natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Uneaten food and faeces are siphoned daily from the test chambers shortly after feeding (30 minutes to 1 hour).
Ostanki hrane in iztrebki se iz preskusnih snovi izčrpajo vsak dan kmalu po hranjenju (v roku 30 minut do ene ure).
Chambers are kept as clean as possible throughout the test so that the concentration of organic matter is kept as low as possible, since the presence of organic carbon may limit the bioavailability of the test substance (1).
Posode so ves čas preskusa čim čistejše, tako da ostaja koncentracija organske snovi čim nižja, saj lahko prisotnost organskega ogljika omeji biološko dostopnost preskusne snovi (1).
Since many feeds are derived from fishmeal, the feed should be analysed for the test substance.
Ker veliko hrane izvira iz ribje moke, je treba hrano analizirati, da se ugotovi prisotnost preskusnih snovi.
It is also desirable to analyse the feed for pesticides and heavy metals.
Zaželeno je tudi, da se v hrani analizira prisotnost pesticidov in težkih kovin.
Light and temperature
Svetloba in temperatura
The photoperiod is usually 12 to 16 hours and the temperature (± 2 °C) should be appropriate for the test species (see Appendix 2).
Obdobje osvetljenosti ponavadi traja 12 do 16 ur, temperatura (nihanje ± 2 oC) pa mora ustrezati preskusnim vrstam (glej Dodatek 2).
The type and characteristics of illumination should be known.
Vrsta in lastnosti svetlobe morajo biti znane.
Caution should be given to the possible phototransformation of the test substance under the irradiation conditions of the study.
Paziti je treba na morebitno fototransformacijo preskusne snovi pod obsevalnimi pogoji študije.
Appropriate illumination should be used avoiding exposure of the fish to unnatural photoproducts.
Uporabiti je treba ustrezno svetlobo, da ribe niso izpostavljene nenaravnim fotoproizvodom.
In some cases it may be appropriate to use a filter to screen out UV irradiation below 290 nm.
V nekaterih primerih je ustrezno uporabiti filter, da se prestreže UV obsevanje pod 290 nm.
Fish are exposed under flow-through conditions to at least two concentrations of the test substance in water.
Ribe so pod pretočnimi pogoji izpostavljene najmanj dvema koncentracijama preskusnih snovi v vodi.
Normally, the higher (or highest) concentration of the test substance are selected to be about 1 % of its acute asymptotic LC50, and to be at least ten-fold higher than its detection limit in water by the analytical method used.
Višja (ali najvišja) koncentracija preskusne snovi ponavadi znaša okoli 1 % njenega akutnega asimptotičnega LC50 in je ob uporabi analitične metode najmanj desetkrat višja od njene meje zaznavnosti v vodi.
The highest test concentration can also be determined by dividing the acute 96 h LC50 by an appropriate acute/chronic ratio (appropriate ratios for some chemicals can be about 3 up to 100).
Najvišja preskusna koncentracija se lahko določi tudi tako, da se akutni 96h LC50 deli z ustreznim akutno/kroničnim razmerjem (pri nekaterih kemikalijah so ustrezna razmerja lahko okoli tri do sto).
If possible, choose the other concentration(s) such that it differs from the one above by a factor of ten.
Če je možno, se izbere druga koncentracija, ki se razlikuje od zgoraj navedene za faktor 10.
If this is not possible because of the 1 % of LC50 criterion and the analytical limit, a lower factor than ten can be used or the use of 14C labelled test substance should be considered.
Če zaradi 1 % kriterija LC50 in analitične mejne vrednosti to ni možno, se lahko uporabi faktor, ki je nižji od 10, ali pa je treba razmisliti o uporabi preskusne snovi, označene s 14C.
No concentration used should be above the solubility of the test substance.
Nobena uporabljena koncentracija ne sme presegati topnosti preskusne snovi.
Where a solubilising agent is used its concentration should not be greater than 0,1 ml/l and should be the same in all test vessels.
Če se uporabi dodatek za topnost, njegova koncentracija ne sme presegati 0,1 ml/l in mora biti enaka v vseh prekusnih posodah.
Its contribution, together with the test substance, to the overall content of organic carbon in the test water should be known.
Poznati je treba njegov prispevek, skupaj s preskusno snovjo, k skupni vsebnosti organskega ogljika v preskusni vodi.
However, every effort should be made to avoid the use of such materials.
V vsakem primeru si je treba prizadevati, da se izognemo rabi takih materialov.
One dilution water control or if relevant, one control containing the solubilising agent should be run in addition to the test series, provided that it has been established that the agent has no effects on the fish.
Poleg preskusne serije je treba imeti še eno kontrolo z vodo za pripravo raztopine ali eno z dodatkom za topnost, če je ta v preskusu uporabljen, pod pogojem, da je bilo ugotovljeno, da navedeni dodatek ne vpliva na ribe.
If not, both controls should be set up.
Če temu ni tako, je treba imeti obe kontroli.
Frequency of water quality measurements
Pogostost meritev kakovosti vode
During the test, dissolved oxygen, TOC, pH and temperature should be measured in all vessels.
Med preskusom je treba raztopljeni kisik, TOC, pH in temperaturo meriti v vseh posodah.
Total hardness and salinity, if relevant, should be measured in the controls and one vessel at the higher (or highest) concentration.
Skupna trdota in slanost, če je to primerno, se morata meriti v kontrolah in v eni posodi z višjo (ali najvišjo) koncentracijo.
As a minimum, dissolved oxygen and salinity, if relevant, should be measured three times — at the beginning, around the middle and end of the uptake period — and once a week in the depuration period.
Raztopljeni kisik in slanost, če je to primerno, naj se izmerita najmanj trikrat – na začetku, približno na sredini in na koncu faze absorpcije – in enkrat tedensko v fazi očiščenja.
TOC should be measured at the beginning of the test (24 h and 48 h prior to test initiation of uptake phase) before addition of the fish and at least once a week, during both uptake and depuration phases.
TOC je treba izmeriti na začetku preskusa (24 ur in 48 ur pred začetkom faze absorpcije), preden se dodajo ribe, in najmanj enkrat tedensko med fazo absorpcije in fazo očiščenja.
Temperature should be measured daily, pH at the beginning and end of each period and hardness once each test.
Temperaturo je treba meriti vsak dan, pH na začetku in koncu vsake faze, trdota pa enkrat na preskus.
Temperature should preferably be monitored continuously in at least one vessel.
Temperatura naj se po možnosti nadzira neprekinjeno v najmanj eni posodi.
Sampling and analysis of fish and water
Vzorčenje in analiza rib in vode
Fish and water sampling schedule
Razporeditev vzorčenja rib in vode
Water from the test chambers for the determination of test substance concentration is sampled before addition of the fish and during both uptake and depuration phases.
Vzorec vode iz preskusnih posod se za določanje koncentracije preskusne snovi vzame preden se dodajo ribe, med fazo absorpcije in fazo očiščenja.
As a minimum, the water is sampled at the same time as the fish and before feeding.
Voda se vzorči istočasno kot ribe in pred hranjenjem, lahko pa tudi večkrat.
During the uptake phase, the concentrations of test substance are determined in order to check compliance with the validity criteria.
Med fazo absorbcije se določijo koncentracije preskusnih snovi, da se preveri skladnost z merili veljavnosti.
Fish is sampled on at least five occasions during the uptake phase and at least on four occasions during the depuration phase.
Ribe se vzorčijo najmanj petkrat med fazo absorpcije in najmanj štirikrat med fazo očiščenja.
Since on some occasions it will be difficult to calculate a reasonably precise estimate of the BCF value based on this number of samples, especially when other than simple first-order depuration kinetics are indicated, it may be advisable to take samples at a higher frequency in both periods (see Appendix 4).
Ker je v nekaterih primerih na osnovi takega števila vzorcev težko izračunati razmeroma natančno oceno BKF vrednosti, zlasti če ne gre za preprosto kinetiko očiščenja prvega reda, je priporočljivo v obeh fazah vzorce vzeti bolj pogosto (glej Dodatek 4).
The extra samples are stored and analysed only if the results of the first round of analyses prove inadequate for the calculation of the BCF with the desired precision.
Dodatni vzorci se shranijo in analizirajo samo, če se rezultati prvega kroga analiz izkažejo kot neustrezni za izračun biokoncentracijskega faktorja z želeno natančnostjo.
An example of an acceptable sampling schedule is given in Appendix 4.
Primer sprejemljivega razporeda vzorčenja je podan v Dodatku 4.
Other schedules can readily be calculated using other assumed values of Pow to calculate the exposure time for 95 % uptake.
Druge razporeditve se izračunajo preprosto tako, da se za izračun časa izpostavitve uporabijo druge vrednosti Pow, predvidene za 95 % absorpcijo.
Sampling is continued during the uptake phase until a steady-state has been established or for 28 days, whichever is the shorter.
Vzorčenje se nadaljuje med fazo absorpcije, dokler ne pride do stabilnega stanja ali največ 28 dni.
If the steady-state has not been reached within 28 days sampling continues until a steady-state has been attained or for 60 days, whichever is shorter.
Če do stabilnega stanja ne pride v 28 dneh, se vzorčenje nadaljuje, dokler ne pride do stabilnega stanja ali še največ 60 dni.
Before beginning the depuration phase the fish are transfered to clean tanks.
Pred začetkom faze očiščenja se ribe premestijo v čiste akvarije.
Sampling and Sample Preparation
Vzorčenje in priprava vzorcev
Water samples for analysis are obtained e.g. by siphoning through inert tubing from a central point in the test chamber.
Vzorci vode za analizo se pridobijo na primer tako, da se voda prek inertnega cevnega materiala izčrpa s središčne točke preskusne posode.
Since neither filtration nor centrifuging appear always to separate the non-bioavailable fraction of the test substance from that which is bioavailable (especially for super-lipophilic chemicals i.e. those chemicals with a log Pow > 5) (1) (5), samples may not be subjected to those treatments.
Glede na to, da ne filtriranje ne centrifugiranje vedno ne ločita delcev preskusne snovi, ki niso biološko dostopni, od tistih, ki so biouporabni (zlasti za superlipofilne kemikalije, t.j. kemikalije z log Pow > 5) (1) (5), vzorci ne smejo biti izpostavljeni takemu ravnanju.
Instead, measures should be taken to keep the tanks as clean as possible and the content of total organic carbon should be monitored during both the uptake and depuration phases.
Namesto tega je treba poskrbeti, da so akvariji čim bolj čisti in da se vsebnost skupnega organskega ogljika nadzira tako med fazo absorpcije kot med fazo očiščenja.
An appropriate number of fish (normally a minimum of four) is removed from the test chambers at each sampling time.
Ob vsakem vzorčenju se iz preskusnih posod odstrani ustrezno število rib (ponavadi najmanj štiri).
The sampled fish are rinsed quickly with water, blot ‘dry’, killed instantly using the most appropriate and humane method, and then weighed.
Vzorčene ribe se hitro izperejo z vodo, osušijo, usmrtijo v hipu z najbolj ustrezno in humano metodo ter nato stehtajo.
It is preferable to analyse fish and water immediately after sampling in order to prevent degradation or other losses and to calculate approximate uptake and depuration rates as the test proceeds.
Zaželeno je, da se ribe in voda analizirajo takoj po vzorčenju, da se prepreči razgradnja ali druge izgube ter da se v teku preskusa izračunata približni stopnji absorpcije in očiščenja.
Immediate analysis also avoids delay in determining when a plateau has been reached.
S takojšnjo analizo se izognemo tudi zamudam pri ugotavljanju kdaj je bil plato dosežen.
Failing immediate analysis, samples are stored by an appropriate method.
Če takojšnja analiza ni izvedena, se vzorci shranijo z ustrezno metodo.
Before the beginning of the study, information on the proper method of storage for the particular test substance — for example, deep-freezing, holding at 4 0C, duration of storage, extraction, etc. are obtained.
Pred začetkom študije se pridobijo podatki o ustrezni metodi shranjevanja za določeno preskusno snov – na primer globoko zmrzovanje, shranjevanje pri 4 oC, trajanja shranjevanja, ekstrakcija, itd.
Quality of Analytical method
Kakovost analitične metode
Since the whole procedure is governed essentially by the accuracy, precision and sensitivity of the analytical method used for the test substance, check experimentally that the precision and reproducibility of the chemical analysis, as well as recovery of the test substance from both water and fish are satisfactory for the particular method.
Ker je za celoten postopek pomembna točnost, natančnost in občutljivost analitične metode, uporabljene za preskusno snov, je treba praktično preveriti, da sta natančnost in reproduktivnost kemične analize, kakor tudi ponovna pridobitev preskusne snovi tako iz vode kot iz rib, zadovoljivi za določeno metodo.
Also, check that the test substance is not detectable in the dilution water used.
Preveriti je treba tudi, da se preskusne snovi v vodi, ki se uporablja za pripravo raztopine, ne zazna.
If necessary, the values of Cw and Cf obtained from the test are corrected for the recoveries and background values of controls.
Če je treba, se vrednosti Cw in Cf, pridobljeni s preskusom, popravita glede na prispevek oziroma na vrednosti ozadja kontrol.
Fish and water samples are handled throughout in such a manner as to minimise contamination and loss (e.g. resulting from adsorption by the sampling device).
Z vzorci rib in vode se ves čas ravna tako, da se čim bolj zmanjša onesnaženje in izguba (npr. ki je posledica adsorpcije na vzorčevalno napravo).
Analysis of Fish Sample
Analiza vzorca rib
If radiolabelled materials are used in the test, it is possible to analyse for total radio label (i.e. parent and metabolites) or, the samples may be cleaned up so that parent compound can be analysed separately.
Če se v preskusu uporabljajo radioaktivno označeni materiali, se lahko analizira količina skupnega radioaktivnega označevala (t.j. izvornega in metabolitov) ali pa se vzorci očistijo, tako da se izvorna spojina lahko analizira ločeno.
Also, the major metabolites may be characterised at steady-state or at the end of the uptake phase, whichever is the sooner.
Glavni metaboliti se lahko določijo tudi na koncu faze absorpcije ali najkasneje med stabilnim stanjem.
If the BCF in terms of total radiolebelled residues is ≥ 1000 %, it may be advisable, and for certain categories of chemicals such as pesticides strongly recommended, to identify and quantify degradates representing ≥ 10 % of total residues in fish tissues at steady state.
Če je BKF glede na skupne radioaktivno označene ostanke > 1000 %, je priporočljivo in za določene kategorije kemikalij, kot so na primer pesticidi, zelo priporočljivo, da se ugotovijo in količinsko opredelijo razkroj ki, ki predstavljajo > 10 % skupnih ostankov v ribjem tkivu v stabilnem stanju.
If degradates representing ≥ 10 % of total radiolabelled residues in the fish tissue are identified and quantified, then it is also recommended to identify and quantify degradates in the test water.
Če so razkrojki, ki predstavljajo > 10 % skupnih radioaktivno označenih ostankov v ribjem tkivu, ugotovljeni in količinsko določeni, potem je priporočljivo tudi, da se ugotovijo in količinsko opredelijo tudi razkrojki v preskusni vodi.
The concentration of the test substance should usually be determined for each weighed individual fish.
Koncentracija preskusne snovi se običajno določi za vsako posamezno stehtano ribo.
If this is not possible, pooling of the samples on each sampling occasion may be done but pooling does restrict the statistical procedures which can be applied to the data.
Če to ni mogoče, je združevanje vzorcev pri vsakem vzorčenju dovoljeno, vendar združevanje omejuje statistične postopke, ki se lahko uporabljajo za tako pridobljene podatke.
If a specific statistical procedure and power are important considerations, then an adequate number of fish to accommodate the desired pooling procedure and power should be included in the test (6) (7).
Če sta določen statistični postopek in stopnja značilnosti pomembna faktorja, se mora v preskus vključiti ustrezno število rib, da se prilagodi zaželenemu postopku združevanja vzorcev in statistične značilnosti (6) (7).
BCF should be expressed both as a function of total wet weight and, for high lipophilic substances, as a function of the lipid content.
BKF je treba izraziti tako kot funkcijo mokre teže in, za visoko lipofilne snovi, kot funkcijo vsebnosti lipida.
Lipid content of the fish is determined on each sampling occasion if possible.
Vsebnost lipida rib se določi pri vsakem vzorčenju, če je to mogoče.
Suitable methods should be used for determination of lipid content (ref. 8 and 2 of Appendix 3).
Za določanje vsebnosti lipida se morajo uporabiti ustrezne metode (Literatura 8 in 2 Dodatek 3).
Chloroform/methanol extraction technique may be recommended as standard method (9).
Kot standardna metoda se lahko priporoči tehnika z ekstrakcijo kloroforma/metanola (9).
The various methods do not give identical values (10), so it is important to give details of the method used.
Različne metode ne dajo enakih vrednosti (10), zato je pomembno, da so znane podrobnosti o uporabljeni metodi.
When possible, the analysis for lipid should be made on the same extract as that produced for analysis for the test substance, since the lipids often have to be removed from the extract before it can be analysed chromatographically.
Če je mogoče, naj se analiza lipida izvede na istem ekstraktu, kot je bil pripravljen za analizo preskusne snovi, saj morajo biti nemalokrat lipidi odstranjeni iz ekstrakta, preden se ga lahko analizira s kromatografom.
The lipid content of the fish (as mg/kg wet weight) at the end of the experiment should not differ from that at the start by more ± 25 %.
Vsebnost lipida v ribah (kot mg/kg mokre teže) se na koncu preskusa ne sme razlikovati od začetne vrednosti za več kot ± 25 %.
The tissue percent solids should also be reported to allow conversion of lipid concentration from a wet to a dry basis.
Ravno tako je treba zabeležiti odstotek suhe snovi v tkivu, da se omogoči pretvorba koncentracije lipida od mokre do suhe osnove.
The uptake curve of the test substance is obtained by plotting its concentration in/on fish (or specified tissues) in the uptake phase against time on arithmetic scales.
Krivulja absorpcije preskusne snovi se dobi tako, da se njena koncentracija v/na ribi (ali določenih tkivih) v fazi absorpcije grafično prikaže kot funkcija časa na aritmetični lestvici.
If the curve has reached a plateau, that is, become approximately asymptotic to the time axis, the steady-state BCFss is calculated from:
Če krivulja doseže plato, torej če postane približno asimptotična na časovno premico, se BKFSS stabilnega stanja izračuna na podlagi enačbe:
When no steady-state is reached, it may be possible to calculate a BCFss of sufficient precision for hazard assessment from a ‘steady-state’ at 80 % (1,6/k2) or 95 % (3,0/k2) of equilibrium.
Če stabilno stanje ni doseženo, se za oceno nevarnosti BKFSS lahko dovolj natančno izračuna na podlagi „stabilnega stanja“ pri 80 % (1,6/k2) ali 95 % (3,0/k2) glede na ravnovesje.
Also the concentration factor (BCFK) is determined, as the ratio k1/k2, the two first-order kinetic constants.
Določi se tudi koncentracijski faktor (BKFk) kot razmerje k1/k2, dveh konstant kinetike prvega reda.
The depuration rate constant (k2) is usually determined from the depuration curve (i.e. a plot of the decrease in test substance concentration in the fish with time).
Konstanta stopnje očiščenja (k2) se ponavadi določi na osnovi krivulje očiščenja (t.j. grafični prikaz upadanja koncentracije preskusne snovi v ribi s časom).
The uptake rate constant (k1) is then calculated given k2 and a value of Cf which is derived from the uptake curve (see also Appendix 5).
Konstanta stopnje absorpcije (k1) se nato izračuna na podlagi danega k2 in vrednosti Cf, ki se pridobi iz krivulje absorpcije (gl. tudi Dodatek 5).
The preferred method for obtaining BCFK and the rate constants, k1 and k2, is to use non-linear parameter estimation methods on a computer (11).
Za izračun faktorja BKFk in konstant stopenj k1 in k2 je zaželena uporaba računalniških metod za izračun nelinearnih parametrskih ocen (11).
Otherwise, graphical methods may be used to calculate k1 and k2.
Sicer se za izračun k1 in k2 lahko uporabijo grafične metode.
If the depuration curve is obviously not first-order, then more complex models should be employed (see references in Appendix 3) and advice from a biostatistician sought.
Če krivulja očiščenja očitno ni krivulja prvega reda, je treba uporabiti bolj zapletene modele (glej literaturo v Dodatku 3) in poiskati nasvet biostatistika.
The results should be interpreted with caution where measured concentrations of test solutions occur at levels near the detection limit of the analytical method.
Rezultate je treba razlagati previdno, kadar se izmerjene koncentracije preskusnih raztopin pojavljajo na ravneh blizu meje zaznavnosti analitične metode.
Clearly defined uptake and loss curves are an indication of good quality bioconcentration data.
Jasno določeni krivulji absorpcije in očiščenja sta pokazateljici kakovostnih podatkov o biokoncentraciji.
The variation in uptake/depuration constants between the two test concentrations should be less than 20 %.
Odstopanja v konstantah absorpcije/očiščenja med dvema preskusnima koncentracijama morajo znašati manj kot 20 %.
Observed significant differences in uptake/depuration rates between the two applied test concentrations should be recorded and possible explanations given.
Večje opažene razlike v stopnjah absorpcije/očiščenja med obema uporabljenima preskusnima koncentracijama je treba zabeležiti in navesti možne razloge.
Generally the confidence limit of BCFs from well-designed studies approach ± 20 %.
Ponavadi se meja zaupanja pri biokoncentracijskih faktorjih iz dobro zasnovanih študij približa ± 20 %.
TEST SUBSTANCE:
PRESKUSNA SNOV:
chemical identification data (including the organic carbon content, if appropriate),
podatki o kemični identifikaciji (vključno z vsebnostjo organskega ogljika, če je to primerno),
if radio labelled, the precise position of the labelled atom(s) and the percentage of radioactivity associated with impurities.
če gre za radioaktivno označeno snov, točen položaj radioaktivnih atoma/atomov in odstotek radioaktivnosti, združene z nečistotami.
TEST SPECIES
PRESKUSNE VRSTE
scientific name, strain, source, any pre-treatment, acclimation, age, size-range, etc.
znanstveno ime, sev, vir, kakršna koli predobdelava, aklimatizacija, starost, red velikosti, itd.
TEST CONDITIONS:
PRESKUSNI POGOJI:
test procedure used (e.g. flow-through or semi-static),
uporabljeni preskusni postopek (npr. pretočni ali polstatični),
type and characteristics of illumination used and photoperiod(s),
tip in lastnosti uporabljene svetlobe in obdobje(a) osvetljenosti,
test design (e.g. number and size of test chambers, water volume replacement rate, number of replicates, number of fish per replicate, number of test concentrations, length of uptake and depuration phases, sampling frequency for fish and water samples,
načrt preskusa (npr. število in velikost preskusnih posod, stopnja nadomeščene vodne prostornine, število ponovitev, število rib na ponovitev, število preskusnih koncentracij, dolžina faze absorpcije in faze očiščenja, pogostost vzorčenja ribjih in vodnih vzorcev),
method of preparation of stock solutions and frequency of renewal (the solubilizing agent, its concentration and its contribution to the organic carbon content of test water must be given, when used),
metoda priprave založnih raztopin in pogostost obnovitev (dodatek za topnost, njegova koncentracija in njegov prispevek k vsebnosti organskega ogljika v preskusni vodi morajo biti podani, kadar so uporabljeni),