natgillin/translations-raw huggingface dataset:
graphical representation of the concentration/effect relationship,
grafické znázornenie vzťahu koncentrácie/účinku,
estimates of toxic endpoints for response variables e.g. EC50, EC10, EC20, and associated confidence intervals.
odhady toxických konečných bodov pre hodnoty reakcie, napr. EC50, EC10, EC20, a príslušné intervaly spoľahlivosti.
If calculated, LOEC and/or NOEC and the statistical methods used for their determination,
Ak sa vypočítava, LOEC a NOEC a štatistické metódy použité na ich stanovenie,
any visual signs of phytotoxicity as well as observations of test solutions,
všetky viditeľné znaky fytotoxicity, ako aj pozorovania testovacích roztokov,
Guidance on information requirements and chemical safety assessment — Chapter R.7b: Endpoint specific guidance; Table 7.8.3 Summary of difficult substance testing issues, available at:
Guidance on information requirements and chemical safety assessment – Chapter R.7b: Endpoint specific guidance; Table 7.8.3 Summary of difficult substance testing issues, dostupné na adrese:
E 1415-91 (Reapproved 1998). pp. 733-742.
E 1415 – 91 (Reapproved 1998). pp. 733 – 742.
OPPTS 850.4400 Aquatic Plant Toxicity Test Using Lemna spp., ‘Public draft’.
OPPTS 850.4400 Aquatic Plant Toxicity Test Using Lemna spp., „Public draft“.
EPA 712-C-96-156.
EPA 712-C-96 – 156.
XP T 90-337: Détermination de l’inhibition de la croissance de Lemna minor.
XP T 90 – 337: Détermination de l’inhibition de la croissance de Lemna minor.
EPS 1/RM/37-120 pp.
EPS 1/RM/37 – 120 pp.
US EPA Report No. EPA-600/3-77 108.
EPA-600/3 – 77 108.
Hydrobiologia, 118/119, 353-359.
Hydrobiologia, 118/119, 353 – 359.
Biometrics, 27: 103-117.
Biometrics, 27: 103 – 117.
Biometrics, 28: 510-531.
Biometrics, 28: 510 – 531.
T = t + 273,15
T = t + 273,15
source
Zdroj N2
B: Vacuum buffer volume C: Pressure gauge
B: Objem na vyrovnávanie vákua
Heating element c.a.
E: Miesto merania
Adjustable valve
Regulačný ventil
gas at ambient pressure
Plynný N2 pri tlaku okolitého prostredia
The sample carrier plate, hanging on a microbalance in a temperature controlled chamber, is swept by a stream of dry nitrogen gas which carries the vaporised molecules of the test substance away.
Nosná doštička so vzorkou, ktorá visí na mikrováhach v komore s regulovanou teplotou, sa umiestni do prúdu suchého dusíka, ktorý unáša odparené molekuly testovanej látky.
The material is mixed with spatula and re-pressed at 10 MPa.
Materiál sa rozmieša pomocou stierky a znovu sa lisuje pod tlakom 10 Mpa.
The material is then removed from the dye and stored in a sealed glass bottle.
Potom sa materiál odoberie z lisovadla a uskladní v hermeticky uzatvorenej sklenej fľaši.
complete supporting information for the specific skin model used including its performance.
úplné podkladové údaje o použitom osobitnom modeli kože vrátane jeho výkonnosti.
This should include, but is not limited to:
K nim by mali patriť predovšetkým:
reference to historical data of the model.
odkaz na historické údaje o modeli.
Globally Harmonized System of Classification and Labelling of Chemicals (GHS), Second revised edition, UN New York and Geneva, 2007.
Globally Harmonized System of Classification and Labelling of Chemicals (GHS), druhé prepracované vydanie, UN New York a Ženeva 2007.
Available at: http://www.unece.org/trans/danger/publi/ghs/ghs_rev02/02files_e.html.
Dostupné na internete: http://www.unece.org/trans/danger/publi/ghs/ghs_rev02/02files_e.html.
Test Guideline 435.
Testovacie usmernenie 435.
Adopted July 19, 2006.
Prijaté 19. júla 2006.
Available at: http://www.oecd.org/document/22/0,2340,en_2649_34377_1916054_1_1_1_1,00.html.
Dostupné na internete: http://www.oecd.org/document/22/0,2340,en_2649_34377_1916054_1_1_1_1,00.html.
Zuang, V., Balls, M., Botham, P.A., Coquette, A., Corsini, E., Curren, R.D., Elliot, G.R., Fentem, J.H., Heylings, J.R., Liebsch, M., Medina, J., Roguet, R., van De Sandt, J.J.M., Wiemann, C. & Worth, A.(2002).
Zuang, V., Balls, M., Botham, P.A., Coquette, A., Corsini, E., Curren, R.D., Elliot, G.R., Fentem, J.H., Heylings, J.R., Liebsch, M., Medina, J., Roguet, R., van De Sandt, J.J.M., Wiemann, C. & Worth, A. (2002).
ESAC statement on updated EpiDerm and similar SkinEthic assays.
Vyhlásenie ESAC o aktualizovanej analýze EpiDerm a podobných analýzach SkinEthic.
5 November 2008.
november 2008.
Official Journal of the European Union L 396 of 30 December 2006, p. 1.
Úradný vestník Európskej únie L 396/1, 30.12.2006.
EpiSkin™ SOP, Version 1.6 (January 2005).
EpiSkin™ SOP, Version 1.6 (január 2005).
EpiDerm™ SOP, Version 5.0 (October 2004).
EpiDerm™ SOP, Version 5.0 (október 2004).
Ispra, November 13, 2008.
Ispra 13. november 2008.
For full expression of the system response to toxic effects (optimal sensitivity), the cultures are allowed unrestricted exponential growth under sufficient nutrient conditions and continuous light for a sufficient period of time to measure reduction of the specific growth rate.
Na preukázanie úplnej reakcie systému na toxické účinky (optimálna citlivosť) sa kultúram umožní neobmedzený exponenciálny rast v podmienkach s vhodnými živinami a nepretržité svetlo počas času postačujúceho na meranie zníženia špecifickej rýchlosti rastu.
Growth and growth inhibition are quantified by measurements of the algal biomass as a function of time.
Rast a inhibícia rastu sa kvantifikujú stanovením biomasy rias ako funkcie času.
Algal biomass is defined as the dry weight per volume, e.g. mg algae/litre test solution.
Biomasa rias je definovaná ako suchá hmotnosť na objem, napr. mg rias/liter testovaného roztoku.
However, dry weight is difficult to measure and therefore surrogate parameters are used.
Suchá hmotnosť sa však zložito stanovuje, a preto sa používajú náhradné parametre.
Of these surrogates, cell counts are most often used.
Z týchto náhradných parametrov sa najčastejšie používa počet buniek.
Other surrogate parameters include cell volume, fluorescence, optical density, etc. A conversion factor between the measured surrogate parameter and biomass should be known.
Iné náhradné parametre zahŕňajú objem buniek, fluorescenciu, optickú hustotu atď. Je potrebné poznať prepočítavací koeficient medzi meraným náhradným parametrom a biomasou.
It is defined as biomass at the end of the exposure period minus the biomass at the start of the exposure period.
Definovaný je ako biomasa na konci času expozície mínus biomasa na začiatku času expozície.
ln Xi– lated as the logarithmic increase in biomass from the equation for each single vessel of controls and treatments:
ln Xi– ta ako logaritmus nárastu biomasy z rovnice pre každú jednotlivú kontrolnú a ošetrenú nádobu:
μT– atment replicate from the equation:
μT– ošetrenú paralelku s pomocou rovnice:
YT– or each treatment replicate as follows:
YT– aždú ošetrenú paralelku takto:
With true first order kinetics the specific degradation rate constant, k, is independent of time and concentration.
V prípade pravej kinetiky prvého poriadku špecifická degradačná rýchlostná konštanta k nie je závislá od času a koncentrácie.
That is, k does not vary appreciably during the course of an experiment and does not change with the added concentration between experiments.
Znamená to, že k významne nemení svoju hodnotu počas pokusu a pridávanou koncentráciou medzi pokusmi sa nemení.
Storage and preparation of surface water
Skladovanie a príprava povrchovej vody
The test should preferably be started within one day after sample collection.
Test je potrebné prednostne začať do nasledujúceho dňa po odbere vzorky.
For the suspended sediment test, surface sediment is added to the flasks containing natural water (filtered to remove coarse particles as described in section 1.8.4) to obtain a suspension; the concentration of suspended solids should be between 0,01 and 1 g/L.
Pre test suspendovaného sedimentu sa pridá povrchový sediment do baniek obsahujúcich prírodnú vodu (filtrovanú na účely odstránenia hrubých častíc, ako je uvedené v oddiele 1.8.4), aby sa získala suspenzia; koncentrácia suspendovaných tuhých látok musí byť medzi 0,01 a 1 g/L.
The surface sediment should come from the same site as that from which the water sample was taken.
Povrchový sediment musí pochádzať z rovnakého miesta, z ktorého bola odobratá vzorka vody.
Dependent on the particular aquatic environment, the surface sediment may either be characterised by a high organic carbon content (2,5-7,5 %) and a fine texture or by a low organic carbon content (0,5-2,5 %) and a coarse texture (3).
V závislosti od konkrétneho vodného prostredia môže byť povrchový sediment charakterizovaný buď vysokým obsahom organického uhlíka (2,5 % –7,5 %) a jemnou textúrou, alebo nízkym obsahom organického uhlíka (0,5 % –2,5 %) a hrubou textúrou (2).
This should be checked by substance-specific analysis or, if possible, DOC analysis (6).
Je to potrebné skontrolovať špecifickou analýzou pre látku alebo ak je možné, analýzou DOC (6).
Care must be taken to limit the amount of solvent transferred to what is absolutely necessary, and to ensure that the amount of test substance can dissolve in the final volume of test water.
Je potrebné venovať pozornosť tomu, aby sa množstvo preneseného rozpúšťadla obmedzilo na čo najnižšiu potrebnú mieru, a zabezpečiť, aby sa množstvo testovanej látky dalo rozpustiť v konečnom objeme testovanej vody.
Other techniques to introduce the test substance into the test vessels may be used as described in (7) and (8).
Môžu sa použiť iné techniky na pridávanie testovanej látky do testovacích nádob, ako je uvedené v (7) a (8).
When an organic solvent is used for application of the test substance, solvent controls containing the test water (with no additions) and test water with added reference substance should be treated similarly to active test vessels amended with test substance in solvent carrier.
Ak sa používa organické rozpúšťadlo na aplikáciu testovanej látky, s kontrolami s rozpúšťadlom obsahujúcimi testovanú vodu (bez žiadnych prídavných látok) a testovanú vodu s pridanou referenčnou látkou sa musí zaobchádzať rovnako ako s aktívnymi testovacími nádobami doplnenými o testovanú látku v nosiči, ktorým je rozpúšťadlo.
However, the test period for the batch test may be extended to a maximum of 90 days, if the degradation of the test substance has started within the first 60 days.
Čas testu v prípade dávkového testu sa môže predĺžiť maximálne na 90 dní, ak sa degradácia testovanej látky začala počas prvých 60 dní.
Degradation is monitored, at appropriate time intervals, by the determination of the residual 14C activity or the evolved 14CO2 (see section 1.8.9.4) and/or by chemical analysis (section 1.8.9.5).
Degradácia sa monitoruje v príslušných časových intervaloch stanovením zvyškovej aktivity 14C alebo uvoľneného 14CO2 (pozri oddiel 1.8.9.4) a/alebo chemickou analýzou (oddiel 1.8.9.5).
The incubation time must be sufficiently long to evaluate the degradation process.
Inkubačný čas musí byť dostatočne dlhý na vyhodnotenie degradačného procesu.
The extent of degradation should preferably exceed 50 %; for slowly degradable substances, the extent of degradation must be sufficient (normally greater than 20 % degradation) to ensure the estimation of a kinetic degradation rate constant.
Prednostne by miera degradácie mala byť vyššia ako 50 %; pre pomaly degradovateľné látky miera degradácie musí byť dostatočná (obvykle vyššia ako 20 % degradácia) na zabezpečenie stanovenia kinetickej degradačnej rýchlostnej konštanty.
Periodic measurements of pH and oxygen concentration in the test system must be conducted unless previous experience from similar tests with water and sediment samples collected from the same site make such measurements unnecessary.
V testovacom systéme sa musia vykonávať pravidelné merania koncentrácie pH a kyslíka, pokiaľ z predchádzajúcich skúseností z podobných testov so vzorkami vôd a sedimentu odobratých z rovnakého miesta nevyplýva zbytočnosť takýchto meraní.
Under some conditions, the metabolism of primary substrates at much higher concentrations within the water or sediment could possibly result in enough CO2 evolution and oxygen depletion to significantly alter the experimental conditions during the test.
Za určitých podmienok by metabolizmus primárnych substrátov pri oveľa vyšších koncentráciách vo vode alebo sedimente mohol mať za následok dostatočné uvoľnenie CO2 a vyčerpanie kyslíka, ktoré významne zmenia experimentálne podmienky počas testu.
Preparation of flasks for pelagic test
Príprava baniek na pelagický test
Transfer a suitable volume of test water to the test flasks, up to about one third of the flask volume and not less than about 100 ml.
Preneste príslušný objem testovanej vody do testovacích baniek, do približne jednej tretiny objemu banky a najmenej okolo 100 ml.
If multiple flasks are used (to allow harvesting of whole flasks at each sampling time), the appropriate volume of test water is also about 100 ml, as small sample volumes may influence the length of the lag phase.
Ak sa používajú viaceré banky (aby sa umožnilo zužitkovanie celých baniek v každom čase odberu vzoriek), je vhodný objem testovanej vody tiež približne 100 ml, keďže malé objemy vzoriek môžu ovplyvňovať dĺžku lag fázy.
The test substance is added from a stock solution as described in sections 1.8.2 and 1.8.7.
Testovaná látka sa pridáva zo zásobného roztoku, ako je uvedené v oddieloch 1.8.2 a 1.8.7. Je potrebné použiť minimálne dve rozdielne koncentrácie testovanej látky odlišujúce sa o faktor 5 až 10 na stanovenie kinetiky degradácie a výpočet kinetickej degradačnej rýchlostnej konštanty.
At least two different concentrations of test substance differing by a factor of 5 to 10 should be used in order to determine degradation kinetics and calculate the kinetic degradation rate constant.
Obe zvolené koncentrácie musia byť menšie ako 100 µg/L a prednostne v rozmedzí < 1 – 10 µg/L.
Withdraw samples for chemical analysis or 14C measurements at the beginning of the test (i.e. before biodegradation starts; see section 1.7.1) and then at suitable time intervals during the course of the test.
Na začiatku testu odoberte vzorky na chemickú analýzu alebo stanovenia 14C (t. j. predtým ako sa začne biodegradácia; pozri oddiel 1.7.1) a potom v príslušných časových intervaloch v priebehu testu.
Sampling may be performed by withdrawal of sub-samples (e.g. 5 ml aliquots) from each replicate or by harvest of whole flasks at each sampling time.
Odber vzoriek sa môže vykonať odoberaním čiastočných vzoriek (napr. 5 ml alikvóty) z každej paralelky alebo zužitkovať celé banky v každom čase odberu vzoriek.
The mineralisation of the test substance may either be determined indirectly or directly (see Appendix 3).
Mineralizácia testovanej látky sa môže stanoviť buď nepriamo, alebo priamo (pozri dodatok 3).
Usually, a minimum of five sampling points are required during the degradation phase (i.e. after ended lag phase) in order to estimate a reliable rate constant, unless it can be justified that three sampling points are sufficient for rapidly degradable substances.
Obvykle je potrebných minimálne päť odberov počas degradačnej fázy (t. j. po ukončení lag fázy) na stanovenie spoľahlivej rýchlostnej konštanty, pokiaľ sa nedá odôvodniť, že pre rýchlo degradujúce látky sú postačujúce tri odbery.
For substances that are not rapidly degraded more measurements during the degradation phase can easily be made and, therefore, more data points should be used for the estimation of k. No fixed time schedule for sampling can be stated, as the rate of biodegradation varies; however the recommendation is to sample once a week if degradation is slow.
Pre látky, ktoré sa počas degradačnej fázy nedegradujú rýchlo, možno ľahko uskutočniť viac meraní, a preto sa na stanovenie k musí použiť viac experimentálnych bodov. Nedá sa stanoviť pevný harmonogram pre odber vzoriek, lebo rýchlosť biodegradácie je premenlivá, ale odporúča sa, ak je degradácia pomalá, odoberať vzorky raz do týždňa.
If the test substance is rapidly degradable, sampling should take place once a day during the first three days and then every second or third day.
Ak je testovaná látka rýchlo degradovateľná, odber vzoriek sa musí uskutočniť jedenkrát za deň počas prvých troch dní a potom každý druhý alebo tretí deň.
Under certain circumstances, such as with very rapidly hydrolysing substances, it may be necessary to sample at hourly intervals.
Za určitých okolností, ako napr. v prípade veľmi rýchlo hydrolyzujúcich látok, môže byť potrebné odoberať vzorky v hodinových intervaloch.
It is recommended that a preliminary study is conducted prior to the test in order to determine the appropriate sampling intervals.
Odporúča sa, aby sa uskutočnila predbežná štúdia pred testom na stanovenie vhodných intervalov odberov vzoriek.
If samples have to be available for further specific analysis, it is advisable to take more samples and then select those to be analysed at the end of the experiment following a backwards strategy, i.e. the last samples are analysed first (see second paragraph in section 1.8.9.5 for guidance on stability of samples during storage).
Ak musia byť vzorky k dispozícii pre ďalšie špecifické analýzy, odporúča sa odobrať viac vzoriek a potom vybrať tie, ktoré sa budú analyzovať na konci pokusu na základe obrátenej stratégie, t. j. posledné vzorky sa analyzujú prvé (pozri druhý odsek v oddiele 1.8.9.5 pre pokyny o stabilite vzoriek počas skladovania).
Number of flasks and samples
Počet baniek a vzoriek
Set up a sufficient number of test flasks to have:
Pripravte dostatočný počet testovacích baniek, aby ste mali k dispozícii:
test flasks; at least duplicate flasks for each concentration of test substance (preferably a minimum of 3) or multiple test flasks for each concentration, if whole flasks are harvested at each sampling time (symbolised FT),
testovacie banky; minimálne dve banky pre každú koncentráciu testovanej látky (prednostne minimálne 3) alebo viac testovaných baniek pre každú koncentráciu, ak sa zužitkujú celé banky v každom čase odberu (označené ako FT), testovacie banky pre výpočet hmotnostnej bilancie; minimálne dve banky pre každú koncentráciu testovanej látky (označené ako FM),
test flasks for mass balance calculation; at least duplicate flasks for each test concentration (symbolised FM),
slepú kontrolu, bez testovanej látky; minimálne jedna čistá testovacia banka obsahujúca iba testovanú vodu (označené ako FB), referenčnú kontrolu; dve paralelné banky s referenčnou látkou (napr. anilín alebo benzoát sodný s koncentráciou 10 µg/l) (označené ako FC). Účelom referenčnej kontroly je potvrdiť minimálnu mikrobiálnu aktivitu.
blank control, no test substance; at least one blank test flask containing only the test water (symbolised FB),
Ak je to vhodné, môže sa použiť radioaktívne označená referenčná látka aj vtedy, keď sa degradácia testovanej látky sleduje chemickou analýzou, sterilnú kontrolu; jedna alebo dve banky obsahujúce sterilizovanú testovanú vodu na preskúmanie prípadnej abiotickej degradácie alebo inej nebiologickej eliminácie testovanej látky (označené ako FS).
If convenient, a radiolabelled reference substance may be used, also when the degradation of the test substance is monitored by chemical analyses,
Ak sa použije HgCl2, musí sa zneškodňovať ako toxický odpad.
The purpose is to examine possible adverse effects of the solvent by determining the degradation of the reference substance.
Účelom je preskúmať možné škodlivé účinky rozpúšťadla stanovením degradácie referenčnej látky.
In the design of the test, the investigator should consider the relative importance of increased experimental replication versus increased number of sampling times.
Pri zostavovaní testu by výskumný pracovník mal zohľadniť relatívnu dôležitosť väčšieho počtu paraleliek v pokuse v porovnaní so zvýšeným počtom časov odberu.
Specific chemical analysis
Špecifická chemická analýza
If a sensitive specific analytical method is available, primary biodegradation can be assessed by measuring the total residual concentration of test substance instead of using radiolabelling techniques.
Ak je k dispozícii citlivá špecifická analytická metóda, primárna biodegradácia sa môže namiesto použitia techník rádioaktívneho označovania vyhodnotiť meraním celkovej zvyškovej koncentrácie testovanej látky.
If a radiolabelled test substance is used (to measure total mineralisation), specific chemical analyses can be made in parallel to provide useful additional information and check the procedure.
Ak sa používa rádioaktívne označená testovaná látka (na meranie celkovej mineralizácie), môže sa paralelne uskutočniť špecifická chemická analýza, aby poskytla ďalšie užitočné informácie, a na kontrolu postupu.
The concentration of the test substance and the transformation products at every sampling time should be measured and reported (as a concentration and as percentage of applied).
Koncentrácia testovanej látky a produktov transformácie pri každom odbere sa stanoví a zaznamená (ako koncentrácia a ako percentuálny podiel použitého množstva).
In general, transformation products detected at ≥ 10 % of the applied concentration at any sampling time should be identified unless reasonably justified otherwise.
Vo všeobecnosti sa produkty transformácie stanovené pri ≥ 10 % použitej koncentrácie v ktoromkoľvek čase odberu vzoriek musia identifikovať, pokiaľ neexistuje iný riadne odôvodnený postup.
Transformation products for which concentrations are continuously increasing during the study should also be considered for identification, even if their concentrations do not exceed the limit given above, as this may indicate persistence.
Produkty transformácie, pre ktoré sa koncentrácie trvale zvyšujú počas štúdie, sa tiež posúdia na účely identifikácie, aj keď ich koncentrácie nepresahujú vyššie uvedené limity, lebo to môže byť dôkazom perzistencie.
Analyses of transformation products in sterile controls should be considered, if rapid abiotic transformation of the test substance (e.g. hydrolysis) is thought possible.
Je potrebné zvážiť analýzu produktov transformácie v sterilných kontrolkách, ak sa usudzuje, že by bola možná rýchla abiotická transformácia testovanej látky (napr. hydrolýza).
The need for quantification and identification of transformation products should be considered on a case by case basis, with justifications being provided in the report.
Podľa jednotlivých prípadov je potrebné uvážiť potrebu kvantifikácie a identifikácie a v správe sa uvedú odôvodnenia.
Extraction techniques with organic solvent should be applied according to directions given in the respective analytical procedure.
Extrakčné techniky s organickým rozpúšťadlom sa musia použiť podľa pokynov v príslušnom analytickom postupe.
All samples should be stored at 2 to 4 °C and air-tight if analysis is carried out within 24 hours (preferred).
Všetky vzorky sa musia skladovať pri 2 °C až 4 °C a bez prístupu vzduchu, ak sa analýza uskutoční do 24 hodín (prednostne).
For longer storage, the samples should be frozen below – 18 °C or chemically preserved.
V prípade dlhšieho skladovania sa vzorky zmrazia pod –18 °C alebo sa chemicky zakonzervujú.
Acidification is not a recommended method to preserve the samples, because acidified samples may be unstable.
Acidifikácia ako metóda na konzerváciu vzoriek sa neodporúča, pretože acidifikované vzorky môžu byť nestabilné.
If the samples are not analysed within 24 hours and are subject to longer storage, a storage stability study should be conducted to demonstrate the stability of chemicals of interest under – 18 °C storage or preserved conditions.
Ak sa vzorky neanalyzujú do 24 hodín a skladujú sa dlhšie, je potrebné uskutočniť štúdiu stability počas skladovania, aby sa dokázala stabilita chemických látok, pri skladovaní pod –18 °C alebo v podmienkach konzervácie.
If the analytical method involves either solvent extraction or solid phase extraction (SPE), the extraction should be performed immediately after sampling or after storing the sample refrigerated for a maximum of 24 hours.
Ak analytická metóda obsahuje buď extrakciu rozpúšťadla, alebo extrakciu tuhej fázy (ETF), extrakcia sa musí uskutočniť hneď po odbere vzoriek alebo po uskladnení vzoriek v chladničke maximálne 24 hodín.