ГЕНЕТИЧЕСКИЕ ПРЕДИКТОРЫ РАЗВИТИЯ ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫХ НОВООБРАЗОВАНИЙ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

Обзор литературы

https://doi.org/10.24060/2076-3093-2021-11-2-157-165

Генетические предикторы развития злокачественных новообразований

А.В. Пушкарев, М.Г. Галеев, В.А. Пушкарев", А.В. Султанбаев

Республиканский клинический онкологический диспансер, Россия, Республика Башкортостан, Уфа * Контакты: Пушкарев Василий Александрович, e-mail: doctorpushkarev@mail.ru

Аннотация

В статье представлен обзор литературы за последние годы, где рак расценивают как генетическое заболевание, способное манифестировать как спорадическими случаями, так и быть наследственным, сопровождающимся различными мутациями в геноме или перестройками на уровне ДНК. Данные изменения могут проявляться в точковых мутациях, хромосомных аберрациях, гиперметилировании, что приводит к дефектам репарации ДНК. Дефекты генов-супрессоров опухолевого роста (BRCA1, BRCA2, CHEK2, PTCH1 и др.) являются причиной наследственной предрасположенности развития рака молочной железы (РМЖ) и рака яичников (РЯ), обусловленной нарушениями стабильности генома. Выявление соматических мутаций имеет большое значение в изучении механизма канцерогенеза и поиска выбора правильного лечения. Из-за гетерогенности рака идентификация мутаций из опухоли является сложной задачей. Выбор тактики лечения и ее эффективность при РМЖ и РЯ зависят от наличия в опухолевых клетках дефицита гомологичной рекомбинации, обусловленной чаще всего дефектом генов BRCA1/2. CHEK2-ассоциированные новообразования составляют большую долю наследственного РМЖ, механизмы формирования их связаны с дефектами системы репарации ДНК. Избыточная экспрессия белка PTCH 1 является мишенью для опухолей молочной железы, легкого, яичников, толстой кишки и др.

Таким образом, генетические исследования коренным образом изменили представления об этиологии и патогенезе злокачественных опухолей у человека. Распознавание молекулярного фенотипа онкозаболеваний служит важнейшим прогностическим фактором болезни и дает возможность персонифицировать лечение больных.

Ключевые слова: злокачественные новообразования, гены новообразований, мутации зародышевой линии, гены BRCA1, гены BRCA2, контрольных точек киназа 2, Patched-1 рецепторы, канцерогенез

Для цитирования: Пушкарев А.В., Галеев М.Г., Пушкарев В.А., Султанбаев А.В. Генетические предикторы развития злокачественных новообразований (обзор литературы). Креативная хирургия и онкология. 2021;11(2):157-165. https://doi.org/10.24060/2076-3093-2021-11-2-157-165

(CC) ]

Пушкарев Алексей Васильевич — хирургическое отделение

№ 5,

orctd.org/Q000-0002-093T-997X

Галеев Марат Галиакбарович — к.м.н., хирургическое отделение № 5

Пушкарев Василий Александрович — д.м.н., отделение № 8, crc¡0.crQ/2000-2001-55б3-2321

Султанбаев Александр Валерьевич —

к.м.н., отдел противоопухолевой лекарственной терапии, crc¡0.crQ/2000-0003-033б-5335

Genetic Predictors of Malignancy: a Literature Review

Aleksey V. Pushkarev, Marat G. Galeev, VasiliyA. Pushkarev*, Aleksandr V. Sultanbaev

Republican Clinical Oncological Dispensary, Ufa, Russian Federation * Correspondence to: Vasiliy A. Pushkarev, e-mail: doctorpushkarev@mail.ru

Abstract

The review covers recent research on cancer as a genetic disease manifesting both sporadically and in germline through variant genomic mutations or DNA rearrangements. This change can be point mutations, chromosomal aberrations or hypermethylation leading to DNA repair failures. Defects in tumour suppressor genes (BRCA1, BRCA2, CHEK2, PTCH1, etc.) underly hereditary predisposition to breast cancer (BC) and ovarian cancer (OC) due to genome instability. Studying somatic mutations is key to the understanding of carcinogenesis mechanisms and finding apt therapies. Heterogeneity of cancers renders the tumour mutation profiling uneasy. The treatment choice and efficacy in BC and OC depends on homologous recombination defects in tumour cells usually imposed by damaged BRCA1/2 genes. CHEK2-associated neoplasms account for most hereditary BCs linked to flaws in the DNA repair machinery. Overexpression of the PTCH1 protein is the target in breast, lung, ovarian, colonic cancers, etc.

Genetic research has fundamentally altered our understanding of the aetiology and pathogenesis of human malignancy. The molecular cancer phenotype is of paramount importance in the disease prognosis and treatment personalisation.

Keywords: malignant neoplasms, neoplastic genes, germline mutations, BRCA1 gene, BRCA2 gene, checkpoint kinase 2, Patched-1 receptor, carcinogenesis

For citation: Pushkarev A.V., Galeev M.G., Pushkarev V.A., Sultanbaev A.V. Genetic Predictors of Malignancy: a Literature Review. Creative Surgery and Oncology. 2021;11(2):157-165. https://doi.org/10.24060/2076-3093-2021-11-2-157-165

Aleksey V. Pushkarev — Surgery Unit No. 5, orcid.org/0000-0002-093l-997X

Marat G. Galeev — Cand. Sci. (Med.), Surgery Unit No. 5

Vasiliy A. Pushkarev —

Dr. Sci. (Med.), Unit No. 8, orcid.org/0000-0001-5569-2321

Aleksandr V. Sultanbaev —

Cand. Sci. (Med.), Anticancer Drug Therapy Unit, orcid.org/0000-0003-0996-5995

Введение

В настоящее время не вызывает сомнений ведущая роль генетических повреждений в патологических процессах канцерогенеза и формировании злокачественных новообразований [1, 2]. Развитие опухоли при некоторых условиях может быть следствием поэтапной кумуляции в генотипе всевозможных «соматических мутаций», которые могут возникать под влиянием физических, химических, биологических факторов среды [1-3]. Мутации генов и/или аномалии кариотипа выявляются в опухолевых тканях пациентов с раковыми заболеваниями. Диапазон генетических нарушений, сопутствующий опухолевой трансформации клеток, широк и охватывает масштабные или микроперестройки хромосом, амплификацию генов, доминантные или рецессивные мутации некоторых генов, добавляющие мутантным белкам многообразные агрессивные особенности или инактивирующие их [2, 4]. Канцерогенез рассматривается как многостадийный процесс, имеющий периоды инициации, промоции и опухолевого роста. В первоначально здоровой клетке происходит неуклонное нарастание генетических перестроек, которое приводит к разрушению ее митотиче-ской активности. Наряду с этим поочередно зарождается сначала одна мутантная опухолевая клетка, далее возникает целый клон аналогичных клеток, из которого в будущем формируется клинически проявляемая опухоль, имеющая преимущественно моноклональное происхождение [1, 2]. Неопластическая перестройка может быть причиной более сотни видов опухолевых новообразований различных органов и тканей, однако злокачественные клетки имеют некоторые совокупные черты, к которым, не считая кумуляции соматических мутаций, можно причислить получение возможности увеличенной неконтролируемой пролиферации, геномную неустойчивость и расстройство цитодифференци-ровки [1, 5].

Генетические предикторы развития онкозаболеваний

Изучение семейных случаев онкозаболеваний, анализ молекулярно-генетических нарушений и хромосомных аберраций, исследования интеграции здоровых и опухолевых клеток, вызывающих ослабевание признаков злокачественности, обусловили открытие ге-нов-супрессоров онкогенеза, активность которых, как правило, сдерживает канцерогенез. В результате мутации последние обусловливают инициацию, промоцию или прогрессию злокачественного роста клеток. Наследственный синдром рака молочной железы (РМЖ) и рака яичников (РЯ) стал причиной усиленных генетических исследований в начале 90-х годов прошлого века. В 1994 году был открыт первый ген, ассоциированный с этим заболеванием, БЯСЛ1, а годом позже — БЯСЛ2. Первые данные о сопричастности генов БЯСЛ1 и БЯСЛ2 к развитию РМЖ и РЯ были выявлены при исследовании пациенток, живущих в Европе и Северной Америке [1, 2, 5]. С английского языка их название переводится как «ген рака молочной железы»

(breast cancer gene). Упомянутые гены сами по себе не приводят к онкозаболеваниям. Они присутствуют в клетках здорового человека и выполняют важные функции. Риск развития злокачественной опухоли увеличивается, когда деятельность указанных генов нарушается из-за мутаций.

По статистическим данным, мутации в генах BRCA1 и BRCA2 наблюдаются у одного из 300-800 человек. У носителей этих генов возрастает риск развития РМЖ, РЯ, рака фаллопиевых труб, брюшины, предстательной железы, поджелудочной железы, желудка, желчного пузыря и желчных протоков, также меланомы. Если человек унаследует определенные мутации от обоих родителей, у него развивается анемия Фанкони, увеличивается риск формирования некоторых злокачественных заболеваний, острого миелоидного лейкоза [1, 5]. Ген BRCA1, кодирующий белок BRCA1, является ге-ном-супрессором опухоли, значение которого состоит в сдерживании опухолевого развития и сохранении устойчивости генетического аппарата клеток. Он размещен на длинном плече 17-й хромосомы (цитоге-нетический «адрес» — 17q21) и принадлежит к ге-нам-супрессорам опухоли, а значит, охраняет клетку от злокачественной перестройки, кодируя белки, принимающие участие в регуляции клеточного цикла, восстановлении ДНК. При наличии мутации в этом гене значительно повышается вероятность развития РМЖ и РЯ, которые являются одними из самых распространенных онкозаболеваний. Ген BRCA1 содержит много мутантных аллелей. Мутация, состоящая в присоединении одного нуклеотида-цитозина в позиции S382, указывается как S382insC. В итоге смещается граница считывания матричной РНК и появляется преждевременный стоп-кодон в позиции 1829. Как следствие, возникает короткий белок BRCA1, что влечет за собой расстройство его функциональных особенностей и повышает риск развития РЯ и РМЖ. Мутации 5382insC и 4153delA являются причиной почти 86 % семейного РЯ в России. У данного контингента больных мутация 5382insC встречается в 9,7 % случаев. Продукт, кодируемый геном BRCA1, создает комплексы белков BRCA (BRCA-associated genome surveillance complex), которые принимают участие в восстановлении ДНК, обусловливая единство генома [1, 2, 6].

Как следствие расстройства деятельности гена BRCA1, «возможно нарушение связанной с BRCA1 системы репарации ДНК в эпизодических опухолях. В результате опухоли могут стать весьма восприимчивы к цитоста-тикам, поражающим ДНК, — производным платины» [7]. Препараты платины вызывают двунитевые разрывы ДНК. Ввиду того, что биомеханизм гомологичной рекомбинации не работает, в клетках с расстройством функции гена BRCA1 не восстанавливается ДНК. Применение препаратов платины влечет гибель опухолевых клеток. На утверждении представленных материалов основано соображение, что «дисфункция гена BRCA1, по всей видимости, является потенциальным биомаркером чувствительности к химиотерапии (XT) с подключением препаратов платины» [7].

В спорадических случаях опухолей молочной железы дисфункция гена BRCA1 может формироваться по разнообразным механизмам, например по системе спонтанных мутаций гена или по структуре гиперметилирования промотора BRCA1. Подобные эпизодические мутации вызывают снижение или даже отсутствие экспрессии мРНК BRCA1 [7].

Уменьшение интенсивности мРНК BRCA1 в опухолях молочной железы с тройным негативным фенотипом появляется чаще, чем в любых других подтипах [8]. Для славянской этнической категории идентифицирован ряд отличительных мутаций BRCA1 (5382insC, 185delAG, T300G), возникновение которых провоцирует развитие РМЖ [9]. Указанные мутации обусловливают формирование наследственного РМЖ, хотя возможно развитие и случайных мутаций в упомянутых локусах ткани опухоли в результате канцерогенеза [7]. Метилирование промоторной зоны гена BRCA1, по материалам изучения E.H. Lips et al. (2013), фиксируется в 27-37 % случаев ТН РМЖ [10]. В работе S.A. Joosse et al. (2011) 34 % видов базальноподобного РМЖ отличались метилированием промоторного участка BRCA1, что значительно коррелировало с расстройством регуляции BRCA1 (во всех образцах уменьшена экспрессия BRCA1) [11]. Аналогичные результаты достигнуты в более ранних работах, где уровень метилирования промоторного участка гена BRCA1 составил 32 % [12, 13].

В исследованиях D.P. Silver et al. (2010) снижение экспрессии мРНК BRCA1 статистически значимо ассоциировалось с ответом на лечение. В работе оценивали патоморфологические регрессии после проведения 4 курсов ХТ цисплатином в монорежиме. Авторы сделали заключение, что дисфункция BRCA1 является маркером чувствительности к платиносодержащим режимам ХТ [8].

В публикации Y.H. Wen et al. (2012) показано, что гиперэкспрессия белка JD4 в клетках ТН РМЖ выявлялась чаще (> 50 %), чем в клетках ER-позитивного варианта РМЖ (5 %) [14].

Среди пациенток с наследственным РМЖ (нРМЖ) около 25-30 % случаев могут быть связаны с наследственными

Гены риска Повышение риска развития РМЖ Гены/синдромы

Высокопенетрантные гены 5-20 раз BRCA1/BRCA2/RAD51C: наследственного РМЖ и РЯ; TP53: синдром Li-Fraumen; STK11/LKB1: синдром Peutz-Jeghers; PTEN: синдром Cowden

Умереннопенетрантные гены 1,5-5,0 раза CHEK2, PALB2, BRIP1, ATM

Малопенетрантные гены 0,7-1,5 раза FGFR2, TOX3, MAP3K1; CAMK1D, SNRPB; FAM84B/c-MYC, COX11; LSP1, CASP8, ESR1; ANKLE1, MERIT40

Таблица 1. Гены, мутации в которых ассоциированы с риском развития РМЖ в соответствии с их пенетрантностью

изменениями в одном из двух высокопенетрантных генов: BRCA1 или BRCA2. Носительство мутаций в генах BRCA1 или BRCA2 связано с общим суммарным риском развития РМЖ в 60-85 % и риском возникновения РЯ в 30-40 % к возрасту 70 лет соответственно [15, 16]. Гены и локусы, ответственные за развитие семейных форм РМЖ, могут быть поделены на три категории в зависимости от степени риска: высокопенетрантные редкие мутации; умереннопенетрантные и низкопене-трантные с наибольшей частотой встречаемости аллелей [17-19] (табл. 1).

Ген BRCA2 расположен на длинном плече 13-й хромосомы (позиция 13q12.3), относится к опухолевым супрессорам, является геном-супрессором опухолевого роста. Ген расположен в регионе 13q13.1, в норме защищающем клетку от злокачественного перерождения. Ген BRCA2 кодирует одноименный белок, участвующий в репарации ДНК, регуляции клеточного цикла и поддержании генетической стабильности. Мутации в этом гене обнаруживаются у больных РМЖ, РЯ, раком поджелудочной и предстательной желез, анемией Фанкони [20].

База ClinVar содержит информацию о 10 000 вариантов последовательности гена BRCA2, из которых 5133 отнесены к патогенным [21]. Самыми распространенными мутациями гена BRCA2 являются миссенс-му-тации (переключение кодона на кодирование другой аминокислоты — 64,2 %), несмысловые замены (замена нуклеотида в кодоне, не приводящая к изменению последовательности аминокислот в соответствующей полипептидной цепи — 12,4 %), нонсенс-мутации (мутация, в результате которой кодон теряет способность кодировать какую-либо аминокислоту, что приводит к преждевременной остановке синтеза белка — 9,8 %) и мутации со сдвигом рамки считывания (10,8 %). Наиболее распространенная из известных мутаций — 6174delT: делеция тимина в позиции 6174. Делеция инактивирует работу гена, что в итоге может увеличивать вероятность развития РЯ, РМЖ и рака предстательной железы [22]. Таким образом, ген BRCA2 участвует в защите организма от случайных повреждений ДНК, поэтому нарушение его работы дает возможность накапливаться мутациям и приводит к злокачественным заболеваниям.

Третьим по частоте геном, мутация в котором обусловливает предрасположенность к РМЖ, является CHEK2. Ген CHEK2 (checkpoint kinase 2), является человеческим гомологом генов Rad53 и Cds1. CHEK2-ядерная серин-треониновая протеинкиназа — один из наиболее важных генов, выполняющих координацию фаз клеточного цикла, работу сигнальной системы восстановления ДНК и регуляции апопто-за. Стимулирующими моментами являются репли-кативный стресс или образование двухцепочечных повреждений ДНК. Ген CHEK2 активируется АТМ и АТR. Эти протеины ускоряют фосфорилирование индивидуального домена, что влечет к последующим димеризации, аутофосфорилированию и активации. Активированные мономеры фосфорилируют

другие компоненты сигнальной цепи, такие как ген-супрессор опухолевого роста р53, семейство белков СЭС25 (СЭС25С и СЭС25Л) и БЯСЛ1. В результате цепочки реакций усиливается процесс репарации и синхронно блокируется вхождение в фазу митоза (переход 01/8, 8, 02/М) [23]. Регулирование деятельности механизма репарации ДНК наиболее важно после повреждающего генотоксического воздействия, такого как ионизирующее излучение или цитоста-тическая химиотерапия. В клетках млекопитающих ген СНЕК2 активируется АТМ в ответ на нарушение ДНК [23].

Риск развития РМЖ на протяжении жизни у носителей мутации гена СНЕК2 составляет приблизительно 20 % для женщин с неотягощенной наследственностью и 44-57 % для женщин с отягощенной наследственностью по РМЖ [23, 24]. Мутация гена СНЕК2 1100ае1С интегрирована с дополнительной вероятностью развития контралатерального РМЖ, к тому же с плохими показателями долгосрочной безрецидивной и общей выживаемости и выживаемости без обнаружения отдаленных метастазов [25-27].

Две наследственные фаундер-мутации в гене СНЕК2 являются наиболее хорошо изученными. Доказана очевидная связь мутации 1100с1е1С с вероятностью возникновения РМЖ. Частота аллеля 1100ае1С в европейской популяции и у населения Северной Америки достигает 0,2-1,5 % [16, 28]. Риск развития РМЖ у женщин — носительниц мутации 1100ае1С возрастает в 1,4-4,7 раза. В эпизодических случаях установленный эффект проявляется в гомозиготном состоянии. Наряду с этим риск развития РМЖ может увеличиваться вдвое по сравнению с гетерозиготным носительством [29-31]. Мутация в гене СНЕК2 1100ае1С ассоциирована с определенной опасностью формирования контралатерального РМЖ, а также с низкими результатами долговременной безрецидивной и общей выживаемости без возникновения отдаленных метастазов [32-34]. Вышеупомянутая мутация 1100ае1С широко распространена и в России [29]. Женщины-гомозиготы проявляют более чем двукратное увеличение вероятности развития РМЖ в сопоставлении с гетерозиготным унаследованным носи-тельством [30, 31].

В таблице 2 показаны наиболее распространенные мутации гена СНЕК2 в различных странах Европы и в Канаде. Преобладающей разновидностью, наиболее распространенной как в Западной, так и в Восточной Европе, является мутация 1100ае1С. Известно, что злокачественные новообразования молочной железы, связанные с мутацией в гене СНЕК2 1100ае1С, чаще бывают ЭР-позитивными [32-34].

В меньшей мере исследованы некоторые повторяющиеся транкирующие мутации СНЕК2: сплайсинго-вая мутация СНЕК2 — 1У82+10>Л и крупная деле-ция, которая характеризует экзоны 9 и 10 ^е15395). Мутация 1У82+10>Л в сайте сплайсинга экзона 2 гена СНЕК2 вызывает нарушение границ сшиваемых экзо-нов, а также появление в мРНК лишних 4 нуклеотидов и сдвиг рамки считывания. Этот аллель встречается

в Германии (0,4 % жителей), Польше (0,3 % жителей), Белоруссии (0,2 % жителей) [35]. Носительство этого аллеля связано с двукратным повышением риска развития РМЖ [35]. Транкирующий вариант (с.277 delT, р.П265_Ы282ае1, del5601) встречается у пациентов из Чехии. Для популяции российских пациентов северо-западного региона, Польши, Германии, Финляндии, Чехии характерны 3 повторяющиеся мутации гена CHEK2: 1100de1C, del5395, IVS2+1G>A [35, 36]. СЫЕК2-ассоциированные опухоли по им-мунофенотипической молекулярной классификации представлены в основном люминальными вариантами [16, 36, 37]. Новообразования, содержащие транкирующие мутации СЫЕК2, чаще относятся к люминаль-ному В подтипу РМЖ, а опухоли, ассоциированные с заменой I157T, — к люминальному А подтипу [38]. Значительная часть СЫЕК2-ассоциированных опухолей (80-90 %) проявляет экспрессию рецепторов эстрогена (ER) независимо от типа наследственной мутации [36]. Несмотря на то что пациенты с ER/ PR-позитивными опухолями имеют лучший прогноз, СЫЕК2-зависимые опухоли демонстрируют неудовлетворительное течение болезни [33]. Доказано, что СЫЕК2 1100de1C-ассоциированный РМЖ связан с высокой вероятностью риска развития контралате-рального РМЖ и плохими показателями 6-летней выживаемости после констатации диагноза [32]. Данные о результатах различных видов лечения для носителей СЫЕК2-мутаций неоднозначны. Эти больные характеризуются сравнительно неблагополучным течением заболевания, поэтому выбор предпочтительных схем химиотерапии является важной задачей. Очевидно, интерес вызывает вопрос о вну-триопухолевом статусе нормального аллеля СЫЕК2, т.е. о наличии или отсутствии «потери гетерозиготно-сти» (los of heterozygositi, ЬОЫ), поскольку абсолютная функциональная инактивация гена может быть причиной дефекта гомологичной репарации ДНК и привести к повышенной чувствительности опухолевых клеток к терапии ДНК-повреждающими цитостатиками

Страна Мутация Автор-исследователь

Голландия 1100 delC

Финляндия 1100 delC

Германия 1100 delC

1100 delC

Польша del5395 IVS2+1G>A I157T

Чехия 1100 delC

Канада 1100 delC

Россия 1100 delC

Таблица 2. Преимущественно встречающиеся фаундер-мутации в гене CHEK2 в некоторых странах Европы и в Канаде

Table 2. Prevalent CHEK2 founder mutations in selected European countries and Canada

(цисплатин, митомицин и др.) [39]. Потеря гетерози-готности при СНЕК2-индуцированных типах РМЖ встречается реже, чем при BRCA-ассоциированных опухолях [40]. Соматические мутации СНЕК2 при новообразованиях молочной железы, по данным базы COSMIC, обнаруживаются примерно в 1,2 % случаев. Такие мутации преимущественно представлены одно-нуклеотидными заменами и не рассматриваются в качестве соматической инактивации гена СНЕК2. Для спорадических опухолей молочной железы с соматическими мутациями СНЕК2, как и для наследственных опухолей, нехарактерны соматические мутации в гене TP53 [41].

Мутации гена PTCH1 при РМЖ коррелируют с рецидивом заболевания. Наиболее высокое соотношение мутаций PTCH1 обнаружено при люминальном В РМЖ без гиперэкспрессии Her-2/neu (67 %) и ТН РМЖ (62 %) по сравнению с другими подтипами. У больных с мутацией PTCH1 было выявлено более высокое соотношение метастазов в легких, в печени и в отдаленных лимфатических узлах. Пациенты с мутациями PTCH1 имели плохую безрецидивную выживаемость. Ген PTCH1 является длинным геном, имеет в общей сложности 23 экзона. Все пациенты с метастазами в легкие, в печень имели мутации в экзоне 22 или 23 PTCH1, который находится в С-конце внутриклеточного домена белка PTCH1. Таким образом, мутация гена PTCH1 является мощным предиктором для больных РМЖ, а экзоны 22 и 23 — потенциально критические сегменты [42].

Ген PTCH1 кодирует патчированный белок гомолог 1 (PTCH1). PTCH1 12-pass трансмембранный белок содержит две большие внеклеточные петли и две большие внутриклеточные петли. Внеклеточная петля белка PTCH1 взаимодействует с белком sonic hedgehog (SHH) или desert hedgehog (DHH). Без связывания лиганда белок PTCH1 ингибирует сглаженные рецепторы (SMO) и инактивирует нисходящие пути. Связывание белка SHH/DHH с рецептором PTCH1 активирует SMO-корецептор и нисходящую сигнализацию GLI1. Без присутствия лиганда hedgehog ген PTCH1 играет другую роль в клетке — ограничение ряда сигналов, блокируя прогрессирование клеточного цикла путем секвенирования циклин В1 или посредством апоптоза клетки через каспазу-3 и каспазу-9 родственных сигнальных путей [43, 44]. Предполагается, что рецептор PTCH1 является су-прессором опухоли. Сигнальный путь hedgehog потенциально активирует при РМЖ за счет повышения экспрессии белков SHH, SMO, GLI1 и снижения экспрессии PTCH1 [45]. При РМЖ обнаруживается избыточная экспрессия белка PTCH1, особенно в люминальных В и ТН подтипах [46]. Ген PTCH1 является потенциальной терапевтической мишенью для PTCH1 — гиперэкспрессирующего легкого, молочной железы, простаты, яичников, толстой кишки, головного мозга, меланомы [46]. Редкие мутации в совокупности играют решающую роль в одной четверти всех злокачественных заболеваний человека [47].

Заключение

Соматические мутации спонтанно возникают в клетках организма и накапливаются на протяжении всей жизни, что может способствовать развитию рака и других заболеваний [48, 49]. Напротив, мутации зародышевых линий присутствуют в гаметах и передаются следующему поколению по наследству [50]. Если генетическая мутация дает клон клеток, которые обходят ограничения нормальных клеток, это еще больше способствует развитию и прогрессированию рака [51, 52].

Таким образом, молекулярно-генетические исследования изменили наши представления о значении генетических показателей в возникновении и развитии злокачественных новообразований. Идентификация молекулярного фенотипа этих опухолей является важным прогностическим фактором заболевания и дает возможность персонифицировать лечение больных.

Информация о конфликте интересов.

Конфликт интересов отсутствует.

Информация о спонсорстве.

Данная работа не финансировалась.

Список литературы

1 Бочков Н.П., Гинтер Е.К., Пузырев В.П. Наследственные болезни: национальное руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2013.

2 Williams M.J., Sottoriva A., Graham T.A. Measuring clonal evolution in cancer with genomics. Annu Rev Genomics Hum Genet. 2019;20:309-29. DOI: 10.1146/annurev-genom-083117-021712

3 Корженевская М.А., Горбунова В.Н. (ред.). Генетика в клинической практике. СПб.: СпецЛит; 2015.

4 Alberts B., Johnson A., Lewis J., Raff M., Roberts K., Walter P. Molecular Biology of the Cell. 4th ed. New York: Garland Science; 2002.

5 Nussbaum R.L., Mclnnes R.R., Willard H.F., Hamosh A. Genetics in medicine. Elsevier; 2007.

6 Пушкарев А.В. Меньшиков К.В., Пушкарев В.А., Султанба-

ев А.В., Галеев М.Г. Роль наследственных факторов в патогенезе рака молочной железы. Медицинский вестник Башкортостана. 2020;2(86):70-8.

7 Игнатова Е.О., Фролова М.А., Петровский А.В., Малышева Е.В., Ажикина Т.Л., Тюляндин С.А. Дисфункция BRCA1 как маркер чувствительности к производным платины при лечении тройного негативного варианта рака молочной железы. Вестник РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН. 2014;25(1-2):5-13.

8 Silver D.P., Richardson A.L., Eklund A.C., Wang Z.C., Szallasi Z., Li Q., et al. Efficacy of neoadjuvant Cisplatin in triple-negative breast cancer. J Clin Oncol. 2010;28(7):1145-53. DOI: 10.1200/JC0.2009.22.4725

9 Telli M.L., Hellyer J., Audeh W., Jensen K.C., Bose S., Timms K.M., et al. Homologous recombination deficiency (HRD) status predicts response to standard neoadjuvant chemotherapy in patients with triple-negative or BRCA1/2 mutation-associated breast cancer. Breast Cancer Res Treat. 2018;168(3):625-30. DOI: 10.1007/s10549-017-4624-7

10 Lips E.H., Mulder L., Oonk A., van der Kolk L.E., Hogervorst F.B., Imholz A.L., et al. Triple-negative breast cancer: BRCAness and concordance of clinical features with BRCA1-mutation carriers. Br J Cancer. 2013;108(10):2172-7. DOI: 10.1038/bjc.2013.144

11 Joosse S.A., Brandwijk K.I., Mulder L., Wesseling J., Hannemann J., Nederlof P.M. Genomic signature of BRCA1 deficiency in sporadic basal-like breast tumors. Genes Chromosomes Cancer. 2011;50(2):71-81. DOI: 10.1002/gcc.20833

12 de Ruijter T.C., van der Heide F., Smits K.M., Aarts M.J., van Engeland M., Heijnen V.C.G. Prognostic DNA methylation markers for hormone receptor breast cancer: a systematic review. Breast Cancer Res. 2020;22(1):13. DOI: 10.1186/s13058-020-1250-9

13 Darbeheshti F., Izadi P., Emami Razavi A.N., Yekaninejad M.S., Tavak-koly Bazzaz J. Comparison of BRCA1 Expression between Triple-

Negative and Luminal Breast Tumors. Iran Biomed J. 2018;22(3):210-4. DOI: 10.22034/ibj.22.3.210

14 Wen Y.H., Ho A., Patil S., Akram M., Catalano J., Eaton A., et al. Id4 protein is highly expressed in triple-negative breast carcinomas: possible implications for BRCA1 downregulation. Breast Cancer Res Treat. 2012;135(1):93-102. DOI: 10.1007/s10549-012-2070-0

15 Aloraifi F., Alshehhi M., McDevitt T., Cody N., Meany M., O'Doherty A., et al. Phenotypic analysis of familial breast cancer: comparison of BRCAx tumors with BRCA1-, BRCA2-carriers and non-familial breast cancer. Eur J Surg Oncol. 2015;41(5):641-6. DOI: 10.1016/j.ejso.2015.01.021

16 Пушкарев А.В., Султанбаева Н.И., Пушкарев В.А., Насретдинов А.Ф., Меньшиков К.В., Мусин Ш.И. и др. Спектр и частота мутаций в генах BRCA1, BRCA2, CHEK2, PALB2 и RAD50 у пациенток с раком молочной железы в Республике Башкортостан. Казанский медицинский журнал. 2020;101(5):691-7. DOI: 10.17816/RMJ2020-691

17 Ghoussaini M., Pharoah P.D.P., Easton D.F. Inherited genetic susceptibility to breast cancer: the beginning of the end or the end of the beginning? Am J Pathol. 2013;183(4):1038-51. DOI: 10.1016/j. ajpath.2013.07.003

18 Zhu B., Mukherjee A., Machiela M.J., Song L., Hua X., Shi J., et al. An investigation of the association of genetic susceptibility risk with somatic mutation burden in breast cancer. Br J Cancer. 2016;115(6):752-60. DOI: 10.1038/bjc.2016.223

19 Iurlaro R., León-Annicchiarico C.L., Muñoz-Pinedo C. Regulation of cancer metabolism by oncogenes and tumor suppressors. Methods Enzymol. 2014;542:59-80. DOI: 10.1016/B978-0-12-416618-9.00003-0

20 Nalepa G., Clapp D.W. Fanconi anaemia and cancer: an intricate relationship. Nat Rev Cancer. 2018;18(3):168-85. DOI: 10.1038/ nrc.2017.116

21 ClinVar. Bethesda: National Center for Biotechnology Information. [cited 2020 Apr 7]. Available from: https://www.clinicalgenome.org/ data-sharing/clinvar/

22 Cataloge of Somatic Mutations in Cancer. Hinxton: Sanger Institute. C 2004. [cited 2020 Apr 7]. Available from: https://сancer.sanger.ac.uk/ cosmic

23 Leedom T.P., LaDuca H., McFarland R., Li S., Dolinsky J.S., Chao E.C. Breast cancer risk is similar for CHEK2 founder and non-founder mutation carriers. Cancer Genet. 2016;209(9):403-7. DOI: 10.1016/j. cancergen.2016.08.005

24 Jalilvand M., Oloomi M., Najafipour R., Alizadeh S.A., Saki N.,

Rad F.S., et al. An association study between CHEK2 gene mutations and susceptibility to breast cancer. Comp Clin Path. 2017;26(4):837-45. DOI: 10.1007/s00580-017-2455-x

25 Kriege M., Hollestelle A., Jager A., Huijts P.E., Berns E.M., Sieuw-erts A.M., et al. Survival and contralateral breast cancer in CHEK2 1100delC breast cancer patients: impact of adjuvant chemotherapy. Br J Cancer. 2014;111(5):1004-13. DOI: 10.1038/bjc.2014.306

26 Reiner A.S., Sisti J., John E.M., Lynch C.F., Brooks J.D., Mellemkjœr L., et al. Breast cancer family history and contralateral breast cancer risk in young women: an update from the women's environmental cancer and radiation epidemiology study. J Clin Oncol. 2018;36(15):1513-20. DOI: 10.1200/JCO.2017.77.3424

27 Schmidt M.K., Hogervorst F., van Hien R., Cornelissen S., Broeks A., Adank M.A., et al. Age- and Tumor Subtype-Specific Breast Cancer Risk Estimates for CHEK2*1100delC Carriers. J Clin Oncol. 2016;34(23):2750-60. DOI: 10.1200/Jœ.2016.66.5844

28 Zhang S., Phelan C.M., Zhang P., Rousseau F., Ghadirian P., Robi-doux A., et al. Frequency of the CHEK2 1100delC mutation amond women with breast cancer: an international study. Cancer Res. 2008;68(7):2154-7. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-07-5187

29 Chekmariova E.V., Sokolenko A.P., Buslov K.G., Iyevleva A.G., Uli-bina Y.M., Rozanov M.E., et al. CHEK2 1100delC mutation is frequent among Russian breast cancer patients. Breast Cancer Res Treat. 2006;100(1):99-102. DOI: 10.1007/s10549-006-9227-7

30 Näslund-Koch C., Nordestgaard B.G., Bojesen S.E. Increased risk for other cancers in addition to breast cancer for CHEK2*1100delC heterozygotes estimated from the copenhagen general population study. J Clin Oncol. 2016;34(11):1208-16. DOI: 10.1200/Jœ.2015.63.3594

31 Adank M.A., Jonker M.A., Kluijt I., van Mil S.E., Oldenburg R.A., Mooi W.J., et al. CHEK2*1100delC homozygosity is associated with

a high breast cancer risk in women. J Med Genet. 2011;48(12):860-3. DOI: 10.1136/jmedgenet-2011-100380

32 Nagel J.H., Peeters J.K., Smid M., Sieuwerts A.M., Wasielewski M.,

de Weerd V., et al. Gene expression profiling assigns CHEK2 1100delC

breast cancers to the luminal intrinsic subtypes. Breast Cancer Res Treat. 2012;132(2):439-48. DOI: 10.1007/s10549-011-1588-x

33 Huszno J., Kolosza Z. Molecular characteristics of breast cancer according to clinicopathological factors. Mol Clin Oncol. 2019;11(2):192-200. DOI: 10.3892/mco.2019.1869

34 Muranen T.A., Greco D., Blomqvist C., Aittomaki K., Khan S., Hogervorst F., et al. Genetic modifiers of CHEK2*1100delC-associated breast cancer risk. Genet Med. 2017;19(5):599-603. DOI: 10.1038/ gim.2016.147

35 Bogdanova N., Sokolenko A.P., Iyevleva A.G., Abysheva S.N., Blaut M., Bremer M., et al. PALB2 mutations in German and Russian patients with bilateral breast cancer. Breast Cancer Res Treat. 2011;126(2):545-50. DOI: 10.1007/s10549-010-1290-4

36 Domagala P., Wokolorczyk D., Cybulski C., Huzarski T., Lubinski J., Domagala W. Different CHEK2 germline mutations are associated with distinct immunophenotypic molecular subtypes of breast cancer. Breast Cancer Res Treat. 2012;132(3):937-45. DOI: 10.1007/s10549-011-1635-7

37 Kleiblova P., Stolarova L., Krizova K., Lhota F., Hojny J., Zemankova P., et al. Germline CHEK2 gene mutations in hereditary breast cancer predisposition — mutation types and their biological and clinical relevance. Klin Onkol. 2019;32(Suppl 2):36-50. DOI: 10.14735/am-ko2019S36

38 Kwei K.A., Kung Y., Salari K., Holcomb I.N., Pollack J.R. Genomic instability in breast cancer: pathogenesis and clinical implications. Mol Oncol. 2010;4(3):255-66. DOI: 10.1016/j.molonc.2010.04.001

39 Lord C.J., Ashworth A. BRCAness revisited. Nat Rev Cancer. 2016;16(2):110-20. DOI: 10.1038/nrc.2015.21

40 Larsen M.J., Thomassen M., Tan Q., Lœnkholm A.V., Bak M., S0rensen K.P., et al. RNA profiling reveals familial aggregation of molecular subtypes in non-BRCA1/2 breast cancer families. BMC Med Genomics. 2014;7:9. DOI: 10.1186/1755-8794-7-9

41 Knappskog S., Berge E.O., Chrisanthar R., Geisler S., Staalesen V., Leirvaag B., et al. Concomitant inactivation of the p53- and pRB-functional pathways predicts resistance to DNA damaging drugs in breast cancer in vivo. Mol Oncol. 2015;9(8):1553-64. DOI: 10.1016/j. molonc.2015.04.008

42 Wang C.Y., Chang Y.C., Kuo Y.L., Lee K.T., Chen P.S., Cheung C., et al. Mutation of the PTCH1 gene predicts recurrence of breast cancer. Sci Rep. 2019;(9):16359. DOI: 10.1038/s41598-019-52617-4

43 Adolphe C., Hetherington R., Ellis T., Wainwright B. Patched1 functions as a gatekeeper by promoting cell cycle progression. Cancer Res. 2006;66(4):2081-8. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-05-2146

44 Katoh M. Genomic testing, tumor microenvironment and targeted therapy of Hedgehog-related human cancers. Clin Sci (Lond). 2019;133(8):953-70. DOI: 10.1042/CS20180845

45 Monkkonen T., Lewis M.T. New paradigms for the Hedgehog signaling network in mammary gland development and breast Cancer. Biochim Biophys Acta Rev Cancer. 2017;1868(1):315-32. DOI: 10.1016/j. bbcan.2017.06.003

46 Riaz S.K., Khan J.S., Shah S.T.A., Wang F., Ye L., Jiang W.G., et al. Involvement of hedgehog pathway in early onset, aggressive molecular subtypes and metastatic potential of breast cancer. Cell Commun Signal. 2018;16(1):3. DOI: 10.1186/s12964-017-0213-y

47 Kohno T. Implementation of "clinical sequencing" in cancer genome medicine in Japan. Cancer Sci. 2018;109(3):507-12. DOI: 10.1111/ cas.13486

48 Pennington K.P., Walsh T., Harrell M.I., Lee M.K., Pennil C.C., Rendi M.H., et al. Germline and somatic mutations in homologous recombination genes predict platinum response and survival in ovarian, fallopian tube, and peritoneal carcinomas. Clin Cancer Res. 2014;20(3):764-75. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-13-2287

49 Janoueix-Lerosey I., Lequin D., Brugières L., Ribeiro A., de Pontual L., Combaret V., et al. Somatic and germline activating mutations of the ALK kinase receptor in neuroblastoma. Nature. 2008;455(7215):967-70. DOI: 10.1038/nature07398

50 Mitsudomi T., Yatabe Y. Mutations of the epidermal growth factor receptor gene and related genes as determinants of epidermal growth factor receptor tyrosine kinase inhibitors sensitivity in lung cancer. Cancer Sci. 2007;98(12):1817-24. DOI: 10.1111/j.1349-7006.2007.00607.x

51 Reddy B.Y., Miller D.M., Tsao H. Somatic driver mutations in melanoma. Cancer. 2017;123(S11):2104-17. DOI: 10.1002/cncr.30593

52 Kim K.B., Dunn C.T., Park K.S. Recent progress in mapping the emerging landscape of the small-cell lung cancer genome. Exp Mol Med. 2019;51(12):1-13. DOI: 10.1038/s12276-019-0349-5

References

1 Bochkov N.P., Ginter E.K., Puzyrev V.P. Hereditary diseases: national guideline. Moscow: GEOTAR-Media; 2013 (In Russ.).

2 Williams M.J., Sottoriva A., Graham T.A. Measuring clonal evolution in cancer with genomics. Annu Rev Genomics Hum Genet. 2019;20:309-29. DOI: 10.1146/annurev-genom-083117-021712

3 Korzhenevskaya M.A., Gorbunova V.N. (eds) Genetics in clinical practice. Saint Petersburg: SpetsLit; 2015 (In Russ.).

4 Alberts B., Johnson A., Lewis J., Raff M., Roberts K., Walter P. Molecular Biology of the Cell. 4th ed. New York: Garland Science; 2002.

5 Nussbaum R.L., McInnes R.R., Willard H.F., Hamosh A. Genetics in medicine. Elsevier; 2007.

6 Pushkarev A.V., Menshikov K.V., Pushkarev V.A., Sultanbaev A.V., Galeev M.G. The role of hereditary factors in the pathogenesis of breast cancer. Bashkortostan Medical Journal. 2020;2(86):70-8 (In Russ.).

7 Ignatova E.O., Frolova M.A., Petrovsky A.V., Malysheva E.V., Azhikina T.L., Tjulandin S.A. BRCA1-associated DNA repair dysfunction as a potential predictive biomarker to platinum-based chemotherapy in patients with triple negative breast cancer. Journal of N.N. Blokhin Russian Cancer Research Center RAMS. 2014;25(1-2):5-13 (In Russ.).

8 Silver D.P., Richardson A.L., Eklund A.C., Wang Z.C., Szallasi Z., Li Q., et al. Efficacy of neoadjuvant Cisplatin in triple-negative breast cancer. J Clin Oncol. 2010;28(7):1145-53. DOI: 10.1200/JC0.2009.22.4725

9 Telli M.L., Hellyer J., Audeh W., Jensen K.C., Bose S., Timms K.M., et al. Homologous recombination deficiency (HRD) status predicts response to standard neoadjuvant chemotherapy in patients with triple-negative or BRCA1/2 mutation-associated breast cancer. Breast Cancer Res Treat. 2018;168(3):625-30. DOI: 10.1007/s10549-017-4624-7

10 Lips E.H., Mulder L., Oonk A., van der Kolk L.E., Hogervorst F.B., Imholz A.L., et al. Triple-negative breast cancer: BRCAness and concordance of clinical features with BRCA1-mutation carriers. Br J Cancer. 2013;108(10):2172-7. DOI: 10.1038/bjc.2013.144

11 Joosse S.A., Brandwijk K.I., Mulder L., Wesseling J., Hannemann J., Nederlof P.M. Genomic signature of BRCA1 deficiency in sporadic basal-like breast tumors. Genes Chromosomes Cancer. 2011;50(2):71-81. DOI: 10.1002/gcc.20833

12 de Ruijter T.C., van der Heide F., Smits K.M., Aarts M.J., van Engeland M., Heijnen V.C.G. Prognostic DNA methylation markers for hormone receptor breast cancer: a systematic review. Breast Cancer Res. 2020;22(1):13. DOI: 10.1186/s13058-020-1250-9

13 Darbeheshti F., Izadi P., Emami Razavi A.N., Yekaninejad M.S., Tavak-koly Bazzaz J. Comparison of BRCA1 Expression between Triple-Negative and Luminal Breast Tumors. Iran Biomed J. 2018;22(3):210-4. DOI: 10.22034/ibj.22.3.210

14 Wen Y.H., Ho A., Patil S., Akram M., Catalano J., Eaton A., et al. Id4 protein is highly expressed in triple-negative breast carcinomas: possible implications for BRCA1 downregulation. Breast Cancer Res Treat. 2012;135(1):93-102. DOI: 10.1007/s10549-012-2070-0

15 Aloraifi F., Alshehhi M., McDevitt T., Cody N., Meany M., O'Doherty A., et al. Phenotypic analysis of familial breast cancer: comparison of BRCAx tumors with BRCA1-, BRCA2-carriers and non-familial breast cancer. Eur J Surg Oncol. 2015;41(5):641-6. DOI: 10.1016/j.ejso.2015.01.021

16 Pushkarev A.V., Sultanbaeva N.I., Pushkarev V.A., Nasretdinov A.F., Menshikov K.V., Musin SH.I., et al. Spectrum and frequency of BRCA1, BRCA2, CHEK2, PALB2, RAD50 mutations in breast cancer patients in the Republic of Bashkortostan. Kazan medical journal. 2020;101(5):691-7 (In Russ.). DOI:10.17816/KMJ2020-691

17 Ghoussaini M., Pharoah P.D.P., Easton D.F. Inherited genetic susceptibility to breast cancer: the beginning of the end or the end of the beginning? Am J Pathol. 2013;183(4):1038-51. DOI: 10.1016/j. ajpath.2013.07.003

18 Zhu B., Mukherjee A., Machiela M.J., Song L., Hua X., Shi J., et al. An investigation of the association of genetic susceptibility risk with somatic mutation burden in breast cancer. Br J Cancer. 2016;115(6):752-60. DOI: 10.1038/bjc.2016.223

19 Iurlaro R., León-Annicchiarico C.L., Muñoz-Pinedo C. Regulation of cancer metabolism by oncogenes and tumor suppressors. Methods Enzymol. 2014;542:59-80. DOI: 10.1016/B978-0-12-416618-9.00003-0

20 Nalepa G., Clapp D.W. Fanconi anaemia and cancer: an intricate relationship. Nat Rev Cancer. 2018;18(3):168-85. DOI: 10.1038/ nrc.2017.116

21 ClinVar. Bethesda: National Center for Biotechnology Information. [cited 2020 Apr 7]. Available from: https://www.clinicalgenome.org/ data-sharing/clinvar/

22 Cataloge of Somatic Mutations in Cancer. Hinxton: Sanger Institute. C 2004. [cited 2020 Apr 7]. Available from: https://cancer.sanger.ac.uk/ cosmic

23 Leedom T.P., LaDuca H., McFarland R., Li S., Dolinsky J.S., Chao E.C. Breast cancer risk is similar for CHEK2 founder and non-founder mutation carriers. Cancer Genet. 2016;209(9):403-7. DOI: 10.1016/j. cancergen.2016.08.005

24 Jalilvand M., Oloomi M., Najafipour R., Alizadeh S.A., Saki N., Rad F.S., et al. An association study between CHEK2 gene mutations and susceptibility to breast cancer. Comp Clin Path. 2017;26(4):837-45. DOI: 10.1007/s00580-017-2455-x

25 Kriege M., Hollestelle A., Jager A., Huijts P.E., Berns E.M., Sieuw-erts A.M., et al. Survival and contralateral breast cancer in CHEK2 1100delC breast cancer patients: impact of adjuvant chemotherapy. Br J Cancer. 2014;111(5):1004-13. DOI: 10.1038/bjc.2014.306

26 Reiner A.S., Sisti J., John E.M., Lynch C.F., Brooks J.D., Mellemkjœr L., et al. Breast cancer family history and contralateral breast cancer risk in young women: an update from the women's environmental cancer and radiation epidemiology study. J Clin Oncol. 2018;36(15):1513-20. DOI: 10.1200/JCO.2017.77.3424

27 Schmidt M.K., Hogervorst F., van Hien R., Cornelissen S., Broeks A., Adank M.A., et al. Age- and Tumor Subtype-Specific Breast Cancer Risk Estimates for CHEK2*1100delC Carriers. J Clin Oncol. 2016;34(23):2750-60. DOI: 10.1200/Jœ.2016.66.5844

28 Zhang S., Phelan C.M., Zhang P., Rousseau F., Ghadirian P., Robi-doux A., et al. Frequency of the CHEK2 1100delC mutation amond women with breast cancer: an international study. Cancer Res. 2008;68(7):2154-7. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-07-5187

29 Chekmariova E.V., Sokolenko A.P., Buslov K.G., Iyevleva A.G., Uli-bina Y.M., Rozanov M.E., et al. CHEK2 1100delC mutation is frequent among Russian breast cancer patients. Breast Cancer Res Treat. 2006;100(1):99-102. DOI: 10.1007/s10549-006-9227-7

30 Näslund-Koch C., Nordestgaard B.G., Bojesen S.E. Increased risk for other cancers in addition to breast cancer for CHEK2*1100delC heterozygotes estimated from the copenhagen general population study. J Clin Oncol. 2016;34(11):1208-16. DOI: 10.1200/Jœ.2015.63.3594

31 Adank M.A., Jonker M.A., Kluijt I., van Mil S.E., Oldenburg R.A., Mooi W.J., et al. CHEK2*1100delC homozygosity is associated with

a high breast cancer risk in women. J Med Genet. 2011;48(12):860-3. DOI: 10.1136/jmedgenet-2011-100380

32 Nagel J.H., Peeters J.K., Smid M., Sieuwerts A.M., Wasielewski M.,

de Weerd V., et al. Gene expression profiling assigns CHEK2 1100delC breast cancers to the luminal intrinsic subtypes. Breast Cancer Res Treat. 2012;132(2):439-48. DOI: 10.1007/s10549-011-1588-x

33 Huszno J., Kolosza Z. Molecular characteristics of breast cancer according to clinicopathological factors. Mol Clin Oncol. 2019;11(2):192-200. DOI: 10.3892/mco.2019.1869

34 Muranen T.A., Greco D., Blomqvist C., Aittomäki K., Khan S., Hogervorst F., et al. Genetic modifiers of CHEK2*1100delC-associated breast cancer risk. Genet Med. 2017;19(5):599-603. DOI: 10.1038/ gim.2016.147

35 Bogdanova N., Sokolenko A.P., Iyevleva A.G., Abysheva S.N., Blaut M., Bremer M., et al. PALB2 mutations in German and Russian patients with bilateral breast cancer. Breast Cancer Res Treat. 2011;126(2):545-50. DOI: 10.1007/s10549-010-1290-4

36 Domagala P., Wokolorczyk D., Cybulski C., Huzarski T., Lubinski J., Domagala W. Different CHEK2 germline mutations are associated with distinct immunophenotypic molecular subtypes of breast cancer. Breast Cancer Res Treat. 2012;132(3):937-45. DOI: 10.1007/s10549-011-1635-7

37 Kleiblova P., Stolarova L., Krizova K., Lhota F., Hojny J., Zemankova P., et al. Germline CHEK2 gene mutations in hereditary breast cancer predisposition — mutation types and their biological and clinical relevance. Klin Onkol. 2019;32(Suppl 2):36-50. DOI: 10.14735/am-ko2019S36

38 Kwei K.A., Kung Y., Salari K., Holcomb I.N., Pollack J.R. Genomic instability in breast cancer: pathogenesis and clinical implications. Mol Oncol. 2010;4(3):255-66. DOI: 10.1016/j.molonc.2010.04.001

39 Lord C.J., Ashworth A. BRCAness revisited. Nat Rev Cancer. 2016;16(2):110-20. DOI: 10.1038/nrc.2015.21

40 Larsen M.J., Thomassen M., Tan Q., Lœnkholm A.V., Bak M., S0rensen K.P., et al. RNA profiling reveals familial aggregation of molecular subtypes in non-BRCA1/2 breast cancer families. BMC Med Genomics. 2014;7:9. DOI: 10.1186/1755-8794-7-9

41 Knappskog S., Berge E.O., Chrisanthar R., Geisler S., Staalesen V., Leirvaag B., et al. Concomitant inactivation of the p53- and pRB-

functional pathways predicts resistance to DNA damaging drugs in breast cancer in vivo. Mol Oncol. 2015;9(8):1553-64. DOI: 10.1016/j. molonc.2015.04.008

42 Wang C.Y., Chang Y.C., Kuo Y.L., Lee K.T., Chen P.S., Cheung C., et al. Mutation of the PTCH1 gene predicts recurrence of breast cancer. Sci Rep. 2019;(9):16359. DOI: 10.1038/s41598-019-52617-4

43 Adolphe C., Hetherington R., Ellis T., Wainwright B. Patched1 functions as a gatekeeper by promoting cell cycle progression. Cancer Res. 2006;66(4):2081-8. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-05-2146

44 Katoh M. Genomic testing, tumor microenvironment and targeted therapy of Hedgehog-related human cancers. Clin Sci (Lond). 2019;133(8):953-70. DOI: 10.1042/CS20180845

45 Monkkonen T., Lewis M.T. New paradigms for the Hedgehog signaling network in mammary gland development and breast Cancer. Biochim Biophys Acta Rev Cancer. 2017;1868(1):315-32. DOI: 10.1016/j. bbcan.2017.06.003

46 Riaz S.K., Khan J.S., Shah S.T.A., Wang F., Ye L., Jiang W.G., et al. Involvement of hedgehog pathway in early onset, aggressive molecular subtypes and metastatic potential of breast cancer. Cell Commun Signal. 2018;16(1):3. DOI: 10.1186/s12964-017-0213-y

47 Kohno T. Implementation of "clinical sequencing" in cancer genome medicine in Japan. Cancer Sci. 2018;109(3):507-12. DOI: 10.1111/cas.13486

48 Pennington K.P., Walsh T., Harrell M.I., Lee M.K., Pennil C.C., Rendi M.H., et al. Germline and somatic mutations in homologous recombination genes predict platinum response and survival in ovarian, fallopian tube, and peritoneal carcinomas. Clin Cancer Res. 2014;20(3):764-75. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-13-2287

49 Janoueix-Lerosey I., Lequin D., Brugieres L., Ribeiro A., de Pontual L., Combaret V., et al. Somatic and germline activating mutations of the ALK kinase receptor in neuroblastoma. Nature. 2008;455(7215):967-70. DOI: 10.1038/nature07398

50 Mitsudomi T., Yatabe Y. Mutations of the epidermal growth factor receptor gene and related genes as determinants of epidermal growth factor receptor tyrosine kinase inhibitors sensitivity in lung cancer. Cancer Sci. 2007;98(12):1817-24. DOI: 10.1111/j.1349-7006.2007.00607.x

51 Reddy B.Y., Miller D.M., Tsao H. Somatic driver mutations in melanoma. Cancer. 2017;123(S11):2104-17. DOI: 10.1002/cncr.30593

52 Kim K.B., Dunn C.T., Park K.S. Recent progress in mapping the emerging landscape of the small-cell lung cancer genome. Exp Mol Med. 2019;51(12):1-13. DOI: 10.1038/s12276-019-0349-5