Антимикробное и антиперсистентное действие растительных экстрактов различных видов полыни Южной Сибири

© УТКИНА Т.М., ПОТЕХИНА Л.П., КАРТАШОВА О.Л. - 2014 УДК. 579.61

АНТИМИКРОБНОЕ И АНТИПЕРСИСТЕНТНОЕ ДЕЙСТВИЕ РАСТИТЕЛЬНЫХ ЭКСТРАКТОВ РАЗЛИЧНЫХ ВИДОВ ПОЛЫНИ ЮЖНОЙ СИБИРИ

Татьяна Михайловна Уткина, Лидия Петровна Потехина, Ольга Львовна Карташова

Резюме. Изучено действие растительных экстрактов 13 видов полыни на рост, способность к инактивации лизоцима и образование биопленок условно-патогенными микроорганизмами. Антилизоцимную активность микроорганизмов определяли фотометрическим методом, образование ими биопленок - фотоколориметрическим методом. Показано, что бактерицидным и фунгистатическим действием обладал растительный экстракт полыни туполопастной 02-07, бактериостатическим - полыни эстрагонной 00-42, 06-24; бактериостатическим и фунгистатическим - полыни метельчатой 11-50. Наиболее эффективно антилизоцимную активность микроорганизмов подавляла полынь сизая 06-02, образование биопленок - полынь сизая 11-09. Проведенные исследования позволили отобрать растительные экстракты полыни, обладающие бактерицидным, бактериостатическим и антиперсистент-ным действием.

Ключевые слова: условно-патогенные микроорганизмы, антилизоцимная активность, образование биопленок, растительные экстракты полыни, полынь эстрагонная, полынь метельчатая, полынь сизая, полынь пижмолистная.

THE ANTIMICROBIAL AND ANTIPERSISTENT ACTION OF PLANT EXTRACTS FROM DIFFERENT SPECIES OF ARTEMISIA SOUTHERN SIBERIA

T.M. Utkina, L.P. Potekhina, O.L. Kartashova

Summary. There has been studied the influence of plant extracts of 13 species of Artemisia on the growth of opportunistic microorganisms and their ability to inactivate lysozyme and biofilm formation. Antilysozyme activity of microorganisms was determined by a photometric method, biofilm formation - by photocolorimetric method. It has been shown that plant extract of Artemisia obtusiloba 02-07 possessed bactericidal and fungistatic activity, Artemisia dracunculus 00-42, 06-24 -bacteriostatic activity, Artemisia scoparia 11-50 - bacteriostatic and fungistatic activity. Most effectively antilysozyme activity of microorganisms was suppressed by Artemisia glauca 06-02, biofilm formation - by Artemisia glauca 11-09. The conducted researches allowed to select the plant extracts Artemisia possessing bactericidal, bacteriostatic and antipersistent action.

Key words: opportunistic microorganisms, antilysozyme activity, biofilm formation, plant extracts Artemisia.

Одним из направлений в лечении инфекционно-воспалительных заболеваний и трофических язв является местное применение эфирных масел растений, которые используются в монотерапии или в составе сложных мазей при инфицированных ожогах и ранах [10]. Несомненный интерес представляет изучение эфирных масел, полученных из полыни, которые обладают антибактериальными, противовирусными, противовоспалительными, нематоцидными и фунгицидными свойствами и используются при заживлении ран и при лечении гнойных поражений кожи [14,15]. Для ряда хирургических инфекций в настоящее время показана роль персистентного потенциала бактериальных патогенов в возникновении осложнений и определении затяжного характера гнойно-воспалительного процесса [3], подавление которого лекарственными препаратами позволяет значительно расширить их круг [5].

В связи с этим целью настоящей работы явилось изучение влияния растительных экстрактов полыни на рост и пер-систентные свойства (антилизоцимная активность, образование биопленок) условно-патогенных микроорганизмов.

Материалы и методы

Растительные экстракты (РЭ) (эфирные масла) полыней: полынь лечебная (Artemisia abrotanum 00-01), полынь сизая (Artemisia glauca 00-02, 05-38, 06-02, 06-44, 11-09;, полынь селитряная (Artemisia nitrosa 00-25), полынь эстрагонная (Artemisia dracunculus 00-42, 06-24), полынь крупнокорзин-чатая (Artemisia macrocephala 01-02), полынь туполопастная (Artemisia obtusiloba 02-07, 02-70), полынь пижмолистная (Artemisia tanacetifolia 04-05), полынь горькая (Artemisia absinthium 05-03), полынь понтийская (Artemisia pontica 0527), полынь сантолинолистная (Artemisia santolinifolia 06-26, 11-60), полынь метельчатая (Artemisia scoparia 08-14, 11-50), полынь Сиверса (Artemisia sieversiana 11-54), полынь холодная (Artemisia frigida 11-59), полученные из свежесобранного растительного сырья методом пародистилляции в ходе экспедиционных исследований в различных регионах Южной Сибири в лаборатории терпеновых соединений

Новосибирского института органической химии им. Н.Н. Ворожцова СО РАН (заведующий лабораторией - д.х.н., профессор А.В. Ткачев), лабораторные шифры являются идентификатором образца, связывающим все характеристики и спектрально-аналитические данные с видовой принадлежностью, точными географическими координатами сбора и экологической приуроченностью исследуемого вида растения.

Для изучения антимикробной активности использовали суточные культуры условно-патогенных микроорганизмов из коллекции лаборатории по изучению механизмов и регуляции персистенции бактерий Escherichia coli (n=12), Staphylococcus epidermidis (n=12), Staphylococcus aureus (n=12), Candida albicans (n=12), выделенных от больных инфекционно-воспалительными заболеваниями.

Антимикробную активность растительных экстрактов определяли по [1], антилизоцимную активность (АЛА) микроорганизмов - фотометрическим методом [2], образование ими биопленок оценивали по степени связывания кристаллического фиолетового в стерильных 96-луночных полистироловых планшетах [13]. Регуляцию исследуемыми растительными экстрактами антилизоцимной активности и образования биопленок (ОБ) микроорганизмами осуществляли по [8]. Эффект являлся существенным, если под воздействием РЭ происходило их снижение на 20% и более, а от 0 до 20% - индифферентным.

Результаты и обсуждение

При изучении антимикробной активности растительных экстрактов полыней было показано (табл. 1), что полынь туполопастная 02-07, 02-70; полынь сантолинолистная 06-26; полынь сизая 06-44; полынь Сиверса 11-54 обладали бактерицидной активностью в отношении всех изученных бактерий. Полынь селитряная 00-25, полынь понтийская 05-27, полынь сантолинолистная 11-60 подавляли рост E. coli и S. epidermidis; полынь лечебная 00-01, полынь крупнокорзинча-тая 01-02, полынь холодная 11-59 обладали бактерицидной активностью в отношении E. coli; полынь горькая 05-03 - S.

epidermidis; полынь пижмолистная 04-05 и полынь сизая 0538 - S. aureus.

Все остальные изученные РЭ подавляли рост E. coli; полынь эстрагонная 00-42, 06-24; полынь метельчатая 11-50; полынь холодная 11-59 - S. epidermidis и S. aureus; полынь сизая 06-02 и полынь пижмолистная 04-05 - S. epidermidis; полынь понтийская 05-27; полынь сизая 11-09 и полынь сантолино-

листная 11-60 - S. aureus. Вместе с тем, наряду с подавлением роста бактерий, под влиянием РЭ полыни лечебной 00-01 и полыни метельчатой 08-14 отмечена стимуляция роста S. aureus. РЭ полыни лечебной 00-01; полыни сизой 00-02, 0538, 11-09; полыни метельчатой 08-14 не оказывали влияния на рост S. epidermidis, полыни сизой 00-02, 06-02; полыни селитряной 00-25 и полыни горькой 05-03 - на рост S. aureus.

Фунгицидной активностью изученные РЭ не обладали, однако экстракты полыни туполопастной 02-70, полыни метельчатой 08-14 и полыни сизой 11-09 подавляли рост C. albicans до единичных колоний. Не оказывали влияния на рост C. albicans полынь селитряная 00-25; полынь эстрагонная 00-42, 06-24; полынь крупнокорзинчатая 01-02; полынь туполопастная 02-07.

Далее было изучено влияние РЭ полыней, не обладаю-

Таблица 1 щих бактерицидной активностью, на способность микроорганизмов инактивировать лизоцим и установлено их разнонаправленное действие: индифферентное, стимулирующее и ин-гибирующее АЛА (табл. 2).

На АЛА кишечной палочки не оказывали влияния РЭ полыни эстрагонной 06-24 и полыни метельчатой 08-14. На 20-40% стимулировал персистент-ный признак E. coli экстракт полыни эстрагонной 0042; на 60% и более - экстракты полыни пижмолистной 04-05; полыни сизой 0538, 11-09; полыни метельчатой 11-50. На 20-40% способность кишечной палочки инактивировать лизоцим ингибировали растительные экстракты полыни горькой 05-03 и полыни сизой 06-02; на 40-60% - полыни сизой 00-02.

Установлено повышение АЛА S. epidermidis на 20-40% под воздействием РЭ полыни лечебной 00-01 и полыни сизой 00-

02. Остальные изученные РЭ с разной степенью эффективности подавляли персистентный признак S. epidermidis. Так, экстракты полыни крупнокорзинчатой 01-02 и полыни сизой 05-38 ингибировали АЛА на 20-40%; полыни эстрагонной 00-42 и 06-24, полыни пижмолистной 04-05 и полыни сизой 11-09 - на 40-60%, полыни сизой 06-02, полыни метельчатой 08-14 и 11-50 - на 60% и более.

В отношении S. aureus индифферентным действием обладали экстракты полыни крупнокорзинчатой 01-02, полыни эстрагонной 06-24 и полыни холодной 11-59. Способность стафилококков к инактивации лизоцима подавляли РЭ полыни метельчатой 11-50 (на 20-40%); полыни сизой 00-02, полыни понтийской 05-27, полыни метельчатой 08-14 (на 40-60%); полыни лечебной 00-01, полыни селитряной 00-25, полыни эстрагонной 00-42, полыни горькой 05-03, полыни

Антимикробная активность эфирных масел (растительных экстрактов) полыней

Контроль (КОЕ/мл) E. coli 5. вр1с1епг11сИ$ S. aureus C. albicans

5*105 5*105 5*105 5*105

00-01 Artemisia abrotanum Полынь лечебная Роста нет 5*105 5*106 1*105

00-02 Artemisia glauca Полынь сизая 1*105 5*105 5*105 1*106

00-25 Artemisia nitrosa Полынь селитряная Роста нет Роста нет 5*105 5*105

00-42 Artemisia dracunculus Полынь эстрагонная, 1*105 1*107 1*106 5*105

01-02 Artemisia macrocephala Полынь крупнокорзинчатая Роста нет <1*103 1*103 5*105

02-07 Artemisia obtusiloba Полынь туполопастная Роста нет Роста нет Роста нет 5*105

02-70 Artemisia obtusiloba Полынь туполопастная Роста нет Роста нет Роста нет Ед. кол.

04-05 Artemisia tanacetifolia Полынь пижмолистная 5*104 1*105 Роста нет 1*105

05-03 Artemisia absinthium Полынь горькая 5*104 Роста нет 5*105 1*103

05-27 Artemisiapontica Полынь понтийская Роста нет Роста нет <1*103 1*104

05-38 Artemisia glauca Полынь сизая 5*104 5*105 Роста нет 1*105

06-02 Artemisia glauca Полынь сизая 1*103 Ед. кол. 5*105 1*103

06-24 Artemisia dracunculus Полынь эстрагонная, <1*103 1*105 1*105 5*105

06-26 Artemisiasantolinifolia Полынь сантолинолистная Роста нет Роста нет Роста нет 1*103

06-44 Artemisia glauca Полынь сизая Роста нет Роста нет Роста нет <1*103

08-14 Artemisia scoparia Полынь метельчатая 1*103 5*105 5*106 Ед. кол.

11-09 Artemisia glauca Полынь сизая Ед. кол. 5*105 1*106 Ед. кол.

11-50 Artemisia scoparia Полынь метельчатая <1*103 1*105 1*106 1*104

11-54 Artemisiasieversiana Полынь Сиверса Роста нет Роста нет Роста нет 1*104

11-59 Artemisia frigida Полынь холодная Роста нет Ед. кол. 1*103 1*106

11-60 Artemisia santolinifolia Полынь сантолинолистная Роста нет Роста нет 1*105 1*105

Таблица 2

Влияние эфирных масел (растительных экстрактов) полыней на АЛА / БО микроорганизмов

Контроль (мкг/мл*ОП / усл. ед.) E. coli 5. ер '1Сегт '1С1$ S. aureus C. albicans

0,32±0,02/ 1,4±0,01 0,83±0,09/ 2,0±0,1 1±0,1/ 1,4±0,01 0,18±0,01/ 1,4±0,01

00-01 Artemisia abrotanum Полынь лечебная Роста нет + 1/-1 -3/0 -1/-1

00-02 Artemisia glauca Полынь сизая -2/0 + 1/0 -2/0 -2/-1

00-25 Artemisia nitrosa Полынь селитряная Роста нет Роста нет -3/0 -3/-1

00-42 Artemisia dracunculus Полынь эстрагонная + 1/0 -2/+1 -3/0 0/-1

01-02 Artemisia macrocephala Полынь крупнокорзинчатая Роста нет -1/-3 0/+3 -3/-1

02-07 Artemisia obtusiloba Полынь туполопастная Роста нет Роста нет Роста нет -3/-1

02-70 Artemisia obtusiloba Полынь туполопастная Роста нет Роста нет Роста нет +3/-1

04-05 Artemisia tanacetifolia Полынь пижмолистная +3/0 -2/-1 Роста нет +3/-1

05-03 Artemisia absinthium Полынь горькая -1/0 Роста нет -3/0 -3/-1

05-27 Artemisia pontica Полынь понтийская Роста нет Роста нет -2/0 +3/-1

05-38 Artemisia glauca Полынь сизая +3/0 -1/-1 Роста нет + 1/-1

06-02 Artemisia glauca Полынь сизая -1/0 -3/-1 -3/0 -3/-1

06-24 Artemisia dracunculus Полынь эстрагонная 0/0 -2/-1 0/+1 -3/-1

06-26 Artemisia santolinifolia Полынь сантолинолистная Роста нет Роста нет Роста нет +3/-1

06-44 Artemisia glauca Полынь сизая Роста нет Роста нет Роста нет -3/-1

08-14 Artemisia scoparia Полынь метельчатая 0/+1 -3/0 -2/+1 0/-1

11-09 Artemisia glauca Полынь сизая +3/-1 -2/-1 -3/+1 +1/-1

11-50 Artemisia scoparia Полынь метельчатая +3/0 -3/0 -1/+1 +3/-1

11-54 Artemisia sieversiana Полынь Сиверса Роста нет Роста нет Роста нет +1/-1

11-59 Artemisia frigida Полынь холодная Роста нет -3/0 0/0 +3/-1

11-60 Artemisia santolinifolia Полынь сантолинолистная Роста нет Роста нет -3/+1 +3/-1

Примечание: 0 - изменение признака на 0-20%; 1 - на 20-40%; 2 - на 40-60%; 3 - на 60% и более.

сизой 11-09 и 06-02, полыни сантолинолистной 11-60 (на 60% и более).

На антилизоцимную активность C. albicans не влияли РЭ полыни эстрагонной 00-42 и полыни метельчатой 0814. Экстракты полыни сизой 05-38, 11-09; полыни Сиверса 11-54 стимулировали АЛА C. albicans на 20-40%; экстракты полыни туполопастной 02-70; полыни пижмолистной 04-05; полыни понтийской 05-27; полыни сантолинолистной 06-26, 11-60; полыни метельчатой 11-50; полыни холодной 11-59 -на 60% и более.

В тоже время, АЛА C. albicans подавляли РЭ полыни лечебной 00-01 (на 20-40%); экстракт полыни сизой 00-02 (на 40-60%); полыни селитряной 00-25, полыни крупнокорзин-чатой 01-02, полыни туполопастной 02-07, полыни горькой 05-03, полыни сизой 06-02 и 06-44, полыни эстрагонной 0624 (на 60% и более).

При изучении влияния РЭ на образование биопленок микроорганизмами было установлено, преимущественно, их индифферентное действие на ОБ E. coli; индифферентное и ингибирующее на ОБ - S. epidermidis.

Способность S. epidermidis к ОБ на 20-40% подавляли РЭ полыни лечебной 00-01; полыни пижмолистной 04-05; полыни сизой 05-38, 06-02, 11-09; полыни эстрагонной 06-24; РЭ полыни крупнокорзинчатой 01-02 - на 60% и более. Не оказывали влияния на ОБ РЭ полыни сизой 00-01; полыни метельчатой 08-14, 11-50; полыни холодной 11-59.

РЭ полыни либо не влияли на ОБ S. aureus, либо стимулировали его. Так, полынь лечебная 00-01, полынь селитряная 00-25, полынь эстрагонная 00-42, полынь сизая 00-02, 06-02; полынь холодная 11-59 не оказывали влияния на данный признак, тогда как остальные - повышали его уровень: полынь эстрагонная 06-24, полынь метельчатая 08-14, 11-50; полынь сизая 11-09, полынь сантолинолистная 11-60 - на 2040%, полынь крупнокорзинчатая 01-02 - на 60% и более.

Все изученные РЭ полыни подавляли способность к образованию биопленок у C. albicans на 20-40%.

Снижение эффективности антимикробных препаратов, появление антибиотикорезистентных штаммов обусловило необходимость поиска новых путей борьбы с персистирую-щими патогенами. В этом плане большой интерес представляют лекарственные растения, которые способны служить не только основой для разработки средств с антимикробной активностью, но и выступать в качестве источника соедине-

ний, обладающих необходимой модифицирующей активностью в отношении персистентного потенциала патогена.

Одним из значимых факторов персистенции является антилизоцимная активность, которая встречается у подавляющего большинства условно-патогенных и патогенных микроорганизмов [7] и определяет затяжное течение инфекционно-воспалительного процесса [6], а также формирование бактерионосительства [12]. Кроме того, в настоящее время в развитии целого ряда инфекций человека доказана роль микробных биопленок [11].

Полученные в результате проведенных исследований данные показали, что растительные экстракты полыни, произрастающей в Южной Сибири, обладают не только бактерицидной, бактерио- и фунгистатической, но и антиперси-стентной активностью.

Установлено, что бактерицидным и фунгистатическим действием обладал растительный экстракт полыни туполо-пастной (02-07); бактериостатическим - РЭ полыни эстрагонной 00-42, 06-24; бактериостатическим и фунгистатическим - полыни метельчатой 11-50. Наиболее эффективно анти-лизоцимную активность микроорганизмов снижала полынь сизая (06-02), у E. coli, S. epidermidis и C. albicans образование биопленок на 20-40% подавляла полынь сизая 11-09. Все изученные РЭ подавляли ОБ C. albicans на 20-40%. Полученные данные представляют интерес в связи с многочисленными сведениями о формировании биопленок Candida sp., что обеспечивает им устойчивость к различным противогрибковым препаратам [4]. Заслуживает внимания и тот факт, что со-инкубирование РЭ полыни крупнокорзинчатой 01-02 с S. epidermidis приводило к снижению ОБ на 60% и более, поскольку этиологическая роль эпидермальных стафилококков тесно ассоциирована с их адгезивной способностью [9].

Полученные результаты могут служить экспериментальным обоснованием для дальнейшего изучения свойств эффективных РЭ полыни с целью их использования в клинической практике в качестве вспомогательного антимикробного средства для терапии инфекционно-воспалительных заболеваний.

Работа выполнена при поддержке программы фундаментальных исследований УрО РАН, проект №12-С-4-1022 «Регуляция биологических свойств микроорганизмов растительными экстрактами как основа разработки антибактериальных средств».

ЛИТЕРАТУРА

1. Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. - М.: Медицина, 1982. - 464 с.

2. Бухарин О.В. Персистенция патогенных бактерий. - М.: Медицина, 1999. - 365 с.

3. Глазева С.А., Тарасенко В.С. Клинические варианты течения рожи и характеристики возбудителей осложненных и неосложненных ее форм // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2006. - №13 (63). - С.121-122.

4. Капустина О.А., Карташова О.Л., Потехина Л.П. и др. Биопленкообразование Candida sp., выделенных из разных биотопов тела человека // Проблемы медицинской микологии. - 2011. - Т. 13. №2. - С.81-82.

5. Карташова О. Л., Уткина Т.М. Регуляция персистент-ных свойств микроорганизмов факторами различной природы (обзор) // Бюллетень Оренбургского научного центра УрО РАН. - 2013. - №1. - С.4.

6. Карташова О.Л., Гандыбин Е.А., Уткина Т.М. и др. Биологические свойства микроорганизмов в прогнозировании течения венозно-трофических язв нижних конечностей // Журнал микробиологии, эпидемиологии, иммунобиологии. - 2009. - №4. - С.111-114.

7. Карташова О.Л., Уткина Т.М., Жестков А.В. и др. Влияние фитосубстанций, обладающих антиоксидантной активностью, на персистентные свойства микроорганизмов // Антибиотики и химиотерапия. - 2009. - Т. 54. №9-10. -С.16-18.

8. Кириллов Д.А. Лекарственная регуляция персистент-ных свойств микроорганизмов: Автореф. дис.... канд. мед.

наук. - Оренбург, 2004. - 22 с.

9. Окулич В.К., Плотников Ф.В., Кабанова А.А. Роль микробных биопленок в патогенезе инфекционных процессов на современном этапе // Иммунология, аллергология, инфек-тология. - 2012. - №4. - С.70-82.

10. Панкрушева Т.А., Кобзарева Е.В. Разработка многокомпонентных мазей для лечения местных гнойно-воспалительных процессов // Актуальные проблемы медицины и фармации: сборник научных трудов. - Курск, 2001.

- С.264-265.

11. Фадеев С.Б., Немцева Н.В. Формирование биопленок возбудителями хирургической инфекции мягких тканей // Журнал микробиологии, эпидемиологии, иммунобиологии.

- 2009. - №4. - С.114-117.

12. Чайникова И.Н. Информативность иммунологических показателей и биологических свойств сальмонелл при прогнозировании исхода сальмонеллезной инфекции // Вестник Оренбургского государственного университета. -2005. - №12. - С.58-62.

13. Merrit J.H., Kadouri D.E., O Toole G.A. Growing and analyzing static biofilms // Curr. Protoc. Microbiol. - 2005. - №1.

- P.135-139.

14. Ramezani M., Bazzaz F.B.S., Khadem S.F. Antimicrobial activity of four Artemisia species of Iran // Fitoterapia. - 2004. -№75. - P.201-203.

15. Saddi M., Sanna A., Cottiglia F., et al. Antiherpevirus activity of Artemisia arborescens essential oil and inhibition of lateral diffusion in Vero cells // Ann Clin Microbiol Antimicrob. -2007. - №6. - P. 1476-1479.

REFERENCES

1. Birger M.O. Handbook of microbiological and virological research methods. - Moscow: Medisina, 1982. - 464 p.

2. Bukharin O. V. Persistence ofpathogenic bacteria. - Moscow: Medisina, 1999. - 365 p.

3. Glazeva S.A., Tarasenko V.S. Clinical variants of the course and characteristics of pathogens faces and uncomplicated forms of it // Vestnik Orenburgskogo Gosudarstvennogo Universiteta. -2006. - №13

4. Kapustina O.A., Kartashova O.L., Potekhina L.P., et al. Biofilm formation of Candida isolated from different human's biotopes // Problemy meditsinskoj mikologii. - 2011. - Vol.13. №2. - P.81-82.

5. Kartashova O.L., Utkina T.M. Regulation persistence properties of mikroorganisms properties factors of the various nature

6. Kartashova O.L., Gandybin E.A., Utkina T.M., et al. Biological characteristics of microorganisms for prognosis of trophic ulcers course // Zhyrnal microbiologii, epidemiologii, immunobiologii. - 2009. - №4. - P.111-114.

7. Kartashova O.L., Utkina T.M., Zhestkov A.V., et al. Effect of phytosubstances with antioxidant activity on persistence properties of microorganisms // Antibiotiki i himioterapia. -2009. - Vol. 54. №9-10. - P.16-18.

8. Kirillov D.A. Drug regulation of persistent properties of microorganisms: Author. dis .... Candidate. Med. Sciences. -Orenburg, 2004. - 22 p.

9. Okulich V.K., Plotnikov F. V., Kabanova A.A. Biofilm's role in the pathogenesis of infectious process at the present stage // Immunologia, allergologia, infectologia. - 2012. - №4. - P.70-82.

10. Pankrusheva T.A., Kobzareva E.V. Development of multicomponent ointments for the treatment of local inflammatory processes // Actual problems of Medicine and Pharmacy: collection of scientific papers. - Kursk, 2001. - P.264-265.

11. Fadeev S.B., Nemtseva N.V. Formation of biofilms by agents of surgical soft tissue infections // Zhyrnal microbiologii, epidemiologii, immunobiologii. - 2009. - №4. - P.114-117.

12. Chainikova I.N. Self-descriptiveness of immunological indexes and biological characteristics of salmonellas at forecasting of salmonella infection outcome // Vestnik Orenburgskogo Gosudarstvennogo Universiteta. - 2005. - №12. - P.58-62.

13. Merrit J.H., Kadouri D.E., O Toole G.A. Growing and analyzing static biofilms // Curr. Protoc. Microbiol. - 2005. - №1. - P.135-139.

14. Ramezani M., Bazzaz F.B.S., Khadem S.F. Antimicrobial activity of four Artemisia species of Iran // Fitoterapia. - 2004. -№75. - P.201-203.

15. Saddi M., Sanna A., Cottiglia F., et al. Antiherpevirus activity of Artemisia arborescens essential oil and inhibition of lateral diffusion in Vero cells // Ann Clin Microbiol Antimicrob. -2007. - №6. - P. 1476-1479.

Информация об авторах:

Уткина Татьяна Михайловна - к.б.н., старший научный сотрудник, 460000, г. Оренбург, ул. Пионерская, 11, тел. (3532) 774463, e-mail: pashkova070782@mail.ru; Потехина Лидия Петровна - к.м.н., старший научный сотрудник, e-mail: ploomy@list.ru; Карташова Ольга Львовна - д.б.н., заведующая лабораторией, e-mail: labpersist@mail.ru.

Information About the Authors:

Utkina Tatiana Mihailovna - senior Researcher, PhD, e-mail: pashkova070782@mail.ru, 460000, Orenburg, st. Pionerskaya, 11, tel. (3532)774463; Potekhina Lidia Petrovna - senior Researcher, PhD, MD, e-mail: ploomy@list.ru; Kartashova Olga Lvovna -

head of the laboratory, PhD, professor, e-mail: labpersist@mail.ru.

© ЛАТЫПОВА Г.М., ИВАНОВА Д.Ф., ДАВЛЕТШИНА Р.Я., УРАЗЛИНА О.И. - 2014 УДК 582.689.2:581.192.2:547.1-32:615.07

СОСТАВ ОРГАНИЧЕСКИХ КИСЛОТ В РАСТЕНИЯХ РОДА ПЕРВОЦВЕТ

Гузель Минулловна Латыпова, Дина Фирусовна Иванова, Разида Ягафаровна Давлетшина, Ольга Исламовна Уразлина (Башкирский государственный медицинский университет, ректор - д.м.н., проф. В.Н. Павлов, кафедра послевузовского и дополнительного профессионального фармацевтического образования ИПО,

зав. - д.ф.н., проф. В.А. Катаев)

Резюме. Определено содержание органических кислот в растениях рода первоцвет. Сравнительный анализ качественного состава органических кислот исследуемых растений показал наличие в них общих кислот: щавелевой, лимонной, аскорбиновой и янтарной. Качественный состав первоцвета весеннего оказался богаче, в нем содержатся дополнительно гидроксилимонная, винная и фумаровая кислоты. По количественному содержанию органических кислот первоцвет крупночашечный не уступает первоцвету весеннему. Пищевые растения рода первоцвет представляют интерес в качестве сырьевых источников органических кислот.

Ключевые слова: первоцвет весенний, первоцвет лекарственный, Primula veris L., P. officinalis (L.) Hill., первоцвет крупочашечный, Primula macrocalyx Bunge, надземная часть трава, органические кислоты.

COMPOSITION OF ORGANIC ACIDS IN THE PLANTS OF PRIMULA GENUS

G.M. Latypova, D.F. Ivanova, R. Ya. Davletshina, O.I. Urazlina

Summary. The composition of organic acids in the plants of Primula genus has been determined. The comparative analysis of the qualitative composition of organic acids in the plants under study has demonstrated the presence of general acids such as axalic, citric, ascobic and succinic ones. Qualitative composition of Primula officinalis has been found to be richer as hydroxycitric, tartaric and fumaric acids are contained in it. It has been revealed that Primula macrocalyx Bunge is equal to Primula officinalis in quantitative amount of organic acids. Plants of Primula genus are of interest as raw material for organic acids.

Key words: Primula veris L. or Primula officinalis, Primula macrocalyx Bunge, aerial part of the herb, organic acid.