natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Environment Canada., (1992) Toxicity Tests Using Early Life Stages of Salmonid Fish (Rainbow Trout, Coho Salmon or Atlantic Salmon).
Environment Canada. (1992), Toxicity Tests Using Early Life Stages of Salmonid Fish (Rainbow Trout, Coho Salmon or Atlantic Salmon).
Report EPS 1/RM/28, December 1992, p. 81.
Report EPS I/RM/28, December 1992, 81 sidor.
Dave G. and Xiu R., (1991) Toxicity of Mercury, Nickel, Lead and Cobalt to Embryos and Larvae of Zebrafish, Brachydanio rerio.
Dave G. and Xiu R. (1991), Toxicity of Mercury, Nickel, Lead and Cobalt to Embryos and Larvae of Zebrafish. Brachydanio rerio.
Arch. of Environmental Contamination and Toxicology, 21, p. 126-134.
Arch. of Environmental Contamination and Toxicology, 21, s. 126–134.
Meyer A., Bierman C.H. and Orti G., (1993) The phylogenetic position of the Zebrafish (Danio rerio), a model system in developmental biology — an invitation to the comperative methods.
Meyer A.. Bierman C. H. and Orti G. (1993), The phylogenetic position of the Zebrafish (Danio rerio), a model system in developmental biology – an invitation to the comperative methods.
Royal Society of London, Series B, 252: 231-236.
Royal Society of London, Series B, 252, s. 231–236.
Ghillebaert F., Chaillou C., Deschamps F. and Roubaud P., (1995) Toxic Effects, at Three pH Levels, of Two Reference Molecules on Common Carp Embryo.
Ghillebaert F., Chaillou C, Deschamps F. and Roubaud P. (1995), Toxic Effects, at Three pH Levels, of Two Reference Molecules on Common Carp Embryo.
Ecotoxicology and Environmental Safety 32, p. 19-28.
Ecotoxicology and Environmental Safety 32, s. 19–28.
US EPA, (1991) Guidelines for Culturing the Japanese Medaka, Oryzias latipes.
US EPA (1991), Guidelines for Culturing the Japanese Medaka, Oryzias latipes.
US EPA, (1991) Guidelines for Conducting Early Life Stage Toxicity Tests with Japanese Medaka, (Oryzias latipes).
US EPA (1991), Guidelines for Conducting Early Life Stage Toxicity Tests with Japanese Medaka, (Oryzias latipes).
De Graeve G.M., Cooney J.D., McIntyre D.O., Poccocic T.L., Reichenbach N.G., Dean J.H. and Marcus M.D., (1991) Validity in the performance of the seven-day Fathead minnow (Pimephales promelas) larval survival and growth test: an intra- and interlaboratory study.
De Graeve G. M., Cooney J. D., McIntyre D. O., Poccocic T. L, Reichenbach N. G., Dean J. H. and Marcus M. D. (1991), Validity in the performance of the seven-day Fathead minnow (Pimephales promelas) larval survival and growth test: an intra- and interlaboratory study.
Calow P., (1993) Handbook of Ecotoxicology, Blackwells, Oxford.
Calow P. (1993), Handbook of Ecotoxicology, Blackwells, Oxford.
Balon E.K., (1985) Early life history of fishes: New developmental, ecological and evolutionary perspectives, Junk Publ., Dordrecht, p. 280.
Balon E. K. (1985), Early life history of fishes: New developmental, ecological and evolutionary perspectives, Junk Publ., Dordrecht, 280 sidor.
Blaxter J.H.S., (1988) Pattern and variety in development, In: W.S.
Blaxter J. H. S. (1988), Pattern and variety in development, in: W.
FRESHWATER
SÖTVATTEN
Rainbow trout (9)(16)
Regnbågslax (9), (16)
Zebrafish (7)(17)(18)
Sebrafisk (7), (17), (18)
Common carp (8)(19)
Karp (8), (19)
Japanese ricefish/Medaka (20)(21)
Japanese ricefish/Medaka (20), (21)
Fathead minnow (8)(22)
Fathead minnow (8), (22)
Examples of other well-documented species which have also been used
Exempel på övriga väldokumenterade arter som också har använts
SALTWATER
SALTVATTEN
Tidewater silverside (23)(24)(25)
Tidewater silverside (23), (24), (25)
Sheepshead minnow (23)(24)(25)
Sheepshead minnow (23), (24), (25)
GUIDANCE ON PERFORMANCE OF A TOXICITY TEST ON EMBRYOS AND SAC-FRY OF ZEBRAFISH (BRACHYDANIO RERIO)
ANVISNINGAR FÖR TOXICITETSTEST PÅ EMBRYON OCH SÄCKYNGEL AV SEBRAFISK (BRACHYDAMO RERIO)
The zebrafish originates from the Coromandel coast of India where it inhabits fast-flowing streams.
Sebrafisken härstammar från indiska Coromandel-kusten där den lever i snabbströmmande vatten.
It is a common aquarium fish of the carp family, and information about procedures for its care and culture can be found in standard reference books on tropical fish.
Den är en vanlig akvariefisk som tillhör karpfamiljen. Information om vård och odling finns i allmänt tillgängliga referensböcker om tropiska fiskar.
Its biology and use in fishery research have been reviewed by Laale (1).
En översikt över sebrafiskens biologi och användning för fiskforskning har sammanställts av Laale (1).
The fish rarely exceeds 45 mm in length.
Fisken blir sällan längre än 45 mm.
The body is cylindrical with 7-9 dark-blue horizontal silvery stripes.
Den har en cylinderformad kropp med 7–9 mörkblå silverskiftande strimmor.
These stripes run into the caudal and anal fins.
Strimmorna löper in i stjärt- och analfenorna.
The back is olive-green.
Ryggen är olivgrön.
Males are slimmer than females.
Hanarna är slankare än honorna.
Females are more silvery and the abdomen is distended, particularly prior to spawning.
Honorna är mer silverskiftande och har en svällande buk, särskilt före romläggningen.
Adult fishes are able to tolerate large fluctuations in temperature, pH and hardness.
Vuxna exemplar klarar av stora variationer i temperatur, pH och vattenhårdhet.
However, in order to get healthy fish which produce eggs of good quality, optimal conditions should be provided.
För att få friska exemplar som producerar ägg av god kvalitet bör man dock se till att betingelserna är optimala.
During spawning the male pursues and butts the female, and as the eggs are expelled they are fertilised.
Vid romläggningen följer hanen efter honan och trycker sig mot henne, och äggen befruktas efterhand som de kommer ut.
The eggs, which are transparent and non-adhesive, fall to the bottom where they may be eaten by the parents.
Äggen, som är genomskinliga och icke-vidhäftande, faller till botten där de i vissa fall kan bli uppätna av föräldrarna.
Spawning is influenced by light.
Romläggningen påverkas av ljus.
If the morning light is adequate, the fish usually spawns in the early hours following daybreak.
Om morgonljuset är tillräckligt lägger fisken i regel sin rom under de första timmarna efter soluppgången.
A female can produce batches of several hundreds of eggs at weekly intervals.
En hona kan producera satser om hundratals ägg med en veckas intervall.
CONDITIONS OF PARENTAL FISH, REPRODUCTION AND EARLY-LIFE STAGES
BETINGELSER FÖR FÖRÄLDRAGENERATIONEN, REPRODUKTION OCH TIDIGA LEVNADSSTADIER
Select a suitable number of healthy fish and keep these in suitable water (e.g. Annex 4) for at least two weeks prior to the intended spawning.
Ett antal friska exemplar väljs ut och hålls i lämpligt vatten (se t.ex. tillägg 4) under minst två veckor före planerad romläggning.
The group of fish should be allowed to breed at least once before producing the batch of eggs used in the test.
Fiskgruppen bör ha producerat minst en sats avkomma innan den producerar de ägg som används för testet.
The density of fish during this period should not exceed 1 gram of fish per litre.
Fisktätheten under denna period får inte överskrida 1 gram fisk per liter.
Regular changes of water or the use of purification systems will enable the density to be higher.
Om vattnet byts regelbundet eller om det finns ett reningssystem kan högre täthet tillåtas.
The temperature in the holding tanks should be maintained at 25 ± 2 oC.
Temperaturen i förvaringskärlen bör hållas på 25 ± 2 oC.
Eight females and 16 males are placed in a tank containing 50 litres of dilution water, shielded from direct light and left as undisturbed as possible for at least 48 hours.
8 hanar och 16 honor placeras i en behållare som innehåller 50 liter spädvatten. Behållaren bör vara avskärmad från direkt ljus och lämnas så ostörd som möjligt i minst 48 timmar.
A number of ‘spawning-trees’, consisting of untwisted nylon rope, are attached to the coarse net of the frame.
Ett antal ”romläggningsträd” av otvinnat nylonrep fästes vid det grova nätet.
The spawning tray will prevent the fish from eating the eggs and at the same time permit an easy collection of the eggs.
Romläggningsbrickan hindrar fiskarna från att äta upp äggen och underlättar samtidigt insamling av äggen.
The group of fish should have spawned at least once before the spawning from which eggs are used for testing.
Fiskgruppen bör ha lagt rom minst en gång innan den lägger den rom som används för testet.
Five to 10 male and female fish are housed individually at least two weeks prior to the intended spawning.
5–10 hanar och honor förvaras separat i minst två veckor före den planerade romläggningen.
After 5-10 days, the abdomens of the females will be distended and their genital papillae visible.
Efter 5–10 dagar har honorna uppsvälld buk och deras genitalpapiller är synliga.
The water temperature is gradually increased one degree higher than the acclimatisation temperature.
Vattentemperaturen ökas stegvis till ett värde som är en grad högre än acklimatiseringstemperaturen.
The light is turned off and the tank is left as undisturbed as possible.
Ljuset släcks och behållarna lämnas så ostörda som möjligt.
If larger batches of eggs are needed than can be obtained from one female, a sufficient number of spawning tanks may be set-up in parallel.
Om det behövs större äggmängder än en hona kan producera kan man använda tillräckligt antal parallella romläggningsbehållare.
By recording the reproduction success of the individual females prior to the test (size of batch and quality), those females with highest reproduction success may be selected for breeding.
De enskilda honornas reproduktionskapacitet registreras före testet (satsens storlek och kvalitet) för att ge möjlighet att välja ut honorna med de bästa reproduktionsegenskaperna för romläggningen.
The eggs should be transferred to the test vessels by means of glass tubes (inner diameter not less than 4 mm) provided with a flexible suction bulb.
Äggen överförs till testkärlen med hjälp av glasrör (innerdiameter minst 4 mm) som är försedda med en mjuk sugboll.
The amount of water accompanying the eggs on their transfer should be as small as possible.
Vid överföring av äggen bör den medföljande vattenmängden vara så liten som möjligt.
The eggs are heavier than water and sink out of the tube.
Äggen är tyngre än vatten och sjunker ut ur röret.
Care should be taken to prevent eggs (and larvae) coming into contact with the air.
Det är viktigt att se till att ägg (och yngel) inte kommer i kontakt med luft.
Also the development rate and the rate of hatching vary from one batch to another.
Även utvecklingshastigheten och kläckningshastigheten varierar mellan olika satser.
The successfully fertilised eggs and the yolk sac larvae survive well, normally above 90 %.
Framgångsrikt befruktade ägg och säckyngel överlever till stor del, i regel över 90 %.
At 25 oC the eggs will hatch three-five days after fertilisation and the yolk sac will be absorbed approximately 13 days after fertilization.
Vid 25 oC kläcks äggen 3–5 dagar efter befruktningen och gulesäcken har absorberats cirka 13 dagar efter befruktningen.
The embryonic development has been well defined by Hisaoka and Battle (2).
Den embryonala utvecklingen har definierats väl av Hisaoka och Battle (2).
Due to the transparency of the eggs and post-hatch larvae, the development of the fish may be followed and the presence of malformations may be observed.
Äggen och nykläckta yngel är genomskinliga och därför kan man följa med fiskens utveckling och observera eventuella missbildningar.
Approximately four hours after spawning, the non-fertilized eggs may be distinguished from the fertilized (3).
Cirka fyra timmar efter romläggningen kan man se skillnaden mellan obefruktade ägg och befruktade ägg (3).
For this examination, eggs and larvae are placed in test vessels of small volume and studied under a microscope.
För denna undersökning placeras ägg och yngel i små testkärl och granskas under mikroskop.
The test conditions, which apply to the early life stages, are listed in Appendix 2.
De testbetingelser som bör användas för de tidiga levnadsstaderna uppräknas i tillägg 2.
Then, for those concentrations at which no adverse effects on any of these parameters have been detected, the body length is statistically evaluated.
Därefter görs en statistisk utvärdering av kroppslängden hos de exemplar som behandlats i koncentrationer vid vilka inga skadliga verkningar på någon av de nämnda parametrarna har detekterats.
This approach is advisable since the toxicant may selectively kill smaller fish, delay hatching-time and induce gross malformations, thus leading to biased length measurements.
Denna metod rekommenderas eftersom ett toxiskt ämne selektivt kan döda mindre fisk, förlänga kläckningstiden och framkalla grova missbildningar, vilket leder till missvisande längdmätningsresultat.
Furthermore, there will be roughly the same number of fish to be measured per treatment, ensuring the validity of the test statistics.
Dessutom mäts ungefär samma antal fiskar per behandling, vilket säkerställer de statistiska resultatens giltighet.
Therefore multiple comparison procedures should be utilised (6)(7)(8)(9)(10).
Därför bör förfaranden med multipeljämförelse användas (6), (7), (8), (9). (10).
Journal of Applied Ichthyology, 2, p. 173-181.
Journal of Applied Ichthyology, 2, s. 173–181.
A Multiple Comparisons Procedure for Comparing Several Treatments with a Control.
(1955), A Multiple Comparisons Procedure for Comparing Several Treatments with a Control.).
Dunnett C.W., (1964) New Tables for Multiple Comparisons with a Control.
Dunnett C. W. (1964), New Tables for Multiple Comparisons with a Control.
Biometrics, 27, p. 103-117.
Biometrics, 27, s. 103–117.
Biometrics 28, p. 519-531.
Biometrics 28, s. 519–531.
TEST CONDITIONS, DURATION AND SURVIVAL CRITERIA FOR RECOMMENDED SPECIES
TESTBETINGELSER, TESTPERIOD OCH ÖVERLEVNADSKRITERIER FÖR REKOMMENDERADE ARTER
Temp
Temperatur
Photo-period
Ljusperiod
Duration of stages
Stadierna s längd
Typical duration of test
Typisk testperiod
Survival of control,
Överlevnad i kontrollgrupper,
Sac-fry
Säckyngel
Hatching success
Kläcknings-framgång
Post-hatch
Efter kläckning
Zebrafish
Sebrafisk
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 5 days post-hatch (8-10 days)
Så snart som möjligt efter befruktning (tidigt gastrula-stadium) till fem dagar efter kläckning (8–10 dagar)
Rainbow trout
Regnbågslax
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 20 days post-hatch (50-55 days)
Så snart som möjligt efter befruktning (tidigt gastrula-stadium) till 20 dagar efter kläckning (50–55 dagar)
Common carp
carpio Karp
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 4 days post-hatch (8-9 days)
Så snart som möjligt efter befruktning (tidigt gastrula-stadium) till 4 dagar efter kläckning (8–9 dagar)
Japanese ricefish/Medaka
ricefish/Medaka
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 5 days post-hatch (13-16 days)
Så snart som möjligt efter befruktning (tidigt gastrula-stadium) till 5 dagar efter kläckning (13–16 dagar)
For embryos.
För embryon.
For larvae.
För yngel.
Darkness for embryo and larvae until one week after hatching except when they are being inspected.
Mörker for embryon och yngel tills att det gått en vecka efter kläckning, utom när de inspekteras.
Then subdued lighting throughout the test.
Därefter dämpad belysning till testets slut.
Test conditions, duration and survival criteria for other well documented species
Testsbetingelser, testperiod och överlevnadskriterier för andra väldokumenterade arter
Temp ( oC)
Temperatur ( oC)
Salinity (0/00)
Salthalt (0/00)
Photo-period (hrs)
Ljusperiod (timmar)
Duration of stages (days)
Stadiernas längd (dagar)
Typical duration of embryo and sac-fry test
Typisk period för test på embryo och säckyngel
Survival of control (minimum %)
Överlevnad i kontrollgrupper (minimum %)
Sac-fry test
Test på säckyngel
Goldfish
Guldfisk
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 4 days post-hatch (7 days)
Så snart som möjligt efter befruktning (tidigt gastrula-stadium) till 4 dagar efter kläckning (7 dagar)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 5 days post-hatch (6-7 days)
Så snart som möjligt efter befruktning (tidigt gastrula-stadium) till 5 dagar efter kläckning (6–7 dagar)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 3 days post-hatch (23-27 days)
Så snart som möjligt efter befruktning (tidigt gastrula-stadium) till 3 dagar efter kläckning (23–27 dagar)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 3 days post-hatch (18 days)
Så snart som möjligt efter befruktning (tidigt gastrula-stadium) till 3 dagar efter kläckning (18 dagar)
As soon as possible after fertilisation (early gastrula stage) to 4/7 days post-hatch (28 days)
Så snart som möjligt efter befruktning (tidigt gastrula-staditim) till 4 eller 7 dagar efter kläckning (28 dagar)
This acute toxicity test method is a replicate of the OECD TG 213 (1998).
Denna testmetod för akut toxicitet motsvarar OECD TG 213 (1998).
This toxicity test is a laboratory method, designed to assess the oral acute toxicity of plant protection products and other chemicals, to adult worker honeybees.
Detta test är en laboratoriemetod for bedömning av växtskyddsprodukters och andra kemikaliers akuta toxicitet (oralt) på vuxna arbetsbin.
In the assessment and evaluation of toxic characteristics of substances, determination of acute oral toxicity in honeybees may be required, e.g. when exposure of bees to a given chemical is likely.
Vid bedömning och utvärdering av olika ämnens toxiska egenskaper kan det vara nödvändigt att bestämma den akuta toxiciteten (oralt) på honungsbin, t.ex. när det är sannolikt att bin kommer att exponeras för en viss kemikalie.
The acute oral toxicity test is carried out to determine the inherent toxicity of pesticides and other chemicals to bees.
Testet för akut toxicitet (oralt) används för att bestämma bekämpningsmedels och kemikaliers toxicitet för bin. Resultatet av detta test används för att avgöra om det behövs ytterligare utvärderingar.
In particular, this method can be used in step-wise programmes for evaluating the hazards of pesticides to bees, based on sequential progression from laboratory toxicity tests to semi-field and field experiments (1).
Dessa program bygger på en sekventiell arbetsgång från laboratorietoxicitetstest till semifält-och fältförsök (1).
Pesticides can be tested as active substances (a.s.) or as formulated products.
Bekämpningsmedel kan testas som verksamma ämnen eller som formulerade produkter.
A toxic standard should be used to verify the sensitivity of the bees and the precision of the test procedure.
En giftekvivalent bör användas för att fastställa binas känslighet och testförfarandets noggrannhet.
Acute oral toxicity: is the adverse effects occurring within a maximum period of 96h of an oral administration of a single dose of test substance.
Akut toxicitet (oralt): de skadliga verkningar som uppträder inom en period pä högst 96 timmar efter oral tillförsel av en engångsdos av testämnet.
Dose: is the amount of test substance consumed.
Dos: den mängd testämne som tillförs.
Dose is expressed as mass (μg) of test substance per test animal (μg/bee).
Dosen uttrycks som vikten (μg) testämne per försöksdjur (μg/bi).
The real dose for each bee can not be calculated as the bees are fed collectively, but an average dose can be estimated (totally consumed test substance/number of test bees in one cage).
Den faktiska dosen per enskilt bi kan inte beräknas eftersom bina matas kollektivt, men det går att uppskatta en genomsnittsdos (total konsumtion av testämnet dividerat med antalet testbin i en bur).
LD50(Median Lethal Dose) oral: is a statistically derived single dose of a substance that can cause death in 50 % of animals when administered by the oral route.
(median letal dose) oralt: en statistiskt fastställd engångsdos av ett ämne som kan förväntas leda till döden för 50 % av de djur som fått dosen på oral väg.
The LD50 value is expressed in μg of test substance per bee.
LD50-värdet uttrycks som μg testämne per bi.
For pesticides, the test substance may be either an active substance (a.s.) or a formulated product containing one or more than one active substance.
När det gäller bekämpningsmedel kan testämnet vara ett verksamt ämne eller en formulerad produkt som innehåller ett eller flera verksamma ämnen.
Mortality: an animal is recorded as dead when it is completely immobile.
Mortalitet: ett djur registreras som dött när der är helt orörligt.
Adult worker honeybees (Apis mellifera) are exposed to a range of doses of the test substance dispersed in sucrose solution.
Vuxna arbetsbin honungsbi (Apis mellifera) exponeras för en serie doser av testämnet som dispergerats i sackaroslösning.
The bees are then fed the same diet, free of the test substance.
Därefter utfodras bina med samma foder, men utan tillsats av testämne.
Mortality is recorded daily during at least 48 h and compared with control values.
Mortaliteten registreras dagligen under minst 48 timmar och jämförs med kontrollgruppens värden.
If the mortality rate is increasing between 24 h and 48 h whilst control mortality remains at an accepted level, i.e. ≤ 10 %, it is appropriate to extend the duration of the test to a maximum of 96 h. The results are analysed in order to calculate the LD50 at 24 h and 48 h and, in case the study is prolonged, at 72 h and 96 h.
Om mortaliteten ökar under perioden 24–48 timmar efter tillförseln, medan kontrollgruppens mortalitet hålls på en godtagbar nivå, dvs. < 10 %, bör testet förlängas till högst 96 timmar. Resultaten analyseras för beräkning av LD50 vid 24 och 48 timmar och, om testet har förlängts, även vid 72 och 96 timmar.
the average mortality for the total number of controls must not exceed 10 % at the end of the test,
Genomsnittsmortaliteten för det totala antalet kontrolldjur får inte överskrida 10 % vid testets slut.
the LD50 of the toxic standard meets the specified range.
De värden som erhålls för LD50 för giftekvivalenten ska ligga inom det specificerade området.
Collection of bees
Insamling av bin
Young adult worker bees of the same race should be used, i.e. bees of the same age, feeding status, etc. Bees should be obtained from adequately fed, healthy, as far as possible disease-free and queen-right colonies with known history and physiological status.
För testet används unga vuxna arbetsbin av samma ras, ålder, näringstillstånd osv. Bina tas från adekvat utfodrade, friska, så långt som möjligt sjukdomsfria samhällen med renrasiga drottningar med känd historia och fysiologisk status.
They could be collected in the morning of use or in the evening before test and kept under test conditions to the next day.
Bina bor samlas in pä testdagens morgon eller kvällen före testet och hällas i testförhållandena fram till följande dag.
Bees collected from frames without brood are suitable.
Bin som insamlats från yngelfria ramar rekommenderas.
Collection in early spring or late autumn should be avoided as the bees have a changed physiology during this time.
Insamling tidigt på våren eller sent på hösten bör undvikas eftersom bina då har genomgått fysiologiska förändringar.
If tests must be conduced in early spring or late autumn, bees can be emerged in an incubator and reared for one week with ‘bee bread’ (pollen collected from the comb) and sucrose solution.
Om ett test måste genomföras tidigt pä våren eller sent på hösten kan bina kläckas i en inkubator och födas upp med ”bibröd” (pollen som insamlats frän vaxkakan) och sackaroslösning under en vecka.
Bees treated with chemical substances, such as antibiotics, anti-varroa products, etc., should not be used for toxicity test for four weeks from the time of the end of the last treatment.
Bin som har behandlats med kemiska ämnen såsom antibiotika, varroabekämpningsmedel osv. får inte användas för toxicitetstest förrän det har gått fyra veckor från det att den sista behandlingen avslutades.
Easy to clean and well-ventilated cages are used.
Burarna kan vara tillverkade av t.ex. rostfritt stål, nät eller plast.