natgillin/translations-raw huggingface dataset:
This test would provide useful information in that is could (a) form a bridge between lethal and sub-lethal tests, (b) be used as a screening test for either a Full Early Life Stage test or for chronic toxicity tests and (c) be used for testing species where husbandry techniques are not sufficiently advanced to cover the period of change from endogenous to exogenous feeding.
Testet kan ge användbar information i flera avseenden: dels bildar det en brygga mellan test avseende letala verkningar och test avseende subletala verkningar, dels kan det användas som ett screeningtest inför ett komplett test av de tidiga levnadsstadierna eller för test avseende kronisk toxicitet. Dessutom kan det användas för test av arter för vilka uppfödningsteknikerna inte är tillräckligt utvecklade för att täcka perioden för övergång från endogen till exogen utfodring.
It should be borne in mind that only tests incorporating all stages of the life-cycle of fish are generally liable to give an accurate estimate of the chronic toxicity of chemicals to fish, and that any reduced exposure with respect to life stages may reduce the sensitivity and thus underestimate the chronic toxicity.
Man bör beakta att endast tester som täcker alla stadier av fiskens livscykel i regel kan ge en tillförlitlig uppskattning om en kemikalies kroniska toxicitet för fisk, och att minskad exponering av levnadsfaser kan medföra lägre känslighet och underskattning av den kroniska toxiciteten.
Prior to the publication of this test, most experience with this embryo and sac-fry test has been with the freshwater fish Danio rerio Hamilton-Buchanan (Teleostei, Cyprinidae — common name zebrafish).
Fram till offentliggörandet av detta test har de flesta erfarenheterna från test på embryon och säckyngel erhållits med sötvattenfisken Danio rerio Hamilton-Buchanan (Teleostei, Cyprinidae – sebrafisk).
More detailed guidance on test performance for this species is therefore given in Appendix 1.
Närmare anvisningar om testförfarandet för denna art finns i tillägg 1.
This does not preclude the use of other species for which experience is also available (Table 1).
Det finns dock inga hinder för att använda andra arter för vilka det finns erfarenheter att tillgå (tabell 1).
Lowest Observed Effect Concentration (LOEC): is the lowest tested concentration of a test substance at which the substance is observed to have a significant effect (at p < 0,05) when compared with the control.
Lägsta koncentration vid vilken verkningar observeras (Lowest observed effect concentration, LOEC): den lägsta testade koncentrationen av ett testämne vid vilken man kan observera signifikanta verkningar (vid p < 0,05) jämfört med kontrollgruppen.
No Observed Effect Concentration (NOEC): is the test concentration immediately below the LOEC.
Koncentration vid vilken inga verkningar observeras (No observed effect concentration, NOEC): testkoncentrationen omedelbart under LOEC.
The embryo and sac-fry stages of fish are exposed to a range of concentrations of the test substance dissolved in water.
Fiskens embryo- och säckyngelstadier exponeras för en serie koncentrationer av testämnet upplöst i vatten.
Within the protocol a choice is possible between a semi-static and a flow-through procedure.
Testprotokollet innehåller en möjlighet att välja mellan halvstatiskt test och genomflödestest.
The choice depends on the nature of the test substance.
Det valda alternativet beror på testämnets egenskaper.
The test is begun by placing fertilised eggs in the test chambers and is terminated just before the yolk-sac of any larvae in any of the test chambers has been completely absorbed or before mortalities by starvation start in controls.
Testet inleds med att befruktade ägg placeras i testkärl. Testet avslutas strax innan någon av gulesäckarna i något av testkärlen har absorberats helt eller innan ynglen i kontrollgrupperna börjar dö på grund av svält.
Lethal and sub-lethal effects are assessed and compared with control values to determine the lowest observed effect concentration and hence the no observed effect concentration.
De letala och subletala verkningarna bedöms och jämförs med kontrollgruppernas värden i syfte att bestämma den lägsta koncentrationen vid vilken verkningar observeras och den koncentration vid vilken inga verkningar observeras.
Alternatively, they may be analysed using a regression model in order to estimate the concentration that would cause a given percentage effect (i.e. LC/ECx, where x is a defined % effect).
Alternativt kan verkningarna analyseras med hjälp av en regressionsmodell i syfte att uppskatta den koncentration som framkallar en given procentuell verkan (t.ex. LC/ECx, där x är en definierad procentuell verkan).
Results of an acute toxicity test (see Method C. 1) preferably performed with the species chosen for this test, should be available.
Man bör ha tillgång till resultaten från ett test avseende akut toxicitet (se metod C.1), som helst ska ha utförts med samma art som används för detta test.
The results may be useful in selecting an appropriate range of test concentrations in the early life stages test.
Sådana resultat kan vara till hjälp vid valet av lämpliga testkoncentrationer för testet på tidiga levnadsstadier.
Water solubility (including solubility in the test water) and the vapour pressure of the test substance should be known.
Testämnets vattenlöslighet (inbegripet lösligheten i testvattnet) och ångtryck måste vara kända.
A reliable analytical method for the quantification of the substance in the test solutions with known and reported accuracy and limit of detection should be available.
Man bör ha tillgång till en tillförlitlig analysmetod för kvantifiering av ämnet i testlösningen. Metoden bör ha känd och rapporterad noggrannhet och detektionsgräns.
Information on the test substance which is useful in establishing the test conditions includes the structural formula, purity of the substance, stability in light, stability under the conditions of the test, pKa, Pow and results of a test for ready biodegradability (see Method C. 4).
För definition av testförhållandena bör man ange bl.a. testämnets strukturformel, ämnets renhet, stabilitet i ljus, stabilitet i testförhållandena. pKa, Pow och resultaten från test avseende biologisk lättnedbrytbarhet (se metod C. 4).
For a test to be valid, the following conditions apply:
För att testet ska vara giltigt måste följande villkor uppfyllas:
overall survival of fertilised eggs in the controls and where relevant, in the solvent-only vessels must be greater than or equal to the limits defined in Appendices 2 and 3
Den totala överlevnaden hos de befruktade äggen i kontrollgrupperna, och i tillämpliga fall i kärlen med rent lösningsmedel, måste vara högre eller lika med de gränsnivåer som definieras i tilläggen 2 och 3.
the dissolved oxygen concentration must be between 60 and 100 % of the air saturation value (ASV) throughout the test
Koncentrationen löst syrgas måste under hela testet ligga mellan 60 och 100 % av luftmättnadsvärdet (ASV).
the water temperature must not differ by more than ±1,5 oC between test chambers or between successive days at any time during the test and should be within the temperature ranges specified for the test species (Appendices 2 and 3).
Under testet får vattentemperaturen inte variera med mer än ±1,5 oC mellan olika testkärl eller mellan påföljande dagar. Vattentemperaturen bör hållas inom de temperaturgränser som specificerats för den art som används (se bilagorna 2 och 3).
Test chambers
Testkärl
Any glass or other chemically inert vessels can be used.
Kärl av glas eller annat kemiskt inert material kan användas.
The dimensions of the vessels should be large enough to allow compliance with the loading rate (see Section 1.7.1.2).
Kärlen måste vara tillräckligt stora med tanke på lämplig fisktäthet (se avsnitt 1.7.1.2).
It is recommended that test chambers be randomly positioned in the test area.
Det rekommenderas att kärlen placeras slumpvis i testutrymmet.
A randomised block design with each treatment being present in each block is preferable to a completely randomised design when there are systematic effects in the laboratory that can be controlled using blocking.
En randomiserad blockutformning med en behandling per block är att föredra framför en fullständigt randomiserad utformning, i de fall där det i laboratoriet förekommer sådana systematiska effekter som kan kontrolleras med hjälp av blockuppdelning.
Blocking, if used, should be taken account of in the subsequent data analysis.
Eventuell blockuppdelning måste beaktas i de efterföljande dataanalyserna.
The test chambers should be shielded from unwanted disturbance.
Testkärlen bör avskärmas från oönskade störningar.
Selection of fish species
Val av fiskart
Recommended fish species are given in Table 1A.
I tabell 1A anges rekommenderade fiskarter.
This does not preclude the use of other species (examples are given in Table 1B), but the test procedure may have to be adapted to provide suitable test conditions.
Det hindrar inte att andra arter används (se exemplen i tabell 1B), men då måste testförfarandet eventuellt justeras så att lämpliga testförhållanden kan säkerställas.
Holding of the brood fish
Förvaring av fiskyngel
Embryos and larvae may be exposed, within the main vessel, in smaller vessels fitted with mesh sides or ends to permit a flow of test solution through the vessel.
Embryon och yngel kan exponeras i mindre kärl, placerade i huvudkärlet, med sidor eller ändar av nät som möjliggör ett flöde av testlösning genom kärlet.
Non-turbulent flow through these small vessels may be induced by suspending them from an arm arranged to move the vessel up and down but always keeping the organisms submerged; a siphon-flush system can also be used.
För att få ett icke-turbulent flöde genom dessa små kärl kan de hållas hängande från en arm som sänker och höjer kärlen (de får dock inte höjas över ytan). Ett sifonspolat system kan också användas.
Fertilised eggs of salmonid fishes can be supported on racks or meshes with apertures sufficiently large to allow larvae to drop through after hatching.
Befruktade ägg av laxfiskar kan hållas på ställningar eller galler med så stora öppningar att ynglen kan falla igenom efter kläckningen.
The use of pasteur pipettes is appropriate to remove the embryos and larvaes in the semi-static tests with complete daily renewal (see paragraph 1.6.6)
Om halvstatiskt testförfarande med fullständig daglig förnyelse används rekommenderas pasteur-pipetter för avlägsnandet av embryon och yngel (se avsnitt 1.6.6).
Where egg containers, grids or meshes have been used to hold eggs within the main test vessel, these restraints should be removed after the larvae hatch [13] OECD, Paris, 1992, Test Guideline 210, ‘Fish, Early-life Stage Toxicity Test’.
Om äggbehållare, galler eller nät har använts för att hålla äggen inom huvudkärlet tas dessa tillbehör bort efter att ynglen har kläckts [13] OECD. Paris. 1992,. Test Guideline 210. ”Fish.
, except that meshes should be retained to prevent the escape of the fish.
Early-life Stage Toxicity Test”. , med undantag av nät som behövs för att hålla fiskarna på plats.
If there is a need to transfer the larvae, they should not be exposed to the air and nets should not be used to release fish from egg containers (such a caution may not be necessary for some less fragile species, e.g. the carp).
Om yngel måste flyttas får de inte utsättas för luft, och nät får inte användas för att släppa ut fisk från äggbehållare (dessa säkerhetsåtgärder ar eventuellt inte nödvändiga om arten inte är så känslig, t.ex. när man använder karp).
The timing of this transfer varies with the species and transfer may not always be necessary.
Överföringstidpunkten varierar beroende på art och det är inte alltid nödvändigt med en överföring.
For the semi-static technique, beakers or shallow containers may be used, and, if necessary, equipped with a mesh screen slightly elevated above the bottom of the beaker.
Vid halvstatiskt test kan man använda bägare eller grunda behållare, vid behov försedda med ett nät som finns en bit ovanför bägarens botten.
If the volume of these containers is sufficient to comply with loading requirements, (see 1.7.1.2) no transfer of embryo or larvae may be necessary.
Om bägarnas volym är tillräcklig med tanke på fisktätheten (se 1.7.1.2) är det eventuellt inte nödvändigt att överföra embryon eller yngel.
Any water which conforms to the chemical characteristics of an acceptable dilution water as listed in Appendix 4 and in which the test species shows control survival at least as good as that described in Appendices 2 and 3 is suitable as a test water.
Som testvatten kan användas allt vatten som uppfyller de kemiska kraven för godtagbart spädvatten enligt tillägg 4 och i vilket testarternas kontrollgrupper har minst den överlevnadsgrad som anges i tilläggen 2 och 3.
The pH should remain within a range of ±0,5 pH units.
Vattnets pH-värde får variera med högst ±0,5 pH-enheter.
In order to ensure that the dilution water will not unduly influence the test result (for example by complexation of test substance), or adversely affect the performance of the brood stock, samples should be taken at intervals for analysis.
För att säkerställa att spädvattnet inte påverkar testresultaten på oönskat sätt (t.ex. genom komplexbildning med testämnet) eller har skadliga verkningar på yngelstammens prestanda, tas vattenprover regelbundet för analys.
Measurements of heavy metals (e.g. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd and Ni), major anions and cations (e.g. Ca, Mg, Na, K, Cl and SO4), pesticides (e.g. total organophosphorus and total organochlorine pesticides), total organic carbon and suspended solids should be made, for example, every three months, where a dilution water is known to be relatively constant in quality.
Mätningar av tungmetaller (t.ex. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd och Ni), viktiga anjoner och katjoner (t.ex. Ca, Mg, Na, K, Cl och SO4), bekämpningsmedel (t.ex. total mängd organiska fosforföreningar eller total mängd organiska klorföreningar), totalt organiskt kol och uppslammade partiklar bör göras t.ex. var tredje månad i fall där man vet att spädvattnet håller en relativt jämn kvalitet.
The stock solution should preferably be prepared by simply mixing or agitating the test substance in the dilution water by using mechanical means (e.g. stirring and ultrasonication).
Stamlösningen bör helst beredas genom enkel blandning eller omskakning av testämnet i spädvattnet på mekanisk väg (t.ex. omrörning och ultraljud).
As far as possible, the use of solvents or dispersants (solubilising agents) should be avoided; however, such compounds may be required in some cases in order to produce a suitably concentrated stock solution.
Man bör så långt som möjligt undvika att använda lösnings- eller dispergeringsmedel (lösningsagenter). Sådana medel kan dock i vissa fall behövas för att få en stamlösning av lämplig koncentration.
Examples of suitable solvents are acetone, ethanol, methanol, dimethylformamide and triethyleneglycol.
Lämpliga lösningsmedel är t.ex. aceton, etanol, metanol, dimetylformamid och trietylenglykol.
Examples of suitable dispersants are Cremophor RH40, Tween 80, methylcellulose 0,01 % and HCO-40.
Lämpliga dispergeringsmedel är t.ex. Cremophor RH40, Tween 80, metylcellulosa (0,01 %) och HCO-40.
Care should be taken when using readily biodegradable agents (e.g. acetone) and/or highly volatile as these can cause problems with bacterial built-up in flow-through tests.
Om man använder agenter som är biologiskt lättnedbrytbara (t.ex. aceton) eller agenter med hög flyktighet bör man iaktta särskild försiktighet eftersom sådana agenter kan orsaka problem med bakterieansamling vid genomflödestest.
When a solubilising agent is used it must have no significant effect on survival nor visible adverse effect on the early-life stages as revealed by a solvent-only control.
Om en lösningsagent används får den inte ha signifikant verkan på överlevnaden eller framkalla synliga skadliga verkningar på tidiga levnadsstadier (verkningar som framkommit vid test med rent lösningsmedel). Användningen av sådana ämnen bör undvikas med alla medel.
For the semi-static technique, two different renewal procedures may be followed; either (i) new test solutions are prepared in clean vessels and surviving eggs and larvae gently transferred into the new vessels in a small volume of old solution, avoiding exposure to air, or (ii) the test organisms are retained in the vessels whilst a proportion (at least three-quarters) of the test water is changed.
Det ena innebär att nya testlösningar bereds i rena kärl och överlevande ägg och yngel överförs försiktigt till de nya kärlen i en liten volym gammal lösning, samtidigt som man undviker exponering för luft. Det andra förfarandet innebär att organismerna hålls kvar i kärlen medan en andel (minst tre fjärdedelar) av testvattnet byts ut.
The frequency of medium renewal will depend on the stability of the test substance, but a daily water renewal is recommended.
Hur ofta mediet måste förnyas beror på testämnets stabilitet, men daglig förnyelse rekommenderas.
In any case, care should be taken to avoid stressing the larvae during the water renewal operation.
Under alla omständigheter bör man undvika att stressa ynglen när man förnyar vattnet.
The flow rates of stock solutions and dilution water should be checked at intervals, preferably daily, and should not vary by more than 10 % throughout the test.
Stamlösningens och spädvattnets flödeshastighet bör kontrolleras regelbundet, helst dagligen, och får inte variera med mer än 10 % under hela testet.
A flow rate equivalent to at least five test chamber volumes per 24 hours has been found suitable (2).
En flödeshastighet som motsvarar minst fem testkärlsvolymer per 24 timmar har konstaterats vara lämplig (2).
Useful information on the performance of fish embryo and sac-fry toxicity tests is available in the literature, some examples of which are included in the literature section of this text (7)(8)(9).
Ett antal exempel på litteratur finns i hänvisningarna (7), (8), (9).
The test should start preferably within 30 minutes after the eggs have been fertilised.
Testet bör helst inledas inom 30 minuter efter befruktning av äggen.
The embryos are immersed in the test solution before, or as soon as possible after, commencement of the blastodisc cleavage stage and in any case before the onset of the gastrula stage.
Embryona läggs i testlösningen före eller så snart som möjligt efter att blastocysten påbörjar klyvning, och under alla omständigheter innan gastrulastadiet inleds.
For eggs obtained from commercial supplier, it may not be possible to start the test immediately after fertilisation.
Om äggen kommer från en kommersiell leverantör kan det hända att det inte är möjligt att starta testet strax efter befruktningen.
As the sensitivity of the test may be seriously influenced by delaying the start of the test, the test should be initiated within eight hours after fertilisation.
Testets känslighet kan allvarligt påverkas av en försenad teststart. Testet måste inledas inom åtta timmar efter befruktningen.
As larvae are not fed during the exposure period, the test should be terminated just before the yolk sac of any larvae in any of the test chambers has been completely absorbed or before mortalities by starvation start in controls.
Eftersom ynglen inte utfodras under exponeringsperioden, bör testet avslutas strax innan någon av gulesäckarna i något av testkarlen har absorberats helt eller innan ynglen i kontrollgrupperna börjar dö på grund av svält.
The duration will depend upon the species used.
Testperiodens längd beror på den art som används.
Some recommended durations are given in Appendices 2 and 3.
Vissa rekommendationer gällande testperiodens längd finns i tilläggen 2 och 3.
The number of fertilised eggs at the start of the test should be sufficient to meet statistical requirements.
Antalet befruktade ägg vid testperiodens början bör vara tillräckligt med tanke på statistiska krav. Äggen fördelas slumpmässigt mellan behandlingsgrupperna.
They should be randomly distributed among treatments, and at least 30 fertilised eggs, divided equally (or as equally as possible since it can be difficult to obtain equal batches when using some species) between at least three replicate test chambers, should be used per concentration.
För varje koncentration används minst 30 befruktade ägg, jämnt fördelade (eller så jämnt det är möjligt – med vissa arter är det svårt att få likadana satser) mellan minst tre likadana testkärl.
The loading rate (biomass per volume of test solution) should be low enough in order that a dissolved oxygen concentration of at least 60 % ASV can be maintained without aeration.
Fisktätheten (biomassa per volym testlösning) får inte vara högre än att man kan hålla koncentrationen löst syrgas på minst 60 % ASV utan luftning.
For flow-through tests, a loading rate not exceeding 0,5 g/l per 24 hours and not exceeding 5 g/l of solution at any time has been recommended (2).
För genomflödestest rekommenderas en fisktäthet som inte överskrider 0,5 g/l per 24 timmar och som under inga omständigheter överskrider 5 g/l lösning (2).
The photoperiod and test water temperature should be appropriate for the test species (Appendix 2 and 3).
Ljusperioden och vattentemperaturen bör anpassas till den art som testas (tilläggen 2 och 3).
For the purpose of temperature monitoring, it may be appropriate to use an additional test vessel.
Temperaturövervakningen kan gärna ordnas med hjälp av ett extra testkärl.
Normally, five concentrations of the test substance spaced by a constant factor not exceeding 3,2 are required.
Koncentrationerna bör ligga i en serie med en konstant faktor som inte överskrider 3,2.
The curve relating LC50 to period of exposure in the acute study should be considered when selecting the range of test concentrations.
När man väljer testkoncentrationsområde är det viktigt att beakta kurvan som visar sambandet mellan LC50 och exponeringsperioden vid test avseende akut toxicitet.
The use of fewer than five concentrations, for example in limit tests, and a narrower concentration interval may be appropriate in some circumstances.
I vissa fall kan det vara motiverat med mindre än fem koncentrationer, t.ex. vid gränstest, och ett snävare koncentrationsintervall.
Concentrations of the substance higher than the 96 hour LC50 or 100 mg/l, whichever is the lower, need not be tested.
Ämneskoncentrationer som är högre än LC50 under 96 timmar eller 100 mg/l, beroende på vilken som är lägre, behöver inte testas.
Substances should not be tested above their solubility limit in the test water.
Ämnen får inte testas ovanför sin löslighetsgräns i testvattnet.
When a solubilising agent is used to aid preparation of test solutions (see Section 1.6.6), its final concentration in the test vessels should not be greater than 0,1 ml/l and should be the same in all test vessels.
Om en lösningsagent används för att underlätta beredningen av testlösningar (se avsnitt 1.6.6) får agentens slutkoncentration i testkärlet inte överskrida 0,1 ml/l och samma slutkoncentration bör användas i alla testkärl.
One dilution-water control (replicated as appropriate) and also, if relevant, one control containing the solubilising-agent (replicated as appropriate) should be run in addition to the test series.
En kontrollsats med spädvatten (med tillämpliga replikat) och, om det är relevant, en kontrollsats med lösningsagenten (med tillämpliga replikat) bör köras utöver testserierna.
During the test, the concentrations of the test substance are determined at regular intervals.
Under testets gång bör testämnets koncentrationer bestämmas med regelbundna intervall.