СПОСОБ ПОДГОТОВКИ ПРОБЫ БИОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА ДЛЯ ИММУНОФЕРМЕНТНОГО АНАЛИЗА
METHOD OF PRODUCING BIOLOGICAL MATERIAL FOR ENZYME-LINKED IMMUNOASSAY

Изобретение относится к медицине, в частности к иммунологии, и может быть использовано для оценки состояния иммунной системы женщин с пролиферативными заболеваниями эндометрия путем исследования содержания цитокинов в аспиратах из полости матки.
Цитокины представляют собой группу полипептидных медиаторов, часто гликозилированных, с молекулярной массой от 8 до 80 кД. Цитокины участвуют в формировании и регуляции защитных реакций организма и его гомеостаза. Изучение и оценка уровней цитокинов позволяет получить информацию о функциональной активности различных типов иммунокомпетентных клеток; о тяжести патологического процесса, о стадии развития ряда заболеваний [1].
Содержание цитокинов определяют с помощью иммуноферментного анализа (ИФА) и в основном измеряют их уровни в естественных жидкостях: периферической крови, моче, слезной жидкости, жидкости десневых карманов, бронхоальвеолярном лаваже, эякуляте, смывах из полостей, спинномозговой или синовиальной жидкости и др. Определение цитокинов в биологических материалах, отличных по консистенции от жидкостей (например, в биоптатах тканей, аспиратах, выдыхаемом воздухе), вызывает определенные трудности, в связи с необходимостью подготовки проб для исследования.
Известен способ подготовки пробы биологической ткани для ИК-спектроскопии [2]. Биоптат ткани предстательной железы обрабатывают гексаметилдисилазаном на кипящей водяной бане в течение 1-2 ч с последующим высушиванием и спектроскопическим анализом.
Однако способ трудоемкий, требует взятие биоптата и не может быть использован для подготовки проб аспирата из полости матки.
Известен способ подготовки пробы периферической крови для ИФА, взятый в качестве прототипа [3]. В стерильных условиях производят забор 5 мл периферической крови из локтевой вены. В пробирку с кровью добавляют антикоагулянт (гепарин) из расчета: на 1 мл крови - 5 Ед. гепарина. Гепарин тщательно перемешивают с кровью. Пробу центрифугируют в течение 5 мин со скоростью 3000 об/мин. После этого, дозатором забирают 0,1 мл надосадочной жидкости и помещают в лунку планшета для определения содержания цитокинов с помощью ИФА. Исследование проводят по стандартной методике в соответствие с протоколом фирмы-производителя.
Однако данный способ подготовки пробы неприемлем для исследования аспирата из полости матки, т.к. аспират представляет собой неоднородную взвесь, состоящую из свернувшейся крови, секрета желез эндометрия и элементов эндометриальной ткани достаточно плотной консистенции, а для проведения ИФА требуется гомогенная жидкость.
Для повышения эффективности способа к 1 мл аспирата из полости матки добавляют 1,0 мл фосфатного буфера (рН 7,4) и 0,1 мл неполярного детергента (например, Твин-60 или Тритон X), выдерживают в течение 1 ч при температуре 20-30°С, центрифугируют 3-5 мин со скоростью 3000 об/мин и надосадочную жидкость забирают для последующего анализа.
Способ осуществляют следующим образом.
Производят забор аспиратов из полости матки с помощью одноразовых пластиковых катетеров. 1,0 мл аспирата помещают в пластиковую пробирку объемом 2,0 мл и добавляют 1,0 мл фосфатного буфера (рН 7,4) и 0,1 мл неполярного детергента (например, Твин-60 или Тритон X), тщательно встряхивают и выдерживают 1 ч при температуре 20-30°С. Затем пробирку с пробой центрифугируют 3-5 мин. со скоростью 3000 об/мин. Дозатором забирают 0,1 мл светлой гомогенной надосадочной жидкости и помещают в лунку планшета для последующего ИФА. Исследование концентрации цитокинов производят согласно протоколу фирмы-производителя набора реагентов. Оптическую плотность определяют с помощью фотометра при длине волны 450 нм, проводят компьютерную обработку, результаты выражают в пикограммах на миллилитр (pg/ml).
Параметры способа определены опытным путем.
Оптимальное время взаимодействия пробы с детергентом - 1 ч. Если выдержать пробирку менее часа, то тканевой компонент осядет лишь частично и жидкой части экстракта выделится мало. Если дольше, то присоединяется угроза развития микроорганизмов в аспирате, что в последующем кардинально изменит пробу (табл.1).
<i>Таблица 1</i><i>Зависимость концентрации цитокинов от времени выдержки при температуре 20°С</i>
<i>Время экстракции (мин)</i>
<i>Концентрация ИЛ-1β (пкг/мл)</i>
<i>Результат</i>
<i>10</i>
<i>5</i>
<i>Недостаточно времени для экстракции</i>
<i>20</i>
<i>8</i>
<i>30</i>
<i>10</i>
<i>40</i>
<i>12</i>
<i>50</i>
<i>20</i>
<i>60</i>
<i>30</i>
<i>Оптимальный результат (выбираем меньшее время)</i>
<i>70</i>
<i>30</i>
<i>80</i>
<i>30</i>
<i>90</i>
<i>25</i>
<i>Угроза развития микрофлоры и изменения пробы</i>
<i>100</i>
<i>20</i>
Температура 20°С наиболее оптимальна для проведения экстракции и исследования концентрации цитокинов (табл.2).
<i>Таблица 2.</i><i>Зависимость концентрации цитокинов от температуры</i>
<i>Т°С</i>
<i>Концентрация ИЛ-1β (пкг/мл)</i>
<i>Результат</i>
<i>10</i>
<i>15</i>
<i>15</i>
<i>20</i>
<i>20</i>
<i>35</i>
<i>Оптимальное время (выбираем меньшее)</i>
<i>25</i>
<i>35</i>
<i>30</i>
<i>35</i>
<i>35</i>
<i>30</i>
<i>40</i>
<i>10</i>
Пробу центрифугируют 3-5 мин со скоростью 3000 об/мин. Это наиболее оптимальные время и скорость центрифугирования, которые обеспечивают исчезновение мутности (экстинции - Е) и, следовательно, выделение светлого гомогенного экстракта в аспирате из полости матки (нефелометрия) (табл.3).
<i>Таблица 3</i><i>Зависимость показателя экстинции нефелометрии от времени и скорости центрифугирования</i>
<i>Скорость центрифугирования (об/мин)</i>
<i>Время центрифугирования (мин)</i>
<i>Е (мутность) (%)</i>
<i>Результат</i>
<i>1000</i>
<i>0</i>
<i>100</i>
<i>Мутность сохранена</i>
<i>1</i>
<i>90</i>
<i>2</i>
<i>80</i>
<i>3</i>
<i>75</i>
<i>4</i>
<i>60</i>
<i>5</i>
<i>55</i>
<i>1500</i>
<i>0</i>
<i>100</i>
<i>Мутность сохраняется</i>
<i>1</i>
<i>80</i>
<i>2</i>
<i>75</i>
<i>3</i>
<i>55</i>
<i>4</i>
<i>35</i>
<i>5</i>
<i>20</i>
<i>3000</i>
<i>0</i>
<i>100</i>
<i>Мутность исчезла</i>
<i>1</i>
<i>40</i>
<i>2</i>
<i>20</i>
<i>3</i>
<i>0</i>
<i>4</i>
<i>0</i>
<i>5</i>
<i>0</i>
Пример 1. Больная С., 45 лет. Дs: простая гиперплазия эндометрия. Для определения степени прогрессии неопластического процесса эндометрия предложено исследовать содержание цитокинов в полости матки.
Для этого произведен забор аспирата из полости матки с помощью одноразового катетера. 1,0 мл аспирата поместили в пластиковую пробирку объемом 2,0 мл. В пробирку добавили 1 мл фосфатного буфера (рН 7,4), содержащего 0,1 мл неполярного детергента - Тритон Х и тщательно перемешали содержимое. Пробу оставляют при температуре 23°С на 1 час. Через 1 ч пробу отцентрифугировали со скоростью 3000 об/мин в течение 3 мин. Дозатором забрали надосадочную жидкость и 0,1 мл несли в иммунологический планшет. Исследование содержания ИЛ-1β провели методом иммуноферментного анализа в соответствии с протоколом фирмы-производителя набора реагентов («Вектор-Бест», г.Новосибирск) с помощью стандартного «ридера» при длине волны 450 нм («ASYS Hitech GmbH», Австрия). Содержание ИЛ-1β составило 235,7 пкг/мл, что свидетельствует о доброкачественном течении гиперпластического процесса.
Пример 2. Больная А., 40 лет, с Дs: атипичная гиперплазия эндометрия.
Забор аспирата и подготовку пробы произвели вышеописанным способом. В качестве неполярного детергента использовали Твин-60. Методом ИФА провели определение содержания фактора некроза опухолей. Концентрация ФНОα составила 878,5 пкг/мл, что свидетельствует о высоком риске развития злокачественного процесса.
Пример 3. Больная А., 49 лет, с Дs: умереннодифференцированная аденокарцинома?
Провели определение содержания цитокинов в аспирате из полости матки в соответствии с примером 2. Концентрация ФНОα составила 2241,4 пкг/мл, что свидетельствует о вероятном течении злокачественного процесса в эндометрии.
С помощью данного способа проведено исследование цитокинов в аспиратах из полости матки у 80 больных с пролиферативными заболеваниями эндометрия. Воспроизводимость способа составила 95%.
Список литературы
1. Заридзе Д.Т. Канцерогенез, - М.: Медицина, 2004. - 580 с.
2. Патент РФ 2018829 МПК G01N 33/48 Способ диагностики заболеваний предстательной железы.
3. Меньшиков В.В. Руководство по клинической лабораторной диагностике. - М.: Медицина, 1982. - 420 с.