natgillin/translations-raw huggingface dataset:
A smaller number of test organisms may be used and a minimum of 20 animals per concentration divided into two or more replicates with an equal number of animals (e.g. four replicates each with five daphnids) is recommended.
Ett mindre antal testorganismer kan användas och man rekommenderar ett minimum på 20 djur per koncentration uppdelade i två eller flera replikat med samma antal djur (t.ex. fyra replikat med fem Daphnia per replikat).
Note that for tests where animals are held in groups, it will not be possible to express the reproductive output as the total number of living offspring produced per parent animal alive at the end of the test, if parent animals die.
I fråga om test där djuren hålls i grupper bör man dock beakta att reproduktionskapaciteten inte kan uttryckas som totalantalet överlevande avkommor per föräldradjur om föräldradjur dör.
In these cases reproductive output should be expressed as ‘total number of living offspring produced per parent present at the beginning of the test’.
I sådana fall måste reproduktionskapaciteten uttryckas som ”totalantalet överlevande avkommor som har producerats per föräldradjur som fanns närvarande vid testets början”.
For semi-static tests, feeding should preferably be done daily, but at least three times per week (i.e. corresponding to media changes).
Vid halvstatiskt test ges foder helst dagligen men minst tre gånger per vecka (vid byte av medium). Avvikelser från detta (t.ex. vid genomflödestest) måste rapporteras.
Deviations from this (e.g. for flow-through tests) should be reported.
Under testet bör föräldradjuren helst utfodras med levande algceller. En eller flera av följande arter kan användas: Chlorella sp.
During the test the diet of the parent animals should preferably be living algal cells of one or more of the following: Chlorella sp, Selenastrum capricornutum (now Pseudokirchneriella subcapitata (11)) and Scenedesmus subspicatus.
Selenaslrum capricornutum (numera Pseudokirchneriella subcapitata (11)) och Scenedesmus subspicatus.
The supplied diet should be based on the amount of organic carbon (C) provided to each parent animal.
Utfodringen bör grunda sig på mängden organiskt kol (C) som ges till varje föräldradjur.
Research (12) has shown that, for Daphnia magna, ration levels of between 0,1 and 0,2 mg C/Daphnia/day are sufficient for achieving the required number of offspring to meet the test validity criteria.
Forskningsresultat (12) för Daphnia magna har visat att det är tillräckligt med dosnivåer mellan 0,1 och 0,2 mg organiskt kol per Daphnia och dag för att nå upp till den mängd avkomma som behövs med tanke på giltighetskriterierna för testet.
The ration can be supplied either at a consistent rate throughout the period of the test, or, if desired, a lower rate can be used at the beginning and then increased during the test to take account of growth of the parent animals.
Dosen kan ges med konstant dosering under hela testet eller, om så önskas, med lägre dosering i början och därefter ökande dosering i takt med föräldradjurens tillväxt.
In this case, the ration should still remain within the recommended range of 0,1-0,2 mg C/Daphnia/day at all times.
I det senare fallet bör dosen ändå alltid hållas inom det rekommenderade området 0,1–0,2 mg organiskt kol per Daphnia och dag.
If surrogate measures, such as algal cell number or light absorbance, are to be used to feed the required ration level (i.e. for convenience since measurement of carbon content is time consuming), each laboratory must produce its own nomograph relating the surrogate measure to carbon content of the algal culture (see Appendix 2 for advice on nomograph production).
Om andra matningssätt (t.ex. antalet algceller eller ljusabsorbans) används för att kontrollera utfodringens dosnivå (av bekvämlighetsskäl, eftersom mätning av kolhalten är tidskrävande) måste varje laboratorium upprätta egna nomogram för mätningarna av algodlingens kolhalt (i bilaga 2 finns anvisningar för hur man upprättar nomogram).
Nomographs should be checked at least annually and more frequently if algal culture conditions have changed.
Nomogrammen måste ses över minst årligen, och oftare om algodlingsbetingelserna har förändrats.
Light absorbance has been found to be a better surrogate for carbon content than cell number (13).
Ljusabsorbans har konstaterats vara en bättre metod än cellräkning när det gäller bestämning av kolhalten (13).
A concentrated algal suspension should be fed to the Daphnia to minimise the volume of algal culture medium transferred to the test vessels.
Algsuspensionen som används för utfodring av Daphnia bör vara koncentrerad, så att minimal volym algodlingsmedium överförs till testkärlen.
Concentration of the algae can be achieved by centrifugation followed by resuspension in distilled water, deionised water or Daphnia culture medium.
För att höja algkoncentrationen kan man använda centrifugering med påföljande återsuspension i destillerat vatten, avjoniserat vatten eller Daphnia-odlingsmedium.
Light
Ljus
16 hours light at an intensity not exceeding 15-20 μE· m-2·s-1.
Ljuset hälls på i 16 timmar med en intensitet som inte överskrider 15–20 μE· m-2 · s-1.
The temperature of the test media should be within the range 18-22 oC.
Temperaturen i testmediet bör hållas inom området 18–22 oC.
However, for any one test, the temperature should not, if possible, vary by more than 2 oC within these limits (e.g. 18-20, 19-21 or 20-22 oC).
Inom ett och samma försök får temperaturen i mån av möjlighet inte variera med mer än 2 oC inom de angivna gränserna (t.ex. 18–20, 19–21 eller 20–22 oC).
It may be appropriate to use an additional test vessel for the purposes of temperature monitoring.
Temperaturövervakningen kan gärna ordnas med hjälp av ett extra testkärl.
Aeration
Luftning
Test concentration
Testkoncentrationer I regel används minst fem testkoncentrationer.
Normally, there should be at least five test concentrations arranged in a geometric series with a separation factor preferably not exceeding 3.2, and the appropriate number of replicates for each test concentration should be used (see Section 1.8.1.3).
Koncentrationerna bör ligga i en geometrisk serie med en separationsfaktor som helst inte bör överskrida 3,2. Dessutom bör ett lämpligt antal replikat användas för varje testkoncentration (se avsnitt 1.8.1.3).
Substances should not be tested above their solubility limit in the test medium.
Ämnen får inte testas i koncentrationer som överskrider löslighetsgränsen i testmediet.
In setting the range of concentrations, the following should be borne in mind:
Vid valet av koncentrationsområde bör man beakta följande:
If the aim is to obtain the LOEC/NOEC, the lowest test concentration must be low enough so that the fecundity at that concentration is not significantly lower than that in the control.
Om syftet är att få värden på LOEC eller NOEC måste den lägsta testkoncentrationen vara tillräckligt låg för att fertiliteten vid den koncentrationen inte ska vara signifikant lägre än i kontrollgruppen.
If this is not the case, the test will have to be repeated with a reduced lowest concentration.
I annat fall måste testet upprepas med en lägre lägsta koncentration.
If the aim is to obtain the LOEC/NOEC, the highest test concentration must be high enough so that the fecundity at that concentration is significantly lower than that in the control.
Om syftet är att få värden på LOEC eller NOEC måste den högsta testkoncentrationen vara tillräckligt hög för att fertiliteten vid den koncentrationen ska vara signifikant lägre än i kontrollgruppen.
If this is not the case, the test will have to be repeated with an increased highest concentration.
I annat fall måste testet upprepas med en högre högsta koncentration.
If the ECX for effects on reproduction is estimated, it is advisable that sufficient concentrations are used to define the ECX with an appropriate level of confidence.
Om man bestämmer ECX för verkningar på reproduktionskapaciteten är det tillrådligt att använda tillräckligt antal koncentrationer för att möjliggöra bestämning av ECx med tillräcklig konfidensnivå.
If the EC50 for effects on reproduction is estimated, it is advisable that the highest test concentration is greater than this EC50.
Om man bestämmer EC5() för verkningar på reproduktionskapaciteten är det tillrådligt att den högsta testkoncentrationen är högre än detta värde på EC50.
Otherwise, although it will still be possible to estimate the EC50, the confidence interval for the EC50 will be very wide and it may not be possible to satisfactorily assess the adequacy of the fitted model.
I annat fall blir konfidensintervallet för EC50 mycket brett, även om det fortfarande är möjligt att bestämma värdet på EC50, och då blir det kanske inte möjligt att få en tillfredsställande bedömning av den anpassade modellens lämplighet.
The range of test concentration should preferably not include any concentrations that have a statistically significant effect on adult survival since this would change the nature of the test from simply a reproduction test to a combined reproduction and mortality test requiring much more complex statistical analysis.
Testkoncentrationsområdet bör helst inte innehålla koncentrationer som framkallar en statistiskt signifikant verkan på vuxna exemplars överlevnad. I ett sådant fall övergår nämligen testets natur från ett enkelt reproduktionstest till ett kombinerat reproduktions- och mortalitetstest, för vilket det krävs en mycket mer komplex statistisk analys.
Where a solvent or dispersant is used to aid preparation of test solutions (see Section 1.6.4), its final concentration in the test vessels should not be greater than 0,1 ml/l and should be the same in all test vessels.
Om ett lösnings- eller dispergeringsmedel används för att underlätta beredningen av testlösningar (se avsnitt 1.6.4) får slutkoncentrationen i testkärlet inte överskrida 0,1 ml/l och samma slutkoncentration bör användas i alla testkärl.
One test-medium control series and also, if relevant, one control series containing the solvent or dispersant should be run in addition to the test series.
En kontrollserie för testmediet och i förekommande fall en kontrollserie med lösnings- eller dispergeringsmedlet bör köras utöver testserierna.
When used, the solvent or dispersant concentration should be the same as that used in the vessels containing the test substance.
Kontrollseriernas lösningsmedel eller dispergeringsmedel bör ha samma koncentration som i testserierna.
The appropriate number of replicates should be used (see Section 1.8.1.3).
Lämpligt antal replikat bör användas (se avsnitt 1.8.1.3).
Generally, in a well-run test, the coefficient of variation around the mean number of living offspring produced per parent animal in the control(s) should be ≤ 25 %, and this should be reported for test designs using individually held animals.
I ett väl utfört test bör variationskoefficienten kring det genomsnittliga antalet levande avkommor som i kontrollgrupperna produceras per föräldradjur i regel vara 25 %. Värdet måste rapporteras i testutformningar där djuren hålls individuellt.
Test medium renewal
Förnyelse av testmediet
The frequency of medium renewal will depend on the stability of the test substance, but should be at least three times per week.
Frekvensen för förnyelse av testmediet beror på testämnets stabilitet, men får inte underskrida tre gånger i veckan.
If, from preliminary stability tests (see Section 1.4) the test substance concentration is not stable (i.e. outside the range 80-120 % of nominal or falling below 80 % of the measured initial concentration) over the maximum renewal period (i.e. 3 days), consideration should be given to more frequent medium renewal, or to the use of a flow-through test.
Om resultaten från preliminära stabilitetstest (se avsnitt 1.4) visar att testämnet inte hålls stabilt (dvs. utanför området 80–120 % av nominell koncentration eller under 80 % av uppmätt startkoncentration) under det maximala förnyelseintervallet (dvs. tre dagar) bör man överväga förnyelse med kortare intervall eller användning av genomflödestest.
When the medium is renewed in semi-static tests, a second series of test vessels are prepared and the parent animals transferred to them by, for example, a glass pipette of suitable diameter.
Vid halvstatiskt test görs förnyelse av mediet genom att en ny serie testkärl ställs i ordning och föräldradjuren överförs till de nya kärlen t.ex. med en glaspipett av lämplig diameter.
The volume of medium transferred with the Daphnia should be minimised.
Volymen medium som överförs med Daphnia bör vara så liten som möjligt.
The results of the observations made during the test should be recorded on data sheets (see examples in Appendices 3 and 4).
Resultaten av de observationer som görs under testet registreras på blanketter (se exempel i bilagorna 3 och 4).
If other measurements are required (see 1.3 and 1.8.8) additional observations may be required.
Om andra mätningar krävs (se 1.3 och 1.8.8) behövs eventuellt tilläggsobservationer.
The offspring produced by each parent animal should preferably be removed and counted daily from the appearance of the first brood, to prevent them consuming food intended for the adult.
Det rekommenderas att avkommorna från varje föräldradjur tas bort och räknas dagligen efter det att produktionen av avkomma har satt i gäng, för att hindra avkommorna från att konsumera foder som är avsett för vuxna exemplar.
For the purpose of this method it is only the number of living offspring that needs to be counted, but the presence of aborted eggs or dead offspring should be recorded.
I test enligt denna metod behöver bara levande avkommor räknas, men förekomsten av aborterade ägg eller döda avkommor bör registreras.
Mortality among the parent animals should be recorded preferably daily, at least at the same times as offspring are counted.
Mortaliteten bland föräldradjuren bör registreras, helst dagligen och minst varje gång avkommorna räknas.
Although this method is designed principally to assess effects on reproduction, it is possible that other effects may also be sufficiently quantified to allow statistical analysis.
Även om denna metod främst är avsedd för bedömning av verkningarna på reproduktionskapaciteten är det möjligt att övriga verkningar kan kvantifieras i tillräcklig grad med tanke på statistisk analys.
Growth measurements are highly desirable since they provide information on possible sublethal effects, which may be more useful than reproduction measurement alone; the measurement of the length of the parent animals (i.e. body length excluding the anal spine) at the end of the test is recommended.
Tillväxtmätningar är mycket önskvärda eftersom de ger information om eventuella subletala verkningar. Sådan information kan vara mer användbar än informationen från rena reproduktionsmätningar.
Other parameters that can be measured or calculated include time to production of first brood (and subsequent broods), number and size of broods per animal, number of aborted broods, presence of males or ephippia and the intrinsic rate of population increase.
Mätning av föräldradjurens längd (t.ex. kroppslängd exklusive analfenan) vid testets slut rekommenderas. Övriga parametrar som kan mätas eller beräknas är tiden fram till att den första satsen avkomma (och efterföljande satser) produceras, satsernas antal och storlek per djur, antalet aborterade satser, förekomsten av hanar eller ephippia och den inneboende tillväxthastigheten.
Oxygen concentration, temperature, hardness and pH values should be measured at least once a week, in fresh and old media, in the control(s) and in the highest test substance concentration.
Syrgashalten, temperaturen, hårdheten och pH bör mätas minst en gång i veckan i färska och gamla medier, i kontrollsatserna och i den högsta testämneskoncentrationen.
During the test, the concentrations of test substance are determined at regular intervals.
Under testets gång bor testämnets koncentrationer bestämmas med regelbundna intervall.
In semi-static tests where the concentration of the test substance is expected to remain within ± 20 % of the nominal (i.e. within the range 80-120 % — see 1.4 and 1.8.4), it is recommended that, as a minimum, the highest and lowest test concentrations be analysed when freshly prepared and at the time of renewal on one occasion during the first week of the test (i.e. analyses should be made on a sample from the same solution — when freshly prepared and at renewal).
Vid halvstatiskt test, där testämnets koncentration bör hållas inom 20 % av den nominella koncentrationen (dvs. inom området 80–120 %, se avsnitten 1.4 och 1.8.4), rekommenderas att de högsta och lägsta testkoncentrationerna analyseras minst en gång under testets första vecka, strax efter beredningen och vid förnyelse (analyserna görs alltså på ett prov av samma lösning – när den är nyberedd och när den förnyas).
These determinations should be repeated at least at weekly intervals thereafter.
Dessa bestämningar upprepas därefter minst varje vecka.
For tests where the concentration of the test substance is not expected to remain within ± 20 % of the nominal, it is necessary to analyse all test concentrations, when freshly prepared and at renewal.
Vid test där testämnets koncentration inte förväntas hållas inom ± 20 % av den nominella koncentrationen är det nödvändigt att analysera alla testkoncentrationer, när de är nyberedda och när de förnyas.
However, for those tests where the measured initial concentration of the test substance is not within ± 20 % of nominal but where sufficient evidence can be provided to show that the initial concentrations are repeatable and stable (i.e. within the range 80-120 % of initial concentrations), chemical determinations could be reduced in weeks 2 and 3 of the test to the highest and lowest test concentrations.
Vid test där testämnets uppmätta startkoncentration inte ligger inom ± 20 % av den nominella koncentrationen men det finns tillräckliga bevis på att startkoncentrationerna är repeterbara och stabila (dvs. inom området 80–120 % av startkoncentrationerna), kan de kemiska bestämningarna under testets vecka 2 och 3 begränsas till de högsta och lägsta testkoncentrationerna.
In all cases, determination of test substance concentrations prior to renewal need only be performed on one replicate vessel at each test concentration.
Under alla omständigheter behöver bestämning av testämnets koncentration före förnyandet bara göras för ett enda replikatkärl per testämneskoncentration.
If a flow-through test is used, a similar sampling regime to that described for semi-static tests is appropriate (but measurement of ‘old’ solutions is not applicable in this case).
Vid genomflödestest kan man lämpligen använda samma provtagningsschema som vid halvstatiska test (även om mätningen av ”gammal” lösning då inte är tillämplig).
If there is evidence that the concentration of the substance being tested has been satisfactorily maintained within ± 20 % of the nominal or measured initial concentration throughout the test, then results can be based on nominal or measured initial values.
Om det däremot finns bevis på att testämnets koncentration i lösningen har hållits tillfredsställande inom ± 20 % av den nominella eller uppmätta startkoncentrationen under hela testperioden, kan nominella eller uppmätta startvärden användas som grund för resultaten.
If the deviation from the nominal or measured initial concentration is greater than ± 20 %, results should be expressed in terms of the time-weighed mean (see Appendix 5).
Om avvikelsen från nominell eller uppmätt startkoncentration är större än 20 % bör resultaten uttryckas i form av tidsvägda medelvärden (se bilaga 5).
The purpose of this test is to determine the effect of the test substance on the total number of living offspring produced per parent animal alive at the end of the test.
Syftet med testet är att bestämma hur testämnet påverkar antalet levande avkommor som produceras av varje föräldradjur som har överlevt testet.
The total number of offspring per parent animal should be calculated for each test vessel (i.e. replicate).
Totalantalet avkommor per föräldradjur beräknas för varje testkärl (varje replikat).
If, in any replicate the parent animal dies during the test or turns out to be male, then the replicate is excluded from the analysis.
Om föräldradjuret i något av replikaten dör under testet eller visar sig vara en hane, tas replikatet i fråga inte med i analysen.
The analysis will then be based on a reduced number of replicates.
I ett sådant fall baserar sig analysen på ett reducerat antal replikat.
For the estimation of the LOEC, and hence the NOEC, for effects of the chemical on reproductive output, it is necessary to calculate the mean reproductive output across replicates for each concentration and the pooled residual standard deviation, and this can be done using analysis of variance (ANOVA).
För uppskattning av LOEC och NOEC med avseende på kemikaliens verkan på reproduktionskapaciteten är det nödvändigt att beräkna den genomsnittliga reproduktionskapaciteten för replikaten per koncentration och den resterande standardavvikelsen. Detta kan göras med variansanalys (ANOVA).
The mean for each concentration must then be compared with the control mean using an appropriate multiple comparison method.
Medelvärdet för varje koncentration bör därefter jämföras med kontrollsatsen med hjälp av en lämplig metod för multipeljämförelse.
Dunnett's or Williams' tests may be useful (14)(15)(16)(17).
Dunnetts eller Williams test kan användas för ändamålet (14) (15) (16) (17).
It is necessary to check whether the ANOVA assumption of homogeneity of variance holds.
Det är nödvändigt att kontrollera hållbarheten hos ANOVA:s antagande om variansens homogenitet.
It is recommended that this be done graphically rather than via a formal significance test (18); a suitable alternative is to run a Bartlett's test.
Det är tillrådligt att detta görs grafiskt, hellre än genom ett test avseende formell signifikans (18). Ett lämpligt alternativ är att köra ett Bartlett-test.
If this assumption does not hold, then consideration should be given to transforming the data to homogenise variances prior to performing the ANOVA, or to carrying out a weighted ANOVA.
Om antagandet inte är hållbart måste man överväga att transformera data för att homogenisera varianserna innan ANOVA utförs, eller att utföra viktad ANOVA.
The size of the effect detectable using ANOVA (i.e. the least significant difference) should be calculated and reported.
Storleken på den verkan som kan detekteras med ANOVA (dvs. den minst signifikanta skillnaden) beräknas och rapporteras.
For the estimation of the concentration which would cause a 50 % reduction in reproductive output (i.e. the EC50), a suitable curve, such as the logistic curve, should be fitted to the data using a statistical method such as least squares.
För uppskattningen av den koncentration som skulle orsaka en minskning på 50 % av reproduktionskapaciteten (dvs. EC50) bör en lämplig kurva, t.ex. den logistiska kurvan, anpassas till data med hjälp av en statistisk metod. t.ex. minsta kvadrat-metoden.
The curve could be parameterised so that the EC50 and its standard error can be estimated directly.
Kurvan bör parametriseras så att EC50 och standardfelet kan uppskattas direkt.
This would greatly ease the calculation of the confidence limits about the EC50.
Därigenom underlättas beräkningen av konfidensintervallen kring EC50.
Unless there are good reasons to prefer different confidence levels, two-sided 95 % confidence limits should be quoted.
Tvåsidiga konfidensintervall på 95 % bör tillämpas, utom om det finns goda skäl för att välja andra konfidensnivåer. Anpassningsproceduren bör helst ge tillgång till ett medel för bedömning av signifikansen eller bristen på signifikans.
This can be done graphically or by dividing the residual sum of squares into ‘lack of fit’ and ‘pure error components’ and performing a significance test for lack of fit.
När man jämför behandlingar som ger låg fertilitet med behandlingar som ger hög fertilitet är det mer sannolikt att de senare leder till en högre varians avseende antalet avkommor som produceras.