Особенности морфологических изменений в тканях околоушной слюнной железы и лицевого нерва в ответна воздействие высокоинтенсивного лазерного излучения

ОСОБЕННОСТИ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ ИЗМЕНЕНИЙ В ТКАНЯХ ОКОЛОУШНОЙ СЛЮННОЙ ЖЕЛЕЗЫ И ЛИЦЕВОГО НЕРВА В ОТВЕТ НА ВОЗДЕЙСТВИЕ ВЫСОКОИНТЕНСИВНОГО ЛАЗЕРНОГО ИЗЛУЧЕНИЯ

Базык-Новикова Ольга Михайловна, аспирант кафедры челюстно-лицевой хирургии Белорусского государственного медицинского университета, Минск Брагина Зоя Николаевна, кандидат медицинских наук, доцент кафедры патологической анатомии Белорусского государственного медицинского университета, Минск

Анфиногенова Елена Альфредовна, кандидат медицинских наук, ассистент кафедры патологической анатомии Белорусского государственного медицинского университета, Минск

Bazyk-Novikova Volga M., Post-graduate Student of the Department of Maxillofacial Surgery

of the Belarusian State Medical University, Minsk Bragina Zoya N., PhD, Associate Professor of the Department of Pathological Anatomy

of the Belarusian State Medical University, Minsk Anfinogenova Elena A., PhD, Assistant of the Department of Pathological Anatomy

of the Belarusian State Medical University, Minsk Morphological changes in tissues of parotid gland and facial nerve in response to influence of high-intensity laser radiation

Цель исследования. Провести сравнительный анализ морфологических изменений в тканях околоушной слюнной железы и лицевом нерве при воздействии высокочастотным электрокоагулятором и высокоинтенсивным полупроводниковым лазером в эксперименте. Материалы и методы. Проведены 12 серий экспериментов на 36 половозрелых морских свинках, массой 800-900 г. В основной группе (n=18) краевую резекцию околоушной слюнной железы выполняли хирургическим лазером, контактным методом (диаметр световода 400 мк, мощность 4 Вт), в контрольной (n=18) - игольчатым электродом электрохирургического аппарата (мощность 28Вт). Результаты. Высокоинтенсивное лазерное излучение оказывает более щадящее действие на ткань слюнной железы, вызывает меньший размер области повреждения и незначительную травматизацию лицевого нерва. Репаративные процессы в лазерной ране наблюдаются раньше и приводят к формированию волокнистой ткани уже на 17-е сутки, а на 90-е - к образованию нежного рубца, не нарушающего функцию железы.

Заключение. В нервной ткани при лазерном воздействии в установленных режимах наблюдаются интенсивные регенеративные процессы, приводящие к формированию морфологически полноценного нервного волокна. Ключевые слова: лазер, морфологические изменения, околоушная слюнная железа.

Современная стоматология. — 2018. — №1. — С. 70-75. Objective. In the pilot study the comparative analysis of morphological changes in parotid gland and a facial nerve in case of influence is carried out by a high-frequency electrocoagulator and the high-intensity junction laser.

Materials and methods. 12 series of experiments were carried out on 36 mature guinea pigs weighing 800-900 g. In the main group (n=18), the marginal resection of the parotid salivary gland was performed with a surgical laser, contact method (fiber diameter 400 jm, power 4 W), in the control (n=18) - the needle electrode of the electrosurgical unit (power 28 W).

Results. High-intensity laser radiation has more sparing effect on tissue of salivary gland, causes the smaller size of field of damage and an insignificant travmatization of a facial nerve. Reparative processes in a laser wound are observed earlier and lead to formation of fibrous fabric by 17 days, and to 90 - to formation of the gentle hem which isn't breaking function of gland.

Conclusion. In nervous tissue at laser influence the intensive regenerative processes leading to formation of morphologically full-fledged nervous fiber are observed.

Keywords: laser, morphological changes, parotid gland.

Sovremennaya stomatologiya. — 2018. — N1. — P. 70-75.

Среди многочисленных научно-технических достижений ХХ-ХХ1 веков лазеры занимают одно из ведущих мест. Появление принципиально нового источника света дало мощный толчок в развитии физики, фитобиологии, медицины.

Использование лазеров в медицине основано на эффекте трансформации световой энергии лазерного луча в тепловую при поглощении данного излучения специфическими хромафорами тканей. На практике этот эффект проявляется в виде температурных реакций тканей организма, которые по сути являются однотипными. Нагрев до температуры 37-42,5°С не вызывает необратимых изменений в живой ткани. При нагреве до температуры примерно 42,5-45°С повреждаются только активно размножающиеся клетки (в злокачественных опухолях и зоне воспаления). При достижении температуры 50-60°С начинается денатурация белка, а при кратковременном нагреве до температуры около 70°С наблюдается явление обратимой потери упругости хрящевой ткани. Быстрый нагрев до 100°С может приводить к кипению внутритканевой воды, разрыву межклеточных связей, достижение температуры более 250°С приводит к карбонизации ткани, более 300°С - к горению и абляции (возгонки) биоткани [1].

В последнее 15 лет периодически велись исследования морфологических изменений различных живых тканей в ответ на воздействие лазерного излучения. Среди исследователей сформировалось единое мнение, что при этом отмечается тенденция к снижению экссудативного компонента воспалительного процесса, отмечается слабая нейтрофильная и ранняя выраженная макрофагальная реакция и раннее начало пролифера-тивного компонента воспалительного ответа, а также стимулирующее влияние на фибробласты. Кроме того, лазерные раны характеризуются полным отсутствием микробной обсемененности [1, 2, 3, 5, 9, 10].

В доступной литературе встречаются единичные сообщения о применении хирургических лазеров при операциях на слюнных железах [4, 8, 11], а данные о морфологических изменениях в слюнной железе после

воздействия высокоинтенсивного лазерного излучения - крайне скудны.

А.Б. Давыдов (1997) изучал морфогенез повреждения околоушной железы и лицевого нерва углекислотным лазерным скальпелем в условиях эксперимента. Было установлено, что повреждение тканей слюнной железы сопровождается формированием двух последовательно развивающихся стадий некроза: первичного или маргинального - от действия комплекса физических факторов; вторичного - в результате последующих дисциркуляторных изменений. Первичный некроз представлен узкой зоной компремированной, дегидратированной ткани, которая отделяется от подлежащих тканей зоной демаркации со слабо выраженным хемотаксисом лейкоцитов. Вторичный некроз, образующийся в течение первых суток, зависит от степени повреждения микроциркуляторного русла и представляет зону резерва некроза. Кроме того, автор показал, что в лицевом нерве, попавшем в зону лазерного воздействия, к концу вторых суток наблюдается нарушение проводимости за счет дегенерации аксонов, которая завершается к 30-м суткам. Несмотря на детальное изучение морфологических изменений в лазерной ране слюнной железы, автор не проводил сравнение изменений при воздействии других традиционных повреждающих факторов -высокочастотного электротока, который широко применяется в хирургии для обеспечения гемостаза [4].

Цель исследования - провести сравнительный анализ морфологических изменений в тканях околоушной слюнной железы и лицевом нерве при воздействии высокочастотным электрокоагулятором и высокоинтенсивным полупроводниковым лазером в эксперименте.

Материалы и методы

Исследование выполнено на базе экспериментально-биологической клиники Белорусского государственного медицинского университета (БГМУ). Эксперимент был направлен на получение результатов, не достижимых при использовании других методов (получение данных, необходимых для разработки нового метода хирургического лечения доброкачественных образований околоушной слюнной железы).

В ходе исследования использовали электрохирургический аппарат ФОТЭК Е352; портативный полупроводниковый лазер («Диолаз 940»: длина волны -940 нм, световод - 400 мкм).

В соответствии с поставленными задачами проведены 12 серий экспериментов на 36 половозрелых морских свинках, массой 800-900 г. В основной группе (n=18) краевую резекцию околоушной слюнной железы проводили хирургическим лазером, контактным методом (диаметр световода - 400 мк, мощность 4 Вт), в контрольной (n=18) - игольчатым электродом электрохирургического аппарата (мощность - 28 Вт).

Все эксперименты проводились в условиях операционной экспериментально-биологической клиники БГМУ. Животные содержались в клетках по 2-3 однополых особи, с обеспечением пищей и водой ad libitum. Животные находились при естественном освещении в весенне-летний период и при искусственном освещении в осенне-зимний период с 12-часовым ритмом смены темного и светлого времени суток. Каждая серия экспериментов проводилась в один и тот же сезон как в контрольной, так и в основной группе.

Оперативные вмешательства выполняли под внутрибрюшинным наркозом 10% раствором тиопентала натрия (10 мл на кг веса животного). Выведение из эксперимента осуществлялось через 2 часа, на 2-е, 7-е, 10-е, 17-е и 90-е сутки (n=5 в каждой подгруппе) внутрибрюшинной передозировкой раствора тиопентала натрия [6].

Все исследования проводились в соответствии с принципами, изложенными в постановлении Межпарламентской ассамблеи государств-участников Содружества независимых государств 31.10.2007 г. №29-17 «О модельном законе «Об обращении с животными», а также в положении о порядке использования экспериментальных животных в научно-исследовательских работах и учебном процессе в учреждении образования «Белорусский государственный медицинский университет», утвержденном приказом ректора университета от 18.07.1996 г. №421-уч.

Для гистологического исследования забиралась околоушная слюнная железа

с лицевым нервом (глубина его залегания в препаратах: 5-8 мм от капсулы железы). Препараты фиксировались в 10-процентном растворе нейтрального формалина, затем обезвоживались в спиртах возрастающей концентрации и заливались в парафин. Изготавливались парафиновые срезы толщиной 3 мкн. Препараты окрашивались гематоксилином и эозином. Световую микроскопию осуществляли с помощью оптической системы микроскопа Leica DM 2500, фотофиксацию - видеокамерой DFC425 C. Все формулировки патоморфологических заключений были унифицированы. Всего изучено 72 микропрепарата.

Результаты и обсуждение

Через 2 часа в основной группе наблюдалась типичная для лазерной раны зональность морфологических изменений: зона некроза (лазерной деструкции), первичного термического поражения и перифокальная зона. Зона некроза была представлена скоплениями аморфных, полигональных масс желто-коричневого и черного цвета. В зоне первичного термического поражения определялась узкая полоска ткани с единичными ре-зорбционными вакуолями. В перифо-кальной - нормальная железистая ткань с незначительным отеком и полнокровием стромы. В нервных стволиках отмечался отек, небольшое расширение перинев-рального пространства (рис. 1).

В контрольной группе четкой зональности морфологических изменений не прослеживалось. Зона некроза была значительно шире. Вокруг некроза отмечался клеточный инфильтрат из плазматических клеток, лимфоцитов и единичных лейкоцитов. В прилежащей ткани железы - выраженный отек, полнокровие, большее количество резорбци-онных вакуолей, вакуольная дистрофия в эпителиальных клетках протоков слюнной железы. Присутствовали клеточные инфильтраты из плазматических клеток, лейкоцитов и лимфоцитов. В нервном стволике выявлялся выраженный отек периневрального пространства, гидро-пическая дистрофия эндоневрия, некроз отдельных клеток (рис. 2).

На 2-е сутки в основной группе зона некроза значительно уменьшилась, имела очаговый характер, была чет-

ко отграничена от паренхимы железы. В капсуле определялся отек, единичные лимфоплазмоцитарные инфильтраты с примесью лейкоцитов и кровоизлияния в субкапсулярной зоне. В перифокальной зоне - незначительный отек со слабо выраженной клеточной инфильтрацией из макрофагов, единичных плазматических клеток и лейкоцитов, единичные резорб-ционные вакуоли. В нервном стволе сохранялся незначительный отек пери-неврия. В мелких нервных стволиках, расположенных ближе к зоне резекции, определялась гидропическая дистрофия (рис. 3).

В контрольной группе зона некроза была значительно шире, чем в основной. Определялся некроз прилежащей ткани железы, мышечных и нервных стволиков. Отмечался выраженный отек и полнокровие стромы железы с очаговыми некрозами и большим количеством резорбционных вакуолей, слабая клеточная инфильтрация из макрофагов, плазматических клеток и лейкоцитов (рис. 4). В нервном стволике отмечались выраженная гидропическая дистрофия, отек пери- и эндоневрия, вокруг нерва наблюдалась выраженная воспалительная реакция в виде лимфоплазмоцитарной инфильтрации (рис. 5).

На 7-е сутки в основной группе в зоне воздействия площадь некроза уменьшилась, появилась грануляционная ткань, капсула железы была отечная, обнаруживались подкапсульные кровоизлияния. В перифокальной зоне сохраняется незначительный отек, полнокровие, умеренная лимфоплазмоцитарная инфильтрация с примесью небольшого количества лейкоцитов. Появлялись единичные гигантские клетки типа инородных тел. В остальных отделах железы наблюдались единичные резорбционные вакуоли и незначительный отек (рис. 6). В нервных стволиках, прилежащих непосредственно к зоне лазерного воздействия, сохранялся отек периневрия, слабо выраженная гидропическая дистрофия. В месте повреждения появлялись мелкие новообразованные нервные стволики (рис. 7).

В контрольной группе зона некроза была значительно шире, кроме того в ткани железы обнаруживались очаговые

некрозы, незначительное количество резорбционных вакуолей. Отмечалась выраженная клеточная инфильтрация с преобладанием лейкоцитов и гигантских клеток типа инородных тел. Определялись дистрофические изменения в эпителии протоков железы. В нервном стволике сохранялся выраженный отек периневрия, гидропическая дистрофия с некрозом отдельных клеток (рис. 8).

На 10-е сутки в основной группе зона некроза продолжала уменьшаться. В капсуле определялась незначительная лимфоплазмоцитарная инфильтрация с единичными лейкоцитами и гигантскими клетками типа инородных тел (в области, близкой к зоне некроза). Паренхима железы была сохранна, в строме - слабый отек с клеточной инфильтрацией из единичных лимфоцитов, плазматических клеток, незначительное количество резорбционных вакуолей. Появлялись фибробласты и нежная соединительная ткань (рис. 9). Отмечались новообразованные нервные стволики, в единичных нервных стволиках определялся незначительный отек периневрия, гидропическая дистрофия (рис. 10).

В контрольной группе зона некроза была значительно шире, также некрозы выявлялись в тканях железы и прилежащей мышечной ткани. В перифокальной зоне - массивная лимфогистиоцитарная инфильтрация из макрофагов, лейкоцитов, лимфоцитов и гигантских клеток типа инородных тел. Выявлялось много мелких кровеносных сосудов и единичные фибробласты (рис. 11). В нервном стволике - выраженная гидропическая дистрофия с множественными очаговыми некрозами клеток (рис. 12).

На 17-е сутки в основной группе некроз отсутствовал, в зоне резекции выявлялась нежная волокнистая соединительная ткань. Паренхима железы - нормального строения, воспалительной инфильтрации практически нет, сохранялся лишь незначительный отек стромы (рис. 13). Нервные стволики имели обычное строение (рис. 14).

В контрольной группе сохранялась зона некроза. В капсуле определялся выраженный склероз с остатками лим-фоплазмоцитарной инфильтрации. К ней

Рис. 1. Морфологические изменения в тканях в основной группе через 2 часа после воздействия. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. Нормальная железистая ткань с незначительным отеком и полнокровием стромы. В нервных стволиках отек, небольшое расширение периневрального пространства

Рис. 2. Морфологические изменения в тканях в контрольной группе через 2 часа. В ткани железы выраженный отек, полнокровие, большее количество резорбционных вакуолей. В нервных стволиках отек периневрального пространства, гидропическая дистрофия эндоневрия, некроз отдельных клеток

Рис. 4. Морфологические изменения в тканях в контрольной группе на 2-е сутки. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. Отек и полнокровие стромы железы с очаговыми некрозами и резорбционными вакуолями

Рис. 5. Морфологические изменения в тканях в контрольной группе на 2-е сутки. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. Нервный ствол. Выраженная гидропическая дистрофия, отек пери- и эндоневрия

Рис. 7. Морфологические изменения в тка- Рис. 8. Морфологические изменения в тканях

нях в основной группе на 7-е сутки после в контрольной группе на 7-е сутки. В ткани

воздействия. Окраска гематоксилином и железы очаговые некрозы, резорбционные

эозином. Ув. х100. В нервных стволиках отек вакуоли, лимфоплазмоцитарная инфиль-

периневрия, гидропическая дистрофия трация с примесью лейкоцитов. В нервном

стволике отек периневрия, гидропическая дистрофия с некрозом отдельных клеток

прилежал тонкий слой грануляционной ческая дистрофия (рис. 16). В стенках

ткани с немногочисленными фибробла- сосудов - фибриноидный некроз.

стами. Наблюдалась атрофия паренхимы На 90-е сутки в основной группе на

железы, сохранялись очаги лимфплазмо- месте воздействия определялась зрелая

цитарной инфильтрации с единичными соединительная ткань, паренхима желе-

лейкоцитами (рис. 15). В нервных стволах зы была полностью сохранна, в строме

отмечался отек периневрия, гидропи- отмечался очаговый склероз (рис. 17).

Рис. 3. Морфологические изменения в тканях в основной группе на 2-е сутки после воздействия. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. Незначительный отек ткани железы. В нервном стволе незначительный отек периневрия

Рис. 6. Морфологические изменения в тканях в основной группе на 7-е сутки после воздействия. В железистой ткани отек, полнокровие, лимфоплазмоцитарная инфильтрация, ре-зорбционные вакуоли

Нервная ткань выявлялась в виде группы новообразованных нервных стволиков, к которым прилегали кровеносные сосуды (рис. 18).

В контрольной группе на месте воздействия - рыхлая неоформленная соединительная ткань, в которой присутствовали мелкие кровеносные сосуды. На месте разрушенной железистой и мышечной ткани выявлялся склероз. Определялась выраженная атрофия железистой ткани (рис. 19). В нервных стволах сохранялся отек периневрия и гидропическая дистрофия, процессы регенерации были выражены слабо, в виде мелких единичных нервных стволиков (рис. 20).

Заключение

Воздействие физических факторов, таких как высокочастотный электроток и высокоинтенсивное лазерное излучение, оказывают повреждающее действие на ткань слюнной железы и лицевого нерва. Морфологические

Рис. 9. Морфологические изменения в тканях в основной группе на 10-е сутки после воздействия. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. В зоне некроза фибробласты и нежная соединительная ткань

Рис. 12. Морфологические изменения в тканях в контрольной группе на 10-е сутки. Окраска гематоксилином и эозином. В нервном стволе гидропическая дистрофия с множественными очаговыми некрозами клеток

Рис. 15. Морфологические изменения в тканях в контрольной группе на 17-е сутки. Окраска гематоксилином и эозином. Атрофия паренхимы железы, очаги лимфоплаз-моцитарной инфильтрации

Рис. 18. Морфологические изменения в тканях в основной группе на 90-е сутки после воздействия. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. Группа новообразованных нервных стволиков

Рис. 10. Морфологические изменения в тканях в основной группе на 10-е сутки после воздействия. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. В паренхиме железы слабый отек с клеточной инфильтрацией, незначительное количество резорбционных вакуолей. Новообразованные нервные стволики, в единичных -отек периневрия, гидропическая дистрофия

Рис. 13. Морфологические изменения в тканях в основной группе на 17-е сутки после воздействия. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. Паренхима железы нормального строения, незначительный отек стромы

Рис. 16. Морфологические изменения в тканях в контрольной группе на 17-е сутки. Окраска гематоксилином и эозином. В нервных стволах отек периневрия, гидропическая дистрофия

Рис. 19. Морфологические изменения в тканях в контрольной группе на 90-е сутки. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. Рыхлая соединительная ткань в зоне воздействия, склероз и выраженная атрофия железистой ткани

Рис. 11. Морфологические изменения в тканях в контрольной группе на 10-е сутки. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. Массивная лимфогистиоцитарная инфильтрация с примесью лейкоцитов, мелкие кровеносные сосуды и единичные фибробласты

Рис. 14. Морфологические изменения в тканях в основной группе на 17-е сутки после воздействия. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. Нервные стволики обычного строения

Рис. 17. Морфологические изменения в тканях в основной группе на 90-е сутки после воздействия. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. Паренхима железы нормального строения

Рис. 20. Морфологические изменения в тканях в контрольной группе на 90-е сутки. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100. В нервных стволиках отек периневрия, гидропическая дистрофия, процессы регенерации выражены слабо

изменения в операционной ране (интенсивность воспалительной реакции, скорость и полноценность репаратив-ных процессов) значительно отличаются в зависимости от используемого физического фактора.

Высокоинтенсивное лазерное излучение оказывает более щадящее действие

ЛИТЕРАТУРА

1. Ануфриева С.С. Возможности использования и эффективность лазерного излучения ближнего инфракрасного диапазона в хирургии доброкачественных узловых новообразований молочной железы: Дис. ... д-ра мед. наук. - Челябинск, 2012. - 263 с.

2. Бондаревский И.Я. Экспериментально-клиническое обоснование использования высокоинтенсивного лазерного излучения при хирургическом лечении пациентов с очаговыми образованиями печени: Дис. ... д-ра мед. наук. - Челябинск, 2012. - 223 с.

3. Гейниц А.В., Максименков А.В., Саакян О.В., Яфаров А.Р. // Лазерная медицина. - 2010. - Т.14, №4. - С.49-59.

4. Давыдов А.Б. Диагностика и лечение опухолей околоушной слюнной железы: Автореф. дис. ... канд. мед. наук. - Тверь, 1997. - 22 с.

5. Игнатьева Е.Н. Особенности ответных реакций биологических тканей на воздействие непрерывного и импульсного высокоинтенсивного лазерного излучения: Дис. . канд. мед. наук. - Челябинск, 2007. - 153 с.

6. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте // И.П. Западнюк [и др.]. - 3-е изд. - К.: Вища школа, 1983. - 383 с.

7. Минаев В.П., Жилин К.М. Современные лазерные аппараты для хирургии и силовой терапии на основе полупроводниковых и волоконных лазеров. Рекомендации по выбору и применению. - М.: Издатель И.В. Балабанов. -2009. - 48 с.

8. Мишина Н.В. Применение лазерного скальпеля при операциях на слюнных железах: Автореф. дис. ... канд. мед. наук. Т., 1992. 20 с.

9. Пряхин А.Н. Использование высокоинтенсивного лазерного излучения в лапароскопической хирургии: Автореф. дис. ... д-ра мед. наук. - Челябинск, 2008. - 42 с.

10. Ревель-Муроз Ж.А. Лазерная туннелизация поджелудочной железы в лечении больных хроническим панкреатитом: Автореф. дис. . д-ра мед. наук. - Екатеринбург; 2012. - 34 с.

11. Astor FC., Hanft K.L. // J. of Clinical Laser Medicine and Surgery. - 2003. -Vol.12, N5. - P.297-299.

Этические аспекты. Исследования проводились в соответствии с принципами, изложенными в постановлении Межпарламентской ассамблеи государств-участников Содружества независимых государств 31.10.2007 №29-17 «О модельном законе «Об обращении с животными», а также в положении о порядке использования экспериментальных животных в научно-исследовательских работах и учебном процессе в учреждении образования «Белорусский государственный медицинский университет», утвержденном приказом ректора университета от 18.07.1996 № 421-уч. Конфликт интересов

Согласно заявлению автора, конфликт интересов отсутствует.

Адрес для корреспонденции 220108, Республика Беларусь, г. Минск, ул. Корженевского 4 (11-я городская клиническая больница) Белорусский государственный медицинский университет Кафедра челюстно-лицевой хирургии тел.: +37517225-88-24

Базык-Новикова Ольга Михайловна, e-mail: facesurg@bsmu.by

к 17-м суткам, на 90-е - к образованию нежного рубца, не нарушающего функцию железы.

В зоне лазерного воздействия наблюдаются интенсивные регенеративные процессы в нервной ткани, приводящие к формированию морфологически полноценного нервного волокна.

REFERENCES

1. Anufriyeva S.S. Vozmozhnosti ispol'zovaniya i effektivnost' lazernogo izlucheniya blizhnego infrakrasnogo diapazona v khirurgii dobrokachestvennykh uzlovykh novoobrazovaniy molochnoy zhelezy [Possibilities of use and efficiency of laser radiation of near infrared range in surgery of benign nodal neoplasms of the mammary gland]. Dis. ... d-ra med. nauk. - Chelyabinsk, 2012. - 263 p. (in Russian).

2. Bondarevskiy IYA. Eksperimental'no-klinicheskoye obosnovaniye ispol'zovaniya vysokointensivnogo lazernogo Izlucheniya prikhirurgicheskom lechenii patsiyentov s ochagovymi obrazovaniyami pecheni [Experimental-clinical substantiation of use of high-intensity laser radiation at surgical treatment of patients with focal liver formations]. Dis. ... d-ra med. nauk. - Chelyabinsk, 2012. - 223 p. (in Russian).

3. Geynits A.V, Maksimenkov A.V, Saakyan O.V, Yafarov A.R. Zhelchnokamennaya bolezn' - sovremennyye vozmozhnosti khirurgicheskogo lecheniya (obzor literatury) [Gallstone disease - modern possibilities of surgical treatment]. Lazernaya medttsina, 2010, vol.14, no.4, pp.49-59. (in Russian).

4. Davydov A.B. Diagnostika i lecheniye opukholey okoloushnoy slyunnoy zhelezy [Diagnosis and treatment of tumors of the parotid salivary gland]. Avtoref. dis. . kand. med. nauk. - Tver', 1997. - 22 p. (in Russian).

5. Ignafyeva Ye.N. Osobennosti otvetnykh reaktsiy biologicheskikh tkaney na vozdeyst-viye nepreryvnogo i impu'snogo vysokointensivnogo lazernogo Izlucheniya [Features of response reactions of biological tissues to the action of continuous and pulsed high-intensity laser radiation]. Dis. ... kand. med. nauk. - Chelyabinsk, 2007. - 153 p. (in Russian).

6. Laboratornyye zhivotnyye. Razvedeniye, sodeizhaniye, ispol'zovaniye veksperi-mente [Dilution, content, use in the experiment]. / I.P. Zapadnyuk [i dr.]. - 3-ye izd.

- K.: Vishcha shkola, 1983. - 383 p. (in Russian).

7. Minayev V.P., Zhilin K.M. Sovremennyye lazernyye apparaty dlya khirurgii i silovoy terapii na osnove poluprovodnikovykh i volokonnykh lazerov. Rekomendatsii po vyboru i primeneniyu [Modern laser devices for surgery and power therapy based on semiconductor and fiber lasers. Recommendations for selection and application]. - M.: Izdatel' I.V. Balabanov. - 2009. - 48 p. (in Russian).

8. Mishina N.V. Primeneniye lazernogo skal'pelya pri operatsiyakh na slyunnykh zhelezakh [The use of a laser scalpel for operations on the salivary glands]. Avtoref. dis. ... kand. med. nauk. - Tve^, 1992. - 20 p. (in Russian).

9. Pryakhin A.N. Ispol'zovaniye vysokointensivnogo lazernogo izlucheniya v laparoskopicheskoy khirurgii [Use of high-intensity laser radiation in laparoscopic surgery]. Avtoref. dis. ... d-ra med. nauk. - Chelyabinsk, 2008. - 42 p. (in Russian).

10. Revel'-Muroz ZH.A. Lazernaya tunnelizatsiya podzheludochnoy zhelezy v lechenii bol'nykh khronicheskim pankreatitom [Laser tunneling of the pancreas in the treatment of patients with chronic pancreatitis]. Avtoref. dis. ... d-ra med. nauk.

- Yekaterinburg, 2012. - 34 p. (in Russian).

11. Astor FC., Hanft K.L. Parotid surgery using Nd:YAG laser contact tips: clinical assessment of perioperative facial nerve function. J of Clinical Laser Medicine and Surgery, 2003, vol.12, no.5, pp.297-299.

Поступила 10.11.2017 г. Принята в печать 14.02.2018 г.

Address for correspondence

220108, Republic of Belarus,

Minsk, Korzhenevsky sir., 4

Belarusian State Medical University

Department of Maxillofacial Surgery

phone: +375 17 225-88-24

Bazyk-Novikova Volga, e-mail: facesurg@bsmu.by

на ткань слюнной железы по сравнению с высокочастотным электротоком, вызывает меньший размер области повреждения и низкую возможную травматизацию лицевого нерва.

Репаративные процессы в лазерной ране наблюдаются раньше и приводят к формированию волокнистой ткани уже