Иммунотропная активность 70s, 50s и 30s рибосом Escherichia coli в эксперименте in vivo

психиатрической помощи, предусматривающая структурное и функциональное реформирование психиатрической службы через децентрализацию, усиление роли внебольничного звена, интеграцию в первичную медико-санитарную сеть, улучшение укомплектованности врачебными кадрами, обеспечение лечебно-диагностическим оборудованием, усиление межведомственного взаимодействия специалистов.

ЛИТЕРАТУРА

1. Краснов В. Н. Охрана психического здоровья - общая ответственность // Социальная и клиническая психиатрия. 2001. № 2. С. 5-7.

2. Семке В. Я. Превентивная психиатрия. Томск, 1999. 403 с.

3. Щепин О. П., Филатов В. Б. Региональное здравоохранение России: пути реформирования и развития // Проблемы социальной гигиены, здравоохранения и истории медицины. 1999. № 1. С. 3-12.

4. Казаковцев Б. А. Современные тенденции в организации психиатрической помощи // Российский психиатрический журнал. 2001. № 1. С. 57-61.

5. Гурович И. Я. Психическое здоровье населения и психиатрическая помощь в России // Социальная и клиническая психиатрия. 2001. № 1. С. 9-16.

Разработка новых иммунобиологических препаратов является важной задачей современной вакцино-логии и клинической иммунологии [1, 7]. При этом приоритетным является поиск более эффективных и менее реактогенных иммуногенов. К их числу следует отнести бактериальные рибосомы, иммуногенные свойства которых являются объектом исследования на протяжении более 40 лет [26]. За это время изучение иммунопротективных свойств рибосом оформилось в самостоятельное направление современной вакцино-логии [6, 22, 20, 21, 25].

К бесспорным достоинствам рибосомных препаратов можно отнести их низкую токсичность и реакто-генность, высокую иммуногенность и способность создавать перекрестный иммунитет к различным серо-типам возбудителей в пределах вида [5, 2, 12]. Препараты на основе бактериальных рибосом в настоящее время вышли за рамки классических вакцин, широко применяются в качестве иммуномодуляторов [19], что позволяет рассматривать их в качестве основы для конструирования вакцинных препаратов нового поколения.

Механизм феномена рибосомной протекции до настоящего времени остается не известным. При дальнейших исследованиях этого вопроса принципиально важным при исследовании иммунотропных свойств рибосом является реализация принципа интактности, то есть использования рибосомного материала с со-

6. Голдобина О. А., Трешутин В. А. Психическое здоровье на региональном уровне: проблемы, пути решения. Томск, 2002. 280 с.

7. Кубань в цифрах: Стат. сборник. Краснодар, 2003. 289 с.

V. G. KOSENKO, N. S. SOCHIVKO

MENTAL HEALTH POPULATION AND IMPROVING OF PSYCHIATRIC SERVICE OF KRASNODAR REGION

There some results about the region particularities of the dynamics of the health of population of Krasnodar region were presented in the article. Some factors were examined which are influenced on the indexes of the mental health of the organization of psychiatric service. Some recommendations were given to increase the effect of psychiatric service in the local scale.

Keywords: index of mental health, organization of the psychiatric service.

храненной структурной организацией, чему ранее, по нашему мнению, не уделялось достаточного внимания [13]. При использовании указанного принципа было, в частности, установлено, что при иммунизации мышей интактными рибосомами главным образом возрастает уровень НГ, Е-РОК, а уровень ЕАС-РОК изменяется незначительно [18]. Развивая наш методический подход в изучении рибосомной протекции, целесообразно оценить особенности иммунотропной активности больших и малых субъединиц, полученных при диссоциации бактериальных рибосом 70S.

Цель работы - изучение влияния рибосомного материала на уровень общего количества лимфоцитов, Е-РОК-лимфоцитов, нейтрофильных гранулоци-тов, фагоцитарную активность и состояние микроби-цидных систем нейтрофилов у нелинейных мышей, иммунизированных 70S, 50S и 30S рибосомами E. coli MRE600, в эксперименте.

Материалы и методы

Рибосомы E. coli MRE600 и их субъединицы получали методом дифференциального ультра центр и фугирования [10]. Качество рибосомного материала оценивали по результатам спектрофотометрического, се-диментационного и электрофоретического анализа.

Иммунизацию белых беспородных мышей-самцов массой 20-22 г 70S, 50S и 30S рибосомами проводили внутрибрюшинно в дозе 1 нг на мышь трехкратно

В. П. КРЫЛОВ, С. В. КОШЕЛЕВА, Н. Э. СКОБЛИКОВ, В. Г. ОРЛОВ

ИММУН0ТР0ПНАЯ АКТИВНОСТЬ 70S, 50S И 30S РИБОСОМ ESCHERICHIA COLI В ЭКСПЕРИМЕНТЕ IN VIVO

ГОУ ВПО «Кубанский государственный медицинский университет», ГУ «Российский центр функциональной хирургической гастроэнтерологии», г. Краснодар

УДК 579.61:579.22:612.017.1:615.37

с интервалом 5 суток [18]. Были сформированы следующие группы: 1-я - фоновый контроль, 2-я - иммунизированные 70S рибосомами, 3-я - 50S рибосомами, 4-я - 30S рибосомами. В каждой группе находилось по 30 особей. Обращение с животными осуществляли в соответствии с правилами обращения с лабораторными животными [17].

Оценку иммунотропной активности проводили через 5 суток после завершения курса иммунизации. Кровь получали путем декапитации. Определяли общее количество лейкоцитов, относительное и абсолютное число лимфоцитов и нейтрофильных грану-лоцитов (НГ) [4]; лимфоцитов, вступающих в реакцию спонтанного розеткообразования с эритроцитами барана (Е-РОК) [14]. Реакцию бактериального фагоцитоза проводили [11] с использованием Staphylococcus aureus 209-Р. Определяли долю фагоцитарно-активных НГ (% ФАН), фагоцитарное число (ФЧ), фагоцитарный индекс (ФИ), процент переваривания (ПП), индекс переваривания (ИП). Состояние микробицидных систем НГ оценивали с помощью NBT-теста с использованием среднего цитохимического индекса (СЦИ) и коэффициента мобилизации (КМ) в модификации [11]; миелопероксидаз-ной (МП) активности НГ [24]; уровня катионных белков (КБ) [15]; неспецифической a-нафтилацетатэс-теразы (АЭ) [16].

Полученные результаты обрабатывались статистически [9] с расчетом средней величины (М), ошибок средних величин (m), средних квадратичных отклонений (а). Характер распределения признака в совокупности оценивали по правилу трех сигм [3]. Достоверность различий между средними величинами оценивали при помощи критерия Стьюдента.

Результаты и обсуждение

При трехкратной иммунизации мышей препаратами 70S, 50S и 30S рибосом Escherichia coli MRE600 получены эффекты, свидетельствующие о взаимосвязи иммунотропной активности рибосом с морфологическим типом рибосомных фракций (табл. 1).

Все исследованные фракции существенно влияли на состояние иммунной системы мышей, использованных в опыте, по сравнению с контрольной груп-

пой, а полученные значения выходили за пределы ±2,0с-зоны контроля, то есть свидетельствовали о стимулирующем либо угнетающем действии рибосомно-го материала.

Оказалось, что иммуностимулирующая активность, которую проявляли 70S рибосомы, трансформировалась в оппозитные иммунотропные эффекты при использовании больших и малых субъединиц. При этом стимулирующая активность 50S рибосом в отношении абсолютного числа лейкоцитов, лимфоцитов и нейтро-фильных гранулоцитов, а также Е-РОК-лимфоцитов была достоверно выше аналогичных показателей в группе животных, иммунизированных 70S-рибосомами (t=2,704, p<0,01; t=8,243, p<0,001; t=4,376, p<0,05; t=11,678, p<0,001 соответственно). Этот факт следует расценивать как безусловное преимущество больших субъединиц перед иммунотропной активностью 70S рибосом. Напротив, 30S рибосомы угнетающе действовали на перечисленные выше показатели, которые достоверно отличались от соответствующих значений у контрольных животных (t=3,063, p<0,01; t=3,633, p<0,001; t=2,081, p<0,05; t=4,06, p<0,001 соответственно). Поскольку лимфоциты, экспрессирующие на своей поверхности Е-рецептор, соответствуют Т-лимфо-цитам, следует полагать, что большие субъединицы рибосом E. coli MRE600 в эксперименте на нелинейных мышах стимулировали клеточный иммунитет и ней-трофильные гранулоциты, а малые субъединицы рибосом угнетали данные звенья иммунной системы. При этом под воздействием 70S и 50S рибосом число Е-РОК возрастало в 2,8 и 3,74 раза соответственно, а под влиянием 30S рибосом снижалось в 1,8 раза, тогда как остальные анализируемые в работе показатели колебались менее существенно (в 1,3-1,6 раза) для всех морфологических типов рибосом.

Выраженная стимуляция бактериальными рибосомами уровня НГ в периферической крови сопровождалась усилением их фагоцитарной активности и функции микробицидных систем (табл. 2, 3).

Под влиянием рибосом 70S и 50S фагоцитарный индекс НГ мышей возрастал в 5,7 и 7,25 раза, а индекс переваривания - в 9,1 и 12,6 раза соответственно. Характерно, что эффекты 70S рибосом и их больших субъединиц были однонаправленными.

Таблица 1

Динамика популяционного состава лейкоцитов и Е-РОК-лимфоцитов периферической крови мышей, иммунизированных рибосомными фракциями

Escherichia coli MRE600

Группы животных Популяцион ный состав лейкоцитов

Общее количество лейкоцитов в 1 мм3 Нейтрофильные гранулоциты в 1 мм3 Лимфоциты в 1 мм3

% абс. % абс. Е-РОК, абс.

1-я (фоновый 5140,33 ± 27,93 ± 1435,87 ± 70 ± 3618,1 ± 1218,9 ±

контроль, п=30) 329,164 0,999 104,561 0,953 239,564 108,146

2-я (введение 7176,47 ± 27,1 ± 1951,43 ± 71,3 ± 5112,6 ± 3418,48 ±

70Б рибосом, п=30) 378,65* 0,726* 151,025** 0,772 251,162* 220,778*

3-я (введение 8417,87 ± 27,77 ± 2357,28 ± 71,33 ± 5984,8 ± 4559,04 ±

50Б рибосом, п=30) 259,699* 0,59* 122,637*** 0,636 155,391* 198,04*

4-я (введение 3701,36 ± 29,47 ± 1101,17 ± 67,93 ± 2499,5 ± 667,48 ±

30Б рибосом, п=30) 335,104** 0,59* 122,257*** 0,681 193,392* 82,171*

Таблица 2

Состояние фагоцитарной активности НГ периферической крови мышей, иммунизированных рибосомными фракциями Escherichia coli MRE600

Группы животных Реакция бактериального фагоцитоза

Поглотительная функция Переваривающая функция

ФАН, % ФЧ ФИ % П ИП

1-я (фоновый контроль, п=30) 41,9±2,81 2,78±0,213 1,11 ±0,077 50,33±1,544 0,56±0,041

2-я (введение 70Б рибосом, п=30) 87,5±1,68* 7,17±0,4* 6,29±0,371* 80,33±2,32* 5,07±0,293*

3-я (введение 50Б рибосом, п=30) 96,4±1,09* 8,31 ±0,313* 8,05±0,358* 87,56±1,86* 7,08±0,393*

4-я (введение 30Б рибосом, п=30) 35,07±1,816*** 2,15±0,157*** 0,78±0,118*** 44,29±1,948*** 0,36±0,081 ***

Примечание: уровни достоверности различий по отношению к контролю: * - p < 0,001; ** - p < 0,01; *** - p < 0,05.

Причем 50S рибосомы более эффективно стимулировали показатели поглотительной и переваривающей функций НГ: долю фагоцитарно-активных НГ, фагоцитарное число, фагоцитарный индекс, долю переваренных микробов и индекс переваривания (t=4,444, p<0,05; t=2,245, p<0,05; t=3,414, p<0,05; t=2,431, p<0,05; t=4,1, p<0,05 соответственно).

Малые субъединицы рибосом, напротив, достоверно угнетали данные показатели по отношению к контролю (t=2,041, p<0,05; t=2,381, p<0,05; t=2,342, p<0,05; t=2,43, p<0,05; t=2,203, p<0,05 соответственно). Под воздействием 30S-рибосом значения фагоцитарного индекса и индекса переваривания снижались в 1,3 и 1,6 раза соответственно.

Хорошо известно, что центральное место в кил-линге и переваривании фагоцитированных объектов принадлежит кислородзависимым микробицидным системам НГ (8). Оказалось, что 70S рибосомы E. coli MRE600, а также их большие субъединицы достоверно стимулировали оксидазные микробицид-ные системы НГ мышей как в NBT-спонтанном (t=8,886, p<0,001; t=13,563, p<0,001), так и в NBT-стимулированном (t=3,589, p<0,001; t=6,116, p<0,001) тестах соответственно. У иммунизирован-

ных 70Б и 50Б рибосомами животных СЦИ НГ в ЫВТ-спонтанном тесте возрастал в 2,85 и 3,85 раза, а в ЫВТ-стимулированном - в 1,45 и 1,98 раза соответственно по отношению к интактным животным контрольной группы. При сравнении 70Б и 50Б рибосом между собой последние обладали большим стимулирующим эффектом как в ЫВТ-спонтанном (1=4,147, р<0,001), так и в ЫВТ-стимулированном (1=3,684, р<0,001) тесте. Рибосомы-30Б, напротив, в ЫВТ-спон-танном и ЫВТ-стимулированном тестах оказывали достоверно угнетающий эффект (1=3,424, р<0,01; t=5,245, р<0,001) на восстановление нитросинего тетразолия, снижая СЦИ НГ в 1,77 и 2,41 раза соответственно по отношению к контролю. Результаты ЫВТ-теста свидетельствуют о том, что 70Б и 50Б рибосомы при неадекватном дозировании способны вызвать истощение ресурсов оксидазных микроби-цидных систем НГ, на что указывают полученные нами значения КМ, которые достоверно (1=4,435, р<0,001; t=6,628, р<0,001) уменьшались в 1,9 и 2,2 раза соответственно.

Уровень МП НГ у мышей, иммунизированных 70Б и 50Б рибосомами, достоверно (1=9,573, р<0,001; 1= 13,598, р<0,001) возрастал в 2,7 и 3,46

Таблица 3

Состояние микробицидных систем НГ периферической крови мышей, иммунизированных рибосомными фракциями Escherichia coli MRE600

Группа животных Кислородзависимые микробицидные системы Кислороднезависимые микробицидные системы

NBT-тест

спон- танный стимули- рованный КМ

1-я (фоновый 0,39 ± 0,65 ± 1,85 ± 0,314 ± 0,126 ± 0,412 ±

контроль, п=30) 0,047 0,065 0,144 0,031 0,011 0,036

2-я (введение 1,11 ± 0,94 ± 0,95 ± 0,849 ± 0,203 ± 0,614 ±

70Б рибосом, п=30) 0,066* 0,048* 0,143* 0,047* 0,018** 0,053**

3-я (введение 1,5 ± 1,29 ± 0,85 ± 1,087 ± 0,268 ± 0,773 ±

50Б рибосом, п=30) 0,067* 0,082* 0,045* 0,048* 0,025* 0,039*

4-я (введение 0,22 ± 0,27 ± 1,27 ± 0,212 ± 0,075 ± 0,255 ±

30Б рибосом, п=30) 0,016** 0,032* 0,117** 0,027*** 0,01* 0,021*

раза соответственно. При этом под влиянием 50S субъединиц уровень МП был в 1,28 раза выше по сравнению с влиянием 70S рибосом (t=3,543, p<0,001). У животных, иммунизированных 30S-субъединицами, СЦИ МП уменьшался в 1,48 раза (t=2,384, p<0,05).

Результаты исследования состояния кислороднеза-висимого микробицидного потенциала НГ мышей, иммунизированных 70S, 50S и 30S рибосомами E. coli MRE600, также подтвердили иммуностимулирующую активность 70S и 50S рибосом и депрессивное действие 30S-субъединиц. Так, СЦИ КБ и АЭ достоверно (t=3,461, p<0,01 и t=3,184, p<0,01) стимулировались при иммунизации 70S рибосомами, возрастая в 1,61 и 1,49 раза соответственно. Под влиянием 50S субъединиц содержание в НГ КБ и АЭ достоверно (t=5,053, p<0,001 и t=6,839, p<0,001) возрастало: в 2,13 и 1,88 раза соответственно. При сравнении 70S и 50S субъединиц между собой в очередной раз 50S рибосомы показали более выраженную стимулирующую активность как в отношении КБ (t=2,11, p<0,05), так и в отношении АЭ (t=2,416, p<0,05). Напротив, 30S субъединицы рибосом E. coli MRE600 способствовали уменьшению содержания указанных выше компонентов кислороднезависимых микробицидных систем НГ по сравнению с контролем более чем в полтора раза: СЦИ КБ - в 1,68 раза, t=3,7, p<0,001; СЦИ АЭ - в 1,62, t=3,719, p<0,001.

Известно, что МП, КБ и АЭ содержатся в азуро-фильных гранулах НГ, определенная часть КБ находится в специфических гранулах, которые формируются во время гранулоцитопоэза в костном мозге на стадиях промиелоцита и миелоцита соответственно (8). Изменение у мышей, иммунизированных 70S, 50S и 30S рибосомами E. coli MRE600 уровня МП, КБ и АЭ следует расценивать как результат воздействия рибосомного материала на процессы кроветворения в красном костном мозге по крайней мере, на формирование промиелоцитов в процессе гранулоцитопоэза.

Выводы

1. Рибосомы Escherichia coli MRE600 70S и 50S в эксперименте обладают иммуностимулирующим эффектом, тогда как малые субъединицы 30S оказывают иммуносупрессивный эффект в отношении абсолютного количества лимфоцитов, лимфоцитов, экспрессирующих Е-рецептор, и нейтрофильных гранулоци-тов периферической крови нелинейных мышей.

2. Рибосомы E. coli MRE600 70S и 50S обладают иммуностимулирующим эффектом, а малые субъединицы 30S оказывают иммуносупрессивный эффект в отношении фагоцитарной активности (поглотительной и переваривающей функций), компонентов кислород-зависимых (активные радикалы кислорода, миелопе-роксидаза) и кислороднезависимых (катионные белки, неспецифическая эстераза) микробицидных систем нейтрофильных гранулоцитов периферической крови нелинейных мышей.

3. Иммунотропная активность 70S рибосом E. coli MRE600 формируется под влиянием разнонаправленных иммунотропных эффектов большой и малой рибосомных субъединиц. Рибосомы 50S оказывают достоверно более выраженную иммуностимуляцию, чем 70S-рибосомы, в экспериментах на нелинейных мышах.

4. Иммунотропная активность 70S рибосом E. coli MRE600, а также их субъединиц опосредована действием рибосомного материала на процессы костно-мозгового кроветворения.

ЛИТЕРАТУРА

1. Воробьев А. А. Современные направления в разработке новых иммунобиологических препаратов // Журн. микробиол. 1999. № 5. С. 16-21.

2. Бакулин И. H., Сергеева Т. И. Получение рибосомальной фракции Clostridium perfringens типа «А» и оценка ее протектив-ной активности // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1990. № 4. C. 80-83.

3. Караулов А. В., Земсков А. М. Клиническая иммунология и аллергология: Учебное пособие. М.: МИА, 2002. 651 с.

4. Меньшиков В. В., Делекторская Л. H., Золотницкая Р. П. и др. Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник / Под ред. В. В. Меньшикова. М.: Медицина,1987. 368 с.: ил.

5. Левенсон В. И., Рухадзе Э. З., Белкин З. П., Эссаулова М. Э. Специфичность протективного действия рибосомальной шигеллезной вакцины и отсутствие активности у рибосом у R-мутанта // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1988. № 10. С. 55-59.

6. Левенсон В. И., Хазанова В. В. Рибосомальные вакцины в стоматологии // Стоматология. 1991. № 3. С. 83-86.

7. Манько В. М., Петров Р. В., Хаитов Р. М. Иммуномодуляция: история, тенденции развития, современное состояние и перспективы // Иммунология. 2002. № 3. С. 132-137.

8. Маянский А. H., Маянский Д. H. Очерки о нейтрофиле и макрофаге: 2-е изд., перераб. и доп. Новосибирск: Наука, 1989. 344 с.

9. Мерков A. M. Общие теории и методика санитарно-статистического исследования. М.: Медицина, 1970. 111 с.

10. Методы выделения субклеточных структур микроорганизмов. Электрофоретическое фракционирование их белковой части: Методические рекомендации (утверждено Министерством здравоохранения РСФСР) / Сост. Г. К. Дегтева, Г. И. Григорьева, Т. В. Носова. Горький, 1980. 25 с.

11. Нестерова И. В. и др. Диагностика изменений в микро-бицидной системе нейтрофильных гранулоцитов при аллергических заболеваниях: Методические рекомендации. Краснодар, 1989. 23 с.

12. Оветчин П. В., Цыганенко А. Я. Протективные свойства рибосомальной протейной вакцины // Журн. микробиол., эпиде-миол. и иммунобиол. 1984. № 1. С. 19-23.

13. Орлов В. Г., Крылов В. П., Качанова О. А., Сиюхова Ф. Ш. Методические основы разработки рибосомных вакцин и изучение механизма их действия // Современная вакцинология. Пермь, 1998. С. 138-139.

14. Петров Р. В., Хаитов Р. М., Пинегин Б. В., Орадовская И. В., Еремина О. Ф., Саидов М. З. Оценка иммунного статуса человека при массовых обследованиях: Методология и методические рекомендации. М.: Минздрав СССР. 1989. 39 с.

15. Пигаревский В. Е. Зернистые лейкоциты и их свойства. М.: Медицина, 1978. 128 с.

16. Пирс Э. Гистохимия теоретическая и прикладная: Пер. с англ. М.: изд-во иностранной литературы, 1964. 964 с.

17. Правила проведения работ с использованием экспериментальных животных // Приказ МЗ СССР № 755 от 12 августа 1977 г.

18. Сиюхова Ф. Ш., Орлов В. Г., Крылов В. П., Качанова О. А. Иммунный ответ мышей на введение рибосом грамположитель-ных и грамотрицательных бактерий // International journal on immunoreabilitation. 1999. № 12. P. 125.

19. Хаитов P. M., Борисова A. M., Хорошилова H. В., Кулаков А. В., Еремина О. Ф, Голубева H. М., Пинегин Б. В. Применение рибосомального препарата «Рибомунил» для коррекции иммунной системы у больных хроническим бронхитом // Иммунология. 1994. № 1. С. 36-43.

20. Dussourd d’Hinterland L. Ribosomal vaccines: introduction to the study of ribosomal vaccines // Arzneimittelforrschung. 1980. № 1а, V. 30. P. 122-125.

21. Gregory R. L., Filler S. J., Michalek S. M., McGhee J. R. Salivary immunoglobulin A and serum antibodies to Streptococcus mutans ribosomal preparations in dental caries-free and caries-susceptible human subjects // Infect. and Immun. 1986. V. 51, № 1. P. 348-351.

22. Lieberman M. M., McKissock D. C., Wright G. L. Passive immunization against Pseudomonas with a ribosomal vaccine-induced immune serum and immunoglobulin fractions // Infect. and Immun. 1979. V. 23, № 2. P. 509-521.

23. Normier G., Pinel A. M., Dussourd d’Hinterland L., Wigzell H., Binz H. Ribosomes as carriers for antigenic determinants of the surfase of microorganisms // Dev. Biol. Stand. 1992. V. 77. P. 79-85.

24. Sato J., Selkija L. // J. Lab. clin. Med. 1928. V. 13. P. 1058.

25. Segal E., Levy R., Eylan E. Antibody formation in experimental immunizations with Candida albicans ribosomal fractions // Mycopathologia. 1978. V. 64, № 2. P. 121-123.

26. Youmans A. S., Youmans G. P. Immunogenic activity of a ribosomal fraction obtained from Mycobacterium tuberculosis // J. Bacteriol. 1965. V. 89. P. 1291-1298.

Известно, что нормальная беременность сопровождается врастанием клеток цитотрофобласта в ми-ометрий [1]. Вначале цитотрофобласт в составе первичных ворсин проникает в эндометрий, образуя им-плантационную площадку и внешний покров зародышевого мешка. При этом пролифераты цитотрофоб-ласта основания якорных ворсин являются главным источником инвазивных клеток. Пик первой волны инвазии цитотрофобласта происходит на 5-6-й неделе гестации, когда активная пролиферация внут-рисосудистого трофобласта во всех эндометриальных сегментах спиральных артерий завершает гестацион-ную перестройку их стенки. На 7-8-й неделе гестации интерстициальный трофобласт проникает в прилежащий к эндометрию слой миометрия [5, 7, 8]. Финалом инвазии части клеток интерстициального тро-фобласта является его слияние в особые клеточные конгломераты - многоядерные клетки в составе базальной пластинки после 8—10-й недели гестации. Вторая волна инвазии цитотрофобласта запускается на 16—18-й неделе гестации за счет продвижения внутрисосудистого цитотрофобласта в миометриаль-ные сегменты спиральных артерий [5, 7, 8, 9].

Недостаточность I и II волн инвазии цитотрофобла-ста может привести к ранним спонтанным абортам, идиопатической задержке внутриутробного развития плода. В то же время клиническое значение патологических процессов, сопровождающихся чрезмерно глубоким проникновением интерстициального трофоб-ласта в миометрий, не известно.

Нами исследованы 7 наблюдений глубокого проникновения интерстициального трофобласта в мио-метрий женщин в возрасте от 19 до 35 лет, посту-

V. P. KRYLOV, S. V. KOSHELEVA, N. E. SKOBLIKOV, V. G. ORLOV

IMMUNOTROPIC ACTIVITY 70S, 50S AND 30S RIBOSOMES ESCHERICHIA COLI IN EXPERIMENT IN VIVO

In experiment on unbreed mice was research immunotropic activity 70S-ribosomes of Escherichia coli MRE600 and theire subunits (50S and 30S). It is shown the influence of ribosomes material on level of lymphocytes, E-roc lymphocytes, neutrophil granulocytes, phagocytic activity, digestive ability and microbicidal system of neutrophil granulocytes.

Key words: bacterial ribosomes, mice, lymphocytes, neutrophil granulocytes, phagocytosis.

пивших в стационар с диагнозами «замершая беременность» [5] и «неполный внебольничный провока-торный аборт» [2] на сроке гестации 10/11-17/20 недель. Особый интерес представляло также судебномедицинское вскрытие родильницы с глубоким проникновением интерстициального трофобласта в ми-ометрий, погибшей от массивной кровопотери после срочных внебольничных родов доношенным живорожденным плодом.

Материалом для исследования служили экстирпи-рованные матки 7 женщин с замершей беременностью [5] и неполным внебольничным провокаторным абортом [2], а также внутренние органы погибшей родильницы. У 5 женщин, поступивших в гинекологическое отделение с диагнозом «замершая беременность», было проведено выскабливание полости матки, осложнившееся кровотечением и развитием синдрома диссеминированного внутрисосудистого свертывания крови. Кровотечение у них развивалось через 10-60 минут после извлечения продукта зачатия из полости матки. Общая кровопотеря составляла 1100-1500 мл. Проводимая консервативная терапия эффекта не давала, в связи с чем в экстренном порядке проводили операцию экстирпации матки без придатков. У пациенток с неполным внебольничным провокаторным абортом гибель эмбриона была спровоцирована введением питуитрина за неделю до поступления в стационар. Этим женщинам проводили операцию экстирпации матки с маточными трубами без предварительного выскабливания полости матки, так как вероятность криминального аборта и возможность развития септических осложнений не были полностью исключены.

Л. Р. КУРАШВИЛИ, С. И. ХУБИРЬЯНЦ, Е. Ю. ЮГИНА, Л. В. МАКАРЕНКО, И. Е. ВАРШАВЕЦ

МАТОЧНЫЕ КРОВОТЕЧЕНИЯ ПРИ ИЗБЫТОЧНОЙ ИНВАЗИИ ЦИТ0ТР0Ф0БЛАСТА В МИОМЕТРИИ

Кубанский государственный медицинский университет, городская клиническая больница № 3, г. Краснодар, краевое бюро судебно-медицинской экспертизы, г. Краснодар

УДК 618.36-06:618.14-005.1]-07