natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The following is a description of the components and procedures of a reconstructed human epidermis model test for skin irritation assessment.
Nasleduje opis zložiek a postupov testu na modeli rekonštruovanej ľudskej pokožky na posúdenie podráždenia kože.
A reconstructed human epidermis model can be constructed, prepared or obtained commercially (e.g. EpiSkin™, EpiDerm™ and SkinEthic RHE™).
Model rekonštruovanej ľudskej pokožky sa môže vytvoriť, pripraviť alebo získať komerčne (napr. EpiSkin™, EpiDerm™ a SkinEthic RHE™).
Standard test method protocols for EpiSkin™, EpiDerm™ and SkinEthic RHE™ can be obtained at [http://ecvam.jrc.ec.europa.eu](21, 22, 23).
Štandardné protokoly testovacej metódy pre EpiSkin™, EpiDerm™ a SkinEthic RHE™ možno nájsť na [http://ecvam.jrc.ec.europa.eu] (21, 22, 23).
Testing should be performed according to the following:
Testovanie by sa malo vykonať takto:
Reconstructed Human Epidermis Model Components
Zložky modelu rekonštruovanej ľudskej pokožky
General model conditions
Všeobecné podmienky modelu
Normal human keratinocytes should be used to construct the epithelium.
Na zostavenie epitelu by sa mali použiť normálne ľudské keratinocyty.
Multiple layers of viable epithelial cells (basal layer, stratum spinosum, stratum granulosum) should be present under a functional stratum corneum.
Pod funkčnou rohovitou vrstvou sa musí nachádzať viac vrstiev životaschopných epitelových buniek (bazálna vrstva, vrstva ostnitých buniek, vrstva zrnitých buniek).
Stratum corneum should be multilayered containing the essential lipid profile to produce a functional barrier with robustness to resist rapid penetration of cytotoxic marker substances, e.g. sodium dodecyl sulphate (SDS) or Triton X-100.
Rohovitá vrstva by mala byť viacvrstvová a obsahovať potrebný profil lipidov, aby sa vytvorila silná funkčná bariéra, ktorá odolá rýchlemu prenikaniu cytotoxických markerových látok, ku ktorým patrí napr. dodecylsulfát sodný (SDS) alebo Triton X-100.
The barrier function may be assessed either by determination of the concentration at which a marker substance reduces the viability of the tissues by 50 % (IC50) after a fixed exposure time, or by determination of the exposure time required to reduce cell viability by 50 % (ET50) upon application of the marker substance at a specified, fixed concentration.
Bariérová funkcia sa môže posudzovať buď určením koncentrácie, pri ktorej markerová látka znižuje životaschopnosť tkanív o 50 % (IC50) po stanovenom expozičnom čase, alebo určením expozičného času, ktorý je potrebný na zníženie životaschopnosti buniek o 50 % (ET50) pri používaní markerovej látky v určitej pevne stanovenej koncentrácii.
The containment properties of the model should prevent the passage of material around the stratum corneum to the viable tissue, which would lead to poor modelling of skin exposure.
Izolačné vlastnosti modelu by mali zabrániť prieniku materiálu okolo rohovitej vrstvy do životaschopného tkaniva, čo by viedlo k chybnému modelovaniu vystavenia kože.
The skin model should be free of contamination by bacteria, viruses, mycoplasma, or fungi.
Model kože by nemal byť kontaminovaný baktériami, vírusmi, mykoplazmami ani hubami.
Functional model conditions
Podmienky funkčného modelu
Viability
Životaschopnosť
The preferred assay for determining the magnitude of viability is the MTT (20).
Uprednostňovanou analýzou na určenie stupňa životaschopnosti je MTT (20).
The optical density (OD) of the extracted (solubilised) dye from the tissue treated with the negative control (NC) should be at least 20 fold greater than the OD of the extraction solvent alone.
Optická hustota (optical density – OD) farbiva extrahovaného (rozpusteného) z tkaniva získaného z negatívnej kontroly (negative control – NC) by mala byť aspoň 20-násobne vyššia ako OD samotného extrakčného rozpúšťadla.
It should be documented that the tissue treated with NC is stable in culture (provide similar viability measurements) for the duration of the test exposure period.
Malo by sa zdokumentovať, že tkanivo získané z negatívnej kontroly je stabilné v kultúre (zabezpečuje podobné výsledky merania životaschopnosti) počas expozičného času testu.
Barrier function
Bariérová funkcia
The stratum corneum and its lipid composition should be sufficient to resist the rapid penetration of cytotoxic marker substances, e.g. SDS or Triton X-100, as estimated by IC50 or ET50.
Rohovitá vrstva a zloženie jej lipidov musia byť schopné zabrániť rýchlemu prieniku cytotoxických markerových látok, ku ktorým patrí napr. SDS alebo Triton X-100, podľa odhadu pomocou IC50 alebo ET50.
Histological examination of the reconstructed skin/epidermis should be performed by appropriately qualified personnel demonstrating human skin/epidermis-like structure (including multilayered stratum corneum).
Rekonštruovanú kožu/pokožku by mal histologicky preskúmať riadne kvalifikovaný personál, ktorý musí preukázať, že model rekonštruovanej kože/pokožky má štruktúru podobnú ľudskej koži/pokožke (vrátane viacvrstvovej rohovitej vrstvy).
The results of the method using a specific model should demonstrate reproducibility over time, preferably by an appropriate batch control (benchmark) substance (see Appendix).
Výsledky metódy používajúcej špecifický model by mali preukázať reprodukovateľnosť v čase, najlepšie prostredníctvom príslušnej dávkovanej kontrolnej látky (referenčnej hodnoty) (pozri dodatok).
Quality controls (QC) of the model
Kontroly kvality modelu (QC)
Each batch of the epidermal model used should meet defined production release criteria, among which those for viability (paragraph 1.6.1.2.1) and for barrier function (paragraph 1.6.1.2.2) are the most relevant.
Každá dávka epidermálneho modelu by mala spĺňať stanovené kritériá na uvoľnenie do obehu, v rámci ktorých sú najvýznamnejšie kritériá životaschopnosti (bod 1.6.1.2.1) a bariérovej funkcie (bod 1.6.1.2.2).
An acceptability range (upper and lower limit) for the IC50 or the ET50 should be established by the skin model supplier (or investigator when using an in-house model).
Rozsah prijateľnosti (horná a dolná hranica) pre IC50 alebo ET50 by mal stanoviť poskytovateľ modelu kože (alebo overovateľ v prípade použitia interného modelu).
The barrier properties of the tissues should be verified by the laboratory after receipt of the tissues.
Bariérové vlastnosti tkanív by sa mali overiť v laboratóriu po prijatí tkanív.
Only results produced with qualified tissues can be accepted for reliable prediction of irritation effects.
Na spoľahlivú prognózu účinkov podráždenia sú prijateľné len výsledky získané pomocou kvalifikovaných tkanív.
As an example, the acceptability ranges for the validated reference methods are given below.
Ako príklad sa nižšie uvádzajú rozpätia prijateľnosti pre overené referenčné metódy.
Examples of QC batch release criteria
Príklady kritérií kontroly kvality na uvoľnenie dávok do obehu
Lower acceptance limit
Dolná hranica prijateľnosti
Mean of acceptance range
Stredná hodnota rozpätia prijateľnosti
Upper acceptance limit
Horná hranica prijateľnosti
Validated reference method 1 (18 hours treatment with SDS)
Overená referenčná metóda 1 (18-hodinové ošetrenie SDS)
Validated reference method 2 (1 % Triton X-100)
Overená referenčná hodnota 2 (1 % Triton X100)
Application of the Test and Control Substances
Aplikácia testovacích a kontrolných látok
A sufficient number of tissue replicates should be used for each treatment and for controls (at least three replicates per run).
Pri každom ošetrení a kontrole by sa mal použiť dostatočný počet replík tkaniva (minimálne tri repliky na jeden pokus).
For liquid as well as solid substances, sufficient amount of test substance should be applied to uniformly cover the skin surface while avoiding an infinite dose (see 1.2 Definitions), i.e. a minimum of 25 μL/cm2 or 25 mg/cm2 should be used.
V prípade kvapalných a pevných látok je potrebné na celý povrch kože rovnomerne naniesť dostatočné množstvo testovacej látky, pričom je nutné sa vyhýbať nekonečnej dávke (pozri 1.2. Vymedzenie pojmov), t. j. malo by sa použiť minimálne 25 μL/cm2 alebo 25 mg/cm2.
For solid substances, the epidermis surface should be moistened with deionised or distilled water before application, to ensure good contact with the skin.
V prípade pevných látok by sa mal pred aplikáciou povrch pokožky zvlhčiť deionizovanou alebo destilovanou vodou, aby sa tak zabezpečil dobrý kontakt s kožou.
At the end of the exposure period, the test substance should be carefully washed from the skin surface with aqueous buffer, or 0,9 % NaCl.
Na konci expozičného času sa testovacia látka musí dôkladne zmyť z povrchu kože vodným pufrom alebo 0,9 % roztokom NaCl.
Depending on the reconstructed human epidermis model used, the exposure period may vary between 15 to 60 minutes, and the incubation temperature between 20 and 37 °C.
V závislosti od použitého modelu rekonštruovanej ľudskej pokožky sa expozičný čas môže pohybovať v rozmedzí od 15 do 60 minút a inkubačná teplota v rozmedzí 20 °C a 37 °C.
For details, see the Standard Operating Procedures for the three methods (21, 22, 23).
Ďalšie informácie sa nachádzajú v štandardných pracovných postupoch pre dané tri metódy (21, 22, 23).
Concurrent NC and positive controls (PC) should be used for each study to demonstrate that viability (NC), barrier function and resulting tissue sensitivity (PC) of the tissues are within a defined historical acceptance range.
Pre každú štúdiu by sa mali súbežne vykonať negatívne a pozitívne kontroly, aby sa preukázalo, že životaschopnosť (NC), bariérová funkcia a výsledná tkanivová citlivosť tkanív (PC) sú v rámci stanoveného historického rozpätia prijateľnosti.
The suggested PC substance is 5 % aqueous SDS.
Navrhovaná látka na pozitívnu kontrolu je 5 % vodný SDS.
The suggested NC substances are water or phosphate buffered saline (PBS).
Navrhované látky na negatívnu kontrolu sú voda alebo fosfátom pufrovaný fyziologický roztok (PBS).
Cell Viability Measurements
Merania bunkovej životaschopnosti
The most important element of the test procedure is that viability measurements are not performed immediately after the exposure to the test substances, but after a sufficiently long post-treatment incubation period of the rinsed tissues in fresh medium.
Najdôležitejším prvkom testovacieho postupu je to, že merania životaschopnosti sa nevykonávajú hneď po expozícii testovacím látkam, ale až po dostatočne dlhom inkubačnom čase po ošetrení opláchnutých tkanív v čerstvom médiu.
This period allows both for recovery from weakly irritant effects and for appearance of clear cytotoxic effects.
Tento čas umožňuje regeneráciu po slabo dráždivých účinkoch, ako aj výskyt jasných cytotoxických účinkov.
During the test optimisation phase (9, 10, 11, 12, 13), a 42 hours post-treatment incubation period proved to be optimal and was therefore used in the validation of the reference test methods.
Počas fázy optimalizácie testu (9, 10, 11, 12, 13) sa ako optimálny ukázal byť 42-hodinový inkubačný čas po ošetrení, a preto sa používal pri overovaní referenčných testovacích metód.
The MTT conversion assay is a quantitative validated method which should be used to measure cell viability.
Analýza premeny MTT je overená kvantitatívna metóda, ktorá by sa mala používať na meranie životaschopnosti buniek.
It is compatible with use in a three-dimensional tissue construct.
Je vhodná na použitie v trojrozmernom modeli tkaniva.
The skin sample is placed in MTT solution of appropriate concentration (e.g. 0,3-1 mg/mL) for 3 hours.
Vzorka kože sa na 3 hodiny vloží do roztoku MTT s vhodnou koncentráciou (napr. 0,3 – 1 mg/mL).
The precipitated blue formazan product is then extracted from the tissue using a solvent (e.g. isopropanol, acidic isopropanol), and the concentration of formazan is measured by determining the OD at 570 nm using a bandpass of maximum ±30 nm.
Pomocou rozpúšťadla (napr. izopropanol, kyslý izopropanol) sa potom z tkaniva extrahuje vyzrážaný modrý formazánový produkt, pričom koncentrácia formazánu sa odmeria stanovením OD pri 570 nm pomocou priepustného pásma maximálne ±30 nm.
Optical properties of the test substance or its chemical action on the MTT may interfere with the assay leading to a false estimate of viability (because the test substance may prevent or reverse the colour generation as well as cause it).
Optické vlastnosti testovacej látky alebo jej chemický účinok na MTT môžu interferovať s analýzou, čo vedie k nesprávnemu odhadu životaschopnosti (keďže testovacia látka môže zabraňovať procesu tvorby farby alebo ho zvrátiť, ale rovnako ho môže aj spôsobovať).
This may occur when a specific test substance is not completely removed from the skin by rinsing or when it penetrates the epidermis.
K tomu môže dôjsť, keď sa špecifická testovacia látka úplne neodstráni z kože pri oplachovaní alebo keď prenikne cez pokožku.
If the test substance acts directly on the MTT, is naturally coloured, or becomes coloured during tissue treatment, additional controls should be used to detect and correct for test substance interference with the viability measurement technique.
Ak testovacia látka pôsobí priamo na MTT, je prirodzene zafarbená alebo sa zafarbí pri ošetrovaní tkaniva, musia sa použiť ďalšie kontroly, aby sa zistilo, či nedochádza k interferencii testovacej látky s technikou merania životaschopnosti, a aby sa táto prípadná interferencia skorigovala.
For detailed description of how to test direct MTT reduction, please consult the test method protocol for the validated reference methods (21, 22, 23).
Podrobný opis testovania priamej redukcie MTT sa nachádza v protokole testovacej metódy pre overené referenčné metódy (21, 22, 23).
Non-specific colour (NSC) due to these interferences should not exceed 30 % of NC (for corrections).
Nešpecifická farba (NSC) spôsobená týmito zásahmi by nemala presahovať 30 % negatívnej kontroly (pre korekcie).
If NSC > 30 %, the test substance is considered as incompatible with the test.
Ak NSC > 30 %, testovacia látka sa považuje za nezlučiteľnú s testom.
Assay Acceptability Criteria
Kritériá prijateľnosti analýzy
For each assay using valid batches (see paragraph 1.6.1.2.5), tissues treated with the NC should exhibit OD reflecting the quality of the tissues that followed all shipment and receipt steps and all the irritation protocol process.
Pri každej analýze používajúcej platné dávkovanie (pozri odsek 1.6.1.2.5) by tkanivá spracované negatívnou kontrolou mali vykázať OD, čím by sa prejavila kvalita tkanív po všetkých krokoch zaslania a prijatia a celom procese protokolu podráždenia.
The OD values of controls should not be below historical established lower boundaries.
Hodnoty OD z kontrol by nemali byť nižšie ako historicky stanovené dolné hranice.
Similarly, tissues treated with the PC, i.e. 5 % aqueous SDS, should reflect the sensitivity retained by tissues and their ability to respond to an irritant substance in the conditions of each individual assay (e.g. viability ≤ 40 % for the validated reference method 1, and ≤ 20 % for the validated reference method 2).
Podobne by tkanivá ošetrené pozitívnou kontrolou, t. j. 5 % vodným SDS, mali reflektovať citlivosť, ktorú si tkanivá uchovali, a ich schopnosť reagovať na dráždivú látku v podmienkach každej jednotlivej analýzy (napr. životaschopnosť 40 % pre overenú referenčnú metódu 1 a 20 % pre overenú referenčnú metódu 2).
Associated and appropriate measures of variability between tissue replicates should be defined (e.g. if standard deviations are used they should be ≤ 18 %).
Mali by sa stanoviť súvisiace a vhodné merania variability medzi replikami tkaniva (napr. ak sa použije štandardná odchýlka, mali by byť < 18 %).
For each treatment, data from individual replicate test samples (e.g. OD values and calculated percentage cell viability data for each test substance, including classification) should be reported in tabular form, including data from repeat experiments as appropriate.
Pre každé ošetrenie je potrebné do tabuľky zaznamenať údaje z jednotlivých testovacích vzoriek replikátu (napr. hodnoty OD a vypočítaný percentuálny podiel životaschopnosti buniek pre každú testovaciu látku vrátane klasifikácie) vrátane údajov o duplicitných alebo opakovaných experimentoch.
In addition means ± standard deviation for each trial should be reported.
Okrem toho by sa mali pre každý pokus uvádzať aj stredné hodnoty ± štandardnej odchýlky.
Observed interactions with MTT reagent and coloured test substances should be reported for each tested substance.
Pozorované interakcie s reagentom MTT a zafarbenými testovacími látkami by sa mali oznamovať pre každú testovaciu látku.
The OD values obtained with each test sample can be used to calculate the percentage of viability compared to NC, which is set at 100 %.
Hodnoty OD namerané pre každú testovaciu vzorku sa môžu použiť na výpočet percenta životaschopnosti v porovnaní s negatívnou kontrolou, ktorá je stanovená na 100 %.
The cut-off value of percentage cell viability distinguishing irritant from non-classified test substances and the statistical procedure(s) used to evaluate the results and identify irritant substances, should be clearly defined and documented, and proven to be appropriate.
Je potrebné jasne definovať, dokumentovať a v prípade potreby preukázať hraničnú percentuálnu hodnotu životaschopnosti buniek odlišujúcu od seba dráždivé látky a nezatriedené testovacie látky a štatistické postupy použité pri hodnotení výsledkov a identifikácii dráždivých látok.
The cut-off values for the prediction of irritation associated with the validated reference methods is given below:
Hraničné hodnoty prognózy podráždenia v rámci overených referenčných metód sa uvádzajú nižšie:
The test substance is considered to be irritant to skin in accordance with UN GHS category 2:
Testovacia látka sa pokladá za dráždivú pre kožu v súlade s kategóriou 2 GHS OSN:
if the tissue viability after exposure and post-treatment incubation is less than or equal (≤) to 50 %.
ak životaschopnosť tkaniva po expozičnom a pozorovacom inkubačnom čase je menšia alebo sa rovná (≤) 50 %.
The test substance is considered to have no category:
Testovacia látka nepatrí do žiadnej kategórie:
if the tissue viability after exposure and post-treatment incubation is more than (>) 50 %.
ak životaschopnosť tkaniva po expozičnom a pozorovacom inkubačnom čase je väčšia (>) ako 50 %.
The test report should include the following information:
Správa o teste by mala obsahovať tieto informácie:
Test and Control Substances:
Testovacie a kontrolné látky:
chemical name(s) such as IUPAC or CAS name and CAS number, if known,
chemický názov (chemické názvy), ako napríklad názov podľa IUPAC alebo CAS a číslo CAS, ak je známe,
purity and composition of the substance (in percentage(s) by weight),
čistota a zloženie látky (v hmotnostných percentách),
physical-chemical properties relevant to the conduct of the study (e.g. physical state, stability and volatility, pH, water solubility if known),
fyzikálno-chemické vlastnosti relevantné na vykonanie štúdie (napr. fyzikálny stav, stabilita a nestabilita, pH, rozpustnosť vo vode, ak je známa),
treatment of the test/control substances prior to testing, if applicable (e.g. warming, grinding),
prípadná úprava testovacích/kontrolných látok pred testovaním (napr. zahriatie, rozomletie),
storage conditions.
podmienky skladovania.
Test Conditions:
Podmienky testovania:
calibration information for measuring device, and bandpass used for measuring cell viability (e.g. spectrophotometer),
údaje o kalibrácii zariadenia a priepustnom pásme použitom na meranie životaschopnosti buniek (napr. spektrofotometer),
viability;
životaschopnosť;
barrier function;
bariérová funkcia;
reproducibility and predictivity;
reprodukovateľnosť a predvídateľnosť;
quality controls (QC) of the model;
kontroly kvality modelu (QC),
details of the test procedure used,
podrobné informácie o použitom postupe testovania,
test doses used, duration of exposure and post treatment incubation period,
testovacie dávky, trvanie expozície a pozorovacieho inkubačného času,
acceptability of the QC data with reference to historical batch data;
prijateľnosť údajov o kontrole kvality s odkazom na historické údaje o dávkach;
acceptability of the positive and negative control values with reference to positive and negative control means and ranges,
prijateľnosť hodnôt pozitívnych a negatívnych kontrol s odkazom na prostriedky a miery pozitívnych a negatívnych kontrol,
description of evaluation criteria used including the justification for the selection of the cut-off point(s) for the prediction model.
opis použitých hodnotiacich kritérií vrátane zdôvodnenia výberu hraničných bodov pre model prognózy.
tabulation of data from individual test samples,
údaje z individuálnych testovacích vzoriek spracované v podobe tabuľky,
Discussion of the results.
Rozbor výsledkov.
Conclusions.
Závery.
Available at: http://guidance.echa.europa.eu/docs/guidance_document/information_requirements_en.htm?time=1232447649.
Dostupné na internete: http://guidance.echa.europa.eu/docs/guidance_document/information_requirements_en.htm?time=1232447649.
Test Method B.4.
Testovacia metóda B.4.
ACUTE TOXICITY; DERMAL IRRITATION/CORROSION.
ACUTE TOXICITY; AKÚTNE PODRÁŽDENIE/POLEPTANIE KOŽE.
Test Method B.40.
Testovacia metóda B.40.
IN VITRO SKIN CORROSION: TRANSCUTANEOUS ELECTRICAL RESISTANCE TEST TER.
POLEPTANIE KOŽE IN VITRO: TEST TRANSKUTÁNNEHO ELEKTRICKÉHO ODPORU TER.
Test Method B.40 BIS.
Testovacia metóda B.40A.
IN VITRO SKIN CORROSION: HUMAN SKIN MODEL TEST.
POLEPTANIE KOŽE IN VITRO: TEST NA MODELI ĽUDSKEJ KOŽE.
Available under Download Study Documents, at: http://ecvam.jrc.ec.europa.eu.
Dostupné na internete pod Download Study Documents: http://ecvam.jrc.ec.europa.eu.
Toxicology in Vitro 15, 57-93.
Toxicology in vitro 15, 57 – 93.
Portes, P., Grandidier, M.H., Cohen, C. & Roguet, R.(2002).
Portes, P., Grandidier, M.H., Cohen, C. & Roguet, R. (2002).
Toxicology in Vitro 16, 765-770.
Toxicology in vitro 16, 765 – 770.
ALTEX 21, 107-114.
ALTEX 21, 107 – 114.
ATLA 33, 351-367.
ATLA 33, 351 – 367.
Cotovio, J., Grandidier, M.-H., Portes, P., Roguet, R. & G. Rubinsteen.
Cotovio, J., Grandidier, M. – H., Portes, P., Roguet, R. & G. Rubinsteen.
ATLA 33, 329-249.
ATLA 33, 329 – 349.
ATLA 30,109-129.
ATLA 30,109 – 129.
ATLA 35, 559-601.
ATLA 35, 559 – 601.
ATLA 35, 603-619.
ATLA 35, 603 – 619.
Vol.14, 351-358.
Vol.14, 351 – 358.
Regulation (EC) No 1907/2006 of the European Parliament and of the Council of 18 December 2006 concerning the Registration, Evaluation, Authorisation and Restriction of Chemicals (REACH), establishing a European Chemicals Agency, amending Directive 1999/45/EC and repealing Council Regulation (EEC) No 793/93 and Commission Regulation (EC) No 1488/94 as well as Council Directive 76/769/EEC and Commission Directives 91/155/EEC, 93/67/EEC, 93/105/EC and 2000/21/EC.
Nariadenie Európskeho parlamentu a Rady (ES) č. 1907/2006 z 18. decembra 2006 o registrácii, hodnotení, autorizácii a obmedzovaní chemických látok (REACH) a o zriadení Európskej chemickej agentúry, o zmene a doplnení smernice 1999/45/ES a o zrušení nariadenia Rady (EHS) č. 793/93 a nariadenia Komisie (ES) č. 1488/94, smernice Rady 76/769/EHS a smerníc Komisie 91/155/EHS, 93/67/EHS, 93/105/ES a 2000/21/ES.
Journal of Immunological Methods 65, 55-63.
Journal of Immunological Methods 65, 55 – 63.
Will be available under Download Study Documents, at: http://ecvam.jrc.ec.europa.eu.
Bude dostupné na internete pod Download Study Documents: http://ecvam.jrc.ec.europa.eu.
Practical Contact Dermatitis Mc Graw-Hill New York, pp 7-18
Practical Contact Dermatitis Mc Graw-Hill New York, s. 7 – 18.
FRESHWATER ALGAE AND CYANOBACTERIA, GROWTH INHIBITION TEST
SLADKOVODNÉ RIASY A SINICE, TEST INHIBÍCIE RASTU
This method is equivalent to OECD TG 201 (2006) (1).
Táto metóda je rovnocenná s OECD TG 201 (2006) (1).
Testing Methods are periodically reviewed and updated in the light of scientific progress.
Testovacie metódy sa pravidelne revidujú a aktualizujú vzhľadom na vedecký pokrok.
Testing Method C.3 needed to be revised to include additional species and to meet the requirements for hazard assessment and classification of chemicals.
Bolo potrebné revidovať testovaciu metódu C.3 tak, aby zahŕňala ďalšie druhy a spĺňala požiadavky posudzovania rizika a aby bola uvedená klasifikácia chemických látok.