Анализ биологически активных соединений мускуса кабарги (Moschus moschiferus) методом газовой хроматографии с масс-селективным детектором

Биомедицина . № 1, 2018, С. 19-39

Анализ биологически активных соединений мускуса кабарги (Moschus moschiferus) методом газовой хроматографии с масс-селективным детектором

B.Н. Каркищенко, М.С. Дуля, Д.В. Хвостов, P.A. Агельдинов,

C.Л. Люблинский

ФГБУН «Научный центр биомедицинских технологий ФМБА России», Московская область

Контактная информация:Дуля Максим Сергеевич, mdulya@gmail.com

Проведено исследование состава биологически активных компонентов мускуса кабарги в условиях комплексной пробоподготовки и последующего определения состава методом ГХ-МС с применением дериватизации силилированием и метилированием. Найдены оптимальные условия экстракции, хроматографического разделения и относительного количественного определения главных компонентов. Подробно представлены результаты идентификации и определения содержания наиболее значимых (мажорных и минорых) компонентов в ткани железы в соответствии с библиотекой NIST 2014 и алгоритмом относительной нормализации. Предложены механизмы трансформации макроцикличе-ских компонентов (мускон, экзальтон), связанные с душистыми свойствами мускусной железы кабарги. Описаны возможные связи компонентов препарата на основе железы с биологическим эффектом. По результатам исследования сделаны выводы о многокомпонентности состава железы, предложены маркерные компоненты в составе мускусной железы и указаны возможные взаимосвязи обнаруженных компонентов состава с биологическими эффектами.

Ключевые слова: кабарга (Moschus moschiferus), мускус, железа, газовая хроматография, масс-спектрометрия, дериватизация, андростероиды.

Введение

Кабарга (Moschus moschiferus) - небольшое, похожее на оленя животное, населяющее крутые, поросшие хвойным лесом скалистые склоны гор. Кабарга характеризуется стенофагией (узкоспециализированное питание животных) и преобладанием в ее рационе лишайников, доля которых очень высока и может достигать 95%.

Мускус (выделение особой железы) кабарги является одним из наиболее ценных природных биостимуляторов, применение которых в арабской, тибетской, китайской и индийской медицине известно с середины IV века [1]. Он при-

меняется или как монокомпонентный препарат, или как обязательный базисный компонент различных комплексов поддержания жизнедеятельности и долголетия. Представленные в литературе по народной и региональной медицине данные свидетельствуют о его эффективности при инфекционных заболеваниях (иммуностимулирующее действие), вялом заживлении ран (регенеративное действие), нарушениях кроветворения (противоанемическое действие), состояниях хронического утомления, астении, последствиях черепно-мозговых травм, нарушений мозгового кровообращения, нейроинфекций (нейропротекторное,

ноотропное, психоэнергизирующее действие), онкологических заболеваниях (иммунный контроль над опухолевым ростом, повышение эффективности и переносимости лучевой и химиотерапии опухолей, ускоренное восстановление после хирургического лечения), а также для борьбы с импотенцией и бесплодием [10].

Экспериментальные и клинические наблюдения на мышах, крысах, морских свинках и кроликах показали, что мускус в дозах 1-100 мг/кг массы тела оказывает анальгезирующее и противовоспалительное влияние, вызывает спонтанные сокращения матки у крыс, тормозит перистальтику изолированной подвздошной кишки у кролика [10].

В экспериментальных исследованиях обнаружены антиокислительные (ан-тиоксидантые) свойства мускуса кабарги [5, 12]. Антиоксидантные свойства мускуса предполагают эффективное его применение в профилактике и лечении заболеваний, причиной которых является оксидативный стресс, или в патогенезе которых он участвует. К таким заболеваниям относятся нейродегене-ративные заболевания (паркинсонизм, болезнь Альцгеймера, эпилепсия, де-менция, рассеянный склероз), сердечнососудистые заболевания (атеросклероз, инфаркт миокарда, ишемически-ре-перфузионные поражения миокарда, дистрофия миокарда), сахарный диабет, заболевания дыхательной системы (респираторный дисстресс-синдром, пневмония, бронхообструктивные заболевания), различные формы анемий, ретинопатии, катаракта, ревматоидный артрит, различные интоксикации.

Известно, что одним из компонентов стероидной фракции мускуса является

За, 17Р-аидростаидиол, у которого обнаружен модулирующий (стимулирующий) эффект на мелатонин-синте-зирующие ферменты шишковидной железы - N-ацетилтрансферазу и ги-дроксииндол-О-метилтрансферазу [12]. Следовательно, мускус железы может оказывать благоприятное действие на биологические ритмы человека, скорость процессов старения, процессы спонтанного канцерогенеза.

Такая широкая сфера его показаний к применению позволяет предположить, что в его составе могут присутствовать регуляторные соединения пептидной природы, гормонально активные комплексы и ростовые факторы, в т.ч. активирующие жизненный цикл стволовых клеток [4].

Представленные в литературе данные об эффективности применения мускуса кабарги, в т.ч. при инфекционных заболеваниях, вялом заживлении ран, нарушениях кроветворения, заболеваниях нервной системы, онкологических заболеваниях, импотенции и бесплодии, носят разрозненный, чаще всего - описательный характер. Они не введены в научный оборот, т.к. не соответствуют требованиям доказательной медицины. Каких-либо контролируемых доклинических и клинических исследований эффективности и безопасности препаратов мускуса кабарги на сегодняшний день не проводилось. Перспективность для современной медицины новых биогенных стимуляторов, полученных из мускуса кабарги, основанная на многовековом опыте их применения в арабской, тибетской, китайской и индийской медицине, не вызывает сомнений [2].

Несмотря на столь обширный период применения, состав активных компонентов мускуса кабарги остается малоизучен-

ным, не идентифицированы компоненты, ассоциированные с широким спектром биологической активности ткани. Известно, что в состав мускуса входят жирные кислоты, воски, ароматические и стероидные соединения, сложные эфиры холестерина. Основной носитель мускусного запаха связывают с присутствием в составе макроциклического кетона му-скона. Однако с большинством из этих компонентов известные биологические эффекты не сопоставлены и не доказаны экспериментально. Более того, известно, что различные пробы мускуса по своей биологической активности не являются эквивалентными, и их эффективность варьирует от умеренной до очень высокой.

В связи с этим целью нашего исследования стала идентификация биологически активных соединений, обеспечивающих биологическую эффективность мускуса кабарги.

Задачи состояли в разработке методов пробоподготовки экстрактов мускусной железы в различных условиях, подборе условий дальнейшей дериватизации и их идентификации в природном сырье методом ГХ-МС анализа. На основе результатов выполненной работы будет возможно решать задачи стандартизации, в т.ч. биологической, природного сырья, разработки технологии получения эффективных лекарственных форм препаратов и методов контроля их качества.

Ранее из экстрактов секрета препуци-альной железы самцов кабарги выделено более 20-ти различных природных соединений. Большинство из них идентифицированы с низким фактором надёжности в идентификации (табл. 1). Рядом работ было установлено, что в мускусе кабарги присутствуют мускон [15], стероидные гормоны, мускопиридины [6] и др. макроциклические соединения.

Таблица 1

Химический состав (% к весу экстракта секрета) мускусной железы

Компоненты секрета Китайская кабарга Г6.131 Сибирская кабарга [12]

Воски 17,0 38,0

Мускон 22,6 0**

Алифатические спирты 2,8 0**

Кислоты и фенолы * 10,0

Стероиды (суммарно) 46,4 38,0

Холестанол * 1,8

Холестерин 7,7 7,0

5а-13,17-дикетоандростан 1,3 0**

5Р-3,17-дикетоандростан 1,3 0**

Д4-3,17-дикетоандростан 1,7 0**

Д46-3,17-дикетоандростан 1,7 0**

Андростерон 3,1 3,0

Д4-3а-окси-17-кетоандростан * 3,4

Д5-3р-гидрокси-17-кетоандростан 1,2 0**

Эпиандростерон 0,7 0**

5Р-3а-окси-17-диоксиандростан 5,6 9,5

5а-33, 17а-диоксиандростан 5,3 3,0

53-3а, 173-диоксиандростан 1,4 1,0

5В-3а, 17а-диоксиандростан 6,3 3,1

Примечания: * - данные отсутствуют, ** - соединение или отсутствует, или его концентрация менее чем 0,5%.

Мускусный запах секрету препуци-альной железы придает смесь летучих компонентов железы, одним из которых является макроциклический кетон мускон (3-метилпентадеканон, рис. 1), содержание которого широко варьирует в зависимости от подвидовой классификации, ареала обитания и сезонности [14]. Так, у животных из географически удаленных популяций (Китай, Непал) его процентное отношение к весу исследуемого экстракта может составлять от менее чем 0,5% [15]

до 22,6% [6]. В образцах из др. мест обитания мускон не обнаружен [3].

Известно, что молекула 3-метил-пентадеканона (мол. вес: 238 а.е.м., CAS 541-91-3) синтезируется рядом методов направленного органического синтеза через стадии циклизации и конденсации линейных карбоновых и дикарбоновых кислот [11], в которых исходными являются гексадекановая ди-карбоновая, 3-метилгексадекановая и др. линейные кислоты (рис. 2).

Рис. 1. Молекулярная структура и ГХ-МС спектр мускона (3-метилпентадеканона, CAS 541-91-3). Источник: LibraryNIST14.

cyclisalion: 1 X = COOR асу I gin cond en sat ¡о п

н3с

Рис. 2. Схема реакции циклизации гексадекановой дикарбоновой кислоты с образованием мусконподобного макроциклического кетона (пентадеканона, экзальтон) (А). Схема лабораторного получения мускона (3-метилпентадеканона, 1) из различных линейных карбо-производных (Б).

Обратная реакция дециклизации и раскрытия цикла макроциклических мусконов может происходить как под воздействием внешних факторов (света, температуры), так и ввиду особенностей биотраснформации внутренней секреции в присутствии ферментов, ме-таллопротеиназ и микробиоты мускусной железы.

Основу липидных компонентов мускуса составляют стероиды - 38,0-46,4%, в т.ч. холестанол, холестерин и соединения ряда андростана (рис. 3). Среди липидов значительную долю (до 38%) занимают воски, т.е. сложные эфиры холестерина и высших жирных спиртов с длинноцепочными алифатическими кислотами. Воски могут играть роль инертной подложки, пролонгирующей сигнальное действие пахучих соединений. Они могут служить также источником свободных жирных кислот, например,

при ферментативной их трансформации. В составе секрета препуциальной железы в значительных количествах (до 10%) присутствуют свободные жирные кислоты и фенольные соединения, среди которых преобладают С16-С24 и ароматическая фенилуксусная кислота. В липидах секрета присутствуют также не идентифицированные компоненты, которые в принципе могут выполнять сигнальную функцию, хотя содержание их в экстракте оказалось незначительным -менее 0,5%.

Обнаруженные межпопуляционные (или подвидовые) различия в составе выделений препуциальной железы кабарги могут быть обусловлены различным набором спектра предпочитаемых кормов. Обоняние у копытных играет решающую роль при выборе поедаемых растений. Пищевые предпочтения видов, ориентированные на запах расте-

ап{1|У*я-4-«1е-3. |?н]н№е сМеысга]

Рис. 3. Аидрогеиная группа стероидов, обнаруживаемая в мускусной железе кабарги (по данным [9]).

нии, широко используются в последние годы как самостоятельное направление химической экологии, а сам эффект получил название «ольфакторныш опосе-мантизм» [7]. Растения, обладающие предпочитаемыми запахами, не только удовлетворяют потребности животного в пище, но могут также служить источником поступления в организм ряда органических веществ, способных связываться с клетками-мишенями в специфических кожных железах.

Материалы и методы

Образцы для исследования

Изучаемыми объектами были на-тивные ткани мускусноИ железы кабарги сибирскоИ (рис. 4), извлекаемые из мускусного мешочка - специфичного природного контеИнера с зернистоИ темно-коричневоИ тканью. Препаратами сравнения выступали два объекта извлеченноИ мускусноИ железы кабарги китаИскоИ - коммерчески доступные образцы «Natural Qinghai Wild Deer Musk Grains Moschus Quality Assurance» двух различных партиИ, маркированные нами как Gold и Silver.

Первичным объектом для извлечения биологически активных компонентов является ткань мускусной железы, имеющей на своей поверхности фрагменты кожи, волос, фасций (рис. 4). Поэтому первым этапом подготовки ткани железы к последующему анализу является механическое освобождение образца ткани от инородных включений.

Пробоподготовка включала этапы механической гомогенизации и последующей экстракции компонентов, а также этапы химического тканевого лизиса для высвобождения активных компонентов из тканей в среде различных растворителей и значения рН.

Пробоподготовка для анализа жирно-кислотного состава мускусной железы кабарги

Условия экстрагирования из натив-ных тканей природного сырья являются наиболее значимой стадией для полного представления о качественном и количественном составе объекта.

Нами отработаны условия экстрагирования из ткани мускусной железы растворителями широкого ряда с раз-

Рис. 4. Общий вид ткани мускусной железы кабарги.

Биомедицина • № 1, 2018 24

личной полярностью (этиловый спирт, диэтиловый эфир, гексан, этилацетат, третбутилметиловый эфир). Данный этап экстрагирования выполнен в условиях различного времени экстракции, гомогенизации и различных способов дериватизации (метилирование по Фол-чу и силилирование).

Метилирование. Образец ткани мускусной железы в количестве 1,0 г подвергали в течение 24 ч обработке смесью 10 мл хлороформа с 10 мл метанола по Фолчу в присутствии 1% р-ра KCl для растворения липидных компонентов. Экстракт фильтровали через бумагу и после удаления избытка растворителей упариванием досуха подвергали кислотному гидролизу с целью получения смеси метиловых эфиров кислот. Для этого к омыляемой фракции добавляли концентрированную соляную кислоту до рН=2-3 для перевода калиевых солей карбоновых кислот в кислоты, после чего смесь выделенных жирных кислот трижды экстрагировали той же смесью. Растворитель удаляли в токе азота. Пере-

вод жирных кислот в метиловые эфиры осуществляли с помощью реакции эте-рификации (метилирование) в условиях кислой среды по ГОСТ Р 51486-99. Полученные МЭЖК трижды экстрагировали 10 мл смеси диэтиловый эфир+гексан (1:4 по объему). После удаления растворителя в токе азота при комнатной температуре сухой остаток МЭЖК взвешивали и растворяли в 1мл хлороформа.

Газовая хроматография с масс-селективным детектором

Качественный и количественный анализ проводили на ГХ-МС анализаторе с масс-спектрометрическим детектором «Хроматэк», сопряженным с газовым хроматографом «Хроматэк-Кристалл 5000» и жидкостным дозатором «ДАЖ-2М (ЗД)».

Условия хроматографирования на капиллярной колонке СЯ-5т8,30 м * 0,25 мм * 0,25 мкм, Са1;.М 6.904.652: повышение температуры колонки в термостате с 70°С до 260°С со скоростью 10°С/мин; температура инжектора - 250°С, переходной линии - 250°С, детекто-

О

А

дериватизации

ОН

низкая летучесть высокая вероятность декарбос кил ирования

* JI

R OR"

высокая летучесть низкая вероятность де карбоскилиро ва ни я

О X-Si(MeyT R ЧЭН

0 ч

1 V

X-Sj(fu1ej-R-

СН

R. У

о \

X-Si(Me)-F? Ч R R. ,;S'R

V-'"И

R'=M&t-Bu

Р..--—" .5'

БН \

Рис. 5. Направление реакций дериватизации силилированием для надежного разделения и определения многокомпонентного состава мускусной железы кабарги.

ра - 200°С; поток гелия -1,0 см3/мин; деление потока - 1:10; время анали-за-33 мин; ввод 1 мкл пробы.

Для надежной идентификации дериватов использовали автоматическую базу поиска и идентификации данных хромато-масс-спектрометрии NIST14 MS Library.

Дериватизация компонентов мускусной железы

Известны многочисленные варианты эффективной дериватизации первичных и вторичных аминов, карбоновых кислот, спиртов, стероидов методом силилирования. При ГХ-МС анализе определяемые аналиты химически модифицируются для обеспечения более разделяемых пиков с улучшенными хро-матографическими свойствами - време-

нем удерживания и разрешением, а также более информативных масс-спектров после электронной ионизации (ЭИ).

Используя методы дериватизации силилированием для экстрактов мускусной железы кабарги, время удерживания полученных продуктов изменяется, а форма пика компонента значительно улучшается.

Результаты и их обсуждение

Весь пул хроматографически разделенных компонентов (рис. 6) был идентифицирован в автоматическом режиме (библиотека NIST14 MS Library) и подвергнут ранжированию по вкладам площадей каждого компонента в общий ионный ток и степени достоверности предложенных структур.

Рис. 6. Профиль хроматограммы ГХ-МС анализа субстанции мускусной железы без и после дериватизации силилированием.

Таблица 2

Состав ткани мускусной железы кабарги сибирской по классам соединений

№ п/п Группа Типичные представители Массовая доля, %

1. Производные жирных кислот Октадеканоидная, гексадеканоидная, тетракозаноидная, докозаноидная, гептакозаноидная, нонадеканоидная кислота и их эфиры 52,37

2. Андростероны Дегидроизоандростерона ацетат 6,92

3. Ненасыщенные углеводороды (воска) Докасен, нонадецен, метилнонадиен 4,59

4. Стеролы (холестеролы) Холестерол, холестанон, холестаен, холестаенол 8,68

5. Кетоны и альдегиды (мускон-подобные) Эфиры бензальдегида, фуранона 4,48

6. Эйкозаноиды и простаноиды Арахидоновая кислота, эфиры эйкоза-ноидной кислоты 3,78

7. Циклические производные Производные циклопентанона, циклоте-традекана 7,26

8. Спирты многоатомные Пентанол, гептадеканол, нонадеканон, эритритол 2,34

9. Эпокси-производные жирных кислот Производные оксирана 2,54

10. Пирролидины Пирролифен 1,27

11. Фумаровые эфиры жирных кислот Фумаровая кислота, 2-хлорпропилтри-дециловый эфир 1,23

12. Эстрогенные фитостеролы 17-Пентатриаконтен 1,02

13. Пиримидиновые эфиры 5-(1,3-бутадиенил)-5-этил-гексагидропи-римидин-2,4,6-трион 0,37

14. Фенольные производные 3,5-дигидроксибензойная кислота и её эфиры 0,56

15. Фенотиазиновые производные 6-гидроксибензо(а)фенотиазин-5-он 0,11

16. Неидентифицированные липиды - 2,48

Анализ состава экстрактов мускусной железы без дериватизации представлен малым количеством компонентов в сравнении с профилем состава с предварительной дериватизацией силилированием (рис. 6).

Состав экстрактов мускусной железы кабарги многообразен и представлен широким классом соединений, типов

их модификаций и имеет 15 основных групп веществ (табл. 2).

Количество определяемых соединений в экстракте мускусной железы в различных условиях экстрагирования и последующей дериватизации достигает 70-90 хроматографически разделяемых компонентов (рис. 7).

Рис. 7. Типичный вид хроматограммы ГХ-МС анализа экстракта мускусной железы кабарги сибирской. В ГХ-МС анализе определено 93 соединения.

Определяемые компоненты сгруппированы нами по относительному уровню концентраций на мажорные (более 0,5 отн.%) и минорные (менее 0,5 отн.%) по вкладу площадей всех обнаруживаемых соединений в общий интегральный

пул по полному ионному току ГХ-МС хроматограмм.

Доля мажорных компонентов в составе экстрактов ткани достигает 90 отн. %, диаграмма соотношения которых приведена на рис. 8ив табл. 3.

Рис. 8. Диаграмма относительного содержания (%) мажорных компонентов в экстракте мускусной железы кабарги.

Таблица 3

Данные ГХ-МС анализа по содержанию и идентификации мажорных компонентов в экстракте мускусной железы кабарги сибирской

№ компонента Содержание, отн. % Наименование определяемого компонента в анализе ГХ-МС (ИЮПАК) Наименование определяемого компонента

72 12,8 Androstane-3,17-diol,

67 12,0 Etiocholanone, TMS derivative Этиохоланон

74 9,8 Androstane-3,17-diol,

89 8,2 Cholesterol, TMS derivative Холестерол

63 6,0 Dehydroisoandrosterone acetate Дегидроизоандростерон ацетат

54 5,1 Trimethylsilyl [4-(acetylamino)phenyl]acetate 4-ацетиламинофенилацетат

71 3,8 5a-Androstan-3p-ol-17-one, TMS derivative 5а-Андростан-3р-ол-17-он

58 2,8 Palmitic Acid, TMS derivative Пальмитиновая кислота

51 2,5 Hippuric acid, TMS derivative Бензоилглицин

73 2,5 Androstane-3,17-diol

19 2,4 5-Trimethylsilyloxy-5-methylhexanoic acid, trimethylsilyl ester 5-триметилгидрокси-5-метилгексановая кислота

39 2,1 4-Hydroxybenzeneacetic acid, 2TMS derivative 4-гидроксибензоуксусная кислота

86 2,0 Androstane-3,11,17-triol,

35 1,6 4-Hydroxybutanoic acid, 2TBDMS derivative 4-гидроксибутановая кислота

55 1,5 4-Hydroxyphenyllactic acid, 3TMS derivative 4-гидроксифенилпропионо-вая кислота

28 1,4 D-(+)-Glucosamine, 4TMS derivative й-(+)-Глюкозамин

30 1,3 3-Methyladipic acid, 2TMS derivative 3-метиладипиновая кислота

83 1,2 Androst-5-ene-3Р,17Р-diol, 2TMS derivative Андрост-5-ен-3р,17р-диол

32 1,1 2-Ethyl-3-trimethylsilyloxy(trimethylsilyl) valerate 2-этил-3-гидроксивалериано-вая кислота

77 1,1 Androstane-3,11,17-triol,

60 1,0 Stearic acid, TMS derivative Стеариновая кислота

69 1,0 Androstane-3,17-diol,

90 1,0 Cholestan-3-ol,

81 0,9 Pregnane-3,17,20,21-tetrol,

33 0,8 2-Methyl-1,3-pentanediol, 2TMS derivative 2-метил-1,3-пентандиол

№ компонента Содержание, отн. % Наименование определяемого компонента в анализе ГХ-МС (ИЮПАК) Наименование определяемого компонента

45 0,7 2-Propylpentanoic acid, 2,3,4,6-tetra(trimethylsilyl)-1-glucopyranoside 2,3,4,6-тетрагидрокси-1-глю-копиранозид-2-пропилпента-новая кислота

5 0,6 m-Cresol, TMS derivative м-крезол

18 0,6 Butanoic acid, dimethyl(ethenyl)silyl ester Диметиловый эфир бутановой кислоты

80 0,6 Androstane-3,11,17-triol,

85 0,6 Androstane-3,11,17-triol,

14 0,5 Benzeneacetic acid, TMS derivative Бензолуксусная кислота

22 0,5 1,2-Butanediol, 2TMS derivative 1,2-бутандиол

23 0,5 1,3-Bis(trimethylsilyloxy)pentane 1,3-дигидроксипентан

27 0,5 a-Hydroxyisobutyric acid, 2TMS derivative 1-гидроксиизобутановая кислота

29 0,5 meso-Erythritol, 4TMS derivative мезо-эритритол

Среди группы минорных компонен- как 4-меркаптобензойной кислоты, три-

тов, суммарно составляющих до 10отн.%, форацетата транс-дегидроандростеро-

нужно отметить установленное содержа- на, триметокси-12Н-бензоксипино-изо-

ние ряда производных с широким спек- хинолина, 3-цианохиноксалин оксида и

тром биологической активности, таких некоторых др. (рис. 9, табл. 4).

Рис. 9. Диаграмма относительного содержания (%) минорных компонентов в экстракте мускусной железы кабарги.

Таблица 4

Данные ГХ-МС анализа по содержанию и идентификации минорных компонентов в экстракте мускусной железы кабарги сибирской

№ компонента Содержание, отн. % Наименование определяемого компонента в анализе ГХ-МС (ИЮПАК) Наименование определяемого компонента

61 0,4 trans-Dehydroandrosterone, trifluoroacetate Транс-дегидроандростерона трифторацетат

10 0,3 Benzoic Acid, TMS derivative Бензойная кислота

20 0,3 2-Methylpentan-2-ol, trimethylsilyl ether 2-метилпентан-2-ол

37 0,3 4-Hydroxybenzoic acid, 2TMS derivative 4-гидроксибензойная кислота

40 0,3 4-Mercaptobenzoic acid, 2TMS derivative 4-меркаптобензойная кислота

47 0,3 2,5-Dihydroxybenzoic acid, 3TMS derivative 2,5-дигидроксибензойная кислота

49 0,3 6,9,10-Trimethoxy-12H-benz(6,7) oxepino(2,3,4-i,j)isoquinoline 6,9,10-триметокси-12Н-бенз(6,7)оксепино(2,3,4) изохинолин

59 0,3 Oleic Acid, (Z)-, TMS derivative Олеиновая кислота

7 0,2 2-Hydroxy-3-methylbutyric acid, 2TMS derivative 2-гидрокси-3-метилбутановая кислота

15 0,2 Butanedioic acid, 2TMS derivative Бутандиовая кислота

16 0,2 3-Cyanoquinoxaline 1-oxide 3-цианохиноксалин оксид-1

34 0,2 3-Hydroxybenzoic acid, 2TMS derivative 3-гидроксибензойная кислота

42 0,2 Xylitol, 5TMS derivative Ксилитол

44 0,2 2-Cyclopentene-1-carboxylic acid, 1-(4-methyl-3-pentenyl)-2-[(trimethylsilyl)oxy]-, ethyl ester 1-(4-метил-3-пентенил)-2-гидрокси этиловый эфир 2-циклопентен-1-карбоксовой кислоты

48 0,2 a-D-Glucopyranoside, methyl 2-(acetylamino)-2-deoxy-3-O-(trimethylsilyl)-, cyclic methylboro-nate а-й-глюкопиранозид метил-2-ацетиламино-2-деокси -циклик метилборанат

68 0,2 Androstane-3,17-diol,

75 0,2 5a-Androstan-3p-ol-17-one, TMS derivative 5а-Андростан-3р-ол-17-он

Несмотря на низкую представленность минорных компонентов, экспериментально найденных в ходе ГХ-МС анализа, присутствие подобных компонентов даже в микромолярных концентрациях способно значительно влиять на спектр биологической активности и их выраженность.

Молекулярные структуры некоторых классов активных минорных компонентов с предполагаемым наиболее выраженным спектром биологической активности представлены на рис. 10.

В составе препаратов сравнения (коммерческих образцов мускусной железы кабарги) обнаружен менее выраженный

Рис. 10. Сруктурные формулы и ГХ-МС спектры дериватов минорных компонентов состава мускусной железы кабарги сибирской.

Обозначения: 1 - Транс-дегидроандростерона трифторацетат; 2 - 4-меркаптобензойная кислота; 3 - 1-(4-метил-3-пентенил)-2-гидрокси этиловый эфир 2-циклопентен-1-карбоксовой кислоты; 4 - 6,9,10-триметокси-12Н-бенз(6,7)оксепино(2,3,4)изохинолин. Источник: ЫЬгагу№8Т14.

Рис. 11. Типичный вид хроматограммы ГХ-МС анализа экстракта мускусной железы кабарги китайской. В ГХ-МС анализе определено 29 соединений.

и менее поликомпонентный профиль соединений. Так, в составе экстракта мускусной железы кабарги китайской (Gold) в условиях экстракции, дериватизации и последующего ГХ-МС анализа обнаружено только 29 соединений (рис. 11).

Примечательно, что наряду с обнаруженными в составе обоих образцов срав-

нения мусконом (3-метилпенгадеканон) и тоналидом (7-ацетил-6-этил-1, 1,4,4-тетра-метилтетралин) - душистыми представителями мусконподобного ряда - установлено полное отсутствие соединений андрогеновой группы стероидов (табл. 5).

Литературный поиск показывает, что наряду с характерным запахом компо-

Таблица 5

Данные ГХ-МС анализа по содержанию и идентификации компонентов в экстракте мускусной железы кабарги китайской

№ п/п Наименование соединения Время, мин Площадь. %

1. Dasvcarpidan-1-methanol, acetate (ester) 4,02 0,11

2. Benzvl alcohol 4,39 0,06

3. Sorbic Acid 4,68 3,95

4. Benzene, 1,2,4,5-tetramethvl- 4,99 0,08

5. Benzoic acid 5,30 23,70

6. Hexanoic acid, 2-ethoxvethvl ester 5,62 0,17

7. Pentadecane 5,68 0,09

8. "hvmol 5,73 0,11

0. Glucosamine. N-acetv -N-benzovl- 5,97 0,14

1. Dodecana 6,12 0,13

2. Octanoic acid. 2-ethoxvethvl ester 6,27 0,26

3. Pentadecar e 6,36 0,14

4. Diethvl Phtha late 6,63 0,33

5. 2-Ethoxvethvl nonanoate 6,77 О/ 7

6. Benzophenone 6,81 О,' 4

7. Heptacosane 6,89 О,' 7

8. 1,4-Bis5-(4-bromophenvl)furvl-1-butene 7,00 0,55

9. Benzvl Benzoate 7,10 1,40

20. Decanedioic acid. bis(2-ethoxvethvl) ester 7,20 0,64

21. 7-Acetvl-6-ethvl-1,1,4,4-tetramethvltetralin (Tonalid) 7,30 1,91

22. Muscone 7,35 42,07

23. n-Hexadecanoic acid 7,43 3,99

24. Stearic acid. 2-hvdroxv-1-methvlpropvl ester 7,62 1,08

25. Oleic Acic 7,82 1,78

26. Dasvcarpidan-1-methano . acetate (ester) 7,86 0,38

27. Stearic acid. 2-hvdroxv-1-methvlpropvl ester 8,05 8,26

28. 2-Butoxvethvl oleate 8,51 7,60

29. 11H-Dibenzoa,gquinolizin-11-one, 5,6,8,8a,9,10,13,13a-octahvdro-2,3-dimethoxv- 8,57 0,19

Рис. 12. Молекулярная структура и ГХ-МС спектр тоналида (7-ацетил-6-этил-1,1,4,4-тетра-метилтетралин, САБ 1506-02-1). Источник: ЫЬгагу№8Т14.

нент тоналид (7-ацетил-6-этил-1,1,4,4-тетраметилтетралин, рис. 12) обладает широким спектром андрогенной активности, проявляя подавляющее действие на ароматазу как ингибитор.

Анализ многокомпонентного профиля всех изученных образцов показал, что наибольшей информативностью обладает ГХ-МС после стадий пробо-

подготовки - экстракции этилацетатом, упаривания, концентрирования и дери-ватизации силилированием.

Нами предложено использовать группу андростероидов как маркерный показатель состава нативной ткани мускусной железы кабарги в задачах фе-нотипирования, идентификации и входного контроля биологического сырья.

Андростан-ЗД7-диол (3[},5РД7Р) I Андростан-ЗД7-диол (За,5РД73) I Этиохоланон

Андростан-ЗД7-диол (За,5аД7Р) I Холестерол

Дегидроизоандростерон ацетат

5а-Андростан-Зр-ол-17-он

I Андростан-ЗД7-диол

Ан дростан-ЗД 1,17-триол

Рис. 13. Стероидный профиль и относительное соотношение стероидов в экстракте мускусной железы кабарги сибирской.

Cho(esterol SS ж f jr

I " 107 171 Ififad-iJ jjdfr

•00 но

Dehydroisoandrosterone acetate

MI

mu^a'.ffi^

МХЬгт,

З-Ас itoxy-5ci-a nd rost-2-en-17-one-. ^

l

w ш и а в н

Androstan-1' SAüejib f'-one, 3-hydmxy-, (3o,5ß)- в

1« WT «3 IT Ii it рз 20 i ML m «Iii1 Androsterone к 1 w jCjfF* о

iw эп m <oo wo wo

Данные НЦБМТ ФМБА России

Рис. 14. Типичные соединения андростероидной группы, обнаруженные в составе экстракта мускусной железы кабарги сибирской. Источник: ОЬгагу№8Т14.

Данный показатель может выступать критерием нормирования в разработке субстанции и лекарственных форм на основе мускусной железы кабарги.

Выбранная группа стероидов и их предшественников представлена 16-тью соединениями, преимущественно содержащимися в экстрактах ткани мускусной железы, каждый из которых в общем составе экстракта составляет более 0,5 отн. % (рис. 13, 14).

Структурные формулы наиболее типичных андростероидных производных, характерных для нативной ткани мускусной железы кабарги сибирской, а также их предшественников, представлены на рис. 14.

Выводы

1. В результате проведения ряда исследовательских работ по изучению состава мускусной железы кабарги отработаны методы пробоподготовки с экстрагированием в среде различных растворителей, условия дериватизации метилированием и силилированием, позволяющие надёжно идентифицировать многокомпонентный состав мускусной железы и проводить количественное определение. Обнаружены особенности биотрансформации мускона и мускон-подобных макроциклических кетонов в результате метаболизма и дециклизации.

2. В составе мускусной железы кабарги сибирской нами идентифицирова-

но 93 компонента. Установлено, что отличительными особенностями состава мускусной железы кабарги является наличие широкого ряда андростероидов, жирных ненасыщенных и насыщенных кислот (и их эфиров), кетонов и альдегидов (мусконподобные производные, придающие мускусной железе специфический запах), ароматических производных и гетероциклического класса соединений (пиримидины, фураны).

3. Предложено использовать группу андростероидов как маркерный показатель состава нативной ткани мускусной железы кабарги в задачах феноти-пирования, идентификации и входного контроля биологического сырья. Данный показатель может выступать критерием нормирования в разработке субстанции и лекарственных форм на основе мускусной железы кабарги.

4. На основе результатов выполненной работы могут решаться задачи стандартизации (в т.ч. - биологической) природного сырья, разработки технологии получения эффективных лекарственных форм препаратов и методов контроля их качества. Многие из обнаруженных производных андростеронов, представленные как в группе мажорных, так и минорных компонентов состава, могут быть использованы для определения в био средах фармако-кинетических свойств субстанций и лекарственных форм на основе мускусной железы кабарги на доклинических и клинических стадиях с применением методов хроматографии и масс-спектрометрии высокого разрешения.

5. Известные из литературы по народной и региональной медицине данные о широком спектре биологической активности связаны с многокомпонентным и разнообразным по классам

соединений составом. Так, составные компоненты м-крезол и фурановые производные оказывают антисептическое и антибактериальное действие. Пири-мидиновые производные проявляют иммуностимулирующее и гемостимули-рующее действие при ряде инфекционных заболеваний, вялом заживлении ран (регенерационное действие), нарушениях кроветворения (противоанемическое действие). Кроме того, пиримидины являются антимикотиками широкого спектра действия. Производные бензойной кислоты в числе мажорных и минорных компонентов (4-гидроксибензоуксусная кислота, 4-меркаптобензойная кислота) эффективны при кожных заболеваниях как наружные антисептические (проти-вомикробное действие) и фунгицидные (противогрибковое) средства, а также при трихофитиях и микозах.

6. Обнаруженные жирные кислоты и их производные активно участвуют в обмене веществ у млекопитающих, формируя следующие полиненасыщенные жирные кислоты (ПНЖК): пальмито-леиновая, олеиновая, линоленовая, ара-хидоновая (АК) и эйкозапентаеновая. В тканях мускусной железы определены и др. полиеновые жирные кислоты (С20, С22, С24), образующиеся из лино-левой и линоленовой кислот путем удлинения углеродной цепи. В клетках и тканях мускусной железы ПНЖК встречаются не в свободном состоянии, а в составе липидов различных классов: триглицеридов, фосфолипидов, кардио-липина, сфинголипидов, эфиров стеро-лов и жирных кислот (например, эфиры холестерина, восков). Линолевая (18:2) и а-линоленовая (18:3) ПНЖК являются незаменимыми, или эссенциальны-ми, для человека и должны поступать в

организм с пищей. Именно эти ПНЖК являются предшественниками двух больших семейств длинноцепочечных ПНЖК (ДЦПНЖК) [ю-6 (линолевая) и ю-3 (а-линоленоваякислота)], выполняющих в организме очень важные функции, - пластическую и регуляторную [8]. Такие важнейшие ПНЖК, как линолевая, а-линоленовая и АК, называют витамином Е Биологические эффекты, оказываемые ю-3 ПНЖК, реализуются на клеточном и органном уровнях. Являясь структурным компонентом биологических мембран клеток, ю-3 ПНЖК оказывают непосредственное влияние на текучесть липидного биослоя, проницаемость мембран; мембраносвязанную ферментную активность; функционирование мембранных рецепторов и распознавание антигенов, а также электрофизиологические свойства мембран. Таким образом, ПНЖК оказывают регулирующее влияние на электрофизиологические свойства биомембран и функции мембранных белков, что имеет особое значение в тканях, обладающих высокой электрофизиологической активностью (ткани мозга, сетчатка глаза), и имеют выраженный биологический эффект в состояниях хронического утомления, астении, последствиях черепно-мозговых травм, нарушений мозгового кровообращения. Регулирующее влияние на организм ДЦПНЖК оказывают благодаря тому, что являются предшественниками эйко-заноидов. К ним относятся простаноиды (простагландины, простациклины, тром-боксаны) и лейкотриены. Эйкозаноиды являются окисленными производными ПНЖК - эйкозатриеновой, АК и эйко-запентаеновой. Биологические эффекты производных ПНЖК ю-3 и ю-6 типов в большинстве своем противоположные,

поскольку ю-3 и ю-6 ПНЖК в организме метаболизируются в эйкозаноиды с участием одних и тех же ферментов, эти процессы идут параллельно и взаимо-конкурентно. Правильное соотношение между ю-3 и ю-6 в пище важно для поддержания баланса гормональных, обменных, клеточных и др. процессов.

7. Широкий спектр обнаруженных мажорных и минорных производных ан-дростероидов определяет биологические эффекты в процессах сперматогенеза и полового поведения, а также оказывает влияние на азотистый и фосфорный обмен. Биологическое действие андро-стероидов наиболее специфично проявляется в тканях-мишенях, где происходит его избирательное накопление: в клетках семенных канальцев, придатке яичка, предстательной железе, семенных пузырьках, гипоталамусе, матке, овари-альных фолликулах. Синтез и секреция тестостерона зависит от андростерои-дов-предшественников и регулируются лютеинизирующим и фолликулостиму-лирующими гормонами гипофиза. При этом биологически активной формой тестостерона в организме млекопитающих является дигидротестостерон, широко представленный в составе мускусной железы кабарги. Спектр биологических эффектов андростероидной группы производных широко представлен: нейропротекторное, ноотропное, психоэнергизирующее действие, активность в онкологических заболеваниях (иммунный контроль над опухолевым ростом, повышение эффективности и переносимости лучевой и химиотерапии опухолей), токолитическое воздействие, ингибирующее действие на ароматазную активность, а также стимулирующее действие в процессах репродукции.

Список литературы

1. Кабарга: Энциклопедический словарь Брокгауза и Эфрона. - СПб, 1890-1907 гг., 86 томов. DVD-версия. ИДДК ООО «Дистрибьютор», 2010.

2. Каркищенко Н.Н., Уйба В.В. Каркищенко В.Н., Шустов Е.Б., Котенко К.В., Люблинский С.Л. Очерки спортивной медицины. Т. 3. Векторы фармакорегулирования.

- М., СПб: Айсинг, 2014. - 356 с.

3. Приходько В.И. Кабарга. Происхождение, систематика, экология, поведение и коммуникация. - М.: Геос, 2003. - 443 с.

4. Уйба В.В., Котенко К.В., Корчажкина Н.Б., Петрова Н.Б., Михайлова А.А. Применение мускуса кабарги в клинической практике: метод. реком. - М., 2013.- 18 с.

5. Штолько В.Н., Золотова Н.Ф., Приходько В.И. Антиокислительная активность мускуса кабарги // Мат-лы конф. «Активные формы кислорода, оксид азота, антиоксидан-ты и здоровье человека», Смоленск, 2007. -С. 138-140.

6. Do J.C., Kitatsuji Е., Yoshii Е. Study on the components of musk. I. Ether soluble components // Chem. Pharm. Bull. - 1975. - Vol. 23. -No. 3.-Pp. 629-635.

7. Eisner Т., Grant R. Toxicity odor aversion, and "olfactory aposematism" // Science. - 1981. -No. 213. - Pp. 476-478.

8. Lauritzen L., Hansen H., Jorgensen M., Michaelsen K. The essentiality of long chain ю-3 fatty acids in relation to development and function of the brain and retina» // Progress in lipid reseach.-2001.-No. 40.-Pp.1-94.

9. Li D., Chen В., Zhang L. The musk chemical composition and microbiota of Chinese forest musk deer males // Scientific Report. -2016.

10. Morichita S., Mishima Y., Shoji M. Pharmacological properties of musk // Gen. Pharmcol. -1987. - Vol. 18.- No. 3.-Pp. 253-261.

11. Ruzicka L. Carbon rings VII: Constitution of muscone // Helv. Chim. Acta. - 1926. - Vol. 9.

- 715 p.

12. Sokolov V.E., Kagan M.Z., Vasilieva VS., Prichodko V.I, Zinkevich E.P. Musk Deer (Moschus moschiferus): Reinvestigation of Main Lipid Components from Preputial Gland Secretion // J. of Chemical Ecology. - 1987. -Vol. 13. - No. 1. - Pp. 71-83.

13. Thevis M., Schanzer W., Geyer H., et al. Traditional Chinese medicine and sports drug test-

ing: identification of natural steroid administration in doping control urine samples resulting from musk (pod) extracts // Br. J. Sports Med. Published Online First. 2012. doi: 10.1136/bjs-ports-2012-090988.

14. Wang J.L., Huang H.M. The taxonomy and status of forest musk deer in China // Chem. Abstr. - 1980.-Vol. 180. - Pp. 102-110.

15. YuD.,DasB.C. Structure of hydroxymuscopyri-dine A and hydroxymuscopyridine B, two new constituents of musk // Planta med. - 1983. -Vol. 49. - No. 3. - Pp. 183-184.

References

1. Kabarga: Entsiklopedicheskiy slovar' Brok-gauza i Efrona [Kabarga. Encyclopedic Dictionary of Brockhaus and Efron]. Saint-Petersburg, 1890-1907. 86 volumes. DVD-version. IDDK OOO «Distrib'yutor», 2010. (In Russian).

2. Karkischenko N.N., Uyba V.V., Karkischen-ko V.N., Shustov E.B., Kotenko K.V., Lyublins-kiyS.L. Ocherki sportivnoy meditsiny. T. 3. Vek-tory farmakoregulirovaniya [Sketches of sports medicine. V. 3. Vectors of pharmaco-regulation]. Moscow, Saint-Petersburg: Aysing, 2014. 356 p. (In Russian).

3. Prikhod'ko V.I. Kabarga. Proiskhozhdeniye, sistematika, ekologiya, povedeniye i kommu-nikatsiya [The musk deer. Origin, systematics, ecology, behavior and communication]. Moscow: Geos, 2003. 443 p. (In Russian).

4. Uyba V.V., Kotenko K.V., Korchazhkina N.B., Petrova N.B., Mikhaylova A.A. Primeneni-ye muskusa kabargi v klinicheskoy praktike: metod. rekom. [The use of musk musk deer in clinical practice: methodical recommendations]. Moscow, 2013. 18p. (In Russian).

5. Shtol'ko V.N., Zolotova N.F., Prikhod'ko V.I. Antiokislitel'naya aktivnost' muskusa kabargi [Antioxidative activity of musk of musk deer]. Mat-ly konf. «Aktivnyye formy kisloroda, ok-sid azota, antioksidanty i zdorov'ye cheloveka» [Proceedings of the conference "Active forms of oxygen, nitrogen oxide, antioxidants and human health"]. Smolensk, 2007. Pp. 138-140. (In Russian).

6. Do J.C., Kitatsuji E., Yoshii E. Study on the components of musk. I. Ether soluble components. Chem. Pharm. Bull. 1975. Vol. 23. No. 3. Pp. 629-635.

7. Eisner T., Grant R. Toxicity odor aversion, and "olfactory aposematism". Science. 1981. No. 213. Pp. 476-478.

8. Lauritzen L., Hansen H., Jorgensen M., Michaelsen K. The essentiality of long chain ffl-3 fatty acids in relation to development and function of the brain and retina». Progress in lipid reseach. 2001.No. 40. Pp. 1-94.

9. Li D., Chen B., Zhang L. The musk chemical composition and microbiota of Chinese forest musk deer males. Scientific Report. 2016.

10. Morichita S., Mishima Y., Shoji M. Pharmacological properties of musk. Gen. Pharmcol. 1987. Vol. 18. No. 3. Pp. 253-261.

11. Ruzicka L. Carbon rings VII: Constitution of muscone. Helv. Chim. Acta. 1926. Vol. 9.715p.

12. Sokolov V.E., Kagan M.Z., Vasilieva VS., Prichodko V.I, Zinkevich E.P. Musk Deer (Moschus moschiferus): Reinvestigation of

Main Lipid Components from Preputial Gland Secretion. J. of Chemical Ecology. 1987. Vol. 13. No. 1. Pp. 71-83.

13. Thevis M., Schanzer W., Geyer H., et al. Traditional Chinese medicine and sports drug testing: identification of natural steroid administration in doping control urine samples resulting from musk (pod) extracts. Br. J. Sports Med. Published Online First. 2012. doi: 10.1136/bjs-ports-2012-090988.

14. Wang J.L., Huang H.M. The taxonomy and status of forest musk deer in China. Chem. Ab-str. 1980. Vol. 180. Pp. 102-110.

15. YuD.,DasB.C. Structure of hydroxymuscopyri-dine A and hydroxymuscopyridine B, two new constituents ofmusk. Plantamed. 1983. Vol. 49. No. 3. Pp. 183-184.

Analysis of biologically active musk compounds of musk deer (Moschus moschiferus) by gas chromatography with mass selective detector

V.N. Karkischenko, M.S. Dulya, D.V. Khvostov, R.A. Ageldinov,

S.L. Lyublinskiy

The study of the composition of biologically active musk components ofmusk deer in integrated sample preparation and subsequent determination of composition was made by GC-MS with the use of derivatization by silylation and methylation. Optimal extraction conditions, chromatographic separation and relative quantification of the main components were found. The results of identification and determination of the content of the most significant (major and minor) components in the gland tissue in accordance with the NIST library 2014 and the algorithm of relative normalization are presented in detail. Mechanisms for the transformation of macrocyclic components (muscon, exaltone), associated with the fragrant properties of the musk gland ofmusk deer, are proposed. Possible links between the components of the drug on the basis of the gland with a biological effect are described. According to the research results the conclusions about the multicomponent nature of the composition of the gland proposed marker ingredients in the musk gland and the possible relationship ofthe discovered components ofthe composition with the biological effects.

Key words: musk deer (Moschus moschiferus), musk, tissue, gas chromatography, mass spectrometry, derivatization, androsterones.