Способ оценки генетического потенциала овец породы манычский меринос на основе молекулярно-генетических маркеров
METHOD FOR ASSESSING THE GENETIC POTENTIAL OF MANYCH MERINO SHEEP BASED ON MOLECULAR GENETIC MARKERS

Область техники, к которой относится изобретение
Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к способу оценки генетического потенциала овец породы манычский меринос на основе молекулярно-генетических маркеров, и может быть использовано для прижизненной оценки высокой мясной продуктивности овец породы манычский меринос на основе выявления генетических маркеров, ассоциированных с показателями роста.
Уровень техники
Известен способ селекции овец романовской породы по адаптационной способности к промышленной технологии, включающий отбор и разведение "в себе" наиболее приспособленных овец, при этом у овец дополнительно определяют генетическую структуру по локусам арилэстеразы Es 1 и альбумина Аl и для воспроизводства отбирают животных-носителей аллелей Es 1B, АlА и АlС (см. пат. №2044482 МПК А01К 67/02, опубл. 27.09.1995 г.).
Недостатком данного способа является невысокое качество селекции, так как учитывается только продуктивность новорожденных ягнят на основе особенностей плаценты, а также то, что в качестве критерия оценки продуктивности молодняка используют только полиморфизм белков и ферментов сыворотки крови, что менее информативно по сравнению с полиморфизмом ДНК.
Известен способ оценки генетического потенциала овец в раннем возрасте, включающий подбор овцематок с учетом степени их генетической совместимости с бараном-производителем по величине индекса антигенного сходства и весовых показателей плаценты, при этом дополнительно определяют плодно-плацентарный индекс с учетом соотношения весовых показателей плаценты и новорожденного с уровнем органометрических показателей пуповины в зависимости от степени генетических различий родительской пары, при этом плодно-плацентарный индекс определяют в граммах путем деления массы новорожденного на массу плаценты, уровень органометрических показателей пуповины определяют по следующим показателям:
1
2
3
5
- средний диаметр пуповины (СДП d CM)=d+d+d+…d:n;
3
2
3
- объем (V см)=π×r×L (см);
3
3
- единица объемной массы (ЕОМ г/см)=М:V (г/см);
- единица линейной массы (ЕЛМ г/см)=М:Л (г/см);
- показатель стандартной массы (ПСМ г)=ЕЛМ×50 см (г),
а подбор овцематок с учетом степени их генетической совместимости с бараном-производителем производят по величине индекса антигенного сходства в пределах от 0,31 до 0,60 (см. пат. №2528857 МПК А01К 67/02, опубл. 20. 09. 2014 г.).
Недостатком данного способа оценки генетического потенциала овец в раннем возрасте является то, что в качестве критерия оценки используют только биохимические и генетические параметры диаметра пуповины, единицы объемной и линейной массы.
Известен способ определения мясной продуктивности коров крупного рогатого скота по полиморфизму в гене LEP 528 С/Т, включающий выделение ДНК из крови с дальнейшим генотипированием коров с помощью полимеразной цепной реакции с использованием праймеров на основе SNP в позиции 528 экзона 2 промотора бычьего лептина и отбор животных гетерозиготных С/Т матерей по гену LEP, при этом используют
- AGGTGCCCAGGGACTCA - прямой праймер;
- CAACAAAGGCCGTGTGACA - обратный праймер;
- FAM-CAAGCTCTAGAGCCTGTGT-BHQ1 - Зонд 1;
- HEX-AAGCTCTAGAGCCTATGT-BHQ1 - Зонд 2 (см. пат. №2734964 МПК А01К 67/02, опубл. 26.10.2020 г.).
Недостатком данного способа оценки мясной продуктивности крупного рогатого скота является невысокое качество определения, так как используют только молекулярно-генетический маркер, направленный на изучение мясной продуктивности у крупного рогатого скота, а точных данных по влиянию данного маркера на продуктивность овец не имеется.
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому положительному эффекту и принятый авторами за прототип является способ оценки высокой мясной продуктивности овец сальской породы, включающий выделение ДНК, амплификацию фрагмента гена GH с использованием праймеров 5'-GGAGGCAGGAAGGGATGAA-3' и 5'-ССAAGGGAGGGAGAGACAGА-3', рестрикцию амплифицированного фрагмента гена GH эндонуклеазой НаеIII, определение генотипов и отбор животных с генотипом AB/GH (см. пат. №2662679 МПК А01К 67/02, С12 1/68, С12 1/6844, С07Н 21/04, опубл. 26.07.2018 г.).
Недостатком данного способа является то, что оценка мясной продуктивности овец производится лишь по результатам молекулярно-генетических тестов на основании одного белка соматотропина (GH), хотя оценка комбинированных полиморфных вариантов ДНК в генах, ассоциированных с высокой продуктивностью, может быть более информативной.
Раскрытие изобретения
Задачей предлагаемого изобретения является разработка и создание эффективного способа оценки генетического потенциала овец селекционной перспективности генетической структуры популяции овец породы манычский меринос на основе молекулярно - генетических маркеров по комплексу генов GH, CAST и GDF9, а также изучение взаимосвязи полиморфизма исследованной комбинации генов с показателями роста и развития при помощи выявленных селекционно-значимых аллелей генов GH, CAST и GDF9 для разведения и селекции, направленной на увеличение мясной продуктивности.
Технический результат, который может быть достигнут с помощью предлагаемого изобретения сводится к эффективной оценке селекционной перспективности генетической структуры популяции овец породы манычский меринос по комплексу генов GH, CAST и GDF9 и развитию породы при помощи выявленных селекционно-значимых аллелей генов GH, CAST и GDF9 для разведения и селекции, направленной на увеличение мясной продуктивности.
Технический результат достигается с помощью способа оценки генетического потенциала овец породы манычский меринос на основе молекулярно-генетических маркеров, включающего выделение ДНК, амплификацию фрагмента гена GH с использованием праймеров 5'-GGAGGCAAGGGAAGGGATGAA-3' и R: 5'-CCAAGGGAGGGAGAGACAGA-3', при этом дополнительно определяют CAST и GDF9 с помощью полиморфизма длин рестрикционных фрагментов (ПЦР-ПДРФ) путем использования праймеров: CAST-F: 5'-TGG-GGC-CCA-ATG-ACG-CCA-TCG-ATG-3' и R: 5'-GGT-GGA-GCA-CTT-CTG-ATC-ACC-3', GDF- F: 5'-GAA-GAC-TGG-TAT-GGG-GAA-ATG-3' и R: 5'-CCA-ATC-TGC-TCC-TAC-ACA-ССТ-3', рестрикцию амплифицированного фрагмента гена GH эндонуклеазой НаеIII, CAST эндонуклеазой MspI, гена GDF9 эндонуклеазой рестрикции BstHHl, выявление генотипов и отбор животных с желательными комплексными генотипами.
Таким образом, включение и выделение ДНК, проведение амплификации фрагмента генов GH, CAST и GDF9 с помощью ПЦР-ПДРФ (полиморфизм длин рестрикционных фрагментов) с использованием праймеров: GH - (F: 5'-GGA-GGC-AGG-AAG-GGA-TGA-A-3' и R: 5'-CCA-AGG-GAG-GGA-GAG-АСА-GA-3'); CAST - (F: 5'-TGG-GGC-CCA-ATG-ACG-CCA-TCG-ATG-3' и R: 5'-GGT-GGA-GCA-CTT-CTG-ATC-ACC-3'); GDF9 (F: 5'-GAA-GAC-TGG-TAT-GGG-GAA-ATG-3' и R: 5'-CCA-ATC-TGC-TCC-TAC-ACA-CCT-3'); рестрикцию амплифицированного фрагмента гена GH эндонуклеазой НаеIII, CAST эндонуклеазой MspI, гена GDF9 эндонуклеазой рестрикции BstHHl; выявление генотипов и отбор животных с желательными комплексными генотипами, позволяет достигнуть технического результата.
Сущность предлагаемого способа оценки генетического потенциала овец породы манычский меринос на основе молекулярно-генетических маркеров, заключается в следующем, производят выделение ДНК, амплификацию фрагмента генов GH, CAST и GDF9 методом ПЦР-ПДРФ (полиморфизм длин рестрикционных фрагментов) с использованием праймеров: GH - (F: 5'-GGA-GGC-AGG-AAG-GGA-TGA-A-3' и R: 5'-CCA-AGG-GAG-GGA-GAG-АСА-GA-3'); CAST - (F: 5'-TGG-GGC-CCA-ATG-ACG-CCA-TCG-ATG-3' и R: 5'-GGT-GGA-GCA-CTT-CTG-ATC-ACC-3'); GDF9 (F: 5'-GAA-GAC-TGG-TAT-GGG-GAA-ATG-3' и R: 5'-CCA-ATC-TGC-TCC-TAC-ACA-CCT-3'); рестрикцию амплифицированного фрагмента гена GH эндонуклеазой НаеIII, CAST эндонуклеазой MspI, гена GDF9 эндонуклеазой рестрикции BstHHl; выявление генотипов и отбор животных с желательными комплексными генотипами.
Краткое описание чертежей и иных материалов
На фиг. 1 - дан способ оценки генетического потенциала овец породы манычский меринос на основе молекулярно-генетических маркеров, рисунок 1 схема исследований по изучению полиморфизма генов GH, CAST, GDF9.
На фиг. 2, то же, дана таблица 1 - частота встречаемости аллелей и генотипов генов GH, CAST, GDF9 овец породы манычский меринос (n=211).
На фиг. 3, то же, дана таблица 2 - идентификация выявленных однонуклеотидных полиморфизмов в генах GH, CAST, GDF9.
На фиг. 4, то же, дана таблица 3 - показатели генетической структуры исследуемых животных породы манычский меринос (n=211).
На фиг. 5, то же, дана таблица 4 - динамика роста ярок породы манычский меринос (n=91) различных генотипов по генам GH, CAST, GDF9.
На фиг. 6, то же, дана таблица 5 - динамика роста баранчиков породы манычский меринос (n=120) различных генотипов по генам GH, CAST, GDF9.
На фиг. 7, то же, дан рисунок 2 - электрофореграмма результата ПЦР-ПДРФ гена гормона роста (GH) в 4% агарозном геле.
Обозначения:
1 - ДНК-маркер 50 bp (IsoGeneLab);
2, 3, 5, 8, 9 - генотип АА (277; 202; 110; 100; 94; 68; 49; 22; 8 и 4 п.н);
4, 6, 7, 10, 11 - генотип АВ (277; 256; 202; 110; 100; 94; 68; 49; 22; 8 и 4 п.н).
На фиг. 8, то же, дан рисунок 3 - электрофореграмма результата ПЦР-ПДРФ гена кальпастатин (CAST) в 1,8% агарозном геле.
Обозначения:
1 - ДНК-маркер 50 bp (IsoGeneLab);
4, 8, 9, 13,17 - генотип MN (622; 336; 286 п.н.)
2, 3, 5, 6, 7, 10, 11, 12, 14, 15, 16, 18 - генотип ММ (336; 286 п.н.)
На фиг. 9, то же, дан рисунок 4 - электрофореграмма результата ПЦР-ПДРФ гена дифференциального фактора роста (GDF9) в 2% агарозном геле.
Обозначения:
1 - ДНК-маркер 50 bp (IsoGeneLab);
6, 9, 13 - генотип AG (462; 250; 220 п.н).
2, 3, 4, 5, 7, 8 10, 11, 12, 14, 15, 16, 17, 18 - генотип GG (250; 220 п.н.).
Осуществление изобретения
Примеры конкретного выполнения способа оценки генетического потенциала овец породы манычский меринос на основе молекулярно-генетических маркеров, осуществляют следующим образом.
Способ молекулярно-генетического анализа, основанный на полимеразной цепной реакции (ПЦР) позволил разработать новые маркерные системы, обеспечивающие определение генотипов животных непосредственно на уровне генетического материала клетки (на уровне ДНК) независимо от пола и возраста, в овцеводстве особое внимание принадлежит селекции, которая направлена на улучшение параметров мясной продуктивности, при этом ведущая роль отводится исследованию полиморфизма маркерных генов и генов-кандидатов, кодирующих гормоны, которые контролируют процессы роста и развития, предоставляют возможность выявлять генетические маркеры, оказывающие влияние на продуктивность и позволяют определить оценочные критерии для прогноза генетического потенциала животных, у экспериментальных животных из практических исследований обнаружено, что маркерная комплексная система, включающая в себя гены GH (соматотропин), CAST (кальпастатин) и GDF9 (дифференциальный фактор роста) являются перспективной для ассоциативных исследований, поскольку комбинация вышеупомянутых генов и выявленных желательных аллелей играют жизненно важную роль в процессе развития, контроле роста млекопитающих.
Найдена замена с. 255 G>A, расположенная в экзоне 3 гена GH (соматотропин, гормон роста), находящимся на хромосоме 11 и состоящим из 6945 п.н. Данный гормон выполняет в организме функцию регулирования обменных процессов, ускоряет синтез протеина, ДНК и РНК, гликогена. Экспрессия соматотропного белка способствует ускоренному развитию и росту организма животного.
Выявлена однонуклеотидная замена с. 767+200G>A, расположенная в области интрона белок-кодирующего гена CAST (кальпастатин), находящимся на хромосоме 5, состоящем из 29 экзонов и имеющим длину 89597 п.н. Является особого рода ингибитором кальций-зависимых протеаз, чем обуславливает нежность мяса и выраженность его структуры.
Мутация с. 397G>A (область 1 экзона) была найдена в структуре гена GDF9 (дифференциальный фактор роста), который находится на хромосоме 5, имеет длину 2940 п.н. и рекомендован к использованию в исследовательских работах как белок, участвующий в клеточных процессах, регулирующих половое размножение самок, генерацию гамет, развитие гонад и цикл овуляции, и модулирующий сигнальные пути рецептора трансформирующего фактора роста бета и трансмембранного рецепторного белка серин/треонин киназы.
Способ оценки генетического потенциала овец породы манычский меринос на основе молекулярно-генетических маркеров, осуществляют следующим образом. Молекулярно-генетическое тестирование животных проводят методом ПЦР-ПДРФ, в результате которого получены сведения о комплексных аллельных вариантах и генотипах. В качестве биоматериала для проведения ДНК-генотипирования у животных использовалась кровь, взятая из яремной вены. Для проведения полимеразной цепной реакции (ПЦР) применяют наборы «GenePakPCRCore», (IsoGeneLab, Москва). Генотипирование овец осуществляют по комплексу генов GH, CAST и GDF9. На программируемом четырехканальном термоциклере «Терцик» фирмы «ДНК-технология» (Россия) проводят амплификацию фрагмента ДНК в объеме 20 мкл (17 мкл реакционная смесь +3 мкл ДНК; 15 мкл реакционная смесь +5 мкл ДНК) с использованием праймеров: GH (973 п.н.) - (F: 5'-GGA-GGC-AGG-AAG-GGA-TGA-A-3' и R: 5'-CCA-AGG-GAG-GGA-GAG-ACA-GA-3'); CAST (622 п.н.) - (F: 5'-TGG-GGC-CCA-ATG-ACG-CCA-TCG-ATG-3' и R: 5'-GGT-GGA-GCA-CTT-CTG-ATC-ACC-3'); GDF9 (462 п.н.) - (F: 5'-GAA-GAC-TGG-TAT-GGG-GAA-ATG-3' и R: 5'-CCA-ATC-TGC-TCC-TAC-ACA-CCT-3') - Рестрикционный анализ полученных амплификатов, проводят при помощи эндонуклеаз рестрикции НаеIII, MspI, BstHHl согласно протоколу производителя (ООО «СибЭнзим, г. Новосибирск»). После окончания электрофореза в 2-4,0% агарозном геле, окрашенным бромистым этидием, который помещают на фильтр трансиллюминатора, излучающего свет в ультрафиолетовом диапазоне, производят визуализацию числа и длин фрагментов рестрикции. В качестве маркера молекулярных масс используют стандартный набор М 50 «GenePakDNAMarkers» (IsoGeneLab) (Фиг. 2-4).
Идентификация обнаруженных однонуклеотидных полиморфизмов, отвечающих за мясную продуктивность, и выравнивание на референсный геном осуществлено в международной базе данных NCBI Genome. Для описания однонуклеотидных замен используют номенклатуру HGVS. По результатам молекулярно-генетического анализа устанавливают наличие и частоту аллелей и генотипов, а также комплексных генотипов. Влияние комплексных генотипов генов GH, CAST, GDF9 на скорость роста учитывают у молодняка овец (n=211) по следующим показателям: живая масса при рождении и в возрасте 4 месяца (кг), среднесуточный прирост от рождения до 4 месяцев (г) (Таб. 5). Все исследуемые животные были одного года рождения и содержались в одинаковых условиях. Согласно вышеуказанной таблице в гене GH аллель А является мутантным (генотип АА), В - референсным (диким) (генотип ВВ), то есть референсная последовательность - это ДНК в цифровом виде, составленная учеными как общий эталонный пример генома данного вида, в частности, у овец. В гене CAST аллель N - мутантный (NN - генотип), M - референсный (ММ - генотип). GDF9 имеет мутантный аллель А (соответственно генотип АА), и референсный аллель G (генотип GG). Для полноты исследования генетического разнообразия популяции молодняка овец породы манычский меринос был проведен генетико-статистический анализ, включающий в себя: анализ частоты аллелей, с использованием уравнения Харди-Вайнберга (HW). который рассчитывался следующим образом:
2
2
1=p+2pq+q,
где р и q - частота встречаемости различных аллелей
2
р - частота гомозиготного доминантного генотипа
2
q - частота гомозиготного рецессивного генотипа.
Ожидаемую гетерозиготность вычисляют по формуле Нех=1-Са,
2
где Са - коэффициент гомозиготности, ее определяют через коэффициент гомозиготности, используя формулу Робертсона Ca=∑pi,
2
где pi - квадраты частот аллелей локуса.
Рассчитанный индекс фиксации Fis позволил установить связь между индивидами отдельной популяции и популяцией в целом. Поскольку данный показатель количественно отражает отклонение частот встречаемости гетерозиготных генотипов от теоретически ожидаемой по Харди-Вайнбергу доли гетерозигот при случайном спаривании внутри популяции, то он может рассматриваться в качестве одного из критериев инбредности популяции.
Fis=1-(Hobs/Hex)
где Hobs - наблюдаемая гетерозиготность, Hex - ожидаемая гетерозиготность.
Уровень полиморфности является важным интегральным показателем, характеризующим число активно действующих аллелей в популяции, поэтому данный параметр также принят во внимание. Уровень полиморфности - это величина, обратная коэффициенту гомозиготности Робертсона: Na=1/Ca,
где Са - степень гомозиготности, %.
Чем выше степень ожидаемой гомозиготности, тем меньше число эффективных аллелей в генотипах и тем значительнее уменьшается генетическое разнообразие в популяции.
ДНК-диагностикой с использованием ПЦР-ПДРФ выявлено наличие полиморфизма в локусах генов GH, CAST и GDF9 у молодняка овец породы манычский меринос (n=211) (Таб. 1), представленного аллелями А и В; М и N; А и G соответственно, при этом прослеживается существенная разница в частоте встречаемости аллелей А (0,83) и В (0,17) гена гормона роста, М (0,9) и N (0,1) гена кальпастатина, А (0,1) и G (0,9) гена дифференциального фактора роста. Выявленная закономерность отразилась в распределении частот гомозиготных и гетерозиготных генотипов в рассматриваемых генах. Так, по гену GH частота встречаемости генотипов АА и АВ составляет 0,67 и 0,32, тогда как гомозиготный генотип ВВ встречается довольно редко 0,01. Для гена CAST наиболее часто встречается гомозиготный генотип ММ (0,8), тогда как гетерозиготный вариант MN составил 0,19, в тоже время низкая встречаемость характерна для овец генотипа NN (0,005). По гену GDF9 наблюдается несколько иное распределение частот генотипов, где преобладающим был гомозиготный генотип GG, частота которого составляет 0,86, тогда как генотипы АА и AG были практически равны 0,06 и 0,08.
Проведенный генетико-статистический анализ полученных результатов, представлен в таблице 3. Наблюдаемая (observed) гетерозиготность (Hobs) по локусу GH составила 0,3, по CAST и GDF9 - 0,18 и 0,18 соответственно. Ожидаемая (expected) гетерозиготность (Hex) более чувствительна к размеру выборки и чаще используется при описании генетического разнообразия, поэтому был рассчитан данный показатель. Ожидаемая гетерозиготность по локусам генов соматотропина, кальпастатина и дифференциального фактора роста составляет 0,7, 0,81 и 0,92 соответственно.
AA
MM
GG
AB
MM
GG
AA
MM
AA
AB
MN
GG
AB
MM
AG
AA
MN
AG
AA
NN
GG
BB
MN
AA
BB
MN
AG
Наиболее высокий показатель уровня полиморфности Na (показатель числа эффективных аллелей) выявлен по локусу GH (1,39), средний показатель по локусам генов GDF9 и CAST, составивший 1,22. Аналогичная картина наблюдается по коэффициенту V (характеризует возможную степень реализации генетической изменчивости), более высокие показатели получены по локусу GH - 31%, против 20%) - по локусам CAST и GDF9. Тест гетерозиготно сти показывает фактическое преимущество количества гетерозигот по локусу гена GH (-0,4Ф>Т), незначительно меньшее количество их было обнаружено по локусу гена CAST (-0,62Ф>Т) и по локусу гена GDF9 их выявлено -0,74Ф>Т. Полученные результаты подтверждают и рассчитанный коэффициент эксцесса (Fis), свидетельствующий о недостатке или избытке фактически наблюдаемой гетерозиготности в сравнении с теоретической. Индекс фиксации оказался наименьшим в локусе гена соматотропина (+0,57), а наибольшим - в локусе гена дифференциального фактора роста (+0,8), в локусе гена кальпастатина индекс фиксации составил +0,78. Мера или величина информационного полиморфизма (polymorphism information content - PIC), определяется способностью генетического маркера устанавливать полиморфизм популяции в зависимости от числа обнаруживаемых аллелей и распределения их частот. Расчет значения PIC для исследуемых маркеров GH, CAST и GDF9 составил 0,28, 0,18 и 0,18 соответственно. Из 27 теоретически возможных комплексных генотипов у исследуемых животных выявлено 14 (Таб. 1). Оценка генетической структуры исследуемого поголовья показала, что среди исследованных животных наиболее часто встречаются овцы с комплексным генотипом GHCASTGDF9 (105 голов или 49,8%). На долю генотипа GHCASTGDF9 приходится 42 головы (19,9%). Равное количество особей имеет комплексные генотипы GHCASTGDF9 и GHCASTGDF9 - на их долю приходится по 8 голов (или по 3,8%). У 5 исследуемых животных (2,4%) выявлен комплексный генотип GHCASTGDF9. По 1 особи (0,5%) приходится на генотипы GHCASTGDF9, GHCASTGDF9, GHCASTGDF9 и GHCASTGDF9. Проведение дальнейших исследований позволило проанализировать взаимосвязь полиморфных вариантов генов GH, CAST, GDF9 с интенсивностью роста молодняка овец.
AB
MN
AA
AA
MM
AG
GG
AB
MM
AA
AB
MN
AA
AA
MM
GG
На основании проводимого эксперимента дана сравнительная характеристика протестированных животных. Среди исследуемых ярок (n=91) наибольшую живую массу при рождении имели особи с генотипами GH, САST, GDF9 при сравнении с животными других генотипов GH, CAST, GDF9 и GDF9 на 2,2-14,8%. Анализируя результаты взвешивания ярок в возрасте 4 месяцев, отмечается преимущество животных, имеющих генотипы GH, CAST, GDF9, составившее 1,1-5,7%. Среди баранчиков зафиксирована более высокая живая масса, как при рождении, так и при отъеме (4 месяца) у носителей генотипов GH, CAST, GDFF9, чем у молодняка с генотипами GH, CAST, GDF9 на 6,2-14,2%, а также 0,7-3,5% соответственно.
AB
AA
AB
AA
Величина среднесуточного прироста исследуемых животных свидетельствует, что ярки с генотипами GH, GDF9 отличающиеся наибольшей живой массой, характеризуются и высокими показателями прироста (таб. 4). Так, интенсивность роста у носителей генотипов GH, GDF9 над ярками других исследуемых генотипов составляет в период от рождения до отъема 1,1-2,4%.
Таким образом, использование тестирования SNP-маркеров комплексной системы, включающей в себя гены GH, CAST, GDF9 позволяет проводить оценку генетического потенциала молодняка овец в раннем возрасте и отбирать высокопродуктивных животных с генетическим обоснованием перспективности селекции в дальнейшем для получения наиболее желательных генотипов мясной продуктивности.
Примеры конкретного выполнения ДНК-генотипирования для выявления полиморфизма генов, отвечающих за высокую мясную продуктивность у овец, разводимых на территории Российской Федерации.
AB
AB
AB
MN
MM
MN
MM
Пример 1. Изучен, проанализирован и испытан полиморфизм генов гормона роста, кальпастатина, дифференциального фактора роста у молодняка овец сальской породы. Установлено, что наличие гетерозиготного генотипа GH у баранчиков этой породы оказывает положительное влияние на темпы роста. Выявлено, что живая масса при отъеме, в 9-месячном возрасте и среднесуточный прирост баранчиков с гетерозиготным генотипом GH превышали значения этих параметров на 0,92; 10,67 кг и 47,3 г, в сравнении с гомозиготным генотипом АА соответственно. Животные генотипа GH характеризовались лучшей мясной продуктивностью. Сравнение показателей роста и развития молодняка овец сальской породы в зависимости от генотипов гена CAST показало наличие влияния данного гена на хозяйственно-полезные признаки. Молодняк с гетерозиготным генотипом CAST имел живую массу при рождении 4,1 кг, что на 0,12 кг выше гомозиготного генотипа CAST (3,98 кг). Выявленные различия по величине живой массы между животными разных генотипов сохранились и в 6-месячном возрасте: овцы гетерозиготного генотипа CAST (33,12 кг) на 1,91 кг превышали гомозиготный вариант CAST (35,03 кг). Исследованиями полиморфизма гена GDF9 выявлено, что в возрасте 7 месяцев бараны с генотипом АА превосходили генотипы AG и GG по показателям мясной продуктивности в среднем на 7,01 кг.
Пример 2. Изучен, проанализирован и испытан полиморфизм генов гормона роста, кальпастатина у молодняка овец романовской породы. Оценка полиморфизма гена GH в популяции романовских овец показала наличие трех вариантов генотипов АА, АВ и ВВ, с частотой встречаемости аллелей А и В - 63 и 37% соответственно. При оценке полиморфизма гена CAST выявлено 3 генотипа MM, MN и NN с различной частотой встречаемости. Соотношение аллелей М и N в популяции составило 74 и 26% соответственно. По гену GH наибольшее достоверное превосходство по живой массе во все исследуемые возрастные периоды выявлено у особей с генотипом АВ, составляющее от 0,5 до 12,9%. Животные с генотипом ММ гена CAST превосходили животных с генотипами MN и NN в 5-месячном возрасте на 5,6 и 14,8%, в возрасте 10 месяцев - на 4,53 и 11,3% соответственно.
Пример 3. Изучен, проанализирован и испытан полиморфизм генов гормона роста, кальпастатина у молодняка овец ставропольской породы. Во все исследуемые возрастные периоды выявлено превосходство по величине живой массы и среднесуточных приростов у генотипов АВ, MN генов GH, CAST по сравнению с аналогами других генотипов. Преимущество по величине живой массы у животных, имеющих эти генотипы, составило: в 2-месячном возрасте - 4,4; 5,7%; в 8 месяцев - 3,7; 9,1% соответственно.
Установлены более высокие показатели среднесуточных приростов, превосходство которых составило: в 2-месячном возрасте - 4,3; 5,5%; в 8 месяцев - 3,6; 8,5%, в сравнении с животными других генотипов соответственно.
Пример 4. Изучен и проанализирован и испытан полиморфизм генов гормона роста, кальпастатина, дифференциального фактора роста у ярок породы манычский меринос. В 6-месячном возрасте выявлено превосходство по величине живой массы и среднесуточных приростов у генотипов АВ, MN и АА генов GH, CAST и GDF9 по сравнению с аналогами других генотипов. По величине живой массы преимущество в среднем составило: 4,37; 3,9; 5,1%, по величине среднесуточных приростов - 2,9; 1,6; 4,4% в сравнении с животными других генотипов соответственно.
Пример 5. Изучен и проанализирован и испытан полиморфизм генов гормона роста, кальпастатина, дифференциального фактора роста у баранчиков породы манычский меринос. В период проведения откорма в возрасте от 6 до 8 месяцев выявили, что баранчики носители АВ, MN генотипов генов GH, CAST при сравнении с аналогами других генотипов по интенсивности роста существенно превосходили этих животных. Результаты наблюдений показали, что у молодняка с генотипом АВ, MN к завершению откорма фиксировалась высокая живая масса в среднем на - 5,0; 3,8% при сопоставлении с показателями животных аналогичных генотипов. Лучшая способность овец носителей генотипов АВ, MN эффективно преобразовывать корм в продукцию обеспечила наибольший среднесуточный прирост, превышающий показатели животных других генотипов в среднем на 7,0; 5,6%.
Предлагаемое изобретение по сравнению с прототипом и другими известными техническими решениями имеет следующие преимущества:
- возможность оценки генетического потенциала молодняка овец в раннем возрасте;
- возможность отбирать высокопродуктивных животных;
- возможность отбирать животных с генетическим обоснованием перспективности селекции в дальнейшем для получения наиболее желательных генотипов мясной продуктивности.