アポトーシス

アポトーシス（）は、多細胞生物、そして酵母など一部の単細胞真核生物で行われるプログラム細胞死の一形態であり、一連の生化学的イベントによって特徴的な細胞形態の変化と細胞死が引き起こされる。こうした変化には、ブレブの形成、細胞の収縮、核の崩壊、クロマチンの凝縮、DNAの断片化、mRNAの分解が挙げられる。平均的な成人では毎日500億から700億個、8歳から14歳の平均的な小児では毎日200億から300億個の細胞がアポトーシスによって失われている。平均的な成人には13兆個以上の細胞が存在するため、およそ0.5%の細胞が毎日アポトーシスによって失われている計算となる。

細胞の急性損傷によって引き起こされる外傷性細胞死の一形態であるネクローシス（壊死）とは対照的に、アポトーシスは高度に調節・制御された過程であり、その存在は生活環を通じて個体に利益をもたらしている。一例として、発生中のヒト胚における手足の指の分離は、遺伝的に決定された形で指間領域の細胞がアポトーシスを起こすことで行われている。ネクローシスとは異なり、アポトーシスではアポトーシス小体と呼ばれる細胞断片が形成され、食細胞によってこうした断片が貪食されて除去されることで、細胞内容物の漏出による周囲の細胞の損傷が防がれている。

アポトーシスはいったん開始されると停止することはできないため、その開始は高度に調節された過程となっている。アポトーシスは内因性経路（intrinsic pathway）と外因性経路（extrinsic pathway）のいずれかを介して開始される。内因性経路はストレスを検知した細胞が自らの死を誘導する経路であるのに対し、外因性経路では他の細胞からのシグナルによって細胞死が誘導される。また、弱い外因性シグナルによって内因性経路が活性化されている場合もある。いずれの経路においても、カスパーゼの活性化によって細胞死が誘導される。カスパーゼは他のタンパク質を分解する酵素（プロテアーゼ）であり、まず誘導型カスパーゼ（initiator caspase）が活性化され、続いて誘導型カスパーゼによって実行型カスパーゼ（executioner/effector caspase）が活性化されることで無差別なタンパク質分解による細胞死が引き起こされる点も両経路に共通している。

アポトーシスは生物学的現象としての重要性に加え、その過程の欠陥が広範囲の疾患と関連していることも示唆されている。過剰なアポトーシスはさまざまな組織の萎縮を引き起こすのに対し、不十分であった場合にはがんのような無制御な細胞増殖が引き起こされる。Fas受容体やカスパーゼといった因子はアポトーシスを促進し、一方Bcl-2ファミリーの一部のメンバーはアポトーシスを阻害する役割を果たしている。

 発見と用語 

ドイツの科学者は、1842年にアポトーシスの原理について初めて記載した。そして1885年、解剖学者ヴァルター・フレミングによってプログラム細胞死の過程についてより詳細な記載が行われた。しかしながらその後、このトピックが再び着目されたのは1965年になってからであった。その年、クイーンズランド大学のは電子顕微鏡を用いて組織の研究を行っていた際、外傷による細胞死とアポトーシス過程との区別が可能であることを発見した。この現象について記載した論文の発表後、カーはアバディーン大学のAlastair Currieのもとに招聘され、カー、Currie、そしてCurrieの大学院生であったAndrew Wyllieの三人は1972年に記念碑的論文をBritish Journal of Cancer誌に発表した。カーは当初、この細胞死過程に対してprogrammed cell necrosisという語を用いていたが、この論文において「アポトーシス」（apoptosis）という命名がなされた。三人は、アポトーシスという用語はアバディーン大学のギリシア語の教授であったJames Cormackの提案によるものであるとしている。2000年、カーはアポトーシスの記載に関する業績で、パウル・エールリヒ&ルートヴィヒ・ダルムシュテッター賞をロバート・ホロビッツと共に受賞している。

しかしながらその後も、「アポトーシス」「プログラム細胞死」といった用語は多く引用されるものとはならなかった。細胞死が主要な研究領域へと変貌したのは、細胞死の制御とそのエフェクター機構の構成要素が初めて同定され、細胞死の異常とヒトの疾患、特にがんとの関係が発見されてからである。1988年、濾胞性リンパ腫の原因遺伝子であるBCL2が細胞死を阻害するタンパク質をコードしていることが示されたのである。2002年にはアポトーシスを制御する遺伝子群を同定した業績によって、シドニー・ブレナー、ロバート・ホロビッツ、ジョン・サルストンがノーベル生理学・医学賞を受賞した。遺伝子群の同定は線虫Caenorhabditis elegansを用いて行われ、これらの遺伝子のホモログはヒトでもアポトーシスを調節する機能を果たしていた。


アポトーシスという語は、木から葉が落ちることを意味するギリシア語に由来する。この語は2000年以上前の古代ギリシアですでに医学的意味合いで用いられており、ヒポクラテスはこの語を骨折治療の際の壊疽を指して用いていた。その発音について、アポトーシスとアポプトーシスのどちらが正当なものであるのか（すなわちapoptosisの2番目のpが黙字であるかどうか）については意見が分かれている。英語では、ギリシア語由来の-pt-子音連結のpは語頭では黙字となるのが一般的であるが（pterodactyl、Ptolemyなど）、helicopter、diptera、lepidopteraなど母音に続く場合には発音される。一方、カー、Wyllie、Currieによるオリジナルの論文では発音に関して次のような脚注があり、黙字とするように記載がある。

We are most grateful to Professor James Cormack of the Department of Greek, University of Aberdeen, for suggesting this term. The word "apoptosis" () is used in Greek to describe the "dropping off" or "falling off" of petals from flowers, or leaves from trees. To show the derivation clearly, we propose that the stress should be on the penultimate syllable, the second half of the word being pronounced like "ptosis" (with the "p" silent), which comes from the same root "to fall", and is already used to describe the drooping of the upper eyelid.

 アポトーシスの活性化 
right

いったんアポトーシスが開始されると細胞死は不可避であるため、活性化機構は緊密な調節を受けている。活性化機構として最もよく理解されている2つの機構は、内因性経路（ミトコンドリア経路）と外因性経路である。内因性経路は細胞がストレスを受けた際に細胞内で生じたシグナルによって活性化され、ミトコンドリア膜間腔からのタンパク質の放出に依存している。外因性経路は細胞外のリガンドが細胞表面の細胞死受容体に結合することで活性化され、（DISC）の形成が引き起こされる。

細胞はストレスへの応答として細胞内のアポトーシスシグナル伝達を開始する。グルココルチコイドの核内受容体への結合、熱、放射線、栄養素の枯渇、ウイルス感染、低酸素、細胞内の遊離脂肪酸濃度の上昇、細胞内のカルシウム濃度の上昇、これらは全て損傷細胞内でのアポトーシスシグナルの放出の引き金となる。など、いくつかの細胞構成要素もアポトーシスの調節を補助している可能性がある。

 内因性経路 
内因性経路はミトコンドリア経路としても知られている。ミトコンドリアは多細胞生物に必要不可欠であり、ミトコンドリアがなければ細胞は好気呼吸を停止し急速に死に至る。この事実は一部のアポトーシス経路の基盤となっており、アポトーシス促進タンパク質はミトコンドリアを標的としてさまざまな形で影響を及ぼす。例えば、ミトコンドリア膜に孔を形成することでミトコンドリアの膨潤を引き起こしたり、ミトコンドリア膜の透過性を高めてアポトーシスのエフェクターの漏出を引き起こしたりする場合がある。また、一酸化窒素はミトコンドリア膜電位の消失を補助し、膜の透過性を高めることでアポトーシスを誘導することを示すエビデンスも蓄積されている。ただし一酸化窒素は他の複数の因子に依存して、アポトーシスの開始と阻害の双方の作用を示す場合がある。

アポトーシス時には、BaxやBakの作用を介してシトクロムcがミトコンドリアから放出される。この放出の機構は完全には解明されていないが、BaxやBakのホモ二量体やヘテロ二量体がミトコンドリア外膜に数多く挿入されることが契機となっているようである。放出されたシトクロムcはApaf-1、ATPと結合し、その後プロカスパーゼ-9を結合することでアポトソームと呼ばれるタンパク質複合体が形成される。アポトソームはプロカスパーゼを切断して活性型であるカスパーゼ-9を形成し、カスパーゼ-9はプロカスパーゼ-3を切断して活性型であるカスパーゼ-3を形成する。

ミトコンドリア膜の透過性の増大後には、と呼ばれるタンパク質も細胞質基質へ放出される。通常、IAPs（inhibitors of apoptosis proteins）と呼ばれるタンパク質群によってカスパーゼの活性は抑制されているが、SMACはIAPsに結合して不活性化し、IAPsによるアポトーシス過程の停止を防ぐことでアポトーシスの進行を可能にする。

 外因性経路 

哺乳類においてアポトーシス機構を直接開始する経路として、TNF経路とFas経路が提唱されているが、どちらも外因性シグナルに対しての受容体が共役する経路である。

 TNF経路 
TNF-αは主に活性化されたマクロファージで産生されるサイトカインであり、アポトーシスにおける主要な外因性メディエーターである。人体の大部分の細胞には、TNFR1とという2種類のTNF-α受容体が存在する。TNF-αがTNFR1に結合することで、、FADDといった介在タンパク質を介してカスパーゼ活性化につながる経路が開始されることが示されている。通常は、TNF-αシグナルは/がTNF受容体結合タンパク質に結合することで阻害されており、またもカスパーゼ-8の活性化を阻害している。TNF-αとアポトーシスとの関係は、TNF-αの異常産生がヒトのいくつかの疾患、特に自己免疫疾患において重要な役割を果たしていることの説明となる。またTNF受容体ファミリーには、やなどのデスレセプター（DR）も含まれている。これらの受容体はTRAILを結合し、アポトーシスを媒介する。アポトーシスはがんの標的治療の主要な機構の1つである。TRAILを模倣した燐光性イリジウム錯体ペプチドハイブリッド（IPH）が設計されており、この分子はがん細胞上のデスレセプターに結合することでアポトーシスを誘導する。

 Fas経路 

Fas受容体はTNFファミリーの膜貫通タンパク質であり、Fasリガンド（FasL）を結合する。FasとFasLの結合によって（DISC）の形成が引き起こされる。この複合体には、FADDやカスパーゼ-8、が含まれている。Type Iに分類される細胞種では、プロセシングされたカスパーゼ-8がカスパーゼファミリーの他のメンバーを直接活性化し、アポトーシスが実行される。Type IIに分類される細胞種では、Fas-DISCはミトコンドリアからのアポトーシス促進因子の放出の増大によるフィードバックループを介し、カスパーゼ-8の活性化を増幅してアポトーシスを開始する。

 両生類モデル 

アフリカツメガエルXenopus laevisは、アポトーシス研究に理想的なモデル系である。ヨウ素やチロキシンは両生類の変態時の鰓や尾、鰭の細胞のアポトーシスを刺激し、また水生で草食性のオタマジャクシから陸生で肉食性のカエルへの神経系の変化も刺激する。

 アポトーシスの負の調節因子 
アポトーシスに対する負の調節は細胞死シグナル伝達経路を阻害するため、腫瘍細胞が細胞死を回避し、薬剤抵抗性を獲得するのを助けることとなる。細胞が生存するか死に至るかは、抗アポトーシスタンパク質（Bcl-2など）とアポトーシス促進タンパク質（Baxなど）の比率によって決定される。アポトーシスを負に制御するタンパク質は、抗アポトーシス因子（IAPs、Bcl-2など）もしくは生存促進因子（、、FADD、Akt、NF-κBなど）のいずれかに分類される。

 アポトーシスの進行 
アポトーシスをもたらす経路やシグナルは多く存在するが、実際に細胞死を引き起こす1つの機構へと収束する。こうした刺激を受け取った細胞では、活性化されたカスパーゼによって細胞小器官の組織的分解が行われる。細胞小器官以外にも、mRNAの全般的分解も迅速に行われるが、その機構の十分な特性解析はなされていない。mRNAの分解はアポトーシスにおいて非常に初期の段階で生じる。

アポトーシスを起こした細胞では、一連の形態学的変化が生じる。初期に生じる変化としては次のようなものがある。
 の退縮とカスパーゼによる細胞骨格の解体、水の排出によって、細胞が収縮し球形化する。
 細胞質は濃密になり、細胞小器官は密に詰め込まれた状態となる。
 ピクノーシスと呼ばれる過程によってクロマチンは凝縮し、核膜に向かって移動してコンパクトなパッチ状となる。
 カリオレキシスと呼ばれる過程によって、核膜は非連続的となり、内部のDNAは断片化される。核は崩壊し、chromatin bodyもしくはnucleosomal unitと呼ばれる数個の塊となる。

アポトーシスは急速に進行し、その産物も迅速に除去されるため、古典的な組織切片を用いたアポトーシスの検出・可視化には困難が伴う。カリオレキシス時にはエンドヌクレアーゼの活性化によって規則的なサイズの短いDNA断片が形成されるため、アガロースゲル電気泳動した際には特徴的なラダー状（はしご状）のパターンとなる。こうしたの形成は、虚血や毒物による細胞死とアポトーシスとの区別に利用される。

 細胞の解体 
アポトーシスを起こしている細胞を除去する前に、細胞をより小さな部分へ解体する過程が存在する。この過程は次のような3段階を経て進行することが知られている。
 ブレブの形成: 細胞膜がブレブと呼ばれる不定形の出芽を行う。序盤の段階では細胞表面に小さなブレブが形成され、大きく動的挙動を示すブレブへと成長する。ブレブ形成における重要な調節因子の1つがである。
 膜突起の形成: 一部の細胞種では特定の条件下で、 microtubule spike、apoptopodia、beaded apoptopodiaといったさまざまな種類の細長い突起が形成される。は、apoptopodiaやbeaded apoptopodiaの形成に関与している重要な膜チャネルである。
 断片化: 細胞はアポトーシス小体と呼ばれる複数の小胞へ解体され、ファゴサイトーシスが行われる。

 死細胞の除去 
近傍の食細胞による死細胞の除去は、エフェロサイトーシスと呼ばれている。アポトーシスの最終段階を経て死につつある細胞は、ホスファチジルセリンなど食細胞によって認識される分子を表面に提示する。ホスファチジルセリンは通常は細胞膜の内葉に存在しているが、アポトーシス時にはの作用によって細胞外面にも分布するようになる。こうした分子は、マクロファージなど適切な受容体を発現している細胞による食作用の標識となる。食細胞による死につつある細胞の除去は、炎症応答を引き起こすことなく、秩序だった形で行われる。また、アポトーシス時には細胞内のRNAとDNAは互いに分離されて異なるアポトーシス小体へ選別される。こうしたRNAの分離は、核小体の分離によって開始される。

 アポトーシス経路のノックアウトの影響 
APAF1やFADD、いくつかのカスパーゼなど、アポトーシス経路の因子をノックアウトしたマウスを用いて、各タンパク質の機能の研究が行われている。TNFをノックアウトしたマウスは正常な発生を行い、大きな構造的・形態学的異常は観察されない。しかしながら、ヒツジ赤血球（SRBC）で免疫化した際、これらのマウスでは抗体応答の成熟の欠陥がみられる。すなわちIgMは正常レベルで産生されるものの、特異的IgGを形成することができない。一方でAPAF1をジーントラップ法によってノックアウトした際には、頭蓋顔面の重度の奇形や脳の過成長、指間の水かきの残存といった表現型が観察され、さまざまな刺激に対するアポトーシスの減少がみられる。

 アポトーシスとネクローシスの区別 
アポトーシスとネクローシスの比較には、無標識、、透過型電子顕微鏡観察といった手法が用いられる。また、フローサイトメトリーによる細胞表面マーカー（ホスファチジルセリンの露出と細胞透過性の比較）や細胞内マーカー（DNA断片化など）の解析、ウェスタンブロッティングによるカスパーゼの活性化、の切断、シトクロムcの放出の解析といった、さまざまな生化学的手法も用いられる。培養上清を用いたカスパーゼ、HMGB1、放出のスクリーニングによって、一次的ネクローシスと二次的ネクローシスを区別することができる。一方で、ネクローシス細胞の明確な細胞表面マーカーや生化学マーカーは特定されておらず、ネガティブマーカーのみが存在するため、ネクローシス細胞の同定にはアポトーシスマーカー（カスパーゼの活性化、シトクロムcの放出、数ヌクレオソーム単位でのDNA断片化）が存在しないことや、細胞死マーカー（ホスファチジルセリンの露出と細胞膜透過化）の速度論的差異が利用される。アポトーシスとネクローシスの区別に用いる技法の選択についてまとめた文献はいくつか発表されている。

 疾患との関係 


 アポトーシス経路の欠陥と疾患 
アポトーシスに至る経路には、多くの生化学的構成要素からなる多くの種類が存在しているが、その多くは理解されていない。さまざまなアポトーシス経路の変化によって引き起こされるあらゆる疾患について議論することは現実的ではないが、根底にある概念はおおむね同じであり、経路の正常な機能が破綻し、細胞の正常なアポトーシスの能力が損なわれるということである。アポトーシスの減少と増大のどちらも疾患と関連しており、こうした調節不全はがん、自己免疫疾患や神経変性疾患に重要な役割を果たしている。

アポトーシス経路の欠陥が記載されている例としては、NCI-H460と呼ばれる肺がん細胞株がある。H460細胞株では、アポトーシスを阻害するXIAPが過剰発現している。XIAPはプロセシングされたカスパーゼ-9に結合し、アポトーシスの活性化因子であるシトクロムcの活性を抑制する。そのため、XIAPの過剰発現によってアポトーシス抑制性とアポトーシス促進性のエフェクター間のバランスはアポトーシス抑制側に傾き、細胞死へ差し向けられたはずの損傷細胞も複製を続けることとなる。

がん細胞におけるアポトーシス調節の欠陥は、転写因子制御の段階で生じていることも多い。一例として、転写因子NF-κBを制御する分子の欠陥は転写調節の様式やアポトーシスシグナルへの応答を変化させ、その細胞が属する組織への依存性を低下させる。こうした外部からの生存シグナルに対するある程度の非依存性の獲得によって、がんの転移が可能となっている場合がある。

またDNAが損傷した際には、一連の生化学的因子によってがん抑制タンパク質p53が蓄積する。こうした経路にはI型インターフェロンが関与しており、これらはp53遺伝子の転写を誘導することでp53のタンパク質濃度を高め、そしてがん細胞のアポトーシスを高める。p53は細胞周期をG1期で停止させることで細胞の複製を防ぎ、修復のための時間を稼ぐ。一方で損傷が広範囲にわたり、修復の試みが失敗した場合には、アポトーシスを誘導する。p53やインターフェロンの調節が破綻した場合には、アポトーシスが損なわれ、腫瘍形成に至る可能性がある。

 アポトーシスの阻害による疾患 
アポトーシスの阻害は、がん、炎症疾患、ウイルス感染症の原因となる場合がある。これらの疾患でみられる細胞の蓄積は細胞増殖の増大のためであると当初は考えられていたが、現在では細胞死の減少もその一因となっていることが知られている。これらの中で最も一般的なのは細胞が過剰増殖する疾患であるがんであり、IAPファミリーのメンバーの過剰発現によって特徴づけられることが多い。こうした過剰発現によって悪性細胞ではアポトーシス誘導に対する異常な応答が生じる。疾患細胞では細胞周期調節遺伝子（p53、Ras、c-Mycなど）が変異または不活性化しており、さらに他の遺伝子（Bcl-2など）も発現が変化している。アポトーシス促進因子の一部はミトコンドリア呼吸に重要であり（シトクロムcなど）、がん細胞におけるアポトーシスの不活性化は解糖系への呼吸代謝のシフトと相関している（この現象はワールブルク効果として知られている）。

 HeLa細胞 
HeLa細胞では、細胞が産生するタンパク質によってアポトーシスが阻害されている。ヒトパピローマウイルス（HPV）はHeLa細胞の由来となった子宮頸がんの原因となるウイルスであり、HPVに由来するE6、E7タンパク質がHeLa細胞におけるアポトーシス阻害タンパク質となっている。HPV E6は細胞周期を調節しているp53を不活性化し、HPV E7はRbタンパク質に結合して細胞周期制御能力を制限する。これら2種類の阻害タンパク質が、HeLa細胞のアポトーシス発生阻害による不死性の一部を担っている。

 治療 
細胞死シグナル伝達と関連した疾患による治療の主な手法は、その疾患の原因がアポトーシスの阻害であるか過剰なアポトーシスであるかによって、疾患細胞のアポトーシス感受性を上昇または低下させることとなる。例えば、細胞死の欠陥を伴う疾患にはアポトーシスを回復すること、過剰な細胞死と関連した疾患にはアポトーシスの閾値を高めることを意図した治療が行われる。がんの治療における化学療法や放射線療法は、標的細胞のアポトーシスを誘導することで死滅させるものである。トラスツズマブやゲフィチニブ、イマチニブといった薬剤は、上流の成長・生存シグナルを遮断することで細胞周期の進行を停止させ、アポトーシスの活性化を引き起こす。他にもアポトーシスの刺激には、デスレセプターのリガンド（TNFやTRAILなど）の量を増やす、抗アポトーシス性のBcl-2経路に対抗する、IAPを阻害するSMAC模倣薬を導入するといった戦略がとられる。細胞死シグナル伝達経路のさまざまな地点でアポトーシスを刺激または阻害する多くの手法が用いられている。

 過剰なアポトーシスによる疾患 
細胞死制御の喪失（その結果生じる過剰なアポトーシス）は、神経変性疾患、血液疾患、組織損傷の原因となる。アルツハイマー病やパーキンソン病などの神経変性疾患では、ミトコンドリア呼吸に依存している神経細胞のアポトーシスが生じる（inverse Warburg effectと呼ばれる）。さらに、神経変性疾患とがんとの間には疫学的なinverse comorbidity（一方の疾患に罹患している場合には他方のリスクが低下する）がみられる。

 治療 
治療は特定のカスパーゼの遮断を意図して行われる。Aktは2つの経路を介して細胞生存を促進することが知られている。まずAktはBadをリン酸化し、Badが14-3-3タンパク質と相互作用するようになった結果、Badと結合していたBcl-2などアポトーシス抑制性のタンパク質が解離し、細胞生存が促進される。またAktはも活性化し、NF-κBの活性化と細胞生存をもたらす。活性型NF-κBはBcl-2など抗アポトーシス因子の発現を誘導し、アポトーシスを阻害する。一方で、NF-κBは用いる刺激や細胞種に依存して、抗アポトーシス作用とアポトーシス促進作用の双方の役割を果たすことが知られている。

 HIV感染症の進行 
HIV感染のAIDSへの進行は主に、骨髄による細胞供給が追い付かないほどにCD4+ヘルパーT細胞が急速に枯渇することが原因となっており、その結果免疫系は機能不全となる。ヘルパーT細胞が枯渇する機構の1つがアポトーシスであり、次に挙げる一連の機構によって引き起こされている。
 HIV由来の酵素が抗アポトーシスタンパク質Bcl-2を不活性化する。これ自体で細胞死が直接引き起こされるわけではないが、細胞は適切なシグナルを受け取った際にアポトーシスが開始されるよう、プライミングされた状態となる。並行して、これらの酵素はプロカスパーゼ-8を活性化し、アポトーシスのミトコンドリア経路が直接活性化される。
 HIVは、Fasを介したアポトーシス経路を促進する細胞タンパク質の濃度を高めている可能性がある。
 HIV由来のタンパク質は、細胞膜上に存在するCD4糖タンパク質マーカーの量を減少させる。
 細胞外液へ放出されたウイルス粒子やウイルスタンパク質が、近傍のバイスタンダーT細胞のアポトーシスを誘導する。
 HIVは細胞がアポトーシスを起こしていることを標識する分子の産生を低下させることでウイルスの複製のための時間を稼ぎ、周辺組織へのアポトーシス促進因子やビリオンの放出を継続する。
 HIVが感染したCD4+T細胞は、細胞傷害性T細胞からも細胞死シグナルを受け取る可能性がある。

細胞はウイルス感染の直接的帰結として死に至る可能性もある。一例として尿細管上皮細胞では、HIV-1の遺伝子発現によって細胞周期はG2/M期で停止し、アポトーシスが誘導される。HIV感染からAIDSへの進行は即座に起こるわけではなく、また必ずしも急速に進行するわけでもない。HIVのCD4+T細胞に対する細胞傷害活性によって患者のCD4+細胞数が血液1 μlあたり200個未満となった際に、AIDSへと分類される。

L-Heptanoylphosphatidyl Inositol Pentakisphosphate（L-Hippo）と呼ばれる合成化合物はHIVのPr55Gagタンパク質に強力に結合し、ウイルスの出芽を抑制することができる。そしてウイルスの出芽の抑制によって、HIVを細胞内に捕捉した状態でアポトーシスを行わせることができる。このアプローチは患者への応用はまだなされていないものの、将来的にはHIV感染症からの完全な回復が達成される可能性がある。

 ウイルス感染 
ウイルスが感染した細胞では、さまざまな機構を介してアポトーシスが誘導される。
 受容体への結合
 プロテインキナーゼRの活性化
 p53との相互作用
 感染細胞表面のMHCタンパク質によるウイルスタンパク質の提示。免疫系の細胞（NK細胞や細胞傷害性T細胞）によって認識され、感染細胞のアポトーシスが誘導される。
犬ジステンパーウイルス（CDV）は、感染したイヌの中枢神経系やリンパ組織のアポトーシスを引き起こすことがin vivo、in vitroで示されている。CDVによって引き起こされるアポトーシスは典型的には外因性経路を介したものであり、カスパーゼが活性化されて細胞機能が破綻し、最終的に細胞死に至る。正常細胞では、CDVはまず誘導型のカスパーゼ-8を活性化し、続いて実行型のカスパーゼ-3が活性化される。一方HeLa細胞では、CDVによって誘発されるアポトーシスにはカスパーゼ-8は関与しない。このようなカスパーゼカスケードの変化は、CDVが内因性経路を介してアポトーシスを誘導していることを示唆している。こうしたケースでは、実行型カスパーゼはカスパーゼカスケードではなく、ウイルス感染によって引き起こされた内因性刺激によって活性化される。

（OROV）は、ブニヤウイルス綱に属するウイルスである。ブニヤウイルスによって引き起こされるアポトーシスの研究は、新生ハムスターの腎細胞や新生マウスの脳においてによるアポトーシスの誘導が観察された1996年に始まった。OROVは吸血性のヌカカを介してヒトの間を伝播するウイルスである。人獣共通感染症の原因となるアルボウイルスであり、オロプーシェ熱と呼ばれる急な発熱を特徴とする疾患を引き起こす。オロプーシェウイルスはHeLa細胞などの培養細胞にも悪影響を及ぼし、細胞では感染直後に変性が開始される。ゲル電気泳動により、OROVはHeLa細胞においてDNA断片化を引き起こすことが観察されている。また、ミトコンドリア膜からはシトクロムcが放出されており、内因性経路を介してアポトーシスが活性化されていることが示されている。

ウイルス感染に伴うアポトーシス誘導に対抗するため、多くのウイルスはアポトーシスを阻害するタンパク質を有している。いくつかのウイルスにはBcl-2のホモログが存在する。これらのホモログは、BAXやBAKなど、アポトーシスの活性化に必要不可欠なタンパク質を阻害する。ウイルスのBcl-2タンパク質の例としては、EBウイルスのBHRF1タンパク質や、アデノウイルスのE1B-19Kタンパク質が挙げられる。また一部のウイルスは、カスパーゼ活性を阻害するタンパク質を発現する。例としては、牛痘ウイルスのCrmAタンパク質がある。TNFやFasの作用を遮断するものもあり、一例としてのM-T2タンパク質はTNFに結合し、TNF受容体への結合と応答の誘導を妨げる。さらに、多くのウイルスはp53阻害タンパク質を発現しており、これらはp53に結合してその転写活性化能を阻害する。その結果、p53はアポトーシス促進タンパク質の発現を誘導することができなくなる。アデノウイルスのE1B-55Kタンパク質やB型肝炎ウイルスのHBxタンパク質は、こうした機能を果たすタンパク質の例である。

特に感染の後期段階では、ウイルスはアポトーシスに干渉しない場合がある。ウイルスは死滅しつつある細胞の表面からくびり切られるアポトーシス小体内へ輸送され、食細胞に貪食されることで宿主の応答の開始を逃れる。このようにしてウイルスの拡散が促進される。

 植物 
植物におけるプログラム細胞死は、多くの点で動物のアポトーシスとの分子的類似性がみられるものの、差異も存在する。特筆すべき点としては、植物には細胞壁が存在すること、そして死細胞の破片を除去する免疫系が存在しないことが挙げられる。さらに、植物には分解やアポトーシス小体の除去といった過程に必要不可欠な食細胞も存在しない。死滅しつつある細胞は免疫応答を誘導する代わりに、自身を分解する物質を合成して液胞内に貯蔵し、細胞死とともに液胞が破裂することで分解をもたらす。この全過程が「アポトーシス」という名称を使用することができるほど、動物における過程と十分に類似しているかどうか、すなわちより一般的な「プログラム細胞死」ではなく「アポトーシス」という名称を使用するのが適切であるのかどうかは明確ではない。

カスパーゼ非依存的なアポトーシス
カスパーゼの特性解析が行われたことでカスパーゼ阻害剤の開発が可能となり、こうした阻害剤は特定の細胞過程に活性型カスパーゼが関与しているかどうかを明らかにするために用いられている。その結果、細胞は形態学的にはアポトーシスとの類似性を示すものの、カスパーゼの活性化を伴わない細胞死を行う場合があることが発見されている。この現象は、ミトコンドリアからの（AIF）の放出、核移行と関連しており、放出にはカルパインによる切断が関与している。

 出典 

 関連項目 


 Apaf-1


 アトロメンチン
 自己融解
 オートファジー
 シスプラチン
 細胞毒性

 フェロトーシス
 恒常性
 免疫学

 壊死
 :en:Necrotaxis


 p53

 :en:Pseudoapoptosis


 外部リンク 
 日本Cell Death学会


Category:細胞プロセス
Category:発生生物学
Category:プログラム細胞死