natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For many species of terrestrial enchytraeids the individual weight is very low (e.g. 5-10 mg wet weight per individual for Enchytraeus albidus and less for Enchytraeus crypticus or Enchytraeus luxuriosus); in order to perform the weight measurements and chemical analysis, it may be necessary to pool the worms of the replicate test vessels (i.e. all the worms of a replicate vessel will be used for obtaining one analytical tissue result).
Många arter av jordlevande enchytraeider har en mycket låg individuell vikt (t.ex. 5–10 mg våtvikt per individ för Enchytraeus albidus och mindre för Enchytraeus crypticus eller Enchytraeus luxuriosus). För vägning och kemisk analys kan det vara nödvändigt att poola maskarna i replikattestkärlen (dvs. alla maskar i ett replikatkärl för att få de analytiska vävnadsresultaten).
20 individual enchytraeids are added to each replicate, and at least three replicates should be used.
Tjugo individer enchytraeider tillförs varje replikat, och antalet replikat bör vara minst tre.
If the analytical detection limit of the test chemical is high, more worms may be necessary.
Om testkemikaliens analytiska detektionsgräns är hög kan det krävas flera maskar.
For test species with higher individual weight (Eisenia fetida and Eisenia andrei), replicate vessels containing one individual can be used.
För testarter med högre individuell vikt (Eisenia fetida och Eisenia andrei) kan replikatkärl med en enda individ användas.
The earthworms used in a test should be of similar weight (e.g. Eisenia fetida and Eisenia andrei should have an individual weight of 250-600 mg).
Daggmaskar som används i ett test bör ha liknande vikt (t.ex. Eisenia fetida och Eisenia andrei bör ha en individuell vikt på 250–600 mg).
Enchytraeids (e.g. Enchytraeus albidus) should have a length of approximately 1 cm.
Enchytraeider (t.ex. Enchytraeus albidus) bör ha en längd på cirka 1 cm.
All worms used in a particular test should come from the same source, and should be adult animals with clitellum (see Appendix 5).
Alla maskar som används i ett visst test bör komma från samma källa och vara vuxna individer med clitellum (gördel) (se tillägg 5).
Since the weight and age of an animal might have an effect on the BAF-values (e.g. due to varying lipid content and/or presence of eggs), these parameters should be recorded accurately and taken into account in the interpretation of results.
Eftersom ett djurs vikt och ålder kan påverka BAF-värdena (t.ex. beroende på varierande fettinnehåll och/eller förekomsten av ägg), bör dessa parametrar registreras noggrant och beaktas vid tolkningen av resultaten.
In addition, cocoons can be deposited during the exposure period, which will also have an impact on the BAF values.
Dessutom kan kokonger deponeras under exponeringsperioden, vilket också påverkar BAF-värdena.
It is recommended that a sub-sample of the test worms be weighed before the test in order to estimate the mean wet and dry weights.
Det rekommenderas att ett delprov av testmaskarna vägs före testet för att få en uppskattning av våt och torr medelvikt.
A high soil-to-worm ratio should be used in order to minimise the decrease of the test chemical concentration in the soil during the uptake phase.
Förhållandet mellan jord och maskar bör vara högt för att minimera sjunkande koncentration av testkemikalien i jorden under upptagningsfasen.
For Eisenia fetida and Eisenia andrei a minimum amount of 50 g dry weight (d.w.) of soil per worm, and for enchytraeids, a minimum of 10-20 g d.w. of soil per test vessel are recommended.
För Eisenia fetida och Eisenia andrei bör det finnas en minimimängd på 50 g jord (torrvikt) per mask och för enchytraeider rekommenderas en minimimängd på 10–20 g jord (torrvikt) per testkärl.
The vessels should contain a soil layer of 2-3 cm (enchytraeids) or 4-5 cm (earthworms).
Jordlagret i kärlen bör vara 2–3 cm (enchytraeider) eller 4–5 cm (daggmaskar).
The worms used in a test are removed from the culture (e.g. enchytraeids by using jeweller’s tweezers).
Testmaskarna tas bort ur odlingen (t.ex. enchytraeider med användning av guldsmedstång).
Adult animals are transferred to non-treated test soil for acclimation, and fed (see paragraph 36).
Vuxna exemplar överförs till obehandlad testjord för acklimatisering och ges föda (se punkt 36).
If the test conditions differ from the culture conditions, an acclimation phase of 24-72 h should be sufficient to adapt the worms to the test conditions.
Om testbetingelserna avviker från odlingsbetingelserna bör en acklimatiseringsfas på 24–72 timmar vara tillräcklig för att maskarna ska anpassa sig till testbetingelserna.
After acclimation, earthworms are rinsed by transfer to glass dishes (e.g. petri dishes) containing clean water, and subsequently weighed before they are added to the test soil.
Efter acklimatiseringen sköljs maskarna genom att överföras till glaskärl (t.ex. petriskålar) som innehåller rent vatten, och därefter vägs maskarna innan de överförs till testjorden.
Prior to weighing, excess water should be removed from the worms by gently touching them against the edge of the dish or by blotting them cautiously dry by using a slightly moistened paper towel.
Före vägningen ska överskottsvatten avlägsnas från maskarna genom att försiktigt stryka av dem längs skålens kant eller försiktigt torka av dem med en lätt fuktad pappersduk.
Burrowing behaviour of the test organisms should be observed and recorded.
Testorganismernas nedgrävningsbeteende bör observeras och registreras.
In tests with earthworms, the animals (control and treatments) normally burrow in the soil within a period of a few hours; this should be checked no later than 24 h after addition of the worms to the test vessels.
I test med daggmaskar gräver sig djuren (kontroll och behandling) in i jorden inom några timmar; detta bör kontrolleras senast 24 timmar efter att maskarna har placerats i testkärlen.
If the earthworms fail to burrow in the soil (e.g. more than 10 % over more than half of the uptake phase), this indicates that either the test conditions are not appropriate or the test organisms are not healthy.
Om maskarna inte gräver in sig i jorden (t.ex. över 10 % mer än hälften av maskarna i upptagningsfasen), tyder detta på att testbetingelserna är olämpliga eller att testorganismerna inte är friska.
In such a case the test should be stopped and repeated.
Då bör testet stoppas och göras på nytt.
Enchytraeids mainly live in the interstitial pores of the soil, and frequently their integument may be only partly in contact with the surrounding substrate; exposure of burrowing and non-burrowing enchytraeids is assumed to be equivalent and non-burrowing of the enchytraeids does not necessarily require the repetition of the test.
Enchytraeiderna vistas i huvudsak i jordens håligheter och det är vanligt att deras integument inte alltid kommer i kontakt med omgivande substrat; exponeringen av grävande och icke-grävande enchytraeider antas vara ekvivalent och om enchytraeiderna inte gräver in sig i jorden betyder detta inte nödvändigtvis att testet måste upprepas.
Feeding should be envisaged when a soil with low total organic carbon content is used.
Utfodring rekommenderas om jorden har låg halt totalt organiskt kol.
When an artificial soil is used, a weekly feeding rate (i.e. the worms should be fed once a week) of 7 mg of dried dung per g soil dry weight is recommended for earthworms, and a weekly rate of 2-2,5 mg of ground oat flakes per g soil dry weight is recommended for enchytraeids (11).
Om syntetisk jord används rekommenderas veckovis utfodring (dvs. maskarna får föda en gång i veckan) med 7 mg torr dynga per g torrvikt jord för daggmaskar och en veckovis mängd på 2–2,5 mg malda havreflingor per g torrvikt jord för enchytraeider (11).
The first food ration should be mixed with the soil immediately before the test organisms are added.
Den första portionen föda bör blandas med jorden omedelbart innan testorganismerna tillförs.
Preferably the same type of food like in the cultures should be used (see Appendix 5).
Helst ska samma typ av föda som i odlingarna användas (tillägg 5).
The tests should be carried out under a controlled 16/8 hours light/dark cycle, preferably 400 to 800 lx in the area of the test vessels (3).
Testningarna bör genomföras med en kontrollerad ljus/mörker-cykel på 16/8 timmar, helst med 400–800 lx i området där testkärlen finns (3).
The test temperature should be 20 ± 2 °C throughout the test.
Testtemperaturen bör vara 20 ± 2 °C under hela testet.
A single concentration is used.
En enda koncentration används.
Situations where additional concentration(s) is(are) required should be justified.
Om ytterligare koncentrationer används måste detta motiveras.
If toxicity (ECx) of the test chemical is close to the analytical detection limit, the use of radiolabelled test chemical with high specific radioactivity is recommended.
Om testkemikaliens toxicitet (ECx) ligger nära den analytiska detektionsgränsen rekommenderas användning av radioaktivmärkt testkemikalie med hög specifik radioaktivitet.
For metals, the concentration should be above the background level in tissue and soil.
För metaller bör koncentrationen ligga över bakgrundsnivåerna i vävnad och jord.
Replicates
Replikat
For the kinetic measurements (uptake and elimination phase), the minimum number of treated replicate vessels should be three per sampling point.
För kinetikmätningar (upptagnings- och elimineringsfaserna) bör det finnas minst tre behandlade replikatkärl per provtagningspunkt.
The total number of replicates prepared should be sufficient to cover all sampling times during the uptake and the elimination phase.
Totalantalet replikat som bereds bör vara tillräckligt för att täcka alla provtagningstidpunkter under upptagnings- och elimineringsfaserna.
For the biological observations and measurements (e.g. dry-to-wet weight ratio, lipid content) and for the analysis of background concentrations in worms and soil, at least 12 replicate vessels of a negative control (four sampled at start, four at end of uptake, and four at end of elimination) should be provided if no solvent other than water is used.
För biologiska observationer och mätningar (t.ex. förhållandet mellan torrvikt och våtvikt, fettinnehåll) samt för analys av bakgrundskoncentrationerna i maskar och jord, bör minst 12 replikatkärl med negativ kontroll (fyra provtagningar vid start, fyra vid slutet av upptagningen och fyra vid slutet av elimineringen) beredas om inget annat lösningsmedel än vatten används.
If any solubilising agent is used for application of the test chemical, a solvent control (four replicate vessels should be sampled at start, four at the end of the uptake phase, and four at the end of the elimination phase) containing all constituents except for test item should be run in addition to the treated replicates.
Om solubiliseringsmedel används för applicering av testkemikalien bör det finnas en lösningsmedelskontroll (fyra replikatkärl för provtagningen vid start, fyra vid slutet av upptagningen och fyra vid slutet av elimineringen) som innehåller alla beståndsdelar utom testämnet och som körs i tillägg till de behandlade replikaten.
In this case, four additional replicate vessels of a negative control (no solvent) may also be provided for optional sampling at the end of the uptake phase.
I detta fall kan fyra ytterligare replikatkärl med negativ kontroll (inget lösningsmedel) även användas för frivillig provtagning i slutet av upptagningsfasen.
These replicates can be compared biologically with the solvent control in order to gain information on a possible influence of the solvent on the test organisms.
Dessa replikat kan jämföras biologiskt med lösningsmedelskontrollen för att få information om eventuella effekter av lösningsmedlet på testorganismerna.
It is recommended establishing a sufficient number of additional reserve replicate vessels (e.g. eight) for treatment and control(s).
Likaså rekommenderas ett tillräckligt antal ytterligare reservreplikatkärl (t.ex. åtta) för behandling och kontroll(er).
Frequency of soil quality measurements
Frekvens för kvalitetsmätning av jord
Soil pH, soil moisture content and the temperature (continuously) in the test room should be measured at the start and end of the uptake and elimination phases.
Vid start och slut av upptagnings- och elimineringsfaserna bör jordens pH, fukthalt och temperatur mätas (kontinuerligt).
Once per week the soil moisture content should be controlled by weighing the test vessels and comparing actual weights with initial weights at test start.
En gång per vecka bör jordens fukthalt kontrolleras genom att väga testkärlen och jämföra de vikterna med vikterna vid testets början.
Water losses should be compensated by adding deionised water.
Vattenförlust bör kompenseras genom tillförsel av avjoniserat vatten.
Sampling and analysis of worms and soil
Provtagning och analys av maskar och jord
An example of schedule for the uptake and elimination phases in earthworm and enchytraeid bioaccumulation tests is given in Appendix 3.
Exempel på ett schema för upptagnings- och eliminationsfaserna i bioackumuleringstest för daggmaskar och enchytraeider finns i tillägg 3.
The soil is sampled from the test vessels for the determination of test chemical concentration before inserting the worms, and during the uptake and elimination phases.
Jordprover tas från testkärlen för bestämning av koncentrationen testkemikalie innan maskarna tillförs, samt under upptagnings- och elimineringsfaserna.
During the test the concentrations of test chemical are determined in the worms and the soil.
Under testet bestäms koncentrationerna testkemikalie i maskarna och jorden.
In general, total soil concentrations are measured.
I regel mäts de totala koncentrationerna i jorden.
As an option, concentrations in pore water may be measured; in such case, rationale and appropriate methods should be provided prior to initiation of a study, and included in the report.
Alternativt kan koncentrationerna i porvatten mätas, och då bör motivering och lämpliga metoder fastställas innan studien inleds, och inkluderas i rapporten.
The worms and soil are sampled at least at six occasions during the uptake and the elimination phases.
Prover av maskar och jord tas minst sex gånger under upptagnings- och elimineringsfaserna.
If the stability of a test chemical is demonstrated, the number of soil analyses can be reduced.
Om man kan påvisa att testkemikalien är stabil, kan antalet jordanalyser reduceras.
It is recommended analysing at least three replicates at the beginning and at the end of the uptake phase.
Det rekommenderas att minst tre replikat analyseras i början och slutet av upptagningsfasen.
If the concentration in soil measured at the end of the uptake phase deviates from the initial concentration by more than 30 %, the soil samples taken at other dates should also be analysed.
Om koncentrationen i jord uppmätt i slutet av upptagningsfasen avviker från den ursprungliga koncentrationen med mer än 30 %, bör även jordprover som tagits andra dagar analyseras.
Remove the worms of a given replicate from the soil at each sampling time (e.g. after spreading the soil of the replicate on a shallow tray and picking the worms using soft jewellers’ tweezers), rinse them quickly with water in a shallow glass or steel tray.
Ta bort maskarna i ett givet replikat varje gång prover ska tas (t.ex. genom att sprida ut jorden på en grund bricka och plocka bort maskarna med en mjuk guldsmedstång), och skölj dem snabbt i vatten på en grund glas- eller stålbricka.
Remove excess water (see paragraph 34).
Avlägsna överflödigt vatten (se punkt 34).
Transfer the worms carefully to a pre-weighed vessel, weigh them instantly, including gut content.
Överför maskarna försiktigt till ett förhandsvägt kärl och väg omedelbart kärlet plus maskar inklusive tarminnehåll.
The earthworms (Eisenia sp.) should then be allowed to purge their gut overnight e.g. on a moist filter paper in a covered petri dish (see paragraph 34).
Därefter bör daggmaskarna (Eisena sp.) lämnas över natten för tömning av tarminnehåll, t.ex. på ett fuktat filterpapper i en täckt petriskål (se punkt 34).
After purging, the weight of the worms should be determined in order to assess a possible decrease in biomass during the test (see validity criteria in paragraph 17).
Efter tömningen bestäms maskarnas vikt i syfte att bedöma eventuell minskning av biomassa under testet (se giltighetskriterierna i punkt 17).
Weighing and tissue analysis of Enchytraeids is carried out without purging, as this is technically difficult due to the small size of these worms.
Vägning och vävnadsanalys av enchytraeider görs utan tarmtömning, eftersom detta är tekniskt svårt på grund av att maskarna är så små.
After final weight determination, the worms should be killed immediately, using the most appropriate method (e.g. using liquid nitrogen, or freezing at temperatures below – 18 °C).
Efter slutlig viktbestämning bör maskarna avlivas omedelbart med lämpligaste metod (t.ex. med flytande kväve eller nedfrysning under 18 °C).
During the elimination phase, the worms replace contaminated gut contents with clean soil.
Under elimineringsfasen ersätter maskarna förorenat tarminnehåll med ren jord.
This means, measurements in un-purged worms (enchytraeids in this context) sampled immediately before the elimination phase include contaminated gut soil.
Det betyder att mätningar i otömda maskar (i detta fall enchytraeider) som tas ut omedelbart före elimineringsfasen inkluderar förorenad jord i tarmen.
The soil and worm samples should be preferably analysed immediately after removal (i.e. within 1-2 days) in order to prevent degradation or other losses, and it is recommended calculating the approximate uptake and elimination rates as the test proceeds.
Jord- och maskproverna bör helst analyseras omedelbart efter att de tagits (inom 1–2 dagar) för att undvika nedbrytning eller andra förluster, och det rekommenderas att ungefärliga värden för upptagning och eliminering beräknas medan testet framskrider.
If the analysis is delayed, the samples should be stored by an appropriate method, e.g. by deep-freezing (≤ – 18 °C).
Om analysen måste vänta, bör proverna förvaras på lämpligt sätt, t.ex. i djupfryst form (≤ –18 °C).
It should be checked that the precision and reproducibility of the chemical analysis, as well as the recovery of the test chemical from soil and worm samples are satisfactory for the given method; the extraction efficiency, the limit of detection (LOD) and the limit of quantification (LOQ) should be reported.
Kontroll bör göras av att den kemiska analysens precision och reproducerbarhet, såväl som extraktion av testkemikalie från jord- och maskproverna är tillfredsställande för den metod det gäller, och extraktionseffektiviteten, detektionsgränsen (LOD) och kvantifieringsgränsen (LOQ) bör rapporteras.
Likewise it should be checked that the test chemical is not detectable in the control vessels in concentrations higher than background.
Dessutom bör man kontrollera att testkemikalien inte kan detekteras i kontrollkärlen i koncentrationer som är högre än bakgrunden.
When the concentration of the test chemical in the test organism Ca is > 0 in the control worms, this should be included in the calculation of the kinetic parameters (see Appendix 2).
Om koncentrationen av testkemikalie i testorganismen Ca är > 0 i kontrollmaskarna, bör detta inkluderas i beräkningen av de kinetiska parametrarna (se tillägg 2).
All samples should be handled throughout the test to minimise contamination and loss (e.g. resulting from adsorption of the test chemical on the sampling device).
Genom hela testet bör alla prover hanteras med tanke på minsta möjliga förorening och förlust (t.ex. till följd av att testkemikalien adsorberas på provtagningsutrustningen).
When working with radiolabelled test chemicals, it is possible to analyse parent and metabolites.
När radioaktivitetsmärkta testkemikalier används är det möjligt att analysera ursprunglig kemikalie och metaboliter.
Quantification of parent test chemical and metabolites at steady state or at the end of the uptake phase provides important information.
Kvantifiering av ursprunglig testkemikalie och metaboliter vid stabilt tillstånd eller i slutet av upptagningsfasen ger viktig information.
The samples should then be “cleaned up” so that the parent test chemical can be quantified separately.
Proverna bör sedan putsas upp så att den ursprungliga testkemikalien kan kvantifieras separat.
If single metabolites exceed 10 % of total radioactivity in the analysed sample(s), the identification of these metabolites is recommended.
Om mängden av en enskild metabolit överskrider 10 % av den totala radioaktiviteten i det analyserade provet (de analyserade proverna) rekommenderas identifiering av dessa metaboliter.
The overall recovery, and the recovery of test chemical in worms, soil, and if used, in traps containing absorbents to retain evaporated test chemical, should be recorded and reported.
Det totala utbytet, och utbytet av testkemikalie i maskar, jord och i förekommande fall fällor med adsorbenter som fångar upp avdunstad testkemikalie, bör registreras och rapporteras.
Pooling of the individuals sampled from a given test vessel is acceptable for enchytraeid worms which are smaller than earthworms.
Pooling av enskilda prover från ett givet testkärl godtas för enchytraeider som är mindre än daggmaskar.
If pooling involves the reduction of the number of replicates, this limits the statistical procedures which can be applied to the data.
Om poolingen inbegriper minskning av antalet replikat, begränsas de statistiska förfaranden som kan användas på erhållna data.
If a specific statistical procedure and power are required, then an adequate number of replicate test vessels should be included in the test to accommodate the desired pooling, procedure and power.
Om det krävs ett specifikt statistiskt förfarande och en specifik tyngd, bör testet omfatta tillräckligt många replikatkärl för att få den pooling, det förfarande och den tyngd som önskas.
It is recommended that the BAF be expressed both as a function of total dry weight and, when required (i.e. for highly hydrophobic chemicals), as a function of the lipid content.
Det rekommenderas att BAF uttrycks både som funktion av total torrvikt och, när så krävs (t.ex. för starkt hydrofoba kemikalier), som en funktion av fettinnehållet.
Suitable methods should be used for determination of lipid content (some existing methods – e.g. (31) (58) – should be adapted for this purpose).
Lämpliga metoder bör användas för bestämning av fettinnehållet (vissa befintliga metoder, t.ex. (31) (58), bör anpassas för ändamålet).
These methods use a chloroform/methanol extraction technique.
Dessa metoder bygger på en kloroform/metanol-extraktionsteknik.
However, to avoid the use of chlorinated solvents, a modification of the Bligh and Dyer method (9) as described in (17) should be used.
För att undvika klorerade lösningsmedel bör en modifiering av Bligh och Dyer-metoden (9) enligt beskrivningen i (17) användas.
Since the various methods may not give identical values, it is important to give details of the method used.
Eftersom de olika metoderna inte ger identiska värden, är det viktigt att beskriva den metod som använts.
When possible, i.e. if sufficient worm tissue is available, the lipid analysis should ideally be made on the same sample or extract as the one used for analysis of the test chemical, since the lipids often have to be removed from the extract before it can be analysed chromatographically (49).
Om det är möjligt, dvs. om det finns tillräckligt med maskvävnad att tillgå, bör analysen av fettinnehåll helst göras på samma prov eller extrakt som det som används för analys av testkemikalien, eftersom fetterna ofta måste avlägsnas från extraktet innan det kan analyseras kromatografiskt (49).
Alternatively, control animals may be used to measure the lipid content, which can then be used to normalise BAF values.
Alternativt kan kontrolldjur användas för att mäta fettinnehållet, som sedan kan användas för att normalisera BAF-värdena.
This latter approach reduces the contamination of equipment with the test chemical.
Det senare förfarandet minskar föroreningen av utrustningen med testkemikalien.