МАЛОИНВАЗИВНЫЙ СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ ОПУХОЛИ ПРЯМОЙ КИШКИ К ЛУЧЕВОЙ ТЕРАПИИ НА ОСНОВАНИИ ИЗМЕНЕНИЯ КОПИЙНОСТИ ГЕНОВ Н2АХ И RBBP8
MINIMALLY INVASIVE METHOD FOR DETECTING SENSITIVITY OF RECTAL TUMOUR TO RADIATION THERAPY BASED ON CHANGE IN ABUNDANCE OF N2AX AND RBBP8 GENES

Изобретение относится к медицине, а именно к молекулярной биологии и онкологии, и может быть использовано для малоинвазивной диагностики радиорезистентных форм рака прямой кишки.
Колоректальный рак (КРР) - одно из наиболее распространенных злокачественных новообразований в мире: каждый год регистрируется около 1000000 новых случаев этого заболевания и более 700000 летальных исходов. В России за последнее 10 лет заболеваемость КРР значительно увеличилась, и как по числу новых случаев, так и по числу умерших больных уступает лишь раку легкого, желудка и молочной железы (Кутилин Д.С, Кошелева Н.Г., Максимов А.Ю., Гусарева М.А., Бондаренко Е.С., Сагакянц А.Б., Донцов В.А., Габричидзе П.Н., Черняк М.Н., Гречкин Ф.Н., Мезенцев С.С, Ульянова Е.П., Полуэктов СИ. Влияние различных доз лучевой терапии на выживаемость клеток аденокарциномы толстой кишки линии НТ-29 // Современные проблемы науки и образования. - 2019. - №3.; URL: http://www.science-education.ru/ru/article/view?id=28918 (дата обращения: 06.09.2019).).
Радиотерапия в интеграции с химиотерапией и хирургические методы являются основными направлениями лечения КРР (Кит О.И, Геворкян Ю.А., Солдаткина Н.В., Новикова И.Α., Гусарева М.А. Клинико-морфологические эффекты предоперационной лучевой терапии крупным
фракционированием дозы при раке прямой кишки // Тюменский медицинский журнал. - 2016. - Т. 18. - №2. - С 39-44.). Один из вариантов предоперационного лечения - это короткий курс лучевой терапии, который проводится на первичную опухоль и зону регионарного метастазирования за 5 фракций с разовой очаговой дозой (РОД) 5 Гр до СОД (суммарной очаговой дозы) 25 Гр, что изоэффективно 40 Гр. (Кутилин Д.С, Кошелева Н.Г., Максимов А.Ю., Гусарева М.А., Бондаренко Е.С, Сагакянц А.Б., Донцов В.А., Габричидзе П.Н., Черняк М.Н., Гречкин Ф.Н., Мезенцев С.С, Ульянова Е.П., Полуэктов СИ. Влияние различных доз лучевой терапии на выживаемость клеток аденокарциномы толстой кишки линии НТ-29 // Современные проблемы науки и образования. - 2019. - №3.; URL: http://www.science-education.ru/ru/article/view?id:=28918 (дата обращения: 06.09.2019).). Большое влияние на эффективность подобной терапии оказывает исходная радиорезистентность опухолевых клеток, зависящая от их генетических особенностей (Ярмоненко СП., Вайнсон А.А. Радиобиология человека и животных. М., 2004.549 с). К подобным особенностям можно отнести показатель копийности генов (Copy Number Variation (CNV)) - вид генетического полиморфизма, результатом которого может явиться снижение или повышение числа копий определенного гена, и, следовательно, пониженная или повышенная экспрессия продукта гена -белка или не кодирующей РНК (Кутилин Д.С, Айрапетова Т.Г., Анистратов П.А., Пыльцин СП., Лейман И.А., Карнаухов Н.С, Кит О.И. Изменение копийности генов в опухолевых клетках и внеклеточной ДНК у больных аденокарциномой легкого // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -2019. - Т. 167. - №6. - С. 731-738; Zarrei Μ., MacDonald J.R., Merico D., Scherer S.W. A copy number variation map of the human genome// Nature Reviews Genetics. - 2015. - №16(3). - PP. 172-83.).
CNV являются следующим уровнем в полном понимании молекулярного контекста развития опухолевого процесса. Так была изучена роль CNV в качестве фактора малигнизации тканей желудка и легкого (см. Gunther Т., Schneider-Stock R., С, Kasper H.U., Pross Μ., Hackelsberger
Α., Lippert Η., Roessner A. Mdm2 gene amplification in gastric cancer correlation with expression of Mdm2 protein and p53 alterations. A Mod Pathol. - 2000 - V. 13(6) - P.621-626; Кутилин Д.С, Енин Я.С, Петрусенко Н.А., Водолажский Д.И. Изменение копийности генетических локусов при малигнизации тканей легкого // Современные проблемы науки и образования. - 2016. - №6.; URL: https://www.science-education.ru/ru/article/view?id=25994). Было проведено исследование относительной копийности генетических локусов, ответственных за регуляцию апоптоза (ΒΑΧ, BCL2, C-FLAR, Р53, MDM2), пролиферацию (SOX2, ОСТ4, NANOG, ΡΙΚ3 и ΜΚΙ67), окислительное фосфорилирование (HV2) и ответ на гипоксию (HIF1A1) в образцах, содержащих опухолевые и нормальные клетки тканей легкого и выявлены генетические локусы, которые имеют высокий потенциал в качестве молекулярных маркеров для прогнозирования рака легкого (HV2, HIF1A1, Ρ53, MDM2). Однако этот потенциал ограничен высоким уровнем инвазивности при получении биоматериала. Возможное решение этой проблемы находится в переходе на исследование копийности генов во внеклеточной ДНК плазмы крови.
К внеклеточной ДНК в организме следует относить: клеточную и митохондриальную ДНК из соматических и из опухолевых клеток, подвергающихся процессам апоптоза и некроза; ДНК из эритробластов, ядра которых энуклеируются в процессе дифференцировки в эритроциты, ДНК из лимфоцитов в процессе их апоптотической гибели после стимуляции, ДНК эмбрионов в крови матери, бактериальную и вирусную ДНК. При многих видах опухолей определяется повышенный уровень внеклеточной ДНК (внДНК) в периферической крови. При этом прогресс заболевания часто связан с постепенным повышением уровня внДНК. Более того, довольно часто уровень внДНК возрастает при метастазировании опухоли, по сравнению со значениями в отсутствие последних (см. Козлов В.А. Свободная внеклеточная ДНК в норме и при патологии. Медицинская иммунология. 2013, Т. 15, №5, с. 399-412).
Изменение числа копий генов Н2АХ и RBBP8 ассоциировано с развитием радиорезистентности опухолевых клеток.
Ген Н2АХ кодирует гистоновый белок из семейства Н2А. В ответ на двухцепочечные разрывы в ДНК, вызванные ионизирующим излучением, Н2АХ становится фосфорилированным по серину в положении 139 (Η2ΑΧ). Из-за этой модификации (фосфорилированной формы гистона) ДНК становится менее конденсированной, освобождается место для присоединения белковых комплексов, необходимых во время репарации (см. Ayoub Ν., Jeyasekharan A.D., Bemal J.Α., Venkitaraman A.R. HP1-beta mobilization promotes chromatin changes that initiate the DNA damage response// Nature. - 2008. - V.453 (7195). - P. 682-6).
RBBP8 кодирует белок, который регулирует пролиферацию клеток. Этот белок образует комплексы с транскрипционным ко-репрессором СТВР, а также модулирует функции BRCA1 в регуляции транскрипции и репарации ДНК (см. Sartori А.А., Lukas С, Coates J., Mistrik Μ., Fu S., Bartek J., Baer R., Lukas J., Jackson S.P..Human CtIP promotes DNA end resection// Nature. - 2007. - V. 450(7169). - P. 509-14.).
Поэтому, в качестве маркеров для прогнозирования радирезистентности рака прямой кишки допустимо использование показателя относительной копийности H2AX и RBBP8.
Из патентных источников известно следующее изобретение, наиболее близкое нашему:
«Способ прогнозирования чувствительности опухоли к лучевой терапии у больных раком прямой кишки» (см. патент RU 2349916 С1, опубликован: 20.03.2009, Бюл. №8) Способ основан на гистологическом исследовании биоптата, взятого из опухоли после 4-го сеанса лучевой терапии, проводимой дробно-протяженным методом. При наличии патоморфоза III-IV степени прогнозируют высокую чувствительность опухоли к облучению, а при наличии патоморфоза I-II степени - низкую чувствительность. Использование способа позволяет прогнозировать чувствительность опухоли у больных раком прямой кишки к проводимой лучевой терапии в ранние сроки, что позволяет при выявлении радиорезистентности опухоли своевременно выполнять радикальную операцию - экстирпацию прямой кишки.
Однако, описанный выше способ принципиально отличается от нашего. Данный способ не является малоинвазивным и не позволяет диагностировать радиорезистентную форму рака прямой кишки до начала терапии.
Анализ патентных источников (www.fips.ru) также показал отсутствие действующих патентов и заявок на «Малоинвазивный способ определения чувствительности опухоли прямой кишки к лучевой терапии на основании изменения копийности генов H2AX и RBBP8».
Техническим результатом заявляемого изобретения является создание нового, простого в исполнении, не дорогостоящего и точного способа с уникальными высокоспецифичными последовательностями синтетических олигонуклеотидов (праймеров) для диагностики радиорезистентного рака прямой кишки.
-
-3
-3
-3
-3
H2AX
RBBP8
H2AX
RBBP8
Сущность способа заключается в том, что образцы крови (10 мл крови и 3 мл 10 мМ фосфатного буфера, рН 7,5, с 0,15 Μ NaCl и 50 мМ ЭДТА) разделяют на плазму и фракцию клеток центрифугированием в течение 20 минут при 400 g при 15°С. Из плазмы крови выделяют внДНК фенол-хлороформным методом и проводят амплификацию с высокоспецифичными праймерами для генов H2AX RBBP8 и GAPDH, анализируют первичные данные и вычисляют относительную копийность (rC) по формуле 2ΔCt, где ΔCt=Ct(H2AX или RBBP8) - Ct(GAPDH). Затем сравнивают полученные значения rC с прогностическими значениями копийности, и при значениях в интервале rC>13,1*10 и rC>21,8*10 у пациента диагностируют радиорезистентную форму рака прямой кишки (чувствительность 96%, специфичность 95%), а при значениях в интервале rC<13,1*10 и rC<21,8*10 у пациента диагностируют чувствительную к лучевой терапии форму рака прямой кишки (чувствительность 96%, специфичность 92%).
H2AX
RBBP8
Заявленный анализ основан на определении количества копий генов H2AX или RBBP8 относительно референсного гена GAPDH во внДНК плазмы крови больных раком прямой кишки, и последующем сравнении полученных значений с интервалом копийности rC и rCхарактерным для радиорезистентной или чувствительной к лучевой терапии формы рака прямой кишки.
Заявленный способ включает следующие приемы:
- выделение внеклеточной ДНК из плазмы крови с помощью метода фенол-хлороформной экстракции;
- определение относительной копийности генетических локусов Н2АХ и RBBP8 методом ПЦР-РВ в присутствии красителя EVA-Green и специфичных праймеров на матрице выделенной внДНК;
- анализ первичных данных с помощью программного продукта амплификатора;
- расчет относительной копийности гена (гС) на основании соотношения сигналов, продуцируемых амплификатами изучаемой и референсной последовательностей,
стандарт
- сравнением гС пробы с прогностическими значениями копийности rС, определенными для радиорезистентной и чувствительной к лучевой терапии формы рака прямой кишки.
Для осуществления способа были разработаны специфичные олигонуклеотидные прямые и обратные праймеры для генов Н2ЛХ, RBBP8 и GAPDH. Дизайн специфичных олигонуклеотидных праймеров (таблица 1) осуществлялся с использованием референсных последовательностей NCBI GenBank.
Заявленный способ осуществляется следующим образом:
На первом этапе образцы крови (10 мл крови и 3 мл 10 мМ фосфатного буфера, рН 7,5, с 0,15 Μ NaCl и 50 мМ ЭДТА) разделяют на плазму и фракцию клеток центрифугированием в течение 20 минут при 400 g при 15°С.Из плазмы крови ДНК выделяют фенол-хлороформным методом в нашей модификации. К плазме крови добавляют равный объем лизирующего буфера (2% SDS и 1% меркаптоэтанол) и 20 мкл протеиназы К, инкубируют в термостате при 58°С 1 час.К полученному лизату добавляют равный объем щелочного фенола и хлороформа (соотношение 1:1), центрифугируют 20 минут 3000 об/мин. После разделения фаз отбирают водную фазу в отдельную стерильную пробирку. К водной фазе добавляют равный объем 95% изопропилового спирта и раствор 5М NaCl до концентрации 100 тМ, пробирку помещают в холодильник на -20°С на 60 минут. Далее центрифугируют 15 минут при 12700 об/мин, при -10°С, декантируют супернатант, а осадок промывают 80% этиловым спиртом, центрифугированием удаляют остатки этанола, высушивают осадок в твердотельном термостате и растворяют в 10 мМ ТЕ буфере. Концентрация полученных препаратов ДНК измеряется на флюориметре. Для проведения ПЦР-РВ концентрацию ДНК в каждом образце нормализуют до 0,5 нг/мкл.
2
Амплификацию проводят в 20 мкл ПЦР-смеси, содержащей 3 нг внДНК, 0,20 мМ dNTPs, 2,5 мМ MgCl, 1х ПЦР-буфер, 1х краситель EvaGreen, и 0,1 е.а./мкл реакционной смеси ДНК-полимеразы Thermus aquaticus, и по 600 нМ прямого и обратного праймеров для референсного гена или гена-мишени.
Количественную ПЦР-РВ амплификацию проводят на термоциклере по следующей программе: t=95°C в течение 4 мин. 40 циклов: t=95°C в течение 10 с, t=58°C (чтение сигнала) в течение 30 с, t=72°C в течение 30 с.
t
t
t
-
Относительная копийность генов Н2АХ и RBBP8 вычисляется следующим образом: рассчитывается C для целевого (Н2АХ или RBBP8) и референсного локуса (GAPDH), далее рассчитывается величина AQ -C(целевой локус) - C(референсный локус); копийность целевого локуса относительно референсного (rC) рассчитывается по формуле 2ΔCt.
Сравниваются полученные значения гС с интервалом прогностического коэффициента копийности:
H2AX
RBBP8
-3
-3
- при значениях rC>13,1*10 и rC>21,8*10 у пациента диагностируют радиорезистентную форму рака прямой кишки (чувствительность 96%, специфичность 95%),
H2AX
RBBP8
-3
-3
- при значениях rC<13,l*10 и rC<21,8*10 у пациента диагностируют чувствительную к лучевой терапии форму рака прямой кишки (чувствительность 96%, специфичность 92%).
Предлагаемым способом было осуществлено обследование 30 пациентов, у которых был диагностирован рак прямой кишки. Для доказательства прогностической ценности предлагаемого способа приводятся две выписки из историй болезни.
0
1. Больной Ш., 70 лет, состоит на учете в РНИОИ с июня 2019 г, диагноз рак средне- и верхнеампулярного отделов прямой кишки, cT3NMo, St II, кл.гр.
МРТ ОБП, ОМТ (от 10.06.2019 г. ) - на 12-14 см от анодермального перехода, в области границы средне- и верхнеампулярного отделов прямой кишки по левой стенке участок опухоли 16x24x11 мм. Лимфоузлы не поражены. СРКТ ОГК (от 13.06.2019 г.) - КТ-признаки единичных мелких очагов S1 справа и S3 слева. ВКС (от 01.07.2019 г.) - на 11 см до 15 см от ануса по левой стенке - опухолевидное экзофитное образование на широком основании в виде утолщенной фиксированной площадки с эрозированной мелкобугристой поверхностью. Гистологический анализ -G1 аденокарцинома.
Консультация радиолога (от 01.07.2019 г.) - показано проведение курса конформной лучевой терапии на зону прямой кишки, лимфоузлы малого таза, на фоне радиомодификации фторпиримидинами.
H2AX
RBBP8
-3
-3
Перед началом лечения взята кровь для выделения внДНК. Результаты молекулярно-генетического анализа образцов внДНК rC=6,1*10 и rC=12,0*10 соответствуют прогностическим коэффициентам чувствительной к лучевой терапии формы рака прямой кишки.
С 08.07.2019 г. по 07.08.2019 г. после СРКТ-топометрической подготовки проведен курс конформной лучевой терапии на зону прямой кишки, лимфоузлы малого таза на линейном ускорителе низких энергий Unique Varian 6MV, на фоне радиомодификации фторпиримидинами -капецитабин 1650 мг/м.
МРТ ОБП, ОМТ (от 30.09.2019 г. ) - MP-признаков рецидива опухолевого процесса нет, метастатического поражения лимфатических узлов не обнаружено. ВКС (от 27.09.2019 г.) - эндоскопически полный регресс опухоли (полный патоморфоз).
x
2. Больной П., 70 лет, состоит на учете в РНИОИ с апреля 2019 г., диагноз: рак средне- и верхненеампулярного отделов прямой кишки, cT3N1M, St III, кл.гр.2.
ВКС (от 31.03.2019 г.) - на расстоянии 8 см от ануса до 18 см -слизистая бугристая, контактно кровоточива. Гистологический анализ -низкодифференцированная аденокарцинома. СРКТ ОГК, ОБП, ОМТ (от 10.04.2019 г.) - опухоль прямой кишки 9,1×4,6 см с переходом на ректосигмоидный отдел, инфильтрация окружающей клетчатки, мтс-узлами в ней до 1 см. МРТ ОБП, ОМТ (от 11.04.2019 г.) - на 8,6 см от входа в анус, на 4,5 см от анодермального перехода циркулярный опухолевый процесс, протяженностью не менее 80 мм. Структура опухоли преимущественно солидная, просвет локально сужен. Экстрамуральный рост с инвазией мезореткальной клетчатки, наличие десмопластической реакции клетчатки. В паректальной клетчатке лимфоузел 9 мм. В мезоректальной клетчатке -единичные лимфоузлы до 5-6 мм.
Консультация радиолога (от 16.04.2019 г.) покачано проведение курса конформной лучевой терапии на зону прямой кишки, лимфоузлы малого таза.
H2AX
RBBP8
-3
-3
Перед началом лечения взята кровь для выделения внДНК. Результаты молекулярно-генетического анализа образцов внДНК rC=16,5*10 и rC=27,4*10 соответствуют прогностическим коэффициентам радиорезистентной формы рака прямой кишки.
2
С 23.04.2019 г. по 29.05.2019 г. после СРКТ-топометрической подготовки проведен курс конформной лучевой терапии на зону прямой кишки, лимфоузлы малого таза, паховые зоны с обеих сторон, на фоне радиомодификации капецитабином 1650 мг/м в сутки на линейном ускорителе низких энергий Unique Varian 6MV.
МРТ ОБП, ОМТ (от 22.07.2019 г.) - MP-картина солидной опухоли средне- и верхненеампулярного отделов прямой кишки с инвазией окружающей клетчатки. ВКС (от 22.07.2019 г.) - рак прямой кишки, состояние после курса НАХЛТ, эндоскопически без выраженной динамики.
Заявляемый способ, включает разработанные нами праймеры и является экономически оправданным для диагностики радиорезистентного рака прямой кишки, осуществляется в условиях стандартной лаборатории молекулярной биологии (ПЦР), без использования специального дорогостоящего оборудования; обладает высокой чувствительностью и специфичностью, осуществление анализа возможно с плазмой крови, занимает не более 5 часов.
<110> Kutilin, Denis; Rostovskij nauchno-issledovatelskij onkologicheskij institut
<120> Low invasive method for radioresistant colon cancer diagnosis based on changes in the copy number of the H2AX and RBBP8 genes.
<160> 1
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> Homo sapiens
<400> 1
AGGCCTCCCA GGAGTACTAA 20
<110> Kutilin, Denis; Rostovskij nauchno-issledovatelskij onkologicheskij institut
<120> Low invasive method for radioresistant colon cancer diagnosis based on changes in the copy number of the H2AX and RBBP8 genes.
<160> 2
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> Homo sapiens
<400> 1
CTGAAGCGGC TCAGCTCTTT 20
<110> Kutilin, Denis; Rostovskij nauchno-issledovatelskij onkologicheskij institut
<120> Low invasive method for radioresistant colon cancer diagnosis based on changes in the copy number of the H2AX and RBBP8 genes.
<160> 3
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> Homo sapiens
<400> 1
ACCGAGGATT TGGCACTCTG 20
<110> Kutilin, Denis; Rostovskij nauchno-issledovatelskij onkologicheskij institut
<120> Low invasive method for radioresistant colon cancer diagnosis based on changes in the copy number of the H2AX and RBBP8 genes.
<160> 4
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> Homo sapiens
<400> 1
TCCGAGATTG CCTCGGGATT 20
<110> Kutilin, Denis; Rostovskij nauchno-issledovatelskij onkologicheskij institut
<120> Low invasive method for radioresistant colon cancer diagnosis based on changes in the copy number of the H2AX and RBBP8 genes.
<160> 5
<210> 1
<211> 19
<212> DNA
<213> Homo sapiens
<400> 1
GCTGAACGGG AAGCTCACT 19
<110> Kutilin, Denis; Rostovskij nauchno-issledovatelskij onkologicheskij institut
<120> Low invasive method for radioresistant colon cancer diagnosis based on changes in the copy number of the H2AX and RBBP8 genes.
<160> 6
<210> 1
<211> 21
<212> DNA
<213> Homo sapiens
<400> 1
GCAGGTTTTT CTAGACGGCA G 21