Флуоресцентный анализ как инструмент оценки физиологического состояния деревьев в различных условиях загрязнения в г. Москве

ЭКОЛОГИЯ

ФЛУОРЕСЦЕНТНЫЙ АНАЛИЗ КАК ИНСТРУМЕНТ ОЦЕНКИ

ФИЗИОЛОГИЧЕСКОГО СОСТОЯНИЯ ДЕРЕВЬЕВ В РАЗЛИЧНЫХ УСЛОВИЯХ ЗАГРЯЗНЕНИЯ В Г. МОСКВЕ

Д.И. Орехов, Г.А. Калабин

Экологический факультет Российский университет дружбы народов Подольское шоссе, 8/5, Москва, Россия, 113093

Рассматриваются основные изменения параметров флуоресценции фотосинтетического аппарата древесных пород (береза, липа, туя, ель) под влиянием загрязнения в г. Москве. Особое внимание уделяется анализу JIP-теста, световых кривых, параметру нефотохимического тушения. Демонстрируются возможности современного флуориметра для экологических исследований с целью более полного анализа устойчивости пород, который не проводился ранее при данных условиях.

Ключевые слова: флуоресценция, хлорофилл, нефотохимическое тушение, фотосинтез, квантовый выход, эффект Каутского.

В настоящее время стали появляться фирмы, производящие относительно недорогие и качественные приборы для научных исследований. Одним из главных плюсов таких компактных портативных приборов является наличие запрограммированных протоколов для проведения специальных научных измерений, что делает их очень доступными для начинающих исследователей фотосинтеза. Главным преимуществом портативных приборов является большая скорость проведения измерений без специальной пробоподготовки, носящей щадящий характер по отношению к растениям. Специальные зажимы предотвращают нанесение какого-либо механического повреждения для фотосинтетических органов растения. Полученные результаты в дальнейшем могут использоваться для научного анализа состояния растения. Но без понимания некоторых фундаментальных основ теории флуоресценции хлорофилла невозможно провести полноценный анализ физиологического состояния растения [1].

В статье рассматривается связь между основными параметрами быстрой флуоресценции хлорофилла листьев (хвои) и стрессовых факторов, воздействующих на древесные растения в условиях города Москвы. Основной задачей было максимально точно идентифицировать состояние деревьев, используя широкие возмож-

ности портативного флуориметра, тем самым подтвердить на практике использование флуориметров как своего рода «сканеров» для оценки физиологического состояния древесных растений.

ОБЪЕКТ ИССЛЕДОВАНИЯ И МЕТОДИКА ПРОВЕДЕНИЯ ИЗМЕРЕНИЙ

Объектом исследования являлись деревья, произрастающие в районах с высоким загрязнением выхлопными газами от автомобильного транспорта — на Дмитровском шоссе, вблизи ТЭЦ под линиями высоковольтных электропередач неподалеку от внутренней стороны МКАД, а также те же самые виды деревьев, но произрастающие в районе пониженного загрязнения выхлопными газами — в центральной части Главного ботанического сада РАН. Породы исследуемых деревьев: береза, липа, туя, ель.

Измерения параметров флуоресценции проводились на импульсно-модулиро-ванном приборе серии FluorPen 100: PAR-FluorPen FP 100-MAX-LM. Фирма-изготовитель: Photon Systems Instruments (PSI, Чехия, г. Драсов). Измерения проводились на «живых» листьях побегов деревьев. Количество образцов варьировало: 15—25 шт. Вычислялось среднее арифметическое значение, и определялось среднее квадратическое отклонение по выборке значений (формулы (1) и (2)). Все образцы предварительно выдерживались в темноте перед проведением замеров (1—5 мин.).

ОСНОВНЫЕ ИЗМЕРЯЕМЫЕ ПАРАМЕТРЫ

Ft (steady-state fluorescence) — величина эквивалентная Fo для образцов листьев, предварительно выдержанных в темноте (зажим прибора предоставляет такую возможность благодаря полному закрытию измеряемого окошка перед проведением измерения); нулевой уровень флуоресценции, соответствующий «открытому» состоянию большинства реакционных центров фотосистемы 2, когда протекание фотохимических процессов ничем не ограничивается.

QY (quantum yield) — квантовый выход — параметр, определяющий эффективность работы фотосистемы 2 в первичных процессах разделения заряда в реакционном центре P680, параметр эквивалентен Fv/Fm для образцов, выдержанных в темноте и эквивалентен Fv/Fm' для образцов, адаптированных к яркому свету.

NPQ (non-photochemical quenching) — нефотохимическое тушение флуоресценции как один из альтернативных вариантов релаксации возбужденного синг-летного хлорофилла "а" [1] — протокол помимо этой величины дает вклад фотохимического тушения флуоресценции (photochemical quenching), — процесс фотохимического переноса по цепи переносчиков заряда кванта света. Благодаря высокому динамическому диапазону амплитудного импульсно-модулированного флуориметра и короткой насыщающей вспышке возможно определение максимальной работы (выхода) флуоресценции при закрытых реакционных центрах не только у адаптированных к темноте образцов, но и при освещении образца постоянным действующим светом во время регистрации индукционной кривой флуоресценции. Это дает возможность определить вклад как фотохимического тушения, так и нефотохимического тушения флуоресценции. Вначале измерительным светом прибор регистрирует нулевой фон Fo, после чего короткой насыща-

ющей вспышкой приводит к восстановлению пула пластохинона и определяется максимальный уровень флуоресценции в условиях темновой адаптации Гт. После непродолжительной темновой релаксации образец подвергается воздействию ак-тиничного света (несколько десятков секунд) для образования эффекта Каутского, кроме того последовательность насыщающих вспышек при максимальном акти-ничном свете вызывает срабатывание нефотохимического тушения NPQ и эффективного квантового выхода фотосинтеза QY у адаптированного к свету образца. После воздействия продолжительным освещением определяется релаксация нефотохимического тушения у адаптированного к темноте образца серией насыщающих вспышек. Условно схема измерения нефотохимического тушения представлена в табл. 1.

Таблица 1

Протокол измерения NPQ

Фаза Продолжительность Количество вспышек Продолжительность одной вспышки Временной интервал между вспышками

Световая 60 с 5 7 с 12 с

Темновой адаптации 88 с 3 11 с 26 с

LC (light curves) — световые кривые — протокол, дающий информацию о зависимости фотосинтеза от интенсивности светового воздействия. Метод основан на поступенном увеличении интенсивности потока фотонов и соответствующем изменении уровня QY и Ft. Условно протокол измерения световых кривых представлен в табл. 2.

Таблица 2

Протокол измерения LC

Количество фаз Продолжительность фазы Набор интенсивностей светового потока

7 60 с 10; 20; 50; 100; 300; 500; 1000

Фотоиндукционные кривые OJIP согласно ЛР-тесту представлены в виде логарифмической временной шкалы. Согласно данному измерению начальная точка Fo соответствует временной отметке по оси X при 50 мкс, точка J плеча OJ — соответственно при 2 мс, точка I плеча Л — соответственно при 60 мс. Пик Р согласно тесту соответствует максимальной флуоресценции, когда большинство реакционных центров оказываются закрытыми в результате освещения образца листа (хвои).

Вся статистическая обработка результатов осуществлялась по формулам

и (2):

х = Ч

п

где ТХ1 — сумма значений; п — число значений.

а =

1

Z (xi- х )2

--.

n

РЕЗУЛЬТАТЫ ИЗМЕРЕНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Проводилось сравнение по JIP-тесту деревьев, произрастающих в районе загрязнения выхлопными газами и контролем (Ботанический сад). Результаты представлены на рис. 1 (на примере березы). Когда действуют актиничным светом высокой интенсивности на листья, выдержанные в темноте, можно выявить постепенное возрастание флуоресценции по основным ступеням, начиная с начальной O-ступени, далее через J и I, достигая максимума уровня флуоресценции на P (пик). Этот градиент быстрого возрастания флуоресценции дает важную информацию о фотохимической активности фотосистемы 2 [2]. Штрассер использовал этот квантовый метод для экспрессной оценки физиологических параметров растения.

Береза

\ ^ р.....

J ¿¿Р^

1 ао

р_

О J\

О • * у

.О

Рис. 1. Фотоиндукционная кривая для березы (12.09.2013) 1 — контроль; 2 — загряз.

Показано, что по Fo (отметка О) — начальный уровень флуоресценции, характеризующий долю открытых реакционных центров готовых к принятию электронов для последующей их передачи по цепи переносчиков Qa и др., — наблюдаются различия не очень значительные, как может показаться на первый взгляд, но по мере развития динамики кривой OЛP значения флуоресцентного сигнала по фазам OJ и Л значительно разнятся и их максимумы-пики (Б) разделяет значительное пространство на графике. Ступень J обусловлена процессами восстановления Qa, ступень I — гетерогенностью фотосистемы 2 [3]. Пик для контроля соответствует 76 758 отн. ед., а для загрязненного образца — почти 41 000 отн. ед. Разница почти вдвое по Гт. Характерно для кривой 2 более пологое положение относительно кривой 1 и меньшая высота ступеней между кардинальными точка-

ми J и I, характеризующие уровень восстановленности первичных хинонных акцепторов фотосистемы 2. По параметру Еу/Ет для кривых 1 и 2 значения составляют соответственно 0,755 и 0,677. Это говорит о различной способности к нециклическому переносу электронов по цепи переносчиков к реакционному центру фотосистемы 1. Интересно провести аналогичное сравнение зеленого листа березы только с уже пожелтевшим листом, утратившим хлорофилл (рис. 2).

Береза

76 ОМ 72 ОФЗ р

63 003

62 №

63 ооз .1

54 №

003 43 003 /

44 003 /

40 003 /

/

30 003

26 003 ................. г-

16 093 О . * * J 1

12 Ш 3 003 4 003 /р.....-

_____________________ г/

--{/------------------------ /

Рис. 2. Фотоиндукционная кривая для листьев березы с наличием/отсутствием хлорофилла 1 — зеленый лист; 2 — желтый лист

Характер кривой 1 для зеленого листа на рис. 2 очень напоминает контрольный лист из Ботанического сада РАН на рис. 1 — прослеживаются довольно четкие ступени J и I. Но при рассмотрении кривой 2 для желтого листа, утратившего практически весь свой хлорофилл, кривая почти линейна, очень пологая с едва выделяющимися ступенями J и I. Это сравнение необходимо для того, чтобы примерно можно было оценить насколько функциональное состояние березы в данном случае находится в подавленном состоянии или, наоборот, в состоянии полной активности и оптимума по отношению к окружающим факторам среды. На рис. 1 кривая 2, соответствующая месту вблизи остановки на Дмитровском шоссе, находится примерно где-то посередине между кривыми 1 и 2 на рис. 2, что говорит о достаточно подавленном состоянии растения, но все еще активно фотосинтези-рующем, так как еще можно выделить на графике ступени J и I. Данные этих рисунков были получены 12 сентября 2013 г. в утренние часы около 9 ч утра по московскому времени. Это время подготовки к вхождению в глубокий зимний покой. Полностью вся листва опала в данном районе примерно к 15 октября 2013 г., хотя встречались еще единичные деревья в Ботаническом саду с листвой зеленоватой окраски в середине октября.

Ниже приведена табл. 3 со средними значениями параметров ЛP-теста для каждой из пород в контрольном месте и в загрязненном. Табл. 3 соответствует средним значениям за ноябрь. Для каждого вида было произведено не менее 20 замеров. Замеры производились с частотой 2—3 раза в неделю. В табл. 4 приведены расшифровки некоторых параметров по данным OЛP-теста.

Похожим образом реагируют на стресс липа с елью, если обратить внимание на соотношение параметров Fo, Fj, Fi, Fm, ABS/RC, Dlo/RC — для контроля эти значения заметно ниже, чем для загрязненного района.

Таблица 3

Значения параметров OJIP-теста для контроля

Параметр Дерево

Береза Липа

Контр. Загряз. Контр. Загряз.

Fo 21 303,714 ± 988,7 11 327,429 ± 2384,49 15 427 ± 2 292 21 311,167 ± 3 863,5

Fj 46 690,286 ± ± 3 943 24 378,286 ± ± 6 524,612 37 192,5 ± ± 2 763,5 41 570,667 ± ± 5 815,889

Fi 51 376,429 ± ± 5 201 27 290,429 ± ± 7 409,918 42 606 ± ± 2 357 47 531,167 ± ± 6 859,83

Fm 51 934± ± 5 046,571 27 870,857 ± ± 7 292,98 44 459 ± ± 699 49 145,667 ± ± 7 737,667

Fv 30 630,2857 ± ± 5 977 16 543,429 ± ± 4 990,612 29 032 ± ± 2 991 25 347,5 ± ± 9 063,333

Vj 0,832 ± 0,027 0,785 ± 0,02 0,74 ± 0,098 0,738 ± 0,075

Vi 0,9797 ± 0,011 0,959 ± 0,018 0,9295 ± 0,0645 0,944 ± 0,029

Fm/Fo 2,459 ± 0,3324 2,424 ± 0,227 2,954 ± 0,484 2,397 ± 0,421

Fv/Fo 1,459 ± 0,3324 1,424 ± 0,227 1,954 ± 0,484 1,397 ± 0,421

Fv/Fm 0,581 ± 0,06 0,582 ± 0,036 0,652 ± 0,057 0,563 ± 0,073

Mo 2,25 ± 0,079 1,7897 ± 0,116 1,917 ± 0,199 2,0395 ± 0,24

Area 9 170 127,857 ± ± 3 031 571,347 6 990 951,857 ± ± 1 744 342,939 14 542 749 ± ± 4 300 059 44 347 594,833 ± ± 50 725 219,056

Phi_Po 0,5814 ± 0,06 2 564 038,0757 ± ± 4 395 492,8355 0,652 ± 0,057 0,563 ± 0,073

Psi_o 0,167 ± 0,027 0,215 ± 0,02 0,26 ± 0,098 0,262 ± 0,075

Phi_Eo 0,0986 ± 0,021 0,125 ± 0,01539 0,164 ± 0,049 0,149 ± 0,047

Phi_Do 0,419 ± 0,06 0,379 ± 0,0794 0,348 ± 0,057 0,437 ± 0,073

Phi_Pav 988,4 ± 2,7 981,712 ± 3,6313 979,197 ± 10,469 983,198 ± 5,8

Pi_Abs 0,069 ± 0,027 0,1014 ± 0,0256 0,1575 ± 0,0245 0,119 ± 0,067

ABS/RC 4,743 ± 0,6 3,947 ± 0,394 4,03 ± 0,468 5,063 ± 0,778

Tro/RC 2,7 ± 0,06 2,282 ± 0,151 2,6015 ± 0,0755 2,766 ± 0,127

Eto/RC 0,45 ± 0,075 0,492 ± 0,056 0,6845 ± 0,2745 0,726 ± 0,198

Dlo/RC 2,04 ± 0,56 1,665 ± 0,292 1,4285 ± 0,3925 2,297 ± 0,7

Туя Ель

Контр. Загряз. Контр. Загряз.

Fo 28 746,2 ± 8 704,96 15 440,3 ± 8 389,8 3392± 1 230 13 037 ± 3 511,3

Fj 64 573,4 ± 16 348,96 39 105,667 ± 21 438,9 8 967,25 ± 2 631,25 33 313 ± 5 974,67

Fi 72 323,8 ± 18 655,92 41 852 ± 23 228 11 154,5 ± 3 019 36 488,3 ± 5 014,2

Fm 72 356,4 ± 18 682,16 41 887,667 ± 23 204,2 11 401,25 ± 3 016,75 38 655,3 ± 6 502,2

Fv 43 410,2 ± 11 304,08 26 447,3 ± 14 814,4 8 009,25 ± 1 897,75 25 618,3 ± 4 963,1

Vj 0,831 ± 0,0312 0,865 ± 0,081 0,69 ± 0,043 0,79767 ± 0,04

Vi 0,999 ± 0,00264 0,99833 ± 0,002 0,9665 ± 0,009 0,928 ± 0,054

Окончание

Параметр Дерево

Туя Ель

Контр. Загряз. Контр. Загряз.

Fm/Fo 2,553 ± 0,29256 2,72133 ± 0,054 3,5655 ± 0,48 3,15 ± 0,592

Fv/Fo 1,552 ± 0,29192 1,72133 ± 0,054 2,5655 ± 0,48 2,15 ± 0,592

Fv/Fm 0,601 ± 0,03744 0,63233 ± 0,008 0,71 ± 0,047 0,667 ± 0,073

Mo 2,493 ± 0,15696 2,16833 ± 0,372 1,3165 ± 0,241 2,026 ± 0,157

Area 22 427 584,6 ± ± 13 597 105,68 29 362 818 ± ± 29 169 640,67 2 937 391,25 ± ± 1 821 700,25 17 536 352,3 ± ± 10 855 511,8

Phi_Po 0,6014 ± 0,03744 0,6323 ± 0,008 0,71 ± 0,047 0,667 ± 0,073

Psi_o 0,169 ± 0,0312 0,135 ± 0,081 0,308 ± 0,043 0,202 ± 0,157

Phi Eo 0,1034 ± 0,02744 0,086 ± 0,052 0,221 ± 0,043 0,138 ± 0,039

Phi_Do 0,3986 ± 0,03744 0,367667 ± 0,008 0,29 ± 0,047 0,333 ± 0,073

Phi_Pav 993,0624 ± 4,06936 989,38967 ± 2,26 976,142 ± 10,856 876,669147,243

Pi_Abs 0,0734 ± 0,04384 0,0826667 ± 0,067 0,4975 ± 0,188 0,166 ± 0,081

ABS/RC 5,0256 ± 0,47728 3,93633 ± 0,37 2,699 ± 0,526 3,875 ± 0,565

Tro/RC 2,9984 ± 0,13472 2,487333 ± 0,214 1,885 ± 0,213 2,537 ± 0,076

Eto/RC 0,5052 ± 0,07912 0,319 ± 0,16 0,568 ± 0,052 0,511 ± 0,092

Dlo/RC 2,027 ± 0,34224 1,44933 ± 0,158 0,815 ± 0,312 1,337 ± 0,49

Для липы разница между загрязненным районом и контрольным составляет около 5884 от. ед. по Fo, около 4000 по Fj, около 5000 по Fi, 1 по ABS/RC, 0,8 по Dlo/RC. По Еу/Ет контрольный образец превышает загрязненный на 0,09, превышает незначительно также и по Eto/RC. У березы, наоборот, значения по Fo, Fj, Fi, Fm, ABS/RC, в контроле превышают значения загрязненного района почти вдвое, только по Eto/RC, Dlo/RC, Tro/RC имеет сходство с липой. Эти различия касаются средних значений для лиственных пород. Для хвойных (туи и ели) различия аналогичны, как и для лиственных пород (березы и липы), только разница ощутимее. У ели разница между контролем и загрязненным районом по Fo составляет почти 10 000 отн. ед., по Fj — более 20 000 отн. ед., по Fi — 25 000 отн. ед., по ABS/RC — 1,2 отн. ед, Mo — 0,7. У туи прослеживается тенденция превышений значений Fo, Fj, Fi, Fm, Fv, как и у березы (почти 1,5—2 раза), причем по Еу/Ет — значения близки (особенно у березы это заметно).

Увеличение параметра ABS/RC для чувствительных ели и липы может объясняться затрудненной адаптацией светособирающего комплекса к стрессу [4]. Увеличение Dlo/RC можно объяснить преобразованием реакционных центров в диссипативных поглотителей энергии возбуждения в стрессовых условиях [5]. Увеличение обоих параметров Tro/RC и Dlo/RC показывает, что инактивация реакционных центров приводит к ослаблению работы светособирающего комплекса и возрастанию рассеивания энергии в виде нефотохимического тушения [6]. Согласно табл. 3 уменьшение параметра Fo для ели и липы является их критерием чувствительности по отношению к загрязнению. Увеличение квантового выхода при переходе о контроля к загрязненным районам связано, скорее всего, с разным расходом энергии (возрастание в загрязненных условиях) при вступлении деревьев в покой.

В табл. 5 приведены значения нефотохимического и фотохимического тушения для различных пород в различных условиях произрастания. В темноте между вспышками фотохимическое тушение у всех пород примерно одинаковое и близко к единице. В режиме освещения значения различны для каждой породы. Для березы, например, при каждой новой насыщающей вспышке значения qP возрастают в загрязненном районе, в контроле остается почти без изменений и сами значения более низкие. Похожее явление прослеживается и для всех остальных пород.

Таблица 4

Расшифровка параметров ОЛР- теста [8]

Сокращенное Разъяснение параметра и его формула

название

параметра

Fo Начальный

Fj Флуоресцентный уровень ступени J

Fi Флуоресцентный уровень ступени I

Fm Максимальная интенсивность флуоресценции

Fv Fv = Fm - Fo

Vj Vj = (Fj - Fo)/(Fm - Fo) интенсивность относительной вариабельной флуоресценции на J-ступени

Vi Vi = (Fi - Fo)/(Fm - Fo) интенсивность относительной вариабельной флуоресценции на I-ступени

Fv/Fm Квантовый выход

Fv/Fo Способность светособирающего комплекса к улавливанию энергии возбуждения

Mo или (dV/dt)0 M0 = TR0 / RC - ET0 / RC = 4 ( F300 - F0 ) / ( FM - F0) — относительный угол наклона градиента флуоресценции

Area Площадь между флуоресцентной кривой и Fm

Phi_P0 Phi_P0 = 1 -

Psi_0 Psi_0 = 1 - VJ — вероятность попадания экситона в электронтранспортную цепь через переносчик Qa

Phi_E0 Phi_E0 = (1 - ( F0 / FM )). Psi_0 — квантовый выход для электронного траснпорта

Phi_D0 Phi_D0 = 1 - Phi_P0 -

Phi_Pav Phi_Pav = Phi_P0

ABS / RC ABS / RC = M0. (1 / VJ). (1 / Phi_P0) соотношение размера антенны/активного реакционного центра фотосистемы 2

TR0/RC TR0 / RC = M0.

ET0 / RC ET0 / RC = M0.

DI0 / RC DI0 / RC =

Интересно заметить, что кривая OJIP находится тем ниже, чем больше загрязнение воздуха, и при этом характер ее развития более пологий (рис. 3). На рис. 3 показаны серии из пяти кривых быстрой индукции флуоресценции для двух различных по степени загрязнения районах — район Ботанического сада и район рядом с ТЭЦ-21. Видно, что вблизи ТЭЦ характер почти у всех кривых носит пологий характер с едва различимыми ступенями J и I. Максимумы ступеней сильно снижены. На центральной алее Ботанического сада РАН все кривые имеют четко выраженные ступени. Падение Гт при высоком загрязнении может объясняться возрастанием количества закрытых реакционных центров фотосистемы 2, которые не участвуют в процессе переноса электронов по цепи [8].

ИНДУКЦИОННЫЕ КРИВЫЕ ФЛУОРЕСЦЕНЦИИ

01 1 10 100 1 ООО

[5 ЬчэМтк

Рис. 3. Сравнение двух наборов индукционных кривых флуоресценции, полученных в октябре 2013 г.

Вернемся к табл. 5 и рассмотрим характер изменения нефотохимического тушения. Нефотохимическое тушение объясняется рассеиванием избытка той энергии, которая не израсходовалась при фотосинтезе. Если параметр qP почти не менялся в «темновых паузах» между вспышками, то NPQ заметно снижается. Это касается темновой фазы регистрации флуоресценции, а при постоянном освещении при каждой новой вспышке данный параметр возрастает последовательно для лиственных пород (контрольная и загрязненная территории). Для хвойных пород вначале увеличивается (см. гр. до № 3 световой фазы в табл. 5), затем снижается (№ 4) и вновь поднимается (№ 5) до максимального значения. Это касается контрольных деревьев: туи и ели. Для загрязненных районов у хвойных образцов значение нефотохимического тушения также последовательно увеличивается. Значения нефотохимического тушения березы в контрольном участке и в загрязненном почти одинаковые. Заметна лишь разница для остальных пород (в контроле значение выше, что возможно связано с тем, что растения в загрязненных местах несколько позже вступают в покой или деревья в контроле более старые). Заметно разнятся деревья в контрольном и загрязненном участке по параметру R/d, который иначе называют коэффициентом спада флуоресценции.

=

где Ет и — соответственно максимальный и стационарный уровни флуоресценции, получаемые из фотоиндукционных кривых.

Наряду с Qmax этот показатель хорошо применять для оценки стрессоустой-чивости растения. Интересно, что в табл. 5 ель в загрязненном и контрольном участках по QY слабо различается, а по индексу Rfd заметно (причем значение Qmax в загрязненном месте даже чуть выше для ели, а Rfd ниже на 0,12 ед.).

Таблица 5

Параметры фотохимического и нефотохимического тушения флуоресценции

Параметр Фаза № на-сыщ. вспыш Береза

NPQ На свету 1 0,0314 ± ± 0,015 0,107 ± ± 0,0152 0,013±0, 004 0,02±0,00 7 0,0214± 0,016 0,034 ±0,0192 0,0585 ± ± 0,03 0,027 ± ± 0,0089

2 0,231 ± ± 0,0816 0,28 ± ± 0,0225 7 0,173 ± ± 0,0115 0,0467 ± ± 0,02 0,192 ± ± 0,112 0,062 ± ± 0,0264 0,304 ± ± 0,0246 0,082 ± ± 0,051

3 0,4228 ± ± 0,121 0,45 ± ± 0,277 0,28 ± ± 0,14 0,133 ± ± 0,045 0,611 ± ± 0,36 0,12 ± ± 0,088 0,51 ± ± 0,033 0,141 ± ± 0,096

4 0,5685 0,149 0,564 ± ± 0,315 0,33 ± ± 0,182 0,19 ± ± 0,073 0,555 ± ± 0,176 0,184 ± ± 0,0992 0,417 ± ± 0,151 0,227 ± ± 0,153

5 0,678 ± ± 0,175 0,64 ± ± 0,0337 0,38±0,2 467 0,25±0,10 67 0,68±0,2 28 0,244±0, 1088 0,848±0, 611 0,324±0, 182

В темноте 1 0,677 ± ± 0,148 0,594 ± ± 0,273 0,35 ± ± 0,2 0,2167 ± ± 0,089 0,718 ± ± 0,175 0,206 ± ± 0,0632 0,4357 ± ± 0,204 0,372 ± ± 0,2469

2 0,392 ± ± 0,0959 0,337 ± ± 0,1587 0,223 ± ± 0,12 0,11 ± ± 0,053 0,478 ± ± 0,021 0,106 ± ± 0,0472 0,358 ± ± 0,169 0,438 ± ± 0,369

3 0,254 ± ± 0,051 0,23 ± ± 0,0113 0,16 ± ± 0,0867 0,093 ± ± 0,051 0,32 ± ± 0,062 0,08 ± ± 0,044 0,282 ± ± 0,139 0,537 ± ± 0,4681

ЧР На свету 1 0,0214 ± ± 0,001 0,034 ± ± 0,0023 0,053 ± ± 0,004 0,113 ± ± 0,091 0,047 ± ± /0,012 0,062 ± ± 0,0336 0,11 ± ± 0,114 0,05 ± ± 0,034

2 0,0257 ± ± 0,001 0,0485 ± ± 0,004 0,04 ± ± 0,0067 0,123 ± ± 0,0978 0,05 ± ± 0,011 0,058 ± ± 0,0304 0,057 ± ± 0,039 0,0385 ± ± 0,019

3 0,0257 ± ± 0,001 0,058 ± ± 0,0049 0,043 ± ± 0,0089 0,1967 ± ± 0,189 0,074 ± ± 0,01 0,066 ± ± 0,0288 0,06 ± ± 0,0428 0,044 ± ± 0,022

4 0,0257 ± ± 0,017 0,0714 ± ± 0,065 0,043 ± ± 0,089 0,18 ± ± 0,18 0,06 ± ± 0,013 0,068 ± ± 0,0304 0,062 ± ± 0,052 0,041 ± ± 0,024

5 0,025 ± ± 0,0022 0,084 ± ± 0,0063 0,073 ± ± 0,0045 0,33 ± ± 0,03267 0,077 ± ± 0,028 0,084 ± ± 0,0432 ,0742 ± ± 0,057 0,0457 ± ± 0,029

В темноте 1 0,988 ± ± 0,038 1,034 ± ± 0,005 0,9467 ± ± 0,051 0,83 ± ± 0,153 0,921 ± ± 0,099 0,934 ± ± 0,0272 0,882 ± ± 0,093 0,958 ± ± 0,044

2 1,054 ± ± 0,006 1,05 ± ± 0,005 0,9967 ± ± 0,037 0,843 ± ± 0,1689 1,04 ± ± 0,06 0,982 ± ± 0,0256 0,94 ± ± 0,1 1,02 ± ± 0,074

3 1,048 ± ± 0,057 1,04 ± ± 0,004 0,9967 ± ± 0,031 0,91 ± ± 0,08 1,034 ± ± 0,036 0,99 ± ± 0,024 0,945 ± ± 0,09 1,027 ± ± 0,1

Qymax 0,697 ± ± 0,0546 0,6657 ± ± 0,047 0,7367 ± ± 0,004 0,4767 ± ± 0,211 0,7 ± ± 0,042 0,71 ± ± 0,036 0,71 ± ± 0,067 0,75 ± ± 0,037

ЯМ 0,741 ± ± 0,1759 0,594 ± ± 0,192 0,593 ± ± 0,0689 0,267 ± ± 0,1156 0,691 ± ± 0,2 0,29 ± ± 0,112 0,46 ± ± 0,175 0,341 ± ± 0,161

На рис. 4, 5 отображены световые кривые для парметров QY и Ft, соответственно. Сравниваются между собой береза и ель, произрастающие рядом с шоссе и вблизи ТЭЦ. Особенно сильно подавлена береза, так как значения QY очень низкие. Кроме действия ТЭЦ, данная порода постоянно подвергается сильному ЭМИ от ЛЭП, находящейся прямо над ней. Ель расположена подальше от ЛЭП.

По Ft, наоборот, в контрастно более загрязненном месте возле ТЭЦ значения показателя для деревьев выше.

0,9

0,8

0,7

* 0,6 <и

х 0,5 ° 0,4 & 0,3 0,2 0,1 0

Береза

Рис.

10 20 50 100 300 500 1000

Интенсивность света, мкЕ*м2/с-1

4. Световые кривые по QY для деревьев в различных по степени загрязнения районах Москвы в октябре 2013 г.

25000

20000

3- 15000 х

I-

5 10000

5000 0

Ель (ТЭЦ) Р1 Ель (шоссе) Р1 Береза (ТЭЦ) Р1 Береза (шоссе) Р1

10 20 50 100 300 500 1000 Интенсивность света, мкЕ*м2/с-1

Рис. 5. Световые кривые по П для деревьев в различных по степени загрязнения районах г. Москвы

***

Фотохимические процессы, такие как окисление хлорофилла в реакционном центре и фотофизические процессы, такие как флуоресцентная эмиссия проходят с определенной эффективностью или выходом. Для более детального описания этих процессов существуют различные параметры флуоресценции, по изменениям которых можно детально прослеживать за изменением состояния растения. В частности, по параметрам флуоресценции можно оценивать различное влияние загрязнения разных факторов на состояние деревьев. Наиболее информативными параметрами являются: квантовый выход &У), величина начальной флуоресцении (То),

индекс «стрессоустойчивости» растения (Rfd), соотношение размера антенны/активного реакционного центра фотосистемы 2 (ABS/RC), фотохимическое тушение (qP), нефотохимическое тушение (NPQ) и др. По данным параметрам удалось проанализировать различное состояние деревьев, находящихся в различных условиях загрязнения. По характеру индукционных кривых наиболее чувствительными породами из числа исследуемых оказались липа и ель. Особенно высокая чувствительность ели продемонстрирована на примере сравнения вблизи с дорогой и рядом с ТЭЦ. У ели наблюдаются более низкие по сигналу флуоресценции OJIP кривые и более пологий их характер развития. Световые кривые также выявляют высокую чувствительность пород к загрязнению. Особенно большое значение на подавление физиологического состояния березы оказывало одновременное воздействие фактора загрязнения дороги, ТЭЦ и ЛЭП, проходящих над березой, что и выявляли параметры флуоресценции.

Безусловно, современные флуоресцентные методы можно рассматривать как наиболее перспективные для дальнейшего изучения и анализа влияния различных негативных факторов на физиологическое состояние деревьев в условиях мегаполиса Москвы.

ЛИТЕРАТУРА

[1] Jeremy Harbinson and Eva Rosenqvist. An introduction to chlorophyll fluorescence, Netherlands, Denmark, 2003.

[2] Strasser B.J., Strasser R.J. Measuring fast fluorescence transients to address environmental questions: The JIP-test // In: Mathis P (ed) Photosynthesis: From Light to Biosphere / Kluwer Academic Publishers / Dordrecht. — 1995.

[3] Melis A. Biochim. Biophys. Acta. 1985. Vol. 808. P. 334—342.

[4] Adams W. W. and B. Demmig-Adams. Chlorophyll fluorescence as a tool to monitor plant response to the environment. In: Papageogiou, G. Govindjee (ed.), Chlorophyll a fluorescence: a signature of photosynthesis // Adv. Photosynth. Respiration. 2004. 19. p. 583—604.

[5] Tevini M., Grusemann P. and Fieser G. Assessement of UVBR stress by chlorophyll fluorescence analysis. In: Lichtenthaler H.K. (ed.). Application of Chlorophyll Fluorescence. P. 229— 238. Kluwer Academic Publications, The Netherlands, 1998.

[6] Nussbaum S., Geissmann M., Eggenberg P., Strasser R.J. and Fuhrer J. Ozone sensitivity in herbaceous species as assessed by direct and modulated chlorophyll fluorescence techniques // J. Plant Physiol. 2001. 158. p. 757—766.

[7] Strasser R.J., Srivastava A. and Tsimilli-Michael M. The fluorescence transient as a tool to characterize and screen photosynthetic samples. In: Probing Photosynthesis: Mechanism, Regulation and Adaptation (M. Yunus, U. Pathre and P. Mohanty, eds.), Taylor and Francis, UK, 2000. Chapter 25. P. 445—483.

[8] Toth S.Z., Schansker G. and Strasser R.J. In intact leaves, the maximum fluorescence level (FM) is independent of the redox state of the plastoquinone pool: a DCMU-inhibition study // Biochim. Biophys. Acta. 2005. 1708. P. 275—282.

FLUORESCENCE ANALYSIS OF CHLOROPHYLL AS AN INDICATOR OF PHYSIOLOGICAL STATE OF TREES IN VARIOUS POLLUTION CONDITIONS OF MOSCOW

D.I. Orekhov, G.A. Kalabin

Ecological faculty Peoples' Friendship University of Russia

Podolskoe shose, 8/5, Moscow, Russia, 113093

In the article are considered the study of fundamental changes in the parameters of fluorescence of the photosynthetic apparatus of trees (birch, linden, thuja, fir), in different conditions of pollution in the Moscow. The content of article focuses on the monitoring of stress in the different environments and uses analysis by JlP-test, the light curves and non-photochemical quenching, etc. The content of this article will demonstrate the possibility of the technique and will hopefully encourage the development of new uses that are not reported in other articles.

Key words: fluorescence, chlorophyll, nonphotochemical quenching, photosynthesis, quantum yield, Kautsky effect.