СОВРЕМЕННАЯ СПЕЦИФИКА ДИАГНОСТИКИ И ТЕРАПИИ ГЕМОТРОПНОГО МИКОПЛАЗМОЗА КОШЕК

2. Aleksandrovich Yu.S., Aleksandrovich I.V., Psh-enisnov K.V. Screening methods for assessing nutritional risk in hospitalized children. Bulletin of Intensive Therapy. 2015; 3: 25-30.

3. Ushakova T.M., Derezina T.N. Correlative Relationships of Malnutrition and Redox Homeostasis Disorders in Allergic Enteropathy in Dogs with Severe Gastrointestinal Syndrome. International Veterinary Bulletin. 2022; 2: 148-155.

4. Ushakova T.M., Derezina T.N. Correlation of malnutrition and hepatoprival syndrome in allergic enteropathy in dogs. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2020; 83(3): 236-240.

5. Laboratory profile of malnutrition in hospitalized dogs [Perfil laboratorial da desnutrifao em caes hospitalizados] / A.K. Fabretti, R.C. Siqueira, H.F. Amaral et al. Journal Semina: Ciencias Agrarias. 2021; 42: 3273-3288.

6. Volkov A.A. Morphological criteria, clinical diagnostic tactics of examination and treatment of dogs with esophageal and gastroduodenal pathology: Dis. ... Dr. Vet. Sci. Saratov, 2009. 392 p.

7. Simpson J., Wilse R. Diseases of the digestive system of dogs and cats. M.: Akvarium beech, 2003. 496 p.

8. Sparks E., Clementine J.-F. Gastroenterology of dogs and cats. Clinical Nutrition Guide. M.: Eksmo, 2014. 200 p.

9. Fabretti, A.K. Laboratory profile of malnutrition in hospitalized dogs [Perfil laboratorial da desnutrifäo-emcäeshospitalizados] / A.K. Fabretti, R.C. Siqueira, H.F. Amaral et al. Journal Semina: Ciencias Agrarias. 2021; 42: 3273-3288.

10. Kathrani, A. Association of chronic enteropathy activity index, blood urea concentration, and risk of death in dogs with protein-losing enteropathy / A. Kathrani, F. Sánchez-Vizcaíno, E.J. Hall. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2019; 33: 536-543.

11. De Lucia, M. Pathogenesis and clinical signs of adverse food reactions in dogs [Patogenesi aspetti clinici delle reazioni avverse al cibo nel cane]. Veterinaria. 2017; 31: 135-142.

12. Trust Your Gut: The Association of Gut Microbiota and Liver Disease / Ridda Manzoor, Weshah Ahmed, Nari-man Afify et al. Microorganisms. 2022; 10(5): 1045

Татьяна Михайловна Ушакова, кандидат ветеринарных наук, доцент, tanja_0802@mail.ru

Tatiana M. Ushakova, Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor, tanja_0802@mail.ru

Статья поступила в редакцию 26.01.2023; одобрена после рецензирования 14.02.2023; принята к публикации 05.03.2023.

The article was submitted 26.01.2023; approved after reviewing 14.02.2023; accepted for publication 05.03.2023. -♦-

Научная статья УДК 619:616.993.192

doi: 10.37670/2073-0853-2023-100-2-223-227

Современная специфика диагностики и терапии гемотропного микоплазмоза кошек

Галина Николаевна Бобкова1, Василий Павлович Иванюк2,

Ева Николаевна Романова1

1 Брянский государственный аграрный университет, Кокино, Брянская область, Россия

2 Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии -МВА имени К.И. Скрябина, Москва, Россия

Аннотация. Представлены эпизоотологические данные и подробное описание клинических случаев гемотропного микоплазмоза у кошек. У животных с острым течением заболевания при обследовании установлено снижение температуры тела, анемичность видимых слизистых оболочек, обезвоживание, болезненность брюшной стенки при пальпации. При общеклиническом анализе крови выявлены выраженная тромбоцитопения, повышение общего билирубина, ГГТ, снижение уровня холестерина. Креатинин, мочевина, общий белок, альбумин, глобулин, глюкоза, АЛТ, АСТ, ЩФ находились в пределах референсных значений. Терапия животного включала в себя инфузии современных кристаллоидов в объёме, соответствующем уровню дегидратации; метамизол натрия, 20 мг/кг/сутки при гипертермии; преднизолон, 2 мг/кг/ сутки, 7 дней; доксициклин, 10 мг/кг/сутки - 21 - 28 дней. Эффективность предложенной схемы терапии проявилась на 9-й день, на 21-й день лечения отмечалось полное восстановление аппетита у животного, отсутствие жалоб, набор веса, повышение активности.

Ключевые слова: гемобартонеллёз, гемотропный микоплазмоз, кошка, диагностика, лечение, эпизоотология, кровь.

Для цитирования: Бобкова Г.Н., Иванюк В.П., Романова Е.Н. Современная специфика диагностики и терапии гемотропного микоплазмоза кошек // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2023. № 2 (100). С. 223 - 227. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2023-100-2-223-227.

Original article

Modern specificity of diagnostics and therapy of hemotropic mycoplasmosis in cats

Galina N. Bobkova1, Vasily P. Ivanyuk2, Eva N. Romanova1

1 Bryansk State Agrarian University, Kokino, Bryansk region, Russia

2 Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology - MVA by K.I. Skryabin, Moscow, Russia

Abstract. Epizootological data and a detailed description of clinical cases of hemotropic mycoplasmosis in cats are presented. In animals with an acute course of the disease, the examination revealed a decrease in body temperature, anemia of visible mucous membranes, dehydration, pain in the abdominal wall during palpation. A general clinical blood test revealed severe thrombocytopenia, an increase in total bilirubin, GGT, and a decrease in cholesterol levels. Creatinine, urea, total protein, albumin, globulin, glucose, ALT, AST, alkaline phosphatase were within the reference values. The therapy of the animal included infusions of modern crystalloids in a volume corresponding to the level of dehydration; metamizole sodium, 20 mg/kg/day for hyperthermia; prednisolone, 2 mg/kg/day, 7 days; doxycycline, 10 mg/kg/day - 21- 28 days. The effectiveness of the proposed therapy regimen was manifested on the 9th day, on the 21st day of treatment there was a complete restoration of the animal's appetite, no complaints, weight gain, increased activity.

Keywords: hemobartonellosis, hemotropic mycoplasmosis, cat, diagnosis, treatment, epizootology, blood.

For citation: Bobkova G.N., Ivanyuk V.P., Romanova E.N. Modern specificity of diagnostics and therapy of hemotropic mycoplasmosis in cats. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2023; 100(2): 223-227. (In Russ.). https://doi.org/10.37670/2073-0853-2023-100-2-223-227.

Частыми пациентами ветеринарных клиник становятся кошки с такими непатогномоничными симптомами, как апатия, анорексия, лихорадка и гипертермия, бледность или иктеричность слизистых. Одним из предполагаемых диагнозов в данном случае может выступать гемотропный микоплазмоз (гемоплазмоз), что обусловливает актуальность темы работы.

Гемобартонеллёз (гемоплазмоз) - распространённое среди кошек заболевание, характеризующееся анемией, кахексией, септицемией и серьёзной интоксикацией, приводящей к нарушению функций жизненно важных органов [1 - 3]. По данным С.А. Боляхиной [4], гемобартонеллёз встречается более чем у 18 % кошек, инцидентность и заболеваемость увеличивается с возрастом животных. В 75 % случаев заболевание протекает субклинически, клиническая форма чаще встречается у котов (68 %) [4]. Бесконтрольное перемещение, частые контакты между особями способствуют обмену гемоплазмами и распространению инфекции. У бродячих кошек заражённость выше, чем у кошек домашнего содержания [5, 6].

Для ветеринарии мелких домашних животных наиболее актуальна проблема диагностики и лечения гемоплазмозов кошек, также рассматриваемых как кошачья инфекционная анемия (feline infectious anaemia (FIA) [7 - 12].

Цель работы - обосновать некоторые аспекты диагностики и лечения гемотропного микоплаз-моза кошек.

Материал и методы. Работа выполнена на кафедре эпизоотологии, микробиологии, паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы Брянского ГАУ. Изучение эпизоотологических и клинических особенностей гемобартенеллёза кошек проводили на базе ветеринарной клиники доктора Т.Ю. Васильевой и Брянской ветеринар-

ной клиники ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных». Изучение эффективности схем лечения проводили на кошках, владельцы которых впервые обратились за ветеринарной помощью в связи с ухудшением общего состояния животных.

Диагноз гемобартонеллёз ставили на основании клинических данных, результатов ПЦР-диагностики в ветеринарных лабораториях «ВетЮнион» и «Нуклеом». В случае отказа клиента от использования ПЦР-диагностики применялась эмпирическая терапия с оценкой ответа организма и дальнейшим подтверждением или опровержением диагноза. Также учитывали гематологические и биохимические показатели крови. Гематологическое и биохимическое исследование крови проводили на анализаторах Micro CC- 20Plus и Rayto 1904С соответственно. Данные исследования позволяли не только подтвердить диагноз, но и оценить степень тяжести заболевания.

Результаты и обсуждение. Гемоплазмозы кошек не являются распространённой проблемой обращения клиентов в клинику (табл. 1).

1. Распространённость гемоплазмоза кошачьих среди пациентов клиники Т.Ю. Васильевой

Год Число клинических случаев Подтверждено ПЦР (ВетЮнион и Нуклеом) Подтверждено ответом на эмпирическое лечение

2020 17 2 16

2021 14 2 12

2022 8 0 8

Из приведённого в таблице цифрового материала видно, что наиболее значительное количество пациентов, страдающих гемотропным микоплазмозом кошек, приходилось на 2020 г. Нозопрофиль за 2022 г. был минимальным.

Рассмотрим специфику терапии на примере клинического случая. В ветеринарную клинику обратился владелец пятилетней кошки с жалобой на иктеричность слизистых и кожи, снижение активности и аппетита у животного. Вакцинация проводилась по графику. Кошка находилась на самовыгуле. Обработка от паразитов была проведена более месяца назад. Ранее отмечались у кошки эпизоды снятия клеща и получения кусаной раны.

На приёме у животного были выявлены следующие признаки заболевания: гипертермия, дегидратация 7 %, видимые слизистые оболочки (далее по тексту ВСО) выраженно иктеричные, брюшная стенка при пальпации безболезненная, положение тела естественное, сознание ясное. Общеклинический анализ крови позволил выявить выраженную тромбоцитопе-нию - 51 тыс/мкл (норма 100 - 514 тыс/мкл), общий билирубин - 174,1 мкмоль/л (норма до 10 мкмоль/л), ГГТ - 12,1 МЕ/л (норма до 6 МЕ/л), холестерин - 1,06 ммоль/л (норма от 2,3 до 5,9 ммоль/л). Креатинин, мочевина, общий белок, альбумин, глобулин, глюкоза, АЛТ, АСТ, ЩФ не выходили за пределы референсных значений.

На основании клинической картины и интерпретации анализов был выдвинут предварительный диагноз - иммуноопосредованная гемолитическая анемия неуточнённой этиологии, предположительно - гемотропный микоплазмоз. Вместе с тем снижение уровня тромбоцитов не могло однозначно трактоваться в контексте возможности агрегации тромбоцитов in vitro. Предложение использовать ПЦР для верификации диагноза было отвергнуто владельцем. Для дифференциации предпечёночной желтухи, индуцированной гемолизом от непосредственно печёночной иктеричности при заболевании гепатобилиарной системы, было выполнено ультразвуковое исследование, в рамках которого не выявили наличия структурных изменений в печени, признаков сладжа в желчном пузыре или обструкции желчных протоков.

Первичные назначения (эмпирическое лечение) включали в себя инфузии современных кристаллоидов в объёме, соответствующем уровню дегидратации; метамизол натрия, 20 мг/кг/ сутки; преднизолон, 2 мг/кг/сутки, 7 дн., далее по состоянию с плавным снижением дозы и кратности введения; доксициклин, 10 мг/кг/сутки, 21 - 28 дн.; миртазапин, 3,75 мг, 1 раз в 3 дня, в зависимости от состояния. Также был назначен приём омепра-зола, 1,3 мг/кг/сутки, однако оправданность такого назначения является дискуссионной, поскольку применение гастропротекторов на курсе ГКК и антибиотиков может не столько минимизировать риск развития гастропатии, как лишь скрыть патологический процесс, приведя к его усугублению ввиду несвоевременного обнаружения.

На 5-е сут. был выполнен повторный общеклинический анализ крови. Общее число лейкоцитов составляло 15 тыс/мкл (норма 5,5 - 19,5), выявлены признаки анемии, пониженный уровень эритроцитов - 4,45 млн/мкл (норма 4,6 - 10,0), гематокрит 23,6 % при норме 28 - 49 % (разница измерений в стеклянном капилляре и на кондуктометрическом гематологическом анализаторе составляла 1,5 %, т.е. 22,1 - 23,6 %). Предварительно (в отсутствие возможности провести исследование на ретикуло-циты) была диагностирована регенераторная анемия, на что указывал средний объём эритроцита (MCV), который имел тенденцию к увеличению до 55,1 фл (нормы лаборатории 39,0 - 52,0 фл). Общеклинический анализ крови, выполненный на 15-е сут. лечения, продемонстрировал все показатели в пределах референсов, а общее состояние - без отклонений. Курс лечения доксициклином был продолжен до 21 дня суммарно.

Представим другой клинический случай. В ветеринарную клинику обратился владелец шестилетней кошки с жалобой на кахексию и снижение аппетита. Животное находилось на самовыгуле и отсутствовало дома в течение 2 мес. Кошка не была вакцинирована, не обработана от эктопаразитов. Масса тела составляла 1 кг.

На приёме выявили гипертермию, дегидратацию 8 - 9 %; ВСО выраженно анемичные, СНК не определялось; брюшная стенка при пальпации безболезненная; положение тела естественное; сознание ясное. Общеклинический анализ крови позволил установить выраженную тромбоцито-пению 138 тыс/мкл и анемию - общее число эритроцитов 2,88 млн/мкл, гемоглобин 46 г/л, гематокрит 11,9 %. Средний объем эритроцитов находился в пределах референса - 41,3 фл.

В качестве предварительного диагноза рассматривалась иммуноопосредованная гемолитическая анемия неуточнённой этиологии, предположительно - гемотропный микоплазмоз. Отказ со стороны владельца от проведения ПЦР, а также от биохимического анализа крови и УЗИ с целью подтверждения диагноза и исключения сочетан-ных патологий вынудил начать эмпирическую терапию. Первичные назначения включали в себя инфузии современных кристаллоидов в объёме, соответствующем уровню дегидратации; мета-мизол натрия, 20 мг/кг/сутки при гипертермии; преднизолон, 2 мг/кг/сутки, 7 дн.; доксициклин, 10 мг/кг/сутки, 21 - 28 дн.

Была рекомендована гемотрансфузия, но владелец отказался. На 4-е сут. терапии владелец отмечал снижение аппетита (до этого аппетит нормализовался) у кошки, полную апатичность. Был выполнен повторный общеклинический анализ крови, который позволил выявить критично низкий уровень гематокрита (табл. 2). Владельца уведомили о прогнозе от осторожного до неблагоприятного.

2. Динамика показателей общего анализа крови кошки

Показатель Первичный приём Продолжительность терапии, сут.

4-е 5-е (после гематранс-фузии) 9-е

WBC, тыс/мкл 18,5 7,2 24,2 21

RBC, млн/мкл 2,88 1,74 3,58 4,7

HGB, г/л 46 32 58 77

HCT, % 11,9 8,8 17,1 23,2

PLT, тыс/мкл 138 42 191 374

Донор крови был найден (гематокрит донора 44 %), проведена гемотрансфузия. Гемотрансфу-зия позволила стабилизировать показатели красной крови: рост гематокрита за 12 час. составил 8,3 %, животное было выписано на домашнее лечение с продолжением антибиотикотерапии до 21 - 28 дн. суммарно и заменой преднизолона на дексаметазон в иммуносупрессивной дозировке курсом длительностью 8 дн. На 9-е сут. терапии владельцы отмечали стабильный нормализовавшийся аппетит, набор веса (привес 500 г). На приёме животное было активно, ВСО бледно-розовые, СНК 1,5 сек., нормотермия. Кроме того, была проведена обработка селамектином и рекомендовано продолжить лечение по выданным ранее назначениям. На 21-е сут. лечения владелец уведомил о хорошем состоянии кошки, отсутствии жалоб и дальнейшем наборе веса.

Выводы. Острая фаза гемотропного мико-плазмоза у кошек выражается апатией, анорек-сией, лихорадкой, иктеричностью слизистых и кожных покровов. В рамках первичной диагностики по результатам общеклинического анализа крови выявляется анемия, выраженная тромбо-цитопения. Оптимальным методом верификации диагноза выступает ПЦР, при отказе клиента от ПЦР-диагностики может быть применена эмпирическая терапия. Этиотропная терапия заболевания базируется на использовании доксициклина в дозировке 10 мг/кг/сутки на протяжении 21 - 28 дн. Глюкокортикоиды, поддерживающий уход, регидратация, стимуляция аппетита также важны при лечении инфекционной кошачьей анемии. При тяжёлом течении может потребоваться гемотрансфузия. Поскольку в настоящее время процесс переноса гемоплазм между кошками изучен не до конца, надёжная профилактика инфекции затруднена. Учитывая известные факторы риска, ветеринарными специалистами могут быть рекомендованы регулярные обработки от эктопаразитов, запрет самовыгула и кастрация как коррекция внутривидовой агрессии.

Список источников

1. Анников В.В., Щербаков Ю.В. Инфекционные болезни собак и кошек. Саратов: Экспресс тиражирование, 2015. 110 с.

2. Ашаткин А.Ф., Васильев А.В., Санин А.В. Гемо-бартонеллёз // Справочник. М., 1998. 255 с.

3. Гаскелл Р.Н., Беннет М. Инфекционная анемия кошек (гемобартонеллёз) // Справочник по инфекционным болезням собак и кошек. М., 1999. 224 с.

4. Боляхина С.А. Гемобартонеллёз кошек в условиях крупного промышленного города: распространение, клиническое проявление, этиотропное лечение: автореф. дис. ... канд. ветеринар. наук. Новосибирск, 2001. 128 с.

5. Демкин В.В. Гемотропные микоплазмозы (гемо-плазмы, гемобартонеллы) кошек и собак // Российский ветеринарный журнал. 2014. № 4. C. 23 - 28.

6. Tasker S., Lappin M.R. Haemobartonella felis: recent developments in diagnosis and treatment. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2002; 4: 3-11.

7. Дубровина Е. Любителям кошек о здоровье и болезнях. М., 2000. 288 с.

8. Дюбо Ф. Два случая гемобартонеллёза кошек // Ветеринар. 1999. № 5/6. С. 33 - 36.

9. Иванова Н.А. Гематологические исследования в ветеринарной практике: их клиническое значение, основные методы и виды // VetPharma. 2018. № 3. URL: https ://vetpharma .org/articles/169/7785/

10. Макаревич Н.А., Лукьянова Г.А. Эпизоотология, симптомы и лечение гемобартонеллёза кошек // Известия сельскохозяйственной науки Тавриды. 2017. № 9 (172). С. 97 - 104.

11. Коняев С. Трансмиссивные болезни животных. Лабораторная диагностика. URL: https://vk.com/video-186938409_456239096?access_key=4ffe39bae 10d76c410.

12. Ященко Е.А., Луцук С.Н., Дьяченко Ю.В. Гематологические показатели при гемобартонеллёзе кошек // Вестник АПК Ставрополья. 2017. № 2. С. 80 - 83.

References

1. Annikov V.V., Shcherbakov Yu.V. Infectious diseases of dogs and cats. Saratov: Express replication. 2015. 110 p.

2. Ashatkin A.F., Vasiliev A.V., Sanin A.V. Hemobar-tonellosis // Handbook. M., 1998. 255 p.

3. Gaskell R.N., Bennet M. Infectious anemia in cats (Hemobartonellosis) // Handbook of infectious diseases of dogs and cats. M., 1999. 224 p.

4. Bolyakhina S.A. Hemobartonellosis in cats in a large industrial city: distribution, clinical manifestations, etiotropic treatment: Abstract of the thesis. Dis. ... Cand. Vet. Sci. Novosibirsk, 2001. 128 p.

5. Demkin V.V. Hemotropic mycoplasmosis (hemo-plasma, hemobartonella) of cats and dogs. Russian Veterinary Journal. 2014; 4: 23-28.

6. Tasker S., Lappin M.R. Haemobartonella felis: recent developments in diagnosis and treatment. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2002; 4: 3-11.

7. Dubrovina E. Cat lovers about health and disease. M., 2000. 288 p.

8. Dubos F. Two cases of hemobartonellosis in cats. Veterinary. 1999; 5/6: 33-36.

9. Ivanova N.A. Hematological studies in veterinary practice: their clinical significance, main methods and types. VetPharma. 2018; 3. URL: https://vetpharma.org/ articles/169/7785/

10. Makarevich N.A., Lukyanova G.A. Epizootology, symptoms and treatment of hemobartonellosis in cats. Transactions of Taurida Agricultural Science. 2017; 172(9): 97-104.

11. Konyaev S. Transmissible diseases of animals. Laboratory diagnostics. URL: https://vk.com/video-186938409_456239096?access_key=4ffe39bae 10d76c410.

12. Yashchenko E.A., Lutsuk S.N., Dyachenko Yu.V. Hematological indicators in hemobartonellosis of cats. Agricultural Bulletin of Stavropol Region. 2017; 2: 80-83.

Галина Николаевна Бобкова, кандидат биологических наук, доцент, olesyabobkova291101@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-8212-0051

Василий Павлович Иванюк, доктор ветеринарных наук, профессор, vpivanuk@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-8439-1632

Ева Николаевна Романова, соискатель, zn-shuklina@yandex.ru

Galina N. Bobkova, Candidate of Biology, Associate Professor, olesyabobkova291101@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-8212-0051

Vasily P. Ivanyuk, Doctor of Veterinary Sciences, Professor, vpivanuk@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-8439-1632

Eva N. Romanova, research worker, zn-shuklina@yandex.ru

Вклад авторов: все авторы сделали эквивалентный вклад в подготовку публикации. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Contribution of the authors: the authors contribution equally to this article. The authors declare no conflict of interests.

Статья поступила в редакцию 10.02.2023; одобрена после рецензирования 24.02.2023; принята к публикации 05.03.2023.

The article was submitted 10.02.2023; approved after reviewing 24.02.2023; accepted for publication 05.03.2023.

-Ф-

Научная статья

УДК 616-018

doi: 10.37670/2073-0853-2023-100-2-227-230

Экспрессия маркёра р53 при пренатальном введении эстрогенов на семенники потомства белых лабораторных мышей

Римма Тагировна Сулайманова

Частное учреждение образовательная организация высшего образования «Университет «Реавиз»,

Санкт-Петербург, Россия

Аннотация. В статье представлены результаты анализа экспрессии иммуногистохического маркёра р53 на семенниках потомства белых беспородных лабораторных мышей при пренатальном воздействии различных доз синтетического аналога эстрогена синэстрола. Объектом исследования было потомство самцов белых беспородных лабораторных мышей, матерям которых на 11-е сутки гестации Е 11.5 беременности в одно и тоже время суток однократно, внутримышечно вводили различные дозы синтетического препарата синестрол: в виде 2%-ного масляного раствора в дозе 25 мкг/кг и в виде 2%-ного масляного раствора в дозе 40 мкг/кг Экспрессию иммуногистохического маркёра р53 оценивали в структурах семенников потомства: сперматогониях, сперматоцитах, сперматидах, сперматозоидах, в клетках Лейдига. Результат анализа показал нарушение эндокринного аппарата семенников в виде снижения численности и функциональной активности клеток Лейдига, о чём свидетельствует иммуногистохический маркёр р53.

Ключевые слова: маркёр р53, пренатальное введение, синэстрол, семенники, белые беспородные лабораторные мыши, потомство.

Для цитирования: Сулайманова Р.Т. Экспрессия маркёра р53 при пренатальном введении эстрогенов на семенники потомства белых лабораторных мышей // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2023. № 2 (100). С. 227 - 230. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2023-100-2-227-230.

Original article

Expression of the p53 marker during prenatal injection of estrogens to the testes of offspring of white laboratory mice

Rimma T. Sulaimanova

Private institution educational organization of higher education "University "Reaviz", St. Petersburg, Russia

Abstract. The article presents the results of the analysis of the expression of the immunohistochemical marker p53 on the testes of offspring of white mongrel laboratory mice under prenatal exposure to various doses of the synthetic analogue of estrogen synestrol. The offspring of male white mongrel laboratory mice were studied,