Оценка динамики и информативности показателей периферической крови лабораторных животных при энтеральном введении угля и твердых продуктов его сгорания

Выводы. Полученные сцинтиграфические данные накопления РФП в организме больных в течение 2-6 суток были использованы для численной идентификации параметров кинетики камерной модели йодного обмена в долях и самой ЩЖ. Полученные времена полувыведения при введении диагностической активности I-131 варьируются от 26 до 189 часов; различие поглощенных доз в долях ЩЖ у больных с ДТЗ составляет от 1,1 до 1,53; у больных МЭЗ от 1,03 до 4,8 и у больных с УТЗ от 2 до 3,5.Полученные низкие поглощенные дозы при проведении радиойодтерапии с I-131 у ряда пациентов (САВ - 40 Гр, КОП -51 Гр, ГЮН - 37Гр) говорят о неэффективном назначении им радиойодлечения. В подтверждение этого один из представленных пациентов через некоторое время после курса РЙТ поступил в клинику с рецидивом заболевания. Разработанное программное обеспечение по идентификации параметров камерных моделей кинетики радиойода позволяет обеспечить расчетное дозиметрическое планирование РЙТ у лиц с заболеваниями ЩЖ.

Литература

1. Власова О.П. и др. // Мед. радиол. и радиационная безопасность.- 2007.- Т. 52, №4.- С. 53-61

2. Клепов А.Н. и др. Применение методов матем. моделирования в ядерной медицине / Под ред. Е.С.Матусевича.- Обнинск, 2006.- С. 204.

3. Фадеев В.В и др. //Проблемы эндокринол.- 2005.- Т. 51, №1.- С. 3-10.

4. Шишканов Е.С. и др.// Мед. радиол. и радиационная безопасность.- 2002.- №2.- С.62-68.

5. Bockish A. et. al. / J. Nucl. Med.- 1993.- Vol.34, №10.-P.1632-1640.

6. SCINTI. ver 4. Базовое программное обеспечение системы обработки радиодиагностической информации. 20939937.0000101 34 01.- М.:НПК «Гелмос», 1998.- С.71.

7. Reschini E. and et. al. // J. Nucl. Med.- 1999.- Vol.40, №11.- P. 1928-1934.

8. Zanzonico P.B. // J.Nucl.Med.- 2000.- №41.- P.297-308.

MATHEMATIC STIMULATION FOR DOZEMETRIC DEVELOPMENT OF RADIOIODOTHERAPY IN PATIENTS WITH THYROID

O.P. VLASOVA, A.N. KLEPOV, E.S. MATUSEVITCH, E.P. POTCHULKO Summary

This article deals with forming kinetic models of radioiodine distribution in the human thyroid. 5 patients with Grave's disease, 7 patients with nontoxic multinodular goiter and 2 patients with toxic adenoma received a pre - therapeutic activity of 50-70 MBq. The thyroid uptake was measured 2-6 days after oral application with scintillation counter. The kinetic of radioiodine in the thyroid was calculate by/ use the three-chamber models. It was assumed that behaviour of 23I in the pre - therapeutic situation would be same the 131I in the therapeutic setting. The measurements after the pre - therapeutic administered activity of 123I were used to calculate the indicative administered dose from 131I.

Key words: radioiodine distribution, ultrasonography

УДК 613.632.2:612.398.12

ОЦЕНКА ДИНАМИКИ И ИНФОРМАТИВНОСТИ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ ПРИ ЭНТЕРАЛЬНОМ ВВЕДЕНИИ УГЛЯ И ТВЕРДЫХ ПРОДУКТОВ ЕГО СГОРАНИЯ

А.В. ГАНЗЕН, А.А. САВЧЕНКО, Е.А. СУВОРИНА*

Широкая распространенность профессиональных заболеваний сохраняет актуальность исследований патогенеза воздействия различных экзотоксических факторов. Не последнее место среди профпатологии занимают заболевания, связанные с воздействием пылевых факторов. Условия труда в угольной промышленности обусловливают длительный контакт рабочих с каменноугольной пылью и продуктами его сгорания. На сегодняшний

* ГУ НИИ медицинских проблем Севера СО РАМН 660022, Красноярск

день доказано, что даже при ингаляционном воздействии угольной пыли на организм легкие не являются единственным депо, частицы угля способны преодолевать аэрогематический барьер и проникать в кровь [1, 5, 8]. Попадая в кровь, частицы угля вызывают изменение структуризации сыворотки, причем эти изменения обнаруживаются уже на ранних стадиях токсического воздействия [7]. При контакте кровяных клеток с частицами угля и его химическими компонентами происходят структурные и метаболические изменения клеток крови [2]. У работников угледобывающей промышленности часто встречается развитие различных иммунодефицитных состояний, как по клеточному, так и по гуморальному звену [6, 9, 10]. Каменный уголь и его производные оказывают патогенное влияние на организм.

Испольуя самообучающиеся нейронные сети, позволяющие дать в решении задач классификации оценку многообразия показателей, их взаимосвязей, выявить скрытые неоднородности в распределении структурных параметров системы [3, 4].

Цель - изучение состояния периферической крови в ответ на энтеральное введение угля и твердых продуктов его сгорания в разных концентрациях на ранних и поздних стадиях адаптации.

Материалы и методы. Эксперимент проведен на 50 лабораторных мышах-самцах массой 25-28 г. Животных содержали в стандартных условиях вивария. В начале эксперимента животные были разделены на группы: контрольную и четыре подопытные. Животные контрольной группы содержались на стандартном рационе. В подопытных группах мыши вместе с пищей ежедневно получали угольную пыль и твердые продукты сгорания угля. Доза вводимой угольной пыли определялась из расчета 0,1 и 0,2 г на одно животное. В связи с изменением физических свойств угля при его сгорании, доза вводимой золы была меньше - 0,25 и 0,5 г на одно подопытное животное. В 1-й, 5-й день и по истечении 11 недель у подопытных животных были забраны образцы периферической крови и подвергнуты оценке по параметрам: гемоглобин, гематокрит, количественный анализ лейкоцитов, эритроцитов, определялось процентное соотношение ретикуло-цитов и эритроцитов и различных форм лейкоцитов.

Забор крови у мышей производился из хвостовой вены. Количество гемоглобина и эритроцитов определялось при помощи фотоэлектрокалориметрии, используя стандартные методики. Содержание ретикулоцитов определяли в мазках крови, при суправитальной окраске бриллианткрезиловым синим. Для исследования лейкоцитарной формулы мазки крови были окрашены по методу Романовского - Гимзы. Количество лейкоцитов подсчитывали в камере Горяева по стандартной методике. Для определения гематокрита плазма от форменных элементов крови отделялась центрифугированием.

Статистическая обработка данных осуществлялась по общепринятым методикам с помощью критерия Манна - Уитни, достоверными считали различия при Р<0,05. Оценка информативности параметров периферической крови осуществлялось с помощью нейросетевого классификатора. Нейросетевой классификатор представляет собой компьютерную программу (Рапа-1у7ег - 2004, «НейроМед», г. Красноярск) способную к самообучению и принятию на его основе необходимых решений [3, 4]. Для этого используется обучающая выборка, состоящая из отдельных примеров, каждый из которых представляет собой набор исследуемых параметров. В нашем случае обучающая выборка была разбита на 2 класса: 1 класс - показатели контрольных животных, 2 класс - показатели животных одной из опытных групп. Задача классификации - научиться правильно идентифицировать класс, к которому относится пример, а также при полном обучении вычислить информативность входных параметров.

Результаты. При энтеральном поступлении частиц угля в течение 5 суток патологические изменения в картине красной и белой крови лабораторных мышей не обнаруживаются, но колебания в пределах нормы присутствуют, что может быть расценено как развитие компенсаторной реакции. При энтеральном поступлении частиц угля в дозе 0,1 г на 5 сутки эритроциты становятся более гипохромными, снижается показатель гематокрита (табл. 1). При поступлении в организм большего количества частиц угля подобные изменения отсутствуют, показатели гематокрита, гемоглобина и эритроцитов близки к таковым у животных контрольной группы. В крови мышей обеих групп, получавших с рационом твердые продукты сгорания угля, на 5 сутки гемоглобин снижен. Введение золы в дозе 0,25 г вызывает снижение показателя на 11,6% и понижается концентрация эритро-

цитов. У мышей, получавших 0,5 г золы, гемоглобин снижен на 9,4 %, а уровень эритроцитов близок к контрольному показателю. В 1,3 раза снизилось число ретикулоцитов у животных, получавших 0,25 г золы, и в 4 раза у мышей, получавших 0,5 г золы.

Спустя 11 недель количество эритроцитов мало отличается в подопытных и контрольной группах (табл. 1). У мышей, получавших 0,2 г угля, выявлено достоверное снижение гемоглобина и гематокрита по сравнению с мышами контрольной группы. У животных, получавших 0,25 г золы, этот показатель повышен. Увеличено количество ретикулоцитов у животных, получавших частицы угля и золы, причем поступление большей дозы угля приводит к росту данного показателя в 1,7 раза. При исследовании лейкоцитарной формулы установлено, что на 5 сутки наибольшее снижение количества лейкоцитов отмечается у мышей, получавших твердые продукты сгорания угля (табл. 2). При введении 0,25 г золы количество лейкоцитов у животных снижалось на 49,0%. Увеличив дозу вещества до 0,5 г, мы обнаружили снижение данного показателя на 22,7%. При анализе фракционного состава гранулоцитов получены результаты: введение частиц угля ведет к снижению числа нейтрофильных лейкоцитов и росту уровня эозинофильных лейкоцитов, в большей мере данные изменения отмечаются у животных, получавших 0,2 г угля.

Таблица 1

Показатели периферической красной крови лабораторных мышей при энтеральном введении частиц угля и золы

Гематокрит Гемоглобин, (г/л) Эритроциты, 1012/л Ретикуло-циты, %

На 5-е сутки эксперимента

Контроль 59,70±2,30 166,00±2,50 9,91±0,20 2,4±0,1

0,1 г угля 53,75±1,70 Р,<0,05 144,00±8,10 Р1<0,05 9,91±0,70 2,3±0,7 Р1<0,05

0,2 г угля 58,70±2,21 164,00±4,30 9,61±0,20 3,1±0,3 Р1<0,05

0,25 г зольного остатка 57,56±0,90 148,78±6,10 Р1<0,05 9,01±0,20 Р1<0,05 1,8±0,3

0,5 г зольного остатка 57,80±0,62 151,00±2,80 Р1<0,05 9,73±0,10 0,6±0,1 Р1<0,05

Через 11 недель эксперимента

Контроль 54,70±1,30 200,01±6,60 8,03±0,20 1,9±0,4

0,1 г угля 51,29±0,90 Р]<0,05 180,67±7,20 Р1<0,05 8,05±0,70 2,8±0,4 Р1<0,05

0,2 г угля 54,11±1,10 194,44±6,10 8,14±0,10 3,4±0,3 Р1<0,05

0,25 г зольного остатка 56,75±1,40 209,29±7,90 8,74±0,30 Р1<0,05 2,8±0,3 Р1<0,05

0,5 г зольного остатка 54,71±0,90 197,29±3,70 8,07±0,10 2,2±0,3

Примечание: Р1 - статистически достоверные различия с контролем

Длительное энтеральное поступление угля и твердых продуктов его сгорания приводит к достоверному увеличению количества лейкоцитов у животных, получавших частицы угля и в дозе 0,25 г (табл. 2). В крови животных, получавших 0,1 г угля и 0,25 г золы, отмечен наибольший рост числа лимфоцитов (на 63,9% и 66,7% соответственно), при увеличении дозы до 0,2 г угля и 0,5 г золы лимфоцитоз выражен меньше (рост показателя на 16,3% и 45,3%). Количество нейтрофильных лейкоцитов во всех группах животных снижено, наименьшие показатели - у животных на малых дозах золы и угля. У мышей всех подопытных групп количество моноцитов увеличено при введении 0,1 и 0,2 г угля на 35,3% и 5,9% соответственно, при введении 0,25 г золы - на 58,8%, а при введении 0,5 г золы - на 35,3%. У особей, получавших 0,2 г угля и 0,25 г золы, число эозинофильных лейкоцитов превышает показатель контроля в 2 раза.

С помощью нейросетевого классификатора была исследована информативность показателей периферической крови у животных, получавших частицы угля и твердые продукты его сгорания, относительно контрольной группы. Успешное обучение нейросетевого классификатора осуществлялось всего на 5 нейронах. Рассматривалась информативность параметров нейро-сетевой модели при классификации «Контроль - Животные подопытных групп с введением угля». Установлено, что наиболее информативными параметрами модели при введении 0,1 г угля через 5 дней являются уровень содержания лейкоцитов, концентрация гемоглобина и относительное количество ретикулоцитов. По истечении 11 недель у мышей, получавших с рационом 0,1 г угля, наиболее информативными параметрами являются относи-

тельное количество моноцитов, эозинофильных и нейтрофиль-ных лейкоцитов. При увеличении дозы вводимого угля до 0,2 г через 5 дней информативность изменяется и более информативными параметрами нейросетевой модели становится процентное число нейтрофильных гранулоцитов, ретикулоцитов и лимфоцитов. После 11 недель у мышей, получавших с рационом 0,2 г угля, наиболее информативны концентрации гемоглобина, процентный уровень ретикулоцитов и эозинофильных лейкоцитов.

Таблица 2

Клеточный состав периферической белой крови лабораторных мышей при энтеральном введении частиц угля и золы

Лейкоци- ты, 109/л Лимфо- циты, % Моно- циты, % Нейтро- филы, % Эозино- филы, % м &

На 5-е сутки эксперимента

Контроль 10,99±1,40 32,5±4,3 3,7±0,6 63,0±4,2 0,9±0,3 0,0±0,0

0,1 г угля 12,19±2,40 33,6±8,7 3,9±0,6 60,9±8,0 1,4±0,5 0,0±0,0

0,2 г угля 9,90±1,90 35,1±2,7 3,5±0,5 59,2±3,0 2,3±0,8 0,0±0,0

0,25 г зольного остатка 0,70П6,67 Р1<0,05 26,5±2,9 4,0±0,6 67,5±2,8 2,0±0,6 Р1<0,05 0,0±0,0

0,5 г зольного остатка 8,52±1,10 30,0±3,8 3,2±0,6 63,8±3,6 1,5±0,4 0,0±0,0

Через 11 недель эксперимента

Контроль 10,94±1,80 25,8±2,5 1,7±0,3 69,1±1,5 2,2±0,6 0,0±0,0

0,1 г угля 19,84±3,60 Р1<0,05 42,3±6,7 Р1<0,05 2,3±0,5 50,5±5,7 Р1<0,05 2,8±1,4 0,1±0,1

0,2 г угля 14,71±1,30 Р1<0,05 30,0±2,7 1,8±0,3 63,1±2,7 Р1<0,05 4,9±0,8 Р1<0,05 0,2±0,1

0,25 г зольного остатка 15,39±2,60 Р1<0,05 43,0±3,8 Р1<0,05 2,7±0,6 49,8±4,0 Р1<0,05 4,5±0,8 Р1<0,05 0,0±0,0

0,5 г зольного остатка 10,94±2,10 37,5±6,4 Р1<0,05 2,3±0,7 58,1±5,6 Р1<0,05 1,8±1,1 0,0±0,0

Примечание: Р1 - статистически достоверные различия с контролем

Результаты нейросетевой классификации показателей периферической крови животных, получавших твердые продукты сгорания угля, показали, что наиболее значимыми показателями нейросетевой модели при классификации «Контроль - Животные, получавшие 0, 25 г золы через 5 дней», являются относительное количество ретикулоцитов, эозинофильных гранулоци-тов и моноцитов в периферической крови. При увеличении времени введения твердых продуктов сгорания угля до 11 недель наиболее информативными становятся процентное содержание эозинофильных гранулоцитов, уровень эритроцитов и ретикуло-цитов в периферической крови. При увеличении дозы золы в рационе животных до 0,5 г через 5 дней наиболее информативными показателями модели становятся концентрация гемоглобина, гематокрит и относительный уровень эозинофильных грану-лоцитов. После 11 недель у мышей, получавших 0,5 г золы, наиболее значимы показатели: процентный уровень моноцитов, эозинофилов и нейтрофилов в периферической крови.

К 5-м суткам введения угля и твердых продуктов его сгорания возникают колебания гематологических показателей. Энтеральное введение малых доз угля ведет к спаду гематокрита и вызывает гипохромию эритроцитов. При этом значимость содержания гемоглобина подтверждена с помощью нейросетевого анализа. При 2-кратном увеличении дозы вводимого угля параметры красной крови не отличались от таковых в контроле, но шел достоверный рост числа ретикулоцитов и выявлена высокая нейроклассификационная информативность этого показателя.

Поступление с пищей твердых продуктов сгорания угля в дозе 0,25 г вызывает снижение уровня гемоглобина и эритроцитов. Нейросетевой анализ показал высокую информативность уровня ретикулоцитов в периферической крови, хотя достоверного изменения величины этого параметра не выявлено. При введении 0,5 г золы, к 5 суткам снижается число ретикулоцитов, и уровень гемоглобина, высокая информативность гемоглобина подтверждена и при нейросетевом анализе. Спустя 11 недель у мышей подопытных групп колебания большинства параметров красной крови по отношению к контролю выражены слабее, чем на 5 сутки. В этот период у мышей, получавших частицы угля и

0,25 г золы, отмечается рост числа ретикулоцитов.

При исследовании параметров периферической крови, характеризующих состояние клеток миелоидного и лимфоидного

ряда, обнаружено, что в ранние сроки воздействия угля и твердых продуктов его сгорания изменения определяются у мышей, получавших 0,25 г золы, как и спад числа лейкоцитов и лимфоцитов. После 11 недель у животных, получавших уголь и золу в дозе 0,25 г, выявлен лейкоцитоз. При рассмотрении фракций зернистых лейкоцитов, у всех животных обнаружено снижение ней-трофилов. При нейросетевом анализе этот показатель высокоинформативен у животных, получавших 0,5 г золы. У мышей, получавших уголь и золу во всех дозах, выявлен лимфоцитоз.

Энтеральное поступление частиц угля и твердых продуктов его сгорания вызывает колебания в пределах диапазона нормы величин показателей белой и красной крови, которые связаны с дозой вводимых веществ и временем их поступления. Эти изменения состояния периферической крови характеризуют развитие компенсаторных адаптационных процессов. С помощью нейросе-тевого классификатора установлено, что при первичной реакции организма на введение угля и твердых продуктов его сгорания число ретикулоцитов имеет высокий уровень информативности. В основе компенсаторной реакции организма экспериментальных животных на введение угля и твердых продуктов его сгорания лежит изменение в содержании ретикулоцитов.

Литература

1. Базелюк Л. Т.// Гигиена и санитар.- 2003.- № 4.- С. 55.

2. Байманова А.М., Кулкыбаев ГА.// Докл. 8 Межд. конгр. по иммунореабилитации «Аллергия, иммунология и глобальная сеть».- Канны, 2002.- С. 21-24.

3. Горбань А.Н., Россиев ДА. Нейронные сети на персональном компьютере.- Новосибирск: Наука, 1996.-276 с.

4. Горбань А.Н. и др. Нейроинформатика.- Новосибирск: Наука, 1998.- 296 с.

5. Ибраева Л.К.// Медицина труда и промышленная экология.- 2004.- № 11.- С. 44-48.

6. Истмаилова А.// Гигиена и санита.- 2006.- №2.- С. 37.

7. Леканова С. С.// Медицина труда и промышл. экология.- 2001.- № 11.- С. 16-19.

8. Олещенко А.М.// Медико-экологические проблемы работающих.- 2004.- № 4.- С. 51-54.

9. Панев Н.И., Ройзен Л.Я. / В кн.: Клинические аспекты профессиональной патологии.- Ленинск-Кузнецк, 2002.- С. 29.

10. Семенихин В..А.Н Бюл. Вост.-Сиб. НЦ СО РАМН.-2004.- № 4.- С. 33-37.

УДК 591.82

ЭПИФИЗАРНАЯ РЕГУЛЯЦИЯ ЦИРКАДИАННОГО РИТМА ПРОЛИФЕРАЦИИ КЛЕТОК ГЕРМИНАТИВНОГО ЦЕНТРА ЛИМФАТИЧЕСКОГО ФОЛЛИКУЛА ТРАХЕОБРОНХИАЛЬНЫХ ЛИМФАТИЧЕСКИХ УЗЛОВ БЕЛЫХ КРЫС

С.М. СЛЕСАРЕВ, В.И. АРАВ*

Ритмичность функционирования является одним из фундаментальных свойств живой материи. Выяснение механизмов регуляции циркадианных ритмов организма представляет собой актуальную проблему современной биологии и медицины. Из всех абиотических факторов среды стабильно во времени изменяется только продолжительность светового дня. Поэтому сформировавшиеся в ходе эволюции циркадианные ритмы организмов синхронизированы с продолжительностью фотопериода. Циркадианные ритмы обладают высокой чувствительностью к различным видам внешних воздействий, а их нарушения могут служить первыми симптомами начинающихся отклонений в жизнедеятельности организма в целом [4, 9]. Десинхроноз может завершаться формированием патологии либо усугубить течение имеющихся заболеваний [3], поэтому надо изучать биоритмы функционирования организма, факторы и уровни их регуляции.

В обеспечении регуляции циркадианных и сезонных биоритмов функций организма важная роль принадлежит эпифизу. Ритмогенную функцию эпифиза связывают с продукцией мелатонина, синтез и секреция которого имеет циркадианный характер [8]. Ранее нами была показана ритмогенная функция эпифиза и его биологически активных пептидов в организации циркадианного ритма пролиферации эпителия крипт тощей кишки [1, 5], эпителия пищевода [7] и сперматогоний типа Б [2] белых крыс.

Это позволяет предполагать его участие в формировании циркадианного ритма пролиферации лимфоидной ткани. Последнее должно осуществляться под влиянием биологически активных веществ эпифиза на процессы клеточной репродукции [6].

Цель исследования - изучение роли биологически активных пептидов эпифиза в формировании циркадианного ритма пролиферации клеток герминативного центра лимфатического фолликула трахеобронхиальных лимфоузлов белых крыс.

Материалы и методы. Опыты выполнены на 270 самцах беспородных белых крыс массой 170-200 г. Животные в течение 20 дней адаптировались к режиму освещения свет: темнота=12:12 (свет с 6 до 18ч). Животных разделили на три группы: интактные контрольные, эпифизэктомированные и эпифизэктомированные с последующей инъекцией уксуснокислого экстракта пептидов эпифиза - эпиталамина. Эпифизэктомия проводилась путем резекции участка теменной кости с подлежащим эпифизом. Водный раствор пептидов эпифиза вводили подкожно в 18ч в течение 14 дней в дозе 2,5 мг/кг. Декапитацию проводили под эфирным наркозом через 40 дней после эпифизэктомии в течение двух суток с интервалом в три часа. Трахеобронхиальные лимфоузлы фиксировали в жидкости Карнуа и заливали в парафин. Срезы окрашивали пиронином-метиловым зеленым по Браше, гематоксилин-эозином и заключали в бальзам. Митотический индекс (МИ) в промилле вычисляли как отношение числа делящихся клеток к 1000 клеток герминативного центра лимфатического фолликула. Статобработку вели по методу Стьюдента -Фишера. Выявление цирка- и ультрадианного ритмов пролиферации, определение их периодов велось параллельно методом спектрального анализа значений МИ и наименьших квадратов.

Результаты. Динамика МИ клеток герминативного центра лимфатического фолликула трахеобронхиальных лимфатических узлов интактных животных представлена на рисунке 1. Изменения МИ характеризовались монофазным ритмом на протяжении суток. Активная фаза монофазного циркадианного ритма МИ клеток герминативного центра приходилась на последние ночные

и, преимущественно, дневные часы и имела сходную продолжительность в течение первых и вторых суток опыта. Начало активной фазы отмечалось перед сменой фоторежима с темнового периода на световой (3ч), а ее окончание в полдень (15ч). Значения МИ были максимальными в 9ч, как первых, так и вторых суток опыта, достоверно превышая минимальные значения МИ в 3ч первых и вторых суток соответственно (Р<0,001). Митотическая активность клеток герминативного центра лимфатического фолликула трахеобронхиальных лимфатических узлов интактных животных в световой фазе фотопериода (31,15±3,21%о) превышала (Р<0,05) таковую в темной фазе (21,4±1,45%о). Данные спектрального и анализа методом наименьших квадратов говорят о наличии циркадианного (период ~24 ч) и ультрадианного (период ~9 ч) ритмов пролиферации клеток герминативного центра.

Эпифизэктомия привела к исчезновению циркадианного ритма МИ клеток герминативного центра лимфатического фолликула трахеобронхиальных лимфатических узлов. Динамика МИ клеток герминативного центра лимфатического фолликула трахеобронхиальных лимфатических узлов эпифизэктомирован-ных животных представлена на рисунке 2. После эпифизэктомии отмечено достоверное увеличение МИ клеток герминативного центра до 43,43±2,08%о (25,8± 1,68%о у интактных животных). Колебания МИ на протяжении двух суток не обнаружили какой-либо связи с фоторежимом. На общем монотонном фоне изменений МИ наблюдался один статистически достоверный подъем (Р<0,05) с максимумом митотической активности в 6ч первых суток. Пролиферативная активность в светлое и темное время суток не имела достоверных (Р>0,05) отличий. Значение МИ в дневные часы составило 41,67±2,42%о, в ночные - 42,63±1,72%о. Результаты спектрального анализа и анализа методом наименьших квадратов показали отсутствие циркадианного и наличие ультрадианного ритма МИ с периодами около 7 и 13 ч.

Введение пептидов эпифиза эпифизэктомированным животным привело к восстановлению монофазного циркадианного ритма МИ клеток герминативного центра лимфатического фолликула трахеобронхиальных лимфатических узлов (рис.3). Соотношение фазовой структуры суточного ритма МИ с суточным свето-темновым циклом характеризовалось повышением уровня митотической активности в дневные часы на протяжении, как 1х, так и 2-х суток опыта. Максимум пролиферирующих клеток отмечен в 12 ч, как в течение 1-х, так и 2-х суток, минимум - в 6 ч (Р<0,001). Аналогичный характер изменений свойственен ритмическим колебаниям МИ клеток герминативного центра лимфатического фолликула трахеобронхиальных лимфатических узлов

* 432017, Ульяновский ГУ, Ин-т медицины, экологии и физкультуры