natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Perform an appropriate ELISA procedure with a specific monoclonal antibody to R. solanacearum.
Uskutočnite príslušný postup ELISA so špecifickou monoklonálnou protilátkou pre R. solanacearum.
A positive ELISA test is achieved if the ELISA reading obtained from the culture is at least half that obtained for the positive control.
Pozitívny test ELISA dosiahnete, ak hodnota testu ELISA získaná z kultúry je aspoň polovičná v porovnaní s hodnotou získanou pri pozitívnej kontrole.
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in molecular grade sterile water.
Pripravte suspenziu približne z 106 buniek na ml v sterilnej vode molekulárneho gradientu.
Heat 100 µl of the cell suspension in closed tubes in a heating block or boiling waterbath at 100 °C for four minutes.
Zahrejte 100 µl bunkovej suspenzie v uzavretých skúmavkách 4 minúty v zahrievacom bloku alebo vo vriacom vodnom kúpeli pri teplote 100 °C.
Apply appropriate PCR procedures to amplify R. solanacearum-specific amplicons (e.g. Seal et al.
Použite príslušné postupy PCR na zdôraznenie špecifických amplikónov R. solanacearum [napr. Seal a kol.
(1993); Pastrik and Maiss (2000); Pastrik et al.
(1993); Pastrik a Maiss (2000); Pastrik a kol.
A positive identification of R. solanacearum is achieved if the PCR amplicons are the same size and have the same restriction fragment length polymorphisms as for the positive control strain.
Pozitívnu identifikáciu R. solanacearum dosiahnete, ak majú PCR amplikóny rovnakú veľkosť a vyznačujú sa rovnakým polymorfizmom s obmedzenou dĺžkou fragmentu.
Prepare a suspension of approximately 106 cells per ml in UPW.
Pripravte suspenziu približne z 106 buniek na ml v UPW.
Apply the FISH procedure (Section VI.A.7.) with at least 2 R. solanacearum-specific oligo-probes (Appendix 7).
Uskutočnite postupy FISH (kapitola VI.A.7) s najmenej dvomi R. solanacearum – špecifickými oligopróbami (dodatok 7).
Grow the culture on trypticase soy agar (Oxoid) for 48 hours at 28 °C.
Kultúru pestujte na tryptikázovom sójovom agare (Oxoid) 48 hodín pri teplote 28 °C.
The presence of characteristic fatty acids are 14:0 3OH, 16:0 2OH, 16:1 2OH and 18:1 2OH and absence of 16:0 3OH is highly indicative of a Ralstonia sp.
Prítomnosť charakteristických mastných kyselín je 14:0 3OH, 16:0 2OH, 16:1 2OH a 18:1 2OH a absencia 16:0 3OH je významným určovateľom Ralstonia sp.
Strain characterisation using one of the following methods is recommended for each new case of isolation of R. solanacearum.
Charakterizácia kmeňa pomocou jednej z nasledujúcich metód sa odporúča pre každý nový prípad izolácie R. solanacearum.
Include known reference strains where appropriate for each test performed (see Appendix 3).
V potrebných prípadoch zahrňte pre každý uskutočňovaný test známe referenčné kmene (pozri dodatok 3).
solanacearum is separated into biovars on the basis of the ability to utilise and/or oxidise three disaccharides and three hexose alcohols (Hayward, 1964 and Hayward et al., 1990).
solanacearum sa rozdeľuje do biovarov na základe schopnosti použiť a/alebo oxidovať tri disacharidy a tri alkoholy hexózy (Hayward, 1964 a Hayward a kol., 1990).
Growth media for the biovar test is described in Appendix 2.
Médiá rastu pre biovarový test sú popísané v dodatku 2.
The test can be successfully performed by stab inoculating the media with pure cultures of R. solanacearum isolates and incubating at 28 °C.
Test sa môže úspešne uskutočniť naočkovaním média vstreknutím čistých kultúr izolátov R. solanacearum a inkubovaním pri teplote 28 °C.
If the media are dispensed into sterile 96 well cell culture plates (200 µl per well) colour change from olive green to yellow can be observed within 72 hours, indicating a positive test result.
Ak sa médiá rozdelia do sterilných platní s bunkovou kultúrou s 96 jamkami (200 µl na jamku), môžete pozorovať zmenu farby z olivovo zelenej na žltú v priebehu 72 hodín, ktorá znamená pozitívny výsledok testu.
Utilisation of:
Použitie:
Maltose
Maltózy
Lactose
Laktózy
D (+) Cellobiose
D (+) Cellobiózy
Additional tests differentiate biovar 2 sub-phenotypes
Dodatočné testy diferencujú 2 sub-fenotypy biovaru
(Worldwide distribution)
(Celosvetové rozšírenie)
(Found in Chile and Colombia)
(Zistený v Čile a Kolumbii)
(Found in tropical areas)
(Zistený v tropických oblastiach)
Utilisation of trehalose
Použitie trehalózy
Utilisation of meso-inositol
Použitie mezo-inozitolu
Utilisation of D ribose
Použitie ribózy D
Pectolytic activity [101]
Pektolytická aktivita [101]
low
nízka
high
vysoká
Molecular differentiation of strains in the R. solanacearum complex can be achieved using several techniques, including:
Molekulárna diferenciácia kmeňov v komplexe R. solanacearum sa môže dosiahnuť pomocou viacerých techník, vrátane:
Restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis (Cook et al., 1989).
analýzy polymorfizmu s obmedzenou dĺžkou fragmentov (RFLP) (Cook a kol., 1989);
Repetitive sequence PCR using REP, BOX and ERIC primers (Louws et al., 1995; Smith et al., 1995).
opakovanej sekvencie PCR pomocou iniciátorov REP, BOX a ERIC (Louws a kol., 1995; Smith a kol., 1995);
Amplified fragment length polymorphism (AFLP) analysis (Van der Wolf et al., 1998).
analýzy polymorfizmu s obmedzenou dĺžkou fragmentov (AFLP) (Van der Wolf a kol., 1998).
Specific PCR primers (Pastrik et al, 2002; see Appendix 6) can be used to differentiate strains belonging to division 1 (biovars 3, 4 and 5) and division 2 (biovars 1, 2A and 2T) of R. solanacearum, as originally defined by RFLP analysis (Cook et al., 1989) and 16S rDNA sequencing (Taghavi et al., 1996).
Špecifické iniciátory PCR (Pastrik a kol, 2002; pozri dodatok 6) sa môžu použiť na diferenciáciu kmeňov patriacich do oddielu 1 (biovary 3, 4 a 5) a oddielu 2 (biovary 1, 2A a 2T) R. solanacearum na základe pôvodnej definície podľa analýzy RFLP (Cook a kol., 1989) a 16S rDNA sekvencovania (Taghavi a kol., 1996).
CONFIRMATION TEST
KONFIRMAČNÝ TEST
The pathogenicity test must be performed as final confirmation of a diagnosis of R. solanacearum and for assessment of virulence of cultures identified as R. solanacearum.
Test patogenity sa musí vykonať ako konečné potvrdenie diagnózy R. solanacearum a na zhodnotenie virulencie kultúr identifikovaných ako R. solanacearum.
Prepare an inoculum of approximately 106 cells per ml from a 24 to 48 hour culture of the isolate to be tested and an appropriate positive control strain of R. solanacearum (e.g. NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857; see Appendix 3).
Pripravte očkovaciu látku z približne 106 buniek na ml z 24 – 28 hodinovej kultúry izolátu určeného na testovanie a príslušný kmeň R. solanacearum s pozitívnou kontrolou (napr. NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857; pozri dodatok 3).
Inoculate 5 to 10 susceptible tomato or eggplant seedlings at the third true leaf stage (see Section VI.A.9).
Naočkujte 5 – 10 vnímavých rajčinových alebo baklažánových semenáčov v tretej skutočnej rastovej fáze (pozri kapitolu VI.A.9).
Incubate for up to two weeks at 25 to 28 °C and high relative humidity with appropriate watering to avoid waterlogging or drought stress.
Inkubujte najviac 2 týždne pri teplote 25 – 28 °C a vysokej relatívnej vlhkosti s vhodným zalievaním, aby nedochádzalo k podmokaniu alebo stresu zo sucha.
With pure cultures typical wilting should be obtained within 14 days.
Pri čistých kultúrach by sa typické vädnutie malo prejaviť do 14 dní.
If after this period symptoms are not present, the culture cannot be confirmed as being a pathogenic form of R. solanacearum.
Ak sa po tomto období neprejavia príznaky tohto ochorenia, kultúra sa nemôže označiť za patogénnu formu R. solanacearum.
Observe for symptoms of wilting and/or epinasty, chlorosis and stunting.
Pozorujte symptómy vädnutia a/alebo epinastie, chlorózy a zakrpatenia.
Isolate from symptomatic plants by removing a section of stem about 2 cm above the inoculation point.
Izolujte zo symptomatických rastlín časť stopky asi 2 cm nad bodom očkovania.
Comminute and suspend in a small volume of sterile distilled water or 50 mM phosphate buffer (Appendix 4).
Pokračujte a rozptýľte v malom množstve sterilnej destilovanej vody alebo 50mM fosforečnanového pufra (dodatok 4).
Isolate from the suspension by dilution spreading or streaking on a suitable medium, preferably onto a selective medium (Appendix 2), incubate for 48 to 72 hours at 28 °C and observe the formation of colonies typical of R. solanacearum.
Izolujte zo suspenzie rozstreknutím alebo vstreknutím roztoku na vhodné médium preferenčne na selektívne médium (dodatok 2), inkubujte 48 – 72 hodín pri teplote 28 °C a pozorujte vytváranie kolónií typických pre R. solanacearum.
See Lelliott and Stead (1987)
Pozri Lelliott a Stead (1987).
Vienna and Linz
Viedeň a Linz
Regione Veneto Unità Periferica per i Servizi Fitosanitari
Regione Veneto Unità Periferica per i Servizi Fitosanitari
Contact scientists: see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main.
Kontaktní vedeckí odborníci: pozri internetovú stránku http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main
General growth media
Všeobecné médiá rastu
Nutrient Agar (NA)
Živný agar (NA)
Nutrient Agar (Difco)
Živný agar (Difco)
Distilled water
Destilovaná voda
Bacto-Peptone (Difco)
Peptón bacto (Difco) 10,0 g Glycerín
D(+) Glucose (monohydrate)
Bacto-agar (Difco)
Bacto-Agar (Difco)
Destilovaná voda
Sucrose Peptone Agar (SPA) Sucrose
Peptón bacto (Difco)
pH 7,2 – 7,4
Rozpustite prísady a sterilizujeme v autokláve pri 121 °C počas 15 min. Kelmanovo médium tetrazolium Kyseliny Casamino (Difco)
Dissolve ingredients and sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 minutes.
Rozpustite prísady a sterilizujte v autokláve pri 121 °C počas 15 min.
Casamino acids (Difco)
Kyseliny Casamino (Difco)
Dextrose
Bacto-agar (Difco)
Cool to 50 °C and add a filter-sterilised solution of 2,3,5-triphenyl tetrazolium chloride (Sigma) to obtain a final concentration of 50 mg per l.
Ochlaďte na 50 °C a pridáme filtrom sterilizovaný roztok 2,3,5-trifenyl tetrazolium chloridu (Sigma), aby ste dosiahli konečnú koncentráciu 50 mg na l.
Validated selective growth media
Validované selektívne médiá rastu
SMSA medium (Englebrecht, 1994 as modified by Elphinstone et al., 1996)
Médium SMSA (Englebrecht, 1994, upravené podľa Elphinstonea a kol., 1996)
Basal medium
Základné médium
Glycerol
Glycerín
Bacto-Agar (Difco); see Note 2.
Destilovaná voda
Cool to 50 °C and add filter-sterilised aqueous stock solutions of the following ingredients to obtain the specified final concentrations:
Ochlaďte na 50 °C a pridajte filtrom sterilizované vodné zásobné roztoky nasledujúcich prísad, aby ste získali špecifické konečné koncentrácie:
Crystal Violet (Sigma)
Kryštálová violeť (Sigma)
5 mg per l
5 mg na l
Polymixin-B-Sulphate (Sigma P-1004)
Polymixin-B-sulfát (Sigma P-1004)
600000 U (approximately 100 mg) per l
600000 U (približne 100 mg) na l
1250 U (approximately 25 mg) per l
1250 U (približne 25 mg) na l
Chloramphenicol (Sigma C-3175)
Chloramfenikol (Sigma C-3175)
Penicillin-G (Sigma P-3032)
Penicilín-G (Sigma P-3032)
825 U (approximately 0,5 mg) per l
825 U (približne 0,5 mg) na l
2,3,5-triphenyl tetrazolium chloride (Sigma)
2,3,5-trifenyl tetrazolium chlorid (Sigma)
50 mg per l
50 mg na l
Use of reagents other than those specified above may affect growth of R. solanacearum.
Používanie reagentov iných ako tie, ktoré sú špecifikované vyššie, môže ovplyvniť rast R. solanacearum.
Oxoid Agar #1 can be used in place of Bacto-Agar (Difco).
Oxoid Agar #1 sa môže použiť namiesto Bacto-agaru (Difco).
In this case growth of R. solanacearum will be slower, although growth of competing saprophytes may also be reduced.
V takom prípade sa rast R. solanacearum spomalí, aj keď rast konkurujúcich saprofytov sa môže tiež znížiť.
Typical colonies of R. solanacearum may take 1 to 2 days longer to form and the red colouration may be lighter and more diffuse than on Bacto-Agar.
Typické kolónie R. solanacearum sa môžu formovať o 1–2 dni dlhšie a červené sfarbenie môže byť svetlejšie a rozptýlenejšie ako pri Bacto-agare.
Increasing bacitracin concentration to 2500 U per l may reduce populations of competing bacteria without affecting growth of Ralstonia solanacearum.
Rastúca koncentrácia bacitracínu až do výšky 2500 U na l môže znížiť populácie súťažiacich baktérií bez toho, aby sa ovplyvnil rast Ralstonia solanacearum.
Store media and stock solutions of antibiotics at 4 °C in the dark and use within one month.
Médiá uskladnite a roztoky antibiotík uložíme pri teplote 4 °C na tmavom mieste a použite v priebehu 1 mesiaca.
Plates should be free from surface condensation before use.
Podložné sklíčka by sa mali pred použitím zbaviť povrchovej kondenzácie.
Avoid excess drying of plates.
Vyhnite sa priamemu vysušovaniu podložných sklíčok.
Quality control should be performed after preparation of each new batch of medium by plating a suspension of a reference culture of R. solanacearum (see Appendix 3) and observing formation of typical colonies after incubation at 28 °C for two to five days.
Kontrola kvality by sa mala uskutočniť po príprave každej novej dávky média platničkovaním suspenzie referenčnej kultúry R. solanacearum (pozri dodatok 3) a pozorovaním vytvárania typických kolónií po inkubovaní pri teplote 28 °C na 2 až 5 dní.
Validated enrichment media
Validované obohacovacie médiá
SMSA Broth (Elphinstone et al., 1996)
Roztok SMSA (Elphinstone a kol., 1996)
Prepare as for SMSA selective agar medium but omit Bacto-Agar and 2,3,5-tetrazolium chloride.
Pripravte ako pre selektívne agarové médium, ale vynechajte Bacto-agar a 2,3,5-tetrazolium chlorid.
Modified Wilbrink broth (Caruso et al., 2002)
Modifikovaný Wilbrinkov roztok (Caruso a kol., 2002)
Sucrose
Sacharóza
Proteose peptone
Proteózny peptón 5g
K2HPO4
MgSO4
Sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 minutes and cool to 50 °C
Sterilizujte v autokláve pri teplote 121 °C počas 15 minút a ochlaďte na 50 °C.
Add antibiotic stock solutions as for SMSA broth.
Pridajte antibiotické uskladnené roztoky ako pri roztoku SMSA.
Bacterial isolates
Bakteriálne izoláty
The following bacterial isolates are recommended for use as standard reference material either as positive controls (Table 1) or during optimisation of tests to avoid cross-reactions (Table 2).
Nasledujúce bakteriálne izoláty sa odporúčajú na použitie ako štandardný referenčný materiál buď ako pozitívne kontroly (tauľka 1), alebo počas optimalizácie testov, aby nedošlo ku vzájomným reakciám (tabuľka 2).
All strains are commercially available from:
Všetky kmene sú komerčne dostupné v:
National Collection of Plant Pathogenic Bacteria (NCPPB), Central Science Laboratory, York, UK
National Collection of Plant Pathogenic Bacteria (NCPPB), Central Science Laboratory, York, Veľká Británia;
Culture Collection of the Plant Protection Service (PD), Wageningen, the Netherlands.
Culture Collection of the Plant Protection Service (PD), Wageningen, Holandsko;
Collection Française de Bactéries Phytopathogènes (CFBP), INRA Station Phytobactériologie, Angers, France.
Collection Française de Bactéries Phytopathogènes (CFBP), INRA Station Phytobactériologie, Angers, Francúzsko.
Table 1 SMT reference panel of isolates of R. solanacearum
Tabuľka 1 Referenčný SMT panel izolátov R. solanacearum
NCPPB code
NCPPB Kód
Other codes
Ďalšie kódy
Note: Authenticity of the above strains can be guaranteed only if obtained from an authentic culture collection.
Poznámka: Autenticita vyššie uvedených kmeňov môže byť zaručená len vtedy, ak sú získané z autentickej kultivačnej zbierky.
Table 2: SMT reference panel of serologically- or genetically-related bacteria for use in optimisation of detection tests
Tabuľka 2 Referenčný SMT panel serologicky alebo geneticky príbuzných baktérií na použitie pri optimalizácii detekčných testov
Other code
Ďalší kód
The following standard control material is available from the NCPPB culture collection.
Nasledujúci štandardný kontrolný materiál je dostupný zo zbierky kultúr NCPPB.
Freeze dried pellet of potato extract from 200 healthy potato tubers as negative control for all tests.
Zmrazte vysušený pelet zemiakového extraktu z 200 zdravých zemiakových hľúz ako negatívnu kontrolu pre všetky testy.
Freeze dried pellet of potato extract from 200 healthy potato tubers containing 103 to 104 and 104 to 106 cells R. solanacearum biovar 2 (strain NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) as positive controls for serological and PCR tests.
Zmrazte vysušený pelet zemiakového extraktu z 200 zdravých zemiakových hľúz obsahujúci 103 až 104 a 104 až 106 buniek biovaru 2 R. solanacearum (kmeň NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) ako pozitívne kontroly pre serologický test a test PCR.
Since cell viability is affected during freeze-drying, these are not suitable as standard controls for isolation or bioassay tests.
Keďže životnosť bunky sa počas zmrazovania a vysušovania narúša, nie sú to vhodné štandardné kontroly pre izolačné alebo biologické testy.
Formalin-fixed suspensions of R. solanacearum biovar 2 (strain NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) at 106 cells per ml as positive controls for serological tests.
Formalín zachycujúce suspenzie biovaru 2 R. solanacearum (kmeň NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) pri 106 bunkách na ml ako pozitívne kontroly pre serologické testy.
Preparation of positive and negative controls for the core screening tests PCR/IF and FISH
Príprava pozitívnych a negatívnych kontrol pre skríningové testy výrezkov PCR/IF a FISH
Produce a 48 hour culture of a virulent strain of R. solanacearum race3/biovar2 (e.g. strain NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) on basal SMSA medium and suspend in 10 mM phosphate buffer to obtain a cell density of approximately 2 × 108 cfu per ml.
Vyrobte 48 hodinovú kultúru virulentného kmeňa R. solanacearum rasa 3/biovar 2 (napr. kmeň NCPPB 4156 = PD 2762 = CFBP 3857) na základnom médiu SMSA a suspendujte v 10 mM fosfátového pufra, aby ste dosiahli bunkovú hustotu približne 2 × 108 cfu na ml.
This is usually obtained by a faintly turbid suspension equivalent to an optical density of 0,15 at 600 nm.
Toto sa obyčajne dosiahne pomocou slabo zakalenej suspenzie, ktorá je ekvivalentná s optickou hustotou 0,15 pri 600 nm.
Remove the heel end cores of 200 tubers taken from a white skin variety production known to be free from R. solanacearum.
Odstráňte kužeľovité výrezky pupkových koncov z 200 hľúz pochádzajúcich z produkcie odrody s bielou šupkou, o ktorej vieme, že neobsahuje R. solanacearum.
Process the heel ends as usual and resuspend the pellet in 10 ml.
Pupkové konce upravte ako obyčajne a pelet resuspendujeme v 10 ml.
Prepare 10 sterile 1,5 ml microvials with 900 µl of the resuspended pellet.
Pripravte 10 sterilných 1,5 ml mikroskúmaviek s 900 µl resuspendovaného peletu.
Transfer 100 µl of the suspension of R. solanacearum to the first microvial.
Umiestnite 100 µl suspenzie R. solanacearum do prevej mikroskúmavky.
Vortex.
Pretrepte.
Establish decimal levels of contamination by further diluting in the next five microvials.
Stanovte desiatkové úrovne kontaminácie pomocou ďalšieho riedenia v ďalších piatich mikroskúmavkách.
The six contaminated microvials will be used as positive controls.
Šesť kontaminových mikroskúmaviek použite ako pozitívne kontroly.
The four non-contaminated microvials will be used as negative controls.
Štyri nekontaminové mikroskúmavky použite ako negatívne kontroly.
Label the microvials accordingly.
Mikroskúmavky príslušne označte.
Prepare aliquots of 100 µl in sterile 1,5 ml microvials thus obtaining nine replicas of each control sample.
Pripravte alikvotný podiel 100 µl v sterilných mikroskúmavkách s objemom 1,5 ml a získate tak 9 replík každej kontrolnej vzorky.
Store at –16 to –24 °C until use.
Uskladnite pri teplote –16 až –24 °C až do použitia.
The presence and quantification of R. solanacearum in the control samples should be first confirmed by IF.
Prítomnosť a kvantifikácia R. solanacearum v kontrolných vzorkách by sa mala najskôr potvrdiť pomocou testu IF.
For the PCR test perform DNA extraction from positive and negative control samples with each series of test samples.
Pre test PCR uskutočnite extrakciu DNA zo vzoriek pozitívnej a negatívnej kontroly pre každú sériu testovaných vzoriek.
For IF and FISH tests perform assays on positive and negative control samples with each series of test samples.
Pre testy IF a FISH uskutočnite skúšky na vzorkách pozitívnej a negatívnej kontroly pre každú sériu testovaných vzoriek.
For IF, FISH and PCR assays R. solanacearum must be detected in at least the 106 and 104 cells/ml of the positive controls and not in any of the negative controls.
Pre skúšky IF, FISH a PCR sa R. solanacearum musí identifikovať v najmenej 106 a 104 bunkách/ml pozitívnych kontrol a nesmie byť v žiadnej negatívnej kontrole.
Use as standard reference strain of R. solanacearum biovar 2 (race 3).
Použite ako štandardný referenčný kmeň biovaru 2 R. solanacearum (rasa 3).
Potential cross-reacting strain in serological tests (IF and/or ELISA) with polyclonal antisera.
Potenciálny vzájomne reagujúci kmeň pri serologickom teste (IF a/alebo ELISA) s polyklónnymi antisérami.
Strain from which PCR product can be amplified in some laboratories of a similar size to that expected using specific primers OLI-1 and Y-2 (see Appendix 6).
Kmeň, z ktorého sa môže amplifikovať produkt PCR v niektorých laboratóriách rovnakej veľkosti, aká sa očakáva pri použití špecifických primerov OLI-1 a Y-2 (pozri dodatok 6).
Likely to cross-react in most tests but known to occur only on banana in Indonesia.
Náklonný na vzájomnú reakciu pri väčšine testov, ale podľa doterajších zistení sa vyskytuje len na banánoch v Indonézii.
General: Unopened sterilised buffers can be stored for up to one year
VŠEOBECNÉ PRAVIDLO: Neotvorené sterilizované pufre sa môžu skladovať až jeden rok.
Buffers for extraction procedure
Pufre pre extrakčný postup
Extraction buffer (50 mM phosphate buffer, pH 7,0)
Extrakčný pufor (50 mM fosforečnanový pufor, pH 7,0)
This buffer is used for extraction of the bacterium from plant tissues by homogenisation or shaking.
Tento pufor sa používa na extrakciu baktérie z rastlinného tkaniva pomocou homogenizácie alebo pretrepaním.
(anhydrous)
(bezvodný)
Dissolve ingredients, check pH and sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 min.
Rozpustite prísady, skontrolujeme pH a sterilizujte v autokláve pri 121 °C počas 15 min.
Additional components may be useful as follows:
Dodatočné zložky môžu byť užitočné nasledujúcim spôsobom:
Quantity (per l)
Množstvo (na l)
Lubrol flakes
Vločky Lubrol
Deflocculant [501]
Antivločkovací prípravok [501]
DC silicone antifoam
DC silicone antifoam (protipenový prípravok)
Anti-foam agent [501]
Protipenové činidlo [501]
Tetrasodium pyrophosphate
Tetrasodium pyrofosfát
Anti-oxidant
Antioxidant
Binding of PCR inhibitors
Viazanie inhibítorov PCR
Pellet buffer (10 mM phosphate buffer, pH 7,2)
Peletový pufor (10 mM fosforečnanový pufor, pH 7,2)
This buffer is used for resuspension and dilution of potato tuber heel-end core extracts following concentration to a pellet by centrifugation.
Tento pufor sa používa pri resuspenzácii a riedení extraktov pupkových koncov zemiakových hľúz podľa koncentrácie do peletu pomocou odstreďovania.
Dissolve ingredients, check pH and sterilise by autoclaving at 121 °C for 15 minutes.
Rozpustite prísady, skontrolujte pH a sterilizujte v autokláve pri 121 °C počas 15 min.
Buffers for the IF test
Pufre pre test IF
IF-Buffer (10 mM phosphate buffered saline (PBS), pH 7.2)
Pufor IF (10 mM fosfátového pufrovaného roztoku (STP), pH 7,2)
This buffer is used for dilution of antibodies
Tento pufor sa používa na riedenie protilátok
IF-buffer-Tween
IF-pufor-tvín
This buffer is used to wash slides.
Tento pufor sa používa na umývanie podložných sklíčok.
Add 0,1 % Tween 20 to the IF buffer.
Pridáme 0,1 % tvín 20 do pufra IF.
Phosphate buffered glycerol, pH 7,6
Glycerín pufrovaný fosfátom, pH 7,6
This buffer is used as a mountant fluid on the windows of IF slides to enhance fluorescence.
Tento pufor sa používa ako krycia kvapalina v jamkách podložných sklíčkach IF na podporu fluorescencie.
Anti-fading mountant solutions are commercially available e.g. Vectashield® (Vector Laboratories) or Citifluor® (Leica).
Roztoky krycích kvapalín sú komerčne dostupné napr. vo Vectashield® (Vector Laboratories) alebo Citifluor® (Leica).
Buffers for the Indirect ELISA test
Pufre pre nepriamy test ELISA