СПОСОБ ВЫЯВЛЕНИЯ ОБСЕМЕНЕННОСТИ ОБЪЕКТОВ ВНЕШНЕЙ СРЕДЫ ГРАМОТРИЦАТЕЛЬНЫМИ БАКТЕРИЯМИ РОДА PSEUDOMONAS И ACINETOBACTER
METHOD OF REVEALING CONTAMINATION OF OBJECTS IN EXTERNAL ENVIRONMENT BY GRAM-NEGATIVE BACTERIA PSEUDOMONAS AND ACINETOBACTER

Изобретение относится к области медицины, а именно эпидемиологии и санитарной микробиологии.
Эффективность микробиологического контроля санитарного состояния в стационарах различного профиля в значительной степени зависит от используемых при этом диагностических тестов. Решение этой задачи осложняется в ряде случаев неэффективностью бактериологической диагностики, поскольку в современных условиях циркуляция госпитальных штаммов может сопровождаться формированием некультивируемых форм бактерий (А.В.Соколенко, Т.Н.Мухина, 2006), не выявляемых традиционными культуральными методами.
Известен способ планового бактериологического контроля в ЛПУ, основанный на определении общего микробного числа и наличия санитарно-показательных микроорганизмов (в том числе грамотрицательных бактерий группы кишечной палочки и др.) в соответствии с приказом МЗ СССР №720 от 31.07.1978 г., приложение №2 и МУ по эпидемиологическому надзору за внутрибольничными инфекциями. МЗ СССР №28-6/34 от 02.12.87.
Недостатки прототипа: трудоемок, продолжителен во времени, не выявляет покоящиеся формы.
Технический результат: сокращение сроков исследования, возможность выявления покоящихся форм грамотрицательных бактерий.
Решение указанной задачи осуществляют следующим образом: при осуществлении санитарного контроля в лечебных учреждениях смывы с объектов внешней среды фильтруют через бактериальные фильтры, размеры пор которых обеспечивают концентрацию всех, в том числе покоящихся, форм бактерий, но исключают контаминацию фильтра случайными фрагментами ДНК. Затем фильтры помещают в пробирку с 1 мл сверхчистой воды, кипятят, центрифугируют, отделяют супернатант, из него осаждают тотальную ДНК изопропиловым спиртом и подвергают ПЦР-анализу с использованием видо- и родоспецифичных праймеров грамотрицательных бактерий.
2
Способ осуществляют следующим образом: смывы получают стерильным ватным тампоном или марлевыми салфетками размером 5×5 см, для увлажнения которых используют стерильный физиологический раствор. При контроле мелких предметов смывы забирают с поверхности всего предмета. При контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят в нескольких местах исследуемого предмета площадью в 100-200 см. Тампоны и салфетки помещают во флакон с 200 мл физиологического стерильного раствора.
В условиях ламинарного бокса с жестким соблюдением правил асептики и антисептики проводят осаждение бактерий на стерильных нитроцеллюлозных бактериальных фильтрах с фильтрующей поверхностью 25 мм и диаметром пор 0,22 мкм, используя фильтровальную установку с разрежением 150 мм рт.ст. Каждый образец смывов (200 мл) фильтруют через один фильтр. Количество фильтров определяется количеством проб, взятых на анализ. Далее фильтры стерильно переносят в пробирки типа «Эппендорф» с 1 мл сверхчистой воды, предварительно измельчив их стерильным скальпелем. Выделение тотальной ДНК для полимеразной цепной реакции проводят по методике, описанной G.G.Stone (1994). Эппендорфы с фильтрами прогревают 10 минут при температуре 97°С в твердофазном термостате «Термит», центрифугируют в течение 10 минут при 10000 об/мин, супернатант переносят в другую пробирку. Для концентрирования ДНК осаждают изопропанолом (1:1), центрифугируют 10 минут при 13000 об/мин, удаляют супернатант, подсушивают, осадок растворяют в 25 мкл ТЕ (10 мМ трис-HCl, 1 мМ ЭДТА) и используют для генетических исследований. Хранение образцов при температуре -18°С.
Молекулярно-генетические исследования осуществляют путем ПЦР (specific PCR) с использованием праймеров (таблица), комплементарных специфической последовательности ДНК, характерной для строго определенного вида микроорганизмов (Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumanii и др.) и универсальных праймеров, которые позволяют амплифицировать фрагменты генов, присутствующих у всех микроорганизмов определенной таксономической группы (Pseudomonas, Klebsiella и др.).
Праймеры для ПЦР-анализа генов 16S РНК наиболее значимых представителей грамотрицательных бактерий - возбудителей ВБИ (F. Widmer et.al., 1998; Т.Spilker, Т.Coenye, 2004; J.F.Turton et.al., 2005).
Микроорганизм
Праймер
Последовательность
Фрагмент, п.н.
Pseudomonas spp.
Ps-for
ggtctgagaggatgatcagt
969
Ps-rev
ttagctccacctcgcggc
P. aeruginosa
PA-SS-F
gggggatcttcggacctca
956
PA-SS-R
tccttagagtgcccacccg
A. baumannii
AcinetF
gaaggtagcttgctac
410
AcinetR
actatctctaggtattaactaaagt
Режим амплификации для праймеров AcinetF/AcinetR начальный цикл денатурации - 2 мин при 94°С, следующие 35 циклов: 94°С - 30 с; 50°С - 60 с; 72°С - 90 с и завершающий цикл - 5 мин при 72°С; для праймеров Ps-for/Ps-rev начальный цикл денатурации - 5 минут при 95°С, следующие 40 циклов: 94°С - 30 с; 65°С - 60 с; 72°С - 70 с, завершающий цикл - 10 мин при 72°С; для праймеров PA-SS-F/PA-SS-R начальный цикл денатурации - 2 мин при 95°С, далее 35 циклов: 94°С - 20 сек; 58°С - 20 сек; 72°С - 40 сек. Завершающий цикл 1 мин при 72°С.
Электрофоретическое разделение продуктов реакции проводили в 1,2% агарозном геле в трис-боратном буфере при напряженности электрического поля 6 В/см. Визуализацию полос и документирование данных осуществляли после окрашивания геля бромистым этидием с использованием системы гель-документации BioDocAnalyze («Biometra», Германия).
Для подтверждения эффективности предлагаемого способа генетического контроля микробной обсемененности объектов внешней среды в медицинских учреждениях проведено 10 исследований в двух крупных клиниках г.Перми.
Примеры практического применения:
Пример 1
Осуществлен контроль обсемененности объектов внешней среды грамотрицательными неферментирующими бактериями в общем отделении краевой инфекционной больницы г.Перми. Пробы были взяты со следующих объектов: №1 - обеденный стол и кровать в палате отделения; №2 - стол для забора анализов в общем коридоре, №3 - стол в процедурном кабинете.
Проведен ПЦР-анализ ДНК, полученной из проб вышеописанным способом с родо- и видоспецифичными праймерами к генам 16S РНК Pseudomonas spp. и А. baumannii.
Путем амплификации с праймерами Ps-for/Ps-rev детектированы фрагменты, соответствующие размеру гена 16S РНК бактерий рода Pseudomonas (фиг.1). Одновременно был проведен бактериологический контроль в соответствии с приложением №2 к Приказу Минздрава №720. Для выделения стафилококков сделан посев непосредственно на чашку Петри с желточно-солевым агаром бактерий группы кишечных палочек - в 10-20% желчный бульон с последующим пересевом на среду Эндо. Для выявления синегнойной палочки - прямые посевы на кровяной агар и на среду Эндо. Бактериологическое исследование на синегнойную палочку отрицательное. Таким образом, с помощью молекулярно-генетического анализа установлено, что в смыве, взятом с поверхности стола в процедурном кабинете отделения, присутствуют бактерии рода Pseudomonas.
Пример 2
Проведен контроль обсемененности объектов внешней среды в хирургическом отделении областной краевой больницы г.Перми. Пробы взяты со следующих объектов: №1 - интубационная трубка аппарата для искусственной вентиляции легких (ИВЛ); №2 - операционный стол, №3 - кровать в палате интенсивной терапии.
Амплификация с праймерами Ps-for/Ps-rev и PA-SS-F/PA-SS-R дала положительный результат с материалом из пробы №1, который был получен в течение одного рабочего дня (8 часов). Бактериологическое исследование подтвердило наличие в смыве бактерий Р. aeruginosa, однако на его проведение потребовалось 3 дня (72 часа).
Пример 3. Проведен контроль обсемененности грамотрицательными неферментирующими бактериями объектов внешней среды в палате интенсивной терапии КИБ №1 г.Перми. Пробы были взяты со следующих объектов: №1 - кровать; №2 - тумбочка, №3 - подоконник, №4 - умывальник; №5 - судно.
Генетическое исследование осуществляли аналогичным способом с тремя видами праймеров. Бактериологическое исследование на синегнойную палочку и ацинетобактеры - отрицательное. В пробе №4 и №5 обнаружены фрагменты ДНК, кодирующие ген 16S РНК A. baumannii.
Положительный эффект заявляемого способа состоит в более качественном контроле бактериальной обсемененности объектов окружающей среды в медицинских учреждениях, при этом учитываются некультивируемые формы микроорганизмов, которые при определенных условиях могут вызвать внутрибольничное инфицирование, но не выявляются с помощью существующего бактериологического метода.