ticoAg/ChineseCorpus-Kaggle-fanti huggingface dataset:
來自臍靜脈的血液與來自胎兒身體下部回流的血液在下腔靜脈中混合后入右心房，絕大部分的混合血經卵圓孔入左心房，再經左心室進入主動脈，主要供應胎兒的腦部及心臟營養。右心房內來自下腔靜脈的小股血與來自頭部及上肢的上腔靜脈的血液相混流入右心室，再進入肺動脈。由于胎兒的肺尚無呼吸功能，所以僅有少量血液入肺，大部分血液則經動脈導管進入降主動脈。降主動脈中的大部分血液經臍動脈返回胎盤，小部分血液供應身體下部。胎兒體內循環的血液，都是動脈血與靜脈血的混合，只是混合成分的比例不同。流入上肢、頭部、心臟及肝臟的血液含氧及養分較多，而流入胎兒肺部及身體下部的血液含氧及養分較少。
兩條動脈將二氧化碳豐富和營養少的血輸入胎盤，靜脈將氧氣和營養豐富的血液輸回胎兒。另一條動脈在胎兒的第一周就退化了。動脈輸送靜脈血（富含二氧化碳和廢物的血）、靜脈輸送動脈血（富含氧氣和營養的血）的血管除肺動脈/靜脈外就只有臍動脈/靜脈。人的臍帶約50至60厘米長，直徑約2厘米，臍帶內的血管由華通氏膠（Wharton's Jelly）包裹，華通氏膠中有干細胞。
約1%的人胚胎臍帶只有兩條血管：一條動脈及一條靜脈。出現這種異常的胎兒多數仍然正常成長。另外有更稀少的例子有動、靜脈各兩條。這種異常多數與遺傳有關，通常同時出現胚胎異常。
通過胎盤絨毛上皮的滲透作用，胎兒血液于絨毛間隙內，與母體血液之間進行物質的交換。
胎兒逸出后臍帶失去作用，數分鐘內搏動停止，此時應在臍帶根部將其剪斷并結扎，動物一般是母動物將臍帶咬斷。等到臍帶停止搏動再鉗夾對於新生兒可能有好處，因為這樣臍帶里面的血液和干細胞可以流入胎兒，可以有效防止一些疾病；之后剩余的臍帶殘段在一到兩周內脫落，留下的疤痕就是肚臍。
出生后臍動脈遠側段閉鎖形成臍內側韌帶，近端段管腔未閉，與髂內動脈起始段相連，發出2~3條膀胱上動脈，分部于膀胱的上、中部。
出生后臍靜脈近側段閉鎖形成肝圓韌帶
西方點墨法使用抗體識別修改的硫辛酸蛋白.
西方墨點法或稱「蛋白質轉漬法」、「免疫墨點法」或「西式吸印雜交」，是在分子生物學、生物化學和免疫遺傳學中常用的一種實驗方法，也是HIV檢測的方法之一。
利用特定抗體能夠專一結合其抗原蛋白質的原理來對樣品進行著色，通過分析著色的位置和著色深度獲得特定蛋白質在所分析的細胞或組織中的表達情況的信息，來分析檢測特定蛋白質的生物學檢測技術。
發明者一般認為是美國斯坦福大學的喬治·斯塔克（George Stark）。在尼爾·伯奈特（Neal Burnette）于1981年所著的《分析生物化學》（''Analytical Biochemistry''）中首次被稱為“Western印跡法”。
Western Blot與Southern或Northern雜交方法類似，但Western Blot采用的是聚丙烯酰胺凝膠電泳，被檢測物是蛋白質，“探針”是抗體，“顯色”用標記的二抗。經過PAGE（根據分子大小）分離的蛋白質樣品，轉移到固相載體（例如硝酸纖維素薄膜）上，固相載體以非共價鍵形式吸附蛋白質，且能保持電泳分離的多肽類型及其生物學活性不變。以固相載體上的蛋白質或多肽作為抗原，與對應的抗體起免疫反應，再與酶或同位素標記的第二抗體起反應，經過底物顯色或放射自顯影以檢測電泳分離的特異性目的基因表達的蛋白成分。該技術也廣泛應用于檢測蛋白水平的表達。
實驗大致分為鑄膠、跑膠、轉漬、接一級抗體、接二級抗體以及壓片幾個部分。
樣本可以從整個組織或者細胞培養物中獲得。固體組織首先需要被機械性的破碎，可以使用攪拌器（對于較大體積的樣本），勻質機（對于小體積的樣本），或者利用超聲波粉碎。細胞也可以通過上述方式機械性的被破開。當然病毒及環境樣本也可以是蛋白的來源，因此Western Blotting并不僅限于細胞研究。
合適的清潔劑、鹽類和Buffer都可以被用于裂解細胞以及溶解蛋白。蛋白酶和磷酸酶抑制劑經常被添加進去，以防護樣品被其自身的酶消化掉。組織準備經常在低溫條件下進行，以避免蛋白變性和降解。
生物化學與機械技術（包括各種形式的過濾和離心）的結合，可用于分離不同的細胞室與細胞器。
樣本中的蛋白質通過凝膠電泳進行分離。蛋白質可以通過等電點（pl），分子量，電荷，以及上述因素的組合進行分離。分離的實際效果取決于樣本的處理和凝膠的性質。這是用來識別某種蛋白的一個非常有用的方法。
到目前為止，最常見的凝膠電泳方式是采用聚丙烯酰胺凝膠和十二烷基硫酸鈉(SDS)作為緩沖負載的組合。SDS-PAGE（SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳）能夠保存處在變性狀態下的多肽，這些多肽由蛋白質被強還原劑還原而失去了二三級結構產生（例：從二硫鍵S-S到巰基SH and SH），通過他們不同的分子量，從而將蛋白質分離。采樣蛋白被帶負電荷的SDS包裹，并通過凝膠的丙烯酰胺網格移動到帶正電的電荷上。較小的蛋白質會更快的遷移通過這個網格，因此蛋白質是通過大小（通常用千道爾頓，kDa作為量度單位）進行分離的。丙烯酰胺濃度決定了凝膠的分辨率：丙烯酰胺濃度越大，較低分子量的蛋白質的分辨率越好。丙烯酰胺濃度越低，高分子量的蛋白質的分辨率越好。蛋白質通常在凝膠上只沿一維做線性運動形成印痕。
樣品被加載到凝膠的泉點。第一道通常是預留給標記物或者梯度物的，它們是一些市售的蛋白質混合物，具有標定的分子量，能形成典型可見的彩色染色條帶。當電壓被施加在凝膠上，蛋白質透過其以不同的速度進行遷移，取決于蛋白質的大小。這些不同的前進速率（不同的電泳遷移率）在每個道內單獨形成條帶。
它也可以使用兩維（2-D）的凝膠，蛋白質從一個單一樣品中沿兩個維度傳播。蛋白質按等電點（蛋白質解離成陰陽離子的趨勢或程度相同，使得凈電荷成中性，此時的pH值即為等電點）在第一個維度分離，并根據其分子量在第二個維度中分離。
要讓抗體成功對蛋白質產生反應，就要將蛋白質從凝膠中轉移到用硝化纖維或聚偏二氟乙烯（PVDF）製成的膜。轉漬蛋白質時，最常用的方法稱爲"電印跡"(Electroblotting)，即運用電流，從凝膠中牽引出帶負電荷的蛋白質，使其向帶正電荷的陽極方向移動，進入PVDF或硝化纖維膜內。蛋白質自凝膠移入膜內時，可維持其在凝膠內形成的結構。較舊的轉漬方法，則是在凝膠上先放一塊膜，再放一疊濾紙，然後，將其整疊移至緩衝溶液中，溶液在毛細管作用下會帶動蛋白質，一同由下而上進入濾紙。但實際上由於耗時長，該方法並不常用。
不論採用何種方法，轉漬完成後，蛋白質便會顯露於薄膜上，可供檢測。
由于膜能結合蛋白質，所以抗體以及目標蛋白都可以結合到膜上，也因此我們必須防止膜和抗體的反應發生。把膜放在稀釋的蛋白質溶液中（比如3-5%的牛血清蛋白、脫脂牛奶、TBS或者I-Block）可以阻擋非特定的結合。稀釋溶液中的蛋白會把膜上沒有與目標蛋白結合的地方全部結合，因此加了抗體之后，膜上就沒有空間去結合其他非目標蛋白。阻攔是實驗最后的鋪墊，可以使結果更清晰，排除錯誤可能性。
在檢測過程中，使用被修飾的抗體作“探針”來標記膜上的目標蛋白，這一抗體與報告酶相連接。當暴露于適當的底物時，報告酶驅動比色反應并產生顏色。由于各種原因，這傳統上發生在一個兩步法的過程中，雖然現在某些應用中可以用一步法的檢測方法。
當宿主或免疫細胞培養物暴露于目標蛋白（或其一部分）時，產生一抗。通常這是免疫反應的一部分，而在這里一抗被采集，并在 Western blot 實驗中被用作直接結合蛋白質的敏感的和特異性的檢測工具。
在封閉后，將使用PBS或TBST緩沖液稀釋后的一抗溶液（通常0.5-5mg/mL）在溫和攪拌下與膜培育，通常室溫下培育1小時，或4℃下培育過夜。也可在不同溫度下培育，較低的溫度常帶來更高的結合性，包括特異性（與"目標蛋白"）與非特異性（與"噪聲"）結合。培育后，將膜在洗滌緩沖液中洗滌數次以除去未結合的一抗，使背景最小化。通常，洗滌緩沖液包括含少量洗滌劑的緩沖鹽液，有時加入奶粉或BSA。
沖洗膜以除去未結合的一抗，然后將膜暴露于另一種抗體，稱之為二抗。抗體來源于動物（或動物源的雜交瘤培養物）。二抗識別并結合一抗的物種特異性位點。因此，一個抗小鼠二抗可以與任何小鼠來源的一抗結合，并且可被稱為“抗物種”抗體（如抗小鼠，抗山羊等）。為了檢測靶蛋白，二抗通常與生物素或報告酶結合，如堿性磷酸酶、辣根過氧化物酶。這意味著幾種二抗可與一種一抗結合并增強信號，從而可以檢測比單獨SDS-PAGE凝膠電泳所見濃度更低的蛋白質。
辣根過氧化物酶（Horseradish peroxidase, HRP）通常與二抗結合，以允許通過化學發光檢測靶蛋白。化學發光底物被HRP裂解，產生發光。因此，發光的量與HRP結合的二抗的量成正比，從而可以間接檢測靶蛋白的存在。將敏感的攝影膠片置于膜上，暴露于反應產生的光，可以產生與印跡結合的抗體的圖像。更便宜但不太敏感的方法是使用含1%過氧化氫的4-氯萘酚染色劑，過氧化物自由基與4-氯萘酚反應產生深紫色斑點，可以在不使用專門膠片的情況下拍攝。
另一種二抗檢測方法利用了近紅外（near-infrared, NIR）熒光團結合的抗體。由熒光染料激發產生的光是靜態的，使得熒光檢測更更清晰和精確地測量 Western blot 中與蛋白結合的標記抗體產生的信號。蛋白質可以被精確測量，是因為膜上由不同蛋白量產生的信號是靜態測量的，而化學發光檢測的光是動態測量的。
第三種選擇是使用放射性標記而不是與二抗結合的酶，例如使用碘的放射性同位素標記抗體結合蛋白，如葡萄球菌蛋白A或抗生蛋白鏈霉菌素。由于其他方法更安全、快捷、便宜，現已很少使用這種方法。然而，該方法的一個優點是基于自動射線的成像的靈敏度，在光學軟件的幫助下，可以實現高精度的蛋白定量檢測。
Western blot binding
歷史上，由于在不同過程中獲得一抗和二抗相對容易，探測過程通常采用兩步法。這為研究人員和公司在靈活性、縮減成本方面提供了巨大優勢，也為檢測過程增加了擴增步驟。然而，由于高通量蛋白分析和低檢測限的出現，人們對發展一步法探測系統產生興趣，這一系統將加快檢測進程，并減少消耗。這需要一種探針抗體，既能識別靶蛋白，又含有可檢測的標記，探針通常可用于已知的蛋白標簽。與兩步法中的一抗類似，初級探針與膜一起培育，然后在一些列洗滌步驟后可以直接檢測。縮略圖
在未結合的探測劑被洗去之后，西方墨點法準備好檢測被標記和結合到目標蛋白質的探測劑。在實際應用中，并不是所有的西方墨點法揭示蛋白質僅在一種膜上的一個條帶。
Western Blot顯色的方法主要有以下幾種：
現常用的有底物化學發光ECL和底物DAB呈色，體同水平和實驗條件的是用第一種方法，目前發表文章通常是用底物化學發光ECL。只要買現成的試劑盒就行，操作也比較簡單，原理如下（二抗用HRP標記）：反應底物為過氧化物+魯米諾，如遇到HRP，即發光，可使膠片曝光，就可洗出條帶。
* 確證HIV檢測采用西方墨點法以檢測在人血清樣品中的抗-HIV抗體。
* 西方墨點法還用作決定性測試牛海綿狀腦病（BSE，通常被稱為“瘋牛病”）。
* 某些形式的萊姆病檢測用西方墨點法。
* 西方墨點法也可以被用來作為乙型肝炎病毒感染的確定測試。
* 在獸醫中，西方墨點法有時被用于確認貓的貓免疫缺陷病毒FIV+狀態。
* 十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳-簡稱SDS-PAGE
*  實驗方法-西方墨點法(Western Blot)
*  Definition of Immunoblotting
*  Western Blotting (Immunoblotting)
* http://www.expasy.ch/ch2d/protocols/protocols.fm14.html
李文正（或印尼名Mochtar Riady, ），祖籍中國福建莆田，生于印度尼西亞瑪瑯，印度尼西亞企業家、力寶集團的創始人。
李文正在中學時期，曾任東爪哇華僑學校學生會主席，他于1947年考入國立中央大學哲學系，后于1949年中國內戰結束之際輟學，經香港，重返印尼，定居雅加達，投身金融界、實業界，是知名的華人富豪之一。李文正與夫人均為虔誠基督教徒。
李文正曾任亞洲銀行家協會主席。李文正熱心于教育事業，為印度尼西亞國立大學董事長、東南大學名譽董事長及名譽教授，并捐資修建了東南大學李文正樓與李文正圖書館以及清華大學圖書館北館。
*  李文正：認人不認錢銀行成功經營新解
*  印尼錢王李文正：最驕傲是孩子比我強
*  GoodTV 真情部落格 印尼特輯 傳奇之路 - 李文正
*  李文正：疫情難阻新加坡，世界更難“去中國”
主要組織相容性復合體（major histocompatibility complex，MHC），又稱主要組織相容性複合基因，是存在于大部分脊椎動物基因組中的一個基因家族，由一群緊密連鎖的基因群組成，呈高度多態性，其編碼產物（主要組織相容性抗原）是抗原提呈和T細胞活化分子，與免疫應答及免疫調節密切相關，也是引起快而強的排斥反應的抗原；其中人類的MHC醣蛋白，又稱為人類白血球抗原（英語：human leukocyte antigen，簡稱HLA）。
MHC基因家族分為三個亞群，個別編碼出三類分子：MHC I類分子、MHC II類分子、MHC III類分子。第一類MHC處理細胞內部被分解後的蛋白質（例如病毒的）；第二類MHC當外部入侵者經過胞吞並利用溶酶體處理后形成碎片，MHC再跟這些碎片結合，並呈現在細胞表面上供T細胞所辨識；第三類MHC主要由肝細胞與巨噬細胞產生，功能並不完全了解。
人體MHC基因區位於6號染色體短臂上（從 6p22.1 到 6p21.3），由包含224個基因，跨越360萬個堿基對組成，包括一系列緊密連鎖的基因座，是目前已知的人類染色體中基因密度最高，也是多態性最為豐富的區域，故有「人類體內的化學指紋」之稱。MHC與人類的免疫系統功能密切相關，其中部分基因編碼細胞表面抗原，成為每個人的細胞不可混淆的「特徵」，是免疫系統區分本身和異體物質的基礎。
主要組織相容性基因復合體最早在近交系小鼠（inbred mice strains）中發現，克拉倫斯·庫克·利特爾在做腫瘤組織移植實驗時發現不同小鼠個體間會有排異反應。喬治·斯內爾將移植時引起排異的抗原命名為組織相容性抗原，并指出了H-2復合體就是小鼠的主要組織相容性復合體，這是最早發現的MHC基因座。因其貢獻，斯內爾獲得了1980年的諾貝爾生理醫學獎。
大多數哺乳動物的MHC變異與人類似，一樣具有豐富的多基因性和多態性，不同動物物種的MHC名稱如下：
histocompatibility system 2
human leukocyte antigen
rabbit leukocyte antigen
guinea pig leukocyte antigen
sus domesticus leukocyte antigen
rhesus macaque leukocyte antigen
根據基因的位置和功能，主要組織相容性復合體分為三類。
第一類主要組織相容性複合體（MHC I類分子）由一個跨越細胞膜的α鏈和一個連在這個鏈上的、細胞外的β2微球蛋白組成。整個分子由四個區組成，其中三個區位于α鏈上（α1-α3），β2微球蛋白組成第四個區。分子位于細胞外的部分（α1和α2）組成一個凹坑，肽可以粘在這個凹坑里。粘在這里的肽一般是在蛋白酶體里被拆除的蛋白質的殘片。免疫細胞（比如CD8+-T細胞）可以檢驗這些被粘在細胞表面的肽來區分自身和外來的細胞。在人類，第一類MHC又稱第一型人類白細胞抗原分子，在幾乎所有有核細胞表面均有分布。這些分子又可以細分為HLA-A、HLA-B和HLA-C。
第一類MHC分子可以提供一般細胞內的一些狀況（呈現該細胞製造中蛋白質的片段），比如該細胞遭受病毒感染，則相病毒外膜碎片之氨基酸鏈（peptide）透過MHCⅠ呈現在細胞外側，可以供胞毒T細胞（CD8+ cytotoxic T cells）等辨識，以進行專一性的胞殺作用。
第二類主要組織相容性複合體（MHC II類分子）由一個α鏈和一個β鏈組成，兩個鏈都穿過整個細胞膜。在細胞外這個分子有四個區（α1、α2、β1和β2），其中α1和β1組成一個凹坑。第二型主要組織相容性複合體比第一型主要組織相容性複合體稍大些。只有吞噬性的細胞（比如吞噬細胞）的表面有第二型主要組織相容性複合體（第二型人類白細胞抗原）。在巨噬過程中被溶酶體分解的蛋白質的肽被粘在第二型主要組織相容性複合體的結合位中。這個型的分子又可以下分為HLA-DP、HLA-DQ、HLA-DR、HLA-DN和HLA-DO。
只位於抗原呈遞細胞（antigen-presenting cell，APC）上，如巨噬細胞、B細胞、已活化的T細胞、樹突細胞和某種上皮細胞（皺壁上皮細胞，M細胞）等。這類提供則是細胞外部的情況，像是組織中有細菌侵入，則巨噬細胞進行吞食後，把細菌碎片利用MHCⅡ提示給輔助T細胞（CD4+ T helper cells）辨識，啟動專一性免疫反應。
第三類主要組織相容性複合體（MHC III類分子）的基因位于前兩類之間，其分子主要參與補體系統。
* Daniel M. Davis, ''The Compatibility Gene'', London, Penguin Books, 2014 (ISBN 978-0-241-95675-5).
*  分子特征（德語在線書籍，2009年）
*  NetMHC 3.0 server — 預測與肽結合有關的多個不同的MHC（HLA）基因對
*  T細胞群（加利福尼亞州立大學）
一美元紙幣（$1）是美國貨幣額名稱。一美元紙幣正面印的是美國國父喬治·華盛頓，反面印的是美國國徽。
1862年第一張一美元紙鈔被使用。上面的肖像人物是財政部大臣薩蒙·波特蘭·蔡斯。現代的肖像是在1957設計的。美元紙幣是使用了75%棉花和25%亞麻混和材料，還有紅色和藍色的微小絲綢纖維交織其上。它的寬度為2.61英寸（合6.63厘米），長6.14英寸（合15.6厘米），單張厚度為0.0043英寸（合0.11毫米），每張一美元紙鈔的質量為1克。財政部經常對貨幣設計進行微小的改變，但是這些改變通常只被發燒友和收藏家注意到。
一美元紙幣被聯邦儲備銀行以藍絲帶運輸發行。
2009年版正面
2009年版背面
正面圖案包括，喬治·華盛頓肖像，美國財政部標志。貨幣標志在1968年被采用，組成了上方的天平，象征著公平；底部的鑰匙則象征著權威；周圍是以V型環繞的13顆星，代表了美國的最初的十三個英國殖民地。
鈔票正面左側有一個圖案中間有一個較大英文字母，代表發行銀行。美國共有12家聯邦儲備銀行。“A”為波士頓；“B”為紐約；“C”為費城；“D”為克里夫蘭；“E”為里士滿；“F”為亞特蘭大；“G”為芝加哥；“H”為圣路易斯；“I”為明尼阿波利斯；“J”為堪薩斯城；“K”為達拉斯；“L”為舊金山。其中紐約的聯邦儲備銀行放著7000多噸的黃金相當於900億美元（金價上升時，幣值也跟著上升），其中只有5%屬于美國，其餘是世界各國的。
背面的圖案充滿象征和數秘術暗示，通常解釋如下：
從1782年開始，背面圖案包括一個三個環圍在一起組成的美國國徽正面圖案。金字塔黑暗的一面朝向西方。暗示了當時蠻荒未被探索過的北美西部。金字塔上方獨立的「帽子」中，包含一個上帝之眼圖案，這象征了雖然美國的建設還沒有完成，但在上帝的幫助下，目標一定會達到。旁邊用拉丁文寫著'（他（神）領導我們的事業）。另一句強調的是'（時代新秩序）指的是剛剛從英國不久的獨立。在金字塔底部寫著 ''MDCCLXXVI'' 即羅馬數字的1776年，《美國獨立宣言》簽署于這一年。另一個環內的白頭海鵰并沒有為此頭戴皇冠。另外，鷹前空懸的盾牌象征了這個新國家有能力由國會獨立自主，統一。這是盾上方白條象征的含義。鷹喙引出''E PLURIBUS UNUM''（合眾為一）幾個字。左右鷹爪分別握著橄欖枝和箭，但鷹頭望向橄欖枝，象征著「我們渴望和平，但時刻準備為之戰斗」。
象征十三殖民地的數字13（如國旗上的13條紋），在紙幣上反復出現：
* ''ANNUIT COEPTIS''共13個字母
* ''E PLURIBUS UNUM''也是13個字母
基因組學，或基因體學，是研究生物基因組和如何利用基因的一門學科。該學科提供基因組信息以及相關數據系統利用，試圖解決生物，醫學，和工業領域的重大問題。
基因組學能為一些疾病提供新的診斷、治療方法。例如，對剛診斷為乳腺癌的女性，一個名為“Onco''type'' DX”的基因組測試，能用來評估病人乳腺癌復發的個體危險率以及化療效果，這有助于醫生獲得更多的治療信息并進行個性化醫療。基因組學還被用于食品與農業部門。
基因組學的主要工具和方法包括：生物信息學，遺傳分析，基因表達測量和基因功能鑒定。
隨著在1941年左右羅莎琳·富蘭克林對于DNA的螺旋結構的確認，詹姆斯·沃森和弗朗西斯·克里克在1953年發表的DNA的結構，還有弗雷德里克·桑格在1955年出版的胰島素的氨基酸序列，核酸測序成為早期分子生物學家們的一個主要目標。
除了他對胰島素的氨基酸序列的開創性工作之外，弗雷德里克·桑格和他的同事在能夠啟動建立全面的基因組測序計劃的DNA測序技術的發展中起到了關鍵作用。在1975年，他和艾倫·庫爾森（Alan Coulson）發表用DNA聚合酶和放射性標記的核苷酸的測序過程，他稱為"加減測序法技術"。該過程可以達到80個核苷酸測序一次性測序，和之前還是非常費力的過程相比是一大進步。然而，在1977年，他的小組能測序5386個核苷酸的單鏈噬菌體（Phage Φ-X174）中的絕大多數，完成了世界上第一個以DNA為基礎的基因組完全測序。"加減測序法"的改進導致鏈終止法（chain termination method），或桑格測序法，形成了DNA測序，基因組圖譜，數據存儲的技術的基礎，和在下一個四分之一世紀的研究中最廣泛使用的生物信息學分析。在同一年，哈佛大學的沃爾特·吉爾伯特和（Allan Maxam）獨立開發出DNA測序的馬克薩姆-吉爾伯特測序（Maxam-Gilbert法，又稱化學法），涉及在DNA已知的堿基優先斷裂，一種效率較低的方法。由于他們在核酸測序開創性的工作，吉爾伯特和桑格與保羅·伯格（重組DNA）分享1980年度的諾貝爾化學獎。
基因組學出現于1980年代，1990年代隨著幾個物種基因組計劃的啟動，基因組學取得長足發展。相關領域是遺傳學，其研究基因以及在遺傳中的功能。
* 1977年，噬菌體Φ-X174;（5,368堿基對）完全測序，成為第一個測定的基因組。
* 1995年，嗜血流感菌（''Haemophilus influenzae''，1.8Mb）測序完成，是第一個測定的自由生活物種。從這時起，基因組測序工作迅速展開。
* 2001年，人類基因組計劃公布了人類基因組草圖，為基因組學研究揭開新的一頁。
* 2012年，千人基因組計劃
“組”在基因組一詞中，意指一個物種的“全部”遺傳組成。由于諸如基因組測序這樣的大規模定量生物項目的成功，“組”的這個意義的使用已經擴展到其他相關領域。例如，蛋白質組指的是一個物種，組織或細胞內的全部蛋白質（表達的基因這里指被翻譯成蛋白質）。蛋白質組學現在已經作為研究蛋白質組的專業術語。
請參見：組學主題列表 (生物學)
在一個生物體已被選擇以后，基因組項目涉及三個部分：DNA測序，該序列的組件生成原有染色體的表示法，以及該表示法的注釋和分析。
基因組間的相互比較已經導致一些驚人的生物學發現。如果某特定的DNA序列或DNA基序在某進化樹分支上所有的物種都出現，則稱該序列在這些物種間是保守的。某DNA序列的進化保守性提示擁有這些序列的物種具有相應的自然選擇優勢。同時也提示，其具有重要功能。這可能是蛋白編碼序列或調控區域。對這些序列的實驗研究表明，其中一部分被轉錄成小RNA，而這些小RNA的功能尚未研究清楚。
在兩個進化樹上距離較遠，相關而又不處于同一進化分支中的物種間鑒定出相似序列（包括許多基因），促成了新理論的產生，該理論認為這些序列是通過水平基因轉移而獲得的。盡管這些基因看起來是從古細菌向真細菌進行轉移，而這種現象在細菌間尤其顯著。同時還注意到，細菌基因在真核生物核基因組中出現，而這些基因通常用來編碼線粒體和葉綠體蛋白，這種現象也支持細胞器起源的內共生學說。該理論認為動物和植物基因組中發現的線粒體和葉綠體最初是自由生活的細菌，由祖先真核細胞吸收而來，后來逐步變成真核細胞的有機組成部分。
由中西部結構基因組學中心確定的蛋白質結構的一個例子。
結構基因組學（Structural Genomics）是基因組學的一個重要組成部分和研究領域，它是一門通過基因作圖、核苷酸序列分析確定基因組成、基因定位的科學。結構基因組學尋求通過研究給定的基因組編碼來測定每一種蛋白質的三維結構。這種基于基因組的方法允許通過實驗和建模方法的組合來實現結構確定的高通量方法。 結構基因組學與傳統結構預測之間的主要區別在于結構基因組學試圖確定基因組編碼的每種蛋白質的結構，而不是專注于一種特定的蛋白質。
（Functional genomics）的研究又往往被稱為后基因組學（Postgenomics）研究，它是利用結構基因組學提供的信息和產物，通過在基因組或系統水平上全面分析基因的功能,
元基因組學，又譯宏基因組學、總體基因體學，是一門直接取得環境中所有遺傳物質的研究。研究領域廣泛，也可稱為環境基因體學、生態基因體學或群落基因體學。在早期研究微生物基因體必須將環境基因DNA或RNA轉殖進入大腸桿菌體內，利用複製選殖方式，分析在自然環境中複製選殖特定基因(通常為16S rRNA)的多樣性。但是，這樣的工作表明，絕大多數的微生物生物多樣性已被基於複製選殖的方法所遺漏。最近的研究使用“霰彈槍”或PCR定向測序來獲得來自所有樣本社區所有成員的所有基因的大部分無偏差的樣本基因。由於其能夠揭示以前隱藏的微生物多樣性，總體基因體學提供了一個強大的鏡頭，用於觀察微生物世界，這些微生物世界有可能徹底改變對整個生命世界的理解。
營養基因組學的研究方面是檢測和操縱植物中的微量營養代謝途徑,
學界常用某特定物種的DNA序列共享人類序列的百分比來表示相似性。該數字顯示了兩物種之間堿基對相同的百分比。這里所列的是相對于人類的遺傳相似性，并列出了數據來源。
''這些數據來源于不同的二級數據源，并用不同的方法獲得（例如DNA-DNA雜交或序列比對），這可能導致相同物種間的比較得到不同的結果。因此，這些數據應該僅僅用作大致相似性。''
引自2000年1月，美國總統克林頓國會演講;同時參見人類基因組計劃
醫學發展美國人聯會（AMP）; Jon Entine in the San Francisco Examiner
Celera基因組中心Richard Mural, quoted on MSNBC
98.38%
基于物種間非重復DNA的研究，發表在''Am J Hum Genet''.（2001）Feb;682:444-56上
醫學發展美國人聯會（AMP）
比較所有的蛋白編碼序列, NHGRI
秀麗隱桿線蟲
基因組學已經在許多領域，包括醫學，生物技術，人類學和其他社會科學提供應用。
下一代基因組技術允許臨床醫生和生物醫學研究人員對于大量的研究種群數量大幅增加收集的基因組數據。也有越來越多的案例使用基因組學所得到的數據應用在個人化的治療上。
基因組學知識的增長，使合成生物學有越來越多的復雜的應用。
*  PLoS引物：比較基因組學
* "人類基因組專刊" ''自然'', 2001年2月15日, no. 6822
* 搜索人類基因信息數據庫 - http://www.medicalcomputing.net/cgi-bin/query_human_gene_info , 醫學計算，網絡
* 基因組學在線數據庫 - https://web.archive.org/web/20060616055022/http://wit.integratedgenomics.com/GOLD/
* 基因組研究中心（TIGR） - https://web.archive.org/web/20200513201339/https://tigr.org/
* 桑格中心 - http://www.sanger.ac.uk
* 美國國家生物技術信息中心（NCBI） - http://www.ncbi.nlm.nih.gov
* http://www.dbbm.fiocruz.br/genomics/genomics.html
* http://www.dbbm.fiocruz.br/genome/tcruzi/tcruzi.html（Chagas' Disease and ''Trypanosoma cruzi'' genome project）
*  Translational Genomics Research Institute
*  International Genomics Consortium
*  Functional Annotation of the Mouse database
* Dengueinfo.org - Dengue Virus full genome database - https://web.archive.org/web/20061208145541/http://www.dengueinfo.org/
輪狀病毒（，簡稱RV）是一種雙鏈核糖核酸病毒，屬于呼腸孤病毒科。它是引起嬰幼兒腹瀉的最常見原因，幾乎每個兒童在約五歲時都經歷至少一次輪狀病毒感染。然而，每一次感染后人體免疫力會逐漸增強，因此之後再次感染的影響就會減輕，到成人階段就很少受其影響。輪狀病毒總共有八個種，以英文字母編號為A、B、C、D、E、F、G與H。其中，A種是最為常見的一種，超過90%人類輪狀病毒感染是由該種造成。
輪狀病毒是藉由糞口途徑傳染的。它會感染與小腸壁上的並且產生腸毒素（enterotoxin），腸毒素會引起腸胃炎，導致嚴重的腹瀉，有時候甚至會因為脫水而導致死亡。雖然輪狀病毒於1973年就被由澳洲的所發現，而且造成嬰兒與幼兒總計超過50%以上因為嚴重腹瀉而住院治療的案例，但是在公共衛生社群中它仍然沒有被廣泛地重視，特別是在發展中國家更是如此。除了對人類健康的影響之外，輪狀病毒也會感染動物，是家畜的病原體之一。
輪狀病毒的治療並不複雜，但每年仍有超過450,000名五歲以下的嬰幼兒因為輪狀病毒的感染而死亡，而且每年有幾乎兩百萬以上的兒童因此患重病。在美國實施疫苗施打計畫之前，輪狀病毒每年造成270萬個兒童嚴重腸胃炎的案例，有近60,000名兒童需住院治療，並且每年平均有37個死亡案例。對付輪狀病毒的方式著重於使用口服補液鹽，並且以疫苗接種來防止這種疾病的發生。在疫苗施打實施之後，輪狀病毒的病例即大幅減少。
是一種中等或重度的急性疾病，會引起噁心、嘔吐、水狀腹瀉，以及低程度的發熱。當兒童受到這類病毒感染時，在癥狀發生前大約會有兩天的潛伏期。癥狀通常是從嘔吐開始，接著是四到八天的大量腹瀉。輪狀病毒感染比起其他細菌性腸胃炎更容易引起脫水的現象，也是輪狀病毒感染的最常見的死因。
每個人終其一生都可能受到A種輪狀病毒的感染。初次感染通常會產生癥狀，再次感染則通常只產生輕微癥狀或沒有癥狀，因為免疫系統提供了部分的保護機制。所以，感染癥狀發生的比例於兩歲以下的兒童最高，之後漸漸降低直到45歲為止。雖然新生兒感染的機會很常見，但是通常都是溫和的癥狀或是無癥狀疾病；最嚴重的癥狀都會發生在比較大一點的出生六個月到兩歲的小孩，以及發生在有免疫缺陷的小孩身上。大部分的成人因童年時期獲得的免疫力，因此對於輪狀病毒感染影響不大；成人發生的腸胃炎通常是因為其他病因而非輪狀病毒，但是成人的無癥狀感染依然在社群中帶有感染癥的傳染性。有癥狀的再感染通常因為感染了不同血清型的輪狀病毒A種。
取自受感染兒童糞便的輪狀病毒A種
輪狀病毒是由糞口路徑（fecal-oral route）所傳染的，藉由與接觸弄髒的手、弄髒的表面以及弄髒的物體來傳染，而且有可能經由呼吸路徑傳染。受感染病患的糞便每克可以包含超過10兆個有傳染性的病毒顆粒；而其中只要10顆到100顆就可以藉由傳播而感染另一個人。
輪狀病毒在自然環境中是穩定的，也可以在河口的樣本中發現，其樣本大概每美-{制}-加侖可以發現1至5顆有傳染性的輪狀病毒顆粒。消滅細菌與寄生蟲的衛生設備似乎對於輪狀病毒的控制是無效的，因為在高衛生水平與低衛生水平的國家中，輪狀病毒感染的發病率是相似的。
受到輪狀病毒感染的腸黏膜細胞電子顯微鏡影像（上圖）可以與未受感染的細胞（下圖）比較。黑線長度大約500奈米。
腹瀉是肇因於輪狀病毒的多重活動。輪狀病毒主要複製於消化道，並感染腸絨毛的，造成上皮組織結構和功能上的改變，遭到該病毒的破壞而導致。產生腸毒素的病毒蛋白質NSP4製造了倚賴鈣離子的氯化分泌物，破壞了鈉-葡萄糖協同運輸蛋白1（sodium-glucose transport 1，SGLT1）載體居中調節的水份再吸收，這個顯然降低了刷狀緣（brush border）薄膜雙醣酵素（disaccharidase）的活動，而且可能激化腸神經系統中依賴鈣離子的分泌（secretion）的反射作用。健康的腸黏膜細胞會分泌乳糖酶進入小腸；所以因乳糖酶缺乏而造成的乳糖不耐癥也是輪狀病毒感染經常出現的癥狀，這個癥狀可以持續數週。乳糖不耐癥的再次發生通常與牛奶再次引入兒童的日常飲食有關，因為細菌發酵了在肚子內的雙醣乳糖。
輪狀病毒感染的診斷一般都伴隨著有嚴重的腹瀉癥狀的腸胃炎。大部分的因為腸胃炎進入醫院的兒童病患都被檢測出輪狀病毒A種。對於輪狀病毒A種傳染病的專門診斷方式是對病患的糞便利用酵素免疫分析法去作病毒的識別。目前市場上已經有幾種核準的監測設備，這些監測設備對於輪狀病毒A種的所有血清型都可以敏感，個別的檢測出來。其他的檢驗方法，如電子顯微鏡法或是凝膠電泳法，則是使用在研究實驗室之中。逆轉錄聚合酶鏈鎖反應（RT-PCR）可以檢測並識別所有種與所有血清型的人類輪狀病毒。
劇烈的輪狀病毒感染癥的治療方法並不特別，這包括了癥狀的控制與最重要的補充水分（Rehydration）。如果沒有治療，兒童可能會因為嚴重脫水而死亡。依據腹瀉的嚴重度，治療包含使用口服補液鹽作為。。有一些感染癥狀較為嚴重，足以住院治療，住院治療時這些液體則是經由靜脈滴入或是經由鼻胃管（nasogastric tube）進入病童身體，而病童的電解質與血糖必須要特別注意。
輪狀病毒感染很少造成其他的併發癥，而且對於癥狀控制良好的兒童來說，預後是極佳的。極少數的報告有出現在中樞神經系統（CNS）的併發癥案例，在中樞神經系統中的液體中發現了輪狀病毒，並且引起了腦炎與腦膜炎，而近期的研究結果也確認了輪狀病毒並不會永遠只限制在內臟裡，還可能會引起病毒血癥（viremia）。
在英格蘭一個地區的輪狀病毒A種感染癥的季節性變化：感染率的高峰是為在冬天的數月之中。
在全世界各地流行的輪狀病毒A種據統計是人類輪狀病毒腸胃炎案例中超過90%以上的病媒，每年輪狀病毒在發展中國家造成上億的腹瀉案例，有接近200萬的病患住院治療，而且據估計有611,000的死亡案例。單獨就美國而言，平均每年就發生超過270萬件輪狀病毒腸胃炎的案例，約60,000的病童必須住院治療，而且有37名病童因為這個病毒感染癥而死亡。而輪狀病毒是引起腹瀉的主要角色並沒有受到廣泛的被公共衛生社群所承認，特別是發展中國家。幾乎每個兒童在五歲以前都曾感染過輪狀病毒。它是嬰兒與幼兒嚴重腹瀉的主要單一原因，其中大約20%的嬰幼兒腹瀉案例是歸因於此，而統計大約50%的案例需要住院治療。男孩住院治療的案例為女孩住院治療的兩倍。
+ 因為輪狀病毒A種而死亡的五歲以下兒童
死亡率或其範圍
1/61 至 1/113
1/390 至 1/660
1/1800
1/20433
1/21675
在溫帶地區，輪狀病毒感染癥主要發生於冬季，但是在熱帶地區則是一年全年都會發生；其中的不同之處有部分可以用溫帶地區溫度與溼度季節性的變化來解釋。對於可歸因食物污染的數據尚未清楚。
輪狀病毒A種腹瀉經常在醫院的嬰兒、參加托兒所的幼兒，以及在照養中心的老人之間爆發。1981年在美國科羅拉多州發生一次因為市區飲用水遭到污染而爆發大規模輪狀病毒感染。而在2005年期間，紀錄上最大的腹瀉大規模傳染病疫情發生在尼加拉瓜。這次不尋常大且嚴重的疫情爆發是伴隨著輪狀病毒A種基因突變，也許這幫助了病毒逃離了民眾體內普遍免疫力的保護。另外一次類似的流行性大爆發則是發生在1977年的巴西。
輪狀病毒B種，也稱為成人腹瀉輪狀病毒（adult diarrhoea rotavirus，ADRV），造成影響上千名中國各年齡層人民的嚴重腹瀉大規模傳染病。這些已經發生的傳染病都是因為污水污染了飲用水的結果。輪狀病毒B種感染也發生在1998年的印度；這次成因的病毒株被命名為CAL，不像ADRV，CAL病毒株是地方性的。目前為止，因為輪狀病毒B種引起的流行病已經被限制在中國大陸，但是研究指出美國普遍缺乏對於該種病毒的免疫力。
輪狀病毒C種出現在許多國家中的小孩腹瀉的極少數偶發案例中，但是在日本與英格蘭曾經爆發過大規模流行。
於2006年，兩種對抗輪狀病毒A種感染的疫苗已經證明對兒童是安全而且有效的：分別是由葛蘭素史克製造的「羅特律」（Rotarix）與由默克大藥廠製造的「輪達停」（RotaTeq）。兩種疫苗皆是用口服接種，並且都包含了無作用力的活病毒。輪狀病毒疫苗目前在澳洲、歐洲、加拿大、巴西、埃及、印度、以色列、臺灣、南非、巴拿馬、阿根廷與美國等地都可以取得。
輪狀病毒疫苗計畫（Rotavirus Vaccine Program）是一個適宜衛生科技組織（Program for Appropriate Technology in Health，簡寫為 PATH）、世界衛生組織與美國疾病控制與預防中心的合作計畫，該計畫由全球疫苗與免疫聯盟（GAVI Alliance）資助。該計畫的目的是藉由製造可以讓發展中國家使用的輪狀病毒疫苗，來降低兒童因為痢疾而產生的疾病與兒童死亡率。
輪狀病毒也會感染年幼的動物並造成腹瀉。各項研究顯示，輪狀病毒會感染哺乳動物（如：猿猴、牛、豬、羊、田鼠、貓與狗、家鼠、馬與兔子等）以及鳥類（雞與火雞等）等。這些感染動物的輪狀病毒是有與感染人類的輪狀病毒產生基因交換的潛在可能性。目前已經證明感染動物的輪狀病毒也可以感染人類，感染途徑包括病毒的直接傳染以及提供感染人類的病毒株一段或是數段的核糖核酸片段來進行基因重整（reassortment）。輪狀病毒是家畜的病原體之一，並且治療的費用、家畜的高罹病率與高死亡率都會造成農人的經濟損失。
輪狀病毒總共有七種，分別以英文字母編號為A、B、C、D、E、F與G等。人類主要是受到輪狀病毒A種、B種與C種的感染，而其中最常見的是輪狀病毒A種的感染。而這七種輪狀病毒都會在其他動物身上造成疾病。
在輪狀病毒A種之中有不同的病毒株，稱之為血清變異株（serovar）。與流行性感冒病毒類似，輪狀病毒使用了雙重的分類系統，這樣分類法是依據這個病毒體表面的兩個結構性蛋白質來作分類的。糖蛋白VP7定義了G型而對於蛋白酶敏感的蛋白質VP4則定義了P型（這些蛋白質的細節請見下文）。P型會以一個數字來標示出P血清型，並用方括弧內部的一個數字來標示所對應的P基因型。G血清型的表示方法很類似，但是G基因型的數字會與G血清型的數字相同。舉個例來說，「輪狀病毒Wa病毒株」（rotavirus strain Wa）就會被標示成「P1AG1」。因為這兩個決定G型跟P型的基因可以被分開傳送而產生後代，所以兩基因不同的組合就會產生各種不同的病毒株。
輪狀病毒的基因組包括了11條獨特的核糖核酸雙螺旋分子，這11條中總共有18,555個核苷鹼基對。每一條螺旋或是分段即是一個基因，並且依照分子尺寸由大到小依次編號為1到11。每一個基因都可以編碼成一種蛋白質，而其中第9基因與第11基因比較特別，它們都可以編碼成兩種蛋白質。核糖核酸外圍則是包圍了三層二十面體的蛋白質殼體。病毒顆粒大約直徑76.5?nm，並且並沒有病毒包膜（Viral envelope）。
有六個病毒蛋白質（viral protein，VP）架構了整個病毒顆粒（病毒體）。這些「結構性」的蛋白質分別被稱為VP1、VP2、VP3、VP4、VP6與VP7。除了這些結構性蛋白質之外，還有六個非結構性蛋白質（nonstructural protein，NSP），這六個蛋白質僅僅在輪狀病毒感染的細胞中製造，而沒有構成病毒體的結構。這六個非結構性蛋白質分別稱為NSP1、NSP2、NSP3、NSP4、NSP5與NSP6。
輪狀病毒結構性蛋白位置簡圖
由輪狀病毒基因組所編碼的12個蛋白質中，至少6個會與核糖核酸結合。這些蛋白質在輪狀病毒複製時所扮演的角色目前還沒有完全被了解；它們的功用被認為有可能是與病毒體內核糖核酸的合成與包裝相關，或是與將信使核糖核酸輸送至基因體複製現場相關，或是與信使核糖核酸轉譯與基因表現調節相關。
VP1蛋白質位於病毒體核心，是一種核糖核酸聚合酶。在被感染的細胞中，這種酶會產生病毒蛋白質合成所需的信使核糖核酸轉錄複本，以及產生輪狀病毒基因體核糖核酸片段拷貝來提供新產生的病毒體使用。
黏在輪狀病毒上的金奈米粒電子顯微鏡影像。圖中的黑色小圓盤是塗上一層單株抗體的金奈米粒，這個單株抗體是專門針對VP6蛋白質製造的。
VP2蛋白質形成病毒體的核心層，並且結合核糖核酸基因體。
VP3蛋白質是病毒體內核的一部分，而且是一種稱為鳥苷酸轉移酶（guanylyl transferase）的酶。這種酶是一種加帽酶（Capping enzyme），也就是製作信使核糖核酸轉錄後修飾時候所用的5'端帽的酶。這個5'端帽保護病毒的信使核糖核酸免受核酸酶（以核酸為底物的水解酶）水解，使之能夠保持穩定。
兩個輪狀病毒：右側的病毒表面VP4蛋白質結合了抗體，阻止其黏附到細胞表面，從而抑制了病毒感染。
VP4蛋白質位於病毒體的表面，突出來而成為一個刺突（spike）。它連接細胞表面的受體分子，並且驅使病毒進入那個細胞。在病毒有傳染性之前，VP4蛋白質會被一種可以在內臟發現的蛋白酶改變成VP5*蛋白質與VP8*蛋白質。VP4蛋白質決定了該病毒的毒性（Virulence），而它也決定了該病毒的P型。
細胞轉譯（上）與輪狀病毒轉譯（下）比較圖，可以看出NSP3蛋白質如何停止細胞蛋白質合成。
VP6蛋白質形成殼體的體積。它是抗原性強的蛋白質，並且可以被用來分辨輪狀病毒的種類。這個蛋白質被實驗室用來進行輪狀病毒A種感染癥的各種測試上。
VP7蛋白質是一種建立病毒體外層表面的糖蛋白。扣除掉它在病毒結構上的功用之外，它也決定該病毒珠的G型。VP7蛋白質跟VP4蛋白質一樣，都被免疫力（immunity）當作是防止感染的途徑。
NSP1蛋白質是第5號基因的產物，是一種非結構性蛋白質，而且也是核糖核酸結合蛋白質（RNA-binding protein）。
NSP2蛋白質是一種核糖核酸結合蛋白質，此種蛋白質會堆積於細胞質內含物（即病毒質，viroplasm）之中，並且是一種基因體複製時所需的蛋白質。
NSP3蛋白質受到感染細胞中的病毒信使核糖核酸影響，它負責停止細胞蛋白質合成的工作。
NSP4蛋白質是一種病毒性腸毒素（enterotoxin），會引起腹瀉的癥狀。此蛋白質是首種發現的病毒性腸毒素。
NSP5蛋白質是由輪狀病毒A種基因體第11號基因編碼的產物。而在受病毒感染的細胞中，NSP5蛋白質堆積在病毒質中。
NSP6蛋白質是一個結合核酸的蛋白質，是由第11號基因於開放閱讀框架階段的編碼產物。
+ 輪狀病毒的基因與蛋白質
核糖核酸片段 （基因）
尺寸 （鹼基對數）
分子量 （kDa）
位於核心的頂點
核醣核酸依賴性的核醣核酸聚合酶（RdRp）
形成核心的內殼
刺激病毒的核糖核酸複製酶
鳥苷酸轉移酶，信使核糖核酸加帽酶
細胞附著，毒性
對於病毒成長非必須
結構性與物種特殊性的抗原
強化病毒信使核糖核酸的活性，並停止受感染細胞的蛋白質合成
包含在核糖核酸包裝中的核苷三磷酸酶（NTPase）
VP71 VP72
結構性與中和抗原
NSP5 NSP6
結合NSP2調節因子的單鏈核糖核酸與雙鏈核糖核酸
該表的資料是基於感染類人猿的輪狀病毒SA11病毒株所編寫。在不同的病毒株中，核糖核酸與蛋白質之間的編碼預測會有所不同。
輪狀病毒複製循環的簡圖
輪狀病毒感染小腸絨毛（villi）的腸黏膜細胞，改變上皮組織的結構與功能。輪狀病毒的三重蛋白質外層使它們可以抵抗胃中的胃酸以及消化系統中的消化酶（digestive enzyme）。
病毒藉由受體媒介的內吞作用進入細胞，並且形成一個稱作核內體（endosome）的囊泡。輪狀病毒第三層的蛋白質（即VP7與VP4刺突）會分解核內體的外膜，而創造一個鈣濃度不同的外膜。這個改變導致了VP7蛋白質三聚體破裂為一個單一蛋白質的子單元，留下圍繞在病毒雙鏈核糖核酸外面的VP2與VP6蛋白質，形成雙層構造的病毒顆粒（DLP）。
七條雙鏈核糖核酸鏈依舊維持兩層蛋白質層，並提供病毒核醣核酸依賴性的核醣核酸聚合酶（RNA replicase或RNA-dependent RNA polymerase，RdRp）創造雙鏈病毒基因體的信使核糖核酸轉錄複本的保護。藉由把病毒核醣核酸保持於病毒核心，病毒核醣核酸躲避了先天宿主的免疫反應。這個免疫反應稱為核醣核酸干擾，會因為雙鏈核糖核酸鏈的表現而觸發。
在感染的過程中，輪狀病毒產生信使核糖核酸來生物合成蛋白質並且進行基因複製。大部分的輪狀病毒蛋白質都堆積在病毒質中，病毒質也是核糖核酸複製的地方，以及雙層構造病毒顆粒組裝的地方。病毒質於病毒感染細胞約兩個小時之內就會快速地在細胞核周圍形成，而組成所謂的「病毒工廠」，這個病毒工廠是由兩個病毒非結構性蛋白質（NSP5與NSP2）所製成。NSP5蛋白質如果因為核醣核酸干擾而被壓抑功能，會明顯地減弱輪狀病毒複製功能。新生的雙層構造病毒顆粒則會移動到內質網，它們將在此處獲得它們第三層外層（由VP7與VP4蛋白質所構成）。最後，這些後代病毒就會經由細胞裂解（lysis）釋放到細胞之外。
費留特原始的電子顯微鏡影像之一
輪狀病毒顆粒的電腦重建影像
1943年，雅各·萊特（Jacob Light）與荷瑞西·赫德斯（Horace Hodes）證明了在感染傳染性腹瀉的小孩身上有一種濾過性的病媒，這個病媒也會造成家畜腹瀉。30年後，被保存下來的病媒樣本證明此病媒是輪狀病毒。從1943年到1973年間，研究發現老鼠身上的病毒與引起成腹瀉的病毒間有相關性。1973年，位於澳洲的露絲·畢夏普（Ruth Bishop）在兒童腸胃炎的研究報告上描述出類似的病毒。
1974年，湯瑪斯·亨利·費留特（Thomas Henry Flewett）在通過電子顯微鏡觀察過這類病毒之後，建議將其命名為「輪狀病毒」（''rotavirus''），因為輪狀病毒的顆粒看起來很像輪子，而拉丁文中「''rota''」的意思即為「輪狀」；這個名稱四年後經由國際病毒分類委員會（International Committee on Taxonomy of Viruses）正式認可。1976年，相關類似的病毒也在許多其他種動物的研究上被描述到。這些被報告描述的病毒，通通都會導致急性腸胃炎，並且被認定為影響全世界人類與動物的集體病原體。輪狀病毒的血清型於1980年首次發表，而在隔年，來自人體的輪狀病毒藉由添加胰蛋白酶（一種發現於哺乳動物十二指腸的酶，目前已知是輪狀病毒複製所必須的物質）首次在從自然環境中猴子腎臟取得的細胞培養中成功栽培。成功培養輪狀病毒的能力加速了研究的腳步，且在1980年代中期，首批候選的疫苗已經開始進行評估。
1998年，首種輪狀病毒疫苗（Rotavirus vaccine）獲得在美國使用的執照。在美國、芬蘭與委內瑞拉的臨床試驗發現該疫苗可以對於成功預防輪狀病毒A種所產生的嚴重腹瀉比率高達80%至100%，而研究者也沒有發現顯著的嚴重藥物不良反應。然而，在該疫苗被發現會增加腸套疊（即腸梗阻（bowel obstruction）的一種）的風險之後，疫苗製造商在1999年將疫苗從市場上全部撤回，研究顯示每12,000注射過疫苗的嬰兒有一個會有腸套疊的癥狀。這次經驗也引發了關於輪狀病毒疫苗的相關風險與益處的激烈爭論。2006年，兩種對抗輪狀病毒A種的新疫苗被證明對兒童是安全而且是有效預防的。
* 嬰兒死亡（infant mortality）
* 輪狀病毒轉譯（rotavirus translation）
* 輪狀病毒順式複製元件（rotavirus cis-acting replication element，rotavirus CRE）
*  美國疾病控制與預防中心關於輪狀病毒的介紹
DNA測序又稱DNA-{zh-cn:定序;zh-tw:測序;}-，是指分析特定DNA片段的堿基序列，也就是腺嘌呤（A）、胸腺嘧啶（T）、胞嘧啶（C）與鳥嘌呤（G）的排列方式。快速的DNA測序方法的出現極大地推動了生物學和醫學的研究和發現。
在基礎生物學研究中，和在眾多的應用領域，如診斷，生物技術，法醫生物學，生物系統學中，DNA序列知識已成為不可缺少的知識。具有現代的DNA測序技術的快速測序速度已經有助于達到測序完整的DNA序列，或多種類型的基因組測序和生命物種，包括人類基因組和其他許多動物，植物和微生物物種的完整DNA序列。
RNA測序則通常將RNA提取后，反轉錄為DNA后使用DNA測序的方法進行測序。目前應用最廣泛的是由弗雷德里克·桑格發明的桑格測序。新的測序方法，例如454生物科學的方法和焦磷酸測序法。
自動化chain-termination DNA測序結果的一個例子。
DNA測序可用于確定任何生物的單個基因的序列，較大的遺傳區域（即基因簇或操縱子的簇），完整的染色體或整個基因組。 DNA測序也是對RNA或蛋白質進行測序的最有效方法（通過對開放閱讀框測序）。目前，DNA測序已成為生物學和其他科學領域（如醫學，法醫學或人類學等）的關鍵技術。
在分子生物學中，DNA測序可被用于研究基因組及其編碼的蛋白質。利用測序獲得的信息，科研人員能夠識別基因的變化，基因與疾病和表型的關聯，并確定潛在的藥物靶點。
由于DNA是攜帶有遺傳信息的大分子，在演化生物學中，DNA測序被用于研究不同生物體之間的相關性以及它們是如何演化的。
宏基因組學是一門直接取得環境中所有遺傳物質的研究。環境包括但不限于水體，污水，污垢，從空氣中過濾出的碎片或者從生物體采集的樣本。了解在特定環境中存在哪些生物體對于生態學，流行病學，微生物學和其他領域的研究至關重要。DNA測序使研究人員能夠確定微生物群中可能存在哪些類型的微生物。
醫療人員可通過對患者基因（基因組）的測序結果確定該患者是否有攜帶遺傳性疾病的風險。需要注意的是，該方法屬于基因檢測，有些基因檢測不會用到DNA測序技術。
DNA測序可以與DNA圖譜鑒定（基因指紋分析，）一起用于法醫鑒定和親子鑒定。 DNA測試在過去的幾十年中發展迅猛，目前已能夠做到將DNA鑒定結果與被調查對象聯系起來。指紋，唾液，毛囊等中的DNA特征可以將不同的生物體進行區分。測試DNA是一種可以檢測DNA鏈中特定基因組并生成唯一的個性化DNA模型的技術。每一種有機體都有其DNA特征，并可以通過DNA測試來確定。兩個人具有完全相同的DNA特征是非常罕見的，因此保證了DNA測試的成功。
弗雷德里克·桑格，DNA測序的先驅者。桑格是少數獲得兩項諾貝爾獎的科學家之一，其中一項為蛋白質測序，另一項為DNA測序。
脫氧核糖核酸（DNA）最早在1869年由Friedrich Miescher發現并分離出來，但由于當時普遍認為遺傳信息保存于蛋白質而不是DNA中，因此在過去幾十年中DNA一直沒有得到充分研究。1944年，由于Oswald Avery，Colin MacLeod和Maclyn McCarty的一些實驗表明，純化的DNA可以將一種細菌變成另一種細菌，這種情況才發生了變化。這也是首次DNA顯示出改變細胞特性的能力。
1953年，James Watson和Francis Crick根據Rosalind Franklin研究的結晶X射線結構提出了他們的雙螺旋DNA模型。根據該模型，DNA由彼此纏繞的兩條核苷酸鏈組成，通過氫鍵連接在一起并以相反方向運行。每條鏈由四個互補的核苷酸組成：腺嘌呤（A），胞嘧啶（C），鳥嘌呤（G）和胸腺嘧啶（T），其中A與T配對，C與G配對。他們提出的這種結構，使得每條單鏈都可被用于重建另一條鏈，并且讓遺傳信息代代相傳。
對蛋白質進行測序的基礎首先由弗雷德里克·桑格（Frederick Sanger）的工作奠定，他于1955年完成了胰島素（胰腺分泌的一種蛋白質）中所有氨基酸序列的測序工作。這是首個確鑿的證據證明蛋白質是具有特定分子模式的化學實體，而不是懸浮在流體中的隨機混合物。桑格在胰島素測序方面的成功使得X射線晶體學家大為振奮，包括沃森和克里克，他們現在正試圖理解DNA如何指導細胞內蛋白質的形成。在1954年10月弗雷德里克·桑格出席一系列講座后不久，克里克開始發展一種理論，認為DNA中核苷酸的排列決定了蛋白質中氨基酸的序列，從而幫助確定蛋白質的功能。他于1958年發表了這一理論。
RNA測序是最早的核苷酸測序形式之一。 RNA測序的主要標志是1972年和1976年Walter Fiers及其同事在根特大學（根特，比利時）確定并發表的第一個完整基因序列和噬菌體MS2的完整基因組。傳統的RNA測序方法需要創建一個用于測序的互補cDNA（Complementary DNA）分子。
確定 DNA 序列的第一種方法涉及由康奈爾大學的吳瑞于1970年建立的位置特異性引物延伸策略。 DNA聚合酶催化和特定核苷酸標記，這兩者在當前的測序方案中都很重要，用于對λ噬菌體DNA的粘性末端進行測序。在1970年至1973年間，吳瑞、R Padmanabhan及其同事證明，該方法可用于使用合成的位置特異性引物確定任何DNA序列。隨后弗雷德里克·桑格(Frederick Sanger)采用這種引物延伸策略在英國劍橋的英國醫學研究委員會(MRC)中心開發了更快速的DNA測序方法，并于1977年發表了“使用鏈終止抑制劑進行DNA測序”的方法。
的5,386 bp基因組。每個彩色塊代表一個基因。
第一個完整的DNA基因組測序是在1977年（Phage Φ-X174）的測序工作。醫學研究委員會的科學家在1984年破譯了Epstein-Barr病毒的完整DNA序列，發現它含有172,282個核苷酸。 該序列的完成標志著DNA測序的一個重要轉折點，它在沒有病毒基因譜知識的情況下實現了DNA測序。
20世紀80年代初，Pohl及其同事開發了一種在電泳時將測序反應混合物的DNA分子轉移到固定基質上的非放射性方法。隨后GATC Biotech公司的DNA測序儀“Direct-Blotting-Electrophoresis-System GATC 1500”商業化，該測序儀在EU基因組測序程序的框架以及酵母釀酒酵母染色體II的完整DNA序列中廣泛使用。加利福尼亞理工學院的Leroy E. Hood實驗室于1986年宣布了第一臺半自動DNA測序機。隨后，Applied Biosystems在1987年推出了第一臺全自動測序儀ABI 370。以及Dupont公司的Genesis 2000，該儀器使用了一種新的熒光標記技術，可在單一泳道中識別所有四個雙脫氧核苷酸。到1990年，美國國立衛生研究院（NIH）已開始對支原體，大腸桿菌，秀麗隱桿線蟲和釀酒酵母進行大規模測序實驗，費用為每個堿基0.75美元。同時，人類cDNA序列的測序始于Craig Venter的實驗室，試圖獲取人類基因組的編碼部分。 1995年，Venter，Hamilton Smith及其基因組研究所（TIGR）的同事發表了第一個完整的自由生物體細菌流感嗜血桿菌（Haemophilus influenzae）的基因組。該環形染色體中含有1,830,137個堿基，其在《科學》雜志中的發表標志著全基因組鳥槍法測序的首次公開使用，擺脫了初始繪制工作的需要。
1990年代中後期開發了幾種新的DNA測序方法，並於 2000年在商業DNA測序儀中實施。這些方法統稱為“下一代”或“第二代”測序 (NGS) 方法，以便將它們與包括桑格測序在內的早期方法區分開來。 與第一代測序相比，NGS 技術的典型特徵是高度可擴展，允許一次對整個基因組進行測序。通常，這是通過將基因組片段化成小塊、隨機採樣片段並使用多種技術之一對其進行測序來實現的，例如下面描述的那些。 整個基因組測序是可能的，因為在一個自動化過程中同時對多個片段進行測序（命名為“大規模並行”測序）。
1990年10月26日，錢永健、Pepi Ross、Margaret Fahnestock 和 Allan J Johnston 提交了一項專利，描述了在 DNA 陣列（印跡和單個 DNA 分子）上使用可移除的 3' 阻斷劑進行逐步（“鹼基對鹼基”）測序。  1996 年，斯德哥爾摩皇家理工學院的(P?l Nyrén) 和他的學生(Mostafa Ronaghi)發表了他們的焦磷酸測序方法。
1997年4月1日，和Laurent Farinelli 向世界知識產權組織提交了描述DNA菌落測序的專利。 本專利中描述的DNA樣品製備和隨機表面聚合酶鏈式反應 (PCR) 陣列方法，與錢永健等人的“鹼基對鹼基”測序方法相結合，現已在Illumina公司的Hi-Seq基因組測序儀中實施。
馬克薩姆-吉爾伯特測序（英語：Maxam-Gilbert sequencing）是一項由與沃爾特·吉爾伯特于1976～1977年間開發的DNA測序方法。此項方法基于：對核鹼基特異性地進行局部化學改性，接下來在改性核苷酸毗鄰的位點處DNA骨架發生斷裂 。