natgillin/translations-raw huggingface dataset:
If algae in control cultures have achieved the recommended growth rates, it can be assumed that the conditions for growth, including light intensity, have been adequate.
Växtbetingelserna, inbegripet ljusstyrkan, anses tillfredsställande om kontrollkulturer uppnår den rekommenderade tillväxttakten.
It is recommended to use, at the average level of the test solutions, a light intensity in the range 60 to 120 μE.m- 2.s-1 (35 to 70 × 1018 photons.m- 2.s-1) when measured in the range 400 to 700 nm using an appropriate receptor.
En ljusintensitet i området 60–120 μE/m-2·s-1 (35 till 70 × 1018 fotonerm-2. s-1) rekommenderas när den mäts i området 400-700 nm med en lämplig mottagare.
For light measuring instruments calibrated in lux, an equivalent range of 6000 to 10000 lx is acceptable.
För ljusmätningsinstrument kalibrerade i lux är den motsvarande lämpliga nivån 6000–10000 lux.
The light intensity could be obtained using four to seven 30 W fluorescent lamps of the universal white type (colour temperature of approximately 4300 K), at a distance of 0,35 m from the algal culture,
Denna ljusintensitet kan uppnås med hjälp av 4–7 universella fluorescerande vita lampor (ljustemperatur på ca 4300 K) placerade på ett avstånd av 0,35 m från algkulturen.
Cell density measurements should be made using a direct counting method of living cells, e.g. a microscope with counting chambers.
Mätningar av cellkoncentrationen ska göras genom direkt räkning av levande celler, t.ex. med hjälp av ett mikroskop med räkningskammare.
However, other procedures (photometry, turbidimetry, ...) may be used if sufficiently sensitive and if shown to be sufficiently well correlated with cell density.
Andra metoder (fotometri, turbidimetri, m.fl.) kan dock användas om de är tillräckligt känsliga och visar sig väl korrelerade med cellkoncentrationen.
Test organisms
Testorganismer
It is suggested that the species of green algae used be a fast-growing species that is convenient for culturing and testing.
Det föreslås att de grönalger som används är av en snabbväxande art som är lämplig för odling och test.
The following species are preferred:
Följande arter anses lämpliga:
Selenastrum capricornutum, e.g. ATCC 22662 or CCAP 278/4,
Selenastrum capricornutum, t.ex. ATCC 22662 eller CCAP 278/4,
Scenedesmus subspicatus, e.g. 86.81 SAG,
Scenedesmus subspicatus, t.ex. 86.81 SAG.
CCAP Culture Centre of Algae and Protozoa (U.K.)
CCAP Culture Centre of Algae and Protozoa (UK)
SAG Collection of algal culture (Gottingen, F.R.G.)
SAG Collection of algal culture (Göttingen, Tyskland)
If other species are used, the strain should be reported.
Om andra arter används måste stammen anges.
The concentration range in which effects are likely to occur is determined on the basis of results from range-finding tests.
Genom inledande tester bestäms det koncentrationsområde där verkningar kan förväntas inträda.
The two measures of growth (biomass and growth rate) may result in widely disparate measures of growth inhibition; both should be used in the range finding test to ensure that the geometric progression of concentrations will allow estimation of both the EbC50 and the ErC50.
De två mätningarna av växten (biomassa och tillväxttakt) kan leda till vitt skilda resultat för tillväxthämning. Båda ska användas i de inledande testerna så att det säkerställs att både EbC50 och ErC50 kan värderas utifrån den geometriska serie som väljs för koncentrationerna.
Initial cell density
Cellkoncentrationen vid försökets inledning
It is recommended that the initial cell density in the test cultures be approximately 104 cells/ml for Selenastrum capricornutum and Scenedesmus subspicatus.
Det rekommenderas att den initiala cellkoncentrationen i testkulturerna är ca 104 celler/ml för Selenastrum capricornutum och Scenedesmus subspicatus.
When other species are used the biomass should be comparable.
Om andra arter används ska biomassan vara jämförbar.
Concentrations of test substance
Testämnekoncentrationer
For the test, at least five concentrations are made up in a geometric series at a concentration ratio not exceeding 2,2.
För testet används minst fem koncentrationer som bildar en geometrisk serie med en koncentration av högst 2,2 väljas ut.
The lowest concentration tested should have no observed effect on the growth of the algae.
Den lägsta koncentrationen bör inte ha några synbara verkningar på algens tillväxt.
The highest concentration tested should inhibit growth by at least 50 % relative to the control and, preferably, stop growth completely.
Den högsta koncentration som testas bör hämma tillväxten med minst 50 % i förhållande till kontrollkulturen och helst stoppa tillväxten helt.
Replicates and controls
Replikater och kontrollkoncentrationer
The test design should include three replicates at each test concentration.
Testets utformning bör inbegripa tre replikater vid varje testkoncentrationsnivå.
Three controls without test substance are run and, if relevant, three controls containing the auxiliary substance are also run.
Tre kontrollkulturer utan testämne ska användas och vid behov, ska även tre kontrollkulturer som innehåller tillsatsämnet användas.
If justified, the test design may be altered to increase the number of concentrations and reduce the number of replicates per concentration.
Om det finns rimliga skäl kan testets utformning ändras så att antalet koncentrationer ökas och antalet replikater per koncentration minskas.
Test cultures containing the desired concentrations of test substance and the desired quantity of algal inoculum are prepared by adding aliquots of stock solutions of the test substance to suitable amounts of algal pre-cultures (see Appendix 1).
Testkulturer framställs med den önskade testämneskoncentrationen och den önskade mängd alginokulat genom tillsättning av stamlösning av testämnet till en passande mängd algförkultur (se tillägg 1).
The culture flasks are shaken and placed in the culturing apparatus.
Testkolvarna skakas och placeras i odlingsapparaturen.
The algal cells are kept in suspension by shaking, stirring or bubbling with air, in order to improve gas exchange and reduce pH variation in the test solutions.
Algcellerna hålls i suspension genom skakning, omrör-ning eller genombubbling med luft så att det blir bättre luftväxling och mindre pH-variationer i testlösningarna.
The cultures should be maintained at a temperature in the range of 21 to 25 oC, controlled at ± 2 oC.
Kulturerna förvaras i en temperatur mellan 21 och 25 oC som hålls konstant inom ± 2 oC.
The cell density in each flask is determined at least at 24, 48 and 72 hours after the start of the test.
Cellkoncentrationen i varje kolv bestäms minst tre gånger, nämligen 24, 48 och 72 timmar efter inledning av försöket.
Filtered algal medium containing the appropriate concentration of the test chemical is used to determine the background when using cell density measurements other than direct counting methods.
När cellkoncentrationen mäts på annat sätt än genom direkt räkning används filtrerat algmedium med den ifrågavarande testämneskoncentrationen för bestämning av bakgrundsvärden.
The pH is measured at the beginning of the test and at 72 hours.
pH mäts vid försökets inledning och efter 72 timmar.
The pH of the controls should not normally deviate by more than 1,5 units during the test.
Kontrollkulturernas pH får normalt inte avvika med mer än 1,5 under försöket.
Testing volatile substances
Test av flyktiga ämnen
There is to date no generally accepted way to test volatile substances.
Det finns ännu ingen allmänt erkänd metod för test av flyktiga ämnen.
When a substance is known to have a tendency to vaporise, closed test flasks with increased head-space may be used.
Om man vet att ett ämne har en tendens att förångas kan man använda slutna testkolvar med ökat luftutrymme ovanför vätskan.
The possibility of shortage of CO2 should be considered when calculating the head-space of the closed flasks.
Möjligheten av brist på CO2 bör beaktas vid beräkning av detta extra luftutrymme.
Variations to this method have been proposed (see reference (4)).
Förslag på variationer av denna metod har lagts fram (se hänvisning 4).
Attempts should be made to determine the amount of the substance which remains in solution, and extreme caution is advised when interpreting results of tests with volatile chemicals using closed systems.
Man bör försöka att bestämma den mängd ämne som återstår i lösningar, varvid yttersta försiktighet bör iakttas vid tolkning av resultaten av tester med flyktiga kemikalier i ett slutet system.
Using the procedures described in this method, a limit test may be performed at 100 mg per litre in order to demonstrate that the EC50 is greater than this concentration.
Genom användning av förfarandena som beskrivs i denna testmetod kan ett gränstest utföras med 100 mg per liter för att konstatera om LC50 är större än denna koncentration.
If the nature of the substance is such that a concentration of 100 mg per litre in the test water cannot be attained, the limit test should be performed at a concentration equal to the solubility of the substance (or the maximum concentration forming a stable dispersion) in the medium used (see also point 1.6.1.1).
Om ämnet är av sådan art att man inte kan erhålla en koncentration av 100 ml per liter i testvattnet utförs gränstestet vid ämnets mättnadskoncentration (eller den högsta koncentrationen vid vilken det bildas en stabil dispersion) i det använda mediet (se även 1.6.1.1).
The limit test should be performed at least in triplicate, with the same number of controls.
Gränstestet utförs minst som en tredubbelbestämning och med kontrollkulturer av samma storlek.
The two measures of growth (biomass and growth rate) should be used for the limit test.
Både mätning av växten (biomassa och tillväxttakt) används i gränstestet.
If, in a limit test, a mean decrease of 25 % or more is found in either biomass or growth rate between the limit test and the control, a full test should be carried out.
Om biomassan eller tillväxttakten är minst 25 % lägre i gränstestet än i kontrollkulturen ska en fullständig undersökning utföras.
The measured cell density in the test cultures and controls are tabulated together with the concentrations of the test substance and the times of measurements.
De uppmätta cellkoncentrationerna i testkulturerna och kontrollkulturerna ska ställas upp i tabellform tillsammans med koncentrationerna av testämnena och tidpunkterna för mätningarna.
The mean value of the cell density for each test substance concentration and for the controls is plotted against time (0-72 h) to produce growth curves.
Medelvärdet av cellkoncentrationen för varje testämneskoncentration och för kontrollkulturerna ritas in mot tiden (0–72 timmar) så att växt-kurvor erhålls.
To determine the concentration/effect relationship, the two following approaches should be used.
För bestämning av förhållandet mellan koncentration och verkan bör följande två metoder användas.
Some substances can stimulate the growth at low concentrations.
Vissa ämnen kan stimulera tillväxt vid låga koncentrationer.
Only data points indicating inhibition between 0 and 100 % should be considered.
Endast datapunkter som anger att hämningen är mellan 0 och 100 % ska beaktas.
COMPARISON OF AREAS UNDER THE GROWTH CURVES
JÄMFÖRELSE AV AREALER UNDER VÄXTKURVORNA
The area between the growth curves and the horizontal line N = N0 may be calculated according to the formula:
Arealen mellan växtkurvorna och den horisontella linjen N = No kan beräknas efter denna formel:
A area
A areal
number of cells/ml at time t0 (beginning of the test),o,
nominellt antal celler per ml vid tidpunkten t0 (inledningen av testet)
measured number of cells/ml at t1
uppmätt antal celler vid tidpunkten t1
measured number of cells/ml at time
uppmätt antal celler vid tidpunkten tn
time of first measurement after beginning of test
tidpunkt för första mätning efter testets inledning
time of nth measurement after beginning of test.
tidpunkt för nde mätning efter testets inledning
n number of measurements taken after the beginning of the test.
n antal mätningar gjorda efter inledning av testet
The percentage inhibition of the cell growth at each test substance concentration (IA) is calculated according to the formula:
Den procentuella hämning av celltillväxten för varje testkoncentration (IA) beräknas efter följande formel:
area between the control growth curve and the horizontal line N = No.
arealen mellan växtkurvan för kontrollkulturen och den horisontella linjen N = No
area between the growth curve at the concentration t and the horizontal line N = No.
arealen mellan växtkurvan vid koncentrationen t och den horisontella linjen N = No.
It is essential that the EbC50 is quoted with the appropriate exposure period, e.g. EbC50 (0-72h).
Det är viktigt att EbC50 anges med lämplig exponeringsperiod, t.ex. EbC50 (0–72 h).
COMPARISON OF GROWTH RATES
JÄMFÖRELSE AV TILLVÄXTTAKT
The average specific growth rate (μ) for exponentially growing cultures can be calculated as
Den genomsnittliga specifika tillväxttakten (μ) för kulturer med exponentiell tillväxt kan beräknas som:
where to is the time at the beginning of the test.
där t0 är tiden vid testets inledning.
Alternatively, the average specific growth rate may be derived from the slope of the regression line in a plot of ln N versus time.
Alternativt kan den genomsnittliga specifika tillväxttakten för varje tillväxttakt härledas av regressionslinjens lutning i en avbildning av ln N mot tiden.
The percentage inhibition of specific growth rate at each test substance concentration (Iμt) is calculated according to the formula:
Den procentuella reduktionen av den genomsnittliga tillväxttakten för varje testämnekoncentration (Iμt) beräknas efter följande formel:
mean control specific growth rate
genomsnittliga tillväxttakten för kontrollkulturen
mean specific growth rate for the test concentration t
specifika genomsnittliga tillväxttakten för testkoncentration
The percentage reduction in average specific growth rate at each test substance concentration compared to the control value is plotted against the logarithm of the concentration.
Den procentuella reduktionen av den genomsnittliga tillväxttakten för varje testämnekoncentration jämfört med kontrollvärdena avbildas mot logaritmen till koncentrationen.
The EC5o may be read from the resulting graph.
Deras EC50 kan avläsas av den därvid framkomna grafen.
To denote unambiguously the EC50 derived by this method it is proposed to use the symbol ErC50.
Som en entydig beteckning för det EC50-värde som beräknas med denna metod föreslås att man använder symbolen ErC50. Tidpunkterna för mätningarna ska anges.
The times of measurement must be indicated, e.g. if the value relates to times 0 and 72 hours, the symbol becomes ErC50 (0-72h).
Om t.ex. värdet gäller observationstidpunkterna 0 och 72 timmar blir symbolen ErC50 (0–72 h).
Note: specific growth rate is a logarithmic term, and small changes in growth rate may lead to great changes in biomass.
Obs.: Tillväxttakten är en logaritmisk term, och små ändringar i tillväxttakten kan medföra stora ändringar i biomassan.
EbC and ErC values are therefore not numerically comparable.
EbC och ErC är därför inte numeriskt jämförbara värden.
CALCULATION OF THE NOEC
BERÄKNING AV NOEC-VÄRDEN
The No Observed Effect Concentration is determined by a suitable statistical procedure for multisample comparison (e.g. analysis of variance and Dunnett's test), using the individual replicates values of the areas under the growth curves A (see point 2.1) or the specific growth rates μ (see point 2.2).
Den koncentration där man inte kan iaktta någon verkan (NOEC-värden) bestäms genom en lämplig statistisk metod för jämförelse av flera prover (t.ex. variationsanalys eller Dunnetts test), som används på de enskilda värdena av arealerna under växtkurvorna A (se 2.1) eller av de specifika tillväxttakterna μ (se 2.2).
test substance: chemical identification data,
Testämne: data för kemisk identifiering.
test organisms: origin, laboratory culture, strain number, method of cultivation,
Testorganismer: Härkomst, laboratoriekultur, stamnummer, odlingsmetod.
date of the start and the end of the test and its duration,
Datum för inledning och avslutning av testet samt testets varaktighet.
temperature,
Temperatur.
composition of medium,
Mediets sammansättning.
culturing apparatus,
Odlingsapparatur.
pH of solutions at the start and end of the test (an explanation should be provided if pH deviations of more than 1,5 unit are observed),
pH-värde av lösningar vid början och slutet av testet (om pH-värdet avviker med mer än 1,5 enheter måste orsaken till detta anges).
vehicle and method used for solubilising the test substance and concentration of the vehicle in the test solutions,
Använd vehikel och metod för lösning av testämnet samt vehikelns koncentration i testlösningen.
light intensity and quality,
Ljusintensitet och kvalitet.
concentrations tested (measured or nominal).
Testade koncentrationer (uppmätta eller nominella).
results:
Resultat:
cell density for each flask at each measuring point and method for measuring cell density,
Cellkoncentration för varje kolv vid varje mättidpunkt och metod för mätning av cellkoncentration.
mean values of cell density,
Genomsnittligt värde av cellkoncentrationer.
growth curves,
Tillväxtkurvor.
graphical presentation of the concentration effect relationship,
Grafisk framställning av förhållandet mellan koncentration och verkan.
EC values and method of calculation,
EC-värde och beräkningsmetod.
other observed effects.
Andra observerade verkningar.
Umweltbundesamt, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag ‘Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus’, in: Rudolph/Boje: bkotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
Umweltsbundesamt, Berling, 1984, Verfahrensvorschalg ”Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus”, i: Rudolph/Boje: Ökotoxikologie, ecomed. Landsberg, 1986.
and M.Vighi — Chemosphere, 1981, vol.10, 1123-1126.
Galassi and M. Vighi-Chemosphere, 1981, vol. 10, 1123–1126.
Example of a procedure for the culturing of algae
Exempel på en metod för odling av alger
The purpose of culturing on the basis of the following procedure is to obtain algal cultures for toxicity tests.
Syftet med odling på grundval av nedanstående metoder är att framställa algkulturer för toxicitetstest.
Suitable methods should be used to ensure that the algal cultures are not infected with bacteria (ISO 4833).
Lämpliga metoder används för att säkerställa att algkulturerna inte infekteras med bakterier (ISO 4833).
Axenic cultures may be desirable but unialgal cultures are essential.
Axe-niska kulturer kan under vissa omständigheter vara önskvärda, men det är väsentligt att kulturerna uteslutande består av alger.
All operations should be carried out under sterile conditions in order to avoid contamination with bacteria and, other algae.
Alla operationer ska företas under sterila förhållanden för att undvika förorening med bakterier eller med andra alger.
Contaminated cultures should be rejected.
Kontaminerade kulturer kasseras.
Procedures for obtaining algal cultures
Metoder för framställning av algkulturer
Preparation of nutrient solutions (media):
Framställning av näringslösningar (medier)
the medium can be prepared by diluting concentrated stock solutions of nutrients.
Substratet kan framställas genom förtunning av koncentrerade näringsämneslösningar.
For solid medium, 0,8 % of agar is added.
För fasta substrater tillsätts 0,8 % agar.
The medium used should be sterile.
Endast sterila substrat används.
Sterilisation by autoclaving may lead to a loss of NH3.
Autoklavering kan leda till förlust av NH3.
Stock culture:
Stamkultur
the stock cultures are small algal cultures that are regularly transferred to fresh medium to act as initial test material.
Stamkulturerna är små algkulturer som regelbundet överförs till ett friskt medium och som används som utgångstestmaterial.
If the cultures are not used regularly they are streaked out on sloped agar tubes.
Om kulturerna inte används regelbundet stryks de ut på böjda agarrör.
These are transferred to fresh medium at least once every two months.
De överförs till ett färskt medium minst varannan månad.
the stock cultures are grown in conical flasks containing the appropriate medium (volume about 100 ml).
Stamkulturerna odlas i koniska kolvar med det lämpliga mediet (volymen ca 100 ml).
When the algae are incubated at 20 oC with continuous illumination, a weekly transfer is required.
När algerna inkuberas vid 20 oC i konstant ljus krävs veckovis överföring.
During transfer an amount of ‘old’ culture is transferred with sterile pipettes into a flask of fresh medium, so that with the fast-growing species the initial concentration is about 100 times smaller than in the old culture.
Under överföringen avsätts en viss mängd ”gammal” kultur med sterila pipetter i en kolv med färskt medium så att initialkoncentrationen i fråga om de snabbväxande arterna är ca 100 gånger mindre än i den gamla kulturen.
the growth rate of a species can be determined from the growth curve.
En arts tillväxttakt kan bestämmas utifrån tillväxtkurvan.
If this is known, it is possible to estimate the density at which the culture should be transferred to new medium.
Om denna är känd är det möjligt att se vid vilken täthet kulturen ska överföras till det nya mediet.
This must be done before the culture reaches the death phase.
Detta måste göras innan kulturen når dödfasen.
Pre-culture:
Förkultur
the pre-culture is intended to give an amount of algae suitable for the inoculation of test cultures.
Avsikten med förkulturen är att få en mängd alger som är lämpliga för inokulering av testkulturer.
The pre-culture is incubated under the conditions of the test and used when still exponentially growing, normally after an incubation period of about three days.
Förkulturen inkuberas under testbetingelser och används medan den fortfarande växer exponentiellt, normalt efter en inkubationsperiod på omkring tre dagar.
When the algal cultures contain deformed or abnormal cells, they must be discarded.
Om algkulturerna innehåller missbildade eller abnorma celler ska de slängas.
The ISO 8692 — Water quality — Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum reports the following results for an inter-laboratory test among 16 laboratories, testing potassium dichromate:
ISO 8692 – Water quality – Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenast-rum capricornutum rapporterar följande resultat för ett test av kaliumdikromat med 16 deltagande laboratorier:
Means (mg/l)
Medel (mg/l)
Range (mg/l)
Område (mg/I)
Six test methods are described that permit the screening of chemicals for ready biodegradability in an aerobic aqueous medium:
Sex metoder för screening av kemikalier för lätt bionedbrytning i ett aerobt vattenmedium beskrivs:
Dissolved Organic Carbon (DOC) Die-Away (Method C.4-A)
Eliminering av upplöst organiskt kol (DOC) (Metod C.4-A).
Modified OECD Screening — DOC Die-Away (Method C.4-B)
Modifierat OECD-screeningtest – eliminering av DOC (Metod C.4-B).
Carbon dioxide (CO2) Evolution (Modified Sturm Test) (Method C.4-C)
Koldioxid (CO2) utvärdering (Modifierat Sturmtest) (Metod C.4-C).
Manometric Respirometry (Method C.4-D)
Manometrisk respiration (Metod C.4-D).
Closed Bottle (Method C.4-E)
Closed Bottle Test (Metod C.4-E).
MITI (Ministry of International Trade and Industry — Japan) (Method C.4-F)
MITI (Ministry of International Trade and Industry – Japan) (Metod C.4-F).
General and common considerations to all six tests are given in Part I of the method.
Del 1 innehåller allmänna och generella kommentarer till alla sex tester.
Items specific for individual methods are given in Parts II to VII.
I del II–VI1 finns det som är specifikt för de enskilda testerna.
The appendices contain definitions, formulas and guidance material.
Tilläggen innehåller definitioner, formler och vägledande upplysningar.
An OECD inter-laboratory comparison exercise, done in 1988, has shown that the methods give consistent results.
1988 genomförde OECD ett ringtest som visade att metoderna ger inbördes överensstämmande resultat.