Этиологическое значение и антибиотикорезистентность сальмонелл, циркулирующих у сельскохозяйственных животных Амурской области

Список литературы

1. Болезни собак: справочник/ А.Д. Белов [и др.]. - М.: «Агропромиздат», 1990. - 368 е., ил.

2. Илларионова, В.К. Бета-адреноблокаторы в лечении хронической сердечной недостаточности у собак / В.К. Илларионова // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. -№1.-2010. -С.41-43.

3. Колягин, А.Н. Хроническая сердечная недостаточность: современное понимание проблемы. Применение бета-блокаторов (сообщение 10) / А.Н. Колягин // Сибирский медицинский журнал (Иркутск). - №5 (том 72). - 2007. - С. 106-108.

4. Мартин, М. Кардиореспираторные заболевания собак и кошек / М.Мартин, Б.Коркорэн .

- Пер. с англ. C.JI Черятникова. - М.: «Аквариум Принт», 2014. - 496 е., ил.

5. Мартин, М. Руководство по электрокардиографии мелких домашних животных / М.Мартин. - Пер. с англ. О.Суворова под редакцией к.м.н. Зориной А.И. - М.: «Аквариум Принт», 2012.

- 144 е., ил.

Reference

1. Bolezni sobak: spravochnik (Diseases of Dogs: A guide), A. D. Belov [i dr.], M.: «Agropromizdat», 1990,368 p., il.

2. Illarionova, V.K. Beta-adrenoblokatory v lechenii khronicheskoi serdechnoi nedostatochnosti u sobak (Beta-blockers in the Treatment of Chronic Heart Failure of Dogs), V.K. Illarionova , Rossiiskii veterinarnyi zhurnal. Melkie domashnie i dikie zhivotnye, No 1, 2010, PP.41-43.

3. Kolyagin, A.N. Khronicheskaya serdechnaya nedostatochnost': sovremennoe ponimanie prob-lemy. Primenenie beta-blokatorov (soobshchenie 10) (Chronic Congestive Heart Failure: Modern Understanding of the Problem. The Use of Beta-blockers (Message 10), A.N. Kolyagin, Sibirskii meditsinskii zhurnal (Irkutsk), No 5 (torn 72), 2007, PP. 106-108.

4. Martin, M. Kardiorespiratornye zabolevaniya sobak i koshek (Cardiorespiratory Diseases of Dogs and Cats), M. Martin, B. Korkoren . - Per. s angl. S.L. Cheryatnikova, M.: «Akvarium Print», 2014, 496 p., il.

5. Martin, M. Rukovodstvo po elektrokardiografii melkikh domashnikh zhivotnykh (Cardiorespiratory diseases of dogs and cats), M.Martin, Per. s angl. O. Suvorova pod redaktsiei k.m.n. Zorinoi A.I., M.: «Akvarium Print», 2012, 144 p., il.

УДК 619:616.981.49 ГРНТИ 68.41

Литвинова 3.A., канд.ветеринар.наук, доцент; Труш Н.В., д-р биол. наук, доцент,

Дальневосточный государственный аграрный университет, г. Благовещенск, Амурская область, Россия, E-mail: Litvinova-08@mail.ru

ЭТИОЛОГИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ И АНТИБИОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТЬ САЛЬМОНЕЛЛ, ЦИРКУЛИРУЮЩИХ У СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ АМУРСКОЙ ОБЛАСТИ

В Амурской области сальмонеллёзу сельскохозяйственных животных и птицы регистрируется ежегодно в течение многолетнего периода. При лабораторном подтверждении диагноза на сальмонеллёз с 1996 по 2016 г. было выделено 677 образцов сальмонелл; обсеменённость материала составила 0,6%. Наибольшее количество положительных проб было зарегистрировано у птицы (38,1 %), крупного рогатого скота (33,1%) и свиней (23,2%). Сальмонеллёзную микрофлору также выделяли от кормов растительного происхождения. За анализируемый период был типирован 21 вид сальмонелл. Установлено, что на территории Приамурья доминируют сальмонеллы групп D (71,3%) и С (16,9%). Основным возбудителем сальмонеллёза у крупного рогатого скота является S.dublin (78,1 %); у свиней - S.choleraesuis (43,7%); у птиц - S.gal-linarum -pullorum (49,7%) и S.enteritidis (45,8%). Выделенные культуры сальмонелл проявили высокую чувствительность к амикацину (98,2%) и гентамицину (94,8%), цефе-

пиму (84,3%), цефексиму (96,1%), цефотаксиму (92,2%), имипенему (96,3%), ампициллину (84,1%), амоксициллину (90,6%), амоксициллину/клавулоновой кислоте (94,8%), ципрофлоксацину (98,1%) и норфлоксацину (89,2%), левомицетину (65,37%). Менее чувствительными сальмонеллы оказались к тетрациклину (43,9%), доксициклину (34,1%), неомецину (4,6%) и канамицину (42,0%), линкомицину (15,2%).

КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: САЛЬМОНЕЛЛЫ, СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫЕ ЖИВОТНЫЕ, АМУРСКАЯ ОБЛАСТЬ

UDC 619:616.981.49

Litvinova Z.A., Cand. Veterinär. Sei., Associate Professor; Trush N.V., Dr Biol. Sei., Associate Professor, Far Eastern State Agrarian University, Blagoveshchensk, Amur region, Russia E-mail: Litvinova-08@mail.ru

ETIOLOGICAL IMPORTANCE AND ANTIBIOTIC RESISTANCE OF SALMONEL-LAS CIRCULATING AMONG FARM ANIMALS OF THE AMUR REGION

Farm animals and poultry's salmonellosis is registered annually for many years. Laboratory salmonellosis tests with positive reaction found from year 1996 till 2016 allowed us to single out 677 specimens of salmonellas; semination of the material amounted to 0,6%. Maximal number ofpositive samples were registered among poultry (38,1 %), cattle (23,2%). Salmonellosis microflora was also separatedfrom the feed ofplant origin. During the period of analysis 21 kinds of salmonellas were typified It was found out that salmonellas groups D (71,3%) and С (16,9%) dominated on the territory of Priamurye. The main pathogens of salmonellosis are the following: cattle - S.dublin (78.1%); pigs—S.choleraesuis (43.7%); birds - S.gallinarum - pull or urn (49.7%) and S.enteritidis (45.8%). Isolated cultures of salmonellas showed high sensitivity to amikacin (98.2%) andgentamycin (94.8%), cefepime (84.3%), Cefixime (96.1%), cefotaxime (92.2%), imipenem (96.3%), ampicillin (84.1%), amoxicillin (90.6%), amoxicil-lin/clavulanic acid (94.8%), ciprofloxacin (98.1%) and norfloxacin (89.2%), chloramphenicol (65.37%). Salmonellas proved to be less sensitive to tetracycline (43.9%), doxycycline (34.1%), neomicina (4.6%) andkanamycin (42.0%), lincomycin (15.2%).

KEY WORDS: SALMONELLA, FARM ANIMALS, AMUR REGION

Сальмонеллёз - это полиэтиологическая инфекционная болезнь, вызываемая различными серологическими типами бактерий рода Salmonella. Род Salmonella включает в себя более 2500 серологических вариантов, объединённых в 65 серологических групп [4]. Несмотря на обилие обнаруживаемых серологических вариантов, основная масса заболеваний сальмо-неллёзов связана с небольшим количеством сальмонелл. Многие сальмонеллы являются патогенными как для животных, так и для человека [5].

Спектр сальмонелл, циркулирующих на определённой территории, может изменяться [з] . Необходимо проводить мониторинговые исследования видового

состава сальмонелл, приуроченных к конкретной географической зоне, так как они определяют не только клиническое проявление болезни, но и особенности эпизоотического течения инфекции [1].

Для проведения эффективных лечебных мероприятий важно располагать данными о чувствительности «региональных» штаммов сальмонелл к антибактериальным препаратам [б,7].

Нами была поставлена цель - определить видовой состав сальмонелл, циркулирующих у сельскохозяйственных животных и птиц на территории Амурской области за многолетний период, и их чувствительность к антибиотикам.

Материалы и методы исследования. Исследования выполнены на базе кафедры ветерннарно-санитарной экспертизы, эпизоотологии и микробиологии ФГЪОУ ВО «Дальневосточный ГАУ». В работе использовали данные отчетности Управления ветеринарии и племенного животноводства Амурской области, а также Центра гигиены и эпидемиологии Амурской области.

Объектом исследования явились сальмонеллы, выделенные на территории Амурской области из биологического материала, полученного от сельскохозяйственных животных и птиц, кормов. Идентификацию микроорганизмов проводили по общепринятой методике с изучением морфотинкториальных, культураль-ных, биохимических и антигенных свойств.

Сальмонеллы (п=164), выделенные за последние семь лет, тестировали на чувствительность к 17 антибиотикам, относящихся к группам аминогликозидов (гента-мицин, неомицин, канамицин, амикацин), цефалоспоринов (цефепим, цефексим, це-фотаксим), полусинтетических пеницил-линов (ампициллин, амоксициллин, амоксициллин/клавуланат), карбапенемов (имипенем), хлорамфеникола (левомице-тин), хинолонов (ципрофлоксацин, норфлоксацин), тетрациклинов (докси-циклин, тетрациклин), линкозамидов (линкомицин). Исследования чувствительности сальмонелл к антибактериальным препаратам проводили диско-диффузионным методом на среде Мюллера-Хин-тона с применением стандартных бумажных дисков с антибиотиками согласно МУК Минздрава России 4.2.1890-04 «Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам». При интерпретации результатов сальмонеллы относили к категориям устойчивых, промежуточных и чувствительных к антибиотикам микроорганизмов на основании международных критериев CLSI (Clinical and Laboratory Standards Institute). Контроль качества чувствительности сальмонелл к антибактериальным препаратам проводили с ис-

пользованием лабораторных штаммов соответствующих видов бактерий. Полученные данные обрабатывали методами вариационной статистики.

Результаты исследования. С 1996 по 2016 г. в Амурской области было исследовано 99362 пробы биологического материала, из которых 677 образцов (0,6%) оказались инфицированы сальмонеллами. Установлено, что в Приамурье циркулирует 21 вид сальмонелл. Выделенные культуры сальмонелл были отнесены к 8 серологическим группам (В, С, Б, Е, Н, I, ]ЧГ, X). Данные микробиологического анализа определили, что на территории Приамурья доминируют сальмонеллы групп Б (Б.ёиЬНп, Б.ЬатЬш^, Б.Ье^еёог!", 8.§аШпатт-ри11огит, 8.еп1егШё1з) -71,3% и С (Б.сЬокгаезшз, Б.пелурог!, Б^урЫвшв, Б.у^ша, Б.геиЬешз)- 16,9%.

Сальмонелл выделяли из биологического материала, поступившего от павших и вынужденно убитых сельскохозяйственных животных, птиц, из абортированных плодов, фекалий животных. Наибольшее количество положительных проб было зарегистрировано у птицы (38,1%), крупного рогатого скота (33,1%) и свиней (23,2%). Сальмонеллёзную микрофлору также изолировали от кормов растительного происхождения (шрот соевый, комбикорм, овёс); в отдельные годы - из яиц. Биологический материал в 65,3% поступал из районов, приуроченных к южной природно-хозяйственной зоне Амурской области (Благовещенский, Тамбовский, Ивановский, Белогорский, Серышевский районы).

Выделение культур сальмонелл с 1996 по 2016 г. варьировало, что указывает на волнообразный характер течения сальмонеллёза и стационарность инфекции. Отмечена динамика устойчивого снижения количественного показателя изоляции сальмонелл. Необходимо отметить, что с 1990 по 2016 г. отмечено уменьшение количества отправляемого на исследования биологического материала. При этом снизился и процент положительных проб. За анализируемый период уровень выделяемых сальмонелл снизился на 31,0% (рис. 1).

Из патологического материала, поступившего от крупного рогатого скота, было изолировано 224 культуры сальмонелл. Наибольший удельный вес среди выделенных сальмонелл имел вид Б.сЬЫт (78,1%); Б.етегтсЬ (11,6%);

БЛурЫтигшт (8,6%). Видовой спектр сальмонелл у крупного рогатого скота с 1996 по 2016 г. оставался стабильным, при

9?

100

90

80

г, ч 70

о

Я

о 60

§

л

5 50

о

о 40

?

ч

о 30

«

20

10

0

ol

ЗА

этом во все годы сохранялся приоритет се-ротипа БЛиЫщ.

Количественные показатели инфицированное™ материала сальмонеллами со временем изменялись. Так, в 1996-1998 гг. было типирована 51 культура бактерий вида 8.<1иЬНй (21,1%) с последующим снижением показателя до 12 культур (6,8%) в 2005-2007 гг.; в 2014-2016 гг. изолировано 17 культур (9,7%).

36

24"

«йЗ

Годы

Рис. 1. Многолетняя динамика типирования сальмонелл в Амурской области

С 1996 по 2016 гг. отмечено увеличение положительных находок З.еШегйШз с 5 (19,2%) до 11 образцов (42,3%). За анализируемый период количество БЛурЫтигшт изменялось незначительно - от 2 до 4 культур. При бактериологическом исследовании в 76,0% случаев возбудителя выделяли из патологического материала, отобранного от телят в возрасте от 1 до 30 дней. Максимальное количество положительных находок отмечено в весенний период (58,4%). Возможно, это связано с массовыми отёлами в весенний период и получением молодняка с низкой естественной резистентностью.

От свиней из 156 культур сальмонелл чаще выделяли 8.с1ю1егае8Ш8 (43,7%), БЛурЫвшв (21,2%), БЛурЫтипит (18,0%) и Б.етегШсЬ (13,5%). Обращает

внимание факт расширения спектра возбудителей сальмонеллёза свиней в 2008-2011 гг. за счет S.Oldenburg, S.bergedorf, S.godesberg. Данные возбудители ранее не выделяли, в связи с чем они были признаны завозными. За исследуемый период установлены различия в количественных показателях выделяемых видов сальмонелл. В

1996-1998 гг. идентифицировано 29 изолятов S.choleraesuis (42,6%) с последующим снижением до 1 культуры в 2005-2007 гг. (1,4%); в

2014-2016 гг. было выделено 2 культуры (2,9%). Уровень S typhi suis снизился с 7 культур (21,2%) в 1996-1998 гг. до 1 культуры в 2011-2013 гг.; в 2014-2016 гг. сальмонеллы данного серологического варианта не типировали. Культуры S.enteritidis изолировали в 1996-1998 гг. -

13 культур (61,9%), 1999-2001 гг. - 7 культур (33,3%) и 2005-2007 гг. - 1 культура (4,8%). Сальмонелл выделяли в основном из патологического материала от поросят, павших в возрасте до 4-х месячного возраста (59,3%). От животных старше 6-и месячного возраста сальмонеллы типиро-вали в 9,4% случаев.

Типовой состав сальмонелл, изолированных от сельскохозяйственной птицы за 2010-2016 гг., был представлен Б^аШпагшп - риПогиш (49,7%), З.етйетМв (45,8%), Б.пелуроП (3,4%), Б^е (0,7%). В 1996-1998 гг. количество бактерий вида Б^аШпагит - риПогиш составило 46 культур (38,0%) со снижением до 23 культур (19,0%) в 1999-2001 гг.; в период с 2002 по 2007 г. данного возбудителя не выделяли; в 2008-2010 гг. было выделено 13 культур (9,9%); в

2014-2016 гг. - 2 культуры (1,5%). Сальмонелл вида Б.пелурог! выявляли в 2008-2010 и 2014-2016 гг. в количестве 7 (77,7%) и 2 (22,2%) культур соответственно. В возрастном аспекте в 62,8% случаев сальмонелл выделяли от павших цыплят в возрасте до 3 недель; 12,6% приходилось на цыплят с 20-дневного до месячного возраста; 13,0% - на молодняк до 3-х месячного возраста. Сальмонеллёзную инфекцию у птиц регистрировали круглогодично, без выраженного сезонного подъёма.

Основные штаммы сальмонелл, выделенные в Амурской области, распространены и в Российской Федерации. В этиологической структуре сальмонелле-зов животных в Российской Федерации ведущая роль принадлежит Б.егЛегШсНз (35,9%), Б^урЫшипиш (13,7%), Б.ёиЬНп (11,2%), З.сЬ^егаевшв (10,1%), Б^аШпагит - риПогит (8,0%) [г].

Сальмонеллёзную микрофлору выделяли от кормов растительного происхождения. Важно отметить, что при бактериологическом исследовании кормов за период часто изолировали не характерные для области сероварианты сальмонелл. Обсеменённость кормов З.тошсаш составила 27,6%; З.айепМв - 24,2%; Б.сМ-егаезшв - 6,9%; 8.тег5еу51с1е - 6,9%; 8.§пез1а, Б.ваЬоуа, Б.геиЬешз и Б.ЬатЬи^ -

по 3,4% для каждого вида соответственно. Ряд возбудителей (Б.топзсаш, 8.тег8еу81с1е, Б^г^а, Б.ваЬоуа, Б.геиЬешз, Б.ЬатЬи^) были отнесены к завозной популяции сальмонелл. В 20,8% случаев выделяли сальмонеллы без определения серотиповой принадлежности. Обсеменённость кормов растительного происхождения сальмонеллами указывает на возможность их участия в возникновении и распространении данного заболевания среди животных и птиц.

По данным Центра гигиены и эпидемиологии Амурской области за последние годы от больных сальмонеллёзом людей чаще всего выделяли Б.егЛегШсНз (98,0%). Из биологического материала в единичных случаях типировали Б.апгопае и Б.сЬокгаезшз. В 1981-1985 гг. на Б.ег^ег-ШсИв приходилось лишь 0,4%. Основное значение в распространении сальмонел-лёза среди населения Амурской области имеет пищевой путь передачи инфекции (в 97,4% случаев), связанный с употреблением продукции животного происхождения.

В результате проведённых исследований отмечено совпадение инфицированное™ Б.егЛегШсНз у крупного рогатого скота, свиней, птицы и человека; БЛурЬппипит - у крупного рогатого скота и свиней; Б.сЬокгаезшз - у свиней и человека. Это указывает на то, что сальмонел-лёзные заболевания животных, птиц и человека имеют эпизоотическую связь.

Показатели чувствительности региональных штаммов сальмонелл, выделенных за последние семь лет (п=164), к антибиотикам представлены в таблице 1. Высокую чувствительность культуры обнаружили к препаратам группы аминоглико-зидов - амикацину (98,2%) и гентамицину (94,8%>); цефалоспаринам - цефепиму (84,3%>), цефексиму (96,1%), цефотаксиму (92,2%); карбапенемам - имипенему (96,3%). Также высокая чувствительность отмечена к препаратам группы полусинтетических пенициллинов - ампициллину (84,1%), амоксициллину (90,6%), амокси-циллин/клавулоновая кислота (94,8%); хи-ноланам - ципрофлоксацину (98,1%) и норфлоксацину (89,2%), хлорамфенико-лам - левомицетину (65,3%).

Таблица 1

Сводные данные чувствительности изолированных сальмонелл к антибактериальным препаратам, М±т

Антибактериальный препарат Чувствительные Умеренно-резистентные Резистентные

Кол-во культур, М±т % Кол-во культур, М±т % Кол-во культур, М±т %

Амикацин 161,0±1,2 98,2* 2,9±0,4 1,8** - -

Ампициллин 138,0±2,6 84,1** 15,4±4,1 9 4** 10,4±1,5 6,3*

Амоксициллин 148,5±1,3 90,6* 12,2±2,0 7,4* 3,1±4,2 \ 9**

Амоксициллин/ клавуланат 155,4±3,5 94,7* 6,4±2,9 3 9** 2,0±1,3 1,2*

Гентамицин 155,4±2,2 94,8** 5,2±0,7 3,2* 3,2±1,1 1,9*

Доксициклин 55,9±6,2 34,1* 45,9±10,0 28,0* 62,0±0,2 37,8**

Имипенем 158,0±4,4 96,3** 5,9±2,1 3,6* - -

Неомицин 7,6±1,3 4,6* 14,1±0,6 8,6* 142,1±7,0 86,8**

Канамицин 68,9±9,2 42,0** 60,3±7,1 36,7** 34,7±0,4 2i 1***

Левомицетин 107,2±0,1 65,3* 23,4±1,9 14,2** 33,3±2,7 20,3*

Линкомицин 25,7±2,2 15,7** 64,0±5,2 39,0* 74,1±0,8 2***

Норфлоксацин 146,3±5,0 89,2* 17,6±1,1 10,7* - -

Тетрациклин 72,0±3,4 43,9** 50,8±0,1 31,0** 41,0±0,2 25,0*

Цефепим 138,3±0,0 84,3* 25,6±12,3 15,6* - -

Цефотаксим 151,3±3,1 92,2* 11,2±1,7 6,8** 1,4±2,0 0 8***

Цефексим 157,6±5,1 96,1** 6,3±4,3 3,8** - -

Ципрофлоксацин 160,9±3,4 98,1** 3,0±2,0 - -

Примечание: * р < 0,05; ** р< 0,01; *** р< 0,001 - показатели достоверности в сравнении с референтными штаммами

Меньшая чувствительность сальмонелл отмечена к препаратам тетрацикли-нового ряда - тетрациклину (43,9%), док-сициклину (34,1%), аминогликазидам -неомецину (4,6%) и канамицину (42,0%), линкозамидам - линкомицину (15,2%).

До 1985 года при паратифе данные препараты обладали высокой терапевтической эффективностью. Вероятно, снижение чувствительности сальмонелл к данным антибиотикам связано с длительным их использованием в хозяйствах Амурской области и формированием лекарственной устойчивости к противомик-робным препаратам.

Заключение. В Амурской области основным возбудителем сальмонеллёза у крупного рогатого скота является S.dublin (78,1%); у свиней - S.choleraesuis (43,7%); у птиц - S.gallinarum - pullorum (49,7%) и S.enteritidis (45,8%). В Амурской области появились новые серовары сальмонелл (S.monscaui, S.reubeuss, S.hamburg, S.merseyside, S.Oldenburg, S.bergedorf,

S.godesberg, S.gege и другие), хотя их значимость в эпизоотическом процессе сальмонеллёза у сельскохозяйственных животных и птиц была невелика. По нашему мнению, появление новых типов сальмонелл на территории Амурской области связано с межконтинентальными и межрегиональными перевозками животных, сырья, кормов для животных.

При назначении адекватной этио-тропной терапии больным сальмонеллё-зам животным необходимо учитывать показатель антибиотикорезистентности. Высокую чувствительность сальмонеллы обнаружили к амикацину (98,2%) и гентами-цину (94,8%); цефепиму (84,3%), цефек-симу (96,1%), цефотаксиму (92,2%), ими-пенему (96,3%), ампициллину (84,1%), амоксициллину (90,6%), амоксицил-лину/клавулоновой кислоте (94,8%); ци-профлоксацину (98,1%) и норфлоксацину (89,2%), левомицетину (65,3%). Менее чувствительными сальмонеллы оказались к тетрациклину (43,9%), доксициклину

(34,1%), неомецину (4,6%) и канамицину (42,0%), линкомицину (15,2%).

С целью профилактики сальмонел-лёза необходимо усилить контроль ввозимых на территорию Российской Федерации животных, сырья и продукции животного и растительного происхождения.

Производителям кормовой продукции необходимо использовать технологии, исключающие попадание бактерии

Salmonella в корма для животных. На постоянной основе важно вести обмен информацией между ветеринарной службой и органами здравоохранения по вопросам использования противомикробных препаратов, выделения штаммов сальмонелл в целях обеспечения рационального лечения людей и животных.

Список литературы

1. Дансарунова, О.С. Антибиотикорезистентность кишечной микрофлоры молодняка сельскохозяйственных и лабораторных животных / О.С.Дансарунова // Вестник КрасГАУ. - 2015. -№7,- - С.189-192.

2. Виткова, О.Н. Изучение антибитикорезистентности сальмонелл, выделенных от животных и из пищевых продуктов животного происхождения на территории Российской Федерации / О.Н. Виткова [и др.] // Ветеринария Кубани. - 2015,- №2 - С. 11-15.

3. Мезенцев, С.В. Распространение сальмонеллёзов среди животных Алтайского края / С.В.Мезенцев // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. - 2004. - №2 (14).-С. 84-85.

4. Мащенко, А.С. Своевременная диагностика - залог эффективной борьбы с сальмонеллё-зом / А.С.Мащенко // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные - 2006. -№4. - С. 13.

5. Тарасенко, Т.Т. О заболеваемости сальмонеллёзом в Приморском крае / Т.Т. Тарасенко [и др.] // Здоровье. Медицинская экология. - 2016. - №3(66).- С. 134-139.

6. Решетнева, И.Т. Антибиотикорезистентность сальмонелл, выделенных на территории Красноярского края / И.Т.Решетнева, О.В. Перьянова, Г.М.Дмитриева // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия - 2015. - №2. - С.35-38.

7. Piddock, L.J.V. Fluoroguinolone resistance in S.serovars isolated from humans and food animals / L.J.V. Piddock // FEMS Microbiol. Rev., 2002 - Vol.26. - P.3-16.

Reference

1. Dansarunova, O.S. Antibiotikorezistentnost' kishechnoi mikroflory molodnyaka sel'skokho-zyaistvennykh i laboratornykh zhivotnykh (Antibiotic Resistance of Gut Organisms of Young Farm and Laboratory Animals), VestnikKrasGAU, 2015, No 7, PP.189-192.

2. Vitkova, O.N. Izuchenie antibitikorezistentnosti sal'monell, vydelennykh ot zhivotnykh i iz pishchevykh produktov zhivotnogo proiskhozhdeniya naterritorii Rossiiskoi Federatsii (Study of Antibiotic Resistance of Salmonellas Isolated from Animals and Foodstuffs of Animal Origin on the Territory of the Russian Federation), O.N. Vitkova [i. dr.], Veterinariya Kubani, 2015, No 2, PP. 11-15.

3. Mezentsev, S.V. Rasprostranenie sal'monellezov sredi zhivotnykh Altaiskogo kraya (Spread of Salmonellosis among the Animals of Altay), Vestnik Altaiskogo gosudarstvennogo agrarnogo universi-teta, 2004, No 2 (14), PP. 84-85.

4. Mashchenko, A.S. Svoevremennaya diagnostika - zalog effektivnoi bor'by s sal'monellezom (Timely Diagnostics - Guarantee of Effective Salmonellosis Control), Rossiiskii veterinarnyi zhurnal. Sel'skokhozyaistvennye zhivotnye, 2006, No 4, P. 13.

5. Tarasenko, Т.Т. О zabolevaemosti sal'monellezom v Primorskom krae (On Incidence of Salmonellosis on the Primorskiy Territory), T.T.Tarasenko [i dr.], Zdorov'e. Meditsinskaya ekologiya, 2016, No 3(66), PP. 134-139.

6. Reshetneva, I.T., Per'yanova, O.V., Dmitrieva, G.M. Antibiotikorezistentnost' sal'monell, vydelennykh na territorii Krasnoyarskogo kraya (Antibiotic Resistance of Salmonellas Isolated on the Krasnoyarsk Territory), Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya, 2015, No 2, PP.35-38.

7. Piddock, L.J.V. Fluoroguinolone resistance in S.serovars isolated from humans and food animals, FEMS Microbiol. Rev., 2002, Vol.26, PP.3-16.