Регуляторы роста и их влияние на ризогенез микропобегов черешни ( Prunus avium L. ) in vitro

2. Большая энциклопедия. Лекарственные растения в народной медицине. - М : Дом АНС, 2007. - С. 175-176.

3. Бутенко Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. -М.: Наука, 1964. - 272с.

4. Гюнтер Е.А. Получение каллусных культур Silene vulgaris (M.) G. // Биотехнология. -2007. - №6. - С. 41-45.

5. Влияние гормонального состава среды Андерсона на рост растений клюквы и образование каллусов в культуре in vitro / Лобов В.П., Брилкина А.А., Веселов А.П. и др. // Фактори експериментально! еволюцп органiзмiв: Зб. наук. пр. - К.: Логос, 2006. - Т.3. - С. 473-478.

6. Новые эфиромасличные культуры: Справочник / Машанов В.И., Андреева Н.Ф., Машанов Н.С., Логвиненко И.Е. - Симферополь: Таврия, 1988. - 160 с.

7. Митрофанова О.В., Логвиненко И.Е., Иванова Н.Н. Регенерация растений из изолированных органов и тканей Artemisia balchanorum Krasch. и Artemisia scoparia W. K. // Биотехнологические исследования садовых и других ценных многолетних культур: Тр. ГНБС. - 1997. - Т.119. - С. 143-153.

8. Спринчану Е.К. Культивирование Artemisia balchanorum Krasch. in vitro и разработка технологии ее клонального микроразмножения // Растительные ресурсы. - 1990. - Вып.2. - С. 242-248.

9. Хараим Н.Н., Невкрытая Н.В., Кривда С.И. Анализ селекционной ценности коллекционных образцов полыни эстрагон (Artemisia dracunculus L.) // Наук. зап. Терноп. пед. ун-ту. Сер. бюл. - 2007. - №3(33). - С. 85-89.

10. Cotton C.M., Gramshaw J.W., Evans L.V. The effect of á-naphthalene acetic acid (NAA) and benzylaminopurine (BAP) on the accumulation of volatile oil components in cell cultures of tarragon (Artemisia dracunculus) // Journal of Experimental Botany. - 1991. - Vol. 42, № 3. - P. 377-386.

11. Mackay W.A., Kitto S.L. Factors affecting in vitro shoot proliferation of French tarragon // HortScience. - 1988. - Vol.113, № 2. - P. 282-287.

Рекомендовано к печати д. б. н. Митрофановой И. В.

РЕГУЛЯТОРЫ РОСТА И ИХ ВЛИЯНИЕ НА РИЗОГЕНЕЗ МИКРОПОБЕГОВ ЧЕРЕШНИ (PRUNUS AVIUM L.) IN VITRO

Н.В. КОРЗИНА

Никитский ботанический сад - Национальный научный центр

Введение

Биотехнология находит все более широкое применение в различных отраслях сельского хозяйства, и, в частности, в плодоводстве. Так, в условиях in vitro успешно проводят селекцию косточковых плодовых культур [4, 11]. Сочетание с методами термотерапии и хемотерапии позволяет оздоравливать ценный посадочный материал от вирусной и грибной инфекции [3, 5, 6] и массово тиражировать трудноразмножаемые виды растений [1, 2], что является особенно актуальным для культур с низкой способностью к ризогенезу [18 ,19].

В последние годы получены положительные результаты микроразмножения in vitro ряда растений, в том числе плодовых, таких как вишня, слива, алыча, персик, абрикос, черешня [610, 12-14, 16]. Однако многие вопросы, такие как влияние регуляторов роста, их концентрации и соотношения в питательных средах для основных этапов культивирования, до сих пор малоизучены. Известно, что черешня является одним из наиболее трудноукореняемых видов рода Prunus и обладает низкой способностью к размножению черенками [15, 18, 19]. Поэтому цель данной работы — установить регуляторы роста и их эффективные концентрации в питательной среде.

Объекты и методы исследования

В качестве объектов исследования использовали сорта черешни с разными сроками созревания плодов, такие как Сказка и Талисман, произрастающие в опытном хозяйстве «Мелитопольское» Института орошаемого садоводства им. Н.Ф. Сидоренко (г. Мелитополь). В исследованиях применяли как общепринятые, так и разработанные в отделе биотехнологии и биохимии растений НБС-ННЦ методы [2, 3]. Опыты проводились в 2008-2009 гг. Микропобеги культивировали на питательной среде Murashige и Skoog (1962) [18] и в наших модификациях: Су, Су1-Су6, Су (ИУК). Для изучения морфогенетических потенций органов и тканей в питательную среду добавляли следующие регуляторы роста: Р-3 -индолилмасляную кислоту (ИМК) - 2,46-7,35 мкМ, а-нафтилуксусную кислоту (НУК) - 5,37-10,74 мкМ, индолилуксусную кислоту (ИУК) — 2,85-5,71 мкМ. Пробирки с микропобегами помещали в культуральную комнату с заданным режимом (интенсивность освещения 2,0-2,5 клк, 16 часовой фотопериод и температура 24±1°С).

Результаты и обсуждение

Как известно, завершающим этапом клонального микроразмножения in vitro является формирование корневой системы. Для индукции ризогенеза микропобеги длиной 1,0-2,0 см помещали на поверхность агаризированной среды, дополненной ауксинами в разных концентрациях и соотношениях. Появление первых корней на регенерантах сорта Сказка наблюдали на питательной безгормональной среде (контрольном варианте) через 28 суток культивирования. Из испытанных составов питательных сред успешное укоренение происходило через 18 суток развития на питательных средах с добавлением 5,71 мкМ ИУК и 10,74 мкМ НУК соответственно (табл. 1).

Таблица 1

Влияние комбинаций и концентраций ауксинов в питательной среде на ризогенез микропобегов черешни сорта Сказка

Концентрация ауксинов, мкМ Исходное количество микропобегов, шт. Время культивирования, сутки Количество микропобегов, %

ИМК НУК ИУК

укоренив. не укорен.

0 0 0 9 28 33,3 66,7

9,80 0 0 18 22 16,7 83,3

4,90 5,37 0 16 24 18,8 81,2

0 10,74 0 16 18 43,8 46,2

19,6 0 0 12 31 8,3 91,7

9,80 10,74 0 12 30 25 75

0 0 5,71 8 18 37,5 62,5

Вместе с тем, одновременно с развитием корней отмечено увядание верхушечных листьев, отмирание апикальной части регенеранта, сильное разрастание каллуса.

Повышение концентрации ИМК в питательной среде замедляло формирование и рост корней. Так, на питательных средах с добавлением 9,80 мкМ ИМК и с 4,90 мкМ ИМК и 5,37 мкМ НУК корни развились через 22-24 суток культивирования. На питательных средах, содержащих 9,80 мкМ ИМК, 10,74 мкМ НУК, и 19,6 мкМ ИМК, корни появились через 30 суток. Таким образом, наиболее эффективными для ризогенеза микропобегов черешни являются питательные среды, содержащие 5,37-10,74 мкМ НУК и 5,71 мкМ ИУК.

В результате культивирования на питательных средах с разными регуляторами роста ауксинового ряда у регенерантов черешни было установлено 2 типа корнеобразования. В первом случае корни развивались из каллусной ткани, которая формировалась из базальной части микропобега. Для второго типа характерно развитие корней непосредственно из тканей микропобега, его базальной части (рис. 1). Отмечено, что формирование корней второго типа

происходит на безгормональной питательной среде, а также на среде, дополненной ИУК в концентрации 2,85-5,71 мкМ. На питательных средах с НУК и ИМК корневая система развивается из каллуса сферической формы бледно-желтого или белого цвета.

Рис. 1. Типы формирования корней у микропобегов черешни in vitro: а - развитие корней из каллусной ткани; б - развитие корней из базальной части

Изучение зависимости укоренения микропобегов in vitro от сроков культивирования (январь-февраль) на питательной среде показало, что в феврале (время выхода растений из состояния покоя) корневая система формируется у 70,6% исследуемых микропобегов. Развитие регенерантов в декабре было менее интенсивным и составляло 60%. Самый низкий процент

декабрь январь февраль Сроки культивирования микропобегов, месяц Рис. 2. Влияние сроков культивирования на ризогенез микропобегов черешни in vitro

Спустя 28-40 суток культивирования растения с нормально развитой корневой системой высаживали в стерильный субстрат (смесь торфа, перлита и дерновой земли в соотношении 1:1:1) для адаптации в условия in vivo (рис. 3).

а б

Рис. 3. Адаптация полученных в культуре in vitro регенерантов черешни к условиям теплицы: а - подготовленный к условиям in vivo регенерант; б - растения, высаженные в

субстрат

Выводы

В результате экспериментальных исследований модифицированы питательные среды и определены эффективные регуляторы роста и их концентрации, индуцирующие ризогенез микропобегов черешни в условиях in vitro. Установлено, что оптимальной питательной средой для развития корней у микропобегов являются питательные среды Су (ИУК) и Cу3, дополненные 2,85-5,7 мкМ ИУК и 5,37-10,7 мкМ НУК соответственно, а также питательная среда Су, не содержащая регуляторы роста. Выявлено 2 типа формирования корневой системы микропобегов черешни. Получены полноценные регенеранты черешни, адаптированные к условиям in vivo.

Список литературы

1. Бленда А.В. Мшроклональне розмноження in vitro представниюв тдродини Prunoidae // Физиология и биохимия культурных растений. - 2000. - Т. 32, №5. - С. 428-434.

2. Бутенко Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. -М.: Наука, 1964. - 272 с.

3. Диагностика вирусных болезней и биотехнологические приемы получения безвирусного посадочного материала косточковых плодовых культур / Митрофанова О.В., Славгородская-Курпиева Л.Е., Митрофанова И.В., Лукичева Л.А. - Ялта: Крымпресс, 2000. - 45 с.

4. Здруйковская-Рихтер А.И. Эмбриокультура изолированных зародышей, генеративных структор и получение новых форм растений. - Ялта: Крым - Фарм - Трейдинг, 2003. - 368 с.

5. Изучение вирусов и вирусных болезней косточковых плодовых культур на юге Украины и особенности оздоровления растений in vitro / Митрофанова О.В., Митрофанова И.В., Ежов В.Н., Лесникова-Седошенко Н.П., Лукичева Л.А., Смыков А.В., Сенин В.В., Литвинова Т.В. // Бюл. Никит. ботан. сада. - 2005. - Вып. 91. - С. 111-120.

6. Калинин Ф.Л., Кушнир Г.П., Сарнацкая В.В. Технология микроклонального размножения растений. - К.: Наукова думка, 1992. - 232 с.

7. Кузнецова Н.В. Особенности введения первичных эксплантов четырех сортов черешни (Prunus avium L.) в условия in vitro // Теоретические и прикладные аспекты биохимии и биотехнологии растений: Матер. III междунар. науч. конф. Минск, 14-16 мая 2008 г. — Минск, 2008. — С.265-268.

8. Кузнецова Н.В., Митрофанова О.В. Влияние регуляторов роста на регенерационную способность четырех сортов черешни (Prunus avium L.) в условиях in vitro // Фактори експериментально! еволюцп органiзмiв: зб. наук. праць. — К: Логос, 2008. — Т. 5. — С. 287-290.

9. Кузнецова Н.В., Митрофанова О.В. Влияние регуляторов роста на повышение эффективности клонального микроразмножения (Prunus avium L.) // Бюлопя: вщ молекули до

бюсфери: Матер. III мiжнар. наук. конф. молод.науковщв. Харюв, 18-21 листоп. 2008 р. -Харкв, 2008. - С. 248.

10. Кузнецова Н.В. Влияние регуляторов роста на эффективность регенерации растений при клональном микроразмножении черешни (Prunus avium L.) // Бюл. Никит. ботан. сада. -2008. - Вып. 97. - С. 52-55.

11. Лесникова Н.П., Сусский А.Н., Горина В.М. Микроразмножение in vitro алычи prunus serasifera Ehrh.) как возможность ускорения селекционного процесса // Бюл. Никит. ботан. сада. - 2002. - Вып. 86. - С. 57-60.

12. Лукичева Л.А., Митрофанова О.В. Клональное микроразмножение перспективных сортов вишни и сливы // Проблемы дендрологии, садоводства и цветоводства: Тез. докл. междунар. конф. молод. учен. 25-27 сент. 1995 г., Крым, Ялта. - Ялта, 1995. - С. 102.

13. Радилова Л.Д., Барабаш Т.Н. Микроклональное размножение вишни методом верхушечных меристем // Современные проблемы плодоводства: Тез. Докл. междунар. науч. конф., посв. 70-летию Белорус. Науч.-исслед. ин-та плод-ва, 9-13 октября 1995. -Самохваловичи, 1995. - С. 160-161.

14. Фомина Е.Г., Жук Н.Г. Клональное микроразмножение районированных в Беларуси сортов Cerasus // Плодоводство. - 1994. - Т.9. - С. 64-74.

15. Gregor Osters, Luthar Zlata, Stampak Franci. The importance of the sterilization proceducing vigorous cherry plants (Prunus sp.) in vitro // Acta agriculturae slovenica. - 2004. - Vol. 83. - P. 45-51.

16. Kuznetsova N.V., Mitrofanova O.V Investigation of regeneration ability of four cultivars of sweet cherry (Prunus avium L.) in conditions in vitro // Биология клеток растений in vitro и биотехнология: Матер. IX междунар. конф. Звенигород, 8-12 сентября 2008 г. — Звенигород, 2008. — С. 60.

17. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassay with tabacco tissue cultures // Physiol. Plant. - 1962. - Vol. 15, №3. - P. 473-497.

18. Sauer Annemarie. In vitro - Vermehrung verschiedener genotypen von Prunus avium L. // Gartenbauwissenschaft. - 1983. - Bd. 48. - S. 124-127.

19. Snir Iona. In vitro micropropagation of sweet cherry cultivars // HortScience. - 1982. - Vol. 17, №2. - P. 735-736.

Рекомендовано к печати д.б.н. Митрофановой И.В.

БОТАНИКА И ОХРАНА ПРИРОДЫ

К ВОПРОСУ ОБ ИДЕНТИФИКАЦИИ ВИДА ПРИ ИНТРОДУКЦИИ НА ПРИМЕРЕ

ВИДОВ РОДА MONARDA L.

З.С. ГОРЛАЧЕВА, кандидат биологических наук Донецкий ботанический сад НАН Украины

Вступление

Как известно, интродукция - это один из действенных методов обогащения ассортимента и повышения продуктивности растений и, что очень важно, в условиях интродукции возможно глубокое изучение и анализ исходных природных видов и интродуцентов, детальное изучение их биологических возможностей.

Роль интродукции высоко оценивается в международном аспекте. Так, в 1978 г. возникла «Международная комиссия содействия внедрению новых нетрадиционных культур» [14]. Основной задачей этой организации является координация интродукционных исследований в разных странах. Огромное внимание при этом уделяется созданию коллекций для изучения видов и сортов из различных стран с целью выделения наиболее продуктивных для внедрения в производство и использование в селекционной работе. До сих пор дискуссионным остается вопрос, что является объектом интродукции? В статье С.Е Коровина, З.Е. Кузьмина [6] отражена одна из точек зрения по этому поводу: " Возникает вопрос: с каким материалом имеет дело экспериментатор? Конечно же, с растением, но ни с таксоном, ни с