ИНТЕГРАТИВНАЯ ГЕНЕТИЧЕСКАЯ КОНСТРУКЦИЯ pWpr-le
INTEGRATIVE GENETIC CONSTRUCTION pWpr-le

Область техники, к которой относится изобретение
Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к созданию интегративной генетической конструкции для экспрессии гена релизинг фактора гормона роста человека/свиньи (GHRH_le) в бактериях.
Уровень техники
Известен способ создания рекомбинантных продуцентов интерферона альфа человека на базе Bacillus licheniformis (см. патент RU №98112850/13 кл. C12N 1/20, А61К 35/74, C12N 1/20, C12R 1:10 2001.08.20). Способ основан на использовании автономно реплицирующегося плазмидного вектора рВМВ 105, несущего целевой ген и ген канамицинфосфотрансферазы, обеспечивающего устойчивость к канамицину. Способ обеспечивает возможность продукции целевого белка при поддержании бациллярной культуры в стерильных условиях в присутствии канамицина. Однако за счет низкой репликативной стабильности плазмида быстро утрачивается при культивировании штамма в отсутствии селекции антибиотиком. Плазмидный вектор способен легко переноситься в клетки широкого круга грамположительных микроорганизмов, в том числе, представителей резидентной микрофлоры кишечника человека и животных. Таким образом, ввиду низкой стабильности и биологической опасности штамм оказывается непригоден для производства пробиотических препаратов зооветеринарного назначения.
Настоящее изобретение состоит в создании новой векторной системы для экспрессии гена пептида GHRH_le в бактериях, обладающей высокой стабильностью при получении бактерийного препарата пробиотического назначения в промышленных условиях и его пероральной доставки животным.
Раскрытие изобретения
Сущностью изобретения является способ создания интегративной генетической конструкции для экспрессии гена пептида GHRH_le в бактериях. Для интеграции гена пептида GHRH_le в хромосомный локус Wpr бактерий рода Bacillus создана конструкция, состоящая из следующих компонентов (фиг.1).
1. Промотор гена Wpr A (1000 п.н.)
Ген wprA кодирует субтилизиноподобную протеиназу, прочно связанную с клеточной стенкой (CWBP). Использование нуклеотидной последовательности, соответствующей последовательности промотора данного гена, предполагает интеграцию целевой конструкции (pWpr-le) в геном В.subtilis AJ73. При этом выключение гена WprA, происходящее в результате рекомбинации, не приводит к нарушению жизнедеятельности клетки, а активность промотора гена wprA обеспечивает синтез целевого белка (GHRH_le) в цитоплазму.
2. Мини-ген (15 п.н.) пентапептида (Е-пептид), экспрессия которого придает клеткам бацилл устойчивость к эритромицину. Использование мини-гена Е-пептида в качестве транскрипционного репортера позволяет существенно облегчить поиск наиболее продуктивных клонов путем выращивания культур на постепенно повышающихся концентрациях эритромицина и отбора наиболее устойчивых к антибиотику.
3. Последовательность, кодирующая GHRH_le (100 п.н.)
Таким образом, настоящее изобретение относится к способу получения интегративной генетической конструкции для экспрессии гена пептида GHRH_le в бактериях.
Способ предусматривает:
- получение плазмидной конструкции pWpr-le, несущей трифункциональный слитой ген;
- введение конструкции в геном В.subtilis AJ73 методом химической трансформации по Спицайзену.
Краткое описание графических изображений
Фиг.1. Плазмидная конструкция pWpr-le: принципиальная схема. Фиг.2. Последовательность трифункционального слитого гена, кодирующего GHRH_le, в составе конструкции pWpr-le.
Фиг.3. Электрофорез геномной ДНК, выделенной из клонов (изолятов) бацилл, предназначенной для детекции интегрированной конструкции pWpr-le методом ПЦР.
Фиг.4. Электрофоретический анализ продуктов ПЦР с целью идентификации конструкции pWpr_le, в том числе интегрированной в геном бацилл, с использованием праймеров SLN-H1 и SLN-H2.
Осуществление изобретения
Методология исследования:
1) получение конструкции pWpr-le,
2) введение в геном В.subtilis AJ73 полученной конструкции,
3) выделение геномной ДНК из В.subtilis AJ73 и детекция трансгена с помощью ПЦР.
1) Получение конструкции pWpr-lе
Получение конструкции проводили по следующей схеме:
1. ПЦР-клонирование кодирующей области зрелой формы GHRH_le с использованием праймеров ПЦР проводили с использованием праймеров к гену пептида GHRH_le:
SLN_H1: GGGGATCCTATGCAGATGCCATCTTCAC
SLN_H2: GGGTCGACTATCCCTGCTGCCTGCTCATGA
Размер ПЦР-продукта - 105 п.н. В качестве матрицы используется геномная ДНК человека.
2. Обработка продукта ПЦР 1 эндонуклеазами рестрикции BamHI и SalI, клонирование в вектор pQE30 (Qiagen), расщепленный по сайтам BamHI и SalI.
3. Получение ДНК-дуплекса искусственного мини-гена Е-пептида путем смешивания праймеров Еm2 и Em1.1 в эквимолярном соотношении с последующей достройкой полимеразой Pfu или обратной транскриптазой Mu-MLV (Promega).
4. Обработка ДНК-дуплекса эндонуклеазой рестрикции NdeI с последующим клонированием в вектор рЕТ23а, рЕТ23b или рЕТ23c, обработанный эндонуклеазами рестрикции NdeI и Ecl136.II.
5. ПЦР-амплификация на матрице геномной ДНК В. subtilis AJ73 фрагмента, содержащего промотор гена wprA с праймерами Wpr41 и Wpr42 (размер продукта 935 п.н.).
6. Обработка продукта ПЦР 3 эндонуклеазами рестрикции BglII и XbaI, лигирование с плазмидной ДНК конструкции 2 на базе вектора рЕТ23, несущей мини-ген Е-пептида устойчивости к эритромицину.
7. Перенос фрагмента ДНК, содержащего промотор гена wprA и мини-ген Е-пептида устойчивости к эритромицину, из конструкции 6 в конструкцию 2. Для этого проводится обработка ДНК обеих конструкций эндонуклеазами рестрикции XhoI и EcoRI, проводится препаративная очистка фрагмента конструкции 6 длиной 999 п.н. элюцией из агарозного геля, лигирование очищенного фрагмента с расщепленной и очищенной фенольной экстракцией плазмидной ДНК конструкции 2.
В составе конструкции (фиг.1 и фиг.2) можно выделить следующие элементы:
- экспрессионный вектор pQE30 (Qiagen);
- промотор гена WprA;
- мини-ген Е-пептида, обеспечивающий устойчивость бацилл к эритромицину;
- ген, кодирующий зрелый ген пептида GHRH_le;
- фрагмент полилинкера вектора рЕТ32 (Novagen).
2) Введение в геном В.subtilis AJ73 полученной конструкции. Конструкцию pWpr-le вводили в клетки штамма В.subtilis AJ73 (ВКПМ В-5036) методом химической трансформации по Спицайзену [11].
2
Бактериальную культуру выращивали в течение 14-18 часов в бульоне Леннокса (дрожжевой экстракт (Difco) 5 г/л, бактопептон (Difco) 10 г/л, NaCl 5 г/л) при 37°С. Культуру разводили в 20 раз средой SpI и подращивали в течение 4-5 часов. Затем ее разводили теплой (37°С) средой SpII в 10 раз и добавляли MgCl до 2,5 мМ. Культуру инкубировали при аэрации на 37°С еще 2 часа. Затем добавляли ДНК (1-2 мкг/мл в случае плазмидной ДНК), клетки инкубировали 1,5-2 часа при 37°С и высевали на сухие чашки с LB - агаром и эритромицином.
Селекцию колоний осуществляли по возникновению устойчивости к эритромицину в концентрации 15 мкг/мл.
В дальнейшем хранение рекомбинантных штаммов проводилось на чашках Петри с LB - агаром (дрожжевой экстракт (Difco) 5 г/л, бактопептон (Difco) 10 г/л, NaCl 5 г/л, бактоагар (Ferak) 12 г/л), содержащим эритромицин (15 мкг/мл) при +4°С, повторно пересевая 1 раз в месяц.
3) Выделение геномной ДНК из культуры клеток В.subtilis AJ73 и детекция трансгена с помощью ПЦР.
Для выделения геномной ДНК культуру клеток клеток В.subtilis AJ73 выращивали в 3 мл среды Леннокса в течение 16 часов при 37°С в условиях интенсивной аэрации. Клетки осаждали центрифугированием при 5000 об/мин. Выделение геномной ДНК из полученных клеток В.subtilis AJ73 проводили с использованием «Комплекта реагентов для выделения ДНК на сорбенте «S-сорб» («Синтол»). Расход реагентов при выделении геномной ДНК из 3 мл культуры соответствовал указанным в инструкции к набору. Полученную геномную ДНК растворяли в 40-50 мкл элюирующего раствора №6 (фиг.3).
-
Для детекции трансгена с помощью ПЦР были использованы следующие пары праймеров для получения ПЦР-продукта, включающего последовательность ДНК, соответствующую гену пептида GHRHle - SLN_H1 - SLN_H2:
SLN_H1: GGGGATCCTATGCAGATGCCATCTTCAC
SLN_H2: GGGTCGACTATCCCTGCTGCCTGCTCATGA,
Размер ПЦР-продукта - 105 п.н.
ПЦР проводили с использованием четырехканального термоциклера ТП4-ПЦР-01-«Терцик» (ООО «НПО ДНК-Технология») в матричном режиме.
Температура отжига праймеров (Та) составляла +60°С.
Объем ПЦР-смеси составил 20 мкл, использована ДНК-полимераза Taq (Fermentas).
Электрофорез ПЦР-продуктов проводили в агарозном геле (3%), в буфере ТАЕ (трис (основание) - 40 мМ, ЭДТА - 1 мМ, уксусная кислота - 31 мМ) с использованием молекулярно-весового стандарта GeneRuler™ 50 bp DNA Ladder (MBI Fermentas, кат. № SM 0373) (размеры фрагментов: 50-1000 п.н.) (фиг.4).
Аутентичность продукта ПЦР в качестве фрагмента гена пептида GHRH_le может быть проконтролирована прямым секвенированием с использованием праймеров SLN-H1 или SLN-H2.
Список использованных источников
1. Bohlen P. Isolation and characterization of the porcine hypothalamic growth hormone releasing factor / Bohlen P., Esch F., Brazeau P., Ling N. and Guillemin R. // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 1983. - V.116, N.2. - P.726-734.
2. Cravador A. Total DNA synthesis and cloning in Escherichia coli of a gene coding for the human growth hormone releasing factor / Cravador A., Jacobs P., Van Elsen A., Lacroix C., Colau В., Van Alphen P., Herzog A. and Bollen A. // Biochimie - 1985. - V.67. - N.7-8. - P.829-834.
3. Draghia-Akli R. High-efficiency growth hormone releasing hormone plasmid vector administration into skeletal muscle mediated by electroporation in pigs. / Draghia - Akli R, Elllis KM, Hill L-A, Malone PB, Fiorotto ML // FASEB J. - 2003. - 17. - P.526-528.
4. Hirose I. Proteome analysis of Bacillus subtilis extracellular proteins: a two-dimensional protein electrophoretic study / Hirose I., Sano K., Shioda I., Kumano M., Nakamura K. and Yamane К. // Microbiology. - 2000. - 14. - P.65-75.
5. Lee S.J. Enhancement of secretion and extracellular stability of staphylokinase in Bacillus subtilis by wprA gene disruption / Lee S.J., Kim D.M., Bae K.H, Byun S.M. and Chung J.H. // Appl. Environ. Microbiol. - 2000. - 66. - P.476-480.
6. Stephenson K. Influence of a cell wall associated protease on production of alpha-amylase by Bacillus subtilis / Stephenson K., Harwood C.R. // Appl. Environ. Microbiol. - 1998. - 64. P.2875-2881.
7. Stephenson K. The influence of protein folding on the late stages of the secretion of α-amylases from Bacillus subtilis / Stephenson K., Carter N.M., Harwood C.R., Petit Glatron M.F. and Chambert R. // FEBS Lett. - 1998. - 430. - P.385-389.
8. Tjalsma H. et al. Proteomics of Protein Secretion by Bacillus subtilis: Separating the "Secrets" of the Secretome / Microbiology and molecular biology reviews. - 2004. - Vol.68. - No.2. - P.207-233.
9. Margot, P. The wprA gene of Bacillus subtilis 168, expressed during exponential growth, encodes a cell-wall-associated protease / Margot, P., and D.Karamata. // Microbiology. - 1996. - 142. - P.3437-3444.
10. Белявская В.А., Сорокулова И.Б., Ромашова Н.Г., соавт. Штамм бактерий Bacillus licheniformis, обладающий антивирусной и антибактериальной активностью. - патент РФ.
11. Anagnostopoulos С.Requirements for transformation in Bacillus subtilis / Anagnostopoulos C., Spizizen J. // J. Bacteriol. - 1961. - V.81. - P.741-746.