Перспективы совершенствования иммунофлюоресцентного метода для диагностики риккетсиозов и q лихорадки

ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Перспективы совершенствования иммунофлюоресцентного метода для диагностики риккетсиозов и Q лихорадки

Пантюхина А.Н., Тарасевич И.В., Шпынов С.Н.

ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. акад. Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России, Москва

В статье представлены авторские данные по разработке риккетсиального мультиплексного диагности-кума на основе корпускулярных антигенов Rickettsia prowazekii и Coxiella burnetti, меченных полупроводниковыми коллоидными квантовыми точками разного цвета флюоресценции. Диагностикум предназначен для одновременного выявления антител к R. prowazekii и C. burnetti методом иммунофлюоресцентной реакции наноагглютинации. Применение полупроводниковых коллоидных квантовых точек в качестве метки антигенов позволило не только увеличить число одновременно анализируемых в реакции антител, но и объективно визуализировать учет результатов реакции, повысить чувствительность анализа. В дальнейших планах - разработка мультиплексных диагностикумов для выявления антител к другим возбудителям, представляющих опасность для человека.

Ключевые слова:

иммунофлюоресцентный анализ, квантовые точки, Rickettsia prowazekii, Coxiella burnetii, мультиплексный диагностикум

Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2017. № 2. С. 79-85.

Статья поступила в редакцию: 29.08.2016. Принята в печать: 16.01.2017.

Prospects for the development of immunofluorescence assay rickettsioses and Q fever

PantyukhinaA.H., TarasevichI.V., N.F. GamaLeya Federal Scientific Research Center for Epidemiology Shpynov S.N. and Microbiology, Moscow

The article presents the author's data on the development of rickettsial multiplex diagnostic kit based on the Rickettsia prowazekii and Coxiella burnetti corpuscular antigens, labeled by colloidal semiconductor quantum dots with different fluorescence colors. Diagnostic kit is for the simultaneous detection of antibodies to R. prowazekii and C. burnetti by immunofluorescence reaction of nanoagglyutination. Using of colloidal semiconductor quantum dots for labeling of antigens is will not only increase the number of simultaneously antibodies in reaction, but also made it possible for objectively assess of results and improve the sensitivity of assay. Our future plans are the development of multiplex diagnostic kits for the detection of antibodies to other dangerous pathogens for human.

Keywords:

immunofluorescenсе assay, quantum dots, Rickettsia prowazekii, Coxiell burnetii, multiplexing diagnosticum

Infectious Diseases: News, Opinions, Training. 2017; (2): 79-85.

Received: 29.08.2016. Accepted: 16.01.2017.

Иммунофлюоресцентный анализ (ИФА), предложенный А. Кунсом в 1940-х гг., до настоящего времени широко распространен в различных областях современной медицины, биологии, цитометрии и молекулярно-ге-нетическом анализе [1-3].

В практических исследованиях термин «ИФА» часто используется в качестве синонима термина «флюоресцирующие антитела», хотя включает 2 альтернативных в методологическом отношении способа исследования: метод флюоресцирующих антител и метод меченых антигенов [4].

На практике наибольшее распространение получил метод флюоресцирующих антител. Одна из его модификаций - реакция непрямой иммунофлюоресценции (РНИФ) -является «золотым стандартом» в диагностике риккетсио-зов, причем до сего времени она не потеряла своего значения [5].

Метод флюоресцирующих антигенов пока не нашел широкого распространения несмотря на такие преимущества, как сочетание строгой специфичности корпускулярных антигенов с высокой чувствительностью флюоресцентного анализа, отсутствием аутофлюоресценции и наведенной флюоресценции фона [4, 6].

В практике применение флюоресцирующих антигенов для выявления риккетсиозных антител было начато в 1973 г., когда исследователями П.С. Барбаном и В.Я. Мирским были разработаны стабильные флюоресцирующие диагностикумы из Rickettsia prowazekii, R. typhi, R. sibirica, Coxiella burnetii и Bartonella quintana [7, 8]. Они представляли собой высокоспецифичные корпускулярные антигены, меченные органическим флюорохромом-изотиоцианатом флюорес-цеина (ФИТЦ), и применялись в иммунофлюоресцентной реакции микроагглютинации для выявления ранних антител при эпидемическом и крысином сыпном тифе, а также при клещевом риккетсиозе Северной Азии, коксиеллезе, бартонеллезе [9].

Использование для метки антигенов нового поколения флюорохромов - флюоресцирующих полупроводниковых квантовых точек (КТ) открывает новые возможности в усовершенствовании иммунофлюоресцентного анализа, в том числе меченых антигенов [1, 10, 11].

Предполагается, что применение КТ позволит конструировать более стабильные флюоресцирующие антигены с высокой фотостабильностью, яркостью и, что очень важно, с отсутствием наведенной флюоресценции фона, а это, в свою очередь, повысит специфичность детекции до уровня единичных корпускул [2, 12].

Применение КТ для метки антигенов с эмиссий от зеленого (520 нм) до ближнего инфракрасного (800 нм) позволит визуализировать большее число анализируемых антител (мультиплексность) в простом серологическом тесте - иммунофлюоресцентной реакции наноагглютинации (ИФРНА). Это позволит в одном препарате одновременно и объективно выявлять специфические антитела к возбудителям ряда опасных риккетсиозных заболеваний человека [13-15].

Цель настоящей работы - разработка мультиплексного диагностикума из антигенов R. prowazekii, C. burnetii и применение его в ИФРНА для выявления антител к возбудителям эпидемического сыпного тифа и коксиеллеза.

Материал и методы

Для приготовления мультиплексного диагностикума использовали коммерческие корпускулярные антигены R. prowazekii и C. burnetii (II фаза) производства филиала ФГУП НПО «Микроген» «Пермское НПО "Биомед"» Минздрава России и ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. акад. Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России, а также экспериментальные серии этих антигенов. В работу брали антигены с активностью в прямом методе флюоресцирующих антител (пМФА) не ниже 1:1024. Были выбраны указанные виды риккетсий, поскольку эти возбудители вызывают особо опасные заболевания у людей: эпидемический сыпной тиф (ЭСТ) и коксиеллез (Q лихорадку, син. ку-лихорадка).

В работе использовали коммерческие типовые диагностические сухие сыворотки к R. prowazekii, C. burnetii, R. sibirica производства филиала ФГУП НПО «Микроген» Пермское НПО «Биомед» Минздрава России и ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. акад. Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России, а также сыворотки крови от пациентов, перенесших сыпной тиф (8 сывороток на 10-й день заболевания), Q лихорадку (7 сывороток на 7-й и 10-й дни заболевания).

Приготовление мультиплексного диагностикума проводили по разработанному ранее способу [16, 17]. Способ включал метку корпускулярных антигенов R. prowazekii и C. burnetii полупроводниковыми коллоидными КТ разного цвета флюоресценции.

Антигены R. prowazekii были конъюгированы с КТ с длиной волны флюоресценции в красном диапазоне спектра (610-670 нм), а антиген C. burnetii с КТ с длиной волны флюоресценции в зеленом диапазоне спектра (520-540 нм). Затем очищенные и стандартизованные R. prowazekii и C. burnetii соединяли в мультиплексный диагностикум и использовали его в ИФРНА для выявления антител к соответствующим возбудителям.

В сравнительных серологических исследованиях использовали «золотой стандарт» серодиагностики - РНИФ, которую ставили и учитывали по общепринятой методике [18].

ИФРНА с мультиплексным диагностикумом проводили по следующей методике. Предварительно готовили последовательные двукратные разведения исследуемых сывороток крови - с 1:20 до 1:2560. На предметное стекло с лунками наносили по 5 мкл каждого разведения сывороток крови, начиная с наибольшего. Постановку ИФРНА сопровождали контролем мультиплексного диагностикума на спонтанную агглютинацию. Параллельно ставили контроль с положительными и отрицательной сыворотками крови, взятыми в разведении 1:20. В разведения испытуемых сывороток крови и в контроль добавляли по 5 мкл диагностикума и перемешивали ингредиенты. Взаимодействие мультиплексного диагностикума с антителами происходило во влажной камере в термостате при температуре 37 оС в течение 45 мин. После этого препарат высушивали на воздухе в термостате. Учет результатов и оценку реакции проводили под иммерсионной системой флюоресцентного микроскопа, просматривая не менее 10 полей зрения в каждом мазке.

Результаты

Первая серия экспериментов была посвящена изучению иммунофлюоресцентной активности мультиплексных диагностикумов. Исследование выполнено с сыворотками крови экспериментально инфицированных животных R. prowazekii, R. sibirica, C. burnetii.

Оценку результатов проводили по 4-крестовой системе, используя шкалу оценки мультиплексных диагностикумов в ИФРНА, представленную в табл. 1.

За положительный результат принимали агглютинаты величиной не менее чем на 3+ или 4+. Титр исследуемой сыворотки крови соответствовал ее максимальному разведению, в котором величина агглютината оценивалась не ниже чем на 3+. Чтение и учет следует начинать с контроля.

Исследование иммунных сывороток крови животных с мультиплексным диагностикумом в иммунофлюоресцентной реакции наноагглютинации

При просмотре препаратов в поле зрения микроскопа в контроле на спонтанную агглютинацию (рис. 1) и в контроле с отрицательной сывороткой (рис. 2) наблюдали изолированные ярко-красные корпускулы R. prowazekii и ярко-зеленые корпускулы C. burnetii, четко контрастируемые на черном фоне.

При исследовании с мультиплексным диагностикумом положительных сывороток крови к R. prowazekii (рис. 3) наблюдали различной величины агглютинаты из корпускул R. prowazekii, флюоресцирующие ярко-красным цветом, а корпускулы C. burnetii располагались отдельно друг от друга и флюоресцировали зеленым цветом.

При исследовании с мультиплексным диагностику-мом положительных сывороток крови к C. burnetii (рис. 4) наблюдали специфические агглютинаты из корпускул

C. burnetii, флюоресцирующие ярко-зеленым цветом и меченые R. prowazekii, расположенные в виде отдельных изолированных корпускул красного цвета.

С сыворотками крови к R. sibirica (рис. 5) мультиплексный диагностикум не взаимодействовал. В этих препаратах меченые R. prowazekii (красного цвета) и меченые C. burnetii (зеленого цвета) были расположены в виде отдельных изолированных корпускул.

Таким образом, приготовленный мультиплексный диагностикум позволяет четко различать по цвету флюоресценции и агглютинатам R. prowazekii и C. burnetii на черном фоне препаратов, что позволяет объективно и достоверно оценивать результаты ИФРНА.

Кроме того, он обладает достаточной иммунофлюоресцентной активностью, так как образует специфические агглютинаты только с гомологичными сыворотками крови и не взаимодействует с гетерологичными сыворотками крови, а также не дает спонтанной агглютинации в контроле.

Как показано на рис. 3 и 4, мультиплексный диагностикум позволяет визуализировать антитела к R. prowazekii в титре 1:640 или C. burnetii в титрах 1: 160 в одном препарате, упрощая и сокращая методику выявления специфических антител в сыворотках крови пациентов.

В следующей серии экспериментов изучали специфичность ИФРНА с мультиплексным диагностикумом.

Исследования были проведены с сыворотками крови кроликов, инфицированных R. prowazekii, C. burnetii, R. cono-riicaspia, R. sibirica и Оrientia tsutsugamushi (табл. 2).

Как следует из представленных в табл. 2 данных, мультиплексный диагностикум не образует специфические агглютинаты с гетерологичными сыворотками крови (R. conorii caspia, R. sibirica и О. tsutsugamushi), в то время как в положительных контрольных сыворотках крови к R. prowazekii и к C. burnetii наблюдали формирование агглютинатов величиной не менее 3+ или 4+.

Таблица 1. 4-крестовая оценка результатов исследования

Интенсивность агглютинации Шкала оценки

Поля зрения заполнены большими, крупными агглютинатами, образованными путем взаимодействия гомологичных риккетсий с гомологичной сывороткой, между которыми расположены иные по цвету флюоресценции гетерологичные изолированные риккетсии 4+

Поля зрения заполнены агглютинатами средней величины (от 10 до 50 риккетсий в агглютинате), образованны- 3+ ми путем взаимодействия гомологичных риккетсий с гомологичной сывороткой, между которыми расположены гомологичные непрореагировавшие изолированные риккетсии, а также иные по цвету флюоресценции гетерологичные изолированные риккетсии

Поля зрения заполнены агглютинатами малой величины (от 6 до 9 риккетсий в агглютинате), образованными путем взаимодействия гомологичных риккетсий с гомологичной сывороткой, между которыми расположены гомологичные непрореагировавшие изолированные риккетсии, а также иные по цвету флюоресценции гетерологичные изолированные риккетсии 2+

Поля зрения заполнены мелкими агглютинатами (от 2 до 5 риккетсий в агглютинате), образованными путем вза- 1+ имодействия гомологичных риккетсий с гомологичной сывороткой, между которыми расположены гомологичные непрореагировавшие изолированные риккетсии и иные по цвету флюоресценции гетерологичные изолированные риккетсии

Поля зрения заполнены гомологичными изолированными риккетсиями и иными по цвету флюоресценции гетерологичными изолированными риккетсиями 0

Рис. 1. Иммунофлюоресцентная реакция наноагглютинации. Контроль на спонтанную агглютинацию

Рис. 3. Иммунофлюоресцентная реакция наноагглютинации мультиплексного диагностикума с сывороткой к R. prowazekii в титре 1:640

Рис. 5. Иммунофлюоресцентная реакция наноагглютинации мультиплексного диагностикума с сывороткой к R. sibirica

Рис. 2. Иммунофлюоресцентная реакция наноагглютинации мультиплексного диагностикума с донорской сывороткой

Рис. 4. Иммунофлюоресцентная реакция наноагглютинации мультиплексного диагностикума с сывороткой к C. burnetii в титре 1:160

Положительные результаты по оценке иммунофлюорес-центной активности и специфичности мультиплексного диагностикума позволили перейти к испытаниям по выявлению специфических антител в сыворотках крови пациентов, перенесших болезнь Брилла-Цинссера, Q лихорадку, астраханскую пятнистую лихорадку. В качестве отрицательного контроля использовали сыворотки крови условно здоровых людей.

Исследование сывороток крови проводили параллельно в РНИФ. Результаты исследований сведены в табл. 3.

Из данных, приведенных в табл. 3, следует, что при изучении сывороток крови с помощью мультиплексного диагностикума в ИФРНА были выявлены антитела только в сыворотках крови к R. prowazekii и к Coxiella burnetii. Сыворотки крови пациентов с астраханской пятнистой лихорадкой, содержащие антитела к R. conorii caspia, выявляемые в РНИФ, с мультиплексным диагностикумом не реагировали. Отрицательные результаты были получены и при тестировании сывороток крови условно здоровых людей.

Таблица 2. Изучение специфичности иммунофлюоресцентной реакции наноагглютинации (ИФРНА) с мультиплексным риккет-сиальным диагностикумом

Исследуемая Количество обследуемых Иммунофлюоресцентная Результат ИФРНА

сыворотка крови пациентов активность

Сыворотка крови 7 Изолированные R. prowazekii красного цвета,

к R. sibirica изолированные C. burnetii зеленого цвета

Сыворотка крови Изолированные R. prowazekii красного цвета,

к O. tsutsugamushi изолированные C. burnetii

Сыворотка крови 2 Изолированные R. prowazekii красного цвета,

к R. conorii caspia изолированные C. burnetii зеленого цвета

Контроль на спонтанную Изолированные R. prowazekii красного цвета,

агглютинацию изолированные C. burnetii зеленого цвета

Сыворотки крови к C. burnetii 1 1:320 3+ агглютинаты C. burnetii зеленого цвета, изолированные R. prowazekii красного цвета

Сыворотки крови к R. prowazekii 1 1:640 4+ агглютинаты R. prowazekii красного цвета, изолированные C. burnetii зеленого цвета

Примечание. При 3-кратном повторении исследований каждой сыворотки в ИФРНА их титр воспроизводился прежним.

Таблица 3. Исследование сывороток крови пациентов с болезнью Брилла-Цинссера, (3 лихорадкой и астраханской пятнистой лихорадкой, а также сывороток крови условно здоровых людей

Исследуемые сыворотки крови Количество Средний геометрический титр антител

обследованных РНИФ ИФРНА

пациентов

Сыворотки крови пациентов с болезнью Брилла-Цинссера 8 lg 9,42/1:676 lg10,3/1:1270

Сыворотки крови больных 0 лихорадкой 7 lg 8,4/1:338 lg 9,3/1:632

Сыворотки крови больных астраханской пятнистой лихорадкой 5 lg 8,3/1:315 -

Сыворотки крови условно здоровых людей (отрицательные 4

сыворотки человека)

Примечание. Средний геометрический титр антител рассчитывали в соответствии с рекомендациями М.К. Ворошиловой и др. Метод лабораторной диагностики энтеровирусных инфекций (М.: Медицина, 1964. 152 с.). Расшифровку аббревиатур см. в тексте.

Обсуждение

ИФРНА представляет собой простой двухкомпонентный тест, позволяющий реализовать реакцию взаимодействия «флюоресцирующий антиген-специфическое антитело» на предметном стекле без дополнительных специальных методических приемов (отмывания, встряхивания, многократного внесения ингредиентов).

К преимуществам ИФРНА следует отнести высокую специфичность, простоту постановки и минимум затраченного времени и ингредиентов.

Применение полупроводниковых коллоидных КТ для метки антигенов позволило не только увеличить число одновременно анализируемых в реакции антител до двух (R. prowazekii, C. burnetii), но и объективно визуализировать учет результатов реакции, повысить детекцию до уровня отдельных корпускул R. prowazekii, C. burnetii, что позволило достоверно оценивать результаты реакции.

Представленные материалы по изучению чувствительности ИФРНА в сравнении с другим серологическим тестом -РНИФ позволили сделать заключение о достаточной, сопоставимой с РНИФ чувствительности ИФРНА. Следует отметить, что повышению специфичности ИФРНА способствует и отсутствие наведенной флюоресценции фона препарата.

Высокую специфичность ИФРНА с мультиплексным диагностикумом подтверждают исследования, проведенные с сыворотками крови людей, переболевших болезнью Брилла-Цинссера или Q лихорадкой, а также с гетерологич-ными сыворотками крови.

Как показали результаты, в ИФРНА были обнаружены антитела только к соответствующим возбудителям (R. prowazekii, C. burnetii) при отрицательных результатах исследования гетерологичных сывороток крови пациентов (R. sibirica, R. conorii caspia, O. tsutsugamushi).

Таким образом, данные изучения ИФРНА с мультиплексным диагностикумом из R. prowazekii, C. burnetii с использованием разного серологического материала позволяют рассматривать эту реакцию как строго специфическую и обладающую достаточной чувствительностью.

ИФРНА в методическом отношении более доступна для практического здравоохранения, так как технологически проста в применении, демонстративна и может быть документирована (сохранена на предметном стекле).

При дальнейшем развитии ИФА для диагностических целей планируется разработка мультиплексных диагности-кумов из антигенов других возбудителей, представляющих опасность для человека.

СВЕДЕНИЯ ОБ АВТОРАХ

Пантюхина Анна Николаевна - доктор медицинских наук, профессор, ведущий научный сотрудник ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. акад. Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России, Москва E-mail: nity151@yandex.ru

Тарасевич Ирина Владимировна - академик РАН, доктор медицинских наук, профессор, главный научный сотрудник ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. акад. Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России, Москва

E-mail: tarasevichirina@ yandex.ru

Шпынов Станислав Николаевич - доктор медицинских наук, руководитель лаборатории экологии риккетсий ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. акад. Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России, Москва

E-mail: stan63@inbox.ru

ЛИТЕРАТУРА

1. Воробьев И.А., Рафаловская-Орловская Е.П., Гладких А.А., По-ташникова Д.М. и др. Флуоресцентные полупроводниковые нанокри-сталлы в микроскопии и цитометрии // Цитология. 2011. Т. 53, № 5. C. 392-403.

2. Олейников В.А. Полупроводниковые флуоресцентные нанокри-сталлы (квантовые точки) в белковых биочипах // Биоорг. химия. 2011; 37(2): C. 171-189.

3. Coons A., Creech H., Jones R. Immunological properties of an antibody containing a fluorescent group // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1941. Vol. 47, N 2. 200-202.

4. Барбан П.С., Пшеничнов Р.А., Пантюхина А.Н. Ившина И.Б. Иммунофлуоресцентный анализ. Свердловск : УрО АН СССР, 1988. 176 с.

5. Bizzini A., Olivier P., Baud D., Edouard S. et al. Evaluation a new serological test for the detection of anti-Coxiella and anti-Rickettsia antibodies // Microbes Infection. 2015. Vol. 17. P. 811-816.

6. Здродовский П.Ф., Голиневич Е.М. Учение о риккетсиях и риккет-сиозах М., 1972. 495 с.

7. Барбан П.С., Мирский В.Я. Иммунофлуоресцентная реакция микроагглютинации риккетсий. Сообщение I. Выявление антител против риккетсий Провачека и Музера // Лаб. дело. 1973. № 1. С. 28-30.

8. Барбан П.С., Мирский. В.Я. Иммунофлуоресцентная реакция микроагглютинации риккетсий. Сообщение 2. Выявление антител Бернета при помощи иммунофлуоресцентной микроагглютинации // Лаб. дело. 1975. № 5. С. 315.

9. Мирский В.Я. Иммунофлуоресцентная реакция микроагглютинации как метод серологической диагностики риккетсиозов : дис. ... канд. мед. наук. Челябинск, 1981. 202 с.

REFERENCES

1. Vorobyev I.A., Rafalovskaya-Orlovskaya., Gladkih A.A., Potashnikova D.M., et al. Fluorescent semiconductor nanocrystals in microscopy and cytometry. Tsitologiya [Cytology]. 2011; 53

2. Oleynikov V.A. Semiconductor fluorescent nanocrystals

3. Coons A., Creech H., Jones R. Immunological properties of an antibody contaning a fluorescent group. Proc Soc Exp Biol Med. 1941; 47 (2): 200-2.

10. Gouriet F., Levy P.Y., Drancourt M., Raoult D. Comparison of the new InoDiag automated fluorescence multiplexed antigen microarray to the reference technique in the serodiagnosis of atypical bacterial pneumonia // Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2008. Vol. 14. P. 11191127.

11. Pathak S., Davidson M.C., Silva G.A. Characterization of the functional binding properties of antibody conjugated quantum dots // Nano Lett. 2007. Vol. 7, N 7. 1839-1845.

12. Fengqin Hu, Yuliang Ran, Zhuan Zhou, Mingyuan Gao. Preparation of bioconjugates of CdTe nanocrystals for cancer marker detection // Nano-technology. 2006. Vol. 17. P. 2972-2977.

13. dian W., Maxwell D.J., Gao X., Bailey R. et al. Luminescent quantum dots for multiplexed biological detection and imaging // Curr. Opin. Bio-technol. 2002. Vol. 13. P. 40-46.

14. Faucher J.F., Socolovschii C., Aubry C., Chirouze C. et al. Brill-Zinsser disease in Moroccan man, France, 2011 // Emerg. Infect. Dis. 2012. Vol. 18. P. 171-182.

15. Portillo A., Santibanez S., Garcia-Alvarez L., Palomar A.M. et al. Ricketsioses in Europe // Microbes Infection. 2015. Vol. 17, N 11-12. P. 834-838.

16. Патент RU 2381304 «Способ синтеза полупроводниковых квантовых точек». Авторы: Новичков Р.В., Вакштейн М.С., Нодова Е.Л., Ма-няшин А.О., Тараскина И.И. Опубликовано 10.02.2010.

17. Патент на изобретение № 2557951 «Способ получения мультиплексного риккетсиального диагностикума». Авторы: Пантюхина А.Н., Тарасевич И.В., Вакштейн М.С., Дежуров С.В. Зарегистрирован в Госреестре изобретений РФ 30 июня 2015 г.

18. Fournier P.E., Marrie T.J., Raouit D. Diagnosis of Q fever // J. Clin. Microbiol. 1998. Vol. 36, N 7. P. 1823-1834.

4. Barban P.S., Pshenichnov R.A., Pantyukhina A.N., Ivshina I.B. Immunofluorescence analysis. Sverdlovsk : Ural Branch of the USSR Academy of Sciences; 1988: 176 p.

5. Bizzini A., Olivier P., Baud D., Edouard S., et al. Evaluation a new serological test for the detection of anti-Coxiella and anti-Rickettsia antibodies. Microbes Infection. 2015; 17: 811-6.

6. Zdrodovsky P.F., Golinevich E.M. The doctrine of Rickettsiae and Ricketsioses. Moscow, 1972: 495 p.

7. Barban P.S., Mirskiy V.Y. Immunofluorescence reaction microagglutination Rickettsia. I. Identification of antibodies against R. prowa-zeki and mooseri. Laboratornoe delo [Laboratory Case]. 1973;

8. Barban P.S., Mirskiy V.Ya. Immunofluorescence reaction microagglutination Rickettsia. 2. Detection of antibodies to Coxiella burnetii using immunofluorescence microagglutination. Laboratornoe delo [Laboratory Case]. 1975;

9. Mirskiy V.Ya. Immunofluorescence reaction microagglutination as a method of serological diagnosis of ricktsioses. Diss. Chelyabinsk, 1981: 202 p.

10. Gouriet F., Levy P.Y., Drancourt M., Raoult D. Comparison of the new InoDiag automated fluorescence multiplexed antigen microarray to the reference technique in the serodiagnosis of atypical bacterial pneumonia. Clin Microbiol Infect Dis. 2008; 14: 1119-27.

11. Pathak S., Davidson M.C., Silva G.A. Characterization of the functional binding properties of antibody conjugated quantum dots. Nano Lett. 2007; 7 (7): 1839-45.

12. Fengqin Hu, Yuliang Ran, Zhuan Zhou, Mingyuan Gao. Preparation of bioconjugates of CdTe nanocrystals for cancer marker detection. Nano-technology. 2006; 17: 2972-7.

13. Chan W., Maxwell D.J., Gao X., Bailey R., et al. Luminescent quantum dots for multiplexed biological detection and imaging. Curr Opin Biotechnol. 2002; 13: 40-6.

14. Faucher J.F., Socolovschii C., Aubry C., Chirouze C., et al. Brill-Zinsser disease in Moroccan man, France, 2011. Emerg Infect Dis. 2012; 18: 171-82.

15. Portillo A., Santibanez S., Garcia-Alvarez L., Palomar A.M., et al. Ricketsioses in Europe. Microbes Infection. 2015; 17 (11-12): 834-8.

16. Patent RU N 2381304

17. Patent RU N 2557951

18. Fournier P.E., Marrie T.J., Raouit D. Diagnosis of Q fever. J Clin Mi-crobiol. 1998; 36 (7): 1823-34.