Мониторинг трипсов на семенниках сахарной свеклы

УДК 632.914

Мониторинг трипсов на семенниках сахарной свеклы

В.Ф. НУЖДИН, А.В. РЯБЧИНСКИЙ, старшие научные сотрудники Всероссийского НИИ сахарной свеклы и сахара

Роль мероприятий по защите сахарной свеклы от комплекса вредных насекомых нередко сводится к ограничению вредоносности листовой свекловичной тли в годы ее массового размножения. Вредитель легко обнаруживается, так как образует хорошо заметные колонии черного цвета. Если же численность свекловичной тли невелика (ниже экономического порога вредоносности), обработки инсектицидами обычно не проводят, и создается иллюзия благополучной фитосанитарной обстановки в свекловичном агроценозе. Но урожай семян и его качество могут снизить и другие вредители, не столь заметные, как тли, например, трипсы - мелкие(длина тела личинки табачного трипса - 0,2-0,5 мм) и подвижные насекомые.

По видовому разнообразию в группе сосущих насекомых трипсы занимают лидирующее положение. Но из 5000 видов трипсов лишь несколько сотен являются вредителями различных культурных растений. Около 40 видов зарегистрированы в закрытом грунте, 12 - отмечены в теплицах России (Дорохова и др., 2003). Типичными местами обитания большинства видов являются цветки, листья и плодовые органы растений. Многие виды трипсов питаются соками формирующихся завязей, тычинок, пестиков, пыльцой или нектаром. Есть и хищные трипсы, а также имеющие смешанный тип питания. Обладая большой экологической пластичностью, трипсы способны выживать в самых разнообразных условиях. Частые случаи

их высокой вредоносности отмечаются не только в условиях закрытого грунта, но и на посевах сельскохозяйственных культур. Наиболее известны табачный, а в последние годы и западный цветочный трипсы.

Однако в научной литературе практически отсутствуют сведения о биологии, экологии и вредоносности данной группы насекомых на семенниках сахарной свеклы или эти сведения крайне фрагментарны. Например, известно, что поврежденные личинками и имаго табачного трип-са цветки засыхают («Атлас болезней и вредителей свеклы», 1985). Вредоносность трипсов может усугубляться также их способностью переносить вирусную инфекцию («Насекомые и клещи - вредители сельскохозяйственных культур», 1973; «Вредители сельскохозяйственных культур и лесных насаждений», 1973; «Довщ-ник 1з захисту рослин», 1999).

Между тем недооценка экономического значения трипсов, их влияния на продуктивность растений свеклы и на посевные качества семян может иметь негативные последствия, поэтому крайне важно разработать адаптированные к данной культуре методы мониторинга и определить критерии целесообразности борьбы с этим вредителем. Семенники сахарной свеклы отличаются образованием мощно развитой вегетативной массы, имеющей ярусную структуру. Наличие обильного, доступного и качественного корма в течение длительного времени (продолжительность цветения растений около месяца) на фоне возможности выбора наиболее благоприятных микроклиматических условий обусловливает повышенную заселенность и поврежденность культуры комплексом растительноядных трип-

сов. По нашим наблюдениям, они в массе размножаются на семенниках практически ежегодно, давая за вегетационный сезон 3-4 генерации.

В литературе описаны многие способы учета трипсов на других сельскохозяйственных культурах. Наиболее известны кошение стандартным энтомологическим сачком; «обмолачивание»; использование фото-, тер-мо-, гигроэклекторов, основанное на соответствующих таксисах насекомых; взятие проб с помощью ящика Петлюка, способ Эванса; встряхивание растений; отлов с помощью различных ловушек: клеевые, цветные ленты, чашки Мерика и т.д. (Дядечко, 1964; Петруха, 1970; Палий, 1970; Фасулати, 1971; Пучков, 1973; Беттхер, 1987).

Кошение сачком - один из самых традиционных способов обнаружения и учета различных насекомых. Однако, по данным Н.П. Дядечко, его использование для учета численности трипсовнеоправдано. Например, в начале колошения злаковых в сачок попадается лишь 2-3 %, в фазе цветения 7-10 %, а на растениях семейства сложноцветных, розовоцветных и лютиковых в период цветения - 2535 % насекомых. Отловленные в сачок трипсы сильно деформируются, что осложняет определение их видовой принадлежности, а личинок первого возраста трудно обнаружить.

Другой способ обнаружения, а в отдельных случаях и учета трипсов -использование в полевых и лабораторных условиях фотоэклектора. С его помощью наблюдают, например, за динамикой вылета из мест зимовки в весенний период льняного и пшеничного трипсов. Для получения информации о численности зимующей популяции трипсов в осенний период проводят отбор проб и их закладку в фотоэклектор в лабораторных условиях. В наших исследованиях трипсы покидали растительную подстилку в течение 7 суток, почву -2-3 недель. Главный недостаток рассматриваемого способа - большая продолжительность выхода насекомых и трудоемкость взятия проб.

Для определения численности и

сроков миграции трипсов из мест зимовки на кормовые стации оправдано применение ящика Петлюка. Последний использовался нами в весенний период на сорняках и семенниках свеклы в фазе формирования розеточных листьев и показал хорошие результаты. При этом за короткий промежуток времени удавалось охватить учетами обширную территорию и получить необходимую информацию.

Не менее известен способ сбора и учета трипсов, предложенный Н.П. Дядечко, который состоит в отборе проб листьев, молодых побегов, почек, соцветий, древесных, кустарниковых или травянистых растений. Содержимое помещают в мешок из плотного материала, подсушивают в течение 1-2 суток. Затем растительные фрагменты высыпают на лист бумаги и собирают разбегающихся насекомых. Практически аналогичный метод извлечения трипсов из злаковых растений описывает В.Ф. Палий, дополнив его «обмолачиванием». Он прост, но более уместен при сборе трипсов, а не определении численности имаго и личинок.

В период цветения семенников свеклы для определения численности вредителей используют различные химические вещества. Например, в наших опытах в 1-3 % раствор гаучо, сп (700 г/кг) или круйзера, кс (350 г/л), залитый в емкость с плоским дном, помещали «букет» из 25 семенных веточек длиной по 15 см (нижняя часть длиной 5 см освобождалась от цветков и листьев). Емкость с пробой ставили на расчерченный (1 х 1 см) лист цветной бумаги, покрытой вазелином. В течение суток, по мере насыщения растительных тканей инсектицидом, происходило почти полное «осыпание» тлей и трипсов, которых затем подсчитывали под бинокуляром.

Способ Эванса (Дядечко, 1964) основывается на действии паров скипидара. Автор использовал стекло от фонаря «летучая мышь», на 3/4 закрашенное черным лаком; нижняя (неокрашенная) часть играла роль фотоэклектора. Внутри нее закреп-

ляли решетку, на которую помещали пробы. Камеру (стекло) одним концом ставили в чашку Петри с водой, другой закрывали крышкой с прикрепленным к ней тампоном, смоченным скипидаром. Трипсы, уходя от запаха скипидара, попадают в воду. Через 1-2 ч подсчитывают собранных в чашке Петри насекомых. Этот способ показал хорошие результаты в наших исследованиях. Его применение позволяет учитывать не только личинок, но и имаго трипсов. Однако обнаружились серьезные неудобства при выемке насекомых из воды и их последующем учете под бинокуляром. Мы постарались избежать их, заменив воду и чашки Петри на цветной (лучше синего цвета) лист бумаги, смазанный вазелином, который предварительно расчерчивают на квадраты (1 см2) и нумеруют

Отказались и от окрашивания части стеклянной лампы в черный цвет. В случае отсутствия стекла от фонаря «летучая мышь» можно использовать пластиковые или стеклянные емкости после их соответствующей доработки. Время «выгонки» - до 1 ч, при этом выходит 90-95 % насекомых. При учете трипсов на семенниках свеклы для получения достоверных данных требуется брать 4 пробы по 25 концевых веточек длиной 10 см. Перед закладкой в камеру со скипидаром веточки разрезают пополам. При проведении «выгонки» важно не допускать запотевания стенок и загрязнения решетки и внутренней поверхности камеры. Данный способ используют, начиная с образования фазы цветоносных побегов и заканчивая непосредственно перед уборкой урожая.

Оптимизированный нами способ, показавший высокую эффективность и простоту на семенниках свеклы, может быть рекомендован для учета трипсов и на других культурах. Изменив конструкцию и материал камеры, возможно определение их численности на отдельных семенных растениях.

В настоящее время в целях сигнализации начала и оценки интенсивности лёта трипсов в теплицах широ-

ко применяются цветовые клеевые ловушки. Действие ловушек основано на зрительных реакциях насекомых, то есть на их способности различать цвет по спектральному составу. В условиях закрытого грунта с помощью ловушек изучались особенности биологии табачного трипса, методы учета численности, экономические пороги вредоносности и регламенты проведения защитных мероприятий. Таким же образом в связи с завозом в Россию и распространением в тепличных хозяйствах западного цветочного трипса ведутся исследования и по данному объекту.

Сведения об использовании клеевых ловушек для мониторинга трипсов в полевых условиях отсутствуют. Мы оценивали эффективность ловушек прямоугольной формы (10 х 15 см) различного цвета по уловистости трипсов на семенниках свеклы. Цветной лист расчерчивали на квадраты (1 см2), закрепляли степлером на таком же по размерам листе ламинированной бумаги и покрывали клеем. Ловушки выставляли в период окончания формирования розеточных листьев - в начале образования цветоносных побегов, убирали -накануне срезки семенных растений. Размещение ловушек - вертикальное по высоте растений. Периодичность учета и замены - один раз в неделю. Клей Липофикс был эффективен как в жаркую, так и в дождливую погоду. Подсчет отловленных трипсов проводили под бинокуляром.

Наибольшую привлекательность показали ловушки голубого, фиолетового и синего цветов. С их помощью можно получать информацию о сроках и интенсивности заселения трипсами кормовых стаций, количестве поколений, суточной и сезонной динамике летной активности насекомых, служащей косвенным показателем их численности.

Таким образом, основные известные и модифицированные способы мониторинга трипсов пригодны и для использования их на семенниках сахарной свеклы для наблюдения, оценки численности и прогноза вредоносности.