natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For this calculation, the weight of the fish in each test chamber can be estimated from the weight of the fish sampled most recently in that chamber.
Na účely takéhoto výpočtu možno hmotnosť rýb nachádzajúcich sa v testovacej komore odhadnúť na základe hmotnosti rýb odobratých z danej komory pri poslednom odbere vzoriek.
Do not weigh the fish remaining in the chamber.
Ryby, ktoré zostávajú v pokusnej komore, sa nesmú vážiť.
Uneaten food and faeces are siphoned daily from the test chambers shortly after feeding (30 minutes to 1 hour).
Neskonzumované krmivo aj výkaly sa z testovacej komory denne odsávajú, a to krátko po skončení kŕmenia (do pol až jednej hodiny).
Chambers are kept as clean as possible throughout the test so that the concentration of organic matter is kept as low as possible, since the presence of organic carbon may limit the bioavailability of the test substance (1).
Testovacie komory treba počas celého testovacieho obdobia udržiavať v čo možno najčistejšom stave, aby sa na čo možno najnižšiu úroveň znižovala aj koncentrácia organickej hmoty. Prítomnosť organicky viazaného uhlíka totiž môže obmedzovať biologickú dostupnosť testovanej látky (1).
Since many feeds are derived from fishmeal, the feed should be analysed for the test substance.
Mnohé krmivá obsahujú rybaciu múčku, krmivo je preto potrebné analyzovať na prítomnosť testovanej látky.
It is also desirable to analyse the feed for pesticides and heavy metals.
Je žiaduce, aby sa v krmive stanovoval aj obsah pesticídov a ťažkých kovov.
Light and temperature
Svetlo a teplota
The photoperiod is usually 12 to 16 hours and the temperature (± 2 °C) should be appropriate for the test species (see Appendix 2).
Dĺžka fotoperiódy je zvyčajne 12 až 16 hodín a teplota (± 2 oC) by mala byť primeraná druhu testovacích rýb (dodatok 2).
The type and characteristics of illumination should be known.
Musí byť známy typ osvetlenia a jeho charakteristiky.
Caution should be given to the possible phototransformation of the test substance under the irradiation conditions of the study.
Treba zachovávať opatrnosť z hľadiska možnosti fototransformácie testovanej látky pod vplyvom svetelných podmienok štúdie.
Appropriate illumination should be used avoiding exposure of the fish to unnatural photoproducts.
Treba udržiavať primerané osvetlenie, aby sa ryby nevystavovali účinkom neprirodzených fotoproduktov.
In some cases it may be appropriate to use a filter to screen out UV irradiation below 290 nm.
V niektorých prípadoch môže byť potrebné používať filtre na elimináciu ultrafialového žiarenia s vlnovou dĺžkou nižšou ako 290 nm.
Fish are exposed under flow-through conditions to at least two concentrations of the test substance in water.
Ryby sa v prietočných podmienkach vystavujú najmenej dvom koncentráciám testovanej látky vo vode.
Normally, the higher (or highest) concentration of the test substance are selected to be about 1 % of its acute asymptotic LC50, and to be at least ten-fold higher than its detection limit in water by the analytical method used.
Vyššia (alebo najvyššia) koncentrácia testovanej látky sa zvyčajne volí tak, aby predstavovala približne 1 % jej akútnej asymptotickej LC50 a aby bola najmenej desať ráz vyššia ako jej prah detegovateľnosti pomocou používanej analytickej metódy.
The highest test concentration can also be determined by dividing the acute 96 h LC50 by an appropriate acute/chronic ratio (appropriate ratios for some chemicals can be about 3 up to 100).
Najvyššiu testovanú koncentráciu tiež možno stanoviť vydelením hodnoty akútnej 96-hodinovej LC50 príslušným pomerom akútnej/chronickej koncentrácie (príslušné pomery sa môžu pri niektorých chemikáliách pohybovať od 3 to 100).
If possible, choose the other concentration(s) such that it differs from the one above by a factor of ten.
Ak je to možné, druhú (prípadne ďalšie) z testovaných koncentrácií treba voliť tak, aby sa od prvej odlišovala/odlišovali o faktor 10.
Where a solubilising agent is used its concentration should not be greater than 0,1 ml/l and should be the same in all test vessels.
V prípade použitia solubilizačného činidla nesmie byť jeho koncentrácia vyššia ako 0,1 ml/l a malo by byť rovnaké pre všetky pokusné nádrže.
Its contribution, together with the test substance, to the overall content of organic carbon in the test water should be known.
Musí byť známe, akým spôsobom prispievajú spoločne s testovanou látkou k celkovému obsahu organicky viazaného uhlíka v testovanej vode.
However, every effort should be made to avoid the use of such materials.
Je však potrebné vynaložiť maximálne úsilie, aby sme sa vyhli použitiu týchto látok.
One dilution water control or if relevant, one control containing the solubilising agent should be run in addition to the test series, provided that it has been established that the agent has no effects on the fish.
Okrem pokusných skupín je potrebné mať aj kontrolnú skupinu udržiavanú iba v riediacej vode a v príslušných prípadoch aj kontrolnú skupinu udržiavanú v riediacej vode s prídavkom iba solubilizačného činidla. Podmienkou je, aby solubilizačné činidlo nemalo na ryby žiadny účinok.
If not, both controls should be set up.
Ak takýto účinok má, potom je potrebné zaradiť do pokusu obidve kontrolné skupiny.
Frequency of water quality measurements
Frekvencia merania kvality vody
During the test, dissolved oxygen, TOC, pH and temperature should be measured in all vessels.
Počas testu treba vo všetkých nádržiach sledovať obsah rozpusteného kyslíka, TOC, pH a teplotu.
Total hardness and salinity, if relevant, should be measured in the controls and one vessel at the higher (or highest) concentration.
Pri kontrolnej skupine a v jednej nádrži s vyššou (najvyššou) koncentráciou treba merať celkovú tvrdosť, a ak to prichádza do úvahy, aj slanosť vody.
As a minimum, dissolved oxygen and salinity, if relevant, should be measured three times — at the beginning, around the middle and end of the uptake period — and once a week in the depuration period.
Množstvo rozpusteného kyslíka, a ak to prichádza do úvahy, aj slanosť je počas vychytávacej fázy potrebné merať minimálne tri razy, t. j. na jej začiatku, približne v strede a na konci. Počas depuračnej fázy treba tieto hodnoty merať raz týždenne.
TOC should be measured at the beginning of the test (24 h and 48 h prior to test initiation of uptake phase) before addition of the fish and at least once a week, during both uptake and depuration phases.
TOC sa musí merať na začiatku testu (24 a 48 hodín pred začatím vychytávacej fázy) pred pridaním rýb a potom najmenej raz týždenne počas vychytávacej aj depuračnej fázy.
Temperature should be measured daily, pH at the beginning and end of each period and hardness once each test.
Teplotu treba merať denne, pH na začiatku a konci každého obdobia a tvrdosť raz počas každého testu.
Temperature should preferably be monitored continuously in at least one vessel.
Aspoň v jednej nádrži by sa malo zabezpečiť kontinuálne meranie teploty.
Sampling and analysis of fish and water
Odber a analyzovanie vzoriek rýb a vody
Fish and water sampling schedule
Harmonogram odoberania vzoriek rýb a vody
Water from the test chambers for the determination of test substance concentration is sampled before addition of the fish and during both uptake and depuration phases.
Voda na stanovenie koncentrácie testovanej látky sa z testovacích nádrží odoberá pred pridaním rýb a počas vychytávacej i depuračnej fázy. Vzorky vody sa ako minimum odoberajú v rovnakom čase ako ryby a tiež pred kŕmením.
As a minimum, the water is sampled at the same time as the fish and before feeding.
Počas vychytávacej fázy sa merajú koncentrácie testovanej látky, aby sa overovalo spĺňanie kritéria platnosti.
During the uptake phase, the concentrations of test substance are determined in order to check compliance with the validity criteria.
Vzorky rýb sa odoberajú najmenej päť ráz počas vychytávacej a najmenej štyri razy počas depuračnej fázy.
Fish is sampled on at least five occasions during the uptake phase and at least on four occasions during the depuration phase.
Dostatočne presné hodnoty BCF sa niekedy pri takomto počte vzoriek vypočítavajú veľmi ťažko, najmä ak sa depurácia zjavne riadi inou ako jednoduchou kinetikou prvého poriadku.
Since on some occasions it will be difficult to calculate a reasonably precise estimate of the BCF value based on this number of samples, especially when other than simple first-order depuration kinetics are indicated, it may be advisable to take samples at a higher frequency in both periods (see Appendix 4).
V takýchto prípadoch je žiaduce robiť odber počas oboch fáz častejšie (pozri dodatok 4).
The extra samples are stored and analysed only if the results of the first round of analyses prove inadequate for the calculation of the BCF with the desired precision.
Navyše odobraté vzorky sa uskladňujú a analyzujú iba vtedy, ak sa výsledky prvého kola analýz ukážu byť pre výpočet BCF s požadovanou presnosťou nedostatočné.
An example of an acceptable sampling schedule is given in Appendix 4.
Príklad prijateľného harmonogramu odberu vzoriek je uvedený v dodatku 4.
Other schedules can readily be calculated using other assumed values of Pow to calculate the exposure time for 95 % uptake.
Jednoducho možno vypočítať aj iné harmonogramy, použijúc pri tom iné predpokladané hodnoty Pow potrebné na výpočet dĺžky vystavenia, ktorá je potrebná na dosiahnutie 95 % vychytávania.
Sampling is continued during the uptake phase until a steady-state has been established or for 28 days, whichever is the shorter.
Počas vychytávacej fázy pokračujú odbery až po dosiahnutie rovnovážneho stavu alebo počas 28 dní, podľa toho, čo nastane skôr.
If the steady-state has not been reached within 28 days sampling continues until a steady-state has been attained or for 60 days, whichever is shorter.
Ak sa rovnovážny stav do 28 dní nedosiahne, odbery pokračujú až do jeho dosiahnutia alebo počas 60 dní, podľa toho, čo nastane skôr.
Before beginning the depuration phase the fish are transfered to clean tanks.
Pred začatím depuračnej fázy sa ryby premiestnia do čistej nádrže.
Sampling and Sample Preparation
Odber a príprava vzoriek
Water samples for analysis are obtained e.g. by siphoning through inert tubing from a central point in the test chamber.
Vzorky vody sa na analyzovanie odoberajú napríklad odsávaním pomocou inertnej hadičky zo stredu testovacej nádrže.
Since neither filtration nor centrifuging appear always to separate the non-bioavailable fraction of the test substance from that which is bioavailable (especially for super-lipophilic chemicals i.e. those chemicals with a log Pow > 5) (1) (5), samples may not be subjected to those treatments.
Oddelenie frakcií testovanej látky dostupných pre biodegradáciu od frakcií pre biodegradáciu nedostupných často nemožno uskutočniť ani filtráciou, ani centrifugáciou (najmä v prípade superlipofilných chemikálií s hodnotou log Pow > 5 (1) (5), takže podrobovať vzorky týmto postupom nemusí byť potrebné.
Instead, measures should be taken to keep the tanks as clean as possible and the content of total organic carbon should be monitored during both the uptake and depuration phases.
Namiesto toho treba vykonávať také opatrenia, ktoré zabezpečia čo možno najlepšiu čistotu nádrží, a počas vychytávacej aj depuračnej fázy treba sledovať obsah celkového organicky viazaného uhlíka.
An appropriate number of fish (normally a minimum of four) is removed from the test chambers at each sampling time.
Pri každom odbere vzoriek sa z testovacích nádrží odoberie primeraný počet rýb (zvyčajne minimálne štyri).
The sampled fish are rinsed quickly with water, blot ‘dry’, killed instantly using the most appropriate and humane method, and then weighed.
Odobraté ryby sa rýchle opláchnu, osušia pomocou absorpčného materiálu a pomocou najprimeranejšej a najhumánnejšej metódy ihneď usmrtia a odvážia.
It is preferable to analyse fish and water immediately after sampling in order to prevent degradation or other losses and to calculate approximate uptake and depuration rates as the test proceeds.
Voda aj ryby by sa mali analyzovať podľa možnosti ihneď po odbere, čím sa predíde degradácii alebo iným stratám. Priebežne počas vykonávania testu treba vypočítavať približné rýchlosti vychytávania a depurácie.
Immediate analysis also avoids delay in determining when a plateau has been reached.
Okamžitým vykonávaním analýz predídeme aj oddialeniu identifikácie dosiahnutia rovnovážneho stavu.
Failing immediate analysis, samples are stored by an appropriate method.
Pri oddialení analýz treba vzorky primeraným spôsobom uskladniť.
Before the beginning of the study, information on the proper method of storage for the particular test substance — for example, deep-freezing, holding at 4 0C, duration of storage, extraction, etc. are obtained.
Pred začatím štúdie sa treba oboznámiť so správnym spôsobom skladovania danej testovanej látky – napríklad zamrazením, skladovaním pri 4 oC, extrahovaním atď.
Quality of Analytical method
Kvalita analytických metód
Since the whole procedure is governed essentially by the accuracy, precision and sensitivity of the analytical method used for the test substance, check experimentally that the precision and reproducibility of the chemical analysis, as well as recovery of the test substance from both water and fish are satisfactory for the particular method.
Celý postup v zásade závisí od presnosti a citlivosti analytických metód používaných pri testovanej látke. Treba preto experimentálne overiť, či sú presnosť a reprodukovateľnosť chemických analýz, ako aj úroveň opätovného získania testovanej látky z vody aj z rýb pre danú metódu uspokojivé.
Also, check that the test substance is not detectable in the dilution water used.
Treba tiež overiť, či nie je testovaná látka v detegovateľných množstvách prítomná v riediacej vode.
If necessary, the values of Cw and Cf obtained from the test are corrected for the recoveries and background values of controls.
V prípade potreby sa hodnoty Cw a Cf získané z testu upravia podľa úrovne opätovného získania testovanej látky a hodnôt pozadia zistených pri kontrolách.
Fish and water samples are handled throughout in such a manner as to minimise contamination and loss (e.g. resulting from adsorption by the sampling device).
So vzorkami rýb aj vody je potrebné počas celého testovania zaobchádzať tak, aby sa minimalizovala koncentrácia a straty (vznikajúce napríklad v dôsledku absorpcie na odoberacie zariadenie).
Analysis of Fish Sample
Analyzovanie rybích vzoriek
If radiolabelled materials are used in the test, it is possible to analyse for total radio label (i.e. parent and metabolites) or, the samples may be cleaned up so that parent compound can be analysed separately.
V prípade použitia rádioaktívne označeného materiálu možno stanovovať celé množstvo označenej látky (t. j. materskú zlúčeninu aj jej metabolity) alebo možno vzorky prečistiť a stanovovať materskú látku osobitne.
Also, the major metabolites may be characterised at steady-state or at the end of the uptake phase, whichever is the sooner.
V rovnovážnom stave alebo na konci vychytávacej fázy, podľa toho, čo nastane skôr, možno charakterizovať aj hlavné metabolity.
If the BCF in terms of total radiolebelled residues is ≥ 1000 %, it may be advisable, and for certain categories of chemicals such as pesticides strongly recommended, to identify and quantify degradates representing ≥ 10 % of total residues in fish tissues at steady state.
V prípadoch, v ktorých je hodnota BCF vyjadreného celkovým množstvom rádioaktívnych zvyškov ≥ 1000 %, môže byť žiaduce a pre niektoré kategórie chemických látok, ako sú pesticídy, sa to dôrazne odporúča, aby sa identifikovali a kvantifikovali tie degradačné produkty testovanej látky, ktoré v rybích tkanivách predstavujú v rovnovážnom stave ≥ 10 % celkového množstva zvyškov.
If degradates representing ≥ 10 % of total radiolabelled residues in the fish tissue are identified and quantified, then it is also recommended to identify and quantify degradates in the test water.
Po identifikácii a kvantifikácii degradačných produktov, ktoré predstavujú v rybích tkanivách ≥ 10 % celkového množstva rádioaktívnych zvyškov, sa tiež odporúča identifikácia a kvantifikácia takýchto degradačných produktov aj v testovanej vode.
The concentration of the test substance should usually be determined for each weighed individual fish.
Koncentráciu testovanej látky je zvyčajne potrebné stanoviť v každej jednej odváženej rybe.
If this is not possible, pooling of the samples on each sampling occasion may be done but pooling does restrict the statistical procedures which can be applied to the data.
Ak to nie je možné, potom možno vzorky odobraté pri rovnakom odbere spájať, hoci spájaním sa obmedzujú štatistické metódy, ktoré možno použiť pri spracúvaní výsledkov.
If a specific statistical procedure and power are important considerations, then an adequate number of fish to accommodate the desired pooling procedure and power should be included in the test (6) (7).
Ak má niektorá štatistická metóda a stupeň štatistickej významnosti osobitnú dôležitosť, potom je potrebné použiť v teste taký počet rýb, ktorý umožní uskutočniť požadovaný spôsob spájania vzoriek (6) (7).
BCF should be expressed both as a function of total wet weight and, for high lipophilic substances, as a function of the lipid content.
BCF je potrebné vyjadriť ako funkciu celkovej vlhkej hmotnosti a v prípade vysoko lipofilných látok aj ako funkciu obsahu tuku.
Lipid content of the fish is determined on each sampling occasion if possible.
Ak je to možné, obsah tuku treba stanoviť pri každom odbere vzoriek.
Suitable methods should be used for determination of lipid content (ref. 8 and 2 of Appendix 3).
Obsah tuku treba stanoviť pomocou vhodnej metódy (literárne odkazy 8 a 2 v dodatku 3).
Chloroform/methanol extraction technique may be recommended as standard method (9).
Ako štandardnú metódu možno odporúčať extrakciu zmesou chloroformu a metanolu (9).
The various methods do not give identical values (10), so it is important to give details of the method used.
Jednotlivé metódy neposkytujú rovnaké výsledky (10), pri každej z nich je preto dôležité uviesť podrobné údaje.
When possible, the analysis for lipid should be made on the same extract as that produced for analysis for the test substance, since the lipids often have to be removed from the extract before it can be analysed chromatographically.
Ak je to možné, obsah tuku treba stanovovať v rovnakom extrakte, ktorý sa pripravil na analyzovanie testovanej látky, pretože tuky býva často potrebné pred chromatografickým krokom zo vzorky odstrániť.
The lipid content of the fish (as mg/kg wet weight) at the end of the experiment should not differ from that at the start by more ± 25 %.
Obsah tukov v rybách (ako mg/kg vlhkej hmotnosti) na konci pokusu by sa nemal líšiť od obsahu tukov na jeho začiatku o viac ako ± 25 %.
The tissue percent solids should also be reported to allow conversion of lipid concentration from a wet to a dry basis.
Treba zaznamenať aj percentuálny obsah sušiny v tkanivách, aby bolo možné vyjadriť obsah tuku aj na suchú hmotnosť.
The uptake curve of the test substance is obtained by plotting its concentration in/on fish (or specified tissues) in the uptake phase against time on arithmetic scales.
Vychytávacia krivka testovanej látky sa získa grafickým vynášaním koncentrácie v/na rybách (alebo určenom tkanive) počas vychytávacej fázy proti času na aritmetických osiach.
If the curve has reached a plateau, that is, become approximately asymptotic to the time axis, the steady-state BCFss is calculated from:
Ak krivka dosiahne plató, t. j. ak sa stane približne asymptotická k časovej osi, potom možno rovnovážnu hodnotu BCFSS vypočítať zo vzťahu:
as steady-state (mean)
rovnovážne (priemer)
When no steady-state is reached, it may be possible to calculate a BCFss of sufficient precision for hazard assessment from a ‘steady-state’ at 80 % (1,6/k2) or 95 % (3,0/k2) of equilibrium.
Ak sa rovnovážny stav nedosiahne, potom sa môže dať BCFSS vypočítať s presnosťou dostatočnou na vyhodnotenie rizika na základe „rovnovážneho stavu“ pri 80 % (1,6/k2) alebo 95 % (3,0/k2) rovnováhe.
Also the concentration factor (BCFK) is determined, as the ratio k1/k2, the two first-order kinetic constants.
Stanovuje sa aj koncentračný faktor (BCFK), ktorý je vyjadrený ako pomer dvoch kinetických konštánt prvého poriadku, t. j. k1/k2.
The depuration rate constant (k2) is usually determined from the depuration curve (i.e. a plot of the decrease in test substance concentration in the fish with time).
Rýchlostná konštanta depurácie (k2) sa zvyčajne stanovuje z depuračnej krivky (t. j. z grafického znázornenia znižovania koncentrácie testovanej látky v rybách v závislosti od času).
The uptake rate constant (k1) is then calculated given k2 and a value of Cf which is derived from the uptake curve (see also Appendix 5).
Z hodnoty k2 a na základe Cf, ktorá je odvodená z vychytávacej krivky, sa potom vypočíta rýchlostná konštanta vychytávania (k1) (pozri tiež dodatok 5).
The preferred method for obtaining BCFK and the rate constants, k1 and k2, is to use non-linear parameter estimation methods on a computer (11).
Prednostným spôsobom stanovovania BCFK a oboch rýchlostných konštánt k1 a k2 sú nelineárne metódy odhadovania parametrov pomocou počítača (11).
Otherwise, graphical methods may be used to calculate k1 and k2.
Na výpočet k1 a k2 možno okrem toho použiť grafické metódy.
If the depuration curve is obviously not first-order, then more complex models should be employed (see references in Appendix 3) and advice from a biostatistician sought.
V prípade zjavnej nelineárnosti depuračnej krivky (t. j. ak sa depurácia neriadi kinetikou prvého poriadku) treba použiť komplexnejšie modely (pozri literárne odkazy v dodatku 3) a poradiť sa s bioštatistikom.
The results should be interpreted with caution where measured concentrations of test solutions occur at levels near the detection limit of the analytical method.
V prípadoch, v ktorých sa koncentrácie testovaných roztokov pohybujú na úrovni blízkej prahu detegovateľnosti analytickej metódy, treba interpretovať výsledky s veľkou opatrnosťou.
Clearly defined uptake and loss curves are an indication of good quality bioconcentration data.
Jasne vymedzené krivky vychytávania a odbúravania sú príznakom dobrej kvality údajov o biokoncentrácii.
The variation in uptake/depuration constants between the two test concentrations should be less than 20 %.
Rozdiely vychytávacích/depuračných konštánt medzi dvoma testovanými koncentráciami musia byť menšie ako 20 %.
Observed significant differences in uptake/depuration rates between the two applied test concentrations should be recorded and possible explanations given.
Významné rozdiely v rýchlosti vychytávania a depurácie medzi dvoma testovacími koncentráciami treba zaznamenať a treba sa pokúsiť sa o ich možné vysvetlenie.
Generally the confidence limit of BCFs from well-designed studies approach ± 20 %.
Medza spoľahlivosti hodnôt BCF sa pri dobre zostavených štúdiách zvyčajne približuje k hodnote ± 20 %.
TEST SUBSTANCE:
TESTOVANÁ LÁTKA
chemical identification data (including the organic carbon content, if appropriate),
identifikačné chemické údaje (vrátane obsahu organicky viazaného uhlíka, ak to prichádza do úvahy)
if radio labelled, the precise position of the labelled atom(s) and the percentage of radioactivity associated with impurities.
v prípade rádioaktívneho označenia presná poloha označeného atómu/označených atómov a percento rádioaktivity viazanej na nečistoty/prímesi.
TEST SPECIES
TESTOVACÍ BIOLOGICKÝ DRUH
scientific name, strain, source, any pre-treatment, acclimation, age, size-range, etc.
vedecký názov, kmeň, pôvod, všetky zásahy uskutočnené pred pokusom, aklimatizácia, vek, rozsah hmotností atď.
TEST CONDITIONS:
TESTOVACIE PODMIENKY
test procedure used (e.g. flow-through or semi-static),
typ pokusu (napríklad prietočný alebo poloprietočný systém),
type and characteristics of illumination used and photoperiod(s),
typ a charakteristiky osvetlenia a dĺžka svetlej fázy/svetlých fáz,