Влияние растительного лекарственного средства «Нефрофит» при экспериментальной канамициновой нефропатии

К.С. Лотиакова, И.О. Убашеее, Е.А. Абгалдаева и др. Влияние растительного лекарственного средства «Неф-рофит» при экспериментальной канамициновой нефропатии

5. Kaushal G.P., Singh A.R., Shah S.V. Identification of

gene family of caspases in rat kidney and altered expression in ischemia-reperfusion injury. // Am. J. Physiol 1998. Vol. 274. P. F581-F595.

6. Kinloch R. A., Treheme J. M., Furness L. M. et al. The Pharmacology of Apoptosis. //TiPS. 1999. V. 20. P. 3542.

7. Kulvinder S. S., Walker N. J. Biochemical and molecular mechanism regulating apoptosis. // Mol. and Cellular Biochem. 1998. V. 178. P. 9-25.

8. Lieberthal W., Menza S.A., Levine J. Graded ATP depletion can cause necrosis or apoptosis of cultured mouse proximal tubular cells. // Am. J. Physiol. 1998. V. 274. P. F315-F327.

9. Ortiz A., Justo P., Sanz A., et al. Targeting apoptosis in acute tubular injury. // Biochem. Pharmacol. - 2003. -Vol. 66. -P. 1589-1594.

10. Rana, A., Sathyanarayana, P., Lieberthal, W., 2001. Role of apoptosis of renal tubular cells in acute renal failure: Therapeutic implications. Apoptosis 6, 83-102.

11. Schumer, M., Colombel, M. C\, Sawchuk, T. S. Morphologic, biochemical, and molecular evidence of apop-tosis during the reperfusion phase after brief periods of renal ischemia. // Am. J. Pathol. 1992. V. 140. P. 831838.

12. Sun F., Hamagawa E ., Tsutsui C., Ono Y., Ogiri Y., Kojo S. Evaluation of Oxidative Stress during Apoptosis and Necrosis Caused by Carbon Tetrachloride in Rat Liver. // Biochemica et Biophysica Acta. 2001. V. 1535. P. 186-191.

Пемза Сергей Васильевич - кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории экспериментальной фармакологии Института общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук, Улан-Удэ.

Мондодоев Александр Гаврилович - кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник Института общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук, Улан-Удэ.

Николаев Сергей Матвеевич - доктор медицинских наук, профессор медицинского факультета Бурятского государственного университета, заведующий отделом биологически активных веществ Института общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук, заслуженный деятель науки РФ, Улан-Удэ.

УДК 615.2

Влияние растительного лекарственного средства «Нефрофит» при экспериментальной канамициновой нефропатии К С. Лоншакова, И О. Убашеев, Е.А. Абгалдаева, А.Г. Мондодоев, ЯГ Разуваева, С.В. Лемза

Установлено, что чНефрофит» обладает выраженным нефропротекторпым действием при экспериментальной канамициновой нефропатии.

The action of phytogenic medication "Nephrophyte" on experimental nephropaty caused by kanamycin

K.S. Lonshakova, I.O. Ubasheev, E A. Abgaldaeva, A.G. Mondodoev, Ya.G. Razuvaeva, S.V. Lemza

The evaluation of morphofunctional .state of white rats kidneys during pharmacological nephropathy activated by kanamycin ingestion has been given in presence of pharmacotherapy with natural medication ''Nephrophyte''. The nephroprotective action of "Nephrophyte " was displayed.

Канамицин относится к антибиотикам аминогликозидной группы (Машковский, 2004), препараты которой были основными в течение последних десятилетий в лечении серьезных инфекций, вызываемых грамотри-цательными бактериями. В настоящее время доказана их эффективность, ив то же время неоспоримой является их токсичность (Ста-нева-Стойчева, Стойчев, 1984; Харкевич, 1999).

По мнению некоторых авторов, в патогенезе поражения почек аминогликозидами существенную роль играет экскреция антибиотиков клубочками и их реабсорбция в проксимальных канальцах (Гольдберг, 1969), а

также в петлях Генле и дистальных канальцах (РаБШпга-Мтог, 1982). Было выявлено, что аминогликозиды, находясь в ионизированной форме, связываются с рецепторами на клетках почечных канальцев с дальнейшим проникновением в клетку, предположительно путем эндоцитоза (МоезйшЬ е! а1., 1995). Внутриклеточный транспорт, накопление в лизосомах, взаимодействие препаратов аминогликозид-ной группы с субклеточными структурами определяют дальнейшее развитие нефроток-сичности и приводят к нарушению синтеза белков и некрозу клетки (Умнова, 1981; Лукьянова, 2002). При проведении клинико-мор-фологических исследований авторами выяв-

лены следующие изменения: повреждение клубочков во время терапии аминогликози-дами возникают у 3-10% взрослых пациентов (Ащатб, 1997) и у 70% пациентов с наличием факторов риска (8таош, 1994), повреждение канальцев наблюдаются у 50-100% больных, получавших аминогликозиды (Гапоз, 1995).

Наша задача сводилась к оценке морфо-функционального состояния почек у белых крыс при лекарственной нефропатии, вызванной приемом канамицина, на фоне фармакотерапии природным лекарственным средством «Нефрофит».

«Нефрофит», разработанный в отделе биологически активных веществ Института общей и экспериментальной биологии СО РАН, представляет собой комплексное неф-ропротекторное растительное средство в форме сухого экстракта. В состав данного фи-тоэкстракта входит сумма экстрактивных веществ, полученных из ортосифона тычиночного, горца птичьего, толокнянки обыкновенной и десмодиума канадского. При выборе указанной композиции и весовых соотношений были учтены основные патогенетические механизмы развития нефропатии и данные предварительных фармакологических исследований отдельных экстрактов и суммарного экстракта. «Нефрофит» содержит биологически активные вещества, относящиеся к различным классам химических соединений: флавоноиды, фенол-карбоновые кислоты, дубильные вещества, кумарины, сапонины, органические кислоты, фенолгликозиды, витамины, микроэлементы и др. Основным действующим началом «Нефрофита» является по-лифенольный комплекс.

Для оценки морфофункционального состояния почек при их повреждениях, а также для определения особенностей фармакотера-певтической эффективности и механизмов рефропротекторного действия испытуемого фитосредства определяли диурез по общепринятому методу без нагрузки и с 2,5%-ной водной нагрузкой (Берхин, Иванов, 1972); де-пурационную функцию почек по содержанию мочевины и креатинина в сыворотке крови и моче с использованием реактивов фирмы Сотшау (Польша); содержание белка в моче (Меньшиков и соавт., 1987); скорость клубоч-ковой фильтрации по клиренсу эндогенного креатинина (Капитаненко, Дочкин, 1985).

Эксперименты выполнены на белых крысах линии Вистар обоего пола с исходной массой 190-230 г. Поражение почек вызывали внутримышечным введением канамицина в дозе 300 мг/кг массы 1 раз в сутки в течение 14 дней (Руководство..., 2001). Морфофунк-циональное состояние почек животных оценивали в динамике на 3-и, 8- и 15-е сутки от начала эксперимента. «Нефрофит» белые крысы получали в форме экстракта в экспериментально-терапевтической дозе 150 мг/кг массы 1 раз в сутки внутрижелудочно, в течение 14 дней. В качестве препарата сравнения использовали «Канефрон». Данный препарат широко известен как эффективное средство, обладающее мочегонным, спазмолитическим, стимулирующим кровообращение, противо-спалительным и антибактериальным действием (Справочник ВИДАЛЬ ..., 2004, Корсун, 1999). Препарат сравнения «Канефрон» вводили лабораторным животным на фоне введения нефротоксичных препаратов в объеме 1,5 мл/кг массы 1 раз в сутки, внутрижелудочно. Животные контрольной группы получали дистиллированную воду в эквиобъемных количествах в аналогичных условиях. Для пато-морфологических исследований почки животных фиксировали в 10%-ном растворе нейтрального формалина и фиксаторе Буэна (Микроскопическая техника ..., 1996). Депа-рафинированные гистологические срезы окрашивали гематоксилин-эозином (Киселева и др., 1983). Морфометрические исследования и микрофотографирование осуществляли на микроскопе «Мойе» (Германия) со встроенной видеокамерой. Морфометрические исследования почечной ткани проводили в 5 полях зрения в каждом из 5 гистологических препаратов.

Полученные в ходе экспериментов данные статистически обработаны с использованием и-критерия Уилкоксона-Манна-Уитни (Сергиенко, Бондарева, 2001).

При курсовом введении канамицина развивается олигурический синдром с нарушением экскреторной функции почек и умеренно выраженной протеинурией. Нарастание тяжести функциональных расстройств коррелирует с длительностью введения указанного антибиотика. Результаты, приведенные в таблице 1, показывают, что на 8- и 15-е сутки эксперимента у животных контрольной группы отмечалось увеличение

К.С. Лопшакова, И.О. Убашеев, ЕЛ. Абгалдаева и др. Влияние растительного лекарственного средства «Неф-рофит» при экспериментальной канамициновой нефропатии

уровня протеинурии соответственно в 3,4 и 4,5 раза; диуреза - на 23% и в 1,6 раза соответственно по сравнению с показателями у крыс в интактной группе.

Весьма чувствительным показателем функционального состояния почек, характе-

ризующего- выделительную функцию клубочков и основанного на сравнении содержания эндогенного креатинина в крови и моче, является скорость клубочковой фильтрации - СКФ (табл. 1).

Таблица 1

Показатели Г руппы животных

Интактная Контрольная (канамицин) Канамицин + «Нефрофит» Канамицин+ «Канефрон»

8 сутки

Белок в моче, г/л СКФ, мкл/мин Объем мочи, за 2 ч, мл/100 г 1,02 ±0,52 84,97 + 7,31 1,41 ±0,12 3,49 ±0,43 45,34 ±3,72 1,08 ±0,06 1,12+0,17* 68,91 ±4,11* 1,43 ±0,05* 1,83 ±0,17 51,79 ±4,35 1,39 ±0,06

15 сутки

Белок в моче, г/л СКФ, мкл/мин Объем мочи за 2 часа, мл/100 г 1,02 ±0,52 84,97 ±7,31 1,41 ±0,12 4,59 ±3,85 13,92 ±1,49 0,88 ±0,07 1,42 ±0,08* 22,96 ± 3,78* 1,36 ±0,09* 4,08 ± 3,20 16,84 ±1,67 1,31 ±0,69

Примечание: * - здесь и далее разница достоверна по сравнению с показателями у животных контрольной группы приР < 0,05.

По результатам, приведенным в таблице 1, видно, что СКФ снижалась на 46% и в 6,1 раза.

Курсовое введение «Нефрофита» на фоне какамицинового поражения почек белых крыс оказывало выраженное нефропротекторное действие, о чем свидетельствовало повышение диуретической и экскреторной функции на 8-е и 15-е сутки исследований.

Снижение СКФ является одним из ранних признаков нарушения функции почек и предшествует накоплению в крови азотистых шлаков. В таблице 2 представлены результаты, полученные при исследовании уровней содержания креатинина и мочевины при введении «Нефрофита».

Таблица 2

Показатели азотистого обмена у белых крыс при экспериментальной канамициновой нефропатии

Показатели Группы животных

Интактная Контрольная ГканамитттО Канамицин «Не4то(Ьит» Канамицин «Кане4тон»

3 сутки

Креатинин, мкмоль/м л Мочевина, ммоль/мл 57,01 ±3,03 5,44 ± 0,46 63,28 ±3,79 6,96 ±0,61 59,19 ±3,07 6,08 ± 0,49 63,12 ±4,72 '6,74 ±0,47

8 сутки

Креатинин, мкмоль/мл 54,01 ±5,12 87,54 ±2,03 69,50 ±3,44* 84,0 ±4,19

Мочевина, ммоль/мл 5,23 ±0,28 9,13 ±0,92 6,24 ±0,81* 6,75 ±0,94

15 сутки

Креатинин, мкмоль/мл 54,01 ±5,12 304,76 ±24,51 176,38±16,99* 262,09±1,01

Мочевина, ммоль/мл 5,23 ± 0,28 23,18 ±2,06 12,27±1,08* 20,39±1,72

Как следует из таблицы 2, курсовое введение канамицина белым крысам вызывало острое поражение почек с развитием выраженного гиперазотемического синдрома, тяжесть которого увеличивалась к 15-м суткам исследования. В эти сроки наблюдалось резкое нарастание выраженности нефропатии: у

животных контрольной группы концентрация креатинина и мочевины повышалась соответственно в 5,6 и 4,4 раза по сравнению с аналогичными показателями у интактных крыс. Курсовое введение «Нефрофита» сопровождалось повышением депурационной функции почек, на что указывало снижение уровня

креатинина и мочевины в сыворотке крови животных на 21 и 32% на 8-е сутки исследования и на 42 и 47% соответственно на 15-е сутки по сравнению с контролем. При пато-морфологической оценке состояния почек у животных контрольной группы, получавших канамицин, характерными морфологическими признаками являлись поражения проксимальных и дистальных канальцев. Клубочки и эпителий прямых канальцев были сохранены. В большинстве клеток проксимальных канальцев обнаруживались изменения, характеризующие развитие некроза. В частности, клетки эпителия проксимальных и дисталь-ных отделов нефрона не содержали ядра. Цитоплазма большинства клеток представлялась гомогенной, эозинофильной. В ряде клеток цитоплазма имела вид глыбок, местами мембрана извитых канальцев была разрушена, выявлялся тубулорексис. На фоне нарастающего интерстициального отека (15-е сутки) выявлялась обильная круглоклеточная инфильтрация вокруг канальцев, в которых обнаруживались белковые массы. Повсеместно наблюдалась дилатация канатьцев и вакуолизация отдельных нефроцитов. Канальцы представляли собой образования, напоминающие маленькие кисты с расширенным просветом и уплощенным эпителием. В зонах дистрофических изменений нефроцитов на 15-е сутки экспериментов обнаруживались отложения извести в канальцах и интерсти-ции. Интенсивность кальцификации значительно варьировала в зависимости от тяжести почечной недостаточности у крыс.

Как видно из таблицы 3, введение «Неф-рофита» сопровождалось снижением кальци-нозов в почечной ткани на 83%; уменьшением числа расширенных и вакуолизированных нефроцитов на 83%, уменьшением площади и

При курсовом введении «Нефрофита» в корковом слое почек отсутствовали очаги вакуольной и гидропической дистрофии. В цитоплазме клеток канальцев выявлялась лишь белковая дистрофия, значительно снижалась круглоклеточная инфильтрация, не просматривались участки кальцинозов. В корковом слое в результате проницаемости стенок сосудов выявлялись скопления эритроцитов. В некоторых канальцах под слоем неотторгнувшихся некротических масс уже на 8-е сутки можно было увидеть сплошную выстилку из уплощенных эпителиальных клеток, иногда с базофильной, но чаще с эо-зинофильной цитоплазмой и с несколько ги-перхромным компактным ядром. Действие «Канефрона» на состояние почек крыс проявлялось слабее, о чем свидетельствовали очаговые инфильтрации в стромальной ткани, многочисленные очажки обызвествления, а также присутствие гемолизированных эритроцитов в просветах расширенных сосудов.

Для количественной оценки влияния «Нефрофита» на динамику патоморфологи-ческих изменений в почках белых крыс при канамициновой нефропатии были проведены морфометрические исследования следующих показателей: количество кальцинатов в поле зрения, количество дилатированных нефро-цитов, канальцев с различными включениями, а также площадь и периметр дилати-рованных и вакуолизированных канальцев. Результаты морфометрических исследований приведены в таблице 3.

Таблица 3

периметра канальцев на 75% и 49% соответственно по сравнению с показателями у крыс контрольной группы

Таким образом, при длительном курсовом введении канамицина-антибиотика ами-

Влияние «Нефрофита» на показатели морфометрического исследования почек крыс _при канамициновой нефропатии_

Показатели Группы животных

Контрольная

Количество кальцинатов Количество дилатированных нефроцитов 4,83 ± 0,19 6,07 ±1,28 0,82 ± 0,04* 1,01 ±0,05*

Количество канальцев, содержащих включения 5,45 ±0,27 1,14 ±0,05*

Площадь канальцев, мкм 6747,63 ± 202,42 1658,50 ±61,34*

Периметр канальцев, мкм 325,93 ±9,78 165,41 ±4,95*

КС. Лоншакова, И.О. Убашеее, Е.А. Абгалдаева и др. Влияние растительного лекарственного средства «Неф-рофит» при экспериментальной канамициновой нефропатии

ногликозидной группы развивается острая ществ. - ^ 2Ш. - 764 с.

почечная недостаточность токсического ге-неза, сопровождающаяся синдромами гиперазотемии, протеинурии, олигурии. Патоморфо-логическими особенностями канамицинового поражения почек являются дистрофические и некротические поражения канальцевого аппарата почек, дилатация и вакуолизация нефро-цитов, воспаление тубулоинтерстициальной ткани, формирование участков кальциноза. Установлено, что «Нефрофит» обладает выраженным нефропротекторным действием при экспериментальной канамициновой нефропа-тии. Об этом свидетельствуют уменьшение выраженности основных ренальных синдромов и патоморфологических изменений почек крыс при курсовом назначении испытуемого фитоэкстракта. В частности, на фоне действия «Нефрофита» отмечаются снижения азотемии и протеинурии, увеличивается диурез. При морфологическом и морфометрическом

Литература

1. Берхин Е.Б. Методы экспериментального исследования почек и водно-солевого обмена / Е.Б. Берхин, Ю.И. Иванов. - Барнаул, 1972. - 56 с.

2. Гольберг Л.Е. Влияние антибиотиков-аминогликозидов на некоторые функции макроорганизма: дис. ...д-ра мед. наук / Л.Е. Гольберг. -1969.-260 с

3 Капитаненко А.М. Клинический анализ лабораторных исследований в практике военного врача / А.М. Капитаненко, А.М. Дочкин. - М., 1985. - С. 122125.

4. Киселева А.Ф. и др. Морфофункциональные методы исследования в норме и при патологии /

A. Ф. Киселева и др - Киев, 1983. - 161 с.

5. Корсун В.Ф. Фитотерапия мочеполовых болезней /

B. Ф. Корсун, А.П Суворов, - СПб., 1999. - 224 с.

6. Корсун В.Ф. Об использовании БАД в комплексном лечении некоторых вирусных заболеваний / В.Ф. Корсун // Практич. фитотерапия. - 2003. - № 3. -С. 31-38.

7. Лукьянова Е.М. Нефротоксичность антибиотиков у новорожденных / Е.М. Лукьянова // Качественная клиническая практика. - 2002. -№ 2. - С 53-63.

8. Машковский М.Д. Лекарственные средства / МД. Машковский. - Харьков, 2004. - 560 с.

9. Меньшиков В.В. Лабораторные методы исследования: справочник / В.В. Меньшиков. - М., 1087. - 368 с

10. Микроскопическая техника: руководство для врачей

и лаборантов / под ред. Д.С. Саркисова, Ю.С. Перова. -М., 1996. - 544 с.

11. Николаев С.М. Влияние растительных полифенолов

на хемилюминесценцию липидов при повреждениях печени // Всесоюзное совещание по хемилюминес-ценции / С.М Николаев. - Уфа, 1986. - С. 66.

12. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических ве-

исследовании почек белых крыс, получавших «Нефрофит», отмечается уменьшение дистрофических и некротических изменений канальцев, уменьшение числа дилатированных нефроцитов и участков кальциноза.

Безусловно, выявленный в наших исследованиях нефропротекторный эффект «Неф-рофита» обусловлен широким спектром биологически активных веществ, содержащихся в нем (полифенолов, кумаринов, каротина, дубильных веществ, эфирных масел, полисахаридов и др ). Особого внимания заслуживают полифенольные комплексы, что объясняется их важной биологической ролью в организме, сводящейся, в частности, к участию в тканевом дыхании, пролиферации клеток, улучшению микроциркуляции, антиокси-дантному и мембраностабилизирующему действию (Грек, Долгов, 1983; Николаев, 1986; Корсун, 2002; Убашеев, Лоншакова и ДР-, 2005).

13 Сергиенко В.И. Математическая статистика в клинических исследованиях / В.И. Сергиенко, И.Б. Бондарева. -М., 2001. - 256 с.

14. Справочник ВИДАЛЬ. Лекарственные препараты в России: справочник. - М., 2004 - 1488 с.

15. Станева-Стойчева Д. Лекарствени взаимодействия / Д. Станева-Стойчева, Ц. Стойчев. - София, 1984 -279 с.

16. Убашеев И.О. Морфофункциональные основы регенерационной терапии природными лекарственными средствами экспериментальных повреждений печени / И.О. Убашеев, К С. Лоншакова, А.И. Бар-танов и др. - Улан- Удэ, 2005. - 206 с.

17. Умнова Л.В. Антибиотики / Л.В. Умнова, Королева В.Г., Гончарская Т.Я. - 1981. - № 8. - С. 612-617.

18. Харкевич Д.А. Фармакология / Д.А. Харкевич. -М.; 1999.-664 с.

19. Aujard Y. Neonatal infections - a special case? Res Clin Forums, 1997. -P. 67-77.

20. Fanos V., Padovani E.M. Importance of evaluation jf urinary enzymes and microglobulins in the neonatal period I J.P. - 1995. - Vol. 6. - P. 775-783.

21. Moestrup S., Cin S., Varum C et al. Evidence thatb epithelial glycoprotein 330 / megalin mediates uptake of polybasis drugs // J. Clin. Invest. -1995.-№96.-P. 14041413.

22. Pastoriza-Minoz E., Timmerman D. et al. // P. Pharmacol, exp. Ther. -1982.-V. 220. -P. 604-608.

23. Smaoui H., Schaeverbeke M., Mallie J.P. et al. Trans-placentae effects of gentamicin on endocitosis in rat renal proximal tubular cells. Pediatr Nephron 1994; Vol. 8(4).-P. 447-450.

1. Berkhin E.B., Ivanov Yu. I. Methods of Experimental Studies of Kidneys and Water-Salt Metabolism. -Barnaul, 1972,- 56 p.

И.О. Убашеев, И.М. Балъхаев, К. С. Лоншакова. Оценка комплексного гепатозащитного влияния СепПапорзЛ ЬагЬа1а (Ргое!) МА. при остром токсическом гепатите у белых крыс

2 Golberg L.E. Influence of Antibiotics - aminoglycosides on some functions of the microorganism. - 1969. - 260 p.

3. Kapitanenko AM., Dochkin A.M. Clinical Analysis of

Laboratory Studies in the Practice of a Military Doctor.

M., 1985 -P. 122-125.

4. Kiseleva A.F. et al Morphofunctional Methods of Stud-

ies in the Norm and Pathology. - Kiev, 1983,- 161 p.

5. Korsun V.F., Suvorov A.P Phytotherapy of the Uro-

genital diseases. - St.Petersburg, 1999,- 224 p.

6. Korsun V.F. On the Use of BAS in the Complex Treat-

ment of Some Virus Diseases // Practical Phytotherapy -

2003. -N 3.-P. 31-38.

7 Lukyanova E.M. Nephrotoxicity of Antibiotics in newborns // Qualitative Clinical Practice. - 2002. - № 2. - P 53-63.

8. Mashkovsky M.D. Medicinal Remedies. - Kharkov,

2004, - 560 p.

9. Menshikov V.V Laboratory Methods of Studies

(Guide-book). - M., 1987,- 368 p.

10. Microscopical Equipment. Manual for Physicians and Laboratory Assistants.-M., 1996.- 544 p.

11 Nikolaev S.M. Influence of Plant Polyphenols on the Lipid

I lemiluminescence in Liver Injury.- Ufa, 1986,- P. 66.

12. Guide for Experimental (Preclinic) Study of New Pharmacological Agents - M., 2001.- 764 p.

13. Sergienko V.I., Bondarev Clinical Studies -M., 2001,-256 p.

14. VIDAL Guidebook. Medicinal Preparations in Russia.-M., 2004,- 1488 p.

15. Staneva-Stoycheva D., Stoychev Ts. Drug Interaction -Sofia, 1984,-279 p.

16. Ubasheyev I.O., Lonshakova K S., Bartanov A,I. et al. Morphofunctional Fundamentals of Regenerative Therapy with Natural Medicinal Preparations of Experimental Liver Injuries. - Ulan-Ude, 2005.- 206 p.

17. Umnova L.V., Koroleva V.G., Goncharskaya T.Ya. // Antibiotics.- 1981,-N8.-P. 612.

18. Kharkevich D.A Pharmacology - M., 1999.- 664 p.

19. Aujard Y. Neonatal Infections - A Special Case? Res. Clin Forums, 1997 - P.67-77.

20. Fanos V., Padovani E.M. Importance of Evaluation of Urinary enzymes and Microglobulins in the Neonatal Period I.J.P.- 1995 -Vol. 6.-P. 775-783.

21. Moestrup S., Gin S., Varum C. et al. Evidence that Epithelial Glycoprotein 330/megalin Mediates Uptake of Polybasis Drugs // J. Clin. Invest.- 1995,- N 96.- P. 1404-1413.

22. Pastoriza-Minoz E., Timmerman D. et al. // P. Pharmacol., Exp. Ther.- 1982,- Vol. 220,- P. 604-608.

23. Smaoui H., Schaeverbeke M., Mallie J.P. et al. Trans-placentae Effects of Gentamycin on Endocitosis in Rat Renal Proximal Tubular Cells.// Pediatr Nephron -1984 - Vol. 8 (4).-P 447-450.

I.B. Mathematical Statistics in

Лоншакова Клара Сергеевна - доктор биологических наук, профессор медицинского факультета Бурятского государственного университета, ведущий научный сотрудник Института общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук, Улан-Удэ.

Убашеев Иннокентий Оширович - доктор медицинских наук, профессор Института общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук, Улан-Удэ.

Абгалдаева Елена Алексеевна - кандидат медицинских наук, Центр Восточной медицины М3 РБ, Улан-Удэ. Мондодоев Александр Гаврилович-кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник Института общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук, Улан-Удэ. РазуваеваЯнина Геннадьевна- кандидат биологических наук, научный сотрудник Института общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук, e-mail: tatur75@mail.ru, Улан-Удэ Лемза Сергей Васильевич-кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории экспериментальной фармакологии Института общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук, Улан-Удэ.

УДК 615.2

Оценка комплексного гепатозащитного влияния 6ЕМТ1АМ0РЯ1Я ВАЯВ А ТА (ЯШ)ЕЕ) МА. при остром токсическом гепатите у белых крыс

И.О.Убашеев, И М. Бальхаев, К.С. Лоншакова

Данные исследований влияния экстракта горечавки бородатой на модели Сал-гепатитау белых крыс отчетливо показывают его гепатозащитный эффект.

The evaluation of hepatoprotective action of GENTIANOPSIS BARBATA (FROEL) MA. extract during acute toxic hepatitis in white rats

IO. Ubasheev, I.M. Balhaev, K.S. Lonshakova

The paper deals with experimental data on combined stimulating effect ofpolyphenolic compounds from the extract of Gentiana barbata (Froehl) on regenerative processes in acute toxic hepatitis in white rat liver.

Говоря о природных лекарственных и действие последних на больной организм средствах, следует подчеркнуть, что по- проверялось не на одном десятке поколений, скольку уже на первых порах развития обще- то отдаленные результаты при лечении ими, ства человек лечился природными объектами, как правило, благоприятны. Однако в настоя-

37