Мелкие дикие млекопитающие как источник природно-очаговой инфекции - лептоспироза

10. Чирикова, О.А. Факторы, определяющие процесс адсорбции высокомолекулярных белков плазмы крови на мембранах эритроцитов при мышечных нагрузках: дис. ... канд. биол. наук / О.А. Чирикова. -Ярославль, 2006. - 129 с.

11. Acquaye, C. The development of a filtration system for evaluation flow characteristics of erythrocytes / C. Acquaye, E.C. Walker, A.N. Schechter// Microvasc. Res. - 1987. - Vol.33. - №1. - P.1-14.

12. Hardeman, M.R. Low hematocrite and plasma fibrinogen in trained athletes increase hemorheological tolerance for physical stress / M.R. Hardeman, H.P.F. Peters, P.T. Goldhart// Clin. Hemoreol. - 1995. - Vоl.15. -№3 - P. 507.

13. Mohandas, N. The influence of membrane skeleton on red cell deformability, membrane material properties and shape / N. Mohandas, J.A. Chasis, S.B. Shobet // Seminare in hematology. - 1983. - Vol.20. - №3. -P.225 - 242.

14. Pries, A.R. Rheology of microcirculation / A.R. Pries, T. Secomb // Clin. Hemorheol. and microcirc. - 2003. -Vol. 29. - P. 143-148.

УДК 619:616.579 Н.П. Немкова

МЕЛКИЕ ДИКИЕ МЛЕКОПИТАЮЩИЕ КАК ИСТОЧНИК ПРИРОДНО-ОЧАГОВОЙ ИНФЕКЦИИ - ЛЕПТОСПИРОЗА

Рассматривается вредоносная деятельность грызунов. Приведены результаты обследования природных и синотропных очагов лептоспироза в животноводческих помещениях, а также в лесу и на полях хозяйств Емельяновского района Красноярского края.

Ключевые слова: лептоспироз, природная очаговость, грызуны, исследования, этиологическая структура.

N.P. Nemkova SMALL WILD MAMMALS AS SOURCE NATURAL-CENTRE OF THE INFECTION - LEPTOSPIROSIS

Leptospirosis characteristic as natural-centre infection, so long as reason disease at first appear bring person in biogeozenosis transfer - rat and mouse, which appear one of fundamental reservuare stimulus Leptospirosis in nature.

Key words: Leptospirosis, natural centre, rodent, investigation, etiological structure.

В последние годы роль экологии как науки и как отрасли практической деятельности людей резко возросла. Возникла необходимость экологизации промышленности, сельского хозяйства, теории и практики ветеринарного дела. Сформировалась ветеринарная экология - наука о биогеоценотической диагностике и профилактике болезней животных, повышении их продуктивности, методах экологически обоснованного производства высококачественной животноводческой продукции для человеческого общества в рамках его устойчивого развития [1, 3].

Ветеринарная экология тесно связана с другими науками. Являясь составной частью мегаэкологии (патэкологии), она имеет тесную связь с сельскохозяйственной экологией и медицинской экологией.

Сельскохозяйственную экологию ученые характеризуют как науку о факторах природной среды, о их влиянии на организмы культивируемых растений и животных, о экосистемах (биогеоценозах), преобразованных человеком для производства продуктов растениеводства и животноводства.

По характеру научных подходов и отчасти по объектам исследования ветеринарная экология созвучна с медицинской экологией. Эти две науки рассматриваются как «близкие родственницы» и «незаменимые соратницы» в деле диагностики, лечения и профилактики болезней, общих животным и человеку (зооантропонозов).

Ветеринарная экология неразрывно связана с биогеоценотической патологией - наукой о болезнях, возникающих у животных вследствие негативных изменений в биогеоценозах. Ее содержание охарактеризовано в свете законов экологии Б. Коммонера [3, 6].

Исторические сведения и многочисленные современные данные свидетельствуют о том, что причиной многих энзоотий, эпизоотий, эндемий и эпидемий явился занос в биогеоценозы возбудителей и переносчиков заразных болезней животных и людей.

Классическим примером, подтверждающим этот тезис, можно считать крыс, которых рассматривают как «побочный продукт цивилизации». В древности крысы обитали на Аравийском полуострове, а теперь они расселились по биогеоценозам всех континентов земного шара (возможно, отсутствуют лишь в Антарктиде). Размножению и расселению крыс по планете способствовала неэкологичная деятельность людей. Не сознавая, человек улучшал условия жизни крыс. В человеческих поселениях грызуны нашли лучшие условия прокорма, чем в бесплодных дюнах Аравийской пустыни. Крысы находят пищу в амбарах, складах, зернохранилищах, магазинах, животноводческих фермах, на помойках. Люди уничтожали естественных врагов крыс, сдерживающих их непомерное размножение, а именно: змей, ласок, лис, куниц, коршунов и др. Естественное равновесие сместилось в пользу крыс, и они оказались способными колонизировать весь мир. В Европу сначала пришла черная крыса (раттус раттус), а затем и серая (раттус норвегикус).

Черные крысы заразили европейцев чумой и тифом; от опустошительных эпидемий погибли десятки миллионов людей. Крысы - переносчики бруцеллеза, лептоспироза, листериоза, пастереллеза, туляремии, бешенства, чумы и рожи свиней, других инфекционных болезней животных (свыше 15). Популяции крыс обладают свойствами выраженной выживаемости, поэтому бороться с ними исключительно трудно. Появляются мутанты, устойчивые к ядам. Так, в борьбе с крысами большие надежды возлагали на антикоагулянты, вызывающие у зверьков смертельные кровотечения. Однако через несколько лет появились «суперкрысы», не восприимчивые к патогенному действию этого яда [2, 6]. Благоприятные условия для гнездования и размножения мышевидных грызунов имеются в большинстве животноводческих объектов: достаточная кормовая база, соответствующий микроклимат и легкость проникновения в помещения. При наличии кормов мышевидные грызуны чрезвычайно быстро размножаются, так как половая зрелость у них наступает рано: у крыс в 3-4-месячном возрасте, а у мышей - в 1-2-месячном. Продолжительность беременности у серой крысы 21-25 дней, а в течение года она способна давать 4-8 пометов по 6-12 крысят в каждом. У мышей беременность длится 18-20 дней, в одном помете бывает по 8-10 мышат [5].

В помещениях для животных в основном обитают такие мышевидные грызуны, как серая крыса, или пасюк, черная крыса, домовая и другие мыши; иногда в них поселяется обыкновенная полевка.

Серые крысы обитают в помещениях для животных, в земле, под полом, в слежавшемся навозе, мусоре. Отличаются прожорливостью, к корму неприхотливы.

Черные крысы несколько меньше серых. Заселяют главным образом поселки и города, прилегающие к морю. Чаще всего селятся на чердаках и верхних этажах зданий. Иногда заселяют животноводческие помещения, но гораздо реже, чем серая крыса.

Домовые мыши обитают в жилых домах, складах, животноводческих помещениях, различных хозяйственных постройках, на полях, в садах, лесных посадках.

Полевая мышь, полевка обыкновенная и полевка общественная - вредители полей и огородов, но могут переселяться и в животноводческие объекты, склады с зерном.

Вредоносная деятельность грызунов не может быть точно учтена вследствие ее многообразия и варьирования в различные годы. Однако экономический ущерб, причиняемый ими значительный, он слагается из: порчи, загрязнения, поедания фуража, уничтожения семенных запасов и продуктов питания людей; поедания яиц, цыплят, новорожденных поросят, беспокойства домашних и сельскохозяйственных животных; порчи построек, сооружений; уничтожения лесов, культурных деревьев и других растений в садах, а также в огородах, хлебов на полях, травостоя на пастбищах.

Главную опасность мышевидные грызуны представляют в эпизоотическом и эпидемиологическом отношениях, так как они являются выделителями и переносчиками возбудителей многих инфекционных и инвазионных болезней. В связи с этим мышевидные грызуны имеют значение очагов и источников (резервуаров) возбудителей инфекций.

Возбудители инфекционных болезней от грызунов передаются животным (или человеку) через корма и воду, загрязненные выделениями больных зверьков, при поедании животными трупов грызунов и их остатков или трансмиссивно через блох, клещей, комаров, мух и других членистоногих, паразитирующих на грызунах и на сельскохозяйственных и комнатных животных.

Известно, что крысы и мыши - это один из основных резервуаров возбудителя лептоспироза в природе. Лептоспирозом болеет свыше 12 видов мышевидных грызунов, из организма которых выделяют патогенные штаммы лептоспир. К числу этих грызунов относят серую и водяную крысу, домовую мышь, полевку-

экономку, рыжую полевку и других. Серые крысы в 10-40% случаев являются хроническими носителями лептоспир, а зараженность их в эпизоотических очагах достигает более 50%.

Природные очаги могут явиться местом инфицирования сельскохозяйственных животных, которые заражаются при выпасе.

Подтверждением вышесказанного являются данные Центра Госсанэпиднадзора по Красноярскому краю и результаты наших исследований [4].

Специалистами ЦГСЭН с середины 90-х годов прошлого столетия изучаются природные очаги некоторых инфекционных болезней, в том числе и лептоспироза. На протяжении нескольких последних лет проводились бактериологические (вода, органы грызунов) и серологические исследования отпечатков крови грызунов. Бактериологический метод положительных находок не дает. Антитела в реакции микроагглютинации (РМА) были обнаружены в 1997 году в одном случае у полевки-экономки к серологическому варианту L hebdomadis в разведении 1:160 (Емельяновский район - западная область края). В 2000 году антитела обнаружены у двух серых крыс к штамму Каширский, серологический вариант L. canicola в разведении 1:20 (Енисейский район - северная область); в 2002 году - у красной и красно-серой полевок к серологическому варианту L. grippotyphosa (Кежемский район - северная область) и у серой крысы и землеройки-бурозубки к Licterohaemorrhagiae (Краснотуранский район - южная область) в разведении 1:20. В 2003 году выявлен штамм Moskwa V в разведении 1:20 у полевки-экономки и землеройки-бурозубки (в округе г. Красноярска -восточная область). Ранее природный очаг лептоспироза был установлен в подсобных хозяйствах г. Железногорска (восточная область).

Нами обследованы природный и синантропный очаги лептоспироза в животноводческих помещениях и на прилегающих территориях, а также в лесу и на полях хозяйств Емельяновского района. При этом проводили отлов мелких диких млекопитающих (грызунов), отбирали от них патологический материал (кровь и мочу, свежие трупы) и исследовали на лептоспироз бактериологическим и серологическим (РМА) методами. Всего было получено 207 проб крови и 32 пробы мочи от мелких диких млекопитающих 11 видов.

Анализ полученных результатов показал (табл. 1), что лептоспирозные антитела по данным реакции микроагглютинации обнаружены в 25 (12,1%) пробах крови от животных 7 видов: крыса серая - 7 (18,4%), землеройка-бурозубка - 4 (17,4%), полевка-экономка - 6 (14,6%), красная полевка - 4 (12,5%), обыкновенная полевка - 2 (9,1%), мышь лесная - 1 (7,7%) и мышь полевая - 1 (6,7%). В пробах мочи грызунов лептоспир не обнаружено.

Таблица 1

Результаты исследования проб крови в РМА на лептоспироз от мелких диких млекопитающих

Вид животных Количество исследованных проб Результат исследования

Количество положительных проб %

Полевка экономка 41 6 14,6

Крыса серая 38 7 18,4

Красная полевка 32 4 12,5

Землеройка-бурозубка 23 4 17,4

Обыкновенная полевка 22 2 9,1

Мышь полевая 15 1 6,7

Мышь лесная 13 1 7,7

Серая полевка 8 - -

Мышь домовая 7 - -

Мышь-малютка 5 - -

Суслик длиннохвостый 3 - -

Всего 207 25 12,1

Этиологическая структура положительных реакций (табл. 2) представлена лептоспирами 10 серог-рупп: Icterohaemorrhagiae (24 %), Grippotyphosa (20 %), Pomona (16 %), Sejroe (12 %), Autumnalis (8 %), Hebdomadis, Canicola, Australis, Bataviae и Javanica (по 4 %). При этом этиологическая структура лептоспироза различна у всех семи видов животных: у серой крысы - Icterohaemorrhagiae, Pomona, Canicola, Sejroe, полевки-экономки - Grippotyphosa, Sejroe, Hebdomadis, Autumnalis, землеройки-бурозубки -

Icterohaemorrhagiae, Pomona, Grippotyphosa, красной полевки - Pomona, Grippotyphosa, Australis, Autumnalis.

У обыкновенной полевки обнаружены антитела к серогруппам лептоспир Pomona и Grippotyphosa, у мыши лесной - к серогруппе Bataviae, у мыши полевой - к серогруппе Javanica.

Таблица 2

Этиологическая структура лептоспироза мелких диких млекопитающих

Серологическая группа Полевка экономка Серая крыса Буро- зубка Полевка Мышь Количе- ство положи- тельных проб %

обыкно- венная крас- ная лес- ная по- леая

Pomona - 1 1 1 1 - - 4 16,0

Hebdomadis 1 - - - - - 1 4,0

Icterohaemor- rhagiae - 4 2 - - - - 6 24,0

Canicola - 1 - - - - - 1 4,0

Grippotyphosa 2 - 1 1 1 - - 5 20,0

Javanica - - - - - - 1 1 4,0

Sejroe 2 1 - - - - - 3 12,0

Bataviae - - - - - 1 - 1 4,0

Australis - - - - 1 - - 1 4,0

Autumnalis 1 - - - 1 - - 2 8,0

Итого 6 7 4 2 4 1 1 25 100

Сравнительный анализ этиологической структуры лептоспироза сельскохозяйственных животных и мелких диких млекопитающих в Емельяновском районе показал, что наблюдается тесная взаимосвязь по серогруппам Icterohaemorrhagiae, Pomona, Sejroe, Hebdomadis и Giippotyphosa. Серогруппа Icterohaemor-rhagiae является доминирующей у свиней (56,5 %), крупного рогатого скота (33,2 %), лошадей (31,1%), серой крысы (57,1%) и землеройки-бурозубки (50%). Серогруппы Grippotyphosa, Pomona и Sejroe выявляются в большинстве случаев у мелких грызунов (20, 16 и 12% соответственно) и ежегодно у крупного рогатого скота, свиней и лошадей.

Итоги изучения дают основания полагать о существовании природных и синантропных очагов лептос-пирозной инфекции в условиях различных ландшафтно-географических зон Красноярского края. Таким образом, лептоспироз животных и людей характеризуется как природноочаговая инфекция.

Литература

1. Баранников, В.Д. Экологическая безопасность сельскохозяйственной продукции / В.Д. Баранников, Н.К. Кириллов. - М.: КолосС, 2006. - 352 с.

2. Кисленко, В.Н. Экология патогенных микроорганизмов / В.Н. Кисленко. - Новосибирск: Изд-во НГАУ, 2000. - 226 с.

3. Кисленко, В.Н. Общая и ветеринарная экология / В.Н. Кисленко, Н.А. Калиненко. - М.: КолосС, 2006. -344 с.

4. Немкова, Н.П. Исследования эпизоотической ситуации по лептоспирозу в природных очагах / Н.П. Немкова // Аграрная наука на рубеже веков: мат-лы регион. науч.-практ. конф. - Ч. 2. - Красноярск, 2006. - С. 203-204.

5. Поляков, А.А. Ветеринарная защита на животноводческих комплексах / А.А. Поляков. - М.: Сов. Россия, 1975. - 125 с.

6. Равилов, А.З. Экологические проблемы ветеринарной медицины / А.З. Равилов, М.Ш. Хусаинов // Ветеринария. - 1997. - №8. - С. 9-12.

УДК 619:616-092.19 А.В. Сахаров

МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ КРИТЕРИИ ПЕРИОДИЗАЦИИ РОСТА ОСЕВОГО СКЕЛЕТА СВИНЬИ

Изучены морфогистохимические характеристики клеток и матрикса хрящевой ткани зон роста тел позвонков свиньи в различные возрастные периоды. Выявленные закономерности морфогенетических преобразований клеток прехондральной мезенхимы в процессе дифференцировки позволяют уточнить временные границы стадий развития позвоночника и выделить четыре фазы роста позвоночника.

Ключевые слова: пластинка роста, хрящевая ткань, хондробласт, пролиферация, дифференцировка, онтогенез, фазы развития позвоночника.

A.V. Sacharov MORPHOLOGICAL CRITERIA OF THE GROWTH PERIODIZATION OF THE PIG BACKBONE

The morphogistochemical characteristics of the cells and the matrix of cartilaginous tissue in growth zones of pi'g vertebra in different age periods have been studied. Revealed regularities of the morphogenetic transformations of prochondral mezenhima cells in the process of differentiation allow to clarify the temporal borders in stages of backbone development and to differentiate four phases of backbone growth.

Key words: growth zone, cartilaginous tissue, chondroblast, proliferation, differentiation, ontogenesis, phases of backbone growth.

Высокая интенсивность роста свиньи является одним из отличительных физиологических признаков данного вида животных и дает определенные преимущества при изучении закономерностей формирования позвоночника перед другими видами сельскохозяйственных животных. Эти преимущества обусловлены сравнительно коротким промежутком времени прохождения определенных стадий развития - от первичной закладки осевого скелета и формирования его структурных компонентов - до последующей их структуризации. Считается, что рост позвоночника происходит не равномерно, а имеет определенные пики, связанные с изменением активности нейроэндокринной системы в определенные периоды онтогенеза [2]. Это должно найти отражение в изменении структурной организации всех компонентов позвоночника на протяжении фаз его роста. Имеющиеся в научной литературе сведения по данному вопросу фрагментарны и противоречивы [3]. Исследование морфогенетических закономерностей роста осевого скелета, определение периодов развития и фаз роста позволяют приблизиться к пониманию патогенеза аномалий и пороков его развития - как врожденных, так и возникающих в постнатальном периоде, а также уточняют временные границы тератогенного терминационного периода [1].

Материал и методы исследования

Исследование проводилось на помесных свиньях пород крупная белая и ландрас. Фрагменты тел позвонков в количестве 686 образцов выделяли из грудного отдела позвоночника предплодов и плодов свиньи, а также поросят в период от новорожденности до 8 месяцев постнатального периода. Все образцы фиксировали в 10%-м растворе нейтрального формалина и декальцинировали в забуференном растворе ЭДТА. Материал обезвоживали в спиртах возрастающей концентрации, просветляли в ксилоле и заливали в целлоидин-парафин. На санном микротоме готовили серийные срезы толщиной 3-5 мкм и монтировали на предметные стекла.

Для изучения общей морфологической картины срезы окрашивали гематоксилином Бемера и эозином. Гликоген и гликопротеины определяли в реакции с реактивом Шиффа по Мак-Манусу. Реакцию на суммарные кислые гликозаминогликаны (ГАГ) ставили с альциановым синим по С. Стидмену. Локализацию ке-ратансульфата (КС), хондроитинсульфата (ХС), гиалуроновой кислоты в клетках и межклеточном веществе, а также их пространственно-упорядоченную организацию в межклеточном веществе хрящевой ткани изучали в реакции с толуидиновым синим при рН 1,5; 2,5 и 5,0 соответственно. Пространственную организацию коллагена в межклеточном веществе определяли реакцией с пикросириусом красным и оценивали интенсивность рефракции в поляризованном свете. Морфометрические характеристики определяли с помощью комплекса программ AxioVision. Статистическую обработку данных проводили с использованием t-критерия Стьюдента, различия считали достоверными при Р < 0,05.

Результаты исследования и их обсуждение

У предплода свиньи на сроке 3,5-4 недель гестации позвоночник представлен хордой и расположен-