natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Mix drops of a suspension of labelled antibody and bacterial ooze (approximately 5 µl each) on windows of multiwell test slides.
Zmiešajte kvapky suspenzie označenej protilátky a baktériový sliz (približne 5 µl z každého) v jamkách viacobjektových testovacích sklíčok.
Prepare positive and negative controls using suspensions of R. solanacearum biovar 2 and a heterologous strain.
Pripravte pozitívne a negatívne kontroly pomocou suspenzií R. solanacearum biovaru 2 a jedného nerovnocenného kmeňa.
Observe for agglutination in positive samples after gentle mixing for 15 seconds.
Po jemnom miešaní počas 15 sekúnd pozorujte aglutináciu v pozitívnych vzorkách.
Note: Before using this method for the first time, perform preliminary tests to ensure reproducible detection of 103 to 104 colony-forming units of R. solanacearum per ml added to extracts from samples which previously tested negative.
Poznámka: Pred prvým použitím tejto metódy urobte predbežné testy na zaistenie opakovateľnosti určenia prítomnosti buniek R. solanacearum tvoriacich kolónie v hodnote 103 až 104 na 1 ml, ktoré sa pridajú do extraktov zo vzoriek, ktoré boli predtým testované s negatívnym výsledkom.
Use an appropriately validated selective medium such as SMSA (as modified by Elphinstone et al., 1996; see Appendix 2).
Použite primerane validované selektívne médium ako SMSA (modifikované podľa Elphinstone et al., 1996; pozri dodatok 2).
Care is required to differentiate R. solanacearum from other bacteria able to develop colonies on the medium.
Je potrebné venovať pozornosť odlíšeniu R. solanacearum od iných baktérií schopných tvoriť v médiu kolónie.
Furthermore, colonies of R. solanacearum may show atypical morphology if plates are overcrowded or antagonistic bacteria are also present.
Okrem toho, ak sú platňové roztery prerastené alebo ak sú prítomné antagonistické baktérie, kolónie R. solanacearum môžu vykazovať netypickú morfológiu.
Where effects of competition or antagonism are suspected, the sample should be re-tested using a different test.
V prípade podozrenia na konkurenčné alebo antagonistické vplyvy musí sa vzorka pretestovať pomocou iného testu.
Highest sensitivity of detection by this method can be expected when using freshly prepared sample extracts.
Najvyššia citlivosť určenia prítomnosti touto metódou sa dá očakávať, ak sa použijú čerstvo pripravené extrakty vzoriek.
However, the method is also applicable for use with extracts which have been stored under glycerol at –68 to –86 °C.
Táto metóda je však použiteľná aj pri extraktoch, ktoré boli skladované v glyceríne pri teplote od –68 do –86 °C.
As positive controls, prepare decimal dilutions from a suspension of 106 cfu per ml of a virulent biovar 2 strain of R. solanacearum (e.g. NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857).
Ako pozitívne kontroly pripravte desatinné riedenia suspenzie s hustotou 106 buniek tvoriacich kolónie na 1 ml virulentného kmeňa R. solanacearum biovaru 2 (napr. NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857).
To avoid any possibility of contamination, prepare positive controls totally separately from samples to be tested.
Aby sa vylúčila akákoľvek možnosť kontaminácie, pripravujte pozitívne vzorky úplne oddelene od vzoriek, ktoré sa majú testovať.
For each newly prepared batch of a selective medium its suitability for growth of the pathogen should be tested before it is used to test routine samples.
Pri každej novopripravenej dávke selektívneho média by sa pred jej použitím pri testovaní bežných vzoriek mala otestovať jej vhodnosť na rast patogénu.
Test control material in an identical manner as the sample(s).
Kontrolný materiál otestujte úplne rovnakým spôsobom ako pri vzorke/vzorkách.
Perform an appropriate dilution plating technique aiming to ensure that any background saprophytic colony-forming populations are diluted out.
Použite vhodnú zrieďovaciu platňovú techniku rozteru, ktorou sa zabezpečí, aby sa zriedili všetky nežiaduce saprofytické populácie tvoriace kolónie.
Spread 50 - 100 µl per plate of sample extract and each dilution.
Rozotrite 50 až 100 µl extraktu vzorky na platňu a na každé riedenie.
Incubate plates at 28 °C.
Platne nechajte inkubovať pri teplote 28 °C.
Read plates after 48 hours and daily thereafter up to six days.
Po 48 hodinách platne skontrolujte a potom každý deň až do 6 dní.
Typical R. solanacearum colonies on SMSA medium are milky white, flat, irregular and fluidal and after three days incubation develop pink to blood-red coloration in the centre with internal streaking or whorling. (see website http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Typické kolónie R. solanacearum na médiu SMSA sú mliečne biele, ploché, nepravidelné a fluidné a po 3 dňoch inkubácie sa v strede vytvorí ružové až krvavočervené sfarbenie s vnútornými prúžkami alebo závitmi (pozri internetovú stránku http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Note: Atypical colonies of R. solanacearum sometimes form on this medium.
Poznámka: Na tomto médiu sa niekedy tvoria netypické kolónie R. solanacearum.
These may be small, round, entirely red in colour and non-fluidal or only partially fluidal and therefore difficult to distinguish from saprophytic colony-forming bacteria.
Môžu byť malé, kruhové, celé červeno sfarbené a nefluidné alebo iba čiastočne fluidné, a preto ťažko rozoznateľné od saprofytických baktérií tvoriacich kolónie.
Purify presumptive R. solanacearum colonies after streaking or dilution plating onto a general nutrient medium to obtain isolated colonies (see Appendix 2).
Predpokladané kolónie R. solanacearum po nanesení v prúžkoch alebo po zriedenom roztere na univerzálnu živnú pôdu očistite, aby ste dostali izolované kolónie (pozri dodatok 2).
Store cultures short-term in sterile water (pH 6 to 8, chlorine free) at room temperature in the dark, or long term in a suitable cryoprotectant medium at –68 to –86 °C or lyophilised.
Kultúry krátkodobo uchovajte v sterilnej vode (pH 6 – 8, bez chlóru) v tme pri izbovej teplote, alebo dlhodobo vo vhodnom kryogénnom ochrannom prostredí pri teplote od –68 do –86 °C alebo lyofilizované.
Identify presumptive cultures (see Section VI.B.) and perform a pathogenicity test (see Section VI.
Identifikujte predpokladané kultúry (pozri oddiel VI. B) a urobte test patogenity (pozri oddiel VI.
Interpretation of selective plating test results
Vyhodnotenie výsledkov testu selektívneho platňového rozteru
The selective plating test is negative if no bacterial colonies are observed after six days or if no presumptive colonies typical of R. solanacearum are found, provided that no inhibition is suspected due to competition or antagonism by other bacteria and that typical R. solanacearum colonies are found in the positive controls.
Test selektívneho platňového rozteru je negatívny, ak sa po šiestich dňoch nedajú spozorovať žiadne kolónie baktérií, alebo ak sa nezistia žiadne predpokladané typické kolónie R. solanacearum za podmienky, že sa nepredpokladá žiadna inhibícia inými konkurenčnými alebo antagonistickými baktériami a že v pozitívnych kontrolách sa nachádzajú typické kolónie R. solanacearum.
The selective plating test is positive if presumptive R. solanacearum colonies are isolated.
Test selektívneho platňového rozteru je pozitívny, ak sa izolujú predpokladané kolónie R. solanacearum.
Use a validated enrichment medium such as modified Wilbrink broth (see Appendix 2).
Použite validované obohacovacie médium ako je modifikovaný živný roztok Wilbrink (pozri dodatok 2).
This procedure can be used to selectively increase R. solanacearum populations in sample extracts and increase sensitivity of detection.
Tento postup sa môže použiť na selektívne zvýšenie populácií R. solanacearum v extraktoch zo vzoriek a na zvýšenie citlivosti pri určovaní ich prítomnosti.
The procedure also effectively dilutes inhibitors of the PCR reaction (1:100).
Týmto postupom sa zároveň účinne riedia inhibítory reakcie PCR (1:100).
It should be noted, however, that enrichment of R. solanacearum can fail due to competition or antagonism by saprophytic organisms which are often simultaneously enriched.
Treba však poznamenať, že obohacovanie R. solanacearum môže byť neúspešné kvôli konkurencii alebo antagonizmu saprofytických organizmov, ktoré sa tiež často súčasne obohatia.
For this reason, isolation of R.solanacearum from enriched broth cultures may be difficult.
Z tohto dôvodu môže byť izolácia R. solanacearum z kultúr obohatených v živných roztokoch ťažká.
In addition, since populations of serologically related saprophytes can be increased, the use of specific monoclonal antibodies rather than polyclonal antibodies is recommended where the ELISA test is to be used.
Okrem toho, keďže sa môžu zvýšiť populácie sérologicky príbuzných saprofytov, ak sa má použiť test ELISA, odporúča sa prednostné použitie osobitných monoklonálnych protilátok pred polyklonálnymi protilátkami.
For enrichment-PCR, transfer 100 µl of sample extract into 10 ml of enrichment broth (Appendix 2) previously aliquoted into DNA-free tubes or flasks.
Pri obohacovaní pre test PCR preneste 100 µl extraktu zo vzorky do 10 ml obohateného živného roztoku (dodatok 2), ktorý ste predtým primerane rozdelili do skúmaviek alebo fliaš bez DNA.
For enrichment-ELISA, higher proportions of sample extract to broth can be used (e.g. 100 µl in 1,0 ml of enrichment broth).
Pri obohacovaní pre test ELISA sa môžu použiť vyššie pomery extraktu zo vzorky k živnému roztoku (napr. 100 µl v 1,0 ml obohateného živného roztoku).
Incubate for 72 hours at 27 to 30 °C in shaking culture or static culture with caps loosely- fitted to permit aeration.
Inkubujte 72 hodín a pri teplote 27 až 30 °C v trepačke alebo staticky s uvoľneným uzáverom, aby bol prístup vzduchu.
Mix well before using in ELISA or PCR tests.
Pred použitím v testoch ELISA alebo PCR dôkladne premiešajte.
Treat enriched broth in an identical manner as the sample(s) in the above tests.
Obohatený živný roztok pripravte rovnakým spôsobom ako vzorku(-y) vo vyššie uvedených testoch.
Note: If inhibition of enrichment of R. solanacearum is anticipated, due to high populations of certain competing saprophytic bacteria, enrichment of sample extracts before any centrifugation or other concentration steps may give better results.
Poznámka: Ak sa očakáva inhibícia obohacovania R. solanacearum kvôli vysokým populáciám určitých konkurenčných saprofytických baktérií, lepšie výsledky sa dajú dosiahnuť obohatením extraktu vzorky pred akýmkoľvek odstredením alebo inými spôsobmi koncentrácie.
IF Test
Test IF
The use of the IF test as the principal screening test is recommended because of its proven robustness to achieve the required thresholds.
Použitie testu IF ako hlavného skríningového testu sa odporúča, pretože je dokázaná jeho účinnosť pri dosahovaní požadovaných prahových hodnôt.
When the IF test is used as the principal screening test and the IF reading is positive, the Isolation, PCR or FISH test must be performed as a second screening test.
Keď sa ako hlavný skríningový test použije test IF a vyhodnotenie je pozitívne, musia sa urobiť testy PCR alebo FISH alebo izolačný test ako druhý skríningový test.
When the IF test is used as the second screening test and the IF reading is positive, further testing according to the flow scheme is required to complete the analysis.
Keď sa test IF použije ako druhý skríningový test a odčítavanie IF je pozitívne, na úplnú analýzu sa vyžaduje ďalšie testovanie podľa vývojového diagramu.
Note: Use a validated source of antibodies to R. solanacearum (see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Poznámka: Používajte validovaný zdroj protilátok R. solanacearum (pozri internetovú stránku http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
It is recommended that the titre is determined for each new batch of antibodies.
Odporúča sa, aby sa pre každú novú dávku protilátok stanovil titer.
The titre is defined as the highest dilution at which optimum reaction occurs when testing a suspension containing 105 to 106 cells per ml of the homologous strain of R. solanacearum and using an appropriate fluorescein isothiocyanate (FITC) conjugate according to the manufacturer’s recommendations.
Titer sa definuje ako najvyššie riedenie, pri ktorom sa pri testovaní suspenzie obsahujúcej 105 to 106 buniek na 1 ml homológneho kmeňa R. solanacearum a s použitím vhodného konjugátu fluorescenčného izotiokyanátu (FITC) podľa pokynov výrobcu, dosahuje optimálna reakcia.
Validated polyclonal antisera all had an IF titre of at least 1:2000.
Všetky validované polyklonálne antiséra mali titer IF najmenej 1:2000.
During testing, the antibodies should be used at a working dilution(s) close to or at the titre.
Počas testovania by sa mali používať protilátky v pracovnom riedení(-iach) blízkom alebo na úrovni titra.
The test should be performed on freshly-prepared sample extracts.
Test by sa mal urobiť s čerstvo pripravenými extraktmi zo vzoriek.
If necessary, it can be successfully performed on extracts stored at –68 to –86 °C under glycerol.
V prípade potreby sa môže úspešne urobiť aj s extraktmi skladovanými pri teplote –68až–86 °C v glyceríne.
Glycerol can be removed from the sample by addition of 1 ml pellet buffer (Appendix 4), re-centrifugation for 15 minutes at 7000 g and re-suspension in an equal volume of pellet buffer.
Glycerín sa môže zo vzorky odstrániť pridaním 1 ml peletového pufra (dodatok 4), opakovaným odstredením počas 15 minút pri odstredivej sile 7000 g a resuspenzii v rovnakom objeme peletového pufra.
This is often not necessary, especially if samples are fixed to the slides by flaming.
Toto však často nie je potrebné, najmä ak sú vzorky fixované na podložné sklíčka flambovaním.
Prepare separate positive control slides of the homologous strain or any other reference strain of R. solanacearum, suspended in potato extract, as specified in Appendix 3 B, and optionally in buffer.
Pripravte samostatné podložné sklíčka s pozitívnou kontrolou z homológneho kmeňa alebo akéhokoľvek iného referenčného kmeňa R. solanacearum, suspendovaného v extrakte zo zemiaka ako je špecifikované v dodatku 3B, a podľa želania v pufri.
Naturally infected tissue (maintained by lyophilisation or freezing at –16 to –24 °C) should be used where possible as a similar control on the same slide.
Ak je to možné, ako obdobná kontrola by sa na tom istom sklíčku malo použiť prirodzene infikované pletivo (udržiavané lyofilizáciou alebo zmrazením pri teplote –16až–24 °C.
As negative controls, aliquots of sample extract which previously tested negative for R. solanacearum can be used.
Ako negatívna kontrola sa môžu použiť alikvotné podiely extraktu vzorky, ktorá sa predtým testovala na R. solanacearum s negatívnym výsledkom.
Standardised positive and negative control materials available for use with this test are listed in Appendix 3.
Štandardné pozitívne a negatívne kontrolné materiály, ktoré sú k dispozícii na použitie pri tomto teste, sa uvádzajú v dodatku 3.
Use multiwell microscope slides with preferably 10 windows of at least 6 mm diameter.
Použite viacobjektové podložné sklíčka, najlepšie s 10 jamkami s minimálnym priemerom 6 mm.
For pellets with relatively little starch sediment:
Pri peletoch s relatívne malým sedimentom škrobu:
Pipette a measured standard volume (15 µl is appropriate for 6 mm window diameter – scale up volume for larger windows) of a 1/100 dilution of the resuspended potato pellet onto the first window.
Pipetou naneste odmeraný štandardný objem (15 µl postačuje pre jamku s priemerom 6 mm – pri väčších jamkách treba použiť primerane väčší objem) riedenia 1/100 resuspendovaného zemiakového peletu do prvej jamky.
Subsequently pipette a similar volume of undiluted pellet (1/1) onto the remaining windows on the row.
Potom do zostávajúcich jamiek v rade pipetou naneste rovnaký objem neriedeného peletu (1/1).
For other pellets:
Pri ostatných peletoch:
Prepare decimal dilutions (1/10, 1/100) of the resuspended pellet in pellet buffer.
Pripravte desatinné riedenia (1/10, 1/100) resuspendovaného peletu v peletovom pufri.
Pipette a measured standard volume (15 µl is appropriate for 6 mm window diameter – scale up volume for larger windows) of the resuspended pellet and each dilution on a row of windows.
Pipetou naneste odmeraný štandardný objem (15 µl postačuje pre jamku s priemerom 6 mm – pri väčších jamkách treba použiť primerane väčší objem) resuspendovaného peletu a každého riedenia do radu jamiek.
Dry the droplets at ambient temperature or by warming to temperatures of 40 to 45 °C.
Kvapky nechajte vyschnúť pri izbovej teplote alebo ohrievaním pri teplote 40 až 45 °C.
Fix the bacterial cells to the slide either by heating (15 minutes at 60 °C), flaming, with 95 % ethanol or according to specific instructions from the suppliers of the antibodies.
Baktériové bunky fixujte na podložné sklíčko buď ohrievaním (15 minút pri teplote 60 °C), flambovaním, 95 % etanolom alebo podľa osobitných pokynov od dodávateľa protilátok.
If necessary, fixed slides may then be stored frozen in a desiccated box for as little time as necessary (up to a maximum of three months) prior to further testing.
V prípade potreby sa fixované podložné sklíčka pred ďalším testovaním môžu skladovať čo najkratšie (najviac 3 mesiace) zmrazené vo vysušenom boxe.
IF procedure
Postup pri teste IF
According to test slide preparation in 5.1(i):
Pri príprave podložného sklíčka podľa 5.1.i): Pripravte sadu dvojnásobných riedení.
Prepare a set of twofold dilutions The first well should have 1/2 of the titre (T/2), the others 1/4 of the titre (T/4), 1/2 of the titre (T/2), the titre (T) and twice the titre (2T).
Prvá jamka by mala obsahovať 1/2 titra (T/2), ostatné 1/4 titra (T/4), 1/2 titra (T/2), titer (T) a dvojnásobok titra (2T).
According to test slide preparation in 5.1(ii):
Pri príprave podložného sklíčka podľa 5.1.ii):
Prepare the working dilution (WD) of the antibody in IF buffer.
Pripravte pracovné riedenie (PR) protilátky v pufri IF.
The working dilution affects the specificity.
Pracovné riedenie ovplyvňuje špecifickosť.
Arrange the slides on moist tissue paper.
Podložné sklíčka položte na vlhký hodvábny papier.
Cover each test window completely with the antibody dilution(s).
Všetky testovacie jamky úplne pokryte riedeniami antiséra.
The volume of antibody applied on each window must be at least the volume of extract applied.
Objem antiséra naneseného na každú jamku musí minimálne zodpovedať objemu naneseného extraktu.
The following procedure should be carried out in the absence of specific instructions from the suppliers of the antibodies:
Nasledujúci postup by sa mal vykonať v prípade, že chýbajú osobitné pokyny výrobcov protilátok:
Incubate the slides on moist paper under a cover for 30 minutes at ambient temperature (18 to 25 °C).
Podložné sklíčka inkubujte zakryté na vlhkom papieri 30 minút pri izbovej teplote (18 až 25 °C).
Shake the droplets off each slide and rinse carefully with IF buffer.
Kvapky z každého podložného sklíčka opatrne straste a opláchnite pufrom IF.
Wash by submerging for five minutes in IF buffer-Tween (Appendix 4) and subsequently in IF buffer.
Preplachujte ponorené 5 minút v roztoku pufra IF-Tween (dodatok 4) a potom v pufri IF.
Avoid causing aerosols or droplet transfer that could result in cross-contamination.
Zabráňte rozprašovaniu alebo kvapkaniu, ktoré by mohli spôsobiť krížovú kontamináciu.
Carefully remove excess moisture by blotting gently.
Prebytočnú vlhkosť starostlivo odstráňte jemným odsatím pijavým papierom.
Cover the test windows with the dilution of FITC conjugate used to determine the titre.
Testovacie jamky pokryte riedením konjugátu FITC použitím na stanovenie titra.
The volume of conjugate applied on the windows must be identical to the volume of antibody applied.
Objem konjugátu naneseného na jamky musí presne zodpovedať objemu nanesenej protilátky.
Rinse and wash as before (5.3.3).
Opláchnite a preplachujte rovnako ako v bode 5.3.3.
Carefully remove excess moisture.
Dôkladne odstráňte prebytočnú vlhkosť.
Pipette 5 - 10 µl of 0,1M phosphate-buffered glycerol (Appendix 4) or a commercially antifading mountant on each window and apply a coverslip.
Na každú jamku napipetujte 5 až 10 µl 0,1M glycerínu pufrovaného fosfátom (dodatok 4) alebo inou komerčnou krycou kvapalinou na udržanie signálu a priložte krycie sklíčko.
Reading the IF test:
Hodnotenie testu IF
Examine test slides on an epifluorescence microscope with filters suitable for excitation of FITC, under oil or water immersion at a magnification of 500-1000.
Podložné sklíčka prehliadnite pod epifluorescenčným mikroskopom s filtrami vhodnými na excitáciu FITC pod olejovou alebo vodnou imerziou pri zväčšení 500 až 1000-krát.
Scan windows across two diameters at right angles and around the perimeter.
Jamky prehliadnite vo dvoch navzájom kolmých priemeroch a po obvode.
For samples showing no or low number of cells observe at least 40 microscope fields.
Pri vzorkách vykazujúcich malý počet buniek alebo nevykazujúcich žiadne bunky prehliadnite najmenej 40 mikroskopických políčok.
Check the positive control slide first.
Najprv skontrolujte podložné sklíčka s pozitívnou kontrolou.
Cells must be bright fluorescent and completely stained at the determined antibody titre or working dilution.
Bunky musia pri titrovaní stanovenou protilátkou alebo pracovným riedením jasne fluoreskovať a byť úplne sfarbené.
The IF test (Section VI.A.5.) must be repeated if the staining is aberrant.
Pri odlišnom sfarbení sa musí test IF (oddiel VI.A.5) zopakovať.
Observe for bright fluorescing cells with characteristic morphology of R. solanacearum in the test windows of the test slides (see website http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
V testovacích jamkách podložných sklíčok pozorujte jasne fluoreskujúce bunky s charakteristickou morfológiou R. solanacearum (pozri internetovú stránku http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
The fluorescence intensity must be equivalent to the positive control strain at the same antibody dilution.
Intenzita fluorescencie musí zodpovedať pozitívnemu kontrolnému kmeňu pri rovnakom riedení antiséra.
Cells with incomplete staining or with weak fluorescence must be disregarded.
Bunky s neúplným sfarbením alebo slabou fluorescenciou sa neberú do úvahy.
If any contamination is suspected the test must be repeated.
Ak je akékoľvek podozrenie na kontamináciu, test sa musí zopakovať.
This may be the case when all slides in a batch show positive cells due to the contamination of buffer or if positive cells are found (outside of the slide windows) on the slide coating.
Môže to byť v prípade, keď sa na všetkých podložných sklíčkach vo vzorke nájdu pozitívne bunky kvôli kontaminácii pufra, alebo ak sa pozitívne bunky nájdu (mimo jamiek na podložnom sklíčku) na krycom sklíčku.
There are several problems inherent to the specificity of the immunofluorescence test.
So špecifickosťou imunofluorescenčného testu sa spája niekoľko problémov.
Background populations of fluorescing cells with atypical morphology and cross reacting saprophytic bacteria with size and morphology similar to R. solanacearum are likely to occur in potato heel end core and stem segment pellets.
Nežiaduce populácie fluoreskujúcich buniek s netypickou morfológiou a saprofytické baktérie spôsobujúce krížovú reakciu a podobnou veľkosťou a morfológiou ako R. solanacearum sa zvyčajne vyskytujú v peletoch výrezkov z pupkových koncov a segmentov stonky.
Consider only fluorescing cells with typical size and morphology at the titre or working dilution of the antibodies as in 5.3.
Pri titrovaní alebo pracovnom riedení protilátok ako sa uvádza v bode 5.3 berte do úvahy len fluoreskujúce bunky s typickou veľkosťou a morfológiou.
If bright fluorescing cells with characteristic morphology are found, estimate the average number of typical cells per microscope field and calculate the number of typical cells per ml of resuspended pellet (Appendix 5).
Ak sa nájdu jasne fluoreskujúce bunky s charakteristickou morfológiou, stanovte priemerný počet typických buniek na mikroskopické políčko a vypočítajte počet typických buniek na 1 ml resuspendovaného peletu (dodatok 5).
The IF reading is positive for samples with at least 5 × 103 typical cells per ml of resuspended pellet.
Výsledok testu IF je pozitívny pri vzorkách s počtom najmenej 5 × 103 typických buniek na 1 ml resuspendovaného peletu.