АЦИЛИРОВАННЫЕ ФЛАВОНОИДЫ РОДА SРIRАЕА КАК ИНГИБИТОРЫ α-АМИЛАЗЫ

Химия растительного сырья. 2017. №4. С. 81-90. DOI: 10.1425 8/j cprm.2017042144

УДК 582.734.2:547.814.5

АЦИЛИРОВАННЫЕ ФЛАВОНОИДЫ РОДА SPIRAEA КАК ИНГИБИТОРЫ а-АМИЛАЗЫ

© Н.И. Кащенко1, Н.К. Чирикова2, Д.Н. Олейников1

1 Институт общей и экспериментальной биологии СО РАН,

ул. Сахьяновой, 6, Улан-Удэ, 670047 (Россия), e-mail: olennikovdn@mail.ru

2 Северо-Восточный федеральный университет им. М.К. Аммосова, ул. Белинского, 58, Якутск, 677000

Spiraea L. представляет собой род листопадных кустарников семейства Rosaceae, широко распространенный на территории Восточной Сибири. В результате исследования шести видов Spiraea, произрастающих в Прибайкалье, было показано, что они характеризовались высоким содержанием фенольных соединений, а экстракты обладали инги-биторным действием на а-амилазу. Применение корреляционного анализа позволило выявить лидирующую роль фла-воноидов, как носителей биологического эффекта экстрактов. Наибольшей активностью обладал экстракт листьев S. salicifolia с величиной 1С50 69,30 мкг/мл. После фракционирования и хроматографического разделения экстрактивных веществ из этилацетатной фракции S. salicifolia было выделено 18 соединений, в том числе 15 - впервые для вида, включая трифолин, 6"-0-кофеил-гиперозид, 6"-0-кофеил-изокверцитрин, 6"-0-кофеил-астрагалин, 1-О-и-гидрокси-бензоил-б-О-и-кумароил-Р-Б-глюкопиранозу, 3,4,5-три-О-кофеилхинную кислоту, изорамнетин-3-O-P-D-глюкопиранозид, тилирозид, изорамнетин-З-О-а-ь-рамнопиранозид, 1-0-^ис-циннамоил-6-0-(2'-метилен-4'-гидрокси-бутироил)-Р-Б-глюкопиранозу, 1-0-(4"-гидрокси-3"-метилфуран-2"-он)-6-0-»г/'акс-циннамоил-Р-в-глюкопиранозу, 1-0-(4"-гидрокси-3"-метилфуран-2"-он)-6-0-^мс-циннамоил-Р-в-глюкопиранозу, 6-тюлипозид А и тюлипалин А. Наиболее активными ингибиторами а-амилазы были флавоноидные кофеилгликозиды, причем 6"-0-кофеил-гиперозид с максимальным показателем 1С50 46,18 мкг/мл, определял общий анти-а-амилазный эффект извлечений S. salicifolia. Суммарное содержание 6"-0-кофеил-гиперозида в листьях S. salicifolia составило 0,60-10,53 мг/г, флавоноидов -12,02-23,17 мг/г. Проведенные исследования показали, что ацилированные флавоноиды Spiraea являются эффективными ингибиторами а-амилазы.

Ключевые слова: Spiraea, Rosaceae, Spiraea salicifolia, флавоноиды, 6"-0-кофеил-гиперозид, ВЭЖХ, ингибиро-вание а-амилазы.

Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ и Правительства Республики Бурятия

в рамках научного проекта № 16-43-030857 и проекта ФАНО России № 0337-2016-0006.

Введение

Сахарный диабет (СД) - известное метаболическое заболевание, характеризующееся анормальным постпрандиальным (возникающим после еды) повышением уровня глюкозы в крови [1]. По оценкам ВОЗ, в 2014 г. СД в мире страдали 422 млн человек, и распространенность этой болезни растет. В 2012 г. это заболевание стало непосредственной причиной около 1,5 млн случаев смерти,а к 2030 г. СД станет седьмой ведущей причиной смерти [2]. В этой связи контроль постпрандиальной гипергликемии является важным звеном терапии СД [3].

а-Амилаза слюнных и поджелудочной желез является важными ферментом, участвующими в деградации углеводов. Ингибиторы а-амилазы способствуют снижению процесса расщепления и абсорбции углеводов в кишечнике, в связи с чем с середины 1980-х гг. данные соединения стали рассматриваться в качестве нового класса антидиабетических лекарственных средств [4].

Кащенко Нина Игоревна - кандидат фармацевтических наук, научный сотрудник лаборатории медико-биологических исследований, e-mail: ninkk@mail.ru Чирикова Надежда Константиновна - кандидат фармацевтических наук, доцент кафедры биохимии и биотехнологии, e-mail: hofnung@mail.ru Олейников Даниил Николаевич - доктор фармацевтических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории медико-биологических исследований, e-mail: olennikovdn@mail.ru

Автор, с которым следует вести переписку.

В ходе медикаментозного лечения СД применяют различные химические агенты синтетического или природного происхояедения. Коммерчески доступными препаратами являются углевод-содержащие акарбоза и воглибоза, получаемыми из природных источников и снижающих постпрандиальный уровень глюкозы в крови [5]. Процесс получения препаратов долгий и многоэтапный, что приводит к высокой стоимости целевых продуктов. Более того, клинически показано, что длительное применение данных соединений приводит к комплексу серьезных желудочно-кишечных расстройств. В этой связи необходимым является поиск альтернативных соединений, обладающих высокой эффективностью в терапии СД без побочных эффектов.

В последнее время, исследовательским проектам, направленным на поиск потенциальных неуглеводных ингибиторов а-амилазы из природных источников, уделяется особое внимание. К настоящему времени накоплен определенный объем научной информации об ингибиторах а-амилазы. Анализируя сведения обзорных работ по данному направлению, можно отметить, что интерес вызывают соединения фенольной природы, применение которых связано с их способностью снижать постпрандиальный уровень глюкозы в крови [6].

Ранее было показано, что некоторые виды семейства Rosaceae обладают антиамилазной активностью. В частности, эффективность ингибирования а-амилазы (IC50) для растительных экстрактов в условиях in vitro может быть и высокой и составлять 4,5-140 мкг/мл для Rosa gallica L. [7], для Sorbus aucuparia L. [8] и Sarcopoterium spinosum (L.) Spach [9]. Исследование отечественных видов Filpendula и Comarum показало, что они также обладают выраженным ингибиторным действием на пищеварительные ферменты [10, 11]. Продолжая поиски растительных анти-а-амилазных компонентов в семействе Rosaceae, мы осуществили изучение химического состава и биологической активности видов рода Spiraea, произрастающих в Восточной Сибири.

Экспериментальная часть

Растительное сырье. Образцы видов Spiraea были собраны в различных районах республики Бурятия и Иркутской области в 2014-2016 гг. (табл. 1). Видовая принадлежность определена докт. фарм. наук Т. А. Асеевой (ИОЭБ СО РАН). Сырье высушивали в конвекционной печи (50 °С) до значений влажности < 5%.

Общие экспериментальные условия. Для колоночной хроматографии (КХ) применяли полиамид, Сефадекс LH-20 и силикагель (Sigma-Aldrich, St. Louis, МО, USA). Преп. ВЭЖХ осуществляли на жидкостном хроматографе Summit (Dionex, Sunnyvale, CA, USA); колонка LiChrospher PR-18 (250x10 мм, 0 10 мкм; Supelco, Bellefonte, PA, USA); v 1 мл/мин; температура колонки 35 °C. Спектрофотометрические исследования проводили на спектрофотометре СФ-2000 (ОКБ Спектр, Санкт-Петербург, Россия); МС-анализ - на TQ-масс-спектрометре LCMS-8050 (Shimadzu, Columbia, MD, USA). Спектры ЯМР регистрировали на ЯМР-спектрометре VXR 500S (Vanan, Palo Alto, CA, USA). Экстракты из листьев и цветков шести видов Spiraea получали с использованием 60% этанола как описано ранее [11]. Количественное содержание флавоноидов в экстрактах определяли спектрофотометрическим методом в присутствии хлорида алюминия (вещество сравнения - гиперозид) [12], катехинов - спектрофотометрическим ванилин-сернокислотным методом (вещество сравнения - (+)-катехин) [13], процианидинов - спектрофотометрическим методом по Porter (вещество сравнения - процианидин В1) [13], фенилпропаноидов - спектрофотометрическим методом по Arnow (вещество сравнения - 3-0-кофеилхинная кислота) [14]. Ингибиторную активность экстрактов, фракций и соединений в отношении а-амилазы определяли спектрофотометрическим микропланшетным методом [15].

Экстракция и фракционирование S. salicifolia. Измельченное растительное сырье (образец SaOl; 5 кг) экстрагировали 60% ЕЮН (1: 15) в УЗ-ванне (100 Вт, частота 35 кГц) при 40 °С в течение 2 ч дважды. Спиртовое извлечение отфильтровывали, концентрировали до водного остатка, который подвергали жидкофазной экстракции гексаном (фракция S-1; 55 г), дихлорэтаном (S-2; 15 г), этилацетатом (S-3; 175 г), ацетоном (S-4; 185 г), 90% этанолом (S-5; 960 г), 50% этанолом (S-6; 1010 г) и водой (70 г). Водную фракцию растворяли в воде (1 : 5) и к полученному раствору приливали 90% этанол (1 : 4). Супернатант и выпавший осадок водорастворимых полисахаридов (ВРПС) разделяли центрифугированием и высушивали, что привело к получению фракций S-7 (45 г) и S-8 (25 г), соответственно. Фракцию S-3 (140 г) наносили на полиамид (1,5 кг), пре-кондиционированный водой и элюировали последовательной водой, 50% этанолом и раствором 0,25% NH3 в 90% этаноле, в результате чего были получены фракции S-3/1 (32 г), S-3/2 (86 г) и S-3/3 (14 г). Фракцию S3/1 (30 г) хроматографировали на силикагеле (КХ, 4x50 см), элюируя системой растворителей гексан-ЕЮАс

(100 :0—>70 : 30) и далее на Сефадекс ЬН-20 (КХ, 2x80 см, элюент этанол-Н20 90 : 10^0 : 100) и преп. ВЭЖХ [подвижная фаза Н20 (А), МсСЫ (В); градиентный режим (% В): 0-60 мин 5-14%, 60-70 мин 14-50%, 70-90 мин 50-58%; V 1 мл/мин; температура колонки 30 °С; УФ-детектор, X 260 нм]. В результате были выделены 13 (52 мг), 14 (25 мг), 15 (29 мг), смесь 16/17 (36 мг) и 18 (12 мг). Фракцию 8-3/2 (80 г) разделяли на силикагеле (КХ, 4x60 см, элюент гексан-ЕЮАс 100 : 0—>70 : 30) и далее на Сефадексе ЬН-20 (КХ, 2x80 см, элюент этанол-Н20 90 : 10—>0 : 100), что привело к получению 2 (25 мг), 3 (30 мг), 4 (32 мг), 5 (161 мг), 6 (24 мг), 10 (31 мг) и 12 (11 мг). Для хроматографирования фракции 8-3/3 (12 г) применяли Сефадекс ЬН-20 (КХ, 2x80 см, элюент этанол-Н20 90 : 10—>0 : 100), что позволило выделить 1 (92 мг), 7 (14 мг), 8 (37 мг), 9 (22 мг) и 11 (28 мг). Для идентификации выделенных соединений использовали данные УФ-, ИК-, ЯМР-спектроскопии и масс-спектрометрии в сравнении с таковыми литературы.

Таблица 1. Описание растительного сырья рода Spiraea, использованного в работе

Место сбора, координаты Дата сбора

Подрод Protospiraea

S. salicifolia L.:

SaOl - ИО, Слюдянский район, нос. Култук, 51°44'1" N, 103°38'18" Е 20.VII.2016

Sa02 - РБ, Кабанский район, нос. Селенгинск, 51°44'1" N, 103°38'18" Е 22.VII.2016

Sa03 - РБ, Прибайкальский район, пос. Татаурово, 52°7'3" N, 107°19'54" Е 6.VII.2016

Sa04 - РБ, Прибайкальский район, пос. Горячинск, 52°59'9" N, 107°18'34" Е 22.VII.2015

Sa05 - РБ, Баргузинский район, полуостров Святой Нос, 53°24'58" N, 109°2'2" Е 15.VII.2015

Sa06 - РБ, Курумканский район, пос. Курумкан, 54°19'36"N, 110°19'32"Е 16.VII.2015

Sa07 - РБ, Кижингинский район, пос. Хуртэй, 51°34'28" N, 110°30'24" Е 12.VII.2014

Sa08 - коммерческий образец, ООО Ортилия (г. Иркутск) 2014

Подрод Metaspiraea

S. alpina Pall. - РБ, Тункинский район, Нилова Пустынь, 51°51'15" N, 101 °43'3" Е 21.VII.2016

S. aquilegifolia Pall. (син. S. hypericifolia L.) - РБ, Мухоршибирский район, Меркитская крепость, 19.VI.2016

51°9'6" N, 107°6'30" Е

S. dahurica (Rupr.) Maxim. - РБ, Баунтовский район, пос. Маловский, 54°23'34" N, 113°33'15" Е 20.VII.2014

S.flexuosa Fisch, ex Cambess. (син. S. chamaedryfolia L.) - РБ, Кабанский район, с. Боярск, 51°50'57" 12.VI.2015

N, 106°4'12" Е

S. media Schmidt - РБ, Кабанский район, Сухой Ручей, 51°48'33" N, 106°1'22" Е 18.VI.2015

ИО - Иркутская область, РБ - республика Бурятия.

ВЭЖХ-ДМД-ИЭР/МС. Анализ осуществляли на жидкостном хроматографе LCMS-8050 (Shimadzu, Columbia, MD, USA), соединенном с диодно-матричным детектором (ДМД) и 3Q детектором с ионизацией электрораспылением (ИЭР/МС; electrospray ionization, ESI), используя колонку GLC Mastro С18 (150x2,1 мм, 0 3 мкм; Shimadzu, Kyoto, Japan). Условия ВЭЖХ: подвижная фаза, элюент А - вода, элюент В - ацетонитрил; программа градиента - 0-5 мин 5-11% В, 5-15 мин 11-18% В, 15-30 мин 18-52% В; инжектируемый объем - 1 мкл; скорость потока - 200 мкл/мин, температура колонки - 30 °С; диапазон сканирования спектров поглощения - 200-600 нм. Условия ИЭР/МС: режим ионизации - электрораспыление; температура интерфейса ИЭР - 300 °С; температура линии десольватации - 250 °С; температура нагревательного блока -400 °С; скорость газа-распылителя (N2) - 3 л/мин; скорость газа-нагревателя (воздух) - 10 л/мин; давление газа, используемого для диссоциации, индуцируемой соударением (CID gas, Ar) - 270 кПа; скорость Ar - 0,3 мл/мин; напряжение на капилляре - 3 кВ; диапазон сканирования масс (m/z) 100-1900.

Микроколоночная ВЭЖХ-УФ. Количественный анализ соединений в листьях S. salicifolia выполняли с использованием микроколоночного жидкостного хроматографа Милихром А-02 (Эконова, Новосибирск, Россия) на колонке ProntoSIL-120-5-C18 AQ (2 х 75 мм, 0 5 мкм; Metrohm AG, Herisau, Switzerland); подвижная фаза: 0,2 М LiC104 в 0,006 М НСЮ4 (A), MeCN (В). Условия градиента (% В): 0-15 мин 5-76; v 150 мкл/мин; температура колонки 35 °С; УФ-детектор, X 330 нм. Расчет содержания проводили, используя вещества сравнения - З-О-кофеилхинная кислота (Sigma-Aldrich), изорамнетин-З-О-р-о-глюкопиранозид и ти-лирозид (Extrasynthese, Lyone, France), а также внешние образцы веществ сравнения - гиперозид, изоквер-цитрин, астрагалин и изорамнетин-З-О-р-о-глюкопиранозид (Extrasynthese) для 6"-0-кофеил-гиперозида, 6"-О-кофеил-изокверцитрина, 6"-0-кофеил-астрагалина и изорамнетин-З-О-а-ь-рамнопиранозида с учетом разницы в молекулярных массах соединений. Результаты представлены в виде среднего значения из трех параллельных определений (± стандартное отклонение, SD). Для получения извлечения 40 мг сырья переносили в пробирку Эппендорфа (2 мл), приливали 1 мл 60% этанола и подвергали ультразвуковой обработке (50 кГц,

30 мин, 40 °С), после чего центрифугировали (6000 g, 20 мин). Полученное извлечение фильтровали через мембранный фильтр (0,45 мкм) и использовали для анализа (1 мкл).

Регрессионный анализ (линейная регрессия) осуществляли с использованием пакета программа Statistica 10 (StatSoft). Статистический анализ проводили с использованием однофакторного дисперсионного анализа (ANOVA). Значимость различий средних определяли с помощью многорангового теста Дункана. Отличия при р < 0,05 считались статистически значимыми. Результаты представлены в виде средних значений ± SD (стандартное отклонение).

Обсуждение результатов

Фенольные соединения экстрактов шести видов Spiraea и их влияние на амилазу. Экстракты из листьев и цветков шести видов Spiraea, полученные с применением 60% этанола, были изучены для определения группового состава фенольных соединений в них. В результате было установлено количественное содержание флавоноидов, катехинов, процианидинов и фенилпропаноидов. Галловая и эллаговая кислоты не были выявлены в свободном или связанном состоянии ни в одном из изученных экстрактов, что указывало на отсутствие галло- и эллаготаннинов, поэтому их концентрации не определялись.

Проведенные исследования показали, что содержание изучаемых групп фенольных соединений варьировало в широких пределах (табл. 2). Концентрация флавоноидов в экстрактах составила от 53,02 мг/г (цветки S. flexuosa) до 120,07 мг/г (листья S. salicifolia), катехинов - от 16,65 мг/г (листья S. flexuosa) до 142,02 мг/г (цветки S. salicifolia), процианидинов - от 4,47 мг/г (листья S. flexuosa) до 141,33 мг/г (цветки S. salicifolia), фенилпропаноидов - от 84,28 мг/г (листья S. flexuosa) до 348,20 мг/г (листья S. salicifolia).

Распределение групп фенольных соединений между листьями и цветками носило случайный характер, что отражалось на химическом профиле производных экстрактов. Концентрация флавоноидов была максимальной в экстрактах листьев S. flexuosa, S. media, S. dahurica и S. aquilegifolia, а для S. salicifolia и S. alpina - напротив, в экстрактах цветков. Высокие показатели содержания катехинов отмечены в экстрактах цветков всех видов, кроме S. media и S. dahurica, в то время как экстракт листьев S. media отличался большим содержанием процианидинов, чем экстракт цветков. Сравнительный анализ уровня фенилпропаноидов показал, что, как правило, экстракты цветков содержали больше данных соединений, за исключением S. aquilegifolia, S. media и S. salicifolia. В целом следует отметить, что экстракционные формы из шести изученных видов Spiraea характеризовались высокими показателями содержания фенольных соединений, что указывало на перспективность изучениях их биологической активности.

Таблица 2. Содержание групп фенольных соединений в экстрактах Spiraea и их анти-а-амилазная активность

Вид Часть Фенольные соединения б, мг/г в ± SDr Ингибирование а-амилазы, % д IC50e ± SD35'3,

растения3 I II III IV 5,0 мкг/мл 50,0 мкг/мл мкг/мл

Л 78,26±1,56 51,15±1,02 40,25±0,80 257,34±5,14 19,71 22,67 103,63±3,10и

S. alpina Ц 99,25±1,98 120,22±2,76 78,46±1,64 283,80±5,10 13,72 36,88 97,19±3,01и

Л 97,55±1,95 44,45±0,89 58,82±1,29 285,18±6,84 21,08 26,57 241,67±8,21и

S. aquilegifolia ц 84,14±1,67 52,11±1,19 61,14±1,22 178,10±4,27 12,35 25,19 204,25±5,31и

S. dahurica л 72,23±1,51 79,00±1,65 93,81±1,87 231,64±6,02 23,65 33,41 226,17±5,42и

ц 68,56±1,37 72,74±1,52 102,79±2,05 247,05±5,18 22,20 31,05 212,10±5,51и

S. flexuosa л 96,54±1,93 16,65±0,38 4,47±0,10 84,28±2,19 3,70 23,43 109,36±2,84и

Ц 53,02±1,06 19,74±0,39 19,42±0,38 145,96±3,35 6,61 20,85 247,66±6,93и

S. media л 89,17±1,78 62,05±1,24 84,29±1,93 259,12±6,21 12,72 26,46 117,98±2,94и

Ц 75,43±1,51 25,39±0,50 41,93±0,83 131,54±3,28 13,23 23,35 152,49±3,96и

S. salicifoliaK л 120,07±2,52 74,42±1,41 59,79±1,19 348,20±9,05 18,16 39,95 69,30±1,80и

Ц 86,62±1,73 142,02±2,98 141,33±2,82 279,57±6,43 20,08 22,31 114,30±2,97и

IV - фенилпропанонды. в От массы воздушно-сухого сырья.г Среднее из пяти определений. д В сравнении с контрольной группой (0,9% ЫаС1). е 50% ингибирование активности амилазы. ж Среднее из трех определений.3 Вещество сравнения - кверцетин (1С50 76,11 ± 1,52 мкг/мл). и Разница статистически достоверна по сравнению с показателями группы вещества сравнения (р < 0,05). к Образец БаО!.

Исследование ингибиторной активности экстрактов Spiraea в отношении пищеварительных ферментов показали, что степень инактивации а-амилазы была максимальной в дозе 50 мкг/мл для экстракта листьев S. salicifolia (39,95%; IC50 69,30 мкг/мл) и экстракта цветков S. alpina (36,88% в сравнении с контролем; IC50 97,19 мкг/мл) и экстракта (табл. 2). Корреляционный анализ зависимостей «химический состав -биологическая активность» показал, что наибольшее влияние на анти-а-амилазную активность оказывало присутствие в экстрактах флавоноидов (г = 0,6494), а наименьшее - процианидинов (г = 0,0100) (рис. 1).

Ранее было установлено, что катехины, процианидины и фенилпропаноиды обладают слабым инги-биторным действием на а-амилазу [3, 6], в отличие от флавоноидов и их производных, оказывающих выраженное влияние на данный пищеварительный фермент [4]. Дальнейшие исследования были направлены на исследование химического профиля и биологической активности экстракта листьев S. salicifolia, оказавшего наибольшее ингибиторное влияние на а-амилазу.

Фенольные соединения листьев S. salicifolia и их биологическая активность. Разделение экстрактивных веществ листьев S. salicifolia были использованы с различные растворители, в результате чего было получено восемь фракций. Наибольшее ингибиторное влияние на активность а-амилазы оказывала фракция, выделенная с использованием этилацетата (фракция S-3; IC50 53,41 мкг/мл) (табл. 3).

Хроматографическое разделение фракции S-3 с использованием колоночной хроматографии на полиамиде, силикагеле, Сефадексе LH-20 и препаративной ВЭЖХ на обращено-фазовом силикагеле привело к получению 18 соединений, идентифицированных на основании данных УФ-, ИК-, ЯМР-спектроскопии и масс-спектрометрии как З-О-кофеилхинная кислота (1) [16], гиперозид (2), трифолин (3), изокверцитрин (4) [17], 6"-0-кофеил-гиперозид (5), 6"-0-кофеил-изокверцитрин (6), 6"-0-кофеил-астрагалин (7) [18], 1-0-/7-гидроксибензоил-б-О-и-кумароил-Р-О-глюкопиранозид (8) [19], 3,4,5-три-О-кофеилхинная кислота (9) [16], изорамнетин-З-О-р-О-глюкопиранозид (10), тилирозид (11), изорамнетин-З-О-а-ь-рамнопиранозид (12) [17], 1-0-(|г/с-циннамоил-6-0-(2'-метилен-4'-гидрокси-бутироил)-Р-о-глюкопираноза (13), 1-<3-(4"-гидрокси-3"-метилфуран-2"-он)-6-0-от/?янс-циннамоил-Р-о-глюкопираноза (14), 1-<3-(4"-гидрокси-3"-метилфуран-2"-он)-6-0-(|г/с-циннамоил-Р-о-глюкопираноза (15) [20], 6-тюлипозид А [6-0-(2'-метилен-4'-гидрокси-бутироил)-а/р-D-глюкопираноза; 16/17] и тюлипалин А (а-метилен-у-бутиролактон; 18) [21] (рис. 2). Ранее в S. salicifolia были обнаружены 1, 2 и 4 [22, 23]; присутствие 3, 5-18 установлено в данном виде впервые.

Хроматографическое исследование фракции S-3 методом ВЭЖХ-ДМД-ИЭР/МС показало, что ее доминирующими соединениями были 6"-0-кофеил-гиперозид (5), а также кофеил-гликозиды 6 и 7, отличающиеся характерным масс-спектрометрическим профилем и легко детектирующиеся в режиме мониторинга выделенных ионов (SIM) (рис. 3). На долю остальных компонентов (1-4, 8-18) приходилось не более 20% от массы фракции.

Рис. 1. Корреляционные зависимости между содержанием фенольных соединений в экстрактах Spiraea

300250200-е 150-¡ 100-Ü 50-

а

§ о-Ü о

-2,3&г +361.2« г - 0.«4М

300 250 200 15010050-

0-

I

г S 3

Q п о у --0,13л- +161,80 г - 0,0700

30 100 150 О

Флавоноиды, мг/г

100 150

Катехины, мг/г

50 100 150 О

Процианидины, мг/г

100 200 300 400 Фенилпропаноиды, мг/г

Таблица 3. Выход и анти-а-амилазная активность фракций из Л". .\аПс1/оПа

Фракция3 Выход, % 6 1С so ± SD в,г, мкг/мл

8-1 (гексан) 1,1 >100

Б-2 (дихлорэтан) 0,3 >100

Б-3 (этилацетат) 3,5 53,41 ± 1,62 д

Э-4 (ацетон) 3,7 78,94 ± 2,37 д

Б-5 (90% этанол) 19,2 -100

Б-6 (50% этанол) 20,2 >100

Э-7 (вода) 0,9 >100

Б-8 (ВРПС) 0,5 >100

а Номер фракции (растворитель); От массы воздушно-сухого сырья; в Среднее из трех определений.г Вещество сравнения - акарбоза (1С50 154,35 ± 3,08 мкг/мл). д Разница статистически достоверна по сравнению с показателями группы вещества сравнения (р < 0,05).

НООС OR-

HÜ

OR

ОН

НО.

XX

ОН Ö но

ОСН3 ОН

НО

он

зС ОН

1: RbR2 = H 9: Rb R2 = CaffA

HO

.о^^гон

HO

2: Rb R3 = OH; R2, R4 = H 3: Rb R2, R4 = H; R3 = OH 4: Rb R2 = OH; R3, R4 = H 5: Rb R3 = OH; R2 = H; R4 = CaffA 6: Rb R2 = OH; R3 = H; R4 = CaffA 7: Rb R3 = H; R2 = OH; R4 = CaffA 10: Rj = OCH3; R2 = OH; R3, R4 = H

11: Rb R3 = H; R2 = OH; R4 = /?-CouA

12

OH

13

\Q / HO

HO

OH

ТТП

14 15 16/17 18

Рис. 2. Структуры соединений, выделенных из фракции 8-3. Сокращения: С а (ТА - кофеил, /?-СоиА - п-кумароил

Для определения роли отдельных соединений в проявлении биологической активности фракции 8-3 была изучена анти-а-амилазная активность соединений 1-18 и показано, что для фенилпропаноидов 1 и 9, флавоноидов 3, 10-12, циннамоил гликозидов 8, 13-15, 6-тюлипозида А (16/17) и тюлипалина А (18) показатели ГС50 не превышали 200 мкг/мл. Наиболее эффективными ингибиторами оказались флавоноидные кофеил-гликозиды 5 (ГС5046,18 мкг/мл) иб (1С5о51,06 мкг/мл) (табл. 4).

Сравнительный анализ анти-а-амилазной активности в ряду производных кемпферола и кверцетина продемонстрировал большую эффективность последних. Причем введение углеводного заместителя по положению С-3 флавоноидного скелета приводило к значительному снижению ингибиторной активности. Присутствие остатка кофейной кислоты у С-6" углеводного фрагмента (глюкопираноза, галактопира-ноза) оказывало обратный эффект, приводя к увеличению биологической активности соединения. Таким образом, можно утверждать, что ацилированные флавоноидные гликозиды являются основными компонентами X яаНсг/оНа, оказывающими ингибиторное влияние на активность а-амилазы.

Рис. 3. Хроматограмма (ВЭЖХ-ДМД) фракции S-3 из листьев S. salicifolia (i) при длине волны 360 нм и в режиме SIM для положительных ионов с mlz 627 (ii) и 611 (iii). На iv - масс-спектр (ESI, положительный режим) 6"-0-кофеил-гиперозида (5). Сокращения: CaffA - кофейная кислота, Glc - глюкоза. Числами обозначено положение соединений: 1 - З-О-кофеилхинная кислота, 2 - гиперозид, 3 - трифолин, 4 - изокверцитрин, 5 - 6"-0-кофеил-гиперозид, 6 - 6 "-О-кофеил-изоквер цитрин, 7 - 6"-0-кофеил-астрагалин, 8 - 1-0-/7-гидроксибензоил-6-0-/7-кумароил-Р-0-глюкопиранозид, 9 - 3,4,5-три-О-кофеилхинная кислота, 10 - изорамнетин-З-О-р-О-глюкопиранозид, 11 -тилирозид, 12 - изорамнетин-З-О-а-ь-рамнопиранозид, 13- 1-0-(|г/с-циннамоил-6-0-(2'-метилен-4'-гидрокси-бутироил)-Р-0-глюкопиранозид, 14- 1-0-(4"-гидрокси-3"-мстил(|)уран-2"-он)-6-0-/;//)я//б-циннамоил-(^-0-глюкопирано !ид. 15 - 1-0-(4"-гидрокси-3"-метилфуран-2"-он)-6-0-г///б-циннамоил-(^-0-глюкопирано!ид

Таблица 4. Анти-а-амилазная активность некоторых флавоноидов, IC50 ± SD" мкг/мл

Углеводная часть Агликон

Кемпферол Кверцетин

- > 200 (R) 76,11 ±1,52 (R)a

ß-D-Галактопираноза > 200

ß-D-Глюкопираноза > 200

6 "-Кофеил-Р-Б-галактопираноза Н.о.г 46,18 ±0,92 (5)д

6 "-Кофеил-Р-Б-глюкопираноза 182,16 ±3,64 (7)д 51,06 ±1,02 (6)д

а Среднее из пяти определений. 0 В скобках указан номер соединения или ]? для коммерческих образцов. в Вещество сравнения - акарбоза (1С50 154,35 ± 3,08 мкг/мл).г Н.о. - не определялось. д Разница статистически достоверна по сравнению с показателями группы вещества сравнения (р < 0,05).

Влияние химического состава листьев X яаНа/оНа на их биологическую активность. С применением микроколоночной ВЭЖХ-УФ было выявлено, что к числу детектируемых компонентов листьев & яаНа/оНа относились фенилпропаноид 1 и шесть флавоноидов (5-7, 10-12), содержание которых было определено в семи образцах дикорастущего (8а01-8а07) и одной коммерческой партии сырья (8а08) (табл. 5).

В результате было установлено, что суммарное содержание фенилпропаноидов составило 6,9718,82 мг/г, флавоноидов - 12,02-23,17 мг/г, причем на долю флавоноидных кофеилгликозидов приходилось от 3,12 до 17,37 мг/г от массы воздушно-сухого сырья. Доминирующими соединениями листьев & яаНа/оНа были З-О-кофеилхинная кислота (1) и 6"-0-кофеил-гиперозид (5), концентрации которых составили 6,97-18,82 и 0,60-10,76 мг/г соответственно. Качество коммерчески доступного материала & яаНа/оНа (образец 8а08) оказалось удовлетворительным, что позволяет рекомендовать его для практического использования.

Рассматривая вопрос о химической характеристике и аутентификации & яаНа/оНа, можно предложить использование З-О-кофеилхинной кислоты (1) и 6"-0-кофеил-гиперозида (5) в качестве маркеров подлинности растительного сырья.

Показатели анти-а-амилазной активности спиртовых экстрактов из листьев Л'. хаНа/оНа составили от 46,41 мкг/мл (образец 8а05) до 263,10 мкг/мл (образец 8а04) (табл. 5). Применение корреляционного анализа выявило наличие связей между химическим составом и биологической активностью Л". яаИа/оИа. Наиболее выраженной зависимостью между анти-а-амилазной активностью и химическим составом обладали пары, включающие суммарное содержание флавоноидных кофеилгликозидов и содержание 6"-0-кофеил-гиперозида, у которых коэффициенты корреляции составили 0,9238 и 0,9606 соответственно (рис. 4).

Таблица 5. Содержание некоторых соединений в листьях S. salicifolia

Показательг Номер образца S. salicifolia

SaOl Sa02 Sa03 Sa04 Sa05 Sa06 Sa07 Sa08

З-О-Кофеилхинная кислота (1) 13.86 ± 0.27 11,52 ± 0.21 12.00 ± 0.24 12.81 ± 0.25 18.82 ± 0.37 14.02 ± 0.28 6.96 ± 0.14 10.60 ± 0.21

6"-0-Кофеил-гиперозид (5) 8.75 ± 0.17 10.28 ± 0.21 6.43 ± 0.12 0.60 ± 0.01 10.53 ± 0.21 10.76 ± 0.20 7.62 ± 0.15 7.06 ± 0.14

6"-0-Кофеил-изокверцитрин (6) 0.78 ± 0.01 1.57 ± 0.03 0.48 ± 0.01 1.02 ± 0.02 2.10 ± 0.04 0.95 ± 0.02 0.59 ± 0.01 0.81 ± 0.02

6"-0-Кофеил-астрагалин (7) 2.35 ± 0.04 0.90 ± 0.02 2.39 ± 0.04 1.50 ± 0.03 4.74 ± 0.09 2.91 ± 0.05 3.49 ± 0.06 2.11 ± 0.04

Изорамнетин-3-O-P-D-Glc/i (10) 1.76 ± 0.03 2.46 ± 0.04 2.29 ± 0.04 3.15 ± 0.06 1.89 ± 0.03 1.56 ± 0.03 0.67 ± 0.01 1.53 ± 0.03

Тилирозид(11) 1.42 ± 0.02 2.52 ± 0.05 1.25 ± 0.02 5.36 ± 0.10 1.85 ± 0.02 1.57 ± 0.03 0.89 ± 0.02 1.47 ± 0.03

Изорамнетин-3-O-a-L-Rhap (12) 2.89 ± 0.05 0.57 ± 0.01 0.98 ± 0.02 0.39 ± 0.01 2.06 ± 0.04 1.47 ± 0.03 1.34 ± 0.03 0.99 ± 0.02

L фенилпропаноидов 13.86 11.52 12.00 12.81 18.82 14.02 6.96 10.60

L флавоноидов 17.95 18.30 13.82 12.02 23.17 19.22 14.60 13.97

L флавоноидных кофеилгликозидов L фенольных соединений 11.88 12.75 9.30 3.12 17.37 14.62 11.70 9.98

31.81 29.82 25.82 24.83 41.99 33.24 21.56 24.57

1С 50 д, мкг/мл 69.30 ± 62.35 ± 103.63 ± 263.10 ± 46.41 ± 60.02 ± 70.34 ± 119.97 ±

2.07е 1.87е 3.10е 7.89е 1.42е 1.82е 2.09е 3.62е

а От массы воздупшо-сухого сырья. 0 Среднее из пяти определений. в Среднее из трех определений.г 01ср - глюкопи-

раноза, Ышр - рамнопираноза, Е - суммарное содержание. д Вещество сравнения - акарбоза (1С50 1 54,35 ±

3,08 мкг/мл).е Разница статистически достоверна по сравнению с показателями группы вещества сравнения (р < 0,05).

Рис. 4. Корреляционные зависимости между содержанием групп фенольных соединений в листьях S. salicifolia

Полученные сведения подтвердили ранние выводы о ведущей роли ацилированных флавоноидных гликозидов в проявлении анти-а-амилазной активности для экстрактов S. salicifolia.

Выводы

Флавоноиды представляют собой обширную группу природных фенольных соединений, применяющихся в качестве терапевтических агентов для профилактики и лечения различных хронических заболеваний, связанных с дисбалансом углеводного обмена, в том числе сахарного диабета [1]. Одним из механизмов гипогликемического действия флавоноидов является их способность ингибировать активность пищеварительных ферментов, в том числе а-амилазы [3]. Ранее неоднократно демонстрировалась высокая эффективность растений накопителей флавоноидов в качестве антидиабетических средств [4]. К числу таких концентраторов (и фенольных соединений в целом) относятся виды Spiraea (Rosaceae), экстракты ко-

Флавоноидные кофеилгликозиды, мг/г Фенольные соединения, мг/г

торых могут содержать до 53,02-120,07 мг/г флавоноидов. Сравнительный анализ анти-а-амилазной активности видов Spiraea показал высокую эффективность S. salicifolia, обусловленную присутствием флавоно-идных гликозидов, ацилированных остатком кофейной кислоты. В качестве наиболее выраженного ингибитора был определен 6"-0-кофеил-гиперозид, являющийся доминирующим флавоноидом листьев S. salicifolia. Полученные сведения позволяют рекомендовать листья S. salicifolia в качестве нового лекарственного растительного сырья, для получения средств, обладающих гипогликемическим действием.

Список литературы

1. Etxeberria U., Garza A.L., Campion J., Martinez J.A., Milagro F.I. Antidiabetic effects of natural plant extracts via inhibition of carbohydrate hydrolysis enzymes with emphasis on pancreatic alpha amylase // Expert Opin. Ther. Targets. 2012. Vol. 16. Pp. 1-29.

2. Mathers C.D., Loncar D. Projections of global mortality and burden of disease from 2002 to 2030 // PLoS Medicine. 2006. Vol. З.Рр. 2011-2030.

3. Yin Z., Zhang W., Feng F., Zhang Y., Kang W. a-Glycosidase inhibitors isolated from medicinal plants // Food Sci. Hum. Wellness. 2014. Vol. 3. Pp. 136-174.

4. Xiao J., Ni X., Kai G., Chen X. A review on structure-activity relationship of dietary polyphenols inhibiting a-amylase // Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2013. Vol. 53. Pp. 497-506.

5. Playford R.J., Pither C., Gao R., Middleton S.J. Use of the alpha-glucosidase inhibitor acarbose in patients with 'Middleton syndrome': Normal gastric anatomy but with accelerated gastric emptying causing postprandial reactive hypoglycemia and diarrhea // Can. J. Gastroenterol. 2013. Vol. 27. Pp. 403^104.

6. Sales P.M., Souza P.M., Simeoni L.A., Magalhaes P.O., Silveira D. a-Amylase inhibitors: A review of raw material and isolated compounds from plant source // J. Pharm. Pharmaceut. Sci. 2012. Vol. 15. Pp. 141-183.

7. Ochir S., Nishizawa M., Park B.J. Inhibitory effect of Rosa gallica on the digestive enzymes // J. Nat. Med. 2010. Vol. 64. Pp. 275-280.

8. Grussu D., Stewart D., McDougall G.J. Berry polyphenols inhibit alpha-amylase in vitro: Identifying acting components in rowanberry and raspberry // J. Agrie. Food. Chem. 2011. Vol. 59. Pp. 2324-2331.

9. Hamdan I.I., Afifi F.U. Screening of Jordanian flora for alpha-amylase inhibitory activity // Pharm. Biol. 2008. Vol. 46. Pp. 746-750.

10. Olennikov D.N., Kashchenko N.I., Chirikova N.K. Meadowsweet teas as new functional beverages: Comparative analysis of nutrients, phytochemicals and biological effects of four Filipéndula species // Molecules. 2017. Vol. 22. Art. No 16 (doi: 10.3390/molecules22010016).

11. Kashchenko N.I., Chirikova N.K., Olennikov D.N. Agrimoniin, an active ellagitannin from Comarum palustre herb with anti-a-glucosidase and antidiabetic potential in streptozotocin-induced diabetic rats // Molecules. 2017. Vol. 22. Art. No 73 (doi: 10.3390/molecules22010073).

12. Chirikova N.K., Olennikov D.N., Tankhaeva L.M. Quantitative determination of flavonoid content in the aerial part of Baical scullcap (Scutellaria baicalensis Georgi) // Russ. J. Bioorg. Chem. 2010. Vol. 36. Pp. 915-922.

13. Sun В., Ricardo-da-Silva J.M., Spranger I. Critical factors of vanillin assay for catechins and proanthocyanidins // J. Agrie. Food Chem. 1998. Vol. 46. Pp. 4267-^1274.

14. Galvez M., Martin-Cordero C., Houghton P.J., Ayuso M.J. Antioxidant activity of methanol extracts obtained from Plantago species // J. Agrie. Food Chem. 2005. Vol. 53. Pp. 1927-1933.

15. Olennikov D.N., Kashchenko N.I. Componential profile and amylase inhibiting activity of phenolic compounds from Calendula officinalis L. leaves // The Sci. World J. 2014. Vol. 2014. Art. ID 654193 (doi:10.1155/2014/654193).

16. Olennikov D.N., Stolbikova A.V., Tankhaeva T.M., Petrov E.V. Phenylpropanoids and polysaccharides of Plantago depressa andP. media II Chem. Nat. Сотр. 2011. Vol. 47. Pp. 165-169.

17. Azimova S.S., Vinogradova V.I. Natural compounds. Flavonoids: plant sources, structure and properties. New York: Springer, 2013. 661 p.

18. Yoshida K., Hishida A., Iida O., Hosokawa K., Kawabata J. Flavonol caffeoylglycosides as a-glucosidase inhibtors from Spiraea cantoniensis flowrs // J. Agrie. Food Chem. 2008. Vol. 56. Pp. 4367^1371.

19. Choudhary M.I., Naheed N, Abbaskhan A., Ali S., Atta-ur-Rahman. Hemuterpene glucosides and other constituents from Spiraea canescens И Phytochemistry. 2009. Vol. 70. Pp. 1467-1473.

20. Hiradate S., Morita S., Sugie H., Fijii Y., Harada J. Phytotoxic cw-cinnamoyl glycosides from Spiraea thunbergii И Phytochemistry. 2004. Vol. 65. Pp. 731-739.

21. Kim C.-S., Datta P.K., Нага Т., Itoh E., Horiike M. Precursor of a-methylene-y-butyrolactone involved in the insecti-cidal activity of Thunberg spiraea, Spiraea thunbergii И Biosci. Biotechnol. Biochem. 1999. Vol. 63. Pp. 152-154.

22. Ahn В., Oh K., Park S., Chung S., Cho E., Kim J., Ro J., Tee K. Phenolic compounds from leaves of Spiraea salicifolia И Korean J. Pharmacogn. 1996. Vol. 27. Pp. 178-183.

23. Кривошеев И.М. Фармакогностическое исследование спиреи иволистной (Spiraea salicifolia Т.), произрастающей в Восточной Сибири: автореф. дисс. ... канд. фарм. наук. Улан-Удэ, 2014. 21 с.

Поступило в редакцию б мая 2017 г.

Kashchenko N.I.1, Chirikova N.K.2, Olennikov D.N.1* ACYLATED FLAVONOIDS OF SPIRAEA GENUS AS a-AMYLASE INHIBITORS

1 Institute of General and Experimental Biology, Siberian Branch, Russian Academy of Science, ul. Sakh 'yanovoy, 6,

Ulan-Ude, 670047 (Russia), e-mail: olennikovdn@mail.ru

2 North-Eastern Federal University, ul. Belinskogo, 58, Yakutsk, 677027

Spiraea L. is a genus of deciduous shrubs of Rosaceae family widespread on the territory of Eastern Siberia. As a result of the study of six Spiraea species growing on the Baikal region, it was shown that they characterized by a high content of phenolic compounds and their extracts had an inhibitory effect on a-amylase. The use of correlation analysis made it possible to reveal the leading role of flavonoids as carriers of the biological effect of extracts. The most active was the extract of S. salicifolia leaves with an IC50 value 69,30 ¡ig/mL After fractionation and chromatographic separation of the extractive substances, 18 compounds were isolated from the ethyl acetate fraction of S. salicifolia and fifteen of them for the first time for the species, including trifolin, 6"-0-caffeoyl-hyperoside, 6"-0-caffeoyl-isoquercitrin, 6"-0-caffeoyl-astragalin, 1-O-p-hydroxybenzoyl-6-O-p-coumaroyl-P-D-glucopyranoside, 3,4,5-tri-O-caffeoylquinic acid, isoramnetinin-3-O-P-D-glucopyranoside, tiliroside, isoramnetin-3-O-a-L-rhamnopyranoside, l-0-cw-cinnamoyl-6-0-(2'-methylene-4'-hydroxybutyroyl)-P-D-glucopyranose, l-0-(4"-hydroxy-3"-methylfurane-2"-one)-6-0-ira«i-cinnamoyl-P-D-glucopyranose, 1-0-(4"-hydroxy-3"-methylfurane-2"-one)-6-0-cw-cinnamoyl-P-D-glucopyranose, 6-tuliposide A and tulipalin A. The most active inhibitors of a-amylase were flavonoid caffeoyl glycosides with 6"-0-caffeoyl-hyperoside as a most effective inhibitor with IC50 value 46.18 ¡ig/mL. Latter compound determined the total anti-a-amylase effect of S. salicifolia. The content of 6"-0-calfeoyl-hyperoside in leaves of S. salicifolia was 0,60-10,53 mg/g and flavonoids - 12,02-23,17 mg/g. This study demonstrated the fact that the acylated flavonoids of Spiraea are effective inhibitors of a-amylase.

Keywords: Spiraea; Rosaceae; Spiraea salicifolia; flavonoids; 6"-0-caffeoyl-hyperoside; HPLC; a-amylase inhibition.

References

1. Etxeberria U., Garza A.L., Campion J., Martinez J.A., Milagro F.I. Expert Opin. Ther. Targets., 2012, vol. 16, pp. 1-29.

2. Mathers C.D., Loncar D. PLoSMedicine, 2006, vol. 3, pp. 2011-2030.

3. Yin Z., Zhang W., Feng F., Zhang Y, Kang W. FoodSci. Hum. Wellness, 2014, vol. 3, pp. 136-174.

4. Xiao J., Ni X., Kai G, Chen X. Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 2013, vol. 53, pp. 497-506.

5. Playford R.J., Pither C., Gao R., Middleton S.J. Can. J. Gastroenterol., 2013, vol. 27, pp. 403^104.

6. Sales P.M., Souza P.M., Simeoni L.A., Magalhaes P.O., Silveira D. J. Pharm. Pharmaceut. Sci., 2012, vol. 15, pp. 141-183.

7. Ochir S., Nishizawa M., Park B.J. J. Nat. Med., 2010, vol. 64, pp. 275-280.

8. Grussu D., Stewart D., McDougall G.J. J. Agric. Food. Chem., 2011, vol. 59, pp. 2324-2331.

9. Hamdan I.I., Afifi F.U. Pharm. Biol., 2008, vol. 46, pp. 746-750.

10. Olennikov D.N., Kashchenko N.I., Chirikova N.K. Molecules, 2017, vol. 22, art. no 16.

11. Kashchenko N.I., Chirikova N.K, Olennikov D.N. Molecules, 2017, vol. 22, art. no 73.

12. Chirikova N.K, Olennikov D.N., Tankhaeva L.M. Russ. J. Bioorg. Chem., 2010, vol. 36, pp. 915-922.

13. Sun B., Ricardo-da-Silva J.M., Spranger I. J. Agric. Food Chem., 1998, vol. 46, pp. 4267^1274.

14. Galvez M., Martin-Cordero C., Houghton P.J., Ayuso M.J. J. Agric. Food Chem., 2005, vol. 53, pp. 1927-1933.

15. Olennikov D.N., Kashchenko N.I. The Sci. World J., 2014, vol. 2014, art. ID 654193. (doi: 10.1155/2014/654193).

16. Olennikov D.N., Stolbikova A. V., Tankhaeva L.M., Petrov E. V. Chem. Nat. Comp., 2011, vol. 47, pp. 165-169.

17. Azimova S.S., Vinogradova V.I. Natural compounds. Flavonoids: plant sources, structure and properties, New York: Springer, 2013. 661 p.

18. Yoshida K., Hishida A., Iida O., Hosokawa K., Kawabata J. J. Agric. Food Chem., 2008, vol. 56, pp. 4367^1371.

19. Choudhary M.I., NaheedN., Abbaskhan A., Ali S., Atta-ur-Rahman. Phytochemistry, 2009, vol. 70, pp. 1467-1473.

20. Hiradate S., Morita S., Sugie H, Fijii Y, Harada J. Phytochemistry, 2004, vol. 65, pp. 731-739.

21. Kim C.-S., Datta P.K, Hara T., Itoh E., Horiike M. Biosci. Biotechnol. Biochem., 1999, vol. 63, pp. 152-154.

22. Ahn B., OhK., Park S., Chung S., Cho E., Kim J., Ro J., Lee K. Korean J. Pharmacogn., 1996, vol. 27, pp. 178-183.

23. Krivosheev I.M. Farmakognosticheskoe issledovanie spirei ivolistnoi (Spiraea salicifolia L.), proizra-staiushchei v Vostochnoi Sibiri: avtoref. diss. ... kand. farm. nauk. [Pharmacognostic study of spiraea islea (Spiraea salicifolia L.), which grows in Eastern Siberia. Author's abstract, diss. ... cand. farm, sciences], Ulan-Ude, 2014, 21 p. (in Russ.).

Received May 6, 2017

Corresponding author.