Ген, кодирующий открытую рамку считывания М-сегмента ККГЛ, и рекомбинантная конструкция, обеспечивающая экспрессию структурных гликопротеинов вируса Крым-Конго геморрагической лихорадки
GENE ENCODING THE OPEN READING FRAME OF THE M SEGMENT OF CCHF AND RECOMBINANT STRUCTURE ENSURING EXPRESSION OF STRUCTURAL GLYCOPROTEINS OF THE CRIMEAN-CONGO HEMORRHAGIC FEVER VIRUS

Изобретение относится к гену, кодирующему структурные гликопротеины вируса Крым-Конго геморрагической лихорадки и рекомбинантной плазмиде, обеспечивающей экспрессию указанного гена за счет цитомегаловирусного (CMV) промотора, а также их интеграцию в геном клеток млекопитающих за счет инвертированных повторов, фланкирующих последовательность гена интереса, промоторных элементов и селективного маркера, и может быть использовано в биотехнологии, молекулярной биологии, генетической инженерии и медицине, в частности для получения вакцины.
Геморрагическая лихорадка Крым-Конго - это особо опасное природно-очаговое трансмиссивное заболевание, вызываемое вирусом Крымско-Конго геморрагической лихорадки (ККГЛ), одно из широко распространенных в мире арбовирусных инфекций, также является рекуррентной инфекцией, эндемичной для юга Европейской части России. Вирус ККГЛ относится к семейству Nairoviridae, порядку Bunyavirales. Геном вируса ККГЛ состоит из трех сегментов: малого (S), среднего (М) и большого (L), представленных одноцепочечной РНК отрицательной полярности [1].
Переносчиками вируса являются иксодовые клещи рода Hyalomma, а хозяевами и резервуаром в природе дикие млекопитающие. Ареал распространения вируса ККГЛ, практически совпадает с ареалом распространения клещей рода Hualomma и охватывает Африку и южную часть Евразии. Для более чем 30 стран была выявлена заболеваемость ККГЛ или же показано наличие вируса ККГЛ в клещах [10].
На данный момент не существует одобренной вакцины, однако имеется множество вакцинных препаратов, которые включают в себя субъединичные антигены, генетически модифицированные растения, вирусные векторы и ДНК-вакцины, экспрессирующие антигены ККГЛ, вирусоподобные частицы (VLP), препараты матричной РНК (мРНК) и инактивированные вирусные частицы [7].
Известно решение по патенту (WO 2020123989, МПК А61К 39/12, опубл. 18.06.2020 г.) [11], где был предложен вариант репликонных вирусных частиц, содержащих все вирусные белки, S- и L-сегменты генома, но не содержащих полноразмерного М-сегмента. Получение вирусных частиц на культуре клеток достигалось путем трансфекции плазмидами pCAGGS, содержащие все три рамки считывания, и минигеномными плазмидами рТ7, содержащие полноразмерные S- и L-сегменты. Для увеличения титра, авторы дополнительно размножали репликонные вирусные частицы, на клеточной культуре Huh7, трансфицированной также pCAGGS-GPC-Oman.
Наиболее близким аналогом (прототипом) является решение по патенту (US 9109199, МПК А61К 39/12, опубл. 18.08.2015 г.) [12], где описан способ получения репликонных частиц буньявирусов, включая вирус лихорадки долины Рифт и ККГЛ, путем транс-комплементации структурных гликопротеинов Gc и Gn как в присутствии, так и в отсутствие кодирующих областей NSm. Транс-комплементация достигалась путем транзиентной экспрессии полноценных вирусных гликопротеинов в клеточной культуре ВНК-21 плазмидой pCAGGS, кодирующей открытую рамку считывания М-сегмента вируса ККГЛ или же путем использования вирусного вектора, кодирующего открытую рамку считывания М-сегмента вируса ККГЛ. В патенте раскрывается подход дизайна репликонных частиц буньявирусов с целью изучения иммунного ответа, разработки средств диагностики буньявирусных инфекций, а также изучения свойств вирусов за пределами помещений класса BSL-4.
Недостатками вышеперечисленных решений является использование дополнительных плазмид или вирусного вектора, которые бы обеспечивали продукцию вирусных гликопротеинов, что может повлечь снижение титра репликонных частиц, а также потерю способности клеточной линии к экспрессии гликопротеинов. Дополнительно, при исключении из вирусной частицы М-сегмента, происходит снижение Т-клеточного ответа, поскольку не обеспечивается внутриклеточный синтез основного структурного антигена. Кроме того, это решение не является технологичным для серийного производства вакцинных препаратов, поскольку при пассировании суспензионных клеточных культур необходима их постоянная трансфекция экспрессионной плазмидой, кодирующей вирусные гликопротеины.
Таким образом, в уровне техники существует потребность в разработке новых подходов, обеспечивающих более стабильную экспрессию вирусных генов и их использовании для разработки кандидатных вакцинных препаратов.
Раскрытие изобретения
Техническим результатом заявленного изобретения является создание рекомбинантной плазмиды, обеспечивающей интеграцию и стабильную экспрессию структурных гликопротеинов вируса Крым-Конго геморрагической лихорадки и не имеющих недостатков выше приведенных аналогов и прототипа.
Указанный технический результат достигается путем создания гена, кодирующего открытую рамку считывания М-сегмента вируса ККГЛ, который представлен последовательностью SEQ ID NO: 1 длиной 5052 п.н.
Указанный технический результат также достигается созданием рекомбинантной плазмиды pSB3delta-GPC, которая имеет размер 11495 п.н. и содержит в соответствии с физической и генетической картой, представленной на фиг. 4, целевой ген, кодирующий белок-предшественник (открытую рамку считывания М-сегмента вируса ККГЛ), имеющий аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 2 длиной 1683 а.к.о., и состоит из следующих элементов:
• ген β-лактамазы (координаты с 10442 по 11303 п.н.) под контролем промотора (координаты с 11304 по 11409 п.н.), в качестве генетического маркера, определяющего устойчивость к ампициллину клеток бактерии E. coli;
• точка начала репликации ori плазмидного вектора pUC (координаты с 9683 по 10272 п.н.)
• 5'-ITR и 3'-ITR инвертированные повторы, имеющие координаты с 17 по 241 п.н. и с 9215 по 9439 п.н. соответственно, обеспечивают интеграцию участка плазмиды, заключенного между ними, в геном клеток млекопитающих при помощи транспозазы Sleeping Beauty (SB);
• промотор и энхансер цитомегаловируса человека (CMV) - обеспечивает экспрессию гена по п. 1 в клетках млекопитающих (координаты с 855 по 1438 п.н.);
• himeric intron - химерный интрон, обеспечивающий эффективную транскрипцию, стабильность и транспорт транскрипта из ядра клетки (координаты с 1574 по 1706 п.н.);
• Т7 promoter - нуклеотидная последовательность промотора бактериофага Т7, необходимая для in vitro транскрипции (координаты с 1751 по 1769 п.н.);
• Glycoprotein precursor - открытая рамка считывания гена, кодирующего структурные гликопротеины вируса ККГЛ (координаты с 1783 по 6834 п.н.);
• IRES2 - внутренний сайт посадки рибосом вируса энцефаломиелита, обеспечивающий экспрессию гена устойчивости к пуромицину (координаты с 6879 по 7465 п.н.);
• PuroR - ген устойчивости к пуромицину, кодирующий N-ацетил трансферазу (координаты с 7466 по 8068 п.н.);
• bGH poly(A) signal - сигнал полиаденелирования (координаты с 8099 по 8323 п.н.).
Существенными отличиями от прототипа, обеспечивающими достижение технического результата, являются:
1. Промоторный IE-элемент цитомегаловируса (CMV) человека необходим для получения стабильно экспрессирующих линий клеток;
2. Полученная рекомбинантная плазмида является интеграционным вектором, который содержат в своем составе ITRs, фланкирующие последовательность гена интереса, промоторных элементов и селективного маркера. Данные последовательности ITRs узнаются транспозазой Sleeping Beauty (SB), с помощью которой происходит интеграция в геном клетки;
3. Ген устойчивости к антибиотику пуромицину позволяет проводить селекцию стабильно экспрессирующих клеточных трансформантов;
4. Вирусные гены структурных гликопротеинов были получены из эпидемиологически значимого штамма вируса ККГЛ.
Сущность заявленного изобретения поясняется чертежами. На фиг. 1 обозначена схема амплификации открытой рамки считывания М-сегмента вируса ККГЛ. На фиг. 2 представлена электрофореграмма в 1.5% агарозном геле фрагментов открытых рамок считывания М- и L-сегментов вируса ККГЛ, амплифицированных на матрице кДНК. На фиг. 3 изображена электрофореграмма в 1.5% агарозном геле продуктов overlap extension ПЦР, полученных путем объединения ампликонов, где М - ДНК-маркер 1 Kb М12 (СибЭнзим, Россия), GPC - открытая рамка считывания М-сегмента, RdRp - открытая рамка считывания L-сегмента. На фиг. 4 изображена схема конструкции рекомбинантной плазмиды pSB3delta-GPC. На фиг. 5 представлена электрофореграмма в 1% агарозном геле фрагментов ДНК после гидролиза плазмид pSB3delta-GPC и pSB3delta-RdRp эндонуклеазами рестрикции XhoI и MluI, где М - ДНК-маркер 1 Kb M12 (СибЭнзим, Россия), GPC - ДНК pSB3delta-GPC, гидролизованная ферментами XhoI - MluI, RdRp - ДНК pSB3delta-RdRp, гидролизованная ферментами XhoI - MluI. На фиг. 6 показаны популяции клеточных линий HEK293-А через двое (А), через пять (Б) суток и через семь (В) суток после трансфекции плазмидами pSB100X и pSB3delta-GPC. На фиг. 7 показано электрофоретическое разделение продуктов амплификации внутреннего участка М-сегмента вируса ККГЛ, где М - маркер длин ДНК 1 kb M12 (СибЭнзим, Россия); 1-5 - ампликоны, полученные с использованием раствора выделенных РНК/ДНК с концентрацией ДНК от 50 нг до 0,005 нг; 6-10 - ампликоны, полученные с использованием образца после обратной транскрипции с концентрацией ДНК от 50 нг до 0,005 нг; К- - образец отрицательного контроля, содержащий ПНР-смесь без ДНК-матрицы.
Осуществление изобретения. Первым этапом создания целевой плазмиды стал выбор способа экспрессии целевого гена в клеточных культурах. Для этого была выбрана система транспозонов Sleeping Beauty, которая позволяет высокоэффективно осуществляет встройку в геном фрагментов ДНК различной длины, ограниченных опознаваемыми особыми последовательностями - так называемыми инвертированными концевыми повторами (англ. ITR, inverted terminal repeats). Кассета, предназначенная для встройки в геном и ограниченная ITR, доставляется в клетку в составе плазмидного вектора. При одновременной доставке вектора и осуществляющейся в клетке экспрессии транспозазы, кассета вырезается из вектора и встраивается в произвольное место в геноме клетки-хозяина. Таким образом, высокоэффективно осуществляется стабильная трансфекция клеточных культур [8]. Использование клеточных линий, стабильно экспрессирующих вирусные белки, может стать преимуществом при разработке кандидатных ДНК-вакцин и VLP против вируса ККГЛ и других вирусов порядка Bunyavirales.
В качестве целевого гена были выбраны участки, кодирующие структурные гликопротеины (открытая рамка считывания М-сегмента) вируса ККГЛ. Такой выбор обусловлен тем, что в вирусные гликопротеины (Gc и Gn, VP38) содержат множество иммуногенных эпитопов и используются в большинстве подходов для индукции как гуморального, так и клеточного ответов [2, 9]. Было показано, что кандидатные вакцинные препараты, содержавшие в своем составе данные участки защищали мышей при контрольном заражении [3-5].
Таким образом, данное изобретение может быть использовано для транс-комплементации М-сегмента при создании репликонных частиц буньявирусов.
Пример 1. Получение кДНК копий М-сегмента вируса ККГЛ
Подбор праймеров (Таблица 1) осуществляли с помощью ПО SnapGene v.3.2.1 и Oligo7, используя в качестве референса последовательности М-сегмента вируса ККГЛ изолят Ast199 (последовательности GenBank: KX056051, KX056050). Синтез олигонуклеотидных праймеров был проведен биотехнологической компанией «Евроген» (г. Москва). Сайты рестрикции в олигонуклеотидах обозначены подчеркиванием и полужирным шрифтом.
1.1. Выделение вирусной РНК и постановка реакции обратной транскрипции
Выделение тотальной РНК проводили из вируссодержащего материала (инфицированный монослой культуры клеток Vero в лизирующем буфере AVL). Для выделения использовали коммерческий набор QIAamp Viral RNA Mini Kit (Qiagen, Германия) в соответствии рекомендациями производителя. Элюат хранили при минус 20°С; в следующем этапе работы использовали его для постановки обратной транскрипции.
Для получения первой цепи ДНК на матрице вирусной геномной РНК использовали набор RNAscribe RT (Biolabmix, Россия). Для проведения реакции пробирку с смесью необходимых компонентов помещали в амплификатор Thermal Cycler С1000 (BioRad, США) и использовали рекомендуемый производителем температурно-временной профиль.
1.2. Амплификация методом ПЦР кДНК фрагментов, кодирующих гликопротеины вируса ККГЛ
Методом ПЦР с использованием специфических праймеров (Таблица 1) были амплифицированы участки, согласно Фиг. 1. Для амплификации использовали высокоточную полимеразу Phusion High-Fidelity (NEB, США), постановку реакции осуществляли согласно рекомендациям производителя. Реакцию для каждого фрагмента проводили в двух повторах с использованием амплификатора Thermal Cycler С1000 с заданным температурно-временным профилем (Таблица 2)
1.3. Выделение ДНК из агарозного геля. После проведения ПНР, очистку продуктов амплификации ДНК проводили методом электрофореза в 1.5% агарозном геле в трис-ацетатном буфере (ТАЕ×1), окрашивали раствором бромистого этидия в течение 10 мин и проявляли с использованием УФ-трансиллюминатора «UV Transilluminator 2000» (BioRad, США). После визуализации под УФ-излучением фрагменты ДНК необходимой длины, разделенные в агарозном геле (фиг. 2) вырезали и выделяли из геля при помощи набора QIAquick Gel Extraction Kit (Qiagen, Германия) в соответствии с рекомендациями производителя.
1.4. Объединение фрагментов при помощи overtap-extension ПЦР
Концентрацию выделенных ДНК фрагментов измеряли при помощи NanoDrop One (Thermo Scientific, США). После чего, фрагменты смешивали в эквимолярных количествах и осуществляли первый этап (overlap) синтеза кДНК копий, кодирующих ORF М-сегмента с помощью полимеразы Phusion High-Fidelity (NEB, США), используя температурно-временной профиль, представленный в Таблице 3. Второй этап (extension) осуществляли при помощи концевых праймеров, содержащих сайты рестрикции Smal и Mlul (Таблица 1) с заданным температурно-временным профилем (Таблица 4).
Очистку продуктов амплификации ДНК при помощи электрофореза в агарозном геле осуществляли способом, описанным ранее. После визуализации под УФ-излучением фрагменты ДНК необходимой длины, разделенные в агарозном геле (фиг. 3), вырезали и выделяли из геля аналогичным образом.
Пример 2 Получение интеграционной конструкции pSB3detta-GPC, несущей открытую рамку считывания М-сегмента вируса ККГЛ
2.1. Клонирование ПЦР продуктов, несущих открытую рамку считывания М-сегмента вируса ККГЛ в плазмиду pSB3delta
Для клонирования генов структурных гликопротеинов в вектор pSB3delta осуществляли ферментативный гидролиз плазмидного вектора и ПЦР продуктов с помощью эндонуклеаз рестрикции SmaI и MluI (NEB, США) с прилагаемыми к ним буферами. Реакционную смесь готовили в соответствии с активностью фермента и концентрацией ДНК. Условия реакции и длительность проведения ферментативного гидролиза ДНК подбирали в соответствии с инструкциями производителя.
Обработанные ферментами ПЦР продукты и вектор pSB3 delta разделяли с помощью электрофореза в 1.5% агарозном геле с последующим выделением с помощью набора QIAquick Gel Extraction Kit (Qiagen, Германия) в соответствии с рекомендациями производителя.
Реакцию лигирования проводили 30 минут при 22°С, используя смесь каждого из ПЦР продуктов, векторной плазмиды pSB3delta в эквимолярных количествах и ДНК-лигазы фага Т4 (ThermoFisher, США) в прилагаемом к коммерческому набору реакционном буфере. Полученная ДНК-конструкция pSB3delta-GPC (фиг. 4) использовали для трансформации культуры компетентных клеток Е. coli штамм NEB Stable (NEB, США). Трансформанты были отобраны с помощью стандартной процедуры ПЦР-скрининга на внутренний участок каждой из вставок.
2.2. Получение плазмидной конструкции pSB3delta-GPC и подтверждение ее структуры при помощи рестрикционного анализа. С помощью бактериологической петли колонию с чашки Петри переносили в пробирку, содержащую 3,5 мл жидкой питательной среды SOB с селективным антибиотиком ампициллином (100 мкг/мл). Далее пробирки помещали в шейкер-инкубатор на 16-18 часов при 170 об/мин, 30°С. Полученную бактериальную суспензию использовали для выделения плазмидной ДНК при помощи набора QIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen, Германия) в соответствии с рекомендациями производителя.
Для подтверждения структуры полученной плазмидной конструкции был проведен гидролиз плазмидной конструкции pSB3delta-GPC с помощью эндонуклеаз рестрикции XhoI и MluI. Согласно теоретически рассчитанной последовательности при гидролизе плазмиды pSB3delta-GPC вышеуказанными ферментами должны появится фрагменты длиной 5471 п.н., 3195 п.н., 1440 п.н. и 1389 п.н.
На фиг. 5 представлена электрофореграмма фрагментов ДНК после гидролиза плазмиды pSB3delta-GPC эндонуклеазами рестрикции XhoI и MluI в 1% агарозном геле, где:
М - ДНК-маркер 1 Kb M12 (СибЭнзим, Россия)
GPC - ДНК pSB3delta-GPC, гидролизованная ферментами XhoI - MluI
RdRp - ДНК pSB3delta-RdRp, гидролизованная ферментами XhoI - MluI
Из данных, представленных на фиг. 5 видно, что подвижность фрагментов гидролизата плазмид pSB3delta-GPC и pSB3delta-RdRp в 1% агарозном геле относительно маркеров молекулярной массы соответствует подвижности теоретически рассчитанных фрагментов.
2.3. Подтверждение структуры плазмид секвенированием по Сэнгеру
Для подтверждения корректной нуклеотидной последовательности полученных образцов использовали метод секвенирования по Сэнгеру. Для постановки реакции использовали набор BrilliantDye Terminator (v3.1) Cycle Sequencing kit (Nimagen, Нидерланды), очищали образцы через Sephadex G-50 Superfine (Cytiva, Швеция) колоночным методом согласно рекомендациям производителя, после чего передавали для проведения капиллярного гель-электрофореза на автоматическом секвенаторе 3500xl Applied Biosystems (США). Полученные хроматограммы анализировали с использованием программного обеспечения SnapGene 3.2.1.
Пример 3. Липофекции клеточной линии HEK293-А плазмидами pSB100X/pSB3delta-GPC и подтверждение экспрессии гена. Для создания линий клеток, стабильно экспрессирующих ген полипротеина GPC, была выбрана перевиваемая клеточная линия HEK293-А. Для липофекции использовали набор Lipofectamine 3000 (Thermo Fisher Scientific, США). Количество взятой для трансфекции плазмидной ДНК в сумме составляло 3 мкг для одной лунки, с соотношением 1 часть плазмиды pSB 100Х к 9 частям плазмиды pSB3delta-GPC. Смесь для липофекции готовили согласно рекомендациям производителя. Перед проведением трансфекции делали рассев клеток на культуральном 6-луночном планшете по 2 мл клеточной суспензии с концентрацией 100 тыс. клеток/мл на лунку в питательной ростовой среде DMEM/F-12 с 7%-содержанием фетальной бычьей сыворотки. Планшет инкубировали до получения монослоя клеток с конфлюентностью в 70-90%.
2
2
В культуральном 6-луночном планшете, содержащем монослой клеточной линии, делали замену питательной среды DMEM/F-12 на среду с пониженным содержанием сыворотки OptiMEM (2 мл на лунку), после чего вносили по 250 мкл полученной смеси ДНК-липидного комплекса в 3 лунки, распределяя смесь по всей поверхности. В качестве контроля оставляли 3 лунки с монослоем клеток без добавления ДНК-липидного комплекса. После инкубации в течение двух суток при 37°С в CO-инкубаторе заменяли кондиционированную питательную среду с пониженным содержанием сыворотки OptiMEM на среду DMEM/F-12 с добавлением селективного антибиотика пуромицина с концентрацией 5 мкг/мл. В одну из трех лунок с монослоем клеток, которые не подвергались трансфекции, вносили питательную среду без добавления антибиотика для наблюдения состояния клеточной популяции. Далее проводили инкубацию при 37°С в CO-инкубаторе со сменой питательной среды каждые 2-3 дня до получения монослоя трансфицированных клеток с конфлюентностью 70-90% (фиг. 6).
Для подтверждения экспрессии гена, кодирующего структурные гликопротеины вируса ККГЛ проводили выделение РНК и ДНК из суспензии клеток трансгенной линии HEK293-А с помощью набор реагентов «РИБО-преп» (Helicon, Россия). Часть раствора очищенных РНК/ДНК гидролизовали ДНКазой I (NEB, США), свободной от РНКаз, и использовали для получения кДНК методом обратной транскрипции с олигонуклеотидными праймерами F-CCHFV_inner и R-CCHFV_inner (Таблица 1), соответствующими внутреннему участку М-сегмента (размер 1541 п.н.). Количество ДНК в растворе выделенных РНК/ДНК и образце после обратной транскрипции измеряли на спектрофотометре NanoDrop One (Thermo ScientiHc, США) и проводили ПЦР с 6 точками 10-кратного разбавления 50 нг ДНК, содержащейся в растворе очищенных РНК/ДНК и в образце с кДНК. По результатам электрофоретического разделения в агарозном геле продуктов амплификации фрагмента можно сделать вывод, что используемые для выделения РНК и ДНК клетки трансгенной линии HEK293-А содержали в геноме последовательность гена структурных гликопротеинов вируса ККГЛ. Присутствие РНК в количестве, достаточном для успешной постановки обратной транскрипции со специфическими олигонуклеотидными праймерами, предполагает стабильную экспрессию данного гена в полученной линии клеток (фиг. 7), что подтверждает заявляемый технический результат.
Источники патентной и научно-технической информации
1. Fields, Bernard N; Knipe, David M; Howley P.M. Fields virology 6th ed. (2013) //Book. 2013. C. 2664.
2. Goedhals D., Paweska J.Т., Burt F.J. Long-lived CD8+ T cell responses following Crimean-Congo haemorrhagic fever virus infection // PLoS Neglected Tropical Diseases. 2017. №12(11). C. e0006149.
3. Hinkula J. [и др.]. Immunization with DNA Plasmids Coding for Crimean-Congo Hemorrhagic Fever Virus Capsid and Envelope Proteins and/or Virus-Like Particles Induces Protection and Survival in Challenged Mice // Journal of Virology. 2017. №10(91).
4. Rodriguez S.E. [и др.]. Vesicular Stomatitis Virus-Based Vaccine Protects Mice against Crimean-Congo Hemorrhagic Fever // Scientific Reports. 2019. №1 (9). C. 1-13.
5. Spengler J. R. [и др.]. Heterologous protection against Crimean-Congo hemorrhagic fever in mice after a single dose of replicon particle vaccine // Antiviral Research. 2019. (170). C. 104573.
6. Sun Y. [и др.]. Bunyavirales ribonucleoproteins: the viral replication and transcription machinery // Critical Reviews in Microbiology. 2018. №5 (44). C. 522-540.
7. Tipih Т., Burt F.J. Crimean-congo hemorrhagic fever virus: Advances in vaccine development // BioResearch Open Access. 2020. №1 (9). C. 137-150.
8. Tschorn N., Berg K., Stitz J. Transposon vector-mediated stable gene transfer for the accelerated establishment of recombinant mammalian cell pools allowing for high-yield production of biologies // Biotechnology Letters. 2020. №7 (42). C. 1103-1112.
9. Zhang J. [и др.]. Fine mapping epitope on glycoprotein Gc from Crimean-Congo hemorrhagic fever virus // Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases. 2019. (67). C. 24-31.
10. Куличенко A.H. [и др.]. Крымская геморрагическая лихорадка в Евразии в XXI веке: эпидемиологические аспекты // Эпидемиол. и инф. бол. Акт. вопр. 2012. (3). С. 42-53.
11. WO 2020123989, МПК А61К 39/12, опубл. 18.06.2020 г. (аналог).
12. US 9109199, МПК А61К 39/12, опубл. 18.08.2015 г. (прототип).
ПРИЛОЖЕНИЕ
--->
Перечень последовательностей
<110> Федеральное бюджетное учреждение науки «Государственный научный
центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по
надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
(ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора)
<120> Ген, кодирующий открытую рамку считывания М-сегмента ККГЛ,
и рекомбинантная конструкция, обеспечивающая экспрессию структурных
гликопротеинов вируса Крым-Конго геморрагической лихорадки
<160> 2
<210> SEQ ID NO:1
<211> 5052 п.н.
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Нуклеотидная последовательность искусственного гена, кодирующего
структурные гликопротеины вируса ККГЛ.
<400> 1
ATGCATACAC TCTTGGTGTG CTTCATTCTT TACCTACAGC TGTCGGGTTT AGGAGGAGCT        60
CATGGACAGT CAAACGCAAC TGAACACAAT GGAACAAACA CCACCACAGT ACCCGGCACA       120
AGTCAAAGCC CCAAGCCACC CGCGAGCACC ACTCTACCAC ACACACCAGA ATCCTCCACC       180
GTCAAACTCA CCACACCAAC AAGCGAAACA GAAGGCTCAG GGGAAACGAC CCCACCCCCA       240
AACACCACCC AGGGCCTGCC CCTACCAGGG ACCACACCAG AACGCTCCGC AACAACCGCC       300
ACAAGCACGT CAAGCACAGA CAACATGAAT TCCACCACAC AGGTGACCGA TAACACCCCC       360
ACATCAACAG TCAGCATAAG TCCATCCAGC AGCTCCAGCA TGCCATCCAC ATCACAAGGC       420
ATACACCATC CCGTAAGGAG TCTATTGTCA GTCTCGAGCC CTAAGACAGC AACAACACCG       480
ACACCAATGA GCCCTGGAGA GATGAGCCCG GAAACCAGCA GTCAGCACTC AGCCATGAGC       540
AGAGCGCCAA CCCTCCACAC AGCAACCCAG GTCTCCACTG AGAACACCGA CCGCAGCACA       600
CCTAGACAAT CTGAGTCCTC AGTACAGCCG GCAACCCAAA GCCCAATAAC TTCCCCAGCG       660
CAAACAATCC TTCTGATGAG TGCTGCTCCT AAAGCTATTC AGGACATGCA TCCCAGCCCA       720
ACAAACAGGT CCAAGAGGAA CCTTGAGGTG GAAATAATTT TAACTCTGTC TCAAGGTCTA       780
AAGAAATATT ACGGTAAAAT ACTGAAGCTT CTGCACCTTA CCTTGGAAGA GGATACTGAA       840
GGCCTGTTAG AATGGTGTAA GAGAAACCTT GGGTCAAATT GTGATGATGA CTTCTTTCAA       900
AAGAGAATAG AAGAATTCTT CATAACTGGT GAGGGCTACT TCAATGAAGT CCTACAATTT       960
AAAACACTAA GCACACTAAG CCCCACGGAG CCGTCTCATG TCAGGCTACC AACAGCGGAG      1020
CCCTTCAAAT CTTACTTCGC TAAGGGCTTC CTTTCAATAG ATTCGGGTTA CTTCTCTGCC      1080
AAATGTTATC CAAGATCATC CACTTCAGGG CTTCAGCTGA TCAATGTCAC CCAACACCCA      1140
GCTAGGATAG CAGAAACACC TGGACCCAAA ACAACGAGTC TGAAAACCAT CAACTGTATC      1200
AACCTAAGAG CATCAGTCTT CAAAGAACAC AGAGAAGTTG AGATCAATGT GCTTCTTCCT      1260
CAGATTGCAG TCAACCTCTC AAACTGCCAT GTTGTGATCA ACTCACATGT CTGTGATTAC      1320
TCTTTAGACA CTGACGGGCC AGTGAGGCTT CCTCGCATTC ACCATGAAGG TACTTTCATA      1380
CCAGGAACTT ATAAAATAGT GATAGACAGG AAAAATAAGC TAAATGACCG ATGCTCGCTA      1440
GTCACTAACT GTGTGATAAA GGGAAGAGAG GTTCGTAAGG GCCAATCAGT GCTGAGGCAG      1500
TACAAAACAG AAATTAAGAT AGGCAAGACA TCAACAGGCT CTAGGAAACT ACTGTCCGAA      1560
GAGCCAGGTG ACGACTGCAT ATCAAGAACT CAGCTATTGA AGACAGAAAC AGCAGAGATC      1620
CATGACGACA ACTATGGTGG TCCAGGTGAC AAAATCACTA TCTGCAATGG TTCAACCATT      1680
GTAGATCAGA GACTGGGCAG TGAACTAGGG TGTTATACCA TCAACAGGGT GAAGTCATTC      1740
AAGCTATGCG AAAACAGTGC CACAGGGAAA ACCTGTGAGA TAGACAGCAC TCCGGTCAAG      1800
TGCAGGCAAG GTTTTTGTTT GAAAATCACC CAAGAGGGAA GGGGCCACGT AAAATTATCC      1860
AGGGGCTCAG AGGTTGTTTT GGATGCTTGC GACTCGAGCT GTGAAATAAT GATACCTAAA      1920
GGCACTGGAG ATATCCTAGT AGACTGTTCA GGTGGACAGC AACATTTCTT AAAAGACAAC      1980
TTGATTGACC TAGGGTGCCC TCATATCCCG CTATTGGGTA AAATGGCCAT TTACATTTGC      2040
AGAATGTCAA ATCATCCCAG GACAACCATG GCTTTCCTCT TCTGGTTCAG TTTTGGCTAT      2100
GTGATCACCT GTATATTTTG CAAGGCTCTT TTTTATTCAT TGATAATTAT TGGGACACTA      2160
GGGAAAAAAA TCAAGCAATA TAGGGAGCTA AAACCTCAAA CTTGCACCAT ATGTGAGACA      2220
GCTCCTGTCA ATGCAATAGA TGCTGAAATG CATGACCTCA ACTGTAGTTA CAATATATGC      2280
CCTTATTGTG CATCAAGACT GACCTCTGAT GGGCTGGCTA GGCATGTGAC ACAATGCCCT      2340
AAGCGAAAGG AGAAAGTTGA GGAGACTGAA CTGTATTTGA ACCTGGAAAG AATTCCTTGG      2400
ATAGTCAGAA AGCTATTGCA AGTGTCAGAG TCCACTGGTG TGGCATTGAA ACGAAGCAGT      2460
TGGCTGATTG TGCTGCTTGT GTTACTCACA GTCTCATTGT CACCGGTCCA ATCAGCACCT      2520
GTTGGTCATG GTAAGACAAT CGAAACATAT CAGACCAGAG AGGGATTCAC AAGTATCTGT      2580
CTCTTTATGT TAGGAAGCAT CCTATTCATA GTTTCTTGCC TGGTAAAGGG GCTGGTTGAC      2640
AGTGTCAGTG ACAGCTTCTT CCCCGGCCTG TCTGTCTGTA AGACATGCTC TATTGGCAGT      2700
ATAAATGGCT TTGAAATTGA ATCGCATAAA TGCTACTGTA GTTTATTTTG CTGCCCCTAC      2760
TGTAGGCACT GCTCTGCTGA CAGAGAAATT CACCAGTTGC ACTTGAGTAT CTGCAAAAAA      2820
AGAAAAACGG GGAGCAATGT CATGCTGGCT GTCTGCAAGC GCATGTGCTT TAAGGCAACC      2880
ATAGAAGCAA GCAGAAGAGC CCTGCTCATC CGAAGCATTA TCAATACCAC TTTTGTAATG      2940
TGCATTCTAA CATTAGCAAT CTGTGTTGTT AGCACCTCTG CAGTAGAGAT GGAAGACCTT      3000
CCAGCAGGCA CTTGGGAGAG AGAGGAAGAC CTAACAAATT TCTGCCATCA GGAATGCCAG      3060
GTGACCGAGA CGGAATGCCT CTGTCCATAC GAAGCTCTTG TGCTCAGGAA ACCCCTTTTC      3120
TTAGACAGTA TAGTTAAAGG TATGAAAAAT TTGCTAAACT CAACAAGCTT AGAAACAAGC      3180
TTATCAATTG AGGCACCATG GGGAGCAATA AATGTCCAGT CAACCTTTAA ACCAACAGTA      3240
TCGACTGCAA ACATAGCACT CAGTTGGAGC TCAGTAGAGC ACAGAGGCAA CAAGATCTTG      3300
GTCACAGGCA GGTCTGAATC AATTATGAAA CTAAAGGAAA GGACAGGAGT CAGCTGGGAT      3360
CTAGGCGTAG AAGATGCCTC TGAATCCAAA TTACTTACCG TCTCTATCAT GGATTTGTCA      3420
CAAATGTATT CCCCTGTTTT TGAGTACTTA TCAGGAGATA GACAGGTTGA AGAATGGCCC      3480
AAGGCAACCT GCACAGGTGA TTGCCCAGAA AGGTGTGGCT GCACATCATC AACCTGCTTG      3540
CATAAAGAAT GGCCTCATTC AAGAAACTGG AGATGTAATC CCACTTGGTG CTGGGGAGTA      3600
GGAACCGGCT GCACATGCTG CGGAGTGGAT GTAAAAGACC TTTTTACAGA CCACATGTTT      3660
ATCAAATGGA AGGTTGAATA TATAAAAACC GAAGCCATAG TATGTGTTGA GCTCACCAGC      3720
CAAGAAAGAC AGTGCAGTCT GATTGAGGCA GGTACTAGAT TCAACTTGGG TCCTGTGACT      3780
ATCACCCTGT CTGAGCCAAG AAACATTCAG CAGAAGCTTC CCCCTGAGAT CATTACGCTG      3840
CATCCCAAAA TTGAAGAAGG CTTCTTTGAC TTGATGCATG TGCAAAAAGT GTTATCTGCA      3900
AGTACAGTGT GTAAACTGCA GAGTTGCACA CATGGTATAC CAGGAGACCT ACAAATTTAC      3960
CACATTGGCA ACTTGTTGAA AGGGGATAGA GTAAACGGCC ATCTAATTCA CAAAATTGAA      4020
CCACATTTTA ACACCTCTTG GATGTCCTGG GATGGTTGTG ACCTAGACTA CTATTGCAAC      4080
ATGGGGGATT GGCCTTCTTG CACATACACA GGAGTGACCC AACATAATCA TGCTGCATTT      4140
GTAAACTTGC TTAACATTGA AACTGATTAC ACGAAAACCT TCCACTTCCA CTCTAAAAGA      4200
GTCACAGCAC ATGGAGACAC ACCACAATTA GACTTAAAAG CAAGGCCGAC CTACGGTGCA      4260
GGTGAGATCA CTGTGCTGGT TGAGGTTGCT GACATGGAGT TGCATACCAA AAAAGTTGAG      4320
ATATCAGGCT TGAAATTTGC AAGTCTGACT TGTACGGGTT GCTATGCTTG TAGCTCTGGC      4380
ATCTCCTGTA AAGTCAGAAT TCATGTAGAT GAACCAGATG AGCTCACAGT GCATGTAAAG      4440
AGCAGTGATC CAGATGTGGT TGCAGCTAGC ACAAGCCTTA TGGCAAGGAA GCTTGAATTT      4500
GGGACAGATA GCACATTCAA GGCATTTTCA GCTATGCCCA AAACCTCTTT ATGCTTTTAC      4560
ATTGTGGAGA GGGAATACTG CAAGAGCTGC AGTGAAGATG ATACAAAAAA ATGTGTTGAC      4620
ACAAAACTTG AGCAGCCACA GAGCATACTA ATTGAGCACA AAGGGACGAT AATTGGAAAG      4680
CAGAATGATA CTTGCACAGC CAAGGCAAGT TGTTGGCTAG AGTCAGTAAA GAGTTTTTTT      4740
TATGGATTGA AGAATATGCT TGGCAGTGTT TTTGGTAGTT TTTTCGTAGG CATTTTGTTA      4800
TTCCTTGCCC CTTTCGTCTT GTTGGTGCTT TTCTTTATGT TTGGATGGAA AATCTTGTTT      4860
TGCTTTAAAT GTTGCAGGAG GACCAGAGGC TTGTTTAAGT ATAGACACCT CAAAGATGAC      4920
GAGGAAACAG GCTACAGAAG GATTATTGAA AGACTGAACA GCAAAAAAGG AAAAAACAGA      4980
CTGCTTGATG GTGAGAGGTT GGCTGATAGG AAAATTGCTG AGCTGTTCTC TACAAAAACA      5040
CACATTGGCT AA                                                          5052
<210> SEQ ID NO:2
<211> 1683 а.к.о.
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Аминокислотная последовательность структурных гликопротеинов
вируса ККГЛ
<400> 2
MHTLLVCFIL YLQLSGLGGA HGQSNATEHN GTNTTTVPGT SQSPKPPAST TLPHTPESST        60
VKLTTPTSET EGSGETTPPP NTTQGLPLPG TTPERSATTA TSTSSTDNMN STTQVTDNTP       120
TSTVSISPSS SSSMPSTSQG IHHPVRSLLS VSSPKTATTP TPMSPGEMSP ETSSQHSAMS       180
RAPTLHTATQ VSTENTDRST PRQSESSVQP ATQSPITSPA QTILLMSAAP KAIQDMHPSP       240
TNRSKRNLEV EIILTLSQGL KKYYGKILKL LHLTLEEDTE GLLEWCKRNL GSNCDDDFFQ       300
KRIEEFFITG EGYFNEVLQF KTLSTLSPTE PSHVRLPTAE PFKSYFAKGF LSIDSGYFSA       360
KCYPRSSTSG LQLINVTQHP ARIAETPGPK TTSLKTINCI NLRASVFKEH REVEINVLLP       420
QIAVNLSNCH VVINSHVCDY SLDTDGPVRL PRIHHEGTFI PGTYKIVIDR KNKLNDRCSL       480
VTNCVIKGRE VRKGQSVLRQ YKTEIKIGKT STGSRKLLSE EPGDDCISRT QLLKTETAEI       540
HDDNYGGPGD KITICNGSTI VDQRLGSELG CYTINRVKSF KLCENSATGK TCEIDSTPVK       600
CRQGFCLKIT QEGRGHVKLS RGSEVVLDAC DSSCEIMIPK GTGDILVDCS GGQQHFLKDN       660
LIDLGCPHIP LLGKMAIYIC RMSNHPRTTM AFLFWFSFGY VITCIFCKAL FYSLIIIGTL       720
GKKIKQYREL KPQTCTICET APVNAIDAEM HDLNCSYNIC PYCASRLTSD GLARHVTQCP       780
KRKEKVEETE LYLNLERIPW IVRKLLQVSE STGVALKRSS WLIVLLVLLT VSLSPVQSAP       840
VGHGKTIETY QTREGFTSIC LFMLGSILFI VSCLVKGLVD SVSDSFFPGL SVCKTCSIGS       900
INGFEIESHK CYCSLFCCPY CRHCSADREI HQLHLSICKK RKTGSNVMLA VCKRMCFKAT       960
IEASRRALLI RSIINTTFVM CILTLAICVV STSAVEMEDL PAGTWEREED LTNFCHQECQ      1020
VTETECLCPY EALVLRKPLF LDSIVKGMKN LLNSTSLETS LSIEAPWGAI NVQSTFKPTV      1080
STANIALSWS SVEHRGNKIL VTGRSESIMK LKERTGVSWD LGVEDASESK LLTVSIMDLS      1140
QMYSPVFEYL SGDRQVEEWP KATCTGDCPE RCGCTSSTCL HKEWPHSRNW RCNPTWCWGV      1200
GTGCTCCGVD VKDLFTDHMF IKWKVEYIKT EAIVCVELTS QERQCSLIEA GTRFNLGPVT      1260
ITLSEPRNIQ QKLPPEIITL HPKIEEGFFD LMHVQKVLSA STVCKLQSCT HGIPGDLQIY      1320
HIGNLLKGDR VNGHLIHKIE PHFNTSWMSW DGCDLDYYCN MGDWPSCTYT GVTQHNHAAF      1380
VNLLNIETDY TKTFHFHSKR VTAHGDTPQL DLKARPTYGA GEITVLVEVA DMELHTKKVE      1440
ISGLKFASLT CTGCYACSSG ISCKVRIHVD EPDELTVHVK SSDPDVVAAS TSLMARKLEF      1500
GTDSTFKAFS AMPKTSLCFY IVEREYCKSC SEDDTKKCVD TKLEQPQSIL IEHKGTIIGK      1560
QNDTCTAKAS CWLESVKSFF YGLKNMLGSV FGSFFVGILL FLAPFVLLVL FFMFGWKILF      1620
CFKCCRRTRG LFKYRHLKDD EETGYRRIIE RLNSKKGKNR LLDGERLADR KIAELFSTKT      1680
HIG*                                                                   1683
<---