natgillin/translations-raw huggingface dataset:
All worms used in a particular test should come from the same source, and should be adult animals with clitellum (see Appendix 5).
Všetky červy použité v konkrétnom teste by mali pochádzať z rovnakého zdroja a malo by ísť o dospelé zvieratá s klitelom (pozri dodatok 5).
Since the weight and age of an animal might have an effect on the BAF-values (e.g. due to varying lipid content and/or presence of eggs), these parameters should be recorded accurately and taken into account in the interpretation of results.
Keďže hmotnosť a vek zvieraťa môže mať vplyv na hodnoty BAF (napr. v dôsledku meniaceho sa obsahu lipidov a/alebo prítomnosti vajíčok), tieto parametre je nutné presne zaznamenať a zohľadniť pri interpretácii výsledkov.
In addition, cocoons can be deposited during the exposure period, which will also have an impact on the BAF values.
Okrem toho počas obdobia expozície môže dôjsť k nakladeniu kokónov, čo bude mať takisto vplyv na hodnoty BAF.
It is recommended that a sub-sample of the test worms be weighed before the test in order to estimate the mean wet and dry weights.
Pred testom sa odporúča odvážiť podvzorku testovacích červov na odhadnutie strednej čerstvej a suchej hmotnosti.
A high soil-to-worm ratio should be used in order to minimise the decrease of the test chemical concentration in the soil during the uptake phase.
Používa sa vysoký pomer pôdy k červom, aby sa minimalizovalo znižovanie koncentrácie testovanej chemikálie v pôde počas fázy absorpcie.
For Eisenia fetida and Eisenia andrei a minimum amount of 50 g dry weight (d.w.) of soil per worm, and for enchytraeids, a minimum of 10-20 g d.w. of soil per test vessel are recommended.
V prípade druhov Eisenia fetida a Eisenia andrei je minimálne odporúčané množstvo 50 g suchej hmotnosti (d.w.) pôdy na červa a v prípade červov čeľade Enchytraeidae minimálne 10 – 20 g d.w. pôdy na testovaciu nádobu.
The vessels should contain a soil layer of 2-3 cm (enchytraeids) or 4-5 cm (earthworms).
Nádoby by mali obsahovať vrstvu pôdy hrubú 2 – 3 cm (Enchytraeidae) alebo 4 – 5 cm (dážďovky).
The worms used in a test are removed from the culture (e.g. enchytraeids by using jeweller’s tweezers).
Červy použité v teste sa odoberú z kultúry (napr. červy Enchytraeidae pomocou pinzety).
Adult animals are transferred to non-treated test soil for acclimation, and fed (see paragraph 36).
Dospelé zvieratá sa prenesú do neošetrenej testovacej pôdy, aby sa aklimatizovali, a kŕmia sa (pozri odsek 36).
If the test conditions differ from the culture conditions, an acclimation phase of 24-72 h should be sufficient to adapt the worms to the test conditions.
Ak sa podmienky testovania líšia od podmienok kultivácie, fáza aklimatizácie v trvaní 24 – 72 hodín by mala postačovať, aby sa červy adaptovali na podmienky testovania.
After acclimation, earthworms are rinsed by transfer to glass dishes (e.g. petri dishes) containing clean water, and subsequently weighed before they are added to the test soil.
Po aklimatizácii sa dážďovky prepláchnu tak, že sa prenesú do sklenených misiek (napr. Petriho misiek) obsahujúcich čistú vodu a následne sa odvážia pred tým, ako sa vložia do testovacej pôdy.
Prior to weighing, excess water should be removed from the worms by gently touching them against the edge of the dish or by blotting them cautiously dry by using a slightly moistened paper towel.
Pred vážením treba z červov odstrániť nadbytočnú vodu jemným dotykom o hranu misky alebo opatrným osušením mierne navlhčenou papierovou vreckovkou.
Burrowing behaviour of the test organisms should be observed and recorded.
Zahrabávanie testovacích organizmov sa pozoruje a zaznamená.
In tests with earthworms, the animals (control and treatments) normally burrow in the soil within a period of a few hours; this should be checked no later than 24 h after addition of the worms to the test vessels.
V testoch s dážďovkami sa zvieratá (kontrolné a ošetrené) zvyčajne zahrabú do pôdy za niekoľko hodín, čo treba najneskôr do 24 hodín po pridaní červov do testovacích nádob skontrolovať.
If the earthworms fail to burrow in the soil (e.g. more than 10 % over more than half of the uptake phase), this indicates that either the test conditions are not appropriate or the test organisms are not healthy.
Ak sa dážďovky nezahrabú do pôdy (napr. viac ako 10 % v priebehu vyše polovice fázy absorpcie), znamená to buď, že podmienky testovania nie sú vhodné, alebo že testovacie organizmy nie sú zdravé.
In such a case the test should be stopped and repeated.
V takom prípade je potrebné test pozastaviť a zopakovať.
Enchytraeids mainly live in the interstitial pores of the soil, and frequently their integument may be only partly in contact with the surrounding substrate; exposure of burrowing and non-burrowing enchytraeids is assumed to be equivalent and non-burrowing of the enchytraeids does not necessarily require the repetition of the test.
Červy Enchytraeidae žijú najmä v intersticiálnych póroch pôdy a ich integument môže byť často v kontakte s okolitým substrátom iba čiastočne. Predpokladá sa, že expozícia zahrabávajúcich sa a nezahrabávajúcich sa červov Enchytraeidae je rovnaká a v prípade, že sa červy nezahrabú, nie je nevyhnutne potrebné test opakovať.
Feeding should be envisaged when a soil with low total organic carbon content is used.
Ak sa použije pôda s nízkym celkovým obsahom organického uhlíka, je potrebné naplánovať kŕmenie.
When an artificial soil is used, a weekly feeding rate (i.e. the worms should be fed once a week) of 7 mg of dried dung per g soil dry weight is recommended for earthworms, and a weekly rate of 2-2,5 mg of ground oat flakes per g soil dry weight is recommended for enchytraeids (11).
Ak sa použije umelá pôda, odporúčaná týždenná dávka krmiva (t. j. červy sa kŕmia raz týždenne) je 7 mg sušeného hnoja na g suchej hmotnosti pôdy v prípade dážďoviek a 2 – 2,5 mg zomletých ovsených vločiek na g suchej hmotnosti pôdy v prípade červov Enchytraeidae (11).
The first food ration should be mixed with the soil immediately before the test organisms are added.
Prvá dávka potravy sa zmieša s pôdou tesne pred pridaním testovacích organizmov.
Preferably the same type of food like in the cultures should be used (see Appendix 5).
Podľa možnosti sa použije rovnaký druh potravy, aký sa použil v kultúrach (pozri dodatok 5).
The tests should be carried out under a controlled 16/8 hours light/dark cycle, preferably 400 to 800 lx in the area of the test vessels (3).
Testy sa vykonávajú v kontrolovaných 16/8-hodinových cykloch svetla/tmy, podľa možnosti s intenzitou 400 – 800 lx v priestore testovacích nádob (3).
The test temperature should be 20 ± 2 °C throughout the test.
Testovacia teplota by počas celého testu mala byť 20 ± 2 °C.
A single concentration is used.
Použije sa jedna koncentrácia.
Situations where additional concentration(s) is(are) required should be justified.
Prípady, keď je potrebná ďalšia koncentrácia (koncentrácie), treba odôvodniť.
If toxicity (ECx) of the test chemical is close to the analytical detection limit, the use of radiolabelled test chemical with high specific radioactivity is recommended.
Ak sa toxicita (ECx) testovanej chemikálie blíži k analytickému detekčnému limitu, na testovanie sa odporúča sa použiť rádiooznačenú chemikáliu s vysokou špecifickou rádioaktivitou.
For metals, the concentration should be above the background level in tissue and soil.
V prípade kovov by koncentrácia mala byť vyššia ako úroveň pozadia v tkanive a pôde.
Replicates
Replikáty
For the kinetic measurements (uptake and elimination phase), the minimum number of treated replicate vessels should be three per sampling point.
Na kinetické merania (fáza absorpcie a eliminácie) sa pri každom odbere vzorky použijú minimálne tri ošetrené paralelné nádoby.
The total number of replicates prepared should be sufficient to cover all sampling times during the uptake and the elimination phase.
Celkový počet pripravených replikátov by mal byť dostatočný na pokrytie všetkých časov odberu vzoriek vo fáze absorpcie a eliminácie.
For the biological observations and measurements (e.g. dry-to-wet weight ratio, lipid content) and for the analysis of background concentrations in worms and soil, at least 12 replicate vessels of a negative control (four sampled at start, four at end of uptake, and four at end of elimination) should be provided if no solvent other than water is used.
Na účely biologických pozorovaní a meraní (napr. pomer suchej a čerstvej hmotnosti, obsahu lipidov) a na analýzu koncentrácií v pozadí pri červoch a v pôde musí byť v prípade, že sa nepoužilo iné rozpúšťadlo ako voda, k dispozícii najmenej 12 paralelných nádob negatívnej kontroly (zo štyroch sa vzorka odoberie na začiatku, zo štyroch na konci fázy absorpcie a zo štyroch na konci fázy eliminácie).
If any solubilising agent is used for application of the test chemical, a solvent control (four replicate vessels should be sampled at start, four at the end of the uptake phase, and four at the end of the elimination phase) containing all constituents except for test item should be run in addition to the treated replicates.
Ak sa pri aplikácii testovanej chemikálie použije činidlo zvyšujúce rozpustnosť, okrem ošetrených replikátov treba vykonať kontrolu rozpúšťadla (zo štyroch paralelných nádob sa vzorka odoberie na začiatku, zo štyroch na konci fázy absorpcie a zo štyroch na konci fázy eliminácie) obsahujúcu všetky zložky okrem testovanej látky.
In this case, four additional replicate vessels of a negative control (no solvent) may also be provided for optional sampling at the end of the uptake phase.
V tomto prípade možno na nepovinný odber vzorky na konci fázy absorpcie použiť ďalšie štyri paralelné nádoby na negatívnu kontrolu (bez rozpúšťadla).
These replicates can be compared biologically with the solvent control in order to gain information on a possible influence of the solvent on the test organisms.
Tieto replikáty možno biologicky porovnať s kontrolou rozpúšťadla s cieľom získať informácie o možnom vplyve rozpúšťadla na testovacie organizmy.
It is recommended establishing a sufficient number of additional reserve replicate vessels (e.g. eight) for treatment and control(s).
Odporúča sa založenie dostatočného počtu ďalších rezervných paralelných nádob (napr. osem) na aplikáciu látky a kontrolu.
Frequency of soil quality measurements
Frekvencia merania kvality pôdy
Soil pH, soil moisture content and the temperature (continuously) in the test room should be measured at the start and end of the uptake and elimination phases.
Hodnota pH pôdy, obsah vlhkosti pôdy a teplota (nepretržitá) v testovacej miestnosti sa odmerajú na začiatku a na konci fázy absorpcie a eliminácie.
Once per week the soil moisture content should be controlled by weighing the test vessels and comparing actual weights with initial weights at test start.
Raz týždenne sa obsah vlhkosti pôdy skontroluje odvážením testovacích nádob a porovnaním skutočných hmotností s počiatočnými hmotnosťami na začiatku testu.
Water losses should be compensated by adding deionised water.
Straty vody treba kompenzovať pridávaním deionizovanej vody.
Sampling and analysis of worms and soil
Odber vzoriek a analýza červov a pôdy
An example of schedule for the uptake and elimination phases in earthworm and enchytraeid bioaccumulation tests is given in Appendix 3.
Príklad harmonogramu fázy absorpcie a fázy eliminácie v testoch bioakumulácie pri dážďovkách a Enchytraeidae je uvedený v dodatku 3.
The soil is sampled from the test vessels for the determination of test chemical concentration before inserting the worms, and during the uptake and elimination phases.
Vzorky pôdy sa z testovacích nádob na účely stanovenia koncentrácie testovanej chemikálie odoberú pred pridaním červov a počas fázy absorpcie a fázy eliminácie.
During the test the concentrations of test chemical are determined in the worms and the soil.
V priebehu testu sa stanovia koncentrácie testovanej chemikálie v červoch a v pôde.
In general, total soil concentrations are measured.
Vo všeobecnosti sa merajú celkové koncentrácie pôdy.
As an option, concentrations in pore water may be measured; in such case, rationale and appropriate methods should be provided prior to initiation of a study, and included in the report.
Nepovinne možno odmerať koncentrácie v pórovej vode. V takom prípade je nutné pred začiatkom štúdie uviesť odôvodnenie a príslušné metódy a zahrnúť ich do správy.
The worms and soil are sampled at least at six occasions during the uptake and the elimination phases.
Vzorky červov a pôdy sa počas fázy absorpcie a fázy eliminácie odoberú najmenej šesťkrát.
If the stability of a test chemical is demonstrated, the number of soil analyses can be reduced.
Ak sa preukáže stabilita testovanej chemikálie, počet analýz pôdy možno znížiť.
It is recommended analysing at least three replicates at the beginning and at the end of the uptake phase.
Odporúča sa analyzovať najmenej tri replikáty na začiatku a na konci fázy absorpcie.
If the concentration in soil measured at the end of the uptake phase deviates from the initial concentration by more than 30 %, the soil samples taken at other dates should also be analysed.
Ak sa koncentrácia v pôde nameraná na konci fázy absorpcie líši od počiatočnej koncentrácie o viac ako 30 %, treba analyzovať aj vzorky pôdy odobraté v iné dni.
Remove the worms of a given replicate from the soil at each sampling time (e.g. after spreading the soil of the replicate on a shallow tray and picking the worms using soft jewellers’ tweezers), rinse them quickly with water in a shallow glass or steel tray.
Červy z daného replikátu sa z pôdy pri každom čase odberu vzorky vyberú (napr. sa na plytkú misku rozotrie pôda z replikátu a červy sa povyberajú pomocou jemnej pinzety) a rýchlo sa prepláchnu vodou v plytkom pohári alebo oceľovej miske.
Remove excess water (see paragraph 34).
Nadbytočná voda sa odstráni (pozri odsek 34).
Transfer the worms carefully to a pre-weighed vessel, weigh them instantly, including gut content.
Červy sa opatrne prenesú do predváženej nádoby a okamžite sa odvážia vrátane obsahu tráviaceho traktu.
The earthworms (Eisenia sp.) should then be allowed to purge their gut overnight e.g. on a moist filter paper in a covered petri dish (see paragraph 34).
V prípade dážďoviek (druh Eisenia) sa počká jednu noc na vyprázdnenie tráviaceho traktu červov, napr. sa umiestnia na vlhký filtračný papier do prikrytej Petriho misky (pozri odsek 34).
After purging, the weight of the worms should be determined in order to assess a possible decrease in biomass during the test (see validity criteria in paragraph 17).
Po vyprázdnení sa stanoví hmotnosť červov, aby sa posúdilo možné zníženie biomasy počas testu (pozri kritériá platnosti v odseku 17).
Weighing and tissue analysis of Enchytraeids is carried out without purging, as this is technically difficult due to the small size of these worms.
Váženie a analýza tkaniva sa v prípade Enchytraeidae vykonáva bez vyprázdňovania, lebo je to vzhľadom na malú veľkosť týchto červov technicky náročné.
After final weight determination, the worms should be killed immediately, using the most appropriate method (e.g. using liquid nitrogen, or freezing at temperatures below – 18 °C).
Po stanovení konečnej hmotnosti sa červy okamžite najvhodnejšou metódou usmrtia (napr. pomocou tekutého dusíka alebo zmrazením pri teplotách pod – 18 °C).
During the elimination phase, the worms replace contaminated gut contents with clean soil.
Vo fáze eliminácie červy nahradia kontaminovaný obsah tráviaceho traktu čistou pôdou.
This means, measurements in un-purged worms (enchytraeids in this context) sampled immediately before the elimination phase include contaminated gut soil.
To znamená, že merania pri nevyprázdnených červoch (v tomto kontexte Enchytraeidae), z ktorých sa vzorky odoberali tesne pred fázou eliminácie, obsahujú kontaminovanú pôdu v tráviacom trakte.
The soil and worm samples should be preferably analysed immediately after removal (i.e. within 1-2 days) in order to prevent degradation or other losses, and it is recommended calculating the approximate uptake and elimination rates as the test proceeds.
Vzorky pôdy a červov by sa podľa možnosti mali analyzovať ihneď po odobratí (t. j. do jedného až dvoch dní), aby sa predišlo degradácii alebo iným stratám, pričom sa odporúča vypočítať približnú rýchlosť absorpcie a rýchlosť eliminácie v priebehu testu.
If the analysis is delayed, the samples should be stored by an appropriate method, e.g. by deep-freezing (≤ – 18 °C).
Ak sa analýza odloží, vzorky by sa mali vhodnou metódou uskladniť, napr. hlbokým zmrazením (≤ – 18 °C).
It should be checked that the precision and reproducibility of the chemical analysis, as well as the recovery of the test chemical from soil and worm samples are satisfactory for the given method; the extraction efficiency, the limit of detection (LOD) and the limit of quantification (LOQ) should be reported.
Treba skontrolovať, či presnosť a reprodukovateľnosť chemickej analýzy, ako aj výťažnosť testovanej chemikálie zo vzoriek pôdy a červov vyhovujú danej metóde. V správe sa uvedie extrakčná účinnosť, detekčný limit (LOD) a kvantifikačný limit (LOQ).
Likewise it should be checked that the test chemical is not detectable in the control vessels in concentrations higher than background.
Podobne treba skontrolovať, či testovaná chemikália nie je prítomná v kontrolných nádobách vo vyšších koncentráciách, ako je koncentrácia v pozadí.
When the concentration of the test chemical in the test organism Ca is > 0 in the control worms, this should be included in the calculation of the kinetic parameters (see Appendix 2).
Ak je koncentrácia testovanej chemikálie v testovacom organizme Ca pri kontrolných červoch > 0, treba túto skutočnosť pri výpočte kinetických parametrov zohľadniť (pozri dodatok 2).
All samples should be handled throughout the test to minimise contamination and loss (e.g. resulting from adsorption of the test chemical on the sampling device).
So všetkými vzorkami by sa počas celého testu malo zaobchádzať tak, aby sa minimalizovala kontaminácia a strata (napr. v dôsledku adsorpcie testovanej chemikálie na zariadenie na odber vzoriek).
When working with radiolabelled test chemicals, it is possible to analyse parent and metabolites.
Pri práci s rádiooznačenými testovanými chemikáliami sa môže analyzovať materská chemikália a metabolity.
Quantification of parent test chemical and metabolites at steady state or at the end of the uptake phase provides important information.
Kvantifikáciou materskej testovanej chemikálie a metabolitov v rovnovážnom stave alebo na konci fázy absorpcie sa získajú dôležité informácie.
The samples should then be “cleaned up” so that the parent test chemical can be quantified separately.
Vzorky by sa následne mali vyčistiť, aby bolo možné kvantifikovať materskú testovanú chemikáliu samostatne.
If single metabolites exceed 10 % of total radioactivity in the analysed sample(s), the identification of these metabolites is recommended.
Ak v analyzovanej vzorke (vzorkách) samotné metabolity presahujú 10 % celkovej rádioaktivity, odporúča sa identifikovať tieto metabolity.
The overall recovery, and the recovery of test chemical in worms, soil, and if used, in traps containing absorbents to retain evaporated test chemical, should be recorded and reported.
Celková výťažnosť a výťažnosť testovanej chemikálie v červoch, v pôde a, ak sa použijú, v zachytávačoch obsahujúcich absorbenty na zadržanie odparenej testovanej chemikálie sa zaznamená a uvedie do správy.
Pooling of the individuals sampled from a given test vessel is acceptable for enchytraeid worms which are smaller than earthworms.
Spájanie vzoriek jedincov odobratých z danej testovacej nádoby je prípustné v prípade červov Enchytraeidae, ktoré sú menšie ako dážďovky.
If pooling involves the reduction of the number of replicates, this limits the statistical procedures which can be applied to the data.
Ak spájanie vzoriek vedie k zníženiu počtu replikátov, štatistické postupy, ktoré možno použiť pri spracúvaní údajov, budú obmedzenejšie.
If a specific statistical procedure and power are required, then an adequate number of replicate test vessels should be included in the test to accommodate the desired pooling, procedure and power.
Ak sa vyžaduje špecifický štatistický postup a významnosť, potom je potrebné do testu zahrnúť primeraný počet paralelných testovacích nádob, aby sa zabezpečilo želané spájanie vzoriek, postup a významnosť.
It is recommended that the BAF be expressed both as a function of total dry weight and, when required (i.e. for highly hydrophobic chemicals), as a function of the lipid content.
Odporúča sa vyjadriť BAF ako funkciu celkovej suchej hmotnosti a v prípade potreby (t. j. v prípade vysokohydrofóbnych chemikálií) aj ako funkciu obsahu lipidov.
Suitable methods should be used for determination of lipid content (some existing methods – e.g. (31) (58) – should be adapted for this purpose).
Na stanovenie obsahu lipidov sa použijú vhodné metódy (niektoré existujúce metódy – napr. (31) (58) – je potrebné na tento účel upraviť).
These methods use a chloroform/methanol extraction technique.
Tieto metódy využívajú extrakciu zmesou chloroformu a metanolu.
However, to avoid the use of chlorinated solvents, a modification of the Bligh and Dyer method (9) as described in (17) should be used.
S cieľom predísť použitiu chlórovaných rozpúšťadiel by sa mala použiť upravená metóda podľa Bligha a Dyera (9) uvedená v odkaze (17).
Since the various methods may not give identical values, it is important to give details of the method used.
Keďže rôznymi metódami sa nemusí dospieť k identickým hodnotám, je dôležité uviesť podrobné informácie o použitej metóde.
When possible, i.e. if sufficient worm tissue is available, the lipid analysis should ideally be made on the same sample or extract as the one used for analysis of the test chemical, since the lipids often have to be removed from the extract before it can be analysed chromatographically (49).
Ak je to možné, t. j. ak je k dispozícii dostatočné množstvo tkaniva z červov, analýza lipidov by sa podľa možnosti mala vykonať na rovnakej vzorke alebo extrakte, aké boli použité na analýzu testovanej chemikálie, lebo lipidy je často nutné z extraktu odstrániť, skôr než ich možno chromatograficky analyzovať (49).
Alternatively, control animals may be used to measure the lipid content, which can then be used to normalise BAF values.
Prípadne možno použiť kontrolné zvieratá na meranie obsahu lipidov, ktorý sa následne môže použiť na normalizáciu hodnôt BAF.
This latter approach reduces the contamination of equipment with the test chemical.
Pri druhom prístupe je kontaminácia zariadenia testovanou chemikáliou nižšia.
The uptake curve of the test chemical is obtained by plotting its concentration in/on the worms during the uptake phase against time on arithmetic scales.
Krivka absorpcie testovanej chemikálie sa získa tak, že sa na aritmetické osi zakreslí jej koncentrácia v/na červoch počas fázy absorpcie v závislosti od času.
When the curve has reached a plateau, or steady state (see definitions in Appendix 1), the steady state bioaccumulation factor BAFss is calculated from:
Ak krivka dosiahne rovnováhu alebo rovnovážny stav (pozri vymedzenie pojmov v dodatku 1), rovnovážny bioakumulačný faktor BAFss sa vypočíta podľa tohto vzorca:
at steady state or at end of uptake phase (mean)
v rovnovážnom stave alebo na konci fázy absorpcie (stredná)
Ca is the concentration of test chemical in the test organism
Ca je koncentrácia testovanej chemikálie v testovacom organizme,
Cs is the concentration of test chemical in the soil
Cs je koncentrácia testovanej chemikálie v pôde.
When no steady state is reached, the BAFK, based on the rate constants, should be determined instead of BAFss, as described below:
Ak sa nedosiahne rovnovážny stav, namiesto BAFss sa na základe konštánt rýchlosti určí BAFK týmto spôsobom:
Determine the accumulation factor (BAFK) as the ratio ks/ke.
určí sa akumulačný faktor (BAFK) ako pomer ks/ke,
Uptake and elimination rates are preferably calculated simultaneously (see Equation 11 in Appendix 2)
rýchlosti absorpcie a eliminácie sa podľa možnosti vypočítajú súbežne (pozri rovnicu 11 v dodatku 2),