Особенности реакций врожденного иммунитета мидии Mytil us ed Ulis

ВЕСТНИК САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКОГО УНИВЕРСИТЕТА

Сер. 3 2007 Вып. 4

УДК 592:591.113:612.017

А. Н. Сухачев, И. В. Кудрявцев, И. С. Дьячков, К. Е. Николаев, А. Д. Харазова, А. В. Полевщиков

ОСОБЕННОСТИ РЕАКЦИЙ ВРОЖДЕННОГ О ИММУНИТЕТА МИДИИ MYTIL US ED ULIS *

Введение. Врожденный иммунитет—один из самых древних и эффективных механизмов защиты организма. Появляясь впервые у губок, он не утрачивает своего значения у всех многоклеточных животных, включая высших позвоночных. Изучение способов защиты в различных филогенетических группах является актуальной задачей, так как изучение этапов становления врожденного и приобретенного иммунитета позволяет установить причины эффективности ныне существующих защитных реакций. Важной формой защитных реакций у беспозвоночных являются паразиг-хозяинные взаимодействия, которые нередко приобретают существенное медицинское и ветеринарное значение, например в системе моллюск Biomphalaria glabrata—трематода Schistosoma mansoni [5]. Всем трематодам присущ сложный жизненный цикл с чередованием полового и бесполого размножения. Разные стадии цикла проходят со сменой хозяев. К числу наиболее опасных трематод, помимо Schistosoma mansoni, относятся Dicrocoelium lanceatum, Opisthorchis felineus, Fasciola hepatica. Экспериментальные работы на этих объектах не всегда возможны, поэтому обычной является практика использования разнообразных моделей, частично повторяющих определенные стадии их жизненного цикла. Одной из значимых и удобных для изучения моделей является пара моллюск Mytilus edulis—трематода Hymasthla elongata.

До настоящего времени у беспозвоночных не найдено механизмов приобретенного иммунитета, основанных на высокой специфичности распознавания через молекулы иммуношобулиновош суперсемейства и сопровождающихся формированием иммунологической памяти, что характерно для позвоночных [14]. Тем не менее циркулирующие клетки беспозвоночных, в том числе и моллюсков, способны к распознаванию патогенов и цитотоксической реакции против чужеродной клетки или патогена [8].

Исследования врожденного иммунитета беспозвоночных демонстрируют филогенетическое сходство используемых организмами стратегий для ответа инфекции. Двустворчатые моллюски формируют как клеточные, так и гуморальные реакции врожденного иммунитета [7]. Ключевую роль в защитных реакциях моллюсков играют форменные элементы гемолимфы — гемоциты, найденные у всех двустворчатых моллюсков, кроме морского гребешка [17]. Гемоциты способны к хемотаксису, адгезии, фагоцитозу, генерации активных форм кислорода, а также внутриклеточному накоплению микробицидных факторов [1]. Гемоциты по результатам градиентного центрифугирования условно можно разделить на три фракции [19]. Верхняя (самая легкая) фракция содержит 97 % базофильных клеток, нижняя (самая тяжелая) — 84 % эозино-фильных клеток, а средняя фракция фактически представляет собой смесь базофильных и эозинофильных клеток. Возможно, нижний слой может подразделяться на две близко лежащие субпопуляции [19]. При этом верхний слой в основном представлен

* Работа поддержана РФФИ (грант № 07-04-00084 и 07-04-00095).

© А. Н. Сухачев, И. В. Кудрявцев, И. С. Дьячков, К. Е. Николаев, А. Д. Харазова, А. В. Полевщиков, 2007

агранулярными, а нижний—гранулярными клетками, но состав и свойства популяций зависят от времени года, места обитания животного, а также от температуры и солености морской воды [10]. Именно гранулоциты легко идентифицируются среди всех гемоцитов моллюсков [9]. Гранулы различаются по размеру, форме и способности к связыванию с гистологическими красителями, а также по набору ферментов [18]. Существуют значительные межвидовые вариации в численности и характере гранул гемоцитов, часть гранул несомненно является лизосомами [9, 11].

После фагоцитоза бактерий количество гранул в цитоплазме гранулоцитов уменьшается [6]. Наиболее активными фагоцитами являются гранулярные клетки, хотя клетки других фракций также обладают этой способностью [19]. При этом именно гранулоциты обладают пероксидазной активностью, а также способностью уничтожать небольшие чужеродные частицы путем секреции гидролитических ферментов. Процесс фагоцитоза инородных частиц связан с активацией кислородного метаболизма фагоцитов и продукцией активных форм кислорода, обеспечивающих деструкцию клеточных мембран паразита.

Для реализации фагоцитарной активности гемоцитов необходима адгезия—способность прилипать к структурам собственной соединительной ткани, друг к другу, эндотелию сосудов либо к поверхности паразита. Для реализации процесса адгезии, как и фагоцитоза часто возникает потребность в дополнительных белках, устанавливающих связи между клеткой и субстратом (в случае адгезии) или клеткой и объектом фагоцитоза. Нередко этими белками становятся лектины—углеводсвязывающие белки или гликопротеины неиммунной природы, агглютинирующие или преципитирующие шикоконъюгаты, локализованные на клеточных поверхностях [2, 4]. Участие лектинов в защитных реакциях показано на двустворчатых моллюсках: Mytilus edulis, Mercenaria mercenaria, Pictada fucata и др. [3]. Лектины служат опсонизирующими факторами, а также необходимы для осуществления адгезии гемоцитов к чужеродным частицам. Поэтому логично предположение о мембранных и сывороточных лектинах как основе распознавания «несвоего» у двустворчатых [22]. Цель нашего исследования — изучение основных параметров реакций врожденного иммунитета мидии Mytilus edulis в отсутствие паразитарной инвазии.

Материалы и методы исследования. Объектом исследования стали мидии Mytilus edulis, собранные в июле—сентябре 2006 г. на базе Беломорской биологической станции «Картеш» им. О. А. Скарлато Зоологического института РАН. Всего в экспериментах было использовано более 100 животных возрастом 4-6 лет. Основные исследования были направлены на изучение свойств циркулирующих гемоцитов моллюска. Гемолимфу с клетками получали в туберкулиновый шприц из задней мышцы-смыкателя раковины и консервировали 5% (по объему) 0,3 М раствора ЭДТА на фильтрованной морской воде (ФМВ). Перед использованием полученные клетки хранили на льду. Клетки отделяли от гемолимфы центрифугированием при 200g и отмывали от содержащей ЭДТА гемолимфы модифицированным раствором Дальбекко без Са2+ и Mg2+, содержавшим 25 г/л NaCl (в дальнейшем—раствор Дальбекко-М).

Оценку поглощения меченых модельных антигенов (меченые ФИТЦ бактерии Е. coli) ге-моцигами проводили на проточном цитометре COULTER EPICS ALTRA (Beckman Coulter, Inc., USA). Для исследования клеточных фракций использовались цитометрическис параметры FS (прямое светорассеивание), РМТ1 (боковое светорассеивание), РМГ2 (интенсивность поглощения—520 нм), которые оценивались по 30000 событиям для каждой из проб. Фагоцитарный индекс высчиты-вался автоматически в программе Epics Elite Ехро32 (Coulter, Hialeah, FL, USA) [12].

Также была оценена фагоцитарная способность гемоцитов мидий. Осажденные путем центрифугирования

и параллельно оценивали уровни HCT-теста и теста поглощения нейтрального красного. Для определения спонтанного показателя поглощения нейтрального красного и HCT-теста в лунки добавляли по 50 мкл ФМВ, а для определения индуцированного показателя добавляли равный объем 0,4 %-ной суспензии зимозана («Нева-Реактив», Санкт-Петербург) или ЛПС из клеточной стенки S.typhii. Планшеты инкубировали в течение 6 ч при температуре, соответствовавшей температуре морской воды в этой время года (около 8-10 °С). По завершении инкубации проводили автоматизированный учет результатов на многоканальном спектрофотометре ПИКОН (Москва). В случае НСТ-теста гранулы диформазана растворяли в смеси ДМСО и КОН и учигывали при длине волны 620 нм, а в тесте поглощения нейтрального красного краситель экстрагировали 1 %-ной уксусной кислотой в 50°-ном этаноле с учетом при 530 нм [13]. Надосадок резко удаляли с помощью декантирования. Для фиксации образцов НСТ-теста в каждую из лунок вносили по 50 мкл 96°-ного этанола. Результат выражали в единицах ОП на 2Т05 гемоцитов.

Для изучения гемолитической активности циркулирующих клеток М. edulis была использована безгелевая модификация реакции локального гемолиза по Н. К. Ерне. В качестве клеток-мишений использовались как интактные, так и опсонизированные различными лектинами эритроциты человека (ЭЧ). Вначале были подобраны концентрации лектинов (СопА, ФГА, пшеница, картофель, бузина черная, арахис, соя, виноградная улитка, чечивица, горох), обладавшие субагглютинирующим и сублизирующим действием. Далее оценивали способность гемоцитов М. edulis к лизису ЭЧ, покрытых лектинами. Гемоциты переводили в среду RPMI-1640 с содержанием NaCl 25 г/л, обогащенную L-глютамином, HEPES и антибиотиками, устанавливая концентрацию равной 60 тыс. клеток в 1 мл среды. Клеточную суспензию вносили в 96-луночный планшет (Sarstedt) по 200 мкл и к клеткам добавляли 25 мкл 4 %-ной суспензии ЭЧ, предо-бработанных лектинами. Подобранные концентрации лектинов смешивали с ЭЧ и инкубировали в течении 40 мин при 37 °С, затем отмывали в ЗФР и выводили концентрацию равную 4 %. После 3 ч инкубации при 10 °С каждую лунку фотографировали на бинокуляре Leica с использованием камеры Canon PowerShot G6 для подсчета числа зон гемолиза и оценивали выход гемоглобина из ЭЧ по ОП надосадков при 405 mí на многоканальном спектрофотометре ПИКОН (Москва). Параллельно исследовалась способность гемоцитов, предобработанных лектинами, к лизису нативных ЭЧ. Суть эксперимента такая же, как описано выше. Только в этот раз лектинами обрабатывали не ЭЧ, а гемоциты мидии.

Сравнивали эффекты лектинов в отношении нативных и десиализированных ЭЧ при культивировании с гемоцитами мидии. Гемоциты переводили в среду RPMI-1640 с содержанием NaCl 25 г/л, обогащенную L-глютамином, HEPES и антибиотиками, устанавливая концентрацию равной 60 тыс. клеток в 1 мл среды. Клеточную суспензию вносили в 96-луночный планшет (Sarstedt) по 200 мкл и к клеткам добавляли 25 мкл 4 %-ной суспензии ЭЧ. Для оценки природы распознаваемых гемоцитами мидий детерминант использовали как нативные ЭЧ, так и ЭЧ, обработанные в течение 1 ч при 37 °С 1 %-ным раствором трипсина (Difco, США) (трипсинизированные ЭЧ, тЭЧ). После 3 ч инкубации при 10 °С каждую лунку фотографировали на бинокуляре Leica с использованием камеры Canon PowerShot G6 для подсчета числа зон гемолиза и оценивали выход гемоглобина из ЭЧ по ОП надосадков при 405 нм.

Результаты исследования. С использованием метода проточной цигометрии показано, что пул циркулирующих гемоцитов содержит как минимум два типа клеток, которые различаются по размерам и гранулярности. Результаты анализа приведены на рисунке. Наиболее вероятно, что выявленные клетки соответствуют гранулоцитам и промежуточным клеткам. Можно также предполагать наличие третьей популяции клеток, предположительно соответствующей гиалиноцитам. Определение процента гемоцитов, обладающих фагоцитарной способностью в отношении меченых ФИТЦ Е. coli, проведенное также с помощью проточного цитофлюориметра, показало, что около 43 % гемоцитов обладали фагоцитарной активностью.

Результаты НСТ-теста и теста поглощения нейтрального красного приведены в таблице. Обнаружено, что гемоциты активно взаимодействуют с корпускулярным антигеном зимозаном, отвечая на него повышением продукции активных форм

го 8

св

а.4

Прямое светорассеивание 1023

Во! РкЛ Р8/РМТ-1 с изображением гемоцитов мидии МуШт е(!иИ.\.

кислорода на 30,67% (р< 0,05) по сравнению со спонтанной продукцией, но не изменяют уровня кислородного метаболизма при взаимодействии с растворимым ЛПС. Сходные данные получены при оценке способности гемоцитов мидии к поглощению витального красителя— нейтральный красный. В этом случае тоже наблюдался ответ только на частицы зимозана (усиление эндоцигоза на 32,43 % по сравнению с уровнем спонтанного эндоцигоза, /?<0,05) и отсутствовал ответ на ЛПС (см. таблицу).

Установлено, что обработка ЭЧ некоторыми лектинами (картофеля, сои, пшеницы, бузины черной, арахиса и виноградной улитки) усиливала разрушение эритроцитов гемоцитами М. ейиИя, в то время как обработка ЭЧ другими лектинами не влияла на этот процесс (ФГА и СопА) или даже тормозила его (чечевицы, гороха). Предобработка свободными лектинами клеток мидии с последующей отмывкой несвязавшихся леюгинов в целом не приводила к изменению гемолитической активности гемоцитов М.ейиИъ по отношению к интактным ЭЧ по сравнению с контролем. Наконец, десиализация ЭЧ раствором трипсина приводила к снижению уровня гемолиза, трипсинизированных ЭЧ гемоцитами мидий по сравнению с ин-тактными ЭЧ, сохранявшими полный набор углеводных молекул в своем шикокаликсе.

Обсуждение результатов исследования. Наиболее вероятно, что два типа клеток, выявленных благодаря цитофлюометрическому анализу, соответствуют гранул о цитам и промежуточным клеткам. Результаты проточной цигометрии дают основание для предположения о существовании третьей популяции клеток, предположительно соответствующей гиалиноцитам. В литературе сведения о количестве клеточных популяций у мидии разнятся. Некоторые авторы выделяют 3 клеточных типа: лимфоциты, макрофаги и гра-нулоциты [16], в то время как по другим данным их всего два: гранулярные и агрануляр-ные гемоциты [19]. Наиболее вероятно, гранулоциты являются обособленным типом клеток, агранулоциты же подразделяются на разные популяции: истинные агрануляр-ные клетки на разных стадиях развития, а также дегранулированные гранулоциты.

Полученные данные свидетельствуют о наличии 43 % фагоцитирующих клеток в пуле гемоцитов. Известно, что наиболее активными фагоцитами являются гранулоциты, хотя и другие популяции тоже способны фагоцитировать [19, 21]. При этом стоит принять во внимание, что численность гемоцитов зависит от многих факторов: времени года, температуры, солености, инвазии паразита. Например, численность гемоцитов у МуШт е(1иШ превышает 8 • 106 кл/мл, однако при попадании в организм

Оценка способности гемоцитов мидий к поглощению нейтрального красного и продукции активных форм кислорода, ед. ОП, Х±5

Показатель ФМВ Зимозан ЛПС

Поглощение нейтрального красного, п >24 0,075 + 0,008 0,111 ±0,011* 0,071 ±0,014

НСТ-тест, «>24 0,373 + 0,032 0,538 ±0,056* 0,364+0,041

* Различия с контролем (ФМВ) достоверны при /><0,05 по ^-критерию.

моллюска инородных объектов также значительно увеличивается [20]. Аналогично при искусственном заражении моллюсков Crassostrea virginica происходило увеличение числа гранулоцитов в гемолимфе [9].

При рассмотрении результатов НСТ-теста и теста поглощения нейтрального красного интересным является факт усиления кислородного метаболизма и эндоцитоза под действием только корпускулярных, но не растворимых стимуляторов. Возможно, это происходит вследствие того, что для эндоцитоза ЛПС необходимы белки связывания (LBP-подобные белки), которые присутствуют в гемолимфе и синтезируются гемоци-тами [15]. Поскольку в соответствии с избранной методикой клетки перед внесением в культуры отмывали, то все белки гемолимфы тоже были удалены. Не исключено, что для фагоцитоза корпускулярных частиц не нужно белков гемолимфы, тогда как для растворимых агентов они необходимы.

В экспериментах определения гемолитической активности гемоцитов было показано, что гемоциты мидии обладают цитотоксической активностью в отношении ЭЧ. Обработка ЭЧ лекганами оказывает влияние на процесс гемолиза, что не удивительно, так как лектины являются опсонизирующим фактором, т. е. усиливают фагоцитоз, а также способствуют узнаванию чужеродного материала гемоцитами. Более того, гемоциты некоторых моллюсков (Corbicula fluminea) не способны к фагоцитозу в отсутствие лектинов [22]. При этом не исключено, что лектины играют роль вспомогательных молекул, и их роль начинает увеличиваться в экстремальных условиях, например при сильном понижении температуры. При обратном эксперименте, т. е. при обработке гемоцитов лектинами, изменений по отношению к контролю (нативные гемоциты) не наблюдалось. Можно предположить, что некоторые лектины закрывают определенные рецепторы на клетках мидии, тем самым уменьшая гемолиз. Опыт с трипсинизированными ЭЧ показал, что гемолиз идет активнее в случае нативных ЭЧ. Это может свидетельствовать о том, что гемоциты распознают углеводные детерминанты на поверхности клеток-мишеней.

Таким образом, проведенные эксперименты показали, что гемоциты мидий обладают фагоцитарной активностью, способностью к продукции активных форм кислорода и цитотоксической активностью в отношении ЭЧ. Наиболее вероятно, что гемоциты распознают углеводные детерминанты на поверхности клеток-мишеней. По-видимому, в пр отиво пар аз итарных реакциях сочетаются две стратегии защиты: одна, связанная с изоляцией паразита, другая—направленная на его элиминацию, и обе они осуществляются разными популяциями гемоцитов и/или требуют их кооперации.

Summary

SukhachevA. N., KudryavtsevI. V, DyachkovL S., NikolaevK. E., Polevschikov A. V, KharazovaA, D. Characterization of Mytulis edulis innate immunity reactions.

This article is devoted to the investigation of molluscan defense reactions in response to different model antigens. Mussels hemocytes are capable of distinguishing and phagocyte corpuscular and soluble antigens, prodution reactive oxygen species and neutral red uptake as well as destroying human red blood cells. It suggests that mussels hemocytes recognize cell surface carbohydrates on target cells.

E-mail: alexpol512@yandex.ru Литература

1. АтаевГ. Л., Полевщиков A.B. Защитные реакции брюхоногих моллюсков. 1. Клеточные реакции//Паразитология. 2004. Т. 38. Вып. 4. С. 342-352. 2. Крылов И. Н. Древнейшие следы жизни на Земле // Природа. 1968. № 11. С. 41-55. 3. Лоенко Ю.Н., ГлазковаВ. Е., АртюковА.А. Лектины морских беспозвоночных//Успехи соврем, биологии. 1992. Т. 112. № 5-6. С. 785-794.

4. Полевгциков А. В. Лектины в защитных реакциях беспозвоночных // Журн. общ. биологии. 1996. Т. 57. № 6. С.718-739. 5. AtaevG.L., CoustauCh. Cellular response to Echinostoma capro-ni infection in Biomphalaria glabrata strains selected for susceptibility/resistance //Dev. Сотр. Immunol. 1999. Vol. 23. P. 187-198. 6. Cheng T.C. Functional morphology and biochemistry of mol-luscan phagocytes//Ann. New York Acad. Sci. 1975. Vol. 266. P. 343-379. 7. Cheng T.C. Bivalves//Invertebrate Blood Cells. New York; 1981. P. 233-300. 8. CooperE.L, RinkevichB, UhlenbruckG. Invertebrate immunity: another viewpoint//Scand. J. Immunol. 1992. Vol. 35. P. 247-266. 9. Feng.S.Y., Feng, J. S., Burke, C. N. Light and electron microscopy of the hemocytes of Crassostrea virginica (Mollusca-Pelecypoda) // Zeitschrift filr Zellforschung und Mikroskopische Anatomie 1971. Vol. 120, P. 225-243. 10. Fisher W.S., Oliver L.M., Edwards P. Hematologic and serologic variability of east-em oysters from Apalachicola Bay, Florida III Shellfish Res. 1996. Vol. 15. P. 555-564. 11. Foley D. A., Cheng T.C. Interaction of molluscs and foreign substances: the morphology and behavior of hemolymph cells in the American oyster, Crassostrea virginica, in vitro HI. Invert. Path. 1972. Vol. 19. P. 383-394. 12. GoedkenM., De Guise S. Flow cytometry as a tool to quantify oyster defence mechanisms//Fish Shellfish Immunol. 2004. Vol. 16. P. 539-552. 13. HccutonCh., Smith V.J. In vitro cytotoxicity of crustacean immunostimulants for lobster (Homarus gammarus) granulocytes demonstrated using the neutral red uptake assay //Fish Shellfish Immunol. 2004. Vol. 17. P. 65-73. 14. Klein J. Are invertebrates capable of anticipatory immune responses?// Scand. J. Immunol. 1989. Vol. 29. P. 499-505. 15. Mitta G., GalinierR., Tisseyre P. Gene discovery and expression analysis of immune-relevant genes from Biomphalaria glabrata hemocytes//Dev. Сотр. Immunol. 2005. Vol. 29. P. 393-407. 16. Moore N.M., LoweD.M. The cytology and cyrochemistry of Mytilus edu-lis and their responses to experimentally injected carbon particles//J. Invert. Path. 1975. Vol. 29. P. 18-30. 17. Mortensen S.H., GletteJ. Phagocytic activity of scallop (.Pecten maximus) haemocytes maintained in v/7ro//Fish Shellfish Immunol. 1996. Vol. 6. P. 111-121. 18. PipeR.K. Hydrolytic enzymes associated with the granular haemocytes of the marine mussel Mytilus edulis II Histochem-lcal J. 1990. Vol. 22. P. 595-603. 19. PipeR.K., Farley S.R„. Coles J. A. The separation and characterisation of haemocytes from the mussel Mytilus edulis II Cell Tissue Res. 1997. Vol. 289. P 537-545. 20. Pipe R. K, Coles J. A., ThomasM.E. Evidence for environmentally derived immuno-modulation in mussel from the Venice Lagoon //Aquatic Toxicology. 1995. Vol. 32. P. 59-73. 21. Reade P., ReadeE. Phagocytosis in invertebrates: studies on the hemocytes of the clam Tridacna maxima HI Invert. Path. 1976. Vol. 28. P. 281-290. 22. TrippM.R. Agglutinins in the hemolymph of the hard clam, Mercenaria mercenaria I'I J. Invert. Path. 1992. Vol. 59. P. 228-234.

Статья принята к печати 15 мая 2007 г.