natgillin/translations-raw huggingface dataset:
For light measuring instruments calibrated in lux, an equivalent range of 6000 to 10000 lx is acceptable.
V prípade meracieho prístroja kalibrovaného v luxoch je ekvivalentný rozsah od 6000 × do 10000 lx.
The light intensity could be obtained using four to seven 30 W fluorescent lamps of the universal white type (colour temperature of approximately 4300 K), at a distance of 0,35 m from the algal culture,
Osvetlenie možno zabezpečiť štyrmi až siedmimi 30 W žiarivkami univerzálneho typu s bielym svetlom (farebná teplota je približne 4300 K) pri vzdialenosti 0,35 m od kultúry rias.
Cell density measurements should be made using a direct counting method of living cells, e.g. a microscope with counting chambers.
Meranie hustoty buniek by sa malo vykonať s použitím priamej metódy na počítanie živých buniek, napr. mikroskopom s počítacou komôrkou.
However, other procedures (photometry, turbidimetry, ...) may be used if sufficiently sensitive and if shown to be sufficiently well correlated with cell density.
Môžu sa však použiť aj iné postupy (fotometria, turbidimetria a pod.), ak sú dostatočne citlivé a ak dostatočne dobre korelujú s hustotou buniek.
Test organisms
Bezprostredne pred začatím testu sa emulzia alebo disperzia testovanej látky v deionizovanej vode alebo inom rozpúšťadle zmieša so základným testovacím substrátom, alebo je na substrát rovnomerne nastriekaná jemným chromatografickým alebo podobným sprejom. Ak je testovaná látka nerozpustná vo vode, môže byť rozpustená v čo najmenšom objeme vhodného organického rozpúšťadla (napr. hexán, acetón alebo chloroform).
It is suggested that the species of green algae used be a fast-growing species that is convenient for culturing and testing.
Odporúča sa použiť rýchlorastúce druhy zelených rias, vhodné na kultivovanie a testovanie.
The following species are preferred:
Odporúčajú sa tieto druhy:
Selenastrum capricornutum, e.g. ATCC 22662 or CCAP 278/4,
Selenastrum capricornutum, napr. ATCC 22662 alebo CCAP 278/4,
Scenedesmus subspicatus, e.g. 86.81 SAG,
Scenedesmus subspicatus, napr. 86.81 SAG.
SAG Collection of algal culture (Gottingen, F.R.G.)
SAG Collection of algal culture (Gôttingen, F.R.G.)
If other species are used, the strain should be reported.
Ak sa použije iný kmeň, je to potrebné uviesť v správe z testu.
The concentration range in which effects are likely to occur is determined on the basis of results from range-finding tests.
Koncentračný rozsah, v ktorom je pravdepodobné prejavenie sa účinkov, sa stanoví na základe výsledkov z vyhľadávacieho testu.
The two measures of growth (biomass and growth rate) may result in widely disparate measures of growth inhibition; both should be used in the range finding test to ensure that the geometric progression of concentrations will allow estimation of both the EbC50 and the ErC50.
Dve merania rastu (biomasy a stupňa rastu) môžu mať za výsledok úplne rozdielne merania inhibície rastu; obe by sa mali použiť vo vyhľadávacom teste rozsahu, aby sa zaistilo, že geometrický nárast koncentrácií umožní určenie EbC50 a ErC50.
Initial cell density
Počiatočná hustota buniek
It is recommended that the initial cell density in the test cultures be approximately 104 cells/ml for Selenastrum capricornutum and Scenedesmus subspicatus.
Odporúča sa, aby počiatočná hustota buniek bola v skúšobnej kultúre približne 104 buniek/ml, ak sa použije Selenastrum capricornutum a Scenedesmus subspicatus.
When other species are used the biomass should be comparable.
V prípade iných skúšobných druhoch sa použije podobná koncentrácia biomasy.
Concentrations of test substance
Koncentrácie testovanej látky
For the test, at least five concentrations are made up in a geometric series at a concentration ratio not exceeding 2,2.
Pripraví sa aspoň päť koncentrácií v geometrickej sérii v koncentračnom pomere nepresahujúcom 2,2.
The lowest concentration tested should have no observed effect on the growth of the algae.
Najnižšia testovaná koncentrácia by nemala vykazovať žiadny pozorovateľný účinok na rast rias.
The highest concentration tested should inhibit growth by at least 50 % relative to the control and, preferably, stop growth completely.
Najvyššia testovaná koncentrácia by mala inhibovať rast aspoň na 50 % vzhľadom na kontrolu a v najlepšom prípade by mala úplne zastaviť rast.
Replicates and controls
Paralelky a kontroly
The test design should include three replicates at each test concentration.
Každú koncentráciu je potrebné testovať v troch paralelkách.
Three controls without test substance are run and, if relevant, three controls containing the auxiliary substance are also run.
Použijú sa tri paralelky na kontrolu bez testovanej látky, a ak je to potrebné, aj tri paralelky na kontrolu s pomocnou látkou.
If justified, the test design may be altered to increase the number of concentrations and reduce the number of replicates per concentration.
Ak je to oprávnené, potom sa môže test pozmeniť tak, že sa zvýši počet testovaných koncentrácií a zníži sa počet paraleliek na koncentráciu.
Test cultures containing the desired concentrations of test substance and the desired quantity of algal inoculum are prepared by adding aliquots of stock solutions of the test substance to suitable amounts of algal pre-cultures (see Appendix 1).
Testované kultúry obsahujúce vhodné koncentrácie testovanej látky a vhodné množstvo inokula rias sa pripravia pridaním potrebného množstva zásobných roztokov testovanej látky k vhodnému množstvu pripravenej kultúry rias (pozri dodatok 1).
The culture flasks are shaken and placed in the culturing apparatus.
Kultivačné banky sa umiestnia v kultivačnom prístroji za trepania.
The algal cells are kept in suspension by shaking, stirring or bubbling with air, in order to improve gas exchange and reduce pH variation in the test solutions.
Bunky rias sa udržiavajú v suspenzii trepaním, miešaním alebo prebublávaním so vzduchom, aby sa zlepšila výmena plynov a redukovali sa zmeny pH v testovacom roztoku.
The cultures should be maintained at a temperature in the range of 21 to 25 oC, controlled at ± 2 oC.
Kultúry by sa mali udržiavať pri teplote v rozmedzí 21 oC až 25 oC, s presnosťou ± 2 oC.
The cell density in each flask is determined at least at 24, 48 and 72 hours after the start of the test.
Hustota buniek v každej banke sa stanoví aspoň 24, 48, a 72 hodín po začatí testu.
Filtered algal medium containing the appropriate concentration of the test chemical is used to determine the background when using cell density measurements other than direct counting methods.
Filtrované médium, ktoré sa používa na rast rias, obsahujúce vhodnú koncentráciu testovanej látky alebo prípravku, sa použije na stanovenie pozadia, ak sa používa na meranie hustoty buniek iná metóda ako priame spočítavame.
The pH is measured at the beginning of the test and at 72 hours.
Hodnota pH sa meria na začiatku testu a tiež po uplynutí 72 hodín.
The pH of the controls should not normally deviate by more than 1,5 units during the test.
Hodnota pH kontrol by sa nemala normálne odchyľovať viac ako 1,5 jednotky počas celého testu.
Testing volatile substances
Testovanie prchavých látok
There is to date no generally accepted way to test volatile substances.
V súčasnosti nie je všeobecne prijatý spôsob testovania prchavých látok alebo prípravkov.
When a substance is known to have a tendency to vaporise, closed test flasks with increased head-space may be used.
Keď je o látke známe, že má tendenciu sa odparovať, potom sa môžu použiť uzavreté skúšobné banky so zväčšeným priestorom pre plynnú fázu.
The possibility of shortage of CO2 should be considered when calculating the head-space of the closed flasks.
Pri výpočte objemu priestoru pre plynnú fázu je potrebné brať do úvahy možnosť nedostatku CO2.
Variations to this method have been proposed (see reference (4)).
Boli navrhnuté obmeny tejto metódy [pozri odkaz (4)].
Attempts should be made to determine the amount of the substance which remains in solution, and extreme caution is advised when interpreting results of tests with volatile chemicals using closed systems.
Mali by sa vykonať testy na stanovenie množstva látky ostávajúcej v roztoku a odporúča sa mimoriadna pozornosť pri interpretácii výsledkov testov s prchavými látkami alebo prípravkami v uzavretých systémoch.
Using the procedures described in this method, a limit test may be performed at 100 mg per litre in order to demonstrate that the EC50 is greater than this concentration.
Limitný test sa môže vykonať pri koncentrácii 100 mg na liter, aby sa preukázalo, že EC50 je väčšia ako táto koncentrácia. Použijú sa postupy opísané v tejto skúšobnej metóde.
If the nature of the substance is such that a concentration of 100 mg per litre in the test water cannot be attained, the limit test should be performed at a concentration equal to the solubility of the substance (or the maximum concentration forming a stable dispersion) in the medium used (see also point 1.6.1.1).
Ak sú vlastnosti látky také, že sa nemôže dosiahnuť koncentrácia 100 mg na liter v testovanom roztoku, limitný test by sa mal vykonať pri koncentrácii rovnej rozpustnosti látky (alebo pri maximálnej koncentrácii, pri ktorej dochádza k tvorbe stabilnej disperzie) v použitom médiu (pozri tiež bod 1.6.1.1).
The limit test should be performed at least in triplicate, with the same number of controls.
Limitný test by sa mal vykonať minimálne v troch opakovaniach s rovnakým počtom kontrol.
The two measures of growth (biomass and growth rate) should be used for the limit test.
V limitnom teste by sa mali použiť dve merania rastu (biomasa a rýchlosť rastu).
If, in a limit test, a mean decrease of 25 % or more is found in either biomass or growth rate between the limit test and the control, a full test should be carried out.
Ak sa v limitnom teste zistí pokles priemernej biomasy alebo rýchlosti rastu rovný alebo väčší ako 25 % oproti kontrole, potom by sa mal vykonať kompletný test.
The measured cell density in the test cultures and controls are tabulated together with the concentrations of the test substance and the times of measurements.
Nameraná bunková hustota v testovaných kultúrach a kontrolách je uvedená v tabuľke spolu s koncentráciami testovanej látky a časmi merania.
The mean value of the cell density for each test substance concentration and for the controls is plotted against time (0-72 h) to produce growth curves.
Pre každú skúšanú koncentráciu látky a pre kontrolu sa zostrojí rastová krivka v podobe grafu logaritmu strednej hustoty buniek v závislosti od času (0 – 72 hodín).
To determine the concentration/effect relationship, the two following approaches should be used.
Na stanovenie vzťahu koncentrácie a účinku by sa mali použiť dva nasledujúce prístupy.
Some substances can stimulate the growth at low concentrations.
Niektoré látky môžu pri nízkych koncentráciách stimulovať rast.
Only data points indicating inhibition between 0 and 100 % should be considered.
Do úvahy sa však berú len údaje indikujúce inhibíciu medzi 0 % a 100 %.
COMPARISON OF AREAS UNDER THE GROWTH CURVES
POROVNANIE PLÔCH POD RASTOVÝMI KRIVKAMI
The area between the growth curves and the horizontal line N = N0 may be calculated according to the formula:
Plocha medzi rastovými krivkami a horizontálnou líniou N = N0 sa môže vypočítať podľa vzorca
A area
A plocha,
number of cells/ml at time t0 (beginning of the test),o,
počet buniek/ml v čase t0 (začiatok testu),o,
measured number of cells/ml at t1
nameraný počet buniek/ml pri t1,
measured number of cells/ml at time
nameraný počet buniek/ml v čase tn,
time of first measurement after beginning of test
čas prvého merania od začiatku testu,
time of nth measurement after beginning of test.
čas n-tého merania od začiatku testu,
n number of measurements taken after the beginning of the test.
n počet vykonaných meraní od začiatku testu.
The percentage inhibition of the cell growth at each test substance concentration (IA) is calculated according to the formula:
Percentuálna inhibícia rastu buniek pri každej koncentrácii testovanej látky (IA) sa vypočíta podľa vzorca:
area between the control growth curve and the horizontal line N = No.
plocha medzi rastovou krivkou kontroly a horizontálnou líniou N = N0,
area between the growth curve at the concentration t and the horizontal line N = No.
plocha medzi rastovou krivkou pri koncentrácii t a horizontálnou líniou N = N0,
It is essential that the EbC50 is quoted with the appropriate exposure period, e.g. EbC50 (0-72h).
Je nevyhnutné, aby EbC50 bola označená vhodnou expozičnou dobou, napr. EbC50 (0 – 72 hodín).
COMPARISON OF GROWTH RATES
POROVNANIE RÝCHLOSTÍ RASTU
The average specific growth rate (μ) for exponentially growing cultures can be calculated as
Priemerná špecifická rýchlosť rastu (μ) pre exponenciálne rastúce kultúry sa môže vypočítať ako:
where to is the time at the beginning of the test.
kde t0 je čas na začiatku testu.
Alternatively, the average specific growth rate may be derived from the slope of the regression line in a plot of ln N versus time.
Alternatívne sa zistí priemerná špecifická rýchlosť rastu zo smernice regresnej priamky v závislosti ln N oproti času.
The percentage inhibition of specific growth rate at each test substance concentration (Iμt) is calculated according to the formula:
Percentuálna inhibícia špecifickej rýchlosti rastu pri každej koncentrácii testovanej látky (Iμt) sa vypočíta podľa vzorca:
mean control specific growth rate
stredná špecifická rýchlosť rastu v kontrole.
mean specific growth rate for the test concentration t
stredná špecifická rýchlosť rastu pri testovanej koncentrácii t.
The percentage reduction in average specific growth rate at each test substance concentration compared to the control value is plotted against the logarithm of the concentration.
Percentuálne zníženie priemernej špecifickej rýchlosti rastu pri každej koncentrácii testovanej látky v porovnaní s kontrolnou hodnotou sa vynesie oproti logaritmu koncentrácie.
The EC5o may be read from the resulting graph.
Hodnota EC50 sa môže odčítať z výsledného grafu.
To denote unambiguously the EC50 derived by this method it is proposed to use the symbol ErC50.
Na jednoznačné označenie EC50 vypočítanej touto metódou sa navrhuje používanie symbolu ErC50.
The times of measurement must be indicated, e.g. if the value relates to times 0 and 72 hours, the symbol becomes ErC50 (0-72h).
Doby merania musia byť uvedené, napr. ak sa merania vykonali v čase medzi 0. a 72. hodinou, uvedie sa symbol ErC50 (0 – 72 hodín).
Note: specific growth rate is a logarithmic term, and small changes in growth rate may lead to great changes in biomass.
Poznámka: špecifická rýchlosť rastu je vyjadrená v logaritmoch a malé zmeny v rýchlosti rastu môžu viesť k veľkým zmenám v biomase.
EbC and ErC values are therefore not numerically comparable.
a ErC hodnoty nie sú preto číselne porovnateľné.
CALCULATION OF THE NOEC
VÝPOČET HODNOTY NOEC
The No Observed Effect Concentration is determined by a suitable statistical procedure for multisample comparison (e.g. analysis of variance and Dunnett's test), using the individual replicates values of the areas under the growth curves A (see point 2.1) or the specific growth rates μ (see point 2.2).
Koncentrácia bez pozorovaného účinku sa stanoví vhodným štatistickým postupom na porovnanie vzoriek (napr. analýza variácií a Dunnettov test) s použitím jednotlivých hodnôt paraleliek v oblastiach pod rastovými krivkami A (pozri bod 2.1) alebo špecifickými stupňami rastu μ (pozri bod 2.2).
test substance: chemical identification data,
testovaná látka: údaje o chemických vlastnostiach,
test organisms: origin, laboratory culture, strain number, method of cultivation,
testovaný organizmus: pôvod, laboratórnu kultúru, číslo kmeňa, metódu kultivácie,
date of the start and the end of the test and its duration,
dátum začiatku a konca testu a jeho dobu,
temperature,
teplotu,
composition of medium,
zloženie média,
culturing apparatus,
kultivačný prístroj,
pH of solutions at the start and end of the test (an explanation should be provided if pH deviations of more than 1,5 unit are observed),
hodnotu pH roztokov na začiatku a na konci testov (je potrebné podať vysvetlenie, ak sa pozorovali odchýlky pH väčšie ako 1,5 jednotky),
vehicle and method used for solubilising the test substance and concentration of the vehicle in the test solutions,
vehikulum (pomocné rozpúšťadlo) a metódu, ktorá sa použila na rozpustenie testovanej látky a koncentráciu vehikula v testovaných roztokoch,
light intensity and quality,
intenzitu a kvalitu svetla,
concentrations tested (measured or nominal).
testované koncentrácie (namerané alebo nominálne),
results:
výsledky:
cell density for each flask at each measuring point and method for measuring cell density,
bunkovú hustotu v každej banke v každom meranom bode a metódu na meranie bunkovej hustoty,
mean values of cell density,
stredné hodnoty bunkovej hustoty,
growth curves,
rastové krivky,
graphical presentation of the concentration effect relationship,
grafické znázornenie vzťahu koncentrácie a účinku,
EC values and method of calculation,
hodnoty EC a metódu výpočtu,
other observed effects.
iné pozorované účinky.
Umweltbundesamt, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag ‘Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus’, in: Rudolph/Boje: bkotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
Umweltbundesamt, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag „Hemmung der Zellvermehrung bei der Grünalge Scenedesmus subspicatus“, in: Rudolph/Boje: Ökotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
and M.Vighi — Chemosphere, 1981, vol.10, 1123-1126.
Galassi and M. Vighi – Chemosphere, 1981, vol. 10, 1123 – 1126.
Example of a procedure for the culturing of algae
Príklad postupu na kultiváciu rias
The purpose of culturing on the basis of the following procedure is to obtain algal cultures for toxicity tests.
Účelom kultivácie na základe predloženého postupu je získať kultúry rias na testovanie toxicity.
Suitable methods should be used to ensure that the algal cultures are not infected with bacteria (ISO 4833).
Aby sa zabezpečilo, že kultúry rias nie sú kontaminované baktériami, mali by sa použiť vhodné metódy (ISO 4833).
Axenic cultures may be desirable but unialgal cultures are essential.
Axenické kultúry môžu byť vhodné, ale nevyhnutné sú kultúry s jedným druhom rias.
All operations should be carried out under sterile conditions in order to avoid contamination with bacteria and, other algae.
Všetky činnosti by sa mali vykonať v sterilných podmienkach, aby sa zamedzilo kontaminácii baktériami a inými riasami.
Contaminated cultures should be rejected.
Kontaminované kultúry by mali byť odstránené.
Procedures for obtaining algal cultures
Postupy na získanie kultúr rias
Preparation of nutrient solutions (media):
Príprava živných roztokov (médii):
the medium can be prepared by diluting concentrated stock solutions of nutrients.
Médium sa môže pripraviť zriedením koncentrovaných zásobných roztokov živín.
For solid medium, 0,8 % of agar is added.
Na prípravu tuhého média sa pridá 0,8 % agaru.
The medium used should be sterile.
Použité médium by malo byť sterilné.
Sterilisation by autoclaving may lead to a loss of NH3.
Sterilizácia autoklávovaním môže viesť k strate NH3.
Stock culture:
Kmeňová kultúra:
the stock cultures are small algal cultures that are regularly transferred to fresh medium to act as initial test material.
Kmeňové kultúry sú malé kultúry rias, ktoré sa pravidelne prenášajú do čerstvého média, aby sa použili ako počiatočný testovací materiál.
If the cultures are not used regularly they are streaked out on sloped agar tubes.
Ak sa kultúry nepoužívajú pravidelne, naočkujú sa do skúmaviek na šikmý agar.
These are transferred to fresh medium at least once every two months.
Potom sa prenášajú do čerstvého média aspoň raz za dva mesiace.
the stock cultures are grown in conical flasks containing the appropriate medium (volume about 100 ml).
Kmeňové kultúry sa kultivujú v kónických bankách obsahujúcich vhodné médium (objem okolo 100 ml).
When the algae are incubated at 20 oC with continuous illumination, a weekly transfer is required.
Prenos raz týždenne sa vyžaduje, ak sa riasy inkubujú pri teplote 20 oC pri kontinuálnom osvetlení.
During transfer an amount of ‘old’ culture is transferred with sterile pipettes into a flask of fresh medium, so that with the fast-growing species the initial concentration is about 100 times smaller than in the old culture.
Prenesie sa také množstvo „starej“ kultúry so sterilnou pipetou do banky s čerstvým médiom, aby počiatočná koncentrácia rýchlo rastúceho druhu bola asi 100-násobne menšia ako v starej kultúre.
the growth rate of a species can be determined from the growth curve.
Rýchlosť rastu druhu môže byť stanovená z rastovej krivky.
If this is known, it is possible to estimate the density at which the culture should be transferred to new medium.
Ak je toto známe, možno určiť hustotu, pri ktorej by sa mala kultúra preniesť do nového média.
This must be done before the culture reaches the death phase.
To sa musí vykonať skôr, ako kultúra dosiahne stacionárnu fázu rastu.
Pre-culture:
Prípravná kultúra:
the pre-culture is intended to give an amount of algae suitable for the inoculation of test cultures.
Prípravná kultúra je určená na to, aby poskytla potrebné množstvo rias na inokuláciu testovaných kultúr.
The pre-culture is incubated under the conditions of the test and used when still exponentially growing, normally after an incubation period of about three days.
Prípravná kultúra je inkubovaná za podmienok testu a použije sa, pokiaľ je ešte v exponenciálnom raste, normálne po inkubačnej perióde asi počas troch dní.
When the algal cultures contain deformed or abnormal cells, they must be discarded.
Kultúry rias obsahujúce deformované alebo abnormálne bunky sa musia odstrániť.
The ISO 8692 — Water quality — Fresh water algal growth inhibition test with Scenedesmus subspicatus and Selenastrum capricornutum reports the following results for an inter-laboratory test among 16 laboratories, testing potassium dichromate:
Technická norma ISO 8692 – Kvalita vody – Inhibičný test rastu rias v sladkej vode so Scenedesmus subspicatuc a Selenastrum capricornutum uvádza tieto výsledky laboratórnych testov zo 16 laboratórií pri testovaní dvojchrómanu draselného:
Means (mg/l)
Stredne hodnoty (mg/l)
Range (mg/l)
Rozsah (mg/1)
Six test methods are described that permit the screening of chemicals for ready biodegradability in an aerobic aqueous medium:
Opísaných je šesť metód, ktoré umožňujú skríning látok a prípravkov na ľahkú biodegradovateľnosť v aeróbnom vodnom médiu:
Dissolved Organic Carbon (DOC) Die-Away (Method C.4-A)
Úbytok rozpusteného organického uhlíka (DOC) Die-Away (metóda C.4-A).
Modified OECD Screening — DOC Die-Away (Method C.4-B)
Modifikovaný skríningový test podľa OECD – DOC Die-Away (metóda C.4-B).
Carbon dioxide (CO2) Evolution (Modified Sturm Test) (Method C.4-C)
Vývoj oxidu uhličitého (CO2) (modifikovaný Sturmov test) (metóda C.4-C).
Manometric Respirometry (Method C.4-D)
Manometrická respirometria (metóda C.4-D).
Closed Bottle (Method C.4-E)
Test uzavretej fľaše (metóda C.4-E).
MITI (Ministry of International Trade and Industry — Japan) (Method C.4-F)
MITI (Ministerstvo medzinárodného obchodu a priemyslu – Japonsko) (metóda C.4-F).
General and common considerations to all six tests are given in Part I of the method.
Všeobecné zamerania všetkých šiestich testov sú uvedené v časti I metódy.
Items specific for individual methods are given in Parts II to VII.
Položky, ktoré sú špecifické pre jednotlivé metódy, sú uvedené v častiach II až VII.
The appendices contain definitions, formulas and guidance material.
Prílohy obsahujú pojmy, vzorce a návody.
mg DOC/1
Pre látky alebo prípravky, ktoré sú slabo rozpustné vo vode, prchavé alebo sa adsorbujú, sú vhodné metódy uvedené v tabuľke č. 1.