natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Determine the following phenotypic properties, which are universally present or absent in R. solanacearum, according to the methods of Lelliott and Stead (1987), Klement et al.
Fastställ följande fenotypiska egenskaper som alltid är närvarande eller frånvarande i R. solanacearum enligt metoderna Lelliott och Stead (1987), Klement m.fl.
Fluorescent pigment production
Produktion av fluorescerande pigment
Poly-ß-hydroxybutyrate inclusions
poly-β-hydroxybutyrat-inklusioner
Oxidation/fermentation (O/F) test
Oxidations-/fermenteringstest (O/F-test).
Kovac’s oxidase test
Kovacs oxidastest
Reduction of nitrate
Reduktion av nitrat
Utilisation of citrate
Användning av citrat
Growth at 40 °C
Tillväxt vid 40 °C
Growth in 1 % NaCl
Tillväxt i 1 % NaCl
Growth in 2 % NaCl
Tillväxt i 2 % NaCl
Arginine dihydrolase activity
Arginindihydrolas-aktivitet
Gelatine liquefaction
Smältning av gelatin
Levan production
Levanproduktion
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in IF buffer (Appendix 4).
Preparera en suspension av ungefär 106 celler per ml i IF-buffert (tillägg 4).
Prepare a twofold dilution series of an appropriate antiserum (see website http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Preparera en serie dubbla utspädningar av ett lämpligt antiserum (se webbplats: http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Apply the IF procedure (Section VI.A.5.).
Tillämpa IF-förfarandet (avsnitt VI.A.5.).
Note: If performing only 2 identification tests, do not use another serological test in addition to this method.
Anmärkning: Om endast två identifieringstest görs, använd inget annat serologiskt test som komplement till den här metoden.
Prepare a suspension of approximately 108 cells per ml in 1X PBS (Appendix 4).
Preparera en suspension av ungefär 108 celler per ml i 1 x fosfatbuffrad koksaltlösning (tillägg 4).
Perform an appropriate ELISA procedure with a specific monoclonal antibody to R. solanacearum.
Utför ett lämpligt ELISA-test med en specifik monoklonal antikropp till R. solanacearum.
A positive ELISA test is achieved if the ELISA reading obtained from the culture is at least half that obtained for the positive control.
ELISA-testet är positivt om ELISA-resultatet från kulturen är minst hälften så högt som det från den positiva kontrollen.
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in molecular grade sterile water.
Preparera en suspension av ungefär 106 celler per ml i sterilt vatten av molekylärbiologisk kvalitet.
Apply appropriate PCR procedures to amplify R. solanacearum-specific amplicons (e.g. Seal et al.
Använd lämpliga PCR-förfaranden för att amplifiera R. solanacearum-specifika kopior (t.ex. Seal m.fl.
(1993); Pastrik and Maiss (2000); Pastrik et al.
[1993]; Pastrik and Maiss [2000]; Pastrik m.fl.
A positive identification of R. solanacearum is achieved if the PCR amplicons are the same size and have the same restriction fragment length polymorphisms as for the positive control strain.
En positiv identifiering av R. solanacearum erhålls om PCR-kopiorna har samma storlek och samma RFLP (restriction fragment length polymorphisms) som den positiva kontrollstammen.
Apply the FISH procedure (Section VI.A.7.) with at least 2 R. solanacearum-specific oligo-probes (Appendix 7).
Tillämpa FISH-förfarandet (avsnitt VI.A.7.) med minst 2 R. solanacearum-specifika oligo-prober (tillägg 7).
Grow the culture on trypticase soy agar (Oxoid) for 48 hours at 28 °C.
Odla kulturen på trypticase-soja-agar (Oxoid) under 48 timmar i 28 °C.
The presence of characteristic fatty acids are 14:0 3OH, 16:0 2OH, 16:1 2OH and 18:1 2OH and absence of 16:0 3OH is highly indicative of a Ralstonia sp.
Förekomsten av karakteristiska fettsyror är 14:0 3OH, 16:0 2OH, 16:1 2OH och 18:1 2OH, och frånvaron av 16:0 3OH tyder i hög grad på Ralstonia sp.
Strain characterisation using one of the following methods is recommended for each new case of isolation of R. solanacearum.
Stamkarakterisering är en av följande metoder som rekommenderas för varje nytt fall av isolering av R. solanacearum.
solanacearum is separated into biovars on the basis of the ability to utilise and/or oxidise three disaccharides and three hexose alcohols (Hayward, 1964 and Hayward et al., 1990).
solanacearum separeras i biovarer på grundval av förmågan att använda och/eller oxidera tre disackarider och tre hexosalkoholer (Hayward, 1964 och Hayward m.fl. 1990).
Growth media for the biovar test is described in Appendix 2.
Odlingsmedier för biovartest beskrivs i tillägg 2.
The test can be successfully performed by stab inoculating the media with pure cultures of R. solanacearum isolates and incubating at 28 °C.
Testet kan tillämpas genom att mediet stickinokuleras med renkulturer av R. solanacearum-isolat och inkuberas i 28 °C.
If the media are dispensed into sterile 96 well cell culture plates (200 µl per well) colour change from olive green to yellow can be observed within 72 hours, indicating a positive test result.
Om mediet fördelas i sterila cellodlingsplattor med 96 brunnar (200 µl per brunn) kan färgändring från olivgrön till gul observeras inom 72 timmar, vilket indikerar ett positivt testresultat.
Utilisation of:
Användning av:
D (+) Cellobiose
D (+) Cellobios
Additional tests differentiate biovar 2 sub-phenotypes
Ytterligare test differentierar biovar 2 subfenotyper.
(Worldwide distribution)
(världsvid spridning)
(Found in Chile and Colombia)
(påträffas i Chile och Colombia)
(Found in tropical areas)
(påträffas i tropiska områden)
Utilisation of trehalose
Användning av trehalos
Utilisation of meso-inositol
Användning av meso-inositol
Utilisation of D ribose
Användning av D-ribos
Pectolytic activity [101]
Pektolytisk aktivitet [101]
low
låg
high
hög
Molecular differentiation of strains in the R. solanacearum complex can be achieved using several techniques, including:
Molekylär differentiering av stammar av R. solanacearum-komplexet kan åstadkommas genom att flera olika tekniker används, bland annat
Restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis (Cook et al., 1989).
RFLP-analys (restriction fragment length polymorphism) (Cook m.fl., 1989).
Repetitive sequence PCR using REP, BOX and ERIC primers (Louws et al., 1995; Smith et al., 1995).
Repetitiv sekvens-PCR med användning av REP-, ERIC- och BOX-primrar (Louws m.fl., 1995; Smith m.fl., 1995).
Amplified fragment length polymorphism (AFLP) analysis (Van der Wolf et al., 1998).
AFLP-analys (amplified fragment length polymorphism) (Van der Wolf m.fl., 1998).
Specific PCR primers (Pastrik et al, 2002; see Appendix 6) can be used to differentiate strains belonging to division 1 (biovars 3, 4 and 5) and division 2 (biovars 1, 2A and 2T) of R. solanacearum, as originally defined by RFLP analysis (Cook et al., 1989) and 16S rDNA sequencing (Taghavi et al., 1996).
Specifika PCR primers (Pastrik m.fl., 2002; se tillägg 6) kan användas för att differentiera stammar tillhörande grupp 1 (biovar 3, 4 och 5) och grupp 2 (biovar 1, 2A och 2T) av R. solanacearum, ursprungligen definierade genom RFLP-analys (Cook m.fl., 1989) och 16S rDNA-sekvensbestämning (Taghavi m.fl., 1996).
The pathogenicity test must be performed as final confirmation of a diagnosis of R. solanacearum and for assessment of virulence of cultures identified as R. solanacearum.
Patogenitetstestet skall utföras som en slutlig bekräftelse på en diagnos av R. solanacearum och för att bedöma virulensen hos kulturer identifierade som R. solanacearum.
Prepare an inoculum of approximately 106 cells per ml from a 24 to 48 hour culture of the isolate to be tested and an appropriate positive control strain of R. solanacearum (e.g. NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857; see Appendix 3).
Bered ett inokulat av ca 106 celler per ml av en 24–48-timmarskultur av det isolat som skall testas och en lämplig positiv kontrollstam av R. solanacearum (t.ex. NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857; se tillägg 3).
Inoculate 5 to 10 susceptible tomato or eggplant seedlings at the third true leaf stage (see Section VI.A.9).
Inokulera 5–10 mottagliga små tomatplantor eller små äggplantor på trebladsstadiet (se avsnitt VI.A.9).
Incubate for up to two weeks at 25 to 28 °C and high relative humidity with appropriate watering to avoid waterlogging or drought stress.
Inkubera under 2 veckor i 25–28 °C med hög relativ luftfuktighet med lämplig bevattning för att undvika vattenmättnad eller stress till följd av torka.
With pure cultures typical wilting should be obtained within 14 days.
Med renodlingar bör typiskt vissnande uppnås inom 14 dagar.
If after this period symptoms are not present, the culture cannot be confirmed as being a pathogenic form of R. solanacearum.
Om inga symtom märks efter denna period, kan det inte fastslås att kulturen är en patogen form av R. solanacearum.
Observe for symptoms of wilting and/or epinasty, chlorosis and stunting.
Sök efter symtom på vissning och/eller epinasti, kloros och försvagad tillväxt.
Isolate from symptomatic plants by removing a section of stem about 2 cm above the inoculation point.
Isolera från plantor med symtom genom att avlägsna ett segment från stjälken ca 2 cm ovanför inokuleringspunkten.
Comminute and suspend in a small volume of sterile distilled water or 50 mM phosphate buffer (Appendix 4).
Finfördela och suspendera i en liten volym sterilt destillerat vatten eller 50 mM fosfatbuffert (tillägg 4).
Isolate from the suspension by dilution spreading or streaking on a suitable medium, preferably onto a selective medium (Appendix 2), incubate for 48 to 72 hours at 28 °C and observe the formation of colonies typical of R. solanacearum.
Isolera från suspensionen genom utspridning eller utstryk från spädningsserie på ett lämpligt medium, företrädesvis ett selektivt substrat (tillägg 2), inkubera under 48–72 timmar i 28 °C och observera bildandet av kolonier typiska för R. solanacearum.
See Lelliott and Stead (1987)
Se Lelliott och Stead (1987).
Laboratory [201]
Laboratorium [201]
Vienna and Linz
Wien och Linz
Contact scientists: see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main.
För kontaktuppgifter för personal, se webbplats: (http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
General growth media
Allmänna odlingsmedier
Nutrient Agar (NA)
Näringsagar (Nutrient Agar, NA)
Nutrient Agar (Difco)
Näringsagar (Difco)
Distilled water
Destillerat vatten
Dissolve ingredients and sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 min.
Lös upp ingredienserna och sterilisera i autoklav i 121 °C under 15 minuter.
Yeast Peptone Glucose Agar (YPGA)
Jäst-pepton-glukosagar (YPGA)
Yeast extract (Difco)
Jästextrakt (Difco)
Bacto-Peptone (Difco)
Bacto pepton (Difco)
D(+) Glucose (monohydrate)
D(+)-glukos (monohydrat)
Bacto-Agar (Difco)
Bacto agar (Difco)
Dissolve ingredients and sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 minutes.
Lös upp ingredienserna och sterilisera i autoklav i 121 °C under 15 minuter.
Kelman’s Tetrazolium Medium
Kelmans tetrazolium medium
Casamino acids (Difco)
Casaminosyror (Difco)
Cool to 50 °C and add a filter-sterilised solution of 2,3,5-triphenyl tetrazolium chloride (Sigma) to obtain a final concentration of 50 mg per l.
Kyl ned till 50 °C och tillsätt en filtersteriliserad lösning av 2,3,5-trifenyl-tetrazoliumklorid (Sigma) så att en slutkoncentration av 50 mg per l uppnås.
Validated selective growth media
Validerade selektiva odlingsmedier
SMSA medium (Englebrecht, 1994 as modified by Elphinstone et al., 1996)
SMSA-medium (Englebrecht, 1994, modifierat av Elphinstone m.fl., 1996)
Basal medium
Basismedium
Bacto-Agar (Difco); see Note 2.
Bacto agar (Difco) (se anmärkning 2)
Cool to 50 °C and add filter-sterilised aqueous stock solutions of the following ingredients to obtain the specified final concentrations:
Kyl ned till 50 °C och tillsätt filtersteriliserade vattenstocklösningar bestående av följande ingredienser för att erhålla de angivna slutkoncentrationerna.
Polymixin-B-Sulphate (Sigma P-1004)
Polymixin-B-Sulfat (Sigma P-1004)
600000 U (approximately 100 mg) per l
600000 U (ca 100 mg) per l
1250 U (approximately 25 mg) per l
1250 U (ca 25 mg) per l
Chloramphenicol (Sigma C-3175)
Kloramphenicol (Sigma C-3175)
825 U (approximately 0,5 mg) per l
825 U (ca 0,5 mg) per l
2,3,5-triphenyl tetrazolium chloride (Sigma)
2,3,5-trifenyl-tetrazoliumklorid (Sigma)
Use of reagents other than those specified above may affect growth of R. solanacearum.
Användning av andra reagens än dem som anges ovan kan påverka tillväxten hos R. solanacearum.
Oxoid Agar #1 can be used in place of Bacto-Agar (Difco).
Oxoid agar (nr 1) kan användas i stället för Bacto-agar (Difco).
In this case growth of R. solanacearum will be slower, although growth of competing saprophytes may also be reduced.
Tillväxten hos R. solanacearum kan då bli långsammare, men tillväxten hos konkurrerande saprofyter kan också reduceras.
Typical colonies of R. solanacearum may take 1 to 2 days longer to form and the red colouration may be lighter and more diffuse than on Bacto-Agar.
Typiska kolonier av R. solanacearum kan ta 1–2 dagar längre att bildas, och den röda färgen kan bli ljusare och mer diffus än på Bacto agar.
Increasing bacitracin concentration to 2500 U per l may reduce populations of competing bacteria without affecting growth of Ralstonia solanacearum.
Om koncentrationen av bacitracin ökas till 2500 U per l kan populationerna av konkurrerande bakterier minska utan att tillväxten hos R. solanacearum påverkas.
Store media and stock solutions of antibiotics at 4 °C in the dark and use within one month.
Lagra medierna och stocklösningarna av antibiotika i 4 °C i mörker och använd inom en månad.
Plates should be free from surface condensation before use.
Plattorna bör vara fria från ytkondensation före användning.
Avoid excess drying of plates.
Undvik att plattorna torkar alltför mycket.
Quality control should be performed after preparation of each new batch of medium by plating a suspension of a reference culture of R. solanacearum (see Appendix 3) and observing formation of typical colonies after incubation at 28 °C for two to five days.
En kvalitetskontroll bör utföras efter prepareringen av varje nytt parti medier genom att plattodla en suspension av en referensodling av R. solanacearum (se tillägg 3) och observera bildandet av typiska kolonier efter inkubation vid 28 °C under 2–5 dagar.
Validated enrichment media
Validerade anrikningsmedier
SMSA Broth (Elphinstone et al., 1996)
SMSA-buljong (Elphinstone m.fl., 1996)
Prepare as for SMSA selective agar medium but omit Bacto-Agar and 2,3,5-tetrazolium chloride.
Preparera på samma sätt som SMSA selektivt agarmedium men uteslut Bacto-agar och 2,3,5-tetrazoliumklorid.
Modified Wilbrink broth (Caruso et al., 2002)
Modifierad Wilbrink-buljong (Caruso m.fl., 2002)
Proteose peptone
Proteos-pepton
Sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 minutes and cool to 50 °C
Sterilisera i autoklav vid 121 °C under 15 minuter och kyl ned till 50 °C.
Add antibiotic stock solutions as for SMSA broth.
Tillsätt antibiotiska stocklösningar som för SMSA-buljong.
Bacterial isolates
Bakterieisolat
The following bacterial isolates are recommended for use as standard reference material either as positive controls (Table 1) or during optimisation of tests to avoid cross-reactions (Table 2).
Följande bakterieisolat rekommenderas som standardreferensmaterial, antingen som positiva kontroller (tabell 1) eller under optimeringen av tester för att undvika korskontamineringar (tabell 2).
All strains are commercially available from:
Alla stammar finns tillgängliga i handeln på följande ställen:
National Collection of Plant Pathogenic Bacteria (NCPPB), Central Science Laboratory, York, UK
National Collection of Plant Pathogenic Bacteria (NCPPB), Central Science Laboratory, York, Storbritannien.
Culture Collection of the Plant Protection Service (PD), Wageningen, the Netherlands.
Culture Collection of the Plant Protection Service (PD), Wageningen, Nederländerna.
Collection Française de Bactéries Phytopathogènes (CFBP), INRA Station Phytobactériologie, Angers, France.
Collection Française de Bactéries Phytopathogènes (CFBP), INRA Station Phytobactériologie, Angers, Frankrike.
Table 1 SMT reference panel of isolates of R. solanacearum
Tabell 1. SMT-referenslista för isolat av R. solanacearum
NCPPB code
NCPPB-kod
Other codes
Andra koder
Note: Authenticity of the above strains can be guaranteed only if obtained from an authentic culture collection.
Anmärkning: Autenticiteten hos de ovan nämnda stammarna kan garanteras endast om de erhålls från en autentisk kultursamling.
Table 2: SMT reference panel of serologically- or genetically-related bacteria for use in optimisation of detection tests
Tabell 2. SMT referenspanel av serologiskt eller genetiskt besläktade bakterier för användning vid optimering av detektionstester.
Other code
Annan kod
The following standard control material is available from the NCPPB culture collection.
Följande standardkontrollmaterial kan fås från NCPPB:s kultursamling.
Freeze dried pellet of potato extract from 200 healthy potato tubers as negative control for all tests.
Frystorkade pelletar av potatisextrakt från 200 friska potatisknölar som negativa kontroller för alla tester.
Freeze dried pellet of potato extract from 200 healthy potato tubers containing 103 to 104 and 104 to 106 cells R. solanacearum biovar 2 (strain NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) as positive controls for serological and PCR tests.
Frystorkade pelletar av potatisextrakt från 200 friska potatisknölar innehållande 103–104 och 104–106 celler R. solanacearum biovar 2 (t.ex. stam NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) som positiva kontroller för serologiska tester och PCR-tester.
Since cell viability is affected during freeze-drying, these are not suitable as standard controls for isolation or bioassay tests.
Eftersom cellernas livskraft påverkas under frystorkning, är dessa inte lämpliga som standardkontroller för isolerings- eller biotest.
Formalin-fixed suspensions of R. solanacearum biovar 2 (strain NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) at 106 cells per ml as positive controls for serological tests.
Formalinfixerade suspensioner av R. solanacearum biovar 2 (stam NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) vid 106 celler per ml som positiva kontroller för serologiska test.
Preparation of positive and negative controls for the core screening tests PCR/IF and FISH
Preparering av positiva och negativa kontroller för de huvudsakliga screeningtesterna PCR/IF och FISH
Produce a 48 hour culture of a virulent strain of R. solanacearum race3/biovar2 (e.g. strain NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) on basal SMSA medium and suspend in 10 mM phosphate buffer to obtain a cell density of approximately 2 × 108 cfu per ml.
Framställ en 48-timmarskultur av en virulent stam av virulent ras 3, biovar 2-stam av R. solanacearum (t.ex. stam NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) på SMSA-basismedium och suspendera i 10 mM fosfatbuffert för att erhålla en celltäthet av omkring 2 x 108 kolonibildande enheter per ml.
This is usually obtained by a faintly turbid suspension equivalent to an optical density of 0,15 at 600 nm.
Detta erhålls vanligtvis genom en svagt grumlig suspension med en optisk densitet av 0,15 vid 600 nm.
Remove the heel end cores of 200 tubers taken from a white skin variety production known to be free from R. solanacearum.
Avlägsna naveländarna från 200 knölar tagna från en odling som är känd för att vara fri från R. solanacearum och där potatis med vitt skal odlas.
Process the heel ends as usual and resuspend the pellet in 10 ml.
Behandla naveländarna på vanligt sätt och suspendera pelleten i 10 ml.
Prepare 10 sterile 1,5 ml microvials with 900 µl of the resuspended pellet.
Preparera 10 sterila 1,5 ml mikrorör med 900 µl av den återsuspenderade pelleten.
Transfer 100 µl of the suspension of R. solanacearum to the first microvial.
Överför 100 µl av suspensionen av R. solanacearum till det första mikroröret.
Vortex.
Skaka.
Establish decimal levels of contamination by further diluting in the next five microvials.
Fastställ decimala kontamineringsnivåer genom ytterligare spädning i de andra fem mikrorören.
The six contaminated microvials will be used as positive controls.
De sex nedsmittade mikrorören används som positiva kontroller.
The four non-contaminated microvials will be used as negative controls.
De fyra icke-nedsmittade mikrorören används som negativa kontroller.
Label the microvials accordingly.
Märk mikrorören i överensstämmelse härmed.
Prepare aliquots of 100 µl in sterile 1,5 ml microvials thus obtaining nine replicas of each control sample.
Preparera portioner på 100 µl i steril 1,5 ml mikrorör och erhåll på så sätt 9 repliker av varje kontrollprov.
Store at –16 to –24 °C until use.
Lagra i –16 till –24 °C fram till användning.
The presence and quantification of R. solanacearum in the control samples should be first confirmed by IF.
Förekomsten och kvantifieringen av R. solanacearum i kontrollproverna bör först bekräftas via IF.
For the PCR test perform DNA extraction from positive and negative control samples with each series of test samples.
För PCR-testet, gör DNA-extraktion från de positiva och negativa kontrollproven för varje serie av testprover.
For IF and FISH tests perform assays on positive and negative control samples with each series of test samples.
För IF- och FISH-testen, gör testerna på de positiva och negativa kontrollproven för varje serie av testprover.
For IF, FISH and PCR assays R. solanacearum must be detected in at least the 106 and 104 cells/ml of the positive controls and not in any of the negative controls.
För IF-, FISH- and PCR-testerna skall R. solanacearum påvisas i minst 106–104 celler/ml i de positiva kontrollerna och inte i någon i de negativa kontrollerna.
Use as standard reference strain of R. solanacearum biovar 2 (race 3).
Använd en standardreferensstam av R. solanacearum biovar 2 (ras 3).
Potential cross-reacting strain in serological tests (IF and/or ELISA) with polyclonal antisera.
Potentiell korsreagerande stam i serologiska tester (IF och/eller ELISA) med polyklonala antiserum.
Strain from which PCR product can be amplified in some laboratories of a similar size to that expected using specific primers OLI-1 and Y-2 (see Appendix 6).
Stam från vilken PCR-kopia kan amplifieras i vissa laboratorier av storlek liknande den som förväntas vid användning av de specifika primrarna OLI-1 och Y-2 (se tillägg 6).
Likely to cross-react in most tests but known to occur only on banana in Indonesia.
Kan korsreagera i de flesta test, något som dock endast har observerats på bananplanta i Indonesien.
General: Unopened sterilised buffers can be stored for up to one year
ALLMÄN ANMÄRKNING: Oöppnade steriliserade buffertar kan förvaras i upp till ett år.
Buffers for extraction procedure
Buffertar för extraktionsförfarande
Extraction buffer (50 mM phosphate buffer, pH 7,0)
Extraktionsbuffert (50 mM fosfatbuffert, pH 7,0)
This buffer is used for extraction of the bacterium from plant tissues by homogenisation or shaking.
Denna buffert används för extraktion av bakterien från plantvävnader genom homogenisering eller skakning.
(anhydrous)
(vattenfri)
Dissolve ingredients, check pH and sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 min.
Lös upp ingredienserna, kontrollera pH och sterilisera i autoklav i 121 °C under 15 minuter.
Additional components may be useful as follows:
Ytterligare komponenter kan vara av nytta enligt följande:
Quantity (per l)
Kvantitet (per l)
Lubrol flakes
Flingor av lubrol
Deflocculant [501]
Deflockulering [501]
DC silicone antifoam
DC-silikonskumdämpning
Anti-foam agent [501]
Skumdämpningsmedel [501]
Binding of PCR inhibitors
Bindning av PCR-inhibitorer
Pellet buffer (10 mM phosphate buffer, pH 7,2)
Pelletbuffert (10 mM fosfatbuffert, pH 7,2)
This buffer is used for resuspension and dilution of potato tuber heel-end core extracts following concentration to a pellet by centrifugation.
Denna buffert används för återsuspension och utspädning av extrakt av naveländar från potatisknölar efter koncentration till en pellet följd av centrifugering.
Dissolve ingredients, check pH and sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 minutes.
Lös upp ingredienserna, kontrollera pH och sterilisera i autoklav i 121 °C under 15 minuter.
Buffers for the IF test
Buffertar för IF-test
IF-Buffer (10 mM phosphate buffered saline (PBS), pH 7.2)
IF-buffert (10 mM fosfatbuffrad saltlösning (PBS), pH 7,2)