Способ вызывания суперовуляции у коров-доноров

воспринимают окраску. Клетки заполнены глыбчатой бесструктурной массой (рис. 4).

На 4-е сутки, т.е. через 96 ч после смерти, печень увеличена в объеме, грязно-бурого цвета, дряблой консистенции и легко рвется, со зловонным запахом.

При микроскопическом исследовании сохраняется лишь общая топография структур печени, не воспринимающих красителей. Параллельно обнаруживаются единичные слабоокрашенные ядра лизи-рованных клеток. В паренхиме органа видна обильная микрофлора.

Таким образом, проведенными исследованиями установлено, что наиболее существенные постмортальные структурные изменения в печени маралов происходят сначала в периферических, а затем в центральных отделах органа. Посмертные

изменения печени необходимо учитывать при проведении судебно-ветеринарной экспертизы и взятии патологического материала для гистологического исследования.

Библиографический список

1. Лазовский Ю.М. Трупные изменения / Ю.М. Лазовский / / Многотомное руководство по патологической анатомии. — М., 1956. — Т. 4. — Кн. 1. — С. 200-309.

2. Хижнякова К.И. Возможности судебно-медицинской экспертизы при определении времени наступления смерти / К.И. Хижнякова. — М., 1973. — С. 40-43.

3. Хижнякова К.И. Исследование желудочно-кишечного тракта при определении давности смерти / К.И. Хижнякова, Л.Н. Моралев. — М.: Медицина, 1986. — С. 142.

+ + +

УДК 619:618.177-089.888.11 Д.В. Попов,

Н.В. Безбородов

СПОСОБ ВЫЗЫВАНИЯ СУПЕРОВУЛЯЦИИ У КОРОВ-ДОНОРОВ

Ключевые слова: трансплантация эмбрионов, коровы-доноры, суперовуляция, иммуномодулятор тимоген.

Одним из важных этапов биотехнологии трансплантации эмбрионов крупного рогатого скота является гормональное вызывание суперовуляции у коров-доноров. Для вызывания суперовуляции в яичниках коров используют гонадотропины в сочетании с простагландинами. Этот способ позволяет вызвать суперовуляцию в яичниках у 70% коров. Одним из существенных недостатков способа вызывания суперовуляции является крайне высокая степень вариабельности числа овуляций и качества оплодотворенных эмбрионов [1]. Отмечено, что среднее число овуляций, оцениваемых при извлечении яйцеклеток или эмбрионов, составляет 8,6 ± 5,8 [2]. Считают, что лишь половина коров, реагирующих на введение гонадотропинов, может дать 4-5 эмбрионов, пригодных

для трансплантации. Такая эффективность вызывания суперовуляции связана с влиянием эстрогенов на зародыши в полости матки, уровнем прогестерона, размеров зародышей, соответствием размеров зародышей их возрасту, наличием аномальных ооцитов, степени рассасывания желтого тела яичника, индивидуальным гормональным фоном животного, породой и возрастом животного, уровнем кормления, индивидуальной реакцией организма на гонадотропные препараты и другими факторами [3].

Гормональная стимуляция яичников у коров, вызывающая полиовуляцию, связана с активизацией метаболических процессов в организме коров-доноров. Поэтому для обеспечения овогенеза, оплодотворения и биологически полноценного формирования и развития эмбрионов коров-доноров необходимо обеспечить биологически активными веществами, способствующими полноценному развитию процессов суперовуляции.

Опыты по выявлению механизмов и взаимосвязи показателей естественной резистентности, гормонального баланса и метаболических изменений у коров-доноров после вызывания суперовуляции с использованием тимогена проведены на группах коров ООО «Интеко-Агро» Про-хоровского района Белгородской области симментальской породы, подобранных по принципу пар-аналогов по следующей схеме [4-6] (табл. 1).

Целью работы было изучение процессов активизации уровня обменных процессов и совершенствование схемы вызывания суперовуляции у коров-доноров путем применения иммуномодулятора ти-могена.

В задачи исследований входило: - определение динамики стероидных гормонов в крови-доноров до и после применения тимогена в схеме вызывания суперовуляции;

Схема

- исследование биохимических и морфологических показателей крови, характеризующих уровень адаптационно-метаболических изменений у коров-доноров после применения биокорректора тимогена;

- определение качественных и количественных характеристик полученных эмбрионов при вымывании, после применения биокорректора тимогена.

Первой группе (контроль) коров-доноров (n = 6) с целью вызывания суперовуляции применяли стандартную схему обработки, включающую в/мышечное введение фолликулостимулирующего

гормона (ФСГ-супер, USA) на 10-, 11-, 12-е сутки эстрального цикла соответственно в дозах: 12, 8, 4, 4 мг/гол/сут. Дополнительно на 12-е сутки цикла вводили внутримышечно простагландин Ф2-альфа (магэстрофан) — 4 мл/гол. (1,0 мг/гол. клопростенола) однократно.

Таблица 1

опытов

Группа День эстрального цикла коров-доноров Введение препаратов

1 10 ФСГ

11 ФСГ

1 12 ФСГ + F2a

(контроль) 13 14 ФСГ

16 Осеменение

22 -

1-10 Тимоген

10 ФСГ

11 ФСГ

2 12 ФСГ+Fa

(опыт) 13 14 ФСГ

16 Осеменение

22 -

Проводимые исследования

Биохимические и морфологические исследования крови

Биохимические и морфологические исследования крови

Биохимические и морфологические исследования крови

Биохимические и морфологические исследования крови

Биохимические и морфологические исследования крови и вымывание эмбрионов

Биохимические и морфологические исследования крови

Биохимические и морфологические исследования крови

Биохимические и морфологические исследования крови

Биохимические и морфологические исследования крови

Биохимические и морфологические исследования крови и вымывание эмбрионов

Второй группе (опытной) коров-доноров (n = 6) с целью вызывания суперовуляции применяли стандартную схему обработки, но с 1-го дня эстрального цикла дополнительно внутримышечно вводили синтетический тимоген

20 мл/гол/сут 0,01% раствора в течение 10 дней.

Синтетический иммуномодулятор тимоген — средство, нормализующее метаболические процессы в организме за счет наличия двух пептидов — глутаминовой кислоты и триптофана.

Исследования содержания гормонов эстрадиола, прогестерона, тироксина, кортизола и ФСГ проводили методом твердофазного иммуноферментного анализа на иммуноферментном иммуноана-лизаторе «Санрайс Текан» с использованием тест-систем для прогестерона, ФСГ, кортизола «Алкор-Био» (г. Санкт-Петербург) и «Хема Медико» (г. Москва) для эстрадиола-^ß. Данные измерения основаны на показаниях спектрофотометра оптической плотности связанных гормонов со специфическими антителами, фиксированными в твердой фазе, с последующим расчетом их концентрации по калибровочной кривой [7, 8]. Определение числа овулировавших фолликулов проводили ректальным методом.

Определение биохимических показателей в крови коров-доноров: белковых фракций; ферментов; аланинаминотранс-феразы (АлАТ); аспартатаминотрансфе-разы (АсАТ); щелочной фосфатазы (ЩФ); холестерина и триглицеридов проводили согласно общепринятым методикам [9-12]. Для определения гемоглобина, эритроцитов, лейкоцитов и лейкоцитарной формулы использовали гематологический анализатор Star-Fax 400 (USA).

Результаты гормональной обработки коров-доноров с целью вызывания суперовуляции показали (табл. 2), что в опытной группе число овулировавших фолликулов в среднем на одну корову-донора было на 26,8% больше, чем в контрольной группе. При этом получено пригодных для трансплантации эмбрионов на 13,9% больше, чем в контроле, а дегенериро-ванных — на 4,7% меньше. Количество не оплодотворенных яйцеклеток от числа овулировавших фолликулов в опытной группе было также на 9,1% меньше.

Содержание гормонов в периферической крови коров-доноров контрольной

группы менялось следующим образом (табл. 3). На первый день полового цикла уровень эстрадиола был наибольшим — 0,48±0,15 нмоль/л, а прогестерона наименьшим — 0,45±0,12 нмоль/л, что соответствует данным многочисленных исследований в этой области. В последующем содержание прогестерона к середине лю-теальной фазы повысилось в 20,1 раза и составило 9,06±2,18 нмоль/л, р > 0,05, а концентрация эстрадиола имела тенденцию снижения к этому времени. Ко времени наступления половой охоты и осеменения (16-й день) содержание прогестерона снизилось в 15,4 раза по сравнению с 12-м днем и достигло значения 0,82±0,14 нмоль/л, р > 0,95. Уровень эстрадиола к этому времени продолжал снижаться и составил 0,43±0,13 нмоль/л.

У коров-доноров опытной группы изменения количества эстрадиола в периферической крови к 16-му дню полового цикла также имели малозначимые изменения и в целом были схожими с показателями у коров контрольной группы.

Динамика содержания прогестерона в течение исследуемого периода имела аналогичную с контролем направленность изменений — повышение к 12-м суткам цикла в 15,1 раза и снижение в последующем ко времени наступления охоты (16-й день) в 2,9 раза [13, 14]. Известно, что образование простагландина ответственного за лизис в последующем желтых тел к концу полового цикла, поддерживается определенным уровнем прогестерона, и только когда его концентрация достигает определенного значения, выделение простагландина прекращается, таким образом, создаются предпосылки для протекания на более качественном уровне фолликулогенеза, определяющем в последующем лучшую эмбриопродуктив-ность у коров-доноров опытной группы

[15].

Повышение соотношения прогестерона к эстрадиолу-17Р на 22-е сутки у коров контрольной группы по сравнению с опытной 1:112,2 против 1:62,2 свидетельствуют о худших результатах суперовуляции. Подобная зависимость получена и в других исследованиях [16].

Изменения биохимических показателей крови у коров-доноров опытной и контрольной групп в основном имели малозначимые изменения (табл. 4).

Таблица 3

Динамика гормональных изменений в крови коров-доноров

Таблица 2

Показатели эмбриопродуктивности

№ Показатели Группы

п/п опыт контроль

1 Количество животных 6 6

2 Число овуляций в среднем на донора 11,6 8,5

3 Получено эмбрионов, в том числе: а) пригодных б) дегенерированных в) не оплодотворенных яйцеклеток 7,3

№ Показатель Взятие крови

п/п (п = 6) 1 10 12 16 22

Опыт

1 Эстрадиол-17р, 0,35 0,31 0,36 0,40 0,36

нмоль/л ±0,08 ±0,05 ±0,1 ±0,09 ±0,08

1:6,4 1:62,2

0,49 6,6

2 Прогестерон, ±0,13 ±1,53* 7,4 2,56 22,4

нмоль/л ±2,01 ±2,2 ±12,7*

1,07 0,91

3 ФСГ, мМ Е/мл ±0,35 ±0,05 0,85 1,14 1,4

±0,1 1 ±0,14 ±0,57

66,22 62,73

4 Тироксин,нмоль/л ±7,85 ±3,75 76,43 70,75± 73,35

±7,28 4,52 ±11,2

31,79 27,76

5 Кортизол,нмоль/л ±8,2 ±10,6 38,28 65,05 32,82

±13,36 ±20,3 ±7,73

Контроль

1 Эстрадиол-17р, 0,48 0,42 0,45 0,43 0,37

нмоль/л ±0,15 ±0,12 ±0,14 ±0,13 ±0,08

1:1,9 1:112,7

2 Прогестерон, 0,45 9,06 12,63 0,82 41,71

нмоль/л ±0,12 ±2,18* ±3,76 ±0,14* ±15,7*

3 ФСГ, мМ Е/мл 0,54 0,60 0,7 0,58 0,62

±0,06 ±0,07 ±0,13 ±0,06 ±0,07

4 Тироксин, нмоль/л 65,28 67,03 73,43 70,0 63,53

±13,9 ±12,5 ±11,3 ±10,5 ±9,2

5 Кортизол, нмоль/л 68,57 55,8 48,2 60,8 39,2

±20,1 ±22,6 ±13,09 ±19,7 ±13,6

Примечание: * Р > 0,95.

Отмеченное у животных опытной группы снижение уровня (на 25,7%) а-гло-булинов (13,3±0,52%, р>0,95) к моменту наступления охоты (16-й день) по сравнению с показателем в середине лютеаль-ной фазы (10-12-й день), очевидно, свидетельствует о повышении уровня неспецифического иммунитета, что подтверждается и снижением к этому времени со-

держания Р-глобулинов (на 10,0%) до 17,7±2,01%, р > 0,95. Повышение у-гло-булинов к 16-му дню на 30,1%, р > 0,95, характеризует интенсификацию иммунологических процессов в группе коров-доноров после введения в схему обработки тимогена.

Полученные данные изменения белковых показателей крови, как отражающих

компенсаторно-приспособительные механизмы становления гомеостаза организма животных после действия препарата тимо-

Динамика изменения биохимических

ген, носят стимулирующий иммунобиохи-мические процессы характер направленности его действия.

Таблица 4 показателей в крови коров-доноров

№ п/п

Показатель

1

Взятие крови

10

12

16

22

1 2 3

Опыт

Общий белок, г/л Альбумины, % Глобулины, %:

- а

- в - 1

ЩФ, ид АлАТ, иД АсАТ, иД

Холестерин, ммоль/л Триглицериды, ммоль/л

70,0±3,07 40,83± 1,13

16,07±0,86 21,82±0,88 19,58±1,76 34,83±2,44 53,67±3,64 37,0±4,31 1,52±0,14

0,44±0,08

69,8±3,61 40,3±0,68

16,63±1,31 17,3±1,08* 24,13± 1,64 42,83±6,92 46,0±3,58 36,17±2,27 1,73±0,16

0,46±0,08

72,3±2,75 41,15± 1,22

17,98±1,7 19,43± 1,98 19,53±2,17 43,17±7,36 39,67±2,2 35,5±2,13 1,76±0,13

0,53±0,07

69,0±4,61 41,58±0,76

13,3±0,52* 17,7±2,01 * 25,42±1,19* 36,17±5,93 42,67±5,2 31,5±2,33 1,53±0,22

0,5±0,09

74,7±4,60 42,83± 1,40

15,07±1,2 17,83± 1,89 22,2±1,66 36,5±5,32 39,17±6,84 32,67±4,59 1,61±0,27

0,52±0,10

1

2 3

Контроль

Общий белок,г/л Альбумины, % Глобулины, %:

- а

- в - 1

ЩФ, U/L АлАТ, U/L АсАТ, иД

Холестерин, ммоль/л Триглицериды, ммоль/л_

71,7±2,51 44,17±3,03

16,07±1,0 13,28±2,34 26,25±2,76 36,0±3,9 41,0±5,02 38,5±5,64 1,78±0,11

0,45±0,07

73,7±3,28 41,78± 1,13

15,92±0,7 13,77±3,10 26,68±2,48 30,17±2,39 38,3±2,6 38,17±4,4 1,66±0,13

0,45±0,06

68,2± 43,13:

1,71 :0,72

68,8± 39,92:

1,78  1,63

15,28:1,2 19,85±4,0 19,45±3,52 46,67±5,45* 36,5:2,65 39,5:6,06 1,75±0,18

0,52:0,08

15,92±0,55 15,72±2,37 25,87:2,71 38,85:7,75 41,5±5,07 35,5:4,23 1,73±0,22

0,51±0,09

71,5±2,11 40,58±1,24

14,42± 1,04 15,9±1,87 25,15±2,60 40,17±6,69 36,0:4,11 33,5:5,96 1,48±0,06

0,5:0,15

Динамика общих гематологических показателей

Таблица 5

№ Показатель Взятие крови

п/п

V 1 1 10 12 16 22

Опыт

1 Гемоглобин, г/л 95,17 99,33 100,2 97,83 93,33

±7,72 ±4,95 ±6,14 ±8,29 ±5,92*

2 Эритроциты, х10,2/л 5,35:0,34 5,83:0,25 5,77±0,21 5,5±0,39 5,27±0,28

3 Лейкоциты, х109/л 8,03:0,36 8,4±0,86 7,77±0,28 8,38±0,23 7,18±0,23*

4 Эозинофилы, % 1,83±0,52 2,0±0,49 2,17±0,34 2,67±0,78 2,33±0,54

5 Нейтрофилы

палочкоядерные, % 2,5±0,25 2,67±0,23 2,67±0,23 2,83±0,34 2,83±0,34

Нейтрофилы

6 сегментоядерные, % 25,5:2,78 27,33±2,26 31,17± 4,65 33,67±5,58 29,67±4,72

7 Лимфоциты, % 64,0:3,26 63,0±3,42 59,0±5,04 54,83±5,72 59,33±5,29

8 Моноциты, % 6,17±0,77 5,0±0,69 5,67±0,83 7,5±1,01 5,83±0,66

Контроль

1 Гемоглобин, г/л 99,67:0,88 94,83±4,17 98,67±2,51 100,0±2,37 100,17±2,20

2 Эритроциты, х10,2/л 5,48:0,12 5,57±0,11 5,73±0,01 5,58±0,09 5,73±0,13

3 Лейкоциты, х109/л 8,0:0,34 6,97±0,67 7,82±0,5 8,55±0,48 8,05±0,89

4 Эозинофилы, % 2,33:0,37 1,83±0,52 2,67±0,37 2,33±0,37 2,33±0,23

5 Нейтрофилы

палочкоядерные, % 2,67:0,23 3,33±0,23 2,33±0,37 2,33±0,23 2,33±0,23

Нейтрофилы

6 сегментоядерные, % 32,0:8,46 33,3±2,53 41,0±2,3 40,83± 1,64 39,17±2,95

7 Лимфоциты, % 57,0:3,66 54,5±3,63 47,0±2,43 48,67±1,99 50,83±3,33

8 Моноциты, % 6,0±0,89 7,0±0,4 7,0±0,4 7,83±0,52 5,33±0,46

8

8

Заключение

1. Результаты гормональной обработки коров-доноров с целью вызывания суперовуляции показали, что в опытной группе число овулировавших фолликулов в среднем на одну корову-донора было на 26,8% больше, чем в контрольной группе. При этом получено пригодных для трансплантации эмбрионов на 13,9% больше, чем в контроле, а дегенерированных — на 4,7% меньше. Количество не оплодотворенных яйцеклеток от числа овулировав-ших фолликулов в опытной группе было также на 9,1% меньше.

2. Динамика гормональных показателей в крови коров-доноров опытной группы свидетельствует только о наличии значимых изменений к середине лютеальной фазы (10 сут.) полового цикла со стороны прогестерона. Учитывая то, что прогестерон тормозит фолликулогенез, то сниженная от изначального уровня на 31,3% его концентрация к 10-м суткам у коров-доноров опытной группы по отношению к контролю свидетельствует об усилении индукции роста числа фолликулов, а возможно, и качества яйцеклеток в них.

К моменту возникновения течки и охоты у коров-доноров соотношение прогестерона и эстрадиола-17Р было больше у животных опытной группы (1:6,4), чем в контрольной (1:1,9), и наоборот, на 7-е сутки полового цикла (вымывание) соотношение гормонов поменялось, соответственно, 1:62,2 и 1:112,2, что характеризует худшую суперовуляцию в контроле.

3. Наиболее характерными изменениями остальных биохимических показателей в крови коров-доноров следует считать уровень глобулиновых фракций у животных опытной группы на 10- и 16-е сутки эстрального цикла. Снижение концентрации Р-глобулинов после введения тимоге-на (10-е сутки) и повышение к этому времени у-глобулинов до физиологических значений свидетельствует об иммуномо-дулирующей направленности действия ти-могена, в том числе очевидно за счет активизации синтеза глобулинов в печени, костном мозге, селезенке и лимфоузлах. Кроме того, Р-глобулины участвуют в транспорте холестерина (предшественника стероидных гормонов), самих стероидных гормонов и фосфолипидов, формирующих клеточные мембраны.

В контрольной группе животных этих изменений не отмечено.

4. Изменения общих гематологических показателей за период исследований не имели значимых изменений и находились у животных обеих групп в пределах физиологических значений.

Библиографический список

1. Shea B.F. Evaluating the bovine em-brio / B.F. Shea // Treriogen. - 1981. -15. 31-42.

2. Бабенков В.Ю. Биотехнологические методы интенсификации воспроизводства молочного и мясного скота: автореф. дис. ... докт. биол. наук / В.Ю. Бабенков. — Дубровицы, 2004. — 46 с.

3. Sanmande J. Superovulation Almitto Egg Transfer in catle / J. Sanmande, D. Chupin // Treriogen. — 1980. — 3. 141149.

4. Жуков В.В. Биохимические механизмы иммуномодулирующего действия пептидов тимуса: автореф. дис. ... канд. мед. наук / В.В. Жуков. — СПб., 1991. — 20 с.

5. Кожемякин Л.А. Биохимические механизмы биорегуляторных эффектов экзогенных пептидов / Л.А. Кожемякин // Пептидные биорегуляторы-цитомедицины.

— СПб.: Наука, 1992. — С. 77-78.

6. Малинин В.В. Механизмы пептидной регуляции гомеостаза / В.В. Малинин,

B.Г. Морозов / / Клиническая фармакология тимогена. — М., 2004. — Гл. 1. —

C. 7-18.

7. Головаченко В.А. Инструкция по применению наборов реагентов для им-муноферментного определения прогестерона, тестостерона, эстрадиола-17р, кор-тизола в сыворотке крови / В.А. Голова-ченко, Д.Г. Польщев. — 2000. — 53 с.

8. Кондрахин И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики / И.П. Кондрахин. — М.: КолосС, 2004. — 520 с.

9. Титов В.Н. Клиническая лабораторная диагностика / В.Н. Титов, Т.Г. Творогова.

— 1995. — № 3. — С. 15-18.

10. Сентебова Н.А. Унификация лабораторных методов исследования / Н.А. Сентебова, Л.А. Медведева, Т.Н. Александровская. — М., 1978. — Вып. VIII. — С. 39-49.

11. Reitman S., Frankel S. Amer. J. Clin. Pathol., 1957. — Vol. 28. — Р. 56.

12. Бажибина В.Я. Лабораторные исследования в ветеринарии / В.Я. Бажибина, П.И. Блинов. — М.: Колос, 1974. — 320 с.

13. Donaldson L.E. et al. Peripheral plasma progesterone concentration of cows during puberty, oestrous cycles, pregnancy and lactation, and the effects of under-nutrition or exogenons oxytocin on progesterone concentrations. J. Endocrin. — 1970. — 48, 599-614.

14. Henricks D.M., et al. Plasma estrogen and progesterone levels in cows prior to and durind estrus. Endocr. 89, 1350-1355.

15. Kindahl H. Et al. Progesterone and 15-leto-13, 14-dihudro prostaglandin F2a levels in peripheral circulation after intranterint iodint infusions in cows. Acta / Vet. Scand. 18, 1977. 274.

16. Антане В.В. Зависимость суперовуляции и качества эмбрионов коров-доноров от состояния их гормонального статуса, эндометрия и показателей обмена веществ: автореф. дис. ... канд. наук / В.В. Антане. - 1990. - 21 c.

+ + +

УДК 636.294:591.4

Ю.М. Малофеев, В.О. Липовик, А.С. Липовик

ДЕРМАТОГЛИФИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ НОСОГУБНОГО ЗЕРКАЛА МАРАЛОВ В СВЯЗИ С ПАНТОВОЙ ПРОДУКТИВНОСТЬЮ

Ключевые слова: носогубное зеркало, дерматоглифика, маралы, продуктивность, пигментация, панты.

Введение

Изучение дерматоглифов носогубного зеркала у пантовых оленей, дающих ценное сырье для фармацевтической промышленности, является достаточно важным и необходимым исследованием. Сведения по данному вопросу недостаточны [1-4].

Целью нашей работы было изучение особенностей рисунка носогубного зеркала у самцов маралов в связи с продуктивностью. Для этого мы использовали методику А.А. Трофименко и дедуктивный метод для анализа рисунка. Для гистологического исследования кусочки кожи носогубного зеркала фиксировали в 10%-ном нейтральном растворе формалина. Срезы кожи готовили на замораживающем микротоме с последующей окраской гематоксилин-эозином по Бемеру.

Проводили фотографирование на цифровую камеру, вводили в компьютерную программу и анализировали полученные снимки.

Материал был взят у 60 животных разных возрастов в ПКЗ «Амурский» Усть-Коксинского района Республики Алтай.

Для наших исследований мы отобрали по 21 гол. животных с каждым типом дерма-тоглифа.

Результаты исследований

Нами было выявлено 2 типа дерматог-лифа у маралов: «малина» и «каменная брусчатка» (рис. 1, 2). Оба типа дерма-тоглифа были разделены по относительной интенсивности пигментации на сильную, умеренную (среднюю) и слабую.

Так, средний вес сырых пантов с типом дерматоглифа «малина» за одну срезку составил 7,3 кг, а с типом дерматоглифа «каменная брусчатка» — 7,75 кг. По относительной интенсивности пигментации было обработано по 8 гол. в каждом типе (табл.) [5].

Из данных таблицы следует, что у животных со слабой пигментацией носогуб-ного зеркала продуктивность выше у типа дерматоглифа «малина» на 26,9% и у типа дерматоглифа «каменная брусчатка» — на 32,9%, чем с сильной пигментацией. При исследовании каждого типа дерма-тоглифа по 21 гол. выявлено, что быки с типом дерматоглифа «малина» дали 153,3 кг сырых пантов, а с типом дерма-тоглифа «каменная брусчатка» — 162,2 кг пантов.