natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Growth medium: is the complete synthetic culture medium in which test algae grow when exposed to the test substance.
”EyC”. odlingsmedium: det kompletta syntetiska medium som algerna växer i när de exponeras för testsubstansen.
The test substance will normally be dissolved in the test medium.
Testsubstansen är vanligen löst i testmediet.
Growth rate (average specific growth rate): is the logarithmic increase in biomass during the exposure period.
Ibland används termen ”planta”. koncentration utan observerad effekt (”NOEC – No Observed Effect Concentration”): koncentration av testsubstansen som ligger omedelbart under LOEC.
Lowest Observed Effect Concentration (LOEC): is the lowest tested concentration at which the substance is observed to have a statistically significant reducing effect on growth (at p < 0,05) when compared with the control, within a given exposure time.
lägsta koncentration med observerad effekt (LOEC – ”Lowest Observed Effect Concentration”): den lägsta testade koncentration vid vilken man kan fastställa att testsubstansen har en statistiskt signifikant hämmande effekt på tillväxten (vid p < 0,05) inom en given exponeringstid, jämfört med kontrollen.
However, all test concentrations above the LOEC must have a harmful effect equal to or greater than those observed at the LOEC.
Alla koncentrationer av testsubstansen som överstiger LOEC måste dock ha en negativ effekt som är minst lika stor som den som observeras vid LOEC.
When these two conditions cannot be satisfied, a full explanation must be given for how the LOEC (and hence the NOEC) has been selected.
Ytterligare ett villkor är att alla koncentrationer av testsubstansen vilka ligger över LOEC måste ha en skadlig effekt lika med eller större än den effekt som observeras vid LOEC.
No Observed Effect Concentration (NOEC): is the test concentration immediately below the LOEC.
nekros: död bladvävnad. Syns på att den är vit eller vattenindränkt.
Response variable: is a variable for the estimation of toxicity derived from any measured parameters describing biomass by different methods of calculation.
responsvariabel: variabel för bestämning av toxicitet. Variabeln fås fram genom att olika beräkningsmetoder tillämpas på uppmätta parametrar för biomassa.
For this method, growth rates and yield are response variables derived from measuring biomass directly or any of the surrogates mentioned.
I den aktuella testmetoden är tillväxthastighet och producerad mängd biomassa responsvariabler som erhålls genom att biomassan mäts antingen direkt eller genom någon av de angivna alternativa mätmetoderna.
Specific growth rate: is a response variable defined as the quotient of the difference of the natural logarithms of a parameter of observation (in this Testing Method, biomass) and the respective time period.
specifik tillväxthastighet: responsvariabel som definieras som kvoten av skillnaden mellan de naturliga logaritmerna för en observerad parameter (i den här testmetoden: biomassa) och motsvarande tidsperiod.
Yield: is the value of a measurement variable at the end of the exposure period minus the measurement variable’s value at the start of the exposure period to express biomass increase during the test.
producerad mängd biomassa: värdet på en mätvariabel i slutet av exponeringstiden minus motsvarande värde i början av exponeringstiden, använt som ett mått på ökningen av biomassa under testet.
APPLICABILITY OF THE TEST
TESTMETODENS TILLÄMPLIGHET
This Testing Method is most easily applied to water-soluble substances which, under the conditions of the test, are likely to remain in the water.
Testmetoden är lättast att tillämpa på vattenlösliga ämnen som under testförhållandena sannolikt kommer att stanna kvar i vattnet.
For testing of substances that are volatile, strongly adsorbing, coloured, having a low solubility in water or substances that may affect the availability of nutrients or minerals in the test medium, certain modifications of the described procedure may be required (e.g. closed system, conditioning of the test vessels).
Om man i stället vill testa ämnen som är flyktiga, starkt adsorberande, färgade, svårlösliga i vatten eller som kan påverka tillgången på näringsämnen och mineraler i testmediet kan det krävas vissa modifieringar av den beskrivna metoden (t.ex. slutna system, andra typer av testkärl).
Guidance on some appropriate modifications is given in (2), (3) and (4).
Några exempel på lämpliga modifieringar ges i (2)(3) och (4).
The purpose of this test is to determine the effects of a substance on the growth of freshwater microalgae and/or cyanobacteria.
Syftet med testet är att bestämma vilka effekter ett visst ämne har på tillväxten hos sötvattenslevande mikroalger och cyanobakterier.
Exponentially growing test organisms are exposed to the test substance in batch cultures over a period of normally 72 hours.
De exponentiellt växande testorganismerna exponeras för testsubstansen i batchkulturer under en tidsperiod på vanligen 72 timmar.
In spite of the relatively brief test duration, effects over several generations can be assessed.
Trots att testperioden är relativt kort kan effekterna på flera generationer bedömas.
The system response is the reduction of growth in a series of algal cultures (test units) exposed to various concentrations of a test substance.
Systemets respons innebär att tillväxten i en serie algkulturer (testenheter) som exponeras för olika koncentrationer av en testsubstans minskar.
The response is evaluated as a function of the exposure concentration in comparison with the average growth of replicate, unexposed control cultures.
Responsen betraktas som en funktion av exponeringskoncentrationen jämfört med den genomsnittliga tillväxten för icke-exponerade kontrollreplikat.
The test endpoint is inhibition of growth, expressed as the logarithmic increase in biomass (average specific growth rate) during the exposure period.
Som effektmått för testet används tillväxtminskning, där tillväxt definieras som den logaritmiska ökningen av biomassan (genomsnittlig specifik tillväxthastighet) under exponeringstiden.
From the average specific growth rates recorded in a series of test solutions, the concentration bringing about a specified x % inhibition of growth rate (e.g. 50 %) is determined and expressed as the ErCx (e.g. ErC50).
Från de genomsnittliga specifika tillväxthastigheter som uppmätts i en serie testlösningar beräknar man den koncentration av testsubstansen som ger upphov till en viss, fastställd minskning av tillväxthastigheten, x % (t.ex. 50 %). Värdet uttrycks som ErCx (t.ex. ErC50).
For the application of this method within the EU regulatory framework, calculation of results should be based on an average specific growth rate for the reasons described in section 2.2 below.
För tillämpning av denna metod inom ramen för EU-lagstiftningen bör resultatberäkningen baseras på en genomsnittlig specifik tillväxthastighet av de skäl som anges i avsnitt 2.2 nedan.
From the yield recorded in a series of test solutions, the concentration bringing about a specified x % inhibition of yield (e.g. 50 %) is calculated and expressed as the EyCx (e.g. EyC50).
Denna koncentration betecknas som EyCx, t.ex. EyC50 i fallet 50 %.
In addition, the lowest observed effect concentration (LOEC) and the no observed effect concentration (NOEC) may be statistically determined.
Utöver detta kan man statistiskt bestämma den lägsta koncentrationen med observerad effekt (LOEC) och koncentrationen utan observerad effekt (NOEC).
INFORMATION ON THE TEST SUBSTANCE
TESTSUBSTANS
Information on the test substance, which may be useful in establishing the test conditions, includes the structural formula, purity, stability in light, stability under the conditions of the test, light absorption properties, pKa, and results of studies of transformation including biodegradability in water.
Uppgifter om testsubstansen kan vara av värde då man bestämmer testförhållandena. Exempel på sådana uppgifter är strukturformel, renhetsgrad, ljusbeständighet, stabilitet under testbetingelserna, ljusabsorberande förmåga, pKa, samt resultat från undersökningar av ämnets omvandling – bland annat genom biologisk nedbrytning – i vatten.
The water solubility, octanol water partition coefficient (Pow) and the vapour pressure of the test substance should be known, and a validated method for the quantification of the substance in the test solutions with reported recovery efficiency and limit of detection should be available.
Testsubstansens vattenlöslighet, fördelningskoefficient oktanol/vatten (Pow) och ångtryck ska vara kända, och det ska finnas en validerad metod för kvantitativ bestämning av ämnet i testlösningarna. Metodens utbyte och detektionsgräns ska vara kända.
REFERENCE SUBSTANCE
REFERENSSUBSTANS
Reference substance(s), such as 3,5-dichlorophenol used in the international ring test (4), may be tested as a means of checking the test procedure.
Referenssubstanser, t.ex. 3,5-diklorfenol, som används i det internationella ringtestet (4), kan testas för att kontrollera testförfarandet.
Potassium dichromate can also be used as a reference substance for green algae.
För grönalger kan även kaliumdikromat användas som referenssubstans.
It is desirable to test a reference substance at least twice a year.
Referenssubstanser bör testas minst två gånger per år.
VALIDITY OF THE TEST
KRITERIER FÖR TESTRESULTATENS GILTIGHET
For the test to be valid, the following performance criteria should be met:
För att testresultaten ska vara giltiga måste följande villkor vara uppfyllda:
The biomass in the control cultures should have increased exponentially by a factor of at least 16 within the 72-hour test period.
Biomassan i kontrollkulturerna ska ha ökat exponentiellt med minst en faktor 16 inom testperioden (72 timmar).
This corresponds to a specific growth rate of 0,92 day–1.
Detta motsvarar en specifik tillväxthastighet på 0,92/dygn.
For the most frequently used species, the growth rate is usually substantially higher (see Appendix 1).
De mest använda arterna har vanligen en betydligt högre tillväxthastighet (se tillägg 1).
This criterion may not be met when species that grow slower than those listed in Appendix 1 are used.
Kravet kan dock inte alltid uppfyllas när man använder sig av arter som växer långsammare än de i tillägg 1.
In this case, the test period should be extended to obtain at least a 16-fold growth in control cultures, while the growth has to be exponential throughout the test period.
Testperioden ska då förlängas så att man erhåller en minst 16-faldig tillväxt i kontrollkulturerna, och tillväxten måste vara exponentiell under hela testperioden.
The test period may be shortened to at least 48 h to maintain unlimited exponential growth during the test, as long as the minimum multiplication factor of 16 is reached.
Testperioden kan även förkortas ända ner till 48 timmar om detta krävs för att uppnå obegränsad exponentiell tillväxt under testet. Ett villkor för detta är dock att tillväxten är minst 16-faldig.
The mean coefficient of variation for section-by-section specific growth rates (days 0-1, 1-2 and 2-3, for 72-hour tests) in the control cultures (see section 1.2 under ‘coefficient of variation’) must not exceed 35 %.
Variationskoefficientens medelvärde för sektionsvis specifika tillväxthastigheter (dag 0–1, 1–2 och 2–3 för 72-timmarstester) i kontrollkulturerna (se avsnitt 1.2 under ”variationskoefficient”) får inte överskrida 35 %.
See the second paragraph in section 2.2.1 for the calculation of section-by-section specific growth rate.
I andra stycket i avsnitt 2.2.1 beskrivs hur man beräknar sektionsvis specifik tillväxthastighet.
This criterion applies to the mean value of coefficients of variation calculated for replicate control cultures.
Detta kriterium tillämpas på medelvärdet för de variationskoefficienter som räknats fram för kontrollreplikaten.
The coefficient of variation of average specific growth rates during the whole test period in replicate control cultures must not exceed 7 % in tests with Pseudokirchneriella subcapitata and Desmodesmussubspicatus.
I tester med Pseudokirchneriella subcapitata och Desmodesmussubspicatus får variationskoefficienten för genomsnittlig specifik tillväxthastighet i kontrollreplikaten inte överskrida 7 % under hela testperioden.
For other less frequently tested species, the value should not exceed 10 %.
För arter som inte används så ofta i testsammanhang får värdet inte överstiga 10 %.
Test vessels and other apparatus, which will come into contact with the test solutions should be made entirely of glass or other chemically inert material.
Testkärl och annan utrustning som kommer i kontakt med testlösningarna ska vara helt av glas eller annat kemiskt inert material.
The items should be thoroughly washed to ensure that no organic or inorganic contaminants may interfere with the algal growth or composition of the test solutions.
Utrustningen ska rengöras omsorgsfullt så att inga organiska eller oorganiska föroreningar påverkar algernas tillväxt eller testlösningarnas sammansättning. Som testkärl används vanligen glaskolvar som rymmer en tillräckligt stor volym algkultur för att möjliggöra mätningar under testet.
The test vessels will normally be glass flasks of dimensions that allow a sufficient volume of culture for measurements during the test and a sufficient mass transfer of CO2 from the atmosphere (see the second paragraph in section 1.8.9).
Kolvarna ska också medge ett tillräckligt högt utbyte av CO2 med den omgivande luften (se andra stycket i avsnitt 1.8.9).
Note that the liquid volume must be sufficient for analytical determinations (see the fifth paragraph in section 1.8.11).
Observera att vätskevolymen måste vara tillräckligt stor för analytiska bestämningar (se femte stycket i avsnitt 1.8.11).
In addition, some or all of the following equipment will be required:
Följande utrustning krävs också (helt eller delvis): Odlingsutrymme.
Culturing apparatus: a cabinet or chamber is recommended, in which the chosen incubation temperature can be maintained at ±2 °C.
Man bör använda ett odlingsskåp eller en odlingskammare där inkuberingstemperaturen kan regleras med en noggrannhet av ±2 °C.
Light measurement instruments: it is important to note that the method of measurement of light intensity, and in particular the type of receptor (collector), will affect the measured value.
Instrument för ljusmätning. Observera att mätvärdena för ljusintensitet påverkas av mätmetoden, särskilt typen av ljussensor.
Measurements should preferably be made using a spherical (4 π) receptor (which responds to direct and reflected light from all angles above and below the plane of measurement), or a 2 π receptor (which responds to light from all angles above the measurement plane).
Mätningarna bör helst göras med en sfärisk (4 π) sensor (som mäter både direkt och reflekterat ljus från alla vinklar ovanför och under mätplanet), eller en 2 π-sensor (som mäter ljus från alla vinklar ovanför mätplanet).
Apparatus to determine algal biomass.
Utrustning för att bestämma algbiomassa.
Cell count, which is the most frequently used surrogate parameter for algal biomass, may be made using an electronic particle counter, a microscope with counting chamber, or a flow cytometer.
Cellräkning, som är den oftast använda alternativa mätmetoden för algbiomassa, kan utföras med elektronisk partikelräknare, mikroskop utrustat med räknekammare eller flödescytometer.
Other biomass surrogates can be measured using a flow cytometer, fluorimeter, spectrophotometer or colorimeter.
Andra alternativa parametrar för biomassa kan mätas med hjälp av flödescytometer, fluorimeter, spektrofotometer eller kolorimeter.
A conversion factor relating cell count to dry weight is useful to calculate.
Man bör helst ta reda på omräkningsfaktorn mellan celltal och torrvikt.
In order to provide useful measurements at low biomass concentrations when using a spectrophotometer, it may be necessary to use cuvettes with a light path of at least 4 cm.
När koncentrationen av biomassa är låg kan det vid spektrofotometriska mätningar vara nödvändigt att använda sig av kyvetter med en strålgång på minst 4 cm för att få fram användbara mätvärden.
Several species of non-attached microalgae and cyanobacteria may be used.
Ett stort antal arter av icke-fastsittande mikroalger och cyanobakterier kan användas för testet.
The strains listed in Appendix 1 have been shown to be suitable using the test procedure specified in this Testing Method.
En förteckning över lämpliga stammar återfinns i tillägg 1.
If other species are used, the strain and/or origin should be reported.
Om man använder sig av andra arter ska stammen och/eller ursprunget anges.
It has to be confirmed that exponential growth of the selected test alga can be maintained throughout the test period under the prevailing conditions.
Man måste också kunna visa att de alger som används kan tillväxa exponentiellt under hela testperioden vid rådande testförhållanden.
Growth medium
Odlingsmedium
Two alternative growth media, the OECD and the AAP medium, are recommended.
Det rekommenderas att man använder antingen OECD eller AAP som odlingsmedium.
The compositions of these media are shown in Appendix 2.
Sammansättningen av dessa medier framgår av tillägg 2.
Note that the initial pH value and the buffering capacity (regulating pH increase) of the two media are different.
Observera att de två medierna har olika utgångsvärde för pH och olika buffringsförmåga (motverkar pH-ökningar), vilket gör att de kan ge olika testresultat.
Therefore the results of the tests may be different depending on the medium used, particularly when testing ionising substances.
Detta gäller särskilt när man testar joniserande ämnen.
Modification of the growth media may be necessary for certain purposes, e.g. when testing metals and chelating agents or testing at different pH values.
Det kan ibland vara nödvändigt att modifiera odlingsmedierna, t.ex. då man testar metaller eller kelatbildare, eller då testerna görs vid skilda pH-värden.
Use of a modified medium must be described in detail and justified (3)(4).
Man ska alltid ange skälen till en sådan modifiering, och det modifierade mediet ska beskrivas i detalj (3)(4).
Initial biomass concentration
Biomassans startkoncentration
The initial biomass in the test cultures must be the same in all test cultures and sufficiently low to allow exponential growth throughout the incubation period without risk of nutrient depletion.
Biomassans startkoncentration ska vara densamma för alla testkulturer. Den ska också vara tillräckligt låg för att möjliggöra exponentiell tillväxt under hela inkuberingen utan att några näringsämnen tar slut.
The initial biomass should not exceed 0,5 mg/l as dry weight.
Startvärdet får inte överskrida 0,5 mg/l, räknat på torrvikt.
The following initial cell concentrations are recommended:
Följande cellkoncentrationer bör användas:
cells/ml
celler/ml
Concentrations of test substance
Testsubstansens koncentration
The concentration range in which effects are likely to occur may be determined on the basis of results from range-finding tests.
Det koncentrationsintervall där det är troligt att testsubstansen ger effekter kan bestämmas på grundval av resultat från särskilda tester (”range-finding tests”).
For the final definitive test, at least five concentrations arranged in a geometric series with a factor not exceeding 3,2 should be selected.
För det slutliga testet används minst fem koncentrationer i en geometrisk serie vars faktor inte överstiger 3,2.
For test substances showing a flat concentration response curve, a higher factor may be justified.
För testsubstanser med plan dos-respons-kurva kan det vara befogat att använda en högre faktor.
The concentration series should preferably cover the range causing 5-75 % inhibition of algal growth rate.
Koncentrationsserien bör helst omfatta ett intervall som minskar tillväxthastigheten med 5–75 %.
Replicates and controls
Replikat och kontroller
The test design should include three replicates at each test concentration.
För varje koncentration av testsubstansen ska det finnas tre replikat.
If determination of the NOEC is not required, the test design may be altered to increase the number of concentrations and reduce the number of replicates per concentration.
Om NOEC inte behöver bestämmas kan man ändra testupplägget så att antalet koncentrationer ökas medan antalet replikat per koncentration minskas.
The number of control replicates must be at least three, and ideally should be twice the number of replicates used for each test concentration.
Minst tre kontrollreplikat ska användas, och helst bör de vara dubbelt så många som antalet replikat för varje koncentration av testsubstansen.
A separate set of test solutions may be prepared for analytical determinations of test substance concentrations (see the fourth and sixth paragraphs in section 1.8.11).
En extra serie testlösningar kan beredas för analytisk bestämning av testsubstansens koncentration (se fjärde och sjätte stycket i avsnitt 1.8.11).
When a solvent is used to solubilise the test substance, additional controls containing the solvent at the same concentration as used in the test cultures must be included in the test design.
Om ett lösningsmedel används för testsubstansen måste man ta med ytterligare kontroller där koncentrationen av lösningsmedel är densamma som i testkulturerna.
Preparation of inoculum culture
Beredning av ympkultur
In order to adapt the test alga to the test conditions and ensure that the algae are in the exponential growth phase when used to inoculate the test solutions, an inoculum culture in the test medium is prepared 2-4 days before start of the test.
En ympkultur bereds i testmedium 2–4 dagar innan testet påbörjas. Syftet med detta är att algerna ska kunna anpassa sig till testförhållandena och befinna sig i exponentiell tillväxtfas när de senare ympas i testlösningarna.
The algal biomass should be adjusted in order to allow exponential growth to prevail in the inoculum culture until the test starts.
Algbiomassan regleras så att ympkulturen fortsätter att tillväxa exponentiellt till dess att testet inleds.
The inoculum culture shall be incubated under the same conditions as the test cultures.
Ympkulturen inkuberas under samma förhållanden som testkulturerna.
Measure the increase in biomass in the inoculum culture to ensure that growth is within the normal range for the test strain under the culturing conditions.
En mätning görs av ökningen av ympkulturens biomassa, så att man kan förvissa sig om att tillväxten befinner sig inom det normala intervallet för den använda stammen under rådande odlingsbetingelser.
An example of the procedure for algal culturing is described in Appendix 3.
I tillägg 3 ges ett exempel på en metod för algodling.
To avoid synchronous cell divisions during the test, a second propagation step of the inoculum culture may be required.
Det kan krävas ett andra förökningssteg för ympkulturen om man vill undvika att celldelningarna under testet sker synkront.
Preparation of test solutions
Beredning av testlösningar
All test solutions must contain the same concentrations of growth medium and initial biomass of test algae.
Alla testlösningar ska innehålla samma koncentration av odlingsmediet, och samma startkoncentration av algbiomassan.
Test solutions of the chosen concentrations are usually prepared by mixing a stock solution of the test substance with growth medium and inoculum culture.
Testlösningar av de valda koncentrationerna bereds vanligen genom att man blandar en stamlösning av testsubstansen med odlingsmedium och ympkultur.
Stock solutions are normally prepared by dissolving the substance in test medium.
Stamlösningar brukar beredas genom att man löser ämnet i fråga i testmedium.
Solvents, e.g. acetone, t-butyl alcohol and dimethyl formamide, may be used as carriers to add substances of low water solubility to the test medium (2)(3).
Lösningsmedel som aceton, tert-butylalkohol och dimetylformamid kan användas som bärare när man tillsätter ämnen med låg vattenlöslighet till testmediet (2)(3).