Атравматическая повязка для лечения ран у животных

Полезная модель относится к ветеринарной медицине, в частности к хирургии, и предназначена для лечения инфицированных ран, язв, пролежней, гнойничковых и трофических поражений кожи и подкожной клетчатки у животных.
В ветеринарной и медицинской практике для лечения инфицированных ран кожи и подкожной клетчатки используются различные виды повязок. Например, известен способ лечения инфицированных ран у животных с применением повязок в виде пластин раневого покрытия «Воскопран», которые накладывают с перекрытием по периметру раны на 10-15 мм без снятия наружной защитной пленки и без дополнительной внешней повязки (Патент РФ №2335281, авт. Дроздова Л.И. и др. - 10.10.2008 г.). Недостатком повязки «Воскопран» является относительно большая продолжительность лечения, включение процесса замены повязки с одним лекарственным средством на повязку с другим лекарственным средством, что затрудняет процесс лечения. К недостаткам данной повязки следует также отнести большой расход лекарственных средств и трудоемкость при ее фиксации на теле животного.
Известен способ лечения ран у животных с использованием фиксирующей повязки в виде перевязочного материала с нанесением на него лекарственного средства. При этом фиксация повязки на теле животного осуществляется за счет способности повязки прилипать к поверхности тела животного (Патент №21661, база патентов Казахстана, авт. Чурканбаев Р.С. и др. - 15.09.2009 г.). Недостатком указанной фиксирующей повязки является то, что ее фиксация на теле животного осуществляется за счет прилипания и при доступности может удаляться животным путем расчесывания.
Существуют мембранные диализирующие повязки для животных, которые предназначены для лечения длительно незаживающих гнойных ран, язв, ожоговых поверхностей. Данные повязки включают два слоя, герметично скрепленных между собой сварочным или клеевым швом. Использование повязок обеспечивает постоянное поступление лекарственных веществ в полость раны путем диффузии через поры целлюлозной мембраны и выведение токсических продуктов из раны наружу (Полезная модель РФ №122575, авт. Безрук Е.А. - 13.06.2012 г.; Патент РФ №2689035, авт. Безрук Е.А. - 23.05.2019 г.). Недостатком указанных повязок является низкая пропускная (диффузная) способность целлюлозной мембраны, что замедляет поступление лекарственных веществ к раневой поверхности и выведение токсических продуктов из раны наружу.
В медицинской практике также используется множество повязок для лечения различных ран (патенты РФ №2000762; №2125859; №2189210; №2323748; №2314129; №2372944; №2500431; №2568909). В последние годы многие фирмы (ООО НТЦ РИА «Полиферм», «Биотекфарм», Россия; «Paul Hartmann», Германия) выпускают повязки и салфетки для лечения ран на клеящейся и неклеящейся основе. При этом не все из них можно применять в ветеринарной практике, так как при их разработке не учитывались видовые особенности заживления ран у животных.
Наиболее близким техническим решением к заявляемой полезной модели является повязка атравматическая лечебная (Полезная модель РФ №99711, авт. Мокрушин И.Н. и др., 27.11.2010 г.), которая состоит из конструктивных элементов: двухслойной повязки из хлопкового, вискозного или хлопковискозного полотна нетканой природы с дренирующим слоем из микрокапсул, содержащих лекарственный препарат (мексидол, лизоамедаза и тыквеол) и иммобилизированных на нетканый материал. При этом оболочкой микрокапсул является альгинат-натрия.
Недостатками полезной модели РФ №99711, принятой за прототип, являются ее слабовыраженное стимулирующее действие на процессы репарации при заживлении ран у животных, а также многокомпонентность, что значительно повышает стоимость повязки и лечения.
Технической задачей заявляемой полезной модели является создание повязки, обладающей атравматичностью и антимикробной активностью для лечения ран различной этиологии у животных.
Технический результат достигается тем, что атравматическая повязка фиг. 1 (вид сбоку), фиг. 2 (вид сверху) состоит из двух слоев хлопкового полотна нетканой природы: внутреннего 1 (рабочего) прилегающего к раневой поверхности и наружного 2 (верхнего). При этом на внутренний слой повязки, предварительно обработанный 0,1-0,2%-ным раствором риванола и 2-3%-ным раствором тримекаина с последующим высушиванием при 37-40°С, наносится слой 3 (0,3-0,4 см) микрокапсулированного антисептика-стимулятора Дорогова второй фракции (АСД-2ф), который был получен по ранее разработанному нами способу (Патент РФ №2543632, авт. Сеин О.Б. и др., 10.03.2015 г.). Сущность данного способа заключается в том, что в качестве оболочки микрокапсул используют каппа-каррагинан, который осаждают из раствора в этаноле в присутствии сложного эфира глицерина с одной-двумя молекулами пищевых жирных кислот и одной-двумя молекулами лимонной кислоты путем добавления серного эфира в качестве осадителя. При этом сушку полученных микрокапсул проводят при комнатной температуре.
Наружный (верхний) слой повязки 2, покрывающий сверху слой микрокапсул, содержащих препарат АСД-2ф, состоит из пергаментной бумаги 4 и нетканого полотна 5. При этом свободные от слоя микрокапсул края повязки 6 по периметру склеиваются клеем БФ-6, тем самым слой микрокапсул «упаковывается» между наружным и внутренним слоями повязки. В таком состоянии повязка может хранится в сухом месте длительное время. Фиксируется повязка на раневой поверхности путем бинтования, а также клеем БФ-6 или коллоидом, которые наносят на свободные от препарата края по периметру повязки.
Отличительной особенностью предлагаемой атравматической повязки является то, что в качестве лекарственного начала в ней используется АСД-2ф, который микрокапсулирован в оболочку из каппа-каррагинана. При этом атравматичность повязки обеспечивается каппа-каррагинаном. Во время контакта с влажной поверхностью раны он переходит в гелеобразное состояние, что предотвращает «прилипание» повязки к раневой поверхности и тем самым создает ее атравматичность. Разрушение оболочки микрокапсул в процессе гелеобразования обеспечивает выход лекарственного вещества АСД-2ф, которое оказывает ранозаживляющее действие.
Являясь препаратом тканевого происхождения, АСД-2 в свой состав включает соединения с активной сульфгидрильной группой, производные алифатических аминов, карбоновые кислоты, алифатические и циклические углеводороды, производные амидов. При наружном применении препарат стимулирует активность ретикулоэндотелиальной системы, нормализует трофику и ускоряет регенерацию поврежденных тканей, оказывает выраженное антисептическое и противовоспалительное действие.
Каппа-каррагинан или карраген относится к семейству линейных сульфатных полисахаридов. Он является природным гелеобразователем и зарегистрирован в качестве пищевой добавки Е-407. При смешивании с водой (20°С и выше) каппа-каррагинан набухает и образует вязкую гелеобразную массу. На основании этого свойства каппа-каррагинан используется в пищевой промышленности как стабилизирующий и загущающий агент. Каппа-каррагинан используют также в фармацевтической промышленности при получении разнообразных мазей и кремов.
Обработка повязки тримекаином оказывает местное анестезирующее действие. Проникая через оболочку нервных волокон, тримекаин связывается с рецепторами и нарушает процессы деполяризации, блокируя проведение нервного импульса.
Входящий в заявляемую повязку риванол обладает выраженным антимикробным действием, особенно в отношении стрептококков и золотистого стафилококка. В основе его антимикробного действия лежит вытеснение водорода из бактериальной клетки. Риванол не токсичен, не раздражает раны и слизистые оболочки, он хорошо адсорбируется клетками раневой поверхности и в связи с этим оказывает длительное действие.
Примеры использования предлагаемой повязки. Испытания разработанной повязки проводили в условиях ветеринарной клиники учебно-опытного хозяйства Курской государственной сельскохозяйственной академии имени И.И. Иванова и в частной ветеринарной клинике ИП «Григорьев» (г. Курск).
Пример 1. В ветеринарной клинике было сформировано две группы кроликов по 7 голов в каждой. У всех кроликов после местной анестезии моделировали путем скальпирования экспериментальные кожно-мышечные раны площадью 2,0×2,0 см в области спины. После остановки кровотечения поверхность раны инфицировали путем наложения на нее марлевой салфетки, обработанной взвесью суточной культуры золотистого стафилококка (штамм Р-209) и взвесью фекалий. Инфицированную салфетку фиксировали на ране в течение 48 часов.
Кроликам 1 (опытной) группы после развития гнойного процесса и удаления инфицированной салфетки проводили первичную обработку раны и на раневую поверхность накладывали разработанную повязку, которую фиксировали по свободному периметру клеевой смесью. Указанную процедуру повторяли через 24 часа до очищения раны от гнойного экссудата и появления розовых грануляций.
Кроликов 2 (контрольной) группы лечили с использованием повязки-прототипа, которая состояла из двух слоев хлопкового полотна нетканой природы и дренирующего слоя. При этом на слой, обращенный к ране, были иммобилизированы микрокапсулы, ядром которых являлся мексидол, а оболочкой - альгинат натрия. Повязку-прототип накладывали на рану и сменяли по той же схеме, что и у животных 1 опытной группы.
Осмотр ран и смену повязок проводили через 24 часа до полного выздоровления.
Оценку заживления ран осуществляли по клинической картине. При этом учитывали состояние краев, наличие корочек на ране, их цвет, степень отделяемости, выраженность эпителиального ободка, появление грануляционной ткани в ранах и ее характер.
Для определения площади заживления раны использовали планиметрический метод с применением целлофанового трафарета (Л.П. Попова, 1942 г.).
В ходе проведения лечения животных учитывали клинические и общие гематологические показатели. Определяли скорость оседания эритроцитов, гематокрит, содержание эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина с использованием общепринятых методик и гематологического анализатора Abacus junior vet.
Полученные во время исследований данные подвергались биометрической обработке (П.Ф. Рокицкий, 1979 г.).
Результаты лечения представлены в таблице 1, из данных которой следует, что при использовании предлагаемой повязки заживление инфицированных ран у кроликов происходило быстрее (15,1±0,6 дн.) по сравнению с использованием повязки-прототипа (19,5±0,7 дн.).
12
12
Исследование крови у подопытных животных свидетельствует о том, что до начала лечения у кроликов обеих групп отмечалась воспалительная реакция на раневой процесс (таблица 2). Однако на 10-й день лечения изучаемые показатели находились в пределах физиологических границ. При этом у кроликов, которых лечили с использованием заявляемой повязки, была выше гематокритная величина (39,8±1,4%), содержание эритроцитов (6,6±0,10·10/л; p<0,05) и гемоглобина (118,7±2,0 г/л; р<0,05) по сравнению с животными, которых лечили с использованием повязки-прототипа (39,0±2,1%; 6,2±0,12·10/л; 111,5±2,1 г/л). Это свидетельствует о более высокой «дыхательной» функции крови у кроликов, которых лечили с использованием заявляемой повязки. В то же время уменьшение содержания лейкоцитов у этих кроликов указывает на снижение реактивности организма на воспалительный процесс.
Пример 2. У бычка №1 на откорме черно-пестрой породы лечили инфицированную рваную рану (1,6×3,2 см) в области правого бедра. После туалета и санации раны на нее накладывали разработанную нами повязку, смену которой осуществляли через 24 часа с использованием соответствующей обработки раны.
Очищение раны от гнойно-некротических масс происходило на 7-й день, появление первых грануляций - на 5-й день, начало эпителизации - на 6-й день. Полное заживление отмечалось на 14 день.
Пример 3. У бычка №2 на откорме черно-пестрой породы лечили инфицированную рану (1,5×4,0 см) в области правой лопатки. После туалета раны на нее накладывали разработанную нами повязку, смену которой осуществляли через 24 часа с использованием соответствующей обработки раны.
Очищение раны от гнойно-некротических масс происходило на 8-й день, появление первых грануляций - на 6-й день, начало эпителизации - на 8-й день. Полное заживление раны отмечалось на 16-й день.
Пример 4. У собаки, кличка Рекс, породы немецкая овчарка лечили инфицированную рану (1,2×3,0 см) в области поясничного отдела позвоночника. После туалета раны на нее накладывали разработанную нами повязку, смену которой производили через 24 часа с использованием соответствующей обработки раны.
Очищение раны от гнойно-некротических масс происходило на 6-й день, появление первых грануляций - на 4-й день, начало эпителизации - на 5-й день. Полное заживление раны отмечалось на 12-й день.
Пример 5. У беспородной собаки, кличка Цыган, лечили скальпированную инфицированную рану (1,0×3,3 см) в области грудного отдела позвоночника. После туалета раны на нее накладывали разработанную нами повязку, смену которой производили через 24 часа с использованием соответствующей обработки раны.
Очищение раны от гнойно-некротических масс происходило на 7-й день, появление первых грануляций - на 5-й день, начало эпителизации - на 6-й день. Полное заживление раны происходило на 13-й день.
Разработанная повязка прошла апробацию в производственных условиях при лечении ран у разных видов животных и получила положительные отзывы ветеринарных специалистов.
Повязка используется в учебном процессе при преподавании курса хирургии на факультете ветеринарной медицины Курской государственной сельскохозяйственной академии имени И.И. Иванова.