natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Calculate average specific growth rate over the entire test duration (normally days 0-3), using the nominally inoculated biomass as the starting value rather than a measured starting value, because in this way greater precision is normally obtained.
Beräkna den genomsnittliga specifika tillväxthastigheten för hela testperioden, dvs. vanligen dag 0–3. Som startvärde används det nominella värdet för ympad biomassa.
If the equipment used for biomass measurement allows sufficiently precise determination of the low inoculum biomass (e.g. flow cytometer) then the measured initial biomass concentration can be used.
(Motsvarande uppmätta värde ska inte användas eftersom det minskar precisionen.) Om utrustningen för mätning av biomassa (t.ex. flödescytometer) ger ett tillräckligt noggrant värde på den lilla mängd som ympats, kan biomassans uppmätta startkoncentration användas.
Also assess the section-by-section growth rate, calculated as the specific growth rates for each day during the course of the test (days 0-1, 1-2 and 2-3) and examine whether the control growth rate remains constant (See validity criteria, section 1.7).
Bestäm också den sektionsvisa tillväxthastigheten genom att beräkna den specifika tillväxthastigheten för varje dag under hela testperioden (dag 0–1, 1–2 och 2–3), och undersök om kontrollens tillväxthastighet förblir konstant (se kriterierna för testresultatens giltighet i avsnitt 1.7).
A significantly lower specific growth rate on day one than the total average specific growth rate may indicate a lag phase.
En påtagligt lägre specifik tillväxthastighet dag ett jämfört med totalvärdet för genomsnittlig specifik tillväxthastighet kan tyda på att kulturen befinner sig i lagfas.
While a lag phase can be minimised and practically eliminated in control cultures by proper propagation of the pre-culture, a lag phase in exposed cultures may indicate recovery after initial toxic stress or reduced exposure due to loss of test substance (including sorption onto the algal biomass) after initial exposure.
I kontrollkulturer kan lagfasen praktiskt taget elimineras genom att förkulturen förökas på lämpligt sätt. I exponerade kulturer kan en lagfas däremot tyda på att algerna återhämtar sig efter inledande toxisk stress eller på att exponeringen minskat på grund av förlust av testsubstans (t.ex. genom adsorption till algbiomassan) efter den inledande exponeringen.
Hence the section-by-section growth rate may be assessed in order to evaluate effects of the test substance occurring during the exposure period.
Den sektionsvisa tillväxthastigheten kan därför användas när man bestämmer testsubstansens effekter under exponeringstiden.
Substantial differences between the section-by-section growth rate and the average growth rate indicate deviation from constant exponential growth and that close examination of the growth curves is warranted.
Stora skillnader mellan tillväxthastigheten i respektive intervall och genomsnittsvärdet tyder på en avvikelse från exponentiell tillväxt, och att tillväxtkurvorna måste studeras närmare.
Calculate the percent inhibition of growth rate for each treatment replicate from the equation:
Beräkna den procentuella minskningen av tillväxthastigheten för varje replikat med testlösning, genom formeln:
percent inhibition in average specific growth rate;
procentuell minskning av genomsnittlig specifik tillväxthastighet,
mean value for average specific growth rate (µ) in the control group;
medelvärdet för genomsnittlig specifik tillväxthastighet (µ) i kontrollgruppen,
average specific growth rate for the treatment replicate.
genomsnittlig specifik tillväxthastighet för replikatet med testlösning.
When solvents are used to prepare the test solutions, the solvent controls rather than the controls without solvents should be used in calculation of percent inhibition.
Om man använder sig av lösningsmedel vid beredning av testlösningarna ska man vid beräkningen av procentuell tillväxthämning jämföra de erhållna värdena med motsvarande värden för kontroller som också innehåller lösningsmedel.
Yield
Producerad mängd biomassa
The yield is calculated as the biomass at the end of the test minus the starting biomass for each single vessel of controls and treatments.
Den producerade mängden biomassa motsvarar biomassan i slutet av testet minus den ursprungliga biomassan. Beräkningen görs för varje enskilt kärl med kontroller och testlösningar.
For each test concentration and control, calculate a mean value for the yield along with variance estimates.
För varje koncentration av testsubstans och kontroll ska ett medelvärde för producerad mängd biomassa liksom en uppskattning av variansen räknas fram.
The percentage inhibition in yield (%Iy) may be calculated for each treatment replicate as follows:
Den procentuella minskningen av den producerade mängden biomassa (%Iy) beräknas för varje replikat med testlösning genom formeln:
percentage inhibition of yield;
procentuell minskning av producerad mängd biomassa,
mean value for yield in the control group;
medelvärdet för producerad mängd biomassa i kontrollgruppen,
value for yield for the treatment replicate.
producerad mängd biomassa i replikatet med testlösning.
PLOTTING CONCENTRATION RESPONSE CURVE
PLOTTNING AV DOS-RESPONS-KURVA
Plot the percentage of inhibition against the logarithm of the test substance concentration and examine the plot closely, disregarding any such data point that was singled out as an outlier in the first phase.
Plotta den procentuella tillväxthämningen mot logaritmen för testsubstansens koncentration och undersök plotten noggrant. Datapunkter som konstaterats vara avvikande i den första fasen ska inte beaktas.
Fit a smooth line through the data points by eye or by computerised interpolation to get a first impression of the concentration response relationship, then proceed with a more detailed method, preferably a computerised statistical method.
För att man ska få en preliminär uppfattning om förhållandet mellan koncentration och respons sammanbinds datapunkterna genom en mjuk linje, antingen på fri hand eller med hjälp av datorbaserad interpolation. Använd därefter en mer ingående metod, helst en datorbaserad statistisk sådan.
Depending on the intended usage of the data, the quality (precision) and amount of data, as well as the availability of data analysis tools, it may be decided (and sometimes well justified) to stop the data analysis at this stage and simply read the key figures EC50 and EC10 (and/or EC20) from the eye fitted curve (also see section below on stimulatory effects).
Beroende på ett flertal faktorer – t.ex. avsett användningsområde för data, datakvalitet (precision), datamängd, tillgängliga analysverktyg för data – kan man (ibland med goda skäl) bestämma sig för att avsluta utvärderingen av data på det här stadiet och enbart avläsa nyckelvärdena EC50 och EC10 (och/eller EC20) från den frihandsritade kurvan (se även avsnittet om tillväxtstimulering nedan).
Valid reasons for not using a statistical method may include:
Det finns flera giltiga skäl för att inte använda en statistisk metod, bland annat:
data are not appropriate for computerised methods to produce any more reliable results than can be obtained by expert judgement — in such situations some computer programs may even fail to produce a reliable solution (iterations may not converge etc.),
Det är inte troligt att man utifrån befintliga data får fram mer pålitliga resultat med hjälp av datorbaserade metoder än genom expertbedömningar. I sådana situationer kan det t.o.m. hända att vissa dataprogram ger ett helt opålitligt resultat (iterationer kanske inte konvergerar t.ex.).
stimulatory growth responses cannot be handled adequately using available computer programs (see below).
Stimulerande tillväxtresponser kan inte hanteras på lämpligt sätt av programvaran (se nedan).
STATISTICAL PROCEDURES
STATISTISK BEHANDLING
The aim is to obtain a quantitative concentration-response relationship by regression analysis.
Målet är att bestämma det kvantitativa förhållandet mellan koncentration och respons med hjälp av regressionsanalys.
It is possible to use a weighted linear regression after having performed a linearising transformation of the response data — for instance into probit or logit or Weibull units (9), but non-linear regression procedures are preferred techniques that better handle unavoidable data irregularities and deviations from smooth distributions.
Man kan använda viktad linjär regression efter att ha gjort en linjär transformation av responsdata, t.ex. till probit-, logit- eller Weibullvärden (9). Icke-linjära regressionsmetoder är dock att föredra, eftersom de är bättre anpassade för att hantera oundvikliga oregelbundenheter i data och avvikelser från jämna fördelningskurvor.
Approaching either zero or total inhibition, such irregularities may be magnified by the transformation, interfering with the analysis (9).
I närheten av nollpunkten (ingen tillväxthämning) och fullständig tillväxthämning kan sådana oregelbundenheter bli uppförstorade genom linjäriseringen och därigenom störa analysen (9).
It should be noted that standard methods of analysis using probit, logit, or Weibull transforms are intended for use on quantal (e.g. mortality or survival) data, and must be modified to accommodate growth or biomass data.
Observera att standardmetoder för analys med probit-, logit-, eller Weibulltransformationer är avsedda för dikotoma data (dvs. tvåpunktsfördelade data, t.ex. dödlighet–överlevnad) och därför måste modifieras för att kunna användas för data om tillväxt eller producerad mängd biomassa.
Specific procedures for determination of ECx values from continuous data can be found in (10)(11) and (12).
Speciella metoder för bestämning av ECx-värden ur kontinuerliga data återfinns i (10)(11) och (12).
The use of non-linear regression analysis is further detailed in Appendix 4.
Tillämpningen av icke-linjär regressionsanalys beskrivs utförligare i tillägg 4.
For each response variable to be analysed, use the concentration-response relationship to calculate point estimates of ECx values.
För varje analyserad responsvariabel används förhållandet mellan koncentration och responsvärde för att beräkna punktskattningar av ECx-värden.
When possible, the 95 % confidence limits for each estimate should be determined.
Om möjligt ska det 95-procentiga konfidensintervallet bestämmas för varje skattning.
Goodness of fit of the response data to the regression model should be assessed either graphically or statistically.
Anpassningsgraden (”goodness of fit”) mellan responsdata och regressionsmodellen ska bestämmas, antingen grafiskt eller statistiskt.
Regression analysis should be performed using individual replicate responses, not treatment group means.
Regressionsanalys ska göras på responsvärden från enskilda replikat, inte på medelvärden från testgrupper.
If, however, nonlinear curve fitting is difficult or fails because of too great a scatter in the data, the problem may be circumvented by performing the regression on group means as a practical way of reducing the influence of suspected outliers.
Om det är svårt eller omöjligt att göra en icke-linjär kurvanpassning på grund av alltför stor spridning i data kan man i stället göra regressionen utifrån gruppmedelvärden. Detta är en praktisk metod för att minska påverkan från misstänkta avvikande värden.
Use of this option should be identified in the test report as a deviation from normal procedure because curve fits with individual replicates did not produce a good result.
Om man använder sig av denna möjlighet ska det tas med i testrapporten som en avvikelse från det normala förförandet, och motiveras med att kurvanpassningar med enskilda replikat inte gav tillfredsställande resultat.
The mean for each concentration must then be compared with the control mean using an appropriate multiple comparison or trend test method.
För skattning av LOEC (och därmed även av NOEC) jämförs medelvärden från testlösningarna med hjälp av variansanalysmetoder (ANOVA).
Dunnett’s or Williams’ test may be useful (14)(15)(16)(17)(18).
Medelvärdet för varje koncentration jämförs sedan med medelvärdet för kontrollerna med hjälp av en lämplig metod för multipeljämförelse eller trendtest, t.ex. Dunnetts eller Williams test (14, 15, 16, 17 och 18).
It is necessary to assess whether the ANOVA assumption of homogeneity of variance holds.
Man måste avgöra om ANOVA-antagandet om varianshomogenitet är uppfyllt.
Failure to meet the assumption of homogeneity of variances can sometimes be corrected by logarithmic transformation of the data.
Skulle antagandet inte vara uppfyllt kan man ibland korrigera för detta genom logaritmisk transformation av data.
If heterogeneity of variance is extreme and cannot be corrected by transformation, analysis by methods such as step-down Jonkheere trend tests should be considered.
Om heterogeniteten i variansen är extremt stor och inte kan korrigeras genom transformation, ska man överväga användning av analys med metoder som t.ex. Jonckheeres trendtest av ”step-down”-typ.
Additional guidance on determining the NOEC can be found in (12).
Mer information om bestämning av NOEC finns i (12).
Recent scientific developments have led to a recommendation of abandoning the concept of NOEC and replacing it with regression based point estimates ECx.
Nya forskningsrön har lett till att man avråder från användning av NOEC-värdet. Det ska ersättas med punktskattningar av ECx baserade på regressionsanalys.
An appropriate value for x has not been established for this algal test.
För detta algtest har ännu inget passande värde på x fastställts.
A range of 10 to 20 % appears to be appropriate (depending on the response variable chosen), and preferably both the EC10 and EC20 should be reported.
Ett intervall på 10–20 % förefaller dock vara lämpligt, beroende på vilken responsvariabel som används. Både EC10 och EC20 bör anges i testrapporten.
GROWTH STIMULATION
TILLVÄXTSTIMULERING
Growth stimulation (negative inhibition) at low concentrations is sometimes observed.
Ibland förekommer tillväxtstimulering (negativ hämning) vid låga koncentrationer.
This can result from either hormesis (toxic stimulation) or from addition of stimulating growth factors with the test material to the minimal medium used.
Detta kan antingen bero på hormesis (”toxisk stimulering”) eller på att stimulerande tillväxtfaktorer överförts från testmaterialet till det minimalmedium som används.
Note that the addition of inorganic nutrients should not have any direct effect because the test medium should maintain a surplus of nutrients throughout the test.
Observera att tillsats av oorganiska näringsämnen inte bör ha någon direkt effekt, eftersom testmediet innehåller ett överskott av näringsämnen i förhållande till algernas behov under testperioden.
Low dose stimulation can usually be ignored in EC50 calculations unless it is extreme.
Vid beräkningen av EC50 kan man vanligen bortse från stimulering vid låga koncentrationer, såvida inte stimuleringen är extremt stor.
However, if it is extreme, or an ECx value for low x is to be calculated, special procedures may be needed.
I det senare fallet – samt då man beräknar ECx för låga värden på x – kan det krävas särskilda åtgärder.
Deletion of stimulatory responses from the data analysis should be avoided if possible, and if available curve fitting software cannot accept minor stimulation, linear interpolation with bootstrapping can be used.
Man ska så långt det är möjligt ta med stimulerande responser vid analysen av data, och om befintliga dataprogram för kurvanpassning inte kan hantera låggradig stimulering kan man i stället använda sig av linjär interpolation med bootstrapping.
If stimulation is extreme, use of a hormesis model may be considered (19).
Om stimuleringen är extremt stor kan man överväga att använda en hormesis-modell (19).
NON-TOXIC GROWTH INHIBITION
ICKE-TOXISK TILLVÄXTHÄMNING
Light absorbing test materials may give rise to a growth rate reduction because shading reduces the amount of available light.
Ljusabsorberande testmaterial kan påverka tillväxthastigheten negativt eftersom de minskar mängden tillgängligt ljus.
Such physical types of effects should be separated from toxic effects by modifying the test conditions and the former should be reported separately.
Sådana fysikaliska effekter måste kunna särskiljas från toxiska effekter genom att man ändrar testförhållandena, och fysikaliska effekter ska rapporteras separat.
Guidance may be found in (2) and (3).
Riktlinjer återfinns i (2) och (3).
The test report must include the following:
Testrapporten ska innehålla följande uppgifter:
Test substance:
Testsubstans:
physical nature and relevant physiochemical properties, including water solubility limit,
fysikalisk form samt relevanta fysikalisk-kemiska egenskaper, inbegripet löslighetsgräns i vatten,
chemical identification data, including purity.
kemiska identifieringsuppgifter, inklusive renhetsgrad.
Test species:
Testarter:
the strain, supplier or source and the culture conditions used.
stam, leverantör eller ursprung, samt odlingsförhållanden.
Test conditions:
Testbetingelser:
date of start of the test and its duration,
Startdatum och tid för testets genomförande.
description of test design: test vessels, culture volumes, biomass density at the beginning of the test,
testets upplägg: testkärl, kulturernas volym, biomassans koncentration i början av testet,
composition of the medium,
mediets sammansättning,
test concentrations and replicates (e.g. number of replicates, number of test concentrations and geometric progression used),
testsubstansens koncentrationer, replikat (t.ex. antal replikat, antal koncentrationer av testsubstansen samt geometrisk serie),
description of the preparation of test solutions, including use of solvents etc.,
metod för beredning av testlösningar, inbegripet användning av lösningsmedel m.m.,
culturing apparatus,
odlingsutrymme,
light intensity and quality (source, homogeneity),
ljusets intensitet och kvalitet (ljuskälla, homogenitet),
all deviations from this Testing Method,
alla avvikelser från testmetoden,
method for determination of biomass and evidence of correlation between the measured parameter and dry weight.
metod för bestämning av biomassa, samt belägg för att det finns en korrelation mellan den uppmätta parametern och biomassans torrvikt.
pH values at the start and end of the test at all treatments,
pH-värden vid testets början och slut i alla testlösningar,
biomass for each flask at each measuring point and method for measuring biomass,
biomassa för varje kolv och varje mätpunkt, samt metod för att mäta biomassa,
growth curves (plot of biomass versus time),
tillväxtkurvor (plott där biomassan avsatts mot tiden),
calculated response variables for each treatment replicate, with mean values and coefficient of variation for replicates,
Beräknade responsvariabler för respektive testreplikat, inklusive medelvärden och variationskoefficient för replikaten.
graphical presentation of the concentration/effect relationship,
grafisk framställning av förhållandet mellan koncentration och effekt,
estimates of toxicity for response variables e.g. EC50, EC10, EC20 and associated confidence intervals.
toxicitetsbestämningar för responsvariablerna, t.ex. EC50, EC10 och EC20 samt dithörande konfidensintervall.
If calculated, LOEC and NOEC and the statistical methods used for their determination,
Om man räknat fram LOEC- och NOEC-värden ska dessa anges, liksom de statistiska metoder som använts vid beräkningen,
if ANOVA has been used, the size of the effect which can be detected (e.g. the least significant difference),
Om ANOVA har använts: storleken på märkbar effekt (t.ex. minsta signifikanta skillnad).
any stimulation of growth found in any treatment,
Tillväxtstimulans som har konstaterats i testlösningar.
any other observed effects, e.g. morphological changes of the algae,
övriga observerade effekter, t.ex. morfologiska förändringar hos algerna,
discussion of the results, including any influence on the outcome of the test resulting from deviations from this Testing Method.
Diskussion av resultaten. Ta även upp sådan inverkan på testresultatet som kan bero på avvikelser från den här beskrivna testmetoden.
Water Research 31: 2525-2531.
Water Research 31, 2525–2531.
In vivo fluorescence determinations of phytoplancton chlorophyll, Limnology & Oceanography 22,5 (1977), pp.919-925.
In vivo fluorescence determinations of phytoplancton chlorophyll, Limnology & Oceanography 22,5 (1977), 919–925.
Biometrics 20: 482-491.
Biometrics 20, 482–491.
Biometrics 27: 103-117.
Biometrics 27, 103–117.
Biometrics 28: 510-531.
Biometrics 28, 510–531.
AEROBIC MINERALISATION IN SURFACE WATER — SIMULATION BIODEGRADATION TEST
AEROB MINERALISERING I YTVATTEN – SIMULERINGSTEST AV BIOLOGISK NEDBRYTNING
This method is equivalent to OECD TG 309 (2004) (1).
Denna metod motsvarar OECD TG 309 (2004) (1).
The purpose of this test is to measure the time course of biodegradation of a test substance at low concentration in aerobic natural water and to quantify the observations in the form of kinetic rate expressions.
Syftet med detta test är att mäta tiden för biologisk nedbrytning av en testsubstans vid låg koncentration i aerobt naturligt vatten, samt att kvantifiera observationerna i form av kinetiska hastighetsuttryck.
This simulation test is a laboratory shake flask batch test to determine rates of aerobic biodegradation of organic substances in samples of natural surface water (fresh, brackish or marine).
Detta simuleringstest är ett batchvis skakflasktest för bestämning av hastigheten för aerob nedbrytning av organiska ämnen i prover av naturligt ytvatten (sött, bräckt eller salt).
It is based on the ISO/DIS 14592-1 (2) and it also includes elements from the testing methods C.23 and C.24 (3)(4).
Det är grundat på ISO/DIS 14592–1 (2) och innehåller också delar av testmetoderna C.23 och C.24 (3) (4).
Optionally, with long test times, semi-continuous operation replaces batch operation in order to prevent deterioration of the test microcosm.
För att undvika att mikromiljön i testet försämras vid långa testperioder kan ett semikontinuerligt testförfarande användas i stället för batchtest.
The principal objective of the simulation test is to determine the mineralisation of the test substance in surface water, and mineralisation constitutes the basis for expressing degradation kinetics.
Simuleringstestet syftar i första hand till att fastställa testsubstansens mineralisering i ytvatten, och mineralisering utgör grunden för att kunna formulera nedbrytningskinetiken.
However, an optional secondary objective of the test is to obtain information on the primary degradation and the formation of major transformation products.
I andra hand syftar testet emellertid också till att få fram uppgifter om primär nedbrytning och bildandet av viktiga nedbrytningsprodukter.
Identification of transformation products, and if possible quantification of their concentrations, are especially important for substances that are very slowly mineralised (e.g. with half-lives for total residual 14C exceeding 60 days).
Identifiering av nedbrytningsprodukter, och om möjligt kvantifiering av deras koncentration, är särskilt viktigt för ämnen som mineraliseras mycket långsamt (t.ex. sådana med en halveringstid för den totala mängden kvarvarande 14C på över 60 dygn).
Higher concentrations of the test substance (e.g. > 100 μg/l) should normally be used for identification and quantification of major transformation products due to analytical limitations.
Högre koncentrationer av testsubstansen (t.ex. > 100 μg/l) bör med tanke på analytiska begränsningar normalt sett användas för identifiering och kvantifiering av viktiga nedbrytningsprodukter.
A low concentration in this test means a concentration (e.g. less than 1 μg/l to 100 μg/l) which is low enough to ensure that the biodegradation kinetics obtained in the test reflect those expected in the environment.
I detta test innebär en låg koncentration (t.ex. mindre än 1 μg/l upp till 100 μg/l) att den är tillräckligt låg för att den biologiska nedbrytningskinetiken i testet ska spegla vad som kan förväntas i miljön.