Мониторинг контаминации служебных помещений вирусами, вызывающими распространенные инфекции человека

43. Ljungberg J.K., Neely G. Cognitive after-effects of vibration and noise exposure and the role of subjective noise sensitivity. J. Occup. Health. 2007; 49 (2): 111-6.

44. Miedema H.M., Vos H. Noise sensitivity and reactions to noise and other environmental conditions. J. Acoust. Soc. Am. 2003; 113 (3): 1492-504.

45. Fyhri A., Klaeboe R. Road traffic noise, sensitivity, annoyance and self-reported health - A structural equation model exercise. Environ. Int. 2009; 35 (1): 91-7.

46. Shepherd D., Hautus M.J. Negative masking and the units problem in audition. Hear. Res. 2010; 247 (1): 60-70.

47. Kishikaw H., Toshihito M., Uchiyam I., Miyakaw M., Hiramats K., Stansfeld A. Noise sensitivity and subjective health: Questionnaire study conducted along trunk roads in Kusatsu, Japan. Noise Health. 2009; 11 (43): 111-7.

48. Indeykina O.S., Dimitriev D.A., Karpenko Y.D., Dimitriev A.D. Influence of noise on heart rate variability and respiratory rate. Epidemiology. 2012; 23 (5): 39.

49. Agadzhanyan H.A., Baevskiy P.M., Bersneva A.P. Problems of Adaptation and Teaching about Health [Problemy adaptatsii i uchenie o zdorov'e]. Moscow: Izdatel'stvo RUDN; 2006.

50. Baevskiy P.M. Analysis of heart rate variability. Fiziologiya cheloveka. 2002; 28

51. Fleyshman A.N. Heart Rate Variability and Slow Hemodynamic Oscillations: Nonlinea Phenomena in Clinical Practice [Varia-bel'nost' ritma serdtsa i medlennye kolebaniya gemodinamiki:

Hygiene & Sanitation

_DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-2-153-157

Original article

nelineynye fenomeny v klinicheskoy praktike]. 2nd ed. Novo-sibrsk: Izdatel'stvo SO RAN; 2009.

52. Breslav I.S., Nozdrachev A.D. Regulation of respiration: visceral and behavioral components. Uspekhi fiziologicheskikh nauk. 2007; 38

53. Indeykina O.S., Dimitriev D.A., Dimitriev A.D. Change of functioning of cardiorespiratory system at impact white noise. Sovremennyeproblemy naukii obrazovaniya. 2013;

54. Roque A.L., Valenti V.E., Guida H.L., Campos M.F., Knap A., Vanderlei L.M. The effects of different styles of musical auditory stimulation on cardiac autonomic regulation in healthy women. Noise Health. 2013; 15 (65): 281-7.

55. Alvarsson J.J., Wiens S., Nilsson M.E. Stress recovery during exposure to nature sound and environmental noise. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2010; 7 (3): 1036-46.

56. Labber E., Schmidt N., Babin J., Pharr M. Coping with stress: The effectiveness of different types of music. Appl. Psychophysiol. Biofeedback. 2007; 32 (3-4): 163-8.

57. Urakawa K., Yokoyama K. Music can enhance exercise-induced sympathetic dominancy assessed by heart rate variability. Tohoku J. Exp. Med. 2005; 206 (3): 213-8.

58. Indeykina O.S. Autonomic changes in response to the menacing musical stimulus. Vestnik Chuvashskogo gosudarstvennogo pedagogicheskogo universiteta im. I.Ya. Yakovleva. 2013; 2

Поступила 12.07.14 Принята к печати 30.12.14

© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2016 УДК 613.5:616.9-022.6-084

Эспер С. А.1,2, Гребенникова Т.В.12, ИсагулянцМ.Г.2, Ходорович А.М.1, Сыроешкин А.В.1

МОНИТОРИНГ КОНТАМИНАЦИИ СЛУЖЕБНЫХ ПОМЕЩЕНИЙ ВИРУСАМИ, ВЫЗЫВАЮЩИМИ РАСПРОСТРАНЕННЫЕ ИНФЕКЦИИ ЧЕЛОВЕКА

1ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов», Медицинский институт, 117198, Москва; 2ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России, Институт вирусологии им. Д.И. Ивановского, 123098, Москва

В данном исследовании методами ПЦР и гнездовой ПЦР исследована контаминация вирусами гриппа А, аде-но- и ротавирусами различных поверхностей в служебных помещениях в поликлинике, лабораториях научно-исследовательского института и учебных аудиториях. На наличие вируса гриппа А, аденовируса и ро-тавируса были также исследованы собранные в учебных аудиториях аэрозоли. РНК вируса гриппа А была обнаружена в поликлинике в двух пробах, собранных в инфекционном отделении на поверхностях ручек кранов и кнопки мыльницы, в аудитории - на поверхности стола, а также в пробах, собранных в лаборатории. Вирус гриппа А был также обнаружен в составе аэрозоля, собранного в учебной аудитории. РНКротавируса и ДНК аденовируса в пробах обнаружены не были. Обсуждается роль обнаруженной контаминации служебных помещений в распространении вирусов, вызывающих часто встречающиеся инфекции человека.

Ключевые слова: служебные помещения; внутрибольничные помещения; поверхности; аэрозоли; контаминация; вирус гриппа А; ротавирус; аденовирус; нуклеиновая кислота; детекция.

Для цитирования: Эспер С.А., Гребенникова Т.В., Исагулянц М.Г., Ходорович А.М., Сыроешкин А.В. Мониторинг контаминации служебных помещений вирусами, вызывающими распространенные инфекции человека. Гигиена и санитария. 2016; 95 (2): 153-157. DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-2-153-157

Esper S.A.12, Grebennikova T.V.12, Isaguliants M.G.2, Hodorovich A.M.1, Syroeshkin A.V.1 MONITORING FOR PREMISES CONTAMINATION BY VIRUSES CAUSING COMMON INFECTIONS IN HUMAN

'Medical Institute of the Peoples' Friendship University of Russia, Moscow, 117198, Russian Federation; 2Federal Research Centre for Epidemiology and Microbiology named after academician N.F. Gamaleya of the D.I. Ivanovsky Institute of Virology, Moscow, 123098, Russian Federation

We have applied polymerase chain reaction and nested polymerase chain reaction to investigate the level of contamination of the surfaces in the work surface environment of a daily stationary (policlinics), laboratory of research institute and classrooms by influenza, adeno- and rotaviruses. Auditoriums were also assessed for the presence of influenza virus in the air probes. Influenza virus RNA was detected as well in two probes collected in the department of infectious diseases of the hospital (on the water tap handle and on the handle of liquid soap dispenser), as in several probes collected both in laboratories and auditoriums. RNA of Influenza A was also detected in the aerosols of the air

дигиена и санитария. 2016; 95

DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-2-153-157_

Оригинальная статья

probes. RNA of rotavirus and adenoviral DNA were no detected in any of the samples. The results are discussed in the context ofpossible routes of spread of common viral pathogens in the indoor work environment.

Keywords: Indoors environment; hospital environment; surfaces; aerosol; contamination; influenza A virus; rotavirus; adenovirus; viral nucleic acid; detection.

For citation: Esper S.A., Grebennikova T.V., Isaguliants M.G., Hodorovich A.M., Syroeshkin A.V. Monitoring for premises contamination by viruses causing common infections in human. Gigiena i Sanitaria (Hygiene and Sanitation, Russian journal) 2016; 95(2): 153-157. (In Russ.). DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-2-153-157

For correspondence: Suzan A. Esper, Junior Researcher Groups Chemistry viral nucleic acids and proteins, D.I. Ivanovsky

Institute of Virology, E-mail: suzan_asper@yahoo.com

Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest.

Funding. The study had no sponsorship.

Received 11 September 2015

Accepted 17 November 2015

Введение

Проблема профилактики острых респираторных вирусных инфекций (ОРВИ) и гриппа в настоящее время весьма актуальна из-за довольно высокого уровня заболеваемости. Всплески заболеваемости ОРВИ и гриппом обычно носят характер сезонных эпидемий и связаны с легкостью распространения вирусов в коллективах людей (на работе, в транспорте, внутри семьи) и полным отсутствием возможностей профилактики распространения вирусов через внутрикомнатные аэрозоли. По оценкам ВОЗ, от различных вариантов вирусов во время сезонных эпидемий в мире ежегодно умирают от 250 тыс. до 500 тыс. человек. Ротавирус, вызывающий кишечную инфекцию, так называемую болезнь грязных рук, является одним из самых распространенных, поражающих в основном детей. Ежегодно ротавирусом заболевает в среднем 125 млн детей на Земле. Необходимо также отметить, что против перечисленных вирусов не вырабатывается пожизненного иммунитета, не предусмотрена обязательная вакцинация населения, а существующее лечение преимущественно симптоматическое [1, 2].

Исследования, проведенные ранее, показали, что поверхности и предметы играют важную роль в распространении возбудителей заболеваний, в том числе и вирусов, которые могут оставаться инфекционными вне тела в течение длительного периода времени [3-5]. При таком способе передачи вирусов реализуется контактно-бытовой способ передачи микроорганизмов. Одним из самых распространенных способов передачи ОРВИ и гриппа является воздушно-капельный через контаминированный воздух, контактно-бытовой способ встречается реже [6-10]. При этом вирусные частицы могут распространяться через биогенный внутрикомнатный аэрозоль - совокупность мельчайших частиц, находящихся во взвешенном состоянии. Частицы аэрозоля могут быть как твердыми, так и жидкими. При попадании вируса из аэрозоля в организм через верхние дыхательные пути уже через 8 ч количество вирусных частиц увеличивается в 10 раз.

Существует высокий риск распространения вирусных заболеваний в общественных местах, таких как больницы и учебные аудитории. Мониторинг загрязнения окружающей среды необходим для проверки общего уровня гигиены, а также контроля за осуществлением мер, направленных на профилактику распространения вирусных инфекций, а также информированности персонала о путях передачи вирусных инфекций и их предотвращения [11-15]. Оценка контаминации вирусами служебных помещений, в частности медицинских учреждений и учебных заведений, - важный элемент в стратегии предотвращения распространения вирусных заболеваний [8-12].

Цель исследования - изучение уровня вирусной контаминации на поверхностях и в аэрозолях служебных помещений -гигиенических объектов, где реализуются контактно-бытовой и воздушно-капельный механизмы передачи инфекции.

Для корреспонденции: Эспер Сузан Аднановна, мл. науч. сотр. группы химии вирусных нуклеиновых кислот и белков, Институт вирусологии им. Д.И. Ивановского ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи», E-mail: suzan_asper@yahoo.com

В соответствие с целью исследования были поставлены следующие задачи: измерение контаминации поверхностей ротавирусами, аденовирусами и вирусом гриппа А в больнице, учебных аудиториях и лабораториях, исследования на наличие вируса гриппа А, ротавируса и аденовируса аэрозолей, собранных в учебных аудиториях, и оценка уровня безопасности и качества санитарной обработки служебных помещений.

Материал и методы

Пробоотбор проводили с поверхностей площадью 30-36 см2 и отдельных предметов (кнопки, ручки) с помощью ватных тампонов, смоченных раствором 6 М гуани-динизотиоцианата, как описано ранее [16]. Нуклеиновые кислоты элюировали с тампонов 6 М раствором гуанидини-зотиоцианата и анализировали путем ПЦР и ОТ-ПЦР.

Пробоотбор аэрозолей проводили с помощью специального устройства [17] на аналитические фильтры АФА-РМП-3, изготовленные на основе материала ФПП-15-1,5 и обеспечивающие при скоростях пробоотбора сбор 99,9% аэрозольных частиц с линейными размерами от 0,3 мкм. Устройство позволяет проводить отбор проб на три фильтра одновременно. Побудителем расхода воздуха являлся пылесос «Karcher» NT 351 ECO с максимальным расходом воздуха 78 л/с. Контроль расхода воздуха проводили с помощью расходомера G-6. Средняя скорость пробоотбора составляла 16,0±0,1 м3/ч, объем воздуха, пропущенного через фильтр, на каждую пробу составлял 48-80 м3.

Для счета частиц различного диаметра в аэрозолях использовали счетчик аэрозолей FLUKE 983 и счетчик частиц IDL 3-1. Измеряли размеры частиц (0,3 um, 0,5 um, 1,0 um, 2,0 um, 5,0 um, 10,0 um) и их концентрацию в единицу времени. Измерения проводили каждые 7 мин (0-130 измерения проводили в 1-е сутки, 131-330 - во 2-е сутки, 331-435 - в 3-и сутки).

Выделение ДНК и РНК проводили с использованием неорганического сорбента (SiO2). К 200 мл образца добавляли 600 мл лизирующего буфера (6 М гуанидинтиоцианат, 0,1 М Трис-HCL рН 6,4, 0,1% тритон Х-100) и 20 мл неорганического сорбента, тщательно перемешивали и снова инкубировали 10 мин при комнатной температуре в шейкере. Затем центрифугировали 30 с при 13 000 g и удаляли надосадочную жидкость. Осадок сорбента дважды промывали 200 мл промывочного буфера (6 М гуанидинтиоцианат, 0,1 М трис-HCl рН 6,4) и 2 раза - 70% этанолом. Затем осадок подсушивали в течение 10 мин при 56 oC и элюировали ДНК и РНК с сорбента в 30 мл деионизованной воды, обработанной диэтилпирокарбонатом для удаления РНКаз.

Тест-системы и наборы праймеров: для определения рота-вируса и аденовируса были использованы тест-системы «Ам-плиСенс Rotavirus-Eph» и «АмплиСенс Adenovirus-Eph» (Интерлабсервис), для обнаружения вируса гриппа А - тест система «Тест-система для обнаружения вируса гриппа А методом ПЦР» (ООО Ветбиохим).

Результаты и обсуждение

Анализ образцов с поверхностей в поликлинике. Было собрано 149 проб с разных поверхностей в одной из поликлиник

Hygiene & Sanitation

DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-2-153-157

Оriginal article

Рис. 1. Результаты измерения концентрации частиц аэрозоля в студенческой аудитории в течение 3-х суток с интервалом 7 мин.

г. Москвы в период с октября по декабрь 2013 г. Сбор был осуществлен в рабочее время в стоматологическом, терапевтическом и процедурном кабинетах, в инфекционном отделении, в лаборатории, туалете и коридорах, с разных поверхностей (ручки дверей, кресла пациентов, рабочий стол врача, ручки кранов, рычаги дозаторов жидкого мыла, кушетки пациентов, кнопки слива в туалете, сидения унитазов, кнопки в лифте и стен). Поликлиника была выбрана как место повышенного риска распространения вирусов, а также как место скопления большого числа больных людей.

Все пробы были проанализированы на присутствие РНК ротавируса и гриппа А и ДНК аденовируса. Для детекции вирусов была использована ПЦР как наиболее чувствительный и эффективный метод обнаружения вирусных геномов как на поверхностях, так и в составе аэрозолей. Площадь 30-36 см2 была выбрана с учетом предшествующего аналогичного исследования по изучению контаминации ряда вирусов [4]. Сбор проводили ватными тампонами, нуклеиновые кислоты элюи-ровали с тампонов 6 М раствором гуанидинизотиоцианата и анализировали путем ПЦР и ОТ-ПЦР с праймерами, специфическими к рота- и аденовирусам и вирусам гриппа типа А, позволяющим выявлять вирусы соответствующих семейств.

РНК вируса гриппа А была обнаружена в двух пробах, собранных в инфекционном отделении на поверхностях ручек кранов и кнопок дозатора жидкого мыла. Ротавирусная РНК и аденовирусная ДНК в пробах обнаружены не были. В нашем исследовании мы получили единичные положительные результаты, в основной части поверхностей внутрибольнич-ных помещений вирусные нуклеиновые кислоты обнаружены не были. Такие результаты исследования согласуются с полученными ранее, в частности с проведенным исследованием на присутствие норовируса, аденовируса, вируса гепатита С и вируса Torque teno (TTV) в одной из больниц [4]. Была обнаружена одна положительная проба на наличие ДНК норовируса и одна - на ротавирусную РНК; в 17 пробах был обнаружен вирус TTV; ни одной положительной пробы на РНК вируса гепатита С [4].

Анализ образцов с поверхностей в аудиториях. Исследование проводили в период с февраля по апрель 2014 г. в одном из университетов г. Москвы. Учебные аудитории были выбраны как модель помещения, где наблюдается скопление большого числа людей, что способствует распространению вирусных заболеваний. Всего было собрано 43 проб с поверхностей, таких как студенческие и преподавательские столы, ручки дверей, кнопки и сидения унитазов и кнопки/рукояти дозаторов жидкого мыла. Отбор происходил непосредственно после лекций. Образцы были проанализированы на присутствие РНК рота-вируса и вируса гриппа А, а также ДНК аденовируса. Сбор проводили с помощью ватных тампонов, как описано выше. РНК вируса гриппа А была обнаружена в одной пробе, собранной с поверхности стола преподавателя. Остальные пробы были отрицательными на присутствие ротавирусной РНК, аденовирусной ДНК и РНК вирусов гриппа типа А.

Анализ аэрозолей внутри аудитории. Для изучения состава аэрозолей внутри аудитории использовали счетчик частиц (Fluke), измеряющий размеры частиц (0,3 um, 0,5 um, 1,0 um,

Рис. 2. Зависимость концентрации частиц от времени измерения в аэрозоле, собранном в аудитории в середине дня с (12 до 15 ч).

2,0 ит, 5,0 ит, 10,0 ит) и их концентрацию в единицу времени. Измерения проводили каждые 7 мин в течение 3 сут. В общей сложности было проведено более 300 измерений. На рис. 1 представлены результаты измерения концентрации частиц аэрозоля во времени в течение 3-х суток.

Как видно из рис. 1, в 1-е сутки в аудитории накапливается 50 000 частиц/м3, а к 3-м суткам концентрация частиц достигает 180 000 частиц/м3, т. е. концентрация частиц в воздухе возрастает с течением времени. При этом наибольшая концентрация частиц была обнаружена около двери, наименьшая - в центре комнаты. Особо высокая концентрация была обнаружена в рабочее время, т. е. во время проведения лекций и семинаров (рис. 2).

Следующим этапом изучения внутрикомнатного аэрозоля был сбор аэрозольных частиц на аналитические фильтры и проведение молекулярного анализа. Было отобрано 40 образцов. После сбора фильтры помещали в 6 М гуанидинизотио-цианат, выделяли нуклеиновые кислоты (ДНК и РНК) и анализировали методом ПЦР с праймерами, специфичными к РНК ротавируса и вируса гриппа А и ДНК аденовируса, используя указанные тест-системы. Результаты представлены на рис. 3.

Анализ выявил образцы, содержащие РНК вируса гриппа А, ротавирусная РНК и аденовирусная ДНК обнаружены не были. При этом все образцы аэрозолей, содержащие РНК вируса гриппа А. были отобраны в феврале 2013 г. В данный зимне-весенний период (февраль-март) наблюдалось повышение заболеваемости гриппом, хотя эпидемии не было зарегистрировано. С конца января-начала февраля в связи с окон-

45

40

to о а. п.

о аз т s t;

о ^

3530252015105-

РНК ДНК РНК вируса

ротавируса аденовируса гриппа А

Щ Отрицательный результат

ЦЦ Положительный результат

Рис. 3. Анализ частиц аэрозоля, собранных в учебных аудиториях, на присутствие нуклеиновых кислот ротавируса, аденовируса и вируса гриппа А.

дигиена и санитария. 2016; 95

DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-2-153-157

Оригинальная статья

Результаты анализа проб, собранных с лабораторных поверхностей, на присутствие РНК вируса гриппа, ротавирусной РНК и аденовирусной ДНК до обработки дезинфектантом

Место сбора

РНК вируса гриппа А

РНК ротавируса

ДНК аденовируса

Рабочий стол +

Рабочий стол +

Рабочий стол +

Рабочий стол +

Рабочий стол +

Рабочий стол +

Поверхности ламинара +

2-го уровня защиты

Поверхности ламинара +

2-го уровня защиты

Поверхности ламинара 2-го уровня защиты

Поверхности ламинара 2-го уровня защиты

чанием зимних каникул и праздников в эпидпроцесс активно стали вовлекаться дети школьного возраста, а с первой декады февраля - взрослое население (сообщение на сайте Роспотреб-надзора). Характерно, что в осенний период (октябрь-ноябрь 2013 г.) РНК вируса гриппа А в аэрозолях учебных аудиторий обнаружено не было.

В помещении, в котором воздух не очищается, в 1 литре воздуха содержится до 300 тыс. пылинок размером 0,5 мкм. Объем вдоха составляет 1,5-2 л, поэтому всякий раз, когда мы делаем вдох, в нашей дыхательной системе остается около 400 тыс. мельчайших частиц пыли и аэрозоля. Таким образом, каждый человек ежедневно через свои легкие пропускает более 30 млн частиц пыли и аэрозоля. Среди биогенных частиц выделяют антропогенные частицы. Размеры аэрозольных частиц обычно колеблются от 0,002 до 100 мкм. Поэтому несмотря на то что масса аэрозольных частиц на 1 м3 в среднем составляет несколько микрограммов, мы обычно не видим частицы и полагаем, что воздух чист. Обнаруженная нами в учебных аудиториях концентрация аэрозольных частиц уровня 180 тыс. частиц/м3 соответствует 9-му классу ГОСТ ИСО 14644-1-2002. «Межгосударственный стандарт. Чистые помещения и связанные с ними контролируемые среды. Часть 1. Классификация чистоты воздуха» [18]. Этот класс соответствует учебному помещению в эксплуатируемом состоянии.

Скопившиеся в воздухе аэрозоли могут служить носителями вирусных частиц и способствовать распространению и передаче вирусных инфекций, в частности вируса гриппа. Это объясняет выявление нами РНК вируса гриппа типа А в аэрозолях, собранных в учебных аудиториях в эпидемический период. Чувствительность гнездовой ПЦР - 102 молекул/мкл или 1 • 10-6 мкг/мкл. Детекция РНК вируса гриппа типа А означает его наличие в количестве примерно 1 • 10-3 мкг/м3. Такой уровень загрязнения соответствует 9 классу ГОСТ ИСО [19].

Обнаружение РНК вируса гриппа А на поверхности стола в аудитории, а также в составе частиц комнатных аэрозолей не только определяет важную роль данного вируса во внутри-комнатной контаминации, но и необходимость более частого вентилирования или проветривания учебных помещений.

Анализ образцов с поверхностей в лабораториях. Для сравнения уровня загрязнения различных помещений сбор образцов был также проведен с различных поверхностей лабораторий научно-исследовательского института как помещений, где находится не очень большое число людей, но наблюдается повышенный контакт с вирусными агентами. Столы, различное оборудование, поверхности ламината 2-го уровня защиты до обработки дезинфектантом были проанализирова-

ны на присутствие РНК вируса гриппа, ротавирусную РНК и аденовирусную ДНК. Результаты исследования представлены в таблице.

В восьми из десяти проб была обнаружены нуклеиновые кислоты вируса гриппа А, однако надо заметить, что на поверхностях в лаборатории может обнаруживаться не только вирус гриппа, но и ампликоны после проведения ПЦР (для диагностики или секвенирования первичной структуры вируса). В любом случае после дезинфекции лабораторных поверхностей исследование проб в тех же самых местах РНК вируса гриппа А не выявила.

Заключение

Мониторинг внутрикомнатных поверхностей показал наличие РНК вируса гриппа А в двух пробах, собранных в инфекционном отделении поликлиники на поверхностях ручек кранов и кнопки дозатора жидкого мыла, стола в учебной аудитории. В восьми из десяти проб до дезинфекции лаборатории были обнаружены нуклеиновые кислоты вируса гриппа А. Нуклеиновые кислоты ротавируса и аденовируса на поверхностях исследуемых помещений обнаружены не были.

Выявленная нами в учебных аудиториях концентрация аэрозольных частиц уровня 180 тыс. частиц/м3 соответствует 9-му классу ГОСТ ИСО. Исследование проб внутрикомнат-ных аэрозолей молекулярными методами показало наличие РНК вируса гриппа А в составе частиц аэрозолей, собранных в учебных аудиториях в эпидемический период. Нуклеиновые кислоты ротавируса и аденовируса в образцах аэрозолей помещений обнаружены не были.

Полученные результаты указывают на важную роль изучаемых гигиенических объектов (внутрикомнатных поверхностей и аэрозолей) в распространении вирусных инфекций, передающихся воздушно-капельным путем. Выявленный нами уровень санитарии и дезинфекции в поликлинике и аудиториях в общем соответствует государственным стандартам для поликлиник и учебного помещения в эксплуатируемом состоянии. Тем не менее рекомендуется более тщательная обработка тех поверхностей, которым часто не уделяется должное внимание при уборке, - ручки кранов и кнопки дозаторов жидкого мыла, также рекомендуется уборка и протирание столов дезинфицирующими растворами в аудиториях после каждого занятия, особенно в зимне-весенний период, когда наблюдаются сезонные эпидемии ОРВИ. Кроме того, заболевшим преподавателям и студентам рекомендуется не посещать занятия или использовать медицинскую маску. Также рекомендуется регулярно проветривать аудиторные помещения для предотвращения распространения заболеваний с внутрикомнатными аэрозолями. Результаты исследования лабораторных помещений показали необходимость регулярной обработки лабораторных поверхностей и ламинарных шкафов дезинфектанта-ми.

Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки. Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литера ту ра

16. Эспер С.А., Гребенникова Т.В., Исагулянц М.Г., Кюрегян К.К., Ходорович А.М. Разработка методов и подходов обнаружения вирусов гепатита А и С на поверхностях для дальнейшего исследования внутрибольничной контаминации. Здоровье населения и среда обитания. 2015; 3 (264): 42-4.

18. ГОСТ-Р-ИСО 14644-1-2002. Межгосударственный стандарт. Чистые помещения и связанные с ними контролируемые среды. Часть 1. Классификация чистоты воздуха. М.: ИПК Издательство стандартов; 2003.

19. ГОСТ-Р-ИСО 14644-8-2008. Межгосударственный стандарт. Чистые помещения и связанные с ними контролируемые среды. Часть 8. Классификация молекулярных загрязнений в воздухе. М.: Стандартинформ; 2009.

References

1. Lozano R., Naghavi M., Foreman K., Lim S., Shibuya K., Aboy-ans V. et al. Global and regional mortality from 235 causes of death for 20 age groups in 1990 and 2010: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2010. Lancet. 2012; 380: 2095-128.

2. Cherry D.K., Hing E., Woodwell D.A., Rechtsteiner E.A. National Ambulatory Medical Care Survey: 2006 Summary. Natl. Health Stat. Report. 2008; 374 (3): 1-39.

3. Ganime A.C., Carvalho-Costa F.A., Mendon^a M.C., Vieira C.B., Santos M., Costa Filho R. et al. Group A rotavirus detection on environmental surfaces in a hospital intensive careunit. Am. J. Infect. Control. 2012; 40 (6): 544-7.

4. Carducci A.,Verani M., Lombardi R., Casini B., Privitera G. Environmental survey to assess viral contamination of air and surfaces in hospital settings. J. Hosp. Infect. 2011; 77 (3): 242-7.

5. Davanzo E., Frasson C., Morandin M., Trevisan A. Occupational blood and body fluid exposure of university health care workers. Am. J. Infect. Control. 2008; 36 (10): 753-75.

6. Petersen N.J. An assessment of the airborne route in hepatitis B transmission. Ann. NY Acad. Sci.1980; 353: 157-66.

7. Lopman B.A., Reacher M.H., Vipond I.B., Hill D., Perry C., Hal-laday T. et al. Epidemiology and cost of nosocomial gastroenteritis, Avon, England, 2002-2003. Emerg. Infect. Dis. 2004; 10 (10): 1827-34.

8. Gupta A.K., Anand N.K., Manmohan N.K., Lamba L.M.S., Gupta R., Srivastava L. Role of bacteriological monitoring of the hospital environment and medical equipment in a neonatal intensive care unit. J. Hosp. Infect. 1991; 19 (4); 263-71.

9. Gallimore C.I., Taylor C., Gennery A.R., Cant A.J., Galloway A., Xerry J. et al. Comparison of two pediatric wards over a winter season. J. Clin. Microbiol. 2008; 46 (9): 3112-5.

10. Morris J., Duckworth G.J., Ridgway G.L. Gastrointestinal endoscopy decontamination failure and the risk of transmission of blood-borne viruses: a review. J. Hosp. Infect. 2006; 63: 1-13.

11. Morter S., Bennet G., Fish J., Richards J., Allen D.J., Nawaz S. et al. Norovirus in the hospital setting: virus introduction and

О КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2016 УДК [616-093/-098:591.69-99]

Бобырева Н. С.1, Корнеева Я.А.12, Дегтева Г.Н.1

Hygiene & Sanitation

_DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-2-157-162

Original article

spread within the hospital environment. J. Hosp. Infect. 2011; 77: 106-12.

12. Lopman B.A., Andrews N., Sarangi J., Vipond L.B., Brown D.W.G., Reacher M.H. Institutional risk factors for outbreaks of nosocomial gastroenteritis: survival analysis of a cohort of hospital units in South-west England 2002-2003. J. Hosp. Infect. 2005; 60: 135-43.

13. Chadwick P.R., Beards G., Brown D., Caul E.O., Cheesbrough J., Clarke I. et al. Management of hospital outbreaks of gastroenteritis due to small round structured viruses. J. Hosp. Infect. 2000; 45: 1-10.

14. Harris J.P., Lopman B.A., O'Brien S.J. Infection control measures for norovirus: a systematic review of outbreaks in semi-closed settings. J. Hosp. Infect. 2010; 74: 1-9.

15. Xerry J., Gallimore C.I., Iturriza-Gómara M., Allen D.J., Gray J.J. Transmission events within outbreaks of gastroenteritis determined through analysis of nucleotide sequences of the P2 domain of genogroup II noroviruses. J. Clin. Microbiol. 2008; 46: 947-53.

16. Esper S.A., Grebennikova T.V., Isagulyants M.G., Kyuregyan K.K., Khodorovich A.M. Development of methods and approaches, the detection of hepatitis A and C on the surface for further study of nosocomial contamination. Zdorov'e naseleniya i sreda obitaniya. 2015; 3

17. Goncharuk V.V., Lapshin M.A., Chichaeva A.O., Samsoni-Todorov V.V., Taranov I.S., Matveeva G.N. et al. The system of the efficient monitoring of air quality in maritime cities and health resort areas: pollution of the nearwater layer of the atmosphere with an aerosols. Journal of Water Chemistry and Technology. 2012; 34 (2): 79-87.

18. GOST-R-ISO 14644-1-2002. Interstate standard. Cleanrooms and associated controlled environments. Part 1: Classification of air cleanliness. Moscow: Publisher IPC standards; 2003.

19. GOST-R-ISO 14644-8-2008. Interstate standard. Cleanrooms and associated controlled environments. Part 8: Classification of airborne molecular contamination. Moscow: Standartinform; 2009.

Поступила 11.09.15 Принята к печати 17.11.15

AНАЛИЗ ЗАБОЛЕВАЕМОСТИ ПАРАЗИТОЗАМИ В НЕНЕЦКОМ АВТОНОМНОМ ОКРУГЕ

1ГБОУ ВПО Северный государственный медицинский университет Минздрава России, 163000, Архангельск; 2ФГАОУ ВПО Северный (Арктический) федеральный университет им. М.В. Ломоносова, 163002, Архангельск

Представлен анализ собственных паразитологических исследований, а также показателей заболеваемости паразитозами по данным официальной статистической отчетности лечебных учреждений, Роспотребнад-зора в Ненецком автономном округе (НАО) за период с 2002 по 2013 г. Обследование на паразитозы проводили у коренных жителей - ненцев-оленеводов и членов их семей, а также пришлого населения, проживающих на территории НАО в поселках Варнек, Красное, Каратайка, Несь, Харута, Хорей-Вер, Искатели, селе Ома и городе Нарьян-Мар. В указанный период методом нативного мазка был обследован 5891 человек, по методу Като - 217 417 человек, методом перианального соскоба - 3054, методом ИФА на наличие специфических антител к антигенам различных паразитов - 11 556. Выявлены тенденции к снижению заболеваемости населения округа лямблиозом, энтеробиозом, дифиллоботриозом и росту показателей пораженности населения округа аскаридозом, выявлены новые виды паразитозов для округа - описторхоз, токсокароз во всех возрастных группах населения НАО.

Ключевые слова: коренное население; описторхоз; токсокароз; лямблиоз; эхинококкоз; аскаридоз; энтеробиоз.

Для цитирования: Бобырева Н.С., Корнеева Я.А., Дегтева Г.Н. Анализ заболеваемости паразитозами в Ненецком автономном округе. Гигиена и санитария. 2016; 95 (2): 157-162. БОТ: 10.18821/0016-9900-2016-95-2-157-162

Для корреспонденции: Корнеева Яна Александровна, канд. псих. наук, зав. отд. НИИ Арктической медицины ГБОУ ВПО СГМУ Минздрава РФ; доцент каф. психологии Северного (Арктического) федерального университета им. М.В. Ломоносова, E-mail: amazonkca@mail.ru