СПОСОБ ГЕНЕРАЦИИ АНТИГЕН-СПЕЦИФИЧЕСКИХ ПРОТИВОТУБЕРКУЛЕЗНЫХ КЛЕТОК
METHOD FOR GENERATION OF ANTIGEN-SPECIFIC ANTITUBERCULOUS CELLS

Изобретение относится к иммунологии и биотехнологии, а именно к способам генерации антиген-специфических противотуберкулезных цитотоксических клеток.
В основе патогенеза туберкулеза лежит нарушение взаимодействия иммунокомпетентных клеток в результате длительного персистирования микобактерий внутри антиген-презентирующих клеток. Стандартное лечение туберкулеза основано на применении антибиотиков, подавляющих развитие микобактерий на различных этапах их жизненного цикла. Лекарственная химиотерапия часто приводит к развитию лекарственно-устойчивых штаммов возбудителей инфекции и поэтому становится неэффективной, кроме того, обладает выраженным гепатотоксическим действием. В настоящее время развитие новых эффективных подходов к лечению инфекционных заболеваний связано с использованием собственных механизмов защиты организма и их возможной модуляции. Эффективный иммунный ответ на М. tuberculosis связан с индукцией клеточного звена иммунного ответа, который в данном случае реализуется посредством Т-хелперов 1 типа. Активность Т-хелперов 1 типа напрямую зависит от представления им антигена и их направленной дифференцировки, что осуществляется дендритными клетками как основными антиген-презентирующими клеточными элементами. Дендритные клетки (ДК) усиливают врожденный иммунитет, регулируют развитие специфического иммунного ответа, обеспечивают развитие иммунологической толерантности. В настоящее время активно исследуется возможность применения дендритных клеток для модуляции специфического иммунного ответа и развития новых методов иммунокоррекции. Это связано, прежде всего, с той ролью, которую ДК играют в организме в развитии иммунного ответа, в частности, дендритные клетки обладают уникальными механизмами захвата антигена и представления его наивным Т-клеткам, определяя направленность и активность иммунных реакций. Кроме того, в эксперименте in vitro показано, что ДК, полученные из моноцитов, не поддерживают внутриклеточную репликацию вирулентного штамма М. tuberculosis H37Rv, в отличие от макрофагов, полученных из тех же самых моноцитов, благодаря снижению доступа микобактериальных вакуолей к циркулирущим эндосомам и ограничению доступа питательных веществ (Tailleux L, Neyrolles О, Honore-Bouakline S, Perret E, Sanchez F, Abastado JP, Lagrange PH, Gluckman JC, Rosenzwajg М, Herrmann JL. Constrained intracellular survival of Mycobacterium tuberculosis in human dendritic cells//J Immunol. - 2003. - V.15, №170(4). - P.1939-48).
Описан способ (прототип), при котором незрелые ДК получали из моноцитов прилипающей фракции мононуклеарных клеток (МНК) периферической крови больных туберкулезом путем культивирования в полной среде с добавлением гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора (ГМ-КСФ) и интерлейкина-4 (ИЛ-4) в течение 4 дней. Затем полученные незрелые дендритные клетки в течение последующих 4 суток культивировались совместно с аутологичными Т-клетками в присутствии липидных антигенов М. tuberculosis. Была показана стимуляция пролиферативной активности Т-клеток и увеличение количества ИФН-γ -продуцирующих клеток в ответ на липидные антигены М. tuberculosis (Ulrichs Т, Moody DB, Grant E, Kaufmann SH, Porcelli SA. T-cell responses to CD 1-presented lipid antigens in humans with Mycobacterium tuberculosis infection // Infect Immun. - 2003. - Vol.71, №6. - p.3076-87).
Интерлейкин-18 (ИЛ-18) - провоспалительный цитокин, который стимулирует продукцию ИФН-γ Т- и НК-клетками, тем самым способствуя активации макрофагов и уничтожению инфицированных микобактериями клеток. Однако у пациентов, больных туберкулезом, наблюдается значительное снижение продукции ИЛ-18 и ИФН-γ М. tuberculosis-стимулированными мононуклеарными клетками in vitro. Добавление в культуру антител к ИЛ-18, приводящее к связыванию эндогенного цитокина, резко снижает М. tuberculosis-индуцированную продукцию ИФН-γ, что говорит о роли ИЛ-18 в синтезе ИФН-γ. Рекомбинантный человеческий ИЛ-18 (рчИЛ-18) в дозе 10 нг/мл стимулирует М. tuberculosis-индуцированную секрецию ИФН-γ у больных туберкулезом. Добавление рчИЛ-18 при совместном культивировании зрелых антиген-активированных ДК и МНК необходимо для стимуляции и поддержания направленной дифференцировки наивных Т-клеток в Т-хелперы 1 типа.
Задачей настоящего изобретения является создание способа генерации антиген-специфических цитотоксических клеток из периферической крови больных туберкулезом.
Сущность предлагаемого изобретения заключается в совместном культивировании неприлипающей фракции МНК, выделенных из периферической крови больных туберкулезом с обработанными антигеном M. tuberculosis дендритными клетками (ДК), полученными из моноцитов прилипающей фракции МНК. Причем для культивирования берутся зрелые ДК, полученные добавлением к антиген-активированным незрелым ДК индуктора созревания, например, липополисахарида E. coli, а совместное культивирование неприлипающей фракции МНК и зрелых ДК проводят в присутствии рекомбинантного человеческого интерлейкина-18.
Техническим результатом изобретения является активация антиген-специфических иммунных реакций по Т-хелпер 1 типу на антиген М. tuberculosis с помощью цитотоксических ИФН-γ-продуцирующих клеток, полученных при сокультивировании мононуклеарных клеток периферической крови больных туберкулезом легких с аутологичными антигенпрезентирующими дендритными клетками и интерлейкином-18 in vitro.
Изобретение осуществляется следующим образом.
-5
2
Выделенные из периферической крови пациентов больных туберкулезом мононуклеарные клетки прилипающей фракции культивируются в концентрации 1 млн/мл в полной среде, содержащей 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 2 мМ L-глютамина, 10 мМ HEPES, 5×10 мМ 2-меркаптоэтанола, 80 мкг/мл гентамицина, 100 мкг/мл ампициллина в атмосфере 5% CO при 37°С с добавлением ГМ-КСФ (50 нг/мл) и ИЛ-4 (200 нг/мл). Через 24 часа культивирования к полученным незрелым ДК добавляется специфический антиген M. tuberculosis ESAT-6 в дозе 3 мкг/мл, а еще через 2 часа для созревания незрелых дендритных клеток в течение последующих 24 часов вносится липополисахарид Е. coli (штамм 055:В5, Sigma) в дозе 5 мкг/мл.
Полученные дендритные клетки культивируются с мононуклеарными клетками неприлипшей фракции в соотношении 1:10 с добавлением рчИЛ-18 в дозе 40 нг/мл.
Для определения эффективности модуляции противотуберкулезного иммунного ответа с помощью полученных ДК оценивали пролиферативную активность МНК, предварительно культивированных с антиген-активированными ДК, в ответ на специфический антиген M. tuberculosis ESAT-6 (табл.1).
Таблица 1Пролиферативный ответ мононуклеарных клеток пациентов, больных туберкулезом легких, культивированных с антиген-активированными ДК и интерлейкином-18 in vitro (n=16).
Группы
Спонтанный пролиферативный ответ, имп/мин
ESAT-6-стимулированный пролиферативный ответ, имп/мин
МНК
1003,818±215,35
1345,303±273,93
МНК+рчИЛ-18
1360,939±279,11
1833,758±310,69
МНК+ДК(без антигена)
2846,37±434,325
2987,148±549,88
МНК+ДК(с антигеном)
3041,424±619,85**
3014,758±553,83**
МНК+ДК(с антигеном)+рчИЛ-18
3344,242±610,76*
3100,515±563,14*
Примечание: МНК - интактные клетки неприлипающей фракции мононуклеарных клетокМНК+рчИЛ-18 - интактные клетки неприлипающей фракции мононуклеарных клеток, культивированные в присутствии рчИЛ-18МНК+ДК (без антигена) - МНК, культивированные с ДК, которым не представлялся антиген М. tuberculosis ESAT-6МНК+ДК (с антигеном) - МНК, культивированные с ДК, которым представлялся антиген М. tuberculosis ESAT-6МНК+ДК (с антигеном)+рчИЛ-18 - МНК, культивированные с ДК, которым представлялся антиген M.tuberculosis ESAT-6 с добавлением рчИЛ-18.**- различия достоверны (р<0.05) по сравнению с группой МНК.*- различия достоверны (р<0.05) по сравнению с группой МНК+рчИЛ-18
Кроме того, для тестирования активации Т-хелперов 1 типа оценивали количество клеток, продуцирующих ИФН-γ, с помощью технологии ELISpot и уровень продукции ИФН-γ в кондиционных средах от клеточных культур МНК в ответ на антиген ESAT-6 с помощью иммуноферментного анализа (табл.2).
Таблица 2Продукция ИФН-γ МНК пациентов, больных туберкулезом легких, культивированных с антиген-активированными ДК и интерлейкином-18 in vitro (n=16).
Количество ИФН-γ-продуцирующих клеток (на 100 тыс. МНК)
Содержание ИФН-γ в кондиционных средах МНК, пг/мл
Спонтанное
ESAT-6
Спонтанное
ESAT-6
МНК
36±3
64±7
13±3
139±49
MHK+IL-18
45±41
119±23
58±35
187±99
МНК+ДК(без антигена)
82±11
102±6
100±78
383±140
МНК+ДК(с антигеном)
84±11**
163±35**
718±318**
882±376**
МНК+ДК(с антигеном)+IЕ-18
114±13*
266±39*(#)
728±364*
1257±469*(#)
Примечание: МНК - интактные клетки неприлипающей фракции мононуклеарных клетокМНК+рчИЛ-18 - интактные клетки неприлипающей фракции мононуклеарных клеток, культивированные в присутствии рчИЛ-18МНК+ДК (без антигена) - МНК, культивированные с ДК, которым не представлялся антиген М tuberculosis ESAT-6МНК+ДК (без антигена) - МНК, культивированные с ДК, которым представлялся антиген М. tuberculosis ESAT-6МНК+ДК (с антигеном)+рчИЛ-18 - МНК, культивированные с ДК, которым представлялся антиген М. tuberculosis ESAT-6 с добавлением рчИЛ-18.**- различия достоверны (р<0.05) по сравнению с группой МНК.*- различия достоверны (р<0.05) по сравнению с группой MHK+IL-18# - различия достоверны (р<0.05) по сравнению с группой МНК+ДК
Для исследования потенциальной цитотоксической активности мы определяли экспрессию молекул перфорина мононуклеарными клетками, предварительно культивированными с антиген-активированными ДК в ответ на специфический антиген ESAT-6. Перфорин - фактор цитотоксичности, мономерный белок, вызывающий образование пор в цитоплазматической мембране, что приводит к лизису инфицированных клеток. Показано достоверное повышение количества перфорин-позитивных клеток, что служит показателем активации цитотоксических клеток, необходимых для уничтожения М. tuberculosis (табл.3).
Таблица 3Уровень экспрессии внутриклеточного белка перфорина мононуклеарными клетками больных туберкулезом, культивированных с антиген-активированными ДК и интерлейкином-18 in vitro (n=8).
Группы
Спонтанная экспрессия перфорина (% позитивных клеток)
ESAT-6-стимулированная экспрессия перфорина (% позитивных клеток)
МНК
12,056±1,234
15,114±1,660
МНК+рчИЛ-18
20,484±2,90**
19,695±3,065
МНК+ДК(без антигена)
23,233±3,040
21,194±0,954
МНК+ДК(с антигеном)
23,243±2,996**
28,571±3,628**
МНК+ДК(с антигеном)+рчИЛ-18
31,391±6,788*
35,678±6,841*(#)
Примечание: МНК - интактные клетки неприлипающей фракции мононуклеарных клетокМНК+рчИЛ-18 - интактные клетки неприлипающей фракции мононуклеарных клеток, культивированные в присутствии рчИЛ-18МНК+ДК (без антигена) - МНК, культивированные с ДК, которым не представлялся антиген М. tuberculosis ESAT-6МНК+ДК (без антигена) - МНК, культивированные с ДК, которым представлялся антиген М. tuberculosis ESAT-6МНК+ДК (с антигеном)+рчИЛ-18 - МНК, культивированные с ДК, которым представлялся антиген М. tuberculosis ESAT-6 с добавлением рчИЛ-18.** - различия достоверны (р<0.05) по сравнению с группой МНК.* - различия достоверны (р<0.05) по сравнению с группой MHK+IL-18# - различия достоверны (р<0.05) по сравнению с группой МНК+ДК
Совместное культивирование ДК и МНК больных туберкулезом легких является эффективным способом генерации специфических цитотоксических клеток мононуклеарного происхождения, что проявляется в усилении их пролиферативного потенциала, стимуляции уровня продукции ИФН-γ и формировании цитотоксических клеток, экспрессирующих перфорин в ответ на специфический антиген М. tuberculosis. Использование рекомбинантного человеческого ИЛ-18 для усиления индукции ответа Т-хелперов 1 типа статистически достоверно увеличивает цитокинпродуцирующий и цитотоксический потенциал мононуклеарных клеток in vitro. Таким образом, в результате проведенных исследований разработан способ генерации антиген-специфических противотуберкулезных цитотоксических клеток с помощью антиген-активированных аутологичных дендритных клеток и рчИЛ-18 in vitro. Такой способ генерации дендритных и противотуберкулезных цитотоксических клеток не только снижает время и затраты на их получение, но и максимально отражает процесс дифференцировки клеток in vivo.