natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Similarly 95 % depuration will be reached at:
95-procentig utsöndring fås på motsvarande sätt med ekvationen:
If 80 % uptake is used for the first period (1,6/k2) and 95 % loss in the depuration phase (3,0/k2), then the depuration phase is approximately twice the duration of the uptake phase.
Om en upptagning på 80 % används för den första perioden (1,6/k2) och en 95-procentig förlust i utsöndringsfasen (3,0/k2), är utsöndringsfasen ungefär dubbelt så lång som utsöndringen i upptagningsfasen.
It is important to note, however, that the estimations are based on the assumption that uptake and depuration patterns will follow first order kinetics.
Det är emellertid viktigt att observera att dessa beräkningar är grundade på förutsättningen att upptagnings-och utsöndringsmönstren följer första ordningens kinetik.
If first order kinetics are obviously not obeyed, more complex models should be employed (e.g. ref (1)).
Om det är uppenbart att första ordningens kinetik inte följs, ska mer komplexa beräkningsmodeller användas (se hänvisning 1).
Literature (of Appendix 3)
Hänvisningar (för bilaga 3)
Kristensen P. (1991) Bioconcentration in fish: comparison of BCF's derived from OECD and ASTM testing methods; influence of particulate matter to the bioavailability of chemicals.
Kristensen P. (1991), Bioconcentration in fish: comparison of BCF's derived from OECD and ASTMtesting methods; influence of particulate matter to the bioavailability of chemicals (ung. Biokoncen tration i fisk: jämförelse av biokoncentrationsfaktorerna från OECD:s och ASTM:s provningsmetoder, partikelformiga ämnens påverkan på kemikaliernas biotillgänglighet).
Influence of partition coefficient of lipophilic compounds on bioconcentration kinetics with fish.
(1988), Influence of partition coefficient of lipophilic compounds onbioconcentration kinetics with fish (ung. Lipofila blandningars partitionskoefficients påverkan på biokoncentrationskinetiken med fisk). Wat.
Res. 22 (6), pp 701-707.
22 (6), s. 701–707.
Branson D.R., Blau G.E., Alexander H.C. and Neely W.B.
Branson D.R., Blau G.E., Alexander H.C. and Neely W.B. (1975), Transactions of the AmericanFisheries Society (ung.
Transactions of the American Fisheries Society, 104 (4), pp 785-792.
Amerikanska fiskeförbundets transaktioner), 104 (4), s. 785–792.
Reilly P.M., Bajramovic R., Blau G.E., Branson D.R. and Sauerhoff M.W.
Reilly P.M., Bajramovic R., Blau G.E., Branson D.R. and Sauerhoff M.W. (1977), Guidelines for theoptimal design of experiments to estimate parameters in first order kenetic models (ung.
Könemann H. and Van Leeuwen K. (1980) Toxicokinetics in fish: Accumulation and Elimination of six Chlorobenzenes by Guppies.
Könemann H. and Van Leeuwen K. (1980), Toxicokinetics in fish: Accumulation and elimination ofsix chlorobenzenes by guppies. Chemosphere (ung.
Chemosphere, 9, pp 3-19.
Toxicokinetik i fisk: Ackumulering och eliminerig av sex klorbenzener i guppy), 9, s. 3–19.
Theoretical example of sampling schedule for bioconcentration tests of substances with log Pow = 4
Teoretiskt exempel på provtagningsschema för biokoncentrationsundersökningar för ämnen med log Pow = 4
Values in brackets are numbers of samples (water, fish) to be taken if additional sampling is carried out.
Värden inom parentes står för antal prover (vatten, fisk som ska tas om tilläggsprovtagning görs.
pre-test estimate of k2 for log Pow of 4,0 is 0,652 days-1.
Föregående uppskattning för k, för log Pow på 4,0 är 0,652 dagar .
The total duration of the experiment is set to 3 × up = 3 × 4,6 days, i.e. 14 days.
Experimentets totala varaktighet är fastställd till: 3 x upp = 3 x 4,6 dagar, dvs. 14 dagar.
For the estimation of ‘up’ refer to Appendix 3.
För uppskattning av ”upp”, se bilaga 3.
Fish sampling
Provtagning av fisk
Sample time schedule
Tidsschema för provtagning
No of water samples
Antal vattenprover
No of fish per sample
Antal fiskar per prov
Minimal required frequency (days)
Längsta tänkbara provtagningsfrekvens (dagar)
Additional sampling
Tilläggsprover
Uptake phase
Upptagningsfas
add 45-80 fish
tillsätt 45–80 fiskar
Sample water after minimum of 3 ‘chamber-volume’ have been delivered.
Ta prover på vattnet när minst tre kärlvolymer har levererats.
Model discrimination
Modellbeskrivning
Most bioconcentration data have been assumed to be ‘reasonably’ well described by a simple two-compartment/two-parameter model, as indicated by the rectilinear curve which approximates to the points for concentrations in fish, during the depuration phase, when these are plotted on semi-log paper.
De flesta biokoncentrationsdata har förutsatts bli skäligen väl beskrivna med en enkel tvådelad modell eller tvåparametersmodell, på det sätt som visas med den räta kurva som närmar sig punkterna för koncentrationen i fisk under utsöndringsfasen, när dessa linjer plottas på halvlogaritmiskt papper.
(Where these points cannot be described by a rectilinear curve then more complex models should be employed, see, for example, Spacie and Hamelink, Ref 1 in Appendix 3).
Om dessa punkter inte kan beskrivas av en rät kurva ska mer komplexa modeller användas, se t.ex Spacie och Hamelink, hänvisning 1 i bilaga 3.
Graphical method for determination of depuration (loss) rate constant k2
Grafisk metod för bestämmning av konstanten k2 för utsöndringshastigheten
Plot the concentration of the test substance found in each sample of fish against sampling time on semi-log paper.
Plotta en koncentration av det undersökta ämne som återfinns i varje fiskprov mot provtagningstiden på halvlogaritmiskt papper.
The slope of that line is k2.
Linjens lutning är k2.
Note that deviations from straight line may indicate a more complex depuration pattern than first order kinetics.
Observera att avvikelser från rät linje kan vara ett tecken på ett mer komplext utsöndringsmönster än första ordningens kinetik.
A graphical method may be applied for resolving types of depuration deviating from first order kinetics.
En grafisk metod kan användas för att särskilja utsöndringstyper som avviker från första ordningens kinetik.
Graphical method for determination of uptake rate constant k1
Grafisk metod för fastställande av konstanten k1 för upptagningshastigheten
Given K2, calculate k1 as follows:
När k2 tagits fram kan konstanten k1 beräknas med följande formel:
The value of Cf is read from the midpoint of the smooth uptake curve produced by the data when log concentration is plotted versus time (on an arithmetical scale).
Värdet på Cf, avläses i mittpunkten på den jämna upptagningskurva som fås av datan när den logaritmiska koncentrationen plottas i förhållande till tiden på en aritmetrisk skala.
Computer method for calculation of uptake and depuration (loss) rate constants
Metod för beräkning av konstanterna för upptagnings- och utsöndringshastigheten
The preferred means for obtaining the bioconcentration factor and k1 and k2 rate constants is to use non-linear parameter estimation methods on a computer.
De medel som föredras för erhållande av biokoncentrationsfaktorn och hastighetskonstanterna k1 och k2 är att använda en icke-linjär metod för parameteruppskattning på dator.
These programs find values for k1 and k2 given a set of sequential time concentration data and the model:
Dessa program hittar värdena på k1 och k2 utifrån en uppsättning koncentrationsdata sekventiella i tiden och med följande ekvationer:
where tc = time at the end of the uptake phase.
där tc står för tiden vid slutet av upptagningsfasen.
This approach provides standard deviation estimates of k1 and k2.
Med denna metod kan vanliga avvikelsebedömningar göras för k1 och k2.
As k2 in most cases can be estimated from the depuration curve with relatively high precision, and because a strong correlation exists between the two parameters k1 and k2 if estimated simultaneously, it may be advisable first to calculate k2 from the depuration data only, and subsequently calculate k1 from the uptake data using non-linear regression.
Eftersom k2 i de flesta fall kan uppskattas i utsöndringskurvan med förhållandevis hög precision och eftersom ett starkt samband finns mellan de två parametrarna k1 och k2 om de beräknas samtidigt, kan det vara tillrådligt att först beräkna k2 från enbart utsöndringsdata och därefter beräkna k1 från upptagningsdata med icke-linjär regression.
This growth toxicity test method is a replicate of the OECD TG 215 (2000).
Denna metod för tillväxttest avseende toxicitet motsvarar OECD TG 215 (2000).
This test is designed to assess the effects of prolonged exposure to chemicals on the growth of juvenile fish.
Testet är avsett för bestämning av vilka verkningar långvarig exponering för kemikalier har på tillväxten hos unga exemplar av fisk.
It is based on a method, developed and ring-tested (1)(2) within the European Union, for assessing the effects of chemicals on the growth of juvenile rainbow trout (Oncorynchus mykiss) under flow-through conditions.
Testet baserar sig på en metod för bestämning av verkningarna av kemikalier på tillväxten hos unga exemplar av regnbågslax (Oncorynchus mykiss) under genomflödesförhållanden, en metod som har utvecklats och ringtestats (1) (2) inom Europeiska unionen.
Other well documented species may be used.
Även andra väldokumenterade arter kan användas.
For example, experience has been gained from growth tests with zebrafish (Danio rerio) (3)(4) and ricefish (medaka, Oryzias latipes) (5)(6)(7).
Man har t.ex. erfarenheter från tillväxttest med sebrafisk (Danio rerio) (3) (4) och ricefish medaka Oryzias latipes) (5) (6) (7).
See also General introduction Part C.
Se också den allmänna inledningen, del C.
Lowest observed effect concentration (LOEC): is the lowest tested concentration of a test substance at which the substance is observed to have a significant effect (at p < 0,05) when compared with the control.
den lägsta testade koncentrationen av ett testämne vid vilken man kan observera signifikanta verkningar (vid p < 0,05) jämfört med kontrollgruppen.
However, all test concentrations above the LOEC must have a harmful effect equal to or greater than those observed at the LOEC.
Alla testkoncentrationer ovanför LOEC måste framkalla skadliga verkningar som är lika stora eller större än de verkningar som observeras vid LOEC.
No observed effect concentration (NOEC): is the test concentration immediately below the LOEC.
Koncentration vid vilken inga verkningar observeras (No observed effect concentration, NOEC): test-koncentrationen omedelbart under LOEC.
ECx: in this test method is the concentration of the test substance which causes a x % variation in growth rate of the fish when compared with controls.
ECx: den koncentration av testämnet som orsakar en tillväxtvariation på x % hos testexemplaren jämfört med kontrollgruppen.
Loading rate: is the wet weight of fish per volume of water.
Fisktäthet: våtvikten fisk per vattenvolym.
Stocking density: is the number of fish per volume of water.
Antalstäthet: antalet exemplar per vattenvolym.
Individual fish specific growth rate: expresses the growth rate of one individual based on its initial weight.
Individuell specifik tillväxthastighet: tillväxthastigheten hos en individ, uppmätt med startvikten som utgångspunkt.
Tank-average specific growth rate: expresses the mean growth rate of a tank population at one concentration.
Kärlmedelvärdet för specifik tillväxthastighet: medeltillväxthastigheten hos en kärlpopulation vid en viss koncentration.
Pseudo specific growth rate: expresses the individual growth rate compared to the mean initial weight of the tank population.
Pseudospecifik tillväxthastighet: den individuella tillväxthastigheten jämförd med kärlpopulationens medel-begynnelsevikt.
Juvenile fish in exponential growth phase are placed, after being weighted, in test chambers and are exposed to a range of sublethal concentrations of the test substance dissolved in water preferably under flow-through, or, if not possible, under appropriate semi-static (static-renewal) conditions.
Unga fiskexemplar i exponentiell tillväxtfas vägs och placeras i testkärl där de exponeras för en serie subletala koncentrationer av testämnet upplöst i vatten. Exponeringen ska helst ske under genomflödesförhållanden eller, om detta inte är möjligt, under lämpliga halvstatiska förhållanden (statisk förnyelse).
The test duration is 28 days.
Testperiodens längd är 28 dagar.
Fish are fed daily.
Fiskarna utfodras dagligen.
The food ration is based on initial fish weights and may be recalculated after 14 days.
Foderportionen baserar sig på fiskarnas begynnelsevikter och kan räknas om efter 14 dagar.
At the end of the test, the fish are weighed again.
Vid slutet av testet vägs fiskarna på nytt.
Effects on growth rates are analysed using a regression model in order to estimate the concentration that would cause a x % variation in growth rate, i.e. ECx (e.g. EC10, EC20, or EC30).
Verkningarna på tillväxthastigheterna analyseras med en regressionsmodell för att bestämma den koncentration som leder till en variation på x % av tillväxthastigheten, dvs. ECx (t.ex. EC10, EC20 eller EC30).
Alternatively, the data may be compared with control values in order to determine the lowest observed effect concentration (LOEC) and hence the no observed effect concentration (NOEC).
Alternativt kan testdata jämföras med kontrollgruppens värden för att bestämma den lägsta koncentration vid vilken verkningar observeras (LOEC) och den koncentration vid vilken inga verkningar observeras (NOEC).
Results of an acute toxicity test (see Test Method C. 1.) preferably performed with the species chosen for this test, should be available.
Det bör finnas tillgäng till resultaten frän ett test avseende akut toxicitet (se metod Cl), som helst ska ha utförts med samma art som används för detta test.
This implies that the water solubility and the vapour pressure of the test substance are known and a reliable analytical method is available for the quantification of the substance in the test solutions with known and reported accuracy and limit of detection is available.
Testämnets vattenlöslighet och ångtryck måste vara kända. Det bör finnas tillgång till en tillförlitlig analysmetod for kvantifiering av ämnet i testlösningen och denna metod blir ha känd och rapporterad noggrannhet och detektionsgräns.
Useful information includes the structural formula, purity of the substance, stability in water and light, pKa, Pow and results of a test for ready biodegradability (see Test Method C.4).
Till information som bör anges hör bl.a. testämnets strukturformel, ämnets renhet, stabilitet i vatten och ljus, pKa, Pow och resultaten från test avseende biologisk lättnedbrytbarhet (se metod C.4).
For the test to be valid the following conditions apply:
För att testet ska vara giltigt måste följande villkor uppfyllas:
the mortality in the control(s) must not exceed 10 % at the end of the test;
Mortaliteten i kontrollgruppen (kontrollgrupperna) får inte överskrida 10 % vid testets slut.
the mean weight of fish in the control(s) must have increased enough to permit the detection of the minimum variation of growth rate considered as significant.
Medelvikten hos fiskarna i kontrollgruppen (kontrollgrupperna) måste ha ökat tillräckligt för att ge möjlighet att detektera den minsta variation som anses vara signifikant.
A ring-test (2) has shown that for rainbow trout the mean weight of fish in the controls must have increased by at least the half (i.e. 50 %) of their mean initial weight over 28 days; e.g. initial weight: 1 g/fish (= 100 %), final weight after 28 days: ≥ 1,5 g/fish (≥ 150 %);
Resultaten från ett ringtest (3) har visat att medelvikten för exemplar av regnbågslax i kontrollgrupperna under de 28 testdagarna måste ha ökat med minst hälften (50 %) av begynnelsevikten. Om t.ex. begynnelsevikten är 1 g per fisk (= 100 %) bör slutvikten efter 28 dagar vara ≥ 1,5 g per fisk (≥ 150 %).
the dissolved oxygen concentration must have been at least 60 % of the air saturation value (ASV) throughout the test;
Koncentrationen upplöst syrgas måste under hela testet ha varit minst 60 % av luftmättnadsvärdet (ASV).
the water temperature must not differ by more than ± 1 oC between test chambers at any one time during the test and should be maintained within a range of 2 oC within the temperature ranges specified for the test species (Appendix 1).
Under testet får vattentemperaturen inte vid någon tidpunkt variera med mer än ± 1 oC mellan olika testkärl och den får variera med högst 2 oC från de temperaturgränser som specificerats för den art som används (se tillägg 1).
Normal laboratory equipment and especially the following:
Normal laboratorieutrustning och särskilt
oxygen and pH meters;
syrgas- och pH-mätare,
equipment for determination of water hardness and alkalinity;
utrustning för bestämning av hårdhet och alkalinitet hos vatten,
adequate apparatus for temperature control and preferably continuous monitoring;
lämplig utrustning för temperaturreglering, helst med kontinuerlig övervakning,
tanks made of chemically inert material and of suitable capacity in relation to the recommended loading and stocking density (see Section 1.8.5 and Appendix 1);
kärl som är tillverkade av kemiskt inert material och tillräckligt stora med tanke på den rekommenderade fisktätheten och antalstätheten (se avsnitt 1.8.5 och tillägg 1),
suitably accurate balance (i.e. accurate to ±0,5 %).
lämplig precisionsvåg (t.ex. noggrannhet ±0,5 %).
Any water in which the test species shows suitable long-term survival and growth may be used as a test water.
Som testvatten kan användas allt vatten i vilket den berörda arten uppvisar lämplig överlevnad och tillväxt under en längre period.
The pH of the water should be within the range 6,5 to 8,5, but during a given test it should be within a range of ±0,5 pH units.
Vattnets pH bör ligga inom intervallet 6,5–8,5 men får dock under ett givet test variera med högst ±0,5 pH-enheter.
Hardness above 140 mg/l (as CaCO3) is recommended.
En vattenhårdhet över 140 mg/l (som CaCO3) rekommenderas.
In order to ensure that the dilution water will not unduly influence the test result (for example by complexion of test substance), samples should be taken at intervals for analysis.
För att säkerställa att spädvattnet inte påverkar testresultaten på oönskat sätt (t.ex. genom komplexbildning med testämnet), bör vattenprover regelbundet tas för analys.
Measurements of heavy metals (e.g. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd and Ni), major anions and cations (e.g. Ca, Mg, Na, K, Cl and SO4), pesticides (e.g. total organophosphorus and total organochlorine pesticides), total organic carbon and suspended solids should be made, for example, every three months where a dilution water is known to be relatively constant in quality.
Mätningar av tungmetaller (t.ex. Cu, Pb, Zn, Hg, Cd och Ni), viktiga anjoner och katjoner (t.ex. Ca, Mg, Na, K, Cl och SO4), bekämpningsmedel (t.ex. total mängd organiska fosforföreningar eller total mängd organiska klorföreningar), totalt organiskt kol och uppslammade partiklar bör göras t.ex. var tredje månad i fall där man vet att spädvattnet håller en relativt jämn kvalitet.
If water quality has been demonstrated to be constant over at least one year, determinations can be less frequent and intervals extended (e.g. every 6 months).
Om vattenkvaliteten har visat sig vara jämn under minst ett år kan dessa kontroller göras med längre intervall (t.ex. var sjätte månad).
Some chemical characteristics of an acceptable dilution water are listed in Appendix 2.
I tillägg 2 anges ett antal kemiska egenskaper för godtagbart spädvatten.
Test solutions of the chosen concentrations are prepared by dilution of a stock solution.
Testlösningar med de valda koncentrationerna bereds genom utspädning av en stamlösning.
The stock solution should preferably be prepared by simply mixing or agitating the test substance in the diluition water by using mechanical means (e.g. stirring or ultrasonication).
Stamlösningen bör helst beredas genom enkel blandning eller omskakning av testämnet i spädvattnet på mekanisk väg (t.ex. omrörning och ultraljud).
Saturation columns (solubility columns) can be used for achieving a suitable concentrated stock solution.
Mättnadskolonner (löslighetskolonner) kan användas för att få stamlösning av lämplig koncentration.
The use of solvents or dispersants (solubilising agents) may be required in some cases in order to produce a suitably concentrated stock solution.
I vissa fall kan lösnings- eller dispergeringsmedel (lösningsagenter) behövas för att få en stamlösning av lämplig koncentration.
Examples of suitable solvents are acetone, ethanol, methanol, dimethylsulfoxide, dimethylformamide and triethyleneglycol.
Lämpliga lösningsmedel är t.ex. aceton, etanol, metanol, dimetylsulfoxid, dimetylformamid och trietylenglykol.
Examples of suitable dispersants are Cremophor RH40, Tween 80, Methylcellulose 0,01 % and HCO-40.
Lämpliga dispergeringsmedel är t.ex. Cremophor RH40, Tween 80, metylcellulosa (0,01 %) och HCO-40.
Care should be taken when using readily biodegradable agents (e.g. acetone) and/or highly volatile compounds as these can cause problems with bacterial built-up in flow-through tests.
Om man använder agenter som är biologiskt lättnedbrytbara (t.ex. aceton) eller agenter med hög flyktighet bör man iaktta särskild försiktighet eftersom sådana agenter kan orsaka problem med bakterieansamling vid genomflödestest.
When a solubilising agent is used it must have no significant effects on the fish growth nor visible adverse effects on the juvenile as revealed by a solvent-only control.
Om en lösningsagent används får den inte ha signifikant verkan på fisktillväxten eller framkalla synliga skadliga verkningar på de unga exemplaren (verkningar som framkommit vid test med rent lösningsmedel).
For flow-through tests, a system which continually dispenses and dilutes a stock solution of the test substance (e.g. metering pump, proportional diluter, saturator system) is required to deliver a series of concentrations to the test chambers.
För genomflödestest behövs ett system som kontinuerligt portionerar och späder ut stamlösning av testämnet, så att man får en tillförsel av en serie koncentrationer till testkärlen.
The flow rates of stock solutions and dilution water should be checked at intervals, preferably daily, during the test and should not vary by more than 10 % throughout the test.
Stamlösningens och spädvattnets flödeshastighet bör kontrolleras regelbundet, helst dagligen, och får inte variera med mer än 10 % under hela testet.
A ring-test (2) has shown that, for rainbow trout, a frequency of water removal during the test of six litres/g of fish/day is acceptable (see Section 1.8.2.2).
Resultaten från ett ringtest (3) har visat att en vattenavlägsning på 6 liter per gram fisk och dag är godtagbar vid test på regnbågslax (se avsnitt 1.8.2.2.).
For semi-static (renewal) tests, the frequency of medium renewal will depend on the stability of the test substance, but a daily water renewal is recommended.
För halvstatiskt test (statisk förnyelse) beror mediets förnyelsefrekvens på testämnets stabilitet, men daglig förnyelse rekommenderas.
If, from preliminary stability tests (see Section 1.4), the test substance concentration is not stable (i.e. outside the range 80-120 % of nominal or falling below 80 % of the measured initial concentration) over the renewal period, consideration should be given to the use of a flow-through test.
Om resultaten från preliminära stabilitetstest (se avsnitt 1.4) visar att testämnet inte är stabilt (dvs. utanför området 80–120 % av nominell koncentration eller under 80 % av uppmätt startkoncentration) under ett helt förnyelseintervall, måste genomflödestest övervägas.
Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) is the recommended species for this test since most experience has been gained from ring-test with this species (1)(2).
De flesta erfarenheterna från ringtest (1) (3) gäller regnbågslax (Oncorhynchus mykiss) och därför rekommenderas denna art för testet.
However, other well documented species can be used but the test procedure may have to be adapted to provide suitable test conditions.
Även andra väldokumenterade arter kan användas, men då måste testförfarandet eventuellt anpassas så att lämpliga testförhållanden erhålls.