natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Homogenise the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4), either in a blender (e.g. Waring or Ultra Thurax) or by crushing in a sealed disposable maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba strong guage polythene, 150 mm × 250 mm; radiation sterilised) using a rubber mallet or suitable grinding apparatus (e.g. Homex).
homogeniziramo jedra z zadostno količino (pribl. 40 ml) ekstrakcijskega pufra (Dodatek 4), ali v mešalniku (npr. Waring ali Ultra Thurax), ali pa jih zdrobimo v dobro zaprti maceracijski vrečki za enkratno uporabo (npr. Stomacher ali Bioreba iz močnega politena, 150 mm × 250 mm, sterilizirano z obsevanjem) z gumijastim kladivom oziroma ustreznim drobilnim aparatom (npr. Homex).
Note: The risk of cross-contamination of samples is high when samples are homogenized using a blender.
Opomba: Če vzorce homogeniziramo z mešalnikom, obstaja veliko tveganje navzkrižne kontaminacije.
Take precautions to avoid aerosol generation or spillage during the extraction process.
Z ustreznimi ukrepi se izogibamo nastajanju aerosolov in politju med postopkom ekstrakcije.
Ensure that freshly sterilised blender blades and vessels are used for each sample.
Poskrbimo, da bodo za vsak vzorec uporabljena sveže sterilizirana rezila mešalnika in posode.
If the PCR test is to be used, avoid carry-over of DNA on containers or grinding apparatus.
Če uporabljamo test PCR, se izogibamo prenosu DNK na posode oziroma drobilni aparat.
Crushing in disposable bags and use of disposable tubes is recommended where PCR is to be used.
Če uporabljamo PCR, je priporočljivo vzorce zmečkati v vrečkah za enkratno uporabo in uporabljati cevke za enkratno uporabo.
Decant the supernatant.
Odtočimo supernatant.
If excessively cloudy, clarify either by slow speed centrifugation (at not more than 180 g for 10 minutes at a temperature between 4 to 10 °C) or by vacuum filtration (40 to 100 µm), washing the filter with additional (approximately 10 ml) extraction buffer.
Če je preveč moten, ga razčistimo s počasnim centrifugiranjem (pri največ 180 g 10 minut pri temperaturi 4-10 °C) ali z vakumsko filtracijo (40-100 µm), in operemo filter z dodatnim (10 ml) ekstrakcijskim pufrom.
Concentrate the bacterial fraction by centrifugation at 7000 g for 15 minutes (or 10000 g for 10 minutes) at a temperature between 4 to 10 °C and discard the supernatant without disturbing the pellet.
Koncentriramo bakterijsko frakcijo s centrifugiranjem pri 7000 g 15 minut (ali pri 10000 g 10 minut) pri temperaturi 4-10 °C in zavržemo supernatant, ne da bi premešali peleto.
Resuspend the pellet in 1.5 ml pellet buffer (Appendix 4).
Peleto resuspendiramo v 1,5 ml peletnega pufra (Dodatek 4).
Use 500 µl to test for R. solanacearum, 500 µl for Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus and 500 µl for reference purposes.
Uporabimo 500 µl za testiranje bakterije R. solanacearum, 500 µl za Clavibacter michiganensis podv. sepedonicus in 500 µl za referenco.
Add sterile glycerol to final concentration of 10 to 25 % (v/v) to the 500 µl of the reference aliquot and to the remaining test aliquot, vortex and store at –16 to –24 °C (weeks) or at –68 to –86 °C (months).
Dodamo končni koncentrat 10–25 % (v/v) sterilnega glicerola 500 µl referenčnega alikvota in preostanku testnega alikvota, močno premešamo. Shranimo pri –16 do –24 °C (tedni) ali pri –68 do –86 °C (meseci).
Preserve the test aliquots at 4 to 10 °C during testing.
Med testiranjem testne alikvote shranimo na 4-10 °C.
Repeated freezing and thawing is not advisable.
Večkratno zamrzovanje in taljenje ni priporočljivo.
If transport of the extract is required, ensure delivery in a cool box within 24 to 48 hours.
Če je potreben transport ekstrakta, poskrbimo za dostavo v hladilni skrinji v 24 do 48 urah.
It is imperative that all R. solanacearum positive controls and samples are treated separately to avoid contamination.
Obvezno je treba vse pozitivne kontrole in vzorce R. solanacearum obravnavati ločeno, da ne bi prišlo do kontaminacije.
This applies to IF slides and to all tests.
To velja za IF stekelca in za vse teste.
See Flow chart and description of the tests and optimised protocols in the relevant appendices:
Glej Diagram poteka in opis testov ter optimizirane protokole v ustreznih dodatkih.
Selective isolation (see Section VI.A.4.)
Selektivna izolacija (glej oddelek VI.A.4)
IF test (see Section VI.A.5.)
IF test (glej oddelek VI.A.5)
PCR tests (see Section VI.A.6.)
Test PCR (glej oddelek VI.A.6)
FISH test (see Section VI.A.7.)
Test FISH (glej oddelek VI.A.7)
ELISA tests (see Section VI.A.8.)
Test ELISA (glej oddelek VI.A.8)
Bioassay (see Section VI.A.9.)
Biološki test (glej oddelek VI.A.9)
Detailed methods for detection and identification of R. solanacearum in samples of asymptomatic potato, tomato or other host plants
Podrobne metode za detekcijo in identifikacijo bakterije R. solanacearum v vzorcih asimptomatskih rastlin krompirja, paradižnika in drugih gostiteljskih rastlin
Note: For detection of latent R. solanacearum populations it is advised to test composite samples.
Opomba: Za detekcijo latentnih populacij bakterije R. solanacearum priporočamo testiranje kompozitnih vzorcev.
The procedure can be conveniently applied for composite samples of up to 200 stem parts.
Postopek lahko prikladno uporabimo za kompozitne vzorce do 200 delov stebel.
Where surveys are performed they should be based on a statistically representative sample of the plant population under investigation.
Če opravljamo preiskave, morajo temeljiti na statistično reprezentativnem vzorcu populacije rastline, ki jo preučujemo.
Collect 1 to 2 cm stem segments in a closed sterile container according to the following sampling procedures:
Zberemo 1-2 centimetrske dele stebel v zaprti sterilni posodi, skladno s spodnjimi postopki vzorčenja:
Other hosts: With a clean disinfected knife or pruning shears, remove a 1 cm segment from the base of each stem, just above the soil level.
Z vsakega poganjka ob strani odstranimo najnižji kos dolžine 1 cm.
Pathogen detection will be most reliable during late spring, summer and autumn seasons, although natural infections can be detected all year round in the perennial Solanum dulcamara growing in watercourses.
Detekcija patogenov je najzanesljivejša pozno spomladi, poleti in jeseni, čeprav je pri zimzeleni rastlini Solanum dulcamara, ki raste v vodnih tokovih, naravne infekcije mogoče odkriti v kateremkoli letnem času.
Known hosts include volunteer potato plants (groundkeepers), Solanum dulcamara, S. nigrum, Datura stramonium and other members of the family Solanaceae.
Znane gostiteljice vključujejo krompirjeve samosevce (se ohranijo v tleh), Solanum dulcamara, S. nigrum, Datura stramonium in druge člane družine Solanaceae.
Further hosts are Pelargonium spp. and Portulaca oleracea.
Med gostiteljicami so tudi vrste Pelargonium in Portulaca oleracea.
Some European weed spp. which may potentially harbour R. solanacearum biovar 2/Race 3 populations in roots and/or rhizospheres under specific environmental conditions include Atriplex hastata, Bidens pilosa, Cerastium glomeratum, Chenopodium album, Eupatorium cannabinum, Galinsoga parviflora, Ranunculus scleratus, Rorippa spp, Rumex spp., Silene alba, S. nutans., Tussilago farfarra and Urtica dioica.
Nekatere evropske vrste plevela, ki potencialno lahko gostijo populacije R. solanacearum biovar 2/biotip 3 v koreninah in/ali rizosferah v določenih okoljskih pogojih, so med drugim: Atriplex hastata, Bidens pilosa, Cerastium glomeratum, Chenopodium album, Eupatorium cannabinum, Galinsoga parviflora, Ranunculus scleratus, vrste rodu Rorippa, vrste rodu Rumex, Silene alba, S. nutans., Tussilago farfarra in Urtica dioica.
Note: Visual examination for internal symptoms (vascular staining or bacterial ooze) can be done at this stage.
Opomba: Na tej stopnji lahko opravimo vizualni pregled za interne simptome (obarvanje žil ali bakterijski izcedek).
Set aside any stem segments with symptoms and test separately (See Section II).
Dele stebel s simptomi damo na stran in jih testiramo ločeno (glej oddelek II).
Disinfect stem segments briefly with ethanol 70 % and immediately blot dry on tissue paper.
Dele stebel na hitro razkužimo z etanolom 70 % in takoj posušimo z vpojnim papirjem.
Then process the stem segments by one of the following procedures: either,
Nato dele stebel obdelamo po enem od naslednjih postopkov, in sicer bodisi tako, da
Cover the segments with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4) and agitate on a rotary shaker (50 to 100 rpm) for four hours below 24 °C or for 16 to 24 hours refrigerated, or
dele prekrijemo z zadostno količino (pribl. 40 ml) ekstrakcijskega pufra (Dodatek 4) in stresamo na rotacijskem stresalniku (50-100 vrt/min) 4 ure pod temperaturo 24 °C ali 16–24 ur pri temperaturi hladilnika, bodisi tako, da
Process immediately by crushing the segments in a strong maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba) with an appropriate volume of extraction buffer (Appendix 4) using a rubber mallet or appropriate grinding apparatus (e.g. Homex).
takoj obdelamo, dele stolčemo v močni maceracijski vrečki (npr. Stomacher ali Bioreba) z ustrezno količino ekstrakcijskega pufra (Dodatek 4) in gumijastim kladivom oziroma ustreznim drobilnim aparatom (npr. Homex).
If this is not possible, store the stem segments refrigerated for not longer than 72 hours or for not longer than 24 hours at room temperature.
Če to ni mogoče, dele stebel shranimo v hladilniku za največ 72 ur oziroma pri sobni temperaturi ne dlje od 24 ur.
Decant the supernatant after settling for 15 minutes.
Po 15 minutah usedanja odtočimo supernatant.
Further clarification of the extract or concentration of the bacterial fraction are not usually required but may be achieved by filtration and/or centrifugation as described in Section III.1.1.3 – 1.1.5.
Nadaljnje prečiščenje ekstrakta ali koncentrata bakterijske frakcije običajno ni potrebno, lahko pa ga dosežemo s filtriranjem in/ali centrifugacijo, kot je opisano v oddelku III.1.1.3 do 1.1.5.
Divide the neat or concentrated sample extract into two equal parts.
Razdelimo ekstrakt čistega oziroma koncentriranega vzorca na dva enaka dela.
Maintain one half at 4 to 10 °C during testing and store the other half with 10 to 25 % (v/v) sterile glycerol at –16 to –24 °C (weeks) or at –68 to –86 °C (month) in case further testing is required.
Polovico hranimo pri 4-10 °C med testiranjem, drugo polovico pa shranimo z 10-25 % (v/v) sterilnim glicerolom pri –16 do –24 °C (tedni) oziroma –68 do –86 °C (meseci), če bi bilo potrebno nadaljnje testiranje.
Sample of water (1)
Vzorec vode (1)
Concentration of the pathogen (2)
Koncentracija patogena (2)
CORE SCREENING TEST
JEDRNI PRESEJALNI TEST
Selective isolation (3)
Selektivna izolacija (3)
optional auxiliary tests: bioassay (4) / enrichment PCR (5) / enrichment ELISA (6)
Dodatni pomožni testi: biološki test (4) / obogatitveni PCR (5) / obogatitveni ELISA (6)
Colonies with typical morphology (7) after isolation
Kolonije z značilno morfologijo (7) po izolaciji
sample not contaminated by
Vzorec ni okužen z
IDENTIFICATION TESTS (9)
IDENTIFIKACIJSKI TESTI (9)
PATHOGENICITY TEST (10)
TEST PATOGENOSTI (10)
Sample not contaminated by
Vzorec ni okužen z
Sample contaminated by
Vzorec je okužen z
See Section IV.2.1. for recommended sampling procedures.
Glej oddelek IV.2.1 za priporočene postopke vzorčenja.
Pathogen concentration methods are described in Section IV.2.1.
Metode koncentriranja patogenov so opisane v oddelku IV.2.1.
Concentration increases populations of both pathogen and competing saprophytic bacteria and is recommended only if it does not result in inhibition of the isolation test.
Koncentracija poveča populacijo tako patogenih kot tekmujočih saprofitskih bakterij, zato je priporočljiva le, če ne povzroči inhibicije izolacijskega testa.
The bioassay test is described in Section VI.A.9.
Biološki test je opisan v oddelku VI.A.9.
Enrichment PCR methods are described in Section VI.A.4.2 and Section VI.A.6.
Obogatitvene metode PCR so opisane v oddelku VI.A.4.2 in oddelku VI.A.6.
Enrichment ELISA methods are described in Section VI.A.4.2 and Section VI.A.8.
Obogatitvene metode ELISA so opisane v oddelku VI.A.4.2 in oddelku VI.A.8.
Culturing can fail due to competition or inhibition by saprophytic bacteria.
Gojenje lahko spodleti zaradi tekmovanja ali inhibicijskega delovanja saprofitskih bakterij.
If high saprophyte populations are suspected to affect the reliability of the isolation, then repeat the isolation tests after dilution of the sample in sterile water.
Če sumite, da velike populacije saprofitskih bakterij vplivajo na zanesljivost izolacije, ponovite izolacijske teste po razredčenju vzorca v sterilni vodi.
The validated detection scheme, described in this section, is applicable for pathogen detection in samples of surface water and can also be applied for testing samples of potato processing or sewage effluents.
Potrjena shema detekcije, ki je opisana v tem oddelku, velja za detekcijo patogenov v vzorcih površinske vode, uporabimo pa jo lahko tudi za testiranje vzorcev iztokov pri predelavi krompirja in odplak.
However, it is important to note that the expected sensitivity of detection will vary with the substrate.
Pomembno se je zavedati, da se pričakovana občutljivost detekcije spreminja z medijem.
Sensitivity of the isolation test is affected by populations of competing saprophytic bacteria which are generally much higher in potato processing and sewage effluents than in surface water.
Na občutljivost izolacijskega testa vplivajo populacije tekmujočih saprofitskih bakterij, ki so ponavadi v iztokih pri predelavi krompirja in odplakah veliko večje kot v površinski vodi.
Whereas the scheme below is expected to detect as few as 103 cells per litre in surface water the sensitivity of detection in potato processing or sewage effluents is likely to be significantly lower.
Spodnja shema predvideva detekcijo le 103 celic na liter v površinski vodi, občutljivost detekcije v iztokih pri predelavi krompirja in odplakah pa bo verjetno veliko nižja.
For this reason, it is recommended to test effluents after any purification treatments (e.g. sedimentation or filtration) during which saprophytic bacterial populations are reduced.
Zato je priporočljivo testirati iztoke po vsaki vrsti čiščenja (npr. sedimentaciji ali filtriranju), med katerim se zmanjšajo populacije saprofitskih bakterij.
The limitations in sensitivity of the test scheme should be considered when assessing the reliability of any negative results obtained.
Ko ocenjujemo zanesljivost morebitnih dobljenih negativnih rezultatov, je treba upoštevati omejitve pri občutljivosti testne sheme.
Whereas this scheme has been successfully used in survey work to determine presence or absence of the pathogen in surface water, its limitations should be realised when used in similar surveys of potato processing or sewage effluents.
Ta shema se sicer uspešno uporablja pri pregledovanju in ugotavljanju prisotnosti oziroma odsotnosti patogena v površinski vodi, toda zavedati se je treba njenih omejitev, če jo uporabljamo pri podobnem pregledovanju iztokov ob predelavi krompirja oziroma odplak.
Detection of R. solanacearum in surface water is most reliable during late spring, summer and autumn seasons when water temperatures exceed 15 °C.
Detekcija bakterij R. solanacearum je najzanesljivejša pozno spomladi, poleti in jeseni, ko temperatura vode preseže 15 °C.
Repeated sampling at different times in the above mentioned period at designated sampling points will increase the reliability of detection by reducing the effects of climatic variation.
Zanesljivost detekcije povečamo z večkratnim zbiranjem vzorcev ob različnih časih v zgoraj omenjenem obdobju na določenih točkah za vzorčenje. Tako zmanjšamo učinke podnebne variacije.
Take into account the effects of heavy rainfall and the geography of the watercourse to avoid extensive dilution effects that may obscure presence of the pathogen.
Upoštevamo učinke močnega deževja in geografijo vodnega toka, da ne bi prišlo do velikih razredčenj, ki bi prikrila prisotnost patogena.
Take surface water samples in the vicinity of host plants if these hosts are present.
Vzorce površinske vode jemljemo v bližini gostiteljskih rastlin, če so gostitelji na voljo.
At selected sampling points, collect water samples by filling disposable sterile tubes or bottles at a depth if possible below 30 cm and within 2 m from the bank.
Na izbranih točkah za vzorčenje zberemo vodne vzorce, tako da napolnimo sterilne cevke ali stekleničke za enkratno uporabo, če je mogoče, na globini več kot 30 cm in v oddaljenosti največ 2 m od brega.
For processing and sewage effluents, collect samples from the point of effluent discharge.
Za iztoke predelave in odplak zberemo vzorce na mestu odtoka odpadne vode.
Sample sizes up to 500 ml per sampling point are recommended.
Priporočljiva je velikost vzorca do 500 ml na mesto vzorčenja.
If smaller samples are preferred, it is advisable to take samples on at least three occasions per sampling point, each sample consisting of two replicated sub-samples of at least 30 ml.
Če imamo rajši manjše vzorce, je priporočljivo, da vzamemo vzorce ob vsaj treh različnih časih na vsako mesto vzorčenja, pri čemer naj vsak vzorec vsebuje dva replicirana pod-vzorca z vsaj 30 ml.
For intensive survey work, select at least three sampling points per 3 km of watercourse and ensure that tributaries entering the watercourse are also sampled.
Za intenzivno pregledovanje izberemo vsaj 3 točke vzorčenja na 3 km vodotoka in obvezno vzamemo vzorce tudi iz pritokov tega vodotoka.
Transport samples in cool dark conditions (4 to 10 °C) and test within 24 hours.
Vzorce prevažamo v hladnem, temnem okolju (4-10 °C) in testiramo v roku 24 ur.
If required, the bacterial fraction may be concentrated using one of the following methods:
Po potrebi se bakterijska frakcija lahko koncentrira po eni od naslednjih metod:
Centrifuge 30 to 50 ml sub-samples at 10000 g for 10 minutes (or 7000 g for 15 minutes) preferably at 4 to 10 °C, discard the supernatant and resuspend the pellet in 1 ml pellet buffer (Appendix 4).
Centrifugiramo 30-50 ml podvzorcev pri 10000 g 10 minut (ali 7000 g 15 minut), najraje pri 4-10 °C, zavržemo supernatant in resuspendiramo peleto v 1 ml peletnega pufra (Dodatek 4).
Membrane filtration (minimum pore size 0,45 µm) followed by washing the filter in 5 to 10 ml pellet buffer and retention of the washings.
Filtracija membrane (najmanjša velikost por 0,45 µm), ki ji sledi pranje filtra v 5-10 ml peletnega pufra in ohranitev izpirka.
This method is suitable for larger volumes of water containing low numbers of saprophytes.
Ta metoda je primerna za večje količine vode z manjšim številom saprofitov.
Concentration is usually not advisable for samples of potato processing or sewage effluent since increased populations of competing saprophytic bacteria will inhibit detection of Ralstonia solanacearum.
Koncentriranje običajno ni priporočljivo za vzorce odpadnih voda od predelave krompirja ali kanalizacije, ker večje populacije konkurenčnih saprofitskih bakterij inhibirajo detekcijo bakterije R. solanacearum.
See flow chart and description of the tests in the relevant appendices.
Glej Diagram poteka in opis testov v ustreznih dodatkih.
Soil sample (1)
Vzorec zemlje (1)
Extraction of the pathogen
Ekstrakcija patogena
selective isolation (2)
Selektivna izolacija (2)
optional auxiliary test: enrichment PCR (3) / bioassay (4)
Dodatni pomožni test: obogatitveni PCR (3) / biološki test (4)
Colonies with typical morphology (5) after isolation
Kolonije z značilno morfologijo (5) po izolaciji
IDENTIFICATION TESTS (7)
IDENTIFIKACIJSKI TESTI (7)
PATHOGENICITY TEST (8)
TEST PATOGENOSTI (8)
Sample not contaminted by
Vzorec ni okužen z
See Section V.2.1. for recommended sampling procedures.
Glej oddelek V.2.1 za priporočene postopke vzorčenja.
If high saprophyte populations are suspected to affect the reliability of the isolation, then repeat the isolation tests after further dilution of the sample.
Če sumite, da velike populacije saprofitskih bakterij vplivajo na zanesljivost izolacije, ponovite izolacijske teste po nadaljnjem razredčenju vzorca.
The validated detection scheme, described in this section, is applicable for pathogen detection in soil samples but can also be used to test samples of solid potato processing waste or sewage sludge.
Potrjena shema detekcije, opisana v tem oddelku, velja za detekcijo patogenov v vzorcih zemlje, lahko pa se uporablja tudi za testiranje vzorcev trdnih odpadkov predelave krompirja oziroma komunalne gošče.
However, it should be noted that these methods are insufficiently sensitive to guarantee detection of low and/or irregularly dispersed populations of Ralstonia solanacearum that may occur in naturally infested samples of these substrates.
Zavedati pa se je treba, da te metode niso zadosti občutljive, da bi zagotovile detekcijo majhnih in/ali neenakomerno razpršenih populacij bakterije R. solanacearum, do katerih lahko pride v naravno okuženih vzorcih teh medijev.
The limitations in sensitivity of this test scheme should be considered when assessing the reliability of any negative results obtained and also when used in surveys to determine presence or absence of the pathogen in soils or sludges.
Omejitve občutljivosti te testne sheme je treba upoštevati, če ocenjujemo zanesljivost morebitnih dobljenih negativnih rezultatov, pa tudi ko jo uporabljamo pri pregledovanju za ugotavljanje prisotnosti ali odsotnosti patogena v zemlji in goščah.
The most reliable test for presence of the pathogen in a field soil is to plant a susceptible host and monitor it for infection, but even with this method low levels of contamination will escape detection.
Najzanesljivejši test za prisotnost patogena v poljskih tleh je, da posadimo dovzetno gostiteljico in spremljamo morebitno okužbo, toda celo s to metodo nizke ravni kontaminacije uidejo detekciji.
Sampling of field soil should follow standard principals used for nematode sampling.
Vzorčenje poljske zemlje mora slediti standardnim načelom za vzorčenje na ogorčice.
Collect 0,5 to 1 kg of soil per sample from 60 sites per 0,3 ha from a depth of 10 to 20 cm (or in a grid of 7 x 7 metres) If the pathogen is suspected to be present, increase the number of collection points to 120 per 0,3 ha.
Zberemo 0,5-1 kg zemlje na vzorec s 60 mest na 0,3 ha na globini 10-20 cm (ali na mreži 7 × 7 metrov). Če sumimo prisotnost patogena, povečamo število mest zbiranja na 120 na 0,3 ha.
Maintain samples at 12 to 15 °C prior to testing.
Pred testiranjem hranimo vzorce na 12-15 °C.
Sample potato processing and sewage sludges by collecting a total of 1 kg from sites representing the total volume of sludge to be tested.
Zberemo goščo od predelave krompirja in odplak, tako da zberemo skupno 1 kg z mest, ki predstavljajo skupni volumen gošče, ki jo bomo testirali.
Mix each sample well before testing.
Vsak vzorec pred testiranjem dobro premešamo.
Disperse sub-samples of 10 to 25 g of soil or sludge by rotary shaking (250 rpm) in 60 to 150 ml extraction buffer (Appendix 4) for up to two hours.
Dispergiramo podvzorce 10-25 g zemlje oziroma gošče z rotacijskim stresanjem (250 vrtlj./m) v 60-150 ml ekstrakcijskega pufra (Dodatek 4) do 2 uri.
If required, addition of 0,02 % sterile Tween-20 and 10 to 20 g sterile gravel may assist dispersion.
Po potrebi pri disperziji lahko pomaga, če dodamo 0,02 % sterilnega Tween-20 in 10-20 g sterilnega peska.
Maintain the suspension at 4 °C during testing.
Suspenzijo med testiranjem hranimo pri 4 °C.
OPTIMISED PROTOCOLS FOR DETECTION AND IDENTIFICATION OF R. SOLANACEARUM
OPTIMIZIRANI PROTOKOLI ZA DETEKCIJO IN IDENTIFIKACIJO BAKTERIJE R. SOLANACEARUM
DIAGNOSTIC AND DETECTION TESTS
DIAGNOSTIČNI IN DETEKCIJSKI TESTI
The presence of R. solanacearum in stems of wilting potato, tomato or other host plants can be indicated by the following simple presumptive test: Cut the stem just above the soil level.
Prisotnost bakterije R. solanacearum v uvelih steblih krompirja, paradižnika in drugih rastlin gostiteljic je mogoče oceniti na podlagi naslednjega preprostega testa domneve: steblo prerežemo tik nad površino tal.
Suspend the cut surface in a tube of clean water.
Prerezano površino postavimo v epruveto s čisto vodo.