natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The polyacrylamide gel can be cut to smaller sizes, recommended when there are few samples or if an automatic electrophoresis device is used (two gels, size 4,5 × 5 cm).
Polyakrylamidový gél možno rozrezať na menšie kúsky, čo sa odporúča vtedy, ak je málo vzoriek, alebo ak sa používa automatické elektroforézne zariadenie (dva gély s rozmermi 4,5 × 5 cm).
lsoelectric focusing
Izoelektrické zaostrovanie
Set the cooling thermostat to 12 °C.
Termostat chladenia nastavte na 12 °C.
Wipe off the reverse of the gel carrier sheet with kerosene, then drip a few drops of kerosene (4.2) onto the centre of the cooling block.
Opačnú stranu fólie na gél očistite kerozínom, potom kvapnite niekoľko kvapiek kerozínu (4.2) do stredu chladiaceho bloku.
Then roll the gel sandwich, carrier side down, onto it, taking care to avoid bubbles.
Potom naň položte gélový sendvič, fóliou na gél smerom nadol, vyhnite sa pritom tvorbe bubliniek.
Wipe off any excess kerosene and remove the cover sheet.
Prebytočný kerozín odstráňte a odstráňte kryciu fóliu.
Soak the electrode strips with the electrode solutions (4.3, 4.4), cut to gel length and place in the positions provided (distance of electrodes 9,5 cm).
Elektródové pásy ponorte do elektródových roztokov (4.3, 4.4), odrežte na dĺžku gélu a umiestnite na dané miesta (vzdialenosť elektród –9,5 cm).
Conditions for isoelectric focusing:
Podmienky izoelektrického zaostrovania:
Gel size 265 × 125 × 0,25 mm
Rozmer gélu 265 × 125 × 0,25 mm
Voltage
Napätie
Current
Prúd
Volt-hours
Volthodiny
Pre-focusing
Predbežné zaostrenie
maximum 2500
max. 2500
maximum 15
max. 15
constant 4
konštantný 4
Sample focusing [2]
Zaostrenie vzorky [2]
Final focusing
Záverečné zaostrenie
maximum 5
max. 5
maximum 20
max. 20
maximum 6
max. 6
maximum 7
max. 7
maximum 25
max. 25
Note: If thickness or width of the gels are changed, the values for current and power have to be suitably adjusted (e.g. double the values for electric current and power if a 265 × 125 × 0,5 mm gel is used).
Poznámka: Ak sa zmení hrúbka alebo šírka gélov, hodnoty prúdu a výkonu treba vhodne upraviť (napr. dvojnásobok hodnoty pre elektrický prúd a výkon, ak sa používa gél s rozmermi 265 × 125 × 0,5 mm).
Example of a voltage programme for an automatic electrophoresis device (2 gels of 5,0 × 4,5 cm), electrodes without strips applied directly to the gel
Príklad programu napätia pre automatické elektroforézne zariadenie (2 gély, 5 × 4,5 cm), elektródy bez pásov sa aplikujú priamo na gél.
Temp.
Teplota
Sample focusing
Zaostrenie vzorky
Focusing
Zaostrenie
Place sample applicator in step 2 at 0 Vh.
Aplikátor vzorky vložte v kroku 2 pri 0 Vh.
Remove sample applicator in step 2 at 30 Vh.
Aplikátor vzorky odložte v kroku 2 pri 30 Vh.
Protein staining
Farbenie proteínov
Protein fixation
Ustálenie proteínov
Remove the electrode strips immediately after turning off the power and put the gel immediately into a staining/destaining dish filled with 200 ml fixative (4.9); leave for 15 minutes, shaking continuously.
Ihneď po vypnutí zariadenia odstráňte elektródové pásy a gél ihneď vložte do misky na farbenie/odfarbovanie naplnenej 200 ml ustaľovačom (4.9), za stáleho pretrepávania odložte na 15 min.
Washing and staining the gel plate
Umývanie a farbenie gélovej doštičky
Thoroughly drain off the fixative and wash the gel plate twice for 30 seconds each time with 100 ml destaining solution (4.10).
Dôkladne odstráňte ustaľovač a gélovú doštičku umyte dvakrát po 30 sekúnd 100 ml roztokom na odfarbovanie (4.10).
Pour off the destaining solution and fill the dish with 250 ml staining solution (4.11.3); allow to stain for 45 minutes with gentle shaking.
Odlejte roztok na odfarbovanie a misku naplňte 250 ml roztokom na farbenie (4.11.3); jemným pretrepávaním nechajte farbiť 45 minút.
Destaining the gel plate
Odfarbenie gélovej doštičky
Pour off the staining solution, wash the gel plate twice using a 100 ml destaining solution (4.10) each time, then shake with 200 ml destaining solution for 15 minutes and repeat the destaining step at least two or three times until the background is clear and uncoloured.
Odlejte roztok na farbenie, gélovú doštičku dvakrát umyte pomocou 100 ml roztoku na odfarbovanie (4.10), potom pretrepte s 200 ml roztoku na odfarbovanie počas 15 minút a odfarbovací postup opakujte najmenej dva alebo trikrát, pokým nie je pozadie čisté a bezfarebné.
Then rinse the gel plate with distilled water (2 × 2 minutes) and dry in the air (2 to 3 hours) or with a hairdryer (10 to 15 minutes).
Potom gélovú doštičku opláchnite destilovanou vodou (2 × 2 minúty) a nechajte vysušiť na vzduchu (2 až 3 hodiny) alebo sušičom na vlasy (10 až 15 minút).
Note 1: Carry out fixing, washing, staining and destaining at 20 °C.
Poznámka 1: Upevňujte, umývajte, farbite a odfarbujte pri 20 °C.
Do not use elevated temperatures.
Nepoužívajte vyššie teploty.
Note 2: If more sensitive silver staining (e.g. Silver Staining Kit, Protein, Pharmacia Biotech, Code No 17-1150-01) is preferred, plasmin-treated casein samples have to be diluted to 5 mg/ml.
Poznámka 2: Ak sa uprednostní citlivejšie strieborné farbivo (napr. Silver Staining Kit, Protein, Pharmacia Biotech, Code No. 17-1150-01), kazeínové vzorky ošetrené plazmínom sa musia rozpúšťať na 5 mg/ml.
Evaluation is performed by comparing the protein patterns of the unknown sample with reference standards on the same gel.
Hodnotenie sa vykonáva porovnaním vzorov proteínov neznámej vzorky s referenčnými štandardnými vzormi na rovnakom géle.
Detection of cows’ milk in cheeses from ewes’ milk, goats’ milk and buffalos’ milk and mixtures of ewes’, goats’ and buffalos’ milk is done via the γ3- and γ2-caseins, whose isoelectric points range between pH 6,5 and pH 7,5 (Figures 4 a, b, Figure 5).
Obsah kravského mlieka v syroch z ovčieho mlieka, kozieho mlieka a byvolieho mlieka a zmesí ovčieho, kozieho a byvolieho mlieka sa zisťuje cez γ3- a γ2-kazeíny, ktorých izoelektrické body sú v rozmedzí pH 6,5 a pH 7,5 (obrázky 4 a, b, obrázok 5).
The detection limit is less than 0,5 %.
Detekčný limit je menej ako 0,5 %.
Visual estimation
Vizuálny odhad
For visual evaluation of the amount of bovine milk it is advisable to adjust the concentrations of samples and standards to obtain the same level of intensity of the ovine, caprine and/or buffalo γ2- and γ3-caseins (see ‘γ2 E,G,B’ and ‘γ3 E,G,B’ in Figures 4 a, b and Figure 5).
Pri vizuálnom hodnotení množstva kravského mlieka je na dosiahnutie rovnakej úrovne intenzity ovčích, kozích a/alebo byvolích γ2- a γ3-kazeínov (pozri hodnoty „γ2- E, G, B“ a „γ3 E, G, B“ na obrázkoch 4 a, b a na obrázku 5) vhodné upraviť koncentrácie vzoriek a štandardných roztokov.
After which the amount of bovine milk (less than, equal to or greater than 1 %) in the unknown sample can be judged directly by comparing the intensity of the bovine γ3- and γ2-caseins (see ‘γ3 C’ and ‘γ2 C’ in Figures 4a, b and Figure 5) to those of the 0 % and 1 % reference standards (ewe, goat) or, laboratory interim-standards (buffalo).
Potom možno posúdiť množstvo kravského mlieka (menej ako 1 %, 1 % alebo viac ako 1 %) v neznámej vzorke priamo porovnaním intenzity kravských γ3- a γ2-kazeínov (pozri „γ3 C“ a „γ2 C“ na obrázkoch 4 a, b a na obrázku 5) s 0 % a 1 % referenčnými štandardnými vzorkami (ovčie, kozie) alebo s laboratórnymi priebežnými štandardnými vzorkami (byvolie).
Densitometric estimation
Denzitometrický odhad
If available, apply densitometry (5.19) for the determination of the peak area ratio of bovine to ovine, caprine and/or buffalo γ2- and γ3-caseins (see Figure 5).
Ak je to možné, na stanovenie pomeru plochy píku kravských k ovčím, kozím a/alebo byvolím γ2- a γ3-kazeínom použite denzitometriu (5.19) (pozri obrázok 5).
Compare this value to γ2- and γ3-casein peak area ratio of the 1 % reference standard (ewe, goat) or laboratory interim-standard (buffalo) analysed on the same gel.
Túto hodnotu porovnajte s pomerom plochy píku γ2- a γ3-kazeínov 1 % referenčného štandardného roztoku (ovčie, kozie) alebo dočasného laboratórneho štandardného roztoku (byvolie) analyzovaného na rovnakom géle.
Note: The method is operating satisfactorily, if there is a clear positive signal for both bovine γ2- and γ3-caseins in the 1 % reference standard but not in the 0 % reference standard.
Poznámka: Metóda funguje uspokojivo, ak je jasný pozitívny signál pre kravské γ2- aj γ3-kazeíny v 1 % referenčnom štandardnom roztoku, ale nie v 0 % referenčnom štandardnom roztoku.
If not, optimize the procedure following the details of the method precisely.
Ak nie, postup optimalizujte presným sledovaním jeho krokov.
A sample is judged as being positive, if both bovine γ2- and γ3-caseins or the corresponding peak area ratios are equal to or greater than the level of the 1 % reference standard.
Vzorka sa hodnotí ako pozitívna, ak sa kravské γ2- aj γ3-kazeíny alebo zodpovedajúce pomery plochy píku rovnajú alebo sú väčšie ako úroveň 1 % referenčného štandardného roztoku.
REFERENCES
ZDROJE
Milchwissenschaft 45, 708-711 (1990).
Milchwissenshaft 45, 708 – 711 (1990).
Addeo F., Nicolai M.A., Chianese L., Moio L., Spagna Musso S., Bocca A., Del Giovine L.: A control method to detect bovine milk in ewe and water buffalo cheese using immunoblotting.
Addeo F., Nicolai M.A., Chianese L., Moio L., Spagna Musso S., Bocca A., Del Giovine L.: A control method to detect bovine milk in ewe and water buffalo cheese using immunoblotting.
Milchwissenschaft 50, 83-85 (1995).
Milchwissenschaft 50, 83 – 85 (1995).
Krause I., Berner I, Klostermeyer H.: Sensitive detection of cow milk in ewe and goat milk and cheese by carrier ampholyte — and carrier ampholyte/immobilized pH gradient — isoelectric focusing of γ-caseins using plasmin as signal amplifier. in: Electrophoresis-Forum 89 (B. J. Radola, ed.) pp 389-393, Bode-Verlag, München (1989).
Krause I., Berner I, Klostermeyer H.: Sensitive detection of cow milk in ewe and goat milk and cheese by carrier ampholyte – and carrier ampholyte/immobilized pH gradient – isoelectric focusing of γ-caseins using plasmin as signal amplifier. v: Electrophoresis-Forum 89 (B. J. Radola, ed.) s. 389 – 393, Bode-Verlag, München (1989).
Krause Ι., Belitz H.-D., Kaiser K.-P.: Nachweis von Kuhmilch in Schaf and Ziegenmilch bzw.
Krause Ι., Belitz H. – D., Kaiser K. – P.: Nachweis von Kuhmilch in Schaf and Ziegenmilch bzw.
Radola B.J.: Ultrathin-layer isoelectric focusing in 50-100 μm polyacrylamide gels on silanised glass plates or polyester films.
Radola B.J.: Radola B.J.: Ultrathin-layer isoelectric focusing in 50 – 100 μm polyacrylamide gels on silanised glass plates or polyester films.
Electrophoresis 1, 43-56 (1980).
Electrophoresis 1, 43 – 56 (1980).
Schematic drawing of the covering sheet
Schematický nákres krycej fólie
Spacer tape
oddeľovací pás
Polyester sheet
polyesterová fólia
Casein layer floating between aqueous and organic phases after centrifugation
Kazeínová vrstva plávajúca medzi vodnou a organickou fázou po odstredení
H2O-Phase
H2O-fáza
CH2Cl2-Phase
CH2Cl2-fáza
Flapping technique for casting of ultrathin polyacrylamide gels
Klapková technika liatia ultratenkých polyakrylamidových gélov
a = spacer tape (0,25 mm); b = covering sheet (5.3); c, e = glass plates (5.1); d = gel solution (4.1.2); f = gel carrier sheet (5.2)
a = oddeľovací pás (0,25 mm); b = krycia fólia (5.3); c, e = sklenené doštičky (5.1); d = gélový roztok (4.1.2); f = fólia na gél (5.2)
Figure 4a
Obrázok 4a
Isoelectric focusing of plasmin-treated caseins from ewes’ and goats’ milk cheese containing different amounts of cows’ milk.
Izoelektrické zaostrovanie kazeínov ošetrených plazmínom z ovčieho a kozieho syra obsahujúcich rôzne množstvá kravského mlieka
% CM = percentage of cows’ milk, C = cow, E = ewe, G = goat
% CM = percento kravského mlieka, C = krava, E = ovca, G = koza
Upper half of the IEF gel is shown.
Znázornená je horná polovica IEF gélu.
Figure 4b
Obrázok 4b
Isoelectric focusing of plasmin treated caseins from cheese made from mixtures of ewes’, goats’ and buffalos’ milk containing different amounts of cows’ milk.
Izoelektrické zaostrovanie kazeínov ošetrených plazmínom zo syra vyrobeného zo zmesí ovčieho, kozieho a byvolieho mlieka s obsahom rôznych množstiev kravského mlieka
Total separation distance of the IEF gel is shown.
Znázornená je celková separačná vzdialenosť izoelektricky zaostreného gélu.
Superposition of densitograms of standards (STD) and cheese samples made from a mixture of ewes’ and goats’ milk after isoelectric focusing
Preloženie denzitogramov štandardných roztokov (STD) a vzoriek syra vyrobeného zo zmesi ovčieho a kozieho mlieka po izoelektrickom zaostrení
a,b = standards containing 0 and 1 % of cows’ milk; c-g = cheese samples containing 0, 1, 2, 3 and 7 % of cows’ milk.
a, b = štandardné vzorky s obsahom 0 a 1 % kravského mlieka; c – g = vzorky kozích syrov s obsahom 0, 1, 2, 3 a 7 % kravského mlieka.
C = cow, E = ewe, G = goat.
C = krava, E = ovca, G = koza, B = byvol.
Upper half of the IEF gel was scanned at λ = 634 nm.
Horná polovica IEF gélu bola skenovaná pri λ = 634 nm.
The produce Ampholine® pH 3,5-9,5 (Pharmacia) and Resolyte® pH 5-7 and pH 6-8 (BDH, Merck) have proved particularly suitable for obtaining the required separation of γ-caseins.
Výrobky Ampholine® pH 3,5 – 9,5 (Pharmacia) a Resolyte® pH 5 – 7 a pH 6 – 8 (BDH, Merck) sa ukázali ako mimoriadne vhodné na dosiahnutie požadovanej separácie γ-kaezínov.
Sample application: After pre-focusing (step 1), pipette 18 μl of the sample and standard solutions onto the sample applicators (10 × 5 mm), place them on the gel at 1 mm intervals from each other and 5 mm longitudinally from the anode and press lightly.
Aplikácia vzorky: Po predbežnom zaostrení (krok 1) napipetujte 18 μl vzorky a štandardného roztoku do aplikátorov vzorky (10 × 5 mm), rozložte ich na gél v 1 mm vzdialenostiach 5 mm pozdĺž anódy a zľahka pritlačte.
Carry out focusing using the above conditions, carefully removing the sample applicators after the 60 minutes of sample focusing.
Vykonajte zameranie podľa uvedených podmienok, po 60 minútach od zamerania vzorky tieto aplikátory opatrne vyberte.
(Article 7)
(Článok 7)
REFERENCE METHOD FOR DETECTING COLIFORMS IN BUTTER, SKIMMED-MILK POWDER, CASEIN AND CASEINATES
REFERENČNÁ METÓDA ZISŤOVANIA KOLIFORIEM V MASLE, SUŠENOM ODSTREDENOM MLIEKU, KAZEÍNOCH A KAZEINÁTOCH
PREPARATION OF SAMPLES
PRÍPRAVA VZORIEK
ISO standard 8261
Norma ISO 8261
ISO standard 4831
Norma ISO 4831
Samples corresponding to 1 g of butter or 0,1 g of skimmed-milk powder or casein/caseinates are inoculated in the culture medium.
Vzorky zodpovedajúce 1 g masla alebo 0,1 g sušeného odstredeného mlieka alebo kazeínom/kazeinátom sa naočkujú do kultúry.
Three tubes are inoculated per sample.
Do každej vzorky sa naočkujú tri skúmavky.
If the 3 tubes produce 3 negative results, the result is ‘compliant’
Ak 3 skúmavky vyprodukujú 3 negatívne výsledky, výsledok je „vyhovujúci“.
If the 3 tubes produce 2 or 3 positive results, the result is ‘non-compliant’
Ak 3 skúmavky vyprodukujú 2 alebo 3 pozitívne výsledky, výsledok je „nevyhovujúci“.
If the 3 tubes produce 2 negative results, the analysis is redone twice (with two tubes)
Ak 3 skúmavky vyprodukujú 2 negatívne výsledky, analýzu treba dvakrát zopakovať (s dvoma skúmavkami):
If the 2 results are negative, the result is ‘compliant’
ak sú 2 výsledky negatívne, výsledok je „vyhovujúci“,
If at least 1 result is positive, the result is ‘non-compliant’.
ak je aspoň 1 výsledok pozitívny, výsledok je „nevyhovujúci“.
(Article 8)
(Článok 8)
DETERMINATION OF LACTOSE IN COMPOUND FEEDINGSTUFFS
STANOVENIE LAKTÓZY V KŔMNYCH ZMESIACH
Determination of lactose in compound feedingstuffs.
Stanovenie laktózy v kŕmnych zmesiach.
The content of lactose is defined as the percentage by mass as determined by the procedure described.
Obsah laktózy sa definuje ako percento hmotnosti stanovené podľa uvedeného postupu.
DEFINITION
VYMEDZENIE POJMU
The anhydrous lactose content is expressed as g per 100 g.
Obsah bezvodnej laktózy je vyjadrený v g/100 g.
The compound feedingstuff is reconstituted with water.
Kŕmna zmes sa obnovuje vodou.
A ‘Biggs’ solution is added to a dilute weighed aliquot to precipitate out the fat and the protein component fractions of the compound feedingstuff.
Do rozpustenej odváženej alikvotnej časti sa pridá Biggsov roztok, aby sa vyzrážal tuk a frakcie proteínovej zložky kŕmnej zmesi.
The sample is filtered (or centrifuged) and the filtrate (or supernatant) is injected on a cation exchange HPLC column in the lead form using HPLC grade water as the mobile phase.
Vzorka sa prefiltruje (alebo odstredí) a filtrát (alebo supernatant) sa injektuje do kolóny na HPLC s vymieňačom katiónov použitím vody v HPLC kvalite ako mobilnej fázy.
The eluted lactose is detected by a differential refractometer.
Eluovaná laktóza sa zisťuje diferenčným refraktometrom.
Use only reagents of recognized analytical grade, unless otherwise specified, and degassed HPLC grade water.
Pokiaľ nie je uvedené inak, používajte len reagenty uznávanej analytickej triedy a odplynenú vodu v HPLC kvalite.
D-Lactose monohydrate ((C12H22)O11H2O) can take up additional moisture.
Monohydrát d-laktózy ((C12H22)O11. H2O) môže nasať prídavnú vlhkosť.
Before use measure the real amount of water by Karl-Fisher or remove the additional moisture by placing lactose in an oven at 105 °C for 8 hours (the lactose does not lose its crystal water by this treatment).
Pred použitím odmerajte skutočné množstvo vody podľa Karl-Fishera alebo odstráňte prídavnú vlhkosť vložením laktózy do pece na 8 hodín pri teplote 105 °C (týmto ošetrením laktóza nestratí kryštalickú vodu).
Concentrated Biggs/Szijarto solution
Koncentrovaný Biggsov/Szijartov roztok
Dissolve 9,10 g zinc acetate ehydrate (Zn(CH3COO)2.2H2O) and 5,46 g phosphotungstic acid monohydrate (H3[P(W3O10)4.xH2O]) in about 70 ml with HPLC grade water (6.8) in a 100 ml volumetric flask.
9,10 g dihydrátu octanu zinočnatého (Zn(CH3COO)2.2H2O) a 5,46 g monohydrátu kyseliny trihydrogendodekavolfrámofosforečnej (H3[P(W3O10)4.xH2O]) rozrieďte v asi 70 ml s vodou v HPLC kvalite (6.8) v 100 ml odmernej banke.
Add 5,81 ml glacial acetic acid (CH3COOH).
Pridajte 5,81 ml ľadovej kyseliny octovej (CH3COOH).
Dilute to the 100 ml mark with HPLC grade water (6.8) water and mix.
Rozrieďte po značku 100 ml vodou v HPLC kvalite (6.8) a zmiešajte.
The solution can be stored at room temperature for 1 year.
Roztok možno skladovať pri izbovej teplote 1 rok.
Diluted Biggs/Szijarto solution
Riedený Biggsov/Szijartov roztok
Dilute 25 ml concentrated Biggs/Szijarto solution (5.3) with water to 500 ml using a volumetric flask.
Zrieďte 25 ml koncentrovaného Biggsovho/Szijartovho roztoku (5.3) vodou na 500 ml pomocou odmerky.
The solution can be stored at room temperature for 1 month.
Roztok možno skladovať pri izbovej teplote 1 mesiac.
Preparation of HPLC grade water
Príprava vody v HPLC kvalite
Filter the ultra pure water (6.8) by using the vacuum system filtration (6.9).
Prefiltrujte ultračistú vodu (6.8) cez vákuový filtračný systém (6.9).
To improve the pump performance and to obtain a stable baseline, degas the mobile phase daily by selecting one of the available techniques such as sparging by helium, sonication, vacuum or in-line degassing system.
Na zlepšenie čerpacieho výkonu a získanie stabilnej základnej línie odplyňujte mobilnú fázu denne pomocou niektorej z dostupných techník, napr. pridaním hélia, pôsobením ultrazvuku, vákuovaním alebo použitím zabudovaného systému odplyňovania.
Note: In order to prolong column life it is essential that the carbon dioxide content of the eluent is as low as possible and that re-uptake is prevented.
Poznámka: Aby sa predĺžila životnosť valca, je dôležité, aby bol obsah oxidu uhličitého čo najmenší a aby sa zabránilo jeho opakovanému nasávaniu.
Usual laboratory equipment and, in particular, the following:
Bežné laboratórne prístroje, najmä tieto:
HPLC ion exchange resin column
Živicová kolóna na HPLC s vymieňačom iónov
Column packing: 8 % cross-linked polystyrene-divinylbenzene copolymer functionalised with cation-exchange groups in the lead form.
Náplň kolóny: 8 % zosieťovaný kopolymér polystyrén-divinylbenzénu aktivovaný katexovými skupinami na báze olova.
Column dimensions: Length 300 mm, internal diameter ca. 8 mm.
Rozmery kolóny: dĺžka 300 mm, vnútorný priemer asi 8 mm.
Use of other diameters is possible provided that the flow-rate is adjusted accordingly.
Použitie iných priemerov je možné za predpokladu, že sa primeraným spôsobom upraví prietok.
Guard column
Ochranná predkolóna
The guard column is a combination of a separate cation exchanger (H+) and an anion exchanger (CO3-), each packed in columns of ca. 30 mm × 4,6 mm (L × ID) (e.g. micro-guard columns in a micro-guard holder) and connected in series or in the form of a mixed bed consisting of AG 50W-X4, -400 mesh (H+) and AG3-X4A, 200–400 mesh (OH-) in the ratio of 35:65 (m/m) manually packed in a column of ca. 20 × 9 mm (L × ID).
Ochranná predkolóna je kombináciou samostatného vymieňača katiónov (H+) a vymieňača aniónov (CO3-), pričom oba sú v kolóne s rozmermi asi 30 mm × 4,6 mm (dĺžka × vnútorný priemer) (napr. mikroochranné predkolóny v mikroochrannom držiaku), tieto kolóny sú sú spojené v sérií alebo vo forme kombinovanej náplne, ktorá je zložená z AG 50W – X4, – 400 mesh (H+) a AG3-X4A, 200 – 400 mesh (OH-) v pomere 35:65 (m/m) manuálne plnené do kolóny s rozmermi približne 20 × 9 mm (L-dĺžka × ID-vnútorný priemer).
Column oven
Kolónová piecka
Oven capable of maintaining a constant temperature of 85 °C ± 1 °C.
Piecka schopná udržiavať konštantnú teplotu 85 °C ± 1 °C.
HPLC pump
Čerpadlo HPLC
Pump capable of generating a constant flow-rate (< 0,5 % fluctuations) at 0,2-1,0 m/min.
Čerpadlo schopné generovať konštantný prietok (s výkyvmi < 0,5 %) pri 0,2 – 1,0 m/min.
HPLC injection device
HPLC nástrekové zariadenie
Auto sampler capable of injecting 25 µL and having a repeatability < 0,5 %.
Automatický odoberač vzoriek schopný nastrekovať 25 µL s opakovateľnosťou < 0,5 %.
Alternatively a manual device may be used (same requirements as the auto sampler).
Alternatívne možno použiť manuálne zariadenie (s rovnakými požiadavkami ako na automatický odoberač vzoriek).
HPLC detector
Detektqor HPLC
Highly sensitive refractive index detector having a noise < 5,10-9 RI units.
Vysokocitlivý detektor refrakčného indexu s úrovňou šumu < 5.10-9 RI jednotiek.
Integrator
Integqrátor
Software or a dedicated integrator to perform data acquisition, processing and generating peak areas and peak heights, which can be converted to lactose concentrations.
Softvér alebo vlastný integrátor na získavanie údajov, spracovanie a generovanie plôch píkov a výšok píkov, ktoré možno previesť na koncentrácie laktózy.
Water purification unit
Systémq čistenia vody
System capable to provide ultra pure water (type 1) having a resistivity >14 MΩ.cm.
Systém schopný zabezpečiť ultračistú vodu (typ 1) s merným odporom >14 MΩ.cm.
Solvent filtration unit
Systém filtrácie rozpúšťadla
System that enables filtration of the water using 0,45 µm pore size membrane filter.
Systém umožňujúci filtráciu vody pomocou membránového filtra s veľkosťou pórov 0,45 µm.
Note: Many water purification units (6.8) have a built in 0,45 or 0,2 µm filtration.
Poznámka: Mnohé čističky vody (6.8) majú zabudovaný 0,45 alebo 0,2 µm filter.
Additional filtration can be omitted if this water is directly used.
Ďalšiu filtráciu možno vynechať, ak sa táto voda priamo použije.
Analytical balance
Analytická váha
Balance having a read-out of 0,1 mg.
Váhy s odčítateľnosťou po 0,1 mg.
Water bath
Vodný kúpeľ
Water bath capable of maintaining a temperature at 40 °C (±0,5).
Vodný kúpeľ schopný udržiavať teplotu na 40 °C (±0,5).
Centrifuge
Odstredivka
Having a capacity of generating at least 3000 g for Eppendorf vials or equivalent or larger type of vials.
Schopná generovať najmenej 3000 g pre Eppendorfove fioly alebo ekvivalentný, prípadne väčší typ fiol.
Volumetric flask 50 mL
Banka s objemom 50 ml
Capacity of 50 mL, class A.
Kapacita 50 ml, trieda A.
Note: Flasks of other capacity can be used by taking into account the volume factor.
Poznámka: Možno použiť aj banky s inou kapacitou so zohľadnením objemového faktora.
Volumetric flask 100 mL
Banka s objemom 100 ml
Capacity of 100 mL, class A.
Kapacita 100 ml, trieda A.
Graduated pipette
Odmerná pipeta