СПОСОБ ДЕЗАКАРИЗАЦИИ И ДЕЗИНСЕКЦИИ ПТИЦЕВОДЧЕСКИХ ПОМЕЩЕНИЙ
METHOD FOR DECONTAMINATION AND DISINSECTION OF POULTRY PREMISES

Изобретение относится к области ветеринарной медицины, паразитологии, в частности к разработке эффективного способа дезакаризации и дезинсекции птицеводческих помещений с возможностью обработки без удаления птиц.
Организация лечебно-профилактических мероприятий в условиях промышленного птицеводства играет важную роль в достижении успехов в разведении и выращивании птицы. Создание оптимальных условий для жизнедеятельности кур возможно путем разработки и применения новых средств борьбы с паразитарными болезнями, в частности эктопаразитозами.
Эктопаразиты - одни из наиболее многочисленных и широко распространенных групп членистоногих. Большой ущерб птицеводству наносит красный куриный клещ Dermanyssus gallinae, который является временным, кровососущим эктопаразитом. При массовом их нападении на птиц отмечают снижение яйценоскости, потерю массы тела и гибель. Кроме того, отрицательное влияние на организм кур оказывает и повышенное фоновое значение зоофильных мух на птицефабриках. Поражая организм птицы, эктопаразиты вызывают не только местные воспалительные реакции, но и приводят к отклонению некоторых показателей физиологического статуса [2, 3].
Ключевыми ветеринарно-санитарными мероприятиями на птицефабриках являются дезакаризация, дезинсекция и дезинфекция птицеводческих помещений. Снижение паразитарной контаминации объектов ветеринарного надзора возможно при использовании новых эффективных инсектоакарицидных средств. Кроме того, необходимо, чтобы после устранения инвазии организм животных возвращался к своим физиологическим нормам и был способен к дальнейшему поддержанию параметров гомеостаза.
В птицеводстве широко применяют различные препараты на основе синтетических пиретроидов (дельтаметрин, тетраметрин, циперметрин, цифлутрин и др.) [5].
Прототипом данного изобретения является лекарственный препарат для ветеринарного применения Биорекс-ГХ, который в качестве действующего вещества содержит пиретроид - циперметрин 2,5% (или 5%). Вспомогательные компоненты: живица, канифоль, поверхностно активное вещество - ОП-7 или ОП-10, неонол и нефрас. Обработку проводят 0,005% водной эмульсией препарата двукратно с учетом цикла развития эктопаразитов и температуры воздуха в птичнике [8]. Недостатком данного препарата является дезакаризация и дезинсекция производственных помещений птицефабрик, птицеферм в период технологического перерыва - только в отсутствии птицы.
2
Целью настоящего изобретения является разработка способа дезакаризации и дезинсекции птицеводческих помещений, включающий обработку птичников методом направленного мелкокапельного опрыскивания или с помощью системы туманного орошения безопасным и эффективным препаратом без нарушения технологического режима. Поставленная цель достигается тем, что в лекарственном средстве используется действующее вещество - d-цифенотрин, а также вспомогательные компоненты: ПЭГ-40 и изопропиловый спирт. Данные компоненты взяты при определенном соотношении. Для обработки используют 0,005% рабочую водную эмульсию препарата. Для ее приготовления препарат разводят с водой непосредственно перед применением. Обработку проводят, используя ранцевые распылители и средства индивидуальной защиты. Следует отметить, что пиретроиды медленно всасываются через кожу, что предотвращает выраженное влияние на организм человека [9]. Дезинсекцию и дезакаризацию птицеводческих помещений проводят в отсутствии птицы во время технологического перерыва, используя 0,005% по действующему веществу водную эмульсию, с нормой расхода 25-50 мл/м обрабатываемой поверхности. Опрыскивают стены, потолки, опорные столбы, пометные траншеи под батареями клеток. Перед обработкой осуществляют сбор яиц. Обработку проводят двукратно, с учетом цикла развития паразитов, при температуре воздуха в птичнике 15-20°С - с интервалом 10-20 дней, при температуре выше 20°С - с интервалом 5-8 дней. Через 1 час после обработки помещение проветривают не менее 1 часа, погибших эктопаразитов сметают и утилизируют, кормушки и поилки тщательно моют и после этого размещают в помещении птицу.
Допускается обработка помещений в присутствии птицы, без нарушения технологического режима. В этом случае подвергают опрыскиванию не более 2/3 суммарной площади помещений. Обработку проводят при работающей вентиляции или открытых дверях. Приточную вентиляцию на срок обработки (30-40 мин) отключают.
Техническим результатом заявленного изобретения является повышение эффективности дезакаризации и дезинсекции птицеводческих помещений, положительная динамика восстановления организма животных на фоне инсектоакарицидных обработок.
Действующее вещество препарата - d-цифенотрин входит в группу синтетических пиретроидов, которые обладают высокой эффективностью против членистоногих и низкой токсичностью для животных. Последнее обусловлено их высоким клиренсом - через 24 ч после воздействия более 90% пиретроидов в виде метаболитов выводится из организма млекопитающих и птиц [9]. Пиретроиды - это нейротоксины, действие которых обусловлено блокированием проведения нервного импульса у паразита за счет изменения проницаемости мембран для ионов натрия, что приводит к парализующему эффекту. Кроме того, цифенотрин влияет на хлорные и кальциевые каналы нервных волокон, нарушая работу ГАМК-рецепторов у паразитов [10].
У птиц пиретроиды быстро выводятся из организма за счет гидролиза и окисления эфиров в их структуре. Данные процессы происходят в два-три раза быстрее по сравнению с млекопитающими. Очевидно, более низкая токсичность и более высокая скорость выведения пиретроидов из организма обусловлена высокой скоростью метаболизма у птиц [9].
В качестве целевых добавок препарат содержит базовый растворитель (например, изопропиловый спирт) и солюбилизатор (например, ПЭГ-40).
Сопоставимый анализ заявляемого технического решения с известным прототипом показывает, что заявляемый способ отличается от прототипа комбинацией целевых добавок, действующим веществом, возможностью проводить обработки в присутствии птиц, положительной динамикой восстановления организма животных на фоне инсектоакарицидных обработок.
Изобретение иллюстрируется следующими примерами.
Пример 1. Приготовление лекарственного препарата для ветеринарного применения.
Препарат получают следующим образом. В реактор загружают навеску изопропилового спирта и ПЭГ-40 перемешивают до полного растворения; далее загружают навеску d-цифенотрина; перемешивают до полного растворения.
Препарат в виде раствора для наружного применения (в мас. %):
d-цифенотрин
5,0
ПЭГ-40
5,0
изопропиловый спирт
до 100,0
Пример 2. Изучение эффективности препарата в отношении красного куриного клеща и зоофильных мух в птицеводческом цехе во время технологического перерыва.
Работа проводилась на птицефабрике в Нижегородской области. Оценивали контаминацию объектов внешней среды птицеводческого помещения путем взятия соскобов из разных участков пола, поверхности стен, технологического оборудования и с проходов. Определяли численность клещей в помещении. Степень заклещеванности помещения оценивали по количеству собранных особей с одного погонного метра поверхности. Численность зоофильных мух оценивали по количеству собранных имаго с липких инсектицидных лент, которые устанавливали в цехе на 24 часа. Паразитологическое обследование проводили на следующие сутки после убоя птицы, соответственно во время технологического перерыва; а затем исследовали взятые пробы в условиях лаборатории эктопаразитозов.
При проведении паразитологического обследования птицеводческого цеха №14 во время технологического перерыва с одного погонного метра поверхности было собрано до 500 живых красных куриных клещей соответственно в вышеуказанном цехе сильная степень заклещеванности. Кроме того, в данном помещении отмечено присутствие зоофильных мух. Среднее фоновое количество мух составило 202 экз.
2
Для обработки птицеводческого помещения использовали 0,005% водную эмульсию препарата. Обработку проводили с помощью системы туманного орошения с нормой расхода 25-50 мл/м обрабатываемой поверхности. Для приготовления 0,005% рабочей водной эмульсии препарат (по примеру 1) разводили с водой в соотношении 1:1000 непосредственно перед применением. После обработок помещение проветривали, проводили механическую очистку цеха, кормушки и поилки тщательно промывали.
Обработку цеха №14 проводили двукратно, с интервалом 7 суток. После двукратной обработки 0,005% рабочей эмульсией препарата живых клещей Dermanyssus gallinae не обнаружено. Кроме того, липкие инсектицидные ленты были свободны от зоофильных мух. Следует отметить, отсутствие отрицательного влияния препарата на обрабатываемые поверхности клеточного оборудования, пола, стен и опорных столбов.
Эффективность препарата подтверждена отсутствием красных куриных клещей Dermanyssus gallinae и имаго зоофильных мух после двукратной обработки рабочей эмульсией препарата (по примеру 1).
Пример 3. Изучение переносимости препарата на курах кросса Хай-Лайн.
2
2
Опыт проводили в Подольском отделе ВНИИП - филиал ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН. Куры были разделены на четыре группы по 10 голов в каждой (три опытные и одна контрольная). Для обработки использовали 0,005% рабочую эмульсию препарата. Для приготовления 0,005% рабочей эмульсии по действующему веществу препарат (по примеру 1) разводили с водой в соотношении 1:1000 непосредственно перед применением. Обработку проводили, используя ранцевые распылители и средства индивидуальной защиты. При определении терапевтической дозы препарата в расчетах использовали среднюю величину плотности посадки для кур 28-32-недельного возраста кросса Хай-Лайн - 20 гол/м [4]. Согласно инструкции по применению препарата при дезакаризации птицеводческих помещений норма расхода - 25-50 мл/м. Исходя из приведенных данных, максимальная терапевтическая доза для птиц - 2,5 мл.
В работе использовали следующую схему при изучении переносимости препарата:
1 опытная группа - рабочую эмульсию препарата использовали двукратно с интервалом 5 суток в пятикратно увеличенной терапевтической дозе - 12,5 мл на одну голову;
2 опытная группа - рабочую эмульсию препарата использовали двукратно с интервалом 5 суток в трехкратно увеличенной терапевтической дозе - 7,5 мл на птицу;
3 опытная группа - рабочую эмульсию препарата использовали двукратно с интервалом 5 суток в терапевтической дозе - 2,5 мл на одну особь;
контрольная группа - применяли дистиллированную воду в объеме 2,5 мл на одну птицу, двукратно с интервалом 5 суток.
Физиологическое состояние и поведение птиц оценивали на протяжении 30 суток. Определяли морфофизиологические и физиолого-биохимические показатели крови согласно общепринятым методикам [6].
12
12
Установлены изменения некоторых показателей углеводно-энергетического и липидного обменов у птиц из первой опытной группы. Так, у них выявлено снижение концентрации глюкозы в крови через 30 суток после обработки на 4,6% и повышение активности лактатдегидрогеназы на 6,3% по сравнению с контролем. Заявленное указывает об увеличении доли анаэробного гликолиза [7]. Так, описанные изменения углеводно-энергетического обмена в организме птиц из первой опытной группы обуславливают снижение его интенсивности, очевидно, при использовании повышенной дозы инсектоакарицида. Кроме того, у кур из первой опытной группы через 15 и 30 суток исследований отмечено снижение концентрации триглицеридов на 4,7 и 5,8%, соответственно, по сравнению с контролем. Можно отметить тенденцию к снижению интенсивности липидного обмена. В крови у кур из первой опытной группы динамика концентрации гемоглобина колебалась от 132,6±2,31 г/л до 129,4±2,35 г/л, уровень эритроцитов - от 2,97±0,06×10/л до 2,83±0,05 ×10/л. Так, в крови у кур из первой опытной группы установлена тенденция к снижению концентрации гемоглобина и уровня эритроцитов, однако данные значения имеют недостоверный характер по сравнению с контрольной группой. Выявленные изменения концентрации гемоглобина и уровня эритроцитов у кур из первой опытной группы, очевидно, повлияли на интенсивность обменных процессов в организме птицы, которая во многом зависит от реализации дыхательной функции крови [7]. Следует отметить у птиц из первой опытной группы через 30 суток тенденцию к снижению температуры тела (41,03±0,11°С против 41,39±0,12°С в контроле). Данные изменения активности процессов термогенеза свидетельствуют о снижении интенсивности обменных процессов [1]. Через 30 суток исследований у кур из первой опытной группы на фоне применения препарата в повышенной дозе отмечено снижение массы тела.
Следует отметить, что при использовании терапевтической дозы препарата у кур из третьей опытной группы не выявлено изменений по комплексу показателей. Так, полученные результаты по массе у птиц соответствовали стандартам для кросса Хай-Лайн [4]. Морфофизиологические и физиолого-биохимические параметры в крови у птиц данной группы сопоставимы с гомеостатическими константами для яичных кур, что создает предпосылки для благоприятного прогноза на их дальнейшее существование.
Учитывая вышеизложенное, можно свидетельствовать о том, что выраженных метаболических нарушений у кур из опытных групп на фоне двукратной обработки рабочей эмульсией препарата при использовании ее в максимальной терапевтической дозе и ее увеличении в пять и три раза по сравнению с контролем не установлено. Поведение кур-несушек из опытных групп не отличалось от контроля. При этом в связи с выявленной тенденцией к снижению интенсивности липидного и углеводно-энергетического обменов, снижением массы и температуры тела через 30 суток исследований, изменениями в системе красной крови в организме кур из первой опытной группы - увеличенную в пять раз терапевтическую дозу можно считать максимальной недействующей дозой.
Таким образом, полученные результаты исследований указывают на возможность безопасного применения рабочей эмульсии препарата на основе d-цифенотрина в присутствии птиц в рекомендуемом режиме дозирования.
Пример 4. Терапевтическая эффективность препарата против Dermanyssus gallinae в присутствии птицы.
На базе птицефабрики в Нижегородской области проведены исследования по выявлению эффективности инсектоакарицидного препарата в птичнике, содержащем кур кросса яичного направления - Хай-Лайн. По результатам паразитологического исследования выявлен птичник неблагополучный по дерманиссиозу с курами-несушками в возрасте восьми месяцев (опытная группа). При оценке степени заклещеванности выявлена сильная степень - с одного погонного метра было собрано до 500 живых красных куриных клещей. Также была отобрана контрольная группа яичных кур, которая была свободна от паразитарных агентов.
2
До и после проведения дезакаризации помещение подвергали механической очистке. Обработку помещения проводили препаратом по примеру 1. Для обработки птицеводческого помещения использовали 0,005% рабочую эмульсию. Для приготовления 0,005% рабочей эмульсии по действующему веществу препарат (по примеру 1) разводили с водой в соотношении 1:1000 непосредственно перед применением. Обработку проводили, используя ранцевые распылители в присутствии птицы с нормой расхода 25-50 мл/м. Опрыскиванию подвергали 2/3 суммарной площади помещения при открытых дверях. Дезакаризацию птичника проводили двукратно с интервалом 7 суток. Обработку осуществляли, используя средства индивидуальной защиты. Учет результатов эффективности препарата выполняли через 24 часа и 7 суток после повторной дезакаризации птичника.
Взятие крови кур для исследований совершали до и после проведения двукратной обработки препаратом через 10 и 20 суток до утреннего кормления. Методы определения этологических особенностей у кур - наблюдение с регистрацией проявления их двигательной активности, оценка реакций кур на различные стимулы.
После двукратной обработки данного птицеводческого помещения во всех пробах отмечено отсутствие живых особей гамазовых клещей. Заявленное подтверждает высокую терапевтическую эффективность данного препарата в отношении D. gallinae при клеточно-батарейном содержании кур яичного кросса. Птицы из контрольного цеха оставались свободными от паразитарных агентов.
Физиолого-биохимический статус особей до и после воздействия препаратом при дезакаризации помещения изменяется в течение всего периода исследования, т.е. 20 суток. Зарегистрирована положительная динамика стабилизации гомеостаза у кур после освобождения от паразитов - красного куриного клеща. У представителей из опытной группы отмечен катаболический сдвиг метаболизма, который обеспечивает организм энергией необходимой для поддержания восстановительных процессов после болезни. При этом у кур отмечена стабилизация концентрации гемоглобина, количества лейкоцитов до контрольных значений. Установлено повышение инкреторной активности щитовидной железы у кур после дезакаризации, а также выраженное снижение интенсивности перекисного окисления липидов.
После освобождения от паразитов - красного куриного клеща этологический статус кур восстанавливается - т.е. угнетение, агрессивное поведение, зуд исчезают. Через 20 суток после обработки их поведение не отличалось от здоровой птицы.
Литература
1. Висмонт Ф.И. Механизмы изменения температуры тела у крыс и кроликов в зависимости от состояния детоксикационной функции печени и выраженности эндотоксинемии // Сборник научных трудов «Функциональные системы организма в норме и при патологии». - Минск: Изд. РИВШ, 2008. - С. 80-84.
2. Индюхова Е.Н., Арисов М.В., Максимов В.И., Азарнова Т.О. Физиолого-биохимический ответ организма яичных кур на Dermanyssus gallinae // Сборник научных статей по материалам международной научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». Выпуск 22. 19-21 мая 2021. - М., 2021. - С. 215-222. DOI: 10.31016/978-5-6046256-1-3.2021.22.215-222
3. Индюхова Е.Н., Арисов М.В., Максимов В.И., Азарнова Т.О. Физиолого-биохимические аспекты взаимосвязи интенсивности липопероксидации и системы белой крови у кур при дерманиссиозе // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2021. - №3. - С. 42-43. DOI: 10.17238/issn2072-6023.2021.3.42
4. Кейд Д., Бобылева Г., Капустин Е. «Хай-Лайн коричневый» - совершенство генетики // Птицеводство. - 2011. - №7. - С. 27-28.
5. Лихарева А. И. Современные препараты для борьбы с эктопаразитами птиц (Аналитический обзор) // Актуальные вопросы ветеринарной биологии. - 2016. - №1 (29). - С. 54-58.
6. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: Справочник / Кондрахин И.П. М.: Изд. «КолосС», 2004. 520 с.
7. Новиков В.Е., Катунина Н.П. Фармакология и биохимия гипоксии // Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. - 2002. - Т. 1. - №.2. - С. 73-87.
8. Сафиуллин Р.Т., Бондаренко Л.А., Вавилов Ю.С.Эпизоотическая ситуация по куриному клещу и эффективность препарата биорекс-ГХ в производственном опыте // Российский паразитологический журнал. - 2015. - №2. - С. 83-91.
9. Schleier III J.J., Peterson R.K.D. Pyrethrins and pyrethroid insecticides. - London: Royal Society of Chemistry, 2011. - Т. 11. - P. 94-131.
10. Soderlund D.M., J.R. Bloomquist, "Neurotoxic Actions Of Pyrethroid Insecticides" Annual Review of Entomology, vol. 34, no. 1, pp. 77-96, 1989. DOI: 10.1146/annurev.en.34.010189.000453