СПОСОБ ФЛУОРИМЕТРИЧЕСКОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ ФЛУНИКСИНА
METHOD FOR FLUORIMETRIC DETERMINATION OF FLUNIXIN

Изобретение относится к аналитической химии, конкретно к способу флуориметрического определения флуниксина в лекарственных препаратах при определении действующего вещества и его наличии.
Флуниксин (2-[[2-метил-3-(трифторметил)-фенил]-амино]-пиридин-3-карбоновая кислота)
относится к нестероидным, противовоспалительным, обезболивающим и жаропонижающим средствам, используемым в ветеринарии. Контроль его содержания осуществляют методами, основанными на принципах хромато-масс-спектрометрии с привлечением газовой, жидкостной хроматографии [Estelle Dubreil-Chéneau, Yvette Pirotais, Mélaine Bessiral, etc. Development and validation of a confirmatory method for the determination of 12 non steroidal anti-inflammatory drugs in milk using liquid chromatography-tandem mass spectrometry.Journal of Chromatography A, 1218 (2011) 6292- 6301; Alessandra Gentili, Fulvia Caretti, Simona Bellante, etc. Development and validation of two multiresidue liquid chromatography tandem mass spectrometry methods based on a versatile extraction procedure for isolating non-steroidal anti-inflammatory drugs from bovine milk and muscle tissue.Anal Bioanal Chem (2012) 404:1375-1388; Tao Peng, Ai-Ling Zhu, Yue-Ning Zhou etc. Development of a simple method for simultaneous determination of nine subclasses of non-steroidal anti-inflammatory drugs in milk and dairy products by ultra-performance liquid chromatography with tandem mass spectrometry. Journal of Chromatography B, 933 (2013) 15- 23; Ngaio Richards, Sarah Hall, Karen Scott, etc. First detection of an NSAID flunixin in sheep's wool using GC-MS. Environmental Pollution 159 (2011) 1446-1450]. Хромато-масс-спектрометрия позволяет осуществить разделение определяемых компонентов и их аналитических сигналов, сложных по составу образцов во времени и получить масс-спектры каждого соединения в смеси. Площадь хроматографического пика пропорциональна содержанию вещества в анализируемом образце, что позволяет проводить точный количественный анализ образцов. Преимущество указанного метода заключается в экпрессности и высокой чувствительности, однако он мало подходит для рутинного анализа лекарственных препаратов, так как требует привлечения дорогостоящего оборудования и персонала высокой квалификации.
Наиболее близким по технической сущности является способ определения флуниксина с помощью дифференциальной импульсной вольтамперометрии с использованием портативных миниатюрных одноразовых графитовых электродов [V. Meuccia, M. Vannia, M. Sgorbinia, etc. Determination of phenylbutazone and flunixin meglumine in equine plasma by electrochemical-based sensing coupled to selective extraction with molecularly imprinted polymers. Sensors and Actuators B 179 (2013) 226- 231]. Способ включает предварительную твердофазную экстракцию флуниксина на колонке с последующим восстановлением его на графитовом электроде и предложен в качестве альтернативы к существующим хроматографическим методам. К существенным недостаткам можно отнести использование одноразовых электродов, что повышает стоимость анализа, а также продолжительное время определения. Чаще на практике в анализе лекарственных препаратов используют методы, основанные на измерении собственной флуоресценции, однако флуниксин не обладает флуоресцентными свойствами, и в этом состоит ограничение возможностей флуориметрии. Нами впервые предложен флуориметрический метод определения флуниксина, основанный на измерении сенсибилизированной флуоресценции комплекса тербия с флуниксином в присутствии триоктилфосфиноксида.
Задачей изобретения является разработка простого флуориметрического экспресс-метода определения флуниксина с помощью аналитической формы, обеспечивающего возможность определения флуниксина в лекарственных препаратах, позволяющего исключить использование дорогостоящего оборудования и привлечение высококвалифицированных специалистов.
Технический результат заключается в упрощении способа определения флуниксина за счет применения флуориметрического метода анализа, возможного в результате взаимодействия флуниксина с ионом тербия (III) и триоктилфосфиноксидом (ТОФО) в мицеллярных растворах Твин-80.
-2
3+
-3
-4
возб
фл
Указанный технический результат достигается тем, что согласно заявляемому способу определения наличия флуниксина в лекарственном препарате ацетатно-аммиачный буферный раствор с рН 7.0-7.8 добавляют Твин-80 до концентрации в конечном растворе 1·10 М, соль тербия Tbдо концентрации в конечном растворе 1·10 М, лекарственный препарат триоктилфосфиноксид до концентрации в конечном растворе 1·10 М, облучают раствор электромагнитным излучением с длиной волны λ=347 нм и по наличию флуоресценции на длине волны λ=545 нм судят о наличии флуниксина. Дополнительно измеряют интенсивность флуоресценции, а концентрацию флуниксина в лекарственном препарате определяют по величине интенсивности с использованием заранее полученного градуировочного графика или методом стандартной добавки.
Изобретение поясняется чертежом, на котором приведен градуировочный график определения флуниксина, где по оси абсцисс указан отрицательный десятичный логарифм концентрации лекарственного препарата рС (M), а по оси ординат - десятичный логарифм интенсивности сигнала флуоресценции lgI.
возб
фл
Использование флуориметрического метода определения флуниксина на основании измерения собственной флуоресценции невозможно, так как аналит не обладает флуоресцирующими свойствами. Однако в результате его взаимодействия с солью тербия (III) и триоктилфосфиноксидом (ТОФО) в мицеллярном растворе Твин-80 образуется комплекс, характеризующийся эмиссией тербия (λ=347 нм, λ=545 нм), которая может быть использована в качестве аналитического сигнала при определении нестероидного противовоспалительного препарата.
Способ реализуется следующим образом.
-2
3+
-3
-4
-7
-4
фл
В пробирку с буферным раствором (рН 7.0 - 7.8) строго по порядку добавляют раствор Твин-80 до его концентрации в конечном растворе 1·10 М, соль тербия Tbдо ее концентрации в конечном растворе 1·10 М, лекарственный препарат (либо другой анализируемый раствор), триоктилфосфиноксид до его концентрации в конечном растворе 1·10 М. На полученный конечный раствор воздействуют электромагнитным излучением с длиной волны возбуждения λ=347 нм, и измеряют интенсивность сигнала флуоресценции на длине волны флуоресценции λ=545 нм, которая зависит от концентрации флуниксина в растворе. С помощью заявляемого способа по наличию флуоресценции возможно обнаружение флунексина в диапазоне концентраций от 1·10 до 1·10 М.
Для определения концентрации флуниксина возможно использовать градуировочный график, постороенный в аналогичных условиях для стандартных растворов флуниксина в координатах логарифм интенсивности (lgI) - отрицательный логарифм концентрации (рС) флуниксина, М. Для измерения сигнала флуоресценции используют способ разрешенной во времени флуоресценции (время задержки составляет 0,3 мс). Определяют интенсивность I флуоресценции раствора, затем рассчитывают логарифм этой величины по основанию 10 lgI и с помощью градуировочного графика находят рС и соответствующую концентрацию флуниксина как антилогарифм полученного значения (см. чертеж).
-4
-2
-2
-1
-2
-7
-4
-3
возб
фл
Для построения градуировочного графика готовят стандартный водный раствор флуниксина концентрации 1·10М ("Sigma-aldrich", основного вещества не менее 98%), водный раствор Твин-80 (фирмы «Sigma», основного вещества не менее 99%) концентрации 1·10-1 М, раствор в этиловом спирте триоктилфосфиноксида (фирмы «Sigma», основного вещества не менее 99%) концентрации 1·10 М, водный раствор соли хлорида тербия (III) шестиводного («AcrosOrganics», 99,9% основного вещества), концентрации 1·10 М, ацетатно-аммиачный буферный раствор (рН 7.0-7.8). В семь-десять пробирок (или более для повышения точности) вносят 1 мл буферного раствора с рН 7.0 - 7.8, затем последовательно добавляют 0.4 мл 1·10 М Твин-80, 0.4 мл раствора соли тербия (III) 1·10 М. После этого в каждую пробирку добавляют стандартный раствор флуниксина так, чтобы конечные концентрации варьировались от 1·10 до 1·10 М. Затем в каждую пробирку добавляют 0.4 мл ТОФО 10 М и добавляют буферный раствор до общего объема 4 мл, перемешивают и измеряют интенсивность I флуоресценции (λ=347 нм, λ=545 нм) в режиме разрешенной во времени флуоресценции (время задержки сигнала составляет 0,3 мс). Для каждого раствора измеряют интенсивность флуоресценции и рассчитывают логарифм этой величины по основанию 10. Градуировочный график (см. чертеж) строят в координатах lgI - pC, где С - содержание флуниксина в стандартном растворе, М.
-7
-4
Из градуировочного графика видно, что диапазон определяемых концентраций составляет 1·10 - 1·10 М. Предел обнаружения рассчитан по способу 3δ (Основы аналитической химии» в 2 кн. Книга 1. Методы химического анализа: учебн. для вузов /Ю.А. Золотов, Е.Н. Дорохова и др. Под редакцией Ю.А. Золотова. - М.: Высшая школа. 2004, 494 с.) и составляет 8·10-8 М.
-1
-2
-4
-3
Для определения концентрации флуниксина возможно использовать метод стандартных добавок (Гришаева Т.И. Методы люминесцентного анализа.- СПб.: АНО НПО «Профессионал», 2003, с.107). Добавка стандартного раствора флуниксина должна характеризоваться интенсивностью флуоресценции, близкой по значению к анализируемому раствору. Методика: 1.5 мл анализируемого раствора помещают в мерную колбу, емкостью 25 мл, добавляют бидистиллированную воду до метки, перемешивают. В пробирку вносят 1 мл буферного раствора (рН 7.0-7.8), 0.4 мл 1·10 М Твин-80, 0.4 мл раствора соли тербия(III) 1·10 М и 0.2 - 0.5 мл разбавленного раствора «Флунекс», 0.2 - 0.4 мл стандартного раствора флуниксина концентрацией 1·10 М, добавляют 0.4 мл ТОФО 10 М и буферный раствор до общего объема 4 мл, перемешивают и измеряют интенсивность флуоресценции (задержка - 0.3 мс). Концентрацию флуниксина определяют по формуле:
Сх=Ix·Cа/Ix+а- Ix, где
Ix - флуоресценция исследуемого раствора;
Ix+ст - флуоресценция исследуемого раствора, содержащего добавку;
Сх - определяемая концентрация, (%);
Cа - концентрация добавки в исследуемом растворе (%).
Результаты определения представлены в таблице 1. Правильность контролировали методом «введено-найдено».
Таблица 1Результаты определения флуниксина в препарате «Флунекс» (n=3, P=0.95, tтабл=4,3)
Заявленное содержание, %
Найдено, %
х±Δх
Sr
8,3
8,45±0,08
0,04
Таблица 2Контроль правильности определение флуниксина в препарате «Флунекс» методом «введено-найдено» (n=3, Р=0.95, tтабл=4,3)
№ пробы
Введено,мг/л
Найдено,мг/л
Sr
tэкспер
1
1,48
1,51±0,01
0,01
2,27
2
3,65
3,69±0,10
0,04
1,53
3
2,96
3,17±0,04
0,02
2,32
экспер
Sr - относительное стандартное отклонение, Sr=S/χ, где S - стандартное отклонение, равное S=∑(χi-χ)2/n-1)1/2, χi - единичный результат определения, χ - средний результат, n - число определений, р - доверительная вероятность, t - коэффициент Стьюдента.
Примеры осуществления способа.
В качестве анализируемой пробы использовали раствор лекарственного препарата «Флунекс» (ООО НИТА-ФАРМ, г. Саратов).
-1
-2
-4
-3
возб
фл
Пример 1. Выбор оптимального иона металла для получения максимального аналитического сигнала. Сигнал флуоресценции могут давать и другие ионы РЗЭ в присутствии флуниксина, ТОФО в мицеллярном растворе Твин-80. В четыре пробирки вносят последовательно 1 мл буферного раствора (рН 7.0 - 7.8), добавляют 0.4 мл 1·10 М Твин-80. В первую пробирку добавляют 0.4 мл раствора соли тербия (III) концентрации 1·10М, в другие соответственно - хлорид европия (III), хлорид самария (III) и гадолиния (III) той же концентрации, затем в каждую добавляют 0.4 мл флуниксина, 10М, 0.4 мл ТОФО 10М, добавляют буферный раствор до общего объема 4 мл, перемешивают и измеряют интенсивность флуоресценции (λ=347 нм, λ=545 нм) в режиме разрешенной во времени флуоресценции. Результаты измерений представлены в таблице 3.
Таблица 3Влияние природы иона РЗЭ на интенсивность аналитического сигнала
РЗЭ
Тербий (III)
Европий (III)
Самарий (III)
Гадолиний (III)
Интенсивность флуоресценции
250
10
5
6
Для получения максимального сигнала флуоресценции нами использовался в дальнейших исследованиях тербий (III).
-1
-2
-4
-3
Пример 2. Определение оптимальной природы ПАВ для получения максимального аналитического сигнала. Рассмотрено влияние катионных (хлорид цетилпиридиния, ЦПХ), анионных (додецилсульфата натрия, ДДС) и неионогенных (Твин-80, Бридж-35, Тriton X-100) ПАВ на интенсивность флуоресценции комплекса тербия (III). В пять пробирок вносят 1 мл буферного раствора с рН 7.0- 7.8, затем в первую пробирку добавляют 0.4 мл 1·10 М ЦПХ, во вторую - ДДС, в третью - Твин-80, в четвертую - Бридж-35, в пятую - Тритон Х-100 и далее во все пробирки вносят 0.4 мл раствора соли тербия 1·10М, 0.4 мл флуниксина 10М, 0.4 мл ТОФО 10 М, добавляют буферный раствор до общего объема 4 мл, перемешивают и измеряют интенсивность флуоресценции (λвозб=347 нм, λфл=545 нм) в режиме разрешенной во времени флуоресценции.
Таблица 4Влияние природы ПАВ на интенсивность флуоресценции комплекса тербия (III)
п/№
ЦПХ
ДДС
Твин-80
Бридж-35
ТритонХ-100
Интенсивность флуоресценции
15
100
750
16
15
Как видно из таблицы 4, из всех ПАВ наибольшее увеличение интенсивности флуоресценции наблюдается в присутствии неионогенного Твин-80, который и выбран нами для дальнейших исследований.
Интенсивность флуоресценции хелата Tb3+- флуниксин - триоктилфосфиноксид зависит от концентрации Твин-80 в растворе.
-2
-4
-3
-6
-4
-3
-2
возб
фл
Пример 3. Определение оптимальной концентрации Твин-80 для получения максимального аналитического сигнала. В четыре пробирки вносят 1 мл буферного раствора (рН 7.0 - 7.8), 0.4 мл раствора соли тербия 1·10М, 0.4 мл флуниксина 10М, 0.4 мл ТОФО 10М, и последовательно добавляют 0.4 мл растворов концентрации 1·10 М, 1·10 М, 1·10 М, 1·10 М Твин-80, буферный раствор до общего объема 4 мл, перемешивают и измеряют интенсивность аналитического сигнала (λ=347 нм, λ=545 нм).
Таблица 5Определение оптимальной концентрации Твин-80
п/№
1
2
3
4
Твин-80, концентрация, М
1·10<sup>-6</sup>
1·10<sup>-4</sup>
1·10<sup>-3</sup>
1·10<sup>-2</sup>
Интенсивность флуоресценции
25
30
30
1000
Ввиду того, что раствор Твин-80 большей концентрации приготовить нельзя по причине ограниченности растворимости реагента в воде, в качестве оптимальной концентрации выступает 1·10-2 М.
-1
-2
-4
-3
-3
-4
-4
возб
фл
Пример 4. Выбор второго лиганда ТОФО для получения максимального аналитического сигнала. В четыре пробирки вносят 1 мл буферного раствора с рН 7.0 - 7.8, добавляют 0.4 мл 1·10 М Твин-80, 0.4 мл раствора соли тербия (III) 1·10М, 0.4 мл флуниксина 1·10 М. В первую пробирку добавляют 0.4 мл ТОФО 10М, во вторую - 0.4 мл натриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА) 1·10М, в третью - 0.4 мл теноилтрифторацетона (ТТА) 1·10М, в четвертую - 0.4 мл 1,10-фенантролина (Фен) 1·10М, добавляют в каждую пробирку буферный раствор до общего объема 4 мл, перемешивают и измеряют интенсивность флуоресценции (λ=347 нм, λ=545 нм) в режиме разрешенной во времени флуоресценции. Результаты измерений представлены в таблице 6.
Таблица 6Выбор оптимального второго лиганда для получения максимального аналитического сигнала
Второй лиганд
ТОФО
ЭДТА
ТТА
Фен
Интенсивность флуоресценции
500
25
10
100
В качестве второго лиганда возможно использование ТОФО или Фен, однако оптимальным для получения максимального значения аналитического сигнала является применение ТОФО.
-1
-2
-4
-3
возб
фл
Пример 5. Определение оптимальной кислотности для получения максимального аналитического сигнала. В каждую из пяти пробирок вносят по 1 мл буферного раствора с рН 5.0, 6.0, 7.0, 8.0, 9.0, добавляют в каждую 0.4 мл 1·10 М Твин-80, 0.4 мл раствора соли тербия (III) 1·10М, 0.4 мл флуниксина 1·10 М, 0.4 мл ТОФО 10М, добавляют соответствующий буферный раствор до общего объема 4 мл, перемешивают и измеряют интенсивность флуоресценции (λ=347 нм, λ=545 нм) в режиме разрешенной во времени флуоресценции. Результаты измерений представлены в таблице 7.
Таблица 7Выбор оптимальной кислотности для получения максимального аналитического сигнала
рН
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
Интенсивность флуоресценции
8
50
100
95
30
Установлено, что интенсивность флуоресценции системы тербий(III) - флуниксин - ТОФО в присутствии Твин-80 значительно зависит от кислотности среды и максимальная интенсивность наблюдается при рН 7-8.
3+
3+
Пример 7. Выбор оптимальных концентраций компонентов системы. Для выбора оптимальной концентрации Tbбыла исследована зависимость интенсивности флуоресценции разнолигандного хелата от различных содержаний ионов Tb.
-1
-6
-3
-4
-3
возб
фл
В шесть пробирок вносили 1 мл буферного раствора (рН 7.0 - 7.8), 0.4 мл 1·10 М Твин-80, в каждую пробирку добавляли раствор соли тербия в интервале концентрации 5·10 - 2·10 М, а затем 0.4 мл флуниксина 10М, 0.4 мл 1·10М ТОФО и буферный раствор до общего объема 4 мл, перемешивали и измеряли интенсивность флуоресценции (λ=347 нм, λ=545 нм) в режиме разрешенной во времени флуоресценции. Результаты представлены в таблице 8.
Таблица 8Выбор оптимальной концентрации соли тербия и второго лиганда для получения максимального аналитического сигнала
Интенсивность флуоресценции, М
2·10<sup>-3</sup>
1·10<sup>-3</sup>
5·10<sup>-4</sup>
1·10<sup>-4</sup>
5·10<sup>-5</sup>
1·10<sup>-5</sup>
Тербий
830
850
750
400
200
100
ТОФО
осадки
осадки
100
170
100
70
-3
-4
Как видно из таблицы 8, для получения максимального значения интенсивности аналитического сигнала необходимо использовать 1·10 М соль тербия(III) и 1·10 М раствор ТОФО.
Предлагаемый способ позволяет отказаться от дорогостоящего оборудования и привлечения квалифицированного персонала.