Влияние механических характеристик сосудистой заплаты на формирование перипротезной капсулы

Животные были выведены из эксперимента на 14-е сутки путем передозировки наркоза. В каждом случае проведена аутопсия с иссечением участка передней брюшной стенки справа и слева от срединной линии в местах размещения имплантов. Полученный таким образом биологический материал фиксировали в 10% растворе нейтрального формалина. После фиксации иссекали меньшие кусочки тканей с фрагментами имплантированных эндопротезов и после промывки, обезвоживания, пропитывания парафином по стандартной методике и микротомирования срезы толщиной 10-12 мкм окрашивали по Маллори и гематоксилином и эозином [1].

Микроскопирование и микрофотосъемку препаратов для морфометрической оценки гистологических изменений проводили с помощью оптической системы, состоящей из микроскопа «Leica CME» и окуляр-камеры «DCM-510» (х100 и х400), с документированием снимков в программе Future Winjoe, входящей в комплект поставки окуляр-камеры.

На микрофотографиях оценивали строение соединительнотканной капсулы, наличие и выраженность ее слоев, степень зрелости коллагеновых волокон, а также исследовали состав клеточного слоя капсулы, непосредственно прилегающего к нитям эндопротеза. Клетки волокнистой соединительной ткани дифференцировали на основе кариологи-ческих признаков. Процентное соотношение указанных представителей клеточной популяции рассчитывали после подсчета 100 клеток в нескольких непересекающихся полях зрения [9].

Статистическую обработку полученных результатов проводили с применением методик описательной статистики: определяли средние величины (средние арифметические, моды и медианы); вариационной статистики: рассчитывали стандартные отклонения и средние ошибки средних, для определения достоверности отличий средних применяли метод доверительных интервалов. Статистически

достоверными считали различия средних величин при p<0,05 [2]. При построении корреляционной матрицы использовали метод квадратов Пирсона. В качестве программной среды для обработки данных использовали лицензионную версию редактора электронных таблиц Microsoft Excel 2010.

Результаты

Было проведено экспериментальное исследование физико-механических свойств изучаемых образцов имплантов. Физико-механические параметры систематизированы и представлены в табл. 1.

Основная цель пропитывания образцов фирмы «B. Braun» желатином - снижение хирургической пористости и, соответственно, интраоперационной кровопотери. Однако данная модификация объясняет наличие у образцов этой серии ряда существенных недостатков, в частности высокой жесткости и низкой прочности, а также незначительной объемной пористости (одно из основных свойств, обусловливающих биологическую пористость и процессы интеграции импланта в структуру сосудистой стенки) [11].

Имея минимальную поверхностную плотность и жесткость, образцы производства фирмы «Линтекс» обладают достаточной прочностью. По нашему мнению, данные позитивные физико-механические свойства способствуют процессам интеграции этих заплат в сосудистую стенку, а также минимизируют реакцию тканей организма на имплантацию.

При световой микроскопии образцов в боковом освещении определен коэффициент шероховатости. Данный показатель оказался максимальным при анализе измерений поверхности образцов производства фирмы «Линтекс» (66,6+52,53), что почти в 4,35 раза превышало значения данного показателя при исследовании поверхности образцов производства фирмы «Север» (p<0,01) и в 24,76 раза фирмы «B. Braun» (p<0,01).

Таблица 1. Показатели физико-механических свойств изученных образцов сосудистых заплат

Параметр Образец Образец Р* Образец Р

«Линтекс» «Север» «B. Braun»

Толщина, мкм 523,3+3,59 253,7+3,71 <0,001 415,3+6,25 <0,001

Поверхностная плотность, г/см2 0,036+0,026 0,05+0,012 >0,05 0,05+0,02 <0,05

Масса образца размером 1x1 см, г 0,038+0,0009 0,03+0,0004 <0,05 0,04+0,0029 <0,05

Объемная пористость, % 44,60+0,026 23,37+0,02 <0,001 5,21+0,02 <0,001

Хирургическая пористость, л/минхсм2 1,23+0,02 1,75+0,02 <0,001 0 -

Разрывная нагрузка (вдоль), Н/см 121,5+0,63 296,8+0,36 <0,001 73,4+0,24 <0,001

Жесткость (вдоль), сНхмм2 1,34+0,12 2,04+1,74 <0,001 _** -

Жесткость (поперек), сНхмм2 6,86+0,24 7+0,16 >0,05 - -

Коэффициент шероховатости 66,6+52,53 15,3+6,17 <0,001 2,69+0,727 <0,001

Примечание. * - уровень достоверности отличий средней арифметической определялся по отношению к образцу производства фирмы «Линтекс»; ** - жесткость образцов «B. Braun» превышала допустимые пределы, в которых можно проводить измерения с помощью выбранной методики.

Рис. 2. Капсула вокруг протеза из материала «Линтекс». Через 14 сут после имплантации в переднюю брюшную стенку. На фотографии обозначены волокна протеза (В), двухслойная капсула (К). Овал обозначает скопление клеток в зоне декомпрессии. Окраска по Маллори. Микрофото.

х100

Рис. 3. Капсула вокруг протеза из материала «Линтекс». Через 14 сут после имплантации в переднюю брюшную стенку. На фотографии обозначены волокна протеза (В) и соединительнотканная капсула (К). Стрелка показывает гигантские клетки инородных тел, имеющие до 20 ядер. Окраска гематоксилином и эозином. Микрофото.

х400

Рис. 4. Капсула вокруг протеза из материала «Север». Через 14 сут после имплантации в переднюю брюшную стенку. На фотографии обозначены волокна протеза (В), соединительнотканная капсула (К). Красная стрелка показывает градиент нарастания плотности клеток на единице площади, желтая стрелка показывает градиент зрелости коллагеновых волокон. Окраска по Маллори. Микрофото. х100

Рис. 5. Капсула вокруг протеза из материала «Север». Через 14 сут после имплантации в переднюю брюшную стенку. На фотографии обозначены волокна протеза (В), соединительнотканная капсула (К). Стрелками указаны расширенные кровеносные сосуды. В выделенном фрагменте видны гигантские клетки инородных тел. Окраска по Маллори. Микрофото. х100

Iis"' Vi "Шл vÄ

АШ

При световой микроскопии гистологических препаратов от животных экспериментальной группы, в которой изучали реакцию тканей на имплантацию образцов фирмы «Линтекс», установлено, что у всех животных вокруг нитей протеза сформирована соединительнотканная капсула, преимущественно состоящая из элементов плотной волокнистой соединительной ткани (ПВСТ). Капсула имеет выраженную двухслойную организацию. Наиболее выражен наружный волокнистый слой капсулы (рис. 2). Также следует указать на завершенность интеграции капсулы в ткани брюшной стенки - ни на одном препарате не удалось определить границу между волокнистым слоем капсулы и фасциями окружающих ее мышц (рис. 3).

Анализ цифровых показателей клеточного состава капсулы (клеточного слоя) в этой серии исследования показывает, что более половины (59,2%) от общего количества клеток составляют клетки фибробластического ряда, а общее количество фагоцитирующих клеток и их предшественников достигает 25%.

Исследование препаратов от животных с использованием материала фирмы «Север» показало, что степень дифференцировки фибробластов, равно как и степень зрелости коллагеновых волокон, убывает по направлению снаружи (от самых наружных слоев капсулы) внутрь к волокнам имплан-та (рис. 4). Поэтому в непосредственной близости от них оказываются наиболее молодые формы фибробластов, имеющие классическую трапециевидную или треугольную форму тела с умеренно базо-фильной цитоплазмой [4, 5].

Следует отметить, что в клеточном слое пери-протезной капсулы соединительнотканная составляющая выражена довольно слабо (фибробласты и фиброциты составляют всего 32,4%). Очевидное преобладание в инфильтрате клеток-нерезидентов позволяет квалифицировать текущее состояние как пролонгированную смену фаз с экссудативной на пролиферативную [13].

Обращает на себя внимание выраженная реакция фагоцитирующих и антигенпредставляющих клеток на пребывание материала «Север» в тканях животных на протяжении 2 нед: в клеточном слое капсулы обнаруживается на 30% больше макрофагов и моноцитов; значительно возрастает количество гигантских клеток инородных тел (ГКИТ), изменяется уровень их клеточной и пространственной организации (рис. 5).

Микроскопирование срезов животных, которым был имплантирован материал фирмы «B.Braun», показало, что, как и в двух предыдущих группах, материал импланта покрыт соединительнотканной капсулой из ПВСТ, фиксирующей и одновременно отграничивающей его от окружающих структур (рис. б) [12].

Если волокнистый слой капсулы, состоящий из организованной ПВСТ, практически не отличается от такового в предыдущих группах исследования, то клеточный слой, наоборот, более вариативен. Это разнообразие организации проявляется не только относительно большей толщиной клеточного слоя, но и несколько иной организацией.

Так, нити импланта отделены от слоя с высокими экссудативными характеристиками прослойкой из ГКИТ. Несмотря на существенные отличия в организации клеточного слоя капсулы в этой экспериментальной группе от группы с использованием материала «Север», значимых отличий в качественном составе клеточного слоя практически нет.

Здесь так же, как и во 2-й группе относительное количество клеток фибробластического ряда составляет 32%, а доля клеток-нерезидентов - 68%.

Рис. 6. Капсула вокруг протеза из материала «B. Braun». Через 14 сут после имплантации в переднюю брюшную стенку. На фотографии показаны соединительнотканная капсула (К), волокна импланта (В), мышцы брюшной стенки (М) и подкожно-жировая клетчатка (Ж). Окраска по Маллори. Микрофото. х100

Для обнаружения вероятных зависимостей показателей тканевой реакции на имплантацию изученных образцов от их физико-механических характеристик мы построили корреляционную матрицу (табл. 2).

Таблица 2. Матрица корреляции исследуемых параметров

Толщина, мкм Поверхностная плотность, г/см2 Масса, г Объемная пористость, % Хирургическая пористость Разрывная нагрузка (вдоль), Н/см Жесткость (вдоль), сНхмм2 Жесткость (поперек), сНхмм2 Коэффициент шероховатости Фибробласты Фиброциты Лимфоциты Макрофаги Нейтрофилы Эозинофилы Моноциты

Толщина -0,99 0,11 0,44 -0,4 -0,82 0,09 0,11 -0,07 0,795 0,8 -0,83 -0,99 0,76 -0,68 -0,47

По-верхн. плотн. -0,24 0,32 0,51 0,88 -0,22 -0,24 -0,19 -0,711 -0,7 0,75 0,96 -0,84 0,58 0,35

Масса -0,84 -0,96 -0,66 0,99 -0,99 -0,18 -0,511 -0,51 0,46 0,03 0,73 0,65 0,83

Масса 0,65 0,16 -0,85 -0,845 0,02 0,894 0,0 -0,87 0,56 0,25 0,96 0,99

Хирургическая пористость 0,85 -0,95 -0,96 -0,2 0,241 0,24 -0,18 0,26 -0,9 -0,41 -0,63

Разрыв. нагр. (вдоль) -0,65 -0,66 0,04 -0,3 -0,3 0,36 0,73 -0,99 0,13 -0,13

Жесткость (вдоль) 0,99 0,08 -0,53 -0,53 0,48 0.05 0,72 0,67 0,84

Жесткость (поперек) 0,47 -0,516 -0,52 0,46 0,03 0,73 0,66 0,83

К. ше-рох. -0,02 0,13 -0,4 0,06 0,3 -0,01 0,19

Фибробласты 1 -0,99 -0,87 0,21 -0,98 -0,91

Фиброциты -0,99 -0,87 0,21 -0,98 -0,91

Лимфоциты 0,9 -0,27 0,97 0,88

Макро-фаги -0,66 0,77 0,59

Нейтрофилы -0,04 0,22

Эози-ноф. 0,97

При анализе коэффициента корреляции Пирсона мы исходили из того, что при его значении >0,7 между исследуемой парой признаков имеется сильная связь, которая может быть прямой или обратной [6]. Из табл. 2 следует, что такие характеристики лавсановых имплантов, как толщина и объемная пористость, обратно коррелировали с долей макрофагов и, соответственно, их предшественников - моноцитов (показатель ответной агрессии ткани на имплант) в клеточном слое соединительнотканной капсулы. Значение коэффициента корреляции достигало -0,989 и -0,999 соответственно.

Наоборот, такие характеристики, как поверхностная плотность и масса образца, прямо коррелировали с долей макрофагов и, соответственно, их предшественников - моноцитов в клеточном слое соединительнотканной капсулы со значениями коэффициента корреляции 0,963 и 0,825 соответственно. Иными словами, именно от значений указанных характеристик лавсановых протезов в нашем эксперименте зависит выраженность экс-судативной фазы асептического воспаления. Также было обнаружено, что толщина и поверхностная плотность коррелировали со значениями доли клеток фибробластического ряда в клеточном слое соединительнотканной капсулы со значениями коэффициента корреляции 0,799 и -0,711 соответственно. Из этого следует, что от вышеуказанных значений в нашем эксперименте зависит выраженность пролиферативной фазы асептического воспаления.

Таким образом, показатели морфологической структуры клеточного слоя перипротезной капсулы: количество клеток фибробластического ряда

и число клеток-нерезидентов (именно моноцитов, макрофагов), - целесообразно использовать в качестве критерия при разработке новых образцов сетчатых эндопротезов для реконструктивных операций - замещения или укрепления тканей, дефектов стенки полых органов или стенок серозных полостей [8]. Это может быть достигнуто как за счет разработки новых способов плетения полотна материала импланта, так и за счет включения в нити имплантов новых типов синтетических волокон.

Выводы

1. Образцы «Линтекс» имеют минимальные поверхностную плотность, жесткость, максимальную шероховатость и достаточную прочность (см. табл. 1), следовательно, по физико-механическим свойствам изученные образцы (от наиболее негативного к наиболее позитивному) можно выстроить следующим образом: «B. Braun» => «Север» => «Линтекс».

2. Смена стадий воспалительной реакции быстрее протекает в группе с имплантацией образцов фирмы «Линтекс», что проявляется статистически достоверным увеличением относительного количества фибробластов, фиброцитов и уменьшением моноцитов, макрофагов, нейтрофилов, эозинофи-лов, лимфоцитов в клеточном слое капсулы.

3. Поверхностная плотность и масса образца прямо коррелируют с долей макрофагов и моноцитов в клеточном слое капсулы, а толщина и объемная пористость лавсановых протезов - обратно; толщина и поверхностная плотность имплантов находятся в прямой корреляционной зависимости от доли клеток фибробластического ряда.

Литература

1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия : руководство. М. : Медицина, 1990. 384 с.

2. Алуханян О.А., Винокур А.А., Горбов Л.В. Сравнительная характеристика новых образцов сосудистых заплат из политетрафторэтилена в эксперименте // Ангиология и сосуд. хир. 2012. № 2. С. 45-51.

3. Новикова С.П. и др. Анализ физико-механических и структурных характеристик протезов кровеносных сосудов // Груд. и серд.-сосуд. хир. 2012. № 4. С. 27-33.

4. Биосовместимость / под ред. В.И. Севастьянова. М., 1999.

368 с.

5. Бызов Д.В. и др. Биотехнологические аспекты создания трансплантатов артерий // Б1отехнолопя. 2010. Т. 3, № 3. С. 23-32.

6. Бокерия Л.А., Стрижакова Л.Л., Юшкевич Т.И. Роль экспериментальных исследований в развитии новых направлений и инновационных технологий // Бюл. НЦССХ им. А.Н. Бакулева. 2013. Т. 14, № 5. С. 4-11.

7. Винокур А.А. Сравнительное изучение новых сосудистых заплат из политетрафторэтилена (экспериментальное исследование) : дис. ... канд. мед. наук : М., 2011. 101 с.

8. Жуковский В.А. Новые направления и возможности совершенствования полимерных имплантатов для реконструктивно-восстановительной хирургии // Современные технологии и возможности реконструктивно-восстановительной и эстетической хирургии : материалы II Междунар. науч. конф. М., 2010. С. 90-93.

9. Лазаренко С.В. и др. Отличительные особенности реакции tunica media и tunica intima аорты на имплантацию различных лавсановых протезов // Курский научно-практический вестник «Человек и его здоровье». 2014. № 4. С. 11-18.

10. Липатов В.А. и др. Физико-механические и структурные свойства имплантатов, предназначенных для операций на магистральных сосудах // Фундамент. исслед. 2015. № 11. С. 92-98.

11. 11. Yasim A., Gui M., CiraLik H., Ergun Y. Gelatin-sealed Dacron graft is not more susceptible to MRSA infection than PTFE graft // Eur. J. Vasc. Endovasc. Surg. 2006. Vol. 32, N 4. P. 425-430.

12. 12. Kao W.J., Hiltner A., Anderson J.M., Lodoen G.A. Theoretical analysis of in vivo macrophage adhesion and foreign body giant cell formation in strained poly (ether-urethane urea) elastomers // J. Biomed. Mater. Res. 1994. Vol. 28. P. 819-829.

13. 13. Yiannis K.N., Scotton C.J., MacKinnon A.C., Goldin R.D. et al. Proteinase activated receptor 1 mediated fibrosis in a mouse model of liver injury: a role for bone marrow derived macrophages // PloS One. 2014. Vol. 9, N 1. Article ID e86241.

References

1. Avtaridilov G.G. Medical morphometry: a guide. Moscow: Meditsina, 1990: 384 p.

2. Alukhanyan O.A., Vinokur A.A., Gorbov L.V. Comparative characteristic of new models of vascular patches of polytetra-fluoroethylene in the experiment. Angiologiya i sosudistaya kh-irurgiya [Angiology and Vascular Surgery]. 2012; Vol. 2: 45-51.

3. Novikov S. P., etc. Analysis of physical-mechanical and structural characteristics of artificial blood vessels Grudnaya i serdechno-sosudistaya khirurgiya [Thoracic and Cardiovascular Surgery]. 2012; Vol. 4: 27-33.

4. . Biocompatibility. Under the editorship of V. I. Sevastyanov. Moscow, 1999: 368 p.

5. Byzov D.V., et al. Biotechnological aspects of creating grafts of arteries. Biotekhnologiya [Biotechnology]. 2010; Vol. 3

6. Bokeriya L.A., Strizhakova L.L., Yushkevich T.I. The role of experimental studies in the development of new directions and innovative technologies. Byul. NTsSSKh im. A.N. Bakuleva [A.N. Bakoulev Scientific Center for Cardiovascular Surgery]. 2013; Vol. 14

7. Vinokur A.A. Comparative study of new vascular patches of polytetrafluoroethylene

8. Zhukovsky V.A. New directions and opportunities for improving polymeric implants for reconstructive surgery. Modern technologies and possibilities of reconstructive and aesthetic surgery : materials of the II Intern. scientific. conf. Moscow, 2010: 90-3.

9. Lazarenko S.V., et al. Distinctive features of the reaction of the tunica media and tunica intima of the aorta to the implantation of prostheses of various lavas. Kursk Scientific and practical bulletin "Man and his health". 2014; Vol. 4: 11-8.

10. Lipatov V. A., etc. Physico-mechanical and structural properties of implants designed for operations on the great vessels. Fundamental'nye Issledovaniya [Fundamental Research]. 2015; Vol. 11: 92-8.

11. Yasim A., Gul M., Ciralik H., Ergun Y. Gelatin-sealed Dacron graft is not more susceptible to MRSA infection than PTFE graft. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2006; Vol. 32 (4): 425-30.

12. Kao W.J., Hiltner A., Anderson J.M., Lodoen G.A. Theoretical analysis of in vivo macrophage adhesion and foreign body giant cell formation in strained poly (ether-urethane urea) elastomers. J Biomed Mater Res. 1994; Vol. 28: 819-29.

13. Yiannis K.N., Scotton C.J., MacKinnon A.C., Goldin R.D. et al. Proteinase activated receptor 1 mediated fibrosis in a mouse model of liver injury: a role for bone marrow derived macrophages. PloS One. 2014; Vol. 9 (1). Article ID e86241.

АБДОМИНАЛЬНАЯ ХИРУРГИЯ

ВОЗМОЖНОСТИ ПРИМЕНЕНИЯ МАЛОИНВАЗИВНЫХ ТЕХНОЛОГИЙ ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ ВАРИКОЗНО РАСШИРЕННЫХ ВЕН ПИЩЕВОДА И ЖЕЛУДКА ПРИ СИНДРОМЕ ПОРТАЛЬНОЙ ГИПЕРТЕНЗИИ

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ

Зимагулов Рустем Талгатович -кандидат медицинских наук, заведующий хирургическим отделением ГАУЗ «Межрегиональный клинико-диагностический центр» Минздрава Республики Татарстан (Казань) E-mail: rzimagulov@mail.ru

Р.Т. Зимагулов, Л.Е. Славин, И.М. Сайфутдинов, С.Б. Сангаджиев, М.К. Давлиев, А.Ф. Якупов, Р.Р. Яхин, А.З. Замалеев, А.Г. Подшивалов

ГАУЗ «Межрегиональный клинико-диагностический центр» Минздрава Республики Татарстан, Казань

Ключевые слова:

синдром портальной гипертензии, варикозное расширение вен пищевода и желудка, эндоскопическое лигирование, лапароскопия, деваскуляризация желудка

С 2012 по 2015 г. были госпитализированы 108 пациентов с синдромом портальной гипертензии, осложненным варикозным расширением вен пищевода и желудка. Эндоскопическое лигирование варикозно расширенных вен пищевода выполнено 75 пациентам, лапароскопическая деваскуляризация желудка - 6 пациентам, портокавальное шунтирование - 3 пациентам, ла-паротомия, деваскуляризация желудка (без гастротомии) - 3 пациентам, операция Пациора -2 пациентам, 3 пациентам проведено TIPS.

Показания и противопоказания к данной методике находятся в стадии разработки. В ряде случаев, в частности при невозможности выполнения шунтирующих вмешательств, лапароскопическая деваскуляризация желудка может быть альтернативой операции Па-циора.

Клин. и эксперимент. хир. Журн. им. акад. Б.В. Петровского. 2016. № 1. С. 58-61.

Possible applications of mini-invasive techniques for the esophageal and gastric varices treatment in theportal hypertension syndrome

CORRESPONDENCE

Zimagulov Rustem T. - MD, Head of the Surgical Department, Interregional Clinical Diagnostic Center of Ministry of Healthcare of the Republic of Tatarstan (Kazan) E-mail: rzimagulov@mail.ru

Keywords:

portal hypertension syndrome, esophageal and gastric varices, endoscopic ligation, laparoscopy, gastric devascularization

R.T. Zimagulov, L.E. Slavin, I.M. Sayfutdinov, S.B. Sangadzhiev, M.K. Davliev, A.F. Yakupov, R.R. Yakhin, A.Z. Zamaleev, A.G. Podshivalov

Interregional Clinical Diagnostic Center of Ministry of Healthcare of the Republic of Tatarstan, Kazan

During the period from 2012 to 2015 108 patients with portal hypertension complicated with esophageal and gastric varices were hospitalized. Endoscopic variceal ligation was performed in 75 patients, laparoscopic gastric devascularization - in 6 patients, portocaval bypass -in 3 patients, surgeries: laparotomy, gastric devascularization (without gastrotomy) - in 3 patients, Patsior procedure - in 2 patients; TIPS - 3 patients.

Indications and contraindications for this method are under development. In some cases, laparoscopic gastric devascularization could be an alternative to Patsior procedure, with inability to perform bypass surgery.

Clin. Experiment. Surg. Petrovsky J. 2016. N 1. Р. 58-61.

Угроза желудочно-пищеводного кровотечения является основным, но, как правило, запоздалым показанием к хирургическому лечению синдрома портальной гипертензии у 25-35% больных циррозом печени [3]. Летальность при первом пищеводно-желудочном кровотечении достигает 50% [4]. У 60% пациентов, перенесших кровотечение из варикозно расширенных вен пищевода и желудка в прошлом, в течение первого года возникает рецидив [5]. От него погибают еще от 30 до 70% больных. Таким образом, именно гастроэзофагеальные кровотечения делают портальную гипертензию у больных циррозом печени хирургической проблемой [1, 6]. Неудовлетворительные результаты хирургического лечения у больных с угрозой портального кровотечения послужили толчком для развития малоинвазивных эндоскопических методик [2, 7].

В своем сообщении мы хотим поделиться результатами комбинированного лечения больных с варикозным расширением вен пищевода и желудка и угрозой портального кровотечения на фоне синдрома портальной ги-пертензии, находившихся на лечении в хирургическом отделении ГАУЗ «Межрегиональный клинико-диагностический центр» Минздрава Республики Татарстан. С 2012 по 2015 г.

были госпитализированы 108 пациентов с синдромом портальной гипертензии, осложненным варикозным расширением вен пищевода и желудка.

Эндоскопическое лигирование варикозно расширенных вен пищевода выполнено 75 пациентам, лапароскопическая деваскуляризация желудка -6 пациентам, портокавальное шунтирование -3 пациентам, лапаротомия, деваскуляризация желудка (без гастротомии) - 3 пациентам, операция Пациора - 2 пациентам; 3 пациентам проведено TIPS.

На первом этапе мы проводили лапароскопическую деваскуляризацию желудка под интубаци-онным наркозом с применением ультразвукового скальпеля для уменьшения притока крови ко дну желудка и нижней трети пищевода путем пересечения коротких желудочных сосудов, левой желудочной артерии и вен, а также правых желудочно-саль-никовых сосудов (рис. 1).

Как правило, послеоперационный период у наших пациентов протекал без особенностей. Больные получали инфузионную терапию (нутритив-ная поддержка, коррекция водно-электролитных нарушений), анальгетики (как правило, ненаркотические), гепатопротекторы (при необходимости в зависимости от активности цирротического процесса), антисекреторные препараты, гормональ-

-

' ' ТшИ»

Рис. 1. Этапы лапароскопической деваскуляризации желудка

W.s •