Диагностика и контроль массовых острых и хронических вирусных инфекций лошадей

оказывать отрицательный эффект на национальные экономики (см. рис.). Вредоносный потенциал трансграничных болезней суммируется следующим образом:

• угроза продовольственной безопасности вследствие серьезных потерь животного белка и/или невозможности эксплуатации животного тягла в пахотном земледелии;

• особая угроза для стран, национальная экономика которых зависит от животноводства;

• большие потери продукции животноводства, в частности, мяса, молока и т. п., потери производства другого животного сырья (кожевенного, шерстного), отрицательное влияние на экономику стран с высокоразвитой перерабатывающей промышленностью;

• существенный косвенный ущерб, связанный с затратами по контролю болезней;

• серьезные нарушения торговли внутри и вне стран в случаях возникновения болезней, убытки национального экспорта, особенно для скотоводческих стран;

• угроза для здравоохранения при зоонозах;

• возможная массовая гибель диких животных популяций и экологический ущерб для окружающей среды;

• боль и страдания больных животных.

ABSRACT V.V. Makarov.

People's Friendship University of Russian (8/2, Miklukho-Maklaya str., Moscow, 115093).

World Animal Health Organization (OIE) and OIE-List-ed Diseases. The most general information on the global significance of the animal infectious diseases in the welfare of the world population is presented. The history and role of international organizations in the field of veterinary medicine, in particular the World Animal Health Organization, and the most important elements of their activities are described briefly. The actual version of the modern classification of more than 100 infectious diseases of animals is given. It is noteworthy that in this classification there are no diseases that are very important for domestic epizootol-ogy and are widespread in the territory of Russia (for example, escherichiosis of young animals, leptospirosis, der-matophytosis, Marek's disease, etc.).The category of the most dangerous transboundary infections is separately described.

Keywords: animal diseases, World Animal Health Organization, classification of infectious diseases.

Для цитирования: Юров, К.П. Диагностика и контроль массовых острых и хронических вирусных инфекций лошадей / К.П. Юров // Российский ветеринарный журнал. — 2017. — № 7. — С. 26-32.

For citation: Yurov K.P., Diagnosis and Control of Main Acute and Chronic Viral Infections of Horses, Rossijskij veterinarnyj zhurnal (Russian veterinary journal), 2017, No. 7, pp. 26-32.

УДК 619: 616.98: 616-076: 616-084

Диагностика и контроль массовых острых и хронических вирусных инфекции лошадей

К.П. Юров, заслуженный деятель науки РФ, доктор ветеринарных наук, профессор, заведующий лабораторией вирусологии (konstyurov@yandex.ru).

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени Я.Р. Коваленко» (ВИЭВ) (109428, г. Москва, Рязанский проспект, д. 24, корп. 1).

Представлен краткий обзор результатов исследований по изучению этиологии ряда массовых заболеваний лошадей. Совместно с лабораториями ряда стран внедрен новый специфический метод диагностики ИНАН лошадей, гармонизированы в международном плане лабораторные исследования на эту инфекцию, утверждены новые правила профилактики и ликвидации ИНАН. Впервые в стране выделены вирусы гриппа лошадей 1 и 2 типов, герпевирусы лошадей 1, 2, .3 типа, что послужило основанием для разработки и внедрения в ветеринарную практику новых средств и методов диагностики и профилактикии заболеваний, вызываемых вирусами гриппа, ринопневмонии-вирусного аборта, инфекционной анемии, болезни Борна. Зарегистрирован новый изолят вируса гриппа лошадей — Л/едите/Ойтгао-уо/11(Н3Ы8). Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей сегмента НА вируса «А/е^тпе/Одш15о-уо/11 Н3Ы8)» и известных штаммов вируса гриппа лошадей Н3Ы8 с помощью компьютерной программы «FЛSTЛ-3» показал наибольшее сходство с группой вирусов, выделенных от лошадей в Германии в 2010-2011 гг.:«А/еците/Ъоке1/1/11»«<А/еците/У1е15еп/10>>, А^ите/НатЬи^/10» (сходство 100 %; 99,7и 99,7 %. соответственно). С 1995 г. функционирует референтная лаборатория МЭБ по ринопневмонии лошадей. Руководитель и эксперт — профессор К.П. Юров. В задачу лаборатории входит, в том числе мониторинг герпесвирусных инфекций лошадей, оказание консультативной помощи в проведении диагностики и противоэпизоотических мероприятий.

Ключевые слова: лошади, герпесвирус, ретровирус, ортомиксовирус, борнавирус, инфекционная анемия, грипп, ринопневмония, инфекционный энцефаломиелит, фиброз легких

Сокращения: ВТД — вирус гриппа лошадей, ВОЗ — Всемирная организация здравоохранения, ТВЛ-5 — герпесвирус лошадей типа 5, ИНАН — инфекционная анемия, ИФА — иммуноферментный анализ, МЭБ — Междуна-

родное Эпизоотическое Бюро, РДП — реакция диффузионной преципитации, РНК — рибонуклеиновая кислота, РСК—реакция связывания комплемента, ОТ-ПТЦР— полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией, ОТ-ПЦР РВ — полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией в реальном времени, NSD — International nucleotide sequence database

Начало исследований инфекционной патологии сельскохозяйственных животных

Становление и последующее развитие в стране исследований по инфекционной патологии сельскохозяйственных животных в большой мере связано с Всероссийским научно-исследовательским институтом экспериментальной ветеринарии имени Я.Р. Коваленко (ВИЭВ). В 20-40 гг. XX века в институте ведущее место занимала тематика по инфекционным болезням лошадей. Наибольшую угрозу для коневодства представляли массовые заболевания, в том числе энцефаломи-елиты, ИНАН, массовые респираторные болезни армейских лошадей и жеребят в конных заводах. В стране сложилась сложная эпизоотическая обстановка по болезням лошадей, которая являлась следствием военного времени и социальных преобразований. Заведующий лабораторией болезней лошадей ВИЭВ — П.М. Макаров в своем выступлении на сессии ВАСХ-НИЛ в 1935 г., убедительно обосновал необходимость расширения научных исследований по борьбе с инфекционной анемией лошадей. Исследованиями по этой проблеме в разные годы в ВИЭВ занимались: И.В. Под-дубский, И.Ф. Иванов, Н.Д. Балл, Н.Ф Гамалея, А.В. Акулов, А.П. Зотов, А.М.Лактионов и др. Однако, начиная со второй половины прошлого столетия, в силу объективных причин интерес к тематике по инфекционной патологии лошадей в стране снизился.

В это же время появились сообщения зарубежных исследователей, которые существенно обогатили пред-тавление об этиологии массовых болезней лошадей и принципах борьбы с ними. Чехословацкие исследователи Н. Тумова и О. Совинова (1956) доказали этиологическую роль вируса гриппа в массовой респираторной инфекции лошадей. Е. Долл, В. Макколум выделили и идентифицировали герпесвирус — возбудитель абортов у кобыл и респираторной инфекции у жеребят в США [27]. В этой связи в 1966 г. приказом министра сельского хозяйства В.В. Мацкевича в ВИЭВ была создана группа сотрудников с задачей возобновить научную тематику по инфекционным болезням лошадей [16].

В течение первых лет объектом исследования этой группы являлись конные заводы, биофабрики МСХ и биопредприятия (институты вакцин и сывороток) Минздрава в связи с подозрением на заболевание лошадей — продуцентов гипериммунных лечебных и диагностических сывороток для ветеринарных и медицинских целей. На отдельных предприятиях насчитывалось до тысячи лошадей-продуцентов.

Исследования ИНАН

Проблема ИНАН лошадей в эти годы была актуальной в разных странах: США, Канаде, Японии и других. Трудность профилактики этого заболевания объясняется особенностями возбудителя (свойственными всем рет-ровирусам), который наряду с острым и хроническим течением инфекции во многих случаях обусловливает многолетнее латентное вирусоносительство. Исследования по разработке специфического диагностического теста на ИНАН в ряде стран получали целевую государственную поддержку. Японские исследователи Ю. Коно и К. Кобаяши в 1963 г. сообщили о разработанном ими методе культивирования вируса

Рис. 1. Токио. Национальный институт охраны здоровья животных, 1972 год, второй справа — Ю. Коно, в центре — автор К.П. Юров

Fig. 1. Tokyo. National Institute for Animal Health, 1972, second from the right Yu. Kono, in the middle — the author K.P. Yurov

ИНАН в переживающей культуре клеток лейкоцитов лошади. Культуральный вирус использовали в качестве специфического антигена для выявления вирусо-специфических антител в РСК. Однако выяснилось, что предложенный тест РСК позволял выявить только ранние иммуноглобулины [28]. В последующем Ю. Коно, Х. Накаджима и другие выполнили ряд экспериментальных работ по изучению биологических свойств вируса, с которыми мы смогли ознакомиться при посещении Национального института охраны здоровья животных в Токио (рис. 1) [31].

Л. Коггинс (1972) в США разработал тест-систему для диагностики ИНАН в реакции преципитации в геле [26]. На следующем этапе французский исследователь Б. Тома провел в течение нескольких лет работу по апробации и стандартизации теста Коггинса (РДП) в сотрудничестве с лабораториями разных стран [33]. Мы приняли активное участие в этой работе (на рисунке 2 представлено заседание рабочей группы в Москве по стандартизации метода серологической диагностики ИНАН). Последовательные этапы этих исследований изложены в статье «Инфекционная анемия лошадей» во французском издании «Википедии». Результатом явилась стандартизация и гармонизация метода в международном плане, который решением МЭБ определен как основной тест для диагностики ИНАН [19]. Участие в этой работе обеспечило совершенствование мер по профилактике и борьбе с ИНАН в нашей стране. Для этого была организована подготовка врачей диагностических ветеринарных лабораторий. Были разработаны и приняты в практику «Наставление по диагностике ИНАН» и новая «Инструкция по профилактике и ликвидации инфекционной анемии лошадей». Совместно с сотрудниками Главби-опрома — Токариком Б.И. и др. была разработана и внедрена технология биофабричного производства диагностических наборов.

По запросу руководителя ветеринарной службы Республики Куба Карлоса Мартиноса, в 1975-76 гг., в общей сложности в течение 2,5 месяцев, проводилась работа (К. Юров) по диагностике вспышки заболевания лошадей с подозрением на ИНАН, велась разработка инструктивных документов по борьбе с ИНАН лошадей на Кубе, организовывалось производство диагнос-тикумов ИНАН на биопредприятии. Законченные результаты этой работы, в том числе готовая партия ли-офилизированных диагностикумов ИНАН, были представлены руководителю ветеринарной службы по завершению командировки.

В настоящее время для диагностики ИНАН предлагаются новые тесты, как то: иммунохимический —

различные модификации ИФА и молекулярно-гене-тический — ОТ-ПЦР. Модификация ОТ-ПЦР с вложенной парой праймеров рекомендуется в ряде случаев в качестве альтернативного теста. Это чувствительный метод, с помощью которого в крови больных животных обнаруживают приблизительно 10 геномных копий вируса. В качестве материала для выявления вируса ИНАН в ОТ-ПЦР отбирают паренхиматозные органы (селезенку), а также лейкоцитарную фракцию крови [1]. Однако на практике диагностическая ценность ОТ-ПЦР ниже принятого стандартного теста (РДП — теста Коггинса). Так, по данным Langemeier и др. (1996), из 71 лошадей, положительно реагирующих на ИНАН в РДП, только 63 были положительны в ОТ-ПЦР [29]. Преимущество метода ОТ-ПЦР заключается в том, что вирус ИНАН может быть выявлен уже на 3-и сутки после заражения, в то время как специфические антитела в РДП выявляют только на 15-е...23-и сутки после заражения. Прямое обнаружение вируса желательно, если необходима ускоренная диагностика болезни в новых очагах инфекции или в случае иммунодефицитного состояния лошади.

ОТ-ПЦР может служить для выявления больных жеребят или, напротив, реабилитации жеребят, рожденных от зараженных кобыл и получивших от своих матерей колостральные антитела. Таким образом, ОТ-ПЦР может быть использована в комплексе лабораторных исследований на ИНАН лошадей, но не может заменить стандартный метод — РДП, поскольку при этом вне поля зрения исследователя будет оставаться определенное число лошадей-вирусо-носителей с хроническим или латентным течением инфекции [13]. Современные лабораторные исследования на инфекционную анемию лошадей регламентируются в соответствии с указаниями МЭБ. В связи с этим нами в 2010 г. разработаны на конкурсной основе и изданы Минсельхозом РФ «Методические рекомендации по борьбе с инфекционной анемией лошадей» [14].

Исследования гриппа лошадей

Сложная эпизоотическая обстановка по массовым лихорадочным, респираторным заболеваниям лошадей сложилась в конце 60-х — начале 70-х гг. В декабре 1968 г. и в 1969 г. на южной и западной границе СССР возникли вспышки острого респираторного заболевания лошадей, распространившегося на территории Украины, в центральном регионе России и принявшего характер эпизоотии. Проведенными исследованиями (К.П. Юров и др.) было установлено, что эпизоотию вызвал вирус гриппа лошадей, идентифицировавшийся как вирус гриппа лошадей 2-го типа (Ы3№) [8]. Кроме того, было показано, что в ряде вспышек имела место другая инфекция, обусловленная ВГЛ 1-го типа (Ы7М7). Подобные эпизоотии часто наблюдались в прошлом и обычно диагностировались как «заразный катар верхних дыхательных путей» (ЗКВДП) в России, «хоп-пегартенский кашель» в Германии и др. Открытие в 1956 г. вируса гриппа лошадей (О. Совинова и Н. Тумова) позволило объяснить этиологию заболевания, позже обозначенного как ВГЛ 1-го типа (A/equi1/Prague/1956). В 1963 г. в США установлена природа эпизоотии, вызванной вирусом гриппа (A/equi2/Mayami/1963). Возникшая эпизоотия имела прямую связь с заболеванием лошадей в

Рис. 2. Москва, Заседание рабочей группы по стандартизации лабораторной диагностики ИНАН, 1979 год. Слева направо: Б. Клингеборн

предшествовавшие годы в США и в Западной Европе. Впервые выделенные нами на территории страны штаммы вируса были идентичны американскому вирусу A/equi2/Mayami/1963 (H3N8) и штамму A/equil/ Prague/1956 (H7N7). Эпизоотия гриппа лошадей H7N7, зарегистрированная в 1974 г. на высокогорных пастбищах Киргизии, по-видимому, была одной из последних в мире, хотя в дальнейшем антигемагглютинины к вирусу 1-го типа выявляли в крови лошадей во многих районах Европейской части РФ и в Казахстане. Из числа полученных нами изолятов типичный штамм вируса А/лошадь1/Киргизия74 (H7N7) был депонирован в Региональном центре ВОЗ по гриппу (Москва) [4].

Молекулярно-генетическими исследованиями штаммов вируса гриппа лошадей, выделенных нами на территории СССР и РФ за период длительностью более 40 лет, установлено, что эпизоотические вспышки инфекции в 1970-2011 гг. были вызваны антигенно измененными вариантами вируса H3N8. Показано, что в крови морских млекопитающих — сивучей, в их природной популяции, обнаруживаются антитела к вирусам гриппа лошадей — H7N7 и H3N8. Результаты этих исследований дают основание предположить возможность существования естественных природных резервуаров вирусов гриппа лошадей в дикой фауне, что согласуется с данными о выявлении вирусов однокопытных в популяциях других видов диких и домашних животных. Немаловажно, что исследования в этом направлении способствуют решению ряда фундаментальных проблем защиты среды обитания человека и животных [24].

В целом антигенный дрейф вируса гриппа лошадей H3N8, наблюдавшийся в 1970-2011 гг. на территории России и стран СНГ, укладывается в рамки эволюционных изменений возбудителя в других регионах мира, обусловивших появление антигенных вариантов вируса H3N8 и возникновение обширных эпизоотий и энзоотических вспышек инфекции [9]. Выделенные эпизоотические штаммы вирусов гриппа были использованы при разработке поливалентной инактивированной вакцины против гриппа лошадей, производство которой было налажено на Приволжской биофабрике, а в настоящее время осуществляется на Курской биофабрике. Полученные результаты позволили разработать комплекс мероприятий по диагностике и профилактике гриппа лошадей, которые представлены в нормативных документах.

Исследования герпесвирусных инфекций

Для коневодства многих стран мира постоянную угрозу представляют герпесвирусные инфекции, в первую очередь герпесвирусная инфекция лошадей 1 (ри-нопневмония-вирусный аборт лошадей). Впервые ГВЛ-1 выделен на территории страны в 1969 г. из абортированного плода [18]. Проведенный в связи с этим мониторинг показал, что инфекция имеет широкое распространение в различных регионах СССР, прежде всего в племенных коневодческих хозяйствах и приносит большие экономические потери вследствие массовых абортов у кобыл и респираторной патологии новорожденных жеребят. Источником возбудителя инфекции, очевидно, послужили лошади Дубровского конного завода, возвращенные из Западной Германии в начале 50-х гг. прошлого века [17, 21]. Исследования по этой проблеме включали в себя: изучение биологических свойств эпизоотических штаммов ГВЛ-1, в том числе экспериментальное воспроизведение болезни (на жеребых кобылах и жеребятах), совершенствование лабораторной диагностики ринопневмо-нии, серийные пассажи вируса в различных культурах клеток с целью получения аттенуированного штамма вируса и т. д. [7]. При этом было установлено, что культуральный вирус ринопневмонии агглютинирует эритроциты лошади, и это его свойство может быть использовано для разработки диагностического теста на заболевание. Результаты этой работы были доложены и получили поддержку на 4-й Международной конференции по болезням лошадей в Лионе в 1976 г. [35]. Проведенные исследования завершились внедрением в биофабричное производство и ветеринарную практику: поливалентной инактивированной вакцины против гриппа лошадей [22]; вирусвакцины против ринопневмонии лошадей [7]; набора диагностикумов ИНАН лошадей [19]; инструкций по борьбе с ИНАН лошадей; ринопневмонией лошадей; гриппом лошадей [14, 23, 36]. Кроме того, была разработана методика для ретроспективной диагностики ринопневмонии лошадей в реакции торможения гемагглютинации [35].

С 1995 г. в Институте функционирует референтная лаборатория МЭБ по ринопневмонии лошадей. Руководитель и эксперт — профессор К.П. Юров. В задачу лаборатории входит мониторинг герпесвирусных инфекций лошадей, оказание консультативной помощи в проведении диагностических мероприятий (рис. 3) [12].

За создание средств и методов специфической профилактики и диагностики вирусных болезней лошадей, организацию промышленного производства препаратов и внедрение их в практику коллективу присуждена премия Совета Министров СССР (1989 г.). Исследования по разработке средств специфической профилактики были продолжены посредством создания генно-инженерной конструкции — рекомбинант-ной плазмиды, содержащей в своем составе ген, кодирующий один из мажорных полипептидов вируса ри-нопневмонии лошадей — гликопротеин D [5]. На основе плазмиды были изготовлены лабораторные образцы вакцины. После иммунизации лабораторных и естественно восприимчивых животных (мышей и жеребят) выявляли высокие титры специфических антител. Разработана лабораторная модель для оценки иммуноген-ности вакцин против герпесвирусной инфекции 1 ло-

шадей. Установлено, что при иммунизации мышей ат-тенуированным, инактивированным вирусом ГВЛ-1 или генно-инженерной конструкцией, содержащей в своем составе ген, кодирующий гликопротеин D ГВЛ-1, у них создается устойчивость к интрацеребральному заражению вирулентным штаммом ГВЛ-1. Изучены штаммы ринопневмонии лошадей, выделенные в различные годы, по их нейровирулентности для белых мышей [2].

Панзоотия гриппа лошадей 2007-2008 гг. выявила недостаточную иммуногенность вакцин против гриппа лошадей различных производителей вследствие антигенного дрейфа вируса H3N8. По этой причине из числа выделенных нами в 2007 г. новых эпизоотических штаммов ГВЛ (H3N8) отобран штамм, относящийся к американскому генотипу, линии Флорида сублинии 2, который использовали в производстве гриппозной вакцины на Курской биофабрике [3].

В 2011 г. при локальной вспышке острой респираторной инфекции в смыве со слизистой оболочки носовой полости от не вакцинированной против гриппа лошади была обнаружена РНК вируса гриппа H3N8. Полученный изолят был обозначен как A/equine/Odintsovo/11(H3N8). Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей сегмента НА вируса «A/equine/Odintsovo/11 H3N8)» и известных штаммов вируса гриппа лошадей H3N8 с помощью компьютерной программы «FASTA3» показал наибольшее сходство с группой вирусов, выделенных от лошадей в Германии в 2010-2011 гг.:«A/equine/ Bokel/1/11»,« A/equine/Viersen/10», А/equine/Ham-burg/10» (сходство 100 %; 99,7 и 99,7 %, соответственно). Частично расшифрованная (1069 п.о.) нуклеотид-ная последовательность 4-го сегмента генома (HA) штамма «A/equine/Odintsovo/11» (H3N8) была зарегистрирована в Банке данных генетических последовательностей Национального Института Здоровья США под инвентарным номером CY103840. Этот штамм принадлежит к Американскому генотипу. Принадлежность к линии остается невыясненной. Конструкция фи-лограммы указывала на то, что этот штамм относится к формирующейся Евро-Азиатской линии или занимает промежуточную позицию между штаммами новой линии и штаммами линии Флорида 2 Американского генотипа. Немецкие штаммы, выделенные в тот же период, имеют сходство с вирусом «A/equine/ Cheshire/2007» (H3N8) Евро-Азиатской линии, но при этом некоторые авторы относят их к линии Флорида 2 Американского генотипа [OIE Expert Surveillance Panel on Equine Influenza Vaccine Composition, OIE Headquarters, 27 February 2012]. По-видимому, некоторые новые штаммы представляют собой тупиковую ветвь эволюции. Этим фактом, вероятно, можно объяснить зарегистрированную в 2011 г. локальную вспышку гриппа H3N8, не получившую распространения [24].

Впервые в РФ определена этиологическая роль гам-магерпесвируса типа 5 «ГВЛ-5» в заболевании лошадей в форме нетипичной многофокусной интерсти-циальной пневмонии с хроническим или подострым течением [25]. Анализ заболеваемости лошадей разного возраста позволяет полагать, что гаммагерпес-вирусы играют существенную роль в патологии респираторных органов этих животных. Гаммагерпесви-

рус типа 5 лошадей был идентифицирован в Австралии в 1970 г. у жеребят, в СССР латентный герпесви-рус лошадей впервые обнаружен в 1974 году [9]. Однако этиологическая роль гаммагерпесвирусов лошадей в инфекционной патологии оставалась недостаточно понятной. В последнее время появились очевидные доказательства, что гаммагерпесвирус типа 5 часто вызывает поражение нижнего отдела органов дыхания у лошадей разного возраста. В Италии ГВЛ-5 идентифицирован методом ПЦР в носовых смывах у 73 % молодых лошадей в возрасте от 1 года до 3 лет и у 80 % лошадей старшего возраста [30]. K.J. Williams с соавт. в США опубликовали результаты вирусологического и патологического исследования 24 лошадей с прогрессирующим узелковым фиброзом легких, предположительно вызванным ГВЛ-5 [34]. При патоморфологическом исследовании выявили интер-стициальный фиброз легких часто с сохранением структуры, подобной альвеолам, выстланным клетками кубического эпителия. Значительные изменения находили в бронхах и легких, а также в лимфатических узлах. Пораженные участки легких имели вид плотных узелков, которые представляли собой про-лифилировавшую интерстициальную ткань. Изменения в легких происходили вследствие увеличения и набухания коллагеновых волокон, инфильтрации интерстициальной ткани лимфоцитами, в меньшей степени макрофагами, нейтрофилами и иногда эо-зинофилами. Гистологические изменения в бронхиальных лимфатических узлах заключались в лимфо-идной гиперплазии, часто с содержанием в синусах гистиоцитов и блуждающих многоядерных гигантских клеток. В других случаях в легких наблюдали нормальные клетки, в основном нейтрофилы, макрофаги и относительно равномерное скопление клеток кубического эпителия. У 14 лошадей из 23, находившихся под наблюдением, отмечали значительные фиброзные изменения легких. Лечение кортикостероидами и антивирусными препаратами дает лишь кратковременный положительный эффект [18].

Показано, что ГВЛ-5 ассоциируется не только с патологией органов дыхания, но обнаруживается в органах абортированных плодов и новорожденных жеребят с симптомами диареи, что указывает на возможность трансплацентарной передачи вируса. Мо-лекулярно-генетическим исследованием показана идентичность идентифицированных изолятов вируса референтному штамму, депонированному в международной базе данных INSD. Учитывая биологические особенности вируса, можно предположить, что возбудитель часто осложняет течение смешанных вирусных инфекций, при этом его роль в инфекционном процессе маскируется другими возбудителями, обусловливающими заболевание с более яркой симптоматикой, свойственной ринопневмонии, вирусному артерииту и т. д. Указанное подтверждается данными ретроспективной серологической диагностики [11].

В лаборатории был получен большой экспериментальный материал, который представлен в кандидатских диссертациях. Докторант А.Р. Сансызбаев защитил диссертацию, представив богатый материал по мыту лошадей в Казахстане, новым средствам

Рис. 3. Забайкальский край, Встреча с ветеринарными специалистами: обсуждение вопросов дифференциации герпесвирусных инфекций лошадей 1-го и 4-го типа, 2014 год

Fig. 3. Trans-Baikal Territory, Meeting with veterinarians: discussion of differentiation of herpesvirus infections of horses of the 1st and 4th type, 2014

специфической профилактики и лечения (1993). Докторант М.П. Неустроев продолжил изучение мыта лошадей — вечную проблему табунного коневодства и нашел нетрадиционные подходы к решению этой проблемы в условиях табунного коневодства Якутии (1997) [20].

Исследования менингоэнцефалита

Хронический прогрессирующий менингоэнцефалит у животных различных видов, характеризующийся неврологическими симптомами: расстройством поведения, нарушением двигательных функций скелетных мышц, нарушением регуляции других систем организма, который диагностируется как болезнь Борна, наблюдается во многих странах, прежде всего в европейских. Первоначально болезнь наблюдали у лошадей и овец в отдельных эндемичных областях центральной Германии [10]. Существует предположение, не подтвержденное экспериментально, о причастности вируса Борна к заболеванию людей с симптомами психоневрологических расстройств. Исследователями из Калифорнийского университета США обнаружен близкородственный птичий борнавирус, вызывающий у попугаев заболевание с признаками расширения железистого желудка (Proventricular Dilatation Disease), а в Канаде зарегистрировано заболевание у диких казарок и лебедей с аналогичными признаками.

В нашей стране в 20-40 гг. прошлого столетия часто регистрировались вспышки заболевания лошадей, которое обычно описывали как энцефаломиелит лошадей в СССР, по клиническим и патологоморфологичес-ким признакам, эпизоотологическим данным подобное болезни Борна.

Заболевание регистрировали на определенных эндемичных территориях. Из головного мозга больных (после эвтаназии) и павших лошадей выделяли вирус путем интрацеребрального заражения кошек и лабораторных животных — мышей, кроликов. Изоляты вируса различались по вирулентности для этих животных [15].

Вирус болезни Борна относится к семейству Bor-naviridae, порядку Mononegavirales. Вирус содержит од-носпиральную линейную несегментированную РНК, транскрипция и трансляция ее происходит в ядре клетки. В процессе репликации вируса создается очень малое число вирусных частиц на клетку.

Объектом наших исследований являлся эндемичный по энцефалиту лошадей район на Украине и овцеводческое хозяйство с импортированным поголовьем овец породы тексель. Заболевание лошадей в эндемичном регионе характеризовалось неврологическими симптомами: нарушением поведения, угнетением, отказом от корма, в последующем симптомами острого энцефаломиелита. Болезнь проявлялась в виде вспышек или отдельных случаев. Периодичность составляла от 2 до 5 лет. Вспышка заболевания или появление отдельных больных лошадей ассоциировалась с выпасом лошадей на определенной ограниченной территории — пастбище, которое одновременно является природным заповедником европейского сурка. Случаи заболевания наблюдали при перемещении лошадей в соседние хозяйства. Начало заболевания приходилось на май-июнь, в случае вспышки число больных лошадей достигало пика примерно в течение 3-х недель. Второй пик выявления больных наблюдали в сентябре. Случаи заражения других видов животных или подозрения на заболевание человека не отмечали. Лабораторными исследованиями больных лошадей были исключены бешенство, листериоз, герпесвирусная мие-лоэнцефалопатия. Для болезни Борна достоверным методом диагностики является изоляция вируса, однако вследствие длительности исследований по адаптации возбудителя к лабораторным животным и свойства вирусов вызывать персистентную инфекцию in vitro без видимого цитопатического действия, эта методика существенно затрудняет работу. Известно, что окончательный диагноз на болезнь Борна ставится только постмортально путем демонстрации вирусного антигена или вирусных маркеров в ткани (клетках) головного мозга. Диагноз может быть поставлен раньше при использовании молекулярно-генетичес-ких методов — ОТ-ПЦР или ОТ-ПЦР РВ. Однако, вследствие распространенности бессимптомных форм инфекции, ассоциации вируса с клетками и низкого инфекционного титра (или отсутствия вируса) в крови и нервной ткани, часто не удается добиться конгруэнтных результатов с другими методами. Долгое время считалось, что геном вируса болезни Бор-на характеризуется высокой консервативностью — гомология нуклеотидной последовательности известных штаммов составляла более 95 %. Это мнение изменилось после публикации Н. Новотного, идентифицировавшего в Австрии вирус, существенно отличавшийся от известных штаммов, идентичность которого с этими штаммами составила только 85 % [32]. Новые штаммы борнавирусов вследствие их значительной генетической вариабельности не всегда можно обнаружить посредством ПЦР. Так, например, для борнавирусов птиц (идентифицированных у казарок и лебедей) разница между генотипами может составлять 60...80 % и 60...89 % с ранее известными штаммами [6].

Учитывая это, мы провели исследования с помощью иммуногистохимических тестов для расшифровки этиологии острых вспышек нервно-паралитического заболевания лошадей, а также овец, наблюдавшихся на юго-востоке Украины, спорадических случаев в центральном регионе, которые по ряду признаков — кли-

ническому проявлению, патолого-анатомическим изменениям, сезонности, природной приуроченности аналогичны болезни Борна. При этом в нервных клетках головного мозга павших и больных, вынужденно убитых лошадей и овец выявлен вирусспецифичес-кий белок — фосфопротеин р24 [6]. Следовательно, полученные результаты свидетельствуют о регистрации у лошадей и экспортированных овец инфекции вируса болезни Борна.

Библиография

1. Алексеенкова, С.В. Диагностика вирусных болезней лошадей методом ПЦР / С.В. Алек-сеенкова, Г.К. Юров, К.П. Юров // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. — 2011. — № 3. — С. 37-39.

2. Алексеенкова, С.В. Эффективность иммунизации мышей линии balb/c при интрацереб-ральном заражении герпесвирусом лошадей 1-го типа / С.В. Алексеенкова, Г.К. Юров, И.Ю. Ткачев, К.П. Юров // Иммунология. — 2006. — Т. 27. — № 6. — С. 361-363.

3. Иванов, В.В. Оценка иммуногенной активности усовершенствованной инактивированной поливалентной вакцины против гриппа лошадей / В.В. Иванов, Г.К. Юров, С.В. Алексеенкова, К.П. Юров // В книге: Лекарственные препараты для животных (разработка, производство, эффективность и качество): тезисы докладов международной научной конференции. Под ред. Л.В. Кириллова. — М.: ВГНКИ, 2011. — С. 56-57.

4. Исаченко, В.А. Выявление вируса гриппа лошадей первого типа среди штаммов, полученных региональным центром по гриппу в 1975 году / В.А. Исаченко, Л.Я. Закстельс-кая, К.П. Юров, Е.В. Молибог, В.К. Сологуб // В сборнике: Обзор регионального центра по гриппу за IV квартал 1975 г. — М.: Институт вирусологии им. Д.И. Ивановского Академии медицинских наук, 1976. — С. 24-28.

5. Ткачев, И.Ю. Получение генетических конструкций, несущих полные гены поверхностных гликопротеинов вируса герпеса лошадей 1 для создания ДНК-вакцины / И.Ю. Ткачев, Г.К. Юров, М.М. Шмаров, Б.С. Народицкий, С.В. Алексеенкова, К.П. Юров // В книге: Биотехнология: состояние и перспективы развития. — М.: ПИК Максима, 2003. — 233 с.

6. Юров, К.П. Болезнь Борна: иммунологические маркеры возбудителя / К.П. Юров, С.В. Алексеенкова // Российский ветеринарный журнал. — 2017. — № 1. — С. 5-9.

7. Юров, К.П. Вакцина для профилактики ринопневмонии лошадей, способы ее изготовления, профилактики и лечения / К.П. Юров, Н.Н. Крюков, М. Амирбеков / Патент на изобретение RUS 974649, 16.12.1981.

8. Юров, К.П. Выделение вируса гриппа при остром респираторном заболевании лошадей / К.П. Юров, Н.Н. Крюков // Российская сельскохозяйственная наука. — 1971. — № 6. — С. 35-36.

9. Юров, К.П. Выделение латентного герпетического вируса лошадей / К.П. Юров, В.К. Сологуб // Ветеринария. — 1974. — № 4. — С. 49-50.

10. Юров, К.П. Выявление болезни Борна у лошадей / К.П. Юров, Ю. Рихт, К. Херден, Г.К. Юров, И.Ю. Ткачев. // Ветеринария. — 2005. — № 3. — С. 8-9.

11. Юров, К.П. Герпесвирус лошадей 5 — возбудитель фиброза легких / К.П. Юров, С.В. Алексеенкова, Г.К. Юров // Ветеринария. — 2013. — № 3. — С. 17-21.

12. Юров, К.П. Деятельность референтных лабораторий МЭБ во ВНИИ экспериментальной ветеринарии / К.П. Юров, В.Т. Заблоцкий // Труды ВИЭВ. -2009. — Т. 75. — С. 676-679.

13. Юров, К.П. Инфекционная анемия лошадей и ее современная диагностика / К.П. Юров, С.В. Алексеенкова, Г.К. Юров // Ветеринария. — 2013. -№ 4. — С. 3-6.

14. Юров, К.П. Методические рекомендации по борьбе с инфекционной анемией лошадей / К.П. Юров, С.В. Алексеенкова, Г.К. Юров, Е.В. Ярных // В Сборнике: Современные средства и методы обеспечения ветеринарного благополучия по инфекционной и протозойной патологии животных, рыб и пчел. — М.: Агентство творческих технологий, 2011. — С. 71-87.

15. Юров, К.П. Неврологический синдром у лошадей, дифференциальная диагностика / К.П. Юров, С.В. Алексеенкова // Материалы VII Международного ветеринарного конгресса «Единый мир — Единое здоровье», Уфа, 19-21 апреля 2017 г. — С. 288-289.

16. Юров, К.П. О создании государственной комиссии по испытанию и регистрации ветеринарных биологических препаратов в СССР / К.П. Юров // Ветеринария. — 1991. — № 5. — С. 6.

17. Юров, К.П. Профилактика вирусных болезней лошадей / К.П. Юров. — М.: Колос, 1984. — С. 1-143.

18. Юров, К.П. Ринопневмония лошадей / К.П. Юров, Н.Н. Крюков // Коневодство и конный спорт. — 1969. — № 12. — С. 31-32.

19. Юров, К.П. Реакция диффузионной преципитации при инфекционной анемии лошадей / К.П. Юров, В.К. Сологуб, Н.Н. Крюков // Ветеринария. — 1976. — № 1. — С. 100-102.

20. Юров, К.П. Результаты лабораторного контроля иммуногенности инактивированной вакцины против ринопневмонии / К.П. Юров, Г.К. Юров, С.В. Алексеенкова, М.П. Неуст-роев, Н.П. Тарабукина, Ф.М. Тихонова // Вестник ветеринарии. — 2013. — № 4 (67). — С. 74-77.

21. Юров, К.П. Результаты экспериментального изучения ринопневмонии лошадей / К.П. Юров // Proceedings of 20th World Veterinary Congress, Thessalonike: G. Papageorgiou Pub. Co, 1976. — С. 2137.

22. Юров, К.П. Способ изготовления инактивированной вакцины против гриппа лошадей / К.П. Юров, Н.Н. Крюков / Патент на изобретение RUS 698302, 13.10.1977.

23. Юров, К.П. Способ получения высокоиммуногенной инактивированной вакцины против ринопневмонии лошадей / К.П. Юров, Ж.Ж. Кумекбаева / Патент на изобретение RUS 1494275, 28.07.1987.

24. Юров, К.П. Эволюция вирусов гриппа лошадей на территории СССР и РФ / К.П. Юров, С.В. Алексеенкова, Г.К. Юров // Ветеринария. — 2012. — № 11. — С. 19-25.

25. Юров, К.П. Этиология, патогенез альфа- и гаммагерпесвирусных инфекций у лошадей / К.П. Юров, С.В. Алексеенкова, М.В. Андреева // Материалы VI Международного ветеринарного конгресса. — 2016. — С. 312-314.

K.n. №p0B

26. Coggins, L. Diagnosis of equine infectious anemia by immunodiffusion test / L. Coggins: N.L. Norcross, S.R. Nusbaum //Am J Vet Res. — 1972. — Vol. 33(1). — pp. 11-18.

27. Doll, E.R. In vitro serum neutralization of hamster propagated equine rhinopneumonitis virus / E.R. Doll, M.E.W. Crowe, W.H. McCollum, J.T. Bryans // Cornell Vet. — 1959. — Vol. 49. — pp. 28-33.

28. Kono, Y. Complement fixation test of equine infectious anemia. I. Specificity of the test / Y. Kono, K. Kobayashi // Natl Inst Anim Health Q (Tokyo). — 1966. — Vol. 6 (4). — pp. 194-203.

29. Langemeier, J.L. Detection of Equine Infectious Anemia Viral RNA in Plasma Samples from Recently Infected and Long-Term Inapparent Carrier Animals by PCR / J.L. Langemeier, S.J. Cook, R.F. Cook, K.E. Rushlow, R.S. Montelaro, C.J. Issel // Journal of Clinical Microbiology. — 1996. — No. 34 (6). — pp. 1481-1487.

30. Marenzoni, M.L. Quantification of Equid herpesvirus 5 DNA in clinical and necropsy specimens collected from a horse with equine multinodular pulmonary fibrosis / M.L. Marenzoni, F. Passamonti, E. Lepri et al. // J. Vet. Diagn. Invest. — 2011. — Vol. 23 (4). — pp. 802-806.

31. Nakajima, H. Characterization of precipitating antibody in equine infectious anemia / H. Naka-jima, Y. Kono and C. Ushimi // J. Immunol. — 1971. — Vol. 107. — pp. 889-894.

32. Nowotny, N. Isolation and characterization of a new subtype of Borna disease virus / N. Nowotny, J. Kolodziejek, C.O. Jehle, A. Suchy, P. Staeheli, M. Schwemmle // Journal of Virology. — 2000. — Vol. 74. — pp. 5655-5658.

33. Toma, B. Equine Infectious Anemia Virus and of its Corresponding Precipitins / B. Toma, H. Laude, S. Iscaki, and P. Goreret // The journal of equine medicine and surgery. — 1978. — No 1. — pp. 389-394.

34. Williams, K.J. Equine multinodular pulmonary fibrosis: a newly recognized herpesvirus -associated fibrotic lung disease / K.J. Williams, R. Maes, F. Del Piero, A. Lim et al. // Vet. Pathol. — 2007. — Vol. 44 (6). — pp. 849-862.

35. Yurov, K.P. Application of the hemagglutination inhibition test for diagnosis of equine herpesvirus 1 infection / K.P. Yurov, V.K. Sologub // The journal of equine medicine and surgery. — 1978. — No.1. — pp. 43-48.

36. Yurov, K.P. Efficiency of intranasal vaccination of foals against equine influenza virus / K.P. Yurov, E.F. Zabegina, V.I. Loparev // Proceedings of World Veterinary Congress; XXV Congress of the World Veterinary Association; XX Congress of the World Small Animal Veterinary Association, 1995. — P. 291.

References

1. Alexeyenkova S.V., Yurov G.K., Yurov K.P., Diagnostika virusnyh boleznej loshadej metodom PCR, Russian Veterinary Journal, 2011, No 3, pp. 37-39.

2. Alexeyenkova S.V., Yurov G.K., Tkachov I.Y., Yurov K.P, Jeffektivnost' immunizacii myshej linii balb/c pri intracerebral'nom zarazhenii gerpesvirusom loshadej 1-go tipa, Immunology, 2006, Vol. 27 (6), pp. 361-363.

3. Ivanov V.V., Yurov G.K., Alexeyenkova S.V., Yurov K.P. Evaluation of the immunogenic activity of an improved inactivated polyvalent vaccine against equine influenza, In Medicinal products for animals (development, production, efficiency and quality): abstracts of the international scientific conference, edited by L.V. Kirillov, Moscow, VGNKI, 2011, pp. 56-57.

4. Isachenko V.A., Zakstelskaya L.Y., Yurov K.P., Molibog Y.V., Sologub V.K. Identification of the equine influenza virus of the first type among strains obtained by the regional influenza center in 1975 In: Review of the regional influenza center for the IV quarter of 1975 Moscow, Vavilov Institute of Virology, DI. Ivanovo Academy of Medical Sciences, 1976, pp. 24-28.

5. Tkachev I.Y., Yurov G.K., Shmarov M.M., Naroditsky B.S., Alekseyenkova S.V., Yurov K.P. Obtaining genetic constructs carrying the full genes of surface glycoproteins of equine herpes virus 1 to create a DNA vaccine, In: Biotechnology: the state and development prospects, Moscow, PIC Maxim, 2003, p. 233.

6. Yurov K.P., Alexeyenkova S.V., Bolezn' Borna: immunologicheskie markery vozbuditelja, Russian Veterinary Journal, 2017, No 1, pp. 5 - 9.

7. Yurov K.P., Kryukov N.N., Amirbekov M. Vaccine for the prevention of horses rinopneumonia, methods of its production, prevention and treatment, Patent for the invention of RUS 974649, 16.12.1981.

8. Yurov K.P., Kryukov N.N., Vydelenie virusa grippa pri ostrom respiratornom zabolevanii loshadej, Russian Agriculture Science, 1971, No 6, pp. 35-36.

9. Yurov K.P., Sologub V.K., Vydelenie latentnogo gerpeticheskogo virusa loshadej, Veterinary, 1974, No. 4, pp. 49-50.

10. Yurov K.P., Richt Y., Herden K., Yurov G.K., Tkachev I.Y., Vyjavlenie bolezni Borna u loshadej, Veterinary, 2005, No. 3, pp. 8-9.

11. Yurov K.P., Alekseenkova S.V., Yurov G.K., Gerpesvirus loshadej 5 — vozbuditel' fibroza legkih, Veterinary, 2013, No. 3, pp. 17-21.

12. Yurov K.P., Zablotsky V.T., Dejatel'nost' referentnyh laboratorij MJeB vo VNII jeksperimental'noj veterinarii, Proceedings of VIEV, 2019, Vol. 75, pp. 676-679.

13. Yurov K.P., Alekseenkova S.V., Yurov G.K., Infekcionnaja anemija loshadej i ee sovremennaja diagnostika, Veterinary, 2013, No. 4, pp. 3-6.

14. Yurov K.P., Alekseyenkova S.V., Yurov G.K., Yarnykh E.V., Methodical recommendations for fighting infectious anemia of horses, In : Modern means and methods for ensuring veterinary well-being in the infectious and protozoan pathology of animals, fish and bees. - Moscow: Agency of Creative Technologies, 2011, pp. 71-87.

15. Yurov K.P., Alekseenkova S.V. Neurologic syndrome in horses, differential diagnosis, Proceeding of VII International Veterinary Congress «Edinyj mir — Edinoe zdorov'e», (Common world — Common health), Ufa, 19-21 apr. 2017, pp. 288-289.

16. Yurov K.P., O sozdanii gosudarstvennoj komissii po ispytaniju i registracii veterinarnyh bio-logicheskih preparatov v SSSR, Veterinary, 1991, No. 5, p. 6.

17. Yurov K.P. Prevention of viral diseases of horses, Moscow, Kolos, 1984, pp. 1-143.

18. Yurov K.P., Kryukov N.N., Rinopnevmonija loshadej, Horse breeding and equestrian sport, 1969, No. 12, pp.31-32.

19. Yurov K.P., Sologub V.K., Kryukov N.N., Reakcija diffuzionnoj precipitacii pri infekcionnoj anemii loshadej, Veterinary, 1976, No. 1, pp. 100-102.

20. Yurov K.P., Yurov G.K., Alekseyenkova S.V., Neustroev M.P., Tarabukina N.P., Tikhonov F.M., Rezul'taty laboratornogo kontrolja immunogennosti inaktivirovannoj vakciny protiv rinopnevmonii, Vestnik of veterinary medicine, 2013, No. 4 (67), pp. 74-77.

21. Yurov K.P. Results of experimental study of horse rhlnopneumonia Proceedings of 20th World Veterinary Congress Thessalonike, G. Papageorgiou Pub. Co., 1976, p. 2137.

22. Yurov, KP, NN. Kriukov. Method for manufacturing inactivated vaccine against equine influenza, Patent for invention RUS 698302, 13.10.1977.

23. Yurov KP, Kumekbaeva Zh.Zh. Method for manufacturing high immunogenic inactivated vaccine against rinopneumonia horses, Patent for invention RUS 1494275, 28.07.1987.

24. Yurov K.P., Alekseyenkova S.V., Yurov G.K., Jevoljucija virusov grippa loshadej na territorii SSSR i RF, Veterinary, 2012, No. 11, pp. 19-25.

25. Yurov K.P., Alekseenkova S.V., Andreeva M.V. Etiology, pathogenesis of alpha and gamma-herpesvirus infections in horses, Proceedings of the VI International Veterinary Congress, 2016, pp. 312-314.

26. Coggins L., Norcross N.L., Nusbaum S.R., Diagnosis of equine infectious anemia by immunodiffusion test, Am J Vet Res., 1972, Vol. 33(1), pp. 11-18.

27. Doll E.R., Crowe M. E. W., McCollum W. H., Bryans J. T., In vitro serum neutralization of hamster propagated equine rhinopneumonitis virus, Cornell Vet, 1959, Vol. 49, pp. 28-33.

28. Kono Y., Kobayashi K., Complement fixation test of equine infectious anemia. I. Specificity of the test, Natl Inst Anim Health Q (Tokyo), 1966, Vol. 6 (4), pp. 194-203.

29. Langemeier J.L., Cook S.J., Cook R.F., Rushlow K.E., Montelaro R.S., Issel C.J., Anemia Viral RNA in Plasma Samples from Recently Infected and Long-Term Inapparent Carrier Animals by PCR, Journal of Clinical Microbiology, 1996, Vol. 34 (6), pp. 1481-1487.

30. Marenzoni M.L., Passamonti F., Lepri E.et al., Detection of Equine Infectious, Quantification of Equid herpesvirus 5 DNA in clinical and necropsy specimens collected from a horse with equine multinodular pulmonary fibrosis, J. Vet. Diagn. Invest, 2011, Vol. 23 (4), pp. 802-806.

31. Nakajima H., Kono Y.and Ushimi C., Characterization of precipitating antibody in equine infectious anemia, J. Immunol, 1971, Vol. 107, pp. 889-894.

32. Nowotny N., Kolodziejek J., Jehle C.O., Suchy A., Staeheli P., Schwemmle M., Isolation and characterization of a new subtype of Borna disease virus, Journal of Virology, 2000, Vol. 74, pp. 5655-5658.

33. Toma B., Laude H., Iscaki S., and Goreret P., Equine Infectious Anemia Virus and of its Corresponding Precipitins, The journal of equine medicine and surgery, 1978, No 1, pp. 389-394.

34. Williams K.J., Maes R., Del Piero F., Lim A.et al., Equine multinodular pulmonary fibrosis: a newly recognized herpesvirus -associated fibrotic lung disease, Vet. Pathol, 2007, Vol. 44 (6), pp. 849-862.

35. Yurov K.P., Sologub V.K., Application of the hemagglutination inhibition test for diagnosis of equine herpesvirus 1 infection, The journal of equine medicine and surgery, 1978, № 1, pp. 43-48.

36. Yurov K.P., Zabegina E.F., Loparev V.I. Efficiency of intranasal vaccination of foals against equine influenza virus, Proceedings. World Veterinary Congress; XXV Congress of the World Veterinary Association; XX Congress of the World Small Animal Veterinary Association, 1995, p. 291.

ABSRACT K.P. Yurov.

All Russian Research Institute of Experimental Veterinary Medicine named

after Ya. R. Kovalenko (VIEV) (109428, Moscow, Ryazanskyi prospect str. 24%1).

Diagnosis and Control of Main Acute and Chronic Viral Infections of Horses. The article presents a brief review of the results of studies on the etiology of a number of mass equine diseases. Together with the laboratories of a number of countries, a new specific method for diagnosis of EIAV was developed, international laboratory research on this infection was harmonized, new rules for the prevention and elimination of EIAV were approved. For the first time in the country there are viruses of the flu of horses of 1 and 2 types, herpesviruses of horses 1, 2, .3 type, which served as the basis for developing and introducing into veterinary practice new means and methods for diagnosis and prophylaxis of diseases caused by viruses of influenza, rinopneumonia-viral abortion, infectious anemia, Borna disease. A new isolate of equine influenza virus - A / equine / Odintsovo / 11 (H3N8) was registered. The comparative analysis of the nucleotide sequences of the A / equine / Odintsovo /11 H3N8 virus segment and the known strains of the H3N8 equine influenza virus using the computer program« FASTA-3 showed the greatest similarity with the group of viruses isolated from horses in Germany in 2010-2011: A / equine / Bokel / 1/11, A / equine / Viersen / 10, A / equine / Hamburg / 10 "(similarity of 100 %, 99.7 and 99.7 % respectively). Since 1995, the OIE Reference Laboratory for Rhinopneumonia in Horses has been functioning. Leader and expert — Professor KP Yurov. The task of the laboratory includes, among other things, monitoring of herpesvirus infections of horses, providing advice in carrying out diagnostics and anti-epizootic activities. Keywords: horse, herpesvirus, retrovirus, orthomyxovirus, bornavirus, infectious anemia, influenza, rhinopneumonia, infectious encephalomyelitis, fibrosis of the lungs.