PEMBIAKAN TANAMAN SECARA VEGETATIF Made Deviani Duaja Elis Kartika Gusniwati Penerbit Fakultas Ekonomi dan Bisnis Universitas Jambi Juli, 2020
PEMBIAKAN TANAMAN SECARA VEGETATIF PENULIS Made Deviani Duaja Elis Kartika Gusniwati ISBN: 978-623-92349-4-2 EDITOR Johannes DESAIN SAMPUL DAN TATA LETAK John Devin PENERBIT Fakultas Ekonomi dan Bisnis Universitas Jambi Jalan Raya Jambi-Muara Bulian KM. 15 Kampus Mendalo Darat, Jambi, Telp: 0741- 583317 Hak Cipta dilindungi undang-undang Dilarang memperbanyak karya tulis ini dalam bentuk dan cara apapun tanpa ijin tertulis dari penerbit
KATA PENGANTAR Puji syukur kepada Tuhan Yang Maha Esa, karena buku ini dapat diselesaikan. Buku ini diperuntukan untuk menambah bahan refernsi berbahasa Indonesia bagi mahasiswa, praktisi , pengelola kebun yang berminat di bidang pertanian khususnya dalam perbanyakan tanaman. Bahasan di buku ini dimulai dari aspek sellular dalam pembiakan vegetative tanaman, manajemen pembibitan termasuk bagaimana menyiapkan entres, setek, perundukan, penyambungan dan okulasi, aspek fisiologi dan teknis dari setiap cara pembiakan vegetative. Pembahasn dari setiap topik bahasan di sajikan dengan cara yang mudah untuk di pahami. Buku ini dapat diselesaikan karena bantuan dari anggota Tim dalam mencari informasi penting, dan artikel jurnal, juga saran dan kritik yang mewarnai kekayaan informasi yang tertuang di dalam buku ini. Juga penghargaan kepada Ketua Prodi karena bisikannya untuk segera menyelesaikan bahan ajar menjadi buku pembiakan vegetative. Akhirnya, meskipun penulis telah berusaha untuk melengkapi setiap topic dengan lengkap dengan urutan sistematis, tapi pasti masih banyak kekurangan di sana- sini. Untuk itu dibutuhkan saran dan kritik melaui email Dengan senang hati akan di tamping dan didiskusikan dengan Tim. Terima kasih dan mohon maaf apabila ada hal yang kurang berkenan dalam buku ini.. . Jambi, Juli 2020 Penulis i
Daftar Isi KATA PENGANTAR ... i DAFTAR ISI ... iii 1. PEMBIAKAN TANAMAN Dasar-dasar Selular untuk Pembiakan Tanaman Klasifikasi dari Tanaman Yang Di budidayakan Manajemen Pembibitan Bibit Unggul Struktur Bangunan Untuk Perbanyakan Tanaman Sertifikasi Benih DAFTAR PUSTAKA 2. SETEK Aspek Anatomi Stek Aspek Fisiologi Stek Aspek Teknis Dari Stek DAFTAR PUSTAKA 3. PERUNDUKAN (LAYERING) Karakteristik Perundukan Perkembangbiakan Vegetatif Alami DAFTAR PUSTAKA 4. PENYAMBUNGAN DAN OKULASI Aspek Anatomi Dari Penyambungan Aspek Fisiologis Dari Penyambungan Metode Penyambungan Okulasi DAFTAR PUSTAKA 1 1 5 5 11 20 34 39 41 43 52 68 110 118 119 113 112 122 130 136 137 166 190 iii
BAB I. PEMBIAKAN TANAMAN Pembiakan atau perbanyakan tanaman telah mengalami banyak kemajuan sebelum periode pemuliaan tanaman modern. Pada awal pemuliaan, manusia mulai menyeleksi tanaman secara langsung dari species tanaman liar, namun dengan ketrampilan manusia lambat laun berkembang menjadi tipe-tipe yang berbeda dengan kerabat liarnya. Contohnya adalah kacang koro, tomat, padi dsb. Cara kedua adalah tipe tanaman yang muncul sebagai hibrida antar species, disertai dengan perubahan jumlah kromosom. Tanaman-tanaman tersebut unik sekali dan tidak mempunyai satupun kerabat liarnya, misalnya, jagung, gandum, tembakau dsb. Namun demikian, kemajuan dalam pemuliaan kemungkinan akan kecil artinya, tanpa metode-metode yang dapat mempertahankan tanaman hasil pemuliaan. Dengan teknik perbanyakan alasan demikian (pembiakan) tanaman. Kebanyakan tanaman akan hilang atau kembali ke bentuk yang kurang diinginkan kecuali tanaman tersebut dibiakkan dibawah kondisi yang terkendali dan melestarikan karakteristik-karakteristik unik yang menjadikan tanaman tersebut bermanfaat. terjadi suatu proses penelitian mengenai Metode umum perkembangbiakan tanaman disajikan dalam beberapa bagian pembahasan yang juga disajikan secara terpisah. Untuk melakukan perkembangbiakan tanaman secara besar seperti tanaman buah perlu dipelajari okulasi, penyambungan atau cangkok (layering). Penemuan rumah kaca pada awal abad ke-sembilanbelas memungkinkan pengakaran stek daun dilaksanakan. Pada tahun-tahun selanjutnya penemuan zat kimia untuk menginduksi pengakaran merangsang perkembangbiakan tanaman dengan sangat pesat. Selanjutnya juga dengan penemuan teknik pengkabutan (mist propagation) telah merevolusi banyak prosedur pembibitan. Keadaan yang sama juga terjadi pada produksi tanaman berbiji dengan ditemukannya prinsip-prinsip genetik yang mengarahkan pada produksi benih-benih hibrida. Kini perkembangan bioteknologi, micropropagation merupakan langkah yang sangat maju dalam bidang perbanyakan tanaman. DASAR-DASAR SELULAR UNTUK PEMBIAKAN TANAMAN Mitosis dan Pembiakan Vegetatif (Reproduksi Aseksual) a. Sifat Dua Kutub Poros yang Berbeda (Polaritas) 1
Telah menjadi suatu kenyataan bahwa setiap tanaman menunjukkan ciri-ciri bentuk arsitektur tertentu dan salah satu dari aspek bentuk tersebut adalah berkembangnya poros secara longitudinal. Pada kedua ujung poros ini terjadi perbedaan perkembangan, umumnya pada poros tanaman berdiferensiasi menjadi ujung tajuk (shoot) dan ujung akar (root). Sifat ini dikatakan menunjukkan polaritas yang didefinisikan sebagai setiap keadaan dimana terjadi perbedaan dua ujung atau permukaan dalam suatu sistem makhluk hidup. Ada 3 aspek polaritas: 1. Oriented behavior: adanya perbedaan pertumbuhan sel atau jaringan, jaringan yang ada di paling ujung pertumbuhaanya akan lebih cepat sehingga mempengaruhi ukuran sel. Gerakan nitrisi akan lebih cepat apabila menuju ke bawah. 2. Axiation: sumbu simetri: bentuk bunga umumnya akan menyeimbangkan bentuk simetris melalui susunan fibonaci; susunan felamen pada bunga. 3. Polar difference (perbedaan kutub): akibat perbedaan distribusi nutrisi Polaritas dapat ditinjau dari struktur luar, dalam dan fisiologi, Polaritas struktur luar dapat dilihat dari adanya regenerasi dari organ tumbuhan dengan tempat dan posisi yang berbeda. Polaritas struktur dalam dapat dilihat pada pola pertumbuhan antara lain fase-fase pada mitosis Polaritas secara fisiologi dapat dilihat antara lain pada ratio C/N, gerakan N cenderung kearah atas sedangkan gerakan C cenderung kea rah bawah. Contoh yang lain adalah gerakan auksin, Aktifitas respirasi cenderung di ujung meristem lebih aktif. b. Memerlukan bahan baku untuk pembentukan organ baru Seperti layaknya mahkluk hidup lainnya, tanaman cenderung untuk menimbun bahan yang berasal dari luar tubuhnya. Penimbunan ini dapat berupa hasil panen tetapi juga dipergunakan untuk pertumbuhan Pembiakan vegetatif dimungkinkan karena setiap sel tanaman mengandung semua gen-gen yang diperlukan untuk pertumbuhan dan perkembangan, dan selama pembelahan sel (mitosis) yang terjadi selama pertumbuhan dan regenerasi gen tersebut direplikasi di dalam sel-sel turunan/anak (daughter cells). Sel-sel turunan mengandung sistem kromosom yang sama seperti sel tetuanya. Sebagai hasilnya karakteristik dari tanaman yang berkembang dari sel-sel kromosom yang sama dengan karakteristik tanaman induknya (tanaman asal diperolehnya sel-sel turunan tersebut). Mitosis terjadi pada titik atau bagian tertentu pada tanaman untuk menghasilkan pertumbuhan. Titik atau bagian tersebut yaitu: ujung pucuk (shoot apex), kambium (cambium), dan bagian bawah dari internode pada tanaman monokotil. Mitosis juga terjadi pada pembentukan kalus (callus) di bagian tanaman yang luka dan pada titik-titik pertumbuhan pada saat terjadi pertumbuhan baru pada ujung akar dan ujung pucuk. Pada waktu terjadinya titik-titik pertumbuhan baru pada strukur vegetatif seperti pada akar, batang, dan daun maka stuktur baru yang dibentuk disebut akar adventif 2
(adventitious roots) atau pucuk adventif (adventitious shoots). Akar adventif ada pucuk yang muncul dari bagian tanaman yang ada di atas tanah (aerial), batang di bawah permukaan tanah, atau dari akar yang relatif tua umurnya. Semua akar yang tumbuh selain dari embryo axis dapat dianggap sebagai akar adventif. Pucuk adventif baru adalah pucuk yang tumbuh dari titik tumbuh laten atau tunas, dan tumbuh di sepanjang batang disebut tunas air (water sprouts). Tunas air sering tumbuh pada cabang tua tanaman berkayu dan dapat dirangsang tumbuh dengan cara memangkas bagian terminal. Mitosis merupakan proses dasar dari pertumbuhan vegetatif, regenerasi, dan penyembuhan luka sehingga memungkinkan untuk melaksanakan teknik perbanyakan secara vegetatif seperti stek (cuttage), penyambungan (graftage), perundukan (layerage), pemisahan (separation), dan pembagian (division). Metode perbanyakan semacam ini penting karena memungkinkan dilakukan perbanyakan dalam jumlah besar dari individu tanaman sebanyak jumlah bagian tanaman yang bisa dipisahkan dari bahan tanaman induk yang tersedia. Setiap tanaman baru yang dihasilkan dengan cara semacam ini mempunyai sifat genetik yang sama dengan tanaman asalnya. Jadi alasan utama untuk memperbanyak tanaman secara vegetatif adalah untuk mereproduksi karakteristik genetik yang tepat sama dari semua tanaman baru dari bahan tanaman induk yang sama. Alasan lain penggunaan teknik pembiakan vegetatif terkait dengan aspek budidaya. Aspek Keilmuan Yang Mendasari Pembiakan Vegetatif Pembiakan vegetatif bukan hanya berisi cara-cara teknis tetapi juga didasarkan pada aspek keilmuan (scientific basis). Hal ini ditegaskan karena ada tujuan atau target tertentu yang diinginkan oleh propagator dalam melakukan pembiakan tanaman secara vegetatif. Target pembiakan vegetatif bukan hanya sekedar keseragaman genetik (genotip) antara tanaman induk dan anaknya tetapi juga tingkat kepastian keseragaman waktu mulai berbuah, sifat arah pertumbuhan cabang (misalnya, heterotrop atau autotrop) yang diinginkan, penggabungan sifat-sifat unggul dari batang bawah (rootstock) dan batang atas (scion) serta keindahan pertumbuhan tanaman itu sendiri. Perbanyakan secara vegetatif mempunyai keunggulan dibanding dengan cara generatif. Dengan cara vegetatif seluruh karakter yang ada pada pohon induk akan diwariskan kepada keturunannya, sehingga potensi pohon induk yang baik akan berdampak baik pada tanaman yang dikembangkan. Cara perbanyakan ini sangat penting artinya untuk pengembangan klon dan merupakan bagian yang tidak terpisahkan dalam kegiatan pemuliaan tanaman karena perannya yang sangat besar dalam meningkatkan perolehan genetik dibandingkan dengan benih hasil penyerbukan alam. Di samping itu teknik perbanyakan secara vegetatif mempunyai kelebihan lain yaitu mudah diperbanyak secara masal dalam waktu relatif singkat. Berdasarkan studi yang dilakukan Mashudi dan Leksono (2004) dan Mashudi (2011) pada tanaman pohon pulai darat, pengadaan bibit dari materi generatif masih menghadapi kendala karena benih pulai bersifat semi rekalsitran sehingga viabilitasnya relatif cepat mengalami kemunduran. Terkait dengan hal tersebut maka pembibitan secara vegetatif dapat digunakan sebagai alternatif. Pada tahap awal, aplikasi 3
pembibitan secara vegetatif dapat diwujudkan melalui pembangunan kebun pangkasan. Kebun pangkasan dibangun dari individu-individu pohon yang berfenotipe bagus sehingga bibit yang dihasilkan diharapkan bagus, karena menurut Libby dan Ahuja (1993), pada perbanyakan secara vegetatif (klonal) varians genetik aditif dan non-aditif akan diwariskan sehingga seluruh potensi genetik pohon induk akan diwariskan kepada keturunannya. Untuk mencapai keberhasilan tersebut, perlu dipelajari beberapa sifat tanaman yang diperbanyak, diantaranya adalah : a. Sitokenesis dan Mitosis Pembiakan vegetatif pada hakekatnya merupakan pembiakan tanaman yang mengandalkan kemampuan sel penyusun organ tanaman untuk melakukan sitokinesis dengan melibatkan pembelahan inti sel secara mitosis. b. Umur Diferensiasi Sel (Umur Ontogenik) dan Umur Sel Setelah Pembelahan Pada umumnya dikenal satu macam umur tanaman, namun sebenarnya pada satu tanaman terdapat dua macam umur yang sama sekali bertolak belakang satu sama lainnya yaitu umur diferensiasi dan umur sel setelah pembelahan. Peta umur diferensiasi pada satu tanaman, semakin dekat dengan pangkal batang atau pangkal akar maka semakin muda umur diferensiasi sel-selnya. Sebaliknya semakin ke ujung tajuk atau akar akan semakin tua umur diferensiasinya. Umur lain yang ada pada tanaman adalah umur sel yang dihitung dari saat pertama sel tersebut membelah, umur ini sama sekali tidak memperhitungkan umur diferensiasi. Semakin dekat dengan pangkal batang atau akar maka akan semakin tua umur setelah pembelahan, sebaliknya semakin ke ujung tajuk atau akar semakin muda umur setelah pembelahan selnya. c. Fenotip Tanaman Ungkapan kecepatan pertumbuhan dan diferensiasi masing-masing tanaman sangat beragam tergantung pada jenisnya, tetapi tanaman satu klon pun dapat beragam tampilannya. Klon yang kita buat bisa akan beragam perkembangannya akibat lingkungan yang berbeda, kita harus menyadari bahwa penampilan atau ekspresi karakter pada suatu individu tanaman merupakan interaksi dengan lingkungannya, yang penampakannya disebut dengan istilah fenotip tanaman. Artinya penampilan tanaman akan beragam akibat lingkungan tumbuh yang berbeda, dengan kata lain fenotipe tanaman hasil pembiakan vegetatif bisa saja tidak sama dengan fenotipe tanaman induknya pada saat ditanam di lapangan atau sebaliknya tanaman dengan genotip yang berbeda dapat memiliki fenotip yang sama. Berdasarkan hal tersebut maka klon yang unggul di suatu daerah bisa saja menjadi tidak unggul di daerah lain karena lingkungan tumbuhnya tidak mendukung untuk menampilkan sifat genetiknya. d. Totipotensi Sel Totipotensi merupakan singkatan dari total atau organ tanaman mempunyai kemampuan untuk tumbuh dan berkembang seperti sel zigot membentuk tanaman utuh, walaupun telah terpisah dari tanaman genetik potensial. Konsep 4
ini menjelaskan bahwa setiap sel, jaringan induknya, dengan syarat ditumbuhkan pada lingkungan yang cocok. dan perkembangan tanaman itu sendiri. e. Meristem Sampai saatnya mati tanaman tersebut akan terus tumbuh, tetapi setelah tingkat embrio dilaluinya, pertumbuhannya terbatas pada bagian yang disebut dengan meristem. Meristem merupakan kumpulan sel atau jaringan yang tersusun atas sel-sel yang mempunyai kemampuan membelah diri secara terus-menerus, sifat ini disebut dengan meristematis. Pada perbanyakan tanaman secara vegetatif, seluruhnya difokuskan pada pengelolaan meristem tanaman, dengan tujuan untuk ditumbuhkan menjadi kalus atau organ baru (pada cangkok, stek, dan kultur jaringan) atau dibiarkan tumbuh sehingga menyebabkan lekatnya dua organ tanaman yang sebelumnya terpisah pada penempelan/okulasi (budding) atau penyambungan (grafting). KLASIFIKASI DARI TANAMAN YANG DIBUDIDAYAKAN Kultivar (cultivar = cultivated variety) adalah kelompok tanaman yang dibudidayakan yang mempunyai nilai penting untuk pertanian, kehutanan dan hortikulura, yang secara jelas dapat dibedakan berdasarkan karakteristik tertentu, dan apabila direproduksi tanaman tersebut akan mempertahankan karakteristik tertentu tersebut. kultivar sinonim dengan varietas. Kultivar dapat dikategorikan menjadi kultivar yang direproduksi secara seksual dan kultivar yang direproduksi secara aseksual. Kultivar yang direproduksi secara aseksual mencakup : 1. Klon, yaitu kelompok tanaman yang berasal dari individu tunggal dan diperbanyak secara vegetatif seperti stek, perundukan atau penyambungan. Contohnya kentang dan apel. 2. Kultivar apomiktik (apomictic cultivars atau apomicts) yaitu tanaman yang secara botani bersifat unik yang direproduksi dari biji tetapi secara aseksual (baik apomiksis sempurna atau apomiksis parsial). MANAJEMEN PEMBIBITAN Manajemen pembibitan secara umum membahas tentang persiapan untuk proses pembenihan meliputi benih, bibit dan perangkat dalam persiapan pembenihan., mulai dari persiapan media sampai ke alat dan bangunan yang diperlukan, pengemasan bibit untuk pengiriman jarak jauh dan sertifikasi benih. 5
Fasilitas yang diperlukan untuk perbanyakan tanaman baik dengan biji maupun stek, atau sambungan mencakup dua unit dasar. Pertama adalah suatu struktur (bangunan) dengan pengendali temperatur dan jumlah cahaya, seperti rumah kaca, dimana biji dapat dikecambahkan atau stek dapat diakarkan. Kedua yaitu suatu struktur dimana di dalamnya dapat ditempatkan tanaman muda (bibit) yang masih lemah, diaklimatisasikan, dan dipersiapkan untuk ditransplanting (ditanam) di lapangan. Perbanyakan Generatif Perbanyakan generatif dilakukan dengan cara penyerbukan untuk menghasilkan buah dan biji. Produksi biji akan sangat menguntungkan, karena sekali panen akan menghasilkan ratusan hingga ribuan biji yang tumbuh dari tongkol bunga. Proses keluarnya bunga juga tergantung jenis tanaman. Umumnya waktu pembungaan pada beberapa jenis tanaman keras, terjadi pada sore hingga malam hari. Waktu pembungaan inilah yang menjadi kendala pada manajemen perbenihan dalam skala besar dan komersil karena pada saat pembungaan, para pegawai pembibitan telah pulang kerja, sehingga waktu proses pematangan bunga jantan dan betina menjadi tidak sama. Munculnya sebuah bunga pada tanaman, akan tergantung pada musim. Ada yang hanya berbunga saat musim hujan dan ada yang berbunga hanya pada musim kemarau, berbunga pada dua musim (kemarau dan hujan), berbunga sepanjang tahun hingga hanya berbunga pada waktu musim pancaroba. Proses penyerbukan terjadi saat spadiks terbuka dan bertemunya serbuk sari dari bunga jantan dengan kepala putik bunga betina. Umumnya di alam, penyerbukan alami dilakukan oleh serangga yang tergoda oleh wangi bunga saat spadik terbunga. Selain cara alami, penyerbukan dapat dilakukan dengan bantuan manusia. Setelah penyerbukan sukses, bunga akan menghasilkan buah di pangkal tongkol bunga selama berbulan-bulan lamanya pematangan biji dapat dilihat dari pembukaan spadik akibat bunga dengan biji yang membesar. Setelah matang, biji dilepas dari dalam buah, pisahkan biji dan keringkan. Penting diingat, bahwa pengeringan biji jangan dilakukan langsung di bawah sinar matahari karena dapat mengurangi daya tumbuh biji. Dalam proses penyerbukan, terjadi kendala-kendala yang ditemukan. Kepala putik pada bunga betina akan lebih dulu matang dari serbuk sari dibanding bunga jantan. Selain itu, matangnya serbuk sari sangat singkat sehingga diperlukan data pengamatan langsung dari jenis tanaman yang digunakan dan disilangkan. Persiapan Pembibitan Pembibitan dimaksudkan sebagai usaha memproduksi bahan tanaman (bibit). Tanaman pada umumnya dapat diperbanyak secara generatif (biji) dan vegetatif, misalnya dengan setek, penyambungan, okulasi, cangkok dan layering. Perbanyakan tanaman dengan biji sering mengecewakan karena selain umur mulai berbuahnya lama (panjang), juga sering terjadi penyimpangan sifat-sifat pohon induknya. Oleh sebab itu perbanyakan tanaman dengan biji hanya dianjurkan untuk memproduksi batang bawah sebagai bahan untuk penyambungan atau untuk okulasi. 6
1) Persiapan untuk bibit batang bawah asal biji a. Penyiapan biji Penyiapan biji sangat tergantung kepada jenis tanaman yang akan dijadikan batang bawah, apakah tanaman buah-buahan atau tanaman perkebunan atau tanaman kehutanan; 1. Pemilihan buah Pilih buah yang matang di pohon, keadaannya sehat, normal, tidak rusak atau cacat bekas serangan hama dan penyakit serta berasal dari pohon induk yang unggul. (a) Siapkan yang dikehendaki. Bunga betina pada tanaman misalnya pada tanaman bunga-bungaan seperti puring, apabila masak ditandai adanya sekresi madu (terasa lengket bila disentuh) sedangkan pada bunga jantan terlihat adanya tepung sari. Ambil bunga jantan tempel dan ketuk-ketuk perlahan ke kepala putik secara manual. induk tanaman lalu (b) Sungkup bunga dengan kantong plastik transparan dan gunakan lidi sebagai penyangga. Penutupan bertujuan untuk mencegah perkawinan alami dari bunga lain dan menjaga kelembaban. (d) (c) Pemanenan sebaiknya dilakukan pagi hari antara pukul 6 - 7. Bila berhasil, akan berwarna cokelat saat masak. terbentuk buah Gambar 1. (.a), (b), (c), (d). Penyiapan Biji b. Menyemaikan biji Pada tahap selanjutnya, proses perkecambahan dapat dipercepat melalui persemaian biji. Berdasarkan pengalaman di lapangan, wadah terbaik untuk penyemaian biji ialah tray karena lebih praktis dan efisien. Selain mudah 7
dipindahkan tak diperlukan jarak tanam. Tray dapat dipilih berdasarkan kebutuhan kolom, biasanya tersedia 50 hingga 105 kolom semai. Gambar 2. Menyemaikan Biji Menggunakan Wadah Dari Kayu Jika lebih memilih memakai wadah selain tray, diberi jarak tanam sekitar 2 cm x 2 cm. Tujuannya agar kecambah tumbuh leluasa, akar tidak saling tumpang tindih dan cukup mendapat asupan hara. Gambar. (a) Gambar (b) Siapkan wadah semai dan media tanam. Adonan dapat berupa sekam bakar dan cacahan pakis (4 : 1) atau alternatif lain. Penuhi wadah dengan media hingga ¾ bagian, ratakan permukaannya. Letakkan biji satu per satu pada tiap kolom tray lalu bumbum hingga penuh. jangan ditancapkan Sebaiknya biji gampang dalam terlalu berkecambah. agar 8
Gambar (c) Letakkan tray di tempat teduh atau bawah paranet. Lakukan penyiraman secara teratur 1 - 2 kali sehari agar media tetap lembab. Gambar (d) baru Tunas-tunas muda muncul ± 1 minggu kemudian. Pemindahan bibit ke dalam pot tanam tunggal dilakukan setelah tumbuh 3 - 5 secara helaian daun. Cabut bibit perlahan agar perakaran tidak rusak. biasanya Gambar 3. (a), (b), (c), (d) Menyemaikan Biji Menggunakan Tray Masa persemaian memiliki peran strategis dalam proses pertumbuhan dan adaptasi tanaman. Pada tahap ini, secara tak langsung seleksi terhadap tanaman berkualitas prima sudah mulai dilakukan. Selain dengan tray ada beberapa wadah untuk pesemaian misalnya dengan polibag, baki/mampan, namun pada umumnya prinsipnya sama. Tahapan penyemaian ; -
Rendam biji dengan air hangat dan larutan pertumbuhan akar/tunas. Untuk biji yang kecil-kecil dapat dilakukan penyemaian bersama pada satu pot, beri lapisan yang halus dan menyimpan banyak air seperti cocopeat halus. Untuk biji yang relatif besar, dapat ditempatkan satu bji per pot sehingga dapat tumbuh dan berkembang tanpa dilakukan re-potting. Pastikan media basah pada saat penyemaian dan jaga kelembaban hingga keluar kecambah tetapi jangan dilakukan penyiraman terlebih dahulu. Setelah keluar akar dan tunas daun, lakukan penyiraman dengan kepala nozzle halus, dan jangan melakukan kegiatan pemupukan. Setelah bibit terlihat tumbuh, pacu pertumbuhan dengan pupuk dengan unsur N tinggi. Letakkan bibit pada tempat yang teduh tetapi mempunyai sirkulasi udara yang baik. 9
Gambar (a) Gambar (b) Gambar (c) Gambar 4. Tahapan Penyemaian Penyemaian Menggunakan Kantong Plastik (contoh pada tanaman karet) Kantong plastik atau polibag yang digunakan untuk tempat menyemaikan bibit karet sebaiknya berukuran 25 x 56 cm atau diperkirakan dapat menampung sekitar 10 kg tanah. Sebelum tanah dimasukkan ke dalamnya, dasar plastik harus diberi lubang sebagai tempat keluarnya air siraman.
Media tanam harus subur dan berhumus yang bisa diambil dari tanah permukaan (top 2) dengan kedalaman maksimum 15 cm. Tanah tidak perlu dicampur pupuk kandang, pasir, atau bahan-bahan lainnya. Setelah itu, kecambah karet ditanam dengan cara yang sama dengan menanam kecambah pada persemaian di lahan. Kantong-kantong plastik tempat persemaian harus diletakkan di lokasi yang setiap pagi dan sore mendapat sinar matahari. Kantong-kantong plastik tersebut kemudian diletakkan di dalam alur sedalam 20 cm, setelah itu ditimbun, sehingga yang muncul ke permukaan hanya 5 cm. Jarak antar kantong plastik dalam barisan sekitar 20 cm dan antar barisan 30 cm. Setiap dua baris kantong plastik dibuat jalan selebar 75 cm untuk kegiatan perawatan tanaman. Perawatan bibit karet di dalam kantong plastik pada dasarnya sama dengan yang di lahan, yakni meliputi penyiraman, penyiangan, pemupukan, dan pemberantasan hama. Hanya, untuk pemupukan cukup dengan TSP dengan dosis 10 gram dan 15 gram/bibit saat bibit berumur sebulan dan tiga bulan setelah tanam. Tabel 1 Ukuran Rata-Rata Biji Karet Ukuran Terkecil Agak kecil Kecil Sedang besar Panjang (cm) 1,733 1,887 1,978 2,060 2,291 Lebar (cm) 1,545 1,670 1,733 1,794 1,928 Tebal (cm) 1,393 1,464 1,536 1,626 1,750 Jumlah (butir/kg) 508 434 410 310 287 Berat (gram/butir) 1,650 2,064 2,231 2,840 3,300 10
Gambar 5. Sketsa Naungan Untuk Pesemaian dan Pembibitan secara Umum Gambar 6. Naungan Untuk Pembibitan Gambar 7. Beberapa Bedeng atau Tempat Pesemaian BIBIT UNGGUL Bibit unggul adalah tanaman muda yang memiliki sifat unggul yaitu mampu menunjukkan sifat asli induknya dan mempunyai nilai ekonomi yang tinggi, serta tidak 11
mengandung hama dan penyakit. Sebagai contoh pada tanaman buah sifat unggul ini terutama nilai dari kualitas buahnya. Bila semakin banyak sifat yang disukai konsumen terkumpul dalam satu buah, maka semakin tinggi pula nilai ekonomi (harga) buah tersebut. Buah demikian dapat digolongkan sebagai buah unggul. Untuk itu dapat diambil contoh cara menilai buah durian berdasarkan kriteria penampilan buah dan sifat buah yang disukai konsumen, sehingga diperoleh suatu daftar kriteria penilaian buah durian unggul. a) Kelompok sifat utama rasa daging buah : manis berlemak, diutamakan dengan rasa khas ketebalan daging : tebal ukuran biji (1) (2) : kecil atau sekurang-kurangnya kempes : kuning sampai jingga : sedikit (kering) : halus, sedikit berserat : besar : kuat merangsang : tipis dan mudah dibuka bila buah sudah masak : 5 - 6 juring sempurna (3) (4) warna daging (5) kadar air daging tekstur daging ukuran buah aroma kulit buah jumlah juring (6) (7) (8) (9) (10) b) Kelompok sifat penunjang (1) Struktur pohon kokoh, percabangan merata / simetris, tajuk bulat (2) Produksi buah tinggi dan stabil setiap tahun, diutamakan yang panen buahnya pada awal atau akhir musim (3) Tahan terhadap hama penggerek dan beberapa jenis cendawan (4) Mudah diperbanyak secara vegetatif (5) Pertumbuhan cepat dan responsif terhadap kultur teknis budidaya (pemupukan, pengairan) Apabila minimal terpenuhi 70% sifat unggul dari daftar di atas maka buah atau bibit durian tersebut tergolong jenis unggul. Bila tidak memenuhi 70% persyaratan di atas, maka buah durian demikian tergolong buah yang biasa saja. Cara penilaian seperti ini dapat dipakai untuk menilai jenis buah lainnya. Namun perlu mengadakan perubahan kriteria tertentu agar sesuai dengan sifat masing-masing jenis buah. Salah satu faktor penting dalam pengelolaan budidaya tanaman khususnys tanaman hortikultura misalnya buah-buahan adalah penggunaan bibit bermutu baik, terutama dari hasil pembiakan vegetatif (Adelina et al., 2009). Bibit unggul dapat diperoleh dengan cara perbanyakan secara vegetatif. Pohon Induk Pohon induk adalah tanaman pilihan yang dipergunakan sebagai sumber batang atas (entres), baik itu tanaman kecil ataupun tanaman besar yang sudah produktif yang berasal dari biji atau hasil perbanyakan vegetatif. Persyaratan pohon induk : 1) Memiliki sifat unggul dalam produktifitas dan kualitas buah untuk tanaman buah dan ketahanan terhadap serangan organisme penganggu tanaman (OPT) 12
2) Nama varietas pohon induk dan asal-usulnya (nama pemilik, tempat asal) harus jelas, sehingga memudahkan pelacakannya 3) Tanaman dari biji harus sudah terpisah dari tanaman lain yang dapat menjadi sumber penularan penyakit atau penyerbukan silang, terutama untuk pohon induk yang akan diperbanyak secara generatif yaitu diambil bijinya. Kebun pohon induk adalah kebun yang ditanam dengan beberapa varietas buah unggul untuk sumber penghasil batang atas (mata tempel atau cabang entres) untuk perbanyakan dalam jumlah besar. Umumnya yang ditanam adalah tanaman hasil perbanyakan vegetatif (okulasi, sambung, susuan, cangkok, stek) dan memenuhi persyaratan sebagai pohon induk. Lokasi pohon induk sebaiknya tidak jauh dengan lokasi perbanyakan tanaman, untuk memudahkan pelaksanaan perbanyakan bibit. Ada dua sistem penanaman kebun pohon induk: 1) Kebun pohon induk sekaligus sebagai kebun produksi 2) Kebun pohon induk dengan jarak tanam lebih rapat, misalnya untuk tanaman durian, untuk kebun produksi biasanya berjarak tanam 10 x 10 m, sedangkan pada kebun pohon induk dapat berjarak 3 x 3 m. Dengan jarak tanam yang rapat dapat diperoleh lebih banyak pohon induk dalam suatu areal yang relatif tidak luas.
Pencarian pohon induk untuk mendapatkan jenis tanaman unggul dengan cara: 1) Eksplorasi; adalah kegiatan pencarian pohon induk dengan cara melacak suatu tanaman ke daerah sentra budidayanya sampai yang tumbuh liar di hutan. Semisal daerah sentra durian di perbukitan Desa Brongkol di Ambarawa (Jawa Tengah), Desa Rancamaya dan Cimahpar (Bogor, Jawa Barat). Tempat tersebut mempunyai ribuan pohon durian yang tumbuh secara alami dan di antara tanaman tersebut terdapat beberapa varietas yang mempunyai sifat-sifat unggul walaupun merupakan tanaman dari biji serta tumbuh setengah liar di alam. Sebagai contoh eksplorasi durian Matahari di Desa Cimahpar, Kecamatan Kedunghalang, Bogor. 2) Promosi; adalah kegiatan pencarian pohon induk dengan cara mengadakan kejuaraan buah unggul; dari lomba tersebut muncul durian unggul baru yang berpotensi sebagai pemenang lomba. Contoh yang paling terkenal adalah durian Petruk. Durian ini adalah juara lomba buah di Jepara dan sekarang sudah ditetapkan pemerintah sebagai durian unggul nasional. 3) Introduksi; adalah kegiatan pencarian pohon induk dengan cara mendatangkan atau mengenalkan jenis buah yang terbukti unggul dari daerah atau negara lain. Cara ini merupakan jalan pintas untuk mempercepat perolehan bahan tanaman yang telah diketahui sifat keunggulannya. Hal yang harus diperhatikan adalah kesesuaian keadaan iklim, tanah dan cara budidaya pada tempat tumbuh asalnya dengan keadaan tempat tanam yang baru, agar kualitasnya tetap baik. Masalah lain yang muncul adalah adanya hama dan penyakit yang sebelumnya tidak diketahui di daerah asalnya, tetapi muncul setelah tanaman tersebut ditanam di tempat yang baru. Sebagai 13
contoh adalah durian bangkok dari Thailand yang diintroduksi ke Indonesia seperti Chanee dan Monthong. Jenis ini rata-rata tidak tahan penyakit busuk akar dan busuk leher batang atau kanker batang. Batang Bawah dan Atas 1. Pemilihan batang bawah * Batang bawah atau rootstock / understam adalah tanaman yang berfungsi sebagai batang bagian bawah yang masih dilengkapi dengan sistem perakaran yang berfungsi mengambil makanan dari dalam tanah untuk batang atas atau tajuknya. Keuntungan batang bawah dari biji: Perkembangan sistem perakarannya lebih kuat dan dalam, karena memiliki akar tunggang, sehingga relatif lebih tahan terhadap ketinggian Penyediaan batang bawah jenis ini bisa dilakukan dalam jumlah banyak Kriteria tanaman yang akan dijadikan batang bawah : Mampu beradaptasi atau tumbuh kompak dengan batang atasnya, ini mampu menyatu dan menopang sehingga batang bawah pertumbuhan batang atasnya Tanaman dalam kondisi sehat Sistem perakarannya baik dan dalam serta tahan terhadap keadaan tanah yang kurang menguntungkan, termasuk hama dan penyakit yang ada dalam tanah Tidak mengurangi kualitas dan kuantitas buah pada tanaman yang disambung/diokulasi Perawatan batang bawah seperti pemupukan, pengendalian hama dan penyakit, serta penyiraman perlu diperhatikan agar batang bawah tumbuh subur dan sehat. Pertumbuhan yang subur dan sehat memudahkan pengelupasan kulit dan kayunya, karena sel-sel kambium berada dalam keadaan aktif membelah diri. Proses pembentukan kalus atau penyembuhan luka berlangsung dengan baik, sehingga pada akhirnya keberhasilan sambungan atau okulasinya juga tinggi. Pemilihan batang atas Perawatan batang bawah seperti pemupukan, pengendalian hama dan penyakit, serta penyiraman perlu diperhatikan agar batang bawah tumbuh subur dan sehat. Pertumbuhan yang subur dan sehat memudahkan pengelupasan kulit dan kayunya, karena sel-sel kambium berada dalam keadaan aktif membelah diri. Proses pembentukan kalus atau penyembuhan luka berlangsung dengan baik, sehingga pada akhirnya keberhasilan sambungan atau okulasinya juga tinggi. Pemilihan batang atas Batang atas yang biasanya disebut entres (scion) adalah calon bagian atas atau tajuk tanaman yang di kemudian hari akan menghasilkan buah berkualitas unggul. Batang atas ini dapat berupa mata tunas tunggal yang digunakan dalam teknik okulasi ataupun berupa ranting dengan lebih dari satu mata tunas atau ranting dengan tunas pucuk yang digunakan dalam sambungan (grafting) 14
3. Entres inilah yang disambungkan pada batang bawah, untuk menggabungkan sifat-sifat yang unggul dalam satu bibit tanaman. Karena itu entres sebagai batang atas harus diambil dari pohon induk yang sudah diketahui betul sifat unggulnya. Pohon induk mempunyai bagian yang berbeda-beda fase perkembangannya. Bagian pangkal pohon merupakan bagian yang tertua menurut umurnya, tetapi karena terbentuk pada masa awal pertumbuhan pohon tersebut maka sel-selnya bersifat sederhana, muda (juvenile) dan sangat vegetatif. Semakin ke arah ujung ranting, semakin muda menurut umurnya, tetapi sel- sel yang terbentuk paling akhir ini justru bersifat lebih kompleks, dewasa (mature) dan siap untuk memasuki masa berbunga dan berbuah (generatif). Pengambilan entres dari pucuk tajuk pohon akan tetap membawa sifat dewasa atau generatif. Penyambungan entres dengan batang bawah akan menghasilkan bibit yang sudah membawa sifat dewasa tersebut. Hal ini menyebabkan bibit hasil penyambungan atau okulasi lebih cepat berbuah daripada tanaman yang berasal dari biji. Kriteria tanaman yang akan dijadikan sebagai batang atas: Mampu beradaptasi atau tumbuh kompak dengan batang bawahnya, sehingga batang atas ini mampu menyatu dan dapat berproduksi dengan optimal. Cabang dari pohon yang sehat, pertumbuhannya normal dan bebas dari serangan hama dan penyakit. Cabang berasal dari pohon induk yang sifatnya benar-benar yang seperti kita kehendaki, misalnya berbuah lebat dan berkualitas tinggi. Pengepakan batang atas. Tujuan pengepakan adalah menjaga kesegaran bahan batang atas selama mungkin, hingga dapat segera disambungkan di kebun pembibitan. Metode pengepakan calon entres: Cabang atau ranting pohon induk dipilih sesuai dengan kriteria dan idealnya berdiameter 2 - 4 mm untuk durian (diameter tergantung jenis dan kualitas pohon induknya), kemudian segera dirontokkan seluruh daunnya. Tujuannya adalah untuk mengurangi terjadinya kehilangan air dari permukaan daun yang dapat mengakibatkan entres menjadi keriput. Pohon induk yang disengaja untuk sumber entes saja dari satu rantingnya mampu menghasilkan 3 - 5 mata entres yang baik / produktif. Harga mata entres berkisar Rp 1000 s.d. Rp 2000 per mata entres tergantung jenis dan kualitas pohon induknya. 15
Entres ini lalu disortir atau dipisahkan berdasarkan baik atau tidaknya mata tunas. Diusahakan agar entres ini tidak bercabang-cabang, tetapi berupa cabang tunggal sepanjang kurang lebih 20 - 30 cm. Cabang tunggal ini kemudian diikat dengan karet gelang sebanyak 10 - 30 entres setiap ikatnya, tergantung dari besar - kecilnya diameter entres. Bahan pembungkus yang digunakan untuk membungkus entres harus bisa meredam panas panas dan sekaligus menjaga kelembaban entres. Bahan yang biasa dipakai dan mudah didapat adalah kertas koran, kertas tisu, kantong plastik, daun dan pelepah pisang. Setiap ikat entres yang telah disortasi kemudian dibungkus dengan beberapa lapis kertas tisu atau kertas koran. Bungkus pertama ini perlu diperciki air lagi agar agak lembab, tetapi jangan terlalu basah. Setelah itu dibungkus lagi dengan kantong plastik. Dengan cara ini, kesegaran entres dapat bertahan 2 hari. Dan lebih baik lagi kalau bungkus paling luar adalah pelepah pisang. Bahan ini merupakan peredam panas yang ideal, karena jaringan batang pisang segar banyak mengandung air dan sekaligus rongga-rongga udara. Kotak kardus atau karton dapat juga dipakai sebagai alternatif. Pada waktu diangkut kendaraan, entres yang sudah dibungkus tidak boleh terkena sinar matahari langsung dan ditaruh di dekat mesin, karena entres bisa kering. Posisi menaruh entres harus datar agar cairan dalam entres tidak bergerak turun akibat gaya gravitasi, sehingga kulit batang entres tidak akan mengerut dan sulit untuk dikelupaskan dari kayunya. Hal lain yang perlu diperhatikan adalah entres jangan dicuci dengan air, karena akan mengundang bakteri patogen dan cendawan masuk jaringan entres dan kambiumnya cepat tertarik keluar sehingga sering keluar cairan kental dari luka, sehingga pada saat akan diokulasikan atau disambungkan pada batang bawah, entres sudah membusuk.
Juga setelah turun hujan jangan melakukan pengambilan cabang entres. Bila ini terpaksa dilakukan, maka setelah cabang entres dipotong dari pohon induknya, segera dikering-anginkan, baru kemudian dibungkus. Penggunaan es kering (dry ice) yang dimasukkan bersama-sama entres ke dalam cool box (termos) ternyata membawa pengaruh buruk terhadap kondisi entres, sehingga saat akan diokulasikan mata tunasnya banyak yang sudah kering. Begitu juga halnya dengan menyimpan entres di dalam refrigerator (kulkas), perlu berhati-hati terhadap suhu dan kelembaban yang rendah. Kondisi demikian dapat menarik air keluar dari entres sehingga entres menjadi keriput dan kehilangan kesegarannya. 16
Contoh untuk tanaman durian yang akan di sambung pada tempat yang berbeda maka Sampel batang atas diambil dari pohon durian yang telah berumur 10 tahun. Sampel batang atas diambil pada sore hari, sekitar pukul 15.00-18.00 dengan menggunakan gunting pangkas. Batang atas diambil pada cabang primer atau cabang sekunder atau cabang tersier. Batang atas yang diambil adalah batang atas dengan kondisi daun tua dan calon daun terakhir dalam keadaan dorman. Panjang batang atas sekitar 10 cm (jumlah daun 4 lembar). Batang atas disimpan pada suhu kamar 20oC dengan kelembaban 75%. Batang atas sebelum disimpan terlebih dahulu dibungkus dengan menggunakan kertas koran yang telah dipercikan air tetapi tidak terlalu basah, selanjutnya dibungkus lagi dengan menggunakan pelepah pisang. Setelah siap untuk diangkut ke lokasi penyambungan. Menurut Thalib (2019), pada tanaman durian, sumber atas dan lama penyimpanan batang tidak berinteraksi terhadap keberhasilan grafting tanaman durian, namun kesegaran batang atas akan menurun karena adanya proses respirasi dan transpirasi selama penyimpanan. Penggunaan sumber batang atas yang terbaik adalah yang segar. Menurut Anita dan Susilo (2012), Kurniastuti (2014), Saefudin dan Wardiana (2016), pada tanaman durian menunjukkan bahwa periode penyimpanan batang atas dapat mempengaruhi jumlah tunas yang terbentuk. Hal ini disebabkan jumlah tunas yang keluar di pengaruhi oleh kondisi cadangan makanan dan auxin yang ada pada batag atas. Selam penyimpanan terjadi perubahan kandungan karbohidrat, kadar air dan auxin yang terus menurun. Lama simpan batang atas berpengaruh terhadap luas daun total tertinggi dibandingkan tanpa penyimpanan dan berbeda nyata dengan perlakuan lainnya. Hal ini berkaitan dengan kandungan auxin yang berbeda akibat penyimpanan batang atas. Hormon auxin berperan dalam hal pertambahan laus daun. Auxin banyak digunakan dalam mikropropagasi dan berinteraksi dengan nutrien untuk memelihara pertumbuhan organ seperti daun (Tanveer et al., 2016). Hal ini disebabkan kaena karbohidrat, lemak, dan kadar air yang terus menurun selama penyimpanan batang tanaman, jika kandungan karbohidrat, lemak, dan kadar air mengalami peningkatan maka proses pertumbuhan luas daun akan meningkat (Tidi et al., 2012, Saefudin dan Wardiana, 2016). Lama simpan batang atas/entres mempengaruhi waktu munculnya tunas, Jumlah daun yang terbentuk mengalami penurunan selama penyimpanan. Hal ini terkait dengan jumlah kabohidrat yang terus berkurang sejalan terjadi akibat dengan pembelahan, pemanjangan dan diferensiasi sel-sel, pada kondisi ini lama penyimpanan. Pertumbuhan daun 17
STRUKTUR BANGUNAN UNTUK PERBANYAKAN TANAMAN Rumah Kaca Ada sejumlah tipe rumah kaca. Yang paling sederhana yaitu konstruksi 'bersandar pada bangunan lain' dengan menggunakan satu sisi, lebih baik di sebelah timur, dari bangunan lain sebagai salah satu dindingnya. Rumah kaca kecil yang tidak mahal dapat juga dibangun dari sejumlah kusen berukuran 90 cm x 180 cm yang dikaitkan ke kerangka kayu berukuran 60 cm x 120 cm. Rumah kaca komersial umumnya berupa struktur 'atap berimbang seperti huruf A' yang independen, konstruksi 'atap bergabung', yang ruangan di dalamnya dibagi secara proporsional sehingga ruangan dapat dimanfaatkan dengan baik untuk tempat jalan dan bangku-bangku perbanyakan (propagating benches). Dalam operasi skala besar, sejumlah unit tunggal rumah kaca sering digabung berdampingan, sehingga mengurangi biaya untuk membuat dinding kaca di antara dua rumah kaca yang bersebelahan. Susunan bangku-bangku di dalam rumah kaca sangat bervariasi. Instalasi perbanyakan tanaman yang dijalankan dengan baik, tidak mempunyai bangku perbanyakan yang permanen, penempatannya bervariasi sesuai tipe peralatan yang digunakan seperti truk pengangkat, kereta listrik, dan lain-lain yang digunakan untuk membawa flat-flat dan tanaman ke dalam dan keluar rumah kaca. Dalam konstruksi rumah kaca, dibuat kerangka kayu atau logam untuk menyangga lembaran-lembaran gelas. Rumah kaca aluminium yang terbuat semuanya dari logam juga digunakan secara luas. Alat untuk memberikan gerakan udara dan pertukaran udara adalah penting untuk semua rumah kaca untuk membantu pengendalian temperatur dan kelembaban. Kipas angin samping selalu digunakan, dan dalam beberapa hal, ventilasi samping juga digunakan. Jika memungkinkan, hal yang paling baik adalah rumah kaca yang diperlengkapi dengan pemanasan, ventilator yang beroperasi otomatik, dan sistem pendinginan evaporator yang dikontrol oleh termostat. Sebagai pedoman umum, dianjurkan temperatur minimum malam hari adalah 600 F (15,50 C) dimana termostat untuk menyalakan pemanas harus disetel pada temperatur ini. Termostat ventilator harus disetel untuk membuka pada temparatur 720 F (220 C) dan termostat untuk sistem evaporator pendinginan distel untuk mulai hidup pada temperatur 750 F (240 C). Rumah kaca berpenutup kaca adalah mahal, namun untuk instalasi permanen tampaknya lebih memuaskan dibanding rumah kaca berpenutup plastik, seperti yang akan diuraikan berikut ini. 20
Gambar 8. Rumah Kaca (a) (b) Gambar 9. (a) dan (b) adalah Penataan Rak-rak di Dalam Rumah Kaca Kerangka yang ringan yang ditutup dengan berbagai tipe plastik adalah populer untuk struktur berskala kebun rumah tangga kecil maupun untuk instalasi komersial yang besar. Beberapa macam bahan plastik tersedia, beberapa bahan cukup ringan dan tidak mahal, sehingga memungkinkan untuk membuat konstruksi rumah kaca dengan biaya lebih murah dibanding jika menggunakan bahan kaca. Rumah plastik biasanya bersifat sementara, kecuali jika struktur yang lebih permanen, penggunaan bahan penutup yang mahal, seperti panel-panel fiber-glass digunakan. Rumah plastik cenderung lebih kedap udara dibanding rumah kaca dengan konsekuensi akan terjadi penumpukan kelembaban tinggi dan, khususnya pada musim dingin, terjadi tetesan air yang tidak diinginkan ke tanaman. Namun demikian, masalah ini dapat diatasi, dengan mempertahankan ventilasi yang cukup. 21
Menghadap Timur Barat Rumah plastik hendaknya dibuat menghadap ke arah timur-barat, agar tanaman bisa menyerap cahaya lebih banyak. Bila dibuat menghadap utara-selatan, cahaya yang ditangkap tidak maksimal. Akibatnya, warna tanaman menyimpang dari aslinya.
Bahan Yang Diperlukan Bahan-bahan yang diperlukan antara lain plastik (ukuran 8 mm) dan aluminium batangan untuk tiangnya. Dengan menggunakan plastik cahaya yang masuk ke dalam rumah kaca mencapai 90%. Namun kalau sulit mendapatkannya, plastik khusus bisa diganti dengan plastik biasa, ketebalannya cukup 2 - 3 mm. Agar biayanya lebih murah, rumah plastik ini bisa juga dibuat dari bahan lain. Tiang-tiang aluminium diganti kayu, sedangkan plastik khusus diganti plastik yang biasa. Hanya saja, 40 % dinding dalam sebaiknya disemprot dengan cat putih, agar "rumah plastik" itu cukup panas. plastik bagian Gambar 9 c. Desain Rumah Plastik Pedoman Pembuatan Atap sebaiknya berbentuk kerucut agar tanaman mendapatkan cahaya secara merata. Satu hal yang perlu diingat, agar sirkulasi udaranya berlangsung dengan baik, ruangan dalam rumah plastik ini tidak tertutup sama sekali dengan plastik. Gunanya agar tanaman tidak mati kepanasan. Oleh karena itu, bagian bawah dinding rumah plastik sampai setinggi 30 cm dipasangi kasa atau kawat nyamuk. Demikian juga dengan bagian di atas pintu serta bagian belakang rumah kaca. Lantai rumah plastik sebaiknya dilapisi pasir setebal 20 cm agar air siraman langsung terserap ke bawah, tidak ada genangan (Maudy, 1990). Polyethylene Polyethylene merupakan bahan penutup yang paling mudah, tetapi memiliki daya tahan paling pendek. Ia akan rusak pada musim panas dan harus diganti sekali dalam setahun atau lebih sering; Polyethylene tahan sinar ultraviolet bertahan lebih lama tetapi juga harganya lebih mahal. Rumah plastik yang ditutup polyethylene lapis tunggal akan kehilangan panas lebih banyak pada malam hari dibanding yang ada di dalam rumah plastik jauh lebih mudah dibanding kaca. Kaca menghentikan kebanyakan radiasi infra merah, sedangkan plastik transparan terhadap infra merah. Film berwarna putih, opaque, yang merupakan campuran polyetylene dan plastik vinyl juga tersedia. Film ini menahan lebih baik radiasi matahari dan tetap fleksibel dibawah temperatur musim dingin dibanding polyethylene. Karena temperatur kurang 22
berfluktuasi di bawah film tersebut dibanding dibawah plastik jernih, ia lebih baik digunakan untuk menyimpan tanaman yang ditumbuhkan dalam pot di musim dingin. Fiberglass Fiberglass adalah kuat, tahan lama (long lasting), ringan, dan dengan mudah dapat diaplikasikan dalam berbagai lebar, panjang, dan ketebalan. Hanya bahan yang jernih - yang dibuat khusus untuk rumah kaca dan dengan ketebalan 3 - 5 mm yang hendaknya digunakan. Transmisi cahaya dari fiberglass cenderung menurun setelah bertahun-tahun hal ini merupakan problem serius. Fiberglass merupakan bahan plastik yang paling mahal yang diuraikan di sini. Aneka Macam Struktur Perbanyakan Tanaman muda dari kebanyakan spesies tumbuh dengan baik dibawah cahaya buatan dari lampu fluorescent atau sumber cahaya lainnya. Seperti lampu metal halida bertekanan tinggi (high-pressure metal halide lamps). Unit ini juga digunakan untuk memulai penanaman bibit muda dan stek yang sedang berakar dari banyak spesies tanaman. Dengan cara menempatkan lampu di dalam kotak, dimungkinkan untuk memelihara kelembaban tinggi. Tabung fluorescent "cool-white" umumnya lebih disukai dibanding jenis lampu lainnya. Dalam ruangan bawah tanah yang mempunyai kelembaban cukup tinggi, kotak tertutup tidak diperlukan. Lampu dapat digantung di atas meja dimana flat yang berisi stek ditempatkan. Dengan peralatan semacam ini sering berguna untuk menggunakan pemanasan dasar media, baik dari kabel pemanas tanah yang dikontrol oleh termostat maupun dengan menggunakan heater atau lampu yang ditempatkan di ruang udara dibawah media pengakaran. Meskipun pertumbuhan tanaman yang memadai dapat diperoleh di bawah lampu fluorescent, pada umumnya, hasilnya tampaknya tidak akan seperti atau melebihi pertumbuhan yang diperoleh jika tanaman ditumbuhkan dibawah kondisi rumah kaca. Kotak Perbanyakan Meski dalam rumah kaca, kelembaban sering tidak cukup tinggi untuk memungkinkan pengakaran stek berdaun. Kerangka tertutup atau kotak (cases) yang ditutup dengan kaca atau salah satu bahan plastik diperlukan. Terdapat banyak variasi peralatan tersebut, yang disebut kotak Wardian (Wardian cases). Kotak tersebut sangat berguna untuk keberhasilanl sambungan stock di dalam pot, yang memungkinkan diperoleh kelembaban yang tinggi selama proses pembentukan kalus. 23
Gambar 10. Kotak Wardian untuk perbanyakan Sebagai contoh dalam perbanyakan tanaman pohon yang sulit berakar misalnya pada tanaman pulai darat (Mashudi, 2013), dibutuhkan kotak/bak perakaran untuk setek. Pembuatan bak perakaran dengan menggunakan sungkup plastik dengan rangka dari bambu. Bak perakaran memiliki fungsi untuk menciptakan kondisi kelembaban yang tinggi, intensitas cahaya matahari ± 25 % dan suhu dalam sungkup berkisar antara 26 - 29 C (Mahfudz, 2005). Media perakaran yang digunakan terdiri dari 5 yaitu: pasir, serbuk sabut kelapa, arang sekam, pasir: serbuk sabut kelapa (4:1) dan pasir : arang sekam (4:1). Kelima komposisi media tersebut kemudian dimasukkan dalam dan selanjutnya disemprot dengan fungisida. Selanjutnya stek daunnya dipotong ± 75% untuk mengurangi laju transpirasi. Sebelum ditanam, stek terlebih dahulu dicelupkan da lam larutan zat perangsang tumbuh akar dengan konsentrasi 40% (Mahfudz, 2003). Penanaman stek dilakukan tegak lurus pada media perakaran yang telah disiapkan. Gelas lonceng (bell jars) adalah gelas kaca besar yang ditelungkupkan di atas pot yang ditanami stek yang akan diakarkan. Kelembaban dapat dipertahankan dalam alat ini, tetapi perhatian harus diberikan untuk memberi peneduh dari sinar matahari dan memungkinkan ventilasi pada saat stek mulai berakar. Kantung plastik plyethylene dapat dibalik dan diikat di atas pot untuk memberikan proteksi secara murah untuk mencegah kehilangan air pada waktu mengakarkan beberapa stek. Polyethylene memungkinkan pelaluan oksigen dan karbondioksida, yang penting untuk proses pertumbuhan bahan tanaman. Dalam menggunakan keseluruhan struktur seperti diuraikan di atas, perlu diperhatikan agar dihindari penumpukan organisme penyebab penyakit. Kondisi hangat dan lembab, dibarengi dengan kurangnya pergerakan air dan intensitas cahaya yang relatif rendah, memberikan kondisi yang prima untuk pertumbuhan berbagai jamur dan bakteri. Kebersihan semua bahan di dalam unit tersebut adalah penting, tetapi selain itu juga penting untuk memberikan semprotan fungisida secara teratur. Media Untuk Perbanyakan Tanaman Di Pembibitan Beberapa bahan dan campuran (mixtures) dari bahan-bahan yang berbeda tersedia untuk mengecambahkan dan mengakarkan stek. Untuk mendapatkan hasil yang baik maka media memerlukan persyaratan sebagai berikut: a. Media harus cukup padat untuk memegang stek atau biji pada tempatnya selama pengakaran atau perkecambahan. Volumenya harus cukup konstan baik selama 24
kering maupun basah. Artinya pengkerutan (shrinkage) yang berlebihan setelah media tersebut mengering tidak dikehendaki. b. Media harus cukup retentif terhadap kelembaban sehingga penyiraman tidak harus sering dilakukan. c. Media harus cukup sarang (porous) sehinga kelebihan air dapat didrainasekan yang memungkinkan aerasi yang cukup d. Media harus bebas dari biji gulma, nematoda, dan berbagai organisme yang berbahaya e. Media harus tidak mengandung salinitas tinggi f. Media harus bisa disterilkan dengan uap tanpa menyebabkan efek yang membahayakan tanaman, dan untuk pengecambahan biji, media harus cukup mengandung unsur hara. Tanah Tanah mengandung bahan-bahan dalam keadaan padat, cair dan gas. Untuk mendapatkan pertumbuhan tanaman yang bagus maka bahan-bahan ini harus berada dalam perbandingan yang benar. Bagian padat dalam rumah terdiri dari bentuk organik dan inorganik. Bagian inorganik terdiri dari residu batuan induk setelah mengalami dekomposisi yang disebabkan oleh proses kimia dan fisika selama pelapukan. Komponen organik semacam itu bervariasi dalam ukuran mulai dari kerikil sampai ke partikel koloid suatu liat, dimana tekstur tanah ditentukan melalui proporsi relatif dari partikel-partikel yang berbeda ukurannya. Partikel yang berukuran lebih kasar bertindak terutama sebagai kerangka penunjang untuk komponen tanah lainnya, sedangkan fraksi koloid dari tanah bertindak sebagai gudang untuk unsur hara yang dapat diadsorbsi oleh tanaman. Bagian organik dari tanah terdiri dari organisme baik yang hidup maupun yang mati. Insekta, cacing, cendawan, bakteri dan akar tanaman umumnya membentuk bahan organik hidup, sedangkan selebihnya dari binatang dan tumbuhan semacam itu yang hidup dalam berbagai fase pelapukan membentuk bahan organik mati. Residu dari pelapukan semacam itu (diberi istilah humus) sebagian besar merupakan koloid dan terlarut dalam berbagai kuantitas, maupun oksigen dan mengandung bahan karbondioksida. Unsur mineral, air dan kemungkinan karbon dioksida memasuki tanaman dari larutan tanah. Bagian berupa gas dari tanah adalah penting untuk pertumbuhan tanaman yang bagus. Pada tanah yang jelek drainasenya dan tergenang, air menggantikan udara dalam tanaman dan mikroorganisme aerobik yang dikehendaki mengambil oksigen yang perlu untuk eksistensi mereka. tanah, sehingga mencegah akar Pasir Pasir terdiri dari butiran-butiran batu kecil berdiameter dari sekitar 0,05 sampai sekitar 2,0 mm; dibentuk sebagai hasil dari pelapukan berbagai batuan; komposisi mineralnya tergantung pada tipe batuannya. Pasir kuarsa yang umum digunakan untuk tujuan perbanyakan terdiri khususnya dari kompleks silika. Tipe pasir yang umum digunakan dalam pemplesteran dinding merupakan grade yang paling memuaskan untuk mengakarkan stek. Pasir merupakan bahan paling berat yang digunakan dalam media 25
pengakaran, lebih baik difumigasi atau diberi perlakuan panas sebelum digunakan, karena ia dapat mengandung biji gulma dan berbagai cendawan berbahaya. Pasir hampir bisa dikatakan tidak mengandung unsur hara mineral dan tidak mempunyai kapasitas bufer. Pasir digunakan paling banyak dalam kombinasinya dengan bahan organik. Gambut (Peat) Gambut terdiri dari sisa-sisa vegetasi akuatik, rawa atau danau yang telah diawetkan dibawah air dalam keadaan terdekomposisi sebagian. Komposisi dari berbagai deposit gambut sangat bervariasi, tergantung pada vegetasi dari mana bahan tersebut berasal, tingkat dekomposisi, kandungan mineral dan tingkat keasaman. Ada tiga tipe gambut; gambut moss, reed sedge, dan humus gambut. Gambut moss (umumnya disebut "peat moss") merupakan yang paling sedikit terdekomposisi dari tiga tipe tersebut yang berasal dari sphagum, hypnum atau moss yang lain. Warnanya bervariasi mulai dari tanin ringan sampai coklat gelap. Ini mempunyai kapasitas menahan air (10 kali dari berat keringnya), keasaman tinggi (pH 3,8 sampai 4,5) mengandung sedikit nitrogen (sekitar 1 persen) tetapi tanpa kalium dan posfor. Jika moss gambut akan digunakan dalam campuran media (mixtures), moss itu harus dipecah lebih dahulu dan dilembabkan sebelum ditambahkan ke campuran media. Penambahan bahan organik kasar yang terus menerus seperti moss gambut (peat moss) atau moss sphagnum ke mixture tanah (soil mixtures) di rumah kaca dapat menyebabkan kering setelah diairi. Moss Sphagnum Moss sphagnum komersial merupakan sisa-sisa tanaman rawa asam yang muda atau yang masih hidup yang didehidrasikan (dikeringkan) dari genus Sphagnum seperti S. papillosum., S. capillaceum dan S. palustre. Moss ini relatif steril, ringan, dan mempunyai kapasitas menahan air sangat tinggi, yaitu dapat mengabsorbsi air 10 sampai 20 kali lipat dari beratnya. Jaringan batang dan daun dari moss sphagnum sebagian besar terdiri dari kelompok sel-sel yang bisa menahan air. Bahan ini umumnya dicacah, baik dengan tangan maupun secara mekanik dengan mesin; sebelum digunakan sebagai media perbanyakan tanaman. Bahan ini mengandung unsur hara sedemikian kecilnya sehingga tanaman yang ditanam pada media ini untuk beberapa lamanya memerlukan sejumlah tambahan unsur hara. Moss spaghnum mempunyai pH sekitar 3,5; memiliki bahan fungistatik spesifik yaitu atau bahan-bahan yang bertanggung jawab atas kemampuannya menghambat penyakit rebah kecambah (damping-off) dari bibit yang berkecambah dalam media ini. Vermiculite Merupakan mineral mika (micaceous mineral) yang sangat mengembang saat dipanaskan; silikat magnesium-aluminium-besi (magnesium-aluminium-iron silicate) yang dihidrasikan. Pada saat mengembang ia sangat ringan, bereaksi netral dengan sifat penyangga (buffering) yang bagus, tidak larut di air; dapat mengabsorbsi air dalam 26
jumlah besar. Vermiculite mempunyai kapasitas tukar kation relatif tinggi dan sehingga dapat menahan unsur hara dalam cadangan dan kemudian melepaskannya. Perlite Bahan silikat berwarna putih keabu-abuan (grey hite silicaceous material) ini berasal dari gunung berapi, yang ditambang dari aliran lava. Perlite bisa menahan air tiga sampai empat kali beratnya. Perlite mempunyai pH sekitar netral antara 6,0 sampai 8,0 tetapi tanpa kemampuan bufer; tidak seperti vermiculite, perlite tidak memiliki kapasitas tukar kation dan tidak mengandung unsur hara mineral. Ia paling bermanfaat dalam meningkatkan aerasi dalam suatu mixture (campuran media). Kompos Di pekarangan, campuran kompos bermanfaat sebagai bahan humus untuk menahan kelembaban dengan nilai penyedia unsur hara terbatas. Kompos dapat dicampur dengan tanah untuk menambah bahan organik. Kompos bisa mengandung biji-biji gulma dan nematoda, insek atau penyakit yang berbahaya, maka lebih baik kompos disterilkan lebih dahulu sebelum digunakan. Cacahan Kulit Kayu, Serbuk Gergaji, dan Serutan Kayu Bahan-bahan ini, dapat digunakan dalam campuran media, dengan peran hampir sama seperti moss gambut kecuali bahwa ia terdekomposisi lebih lambat. Salah satu bahan yang paling banyak digunakan yaitu serbuk gergaji kayu yang dinitrifikasi. Nitrogen ditambahkan dalam jumlah cukup untuk memenuhi syarat dekomposisi serbuk gergaji, ditambah sejumlah nitrogen untuk kebutuhan tanaman. Laju dekomposisi bervariasi sesuai spesies kayu yang digunakan. Karena rendahnya biaya, kompos digunakan secara luas, sebagai amandemen tanah, meskipun beberapa tipe kompos, khususnya pada saat masih segar dapat mengandung bahan yang beracun bagi tanaman. Gambar 11. Cercahan Kulit Kayu Campuran Tanah Untuk Bertanam Dalam Wadah Pot Dalam proses perbanyakan tanaman, bibit muda atau stek berakar kadang- kadang ditanam langsung di lapangan, tetapi sering bibit ditanam dahulu pada campuran tanah dalam berbagai wadah (pot). Untuk berbagai alasan, tanah berlumpur tanpa 27
dicampur dengan bahan lain tidak memuaskan untuk maksud tersebut. Tanah semacam ini sering berat dan beraerasi buruk, dan cenderung menjadi lengket setelah diberi air. Pada saat mengering tanah tersebut membentuk permukaan keras dan pecah-pecah. Tanah berlumpur tersebut lepas dari permukaan dalam dinding pot selama pengeringan, dan jika diairi maka air tersebut mengalir ke bawah sepanjang dinding dalam dan keluar dari dinding drainase ketimbang air tersebut membasahi kembali massa tanahnya. Untuk mendapatkan tekstur campuran media tanaman pot yang lebih baik, pasir dan bahan organik seperti moss gambut atau serbuk gergaji atau cacahan kulit kayu, biasa ditambahkan. Dalam penyiapan ini, tanah hendaknya disaring lebih dahulu untuk membuatnya seragam dan menghilangkan partikel berukuran besar. Jika bahan tersebut sangat kering, tanah harus sedikit dilembabkan. Terutama untuk gambut, jika dicampur pada saat masih kering, ia akan sangat lambat menyerap kelembaban. Namun demikian, tanah hendaknya tidak basah dan lengket. Dalam pencampuran, berbagai bahan dapat disusun lapis demi lapis dan kemudian diaduk dengan skop. Mixer pencampur semen yang digerakkan dengan mesin, pencacah tanah dan skop pemuat digunakan dalam penyiapan media skala besar. Persiapan campuran tanah lebih baik disiapkan paling cepat sehari sebelum digunakan. Selama 24 jam, kelembaban akan mengadakan keseimbangan ke seluruh bagian campuran. Campuran tanah tersebut hendaknya sedikit cukup lembab pada saat digunakan sehingga tidak berair; sebaliknya, tidak cukup basah untuk membentuk sebuah bola jika diremas dengan tangan. Pupuk kering, seperti kapur dan superfosfat, dapat ditambahkan selama pencampuran. Untuk menge-potkan stek berakar dan bibit muda 1 atau 2 bagian pasir 1 bagian tanah lumpur (loam soil) 1 bagian moss gambut (atau cacahan kulit batang atau daun lapuk (Leaf mold) a. Untuk stok tanaman bibit yang ditanam dalam pot secara umum 1 bagian pasir 2 bagian tanah lumpur (loam sil) 1 bagian moss gambut (atau cacahan kulit batang atau daun lapuk) atau mengecambahkan benih, banyak produser komersial dari bibit tanaman stok menanam tanaman tersebut sampai ukuran yang dapat dijual di dalam pot, dengan menggunakan campuran tanah berpasir yang dimodifikasi. Campuran ini bervariasi dalam industri pembibitan, tetapi umumnya mengikutkan pasir yang dicampur dalam berbagai proporsi dengan bahan-bahan seperti moss gambut, serbuk gergaji, atau cacahan kulit kayu . Campuran semacam ini memerlukan pupuk tambahan dan pemupukan berkelanjutan sampai tanaman menjadi mapan di lokasi permanennya. Setelah bibit tanaman baru dengan cara mengakarkan stek Banyak formulasi dari "tanah" artifisial telah dikembangkan dan digunakan oleh penangkaran bibit komersial. Salah satu contoh campuran yang telah berhasil baik untuk bibit kecil, stek berakar, dan tanaman bedengan terdiri dari proporsi yang sama antara cacahan kulit batang pohon, moss gambut, perlite, dan pasir. Pada campuran ini 28
ditambahkan gypsum, superphosphate, kapur dolomit dan soda api (potash). Nitrogen ditambahkan dalam air irigasi selanjutnya. (1) Ambil oasis untuk media tanam. Potong-potong dengan ukuran 3 x 4 cm 29
Rendam potongan oasis dalam air yang telah dicampur zat perangsang akar dan insektisida (misal Benlate 0,2% plus atonik) Tancapkan batang ke oasis satu persatu. Letakkan di tray, lalu tempatkan di rumah kaca/rumah plastik atau di tempat teduh/ternaungi Gambar 12. Beberapa Jenis Media Untuk Perbanyakan Tanaman Pada Tahap Pembibitan 30
SERTIFIKASI BENIH Masalah yang perlu diperhatikan dalam usaha pembibitan adalah upaya registrasi dan sertifikasi varietas bibit yang akan disebarkan kepada masyarakat. Pohon induk untuk sumber mata tunas (entres) harus diregistrasi terlebih dahulu oleh petugas Balai Pengawasan dan Sertifikasi Benih (BPSB). Dasar dari Sertifikasi dari benih adalah: 1. Undang-undang Nomor 12 Tahun 1993, tentang sistem Budidaya Tanaman. 2. Peraturan Pemerintah Republik Indonesia Nomor 44 Tahun 1995, Tentang Pembenihan Tanaman. 3. Undang-undang Nomor 22 Tahun 1999, tentang Pemerintah Daerah Tujuan registrasi pohon induk buah-buahan adalah menjamin kebenaran bibit yang dihasilkan dari pohon induk yang bersangkutan secara hukum (yuridis), sehingga konsumen tidak dirugikan. Tujuan lainnya adalah untuk menjamin kebenaran suatu varietas. Sebagai contoh adalah tentang banyak beredarnya varietas sitokong yang berlainan. Jika diperhatikan, mungkin dapat dikumpulkan sekitar selusin varietas sitokong yang berbeda ciri tanamannya. Padahal varietas sitokong yang resmi dilepas Menteri Pertanian pada Tahun 1984, hanya ada satu jenis. Sedangkan selebihnya adalah jenis-jenis durian yang tidak diketahui asal-usulnya yang diberi nama sitokong. Hal tersebut menunjukkan bahwa pengawasan cara perbanyakan bibit perlu diperketat agar tidak mengecewakan para pembeli bibit. Investasi pohon buah-buahan merupakan investasi jangka panjang, sehingga bila seseorang membeli bibit palsu, baru diketahui setelah 4-5 tahun pada saat pohon tersebut menghasilkan buah. Kerugian uang, tenaga dan waktu akan menimbulkan kekecewaan yang mendalam, sehingga akhirnya menghambat usaha pengembangan tanaman buah-buahan. Oleh karena itu dianjurkan membeli bibit yang telah diketahui ciri-ciri atau bibit yang berlabel. Sertifikasi dan Pelabelan Benih Cara melakukan sertifikasi adalah sebagai berikut : 1. Penangkar harus memberi tahu rencana penangkarannya kepada BPSB selambat-lambatnya satu minggu sebelum pelaksanaan perbanyakan bibit. 2. Pengisian formulir tentang rencana dan jumlah bibit yang akan diproduksi, disesuaikan dengan kemampuan pohon induk dan tenaga yang tersedia. Bila penangkar akan mengambil entres dari pohon induk milik orang lain, maka pada pengajuannya dilengkapi dengan surat persetujuan dari pemilik pohon induk. 3. Setelah permohonan diterima BPSB maka petugas BPSB akan melakukan pemeriksaan pendahuluan tentang: * kepastian letak atau areal penangkaran * kebenaran varietas pohon induk * perkiraan jumlah bibit yang akan diperbanyak 4. Setelah diperiksa baru dilakukan perbanyakan bibit. 34
Garsitria, L. 2007. Puring si Daun Atraktif. Serial Taman. Penerbit PT Prima Infosarana Media. Jakarta. Hartman, T.H. dan D. E. Kestler. 1976. Plant Propagation. Principles and Practices. Third Ed. Kurniastuti. 2014. Pengaruh Defoliasi Daun Batang Atas dan Lama Tunda Sambung Pada Keberhasilan Penyambungan Bibit. Grafting 4 (1). Lakiban, B. 2000. Fisiologi Tumbuhan dan Perkembangan Tanaman. Raja Grafindo Persada. Jakarta. Libby, W.J. and M.R. Ahuja. 1993. Clonal Forestry. In : Ahuja, M.R, and Libby, W.J. (eds). Clonal Forestry II. Springer-Verlag, Berlin :1 - 8 Mahfudz. 2005. Pengaruh Ketuaan dan Pos dan Posisi Cabang Pada Tajuk Pohon Induk Terhadap Keberhasilan Okulasi dan Produksi Stek Pucuk Jati. Tesis S2, Program Pasca Sarjana, Universita Gajah Mada. Yogyakarta. Tidak diterbitkan. Mashudi dan B. Leksono. 2004. Litbang Pemuliaan Pulai (Alstonia scholaris) untuk Menghasilkan Benih Unggul dan Perannya dalam Mendukung Program GN- RHL. Prosiding Ekspose Hasil Litbang Bioteknologi dan Pemuliaan Tanaman Hutan. Pusat Penelitian dan Pengembangan Bioteknologi dan Pemuliaan Tanaman Hutan.Yogyakarta. Hlm. 53-62. Mashudi. 2011. Pengaruh Asal Populasi dan Komposisi Media Terhadap Keberhasilan Stek Pucuk Pulai Darat (Alstonia angustiloba). Jurnal Pemuliaan Tanaman Hutan Vol. 5 (3) : 159-168. Maudy, E. 1990. Perbanyakn Tanaman dengan Stek Batang Pada Daun Jahit. Trubus Mulyani C dan J. Ismail. 2015. Pengaruh Konsentrasi dan Lama Perendaman Rootone F Terhadap Pertumbuhan Stek Pucuk Jambu Air (Syzygium Semaragense) Pada Media Oasis. Agrosamudra, Jurnal Penelitian Vol.2 (2):1-9. Putra, F., Indriyanto dan M. Riniarti. 2014. Keberhasilan Hidup Stek Pucuk Jabon dengan Pemberian Beberapa Konsentrasi Rootone F. Jurnal Sylva Lestari Vol.2 (2 ): 33-40. Universitas Lampung. Rahardjo, M dan E. Djauhariya. 2009. Pengaruh Umur Batang Bawah dan Lama Penyimpanan Batang Atas Terhadap Keberhasilan Grafting Tanaman Mengkudu. In Prosiding Seminar Nasional Tumbuh Obat Indonesia, H:87-95. Saefudin, S, dan E. Wardiana. 2016. Pengaruh Penyimpanan Dan Pengemasan Batang Entres Terhadap Keberhasilan Okulasi Hijau Tanaman Karet. Jurnal Tanaman Industri dan Penyegar 3 (2): 95. 016.p95- 102. Syah, J., M Anwaruddin. 2008. Pengaruh Lama Penyimpanan Entris Terhadap Keberhasilan Sambung Pucuk Beberapa Varietas Avokad. Jurnal Hortikultura 18 (4): 402-8. Sintia, M dan G. Pantiyasa. 2006. Philodendron. Serial Taman. Penerbit PT. Prima Infosarana Media. Jakarta. 39
Sudahono, E. Kartika, Sarman, D. Martino. 2000. Bahan Kuliah Pembiakan Vegetatif. Fakultas Pertanian. Universitas Jambi. Sudrajat, H dan H. Widodo. 2011. Pengaruh Konsentrasi dan Lama Perendaman Rootone F Pada Pertumbuhan Pule Pandak. Laporan Penelitian Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Obat dan Tanaman Obat. Surakarta Sulastri, Y S. 2004. " Pengaruh Konsentrasi IBA dan Lama Perendaman Terhadap Pertumbuhan Stek Pucuk Jambu Air (syzygium samagence). Jurnal Penelitian Bidang Ilmu Pertanian. Vol 2 (3): 25-34. Suprapto, A. 2004. " Auksin: Zat Pengatur Tumbuh Penting Meningkatkan Mutu Stek Tanaman "Jurnal Produksi Tanaman Vol.21(1):81-90. Universitas Tidar Magelang Tanveer, S. Syed, S. Rahman dan N. Khan. 2016. Viability of Meyer Lemon Over Sour Orange Rootstock. Pure Appl. Biol 5 (2): 326- 31. Thalib, S. 2019. Pengaruh Sumber dan Lama Simpan Batang Atas Terhadap Pertumbuhan Hasil Grafting Tanaman Durian. Jurnal Agro, 6(2):196-205 Tidi, D., Mansyur dan A. Budiman. 2012. Evaluasi Karbohidrat dan Lemak Batang Tanaman Pisang Hasil Fermentasi Anaerob Dengan Suplementasi Nitrogen Dan Sulfur Sebagai Bahan Pakan Ternak. Pastura 2 (2): 97-101. Wahyudi E., I. Permanasari dan E. Aryanti. 2017. Perbedaan Batang Bawah dan Masa Penyimpanan Entres Terhadap Pertumbuhan Okulasi Bibit Jeruk Siam Madu (Citrus nobilis). Jurnal Agroteknologi, Vol. 8 (1) : 35 - 40 Widianto, R. 2002. Membuat Stek, Cangkok, dan Okulasi. Penebar Swadaya. Jakarta. 40
BAB II. SETEK Perbanyakan secara vegetatif adalah cara perkembangbiakan tanaman dengan menggunakan bagian-bagian seperti batang, cabang, ranting, pucuk, daun, umbi dan akar, untuk menghasilkan tanaman baru yang sama dengan induknya. Prinsipnya adalah merangsang tunas adventif yang ada di bagian-bagian tersebut agar berkembang menjadi tanaman sempurna yang memiliki akar, batang, dan daun sekaligus. Keunggulan cara ini adalah menghasilkan tanaman yang memiliki sifat yang sama dengan induknya. Selain itu, lebih cepat berbunga dan berbuah. Kelemahan dari cara ini membutuhkan pohon induk yang lebih besar dan lebih banyak, sehingga membutuhkan biaya yang banyak. Selain hal tersebut juga tidak semua tanaman dapat diperbanyak dengan cara stek/setek, dan tingkat keberhasilannya sangat rendah, terlebih jika dilakukan oleh hobiis atau penangkar pemula. Setek atau stek adalah metode perkembangbiakan tanaman dengan menggunakan potongan tubuh tanaman (akar, daun, batang). Setiap bagian tubuh tanaman memiliki sifat totipotensi di mana satu sel dapat membelah menjadi sel lain. Totipotensi menunjukkan kemampuan suatu sel untuk dapat memperbanyak diri dalam keseluruhan (total) kemungkinan perkembangan yang dimungkinkan. Namun menurut Huges (1981), usaha untuk menginduksi plantlet dari bagian-bagian tumbuhan berdasar konsep totipotency seringkali sangat tumbuhan menghasilkan tunas adventif beragam antar jenis, bahkan antar tumbuhan dari jenis yang sama. Di dalam suatu tumbuhan, kemampuan regenerasi dari jaringan yang berbeda tidak hanya tergantung pada umur fisiologisnya, tetapi sampai ke tingkat karakterisasi dan kualitas selnya. Jaringan yang muda umumnya mempunyai kemampuan berdiferensiasi lebih baik. Sedangkan ukuran eksplan, suhu, cahaya, waktu inokulasi (pada musim yang berbeda), jenis medium atau zat pengatur mempengaruhi pertumbuhan eksplan (Tisserat, 1985). terbatas hasilnya. Kemampuan suatu Perbanyakan dengan stek pada umumnya dilakukan pada tanaman dikotil, pada monokotil masih jarang; namun pada beberapa tanaman seperti asparagus - dalam kondisi terkontrol dapat dilakukan. Perbanyakan secara stek meliputi stek batang, stek bertunas daun, stek daun, stek akar, stek mata, stek umbi (meliputi umbi lapis, umbi palsu, umbi batang, umbi akar dan akar batang). Stek berasal dari kata stuk (bahasa Belanda) dan cuttage (Bahasa Inggris) yang artinya potongan. Sesuai dengan namanya perbanyakan ini dilakukan dengan menanam potongan tanaman induk ke dalam media agar tumbuh menjadi tanaman baru. Perbanyakan dengan stek mudah dilakukan karena tidak memerlukan peralatan khusus dan teknis pelaksanaan tidak rumit. Keunggulan teknik ini adalah dapat menghasilkan tanaman baru dalam jumlah banyak walaupun bahan tanaman yang tersedia sangat sedikit atau terbatas. Namun tidak semua tanaman dapat diperbanyak 41
Gambar 2.5. Perkembangan akar muda menjadi akar dewasa 45
Gambar 2.6. Struktur anatomi batang tanaman monokotil (Jagung) dan dikotil (Bunga Matahari) Gambar 2.7. Struktur anatomi akar tanaman monokotil dan dikotil 46
A Gambar 2.8. A. Perkembangan akar muda menjadi akar dewasa B. Penampang akar monokotil dan dikotil Beberapa penelitian pada tanaman hias menunjukkan bahwa akar akan muncul sekitar 7 sampai 10 hari; misalnya pada mawar, soka, kenanga, melati. Sedangkan pada aglaonema dan beberapa varietas diffenbachia yang diberi perlakuan zat perangsang tumbuh akar rootone-F sekitar 14-21 hari. Penelitian pada stek jambu air varietas Citra yang diberi NAA, tampak waktu pengakaran menunjukkan perbedaan yang sangat nyata dengan yang tidak diberi NAA. Akar akan muncul sekitar 3 minggu pada tanaman yang diaplikasi NAA. Tanaman yang diaplikasi NAA juga lebih banyak mempunyai tunas dibanding dengan yang kontrol . Penelitian pada mawar juga memberikan respon yang sama dengan yang dijelaskan terdahulu. Stek mawar yang diaplikasi dengan IBA, menunjukkan persentase pertunasan lebih tinggi dibandingkan dengan kontrol. Pertumbuhan tanaman terutama jumlah daun lebih seragam Inisiasi akar berasal dari parenkim jaringan floem. Pada saat 47
Pertumbuhan sel kalus berasal dari sel-sel muda pada daerah kambium pembuluh, walaupun ada juga beberapa kalus ini yang terbentuk dari sel-sel kortex dan empulur. Pada beberapa fenomena, pembentukan kalus dan pembentukan akar adalah independen satu dengan lainnya, sehingga hal ini dapat terjadi secara serempak tergantung dari kondisi lingkungan dan internal. Beberapa penelitian menunjukkan bahwa pH media perakaran mempengaruhi proses pembentukan kalus, yang pada akhirnya dapat mempengaruhi proses pembentukan akar adventif baru. Pembentukan akar adventif dibatasi oleh faktor-faktor inherent (faktor bawaan dari tanaman) yang tidak ditranslokasikan didalam jaringan tanaman. Namun dari beberapa pustaka dikatakan bahwa interaksi antara faktor-faktor yang tidak bergerak (immobile) yang terletak didalam sel, mungkin berupa enzim-enzim tertentu dan nutrien serta faktor-faktor endogen yang mudah ditranslokasi saling berinteraksi untuk menciptakan kondisi yang favorable untuk perakaran. Pada beberapa penelitian pada stek yang dilakukan di akar (stek akar), inisiasi akar biasanya terjadi dengan didahului oleh inisiasi daun Regenerasi dari akar sangat lambat, kecuali diinduksi oleh zat pengatur tumbuh dari luar misalnya cytokinin, yang akan merangsang keluarnya akar . Menurut Hartman dan Davies (1990), akar baru yang terbentuk biasanya bukan merupakan akar adventif tetapi adalah akar yang berkembang dari akar laten yang terkandung didalam cabang akar-akar tua yang mungkin terbawa ketika stek akar dilakukan. Akar-akar ini biasanya berkembang karena adanya perlakuan hara atau zat pengatur tumbuh. Akar-akar ini berasal dari sel-sel dewasa dari pericycle atau endodermis atau kedua-duanya. Stek akar yang diambil dari tanaman yang muda atau yang telah memasuki fase juvenil, lebih cepat berakar dari yang tua. Secara fisiologis hal ini menurut Hartman dan Kestler (1983), dapat disebabkan karena adanya faktor endogenus yaitu adanya auksin untuk merangsang perkembangan akar adventif dan masih tingginya cytokinin didalam tanaman yang dapat merangsang keluarnya akar pada bagian bawah tanaman (akar asli), namun pada banyak kasus yang sering terjadi adalah akar keluar pertama kali dibawah pucuk adventif, dari akar selain akar yang mengalami pemotongan. Pada beberapa penelitian pada tanaman hias biasanya tanaman yang pertumbuhan bagian atasnya baik (bagian atas dari tanaman induk), akan diikuti dengan pertumbuhan akar yang juga baik apabila dilakukan penyetekan akar. Beberapa tanaman sering menunjukkan fenotipe yang berbeda dengan induknya, misalnya sifat berduri dan tidak berduri, Contohnya pada waktu dilakukan stek akar akan menghasilkan tanaman yang berduri, sedangkan dengan stek daun atau stek batang akan menghasilkan tanaman yang tidak berduri. Terdapat hubungan yang sangat erat antara sifat-sifat anatomi batang dengan faktor-faktor yang mempengaruhi proses pertumbuhan akar. Menurut Hartman et al. (2002), bahwa stek yang diambil dari materi yang terlalu muda akan mudah diserang penyakit sehingga cepat busuk/mati. Kemudian Leppe dan Smits (1988), menyampaikan bahwa saat terbaik untuk pengambilan bahan stek adalah pada saat pucuk beristirahat, karena apabila pucuk tanaman diambil dalam keadaan aktif, eksplan akan mudah layu dan busuk. Dalam pembangunan kebun pangkas untuk memproduksi bibit secara masal konsep juvenilitas materi stek sangat penting 49
ASPEK FISIOLOGI STEK Pada waktu akar adventif telah terbentuk maka akan terjadi perubahan yang sangat besar pada proses metabolik. Beberapa hasil penelitian pada potongan batang menunjukkan bahwa sintesis protein dan produksi RNA banyak terjadi. Hasil-hasil penelitian lain pada tanaman berkayu menunjukkan bahwa terjadi perubahan pola DNA dan enzim ketika akar berkembang. Sintesis protein terjadi sebelum inisiasi akar, peranan protein adalah untuk menghambat inhibitor-inhibitor yang akan mempengaruhi proses metabolik dalam pembentukan akar. Sebagai contoh enzim peroksidase mendekstruksi inhibitor- inhibitor tertentu yang akan menghambat proses metabolik dalam pembentukan akar adventif. Beberapa penelitian pada stek advokat yang diberi perlakuan IBA, menggunakan CO2 radioaktif yang diaplikasi ke daun, menunjukkan bahwa setelah kalus dan akar mulai terbentuk terjadi peningkatan dalam jumlah besar dari gula dan terjadi kehilangan yang sangat tinggi dari pati yang berlangsung di bagian bawah dari stek. Fenomena ini menunjukkan bahwa kalus dan akar yang sedang terbentuk adalah sink untuk terjadinya gerakan karbohidrat terlarut dari bagian atas stek tersebut kearah bawah. lain, pada stek tanaman kacang-kacangan, IAA yang ditambahkan meningkatkan akumulasi gula pada dasar stek, terjadi peningkatan asimilat ke arah bawah, hal ini diketahui dari 'C berlabel radioisotop yang diberikan ke daun. Dalam penelitian Pada telaah fisiologi perakaran stek juga dikenal adanya polaritas yaitu peng- kutuban ke suatu arah tertentu yang inheren pada pucuk dan akar. Stek batang yang diambil dari pucuk yang berada pada ujung distal yaitu bagian yang paling dekat dengan ujung pucuk, dan akar pada ujung proximal (paling dekat dengan mahkota tanaman; crown = pertemuan pucuk dengan akar). Stek akar membentuk akar pada ujung distal dan membentuk pucuk pada ujung proximal (Hartman dan Kestler, 1976). Pada beberapa pustaka menunjukkan bahwa polaritas dari jaringan batang sangat kuat, sifat ini disebabkan oleh komponen selular individual, karena betapa kecilnyapun potongan stek, regenerasi secara konsisten terjadi secara polar. Pada waktu sepotong akar dipotong menjadi dua segmen, dua permukaan yang bersentuhan sebelum dipotong adalah serupa dalam segala hal. Namun pada saat terjadi regenerasi dari pucuk dan akar, satu permukaan potongan menjadi akar dan permukaan potongan lainnya menjadi batang. 51
Gambar 2.11. Polaritas Pada Tanaman Gambar 2.12. Polaritas Pada Pemotongan Daun 52
Gambar 2.13. Polaritas pada pemotongan akar Pada beberapa kasus membuktikan bahwa polaritas regenerasi dari batang sangat kuat dan polaritas regenerasi dari akar lemah, dan sangat lemah pada daun. Pengamatan pada stek daun menunjukkan bahwa akar dan pucuk muncul pada posisi yang sama, biasanya pada dasar dari stek. Pada waktu segmen batang dipotong, kesatuan fisiologis terganggu. Hal ini menyebabkan suatu redistribusi dari beberapa senyawa, yang terbesar adalah auksin. Gerakan polaritas dari auksin merupakan transpor aktif, dan ternyata merupakan aktivitas sekresi. Faktor-faktor yang Mempengaruhi Pertumbuhan Stek Perbedaan besar terjadi dalam proses pengakaran antar spesies dan kultivar. Meskipun hubungan botani dapat memprediksi tingkat keberhasilan perakaran yang sama, namun bukti empiris sering berbeda. Keadaan ini disebabkan karena pengaruh yang besar dari berbagai faktor yang saling berinteraksi yaitu antar faktor bahan stek itu sendiri dengan faktor fisiologi dan lingkungan. Apabila akar telah terinisiasi biasanya proses metabolik akan lebih cepat karena akar yang sedang tumbuh merupakan sink untuk translokasi pati atau karbohidrat. Dari beberapa hasil penelitian ditunjukkan bahwa inisiasi akar merangsang sintesis protein dan produksi RNA. Beberapa penelitian pada tanaman hortikultura khususnya buah-buahan menunjukkan bahwa selama pembentukan akar adventif terdapat banyak suksisnic dehidrogenase dan enzim-enzim penghidrolisis pati di dalam sel pada jari-jari floem dan enzim-enzim peroxidase, cytochorome oksidase, 53
xylem dari berkas vaskular. Pada proses perkembangan yang lebih lanjut diketahui bahwa aktifitas dari enzim-enzim tersebut berpindah dari jari-jari floem ke bagian pinggir dari seludang pembuluh. Selanjutnya dijelaskan bahwa enzim peroksidase berfungsi untuk mendekstruksi inhitor-inhibitor tertentu yang dapat menghambat proses metabolik. Enzim suksinik dehidrogenase dan cythocrome oksidase terlibat dalam respirasi selular, sedangkan enzim amylase terlibat dalam proses perubahan gula dari zat pati sebagai substrat untuk berbagai proses sintetik. Pada beberapa penelitian tanaman anggur ditemukan bahwa stek yang akar adventif telah keluar serta telah mempunyai kalus, terjadi peningkatan gula dalam jumlah besar. Ini diduga karena adanya sink strength dari akar yang telah terbentuk yang sangat tinggi untuk menarik assimilat dari bagian atas stek (Wareing dan Philips, 1986). Beberapa peneliti berpendapat bahwa bagian yang terluka pada batang merangsang penarikan karbohidrat ke bagian bawah dari stek untuk proses penutupan luka dan merangsang proses inisiasi akar. Hartman dan Kestler (1983) menemukan pada suatu penelitian dengan sumber auksin pada kacang-kacangan bahwa terjadi peningkatan akumulasi gula pada dasar stek. Berdasarkan pernyataan di atas untuk mempercepat keluarnya akar adventif maka pada stek sebaiknya diambil dari tanaman induk yang sedang aktif tumbuh, dan untuk mempercepat keluarnya akar adventif harus ada bud dan harus ditinggalkan 2 helai daun. Hal ini dijelaskan bahwa keluarnya akar adventif secara fisiologi adalah interaksi dari berbagai hormon. Akar juga adalah sink, dan akar yang sedang tumbuh mempunyai sink strength yang tinggi, untuk penarikan karbohidrat kebawah dalam proses penutupan luka dan inisiasi akar. Daun yang telah ada pada waktu penyetekan dapat merupakan tempat terjadinya fotosintesis, sehingga adalah sumber fotosintat bagi akar.. Tanaman Induk Tanaman induk dalah bahan tanam yang akan digunakan untuk perbanyakan. Bahan tanam harus berasal dari pohon induk yang sehat dan telah diketahui asal- usulnya, mudah dibiakkan, tahan hama dan penyakit, produktivitas tinggi, bercabang kekar, tumbuh normal, serta memilliki perakaran yang kuat dan rimbun. Untuk memperbanyak tanaman keras dan tanaman buah tahunan tanaman induk harus dipilih dari tanaman yang sudah berbuah sedikitnya lima kali agar diketahui secara pasti keunggulan sifat buahnya. Untuk tanaman sayuran dan buah-buahan berumur pendek, tanaman yang bersosok kekar, pertumbuhannya baik dan sehat. tanaman induk dipilih dari Tanaman induk dapat berupa tanaman lokal atau tanaman yang diintroduksi yaitu tanaman unggulan dari dalam negeri (lokal) atau dari luar negeri. Cara ini biasa dilakukan oleh para hobiis yang ingin cepat mendapatkan pohon induk. Sebagai contoh adalah introduksi varietas unggul durian dari Thailand, si Otong dan Kani - dua jenis durian unggul yang sekarang telah menjadi durian unggul nasional. Contoh lain adalah aglaonema dan adenium hibrida yang berasal dari Thailand. 54
Selain dengan cara di atas dapat juga dilakukan dengan melakukan eksplorasi atau melacak ke berbagai tempat yang diduga merupakan sentra atau banyak terdapat tanaman unggul atau tanaman unik. Cara lain untuk mendapatkan tanaman induk adalah dengan melacak di arena kontes atau lomba. Biasanya tanaman yang menjadi pemenang di kontes atau lomba pada ajang-ajang bergengsi akan disahkan dan dilepas Pemerintah sebagai varietas unggul nasional. Faktor fisiologi tanaman Beberapa faktor fisiologi yang dapat mempengaruhi pertumbuhan stek, yaitu: Hormon dan Zat pengatur tumbuh tanaman Auksin • Cytokinin • Giberalin • Bahan-bahan yang terbentuk secara alami Efek dari daun dan tunas Efek dari inhibitor. Hormon dan Zat Tumbuh Tanaman Hormon tanaman adalah senyawa organik yang disintesis di salah satu bagian tanaman dan dipindahkan ke bagian lain, dan pada konsentrasi yang sangat rendah mampu menimbulkan suatu respon fisiologis. Ini adalah batasan hormon yang diterima secara universal. Zat pengatur tumbuh tanaman adalah zat organik yang dalam jumlah kecil mempunyai aktifitas menstimulasi, menghambat, menekan (retardasi) dan memodifikasi berbagai proses fisiologi. Zat pengatur tumbuh tidak disintesis di dalam tanaman. Gardner dan Mitchel (1991), mendefinisikan zat pengatur tumbuh tanaman yang disintesis di dalam tanaman dengan sebutan hormon tanaman atau fitohormon. Istilah hormon berasal dari fisiologi hewan yang berarti suatu substansi yang disintesis dalam suatu organ yang akan merangsang terjadinya respon pada organ yang lain. Hormon tanaman tidaklah khusus seperti hormon hewan yang sangat spesifik akan tempat sintesis ataupun organ tempat responnya, tetapi cenderung mengikuti pola tingkah laku yang umum. Pada saat ini terdapat lima jenis zat pengatur tumbuh yaitu auksin, giberelin, sitokinin atau kinin, penghambat pertumbuhan dan etilen. Sifat-sifat tertentu diperlukan bagi suatu senyawa agar dapat dikelompokkan sebagai fitohormon yaitu : (1) tempat sintesis berbeda dari tempat aktifitasnya, misalnya sintesis di pucuk dan daun muda, tetapi responnya di batang, akar atau organ-organ lain, (2) respon dihasilkan oleh sejumlah atau sangat kecil (konsentrasi), (3) tidak seperti pada vitamin dan enzim, respon mungkin berbentuk formatif dan plastik (tidak dapat pulih, misalnya respon tropi). 55
sedangkan penghambat pertumbuhan dalam konsentrasi yang sangat rendah sudah dapat menghambat transpor auksin. Bahan lain yang dapat memacu pembentukan akar adventif tetapi tidak terbentuk secara (IBA) dan alami dan pengaruhnya naphtaneaceticacid ( NAA). Beberapa hasil penelitian menunjukkan bahwa kedua bahan ini dapat memacu pembentukan akar dibeberpa segmen batang dengan sangat effektif. Beberapa hasil penelitian pada tanaman perkebunan maupun buah-buahan membuktikan bahwa inisiasi akar pada batang yang distek tergantung pada auksin asli ( native auxin) maupun auksin yang diaplikasi bersama-sama dengan sinergis auksin ((auxin synergis) dapat menginduksi RNA yang terlibat dalam primodia akar. seperti auksin adalah Indolbutyricacid Beberapa auksindihasikan secara alami oleh tumbuhan, misalnya IAA (indoleacetic acid), PAA (Phenylacetic acid), 4-chloroIAA (4-chloroindole acetic acid) dan IBA (indolebutyric acid) dan beberapa lainnya merupakan auksin sintetik, misalnya NAA (napthalene acetic acid), 2,4 D (2,4 dichlorophenoxyacetic acid) dan MCPA (2-methyl- 4 chlorophenoxyacetic acid). Auksin alami yang berada di dalam tumbuhan, adalah asam indol asetat (IAA=Indol Asetic Acid), akan tetapi, beberapa senyawa lainnya, termasuk beberapa sintetisnya, mempunyai aktivitas seperti auksin. Nama auksin digunakan khususnya terhadap IAA. Walaupun auksin merupakan hormon tumbuhan pertama yang ditemukan, namun masih banyak yang harus dipelajari tentang transduksi sinyal auksin dan tentang regulasi biosintesis auksin. Kenyataan sekarang mengemukakan bahwa auksin diproduksi dari asam amino triptopan di dalam ujung tajuk tumbuhan. Tempat sintesis utama auksin pada tanaman yaitu di daerah meristem apikal tunas ujung. IAA yang diproduksi di tunas ujung tersebut diangkut ke bagian bawah dan berfungsi mendorong pemanjangan sel batang. IAA mendorong pemanjangan sel batang hanya pada konsentrasi tertentu yaitu 0,9 g/l. Di atas konsentrasi tersebut IAA akan menghambat pemanjangan sel batang. Pengaruh menghambat ini kemungkinan terjadi karena konsentrasi IAA yang tinggi mengakibatkan tanaman mensintesis ZPT lain yaitu etilen yang memberikan pengaruh berlawanan dengan IAA. Auksin dihasilkan pada jaringan meristem yang aktif seperti bud, kuncup, daun muda dan buah yang dimobilisasi oleh enzim IAA oksidase disamping enzim peroksidasi dan beberapa enzim oksidase lainnya. Auksin ditransportasi secara besipetal dan symplastic melalui phloem. Ada beberapa karakteristik respon terhadap auksin yaitu; ➢ Dipengaruhi konsentrasi, konsentrasi harus rendah sehingga akan mempengaruhi aktivitas merangsang perpanjangan sel, tetapi apabila dalam jumlah besar akan bersifat inhibitor. ➢ Berhubungan dengan geotropisme dan fototropisme, gerakan yang dipengaruhi oleh rangsang cahaya berhubungan dengan redistibusi auksin sehingga mengalami kesetimbangan. ➢ Auksin mengkoordinasi morfogenesis, pada akar dan pucuk bila tidak dalam kesetimbangan kemudian ditambah dari luar maka akan berfungsi menghambat. 58
Pada kalus, bila diberi dari maka akan berfungsi sebagai promotor dan merangsang perakaran pada perpanjangan bagian vegetatif. Auksin terlibat dalam berbagai aktivitas tanaman, seperti pertumbuhan batang, pembentukan akar, membantu untuk menginduksi tunas lateral, pengaktifan sel-sel kambium dsb. Indole-3-Acetic Acid (IAA) diidentifikasi sebagai senyawa yang terbentuk secara alami, yang mempunyai kerja auksin yang sangat kuat dan dapat memacu pembentukan akar adventif. Kadar auksin endogen dan aktivitasnya dalam jaringan berhubungan dengan keseimbangan antara sintesis dengan hilangnya auksin karena transpor dan metabolisme. Auksin diproduksi didalam jaringan merimatik yang aktif (yaitu tunas, daun muda dan buah). Terjadi imobilisasi oleh fotooksidasi, dan oksidasi enzim (IAA-oksidase) di seluruh bagian tanaman, terutama dalam jaringan tanaman yang lebih tua (Wareing dan Philips, 1986). Transpor auksin berlangsung secara besipetal, yaitu dari ujung ke basal. Pembalikan ujung batang tidak merubah polaritas ini. Walaupun demikian beberapa penelitian, beberapa penelitian dengan menggunakan radioisotop IAA menunjukkan gerakan akropetal (dari basal ke ujung) (Gardner dan Mitchel., 1991). Transpor auksin adalah simplatik (dalam floem) dan bersifat aktif. transpor auksin, sedangkan penghambat Sitokinin dan GA mempercepat pertumbuhan dalam konsentrasi yang sangat rendah sudah dapat menghambat transpor auksin. Bahan lain yang dapat memacu pembentukan akar adventif tetapi tidak terbentuk secara alami dan pengaruhnya seperti auksin adalah Indolbutyricacid (IBA) dan naphtaneaceticacid (NAA). Beberapa hasil penelitian menunjukkan bahwa kedua bahan ini dapat memacu pembentukan akar di beberapa segmen batang dengan sangat efektif. Beberapa hasil penelitian pada tanaman perkebunan maupun buah-buahan membuktikan bahwa inisiasi akar pada batang yang di-stek tergantung pada auksin asli (native auxin) maupun auksin yang diaplikasi bersama-sama dengan sinergis auksin (auxin synergis) dapat menginduksi RNA yang terlibat dalam primodia akar. Selanjutnya penelitian pengaruh IBA terhadap pertumbuhan mata tunas dari belahan bonggol pisang Ambon Putih dengan lama perendaman 30 menit, yang memberikan hasil terbaik terhadap munculnya tunas dibandingkan perlakuan lainnya. Selanjutnya penelitian pada bonggol pisang Ambon Putih untuk melihat pertumbuhan tunas pada beberapa perbedaan konsentrasi, ternyata pada konsentrasi 70 ppm memberikan hasil terbaik dan tercepat keluarnya tunas dibandingkan dengan perlakuan lainnya. Selanjutnya penelitian pada nanas dengan menggunakan IBA untuk melihat kecepatan keluarnya perakaran tunas, hasil terbaik adalah dengan merendam tunas selama 24 jam dengan konsentrasi IBA 50 ppm. Pada penelitian Mulyani dan Ismail (2015) tentang pengaruh konsetrasi Rootone-F terhadap pertumbuhan stek pucuk jambu air menunjukkan NAA dan IBA yang merupakan hormon jenis auksin ketika diberikan pada konsentrasi optimal dan didukung oleh keadaan lingkungan seperti tersedianya air yang cukup pada media 59
tanam serta terpenuhinya kebutuhan cahaya akan mempercepat terjadinya proses fisilogis yaitu pembelahan sel menjadi lebih cepat sehingga pertumbuhan tunas pada stek berkembang secara maksimal. Tetapi bila konsentrasi Rootone F diberikan pada konsentrasi yang tinggi dan berlebih, akan menyebabkan pertumbuhan panjang tunas menjadi terhambat. Hal ini sesuai dengan pendapat Putra et al. (2014) menyatakan bahwa kandungan Rootone-F adalah senyawa IBA dan NAA yang merupakan senyawa yang memiliki daya kerja seperti auksin (IAA) yaitu pada konsentrasi yang tepat akan meningkatkan pembelahan, perpanjangan sel dan diferensiasi dalam bentuk perpanjangan ruas. Auksin berperan merangsang perenggangan dinding sel sehingga tekanan dinding sel menurun sehingga terjadilah pelenturan sel, sehingga pemanjangan dan pembesaran sel dapat terjadi. Munculnya akar karena aplikasi Rootone-F sesuai dengan pendapat Gardner dan Mitchel (1991) yang mengemukakan bahwa kadar auksin yang optimal akan memacu pertumbuhan dan perkembangan awal akar. Hal ini disebabkan penggunaan Rootone-F dengan konsentrasi yang sesuai sebagai auksin eksogen bekerja sinergis dengan auksin endogen untuk merangsang proses pembentukan, permunculan dan differensiasi primordia akar. Menurut Dwijoseputro (2001) menyatakan bahwa Auksin merupakan hormone untuk pertumbuhan khususnya merangsang perpanjangan sel, Cytokinin Cytokinin dikenal sebagai zat pengatur tumbuh yang merangsang sitokinesis (pembelahan sel). Zeatin diperoleh dari isolasi endosperm biji muda jagung, zeatin kaya akan kinin, tempat sintesisnya adalah akar muda, buah muda dan jaringan endosperm muda. Cytokinin berasal dari adenin dengan rantai cabang yang berasal dari isoperne. Di alam kini terkonjugasi dengan gula dan pospat. Cytokinin adalah hormon tanaman yang terlibat dalam pertumbuhan sel dan differensiasi. Bebagai bahan alami maupun sintetik seperti Zeatin, kinetin, dan 6-benzyl adenin memiliki aktifitas seperti cytokinin. Beberapa penelitian pada batang kapri, pada fase awal pertumbuhan menunjukkan bahwa pada konsentrasi rendah dapat memacu inisiasi akar tetapi pada konsentrasi tinggi justru menghambat inisiasi akar. Namun aplikasi pada fase lebih lanjut pada konsentrasi tinggi tersebut tidak menghambat inisiasi akar. Penelitian pada tembakau menunjukkan bahwa cytokinin dalam aksinya berhubungan dangan auksin. Stek daun adalah bahan yang sangat baik digunakan untuk menguji perilaku auksin dan cytokinin. Pada penelitian dengan stek begonia, tampak bahwa pemberian cytokinin yang relatif tinggi (13 ppm) merangsang pembentukan tunas dan menghambat pembentukan akar; auksin pada konsentrasi yang tinggi memberikan efek yang berlawanan. Namun terdapat hubungan interaksi antar auksin dan cytokinin. Pada konsentrasi rendah (sekitar 2 ppm), IAA memacu pembentukan tunas, yang berarti memperkuat pengaruh cytokinin. Juga pada konsentrasi rendah (sekitar 0,8 ppm) kinetin menstimulasi pengaruh IAA dalam memacu perakaran. Faktor lingkungan seperti suhu dan panjang hari saling berhubungan dalam kerja auksin dan cytokinin. Pada temperatur tinggi (27°C) menghambat pembentukan tunas dan melawan efek perangsangan dari cytokinin dalam proses pembentukan tunas 60
maupun efek yang menekan dari cytokinin. Sebaliknya efek auksin distimulasi pada hari panjang dan pada temperatur rendah (15°C). Namun pada intensitas cahaya rendah, baik auksin maupun kemampuan regenerasi tidak dipengaruhi suhu. Pada cocor bebek, tunas diinisiasi pada lekukan daun dan terjadi pada fase dini dalam pembentukan daun. Pucuk yang tumbuh kemudian menjadi daun berasal dari tunas-tunas ini. Pada fase ini, aplikasi cytokinin mempunyai efek perangsangan pada perkembangan tunas sedangkan aplikasi auksin menghambat perkembangan tunas tetapi menstimulasi pembentukan akar. Gibberalin GA berbeda dengan auksin dalam aktivitas fisiologinya. GA sangat luas, walaupun secara khusus dan sangat spesifik adalah memperpanjang buku (internode elongation). Pada beberapa penelitian, apabila terjadi kekurangan GA akan memberikan pengaruh dwarfisme. GA dalam kondisi yang berlebih tidak langsung menyebabkan toksik dan pengaruh menghambat (inhibitor). GA adalah suatu kelompok yang saling berkaitan dari senyawa-senyawa yang terbentuk secara alami, dan dikenal terutama karena pengaruhnya dalam merangsang pemanjangan batang. Pada konsentrasi yang relatif tinggi tampak menghambat pembentukan akar adventif. Terdapat bukti bahwa penghambatan tersebut merupakan efek langsung yang mencegah pembentukan awal sel yang terlibat dalam transformasi dari jaringan batang dewasa ke kondisi merismatik. Banyak peneliti yang mengasumsikan GA ditranslokasikan secara simplastik. Tetapi kehadiran GA dalam jumlah tinggi pada jaringan floem maupun xilem pada kondisi tertentu menunjukkan bahwa transpor mungkin berlangsung secara simplastik maupun apoplastik . Laju transpor dalam floem menurut pengamatan sama dengan laju transpor karbohidrat. Kalau pergerakan auksin mungkin pasipetal atau akropetal; maka GA bebas besipetal dan akropetal. Giberalin mempunyai fungsi regulasi sintesis asam nukleat dan kemungkinan menekan inisiasi akar melalui interferensi dalam proses tersebut. Namun pada beberapa hasil penelitian pada tomat dan kapri menunjukkan bahwa pada konsentrasi rendah giberalin merangsang inisiasi akar. Penelitian yang lain pada daun begonia tampak giberalin menekan pembentukan tunas, namun merangsang pembentukan akar. Beberapa hasil penelitian pada tanaman buah-buahan, menunjukkan bahwa pada konsentrasi yang rendah GA, merangsang keluarnya akar adventif pada kedondong, namun apabila konsentrasi dinaikkan akar menjadi terhambat namun tunas yang telah ada sewaktu penyetekan akan lebih dahulu muncul. Pernyataan ini didukung oleh hasil penelitian pada stek daun Sansievera sp. menunjukkan pada konsentrasi yang rendah GA merangsang keluarnya root tip, namun menurut Hartman dan Kestler (1983), peningkatan dosis akan lebih merangsang keluarnya tunas daripada munculnya root tip. Giberalin adalah sejenis hormon tumbuh yang mula-mula ditemukan di Jepang oleh Kurosowa pada tahun 1926. Kurosowa melakukan penelitian pada penyakit bakane yang menyerang padi. Penyakit ini disebabkan oleh jamur Giberella fujikoroi. Sampai saat ini telah ditemukan 10 jenis giberelecic acid yang disimbolkan GA(1-10). Sebagai hormon, GA sangat berpengaruh 61
terhadap sifat genetik dwarfsisme (kerdil karena mutasi), pembungaan, partenokarpi, pemanjangan sel, merangsang keluarnya akar dan berbagai proses fisiologis lainnya. Yang terutama fungsi GA dari seluruh proses fisiologi adalah pemanjangan sel dan merangsang aktivitas kambium Pada suatu penelitian pada tanaman anggur, jeruk, jambu, penggunaan GA merangsang pemanjangan akar. Aplikasi pada bahan stek mempercepat keluarnya akar adventif pada dosis yang rendah. Interaksi Cytokinin, Gibberellin, dan Auksin terhadap Perkembangan Tanaman Pada tanaman, zat pengatur tumbuh auksin, gibberellin dan cytokinin bekerja tidak sendiri-sendiri, tetapi saling berinteraksi yang dicirikan dalam perkembangan tanaman. Beberapa hasil penelitian menunjukkan adanya interaksi ke tiga hormon tumbuh ini. Wareing dan Phillips (1986), mengemukakan bahwa zat pengatur tumbuh itu bekerja secara berinteraksi. Hal ini ditunjukkan pada penelitian dengan menggunakan kentang liar Solanum andigena untuk membuktikan interaksi dari ke tiga hormon tersebut. Perlakuan dilakukan dengan memotong pucuk-pucuk daun, selanjutnya batang yang terpotong masing-masing diberi: IAA, GA, GA + IAA, GA + IAA pada batang yang dipotong dan pada pucuk yang tumbuh di ketiak daun diberi kinetin. Pada perlakuan yang diberi IAA, tampak pertumbuhan tunas mengalami hambatan. Tetapi pada perlakuan GA, pertumbuhan tunas memperlihatkan pemanjangan internode pada tunas yang tumbuh di ketiak daun. Sedangkan pada perlakuan pemberian GA + IAA, memperlihatkan pertumbuhan stolon secara horizontal. Dan pada perlakuan IAA + GA pada batang yang terpotong kemudian diberi perlakuan kinetin pada pucuk yang tumbuh di ketiak daun, menunjukkan pertumbuhan yang normal. Bahan-Bahan Yang Terbentuk Secara Alami Banyak senyawa baik yang telah diidentifikasi yang berpengaruh dalam merangsang pembentukan akar adventif. Beberapa diantaranya adalah semacam kofaktor pengakaran (rooting cofactor). Meskipun dapat diekstrak dari tanaman namun secara normalnya tidak dimasukkan dalam proses fisiologi (Waering dan Philips, 1986) • Ethylene (C2H4) dihasilkan oleh tanaman dan mempunyai pengaruh hormonal meskipun tidak secara pasti memenuhi definisi hormonal. Penelitian terhadap ethylene pada beberapa tanaman sering memberikan hasil yang tidak konsisten. Ethylene dalam aktivitasnya sangat luas, dapat meningkatkan kerja auksin, karena antara Ethylene dan auksin terdapat hubungan yang sangat erat. Banyak bahan-bahan lain yang mempunyai fungsi seperti hormon namun belum dapat diidentifikasi. Ethylen adalah hormon tumbuh yang secara umum berlainan dengan auksin, gibberellin, dan cytokinin. Dalam keadaan normal, ethylene akan berbentuk gas dan struktur kimianya sangat sederhana sekali. Di alam, ethylene akan berperanan bila terjadi perubahan secara fisiologis pada suatu tanaman. Hormon ini akan berperanan pada proses pematangan buah dalam fase klimaterik. Beberapa hasil penelitian, membuktikan tentang adanya hubungan antara auksin dan ethylene dalam pembengkakan dan perakaran dengancara mengaplikasikan 62
auksin pada jaringan setelah ethylene berperan. Hal ini menunjukkan bahwa adanya auksin dapat menstimulasi produksi ethylene. Strutur kimia ethylene sangat sederhana sekali yaitu terdiri dari dua atom karbon dan empat atom hydrogen.. Biosynthesis ethylene terjadi di dalam jaringan tanaman yaitu terjadinya perubahan dari asam amino methionine atas bantuan cahaya dan FMN menjadi methionel. Senyawa tersebut mengalami perubahan atas bantuan cahaya dan FMN menjadi ethylene, methyl disulphide, formic acid. Pada tanaman yang direbahkan/horizontal, maka terjadi pengumpulan auksin pada batang. Seperti diketahui konsentrasi auksin yang tinggi akan merangsang produksi ethylene. Mekanisme timbal balik secara teratur dengan adanya auksin yaitu konsentrasi auksin yang tinggi menyebabkan terbentuknya ethylene. Namun, kehadiran ethylene menyebabkan rendahnya konsentrasi auksin di dalam jaringan. Hubungan ethylene dengan konsentrasi auksin, ethylene menentukan pembentukan protein yang diperlukan dalam aktivitas pertumbuhan sedangkan rendahnya konsentrasi auksin, akan mendukung protein yang akan mengkatalisasi sintesis ethylene dan precursor. Interaksi Ethylen dengan auksin dan kinetin menurut Delvin (1975) menunjukkan bahwa pembentukan ethylene lebih Nampak pada jaringan merestematik tempat auksin dihasilkan. Disini IAA mengontrol pembentukan ethylene dalam pemanjangan batang kacang. Kehadiran kinetin dalam pertumbuhan tunas lateral dapat mengatasi hambatan yang diakibatkan oleh IAA. Penghambatan pertumbuhan tunas lateral oleh IAA dan ethylene dapat diatasi oleh kinetin. Hal nin berarti pengaruh kinetin terhadap ethylene yang menghambat pertumbuhan tunas lateral adalah sama dengan IAA. Juga dijelaskan bahwa adanya penghambatan transportasi auksin oleh endogenous ethylene yang menyebabkan terjadinya absisi pada daun. sebelum absisi terjadi, kapasitas tranportasi auksin menurun sedangkan sintesis ethylene meningkat.
Efek Dari Daun Dan Tunas Beberapa peneliti mengatakan bahwa pembentukan akar adventif pada batang atas adalah atas dasar gerakan ke arah bawah dari cairan tanaman dalam batang. Dalam hubungan dengan ini, ada postulat bahwa ada bahan pembentuk akar yang khas yang dibuat didalam daun yang bergerak ke arah bawah dari dasar batang, yang dapat memacu pembentukan akar. Pada tahun 1925 ditemukan bahwa tunas-tunas yang berkecambah, secara kuat akan merangsang perkembangan akar tepat di bawah tunas tersebut pada stek anggur. Diasumsikan bahwa bahan semacam hormon dibentuk dalam tunas yang sedang berkembang dan ditransportasikan melalui floem ke dasar stek, dimana bahan-bahan tersebut merangsang akar. Adanya faktor pembentukan akar yang spesifik pertama kali ditemukan pada saat mengekstrak daun tanaman Acalypa yang diaplikasikan ke jaringan tanaman tersebut, bahan-bahan tersebut menginduksi pembentukan akar. Hal ini selanjutnya dijelaskan bahwa daun dan tunas dapat menstimulasi pengakaran pada stek, mereka menamakan zat tersebut rhizokalin. 63
Selanjutnya beberapa penelitian pada tanaman kapri untuk melihat aktifitas pembentukan akar, diketahui bahwa akan sangat signifikan apabila sedikitnya satu tunas yang ditinggalkan pada stek tanaman kapri yang esensial untuk produksi akar pada stek tersebut, stek yang tidak mempunyai tunas lambat membentuk akar, walaupun diberi perlakuan dengan auksin. Hal ini menunjukkan bahwa ada faktor selain auksin yang diproduksi oleh tunas yang dapat merangsang pembentukan akar pada stek. Penelitian pada pengakaran stek pada tanaman konifera yang tidak meluruhkan daun, tampak bahwa terdapat beberapa faktor yang dapat merangsang perakaran selain auksin yang terlibat dalam inisiasi akar. Selanjutnya dijelaskan bahwa faktor ini kemungkinan berada dalam jumlah banyak pada tanaman muda. Hal ini dibuktikan pada penelitian dari beberapa stek yang diambil pada tanaman muda (fase juvenil). Penelitian selanjutnya yang mendukung, yaitu pembuangan tunas-tunas pada stek pada tanaman tertentu akan menghambat pembentukan akar. Pada beberapa tanaman jika cincin dikelupas dari kulit kayu tepat dibawah mata tunas, pembentukan akar akan berkurang, yang menunjukkan bahwa pengaruh faktor yang dapat merangsang pembentukan akar melalui floem dari satu tunas ke dasar stek. Fenomena yang telah dijelaskan diatas mendukung fakta bahwa daun merangsang pembentukan inisiasi akar. Hal ini disebabkan karena karbohidrat yang diproduksi oleh daun akan dikirim kebagian bawah untuk merangsang proses inisiasi akar. Daun dan tunas sangat kuat sebagai produsen auksin, pengaruhnya dapat dilihat secara langsung yaitu terjadi transport dari apex ke dasar, keadaan ini terjadi karena adanya pengaruh polaritas. Selanjutnya Hess (1962) dalam Hartman dan Kestler (1976), mengisolasi berbagai kofaktor (kofaktor adalah senyawa kimia non-protein yang diperlukan untuk aktivitas biologis protein. Protein ini biasanya enzim, dan kofaktor dapat dianggap "molekul pembantu" yang membantu dalam transformasi biokimia) pengakaran dari stek menggunakan beberapa teknik termasuk bioassay pada tanaman kacang hijau (stek muda dan stek dewasa), krisan (stek yang mudah berakar dan tidak mudah berakar), kembang sepatu (stek berbunga putih dan stek berbunga merah muda). Dari hasil penelitian tersebut ditemukan bahwa tanaman stek yang mudah berakar mengandung banyak co-faktor dibanding yang sulit berakar. Kemungkinan co-faktor tersebut adalah senyawa phenolic yaitu catecol yang bereaksi secara synergis dengan indolacetic acid dalam produksi akar pada kacang hijau. Catecol ini dalam aktifitas biologis mudah teroksidasi menjadi quinone, dan karena kacang hijau sendiri sumber fenol yang bagus, kemungkinan bahwa oksidasi dari suatu orthodihydroksiphenol merupakan suatu langkah awal menuju inisiasi akar. Berbagai senyawa juga telah ditemukan bereaksi secara sinergis dengan auksin. Satu diantaranya yang jelas adalah ABA. ABA memacu inisiasi akar melalui reaksi yang bersifat anatagonistik dengan giberelin, dimana ABA akan menghambat kerja giberrelin yang dalam konsentrasi tertentu diketahui dapat menghambat inisiasi akar. 64
Efek dari Inhibitor Stek dari tanaman berakar akan sulit berakar bahkan gagal berakar karena adanya zat penghambat perakaran yang terbentuk secara alami. Pada suatu studi pada jaringan Eucalyptus grandis, terdapat senyawa yang memblok pembentukan akar adventif. Terdapat tiga inhibitor pada Eucalyptus grandis yang adalah derivatif yang terbentuk secara alami dari 2,3-dioxabicyle decane. Inhibitor ini tidak terdapat pada jaringan juvenil dari tanaman tersebut yang mudah berakar. Selanjutnya penelitian pada tanaman dahlia yang mudah berakar dan sulit berakar ditemukan bahwa tanaman yang steknya sulit berakar, inhibitor terbentuk di akar dan bergerak ke arah atas, berakumulasi di pucuk, selanjutnya berdiferensiasi dalam pembentukan akar. Pada kultivar yang mudah berakar tingkat inhibitornya rendah. Asam absisat - yang dikenal sebagai inhibitor, diamati merangsang differesiasi pada waktu pembentukan akar pada stek tanaman begonia pada konsentrasi 20 ppm. Tanaman dapat dikelompokkan menjadi tiga kelompok berdasarkan hubungannya dengan senyawa yang terlibat dalam inisiasi akar adventif yaitu: 1. Tanaman yang jaringannya menghasilkan berbagai senyawa secara alami. 2. Tanaman yang memiliki beberapa co-faktor yang terbentuk secara alami dalam jumlah banyak tetapi auksin sedikit 3. Tanaman yang tidak memiliki aktifitas satu atau lebih dari ko-faktor internal tersebut, meskipun auksin alami dapat berada atau tidak berada dalam jumlah banyak. Tabel 3 Distrubusi hormon pada tanaman Bagian Tanaman Auksin Giberalin Sitokinin ABA Ujung batang Daun muda Batang mengalami pemanjangan Kuncup Lateral Daun tua Batang tua Akar Ujung Akar Sumber: Suastika (1987) yang sedang vvv vvv vv v v v v vv vvv vvv vv vv v v - vv vvv - - v - - - - - - - - - - Faktor-Faktor lain yang Mempengaruhi Regenerasi Tanaman dari Stek Perbedaan besar terjadi antar spesies dan kultivar dalam kemampuan perakaran dari stek yang diambil dari tanaman yang bersangkutan. Adalah sulit untuk diprediksi apakah stek dari klon-klon tertentu akan berakar dengan mudah atau sulit setelah distek 65
sangat sulit diprediksi, karena sangat tergantung dari genetik tanaman dan interaksinya dengan lingkungan, serta faktor endogenus dari tanaman.stock. ASPEK TEKNIS DARI SETEK Pemilihan Bahan Setek /stek Pemilihan bahan stek sangat tergantung dari kondisi fisiologis dari tanaman stock dan faktor fisiologi tanaman. Terdapat banyak bukti bahwa nutrisi dari tanaman stock memberikan pengaruh yang besar pada perkembangan perakaran dan tunas pada stek. Bahan stek dapat berupa: ➢ Stek batang ➢ Stek akar: ❖ Meristem primer : Bahan untuk stek diambil dari akar yang memanjang ke samping, khususnya dari meristem primer laten, yaitu sel-sel yang belum mencapai puncak differesiasi. ❖ Meristem sekunder : bahan untuk stek diambil dari sel dewasa yaitu bagian akar yang sudah menghasilkan anak-anak akar. ➢ Stek daun: ❖ Meristem primer : kelompok sel-sel yang merupakan turunan langsung dari sel-sel embryonik yang masih melakukan proses pembelahan dan terlibat langsung dalam proses metabolik. ❖ Meristem sekunder : kelompok sel-sel yang telah berdifferensiasi dan telah berfungsi pada beberapa sistem jaringan dewasa dan masih melakukan aktifitas merismatik. Contoh pada tanaman Begonia rex., primordia baru berasal dari meristem sekunder yang berasal dari sel dewasa yang berada pada dasar helai daung dan tangkai daun. ➢ Stek mata tunas ➢ Stek pucuk ➢ Stek umbi ❖ Umbi palsu ❖ Umbi lapis ❖ Umbi batang ❖ Umbi akar ❖ Akar batang A. Stek Batang Disebut stek batang karena bahan tanamnya diambil dari batang atau cabang pohon induk. Beberapa tanaman yang dapat diperbanyak dengan stek batang adalah 66
Gambar 2.17. Pohon yang sehat dapat digunakan untuk stek Gambar 2.18. Batang stek yang lurus yang harus diambil dari pohon induk, setiap bagian dengan 3-4 tunas 68
Gambar 2.19. Stek bertumit, perlu diratakan agar kalus cepat terbentuk Gambar 2.20. Stek bermartil, dengan mengikutkan sebagian batang tanaman induk Faktor penghambat pada pertumbuhan stek batang Kadang-kadang stek batang yang ditanam sulit membentuk akar sehingga perlu diberikan perlakuan khusus, misalnya; Mengerat batang Pengeratan dilakukan agar cabang yang distek memiliki kandungan karbohidrat dan auksin yang cukup untuk membentuk akar. Pengeratan dilakukan 1-2 bulan sebelum cabang dipotong. Caranya : buat keratan melingkar selebar 2-3 cm pada jarak 30-40 cm dari ujung cabang. Kulit cabang pada batang keratan dibuang, lalu dibiarkan selam 1-2 bulan sampai muncul tonjolon yang menandakan telah terjadi penumpukan karbohidrat dan auksin. Mengetiolasi batang Etiolasi dilakukan dengan membungkus bagian cabang stek dengan kertas, plastik atau kain. Warna pembungkus sebaiknya hitam agar cahaya matahari tidak dapat menembus kulit cabang yang dibungkus sehingga zat klorofil hilang dan zat auksin berkumpul. Perlakuan ini membuat cabang cepat menumbuhkan akar setelah ditanam. Menggunakan Hormon tumbuh 69
Secara alami tanaman menghasilkan hormon tumbuh sendiri yaitu auksin. Namun kadang-kadang tidak mencukupi untuk membantu pembentukan akar. Oleh karena itu perlu tambahan auksin dari luar untuk memacunya. Hormon auksin yang digunakan dapat berupa IBA, IAA, atau NAA. Hormon-hormon ini berbentuk kristal sehingga harus dilarutkan terlebih dahulu ke dalam larutan alkohol. jumlahnya Pemberiannya bisa dilakukan dengan cara : Celup cepat Bahan pelarut yang digunakan adalah alkohol 50% dengan konsentrasi tergantung jenis hormon yang digunakan. Jika hormon yang digunakan IAA, konsentrasinya 500-1000 ppm atau 500-1000 mg IAA/ liter pelarut. Jika yang digunakan NAA, konsentrasinya 5000 ppm atau 5 g/l pelarut. Sementara itu jika hormon yang digunakan IBA, konsentrasinya 5000-10000 ppm atau 5-10 g/l pelarut. Setelah itu batang-batang stek disatukan dan 2 cm bagian pangkalnya dicelupkan selama 5-10 detik kedalam larutan hormon. Perendaman Hormon auksin dilarutkan terlebih dahulu ke dalam alkohol 95%, lalu ditambahkan air sesuai konsentrasinya yang dibutuhkan. Umumnya untuk stek batang tanaman buah, konsentrasinya 100 ppm dengan lama perendaman 1-2 jam. Sementara itu, untuk tanaman yang gampang berakar seperti beberapa jenis tanaman hias, konsentrasinya hanya 5 ppm dengan lama perendaman 1- 5 menit. Bentuk Tepung (penepungan) Tepung dibuat dengan melarutkan hormon auksin kedalam alkohol 95% dengan konsentrasi 1000-5000 ppm, lalu dimasukkan 1 kg tepung bedak dan diaduk. Campuran tersebut dikering-anginkan sampai seluruh alkohol menguap. Jika tak ingin repot membuatnya, kita dapat menggunakan hormon tumbuh berbentuk tepung siap pakai seperti Rhizopon A yang mengandung NAA, Rhizopon B yang mengandung IAA, atau Rootone- F yang mengandung empat jenis tersebut. Cara pemberiannya : ➢ Bagian pangkal stek dibasahi dengan air, lalu disentuhkan kedalam tepung dan diketuk-ketuk agar tepung yang melekat tidak berlebihan. Cara lain, Rootone-F yang berbentuk tepung dicampur dulu sedikit dengan air sampai mencapai pasta, lalu pangkal stek dicelupkan kedalam pasta tersebut. Setelah diberi hormon tumbuh, stek batang siap disemai didalam kotak kayu, pot atau bedengan. Media semai yang digunakan dapat berupa pasir atau campuran pasir dan sekam padi dengan perbandingan 2:1 atau 3:1 atau campuran pasir, lumut, dan tanah gembur denga perbandingan 2:1:1. Ketebalan media pada wadah semai dan bedengan 25-30 cm dan dilapisi pasir setebal 5 cm. Stek ditanam dengan menancapkan bagian pangkal stek kedalam media sampai hanya tersisa dua mata tunas di permukaan tanah. Posisi stek sebaiknya agak miring sekitar 45%. Jika stek masih memiliki daun, posisinya daunnya harus berada diatas permukaan media. Setelah itu media disiram kembali. ➢ 70
➢ Untuk menjaga kelembaban agar tetap tinggi, permukaan media persemaian ditutup dengan plastik transparan. Jika penyemaian dilakukan dikotak akyu atau pot, wadah cukup ditutup dengan lembar plastik bening. Sementara itu, jika penyemaian dilakukan di bedengan, buatkan sungkup dari plastik transparan yang menutupi seluruh permukaan bedengan, lalu bedengan disiram dengan air setiap hari. Biasanya stek batang mulai berakar setelah 2-3 bulan disemai. Batang stek yang tidak tumbuh sebaiknya dibuang. Setelah akarnya terlihat berwarna coklat dan cukup banyak, stek dapat dipindah ke polibag untuk dibesarkan. 71
a) ZPT c) : wadah untuk penyimpanan Gambar 2.22. Penggunaan zat pengatur tumbuh untuk merangsang pertumbuhan akar 73
Gambar 2.23. Wadah untuk penyemaian stek Gambar 2.24. Wadah untuk penyemaian stek yang sederhana Gambar 2.25. Penggunaan barang bekas untuk penyemaian stek 74
Gambar 2.26. Stek batang (Agung, 2007) Gambar 2.27. Stek batang pada aglaonema 75
Gambar 2.28. Teknis stek batang pada aglaonema (Zainal, 2007) Gambar 2.29. Teknis pelaksanaan stek batang pada Adenium (Syah, 2005) 76
Gambar 2.30. Stek batang pada Anthurium Gambar 2.31. Pepaya hasil perbanyakan dengan stek Perbanyakan pepaya umumnya dari biji, namun dapat juga diperbanyak dengan stek batang. Tujuannya agar bibit mewarisi sifat-sifat unggul induk. Prinsipnya cukup sederhana yaitu pohon induk menumbuhkan sebanyak mungkin cabang untuk disetek. Mula-mula tetap calon pohon induk yang buahnya berkualitas super dan tahan penyakit. Pertumbuhan vegetatif pohon itu dirangsang dengan membuang semua bunga dan buah, lalu pangkas pucuk batang agar cabang lateral tumbuh. Biasanya yang tumbuh hanya 2- 4 cabang. Namun, dengan menyemprotkan suatu "ramuan", mata tunas yang "tidur"mendadak "bangun". Ramuan itu mengandung zat sitokinin dan GA2 yang merangsang cabang-cabang muda trubus. 77
Setiap tahun satu pohon menghasilkan sekitar 100 cabang sehat. Cabang-cabang dibiarkan hingga cukup keras, cabang dipangkas sepanjang 20 - 30 cm. Daun-daun tetap dipertahankan. Pangkal cabang segera diolesi campuran homon perangsang akar yang mengandung zat auksin (IBA, NAA) dan fungisida. Stek kemudian ditanam dalam media pasir steril yang diberi larutan hara. Untuk menjaga kesegaran, dipasang yang menyemprotkan kabut air secara berkala. Dalam beberapa minggu stek-stek itu telah berakar. Sebelum ditanam bibit diaklimatisasikan di luar sungkup plastik. Kelemahan selang air ialah stek perakaran relatif dangkal. Bila ditanam ia mudah tumbang tertiup angin kencang. Untuk mengatasi, tanaman harus ditanam lebih dalam. Jadi jangan heran bila buahnya penuh bergelantungan dari pangkal batang dan menempel di tanah hingga ke pucuk pohon. Gambar 2.32. Stek batang pada Pachypodium (tanaman yang berbatang lunak) (Raharjo, 1999). Gambar 2.33. Teknis stek batang pada tanaman ara 78
Keterangan: 1. Pilih cabang tanaman berwarna, cokelat sampai cokelat kehitaman untuk distek 2. Potong batang, 10 - 15 cm dari pucuk 3. Rendam bagian bawah (calon akar) dengan zat perangsang akar selama 5 - 10 menit 4. Semprot dengan fungisida sistemik 5. Tanam dengan media sekam bakar steril murni, tanpa campuran 6. Tancapkan batang tegak lurus 7. Sungkup segera setelah ditancapkan, mulut plastik sungkup diikat ke bawah 8. Siram, pagi hari ke tanaman dan lantai, pada siang hari ke lantai 9. Cek setelah 10 hari, lihat tunas tanpa membuka sungkup 10. Rawat 10 - 12 minggu, baru siap ditanam Gambar 2.34. Perbanyakan Ara dengan stek (Rosy, 2006) 79
Gambar 2.35. Perbanyakan dengan stek batang pada Nephentes sp (Hanni, 2006) Gambar 2.36. Perbanyakan dengan stek batang pada daun jahit (Maudy, 1990) B.. Stek Akar Untuk perbanyakan dengan akar, potongan akar sebaiknya diambil dari tanaman stock yang masih muda, dan dari tumbuhan yang sehat. Hal ini disebabkan pada tanaman yang masih muda, masih pada fase juvenil adalah tanaman tersebut masih dalam proses pertumbuhan aktif, regenerasi dari sel masih tinggi sehingga regenerasi dari sel akar baru juga akan tinggi. 80
Regenerasi tanaman baru dari stek akar sangat tergantung dari tanaman, juga dengan faktor tunas, akar dapat memunculkan tunas, tunas dapat muncul di dinding atau di bekas potongannya yang telah muncul kalus. lingkungan. Walaupun tidak memiliki mata Menurut Hartman dan Kestler (1983), akar yang terluka akan merangsang terbentuknya kalus, pada waktu yang hampir bersamaan juga merangsang terbentuknya akar adventif, dan selanjutnya baru muncul pucuk pertama. Pada beberapa kasus akar adventif berkembang tidak berasal dari akar yang mengalami pelukaan tetapi dari bagian akar yang lain. Tunas baru juga akan berkembang dari akar yang lain, yang telah ada sejak akar tersebut di-stek. Pada stek akar sangat perlu diperhatikan polaritas yang benar waktu penanaman, untuk menghindari penanaman terbalik. Ujung proximal (paling dekat dengan mahkota tanaman), dapat dibuat dengan potongan tegak lurus dan ujung distal (yang jauh dari mahkota) dengan potongan miring. Ujung proximal dari stek akar harus selalu berada di atas. Pada waktu penanaman, tancapkan stek secara vertikal sehingga bagian atas berada pada level permukaan tanah (secara horizontal). Tanaman yang dapat diperbanyak dengan cara ini cukup banyak, misalnya tanaman yang berbentuk semak, tanaman yang merambat, tanaman tahunan, sampai tanaman dataran tinggi. Misalnya, cemara, jambu biji, jeruk keprok, sukun dsb. Bahan stek akar harus berupa akar lateral, yaitu akar yang tumbuh ke arah samping sejajar dengan permukaan tanah. Sebaiknya pilih akar muda berukuran 1 cm atau sebesar pensil karena lebih cepat memunculkan akar dibandingkan dengan akar tua. Untuk tanaman besar berbentuk semak atau pohon, pengambilan akar dilakukan dengan melubangi tanah sampai ke akar-akarnya kelihatan. Kemudian ambil akar yang diperlukan, lalu lubang ditutup kembali dengan tanah. Sementara itu, untuk tanaman kecil, pengambilan akar dilakukan dengan mencabut tanaman tersebut, lalu memotong akar yang diperlukan. Setelah itu, tanaman ditanam kembali. Untuk mendapatkan bahan stek akar dalam jumlah banyak adalah sulit dan memerlukan biaya yang besar, sehingga pada beberapa tanaman dapat direncanakan dan dilakukan ketika masih di pembibitan; yaitu ketika tanaman digali dapat dilakukan trimming (memotong akar) pada proses pemindahan tanaman. Teknik stek akar dilakukan untuk memperoleh bibit dalam jumlah yang besar karena bahan yang digunakan dapat diperoleh dalam jumlah banyak, pelaksanaannya cukup mudah dan biayanya relatif murah. Pohon induk sebaiknya berumur sekitar 20 tahun biasanya lebih berhasil dibanding pohon yang muda. Pengambilan akar dilakukan dengan menggali akar kemudian dipotong sepanjang 0,5-1 m.. Apabila pengambilan bahan stek dilakukan di tempat yang jauh dari lokasi persemaian maka stek dijaga supaya tidak kering, yaitu dibungkus menggunakan pelepah pisang atau karung goni yang basah. Pada perbanyakan tanaman secara vegetatif, jarak antara tempat mengerjakan okulasi dan sumber pohon induk biasanya berjauhan, kadang bisa antar pulau. Selain itu, jumlah pohon yang akan diokulasi sangat banyak sehingga okulasi sulit diselesaikan dalam waktu satu hari sehingga entres harus dikemas kembali dan disimpan karena tertundanya waktu okulasi (Sukarmin, 2011). 81
Menurut Wahyudi et al., (2017) masa penyimpanan entres 0-3 hari tidak mempengaruhi persentase tumbuh tunas bibit jeruk. Hal ini disebabkan karena penggunaan pembungkus (pelepah pisang), yang mampu menyimpan mata entres dan mampu menjaga kadar air sehingga kualitas mata entres dapat terjaga dan tidak menyebabkan kemunduran selama penyimpanan. Pada tanaman sukun sebagai contoh, akar sukun dipotong-potong menjadi stek akar sepanjang 10 - 15 cm dengan diameter rata-rata 1-2 cm. Bagian stek yang lebih muda (ujung akar) ditandai dengan dipotong miring. Hal ini akan memudahkan dalam penanaman stek supaya tidak terbalik. Posisi stek ditanam tegak dengan kedalaman penanaman sekitar setengah bagian dari panjang stek. Setelah ditanam segera dilakukan penyiraman kemudian bedengan ditutup dengan sungkup plastik. Setelah satu bulan dalam bedengan, stek akar mulai menumbuhkan tunas. Pada bulan ketiga akar sudah tumbuh namun daunnya masih berwarna kekuningan. Pada saat ini sungkup plastik sudah dapat dibuka secara bertahap agar bibit tidak layu dan 1-2 minggu kemudian sungkup sudah dapat dibuka sepenuhnya (lihat gambar dibawah). Caranya: ➢ Akar yang telah diambil dipotong-potong sepanjang 5-10 cm, menggunakan silet atau pisau tajam agar menghasilkan potongan yang bersih dan rata. ➢ Bagian akar yang dekat dengan pangkal batang dipotong secara serong, sementara itu bagian ujungnya dipotong datar, lalu taburi dengan fungisida untuk mencegah serangan jamur. ➢ Stek akar disemai dalam media pasir setebal 7-10cm. ➢ Posisinya dapat tegak atau dibaringkan. Jika disemai tegak, bagian pangkal dibenamkan kedalam media sedalam 3-5 cm atau setengah dari panjang stek, dengan jarak 4-5 cm. ➢ Apabila disemai dengan cara dibaringkan, stek cukup disusun dalam barisan berjarak 5 cm, lalu ditutupi pasir setebal 2-3 cm. ➢ Media semai harus selalu lembab agar stek menghasilkan tuunas akar yang banyak. Oleh karena itu, media disiram 2 kali sehari, pagi dan sore. ➢ Pesemaian harus disungkup plastik agar kelembabannya tetap tinggi sehingga pertumbuhan akar dan tunas menjadi lebih cepat. ➢ Stek dapat dipindahkan ke polibag pembesaran jika akarnya telah tumbuh banyak. 82
Gambar 2.37. Tanaman stok untuk stek akar Gambar 2.38. Teknik perbanyakan tanaman dengan stek akar C. Stek Daun Stek daun biasanya dilakukan untuk memperbanyak tanaman hias yang berbatang sukulen, berdaun tebal, dan memiliki kandungan air yang tinggi. Contohnya Begonia, sansivera, violces, wijaya kesuma, Zamia curcas dan cocor bebek. Bahan stek dapat berupa daun utuh, atau hanya berupa potongan-potongan daun, tergantung pada jenis tanamannya. 83
Gambar 2.39. Stek daun pada Begonia sp. dan Sansiviera sp. 84
Gambar 2.40. Stek daun pada vanili (Sardi, 2004) Gambar 2.41. Tanaman induk (Begonia sp.) yang digunakan untuk stek daun Daun untuk stek sebaiknya yang berwarna hijau segar dan berumur cukup tua. Daun seperti ini memiliki karbohidrat dan nitrogen cukup tinggi sehingga cukup untuk menumbuhkan akar. Untuk Violces (Saintpaulia sp.) dan Zamio curcas digunakan daun lengkap (helai daun dan petiole). Untuk Violces dapat juga dengan helai daun saja. 85
Untuk begonia (Begonia sp.) digunakan daun lengkap atau hanya berupa irisan-irisn daun. Untuk begonia karena daun tebal dan berdaging, stek daun dilakukan di tulang daun yang besar, yang dipotong di bawah permukaan daun yang telah dewasa, yang kemudian pada media penanaman diletakkan mendatar diatas media yang lembab. Akar akan terbentuk masing-masing di potongan tulang daun, helai daun aslinya akan membusuk. Sementara itu untuk lidah mertua (Sansivieria sp.) yang digunakan adalah potongan- potongan daun sepanjang 10 cm. Daun untuk stek lidah mertua sebaiknya yang berwarna hijau segar dan berumur cukup tua. Potongan daun ini kemudian dimasukkan ke media; setelah akar tumbuh daun asli ini akan hancur. Namun perbanyakan lidah mertua yang dari variegata dengan perbanyakan daun tidak dapat menghasilkan tanaman yang serupa dengan aslinya (to-true-type), oleh karena itu cara yang tepat adalah dengan pemisahan anakan. Gambar 2.42. Tanaman cocor bebek (Bryophylum) 86
Gambar 2.43. African Violet Gambar 2.44. Begonia Gambar 2.45. Perbanyakan tanaman dengan stek tunas daun (tulang daun) pada Sanchezia nobilis (Emma, 2006) 87
Gambar 2.46. Fokus dari Gambar 2.45. Gambar 2.47. Perbanyakan tanaman dengan stek daun (irisan daun) pada Begonia sp. (Trubus, 1997) Caranya: ➢ Sebelum disemai, stek diberi hormon tumbuh untuk mempercepat pertumbuhan akar. ➢ Kemudian disemai kedalam media bersama campuran tanah dari kebun, kompos, ➢ pupuk kandang, dan pasir dengan perbandingan 1:2:2:2, lalu disiram secukupnya. Tutup pesemaian dengan plastik transparan untuk menjaga kelembabanya tetap tinggi. ➢ Biasanya dalam waktu 2-3 minggu stek sudah memunculkan tunas. ➢ Setelah perakarannya cukup banyak, stek dipindahkan ke dalam polibag. 88
Gambar 2.48. Stek daun pada Zamiocurcas. Gambar 2.49. Stek daun pada violces (Sumarni, 1988) 89
D. Stek Mata Tunas Stek mata juga sering disebut stek mata tunas, ini sebenarnya merupakan stek batang, hanya saja batang yang digunakan hanya mempunyai satu mata. Dengan demikian ukuran steknya lebih pendek jika dibandingkan dengan stek batang. Stek mata tunas biasanya dilakukan untuk memperbanyak nanas, anggur, dan tanaman hias seperti diffenbachia serta aglaonema . Gambar 2.50. Stek mata tunas pada Keiki phalaenopsis (Angkasa, 2000) 90
Gambar 2.51. Perbanyakan nanas lewat stek mata tunas tidur (Tirtawinata, 2002) Gambar 2.52. Fokus dari Gambar 2.51. 91
Gambar 2.54. Stek mata tunas pada Aglaonema sp. (Raharjo, 1999) E. Stek Pucuk Stek pucuk diambil dari dari pucuk-pucuk batang yang masih muda dan masih dalam masa tumbuh. Banyak jenis tanaman yang dapat diperbanyak dengan stek pucuk. Untuk tanaman hias misalnya adalah soka, kembang sepatu, dan gardenia. Pada tanaman perkebunan misalnya tebu, stevia, gaharu dan teh. Untuk tanaman pangan adalah ubi jalar. Stek ubi jalar dapat langsung ditanam di lapangan, sedangkan yang lainnya perlu disemaikan terlebih dahulu. 93
ditanam 3-4 bulan kemudian saat tingginya minimal 20 cm dan cukup rimbun dengan 4-5 cabang (Fendy, 2004). Gambar 2.58. Perbanyakan tanaman dengan stek pucuk pada Bromelia sp.(Syah, 2003) Keterangan: 1. Ambil sebuah bambu berdiamater 1 cm sepanjang 20-30 cm. Runcingkan ujungnya. Siapkan bromelia remaja berumur 5-7 bulan dan sehat. 2. Tancapkan bambu tepat di tengah pucuk tanaman. Tusuk hingga sedalam 4-5 cm di titik tumbuh. Bila tidak tepat, pucuk tetap tumbuh tapi daun rusak karena bolong. Bambu bisa dicabut atau dibiarkan. 3. Bila penusukan berhasil, warna daun kian cerah. Sebulan kemudian terbentuk 1-2 anakan. Biarkan hingga pucuk daun terbuka penuh. Bibit yang pucuknya belum membuka berdaya tahan rendah sehingga gampang mati. 4. Ambil pisau yang tajam dan bersih. Iris anakan di pangkal batang 5. Biarkan 1 hari agar pangkal batang mengering. Bila masih basah bibit gampang rusak. 6. Siapkan pot 5 cm. Isi dengan media campuran sekam dan serutan kayu dengan perbandingan seimbang, atau cincangan batang pakis. Tanam dengan menancapkan di media 7. Letakkan bibit di bawah naungan jaring plastik 55%. Perawatan cukup dengan menyiram setiap hari Untuk menyetek tanaman hias, biasanya caranya sbb: ➢ Pilih pucuk yang rajin berbunga. ➢ Panjang stek cukup 10-15 cm dan dipotong tepat dibawah pangkal daun (karena di tempat ini banyak tersimpan bahan makanan). ➢ Dalam memilih cabang diusahakan jangan terlalu besar, cukup 0,5 cm. ➢ Cabang yang telah dipotong daunnya disisakan hanya sekitar 2 helai daun (pembuangan daun bertujuan untuk mengurangi penguapan, sedangkan daun yang 95
➢ disisakan bertujuan untuk menyediakan fotosintat untuk pertumbuhan akar dan tunas baru). Stek pucuk sebelum ditanam dicelupkan dahulu di zat perangsang tumbuh. ➢ Media yang digunakan sama dengan media untuk stek daun. ➢ Untuk tanaman perkebunan biasanya agak lain caranya, karena bibit yang diperlukan dalam jumlah yang banyak. Untuk tempat penyetekan memerlukan tempat yang luas, biasanya di bedengan atau kantong plastik. Tempat harus diberi naungan yang cukup Perbanyakan tanaman, setek dengan menggunakan oasis, contohnya pada jambu air Gambar 2.59.. Penggunaan oasis pada jambu biji. Jambu air dapat distek melalui stek batang, ranting dan stek pucuk. Stek batang atau ranting cukup ditanam pada media campuran tanah dan pupuk kandang/arang sekam. Lalu tempatkan pada tempat yang teduh. Stek pucuk harus ditempatkan dalam sungkup dengan media tanam arang sekam. Stek pucuk juga dapat menggunakan media dari floral foam oasis Setek batang/ranting lebih mudah dilakukan tapi tingkat kerberhasilan lebih rendah dan pembentukan akarnya lebih lama dibanding stek pucuk. Akar yang terbentuk pada stek pucuk lebih bagus dibandingkan dengan stek batang/ranting. Berikut ini cara setek pucuk jambu air yang menggunakan sungkup dengan media floral foam oasis yaitu: Pilih pucuk yang daunnya sudah memiliki warna hijau tua dan dorman dengan ruas ranting masih berwarna hijau. Pucuk jambu air pada fase ini merupakan bahan setek yang paling ideal, relatif tahan layu dan pembentukan akarnya cepat. Hal ini karena cadangan makanan pada pucuk sudah cukup banyak untuk menunjang proses regenerasi sel. Sementara daya regenerasinya juga masih tinggi karena jaringan ruasnya belum tua. Dengan hindarkan menggunakan pucuk dengan daun yang mulai menguning karena akan rontok selama dalam proses penyetakan. 96
Potong batang/ranting 2-3 ruas. Pasang daun pucuk yang dijadikan sebagai bahan setek cukup 2-3 ruas saja. Hal ini dilakukan untuk menyeimbangkan kemampuan daya serap air oleh pangkal setek dengan kebutuhan air pada bahan setek. Bila daya serap air tidak mencukupi akan menyebabkan setek layu dan gagal menumbuhkan akar. Kurangi ukuran dengan membuang 2/3 bagian daun, pemotongan daun ini bertujuan supaya kebutuhan air dengan kemampuan daya serap air oleh setek seimbang. Daun jangan dipotong habis akan menghilangkan kemampuan fotosintesisi dari stek yang akan berakibat pada lambatnya pembentukan akar bahkan setek dapat busuk karena kehabisan energi cadangan makanan. Perlakuan Oasis Rendam oasis dalam air yang sudah diberikan Vitamin B1 oasis cukup diletakkan diatas permukaan air dan biarkan air meresap dengan sendirinya sampai seluruh bagian oasis terbenam. Jangan menekan oasis untuk mempercepat terbenam dalam air karena akan mengakibatkan oasis tidak basah secara sempurna. Potong oasis sesuai dengan ukuran diameter setek. • Oasis dipotong-potong dengan ukuran yang disesuaikan dengan besarnya setek. • Tancapkan setek sedalam 3/4 media. • Setek ditancapkan ke potongan oasis sedalam 2/3 panjang potongan oasis. • Selanjutnya susun stek dalam tray. • Setek disusun dalam tray dengan posisi daun yang tidak saling tumpang tindih untuk menghindarkan kebusukan. Kemudian letakkan setek dalam propagation chamber. • Pada stek dalam tray diletakkan dalam propagation chamber, proses pembentukan akar sampai setek siap ditrasplanting berkisar 3-6 minggu. Perbanyakan dengan Pisah Anakan. Teknik memisahkan anakan tanaman sangat mudah, anakan yang cukup besar dan tumbuh di sekitar induknya dengan mudah bisa dipotong dan ditanam di media yang baru. Beberapa tanaman, seperti calathea, spathyphillum, dan aglaonema tumbuh dan merumpun dan beranak. Tanaman tersebut biasanya tidak berbatang dan jarang menghasilkan biji. Gambar 2.60. Perbanyakan tanaman dengan stek tunas (pisah rumpun) pada Begonia sp. 97
Gambar 2.61. Pisah anakan yang masih muda dari tanaman periuk monyet (Nephenthes sp.) (Hanni, 2006) Hasil penelitian Wahyudi et al. (2018), menunjukkan bahwa untuk keberhasilan setek lada perdu dapat dilakukan dengan pemberian zat pengatur sintetis dan alami Zat pengatur tumbuh alami dari air kelapa dapat meningkatkan pertumbuhan setek tanaman lada perdu. Gambar 2.62. Perbanyakan lada (Peper ningrum) dengan stek pucuk Gambar 2.63. Perbanyakan Nolina dengan stek pucuk (Fendy dan Utami, 1999) 98
F. Stek Umbi Di alam semesta ini terdapat banyak sekali tanaman umbi-umbian. Dari yang banyak tersebut, hanya separuh dari tanaman tersebut yang berumbi sebenarnya atau sering disebut bulb. Sedang yang lainnya dapat digolongkan kedalam umbi palsu (corm), umbi batang (tubers), umbi akar (tuberous roots), dan akar batang (rhizome). Terdapat perbedaan dalam struktur, bentuk dan kebiasaan hidup dari jenis umbi- umbian ini, tetapi semuanya mempunyai kesamaan yaitu mengumpulkan makanan dari dalam tanah selama proses hidupnya, kemudian menyimpannya. Semua jenis yang telah disebutkan dapat diperbanyak dengan stek umbi, tetapi caranya berbeda-beda. ➢ Umbi Lapis (bulb) Umbi ini merupakan modifikasi dari pucuk tanaman yang mengalami modifikasi karena termampatkan, sehingga menjadi batang yang pendek dan pipih berbentuk seperti cawan yang dikelilingi dengan sisik (scales). Sisik-sisik ini sebenarnya merupakan semacam daun yang berdaging. Sedang tunas terdapat diantara lembaran sisik di bagian pusat ujung pertumbuhannya. Beberapa tanaman umbi lapis yaitu bakung, bawang bombay, bawang putih, lily dan tulip Cara perkembangbiakan : dengan memisahkan sisik-sisik tersebut. Sisik harus diambil dengan hati-hati, usahakan tetap dalam keadaan utuh dan sebagian akarnya harus diikutkan. Jika waktu pengambilan sebagian sisiknya hilang dan akarnya ada yang copot atau tertinggal, maka tanaman tidak dapat hidup. Untuk bawang bombay, bawang putih dan bakung biasanya ditanam langsung di kebun tanpa melalui pesemaian; namun untuk Lily, kadang-kadang perlu disemaikan terlebih dahulu. Gambar 2.64. Stek pucuk pada corm dan bulbs 99
Gambar 2.65. Perbanyakan tanaman dengan umbi lapis ➢ Umbi palsu ( corm) Umbi palsu sering disebut dengan bulb palsu, ini merupakan batang yang terletak dibawah tanah yang mempunyai mata dan ruas-ruas. Umbi jenis ini tidak mempunyai lembaran-lembaran daun yang berdaging seperti halnya bulb, tetapi hanya mempunyai beberapa daun rudimenter. Tunas-tunas corm akan keluar dari corm yang telah masak dan akan berkembang menjadi tunas-tunas pembangun. Corm baru akan tumbuh diatas corm tua dan diantara corm ini kadang-kadang terdapat corm kecil (cormel). Cara perkembangbiakan tanaman yang berumbi dengan cara memisahkan corm- corm yang baru atau dapat juga dengan cormelnya. Hasil pemisahan ini bisa langsung ditanam. Contoh tanaman yang dikembangbiakan dengan cara ini adalah gladiol, bunga cokelat (potlochess) dan krokus. Gambar 2.66 100
Gambar 2.67. Cacah umbi Keterangan Cacah umbi A.B.C. Potong pangkal umbi, lalu cacah setiap sisi umbi. Sisi umbi yang telah terpotong dibagi lagi menjadi 2. Total jenderal terdapat potongan umbi Simpan 9 potongan umbi di baskom kecil yang bagian bawahnya berlubang. Taburkan kapur sirih secukupnya untuk mentup luka umbi. Agar merata, goyangkan baskom sehingga semua permukaan umbi tertutup kapur sirih. Biarkan potongan umbi di baskom selama 1 malam agar luka mengering sempurna. Luka yang belum kering menyebabkan umbi mudah membusuk E.F. Siapkan pot berdiameter 17 cm. Masukkan media sekam dan tanah dengan komposisi 2 : 1 setinggi 2/3 pot. Letakkan potongan umbi di bagian atas di tengah pot. Lalu letakkan potongan umbi lain di sekelilingnya. Timbun potongan umbi dengan media setebal 1 - 2 cm. Letakkan tanaman di tempat ternaungi dan biarkan selama 24 jam setelah itu siram 2 hari sekali. Lima belas hari setelah tanam, pupuk dengan kandungan N tinggi setiap 7 hari. Bisa juga digunakan pupuk kandang cair setiap 10 hari sekali. Tanaman siap dipindah ke pot tunggal setelah berumur 1 bulan (Cahyana, 2007) D. G. 101
Gambar 2.68. Cacah Umbi. Perbanyakan tanaman dengan stek umbi pada Amarylis (Enny, 1995) Gambar 2.69. Perbanyakan tanaman dengan umbi lapis ➢ Umbi batang (tuber) Umbi batang adalah batang yang mempunyai daging tebal yang terdapat didalam tanah dan mengandung beberapa mata/ tunas. Contoh tanaman yang mempunyai umbi batang adalah kentang, talas, suweg, dsb. Khusus kentang, susunan letak tunasnya berbentuk melingkar menyurapai spiral, sedang tanaman yang lainnya susunannya tidak teratur. Perkembangbiakan jenis tanaman ini dengan menanam tuber (umbi batangnya) tunas-tunasnya yaitu dengan dalam bentuk utuh atau dengan pemisahan 102
memotong-motong tuber. Penanaman dapat dilakukan secara langsung tanpa memerlukan adanya pesemaian. Gambar 2.71. Perbanyakan tanaman dengan umbi batang 103
Gambar 2.73. Teknis perbanyakan tanaman dengan stek umbi akar pada Yuka (Fendy dan Utami, 1999) 105
➢ Akar Batang (rhizome) Sering juga disebut rootstock yaitu batang yang terletak dibawah tanah yang tumbuh horizontal. Rhizoma ini dapat berdaging tebal seperti pada bunga kana, ganyong, garut, jahe, juga alang-alang (berbentuk kecil dengan ruas-ruas memanjang). Perkembangbiakan adalah dengan menanam potongan rhizoma yang mengandung tunas vegetatif dan langsung ditanam di media, atau dapat langsung ditanam di lapangan. Gambar 2.74. Perbanyakan tanaman dengan akar batang (Rini, 1991) 106
a. Tunas yang siap untuk ditanam b. Panjang tunas minimal 1 cm Gambar 2.76. Perbanyakan tanaman dengan rimpang (akar batang, rhizoma) pada Oncidium (Golden shower) (Nafsiah, 2003) Gambar 2.77. Perbanyakan tanaman dengan akar batang (rhizoma), atau dengan pemisahan anakan pada sedap malam (Rini, 1991) 108
DAFTAR PUSTAKA Adiwijaya, D. 2000. Durian Sistem Dua Batang Bawah. Trubus 370. Agung, 2007. Kunci Sukses Memperbanyak Tanaman. PT Agromedia Pustaka. Jakarta. 78 hal Angkasa, S. 2000. Jambu Taiwan Asli Demak Lebih Cepat Dengan Stek. Trubus 366. Angkasa, S. 2000. Perbanyak Keiki Phalaenopsis. Trubus 399. Angkasa, S. 2003. 7 Langkah Perbanyak Bromelia. Trubus 404. Angkasa, S. 2003. Ada Bianglala Di Kamboja Cina. Trubus 405. Apriyanti, R. N. 2006. Anthurium Bonggolnya Dipenggal Saja. Trubus 444. Apriyanti, R. N. 2006. Sekali Runduk 4 Anakan Didapat. Trubus 438. Apriyanti, R. N. 2007. Demi Anakan Penggal Leher Ratu. Trubus 448. Barney , 1987. Bundel Untuk Tanaman Hias. Agustus 1987. Budi, S. dan L. Subjanto. 1989. Mencangkok Untuk Bahan Bonsai. Trubus 240. Cahyana, D. 2006. Gandakan Keladi Dengan Mutilasi. Trubus 439. Cahyana, D. 2007. Lidah Jin - Kecil Itu Indah. Trubus 450. Danu, I. Z. Siregar, W. Cahyo dan A. Subiakto. 2010. Pengaruh Umur Sumber Bahan Stek terhadap Keberhasilan Stek Pucuk Meranti Tembaga (Miq.). Jurnal Penelitian Hutan Tanaman Vol.7 (3) : 131- 139. Danu, J. S. Dede dan N. Siregar. 2018. Pengaruh Bahan Setek dan Zat Pengatur Tumbuh Terhadap Pertumbuhan Setek Trema (Trema Orientalis L). Jurnal PerbenihanTanaman Hutan. Vol.6 (1 ): 31-40 Delvin, M. R. 1975. Plant Physiology and Development. Publisher: Van Nostrand; 3rd edition. Djaafar, R. 1990. Trik Memperbanyak Kaktus Kristata. Trubus 246 - Mei 1990. Doran, J.C., A. Rimbawanto, B.V. Gunn dan A. Nirsatmanto. 1998. Breeding Plant for Melaleuca cajuputi subsp. cajuputi in Indonesia. CSIRO Forestry and Forest Products. Technical Reprot No. 98/178. Duryatmo, S. 2004. Vanili - Selembar Daun Jadi Generasi Baru. Trubus 417. Duryatmo, S. dan N. S. Budiana. Teknologi Stumping - Biaya Satu Bibit Cuma Rp 80. Trubus 370. 109
Dwijoseputro. 2001. Pengantar Fisiologi Tumbuhan. PT. Gramedia Pustaka Utama. Jakarta. Edy, Y. 1988. Memisahkan Kaktus Dari Batang Bawahnya. Trubus 223. Edy,Y. 1990. Anakan Anggrek Bulan Dari Tangkai Bunga. Trubus 246. Ekowati, M. 1990. Cara Baru Memperbanyak Daun Jahit. Trubus 244. Emma. 2006. Perbanyakan Tanaman Dengan Stek Tunas Daun (Tukang Daun) Pada Sanchezia Nobilis. Trubus Mei. Enny, 1995. Perbanyakan Tanaman Dengan Stek Umbi Pada Amarylis. Trubus Agustus Fendy R.P. 2004. Generasi Baru dari Pucuk Tunas. Trubus 419. Fendy R.P. dan K.P. Utami 1999. Memperbanyak Yuka dari Umbi. Trubus 358. Fortainer, E.J. and H. Jonker. 1976. Juvenility and Maturation of Plants as Influenced by their Ontogenetical and Physiological Ageing.Acta Hort. 56: 37-44 Gardner, P dan Mitchel. 1991. Fisiologi Tanaman Budidaya. Universitas Indonesia. Jakarta Greenwood, M.S. and K.W. Hutchison. 1992. Maturation as a Development Process. In: Ahuja, M.R. and Libby,W.J. (eds.) Clonal Forestry. Springer-Verlag, Berlin : 14-33 Hanni. 2006 . Perbanyakan Tanaman Dengan Stek Batang Pada Nephentes sp. Trubus 443 Hartman H. T and D. E. Kestler 1976. Plant Propagation. Principle and Practices. 3nd ed. Prentice Hall of India Private. Ltd., New delhi. Hartman, H. T and D. E. Kester. 1983. Plant Propagation Principle and Practise. Prentice Hall. Internasional Inc. Engelwoods Clifs. New Jersy. 253-341. --------------- and F. T. Davies, Jr. 1990. Plant Propagation Principles and Practice. Fifth Edition. Prentice - Hall International, Inc. London. -------------------- H.T., D.E. Kester, F.T. Davies and R.L. Geneve. 2002. Plant Propagation Principles and Practices. Sevent edition. Prentice Hall, Upper Saddle River, New Jersey. 880 pp Hendromono. 1996. Stek Batang dari Ranting Pohon dan Anakan Permudaan Alam. Buletin Penelitian Hutan No. 602. Pusat Penelitian dan Pengembangan Hutan dan Konservasi Alam. Bogor. Heru, P. 1989. Cara Baru Mencangkok Jambu Biji. Trubus 240. Huges K.W. 1981. Ornamental Species. In: Cloning Agriculture Plants via In Vitro Techniques. BV Conger (Ed.). CRC, Boca Raton, Florida, PP: 5- 50. 110
Iwan. 2000. Perbanyakan Tanaman Umbi Batang Pada Kentang Dengan Pemotongan Umbi Bibit. Trubus. Juwono P. 1984. Bertanam Mangga Okulasi. Trubus 170. Karyono dan Evy. 2007. Perbanyakan Keladi Dengan Stek Mata Tunas dari Umbi. Trubus. Leksono, B., 2003. Konservasi Ex-situ Pulai dari Beberapa Ekotipe Hutan. Laporan Litbang Pemuliaan Pulai (spp.). Proyek Penelitian dan Pengembangan Bioteknologi dan Pemuliaan Tanaman Hutan. Yogyakarta. Tidak diterbitkan. Leppe D. dan W.T.M. Smits. 1988. Metoda Pembuatan dan Pemeliharaan Kebun Pangkas Dipterocarpaceae. Balai Penelitian Kehutanan Samarinda. 49 pp. Libby, W.J. and M.R. Ahuja. 1993. Clonal Forestry. In : Ahuja, M.R, and Libby, W.J. (eds). Clonal Forestry II. Springer-Verlag, Berlin :1 - 8. Wahyudi, M.D. Duaja, E. Kartika. 2018. Uji Beberapa Zat Pengatur Tumbuh Terhadap Pertumbuhan Setek Lada Perdu (Piper nigrum L.) Jurnal Biogenesis 6, hal 86- 92. Mahfudz, M.A. Fauzi dan H.A. Adinugraha. 2003. Pengaruh Media dan Dosis Rootne-F terhadap Keberhasilan Stek Pucuk Pulai Alstonia scolaris (L.) R.Br.). Jurnal Pemuliaan Tanaman Hutan. Vol. 1 (1) : 1 - 9. Mahfudz. 2005. Pengaruh Ketuaan dan Pos dan Posisi Cabang Pada Tajuk Pohon Induk Terhadap Keberhasilan Okulasi dan Produksi Stek Pucuk Jati. Tesis S2, Program Pasca Sarjana, Universita Gajah Mada. Yogyakarta. Tidak diterbitkan. Mashudi, D. Setiadi dan H.A. Adinugraha. 2003. Aplikasi Teknik Stek Batang Pulai (Alstonia scholaris) dalam Pengembangan Kebun Pangkas. Jurnal Penelitian Pusat Litbang Bioteknologi dan Pemuliaan Tanaman Hutan. Vol. 1 (3): 93 - 100. Mashudi dan B. Leksono. 2004. Litbang Pemuliaan Pulai (Alstonia scholaris) untuk Menghasilkan Benih Unggul dan Perannya dalam Mendukung Program GN- RHL. Prosiding Ekspose Hasil Litbang Bioteknologi dan Pemuliaan Tanaman Hutan. Pusat Penelitian dan Pengembangan Bioteknologi dan Pemuliaan Tanaman Hutan.Yogyakarta. Hlm. 53-62. Mashudi. 2013. Pengaruh Asal Populasi dan Komposisi Media Terhadap Keberhasilan Stek Pucuk Pulai Darat (Alstonia angustiloba). Jurnal Pemuliaan Tanaman Hutan Vol. 5 (3) : 159-168. Maudy, E. 1990. Perbanyakn Tanaman dengan Stek Batang Pada Daun Jahit. Trubus Mariana, M. 2017. Pengaruh Media Tanam Terhadap Pertumbuhan Stek Batang Nilam (Pogostemon Cablin Benth). Agrica Ekstensia. Vol. 11 (1) : 1-8 Mulyani C dan J. Ismail. 2015. Pengaruh Konsentrasi dan Lama Perendaman Rootone F Terhadap Pertumbuhan Stek Pucuk Jambu Air (Syzygium semaragense) Pada Media Oasis. Agrosamudra Jurnal Penelitian Vol.2 (2) :1-9 111
Nafsiah, S.B. Perbanyakan Oncidinium Dengan Anakan. 2003. Album Tanaman Hias. Trubus No 30 Nafsiah. 2003. Perbanyakan Tanaman Dengan Rimpag (Akar Batang, Rhizoma,) Pada Oncidium. Trubus. Nyuwan, S.B. 2004. Selamat Berkat Donor Saudara Kandung. Trubus 419. Prasetyawati Y. E., C. Wibowo dan S.W. Budi. 2018. Pengaruh Keberadaan Akar Adventif dan Media Tanam Terhadap Pertumbuhan Stek Cabang Bambu Betung (Dendrocalamus asper Schult Backer ex Heyne). Jurnal Silvikultur Tropika Vol. 9 (2) : 109-115 Putra, F., Indriyanto dan M. Riniarti. 2014. Keberhasilan Hidup Stek Pucuk Jabon dengan Pemberian Beberapa Konsentrasi Rootone F. Jurnal Sylva Lestari Vol.2 (2): 33-40. Universitas Lampung. Rachman, S. F. 2006. Ada Rumah Susun Di Batang Ting. Trubus 441. Raharjo, A. 1999. Perbanyakan Aglaonema Lebih Aman Dengan Anakan. Trubus 359. Raharjo, A.. 2006. Stek Ara - Tancap Tongkat Buah Wasiat. Trubus 444. Rizkika, K. 2006. Tomatnya Disambung Saja. Trubus 442 - September 2006. hal : 151 Rini. 1991. Perbanyakan Tanaman Dengan Akar Batang (Rhizoma), atau dengan Pemisahan Anakan Pada Sedap Malam. Trubus. Riodevrisa. 2010. Pengaruh Pohon Induk Terhadap Tingkat Keberhasilan Stek dan Sambungan Bl. Makalah pada Seminar Penelitian Silvikultur Fakultas Kehutanan, Insitut Pertanian Bogor, Bogor. Hlm. 1 - 7. Rokhman, P. dan Y. Edy. 1988. Membuat Bougenvil Berbunga Warna/Warni. Trubus 223 . Roospitasari, K. 1992. Tomtang - Tomat Sambung Kentang. Trubus 272 . Rosy. 2006. Perbanyakan Anthurium Dengan Bonggol (Umbi Lapis). Trubus 442. Saefudin dan T. Rostiwati. 2009. Pemilihan Bahan Vegetatif untuk Penyediaan. Bibit Bambu. Jurnal Tekno Hutan Tanaman. 3(1) : 23--28. Sardi, 2004. Stek Daun Pada Vanili. Trubus 420. Sari E, Indriyanto, A. Bintoro . 2016. Respon setek cabang bambu betung (Dendrocalamus asper) akibat pemberian asam indol butirat (AIB). Jurnal Sylva Lestari. 4(2):61-69 Sarwono, B. 1991. Menyemai Belimbing Untuk Batang Bawah. Trubus 257. Sarwono, B. 1995. Kegagalan Sambung Sawo dan Basia. Trubus 342 . 112
Setiadi., D. R. dan Maudy. 1987. Membuat Okulasi Melinjo Ala Desa Rejosari. Trubus 213 Sigit. 2007. Split Batang, Jalan Pintas Dapatkan Anthurium Berkualitas Flowers Vol. 1 . Soenaryono, H. 2000. Sambung Pucuk Paling Bagus Untuk Alpukat. Trubus 366 Stapleton C.M.A. 1987. Studies on Vegetative Propagation of Bambusa and Dendrocalamus Species by Culm Cuttings. In: Rao AN, Dhanarajan G, Sastry CB, editor. Recent Research on Bamboos. Workshop of International Bamboo; 1985 Okt 6-14; Hangzhou, RRC. Hangzhou (CN): The Chinese Academy of Forestry & International Development Research Centre. hlm 146-153. Suastika, K., 1987. Pengantar Fisiologi Tumbuhan. Bagian Fisiologi Tumbuhan Fakultas Pertanian UNUD Denpasar. Sukarmin. 2011. Teknik Uji Daya Simpan Entres Durian Varietas Kani Sebagai Bahan Penyambungan. Buletin Teknik Pertanian,16 (2) : 48-51. Sulistyo, B. dan L. Subbijanto. 1989. Mencangkok Untuk Bahan Bonsai. Trubus 240. Sumarni dan F. Hersetyani. 1987. Merawat Tanaman Hias Dalam Ruangan. Trubus 213. Sumarni. 1988. Stek Daun Violces. Trubus 225. Supriyono, A. H. 1989. Bibit Alpokat Sambung Dini (Horti Malang). Trubus 240 . Suyono, H. 1989. Pepaya Bisa Disambung. Trubus 240 Syah, 2003. Perbanayakan Tanaman Dengan Stek Pucuk Pada Bromelia sp. Trubus 403 Syah , 2005. Teknis Pelaksanaan Stek Batang Pada Adenium. Ttrubus 430. Syariefa, E. dan Karjono. 2007. Mata Dicungkil Dapat 40 Anak. Trubus 448 Syariefa, E. 2004. Bibit Lengkeng Di Bawah Lindungan Sungkup. Trubus 419 Syariefa, E. 2004. Duplikasi Si Bola Pingpong Ala Kreo. Trubus 417 : hal 58-59. Swasono H. 1986. Hormon Tumbuhan. Rajawali Pers. Jakarta. Tambunan, L. A. 2006. Sebulan Lahir Sembilan Anak. Trubus 442 . Tisserat, B, 1985. Embryogenesis, Organogenesis and Plant Regeneration. Dalam: Plant Cell Culture, a Practical Approach. RA Dixon (Ed.) IRL, Oxford, 79-105. Tirtawijaya, M. R. 1995. Aneka Varietas Dalam Satu Pohon. Trubus 324 Tirtawinata, M. R. 2001. Kembali Remaja Berkat Stump Grafting. Trubus 376 . Tirtawinata, M. R. 2002. Perbanyak Nanas Lewat Tunas Tidur. Trubus 392. 113
Trubus. 1997. Perbanyakan Tanaman Dengan Stek Daun (Irisan Daun) Pada Begonia Sp. Titik, 2006. Calla Lily Tahan Lama Beragam Warna. Garden 4/I/2006. Utami, K.P. 1997. Cara Mudah Memperbanyak Begonia Daun. Trubus 334. Wahyudi E., I. Permanasari dan E. Aryanti. 2017. Perbedaan Batang Bawah dan Masa Penyimpanan Entres Terhadap Pertumbuhan Okulasi Bibit Jeruk Siam Madu (Citrus nobilis). Jurnal Agroteknologi, Vol. 8 (1): 35 - 40 Wareing, P. F. and I. J. Philips. 1986. Growth and Differentiation in Plant. Third Edition. Pergamon Press. Oxford. Widianto, Rini. 1990. Mencangkok Dieffenbachia. Trubus 245 Wijaya dan M. R. Tirtawijaya. 1990. Cara Baru Membuat Bibit Sawo. Trubus 243 Widjaja E. A. 2004. Panduan Membudidayakan Bambu. Bogor (ID): Puslitbang Biologi LIPI. Zainal. 2007. Dengan Stek Batang Lebih Menantang. Flowers I - 2007. 114
BAB III. PERUNDUKAN (LAYERING) Perundukan adalah metode perbanyakan dimana akar adventif dipacu terbentuk pada batang sementara batang tersebut masih melekat pada tanaman induknya. Batang yang telah berakar, dirundukkan, selanjutnya dipisahkan untuk menjadi tanaman baru yang tumbuh pada akarnya sendiri. Perundukan dapat dipandang sebagai persiapan untuk pemisahan tanaman selanjutnya. Hal ini merupakan cara alami dari reproduksi, seperti tanaman strawberry, atau perundukan juga dapat diinduksi dengan metode "artifisial" (artificial; buatan) yang diuraikan dalam bagian ini. Air dan mineral secara kontinyu disuplai ke pucuk atau bagian yang dirundukkan, karena batang tidak dipotong dan xylem tetap utuh (intact). Dengan tergantung pada panjangnya waktu yang harus demikian, perundukan dipertahankan oleh batang yang dipotong (stek) sebelum pengakaran berlangsung. Hal ini merupakan alasan mengapa perundukan lebih berhasil pada banyak tanaman ketimbang perbanyakan melalui stek. tidak Pembentukan akar selama perundukan dipacu oleh berbagai perlakuan batang yang menyebabkan penghentian (interuption) translokasi ke bawah dari bahan-bahan organik - karbohidrat, auksin, dan faktor pertumbuhan lain - dari daun ke ujung pucuk yang sedang tumbuh. Bahan-bahan ini berakumulasi di dekat titik perlakuan, dan pengakaran terjadi di bagian ini meskipun batang masih melekat di tanaman induk. langkah yang umum untuk semua metode perundukan adalah mengeliminasi cahaya dari bagian yang dikehendaki untuk merangsang pembentukan akar. Hal ini dicapai pada perundukan dengan gundukan tanah (mound layering) dan perundukan parit (trench layering) dengan cara menutup pucuk baru yang sedang berkembang pada waktu pertumbuhan pucuk yang aktif, sehingga bagian basal dari pucuk yang dirundukkan tidak pernah terekspos ke cahaya. Jika bagian tersebut telah ada akar, seperti pucuk yang tertimbun tanah, maka diikuti oleh proses pemutihan (blanching process). Pemutihan berbeda dari etiolasi, dimana pucuk dihasilkan di dalam kondisi gelap sama sekali dan tidak berdaun. Pucuk yang dihasilkan dalam cahaya dan kemudian ditutup dapat mengalami pemutihan, tetapi tidak mengalami etiolasi yang sebenarnya. Banyaknya keberhasilan dalam mengakarkan tanaman yang relatif sulit berakar dengan metode perundukan ternyata disebabkan oleh etiolasi dan pemutihan (blanching). Satu Pemberian bahan perangsang pengakaran seperti IBA, Rootone F selama perundukan kadang-kadang menguntungkan, seperti yang terjadi pada stek, meskipun metoda aplikasinya agak berbeda. Pemberian zat pengatur tumbuh dalam lanolin, larutan dalam 50 persen alkohol, atau bubuk ke irisan pengeratan (girdling) dapat digunakan secara efektif. 115
Pembentukan akar pada perundukan tergantung pada kelembaban yang terus- menerus, aerasi bagus, dan temperatur moderat pada zona pengakaran. Kondisi ini diberikan paling baik oleh media pengakaran seperti campuran tanah ringan dan serbuk gergaji. Tanah berat dan kering menghambat perkembangan akar, khususnya selama fase inisial pengakaran. Penambahan granul moss gambut ke tanah yang digundukkan di sekitar tanaman rootstock dapat memacu perakaran. Temperatur yang kelewat tinggi di tanah lapisan atas dapat mengurangi kelembaban dan menyebabkan pemadatan, tidak hanya menghambat pengakaran tetapi juga merusak pucuk. Manfaat utama dari perundukan adalah kesuksesan pembentukan akar pada batang. Banyak klon yang steknya tidak mudah berakar dapat diperbanyak dengan perundukan, sehingga memungkinkan ditumbuhkan pada akarnya sendiri. Kebanyakan metoda perundukan relatif sederhana untuk dikerjakan dan dapat dipraktekkan di pembibitan atau di kebun. Jika jumlah tanaman yang terlibat relatif sedikit, perundukan dapat memberikan keberhasilan yang tinggi dengan sedikit keahlian, usaha, dan peralatan ketimbang penyetekan. Dengan sedikit macam tanaman dimana perundukan terjadi secara alami, merupakan metode perbanyakan yang sederhana dan dinamis. KARAKTERISTIK PERUNDUKAN Dalam beberapa kasus, tanaman besar dapat diproduksi dalam waktu lebih singkat dibanding jika dengan stek. Namun, karena transplanting menjadi makin sulit pada saat ukuran dari tanaman yang dirundukkan meningkat, diperlukan kehati-hatian untuk menjadikan tanaman besar tersebut tumbuh di atas akarnya sendiri. Sebaliknya, perundukan merupakan metode perbanyakan yang mahal karena ia memerlukan tenaga manusia dan kurang memungkinkan untuk dimekanisasi. Tanaman yang dirundukkan memerlukan perhatian tertentu secara individu, tergantung pada metoda tertentu yang digunakan, meskipun operasi yang terlibat itu sendiri sederhana. Juga, jumlah tanaman yang layak jual dari sejumlah tanaman stok adalah lebih sedikit dibandingkan jika diperbanyak dengan stek tunas (untuk grafting atau budding). Metoda perundukan cenderung merepotkan, dan tanaman stok memerlukan tempat yang luas sehingga sulit untuk membudidayakannya dan sulit untuk mengendalikan gulma. Ada enam tipe perundukan yaitu air layering, simple layering, tip layering, trench layering, serpentine layering dan mound layering. Air layering dan simple layering adalah tipe perunduan yang paling banyak dilakukan. Air Layering (Cangkok) Pencangkokan adalah salah satu tipe perundukan, dimana akar terbentuk pada bagian tanaman yang masih berada di tanaman induknya. Pada perundukan tipe ini 116
batang tanaman di kerat dan dibungkus dengan tanah. Batang tanaman akan dibiarkan selama beberapa minggu sampai membentuk akar. Gambar 1. Perundukan dengan cara cangkok 1 2 3 4 Gambar 2 Langkah - langkah mencangkok (Air layering) 117
Gambar 3 Perundukan tunggal (Simple Layering) Perundukan tunggal dilakukan dengan cara membengkokkan sebuah cabang ke tanah, sebelumnya batang tersebut dilukai kemudian dimasukkan ke tanah dan ditutup dengan tanah atau media pengakaran, tetapi ujung terminal berada diatas tanah. Ujung dari cabang secara tajam dibengkokkan ke posisi tegak sekitar 6 sampai 10 cm jaraknya dari ujung. Pembengkokan yang tajam dari pucuk tersebut sangat penting untuk menginduksi pengakaran, meskipun manfaat tambahan dapat diperoleh dengan cara pemuntiran untuk melonggarkan kulit kayu. Pemotongan atau sedikit pelukaan di bagian bawah dari batang sering dilakukan. Metode lain yaitu, bagian yang bengkok dari pucuk selanjutnya disisipkan ke dalam tanah sehingga dapat ditutup pada kedalaman 3 sampai 6 cm. Pasak kayu, kawat yang dibengkokkan atau batu dapat digunakan untuk menjaga rundukan di tempatnya dan ajir kayu vertikal dapat ditancapkan di samping rundukan untuk menopang pucuk yang terekspose dan memegangnya tegak. Jika cabang relatif tidak lentur dan sulit untuk dibengkokkan, tegangan dapat dikurangi dengan cara melukai sedikit bagian atas dari pucuk pada bagian tertinggi dari bengkokan Waktu yang umum untuk perundukan adalah awal musim hujan, dan digunakan pucuk berumur satu tahun. Dipilih cabang-cabang yang rendah dan lentur dari tanaman yang dapat dengan mudah dibengkokkan ke tanah. Dalam beberapa hal cabang samping (suckers) yang dihasilkan di dekat mahkota tanaman dapat bertindak sebagai sumber pucuk untuk perundukan. Pengadaan rundukan berakar dapat dilakukan bertahun-tahun dengan cara membuat bedengan yang terdiri dari tanaman stock yang ditanam dengan jarak yang cukup lebar sehingga memungkinkan semua pucuk dirundukkan. Prosedur ini telah digunakan secara komersial untuk memperbanyak tanaman strawberry dan blackberry di Lembang dan Malang. Hasil penelitian Purba et al. (2017), perundukan pada tanaman Mucuna bracteata, dengan beberapa cara merunduk, merunduk 1 kali, 2 kali, 3 kali dan 4 kali, diatas maupun dibawah tanah tidak berpengaruh terhadap pertumbuhan, jumlah bintil akar dan berta kering akar. 119
Perundukan Ujung Pucuk (Tip Layering) Pada tip layering, pengakaran terjadi di ujung pucuk yang dilukai dan dibengkokkan ke tanah. Ujung pucuk ditimbun dengan tanah, dijaga kelembabanya, dibiarkan beberapa minggu sampai keluar akar pada ujung pucuk yang dibenamkan tersebut. Setelah berakar, ujung pucuk dapat dipotong untuk ditanam menjadi tanaman mandiri. 4 3 Gambar 4 Perundukan pucuk (Tip Layering) (Rosie dan Dana, 1996) Ujung pucuk lateral lebih baik dirundukkan dengan tangan, sekop kecil digunakan untuk membuat lubang dengan satu sisi vertikal dan sisi lainnya miring ke arah tanaman induk. Ujung pucuk ditempatkan di dalam lubang dengan pucuk terletak sepanjang sisi miring dan tanah yang ditutupkan ditekan cukup padat. Dengan demikian ujung tidak dapat terus tumbuh memanjang dan menjadi seperti bentuk teleskop (telescoped) dan serta mengembangkan pucuk vertikal muda. Dengan cara ini hanya satu individu baru yang dihasilkan dari satu cabang. segera membentuk sistem perakaran yang banyak Perundukan Berganda (Compound or Serpentine Layering) Perundukan berganda prinsipnya sama seperti perundukan tunggal, pada perundukan berganda lebih dari satu titik tumbuh yang dibengkokkan kedalam tanah. Namun untuk perundukan berganda pada setiap bagian yang dibenamkan ke tanah harus mempunyai titik tumbuh di atasnya untuk membentuk tunas baru apabila sudah berakar dan siapkan dipisahkan dari induknya. Pada suatu cabang yang panjang hanya beberapa tempat di satu cabang yang ditutup tanah. Penutupan tanh berselang-seling, ada yang ditutup, ada yang dibiarkan pucuknya di atas tanah tidak ditutup. Setelah beberapa minggu cabang yang berada diatas tanah akan memunculkan tunas baru, sementara bagian yang ditutup tanah akan memunculkan akar baru. Umumnya, batang dilukai atau dikerat di bagian bawah dan ditutup dengan tanah seperti pada perundukan tunggal. Akar berkembang pada setiap bagian yang dibenamkan ini. Bagian yang dilukai dan dibenamkan kedalam tanah dari batang tersebut paling sedikit mengandung satu titik tunas yang akan berkembang menjadi 120
pucuk. Setelah terbentuk akar, cabang tersebut dipotong pada bagian yang mempunyai pucuk baru dan mengandung akar baru. Beberapa tanaman baru dapat dihasilkan dari satu cabang. Metode ini digunakan untuk memperbanyak tanaman yang mempunyai pucuk panjang dan batang fleksibel seperti anggur. Gambar 5 Perundukan Berganda (Compound or Serpentine Layering) Hasil penelitian Sumarni dan Jamal (2008), menunjukkan penggunaan metode pembiakan vegetative dengan merunduk, pada Piper miniatum pada ruas/ buku batang tua (R3) dengan media sekam menunjukkan waktu yang lebih cepat untuk tumbuh akar 2-4 minggu bila dibandingkan dengan cara setek dan cangkok. Kelebihan lainnya dengan merunduk adalah tidak memerlukan masa aklimatisasi untuk menjadi bibit. Perundukan Horizontal (Trench Layering) Perundukan horizontal atau larikan/parit adalah perundukan dengan merebahkan dan membenamkan cabang dengan posisi secara horizontal pada larikan tanah atau lubang yang dibuat memanjang (trench : parit kecil), rundukan cabang didasar lubang. Cabang yang berada didalam tanah dilukai untuk merangsang tumbuhnya akar dari dasar pucuk teretiolasi. Akar berkembang dari dasar pucuk baru ini. Pucuk cabang dengan beberapa lembar daun dibiarkan di atas permukaan tanah. Dari beberapa ruas cabang yang dibenamkan akan muncul tunas baru. ini dilakukan sebelum mulai pertumbuhan di musim semi. Tanaman dibengkokkan batangnya dan diletakkan mendatar pada dasar dari parit yang digali sepanjang barisan sedalam 6 cm dan cukup lebar untuk keseluruhan rundukan. Cabang-cabang lateral yang lemah dipotong sepanjang 2 cm dan cabang lateral yang kuat dipotong ujungnya. Pasak kayu dapat digunakan untuk menahan tanaman rundukan induk di tempatnya. Kawat pendek yang dibengkokkan berbentuk huruf U atau kawat yang lebih panjang seperti gantungan baju, bermanfaat untuk memegang pucuk-pucuk yang kecil. Adalah penting bahwa semua bagian dari pucuk mendatar sempurna pada dasar parit. Sebelum semua rundukan ditutup dengan tanah halus 5 cm atau media pengakaran seperti moss gambut, serbuk gergaji atau serutan kayu. 2 cm media tambahan ditambahkan pada saat pucuk yang sedang berkembang muncul dari lapisan tanah yang pertama tetapi sebelum daunnya mengembang. Beberapa tanah tambahan diberikan pada 2-3 minggu pertama dari Pada daerah empat musim (subtropis), 121
Pengeratan dasar dari pucuk dengan cara mengikatkan kawat sekitar 6 minggu setelah mulai tumbuh akan memacu pengakaran pada banyak tunas tanaman. Ukuran sistem perakaran tanaman apel hasil penggundukan meningkat pada pucuk yang tumbuh. Gambar 7 Perundukan dengan cara Gundukan (Mound atau Stool Layering) PERKEMBANGBIAKAN VEGETATIF ALAMI Beberapa tanaman menunjukkan modifikasi dari struktur vegetatif mereka atau metode dari pertumbuhan yang mengarah kepada perbanyakan vegetatif alami. Struktur- struktur yang disebutkan di bawah ini dianggap merupakan bentuk-bentuk alami dari perundukan dan sering digunakan untuk perbanyakan tanaman. MODIFIKASI BATANG Runners (Sulur) Runner merupakan batang terspesialisasi yang berkembang dari ketiak daun pada mahkota tanaman, tumbuh secara horizontal sepanjang permukaan tanah, dan membentuk tanaman baru pada setiap nodusnya. Contohnya adalah tanaman strawberry yang diperbanyak dengan cara ini. Tanaman lain yang diperbanyak dengan cara ini strawberry, geranium, dan tanaman penutup tanah Duchesne indica. Tanaman spesies ini tumbuh sebagai rosette tipikal atau mahkota. Pada kebanyakan kultivar strawberry, pembentukan runner berhubungan dengan panjang hari dan temperatur. Tanaman- tanaman baru dihasilkan pada nodus-nodus secara berselang-seling. Runner tersebut berakar tetapi tetap melekat pada tanaman induk. 123
diperbanyak dengan offset meskipun di dalam kultur komersial diberi istilah ratoons, suckers, atau slips, tergantung pada bagian dari tanaman yang diambil untuk perbanyakan. Pucuk-pucuk lateral yang tumbuh dari rhizome seperti pada pisang atau anggrek juga merupakan offset atau offshoot. Offset diambil melalui pemotongan yang cukup dekat dengan batang utama. Jika sudah berakar, offset dapat dipotkan seperti yang dilakukan pada stek yang berakar. Jika perakarannya tidak memadai, pucuk ditempatkan pada media pengakran yang favorable dan diperlakukan sebagai stek batang berdaun. Perkembangan offset kurus, pemotongan rosette utama dapat menstimulasi perkembangan offset dari batang tua tepat seperti pembuangan tunas terminal, menstimulasi pucuk lateral pada tanaman tipe lain. Sebagai contoh pada tanaman Echeveria batang utama memanjang sehingga tanaman menjadi rosette berdaging yang tumbuh di atas batang berdaging. Rosette tersebut dengan sepotong batang yang pendek dapat diambil dan diakarkan, dan rosette baru akan berkembang dari tunas-tunas pada bagian dasar. Dikehendaki bahwa operasi ini dilakukan pada saat batang agak lunak dan sukulen ketimbang membiarkannya sampai menjadi keras dan berkayu. Offsets tanaman kurma tidak mudah berakar jika dipisahkan dari tanaman induk. Mereka biasanya dirundukkan selama satu tahun sebelum diambil. 125
Gambar 10 Berbagai jenis tunas nenas A. Tunas anakan, B. Slip/ tunas buah, C. Tunas mahkota, D. Mahkota, dan E. Stek Suckers (Anakan/ tunas batang) Suckers adalah pucuk / tunas yang tumbuh pada tanaman di bawah tanah. Penggunaan yang paling tepat dari istilah ini ditujukan pada pucuk yang muncul dari tunas adventif pada akar. Namun, dalam praktek, pucuk yang muncul dari sekitar mahkota tanaman juga disebut sebagai suckers meskipun berasal dari jaringan batang. Umumnya istilah suckers mengacu pada semua pucuk yang dihasilkan dari rootstock di bawah penyatuan tunas dari pohon hasil okulasi sebagai suckers dan pekerjaan untuk membuang suckers tersebut diberi istilah "suckering". Sebaliknya, pucuk yang muncul dari tunas laten dari batang yang telah berumur beberapa tahun, sebagai contoh istilahnya adalah "tunas air" dari batang pokok (trunk) atau cabang utama, (waterprouts). Contoh : tanaman pisang. Kecenderungan untuk membentuk suckers merupakan karakteristik yang dimiliki oleh beberapa tanaman namun tidak dimiliki oleh tanaman lain. Kemampuan dari tanaman untuk membentuk suckers dan kemampuan dari tanaman untuk tumbuh dari stek akar berhubungan erat. Namun, dalam hal seperti ini, penangkar bibit menyukai untuk menggunakan stek akar ketimbang tergantung pada suckers yang dibentuk secara alami. Karena sukcers muncul dari tunas adventif, mereka menunjukkan karakteristik juvenile dan meregenerasi akar lebih mudah ketimbang pucuk-pucuk pada fase dewasa. Sucker digali dan dipotong dari tanaman induk. Dalam beberapa kasus bagian dari akar tua dapat dipertahankan, meskipun kebanyakan dari akar-akar baru muncul dari dasar suckers. Adalah penting untuk menggali suckers ketimbang mencabutnya, 126
untuk menghindari kerusakan pada bagian dasarnya. Suckers secara esensial diperlakukan sebagai rundukan berakar atau sebagai stek, jika akarnya sedikit atau tidak terbentuk. Beberapa hasil penelitian menunujukkan tanaman kesemek (Dyospiros knaki) sulit di perbanyak dengan setek, sehingga perbanyakan dengan root sucker menjadi alternatif (Dewi et al, 2014). Selanjutnya Dewi et al. (2018) melakukan sambung pucuk (top grafting) menggunakan anakan (rootsucker) sebagai batang bawah untuk mendapatkan tanaman kesemek yang berbuah lebih cepat. Crowns (Mahkota - bonggol batang) Istilah crown umumnya digunakan dalam hortikultura yang ditujukan pada bagian tanaman diatas permukaan tanah tempat dihasilkan pucuk-pucuk baru. Tunas baru pada tanaman yang dapat digunakan untuk perbanyakan tanaman. Pada tanaman dengan batang tunggal, crown utamanya merupakan titik terdekat permukaan tanah yang merupakan zona transisi antara batang dan akar. Pada tanaman herba tahunan (herbaceous perennilas), crown merupakan bagian dari tanaman dimana pucuk-pucuk baru tumbuh setiap tahun. Crown dari beberapa tanaman tahunan herba terdiri dari banyak cabang. Pucuk-pucuk lateral ini distimulasi tumbuh dari dasar batang tua pada saat batang tua tersebut mati pucuknya setelah pembungaan. Akar adventif tumbuh sepanjang dasar dari pucuk-pucuk baru. Pucuk-pucuk baru ini akhirnya berbunga baik pada tahun yang sama pada saat mereka diproduksi atau di tahun berikutnya. Sebagai akibat dari produksi tahunan dari pucuk-pucuk baru dan mati pucuk dari pucuk-pucuk tua, crown dapat menjadi banyak (extensive) dalam periode beberapa tahun saja. Contoh African violet. Pada tanaman tertentu, sebagai contoh strawberry atau African violet (Saintpaulia), struktur batang pendek dan daun-daun menebal dihasilkan dengan susunan seperti rosette. Tubuh tanaman secara keseluruhan sering juga dinamakan crown. Pucuk-pucuk lateral atau offset dihasilkan dari dasar crown. Tanaman tua dapat terdiri dari sejumlah "crown" atau "crown divisions" yang telah dihasilkan dengan cara ini. Tanaman herbal bercabang banyak dapat mengembangkan crown banyak. Meskipun batang berkayu secara individual tetap dapat bertahan selama beberapa tahun pucuk-pucuk baru yang sehat diproduksi secara terus-menerus dari crown. Jika dibiarkan tidak terganggu, semak semacam itu membentuk semak berjejalan (thickets). Di bawah penanganan normal, pucuk yang tua secara teratur diambil dengan cara pemangkasan untuk memberikan jalan bagi pucuk-pucuk muda yang lebih sehat. Pembagian dari crown merupakan metode yang penting dari perbanyakan untuk tanaman tahunan herbal, dan pada tingkat tertentu untuk tanaman semak berkayu, dikarenakan oleh caranya yang sederhana dan dapat diandalkan. Karakteristik semacam itu membuat metode ini berguna bagi pekebun amatir dan profesinal yang umumnya tertarik hanya untuk memperbanyak tanaman tertentu dalam jumlah sedang. Banyak tanaman herbal tahunan harus dibagi setiap dua atau tiga tahun untuk mencegah tanaman berjejalan (over crowded). 127
Pada pemisahan crown, tanaman digali dan dipotong menjadi bagian-bagian dengan sebuah pisau. Pada tanaman herba tahunan seperti daisy 'Shasta' atau aster dimana dihasilkan offshoot berakar baru dan crown, setiap offshoot dapat dipecah dari crown tuanya dan ditanam secara terpisah, dan bongkahan tanaman yang tua dibuang. Jika bongkahan besar besar dikehendaki, maka potongan dari crown tua yang membawa sejumlah pucuk-pucuk baru dari bagian dasarnya dapat digunakan. Pada tanaman dimana crownnya terdiri dari sejumlah rosette atau offset seperti terjadi pada tanaman African violet, pembagian harus dilakukan di antara masing-masing rosette, tetapi akar harus ada di setiap potongan. Tanaman semak dapat dibagi dengan cara sama dengan sebuah sekop atau kapak kecil (hatchet). Operasi semacam itu harus dilakukan pada saat ketika tanaman dorman. Bagian atas harus dipotong dan akarnya dipotong (trimmed) pada saat dilakukan pembagian, dan setiap tanaman ditanam sebagai semak baru. Jika crown telah tua atau terlalu besar, dan jika tidak ada kelangkaan kultivar, maka sub crown yang berada paling jauh dari pusat tanaman induk harus digunakan, dan crown di bagian tengah yang lebih tua dibuang. Modifikasi Alami Modifikasi batang, terdiri dari: a. Umbi lapis (bulbus), merupakan pertumbuhan calon batang yang memendek, menebal, dan membentuk lapisan-lapisan. Umbi lapis yang berkembangan penuh disebut offset. Bulbus dijumpai pada keluarga Liliaceae seperti brambang, lili, bakung dan lain-lain. b. Umbi lapis adalah umbi yang berlapis-lapis dan ditengahnya tumbuh tunas. Umbi lapis terdiri atas daun yang mengelilingi cakram (batang) dan membengkak didalam tanah. Pada permukaan atas dari setiap buku, tumbuh daun yang tebal dengan satu atau dua kuncup ketiak yang letaknya berdekatan sehingga seperti berlapis-lapis. Pada permukaan bawah dari setiap buku, tumbuh akar serabut tepat dibawah batangnya (cakram).Umbi lapis merupakan umbi yang berlapis-lapis dan dibagian pangkalnya terdapat batang sangat pendek yang disebut cakram dan suing yang merupkan tunas sebagai calon individu baru. Tunas tersebut semakin lama semakin besar membentuk suing. c. Contoh tumbuhan yang umbi lapis yaitu bawang merah (Allium cepa), bawang putih (Allium sativum), bawang daun (Allium fistulosum), bunga bakung (Crinum asiaticum), dan bunga tulip. d. Umbi batang (Cormus), merupakan pertumbuhan calon batang yang memendek dan menebal, tertapi tidak diikuti oleh lapisan-lapisan. Dijumpai pada bunga gladiul, bawang putih, talas, dan lain-lain. Umbi batang adalah batang yang tumbuh ke dalam tanah, ujung batang tersebut menggembung membentuk umbi untuk menyimpan cadangan makanan, terutama zat tepung. Pada suatu lekukan di permukaan batang atau umbi tersebut terdapat tunas yang disebut mata tunas. Umbi batang merupakan batang yang menggembung karena berisi cadangan makanan dan 128
pada permukannya terdapat daun yang berubah menjadi sisik. Pada ketiak sisik terdapat mata tunas sebagai calon individu baru. Contoh tumbuhan umbi batang yaitu kentang (Solanum jalar(Ipomoea batatas), gadung (Dioscorea hispida), dan gambili (Dioscorea aculata). tuberrodum), ubi e. Rimpang (Rhizome), merupakan batang yang tumbuh di bawah permukaan tanah. Rhizome dibedakan menjadi dua yaitu: i) Rhizome tidak berdaging djumpai pada alang-alang, ii) Rhizome berdaging dijumpai pada tanaman temutemuan, jahe, kunir, bangle, laos, cana dan lain-lain. f. Umbi batang (tuber), adalah bagian batang di bawah tanah yang menjulur dan membesar sebagai tempat penyimpanan makanan cadangan, pada bagian kulit banyak di jumpai tunas. Tuber dijumpai pada tanaman kentang. g. Umbi akar dijumpai pada ubi jalar, gadung, ubi sikep, ubi aung dan lain-lain. h. Umbi akar adalah akar yang berubah fungsi sebagai penyimpan cadangan makanan dan hanya dapat tumbuh menjadi individu baru apabila ditanam bersama sedikit batang yang bertunas. Ciri-ciri umbi akar adalah umbi tidak berbuku-buku, umbi tidak mempunyai kuncup dan daun, dan umbi tidak mempunyai mata tunas. Jika umbi akar ditanam, maka akan tumbuh tunas-tunas baru dari bagian yang merupakan sisa batang. Tunas inilah yang kemudian menjadi individu baru. Contoh tumbuhan umbi akar adalah singkong (Manihot utilissima), dahlia dan wortel. i. Geragih adalah batang yang tumbuh mendatar di atas permukaan tanah. Geragih merupakan batang yang menjalar diatas permukaan tanah dan apabila batang tersebut tertimbun tanah akan tumbuh menjadi tanaman baru. Tunas pada buku- buku batang dapat tumbuh menjadi tumbuhan baru. Ujung geragih yang menyentuh tanah akan membelok keatas. Pada bagian bawah geragih muncul akar serabut, walaupun tetap berhubungan dengan induknya, namun tumbuhan baru itu tidak bergantung pada induknya. Contoh tanaman geragih di atas permukaan tanah yaitu pegagan (Centella asiatica), arbei, dan semanggi. Ada geragih yang menjalar dibawah permukaan tanah dan disebut stolon. Di sepanjang stolon dapat tumbuh tunas adventisia (liar), dan masing-masing tunas ini dapat menjadi anakan tanaman. Contoh tumbuhan bergeragih di bawah permukaan tanah adalah rumput teki (Cyperus rotundus) dan rumput pantai (Spinifex sp) serta strawberry. j. Tunas adventif Tunas adventif atau tunas liar adalah tunas yang tidak tumbuh diujung batang atau ketiak daun. Tunas adventif yang dipisahkan dari induknya dapat tumbuh membentuk individu baru. Contoh tunas adventif pada akar adalah kersen (Muntingia calabura), sukun (Arthocarpus communis), kesemek (Dyospiros knaki), jambu biji (Psidium guavajava) dan cemara. Tunas yang tumbuh di daun disebut dengan tunas daun. Tunas tersebut dapat membentuk daun dan akar sehingga seperti tumbuhan kecil yang menempel pada tumbuhan. Contoh tumbuhan tunas daun yaitu cocor bebek dan begonia. 129
Gambar 10 a Tunas daun pada cocor bebek (Kalanchoe pinnata) Apomiksis Apomiksis adalah suatu bentuk reproduksi non-seksual pada tumbuhan melalui biji. Pada apomiksis, kecambah-kecambah muncul dari biji tetapi bukan berasal dari embrio (lembaga), melainkan dari jaringan maternal (asal tetua betina). Akibatnya, secara genetic tumbuhan-tumbuhan baru yang muncul adalah identik dengan tetua betinanya (klon). Walaupun demikian, sekarang ditemukan kasus "apomiksis jantan" yang terjadi pada sejenis sipres (Cupressus dupreziana). Kasus apomiksis banyak terjadi pada tumbuhan tropika. Beberapa varietas manggis dan kerabatnya (marga Garcinia) dapat memperbanyak hanya melalui apomiksis. Biji manggis terbentuk tanpa proses fertilisasi, tetapi melalui perkembangan jaringan nuselus. Sifat apomiksis mengakibatkan sifat genetik turunan identik dengan induknya (Fauza et al., 2003). Namun, Sifat apomiksis ini menyebabkan perbaikan sifat tanaman manggis melalui pemuliaan konvensional tidak dapat dilakukan. Alternatif peningkatan keragaman genetik tanaman manggis dapat dilakukan dengan teknik induksi mutasi. Qosim et al. (2007), dengan teknologi irradiasi. Namun pada beberapa kasus belum tumbuhnya akar pada regeneran-regeneran manggis hasil radiasi tersebut. Oleh tunas-tunas manggis yang dilakukan secara karenanya perlu penyambungan mikrografting yaitu teknik penyambungan potongan batang atas pada batang bawah dalam kultur jaringan (Toruan-Mathius et al., 2006). Teknik mikrografting ini dapat diterapkan pada tunas manggis hasil induksi mutasi yang memiliki sifat genetik berbeda dari manggis biasa, namun belum dapat tumbuh akar. Tunas manggis in vitro hasil induksi mutasi yang belum berakar dapat disambungkan dengan tunas manggis batang bawah hasil perkecambahan biji manggis in vitro yang sudah berakar. Dengan demikian, pada akhirnya akan didapat satu individu baru yang memiliki sifat genetik berbeda dari tanaman manggis biasa, yang sudah memiliki akar dan siap diaklimatisasi. Contoh tumbuhan lain yang diketahui memiliki perilaku ini adalah berbagai jenis jeruk dan duku. Terdapat tiga golongan apomiksis: 1. Parthenogenesis yaitu embrio terbentuk dari embrio yang tidak dibuahi, kalau terjadi meiosis maka turunannya memiliki jumlah kromosom n, contohnya Nicotiana solanum. Kalau kejadian abnormal, maka turunannya memiliki jumlah kromoson 2n, contoh Teraxacum. 130
2. 3. Apogamic yaitu terjadi penggabungan 2 sel kantong embrio dapat menghasilkan turunan haploid atau diploid (pada Allium) Apospory yaitu kantong embryo langsung dari sel somatic (integument, nucleus), tanpa pembentukan spora dan tanpa pembuahan sehingga turunannya diploid. terbentuk Biji apomiksis, merupakan pembiakan vegetatif yang ditandai dengan terjadinya proses reproduksi seksual yang tidak normal. Tanaman yang dihasilkan dari peristiwa apomiksis disebut apomicts. Tanaman yang tumbuh hanya dari embrio apomicts disebut obligate apomict, sedangkan tanaman yang tumbuh dari biji dengan embrio apomicts dan embrio seksual normal sekaligus disebut facultative apomicts. Peristiwa apomiksis dapat terjadi karena adanya peristiwa partenogenesis dan apogami. Patenogenesis merupakan peristiwa dimana embrio tumbuh dari sel telur yang tidak dibuahi. Bila sel telur tersebut tidak mengalami pembelahan miosis, maka embrio yang tumbuh bersifat diploid. Tetapi bila embrio tumbuh dari sel telur yang telah mengalami miosis, maka embrio yang tumbuh bersifat haploid. Peristiwa ini banyak dijumpai pada tanaman bawang merah dan apel. Makrosporogenesis merupakan peristiwa pembelahan reduksi dari sel induk megaspora, yang disamping menghasilkan sel telur juga menghasilkan sel antipoda dan sel sinergid. Bila embrio tumbuh berasal dari sel sinergid atau antipoda maka disebut apogami. Semua individu yang berasal dari perbanyakan vegetatif satu individu tanaman, disebut klon Semua keturunan hasil perbanyakan vegetatif mempunyai keseragaman genotipe. Keragaman genotipe dalam populasi tanaman klonal dapat pula terjadi karena kemungkinan adanya mutasi gen, mutasi kromosom atau mutasi genom. Perbaikan tanaman dapat dilakukan dengan melakukan hibiridisasi antar tanaman klonal, selanjutnya dilakukan seleksi pada turunan. Bila didapatkan turunan yang memiliki karakter agronomi/ hortikulturik baik, dapat diperbanyak kembali secara vegetatif. Rimpang mempunyai ciri-ciri : 1. Bentuk seperti akar, tetapi berbuku-buku seperti batang 2. Pada setiap buku/ruas terdapat daun yang berubah menjadi sisik 3. Di setiap ketiak sisik terdapat mata tunas. Jika ujung rizoma atau tunas ketiak tumbuh menjadi tumbuhan baru, maka tumbuhan tersebut tetap bergabung dengan tumbuhan induk dan membentuk rumpun. Contoh tumbuhan rizoma lengkuas (Alpinia galanga), jahe (Zingiber officinale), kunyit (Curcuma domestica), kencur (Curcuma xanthorrhiza), dan lidah mertua (Sansivera sp). (Kaempferia galanga), temulawak 131
DAFTAR PUSTAKA Apriyanti, R. N. 2007. Demi Anakan Penggal Leher Ratu. Trubus 448 . Browse, P. D. A. 1978. Plant Propagation. Simon and Schuster: New York. Bryant, G. 1995. Propagation Handbook. Stackpole Books: Mechanicsburg, Pennsylvania. Dewi-Hayati, P.K. 2014. Kesemek: Pengenalan, Pengolahan Buah dan Propagasi Tanaman. Modul 07. PATPKP. Universitas Andalas. Dewi-Hayati, P.K., I. Darfis dan A. Anwar. 2014. Propagasi Tanaman Kesemek (Diospyros kaki Thunb.) di Kabupaten Solok. Laporan Akhir Kegiatan PATPKP. Universitas Andalas. Dewi, H. P.K., Sutoyo, N. Herawati, I. Suliansyah, N. Marta dan Kuswandi. 2018. Transfer Teknologi Sambung Menggunakan Anakan (Root-Sucker) Sebagai Batang Bawah Untuk Propagasi Tanaman Kesemek Di Batu Bagiriek Alahan Panjang. Jurnal Hilirisasi IPTEKS Vol. 1 (3). Dirr, M. A. and C.W. Heuser . 1987. The Reference Manual of Woody Plant Propagation: From Seed to Tissue Culture. Varsity Press: Athens, Georgia. Fauza, H., Murdaningsih, H. Karmana, N. Rostini, I. Mariska. 2003. Variabilitas Genetik Manggis Hasil Iradiasi Sinar Gamma Melalui Analisis RAPD. Zuriat 14:59-67. Hartmann, H. T., Kester, F.T. Davies and R. L.Geneve. 1996. Plant Propagation, Principles and Practices. Prentice Hall: Upper Saddle River, New Jersey. Heru, P. 1989. Cara Baru Mencangkok Jambu Biji. Trubus 240 . Nyuwan, S.B. 2004. Selamat Berkat Donor Saudara Kandung. Trubus 419. Purba R.P., N. M. Titiaryanti dan U.K. Rusmasini. 2017. Pengaruh Beberapa Cara Merunduk Terhadap Pertumbuhan Mucuna bracteata. Jurnal Agromast Vol 2(1):1-6. Rachamn, S. F. 2006. Ada Rumah Susun Di Batang Ting. Trubus 441. Rini. 1991. Perbanyakan Tanaman Dengan Akar Batang (Rhizoma), atau Dengan Pemisahan Anakan Pada Sedap Malam. Rosie L.B. and Dana M.N. 1996. New Plants From Layering. Department of West Horticulture. Perdue University Cooperative Extension Lafayette, INC. Servica Rukmana, R. 1996. Nanas Budidaya dan Pascapanen. Kanisius, Yogyakarta. 132
Selvy H., R. Poerwanto, Sobir, A. Purwito dan T. M. Ermayanti. 2013. Effect of Rootstock and Shoot Types on In Vitro Mangosteen (Garcinia mangostana) Micrografting. J. Agron. Indonesia 41 (1) : 47 - 53. Sulistyo, B. dan L. Subbijanto. 1989. Mencangkok Untuk Bahan Bonsai. Trubus 240. Sumarni, H. P dan Y. Jamal. 2008. Konservasi Piper miniatum BI. Dengan Perbanyakan Cara Perundukan, Ekstraksi dan Uji Aktifitas Antiradikal Bebas DPPH dan Antidiabetik. Jurnal Teknik Lingkungan Vol 9 (3):263-270. Sumarni dan F. Hersetyani. 1987. Merawat Tanaman Hias Dalam Ruangan. Trubus 213. Tirtawinarta, M. R. 2002. Perbanyak Nanas Lewat Tunas Tidur. Trubus 392 . Toogood, A.. 1993. Plant Propagation Made Easy. Timber Press: Portland, Oregon. Toruan -Mathius, N., Lukman, A. Purwito. 2006. Teknik Sambung Mikro In Vitro Kina Cinchona Succirubra Dengan C. Ledgeriana. Menara Perkebunan 74:63- 75. Utami, K.P. 1997. Cara Mudah Memperbanyak Begonia Daun. Trubus 334. Qosim, W. A., R. Purwanto, G.A. Wattimena, Witjaksono. 2007. Pengaruh Iradiasi Sinar Gamma terhadap Kapasitas Regenerasi Kalus Nodular Tanaman Manggis. Hayati Journal of Biosciences Vol. 14 (4): 140-144 Widianto, R. 1990. Mencangkok Dieffenbachia. Trubus 245. 133
BAB IV. PENYAMBUNGAN DAN OKULASI Penyambungan adalah perbanyakan tanaman yang dilakukan secara generatif- vegetatif dengan menggunakan campuran dua bahan tanam, yaitu yang berasal dari bibit asal biji dan yang berasal dari bagian vegetatif serta mata tunas atau pucuk dari tanaman lain. Bibit asal biji dijadikan batang bawah untuk menopang pertumbuhan bagian vegetatif yang dijadikan batang atas. Perbanyakan secara generatif-vegetatif dilakukan dengan dua cara, yaitu sambungan (grafting) dan tempelan (okulasi). Menurut Rini (1990), penyambungan atau grafting atau ent, adalah istilah yang digunakan untuk menggambarkan suatu cara dalam penggabungan tanaman dengan batang bawah dan batang atas dari tanaman yang berbeda sedemikian rupa, sehingga terjadi persenyawaan, menyatu, dan kombinasi ini akan terus tumbuh membentuk tanaman baru. Selanjutnya juga dijelaskan oleh Taylor (1987), bahwa grafting bukan hanya sekedar penggabungan tanaman tetapi lebih mengarah ke seni (art) dari tanaman. Pada perkembangan selanjutnya menurut Sudarsono (1988), telah ditemukan banyak model- model grafting yang dilakukan tidak saja pada tanaman perkebunan atau buah-buahan tetapi terutama pada tanaman hias, dengan berbagai modifikasi. Penyambungan menurut Hartman dan Kestler (1983), adalah suatu cara untuk menggabungkan bagian-bagian tanaman dengan cara yang tepat sehingga bagian yang digabungkan tersebut akan menyatu dan melanjutkan pertumbuhan sebagai satu tanaman utuh. Grafting adalah teknik menyatukan pucuk yang berfungsi sebagai calon batang atas dengan calon batang bawah, sehingga dapat diperoleh batang baru yang memiliki sifat- sifat unggul. Keunggulan dari grafting yaitu lebih mudah dan lebih cepat dalam pengerjaannya (sederhana), serta tingkat keberhasilannya cukup tinggi (Vural et al., 2009). Keberhasilan grafting sangat ditentukan oleh batang bawah untuk disambung serta kompatibilitas antara batang atas dan batang bawah (Yang et al., 2015). Disamping itu keberhasilan penyambungan ditandai dengan terbentuknya pertautan yang sempurna antara batang bawah dan batang atas serta laju pertumbuhan bibit hasil sambungan (Ciobotari et al., 2010 dan Suharjo et al., 2017). 134
Terminologi Dalam membentuk sambungan yang sukses, adalah dengan menghubungkan atau memasangkan secara pas (fit) dua potong jaringan tanaman hidup bersama-sama dalam sebuah cara sedemikian sehingga mereka akan menyatu dan selanjutnya berlaku sebagai satu tanaman. Teknik apapun yang akan menghasilkan penyatuan tersebut dapat dianggap sebagai metode penyambungan, sehingga tidak mengherankan jika terdapat sangat banyak prosedur untuk penyambungan (grafting) yang diuraikan dalam literatur mengenai subyek penyambungan. Dengan berkembangnya waktu beberapa metode khas telah menjadi mantap yang memungkinkan para penyambung dapat mengatasi problem penyambungan dengan baik. Hal ini diuraikan dengan berbagai bukti bahwa terdapat banyak variasi dari setiap teknik penyambungan, dan adanya teknik penyambungan yang lain yang agak berbeda, tetapi dapat memberikan hasil yang sama. Ini adalah beberapa istilah dalam proses penyambungan dan okulasi: Scion (ada yang menyebut Cion) adalah sepotong pendek pucuk yang mempunyai beberapa tunas dorman yang dipisahkan dari tanaman induk, yang pada saat disatukan dengan stock, menyusun bagian atas dari sambungan (graft) dan dari scion tersebut akan tumbuh batang atau cabang atau kedua-duanya dari tanaman yang disambung. Scion harus merupakan kultivar yang dikehendaki dan bebas dari penyakit. Stock (rootstock, understock) adalah bagian bawah dari sambungan yang berkembang menjadi sistem perakaran dari tanaman yang disambung. Ia dapat berupa bibit (seedling), stek berakar, atau tanaman rundukan (layered plant). Jika sambungan dilakukan pada bagian yang tinggi dari batang, seperti pada "top working", stock bisa terdiri dari akar, batang, dan cabang-cabang. Interstock (intermediate stock, interstem) adalah sepotong batang yang disisipkan di antara dua penyatuan sambungan antara scion dan rootstock. Interstock digunakan untuk beberapa alasan, seperti untuk menghindari inkompatibilitas antara stock dan rootstock, atau untuk memanfaatkan sifat-sifat pengendalian pertumbuhan pohon. Cambium (kambium) adalah jaringan tipis dari tanaman yang terletak antara kulti batang (bark; phloem) dan kayu (xylem). Sel-selnya adalah meristematik; mereka mampu membelah dan membentuk sel-sel baru. Agar penyatuan sambungan berhasil, adalah esensial bahwa kambium dari scion ditempatkan dengan menempel secara rapat dengan kambium dari stock. Callus (kalus) ada istilah untuk massa sel-sel parenkima yang berkembang dari dan sekitar jaringan tanaman yang terluka. Kalus terjadi pada pertautan (junction) dari penyatuan sambungan, muncul dari sel-sel hidup dari scion dan rootstock. Produksi dan saling-penguncian (interlocking) dari sel-sel 135
Gambar 4.1. Bagian Dari Kombinasi Penyambungan (Mata Sambung/Scion dan Batang Bawah/Root Stock) Semua teknik menggabungkan bagian-bagian tanaman disebut penyambungan, tetapi jika mata sambung yang digunakan hanya mengandung sebagian kecil kulit batang (kadang- kadang juga mengandung kayu) yang mempunyai satu mata tunas (bud), maka teknik penyambungan semacam itu disebut okulasi (budding). Menurut Rini (1990), penyambungan mutlak memerlukan batang atas dan batang bawah. Batang bawah disebut stock atau root stock atau onderstam, cirinya adalah batang ini masih dilengkapi dengan akar. Sedangkan batang atas yang disambung sering disebut entres atau scion. Batang atas dapat berupa potongan batang atau bisa juga batang yang masih berada pada pohon induknya. Kadang-kadang untuk penyambungan kita memerlukan batang perantara (interstock). Salah satu faktor yang sangat mempengaruhi keberhasilan dengan metode grafting adalah kesegaran batang atas (Adelina et al., 2009 dan Syah et al., 2009). Kesegaran batang atas berkaitan dengan kecukupan cadangan makanan/ energi berupa kandungan asimilat untuk pertumbuhan dan pemulihan sel-sel yang rusak akibat pelukaan, makin segar batang atas maka makin banyak pula cadangan energinya. Penggunaan dan pemilihan tipe batang atas yang baik dan mengetahui kapan batang bawah berada dalam stadia aktivitas vegetatif yang baik merupakan pertimbangan penting berhasilnya penyatuan sambungan, sehingga perlu diketahui sumber batang atas yang paling sesuai untuk disambung pada masingmasing varietas. Pertumbuhan bibit setelah penyambungan (tinggi batang atas dan lebar daun bibit) dipengaruhi oleh sumber batang atas yang digunakan. Asimilat dapat merangsang pembelahan, pembesaran dan deferensiasi sel, yang kemudian mendorong proses pertautan antara batang atas dan bawah (Sudjijo, 2009). Perbanyakan tanaman sering mengalami kegagalan contohnya pada durian, grafting durian mengalami kegagalan, diduga karena pemilihan batang bawah dan batang atas yang kurang tepat. Pemilihan batang bawah berkaitan dengan pertumbuhan tanaman dimana batang bawah berada pada kondisi aktif tumbuh ketika sel-sel membelah dengan cepat. Kondisi aktif tumbuh yang cepat terjadi pada waktu tanaman masih muda. Penggunaan batang atas dan batang bawah berhubungan dengan kompatibilitas. Penyambungan antara batang atas dengan batang bawah yang tidak sesuai akan menghasilkan bibit dengan pertumbuhan yang lambat, selanjutnya bibit 137
hasil sambungan akan mati. Sumber batang atas untuk dijadikan batang atas diperoleh dari berbagai jenis cabang tanaman durian yang diperkirakan masih memiliki enegi yang cukup untuk disambung. Penggunaan sumber batang atas belum spesifik bersumber dari cabang tertentu. Sumber batang atas potensial durian adalah cabang primer, sekunder, dan tersier yang memiliki keragaman kandungan makromolekul dan fitohormon. Kandungan makromolekul diperlukan sebagai penyedia energi dalam proses pembentukan kallus sedangkan fitohotmon mengontrol pertumbuhan dan perkembangan tanaman, dengan mempengaruhi pembelahan sel, perpanjangan sel dan diffferensiasi sel serta keberhasilan sambungan dan kompatibilitas. Kendala lain yang sering dihadapi ketika melakukan penyambungan dengan grafting atau penyambungan adalah jauhnya jarak antara pohon induk atau sumber batang atas dengan tempat atau lokasi kegiatan penyambungan, sehingga dibutuhkan waktu yang agak lama mulai dari pengambilan batang atas sampai dengan proses penyambungan. Kondisi ini menyebabkan kesegaran batang atas akan menurun karena adanya proses transpirasi dan respirasi selama penyimpanan yang selanjutnya akan menyebabkan rendahnya tingkat keberhasilan penyambungan. Selain itu jumlah batang bawah yang akan disambung sering dalam jumlah yang sangat banyak, sehingga tidak bisa dilakukan penyambungan dalam waktu sehari dan batang atas yang belum tersambung harus disimpan untuk keesokan harinya baru dilakukan penyambungan. Keragaman kandungan air, makromolekul dan auxin berbagai cabang durian akan memiliki tingkat daya simpan beragam dan akan menentukan keberhasilan penyambungan. Keunggulan teknik grafting atau penyambungan ini adalah dihasilkan tanaman yang memiliki perakaran yang kuat dan lebat serta menghasilkan buah yang serupa dengan pohon induknya sehingga sangat cocok diterapkan pada tanaman buah-buahan. Namun teknik ini juga memiliki beberapa kelemahan; hanya dapat dilakukan pada tanaman- tanaman berkayu, biaya yang cukup besar karena memerlukan banyak bibit-biji dan sekaligus pohon induk untuk batang atasnya, serta membutuhkan ketrampilan teknis yang baik agar keberhasilannya tinggi. Alasan mengapa dilakukan penyambungan dan okulasi: 1. 2. Melestarikan klon yang tidak mudah diperbanyak dengan stek, perundukan, pemisahan, atau cara-cara vegetatif lainnya. mengontrol variasi genetik tanaman yang dihasilkan misalnya dalam ukuran, rasa, warna, dsb. Dengan perbanyakan biji, variasi hasil sangatlah besar. gambar 4.2 Variasi hasil sangat besar pada perkembangbiakan dengan biji 138
3. 4. 5. Untuk memperoleh suatu kultivar sesuai dengan perlakuan yang diinginkan, misalnya, warna, ukuran, bentuk, ketahanan hama dan penyakit. Gambar 4. 3 Menciptakan kultivar yang sesuai dengan keinginan, baik dalam warna, bentuk dsb Menciptakan tanaman yang mempunyai kebiasaan tumbuh meninggi atau merunduk Gambar 4.4 Untuk Menciptakan Tanaman yang Mempunyai Kebiasaan Tumbuh Meninggi dan Merunduk Mendapatkan sifat-sifat menguntungkan (baik) dari rootstock (to create a novelty plants). Banyak tanaman yang berkualitas dan terpilih, misalnya tanaman buah, tanaman hias atau tanaman perkebunan, tidak dapat diakarkan dan diperlukan penyambungan pada rootstock agar bagus pertumbuhannya. 139
Gambar 4.5 Untuk menciptakan tanaman yang bernilai ekonomi dan estetik tinggi 6. Mengganti kultivar/varietas yang sudah tumbuh dengan baik, namun sifat-sifat yang dimilikinya tidak sesuai dengan yang diinginkan. Tanaman buah atau perkebunan, kadang hasilnya kurang diinginkan, atau merupakan kultivar tua yang kurang produktif, atau mempunyai kebiasaan tumbuh yang kurang menguntungkan, atau sangat rentan akan hama dan penyakit yang sedang berkembang. Sepanjang kompatibel, maka batang atas dapat disambung dengan kultivar yang dikehendaki. Gambar 4.6 Penyambungan untuk memperoleh tanaman yang dapat berproduksi dalam waktu yang cepat, misalnya topworking Gambar 4.6.a Penyambungan untuk mengganti tanaman yang kurang produktif dengan yang lebih produktif 140
Gambar 4.6.b Penyambungan Untuk Mengganti Tanaman Yang Kurang Produktif Dengan Yang Lebih Produktif Dengan Beberapa Varietas Dalan Satu Pohon 7. Mempercepat pertumbuhan tanaman 8. Dengan penyambungan akan menghasilkan buah lebih cepat. Waktu berbuah diperpendek karena bibit yang masih muda digunakan sebagai batang atas atau scion, sedangkan sebagai rootstock digunakan yang sudah tua secara anatomi dan fisiologis. Hal ini hanya dapat dilakukan jika faktor juvenilitas kurang berpengaruh. Memperoleh bentuk khusus dari tanaman 9. Dengan penyambungan terhadap beberapa jenis dapat diperoleh tanaman yang lebih baik, unik dan khusus; misalnya buah-buahan, pada tanaman hias seperti bougenville, yang disambung dengan bunga warna putih, merah, ungu dsb. Memperbaiki bagian pohon yang rusak Dalam kondisi tertentu bagian tanaman dapat saja rusak, baik karena faktor penyadapan, cuaca atau hama dan penyakit. Hal ini mengakibatkan satu tanaman dapat terganggu pertumbuhannya. Dengan penyambungan misalnya dengan sambung jembatan (bridge grafting) atau inarching, maka kerusakan tersebut dapat diperbaiki dan tanaman tersebut tetap tumbuh dengan baik. Gambar 4.7 Penyambungan untuk memperbaiki tanaman yang sudah dirusak 141
10. Mempelajari penyakit yang disebabkan oleh virus Karakteristik penyakit yang disebabkan oleh virus biasanya ditularkan waktu penyambungan. Hal ini memungkinkan dilakukannya pengujian untuk mendeteksi virus yang ada dalam tanaman, yang mungkin membawa penyakit tetapi menunjukkan sedikit atau mungkin tanpa gejala. 1. 2. Kelemahan Dari Proses Penyambungan dan Okulasi Hanya dapat dilakukan pada tanaman dikotil. Adanya incompatibilitas. Artinya dalam penyambungan dan okulasi sering adanya ketidaksesuaian antara batang bawah dan batang atas. Compability adalah kemampuan dua tanaman yang berbeda disambungkan bersama, untuk menyatu secara sukses dan berkembang secara memuaskan menjadi sebuah tanaman komposit. Rootstock dari batang atas dari tanaman yang masih mempunyai hubungan secara botani dekat, dapat dengan mudah menyatu menjadi sebuah tanaman. Sebaliknya, root stock dari batang atas dari tanaman yang tidak ada hubungan jika disambungkan akan rentan kegagalan. Namun demikian, karakteristik dari inkompatibilitas tidaklah begitu spesifik nyata, untuk banyak kombinasi biasanya kombinasi sambungan diantara keduanya. Gambar 4.8 Faktor-faktor Yang Mempengaruhi Keberhasilan Penyambungan Tanda-tanda incompability : 1. Daun menguning 2. Mati Pucuk 3. Kering dan mati root stock 4. Lemahnya penyatuan sambungan 5. Kematian dini dari penyambungan 142
Selain itu perlu ditekankan bahwa dalam penyatuan sambungan tidak ada tumpang tindih (intermigling) kandungan sel-sel. Sel-sel yang dihasilkan oleh rootstock dan batang masing-masing mempertahankan identitas dirinya sendiri. Proses-proses utama yang terjadi dalam penyembuhan luka adalah; a) Terjadinya kontak erat atas sejumlah besar daerah kambium dari batang atas dan rootstock dibawah kondisi lingkungan yang favorable. b) Produksi dan saling penguncian (interlocking) dari sel-sel parenkhim (jaringan kalus) yang dihasilkan oleh batang atas dan rootstock. c) Produksi kambium baru pada jalur ke kalus. d) Pembentukan xylem dan floem baru dari kambium vaskular pada jembatan kalus. Faktor-Faktor Yang Mempengaruhi Keberhasilan Penyambungan ➢ Inkompatibilitas Agar berhasil sebaiknya dipilih batang bawah dan batang atas yang mempunyai persamaan sifat-sifat vegetatif, kalau hanya pada klasifikasi botani sering penyambungan kurang berhasil. Kemungkinan keberhasilan penyambungan tanaman menjadi lebih kecil apabila dilakukan antar marga yang masih satu famili. Penyambungan antar famili keberhasilannya lebih rendah lagi. Agar keberhasilan lebih tinggi, maka sebelum penyambungan perlu dipertimbangkan penentuan batang bawah dan batang atas. Lapisan kambium dari batang atas harus diletakkan dengan tepat di lapisan kambium dari batang bawah Gambar 3.10 Anatomi Batang dan Anatomi Antara Root Stock dan Scion Harus Ditentukan Dengan Tepat oleh Lapisan Kambium 144
Gambar 4.11. Anatomi Batang Tanaman Dikotil dan Monokotil ➢ Tipe dari Grafting dan Jenis tanaman Tanaman Gymnospermae biasanya dilakukan penyambungan (grafting) sedangkan pada anggiospermae dilakukan penempelan (budding) Gambar 4.12 Beberapa tipe grafting/penyambungan dan budding okulasi ➢ Suhu Faktor suhu sangat mempengaruhi keberhasilan penyambungan < 320 F 45-500 F > 900 F > 1040 F : tidak ada kalus yang terbentuk : pembentukan kalus lambat : pembentukan kalus terhambat : sel kalus mati ➢ Status Air Di Tanaman Lapisan jaringan yang terpotong harus mempunyai kelembaban yang tinggi untuk proses pembentukan kalus. Untuk mencegah kehilangan air tanaman tersebut dapat disungkup dengan plastik atau scion dapat dilapisi dengan lilin. 145
Gambar 4.13 Beberapa cara untuk mengurangi kehilangan air pada tanaman Oksigen. Oksigen sangat diperlukan dalam penyatuan sambungan untuk memproduksi kalus. Hal ini disebabkan karena pembelahan sel yang cepat dan selanjutnya pertumbuhan sel disertai oleh respirasi yang tinggi dan memerlukan oksigen. Untuk penyembuhan luka sambungan diperlukan kelembaban yang tinggi dan oksigen yang juga tinggi. Cahaya. Cahaya sangat diperlukan dalam proses penutupan terutama pembentukan kalus. Cahaya yang tinggi biasanya diikuti dengan suhu yang tinggi akan menyebabkan kekeringan di daerah yang terluka. Ini karena sel-sel parenkhim adalah penyusun utama dari jaringan kalus yang mempunyai dinding sel yang tipis dan lunak, tidak tahan terhadap kekeringan. luka, ➢ Aktifitas Pertumbuhan Rootstock Pada saat akan melakukan penyambungan sangat perlu diketahui rootstock berada pada fase pertumbuhan apa. Hal ini disebabkan karena pada metode penyambungan dengan kulit batang atau dengan okulasi "T" sangat tergantung pada kelicinan kulit batang (slipping), yang berarti sel-sel kambium sedang aktif membelah, menghasilkan sel-sel muda berdinding tipis pada tiap-tiap sisi dari kambium. ➢ Teknik Perbanyakan Teknik perbanyakan yang kurang baik atau buruk akan mengakibatkan berkurangnya kambium dari rootstock dan batang atas atau entres yang bersatu. Meskipun penyembuhan luka terjadi di daerah ini dan pertumbuhan entres tetap berkembang, setelah daun berkembang luas dan pengaruhh lingkungan tinggi misalnya suhu yang tinggi yang mengakibatkan laju transpirasi juga menjadi tinggi, perpindahan air yang tinggi melalui melalui daerah penghubung yang terbatas tidak dapat berlangsung dan entres akhirnya teknik penyambungan, seperti mati. Kesalahan-kesalahan lain dalam 146
pemberian lilin yang jelek atau terlambat pemberiannya, potongan yang tidak rata atau kurang sempurna, atau menggunakan entres yang telah kering (terdesikasi) akan mengurangi keberhasilan penyambungan. ➢ Kontaminasi Virus, Hama, Penyakit ➢ Hormon dan Zat Pengatur Tumbuh Pada suatu percobaan dengan menggunakan zat pengatur tumbuh, khususnya auxin yang diaplikasikan pada luka tanaman, menunjukkan bahwa terdapat hubungan yang erat antara level IAA dan kinetin dalam produksi kalus pada segmen batang tembakau yang dipelihara dibawah kondisi terkontrol. ➢ Polaritas Dalam penyambungan dua potong jaringan batang secara bersama ujung yang morfologis proximal dari entres harus disisipkan ke dalam ujung yang secara morfologis distal dari rootstock. Tetapi dalam penyambungan sepotong jaringan batang pada sepotong akar, seperti yang dilakukan pada penyambungan akar, ujung proximal entres harus disisipkan ke dalam ujung proximal dari sepotong akar. Gambar 4.14 Proximal-closer to root-shoot junction; distal-farther from root-shoot junction Hubungan Antara Batang Atas dan Batang Bawah (Pucuk-Akar) Penyambungan adalah penggabungan dua tanaman atau lebih, biasanya yang mempunyai kebiasaan tumbuh yang sama. Tanaman-tanaman ini, yang batang bawah atau pun yang batang atas, akan mempunyai pola pertumbuhan sendiri-sendiri; dan dalam penggabungan juga akan menghasilkan pola pertumbuhan yang berbeda dan tidak sama dengan ketika belum digabungkan. Setiap tanaman mempunyai pola pertumbuhan, nilai ekonomis dan nilai artistik. Beberapa karakteristik dapat sangat merusak dan perlu dihindari. Pola pertumbuhan semacam ini dapat disebabkan oleh : ➢ ➢ Reaksi incompatibilitas. Satu dari pasangan sambungan mempunyai satu atau lebih karakter specifik yang tidak ditemukan pada pasangan lainnya. Pola-pola pertumbuhan setelah penyambungan. Pola-pola pertumbuhan ini dapat berasal dari interaksi spesifik antara rootstock dan batang atas yang bisa mengubah ukuran, pertumbuhan, produktifitas dan kualitas buah dsb. Pada kenyataannya sulit untuk memisahkan yang mana dari faktor-faktor tersebut 147
yang berpengaruh dominan pada suatu sambungan tertentu yang ditumbuhkan pada kondisi lingkungan tertentu. Terdapat beberapa hubungan pengaruh antara batang atas dan batang bawah sebagai berikut. ❖ Pengaruh rootstock (batang bawah) terhadap kultivar batang atas ✓ Ukuran dan kebiasaan tumbuh Batang bawah sangat mempengaruhi ukuran dari batang atas. Hal ini biasa dilakukan pada tanaman buah-buahan. Misalnya untuk efek pengerdilan (dwarf), semi dwarf, kekar (vigorous), sangat tegar (super vigourous), dsb. Beberapa kasus juga terjadi untuk ketahanan terhadap hama, penyakit dan pada lingkungan stress misalnya penyambungan untuk memperoleh varitas yang tahan terhadap hama dan penyakit tetapi berumur genjah. Batang bawah dapat yang tahan terhadap hama dan penyakit tetapi batang atas adalah kultivar yang berumur genjah. Pada tanaman hias juga banyak dilakukan untuk memperoleh kultivar yang adaptif terhadap lingkungan tetapi pada batang atas mempunyai nilai ekonomis yang tinggi dari segi warna atau ketahanan bunga misalnya. Misalnya pada tanaman soka. Untuk batang bawah dipakai tanaman soka lokal biasanya soka lokal sangat kekar dan lebih tinggi, dan untuk batang atas digunakan tanaman soka hibrida yang pendek dan berbunga warna/i. Untuk soka misalnya, bunganya sangat spesifik antara hibrida dan lokal. ✓ Kegenjahan berbuah, pembentukan tunas buah, pembentukan buah dan hasil Jumlah buah dalam satu pohon sangat dipengaruhi oleh rootstock yang digunakan. Secara umum kegenjahan berbuah diasosiasikan dengan rootstock, pengerdilan, lambat untuk mulai berbuah diasosiasikan dengan rootstock yang vigourous. Namun hasil akhir adalah interaksi antara faktor genetis dan lingkungan. akibatnya ✓ Ukuran, kualitas dan kematangan buah. Terdapat variasi yang sangat besar antara species tanaman dalam hal pengaruh dari batang bawah terhadap karakteristik buah dan kultivar batang atas. Menurut Hartman dan Kestler (1983), tidak terdapat pengaruh pewarisan dari karakteristik buah yang akan diproduksi oleh rootstock ditemukan pada buah dari kultivar batang atas (scion). Meskipun tidak terdapat pengaruh karakteristik berbuah antara batang bawah dan batang atas, batang bawah tertentu dapat mempengaruhi kualitas buah dari kultivar batang atas. Terdapat translokasi senyawa antara root stock dan batang atas pada sambungan intergenerik pada familia Solanaceae (terung-terungan). Pada suatu seri penyambungan saling balik (reciprocal grafts) antara tomat dan tembakau, nicotine terdapat pada tanaman tomat pada waktu tomat disambung dengan 148
rootstock tembakau. Pada waktu tembakau disambung pada rootstock tomat, produksi alkaloid pada tembakau sangat berkurang. Perbanyakan dan sintesis alkaloid adalah pada penyatuan sambungan dan dalam batang tembakau dekat dengan sambungan. Lokalisasi semacam ini tidak ditemukan pada batang atas tomat pada rootstock tembakau. ❖ ❖ Pengaruh Batang Atas (Scion) Terhadap Batang Bawah. Menurut Daymond et al. (2002) dalam Yin (2004), pemilihan batang bawah pada metode perbanyakan vegetatif akan mempengaruhi keragaan batang atas, prekositas, dan hasil. Menurut Anita dan Susilo (2012), semakin besar diameter batang atas yang digunakan maka semakin besar kegagalan sambungan yang ditunjukkan dengan nilai korelasi negatif. Menurut Kurniawati et al. (2014) jika entres yang digunakan cepat menyesuaikan dengan batang bawah maka suplai unsur hara dan hasil fotosintesis berjalan dengan lancar sehingga pertumbuhan tanaman menjadi optimal. Pengaruh (Kultivar) Batang Atas Terhadap Batang Bawah. Adanya interaksi antara kedua batang yang digunakan dapat menimbulkan keragaman respons antara individu pada batang atas (Toruan-Mathius et al., 2007). Interaksi tersebut dapat dimanfaatkan untuk memperoleh kombinasi tanaman yang memiliki sifat pertumbuhan bibit yang gigas (Prawoto, 2008). Pada pengujian 21 kombinasi sambungan tanaman anggur juga menunjukkan adanya perbedaan kandungan unsur N, K, Mg, Na, Mn, Cu dan B dalam daun batang atas (Wutscher dan Shull, 1975) Pengaruh Intermediate Stock (Interstock) Terhadap Batang Atas (Scion) Dan Batang Bawah ❖ Sebagai contoh pada tanaman Kakao menurut Anita dan Susilo (2012): Perbedaan famili batang bawah berpengaruh nyata terhadap sifat daya hidup, diameter pertautan, dan tinggi tunas, sedangkan faktor klon batang atas berpengaruh terhadap karakter : Diameter batang (Scion diameter) • Diameter batang bawah (Root-stock diameter) • Tinggi tunas (Sprouted shoot height) • Diameter Pertautan (Lingkage) • Diameter Jumlah daun (Amount of leaves Rasio) • Diameter batang atas dan batang bawah (Diameter ration between root- stock and scion) Daya Hidup (Viability) Dari semua karakter tanaman kakao yang dijelaskan diatas, parameter utama yang mendukung keberhasilan sambungan pada kakao adalah diameter batang bawah dan rasio antara diameter batang atas dan batang bawah yang digunakan. Semakin besar diameter batang bawah semakin besar tingkat keberhasilan sambungan. Sebaliknya 149
bawah. Pelukaan di salah satu bagian akan mempengaruhi translokasi unsur hara, dan air. Hal ini disebabkan karena ; - pengurangan gerakan air dan unsur hara melalui potongan interstock. - terjadi perubahan pola distribusi fotosintat. terjadi pemblokan partial pada penyatuan sambungan Suatu studi pada tanaman apel Mc.Intosch terhadap translokasi dari Phospor P32 radioaktif dan kalsium Ca45 radioaktif dari akar ke pucuk yang ditumbuhkan dalam kultur larutan, menunjukkan bahwa tiga kali lebih tinggi dalam kedua unsur kimia tersebut dalam pucuk batang atas (scion) pada waktu digunakan rootstock vigourous dibanding jika disambung dengan rootstock kultivar kerdil. Hal ini mengindikasikan suatu kemampuan superior dari rootstock pengerdil. Atau hal tersebut hanya berarti bahwa akar kultivar yang kerdil dengan persentase yang tinggi dalam jaringan hidup membentuk suatu sink untuk mineral ini, mempertahankannya dalam akar. Beberapa hasil penelitian menunjukkan factor eksternal tanah, media tanam juga berpengaruh terhadap keberhasilan penyambungan. Menurut Sugiyarto (1994) batang bawah Rough Lemon dapat beradaptasi dengan baik pada daerah yang kadar lempungnya tinggi dan daerah yang salinitasnya tinggi, akan tetapi kurang baik pada daerah dingin dan tergenang. Batang bawah Rough Lemon lebih mampu beradaptasi dengan tanah yang kering dibandingkan dengan batang bawah Japanese Citroen, juga dijelaskan bahwa batang bawah Rough Lemon memiliki keistimewaan perakaran yang baik untuk lingkungan yang kekeringan, kelebihan air dan ketahanan terhadap hama dan penyakit tertentu. Batang bawah Rough Lemon tahan terhadap kekeringan sehingga dapat merangsang pembentukan buah pada batang atas lebih awal dan menghasilkan produksi tinggi dengan kualitas yang baik (Alifia, 2008). Selanjutnya juga dijelaskan jeruk ini mudah di sambung atau diokulasi dan daya adaptasinya luas terhadap berbagai jenis tanah. Perubahan Dalam Faktor-Faktor Tumbuh Endogenus Menurut Hartman dan Kestler (1983), terjadi perubahan pertumbuhan ketika cincin kulit batang muda dibalik posisinya atau ketika interstock digunakan karena interfensi pada translokasi dari hormon, unsur hara dan air dari daun ke akar. Terdapat faktor-faktor tertentu seperti vitamin B1 yang penting untuk pertumbuhan akar, dan apapun yang menghentikan atau mengurangi aliran hormon akan membatasi pertumbuhan root sock; pada akhirnya mempengaruhi penyatuan sambungan. Penggabungan antara klon batang atas dan klon batang bawah dapat terbentuk dengan cara membuat batang atas sedemikian rupa terjadi hubungan pada lapisan kambium batang atas dan batang bawah sehingga dapat menghasilkan sel parenkim yang disebut dengan kalus. Selsel parenkim dari klon batang atas dan batang bawah jalin-menjalin, tetapi masing-masing sel tidak melebur. Kalus kemudian berdeferensiasi membentuk kambium baru yang mengait dengan kambium asli. Sel-sel tersebut kemudian membentuk jaringan vasculer baru yaitu xylem dan floem sekunder. Sel-sel hidup parenkim (kalus) berasal dari sel pembuluh tipis dan xylem muda, sedangkan lapisan kambium hanya berperan kecil dalam perkembangan awal dari kalus (Hartman dan Kestler, 1983). 151
Perbedaan keberhasilan sambungan dan pertumbuhan yang terjadi pada perbedaan klon batang atas dan famili batang bawah menunjukkan bahwa masing- masing genotipe memiliki sifat dan keberhasilan sambungan yang berbeda. Ketidaksesuaian tersebut dapat disebabkan oleh perbedaan sifat antar genotipe yang digunakan, jauh dekatnya hubungan kekerabatan batang bawah yang digunakan dalam perbanyakan vegetatif mengakibatkan perbedaan struktur anatomi, sifat fisiologis, dan biokimiawi. Selain itu status nutrisi dan hormon serta umur batang bawah akan mempengaruhi perbedaan tingkat keeratan pengikatan sambungan (Prawoto, 1989), dan faktor tersebut merupakan faktor penentu keberhasilan sambungan (Ramadasan dan Arasu, 1976 dalam. Prawoto, 1989). Perbedaan persentase sambungan jadi pada masingmasing kombinasi penyambungan mengindikasikan adanya perbedaan jumlah kambium antar kombinasi perlakuan. Menurut Roselina et al. (2007), hubungan kambium yang rapat dan tepat dari kedua batang yang disambungkan mempengaruhi keberhasilan sambungan. Hartman et al. (1983) melaporkan bahwa jika pertemuan kambium dari batang atas dan batang bawah dalam penyambungan semakin banyak maka tingkat keberhasilan penyambungan akan semakin tinggi. Menurut Riodevrizo (2010), sel-sel kambium bersifat meristematis yang berarti mampu membelah diri dan membentuk sel baru. Jika pertemuan kabium pada klon batang atas dan batang bawah semakin banyak, maka penyambungan akan semakin berhasil. Hartman et al. (1983) mengemukakan bahwa keberhasilan sambungan salah satunya dipengaruhi oleh kompatibilitas (kesesuaian) antara batang atas dan batang bawah untuk menyatukan diri. Pina dan Errea (2005) menyatakan bahwa tahapan terjadinya kompatibilitas penyambungan diawali dengan terbentuknya sel-sel parenkim yang akan menghubungkan jaringan batang atas dengan jaringan batang bawah kemudian kalus terdeferensiasi menjadi jaringan pengangkut (phloem dan xylem). Kompatibilitas penyambungan terjadi apabila jaringan pengangkut tersebut dapat berfungi secara baik untuk menghubungkan jaringan bawah dengan batang atas. Selanjutnya dikatakan oleh Susilo dan Sobadi (2008) bahwa kompatibilitas penyambungan merupakan interaksi yang terjadi antara batang bawah dengan batang atas yang berpengaruh terhadap pertumbuhan bibit dan tingkat produksi tanaman. Terjadinya pembengkakan sejak awal pada daerah pertautan tidak menghambat pertumbuhan bibit. Pembengkakan tersebut mendukung pertumbuhan bagian atasnya Suatu percobaan menggunakan ZPT khususnya auxin pada luka, menunjukkan bahwa terdapat hubungan yang erat antara level IAA dan kinetin dalam produksi kalus pada segmen batang tembakau yang dipelihara dibawah kondisi terkontrol. Berbagai tipe rootstock kultivar kerdil dan kultivar vigourous dari rootstock ternyata mengandung jumlah yang berbeda dari zat pemacu atau zat penghambat pertumbuhan yang terjadi secara alami, dan sangat bervariasi tergantung kepada lingkungan yang dengan sendirinya dapat mengontrol penyatuan sambungan dan mempengaruhi juga pertumbuhan pucuk batang atas (scion). 152
METODE PENYAMBUNGAN Sambungan Lidah (Whip = tounge grafting) Metode ini sangat berguna untuk penyambungan bahan tanaman yang relatif kecil, dengan diamater 1-3 cm. Cara ini akan sangat sukses jika dikerjakan dengan tepat karena terdapat kontak kambium yang sangat banyak. Penyembuhan luka berlangsung cepat dan membuat penyatuan kuat. Lebih sesuai apabila diameter stock dan scion sama besarnya. Scion harus mengandung dua atau tiga tunas dengan sambungan dibuat pada internode yang halus dibawah mata tunas terbawah. Irisan yang dibuat di bagian atas dari stock harus tepat sama dengan irisan yang dibuat pada bagian bawah dari scion. ➢ ➢ ➢ ➢ Iris memanjang, rata dan miring sepanjang 2 - 3 cm. Potongan lebih panjang dibuat bila menggunakan tanaman yang lebih besar. Setiap potongan dibuat dengan sekali tekanan supaya permukaannya rata dan tidak kasar dan datar. Gunakan pisau yang tajam dengan satu kali tekanan sehingga irisan tidak bergelombang dan akan menhasilkan penyatuan yang memuaskan. Pada setiap permukaan irisan dibuat irisan balik. Irisan ini dimulai menuju ke bawah pada titik sekitar 1/3 dari ujung dan harus sekitar setengah panjangnya dari irisan pertama. Untuk memperoleh sambungan yang halus, pas, irisan kedua ini tidak hanya membelah kayu tetapi harus mengikuti sepanjang bawah irisan pertama. Untuk memperoleh sambungan yang halus yang paralel dengan irisan pertama tersebut. Stock dan scion selanjutnya saling disisipkan, dengan lidahnya saling mengunci. Adalah sangat penting bahwa lapisan kambium saling berpasangan (match), sepanjang paling sedikit satu sisi, lebih baik kalau dua sisi. Bagian bawah dari scion tidak boleh menggantung (overhang) pada stock, karena akan terjadi pembentukan pembengkakan kalus yang besar. Pada beberapa species pertumbuhan berlebihan dari kalus sering disebut sebagai kanker leher akar. Penggunaan scion yang lebih besar dari stock harus dihindari untuk menghindari hal seperti di atas. Jika scion lebih kecil dari stock, harus diletakkan pada satu sisi dari rootstock, sehingga lapisan kambium lebih match sepanjang sisi tersebut. Splice Grafting Metode ini sama dengan sambungan lidah tetapi yang membedakan adalah irisan kedua yang berbentuk lidah tidak dibuat di stock dan scion. Irisan tunggal miring dibuat sama panjang pada scion dan stock. Irisan-irisan tersebut dilekatkan bersama-sama atau diikat seperti pada sambung lidah. Metode ini sangat berguna untuk tanaman yang mempunyai batang dengan empulur tebal (pithy stem) atau yang punya kayu yang tidak cukup fleksibel untuk memungkinkan pemasangan sambungan dengan pas pada saat irisan lidah (tongue) disambungkan. 153
Gambar 4.15 Teknik Sambung Pucuk Pada Pepaya (Herry, 1989). Keterangan: Gambar 1 : Calon batang bawah dan batang atas harus seimbang ukurannya. Gambar 2: Pada cara sambung miring, batang bawah dan batang atas sama-sama disayat miring. Gambar 3 : Kalau sambungan sudah menyatu (± 3 bulan), tali pengikat boleh dibuka. Gambar 4 : Pohon pepaya hasil sambung belah tengah, bekas sambungannya mirip huruf *V* 154
5. 6. 7. Ikat bagian sambungan dengan tali rafia atau pita plastik yang terbuat dari kantung plastik es batu selebar satu cm. Untuk mengurangi penguapan, daun batang bawah dan batang atas yang masih ada dipotong sampai 1/3 bagian. Tutup pucuk tanaman sampai lokasi penyambungan menggunakan kantong plastik bening sebelumnya telah disemprot fungisida, lalu ikat bagian kantong plastik yang terbuka. Penutupan ini bertujuan menjaga kelembaban udara di tanaman, dan daerah sambungan, mempertahankan kesegaran pucuk mempercepat proses penyatuan sambungan. Letakkan di tempat teduh dan disiram setiap hari. Biasanya setelah 3 - 5 minggu mulai muncul tunas-tunas baru di batang atas. Saat itu ikatan plastik sudah dapat dilepas, tetapi kantong plastik tetap dibiarkan menutup pucuk batang atas, dan baru dibuka setelah daun-daun baru tumbuh sempurna. Dua sampai tiga bulan kemudian, pengikat dapat dilepas agar batang atas tumbuh dengan baik. Pelihara bibit sampai siap dipindahkan ke media pembesaran. Gambar (a) Gambar (b) Gambar (c) Gambar 4.16 Tahapan sambung pucuk (Evy, 2007) 156
Untuk mempercepat pertumbuhan sambung pucuk tanaman durian, perlu adanya zat pengatur tumbuh (ZPT), baik yang organik maupun yang anorganik. Salah satu alternatif zpt organik yang dapat digunakan untuk mempercepat adalah air kelapa. Air kelapa banyak mengandung persenyawaan komplek yang sangat bermanfaat dalam proses diferensiasi sel. Persenyawaan komplek tersebut adalah auksin, sitokinin, zeatin, vitamin, asam amino, unsur hara dan karbohidrat. Konsentrasi air kelapa 100% mampu merangsang saat pecah tunas tercepat. Kandungan hormon dalam air kelapa muda, dalam hal ini sitokinin berperan dalam proses metabolisme asam nukleat dan sintesis protein. Sitokinin ini juga sangat berperan dalam pembelahan sel tanaman, sehingga dapat meningkatkan laju pembelahan sel jaringan meristem pada ujung-ujung akar serta pada kambium menurut Ika et al., (2013), hormon sitokinin terlibat dalam berbagai aspek pada pertumbuhan dan perkembangan tanaman. Menurut Ika et al. (2013), tipe sambung tidak berpengaruh terhadap keberhasilan sambung pucuk durian, tetapi tipe sambung celah memiliki respon yang paling baik terhadap saat pecah tunas, jumlah daun dan diameter batang tanaman durian sambung pucuk dibandingkan dengan tipe sambung lainnya. Tipe sambung celah memiliki rerata jumlah daun terbanyak. Pada teknik sambung celah, bidang sambungan terutama pada batang bawah yang setelah dibelah langsung diselipkan batang atas sehingga peluang untuk terjadinya kekeringan kambium kecil sekali. Keadaan ini mendorong dengan cepat terjadinya proses pembelahan sel. Pada tanaman jeruk, awal pembelahan sel dimulai 24 jam setelah sambung (Hartmann dan Kestler, 1983). Konsentrasi air kelapa 25% dianggap konsentrasi yang paling tepat untuk mendukung pertumbuhan tanaman durian untuk membentuk daun. Franklin et al. (1991) berpendapat bahwa zat pengatur tumbuh efektif pada jumlah tertentu, konsentrasi tinggi dapat menghambat pertumbuhan, karena pembelahan sel dan kalus berlebihan sehingga mencegah tumbuhnya tunas akar. Sedangkan konsentrasi di bawah optimum tidak efektif. 157
Gambar 4.18 Tahap-Tahap Penyambungan Cleft Grafting Gambar 4.19 Tomat hasil sambung pucuk dengan kentang (Kinanti, 1992) 159
Gambar 4.20 Teknis pelaksanaan sambung pucuk pada kentang-tomat (Kinanti, 1992) 160
Gambar 4.21 Sambung pucuk pada bougenville 1. Persiapan bibit 2. Potong batang bawah atas 3.Potong batang 4. Masukkan tube kedalam batang 5. Masukkan batang atas ke tube 6. Pindahkan bibit 7. Pindahkan ke screen house 8. Penanaman di green house. 9. Tomat dewasa hasil sambung pucuk, berbatang dua. Gambar 4.22 Sambung pucuk pada tomat (Rizkika, 2006) 161
Gambar 4.23 Sambung pucuk pada durian menggunakan dua batang bawah (Adiwijaya, 2000) Keterangan: Selama ini penangkar durian menggunakan batang bawah asal biji. Dengan cara ini resiko ketidakseragaman batang atas dan batang bawah sangat besar, akibatnya kemampuan akar kurang bagus sehingga penyerapan hara terganggu. Untuk mengatasinya, digunakan dua batang bawah, secara teoritis penggunaan dua batang bawah menghasilkan tanaman yang lebih besar dan produksi buah lebih tinggi serta umur lebih seragam. Hal ini dapat dicapai apabila umur kedua batang lebih besar. Teknik membuat dua batang bawah adalah sbb; ❖ ❖ ❖ ❖ Pilih biji durian yang akan disemaikan, tunggu sampai umur 5 minggu (Gambar 4.23 -1) Setelah itu pilih bibit yang sehat, potong bagian atasnya, sisakan 8-10 cm. Demikian pula pada akar sisakan 5 cm di bawah pangkal akar untuk merangsang pertumbuhan akar baru yang lebih banyak (Gambar 2) Kemudian iris runcing ujungnya sepanjang 2-3 cm. Usahakan bila keduanya disatukan membentuk celah 'V'. Langkah berikutnya pilih batang atas dengan dua mata tunas yang sehat dan subur. Potong bagian atas batang, sisakan 5-8 cm. Bagian bawah diiris runcing sepanjang 2 - 3 cm seperti pada bibit. Begitu juga pada daun, potonglah sepertiga dari asalnya (Gambar 3) 162
❖ ❖ ❖ ❖ Langkah terakhir adalah memasukkan batang atas pada celah antara dua batang bawah. Usahakan bagian kambium batang keduanya dapat disatukan. Ikat dengan parafilm agar keduanya menempel rapat (Gambar 4). Pindahkan dalam polibag, siram air secukupnya dan tutup dengan tudung plastik untuk menjaga kelembaban (Gambar 5) 2 minggu kemudian buka tudungnya. Setelah tujuh bulan bibit sudah siap ditanam di kebun (Gambar 6) Parafilm dapat dibuka 2 - 3 bulan kemudian, apabila sambungan terlihat sudah kokoh dan menyatu. Cleft grafting Penyambungan ini merupakan metode yang paling luas digunakan, khususnya disesuaikan untuk mengerjakan top-working pada pohon, baik pada batang tanaman kecil atau pada cabang-cabang pohon besar. Cleft grafting juga sangat berguna untuk tanaman yang lebih kecil, seperti pada crown-grafting (penyambungan pada mahkota pohon) pada tanaman anggur yang sudah mapan atau pada tanaman camellias. Pada top- working pohon, metoda ini harus dibatasi pada cabang stock yang berdiameter 1 sampai 4 inci dan pada spesies yang kayunya berserat lurus sehingga akan membelah rata. Dalam membuat cleft graft, pisau berat seperti pisau daging, atau satu dari beberapa cleft-grafting digunakan untuk membuat belahan vertikal untuk jarak 2 sampai 3 inci ke dalam batang yang akan disambungkan. Hal ini dilakukan dengan memukulkan palu pada pisau. Sangat penting untuk mendapatkan cabang yang digergeji dalam posisi sedemikian sehingga ujung dari batang yang ditinggalkan rata/licin, berserat lurus, dan bebas benjolan sedikitnya 6 inci. Jika tidak, pada waktu belahan dibuat, belahan tersebut kemungkinan tidak lurus, atau kayunya akan belah dan kulit kayunya akan belah ke arah lain. Arah belahan harus tangetial ketimbang radial dalam hubungannya terhadap pusat dari pohon. Hal ini memungkinkan penempatan scion yang lebih baik untuk pertumbuhan scion selanjutnya. Kadang-kadang cleft dibuat dengan irisan gergaji secara longitudinal ketimbang dengan membelah. Setelah belahan yang bagus dan lurus dibuat, belahan tersebut dibuka dengan cara memasukkan obeng, pahat atau peralatan cleft- grafting untuk menahan bukaan tersebut terbuka. Biasanya dua scion disisipkan, satu pada setiap sisi dari stock dimana lapisan kambium terletak. Scion harus 3 sampai 4 inci panjangnya dan mempunyai dua atau tiga tunas. Bagian basal dari setiap scion harus dipotong menjadi seperti pasak panjang, sedikit miring (sloping) sekitar 2 inci panjangnya. Tidak perlu bahwa pasak membentuk runcingan. Sisi dari pasak yang nantinya akan diletakkan luar dari stock dibuat sedikit lebar dibanding sisi yang akan ada di dalam. Dengan demikian, pada saat scion disisipkan dan alat pembuka belahan stock diambil, tekanan penuh dari stock yang terbelah akan menyebabkan scion pada posisi dimana kambium stock menyentuk lapisan kambium pada sisi luar dari scion. Karena kulit batang stock akan selalu lebih tebal dari pada kulit batang scion, biasanya perlu untuk menempatkan permukaan luar dari scion sedikit lebih dalam daripada permukaan luar dengan maksud untuk memasangkan dengan tepat lapisan-lapisan kambium. 163
Catatan: Untuk semua tipe penyambungan, scion harus disisipkan dengan arah yang benar. Titik dari tunas-tunas pada scion harus mengarah menjauhi stock. Kelalaian memperhatikan hal ini menyebabkan kegagalan sambungan untuk tumbuh. Sambung Samping (side cleft grafting). Sambung samping dilakukan dengan menyambungkan potongan pucuk batang atas ke bagian sisi batang bawah yang pucuknya tidak dipotong. Dibandingkan dengan sambung pucuk, perbanyakan ini memiliki tingkat keberhasilan yang lebih tinggi karena batang bawah masih memiliki tajuk yang lengkap sehingga proses fotosintesis untuk menghasilkan makanan dapat berlangsung dengan baik. Perlu diperhatikan, diameter pucuk batang atas harus lebih kecil daripada diameter batang bawah agar proses pertautan tidak terganggu. Jika batang atasnya lebih besar, tidak akan menempel erat pada batang bawah. Ada berbagai variasi dari side grafting namun ada tiga yang terpenting dan paling banyak digunakan karena sangat tinggi tingkat keberhasilannya dan hampir semua tanaman berkayu dapat menggunakan cara ini untuk penyambungan. Cara melakukan sambung samping: 1. 2. 3. 4. 5. 6. Potong pucuk batang atas sepanjang 7,5 cm. Sayat serong pucuk batang atas pada kedua sisinya sampai membentuk seperti mata baji atau huruf 'V'. Sayat kulit samping batang bawah dengan arah dari atas kebawah. Posisi bidang sayatan 15 - 30 cm dari leher akar: atau 2 - 3 cm di atas batang batang yang berwarna hijau kecoklatan. Kemudian buang lidah sayatan, tetapi sisakan sedikit untuk tempat menyelipkan batang atas. Selipkan pangkal pucuk batang atas ke sayatan batang awah. Posisi mata baji tepat berada di dalam lidah sayatan. Ikat erat bidang sambungan tersebut dengan tali rafia atau pita plastik dari bawah keatas dan sebaliknya. Bungkus pucuk batang atas dengan menggunakan plastik. Letakkan bibit di tempat teduh dan disiram setiap hari. Biasanya 3 - 5 minggu kemudian sudah mulai muncul tunas-tunas baru pada batang atas. Saat itu ikatan sudah dapat dilepaskan. Dua atau tiga bulan kemudian setelah penyambungan, bekas sambungan sudah sembuh dan batang atas sudah tumbuh baik. Saat itu bagian atas batang bawah, tepat di atas bekas sambungan dapat dipotong dan diolesi fungisida untuk menghindari serangan jamur. Buka plastik pembungkus batang atas, lalu biarkan bibit sampai luka potongan benar-benar sembuh. 7. 164
Gambar 4.24 Teknik Sambung Samping Pada Kakao (Anonymous, 1996) Perlakuan pada batang bawah: A. Tanaman pokok B. Tanaman pokok dikerat 40-60cm dari atas tanah. C. Kulit dikelupas selebar 1cm dan panjang 2-4cm. D. Keratan diambil dengan tujuan untuk mempermudah membuka kulit. E. Gambar kulit yang sudah dikelupas dan tidak dipotong. Gambar 4.25 Pengambilan entres Keterangan: B. Ranting plagitrop yang akan digunakan untuk sambungan dengan panjang lebih kurang 40 cm, yang terdiri sekitar 15 mata tunas. Dua mata tunas di bagian pangkal dan 3 mata tunas bagian ujung dibuang. B. Bagian tunas bahan sambungan, terdiri dari 8 mata tunas, dapat digunakan untuk 2 sambungan. C. Bagian pangkal bahan sambungan disayat miring sepanjang 2-3 cm, untuk perekatan dengan tanaman pokok. 165
Gambar 4.26 Teknik sambung samping pada jeruk (Abdurrahman, Sudiyanti, dan Basuno., 2007) → → 166
→
→ Gambar 4.27 Teknik sambung samping pada mangga (Fendy, 2001) Keterangan gambar: ialah Teknik sambung samping atau sambung sisi (side cleft grafting) menyambungkan pucuk entres pada bagian samping batang bawah. Di Thailand, teknik ini banyak dipakai untuk menghasilkan bibit bermutu. Kondisi batang bawah pada saat penyambungan masih tetap utuh, tidak ada pengurangan daun atau pemangkasan pucuk. Dengan demikian proses penyambungan bagian batang atas dan batang bawah berlangsung lebih cepat. Tingkat keberhasilan penyambungan lebih baik. Tahapan pelaksanaannya sebagai berikut. 1. Buat sayatan sepanjang 6 cm-8 cm pada bagian sisi batang bawah. 2. Kupas kulit pada bagian yang disayat dari atas ke bawah sepanjang bekas sayatan. 3. Potong ½ atau 2/3 bagian kulit yang dikelupas hingga sisanya 4. Ambil pucuk entres sepanjang 5 cm-l0 cm.Sebelumnya daun-daun yang ada di bagian itu dipangkas sampai ketiak daun. 5. Sayat miring kedua sisi pangkalnya ssehingga membentuk mata baji. Usahakan sayatan pada salah satu sisi lebih panjang dibanding sisi lain. 6. Selipkan pucuk entres pada bagian kulitbatang bawah yang dikupas. Posisi pangkal entres yang disayat panjang menghadap ke dalam. 167
7. Ikat bagian sambungan dengan pita plastik dari bawah ke atas, hingga membentuk susunan genteng. Namun, ujung entres tidak sampai terbungkus plastik agar tunas tumbuh bebas. 8. Sambungan berhasil bila terlihat tunas mulai tumbuh di ujung entres. Ujung batang bawah dapat dipotong. Ikatan dibuka 2 - 3 bulan kemudian. Sambung Susu (Approach Grafting) Bila suatu tanaman disayat batangnya dan luka tanaman tersebut disatukan dengan luka sayatan yang telah dibuat pada pohon induknya, kemudian tempat perpaduan tersebut diikat erat sampai beberapa waktu; ini disebut penyusuan. Sifat yang mencirikan cara penyambungan ini adalah dua tanaman yang independen (tidak saling bergantung) dan menopang kehidupannya sendiri. Setelah penyatuan terjadi, bagian atas dari tanaman stock dibuang, di atas sambungan dan pangkal dasar dari scion dibuang di bawah scion. Kadang-kadang pembuangan bagian tersebut perlu dilakukan secara bertahap. Ini memberikan cara untuk membentuk penyambungan yang sukses antara tanaman tertentu yang sulit disambungkan. Biasanya penyambungan dengan cara ini dilakukan dengan salah satu tanaman berada di dalam polibag atau pot atau kedua tanaman di dalam polibag atau pot. Penyambungan akan lebih berhasil apabila dilakukan pada fase pertumbuhan aktif dari tanaman. Pada penyambungan dengan cara ini, permukaan irisan harus disatukan dengan erat dengan lilin atau parafin untuk mencegah pengeringan jaringan. Bila suatu tanaman disayat batangnya dan luka tanaman tersebut disatukan dengan luka sayatan yang telah dibuat pada pohon induknya, kemudian tempat perpaduan tersebut diikat erat sampai beberapa waktu, disebut penyusuan. 168
Hasil teknik penyusuan duduk Hasil teknik penyusuan gantung Tipe penyusuan: Susuan duduk untuk mendekatkan batang bawah dengan cabang induknya dibuat para- para dari bamboo. Batang bawah kemudian di taruh diatas para-para dan di susukan dengan cabang pohon induk. Susuan gantung disebut demikian karena batang bawah yang akan disusukan didekatkan dengan cabang pohon induk dengan posisi menggantung, dan polybag batang bawah dikatkan pada cabang batang atas Pada penyusuan, tanaman muda dan batang masih berhubungan erat dengan perakaran masing-masing; dengan demikian kebutuhan makannya masih dari pohon induk masing-masing. Setelah beberapa waktu ketika dua bagian tanaman tersebut mampu menyatu dan tumbuh subur, baru tanaman muda tersebut dipisahkan dengan cara memotong di atas sambungan. Untuk tanaman atau ranting atau dahan pokok yang kita sambungkan tadi dipotong di bawah sambungan. Gambar 4.28. Tahapan dalam penyambungan susu (Anonymus, 2007) 169
Gambar 4.29 Sambung Susu Tipe Sambung Lidah Pada Nangka Perhatikan bahwa yang berfungsi sebagai batang bawah adalah tanaman muda, sedangkan batang atasnya adalah cabang dari pohon induk. Karena prosesnya seperti ini maka disebut dengan penyusuan, dan bibit yang dihasikan disebut bibit penyusuan. Menurut beberapa pakar dan praktisi, cara ini mempunyai tingkat keberhasilan yang cukup tinggi. Kelebihan dengan cara ini adalah tidak perlu mencari calon batang bawah. Gambar 4.30. Sambung Susu Tipe Sambung Lidah Pada Nangka (Utami. 2004.) 170
Gambar 4.31 Penyusuan tipe sambung lengkung pada putsa (Rachman dan Syaifera. 2006) 171
Gambar 4.32 Penyusuan tipe sambung lengkung pada durian. (Anonymus, 1984) Ada dua model penyusuan yang banyak digunakan yaitu penyusuan duduk dan penyusuan gantung. Disebut susuan duduk karena tanaman muda yang disusukan didudukkan di atas para-para atau di atas tanah didekat tanaman calon batang atas. Untuk susuan duduk, tanaman untuk batang bawah ditanam dalam kantung plastik atau keranjang yang berisi tanah bercampur pupuk kandang atau media yang sesuai dengan tanaman yang akan disambung susu. Untuk susuan gantung, tanaman calon batang bawah sebaiknya ditanam dalam kantong plastik. Sebagai medianya dapat berupa moss atau sabut kelapa. Bila bahan tidak ada dapat juga berupa kiambang atau eceng gondok yang telah dikeringkan terlebih dahulu. Yang harus diperhatikan medianya harus ringan, sehingga bila disusukan dengan posisi menggantung pada cabang-cabang tanaman induk, cabang tidak akan patah. Cara penyambungan pada penyusuan ini ada dua macam, yaitu sambung lengkung dan sambung lidah. Perbedaan ini ada pada bentuk irisan. ❖ Penyusuan dengan sambung lengkung Penyusuan dengan cara sambung lengkung adalah batang tanaman muda disayat tipis kulit dan kayunya. Menyayat bisa dari arah atas ke bawah dan sebaliknya. Sewaktu mengiris atau menyayat harus hati-hati supaya tidak kena empulur (korteksnya), karena batang bawah bisa patah. Tepatnya ukuran sayatan untuk cabang yang berdiameter 0,8 - 1,2 cm. Hal yang sama juga dilakukan pada calon batang bawah ataupun batang atas. Jadi apabila panjang sayatan untuk calon 172
batang bawah 3 m, panjang sayatan calon batang atas 3 cm juga. Kesamaan ini juga berlaku untuk lebar, dan tebal sayatan. Bentuk sayatan yang baik adalah ujungnya membulat, tidak lancip. Permukaan sayatan rata, datar, halus dan bersih, sehingga apabila kedua cabang yang telah disayat tersebut ditempelkan dapat bersatu dengan baik, tidak ada rongga antar dua batang yang ditempelkan, dengan demikian kambium dari dua cabang ini dapat menyatu. Pas atu tidak perpaduan dapat diamati dengan melihat bersentuh tidaknya kulit kayu calon batang atas dan batang bawah. Bila kulit kayunya menempel, ini berarti perpaduan dua sayatan pas. ❖ Penyusuan dengan sambung lidah (tongue approach grafting) Bila batang tanaman yang akan disusukan berukuran lebih besar maka cara sambung susu tipe lidah adalah paling cocok. Cara pengirisannya lebih sulit dibandingkan dengan sambung lengkung, tetapi hasilnya lebih bagus karena dengan dengan cara ini ada tiga permukaan lapisan kambium yang berfungsi dalam penyatuan, bertemu. Caranya: Mula-mula batang tanaman muda diiris tipis kulit dan kayunya di bagian bawah sayatan diperdalam. Dengan demikian bentuk irisan akan berlawanan dengan tanaman muda. Kedua irisan yang sudah berbentuk lidah ini lalu ditautkan. Bila besar irisan sama pasti perpautannya cocok sehingga tidak terdapat lubang diantaranya. Selanjutnya susuan dibalut dengan tali rafia. Balutan harus rapat benar, oleh karena itu cara membalutnya harus sambil ditarik. Hal ini bertujuan agar kambium menjadi rapat. Pembalutan dimulai dari bawah ke atas (sistem genting), dimana tepi atas dari rafia yang dibawah ditutup (ditumpangi) oleh tepi bawah dari rafia di atasnya, dst. Dengan cara demikian diharapkan sambungan tidak akan terkena air hujan. Agar bagian yang disusukan tidak mengalami kekeringan, maka seluruhnya harus terbalut.
- 173
Gambar 4.35 Penyusuan lewat akar (root approach grafting) pada durian (Nyuwan, 2004) Bark Grafting Ada dua teknik menyambung tanaman dewasa yaitu sambung kulit atau bark grafting dan sambung tunas. Sambung kulit dilakukan dengan membuat sayatan kebawah pada kulit batang kemudian menyisipkan entres di kulitnya. Jika gagal, digunakan cara sambung tunas yaitu menyambung tunas baru yang tumbuh setelah pematangan batang. Umumnya tunas muncul 3 bulan kemudian dan siap disambung. Faktor yang mempengaruhi keberhasilan sambungan ini adalah entres. Pilih mata tunas dari cabang atau ranting generatif tua, mata tunas sudah pecah dan mulai tumbuh serta pertumbuhannya ke atas. Bila terlalu muda atau tumbuh ke samping pertumbuhan akan 175
kurang baik dan lambat berbuah. Waktu penyambungan sebaiknya pada awal dan akhir musim hujan. Pohon berdiameter 5-30 cm di potong setinggi 60-75 cm dari permukaan tanah. Bekas potongan kulitnya di sayat kebawah sepanjang lebih kurang 5 cm Entres varitas terpilih dipotong sepanjang 10 cm dan kedua sisi bagian pangkal di runcingkan. Buka sayatan kulit dan sisipkan 2- 3 entres Ikat dengan tali plastic es/raffia atau tali karet. 176
Bagian-bagian tanaman yanag terbuka ditutup dengan mengolesi lili atau parafin Gambar 4. 36. Teknis pelaksanaan sambung kulit = bark grafting pada durian (Agus, 2002) Stump Grafting Pada tanaman buah-buahan dikenal cara penyambungan yang populer dan tingkat keberhasilannya tinggi yang disebut dengan stump grafting (stump = bonggol), penyambungan ini memanfaatkan pohon-pohon tua. Tajuk pohon tua dipangkas secara bertahap sehingga hanya tersisa batang pokok dengan beberapa cabang besar. Stump ini akan menghasilkan tunas-tunas baru, tunas inilah yang akan diganti varietasnya dengan cara sambung pucuk (apical/ wedge grafting). Gambar 4.37. Penyambungan Dengan Stump Grafting Pada Mangga (Tirtawinata, 2001) 177
Beberapa keuntungan dari cara sambung pucuk ini adalah: Batang telah kokoh sehingga dapat mendorong pertumbuhan dan produktivitas tetap tinggi Akar tanaman telah tumbuh mapan. - Daya tahan terhadap lingkungan dan hama serta penyakit telah dievaluasi.. - Dapat mengabungkan beberapa varietas dalam satu pohon. Caranya:
Tanaman tua yang akan diremajakan dipangkas secara bertahap agar tidak stres dan mati. Sebelum memotong pilih cabang primer sebagai kerangka dasar pohon dan tempat untuk penyambungan. Biasanya dipilih 4 cabang besar berdasarkan arah Barat, Utara, Timur dan Selatan. Pemangkasan cabang-cabang dilakukan bergiliran setiap tiga bulan, sehingga peremajaan diharapkan selesai dalam satu tahun. Sebaiknya cabang barat yang pertama dipangkas. Dengan demikian cabang timur yang mendapat cahaya matahari tetap melakukan fotosintesis. Terakhir cabang timur dipangkas dan saat itu cabang barat dan utara telah cukup kuat untuk membantu mempertahankan pertumbuhan seluruh cabang. Letak pemangkasan cabang sekitar 2 m dari permukaan tanah. Sisakan sedikit daun. Penggergajian harus berhati-hati, caranya:
Potong sisi bawah sehingga membentuk setengah lingkaran. Lalu setengah lingkaran lagi pada sisi atas dengan jarak 5-10 cm dari lingkaran sebelumnya (lihat gambar), maksudnya agar cabang tidak merusak kulit, dengan luka memanjang. Luka besar akibat pemangkasan harus segera ditutup dengan cat anti air agar tidak membusuk dan diserang hama dan penyakit. Setelah beberapa minggu sejumlah tunas muda tumbuh pada bekas pangkasan tadi. Tunggu hingga daun-daun dewasa dan berwarna hijau tua. Setelah itu seleksi tunas yang layak dipertahankan tumbuh, sisakan tiga atau empat tunas yang mewakili arah yang berbeda. Tunas-tunas ini akan menjadi batang bawah untuk tempat penyambungan entres varietas yang baru. Kondisi tunas baru harus sehat dan segar. Ketika daun terakhir telah hijau tua dan mata tunas terakhir telah membesar, itulah saat terbaik untuk mengganti pucuk, karena energi baru telah banyak terkumpul. Caranya adalah sebagai berikut:
Potong pucuk yang akan diganti sepanjang 10 - 15 cm, lalu buat irisan membelah sepanjang 1-2 cm. Pangkal entres disayat berbentuk 'V' sepanjang 1 - 2 cm. 178
Entres disisipkan dicelah ranting yang telah dibelah. Ranting yang telah dibelah. Pertumbuhan entres diamati setelah 3 - 4 minggu, bila sambungan berhasil akan tampak tunas baru. Biarkan entres tumbuh di dalam sungkup hingga 3 - 4 minggu lagi atau sampai daun pertama berwarna hijau tua. Selanjutnya sungkup plastik dapat dibuka pada sore atau menjelang malam. Tunas sambungan baru akan tumbuh pesat karena batang bawah mendorong pertumbuhan dengan kuat. Dalam waktu satu tahun panjang cabang mencapai 1,5 - 2,0 m dan batang telah berkayu. Cabang-cabang ini akan segera berbuah pada musim berikutnya. Setiap cabang primer yang diremajakan dapat diganti dengan satu varitas sehingga dalam satu pohon dapat disambung dengan beberapa varietas. E F Gambar 4.38 Tahapan stump grafting pada mangga (Tirtawinata, 2001) Keterangan: E : Proses penyambungan dengan entres pilihan, sambungan dibungkus plastik dan koran. F : Penggergajian dilakukan bertahap setengah lingkaran pada sisi bawah setengah sisi atas. 179
Saw Kerf Grafting (A) (B) ( C ) (D ) (E) (F) Gambar 3.39. Saw Kerf Grafting Keterangan: A : Gergaji batang bawah untuk membuat tiga potongan, potong hampir ke tengah. B : Potongan kemudian dilebarkan dengan pisau tumpul untuk mencocokkan atau mengepaskan potongan dengan scion. C : Bagian atas dan bawah scion dipotong berbentuk baji dan lonjong ke bawah dan masuk kedalam. D sampai F: Memasukkan scion ke stock D : Apabila scion cocok dengan potongan distock, keduanya akan bertaut dengan baik dan aman, hanya apabila masuk dengan pas di stock. E : Tiga scion biasanya digunakan untuk satu batang bawah. Lapisan kambium dari F : scion dan stock harus sesuai dan pas. Penyatuan sambungan dan seluruh bagian sambungan scion ditutup dengan lilin untuk grafting 180
181
Gambar 4.40 Saw kerf grafting pada alpukat (Marfuah, 2000) Gambar 4.41 Alat untuk penyambungan 182
OKULASI Penempelan atau okulasi (budding) adalah penggabungan dua bagian tanaman yang berlainan sedemikian rupa sehingga merupakan satu kesatuan yang utuh dan tumbuh sebagai satu tanaman setelah terjadi regenerasi jaringan pada bekas luka sambungan atau tautannya.
bagian bawah (yang mempunyai perakaran) yang menerima sambungan disebut batang bawah (rootstock atau understock) atau sering disebut stock
bagian tanaman yang ditempelkan atau disebut batang atas, entres (scion) dan merupakan potongan satu mata tunas (entres) Dalam buku ini juga dibahas "Okulasi Cipaku" karena teknik okulasi ini banyak dikembangkan dan digunakan oleh petani penangkar bibit di daerah Cipaku dan sekitarnya, di daerah Bogor. Biasanya penangkar bibit melakukan okulasi pada saat batang bawah sudah sebesar ukuran pensil. Sedangkan okulasi Cipaku dilakukan pada batang bawah berukuran sebesar pangkal lidi, sehingga bisa menghasilkan bibit lebih cepat daripada sistem okulasi yang lama. Teknik okulasi cipaku ini adalah pengembangan teknik okulasi sistem Forkert. a. Syarat batang bawah untuk okulasi: Dapat menggunakan biji asalan atau "sapuan" untuk menghasilkan batang bawah, tetapi ada varietas durian yang baik khusus untuk batang bawah yaitu varietas bokor dan siriwig, karena biji besar sehingga mampu menghasilkan sistem perakaran yang baik dan tahan terhadap busuk akar. Berdiameter 3-5 mm, berumur sekitar 3 - 4 bulan. - Dalam fase pertumbuhan yang optimum (tingkat kesuburannya baik), kambiumnya aktif, sehingga memudahkan pengupasan dan proses merekatnya mata tempel ke batang bawah Disarankan penyiraman cukup (media cukup basah) - Batang bawah dipupuk dengan urea 1-2 minggu sebelum penempelan - Gunakan media tanam dengan komposisi tanah subur; tanah : pupuk kandang : sekam padi (1:1:1) Gunakan polybag ukuran 15 x 20 cm yang sanggup bertahan dari biji sampai 3 bulan siap tempel sampai dengan 3 bulan setelah tempel, setelah periode tersebut polybag harus diganti dengan ukuran yang lebih besar 20 x 30 cm, atau langsung ke polybag 30 x 40 cm tergantung permintaan pasar dan seterusnya makin besar pertumbuhan tanaman harus diimbangi dengan ukuran besar polybag. Kecuali untuk alasan 183
b. c. pengangkutan jarak jauh untuk efisiensi tempat kita gunakan polybag yang lebih kecil dari biasanya. Syarat batang atas untuk okulasi Entres yang baik adalah yang cabangnya dalam keadaan tidak terlalu tua dan juga tidak terlalu muda (setengah berkayu). Warna kulitnya coklat muda kehijauan atau abu-abu muda. Entres yang diambil dari cabang yang terlalu tua pertumbuhan lambat dan persentase keberhasilannya rendah. Besar diameter cabang untuk entres ini harus sebanding dengan besar batang bawahnya. Cabang entres untuk okulasi ini sebaiknya tidak berdaun (daunnya sudah rontok). Pada tanaman tertentu sering dijumpai cabang entres yang masih ada daun melekat pada tangkai batangnya. Untuk itu perompesan daun harus dilakukan dua minggu sebelum pengambilan cabang entres. Dalam waktu dua minggu ini, tangkai daun akan luruh dan pada bekas tempat melekatnya (daerah absisi) akan terbentuk kalus penutup luka yang bisa mencegah masuknya mikroorganisme penyebab penyakit (patogen). - Syarat lain yang perlu diperhatikan pada waktu pengambilan entres adalah kesuburan dan kesehatan pohon induk. Untuk meningkatkan kesuburan pohon induk, biasanya tiga minggu sebelum pengambilan batang atas dilakukan pemupukan dengan pupuk NPK. Kesehatan pohon induk ini penting karena dalam kondisi sakit, terutama penyakit sistemik mudah sekali ditularkan pada bibit. Entres diambil setelah kulit kayu cabangnya dengan mudah dapat dipisahkan dari kayunya (dikelupas). Bagian dalam kulit kayu ini (kambium) akan tampak berair, ini menandakan kambiumnya aktif, sehingga bila mata tunasnya segera diokulasikan akan mempercepat pertautan dengan batang bawah. Faktor penunjang keberhasilan okulasi Waktu terbaik pelaksanaan okulasi adalah pada pagi hari, antara jam 07.00 - 11.00 pagi, karena pada saat tersebut tanaman sedang aktif berfotosintesis sehingga kambium tanaman juga dalam kondisi aktif dan optimum. Diatas jam 12.00 siang daun mulai layu. Tetapi ini bisa diatasi dengan menempel di tempat yang teduh, terhindar dari sinar matahari langsung. Kebersihan alat okulasi, silet yang akan digunakan langsung kita belah dua saat masih dalam bungkusan kertas, sehingga silet kita tetap dalam kondisi bersih; satu belahan kita gunakan sedangkan belahan lainnya kita simpan untuk pengganti belahan silet pertama apabila dirasa sudah tidak tajam lagi. Perawatan alat okulasi, setelah digunakan silet dibersihkan dan dibungkus lagi dengan kertas pembungkusnya agar tidak berkarat. 184
Petani terampil dengan satu silet mampu digunakan untuk 100 s/d 200 kali okulasi sehingga dengan dua bagian silet mampu dihasilkan 200 s/d 400 okulasi dalam sehari (10 jam kerja). Seorang pembibit yang berpengalaman menempel dalam 1 jam mampu mengerjakan sekitar 40 tempelan. Kerja mulai jam 06.00 - 12.00 (6 jam) dilanjutkan jam 13.00 17.00 (4 jam), sehingga 10 jam dalam 1 hari dihasilkan 10 x 40 = 400 tempelan. Pembuatan tali plastik dari kantong plastik berukuran ½ kg (12 x 25 cm) atau 2 kg (20 x 35 cm). Gunakan plastik yang tahan santan dan minyak. Membuat irisan memanjang dengan lebar 0,5 - 1 cm. Pengirisan dengan silet, yang bergeraknya plastik bukan siletnya. Untuk pemula pengirisan plastik bisa beralaskan papan atau kaca, sedangkan yang sudah biasa pengirisan kantong plastik dapat langsung di atas paha kita. Menghitung kebutuhan plastik, 1 kantong plastik ukuran ½ kg menjadi 12 irisan bolak-balik sehingga menjadi 24 irisan x 3 bagian (8 cm) dihasilkan sekitar 72 tali plastik x ¼ kg (isi 140 lembar) maka dihasilkan 10.080 tali plastik, sedangkan 1 kantong plastik ukuran 2 kg menjadi 20 irisan bolak-balik sehingga menjadi 40 irisan x 4 bagian (8 cm) dihasilkan sekitar 160 tali plastik x ¼ kg (isi 60 lembar) maka dihasilkan 9.600 tali plastik. Harga ¼ kg kantong plastik Rp 3.000,-, ¼ kg plastik ukuran ½ kg berisi 140 kantong plastik dan ¼ kg plastik ukuran 2 kg berisi 60 kantong plastik. Membersihkan jari direntangkan dan diketek-ketek atau digerakkan biar menjadi bersih, jangan dilap. Biasanya kantong plastik yang telah diiris menjadi tali plastik, kita gosok-gosokkan ke telapak tangan kita agar tidak licin / lebih kesat. tali plastik dengan cara dipegang dengan d. Cara okulasi 1. Perlakuan pendahuluan Batang bawah dengan polybagnya dipegang dan diangkat sedikit ke atas lalu ditekan miring ke bawah sehingga posisi tanaman dan polybagnya menjadi miring ke arah luar, agar memudahkan mencari posisi batang yang akan ditempel dan pengerjaan penempelan, gerakan ini juga mampu menjatuhkan embun atau air yang melekat di daun, agar lebih banyak embun/air yang jatuh, gerakan batang bawah sekali lagi dengan tangan. - Batang bawah dibersihkan dari kotoran atau debu dengan cara mengusap dengan ibu jari atau telunjuk tangan kita pada bagian yang akan dibuat sobekan untuk okulasi 2. Pembuatan sayatan untuk tempat menempel entres Lihat dan perhatikan bagian batang bawah yang akan dijadikan tempat okulasi 185
Penentukan tempat sayatan/kupasan/sobekan/ setinggi 3 kali tinggi/panjang silet dari batas batang dan akar, karena bila okulasi pertama gagal setelah 3 minggu kita bisa mengokulasi lagi tepat berjarak sepanjang silet di bawah luka okulasi pertama pada sisi yang berlawanan. Kalau okulasi ke-2 masih gagal dalam 3 minggu berikutnya kita dapat mengulang untuk yang terakhir kali atau yang ke-3 berjarak sepanjang silet pada sisi yang berlawanan pada okulasi ke-2 atau sama sisi dengan okulasi ke-1. Kalau itu pun gagal kita bisa gunakan alternatif dengan teknik sambung pucuk atau kita menunggu tanaman tumbuh lebih tinggi. Tetapi jangan melakukan okulasi 2 atau 3 sekaligus pada tanaman karena itu akan membuat stress tanaman. tempat okulasi, buat Panjang silet sekitar 4 cm, sehingga jarak tempat okulasi pertama adalah setinggi sekitar 12 cm di atas batas akar dan batang. Buang daun di bawah posisi tempat sayatan, untuk memudahkan penempelan atau tidak menghalangi pandangan. 3. Menempelkan mata entres ke sayatan batang bawah Ambil sayatan mata entres, masukkan, lekatkan, tempelkan dan tancapkan dan tekan entres pada sisa sobekan di batang bawah. Prinsipnya semakin cepat penempelan dari pengambilan entres semakin baik, persentase jadinya semakin tinggi. 4. Pengikatan Ambil tali dan tarik tali plastik yang disiapkan untuk pengikatan, pengikatan dari bawah tempelan melingkar ke atas dimulai sekitar 0,5 cm di bawah sayatan/jendela, tali plastik disusun saling tumpang tindih seperti menyusun genting, pengikatan dengan hati-hati jangan terlalu kencang (mengganggu proses penyatuan batang bawah dan entres), atau kurang kencang/kendur (air bisa masuk ke luka tempelan, sehingga menganggu penempelan) gunakan perasaan dalam mengikat. Pengikatan di dekat mata entres harus lebih hati-hati, ikat bagian bawah mata entres menuju bagian atas mata entres, ikat arah menyilang menuju bawah mata entres, ikat bagian bawah mata entres, kembali menyilang ke atas mata entres usahakan sekitar mata entres teriakt sempurna sehingga air tidak masuk ke dalam tempelan. Lanjutkan pengikatan ke arah atas sampai ikatan menutupi 0,5 cm di atas luka sayatan batang bawah, lalu kunci ikatan dan tarik tali plastik dan potong/rapikan sisa tali plastik. - Mata entres yang besar atau menonjol, semisal pada durian tidak ditutup tali plastik saat pengikatan, tangkai daun dipotong penuh / biasanya tangkai daunnya sudah tanggal dengan sendirinya bila mata entres sudah besar. Mata entres yang masih kecil ditutup dengan tali plastik, tetapi disiasati dengan menyisakan potongan tangkai daun dibawahnya agak panjang 186
sedikit, sehingga walaupun ditutup tetapi sisa potongan tangkai daun masih mampu melindungi mata entres kecil dari tekanan pengikatan tali plastik sehingga cukup ruang untuk tumbuh dan mata entres tidak patah. Jika mata tunasnya tidak menonjol seperti pada mangga dan jeruk, mata tunas boleh ditutup rapat dengan pita plastik e. Kegiatan sesudah okulasi Untuk mendorong tumbuhnya mata tunas atau pertumbuhan batang bawah seimbang antara pertumbuhan ke atas dan menyamping, sehingga cukup makanan untuk proses melekatnya tempelan entres, dilakukan pemotongan pucuk (titik tumbuh) batang bawah setelah penempelan. - Biasanya 2-3 minggu kemudian mata okulasi mulai tumbuh dan dimulailah pembukaan entres. Kita buka ikatan paling atas dengan silet dan dilanjutkan dengan memutar tali ikatan berlawanan dengan arah pengiktatan secara pelahan dan hati-hati ke arah yang lebih bawah. Tanda dari keberhasilan okulasi adalah mata entres yang ditempelkan tetap hijau, segar, tidak kering atau tidak patah. Mata tunas tumbuh, kalaupun belum kelihatan tumbuh dapat dengan menggores sedikit permukaan sayatan mata entres yang kita tempel apabila tetap segar/hijau berarti tempelan jadi. Tempelan yang gagal mata tempelnya akan berwarna coklat kehitaman. Setelah mata tunas okulasi mempunyai 2 - 3 helai daun yang dewasa dan siap berfotosintesis, lakukan pemotongan kira-kira 2-3 cm di atas mata okulasi batang bawahnya. Agar pertumbuhan mata tunas batang atas tidak terganggu, tunas yang tumbuh dari batang bawah harus dibuang. 187
f. Pemeliharaan bibit setelah okulasi Penyiraman paling lama 2 hari sekali, dilihat ada tidaknya hujan, yang harus diingat bahwa tanaman yang kita tempel mengalami pelukaan / stess sehingga memerlukan makanan, air dan perawatan yang lebih. - Pemupukan dapat dilakukan dengan menggunakan pupuk daun seperti Atonik, Metalik atau Gandasil D dengan konsentrasi 2 cc/l air atau menggunakan pupuk NPK (15 :15 :15 ) dengan konsentrasi 1 - 2 g/l air. Pemberian pupuk ini dilakukan seminggu sekali. Selain pemupukan dapat juga diberikan melalui tanah dengan dosis 1 - 2 gram per tanaman yang dilakukan sebulan sekali. Penyemprotan dengan insektisida apabila terdapat hama. Biasanya hama yang menyerang tanaman di pembibitan adalah kutu perisai, kutu putih dan ulat daun. Insektisida yang digunakan, misalnya Supracide 25 WP, Decis 2.5 DC, Reagent 50 SC atau Decis 2.5. EC, Matador, Kanon dengan konsentrasi 2 cc/l air. Perlu ditambahkan perekat semisal Sunstick, apabila penyemprotan pada musim hujan. Penyemprotan dengan fungisida apabila terdapat serangan penyakit lodoh/busuk daun, gejala bercak-bercak hitam pada permukaan daun, daun melipat dan melekat satu sama lainnya, selanjutnya daun menjadi kecoklatan, kering dan mati. Biasanya penyakit yang menyerang tanaman di pembibitan terutama yang disebabkan oleh Rhizoctonia sp, Phytophthora sp, Fusarium sp dan Phytium sp. Bibit yang terserang supaya tidak menular segera dipisahkan dari kelompok yang masih sehat, kemudian seluruh bibit disemprot dengan Antracol 70 WP, Dithane M- 45 80 WP, Benlate dengan konsentrasi 2 cc/l atau 2 g/l air. Penyemprotan diulang seminggu sekali. 188
Berdasarkan penjelasan sebelumnya tentang perbanyakan tanaman secara vegetative, maka tabel di bawah ini menjelaskan beberapa jenis tanaman dan kesesuaian dalam perbanyakannya. Tabel 4 Jenis tanaman dan cara perbanyakan vegetatif yang sesuai Jenis Tanaman Okulasi Sambung Penyusuan Stek Cangkokan Alpukat Belimbing Cempedak Duku Durian Jambu Air Jambu biji Jambu bol Jeruk Kapulasan Mangga Manggis Melinjo Nangka Rambutan Sirsak Sukun + Keterangan: + (baik), kurang baik (0), gagal (-) + + + 0 + + + - + + + - - + + + + + + + + + - + + + - + - - - + + + + + + + + + + + + -- - - 0 - - - - + + 0 + - 0 - - - + + 0 0 0 0 + + + + + + - - - + + 189
DAFTAR PUSTAKA Abdurahman, Sudiyanti, dan Basuno. 2007. Teknik Okulasi Jeruk Manis dengan Perlakuan Masa Penyimpanan dan Media Pembungkus Entres yang Berbeda. Buletin Teknik Pertanian, 12 (1) : 10-13 Adelina, E, Y. Tambing dan M. S. Saleh. 2009. Potensi pengembangan perbanyakan vegetatif durian. In Hasil-Hasil Penelitian dan Pengembangan Di Sulawesi Tengah, pp:122-`129. Adinugraha, H.A., B. Leksono dan F. Halang. 2005. Keberhasilan Tumbuh Beberapa Klon Jenis Eukaliptus Dengan Penerapan Dua Teknik Sambungan. Jurnal Penelitian Hutan Tanaman Vol 2: 96-102. Alifia, U. 2008. Pengaruh Interstock terhadap Pertumbuhan Vegetatif dan Generatif Jeruk Besar Kultivar Nambangan dan Cikoneng. Skripsi. Fakultas Pertanian Institut Pertanian Bogor. Anita, S. I., dan A. W. Susilo. 2012. Keberhasilan Sambungan pada Beberapa Jenis Batang Atas dan Famili Batang Bawah Kakao. Pelita Perkebunan 28 (2): 326-31 Anonymus, 1984. Penyusun Tipe Sambung Lengkung Pada Durian. Anonymous, 1996. Teknik Sambung Samping Pada Kakao. Trubus 314: 80. Anonymous, 2007. Tahapan Sambung Samping. Trubus. Adiwijaya, D. 2000. Durian Sistem Dua Batang Bawah. Trubus 370. Agus, S., H. 2002. Ganti Varietas Kebun Durian. Trubus 392. Ciobotari, Gheorghii, M. Brinza, A. Morariu, dan G. Gradinariu. (2010). Graft Incompatibility Influence on Assimilating Pigments and Soluble Sugars Amount of Some Pear (Pyrus sativa) cultivars. Notulae Botanicae Horti AgrobotaniciCluj- Napoca 38 (1): 187-92. Devi R., Sukarman dan Melati. 2006. Pengaruh Baatang Atas dan Bawah Terhadap Keberhasilan Penyambungan Jambu Mete (Anacardium esculenta L.). Jurnal Littri 12(1):32-37 Dirgahani P., H. Gustia dan Y. Suryati. 2016. Pengaruh Panjang Entres Terhadap Keberhasilan Penyambungan Tanaman Alpukat (Persea Americana Mill.) Jurnal Agrosains dan Teknologi. Vol. 1(1):31-44. Eko W., I. Permanasari dan E. Aryanti. 2017. Perbedaan Batang Bawah dan Masa Penyimpanan Entres Terhadap Pertumbuhan Okulasi Bibit Jeruk Siam Madu (Citrus Nobilis). Jurnal Agroteknologi, Vol. 8 (1) : 35 - 40 Evy, A. 2007. Tahapan Sambung Pucuk. Trubus. 441. 190
Fendy R.P. 2001. Cobalah Sambung Samping Pada Mangga. Trubus 374: 28. Franklin P.O., P. R Brent, L M Roger . 1991. Fisiologi tanaman budidaya. Jakarta (ID): Universitas Indonesia (terjemahan). Hartman, H. T. and D. E. Kestler. 1983. Plant Propagation Principles and Practices. Prentice Hall Inc. Englewood Cliffs. New Jersey. Herry, S. 1989. Pepaya Bisa Disambung: Sambung Pucuk. Trubus 240 Ika T. Y., Sulanjari dan E. Yuniastuti. 2013. Pengaruh Pemberian Air Kelapa dan Tipe Sambungan terhadap Keberhasilan Sambung Pucuk Durian (Durio zibethinus M.). Agrosains 15(2): 46-49, 2013. Indah A. S. dan A. W. Susilo. 2012. Keberhasilan Sambungan Pada Beberapa Jenis Batang Atas dan Famili Batang Bawah Kakao (Theobroma cocoa L.) Pelita Perkebunan 28(2): 72-81. Kinanti, R. 1992. Tomtang, Tomat Hasil Sambung Pucuk Dengan Kentang. Trubus 272: 55 Kurniawati, D., M, Santoso dan E, Widaryanto. 2014. Pertumbuhan Jenis Mata Tunas Pada Okulasi Beberapa Klon Tanaman Karet (Hevea brasiliensis Muell. Arg). Jurnal Produksi Tanaman, 6 (1) : 532- 539. Larekeng, Y., S. Samudin, dan H. Barus. 2014. Kajian Berbagai Lama Penyimpanan Batang Atas Terhadap Hasil Sambung Samping Kakao Klon Sulawesi. Mitra Sains 5 (1): 89-97. Marfuah, P. 2000. Top Working: Alpukat Ganti Kelamin. Trubus 418: 58 - 59. Mashudi, 2013. Pengaruh Provenan dan Komposisi Media Terhadap Keberhasilan Teknik Penunasan Pada Stek Pucuk Pulai Darat ( Miq.). Balai Besar Penelitian Bioteknologi dan Pemuliaan Tanaman Hutan. Jurnal Penelitian Hutan Tanaman Vol. 10 (1): 25-32. Naala F., D. Saptadi dan S. Ashari. 2017. Pengaruh Ketinggian Batang Bawah Terhadap Keberhasilan Tumbuh Durian Kleting Kuning Dalam Sistem Top Working. Jurnal Produksi Tanaman. Vol. 5(3): 404-409. Nyuwan, S.B. 2004. Selamat Berkat Donor Saudara Kandung. Trubus 419. Pendas. 2013. Budidaya Tanaman Kakao. Bogor Pina, A dan P. Errea. 2005. A Review of New Advances In Mechanism Of Graft Compatibility-Incompatibility. Scientia Horticulturae 106:1-11. Prawoto, A. 2008. Penelitian Sambungan Kakao di Pembibitan. Pelita Perkebunan (5): 47-51. 191
Rahardjo, M dan E. Djauhariya. 2009. Pengaruh Umur Batang Bawah Dan Lama Penyimpanan Batang Atas Terhadap Keberhasilan Grafting Tanaman Mengkudu. In Prosiding Seminar Nasional Tumbuh Obat Indonesia, pp:87-95. Rachman, D. dan Syaifera, E. 2006. Bila Cangkok Telah Menthok, Lakukan Sambung Susu. Trubus 4: 60. Rini, W. 1990. Mencangkok Diffenbachia. Trubus 245:168. Riodevriza. 2010. Pengaruh Umur Pohon Induk terhadap Keberhasilan Stek dan Sambungan Shorea Selanica BI. Departemen Silvikultur. Fakultas Kehutanan Institut Pertanian Bogor. Bogor. Rizkika, K. 2006. Tomatnya Disambung Saja. Trubus 442:151 Roselina, M.D., B. Sriyadi, S. Amien dan A. Karuniawan. 2007. Seleksi Batang Atas Kina (Chinchona Ledgeriana) Klon QRC Dalam Pembibitan Stek Sambung. Zuriat (18): 192-200. Selvy H., R. Poerwanto, Sobir, A. Purwito dan T. M. Ermayanti. 2013. Pengaruh Batang Bawah dan Jenis Tunas pada Mikrografting Manggis (Garcinia mangostana) secara In Vitro. J. Agron. Indonesia 41(1): 47 - 53. Sembiring D.S.P.S dan L. Yanti. 2017. Pengaruh Pemilihan Mata Entres Yang Berbeda dan Teknis Pengirisan Mata Entres Terhadap Keberhasilan Sambung Pucuk Kakao (Theobroma cacao L). Jurnal Agroteknosains Vol. 1(1): 12-22 Sudarsono, A. 1988. Pembiakan Vegetatif pada Tanaman Buah-buahan. Bahan Ajar . Faperta Univ. Brawijaya, Malang. Sudjijo. 2009. Pengaruh Ukuran Batang Bawah Dan Batang Atas Terhadap Pertumbuhan Durian Monthong, Hepe, dan DCK-01. Jurnal Hortikultura 19 (1): 89-94. Suharjo, A. Bahrun dan L. O. Safuan. 2017. Effect of Source and Storage Times of Scion To Carbohydrate, Protein, Lipids, and Auxin Content at Durian Nursery (Durio Zibethinus. Murr). International Journal of Recent Advances in Multidisciplinary Research 04 (09): 2819-2824. Suharsi. 2013. Pertumbuhan Mata Tunas Jeruk Keprok Hasil Okulasi Pada Berbagai Media Tanam dan Umur Batang Bawah. Ilmu Pertanian Indonesia (JIPI). Vol 18 (2): 97-100. Suhendi, D., A.W. Susilo dan S. Mawardi. 2004. Daya Gabung Karakter Pertumbuhan Vegetatif Beberapa Klon Kakao (Theobroma cacao L.). Zuriat Vol 15: 125- 131. Sugiyarto, M. 1994. Deskripsi Beberapa Varietas Batang Bawah dan Varietas Jeruk Komersial. Balit. Hort. Solok. 20 hal. Susilo, A.W. dan Sobadi. 2008. Analisis Daya Gabung Kompatibilitas Penyambungan Bibit Antara Beberapa Jenis Klon Batang Atas dan Famili Batang Bawah. Pelita Perkebunan (24): 175-180). 192
Sutami, M. Athailah, M.S.N. Gusti. 2009. Pengaruh Umur Batang Bawah dan Panjang Entres Terhadap Keberhasilan Sambung Bibit Jeruk Siam Banjar Label Biru. Agroscientiae 16(2): 146-154. Syah, J dan M Anwaruddin. 2008. Pengaruh Lama Penyimpanan Entris Terhadap Keberhasilan Sambung Pucuk Beberapa Varietas Avokad. Jurnal Hortikultura 18 (4): 402-8. Syah, M A., R. Poerwanto, T. Purnama, F. Usman dan I. Muas. 2009. Pengaruh Posisi Sayatan dan Penyisipan Entris Pada Batang Bawah Terhadap Keberhasilan Penyambungan dan Kecepatan Pertumbuhan Benih Manggis. Jurnal Hortikultura 17 (4): 328-34. .2007.p. Syariefa, E. 2004. Bibit Lengkeng Di Bawah Lindungan Sungkup. Trubus 419. Taylor. 1987. Introduction to Plant Propagation. Prentice Hall Inc. Englewood Cliffs. New Jersey. Tirtawinata, M. R. 2001. Kembali Remaja Berkat Stump Grafting. Trubus 376: 74-75. Toruan-Mathius NT, Siti-Chalimah, Muhadiono, L. Aznam, S. Haran. 2007. Kultur Akar Rambut In Vitro Serta Pemanfaatan Kultur Ganda Untuk Pertumbuhan dan Perkembangan Endomikoriza (Gigaspora sp. dan Acaulospora sp.). Menara Perkebunan 75(1): 20-31 Utami, K.P. 2004. Cara Bibitkan Nangka. Trubus 480. Vural, U., H. Dumanoglu and V. Erdogan. 2009. Effect of Grafting/Budding Techniques and Time on Propagation of Black Mulberry (Morus Nigra l.) in Cold Temperate Zones. Propagation of Ornamental Plants 8 (2): 55-58. Waard, P.W.F. and R. Zaubin, 1983. Callus Formation During Grafiting of Woody Plant. Abstract on Tropical Agriculture. W.H. Freeman & Co. San Fransisco. 594p. Wutscher, H.K. dan A.V. Shull. 1975. Yield, Fruit Quality, Growth, and Leaf Nutrient Level of 14 Year Old Grapefruit Citrus Paradisi Mac. Trees on 21 Rootstock. J. Amer. Soc. Hort Sci., 100, 290-294. Yang, Y., M. Linyong, Y. Jittayasothor, Y. Kang, C. Jiao, Z. Fei, and G. Zhong. 2015. Messenger RNA exchange between scions and rootstocks in grafted grapevines. BMC Plant Biology 15: 251-54. Yin, J.P.T. 2004. Rootstock Effects on Cocoa in Sabah, Malaysia. Expl. Agric., 40, 445- 452. Yoga, A. 2013. Respon Pertumbuhan Bibit Kakao (Theobroma cacao L.) Terhadap Pemberian Pupuk Kompos. [Skripsi]. IPB. Bogor. Yufdi M.P, dan Ernawati. 1987. Pengaruh air kelapa terhadap pertumbuhan setek lada (Pipernigrum L.). Balai Penelitian Tanaman Rempah dan Obat 12(34): 89-93. 193
Zaubin dan R. Suryadi. 2002. Pengaruh Topping, Jumlah Daun dan Waktu Penyambungan Terhadap Keberhasilan Pengembangan Jambu Mete di Lapangan. Jurnal Penelitian Tanaman Industri 8 (2) : 55 - 59. 194
BIODATA PENULIS Made Deviani Duaja, lahir di Makassar pada tanggal 8 Maret 1964. Menyelesaikan pendidikan S1 (1986) di Universitas Nusa Cendana, Kupang, S2 (1990) dan S3 (1995) di Universitas Padjadjaran, Bandung. staf pengajar Program Studi Saat Agroekoteknologi Fakultas Pertanian Universitas Jambi. Penulis mengampu berbagai mata kuliah di antaranya mata kuliah Pembiakan Vegetatif. Penulis juga aktif melakukan penelitian dan menulis artikel ilmiah di berbagai jurnal terutama yang berkaitan dengan pupuk organik dan teknik pembiakan vegetatif. ini penulis adalah 195
BIODATA PENULIS ELIS KARTIKA lahir di Sumedang pada tangaal 16 November 1963. Pendidikan S1 (1987), S2 (2004) dan S3 (2006) diselesaikan di Institut Pertanian Bogor. Saat ini penulis adalah staf pengajar Program Studi Agroekoteknologi Fakultas Pertanian Universitas Jambi. Penulis mengampu berbagai mata kuliah di antaranya mata kuliah Pembiakan Vegetatif, Fisiologi Tumbuhan, Teknologi Benih, Biokimia Tanaman, Botani, Teknik Budidaya Tanaman aktif Perkebuann, Agroklimatologi, Biologi. Penulis melakukan penelitian dan menulis artikel ilmiah di berbagai jurnal terutama yang berkaitan dengan mikoriza, pupuk organik dan teknik pembiakan vegetatif. juga 196
BIODATA PENULIS GUSNIWATI lahir di Solok pada tangal 15 Agustus 1961. Penulis menyelesikan Pendidikan S1 pada Tahun 1986 di Universitas Jambi pada jurusan Budidaya Pertanian, S2 pada tahun 1994 di Universitas Andalas. Saat ini penulis adalah staf pengajar Program Studi Agroekoteknologi Fakultas Pertanian Universitas Jambi. Penulis mengampu berbagai mata kuliah di antaranya mata kuliah Pembiakan Vegetatif, Agroklimatologi, Ekologi Tanaman, Dasar-Dasar Agronomi, Teknologi Hayati, Teknik Budidaya Tanaman Perkebunan, Botani dan Biologi. 197