СПОСОБ МОДЕЛИРОВАНИЯ ОСТЕОМИЕЛИТА
METHOD FOR SIMULATING OSTEOMYELITIS

Способ моделирования остеомиелита
Изобретение относится к медицине, а именно к ортопедии и травматологии, может быть использовано для моделирования очага хронического остеомиелита, а также для разработок и апробации методик хирургического и консервативного лечения хронического остеомиелита.
Известен способ моделирования хронического остеомиелита, включающий формирование костного дефекта в кости подопытного животного с помещением в него носителя штамма патогенного микроорганизма и последующей санацией. (Патент RU 2499295 С1 3, 19.05.2012 г, опубл. 20.11.2013 г.). В качестве штамма патогенного микроорганизма используют штамм Staphylococcus Aureus. В качестве носителя штамма Staphylococcus Aureus используют кварцевый песок, который помещают в здоровую кость подопытного животного с последующим удалением некротических масс и гноя из зоны костного дефекта и сохранением раны в свищевом виде.
Недостатком известного способа является невозможность полного удаления носителя St. Aureus из раны, при этом исследователи получают искажение картины течения остеомиелита в естественных условиях.
Задачей, на решение которой направленно заявляемое изобретение, является повышение достоверности течения хронического остеомиелита, достижение простоты и повторимости эксперимента, упрощение способа введения, дозирования патогена и последующей санации гнойно-септического очага.
Техническим результатом заявляемого изобретения является обеспечение полного удаления носителя штамма патогенного микроорганизма из раны с сохранением клинической и морфологической картины заболевания.
∧
Для решения поставленной задачи в способе моделирования остеомиелита, включающем формирование костного дефекта у подопытного животного с помещением в этот дефект носителя штамма патогенного микроорганизма и последующим удалением носителя, согласно изобретению в качестве носителя используют лавсановую ткань, контаминированную штаммом патогенного микроорганизма путем выдерживания полоски лавсановой ткани в суспензии возбудителя 1.5 McF(1*108 КОЭ), при этом после размещения полоски в дефекте кости его герметизируют костным воском, а рану послойно ушивают, удаление полоски производят на 7-е сутки.
В качестве штамма патогенного микроорганизма используют штамм Staphylococcus Aureus.
В качестве подопытного животного используют кролика породы «Шиншилла».
Использование в качестве носителя штамма St. Aureus полоски лавсановой ткани позволяет полностью удалить носитель из раны на этапе санации, так как свойства материала позволяют удалить его из раны единым фрагментом, предоставляют исследователю широкий спектр возможностей управления гнойным процессом, максимально полно имитирует естественный гематогенный остеомиелит.
Заявляемый способ моделирования гнойного остеомиелита осуществляют следующим образом.
∧
Проводят обезболивание подопытного животного (кролика породы «Шиншилла» массой 3-4 кг, ранее не участвовавшего в эксперименте) в/м введением препарата «Золетил 50» в дозе 15 мг/кг в/м, «Ксила» в дозе 0,1 мг/кг в/м, дополняя анестезию раствором местного анестетика в области хирургического доступа. По передней поверхности в/3 голени проводят линейный разрез кожного покрова до 3-х см. Осуществляют доступ к передненаружному краю метаэпифиза б/берцовой кости без повреждения суставной капсулы, собственной связки надколенника, мышц голени. Формируют костный дефект кусачками «Люэра» 5×5 мм, в который помещают полоску лавсановой ткани размером 2 квадратных сантиметра, контаминированную штаммом патогенного микроорганизма, например St. Aureus. Полоску лавсановой ткани, выдержанную в суспензии возбудителя 1.5 McF(1*108 КОЭ), оставляют в сформированном дефекте, дефект большеберцовой кости герметизируют костным воском, рану послойно ушивают. В послеоперационном периоде проводят симптоматическую терапию, обезболивание. На 7-е сутки проводят разведение всех швов, удаление полоски лавсановой ткани, при требованиях эксперимента проводят резекцию некротизированных тканей, выполняют некрсеквестрэктомию. У исследуемой группы проводят обработку антисептическим препаратом либо проводят апробацию новой хирургической методики. У группы контроля проводят хирургическую обработку раны. Рану после обработки послойно ушивают. В послеоперационном периоде проводят симптоматическую терапию. На 14-е сутки проводят снятие швов. На 21-е сутки после хирургической санации животных выводят из эксперимента. Производят взятие гистологического материала из области оперативного вмешательства -мягкие ткани, костная ткань, берут посевы на рост неспецифической микрофлоры.
Пример. Способ выполнен на 15 особях кроликов породы «Шиншилла». Для ввода в эксперимент животным было выполнено хирургическое вмешательство по заявляемому способу. Послеоперационный период включал симптоматическую терапию. На 14-е сутки снятие швов. На 21-е сутки животные выведены из эксперимента. Были выполнены бактериологические исследования полученного раневого отделяемого, в результате которых культуральными методами выявлен рост монокультуры S. Aureus из сформированного очага остеомиелита у каждого животного. Гистологическим исследованием костной ткани из очага подтвержден активный остеомиелит.
Использование заявляемого изобретения позволяет обеспечить полное удаление носителя штамма патогенного микроорганизма из раны с сохранением клинической и морфологической картины заболевания. Заявляемый способ отличается полнотой санации, наибольшей схожестью по клинической и морфологической картине с гематогенным остеомиелитом за счет солидного удаления экспериментально-сформированного секвестра.