natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Turner, N.T., Batson, A.G. and Clive, D., (1984) Procedures for the L5178Y/TK+/- — TK+/- Mouse Lymphoma Cell Mutagenicity Assay.
Turner, N.T., Batson, A.G and Clive, D. (1984). Procedures for the L5178Y/TK+/- – TK+/- Mouse Lymphoma Cell Mutagenicity Assay.
Kilbey, B.J. et al (eds.)
In: Kilbey, B.J. et al (eds.) Handbook of Mutagenicity Test Procedures, Elsevier Science Publishers, New York, pp.
Arlett, C.F., Smith, D.M., Clarke, G.M., Green, M.H.L., Cole, J., McGregor, D.B. and Asquith, J.C., (1989) Mammalian Cell Gene Mutation Assays Based upon Colony Formation.
Arlett, C.F., Smith, D.M., Clarke, G.M., Green, M.H.L., Cole, J., McGregor, D.B. and Asquith, J.C. (1989). Mammalian Cell Gene Mutation Assays Based upon Colony Formation. In: Statistical Evaluation of Mutagenicity Test Data, Kirkland, D.J., Ed., Cambridge University Press, pp.
Abbondandolo, A., Bonatti, S., Corti, G., Fiorio, R., Loprieno, N. and Mazzaccaro, A., (1977) Induction of 6-Thioguanine-Resistant Mutants in V79 Chinese Hamster Cells by Mouse-Liver Microsome-Activated Dimethylnitrosamine.
Abbondandolo, A., Bonatti, S., Corti, G, Fiorio, R., Loprieno, N. and Mazzaccaro, A. (1977). Induction of 6 – Thioguanine – Resistant Mutants in V79 Chinese Hamster Cells by Mouse – Liver Microsome – Activated Dimethylnitrosamine.
Mutation Res., 46, p. 365-373.
Mutation Res., 46, 365 – 373.
Ames, B.N., McCann, J. and Yamasaki, E., (1975) Methods for Detecting Carcinogens and Mutagens with the Salmonella/Mammalian-Microsome Mutagenicity Test.
Ames, B.N., McCann, J. and Yamasaki, E. (1975). Methods for Detecting Carcinogens and Mutagens with the Salmonella/Mammalian – Microsome Mutagenicity Test.
Clive, D., Johnson, K.O., Spector, J.F.S., Batson, A.G. and Brown M.M.M., (1979) Validation and Characterisation of the L5178Y/TK+/- Mouse Lymphoma Mutagen Assay System.
Clive, D., Johnson, K.O., Spector, J.F.S., Batson, A.G. and Brown M.M.M. (1979).
Mutat.
Validation and Characterization of the L5178Y/TK+/– Mouse Lymphoma Mutagen Assay System. Mutat.
Res., 59, p. 61-108.
Res., 59, 61 – 108.
Elliott, B.M., Combes, R.D., Elcombe, C.R., Gatehouse, D.G., Gibson, G.G., Mackay, J.M. and Wolf, R.C., (1992) Alternatives to Aroclor 1254-Induced S9 in In Vitro Genotoxicity Assays.
Elliott, B.M., Combes, R.D., Elcombe, C.R, Gatehouse, D.G, Gibson, G.G., Mackay, J.M. and Wolf, R.C. (1992). Alternatives to Aroclor 1254 – Induced S9 in In Vitro Genotoxicity Assays.
In vitro Metabolic Activation in Mutagenesis Testing, de Serres, F.J., Fouts, J.R., Bend, J.R. and Philpot, R.M.
In: In Vitro Metabolic Activation in Mutagenesis Testing, de Serres, F.J., Fouts, J.R., Bend, J.R. and Philpot, RM. (eds), Elsevier, North – Holland, pp.
Applegate, M.L., Moore, M.M., Broder, C.B., Burrell, A. and Hozier, J.C., (1990) Molecular Dissection of Mutations at the Heterozygous Thymidine Kinase Locus in Mouse Lymphoma Cells.
Applegate, M.L., Moore, M.M., Broder, C.B., Burrell, A. and Hozier, J.C. (1990).
USA, 87, p. 51-55.
USA, 87, 51 – 55.
Moore, M.M., Clive, D., Hozier, J.C., Howard, B.E., Batson, A.G., Turner, N.T. and Sawyer, J., (1985) Analysis of Trifluorothymidine-Resistant (TFTr) Mutants of L5178Y/TK+/- Mouse Lymphoma Cells.
Moore, M.M., Clive, D., Hozier, J.C, Howard, B.E., Batson, A.G, Turner, N.T. and Sawyer, J. (1985). Analysis of Trifluorothymidine – Resistant (TFTr) Mutants of L5178Y/TK+/- Mouse Lymphoma Cells.
Mutation Res., 151, p. 161-174.
Mutation Res., 151, 161 – 174.
Yandell, D.W., Dryja, T.P. and Little, J.B., (1990) Molecular Genetic Analysis of Recessive Mutations at a Heterozygous Autosomal Locus in Human Cells.
Yandell, D.W., Dryja, T.P. and Little, J.B. (1990). Molecular Genetic Analysis of Recessive Mutations at a Heterozygous Autosomal Locus in Human Cells.
Mutation Res., 229, p. 89-102.
Mutation Res., 229. 89 – 102.
Moore, M.M. and Doerr, C.L., (1990) Comparison of Chromosome Aberration Frequency and Small-Colony TK-Deficient Mutant Frequency in L5178Y/TK+/- - 3.7.2C Mouse Lymphoma Cells.
Moore, M.M. and Doerr, C.L. (1990). Comparison of Chromosome Aberration Frequency and Small – Colony TK – Deficient Mutant Frequency in L5178Y/TK+/- – 3.7.2C Mouse Lymphoma Cells.
Mutagenesis, 5, p. 609-614.
Mutagenesis, 5, 609 – 614.
The Unscheduled DNA Synthesis (UDS) test measures the DNA repair synthesis after excision and removal of a stretch of DNA containing the region of damage induced by chemical and physical agents.
Test neprogramovanej syntézy DNA (UDS) meria reparačnú syntézu DNA po vyštiepení a odstránení úseku DNA, ktorý obsahuje oblasť poškodenia vyvolaného chemickými a fyzikálnymi agensmi.
The test is based on the incorporation of tritium labelled thymidine (3H-TdR) into the DNA of mammalian cells, which are not in the S phase of the cell cycle.
Test je založený na inkorporácii tymidínu značeného tri ciom (3H -TdR) do DNA buniek cicavcov, ktoré sa nenachádzajú v S fáze bunkového cyklu.
The uptake of 3H-TdR may be determined by autoradiography or by liquid scintillation counting (LSC) of DNA from the treated cells.
Príjem 3H -TdR sa môže determinovať autorádiografiou alebo meraním DNA z ovplyvnených buniek v scintilačnej kvapaline (LSC).
Mammalian cells in culture, unless primary rat hepatocytes are used, are treated with the test agent with and without an exogenous metabolic activation system.
Cicavčie bunky v kultúre, pokiaľ sa nepoužívajú primárne hepatocyty potkanov, sa ovplyvňujú testovaným agensom v prítomnosti, ako aj neprítomnosti exogénneho metabolického aktivačného systému.
UDS may also be measured in in vivo systems.
UDS sa tiež môže merať v in vivo systémoch.
Test chemicals and control or reference substances should be prepared in growth medium or dissolved or suspended in appropriate vehicles and then further diluted in growth medium for use in the assay.
Testované chemikálie a kontrolné alebo odporúčané látky by sa mali pripraviť v rastovom médiu alebo rozpustiť, alebo rozsuspendovať vo vhodnom nosiči, a potom ďalej rozriediť v rastovom médiu na použitie v skúšobnom teste.
The final concentration of the vehicle should not affect cell viability.
Konečná koncentrácia nosiča by nemala ovplyvňovať životaschopnosť buniek.
Primary cultures of rat hepatocytes, human lymphocytes or established cell lines (e.g. human diploid fibroblasts) may be used in the assay.
V skúšobnom teste sa môžu použiť primárne kultúry potkaních hepatocytov, ľudských lymfocytov alebo stabilných bunkových línií (napr. ľudských diploidných fibroblastov).
Cells should be exposed to the test chemical both in the presence and absence of an appropriate metabolic activation system.
Bunky sa vystavujú pôsobeniu testovanej chemikálie tak v prítomnosti, ako aj v neprítomnosti vhodného metabolického aktivačného systému.
Number of cultures
Počet kultúr
At least two cell cultures for autoradiography and six cultures (or less if scientifically justified) for LSC UDS determinations are necessary for each experimental point.
Pre každý krok experimentu sa používajú minimálne dve bunkové línie na autorádiografiu a šesť kultúr (alebo menej, ak je to vedecky overené) na stanovenie UDS pomocou LSC.
Concurrent positive and negative (untreated and/or vehicle) controls with and without metabolic activation should be included in each experiment.
Ku každému experimentu sa pripájajú súbežné pozitívne a negatívne (neovplyvnené vzorky a/alebo vzorka s nosičom) kontroly s alebo bez metabolickej aktivácie.
Examples of positive controls for the rat hepatocyte assay include 7,12- dimethylbenzathracene (7,12- DMBA) or 2-acetylaminofluorene (2-AAF).
Príklady pozitívnych kontrol pre test potkaních hepatocytov zahŕňajú 7,12-dimetylbenzantracén (7,12-DMBA) alebo 2-acetylaminofluorén (2-AAF).
In the case of established cell lines 4-nitroquinoline-N-oxide (4-NQO) is an example of a positive control for both the autoradiographic and LSC assays performed without metabolic activation; N-dimethylnitrosamine is an example of a positive control compound when metabolic activation systems are used.
V prípade stabilných bunkových línií je príkladom pozitívnej kontroly 4-nitrochinolín-N-oxid (4-NQO) ako pre autorádiografický, tak aj pre LSC test vykonaný bez metabolickej aktivácie; N-dimetylnitrózamín je príkladom pozitívnej kontrolnej zlúčeniny, ak sa používa metabolický aktivačný systém.
Multiple concentrations of the test substance over a range adequate to define the response should be used.
Používajú sa mnohonásobné koncentrácie testovanej látky v rozsahu primeranom na definovanie odpovede.
The highest concentration should elicit some cytotoxic effects.
Najvyššia koncentrácia by mala vyvolať určité cytotoxické účinky.
Relatively water-insoluble compounds should be tested up to the limit of solubility.
Vo vode ťažko rozpustné zlúčeniny by sa mali testovať až do hranice rozpustnosti.
For freely water-soluble non-toxic chemicals, the upper test chemical concentration should be determined on a case-by-case basis.
V prípade vo ľahko vode rozpustných netoxických chemikálií sa horná koncentrácia testovanej chemikálie určuje od prípadu k prípadu.
Appropriate growth media, CO2 concentration, temperature and humidity should be used in maintaining cultures.
Na udržiavanie kultúr musia byť použité vhodné rastové médiá, koncentrácia CO2, teplota a vlhkosť.
Established cell lines should be periodically checked for Mycoplasma contamination.
Stabilné bunkové línie sa periodicky kontrolujú na kontamináciu mykoplazmou.
A metabolic activation system is not used with primary hepatocyte cultures.
Metabolický aktivačný systém sa nepoužíva v kultúrach primárnych hepatocytov.
Established cell lines and lymphocytes are exposed to test substance both in the presence and absence of an appropriate metabolic activation system.
Stabilné bunkové línie a lymfocyty sa vystavia testovanej látke tak v prítomnosti, ako aj v neprítomnosti vhodného metabolického aktivačného systému.
Established cell lines are generated from stock cultures (e.g. by trypsinisation or by shaking off), seeded in culture vessels at appropriate density, and incubated at 37 oC.
Stabilné bunkové línie sa získajú zo zásobnej kultúry (napr. trypsinizáciou alebo pretrepávaním), naočkujú do kultivačných nádob v primeranej hustote a inkubujú pri 37 oC.
Short-term cultures of rat hepatocytes are established by allowing freshly dissociated hepatocytes in an appropriate medium to attach themselves to the growing surface.
Krátkodobé kultúry potkaních hepatocytov sa získajú tak, že čerstvo disociovaným hepatocytom sa umožní vo vhodnom médiu pripevniť sa na rastový povrch.
Human lymphocyte cultures are set up using appropriate techniques.
Kultúry ľudských lymfocytov sa zakladajú s použitím primeranej techniky.
Treatment of the cultures with the test substance
Vystavenie kultúr testovanej látke
Primary rat hepatocytes
Primárne potkanie hepatocyty
Freshly isolated rat hepatocytes are treated with the test substance in a medium containing 3H-TdR for an appropriate length of time.
Čerstvo izolované hepatocyty potkanov sa vystavia testovanej látke v médiu obsahujúcom 3H-TdR počas primeraného časového intervalu.
At the end of the treatment period, medium should be drained off the cells, which are then rinsed fixed and dried.
Na konci obdobia vystavenia sa bunky zbavia média, potom premyjú, fixujú a vysušia.
Slides should be dipped in autoradiographic emulsion (alternative stripping film may be used), exposed, developed, stained and counted.
Sklíčka sa ponoria do autorádiografickej emulzie (prípadne sa môže použiť „stripping“ film), exponujú, vyvolajú, farbia a spočítajú.
Established cell lines and lymphocytes
Stabilné bunkové línie a lymfocyty
Autoradiographic techniques: cell cultures are exposed to the test substance for appropriate durations followed by treatment with 3H-TdR.
Autorádiografické techniky: Bunkové kultúry sa ovplyvňujú testovanou látkou na primeraný čas, po ktorom nasleduje ovplyvnenie s 3H-TdR.
The times will be governed by the nature of the substance, the activity of metabolising systems and the type of cells.
Časy ovplyvnenia sa určia povahou látky, aktivitou metabolických systémov a typom buniek.
To detect the peak of UDS, 3H-TdR should be added either simultaneously with the test subsrance or within a few minutes after exposure to the test substance.
Na určenie vrcholu UDS sa pridáva 3H-TdR buď súčasne s testovanou látkou, alebo počas niekoľkých minút po vystavení testovanej látke.
The choice between these two procedures will be influenced by possible interactions between test substance and 3H-TdR.
Výber medzi týmito dvoma postupmi bude ovplyvnený možnými interakciami medzi testovanou látkou a 3H-TdR.
In order to discriminate between UDS and semi-conservative DNA replication, the latter can be inhibited, for example, by the use of an arginine-deficient medium, low serum content or by hydroxyurea in the culture medium.
Na odlíšenie UDS od semikonzervatívnej replikácie DNA sa môže táto inhibovať, napríklad použitím arginín-deficitného média, nízkeho obsahu séra alebo pomocou hydroxyurei v kultivačnom médiu.
LSC measurements of UDS: prior to treatment with test substance, entry of cells into S-phase should be blocked as described above; cells should then be exposed to test chemical as described for autoradiography.
LSC meranie UDS: Pred ovplyvnením testovanou látkou sa vyššie opísaným spôsobom blokuje vstup buniek do S fázy; bunky sa potom vystavia testovanej chemikálii spôsobom opísaným pri autorádiografii.
At the end of the incubation period, DNA should be extracted from the cells and the total DNA content, and the extent of 3H-TdR, incorporation determined.
Na konci inkubačnej doby sa z buniek izoluje DNA a stanoví sa celkový obsah DNA a množstvo inkorporovaného 3H-TdR.
It should be noted that, where human lymphocytes are used in the above techniques, the suppression of semi-conservative DNA replication is unnecessary in unstimulated cultures.
Je potrebné pripomenúť, že pri použití ľudských lymfocytov vo vyššie opísanej technike sa nevyžaduje potlačenie semikonzervatívnej replikácie DNA v nestimulovaných bunkách.
Autoradiographic determinations
Autorádiografické stanovenia
In determining UDS in cells in culture, S-phase nuclei are not counted.
Pri stanovení UDS v bunkách kultúry sa nezapočítavajú jadrá v S fáze.
At least 50 cells per concentration should be counted.
Počíta sa minimálne 50 buniek na koncentráciu.
Slides should be coded before counting.
Sklíčka sa musia pre počítaním označiť.
Several widely separated random fields should be counted on each slide.
Na každom sklíčku je potrebné počítať niekoľko ďaleko od seba uložených, samostatných náhodných polí.
The amount of 3H-TdR incorporation in the cytoplasm should be determined by counting three nucleus-sized areas in the cyptoplasm of each cell counted.
Úroveň začlenenia 3H-TdR v cytoplazme by sa mala určiť zrátaním oblastí trojnásobnej veľkosti jadra v cytoplazme každej rátanej bunky.
LSC determinations
Stanovenie LSC
An adequate number of cultures should be used at each concentration and in the controls in LSC UDS determinations.
Pri stanovení UDS pomocou LSC sa používa primeraný počet kultúr pre každú koncentráciu a v kontrolách.
Data should be presented in tabular form.
Údaje sa prezentujú vo forme tabuliek.
AUTORADIOGRAPHIC DETERMINATIONS
AUTORÁDIOGRAFICKÉ STANOVENIA
The extent of 3H-TdR incorporation in the cytoplasm and the number of grains found over the cell nucleus should be recorded separately.
Rozsah inkorporácie 3H-TdR do cytoplazmy a množstvo zŕn nájdených v bunkovom jadre sa zaznamenávajú osobitne.
Mean, median and mode may be used to describe the distribution of the extent of 3H-TdR incorporation in the cytoplasm and the number of grains per nucleus.
Priemer, medián a modus sa môžu použiť na opis distribúcie rozsahu inkorporácie 3H-TdR do cytoplazmy a množstva granúl na jadro.
LSC DETERMINATIONS
STANOVENIA LSC
For LSC determinations, 3H-TdR incorporation should be reported as dpm/μg DNA.
Na stanovenie LSC sa inkorporácia 3H-TdR udáva dpm/μg DNA.
The mean dpm/μg DNA with standard deviation may be used to describe the distribution of incorporation.
Na opis rozdelenia inkorporácie sa môže použiť priemerná hodnota dpm/μg DNA so štandardnou odchýlkou.
Data should be evaluated using appropriate statistical methods.
Údaje sa vyhodnocujú pomocou vhodných štatistických metód.
cells used, density and passage number at time of treatment, number of cell cultures,
použité bunky, hustota a číslo pasážovania v čase vystavenia, počet bunkových kultúr,
methods used for maintenance of cell cultures including medium, temperature and CO2 concentration,
metódy používané na udržiavanie bunkových kultúr zahŕňajúce živnú pôdu, teplotu a koncentráciu CO2,
test substance, vehicle, concentrations and rationale for selection of concentrations used in the assay,
testovanú látka, nosič, koncentrácie a podklady pre výber použitých koncentrácií v teste,
details of metabolic activation systems,
podrobnosti o metabolických aktivačných systémoch,
treatment schedule,
rozvrh ovplyvnenia,
autoradiographic technique used,
použitá autorádiografická technika,
procedures used to block entry of cells into S-phase,
postupy použité na zablokovanie vstupu buniek do S fázy,
procedures used for DNA extraction and determination of total DNA content in LSC determination,
postupy na extrakciu DNA a stanovenie celkového obsahu DNA pri určení LSC,
dose/response relationship, where possible,
ak je to možné, vzťah dávka/efekt,
statistical evaluation,
štatistické vyhodnotenie,
VALUATION AND INTERPRETATION
VYHODNOTENIE A INTERPRETÁCIA
The Sister Chromatid Exchange (SCE) assay is a short-term test for the detection of reciprocal exchanges of DNA between two sister chromatids of a duplicating chromosome.
Test výmeny sesterských chromatíd (SCE) je krátkodobý test na určenie recipročnej výmeny DNA medzi dvomi sesterskými chromatídami duplikovaných chromozómov.
SCEs represent the interchange of DNA replication products at apparently homologous loci.
SCE predstavuje výmenu produktov DNA replikácie v zdanlivo homo logických lokusoch.
The exchange process presumably involves DNA breakage and reunion, although little is known about its molecular basis.
Proces výmeny pravdepodobne zahŕňa zlom DNA a znovuspojenie, hoci o jeho molekulárnom mechanizme existuje málo poznatkov.
Detection of SCEs requires some means of differentially labelling sister chromatids and this can be achieved by incorporation of bromodeoxyuridine (BrdU) into chromosomal DNA for two cell cycles.
Stanovenie SCE vyžaduje niektoré techniky odlišne značených sesterských chromatíd, čo sa dá dosiahnuť inkorporáciou brómdeoxyuridínu (BrdU) do chromozomálnej DNA počas dvoch bunkových cyklov.
Mammalian cells in vitro are exposed to the test chemical with and without a mammalian exogenous metabolic activation system, if appropriate, and cultured for two rounds of replication in BrdU-containing medium.
Ak je to vhodné, cicavčie bunky sa in vitro vystavia testovanej chemikálii tak v prítomnosti ako aj v neprítomnosti cicavčieho exogénneho metabolického aktivačného systému a inkubujú sa počas dvoch kôl replikácie v médiu obsahujúcom BrdU.
After treatment with a spindle inhibitor (e.g. colchicine) to accumulate cells in a metaphase-like stage of mitosis (c-metaphase), cells are harvested and chromosome preparations are made.
Po ovplyvnení inhibítorom deliaceho vretienka (napr. kolchicínom), s cieľom nahromadenia buniek v štádiu podobnom metafáze mitózy (c-metafáza), sa bunky zozbierajú a vykoná sa izolácia chromozómov.
Primary cultures, (human lymphocytes) or established cell lines (e.g. Chinese hamster ovary cells) may be used in the assay.
Primárne kultúry (ľudské lymfocyty) alebo stabilné bunkové línie (napr. bunky vaječníkov čínskeho škrečka) sa používajú v teste.
Cell lines should be checked for Mycoplasma contamination,
Bunkové línie sa musia kontrolovať na kontamináciu mykoplazmou.
appropriate culture media and incubation conditions (e.g. temperature, culture vessels, CO2 concentration and humidity) should be used,
Používajú sa vhodné kultivačné médiá a inkubačné podmienky (napr. teplota, kultivačné nádoby, koncentrácia CO2 a vlhkosť).
test substances may be prepared in culture media or dissolved or suspended in appropriate vehicles prior to treatment of the cells.
Pred vystavením buniek môžu byť testované látky pripravené v kultivačnom médiu alebo rozpustené, alebo rozsuspendované vo vhodnom nosiči.
The final concentration of a vehicle in the culture system should not significantly affect, cell viability or growth rate and effects on SCE frequency should be monitored by a solvent control,
Konečná koncentrácia nosiča v kultivačnom systéme by nemala významne ovplyvňovať životaschopnosť buniek alebo rýchlosť rastu a vplyvy na frekvenciu SCE sa musia monitorovať kontrolou s rozpúšťadlom.
cells should be exposed to the test substance both in the presence and absence of an exogenous mammalian metabolic activation system.
Bunky sa vystavujú testovanej látke ako v prítomnosti, tak i v neprítomnosti exogénneho cicavčieho metabolického aktivačného systému.
Alternatively, where cell types with intrinsic metabolic activity are used, the rate and nature of the activity should be appropriate to the chemical class being tested.
Ak sa eventuálne používajú typy buniek s endogénnou metabolickou aktivitou, miera a podstata aktivity by mala byť primeraná testovanej triede chemikálií.
At least duplicate cultures should be used for each experimental point.
Pre každý bod experimentu sa musia použiť minimálne zdvojené kultúry.
Positive controls, using both a direct acting compound and a compound requiring metabolic activation should be included in each experiment; a vehicle control should also be used.
Do každého experimentu by sa mali zahrnúť pozitívne kontroly využívajúce priamo pôsobiace zlúčeniny, ako aj zlúčeniny vyžadujúce metabolickú aktiváciu; tiež sa musí použiť nosičová kontrola.
The following are examples of substances which might be used as positive controls:
Nasledujú príklady látok, ktoré sa môžu použiť ako pozitívna kontrola:
direct acting compound:
priamo pôsobiaca zlúčenina,
ethylmethanesulphonate,
etylmetánsulfonát,
indirect acting compound:
nepriamo pôsobiaca zlúčenina,
cyclophosphamide.
cyklofosfamid.
When appropriate, an additional positive control of the same chemical class as the chemical under test may be included.
V prípade, že je to vhodné, môže sa zahrnúť ďalšia pozitívna kontrola rovnakej chemickej triedy ako testovaná chemikália.
At least three adequately spaced concentrations of the test substance should be used.
Mali by sa použiť minimálne tri zodpovedajúco rozložené koncentrácie testovanej látky.
The highest concentration should give rise to a significant toxic effect but must still allow adequate cell replication to occur.
Najvyššia koncentrácia by mala vyvolať významný toxický účinok, ale napriek tomu musí umožniť uskutočnenie bunkového delenia.
Relatively water-insoluble substances should be tested up to the limit of solubility using appropriate procedures.
Vo vode ťažko rozpustné látky sa majú testovať až do úrovne rozpustnosti s použitím vhodných postupov.
For freely water-soluble non-toxic substances the upper test substance concentration should be determined on a case-by-case basis.
Pre voľne rozpustné netoxické látky sa horná koncentrácia testovanej látky určuje od prípadu k prípadu.
Established cell lines are generated from stock cultures (e.g. by trypsinisation or by shaking off), seeded in culture vessels at appropriate density and incubated at 37 oC.
Stabilné bunkové línie sa získajú zo zásobnej kultúry (napr. trypsinizáciou alebo pretrepávaním), naočkujú do kultivačnej nádoby v primeranej hustote a inkubujú pri 37 oC.
For monolayer cultures, the number of cells per culture vessel should be adjusted so that the cultures are not much more than 50 % confluent at the time of harvest.
Pri monovrstvových kultúrach sa počet buniek v kultivačnej nádobe prispôsobí tak, aby kultúry v období zberania neboli splynuté na viac ako 50 %.
Alternatively, cells may be used in suspension culture.
Bunky sa prípadne môžu použiť v suspenznej kultúre.
Human lymphocyte cultures are set up from heparinized blood, using appropriate techniques, and incubated at 37 oC.
Kultúry ľudských lymfocytov sa zakladajú z heparinizovanej krvi pri použití primeraných techník a inkubujú pri 37 oC.
Treatment
Vystavenie