natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For this, plant material must be used instead of fish food, e.g. addition of 0,5 % (dry weight) finely ground leaves of e.g. stinging nettle (Urtica dioica), mulberry (Morus alba), white clover (Trifolium repens), spinach (Spinacia oleracea) or of other plant material (Cerophyl or alpha-cellulose) may be used.
Då ska växtmaterial användas i stället för fiskfoder, t.ex. 0,5 % (torrvikt) finmalda löv från t.ex. brännässla (Urtica dioica), mullbär (Morus alba), vitklöver (Trifolium repens), spenat (Spinacia oleracea) eller annat växtmaterial (Cerophyl eller alfacellulosa).
The test is conducted at a constant temperature of 20 °C (± 2 °C).
Testet genomförs vid konstant temperatur på 20 °C (± 2 °C).
For C. tentans and C. yoshimatui recommended temperatures are 23 °C and 25 °C (± 2 °C), respectively.
För C. tentans och C. yoshimatsui rekommenderas temperaturer på 23 °C respektive 25 °C (± 2 °C).
A 16 hours photoperiod is used and the light intensity should be 500 to 1000 lux.
En ljusperiod på 16 timmar används och ljusintensiteten ska vara 500–1000 lux.
Exposure duration
Exponeringstid
The exposure commences with the addition of larvae to the spiked and control vessels.
Exponeringen inleds när larver tillsätts i spikade kärl och kontrollkärl.
The maximum exposure duration is 28 days for C. riparius and C. yoshimatsui, and 65 days for C. tentans.
Den maximala exponeringstiden är 28 dagar för C. riparius och C. yoshimatsui och 65 dagar för C. tentans.
If midges emerge earlier, the test can be terminated after a minimum of five days after emergence of the last adult in the control.
Om myggor kläcks tidigare, kan testet avslutas efter minst fem dagar efter att det sista vuxna exemplaret har kläckts i kontrollen.
Emergence
Kläckning
The development time and the total number of fully emerged male and female midges are determined.
Utvecklingstiden och totalantalet fullbildade han- och honmyggor bestäms.
Males are easily identified by their plumose antennae.
Hanarna är lätta att känna igen på sina fjäderantenner.
The test vessels should be observed at least three times per week to make visual assessment of any abnormal behaviour (e.g. leaving sediment, unusual swimming), compared with the control.
Testkärlen bör granskas visuellt minst tre gånger i veckan för att bedöma förekomsten av onormalt beteende (t.ex. exemplar som lämnar sedimentet, ovanligt simmande) jämfört med kontrollen.
During the period of expected emergence a daily count of emerged midges is necessary.
Under perioden för förväntad kläckning är det nödvändigt att dagligen räkna antalet kläckta exemplar.
The sex and number of fully emerged midges are recorded daily.
Kön och antal fullbildade exemplar registreras dagligen.
After identification the midges are removed from the vessels.
Efter identifiering avlägsnas myggorna från kärlen.
Any egg masses deposited prior to the termination of the test should be recorded and then removed to prevent re-introduction of larvae into the sediment.
Ägg som har deponerats före testets slutförande bör registreras och därefter avlägsnas för att förhindra att larver på nytt introduceras i sedimentet.
The number of visible pupae that have failed to emerge is also recorded.
Likaså ska registrering göras av antalet synliga puppor som inte har kläckts.
Guidance on measurement of emergence is provided in Appendix 5.
Vägledning om övervakning av kläckning finns i tillägg 5.
Growth and survival
Tillväxt och överlevnad
If data on 10-day larval survival and growth are to be provided, additional test vessels should be included at the start, so that they may be used subsequently.
Om det krävs data om överlevnad och tillväxt under en tiodagarsperiod bör ytterligare testkärl införlivas från början, så att dessa därefter kan användas.
The sediment from these additional vessels is sieved using a 250 μm sieve to retain the larvae.
Larverna i sedimentet från dessa tilläggskärl tillvaratas genom sållning med ett 250 μm-såll.
Criteria for death are immobility or lack of reaction to a mechanical stimulus.
Kriterierna för död är orörlighet eller utebliven reaktion på mekanisk stimulans.
Larvae not recovered should also be counted as dead (larvae which have died at beginning of the test may have been degraded by microbes).
Larver som inte tillvaratas bör räknas som döda (larver som har dött i början av testet kan ha sönderdelats av mikrober).
The (ash free) dry weight of the surviving larvae per test vessel is determined and the mean individual dry weight per vessel calculated.
Torrvikten (askfri) för överlevande larver per testkärl bestäms och den genomsnittliga individuella torrvikten per kärl beräknas.
It is useful to determine which instar the surviving larvae belong to; for that measurement of the width of the head capsule of each individual can be used.
Det är bra att bestämma vilket stadium överlevande larver tillhör, och för detta kan mätning av huvudkapselns bredd användas.
Analytical measurements
Analytiska mätningar
Concentration of the test substance
Testämnets koncentration
Prior to test commencement (i.e. addition of larvae), samples of bulk sediment are removed from at least one vessel per treatment for the analytical determination of the test substance concentration in the sediment.
Innan testet inleds, dvs. före tillsättning av larver, tas prover av bulksediment från minst ett kärl per behandling för analytisk bestämning av testämnets koncentration i sedimentet.
It is recommended that, as a minimum, samples of the overlying water, the pore water and the sediment be analysed at the start (see paragraph 24) and at the end of the test, at the highest concentration and a lower one.
Man bör åtminstone analysera prover av överliggande vatten, porvatten och sediment i början (se punkt 24) och i slutet av testet, för den högsta koncentrationen och en lägre koncentration.
These determinations of test substance concentration inform about the behaviour/partitioning of the test substance in the water-sediment system.
Dessa bestämningar av testämneskoncentrationen ger information om testämnets beteende/fördelning i vatten-sedimentsystemet.
When intermediate measurements are made (e.g. at day 7) and if the analysis needs large samples which cannot be taken from test vessels without influencing the test system, analytical determinations should be performed on samples from additional test vessels treated in the same way (including the presence of test organisms) but not used for biological observations.
Om mellanliggande mätningar görs (t.ex. dag 7) och om det för analysen krävs stora prover som inte kan tas från testkärlen utan att testsystemet påverkas, bör de analytiska bestämningarna göras på prover som tas från extra testkärl som behandlas på samma sätt (inklusive förekomst av testorganismer) men som inte används för biologiska observationer.
In some cases it might not be possible to analyse concentrations in the pore water as the sample size is too small.
I vissa fall är det kanske inte möjligt att analysera koncentrationerna i porvattnet därför att provet är för litet.
Physical-chemical parameters
Fysikalkemiska parametrar
pH and temperature of the test vessels should be measured in an appropriate manner (see paragraph 10).
Testkärlens pH och temperatur bör mätas på lämpligt sätt (se punkt 10).
Hardness and ammonia should be measured in the controls and one test vessel at the highest concentration at the start and the end of the test.
Hårdhet och ammonium bör mätas i kontrollerna och ett testkärl vid den högsta koncentrationen i början och slutet av testet.
The purpose of this test is to determine the effect of the test substance on the development rate and the total number of fully emerged male and female midges, or in the case of the 10-day test effects on survival and weight of the larvae.
Syftet med detta test är att bestämma testämnets effekt på utvecklingshastigheten och totalantalet fullbildade han- och honmyggor eller, om det gäller ett tiodagarstest, effekterna på larvernas överlevnad och vikt.
If there are no indications of statistically different sensitivities of sexes, male and female results may be pooled for statistical analyses.
Om det inte finns indikationer på statistiskt avvikande känslighet för hanar och honor, kan resultaten poolas för statistiska analyser.
Effect concentrations expressed and based on dry weight, are calculated preferably based on measured sediment concentrations at the beginning of the test (see paragraph 38).
Effektkoncentrationerna uttryckta och baserade på torrvikt beräknas helst på grundval av uppmätta sedimentkoncentrationer vid testets början (se punkt 38).
To compute a point estimate for the EC50 or any other ECx, the per-vessel statistics may be used as true replicates.
För att beräkna en punktvis uppskattning av EC50 eller något annat ECx-värde, kan statistiken per kärl användas som äkta replikat.
In calculating a confidence interval for any ECx the variability among vessels should be taken into account, or it should be shown that this variability is so small that it can be ignored.
Vid beräkning av konfidensintervallet för ett ECx-värde bör variansen mellan kärl beaktas, eller så bör man påvisa att variansen är så liten att den kan ignoreras.
When the model is fitted by Least Squares, a transformation should be applied to the per-vessel statistics in order to improve the homogeneity of variance.
Om modellen anpassas med minsta kvadratmetoden bör transformation tillämpas på den kärlvisa statistiken i syfte att förbättra variansens homogenitet.
However, ECx values should be calculated after the response is transformed back to the original value.
ECx-värdena bör dock beräknas när responsen har transformerats tillbaka till det ursprungliga värdet.
When the statistical analysis aims at determining the NOEC/LOEC by hypothesis testing, the variability among vessels needs to be taken into account, e.g. by a nested ANOVA.
När syftet med den statistiska analysen är att bestämma NOEC/LOEC genom hypotestestning, måste variansen mellan kärl beaktas, t.ex. genom nästad ANOVA.
Alternatively, more robust tests (21) can be appropriate in situations where there are violations of the usual ANOVA assumptions.
Alternativt kan mer robust testning (21) vara lämplig i situationer där de vanliga ANOVA-antagandena inte gäller.
Emergence ratio
Kläckningsfrekvens
Emergence ratios are quantal data, and can be analyzed by the Cochran-Armitage test applied in step-down manner where a monotonic dose-response is expected and these data are consistent with this expectation.
Kläckningsfrekvenser är dikotoma (tvåpunktsfördelade) data och kan analyseras genom Cochran-Armitage test som tillämpas på step-down-grund där monoton dos-respons förväntas och dessa data stämmer överens med förväntningen.
If not, a Fisher’s exact or Mantel-Haenszel test with Bonferroni-Holm adjusted p-values can be used.
Om inte, kan Fishers exakta test eller ett Mantel-Haenszel-test med Bonferroni-Holm-korrigerade p-värden användas.
If there is evidence of greater variability between replicates within the same concentration than a binomial distribution would indicate (often referenced as “extra-binomial” variation), then a robust Cochran-Armitage or Fisher exact test such as proposed in (21), should be used.
Om det finns bevis på större variation mellan replikat inom samma koncentration än det som en binomial fördelning skulle indikera (ofta kallad extra-binomial fördelning), bör ett robust Cochran-Armitage-test eller Fischers exakta test användas, enligt det som föreslås i punkt 21.
The sum of midges emerged per vessel, ne, is determined and divided by the number of larvae introduced, na:
Det totala antalet myggor som kläckts per kärl, ne, bestäms och divideras med antalet tillsatta larver, na enligt följande:
number of midges emerged per vessel
antalet myggor som kläckts per kärl
number of larvae introduced per vessel
antalet larver som tillsatts per kärl
An alternative that is most appropriate for large sample sizes, when there is extra binomial variance, is to treat the emergence ratio as a continuous response and use procedures such as William’s test when a monotonic dose-response is expected and is consistent with these ER data.
Ett alternativ som bäst lämpar sig för stora provstorlekar, när det finns extra-binomial varians, är att behandla kläckningsfrekvensen som en kontinuerlig respons och använda förfaranden såsom William-test när monoton dos-respons förväntas och stämmer överens med dessa data för kläckningsfrekvens.
Dunnett’s test would be appropriate where monotonicity does not hold.
Dunnett-test är lämpligt i fall där det inte är hållbart med monotonicitet.
A large sample size is defined here as the number emerged and the number not emerging both exceeding five, on a per replicate (vessel) basis.
I detta sammanhang definieras begreppet ”stort prov” som ett prov där antalet kläckta och antalet inte kläckta överstiger fem, per replikatkärl.
To apply ANOVA methods values of ER should first be transformed by the arcsin-sqrt-transformation or Freeman-Tukey transformation to obtain an approximate normal distribution and to equalise variances.
Vid användning av ANOVA-metoder bör värdena för kläckningsfrekvens först transformeras genom arcsin-sqrt-transformation eller Freeman-Tukeytransformation för att få en ungefärlig normalfördelning och jämna ut varianserna.
The Cochran-Armitage, Fisher’s exact (Bonferroni), or Mantel-Haenszel tests can be applied when using the absolute frequencies.
Cochran-Armitage-test, Fishers exakta test (Bonferroni) eller Mantel-Haenszel-test kan användas när absoluta frekvenser används.
The arcsin-sqrt transformation is applied by taking the inverse sine (sin-1) of the square root of ER.
För att göra arcsin-sqrt-transformation tar man inverterad sinus (sin–1) av kvadratroten av kläckningsfrekvensen.
For emergence ratios, ECx-values are calculated using regression analysis (or e.g. probit (22), logit, Weibull, appropriate commercial software etc.).
ECx-värden för kläckningsfrekvenser beräknas med regressionsanalys (t.ex. probit (22), logit, Weibull, lämplig kommersiell mjukvara eller dylikt).
If regression analysis fails (e.g. when there are less than two partial responses), other non-parametric methods such as moving average or simple interpolation are used.
Om regressionsanalysen inte lyckas (om det t.ex. finns mindre än två partiella responser) används andra icke-parametriska metoder såsom glidande medelvärde eller enkel interpolering.
Development rate
Utvecklingshastighet
The development rate is the reciprocal of the development time (unit: 1/day) and represents that portion of larval development which takes place per day.
Värdet för utvecklingshastighet är det reciproka värdet av tidsenheten för utveckling: (enhet: 1/dag) och representerar den andel larvutveckling som sker per dag.
The development rate is preferred for the evaluation of these sediment toxicity studies as its variance is lower, and it is more homogeneous and closer to normal distribution as compared to development time.
Utvecklingshastigheten är det mått som helst ska användas för utvärdering av dessa sedimenttoxicitetsstudier eftersom variansen är lägre och homogenare samt närmare normalfördelningen i jämförelse med utvecklingstiden.
Hence, powerful parametric test procedures may be used with development rate rather than with development time.
Kraftfulla parametriska testförfaranden kan alltså användas baserade på utvecklingshastighet hellre än på utvecklingstid.
For development rate as a continuous response, ECx-values can be estimated by using regression analysis (e.g. (23), (24)).
För utvecklingshastighet som en kontinuerlig respons kan ECx-värden uppskattas med hjälp av regressionsanalys (t.ex. (23), (24)).
For the following statistical tests, the number of midges observed on inspection day × are assumed to be emerged at the mean of the time interval between day x and day x – l (l = length of the inspection interval, usually 1 day).
För efterföljande statistiska test antas antalet myggor observerade på inspektionsdag × ha kläckts i mitten av tidsintervallet mellan dag × och dag x-1 (l är inspektionsintervallets längd, i regel 1 dag). Genomsnittlig utvecklingshastighet per kärl (x) beräknas enligt följande:
The mean development rate per vessel (x) is calculated according to:
Genomsnittlig utvecklingshastighet per kärl (x) beräknas enligt följande:
mean development rate per vessel
genomsnittlig utvecklingshastighet per kärl
i index of inspection interval
i index för inspektionsintervall
number of midges emerged in the inspection interval i
antalet myggor som kläckts under inspektionsintervallet i
total number of midges emerged at the end of experiment (=
totalantalet myggor som kläckts i slutet av experimentet (=
development rate of the midges emerged in interval i
utvecklingshastigheten för myggor som kläckts under intervallet i
inspection day (days since application)
inspektionsdag (dagar från appliceringen)
length of inspection interval i (days, usually 1 day)
inspektionsintervallets längd i (dagar, i regel 1 dag)
The test report must at least provide the following information:
Testrapporten ska innehålla minst följande uppgifter:
physical nature and, where relevant, physical-chemical properties (water solubility, vapour pressure, partition coefficient in soil (or in sediment if available), stability in water, etc.);
Fysikalisk natur och, där det är relevant, fysikalkemiska egenskaper (vattenlöslighet, ångtryck, fördelningskoefficient i jord (eller i sediment, om tillgänglig), stabilitet i vatten osv.).
chemical identification data (common name, chemical name, structural formula, CAS number, etc.) including purity and analytical method for quantification of test substance.
Kemiska identifieringsdata (trivialnamn, kemiskt namn, strukturformel, CAS-nummer osv.) samt renhet och analysmetod för kvantifiering av testämnet.
test animals used: species, scientific name, source of organisms and breeding conditions;
Organismer som använts för testet: art, vetenskapligt namn, ursprung och odlingsbetingelser.
information on handling of egg masses and larvae;
Information om hantering av äggmassor och larver.
age of test animals when inserted into test vessels.
Organismernas ålder när de tillförs testkärlen.
sediment used, i.e. natural or formulated sediment;
Sediment som använts (naturligt eller syntetiskt).
for natural sediment, location and description of sediment sampling site, including, if possible, contamination history; characteristics: pH, organic carbon content, C/N ratio and granulometry (if appropriate).
För naturligt sediment, insamlingsplatsens belägenhet och beskrivning av sedimentet, inbegripet i mån av möjlighet föroreningshistoria och egenskaper: pH, halten organiskt kol, C/N-kvot och granulometri (om lämpligt).
preparation of the formulated sediment: ingredients and characteristics (organic carbon content, pH, moisture, etc. at the start of the test);
Beredning av syntetiskt sediment: beståndsdelar och egenskaper (halten organiskt kol, pH, fukthalt osv. vid testets början).
preparation of the test water (if reconstituted water is used) and characteristics (oxygen concentration, pH, conductivity, hardness, etc. at the start of the test);
Beredning av testvatten (om rekonstituerat vatten används) och egenskaper (syrehalt, pH, konduktivitet, hårdhet osv. vid testets början).
depth of sediment and overlying water;
Sedimentets och överliggande vattnets djup.
volume of overlying and pore water; weight of wet sediment with and without pore water;
Volymen för överliggande vatten och porvatten, vikten för vått sediment med och utan porvatten.
test vessels (material and size);
Testkärl (material och storlek).
method of spiking sediment: test concentrations used, number of replicates and use of solvent if any;
Metod för spikning av sediment: testkoncentrationer, antalet replikat och, i förekommande fall, använt lösningsmedel.
stabilisation equilibrium phase of the spiked sediment-water system: duration and conditions;
Fasen för stabilisering av jämvikt i systemet med spikat sediment och vatten: varaktighet och betingelser.
incubation conditions: temperature, light cycle and intensity, aeration (frequency and intensity);
Inkubationsbetingelser: temperatur, ljuscykel och intensitet, luftning (frekvens och intensitet).
detailed information on feeding including type of food, preparation, amount and feeding regime.
Detaljerad information om utfodringen, inklusive typ av foder, beredning, mängd och utfodringsschema.
the nominal test concentrations, the measured test concentrations and the results of all analyses to determine the concentration of the test substance in the test vessel;
Nominella testkoncentrationer, uppmätta testkoncentrationer och resultaten av alla analyser för bestämning av testämnets koncentration i testkärl.
water quality within the test vessels, i.e. pH, temperature, dissolved oxygen, hardness and ammonia;
Vattenkvaliteten i testkärlen – pH, temperatur, upplöst syre, hårdhet och ammonium.
replacement of evaporated test water, if any;
Ersättning av avdunstat testvatten, i förekommande fall.
number of emerged male and female midges per vessel and per day;
Antalet kläckta hon- och hanmyggor per kärl och dag.
number of larvae which failed to emerge as midges per vessel;
Antalet larver som inte utvecklats till myggor, per kärl.
mean individual dry weight of larvae per vessel, and per instar, if appropriate;
Genomsnittlig individuell torrvikt för larver per kärl och per stadium, om lämpligt.
percent emergence per replicate and test concentration (male and female midges pooled);
Procentandel kläckta exemplar per replikat- och testkoncentration (han- och honmyggor poolade).
mean development rate of fully emerged midges per replicate and treatment rate (male and female midges pooled);
Genomsnittlig utvecklingshastighet för fullbildade myggor per replikat och behandlingsnivå (han- och honmyggor poolade).
estimates of toxic endpoints e.g. ECx (and associated confidence intervals), NOEC and/or LOEC,, and the statistical methods used for their determination;
Uppskattning av toxiska endpoints t.ex. ECx (och associerade konfidensintervall), NOEC och/eller LOEC och de statistiska metoder som använts för bestämning av dem.
discussion of the results, including any influence on the outcome of the test resulting from deviations from this Test Method.
Diskussion av resultaten, inbegripet inverkan på testresultatet som kan tillskrivas avvikelser från denna testmetod.
Test Method C.8 of this Annex, Toxicity for Earthworms.
Testmetod C.8 i denna bilaga, Toxicitet hos daggmaskar.
For the purpose of this Test Method the following definitions are used:
I denna testmetod gäller följande definitioner:
Formulated sediment or reconstituted, artificial or synthetic sediment, is a mixture of materials used to mimic the physical components of a natural sediment.
syntetiskt sediment: rekonstituerat, konstgjort sediment som är en blandning av material avsedda att efterlikna de fysiska beståndsdelarna i naturligt sediment.
Overlying water is the water placed over sediment in the test vessel.
överliggande vatten: det vatten som hålls ovanför sedimentet i testkärlet.
Interstitial water or pore water is the water occupying space between sediment and soil particles.
porvatten: det vatten som finns i mellanrummen mellan sediment- och jordpartiklar.
Spiked sediment is sediment to which test substance has been added.
spikat sediment: sediment med tillsatt testämne.
Recommendations for culture of Chironomus riparius
Rekommendationer för odling av Chironomus riparius
Chironomus larvae may be reared in crystallising dishes or larger containers.
Chironomus-larver kan odlas i kristalliseringskärl eller stora behållare.
Fine quartz sand is spread in a thin layer of about 5 to 10 mm deep over the bottom of the container.
Fin kvartssand sprids som ett tunt skikt på cirka 5–10 mm på behållarens botten.
Kieselguhr (e.g. Merck, Art 8117) has also been shown to be a suitable substrate (a thinner layer of up to a very few mm is sufficient).
Även kiselgur (t.ex. Merck, Art. 8117) har visat sig vara ett lämpligt substrat (det räcker med ett tunt lager på några mm).
Suitable water is then added to a depth of several cm.
Lämpligt vatten tillsätts till ett djup på flera cm.