natgillin/translations-raw huggingface dataset:
If the time required to reach 95 % loss is impractically long, exceeding for example twice the normal duration of the uptake phase (i.e. more than 56 days) a shorter period may be used (i.e. until the concentration of test substance is less than 10 % of steady-state concentration).
Om den tid som krävs för att få en 95-procentig minskning blir orimligt lång, dvs. att den överskrider dubbla normala varaktigheten för upptagningsfasen, dvs. mer än 56 dagar, kan en kortare period användas, dvs. tills koncentrationen av det undersökta ämnet är mindre an 10 % av koncentrationen vid stabilitet.
However, for substances having more complex patterns of uptake and depuration than are represented by a one-compartment fish model, yielding first order kinetics, allow longer depuration phases for determination of loss rate constants.
För ämnen med ett mer komplext mönster för upptagning och utsöndring än det som representeras av en enstaka fiskmodell med första ordningens kinetik, krävs emellertid utsöndringsfas för fastställande av utsöndringshastigheten.
The period may, however, be governed by the period over which the concentration of test substance in the fish remains above the analytical detection limit.
Periodens längd bör emellertid styras utifrån längden på den period som koncentrationen av det undersökta ämnet i fisken ligger kvar över analytiskt mätbar gräns.
Numbers of test fish
Antal fiskar
Select the numbers of fish per test concentration such that minimum of four fish per sample are available at each sampling.
Välj antalet fiskar per undersökt koncentration på ett sådant satt att minst fyra fiskar per prov finns tillgängliga för varje provtagning.
If greater statistical power is required, more fish per sample will be necessary.
Om större statistisk noggrannhet krävs, behövs fler fiskar per prov.
If adult fish are used, report whether male or female, or both are used in the experiment.
Om vuxna fiskar användas ska det i rapporten anges huruvida han- eller honfiskar eller bägge sorter använts vid experimentet.
If both sexes are used, differences in lipid content between sexes should be documented to be non-significant before the start of the exposure; pooling all male and all female fish may be necessary.
Om bägge könen används ska skillnader avseende fettinnehåll mellan könen visas vara utan betydelse innan exponeringen påbörjas. Det kan vara nödvändigt att hålla han-och honfiskar var för sig.
In any one test, fish of similar weight are selected, such that the smallest are no smaller than two-thirds of the weight of the largest.
Vid denna typ av undersökningar ska fiskar med jämn vikt alltid väljas på ett sådant sätt att den minsta fisken inte väger mindre än 2/3 av vad den största väger.
All should be of the same year-class and come from the same source.
Samtliga fiskar ska vara från samma årskull och från samma källa.
Since weight and age of a fish appear sometimes to have a significant effect on BCF values (1) these details are recorded accurately.
Eftersom fiskens vikt och ålder ibland förefaller ha stor betydelse för BCF-värdena (1), ska dessa uppgifter registreras korrekt.
It is recommended that a sub-sample of the stock of fish is weighed before the test in order to estimate the mean weight.
Det rekommenderas att delar av fiskbeståndet vägs före undersökningen, för fastställande av medelvikten.
Loading
Djurtäthet
High water-to-fish ratios are used in order to minimise the reduction in CW caused by the addition of the fish at the start of the test and also to avoid decreases in dissolved oxygen concentration.
En hög fisktäthet används för att minimera minskningen av Cw provningskärlet ska under undersökningen inte överstiga den koncentration av organiskt kol p.g.a. tillförsel av fiskar vid undersökningens början samt för att undvika en ökning av koncentrationen upplöst syre.
It is important that the loading rate is appropriate for the test species used.
Det är viktigt att fisktätheten är anpassad för den art som används.
In any case, a loading rate of 0,1-1,0 g of fish (wet weight) per litre of water per day is normally recommended.
En täthet på 0,1–1,0 g fisk (våt vikt) per liter vatten och dag rekommenderas normalt.
High loading rates can be used if it is shown that the required concentration of test substance can be maintained within ± 20 % limits, and that the concentration of dissolved oxygen does not fall below 60 % saturation.
Hög täthet kan användas om det visar sig att önskad koncentration av det undersökta ämnet kan upprätthållas inom ± 20 % och att koncentrationen av upplöst syre inte faller under 60 % mättnad.
In choosing appropriate loading regimes, account of the normal habitat of the fish species is taken.
Vid val av lämpliga system ska hänsyn tas till fiskartens normala beteende.
For example, bottom-living fish may demand a larger bottom area of the aquarium for the same volume of water than pelagic fish species.
Bottenlevande fisk kan således kräva en större bottenyta i ett akvarium för en viss vattenvolym i förhållande till ytlevande fiskarter.
Fish are fed daily throughout the acclimation and test periods at a level of approximately 1 to 2 % of body weight per day; this keeps the lipid concentration in most species of fish at a relatively constant level during the test.
Under acklimatiserings- och provningsperioderna ska fisken utfodras med lämplig diet med känd fetthalt och totalt proteininnehåll, i sådan utsträckning att de hålls friska och behåller kroppsvikten, Fisken ska under acklimatiserins- och provningsperioderna utfodras med ungefär 1 — 2 % av kroppsvikten per dag.
The amount of feed should be re-calculated, for example, once per week, in order to maintain consistent body weight and lipid content.
Detta håller fetthalten relativt konstant i de flesta fiskarter under provet. Fodermängden ska räknas om, t.ex. en gång per vecka, för att upprätthålla jämn kroppsvikt och fetthalt.
For this calculation, the weight of the fish in each test chamber can be estimated from the weight of the fish sampled most recently in that chamber.
Vid denna beräkning kan fiskens vikt i respektive provningskammare bedömas utifrån vikten på den fisk som senast tagits som prov från respektive kammare.
Do not weigh the fish remaining in the chamber.
Väg inte den fisk som lämnas kvar i kammaren.
Uneaten food and faeces are siphoned daily from the test chambers shortly after feeding (30 minutes to 1 hour).
Kvarvarande foder och exkrementer ska sugas ut från provningskammaren kort efter utfodringen (30 minuter till 1 timma).
Chambers are kept as clean as possible throughout the test so that the concentration of organic matter is kept as low as possible, since the presence of organic carbon may limit the bioavailability of the test substance (1).
Kärlen ska hållas så rena som möjligt under provningen, så att koncentrationen av organisk materia hålls så låg som möjligt, eftersom förekomst av organisk kol kan begränsa det undersökta ämnets biotillgänglighet (1).
Since many feeds are derived from fishmeal, the feed should be analysed for the test substance.
Eftersom många foder tillverkas av fiskmjöl, ska fodret analyseras avseendes det undersökta ämnet.
It is also desirable to analyse the feed for pesticides and heavy metals.
Det är också önskvärt att fodret analyseras avseede bekämpningsmedel och tungmetaller.
Light and temperature
Ljus och temperatur
The photoperiod is usually 12 to 16 hours and the temperature (± 2 °C) should be appropriate for the test species (see Appendix 2).
Ljusperioden är vanligtvis 12 till 16 timmar, och temperaturen (± 2 oC) ska vara anpassad för den undesökta arten (ser bilaga 2).
The type and characteristics of illumination should be known.
Belysningens typ och egenskaper ska vara kända.
Caution should be given to the possible phototransformation of the test substance under the irradiation conditions of the study.
Hänsyn ska tas till det undersökta ämnets eventuella fototransformation under strålningsförhållanden vid försöket.
Appropriate illumination should be used avoiding exposure of the fish to unnatural photoproducts.
Lämplig belysning ska användas för undvikande av exponering av fisken för onaturliga ljusprodukter.
In some cases it may be appropriate to use a filter to screen out UV irradiation below 290 nm.
Det kan i vissa fall vara lämpligt att använda ett filter för bortfiltrering av UV-strålning under 290 nm.
Fish are exposed under flow-through conditions to at least two concentrations of the test substance in water.
Fisken exponeras under genomflödesförhållandena för minst två koncentrationer av det undersökta ämnet i vatten.
Normally, the higher (or highest) concentration of the test substance are selected to be about 1 % of its acute asymptotic LC50, and to be at least ten-fold higher than its detection limit in water by the analytical method used.
Normalt väljs den högre (eller högsta) koncentrationen av det undersökta ämnet till ungefär 1 % av dess akuta asymptotiska LC50 och så att den är minst tio gånger högre än den gräns som ska överskridas för detektion i vatten med den använda analysmetoden.
The highest test concentration can also be determined by dividing the acute 96 h LC50 by an appropriate acute/chronic ratio (appropriate ratios for some chemicals can be about 3 up to 100).
Den högsta provningskoncentrationen kan också fastställas genom division av den akuta LC50 under 96 timmar med lämpligt akut/kroniskt förhållande (lämpliga förhållanden för vissa kemikalier kan vara från ungefär 3 upp till 100).
If possible, choose the other concentration(s) such that it differs from the one above by a factor of ten.
Om möjligt bör andra koncentrationer väljas på ett sådant sätt att de avviker från ovannämnda med en fartor på 10.
If this is not possible because of the 1 % of LC50 criterion and the analytical limit, a lower factor than ten can be used or the use of 14C labelled test substance should be considered.
Om detta inte är möjligt p.g.a. kravet på 1 % av LC5O och det analytiska gränsvärder, kan en lägre faktor än 10 tillämpas eller 14C-märkning av det undersökta ämnet beaktas.
No concentration used should be above the solubility of the test substance.
Ingen av använda koncentrationer får ligga över det undersökta ämnets lösningsbarhet.
Where a solubilising agent is used its concentration should not be greater than 0,1 ml/l and should be the same in all test vessels.
När lösningsagent avvänds ska dess koncentration inte vara större än 0,1 ml/l och vara lika stor i samtliga kärl.
Its contribution, together with the test substance, to the overall content of organic carbon in the test water should be known.
Dess bidrag tillsammans med det undersökta ämnet till det totala innehållet av organsikt kol i provningsvattnet ska vara känt.
However, every effort should be made to avoid the use of such materials.
Vid halvstatiskt test kan man välja mellan två olika förnyelseförfaranden.
One dilution water control or if relevant, one control containing the solubilising agent should be run in addition to the test series, provided that it has been established that the agent has no effects on the fish.
Kontroll av lösningsvattnet eller, om så är tillämpligt, kontroll av lösningsagenten, ska göras utöver provningsserierna, förutsatt att det kunnat fastställas att agenten inte har någon effekt på fisken.
If not, both controls should be set up.
Om så inte är fallet ska bägge kontrollerna göras.
Frequency of water quality measurements
Frekvens för mätning av vattenkvalitet
During the test, dissolved oxygen, TOC, pH and temperature should be measured in all vessels.
Upplöst syre, TOC, pH och temperatur ska mätas i samtliga kärl under provningen.
Total hardness and salinity, if relevant, should be measured in the controls and one vessel at the higher (or highest) concentration.
Den totala hårdheten och eventuellt salthalten ska mätas vid kontrollerna i ett kärl med högre (eller högst) koncentration.
As a minimum, dissolved oxygen and salinity, if relevant, should be measured three times — at the beginning, around the middle and end of the uptake period — and once a week in the depuration period.
Det upplösta syret och eventuellt salthalten ska mätas minst tre gånger – i början, ungefär i mitten och mot slutet av upptagningsperioden – och en gång i veckan under utsöndringsperioden.
TOC should be measured at the beginning of the test (24 h and 48 h prior to test initiation of uptake phase) before addition of the fish and at least once a week, during both uptake and depuration phases.
TOC ska mätas vid början av provet (24 och 48 timmar innan upptagningsfasen initieras) före det att fisken tillsätts och minst en gång i veckan under både upptagnings- och utsöndringsfaserna.
Temperature should be measured daily, pH at the beginning and end of each period and hardness once each test.
Temperaturen ska mätas dagligen, pH i början och slutet av varje period och hårdheten en gång under varje provning.
Temperature should preferably be monitored continuously in at least one vessel.
Temperaturen ska helst avläsas kontinuerligt i åtminstone ett kärl.
Sampling and analysis of fish and water
Provtagning och analys ar fisk och vatten
Fish and water sampling schedule
Schema för provtagning på fisk och vatten
Water from the test chambers for the determination of test substance concentration is sampled before addition of the fish and during both uptake and depuration phases.
Vatten frän provningskärlen ska tas både före det att fisken tillsätts samt under upptagnings- och utsöndringsfaserna, för fastställande av koncentrationen av det undersökta ämnet.
As a minimum, the water is sampled at the same time as the fish and before feeding.
Prover ska tas av vattnet åtminstone samtidigt som av fisken samt före utfodring.
During the uptake phase, the concentrations of test substance are determined in order to check compliance with the validity criteria.
Under upptagningsfasen fastställs koncentrationen av det undersökta ämnet för kontroll av överensstämmelse med giltighetskriterierna.
Fish is sampled on at least five occasions during the uptake phase and at least on four occasions during the depuration phase.
Prover ska tas på fisken minst fem gånger under upptagningsfasen och vid minst fyra tillfällen under utsöndringsfasen.
Since on some occasions it will be difficult to calculate a reasonably precise estimate of the BCF value based on this number of samples, especially when other than simple first-order depuration kinetics are indicated, it may be advisable to take samples at a higher frequency in both periods (see Appendix 4).
Eftersom det i bland är svårt att göra en exakt uppskattning av BCF-värdet grundat på detta antal prover, framför allt när annan utsöndringskinetik än första ordningens kan påvisas, kan det vara tillrådligt att ta prover med tätare mellanrum under bägge perioderna (se bilaga 4).
The extra samples are stored and analysed only if the results of the first round of analyses prove inadequate for the calculation of the BCF with the desired precision.
Extraproverna ska lagras och bara analyseras om resultaten från första omgångens analyser visar sig vara otillräckliga för beräkning av BCF med önskad noggrannhet.
An example of an acceptable sampling schedule is given in Appendix 4.
I bilaga 4 ges ett exempel på ett acceptabelt provtagningsschema.
Other schedules can readily be calculated using other assumed values of Pow to calculate the exposure time for 95 % uptake.
Andra scheman kan lätt räknas ut med andra antagna värden för Pow, för beräkning av exponeringstiden för att få 95-procentig upptagning.
Sampling is continued during the uptake phase until a steady-state has been established or for 28 days, whichever is the shorter.
Provtagningen ska försätta under upptagningsfasen tills stabil nivå uppnås, dock minst 28 dagar.
If the steady-state has not been reached within 28 days sampling continues until a steady-state has been attained or for 60 days, whichever is shorter.
Om stabil nivå inte nåtts inom 28 dagar, ska provtagningen fortsätta tills stabil nivå nås, dock minst 60 dagar, om detta inträffar först.
Before beginning the depuration phase the fish are transfered to clean tanks.
Innan utsöndringsfasen inleds ska fisken överföras till rena tankar.
Sampling and Sample Preparation
Provtagning och beredning av prover
Water samples for analysis are obtained e.g. by siphoning through inert tubing from a central point in the test chamber.
Vattenprover för analys tas genom en tät röranslutning i provningskammarens mittpunkt.
Since neither filtration nor centrifuging appear always to separate the non-bioavailable fraction of the test substance from that which is bioavailable (especially for super-lipophilic chemicals i.e. those chemicals with a log Pow > 5) (1) (5), samples may not be subjected to those treatments.
Eftersom varken filtrering eller centrifugering alltid separerar den icke-biologiska fraktionen från det undersökta ämnet från den biotillgängliga delen (särskilt för superlipofila kemikalier, dvs. kemikalier med log Pow > 5) (1) (5), ska proverna inte utsättas för sådan behandling.
Instead, measures should be taken to keep the tanks as clean as possible and the content of total organic carbon should be monitored during both the uptake and depuration phases.
Åtgärder bör istället vidtas för att hålla tankarna så rena som möjligt och innehållet fullorganiskt kol ska övervakas under både upptagnings- och utsöndringsfasen.
An appropriate number of fish (normally a minimum of four) is removed from the test chambers at each sampling time.
Ett lämpligt antal fiskar, i normalfallet minst fyra, ska tas från provningskammaren vid varje provtagning.
The sampled fish are rinsed quickly with water, blot ‘dry’, killed instantly using the most appropriate and humane method, and then weighed.
Provtagningsfisken ska sköljas snabbt med vatten, torkas torr, dödas omedelbart på lämpligaste och humanaste sätt och därefter vägas.
It is preferable to analyse fish and water immediately after sampling in order to prevent degradation or other losses and to calculate approximate uptake and depuration rates as the test proceeds.
Det är lämpligt att under den tid som provet pågår analysera fisken och vattnet omedelbart efter provtagning, för att förhindra försämring eller andra förluster samt för beräkning av ungefärlig upptagnings- och utsöndringshastighet.
Immediate analysis also avoids delay in determining when a plateau has been reached.
Mellananalyser förhindrar också förseningar vid fastställande av när en nivå har nåtts.
Failing immediate analysis, samples are stored by an appropriate method.
Om mellananalyser inte görs ska proverna lagras pa lämpligt sätt.
Before the beginning of the study, information on the proper method of storage for the particular test substance — for example, deep-freezing, holding at 4 0C, duration of storage, extraction, etc. are obtained.
Innan undersökningen påbörjas ska information om lämplig förvaringsmetod för det aktuella ämnet, t.ex. djupfrysning, nedkylning vid 4 oC, förvaringstid, extraktion osv., skaffas.
Quality of Analytical method
Analysmetodens kvalitet
Since the whole procedure is governed essentially by the accuracy, precision and sensitivity of the analytical method used for the test substance, check experimentally that the precision and reproducibility of the chemical analysis, as well as recovery of the test substance from both water and fish are satisfactory for the particular method.
Eftersom hela proceduren i huvudsak styrs av noggrannhet, precision och känslighet i den analysmetod som används för det undersökta ämnet, ska precision och reproduktionsbarhet för den kemiska analysen kontrolleras experimentellt, vilket även gäller för återhämtning av det undersökta ämnet från både vatten och fisk, vilket ska vara tillfresställande med den aktuella metoden.
Also, check that the test substance is not detectable in the dilution water used.
Kontrollera också att det undersökta ämnet inte kan upptäckas i det lösningsvatten som används.
If necessary, the values of Cw and Cf obtained from the test are corrected for the recoveries and background values of controls.
Om så krävs ska Cw- och Cf-värden som fås från undersökningen korrigeras för återhämtnings- och bakgrundsvärden från kontrollerna.
Fish and water samples are handled throughout in such a manner as to minimise contamination and loss (e.g. resulting from adsorption by the sampling device).
Fisk- och vattenprover ska alltigenom hanteras på ett sådant sätt att förorening och förlust minimeras, t.ex. på grund av absorbtion från provtagningsanordningarna.
Analysis of Fish Sample
Analys av fiskprov
If radiolabelled materials are used in the test, it is possible to analyse for total radio label (i.e. parent and metabolites) or, the samples may be cleaned up so that parent compound can be analysed separately.
Om radioaktivt märkt material används vid undersökningen är det möjligt att analysera den totala radioaktiva märkningen, dvs. moderblandning och metaboliter, eller kan proverna rengöras så att moderblandningen kan analyseras separat.
Also, the major metabolites may be characterised at steady-state or at the end of the uptake phase, whichever is the sooner.
De viktigare metabohterna kan karakteriseras vid stabil nivå, dock senast vid upptagningsfasens slut.
If the BCF in terms of total radiolebelled residues is ≥ 1000 %, it may be advisable, and for certain categories of chemicals such as pesticides strongly recommended, to identify and quantify degradates representing ≥ 10 % of total residues in fish tissues at steady state.
Om BCF som total radioaktivt märkt rest är ≥ 1000 %, kan det vara lämpligt och för vissa kemikaliekategorier, som t.ex. bekämpningsmedel, starkt rekommendabelt att identifiera och mängdbestämma de rester dom uppgår till ≥ 10 % av den totala resten i fiskvävnaden vid stabil nivå.
If degradates representing ≥ 10 % of total radiolabelled residues in the fish tissue are identified and quantified, then it is also recommended to identify and quantify degradates in the test water.
Om resterna representerar ≥ 10 % av den totala radioaktivt märkta resten if fiskvävnaden identifieras och kvantifieras, är det också rekommendabelt att identifiera och mängdbestämma resterna i provningsvattnet.
The concentration of the test substance should usually be determined for each weighed individual fish.
Koncentrationen av det undersökta ämnet ska normalt fastsfällas för varje vägd fiskindivid.
If this is not possible, pooling of the samples on each sampling occasion may be done but pooling does restrict the statistical procedures which can be applied to the data.
Om detta inte är möjligt kan sammanslagning av proverna vid varje provtagningstillfälle göras, men detta begränsar det statistiska förfarandet för erhållna data. Om ett visst statistiskt förfarande och dess funktion är viktiga, skal!
If a specific statistical procedure and power are important considerations, then an adequate number of fish to accommodate the desired pooling procedure and power should be included in the test (6) (7).
ett tillräckligt antal fiskar för att tillfredsställa den önskade sammanslagningsproceduren och effekten införas i undersökningen (6) (7).
BCF should be expressed both as a function of total wet weight and, for high lipophilic substances, as a function of the lipid content.
BCF ska uttryckas både som en funktion av total våt vikt och, för kraftigt lipofila ämnen, som en funktion av fettinnehållet.
Lipid content of the fish is determined on each sampling occasion if possible.
Fettinnehållet i fisken fastställs om möjligt vid varje provtagningstillfälle.
Suitable methods should be used for determination of lipid content (ref. 8 and 2 of Appendix 3).
Lämpliga metoder ska användas för fastställandet av fettinnehållet (punkterna 8 och 2 i bilaga 3).
Chloroform/methanol extraction technique may be recommended as standard method (9).
Extraktionstekniker med kloroform/metanol kan vara att rekommendera som standardmetod (9).
The various methods do not give identical values (10), so it is important to give details of the method used.
De olika metoderna ger inte identiska värden (10), varför det är viktigt att ange vilken metod som använts.