natgillin/translations-raw huggingface dataset:
In advanced stages, infection breaks outwards from the heel end and the eyes from which bacterial slime may ooze causing soil particles to adhere.
Vid långt framskridna skeden bryter infektionen fram från naveländan och ögonen, från vilka bakterieslem utsöndras så att jordpartiklar häftar vid.
Reddish-brown slightly sunken lesions may appear on the skin due to collapse of vascular tissues internally.
Rödbruna lätt insjunkna lesioner i skalet kan uppträda på skalet på grund av kollaps av kärlringvävnader inuti knölen.
Secondary development of fungal and bacterial soft rots is common in the advanced stages of the disease.
Sekundära utvecklingsstadier av svamp- och bakteriebetingad blötröta är vanligt förekommande i långt framskridna stadier av sjukdomen.
Symptoms on tomato
Symtom på tomater
The tomato plant.
Tomatplantan.
The first visible symptom is the flaccid appearance of the youngest leaves.
Det första synliga symtomet är att de yngsta bladen blir sladdriga.
Under favourable environmental conditions for the pathogen (soil temperatures of approximately 25 °C; saturated humidity), epinasty and wilting of one side or of the whole plant follows within a few days leading to total plant collapse.
Under gynnsamma miljöförhållanden för patogenet (jordtemperatur cirka 25 °C, mättad fuktighet) följer epinasti och vissning av ena sidan eller hela plantan inom några få dagar, vilket leder till att hela plantan faller samman.
Under less favourable conditions (soil temperature below 21 °C), less wilting occurs, but large numbers of adventitious roots may develop on the stem.
Under mindre gynnsamma förhållanden (jordtemperatur under 21 °C) inträffar vissning mindre ofta, men ett stort antal extra rottrådar kan utvecklas på stjälken.
It is possible to observe watersoaked streaks from the base of the stem which is evidence of necrosis in the vascular system.
Vattendränkta strimmor som löper från stjälkens bas kan observeras, vilket är tecken på nekros i kärlsystemet.
When the stem is cut crosswise, discoloured brown vascular tissues exude white or yellowish bacterial ooze.
När stjälken genomskärs utsöndrar missfärgade bruna kärlvävnader vitt eller gulaktigt bakteriellt sekret.
Symptoms on other hosts
Symtom på andra värdväxter
Solanum dulcamara and S. nigrum plants.
Solanum dulcamara och S. nigrum.
Under natural conditions, wilting symptoms are rarely observed in these weed hosts unless soil temperatures exceed 25 °C or inoculum levels are extremely high (e.g. as for S. nigrum growing adjacent to diseased potato or tomato plants).
Under naturliga förhållanden uppträder vissningsymtom sällan hos detta ogräs som är värdväxt, om inte jordtemperaturen överskrider 25 °C eller om inokulationen är omfattande (t.ex. i fallet S. nigrum, om den växer i anslutning till potatis- eller tomatplantor som dött).
When wilting does occur, the symptoms are as described for tomato.
När vissnande sker uppträder samma symtom som för tomater.
Non-wilting S. dulcamara plants growing with stems and roots in water may show internal light brown discolouration of vascular tissues on transverse section of the stem base or underwater stem parts.
Icke-vissnande plantor av S. dulcamara som växer med stjälkarna och rötterna i vatten kan uppvisa inre ljusbrun missfärgning hos kärlvävnaderna i ett tvärsnitt av stjälkbasen eller av de stjälkdelar som befinner sig under vatten.
Bacteria may ooze from cut vascular tissues or form threads of slime if the cut stem is placed vertically in water, even in the absence of wilting symptoms.
Bakterieslem kan utsöndras från avskurna kärlvävnader eller bilda trådar av slem om den skurna stjälken ställs vertikalt i vatten, även i frånvaro av vissningssymtom.
Rapid screening tests may facilitate presumptive diagnosis but are not essential.
Snabbscreeningtest underlättar presumtiv diagnos men är inte nödvändiga.
Use one or more of the following validated tests:
Använd ett eller flera av följande validerade test:
(See Section VI.A.1.)
(Se avsnitt VI.A.1.)
Detection of poly-ß-hydroxybutyrate (PHB) granules
Upptäckt av poly-β-hydroxybutyratkorn (PHB)
Characteristic PHB granules in the cells of R. solanacearum are visualised by staining heat-fixed smears of bacterial ooze from infected tissue on a microscope slide with Nile Blue A or Sudan Black (See Section VI.A.2.).
Karakteristiska PHB-korn i celler av R. solanacearum kan göras synliga genom att färga värmefixerade utstrykningspreparat av bakteriellt sekret från infekterad vävnad på ett objektglas med Nilblått A eller Sudansvart B (se avsnitt VI.A.2.).
(See Section VI.A.3.)
(Se avsnitt VI.A.3.)
Further appropriate rapid screening tests include the IF test (see Section VI.A.5.), FISH test (see Section VI.A.7.), ELISA tests (see Section VI.A.8.) and PCR tests (see Section VI.A.6).
Andra lämpliga snabbscreeningtest omfattar IF-test (se avsnitt VI.A.5.), FISH-test (se avsnitt VI.A.7.), ELISA-test (se avsnitt VI.A.8.) och PCR-test (se avsnitt VI.A.6).
Remove ooze or sections of discoloured tissue from the vascular ring in the potato tuber or from the vascular strands in stems of potato, tomato or other wilting host plants.
Avlägsna sekret eller partier med missfärgad vävnad från knölens kärlring på potatis eller från stjälkens kärlsträngar på potatis, tomat eller andra vissnande värdväxter.
Suspend in a small volume of sterile distilled water or 50mM phosphate buffer (Appendix 4) and leave for 5 to 10 minutes.
Suspendera i en mindre volym av sterilt destillerat vatten eller 50 mM fosfatbuffert (tillägg 4) och låt stå i 5–10 minuter.
Prepare a series of decimal dilutions of the suspension.
Bered en serie av decimala utspädningar av suspensionen.
Transfer 50-100 µl of the suspension and dilutions to a general nutrient medium (NA, YPGA or SPA; see Appendix 2) and/or to Kelman’s tetrazolium medium (Appendix 2) and/or a validated selective medium (e.g. SMSA; see Appendix 2).
För över 50–100 µl av suspensionen och utspädningarna till ett vanligt näringsmedium (NA, YPGA eller SPA; se tillägg 2) och/eller till Kelmans tetrazolium medium (tillägg 2) och/eller till ett validerat selektivt substrat (t.ex. SMSA; se tillägg 2).
Spread or streak with an appropriate dilution plating technique.
Utsprid eller utstryk med lämplig plattspridning från spädningsserie.
If useful, prepare separate plates with a diluted cell suspension of R. solanacearum biovar 2 as a positive control.
Bered, om det anses lämpligt, separata plattor med en utspädd cellsuspension av R. solanacearum biovar 2 som positiv kontroll.
Incubate the plates for two to six days at 28 °C.
Inkubera plattorna under 2–6 dagar vid 28 °C.
On the general nutrient media, virulent isolates of R. solanacearum develop pearly cream-white, flat, irregular and fluidal colonies often with characteristic whorls in the centre.
På det allmänna näringsmediet utvecklar virulenta isolat av R. solanacearum pärl-/krämvita, platta, oregelbundna, flödiga kolonier med karakteristiska virvlar i mitten.
Avirulent forms of R. solanacearum form small round non-fluidal, butyrous colonies which are entirely cream-white.
Icke virulenta former av R. solanacearum utvecklar små runda icke-flödiga smörlika kolonier som är helt krämvita.
On Kelman’s tetrazolium and SMSA media, the whorls are blood red in colour.
På Kelmans tetrazolium- och SMSA-medier har virvlarna blodröd färg.
Avirulent forms of Ralstonia solanacearum form small round non-fluidal, butyrous colonies which are entirely deep red.
Icke virulenta former av R. solanacearum utvecklar små runda icke-flödiga smörlika kolonier som är fullständigt djupröda.
Tests to confirm identity of presumptive isolates of R. solanacearum are shown in Section VI.B.
Test för att bekräfta identiteten hos förmodade isolat av R. solanacearum behandlas i avsnitt VI.B.
Detailed methods for detection and identification of Ralstonia solanacearum in samples of asymptomatic potato tubers
Detaljerade metoder för att upptäcka och identifiera Ralstonia solanacearum i prover av asymtomatiska potatisknölar
The potato extract described below can also be used for detection of the potato ring rot bacterium, Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus.
Det nedan beskrivna potatisextraktet kan även användas för upptäckt av den bakterie som orsakar ljus ringröta hos potatis, Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus.
Incubation of samples at 25 to 30 °C, for up to two weeks before testing, to encourage multiplication of any R. solanacearum populations.
Inkubation av prover vid 25–30 °C under upp till 2 veckor före testning för att främja förökning av alla populationer av R. solanacearum.
Use appropriate disinfectants (chlorine compounds when PCR-test is to be used in order to remove pathogen DNA) and detergents between each sample.
Använd lämpliga desinfektionsmedel (vid PCR-test klorföreningar för att avlägsna patogent DNA) och tvättmedel mellan varje stickprov.
This washing procedure is particularly useful (but not required) for samples with excess soil and if a PCR-test or direct isolation procedure is to be performed.
Detta rengöringsförfarande är användbart (men inte obligatoriskt) i synnerhet vid jordiga prover och om ett PCR-test eller ett direkt isoleringstest skall göras.
Remove with a clean and disinfected scalpel or vegetable knife the skin at the heel (stolon) end of each tuber so that the vascular tissues become visible.
Avlägsna med en ren, desinficerad skalpell eller grönsakskniv epidermis från varje knöls navelända (stolon) så att kärlringvävnaderna blir synliga.
Carefully cut out a small core of vascular tissue at the heel end and keep the amount of non-vascular tissue to a minimum. (see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Skär försiktigt ur en liten kärna av kärlringvävnad i naveländan och minimera mängden icke-kärlringvävnad (se webbsida: http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Note: Set aside any (rotting) tubers with suspected brown rot symptoms and test separately.
Anmärkning: Lägg undan alla (ruttnande) knölar med misstänkta symtom på brunröta och testa dem separat.
All tubers including those with suspicioussymptoms should be kept according to Annex III.
Alla knölar, inklusive dem med misstänkta symtom, bör förvaras i enlighet med bilaga III.
Process the heel end cores by one of the following procedures: either,
Behandla naveländarna enligt något av följande förfaranden:
Homogenise the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4), either in a blender (e.g. Waring or Ultra Thurax) or by crushing in a sealed disposable maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba strong guage polythene, 150 mm × 250 mm; radiation sterilised) using a rubber mallet or suitable grinding apparatus (e.g. Homex).
Homogenisera naveländarna i en tillräcklig mängd (ungefär 40 ml) extraktionsbuffert (tillägg 4), antingen i en mixer (t.ex. Waring mixer eller Ultra Thurrax) eller genom att krossa dem i en förseglad engångspåse för finfördelning (t.ex. Stomacherpåse eller stark polyten från Bioreba, 150 × 250 mm, steriliserad genom strålning) med en gummihammare eller lämplig malapparat (t.ex. Homex).
Note: The risk of cross-contamination of samples is high when samples are homogenized using a blender.
Anmärkning: Risken för korskontaminering av proverna är hög när de homogeniseras med en mixer.
Take precautions to avoid aerosol generation or spillage during the extraction process.
Vidta försiktighetsåtgärder för att undvika att det alstras aerosoler eller uppkommer spill under extraheringen.
Crushing in disposable bags and use of disposable tubes is recommended where PCR is to be used.
Krossning i engångspåsar och användning av engångsrör rekommenderas vid PCR-test.
If excessively cloudy, clarify either by slow speed centrifugation (at not more than 180 g for 10 minutes at a temperature between 4 to 10 °C) or by vacuum filtration (40 to 100 µm), washing the filter with additional (approximately 10 ml) extraction buffer.
Om den är mycket grumlig, separera genom långsam centrifugering (högst 180 g under 10 minuter. vid en temperatur av 4–10 °C) eller genom vakuumfiltrering (40–100 µm), varvid filtret tvättas med ytterligare (ca 10 ml) extraktionsbuffert.
Concentrate the bacterial fraction by centrifugation at 7000 g for 15 minutes (or 10000 g for 10 minutes) at a temperature between 4 to 10 °C and discard the supernatant without disturbing the pellet.
Koncentrera bakteriedelen genom centrifugering vid 7000 g under 15 minuter (eller 10000 g under 10 minuter) vid en temperatur av 4-10 °C och kasta bort supernatanten utan att störa pelleten.
Resuspend the pellet in 1.5 ml pellet buffer (Appendix 4).
Återsuspendera pelleten i 1,5 ml pelletbuffert (tillägg 4).
Use 500 µl to test for R. solanacearum, 500 µl for Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus and 500 µl for reference purposes.
Använd 500 µl för att testa för R. solanacearum, 500 µl för Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus och 500 µl i referenssyfte.
Add sterile glycerol to final concentration of 10 to 25 % (v/v) to the 500 µl of the reference aliquot and to the remaining test aliquot, vortex and store at –16 to –24 °C (weeks) or at –68 to –86 °C (months).
Tillsätt steril glycerol till en slutkoncentration av 10–25 % (v/v) till 500 µl av referensportionen och till den återstående testportionen. Skaka och förvara vid –16 till –24 °C (veckor) eller vid –68 till –86 °C (månader).
Preserve the test aliquots at 4 to 10 °C during testing.
Förvara testportionerna vid 4–10 °C under testningen.
If transport of the extract is required, ensure delivery in a cool box within 24 to 48 hours.
Om transport av extraktet krävs, se till att leveransen sker i en kall behållare inom 24 timmar.
It is imperative that all R. solanacearum positive controls and samples are treated separately to avoid contamination.
Det är absolut nödvändigt att alla positiva kontroller och prover av R. solanacearum hanteras skilda från varandra för att nedsmittning skall undvikas.
See Flow chart and description of the tests and optimised protocols in the relevant appendices:
Se flödesdiagram och beskrivningar av testerna och de optimerade protokollen i de berörda bilagorna enligt följande:
Selective isolation (see Section VI.A.4.)
Selektiv isolering (se avsnitt VI.A.4).
IF test (see Section VI.A.5.)
IF-test (se avsnitt VI.A.5).
PCR tests (see Section VI.A.6.)
PCR-test (se avsnitt VI.A.6).
FISH test (see Section VI.A.7.)
FISH-test (se avsnitt VI.A.7).
ELISA tests (see Section VI.A.8.)
ELISA-test (se avsnitt VI.A.8).
Bioassay (see Section VI.A.9.)
Biotest (se avsnitt VI.A.9).
Detailed methods for detection and identification of R. solanacearum in samples of asymptomatic potato, tomato or other host plants
Detaljerade metoder för att upptäcka och identifiera Ralstonia solanacearum i prover av asymtomatiska potatisplantor, tomatplantor eller andra värdväxter
Note: For detection of latent R. solanacearum populations it is advised to test composite samples.
Anmärkning: För upptäckt av latenta populationer R. solanacearum rekommenderas testning av blandprover.
Where surveys are performed they should be based on a statistically representative sample of the plant population under investigation.
Om undersökningar görs bör dessa grundas på ett statistiskt representativt prov av den plantpopulation som undersöks.
Collect 1 to 2 cm stem segments in a closed sterile container according to the following sampling procedures:
Samla 1–2 cm långa stjälksegment i en tillsluten steril behållare enligt följande provtagningsförfaranden:
Other hosts: With a clean disinfected knife or pruning shears, remove a 1 cm segment from the base of each stem, just above the soil level.
Andra värdväxter: Med en ren, desinficerad kniv eller sekatör avlägsnas ett 1 cm långt segment av basen på varje stjälk strax ovanför markytan.
Pathogen detection will be most reliable during late spring, summer and autumn seasons, although natural infections can be detected all year round in the perennial Solanum dulcamara growing in watercourses.
Upptäckt av patogen är mest tillförlitligt under den sena vårsäsongen, samt sommar- och höstsäsongerna, även om naturliga infektioner kan upptäckas året runt hos den fleråriga Solanum dulcamara som växer i vattendrag.
Known hosts include volunteer potato plants (groundkeepers), Solanum dulcamara, S. nigrum, Datura stramonium and other members of the family Solanaceae.
Kända värdväxter omfattar övervintrande potatisplantor (efterliggare), Solanum dulcamara, S. nigrum, Datura stramonium och andra arter i familjen Solanaceae.
Further hosts are Pelargonium spp. and Portulaca oleracea.
Andra värdar är Pelargonium spp. och Portulaca oleracea.
Some European weed spp. which may potentially harbour R. solanacearum biovar 2/Race 3 populations in roots and/or rhizospheres under specific environmental conditions include Atriplex hastata, Bidens pilosa, Cerastium glomeratum, Chenopodium album, Eupatorium cannabinum, Galinsoga parviflora, Ranunculus scleratus, Rorippa spp, Rumex spp., Silene alba, S. nutans., Tussilago farfarra and Urtica dioica.
Vissa europeiska ogräsarter som potentiellt kan vara infekterade med biovar 2/Ras 3-populationer av R. solanacearum i rötterna och/eller rhizosfärer under särskilda miljöförhållanden omfattar Atriplex hastata, Bidens pilosa, Cerastium glomeratum, Chenopodium album, Eupatorium cannabinum, Galinsoga parviflora, Ranunculus scleratus, Rorippa spp, Rumex spp., Silene alba, S. nutans., Tussilago farfarra och Urtica dioica.
Note: Visual examination for internal symptoms (vascular staining or bacterial ooze) can be done at this stage.
Anmärkning: Okulär besiktning för att påvisa inre symtom (färgning av vävnad eller bakteriellt sekret) kan göras på detta stadium.
Set aside any stem segments with symptoms and test separately (See Section II).
Lägg undan alla stjälksegment med symtom och testa dem separat (se avsnitt II).
Then process the stem segments by one of the following procedures: either,
Behandla därefter stjälksegmenten enligt någon av följande metoder:
Cover the segments with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4) and agitate on a rotary shaker (50 to 100 rpm) for four hours below 24 °C or for 16 to 24 hours refrigerated, or
Täck segmenten genom att tillsätta en tillräcklig mängd (ungefär 40 ml) extraktionsbuffert (tillägg 4) och skaka på en rotationsskak (50–100 r/min) under 4 timmar vid en temperatur under 24 °C eller under 16-24 timmar nedkylda.
Process immediately by crushing the segments in a strong maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba) with an appropriate volume of extraction buffer (Appendix 4) using a rubber mallet or appropriate grinding apparatus (e.g. Homex).
Behandla omedelbart segmenten genom att krossa dem i en kraftig påse för finfördelning (t.ex. Stomacherpåse eller Bioreba) i en lämplig mängd extraktionsbuffert (tillägg 4) med en gummihammare eller lämplig malapparat (t.ex. Homex).
Further clarification of the extract or concentration of the bacterial fraction are not usually required but may be achieved by filtration and/or centrifugation as described in Section III.1.1.3 – 1.1.5.
Ytterligare klarnande av extraheringen eller koncentrationen av bakteriedelen krävs vanligtvis inte men kan åstadkommas genom filtrering och/eller centrifugering enligt avsnitten III.1.1.3 till III.1.1.5.
Divide the neat or concentrated sample extract into two equal parts.
Dela det outspädda eller koncentrerade provextraktet i två lika stora delar.
Maintain one half at 4 to 10 °C during testing and store the other half with 10 to 25 % (v/v) sterile glycerol at –16 to –24 °C (weeks) or at –68 to –86 °C (month) in case further testing is required.
Bibehåll ena hälften vid en temperatur av 4–10 °C under testet och lagra den andra hälften med 10- till 25-procentig (v/v) steril glycerol vid en temperatur av –16 till –24 °C (veckor) eller -68 till –86 °C (månader) för det fallet att ytterligare tester krävs.
Scheme for detection and identification of R. solanacearum in water
Program för att upptäcka och identifiera Ralstonia solanacearum i vatten
Sample of water (1)
Stickprov från vatten (1)
Concentration of the pathogen (2)
Koncentrering av patogenet (2)
CORE SCREENING TEST
HUVUDSAKLIGT SCREENINGTEST
Selective isolation (3)
Selektiv isolering (3)
optional auxiliary tests: bioassay (4) / enrichment PCR (5) / enrichment ELISA (6)
Frivilligt kompletterande test: biotest (4) / anrikning plus PCR (5) / anrikning plus ELISA (6) Kolonier med typisk morfologi (7) efter isolering NEJ (8)
Colonies with typical morphology (7) after isolation
solanacearum ej påvisad Prov ej infekterat med
sample not contaminated by
Prov ej infekterat med
IDENTIFICATION TESTS (9)
Prov infekterat med R. solanacearum (1)
PATHOGENICITY TEST (10)
Rekommenderade provtagningsförfaranden, se avsnitt IV.2.1. (2)
Sample contaminated by
Prov infekterat med
See Section IV.2.1. for recommended sampling procedures.
Biotest beskrivs i avsnitt VI.A.9.
Enrichment PCR methods are described in Section VI.A.4.2 and Section VI.A.6.
Metoder för anrikning plus PCR beskrivs i avsnitten VI.A.4.2 och VI.A.6.
Culturing can fail due to competition or inhibition by saprophytic bacteria.
Odling i kultur kan misslyckas på grund av konkurrens eller inhibering från saprofytiska bakterier.
If high saprophyte populations are suspected to affect the reliability of the isolation, then repeat the isolation tests after dilution of the sample in sterile water.
Om stora populationer av saprofyter misstänks påverka isoleringens tillförlitlighet, repetera isolationstestet efter utspädning av provet i sterilt vatten.
The validated detection scheme, described in this section, is applicable for pathogen detection in samples of surface water and can also be applied for testing samples of potato processing or sewage effluents.
Det validerade programmet för upptäckt som beskrivs i det här avsnittet är tillämpligt på upptäckt av patogen i prover av ytvatten och kan även tillämpas på testning av prover från process- eller avloppsvatten från verksamhet där potatis förädlas.
However, it is important to note that the expected sensitivity of detection will vary with the substrate.
Det är emellertid viktigt att påpeka att den förväntade detektionskänsligheten varierar beroende på substratet.
Sensitivity of the isolation test is affected by populations of competing saprophytic bacteria which are generally much higher in potato processing and sewage effluents than in surface water.
Känsligheten hos isoleringstestet påverkas av populationerna av konkurrerande saprofytiska bakterier, som vanligtvis är mycket större i process- och avloppsvatten från verksamhet där potatis förädlas än i ytvatten.
Whereas the scheme below is expected to detect as few as 103 cells per litre in surface water the sensitivity of detection in potato processing or sewage effluents is likely to be significantly lower.
Programmet nedan är avsett att upptäcka ända ned till 103 celler per liter i ytvatten, men detektionskänsligheten vid process- eller avloppsvatten från anläggningar där potatis förädlas är troligen avsevärt lägre.
For this reason, it is recommended to test effluents after any purification treatments (e.g. sedimentation or filtration) during which saprophytic bacterial populations are reduced.
Därför rekommenderas att testning av process- och avloppsvatten sker efter övrig rening (t.ex. sedimentering eller filtrering), då populationerna av saprofytiska bakterier minskar.
The limitations in sensitivity of the test scheme should be considered when assessing the reliability of any negative results obtained.
Testprogrammets begränsningar i fråga om känslighet bör tas med i beräkningen vid bedömningen av tillförlitligheten hos alla eventuella negativa resultat.
Whereas this scheme has been successfully used in survey work to determine presence or absence of the pathogen in surface water, its limitations should be realised when used in similar surveys of potato processing or sewage effluents.
Det här programmet har med framgång använts i undersökningar för att påvisa närvaro eller frånvaro av patogenet i ytvatten, men dess begränsningar bör beaktas vid användning i liknande undersökningar av process- eller avloppsvatten från verksamhet där potatis förädlas.