Применение иммуномодулирующих препаратов для профилактики мастита у лактирующих коров

Применение иммуномодулирующих препаратов для профилактики мастита у лактирующих коров

И.Н. Жданова, к.в.н., ФГБНУ Пермский НИИСХ

Мастит — одна из наиболее экономически значимых болезней молочного скота [1—4]. По данным Международной молочной федерации, сообщениям Европейской ассоциации животноводов, а также по результатам многих исследований, клиническая форма мастита диагностируется у 20,0—25,0%, а субклиническая — у 35,0—50,0% коров молочного стада [5, 6]. По данным управления ветеринарии в Пермском крае, мастит имеет широкое распространение: в 2013 г. из 459493 исследованных животных мастит диагностирован у 22134 гол., в 2014 г. из 373831 коров - у 21607 гол.

В России чаще всего для системного лечения мастита применяют препараты на основе антибиотиков (пенициллина, стрептомицина, неомицина и некоторых др.), эффективность которых недостаточно высока, что связано с распространением антибиотикоустойчивых штаммов патогенной микрофлоры. Актуальность данного вопроса резко возросла перед наукой и сельскохозяйственным производством (особенно в молочном животноводстве) в связи с вступлением Российской Федерации в ВТО. Интерес учёных в последние годы вызывают препараты природного происхождения - безвредные и безопасные в экологическом отношении, обладающие ярко выраженным иммуномодули-рующим действием. Учитывая, что препараты на основе левзеи сафлоровидной повышают общую резистентность организма и обеспечивают высокий иммунный статус животных, было проведено исследование профилактических свойств биоин-фузина и гистогена при мастите коров в период интенсивного раздоя.

Материал и методы исследования. В опыт было взято 48 клинически здоровых коров, аналогичных по породе, возрасту, лактации и разделённых на четыре группы [7]. Коровам I опытной гр. внутримышечно вводили препарат биоинфузин в дозе 2,5 мл/100 кг живой массы, с 15-го дня после отёла, ежедневно, в течение 7 сут. после отёла согласно

схеме опыта. Коровам II опытной гр. вводили подкожно гистоген в дозе 0,02 мл на 1 кг живой массы, ежедневно, с 15-го дня после отёла, в течение 7 сут. Аналоги III опытной гр. получали внутримышечно биоинфузин в дозе 2,5 мл/100 кг живой массы, с 15-го дня после отёла, ежедневно, в течение 7 сут. и подкожно препарат гистоген в дозе 0,02 мл/1 кг в с 15-го дня после отёла, ежедневно, в течение 7 сут. Животным контрольной гр. вводили препарат гамавит внутримышечно, три раза в неделю, в дозе 20,0 мл, согласно утверждённым инструкциям и наставлению.

С целью определения физиологического состояния и уровня общей резистентности организма у коров проводили морфологические и биохимические исследования за день до введения испытуемых препаратов, а затем на 7-й день после окончания их применения. Взятие крови для исследования осуществлялось пункцией яремной вены в средней трети шеи. Пробы крови стабилизировали трилоном Б. Все манипуляции с животными проводили в утренние часы до кормления. Пробы крови исследовали в ГБУВК «Пермский ВДЦ» по общепринятым методикам.

Также через неделю после применения курса испытуемых препаратов всех животных исследовали по общепринятым методикам на заболеваемость маститом [8, 9].

Результаты исследования. В результате морфологических исследований выявили, что по отношению к исходным значениям через 7 дн. после сочетанного применения биоинфузина и гистогена в крови подопытных коров увеличилось содержание эритроцитов на 12,3%, гемоглобина — на 15,9%, палочкоядерных и сегментоядерных нейтрофи-лов - на 27,0-42,0% (табл. 1).

Изменения показателей эозинофилов и моноцитов были закономерными и находились в пределах нормы.

Концентрация альбуминов a-, ß- и у-глобу-линов после проведённой профилактики увеличилась незначительно и на протяжении всего экс-

1. Морфологические показатели крови коров

Показатель Группа

контрольная I опытная II опытная III опытная

До профилактики

Эритроциты, 1012/л Гемоглобин, г/л Лейкоциты, 109/л 6,7±0,1 96,0±1,6 10,2±0,1 6,6±0,2 102,3±0,9* 7,1±0,4 6,2±0,1* 100,7±0,5* 7,3±0,2 6,8±0,1 96,7±0,2 9,1±0,1

После профилактики

Эритроциты, 1012/л Гемоглобин, г/л Лейкоциты, 109/л 5,7±0,1 84,3±0,4 10,7±0,1 6,2±1,7* 95,7±0,7* 7,9±0,3 6,4±0,1* 91,7±0,9* 7,3±0,9 6,5±0,1* 100,3±0,7* 8,9±0,2

Примечание: здесь и далее: * — Р > 0,95; ** — Р > 0,99; *** — Р > 0,999 — по сравнению с контрольной

3. Эффективность биоинфузина и гистогена для профилактики клинической формы мастита у коров

2. Показатели белкового обмена

Показатель Группа

контрольная I опытная II опытная III опытная

До профилактики

а-глобулины, % ß-глобулины, % у-глобулины, % Альбумины, % 13,7±0,2 7,2±0,2 32,9±0,6 39,4±1,4 13,9±0,3 6,8±0,5 26,4±0,6* 44,5±1,8 16,3±0,3* 8,7±0,6 35,8±0,8 35,5±1,6* 15,3±0,4 5,7±0,1 38,7±0,8* 46,8±0,4

После профилактики

а-глобулины, % ß-глобулины, % у-глобулины, % Альбумины, % 14,5±0,4 8,9±0,5 29,1±0,7 39,6±1,3 13,7±0,5 9,6±0,2 27,8±0,4* 37,5±1,1 13,2±0,2 10,8±1,1* 32,1±0,2* 37,6±0,7* 13,9±0,7 10,9±0,6* 40,7±0,7* 35,5±0,9*

Показатель Группа

контрольная I опытная II опытная III опытная

Количество животных, гол. 12 12 12 12

Задержание последа, гол/% 5/41,7 3/25 2/16,7 1/8,3

Профилактическая эффективность, % 58,3 75 83,3 91,7

Эндометрит, гол/% 7/58,3 3/25 4/33,3 2/16,7

Профилактическая эффективность, % 41,7 75 66,7 83,3

Мастит в период интенсивного раздоя, гол/% 5/41,7 2/16,7 3/25 1/8,3

Профилактическая эффективность, % 58,3 83,3 75 91,7

перимента оставалась в пределах первоначальных показателей (табл. 2).

Так, по содержанию р-глобулинов животные III гр., получавшие препараты биоинфузин и гистоген, превосходили животных I и II гр. По содержанию у-глобулинов коровы III группы уступали аналогам II гр. на 21,1%.

Результаты исследования состояния молочной железы и половых органов после отёла и в лактационном периоде у коров различных групп представлены в таблице 3. Лучшие результаты получены в III опытной гр., при комплексном применении препаратов биоинфузин и гистоген.

В ходе рекогносцировочных испытаний оптимальные результаты были получены в III опытной гр. при внутримышечном введении коровам биоинфузина, в дозе 2,5 мл/100 кг живой массы, с 15-го дня после отёла, ежедневно, в течение 7 сут. и подкожно гистогена в дозе 0,02 мл/1 кг в с 15-го дня после отёла, ежедневно, в течение 7 сут.

В этой группе эффективность профилактики оказалась выше на 16,7 и 33,4% по сравнению со II опытной гр. и контрольной. У животных I опытной гр. зарегистрировано снижение количества родовых (задержание последа) и послеродовых осложнений (эндометрит) на 33,4% по сравнению с контрольной группой и на 16,7% — по сравнению со II опытной гр.

Вывод. Биоинфузин и гистоген обладают выраженной эффективностью в профилактике патологии молочной железы (в опытных группах этот показатель составил 83,3 и 91,7%). Использование

препаратов биоинфузин и гистоген оказало позитивное влияние на изменение морфологической картины крови и некоторые показатели обменных процессов. Профилактику заболеваний молочной железы у коров следует проводить путём внутримышечного введения биоинфузина, в дозе 2,5 мл/100 кг живой массы, с 15-го дня после отёла, ежедневно, в течение 7 сут. и подкожно гистогена в дозе 0,02 мл/1 кг, с 15-го дня после отёла, ежедневно, в течение 7 сут.

Литература

1. Комарова Н.К., Косилов В.И. Снижение сроков преддо-ильной подготовки нетелей с использованием лазерного излучения // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2014. № 2 (46). С. 126—129.

2. Крылов В.Н., Косилов В.И.Показатели крови молодняка казахской белоголовой породы и её помесей со светлой аквитанской // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2009. № 2 (22). С. 121—125.

3. Косилов В.И., Мироненко С.И., Жукова О.А. Гематологические показатели тёлок различных генотипов на Южном Урале // Вестник мясного скотоводства. 2009. Т. 1. № 62. С. 150-158.

4. Комарова Н.К., Косилов В.И., Исайкина Е.Ю. и др. Новые технологические методы повышения молочной продуктивности коров на основе лазерного излучения. М., 2015. 192 с.

5. Ивановский А.А. Иммуностимуляторы и их роль в повышении резистентности животных к болезням. Киров: Зональный НИИСХ Северо-Востока, 2005. С. 68.

6. Кондрахин И.П. и др.Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии. М., 1983. 63 с.

7. Антонова В.С., Топурия Г.М., Косилов В.И. Методология научных исследований в животноводстве. Оренбург; 2011. 246 с.

8. Пособие по биохимическим исследованиям крови, мочи, молока для диспансеризации с.-х. животных и оборудованию биохимических отделов ветеринарных лабораторий. М., 1970. 45 с.

9. Симонян Г.А. и др. Ветеринарная гематология. М.: Колос, 1995. 256 с.