Криптические виды растений и их выявление по генетической дифференциации популяций

УДК 575.858:577.21

© В. с. шнеер, В. В. коцеруба

Ботанический институт им. В. Л. Комарова РАН, Санкт-Петербург

криптические виды известны давно, но в последние годы все чаще и в больших количествах они выявляются у животных, грибов, водорослей благодаря исследованиям внутривидовой генетической дифференциации с помощью методов, основанных на пцр. реже они обнаруживаются у растений. В обзоре сведены и проанализированы работы, в которых у видов споровых и семенных растений выявлены генетически дифференцированные линии, которые могут рассматриваться как криптические виды. обсуждены причины их сравнительно редких находок у растений, обстоятельства, сопутствующие таким находкам, распространение криптических видов, природа возможных различий между ними и другие факторы.

С ключевые слова: криптические виды; генетическая дифференциация; популяции; растения.

Поступила в редакцию 24.01.2014 Принята к публикации 25.09.2014

криптические виды растении и их выявление по генетической дифференциации популяций

ВВЕДЕНИЕ

Криптическими (или скрытыми) называют виды, морфологически настолько сходные, что при таксономическом анализе входящие в них особи были отнесены к одному виду, но позже, при более детальном анализе, было выяснено, что они репродуктивно изолированы и различаются какими-либо другими особенностями (поведенческими, экологическими, цитогенетичес-кими и др.). Описание форм, подходящих под описание криптических видов, можно прочесть еще у Ч. Дарвина (Darwin, 1859) — «формы, обладающие признаками вида, но настолько сходные с другим видом или связанные с ним рядом промежуточных градаций, что натуралисты не склонны относить их к отдельному виду». Однако сам термин «криптический» применительно к виду впервые появился в работе Дарлингтона (1940). Вскоре Э. Майр (Mayr, 1942) предложил использовать (возможно, неудачно — см. ниже) термин sibling species как виды-двойники — виды, которые невозможно распознать по морфологическим различиям, по крайней мере, что важно подчеркнуть, при обычном таксономическом анализе. Существование криптических видов было одним из главных аргументов за использование биологического критерия вида (Mayr, 1963). Нередко более пристальное изучение таких видов, привлечение дополнительных морфолого-анатомических признаков, все же позволяло обнаружить между ними небольшие отличия, тогда их называли «псевдо-криптическими», «псевдо-двойниками» или «полукрипти-ческими» (Knowlton, 1993; Dong et al., 2012). Таким образом, для некоторых видов статус «криптических» можно считать временным но важным этапом в ходе их изучения.

Хотя термин «виды-двойники» редко используется нашими ботаниками, хочется отметить, какая это удачная замена (скорее, чем перевод) английского «sibling species». Последнее было введено Майром (1942), с уточняющей оговоркой о широком понимании, но часто используется как синоним термина «криптический вид». Между тем, как неоднократно указывалось (Steyskal, 1972; Knowlton, 1993; Bickford et al., 2007), главный смысл в термине «sibling» — генетическая близость. Энтомолог G. Steyskal (1972) полагал, что само предложение термина sibling в значении «виды-двойники» и его широкое распространение является искажением (perversion) основного смысла термина, так как в нем упор на родство, а не на сходство. Всё же недавно было предложено (Bickford et al., 2007) использовать sibling species в значении «сестринские криптические виды» в отличие от sister species — сестринские виды вообще. Однако ещё Steyskal (1972) подчёркивал, что если виды сестринские, они непременно и «siblings». Нам представляется, что в связи с открывшейся в последние годы частой встречаемостью крип-тических видов, следовало бы рекомендовать использование именно этого термина (cryptic species) в статьях на английском. При этом стоит учесть, что именно несестринский статус выявляемых внутривидовых линий (немонофи-летичность вида) часто является аргументом в пользу трактовки этих линий как видов (а не подвидов или разновидностей) в соответствии с филогенетической или генеалогической концепциями вида. Однако часто криптическими видами называют и сестринские линии. Свидетельством того, что речь в данном случае идет именно о видообразовании, считают наличие явной фило-

генетической структуры (высокий уровень дивергенции последовательностей и четкое разделение линий с высокой статистической поддержкой) и дополнительные географические, экологические или иные различия.

В настоящее время важным свидетельством наличия криптических видов признается выраженная внутривидовая генетическая дифференциация, первым молекулярным методом выявления которой был электрофо-ретический анализ изозимов, затем добавились методы анализа нуклеотидных последовательностей ДНК.

Ситуация с выявлением криптических видов особенно резко поменялась с внедрением ПЦР (полиме-разной цепной реакции), когда стало возможным массово секвенировать протяженные участки геномов, что стимулировало молекулярно-филогенетические исследования, в том числе на видовом уровне. От использования в работах отдельных образцов, представляющих вид, перешли к анализу множества их. Такая возможность предопределила появление подхода, названного ДНК-штрихкодирование, заключающегося в секвениро-вании у разных (конечная цель — всех) видов определенного (ДНК-штрихкодового) участка генома, нуклео-тидная последовательность которого у всех видов разная и может обеспечить молекулярную идентификацию вида (Hebert et al., 2003, см. Шнеер, 2009). Подход предполагает, в идеале, чтобы ДНК-штрихкод вида был определен на основе анализа множества образцов, представляющих всё его эколого-географическое разнообразие. Устанавливаются определенные пороговые значения внутривидовой дивергенции для данного участка генома (и для данной таксономической группы), при превышении которых следует рассмотреть возможность, что это может быть не один вид. Кроме того, как упоминалось выше, выявляемая немонофилия образцов какого-либо вида при построении филогенетического древа по сек-венированным последовательностям служит указанием на возможное наличие криптических видов.

В результате развертывания работ по ДНК-штрих-кодированию появилось множество сообщений о выявлении в пределах одного вида в разных группах животных молекулярно дивергентных линий, которые могут оказаться отдельными видами. Было замечено, что количество обнаруживаемых криптических видов у животных увеличивается в последние годы экспоненциально (Bickford et al., 2007), и эта тенденция не ослабевает. Много их находят в тех группах, где скудны морфологические признаки, например, у земляных червей, причем в разных родах и на разных территориях (Novo et al., 2010), и особенно много — у очень мелких организмов, например, микроскопических простейших (Harper et al., 2009).

Но и у более крупных животных криптические виды встречаются гораздо чаще, чем это ранее предполагали. Их находят даже в давно известных и хорошо изученных видах. Часто в одном виде обнаруживается по 2—3 вида,

иногда их число превышает десяток. Их много у беспозвоночных, наибольшее количество пока найдено у ракообразных остракод Eucypris virens — 35 (Koenders et al., 2012). Немало их обнаруживается и у позвоночных, например, в виде рыб Schindleria praematura найдено 14 видов (Kon et al., 2007), у лягушки Limnonectes kuhlii — 16 (McLeod, 2010), и предполагают, что их много даже в таких, лучше других исследованных группах, как млекопитающие.

Часто криптические виды находят на малоисследованных территориях, например, в бассейне Амазонки (Fouquet et al., 2007), и особенно часто — в недостаточно изученных средах, водной, почвенной (Knowlton, 1993). Последнее в полной мере относится к грибам и водорослям, многие из которых живут в почвенной и водной среде и, к тому же, часто представлены очень мелкими организмами. Сообщений об обнаружении крипти-ческих видов у грибов очень много (Pavlic et al., 2009; Bennett et al., 2011). У них, впрочем, и до появления молекулярных методов скрупулезное изучение отдельных видов на большом и представительном материале почти в каждом случае выявляло репродуктивно изолированные линии, часто различающиеся по патогенности, условиям роста или по виду организма-хозяина (Hawksworth, Rossman, 1997; Михайлова и др., 2009). Допускают, что у водорослей около половины всех неописанных еще видов может быть представлено криптическими видами (Guiry, 2012). Их находят особенно много у красных (Saunders, 2005; Payo et al., 2012), но также у зеленых (Fawley et al., 2005), диатомовых (Amato et al., 2007), бурых (Poong et al., 2013) водорослей.

Авторы обзора-сводки по криптическим видам отметили, что на удивление мало сообщений об их обнаружении у растений (Bickford et al., 2007), хотя выдающийся ботаник-эволюционист В. Грант допускал, что виды-двойники встречаются во многих видах высших растений, особенно в сочетании с полиплоидией (Grant, 1971). Далее в обзоре будет рассмотрено выявление криптических видов у споровых и семенных растений путем исследования внутривидовой молекулярной дифференциации.

ПРИЧИНЫ РЕДКИХ НАХОДОК КРИПТИЧЕСКИХ ВИДОВ у РАСТЕНИЙ

Впрочем, сразу укажем, что поиск статей для обзора (Bickford et al., 2007) велся по ключевым словам «cryptic species» и «sibling species». Однако знакомство с литературой показывает, что эти термины (особенно второй) более популярны у зоологов, тогда как ботаники не всегда прибегают к ним, констатируя в работе выявление возможного нового вида в пределах существовавшего, даже в тех случаях когда дифференцирующие морфологические признаки не найдены. Так, филогения семейства Apiaceae (Зонтичные) очень активно изучается молекулярными методами и часто исследуется много об-

разцов каждого вида. Считается, что виды в нем неплохо разграничены. Мы взяли такие работы по 5 небольшим родам и обнаружили, что в четырех из них у одного вида была обнаружена выраженная внутривидовая дивергенция по ITS участку, позволившая авторам предположить наличие новых видов (Downie et al., 2004; Lee, Downie, 2006; Feist, Downie, 2008). Изучение нуклеотидных последовательностей у представительной выборки ряда видов бобовых из рода Coursetia позволило обнаружить наличие двух новых видов (Duno de Stefano et al., 2010; Queiroz, Lavin, 2011). Исследование 7 видов злаков из рода Cynodon выявило более 7 групп гаплотипов (по хлоропластным участкам), авторы работы предположили, что две группы могут представлять новые виды (Jewell et al., 2012). В упомянутых случаях новые виды не были названы криптическими, поэтому они не попадают в число соответствующих статей при поиске по ключевым словам (и не включены в нашу таблицу), по-видимому, немало подобных случаев и в работах по другим таксонам.

Авторы, обнаруживающие криптические виды у растений, обсуждая причины их редких находок в молекулярных исследованиях, допускают, что классификации растений, основанные на морфологии, высоко надежны (Okuyama, Kato, 2009), но подчеркивают, что экспериментальных работ такого рода явно недостаточно. Число исследованных образцов может быть очень важным фактором. Сообщения о нахождении криптических видов у животных, как правило, основаны на изучении большого числа образцов. К сожалению, для растений нет таких надежных вариабельных молекулярных маркеров, как для животных. У большинства животных высокая и относительно стабильная по темпам накопления вариабельность присуща митохондриальным генам, один из которых (половина субъединицы гена цитохромок-сидазы СО1) используется в качестве ДНК-штрихкода в большинстве таксономических групп. У большинства растений митохондриальная ДНК эволюционирует медленно и неравномерно (подвержена частым перестройкам, что не позволяет использовать универсальные праймеры для амплификации). У растений на видовом уровне наиболее информативными являются хлороп-ластные некодирующие последовательности (интроны и спейсеры), а также ядерные внутренние и внешние транскрибируемые спейсеры рибосомальных генов (ITS1, ITS2 и ETS). Высоко вариабельны ядерные низ-кокопийные гены, но последние гораздо успешнее ам-плифицируются из свежего материала, чем из гербар-ного, что ограничивает их использование. Кроме того, уровень их вариабельности может сильно варьировать даже у близких видов — участок, демонстрирующий высокую вариабельность в одной группе видов растений, не обязательно будет таковым в другой группе, поэтому приходится проводить предварительный поиск подходящих маркеров, что тормозит темпы исследований.

В некоторых случаях авторы, при нахождении внутривидовой дифференциации, констатировали, что для окончательного решения о статусе разных линий необходимо исследование дополнительных образцов (Särkinen et al., 2011; Kadereit et al., 2012). Есть основания полагать, что по мере увеличения выборок число обнаруживаемых криптических видов растений будет расти быстрее.

КРИПТИЧЕСКИЕ ВИДЫ У СПОРОВЫХ РАСТЕНИЙ

Тем не менее надо оговорить, что у споровых растений — мохообразных и папоротников, криптичес-кие виды выявлялись молекулярными методами уже давно — поначалу методом электрофореза изозимов. При некоторой скудости морфологических признаков мохообразных построить основанную на них систему очень непросто. Некоторые виды, при единообразии морфологических признаков, занимают очень широкие ареалы, встречаясь на разных континентах, в различных условиях, и вопрос о том, действительно ли столь разобщенные популяции представляют один вид, занимал бри-ологов давно. Уже к 2001 году методом электрофореза энзимов были достоверно выявлены криптические виды не менее чем в 7 видах мхов (Fontinalis antipyretica, Mielichhoferia elongata, M. mielichhoferiana, Mnium hornum, Neckerapennata, Plagiomnium ciliare, Polytri-chum commune) и 7 видах печеночниц (Aneura pinguis, Conocephalum conicum, Marchantia polymorpha, Pel-lia endivifolia, Porella cordeana, Reboulia hemispha-erica, Riccia dictiospora). Эти случаи описаны в обзорной работе (Shaw, 2001). При этом было найдено, что, например, представитель маршанциевых Conocephalum conicum включает 6—7 морфологически очень сходных видов, генетическое расстояние между которыми больше, чем между многими морфологически различными видами маршанциевых.

Оценка дивергенции последовательностей участков ДНК подтвердила многие результаты, полученные электрофоретически, и расширила список предполагаемых находок криптических видов у мхов: Pyrrhobrium mnioides (McDaniel, Shaw, 2003), в нескольких видах рода Campylopus (Stech, Wagner, 2005), у Grimmia laevigata (Fernandez et al., 2006), Hamatocaulis vernicosus (Hedenäas, Eldenäas, 2007), Leptodon corsicus (Sotiaux et al., 2009). В видовом комплексе Orthotrichum consimile было обнаружено 4 криптических вида (Medina et al., 2012). Много их выявлено у печеночников: Pellia epiphylla (Fiedorow et al., 2001), Conocephalum japonicum (Miwa et al., 2003), Herbertus sendtneri (Feldberg et al., 2004), Ptychanthus striatus (Ahonen et al., 2005), Marchesinia brachiata (Heinrichs et al., 2009), Metzgeria furcata,M. conjugata(Fuselier et al., 2009), Adelanthus lindenbergianus (Feldberg et al., 2010), Frullaniaasagrayana (Ramaiya et al., 2010), F. tamariscii (Heinrichs et al., 2010), Ptilidium ciliare (Kreier et al.,

2010), Diplasiolejeunea pauckertii, D. cavifolia (Dong et al., 2012). В виде печеночника Frullania tamariscii, возможно, содержится до 8 видов (Heinrichs et al., 2010). Криптический вид, описанный как Herbertus norenus, был найден среди образцов Herbertus borealis в ходе разворачивающихся работ по ДНК-штрихкодированию (Bell et al., 2012).

В ряде случаев исследование молекулярных маркеров позволило решить давно стоявшие вопросы о самостоятельности некоторых видов мохообразных. Так, в 1919 году был обнаружен подземный беловато-желтоватый печеночник, который приняли за бесхлоро-фильную форму вида Aneura pinguis (L.) Dumort.; позже его описали как Cryptothallus mirabilis Malmb. Оба варианта находили сторонников, пока анализ участков ядерного, хлоропластного и митохондриального геномов не дали оснований полагать, что печеночник представляет собой самостоятельный вид рода Aneura — A. mirabilis (Malmb.) Wickett & Goffinet (Wickett, Goffinet, 2008). Молекулярный анализ помог положительно решить и вопрос о видовой самостоятельности Homalothecium mandonii, встречающегося на Мадейре и морфологически очень сходного с H. sericeum, распространенным в западной Па-леарктике и Северной Америке (Huttunen et al., 2008).

В большинстве случаев криптические виды мохообразных имеют широко перекрывающиеся ареалы, хотя экологически дифференцированы. Например, изучение около 50 образцов произрастающего на камнях космопо-литного мха Grimmia laevigata (методом AFLP — анализа длин амплифицированных фрагментов) показало существование лишь в одной Калифорнийской Флористической Провинции двух репродуктивно изолированных видов с перекрывающимися ареалами (Fernandez et al., 2006). Тщательное исследование таких групп показало, что выделяемые нередко «морфовиды» представляют собой искусственные группировки, появившиеся в результате конвергентного развития морфологических признаков, например формы листа. В то же время стоит оговорить, что хотя исследование ряда видов мхов с широким ареалом и некоторой морфологической или фито-химической вариабельностью выявило у них генетическую дифференциацию (Hylocomium splendens: Chiang, Schaal, 1999; Plagiochila bifaria: Heinrichs et al., 2004), она была недостаточна для выдвижения гипотезы о видовом статусе дивергентных линий. Кроме того, как было отмечено (Heinrichs et al., 2009), еще не ясно, относится ли выявляемая во многих морфовидах мохообразных генетическая дифференциация к генетически несовместимым единицам. Отсутствие обмена генов может вызываться не генетическими, а географическими причинами — значительной удаленностью, при сохраняющемся потенциале к скрещиванию.

Криптические виды были найдены по генетической дифференциации в нескольких видах папоротников — Adiantum pedatum (Paris and Windham 1988),

Polypodium vulgare (Haufler and Windham 1991), Gymnocarpium dryopteris (Pryer and Haufler 1993), Athyrium oblitescens (Kurihara et al. 1996), Botrichium lunaria (Hauk and Haufler 1999; Daufin et al., 2014), Asplenium nidus (Yatabe et al., 2001), Metaxya rostrata (Smith et al., 2001), Ceratopteris thalictroides (Masuyama et al. 2002), Microlepia marginata (Inoue et al., 2004), Cheilanthes yavapensis (Grusz et al., 2009). По большей части это полиплоидные комплексы, в которых тетраплоидные виды представляют собой чаще гибриды разных диплоидных видов, чем результат внутривидовых скрещиваний (Hauk, Hoffler, 1999). При этом у папоротников внутривидовые дивергентные линии обнаружены даже по такому консервативному гену как rbcL — (Metaxya lanosa, Ceratopteris thalictroides, Asplenium nidus). У A. nidus уровень его дивергенции (найдено 5 линий) составляет 4—5 % (Murakami et al., 1999), что очень много, и разные rbcL-типы этого папоротника не скрещиваются между собой (Yatabe et al., 2001). C. thalictroides — морфологически полиморфный вид, встречающийся в теплых водах тропических областей. В нем, среди японских образцов, сначала нашли два криптических вида с помощью изозимного анализа (Watano, Masuyama, 1994). Позднее, с помощью анализа последовательностей хлоропластных маркеров — еще один, причем результат был подтвержден экспериментальными скрещиваниями (Masuyama, 2008).

У плаунов криптический вид был найден при изучении дивергенции ITS и интрона гена LEAFY в американском видовом комплексе Isöetes melanopoda; он был представлен популяцией из штата Арканзас, отличавшейся от популяций из соседних штатов Миссисипи и Луизиана (Hoot, Taylor, 2001).

Высказывались предположения, что у споровых растений, где размножение не требует привлекать опылителей и вырабатывать соответствующие морфологические изменения, может быть больше криптических видов, чем у семенных, однако пока изученность этих групп не достаточна, чтобы оценить, так ли это.

КРИПТИЧЕСКИЕ ВИДЫ У СЕМЕННЫХ РАСТЕНИЙ

А как же обстоит дело с выявлением молекулярными методами криптических видов в самой большой группе растений, у семенных?

Криптические виды были найдены у некоторых голосеменных, в родах Juniperus (Adams et al., 2005) и Taxus (Liu et al., 2011). При этом у вида Taxus wallichiana было найдено, пожалуй, наибольшее из известных на настоящий момент у семенных растений число дивергентных линий — семь. Две из них представляли выделявшиеся ранее некоторыми исследователями подвиды (или даже самостоятельные виды), а четыре соответствовали географическим группам, из которых существование лишь одной было показано ранее на основании морфологического анализа.

Но что касается покрытосеменных, действительно, они найдены пока у сравнительно небольшого числа видов относительно их общей численности в этой группе (около 350 000), но постепенно их количество увеличивается (табл. 1), хотя и медленно по сравнению с тем, что мы видим для животных.

Как отмечал еще Майр (1963), большинство крип-тических видов было открыто не в процессе обычного таксономического анализа, а при изучении видов, имеющих особое значение для медицины, сельского хозяйства, генетики и других областей науки и практики, т. е. более скрупулезного, чем обычно, изучения. Некоторые виды действительно вызывают повышенный интерес. Так, Brachypodium distachyon, самоопыляющийся вид с маленьким геномом и коротким жизненным циклом, служит моделью для исследования пищевых, кормовых и биотопливных злаков, поэтому выяснение того, что в его состав входят три криптических вида (Catalan et al.,

2012) очень важно. Скрупулезному изучению подвергаются некоторые инвазионные виды растений из-за их вредного воздействия на местные виды и сельское хозяйство, и у них тоже обнаружены криптические виды. Предположительно, новые виды найдены в одном из самых злостных сорных видов, занесенных в США — «русском чертополохе» Salsola tragus (Hrusa, Gaskin, 2010), среди австралийских инвазионных видов злаков из рода Cynodon (Jewell et al., 2012).

Обнаружение криптических видов во многих случаях стало результатом целенаправленного поиска и проверки видов, у которых ранее была выявлена выраженная внутривидовая вариабельность или даже дивергенция по каким-либо признакам, или существовали гипотезы о наличии криптических видов и/или внутривидовых подразделений (подвидов, разновидностей) в данной группе (Linanthus bicolor: Goodwill, Stiller, 2001; Lasthenia californica: Chan et al., 2002; Brachypodium distachyon: Catalan et al., 2012; Gymnadenia conopsea: Ефимов,

2013). Однако морфологические различия иногда вызываются фенотипической пластичностью, а не генетическими различиями, поэтому так ценен молекуляр-но-филогенетический анализ. В виде Linanthus bicolor по морфологическим данным выделялось два подвида. Но дифференциация на два ITS-типа, соответствующих этим подвидам, оказалась столь велика (более 50 нук-леотидных замен, дивергенция 8,5 %), что авторы сочли ее соответствующей видовым различиям (Goodwill, Stiller, 2001). Морфологически вариабельная и сложная серия Andinae рода Mimosa включала 4 общепризнанных вида, а также ряд видов и подвидов, выделявшихся отдельными авторами. Исследование плотной выборки образцов этих таксонов по всему ареалу молекулярным и последующим морфологическим анализом подтвердило наличие 6 видов и 3 криптических линий, одна из которых была описана как новый вид M. jaenensis (Sarkinen et al., 2011). У вышеупомянутого Brachypodium distachyon

имелось до 30 гетеротипных синонимов, хотя в последние годы преобладала широкая концепция вида. Согласно выявленным цитогенетическим, молекулярным (по ядерным и хлоропластным маркерам) и фенотипичес-ким различиям, в нем были выявлены три криптических вида, соответствующих разным циторасам (Catalan et al., 2012). Насекомоядное охраняемое растение Sarracenia alata — вид с разорванным ареалом в юго-восточных штатах США, разрыв проходит по бассейну реки Миссисипи. Такой же разрыв свойствен некоторым другим видам растений и животных, поэтому значительные усилия были предприняты американскими учеными для изучения Sarracenia alata, и в конце концов высокая генетическая дифференциация, соответствующая видовой, была выявлена (Carstens, Satler, 2013).

В некоторых случаях выраженная молекулярная дифференциация выявляется в малоизученных видах, что неудивительно. Род Schoenocaulon включает более 20 эндемичных видов Южной Америки и Мексики, разграничение которых неясно, а сборов немного и их нельзя повторить, так как соответствующие территории застроены. Четыре вида из 24 изученных оказались немо-нофилетичными, авторы предполагают, что в выборке могут присутствовать криптические виды (Zomlefer et al., 2006). Малоизученными были виды Plantago (подорожника) с Гавайского архипелага, где, при множестве островов и разнообразии экологических условий, активно проходят процессы адаптивной радиации. Оказалось, что образцы Plantago princeps var. princeps образуют не монофилетическую кладу, а граду, причем морфологически неотличимые образцы разделились в соответствии с географической приуроченностью к разным островам архипелага (Dunbar-Co et al., 2008). Авторы считают, что разные группы могут быть криптическими видами. Исследование 10 видов рода Mitella из Японии выявило криптические виды в двух из них, и двух подвидов — в третьем, причем наличие репродуктивной изоляции между криптическими видами было показано проведением экспериментальных скрещиваний (Okuyama, Kato, 2009).

Весьма велика вероятность нахождения криптичес-ких видов в тех родах, где затруднена видовая идентификация, и они были найдены у Potamogeton (Whittall et al., 2004), Carex (Roalson, Friar, 2004), а также в составе сложных видовых комплексов (Cesalpinia hintonii: Sotuyo et al., 2007; Ancistrocladus tectorius: Meimberg et al., 2010). Разные авторы насчитывали в роде Ancistrocladus в Юго-Восточной Азии от 1 (A. tectorius s. l.) до 12 морфологически мало отличающихся видов. При этом у образцов из данного региона был выявлен значительный полиморфизм по составу на-фтилизохинолиновых алкалоидов и наблюдалась некоторая географическая приуроченность отдельных вариантов. Исследование выявило не менее выраженную генетическую дифференциацию среди образцов этого

to «

о

^

о

CVJ

а

A

съ

Г) «

а

00

Ж

съ

2

а «

а

н О

X

ю о

Выявление внутривидовых дивергентных линий видового уровня у семенных растений с использованием молекулярных маркеров

Таблица 1

со

СО

о

CD ОО

ю

Таксоны Число образцов одного вида Число внутривидовых линий Распространение Симпатри-ческие или аллопатри ческие Сестринские Маркеры и/или метод Ссылки

Salsola tragas (Chenopodiaceae) 11 2 Сев. Америка алл. RAPD, ISSR, intron РЕРС Ryan, Ayres, 2000

Linanthus bicolor (Polemaniaceae) 44 2 Сев. Америка алл. - ITS Goodwillie, Stiller, 2001

Lasth en i a c.a Ufo rn tea L. macrantha (Asteraceae ) 42 9 2 Сев. Америка (Калифорния) алл. - ITS, ETS, trnK Chan et al., 2002

A m ph i c.a rpaea b ra dea ta (Fabaceae) 10 3 Вост. Сев. Америка симп. + trnh, ITS, histon H3-D Parker et al., 2004

Potamogeton (Potamogetonaceae) 6-13 2 Сев.Америка симп. - ITS, trnh, tmh-F, AFLP Whittall et al., 2004

Carex ros si i (Cyperaceae) 4 2 Сев. Америка р - ITS, ETS Roalson, Friar, 2004

Ju ti iperus oxicedras (Cupressaceae 6 2 Средиземноморье алл. - ITS Adams et al., 2005

Shoenocaulon (2-4 вида) (Melanthiaceae) 4-13 2 Центр. Америка симп. - ITS Zomlefer et al., 2006

Caescilpinia oyatnae (Leguminosae) 25 2 Мексика алл. + trnL, trnL-F, trnH-psbA, accD-psa\ Sotuyo et al., 2007

Millium effusum (Poaceae ) 46 2 Евразия, Сев. Америка алл. - ITS Коцеруба и др., 2008

Allium rosenorum A. stipitatum, A. darwasicum (Alliaceae ) 5 5 4 2 Средняя Азия алл. алл. симп. - ITS, RAPD Gurushidze et al., 2008

Plantago princeps (Plantaginaceae) 7 2 Гавайский архипелаг алл. - ITS, ETS, ndhF-rpl 32, rpl Ш-trnL Dunbar-Co et al., 2008

Draba fladnizensis D. nivalis (Brassicaceae) 66 94 2 3 Арктика алл. симп. + ITS, микросателлиты, AFLP Skrede et al., 2009

Spiraeanthemum ellipticum, S. pubescens (Cunoniaceae) 4 3 2 Новая Каледония алл. - ncpGS, GapC Pillon et al., 2009

I hi

5:

ЙЗ

1 hi

0

1

£

Си

с»

s §

Си §

Q ñ

Таблица 1

to «

О

^

О

оо

а

А

Г) «

а ¿0 00

Ж

съ

2

а «

а

н О

X

ю о

00

СО СО

о

CD О0

ю

Таксоны Число образцов одного вида Число внутривидовых линий Распространение Симпатри-ческие или аллопатри ческие Сестринские Маркеры и/или метод Ссылки

Mitella japónica, M.joshinagae (Saxifragaceae) 18 30 2 Япония алл. - psbk-trnW, /па/К, ITS, ETS Okuyama, Kato, 2009

A ti cistroela dus tecto rius (Ancistrocladaceae) 75 2 Юго-Восточная Азия симп. - ITS, интрон trnK, ISSR Meimberg et al., 2010

Cedrela odorata (Meliacae) 8 2-3 Южн. Америка алл. - ITS, psbB, psbN, psbJ, trnS-trnG Muellner et al., 2010

Navarretia sinistra (Polemoniaceae) 8-32 2 Сев. Америка симп. - ITS, интроны idhA, idhB, g3pdh, trnL—trnL—trnF, trnS—G, trnG—G Johnson, Cairns-Heath, 2010

Gaultheria, 3 вида (Ericaceae) 3-7 2-3 Вост. Азия симп. - ITS, matK, rpl\6, trnL-tmF, trnS-trnG Lu et al., 2010

Downingia tjina (Campanulaceae) 14 2 Северо-Запад Сев. Америки р ITS, trnK, matK Schultheis, 2010

Taxus wallic.hiana (Taxaceae) 29 7 Евразия алл. - ITS, frit 1.-1, matK, trnH-psbA, rbcL Liu et al., 2011

Mimosa montana, M. weberbaueri (Fabaceae) 3 2 2,3 Перу алл. - trnD-trriT Sarkinen et al., 2011

Brachypodiutn distachyon (Poaceae) 27 3 Средиземноморье симп. - ITS, ETS, ndhV, trnL-V Catalan et al., 2012

Navarettia saximontana (Polemoniaceae -40 2 Сев. Америка алл. - ITS, trnH-psbA, rpl 16, trnS-trnG, trnG-trnG Johnson et al., 2012

Gymnadenia conopsea (Orchidaceae) 25 2-4 Евразия алл. - ITS Ефимов, 2013

Sarracenia alafa (Sarraceniaceae) 82 2 Сев. Америка алл. + ITS, atpl-atpH, trnC-уф, уф-psbM, trnH-psbA, rpll6, rps\6-trnK. 21 локус NGS-технология Carstens, Satler, 2013

Aster amellas (Asteraceae) 290 2 Европа симп. микросателлиты Mtinzbergova et al., 2013

Te t ra ri a triangula ri s Cyperaceae) 332 5 ЮАР алл., симп. ETS, trnH-psbA Britton et al., 2014

В графе "Маркеры и/или метода жирным шрифтом выделены участки, которые показали наличие внутривидовых дивергентных линий

I hi

5: йз

I hi

0

1

£

Си

с»

1 §

Си §

Q

с> й

вида, оказавшегося парафилетичным относительно индийских видов, а также внутривидовую вариабельность, превышающую таковую у африканских видов рода, свидетельствующую о возможном присутствии криптичес-ких видов (Meimberg et al., 2010).

Однако иногда криптические виды выявляются весьма неожиданно. При исследовании рода Allium (лук) оказалось, что образцы вида Allium darwasicum разделились на две ITS-клады, которые не были сестринскими, более того, они располагались на филогенетическом древе довольно далеко друг от друга, хотя все образцы были собраны примерно в одном географическом районе (Gurushidze, 2008). Их генетическая дифференциация свидетельствует, что это могут быть криптические виды. Совершенно неожиданно две несестринские группы были выявлены в виде злаков с широким ареалом — Milium effusum (бор развесистый). Этот вид широко распространен в бореальной зоне в Евразии и на северо-востоке Северной Америки. Молекулярный анализ (ITS) десятков образцов из разных точек ареала показал наличие двух клад — одной, включающей образцы из Европы, Азии вплоть до Забайкалья, Джунгарии и Гималаев, и Северной Америки, и другой, восточноазиатской (Дальний Восток России, включая Камчатку, Курилы, о-ва Японского моря, некоторые провинции Китая, Корея, Япония). Генетическая дивергенция между кладами составляет более 5 %, при этом вторая клада является сестринской кладе секции Milium, включающей первую кладу, и 2 других вида секции (Коцеруба и др., 2008). По-видимому, восточноазиатская клада является крипти-ческим видом. Морфологических или цитогенетических различий пока найти не удалось.

Характерно, что некоторые из выявленных сильно дивергировавших линий и внутренне негомогенны (Lasthenia californica — White: Chan et al., 2002; Milium effusum восточноазиатская клада: Коцеруба и др., 2008; Ancistrocladus tectorium: Meimberg et al., 2010; Gymnadenia conopsea азиатская клада: Ефимов, 2013), что дало основания авторам в ряде случаев предполагать присутствие нескольких криптических видов в одном. Возможно, применение дополнительных маркеров и увеличение выборки может внести большую ясность относительно генетической и таксономической структуры этих групп.

Иногда не все использованные в конкретной работе маркеры выявляют дифференциацию. Так, в таксоно-мически сложной серии Trichophyllae рода Gaulteria дифференциацию, свидетельствующую о наличии кри-птических видов, показали участки хлоропластной ДНК, а по ITS полиморфизм практически отсутствовал (Lu et al., 2010), сходная картина получена при изучении Plantago princeps (Dunbar-Co et al., 2008). А вот при изучении видов Mitella (Okuyama, Kato, 2009) была обратная картина — хлоропластный участок psbA-trnH дифференцировал виды рода хуже, чем ядерные ITS + ETS.

При этом степень репродуктивной изоляции у них больше соответствовала генетическим расстояниям, выявляемым ядерными маркерами, чем хлоропластными. У Cedrella odorata участки ITS показывали три отдельных линии, а 4 хлоропластных участка — лишь две (Muellner et al., 2009). По-видимому, для надежного выявления криптических видов растений желательно исследование и ядерных и хлоропластных участков.

Иногда криптические виды удавалось обнаружить только после приложения немалых усилий. Так, у уже упоминавшегося вида Sarracenia alata исследование участка ITS2 не показало разницы между восточными и западными популяциями (Neuland, 2008). Однако анализ микросателлитной ДНК, а также участка trnK-rps16 (он один из 6 изученных хлоропластных участков оказался более или менее вариабельным) указывали на существование некоторой структуры популяций (Koopman, Karstens, 2010). Анализ последовательностей 21 локуса методами секвенирования следующего поколения (NGS) все же убедительно показал, что в виде существуют две дивергентные линии, по-видимому, представляющие собой криптические виды (Carstens, Satler, 2013). Пока метод NGS широко не вошел в практику подобных исследований, и используются методы множественных локусов (RAPD, ALFP, микросателлиты, ISSR), также иногда дающие хорошие результаты.

Выявляемое наличие криптических видов заставляет вспомнить о дуализме биологических и таксономических видов, о котором писал еще Грант (1971). В качестве яркого примера криптических видов он приводил комплекс Gilia transmontana (Polemoniaceae), содержащий 5 видов, столь сходных по фенотипу, что их идентификация затруднена, но при этом полностью взаимостерильных (к сожалению, этот комплекс, произрастающий в пустыне Мохаве, до сих пор не проанализирован с помощью молекулярных методов). Все же Грант указывал, что такие виды нельзя считать таксономическими видами в силу трудностей с их определением, поэтому за единицу классификации приходится принимать весь комплекс видов-двойников.

То, что криптические виды, найденные по генетической дифференциации, являются и репродуктивно изолированными биологическими видами, было продемонстрировано для некоторых растений экспериментальными скрещиваниями (Masuyama, 2008; Okuyama, Kato, 2009; Yatabe et al., 2001). Но такая корреляция не всегда наблюдается, что показало изучение трех арктических видов рода Draba (D. fladnizensis, D. subcapitata, D. nivalis). Экспериментальные скрещивания были проведены внутри разных географических популяций и между ними. Они выявили в каждом из видов множество репродук-тивно изолированных популяций — возможных крипти-ческих видов (Grundt et al., 2006). Но последующее исследование молекулярной дифференциации или совсем не выявило ее (по ITS и хлоропластным маркерам), или

выявило в гораздо меньшей степени (по микросателлит-ной ДНК) — когда в одном виде найдено три дивергентных линии, в другом — две, в третьем их не было (Skrede et al., 2009). Тот факт, что молекулярная дифференциация в видах Draba выявила гораздо меньшее количество генетически обособленных групп, чем экспериментальные скрещивания, авторы (Skrede et al., 2009) объясняют тем, что развитие барьеров стерильности в этой группе происходит очень быстро и затрагивает лишь маленькую часть генома. Если раньше допускали, что при возникновении репродуктивной изоляции изменениям подвергается весь геном или большая его часть, теперь показано, что на первых порах она может быть вызвана действием отдельных генов, называемых генами видообразования. У растений уже известно более 40 таких генов, действующих на разных этапах изоляции — презиготическом, постзиготическом, нежизнеспособности гибридов или их стерильности (Rieseberg, Blackman, 2010). В таких случаях исследование отдельных участков генома обеспечивает меньшую вероятность уловить начинающуюся дивергенцию, чем методы множественных локусов, даже если изоляция уже произошла некоторое время назад. Обычно считается, что криптические виды — молодые, представляющие собой начальные этапы видообразования. По-видимому, это справедливо для большинства случаев. Однако показано, что возраст некоторых может быть солидным. Время дивергенции двух видов, обнаруженных у мха Pyrrhobryum mnioides, оценивается в 80 млн лет (McDaniel, Shaw, 2003). Отметим, что эта цифра превышает таковые, найденные пока для крипти-ческих видов в других группах организмов.

ВОЗМОЖНЫЕ РАЗЛИЧИЯ КРИПТИЧЕСКИХ

видов растений

Известно, что у животных морфологически неразличимые криптические виды могут различаться по характеру издаваемых звуков, демонстрационному и миграционному поведению, феромонам, специфичности по «хозяину», пищевым предпочтениям и т. п. По каким же признакам различаются криптические виды растений?

Существование криптических видов у растений связывали в первую очередь с полиплоидией. У многих видов покрытосеменных (до 13 % по разным оценкам), еще чаще — у папоротников, существуют хромосомные расы (циторасы или цитотипы) с разным уровнем плоидности. Иногда при тщательном изучении между ними выявлялись географические, морфологические, экологические и другие различия, хотя вопрос о том, в какой степени эти различия присущи расам, и как часто они репродук-тивно изолированы друг от друга, — остается открытым. Высказывалось предложение о выделении циторас как таковых в самостоятельные виды (Love, 1964), делались предложения, касающиеся отдельных таксонов (на-

пример, Ball, Heywood, 1962; Vaghan et al., 1997), хотя по большей части их рассматривали в рамках внутривидовой изменчивости. Также следует отметить, что морфологические различия между диплоидами и полиплоидами (и циторасами вообще) чаще всего носят скорее количественный, чем качественный характер (это касается и генеративных и вегетативных органов), то есть их сложно выявить и зафиксировать так, как требуется для таксономических признаков.

Тем не менее, не так давно группа авторитетных авторов выступила с предложением описывать автополиплоидные цитотипы как отдельные виды (Soltis et al., 2007), если получены дополнительные доказательства их видового статуса (например, экологические различия, отсутствие потока генов). В статье приводились примеры наиболее подходящих, по мнению авторов, кандидатов в новые виды — это цитотипы видов Tolmiea menziesii и Heuchera grossulariifolia (Saxifragaceae), Galax ur-ceolata (Diapensiaceae), Chamerion angustifolium (Onagraceae), Vaccinium corymbosum (Ericaceae). Чтобы избежать путаницы в названиях, было предложено в названиях новых видов добавлять к видовому эпитету существовавшего вида указание на уровень плоидности, как было с видами рода Zea — был известен тетраплоидный Zea perennis, а найденный позже похожий диплоидный вид был назван — Zea diploperennis (Iltis et al., 1979).

Надо сказать, что В. Грант, Д. Л. Стеббинс и ряд других видных исследователей не считали автополиплоидию значимым механизмом видообразования (считали строго доказанными менее десятка примеров) и не допускали, что цитотипы могут представлять собой разные виды. Грант полагал, что автополиплоидия — явление, необычное у растений, а цитогенетические критерии, по которым оно обычно распознается — в первую очередь спаривание бивалентов в мейозе — нельзя считать диагностическими (как и морфологическое сходство полиплоидов с близкими диплоидными видами). Позже было установлено, что наиболее надежным доказательством автополиплоидной природы является полисомное наследование. В последнее десятилетие использование генетических и в особенности молекулярных маркеров позволило получать во многих случаях убедительные свидетельства автополиплоидии и показало, что она распространена гораздо более, чем предполагалось раньше (Soltis et al., 1999), особенно в некоторых семействах, например, Saxifragaceae и Cactaceae.

В то же время установить, являются ли расы автополиплоидными или аллополиплоидными бывает очень сложно. Даже анализ четырех ядерных низко-копийных генов видов Zea perennis и Z. diploperennis не позволил полностью исключить гипотезу о происхождении Z. perennis путем межвидовой гибридизации с участием предка вида Z. diploperennis и какого-то ныне вымершего вида рода (Tiffin, Gaut, 2001). Три циторасы вида Brachypodium distachyon s. l. долго считались автопо-

липлоидной серией, пока GISH и FISH гибридизация не показали, что расы с 2n = 10 и 2n = 20 являются диплоидами с х = 5 и х = 10, а раса с 2n = 30 — производным от них аллотетраплоидом (Hasterok et al., 2004). Детальные морфометрический, цитогенетический и молекулярный анализы показали, что все три расы — самостоятельные криптические виды (Catalan, 2012).

Стоит отметить, что и в случае исследования цито-рас (в том числе по молекулярной дивергенции) заключения авторов о том, что данный вид может содержать несколько самостоятельных видов часто выражены в неявной форме, не содержат таксономических рекомендаций (напр., Glycine tomentella: Doyle et al., 2004; Solidago simplex: Peirson et al., 2012, Aster amellus: Münzbergova et al., 2013 и др.). и остаются мало замеченными, особенно при поиске по названиям или ключевым словам. Тем не менее комплексы циторас представляют собой потенциальный резерв криптических видов и ожидают своего исследования современными методами, включая молекулярные.

Известно, что у покрытосеменных в большинстве случаев дифференцирующими видовыми признаками являются признаки генеративной сферы, а различия в вегетативных признаках часто относят за счет внутривидовой вариабельности. Но оказалось, что, например, два криптических вида у орхидей Gymnadenia conopsea и G. densiflira, выявленных по молекулярной дифференциации, весьма устойчиво различаются по вегетативным признакам (Ефимов, 2013). В случае криптических видов хорошие результаты иногда дает морфометрический анализ (Catalan et al., 2012; Ефимов, 2013), Что касается признаков генеративных, показано, что они могут носить более сложный характер, чем простое описание отдельных элементов. В виде Caesalpinia hintonii различали три морфы, отличавшиеся некоторыми морфологическими особенностями соцветий и цветков, обеспечивавших три разных синдрома опыления. Оказалось, что одна из этих морф образует отдельную кладу на дереве, построенном по последовательностям 4 участков хлоропластной ДНК, она аллопатрична относительно других морф и была выделена в самостоятельный вид (Sotuyo et al., 2007). Некоторые с трудом уловимые морфологические различия еще необходимо отличать от возможной фенотипической пластичности, изучение которой очень важно, так как наличие её может затуманивать картину соответствия морфологической и генетической дифференциации, их корреляции.

Криптические виды растений могут различаться по составу низкомолекулярных химических соединений. Так, в роде Juniperus они различаются по терпеноидам листа (Adams et al., 2005), в роде Ancistrocladus — по составу нафтилизохинолиновых алкалоидов (Meimberg, 2010). Морфологически очень сходные виды цветковых, опыляемых насекомыми и птицами (особенно у двудомных растений), могут различаться компонентами, определяющими аромат цветка, что ведет к различиям в опы-

лителях. Это относится, например, к орхидеям из родов Ophrys (Bateman et al., 2011) и Chiliglottis (Bower, Brown, 2009), у последнего в пределах некоторых видов было выявлено по 2—5 криптических видов, обладающих уникальными опылителями. Различия в ароматах могут привести к репродуктивной изоляции (или по крайней мере коррелировать с нею), как показано, например, для видов рода Silene (Walti et al., 2008).

Получены сведения, позволяющие предположить, что криптические виды растений могут различаться также особенностями развития и фотосинтеза, экологическими нишами. Разные rbcL-типы папоротника эпифита Asplenium nudus различаются высотой местности их произрастания над уровнем моря и положением на стволе дерева (Yatabe et al., 2009). Растения из американского вида бобовых Amphicarpaea bracteata разделились на три линии при анализе последовательностей ДНК, при этом линии различались по способности образовывать клубеньки с определенными штаммами бактерий из рода Bradyrhizobium (Parker et al., 2004). Анализ двух высоко-вариабельных низко-копийных ядерных генов у Spiraeanthemum ellipticum и S. pubescens из Новой Каледонии показал, что в обоих этих видах есть по два криптических вида, характеризующихся разными эда-фическими потребностями (Pillon et al., 2009). Было показано, что ареалы диплоидного и тетраплоидого крип-тических видов Brachypodium distachyon отличаются степенью аридности, т. е. растения отличаются эффективностью использования воды (Manzaneda et al., 2012). Известно, что внутривидовые различия могут быть фенологическими, например, у цветковых — по времени цветения, но криптических видов, различающихся по этому признаку, пока не выявлено.

Как можно видеть по приведенным в таблице 1 результатам, криптические виды могут быть и аллопатри-ческими и симпатрическими, при этом то и другое может трактоваться как указание на видовую самостоятельность, аллопатрия — на обособленность ареалов, а сим-патрия — на репродуктивную изоляцию, хотя в случае обособленных ареалов виды легче различать.

Пока неясно, есть ли области Земли, где более вероятно найти криптические виды. Даже среди зоологов, имеющих большой материал по животным, пока нет согласия относительно того, к каким географическим, климатическим, экологическим регионам в большей мере приурочены такие виды. Проведя анализ публикаций и базы данных по животным Zoological Record (1978—2006), где содержались сведения о более 2 000 криптичес-ких видов в разных группах, M. Pfenniger и K. Schwenk (2007) пришли к выводу о их равномерной встречаемости в разных макротаксонах и разных биогеографических районах. Однако есть мнение, что их особенно много в тропических районах (Strutzenberger et al., 2011). Есть также предположения, что их изобилие может быть связано с местообитаниями в экстремальных условиях, ог-

раничивающих разнообразие путей адаптации, таких как глубоководные, в карстовых пещерах, в Арктике и т. д. (Bickford et al., 2007). С другой стороны, совсем недавно были получены данные, позволяющие допустить, что криптические виды могут быть характерны для регионов, где изменчивы топографические факторы и связанные с ним климатические условия, и, соответственно, наблюдается видовое богатство, таких, например, как Капская область (Britton et al., 2014),

Сравнительно небольшое число найденных крипти-ческих видов растений пока не позволяет судить, равномерно ли они распространены и приурочены ли к определенным местообитаниям. Из перечисленных в таблице 1 примеров Ancistrocladus tectorius, Caesalpinia oyamae, Plantago princeps, виды Mimose ser. Andinae, родов Cedrella, Schoenocaulon — растения тропического пояса, другие — умеренных районов, виды рода Draba — арктические, и авторы этой работы (Grundt et al., 2006) высказали предположение, что и в других арктических видах растений криптические виды могут быть найдены. Очевидно, что значительный интерес представляют виды с дизъюнктивным ареалом, они интенсивно изучаются, и среди них были найдены криптические виды (Parker et al., 2004; Medina et al., 2012).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Ранее отмечалось

Криптические виды представляют собой брешь в познании биоразнообразия, их выявление и изучение очень важно для его полного описания, для познания эволюции и видообразования, для охраны редких видов, а также в других областях науки и практики.

Работа выполнена в соответствии с исследованиями, поддержанными грантами РФФИ 12-04-01470-а и 11-04-01167-а и программой «Динамика генофондов».

ЛИТЕРАТУРА

1. Ефимов П. Г. (2013) Криптические виды кокушников (Gymnadenia: Orchidaceae, Magnoliophyta) России. Генетика. Т. 49: С. 343-354.

2. Коцеруба В. В., Пробатова Н. С., Блаттнер Ф. (2008) Полиморфизм Milium effusum L. (Poaceae) в географическом ареале вида по данным ITS секвенирования рибосомальной РНК. Фундаментальные и прикладные проблемы ботаники в начале XXI века. Петрозаводск. Карельский научный центр. Ч 3. С. 39-42.

3. Михайлова Ю. В., Кастелло С., Наумова Е. С., Наумов Г. И. (2009) Алло- и симпатрические виды-двойники Saccharomyces cerevisiae: ДНК-ДНК гомология. Экол. генет. Т. 7: С. 3-7.

4. Шнеер В. С. (2009) ДНК штрихкодирование — новое направление в сравнительной геномике растений. Генетика. Т. 54: С. 1436-1448.

5. Adams R. P., Morris J. A., Pandey R. N., Schwarzbach A. E. (2005) Cryptic speciation between Juniperus deltoides and Juniperus oxycedrus (Cupressace-ae) in the Mediterranean. Biochem. Syst. Ecol. V. 33: P. 771-787.

6. Ahonen I., Sass-Gyarmati A., Pocs T. (2005) Molecular, morphological, and taxonomic evaluation of the Ptychanthus striatus — complex. Acta Bot. Hung. V. 47: P. 225-246.

7. Amato A., Kooistra WH. C.F, Ghiron J. H. L. et al. (2007) Reproductive isolation among sympatric cryptic species in marine diatoms. Protist. V 158: P 193-207.

8. Bateman R. M., Bradshaw E., Devey D. S. et al. (2011) Species arguments: clarifying competing concepts of species delimitation in the pseudo-copulatory orchid genus Ophrys Bot. J. Linn. Soc. V. 165: P. 336-347.

9. Bell D., Long D. G., Forrest A. D., et al. (2012) DNA barcoding of European Herbertus (Marchantiopsida, Herbertaceae) and the discovery and description of a new species. Mol. Ecol. Res. V. 12: P. 36-47.

10. Bennett C., Aime M. C., Newcombe G. (2011) Molecular and pathogenic variation within Melampsora on Salix in western North America reveals numerous cryptic species. Mycologia. V. 103: P. 1004-1018.

11. Bickford D., Lohman D. J., Sodhi N. S. et al. (2007) Cryptic species as a window on diversity and conservation. Trends Ecol. Evol. V. 22: P. 148-155.

12. Bower C. C., Brown G. R. (2009) Pollinator specificity, cryptic species and geographical patterns in pollinator responses to sexually deceptive orchids in the genus Chiloglottis: the Chiloglottis gunnii complex. Austral. J. Bot. V. 57: P. 37-55.

13. Britton M. N., Hedderson T. A., Verboom G. A. (2014) Topography as a driver of cryptic speciation in the high-elevation cape sedge Tetraria triangularis (Boeck.) C. B. Clarke (Cyperaceae: Schoeneae) Mol. Phylogen-et. Evol. V. 77: P. 96-109.

14. Carstens B. C., Satler J. D. (2013) The carnivorous plant described as Sarracenia alata contains two cryptic species. Biol. J. Linn. Soc. V. 109: P. 737-746.

15. Catalán P., Müller J., Hasterok R. et al. (2012) Evolution and taxonomic split of the model grass Brachypo-dium distachyon. Ann. Bot. V. 109: P. 385-405.

16. Chan R., Baldwin B.G, Ornduff R. (2002) Cryptic goldfields: a molecular phylogenetic reinvestigation of Lasthenia californica sensu lato and close relatives (Compositae: Heliantheae sensu lato). Amer. J. Bot. V 89: P. 1103-1112.

17. Chiang T. Y., Schaal B. A. (1999) Phylogeography of North American populations of the moss species Hylo-comium splendens based on the nucleotide sequence of internal transcribed spacer 2 of nuclear ribosomal DNA. Mol. Ecol. V. 8: P. 1037-1042.

18. Darlington C. D. (1940) Taxonomic species and genetic systems. In: J. S. Huxley, editor. The new systemat-ics. Oxford: University Press. p. 137-160.

19. Darwin C. (1859) On the origin of species by means of natural selection. London: John Murray.

20. Dauphin B., Vieu J., Grant J. R. (2014) Molecular phylogenetics supports widespread cryptic species in moonworts (Botrychium s. s., Ophioglossaceae) Am. J. Bot. V. 101: P. 128-140.

21. Doyle J. J., Doyle J. L., Rauscher J. T., Brown A. H. D.

(2004) Evolution of the perennial soybean polyploid complex (Glycine subgenus Glycine): a study of contrasts Biol. J. Linn. Soc. V. 82: P. 583-597.

22. Duno de Stefano R., Fernández-Concha G. C., Can-It-za L. L., Lavin M. (2010) The morphological and phylogenetic distinctions of Coursetia greenmanii (Legu-minosae): taxonomic and ecological implications. Syst. Bot. V 35. P. 289-295.

23. Dong S., Schafer-Verwimp A., Meinecke P. et al. (2012) Tramps, narrow endemics and morphologically cryptic species in the epiphyllous liverwort Diplasiolejeunea. Mol. Phylogenet. Evol. V. 65: P. 582-594.

24. Downie S. R., Sun F.-J, Katz-Downie D. S., Col-letti G. J. (2004) A phylogenetic study of Perideridia (Apiaceae) based on nuclear ribosomal DNA ITS sequences. Syst. Bot. V. 29: P. 737-751.

25. Dunbar-Co S., Wieczorek A. M., Morden C. W (2008) Molecular phylogeny and adaptive radiation of the endemic Hawaiian Plantago species (Plantaginaceae). Amer. J. Bot. V. 95: P. 1177-1188.

26. Egge J. J. D., Simons A. M. (2006) The challenge of truly cryptic diversity: diagnosis and description of a new madtom catfish (Ictaluridae: Noturus). Zool. Scripta. V. 35: P. 581-595.

27. Fawley M. W, Dean M. L., Dimmer S. K., Fawley K. P.

(2005) Evaluating the morphospecies concept in the Selenastraceae (Chlorophyceae, Chlorophyta). J. Phy-col. V. 42: P. 142-154.

28. Feist M. A. E., Downie S. R. (2008) A phylogenetic study of Oxypolis and Ptilimnium (Apiaceae) based on nuclear rDNA ITS sequences. Syst. Bot. V. 33: P. 447-458.

29. Feldberg K., Groth H., R. Wilson R. et al. (2004) Cryptic speciation in Herbertus (Herbertaceae, Jungerman-niopsida): Range and morphology of Herbertus send-tneri inferred from nrITS sequences. Pl. Syst. Evol. V. 249: P. 247-261.

30. Feldberg K., Vana J., Long D. G. et al. (2010) A phy-logeny of Adelanthaceae (Jungermanniales, March-antiophyta) based on nuclear and chloroplast DNA markers, with comments on classification, cryptic speciation and biogeography. Mol. Phylogenet. Evol. V. 55: P. 293-304.

31. Fernandez C. C., Shevock J. R., Glazer A..N., Thompson J. N. (2006) Cryptic species within the cosmopolitan desiccation-tolerant moss Grimmia laevigata. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 103: P. 637-642.

32. Fiedorow P., Odrzykoski I., Szweykowski J., Szweykowska-Kulinska Z. (2001) Phylogeny of the European species of the genus Pellia (Hepaticae; Metzgeriales) based on the molecular data from nuclear tRNA (Leu) (CAA) intergenic sequences. Gene. V. 262: P. 309-315.

33. Filipowicz N., Nee M. H., Renner S. S. (2012) Description and molecular diagnosis of a new species of Brunfelsia (Solanaceae) from the Bolivian and Argentinean Andes. PhytoKeys. V. 10: P. 83-94.

34. Fouquet A., Gilles A., Vences M. et al. (2007) Underestimation of species richness in neotropical frogs revealed by mtDNA analyses. PLoS ONE. V. 2: e1109.

35. Fuselier L., Davison P. G., Clements M. (2009) Phylo-geographic analyses reveal distinct lineages of the liverworts Metzgeria furcata (L.) Dumort. and Metzge-ria conjugata Lindb. (Metzgeriaceae) in Europe and North America. Biol. J. Linn. Soc. V. 98: P. 745-756.

36. Goodwillie C., Stiller J. W (2001) Evidence for poly-phyly in a species of Linanthus (Polemoniaceae): Convergent evolution in selffertilizing taxa. Syst. Bot. V. 26: P. 273-282.

37. Grant V. (1971) Plant speciation. New York: Columbia University Press.

38. Grundt H. H., Kjolner S., Borgen L. et al. (2006) High biological species diversity in the arctic flora. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 103: P. 972-975.

39. Grusz A. L., Windham M. D., Pryer K. M. (2009) Deciphering the origins of apomictic polyploids in the Cheilanthes yavapensis complex (Pteridaceae) Amer. J. Bot. V. 96: P. 1636-1645.

40. Guiry M. D. (2012) How many species of algae are there? J. Phycol. V. 48: P. 1057-1063.

41. Gurushidze M., Fritsch R. M., Blattner F. R. (2008) Phylogenetic analysis of Allium subg. Melanocrom-myum infers cryptic species and demands a new sec-

tional classification. Mol. Phylogenet. Evol. V. 49: P. 997-1007.

42. Harper J. T., Gile G. H., James E. R. et al. (2009) The inadequacy of morphology for species and genus delineation in microbial eukaryotes: An example from the parabasalian termite symbiont Coronympha. PLoS ONE V. 4 (8): e6577.

43. Hasterok R., Draper J., Jenkins G. (2004) Laying the cytotaxonomic foundations of a new model grass, Brac-hypodium distachyon (L.) Beauv. Chrom. Res. V. 12: P. 397-403.

44. Hauk W. D., Haufler C. H. (1999) Isozyme variability among cryptic species of Botrychium subgenus Botrychium (Ophioglossaceae). Amer. J. Bot. V. 86: P. 614-633.

45. Haufler C. H., Windham M. D. (1991) New species of North American Cystopteris and Polypodium, with comments on their reticulate relationships. Amer. Fern J. V 81: P. 7-23.

46. Hawksworth D. L., Rossman A. Y. (1997) Where are all the undescribed fungi? Phytopathology V. 87: P. 888-891.

47. Hebert P. D. N., Cywinska A., Ball S. L., DeWaard J. R. (2003) Biological identification through DNA barcodes. Proc. Roy. Soc. Lond. B. V. 270: P. 313-321.

48. Hedenäs L., Eldenäs P. (2007) Cryptic speciation, habitat differentiation, and geography in Hamatocau-lis vernicosus (Calliergonaceae, Bryophyta). Pl. Syst. Evol. V. 268: P. 131-145.

49. Heinrichs J., Groth H., Lindner M., Feldberg K. (2004) Molecular, morphological, and phytochemical evidence for a broad species concept of Plagiochila bifaria (He-paticae). The Bryologist. V. 107: P. 28-40.

50. Heinrichs J., Hentschel J., Bombosch A. et al. (2010) One species or at least eight? Delimitation and distribution of Frullania tamarisci (L.) Dumort. s. l. (Jungermanniopsida, Porellales) inferred from nuclear and chloroplast DNA markers. Mol. Phylogenet. Evol. V. 56: P. 1105-1114.

51. Heinrichs J., Hentschel J., Feldberg K. et al. (2009) Phylogenetic biogeography and taxonomy of disjunct-ly distributed bryophytes. Journal Syst. Evol. V. 47: P. 497-508.

52. Hoot S. B., Taylor W C. (2001) The utility of nuclear ITS, a LEAFY homolog intron, and chloroplast atpB-rbcL spacer region data in phylogenetic analyses and species delimitation in Isoetes. Amer. Fern J. V. 91: P. 166-177.

53. Hrusa G. F., Gaskin J. F. (2008) The Salsola tragus complex in California (Chenopodiaceae): characterization and status of Salsola australis and the autochthonous allopolyploid Salsola ryanii sp. nov. Madrono. V. 55: P. 113-131.

54. Huttunen S., Hedenäs L., Ignatov M. S. et al. (2008) Origin and evolution of the northern hemisphere dis-

junction in the moss genus Homalothecium (Brachyth-eciaceae). Amer. J. Bot. V. 95: P. 720-730.

55. Iltis H. H., Doebley J. F., Guzman R. et al. (1979) Zea diploperennis (Gramineae): a new teosinte from Mexico. Science. V. 203: P. 186-188.

56. Inoue Y., Ishikawa H., Ohsawa T. A. (2004) Cryptic species in the Microlepia marginata suggested by nuclear and chloroplast DNA markers. J. Plant Res. V. 117 (Supplement): P. 42-43.

57. Jewell M., Frère C. H., Harris-Shultz K. et al. (2012) Phylogenetic analysis reveals multiple introductions of Cynodon species in Australia. Mol. Phylogenet. Evol. V. 65: P. 390-396.

58. Johnson L. A., Cairns-Heath H. (2010) Decrypting cryptic species: morphological and molecular evidence for recognizing Navarretia linearifolia as distinct from N. sinistra (Polemoniaceae). Syst. Bot. V. 35: P. 618-628.

59. Johnson L. A., Chan L. M., Burr K., Hendrickson D. (2012) Navarretia furnissii (Polemoniaceae), a new diploid species from the intermountain western United States distinguished from tetraploid Navarretia saxi-montana. Phytotaxa. V. 42: P. 51-61.

60. Kadereit G., Piirainen M., Lambinon J., Vander-poorten A. (2012) Cryptic taxa should have names: Reflections in the glasswort genus Salicornia (Ama-ranthaceae) Taxon. V. 61: P. 1227-1239.

61. Knowlton N. (1993) Sibling species in the sea. Annu. Rev. Ecol. Syst. V. 24: P. 189-216.

62. Koenders A., Martens K., Halse S., Schon I. (2012) Cryptic species of the Eucypris virens species complex (Ostracoda, Crustacea) from Europe have invaded Western Australia. Biol. Invasions. V 14: P. 2187-2201.

63. Kon T., Yoshino T., Mukai T., Nishida M. (2007) DNA sequences identify numerous cryptic species of the vertebrate: A lesson from the gobioid fish Schindleria. Mol. Phylogen. Evol. V. 44: P. 53-62.

64. Koopman M. M., Carstens B. C. (2010) Inferring population structure and demographic parameters across a riverine barrier in the carnivorous plant Sarracenia alata (Sarraceniaceae). Conserv. Genet. V. 11: P. 2027-2038.

65. Kreier H.-P., Feldberg K., Mahr F. et al. (2010) Phy-logeny of the leafy liverwort Ptilidium: Cryptic speciation and shared haplotypes between the Northern and Southern Hemispheres. Mol.Phylogenet. Evol. V. 57: P. 1260-1267.

66. Kurihara T., Watano Y., Takamiya M., Shimizu T. (1996). Electrophoretic and cytological evidence for genetic heterogeneity and the hybrid origin of Athy-rium oblitescens. J. Plant Res. V. 109: P. 29-36.

67. Lee C.-S., Downie S. R. (2006) Phylogenetic relationships within Cicuta (Apiaceae tribe Oenantheae) inferred from nuclear rDNA ITS and cpDNA sequence data. Can. J. Bot. V. 84: P. 453-468.

68. Liu J., Möller M., Gao L.-M. et al. (2011) DNA barcoding for the discrimination of Eurasian yews (Taxus L., Taxaceae) and the discovery of cryptic species. Mol. Ecol. Res. V. 11: P. 89-100.

69. Löve A. (1964) The biological species concept and its evolutionary structure. Taxon. V. 13. P. 33-45.

70. Lu L., Fritsch P. W., Cruz B. C. et al. (2010) Reticulate evolution, cryptic species, and character convergence in the core East Asian clade of Gaultheria (Ericaceae). Mol. Phylogenet. Evol. V. 57: P. 364-379.

71. Manzaneda A. J., Rey P. J., Bastida J. M., et al. (2012) Environmental aridity is associated with cytotype segregation and polyploidy occurrence in Brachypodium dis-tachyon (Poaceae). New Phytol. V. 193: P 797-805

72. Masuyama S. (2008) Cryptic species in the fern Cer-atopteris thalictroides (Parkeriaceae). III. Referential diagnostic characters of three cryptic species. J. Plant Res. V. 121: P. 279-286.

73. Masuyama S., Yatabe Y., Murakami N., Watano Y. (2002) Cryptic species in the fern Ceratopteris thalictroides (L.) Brongn. (Parkeriaceae). I. Molecular analyses and crossing tests. J. Plant. Res. V. 115: P. 8797.

74. Mayr E. (1942) Systematics and the origin of species. New York: Columbia Univ. Press.

75. Mayr E. (1963) Animal species and evolution Cambridge, Mass.: The Belknap Press, Harvard University Press.

76. McDaniel S. F., Shaw A. J. (2003) Phylogeographic structure and cryptic speciation in the trans-antarctic moss Pyrrhobryum mnioides. Evolution. V. 57: P. 205-215.

77. McLeod D. S. (2010) Of least concern? Systematics of a cryptic species complex: Limnonectes kuhlii (Amphibia: Anura: Dicroglossidae). Mol. Phylogenet. Evol. V 56: P. 991-1000.

78. Medina R., Lara F., Goffinet B. et al. (2012) Integra-tive taxonomy successfully resolves the pseudo-cryptic complex of the disjunct epiphytic moss Orthotri-chum consimile s. l. (Orthotrichaceae). Taxon. V 61: P. 1180-1119.

79. Meimberg H., Rischer H., Turini F. G. et al. (2010) Evidence for species differentiation within the Ancis-trocladus tectorius complex (Ancistrocladaceae) in Southeast Asia: a molecular approach. Pl. Syst. Evol. V. 284: P. 77-98.

80. Miwa H., Odrzykoski I. J., Matsui A. et al. (2009) Adaptive evolution of rbcL in Conocephalum (Hepati-cae, bryophytes). Gene. V. 441: P. 169-175.

81. Muellner A. N., Pennington T. D., Koecke A. V., Renner S. S. (2010) Biogeography of Cedrela (Me-liaceae, Sapindales) in Central and South America. Amer. J. Bot. V. 97: P. 511-518.

82. Münzbergova Z., Surinova M. S., Castro S. (2013) Absence of gene flow between diploids and hexaploids

of Aster amellus at multiple spatial scales Heredity. V. 110: P. 123-130.

83. Murakami N., Nogami S., Watanabe M. et al. (1999) Phylogeny of Aspleniaceae inferred from rbcL nucle-otide sequences. Amer. Fern J. V. 89: P. 232-243.

84. Neyland R. (2008) Intraspecific systematic relationships of Sarracenia alata Wood (Sarraceniaceae) inferred from nuclear ribosomal DNA sequences. J. Mississippi Acad. Sci. V. 53: P. 238-245.

85. Novo M., Almodovar A., Fernandez R., Cosin D. J. D. (2010) Cryptic speciation of hormogastrid earthworms revealed by mitochondrial and nuclear data. Mol. Phy-logenet. Evol. V. 56: P. 507-512.

86. Okuyama Y., Kato M. (2009) Unveiling cryptic species diversity of flowering plants: successful biological species identification of Asian Mitella using nuclear ribosomal DNA sequences. BMC Evol. Biol. V. 9: P. 105.

87. Paris C. A., Windham M. D. (1988) A biosystematic investigation of the Adiantum pedatum complex in Eastern North America. Syst. Bot. V. 13: P. 240-255.

88. Parker M. A., Doyle J. L., Doyle J. J. (2004) Comparative phylogeography of Amphicarpaea legumes and their root-nodule symbionts in Japan and North America. J. Biogeogr. V. 31: P. 425-434.

89. Pavlic D., Slippers B., Coutinho T. A., Wingfield M. J. (2009) Multiple gene genealogies and phenotypic data reveal cryptic species of the Botryosphaeriaceae: a case study on the Neofusicoccum parvum/N. ribis complex. Mol. Phylogenet. Evol. V. 51: P. 259-268.

90. Payo D. A., Leliaert F., Verbruggen H. et al. (2013) Extensive cryptic species diversity and fine-scale en-demism in the marine red alga Portieria in the Philippines. Proc. R. Soc. B V. 280, 20122660.http://dx.doi. org/10.1098/rspb.2012.2660.

91. Peirson J. A., Reznicek A. A., Semple J. C. (2012) Polyploidy, infraspecific cytotype variation, and specia-tion in Goldenrods: The cytogeography of Solidago subsect. Humiles (Asteraceae) in North America Tax-on V. 61: P. 197-210.

92. Pfenninger M., Schwenk K. (2007) Cryptic animal species are homogeneously distributed among taxa and biogeographical regions. BMC Evol. Biol. V. 7: P. 121.

93. Pillon Y., Hopkins H. C. F., Munzinger J. et al. (2009) Cryptic species, gene recombination and hybridization in the genus Spiraeanthemum (Cunonia-ceae) from New Caledonia. Bot. J. Linn. Soc. V. 161: P. 137-152.

94. Poong S.-W, Lim P.-E., Phang S.-M. et al. (2013) Mesospora elongata sp. nov. (Ralfsiales, Phaeophyce-ae), a new crustose brown algal species from the Indo-Pacific region. Phycologia. V. 52: P. 74-81.

95. Pryer K. M., Haufler C. H. (1993). Isozymic and chromosomal evidence for the allotetraploid origin of Gym-nocarpium dryopteris (Drypteridaceae). Syst. Bot. V. 18: P. 150-172.

96. Queiroz L. P. de, Lavin M. (2011). Coursetia (Legu-minosae) from eastern Brazil: nuclear ribosomal and chloroplast DNA sequence analysis reveal the mono-phyly of three caatinga-inhabiting species. Syst. Bot. V. 36. P. 69-79.

97. Ramaiya M., Johnson M. G., Shaw B. (2010) Morphologically cryptic biological species within the liverwort Frullania asagrayana. Amer. J. Bot. V. 97: P. 1707-1718.

98. Rieseberg L. H., Blackman B. K. (2010) Speciation genes in plants. Ann. Bot. V. 106: P. 439-455.

99. Roalson E. H., Friar E. A. (2004) Phylogenetic relationships and biogeographic patterns in North American members of Carex section Acrocystis (Cyper-aceae) using nrDNA ITS and ETS sequence data. Pl. Syst. Evol. V 243: P. 175-187.

100. Ryan F. J., Ayres D. R. (2000) Molecular markers indicate two cryptic, genetically divergent populations of Russian thistle (Salsola tragus) in California. Can. J. Bot. V. 78: P. 59-67.

101. Sarkinen T. E., Marcelo-Pena J. L., Yomona A. D. et al. (2011) Underestimated endemic species diversity in the dry inter-Andean valley of the Rio Maranon, northern Peru: An example from Mimosa (Legumino-sae, Mimosoideae). Taxon. V. 60: P. 139-150.

102. Saunders G. W. (2005) Applying DNA barcoding to red macroalgae: a preliminary appraisal holds promise for future application. Phil. Trans. R. Soc. B. V. 360 (1462): P. 1879-1888.

103. Schultheis L. M. (2010) Morphologically cryptic species within Downingia yina (Campanulaceae). Madroño. V. 57: P. 20-41.

104. Shaw J. (2001) Biogeographic patterns and cryptic speciation in bryophytes. J. Biogeogr. V. 28: P. 253-261.

105. Skrede I., Borgen L., Brochmann C. (2009) Genetic structuring in three closely related circumpolar plant species: AFLP versus microsatellite markers and high-arctic versus arctic-alpine distributions. Heredity. V. 102: P. 293-302.

106. Smith A. L., Tuomisto H., Pryer K. M. et al. (2001) Metaxya lanosa, a second species in the genus and fern family Metaxyaceae. Syst.Bot. V. 26: P. 480-486.

107. Soltis D. E., Soltis P. S., Schemske D. W. et al. (2007) Autopolyploidy in angiosperms: have we grossly underestimated the number of species? Taxon. V. 56: P. 13-30.

108. Soltis D. E., Soltis P. S., Tate J. A. (2004) Advances in the study of polyploidy since "Plant Speciation". New Phytol. V. 161: P. 173-191.

109. Sotiaux A., Enroth J., Olsson S. et al. (2009) When morphology and molecules tell us different stories: a case-in-point with Leptodon corsicus, a new and unique endemic moss species from Corsica. J. Bryol. V 31: P. 186-196.

110. Sotuyo S., Delgado-Salinas A., Chase M. W et al. (2007) Cryptic speciation in the Caesalpinia hin-tonii complex (Leguminosae: Caesalpinioideae) in a seasonally dry Mexican forest. Ann. Bot. V. 100: P. 1307-1314.

111. Stech M., Wagner D. (2005) Molecular relationships, biogeography, and evolution of Gondwanan Campy-lopus species (Dicranaceae, Bryopsida). Taxon. V. 54: P. 377-382.

112. Steyskal G. S. (1972) The meaning of the term "sibling species". Syst. Zool. V. 21: P. 446.

113. Strutzenberger P., Brehm G., Fiedler K. (2011) DNA barcoding-based species delimitation increases species count of Eois (Geometridae) moths in a well-studied tropical mountain forest by up to 50 %. Insect Science. V. 18: P. 349-362.

114. Tiffin P., Gaut B. S. (2001) Sequence diversity in the tetraploid Zea perennis and the closely related diploid Z. diploperennis: Insights from four nuclear loci. Genetics. V. 158: P. 401-412.

115. Vaughan H. E., Taylor S., Parker J. S. (1997) The ten cytological races of the Scilla autumnalis species complex Heredity. V. 79: P. 371-379.

116. Walti M. O., Muhlemann J. K., Widmer A., Schi-estl F. P. (2008) Floral odor and reproductive isolation in two species of Silene. J. Evol. Biol. V. 21: P. 111-121.

117. Watano Y., Masuyama S. (1994) Genetic differentiation in population of the polymorphic fern Ceratopteris thalictroides in Japan. J. Plant Res. V 107: P 139-146.

118. Wickett N. J., Goffinet B. (2008) Origin and relationships of the myco-heterotrophic liverwort Cryptothal-lus mirabilis Malmb. (Metzgeriales, Marchantiophy-ta) Bot. J. Linn. Soc. V. 156: P. 1-12.

119. Williams E. W., Waller D. M. (2012) Phylogenetic placement of species within the genus Botrychium s. s. (Ophioglossaceae) on the basis of plastid sequences, Amplified Fragment Length Polymorphisms, and Flow Cytometry J. Plant Sci. V. 173: P. 516-531.

120. Whittall J. B., Hellquist C. B., Schneider E. L., Hodges S. A. (2004) Cryptic species in an endangered pondweed community (Potamogeton, Potamoget-onaceae) revealed by AFLP markers. Amer. J. Bot. V. 91: P. 2022-2029.

121. Zomlefer W B.,Whitten W M.,Williams N. H.,Judd W S. (2006) Infrageneric phylogeny of Schoenocaulon (Lil-iales: Melanthiaceae) with clarification of cryptic species based on ITS sequence data and geographical distribution. Amer. J. Bot. V. 93: P 1178-1192.

122. Yatabe Y., Masuyama S., Darnaedi D., Murakami N. (2001) Molecular systematics of the Asplenium nidus complex from mt. Halimun national park, Indonesia: evidence for reproductive isolation among three sympatric rbcL sequence types Amer. J. Bot. V. 88: P. 1517-1522.

CRYPTIC SPECIES IN PLANTS AND THEIR DETECTION BY GENETIC DIFFERENTIATION BETWEEN POPULATIONS

Shneyer V. S., Kotseruba V. V.

C SUMMARY: Many cryptic species were found during last years in animals, fungi, algae by their intraspecious genetic differentiation revealed by PCR-based methods. But they were rarely found yet in plants. In this review, we summarized the information on detection of cryptic species of spore and seed plants by the data on genetic differentiation between populations. Reasons for their rare discovery, the surrounding circumstances, the distinguishing features, and other issues are discussed.

C KEY WORDS: cryptic species; genetic differentiation; populations; plants.

C REFERENCES

1. Efimov P. G. (2013) Kripticheskie vidy kokushnikov (Gymnadenia: Orchidaceae, Magnoliophyta) Rossii. [Sibling species of fragrant orchids (Gymnadenia: Orchidaceae, Magnoliophyta) in Russia] Russian Journal of Genetics. V. 49: P. 299-309.

2. Kotseruba V. V., Probatova N. S., Blattner F. (2008) Polimorfizm Milium effusum L. (Poaceae) v geogra-ficheskom areale vida po dannym ITS sekvenirovaniya ribosomal'noy RNK. [Polymorphism in Milium effusum in its geographical range revealed by ITS DNA sequences] Fundamental'nye i prikladnye problemy botaniki v nachale XXI veka. Petrozavodsk. Karel'skiy nauchnyy tsentr. Ch. 3. S. 39-42.

3. Mikhaylova Yu. V., Kastello S., Naumova E. S., Nau-mov G. I. (2009) Allo- i simpatricheskie vidy-dvoyniki Saccharomyces cerevisiae: DNK-DNK gomologiya. [Allo- and sympatric sibling species of Saccharomyces cerevisiae: DNA-DNA gomologies] Ecological genetics. V. 7: P. 3-7.

4. Shneyer V S. (2009) DNK shtrikhkodirovanie — novoe napravlenie v sravnitel'noy genomike rasteniy. [DNA barcoding is a new approach in comparative genomics of plants] Russian J. of Genetics. V. 45: P. 1267-1278.

5. Adams R. P., Morris J. A., Pandey R. N., Schwarzbach A. E. (2005) Cryptic speciation between Juniperus deltoides and Juniperus oxycedrus (Cupressace-ae) in the Mediterranean. Biochem. Syst. Ecol. V. 33: P. 771-787.

6. Ahonen I., Sass-Gyarmati A., Pocs T. (2005) Molecular, morphological, and taxonomic evaluation of the Ptychanthus striatus — complex. Acta Bot. Hung. V. 47: P. 225-246.

7. Amato A., Kooistra WH. C.F, Ghiron J. H. L. et al. (2007) Reproductive isolation among sympatric cryptic species in marine diatoms. Protist. V. 158: P 193-207.

8. Bateman R. M., Bradshaw E., Devey D. S. et al. (2011) Species arguments: clarifying competing concepts of species delimitation in the pseudo-copulatory orchid genus Ophrys Bot. J. Linn. Soc. V. 165: P. 336-347.

9. Bell D., Long D. G., Forrest A. D., et al. (2012) DNA barcoding of European Herbertus (Marchantiopsida, Herbertaceae) and the discovery and description of a new species. Mol. Ecol. Res. V. 12: P. 36-47.

10. Bennett C., Aime M. C., Newcombe G. (2011) Molecular and pathogenic variation within Melampsora on Salix in western North America reveals numerous cryptic species. Mycologia. V. 103: P. 1004-1018.

11. Bickford D., Lohman D. J., Sodhi N. S. et al. (2007) Cryptic species as a window on diversity and conservation. Trends Ecol. Evol. V 22: P. 148-155.

12. Bower C. C., Brown G. R. (2009) Pollinator specificity, cryptic species and geographical patterns in pollinator responses to sexually deceptive orchids in the genus Chiloglottis: the Chiloglottis gunnii complex. Austral. J. Bot. V. 57: P. 37-55.

13. Britton M. N., Hedderson T. A., Verboom G. A. (2014) Topography as a driver of cryptic speciation in the high-elevation cape sedge Tetraria triangularis (Boeck.) C. B. Clarke (Cyperaceae: Schoeneae) Mol. Phylogen-et. Evol. V. 77: P. 96-109.

14. Carstens B. C., Satler J. D. (2013) The carnivorous plant described as Sarracenia alata contains two cryptic species. Biol. J. Linn. Soc. V. 109: P. 737-746.

15. Catalán P., Müller J., Hasterok R. et al. (2012) Evolution and taxonomic split of the model grass Brachypo-dium distachyon. Ann. Bot. V. 109: P. 385-405.

16. Chan R., Baldwin B.G, Ornduff R. (2002) Cryptic goldfields: a molecular phylogenetic reinvestigation of Lasthenia californica sensu lato and close relatives (Compositae: Heliantheae sensu lato). Amer. J. Bot. V. 89: P. 1103-1112.

17. Chiang T. Y., Schaal B. A. (1999) Phylogeography of North American populations of the moss species Hylo-comium splendens based on the nucleotide sequence of internal transcribed spacer 2 of nuclear ribosomal DNA. Mol. Ecol. V. 8: P. 1037-1042.

18. Darlington C. D. (1940) Taxonomic species and genetic systems. In: J. S. Huxley, editor. The new systematics. Oxford: University Press. p. 137-160.

19. Darwin C. (1859) On the origin of species by means of natural selection. London: John Murray.

20. Dauphin B., Vieu J., Grant J. R. (2014) Molecular phylogenetics supports widespread cryptic species in moonworts (Botrychium s. s., Ophioglossaceae) Am. J. Bot. V. 101: P. 128-140.

21. Doyle J. J., Doyle J. L., Rauscher J. T., Brown A. H. D. (2004) Evolution of the perennial soybean polyploid complex (Glycine subgenus Glycine): a study of contrasts Biol. J. Linn. Soc. V. 82: P. 583-597.

22. Duno de Stefano R., Fernández-Concha G. C., Can-It-za L. L., Lavin M. (2010) The morphological and phy-logenetic distinctions of Coursetia greenmanii (Legu-minosae): taxonomic and ecological implications. Syst. Bot. V. 35. P. 289-295.

23. Dong S., Schafer-Verwimp A., Meinecke P. et al. (2012) Tramps, narrow endemics and morphologically cryptic species in the epiphyllous liverwort Diplasiolejeunea. Mol. Phylogenet. Evol. V. 65: P. 582-594.

24. Downie S. R., Sun F.-J, Katz-Downie D. S., Col-letti G. J. (2004) A phylogenetic study of Perideridia (Apiaceae) based on nuclear ribosomal DNA ITS sequences. Syst. Bot. V. 29: P. 737-751.

25. Dunbar-Co S., Wieczorek A. M., Morden C. W. (2008) Molecular phylogeny and adaptive radiation of the endemic Hawaiian Plantago species (Plantaginaceae). Amer. J. Bot. V. 95: P. 1177-1188.

26. Egge J. J. D., Simons A. M. (2006) The challenge of truly cryptic diversity: diagnosis and description of a new madtom catfish (Ictaluridae: Noturus). Zool. Scripta. V. 35: P. 581-595.

27. Fawley M. W., Dean M. L., Dimmer S. K., Fawley K. P. (2005) Evaluating the morphospecies concept in the Selenastraceae (Chlorophyceae, Chlorophyta). J. Phy-col. V. 42: P. 142-154.

28. Feist M. A. E., Downie S. R. (2008) A phylogenetic study of Oxypolis and Ptilimnium (Apiaceae) based on nuclear rDNA ITS sequences. Syst. Bot. V. 33: P. 447-458.

29. Feldberg K., Groth H., R. Wilson R. et al. (2004) Cryptic speciation in Herbertus (Herbertaceae, Jungerman-niopsida): Range and morphology of Herbertus send-tneri inferred from nrITS sequences. Pl. Syst. Evol. V. 249: P. 247-261.

30. Feldberg K., Vana J., Long D. G. et al. (2010) A phylogeny of Adelanthaceae (Jungermanniales, March-antiophyta) based on nuclear and chloroplast DNA markers, with comments on classification, cryptic speciation and biogeography. Mol. Phylogenet. Evol. V. 55: P. 293-304.

31. Fernandez C. C., Shevock J. R., Glazer A..N., Thompson J. N. (2006) Cryptic species within the cosmopolitan desiccation-tolerant moss Grimmia laevigata. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 103: P. 637-642.

32. Fiedorow P., Odrzykoski I., Szweykowski J., Szweykowska-Kulinska Z. (2001) Phylogeny of the European species of the genus Pellia (Hepaticae; Metzgeriales) based on the molecular data from nuclear tRNA (Leu) (CAA) intergenic sequences. Gene. V. 262: P. 309-315.

33. Filipowicz N., Nee M. H., Renner S. S. (2012) Description and molecular diagnosis of a new species of Brunfelsia (Solanaceae) from the Bolivian and Argentinean Andes. PhytoKeys. V. 10: P. 83-94.

34. Fouquet A., Gilles A., Vences M. et al. (2007) Underestimation of species richness in neotropical frogs revealed by mtDNA analyses. PLoS ONE. V. 2: e1109.

35. Fuselier L., Davison P. G., Clements M. (2009) Phy-logeographic analyses reveal distinct lineages of the

liverworts Metzgeria furcata (L.) Dumort. and Metz-geria conjugata Lindb. (Metzgeriaceae) in Europe and North America. Biol. Journal Linn. Soc. V. 98: P. 745-756.

36. Goodwillie C., Stiller J. W. (2001) Evidence for poly-phyly in a species of Linanthus (Polemoniaceae): Convergent evolution in selffertilizing taxa. Syst. Bot. V. 26: P. 273-282.

37. Grant V. (1971) Plant speciation. New York: Columbia University Press.

38. Grundt H. H., Kjolner S., Borgen L. et al. (2006) High biological species diversity in the arctic flora. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 103: P. 972-975.

39. Grusz A. L., Windham M. D., Pryer K. M. (2009) Deciphering the origins of apomictic polyploids in the Cheilanthes yavapensis complex (Pteridaceae) Amer. J. Bot. V. 96: P. 1636-1645.

40. Guiry M. D. (2012) How many species of algae are there? J. Phycol. V. 48: P. 1057-1063.

41. Gurushidze M., Fritsch R. M., Blattner F. R. (2008) Phylogenetic analysis of Allium subg. Melanocrom-myum infers cryptic species and demands a new sectional classification. Mol. Phylogenet. Evol. V. 49: P. 997-1007.

42. Harper J. T., Gile G. H., James E. R. et al. (2009) The inadequacy of morphology for species and genus delineation in microbial eukaryotes: An example from the parabasalian termite symbiont Coronympha. PLoS ONE V. 4 (8): e6577.

43. Hasterok R., Draper J., Jenkins G. (2004) Laying the cytotaxonomic foundations of a new model grass, Brac-hypodium distachyon (L.) Beauv. Chrom. Res. V. 12: P. 397-403.

44. Hauk W. D., Haufler C. H. (1999) Isozyme variability among cryptic species of Botrychium subgenus Botrychium (Ophioglossaceae). Amer. J. Bot. V. 86: P. 614-633.

45. Haufler C. H., Windham M. D. (1991) New species of North American Cystopteris and Polypodium, with comments on their reticulate relationships. Amer. Fern J. V. 81: P. 7-23.

46. Hawksworth D. L., Rossman A. Y. (1997) Where are all the undescribed fungi? Phytopathology V. 87: P. 888-891.

47. Hebert P. D. N., Cywinska A., Ball S. L., DeWaard J. R. (2003) Biological identification through DNA barcodes. Proc. Roy. Soc. Lond. B. V. 270: P. 313-321.

48. Hedenäs L., Eldenäs P. (2007) Cryptic speciation, habitat differentiation, and geography in Hamatocau-lis vernicosus (Calliergonaceae, Bryophyta). Pl. Syst. Evol. V. 268: P. 131-145.

49. Heinrichs J., Groth H., Lindner M., Feldberg K. (2004) Molecular, morphological, and phytochemical evidence for a broad species concept of Plagiochila bifaria (Hepaticae). The Bryologist. V. 107: P. 28-40.

50. Heinrichs J., Hentschel J., Bombosch A. et al. (2010) One species or at least eight? Delimitation and distribution of Frullania tamarisci (L.) Dumort. s. l. (Jungermanniopsida, Porellales) inferred from nuclear and chloroplast DNA markers. Mol. Phylogenet. Evol. V 56: P. 1105-1114.

51. Heinrichs J., Hentschel J., Feldberg K. et al. (2009) Phylogenetic biogeography and taxonomy of disjunct-ly distributed bryophytes. Journal Syst. Evol. V. 47: P. 497-508.

52. Hoot S. B., Taylor W. C. (2001) The utility of nuclear ITS, a LEAFY homolog intron, and chloroplast atpB-rbcL spacer region data in phylogenetic analyses and species delimitation in Isoёtes. Amer. Fern J. V. 91: P. 166-177.

53. Hrusa G. F., Gaskin J. F. (2008) The Salsola tragus complex in California (Chenopodiaceae): characterization and status of Salsola australis and the autochthonous allopolyploid Salsola ryanii sp. nov. Madrono. V. 55: P. 113-131.

54. Huttunen S., Hedenäs L., Ignatov M. S. et al. A. (2008) Origin and evolution of the northern hemisphere disjunction in the moss genus Homalothecium (Brachytheciaceae). Amer. J. Bot. V. 95: P. 720-730.

55. Iltis H. H., Doebley J. F., Guzman R. et al. (1979) Zea diploperennis (Gramineae): a new teosinte from Mexico. Science. V. 203: P. 186-188.

56. Inoue Y., Ishikawa H., Ohsawa T. A. (2004) Cryptic species in the Microlepia marginata suggested by nuclear and chloroplast DNA markers. J. Plant Res. V 117 (Supplement): P. 42-43.

57. Jewell M., Frère C. H., Harris-Shultz K. et al. (2012) Phylogenetic analysis reveals multiple introductions of Cynodon species in Australia. Mol. Phylogenet. Evol. V. 65: P. 390-396.

58. Johnson L. A., Cairns-Heath H. (2010) Decrypting cryptic species: morphological and molecular evidence for recognizing Navarretia linearifolia as distinct from N. sinistra (Polemoniaceae). Syst. Bot. V. 35: P. 618-628.

59. Johnson L. A., Chan L. M., Burr K., Hendrickson D. (2012) Navarretia furnissii (Polemoniaceae), a new diploid species from the intermountain western United States distinguished from tetraploid Navarretia saxi-montana. Phytotaxa. V. 42: P. 51-61.

60. Kadereit G., Piirainen M., Lambinon J., Vander-poorten A. (2012) Cryptic taxa should have names: Reflections in the glasswort genus Salicornia (Ama-ranthaceae) Taxon. V. 61: P. 1227-1239.

61. Knowlton N. (1993) Sibling species in the sea. Annu. Rev. Ecol. Syst. V 24: P. 189-216.

62. Koenders A., Martens K., Halse S., Schön I. (2012) Cryptic species of the Eucypris virens species complex (Ostracoda, Crustacea) from Europe have invaded Western Australia. Biol. Invasions. V. 14: P. 2187-2201.

63. Kon T., Yoshino T., Mukai T., Nishida M. (2007) DNA sequences identify numerous cryptic species of the vertebrate: A lesson from the gobioid fish Schindleria. Mol. Phylogen. Evol. V. 44: P. 53-62.

64. Koopman M. M., Carstens B. C. (2010) Inferring population structure and demographic parameters across a riverine barrier in the carnivorous plant Sarracenia alata (Sarraceniaceae). Conserv. Genet. V 11: P. 2027-2038.

65. Kreier H.-P., Feldberg K., Mahr F. et al. (2010) Phy-logeny of the leafy liverwort Ptilidium: Cryptic specia-tion and shared haplotypes between the Northern and Southern Hemispheres. Mol.Phylogenet. Evol. V. 57: P. 1260-1267.

66. Kurihara T., Watano Y., Takamiya M., Shimizu T. (1996) Electrophoretic and cytological evidence for genetic heterogeneity and the hybrid origin of Athyrium oblitescens. J. Plant Res. V. 109: P. 29-36.

67. Lee C.-S., Downie S. R. (2006) Phylogenetic relationships within Cicuta (Apiaceae tribe Oenantheae) inferred from nuclear rDNA ITS and cpDNA sequence data. Can. J. Bot. V. 84: P. 453-468.

68. Liu J., Möller M., Gao L.-M. et al. (2011) DNA barcoding for the discrimination of Eurasian yews (Taxus L., Taxaceae) and the discovery of cryptic species. Mol. Ecol. Res. V. 11: P. 89-100.

69. Löve A. (1964) The biological species concept and its evolutionary structure. Taxon. V. 13. P. 33-45.

70. Lu L., Fritsch P. W, Cruz B. C. et al. (2010) Reticulate evolution, cryptic species, and character convergence in the core East Asian clade of Gaultheria (Ericaceae). Mol. Phylogenet. Evol. V. 57: P. 364-379.

71. Manzaneda A. J., Rey P. J., Bastida J. M., et al. (2012) Environmental aridity is associated with cytotype segregation and polyploidy occurrence in Brachypodium dis-tachyon (Poaceae). New Phytol. V 193: P. 797-805

72. Masuyama S. (2008) Cryptic species in the fern Cer-atopteris thalictroides (Parkeriaceae). III. Referential diagnostic characters of three cryptic species. J. Plant Res. V. 121: P. 279-286.

73. Masuyama S., Yatabe Y., Murakami N., Watano Y. (2002) Cryptic species in the fern Ceratopteris thalictroides (L.) Brongn. (Parkeriaceae). I. Molecular analyses and crossing tests. J. Plant. Res. V 115: P. 8797.

74. Mayr E. (1942) Systematics and the origin of species. New York: Columbia Univ. Press.

75. Mayr E. (1963) Animal species and evolution Cambridge, Mass.: The Belknap Press, Harvard University Press.

76. McDaniel S. F., Shaw A. J. (2003) Phylogeographic structure and cryptic speciation in the trans-antarctic moss Pyrrhobryum mnioides. Evolution. V. 57: P. 205-215.

77. McLeod D. S. (2010) Of least concern? Systematics of a cryptic species complex: Limnonectes kuhlii (Am-

phibia: Anura: Dicroglossidae). Mol. Phylogenet. Evol. V. 56: P. 991-1000.

78. Medina R., Lara F., Goffinet B. et al. (2012) Integra-tive taxonomy successfully resolves the pseudo-cryptic complex of the disjunct epiphytic moss Orthotri-chum consimile s. l. (Orthotrichaceae). Taxon. V. 61: P. 1180-1119.

79. Meimberg H., Rischer H., Turini F. G. et al. (2010) Evidence for species differentiation within the Ancis-trocladus tectorius complex (Ancistrocladaceae) in Southeast Asia: a molecular approach. Pl. Syst. Evol. V. 284: P. 77-98.

80. Miwa H., Odrzykoski I. J., Matsui A. et al. (2009) Adaptive evolution of rbcL in Conocephalum (Hepati-cae, bryophytes). Gene. V. 441: P. 169-175.

81. Muellner A. N., Pennington T. D., Koecke A. V., Renner S. S. (2010) Biogeography of Cedrela (Me-liaceae, Sapindales) in Central and South America. Amer. J. Bot. V 97: P. 511-518.

82. Münzbergova Z., Surinova M. S., Castro S. (2013) Absence of gene flow between diploids and hexaploids of Aster amellus at multiple spatial scales Heredity. V. 110: P. 123-130.

83. Murakami N., Nogami S., Watanabe M. et al. (1999) Phylogeny of Aspleniaceae inferred from rbcL nucleotide sequences. Amer. Fern J. V. 89: P. 232-243.

84. Neyland R. (2008) Intraspecific systematic relationships of Sarracenia alata Wood (Sarraceniaceae) inferred from nuclear ribosomal DNA sequences. J. Mississippi Acad. Sci. V. 53: P. 238-245.

85. Novo M., Almodovar A., Fernandez R., Cosin D. J. D. (2010) Cryptic speciation of hormogastrid earthworms revealed by mitochondrial and nuclear data. Mol. Phy-logenet. Evol. V. 56: P. 507-512.

86. Okuyama Y., Kato M. (2009) Unveiling cryptic species diversity of flowering plants: successful biological species identification of Asian Mitella using nuclear ribosomal DNA sequences. BMC Evol. Biol. V. 9: P. 105.

87. Paris C. A., Windham M. D. (1988) A biosystematic investigation of the Adiantum pedatum complex in Eastern North America. Syst. Bot. V. 13: P. 240-255.

88. Parker M. A., Doyle J. L., Doyle J. J. (2004) Comparative phylogeography of Amphicarpaea legumes and their root-nodule symbionts in Japan and North America. J. Biogeogr. V. 31: P. 425-434.

89. Pavlic D., Slippers B., Coutinho T. A., Wingfield M. J. (2009) Multiple gene genealogies and phenotypic data reveal cryptic species of the Botryosphaeriaceae: a case study on the Neofusicoccumparvum/N. ribis complex. Mol. Phylogenet. Evol. V. 51: P. 259-268.

90. Payo D. A., Leliaert F., Verbruggen H. et al. (2013) Extensive cryptic species diversity and fine-scale en-demism in the marine red alga Portieria in the Philippines. Proc. R. Soc. B V. 280, 20122660.http://dx.doi. org/10.1098/rspb.2012.2660.

91. Peirson J. A., Reznicek A. A., Semple J. C. (2012) Polyploidy, infraspecific cytotype variation, and speciation in Goldenrods: The cytogeography of Solidago subsect. Humiles (Asteraceae) in North America Tax-on V. 61: P. 197-210.

92. Pfenninger M., Schwenk K. (2007) Cryptic animal species are homogeneously distributed among taxa and biogeographical regions. BMC Evol. Biol. V. 7: P. 121.

93. Pillon Y., Hopkins H. C. F., Munzinger J. et al. (2009) Cryptic species, gene recombination and hybridization in the genus Spiraeanthemum (Cunonia-ceae) from New Caledonia. Bot. J. Linn. Soc. V. 161: P. 137-152.

94. Poong S.-W., Lim P.-E., Phang S.-M. et al. (2013) Mesospora elongata sp. nov. (Ralfsiales, Phaeophyce-ae), a new crustose brown algal species from the Indo-Pacific region. Phycologia. V. 52: P. 74-81.

95. Pryer K. M., Haufler C. H. (1993) Isozymic and chromosomal evidence for the allotetraploid origin of Gym-nocarpium dryopteris (Drypteridaceae). Syst. Bot. V. 18: P. 150-172.

96. Queiroz L. P. de, Lavin M. (2011) Coursetia (Legu-minosae) from eastern Brazil: nuclear ribosomal and chloroplast DNA sequence analysis reveal the mono-phyly of three caatinga-inhabiting species. Syst. Bot. V. 36. P. 69-79.

97. Ramaiya M., Johnson M. G., Shaw B. (2010) Morphologically cryptic biological species within the liverwort Frullania asagrayana. Amer. J. Bot. V. 97: P. 1707-1718.

98. Rieseberg L. H., Blackman B. K. (2010) Speciation genes in plants. Ann. Bot. V. 106: P. 439-455.

99. Roalson E. H., Friar E. A. (2004) Phylogenetic relationships and biogeographic patterns in North American members of Carex section Acrocystis (Cyper-aceae) using nrDNA ITS and ETS sequence data. Pl. Syst. Evol. V. 243: P. 175-187.

100. Ryan F. J., Ayres D. R. (2000) Molecular markers indicate two cryptic, genetically divergent populations of Russian thistle (Salsola tragus) in California. Can. J. Bot. V. 78: P. 59-67.

101. Särkinen T. E., Marcelo-Pena J. L., Yomona A. D. et al. (2011) Underestimated endemic species diversity in the dry inter-Andean valley of the Rio Maranon, northern Peru: An example from Mimosa (Legumino-sae, Mimosoideae). Taxon. V. 60: P. 139-150.

102. Saunders G. W (2005) Applying DNA barcoding to red macroalgae: a preliminary appraisal holds promise for future application. Phil. Trans. R. Soc. B. V. 360 (1462): P. 1879-1888.

103. Schultheis L. M. (2010) Morphologically cryptic species within Downingia yina (Campanulaceae). Madroño. V. 57: P. 20-41.

104. Shaw J. (2001) Biogeographic patterns and cryptic speciation in bryophytes. J. Biogeogr. V 28: P. 253-261.

105. Skrede I., Borgen L., Brochmann C. (2009) Genetic structuring in three closely related circumpolar plant species: AFLP versus microsatellite markers and high-arctic versus arctic—alpine distributions. Heredity. V. 102: P. 293-302.

106. Smith A. L., Tuomisto H., Pryer K. M. et al. (2001) Metaxya lanosa, a second species in the genus and fern family Metaxyaceae. Syst.Bot. V. 26: P. 480-486.

107. Soltis D. E., Soltis P S., Schemske D. W et al. (2007) Autopolyploidy in angiosperms: have we grossly underestimated the number of species? Taxon. V 56: P. 13-30.

108. Soltis D. E., Soltis P. S., Tate J. A. (2004) Advances in the study of polyploidy since "Plant Speciation". New Phytol. V. 161: P. 173-191.

109. Sotiaux A., Enroth J., Olsson S. et al. (2009) When morphology and molecules tell us different stories: a case-in-point with Leptodon corsicus, a new and unique endemic moss species from Corsica. J. Bryol. V. 31: P. 186-196.

110. Sotuyo S., Delgado-Salinas A., Chase M. W et al. (2007) Cryptic speciation in the Caesalpinia hin-tonii complex (Leguminosae: Caesalpinioideae) in a seasonally dry Mexican forest. Ann. Bot. V. 100: P. 1307-1314.

111. Stech M., Wagner D. (2005) Molecular relationships, biogeography, and evolution of Gondwanan Campy-lopus species (Dicranaceae, Bryopsida). Taxon. V. 54: P. 377-382.

112. Steyskal G. S. (1972) The meaning of the term "sibling species". Syst. Zool. V. 21: P. 446.

113. Strutzenberger P., Brehm G., Fiedler K. (2011) DNA barcoding-based species delimitation increases species count of Eois (Geometridae) moths in a well-studied tropical mountain forest by up to 50 %. Insect Science. V. 18: P. 349-362.

114. Tiffin P., Gaut B. S. (2001) Sequence diversity in the tetraploid Zea perennis and the closely related diploid

Z. diploperennis: Insights from four nuclear loci. Genetics. V. 158: P. 401-412.

115. Vaughan H. E., Taylor S., Parker J. S. (1997) The ten cytological races of the Scilla autumnalis species complex Heredity. V 79: P. 371-379.

116. Walti M. O., Muhlemann J. K., Widmer A., Schi-estl F. P. (2008) Floral odor and reproductive isolation in two species of Silene. J. Evol. Biol. V. 21: P. 111-121.

117. Watano Y., Masuyama S. (1994) Genetic differentiation in population of the polymorphic fern Ceratopteris thalictroides in Japan. J. Plant Res. V 107: P 139-146.

118. Wickett N. J., Goffinet B. (2008) Origin and relationships of the myco-heterotrophic liverwort Cryptothal-lus mirabilis Malmb. (Metzgeriales, Marchantiophy-ta) Bot. J. Linn. Soc. V. 156: P. 1-12.

119. Williams E. W, Waller D. M. (2012) Phylogenetic placement of species within the genus Botrychium s. s. (Ophioglossaceae) on the basis of plastid sequences, Amplified Fragment Length Polymorphisms, and Flow Cytometry Journal Plant Sci. V 173: P. 516-531.

120. Whittall J. B., Hellquist C. B., Schneider E. L., Hodges S. A. (2004) Cryptic species in an endangered pondweed community (Potamogeton, Potamoget-onaceae) revealed by AFLP markers. Amer. J. Bot. V. 91: P. 2022-2029.

121. Zomlefer W B.,Whitten W M.,Williams N. H.,Judd W S. (2006) Infrageneric phylogeny of Schoenocaulon (Lil-iales: Melanthiaceae) with clarification of cryptic species based on ITS sequence data and geographical distribution. Amer. J. Bot. V. 93: P 1178-1192.

122. Yatabe Y., Masuyama S., Darnaedi D., Murakami N. (2001) Molecular systematics of the Asplenium nidus complex from mt. Halimun national park, Indonesia: evidence for reproductive isolation among three sympatric rbcL sequence types Amer. J. Bot. V. 88: P. 1517-1522.

C Информация об авторах

Шнеер Виктория Семеновна — лаборатория биосистематики и цитологии. Ботанический институт им. В. Л. Комарова РАН. 197376, Санкт-Петербург, ул. Профессора Попова, д. 2. E-mail: shneyer@rambler.ru.

Коцеруба Виолетта Владимировна — лаборатория биосистематики и цитологии. Ботанический институт им. В. Л. Комарова РАН. 197376, Санкт-Петербург, ул. Профессора Попова, д. 2. E-mail: viola.kotseruba@gmail.com.

Shneyer Viktoriya Semenovna — Department of Biosystematics and Cytology. Komarov Botanical Institute of RAS. 197376, Saint Petersburg, Professor Popov St., 2. Russia. E-mail: shneyer@rambler.ru.

Kotseruba Violetta Vladimirovna — Department of Biosystematics and Cytology. Komarov Botanical Institute of RAS. 197376, Saint Petersburg, Professor Popov St., 2. Russia. E-mail: viola.kotseruba@gmail.com.