Микро- и ультраструктурные изменения в субкапсулярном слое тимуса в остром периоде после воздействия экспериментальной гипертермии

отмечается усиление акустической плотности сигнала от миокарда, эндокарда и перикарда. При врожденных пороках сердца этот признак наблюдался лишь у 1/3 больных. Этот признак не входит в число известных диагностических критериев миокардитов, но полученные нами данные свидетельствуют о его статистической значимости. Биохимические индикаторы миокардиального повреждения (КФК-МВ и ЛДГ) хотя и были повышены у всех пациентов с миокардитами, их средние сывороточные титры не отличались между группой пациентов с миокардитом и группой детей с ВПС без миокардита,

что, безусловно, затрудняет диагностику миокардита на фоне врожденных пороков сердца.

Таким образом, при цитомегаловирусных миокардитах наиболее значимыми диагностическими признаками, в т. ч. позволяющими отличить их от ВПС, являются приглушение тонов сердца, расширение левой границы, на эКг — сглаженность Т-зубцов и 8Т-депрессия в левых грудных отведениях, глубокие Т-зубцы и 8Т-депрессия в У1-2, при эхокардиографии — обнаружение очагов высокой акустической плотности в стенках сердца.

ЛИТЕРАТУРА

1. Басаргина Е.Н., Иванов А.П., Белова Н.Р.и др. Миокардит и дилатационная кардиомиопатия у детей раннего возраста. // Российский вестник перинатологии и педиатрии. — 2004. — Т.49. №3. — С. 26-32.

2. Белозеров Ю.М. Детская кардиология. — М.: МЕДпресс-информ, 2004. — С. 222-229.

3. Белоконь Н.А. Неревматические кардиты у детей. М.: Медицина, 1984. — 216 с.

4. Бойцов С.А., Дерюгин М.В. Современные возможности диагностики неревматических миокардитов. // СошШит-шеакиш. — 2002. — Т.4. №3 — С. 117-124.

5. Кардиология: национальное руководство / Под ред. Ю.Н. Беленкова, Р.Г. Оганова. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. — С. 874-887.

6. Крючко Д.С. Кардиальные проявления цитомегало-вирусной инфекции у новорожденных. // Российский вест-

ник перинатологии и педиатрии. — 2006. — №4. — С. 15-19.

7. Педиатрия: национальное руководство: В 2т. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. — Т.2. — С.185-201.

8. Carles G., Lochet S., Youssef M., et al. Syphilis and pregnancy // J Gynecol Obstet Biol Reprod (Paris). — 2008. — Vol.37. №4. — P. 353-360.

9. Dogan Y., Yuksel A., Kalelioglu I.H., et al. Intracranial ultrasound abnormalities and fetal cytomegalovirus infection: report of 8 cases and review of the literature / / Fetal Diagn Ther. — 2011. — Vol.30. №2. — P. 141-150.

10. Lopez H., Benard M., Saint-Aubert E., et al. Novel model of placental tissue explants infected by cytomegalovirus reveals different permissiveness in early and term placentae and inhibition of indoleamine 2,3-dioxygenase activity // Placenta. — 2011. — Vol.32. — P. 522-530.

Информация об авторах: 664079, г. Иркутск, м/н Юбилейный, 100, e-mail: marinaloginova@yandex.ru;

Логинова Марина Сергеевна — ассистент,

Брегель Людмила Bладимиpoвна — заведующая кафедрой, д.м.н., профессор;

Субботин Bладимиp Михайлович — и.о. заведующего отделением, ассистент кафедры; к.м.н.; Крупская Тамара Семеновна — доцент кафедры, к.м.н.

в ВАСЕНДИН Д.В., МИЧУРИНА C.B., ИЩЕНКО И.Ю. — 2012 УДК 611.438:615.367

МИКРО- И УЛЬТРАСТРУКТУРНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ В СУБКАПСУЛЯРНОМ СЛОЕ ТИМУСА В ОСТРОМ ПЕРИОДЕ ПОСЛЕ ВОЗДЕЙСТВИЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ ГИПЕРТЕРМИИ

Дмитрий Викторович Васендин1, Светлана Викторовна Мичурина2, Ирина Юрьевна Ищенко2 ^Сибирская государственная геодезическая академия, ректор д.т.н. проф. А.П. Карпик, кафедра безопасности жизнедеятельности, зав. — д.э.н. проф. В.И. Татаренко; Новосибирский научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной лимфологии, директор — д.м.н., акад. РАМН В.И. Коненков)

Резюме. Целью исследования явилось изучение клеточного состава тимуса 45 крыс Вистар после экспериментальной гипертермии (ЭГ). Животные нагревались однократно до стадии теплового удара. На разных сроках эксперимента (5 ч, 3 сут) после ЭГ животных забивали под легким наркозом и забирали тимус для исследования. Гистологические препараты изготавливались по стандартным методикам. В субкапсулярной зоне тимуса дифференцировали иммунобласты, средние и малые лимфоциты, клетки с фигурами митозов, клетки с пикнотиче-скими ядрами, эпителиальные клетки и макрофаги (увеличение 1000 раз, на стандартной площади 4500 мкм2). Установлено, что воздействие на организм крыс Вистар ЭГ приводит к формированию акцидентальной инволюции тимуса. Инволюция органа соответствовала острому постгипертермическому периоду, что выражалось в снижении относительного веса органа (на 25 %), уменьшении относительной площади коркового вещества (на 15 %) и плотности лимфоцитов (на 12 %). На тканевом уровне выявлено усиление деструктивных процессов, признаки периваскулярного отека, миграции клеточных элементов в лимфатические пространства и капилляры.

Ключевые слова: тимус, гипертермия, крысы Вистар.

MICRO- AND — ULTRASTRUCTURAL CHANGES IN SUBCAPSULAR LAYER IN ACUTE PERIOD OF THYMUS AFTER

EXPERIMENTAL HYPERTHERMIA

D.V. Vasendin1, S.V. Michurina2, I.Yu. Ischenko2 ^Novosibirsk State Academy of Geodesy;

^Novosibirsk Research Institute of Clinical and Experimental Lymphology)

Summary. The aim of research was to study the 45 Vistar rat thymus’ cellular composition after the experimental hyperthermia (EH). The animals were heated only once to thermoplegia. During different periods (5 hours, 3 days after EH) the animals were killed after light narcosis, then thymus was taken for further research. Histologic specimen were produced according to basic methods. Immunoblasts were differentiated in subcapsular zone of thymus. Also there were

middle and small lymphocytes, cells with mitosis’ shapes, cells with pyknotic nuclei, epithelial cells and macrophages (1000 times expansion on the standard area 4500 mkml). It has been established, that influence of the EH on the rat organism leads to formation of accidental involution of thymus. Involution of this organ corresponded to the «catabolic» phase of the posthyperthermal period (5 hours, 3 days after EH) that was expressed in decrease of relative weight of the organ (25 %), reduction of the relative area of cortex (15 %) and density of lymphocyte (12 %). Strengthening of destructive processes at a tissue level, attributes of perivascular hypostasis, migration of cellular elements in lymphatic spaces and capillaries were marked.

Key words: thymus, hyperthermia, Vistar rats.

Температура окружающей среды является одним из главных абиотических факторов, обеспечивающих выживаемость биологических систем. Изменение теплового режима в сторону повышения общей температуры тела влечет за собой изменения в функционировании всех систем организма [5].

Современная медицина решает целый ряд научных задач, связанных со сменой экологической среды обитания человека, предъявляющей к организму новые, не встречающиеся ранее требования, реакция на которые не сформирована в эволюционном плане и не эффективна в своей реализации [7]. Следовательно, система защитных сил организма сама становится объектом негативного воздействия повреждающих агентов и сама нуждается в лечении и восстановлении.

Степень патогенности любого повреждающего фактора, в том числе и гипертермии, лимитируется реакцией центрального органа лимфоидной системы — тимуса — на воздействие гипертермического раздражителя, поэтому целью исследования было выявить и оценить характер структурнвых изменений в тимусе на различных сроках острого периода (5 ч, 3 сут) после воздействия экспериментальной гипертермии (ЭГ).

Материалы и методы

В эксперименте использовались крысы-самцы Вистар, по 15 животных в каждую временную точку. Разогревание экспериментальных животных производилось в полном соответствии со «Способом экспериментального моделирования общей гипертермии у мелких лабораторных животных» [4].

Тимус фиксировали в растворе по Телесницкому, обезвоживали в серии спиртов возрастающей концентрации и заливали в смесь парафина с добавлением воска. Срезы изготавливали на ротационном микротоме, окрашенные препараты заключали в канадский бальзам. Определение относительной площади коркового вещества, капсулы и междольковых перегородок проводили на срезах толщиной 10 мкм, окрашенных гематоксилином Майера и эозином, используя метод наложения точечных морфометрических сеток [1]. Срезы морфометрировали при увеличении в 16 раз, морфоме-трию железистых образований проводили при увеличении в 200 раз. Клеточный состав тимуса изучали на срезах толщиной 5 мкм, окрашенных азуром II и эозином. При увеличении в 1000 раз подсчитывали абсолютное количество клеток на стандартной площади 4500 мкм2, дифференцируя следующие клеточные элементы: им-мунобласты, средние и малые лимфоциты, клетки с фигурами митозов, клетки с пикнотическими ядрами, эпителиальные клетки, макрофаги.

Экспериментальные работы выполнены с соблюдением правил биоэтики, утвержденных Европейской конвенцией о защите позвоночных животных, исполь-зумых для лабораторных или иных целей. Исследование одобрено комитетом по этике Новосибирского государственного медицинского университета от 20 ноября 2009 года, протокол №18.

Статистическую обработку данных проводили методом вариационной статистики с применением ^критерия Стьюдента [12]. Результаты обработаны при помощи пакета программ 6.0. Различия срав-

ниваемых показателей принимались как статистически значимые при р<0,05.

Результаты и обсуждение

Как показали наши наблюдения, воздействие на организм крыс ЭГ приводит к выраженным изменениям на тканевом, клеточном и субклеточном уровнях в суб-капсулярном слое коркового вещества тимуса, которые характерны для «катаболической» фазы, соответствующей в нашем эксперименте острому (5 ч, 3 cут) постги-пертермическому периоду [11].

В первые часы острого периода (5 ч после ЭГ) относительный вес тимуса не отличался от показателя в контрольной группе. Морфометрически обнаружено увеличение относительной площади коркового вещества органа и уменьшение размеров мозгового вещества, что привело к росту К/М индекса. К концу острого периода (3 сут после ЭГ) на фоне статистически значимого снижения относительного веса тимуса отмечено восстановление долевых соотношений коркового и мозгового вещества органа до уровня контроля.

Плотность всех клеточных элементов и сумма всех лимфоцитов имели тенденцию к снижению (табл. 1). Основной вклад в эти изменения вносит уменьшение численности лимфоидных клеток: значительно снизилось как абсолютное, так и относительное количество зрелых лимфоцитов в обе временные точки острого периода. По-видимому, значительный вклад в эти изменения вносят следующие процессы — миграция зрелых лимфоцитов из коры и гибель дифференцированных Т-лимфоцитов, а также развитие отечных процессов, что согласуется с точкой зрения многих исследователей [8,14,15].

Отмечено увеличение численности средних лимфоцитов в виде выраженной тенденции. Рост числа средних лимфоцитов, по-видимому, свидетельствует об усилении лимфоцитопоэтической функции и ускорении созревания имеющихся тимоцитов, что рассматривается нами как компенсаторные процессы. К 5 ч после проведения ЭГ возросло число клеток с фигурами митозов, а к концу острого постгипертермического периода этот показатель был близок к контрольному значению.

Отмеченное нами в первые часы острого периода усиление процесса гибели клеток в исследованной зоне органа подтверждается морфометрическими данными на световом уровне, а именно — увеличением количества лимфоидных клеток с пик-нотическими ядрами и числа макрофагов с окрашенными тельцами (tingible body macrophages), ярко выраженной макрофагаль-ной реакцией: к 5 ч после ЭГ более чем в 2 раза увеличилось абсолютное и относительное число этих фагоцитирующих клеток.

Мы наблюдали также появление большого количества дегранули-рованных тучных клеток — это явление взаимосвязано с имеющим место повышением сосудистой проницаемости и вносит серьезный вклад в усиление процесса гибели лимфоцитов в суб- Рис- 1 Тимус кРыс капсулярном слое тимуса [6]. На группы «ЭГ+5 ч».

' г Разрушение эпителиаль-

ультраструктурном уровне в ма- ной клетки. Выход детри-крофагах отмечено содержание та в межклеточное про-крупных вторичных лизосом странство. Увеличение разной электронной плотности, 15000.

Таблица 1

Клеточный состав субкапсулярной зоны коркового вещества тимуса у крыс контрольной группы и в остром постгипертермическом периоде

Виды клеток: Контроль Сроки после воздействия ЭГ

5 ч 3 сут

Иммунобласты: - абсолютное количество 25,5 ± 2,2 25,8 ± 3,83 26,5 ± 1,97

- относительное количество, % 14,85 ± 1,46 15,05 ± 1,42 17,38 ± 2,17

Средние лимфоциты: - абсолютное количество 14,0 ± 2,0 20,0 ± 2,24 20,75 ± 2,51

- относительное количество, % 8,13 ± 1,16 11,76 ± 0,99* 13,32±0,87*

Малые лимфоциты: - абсолютное количество 119,0 ± 5,99 101,4 ± 3,42* 92,5 ± 9,22*

- относительное количество, % 68,72 ± 1,71 60,25 ± 2,36* 59,64±2,75*

Сумма всех лимфоцитов: - абсолютное количество 158,5 ± 5,81 147,2 ± 7,31 139,75 ± 9,8

- относительное количество, % 91,71 ± 0,63 87,07 ± 0,48* 90,16±0,62#

Клетки с фигурами митозов: - абсолютное количество 3,33 ± 0,61 4,4 ± 1,30 3,5 ± 0,75

- относительное количество, % 1,94 ± 0,36 2,52 ± 0,6 2,23 ± 0,39

Клетки с пикнотическими ядрами: - абсолютное количество 2,67 ±0,37 6,0 ± 1,27* 3,0 ± 1,56

- относительное количество, % 1,53 ± 0,17 3,58 ± 0,79* 1,82 ± 0,81

Макрофаги: - абсолютное количество 2,33 ± 0,23 7,2 ± 1,24* 2,0 ± 0,82#

- относительное количество, % 1,35 ± 0,13 4,27 ± 0,74* 1,37 ± 0,55#

Эпителиальные клетки: - абсолютное количество 6,0 ± 1,06 4,4 ± 0,67 6,75 ± 0,73#

- относительное количество, % 3,47 ± 0,13 2,57 ± 0,3 4,42 ± 0,65#

Сумма клеток: 172,83±6,18 169,2 ± 9,17 155 ±10,92

Примечание: 1. Абсолютное количество — число клеток на стандартной площади — 4500 мкм2. 2. Относительное количество (%) от общего количества клеток. 3. * — отличия значимы в сравнении с показателями интактных животных при р<0,05. 4 # — отличия значимой в сравнении с показателями животных экспериментальной группы «ЭГ + 5 ч».

активный комплекс Гольджи, умеренное содержание митохондрий с хорошо выраженными кристами и профилей гранулярного эндоплазматического ретикулума, большое количество рибосом и полисом. Численность эпителиальных клеток, как и относительная площадь эпителиальных железистых образований значительных изменений не претерпела. Встречались скопления тесно контактирующих эпителиальных клеток, охватывающих остатки разрушенных клеточных элементов, и трубчатые структуры, стенка которых образована однослойным эпителием. Однако именно на ультраструктурном уровне были обнаружены значительные разрушения эпителиальных клеток: баллонообразное расширение профилей гранулярного эндо-плазматического ретикулума, осыпание с его мембран рибосом, что является признаком нарушения синтетических процессов.

В митохондриях наблюдалось набухание митохондриального матрикса, дезорганизация и разрушение крист,

что является признаком тканевой (гистотокси-ческой) гипоксии [9]. В основе гипоксии лежит инактивация митохондриальных ферментных и ионотранспортных комплексов [9,10]. В конечном итоге отмечалось разрушение цитоплазматической мембраны и выход остатков органелл в межклеточное пространство (рис.1). Логично, что переполнение интерстициального пространства клеточным детритом и повышение в нем уровней молекул средней массы [3] приводит к нарушению работы интерстициальных несосудистых путей массопереноса [2], удержанию жидкости в нем и отечным явлениям. Это в свою очередь, способствует развитию тканевой гипоксии [9].

Во многих случаях определялось разрушение цитоплазматической мембраны и выход остатков органелл в межклеточное пространство. Уже в первые часы после воздействия ЭГ отмечено увеличение периваскулярных пространств, особенно — в области корковомедуллярного соединения. На ультраструктурном уровне обращает на себя внимание очень большое количество пи-ноцитозных везикул в эндотелиоцитах капилляров и венул, разволокнение базальных мембран, особенно со стороны периваскулярных эпителиальных клеток, расширение перинуклеарных пространств, наличие в них соединительнотканных фибрилл и детрита разрушенных эпителиальных клеток (рис.2). На светооптическом уровне отмечается появление плазматических клеток на фоне большого числа лимфоидных клеточных элементов, заполняющих периваскулярные пространства. Ультраструктурно выявлено, что плазматические клетки очень активны — профили их гранулярного эндоплазматического рети-кулума расширены, заполнены электронносветлым материалом и образуют с митохондриями мито-ГЭР-комплексы (рис.3).

Количество макрофагов снизилось статистически значимо по сравнению с группой «ЭГ+5 ч» и вернулось к исходному контрольному уровню. Обращают на себя внимание изменения, обнаруженные на светооптическом уровне в эпителиальном компартменте. Морфометрически выявлено статистически значимое увеличение абсолютного (на 53%) и относительного числа отдельных эпителиальных клеточных элементов, что можно объяснить острой необходимостью усиления тимических гормонов [13] . Установлено, что относительная площадь железистых образований статистически значимо возросла к моменту окончания острого периода по сравнению с группой «ЭГ+5 ч». При этом встречаются железистые образования, стенка которых образована несколькими слоями эпителиальных клеток, и находящихся в тесном контакте с венулами.

На ультраструктур-ном уровне в эпителиальных клетках продолжают выявляться признаки разрушений: разбухание и вакуолизация митохондриального матрикса, дезорганизация и разрушение крист, баллонообразное расширение профилей ГЭР, осыпание с мембран ретикулума рибосом, разрушение цитоплазматической мембраны и выход остатков органелл в межклеточное пространство (рис.4).

Рис. 2. Тимус крыс группы «ЭГ+5 ч». Детрит разрушенных эпителиальных клеток и соединительнотканные фибриллы в периваскулярном пространстве. Разрушение базальной мембраны под эпителиальной клеткой. Увеличение 10000.

Рис. 3. Плазматическая Рис. 4. Тимус крыс

клетка крыс группы «ЭГ+5 группы «ЭГ+3 сут». ч». Увеличение 8000. Клеточный детрит в

интерстиции тимуса. Увеличение 10000.

К концу острого периода признаки периваскуляр-ного отека в области корковомедуллярного соединения сохранялись. Электронномикроскопически выявлено, что базальные мембраны со стороны эндотелия капилляров и венул, а особенно со стороны периваскулярных эпителиальных клеток разрыхлены; в просвете пери-васкулярных пространств встречался хлопьевидный материал и мембранные остатки органелл из разрушенных клеток. В самих периваскулярных эпителиальных клетках выявлена баллонизация профилей ГЭР, вакуолизация митохондрий, часто разрушена клеточная мембрана и содержимое этих клеток оказывается в перива-скулярном пространстве.

На светооптическом уровне в периваскулярных пространствах выявлено значительное количество плазматических клеток. Рядом с сосудами обнаружены тучные клетки II и III степени дегрануляции.

Таким образом, нами установлено, что воздействие на организм крыс Вистар экспериментальной гипертермии приводит к значительным изменениям микро- и ультраструктурной организации субкапсулярного слоя коркового вещества тимуса: в остром периоде наблюдались выраженные признаки инволютивных процессов, интенсивность которых не может не оказывать влияния на исход адаптационного процесса.

ЛИТЕРАТУРА

1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия: Рук-во. — М.: Медицина, 1990. — 384 с.

2. Бородин Ю.И. Лимфатический регион и регионарная лимфодетоксикация. Хирургия, морфология, лимфология. — Бишкек: Изд-во НЦВРХ Мз КР Алтын Тамга, 2004. — Т.1. №

2. — С. 5-6.

3. Быкова Е.В. Патогенетические и клинические аспекты безопасности общей управляемой гипертермии высокого уровня (42,5 — 44,0°С): Автореф. дис. ... д-ра мед. наук. — Новосибирск, 2006. — 32 с.

4. Ефремов А.В., Пахомова Ю.В., Пахомов Е.А. и др. Способ экспериментального моделирования общей гипертермии у мелких лабораторных животных // Изобретения. Полезные модели. — 2001. — №10. — С. 43-45.

5. Ефремов А.В., Сувернев А.В., Верещагин И.П. и др. Перспективы общей управляемой гипертермии в терапии тяжелой бронхиальной астмы // Международный журнал по иммунореабилитации. — 2001. — Т. 3. № 3. — С. 182.

6. Зерчанинова Е.И. О роли тучных клеток в регуляции кроветворения при действии на организм экстремальных факторов: Автореф. дис. ... канд. мед. наук. — Екатеринбург, 2000. — 20 с.

7. Коненков В.И. Протективные фунуции лимфатической

системы // Бюллетень СО РАМН. — 2007. — T. 124. № 2. — C. 60-64.

8. Кветной И.М., Ярилин А.А., Полякова В. О., Князькин И.В. Нейроиммуноэндокринология тимуса. — СПб.: Изд-во ДЕАН, 2005. — 160 с.

9. Лукьянова Л.Д. Биоэнергетическая гипоксия: понятие, механизмы и способы коррекции. // Бюл. экспер. биол. — 1997. — T.124. №9. — C. 244-254.

10. Маянский Д.Н. Лекции по клинической патологии: Рук-во для врачей. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. — 464 c.

11. Пахомова Ю.В. Системные механизмы метаболизма при общей управляемой гипертермии: Автореф. дис. ... д-ра мед. наук. — Новосибирск, 2006. — 33 c.

12. Плохинский Н.А. Биометрия. — М.: Изд-во МГУ, 1970. — 367 с.

13. СелятиикаяВ.Г., ОбуховаЛ.А. Эндокриннолимфоидные отношения в динамике адаптивных процессов. — Новосибирск: Изд-во СО РАМН, 2001. — 168 с.

14. Ярилин А.А. Гомеостатические процессы в иммунной системе. Контроль численности лимфоцитов // Иммунология. — 2004. — № 5. — C. 312-320.

Zeiss C.J. The apoptosis-necrosis continuum: insight from ge-neticially altered mice // Vet. Pathol. — 2003. — Vol. 40, №5. — P. 481-495.

Информация об авторах: 630108, Новосибирск, ул. Плахотного, 10, кафедра БЖД СГГА; e-mail: vasendindv@gmail.com;

Васендин Дмитрий Викторович — доцент, к.м.н.,

Мичурина Светлана Викторовна — главный научный сотрудник, д.м.н., профессор; Ищенко Ирина Юрьевна — старший научный сотрудник, к.б.н.

© МИЩЕНКО Т.С., НОВОЖИЛОВА Е.Т., СЕЛИВЕРСТОВА Н.Н., РОЗАНОВА О.И., ЩУКО А.Г., МАЛЫШЕВ В.В. — 2012 УДК 617.753.4

НАРУШЕНИЕ БИНОКУЛЯРНОГО ВЗАИМОДЕЙСТВИЯ ПРИ ФОРМИРОВАНИИ ПРЕСБИОПИИ У ЛИЦ С РАЗЛИЧНЫМИ ВИДАМИ РЕФРАКЦИИ

Татьяна Сергеевна Мищенко1, Евгения Таировна Новожилова1, Наталия Николаевна Селиверстова1,

Ольга Ивановна Розанова1, Андрей Геннадьевич Щуко 1Л3, Владимир Владимирович Малышев1

Резюме. Цель исследования — оценка бинокулярного взаимодействия у пациентов с различными видами рефракции при формировании пресбиопии. Обследованы 190 пациентов в двух возрастных группах (с 18 до 30 лет и с 45 до 60 лет). Проведено стандартное офтальмологическое обследование с оценкой уровня бинокулярного сотрудничества. Выявлено, что формирование пресбиопии сопровождается подавлением бинокулярного сотрудничества, выраженного в различной степени в зависимости от рефракции. При эмметропии площадь фузионного поля уменьшилась с 362,1±14,5 до 105,8± 10,2 см2 (p<0,001), при миопии — с 267,2±13,3 до 87,7±7,1 см2 (p<0,001), при гиперметропии — с 98,1±7,6 до 18,2±3,4 см2 (p<0,001). Выводы: определение уровня бинокулярного взаимодействия должно быть обязательным на этапе выбора метода коррекции пресбиопии.

Ключевые слова: пресбиопия, бинокулярное взаимодействие, фузия.

THE DISTURBANCE OF BINOCULAR INTERACTION IN PRESBYOPIA FORMATION IN PERSONS WITH DIFFERENT

REFRACTION TYPES

T.S. Mishchenko1, E.T. Novozilova1, N.N. Seliverstova1, O.I. Rozanova1, A.G. Shchuko1’2, V.V. Malyshev1 ( 1Sv. Fyodorov Eye Microsurgery Complex, Irkutsk Branch, Irkutsk,

2Irkutsk State Academy for Postgraduate Medical Education, Russia)