natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The main factors to be considered for the selection of these sampling points are: previous detection of OsHV-1 μvar in the area, stocking density, water flows, bathymetry and management practices.
Pri výbere týchto miest odberu vzoriek je nutné zohľadniť tieto určujúce činitele: predošlé zistenie OsHV-1 μvar v oblasti, hustotu chovu, vodné toky, hĺbku vody a riadiace postupy.
The sampling provided for in Article 5(2) shall be carried out in the period of the year when prevalence of OsHV-1 μvar in the Member State or compartment is known to be maximal.
Odber vzoriek stanovený v článku 5 ods. 2 sa vykonáva v tom období roka, v ktorom je prevalencia OsHV-1 μvar v členskom štáte alebo oblasti preukázateľne najvyššia.
When such data is not available, sampling shall be carried out just after the period when the water temperature exceeds 16 °C or at the time of the year when the temperature normally reaches its yearly maximum.
Ak nie je takýto údaj dostupný, odber vzoriek sa vykonáva bezprostredne po období, keď teplota vody presiahne 16 °C, alebo v takom období roka, v ktorom teplota bežne dosahuje svoje ročné maximum.
The sampling provided for in Article 5(1)(b) shall preferably be carried out in the period of the year described in point c. If samples are collected outside that period of the year, the sampled oysters must be maintained under conditions equivalent to those described in point c for a period suitable for the detection of OsHV-1 μvar, before being tested.
Odber vzoriek stanovený v článku 5 ods. 1 písm. b) sa pokiaľ možno vykonáva v období roka opísanom pod písmenom c). Ak sa vzorky ustríc odoberajú mimo uvedeného obdobia v roku, musia sa pred testovaním počas obdobia vhodného na zisťovanie OsHV-1 μvar uchovávať v podmienkach rovnocenných podmienkam opísaným pod písmenom c).
Diagnostic methods of detecting OsHV-1 μvar
Diagnostické metódy zisťovania OsHV-1 μvar
This procedure explains a standard diagnostic method to be used for OsHV-1 μvar detection and identification by Polymerase Chain Reaction (hereinafter PCR).
Ďalej je opísaná štandardná diagnostická metóda, ktorá sa má používať na zisťovanie a identifikáciu OsHV-1 μvar prostredníctvom polymerázovej reťazovej reakcie (ďalej len „PCR“).
It allows distinguishing between OsHV-1 and OsHV-1 μvar.
Jej prostredníctvom možno odlíšiť OsHV-1 a OsHV-1 μvar.
When appropriate, in order to optimise the reaction conditions and to suit the equipment and conditions in their own laboratory, the laboratories may apply modifications to the methods described in this Annex, provided that an equal sensitivity and specificity can be demonstrated.
Ak je to vhodné, laboratóriá môžu v záujme optimalizácie reakčných podmienok a prispôsobenia sa svojmu vybaveniu a podmienkam upraviť metódy opísané v tejto prílohe za predpokladu, že možno preukázať rovnakú citlivosť a špecifickosť.
OsHV-1 μvar is defined in Article 1 of this Regulation.
OsHV-1 μvar je vymedzený v článku 1 tohto nariadenia.
Equipment and environmental conditions
Vybavenie a podmienky okolitého prostredia
The diagnostic test used for OsHV-1 μvar detection and identification by PCR requires the equipment and environmental conditions classically used for PCR assays as follows:
Na diagnostickú skúšku použitú na zistenie a identifikáciu OsHV-1 μvar prostredníctvom PCR je potrebné také vybavenie a také podmienky okolitého prostredia, aké sa klasicky využívajú pre skúšky PCR:
A closed hood equipped with an UV producing system to eliminate potential contaminations when preparing PCR mix.
digestórium so systémom produkcie UV žiarenia v záujme eliminácie potenciálnej kontaminácie počas prípravy zmesi PCR,
Two complete sets of pipettes (2 μl; 20 μl; 200 μl and 1000 μl), the first one for DNA extraction, and the second one for PCR mix preparation.
dva úplné sety pipiet (2 μl, 20 μl, 200 μl a 1000 μl), prvý na extrakciu DNA, druhý na prípravu zmesi PCR,
Three different pipettes: one pipette (2 μl) to dispense samples in PCR mix, one pipette (20 μl) for EB sampling and another pipette (20 μl) to load PCR products in agarose gels.
tri rozličné pipety: jedna pipeta (2 μl) na rozdeľovanie vzoriek do zmesi PCR, jedna pipeta (20 μl) na odber vzoriek EB (etídium-bromid) a ďalšia pipeta (20 μl) na nanášanie produktov PCR na agarózové gély,
Filter pipette tips (2 μl; 20 μl; 200 μl and 1000 μl) for DNA extraction, PCR mix preparation and sample dispensing.
špičky pipiet s filtrom (2 μl, 20 μl, 200 μl a 1000 μl) na extrakciu DNA, prípravu zmesi PCR a rozdeľovanie vzoriek,
Pipette tips (20 μl) to collect EB and to load amplification products in agarose gel.
špičky pipiet (20 μl) na odber EB a nanášanie produktov amplifikácie na agarózové gély,
A thermal cycler to perform amplifications.
termocyklér na amplifikáciu,
A horizontal electrophoresis system for PCR products electrophoresis.
horizontálna elektroforéza na elektroforézu produktov PCR,
An UV table to observe PCR products after agarose gel electrophoresis.
UV tabuľka na pozorovanie produktov PCR po elektroforéze na agarózovom géli,
A system to acquire pictures of the gels.
systém na získanie snímok gélov.
The manipulator must wear a lab coat and some gloves during all the different steps described bellow.
Manipulujúca osoba musí mať vo všetkých nižšie opísaných fázach na sebe laboratórny plášť a rukavice.
Lab coat and gloves must be changed preferably after each main step: DNA extraction, preparation of PCR mix, sample dispensing, amplification and gel loading.
Laboratórny plášť a rukavice sa musia pokiaľ možno meniť po každom z týchto hlavných krokov: extrakcia DNA, príprava zmesi PCR, rozdeľovanie vzorky, amplifikácia a nanášanie na gél.
It is recommended to perform these different steps in different rooms.
Odporúča sa vykonávať tieto rozličné kroky v rozličných miestnostiach.
More particularly, amplification and gel loading/electrophoresis should take place in a room separate from DNA extraction, PCR mix preparation and DNA dispensing.
Konkrétnejšie, amplifikácia a nanášanie na gél/elektroforéza by sa mali vykonávať v miestnosti oddelenej od miestnosti na extrakciu DNA, prípravu zmesi PCR a rozdeľovanie DNA.
Live or freshly dead (not decomposed) oysters, which can be previously frozen, are processed for DNA extraction.
Živé alebo čerstvo uhynuté (nerozložené) ustrice, ktoré sa môžu vopred zamraziť, sa spracujú na účely extrakcie DNA.
Samples are processed differently according to their size:
Vzorky sa spracúvajú rozlične v závislosti od ich veľkosti:
For larvae, pools of 50 mg of the whole animals (including the shell) completed with 200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute.
Pokiaľ ide o larvy, súhrnné vzorky s hmotnosťou 50 mg celých živočíchov (vrátane lastúry), doplnené o 200 μl destilovanej vody, sa rozdrvia a odstredia pri 1000 g počas 1 minúty.
For spat smaller than or of 6 mm, pools of 300 mg of the whole animals (including the shell) completed with 1200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute.
Pokiaľ ide o mladé ustrice menšie než 6 mm, súhrnné vzorky s hmotnosťou 300 mg celých živočíchov (vrátane lastúry), doplnené o 1200 μl destilovanej vody, sa rozdrvia a odstredia pri 1000 g počas 1 minúty.
For spat between 6 and 15 mm in size, all the soft tissues of each animal are crushed individually.
Pokiaľ ide o mladé ustrice s veľkosťou 6 až 15 mm, všetky mäkké tkanivá každého živočícha sa rozdrvia samostatne.
For animals bigger than 15 mm, pieces of gills and mantle are isolated.
Pokiaľ ide o živočíchy väčšie než 15 mm, izolujú sa časti žiaber a plášťa.
DNA extraction is performed using the QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) and following the instructions for Tissue Test Protocol.
Extrakcia DNA sa vykonáva pri použití súpravy QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) a podľa pokynov protokolu o skúškach tkanív.
The further sample preparation is performed in the following order:
Ďalšia príprava vzoriek sa vykonáva v tomto poradí:
Place 100 μl of supernatant for samples referred to in (a) and (b) or 10 to 50 mg of tissues for samples referred to point (c) and (d) in a 1,5 ml microcentrifuge tube and add 180 μl of Buffer ATL.
Do skúmavky mikroodstredivky s objemom 1,5 ml sa v prípade vzoriek uvedených pod písmenami a) a b) pridá 100 μl supernatantu a v prípade vzoriek uvedených pod písmenami c) a d) 50 mg tkanív a pridá sa 180 μl pufru ATL.
Add 20 μl Proteinase K, mix by vortexing and incubate at 56 °C until the tissue is completely lysed (overnight).
Pridá sa 20 μl proteinázy K, premieša sa na miešadle vortex a nechá sa inkubovať pri teplote 56 °C, pokiaľ sa tkanivo úplne nerozloží (v noci).
Vortex occasionally during incubation to disperse sample.
Počas inkubácie sa niekoľkokrát premieša na miešadle vortex, aby sa vzorka rozptýlila.
Briefly centrifuge the 1,5 ml microcentrifuge tube to remove drops from the lid.
Skúmavka mikroodstredivky s objemom 1,5 ml sa krátko odstredí, aby sa z uzáveru odstránili kvapky.
Add 200 μl Buffer AL to the sample, mix by pulse-vortexing for 15 s and incubate at 70 °C for 10 minutes.
K vzorke sa pridá 200 μl pufru AL, mieša sa na pulznom miešadle 15 s a nechá sa inkubovať pri teplote 70 °C počas 10 minút.
Add 200 μl ethanol (96-100 %) to the sample, and mix by pulse-vortexing for 15 s. Briefly centrifuge the 1,5 ml microcentrifuge tube to remove drops from the lid.
K vzorke sa pridá 200 μl etanolu (96 % – 100 %) a mieša sa na pulznom miešadle 15 s. Skúmavka mikroodstredivky s objemom 1,5 ml sa krátko odstredí, aby sa z uzáveru odstránili kvapky.
Carefully apply the mixture from step 4 to the QIAamp Spin Column (in a 2 ml collection tube) without wetting the rim.
Zmes vytvorená podľa kroku 4 sa opatrne umiestni do kolóny QIAamp Spin (v skúmavke s objemom 2 ml) bez toho, aby sa zvlhčil okraj.
Close the cap and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the tube containing the filtrate.
Uzavrie sa a odstreďuje pri 10000 ot./min. 1 minútu. Kolóna QIAamp Spin sa umiestni do čistej skúmavky s objemom 2 ml (ktorá je obsahom súpravy) a skúmavka obsahujúca filtrát sa odstráni.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW1 without wetting the rim.
Kolóna QIAamp Spin sa opatrne otvorí a pridá sa 500 μl pufru AW1 bez toho, aby sa zvlhčil okraj.
Close the cap and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
Uzavrie sa a odstreďuje pri 10000 ot./min. 1 minútu. Kolóna QIAamp Spin sa umiestni do čistej skúmavky s objemom 2 ml (ktorá je obsahom súpravy) a skúmavka obsahujúca filtrát sa odstráni.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW2 without wetting the rim.
Kolóna QIAamp Spin sa opatrne otvorí a pridá sa 500 μl pufru AW2 bez toho, aby sa zvlhčil okraj.
Close the cap and centrifuge at full speed (14000 rpm) for 3 min.
Uzavrie sa a odstreďuje pri plnej rýchlosti (14000 ot./min.) 3 minúty.
(Optional) Place the QIAamp Spin Column in a new 2ml collection tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
(Nepovinné) Kolóna QIAamp Spin sa umiestni do nepoužitej skúmavky s objemom 2 ml (ktorá nie je obsahom súpravy) a skúmavka obsahujúca filtrát sa odstráni.
Centrifuge at full speed (14000 rpm) for 1 min.
Odstreďuje sa pri plnej rýchlosti (14000 ot./min.) 1 minútu.
Place the QIAamp Spin Column in a clean 1,5 ml microcentrifuge tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
Kolóna QIAamp Spin sa umiestni do čistej skúmavky mikroodstredivky s objemom 1,5 ml (ktorá nie je obsahom súpravy) a skúmavka obsahujúca filtrát sa odstráni.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 100 μl of distilled water.
Kolóna QIAamp Spin sa opatrne otvorí a pridá sa 100 μl destilovanej vody.
Incubate 5 minutes at room temperature and centrifuge at 10000 rpm for 1 min.
Nechá sa 5 minút inkubovať pri laboratórnej teplote a odstreďuje sa pri 10000 ot./min. 1 minútu.
Control the quality and efficacy of the extraction (for example by measuring OD (260 nm) under spectrophotometer or after electrophoresis in agarose gel).
Kvalita a účinnosť extrakcie sa sleduje pomocou spektrofotometru alebo po elektroforéze na agarózovom géli [napríklad meraním optickej hustoty (260 nm)].
Prepare dilution of your samples in order to have a final DNA concentration of 50-100 ng/μl.
Vzorky sa riedia tak, aby konečná koncentrácia DNA predstavovala 50 – 100 ng/μl.
DNA solutions are kept at 4 °C until PCR analyses are performed.
Roztoky DNA sa až do vykonania analýzy PCR uchovávajú pri teplote 4 °C.
Other commercial kits may be used for the DNA extractions provided they have been demonstrated to give similar results.
Na extrakciu DNA možno použiť aj iné na trhu dostupné súpravy za predpokladu, že preukázateľne poskytujú podobné výsledky.
Polymerase Chain Reaction (PCR)
Polymerázová reťazová reakcia (PCR)
Reactives
Reakčné činidlá
10 X Buffer (furnished with the Taq DNA polymerase)
pufer 10 X (s polymerázou Taq DNA),
MgCl2 (furnished with the DNA polymerase) (25 mM)
MgCl2 (s polymerázou DNA) (25 mM),
Taq DNA Polymerase (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl
polymeráza Taq DNA (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl,
dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Master Mix (20mM) must be diluted 10 fold (at 2 mM) before use
dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Master Mix (20 mM), pred použitím zriedený desaťkrát (na 2 mM),
d H2O (distilled H2O free of DNA and RNA)
d H2O (destilovaná H2O bez DNA a RNA).
Primers
Primery
The following primers [1] must be used:
Musia sa používať tieto primery [1]:
PCR mix
Zmes PCR
PCR mix for each tube is:
Zmes PCR pre každú skúmavku je:
Volume per tube
Objem na skúmavku
Buffer (10 X)
Pufer (10 X)
Taq polymérase (5U/μl)
polymeráza Taq (5 U/μl)
49 μl of this PCR mix is dispensed in each PCR tube
49 μl tejto zmesi PCR sa rozdelí do každej skúmavky PCR,
1 μl of extracted DNA (50-100 ng/μl) is added to each tube
do každej skúmavky sa pridá 1 μl extrahovanej DNA (50 – 100 ng/μl).
Two types of control are used:
Používajú sa dva typy kontrol:
Negative controls consist of dH2O (1 μl for 49 μl of PCR mix).
negatívne kontroly sa skladajú z dH2O (1 μl na 49 μl zmesi PCR).
They aim at detecting potential reactive contamination or working environment.
Cieľom je zistiť možnú reaktívnu kontamináciu alebo reaktívne pracovné prostredie.
One negative control should be included every 10 samples or after each batch of samples.
Mala by sa vykonať jedna negatívna kontrola na každých 10 vzoriek alebo na každú sériu vzoriek,
Positive controls consist of plasmidic DNA containing the OsHV-1 target genome region CF-CR.
pozitívne kontroly sa skladajú z plazmidickej DNA obsahujúcej región CF-CR cieľového genómu OsHV-1.
They aim at checking the efficacy of the PCR reaction.
Cieľom je kontrola účinnosti reakcie PCR.
One positive control should be included for each PCR analysis.
Mala by sa vykonať jedna pozitívna kontrola na každú analýzu PCR.
Positive controls are available from the Community Reference Laboratory.
Pozitívne kontroly sú k dispozícii v referenčnom laboratóriu Spoločenstva.
Amplification
Amplifikácia
Amplification cycles are performed in a thermal cycle apparatus.
Amplifikačné cykly sa vykonávajú v termocykléri.
Initial denaturation: 2 min at 94 °C
Počiatočná denaturácia: 2 min. pri 94 °C.
Amplification: 35 cycles (1 min at 94 °C, 1 min at 50 °C and 1 min at 72 °C)
Amplifikácia: 35 cyklov (1 min. pri 94 °C, 1 min. pri 50 °C a 1 min. pri 72 °C).
Final elongation: 5 min at 72 °C
Konečná elongácia: 5 min. pri 72 °C.
Electrophoresis
Elektroforéza
50 X TAE (can be bought directly ready for use):
50 X TAE (možno zakúpiť ako pripravený na použitie):
Tris base (40 mM) 242 g
báza tris (40 mM) 242 g,
Acetic glacial acid (40 mM) 57,1 ml
ľadová kyselina octová (40 mM) 57,1 ml,
Na2EDTA.2H2O (1 mM) 18,61 g
Na2EDTA.2 H2O (1 mM) 18,61 g,
dH2O for 1 liter
dH2O na 1 liter,
Ajust at pH 8
upraví sa na pH 8,
Agarose gel 2,5 % in 1 X TAE
agarózový gél 2,5 % v IX TAE:
Ethidium bromide (0,5 μg/ml) added after cooling the gel.
etídium-bromid (0,5 μg/ml) pridaný po vychladnutí gélu,
Loading blue dye:
nanášanie modrého farbiva:
Bromophenol blue 0,25 %
brómfenolová modrá 0,25 %,
Cyanol xylene FF 0,25 %
xylén kyanol FF 0,25 %,
Sucrose 40 %
sacharóza 40 %,
Keep at 4 °C.
uchováva sa pri teplote 4 °C.
Use diluted 6 times (2 μl of loading blue buffer for 10μl of PCR products).
Použije sa 6-krát zriedené (2 μl nanášacieho modrého pufra na 10 μl produktov PCR),
Molecular weight marker:
markér molekulovej hmotnosti:
SmartLadder SF (Eurogentec): a ready-to-use molecular weight marker including 9 regularly spaced bands from 100 to 1000 bp.
SmartLadder SF (Eurogentec): markér molekulovej hmotnosti pripravený na použitie vrátane 9 rovnomerne delených pruhov od 100 do 1000 bp.
Agarose gel preparation
Príprava agarózového gélu
Weight 2,5 g of agarose, add 100 ml of 1 X TAE and heat until the mix is melted.
Naváži sa 2,5 g agarózy, pridá sa 100 ml IX TAE a zahrieva sa, pokiaľ sa zmes nerozpustí.
After cooling the solution, ethidium bromide is added (5 μl for 100 ml of agarose gel) and the solution is disposed in a specific mould equipped with combs (to form slots).
Po vychladnutí roztoku sa pridá etídium-bromid (5 μl na 100 ml agarózového gélu) a roztok sa umiestni do zvláštnej formy vybavenej hrebeňmi (aby sa vytvorili štrbiny).
When gel is polymerised, combs are removed and gel is placed in a horizontal electrophoresis system containing enough 1 X TAE to the cover agarose gel.
Po tom, ako sa gél polymerizuje, hrebene sa odstránia a umiestnia do horizontálnej elektroforézy, ktorá obsahuje dostatočné množstvo IX TAE na to, aby bol agarózový gél úplne pokrytý.
10 μl of PCR products are mixed with 2 μl of blue dye (6 X) and disposed in the slots.
10 μl produktov PCR sa zmieša s 2 μl modrého farbiva (6X) a umiestni sa do štrbín.
One whole is dedicated to the molecular weight marker (5 μl).
Jedna priehlbina je určená pre markér molekulovej hmotnosti (5 μl).
A voltage of 50 to 150 volts is applied during 30 min to 1 hour depending on the gel size and thickness.
Použije sa napätie v rozsahu 50 – 150 voltov počas 30 minút až 1 hodiny v závislosti od množstva a hrúbky gélu.
Gel is observed under UV.
Gél sa pozoruje pod UV žiarením.
The presence of OsHV-1 μvar in a sample is indicated by the presence of a band of the appropriate size (157 bp instead of 173 bp for OsHV-1) on a 2,5 % agarose gel with all negative controls negative and all positive controls positive.
Ak je vo vzorke prítomný OsHV-1 μvar, na 2,5 % agarózovom géli sa vytvorí pruh zodpovedajúcej veľkosti (157 bp namiesto 173 bp v prípade OsHV-1), pričom všetky negatívne kontroly sú negatívne a všetky pozitívne kontroly sú pozitívne.
Definition of the containment area
Vymedzenie uzavretej oblasti
The following factors influencing the risks for the spread of the disease shall be taken into account when defining the containment area in accordance with Article 2(2):
Pri vymedzení uzavretej oblasti v súlade s článkom 2 ods. 2 sa zohľadňujú tieto činitele, ktoré majú vplyv na šírenie nákazy:
the number, rate and distribution of molluscs on the farm or mollusc farming area infected;
počet a rozloženie mäkkýšov v infikovanom hospodárstve alebo v infikovanej oblasti chovu mäkkýšov;
distance and density of neighbouring farms or mollusc farming areas;
vzdialenosť a hustota susediacich hospodárstiev alebo oblastí chovu mäkkýšov;
proximity to processing establishments, contact farms or contact mollusc farming areas;
blízkosť k spracovateľským zariadeniam, kontaktným hospodárstvam alebo oblastiam chovu mäkkýšov;
species present at the farms or mollusc farming areas;
druhy prítomné v hospodárstvach alebo v oblastiach chovu mäkkýšov;
farming practices applied in the affected and the neighbouring farms or mollusc farming areas; and
chovné postupy používané v postihnutých a susediacich hospodárstvach alebo oblastiach chovu mäkkýšov a
hydrodynamic conditions and other factors of epizootiological significance identified.
zistené hydrodynamické podmienky a ostatné činitele epizootologického významu.
These primers or descriptions thereof may be obtained from the Community Reference Laboratory for Mollusc Diseases (LGP-Ifremer, av de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, France).
Tieto primery alebo ich opis možno získať od referenčného laboratória Spoločenstva pre nákazy mäkkýšov (LGP-Ifremer, av de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, Francúzsko).
Model animal health certificate for the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas
Vzor zdravotného certifikátu pre uvedenie ustríc Crassostrea gigas určených pre chovné oblasti alebo sádky na trh
Part I: Details of consignment presented
Časť I: Podrobné údaje o zásilke
Intra trade certificate
Certifikát pre obchod v rámci Spoločenstva
Animal species/product
Druh zvierat/Produkty
Identification of container/seal number
Číslo plomby/Číslo contajnera
Animals certified as/products certified for
Zvietratá asvedčéné na/Produkty asvedčéné na:
BIP unit no.:
Číslo HIS
For the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas
pre uvedenie ustríc Crassostrea gigas určených pre chovné oblasti alebo sádky na trh
(1)(2)[II.1 Requirements for Crassostrea gigas oysters originating from a containment area established in accordance with Article 2 of Regulation (EU) No 175/2010
Požiadavky týkajúce sa ustríc Crassostrea gigas pochádzajúcich z uzavretej oblasti zriadenej v súlade s článkom 2 nariadenia (EÚ) č. 175/2010
I, the undersigned official inspector, hereby certify that the Crassostrea gigas oysters referred to in Part I of this certificate:
Ja dolupodpísaný úradný inšpektor týmto osvedčujem, že ustrice Crassostrea gigas uvedené v časti I tohto certifikátu:
originate from an area subject to disease control measures regarding increased mortalities in Crassostrea gigas oysters in connection with OsHV-1 μvar;.
pochádzajú z oblasti, na ktorú sa vzťahujú opatrenia na kontrolu nákazy týkajúce sa zvýšeného úhynu ustríc Crassostrea gigas v súvislosti s OsHV-1 μvar;
(1)[II.1.2 are allowed to be placed on the market according to Article 3(2)(a) of Regulation (EU) No 175/2010;]
(1)[II.1.2. sa podľa článku 3 ods. 2 písm. a) nariadenia (EÚ) č. 175/2010 môžu uviesť na trh;]
(1)[II.1.2 are originating from a part of the containment area not affected by the increased mortalities and the consignment has been subject to sampling and testing in accordance with Annex I to Regulation (EU) No 175/2010 in Crassostrea gigas oysters with negative result;]]
(1)[II.1.2. pochádzajú z časti uzavretej oblasti, ktorá nie je postihnutá zvýšeným úhynom, a zásielka sa podrobila odberu vzoriek a skúškam ustríc Crassostrea gigas v súlade s prílohou I k nariadeniu (EÚ) č. 175/2010 s negatívnym výsledkom;]
(1)(3)[II.2 Requirements for Crassostrea gigas oysters originating from a Member State or compartment previously subjected to containment measures as regards increased mortalities in Crassostrea gigas oysters in connection with OsHV-1 μvar and intended for Member States or compartments subject to a programme for the early detection of OsHV-1 μvar
Požiadavky týkajúce sa ustríc Crassostrea gigas pochádzajúcich z členského štátu alebo oblasti, ktoré predtým vzhľadom na zvýšený úhyn ustríc Crassostrea gigas v súvislosti s OsHV-1 μvar podliehali opatreniam na zabránenie šíreniu, a určených do členských štátov alebo oblastí, na ktoré sa vzťahuje program pre včasné zistenie OsHV-1 μvar
come from a farm or mollusc farming area where, according to the records of the farm or mollusc farming area, there is no indication of increased mortalities;
pochádzajú z hospodárstva alebo oblasti chovu mäkkýšov, v ktorých sa podľa záznamov hospodárstva alebo oblasti chovu mäkkýšov nevyskytujú žiadne náznaky zvýšeného úhynu;
originate from a compartment, where the absence of OsHV-1 μvar is demonstrated by a sampling and testing carried out in accordance with Annex I to Regulation (EU) No 175/2010 in Crassostrea gigas oysters.]
pochádzajú z oblasti, v ktorej sa prostredníctvom odberu vzoriek ustríc Crassostrea gigas a skúšok vykonaných v súlade s prílohou I k nariadeniu (EÚ) č. 175/2010 preukázala neprítomnosť OsHV-1 μvar.]