natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Testing above the concentration of 5 mg/plate or 5 μl/plate may be considered when evaluating substances containing substantial amounts of potentially mutagenic impurities.
Lahko se izvedejo preizkusi s koncentracijami, večjimi od 5 mg/ploščo ali 5 μl/ploščo, kadar se ocenjujejo snovi, ki vsebujejo znatne količine potencialno mutagenih nečistot.
Concurrent strain-specific positive and negative (solvent or vehicle) controls, both with and without metabolic activation, should be included in each assay.
V vsak preizkus naj se vključijo sočasni pozitivni in negativni (topilo ali nosilec) kontrolni vzorci, specifični za sev, ob aktivaciji presnove in brez nje.
Positive control concentrations that demonstrate the effective performance of each assay should be selected.
Izberejo naj se koncentracije pozitivne kontrole, ki dokazujejo učinkovito izvedbo vsakega preizkusa.
For assays employing a metabolic activation system, the positive control reference substance(s) should be selected on the basis of the type of bacteria strains used.
Pri preizkusih, pri katerih se uporabi sistem aktivacije presnove, naj se referenčna(-e) snov(-i) pozitivne kontrole izbere(-jo) na podlagi vrste uporabljenih bakterijskih sevov.
The following substances are examples of suitable positive controls for assays with metabolic activation:
Naslednje snovi so primeri ustreznih snovi pozitivne kontrole za preizkuse z aktivacijo presnove:
CA numbers
Št. CAS
Names
Snovi
9,10-dimethylanthracene
9,10-dimetilantracen
7,12-dimethylbenz[a]anthracene
7,12-dimetilbenzo(a) antracen
2-aminoanthracene
2-aminoantracen
cyclophosphamide
ciklofosfamid
The following substance is a suitable positive control for the reductive metabolic activation method:
Naslednja snov je ustrezna snov pozitivne kontrole za metodo redukcijske aktivacije presnove:
2-Aminoanthracene should not be used as the sole indicator of the efficacy of the S9-mix.
2-aminoantracen naj se ne uporablja kot edini kazalec učinkovitosti zmesi S9.
If 2-aminoanthracene is used, each batch of S9 should also be characterised with a mutagen that requires metabolic activation by microsomal enzymes, e.g. benzo[a]pyrene, dimethylbenzanthracene.
Če se uporabi 2-aminoantracen, naj bo tudi za vsako serijo S9 značilen mutagen, ki potrebuje aktivacijo presnove z mikrosomskimi encimi, npr. benzo[a]piren, dimetilbenzo antracen.
The following substances are examples of strain-specific positive controls for assays performed without exogenous metabolic activation system:
Naslednje snovi so primeri snovi pozitivne kontrole za posamezne seve, za preizkuse, izvedene brez zunanjega sistema aktivacije presnove:
Strain
Sev
Sodium azide
natrijev azid
TA 1535 and TA 100
TA 1535 in TA 100
9-aminoacridine
9-aminoakridin
TA 1537, TA 97 and TA 97a
TA 1537, TA 97 in TA 97a
uvrA and TA102
uvrA in TAl 02
N-ethyl-N-nitro-N-nitrosoguanidine
N-metil-N-nitro-N-nitrozogvanidin
WP2, WP2uvrA and WP2uvrA(pKM101)
WP2, WP2uvrA in WP2uvrA(pK M101)
4-nitroquinoline-1-oxide
4-nitrokinolin-1-oksid
plasmid-containing strains
sevi s plazmidi
Other appropriate positive control reference substances may be used.
Lahko se uporabijo druge ustrezne referenčne snovi pozitivne kontrole.
Negative controls, consisting of solvent or vehicle alone, without test substance, and otherwise treated in the same way as the treatment groups, should be included.
Vključijo naj se negativni kontrolni vzorci, ki jih sestavlja le topilo ali nosilec brez preizkušane snovi, obdelani na enak način kakor obdelovalne skupine.
For the plate incorporation method (1)(2)(3)(4), without metabolic activation, usually 0,05 ml or 0,1 ml of the test solutions, 0,1 ml of fresh bacterial culture (containing approximately 108 viable cells) and 0,5 ml of sterile buffer are mixed with 2,0 ml of overlay agar.
Pri metodi vključitve v ploščo (1) (2) (3) (4) brez aktivacije presnove se navadno 0,05 ml ali 0,1 ml preizkušane raztopine, 0,1 ml sveže bakterijske kulture (ki vsebuje približno 108 živih celic) in 0,5 ml sterilnega pufra zmeša z 2,0 ml poltrdega gojišča.
For the assay with metabolic activation, usually 0,5 ml of metabolic activation mixture containing an adequate amount of post-mitochondrial fraction (in the range from 5 to 30 % v/v in the metabolic activation mixture) are mixed with the overlay agar (2,0 ml), together with the bacteria and test substance/test solution.
Pri preizkusu z aktivacijo presnove se navadno 0,5 ml zmesi za aktivacijo presnove, ki vsebuje ustrezno količino postmitohondrijske frakcije (v območju od 5 do 30 % v/v v zmesi za aktivacijo presnove), zmeša s poltrdim gojiščem (2,0 ml) skupaj z bakterijami in preizkušano snovjo/raztopino.
The contents of each tube are mixed and poured over the surface of a minimal agar plate.
Vsebina vsake epruvete se premeša in razlije po površini plošče minimalnega gojišča.
The overlay agar is allowed to solidify before incubation.
Pred inkubacijo naj se poltrdo gojišče strdi.
For the preincubation method (2)(3)(5)(6), the test substance/test solution is preincubated with the test strain (containing approximately 108 viable cells) and sterile buffer or the metabolic activation system (0,5 ml) usually for 20 min. or more at 30-37 oC prior to mixing with the overlay agar and pouring onto the surface of a minimal agar plate.
Pri metodi poprejšnje inkubacije (2) (3) (5) (6) se preizkušana snov/raztopina inkubira skupaj s preizkusnim sevom (ki vsebuje približno 108 živih celic) in sterilnim pufrom ali sistemom za aktivacijo presnove (0,5 ml), navadno 20 minut ali več pri 30–37 oC, preden se zmeša s poltrdim gojiščem in razlije na površino plošče minimalnega gojišča.
Usually, 0,05 or 0,1 ml of test substance/test solution, 0,1 ml of bacteria, and 0,5 ml of S9-mix or sterile buffer are mixed with 2,0 ml of overlay agar.
Navadno se 0,05 ali 0,1 ml preizkušane snovi/raztopine, 0,1 ml bakterij in 0,5 ml zmesi S9 ali sterilnega pufra zmeša z 2,0 ml poltrdega gojišča.
Tubes should be aerated during pre-incubation by using a shaker.
Epruvete se med inkubacijo prezračujejo s stresalnikom.
For an adequate estimate of variation, triplicate plating should be used at each dose level.
Za ustrezno oceno nihanja naj se za vsako velikost odmerka uporabijo tri plošče.
The use of duplicate plating is acceptable when scientifically justified.
Uporaba dveh plošč je sprejemljiva, kadar je znanstveno utemeljena.
The occasional loss of a plate does not necessarily invalidate the assay.
Občasna izguba plošče ne pomeni nujno neveljavnega preizkusa.
Gaseous or volatile substances should be tested by appropriate methods, such as in sealed vessels (12)(14)(15)(16).
Plinaste ali hlapne snovi naj se preizkušajo z ustreznimi metodami, na primer v zatesnjenih posodah (12) (14) (15) (16).
All plates in a given assay should be incubated at 37 oC for 48-72 hours.
Vse plošče posameznega preizkusa naj se inkubirajo 48-72 ur pri 37 oC.
After the incubation period, the number of revertant colonies per plate is counted.
Po inkubaciji se določi število kolonij povratnih mutant na ploščo.
Data should be presented as the number of revertant colonies per plate.
Podatki se prikažejo kot število kolonij povratnih mutant na ploščo.
The number of revertant colonies on both negative (solvent control, and untreated control if used) and positive control plates should also be given.
Navede se tudi število kolonij povratnih mutant na ploščah negativne (kontrolni vzorec s topilom in neobdelani kontrolni vzorec, če se uporabi) in pozitivne kontrole.
Individual plate counts, the mean number of revertant colonies per plate and the standard deviation should be presented for the test substance and positive and negative (untreated and/or solvent) controls.
Navedejo se število na posameznih ploščah, srednja vrednost števila kolonij povratnih mutant na ploščo in standardni odklon za preizkušano snov ter pozitivne in negativne (neobdelane in/ali s topilom) vzorce.
Negative results need to be confirmed on a case-by-case basis.
Negativne rezultate je treba potrditi za vsak primer posebej.
Study parameters that might be modified include the concentration spacing, the method of treatment (plate-incorporation or liquid pre-incubation), and metabolic activation conditions.
Preizkusni parametri, ki bi se lahko prilagodili, vključujejo intervale med koncentracijami, metodo obdelave (vključitev v ploščo ali poprejšnja inkubacija v suspenziji) in pogoje aktivacije presnove.
There are several criteria for determining a positive result, such as a concentration-related increase over the range tested and/or a reproducible increase at one or more concentrations in the number of revertant colonies per plate in at least one strain with or without metabolic activation system (23).
Pozitivni rezultat se lahko določi na podlagi številnih meril, kakor sta na primer s koncentracijo povezano povečanje v preizkušanem območju in/ali ponovljivo povečanje števila kolonij povratnih mutant na ploščo pri eni ali več koncentracijah pri vsaj enem sevu s sistemom za aktivacijo presnove ali brez njega (23).
Statistical methods may be used as an aid in evaluating the test results (24).
Pri vrednotenju rezultatov preizkusa se kot pomoč lahko uporabijo statistične metode (24).
However, statistical significance should not be the only determining factor for a positive response.
Vendar pa naj statistična značilnost ne bo edini odločilni dejavnik za pozitivni odziv.
Positive results from the bacterial reverse mutation test indicate that the substance induces point mutations by base substitutions or frameshifts in the genome of either Salmonella typhimurium and/or Escherichia coli.
Pozitivni rezultati preizkusa bakterijskih povratnih mutacij pomenijo, da snov povzroča točkovne mutacije z zamenjavo baz ali premikom bralnega okvira v genomu Salmonella typhimurium in/ali Escherichia coli.
Negative results indicate that under the test conditions, the test substance is not mutagenic in the tested species.
Negativni rezultati pomenijo, da preizkušana snov pri preizkusnih pogojih ni mutagena za preizkusno vrsto.
justification for choice of solvent/vehicle,
utemeljitev izbire topila/nosilca,
Strains:
Sevi :
strains used,
uporabljeni sevi,
number of cells per culture,
število celic na kulturo,
strain characteristics.
značilnosti seva.
amount of test substance per plate (mg/plate or μl/plate) with rationale for selection of dose and number of plates per concentration,
količina preizkušane snovi na ploščo (mg/ploščo ali μl/ploščo), skupaj z razlogi za izbiro odmerka in števila plošč na koncentracijo,
media used,
uporabljena gojišča,
treatment procedures.
postopki obdelave.
individual plate counts,
število kolonij na posameznih ploščah,
the mean number of revertant colonies per plate and standard deviation,
srednja vrednost števila kolonij povratnih mutant na ploščo in standardni odklon,
concurrent negative (solvent/vehicle) and positive control data, with ranges, means and standard deviations,
podatki o sočasni negativni (topilo/nosilec) in pozitivni kontroli, z območji, srednjimi vrednostmi in standardnimi odkloni,
historical negative (solvent/vehicle) and positive control data with ranges, means and standard deviations.
podatki o pretekli negativni (topilo/nosilec) in pozitivni kontroli, z območji, srednjimi vrednostmi in standardnimi odkloni.
Environmental Protection Agency Gene-Tox Program.
(1988). A Review and Analysis of the Chinese Hamster Ovary/Hypoxanthine Guanine Phosphoribosyl Transferase System to Determine the Mutagenicity of Chemical Agents: A Report of Phase III of the U.S. Environmental Protection Agency Gene-Tox Program.
Yahagi, T., Degawa, M., Seino, Y.Y., Matsushima, T., Nagao, M., Sugimura, T. and Hashimoto, Y., (1975) Mutagenicity of Carcinogen Azo Dyes and their Derivatives, Cancer Letters, 1, p. 91-96.
Yahagi, T., Degawa, M., Seino, Y. Y., Matsushima, T., Nagao, M., Sugimura, T., in Hashimoto, Y. (1975), Mutagenicity of Carcinogen Azo Dyes and their Derivatives, Cancer Letters, str. 91–96.
Norpoth K.H. and Garner, R.C., Springer, Berlin-Heidelberg-New York. p. 273-285.
Norpoth K. H., in Garner, R. C, Springer, Berlin-Heidelberg-New York, str. 273–285.
Kirkland, Cambridge University Press, p. 13-61.
Kirkland, Cambridge University Press, str. 13–61.
Mutation Res., 38, p. 33-42.
J., in Bridges, B. A. (1976), Use of a simplified fluctuation test to detect low levels of mutagens, Mutation Res., 38, str. 33–42.
Hubbard, S.A., Green, M.H.L., Gatehouse, D. and J.W.
Hubbard, S. A., Green, M. H. L., Gatehouse, D., in Bridges, J. W.
Kilbey, B.J., Legator, M., Nichols, W. and Ramel, C., Elsevier, Amsterdam-New York-Oxford, p. 141-161.
Kilbey, B. J., Legator, M., Nichols, W., in Ramel, C, Elsevier, Amsterdam-New York-Oxford, str. 141–161.
Zeiger, E., Anderson, B.E., Haworth, S., Lawlor, T. and Mortelmans, K., (1992) Salmonella Mutagenicity Tests.
Zeiger, E., Anderson, B. E., Haworth, S., Lawlor, T., in Mortelmans, K. (1992), Salmonella Mutagenicity Tests.
Mutagen., 19, p. 2-141.
Mutagen., 19, str. 2–141.
Elsevier, Amsterdam, p. 249-258.
Elsevier, Amsterdam, str. 249–258.
USA, 77, p. 4961-4965.
USA, 77, str. 4961–4965.
de Serres et al.
de Serres idr.
Elsevier, North Holland, p. 85-88.
Elsevier, North Holland, str. 85–88.
Kirkland, D.J., Cambridge University Press, p. 28-65.
Kirkland, D. J., Cambridge University Press, str. 28–65.
A variety of haploid and diploid strains of the yeast Saccharomyces cerevisiae can be used to measure the production of gene mutations induced by chemical agents with and without metabolic activation.
Za merjenje nastanka genskih mutacij, ki jih inducirajo kemijski povzročitelji z ali brez metabolne aktivacije, je mogoče uporabiti niz haploidnih in diploidnih sevov kvasovke Saccharomyces cerevisiae.
Forward mutation systems in haploid strains, such as the measurement of mutation from red, adenine-requiring mutants (ade-1, ade-2) to double adenine-requiring white mutants and selective systems such as the induction of resistance to canavnaine and cycloheximide, have been utilised.
Uporabljajo se sistemi napredne mutacije v haploidnih sevih, kot je merjenje mutacije rdečih mutant, ki potrebujejo adenin (ade-1, ade-2), v bele mutante, ki potrebujejo dvojni adenin, ter selektivni sistemi, kot je indukcija odpornosti proti kanavaninu in cikloheksimidu.
The most extensively validated reverse mutation system involves the use of the haploid strain XV 185-14C which carries the ochre nonsense mutations ade 2-1, arg 4-17, lys 1-1 and trp 5-48, which are reversible by base substitution mutagens that induce site specific mutations or ochre suppressor mutations.
Najširše validirani sistem povratne mutacije vključuje uporabo haploidnega seva XV 185-14C, ki nosi ochre nesmiselne mutacije ade 2–1, org 4–17, lys 1–1 in trp 5–48, ki so povratne z mutageni, ki povzročajo zamenjave baz, in inducirajo usmerjene mutacije ali ochre supresorske mutacije.
XV 185-14C also carries the his 1-7 marker, a missense mutation reverted mainly by second site mutations, and the marker hom 3-10 which is reverted by frameshift mutagens.
XV 185-14C nosi tudi označevalec his 1–7, ki je drugače pomenska mutacija, v glavnem povratna z mutacijami na drugem mestu, ter označevalec hom 3–10, ki je povraten z mutageni, ki inducirajo mutacije tipa premik bralnega okvira.
In diploid strains of S. cerevisiae the only extensively used strain is D7 which is homozygous for ilv 1-92.
Pri diploidnih vrstah S. cerevisisae je edina široko uporabljana vrsta D7, ki je homozigotna za ilv 1–92.
Solutions of test chemicals and control should be prepared just prior to testing, using an appropriate vehicle.
Raztopino preskusnih kemikalij in kontrolo je treba z uporabo ustreznega nosilca pripraviti tik pred preskusom.
In the case of organic compounds, which are not water soluble, not more than a 2 % solution v/v of organic solvents such as ethanol, acetone or dimethylsulphoxide (DMSO) should be used.
Če gre za v vodi netopne organske spojine, naj se ne uporabi več kot 2 % raztopina v/v organskih topil, kot so etanol, aceton ali dimetilsulfoksid (DMSO).
The final concentration of the vehicle should not significantly affect cell viability and growth characertistics.
Končna koncentracija nosilca ne sme bistveno vplivati na sposobnost preživetja celic in na značilnosti rasti.
Cells should be exposed to test chemicals both in the presence and absence of an appropriate exogenous metabolic activation system.
Celice je treba izpostaviti preskusnim kemikalijam v prisotnosti in v odsotnosti ustreznega eksogenega metabolnega aktivacijskega sistema.
The most commonly used system is a co-factor supplemented post-mitochondrial fraction from the livers of rodents pre-treated with enzyme inducing agents.
Najpogosteje uporabljeni sistem je s kofaktorjem dopolnjena post-mitohondrijalna frakcija iz jeter glodalcev, ki so bila prej tretirana s sredstvi, za encimsko indukcijo.
The use of other species, tissues, post-mitochondrial fractions, or procedures may also be appropriate for metabolic activation.
Za metabolno aktivacijo je lahko ustrezna tudi uporaba drugih vrst, tkiv, post-mitohondrijalnih frakcij ali postopkov.
Tester strains
Preskusni sevi
The haploid strain XV 185-14C and the diploid strain D7 are the most used in gene mutation studies.
V študijah genske mutacije sta najbolj uporabljana haploidni sev XV 185-14C in diploidni sev D7.
Other strains may also be appropriate.
Ustrezni so lahko tudi drugi sevi.
Media
Gojišča
Appropriate culture media are used for the determination of survival and mutant numbers.
Za določitev preživetja celic in števila mutant se uporabijo ustrezna gojišča.
Use of negative and positive controls
Uporaba negativnih in pozitivnih kontrol
Positive, untreated and solvent controls should be performed concurrently.
Pozitivno kontrolo, netretirano kontrolo in kontrolo topila je treba opraviti hkrati.
Appropriate positive control chemicals should be used for each specific mutational endpoint.
Za vsak specifičen mutacijski ciljni učinek je treba uporabiti ustrezne kemikalije pozitivne kontrole.
At least five adequately spaced concentrations of the test substance should be used.
Uporabiti je treba najmanj pet ustrezno razporejenih koncentracij preskusne snovi.
Sub-cultures should be used with spontaneous mutation frequencies within the accepted normal range.
Uporabljati je treba subkulture s frekvencami spontanih mutacij znotraj dovoljenega razpona.
In the case of experiments using markers such as hom 3-10 with a low mutation rate, the number of plates used must be increased to provide statistically relevant data.
V primeru preskusov, pri katerih se uporabljajo označevalci, kot je hom 3-10 z nizko stopnjo mutacije, je treba za pridobitev statistično ustreznih podatkov število plošč povečati.
Treatment of S. cerevisiae strains is usually performed in a liquid test procedure involving either stationary or growing cells.
Tretiranje sevov S. cerevisiae se običajno izvaja s preskusnim postopkom v tekoči suspenziji, ki zajema ali celice v stacionarni fazi ali rastoče celice.
Initial experiments should be carried out on growing cells: 1-5 × 107 cells/ml are exposed to the test chemical for up to 18 hours at 28 to 37 oC with shaking; an adequate amount of metabolic activation system is added during treatment when appropriate.
Začetne preskuse je treba opraviti na rastočih celicah: 1 - 5 × 10 celic/ml se izpostavi preskusni kemikaliji največ 18 ur pri 28 do 37 oC s tresenjem; če je primerno, se med tretiranjem doda ustrezna količina metabolnega aktivacij skega sistema.
At the end of the treatment, cells are centrifuged, washed and seeded upon an appropriate culture medium.
Na koncu tretiranja se celice centrifugirajo, sperejo in zasejejo na ustrezno gojišče.
After incubation, plates are scored for survival and the induction of gene mutation.
Po inkubaciji se plošče preštejejo za določitev preživetja in indukcije genske mutacije.
If the first experiment is negative, then a second experiment should be carried out using stationary phase cells.
Če je prvi preskus negativen, je treba ob uporabi celic v stacionarni fazi opraviti drugi preskus.
If the first experiment is positive it is confirmed in an appropriate independent experiment.
Če je prvi preskus pozitiven, se ga potrdi z ustreznim neodvisnim preskusom.
Data should be presented in tabular form indicating the number of colonies counted, number of mutants, survival and mutant frequency.
Podatki se povzamejo v obliki tabele, iz katere je razvidno število preštetih kolonij, število mutant, preživetje in frekvenco mutant.
All results should be confirmed in an independent experiment.
Vse rezultate je treba potrditi v neodvisnem preskusu.
The dara should be evaluated using appropriate statistical methods.
Podatke je treba oceniti z uporabo ustreznih statističnih metod.
The test report shall, if possible, contain the following information:
Če je mogoče, se v poročilo o preskusu vključijo naslednji podatki:
strain used,
uporabljeni sev,
test conditions: stationary phase or growing cells, compositions of media, incubation temperature and duration, metabolic activation system,
preskusni pogoji: celice v stacionarni fazi ali rastoče celice, sestava gojišč, inkubacijska temperatura in trajanje, metabolni aktivacijski sistem,
treatment conditions: exposure levels, procedure and duration of treatment, treatment temperature, positive and negative controls,
pogoji tretiranja: stopnje izpostavljenosti, postopek in trajanje tretiranja, temperatura tretiranja, pozitivna in negativna kontrola,
number of colonies counted, number of mutants, survival and mutant frequency, dose/response relationship if applicable, statistical evaluation of data,
število preštetih kolonij, število mutant, preživetje in frekvenca mutantov, razmerje odmerek/odziv, če je primerno, statistična ocena podatkov,
discussion of results,
obravnava rezultatov,
Mitotic recombination in Saccharomyces cerevisiae can be detected between genes (or more generally between a gene and its centromere) and within genes.
Mitotično rekombinacijo v Saccharomyces cerevisiae je mogoče zaznati med geni (ali bolj splošno med genom in njegovo centromero) ali znotraj genov.
The former event is called mitotic crossing-over and generates reciprocal products whereas the latter event is most frequently non-reciprocal and is called gene conversion.
Prvi primer se imenuje mitotični crossing-over in ustvarja recipročne produkte, medtem ko je drugi najpogosteje nerecipročen in se imenuje konverzija genov.
Crossing-over is generally assayed by the production of recessive homozygous colonies or sectors produced in a heterozygous strain, whereas gene conversion is assayed by the production of prototrophic revertants produced in an auxotrophic heteroallelic strain carrying two different defective alleles of the same gene.
Preskus crossing-over se običajno opravlja s proizvajanjem recesivnih homozigotnih kolonij ali sektorjev, ki nastanejo v heterozigotnem sevu, medtem ko se preskus konverzije genov opravlja s proizvodnjo prototrofnih revertant, ki nastanejo na avksotrofnem heteroalelnem sevu, ki nosi dva različna okvarjena alela istega gena.
The most commonly used strains for the detection of mitotic gene conversion are D4 (heteroallelic at ade 2 and trp 5) D7 (heteroallelic at trp 5) BZ34 (heteroallelic at arg 4) and JDl (heteroallelic at his 4 and trp 5).
Najpogosteje uporabljani sevi za odkrivanje mitotične konverzije genov so D4 (heteroalelna na ade 2 in trp 5), D7 (heteroralelna na trp 5), BZ34 (heteroalelna na org 4) in JD1 (hetroalelna na his 4 in trp 5).
Mitotic crossing-over producing red and pink homozygous sectors can be assayed in D5 or in D7 (which also measures mitotic gene conversion and reverse mutation at ilv 1-92) both strains being heteroallelic for complementing alleles of ade 2.
Mitotični crossing-over, s katerim nastajajo rdeči in rožnati homozigotni sektorji, je mogoče določiti v D5 ali na D7 (ki meri tudi mitotično konverzijo genov in povratno mutacijo na ilv 1–92), pri čemer sta oba seva heteroalelna za komplementne alele ade 2.
Solutions of test chemicals and control or reference compounds should be prepared just prior to testing, using an appropriate vehicle.
Raztopino preskusnih kemikalij ter kontrolo ali referenčne spojine je treba z uporabo ustreznega nosilca pripraviti tik pred preskusom.