natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Such substances may be detected by E. coli WP2 strains or S. typhimurium TA102 (19), which have an AT base pair at the primary reversion site.
Takéto látky sa dajú zistiť pomocou kmeňov E. coli WP2 alebo S. typhimurium TA 102 (19), ktoré majú AT bázu na primárnom reverznom mieste.
Therefore the recommended combination of strains is:
Odporúčanou kombináciou kmeňov je preto:
typhimurium TA1535, and
typhimurium TA 1535 a
typhimurium TA1537 or TA97 or TA97a, and
typhimurium TA 1537 alebo TA 97, alebo TA 97a a
typhimurium TA98, and
typhimurium TA 98 a
typhimurium TA100, and
typhimurium TA 100 a
coli WP2 uvrA, or E. coli WP2 uvrA (pKM101), or S. typhimurium TA102.
coli WP2 uvrA alebo E. coli WP2 uvrA (pKM101), alebo S. typhimurium TA 102.
In order to detect cross-linking mutagens it may be preferable to include TA102 or to add a DNA repair-proficient strain of E. coli [e.g. E. coli WP2 or E. coli WP2 (pKM101)]
Na zistenie spájacích mutagénov je vhodnejšie použiť TA 102 alebo pridať kmeň E. coli [napríklad E. coli WP2 alebo E. coli WP2 (pKMIOl)], ktorý dokonale opravuje DNA.
Established procedures for stock culture preparation, marker verification and storage should be used.
Na prípravu kultúr, overovanie bunkových znakov a uskladnenie sa používajú overené postupy.
The amino-acid requirement for growth should be demonstrated for each frozen stock culture preparation (histidine for S. typhimurium strains, and tryptophan for E. coli strains).
Požiadavka na aminokyselinu pre rast sa preukazuje pre každý prípravok zmrznutej kultúry (histidín pre kmene S. typhimurium a tryptofán pre kmene E. coli).
Other phenotypic characteristics should be similarly checked, namely: the presence or absence of R-factor plasmids where appropriate [i.e. ampicillin resistance in strains TA98, TA100 and TA97a or TA97, WP2 uvrA and WP2 uvrA (pKM101), and ampicillin + tetracycline resistance in strain TA102]; the presence of characteristic mutations (i.e. rfa mutation in S. typhimurium through sensitivity to crystal violet, and uvrA mutation in E. coli or uvrB mutation in S. typhimurium, through sensitivity to ultraviolet light) (2)(3).
Podobným spôsobom sa overujú iné fenotypové charakteristiky, menovite ak je potrebná prítomnosť alebo neprítomnosť R-faktorových plazmidov [napríklad odolnosť proti ampicilínu v kmeňoch TA 98, TA 100 a TA 97a alebo TA 97, WP2 uvrA alebo WP2 uvrA (pKM101) a odolnosť proti ampicilínu a tetracyklínu v kmeni TA102]; prítomnosť charakteristických mutácií (t. j. rfa mutácia S. typhimurium prostredníctvom citlivosti na kryštálovo fialovú a uvrA mutáciu E. coli alebo uvrB mutáciu S. typhimurium prostredníctvom citlivosti na ultrafialové svetlo) (2) (3).
The strains should also yield spontaneous revertant colony plate counts within the frequency ranges expected from the laboratory's historical control data and preferably within the range reported in the literature.
Kmene by tiež mali dosahovať spontánne počty revertantných kolónií v rámci frekvenčných rozsahov očakávaných podľa historických kontrolných údajov laboratória, najlepšie v rozsahu uvedenom v literatúre.
Medium
Médium
An appropriate minimal agar (e.g. containing Vogel-Bonner minimal medium E and glucose), and an overlay agar containing histidine and biotin or tryptophan to allow for a few cell divisions, is used (1)(2)(9).
Používa sa vhodné minimálne množstvo agaru (napríklad obsahujúci Vogelovo-Bonnerovo minimálne médium E a glukózu) a krycí agar obsahujúci histidín a biotín alebo tryptofán umožňujúci malý počet delení buniek (1) (2) (9).
Bacteria should be exposed to the test substance both in the presence and absence of an appropriate metabolic activation system.
Baktérie sa vystavia testovacej látke v prítomnosti i v neprítomnosti vhodného systému metabolickej aktivácie.
The most commonly used system is a cofactor-supplemented post-mitochondrial fraction (S9) prepared from the livers of rodents treated with enzyme-inducing agents such as Aroclor 1254 (1)(2) or a combination of Phenobarbitone and ß-naphthoflavone (18)(20)(21).
Najpoužívanejším systémom je postmitochondriálna frakcia podporená kofaktorom (S9), pripravená z pečene hlodavcov ošetrených prípravkami na indukciu enzýmov, ako napríklad Aroclorom 1254 (1) (2) alebo kombináciou fenobarbitonu a betanaftoflavónu (18) (20) (21).
The post-mitochondrial fraction is usually used at concentrations in the range from 5 to 30 % v/v in the S9-mix.
Postmitochondriálna frakcia sa zvyčajne používa v koncentrácii v rozsahu od 5 % do 30 % v/v v zmesi S9.
The choice and condition of a metabolic activation system may depend upon the class of chemical being tested.
Výber a stav systému metabolickej aktivácie závisí od triedy testovanej chemikálie.
In some cases, it may be appropriate to utilise more than one concentration of post-mitochondrial fraction.
V niektorých prípadoch je vhodné využiť viac než jednu koncentráciu postmitochondriálnej frakcie.
For azo-dyes and diazo-compounds, using a reductive metabolic activation system may be more appropriate (6)(13).
Pre azofarbivá a diazozmesi je vhodnejšie použiť redukčný systém metabolickej aktivácie (6) (13).
Solid test substances should be dissolved or suspended in appropriate solvents or vehicles and diluted if appropriate prior to treatment of the bacteria.
Pevné testovacie látky sa rozpúšťajú alebo ukladajú v príslušných rozpúšťadlách alebo nosičoch, a ak je to potrebné, rozrieďujú sa pred podávaním baktériám.
Fresh preparations should be employed unless stability data demonstrate the acceptability of storage.
Používajú sa čerstvé prípravky testovacej látky, pokiaľ údaje o stabilite nepoukazujú na vhodnosť uskladnenia.
The solvent/vehicle should not be suspected of chemical reaction with the test substance and should be compatible with the survival of the bacteria and the S9 activity (22).
Rozpúšťadlo/nosič by nemali chemicky reagovať s testovacou látkou a mali by byť kompatibilné s prežitím buniek a aktivitou S9 (22).
Test strains (see 1.5.1.1)
Testovacie kmene (pozri 1.5.1.1)
Amongst the criteria to be taken into consideration when determining the highest amount of the test substance to be used are the cytotoxicity and the solubility in the final treatment mixture.
Medzi kritériá, ktoré je potrebné brať do úvahy pri stanovovaní najvyššieho množstva použitej testovacej látky, patrí cytotoxicita a rozpustnosť v konečnej zmesi.
It may be useful to determine toxicity and insolubility in a preliminary experiment.
Je užitočné stanoviť toxicitu a nerozpustnosť pri predbežnom pokuse.
Cytotoxicity may be detected by a reduction in the number of revertant colonies, a clearing or diminution of the background lawn, or the degree of survival of treated cultures.
Cytotoxicita sa dá zistiť redukciou v množstve revertantných kolónií, vyjasnením alebo redukciou pozadia, alebo stupňom prežitia ošetrených kultúr.
The cytotoxicity of a substance may be altered in the presence of metabolic activation systems.
Cytotoxicita látky sa môže meniť v prítomnosti systémov metabolickej aktivácie.
Insolubility should be assessed as precipitation in the final mixture under the actual test conditions and evident to the unaided eye.
Nerozpustnosť by sa mala určiť ako vyzrážanie v konečnej zmesi za skutočných podmienok testu a musí byť viditeľná voľným okom.
The recommended maximum test concentration for soluble non-cytotoxic substances is 5 mg/plate or 5 μl/plate.
Odporúčaná maximálna testovacia koncentrácia rozpustných necytotoxických látok je 5 mg/miska alebo 5 μl/miska.
For non-cytotoxic substances that are not soluble at 5 mg/plate or 5 μl/plate, one or more concentrations tested should be insoluble in the final treatment mixture.
V prípade necytotoxických látok, ktoré nie sú rozpustné pri 5 mg/miska alebo 5 μl/miska, má byť v konečnej zmesi nerozpustná jedna alebo viac testovaných koncentrácií.
Test substances that are cytotoxic already below 5 mg/plate or 5 μl/plate should be tested up to a cytotoxic concentration.
Testované látky, ktoré sú cytotoxické už pod 5 mg/miska alebo 5 μl/miska, sa majú testovať až po cytotoxickú koncentráciu.
At least five different analysable concentrations of the test substance should be used with approximately half log (i.e. √10) intervals between test points for an initial experiment.
Malo by sa použiť aspoň päť rôznych analyzovateľných koncentrácií testovanej látky s intervalmi približne pol log (t. j. √10) medzi testovanými miestami v počiatočnom experimente.
Smaller intervals may be appropriate when a concentration-response is being investigated.
Menšie intervaly môžu byť vhodné vtedy, ak sa skúma vzťah koncentrácia/reakcia.
Testing above the concentration of 5 mg/plate or 5 μl/plate may be considered when evaluating substances containing substantial amounts of potentially mutagenic impurities.
Možno zvážiť testovanie nad koncentráciu 5 mg/miska alebo 5 μl/miska, ak sa vyhodnocujú látky obsahujúce významné množstvá potenciálne mutagénnych nečistôt.
Concurrent strain-specific positive and negative (solvent or vehicle) controls, both with and without metabolic activation, should be included in each assay.
Pri každej skúške sa zahrnú súbežne podľa kmeňa špecifické pozitívne a negatívne (rozpúšťadlo alebo nosič) kontrolné kultúry, a to s metabolickou aktiváciou i bez nej.
Positive control concentrations that demonstrate the effective performance of each assay should be selected.
Koncentrácie pri pozitívnych kontrolných kultúrach sa volia tak, aby pri každej skúške vykazovali efektívny výkon.
For assays employing a metabolic activation system, the positive control reference substance(s) should be selected on the basis of the type of bacteria strains used.
Pri pokusoch s použitím systému metabolickej aktivácie sa referenčné látky pozitívnej kontrolnej kultúry vyberajú na báze použitého typu bakteriálnych kmeňov.
The following substances are examples of suitable positive controls for assays with metabolic activation:
Nasledujúce látky sú príkladmi látok vhodných pre pozitívne kontrolné kultúry pri pokusoch s metabolickou aktiváciou.
CA numbers
Číslo CAS
Names
Látka
9,10-dimethylanthracene
9,10-dimetylantracén
7,12-dimethylbenz[a]anthracene
7,12-dimetylbenz[a]anthracén
2-aminoanthracene
2-aminoantracén
cyclophosphamide
cyklofosfamid
The following substance is a suitable positive control for the reductive metabolic activation method:
Nasledujúca látka je vhodná pre pozitívne kontrolné kultúry pri metóde redukčnej metabolickej aktivácie:
2-Aminoanthracene should not be used as the sole indicator of the efficacy of the S9-mix.
2-aminoantracén by nemal byť jediným indikátorom efektívnosti zmesi S9.
If 2-aminoanthracene is used, each batch of S9 should also be characterised with a mutagen that requires metabolic activation by microsomal enzymes, e.g. benzo[a]pyrene, dimethylbenzanthracene.
Ak sa používa 2-aminoantracén, každá dávka S9 by tiež mala byť charakterizovaná mutagénom, ktorý vyžaduje metabolickú aktiváciu mikrozomálnymi enzýmami, napríklad benzo[a]pyrén, dimetylbenzantracén.
The following substances are examples of strain-specific positive controls for assays performed without exogenous metabolic activation system:
Nasledujúce látky sú príkladmi pozitívnych kontrolných kultúr podľa kmeňov pre skúšky bez exogénneho systému metabolickej aktivácie:
Strain
Kmeň
Sodium azide
azid sodný
TA 1535 and TA 100
TA 1535 a TA 100
9-aminoacridine
9-aminoakridín
TA 1537, TA 97 and TA 97a
TA 1537, TA 97 a TA 97a
Mitomycin C
mitomycín C
uvrA and TA102
uvrA a TA 102
N-ethyl-N-nitro-N-nitrosoguanidine
N-etyl-N-nitro-N-nitrozguanidín
WP2, WP2uvrA and WP2uvrA(pKM101)
WP2, WP2uvrA a WP2uvrA(pKM101)
4-nitroquinoline-1-oxide
4-nitrochinolín-1-oxid
plasmid-containing strains
kmene obsahujúce plazmid
Other appropriate positive control reference substances may be used.
Pre pozitívne kontrolné kultúry sa môžu použiť aj ďalšie vhodné referenčné látky.
Negative controls, consisting of solvent or vehicle alone, without test substance, and otherwise treated in the same way as the treatment groups, should be included.
Použijú sa tiež negatívne kontrolné vzorky pozostávajúce len z rozpúšťadla alebo nosiča, bez testovacej látky a inak ošetrované rovnakým spôsobom ako pokusné skupiny.
For the plate incorporation method (1)(2)(3)(4), without metabolic activation, usually 0,05 ml or 0,1 ml of the test solutions, 0,1 ml of fresh bacterial culture (containing approximately 108 viable cells) and 0,5 ml of sterile buffer are mixed with 2,0 ml of overlay agar.
Pri metóde s použitím misiek (1) (2) (3) (4) bez metabolickej aktivácie sa zvyčajne zmieša 0,05 ml alebo 0,1 ml testovacích roztokov, 0,1 ml čerstvej bakteriálnej kultúry (obsahujúcej približne 108 životaschopných buniek) a 0,5 ml sterilného tlmiaceho roztoku s 2,0 ml krycieho agaru.
For the assay with metabolic activation, usually 0,5 ml of metabolic activation mixture containing an adequate amount of post-mitochondrial fraction (in the range from 5 to 30 % v/v in the metabolic activation mixture) are mixed with the overlay agar (2,0 ml), together with the bacteria and test substance/test solution.
Pri skúške s metabolickou aktiváciou sa zvyčajne zmieša 0,5 ml roztoku metabolickej aktivácie obsahujúceho vhodné množstvo postmitochondriálnej frakcie (v rozmedzí od 5 % do 30 % v/v v roztoku na metabolickú aktiváciu) s krycím agarom (2,0 ml), s baktériami a testovacou látkou/testovacím roztokom.
The contents of each tube are mixed and poured over the surface of a minimal agar plate.
Obsah oboch skúmaviek sa zmieša a vyleje sa na povrch veľmi malej agarovej misky.
The overlay agar is allowed to solidify before incubation.
Krycí agar sa pred inkubáciou nechá vytvrdnúť.
For the preincubation method (2)(3)(5)(6), the test substance/test solution is preincubated with the test strain (containing approximately 108 viable cells) and sterile buffer or the metabolic activation system (0,5 ml) usually for 20 min. or more at 30-37 oC prior to mixing with the overlay agar and pouring onto the surface of a minimal agar plate.
Pri predinkubačnej metóde (2) (3) (5) (6) sa testovacia látka/testovací roztok predinkubuje s testovacím kmeňom (obsahujúcim približne 108 životaschopných buniek) a sterilným tlmiacim roztokom alebo systémom metabolickej aktivácie (0,5 ml) zvyčajne na 20 minút alebo viac pri teplote 30 oC – 37 oC pred zmiešaním s krycím agarom a vyliatím na povrch veľmi malej agarovej misky.
Usually, 0,05 or 0,1 ml of test substance/test solution, 0,1 ml of bacteria, and 0,5 ml of S9-mix or sterile buffer are mixed with 2,0 ml of overlay agar.
Zvyčajne sa mieša 0,05 alebo 0,1 ml testovacej látky/testovacieho roztoku, 0,1 ml baktérií a 0,5 ml zmesi S9 alebo sterilného tlmiaceho roztoku s 2,0 ml krycieho agaru.
Tubes should be aerated during pre-incubation by using a shaker.
Skúmavky sa počas predinkubácie vetrajú použitím miešadla.
For an adequate estimate of variation, triplicate plating should be used at each dose level.
Pri každej úrovni dávok sa kvôli primeranému odhadu variácie používajú tri misky.
The use of duplicate plating is acceptable when scientifically justified.
Použitie dvoch misiek je prijateľné s vedeckým zdôvodnením.
The occasional loss of a plate does not necessarily invalidate the assay.
Občasná strata misky pokus neznehodnocuje.
Gaseous or volatile substances should be tested by appropriate methods, such as in sealed vessels (12)(14)(15)(16).
Plynné alebo prchavé látky sa testujú vhodnými metódami, ako napríklad vo vzduchotesne uzatvorených nádobách (12) (14) (15) (16).
Incubation
Inkubácia
All plates in a given assay should be incubated at 37 oC for 48-72 hours.
V danom pokuse sa misky inkubujú pri teplote 37 oC počas 48 – 72 hodín.
After the incubation period, the number of revertant colonies per plate is counted.
Po uplynutí inkubačnej doby sa zráta počet revertantných kolónií na misku.
Data should be presented as the number of revertant colonies per plate.
Údaje sa uvádzajú ako počet revertantných kolónií na misku.
The number of revertant colonies on both negative (solvent control, and untreated control if used) and positive control plates should also be given.
Udáva sa tiež počet revertantných kolónií pri negatívnych (kontrola rozpúšťadlom a bez ošetrenia, ak sa použili) a pozitívnych kontrolných kultúrach.
Individual plate counts, the mean number of revertant colonies per plate and the standard deviation should be presented for the test substance and positive and negative (untreated and/or solvent) controls.
Jednotlivé počty na miskách, stredná hodnota revertantných kolónií na misku a štandardná odchýlka sa uvádzajú pre testovaciu látku aj pre pozitívne a negatívne kontrolné kultúry (bez ošetrenia a/alebo s rozpúšťadlom).
Negative results need to be confirmed on a case-by-case basis.
Negatívne výsledky sa musia potvrdiť z prípadu na prípad.
Study parameters that might be modified include the concentration spacing, the method of treatment (plate-incorporation or liquid pre-incubation), and metabolic activation conditions.
Parametre štúdie, ktoré sa dajú modifikovať, zahŕňajú rozsahy koncentrácií, metódu aplikácie látky (použitie misky alebo kvapalná predinkubácia) a podmienky metabolickej aktivácie.
There are several criteria for determining a positive result, such as a concentration-related increase over the range tested and/or a reproducible increase at one or more concentrations in the number of revertant colonies per plate in at least one strain with or without metabolic activation system (23).
Pre stanovenie pozitívneho výsledku existuje niekoľko kritérií, ako napríklad nárast oproti testovanému rozsahu spojený s koncentráciou a/alebo reprodukovateľný nárast pri jednej alebo viacerých koncentráciách počtu revertantných kolónií na misku najmenej v jednom kmeni so systémom metabolickej aktivácie alebo bez systému metabolickej aktivácie (23).
Statistical methods may be used as an aid in evaluating the test results (24).
Ako pomôcka sa pri hodnotení výsledkov testov používajú štatistické metódy (24).
However, statistical significance should not be the only determining factor for a positive response.
Štatistický význam nie je jediným určujúcim faktorom pre pozitívnu reakciu.
Positive results from the bacterial reverse mutation test indicate that the substance induces point mutations by base substitutions or frameshifts in the genome of either Salmonella typhimurium and/or Escherichia coli.
Pozitívne výsledky bakteriálneho testu reverzných mutácií naznačujú, že určitá látka vyvoláva bodové mutácie prostredníctvom základných substitúcií alebo konštrukčných posunov genómu Salmonella typhimurium a/alebo Escherichia coli.
Negative results indicate that under the test conditions, the test substance is not mutagenic in the tested species.
Negatívne výsledky naznačujú, že testovacia látka nie je v testovacích podmienkach pre testované druhy mutagénna.
justification for choice of solvent/vehicle,
zdôvodnenie výberu nosiča,
Strains:
Kmene:
strains used,
použité kmene,
number of cells per culture,
počet buniek v kultúre,
strain characteristics.
charakteristiky kmeňa.
amount of test substance per plate (mg/plate or μl/plate) with rationale for selection of dose and number of plates per concentration,
množstvo testovacej látky na misku (mg/miska alebo μl/miska) so zdôvodnením voľby dávky a počtu misiek na koncentráciu,
media used,
použité médiá,
treatment procedures.
postupy dávkovania.
individual plate counts,
počty na jednotlivých miskách,
the mean number of revertant colonies per plate and standard deviation,
stredná hodnota revertantných kolónií na misku a štandardná odchýlka,
concurrent negative (solvent/vehicle) and positive control data, with ranges, means and standard deviations,
súbežné údaje o negatívnych (rozpúšťadlo/nosič) a pozitívnych kontrolných kultúrach s rozsahmi, strednými hodnotami a štandardnými odchýlkami,
historical negative (solvent/vehicle) and positive control data with ranges, means and standard deviations.
historické údaje o negatívnych (rozpúšťadlo/nosič) a pozitívnych kontrolných kultúrach s rozsahmi, strednými hodnotami a štandardnými odchýlkami.
Environmental Protection Agency Gene-Tox Program.
(1988). A Review and Analysis of the Chinese Hamster Ovary/Hypoxanthine Guanine Phosphoribosyl Transferase System to Determine the Mutagenicity of Chemical Agents: A Report of Phase III of the U.S. Environmental Protection Agency Gene – Tox Program.
Yahagi, T., Degawa, M., Seino, Y.Y., Matsushima, T., Nagao, M., Sugimura, T. and Hashimoto, Y., (1975) Mutagenicity of Carcinogen Azo Dyes and their Derivatives, Cancer Letters, 1, p. 91-96.
Yahagi, T., Degawa, M., Seino, Y. Y., Matsushima, T., Nagao, M., Sugimura, T. a Hashimoto, Y. (1975), Mutagenicity of Carcinogen Azo Dyes and their Derivatives, Cancer letters 1, s. 91 – 96.
Norpoth K.H. and Garner, R.C., Springer, Berlin-Heidelberg-New York. p. 273-285.
Norpoth, K. H. a Garner, R C, Springer, Berlin-Heidelberg-New York, s. 273 – 285.
Kirkland, Cambridge University Press, p. 13-61.
Kirkland, Cmabridge University Press, s. 13 – 61.
Mutation Res., 38, p. 33-42.
a Bridges, B. A. (1976), Use of a Simplified Fluctuation Test to Detect Low Levels of Mutagens, Mutation Res., 38, s. 33 – 42.
Hubbard, S.A., Green, M.H.L., Gatehouse, D. and J.W.
Hubbard, S. A., Green, M. H. L., Gatehouse, D. a Bridges, J. W.
Kilbey, B.J., Legator, M., Nichols, W. and Ramel, C., Elsevier, Amsterdam-New York-Oxford, p. 141-161.
Kilbey, B. J., Legator, M., Nichols, W. a Ramel, C, Elsevier, Amsterdam-New York-Oxford, s. 141 – 161.
Zeiger, E., Anderson, B.E., Haworth, S., Lawlor, T. and Mortelmans, K., (1992) Salmonella Mutagenicity Tests.
Zeiger, E., Anderson, B. E., Haworth, S., Lawlor, T. a Mortelmans, K. (1992), Salmonella Mutagenicity Tests.
Mutagen., 19, p. 2-141.
Mutagen., 19, s. 2 – 141.
Proc.
Molecular Dissection of Mutations at the Heterozygous Thymidine Kinase Locus in Mouse Lymphoma Cells.
Natl.
Proc.
USA, 77, p. 4961-4965.
USA, 77, s. 4961 – 4965.
Elsevier, North Holland, p. 85-88.
(eds), Elsevier, North Holland, s. 85 – 88.
Kirkland, D.J., Cambridge University Press, p. 28-65.
Kirkland, D. J., Cambridge University Press, Cambridge, s. 28 – 65.
A variety of haploid and diploid strains of the yeast Saccharomyces cerevisiae can be used to measure the production of gene mutations induced by chemical agents with and without metabolic activation.
Na zisťovanie vzniku génových mutácií indukovaných chemickými agensmi sa používa množstvo haploidných a diploidných kmeňov kvasiniek Saccharomyces cerevisiae buď s metabolickou aktiváciou, alebo bez nej.
Forward mutation systems in haploid strains, such as the measurement of mutation from red, adenine-requiring mutants (ade-1, ade-2) to double adenine-requiring white mutants and selective systems such as the induction of resistance to canavnaine and cycloheximide, have been utilised.
Môže sa použiť systém priamych mutácií v haploidných kmeňoch (ade-1 alebo ade-2), ktoré sú červené a ďalšou mutáciou sa menia na dvojité biele mutanty, alebo selektívny systém, ako je indukcia rezistencie na kanavanín a cykloheximid.
The most extensively validated reverse mutation system involves the use of the haploid strain XV 185-14C which carries the ochre nonsense mutations ade 2-1, arg 4-17, lys 1-1 and trp 5-48, which are reversible by base substitution mutagens that induce site specific mutations or ochre suppressor mutations.
Prevažne sa však používa overený systém reverzných mutácií s haploidným kmeňom XV 185-14C, ktorý nesie „ochre nonsens“ mutácie ade 2-1, arg 4-17, lys 1-1 a trp 5-48. Tieto mutácie sú reverzibilné bázovou substitúciou s použitím mutagénov, ktoré indukujú „site“ špecifické mutácie alebo „ochre“ supresorové mutácie.
XV 185-14C also carries the his 1-7 marker, a missense mutation reverted mainly by second site mutations, and the marker hom 3-10 which is reverted by frameshift mutagens.
XV 185-14C nesie tiež his 1-7 marker. Je to „missens“ mutácia, ktorá je väčšinou reverzibilná druhou „site“ mutáciou. Takisto nesie ďalší marker hom 3-10, ktorý je reverzibilný „frameshift“ mutagénmi.
In diploid strains of S. cerevisiae the only extensively used strain is D7 which is homozygous for ilv 1-92.
Z diploidných kmeňov S. cerevisiae sa prevažne používa kmeň D7, ktorý je homozygotný v ilv 1-92.