Диагностическое значение некоторых иммунодоминантных белков изогенных вариантов Bacillus anthracis

quantification of in vitroNET formation. Front. Immunol. 2013; 3: 413.

36. Radic M., Kaplan M.J. Extracellular chromatin traps interconnect cell biology, microbiology, and immunology. Front. Immunol. 2013; 4: 160.

37. Brinkmann V., Laube B., Abu Abed U., Goosmann C., Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps: how to generate and visualize them. J. Vis. Exp. 2010; (36). pii: 1724.

38. Lande R., Ganguly D., Facchinetti V., Frasca L., Conrad C., Gregorio J. et al. Neutrophils activate plasmacytoid dendritic cells by releasing self-DNA-peptide complexes in systemic lupus erythematosus. Sci. Transl. Med. 2011; 3 (73): 73-19.

39. Remijsen Q., Van den Berghe T., Wirawan E., Asselbergh B., Parthoens E., De Rycke R. Neutrophil extracellular trap cell death requires both autophagy and superoxide generation. Cell Res. 2011; 21: 290-304.

40. Brinkmann V., Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps: is immunity the second function of chromatin? J. Cell Biol. 2012; 198: 773-83.

41. Li P., Li M., Lindberg M.R., Kennett M.J., Xiong N., Wang Y. PAD4 is essential for antibacterial innate immunity mediated by neutrophil extracellular traps. J. Exp. Med. 2010; 207: 1853-62.

42. Lood C., Blanco L.P., Purmalek M.M., Carmona-Rivera C., De Ravin S.S., Smith C.K. et al. Neutrophil extracellular traps enriched in oxidized mitochondrial DNA are interferogenic and contribute to lupus-like disease. Nat. Med. 2016; 22 (2): 146-53.

43. Liaw P.C., Ito T., Iba T., Thachil J., Zeerleder S. DAMP and DIC: The role of extracellular DNA and DNA-binding proteins in the patho-genesis of DIC. Blood Rev. 2015; pii: S0268-960X (15)00097-1.

44. Kain R., Firmin D.A., Rees A.J. Pathogenesis of small vessel vas-culitis associated with autoantibodies to neutrophil cytoplasmic antigens: new insights from animal models. Curr. Opin. Rheumatol. 2010; 22: 15-20.

45. Levy O. A neutrophil-derived anti-infective molecule: bactericidal/ permeability-increasing protein. Antimicrob. Agents Chemother. 2000; 44 (11): 2925-31.

46. Mankovich A.R., Lee C.Y., Heinrich V. Differential effects of serum heat treatment on chemotaxis and phagocytosis by human neutrophils. PLoS One. 2013; 8 (1): e54 735.

47. Andryukov B.G., Somova L.M., Timchenko N.F. Strategy of programmed cell death in prokaryotes. Infektsiya i immunitet. 2015; 5

48. Mantovani A., Cassatella M.A., Costantini C., Jaillon S. Neutrophils

immunology

in the activation and regulation of innate and adaptive immunity. Nat. Rev. Immunol. 2011; 11: 519-31.

49. Metzler K.D., Fuchs T.A., Nauseef W.M., Reumaux D., Roesler J., Schulze I. et al. Myeloperoxidase is required for neutrophil extracellular trap formation: Implications for innate immunity. Blood. 2010; 3 (17): 36-43.

50. Möcsai A. Diverse novel functions of neutrophils in immunity, inflammation, and beyond. J. Exp. Med. 2013; 210 (7): 1283-99.

51. Radford-Smith G., Jewell D. P. Cytokines and inflammatory bowel disease. Baillieres Clin. Gastroenterol. 1996; 10 (1): 151-64.

52. Korotina O.L., Generalov I.I. Neutrophil extracellular traps: mechanisms of formation and function. Immunopatologiya, allergologiya, infektologiya. 2012;

53. Sun L., Wang H., Wang Z., He S., Chen S., Liao D. et al. Mixed lineage kinase domain-like protein mediates necrosis signaling downstream of RIP3 kinase. Cell. 2012; 148 (1-2): 213-27.

54. Vandenabeele P., Galluzzi L., Vanden Berghe T., Kroemer G. Molecular mechanisms of necroptosis: an ordered cellular explosion. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2010; 11 (10): 700-14.

55. Yousefi S., Mihalache C., Kozlowski E., Schmid I., Simon H.U. Viable neutrophils release mitochondrial DNA to form neutrophil extracellular traps. Cell Death Differ. 2009; 16 (11): 1438-44.

56. Neeli I., Dwivedi N., Khan S., Radic M. Regulation of extracellular chromatin release from neutrophils. J. Innate Immun. 2009; 1 (3): 194-201.

57. Farrera C., Fadeel B. Macrophage clearance of neutrophil extracellular traps is a silent process. J. Immunol. 2013; 191: 2647-56.

58. Sangaletti S., Tripodo C., Chiodoni C., Guarnotta C., Cappetti B., Casalini P. Neutrophil extracellular traps mediate transfer of cyto-plasmic neutrophil antigens to myeloid dendritic cells toward ANCA induction and associated autoimmunity. Blood. 2012; 120: 3007-18.

59. Wang Y., Li P., Wang S., Hu J., Chen X.A., Wu J. et al. Anticancer peptidylarginine deiminase (PAD) inhibitors regulate the autophagy flux and the mammalian target of rapamycin complex 1 activity. J. Biol. Chem. 2012; 287 (31): 25 941-53.

60. Leshner M., Wang S., Lewis C., Zheng H., Chen X.A., Santy L. PAD4 mediated histone hypercitrullination induces heterochromatin decondensation and chromatin unfolding to form neutrophil extracellular trap-like structures. Front. Immunol. 2012; 3: 307.

Поступила 30.05.16 Принята к печати 15.06.16

© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2016 УДК 616.373:579.852.11

Баркова И.А., Червакова М.П., Барков А.М., Новоженина А.В., Викторов Д.В.

ДИАГНОСТИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ НЕКОТОРЫХ ИММУНОДОМИНАНТНЫХ БЕЛКОВ ИЗОГЕННЫХ ВАРИАНТОВ БАСИШБ АМТНЙАС1Б

ФКУЗ «Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт» Роспотребнадзора, 400131, г. Волгоград

Получены поликлональные моноспецифические сыворотки к белкам токсина и антигенам S-слоя Bacillus anthracis, выделенным в препаративном электрофорезе. При применении метода флуоресцирующих антител (МФА) иммуноглобулины сывороток к белку S-слоя B. anthracis мм. 94 кДа обладали специфичностью и специфической активностью на представленном количестве штаммов, а в пробах почвы обнаруживали споры в концентрации Ь104 КОЕ/мл, что позволяет рекомендовать данные иммуноглобулины для индикации B. anthracis. Белки м.м. 90 кДа, относящиеся к антигенам токсина B. anthracis, в иммуноблоттинге реагировали с сыворотками больных кожной формой сибирской язвы и морских свинок, иммунизированных и выживших после заражения. Сыворотки к ним видоспецифичны, могут быть использованы для диагностики заболевания (обнаружение протективного антигена) и определения продукции белков в реакции иммуно-диффузии с растущими культурами (РИДРК).

К л ю ч е в ы е с л о в а: культуральные фильтраты; препаративный электрофорез; белки м.м. 94, 87, 90 кДа Bacillus anthracis; иммуноблоттинг; метод флуоресцирующих антител (МФА).

Для цитирования: БарковаИ.А., ЧерваковаМ.П., Барков А.М., Новоженина А.В., Викторов Д.В. Диагностическое значение некоторых иммунодоминантных белков изогенных вариантов Bacillus anthracis. Клиническая лабораторная диагностика. 2016; 61 (12): 833-837. DOI: http://dx.doi.org/10.18821/0869-2084-2016-61-12-833-837

Д л я к о р р е с п о н д е н ц и и: Баркова Ирина Анатольевна - канд. мед. наук, доц., зав. лаб. оперативной диагностики бактериальных и вирусных инфекций, e-mail: barina_10@mail.ru

иммунология

BarkovaI.A., ChervakovaM.P., BarkovA.M., NovojeninaA.V., ViktorovD.V.

THE DIAGNOSTIC SIGNIFICANCE OF PARTICULAR IMMUNE-DOMINATING PROTEINS OF ISOGENIC VARIANTS OF BACILLUS ANTHRACIS

The Volgogradskii anti-plague research institute of Rospotrebnadzor, 400131 Volgograd, Russia

The polyclonal mono-specific sera to proteins of toxin and antigens ofS-layer of Bacillus Anthracis .separated in preparative electrophoresis. While fluorescent antibody technique was applied, immunoglobulins ofsera to protein of S-layer of Bacillus Anthracis m.m. 94 kDa had specificity and specific activity in presented number of strains. In the soil samples spores in concentration of 1x104 KOE/ml were detected that permits to recommend the given immunoglobulins for indexation of Bacillus Anthracis. The proteins m.m. 90 kDa relevant to antigens of toxin of Bacillus Anthracis reacted in immuno-blotting with sera from patients with skin form of anthrax and guinea pigs immunized and survived after infection. Thew sera to them are species specified and can be applied for diagnostic of disease (detection ofprotective antigen) and detection ofproduction ofproteins in reaction of immunodiffusion with growing cultures.

Keywords: cultural filtrates; preparative electrophoresis; proteins m.m. 94, 87,90 kDa of Bacillus Anthracis; fluorescent antibody technique.

For citation: Barkova I.A., Chervakova M.P., Barkov A.M., Novojenina A. V, Viktorov D. V. The diagnostic significance ofparticular immune-dominating proteins of isogenic variants of Bacillus Anthracis. Klinicheskaya Laboratornaya Diagnostika (Russian Clinical Laboratory Diagnostics) 2016; 61 (12): 833-837. (in Russ.). DOI: http: dx.doi.org/10.18821/0869-2084-2016-61-12-833-837

For correspondence: Barkova I.A., candidate of medical sciences, associate professor, head of the laboratory of operative diagnostic of baxcterial and viral infections. e-mail: barina_10@mail.ru

Conflict of interests. The authors declare absence of conflict of interests.

Financing. The study had no sponsor support

Received 17.03.2016 Accepted 21.03.2016

Введение. Возбудитель сибирской язвы при культивировании в жидких питательных средах продуцирует большое количество белков, спектр которых зависит от особенностей штамма, питательной среды и условий культивирования. Унифицированная оценка высоко- и низкосекретируемых белков позволила идентифицировать группы белков, кодируемых генами, расположенными на хромосоме или плазмиде рХО1. Белки S-слоя, такие как Sap и ЕА1 молекулярной массой (м.м.) 86,7 кДа и 91,4 кДа соответственно, а также протектив-ный антиген (ПА) выявлялись наиболее часто, при культивировании в течение 16 ч их количество было максимальным по сравнению с другими внеклеточными белками [1-4]. Высокая иммуногенность и распространенность предполагают, что белки S-слоя, особенно ЕА1, могут служить в качестве подходящей мишени для тест-систем, предназначенных для обнаружения вегетативных клеток и спор Bacillus anthracis в пробах продуктов и клиническом материале [5-10].

Ранее нами была изучена видовая специфичность сывороток против белков м.м. 94 кДа культурального фильтрата (КФ) бесплазмидного штамма B. anthracis 81/1, полученных при гель-хроматографическом разделении на сефакриле S-300 SF. Однако препаративное накопление гель-хроматографией было трудоемким, а выделение электрофорезом невозможно, так как антиген не окрашивался Кумасси. Полученные нами изогенные варианты B. anthracis 575/122 характеризовались стабильной продукцией и окрашиванием белков м.м. 94, 87 и 90 кДа, которые соответствовали м.м. белков S-слоя и токсина [11, 12].

Цель работы - предварительная оценка диагностического значения белков S-слоя и сибиреязвенного токсина B. anthracis, выделенных препаративным электрофорезом.

Материал и методы. Штаммы. Изогенные варианты вирулентных штаммов B. anthracis 81/1, 575/122 (рХО1+, рХО2+): моноплазмидные токсинпродуцирующие (рХО1+, рХО2-) B. anthracis 81/1 R01, 575/122 R01 и бесплазмидные (рХО1-, рХО2-) B. anthracis 81/1 R00, 575/122R 00 [12].

При оценке тестов идентификации возбудителя сибирской язвы использованы десять вирулентных штаммов B. anthracis (81/1, 575/122, 614/1, 298/2, 591/2, 12/16, 619/42, 44/1СО, 248/22, 3-БК-2), вакцинные штаммы B. anthracis (СТИ, Sterne) и штаммы близкородственных ба-

цилл: B. cereus (UHA, 1, 8035, VRRL569, ATCC 6464), B. thuringiensis v. v. Pasteur, B. megaterium (5, 216, 1), B. subtilis (6051, 6633), B. stearotermophilus ВКМВ718, B. mycoides 2, B. mesentericus 6 (коллекция живых культур ФКУЗ «Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт» Роспотребнадзора).

Питательные среды. В качестве питательных сред использовали сердечно-мозговой агар и бульон («Difco», США), бесклеточные культуральные фильтраты получали с использованием R-среды рН 8,0-8,3, для реакции иммуно-диффузии с растущими культурами (РИДРК) использовали среду, описанную ранее [11, 13].

Электрофоретический анализ и препаративный электрофорез белков. Для электрофоретического анализа белки КФ, сконцентрированных в 180 раз на ультрафильтре с отсечением (cut-off) белков до 10 кДа, осаждали ацетоном [13]. Электрофорез в полиакриамидном геле с додецилсульфатом натрия (ПААГ с ДСН), окраску и иммуноблоттинг проводили по методике, изложенной в инструкции к «Ettan Dalt electrophoresis systems» (General Electric). Для препаративного выделения белков формировали блок 10% геля с площадью 1,5x140 мм без гребенки в концентрирующем геле, на который наносили 150-350 мкл препарата. Проводили электрофорез при 5 мА, 24 В. Электрофорез заканчивали при миграции свидетеля на 10 см. Локализацию белков определяли после окрашивания Кумасси R-250 и обесцвечивания в течение 15-20 мин, или блок геля помещали в охлажденный раствор 0,1 М KCl при температуре 0-1oC на 1 ч. Полосы вырезали, гомогенизировали, помещали в пробирку с сетчатым мешком, содержащую 0,5 мл 0,05М (NH4)2HCO3 (углекислый аммоний) [14]. Экстракцию проводили при 37oC и при комнатной температуре в течение 18 ч, затем гель переносили в пробирку с сетчатой перегородкой, центрифугировали при 2000 об/мин 5 мин. Жидкость отсасывали, гель экстрагировали повторно. Эффективность элюирования контролировали в реакции иммунодиффузии (РИД).

Для определения молекулярной массы белков применяли маркеры фирмы «Amresco» (фосфорилаза - 97,4 кДа; бычий сывороточный альбумин - 66,2 кДа; альдолаза - 39,2 кДа; триоз-фосфат изомераза - 26,6 кДа; ингибитор трипсина -21,5 кДа; лизоцим - 14,4 кДа) и программу «LabImage».

immunology

Получение моноспецифических поликло-нальных сывороток. Для получения кроличьих сывороток к белкам м.м. 94, 90 и 87 кДа, выделенных препаративным электрофорезом, внутрикожно паравертебрально и в оба паха вводили возрастающие объемы белков, активных в РИД. Первое введение включало 0,25 мл препарата, последующие - на 0,25 мл больше, которые доводили до 1 мл раствором 0,9% NaCl и смешивали с 1 мл неполного адъюванта Фрейнда (НАФ). При титре антител 1:8-1:16 у животных брали кровь из вены уха в объеме 30 мл, что позволяло получить 15-20 мл сыворотки. Сыворотки консервировали мер-тиолятом 1:10 000 и хранили при температуре +4oC.

При более низких титрах антител после месячного перерыва проводили второй цикл иммунизации, который заключался в двукратном введении антигенов с НАФ по описанной методике.

Специфическую активность и специфичность сывороток оценивали в РИД, РИДРК, МФА. Иммуноглобулины сывороток выделяли полиэтиленгликолем, метили флуоресцеинизотиоцианатом (ФИТЦ), использовали в методе флуоресцирующих антител (МФА), иммуноблоттинге [11-13].

МФА проводили с вегетативными клетками и спорами B. anthracis и близкородственных бацилл [11]. Пробы почвы готовили в соответствии с МУ 4.2.1103-02 «Приготовление проб с имитаторами патологических биологических агентов».

Результаты и обсуждение. С целью выделения белков S-слоя были изучены КФ изогенных авирулентных токсин-продуцирующих и бесплазмидных вариантов B. anthracis 81/1 и 575/122, с концентрацией белка 3,07-3,68 мг/мл и 4,54-5,62 мг/мл соответственно. Более высокое содержание белка в КФ бесплазмидных вариантов, возможно, связано с экспрессией белков, вовлеченных в процесс споруляции, так как существуют различия в споруляции плазмидсодержащих и бесплазмидных штаммов [1].

В результате электрофоретического разделения белков КФ в ПААГ с ДСН установлено, что КФ токсинпродуцирую-щих штаммов содержали белок м.м. 90 кДа, что соответствует м.м. компонентов сибиреязвенного токсина (протективный антиген (ПА) 83 кДа, отечный фактор (ОФ) 88,8 кДа, летальный фактор (ЛФ) 90,33 кДа) [15]. Культуральные фильтраты бесплазмидных штаммов были представлены белками м.м. 94 и 87 кДа, которые соответствуют м.м. белков S-слоя, ЕА1 и Sap [1, 4, 5]. Для визуализации белков м.м. 94 и 87 кДа было использовано окрашивание Кумасси, а для белков м.м. 90 кДа был определен метод инкубации блока геля в растворе 0,1М КС1 при 1-2oC в течение 1 ч [20]. При этом белки м.м. 87 кДа бесплазмидного варианта B. anthracis 81/1 R00, содержащего ген sap, не выявлялись Кумасси, однако определялись в им-муноблоттинге. При электрофоретическом разделении белки м.м. 94 и 87 кДа, штамма B. anthracis 575/122 R00, окрашенные Кумасси, определялись в виде двух полос шириной до 1 мм с расстоянием между ними до 5 мм [12]. В связи с этим КФ штамма B. anthracis 575/122 R00 был использован для препаративного выделения белков S-слоя, а для выделения белков м.м. 90 кДа - штамм B. anthracis 575/122 R01.

Препаративный электрофорез по сравнению с гель-хроматографией оказался более рациональным, так как позволял выделять белки м.м. 94, 87 и 90 кДа в концентрациях, активных в РИД, что позволяло контролировать наличие белков, экстрагируемых из геля. Исключались дополнительные поте-

Рис. 1. Электрофорез и иммуноблоттинг белков, выделенных электрофорезом. а - электрофорез; б, в - иммуноблоттинг с поликлональной кроличьей сывороткой к КФ B. anthracis СТИ. 1 - маркеры м.м.; 2 - КФ B. anthracis 575/122 R01 (pX01+, pX02-); 3 - КФ B. anthracis 575/122 R00 (pX01-, pX02-); 4 - белок м.м. 94 кДа; 5 - белок м.м. 87 кДа; 6 -КФ B. anthracis 55 (pX01+, pX02-); 7 - белок м.м. 90 кДа.

ри, связанные с концентрированием фракции на ультрафильтрах. В иммуноблоттинге с поликлональной сибиреязвенной сывороткой белки электрофоретических фракций бесплазмидного варианта штамма В. апАга^ 575/122 идентифицированы как белки м.м. 94 и 87 кДа, а токсинпродуцирующего - как м.м. 90 кДа, что подтверждает высокую степень гомогенности и чистоту выделенных антигенов (рис. 1). К электрофорети-ческим фракциям были получены моноспецифические сыворотки. Сыворотки к белкам, элюировавшимся в свободном объеме при гельхроматографии [11], и сыворотки к белкам м.м. 94, 87 кДа бесплазмидного варианта В. апАга^ 575/122, выделенным электрофорезом, в РИД содержали антитела к идентичным антигенам, что подтверждало принадлежность белков к антигенам S-слоя. Изучение в РИДРК сывороток к белкам м.м. 94, 87 кДа показало, что они реагируют с антиге-

Рис. 2. Идентификация и дифференциация штаммов B. anthracis в РИДРК.

а - слева B. anthracis 55; справа - B. cereus VRRL569; б - слева B. anthracis 575/122 R01; справа - B. anthracis 575/122 R00. Сыворотки к антигенам B. anthracis: 1 - м.м. 94 кДа; 2 - м.м. 90 кДа; 3 - м.м. 87 кДа.

иммунология

Рис. 3. Антигены B. anthracis, выявляемые в иммуноблоттин-ге с сыворотками больных людей и зараженных животных. а - с сывороткой больного кожной формой сибирской язвы на 5-й день заболевания; б - на 21-й день заболевания; в - с сывороткой иммунизированной морской свинки, выжившей после заражения. 1 - КФ B. anthracis 575/122 R00 (pX01-, рХО2-); 2 - КФ B. anthracis 575/122 R01 (pX01+, pX02-).

нами, продукция которых не зависит от плазмид вирулентности, а сыворотки к белкам м.м. 90 кДа реагируют с антигенами токсинпродуцирующих штаммов B. anthracis [12]. Сыворотки к белкам S-слоя и токсина не образовывали иммунопреципи-татов с антигенами близкородственных бацилл, что свидетельствовало об их видоспецифичности (рис. 2).

Специфическая активность и специфичность иммуноглобулинов к белкам м.м. 94 и 87 кДа B. anthracis 575/122 R00 изучены в МФА с вегетативными клетками и спорами 10 штаммов B. anthracis. Наиболее активными оказались иммуноглобулины сыворотки к белкам м.м. 94 кДа B. anthracis 575/122 R00, которые в рабочих разведениях дифференцировали штаммы B. anthracis от близкородственных споро-образующих бацилл, в пробах почвы обнаруживали споры в концентрации 1*104 КОЕ/мл, что позволяет рекомендовать данные иммуноглобулины для индикации B. anthracis.

Белки КФ бесплазмидного и токсинпродуцирующего штаммов изучены в иммуноблоттинге для определения их диагностического значения. С этой целью использованы сыворотка больной Л. с диагнозом «сибирская язва, кожная форма», контакт с источником - 08.09.2008 г., дата заболевания - 16.09.2008 г, сыворотка получена 02.10.2008 г., титр антител в реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) 1:2560; парные сыворотки больного К. с диагнозом «сибирская язва, кожная форма», контакт с источником - 01.09.2011 г., дата заболевания - 05.09.2011 г, сыворотки получены 09.09.2011 г. и 26.09.2011 г., титр антител в РНГА 1:40 и 1:640 соответственно, а также сыворотки двух морских свинок, иммунизированных ПА и выживших после подкожного заражения 2*104 спор B. anthracis которые получены на 21-е и 35-е сутки после заражения, титр антител в РНГА 1:20 480 и 1:81 920.

В иммуноблоттинге сыворотки больных преимущественно выявляли белки м.м. 90 кДа КФ токсинпродуцирующего варианта B. anthracis 575/122R01, сыворотки животных реагировали с антигенами м.м. 90, 65, 39,2 кДа, что соответствовало м.м. компонентов протективного антигена. Определить

антитела к белкам S-слоя м.м. 94 и 87 кДа бесплазмидного штамма B. anthracis 575/122R00 в сыворотках больных людей не удалось; в сыворотках морских свинок антитела определялись в следовых количествах (рис. 3). Постановка точного диагноза сибирской язвы осложняется редкостью заболевания и неспецифичностью симптомов, быстрой элиминацией B. anthracis при ранней антибиотикотерапии. Лабораторная диагностика основывается на обнаружении в клинических образцах возбудителя, детекции генов плазмид вирулентности, антител в сыворотках больных и реконвалес-центов; рутинные методы иммунофлуоресценции и иммуно-гистохимии недостаточно разработаны. Использование ПА в качестве биомаркера сибиреязвенной инфекции связано с его наличием в значительном количестве в крови инфицированных животных. ОФ и ЛФ могут быть обнаружены только на более поздних стадиях инфекции. В связи с этим серокон-версия в ответ на различные компоненты токсина может служить только ретроспективным подтверждением заболевания. Кроме ПА, ОФ и ЛФ, в крови инфицированных животных были обнаружены уникальные высокоспецифичные белки: протеаза HtrA (ВА3660), эндопептидаза NlpC/P60 (ВА1952) и белок с неизвестной функцией (ВА0796) [16, 17]. Доказано присутствие антигенов S-слоя в вегетативных клетках и спорах B. anthracis, а антител к ним - в сыворотках иммунизированных и зараженных животных, вакцинированных и больных людей [3, 4, 6-10].

В предыдущих работах белки ПА, выделенные гель-хроматографией, были успешно использованы нами в РНГА и твердофазном иммуноферментном анализе (ТИФМ) [18]. В данной работе белки м.м. 90 кДа, выделенные препаративным электрофорезом, выявлялись в иммуноблоттинге сыворотками зараженных животных и больных людей, что подтверждает первостепенное значение ПА для диагностики сибирской язвы [19, 20].

Заключение. Таким образом, в препаративном электрофорезе накоплены белки токсина и S-слоя B. anthracis. Иммуноглобулины моноспецифических сывороток к белкам S-слоя м.м. 94 кДа бесплазмидного варианта B. anthracis 575/122R00, меченные ФИТЦ, пригодны для идентификации и индикации вегетативных клеток и спор B. anthracis. Белки м.м. 90 кДа токсинпродуцирующего штамма B. anthracis 575/122R01, выделенные электрофорезом, являются антигенами с первостепенным значением для диагностики заболевания, а сыворотки к ним видоспецифичны и могут быть использованы для определения продукции белков токсина в РИДРК.

Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки.

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

ЛИТЕРАТУРА

5. Гончарова А.Ю., Микшис Н.И., Кудрявцева О.М., Болотникова М.Ф., Новикова Л.В., Красичков Г.Г. и др. Получение поликло-нальных антител к белкам S-слоя Bacillus anthracis и изучение их специфичности в иммуноферментном анализе. Проблемы особо опасных инфекций. 2010; (3): 46-9.

6. Свешников П.Г., Киселев В.И., Северин Е.С., Пальцев М.А. Биобезопасность: применение моноклональных антител для индикации опасных патогенов и диагностики инфекционных болезней. Молекулярная медицина. 2004; (4): 67-72.

11. Барков А.М., Баркова И.А., Алексеев В.В., Липницкий А.В. Ви-доспецифические сыворотки против антигенов поверхностных структур штаммов Bacillus anthracis. Клиническая лабораторная диагностика. 2010; (11): 51-3.

12. Барков А.М., Новоженина А.В., Порохня С.В., Ткаченко Г.А., Лип-

ницкий А.В. Характеристика изогенных вариантов Bacillus anthracis с различным содержанием плазмид вирулентности. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2015; (1): 17-22.

13. Баркова И.А., Барков А.М., Алексеев В.В., Липницкий А.В., Буханцова Л.В. Продукция белков S - слоя разными штаммами Bacillus anthracis. Проблемы особо опасных инфекций. 2008; 98 (4): 29-32.

14. Остерман Л.А. Методы исследования белков и нуклеиновых кислот: электрофорез и ультрацентрифугирование (практическое пособие). М.: Наука; 1981.

17. Онищенко Г.Г., Кожухов В.В., Васильев Н.Т., Бондарев В.П., Борисевич И.В., Дармов И.В. и др. Сибирская язва: актуальные проблемы разработки и внедрения медицинских средств защиты:руководство для врачей. М.: Медицина; 2010.

18. Барков А.М., Баркова И.А., Алексеев В.В., Липницкий А.В., Кулаков М.Я. Обнаружение антител к протективному антигену Bacillus anthracis с использованием реакции непрямой гемагглю-тинации и твердофазного иммуноферментного метода. Проблемы особо опасных инфекций. 2010; (3): 42 - 5.

REFERENCES

1. Lamonica J.M., Wagner М.А., Echenbrenner M., Williams L.E., Miller T.L., Patra G. et al. Comparative secretome analyses of the Bacillus anthracis strains with variant plasmid contents. Infect. Jm-mun. 2005; 73 (6): 3646-58.

2. Chitlaru Т., Gat O., Gozlan Y., Ariel N., Shafferman А. Differential proteomic analysis of the Bacillus anthracis secretome: distinct and chromosome CO2 _ dependent cross talk mechanisms modulate extracellular proteolytic; activites. J. Bacteriol. 2006; 188 (10): 3551-71.

3. Chitlaru T., Gat O., Grosfeld H., Inbar I., Gozlan Y., Shafferman A. Identification of In Vivo-Expressed Immunogenic Proteins by Serological Proteome Analysis of the Bacillus anthracis Secretome. Infect. Immun. 2007; 75: 2841-52.

4. Walz A., Mujer C., Connolly J., Alefantis T., Khan A.S., DelVec-chio V.G. et al. Bacillus anthracis secretome time course under host-simulated conditions and identification of immunogenic proteins. Proteome Sci. 2007; 5: 11.

5. Goncharova A.Yu., Mikshis N.I., Kudryavtseva O.M., Bolotnikova M.F., Novikova L.V., Krasichkov G.G. et al. Preparation of polyclonal antibodies to S - layer Bacillus anthracis and the study of their specificity in ELISA. Problemy osobo opasnykh infektsiy. 2010;

6. Sveshnikov P.G., Kiselev V.I., Severin E.S., Pal'tsev M.A. Biosecu-rity: the use of monoclonal antibodies to indicate dangerous pathogens and diagnosis of infectious diseases. Molekulyarnaya medit-sina. 2004;

7. Love T.E., Redmond C., Mayers C.N. Real time detection of anthrax spores using highly specific anti-EA1 recombinant antibodies produced by competitive panning. J. Immunol. Methods. 2008; 334 (1-2): 1-10.

8. Wang D., Yang R., Zhang Z.P., Bi L.J., You X.Y., Wei H.P. et al. Detection of B. anthracis spores and vegetative cells with the same monoclonal antibodies. PLoS One. 2009; 4 (11): e7810.

immunology

9. Makam S., Kingston J., Ramakrishna U., Radhika M., Tuteja U., Murali R. et al. Аpplication of extractable antigen 1 (ЕА1) for specific detection of Bacillus anthracis cells. IJPRBS. 2013; 4 (2): 274-83.

10. Walper S.A., Anderson G.P., Brozozog P.A., Glaven R.H., Liu J.L., Bernstein R.D. et al. Rugged single domain antibody detection elements for Bacillus anthracis spores and vegetative cells. PLoS One. 2012; 7 (3): e32 801.

11. Barkov A.M., Barkova I.A., Alekseev V.V., Lipnitskiy A.V. Species-specific serum against antigens of surface structures strains of Bacillus anthracis. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 2010;

12. Barkov A.M., Novozhenina A.V., Porokhnya S.V., Tkachenko G.A., Lipnitskiy A.V. Characteristics of isogenic variants Bacillus anthracis with different content of virulence plasmids. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii. 2015;

13. Barkova I.A., Barkov A.M., Alekseev V.V., Lipnitskiy A.V., Bukhantsova L.V. Production of protein of S - layer different strains of Bacillus anthracis. Problemy osobo opasnykh infektsiy. 2008; 98

14. Osterman L.A. Methods of Studying Proteins and Nucleic Acids: Electrophoresis and Ultracentrifugation

15. Boyer A.E., Gallegos-Candela M., Lins R.C., Kuklenyik Z., Woolfitt A., Moura H. et al. Quantitative mass spectrometry for bacterial protein toxins - a sensitive, specific, high-throughput tool for detection and diagnosis. Molecules. 2011; 16 (3): 2391-413.

16. Sela-Abranovich S., Chitlaru T., Gat O., Grosfeld H., Cohen О., Shafferman А. Novel and Unique Diagnostic Biomarkers for Bacillus anthracis Infection. Appl. Environ. Microbiol. 2009; 75 (19): 6157-67.

17. Onishchenko G.G., Kozhukhov V.V., Vasil'ev N.T., Bondarev V.P., Borisevich I.V., Darmov I.V. et al. Anthrax: Actual Problems of Development and Implementation of Health Protection: A Guide for Physicians [Sibirskayayazva: aktual'nyeproblemy razrabotki i vne-dreniya meditsinskikh sredstv zashchity: rukovodstvo dlya vrachey]. Moscow: Meditsina; 2010.

18. Barkov A.M., Barkova I.A., Alekseev V.V., Lipnitskiy A.V., Kula-kov M.Ya. Detection of antibodies to protective antigen Bacillus an-thracis using indirect hemagglutination reaction and enzyme linked immunoassay assay. Problemy osobo opasnykh infektsiy. 2010;

19. Kobiler D., Weiss S., Levy H., Fisher M., Michaly A., Pass A. et al. Protective antigen as a correlative marker for anthrax in animal models. Infect. Immun. 2006; 74: 5871-6.

20. Rossi C.A., Urich M., Noris S., Reed D.S., Pitt I.M., Leffel E.K. Identification of a surrogate marker for infection in the African green monkey model of inhalation anthrax. Infect. Immune. 2008; 76: 5790-801.

Поступила 17.03.16 Принята к печати 21.03.16