Savana Cendana 6 (4) 57-60 (2021) Jurnal Pertanian Konservasi Lahan Kering International Standard of Serial Number 2477-7927 Pematahan Dormansi Benih Cabai Rawit Lokal (Capsicum frutescens L.) Asal Kecamatan Insana Tengah Kabupaten Timor Tengah Utara dengan Aplikasi Plant Growt Promoting Rhizobacteria (PGPR) Laudius Nahaka a Fakultas Pertanian, Universitas Timor, Kefamenanu, TTU - NTT, Indonesia, email: Article Info Abstrak Article history: Received 16 Desember 2020 Received in revised form 28 Maret 2021 Accepted 30 Juni 2021 DOI: Keywords: Capsicum frutescens L. PGPR Dosis Lama perendaman. Penelitian ini bertujuan mengetahui respon benih terhadap perlakuan yang digunakan dan lama perendaman benih yang tepat terhadap benih cabai rawit lokal. Penelitian ini telah dilaksanakan pada bulan Agustus-September 2020 di laboratorium Fakultas Pertanian, Universitas Timor Kelurahan Sasi, Kecamatan Kota Kefamenanu, Kabupaten TTU. Rancangan yang digunakan dalam penelitian ini adalah Rancangan Acak Lengkap (RAK) pola faktorial. Faktor pertama dosis PGPR yang terdiri dari 3 perlakuan yaitu tanpa PGPR kontrol, PGPR 25g/5 L dan PGPR 50 g/5 L. Faktor kedua adalah lama perendaman yang terdiri dari 3 perendaman yaitu perendaman 90 menit, perendaman 120 menit dan perendaman 150 menit. Terdapat 9 kombinasi perlakuan yang diulang 3 kali sehingga seluruhnya terdapat 27 satuan percobaan. Hasil penelitian menunjukkan Respon benih cabai rawit lokal terhadap dosis PGPR dan waktu perendaman menunjukkan tidak terjadi interaksi tetapi terjadi interaksi pada parameter Potensi Tumbuh Maksimal. Perlakuan tanpa PGPR (Ko ntrol) memberikan hasil terbaik dan berbeda nyata dengan perlakuan PGPR pada parameter pengamatan indeks vigor, berat kering kecambah normal sedangkan parameter pengamatan lain tidak berbeda nyata. Perlakuan lama waktu perendaman PGPR terhadap benih cabai tid ak berbeda nyata kecuali pada parameter pengamatan indeks vigor dengan lama waktu perendaman 90 menit maupun pada parameter pengamatan berat kering kecambah normal yang tidak berbeda nyata dengan lama perendaman 120 menit. 1. Pendahuluan Cabai rawit adalah salah satu tanaman hortikultura yang mempunyai harga jual yang sangat tinggi ketika permintaan dari konsumen yang sangat banyak dan penyediannya lebih sedikit dari permintaan. Cabai rawit termasuk golongan spesies atau family solanaceae. Menurut Cahyono (2003), cabai rawit lokal sebagai salah satu tanaman hortikultura dari famili solanaceae yang memilki nilai ekonomi yang sangat tinggi. Cabai rawit dapat dikategorikan tanaman umur panjang karena bisa bertahan hidup sampai satu tahun dan memiliki umur panen berkisar 3-4 bulan setelah tanam. Alif (2017), cabai rawit berumur panjang, dapat hidup sampai umur satu tahun dan dapat dipanen pada umur 4-5 bulan. Tanaman cabai rawit mempunyai khasiat atau sebagai obat- obatan yang bisa mengobati penyakit kanker karena mengandung capsaicin. Selain itu tanaman cabai rawit mengandung banyak vitamin yang terkandung dalam buahnya. Dormansi dapat dinyatakan sebagai kondisi terjadinya hambatan perkecambahan yang disebabkan embrio mengalami belum matang dan beberapa kendala seperti kulit atau adanya suatu zat atau materi yang menutupi jaringan benih (Baskin dan Baskin, 2005). Tipe dormansi benih berbeda antara semua jenis benih. Cabai rawit lokal termasuk salah satu benih yang mempunyai masa dormansi lama. Hal ini terjadi karena benih cabai rawit tergolong benih yang berkulit keras. Kulit benih yang keras menghambat proses penyerapan air dan gas kedalam benih untuk mempercepat proses kecambahan. Jäkel and Witzler liar capsicum memiliki (2018) melaporkan bahwa kultivar varietas perkecambahan yang lama. Dormansi yang pada umumnya dialami oleh benih cabai rawit berlangsung selama satu atau dua minggu bahkan sampai beberapa bulan (Siginingsih, 2014). Hal ini dipengaruh oleh faktor-faktor penghambat perkecambahan benih seperti kulit benih. Sombalatu et al, 2017 menyatakan bahwa dormansi yang pada umumya oleh benih cabai rawit lokal yaitu dormansi fisik kulit benih. Barchenger dan Bosland (2016) melaporkan bahwa capsaicin merupakan metabolisme sekunder yang berperan dalam metabolisme dan merupakan penyebab dormansi pada beberapa kultivar cabai. Benih cabai liar dilaporkan mengalami dormansi benih (Quintaro et al., 2018). Benih tanjung memiliki kulit biji yang keras dan pada daging buah yang tebal terdapat senyawa aromatik inhibitor yang menghasilkan aroma tertentu didalam biji yang menjadikan salah satu faktor penyebab dormansi (Winarni, 2010). Upaya pematahan dormansi dapat dilakukan secara fisik yaitu skarifikasi, perendaman air panas dan pelukaan di sekitar embrio serta dapat dilakukan juga secara kimiawi yaitu penggunaan H2SO4, KNO3, HCl dan hormon Giberelin (Sandi et al., 2014). Untuk meningkat proses perkecambahan pada benih yang memilki dormansi yang lama dengan melakukan pematahan dormansi pada benih. 83.33%, daya kecambah 46.67%, nilai penundaan perkecambahan 16.67% dan indeks vigor 26.67% (Rahayu, 2013). Salah satu bahan yang digunakan untuk pematahan benih adalah Plant Growth Promoting Rhizobacteria (PGPR). PGPR merupakan salah satu bahan organik hayati yang mampu memberikan pertumbuhan serta hasil pada tanaman yang baik. Menurut (Loon, 2007) PGPR merupakan mikroba tanah yang terdapat pada akar tanaman dan dapat meningkatkan pertumbuhan dan perlindungan terhadap patogen tertentu. Selain pada pertumbuhan tanaman PGPR bisa membantu dalam proses perkecambahan pada benih. Hal ini terjadi karena terdapat beberapa hormon tumbuh pada PGPR yang mampu percepat dalam proses perkecambahan, pertumbuhan dan hasil. Menurut Rahni (2012), mengemukakan bahwa PGPR dapat memproduksi fitohormon yaitu IAA, sitokinin, giberelin, etilen dan asam absisat, dimana IAA merupakan bentuk aktif dari hormon auksin yang dijumpai pada tanaman dan berperan meningkatkan kualitas dan hasil panen. Berdasarkan kandungan yang dimiliki oleh PGPR tentu mempunyai peran dan fungsinya masing-masing. Ketika PGPR akan digunakan dalam proses perkecambahan tidak lagi mengherankan karena mempunyai hormon yang berperan sebagai pemacu perkecambahan yaitu sitokinin dan giberelin. Pernyataan ini dapat didukung oleh Krishnamoorthy (1981), bahwa hormon giberelin berperan sebagai katalisator dalam perubahan pati menjadi glukosa yang oleh benih digunakan untuk pertumbuhan dan perkembangan embrio menjadi kecambah. Prinsip dari PGPR berdasarkan kandungan tersebut tentu sudah memberikan satu harapan yang pasti yaitu memberikan keuntungan. Hal ini diperkuat oleh Figueiredoet al., (2010) bahwa prinsip pemberian PGPR adalah meningkatkan jumlah bakteri yang aktif di sekitar perakaran tanaman sehingga memberikan keuntungan bagi tanaman. Keuntungan penggunaan PGPR adalah meningkatkan kadar mineral dan fiksasi nitrogen, meningkatkan tolerasi tanaman terhadap cekaman lingkungan, sebagai biofertiliser, agen biologi kontorol, melindungi tanaman dari patogen serta peningkatan produksi Indol-3-Acetic Acid (Figueiredoet al., 2010). Berpijak dari upaya untuk mematahkan dormansi benih yang lama, maka penelitian ini bertujuan untuk mengetahui respon benih terhadap perlakuan dosis PGPR yang digunakan dan untuk mengetahui lama perendaman benih dalam PGPR yang tepat terhadap benih cabai rawit lokal. 2. Metode Pematahan dormansi benih merupakan salah satu cara atau metode yang digunakan untuk mempercepat proses perkecambahan dari benih yang dibudidayakan. Dalam proses pematahan dormansi benih tentu mempunyai teknik atau metode yang berbeda tergantung pada bentuk fisik benih. Perlakuan yang umum dilakukan untuk dormansi kulit benih adalah perendaman dengan air panas, skarifikasi mekanik dan kimia serta aerasi udara panas (Olmezet al., 2007). Perlakuan perendaman dengan air dapat dilakukan untuk memecah kulit biji dan memudahkan embrio menyerap air. Metode skarifikasi secara mekanis dan kimia (perendaman air panas dan bahan kimia) merupakan teknik yang digunakan untuk memecah dormansi (Mousavi, 2011). Hasil penelitian Lensari (2009) perlakuan pematahan dormansi pada benih Angsana dengan perendaman H2SO4 1% selama 10 menit dan perendaman dengan KNO3 1% selama 24 jam mampu meningkatkan daya perkecambahan biji Angsana. Hasil penelitian Azad et al. (2010) bahwa perlakuan perendaman benih Melia azedarach dengan air suhu 80ºC dapat meningkatkan perkecambahan (69%) dibandingkan dengan perendaman air dingin (39%). Penggunaan H2SO4 20% dapat mematahkan dormansi pada benih Aren (Arenga pinnata) dan meningkatkan potensi tumbuh Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Agustus-September 2020 yang bertempat di laboratorium Fakultas Pertanian Universitas Timor Kelurahan Sasi, Kecamatan Kota Kefamenanu, Kabupaten Timor Tengah Utara (TTU). Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah benih cabai rawit yang berasal dari daerah TTU. Rancangan yang digunakan dalam penelitian ini adalah Rancangan Acak Lengkap (RAK) pola faktorial. Faktor pertama dosis PGPR yang terdiri dari 3 perlakuan yaitu tanpa PGPR kontrol (D0), PGPR 25g/5 L (D1) dan PGPR 50 g/5 L, (D2). Faktor kedua adalah lama perendaman yang terdiri dari 3 perendaman yaitu perendaman 90 menit (T1), perendaman 120 menit (T2) dan perendaman 150 menit (T3). Kedua faktor ini akan diulang sebanyak 3 kali dengan kombinasi D0T1, D0T2, D0T3, D1T1, D1T2, D1T3, D2T1, D2T2, D2T3 peralkuan ini di ulang sebanyak 3 kali. sehingga seluruhnya terdapat 27 satuan percobaan. Data hasil pengamatan pengujian pematahan dormansi benih cabai rawit lokal dianalisis menggunakan analisis ragam. Hasil analisis yang menunjukkan pengaruh nyata dilanjutkan dengan uji Duncan Multiple Range Test (DMRT). L. Nahak / Savana Cendana 6 (4) 57-60 57
Savana Cendana 6 (4) 57-60 (2021) Jurnal Pertanian Konservasi Lahan Kering International Standard of Serial Number 2477-7927 3. Hasil dan Pembahasan 3.1. Hasil Potensi Tumbuh Maksimum (%) Potensi Tumbuh salah (Sutopo, 2004). Besarnya nilai PTM satu parameter viabilitas benih menunjukkan kondisi viabilitas benih yang tinggi (Justice dan Bass, 2002). PTM berarti benih yang dapat tumbuh, baik yang tumbuh normal maupun tumbuh abnormal pada batas tertentu. Analisis sidik ragam (Anova) menunjukkan terjadi interaksi (P<0.05) antara perlakuan dosis PGPR dengan waktu perendaman terhadap parameter PTM. Aras perlakuan dosis PGPR dan waktu perendaman berpengaruh nyata dalam menghasilkan PTM. Pada perlakuan tanpa PGPR (kontrol) memberikan nilai tertinggi yaitu 44,33 % dan waktu perendaman 150 menit memberikan nilai tertinggi 41.78 % (Tabel 1). Maksimum (PTM) merupakan Keserempakan Tumbuh Sadjad (1993) menyatakan, nilai keserempakan tumbuh berkisar antara 40 % -70 % tergolong tinggi, dan nilai keserempakan tumbuh lebih dari 70% mengartikan bahwa vigor kekuatan sangat tinggi. Pertumbuhan kecambah secara serempak menandakan kekuatan tumbuh suatu benih tinggi (Sadjad, 1994). Analisis sidik ragam (Anova) menunjukkan tidak terjadi interaksi (P>0.05) antara perlakuan dosis PGPR dengan waktu perendaman terhadap keserempakan tumbuh. Aras perlakuan dosis PGPR maupun waktu perendaman menghasilkan keserempakan tumbuh tidak berbeda nyata antara aras perlakuan. Namun perlakuan yang memberikan nilai tertinggi adalah perlakuan tanpa dosis PGPR dan dosis 50 gram yaitu sebesar 0,02 % serta perlakuan waktu perendaman 120 menit dengan nilai yang sama yaitu 0,02 % (Tabel 5). Tabel 1. Potensi tumbuh maksimal (%) Tabel 5. Keserempakan Tumbuh. Dosis PGPR (g/5 L) 0 25 50 Rerata Waktu Perendaman (menit) 90 41.33bc 24.00c 28.00c 31.33 120 66.67ab 29.33c 21.33c 40.00 150 76.00a 24.00c 28.00c 41.78 Rerata 44.33 17.56 15.00 (+) Dosis PGPR (g/5 L) 0 25 50 Rerata Waktu Perendaman (menit) 120 0.03 0.00 0.04 0.02a 90 0.01 0.00 0.00 0.00a 150 0.01 0.00 0.01 0.01a Rerata 0.02a 0.00a 0.02a (-) Keterangan: angka yang diikuti huruf sama pada baris dan kolom menunjukkan tidak berbeda nyatamenurut uji DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor (+) terjadi interaksi. Keterangan: angka yang diikuti huruf sama pada baris dan kolom menunjukkan tidak berbeda nyata menurut uji DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor. Daya Berkecambah (%) Berat Kering Kecambah Normal (gram) Daya kecambah benih adalah pengujian akan sejumlah benih, berupa persentase dari jumlah benih tersebut yang dapat atau mampu berkecambah pada jangka waktu yang telah ditentukan (Danuarti, 2005). Analisis sidik ragam (Anova) menunjukkan tidak terjadi interaksi antara perlakuan dosis PGPR dengan waktu perendaman terhadap parameter daya berkecambah. Perlakuan tanpa PGPR mampu menghasilkan daya berkecambah lebih tinggi dibandingkan perlakuan lainnya yaitu sebesar 22,67 % (Tabel 2) Tabel 2. Daya berkecambah (%) Menurut Ilyas (2012), berat kering kecambah normal (BKKN) menggambarkan viabilitas potensial benih yang ditanam pada kondisi optimum. Analisis sidik ragam (Anova) menunjukkan tidak terjadi interaksi (P>0.05) antara perlakuan dosis PGPR dengan waktu perendaman terhadap parameter berat kering kecambah normal. Aras perlakuan dosis PGPR maupun waktu perendaman menghasilkan berat kecambah normal yang berbeda nyata antara aras perlakuan. Namun perlakuan tanpa PGPR (kontrol) memberikan nilai tertinggi yaitu 0.10 gram dan waktu perendaman 120 menit memberikan nilai tertinggi 0,07 gram (Tabel 6). Dosis PGPR (g/5 L) 0 25 50 Rerata Waktu Perendaman (menit) 90 18.67 10.67 13.33 14.22a 120 28.00 9.33 13.33 16.89a 150 21.33 9.33 20.00 16.89a Rerata 22.67a 9.78b 15.56ab (-) Keterangan: angka yang diikuti huruf sama pada baris dan kolom menunjukkan tidak berbeda nyata menurut uji DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor Tabel 6. Berat Kering Kecambah Normal (gram) Dosis PGPR (g/5 L) 0 25 50 Rerata Waktu Perendaman (menit) 150 0.08 0.04 0.02 0.05b 90 0.09 0.02 0.05 0.05ab 120 0.13 0.04 0.05 0.07a Rerata 0.10a 0.03b 0.04b (-) Indeks Vigor (%) Vigor adalah kemampuan benih untuk tumbuh normal dalam keadaan lapangan produksi sub optimun atau kemampuan untuk disimpan dalam kondisi sub simpan sub optimun (terbuka) Schimint (2000). Analisis sidik ragam (Anova) menunjukkan tidak terjadi interaksi antara perlakuan dosis PGPR dengan waktu perendaman terhadap parameter indeks vigor. Aras perlakuan dosis PGPR maupun waktu perendaman meghasilkan indeks vigor yang berbeda nyata antar aras perlakuan. Namun perlakuan yang memberikan nilai indeks vigor tertinggi yaitu perlakuan tanpa PGPR (kontrol) dan waktu perendaman 90 menit dengan nilai 4.89 % (Tabel 3). Tabel 3. Indeks vigor (%) Dosis PGPR (g/5 L) 0 25 50 Rerata Waktu Perendaman (menit) 90 6.67 4.00 4.00 4.89a 120 5.33 1.33 1.33 2.67b 150 2.67 1.33 2.67 2.22b Rerata 4.89a 2.22b 2.67b (-) Keterangan: angka yang diikuti huruf sama pada baris dan kolom menunjukkan tidak berbeda nyata menurut uji DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor Kecepatan Tumbuh (%) Keterangan: angka yang diikuti huruf sama pada baris dan kolom menunjukkan tidak berbeda nyata menurut uji DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor Tinggi Tanaman (cm) Menurut Sitompul dan Guritno, (1995) menyatakan bahwa tinggi tanaman merupakan ukuran tanaman yang sering diamati baik sebagai indikator pertumbuhan maupun sebagai parameter yang digunakan untuk mengukur pengaruh lingkungan atau perlakuan yang ditetapkan. Analisis sidik ragam (Anova) menunjukkan tidak terjadi interaksi (P>0.05) antara perlakuan dosis PGPR dengan waktu perendaman terhadap parameter tinggi tanaman. Aras perlakuan dosis PGPR maupun waktu perendaman memberikan tinggi tanaman tidak berbeda nyata antara aras perlakuan. Namun perlakuan dosis PGPR 50 gram memebrikan nilai tinggi tanaman tertinggi yaitu 3.09 cm dan waktu perendaman 150 menit memberikan nilai tinggi tanaman tertinggi dengan nilai 3,23 cm (Tabel 7). Tabel 7. Tinggi tanaman (cm) Dosis PGPR (g/5 L) 0 25 50 Rerata Waktu Perendaman (menit) 90 1.99 3.31 3.23 2.84a 120 2.50 2.77 3.18 2.81a 150 3.68 3.14 2.85 3.23a Rerata 2.72a 3.07a 3.09a (-) Analisis sidik ragam (Anova) menunjukkan tidak terjadi interaksi antara perlakuan dosis PGPR dengan waktu perendaman terhadap parameter kecepatan tumbuh. Aras perlakuan dosis PGPR menghasilkan kecepatan tumbuh yang berbeda nyata antara aras perlakuan. Aras perlakuan waktu perendaman menghasilkan kecepatan tumbuh tidak berbeda nyata antara aras perlakuan. Namun perlakuan tanpa dosis PGPR (kontrol) memberikan nilai kecepatan tumbuh tertinggi 2,02 % dan waktu perendaman 150 menit memberikan nilai kecepatan tumbuh tertinggi yaitu 1,56 % (Tabel 4). Tabel 4. Kecepatan Tumbuh (%) Dosis PGPR (g/5 L) 0 25 50 Rerata Waktu Perendaman (menit) 90 1.52 0.82 1.04 1.13a 120 2.39 0.74 1.33 1.49a 150 2.15 0.78 1.75 1.56a Rerata 2.02a 0.78b 1.37ab (-) Keterangan: angka yang diikuti huruf sama pada baris dan kolom menunjukkan tidak berbeda nyata menurut uji DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor (+) terjadi interaksi. Jumlah Daun (Helai) fotosintesis, karena mengandung klorofil yang diperlukan oleh tanaman dalam proses fotosintesis, semakin banyak jumlah daun maka hasil fotosentesis semakin tinggi, sehingga tanaman tumbuh dengan baik (Ekawati, M 2006). Analisis sidik ragam (Anova) menunjukkan tidak terjadi interaksi (P>0.05) antara perlakuan dosis PGPR dengan waktu perendaman terhadap parameter jumlah daun. Aras perlakuan dosis PGPR maupun waktu perendaman menghasilkan jumlah daun yang tidak berbeda nyata antara aras perlakuan. Namun perlakuan yang memberikan nilai jumlah daun terbanyak adalah perlakuan dosis PGPR 50 gram yaitu sebanyak 4.32 helai dan perlakuan waktu perendaman 90 menit dengan nilai jumlah daun terbanyak yaitu 4,28 cm (Tabel 8). Daun sangat berhubungan dengan aktivitas Keterangan: angka yang diikuti huruf sama pada baris dan kolom menunjukkan tidak berbeda nyata menurut uji DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor. L. Nahak / Savana Cendana 6 (4) 57-60 58
Savana Cendana 6 (4) 57-60 (2021) Jurnal Pertanian Konservasi Lahan Kering International Standard of Serial Number 2477-7927 Tabel 8. Jumlah daun Dosis PGPR (g/5 L) 0 25 50 Rerata Waktu perendaman (menit) 90 3.90 4.32 4.63 4.28a 120 4.05 4.29 4.39 4.24a 150 4.56 4.13 3.94 4.21a Rerata 4.17a 4.24a 4.32a (-) Pustaka Alif, S. (2017). Kiat Sukses Budidaya Cabai Keriting. Yogyakarta: Bio Genesis. A'yun KQ (2013) Pengaruh Penggunaan Plant Growth Promoting Rizobakteria Terhadap Intensitas TMV (Tobacco Mosaic Virus), Pertumbuhan, Dan Produksi Pada Tanaman Cabai Rawit (Capsicum frutescens L.) J HPT 1(1):47-56.S Keterangan: angka yang diikuti huruf sama pada baris dan kolom menunjukkan tidak berbeda nyata menurut uji DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor. Azad, MS, Zedan-Al-Musa, M & Matin, MA 2010, Effects of pre-sowing treatments on seed germination of Melia azedarach, Journal of Forestry Research, 21(2):193-196. 3.2. Pembahasan Baskin, C.C. dan Baskin. J.M. 2005. Dormansi Benih di Pohon-pohon dari PGPR merupakan salah bahan organik hayati yang mampu memberikan pertumbuhan serta hasil pada tanaman yang baik. Hasil sidik ragam anova menunjukkan tidak terjadi interaksi antara perlakuan dosis PGPR dan lama perendaman benih cabai rawit lokal terhadap setiap parameter, namun terjadi interaksi pada parameter potensi tumbuh maksimum. Pada parameter daya berkecambah, indeks vigor, kecepatan tumbuh, dan keserempakan tumbuh perlakuan tanpa dosis PGPR memberikan nilai tertinggi dibandingkan aras perlakuan lainnya. Hal ini dikarenakan PGPR merupakan mikroba tanah yang terdapat pada akar tanaman dan meningkatkan pertumbuhan dan perlindungan terhadap patogen tertentu (Loon, 2007) dan jika dibandingkan dengan penelitian yang dilakukan adalah proses perkecambahan didalam laboratorium yang mana tanpa menggunakan tanah (kertas CD) sebagai media tumbuh sehingga pengaruh PGPR terhadap benih yang dikecambahkan tidak terlihat dan mengakibatkan perlakuan kontrol memberikan nilai tertinggi. Hal ini dikarenakan bakteri yang terkandung dalam PGPR tidak memilki tempat untuk hidup dan selanjutnya mensintesis zat pengatur tumbuh yang penting dalam mempercepat perkecambahan. aktifitas pertumbuhan aksis embriotik di dalam biji yang terhenti untuk kemudian membentuk bibit (Hardi, 2005). Menurut Spaenen et al., (2009) PGPR mampu menghasilkan hormon tumbuh seperti auksin, giberelin dan sitokinin. Menurut Krishnamoorthy, (1981) hormon giberelin berperan sebagai katalisator dalam perubahan pati menjadi glukosa yang oleh benih digunakan untuk pertumbuhan dan perkembangan embrio menjadi kecambah. Pada perlakuan lama perendaman 120 dan 150 menit memberikan nilai tertinggi dibandingkan perlakuan lama perendaman 90 menit hal ini dikarenakan semakin lama perendaman berlangsung maka air akan masuk kedalam benih dan terjadinya proses imbibisi pada kulit benih sehingga benih dapat berkecambah. Pada parameter BKKN perlakuan kontrol memberikan nilai tertinggi yaitu 0.10 gram sedangkan lama perendaman perlakuan 120 menit memberikan nilai tertinggi yaitu 0.07 gram.Menurut Tefa, (2017), benih yang memiliki vigor tinggi mampu menghasilkan berat kering kecambah normal yang tinggi pada kondisi optimum dan sub optimum. Pada parameter pertumbuhan yaitu tinggi tanaman dan jumlah daun tidak terjadi interaksi (P>0.05) antara perlakuan dosis PGPR dan lama perendaman benih cabai rawit lokal. Pada perlakuan dosis PGPR 50 gram memberikan nilai tertinggi pada parameter tinggi tanaman yaitu 3.09 cm dan jumlah daun terbanyak yaitu 4.32 helai. Perkecambahan adalah peroses pengaktifan kembali Jenis Vegetasi Tropis Klimaks. Ekologi Tropis 46 (1): 17-28. Barchenger, D.W. and P.W. Bosland. 2016 Exogeneus applications of capsaicin seed germennation of capsicum annum. Sciientia inhibits Horticulturae (203):29-31. Cahyono, Bambang. (2003). Cabai Rawit Teknik Budi Daya dan Analisis Usaha Tani. Yogyakarta : Kanisius. Danuarti 2005. Analisis Benih. Kanisius. Yogyakarta. Ekawati, M. 2006. Pengaruh Media Multipikasi Terhadap Pembentukan Akar dan Tunas in Vitro Nenas (Ananas Comosus L merr) cv. Smooth Cayeene pada Media Penangkaran. Skripsi Jurusan Budidaya Pertanian. Fakultas Pertanian. Institut Pertanian Bogor. Figueiredo, Seldin, Araujo dan Mariano. 2010. Rhizobacteria Mempromosikan Pertumbuhan Tanaman: Dasar-Dasar dan Aplikasi. Mikrobiologi Monografi 18: 21-43. Hardi, T, TW. 2005. Daya kecambah dan Daya Tumbuh Biji Sengon Yang Disimpan Selam Tiga Belas Tahun Dalam tempat Penyimpanan Dingin Kering. Wana Benih, 6 (1) :82-125. Pusat Penilitian dan pengembangan Hutan Tanaman, Yogyakarta Ilyas. 2012. Kinerja, Teori, Penilaian san Penelitian. Jakarta: Pusat Kajian Ekonomi Kesehatan FKM Universitas Indonesia. Jäkel, N., & M. Witzler. 2018. Influence of germination aids on germination of different Capsicum sp. American Journal of Experimental Agriculture. 20(3): 1-7. Justice, Oren L dan Bass, Luis N. 2002 Prinsip dan Praktek Penyimpanan Benih. Jakarta: PT. Raga Grafindo Persada. Khalimi K dan G. N Alit Susanta Wirya. 2009. Pemanfaatan plant growth rizobakteria untuk biostimulan dan bioprotektan. promoting ECOTROPHIC. 4(2):131-135. Krishnamoorthy, H.N. 1981. Substansi pertumbuhan tanaman termasuk aplikasi dalam pertanian. Tata Mc. Graw Hill, Publishing Co. Ltd., New York. 50 p Lensari, D. 2009. Pengaruh Pematahan Dormansi terhadap Kemampuan Perkecambahan Benih Angsana (Pterocarpus indicus Will.). Skripsi. Departemen Silvikultur. Fakultas Kehutanan. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Khalimi dan Wirya (2009) menyatakan bahwa perlakuan PGPR juga mampu meningkatkan jumlah daun maksimal pada pertumbuhan tanaman kedelai. Sedangkan pada perlakuan lama perendaman 150 menit pada tinggi memberikan nilai tertinggi pada parameter tinggi tanaman dan 90 menit memberikan nilai tertinggi pada parameter jumlah daun. Hal ini didukung oleh Oedjijono et al. (2012), bahwa bakteri azospirilium spp. secara nyata memberikan pertumbuhan tanaman jagung, terutama dalam peningkatan tinggi tanaman dan diperkuat oleh penelitian Khalimi dan Wirya (2009), bakteri p.aureginosa yang terkandung dalam PGPR mampu memacu pertumbuhan tanaman kedelai atau dapat digunakan sebagai biostimulan dibandingkan dengan proses perkecambahan pada parameter pertumbuhan PGPR mampu memberikan nilai tertinggi dikarenakan pada masa pertumbuhan tanaman telah berada di tanah sehingga proses sintesis ZPT seperti auksin sitokinin dan giberelin berjalan lancar. Menurut A'yun (2013) mekanisme PGPR secara langsung dengan mensintesis metabolit misalnya senyawa yang merangsang pembentukan fitohormon seperti IAA, atau dengan meningkatkan pengambilan nutrisi tanaman, IAA dijumpai pada tanaman dan berperan aktif dalam meningkatkan kualitas dan hasil panen Mousavi, SR, Rezaei, M & Mousavi, A 2011, A general overview on seed dormancy and methods of breaking it, Advancesin Environmental Biology, 5(10):3333-3337. Oedjijono, U. W. Lestanto, E.K. Nasution dan Bondansari.2012. Pengaruh Azospirilium spp. Terhadap pertumbuhan Tanaman Jagung (Zea mays L.) dan Kemampuan Beberapa Isolat Dalam Mengahasilkan IAA. Dalam Prosiding Seminar Nasional. Olmez, Z., F. Temel., A. Gokturk dan Z. Yahyaoglu. 2007. Pengaruh Asam Sulfat dan Pretreatment Stratifikasi Dingin terhadap Perkecambahan Pomeganate (Punica granatum L). J. Asian Journal of Plant Sciences 6 (2): 427-43. Quintaro, M. F. C., G.C. Oscar, D.S. Pablo, M.S. Jose, I.G.C. Ana, dan M.G.P. Jose. 2018. Improving dormancy and germantioan of piquin chili (Capsicum annunm var. glabriusculum) by priming peper techniques. J Coget Food & Agriculture. 4(1): 1-14 Rahni, N.M .2012. Efek Fitohormon PGPR Terhadap Pertumbuhan Tanaman Pengembangan Jagung Wilayah.3(2):27-35. (Zea mays). J Agribisnis dan Rahayu A. 2013. Viabilitas dan vigor benih aren (Arenga pinnata) akibat pematahan dormansi melalui skarifikasi secara fisik dan kimia [skripsi]. Banda Aceh (ID): Universitas Syiah Kuala. 4. Simpulan Respon benih cabai rawit lokal terhadap dosis PGPR dan waktu perendaman menunjukkan tidak terjadi interaksi tetapi terjadi interaksi pada parameter Potensi Tumbuh Maksimal.Perlakuan tanpa PGPR (Kontrol) memberikan hasil terbaik dan berbeda nyata dengan perlakuan PGPR pada parameter pengamatan indeks vigor, berat kering kecambah normal sedangkan parameter pengamatan lama waktu perendaman PGPR terhadap benih cabai tidak berbeda nyata kecuali pada parameter pengamatan indeks vigor dengan lama waktu perendaman 90 menit maupun pada parameter pengamatan berat kering kecambah normal yang tidak berbeda nyata dengan lama perendaman 120 menit. lain tidak berbeda nyata.Perlakuan Sadjad, S. 1993. Dari Benih kepada Benih. Jakarta: PT. Gramedia Sadjad, S. 1994. Metode Uji Langsung Viabilitas Benih. Bogor. IPB. Sandi ALI, Indriyanto, Duryat. 2014. Ukuran benih dan skarifikasi dengan air panas terhadap perkecambahan benih pohon kuku (Pericopsis mooniana). J. Sylva Lestari. 2 (3): 82-92. Schimint, L. 2000. Pedoman Penanganan Tanaman Hutan tropis dan Suptropis. Derektorat Jendral Rehabilitasi Lahan dan Perhutanan Sosial. Departemen Kehutanan. Buku. Gramedia. jakarta. 185 p. Siginingsih, kecepatan perkecambahan dan prosentase kecambah benih kemiri. (jurnal online) diakses pada minggu, tanggal 17-10-2019. 2014. Pengaruh perlakuan awal terhadap terhadap perkecamabahan benih cabai rawit. Jurnal Biology science dan Education. Makasar. 6(2):138-147. Sutopo, L. 2004. Teknologi Benih. CV Rajawali. Jakarta. Sombalatu.I., Irvan.L., Evi.R. 2017. Lama penyimpanan L. Nahak / Savana Cendana 6 (4) 57-60 59
Savana Cendana 6 (4) 57-60 (2021) Jurnal Pertanian Konservasi Lahan Kering International Standard of Serial Number 2477-7927 Sitompul, S. M. dan Guritno, B. 1995. Analisis Pertumbuhan Tanaman. UGM Press: Yogyakarta. Spaenen, S., J. Vanderleyden., Y. Okon. 2009. Plant Growth-Gromoting Actions of Rhisobacteria. Adv Botl Res 51: 283-320. Tefa, A. 2017. Uji Viobilitas dan Vigor Benih Padi (Oryza Sativa L.) Pada Tingkatan Kadar Air Yang Berbeda. Jurnal Pertanian Konservasi Lahan Kering 2(3):48-50. Van Loon LC. 2007. Plant responses to plant growth-promotingrhizobacteria. Eur J Plant Pathol 119:243-254 Winarni E. 2010. Daya berkecambah benih tanjung pada berbagai kadar air benih. Jurnal Hutan Tropis. 11 (30) : 12-24. L. Nahak / Savana Cendana 6 (4) 57-60 60