Динамическое поверхностное натяжение сыворотки крови свиноматок

свинья

9. Hofmann M., Wyler R. ropagation of the virus of porcine epidemic diarrhea in cell culture. J Clin Microbiol, 1988, 26, 2235—2239.

10. Honda E, Takahashi H, Okazaki K. et al. The multiplication of transmissible gastroenteritis viruses in several cell lines originated from porcine kidney and effects of trypsin on the growth of the viruses. Jpn. J. Vet. Sei.,1990, 52, 217—224.

11. Kadoi K., Sugioka H„ Satoh T„ Kadoi B.K. The propagation of a porcine epidemic diarrhea virus in swine cell lines. New Microbiol, 2002, 125, 285—290.

12. Kaji T., Shimizu Y. Passive Immunization against transmissible gastroenteritis virus in piglets of ingestion of milk of sows inoculated with attenuated virus. Natl. Inst. Anim. Health Q. (Tokyo), 1978, 18, 43-52.

13. Kang T.J., Kim Y.S., Jang Y.S., Yang M.S. Expression of the synthetic neutralizing epitope gene of porcine epidemic diarrhea virus in tobacco plants without nicotine. Vaccine, 2005. 23, 2294—2297.

14. Kim S.Y., Song D.S., Park B.K. Differential detection of transmissible gastroenteritis virus and porcine epidemic diarrhea virus by duplex RT-PCR. J Vet Diagn Invest, 2001, 13, 516—520.

15. Kweon C.H., Kwon B.J., Lee J.G. et al. Derivation of attenuated porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) as vaccine candidate. Vaccine, 1999, 17, 2546—2553.

16. Laude H., Rasschaert D., Delmas B. et al. Molecular biology of transmissible gastroenteritis virus. Vet. Res., 1993, 24, 125-150.

17. Moxley R.A., Olson L.D. Clinical evaluation of transmissible gastroenteritis virus vaccines and vaccination procedures for inducing lactogenic immunity in sows.Am Jvet Res, 1989, 50. 111—118.

18. Pensaert M., Cox E. orcine respiratory Coronavirus related to transmissible virus. Agri-Pract., 1989, 10, 17—21.

19. Pensaert M.. Yeo S.G. Porcine epidemic diarrhea virus. In: Diseases of Swine. 9th ed. Blackwell Publ Co, 2006. 367—372.

20. Saif L.J., Bohl E.H. Passive immunity to transmissible gastroenteritis virus: intramammary viral inoculation of sows. Ann NY Acad Sei, 1983, 409, 708—723.

21. Saif I___I., Sestak K. Transmissible gastroenteritis virus and porcine

respiratory Coronavirus. In: Diseases of Swine, 9,h edition, 2006, 487-516.

22. Saif L.J., Wesley R.D. Transmissible gastroenteritis virus and porcine respiratory Coronavirus. In: Diseases of Swine, 8" edition, 1999, 286-316.

23. Shibata I., Tsuda T., Mori M. et al. Isolation of porcine epidemic diarrhea virus in porcine cell cultures and experimental infection of pigs of different ages. Vet Microbiol, 2000, 72, 173—182.

24. Shoup D.I. Swayne D.E., Jackwood D.J. et al. Immunohistochemistry of transmissible gastroenteritis virus antigens in fixed paraffin-embedded tissues. J. Vet Diagn Invest, 1996, 8, 161—167.

25. Song D.S., Oh J.S., Kang B.K. et al. Oral efficacy of Vera cell attenuated porcine epidemic diarrhea virus DR13 strain. Res. Vet Sei, 2007, 82, 134—140.

26. Sueyoshi M. Tsuda T., Yamazaki K. An immunohistochemical investigation of porcine epidemic diarrhoea, et al. J Clin Pathol, 1995, 113, 59—67.

27. Sune C„ Jimenez G., Correa I. et al. Mechanisms of transmissible gastroenteritis Coronavirus neutralization. Virology, 1990, 177. 559—569.

28. Tuboly T„ Yu W„ Bailey A. et al. Immunogenicity of porcine transmissible gastroenteritis virus spike protein expressed in plants. Vaccine, 2000,18,2023—2028.

29. Usami Y„ Nomura H., Iso A. et al. Porcine epidemic diarrhea and porcine respiratory Coronavirus. J Jpn Vet Med Assoc, 1998, 51, 652—655.

30. Wesley R.D., Woods R.D. Induction of protective immunity against transmissible gastroenteritis virus after exposure of neonatal pigs to porcine respiratory Coronavirus.Amer J Vet Res, 1996, 57, 157—162.

O.V. Sergeev. Coronoviral gastroenterities of swine.

532.612.4:636.424.1:612.12 ДИНаМИЧеСКОе ПОВврХНОСТНОС

натяжение сыворотки крови свиноматок

E.H. Зарудная, С.Ю. Зайцев, В.И. Максимов, МГАВМиБ

Ключевые слова: сыворотка крови, поверхностное натяжение, тензиометр

Сокращения: ДПН — динамическое поверхностное натяжение

Введение

Определение параметров ДПН является важной и актуальной задачей для изучения биологических жидкостей организма, в частности сыворотки крови человека и животных [1...3]. Однако в практической ветеринарии методы измерения ДПН остаются пока малоизвестными, первые данные по ДПН сыворотки крови животных были получены сотрудниками МГАВМиБ [5).

Цель наших исследований состояла в выявлении особенностей ДПН сыворотки крови свиней, находящихся на разных стадиях постнаталыюго онтогенеза.

Материалы и методы

Исследования провели на клинически здоровых свиноматках из ООО «Алексеевское» Самарской обл. Животных разделили на группы с учетом их физиологического состояния: холостые — в возрасте 1 года, супоросные свиноматки — 1,5 года. (1-я треть беременности); лактирующие — 2 года и подсвинки в возрасте 6 мес, находящиеся на откорме. Кровь для исследования у свиней брали из больших краевых вен наружной поверхности уха перед утренним кормлением в состоянии покоя; для исследования использовали сыворотку.

ДПН сыворотки крови измеряли с помощью прибора ВРА-1Р (Бийегбасе ТесЬп., Германия), работающего по принципу максимального давления в пузырьке, который позволяет получать значения поверхностного натяжения во временном интервале существования поверхности от 0,01 до 10 секунд [ 1...3].

Результаты исследований были представлены в виде тен-зиограмм (кривых зависимости ПН от времени). На них с по-

мощью компьютерной программы А05А [3, 6] определяли значения ПН, соответствующие времени существования поверхности I = 0,02 сек (о,) и 1=1 сек (о,) в координатах о (^0, а также равновесное ПН (а3) и о0 путем экстраполяции динамической тензиограммы к бесконечному времени в координатах о (I 1/2) и нулевому времени в координатах а (с12). Кроме того, подсчитывали углы наклона начального (Хп) и конечного (А.,) участка уривой в координатах ст (11'2) и о (г 1/2) соответственно. Биохимический анализ проводили на КФК-2-УХЛ (РФ) с использованием биохимических наборов фирм «ДИАКОМ» стандартными методами.

Результаты и обсуждения

В результате проведенных исследований установили, что ДПН сыворотки крови свиноматок разных групп существенно отличается. Максимальные значения ДПН отметили в области очень коротких времен существования поверхности (от 77,9 ±1,0 мН/м — у подсвинков, находящихся на откорме до 79,2 ± 0,3 мН/м — у лактирующих свиноматок), что было обусловлено солевым составом сыворотки крови [2], а минимальные — при больших временах существования поверхности (от 60,1 +1,0 мН/м у лактирующих до 61,0 ± 0,5 мН/м у холостых свиноматок) вследствие постепенной адсорбции белков на границе раздела фаз (сыворотка/воздух) [2...3]. Наибольшие колебания в показателях ДПН сыворотки крови у свиноматок наблюдали при среднем времени существования поверхности 1 с (от 71,4 ± 1,2 мН/м у лактирующих свиноматок до 74,5 ± 0,8 мН/м у подсвинков на откорме). Значения А.0, отражающие суммарную концентрацию ПАВ в сыворотке крови, сильно различались: наивысшим этот показатель был у лактирующих свиноматок (6,0 ± 0,8 мН • м '• с~1/2), а наименьшим — у подсвинков на откорме (2,4 ± 0,3 мН  м с |/2). Значения А,,, характеризующие величину адсорбции при больших временах существования поверхности, колеблются в пределах ошибки измерения

РВЖ СХЖ №2-2009

23

ЖВАЧНЫЕ

(от 12,3 ± 0,9 мН- м с1/2 — у лактирующих свиноматок до 13,8 ± 0,8 мН • м 1 • с"2 — у подсвинков на откорме).

Для уточнения характера влияния отдельных компонентов сыворотки крови свиноматок на ее ДИН провели корреляционный анализ между данными тензиометрии и биохимическими показателями. Установили, что значения биохимических параметров сыворотки крови зависят от возраста животных, периода репродуктивного цикла и состава рациона, однако все изменения не выходили за пределы физиологической нормы [4]. У супоросных свиноматок уровень общего белка был на 7,8% выше, чем у холостых, а у лактирующих — на 9 % выше, чем у супоросных. Уровень альбуминов оказался выше у подсвинков, находящихся на откорме (по сравнению с остальными группами), что связано с более высоким содержанием белка в комбикормах этой группы животных. У лактирующих свиноматок в сыворотке крови отметили наименьшее содержание глюкозы по сравнению с животными других исследуемых групп. Самое низкое содержание кальция выявили у супоросных свиноматок, а самое высокое — у подсвинков, находящихся на откорме. Наиболее важными результатами корреляционного анализа является обнаружение у свиноматок сильной положительной корреляционной связи: а,, А.(| с уровнем мочевины, глюкозы, ионов хлора и кальция; Х0 с уровнем триглицеридов; сильной отрицательной связи: А., с уровнем общего белка; А.0 с уровнем кальция, глюкозы, холестерина и мочевины.

Заключение

Рост, развитие и адаптация организма свиноматок в пост-натальный период сопровождаются закономерными измене-

ниями крови, связанными со степенью ее функциональной активности, которые в свою очередь определяют изменения значений ДПН сыворотки крови.

Результаты проведенных исследований позволяют сделать вывод о перспективности изучения ДПН сыворотки крови свиноматок. По нашему мнению, внедрение в лабораторную практику относительно недорогого, простого и удобного метода определения ДПН сыворотки крови позволит осуществлять экспресс-оцеику физиолого-биохимического состояния организма свиней.

БИБЛИОГРАФИЯ

1. Казаков В Н.. Синяченко О.В., Файнерман В.Б. и др. Динамическое поверхностное натяжение биологических жидкостей здоровых людей. Архив клинич. и экспер, мед, 1996, т. 5, 1, 3—6.

2. Казаков В.Н., Синяченко О.В., Постовая М.В. и др. Межфазная тензио-метрия биологических жидкостей: Вопросы теории, методы и перспективы использования в медицине. Архив клин, экспер. мед.. 1998, т. 7, 1. 5—12.

3. Казаков В.Н., Синяченко О.В., Игнатенко Г.А. и др. Межфазная тензиоре-ометрия биологических жидкостей в терапии. - Донецк: Донеччина, 2003.

4. Кондрахин И.П. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии/ Кондрахин И.П., Курилов Н.В., Малахов А.Г. - М.: Агропромиздат, 1990, 116 с.

5. Максимов В.И., Зарудная E.H., Зайцев С.Ю.. Милаева И.В. Использование метода динамической межфазной тензиометрии для исследования сыворотки крови крупного рогатого скота//Уч. записки Казанской гос. академии ветеринарной медицины//Материалы Межд. н-практ. конф.. посвященная 135-летию академии «Современные подходы развития АПК», 29—31 мая 2008 г., т. 194. - Казань. 2008. 57—60.

6. Fainerman V.B., Miller R„ Joos P. The measurement of dynamic surface tension by the maximum bubble pressure method. Colloid Polymer Sei, 1994, 272, 731—739.

E.N. Zarudnaya, S.U. Zaitsev, V.l. Maximov. Dynamyc surface tension of sow's serum.

УДК 619:616.98:576-078:636

Эпизоотия энцефаломиелита КРС, вызванного вирусом Акабане, на юге Японии

Р. Коно1, М. Хирата2, М. Каджи', Ю. Гото2, С. Икеда2, Т. Янасе3, Т. Като3, С. Танака3, Т. Тсютсюи4, Т. Имада3 и М. Ямакава3

1 Центр зоогигиены провинции Кумамото

2 Центр зоогигиены провинции Кагошима

3 Национальный институт здоровья животных

11 Национальный институт здоровья животных

Ключевые слова: болезнь Акабане, вектор инфекции, вирусы, диагностика, крупный рогатый скот, патоморфоло-гия, симптоматика

Сокращения: БА — болезнь Акабане; ВА — вирус Акабане; ОТ-ПЦР — обратнотранскриптазная полимераз-ная цепная реакция

Введение

Возбудитель БА относится к роду О г! ЬоЬипуа\чги.ч семейства Випуа\апс1ае. Он распространен на обширной территории — от тропиков до решонов с умеренным климатом, т. е. там, где одновременно имеются его векторы (членистоногие — комары, мошки) и жвачные [7,16.18,28]. В Японии, Корее, Тайване, Австралии, Израиле и Турции [3, 4, 7| периодически возникают вспышки инфекции, которые сопровождаются абортами, рождением мертвых, недоношенных или имеющих врожденные уродства (артрогрппоз и водянку головного мозга) телят, ягнят и козлят [6, 8, 23]. В Японии во время одной из самых крупных эпизоотий БА (1972—1975 гг.) родилось около 42 000 телят с уродствами. Из изолированного в 1974 г. штаммаОВЕ-1

приготовили вакцину, которой пользуются для специфической профилактики болезни и в настоящее время [ 13, 14].

ВА проявляет большое сходство с другими представителями рода Orthobunyavirus [25]. Его вирионы покрыты ли-пидной оболочкой, а геном состоит из трех сегментов одноце-почечной РНК: крупного (L. 6868 нуклеотидов), среднего (М, 4309 нуклеотидов) и маленького (S, 858 нуклеотидов) [2, 20, 31 ]. Сегмент L РНК кодирует L-протеин, обладающий активностью РНК-полимеразы и принимающий участие в репликации и транскрипции агента. М-сегмент РНК несет информацию о двух гликопротеинах оболочки ВА (Gn и Ge), а также о предшественнике неструктурного белка NSm. Гли-копротеины ВА индуцируют in vivo образование антител, выявляемых в реакциях нейтрализации и гемагглютинации, а также обеспечивают прикрепление к рецепторам клеток. Белок NSm служит регулятором сборки и созревания вирио-нов |27]. S-сегмент РНК кодирует нуклеокапсидный протеин (N) и маленький неструктурный белок (NSs). Протеин N несет общие с другими вирусами рода антигенные детерминанты. Белок NSs выполняет роль антагониста альфа/бета-интерферона, регулирует синтез белков клеток хозяина и индуцирует их апоптоз [5, 10, 30].