Методы получения гаплоидных и дигаплоидных растений перца в культуре пыльников и микроспор (обзор)

СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ БИОЛОГИЯ, 2011, № 5

Культура клеток и тканей

УДК 635.649:631.52:581.143.6

МЕТОДЫ ПОЛУЧЕНИЯ ГАПЛОИДНЫХ И ДИГАПЛОИДНЫХ РАСТЕНИЙ ПЕРЦА В КУЛЬТУРЕ ПЫЛЬНИКОВ И МИКРОСПОР*

Д.В. ШУМИЛИНА, Н.А. ШМЫКОВА

Обсуждается роль гаплоидных и дигаплоидных линий в селекции и изучении генотипов растений рода Capsicum. Приводятся факторы, влияющие на эффективность эмбриогенеза в культуре микроспор и пыльников перца, описываются наиболее эффективные методики. В настоящее время продуктивность таких методик остается низкой, и их совершенствование имеет важное практическое значение.

Ключевые слова: Capsicum, гаплоидные растения, микроспоры, пыльники.

Keywords: Capsicum, haploid plants, microspores, anthers.

Перец — распространенная овощная культура, которую используют как для приготовления специй, так и в свежем виде. По данным Продовольственной и сельскохозяйственной организации ООН (Food and Agriculture Organization — FAO), в 2007 году под перцем в мире бышо занято более 1,7 млн га. Ежегодное мировое товарное производство перца составляет более 27 млн т. Все острые и сладкие перцы относятся к семейству Пасленовые (Solanaceae Juss.), роду Capsicum (1). К этому роду принадлежат около 27 видов, но только 5 из них окультурены — C. annuum L., C. baccatum L., C. chinense J., C. frutescens L., C. pubescens Ruiz & Pav. Диплоидный набор хромосом у всех окультуренных и большинства диких видов перца включает 24 хромосомы и только у некоторых диких видов насчитывается 26 хромосом (C. campy-lopodium, C. villosum и др.). Большинство видов перца в разной степени восприимчивы к фитопатогенным грибам, бактериям, вирусам, насекомым и другим вредителям. Экстремальные колебания абиотических факторов (температура, влажность, освещенность, содержание питательных веществ, рН, химический состав воздуха и пестициды) также могут негативно влиять на урожай этой культуры. Современные сорта перца должны отвечать высоким нормам как по вкусовым качествам продукции, так и по устойчивости к неблагоприятным абиотическим и биотическим факторам окружающей среды. В настоящее время почти все новые сорта перца создаются с использованием дигаплоидных линий.

Галоидные и дигаплоидные растения представляют собой важный материал для селекции. С их помощью можно обнаружить редкие рецессивные мутации и уникальные рекомбинации. Поскольку гаплоиды обладают только одной копией аллеля каждого локуса, это дает возможность выявить рецессивные мутации, которые в обычных диплоидных растениях замаскированы немутантными доминантными аллелями генов. Удвоение хромосом у гаплоидных растений позволяет быстро создавать дигаплоиды, гомозиготные по всем генам, для получения гибридов (2). Кроме того, использование F1 гибридов в культуре пыльников позволяет вычленить наилучший генотип и зафиксировать его посредством удвоения хромосом.

Единую карту сцепления генов у острого перца (C. annuum L.), включающую в основном RFLP (restriction fragment length polymorphism) и RAPD (random amplified polymorphic DNAs) маркеры, создали, сопоставляя

* Работа выполнена при поддержке гранта Министерства образования и науки РФ (Государственный контракт № 16.М04.11.0004 от 19.04.2011 г., шифр темы «2011-16-МЦП/12»).

три внутривидовые карты сцепления, сконструированные посредством разделения потомства дигаплоидов (3). С использованием гаплоидных и дигапло-идных растений облегчается маркирование генов и определение генетической составляющей устойчивости к биотическим и абиотическим факторам (4).

Гаплоидные растения можно получать экспериментально из неопло-дотворенной семяпочки или микроспор. Облучение, радиоизотопы, тепловой шок, отдаленная гибридизация, опыление стерильной пыльцой, обработка цветов химическими веществами (растительными регуляторами, закисью азота и др.), хромосомная элиминация при культивировании молодых эмбриои-дов, партеногенез in vitro, в культуре микроспор или в культуре пыльников индуцируют образование гаплоидов. В природе они появляются спонтанно. Спонтанное образование гаплоидов зафиксировано для разных видов Capsicum (5-7). Чаще всего их находят в семенах, где образовалось 2 зародыша-близнеца (это происходит в 1-10 из 10 000 проросших семян). Для получения спонтанных гаплоидов у перца посредством партеногенеза отбирают и размножают генотипы с высокой степенью гаплоидии в потомстве, а также применяют обработку цветов закисью азота (7). Чтобы удвоить число хромосом у гаплоидных растений, обычно используют обработку побегов 0,3 % раствором колхицина. Самым распространенным способом получения гаплоидов и дигаплоидов перца остается метод культивирования пыльников.

Факторами, влияющими на переключение с гаметофитного на спо-рофитное развитие, приводящее к формированию гаплоидного эмбриоида, при инкубации микроспор служат повышенные или пониженные температуры, состав среды культивирования, содержание растительных гормонов. K. Kristiansen и S.B. Andersen изучали влияние температуры и фотопериода на формирование эмбриоидов в гибридах Fj (сорта Jetta, Parma и Trophy) C. annuum в культуре пыльников (8). Растения выращивали в теплицах при температурах от 16 до 30 °С и фотопериоде 11-19 ч. Пыльники отбирали с индивидуальных растений в течение 5-9 нед и культивировали по методике R. Dumas de Vaulx с соавт. (9). Эмбриоиды получали из материала от растений, выращенных во всех температурных режимах с оптимумом выращивания при 26,4 °С. Авторы показали, что фоторежим не влиял на образование эмбриоидов. Число эмбриоидов существенно снижалось при увеличении возраста донорного растения. Так, из пыльников, собранных с материнского растения в возрасте 12-14 нед, эмбриоиды не формировались. Сходные результаты получены J. Mityko с соавт. (10). Были протестированы 4 селекционные линии (C. annuum L.), 7 сортов и 4 гибрида Fx. До-норные растения выращивали в теплице. Бутоны собирали только в течение 4 нед после появления первого цветка, что позволило увеличить выход эмбриоидов в культуре пыльников.

Еще один важный фактор, влияющий на эмбриоидогенез, — стадия развития микроспор. Большинство исследователей сходятся во мнении, что наиболее отзывчивы микроспоры, находящиеся на поздней стадии развития (11, 12). Как правило, пыльники, содержащие такие микроспоры, имеют частичную антоциановую окраску и находятся в бутонах, в которых венчик немного больше, чем чашелистики (10, 13-16).

Описана зависимость образования гаплоидов в культуре пыльников и микроспор от вида перца, гибрида, сорта и генотипа отдельного растения (10, 14, 17-19).

Обработка пыльников (8) или бутонов перед культивированием in vitro часто применяется для повышения выхода гаплоидов (9, 14, 15). Для этой цели используют как низкие (4 °С) (14, 15, 20, 21), так и высокие (35 °С) температуры (9). Показано, что определенные сорта перца C. annum рос-

сийской селекции лучше отзываются иа инкубирование бутонов при низких температурах (4-10 °С). Для культивирования пышьников чаще всего применяют среду Мурасиге-Скуга (МБ) (22) или МБ с модификациями. Некоторые исследователи также используют среды ЬБ (23), МТ (24), В5 (25) и (15).

Для улучшения эмбриоидогенеза обычно применяют регуляторы роста и развития растений. Наиболее эффективными признаны сочетания ауксинов и цитокининов: кинетин (Кин) + р-индолил-3-уксусная кислота (ИУК) (11), Кин + а-нафтилуксусная кислота (НУК) (26), 2,4-дихлор-феноксиуксусная кислота (2,4-Д) + Кин (9, 27). М. с соавт. (15) для повышения выхода растений-гаплоидов применяли витамин В12, добавляя его в состав среды для индукции образования зародышей. Другие исследователи использовали кокосовое молоко (26), дрожжевой экстракт, казеин (11), экстракт моркови и ак-В то же время, по нашим данным, некоторые сорта (Мазурка, Здоровье) демонстрируют лучший эмбриогенез в культуре пыльников при применении безгормональных сред (рис. 1). В случае использования безгормональной среды можно с большей уверенностью говорить об андрогенном происхождении полученных растений. Кроме того, значительная доля образовавшихся эмбриоидов развивается в полноценные растения (рис. 2) (неопубликованные данные).

Рис. 1. Развитие эмбриоида из микроспор перца Capsicum annum L.

сорта Здоровье: 1 — торпедовид-ный эмбриоид, 2 — почти полностью сформировавшийся эмбриоид с зачатками зеленый семядолей.

тивированный уголь (17).

А

Рис. 2. Нормально развивающийся эмбриоид с двумя семядолями (А) и аномально развивающийся эмбриоид с одной семядолей, корнем и без верхушечной почки (Б), полученные в культуре пыльников перца Capsicum annum L. сорта Здоровье.

Y.Y. Wang с соавт. первыми опубликовали методику получения гаплоидных растений острого перца в культуре пыльников (28). Они использовали пыльники сорта Yeo Hsien Small Red pepper с микроспорами, у которых ядро занимало пристеночную позицию. Пыльники культивировали на MS-среде, модифицированной по некоторым микроэлементам и витаминам, с добавлением 4,65 мМ Кин, 5,37 мМ НУК или 4,52 мМ 2,4-Д. Зеленые ростки получали из пыльников через 33 сут культивирования. На среде с НУК каллус и побеги образовывались с эффективностью соответственно 28,6 и 4,8 %, на среде с 2,4-Д — 23,5 и 2,6 %. Проведен цитологический анализ кончиков корней. Регенеранты были идентифицированы как гаплоидные растения с 12 хромосомами. J.S. Kuo с соавт. (29) описали факторы, влияющие на образование гаплоидов перца в культуре пыльников. Пыльники культивировали на среде NT и MS с добавлением гормонов (стадия микроспор поздняя, расположение ядра пристеночное). L. George и S. Narayanaswamy (11) в опытах с C. annuum var. grossum культивировали незрелые пыльники с одноядерными микроспорами сразу после стадии тетрад на среде LS с 2 % сахарозой и FeEDTA в качестве источника железа. Индукторами эмбриоидогенеза служили ауксин, цитокинины, кокосовое молоко, дрожжевой экстракт и гидролизат казеина (ГК) в различных ком-

ь

бинациях и концентрациях. Культивирование проводили при постоянном искусственном освещении и температуре 25±2 °С. Деления микроспор достигали на средах, содержащих следующие комбинации индукторов эм-бриоидогенеза: 1,39 мМ Кин + 17,12 мМ ИУК; 13,9 мМ Кин + 5,71 мМ ИУК; 2,85 мМ ИУК + ГК (400 мг/л) + инозитол (100 мг/л). Дедифферен-циация микроспор и образование мультиклеточных структур, схожих с про-эмбриогенными, наблюдали у 1 % микроспор. Для последующего развития эмбриоидов пыльники переносили на среду, в которую добавляли 2,85 мМ ИУК + ГК (400 мг/л) + миоинозитол (100 мг/л). Побеги были получены только в 0,1 % из нескольких сотен пыльников. Ацетокарминовое окрашивание кончиков корней растений показало наличие в клетках 12 хромосом, что подтвердило их гаплоидность.

В настоящее время наиболее эффективным считается протокол культуры пыльников перца, разработанный R. Dumas de Vaulx с соавт. (9). Его применяют в исходном виде или вводя некоторые модификации (8, 10, 17, 18, 27).

R. Dumas de Vaulx изучал влияние тепловых обработок на андроге-нез в культуре in vitro у острого перца (С. annuum L.). Пыльники в течение 2 или 8 сут инкубировали при 35 °С, в питательную среду добавляли различные концентрации 2,4-Д и Кин. Обработка пыльников в течении 2 сут приводила к более низкой регенерации, чем обработка в течение 8 сут. При добавлении к среде 2,4-Д (0,45; 4,52 и 9,00 мМ) и Кин (9,3 мМ) лучший результат получен в пыльниках, которые инкубировали при 35 °С 8 сут и затем при 25 °С в присутствии 0,45 мМ 2,4-Д и 9,3 мМ Кин (частота регенерации — 5 %). Эффективность регенерации увеличивалась (до 12 %) в пыльниках, прединкубированных 8 сут при 35 °С и далее культивируемых при 25 °С на среде, содержащей 0,04 мМ 2,4-Д.

R.A. Morrison с соавт. (16) получали гаплоидные растения в культуре пыльников гибрида Emerald Giant (С. annuum) х CA4 (С. chinense), используя двухслойную среду. Гибрид не был отзывчив на среде, предложенной R. Dumas de Vaulx с соавт. (30), поэтому авторы применяли среду, описанную M. Sibi с соавт. (15) с добавлением FeEDTA и сахарозы по прописи T. Murashige и F. Skoog (22). Среда C использовалась в первые 12 сут культивирования, в ее состав входили 6 % сахарозы и 0,01 мМ 2,4-Д (30). Среду R (без регуляторов роста) применяли в конце культивирования, она содержала 3 % сахарозы. В C и R среды вместо агара вводили агарозу (1 %). Двойные среды готовили на основе среды R с активированным углем (2 %) и агарозой (1 %). Бутоны отделяли от материнского растения и инкубировали 100 ч при 4 °С. Далее пыльники изолировали и инкубировали на среде C 8 сут при 35 °С и 4 сут при 25 °С в темноте, после чего переносили на двухслойную среду с активированным углем. Эмбриоиды появлялись в пыльниках через 2-4 нед и развивались в растения через 2-3 нед культивирования на среде R. Все полученные растения были диплоидными и гомозиготными по ряду локусов. Электрофоретический анализ подтвердил их гаметное происхождение. Метод двухслойной среды оказался эффективным для сортов Calwonder, Yolo Wonder, Emerald Giant.

В 2006 году E.D.J. Supena с соавт. (21) предложили, пожалуй, самую эффективную на сегодняшний день методику получения гаплоидных растений перца. Авторы выделяют следующие основные факторы: использование бутонов, не менее 50 % микроспор в которых находятся в поздней стадии развития; проведение предобработки бутонов в течение 1 сут при температуре 4 °С; культивация пыльников в течение 7 сут на двухслойной среде при 9 °С, далее — при 28 °С в темноте до появления эмбриоидов. В

качестве двухслойной применяли среду Nitch с добавлением 2 % мальтозы, а также 1 % активированного угля + 0,6 % Plant Agar (для плотной фазы) и 2,5 мкМ зеатина + 5 мкМ ИУК (для верхней жидкой фазы). Эм-бриоиды переносили на среду 1/2 MS с сахарозой (2 %), 0,1 мкМ 6-бен-зиламинопурином (6-БАП) и 0,6 % Plant Agar. Культивирование осуществляли в чашках Петри диаметром 6 см при освещении 16 ч и температуре 25 °С. Через 3-4 нед проростки с первыми настоящими листьями помещали в банки с вермикулитом, жидкой 1/2 MS и сахарозой (1 %), после образования на растениях 4-6 листьев их пересаживали в почву. Все 10 испытанных генотипов острого перца показали высокий выход гаплоидных растений, в культуре пыльников перца сорта Galaxy было получено семь растений из расчета на один бутон.

Получение гаплоидных растений перца в культуре микроспор также возможно. M. Kim с соавт. (31) продемонстрировали это на остром перце (Capsicum annuum L.) с использованием модифицированной NLN среды (NLNS). Глобулярные и сердцевидные эмбриоиды образовывались уже через 3 нед культивирования микроспор. К 4-й нед эмбриоиды развивались до стадии семядолей. Затем их переносили на агаризованную среду B5. Также были испытаны среды для предобработки микроспор, содержащие различные сахара в нескольких концентрациях. Тепловой шок оказался действеннее при использовании среды без сахаров. Кроме того, показана эффективность эмбриоидогенеза на среде с сахарозой в концентрации 9 %.

C. Lantos с соавт. (12) оптимизировали методику получения гаплоидов острого перца в культуре микроспор посредством сокультивирова-ния микроспор и семяпочек перца и пшеницы. Для культивирования использовали пыльники, содержащие 80 % микроспор в поздней стадии развития и 20 % ранней пыльцы. Изолированные микроспоры культивировали в жидкой W14 среде (32) с 9 % мальтозы, глутамином (1 г/л), Кин (0,5 мг/л), 2,4-Д (0,5 мг/л) и цефотаксимом (200 мг/л). Применение семяпочек пшеницы в качестве культуры-няньки было более эффективным по сравнению с использованием семяпочек перца. Эффективность образования эмбриоидов в такой системе оказалась сорто- и генотипозависимой. Среди полученных гаплоидных растений некоторые имели мутации в виде розеточности листьев.

Таким образом, в настоящее время разработаны методики, позволяющие получать гаплоидные растения у разновидностей перца. Вместе с тем продуктивность этих приемов остается низкой. Успех во многом зависит от отзывчивости сорта или вида перца. Значительная доля эмбриоидов не развивается в полноценные растения. Разработка универсальной методики, позволяющей получать большое число гаплоидных растений различных видов и сортов перца, имеет важное практическое значение для селекции, исследования генотипов и изучения роли отдельных генов.

Л И Т Е Р А Т У Р А

1. D e W i t t D., B o s l a n d P.W. The pepper garden. Berkeley, CA, 1993.

2. P i c k e r i n g R.A., D e v a u x P. Haploid production: approaches and use in plant breeding. In: Barley: genetics, biochemistry, molecular biology and biotechnology /P.R. Shewry (ed.) Oxford, 1992: 519-547.

3. L e f e b v r e V., P a l l o i x A., C a r a n t a C., P o c h a r d E. Construction of an in-traspecific integrated linkage map of pepper using molecular markers and doubled-haploid progenies. Genome, 1995, 38: 112-121.

4. D a u b o z e A.M., P a l l o i x A., P o c h a r d E. Resistance of androgenetic autodiploid lines of pepper to Phytophthora capsici and tobacco mosaic virus under high temperature. Capsi-

cum Newsletter, 1990, 8-9: 47-48.

5. C h r i s t e n s e n H.M., B a m f o r d R. Haploids in twin seedlings of pepper (Capsicum annuum L.). J. Hered., 1943, 34: 99-104.

6. C a m p o s F.F., M o r g a n D.T.Jr. Haploid pepper from a sperm: an androgenic haploid of Capsicum frutescens. J. Heredity, 1958, 49: 134-137.

7. P o c h a r d E., D u m a s d e V a u l x R. Haploid parthenogenesis in Capsicum annuum L. In: The biology and taxonomy of the Solanaceae /J.G. Hawkes, R.N. Lester, A.D. Skelding, (eds.). London, 1979: 455-472.

8. K r i s t i a n s e n K., A n d e r s e n S.B. Effects of donor plant temperature, photoperiod, and age on anther culture response of Capsicum annuum L. Euphytica, 1993, 67: 105-109.

9. D u m a s d e V a u l x R., C h a m b o n n e t D., P o c h a r d E. Culture in vitro d'antheres du piment (Capsicum annuum L.): amelioration des taux d'obtention de plantes chez differents genotypes par des traitements a +35 °C. Agronomie, 1981, 1: 859-864.

10. M i t y k o J., A n d r a s f a l v y A., C s i l l e r y G., F a r i l M. Anther-culture response in different genotypes and F1 hybrids of pepper (Capsicum annuum L.). Plant Breed., 1995, 114: 78-80.

11. G e o r g e L., N a r a y a n a s w a m y S. Haploid Capsicum through experimental andro-genesis. Protoplasma, 1973, 78: 467-470.

12. L a n t o s C., J u h a s z A.G., S o m o g y i G., O t v o s K., V a g i P., M i h a l y R., K r i s t o f Z., S o m o g y i N., P a u k J. Improvement of isolated microspore culture of pepper (Capsicum annuum L.) via co-culture with ovary tissues of pepper or wheat. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2009, 97: 285-293.

13. N o v a k F.J. Induction of a haploid callus in anther cultures of Capsicum sp. Z. Pflanzenzucht., 1974, 72: 46-54.

14. S a c c a r d o F., D e v r e u x M. In vitro production of plantlets from anther culture of Capsicum annuum. Proc. Eucarpia Meet. «Genetics and breeding of Capsicum». Budapest, 1974: 45-49.

15. S i b i M., D u m a s d e V a u l x R., C h a m b o n n e t D. Obtention de plantes hap-loedes par androgenese in vitro chez le piment (Capsicum annuum L.). Ann. Amelior. Plantes, 1979, 29: 583-606.

16. M o r r i s o n R.A., K o n i n g R.E., E v a n s D.A. Anther culture of an interspecific hybrid of Capsicum. J. Plant Physiol., 1986, 126: 1-9.

17. V a g e r a J., H a v r a n e k P. In vitro induction of androgenesis in Capsicum annuum L. and its genetic aspects. Biol. Plant., 1985, 27: 10-21.

18. M u n y o n I.P., H u b s t e n b e r g e r J.F., P h i l l i p s G.C. Origin of plantlets and callus obtained from Chile pepper anther cultures. In Vitro Cell. Dev. Biol., 1989, 25: 293-296.

19. N o w a c z y k P., K i s i a i a A., O l s z e w s k a D. Induced andro-genesis of Capsicum frutescens L. Acta Physiol. Plant., 2006, 28(1): 35-39.

20. O s k u m D., T i p i r d a m a z R., E l l i a l t i o g l u S. The relationship between the endogenous abscisic acid content of anthers and in vitro androgenesis in peppers (Capsicum annuum L.). IV ISHA. International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding. Acta Hortic., 2001, 560: 327-329.

21. S u p e n a E.D.J., S u h a r s o n o S., J a c o b s e n J., C u s t e r s J.B.M. Successful development of a shed-microspore culture protocol for doubled haploid production in Indonesian hot pepper (Capsicum annuum L.). Plant Cell Rep., 2006, 25(1): 1-10.

22. M u r a s h i g e T., S k o o g F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant., 1962, 15: 473-497.

23. L i n s m a i e r E.M., S k o o g F. Organic growth factor requirements of tobacco tissue cultures. Physiol. Plant., 1965, 18: 100-127.

24. N a g a t a T., T a k e b e I. Plating of isolated tobacco mesophyll protoplasts on agar medium. Planta, 1971, 99: 12-20.

25. G a m b o r g O.L., M i l l e r R.A., O j i m a K. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Exp. Cell Res., 1968, 50: 151-158.

26. W a n g Y.Y., K u o C.S., L i C.L., C h i a n g C.R. A preliminary report on the study of pollen plants of sweet peppers (Capsicum annuum L. var. grossum Bell). Proc. Symposium on plant tissue culture. Boston, London, Melbourne, 1981: 243.

27. G y u l a i G., G e m e s n e J.A., S a g i Zs., V e n c z e l G., P i n t e r P., K r i s t o f Z., T o r j e k O., H e s z k y L., B o t t k a S., K i s s J., Z a t y k o L. Doubled haploid development and PCR-analysis of F1 hybrid derived DH-R2 paprika (Capsicum annuum L.) lines. J. Plant Physiol., 2000, 156: 168-174.

28. W a n g Y.Y., S u n C.S., W a n g C.C., C h i e n N.F. The induction of the pollen plantlets of triticale and Capsicum annuum from anther culture. Sci. Sinica, 1973, 16: 147-151.

29. K u o J.S., W a n g Y.Y., C h i e n N.F., K u S.J., K u n g M.L., H s u H.C. Investigation on the anther culture in vitro of Nicotiana tabacum L. and Capsicum annuum L. Acta Bot. Sinica, 1973, 15: 43-47.

30. D u m a s d e V a u l x R., C h a m b o n n e t D., S i b i M. Stimulation of in vitro an-drogenesis in pepper (Capsicum annuum) by elevated temperature treatments. In: Variability in plants regenerated from tissue culture /D. Earle, Y. Demarly (eds.). N.Y., 1982: 92-98.

31. K i m M., J a n g I.C., K i m J.A., P a r k E.J., Y o o n M., L e e Y. Embryogenesis

and plant regeneration of hot pepper (Capsicum annuum L.) through isolated microspore culture. Plant Cell Rep., 2008, 27: 425-434. 32. O u y a n g J.W., J i a S.E., Z h a n g C., C h e n X., F e n G. A new synthetic medium (W14) for wheat anther culture. Beijing, 1989: 91-92.

ГНУ Всероссийский НИИ селекции и семеноводства Поступила в редакцию

овощных культур Россельхозакадемии, 20 октября 2010 года

143080 Московская обл., Одинцовский р-н, п/о Лесной городок,

пос. ВНИИССОК,

e-mail: shumilina@vniissok.ru

THE METHODS FOR ISOLATION OF HAPLOID AND DIHAPLOID PEPPER PLANTS BY THE USE OF ANTHER AND MICROSPORES

CULTURE

D.V. Shumilina, N.A. Shmykova S u m m a r y

The role of haploid and dihaploid lines in the breeding and the studying of genotypes of plants from Capsicum genus is discussed. The factors are presented, which has an effect on embryogenesis efficiency in the culture of pepper microspores and anthers, the most effective method are described. At present the productivity of such methods is rather low, and their development has practical importance.

Научные конференции

МЕЖДУНАРОДНАЯ НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКАЯ

КОНФЕРЕНЦИЯ «ПЕРСПЕКТИВЫ ОСВОЕНИЯ ИННОВАЦИОННЫХ ТЕХНОЛОГИЙ В СЕЛЬСКОМ ХОЗЯЙСТВЕ НА ПРИМЕРЕ КАЛИНИНГРАДСКОЙ ОБЛАСТИ»

Конференция проходила на базе Калининградского НИИ сельского хозяйства (НИИСХ). Тематика конференции охватывала проблемы освоения инновационных технологий в сельском хозяйстве Калининградской области, научного обеспечения инновационного развития сельского хозяйства Северо-Западного региона России, инноваций в сельскохозяйственной и почвенной микробиологии, биотехнологии. Обсуждалась роль инновационных технологий при выращивании различных культур (зерновые, люпин, рапс, картофель, крестоцветные). Специальное внимание было уделено теме кормопроизводства и заготовки кормов, состоянию пастбищных земель. Важными вопросами стали агроэкологическое районирование территорий в целях адаптивного размещения сельскохозяйственных культур, информационные технологии точного земледелия и целесообразность их внедрения в России. Были представлены доклады по проблеме эрозии почв, созданию почвенно-информационных баз.

Сообщение о перспективах производства экологически чистых продуктов растениеводства и животноводства в Северной Германии сделали глава экологического сельскохозяйственного предприятия Геральд Шульц и интегрирующий специалист Детлеф Гронау (Штальб-роде-Аузбау, Германия). Коллег из Германии заинтересовала технология возделывания сельскохозяйственных культур без применения минеральных удобрений, позволяющая получать экологически чистую продукцию, а также выращивание люпина и других бобовых по оригинальной схеме, предложенной учеными Калининградского НИИСХ и позволяющей повышать плодородие почв, укреплять кормовую базу животноводства, создавая при этом условия для перехода на получение тепловой энергии на основе переработки зеленой массы.

Проблема выживания в конкурентной борьбе со странами, где агарный сектор чувствует ощутимую поддержку государства, беспокоит сегодня и ученых, и практиков. По мнению одних участников конференции, такая конкуренция после вступления в ВТО может подорвать аграрный сектор России, по мнению других, научит успешному соперничеству, если будут приняты соответствующие меры государственной поддержки, а в отрасль придут самые современные технологии.

В конференции приняли участие специалисты из России (Москва, Санкт-Петербург, Сибирь), Беларуси, Казахстана, Германии.