Оценка микробного пейзажа кишечника крольчат

4. Goenko I. A., Petukhov V. Yu., Yatzyk I. V. et al. EPR Investigation of the Radiation-Induced Transformation in Calcium Gluconate, Abstracts of the international conference «Modern development of magnetic resonance», Kazan, 2016, pp. 136-137.

5. Ledgard S. F. et al. Effect of calcium supplementation on milk production and hypocalcaemia, Proceedings of the New Zealand Grassland Association, 2004, No. 66, pp. 69-74.

6. McDougall S. Effects of periparturient diseases and conditions on the reproductive performance of New Zealand dairy cows, New Zealand Veterinary Journal, 2001, Vol. 49, pp. 60-67.

7. Salata O. V. Applications of nanoparticles in biology and medicine [Elektronnyi resurs] : Journal of Nanobiotechnology, 2004, Vol. 2, Issue 3, Rezhim dostupa: http://www.jnanobiotechnology.com/content/2/1/3 (data obrashcheniya: 15.12.2017).

8. Stevenson M. et al. The effects of calcium supplementation of dairy cattle after calving on milk, milk fat and protein production, and fertility, New Zealand Veterinary Journal, 1999, Vol. 47, Issue 2, pp. 53-60.

9. Talmadge R. V., VanderWiel C. J., Matthews J. L. Calcitinin and phosphate, Mol. Cell Endocrinol, 1981, No. 24, p. 235.

10. Ivanov G. V., Ivanov A. V. Kal'tsii - eto metall (Calcium is a metal), Tsenovik, 2011, No. 5, pp. 52-53.

11. Kislyakova E. M., Achkasova E. V. Molochnaya produktivnost' i tekhnologicheskie svoistva moloka korov-pervotelok v zavisimosti ot sostava ratsiona (Dairy productivity and technological properties of milk cows-cows depending on the composition of the diet), Zootekhniya, 2009, No. 1, pp. 20-22.

12. Kislyakova E. M., Berezkina G. Yu. Effektivnost' ispol'zovaniya prirodnykh sorbentov v kormlenii korov-pervotelok (The effectiveness of the use of natural sorbents in feeding cows), Vestnik Bashkirskogo gosudarstvennogo agrar-nogo universiteta, 2016, No. 2 (38), pp. 47-50.

13. Lyubimov A. I., Kislyakova E. M., Ovchinnikova I. V. Zavisimost' laktatsii i molochnoi produktivnosti pervotelok ot sezona otela (Dependence of lactation and milk productivity of cows calving season), Agrarnaya nauka, 2007, No. 1, p. 24.

14. Draganov I. F. et al. Praktikum po zootekhnicheskomu analizu kormov (Guide on zootechnical feed analysis), ucheb. posobie dlya vuzov, pod obshch. red. I. F. Draganova, V. M. Kosolapova, Moscow, Rossiiskii gosudarstvennyi agrar-nyi universitet - MSKhA im. K. A. Timiryazeva, 2012, 320 p.

15. Ryadchikov V.G. et al. Optimizatsiya urovnya kontsentratov v ratsione korov v perekhodnyi period (Optimization level concentrates in the diet of cows in the transition period), Zootekhniya, 2012, No.1, pp. 10-12.

16. Strelkov N. S., Konygin G. N., Rybin D. S. et al. Nanodispersnaya amorfnaya forma kal'tsiya glyukonata: biokhimich-eskaya sovmestimost' i terapevticheskaya effektivnost' pri lechenii zabolevanii, svyazannykh s obmenom kal'tsiya v organizme (Nanodispersion amorphous form of calcium gluconate: biochemical compatibility and therapeutic efficacy in the treatment of diseases associated with the exchange of calcium in the body), Al'manakh klinicheskoi meditsiny, 2008, No. 17-2, pp. 366-370.

17. Sycheva L.V. Ispol'zovanie biologicheski aktivnykh veshchestv v molochnom skotovodstve (The use of biologically active substances in dairy cattle), monografiya, Perm', Izd-vo FGBOU VPO Permskaya GSKhA, 2013, 162 p.

18. Tomme M. F., Martynenko R. V. Perevarimost' kormov. Otsenka pitatel'nosti kormov i metody ee izmereniya (Digestibility of forages. Assessment of nutritiousness of forages and methods of her measurement), M. F. Tomme, R. V. Martynenko (SSSR), Rabochaya gruppa SEV, Moscow, Kolos, 1970, 463 p.

УДК 579.62; 636.92

ОЦЕНКА МИКРОБНОГО ПЕЙЗАЖА КИШЕЧНИКА КРОЛЬЧАТ

И. А. Кудреватых, аспирант; Н. Н. Шумилина, д-р с.-х. наук, ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И.Скрябина, ул. Академика Скрябина, д. 23, г. Москва, Россия, 109472 E-mail: vania-zoo@ya. ru

Аннотация. Изучение микробного пейзажа слепой и прямой кишки проводилось на клинически здоровых крольчатах породы советская шиншилла в возрасте от 2 до 60 суток в кролиководческом хозяйстве ООО «Животноводческий центр «Прикамье» Пермского края. Для исследований брали общую пробу из прямой и слепой кишки крольчат после убоя в возрасте 2, 7, 14, 21, 30, 60 суток по 5 голов из каждой возрастной группы. В ходе исследований было обнаружено, что уже после рождения на 21 сутки содержание лактобактерий (Lactobacillus) составляло 1Х101 КОЕ/г, среднее количество колониеобразующих единиц Bifidobacterium в 1 г фекалий в начале исследований 1х103 и 1Х101 КОЕ/г, к 14 суткам жизни кролика увеличилось до 1х107 и 1х103 КОЕ/г, грамположительные спорообразующие аэробные бактерии Bacillus subtilis рода Bacillus наблюдались во всех пробах кала из прямой кишки. С 30 по 60 сутки количество лак-тобактерий увеличивается до 1х105 КОЕ/г. Колонии E.coli находились в допустимых пределах. Условно-патогенных бактерий, неспорообразующих анаэробных бактерий и грибов рода Candida у кроликов в возрасте с 2 до 60 суток не обнаружено. Данные по динамике возрастных изменений микробного пейзажа толстого отдела кишечника кроликов послужат полезной информацией для проведения диагностики расстройства пищеварения крольчат гнездового периода.

Ключевые слова: кролики, советская шиншилла, толстый кишечник, слепая и прямая кишка, микрофлора.

Введение. Основной отход молодняка кроликов наблюдается в гнездовой период -10%, по данным Калугина Ю. А. [3,4]. Причиной отхода молодняка является ослабленный иммунитет и расстройство пищеварения [9]. Одной из причин гибели может быть состав микробного пейзажа толстого отдела кишечника и слепой кишки. Данные по составу микрофлоры кишечника крольчат при рождении отсутствуют. Кроме того, состав микроорганизмов толстого отдела кишечника тесно связан со скоростью роста молодняка [12]. Поэтому изучение состава микробиоты кишечника молодняка кроликов в гнездовой период до отсадки (45 дней) актуально.

Состав кишечной флоры кроликов весьма разнообразен, а взаимоотношения бактерий и организма хозяина носят характер физиологического симбиоза. В целом значение бактерий желудочно-кишечного тракта кролика можно свести к следующему:

• участие в переваривании питательных веществ корма и прежде всего клетчатки, которая переваривается только микробиальной целлюлазой;

• улучшение биологической ценности низкокачественных белков;

• участие в углеводном и жировом обмене;

• синтез витаминов группы В и К [1, 3, 4, 6].

Целью нашего исследования являлось

изучение как нормальной, так и патогенной, и

условно патогенной микрофлоры слепой и прямой кишки кролика от 2-х суток до двухмесячного возраста и определение наиболее часто встречающихся видов микроорганизмов.

Материал. Работа проводилась в гено-фондном хозяйстве Пермского края в ООО «Животноводческий центр «Прикамье» и ла-болатории микробиологии МГАВМиБ-МВА имени К.И.Скрябина. Объектом исследования служили здоровые крольчата породы советская шиншилла в возрасте от 2-х до 60 суток, которые содержались с крольчихами в индивидуальных клетках с гнездовым отделением.

Материалом для исследований служило содержимое слепой и прямой кишки, из которого готовили общую пробу из каждой кишки. Материал для исследования брали у молодняка после убоя в возрасте 2, 7, 14, 21, 30, 60 суток, по 5 голов в каждой возрастной группе.

Для определения бактерий семейства Enterobacteriae делали посев на среду Эндо, бактерий семейства Lactobacterius, Bifidobacterium, Fuzobakterium - посевы на чашки с кровяным агаром (КА), желточно-солевым агаром (ЖСА) и на среду Сабуро. Bacillus subtilis выращивали в жидкой среде - мясо-пептонном бульоне (МПБ).

Результаты. Данные, отражающие изменение содержания микроорганизмов в кишках кроликов (количество микроорганизмов в 1 г исследуемого материала) у крольчат в разном возрасте представлены в таблице.

Таблица

Содержание микроорганизмов в кишечнике крольчат в разном возрасте

Состав и количество (КОЕ/г) микроорганизмов в толстом отделе кишечника крольчат

в разном возрасте

Место отбора образцов химуса и фекалий Lactobacterius Bifidobacterium E. coli Staphylococcus Enterococcus другие условно-патогенные бактерии (в т.ч. НГОБ) неспорообразую-щие анаэробные бактерии (бактероиды, Fuzobakterium) грибы рода Candida /плесневые грибки B.subtilis

2 сут

слепая кишка 1Х101 1x103 3,1x106 0 0 0 Fuzobakterium 1x10' 0 0

прямая кишка 1Х101 1Х101 2,3x106 0 0 0 Fuzobakterium 1x10' 0 1x10'

7 сут

слепая кишка 1Х101 1x103 3,0x105 0 0 0 0 0 0

прямая кишка 1x103 1x10' 2,2x104 4*103 0 0 Fuzobakterium 1x103 0 1x10'

14 сут

слепая кишка 1Х101 1x107 5,3x106 0 0 0 Fuzobakterium 1x10' 0 0

прямая кишка 1Х101 1x103 1,0x106 0 0 0 Fuzobakterium 1x103 0 1x10'

21 сут

слепая кишка 1x103 1x107 2,7x105 0 0 0 Fuzobakterium 105 0 0

прямая кишка 1Х101 1x10' 3,3x106 0 0 0 Fuzobakterium 103 0 1x10'

Окончание таблицы

Состав и количество (КОЕ/г) микроорганизмов в толстом отделе кишечника крольчат

в разном возрасте

Место отбора образцов химуса и фекалий Lactobacterius Bifidobacterium E. coli Staphylococcus Enterococcus другие условно-патогенные бактерии (в т.ч. НГОБ) неспорообразую-щие анаэробные бактерии (бактероиды, Fuzobakterium) грибы рода Candida /плесневые грибки B.subtilis

30 сут

слепая кишка 0 1х107 2,8х107 2*105 0 0 Fuzobakterium 107 0 0

прямая кишка 1х105 1х107 3,6х106 0 0 0 Fuzobakterium 107 0 1х107

60 сут

слепая кишка 1х105 1х107 2,4х107 0 0 0 Fuzobakterium 107 0 0

прямая кишка 1х105 1х107 2,4х107 0 0 0 Fuzobakterium 107 0 1х107

Примечание: НГОБ - неферментирующие грамотрицательные бактерии; 0 - роста нет

Результаты, представленные в таблице, показывают, что микроорганизмы, находящиеся в слепой и прямой кишках крольчат в разные возрастные периоды, отличаются количественным содержанием.

Из таблицы следует, что как в гнездовой период, так и после отъёма в кишечной микрофлоре кроликов происходят количественные изменения.

В гнездовой период с 2-х и до 21 суток при питании молоком матери у крольчат наблюдается стабильное количество лактобак-терий (Lactobacillus) - 1Х101 КОЕ/г в обоих отделах толстого кишечника. С 30 по 60 день жизни крольчат наблюдаем увеличение колоний лактобактерий до 1х105 КОЕ/г, связано это со сменой питания, ростом организма и внутренних органов.

Установлено, что среднее количество ко-лониеобразующих единиц Bifidobacterium в 1 г фекалий в слепой и прямой кишках составляло в начале исследований 1 Х103 и 1Х101 КОЕ/г, с увеличением к 14 суткам жизни кролика до 1x10 и 1х103 КОЕ/г. После чего, количество Bifidobacterium в слепой кишке не изменялось, а в прямой на 21 сутки увеличилось до 10' КОЕ/г.

Колонии E.coli находились в допустимых пределах и соответствовали данным по взрослым животным (2,7х105КОЕ/г)(2,3) не вызывая патогенности на протяжении 2 месяцев жизни крольчат.

В наших исследованиях с 2-х суток жизни крольчат обнаружены грамположительные спорообразующие аэробные бактерии Bacillus subtilis рода Bacillus, которые наблюдались во всех пробах кала из прямой кишки -

1x10' КОЕ/г. Их присутствие необходимо для молодняка, питающегося молоком, они подкисляют среду и обладают антимикробной активностью, подавляяя рост патогенных и условно патогенных бактерий и грибов. В наших исследованиях количество Entero-coccus и иных условно-патогенных бактерий (в т.ч. НГОБ), неспорообразующих анаэробных бактерий и грибов рода Candida у кроликов в возрасте с 2 до 60 суток не обнаружено (табл.).

В целом полученные нами результаты совпадают с данными других авторов и дополняют их в изучении микрофлоры кишечника у животных [1, 2, 3, 4, 7, 8, 10].

Выводы. Из представленных данных следует, что микрофлора кишечника кроликов в гнездовой период с использованием групповых проб кала в первый месяц после отъёма от матери количественно изменяется как в слепой кишке, так и в прямой кишке. Максимальное количество Lactobacterius у клинически здоровых кроликов в слепой кишке обнаруживается в возрасте 60 суток и в возрасте 35-45 суток в толстом отделе кишечника. По данным исследований Калугина Ю. А. [3,4], в период 45-60 суток колонии микроорганизмов заселяют слепую кишку, а в период 35-45 суток обнаруживаются в толстом отделе кишечника. В гнездовой период крольчат наблюдается количественное преобладание молочнокислых бактерий лакто-и бифидобакте-рий. Выявлено доминирование колоний сенной палочки над лактобактериями и другими микроорганизмами, которые подавляют их рост.

Литература

1. Данилевская Н. В. Физиологическая роль основных представителей нормальной микрофлоры мелких домашних животных // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. 2008. № 1. С. 28-29.

2. Зыкин Л. Ф., Хапцев З. Ю. Клиническая микробиология для ветеринарных врачей. М. : Колос, 2006. 296 с.

3. Калугин Ю. А. Пищеварение у кроликов // Кролиководство и звероводство. 2009. № 5. С. 24-28.

4. Калугин Ю. А. Физиология питания кроликов. М. : Колос, 1980. 174 с.

5. Каничева И. В. Микробиоценоз содержимого толстого отдела кишечника ягнят раннего возраста // Вестник ОрелГАУ. 2012. № 4. С. 107-109.

6. Мефед К. М. Новый споровый пробиотик Ирилис и его использование в ветеринарной практике : дис. ... канд. биол. наук наук: 03.00.07. М., 2007. 92 с.

7. Никитин Е. Б. Микробиология с основами иммунологии // Павлодар : Арман-ПВ, 2004. С. 59

8. Королюк А. М., Сбойчаков В. Б. Медицинская микробиология : учебное пособие. Санкт-Петербург : ЭЛБИ-СПб, 2002. 287 с.

9. Субботин В. В., Данилевская Н. В. Микрофлора кишечника собак: физиологическое значение, возрастная динамика, дисбактериозы // Ветеринар. 2004. № 4. С. 15-22.

10. Сорокин В. В., Тимошенко М. А., Николаева А. В. Нормальная микрофлора кишечника животных // Кишинев. 1973. 79 с.

11. Yan Rui Li, Chunxiu Fu Lizhi, Wang Xiaoyou. Intestinal Microbial Community Structure in Rabbits of Different Days // Chinese Journal of Veterinary Science. 2017. № 9. P. 1693-1698.

12. Zeng Bo, Zhang Zhi., Zaisin. Li. Construction and Analysis of ERIC-P ER Fingerprint of Intestinal Microbes in Rabbits // Journal of Southern Agriculture. 2017. №1. P. 139-143.

EVALUATION OF MICROBIAL LANDSCAPE OF THE INTESTINE IN RABBITS

I. A. Kudrevatykh, PhD student;

N. N. Shumilina, Dr. Agr. Sci., Professor,

Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology - MVA named after K. I. Skryabin 23, Akademika Skryabina St., Moscow, 109472, Russia E-mail: vania-zoo@ya.ru

ABSTRACT

The investigation of microbial landscape of the cecum and rectum was carried out on clinically healthy rabbits of Soviet Chinchilla breed at the age of 2 to 60 days in the "Prikamie" rabbit farm of Perm Krai. General sample from rectum and cecum in rabbits was taken after their slaughtering at the age of 2, 7, 14, 21, 30, 60 days, 5 heads from each age group. In the course of research, it was determined that the content of Lactobacillus on the 21st day after the birth was equal to Ш01 CFU/g. At the beginning of research, the average number of colony-forming units of Bifidobacterium per 1 g of faeces was equal to Ш03 and Ш01 CFU/g, by the 14th day of life it increased up to 1x107 and 1x103 CFU/g. Gram-positive spore-forming aerobic bacteria belonging to the genus Bacillus - Bacillus Subtilis were observed in all samples of faeces taken from rectum. From 30 to 60 days, the number of Lactobacillus increased up to 1x105 CFU/g. Colonies of E. coli were within the acceptable range. Opportunistic pathogenic bacteria as well as non-spore forming anaerobic bacteria and fungus of the genus Candida were not found in rabbits at the age of 2 to 60 days. The obtained data on dynamics of age-related changes in the microbial landscape of rabbit large intestine will serve as a useful source of information for the diagnosis of digestive disorders of rabbits in the nesting period. Key word: rabbits, Soviet Chinchilla breed, colon, cecum, rectum, microflora.

References

1. Danilevskaya N. V. Fiziologicheskaya rol' osnovnykh predstavitelei normal'noi mikroflory melkikh domashnikh zhivotnykh (Physiological role of the main representatives of normal microflora in small pets), Rossiiskii veterinarnyi zhur-nal. Melkie domashnie i dikie zhivotnye, 2008, No. 1, pp. 28-29.

2. Zykin L. F., Khaptsev Z. Yu. Klinicheskaya mikrobiologiya dlya veterinarnykh vrachei (Clinical microbiology for veterinary physicians), Moscow, Kolos, 2006, 296 p.

3. Kalugin Yu. A. Pishchevarenie u krolikov (Digestion in rabbits), Krolikovodstvo i zverovodstvo, 2009, No. 5, pp. 24-28.

4. Kalugin Yu. A. Fiziologiya pitaniya krolikov (Physiology of nutrition in rabbits), Moscow, Kolos, 1980, 174 p.

5. Kanicheva I. V. Mikrobiotsenoz soderzhimogo tolstogo otdela kishechnika yagnyat rannego vozrasta (Microbioce-nosis of the contents of a thick intestine of lambs at early age), Vestnik OrelGAU, 2012, No. 4, pp. 107-109.

6. Mefed K. M. Novyi sporovyi probiotik Irilis i ego ispol'zovanie v veterinarnoi praktike (A new spore probiotic Irilis and its use in veterinary practice), dis. ... kand. biol. nauk nauk: 03.00.07, Moscow, 2007, 92 p.

7. Nikitin E. B. Mikrobiologiya s osnovami immunologii (Microbiology with basics of immunology), Pavlodar, Ar-man-PV, 2004, p. 59

8. Korolyuk A. M., Sboichakov V. B. Meditsinskaya mikrobiologiya (Medical microbiology), Sankt-Peterburg, ELBI-SPb, 2002, 287 p.

9. Subbotin V. V., Danilevskaya N. V. Mikroflora kishechnika sobak: fiziologicheskoe znachenie, vozrastnaya dina-mika, disbakteriozy (The intestinal flora in dogs: the physiological importance, developmental dynamics, dysbiosis), Veteri-nar, 2004, No. 4, pp. 15-22.

10. Sorokin V. V., Timoshenko M. A., Nikolaeva A. V. Normal'naya mikroflora kishechnika zhivotnykh (The normal intestinal microflora in animals), Kishinev, 1973, 79 p.

11. Yan Rui Li, Chunxiu Fu Lizhi, Wang Xiaoyou Intestinal Microbial Community Structure in Rabbits of Different Days, Chinese Journal of Veterinary Science, 2017, No. 9, pp. 1693-1698.

12. Zeng Bo, Zhang Zhi., Zaisin. Li. Construction and Analysis of ERIC-P ER Fingerprint of Intestinal Microbes in Rabbits, Journal of Southern Agriculture, 2017, No. 1, pp. 139-143.

УДК 636.271.034.061

ЭКСТЕРЬЕРНЫЕ ОСОБЕННОСТИ И МОЛОЧНАЯ ПРОДУКТИВНОСТЬ ГОЛШТИНИЗИРОВАННЫХ КОРОВ ХОЛМОГОРСКОЙ ПОРОДЫ РАЗНЫХ ГЕНЕРАЦИЙ

Е. Н. Мартынова, д-р с.-х. наук, профессор; Ю. В. Исупова, канд. с.-х. наук, доцент, ФГБОУ ВО Ижевская ГСХА, ул. Студенческая, д. 11, г. Ижевск, Россия, 426069 E-mail: ekate .martynova.55@mail. ru

Аннотация. В условиях Удмуртской Республики на базе АО «Путь Ильича» изучали экс-терьерные особенности и молочную продуктивность холмогорских коров, улучшенных голштинской породой, разных генераций. В зависимости от года рождения, все животные были разделены на 4 генерации: 1-я - родившиеся до 2000 г., 2-я - родившиеся с 2000 по 2004 г., 3-я - родившиеся с 2005 по 2009 г., 4-я - родившиеся с 2010 по 2012 г. Экстерьер животных оценивался на основе 7 основных промеров: высота в холке, глубина груди, ширина груди, ширина в маклоках, косая длина туловища, обхват груди, обхват пясти. Установлено, что линейные промеры коров разных генераций имеют определенные различия. У коров всех возрастов наблюдается уменьшение глубины груди с 1-й генерации к 4-й на 2,63 см. Полновозрастные коровы 4-й генерации превосходили сверстниц по следующим промерам: высоте в холке - на 7,03 см сверстниц 1 и 2-й генераций и на 2,81 см - 3-й генерации, ширине груди - на 0,122,27 см, косой длине туловища - на 1,27-6,34 см. Обхват груди за лопатками у коров 4-й генерации был меньше, чем у сверстниц, на 5,37-8,01 см. Обхват пясти у коров 4-й генерации на 0,41 см был больше, чем у коров 3-й генерации и на 0,37-0,45 см меньше, чем у сверстниц 1 и 2-й генерации. При сравнении молочной продуктивности у коров разных генераций видно, что наибольшую молочную продуктивность и живую массу имели коровы 4-й генерации.

Ключевые слова: экстерьер, промеры телосложения, генерация, коровы холмогорской породы, молочная продуктивность, живая масса.

Введение. Основная задача при создании высокопродуктивного скота - это формирование молочного типа, который способствует разведению крепких по конституции животных и обеспечивает высокую молочную продуктивность в течение длительного времени. Важным моментом при разведении специализированного молочного скота является создание гармонично развитых животных без существенных недостатков и пороков экстерьера [1, 3].

В последние десятилетия для совершенствования отечественных пород скота широко

используются лучшие мировые генетические ресурсы. Особенно возросли масштабы генетического влияния голштинского скота, обладающего самым высоким в мире потенциалом молочности, хорошим содержанием жира и белка в молоке [5, 6, 9, 14]. Использование мирового генофонда позволяет улучшить, наряду с продуктивными качествами, экстерьер и приспособляемость животных к условиям интенсивных технологий.

Конституция и экстерьер являются важными показателями племенных и продуктив-