natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Solutions of test chemicals and control should be prepared just prior to testing, using an appropriate vehicle.
Roztoky testovaných chemikálií a kontroly by sa mali pripravovať tesne pred testovaním s použitím vhodných rozpúšťadiel.
In the case of organic compounds, which are not water soluble, not more than a 2 % solution v/v of organic solvents such as ethanol, acetone or dimethylsulphoxide (DMSO) should be used.
V prípade organických zlúčenín, ktoré nie sú rozpustné vo vode, malo by sa použiť organické rozpúšťadlo ako etanol, acetón alebo dimetylsulfoxid (DMSO), najviac 2 % roztok v/v.
The final concentration of the vehicle should not significantly affect cell viability and growth characertistics.
Výsledná koncentrácia rozpúšťadla by nemala výrazne ovplyvňovať životaschopnosť buniek a rastové parametre.
Cells should be exposed to test chemicals both in the presence and absence of an appropriate exogenous metabolic activation system.
Bunky by mali byť ovplyvnené testovanou látkou bez prítomnosti a s prítomnosťou vhodného exogénneho metabolického aktivačného systému.
The most commonly used system is a co-factor supplemented post-mitochondrial fraction from the livers of rodents pre-treated with enzyme inducing agents.
Najbežnejšie používaný systém je postmitochondriálna frakcia z pečene hlodavcov doplnená kofaktormi, vopred ovplyvnená látkami indukujúcimi enzýmy.
The use of other species, tissues, post-mitochondrial fractions, or procedures may also be appropriate for metabolic activation.
Na metabolickú aktiváciu môže byť vhodné použitie aj iných druhov, tkanív, post-mitochondriálnych frakcií alebo iných postupov.
Tester strains
Testovacie kmene
The haploid strain XV 185-14C and the diploid strain D7 are the most used in gene mutation studies.
Pre testy génových mutácií je najpoužívanejší haploidný kmeň XV 185-14C a diploidný kmeň D7.
Other strains may also be appropriate.
Vhodné môžu byť aj iné kmene.
Appropriate culture media are used for the determination of survival and mutant numbers.
Pre stanovenie prežívania a počtu mutantov sa používajú vhodné kultivačné médiá.
Use of negative and positive controls
Použitie negatívnej a pozitívnej kontroly
Positive, untreated and solvent controls should be performed concurrently.
Súbežne by mali byť použité pozitívne, neovplyvnené kontroly a kontroly s rozpúšťadlom.
Appropriate positive control chemicals should be used for each specific mutational endpoint.
Pre každý špecifický typ mutácií by sa mala použiť vhodná chemikália ako pozitívna kontrola.
At least five adequately spaced concentrations of the test substance should be used.
Malo by sa použiť aspoň päť primerane odstupňovaných koncentrácií testovanej látky.
Sub-cultures should be used with spontaneous mutation frequencies within the accepted normal range.
Mali by sa použiť monokultúry s frekvenciou spontánnych mutácií v prijateľnom rozsahu.
In the case of experiments using markers such as hom 3-10 with a low mutation rate, the number of plates used must be increased to provide statistically relevant data.
V prípade experimentov používajúcich markery ako hom 3-10 s nízkou mutačnou frekvenciou sa množstvo použitých platní má zvýšiť tak, aby poskytovalo štatisticky významné údaje.
Treatment of S. cerevisiae strains is usually performed in a liquid test procedure involving either stationary or growing cells.
Ovplyvňovanie S. cerevisiae sa bežne robí v tekutom prostredí s použitím stacionárnych alebo rastúcich buniek.
Initial experiments should be carried out on growing cells: 1-5 × 107 cells/ml are exposed to the test chemical for up to 18 hours at 28 to 37 oC with shaking; an adequate amount of metabolic activation system is added during treatment when appropriate.
Začiatočné experimenty by sa mali robiť na rastúcich bunkách: bunky s koncentráciou 1 – 5 × 107/ml sú ovplyvnené testovanou chemikáliou maximálne 18 hodín pri 28 oC až 37 oC pri neustálom prevzdušňovaní; ak je potrebné, pridá sa počas experimentu primerané množstvo metabolického aktivátora.
At the end of the treatment, cells are centrifuged, washed and seeded upon an appropriate culture medium.
Na konci ovplyvnenia sú bunky zcentrifugované, premyté a vysiate na vhodné kultivačné médium.
After incubation, plates are scored for survival and the induction of gene mutation.
Po inkubácii sa platne vyhodnotia na prežívanie a indukciu génových mutácií.
If the first experiment is negative, then a second experiment should be carried out using stationary phase cells.
Ak je prvý experiment negatívny, v druhom experimente by sa mali použiť bunky stacionárnej fázy.
If the first experiment is positive it is confirmed in an appropriate independent experiment.
Ak je prvý experiment pozitívny, malo by sa to potvrdiť vo vhodnom nezávislom experimente.
Data should be presented in tabular form indicating the number of colonies counted, number of mutants, survival and mutant frequency.
Údaje by sa mali prezentovať v tabuľke a udávať počet kolónií, počet mutantov, prežívania a frekvenciu mutantov.
All results should be confirmed in an independent experiment.
Všetky výsledky je potrebné potvrdiť v nezávislom experimente.
The dara should be evaluated using appropriate statistical methods.
Výsledky by sa mali vyhodnotiť vhodnou štatistickou metódou.
The test report shall, if possible, contain the following information:
Správa z testu má podľa možnosti obsahovať nasledujúce informácie:
strain used,
použitý kmeň,
test conditions: stationary phase or growing cells, compositions of media, incubation temperature and duration, metabolic activation system,
podmienky pri teste: rastúce bunky alebo bunky stacionárnej fázy, zloženie médií, trvanie inkubácie a inkubačnú teplotu, metabolický aktivačný systém,
treatment conditions: exposure levels, procedure and duration of treatment, treatment temperature, positive and negative controls,
podmienky vystavenia: použité koncentrácie, metódy a čas vystavenia a teplotu pri vystavení, pozitívne a negatívne kontroly,
number of colonies counted, number of mutants, survival and mutant frequency, dose/response relationship if applicable, statistical evaluation of data,
spočítaný počet kolónií, počet mutantov, prežívanie a frekvencia mutantov, vzťah dávka/odpoveď ak je to reálne, štatistické vyhodnotenie údajov,
discussion of results,
diskusiu o výsledkoch,
Mitotic recombination in Saccharomyces cerevisiae can be detected between genes (or more generally between a gene and its centromere) and within genes.
Mitotická rekombinácia v Saccharomyces cerevisiae môže byť detekovaná medzi génmi (alebo všeobecnejšie medzi génom a jeho centromérou) a vnútri génov.
The former event is called mitotic crossing-over and generates reciprocal products whereas the latter event is most frequently non-reciprocal and is called gene conversion.
Prvý dej sa nazýva mitotický crossing-over a vytvára recipročné produkty, zatiaľ čo druhý dej je najčastejšie nerecipročný a nazýva sa génová konverzia.
Crossing-over is generally assayed by the production of recessive homozygous colonies or sectors produced in a heterozygous strain, whereas gene conversion is assayed by the production of prototrophic revertants produced in an auxotrophic heteroallelic strain carrying two different defective alleles of the same gene.
V crossing-overe je všeobecne hodnotené množstvo recesívne homozygotných kolónií alebo sektorov vzniknutých v heterozygotnom kmeni, zatiaľ čo v génovej konverzii je hodnotené množstvo prototrofných revertantov vzniknutých v auxotrofnom heteroalelickom kmeni, ktorý nesie dve rozdielne defektné alely v tom istom géne.
The most commonly used strains for the detection of mitotic gene conversion are D4 (heteroallelic at ade 2 and trp 5) D7 (heteroallelic at trp 5) BZ34 (heteroallelic at arg 4) and JDl (heteroallelic at his 4 and trp 5).
Najbežnejšie používané kmene pre detekciu mitotickej génovej konverzie sú D4 (heteroalelický v ade 2 a trp 5), D7 (heteroalelický v trp 5), BZ34 (heteroalelický v arg 4) a JD1 (heteroalelický v his 4 a trp 5).
Mitotic crossing-over producing red and pink homozygous sectors can be assayed in D5 or in D7 (which also measures mitotic gene conversion and reverse mutation at ilv 1-92) both strains being heteroallelic for complementing alleles of ade 2.
Mitotický crossing-over vytvárajúci červené a ružové homozygotné sektory môže byť testovaný v D5 alebo v D7, (v ktorom môžeme takisto detekovať mitotickú génovú konverziu a reverzné mutácie v ilv 1-92), oba kmene sú heteroalelické pre komplementáciu alel ade 2.
Solutions of test chemicals and control or reference compounds should be prepared just prior to testing, using an appropriate vehicle.
Roztoky testovaných chemikálií a kontroly alebo referenčné zlúčeniny by mali byť pripravované tesne pred testovaním s použitím vhodných rozpúšťadiel.
With organic compounds that are water insoluble not more than a 2 % solution v/v of organic solvents such as ethanol, acetone or dimethylsulphoxide (DMSO) should be used.
V prípade organických zlúčenín, ktoré nie sú rozpustné vo vode, by sa malo použiť organické rozpúšťadlo ako etanol, acetón alebo dimetylsulfoxid (DMSO) nie viac ako 2 % roztok v/v.
The final concentration of the vehicle should not significantly affect cell viability and growth characteristics.
Výsledná koncentrácia rozpúšťadla by nemala výrazne ovplyvňovať životaschopnosť buniek a rastové parametre.
The system most commonly used is a co-factor supplemented post-mitochondrial fraction from the livers of rodents pre-treated with enzyme inducing agents.
Najbežnejšie používaný systém je post-mitochondriálna frakcia z pečene hlodavcov doplnená kofaktormi vopred ovplyvnená latkami indukujúcimi enzýmy.
The most frequently used strains are the diploids D4, D5, D7 and JD1.
Najviac používanými kmeňmi sú diploidy D4, D5, D7 a JD1.
The use of other strains may be appropriate.
Môžu sa použiť aj iné kmene.
Appropriate culture media are used for the determination of survival and the frequency of mitotic recombination.
Na stanovenie prežívania a frekvencie mitotickej rekombinácie sa používajú vhodné kultivačné médiá.
Appropriate positive control chemicals should be used for each specific recombination endpoint.
Pre každý špecifický typ mutácií by sa mala použiť vhodná chemikália ako pozitívna kontrola.
Among the factors to be taken into consideration are cytotoxicity and solubility.
Medzi faktormi, ktoré treba brať do úvahy, je cytotoxicita a rozpustnosť.
The lowest concentration must have no effect on celf viability.
Najnižšia koncentrácia nemá mať efekt na životaschopnosť buniek.
For toxic chemicals, the highest concentration tested should not reduce survival below 5 to 10 %.
Pri toxických chemikáliách by nemala najvyššia testovaná koncentrácia znižovať prežívanie pod 5 až 10 %.
Relatively water-insoluble chemicals should be tested up to the limit of solubility using appropriate procedures.
Látky relatívne nerozpustné vo vode by mali byť testované až do hranice ich rozpustnosti použitím vhodných metód.
For freely water-soluble non-toxic substances the upper concentration should be determined on a case by case basis.
Pri netoxických látkach voľne rozpustných vo vode by sa mala najvyššia použitá koncentrácia stanoviť z prípadu na prípad.
Cells may be exposed to test chemicals in either the stationary phase or during growth for periods of up to 18 hours.
Bunky môžu byť vystavené testovanej chemikálii buď v stacionárnej fáze, alebo v rastovej fáze maximálne 18 hodín.
However, for long treatment times cultures should be microscopically inspected for spore formation, the presence of which invalidates the test.
Pri dlhšom vystavení by sa malo v kultúrach sledovať formovanie spór, prítomnosť ktorých znehodnocuje test.
Incubation conditions
Inkubačné podmienky
The plates are incubated in the dark for four to seven days at 28 to 30 oC.
Platne sú inkubované štyri až sedem dní pri 28 – 30 oC v tme.
Plates used for the assay of red and pink homozygous sectors produced by mitotic crossing-over should be kept in a refrigerator (about 4 oC) for a further one to two days before scoring to allow for the development of the appropriate pigmented colonies.
Platne použité pre testovanie červených a ružových homozygotných sektorov vzniknutých mitotickým crossing-overom by mali byť po skončení experimentu držané v chladničke (okolo 4 oC) ďalšie jeden až dva dni pred vyhodnotením, čo umožní vytvorenie hodnotiteľných pigmentovaných kolónií.
Spontaneous mitotic recombination frequencies
Frekvencia spontánnej mitotickej rekombinácie
Sub-cultures should be used with spontaneous mitotic recombination mutation frequencies within the accepted normal range.
Mali by byť použité monokultúry s frekvenciou spontánnej mitotickej rekombinácie v prijateľnom rozsahu.
Number of replicates
Počet opakovaní
A minimum of three replicate plates should be used per concentration for the assay of prototrophs produced by mitotic gene conversion and for viability.
Pri testovaní vzniku prototrofov mitotickou génovou konverziou a pre stanovenie prežívania buniek by mali byť použité najmenej tri opakovania pre každú koncentráciu.
In the case of the assay of recessive homozygosis produced by mitotic crossing-over, the plate number should be increased to provide an adequate number of colonies.
V prípade testovania recesívnych homozygotov vzniknutých mitotickým crossing-overom sa množstvo použitých platní má zvýšiť tak, aby poskytovalo primerané množstvo kolónií.
1-5 × 107 celles/ml are exposed to the test chemical for up to 18 hours at 28 to 37 oC with shaking; an adequate amount of metabolic activation system is added during treatment when appropriate.
Začiatočné experimenty by sa mali robiť na rastúcich bunkách: bunky s koncentráciou 1 – 5 × 107/ml sú vystavené testovanej chemikálii maximálne 18 hodín pri 28 až 37 oC pri neustálom prevzdušňovaní; ak je potrebné, pridá sa počas experimentu primerané množstvo metabolického aktivátora.
At the end of the treatment, cells are centrifuged, washed and seeded upon appropriate culutre medium.
Na konci ovplyvnenia sú bunky zcentrifugované, premyté a vysiate na vhodné kultivačné médium.
After incubation plates are scored for survival and the induction of mitotic recombination.
Po inkubácii sú platne vyhodnotené na prežívanie a indukciu mitotickej rekombinácie.
If the first experiment is positive it is confirmed in an independent experiment.
Ak je prvý experiment pozitívny, malo by sa to potvrdiť vo vhodnom nezávislom experimente.
Data should be presented in tabular form indicating the number of colonies counted, the number of recombinants, survival and the frequency of recombinants.
Údaje by mali byť prezentované v tabuľke a udávať počet kolónií, počet rekombinantov, prežívanie a frekvenciu rekombinantov.
Results should be confirmed in an independent experiment.
Výsledky by mali byť potvrdené v nezávislom experimente.
The data should be evaluated using appropriate statistical methods.
Údaje by mali byť vyhodnotené vhodnou štatistickou metódou.
test conditions: stationary phase or growing cells, composition of media, incubation temperature and duration, metabolic activation system,
podmienky pri teste: bunky stacionárnej fázy alebo rastúce bunky, zloženie médií, inkubačná teplota a trvanie inkubácie, metabolický aktivačný systém,
treatment conditions: exposure concentration, procedure and duration of treatment, treatment temperature, positive and negative controls,
podmienky ovplyvňovania: použité koncentrácie, metódy a trvanie ovplyvnenia, teplota pri ovplyvnení, pozitívne a negatívne kontroly,
number of colonies counted, number of recombinants; survival and recombination frequency, dose/response relationship if applicable, statistical evaluation of data,
spočítaný počet kolónií, počet rekombinantov, prežívanie a frekvencia rekombinantov, vzťah dávka/odpoveď ak je to reálne, štatistické vyhodnotenie údajov,
This method is a replicate of the OECD TG 476, In Vitro Mammalian Cell Gene Mutation Test (1997).
Táto metóda je obdobou OECD TG 476, in vitro test mutácií génov buniek cicavcov (1997).
The in vitro mammalian cell gene mutation test can be used to detect gene mutations induced by chemical substances.
In vitro test mutácií génov buniek cicavcov sa používa na zistenie mutácií vyvolaných chemickými látkami.
Suitable cell lines include L5178Y mouse lymphoma cells, the CHO, CHO-AS52 and V79 lines of Chinese hamster cells, and TK6 human lymphoblastoid cells (1).
Vhodné bunkové línie zahŕňajú L5178Y lymfómové (lymphoma) bunky myší, CHO, CHO-AS52 a V79 línie buniek čínskych morčiat a TK6 lymfoblastoidné bunky ľudí (1).
In these cell lines the most commonly-used genetic endpoints measure mutation at thymidine kinase (TK) and hypoxanthine-guanine phosphoribosyl transferase (HPRT), and a transgene of xanthine-guanine phosphoribosyl transferase (XPRT).
V týchto bunkových líniách najbežnejšie používané genetické merania merajú mutácie na timidínovej kináze (TK) a hypoxantino-guanínovej fosforibosilovej transferáze (HPRT) a transgén xantínovo-guanínovej fosforibozylovej transferáze (XPRT).
The TK, HPRT and XPRT mutation tests detect different spectra of genetic events.
Testy mutácií TK, HPRT a XPRT zisťujú rôzne spektrum genetických udalostí.
The autosomal location of TK and XPRT may allow the detection of genetic events (e.g. large deletions) not detected at the HPRT locus on X-chromosomes (2)(3)(4)(5)(6).
Autozomálna poloha TK a XPRT môže umožňovať zistenie genetických udalostí (napríklad: veľké vymazania), nezistené v mieste HPRT na X chromozómoch (2)(3)(4)(5)(6).
In the in vitro mammalian cell gene mutation test, cultures of established cell lines or cell strains can be used.
V in vitro teste mutácií génov buniek cicavcov sa používajú kultúry ujatých bunkových línií alebo bunkových kmeňov.
The cells used are selected on the basis of growth ability in culture and stability of the spontaneous mutation frequency.
Použité bunky sa vyberajú na základe rastovej schopnosti kultúry a stability frekvencie spontánnych mutácií.
Care should be taken to avoid conditions, which would lead to results not reflecting intrinsic mutagenicity.
Je potrebná opatrnosť pri vyhýbaní sa podmienkam, ktoré by viedli k pozitívnym výsledkom, ktoré neodrážajú vnútornú mutagénnosť.
Positive results, which do not reflect intrinsic mutagenicity may arise from changes in pH, osmolality or high levels of cytotoxicity (7).
Pozitívne výsledky, ktoré neodrážajú vnútornú mutagénnosť, môžu pochádzať zo zmien pH, osmolality alebo vysokých hladín cytotoxicity (7).
Correlation is dependent on chemical class and there is increasing evidence that there are carcinogens that are not detected by this test because they appear to act through other, non genotoxic mechanisms or mechanisms absent in bacterial cells (6).
Korelácia závisí od triedy chemikálie a je stále viac dôkazov, že existujú karcinogény, ktoré tento test neodhalí, pretože pravdepodobne účinkujú prostredníctvom odlišných negenotoxických mechanizmov alebo mechanizmov neprítomných v bunkách baktérií (6).
Forward mutation: a gene mutation from the parental type to the mutant form which gives rise to an alteration or a loss of the enzymatic activity of the function of the encoded protein.
Predná mutácia: génová mutácia z rodičovského typu mutantných foriem, ktorá umožňuje zmenu alebo stratu enzymatickej aktivity funkcie kódovaného proteínu.
Base pair substitution mutagens: substances, which cause substitution of one or several base pairs in the DNA.
Mutagény substituujúce bázové páry: látky, ktoré spôsobujú substitúciu jedného alebo viacerých bázových párov v DNA.
Frameshift mutagens: Substances, which cause the addition or deletion of single or multiple base pairs in the DNA molecule.
Konštrukčné mutagény: sú činiteľmi, ktoré v molekule DNA spôsobujú pridanie alebo vymazanie jedného alebo viacerých základných párov.
Phenotypic expression time: a period during which unaltered gene products are depleted from newly mutated cells.
Doba fenotypického prejavu: obdobie, počas ktorého sú nezmenené génové produkty vyčerpané z novomutovaných buniek.
Mutant frequency: the number of mutant cells observed divided by the number of viable cells.
Mutačná frekvencia: pozorovaný počet mutantných buniek delený počtom životaschopných buniek.
Relative total growth: increase in cell number over time compared to a control population of cells; calculated as the product of suspension growth relative to the negative control times cloning efficiency relative to negative control.
Relatívny celkový rast: zvýšenie počtu buniek v čase v porovnaní s kontrolnou populáciou buniek; vypočítava sa ako výsledok rastu suspenzie v pomere k času negatívnej kontrolnej kultúry krát klonovacia efektívnosť v pomere k negatívnej kontrolnej kultúre.
Relative suspension growth: increase in cell number over the expression period relative to the negative control.
Relatívny suspenzný rast: zvýšenie počtu buniek v porovnaní s časom prejavu v pomere k negatívnej kontrolnej kultúre.
Viability: the cloning efficiency of the treated cells at the time of plating in selective conditions after the expression period.
Životaschopnosť: klonovacia efektívnosť ošetrených buniek v čase umiestnenia na misky v selektívnych podmienkach po čase prejavu.
Survival: the cloning efficiency of the treated cells when plated at the end of the treatment period; survival is usually expressed in relation to the survival of the control cell population.
Prežitie: klonovacia efektívnosť ošetrených buniek pri umiestnení na misky na konci doby podávania; prežitie sa obyčajne vyjadruje v pomere k prežitiu populácie kontrolných buniek.
Cells deficient in thymidine kinase (TK) due to the mutation TK+/- -> TK-/- are resistant to the cytotoxic effects of the pyrimidine analogue trifluorothymidine (TFT).
Bunky s nedostatkom tymidínovej kinázy (TK) z dôvodu mutácie TK+/- -> TK-/- sú odolné voči cytotoxickým účinkom pyrimidínovej obdoby trifluoroťnymidínu (TFT).
Thymidine kinase proficient cells are sensitive to TFT, which causes the inhibition of cellular metabolism and halts further cell division.
Bunky s dostatkom tymidínovej kinázy sú citlivé na TFT, ktorý spôsobuje inhibíciu bunkového metabolizmu a zastavuje ďalšie delenie buniek.
Thus mutant cells are able to proliferate in the presence of TFT, whereas normal cells, which contain thymidine kinase, are not.
Tieto mutantné bunky sú schopné rozširovať sa za prítomnosti TFT, zatiaľ čo normálne bunky, ktoré obsahujú tymidínovú kinázu, nie sú.
Similarly, cells deficient in HPRT or XPRT are selected by resistance to 6-thioguanine (TG) or 8-azaguanine (AG).
Podobne aj bunky s nedostatkom HPRT alebo XPRT sa vyberajú podľa odolnosti voči 6-thioguanínu (TG) alebo 8-azaguanínu (AG).
The properties of the test substance should be considered carefully if a base analogue or a compound related to the selective agent is tested in any of the mammalian cell gene mutation tests.
Vlastnosti testovacej látky je potrebné zvážiť v prípadoch, keď sa bázová obdoba alebo zlúčenina príbuzná so selektívnym činidlom testujú v akýchkoľvek testoch mutácií génov buniek cicavcov.
For example, any suspected selective toxicity by the test substance for mutant and non-mutant cells should be investigated.
Potrebné je napríklad preskúmať akúkoľvek predpokladanú selektívnu toxicitu testovacej látky pre mutantné a nemutantné bunky.
Thus, performance of the selection system/agent must be confirmed when testing chemicals structurally related to the selective agent (8).
Pri testovaní chemikálií štrukturálne príbuzných so selektívnym činidlom je preto nutné overiť výkon selektívneho systému/činidla (8).
Cells in suspension or monolayer culture are exposed to the test substance, both with and without metabolic activation, for a suitable period of time and subcultured to determine cytotoxicity and to allow phenotypic expression prior to mutant selection (9)(10)(11)(12)(13).
Bunky v suspenzii alebo jednovrstvovej kultúre sa vystavia testovacej látke s metabolickou aktiváciou i bez metabolickej aktivácie na vhodnú dobu a subkultivujú sa na stanovenie cytotoxicity a na umožnenie fenotypického prejavu pred mutantnou selekciou (9) (10) (11) (12) (13).