natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Sera can be tested at a single dilution of 1 in 5 (spot test method) or may be titrated (serum titration method) to give dilution end-points.
Serum kan testas i en enkel spädning på 1:5 (spot test-metod) eller kan titreras (serumtitreringsmetod) så att en sluttiter erhålls.
Inhibition values higher than 50 % may be regarded as positive.
Inhibition på mer än 50 % ska ses som positiva.
The test protocol described hereinafter is used in the Regional Reference Laboratory for African horse sickness in Pirbright, United Kingdom.
Nedan beskrivna testprotokoll används vid Regional Reference Laboratory for African horse sickness i Pirbright, Förenade kungariket.
Preparation of plates
Beredning av plattorna
Coat ELISA plates with AHSV antigen extracted from infected cell cultures and diluted in carbonate/bicarbonate buffer, pH 9,6.
Ladda Elisa-plattorna med AHSV-antigen från infekterade cellkulturer i en karbonat/natriumvätekarbonat buffert, pH 9,6.
Incubate the ELISA plates overnight at 4 °C.
Inkubera Elisa-plattorna vid 4 oC över natten.
Wash plates three times by flooding and emptying the wells with phosphate buffered saline (PBS), pH 7, 2 to 7,4 pH, and blot dry on adsorbent paper.
Tvätta plattorna tre gånger med fosfatbuffrad koksaltlösning (PBS), pH 7,2–7,4, töm och avlägsna överskottsbuffert med läskpapper.
Control wells
Kontrollbrunnar
Titrate the positive control sera in a twofold dilution series, from 1 in 5 to 1 in 640, across column 1 in blocking buffer (PBS containing 0,05 % (v/v) Tween-20, 5,0 % (w/v) skimmed-milk powder (Cadbury’s MarvelTM) and 1 % (v/v) adult bovine serum) to give a final volume of 50 μl/well.
Titrera positivt kontrollserum i en tvåfaldig spädningsserie, från 1:5 till 1:640, i kolumn 1 i en blockerande buffert (PBS innehållande 0,05 % (v/v) Tween 20, 5,0 % (w/v) skummjölkspulver (Cadburys MarvelTM) och 1 % (v/v) serum från vuxet nötkreatur) så att en slutlig volym på 50 μl/brunn erhålls.
Add 50 μl of the negative control serum at a dilution of 1 in 5 (10 μl serum + 40 μl blocking buffer) to wells A and B of column 2.
Tillsätt 50 μl av negativt kontrollserum i en spädning på 1:5 (10 μl serum + 40 μl blockerande buffert) i brunnarna A och B i kolumn 2.
Add 100 μl/well of blocking buffer to wells C and D of column 2 (blank).
Tillsätt 100 μl blockerande buffert per brunn i brunnarna C och D i kolumn 2 (blank).
Add 50 μl of blocking buffer to wells E, F, G and H of column 2 (guinea pig control).
Tillsätt 50 μl blockerande buffert i brunnarna E, F, G och H i kolumn 2 (marsvinskontroll).
Spot test method
Spot test-metod
Add a 1 in 5 dilution of each test serum in blocking buffer to duplicate wells of columns 3 to 12 (10 μl sera + 40 μl blocking buffer).
Sätt en spädning på 1:5 av varje testserum i blockerande buffert till två brunnar i kolumnerna 3–12 (10 μl serum + 40 μl blockerande buffert).
Serum titration method
Serumtitreringsmetod
Prepare a twofold dilution series of each test sample (1 in 5 to 1 in 640) in blocking buffer across eight wells of single columns (3 to 12).
Preparera en tvåfaldig spädningsserie av varje prov (från 1:5 till 1:640) i blockerande buffert, en brunn per spädning i åtta brunnar i kolumnerna 3–12.
then
och
Add 50 μl of guinea pig antisera, pre-diluted in blocking buffer, to all wells except the blank wells of the ELISA plate (all wells now contain a final volume of 100 μl).
Sätt 50 μl marsvinsantiserum, som spätts i blockerande buffert, till alla brunnar på Elisa-plattorna utom brunnarna som är blanka (varje brunn ska nu innehålla sammanlagt 100 μl).
Incubate for 1 hour at 37 °C on an orbital shaker.
Inkubera på skak vid 37 °C under en timme.
Wash plates three times and blot dry as before.
Tvätta plattorna tre gånger och avlägsna överskottsbuffert med läskpapper.
Add 50 μl of rabbit anti-guinea-pig horseradish peroxidase (HRP) conjugate pre-diluted in blocking buffer to each well.
Tillsätt 50 μl HRP-konjugerat kanin-antimarsvin som spätts med blockerande buffert i varje brunn.
Prepare the chromogen OPD (OPD = ortho-phenyldiamine) solution according to the manufacturers’ instructions (0,4 mg/ml in sterile distilled water) just before use.
Preparera kromogen/substrat-lösningen OPD (ortho-phenyldiamine) i enlighet med tillverkarens instruktioner (0,4 mg/ml i sterilt destillerat vatten) strax innan den ska användas.
Add substrate (hydrogen peroxide = H2O2) to give a final concentration of 0,05 % (v/v) (1 in 2000 of a 30 % solution of H2O2).
Tillsätt en sådan mängd substrat (väteperoxid = H2O2) att den slutliga koncentrationen blir 0,05 % (v/v) (1:2000 av en 30 %-ig lösning av H2O2).
Add 50 μl of the OPD solution to each well and leave plates on the bench for 10 minutes at ambient temperature.
Sätt 50 μl OPD-lösning till varje brunn och låt plattorna stå i 10 minuter i rumstemperatur.
Stop the reaction by the addition of 50 μl/well of 1M sulphuric acid (H2SO4).
Stoppa reaktionen genom att tillsätta 50 μl 1M svavelsyra (H2SO4) per brunn.
Reading
Avläsning
Read spectrophotometrically at 492 nm.
Avläs spektrofotometriskt vid 492 nm.
Expression of results
Redovisning av resultaten
Using a software package print out the optical density (OD) values, and the percentage inhibition (PI) for test and control sera based on the mean value recorded in the four guinea pig control wells.
Använd ett dataprogram för att skriva ut värden för optisk täthet (optical density, OD) och den procentuella inhibitionen (PI) för test- och kontrollsera på grundval av det medelvärde som erhållits för de fyra marsvinskontrollerna.
The data expressed as OD and PI values are used to determine whether the test has performed within acceptable limits.
OD- och PI-värden används för att bedöma testens tillförlitlighet.
The upper control limits (UCL) and lower control limits (LCL) for the guinea pig control are between OD values 1,4 and 0,4 respectively.
De övre (UCL) och de undre kontrollgränserna (LCL) för marsvinskontrollen ligger mellan OD-värdena 1,4 respektive 0,4.
The end-point titre for the positive control based on 50 % PI should be 1 in 240 (within a range from 1 in 120 to 1 in 480).
Titern för den positiva kontrollen som baseras på 50 % PI ska vara 1:240 (mellan 1:120 och 1:480).
Any plate that fails to conform to the above criteria must be rejected.
Plattor som inte uppfyller dessa kriterier ska inte godkännas.
However, if the positive control serum titre is greater than 1 in 480 and the test samples are still negative then the negative test samples can be accepted.
Om titern för positivt kontrollserum är högre än 1:480 och proverna fortfarande är negativa kan negativa prover emellertid godtas.
The duplicate negative control serum wells and the duplicate blank wells should record PI values between + 25 % and – 25 %, and between + 95 % and + 105 %, respectively.
De negativa kontrollerna och blank ska ge PI-värden på mellan + 25 % och - 25 % respektive mellan + 95 och + 105 %.
Failure to be within these limits does not invalidate the plate but does suggest that background colour is developing.
Om resultaten ligger utanför dessa värden betyder detta inte att plattan inte kan godkännas, men att bakgrundsfärg håller på att utvecklas.
The diagnostic threshold (cut-off value) for test sera is 50 % (PI 50 %).
Det diagnostiska tröskelvärdet (cut-off-värdet) för testserum är 50 % (PI 50 %).
Samples recording PI values greater than 50 % are recorded as positive.
Prov som ger PI-värden på mer än 50 % ska registreras som positiva.
Samples recording PI values lower than 50 % are recorded as negative.
Prov som ger PI-värden på mindre än 50 % ska registreras som negativa.
Samples that record PI values above and below the threshold for the duplicate wells are considered doubtful.
Prov som ger resultat som ligger över eller under tröskelvärdena för kontrollerna ska betraktas som tveksamma.
Such samples may be re-tested in the spot test and by titration.
Sådana prov bör testas om med spot test-metoden eller genom titrering.
Positive samples may also be titrated to provide an indication of the degree of positivity.
Positiva prover kan också titreras för att bestämma sluttitern.
Spot test layout
Spot test-schema
–ve cont negative control.
–ve Cont. negativ kontroll
+ ve cont positive control.
+ ve Cont. positiv kontroll
GP cont guinea pig control.
GP Cont. marsvinskontroll
Test sera
Serumtitreringsschema
–ve cont.
–ve. Cont.
INDIRECT ELISA FOR THE DETECTION OF ANTIBODIES TO AFRICAN HORSE SICKNESS VIRUS (AHSV) (PRESCRIBED TEST)
INDIREKT ELISA FÖR PÅVISANDE AV ANTIKROPPAR MOT AFRIKANSK HÄSTPESTVIRUS (AHSV) (FÖRESKRIVEN TEST)
The test described hereinafter is in accordance with the test description in Chapter 2.1.11 of the OIE Manual of Standards for Diagnostic Tests and Vaccines, fourth edition, 2000.
Denna test följer testbeskrivningen i kapitel 2.1.11 i OIE:s Manual of Standards for Diagnostic Tests and Vaccines, fjärde utgåvan, 2000.
The recombinant VP7 protein has been used as antigen for AHS virus antibody determination with a high index of sensitivity and specificity.
Rekombinant VP7-protein har använts som antigen för påvisande av antikroppar mot AHSV och ger hög sensitivitet och specificitet.
Other advantages are that it is stable and not infective.
Andra fördelar är att det är stabilt och inte infektiöst.
Solid phase
Fast fas
ELISA plates are coated with recombinant AHSV-4 VP7 diluted in carbonate/bicarbonate buffer, pH 9,6.
Elisa-plattorna laddas med rekombinant AHSV-4 VP7 i en karbonat/natriumvätekarbonat buffert, pH 9,6.
Incubate plates overnight at 4 °C.
Inkubera plattorna vid 4 °C över natten.
Wash the plates five times with distilled water containing 0,01 % (v/v) Tween 20 (washing solution).
Skölj plattorna fem gånger med destillerat vatten innehållande 0,01 % (v/v) Tween 20 (tvättlösning).
Gently tap the plates onto absorbent material to remove any residual wash.
Tryck försiktigt plattorna mot ett absorberande material så att eventuella tvättrester tas bort.
Block the plates with phosphate buffered saline (PBS) + 5 % (w/v) skimmed milk (Nestlé Dry Skim MilkTM), 200 μl/well, for 1 hour at 37 °C.
Blockera plattorna med fosfatbuffrad koksaltlösning (PBS) och 5 % (w/v) skummjölk (torrmjölk från NestléTM), 200 μl/brunn, under en timme vid 37 °C.
Remove the blocking solution and gently tap the plates onto absorbent material.
Avlägsna den blockerande lösningen och slå försiktigt plattorna mot ett absorberande material.
Test samples
Prov
Serum samples to be tested, and positive and negative control sera, are diluted 1 in 25 in PBS + 5 % (w/v) skimmed milk + 0,05 % (v/v) Tween 20, 100 μl per well.
De serumprov som ska testas och positiva och negativa kontrollsera späds 1:25 i PBS + 5 % (w/v) skummjölk + 0,05 % (v/v) Tween 20, 100 μl per brunn.
Incubate for 1 hour at 37 °C.
Inkubera under en timme vid 37 °C.
For titration, make a twofold dilution series from 1 in 25 (100 μl/well), one serum per plate column, and do the same with positive and negative controls.
Vid titreringen, gör en tvåfaldig spädningsserie från 1:25 (100 μl/brunn), ett serum per kolumn på plattan, och gör detsamma med de positiva och negativa kontrollsera.
Wash the plates as described in step 2.1.1.2.
Tvätta plattorna i enlighet med steg 2.1.1.2.
Dispense 100 μl/well of horseradish-peroxidase (HRP) -conjugated anti-horse gamma-globulin diluted in PBS + 5 % milk + 0,05 % Tween 20, pH 7,2.
Fördela 100 μl per brunn av HRP-konjugerat antihästgammaglobulin som spätts i PBS + 5 % mjölk + 0,05 % Tween 20, pH 7,2.
Add 200 μl/well of chromogen/substrate solution (10 ml of 80,6 mM DMAB (dimethyl aminobenzaldehyde) + 10 ml of 1,56 mM MBTH (3-methyl-2-benzo-thiazoline hydrazone hydrochlorid) + 5 μl H2O2)
Tillsätt 200 μl/brunn av kromogen/substratlösning [10 ml 80,6 mM DMAB (dimethyl aminobenzaldehyd) + 10 ml 1,56 mM MBTH (3-methyl-2-benzothiazoline hydrazone hydrochlorid) + 5 μl H2O2].
Colour development is stopped by adding 50 μl of 3N H2SO4 after approximately 5 to 10 minutes (before the negative control begins to be coloured).
Färgutvecklingen stoppas genom tillsats av 50 μl 3N H2SO4 efter cirka 5–10 minuter (innan det negativa kontrollprovet börjar färgas).
Other chromogens such as ABTS (2,2'-Azino-bis-[3-ethylbenzothiazoline-6-sulphonic acid]), TMB (tetramethyl benzidine), or OPD (ortho-phenyldiamine) can also be used.
Andra kromogener såsom ABTS (2,2’-Azino-bis-[3-ethylbenzothiazoline-6-sulphonic acid]), TMB (tetramethyl benzidin), eller OPD (ortho-phenyldiamin) kan också användas.
Read the plates at 600 nm (or 620 nm).
Avläs plattorna vid 600 nm (eller 620 nm).
Interpretation of the results
Tolkning av resultaten
Calculate the cut-off value by adding 0,6 to the value of the negative control (0,6 is the standard deviation derived with a group of 30 negative sera).
Beräkna cut-off-värdet genom att lägga till 0,6 till det negativa kontrollvärdet (0,6 är standardavvikelsen för en grupp med 30 negativa serum).
Test samples giving absorbance values lower than the cut-off are regarded as negative.
Prov som ger absorbansvärden som är lägre än cut-off-värdet ska betraktas som negativa.
Test samples giving absorbance values greater than the cut-off + 0,15 are regarded as positive.
Prov som ger absorbansvärden som är högre än cut-off-värdet + 0,15 ska betraktas som positiva.
Test samples giving intermediate absorbance values are doubtful and a second technique must be employed to confirm the result.
Prov som ger absorbansvärden som ligger mellan negativt och positivt ska betraktas som tveksamma och en annan metod måste tillämpas för att bekräfta resultatet.
BLOCKING ELISA FOR THE DETECTION OF ANTIBODIES TO AFRICAN HORSE SICKNESS VIRUS (AHSV) (PRESCRIBED TEST)
BLOCKERANDE ELISA FÖR PÅVISANDE AV ANTIKROPPAR MOT AFRIKANSK HÄSTPEST-VIRUS (AHSV) (FÖRESKRIVEN TEST)
The blocking ELISA is designed to detect specific AHSV antibodies in sera from any susceptible species.
Den blockerande ELISA används för att påvisa specifika AHSV-antikroppar i serum från alla arter av djur som kan drabbas av AHS.
is the major, antigenic, viral protein of AHSV, and is conserved within the nine serotypes.
är det dominerande antigenet hos AHSV och är konserverat hos alla nio serotyperna.
Because the monoclonal antibody (Mab) is also directed against the VP7, the assay will give a high level of sensitivity and specificity.
Eftersom den monoklonala antikroppen (Mab) riktas mot VP7 har testen en hög sensitivitet och specificitet.
Further, the recombinant VP7 antigen is completely innocuous and therefore guarantees a high degree of safety.
Det rekombinanta VP7-antigenet är helt oskadlig vilket garanterar en hög grad av säkerhet.
The principal of the test is the interruption of the reaction between the recombinant VP7, as the antigen bound to the ELISA plate and the conjugated Mab specific for the VP7.
Principen för testen är att avbryta reaktionen mellan det rekombinanta VP7, som är de antigen som är bundet till Elisa-plattan och den för VP7 specifika konjugerade Mab.
Antibody in the test sera will block the reaction between the antigen and the Mab resulting in a reduction in colour.
Om antikroppar finns i serum kommer reaktionen mellan antikroppen och Mab att avbrytas, vilket ger en färgreduktion.
The test described hereinafter is carried out in the European Community Reference Laboratory for African horse sickness in Algete, Spain.
Nedan beskrivna test utförs av Europeiska gemenskapens referenslaboratorium för afrikansk hästpest i Algete i Spanien.
ELISA plates
Elisa-plattor
Wash the plates five times with phosphate buffered saline (PBS) containing 0,05 % (v/v) Tween 20 (PBST).
Tvätta plattorna fem gånger med fosfatbuffrad koksaltslösning (PBS) innehållande 0,05 % (v/v) Tween 20 (PBST).
Stabilise the plate by treatment with a stabilising solution (in order to allow long term storage at 4 °C without loss of activity) and blot dry onto absorbent material.
Stabilisera plattorna med en stabiliseringslösning (så att de kan förvaras under längre tid vid + 4 oC utan att förlora aktivitet) och torka dem mot ett absorberande material.
Test samples and controls
Prov och kontroller
For screening dilute test sera and controls 1 in 10 directly on the plate in PBST to give a final volume 100 μl/well.
Vid screening Späd provsera och kontrollsera med PBST 1:10 direkt i plattorna så att en slutlig volym på 100 μl/brunn erhålles.
For titration prepare a twofold dilution series of test sera and positive controls (100 μl/well) from 1 in 10 to 1 in 1280 across eight wells.
Vid titrering Bered en tvåfaldig spädningsserie med provserum och positiva kontroller (100 μl/brunn) från 1:10 till 1:1280 i åtta brunnar.
Negative control is tested at 1 in 10 dilution.
Negativa kontrollen testas i spädning 1:10.
Add 50 μl/well of pre-diluted horseradish-peroxidase (HRP) -conjugated Mab (monoclonal antibodies specific for VP7) to each well and mix gently to ensure homogeneity.
Sätt 50 μl/brunn av förspädd HRP-konjugerad Mab (monoklonala antikroppar specifika för VP7) i varje brunn och blanda försiktigt så att lösningen blir homogen.
Incubate for 30 minutes at 37 °C.
Inkubera under 30 minuter vid 37 °C.
Wash the plates five times with PBST and blot dry as above.
Tvätta plattorna fem gånger med PBST, och torka enligt ovan.
Add 100 μl/well of chromogen/substrate solution (1 ml of ABTS (2,2′-Azino-bis-[3-ethylbenzothiazoline-6-sulphonic acid]) 5 mg/ml + 9 ml of substrate buffer (0,1 M Phosphate-Citrate buffer of pH 4 containing 0,03 % H2O2] and incubate for 10 minutes at room temperature.
Sätt 100 μl/brunn av kromogen/substratlösning (1 ml ABTS (2,2’-Azino-bis-[3-ethylbenzothiazoline-6-sulphonic acid]) 5 mg/ml + 9 ml substratbuffert [0,1 M fosfatcitratbuffert, pH 4, innehållande 0,03 % H2O2]) och inkubera under tio minuter vid rumstemperatur.
Colour development is stopped by adding 100 μl/well of 2 % (w/v) SDS (sodium dodecyl sulphate).
Färgutvecklingen stoppas genom tillsats av 100 μl/brunn av 2 % (w/v) SDS (natriumdodecylsulfat).
Read at 405 nm in an ELISA reader.
Avläs i Elisa-läsare vid 405 nm.
Assay validation
Validering av metoden
The test is valid when the optical density (OD) of negative control (NC) is higher than 1,0 and the OD of positive control (PC) is lower than 0,2.
Testen är giltig när de negativa kontrollprovens (NC) OD-värden är högre än 1,0 och den positiva kontrollens (PC) är lägre än 0,2.
Cut-off calculation
Beräkning av cut-off-värdet
Positive cut off NC – ((NC – PC) × 0,3)
Positivt cut off-värde NC - ((NC - PC) × 0,3)
Negative cut off NC – ((NC – PC) × 0,2)
Negativt cut off-värde NC - ((NC - PC) × 0,2)
Where, NC is the OD of the negative control and PC the OD of positive control.
där NC är OD av den negativa kontrollen, och PC är OD av den positiva kontrollen.
Samples with OD lower than positive cut-off should be considered as positives to AHSV antibodies.
Prov vars OD-värde är lägre än det positiva cut-off-värdet ska anses vara positiva.
Samples with OD higher than negative cut-off should be considered negatives for AHSV antibodies.
Prov vars OD-värde är högre än det negativa cut-off-värdet ska anses vara negativa.
Samples with OD between these two values should be considered doubtful and the animals re-sampled after two to three weeks.
Prov vars OD-värde ligger mellan dessa båda värden ska anses tveksamma och nya prov ska tas från djuren efter två till tre veckor.
(referred to in Article 22)
(som avses i artikel 22)
Council Directive 90/426/EEC
Rådets direktiv 90/426/EEG
(OJ L 224, 18.8.1990, p. 42).
(EGT L 224, 18.8.1990, s. 42)
Council Directive 90/425/EEC
Rådets direktiv 90/425/EEG
(OJ L 224, 18.8.1990, p. 29).
(EGT L 224, 18.8.1990, s. 29)
only Article 15(3)
Endast artikel 15.3
Council Directive 91/496/EEC
Rådets direktiv 91/496/EEG
(OJ L 268, 24.9.1991, p. 56).
(EGT L 268, 24.9.1991, s. 56)
only as regards the reference to Directive 90/426/EEC in Article 26(2)
Endast angående hänvisningen till direktiv 90/426/EEG i artikel 26.2
Commission Decision 92/130/EEC
Kommissionens beslut 92/130/EEG
(OJ L 47, 22.2.1992, p. 26).
(EGT L 47, 22.2.1992, s. 26)
Council Directive 92/36/EEC
Rådets direktiv 92/36/EEG
(OJ L 157, 10.6.1992, p. 28).
(EGT L 157, 10.6.1992, s. 28)
1994 Act of Accession, Annex I, Point V.E.I.A.3
1994 års anslutningsakt, punkt V.E.I.A.3 i bilaga I
(OJ C 241, 29.8.1994, p. 132).
(EGT C 241, 29.8.1994, s. 132)
Commission Decision 2001/298/EC
Kommissionens beslut 2001/298/EG
(OJ L 102, 12.4.2001, p. 63).
(EGT L 102, 12.4.2001, s. 63)
only as regards the reference to Directive 90/426/EEC in Article 1(1), and Annex I, pt. 2
Endast angående hänvisningen till direktiv 90/426/EEG i artikel 1.1, och bilaga I, punkt 2
Commission Decision 2002/160/EC
Kommissionens beslut 2002/160/EG
(OJ L 53, 23.2.2002, p. 37).
(EGT L 53, 23.2.2002, s. 37)
only Annex III, point 10
Endast bilaga III, punkt 10
2003 Act of Accession, Annex II, Point 6.B.I.16
2003 års anslutningsakt, punkt 6.B.I.16 i bilaga II
(OJ L 236, 23.9.2003, p. 381).
(EUT L 236, 23.9.2003, s. 381)
Council Directive 2004/68/EC
Rådets direktiv 2004/68/EG
(OJ L 139, 30.4.2004, p. 321).
(EUT L 139, 30.4.2004, s. 321)
only Article 15
Endast artikel 15
(OJ L 363, 20.12.2006, p. 352).
(EUT L 363, 20.12.2006, s. 352)
only Annex, point I.2.
Endast bilagan, punkt I.2
(OJ L 219, 14.8.2008, p. 40).
(EUT L 219, 14.8.2008, s. 40)
90/426/EEC
90/426/EEG
90/425/EEC
90/425/EEG
91/496/EEC
91/496/EEG
92/36/EEC
92/36/EEG
Directive 90/426/EEC
Direktiv 90/426/EEG
Article 2(c)(i) and (ii)
Artikel 2 c i och ii
Article 2(d) to (i)
Artikel 2 d–i
Article 4(1), (2) and (3)
Artikel 4.1, 4.2 och 4.3
Article 4(4)(i) and (ii)
Artikel 4.4 i och ii
Article 4(4)(a) and (b)
Artikel 4.4 a och b
Article 4(5)(a), first to sixth indents
Artikel 4.5 a första-sjätte strecksatsen
Article 4(5)(a)(i) to (vi)
Artikel 4.5 a i–vi
Article 4(5)(b)
Artikel 4.5 b
Article 4(6), first subparagraph, first to eighth indents
Artikel 4.6 första stycket första-åttonde strecksatsen
Article 4(6), first subparagraph, (a) to (h)
Artikel 4.6 första stycket a–h
Article 4(6), second and third subparagraphs
Artikel 4.6 andra och tredje stycket
Article 5(2), first subparagraph, (a) and (b)
Artikel 5.2 första stycket a och b
Article 5(2), second subparagraph, (a) and (b)
Artikel 5.2 andra stycket a och b
Article 5(5)(a) and (b)
Artikel 5.5 a och b
Article 5(3)(c), first and second indents
Artikel 5.3 c första och andra strecksatsen
Article 5(5)(c), first subparagraph, (i) and (ii)
Artikel 5.5 c första stycket i och ii
Article 5(3)(c), second indent, last sentence
Artikel 5.3 c andra strecksatsen sista meningen
Article 5(5)(c), second subparagraph
Artikel 5.5 c andra stycket
Article 5(3)(d) and (e)
Artikel 5.3 d och e
Article 5(5)(d) and (e)
Artikel 5.5 d och e
Article 8(1), first subparagraph, first and second indents
Artikel 8.1 första stycket första och andra strecksatsen
Article 8(1)(a) and (b)
Artikel 8.1 a och b
Article 16(1)(a) to (f)
Artikel 16.1 a–f
Article 16(1), final sentence
Artikel 16.1 sista meningen
Article 19(i) to (iv)
Artikel 19 i–iv
Article 19(a) to (d)
Artikel 19 a–d
Article 25(1) and (2)
Artikel 25.1 och 2
Article 21(1) and (3)
Artikel 21.1 och 21.3
+ ve cont.
Cont.
Coat ELISA plates with recombinant AHSV-4 VP7 diluted in carbonate/bicarbonate buffer, pH 9,6.
Ladda plattorna med rekombinant AHSV-4 VP7 som spätts i en karbonat/natriumvätekarbonat buffert, ph 9,6.
Incubate overnight at 4 °C.
Inkubera över natten vid 4 oC.
‘registered equidae’ means any equidae registered as defined in Council Directive 90/427/EEC of 26 June 1990 on the zootechnical and genealogical conditions governing intra-Community trade in equidae [7], identified by means of an identification document issued by: (i) the breeding authority or any other competent authority of the country where the animal originated which manages the studbook or register for that breed of animal; or
registrerade hästdjur varje hästdjur som registrerats enligt rådets direktiv 90/427/EEG av den 26 juni 1990 om avelsmässiga och genealogiska villkor för handeln med hästdjur inom gemenskapen [7], identifierats genom ett identifieringsdokument som utfärdats avi) avelsmyndigheten eller någon annan behörig myndighet inom det land som djuret härrör ifrån och som för stambok eller register över den ifrågavarande rasen, eller
Done at Brussels, 30 November 2009. For the Council
Utfärdat i Bryssel den 30 november 2009.
Littorin
Littorin Ordförande