natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The results should be expressed to two decimal places.’
där Km är den specifika absorptionen vid våglängden för maximal absorption vid 270 nm och 268 nm beroende på vilket lösningsmedel som används.
ANNEX IV
Resultaten bör anges med två decimaler.”
ANNEX X
BILAGA IV
DETERMINATION OF FATTY ACID METHYL ESTERS BY GAS CHROMATOGRAPHY
BILAGA X
This Annex gives guidance on the gas chromatographic determination of free and bound fatty acids in vegetable fats and oils following their conversion into fatty acid methyl esters (FAME).
BESTÄMNING AV FETTSYRAMETYLESTRAR MED GASKROMATOGRAFI
The bound fatty acids of the triacylglycerols (TAGs) and, depending on the esterification method, the free fatty acids (FFA), are converted into fatty acid methyl esters (FAME), which are determined by capillary gas chromatography.
I denna bilaga ges vägledning om bestämning med gaskromatografi av fria och bundna fettsyror i vegetabiliska fetter och oljor efter deras omvandling till fettsyrametylestrar (Fame).
The method described in this Annex allows the determination of FAME from C12 to C24, including saturated, cis- and transmonounsaturated and cis- and trans-polyunsaturated fatty acid methyl esters.
De bundna fettsyrorna av triglycerider och, beroende på esterifieringsmetod, de fria fettsyrorna, omvandlas till fettsyrametylestrar, som bestäms genom kapillärgaskromatografi.
PRINCIPLE
Den metod som beskrivs i denna bilaga möjliggör bestämning av fettsyrametylestrar från C12 till C24, inbegripet mättade, cis- och trans-enkelomättade och cis- och trans-fleromättade fettsyrametylestrar.
Gas chromatography (GC) is used for the quantitative analysis of FAME.
PRINCIP
The FAME are prepared according to Part A. They are then injected into and vaporised within the injector.
Gaskromatografi (GC) används för kvantitativ analys av fettsyrametylestrar.
The separation of FAME is performed on analytical columns of specific polarity and length.
Fettsyrametylestrar bereds enligt del A. De injiceras sedan i injektorn och förångas i denna.
A Flame Ionisation Detector (FID) is used for the detection of the FAME.
Separation av fettsyrametylestrar utförs på analyskolonner av bestämd polaritet och längd.
The conditions of analysis are given in Part B.
En flamjoniseringsdetektor används för detektion av fettsyrametylestrar.
Hydrogen or helium may be used as the carrier gas (mobile phase) in the gas chromatography of FAME with FID.
Analysförhållandena anges i del B.
Hydrogen speeds up separation and gives sharper peaks.
Väte eller helium kan användas som bärgas (mobil fas) i gaskromatografi av fettsyrametylestrar med flamjoniseringsdetektor.
The stationary phase is a microscopic layer of a thin liquid film on an inert solid surface made of fused silica.
Väte påskyndar separation och ger skarpare toppar.
As they pass through the capillary column the volatilised compounds being analysed interact with the stationary phase coating the inner surface of the column.
Den stationära fasen är ett mikroskopiskt skikt som består av en tunn vätskefilm på en inert fast yta av kvartsglas.
Due to this different interaction of different compounds, they elute at a different time, which is called the retention time of the compound for a given set of analysis parameters.
När de förångade föreningar som analyseras passerar genom kapillärkolonnen interagerar de med den stationära fasen som täcker kolonnens inneryta.
The comparison of the retention times is used for the identification of the different compounds.
På grund av att olika föreningar interagerar på olika sätt eluerar de vid olika tidpunkter; detta kallas föreningens retentionstid för en given uppsättning analysparametrar.
PART A
Jämförelsen av de olika retentionstiderna används för att identifiera de olika föreningarna.
PREPARATION OF THE FATTY ACID METHYL ESTERS FROM OLIVE OIL AND OLIVE-POMACE OIL
DEL A
This part specifies the preparation of the methyl esters of fatty acids.
BEREDNING AV METYLESTRAR AV FETTSYROR FRÅN OLIVOLJA OCH FRÅN OLIVOLJA AV PRESSRESTER
It includes methods for preparing fatty acid methyl esters from olive and olive-pomace oils.
Denna del beskriver framställningen av metylestrar av fettsyror.
FIELD OF APPLICATION
Den innefattar metoder för beredning av metylestrar av fettsyror från olivolja och olivolja av pressrester.
The preparation of the fatty acid methyl esters from olive oils and olive-pomace oils are performed by transesterification with methanolic solution of potassium hydroxide at room temperature.
TILLÄMPNINGSOMRÅDE
The necessity of purification of the sample prior to the trans-esterification depends on the sample's free fatty acids content and the analytical parameter to be determined, it can be chosen according to the following table:
Beredning av metylestrar av fettsyror från olivolja och olivolja av pressrester utförs genom transesterifiering i en metanollösning av kaliumhydroxid vid rumstemperatur.
Category of oil
Behovet av rening av provet före transesterifieringen beror på provets innehåll av fria fettsyror och på vilken analysparameter som ska bestämmas; den kan väljas enligt följande tabell:
Method
Kategori av olja
Virgin olive oil with acidity ≤ 2,0 %
Metod
Fatty acids
Jungfruolja med en halt av fria fettsyror på ≤ 2,0 %
trans-Fatty acids
Fettsyror
ΔECN42 (after purification with silica-gel SPE)
Transfettsyror
Refined olive oil
ΔECN42 (efter rening med kiselgel SPE)
Olive oil composed of refined olive oil and virgin olive oils
Raffinerad olivolja
Refined olive pomace oil
Olivolja bestående av raffinerad olivolja och jungfruolja
Olive pomace oil
Raffinerad olivolja av pressrester
Virgin olive oil with acidity > 2,0 %
Olivolja av pressrester
Crude olive pomace oil
Jungfruolja med en halt av fria fettsyror > 2,0 %
Fatty acids (after purification with silica-gel SPE)
Oraffinerad olivolja av pressrester
trans-Fatty acids (after purification with silica-gel SPE)
Fettsyror (efter rening med kiselgel SPE)
METHODOLOGY
Transfettsyror (efter rening med kiselgel SPE)
Trans-esterification with methanolic solution of potassium hydroxide at room temperature
METOD
Principle
Transesterifiering i en metanollösning av kaliumhydroxid i rumstemperatur
Methyl esters are formed by trans-esterification with methanolic potassium hydroxide as an intermediate stage before saponification takes place.
Princip
Reagents
Metylestrar bildas genom transesterifiering i en metanollösning av kaliumhydroxid som en mellanprodukt före förtvålning.
Methanol containing not more than 0,5 % (m/m) water.
Reagenser
Hexane, chromatographic quality.
Metanol med en vattenhalt som inte överstiger 0,5 % (m/m).
Heptane, chromatographic quality.
Hexan för kromatografi.
Diethyl ether, stabilised for analysis.
Heptan för kromatografi.
Acetone, chromatographic quality.
Dietyleter, stabiliserad för analys.
Elution solvent for purifying the oil by column/SPE chromatography, mixture hexane/diethyl ether 87/13 (v/v).
Aceton, för kromatografi.
Potassium hydroxide, approximately 2M methanolic solution: dissolve 11,2 g of potassium hydroxide in 100 ml of methanol.
Elueringslösning för rening av oljan genom kolonnkromatografi/SPE-kromatografi, blandning hexan/dietyleter (87:13 v/v).
Silica gel cartridges, 1 g (6 ml), for solid phase extraction.
Kaliumhydroxid i metanollösning, ca 2 M: lös 11,2 g kaliumhydroxid i 100 ml metanol.
Apparatus
Kiselgelpatroner, 1 g (6 ml), för fastfasextraktion.
Screw-top test tubes (5 ml volume) with cap fitted with a PTFE joint.
Utrustning
Graduated or automatic pipettes, 2 ml and 0,2 ml.
Provrör (volym 5 ml) med skruvkork försedd med teflonpackning.
Purification of oil samples
Mätpipetter eller automatpipetter, 2 ml och 0,2 ml.
When necessary, the samples will be purified by passing the oil through a silica gel solid-phase extraction cartridge.
Rening av oljeprov
A silica gel cartridge (3.1.2.8) is placed in a vacuum elution apparatus and washed with 6 ml of hexane (3.1.2.2); washing is performed without vacuum.
Vid behov renas proven genom att oljan får passera en kiselgelpatron för fastfasextraktion.
Then a solution of the oil (0,12 g approximately) in 0,5 ml of hexane (3.1.2.2) is loaded onto the column.
Placera en kiselgelpatron (3.1.2.8) i en apparat för eluering i vakuum och skölj med 6 ml hexan (3.1.2.2); sköljningen utförs utan vakuum.
The solution is pulled down and then eluted with 10 ml of hexane/diethyl ether (87:13 v/v) (3.1.2.6).
Tillför olja (ca 0,12 g) löst i 0,5 ml hexan (3.1.2.2) i kolonnen.
The combined eluates are homogenised and divided in two similar volumes.
Låt lösningen tränga in i kiselgelen och eluera sedan med 10 ml hexan/dietyleter (87:13 v/v) (3.1.2.6).
An aliquot is evaporated to dryness in a rotary evaporator under reduced pressure at room temperature.
Homogenisera hela mängden eluat och dela upp det i två lika stora volymer.
The residue is dissolved in 1 ml of heptane and the solution is ready for fatty acid analysis by GC.
Låt den ena volymen avdunsta till uttorkning i en roterande evaporator under undertryck och i rumstemperatur.
The second aliquot is evaporated and the residue is dissolved in 1 ml of acetone for triglyceride analysis by HPLC, if necessary.
Lös återstoden i 1 ml heptan.
Procedure
Den erhållna lösningen är färdig för analys av fettsyror med gaskromatografi.
In a 5 ml screw-top test tube (3.1.3.1) weigh approximately 0,1 g of the oil sample.
Låt den andra volymen avdunsta och lös upp återstoden i 1 ml aceton för analys av triglycerider med vätskekromatografi (HPLC) om nödvändigt.
Add 2 ml of heptane (3.1.2.2), and shake.
Utförande
Add 0,2 ml of the methanolic potassium hydroxide solution (3.1.2.7), put on the cap fitted with a PTFE joint, tighten the cap, and shake vigorously for 30 seconds.
Mät upp ca 0,1 g av oljeprovet i ett 5 ml provrör med skruvkork (3.1.3.1).
Leave to stratify until the upper solution becomes clear.
Tillsätt 2 ml heptan (3.1.2.2) och skaka.
Decant the upper layer containing the methyl esters.
Tillsätt 0,2 ml 2 M metanollösning av kaliumhydroxid (3.1.2.7), tillslut väl med en kork försedd med teflonpackning och skaka kraftigt i 30 sekunder.
The heptane solution is ready for injection into the gas chromatograph.
Låt provröret stå tills lösningens övre skikt har klarnat.
It is advisable to keep the solution in the refrigerator until gas chromatographic analysis.
Häll av det övre skiktet, som innehåller metylestrarna.
Storage of the solution for more than 12 hours is not recommended.
Heptanlösningen är färdig att injiceras i kromatografen.
PART B
Det är lämpligt att förvara lösningen i kylskåp fram till dess att analysen med kromatografi ska ske.
ANALYSIS OF FATTY ACID METHYL ESTERS BY GAS CHROMATOGRAPHY
Lösningen bör ej stå längre tid än tolv timmar.
This part gives general guidance for the application of capillary column gas chromatography to determine the qualitative and quantitative composition of a mixture of fatty acid methyl esters obtained in accordance with the method specified in Part A.
DEL B
The part is not applicable to polymerised fatty acids.
ANALYS AV FETTSYRAMETYLESTRAR MED GASKROMATOGRAFI
Carrier gas
Denna del ger allmänna riktlinjer för tillämpning av gaskromatografi på kapillärkolonn för att bestämma den kvalitativa och kvantitativa sammansättning av en blandning av fettsyrametylestrar som erhållits i enlighet med den metod som anges i del A.
Inert gas (helium or hydrogen), thoroughly dried and with an oxygen content of less than 10 mg/kg.
Delen är inte tillämplig på polymeriserade fettsyror.
Note 1:
Bärgas
Hydrogen can double the speed of analysis but is hazardous.
Inert gas (helium eller väte) som är omsorgsfullt torkad och med en syrehalt som är mindre än 10 mg/kg.
Safety devices are available.
Anm.
Auxiliary gases
1:
Hydrogen (purity ≥ 99,9 %), free from organic impurities.
Väte kan fördubbla analyshastigheten men är farlig.
Air or oxygen, free from organic impurities.
Säkerhetsanordningar finns att tillgå.
Nitrogen (purity > 99 %).
Supplementerande gaser
Reference standard
Väte (renhet ≥ 99,9 %) utan organiska föroreningar.
Mixture of methyl esters of pure fatty acids, or the methyl esters of a fat of known composition, preferably similar to that of the fatty matter to be analysed.
Luft eller syre utan organiska föroreningar.
Cis and trans isomers of octadecenoic, octadecadienoic and octadecatrienoic methyl esters are useful for the identification of trans isomers of unsaturated acids.
Kväve (renhet > 99 %)
Care should be taken to prevent the oxidation of polyunsaturated fatty acids.
Standard för referens
APPARATUS
Blandning av metylestrar av rena fettsyror eller metylestrar av ett fett av känd sammansättning, företrädesvis liknande det fett som ska analyseras.
The instructions given are for the usual equipment used for gas chromatography, employing capillary columns and a flame-ionisation detector.
Cis- och transisomerer av metylestrar av oktadekensyra, oktadekadiensyra och oktadekatriensyra kan användas för att identifiera transisomerer av omättade fettsyror.
Gas chromatograph
Försiktighet bör iakttas för att förhindra oxidation av fleromättade fettsyror.
The gas chromatograph shall comprise the following elements.
UTRUSTNING
Injection system
De anvisningar som ges här avser vanlig utrustning som används för gaskromatografi, som använder kapillärkolonner och en flamjoniseringsdetektor.
Use an injection system with capillary columns, in which case the injection system should be specially designed for use with such columns.
Gaskromatograf
It may be of the split type or the splitless on-column injector type.
Gaskromatografen ska bestå av följande enheter:
Oven
Injektionssystem
The oven shall be capable of heating the capillary column to a temperature of at least 260 °C and of maintaining the desired temperature to within 0,1 °C.
Använd ett injektionssystem med kapillärkolonner, varvid injektionssystemet bör vara speciellt konstruerat för användning med sådana kolonner.
The last requirement is particularly important when a fused silica tube is used.
Injektorn kan vara med eller utan split.
The use of temperature-programmed heating is recommended in all cases, and in particular for fatty acids with less than 16 carbon atoms.
Ugn
Capillary column
Ugnen ska kunna värma kapillärkolonnen till en temperatur av minst 260 °C och upprätthålla den önskade temperaturen inom 0,1 °C.
Tube, made of a material inert to the substances to be analysed (usually glass or fused silica).
Det senaste kravet är särskilt viktigt när kvartsrör används.
The internal diameter shall be between 0,20 to 0,32 mm.
Användning av temperaturprogrammerad uppvärmning rekommenderas i alla fall och särskilt för fettsyror med mindre än 16 kolatomer.
The internal surface shall undergo an appropriate treatment (e.g. surface preparation, inactivation) before receiving the stationary phase coating.
Kapillärkolonn
A length of 60 m is sufficient for fatty acid and cis and trans isomers of fatty acids.
Rör som är tillverkade av ett material som är inert för ämnen som ska analyseras (vanligen glas eller kvarts).
Stationary phase, polar polysiloxane (cyanopropylsilicone) bonded (cross-linked) columns are suitable.
Innerdiametern ska vara mellan 0,20 och 0,32 mm. Den inre ytan ska genomgå en lämplig behandling (t ex ytpreparering, inaktivering) innan den får täckning av den stationära fasen.
Note 2:
En längd av 60 m räcker för fettsyror och cis- och transisomerer av fettsyror.
There is a risk that polar polysiloxanes may give rise to difficulties in the identification and separation of linolenic acid and C20 acids.
Stationär fas, polär polysiloxan (cyanopropylsilikon) tvärbundna kolonnfyllningar är lämpliga.
The coatings shall be thin, i.e. 0,1 to 0,2 μm.
Anm.
Assembly and conditioning of the column
2:
Observe the normal precautions for assembling capillary columns, i.e. arrangement of the column in the oven (support), choice and assembly of joints (leak tightness), positioning of the ends of the column in the injector and the detector (reduction of dead-spaces).
Det finns en risk att polära polysiloxaner kan ge upphov till svårighet att identifiera och separera linolensyra och C20-syror.
Place the column under a flow of carrier gas (e.g. 0,3 bar (30 kPa) for a column of length 25 m and internal diameter 0,3 mm).
Beläggningen ska vara tunn, dvs 0,1 till 0,2 μm.
Condition the column by temperature programming of the oven at 3 °C/min from ambient temperature to a temperature 10 °C below the decomposition limit of the stationary phase.
Sammansättning och konditionering av kolonnen
Maintain the oven at this temperature for one hour until stabilisation of the baseline.
Följ de normala försiktighetsåtgärderna för att sätta ihop kapillärkolonnerna, dvs. placeringen av kolonnen i ugnen (bärare) val och sammansättning av skarvar (läckaget) placering av kolonnens in- och utlopp i injektorn och detektorn (minskning av dödutrymmen).
Return it to 180 °C to work under isothermal conditions.
Placera kolonnen i en ström av bärgas (t.ex.
Note 3:
0,3 bar [30 kPa] för en kolonn med längden 25 m och en innerdiameter på 0,3 mm).
Suitably pre-conditioned columns are available commercially.
Behandla kolonnen genom temperaturprogrammering av ugnen till 3 °C/minut från omgivningstemperaturen till en temperatur som är 10 °C under sönderfallsgränsen för den stationära fasen.
Flame ionisation detector and converter-amplifier
Håll ugnen vid denna temperatur i en timme, tills baslinjen har stabiliserats.
Syringe
Gå tillbaka till 180 °C för att arbeta under isoterma förhållanden.
The syringe shall have a maximum capacity of 10 μl, graduated in 0,1 μl divisions.
Anm.
Data acquisition system
3:
Data acquisition system connected online with the detectors and employed with a software program suitable for peak integration and normalisation.
Lämpliga förbehandlade kolonner finns tillgängliga i handeln.
The operations described in 4.1 to 4.3 are for the use of a flame-ionisation detector.
Flamjonisationsdetektor och omformarförstärkare
Test conditions
Sprutor
Selection of optimum operating conditions for capillary columns
Sprutorna ska ha en maximivolym av 10 μl med 0,1 μl gradering.
Owing to the efficiency and permeability of capillary columns, the separation of the constituents and the duration of the analysis are largely dependent on the flow-rate of the carrier gas in the column.
System för datainsamling
It will therefore be necessary to optimise the operating conditions by adjusting this parameter (or simply column head loss) depending on whether the aim is to improve separation or speed up analysis.
System för datainsamling, som är uppkopplade online med detektorer och används med en programvara som lämpar sig för integrering av toppar och normalisering.
The following conditions have proved to be suitable for the separation of FAMEs (C4 to C26).
De arbeten som beskrivs i 4.1 till 4.3 avser användning av en flamjoniseringsdetektor.
Examples of chromatograms are shown in Appendix B:
Provningsförhållanden
Injector temperature:
Val av optimala provningsförhållanden för kapillärkolonner
250 °C
På grund av effektivitets- och permeabilitetsegenskaperna hos kapillärkolonnen är separationen mellan komponenterna och tiden för analysen i hög grad beroende av flödeshastigheten på bärgasen i kolonnen.
Detector temperature:
Det är därför nödvändigt att optimera driftförhållandena genom att anpassa denna parameter (eller, enklare, tryckfallet i kolonnen) beroende på om man önskar förbättra separationen eller påskynda analysen.
Oven temperature:
Följande villkor har visat sig vara lämpliga för separation av fettsyrametylestrar (C4–C26).
165 °C (8 min) to 210 °C at 2 °C/min
Exempel på kromatogram visas i tillägg B:
Carrier gas hydrogen:
Injektortemperatur:
column head pressure, 179 kPa
250 °C
Total flow:
Detektortemperatur:
Split ratio:
Ugnstemperatur:
Injection volume:
165 °C (8 minuter) till 210 °C med 2 °C/min.
Determination of the resolution (see Appendix A)
Bärgas väte:
Calculate the resolution, R, of two neighbouring peaks I and II, using the formula:
tryck i kolonninloppet 179 kPa
R = 2 × ((ddr(II) – dr(I))/(ω(I) + ω(II))) or R = 2 × ((tr(II) – tr(I))/(ω(I) + ω(II))) (USP) (United States Pharmacopeia),
Totalt flöde:
R = 1,18 × ((tr(II) – tr(I))/(ω0,5(I) + ω0,5(II))) (EP, BP, JP, DAB), (JP (Japanese Pharmacopeia), EP (Pharmacopée Européenne), BP (British Pharmacopeia))
Delningsförhållande:
dr(I) is the retention distance of peak I;
Injektionsvolym:
dr(II) is the retention distance of peak II;
Bestämning av upplösningen (se tillägg A)
tr(I) is the retention time of peak I;
Beräkna upplösningen R för två angränsande toppar I och II med hjälp av formeln
tr(II) is the retention time of peak II;
R = 2 × ((dr(II) – dr(I))/(ω(I) + ω(II))) eller R = 2 × ((tr(II) – tr(I))/(ω(I) + ω(II))) (USP) (Förenta Staternas farmakopé),
If ω(I) ≈ ω(II), calculate R using the following formulas:
trI) är retentionstiden för topp I,
σ is the standard deviation (see Appendix A, Figure 1).
tr(II) är retentionstiden för topp II,
If the distance dr between the two peaks dr(II) - dr(I) is equal to 4σ, the resolution factor R = 1.
ω(I) är bredden av basen av topp I,
If two peaks are not separated completely, the tangents to the inflection points of the two peaks intersect at point C. In order to completely separate the two peaks, the distance between the two peaks must be equal to:
ω(II) är bredden av basen av topp II,
dr(II) - dr(I) = 6 σ from where R = 1,5 (see Appendix A, Figure 3).
ω0,5 är toppbredden av den angivna föreningen, vid mitten av toppen, Om ω(I) ≈ ω(II), beräkna R med hjälp av följande formler: R = (dr(II) – dr(I))/ω = (dr(II) – dr(I))/4σ
EXPRESSION OF RESULTS
där: σ är standardavvikelsen (se tillägg A, figur 1).
Qualitative analysis
dr(II) – dr(I) = 6 σ som ger R = 1,5 (se tillägg A, figur 3).
Identify the methyl ester peaks of the sample from the chromatogram in Appendix B, figure 1, if necessary by interpolation, or by comparison with those of the methyl esters reference mixtures (as indicated at point 2.3).
RESULTATANGIVELSER
Quantitative analysis
Kvalitativ analys
Determination of the composition
Identifiera provets metylestertoppar från kromatogrammet i tillägg B, figur 1, om så behövs genom interpolering eller genom en jämförelse med dessa blandningar av metylestrar (som anges i punkt 2.3).
Calculate the mass fraction wi of the individual fatty acid methyl esters, expressed as a percentage by mass of methyl esters, as follows:
Kvantitativ analys
Method of calculation
Bestämning av sammansättningen
General case
Beräkna massfraktionen wi av de enskilda fettsyrametylestrarna, uttryckt som massprocent av metylestrar, enligt följande:
Calculate the content of a given component i, expressed as a percentage by mass of methyl esters, by determining the percentage represented by the area of the corresponding peak relative to the sum of the areas of all the peaks, using the following formula:
Beräkningssätt
Ai is the area under the peak of the individual fatty acid methyl ester i;
Allmänt fall
ΣA is the sum of the areas under all the peaks of all the individual fatty acid methyl esters.
Beräkna halten av en given komponent i, uttryckt som massprocent av metylestrar, genom att bestämma hur stor procentandel den motsvarande toppens area utgör i förhållande till summan av areorna för alla topparna, med användning av formeln:
The results are expressed to two decimal places.
Ai är arean under toppen för den enskilda fettsyrametylestern i,
Note 4:
ΣA är summan av areorna under alla topparna för samtliga enskilda fettsyrametylestrar.
For fats and oils, the mass fraction of the fatty acid methyl esters is equal to the mass fraction of the triacylglycerols in grams per 100 g.
Resultaten uttrycks med två decimaler.
For cases in which this assumption is not allowed, see 5.2.2.2.
Anm.
Use of correction factors
4:
In certain cases, for example in the presence of fatty acids with less than eight carbon atoms or of acids with secondary groups, the areas shall be corrected with specific correction factors (Fci).
För fetter och oljor är massfraktionen av fettsyrametylestrar lika med massfraktionen av triglyceriderna i gram per 100 g.
These factors shall be determined for each single instrument.
För de fall där detta antagande inte är tillåtet, se 5.2.2.2.
For this purpose suitable reference materials with certified fatty acid composition in the corresponding range shall be used.
Användning av korrektionsfaktorer