Способ оценки пригодности использования в медицинских целях разрабатываемых синтетических полимеров
METHOD FOR ASSESSING SUITABILITY OF SYNTHETIC POLYMERS BEING DEVELOPED FOR MEDICAL PURPOSES

Изобретение относится к медицине, а именно к биотехнологии, иммунологии, имплантологии, и может быть использовано при выборе синтетических материалов для медицинских целей по способности предотвращать развитие воспалительного ответа.
В настоящее время результаты исследований в области химии обеспечивают медицину и, в частности имплантологию, широким набором синтетических полимерных материалов, которые по многим своим характеристикам занимают лидирующие позиции при создании эндопротезов и других имплантируемых в организм человека изделий. Однако все эти материалы являются чужеродными для его внутренней среды. Характерной и типичной реакцией иммунной системы на вживление таких имплантатов становится развитие воспаления, когда иммунокомпетентные клетки, наращивая свой защитный потенциал, обусловливают развитие осложнений, вплоть до отторжения имплантируемого объекта. Основное внимание исследователей на современном этапе сконцентрировано на поиске путей предотвращения развития таких реакций, однако методические подходы для оценки синтетических полимеров, разрабатываемых и предлагаемых для использования с различными медицинскими целями, с этих позиций оставляют желать лучшего.
Известен способ сравнительной оценки реакции иммунокомпетентных клеток в ответ на действие различных вживляемых материалов в стоматологии на основе цитоморфологического исследования с учетом индекса сдвига нейтрофилов [Рыжова И.Л., Денисова В.Ю. Изучение биосовместимости современных конструкционных полимерных материалов // Уральский медицинский журнал. - 2010. - № 08(73). - С. 36-39].
Недостатки прототипа: низкая эффективность способа при высокой стоимости, связанная с трудоемкостью, продолжительностью во времени, преимущественном выявлении воспалительной реакции, развивающейся в ответ на микробные агенты, а также отсутствием учета активности иммунокомпетентных клеток.
Технический результат: повышение эффективности способа за счет снижения временных и трудозатрат, возможность одномоментной проверки значительного количества образцов, комплексной оценки пролиферативной и цитокин-продуцирующей активности мононуклеарных клеток при их непосредственном контакте с образцами, позволяющей определять направленность иммунного ответа, обосновывая выбор перспективного для медицины материала.
in vitro
Результат достигается с помощью контактного способа воздействия образцов синтетических полимеров на клетки иммунной системы (мононуклеарные лейкоциты), содержащиеся в периферической венозной крови человека, с оценкой продукции ими противовоспалительных цитокинов  по показателю индекса стимуляции, что в сравнительном анализе результатов тестирования позволит выбрать наиболее перспективные образцы.
Способ осуществляют следующим образом.
3
6
2
У добровольца получают пробу периферической венозной крови и с помощью градиентного (фиколл-верографин; ρ=1,077 г/см) центрифугирования выделяют популяцию мононуклеарных лейкоцитов. Клетки трижды отмывают свежим охлажденным раствором Хенкса (ООО «Биолот», Россия) и доводят до 2×10 клеток/мл. После этого клеточную суспензию вносят в лунки круглодонного планшета с предварительно размещенными там образцами разных синтетических полимеров в форме цилиндра длиною 3 мм и диаметром 1 мм. В качестве контроля используют лунки с образцами из стекла и лунки, не содержащие синтетических материалов. Планшеты инкубируют в термостате ТС-80 (Анкар, Россия) при 37°С в условиях 5% СО в течение 72 ч. По окончании инкубации в лунках подсчитывают общее число клеток и в том числе количество жизнеспособных в тесте с трипановым синим [Мельникова Н.А., Шубина О.С., Дуденкова Н.А., Лапшина М.В., Лиференко О.В., Тимошкина О.И. Исследование жизнеспособности клеток при воздействии ацетата свинца на организм крысы // Современные проблемы науки и образования. - 2013. - № 5. - С. 495]. Содержимое лунок после инкубации центрифугируют и надосадочную жидкость используют для определения концентрации противовоспалительных цитокинов ИЛ-4 и ИЛ-10 с помощью иммуноферментного метода [Симбирцев А.С., Тотолян А.А. Цитокины в лабораторной диагностике // Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. - 2015. - № 2 (11). - С. 82-98.]. Для вычисления удельной продукции каждого цитокина в присутствии синтетического полимера (УП, пг/кл.) или в присутствии стекла (УС, пг/кл.) производят пересчет количества цитокинов на 1 жизнеспособную клетку по формулам:
Ц
С
УП=Ц/КЛ или УС=С/КЛ, где
Ц - концентрация цитокина в пробе с синтетическим полимером, пг/мл;
Ц
КЛ - количество мононуклеарных лейкоцитов в пробе с синтетическим полимером, в 1 мл;
С - концентрация цитокина в пробе со стеклянным образцом, пг/мл;
С
КЛ - количество мононуклеарных лейкоцитов в пробе со стеклом, в 1 мл.
Далее для оценки направленности иммунного ответа для каждого противовоспалительного цитокина вычисляют индекс стимуляции (ИС), как отношение удельной продукции цитокина в пробе с полимерным образцом к продукции того же цитокина в пробе со стеклом по формуле:
ИС=УП/УС, где
УП - удельная продукция цитокина в присутствии синтетического полимерного образца, пг/клетка;
УС - удельная продукция цитокина в присутствии стекла, пг/клетка;
Индекс стимуляции равный и более 1 указывает на пригодность использования в медицинских целях синтетического полимера, т.е. образец стимулирует продукцию противовоспалительного цитокина, предупреждая развитие воспаления.
Примеры конкретного выполнения
3
6
2
Пример 1. У добровольца У. получили пробу периферической венозной крови из кубитальной вены. С помощью градиентного (фиколл-верографин; ρ=1,077 г/см) центрифугирования выделили популяцию мононуклеарных лейкоцитов. Клетки трижды отмыли свежим охлажденным раствором Хенкса и довели до 2×10 клеток/мл. После этого клеточную суспензию внесли в лунки круглодонного планшета с предварительно размещенными там образцами разных синтетических полимеров, условно обозначенные как «№ 1», «№ 2», «№ 3» и «№ 4». Каждый образец был в форме цилиндра длиною 3 мм и диаметром 1 мм. В качестве контролей использовали лунки с образцами из стекла и лунки, не содержащие синтетических полимеров. Планшеты инкубировали при 37°С в условиях 5% СО в течение 72 ч. По окончании инкубации в лунках подсчитывали общее число клеток, в том числе количество жизнеспособных в тесте с трипановым синим. Надосадочную жидкость после центрифугирования содержимого лунок использовали для определения концентрации ИЛ-4 и ИЛ-10 с помощью иммуноферментного метода. Уровень каждого из цитокинов пересчитали на 1 жизнеспособную клетку. После этого проводили расчет индекса стимуляции.
Полученные результаты представлены в таблице 1.
По показателям индекса стимуляции видно, что для добровольца У. будут пригодными для применения синтетические полимеры из которых изготовлены образцы № 2 и № 4. Иммунокомпетентные клетки в присутствии этих образцов не будут стимулировать воспалительный ответ, что обусловлено активной продукцией противовоспалительных цитокинов в их присутствии. Напротив, присутствие образцов № 1 и № 3 совместно с клетками добровольца У. не будут стимулировать лейкоциты на продукцию противовоспалительных цитокинов.
3
6
2
Пример 2. У добровольца С. получили пробу периферической венозной крови из кубитальной вены. С помощью градиентного (фиколл-верографин; ρ=1,077 г/см) центрифугирования выделили популяцию мононуклеарных лейкоцитов. Клетки трижды отмыли свежим охлажденным раствором Хенкса и довели до 2×10 клеток/мл. После этого клеточную суспензию внесли в лунки круглодонного планшета с предварительно размещенными там образцами разных синтетических полимеров, условно обозначенные как «№ 1», «№ 2», «№ 3» и «№ 4». Каждый образец был в форме цилиндра длиною 3 мм и диаметром 1 мм. В качестве контролей использовали лунки с образцами из стекла и лунки, не содержащие синтетических полимеров. Планшеты инкубировали при 37°С в условиях 5% СО в течение 72 ч. По окончании инкубации в лунках подсчитывали общее число клеток, в том числе количество жизнеспособных в тесте с трипановым синим. Надосадочную жидкость после центрифугирования содержимого лунок использовали для определения концентрации ИЛ-4 и ИЛ-10 с помощью иммуноферментного метода.
Уровень цитокинов пересчитали на 1 жизнеспособную клетку. После этого проводили расчет индекса стимуляции.
Полученные результаты представлены в таблице 2.
По показателям индекса стимуляции видно, что в присутствии всех четырех образцов клетки повышают продукцию противовоспалительных цитокинов. Однако в присутствии образца № 2 наблюдается максимальная продукция цитокинов. В целом, все четыре образца синтетического полимерного материала будут пригодны для использования в медицинских целях, но более перспективным представляется материал образца № 2.
3
6
2
Пример 3. У добровольца Ж. получили пробу периферической венозной крови из кубитальной вены. С помощью градиентного (фиколл-верографин; ρ=1,077 г/см) центрифугирования выделили популяцию мононуклеарных лейкоцитов. Клетки трижды отмыли свежим охлажденным раствором Хенкса и довели до 2×10 клеток/мл. После этого клеточную суспензию внесли в лунки круглодонного планшета с предварительно размещенными там образцами разных синтетических полимеров, условно обозначенные как «№ 1», «№ 2», «№ 3» и «№ 4». Каждый образец был в форме цилиндра длиною 3 мм и диаметром 1 мм. В качестве контролей использовали лунки с образцами из стекла и лунки, не содержащие синтетических полимеров. Планшеты инкубировали при 37°С в условиях 5% СО в течение 72 ч. По окончании инкубации в лунках подсчитывали общее число клеток, в том числе количество жизнеспособных в тесте с трипановым синим.
Надосадочную жидкость после центрифугирования содержимого лунок использовали для определения концентрации ИЛ-4 и ИЛ-10 с помощью иммуноферментного метода. Уровень каждого из цитокинов пересчитали на 1 жизнеспособную клетку. После этого проводили расчет индекса стимуляции.
Полученные результаты представлены в таблице 3.
По показателям индекса стимуляции видно, что в присутствии всех четырех образцов клетки не повышают продукцию противовоспалительных цитокинов, что указывает на непригодность этих образцов для использования в медицинских целях.
Таким образом, использование предложенного способа позволяет снизить временные и трудозатраты при оценке пригодности использования синтетических полимеров с медицинскими целями, дает возможность одномоментной проверки значительного количества образцов, комплексной оценки пролиферативной и цитокин-продуцирующей активности мононуклеарных клеток при их непосредственном контакте с образцами, а также показывает направленность иммунного ответа, что должно быть в основе выбора перспективного для медицинского применения материала.