ПОЛУЧЕНИЕ, ОЦЕНКА СПЕЦИФИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ И ПОДЛИННОСТИ РЕКОМБИНАНТНОЙ ВАКЦИНЫ, ПРЕДНАЗНАЧЕННОЙ ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ СИНЕГНОЙНОЙ ИНФЕКЦИИ

Original articles

Оригинальные статьи

Russian Journal of Infection and Immunity = Infektsiya i immunitet Инфекция и иммунитет

2021, vol. 11, no. 4, pp. 763-770 2021, Т. 11, № 4, с. 763-770

ПОЛУЧЕНИЕ, ОЦЕНКА СПЕЦИФИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ И ПОДЛИННОСТИ РЕКОМБИНАНТНОЙ ВАКЦИНЫ, ПРЕДНАЗНАЧЕННОЙ ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ СИНЕГНОЙНОЙ ИНФЕКЦИИ

А.А. Калошин, Е.М. Зимина, Е.О. Калиниченко, Н.А. Михайлова

ФГБНУНИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова, Москва, Россия

Резюме. Целью исследования было получение и характеристика рекомбинантной вакцины, предназначенной для иммунопрофилактики инфекций, вызываемых Pseudomonas aeruginosa. При создании вакцины использован комплекс двух высокоиммуногенных рекомбинантных белков P. aeruginosa. Первый компонент вакцины представлял собой рекомбинантную форму белка F наружной мембраны (OprF), а второй — рекомбинантную атоксическую форму (анатоксин) экзотоксина А. Эти антигены позволили разработать вакцину, стимулирующую иммунные реакции против поверхностных структур бактерии и способствующую синтезу нейтрализующих антител против экзотоксина А, одного из наиболее опасных факторов патогенности P. aeruginosa. Рекомби-нантные белки синтезировали в клетках Escherichia coli и выделяли в результате двухэтапной очистки. В случае рекомбинантного белка OprF на первом этапе получали осадок, содержащий гидрофобную фракцию белков продуцента, а в случае рекомбинантного анатоксина — тельца-включения. На втором этапе проводили аффинную хроматографию в колонках с никель-сефарозой. Очищенные рекомбинантные белки диализовали против буферного раствора, содержащего 50 mМ Tris-HCl (pH 9,0) и 0,01% Tween 20, а затем стерилизовали фильтрацией. Для исследования были получены три серии рекомбинантной вакцины синегнойной (РВС), в которой рекомбинантные антигены находились в сорбированном с гидроокисью алюминия состоянии. В этой вакцине рекомбинантный белок OprF использовали в дозе 25 мкг, а рекомбинантный анатоксин — в дозе 50 мкг. Определение полноты сорбции рекомбинантных антигенов в составе вакцины оценивали методом электрофореза в полиакриламидном геле, используя для нанесения препараты РВС, сконцентрированные ультрафильтрацией в спин-колонках. С целью оценки подлинности рекомбинантной вакцины разработали оригинальный метод. Для этого проводили десорбцию антигенов с последующей концентрацией препарата с помощью спин-колонок. Полученные сконцентрированные десорбированные вакцинные препараты анализировали методом электрофореза в полиакриламидном геле и иммуноблоттингом, в результате чего подтверждено наличие специфических рекомбинантных антигенов в составе вакцины. Экспериментальные серии РВС проявляли специфическую активность (защитные свойства) в эксперименте на животных (мышах). При этом использована схема двукратной, с двухнедельным интервалом внутрибрюшинной иммунизации, через две недели после которой мышей заражали токсигенной культурой P. aeruginosa штамма PA-103. Индексы эффективности защитных

Адрес для переписки:

Калошин Алексей Алексеевич

105064, Россия, Москва, Малый Казенный пер., 5А,

ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова.

Тел.: 8 (965) 136-51-45 (моб.), 8 (495) 916-25-87 (служебн.).

Факс: 8 (495) 917-54-60.

E-mail: alex-k-1973@yandex.ru

Для цитирования:

Калошин А.А., Зимина Е.М., Калиниченко Е.О., Михайлова Н.А. Получение, оценка специфической активности и подлинности рекомбинантной вакцины, предназначенной для профилактики синегнойной инфекции // Инфекция и иммунитет. 2021. Т. 11, № 4. С. 763-770. Со1: 10.15789/2220-7619-ОЕБ-1369

© Калошин А.А. и соавт., 2021

Contacts:

Alexei A. Kaloshin

105064, Russian Federation, Moscow, Malyi Kazennyi lane, 5A, Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera. Phone: +7 (965) 136-51-45 (mobile), 8 (495) 916-25-87 (office). Fax: +7 (495) 917-54-60. E-mail: alex-k-1973@yandex.ru

Citation:

Kaloshin A.A., Zimina E.M., Kalinichenko E.O., Mikhailova N.A. Generation and evaluation of specific activity and authenticity of recombinant vaccine designed preventing against Pseudomonas aeruginosa // Russian Journal of Infection and Immunity = Infektsiya i immunitet, 2021, vol. 11, no. 4, pp. 763-770. doi: 10.15789/2220-7619-OES-1369

DOI: http://dx.doi.org/10.15789/2220-7619-0ES-1369

свойств (ИЭ) экспериментальных серий вакцины составляли не менее трех (ИЭ: 3,0—3,3), что превышало в полтора раза эффективность использования компонентов вакцины по отдельности (ИЭ: 2,0—2,3). Таким образом, подтвержден аддитивный эффект использования комплексного препарата для защиты от инфицирования то-кигенными штаммами синегнойной палочки.

Ключевые слова: Pseudomonas aeruginosa, белок Fнаружной мембраны (OprF), анатоксин, рекомбинантный белок, рекомбинантная вакцина.

GENERATION AND EVALUATION OF SPECIFIC ACTIVITY AND AUTHENTICITY OF RECOMBINANT VACCINE DESIGNED PREVENTING AGAINST PSEUDOMONAS AERUGINOSA

Kaloshin A.A., Zimina E.M., Kalinichenko E.O., Mikhailova N.A.

Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera, Moscow, Russian Federation

Abstract. The aim of the study was to obtain and characterize a recombinant vaccine for the immunoprophylaxis of infections caused by Pseudomonas aeruginosa. A set of two highly immunogenic P. aeruginosa recombinant proteins was used to create related vaccine. The first vaccine component was presented by recombinant outer membrane protein F (OprF), whereas the second one — by recombinant atoxic exotoxin A (toxoid). These antigens allowed to develop vaccine inducing immune response against the surface bacterial cues and promote production of neutralizing antibodies against exotoxin A, one of the most dangerous P. aeruginosa pathogenicity factors. Recombinant proteins were synthesized in Escherichia coli cells and isolated by two-step purification. In case of recombinant OprF protein, it was initially (stage 1) isolated as a precipitate containing hydrophobic fraction of producer cell-derived proteins, whereas for recombinant toxoid we purified inclusion bodies. At stage 2, a Ni Sepharose column affinity chromatography was performed. Next, purified recombinant proteins were dialyzed against buffer solution containing 50 mM Tris-HCl (pH 9.0) and 0.01% Tween 20 followed by filtration sterilization. Three lots of the Pseudomonas Recombinant Vaccine (PRV) were obtained for the study, wherein the recombinant antigens were absorbed with aluminum hydroxide. Recombinant OprF and toxoid protein in vaccine formula were used at a dose of 25 ^g and 50 ^g, respectively. Absorption completeness of the recombinant antigens within the vaccine was evaluated by polyacrylamide gel electrophoresis with PRV preparations concentrated by ultrafiltration in spin columns. Authenticity of recombinant vaccine was assessed by using customized method by desorb-ing antigens followed by ultrafiltration concentration in spin columns. Final concentrated desorbed vaccine preparations were analyzed by polyacrylamide gel electrophoresis and immunoblotting, which allowed to confirm presence of specific recombinant antigens in the vaccine. The experimental PRV series demonstrated specific activity (protective properties) after inoculation in animals (mice) by using a dual vaccination protocol, wherein mice were immunized intraperitonially twice with a two-week interval. Next, two weeks later mice were infected by toxigenic P. aeruginosa strain PA-103 culture cells. The index of protective efficiency (IE) for experimental vaccine series was at least a value of three (IE: 3.0—3.3) that was by 1.5-fold higher than that for using single vaccine components (IE: 2.0—2.3). Thus, we confirmed an additive effect of using a set preparation to protect against infection caused by toxigenic Pseudomonas aeruginosa strains.

Key words: Pseudomonas aeruginosa, outer membrane protein F (OprF), toxoid, recombinant protein, recombinant vaccine.

Введение

Pseudomonas aeruginosa — условно патогенный микроорганизм, вызывающий гнойно-воспалительные заболевания человека и животных. Обычно синегнойная инфекция развивается как осложнение вследствие ослабления иммунной системы организма, что может быть вызвано различными видами травм и перенесенными заболеваниями. Поскольку P. aeruginosa неприхотлива к питательным веществам и обладает высокой устойчивостью к факторам внешней среды и лекарственным препаратам, в том числе и к антибиотикам, синегнойные инфекции имеют широкое распространение в медицинских стационарах [3, 10].

Для иммунопрофилактики гнойно-воспалительных инфекций, вызываемых P. aerugi-nosa, может использоваться активная иммуни-

зация [11]. Ранее рассматривалась перспектива создания вакцин на основе материала, полученного после культивирования производственных штаммов P. aeruginosa. В частности, была разработана цельноклеточная инакти-вированная вакцина, содержащая семь штаммов основных иммунотипов P. aeruginosa [8]. Однако такая вакцина не нашла применения в медицинской практике из-за высокой токсичности. Позднее были предприняты попытки получения вакцин на основе разрушенных микробных клеток [1, 7]. Но несмотря на высокую иммуногенность и эффективность этих препаратов, не удалось полностью избавиться от реактогенности, обусловленной примесью липополисахарида клеточной стенки бактерии.

Перспективными оказались препараты на основе очищенных мембранных белков, которые обладали выраженными протективными свой-

ствами и характеризовались отсутствием токсичности [4, 14]. Известны исследования препаратов анатоксинов — химически детоксици-рованных препаратов экзотоксина А, который является одним из основных факторов патоген-ности синегнойной палочки [5]. Анатоксин использовали с целью получения донорской плазмы, которая оказалась высокоэффективной при лечении генерализованных форм заболеваний, вызываемых P. aeruginosa [6]. Подобные субъединичные вакцины не получили широкого распространения в практике здравоохранения, что связано со сложностью технологического процесса очистки целевых протективных антигенов, а кроме того, с тем, что в случае получения анатоксина остается вероятность реверсии токсичности. Выходом из этой ситуации является использование рекомбинантных белков.

Ранее нами получены и изучены рекомби-нантный белок F наружной мембраны (OprF) [12] и рекомбинантная атоксическая форма экзотоксина А (анатоксина) [13]. Комплекс этих реком-бинантных антигенов, сорбированных на геле гидроокиси алюминия, защищал мышей от экспериментальной синегнойной инфекции и проявлял аддитивный эффект [2].

Материалы и методы

Синтез рекомбинантных антигенов. При получении рекомбинантных белков использовали штаммы-продуценты рекомбинантного белка OprF Escherichia coli [12] и рекомбинант-ного анатоксина [13] из коллекции лаборатории протективных антигенов ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова. При культивировании первого продуцента использовали LB-среду, содержащую ампициллин в концентрации 100 мкг в мл и канамицин в концентрации 50 мкг в мл, а при культивировании второго продуцента — LB-среду, содержащую только канамицин в концентрации 50 мкг в мл. Штаммы-продуценты рассевали на агаризованной LB-среде в чашках Петри. Выращенные одиночные колонии после ночной инкубации (12—16 ч) при температуре 37°C использовали для инокуляции 250 мл жидкой среды. Культуру выращивали в термостатированном шейкере в течение 12 ч при температуре 37°C, после чего ее вносили в 2 л свежей LB-среды и инкубировали в прежних условиях в течение 2—3 ч до значения оптической плотности (OD600) 0,5. Добавляли 2 мл 1 М ИПТГ и продолжали инкубацию в прежних условиях 3,5 ч. Полученную биомассу осаждали центрифугированием. Осадок собирали и замораживали.

Получение телец-включений. Осадок бактериальной биомассы, полученной из 10 л куль-туральной среды, размораживали и растворяли в 300 мл литического буфера (фосфатно-солевой

буфер, 5 mM ЭДТА, 7 mM ß-меркаптоэтанола). Суспензию подвергали ультразвуковой дезинтеграции на приборе 130-Watt Ultrasonic Processor (Cole-Parmer, США) в режиме максимальной мощности трижды по 30 с. Нерастворившуюся фракцию осаждали в центрифуге Avanti J-E c ротором JA-14 (Beckman Coulter, США) 20 мин при скорости 5000 об/мин и температуре 4°C, а затем удаляли супернатант. Полученный осадок растворяли в 300 мл раствора следующего состава: 10 ммоль NaCl, 6 ммоль MgCl2, 10 ммоль CaCl2, 40 mM Tris-HCl, pH 8,0, добавляли 6 мкл РНКазы А (10 мг/л) и 15 мкл ДНКазы I (10 мг/мл) и инкубировали 15 мин при температуре 37°C. Повторяли ультразвуковую дезинтеграцию вышеописанным способом. Суспензию центрифугировали 20 мин при скорости 5000 об/мин и температуре 4°C с последующим удалением супернатанта. Осадок трижды промывали следующим образом: ресуспендировали в 100 мл промывочного буфера (фосфатно-солевой буфер, 5 mM ЭДТА, 20% сахарозы, 1% Triton X-100) и инкубировали 10 мин при температуре 4°C, а затем центрифугировали 20 мин при скорости 5000 об/мин и температуре 4°C. Супернатант удаляли и собирали осадок.

Получение гидрофобной фракции бактериальных белков. Осадок бактериальной биомассы, полученной из 10 л культуральной среды, размораживали и растворяли в 210 мл буфера, содержащего 0,3 М NaCl, 0,02 M MgCl2, 0,04 M Tris-HCl (pH 8,0). Далее добавляли 250 мкл раствора ДНКазы (10 мг/мл) и 70 мг лизоцима и инкубировали 30 мин при температуре 4°С. Затем добавляли 168 мл 10% раствора Triton X-100 и интенсивно перемешивали. Осаждали нерастворимую фракцию на центрифуге Beckman Avanti J-E (ротор JA-14) при 5000 об/мин и при температуре 4°С в течение 20 мин, а затем удаляли супернатант.

Хроматографическая очистка. Осадок гидрофобной фракции или осадок телец-включений растворяли в одном литре буфера следующего состава: 8 М мочевина, 0,1 М NaH2PO4, 0,01 М Tris-НО, рН 8,0. Растворение осуществляли в орбитальном шейкере со скоростью вращения 70 об/мин в течение 12 ч при комнатной температуре. Затем проводили осаждение нерастворимой фракции лизата, используя центрифугу Beckman Avanti J-E (ротор JA-14), со скоростью вращения 10 000 об/мин при комнатной температуре в течение часа. К супернатанту добавляли 20—25 мл суспензии Ni-сефарозы (GE Healthcare, США) и инкубировали 1 час при комнатной температуре в орбитальном шейкере с легким покачиванием (60 об/мин). Полученную суспензию пропускали самотеком через хроматографическую колонку (Bio-Rad, США). После прохождения почти всей жидкой фазы колонку подключали к хроматогра-

фу (BioLogic LP, Bio-Rad) и пропускали два литра первого промывочного раствора (8 М мочевина, 0,1 М NaH2PO4, 0,01 М Tris-HCl, рН 6,3) и 500 мл второго промывочного раствора (8 М мочевина, 0,1 М NaH2PO4, 0,01 М Tris-HCl, рН 5,9). Элюцию рекомбинантного белка осуществляли буферным раствором следующего состава: 8 М мочевина; 0,1 М NaH2PO4, 0,01 М Tris-HCl, рН 4,5.

Диализ и стерилизация. Перед проведением диализа pH растворов рекомбинантных белков доводили до значения 9,0 насыщенным раствором гидроксида натрия. Препараты рекомбинантных белков переносили в диализные мешки — целлюлозные диализные мембраны с размером пор для белков с молекулярным весом 14 kDa (Sigma, США). Диализные мешки с препаратами ре-комбинантных белков помещали в емкость, содержащую буфер следующего состава: 50 тМ раствор Tris-HCl (pH 9,0), 0,01% Tween 20. Объем препаратов рекомбинантных белков в диализном мешке и объем буфера для диализа имели соотношение 1:10. Диализ проводили в холодильном боксе с температурой 2—8°C на мешалке при постоянном перемешивании раствора магнитным перемешивающим элементом. Смену буфера осуществляли пять раз каждые 4 часа. Буферный раствор для пятой (финальной) смены готовили на апирогенной воде. После диализа проводили стерилизующую фильтрацию препаратов рекомбинантных белков с использованием полисульфоновых фильтров с диаметром пор 0,22 мкм (Sartorius, Германия). После стерилизации препараты хранили при температуре 2—8°C. Концентрацию белков определяли на спектрофотометре Genesys 6 (Thermo Fisher Scientific, США) при длине волны 280 нм.

Оценка специфичности рекомбинантных белков. При анализе рекомбинантных белков использовали методы электрофореза в полиакрил-амидном геле и иммуноблоттинга [15]. В им-муноблоттинге использовали специфические сыворотки крови кроликов, полученные к ре-комбинантному белку OprF [12] и рекомбинант-ному анатоксину [13] из коллекции лаборатории протективных антигенов ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова.

Сведение компонентов вакцины. Препараты рекомбинантных антигенов и гель гидроокиси алюминия переносили в стерильную бутыль и доводили объем стерильным физиологическим раствором хлорида натрия. Затем в бутыль помещали стерильный магнитный перемешивающий элемент и герметично закрывали крышку. Сорбцию антигена проводили в холодильном боксе с температурой 2—8°C на магнитной мешалке со скоростью вращения 60— 100 об/мин в течение 12 ч. Сорбированный препарат разливали в стерильные флаконы, укупоривали и хранили при температуре 2—8°C.

Оценки стерильности проводили в соответствии с требованиями «Государственной фармакопеи РФ» [9].

Десорбция вакцины. Флакон с вакциной встряхивали, вскрывали и переносили одну дозу (0,5 мл) в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5—2,0 мл. Добавляли 1 мл буферного раствора следующего состава: 0,45 М цитрат натрия, 0,4 М Na2HPO4, рН 9,0. Встряхивали пробирку на вортексе и инкубировали в течение часа при комнатной температуре. Затем переносили содержимое в центрифужную ультрафильтрационную колонку Millipore объемом 15 мл с размером пор мембраны 10 kDa. Проводили центрифугирование в настольной центрифуге Eppendorf5702 (Eppendorf, Германия) при скорости вращения 2500 об/мин в течение 15—20 мин до достижения объема 100 мкл. Полученный препарат использовали для анализа подлинности компонентов рекомбинантной вакцины.

Оценка защитных свойств. Для иммунизации использовали самок белых беспородных мышей весом 16—18 г. При экспериментальном инфицировании животным внутрибрюшинно вводили различные дозы живой вирулентной культуры P. aeruginosa штамма PA-103 в объеме 0,5 мл. Для этого колонии P. aeruginosa, выращенные на агаризованной среде Мюллера— Хинтон, смывали изотоническим раствором хлорида натрия и разводили до концентрации 109 КОЕ (число образующих колонии бактерий) в 1 мл, используя стандарты мутности и спектрофотометр. Из полученной взвеси готовили дозы заражения различной концентрации, осуществляя контроль путем высева на агаризо-ванную среду взвеси культуры, соответствующей минимальной дозе заражения, с последующим подсчетом образовавшихся колоний. Статистическую обработку результатов — определение ЛД50 в опытных и контрольных группах, а также индекса эффективности (ИЭ) — проводили общепринятыми методами.

Результаты

Получение рекомбинантных антигенов. На первом этапе синтезировали по три серии препаратов рекомбинантного белка OprF и ре-комбинантного анатоксина, при этом используемым штаммам-продуцентам Е. coli присвоили название PA-OPRF и PA-ATOX. При синтезе одной серии рекомбинантного белка OprF культивирование проводили в 10 л жидкой среды, а при синтезе рекомбинантного анатоксина — в 20 л жидкой среды.

С целью получения высокоочищенных рекомбинантных белков мы использовали методы их предварительной очистки до хроматографии. При очистке рекомбинантного анатоксина по-

лучали тельца-включения. В то же время реком-бинантный белок ОргБ после ультразвуковой обработки растворялся и не формировал тельца-включения. Поэтому для его очистки был разработан так называемый «метод получения гидрофобной фракции бактериальных белков», который заключался в ферментативном лизисе бактериальных клеток с обработкой нукле-азами и последующим центрифугированием. Нерастворимый в воде осадок использовали для хроматографической очистки. В итоге после очистки в колонках с никель-сефарозой получены по три серии обоих рекомбинантных белков.

При оценке подлинности препаратов ре-комбинантных белков методом электрофореза в полиакриламидном геле определены продукты с размерами около 40 kDa для ОргБ и около 65 kDa для анатоксина, что соответствовало расчетным параметрам (рис. 1, вклейка, с. II). В иммуноблоттинге эти рекомбинантные белки реагировали со специфическими кроличьими антисыворотками (рис. 2, вклейка, с. II).

После диализа препараты рекомбинантных белков стерилизовали фильтрованием. В тестах по оценке стерильности компонентов вакцины не наблюдали роста посторонней микрофлоры ни в одном опытном образце.

Получение экспериментальных серий вакцины и их качественная характеристика. При сведении компонентов вакцины для одной дозы объемом 0,5 мл использовали 25 мкг рекомби-нантного белка ОргБ, 50 мкг рекомбинантного анатоксина и 225 мкг гидроокиси алюминия. После проведения процесса сорбции вакцину разлили в пенициллиновые флаконы и укупорили. В результате были получены три экспериментальные серии вакцины, которые заложены на хранение с целью проведения доклинических исследований и оценки стабильности показателей качества.

Один из важных этапов производства вакцины — это анализ ее подлинности, что определяется наличием самих компонентов — рекомбинантного белка ОргБ и рекомбинантного анатоксина. Однако рекомбинантные белки в вакцине связаны с гидроокисью алюминия. Кроме того, компоненты находятся в разбавленном состоянии, что затрудняет их детекцию. Поэтому были отработаны методы десорбции компонентов вакцины с последующей концентрацией препарата ультрафильтрацией.

Сконцентрированные десорбированные препараты анализировали электрофорезом в поли-акриламидном геле. Одновременно проводили анализ полноты сорбции рекомбинантных антигенов в составе вакцины, для чего также проводили концентрацию ультрафильтрацией препаратов вакцины без десорбции. Препараты трех экспериментальных серий вакцины не вхо-

дили в полиакриламидный гель во время электрофореза. В то же время в аналогичных десор-бированных препаратах идентифицировались рекомбинантный белок OprF и рекомбинант-ный анатоксин (рис. 3, вклейка, с. II).

При оценке подлинности вакцины в имму-ноблоттинге в препаратах при анализе с антисывороткой к рекомбинантному белку OprF наблюдали специфические бэнды, как в опыте, так и в контроле. Аналогичные результаты получены при иммуноблоттинге с антисывороткой к реком-бинантному анатоксину (рис. 4, вклейка, с. II).

Исследование защитных свойств рекомбинантных антигенов и вакцины. Предварительно перед приготовлением экспериментальных серий вакцины рекомбинантные антигены всех серий исследовали на предмет защитных свойств от экспериментальной синегнойной инфекции. При исследовании рекомбинантного белка OprF использовали дозу 25 мкг, а при исследовании рекомбинантного анатоксина — дозу 50 мкг, то есть те же дозы компонентов, что и в составе вакцины. В качестве адъюванта использовали гель гидроокиси алюминия, который добавлялся в соотношении 3:1 к массе рекомбинантного белка. Объем доводили физиологическим раствором из расчета 0,5 мл на одну дозу. Проводили двукратную иммунизацию с интервалом 2 недели с последующим через две недели внутрибрюшинным заражением P. aeruginosa штамма РА-103.

Таблица 1. Защитные свойства препаратов рекомбинантных белков серии № 1

Table 1. Protection by the preparations of recombinant proteins, lot No. 1

Количество

Препарат Preparation Доза заражения, КОЕ* Infection dose, CFU* мышей павших/ выживших Number of died/ survived mice ЛД50, КОЕ* ld50, CFU* ИЭ** IE**

OprF, серия № 1 OprF, lot No.1 108 8/2

5,0 x 107 7/3

2,5 x 107 5/5 33,0 2,0

12,5 x 106 1/9

6,3 x 106 0/10

Анатоксин, серия № 1 Toxoid, lot No.1 108 9/1

5,0 x 107 7/3

2,5 x 107 5/5 33,0 2,0

12,5 x 106 0/10

6,3 x 106 0/10

Контроль 5,0 x 107 10/0

(интактные 2,5 x 107 7/3

мыши) 12,5 x 106 3/7 16,5 -

Control 6,3 x 106 1/9

(intact mice) 3,1 x 106 0/10

Примечание. *КОЕ — колониеобразующие единицы, **ИЭ — индекс эффективности.

Note. *CFU — colony forming units, **IE — index of efficiency.

После курса иммунизации мышам опытных групп вводили от 6,3 х 106 до 108 КОЕ культуры P. aeruginosa. Животных контрольных групп (мыши той же партии, которым вводили физиологический раствор хлорида натрия) заражали дозами от 3,1 х 106 до 5 х 107 КОЕ культуры. Значение индексов эффективности защитных свойств (ИЭ) было не менее 2,0 (табл. 1 и 2), что соответствовало заданным параметрам. В аналогичном опыте по исследованию опытных серий вакцины индексы эффективности защитных свойств соответствовали для серии 1 — 3,3, для серии 2 — 3,0 и для серии 3 — 3,3 (табл. 3).

Обсуждение

Предварительно нами определен оптимальный состав рекомбинантной вакцины для профилактики синегнойной инфекции, которая способствует стимуляции иммунных реакций

Таблица 2. Защитные свойства препаратов рекомбинантных белков серий № 2 и № 3

Table 2. Protection by the preparations of recombinant proteins, lots No. 2 and No. 3

Количество

Доза мышей ЛД50, КОЕ* ld50, CFU*

Препарат Preparation заражения, КОЕ* Infection павших/ выживших Number ИЭ** IE**

dose, CFU* of died/ survived mice

OprF, серия № 2 OprF, lot No.2 108 10/0

5,0 x 107 6/4

2,5 x 107 5/5 28,8 2,1

12,5 x 106 2/8

6,3 x 106 0/10

OprF, серия № 3 OprF, lot No.2 108 9/1

5,0 x 107 7/3

2,5 x 107 5/5 26,8 2

12,5 x 106 3/7

6,3 x 106 0/10

Анатоксин, серия № 2 Toxoid, lot No.2 108 9/1

5,0 x 107 7/3

2,5 x 107 4/6 30,8 2,3

12,5 x 106 2/8

6,3 x 106 0/10

Анатоксин, серия № 3 Toxoid, lot No.3 108 10/0

5,0 x 107 8/2

2,5 x 107 3/7 28,7 2,1

12,5 x 106 2/8

6,3 x 106 0/10

Контроль 5,0 x 107 10/0

(интактные 2,5 x 107 8/2

мыши) 12,5 x 106 4/6 13,4 -

Control 6,3 x 106 2/8

(intact mice) 3,1 x 106 0/10

Примечание. *КОЕ — колониеобразующие единицы, **ИЭ — индекс эффективности.

Note. *CFU — colony forming units, **IE — Index of efficiency.

к мажорному поверхностному белку бактериальной клетки и одному из основных факторов патогенности P. aeruginosa. Оптимальные дозы антигенов комплексного препарата составили 25 мкг для рекомбинантного белка OprF и 50 мкг для рекомбинантного анатоксина, которые были сорбированы на геле гидроокиси алюминия. Оптимальная схема иммунизации данным препаратом включала в себя два введения с двухнедельным интервалом [2].

Во всех предыдущих исследованиях, посвященных получению и изучению разнообразных протективных антигенов, использовали одностадийную хроматографическую очистку на никель-активированных сорбентах. Однако для получения максимально очищенных компонентов вакцины мы предварительно отделяли основную белковую фракцию бактерий от большей части липополисахарида и нуклеиновых кислот. Рекомбинантный анатоксин обладал сильными гидрофобными свойствами, что позволило ему формировать тельца-включения, которые и использовались для хрома-тографической очистки. Этот подход оказался

Таблица 3. Защитные свойства экспериментальных серий рекомбинантной вакцины синегнойной

Table 3. Protection by the experimental lots of recombinant Vaccine pseudomonas

Количество

Доза мышей ЛД50, КОЕ* ld50, CFU*

Препарат Preparation заражения, КОЕ* Infection павших/ выживших Number ИЭ** IE**

dose, CFU* of died/ survived mice

108 7/3

РВС, 5,0 x 107 2/8

серия № 1 2,5 x 107 2/8 66 3,3

RVP, lot No.1 12,5 x 106 0/10

6,3 x 106 0/10

108 7/3

РВС, 5,0 x 107 3/7

серия № 2 2,5 x 107 2/8 61,6 3

RVP, lot No.2 12,5 x 106 0/10

6,3 x 106 0/10

108 6/4

РВС, 5,0 x 107 3/7

серия № 3 2,5 x 107 1/9 66 3,3

RVP, lot No.3 12,5 x 106 1/9

6,3 x 106 0/10

Контроль 5,0 x 107 10/0

(интактные 2,5 x 107 6/0

мыши) 12,5 x 106 2/8 20,3 -

Control 6,3 x 106 0/10

(intact mice) 3,1 x 106 0/10

Примечание. *КОЕ — колониеобразующие единицы, **ИЭ — индекс эффективности.

Note. *CFU — colony forming units, **IE — index of efficiency.

неудачным в случае рекомбинантного белка ОргЕ Однако после лизиса клеток лизоцимом и деградации бактериальной ДНК рекомби-нантный белок ОргБ оказался в нерастворимой форме, поэтому удалось его отделить и также использовать для второго этапа очистки.

Подлинность рекомбинантных антигенов как на стадии получения компонентов вакцины, так и при оценке качества самой вакцины определяли методами электрофореза в полиакрил-амидном геле и иммуноблоттинга. Расчетная молекулярная масса рекомбинантного белка ОргБ составляла 38,9 kDa, а молекулярная масса рекомбинантного анатоксина — 65,8 kDa. Рекомбинантные белки соответствующих размеров обнаруживались при анализе продуктов очистки (рис. 1 и 3). Другим показателем подлинности рекомбинантных белков является их специфическое взаимодействие с иммунными сыворотками к охарактеризованным препаратам рекомбинантного белка ОргБ и рекомбинантного анатоксина (рис. 2 и 4).

С целью анализа подлинности вакцины разработан оригинальный метод десорбции реком-бинантной вакцины. Основные методы контроля вакцинных препаратов описаны в XIII издании «Государственной фармакопеи РФ», однако при создании новых препаратов авторы уделяют внимание разработке методов определения подлинности и специфической активности. Подлинности разрабатываемой вакцины определяется путем идентификации рекомбинант-ного белка ОргБ и рекомбинантного анатоксина, которые труднодоступны из-за того, что они находятся в связанном с гелем гидроокиси алюминия состоянии, поэтому были подобраны условия их десорбции. Обычно при определении компонентов вакцины используют иммуно-ферментный анализ, для чего проводится десорбция, в частности в цитратном буфере [16]. В своей работе мы сочетали десорбцию вак-

Список литературы/ЯеТегепсеБ

цины с последующим электрофорезом в поли-акриламидном геле и иммуноблоттингом, что позволило выявлять качество рекомбинантных антигенов вакцины. При этом мы столкнулись с проблемой низких концентраций целевых ре-комбинантных антигенов на стадии детекции. Выходом из этого стало концентрирование де-сорбированных препаратов с помощью ультрацентрифугирования.

При анализе специфической активности вакцины использовали модель экспериментального заражения мышей высоковирулентным штаммом синегнойной палочки РА-103, который характеризуется наличием всех основных факторов патогенности, свойственных клиническим изолятам. Выявлено, что вакцина успешно защищала иммунизированных животных, при этом индексы эффективности экспериментальных серий составляли 3,0—3,3. Эти значения в полтора раза превышали индексы эффективности, полученные в экспериментах по оценке протективных свойств отдельных рекомбинантных белков всех серий, значения которых составляли 2,0—2,3. Полученные результаты экспериментов подтверждают правильность выбранной стратегии, когда хорошо проявлялся аддитивный эффект сочетанного использования протективных антигенов.

Благодарности

Работа выполнена в соответствии с государственным контрактом от 28 апреля 2017 г. № 14.N08.11.0135 в рамках ФЦП «Развитие фармацевтической и медицинской промышленности Российской Федерации на период до 2020 г. и дальнейшую перспективу» по теме «Доклинические исследования вакцины на основе рекомбинантных протективных антигенов, предназначенной для профилактики инфекций, вызываемых синегнойной палочкой».

1. Благовидов Д.А., Костинов М.П., Симонова О.И., Шмитько А.Д., Буркина Н.И., Шахназарян М.К. Переносимость вакцины против P. aeruginosa у детей с муковисцидозом и врожденными пороками развития легких // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2016. Т. 15, № 2 (87). С. 55-66. [Blagovidov D.A., Kostinov M.P., Simonova O.I., Shmit'ko A.D., Burkina N.I., Shahnazaryan M.K. The tolerability of the vaccine against P. aeruginosa in children with cystic fibrosis and congenital lung development. Jepidemiologija i vakcinoprofilaktika = Epidemiology and Vaccinal Prevention, 2016, vol. 15, no. 2, pp. 55-66. (In Russ.)] doi: 10.31631/2073-3046-2016-15-2-55-66

2. Калошин А.А., Леонова Е.И., Солдатенкова А.В., Михайлова Н.А. Исследование протективных свойств комплекса рекомбинантного белка F наружной мембраны и рекомбинантного анатоксина Pseudomonas aeruginosa // Вестник Российской академии медицинских наук. 2016. Т. 71, № 1. С. 17-22. [Kaloshin A.A., Leonova E.I., Soldatenkova A.V., Mikhailova N.A. Assessment protective properties of the recombinant complex of the outer membrane protein F and the toxoid of Pseudomonas aeruginosa. Vestnik Rossiiskoi akademii meditsinskikh nauk = Herald of the Russian Academy of Sciences, 2016, vol. 71, no. 1, pp. 117-122. (In Russ)] doi: 10.15690/vramn584

3. Лазарева А.В., Чеботарь И.В., Крыжановская О.А., Чеботарь В.И., Маянский Н.А. Pseudomonas aeruginosa: пато-генность, патогенез и патология // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2015. Т. 17, № 3. С. 170-186. [Lazareva A.V., Chebotar I.V., Kryzhanovskaya O.A., Chebotar V.I., Mayanskiy N.A. Pseudomonas aeruginosa: pathogenicity, pathogenesis and diseases. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy, 2015, vol. 17, no. 3, pp. 170-186. (In Russ.)]

4. Макаренко Т.А., Станиславский Е.С. Иммунологическое изучение белков клеточной стенки Pseudomonas aeruginosa // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1996. № 2. C. 7—9. [Makarenko T.A., Stanislavskii E.S. An immunological study of the cell-wall proteins of Pseudomonas aeruginosa. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 1996, no. 2, pp. 7—9. (In Russ.)]

5. Патент № 1481962 С Российская Федерация, МПК. A61K 35/74. Способ обезвреживания очищенного экзотоксина А си-негнойной палочки; заявлено 1987.07.15: опубликовано 1995.09.06 / Михайлова Н.А., Шаймухаметов Ф.А., Кузнецова Т.Н., Мороз А.Ф. Патентообладатель: УфНИИВС им. И.И. Мечникова, ГУ НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи. 3 с. [Patent No. 1481962 С Russian Federation, Int. Cl. A61K 35/74. Method for rendering harmless exonoxin A ofPseudomonas aeruginosa; application: 1987.07.15: date of publication 1995.09.06 / Mikhailova N.A., Shajmukhametov F.A., Kuznetsova T.N., Moroz A.F. Proprietors: Ufimskij nauchno-issledovatel'skij institut vakcin i syvorotok im. I.I.Mechnikova (UfNIIVS im. I.I. Mechnikova), Nauchno-issledovatel'skij institut jepidemiologii i mikrobiologii im. N.F. Gamalei (GU NIIEM im. N.F. Gamalei). 3 p.]

6. Подгорная Л.Г., Дзюбан Н.Ф. Антигенные свойства анатоксина синегнойной палочки и протективное действие антитоксической противосинегнойной сыворотки // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1986. № 6. С. 67—69. [Podgornaia L.G., Dziuban N.F. Antigenic properties of Pseudomonas aeruginosa anatoxin and the protective action of antitoxic anti-Pseudomonas aeruginosa serum. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 1986, no. 6, pp. 67—69. (In Russ.)]

7. Станиславский Е.С., Йоо И., Северцева М.К., Машилова Г.М., Болтуцкий Л.Г. Иммунологическая эффективность и безвредность в эксперименте пиоиммуногена-вакцины против инфекции Pseudomonas aeruginosa // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1982. № 5. С. 70—75. [Stanislavskii E.S., Joo I., Severtsova M.K., Mashilova G.M., Boltutsii L.G. Experimental immunological effectiveness and safety of pyoimmunogen vaccine against Pseudomonas aeruginosa infection. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 1982, no. 5, pp. 70—75. (In Russ.)]

8. Титова Т.И., Сидорова Т.Н., Радкевич С.А., Анциферова Н.Г., Мороз А.Ф. Получение и изучение свойств поливалентной корпускулярной синегнойной вакцины // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1985. № 8. С. 80-88. [Titova T.I., Sidorova T.N., Radkevich S.A., Antsiferova N.G., Moroz A.F. Production and study of the properties of a polyvalent corpuscular Pseudomonas aeruginosa vaccine. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 1985, no. 8, pp. 80—88. (In Russ.)]

9. Фармакопея.рф: сайт о регистрации лекарственных средств в России. Общая фармакопейная статья 0ФС.1.2.4.0003.15 Стерильность. [Pharmacopoeia.ru: site about registration of drugs in Russia and EAEU

10. Chatterjee M., Anju C.P., Biswas L., Mohan G., Biswas R. Antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa and alternative therapeutic options. Int. J. Med. Microbiol, 2016, vol. no. 1, pp. 48—58. doi: 10.1016/j.ijmm.2015.11.004

11. Döring G., Pier G.B. Vaccines and immunotherapy against Pseudomonas aeruginosa. Vaccine, 2008, vol. 26, no. 8, pp. 10111024. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.12.007

12. Kaloshin A.A., Gatypova E.V., Mikhailova N.A. Obtaining recombinant forms ofthe outer membrane protein F of Pseudomonas aeruginosa and assessment of their immunogenic properties. Appl. Biochem. Microbiol., 2011, vol. 47, no. 8, pp. 780—788. doi: 10.1134/S0003683811080060

13. Kaloshin A.A., Isakov M.A., Mihailova N.A., Vertiev Ju.V. Preparation of recombinant atoxic form of exotoxin a from Pseudomonas aeruginosa. Bull. Exper. Biol. Med., 2013, vol. 154, no. 3, pp. 346-350. doi: 10.1007/s10517-013-1947-1

14. Lee N.G., Jung S.B., Ahn B.Y., Kim Y.H., Kim J.J., Kim D.K., Kim I.S., Yoon S.M., Nam S.W., Kim H.S., Park W.J. Immunization of burn-patients with a Pseudomonas aeruginosa outer membrane protein vaccine elicits antibodies with protective efficacy. Vaccine, 2000, vol. 18, no. 18, pp. 1952-1961. doi: 10.1016/S0264-410X(99)00479-X

15. Sambrook J.F., Russell D.W. Molecular cloning: a laboratory manual. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2001. 2100p.

16. Shanmugham R., Thirumeni N., Rao V.S., Pitta V., Kasthuri S., Singanallur N.B., Lingala R., Mangamoori L.N., Villuppa-noor S.A. Immunocapture enzyme-linked immunosorbent assay for assessment of in vitro potency of recombinant hepatitis B vaccines. Clin. Vaccine Immunol., 2010, vol. 17, no. 8, pp. 1252-1260. doi: 10.1128/CVI.00192-10

Авторы:

Калошин А.А., к.б.н., ведущий научный сотрудник лаборатории протективных антигенов ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова, Москва, Россия;

Зимина Е.М., младший научный сотрудник лаборатории протективных антигенов ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова, Москва, Россия;

Калиниченко Е.О., аспирант, младший научный сотрудник лаборатории механизмов регуляции иммунитета ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова, Москва, Россия; Михайлова Н.А., д.м.н., профессор, зав. лабораторией протективных антигенов ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова, Москва, Россия.

Поступила в редакцию 31.01.2020 Принята к печати 16.05.2020

Authors:

Kaloshin A.A, PhD (Biology), Leading Researcher, Laboratory of Protective Antigens, Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera, Moscow, Russian Federation;

Zimina E.M., Junior Researcher, Laboratory of Protective Antigens, Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera, Moscow, Russian Federation;

Kalinichenko E.O., PhD Student, Junior Researcher, Laboratory of Mechanisms of Immunity Regulation, Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera, Moscow, Russian Federation; Mikhailova N.A, PhD, MD (Medicine), Head of the Laboratory of Protective Antigens, Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera, Moscow, Russian Federation.

Received 31.01.2020 Accepted 16.05.2020