stanford-oval/wikipedia huggingface dataset:
Thyrinteina
Chú thích

↑  Bisby, F.A.; Roskov, Y.R.; Orrell, T.M.; Nicolson, D.; Paglinawan, L.E.; Bailly, N.; Kirk, P.M.; Bourgoin, T.; Baillargeon, G.; Ouvrard, D. (2011). “Species 2000 & ITIS Catalogue of Life: 2011 Annual Checklist”. Species 2000: Reading, UK. Truy cập ngày 6 tháng 6 năm 2014.
Oriocourt

| --- | --- |
 Oriocourt

Hành chính
Quốc gia:  Pháp
Vùng: Grand Est
Tỉnh: Moselle
Quận: Château-Salins
Tổng: Delme
Thống kê
Độ cao: 228–296 m (748–971 ft) (bình quân [chuyển đổi: số không hợp lệ])
INSEE/Mã bưu chính: 57525/ 57590

Oriocourt là một xã trong vùng Grand Est, thuộc tỉnh Moselle, quận Château-Salins, tổng Delme. Tọa độ địa lý của xã là 48° 51' vĩ độ bắc, 06° 24' kinh độ đông. Oriocourt nằm trên độ cao trung bình là m mét trên mực nước biển, có điểm thấp nhất là 228 mét và điểm cao nhất là 296 mét. Xã có diện tích 4,44 km², dân số vào thời điểm 2004 là 50 người; mật độ dân số là 11,4 người/km². Oriocourt nằm về phía đông nam của Metz.
Thông tin nhân khẩu

| 1962 | 1968 | 1975 | 1982 | 1990 | 1999 |
| --- | --- | --- | --- | --- | --- |
| 89 | 95 | 94 | 80 | 66 | 58 |
Oswaldia vesana

| Oswaldia vesana> Phân loại khoa học |
| --- | --- |
Giới (regnum): Animalia
Ngành (phylum): Arthropoda
Lớp (class): Insecta
Bộ (ordo): Diptera
Họ (familia): Tachinidae
Chi (genus): Oswaldia
Loài (species): O. vesana
Danh pháp hai phần
Oswaldia vesana
Oswaldia vesana là một loài ruồi trong họ Tachinidae.
Chú thích

↑  Bisby, F.A.; Roskov, Y.R.; Orrell, T.M.; Nicolson, D.; Paglinawan, L.E.; Bailly, N.; Kirk, P.M.; Bourgoin, T.; Baillargeon, G.; Ouvrard, D. (2011). “Species 2000 & ITIS Catalogue of Life: 2011 Annual Checklist”. Species 2000: Reading, UK. Truy cập ngày 20 tháng 6 năm 2014.
↑  James E. O’Hara WORLD GENERA OF THE TACHINIDAE (DIPTERA) AND THEIR REGIONAL OCCURRENCE; Version 7; 10 december 2012
Lubny (huyện)

| Huyện Lubny |
| --- | --- |
—  Huyện (Raion)  —
 
  Hiệu kỳ Huy hiệu
Vị trí của huyện Lubny trong tỉnh Poltava Vị trí của huyện Lubny trong tỉnh Poltava
Huyện Lubny
Quốc gia:  Ukraine
Tỉnh: tỉnh Poltava
Thủ phủ: Lubny
Diện tích
 • Tổng cộng: 1.375 km2 (531 mi2)
Dân số (2001)
 • Tổng cộng: 39.970
Múi giờ: EET (UTC+2)
 • Mùa hè (DST): EEST (UTC+3)
Huyện Lubny (tiếng Ukraina: Лубенський район, chuyển tự: Lubnys’kyi raion) là một huyện của tỉnh Poltava thuộc Ukraina. Huyện Lubny có diện tích 1375 kilômét vuông, dân số theo điều tra dân số ngày 5 tháng 12 năm 2001 là 39970 người với mật độ 29 người/km2. Trung tâm huyện nằm ở Lubny.
Perdita crotonis

| Perdita crotonis> Phân loại khoa học |
| --- | --- |
Giới (regnum): Animalia
Ngành (phylum): Arthropoda
Lớp (class): Insecta
Bộ (ordo): Hymenoptera
Họ (familia): Andrenidae
Phân họ (subfamilia): Panurginae
Tông (tribus): Perditini
Chi (genus): Perdita
Loài (species): P. crotonis
Danh pháp hai phần
Perdita crotonis Cockerell, 1896 
Perdita crotonis là một loài Hymenoptera trong họ Andrenidae. Loài này được Cockerell mô tả khoa học năm 1896.
Chú thích

↑  (2008) Integrated Taxonomic Information System (ITIS) Bee Checklist 3 oktober 2008
Xylocopa langi

| Xylocopa langi> Phân loại khoa học |
| --- | --- |
Giới (regnum): Animalia
Ngành (phylum): Arthropoda
Lớp (class): Insecta
Bộ (ordo): Hymenoptera
Họ (familia): Apidae
Phân họ (subfamilia): Xylocopinae
Tông (tribus): Xylocopini
Chi (genus): Xylocopa
Loài (species): X. langi
Danh pháp hai phần
Xylocopa langi (LeVeque, 1928) 
Xylocopa langi là một loài Hymenoptera trong họ Apidae. Loài này được LeVeque mô tả khoa học năm 1928.
Chú thích

↑  (2008) Integrated Taxonomic Information System (ITIS) Bee Checklist 3 oktober 2008
Phản ứng tổng hợp chuỗi polymerase thời gian thực

Laboratory technique of molecular biologyBản mẫu:SHORTDESC:Laboratory technique of molecular biology
Đối với Phản ứng tổng hợp chuỗi polymerase sao chép ngược, xem Phản ứng tổng hợp chuỗi polymerase sao chép ngược.
Biểu đồ tín hiệu huỳnh quang SYBR Green được tạo ra bằng phương pháp PCR thời gian thực
Đường cong nóng chảy được tạo ra ở cuối chuỗi PCR thời gian thực
Phản ứng chuỗi polymerase thời gian thực (hay PCR thời gian thực, hoặc khi sử dụng để định lượng có thể gọi là qPCR) là một kỹ thuật thí nghiệm trong lĩnh vực sinh học phân tử dựa trên dựa trên phản ứng chuỗi polymerase (PCR). Phương pháp này giám sát quá trình khuếch đại một đoạn DNA cụ thể trong suốt quá trình PCR (tức là thời gian thực), không phải ở cuối quá trình như trong PCR thông thường. PCR thời gian thực có thể được sử dụng định lượng (PCR thời gian thực định lượng) và bán định lượng (nghĩa là trên/dưới một lượng phân tử DNA nhất định) (PCR thời gian thực bán định lượng).
Hai phương pháp phổ biến để phát hiện các sản phẩm PCR trong PCR thời gian thực là (1) thuốc nhuộm huỳnh quang không đặc hiệu xen kẽ với bất kỳ DNA sợi kép và (2) đầu dò DNA đặc hiệu gồm oligonucleotide được dán nhãn bằng máy phóng huỳnh quang, cho phép phát hiện chỉ sau khi lai acid nucleic của đầu dò với trình tự bổ sung của nó.
Hướng dẫn "The Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments" (MIQE) đề xuất rằng viết tắt "qPCR" được sử dụng để chỉ "quantitative real-time PCR," và "RT-qPCR" được sử dụng để chỉ "reverse transcription–qPCR." Thuật ngữ "RT-PCR" thường được sử dụng để chỉ "phản ứng tổng hợp chuỗi polymerase sao chép ngược" và không phải là "real-time PCR." Tuy nhiên, không tất cả các tác giả đều tuân thủ quy ước này.
Các nguyên tắc cơ bản

Bài chi tiết: Phản ứng chuỗi polymerase
PCR thời gian thực được thực hiện trong máy quay vòng nhiệt có khả năng chiếu sáng từng mẫu bằng một chùm ánh sáng có ít nhất một bước sóng xác định và phát hiện huỳnh quang phát ra từ fluorophore bị kích thích. Máy chu trình nhiệt cũng có thể làm nóng và làm lạnh mẫu nhanh chóng, nhờ đó tận dụng được các đặc tính hóa lý của acid nucleic và DNA polymerase.
Quá trình PCR thường bao gồm một loạt các thay đổi nhiệt độ được lặp lại 25–50 lần. Các chu trình này thường bao gồm ba giai đoạn: giai đoạn thứ nhất, ở khoảng 95 °C, cho phép tách chuỗi kép acid nucleic; thứ hai, ở nhiệt độ khoảng 50–60 °C, cho phép liên kết mồi với mẫu DNA; thứ ba, ở nhiệt độ từ 68 đến 72 °C, tạo điều kiện thuận lợi cho phản ứng trùng hợp được thực hiện bởi DNA polymerase. Do kích thước nhỏ của các đoạn, bước cuối cùng thường bị bỏ qua trong loại PCR này vì enzyme có thể sao chép DNA amplicon trong quá trình thay đổi giữa giai đoạn căn chỉnh và giai đoạn biến tính. Ngoài ra, trong PCR bốn bước, huỳnh quang được đo trong các giai đoạn nhiệt độ ngắn chỉ kéo dài vài giây trong mỗi chu kỳ, với nhiệt độ, ví dụ: 80 °C, để giảm tín hiệu gây ra bởi sự hiện diện của chất điều chỉnh mồi khi sử dụng thuốc nhuộm không đặc hiệu. Nhiệt độ và thời gian được sử dụng cho mỗi chu kỳ phụ thuộc vào nhiều thông số khác nhau, chẳng hạn như: enzyme được sử dụng để tổng hợp DNA, nồng độ của các ion hóa trị hai và deoxyribonucleotide triphosphate (dNTPs) trong phản ứng và nhiệt độ liên kết của các mồi.
Phân loại hóa học

Kỹ thuật PCR thời gian thực có thể được phân loại theo hóa chất được sử dụng để phát hiện sản phẩm PCR, fluorochromes cụ thể hoặc không đặc hiệu.
Phân loại hóa học > Phát hiện không đặc hiệu: PCR thời gian thực với thuốc nhuộm liên kết DNA sợi đôi làm chất thăm dò

Thuốc nhuộm liên kết DNA liên kết với tất cả (ds) DNA sợi đôi trong PCR, làm tăng hiệu suất lượng tử huỳnh quang của thuốc nhuộm. Do đó, sự gia tăng sản phẩm DNA trong quá trình PCR dẫn đến tăng cường độ huỳnh quang đo được ở mỗi chu kỳ. Tuy nhiên, thuốc nhuộm DSDNA như SYBR Green sẽ liên kết với tất cả các sản phẩm PCR DSDNA, bao gồm cả các sản phẩm PCR không đặc hiệu (chẳng hạn như primer dimer). Điều này có khả năng gây trở ngại hoặc ngăn chặn việc giám sát chính xác trình tự mục tiêu đã định.
Trong PCR thời gian thực với thuốc nhuộm DSDNA, phản ứng được chuẩn bị như bình thường với việc bổ sung thuốc nhuộm DSDNA huỳnh quang. Sau đó, phản ứng được thực hiện trong công cụ PCR thời gian thực và sau mỗi chu kỳ, cường độ huỳnh quang được đo bằng máy dò; thuốc nhuộm chỉ phát huỳnh quang khi liên kết với DSDNA (tức là sản phẩm PCR).
Phương pháp này có ưu điểm là chỉ cần một cặp mồi để thực hiện khuếch đại, giúp giảm chi phí; nhiều chuỗi mục tiêu có thể được theo dõi trong một ống bằng cách sử dụng các loại thuốc nhuộm khác nhau.
Phân loại hóa học > Phát hiện cụ thể: phương pháp đầu dò chỉ thị huỳnh quang

Đầu dò chỉ thị huỳnh quang chỉ phát hiện DNA chứa trình tự bổ sung cho đầu dò; do đó, việc sử dụng đầu dò chỉ thị làm tăng đáng kể độ đặc hiệu và cho phép thực hiện kỹ thuật này ngay cả khi có sự hiện diện của DSDNA khác. Sử dụng các nhãn có màu khác nhau, đầu dò chỉ thị huỳnh quang có thể được sử dụng trong các xét nghiệm ghép kênh để theo dõi một số chuỗi mục tiêu trong cùng một ống. Độ đặc hiệu của đầu dò chỉ thị huỳnh quang cũng ngăn chặn sự can thiệp của các phép đo gây ra bởi các primer dimer, là những sản phẩm phụ tiềm ẩn không mong muốn trong PCR. Tuy nhiên, đầu dò chỉ thị huỳnh quang không ngăn được tác dụng ức chế của các primer dimer, điều này có thể làm giảm sự tích tụ của các sản phẩm mong muốn trong phản ứng.
Phương pháp này dựa trên đầu dò DNA với chất chỉ thị huỳnh quang ở một đầu và dập tắt huỳnh quang ở đầu đối diện của đầu dò. Sự ở gần của đầu dò với chất khử chất khử sẽ ngăn cản việc phát hiện huỳnh quang của nó; sự phá vỡ đầu dò theo hoạt động 5' đến 3' exonuclease của Taq polymerase phá vỡ khoảng cách gần chất chỉ thị-chất dập tắt và do đó cho phép phát huỳnh quang không bị dập tắt, có thể được phát hiện sau kích thích bằng tia laze. Do đó, sự gia tăng sản phẩm được nhắm mục tiêu bởi đầu dò chỉ thị ở mỗi chu kỳ PCR gây ra sự gia tăng huỳnh quang theo tỷ lệ do sự cố của đầu dò và giải phóng đầu báo cáo.
PCR được chuẩn bị như bình thường (xem PCR), và đầu dò báo cáo được thêm vào.
Khi phản ứng bắt đầu, trong giai đoạn ủ của PCR cả đầu dò và mồi đều gắn vào DNA đích.
Quá trình trùng hợp của chuỗi DNA mới được bắt đầu từ các đoạn mồi và khi polymerase tiếp cận đầu dò, 5'-3'-exonuclease của nó sẽ làm suy giảm đầu dò, tách vật lý chất phát huỳnh quang khỏi chất khử chất khử, dẫn đến tăng huỳnh quang.
Huỳnh quang được phát hiện và đo bằng máy PCR thời gian thực và mức tăng hình học của nó tương ứng với mức tăng theo cấp số nhân của sản phẩm được sử dụng để xác định chu kỳ định lượng (Cq ) trong mỗi phản ứng.
Phân tích nhiệt độ dung hợp

PCR thời gian thực cho phép xác định các đoạn DNA cụ thể, được khuếch đại bằng cách sử dụng phân tích nhiệt độ nóng chảy của chúng (còn gọi là giá trị  Tm, từ melting  nhiệt độ). Phương pháp được sử dụng thường là PCR với thuốc nhuộm liên kết DNA sợi đôi làm phóng viên và thuốc nhuộm được sử dụng thường là SYBR Green. Nhiệt độ nóng chảy DNA đặc trưng cho đoạn được khuếch đại. Kết quả của kỹ thuật này thu được bằng cách so sánh các đường cong phân ly của các mẫu DNA được phân tích.
Không giống như PCR thông thường, phương pháp này tránh sử dụng kỹ thuật điện di trước đây để chứng minh kết quả của tất cả các mẫu. Điều này là do, mặc dù là một kỹ thuật động học, PCR định lượng thường được đánh giá ở một điểm cuối khác biệt. Do đó, kỹ thuật này thường cho kết quả nhanh hơn và/hoặc sử dụng ít chất phản ứng hơn so với điện di. Nếu cần phải điện di tiếp theo thì chỉ cần kiểm tra những mẫu mà PCR thời gian thực cho thấy có nghi ngờ và/hoặc phê chuẩn kết quả đối với các mẫu đã xét nghiệm dương tính với một yếu tố xác định cụ thể.
Các ứng dụng

Có rất nhiều ứng dụng cho phản ứng chuỗi polymerase định lượng trong phòng thí nghiệm. Nó thường được sử dụng cho cả chẩn đoán và nghiên cứu cơ bản. Ứng dụng của kỹ thuật này trong công nghiệp bao gồm định lượng lượng vi sinh vật trong thực phẩm hoặc trên thực vật, phát hiện GMO (sinh vật biến đổi gen) cũng như định lượng và xác định kiểu gen của mầm bệnh virus ở người.
Các ứng dụng > Định lượng biểu hiện gen

Định lượng biểu hiện gen bằng các phương pháp phát hiện DNA truyền thống là không đáng tin cậy. Việc phát hiện mRNA trên northern blot hoặc sản phẩm PCR trên gel hoặc Southern blot không cho phép định lượng chính xác. Ví dụ: trong 20–40 chu kỳ của một PCR thông thường, lượng sản phẩm DNA đạt đến bình nguyên không tương quan trực tiếp với lượng DNA mục tiêu trong PCR ban đầu.
PCR thời gian thực có thể được sử dụng để định lượng acid nucleic bằng hai phương pháp phổ biến: định lượng tương đối và định lượng tuyệt đối. Định lượng tuyệt đối đưa ra số lượng phân tử DNA mục tiêu chính xác bằng cách so sánh với các tiêu chuẩn DNA bằng cách sử dụng đường cong hiệu chuẩn. Do đó, điều cần thiết là PCR của mẫu và chất chuẩn phải có cùng hiệu suất khuếch đại.
Định lượng tương đối dựa trên các gen tham chiếu nội bộ để xác định sự khác biệt gấp bội trong biểu hiện của gen mục tiêu. Việc định lượng được biểu thị bằng sự thay đổi mức độ biểu hiện của mRNA được hiểu là DNA bổ sung (cDNA, được tạo ra bởi reverse Transcription của mRNA). Việc định lượng tương đối dễ thực hiện hơn vì nó không yêu cầu đường chuẩn vì lượng gen được nghiên cứu được so sánh với lượng gen tham chiếu đối chứng.
Vì đơn vị được sử dụng để biểu thị kết quả định lượng tương đối không quan trọng nên kết quả có thể được so sánh trên một số RTqPCR khác nhau. Lý do sử dụng một hoặc nhiều gen giữ nhà là để điều chỉnh các biến thể không đặc hiệu, chẳng hạn như sự khác biệt về số lượng và chất lượng RNA được sử dụng, điều này có thể ảnh hưởng đến hiệu quả của quá trình sao chép ngược và do đó ảnh hưởng đến hiệu quả của toàn bộ quá trình PCR. Tuy nhiên, khía cạnh quan trọng nhất của quá trình này là gen tham chiếu phải ổn định.
Việc lựa chọn các gen tham chiếu này theo truyền thống được thực hiện trong sinh học phân tử bằng cách sử dụng các nghiên cứu định tính hoặc bán định lượng như kiểm tra trực quan gel RNA, Northern blot đo mật độ hoặc PCR bán định lượng (mô phỏng PCR). Giờ đây, trong kỷ nguyên gen, có thể thực hiện ước tính chi tiết hơn cho nhiều sinh vật bằng cách sử dụng công nghệ phiên mã. Tuy nhiên, nghiên cứu đã chỉ ra rằng mức khuếch đại của phần lớn các gen tham chiếu được sử dụng để định lượng biểu hiện của mRNA thay đổi tùy theo điều kiện thí nghiệm. Do đó, cần phải thực hiện nghiên cứu phương pháp luận hợp lý thống kê ban đầu để chọn ra gen tham chiếu phù hợp nhất.
Một số thuật toán thống kê đã được phát triển có thể phát hiện gen nào hoặc các gen nào phù hợp nhất để sử dụng trong những điều kiện nhất định. Những thứ như geNORM hoặc BestKeeper có thể so sánh các cặp hoặc trung bình hình học cho một ma trận gồm các gen tham chiếu khác nhau và mô.
Các ứng dụng > Công dụng chẩn đoán

PCR định tính chẩn đoán được áp dụng để phát hiện nhanh chóng acid nucleic được chẩn đoán, ví dụ: bệnh truyền nhiễm, ung thư và các bất thường về di truyền. Việc đưa các xét nghiệm PCR định tính vào phòng thí nghiệm vi sinh lâm sàng đã cải thiện đáng kể việc chẩn đoán các bệnh truyền nhiễm, và được triển khai như một công cụ để phát hiện các bệnh mới nổi, chẳng hạn như các chủng flu và coronavirus mới, trong xét nghiệm chẩn đoán.
Các ứng dụng > Công dụng vi sinh

PCR định lượng cũng được sử dụng bởi các nhà vi trùng học làm việc trong lĩnh vực an toàn thực phẩm, hư hỏng và lên men thực phẩm cũng như đánh giá rủi ro vi khuẩn đối với chất lượng nước (nước uống và nước giải khát) cũng như bảo vệ sức khỏe cộng đồng.
qPCR cũng có thể được sử dụng để khuếch đại các dấu hiệu phân loại hoặc chức năng của gen trong DNA lấy từ các mẫu môi trường. Các điểm đánh dấu được thể hiện bằng các đoạn DNA di truyền hoặc DNA bổ sung. Bằng cách khuếch đại một yếu tố di truyền nhất định, người ta có thể định lượng lượng nguyên tố đó trong mẫu trước khi khuếch đại. Sử dụng các dấu hiệu phân loại (gen ribosome) và qPCR có thể giúp xác định số lượng vi sinh vật trong một mẫu và có thể xác định các họ, chi hoặc loài khác nhau dựa trên tính đặc hiệu của dấu hiệu. Sử dụng các dấu hiệu chức năng (gen mã hóa protein) có thể hiển thị biểu hiện gen trong cộng đồng, điều này có thể tiết lộ thông tin về môi trường.
Các ứng dụng > Phát hiện mầm bệnh thực vật

Ngành nông nghiệp không ngừng nỗ lực tạo ra cây giống hoặc cây giống không có mầm bệnh nhằm ngăn ngừa thiệt hại kinh tế và bảo vệ sức khỏe. Các hệ thống đã được phát triển cho phép phát hiện một lượng nhỏ DNA của Phytophthora ramorum, một loại nấm oomycete có thể giết chết oaks và các loài khác, trộn lẫn với DNA của cây chủ. Việc phân biệt DNA của mầm bệnh và thực vật dựa trên sự khuếch đại các trình tự ITS, các đoạn đệm nằm trong vùng mã hóa của gen ribosomal RNA, đặc trưng cho từng taxon. Các phiên bản thực địa của kỹ thuật này cũng đã được phát triển để xác định mầm bệnh tương tự.
Các ứng dụng > Phát hiện sinh vật biến đổi gen

qPCR sử dụng phiên mã ngược (RT-qPCR) có thể được sử dụng để phát hiện GMO nhờ độ nhạy và phạm vi động trong việc phát hiện DNA. Các phương pháp thay thế như phân tích DNA hoặc protein thường ít nhạy cảm hơn. Các đoạn mồi cụ thể được sử dụng để khuếch đại không phải gen chuyển mà là promoter, terminator hoặc thậm chí các trình tự trung gian được sử dụng trong quá trình thiết kế vectơ. Vì quá trình tạo ra cây chuyển gen thường dẫn đến việc chèn nhiều hơn một bản sao của gen chuyển nên số lượng của nó cũng thường được đánh giá. Điều này thường được thực hiện bằng cách định lượng tương đối bằng cách sử dụng một gen đối chứng từ các loài được xử lý chỉ hiện diện dưới dạng một bản sao duy nhất.
Các ứng dụng > Định lượng lâm sàng và kiểu gen

Vi-rút có thể hiện diện ở người do nhiễm trùng trực tiếp hoặc đồng nhiễm, khiến chẩn đoán khó sử dụng các kỹ thuật cổ điển và có thể dẫn đến tiên lượng và điều trị không chính xác. Việc sử dụng qPCR cho phép cả định lượng và xác định kiểu gen (đặc tính của chủng, được thực hiện bằng cách sử dụng các đường cong nóng chảy) của một loại vi-rút như vi-rút viêm gan B. Mức độ lây nhiễm, được định lượng bằng các bản sao của bộ gen virus trên một đơn vị mô của bệnh nhân, có liên quan trong nhiều trường hợp; ví dụ: xác suất herpes simplex virus loại 1 kích hoạt lại có liên quan đến số lượng tế bào thần kinh bị nhiễm trong hạch. Việc định lượng này được thực hiện bằng phiên mã ngược hoặc không có phiên mã ngược, như xảy ra nếu vi rút tích hợp vào bộ gen của con người tại bất kỳ thời điểm nào trong chu kỳ của nó, chẳng hạn như xảy ra trong trường hợp HPV (vi rút u nhú ở người), trong đó một số các biến thể của nó có liên quan đến sự xuất hiện của ung thư cổ tử cung.  PCR thời gian thực cũng đã mang lại sự định lượng human cytomegalovirus (CMV) được thấy ở những bệnh nhân bị ức chế miễn dịch sau ghép tạng hoặc tủy xương.
Danh mục

Elyse; Houde, Alain (2002). “La PCR en temps réel: principes et applications” (PDF). Reviews in Biology and Biotechnology. 2 (2): 2–11. Bản gốc (PDF) lưu trữ ngày 12 tháng 6 năm 2009.
Bustin, SA (2000). “Absolute quantification of mRNA using real-time reverse transcription polymerase chain reaction assays”. J Mol Endocrinol. 25 (2): 169–193. doi:10.1677/jme.0.0250169. PMID 11013345.
Higuchi, R.; Dollinger, G.; Walsh, P.S.; Griffith, R. (1992). “Simultaneous amplification and detection of specific DNA-sequences”. Bio-Technology. 10 (4): 413–417. doi:10.1038/nbt0492-413. PMID 1368485. S2CID 1684150.
Holland, P.M.; Abramson, R.D.; Watson, R.; Gelfand, D.H. (1991). “Detection of specific polymerase chain reaction product by utilizing the 50 !30 exonuclease activity of Thermus aquaticus DNA polymerase”. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 88 (16): 7276–7280. Bibcode:1991PNAS...88.7276H. doi:10.1073/pnas.88.16.7276. JSTOR 2357665. PMC 52277. PMID 1871133.
Kubista, M; Andrade, JM; Bengtsson, M; Forootan, A; Jonak, J; Lind, K; Sindelka, R; Sjoback, R; Sjogreen, B; Strombom, L; Stahlberg, A; Zoric, N (2006). “The real-time polymerase chain reaction”. Mol. Aspects Med. 27 (2–3): 95–125. doi:10.1016/j.mam.2005.12.007. PMID 16460794.
Higuchi, R.; Fockler, C.; Dollinger, G.; Watson, R. (1993). “Kinetic PCR: Real time monitoring of DNA amplification reactions”. Biotechnology. 11 (9): 1026–1030. doi:10.1038/nbt0993-1026. PMID 7764001. S2CID 5714001.
Filion, M. (2012). Quantitative Real-time PCR in Applied Microbiology. Caister Academic Press. ISBN 978-1-908230-01-0.
Wawrik, B; Paul, JH; Tabita, FR (2002). “Real-time PCR quantification of rbcL (ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase/oxygenase) mRNA in diatoms and pelagophytes”. Appl. Environ. Microbiol. 68 (8): 3771–3779. Bibcode:2002ApEnM..68.3771W. doi:10.1128/aem.68.8.3771-3779.2002. PMC 123995. PMID 12147471.
Logan J; Edwards K; Saunders N biên tập (2009). Real-Time PCR: Current Technology and Applications. Caister Academic Press. ISBN 978-1-904455-39-4.
PCR thời gian thực sử dụng huỳnh quang để phát hiện mức độ biểu hiện gen.
(1) Trong các đầu dò nguyên vẹn, đầu phóng huỳnh quang bị tắt. (2) Đầu dò và chuỗi DNA bổ sung được lai acid nucleic và đầu phóng huỳnh quang vẫn bị tắt. (3) Trong quá trình PCR, đầu dò bị suy giảm bởi Taq polymerase và đầu phóng huỳnh quang được giải phóng.
Đường cong dung hợp riêng biệt của một số sản phẩm PCR (hiển thị màu sắc riêng biệt). Có thể thấy phản ứng khuếch đại đối với một sản phẩm cụ thể (hồng, xanh lam) và các phản ứng khác có kết quả âm tính (xanh lục, cam). Đỉnh hợp nhất được biểu thị bằng mũi tên cho thấy đỉnh gây ra bởi các bộ điều chỉnh mồi, khác với sản phẩm khuếch đại dự kiến.
Thyenula oranjensis

| Thyenula oranjensis> Phân loại khoa học |
| --- | --- |
Giới (regnum): Animalia
Ngành (phylum): Arthropoda
Phân ngành (subphylum): Chelicerata
(không phân hạng): Arachnomorpha
Lớp (class): Arachnida
Bộ (ordo): Araneae
Họ (familia): Salticidae
Chi (genus): Thyenula
Loài (species): T. oranjensis
Danh pháp hai phần
Thyenula oranjensis Wesołowska, 2001 
Thyenula oranjensis là một loài nhện trong họ Salticidae.
Loài này thuộc chi Thyenula. Thyenula oranjensis được Wanda Wesołowska miêu tả năm 2001.
Chú thích

↑  Platnick, N. I. (2012) The world spider catalog, version 12.5. American Museum of Natural History. DOI: 10.5531/db.iz.0001.
Xoắn đại tràng sigma

| Xoắn đại tràng sigma trên X quang |
| --- | --- |

ICD-10: Xxx.x
ICD-9-CM: xxx
MeSH:  
Xoắn đại tràng sigma là tình trạng xoắn ruột ảnh hưởng tới đại tràng sigma. Nó là nguyên nhân gây tắc ruột và táo bón. Bệnh lý này phổ biến nhất ở châu Á, Ấn Độ (7% tắc ruột) và đặc biệt là Nam Ấn Độ do chế độ ăn có hàm lượng xơ cao.
Triệu chứng lâm sàng

Đau bụng – ban đầu khu trú bên trái sau đó lan ra khắp bụng
Táo bón
Bụng chướng căng
Nôn muộn và mất nước
Các dấu hiệu viêm phúc mạc
Nấc và buồn nôn có thể xảy ra
Nguyên nhân

Hay gặp ở nam giới lớn tuổi. Nó cũng khá phổ biến ở những người táo bón mãn tính và lạm dụng thuốc nhuận tràng.
Nguyên nhân phổ biến là:
Hội chứng Ogilvie
Thiểu năng trí tuệ
Bệnh Chagas
Suy giáp
Thuốc kháng cholinergic
Xơ cứng rải rác
Xơ cứng bì
Bệnh Parkinson
Xoắn đại tràng sigma luôn quay ngược chiều kim đồng hồ. Cần phải quay một vòng rưỡi để gây tắc nghẽn mạch máu và hoại tử đó đã dẫn đến thủng ruột ở gốc hay đỉnh của quai ruột.
Chẩn đoán

X-quang bụng không chuẩn bị(chẩn đoán được khoảng 70 đến 80%): dấu hiệu hạt cà phê
X quang bụng bơm thuốc cản quang: dấu hiệu mỏ chim
Cắt lớp vi tính: dấu hiệu xoáy nước đặc trưng
Máu: haematocrit, chức năng thận, điện giải
Điều trị

Đặt sonde dạ dày
Truyền dịch đường tĩnh mạch
Đặt catheter
Thuốc kháng sinh
Bơm hơi qua hậu môn hoặc nội soi đại tràng sigma để tháo xoắn.
Nếu không tháo xoắn cần mở bụng qua đường giữa và tháo xoắn bằng tay. Nếu có thể cần cố định ruột vào thành bên bụng hoặc xương chậu
Nếu ruột bị hoại tử, cần thực hiện phẫu thuật Hartmann hoặc Paul Milulikz.