Влияние техногенного загрязнения на биохимический статус крови овец

УДК 636.32/.38:612.1

Иммуногенетический анализ крови потомков, полученных от баранов пород манычский и австралийский меринос

Л.В Ольховская, С.Ф. Силкина,

Г.Н. Шарко, ГНУ СНИИЖК

Традиционные методы и приемы, используемые в селекции, далеко не всегда дают желаемый результат и затрагивают в основном количественные характеристики животных, которые изменчивы, зависят от условий внешней среды.

Современный же подход при отборе животных диктует разработку и внедрение в практическую селекцию доступных тестов, прогнозирующих генетический и продуктивный потенциал животных. В свете этой проблемы все большее значение приобретают методы системы иммуногенетического мониторинга, которые не требуют больших материальных затрат, надежны, просты в исполнении, дают возможность прогнозировать продуктивные качества животных в раннем возрасте, оценить генофонд пород, стад, линий сельскохозяйственных животных и его изменения в процессе селекции, так как именно недостаточное генетическое разнообразие в стадах снижает эффективность использования производителей, в существенной мере затрудняя ход селекционного процесса. При низком уровне генетической изменчивости селекционный отбор не в состоянии воздействовать на генетическую структуру стада.

Применение методов системы иммуногенетического мониторинга в популяциях позволяет не только контролировать генетическую ситуацию, но и подбирать таких производителей, которые способствовали бы расширению генетического разнообразия стад и оптимизировали структуру их генофондов.

Данная работа выполнялась в племзаводе «Маныч» Апанасенковского района Ставропольского края на молодняке, полученном от скрещивания маток породы манычский меринос с баранами пород манычский и австралийский меринос. В 2004 году в хозяйство были завезены 4 барана породы австралийский меринос, из них 2 из завода ROSEVIL PARK (№ А 32924 и № А 32923) и 2 из завода COLLINSVILLE (№ А 2057 и № А 2335). Учитывая, что племенная работа в животноводстве основана на точном знании происхождения приплода и родословных, потому как неточность 5% родословных, по Р. Грамль (1985), является критической величиной для рентабельности, особое внимание было обращено на проведение генетической экспертизы достоверности происхождения потомства, полученного в результате скрещивания.

В возрасте 4-х месяцев у потомков (п=186) были взяты образцы крови для изучения иммуногенетических показателей крови по четырем системам крови (А, В, С, D), включающим 7 эритроцитарных антигенов (Ab, Bd, Be, Bi, Bg, Ca, Da), и двум основным системам полиморфных

белков (трансферрин - Т^ гемоглобин - Нв). По результатам племенного учета (осеменения) были сформированы двуады (отец-потомок), по которым проводилась, сопоставлением иммуногенетических характеристик крови предполагаемого родителя с таковыми у потомка, генетическая экспертиза достоверности происхождения.

Учитывая, что оценка баранов-производителей по качеству потомства - важнейшее звено селекционно-племенной работы, ошибочные записи недопустимы и могли бы привести к искажению результатов, однако, благодаря проведенным иммуногенетическим исследованиям и используя компьютерные данные банка иммуногенетических характеристик крови баранов, у потомков, участвующих в эксперименте, удалось установить истинных отцов. Проведенный иммуногенетический анализ позволил выявить уровень генетического разнообразия крови потомков, произошедших от различных вариантов спаривания (табл. 1).

Таблица 1. - Частота встречаемости антигенов, полиморфных

Системы крови и полиморфных белков Антиге- ны, аллели белков Индив /ідуальньїй номер отца

А 2057 А2335 А32924 А32923 3249 3290

А нтигенный состав крови

А Ав 0,215 0,222 0,129 0,238 0,223 0,100

В Вd 0,294 0,444 0,322 0,333 0,366 0,266

Ве 0,294 0,666 0,419 0,333 0,200 0,433

ВІ 0,745 0,888 0,838 0,761 0,666 0,866

Вg 0,235 0,222 0,258 0,476 0,233 0,266

С Са 0,529 0,777 0,741 0,523 0,666 0,466

D Da 0,215 0,111 0,096 0,064 0,133 0,266

Полиморфные системы бел ков и фе рментов

Трансферрин А 0,509 0,444 0,303 0,405 0,375 0,517

В 0,112 0,111 0,106 0,167 0,109 0,100

С - - 0,121 - 0,08 -

D 0,379 0,445 0,470 0,428 0,438 0,383

Е - - - - - -

Гемоглобин А 0,310 0,555 0,242 0,552 0,266 0,232

В 0,690 0,445 0,758 0,448 0,734 0,768

Так, сравнительный анализ иммуногенетических характеристик крови выявил, что потомки, произошедшие от барана-производителя №А 2057, имели высокую частоту встречаемости антигенов крови Ві, Са (0,745 и 0,529 соответственно), аллеля А локуса трансферрина (0,509) и В - гемоглобина (0,690); от барана №А 2335 - антигенов Ве (0,666), ВІ (0,888), Са (0,777), аллелей А и D локусов трансферрина (0,444 и 0,445 соответственно), А-гемоглобина; барана №А 32924 - ВІ ( 0,838), Са

(0,741), аллеля Э локуса трансферрина (0,470), В - гемоглобина (0,758); производителя №А 32923 - В1 аллеля (0,761); Вд (0,476); Са (0,523), аллеля Э локуса трансферрина (0,428), А -гемоглобина (0,552); барана №3249 - В1 и Са (по 0,666), аллеля Э локуса трансферрина (0,438), В -гемоглобина (0,734); барана №3290 - В1 (0,866) и Са (0,466), аллеля А локуса трансферрина (0,517), В - гемоглобина (0,768).

Таким образом, общим для всех потомков (независимо от наличия или отсутствия такого антигена у производителя) является высокая частота встречаемости антигенных факторов В1 и Са.

Фенотипическое распределение по полиморфным системам белков баранов-производителей и их потомков показано в таблице 2.

Таблица 2. - Полиморфные системы белков баранов-производителей и потомков

Инд. № баран а Генетич еские показат ели барана Генетические показатели крови потомков, % Степе нь гетер., %

ТГ Нв ТГ Нв

АА АВ АЭ ВЭ СЭ АА АВ ВВ

А 2057 АА АВ 1,7 с№ 24 75, 9 - - 12, 1 37, 9 50,0 50,6

А2335 АЭ АА - 11, 1 К Ь- 00 11, 1 - 11, 1 со" со со - 54,3

А3292 4 ВЭ АВ - 6,1 55 15, 2 22 - 00° 45 51,5 51,5

А3292 3 ВЭ АА - 14, 3 66, 7 19, 0 - 10, 5 5 8 СО - 54,8

3249 АЭ ВВ - 12, 5 с№ 65 9,4 15, 6 - 53, 1 46,9 52,1

3290 АЭ ВВ 3,3 о° 20 76, 7 - - - со 44 53,6 46,6

Анализируя данные, представленные в таблице, можно предположить, что по локусу трансферрина в большей степени передали своим потомкам аллель А локуса трансферрина бараны №А 2057 и 3290, аллель Д - бараны № А 32924 и 3249; по локусу гемоглобина аллель А - бараны №А 32923 и А 2335, аллель В - бараны №А 32924, 3290.

Изученные группы животных не отличаются широким фенотипическим разнообразием. Выявлено максимум по 4 фенотипа из 15 возможных в локусе трансферрина у потомков баранов № А 32924 и 3249, что свидетельствует, по-видимому, о высокой степени консолидации маточного поголовья.

Отмечая, как общую для всех групп, высокую частоту носительства

потомками фенотипа АД локуса трансферрина (54,5-77,8 %),

остановимся на фенотипических особенностях групп. Так, у потомков баранов № А2057 и 3290 отмечены в локусе трансферрина наличие редко встречающегося фенотипа АА (1,7 и 3,3 % соответственно) и высокая концентрация, по сравнению с другими группами, фенотипа АВ (22,4 и 20,0 % соответственно).

Иммуногенетический анализ крови баранов выявил, что животные, завезенные из Австралии, являлись носителями фенотипов АА и АВ локуса гемоглобина.

Потомки трёх из них (№А 2057, А 2335, А32923) являлись носителями фенотипа АА локуса гемоглобина (12,1; 11,1 и 10,5 % соответственно), причем в группах ягнят - потомков двух из них (№А 2335, А32923) выявлена очень высокая концентрация гетерозиготного фенотипа АВ (88,9 и 89,5 % соответственно).

В связи с тем, что бараны породы манычский меринос являлись носителями гомозиготного фенотипа гемоглобина ВВ, то потомки этих баранов могли иметь только 2 фенотипа гемоглобина - АВ и ВВ, что подтвердилось нашими исследованиями: среди них высоко

носительство обоих фенотипов (46,4 - 53,1 и 46,9 - 53,6% соответственно).

Данное фенотипическое распределение отразилось на степени гетерозиготности каждой из групп как показателя генетического разнообразия.

В пяти из шести изученных групп животных отмечен оптимальный (50,6 - 54,8 %) уровень гетерозиготности, по группе потомков от барана манычский меринос № 3290 он оказался ниже - 46,6 %. Самые высокие показатели отмечены по потомкам баранов А 32923 и А 2335 (54,8 и 54,3 % соответственно), что является положительным фактором для селекции.

Полученные нами иммуногенетические характеристики крови потомков будут использованы для последующей оценки баранов-производителей по качеству истинных потомков с учетом основного для этих пород овец селекционируемого признака - настрига чистой шерсти. Будут выявлены генетические маркеры шерстной продуктивности, характерные для производителей, с целью дальнейшего использования в практической селекции.