Гистологические изменения в сетчатке глаза куриного эмбриона на второй и третьей неделе антенатального развития

3. Айбазов А.М.М., Сеитов М.С., Мамонтова Т.В. Перспективная биотехнология воспроизводства овец и коз // Сборник научных трудов Всероссийского научно-исследовательского института овцеводства и козоводства. 2014. Т. 1. № 7 (1). С. 3-7.

4. Айбазов М.М., Трубникова П.В., Коваленко Д.В. Воспроизводительные функции баранов австралийской селекции в адаптационном аспекте // Зоотехния. 2007. № 5. С. 29-30.

5. Айбазов А.М. К вопросу о сохранении генофонда и биологической полноценности криоконсервированной спермы / А.М. Айбазов, П.В. Аксенова, К.К. Ашурбегов, Д.В. Коваленко // Сборник научных трудов Всероссийского научно-исследовательского института овцеводства и козоводства. 2011. Т. 1. № 4-1. С. 24-29.

6. Айбазов М.М., Коваленко Д.В., Аксенова П.В. Биологическая полноценность глубокозамороженной спермы баранов в зависимости от сроков хранения // Сборник научных трудов Всероссийского научно-исследовательского института овцеводства и козоводства. 2012. Т. 2. № 1. С. 140—143.

7. Аксенова П.В., Айбазов М.М. Половая активность и спермопродукция козлов-производителей в зависимости от режима эксплуатации // Российский ветеринарный журнал. 2012. № 1. С. 6-7.

8. Шарипов Х.К. Сравнительный анализ воспроизводительных качеств полновозрастных маток и маток-первоокоток эдильбаевской породы в период их адаптации в условиях Оренбуржья / Х.К. Шарипов, С.А. Белов, М.С. Сеитов, Ш.М. Биктеев, И.В. Ненашев // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2016. № 5 (61). С. 160-161.

Гистологические изменения в сетчатке глаза куриного эмбриона на второй и третьей неделе антенатального развития

Ф.И. Сулейманов, д.в.н., профессор, О.С. Дмитриева,

аспирантка, Т.М. Половинцева, к.б.н., ФГБОУ ВО Великолукская ГСХА

Птицеводство является одной из наиболее быстро развивающихся и экономически эффективных отраслей сельского хозяйства, которое обеспечивает получение диетических продуктов питания с относительно невысокой стоимостью. Комплекс зоотехнических мероприятий, таких, как селекция, воспроизводство, кормление и выращивание, сводится к получению птиц, дающих большое количество дешёвой продукции высокого качества, что играет заметную роль в национальной экономике России и является важным источником животного белка.

Глаза — наиболее развитые органы чувств у птиц и важный анализатор для ориентации в пространстве, поиске корма и воды, информации о длительности светового дня. Их зрительный аппарат во многих отношениях превосходит органы зрения других животных, обеспечивает до 80% информации об окружающем мире и отвечает непосредственно за яичную и мясную продуктивность кур. Характерно, что среди птиц не имеется форм с недоразвитыми глазами, тогда как такие формы встречаются среди всех классов позвоночных.

Зрительный анализатор птиц выполняет три наиболее важные функции: кодирование длины волны и интенсивности света, восприятие формы предмета, ясное видение за счёт работы аккомодационного аппарата. Свет для птиц является одним из основных факторов жизнеобеспечения и оказывает влияние на их рост, развитие, продуктивные и репродуктивные показатели [1].

В статьях разных авторов описывается влияние различных химических и физических факторов (влияние растворов, лекарственных препаратов, лазерных и магнитных облучений, смена температурного режима) на инкубационное яйцо [2, 3].

Благоприятное влияние на развитие зрительного анализатора птиц оказывают многие лекарственные препараты. В настоящей работе изучено влияние раствора витамина В2 (рибофлавина) с концентрацией 0,002%.

Материал и методы исследования. Исследование проводили в научной лаборатории Великолукской ГСХА на яйцах, приобретённых в ООО «Племенная птицефабрика «Лебяжье» Ленинградской области.

Объектом исследования были яйца кур кросса ХАББАРД F15 УАЙТ. Инкубацию проводили в инкубаторе ИБЛ-770. Для исследования отбирали яйца по результатам оценки их качества и пригодности к инкубации по массе, целостности скорлупы, степени мраморности. Масса яиц составляла от 52 до 61 г.

Инкубационные яйца в количестве 600 шт. были разделены на опытную и контрольную группы. Яйца опытной группы опускали в раствор витамина рибофлавина с концентрацией 0,002% по способу Ф.И. Сулейманова и О.В. Вавиловой (2010) [4, 5]. Прогретые в инкубаторе яйца помещали в раствор витамина В2 комнатной температуры и выдерживали 20 мин. Яйца контрольной группы предын-кубационной обработке не подвергались.

На протяжении инкубации температура воздуха в инкубаторе была стабильной и составляла 37,6±0,1°С, относительная влажность воздуха — 54,0—57,0%, что соответствовало рекомендациям ВНИТИП по инкубации яиц сельскохозяйственной птицы.

В ходе работы проводили биологический контроль путём овоскопирования, что позволило своевременно удалять неоплодотворённые яйца, яйца с кровяными кольцами, замершими эмбрионами [6].

Зрительный анализатор эмбрионов исследовали через каждый час в течение первой недели развития и на 10-, 13-, 15-, 17- и 20-е сут. инкубации. Производили энуклеирование глаз в каждом из указанных возрастных интервалов у трёх эмбрионов из каждой исследованной группы.

Определение массы тела эмбриона и глаз осуществляли на весах HL-400 с погрешностью ±0,1 мг, линейные измерения — штангенциркулем Каё^Иаскс точностью ±0,01 мм. Гистологически и морфометрически были исследованы глазные яблоки эмбрионов: форма, размер глаза, сетчатки, хрусталика и других структурных элементов. В данной статье приведены сведения о структурных изменениях сетчатки глаза у эмбрионов кур на 10-, 13-, 15-, 17- и 20-е сут. развития.

Результаты исследования. Целью исследования было изучение структурных элементов глаза у эмбрионов кур в возрастном аспекте и при воздействии на зрительный анализатор витамина В2 (рибофлавина).

Сетчатка — основная часть глаза, воспринимающая зрительные изображения, располагается между пигментным эпителием и стекловидным телом. В сетчатке отчётливо выделяются десять слоёв. Свет проходит сквозь роговицу, зрачок, хрусталик, стекловидное тело и сетчатку, отражается от пигментного слоя. К этому слою направлены отростки зрительных клеток (ядра их расположены в наружном ядерном слое), благодаря этому птицы воспринимают свет. В сетчатке находятся такие структурные элементы, как палочки и колбочки (палочки отвечают за чёрно-белое изображение, колбочки за цветное).

Сетчатка глаза птиц значительно толще, чем у млекопитающих, и элементы её ярко выражены. У птиц в сетчатке глаза имеются 2—3 ямки, которые способствуют остроте зрения.

При исследовании слоёв сетчатки глаз эмбрионов опытной группы (влияние раствора витамина В2) их толщина оказалась больше, чем в контрольной группе. Это изменение связано с увеличением количества клеток на единицу площади.

На гистологических срезах, исследованных на 10-е сут. развития глаза куриного эмбриона, ярко выражены сформировавшиеся десять слоёв сетчатой оболочки в опытной группе, в контрольной группе видно восемь слоёв сетчатой оболочки. Наиболее тонким слоем оказался слой нервных волокон. Самыми сформированными на данном этапе развития оказались ганглиозный, наружный ядерный и внутренний ядерный слои (рис. 1, 2). Данные по толщине этих слоёв представлены в таблице.

Графические изображениях хорошо демонстрируют влияние рибофлавина на развитие слоёв сетчатой оболочки (рис. 3—5).

Толщина слоёв сетчатой оболочки глаза куриного эмбриона в антенатальном онтогенезе, мкм

Период Ганглиозный слой

исследования, группа

нед. опытная контрольная

10 24,16±0,36* 23,39±0,34

13 25,38±0,52* 24,65±0,38

15 26,05±0,49 25,36±0,92

17 30,53±0,50* 29,44±0,59

20 31,07±0,61 30,19±0,99

Наружный ядерный слой

10 1,09±0,31 0,79±0,38

13 3,16±0,65 2,68±0,57

15 6,10±1,02 5,44±1,03

17 7,34±0,61 6,52±0,84

20 9,36±0,65 8,610±0,74

Внутренний ядерный слой

10 14,47±0,30* 13,87±0,26

13 15,11±0,62 14,48±0,46

15 16,25±0,66 15,56±1,15

17 18,01±0,90 17,41±0,83

20 19,00±0,47 18,54±0,62

Рис. 1 - Сетчатка, опытная группа, 10-е сут.:

1 - пигментный слой; 2 - фоторецепторный слой;

3 - наружная глиальная пограничная мембрана;

4 - наружный ядерный слой; 5 - наружный сетчатый слой; 6 - внутренний ядерный слой; 7 - внутренний сетчатый слой; 8 - ганглиозный слой; 9 - слой нервных волокон; 10 - внутренняя глиальная пограничная мембрана. Окраска гематоксилин-эозином. Увеличение х40

Рис. 2 - Сетчатка, контрольная группа, 10-е сут.:

1 - пигментный слой; 2 - фоторецепторный слой;

3 - наружная глиальная пограничная мембрана;

4 - наружный ядерный слой; 5 - наружный сетчатый слой; 6 - внутренний ядерный слой; 7 -внутренний сетчатый слой; 8 - ганглиозный слой. Окраска гематоксилин-эозином. Увеличение х40

контроль

"ОПЫТ1 —«—контроль

12.5 11,5 10.5 9.5 8,5

4,5

3,5

Рис. 3 - Толщина фоторецепторного слоя сетчатой оболочки глаза куриного эмбриона

Рис. 4 - Толщина наружного сетчатого слоя сетчатой оболочки глаза куриного эмбриона

Например, фоторецепторный слой под влиянием витамина В2 (опытная группа) опережает в росте фоторецепторный слой сетчатой оболочки глаза куриного эмбриона контрольной группы. С 10 по 15-е сут. идёт активный рост слоя, с 15 по 17-е сут. скорость роста снижается. Самый активный рост наблюдался с 17 по 20-е сут. Опытная группа превосходила контрольную на 10-е сут. на 44%, 13-е — 21%, 15-е — 13,3%, 17-е — 11,3%, 20-е — на 10,3%.

Наружный сетчатый слой имел те же этапы активного роста — 10—15-е сут. 17—20-е сут.). По данному показателю опытная группа превосходила контрольную на 10-е сут. на 21,3%, 13-е — 14%, 15-е — 4%, 17-е — 6,2%, 20-е — на 6,1%.

Развитие внутреннего сетчатого слоя с 10 по 20-е сут. происходило более равномерно по срав-

Рис. 5 - Толщина внутреннего сетчатого слоя сетчатой оболочки глаза куриного эмбриона

нению с развитием ранее описанных слоёв. Толщина внутреннего сетчатого слоя глаза куриного эмбриона опытной группы превосходила толщину слоя в контрольной группе на 10-е сут. на 4,3%, 13-е — 4,3%, 15-е — 4,4%, 17-е — 4%, 20-е — на 3%.

По результатам исследования можно сделать вывод о том, что витамин В2 оказал положительное действие на сетчатую оболочку глаза, а именно на количество клеток на единицу площади, что привело к увеличению толщины слоёв. Разница в толщине всех 10 слоёв сетчатки у эмбрионов кур опытной группы по отношению к контрольной группе была заметно больше, что подтверждается морфометри-ческими и гистологическими исследованиями.

Литература

1. Гладин Д. Светодиодное освещение: только преимущества // Животноводство России. 2012. № 9. С. 62—63.

2. Суйя Е.В. Влияние физических факторов на развитие куриного эмбриона мясного кросса // Известия Великолукской государственной сельскохозяйственной академии. 2016. № 1. С. 2—6.

3. Суйя Е.В., Сулейманов Ф.И. Морфометрические изменения в организме эмбрионов кур в онтогенезе и при воздействии магнитного поля и лазерного излучения // Иппология и ветеринария. 2016. № 2 (20). С. 126—131.

4. Сулейманов Ф.И., Ширяев С.А., Иванова Т.Н. Онтогенез куриного эмбриона и его связь с морфологическими и биохимическими показателями роста и развития // Наука о проблемах инновационного развития АПК: матер. между-нар. науч.-практич. конф. Великие Луки, 2010. С. 64—66.

5. Сулейманов Ф.И., Вавилова О.В. Стимуляция эмбрионального развития иммунокомпетентных органов у кур // Птица и птицепродукты. 2010. № 1. С. 39—41.

6. Половинцева Т.М. Рост и развитие органов движения кур в антенатальном онтогенезе при разных режимах инкубации: дисс. ... канд. биол. наук. М., 2010. 125 с.

Коадаптация механизмов полового созревания самцов и самок малой лесной мыши (Sylvaemus uralensis Pallas, 1811) при различной плотности элементарных популяций

Д.А. Боков, н.с, ФГБОУ ВО Оренбургский ГМУ

Половое созревание млекопитающих (в том числе грызунов) как экологическое явление выражает особенности вступления зверьков из

целостных функционально-репродуктивных групп в размножение [1—3]. Исходя из экологической трактовки половое созревание определяет уровень репродуктивной активности животных, воспроизводительно-динамические свойства