natgillin/translations-raw huggingface dataset:
In semi-static tests where the concentration of the test substance is expected to remain within ± 20 % of the nominal (i.e. within the range 80-120 %; see Section 1.4 and 1.6.6), it is recommended that, as a minimum, the highest and lowest test concentrations be analysed when freshly prepared and immediately prior to renewal on at least three occasions spaced evenly over the test (i.e. analyses should be made on a sample from the same solution — when freshly prepared and at renewal).
Vid halvstatiskt test, där testämnets koncentration bör hållas inom ± 20 % av den nominella koncentrationen (dvs. inom området 80–120 %, se avsnitten 1.4 och 1.6.6), rekommenderas att de högsta och lägsta testkoncentrationerna åtminstone analyseras strax efter beredningen och strax före förnyandet vid minst tre tillfällen som är jämnt fördelade över testperioden (analyserna görs på ett prov av samma lösning – när den är nyberedd och när den förnyas).
For tests where the concentration of the test substance is not expected to remain within ± 20 % of nominal (on the basis of stability data of the substance), it is necessary to analyse all test concentrations, when freshly prepared and at renewal, but following the same regime (i.e. on at least three occasions spaced evenly over the test).
Om det är förväntat att testämnets koncentration inte kommer att hållas inom ± 20 % av den nominella koncentrationen (på grundval av stabilitetsdata om ämnet) måste alla testkoncentrationer analyseras, när de är nyberedda och när de förnyas, men enligt samma schema (dvs. vid minst tre tillfällen som är jämt fördelade över hela testperioden).
Determination of test substance concentrations prior to renewal need only be performed on one replicate vessel at each test concentration.
Bestämning av testämnets koncentration före förnyandet behöver bara göras på ett replikatkärl per testämneskoncentration.
Determinations should be made no more than seven days apart.
Intervallet mellan bestämningarna får inte vara längre än sju dagar.
However, if evidence is available to demonstrate that the concentration of the test substance in solution has been satisfactorily maintained within ± 20 % of the nominal or measured initial concentration throughout the test, then results can be based on nominal or measured initial values.
Om det däremot finns bevis för att testämnets koncentration i lösningen på ett tillfredsställande sätt har hållits inom ± 20 % av den nominella eller uppmätta startkoncentrationen under hela testperioden, kan resultaten grunda sig på nominella eller uppmätta startvärden.
For flow-through tests, a similar sampling regime to that described for semi-static tests is appropriate (but measurement of ‘old’ solutions is not applicable in this case).
Vid genomflödestest kan man lämpligen använda samma provtagningsschema som för halvstatiskt test (även om mätningen av ”gammal” lösning då inte är tillämplig).
However, if the test duration is more than seven days, it may be advisable to increase the number of sampling occasions during the first week (e.g. three sets of measurements) to ensure that the test concentrations are remaining stable.
Om testperioden sträcker sig över mer än sju dagar kan det vara tillrådligt att utöka antalet provtagningstillfällen under den första veckan (t.ex. tre mätningsomgångar) för att kontrollera att testkoncentrationerna hålls stabila.
Samples may need to be centrifuged or filtered (e.g. using a 0,45 μm pore size).
Proverna kan behöva centrifugeras eller filtreras (t.ex. med porstorlek 0,45 μm).
However, since neither centrifuging nor filtration appears always to separate the non-bioavailable fraction of the test substance from that which is bioavailable, samples may not be subjected to those treatments.
Eftersom det inte alltid är möjligt att separera den icke-biotillgängliga fraktionen av testämnet från den biotillgängliga fraktionen genom centrifugering eller filtrering bör emellertid dessa behandlingar undvikas.
Total hardness and salinity (if relevant) should be measured in the controls and one vessel at the highest concentration.
Totalhårdhet och salthalt (om relevant) mäts i kontrollsatserna och i ett kärl med den högsta koncentrationen.
In semi-static tests, it is recommended that dissolved oxygen be measured more frequently, preferably before and after each water renewal or at least once at week. pH should be measured at the beginning and end of each water renewal in semi-static test and at least weekly in flow-through tests.
Vid halvstatiskt test rekommenderas att upplöst syrgas mäts oftare, helst före och efter varje vattenförnyelse eller minst en gång i veckan. Vid halvstatiskt test mäts pH i början och i slutet av varje vattenförnyelse och vid genomflödestest minst varje vecka.
Hardness should be measured once each test.
Hårdheten mäts en gång per test.
Temperature should be measured daily and it should preferably be monitored continuously in at least one test vessel.
Temperaturen bör mätas dagligen och helst övervakas kontinuerligt i minst ett testkärl.
Stage of embryonic development
Stadiet för embryonal utveckling
The embryonic stage (i.e. gastrula stage) at the beginning of exposure to the test substance should be verified as precisely as possible.
Det embryonala stadium (dvs. gastrulastadium) som råder när exponeringen för testämnet inleds bör bekräftas så exakt som möjligt.
This can be done using a representative sample of eggs suitably preserved and cleared.
Detta kan göras på ett representativt prov av ägg som har förvarats på lämpligt sätt.
The literature may also be consulted for the description and illustration of embryonic stages (2)(5)(10)(11).
Även litteratur kan konsulteras i fråga om beskrivning och illustration av de embryonala stadierna (2), (5), (10) och (11).
Hatching and survival
Kläckning och överlevnad
Observations on hatching and survival should be made at least once daily and numbers recorded.
Observationer av kläckning och överlevnad bör göras minst en gång per dag. Alla antal bör registreras.
It may be desirable to make more frequent observations at the beginning of the test (e.g. each 30 minutes during the first three hours), since in some cases, survival times can be more relevant than only the number of deaths (e.g. when there are acute toxic effects).
Det kan vara önskvärt med tätare observationer i början av testperioden (t.ex. med 30 minuters intervall under de tre första timmarna) eftersom överlevnadstiderna i vissa fall kan ha större relevans än blotta antalet dödsfall (t.ex. när det förekommer akuta toxiska verkningar).
Dead embryos and larvae should be removed as soon as observed since they can decompose rapidly.
Döda embryon och yngel bör avlägsnas så snart de observeras, eftersom förruttnelse kan ske snabbt.
Extreme care should be taken when removing dead individuals not to knock or physically damage adjacent eggs/larvae, these being extremely delicate and sensitive.
Yttersta försiktighet bör iakttas när döda individer avlägsnas så att man inte slår till eller orsakar fysiska skador på närliggande ägg eller yngel eftersom de är extremt sköra och känsliga.
Criteria for death vary according to life stage:
Kriterierna för död varierar beroende på levnadsstadium:
for eggs: particularly in the early stages, a marked loss of translucency and change in colouration, caused by coagulation and/or precipitation of protein, leading to a white opaque appearance,
Ägg: särskilt i tidiga stadier en tydligt förlust av genomskinlighet och färgförändringar orsakade av koagulering eller utfällning av protein, vilket leder till ett vitt ogenomskinligt utseende.
for embryos: absence of body movement and/or absence of heart beat and/or opaque discoloration in species whose embryos are normally translucent,
Embryon: avsaknad av kroppsrörelse, avsaknad av hjärtslag eller ogenomskinlig missfärgning hos arter vars embryon normalt är genomskinliga.
for larvae: immobility and/or absence of respiratory movement and/or absence of heart-beat and/or white opaque colouration of central nervous system and/or lack of reaction mechanical stimulus.
Yngel: orörlighet, avsaknad av andningsrörelse, avsaknad av hjärtslag, vit ogenomskinlig färgning av centrala nervsystemet eller avsaknad av reaktion på mekanisk stimulering.
Abnormal appearance
Onormalt utseende
The number of larvae showing abnormality of body form and/or pigmentation, and the stage of yolk-sac absorption, should be recorded at adequate intervals depending on the duration of the test and the nature of the abnormality described.
Gulesäckens absorptionsstadium och antalet yngel som har onormal kroppsform eller pigmentering bör registreras med intervall vars längd bestäms enligt testperiodens längd och karaktären hos de abnormaliteter det gäller.
It should be noted that abnormal embryos and larvae occur naturally and can be of the order of several per cent in the control(s) in some species.
Man bör beakta att onormala embryon och yngel även förekommer av naturliga skäl, och kan för vissa arter uppgå till flera procent i kontrollgruppen (kontrollgrupperna).
Abnormal animals should only be removed from the test vessels on death.
Onormala djur bör inte avlägsnas från testkärlet förrän de har dött.
Abnormalities, e.g. hyperventilation, uncoordinated swimming, and atypical quiescence should be recorded at adequate intervals depending on the duration of the test.
Abnormaliteter, t.ex. hyperventilation, okoordinerat simmande och atypisk passivitet bör registreras med intervall vars längd bestäms enligt testperiodens längd.
These effects, although difficult to quantify, can, when observed, aid in the interpretation of mortality data, i.e. provide information on the mode of toxic action of the substance.
Sådana verkningar kan vara svåra att kvantifiera men kan, när de observeras, vara till hjälp vid tolkningen av dödlighetsdata, dvs. ge upplysningar om ämnets toxiska verkningssätt.
At the end of the test, measurement of individual lengths is recommended; standard, fork or total length may be used.
Vid testets slut rekommenderas matning av individuella längder.
If however, caudal fin rot or fin erosion occurs, standard lengths should be used.
Om det förekommer röta pä stjärtfenan eller frätning av fenorna bör standardlängder användas.
Generally, in a well-run test, the coefficient of variation for length among replicates in the controls should be ≤ 20 %.
1 ett väl utfört test bör variationskoefficienten med avseende på längden hos replikaten i kontrollgrupperna i regel vara ≤ 20 %.
Weight
Vikt Vid testets slut kan individuella vikter bestämmas.
These observations will result in some or all of the following data being available for statistical analysis:
Från dessa observationer fås följande data, till alla delar eller delvis, för statistisk analys:
cumulative mortality,
Kumulativ mortalitet.
numbers of healthy larvae at end of test,
Antalet friska yngel vid försökets slut.
time to start of hatching and end of hatching (i.e. 90 % hatching in each replicate),
Tidpunkten för kläckningens början och slut (dvs. kläckning till 90 % i varje replikat).
numbers of larvae hatching each day,
Antalet yngel som kläcks per dag.
length (and weight) of surviving animals at end of the test,
Längd (och vikt) för överlevande djur vid testets slut.
numbers of larvae that are deformed or of abnormal appearance,
Antalet yngel som är missbildade eller har onormalt utseende.
numbers of larvae exhibiting abnormal behaviour.
Antalet yngel som beter sig onormalt.
If LOEC/NOECs are to be estimated, it will be necessary for variations to be analysed within each set of replicates using analysis of variance (ANOVA) or contingency table procedures.
Om man avser att uppskatta LOEC- eller NOEC-värden är det nödvändigt att analysera variationerna inom varje replikatgrupp med hjälp av variansanalys (ANOVA) eller kontingenstabellprocedurer.
In order to make a multiple comparison between the results at the individual concentrations and those for the controls, Dunnett's method may be found useful (12)(13).
För multipla jämförelser mellan resultaten vid enskilda koncentrationer och resultaten för kontrollgrupperna kan Dunnetts metod rekommenderas (12), (13).
Other useful examples are also available (14)(15).
Det finns också exempel på andra användbara metoder (14), (15).
The size of the effect detectable using ANOVA or other procedures (i.e. the power of the test) should be calculated and reported.
Storleken på den verkan som kan detekteras med hjälp av ANOVA eller andra procedurer (dvs. testets kapacitet) beräknas och rapporteras.
It should be noted that not all the observations listed in Section 1.7.5.6 are suitable for statistical analysis using ANOVA.
Anmärkningsvis kan konstateras att analys med ANOVA inte lämpar sig för alla observationer som uppräknas i avsnitt 1.7.5.6.
For example, cumulative mortality and numbers of healthy larvae at the end of the test could be analysed using probit methods.
Kumulativ mortalitet och antalet friska yngel i slutet av testet kan t.ex. analyseras med probitmetoder.
If LC/ECxs are to be estimated, (a) suitable curve(s), such as the logistic curve, should be fitted to the data of interest using a statistical method such as least squares or non-linear least squares.
Om man avser att uppskatta värden på LC eller ECx bör en eller flera kurvor, t.ex. logistisk kurva, anpassas till relevanta data med hjälp av en statistisk metod, t.ex. minsta kvadrat-metoden eller icke-linjär minsta kvadratmetod.
The curve(s) should be parameterised so that the LC/ECx of interest and its standard error can be estimated directly.
Kurvan (kurvorna) parametriseras så att relevanta värden på LC eller ECx och motsvarande standardfel kan uppskattas direkt.
This will greatly ease the calculation of the confidence limits around the LC/ECx.
Därigenom underlättas beräkningen av konfidensintervallet kring LC eller ECx betydligt.
Unless there are good reasons to prefer different confidence levels, two-sided 95 % confidence should be quoted.
Tvåsidig konfidens på 95 % bör tillämpas, utom när det finns goda skäl för att föredra avvikande konfidensnivåer.
The fitting procedure should preferably provide a means for assessing the significance of the lack of fit.
Detta kan göras grafiskt eller genom att dela kvadraternas restsumma i ”brist på passning” och ”rena felkomponenter” och utföra ett signifikanstest avseende brist på passning.
Graphical methods for fitting curves can be used.
Grafiska metoder för kurvanpassning kan användas.
Regression analysis is suitable for all observations listed in Section 1.7.5.6.
Regressionsanalys är lämplig för alla observationer som uppräknas i avsnitt 1.7.5.6.
The results should be interpreted with caution where measured toxicant concentrations in test solutions occur at levels near the detection limit of the analytical method.
Resultaten bör tolkas med försiktighet när de uppmätta koncentrationerna av det toxiska ämnet i testlösningen ligger på nivåer nära analysmetodens detektionsgräns.
The interpretation of results for concentrations above the water solubility of the substance should also be made with care.
Likaså bör man vara försiktig vid tolkning av resultaten när det galler koncentrationer ovanför ämnets vattenlöslighetsgräns.
THE TEST REPORT
TESTRAPPORT
chemical identification data, including purity and analytical method for quantification of the tests substance where appropriate.
Kemiska identifieringsdata, inklusive renhet och i tillämpliga fall analysmetod för kvantificering av testämnet.
scientific name, strain, numbers of parental fish (i.e. how many females were used for providing the required numbers of eggs in the test), source and method of collection of the fertilised eggs and subsequent handling.
Vetenskapligt namn, stam, antalet föräldrafiskar (dvs. hur många honor som behövdes för produktion av det antal ägg som användes i testet), ursprung, metoden för insamling av befruktade ägg och efterföljande behandling av äggen.
test procedure used (e.g. semi-static or flow-through, time period from fertilisation to start the test, loading, etc),
Testförfarande som har använts (t.ex. halvstatiskt test eller genomflödestest, tiden mellan befruktningen och testets början, fisktäthet osv.).
photoperiod(s),
Ljusperiod(er).
test design (e.g. number of test chambers and replicates, number of embryos per replicate),
Testets utformning (t.ex. antalet testkärl och replikat, antalet embryon per replikat).
the nominal test concentrations, the measured values, their means and their standard deviations in the test vessels and the method by which these were attained and, if the test substance is soluble in water at concentrations below those tested, evidence should be provided that the measurements refer to the concentrations of the test substance in solution,
Nominella testkoncentrationer, uppmätta värden, deras medelvärden och standardavvikelser i testkärlen och den metod med vilken dessa erhölls. Om testämnet är vattenlösligt vid koncentrationer under de testade, måste man bevisa att mätningarna hänför sig till testämnets koncentrationer i lösningen.
dilution water characteristics: pH, hardness, temperature, dissolved oxygen concentration, residual chlorine levels (if measured), total organic carbon, suspended solids, salinity of the test medium (if measured) and any other measurements made,
Spädvattnets egenskaper: pH, hårdhet, koncentrationen upplöst syrgas, restklornivåer (om de har uppmätts), totalt organiskt kol, partikelinnehåll, testmediets salthalt (om den har uppmätts) och resultatet av alla övriga mätningar.
water quality within test vessels: pH, hardness, temperature and dissolved oxygen concentration.
Vattenkvaliteten i testkärlen: pH, hårdhet, temperatur och halten upplöst syrgas.
results from any preliminary studies on the stability of the test substance,
Resultaten frän eventuella preliminära test gällande testämnets stabilitet.
evidence that controls met the overall survival acceptability standard of the test species (Appendices 2 and 3),
Bevis för att kontrollgrupperna uppfyller normerna för total överlevnad för testdjur (tilläggen 2 och 3).
data on mortality/survival at embryo and larval stages and overall mortality/survival,
Data om mortalitet och överlevnad på embryo- och yngelstadiet och total mortalitet och överlevnad.
days to hatch and numbers hatched,
Antalet dagar fram till kläckning och antalet kläckta ägg.
data for length (and weight),
Data om längd (och vikt).
incidence and description of morphological abnormalities, if any,
Förekomst och beskrivning av morfologiska abnormaliteter (i förekommande fall).
incidence and description of behavioural effects, if any,
Förekomst och beskrivning av verkningar pä beteendet (i förekommande fall).
statistical analysis and treatment of data,
Statistisk analys och behandling av data.
for tests analysed using ANOVA, the lowest observed effect concentration (LOEC) at p=0,05 and the no observed effect concentration (NOEC) for each response assessed, including a description of the statistical procedures used and an indication of what size of effect could be detected,
För test som analyseras med hjälp av ANOVA bör man rapportera den lägsta koncentration vid vilken verkningar observeras (LOEC) vid p = 0,05 och den koncentration vid vilken inga verkningar observeras (NOEC) för varje respons som har varit föremål för bedömning, tillsammans med en beskrivning av de statistiska procedurer som har använts och angivelse av hur stark verkan som kunde detekteras.
for tests analysed using regression techniques, the LC/ECx and confidence intervals and a graph of the fitted model used for its calculation,
För test som har analyserats med hjälp av regressionstekniker bör man ange LC eller ECx, konfidensintervall och en kurva med den anpassade modell som har använts för beräkningen.
explanation for any deviation from this testing method.
Motiveringar för varje avvikelse från denna testmetod.
Kristensen P., (1990) Evaluation of the Sensitivity of Short Term Fish Early Life Stage Tests in Relation to other FELS Test Methods.
Kristensen P. (1990), Evaluation of the Sensitivity of Short Term Fish Early Life Stage Tests in Relation to other EELS Test Methods.
ASTM (1988) Standard Guide for Conducting Early Life-Stage Toxicity Tests with Fishes.
ASTM (1988), Standard Guide for Conducting Early Life-Stage Toxicity Tests with Fishes.
E 1241-88. p. 26
26 sidor.
Brauhn J.L. and Schoettger R.A., (1975) Acquisition and Culture of Research Fish: Rainbow trout, Fathead minnows, Channel Catfish and Bluegills. p. 54, Ecological Research Series, EPA-660/3-75-011, Duluth, Minnesota.
Brauhn J. L. and Schoettger R. A. (1975), Acquisition and Culture of Research Fish: Rainbow trout, Fathead minnows, Channel Catfish and Bluegills. s. 54, Ecological Research Series, EPA-660/3-75-011, Duluth, Minnesota.
Brungs W.A. and Jones B.R., (1977) Temperature Criteria for Freshwater Fish: Protocol and Procedures p. 128, Ecological Research Series EPA-600/3-77-061, Duluth, Minnesota.
Brungs W. A. and Jones B. R. (1977), Temperature Criteria for Freshwater Fish: Protocol and Procedures, p. 128, Ecological Research Series EPA-600/3-77-061, Duluth, Minnesota.
Laale H.W., (1977) The Biology and Use of the Zebrafish (Brachydanio rerio) in Fisheries Research.
Laale FE W. (1977), The Biology and Use of the Zebrafish (Brachydanio rerio) in Fisheries Research.
Legault R. (1958) A Technique for Controlling the Time of Daily Spawning and Collecting Eggs of the Zebrafish, Brachydanio rerio (Hamilton-Buchanan) Copeia, 4, p. 328-330.
Legault R. (1958), A Technique for Controlling the Time of Daily Spawning and Collecting Eggs of the Zebrafish, Brachydanio rerio (Hamilton-Buchanan) Copeia, 4, s. 328–330.
Dave G., Damgaard B., Grande M., Martelin J.E., Rosander B. and Viktor T., (1987) Ring Test of an Embryo-larval Toxicity Test with Zebrafish (Brachydanio rerio) Using Chromium and Zinc as Toxicants.
Dave G., Damgaard B., Grande M., Martelin J. E., Rosander B. and Viktor T. (1987), Ring Test of an Embryo-larval Toxicity Test with Zebrafish (Brachydanio rerio) Using Chromium and Zinc as Toxicants.
Environmental Toxicology and Chemistry, 6, p. 61-71.
Environmental Toxicology and Chemistry, 6, s. 61–71.
Birge J.W., Black J.A. and Westerman A.G., (1985) Short-term Fish and Amphibian Embryo-larval Tests for Determining the Effects of Toxicant Stress on Early Life Stages and Estimating Chronic Values for Single Compounds and Complex Effluents.
Birge J. W., Black J. A. and Westerman A. G. (1985), Short-term Fish and Amphibian Embryo-larval Tests for Determining the Effects of Toxicant Stress on Early Life Stages and Estimating Chronic Values for Single Compounds and Complex Effluents.
Environmental Toxicology and Chemistry 4, p. 807-821.
Environmental Toxicology and Chemistry 4, s. 807–821.
Van Leeuwen C.J., Espeldoorn A. and Mol F. (1986) Aquatic Toxicological Aspects of Dithiocarbamates and Related Compounds.
Van Leeuwen C. J., Espeldoorn A. and Mol F. (1986), Aquatic Toxicological Aspects of Dithiocarbamates and Related Compounds.
Aquatic Toxicology, 9, p. 129-145.
Aquatic Toxicology, 9, s. 129–145.
West (1969) Teleostean Development.
West (1969), Teleostean Development.
West (1976) The Japanese Medaka.
West (1976), The Japanese Medaka.
Carolina Biological Supply Company, North Carolina. p. 36.
Carolina Biological Supply Company, North Carolina, 36 sidor.
Dunnett C.W., (1955) A Multiple Comparisons Procedure for Comparing Several Treatments with Control.
Dunnett C. W. (1955), A Multiple Comparisons Procedure for Comparing Several Treatments with Control.
New Tables for Multiple Comparisons with a Control.
(1964), New Tables for Multiple Comparisons with a Control.
Mc Clave J.T., Sullivan J.H. and Pearson J.G., (1980) Statistical Analysis of Fish Chronic Toxicity Test Data.
Mc Clave J. T., Sullivan J. H. and Pearson J.G. (1980), Statistical Analysis of Fish Chronic Toxicity Test Data.
Van Leeuwen C.J., Adema D.M.M. and Hermes J., (1990) Quantitative Structure-Activity Relationships for Fish Early Life Stage Toxicity.
Van Leeuwen C. J., Adema D. M. M. and Hermes J. (1990), Quantitative Structure-Activity Relationships for Fish Early Life Stage Toxicity.
Aquatic Toxicology, 16, p. 321-334.
Aquatic Toxicology, 16, s. 321–334.