Сравнительная характеристика половой активности, уровня спермопродукции и устойчивости к криоконсервации спермы баранов различных пород

ободочной и прямой кишок козлят в возрасте 1 мес. характеризуется тенденцией к плавному снижению толщины коркового и мозгового вещества по мере приближения к прямой кишке. К моменту достижения козами возраста 6 мес. существенных преобразований в гистоархитектонике лимфатических узлов толстого отдела кишечника не происходило, однако наблюдался ряд морфологических изменений.

Литература

1. Этинген Л.Е. Лимфатическая система // Человек. 2005. № 3. С. 172-179.

2. Савилова О.В., Окунев Д.А. // Особенности строения лимфатического русла подвздошной кишки коз оренбургской породы // Архивариус. 2015. Т. 2. № 3 (3). С. 12-14.

3. Савилова О.В., Тайгузин Р.Ш. Макро- и микроанатомия лимфатических узлов тонкого отдела кишечника коз орен-

бургской породы // Учёные записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2012. Т. 212. Вып. 4. С. 130-137.

4. Савилова О.В., Тайгузин Р.Ш. Особенности микроскопического строения регионарных лимфатических узлов тонкого отдела кишечника коз оренбургской породы // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2012. № 2 (34). С. 230-233.

5. Чумаков В.Ю. Анатомо-гистологические особенности регионарных лимфатических узлов некоторых органов овец / В.Ю. Чумаков, Е.Ю. Складнева, А.Е. Медкова, М.В. Новицкий, Е.А. Кудашова, В.М. Романов, Р.Э. Красовская, Е.А. Назарова // Фундаментальные исследования. 2004. № 3. С. 127-128.

6. Чумаков В.Ю. Конструкция капсулы регионарных лимфатических узлов некоторых органов овец / В.Ю. Чумаков, Е.Ю. Складнева, А.Е. Медкова, Е.А. Кудашова, М.В. Новицкий, Р.Э. Красовская // Успехи современного естествознания. 2003. № 12. С. 73-73.

7. Волкова О.В., Елецкий Ю.К. Основы гистологии с гистологической техникой. М.: Медицина, 1982. 304 с.

Сравнительная характеристика половой активности, уровня спермопродукции и устойчивости к криоконсервации спермы баранов различных пород*

Т.В. Мамонтова, к.с.-х.н., М.М. Айбазов, д.с.-х.н., профессор, ФГБНУ Всероссийский НИИОК; М.С. Сеитов, д.б.н., профессор, ФГБОУ ВО Оренбургский ГАУ

Преобразования в овцеводстве Российской Федерации, проводимые в последние десятилетия, привели к существенным экономическим, организационным и структурным изменениям в отрасли. Среди них следует отметить перевод шёрстного овцеводства в мясное направление, что продиктовано в первую очередь экономической конъюнктурой [1-5]. В частности, для развития мясного направления в овцеводстве в регионы с традиционным овцеводством осуществляется завоз баранов-производителей лучших мясных пород (тексель, дорсет, суффолк, мериноленд и др.). Создаются крупные холдинги по круглогодичному производству баранины, в которых на матках отечественных тонкорунных и полутонкорунных пород используется генофонд производителей мясных пород.

С другой стороны, предпринимаются попытки создания животных с двойной продуктивностью. В 2007 г. был осуществлён завоз австралийских мясных мериносов, сочетающих высокую живую массу, хорошие мясные формы и производство тонкой и супертонкой шерсти. Эти производители интенсивно использовались на тонкорунных породах Ставрополья - ставропольской, манычский и советский меринос. Итогом почти десятилетней кропотливой работы, проведённой под организационным руководством Национального союза овцеводов и научно-методическим руководством

ВНИИОК, стало создание новой отечественной породы овец - российский мясной меринос.

При осуществлении селекционно-племенной работы максимальное внимание в первую очередь уделяется происхождению и фенотипическим показателям конструируемых животных. В то же время представляет определённый интерес реализация воспроизводительной функции завозимых импортных и создаваемых пород [6-8].

Цель исследования - изучение половой активности, уровня спермопродукции баранов разных генотипов, а также устойчивости спермы к крио-консервации.

Материал и методы исследования. Исследование проводили на племзаводах Ставропольского края и на опытной станции ФГБНУ ВНИИОК в половой сезон (сентябрь). Объектом исследования служили бараны-производители пород северокавказская мясо-шёрстная (СК, п=3), джалгинский меринос (ДМ, п=3), советский меринос (СМ, п = 3), манычский меринос (ММ, п=3), российский мясной меринос (РММ, п=3), эдильбаевская (Э, п = 2), поллдорсет (ПД, п = 2), тексель (Т, п = 2). Всем животным были обеспечены аналогичные условия содержания и ухода. Кормление баранов осуществлялось по рационам случного периода в соответствии с рекомендуемыми нормами (ВНИИОК, 1987 г.). Баранов-производителей содержали, строго соблюдая рациональный распорядок дня. Половую активность оценивали по времени (в сек.), затрачиваемому бараном на выделение эякулята. Сперму получали в искусственную вагину и исследовали на следующие показатели: качество

* Исследование поддержано программой развития биоресурсных коллекций ФАНО

2. Уровень половых гормонов у баранов разных пород

1. Показатели воспроизводительной функции баранов разных пород

Показатель СК ДМ СМ ММ РММ Э ПД Т

Половая активность, сек. Объём, мл Концентрация, млрд/ мл Подвижность, балл Млрд спермиев в эякуляте 28±3,5 1,28±0,03 3,42±0,01 8,4±0,03 4,38±0,07 25±4,0 1,34±0,06 3,35±0,01 8,7±0,03 4,49±0,11 29±2,2 1,24±0,06 3,11±0,01 8,6±0,04 3,86±0,08 25±3,4 1,30±0,06 3,21±0,01 8,5±0,03 4,30±0,13 34±4,5 1,18±0,06 3,15±0,01 8,3±0,03 3,72±0,12 22 ±3,0 1,42±0,07 3,16±0,03 8,7±0,04 4,49±0,07 31±5,3 1,02±0,06 3,49±0,01 8,2±0,01 3,56±0,09 39±5,5 1,09±0,05 3,30±0,04 8,0±0,06 3,60±0,13

Подвижность после криоконсервации, балл 4,8±0,08 4,7±0,13 4,4±0,13 4,6±0,13 4,6±0,13 4,3±0,08 4,4±0,17 4,2±0,11

Количество доз криоконсер-вированной спермы из одного эякулята (0,2 мл с содержанием 80 млн спермиев с ППД) 26 26 21 25 21 24 20 19

Показатель СК ДМ СМ ММ РММ Э ПД Т

Тестостерон, нмоль/л Эстрадиол, нмоль/л 49,6±2,5 0,56±0,03 52,6±2,7 0,74±0,05 51,3±1,4 0,75±0,06 52,8±3,0 0,63±0,04 47,6±2,7 0,74±0,05 60,3±1,4 0,75±0,06 42,8±3,0 0,63±0,04 35,9±2,2 0,47±0,07

и количество выделяемой спермы, устойчивость спермы к криоконсервации при —196°С. Содержание половых гормонов — тестостерона и эстрадио-ла — в крови подопытных животных определяли методом ИФА на приборе «Униплан» с помощью стандартных наборов фирмы «Вектор-Бест».

Результаты исследования. Средние показатели половой активности и уровня спермопродукции баранов изучаемых пород приведены в таблице 1.

Уровень половых гормонов в крови у баранов разных пород представлен в таблице 2.

При анализе таблицы 1 видно, что между породами баранов по степени и полноте проявления половых рефлексов не было достоверных различий, хотя следует отметить, что наиболее активными были бараны эдильбаевской породы, а наиболее замедленной реакцией на матку, зафиксированную в станке, отличались бараны породы тексель и поллдорсет.

По уровню спермопродукции следует отметить тот факт, что все бараны выделяли сперму, которая по качественным и количественным параметрам соответствовала инструкции, хотя у баранов разных пород наблюдались некоторые вариации. Так, достоверно больший объём спермы наблюдали у производителей пород Э, ММ, ДМ и СК по сравнению с породами ПД и Т. Необходимо подчеркнуть, что небольшое количество спермы у баранов ПД в определённой степени компенсируется её высокой концентрацией. У баранов породы тексель была наименьшая подвижность спермиев в нативной сперме.

По устойчивости спермы к криоконсервации мы не обнаружили достоверных различий между баранами разных пород, хотя подвижность оттаянной спермы баранов тексель была самой низкой (4,2 балла), а самой высокой подвижностью отличалась дефростированная сперма баранов СК (4,8 балла).

Одним из интересных и значимых показателей мы посчитали количество доз криоконсервирован-ной спермы, получаемое из одного эякулята. При этом дозой спермы мы считали оттаянную сперму объёмом 0,2 мл с содержанием 80 млн спермиев с прямолинейно-поступательным движением (ППД). Наибольшее количество доз спермы из одного эякулята можно заготовить от баранов пород северокавказская мясо-шёрстная и джал-гинский меринос (по 26 доз), наименьшее — от баранов пород тексель и поллдорсет (19 и 20 доз соответственно).

Как видно по материалам таблицы 2, концентрация тестостерона была наименьшей в крови баранов породы тексель и поллдорсет, что, по-видимому, определило их невысокую половую активность.

Выводы. Количественную характеристику ба-зального уровня половых гормонов в крови баранов разных пород можно рассматривать как вспомогательный источник информации, необходимый для объективной оценки воспроизводительной функции в половой сезон.

Полученные данные, на наш взгляд, представляют определённый интерес и могут быть учтены специалистами при составлении и реализации программ по разведению, в частности, при проведении искусственного осеменения овец, а также при заготовке замороженной спермы для генофондных хранилищ.

Литература

1. Айбазов А.М.М., Аксёнова П.В., Сеитов М.С. Современные биотехнические методы направленного воспроизводства мелкого рогатого скота // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2013. № 4 (42). С. 241-242.

2. Коваленко Д.В., Аксенова П.В., Айбазов А.М.М. К вопросу об интенсификации использования высокоценных производителей // Сборник научных трудов Всероссийского научно-исследовательского института овцеводства и козоводства. 2009. Т. 1. № 1-1. С. 20-23.

3. Айбазов А.М.М., Сеитов М.С., Мамонтова Т.В. Перспективная биотехнология воспроизводства овец и коз // Сборник научных трудов Всероссийского научно-исследовательского института овцеводства и козоводства. 2014. Т. 1. № 7 (1). С. 3-7.

4. Айбазов М.М., Трубникова П.В., Коваленко Д.В. Воспроизводительные функции баранов австралийской селекции в адаптационном аспекте // Зоотехния. 2007. № 5. С. 29-30.

5. Айбазов А.М. К вопросу о сохранении генофонда и биологической полноценности криоконсервированной спермы / А.М. Айбазов, П.В. Аксенова, К.К. Ашурбегов, Д.В. Коваленко // Сборник научных трудов Всероссийского научно-исследовательского института овцеводства и козоводства. 2011. Т. 1. № 4-1. С. 24-29.

6. Айбазов М.М., Коваленко Д.В., Аксенова П.В. Биологическая полноценность глубокозамороженной спермы баранов в зависимости от сроков хранения // Сборник научных трудов Всероссийского научно-исследовательского института овцеводства и козоводства. 2012. Т. 2. № 1. С. 140-143.

7. Аксенова П.В., Айбазов М.М. Половая активность и спермопродукция козлов-производителей в зависимости от режима эксплуатации // Российский ветеринарный журнал. 2012. № 1. С. 6-7.

8. Шарипов Х.К. Сравнительный анализ воспроизводительных качеств полновозрастных маток и маток-первоокоток эдильбаевской породы в период их адаптации в условиях Оренбуржья / Х.К. Шарипов, С.А. Белов, М.С. Сеитов, Ш.М. Биктеев, И.В. Ненашев // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2016. № 5 (61). С. 160-161.

Гистологические изменения в сетчатке глаза куриного эмбриона на второй и третьей неделе антенатального развития

Ф.И. Сулейманов, д.в.н., профессор, О.С. Дмитриева,

аспирантка, Т.М. Половинцева, к.б.н., ФГБОУ ВО Великолукская ГСХА

Птицеводство является одной из наиболее быстро развивающихся и экономически эффективных отраслей сельского хозяйства, которое обеспечивает получение диетических продуктов питания с относительно невысокой стоимостью. Комплекс зоотехнических мероприятий, таких, как селекция, воспроизводство, кормление и выращивание, сводится к получению птиц, дающих большое количество дешёвой продукции высокого качества, что играет заметную роль в национальной экономике России и является важным источником животного белка.

Глаза - наиболее развитые органы чувств у птиц и важный анализатор для ориентации в пространстве, поиске корма и воды, информации о длительности светового дня. Их зрительный аппарат во многих отношениях превосходит органы зрения других животных, обеспечивает до 80% информации об окружающем мире и отвечает непосредственно за яичную и мясную продуктивность кур. Характерно, что среди птиц не имеется форм с недоразвитыми глазами, тогда как такие формы встречаются среди всех классов позвоночных.

Зрительный анализатор птиц выполняет три наиболее важные функции: кодирование длины волны и интенсивности света, восприятие формы предмета, ясное видение за счёт работы аккомодационного аппарата. Свет для птиц является одним из основных факторов жизнеобеспечения и оказывает влияние на их рост, развитие, продуктивные и репродуктивные показатели [1].

В статьях разных авторов описывается влияние различных химических и физических факторов (влияние растворов, лекарственных препаратов, лазерных и магнитных облучений, смена температурного режима) на инкубационное яйцо [2, 3].

Благоприятное влияние на развитие зрительного анализатора птиц оказывают многие лекарственные препараты. В настоящей работе изучено влияние раствора витамина В2 (рибофлавина) с концентрацией 0,002%.

Материал и методы исследования. Исследование проводили в научной лаборатории Великолукской ГСХА на яйцах, приобретённых в ООО «Племенная птицефабрика «Лебяжье» Ленинградской области.

Объектом исследования были яйца кур кросса ХАББАРД F15 УАЙТ. Инкубацию проводили в инкубаторе ИБЛ-770. Для исследования отбирали яйца по результатам оценки их качества и пригодности к инкубации по массе, целостности скорлупы, степени мраморности. Масса яиц составляла от 52 до 61 г.

Инкубационные яйца в количестве 600 шт. были разделены на опытную и контрольную группы. Яйца опытной группы опускали в раствор витамина рибофлавина с концентрацией 0,002% по способу Ф.И. Сулейманова и О.В. Вавиловой (2010) [4, 5]. Прогретые в инкубаторе яйца помещали в раствор витамина В2 комнатной температуры и выдерживали 20 мин. Яйца контрольной группы предын-кубационной обработке не подвергались.

На протяжении инкубации температура воздуха в инкубаторе была стабильной и составляла 37,6±0,1°С, относительная влажность воздуха - 54,0-57,0%, что соответствовало рекомендациям ВНИТИП по инкубации яиц сельскохозяйственной птицы.

В ходе работы проводили биологический контроль путём овоскопирования, что позволило своевременно удалять неоплодотворённые яйца, яйца с кровяными кольцами, замершими эмбрионами [6].

Зрительный анализатор эмбрионов исследовали через каждый час в течение первой недели развития и на 10-, 13-, 15-, 17- и 20-е сут. инкубации. Производили энуклеирование глаз в каждом из указанных возрастных интервалов у трёх эмбрионов из каждой исследованной группы.