natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Cytotoxicity is usually determined by measuring the relative cloning efficiency (survival) or relative total growth of the cultures after the treatment period.
Cytotoxicita sa zvyčajne stanovuje meraním relatívnej klonovacej efektívnosti (prežitie) alebo relatívneho celkového rastu kultúr po dobe podávania.
The treated cultures are maintained in growth medium for a sufficient period of time, characteristic of each selected locus and cell type, to allow near-optimal phenotypic expression of induced mutations.
Ošetrené kultúry sa vhodnú dobu, charakteristickú pre každý vybraný lokus a typ buniek, udržiavajú v rastovom médiu, čo umožní takmer optimálny fenotypický prejav indukovaných mutácií.
Mutant frequency is determined by seeding known numbers of cells in medium containing the selective agent to detect mutant cells and in medium without selective agent to determine the cloning efficiency (viability).
Mutačná frekvencia sa stanovuje zasadením známeho počtu buniek do média obsahujúceho selektívne činidlo na zistenie mutantných buniek a do média bez selektívneho činidla na stanovenie klonovacej efektívnosti (životaschopnosti).
After a suitable incubation time, colonies are counted.
Po vhodnej inkubačnej dobe sa kolónie zrátajú.
The mutant frequency is derived from the number of mutant colonies in selective medium and the number of colonies in non-selective medium.
Mutačná frekvencia sa odvodzuje od počtu mutantných kolónií v selektívnom médiu a počtu kolónií v neselektívnom médiu.
A variety of cell types are available for use in this test including subclones of L5178Y, CHO, CHO-AS52, V79 or TK6 cells.
Pre použitie v tomto teste sú dostupné rôzne bunkové typy, vrátane subklonov buniek L5171Y, CHO, CHO-AS52, V79 alebo TK6.
Cell types used in this test should have a demonstrated sensitivity to chemical mutagens, a high cloning efficiency and a stable spontaneous mutant frequency.
Typy buniek použité v tomto teste majú preukázanú citlivosť na chemické mutagény, vysokú klonovaciu efektívnosť a stabilnú frekvenciu spontánnych mutácií.
Cells should be checked for mycoplasma contamination and should not be used if contaminated.
Bunky sa kontrolujú na kontamináciu mykoplazmou a pri jej zistení sa nepoužívajú.
The test should be designed to have a predetermined sensitivity and power.
Test by sa mal formulovať tak, aby mal vopred určenú citlivosť a silu.
The number of cells, cultures and concentrations of test substance used should reflect these defined parameters (14).
Počet použitých buniek, kultúr a koncentrácií testovacej látky odráža tieto definované parametre (14).
The minimal number of viable cells surviving treatment and used at each stage in the test should be based on the spontaneous mutation frequency.
Minimálny počet životaschopných buniek, ktoré prežijú podávanie a ktoré sa použijú v každom štádiu testu, je založený na frekvencii spontánnych mutácií.
A general guide is to use a cell number, which is at least 10 times the inverse of the spontaneous mutation frequency.
Všeobecným pravidlom je použiť počet buniek, ktorý je najmenej 10-krát taký veľký, ako prevrátená hodnota frekvencie spontánnych mutácií.
However, it is recommended to utilise at least 106 cells.
Odporúča sa však použiť najmenej 106 buniek.
Adequate historical data on the cell system used should be available to indicate consistent performance of the test.
Na znázornenie konzistentného výkonu testu by mali byť dostupné historické údaje o použitom systéme buniek
Appropriate culture media, and incubation conditions (culture vessels, temperature, CO2 concentration, and humidity) should be used.
Používajú sa príslušné médiá a inkubačné podmienky (nádoby, koncentrácia CO2, teplota a vlhkosť).
Media should be chosen according to the selective systems and cell type used in the test.
Médiá sa vyberajú podľa selektívnych systémov a typu buniek použitých počas testu.
It is particularly important that culture conditions should be chosen that ensure optimal growth of cells during the expression period and colony forming ability of both mutant and non-mutant cells.
Osobitne dôležité je zvoliť podmienky kultúr tak, aby bol zabezpečený optimálny rast buniek počas obdobia prejavu a schopnosť formovania kolónií mutantných aj nemutantných buniek.
Cell are propagated from stock cultures, seeded in culture medium and incubated at 37 oC.
Bunky sa odoberajú z kultúr vysadených v médiu a inkubovaných pri teplote 37 oC.
Prior to use in this test, cultures may need to be cleansed of pre-existing mutant cells.
Pred použitím v tomto teste sa kultúry podľa potreby prečistia od existujúcich mutantných buniek.
The most commonly used system is a cofactor-supplemented post-mitochondrial fraction (S9) prepared from the livers of rodents treated with enzyme-inducing agents such as Aroclor 1254 (15)(16)(17)(18) or a combination of phenobarbitone and ß–naphthoflavone (19)(20).
Najpoužívanejším systémom je postmitochondriálna frakcia podporená kofaktorom (S9) pripravená z pečene hlodavcov a ošetrená prípravkami na indukciu enzýmov ako napríklad Aroclorom 1254 (15) (16) (17) (18) alebo kombinácia fenobarbitonu a beta-naftoflavónu(19)(20).
Cytotoxicity should be determined with and without metabolic activation in the main experiment using an appropriate indication of cell integrity and growth, such as relative cloning efficiency (survival) or relative total growth.
Cytotoxicita sa stanovuje s metabolickou aktiváciou a bez metabolickej aktivácie pri hlavnom pokuse s použitím príslušného označenia integrity a rastu buniek, ako napríklad relatívnej klonovacej efektívnosti (prežitie) alebo relatívneho celkového rastu.
At least four analysable concentrations should be used.
Používať by sa mali najmenej štyri analyzovateľné koncentrácie.
Where there is cytotoxicity, these concentrations should cover a range from the maximum to little or no toxicity; this will usually mean that the concentration levels should be separated by no more than a factor between 2 and √10.
Pri výskyte cytotoxicity tieto koncentrácie pokrývajú rozsah od maximálnej po malú alebo žiadnu toxicitu; toto zvyčajne znamená, že koncentrácie sú oddelené nie viac ako jedným koeficientom medzi 2 a √10.
If the maximum concentration is based on cytotoxicity then it should result in approximately 10-20 % (but not less than 10 %) relative survival (relative cloning efficiency) or relative total growth.
Ak je najvyššia koncentrácia založená na cytotoxicite, jej výsledkom je približne 10 – 20 % (avšak nie menej ako 10 %) relatívneho prežitia (relatívna klonovacia efektívnosť) alebo relatívneho celkového rastu.
For relatively non-cytotoxic substances, the maximum test concentration should be 5 mg/ml 5 μl/ml, or 0,01 M, whichever is the lowest.
Pre relatívne necytotoxické látky sú maximálne testovacie koncentrácie 5 mg/ml, 5 μl/ml alebo 1,01 M, podľa toho, ktorá je najnižšia.
Relatively insoluble substances should be tested up to or beyond their limit of solubility under culture conditions.
Relatívne nerozpustné látky sa testujú po limit rozpustnosti v podmienkach kultúry.
Evidence of insolubility should be determined in the final treatment medium to which cells are exposed.
V konečnom médiu, ktorému sú bunky vystavené, sa stanovujú dôkazy nerozpustnosti.
It may be useful to assess solubility at the beginning and the end of the treatment, as solubility can change during the course of exposure in the test system due to presence of cells, S9, serum, etc. Insolubility can be detected by using the unaided eye.
Užitočné je odhadnúť rozpustnosť na začiatku a na konci podávania, keďže rozpustnosť sa môže zmeniť počas priebehu vystavenia v testovacom systéme kvôli prítomnosti buniek, séra S9 atď. Nerozpustnosť sa zisťuje voľným okom.
Concurrent positive and negative (solvent or vehicle) controls, both with and without metabolic activation should be included in each experiment.
Pri každom pokuse sa vytvoria pozitívne a negatívne (rozpúšťadla alebo nosiča) kontrolné kultúry s metabolickou aktiváciou i bez metabolickej aktivácie.
Metabolic activation condition
Stav metabolickej aktivácie
Locus
Miesto
Absence of exogenous metabolic activation
neprítomnosťexogénnej metabolickej aktivácie
TK (small and large colonies)
TK (malé a veľké kolónie)
Presence of exogenous metabolic activation
prítomnosť exogénnej metabolickej aktivácie
3-Methylcholanthrene
3-mety lcho lanthén
N-Nitrosodimethylamine
N-nitrozodimetylamín
7,12-Dimethylbenzanthracene
7,12-dimetylbenzanthracén
N-Nitrosodimethylamine (for high levels of S-9)
N-nitrozodimetylamín (pre vysoké dávky S9)
Other appropriate positive control reference substances may be used, e.g. if a laboratory has a historical data base on 5-Bromo 2'-deoxyuridine (CAS n. 59-14-3, Einecs n. 200-415-9), this reference substance could be used as well.
Na pozitívnu kontrolnú kultúru sa môžu použiť aj iné vhodné látky, napríklad: ak laboratórium má historickú databázu o 5-bromo 2'-deoxyuridíne (CAS č. 59-14-3, Einecs č. 200-415-9), použije sa aj táto referenčná látka.
Negative controls, consisting of solvent or vehicle alone in the treatment medium, and treated in the same way as the treatment groups, should be included.
Použijú sa negatívne kontrolné kultúry, pozostávajúce iba zo samotného rozpúšťadla alebo nosiča v médiu, a ošetrené rovnakým spôsobom ako ošetrované kultúry.
Proliferating cells should be exposed to the test substance both with and without metabolic activation.
Rozširujúce sa bunky sa exponujú testovacej látke s metabolickou aktiváciou i bez metabolickej aktivácie.
Exposure should be for a suitable period of time (usually three to six hours is effective).
Exponovanie trvá vhodnú dobu (efektívnych je zvyčajne 3-6 hodín).
Exposure time may be extended over one or more cell cycles.
Doba expozície sa môže predĺžiť počas jedného alebo viacerých bunkových cyklov.
Either duplicate or single treated cultures may be used at each concentration tested.
Pri každej testovanej koncentrácii sa môžu použiť duplicitné alebo jednotlivé ošetrené kultúry.
When single cultures are used, the number of concentrations should be increased to ensure an adequate number of cultures for analysis (e.g. at least eight analysable concentrations).
Pri použití jednotlivých kultúr sa počet koncentrácií zvýši na zabezpečenie primeraného počtu kultúr na analýzu (napríklad: minimálne 8 analyzovateľných koncentrácií).
Duplicate negative (solvent) control cultures should be used.
Používajú sa duplicitné negatívne (s rozpúšťadlom) kontrolné kultúry.
Gaseous or volatile substances should be tested by appropriate methods, such as in sealed culture vessels (21)(22).
Plynné alebo prchavé látky sa testujú príslušnými metódami, ako napríklad vo vzduchotesne uzavretých nádobách (21),(22).
Measurement of survival, viability and mutant frequency
Meranie prežitia, životaschopnosti a mutačnej frekvencie
At the end of the exposure period, cells are washed and cultured to determine survival and to allow for expression of the mutant phenotype.
Na konci expozičného obdobia sa bunky očistia a kultivujú na stanovenie prežitia a na umožnenie prejavu mutantného fenotypu.
Measurement of cytotoxicity by determining the relative cloning efficiency (survival) or relative total growth of the cultures is usually initiated after the treatment period.
Meranie cytotoxicity stanovením relatívnej klonovacej frekvencie (prežitie) alebo relatívneho celkového rastu kultúr sa zvyčajne uskutoční po dobe podávania.
Each locus has a defined minimum time requirement to allow near optimal phenotypic expression of newly induced mutants (HPRT and XPRT require at least six to eight days, and TK at least two days).
Každé miesto má definovanú požiadavku na minimálnu dobu na umožnenie takmer optimálneho fenotypického prejavu novoindukovaných mutantov (HPRT a XPRT vyžadujú najmenej 6 – 8 dní a TK najmenej 2 dni).
Cells are grown in medium with and without selective agent(s) for determination of numbers of mutants and cloning efficiency, respectively.
Bunky rastú v médiu so selektívnym činiteľom aj bez selektívneho činiteľa/činiteľov na stanovenie počtu mutantov a klonovacej efektívnosti.
The measurement of viability (used to calculate mutant frequency) is initiated at the end of the expression time by plating in non-selective medium.
Meranie životaschopnosti (používa sa na výpočet mutačnej frekvencie) sa uskutočňuje na konci obdobia prejavu umiestnením na misky s neselektívnym médiom.
If the test substance is positive in the L5178Y TK+/- test, colony sizing should be performed on at least one of the test cultures (the highest positive concentration) and on the negative and positive controls.
Ak je testovacia látka v L5178Y TK+/- teste pozitívna, meranie veľkosti kolónie sa uskutoční minimálne na jednej testovanej kultúre (najvyššia pozitívna koncentrácia) a na negatívnych a pozitívnych kontrolných kultúrach.
If the test substance is negative in the L5178Y TK+/- test, colony sizing should be performed on the negative and positive controls.
Ak je testovacia látka v L5178Y TK+/- teste negatívna, meranie veľkosti kolónie sa uskutoční na negatívnych a pozitívnych kontrolných kultúrach.
In studies using TK6TK+/-, colony sizing may also be performed.
Meranie kolónií sa tiež môže uskutočniť pri štúdiách používajúcich TK6TK+/- .
Data should include cytotoxicity and viability determination, colony counts and mutant frequencies for the treated and control cultures.
Údaje zahŕňajú stanovenie cytotoxicity a životaschopnosti, počet kolónií a mutačné frekvencie pre ošetrované a kontrolné kultúry.
In the case of a positive response in the L5178Y TK+/- test, colonies are scored using the criteria of small and large colonies on at least one concentration of the test substance (highest positive concentration) and on the negative and positive control.
V prípade pozitívnej reakcie v teste L5178TK+/- sa kolónie hodnotia použitím kritérií malých a veľkých kolónií na najmenej jednej koncentrácii testovacej látky (najvyššia pozitívna koncentrácia) a na negatívnych a pozitívnych kontrolných kultúrach.
The molecular and cytogenetic nature of both large and small colony mutants has been explored in detail (23)(24).
Podrobne bola preskúmaná molekulárna a cytogenetická povaha veľkých a malých kolónií mutácií (23), (24).
In the TK+/- test, colonies are scored using the criteria of normal growth (large) and slow growth (small) colonies (25).
V teste TK+/- sa kolónie hodnotia použitím kritérií pre kolónie s normálnym rastom (veľké) a pomalým rastom (malé) (25).
Mutant cells that have suffered the most extensive genetic damage have prolonged doubling times and thus form small colonies.
Mutantné bunky, ktoré utrpeli najväčšie genetické poškodenie, majú predĺžené časy delenia, a preto tvoria malé kolónie.
This damage typically ranges in scale from the losses of the entire gene to karyotypically visible chromosome aberrations.
Toto poškodenie je zvyčajne v rozsahu od straty celého génu po karyotypicky viditeľné chromozómové odchýlky.
The induction of small colony mutants has been associated with chemicals that induce gross chromosome aberrations (26).
Vznik mutovaných malých kolónií sa spája s chemikáliami, ktoré indukujú veľké chromozómové odchýlky (26).
Less seriously affected mutant cells grow at rates similar to the parental cells and form large colonies.
Menej vážne ovplyvnené mutantné bunky rastú rýchlosťou podobnou ako rodičovské bunky a tvoria veľké kolónie.
Survival (relative cloning efficiencies) or relative total growth should be given.
Uvádza sa prežitie (relatívna klonovacia efektívnosť) alebo relatívny celkový rast.
Mutant frequency should be expressed as number of mutant cells per number of surviving cells.
Mutačná frekvencia sa vyjadruje ako počet mutantných buniek na počet prežitých buniek.
Modification of study parameters to extend the range of conditions assessed should be considered in follow-up experiments for either equivocal or negative results.
Modifikácia parametrov štúdie na rozšírenie rozsahu hodnotených podmienok sa posudzuje pri následných pokusoch, a to buď pri nejasných alebo negatívnych výsledkoch.
There are several criteria for determining a positive result, such as a concentration-related increase or a reproducible increase in mutant frequency.
Pre stanovenie pozitívneho výsledku existuje niekoľko kritérií, ako napríklad nárast spojený s koncentráciou alebo reprodukovateľný nárast mutačnej frekvencie.
Statistical methods may be used as an aid in evaluating the test results.
Ako pomôcka sa pri hodnotení výsledkov testov používajú štatistické metódy.
Although most studies will give clearly positive or negative results, in rare cases the data set will preclude making a definite judgement about the activity of the test substance.
Hoci väčšina pokusov poskytne jednoznačne pozitívne alebo negatívne výsledky, v zriedkavých prípadoch súbor údajov vopred vylúči jednoznačné posúdenie aktivity testovacej látky.
Positive results from the in vitro mammalian cell gene mutation test indicate that the test substance induces gene mutations in the cultured mammalian cells used.
Pozitívne výsledky in vitro testu mutácií génov buniek cicavcov naznačujú, že testovacia látka vyvoláva génové mutácie v použitých kultúrach buniek cicavcov.
A positive concentration response that is reproducible is most meaningful.
Najdôležitejšou je reprodukovateľná pozitívna reakcia na koncentráciu.
Negative results indicate that, under the test conditions, the test substance does not induce gene mutations in the cultured mammalian cells used.
Negatívne výsledky naznačujú, že v testovacích podmienkach testovacia látka neindukuje génové mutácie v použitých kultúrach buniek cicavcov.
justification for choice of vehicle/solvent,
zdôvodnenie voľby nosiča,
number of cell cultures,
počet bunkových kultúr,
number of cell passages, if applicable,
počet bunkových prechodov, ak je to vhodné,
absence of mycoplasma.
neprítomnosť mykoplazmy.
composition of media, CO2 concentration,
skladba média, koncentrácia CO2,
cell density during treatment,
hustota buniek pri vysádzaní,
length of expression period (including number of cells seeded, and subcultures and feeding schedules, if appropriate),
dĺžka obdobia prejavu (vrátane počtu vysadených buniek, subkultúr a harmonogramov kŕmenia, ak je to vhodné),
selective agents,
selektívne činitele,
criteria for considering tests as positive, negative or equivocal,
kritériá na hodnotenie pokusov ako pozitívne, negatívne alebo nejasné,
methods used to enumerate numbers of viable and mutant cells.
metódy použité na stanovenie počtu životaschopných a mutantných buniek,
definition of colonies of which size and type are considered (including criteria for ‘small’ and ‘large’ colonies, as appropriate).
definícia kolónií, hodnotí sa veľkosť a typ (vrátane kritérií na „malé“ a „veľké“, ak je to vhodné).
data on pH and osmolality during the exposure to the test substance, if determined,
údaje o pH a osmolalite počas vystavenia testovacej látke, ak sú stanovené,
colony size if scored for at least negative and positive controls,
veľkosť kolónie, ak sa hodnotí, prinajmenšom pre negatívne a pozitívne kontrolné kultúry,
laboratory's adequacy to detect small colony mutants with the L5178Y TK+/- system, where appropriate,
primeranosť laboratória na zistenie malých mutantných kolónií so systémom L5178TK+/-, ak je to vhodné,
historical negative (solvent/vehicle) and positive control data with ranges, means and standard deviations,
historické údaje o negatívnej (rozpúšťadlo/nosič) a pozitívnej kultúre, s rozsahmi, modusmi a štandardnými odchýlkami,
mutant frequency.
mutačná frekvencia.
Moore, M.M., DeMarini, D.M., DeSerres, F.J. and Tindall, K.R.
Moore, M.M., DeMarini, D.M., DeSerres, FJ. and Tindall, K.R. (Eds.)
(Eds.), (1987) Banbury Report 28: Mammalian Cell Mutagenesis, Cold Spring Harbor Laboratory, New York.
(1987). Banbury Report 28: Mammalian Cell Mutagenesis, Cold Spring Harbor Laboratory, New York.
Chu, E.H.Y. and Malling, H.V., (1968) Mammalian Cell Genetics.
Chu, E.H.Y. and Mailing, H.V. (1968). Mammalian Cell Genetics.
Sci., USA, 61, p. 1306-1312.
Sci., USA, 61, 1306 – 1312.
Liber, H.L. and Thilly, W.G., (1982) Mutation Assay at the Thymidine Kinase Locus in Diploid Human Lymphoblasts.
Liber, H.L. and Thilly, W.G (1982). Mutation Assay at the Thymidine Kinase Locus in Diploid Human Lymphoblasts.
Mutation Res., 94, p. 467-485.
Mutation Res., 94, 467 – 485.
Moore, M.M., Harington-Brock, K., Doerr, C.L. and Dearfield, K.L., (1989) Differential Mutant Quantitation at the Mouse Lymphoma TK and CHO HGPRT Loci.
Moore, M.M., Harington – Brock, K, Doerr, C.L. and Dearfield, K.L. (1989). Differential Mutant Quantitation at the Mouse Lymphoma TK and CHO HGPRT Loci.
Mutagenesis, 4, p. 394-403.
Mutagenesis, 4, 394 – 403.
Aaron, C.S. and Stankowski, Jr.L.F., (1989) Comparison of the AS52/XPRT and the CHO/HPRT Assays: Evaluation of Six Drug Candidates.
Aaron, C.S. and Stankowski, Jr.L.F. (1989). Comparison of the AS52/XPRT and the CHO/HPRT Assays: Evaluation of Six Drug Candidates.
Mutation Res., 223, p. 121-128.
Mutation Res., 223, 121 – 128.
Aaron, C.S., Bolcsfoldi, G., Glatt, H.R., Moore, M., Nishi, Y., Stankowski, Jr.L.F., Theiss, J. and Thompson, E., (1994) Mammalian Cell Gene Mutation Assays Working Group Report.
Aaron, C.S., Bolcsfoldi, G, Glatt, H.R, Moore, M., Nishi, Y., Stankowski, Jr.L.F., Theiss, J. and Thompson, E. (1994). Mammalian Cell Gene Mutation Assays Working Group Report.
Mutation Res., 312, p. 235-239.
Mutation Res., 312. 235 – 239.
Scott, D., Galloway, S.M., Marshall, R.R., Ishidate, M., Brusick, D., Ashby, J. and Myhr, B.C., (1991) Genotoxicity Under Extreme Culture Conditions.
Scott, D., Galloway, S.M., Marshall, RR, Ishidate, M., Brusick, D., Ashby, J. and Myhr, B.C. (1991). Genotoxicity Under Extreme Culture Conditions.
Mutation Res., 257, p. 147-204.
Mutation Res., 257, 147 – 204.
Clive, D., McCuen, R., Spector, J.F.S., Piper, C. and Mavournin, K.H., (1983) Specific Gene Mutations in L5178Y Cells in Culture.
Clive, D., McCuen, R, Spector, J.F.S., Piper, C. and Mavournin, K.H. (1983).
A Report of the U.S.
Specific Gene Mutations in L5178Y Cells in Culture.
Mutation Res., 115, p. 225-251.
Mutation Res., 115. 225 – 251.
Li, A.P., Gupta, R.S., Heflich, R.H. and Wasson, J.S., (1988) A Review and Analysis of the Chinese Hamster Ovary/Hypoxanthine Guanine Phosphoribosyl Transferase System to Determine the Mutagenicity of Chemical Agents: A Report of Phase III of the U.S.
Li, A.P., Gupta, R.S., Heflich, RH. and Wasson, IS.
Mutation Res., 196, p. 17-36.
Mutation Res., 196, 17 – 36.
Li, A.P., Carver, J.H., Choy, W.N., Hsie, A.W., Gupta, R.S., Loveday, K.S., O'Neill, J.P., Riddle, J.C., Stankowski, L.F.
Li, A.P., Carver, J.H, Choy, W.N, Hsie, A.W., Gupta, R.S., Loveday, K.S., O'Neill, LP., Riddle, J.C., Stankowski, L.F. Jr. and Yang, L.L.
Jr. and Yang, L.L., (1987) A Guide for the Performance of the Chinese Hamster Ovary Cell/Hypoxanthine-Guanine Phosphoribosyl Transferase Gene Mutation Assay.
A Guide for the Performance of the Chinese Hamster Ovary Cell/Hypoxanthine – Guanine Phosphoribosyl Transferase Gene Mutation Assay.
Mutation Res., 189, p. 135-141.
Mutation Res., 189, 135 – 141.
Liber, H.L., Yandell, D.W and Little, J.B., (1989) A Comparison of Mutation Induction at the TK and HPRT Loci in Human Lymphoblastoid Cells: Quantitative Differences are Due to an Additional Class of Mutations at the Autosomal TK Locus.
Liber, H.L., Yandell, D.W and Little, J.B. (1989). A Comparison of Mutation Induction at the TK and HPRT Loci in Human Lymphoblastoid Cells: Quantitative Differences are Due to an Additional Class of Mutations at the Autosomal TK Locus.
Mutation Res., 216, p. 9-17.
Mutation Res., 216, 9 – 17.
Stankowski, L.F.
Stankowski, L.F. Jr., Tindall, K.R and Hsie, A.W.
Jr., Tindall, K.R. and Hsie, A.W., (1986) Quantitative and Molecular Analyses of Ethyl Methanosulphonate -and ICR 191- Induced Molecular Analyses of Ethyl Methanosulphonate -and ICR 191-Induced Mutation in AS52 Cells.
Quantitative and Molecular Analyses of Ethyl Methanosulphonate – and ICR 191 – Induced Molecular Analyses of Ethyl Methanosulphonate – and ICR 191 – Induced Mutation in AS52 Cells.
Mutation Res., 160, p. 133-147.
Mutation Res., 160, 133 – 147.