Appl. Environ. Microbiol. 64: 4546-4554.”
§ 6. Приложение № 2 се изменя така:
“Приложение № 3
към чл. 4, ал. 1
1. При всяко съмнение за наличие, за което е
идентифициран положителен резултат в скринин-
говия тест/скрининговите тестове, за изброения
растителен материал и за всички други случаи, в
съответствие с методите, посочени в приложение
№ 2, и за което се очаква потвърждаване или от-
хвърляне при приключване на упоменатите мето-
ди, следва да се извършат задържане и подходящо
съхраняване на:
—всички клубени, от които са взети проби, а
при възможност и всички растения, от които са
взети проби,
—останал екстракт и допълнително изготвен
материал за скрининговия тест/скрининговите
тестове, например имунофлуоресцентни предмет-
ни стъкла,
и
—цялата документация,
до приключването на упоменатите методи.
Запазването на клубените позволява провежда-
нето на сортово изпитване, когато е необходимо.
2. В случай на потвърждаване наличието на
вредителя следва да се извърши задържане и под-
ходящо съхраняване на:
—материала, определен в т. 1,
—проба от заразения материал от домат или
син домат, инокулиран с екстракт от клубен или
растение, в зависимост от случая,
и
—изолираната култура на вредителя,
за период поне един месец след процедурата за
уведомяване съгласно чл. 5, ал. 1 и 2.”
§ 7. Приложение № 3 се изменя така:
“Приложение № 4
към чл. 5, ал. 1, т. 1, буква “а”
Елементите на разследването, посочено в чл. 5,
ал. 1, т. 1, буква “а”, в зависимост от случая са, както
следва:
а) място на производство, на което:
—се отглеждат или са се отглеждали картофи,
които са клоново свързани с картофи, за които е
установено заразяване с вредителя,
—се отглеждат или са се отглеждали домати,
които са от един и същ източник с домати, за ко-
ито е установено заразяване с вредителя,
—се отглеждат или са се отглеждали картофи
или домати, които са поставяни под официален
контрол поради съмнение за наличие на вредителя,
—се отглеждат или са се отглеждали картофи,
които са клоново свързани с картофи, които са
отглеждани на производствени участъци, за които
е установено заразяване с вредителя,
—се отглеждат картофи или домати и е разпо-
ложено в близост до заразени места за производ-
ство, включително места за производство, които
използват общо производствено оборудване и съ-
оръжения пряко или чрез общ изпълнител,
—се използва повърхностна вода за напояване
или дъждуване от източник, за който е потвърде-
но или има съмнение за заразяване с вредителя,