natgillin/translations-raw huggingface dataset:
During the uptake phase, replicated groups of worms are exposed to soil, which has been spiked with the test chemical.
Počas fázy absorpcie sa paralelné skupiny červov vystavia pôsobeniu pôdy, ktorá bola obohatená testovanou chemikáliou.
In addition to the test animals, groups of control worms are held under identical conditions without the test chemical.
Okrem testovacích zvierat sa za tých istých podmienok bez testovanej chemikálie chovajú skupiny kontrolných červov.
The dry weight and lipid content of the test organisms are measured.
Odmeria sa suchá hmotnosť a obsah lipidov v testovacích organizmoch.
This can be done using worms of the control group.
Na toto meranie možno použiť červy z kontrolnej skupiny.
Analytical background values (blank) can be obtained by analysing samples of the control worms and soil.
Analytické hodnoty pozadia (slepý test) možno získať analýzou vzoriek kontrolných červov a pôdy.
For the elimination phase, the worms are transferred to a soil free of the test chemical.
Vo fáze eliminácie sa červy prenesú do pôdy, ktorá neobsahuje testovanú chemikáliu.
An elimination phase is always required unless uptake of the test chemical during the exposure phase has been insignificant.
Fáza eliminácie je nutná vždy okrem prípadu, keď je absorpcia testovanej chemikálie počas fázy expozície bezvýznamná.
During the uptake phase, measurements are made at sampling times up to 14 days (enchytraeids) or 21 days (earthworms) until the steady state is reached (11) (12) (67).
Počas fázy absorpcie sa vykonávajú merania v časoch odberov vzoriek počas až 14 dní (čeľaď Enchytraeidae) alebo 21 dní (dážďovky), až kým sa nedosiahne rovnovážny stav (11) (12) (67).
The steady state occurs when a plot of the concentration in worms against time is parallel to the time axis, and three successive concentration analyses made on samples taken at intervals of at least two days do not vary more than ± 20 % of each other based on statistical comparisons (e.g. analysis of variance, regression analysis).
Rovnovážny stav nastáva vtedy, keď je krivka závislosti koncentrácie pri červoch od času paralelná s časovou osou a ak sa tri po sebe nasledujúce analýzy vzoriek odobratých v intervaloch najmenej dvoch dní navzájom nelíšia o viac ako ± 20 % na základe štatistických porovnaní (napr. analýza rozptylu, regresná analýza).
The elimination phase consists of transferring the test organisms to vessels containing the same substrate without the test chemical.
Fáza eliminácie pozostáva z prenosu testovacích organizmov do nádob obsahujúcich rovnaký substrát bez testovanej chemikálie.
During the elimination phase, measurements are made at sampling times during 14 days (enchytraeids) or 21 days (earthworms) unless earlier analytical determination showed 90 % reduction of the test chemical residues in worms.
Počas fázy eliminácie sa merania vykonávajú v časoch odberov vzoriek počas 14 dní (čeľaď Enchytraeidae) alebo 21 dní (dážďovky), pokiaľ skoršie analytické skúmanie nepreukázalo 90-percentné zníženie rezíduí testovanej chemikálie pri červoch.
The concentration of the test chemical in the worms at the end of the elimination phase is reported as non-eliminated residues.
Koncentrácia testovanej chemikálie pri červoch na konci fázy eliminácie sa do správy uvedie ako neeliminované rezíduá.
The steady state bioaccumulation factor (BAFss) is calculated preferably both as the ratio of the concentration in worms (Ca) and in the soil (Cs) at apparent steady state, and as a kinetic bioaccumulation factor, BAFK, as the ratio of the rate constant of uptake from soil (ks) and the elimination rate constant (ke) (see Appendix 1 for definitions) assuming first-order kinetics (see Appendix 2 for calculations).
Rovnovážny bioakumulačný faktor (BAFss) sa podľa možnosti vypočíta ako pomer koncentrácie pri červoch (Ca) a v pôde (Cs) pri zrejmom rovnovážnom stave, a ako kinetický bioakumulačný faktor, BAFK, ako pomer konštanty rýchlosti absorpcie z pôdy (ks) a konštanty rýchlosti eliminácie (ke) (pre vymedzenie pojmov pozri dodatok 1) pri predpoklade kinetiky prvého rádu (pre výpočty pozri dodatok 2).
If first-order kinetics is obviously not applicable, other models should be employed.
Ak je zrejmé, že nie je možné použiť kinetiku prvého rádu, mali by sa použiť iné modely.
The uptake rate constant, the elimination rate constant (or constants, where other models are involved), the kinetic bioaccumulation factor (BAFK), and where possible, the confidence limits of each of these parameters are calculated from computerised model equations (see Appendix 2 for guidance).
Konštanta rýchlosti absorpcie, konštanta rýchlosti eliminácie (alebo konštanty, ak boli použité ďalšie modely), kinetický bioakumulačný faktor (BAFK) a podľa možnosti limity spoľahlivosti každého z týchto parametrov sa vypočítajú pomocou počítačových modelových rovníc (pre ďalšie usmernenia pozri dodatok 2).
The goodness of fit of any model can be determined from e.g. the correlation coefficient or the coefficient of determination (coefficients close to one indicate a good fit) or chi-squared.
Správnosť odhadu každého modelu možno stanoviť napr. na základe korelačného koeficientu alebo koeficientu určenia (koeficienty blízke hodnote jeden indikujú vysokú mieru zhody) alebo na základe chí-kvadrátu.
Also the size of the standard error or confidence limit around the estimated parameters may be indicative of the goodness of fit of the model.
Takisto veľkosť štandardnej chyby alebo limit spoľahlivosti blízko odhadovaných parametrov môžu indikovať správnosť odhadu modelu.
To reduce variability in test results for test chemicals with high lipophilicity, bioaccumulation factors should be expressed in relation to lipid content and organic carbon content (kg soil organic carbon (OC) kg-1 worm lipid content).
Na zníženie variability výsledkov testu v prípade testovaných chemikálií s vysokou lipofilitou by bioakumulačné faktory mali byť vyjadrené vo vzťahu k obsahu lipidov a k obsahu organického uhlíka (kg organického uhlíka (OC) kg–1 obsahu lipidov pri červoch).
This approach is based on the fact that for some chemical classes, there is a clear relationship between the potential for bioaccumulation and lipophilicity; this has been well established for fish (47).
Tento prístup je založený na skutočnosti, že v prípade iektorých chemických tried existuje zrejmá závislosť medzi potenciálom bioakumulácie a lipofilitou, ktorá bola zistená pri rybách (47).
There is a relationship between the lipid content of fish and the bioaccumulation of such chemicals.
Medzi obsahom lipidov pri rybách a bioakumuláciou takýchto chemikálií existuje vzťah.
For benthic organisms, similar correlations have been found e.g. (30) (44).
V prípade bentických organizmov boli zistené podobné korelácie, napr. (30) (44).
Likewise for terrestrial oligochaetes this correlation has been demonstrated e.g. (5) (6) (7) (14).
Podobne sa táto korelácia preukázala v prípade suchozemských máloštetinavcov, napr. (5) (6) (7) (14).
If sufficient worm tissue is available, the lipid content of the test animals can be determined on the same biological material as the one used to determine the concentration of the test chemical.
Ak je k dispozícii dostatok ntkaniva z červov, obsah lipidov v testovacích zvieratách možno určiť na rovnakom biologickom materiáli, aký bol použitý na určenie koncentrácie testovanej chemikálie.
Alternatively, control animals can be used to measure the lipid content.
Na meranie obsahu lipidov možno prípadne použiť kontrolné zvieratá.
For a test to be valid the following criteria should be fulfilled for both controls and treatments:
Ak má byť test platný, musia byť splnené tieto kritériá v prípade kontrolných zvierat, ako aj v prípade ošetrených zvierat:
At the end of the test, the overall mortality during uptake and elimination phase should not exceed 10 % (earthworms) or 20 % (enchytraeids) of the total number of the introduced worms.
na konci testu by celková mortalita počas fázy absorpcie a eliminácie nemala presahovať 10 % (dážďovky) alebo 20 % (červy čeľade Enchytraeidae) celkového počtu zavedených červov,
For Eisenia fetida and Eisenia andrei, the mean mass loss as measured at the end of the uptake and at the end of the elimination phase should not exceed 20 % compared to the initial fresh weight (f.w.) at start of each phase.
pri druhoch Eisenia fetida a Eisenia andrei by strata strednej hmotnosti nameraná na konci fázy absorpcie a na konci fázy eliminácie nemala presahovať 20 % v porovnaní s počiatočnou čerstvou hmotnosťou (f.w.) na začiatku jednotlivých fáz.
Test species
Testovacie druhy
Several species of terrestrial oligochaetes are recommended for bioaccumulation testing.
Na testovanie bioakumulácie sa odporúča niekoľko druhov suchozemských máloštetinavcov.
The most commonly used species Eisenia fetida or Eisenia andrei (Lumbricidae), or Enchytraeus albidus, Enchytraeus crypticus, or Enchytraeus luxuriosus (Enchytraeidae)) are described in Appendix 5.
Najbežnejšie používané druhy Eisenia fetida alebo Eisenia andrei (čeľaď Lumbricidae), alebo Enchytraeus albidus, Enchytraeus crypticus alebo Enchytraeus luxuriosus (čeľaď Enchytraeidae) sú opísané v dodatku 5.
Care should be taken to avoid the use of materials, for all parts of the equipment, which can dissolve, adsorb the test chemical or leach other chemicals, and have an adverse effect on the test animals.
V prípade všetkých častí zariadenia treba dbať na to, aby sa predišlo používaniu materiálov, ktoré môžu rozpustiť, adsorbovať testovanú chemikáliu alebo vylúhovať iné chemikálie a mať škodlivé účinky na testovacie zvieratá.
Standard rectangular or cylindrical vessels, made of chemically inert material and of suitable capacity can be used in compliance with the loading rate, i.e. the number of test worms.
Možno použiť štandardné nádoby pravouhlého alebo valcovitého tvaru vyrobené z chemicky inertného materiálu a s primeranou kapacitou, ktorá zodpovedá veľkosti násady, t. j. počtu testovacích červov.
Stainless steel, plastic or glass may be used for any equipment having contact with the test media.
Na každé zariadenie, ktoré prichádza do kontaktu s testovacími médiami, možno použiť nerezovú oceľ, umelú hmotu alebo sklo.
The test vessels should be appropriately covered to prevent escaping of the worms, while allowing sufficient air supply.
Testovacie nádoby by mali byť vhodne prikryté, aby sa zabránilo úniku červov, ale zároveň bol zabezpečený dostatočný prívod vzduchu.
For chemicals with high adsorption coefficients, such as synthetic pyrethroids, silanised glass may be required.
V prípade chemikálií s vysokým adsorpčným koeficientom, ako sú syntetické pyretroidy, môže byť potrebné posilanizované sklo.
In these situations the equipment will have to be discarded after use (49).
V takýchto prípadoch je potrebné zariadenia po skončení pokusu zlikvidovať (49).
Radiolabelled test items and volatile chemicals should be prevented from escaping.
Je nutné zabrániť úniku rádiooznačených testovaných látok a prchavých chemikálií.
Traps (e.g. glass gas washing bottles) should be employed containing suitable absorbents to retain any residues evaporating from the test vessels.
Na zachytenie všetkých rezíduí odparených z testovacích nádob by sa mali použiť zachytávače (napr. sklenené fľaše na premývanie plynu) obsahujúce vhodné absorbenty.
The test soil should be of a quality that will allow the survival and preferably the reproduction of the test organisms for the duration of the acclimation and test periods without them showing any abnormal appearance or behaviour.
Testovacia pôda by mala mať takú kvalitu, aby umožnila prežívanie a podľa možnosti reprodukciu testovacích organizmov počas celého obdobia aklimatizácie a testovania bez toho, aby sa pri týchto organizmoch prejavil nezvyčajný vzhľad alebo správanie.
The worms should burrow in the soil.
Červy by sa mali zahrabať do pôdy.
The artificial soil described in the chapter C.8 of this Annex (48) is recommended for use as the substrate in the tests.
Ako substrát v týchto testoch sa odporúča použiť umelú pôdu opísanú v kapitole C.8 tejto prílohy (48).
Preparation of the artificial soil for use in the bioaccumulation tests and recommendations for the storage of artificial soil are given in Appendix 4.
Príprava umelej pôdy pre testy bioakumulácie a odporúčania týkajúce sa skladovania umelej pôdy sú uvedené v dodatku 4.
Air-dried artificial soil may be stored at room temperature until use.
Umelú pôdu vysušenú vzduchom možno až do použitia skladovať pri izbovej teplote.
However, natural soils from unpolluted sites may serve as test and/or culture soil.
Ako testovacia a/alebo kultivačná pôda však môže slúžiť prírodná pôda z neznečistených miest.
Natural soils should be characterised at least by origin (collection site), pH, organic carbon content, particle size distribution (percent sand, silt, and clay), maximum water holding capacity (WHCmax), and percent water content (3).
V prípade prírodnej pôdy je nutné uviesť aspoň pôvod (miesto odberu), pH, obsah organického uhlíka, rozdelenie veľkosti častíc (percento piesku, siltu a hliny), maximálnu retenčnú kapacitu vody (WHCmax) a percentuálny obsah vody (3).
Analysis of the soil or its constituents for micro-pollutants prior to use should provide useful information.
Analýzou pôdy alebo jej zložiek pred použitím možno získať užitočné informácie o znečisťujúcich mikrolátkach.
If field soil from agricultural land is used, it should not have been treated with crop protection products or with manure from treated animals as fertilizers for at least one year and with organic fertilizers for at least six months prior to sampling (50).
Ak sa použije pôda z poľnohospodárskeho poľa, nemala by byť ošetrovaná výrobkami na ochranu plodín ani hnojivom z ošetrovaných zvierat, ako sú umelé hnojivá, najmenej jeden rok a v prípade organických hnojív najmenej šesť mesiacov pred odberom vzoriek (50).
Manipulation procedures for natural soils prior to use in ecotoxicological tests with oligochaetes in the laboratory are described in (3).
Postupy manipulácie s prírodnou pôdou pred jej použitím v ekotoxikologických testoch s máloštetinavcami v laboratóriu sú opísané v odseku (3).
For natural soils the storage time in the laboratory should be kept as short as possible.
Čas skladovania prírodnej pôdy v laboratóriu by mal byť čo najkratší.
Application of the test chemical
Aplikácia testovanej chemikálie
The test chemical is incorporated into the soil.
Testovaná chemikália sa pridá do pôdy.
The physicochemical properties of the test chemical should be taken into consideration.
Je potrebné zohľadniť fyzikálno-chemické vlastnosti testovanej chemikálie.
A water-soluble test chemical should be completely dissolved in water before it be mixed with the soil.
Testovaná chemikália rozpustná vo vode by sa mala pred tým, ako sa zmieša s pôdou, vo vode úplne rozpustiť.
The recommended spiking procedure for poorly water-soluble test chemical involves coating of one or more of the (artificial) soil constituents with the test chemical.
Odporúčaný postup obohacovania v prípade testovanej chemikálie, ktorá je slabo rozpustná vo vode, zahŕňa nanesenie testovanej chemikálie na jednu alebo viacero (umelých zložiek) pôdy.
The major advantage of this procedure is that no solvent is introduced into the soil.
Hlavnou výhodou tohto postupu je fakt, že do pôdy sa nedostane žiadne rozpúšťadlo.
When a natural soil is used, the test chemical may be added by spiking an air-dried portion of the soil as described above for the artificial soil, or by stirring the test chemical into the wet soil, with subsequent evaporating step if a solubilising agent is used.
Ak sa použije prírodná pôda, testovanú chemikáliu možno pridať obohatením časti pôdy vysušenej vzduchom, ako je opísané v prípade umelej pôdy, alebo zamiešaním testovanej chemikálie do mokrej pôdy, pričom ďalším krokom bude odparenie v prípade, že sa použilo činidlo zvyšujúce rozpustnosť.
In general, the contact of wet soil with solvents should be avoided as far as possible.
Vo všeobecnosti treba v čo najväčšej možnej miere zabrániť kontaktu mokrej pôdy s rozpúšťadlami.
The following should be considered (3):
Je možné uvažovať o nasledujúcich možnostiach (3):
If a solvent other than water is used, it should be one that is water-miscible and/or can be driven off (for example, evaporated), leaving only the test chemical on the soil.
ak sa použije iné rozpúšťadlo ako voda, malo by byť miešateľné s vodou a/alebo by malo byť možné ho odstrániť (napríklad odparením), v dôsledku čoho by v pôde zostala iba testovaná chemikália,
If a solvent control is used, there is no need for negative control.
ak sa použije kontrola rozpúšťadla, negatívna kontrola nie je nutná.
The solvent control should contain the highest concentration of solvent added to the soil and should use solvent from the same batch used to make the stock solution.
Kontrola rozpúšťadla by mala obsahovať najvyššiu koncentráciu rozpúšťadla pridaného do pôdy a malo by sa pri nej použiť rozpúšťadlo z tej istej dávky, aká bola použitá na prípravu zásobného roztoku.
Toxicity and volatility of the solvent, and solubility of the test chemical in the chosen solvent should be the main criteria used for the selection of a suitable solubilising agent.
Toxicita a prchavosť rozpúšťadla a rozpustnosť testovanej chemikálie vo vybratom rozpúšťadle by mali byť hlavnými kritériami pri výbere vhodného činidla zvyšujúceho rozpustnosť.
For chemicals that are poorly soluble in water and in organic solvents, 2,0-2,5 g of finely ground quartz sand per test vessel can be mixed with the quantity of test chemical, e.g. using mortar and pestle, to obtain the desired test concentration.
V prípade chemikálií, ktoré sú slabo rozpustné vo vode a v organických rozpúšťadlách, možno na dosiahnutie želanej testovacej koncentrácie zmiešať 2,0 – 2,5 g jemného kremenného piesku na testovaciu nádobu s určitým množstvom testovanej chemikálie, napr. pomocou trecej misky a paličky.
This mixture of quartz sand and test chemical is added to the pre-moistened soil and thoroughly mixed with an appropriate amount of de-ionised water to obtain the required moisture content.
Táto zmes kremenného piesku a testovanej chemikálie sa pridá do predvlhčenej pôdy a dôkladne sa zmieša s primeraným množstvom deionizovanej vody, aby sa získal požadovaný obsah vlhkosti.
The final mixture is distributed to the test vessels.
Konečná zmes sa rozdelí do testovacích nádob.
The procedure is repeated for each test concentration, and an appropriate control with 2,0-2,5 g of finely ground quartz sand per test vessel is also prepared.
Postup sa opakuje pri každej testovacej koncentrácii a pripraví sa aj vhodná kontrola s 2,0 – 2,5 g jemne zomletého kremenného piesku na testovaciu nádobu.
The concentration of the test chemical in the soil should be determined after spiking.
Koncentrácia testovanej chemikálie v pôde sa stanoví po obohatení.
The homogenous distribution of the test chemical into the soil should be verified before introducing the test organisms.
Pred zavedením testovacích organizmov je potrebné overiť homogénnu distribúciu testovanej chemikálie do pôdy.
The method used for spiking, and the reasons for choosing a specific spiking procedure should be reported (24).
Metóda použitá na obohatenie a dôvody pre výber konkrétneho postupu obohacovania sa uvedú do správy (24).
Equilibrium between the soil and the pore-water phase should ideally be established before adding the organisms; a time period of four days at 20 °C is recommended.
Rovnováha medzi pôdnou fázou a fázou pórovej vody by sa podľa možnosti mala stanoviť ešte pred pridaním organizmov. Odporúča sa použiť obdobie štyroch dní pri teplote 20 °C.
For many poorly water-soluble organic chemicals the time required to reach a true equilibrium between adsorbed and dissolved fractions can be counted in days or months.
V prípade mnohých organických chemikálií slabo rozpustných vo vode sa čas potrebný na dosiahnutie skutočnej rovnováhy medzi adsorbovanými a rozpustenými časťami môže počítať na dni alebo mesiace.
Depending on the purpose of the study, for example when the environmental conditions are to be mimicked, the spiked soil may be “aged” for a longer period, e.g. for metals three weeks at 20 °C (22).
V závislosti od účelu štúdie, napríklad ak sa napodobňujú podmienky životného prostredia, sa obohatená pôda môže nechať ‚zrieť‘ dlhšie, napr. v prípade kovov počas troch týždňov pri teplote 20 °C (22).
Culturing of the test organisms
Kultivácia testovacích organizmov
Worms should be preferably kept in permanent laboratory culture.
Červy sa podľa možnosti chovajú v stálej laboratórnej kultúre.
Guidance on laboratory culture methods for Eisenia fetida and Eisenia andrei, and Enchytraeid species, is provided in Appendix 5 (see also (48) (51) (52)).
Usmernenia o metódach laboratórnej kultivácie v prípade druhov Eisenia fetida a Eisenia andrei a druhov čeľade Enchytraeidae sú uvedené v dodatku 5 [pozri aj (48) (51) (52)].
The worms used in the tests should be free from observable diseases, abnormalities and parasites.
Červy použité v testoch by nemali mať žiadne badateľné choroby, abnormality a parazity.
The test organisms are exposed to the test chemical during the uptake phase.
Testovacie organizmy sú počas fázy absorpcie vystavené pôsobeniu testovanej chemikálie.
The uptake phase should be of 14 days (enchytraeids) or 21 days (earthworms) unless it is demonstrated that steady state has been reached.
Fáza absorpcie by mala trvať 14 dní (Enchytraeidae) alebo 21 dní (dážďovky), pokiaľ sa nepreukáže, že bol dosiahnutý rovnovážny stav.
For the elimination phase, the worms are transferred to a soil free of test chemical.
Vo fáze eliminácie sa červy prenesú do pôdy, ktorá neobsahuje testovanú chemikáliu.
The first sample should be taken at 4-24 h after the start of elimination phase.
Prvá vzorka sa odoberie po 4 – 24 hodinách od začiatku fázy eliminácie.
Examples of sampling schedules for a 21-day uptake phase and a 21-day elimination phase are given in Appendix 3.
Príklady harmonogramu odberov vzoriek v prípade 21-dňovej fázy absorpcie a 21-dňovej fázy eliminácie sú uvedené v dodatku 3.
For many species of terrestrial enchytraeids the individual weight is very low (e.g. 5-10 mg wet weight per individual for Enchytraeus albidus and less for Enchytraeus crypticus or Enchytraeus luxuriosus); in order to perform the weight measurements and chemical analysis, it may be necessary to pool the worms of the replicate test vessels (i.e. all the worms of a replicate vessel will be used for obtaining one analytical tissue result).
V prípade mnohých druhov suchozemských červov čeľade Enchytraeidae je individuálna hmotnosť veľmi nízka (napr. 5 – 10 mg čerstvej hmotnosti na jedinca v prípade druhu Enchytraeus albidus a ešte menej v prípade druhu Enchytraeus crypticus alebo Enchytraeus luxuriosus). Na vykonanie meraní hmotnosti a chemickú analýzu môže byť potrebné zozbierať červy z paralelných testovacích nádob (t. j. na získanie jedného analytického výsledku z tkaniva sa použijú všetky červy z paralelnej nádoby).
20 individual enchytraeids are added to each replicate, and at least three replicates should be used.
Do každého replikátu sa pridá 20 jedincov Enchytraeidae, pričom sa použijú najmenej tri replikáty.
If the analytical detection limit of the test chemical is high, more worms may be necessary.
Ak je analytický detekčný limit testovanej chemikálie vysoký, môže byť potrebných viac červov.
For test species with higher individual weight (Eisenia fetida and Eisenia andrei), replicate vessels containing one individual can be used.
V prípade testovacích druhov s vyššou individuálnou hmotnosťou (Eisenia fetida a Eisenia andrei) možno použiť paralelné nádoby obsahujúce jedného jedinca.
The earthworms used in a test should be of similar weight (e.g. Eisenia fetida and Eisenia andrei should have an individual weight of 250-600 mg).
Dážďovky použité v teste by mali mať podobnú hmotnosť (napr. individuálna hmotnosť Eisenia fetida a Eisenia andrei by mala byť v rozmedzí 250 – 600 mg).
Enchytraeids (e.g. Enchytraeus albidus) should have a length of approximately 1 cm.
Červy čeľade Enchytraeidae (napr. Enchytraeus albidus) by mali mať dĺžku približne 1 cm.