Сравнительная эффективность гельминтоовоскопических методов диагностики гельминтозов свиней

Наиболее опасными паразитами в качестве источников инвазий для человека являются носовая пятиустка, огуречный цепень, токсокары, чесоточные клещи в т.ч. демодексы и нотоэдресы, личинки тений, личинки лентеца широкого, возбудители микроспории и трихофитии.

Литература: 1. Кармалиев Р.С. 1997.//Сб. науч. Тр.Каз НИВИ.-Алматы-С.234-237.2. ВасилевичФ.И.//Ветеринария.-1993-С.108-215.

Prevalence of infective zooanthroponoses in Orenburje.Terentjeva Z.H. Orenburg State Agricultural University.

Summary. One discusses the main sources of infection of humans by the most dangerous zoonoses.

СРАВНИТЕЛЬНАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ГЕЛЬМИНТООВОСКОПИЧЕСКИХ МЕТОДОВ ДИАГНОСТИКИ ГЕЛЬМИНТОЗОВ СВИНЕЙ

Тимербаева Р.Р., Идрисов А.А., Лутфуллин М.Х.

ФГБОУ ВПО Казанская государственная академия ветеринарной

медицины им.Н.Э. Баумана

Введение. Основой профилактики большинства инвазионных болезней являются профилактические и лечебные дегельминтизации, целесообразность проведения которых, базируется на результатах гельминтокопроскопических исследований животных.

В настоящее время для диагностики гельминтозов животных предложено немалое количество флотационных и комбинированных методов копроскопии. Следует обратить внимание на то, что данные некоторых авторов, полученные при исследовании фекалий с помощью того или иного метода являются противоречивыми. Одни ученые считают, что растворы отдельных солей с увеличением их плотности повышают флотационную способность яиц гельминтов, другие же, напротив,что способствуют задержке флотации яиц.

На основании вышеизложенного, перед нами была поставлена задача -дать сравнительную оценку эффективности некоторым существующим методам, рекомендованным для гельминтоовоскопической диагностики

314

гельминтозов животных, а также разработать новый метод копроскопической диагностики гельминтозов свиней.

Материалы и методы. В целях сравнительной оценки эффективности предложенных и разработанного нами методов копроскопической диагностики гельминтозов свиней, испытали некоторые флотационные (Котельникова-Хренова, Маллори, Фюллеборна), а также ряд комбинированных методов (Дарлинга, Котельникова-Вареничева, Щербовича). В качестве контроля использовали флотационный метод Фюллеборна с применением насыщенного раствора хлорида натрия.

Нами предложен новый метод гельминтокопроскопической диагностики гельминтозов свиней, на который получен патент № 2386417 от 20 апреля 2010 г. Сущность метода заключается в том, что берут 1 г фекалий, размешивают в 13 мл комбинированной флотационной жидкости, состоящей из насыщенного раствора хлорида натрия (420 г на 1 л) и сахара (1670 г на 1 л), взятых в соотношении 6:1, соответственно, затем фильтруют, полученную взвесь центрифугируют в течение 2 минут при 1500 об./мин., после чего проводят микроскопию поверхностной пленки.

Для стандартизации проводимых исследований использовали чистую посуду (стаканчики объемом 30 мл, центрифужные пробирки объемом 10 мл). Пробы отстаивали и центрифугировали в течение одного и того же времени, согласно методике. Удельный вес приготовленных флотационных растворов определяли с помощью денсиметра при температуре окружающей среды 20°С.

Из матки самок Ascaris suum получали яйца, которые помещали в центрифужную пробирку с дистиллированной водой, осаждали и готовили взвесь необходимой концентрации. Яйца A. suum в количестве 100 экз. закладывали в пробы фекалий свиней равные 1 грамму, которые изначально были свободны от яиц. После этого подготовленные пробы исследовали различными гельминтоовоскопическими методами. Всплывающие яйца нематод диагностировали путем их снятия с поверхностной пленки с помощью металлической петли с диаметром кольца 0,9 мм. После чего вели их подсчет сначала в одной капле, а затем в 1 мл флотационной жидкости. Для подсчета яиц использовали сетку Акбаева, а полученные результаты подвергали статистическому анализу.

Результаты. Данные о сравнительной эффективности различных гельминтоовоскопических методов диагностики аскариоза свиней с искусственной закладкой яиц представлены в таблице.

Таблица

Сравнительная эффективность различных гельминтоовоскопических методов для выявления яиц Ascaris suum

№

Методы

исследовани

й

Реактив

Химич. формула Норма расхода, г/л

Уд.вес флот. Кол-во Кол-во

заложен.

жидкост в пробу яиц впробе

и яиц

315

1 Фюллеборна NaCl 420 1,19 100 29,3 ± 1,0

2 Разработанный метод NaCl+ C12H22O11 420 (NaCl) +1670 (C12H22O11) 1,22 100 61,0 ± 2,3

3 Котельников а-Хренова NH4NO3 1500 1,28 100 48,5 ± 1,8

4 Маллори C12H22O11 1670 1,28 100 18,3 ± 0,6

5 Дарлинга NaCl + C3H8O3 420 (NaCl) 1,21 100 24,4 ± 0,9

6 Котельников а-Вареничева ZnCl2 2000 1,82 100 57,1 ± 2,1

7 Щербовича MgSO4 920 1,28 100 53,7 ± 1,7

Результаты изучения диагностической эффективности различных гельминтоовоскопических методов показали, что все использованные методы позволили диагностировать яйца нематод A.suum. Однако разработанный нами метод для диагностики гельминтозов свиней с насыщенным раствором хлорида натрия и сахара показал более высокую диагностическую эффективность, с помощью которого было выявлено до 61,0±2,3 заложенных яиц A.suum. Флотационными методами: Фюллеборна (с насыщенным

раствором хлорида натрия), Котельникова-Хренова (с аммиачной селитрой), Маллори (с насыщенным раствором сахара), комбинированными - Дарлинга (с насыщенным раствором хлорида натрия и глицерином в соотношении 1:1), Котельникова-Вареничева (с насыщенным раствором хлорида цинка), Щербовича (с насыщенным раствором сульфата магния), также обнаружены яйца A.suum, но их количество было значительно меньше, чем выявлено предлагаемым новым методом. Методом Фюллеборна удалось выявить 29,3 ± 1,0; методом Котельникова-Хренова обнаружено 48,5±1,8; методом Дарлинга

- 24,4±0,9; методом Котельникова-Вареничева -57,1±2,1; методом Щербовича

- 53,7±1,7 яиц A.suum. Наименьшее число яиц нематод было выявлено посредством гельминтоовоскопического метода Маллори - 18,3±0,6.

Заключение. Таким образом, проведенные исследования по изучению сравнительной эффективности семи гельминтоовоскопических методов в опытах с искусственной закладкой яиц A.suum показали, что наиболее высокой диагностической эффективностью обладает разработанный нами метод с использованием комбинированной флотационной жидкости, состоящей из двух ингредиентов: хлорида натрия и сахара, взятых в соотношении 6:1.

316

Литература: 1. Акбаев М.Ш., Василевич Ф. И. и другие. Паразитология и инвазионные болезни животных.-М.: Колос, 2008. - 775 с. 2. Котельников Г.А. Диагностика гельминтозов животных.-М.: Колос 1974. - 240 с. 3. Котельников Г.А. Гельминтологические исследования животных и окружающей среды.-М.: Колос, 1984. - 208 с.

Comparative efficacy of helminthovoscopic methods of diagnosis of swine helminthoses. Timerbaeva R.R., Idrisov A.A., Lutfullin M.H. N.A. Bauman Kazan State Academy of Veterinary Medicine.

Summary. As a result of the carried out investigations on comparative efficacy of 7 helminthovoscopic methods in experiments with artificial laying of Ascaris suum eggs one concluded that the method with combined floatation fluid comprising sodium chloride and sugar (6:1) appeared to be the most effective.

ФАКТОРЫ ВНЕШНЕЙ среды, влияющие на ИНВАЗИРОВАННОСТЬ ОВЕЦ ГЕЛЬМИНТАМИ

Тлепов А.А. **,Сулейменов М.Ж. *,

Аубакиров Х.А. **, Жумаханов Б. **

*Казахский научно-исследовательский ветеринарный институт **Филиал «Жамбылская научно-исследовательская ветеринарная станция»

Инвазированность сельскохозяйственных животных гельминтами в Жамбылской области достаточно высокая, она определяет уровень заболеваемости животных и наносит огромный экономический ущерб хозяйствующим субъектам.

Вследствие трансформации технологии животноводства, эпизоотическая ситуация по многим гельминтозам на юге страны приобрела напряженный характер. На настоящем этапе гельминты встречаются в основном в виде полиинвазии, что обусловлено интенсивным использованием присельских пастбищ.

Решение проблемы усложняется не только наличием множества природно-климатических зон и метеорологических условий на территории области, а также разнообразием групп, свойств и видового состава

317