ЖИДКИЕ БАКТЕРИАЛЬНЫЕ ИНОКУЛЯНТЫ С ПОВЫШЕННЫМ СРОКОМ ГОДНОСТИ И ПОВЫШЕННОЙ СТАБИЛЬНОСТЬЮ НА СЕМЕНАХ
LIQUID BACTERIAL INOCULANTS WITH EXTENDED USEFUL LIFE AND ENHANCED STABILITY ON SEEDS

Область техники, к которой относится изобретение
Изобретение относится к жидким инокулянтам. В частности, изобретение относится к способу повышения выживаемости и стабильности бактерий жидких инокулянтов в упаковке и при нанесении на семена.
Уровень техники
Rhizobium
Bradyrhizobium), Pseudomonas, Serratia, Bacillus
,
Paenibacillus), Pasteuria, Azotobacter, Enterobacter, Azospirillum, MethylobacteriumCyanobacteria
Известно, что различные микроорганизмы обладают полезным действием на растения. Эти микроорганизмы включают бактерии родов (включая (включая (сине-зеленые водоросли) и микоризные грибы. Такие микроорганизмы могут доставляться к растению посредством использования композиций инокулянтов. Способ получения композиций инокулянтов включает стадию ферментирования микроорганизмов, обычно в питательной среде.
Композиции инокулянтов могут наноситься прямо на семена растений или вноситься в борозду непосредственно перед посадкой семян. Инокуляция семян или почвы полезными микроорганизмами для повышения урожая введена в практику много лет назад. Однако зачастую наблюдались изменчивые и не согласующиеся между собой результаты, возможно, вследствие потери жизнеспособности бактерий или возможного изменения дозировки, обусловленной изменениями жизнеспособности инокулянтов.
При применении инокулянта во время посева, независимо вносится ли он в борозду или наносится на семена, у микроорганизмов инокулянта нет времени для адаптации к новой окружающей среде. В результате, микроорганизмы инокулянта могут иметь низкий показатель выживаемости.
В настоящее время для повышения жизнеспособности микроорганизмов в инокулянте при нанесении инокулянта на семена или во время их посадки в инокулянт добавляются вспомогательные компоненты, продлевающие срок выживаемости бактерий (экстендеры), на основе сахаров или полимеров. Поскольку экстендеры добавляются после расфасовки инокулянта, они не влияют на выживаемость или стабильность инокулянта в упаковке.
Кроме того, добавление экстендеров во время нанесения инокулянта на семена или во время посадки является трудоемким процессом и обычно должно выполняться конечными потребителями инокулянтов (например, фермерами) в неконтролируемой окружающей среде (например, в сарае или на сельскохозяйственном поле). Поэтому велика вероятность того, что экстендеры будут применены неправильно.
Для устранения проблем, связанных с добавлением экстендеров после приготовления инокулянта, добавление экстендеров осуществлялось в питательную среду перед стадией ферментации процесса получения жидкого инокулянта. Однако добавление экстендеров в оптимальном количестве перед ферментацией для повышения выживаемости микроорганизмов на семенах ингибирует их рост.
Таким образом, существует потребность в способе повышения выживаемости и стабильности микроорганизмов (например, бактерий) жидкого инокулянта в процессе хранения и повышения выживаемости и стабильности микроорганизмов жидкого инокулянта при нанесении его на семена.
Сущность изобретения
Одним вариантом осуществления настоящего изобретения является собой способ получения жидкого препарата инокулянта, содержащего десикант. Способ включает получение жидкого инокулянта бактерий, выращенных по существу до стационарной фазы. В полученный жидкий инокулянт добавляется компонент для осушительной (обезвоживающей) обработки, включающий в себя десикант, с получением препарата частично обезвоженного инокулянта.
В другом варианте осуществления настоящего изобретения препарат частично осушенного инокулянта подвергается расфасовке и хранится.
В еще одном варианте осуществления настоящего изобретения частично осушенный инокулянт наносится на семена.
Краткое описание фигур
Bradyrhizobium japonicum («B. japonicum»)
Фиг. 1 представляет графическое изображение выживаемости в жидком бульоне, которая является функцией времени и температуры, представленные графики построены по результатам нескольких вариантов осуществления настоящего изобретения.
B. japonicum
Фиг. 2 представляет графическое изображение выживаемости в жидком бульоне, которая является функцией времени и температуры, представленные графики построены по результатам нескольких вариантов осуществления настоящего изобретения.
Фиг.3 представляет графическое изображение выживаемости В. japonicum на семенах, которая является функцией времени и температуры, представленные графики построены по результатам нескольких вариантов осуществления настоящего изобретения.
Фиг.4 представляет диаграмму выживаемости В. japonicum в жидком бульоне в зависимости от типа и количества десиканта, представленная диаграмма построена по результатам нескольких вариантов осуществления настоящего изобретения.
Фиг.5 представляет диаграмму выживаемости В. japonicum в жидком бульоне в зависимости от типа и количества десиканта, представленная диаграмма построена по результатам нескольких вариантов осуществления настоящего изобретения.
Фиг.6 представляет диаграмму выживаемости В. japonicum на семенах в зависимости от типа и количества десиканта, представленная диаграмма построена по результатам нескольких вариантов осуществления настоящего изобретения.
Фиг.7 представляет диаграмму выживаемости Pseudomonas fluorescens («P. fluorescent») в жидком бульоне в зависимости от типа и количества десиканта, представленная диаграмма построена по результатам нескольких вариантов осуществления настоящего изобретения.
Фиг.8 представляет диаграмму выживаемости S. proteamaculans («S. proteamaculans») в жидком бульоне в зависимости от типа и количества десиканта, представленная диаграмма построена по результатам нескольких вариантов осуществления настоящего изобретения.
Подробное описание изобретения
Предоставлен способ получения жидкого инокулянта бактерий. Способ включает добавление десиканта в жидкий инокулянт после того, как бактерии выращены по существу до стационарной фазы. Добавление десиканта к инокулянту приводит к получению препарата частично обезвоженного инокулянта.
Способ может обеспечивать повышенную стабильность бактерий, когда препарат частично осушенного инокулянта находится «в упаковке» (т.е. помещен в упаковку) и когда препарат частично осушенного инокулянта нанесен на семена. Повышенная стабильность может приводить к повышенной выживаемости бактерий как в упаковке, так и на семенах.
Rhizobium
Bradyrhizobium), Pseudomonas, Serratia, Bacillus
Paenibacillus), Pasteuria, Azotobacter, Enterobacter, Azospirillum, Methylobacterium, Cyanobacteria
Rhizobium
Bradyrhizobium
Bradyrhizobium japonicum, Rhizobium meliloti, Rhizobium leguminosarum biovar trifolii, Rhizobium leguminosarum biovar viceae
Rhizobium leguminosarum biovar phaseoli.
Rhizobium
Бактерии вводятся в жидкую питательную среду для получения бактериальной культуры. В жидкую питательную среду могут вводиться различные бактерии, включая, но без ограничения, (в том числе (в том числе  (сине-зеленые водоросли). Для получения бактериальной культуры в жидкую питательную среды могут вводиться и другие микроорганизмы (например, микоризные грибы). Предпочтительные штаммы и включают и Эти бактерии способны образовывать клубеньки на корнях бобовых растений. Хотя приведенное далее описание относится, главным образом, к композициям инокулянта , будет понятно, что аналогичные принципы применяются и при использовании других микроорганизмов.
Rhizobium
Жидкая питательная среда, в которую вводятся бактерии, может представлять собой любую известную в данной области техники жидкую питательную среду, совместимую с выбранными бактериями. Например, YMB представляет собой среду, обычно используемую для . Состав YMB представлен в таблице 1.
Таблица 1Характеристические свойства YMB
Дрожжевой экстракт
0,50 г/л
Маннит
10,0 г/л
К<sub>2</sub>НРО<sub>4</sub>
0,50 г/л
MgSO<sub>4</sub>·7H<sub>2</sub>O
0,2 г/л
NaCl
0,1 г/л
Вода
1 л
рН
6,8
После добавления бактерий в жидкую питательную среду бактериальная культура инкубируется (или ферментируется) для предоставления бактериям возможности роста до «по существу стационарной фазы». Значение термина «по существу стационарная фаза» включает период роста культуры от поздней «логарифмической фазы» до «стационарной фазы». Термин «логарифмическая фаза» означает фазу, которая имеет место после лаг-фазы в начале ферментации и представляет собой фазу, на которой обычно питательные вещества являются неограниченными и наблюдается экспоненциальный рост бактерий. Термин «стационарная фаза» означает фазу, которая имеет место после логарифмической фазы и представляет собой фазу, на которой рост бактерии по существу прекращается. Стационарная фаза обычно достигается, когда жидкая питательная среда по существу полностью расходуется. В данном описании среда, содержащая бактерии, которые инкубируются по существу до стационарной фазы, называется «жидким инокулянтом».
B. japonicum
B. japonicum
Обычно период инкубирования бактерий может составлять от 115 дней. Точнее, инкубационный период может составлять от 2 до 7 дней. В течение инкубационного периода жидкая питательная среда и бактерии могут аэрироваться и выдерживаться при температуре, подходящей для их роста. Аэрация может осуществляться с использованием инкубатора со встряхиванием, ферментационного реактора и других аналогичных устройств. Конкретные условия инкубации зависят от типа бактерий и типа используемой жидкой питательной среды. Например,  может инкубироваться в питательной среде в инкубаторе со встряхиванием в течение примерно от 1 до 10 дней при температурах в интервале от примерно 20°С до примерно 35°С. Предпочтительно,  инкубируется в течение примерно от 2 до 7 дней при температуре примерно 28°С для обеспечения возможности роста бактерий.
Rhizobium
9
11
10
Количество бактерий в продолжении по существу стационарной фазы изменяется в зависимости от вида бактерий. Например, для  бактерий общее количество бактерий в жидком инокулянте составляет от примерно 1 × 10/мл до примерно 1 × 10/мл. Точнее, данный жидкий инокулянт включает примерно 1 × 10/мл бактерий. Указанные количества являются примерными количествами, и подразумевается, что и эти другие количества также входят в область настоящего изобретения.
После достижения по существу стационарной фазы (т.е. после того, как бактериям была предоставлена возможность роста с экспоненциальным коэффициентом скорости роста) в жидкий инокулянт вводится компонент обезвоживающей обработки, включающий десикант, для получения препарата частично обезвоженного инокулянта. Термин «компонент обезвоживающей обработки» означает смесь десиканта и разбавителя, обычно воды. Термин «десикант» означает вещество, которое при добавлении к воде снижает активность воды (определяемую как парциальное давление водных паров на поверхности вещества, деленное на давление насыщенного пара). Считается, что снижение водной активности до уровня менее 0,995 эффективно для повышения выживаемости бактерий препарата частично обезвоженного инокулянта, находящегося в упаковке. Считается, что снижение водной активности до уровня менее 0,990, предпочтительно менее примерно 0,980, эффективно для повышения выживаемости бактерий в препарата частично обезвоженного инокулянта, нанесенного на семена.
Термин «десиканты», используемый в настоящем описании, может включать любое соединение или смесь соединений, которые могут классифицироваться как десиканты независимо от того, используется(ются) ли соединение или соединения в концентрациях, фактически обеспечивающих осушительное (обезвоживающее) действие на жидкий инокулянт, или нет. Примеры подходящих десикантов включают одно или несколько соединений, выбранных из трегалозы, сахарозы, глицерина и триэтиленгликоля. Другие подходящие десиканты включают, но без ограничения, невосстанавливающие сахара и спирты, относящиеся к группе сахаров (например, маннит).
Количество десиканта, вводимое в жидкий инокулянт, обычно составляет от примерно 5% до примерно 50% (мас./об.) препарата частично обезвоженного инокулянта. Когда десикантом является трегалоза, концентрация десиканта в препарате частично обезвоженного инокулянта предпочтительно составляет от примерно 10% до примерно 40% (мас./об.). Более предпочтительно, концентрация трегалозы в препарате частично обезвоженного инокулянта находится в интервале от примерно 20% до примерно 30% (мас./об.).
Компонент обезвоживающей обработки может включать смесь нескольких десикантов. На практике смеси могут представлять собой любое сочетание двух или большего количества десикантов, которые определены в описании. Например, компонент обезвоживающей обработки может включать смесь трегалозы и глицерина, смесь трегалозы и сахарозы или смеси сахарозы и триэтиленгликоля. Смесь трегалозы и глицерина может включать трегалозу в концентрациях от примерно 5% до примерно 40 (мас./об.) препарата частично обезвоженного инокулянта и глицерин в концентрациях от примерно 1% до примерно 10% (мас./об.) препарата частично обезвоженного инокулянта. Точнее, концентрации трегалозы и глицерина в смеси могут составлять примерно 20% и примерно 5% (мас./об.) препарата частично обезвоженного инокулянта соответственно.
Десикант может добавляться в жидкий инокулянт в то время, когда жидкий инокулянт еще находится в емкости в процессе инкубации (например, в ферментационном реакторе или инкубаторе со встряхиванием). Альтернативно, десикант может добавляться в жидкий инокулянт в процессе расфасовки.
В одном варианте осуществления настоящего изобретения достаточное количество десиканта присутствует в, по меньшей мере, препарате частично обезвоженного инокулянта, посредством чего (1) повышается стабильность и выживаемость бактерий на последующих стадиях, таких как расфасовка и хранение, и (2) повышается стабильность и выживаемость бактерий на последующих стадиях, таких как нанесение на семена препарата частично обезвоженного инокулянта.
Препарат частично обезвоженного инокулянта может затем расфасовываться и отправляться на хранение. Упаковка может представлять собой любую стандартную упаковку, известную в данной области техники. Например, препарат частично обезвоженного инокулянта может расфасовываться в полиэтиленовые емкости.
После расфасовки препарат частично обезвоженного инокулянта может оправляться на хранение. Условия хранения могут включать охлаждение до температур окружающей среды и ниже до приемлемой относительной влажности. Предпочтительно, условия хранения включают температуру ниже примерно 35°С и относительную влажность ниже примерно 80%.
Препарат частично обезвоженного инокулянта может наноситься на различные семена. Например, препарат частично обезвоженного инокулянта может наноситься на семена бобовых растений. Бобовые растения образуют большую группу растений, включая экономически значимые овощные культуры, такие как соя, люцерна, арахис, горох, бобы и т.п. Бактерии препарата частично обезвоженного инокулянта могут заселять ризосферу и/или заражать корни растения, проникая в корешковые волоски, заселяя корни и образуя клубеньки. В результате такой симбиотической связи растения могут превращать газообразный азот в органические соединения азота посредством азотфиксации. Затем растения могут использовать эти органические соединения для роста.
5
5
Количество бактерий на семени во время нанесения препарата частично обезвоженного инокулянта на семя изменяется. Число бактерий на семени через 10 недель после нанесения препарата частично обезвоженного инокулянта на семя также может изменяться, но считается, что число незначительно отклоняется от исходного количества. Другими словами, не должно быть значительного снижения количества бактерий на семени по времени. Например, если количество бактерий на семени при нанесении препарата частично обезвоженного инокулянта на семя составляет, по меньшей мере, 6 × 10, количество бактерий на семени спустя примерно 10 недель предпочтительно составляет 1 × 10.
Предполагается, что для повышения стабильности и выживаемости бактерий в препарате частично обезвоженного инокулянта в упаковке и на семенах, перед нанесением частично обезвоженного инокулянта продукта на семена в препарат частично обезвоженного инокулянта может необязательно добавляться полимер. Полимер может добавляться перед стадией расфасовки или после стадией хранения. Полимер может включать поливинилпирролидон, полимеры алкилированного винилпирролидона, сополимеры винилпирролидона и винилацетата, сополимеры винилпирролидона и стирола, полимеры на основе поливинилового спирта и другие аналогичные полимеры. Концентрация полимера может составлять от примерно 1% до 25% (мас./об.) препарата частично обезвоженного инокулянта.
Хотя добавление десиканта к жидкому инокулянту для получения препарата частично обезвоженного инокулянта после достижения бактериями по существу стационарной фазы повышает стабильность бактерий без необходимого добавления экстендера во время посева, применение экстендера не исключено. На практике область изобретения также включает также нанесение на семена экстендеров после нанесения на семена препарата частично обезвоженного инокулянта. Экстендер может добавляться во время посадки или во время нанесения препарата частично обезвоженного инокулянта на семена. Экстендеры могут включать любые традиционно применяемые экстендеры, например, полученные на основе сахаров, смол, карбоксиметилцеллюлозы и полимеров.
Препарат частично обезвоженного инокулянта может наноситься на торф, глину и/или другие аналогичные сухие носители для получения сухого сыпучего (текучего) препарата инокулянта. Препарат частично обезвоженного инокулянта может наноситься распылением или другими известными способами.
Далее изобретение будет проиллюстрировано с помощью примеров, которые, однако, не следует рассматривать как ограничивающие область настоящего изобретения.
Bradyrhizobium japonicum
Пример 1. Оценка стабильности  в присутствии трегалозы и смеси глицерин/трегалоза.
B. japonicum
культурируют в виброинкубаторе во встряхиваемых колбах с питательной средой в течение 7 дней при температуре 28°С для получения 7-дневного ферментационного бульона. Во встряхиваемых колбах объемом 250 мл приготавливают четыре компонента обезвоживающей обработки (см. таблицу 2). Приготавливают по два образца каждого компонента обезвоживающей обработки, таким образом, подготавливают всего 8 встряхиваемых колб объемом 250 мл с компонентами обезвоживающей обработки. В каждую такую встряхиваемую колбу добавляют по 50 мл семидневного ферментационного бульона. Содержимому всех колб дают возможность достичь состояния равновесия в течение дополнительных 7 дней при 28°С. После достижения состояния равновесия одну колбу из каждой пары с одинаковыми компонентами обезвоживающей обработки статически инкубируют при 28°С. Вторую колбу из каждой пары с одинаковыми компонентами обезвоживающей обработки статически инкубируют при 35°С.
Таблица 2Обезвоживающая обработка. Влияние трегалозы и глицерина на стабильность <i>B. japonicum.</i>
Обработка
Вода (г)
Глицерин (г)
Трегалоза (г)
Символы на фигурах
Контроль: 0% трегалозы, 0% глицерина
50
0
0
<img file="00000001.tif" he="6" wi="14" img-content="undefined" img-format="tif" />
20% трегалозы
30
0
20
<img file="00000002.tif" he="6" wi="11" img-content="undefined" img-format="tif" />
5% глицерина
45
5
0
<img file="00000003.tif" he="7" wi="11" img-content="undefined" img-format="tif" />
5% глицерина + 20% трегалозы
25
5
20
<img file="00000004.tif" he="4" wi="11" img-content="undefined" img-format="tif" />
-1
-1
-1
-2
-7
Из колб периодически отбирают пробные образцы и чашечным методом определяют общее количество жизнеспособных бактерий. Для чашечного определения количества жизнеспособных бактерий образцы сначала тщательно перемешивают и затем, используя калиброванную пипетку со стерильным наконечником, отбирают 1 мл образца и переносят его в опытную пробирку с 9 мл воды для обратного осмоса (RO), получая таким образом 10 разведение. Затем, используя 1000 мкл Rainin (калиброванный и установленный на 1000 мкл) и стерильные наконечники, из опытной пробирки 10 разведения отбирают 1000 мкл образца 10 разведения и переносят его в другую опытную пробирку, содержащую 9 мл RO воды, получая, таким образом, 10 разведение. Затем эти действия повторяют до 10 разведения, встряхивая опытные пробирки, содержащие разведения, и фламбируя их между каждым переносом.
-1
-5
-6
-7
Используя 100 мкл Rainin (калиброванный и установленный на 30 мкл) и стерильные наконечники, из опытной пробирки с 10 разведением отбирают образец объемом 30 мкл и три капли по 10 мкл капли переносят на чашку с питательным агаром, которая служит в качестве чашки выявления загрязнения. Питательный агар представляет собой агар Oxoid. Указанные действия повторяют для других разведений с тем отличием, что для 10, 10 и 10 разведений образцы помещают на стандартные чашки с питательной средой Congo Red Yeast Mannitol Agar («CRYMA» - см. таблицу 3).
Таблица 3Состав питательной среды CRYMA-чашек
Ингредиент
Количество
MgSО<sub>4</sub>
0,204 г
NaCl
0,1 г
K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>
0,5 г
Дрожжевой экстракт (Difco)
0,4 г
Манит
10,0 г
Конго красный (0,25% раствор)
10 мл
Агар (BBL)
15 г
о
Чашкам дают возможность высохнуть перед инвертированием и инкубируют их при 28С в течение 5 дней. По истечении 5 дней число колоний подсчитывают под микроскопом малого увеличения. Общее количество вычисляют по формуле «среднее значение × разбавление × 100».
B. japonicum
B. japonicum
Результаты определения выживаемости  в жидком бульоне при 28°С, полученные при добавлении четырех различных компонентов обезвоживающей обработки, представлены на Фиг. 1. Результаты определения выживаемости бактерий  в жидком бульоне при 35°С, полученные при добавлении четырех различных компонентов обезвоживающей обработки, представлены на Фиг. 2. Образец с добавлением 5% глицерина был испорчен в процессе испытания, и поэтому результат его испытания не представлен на Фиг. 2.
Результаты, представленные на Фиг. 1, показывают, что при 28°С добавление 20% трегалозы и смеси 20% трегалозы/5% глицерина обеспечивает хорошую выживаемость бактерий в жидком бульоне. Количество бактерий в контрольном образце начинает снижаться в течение периода времени в интервале примерно от 12 недель до 16 недель от начала эксперимента. В отличие от контрольного образца, в образце с 20% трегалозы и в образце со смесью 20% трегалозы/5% глицерина количество бактерий сохраняется на относительно постоянном уровне в указанный период времени и даже по истечении указанного периода времени.
Результаты, представленные на Фиг. 2, показывают, что при 35°С добавление 20% трегалозы обеспечивает хорошую выживаемость бактерий в жидком бульоне. Хотя количество бактерий в других образцах, включая контрольные образцы, значительно снижается в начале эксперимента, количество бактерий при добавлении 20% трегалозы остается относительно постоянным в течение всего эксперимента.
B. japonicum.
По истечении 10 недель из контрольного образца и образца, содержащего 20% трегалозы, отбирают пробы и наносят на семена сои. Семена выдерживают при 22°С. Периодически отбирают пробы и определяют количество выживших  Количество выживших бактерий на семенах определяют следующим способом.
-1
-1
-1
-2
-2
-3
-4
Навеску семян сои массой 500 г помещают в чистый маркированный пластиковый пакет, который может герметично закрываться. Используя шприц объемом 2 мл или стерильные пипетки объемом 2 мл, отбирают 1,38 мл каждого образца и равномерно распределяют на поверхностях семян. Затем в пластиковый пакет, содержащий инокулированные семена, захватывают воздух окружающей среды. Сразу после этого пластиковый пакет герметично закрывают и встряхивают до тех пор, пока образец не покроет равномерно семена (приблизительно 30 секунд). Пластиковый пакет открывают и семена выдерживают в лабораторных условиях (21°С), защищая их от действия прямых солнечных лучей, до полного высыхания (приблизительно 10 минут). Используя сухой, протертый спиртом по всей длине шпатель в виде ложки, из пластикового мешочка произвольно отбирают 100 неповрежденных семян. Семена помещают в предварительно подготовленную бутыль со 100 мл разбавителя. Бутыль закрывают и сразу энергично встряхивают в течение приблизительно 1 минуты. Используя асептический способ, полученные в бутыли 100 мл суспензии последовательно разбавляют следующим образом: (1) сразу после встряхивания 100 мл суспензии из бутыли отбирают 1 мл суспензии бактерий в разбавителе и асептически переносят в первую пробирку с 9 мл RO воды, используемой в качестве разбавителя, получая, таким образом, 10 разведение; (2) суспензию 10разведения встряхивают в течение 15 секунд; (3) сразу после встряхивания 1 мл суспензии 10разведения переносят в другую пробирку с 9 мл RO воды, используемой в качестве разбавителя, с получением 10 разведения; (4) после этого суспензию 10 разведения встряхивают; (5) стадии (3) и (4) повторяют, с получением 10и 10 разведения.
(а)
(b)
(c)
После этого чашки с агаровой средой, на которых производится подсчет колоний, снабжают ярлыком с указанием разведения суспензии используемой пробирки, описанием композиции обработки и датой посева. Для каждого разведения подготавливают по две чашки. Перед отбором образцов из пробирок с разбавленными суспензиями и посевом их на чашки с агаровой средой суспензии встряхивают. Затем, используя стандартные методы асептического пипетирования, из каждой пробирки разведения отбирают образцы объемом 100 мкл и распределяют их, вносят в центр каждой чашки с агаровой средой. Используя стерильный распределитель, образцы равномерно распределяют на поверхностях чашек. После этого чашки инкубируют в течение 7 дней при 28°С. После инкубирования подсчитывают и записывают число колониеобразующих единиц (CFU) в каждой чашке. Затем для каждой чашки для определения количества CFU из расчета на каждую чашку (CFU/чашка) проводят следующие вычисления: [Среднее число колоний × [указанное в ярлыке разведение × 10 × 100}/100], где (а) представляет собой поправочное значение для 0,1 мл/чашка, (b) представляет собой поправочный коэффициент для 100 мл в исходной суспензии, помещенной в бутыли, и (с) представляет собой поправочный коэффициент для количества семян в исходном образце.
B. japonicum
5
Результаты определения выживаемости  по истечении 10 недель представлены на Фиг. 3. Результаты показывают, что временной отрезок, в течение которого количество бактерий сохраняется на уровне свыше 1 × 10/семя, составляет для контрольного образца менее 1 недели, а для образца, содержащего 20% трегалозы, более 10 недель. Эти результаты показывают, что добавление трегалозы в концентрации 20% обеспечивает хорошее выживание бактерий при нанесении их на семена.
B. japonicum
Пример 2. Оптимизация количества смеси трегалоза/ахароза, необходимой для стабилизации
Образцы препаратов приготавливают во встряхиваемых колбах в соответствии с методикой, описанной в примере 1. Компоненты, используемые для обезвоживающей обработки, для данного примера, представлены в таблице 4.
Таблица 4Обезвоживающая обработка. Влияние трегалозы и сахарозы на стабильность <i>B. japonicum</i>
Обработка
Вода (г)
Трегалоза (г)
Сахароза (г)
Контрольный образец
50
0
0
5 % трегалозы
45
5
0
10% трегалозы
40
10
0
20% трегалозы
30
20
0
30% трегалозы
20
30
0
40% трегалозы
10
40
0
5% сахарозы
45
0
5
10% сахарозы
40
0
10
20% сахарозы
30
0
20
30% сахарозы
20
0
30
B. japonicum
B. japonicum
Результаты определения выживаемости  в жидком бульоне при 28°С с применением указанных добавок, представлены на Фиг. 4. Результаты определения выживаемости  в жидком бульоне при 25°С с применением указанных добавок, представлены на Фиг. 5.
Результаты, представленные на Фиг. 4, показывают, что при инкубировании при 28°С добавление галактозы в концентрациях в интервале от 10% до 30% (мас./об.) является оптимальными для выживаемости бактерий в жидком бульоне. Результаты, представленные на Фиг. 4, также показывают, что добавление сахарозы в концентрациях в интервале от 5% до 10% (мас./об.) благоприятно для выживаемости бактерий в жидком бульоне, но не в такой же степени, как добавление трегалозы. Кроме того, результаты, представленные на Фиг. 4, показывают, что бактерии могут выживать при обработке с добавлением трегалозы в концентрации 40%, демонстрируя, что бактерии обладают потенциалом выживать в препарате, который является ингибиторным для микроорганизмов.
Результаты, представленные на Фиг.5, показывают, что при 35°С добавление трегалозы в концентрациях в интервале от 10% до 30% (мас./об.) является оптимальными для выживаемости бактерий в жидком бульоне. Результаты, представленные на Фиг.5, также показывают, что добавление сахарозы в концентрации 5% (мас./об.) благоприятно для выживаемости бактерий в жидком бульоне, но не в такой же степени, как добавление трегалозы.
По истечении 10 недель образцы препаратов с компонентами, представленными в таблице 4, наносят на семена сои. Семена инкубируют при 22°С. Образцы инокулянта на семенах отбирают непосредственно после нанесения препарата, затем через 6 дней, через 2 недели и через 4 недели. В образцах определяют количество бактерий В. japonicum. Способ определения выживаемости бактерий на семенах описан выше в примере 1. Результаты определения выживаемости бактерий на семенах представлены на Фиг.6.
Результаты, представленные на Фиг.6, показывают, что при 22°С добавление трегалозы в концентрациях в интервале от 20% до 30% (мас./об.) являются оптимальными для выживаемости бактерий при нанесении бактерий на семена.
Пример 3. Определение стабильности Serratia Proteamaculans и Pseudomonas Fluorescens в препарате жидкого бульона Serratia Proteamaculans ("S. Proteamaculans") выращивают в стандартной микробиологической среде (триптический соевый бульон (Tryptic soya broth - "TBS") половинной концентрации) в течение 24 часов при 22°С для приготовления бактериального бульона. Приготавливают компоненты обезвоживающей обработки, представленные в таблице 5. В каждую колбу, содержащую указанный компонент, добавляют 50 мл бактериального бульона. Содержимому всех колб дают возможность достичь состояния равновесия в течение дополнительных 3 дней в виброинкубатора при 22°С. Затем колбы удаляют из виброинкубатора для статического инкубирования при 28°С. Из колб периодически отбирают образцы и количество бактерий оценивают, получая последовательные разведения и высевая их на агаровую среду со стриптическим соевым бульоном половинной концентрации - "TSA".
Эти же действия выполняют для Pseudomonas fluorescens ("Р. fluorescens").
Таблица 5
Обезвоживающая обработка. Влияние добавления трегалозы, сахарозы и глицерина на стабильность S.Proteamaculaus и Р.fluorescens.
Обработка
Вода (г)
Трегалоза (г)
Сахароза (г)
Глицерин (г)
Контрольный образец
50
0
0
0
10% глицерина
40
0
0
10
20% глицерина
30
0
0
20
30% глицерина
20
0
0
30
10% трегалозы
40
10
0.
0
20% трегалозы
30
20
0
0
30% трегалозы
20
30
0
0
10% сахарозы
40
0
10
0
20% сахарозы
30
0
20
0
30% сахарозы
20
0
30
0
Результаты определения выживаемости P. fluorescens в жидкости при 28°С представлены на Фиг.7. Результаты показывают, что при 28°С добавление глицерина, трегалозы и сахарозы может улучшать выживаемость P. fluorescens.
Результаты определения выживаемости S. proteamaculans в жидкости при 28°С представлены на Фиг.8. Результаты показывают, что при добавлении в инокулянт 30% трегалозы, 10% сахарозы и 30% сахарозы количество выживших бактерий превосходит количество выживших бактерий в контрольном образце в течение периода времени, составляющем до 4 недель. Эти данные показывают, что введение указанных добавок может повысить выживаемость S. proteamaculans.
Квалифицированный специалист данной области техники будет представлять, что настоящее изобретение может осуществляться в различных альтернативных формах и конфигурациях. Приведенное выше подробное описание раскрытых вариантов осуществления изобретения представлено только с целью более четкого его разъяснения, и не подразумевает никаких ограничений.