natgillin/translations-raw huggingface dataset:
If positive results are obtained in screening tests, but the isolation tests are negative, then repeat the isolation tests from the same pellet or by taking additional vascular tissue near the heel end from cut tubers of the same sample and, if necessary, test additional samples.
Ak sa v skríningových testoch dosiahnu pozitívne výsledky, no izolačné testy sú negatívne, zopakujte izolačné testy z toho istého peletu alebo odobratím dodatočného cievneho pletiva pri pupkovom konci z rozrezaných hľúz z tej istej vzorky a, ak je to potrebné, testujte dodatočné vzorky.
Reliable identification of pure presumptive C. m. subsp. sepedonicus cultures is achieved using the tests described in section 9.
Spoľahlivá identifikácia čistých predpokladaných kultúr C. m. subsp. sepedonicus sa dosiahne použitím testov opísaných v oddiele 9.
Scheme for detection and identification of Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus in samples of asymptomatic potato plants
Schéma na určovanie prítomnosti a identifikáciu Clavibacter michiganensis ssp. sepedonicus vo vzorkách bezpríznakových rastlín zemiaka
sample of stem segments (1)
vzorka segmentov stonky (1)
selective isolation (4)/IF test (5)/PCR test (6)/FISH test (7)
selektívna izolácia (4)/IF test (5)/PCR test (6)/FISH test (7)
optional auxiliary test: bioassay (8)
nepovinný pomocný test: biotest (8)
colonies with typical morphology (4) after isolation
kolónie s typickou morfológiou (4) po izolácii
all tests done negative
všetky vykonané testy negatívne
IDENTIFICATION TESTS (10)
IDENTIFIKAČNÉ TESTY (10)
PATHOGENICITY TEST (11)
TEST PATOGENITY (11)
See section 3.2 for recommended sample sizes.
Pozri oddiel 3.2 pre odporúčanú veľkosť vzorky.
Pathogen extraction and concentration methods are described in section 3.2.
Extrakcia patogénu a metódy koncentrácie sa opisujú v oddiele 3.2.
When this test is negative the sample is considered to be negative.
Ak je tento test negatívny, vzorka sa považuje za negatívnu.
In case this test is positive a second or more screening tests based on different biological principles are required to verify the first positive result.
V prípade, že je tento test pozitívny, vyžaduje sa druhý alebo ďalšie skríningové testy založené na rôznych biologických princípoch s cieľom overiť prvý pozitívny výsledok.
The selective isolation test and typical colony morphology are described in section 8.
Test selektívnej izolácie a typická morfológia kolónie sa opisujú v oddiele 8.
The IF test is described in section 4.
IF test sa opisuje v oddiele 4.
PCR tests are described in section 6.
Testy PCR sa opisujú v oddiele 6.
The FISH test is described in section 5.
Test FISH sa opisuje v oddiele 5.
The bioassay is described in section 7.
Biotest sa opisuje v oddiele 7.
If positive results are obtained in screening tests, but the isolation tests are negative, then repeat the isolation tests and, if necessary, test additional samples.
Ak sa v skríningových testoch dosiahnu pozitívne výsledky, no izolačné testy sú negatívne, zopakujte izolačné testy a, ak je to potrebné, testujte dodatočné vzorky.
VISUAL EXAMINATION FOR RING ROT SYMPTOMS
VIZUÁLNE HODNOTENIE PRÍZNAKOV BAKTÉRIOVEJ KRÚŽKOVITOSTI ZEMIAKA
Potato plants
Rastliny zemiaka
Under European climatic conditions symptoms are rarely found in the field and often only at the end of the season.
V európskych klimatických podmienkach sa príznaky nájdu v teréne len zriedka a často len na konci sezóny.
Moreover the symptoms are frequently masked or confused by/with other diseases, senescence or mechanical damages.
Príznaky sa navyše často ukrývajú za príznaky iných chorôb, starnutie alebo mechanické poškodenie, alebo sa s nimi zamieňajú.
Therefore it may be easy to miss symptoms in field inspections.
Môže sa preto ľahko stať, že pri inšpekciách v teréne zostanú príznaky bez povšimnutia.
Wilting symptoms are very different from those of brown rot; wilting is usually slow and initially limited to the leaf margins.
Príznaky starnutia sa veľmi odlišujú od príznakov baktériovej hnedej hniloby; vädnutie je spravidla pomalé a spočiatku sa obmedzuje na okraje listov.
Young infected leaves often continue to expand although, less so in the infected zones.
Mladé infikované listy sa často naďalej vyvíjajú, ale na infikovaných miestach menej výrazne.
This creates odd shaped leaves.
Listy tak nadobúdajú nepravidelný tvar.
Leaves affected by blocking of the vascular tissues further down the stem often develop chlorotic, yellow to orange, intercostal areas.
Listy postihnuté blokovaním cievnych zväzkov stonky, nachádzajúce sa nižšie na stonke, často rozvíjajú chlorotické, žlté až oranžové interkostálne oblasti.
Infected leaflets, leaves and even stems may eventually die.
Infikované lístočky, listy a dokonca stonky môžu prípadne odumrieť.
Often leaves and tubers are simply reduced in size.
Listy a hľuzy často len zmenšia svoju veľkosť.
Occasionally plants are stunted.
Príležitostne sa vývin rastlín zastaví.
Coloured pictures of a range of symptoms can be found on the web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main
Farebné obrázky celého radu príznakov sa nachádzajú na webovej stránke Komisie http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main
Potato tubers
Zemiakové hľuzy
The earliest symptoms are a slight glassiness or translucence of the tissue without softening around the vascular system, particularly near the heel end.
Prvými príznakmi sú jemná sklovitosť alebo priesvitnosť pletiva bez zmäknutého okolia cievneho systému, predovšetkým blízko pupkového konca.
The vascular ring at the heel end may be slightly darker in colour than normal.
Sfarbenie prstenca cievnych zväzkov na pupkovom konci môže byť oproti normálnemu stavu mierne tmavšie.
The first readily identifiable symptom is one whereby the vascular ring has a yellowish coloration and when the tuber is gently squeezed, pillars of cheese-like material emerge from the vessels.
Prvými ľahko identifikovateľnými príznakmi sú žltkasté sfarbenie prstenca cievnych zväzkov a vytekanie stĺpčekov látky syrovitej konzistencie z ciev pri jemnom stlačení hľuzy.
This exudation contains millions of bacteria.
Tento výlučok obsahuje milióny baktérií.
Browning of the vascular tissue may develop and tuber symptoms at this stage are similar to those of brown rot caused by Ralstonia solanacearum.
Môže sa objaviť hnednutie cievneho pletiva a príznaky na hľuze sa v tomto štádiu podobajú na príznaky hnedej hniloby, ktorú spôsobuje Ralstonia solanacearum.
At first, these symptoms may be restricted to one part of the ring, not necessarily close to the heel end and may gradually extend to the whole ring.
Tieto príznaky sa najprv môžu obmedzovať na jednu časť prstenca, nemusí to však byť nevyhnutne pri pupkovom konci, a postupne sa môžu rozširovať na celý prstenec.
As the infection progresses, destruction of the vascular tissue occurs; the outer cortex may become separated from the inner cortex.
S postupujúcou infekciou dochádza k rozkladu cievnych pletív; vonkajšia vrstva zásobného pletiva sa môže oddeľovať od vnútornej.
In advanced stages of infection, cracks appear on the surface of the tuber, which are often reddish-brown at their margins.
V pokročilých štádiách infekcie sa na povrchu hľúz objavujú priehlbiny, ktoré majú často červeno-hnedé sfarbenie okrajov.
Recently in Europe several cases have occurred where the central cortex rots at the same time as the vascular ring resulting in secondary invasion with internal hollowing and necrosis.
V Európe sa nedávno vyskytlo niekoľko prípadov hniloby strednej vrstvy zásobného pletiva a zároveň aj prstenca cievnych zväzkov, v dôsledku čoho dochádza k druhotnej invázii prostredníctvom vnútorného vpadnutia a nekrózy.
Secondary fungal or bacterial invasion may mask the symptoms and it may be difficult, if not impossible, to distinguish advanced ring rot symptoms from other tuber rots.
Druhotné napadnutie hubami alebo baktériami môže tieto príznaky prekryť a rozlíšenie pokročilejších štádií tohto ochorenia od ostatných hnilobných ochorení sa môže sťažiť, ba až znemožniť.
Atypical symptoms may be possible.
Možné sú aj netypické príznaky.
SAMPLE PREPARATION
PRÍPRAVA VZORIEK
The standard sample size is 200 tubers per test.
Štandardná veľkosť vzorky je 200 hľúz na každý test.
More intensive sampling requires more tests on samples of this size.
Intenzívnejší odber vzoriek znamená viac testov na vzorkách tejto veľkosti.
Larger numbers of tubers in the sample will lead to inhibition or difficult interpretation of the results.
Väčšie počty hľúz vo vzorke povedú k inhibícii alebo zložitej interpretácii výsledkov.
However, the procedure can be conveniently applied for samples with less than 200 tubers where fewer tubers are available.
Postup sa však môže bez ťažkostí uplatniť aj na vzorky s menej ako 200 hľuzami, keď je k dispozícii menej hľúz.
Validation of all detection methods described below is based on testing of samples of 200 tubers.
Overenie všetkých metód na určovanie prítomnosti opísaných nižšie sa zakladá na testovaní vzoriek 200 hľúz.
The potato extract described below can also be used for detection of the potato brown rot bacterium, Ralstonia solanacearum.
Extrakt zemiaka, ktorý sa opisuje nižšie, sa môže použiť aj na určovanie prítomnosti baktériovej hnedej hniloby zemiaka, Ralstonia solanacearum.
Optional pre-treatment in advance to sample preparation:
Nepovinné predbežné spracovanie, ktoré predchádza príprave vzorky:
Wash the tubers.
Hľuzy očistite.
Use appropriate disinfectants (chlorine compounds when PCR-test is to be used in order to remove eventual pathogen DNA) and detergents between each sample.
Použite vhodný dezinfekčný prostriedok (zlúčeniny chlóru, ak sa má použiť test PCR s cieľom odstrániť prípadný patogén DNA) a čistiaci prostriedok medzi každou vzorkou.
Air dry the tubers.
Hľuzy nechajte na vzduchu vyschnúť.
This washing procedure is particularly useful (but not required) for samples with excess soil and if a PCR-test or direct isolation procedure is to be performed.
Tento čistiaci postup je užitočný (nie je však povinný) predovšetkým pre vzorky s nadbytočným obsahom pôdy a tiež keď sa má vykonať test PCR alebo priama izolácia.
Remove with a clean and disinfected scalpel or vegetable knife the skin at the heel end of each tuber so that the vascular tissue becomes visible.
Čistým a dezinfikovaným skalpelom alebo nožom na zeleninu odstráňte šupku hľuzy na jej pupkovom konci, aby bolo vidieť cievne pletivo.
Carefully cut out a small core of vascular tissue at the heel end and keep the amount of non-vascular tissue to a minimum (see web site: http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main)
Z cievneho pletiva na pupkovom konci každej hľuzy opatrne vyrežte malý kúsok, dbajte pritom na to, aby sa vyrezalo čo najmenej necievneho pletiva (pozri webovú stránku http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Set aside any tubers with suspected ring rot symptoms and test separately.
Akékoľvek hľuzy s podozrivými príznakmi baktériovej krúžkovistosti odložte nabok a testuje oddelene.
If during removal of the heel end core suspect symptoms of ring rot are observed, the tuber should be visually inspected after cutting near the heel end.
Ak sa počas odoberania na pupkovom konci hľuzy objavia podozrivé príznaky baktériovej krúžkovitosti, mala by sa vykonať vizuálna prehliadka tejto hľuzy po narezaní pri pupkovitom konci.
Any cut tuber with suspected symptoms should be suberised at room temperature for two days and stored under quarantine (at 4 to 10 °C) until all tests have been completed.
Všetky odrezané hľuzy s podozrivými príznakmi by sa mali suberizovať (zahojenie reznej rany) najmenej dva dni pri izbovej teplote, a potom uskladniť v chlade v karanténnych podmienkach (pri teplote 4 – 10 °C), pokiaľ sa neskončia všetky testy.
All tubers in the sample (including those with suspicious symptoms) should be kept according to Annex II.
Všetky hľuzy vo vzorke (vrátane hľúz s podozrivými príznakmi) by sa mali uchovávať v súlade s prílohou II.
If this is not possible, store them in the container, without addition of buffer, refrigerated for not longer than 72 hours or for not longer than 24 hours at room temperature.
Ak to nie je možné, skladujte ich v nádobe bez pridania pufra, ochladené nie dlhšie ako 72 hodín, alebo pri izbovej teplote nie dlhšie ako 24 hodín.
Drying and suberisation of cores, and growth of saprophytes during storage may hinder detection of the ring rot bacterium.
Sušenie a suberizácia (zahojenie reznej rany) výrezkov, ako aj rast saprofytov počas skladovania môžu byť prekážkou pri určovaní prítomnosti baktérie, ktorá spôsobuje krúžkovitosť zemiaka.
Process the heel end cores by one of the following procedures: either,
Výrezky pupkových koncov hľúz spracujte jedným z nasledujúcich postupov, a to buď:
cover the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 3) and agitate on a rotary shaker (50 to 100 rpm) for four hours below 24 °C or for 16 to 24 hours refrigerated,
pokryte výrezky dostatočným množstvom (približne 40 ml) extrakčného pufra (dodatok 3) a vložte do rotačnej trepačky (50 – 100 otáčok za minútu) na 4 hodiny pri teplote nižšej ako 24 °C, alebo ochladené na 16–24 hodín,
homogenise the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 3), either in a blender (e.g. Waring or Ultra Thurax) or by crushing in a sealed disposable maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba strong guage polythene, 150 mm × 250 mm; radiation sterilised) using a rubber mallet or suitable grinding apparatus (e.g. Homex).
výrezky zhomogenizujte s dosatočným množstvom (približne 40 ml) extračného pufra (dodatok 3) buď v mixéri (napr. Waring alebo Ultra Thurax), alebo drvením v utesnenom jednorazovom maceračnom vrecúšku (napr. Stomacher alebo Bioreba strong guage polythene, 150 mm × 250 mm; sterilizované ožiarením) s použitím gumeného kladivka alebo vhodného drviaceho zariadenia (napr. Homex).
The risk of cross-contamination of samples is high when samples are homogenized using a blender.
Riziko krížovej kontaminácie vzoriek je vysoké, keď sa vzorky homogenizujú pomocou mixéra.
Take precautions to avoid aerosol generation or spillage during the extraction process.
Prijmite opatrenia, aby sa predišlo vytváraniu aerosolu alebo preliatiu počas extrakčného procesu.
Ensure that freshly sterilised blender blades and vessels are used for each sample.
Zabezpečte, aby sa pre každú vzorku použili čerstvo sterilizované čepele mixéra a nádoby.
If the PCR test is to be used, avoid carry-over of DNA on containers or grinding apparatus.
Ak sa má použiť test PCR, zabráňte akémukoľvek prenosu DNA na nádobách alebo drviacom zariadení.
Crushing in disposable bags and use of disposable tubes is recommended where PCR is to be used.
Ak sa má použiť PCR, odporúča sa drvenie v jednorazových vrecúškach a použitie jednorazových skúmaviek.
Decant the supernatant.
Dekantujte supernatant.
If excessively cloudy, clarify either by slow speed centrifugation (at not more than 180 g for 10 minutes at a temperature between 4 to 10 °C) or by vacuum filtration (40 to 100 µm), washing the filter with additional (10 ml) extraction buffer (Appendix 3).
Ak je nadmerne kalný, prečistite ho buď nízkou rýchlosťou odstreďovania (pri odstredivej sile nie väčšej ako 180 g počas 10 minút pri teplote medzi 4–10 °C), alebo vákuovou filtráciou (40–100 µm), filter premyte dodatočným (10 ml) extrakčným pufrom (dodatok 3).
Concentrate the bacterial fraction by centrifugation at 7000 g for 15 minutes (or 10000 g for 10 minutes) at a temperature between 4 to 10 °C and discard the supernatant without disturbing the pellet.
Skoncentrujte bakteriálnu frakciu odstreďovaním pri odstredivej sile 7000 g počas 15 minút (alebo 10000 g počas 10 minút) pri teplote medzi 4–10 °C a supernatant vylejte tak, aby ste neporušili vzniknutý pelet.
Resuspend the pellet in 1,5 ml pellet buffer (Appendix 3).
Pelet resuspendujte v 1,5 ml peletového pufru (dodatok 3).
Use 500 µl to test for C. m. subsp. sepedonicus, 500 µl for Ralstonia solanacearum and 500 µl for reference purposes.
Použite 500 µl a test pre C. m. subsp. sepedonicus, 500 µl pre Ralstonia solanacearum a 500 µl na referenčné účely.
Add sterile glycerol to final concentration of 10 to 25 % (v/v) to the 500 µl of the reference aliquot and to the remaining test aliquot, vortex and store at –16 to –24 °C (weeks) or at 68 to –86 °C (months).
Pridajte sterilný glycerín do konečnej koncentrácie 10–25 % (objem/objem) k 500 µl referenčného alikvotného podielu a k zostávajúcemu testovanej alikvotnému podielu, pretrepte a skladujte pri teplote –16 až –24 °C (niekoľko týždňov), alebo pri teplote –68 až –86 °C (niekoľko mesiacov).
Preserve the test aliquots at 4 to 10 °C during testing.
Počas testovania uchovávajte testované alikvotné podiely pri teplote 4–10 °C.
Repeated freezing and thawing is not advisable.
Opakované zmrazovanie a rozmrazovanie sa neodporúča.
If transport of the extract is required, ensure delivery in a cool box within 24 to 48 hours.
Ak sa požaduje preprava extraktu, zabezpečte dodanie v chladiacom boxe v časovom rozpätí 24 až 48 hodín.
It is imperative that all C. m. subsp. sepedonicus positive controls and samples are treated separately to avoid contamination.
Je nevyhnutné, aby sa so všetkými pozitívnymi kontrolami a vzorkami C. m. subsp. sepedonicus zaobchádzalo oddelene, aby nedošlo ku kontaminácii.
This applies to IF slides and to all tests.
Platí to pre podložné sklíčka pre IF test a pre všetky testy.
For detection of latent C. m. subsp. sepedonicus populations it is advised to test composite samples.
Na určenie prítomnosti skrytých populácií C. m. subsp. sepedonicus sa odporúča testovať kompozitné vzorky.
The procedure can be conveniently applied for composite samples of up to 200 stem parts.
Postup sa môže bez ťažkostí uplatniť na kompozitné vzorky až do množstva 200 častí stonky.
(Where surveys are performed they should be based on a statistically representative sample of the plant population under investigation.)
(Keď sa uskutočňujú prieskumy, mali by sa zakladať na štatisticky reprezentatívnej vzorke skúmanej rastlinnej populácie.)
With a clean disinfected knife or pruning shears, remove a 1 to 2 cm segment from the base of each stem, just above the soil level.
Čistým dezinfikovaným nožom alebo záhradníckymi nožnicami odoberte 1–2 cm segment zo spodnej časti každej stonky, tesne nad úrovňou pôdy.
Disinfect stem segments briefly with ethanol 70 % and immediately blot dry on tissue paper.
Segmenty stonky krátko dezinfikujte 70 % etanolom a okamžite ich usušte na hodvábnom papieri.
Collect stem segments in a closed sterile container according to the following sampling procedures:
Segmenty stonky vložte do uzatvorenej sterilnej nádoby v súlade s nasledujúcimi postupmi odoberania vzoriek:
Process the stem segments by one of the following procedures: either,
Segmenty stonky spracujte podľa jedného z nasledujúcich postupov, a to buď:
cover the segments with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 3) and agitate on a rotary shaker (50 to 100 rpm) for four hours below 24 °C or for 16 to 24 hours refrigerated,
segmenty pokryte dostatočným množstvom (približne 40 ml) extrakčného pufra (dodatok 3) a vložte do rotačnej trepačky (50 – 100 otáčok za minútu) na 4 hodiny pri teplote nižšej ako 24 °C, alebo ochladené na 16 – 24 hodín,
process immediately. By crushing the segments in a strong maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba) with an appropriate volume of extraction buffer (Appendix 3) using a rubber mallet or appropriate grinding apparatus (e.g. Homex).
segmenty okamžite spracujte drvením v pevnom maceračnom vrecúšku (napr. Stomacher alebo Bioreba) s náležitým množstvom extrakčného pufra (dodatok 3) s použitím gumeného kladivka alebo vhodného drviaceho zariadenia (napr. Homex).
If this is not possible, store the stem segments refrigerated for not longer than 72 hours or for not longer than 24 hours at room temperature.
Ak to nie je možné, uchovajte segmenty stoniek ochladené nie dlhšie ako 72 hodín alebo pri izbovej teplote nie dlhšie ako 24 hodín.
Decant the supernatant after settling for 15 minutes.
Dekantujte supernatant po usadzovaní počas 15 minút.
Further clarification of the extract or concentration of the bacterial fraction are not usually required but may be achieved by filtration and/or centrifugation as described in section 3.1.4 to 3.1.6.
Ďalšie čistenie extraktu alebo koncentrácie bakteriálnej frakcie sa spravidla nevyžaduje, no dá sa dosiahnuť filtráciou a/alebo odstreďovaním, ako sa opisuje v oddiele 3.1.4 – 3.1.6.
Divide the neat or concentrated sample extract into 2 equal parts.
Rozdeľte neriedený alebo koncentrovaný extrakt zo vzorky na dve rovnaké časti.
Maintain one half at 4 to 10 °C during testing and store the other half with 10 to 25 % (v/v) sterile glycerol at –16 to –24 °C (weeks) or at –68 to –86 °C (months) in case further testing is required.
Jednu časť uchovajte počas testovania pri teplote 4 – 10 °C a druhú časť uskladnite pomocou 10 – 25 % (objem/objem) sterilného glycerínu pri teplote –16 až –24 °C (niekoľko týždňov) alebo pri teplote –68 až –86 °C (niekoľko mesiacov) v prípade, že sa vyžaduje ďalšie testovanie.
The use of the IF test as the principal screening test is recommended because of its proven robustness to achieve the required thresholds.
Použitie IF testu ako základného skríningového testu sa odporúča kvôli jeho preukázanej schopnosti dosiahnuť požadované prahy.
When the IF test is used as the principal screening test and the IF reading is positive, the PCR or FISH test must be performed as a second screening test.
Keď sa IF test používa ako hlavný skríningový test a jeho výsledok je pozitívny, test PCR alebo test FISH sa musí vykonať ako doplnkový skríningový test.
When the IF test is used as the second screening test and the IF reading is positive, further testing according to the flow scheme is required to complete the analysis.
Keď sa IF test používa ako doplnkový skríningový test a jeho výsledok je pozitívny, vyžadujú sa ďalšie testy na doplnenie analýzy v súlade s vývojovým diagramom.
Always use a polyclonal antibody, when the IF test is used as the principal screening test.
Keď sa používa IF test ako hlavný skríningový test, vždy používajte polyklonálnu protilátku.
In case of a positive IF reading with a polyclonal antibody further screening of the sample with a monoclonal antibody may provide more specificity but can be less sensitive.
V prípade pozitívneho výsledku IF testu s polyklonálnou protilátkou môžu ďalšie skríningy vzorky s monoklonálnou protilátkou poskytnúť viac špecifickosti, no môžu byť tiež menej citlivé.
Use antibodies to a reference strain of C. m. subsp. sepedonicus.
Použite protilátky k referenčnému kmeňu C. m. subsp. sepedonicus.
It is recommended that the titre is determined for each new batch of antibodies.
Odporúča sa, aby sa titer určil pre každú novú dávku protilátok.
The titre is defined as the highest dilution at which optimum reaction occurs when testing a suspension containing 105 to 106 cells per ml of the homologous strain of C. m. subsp. sepedonicus and using an appropriate fluorescein isothiocyanate (FITC) conjugate according to the manufacturer's recommendations.
Titer sa definuje ako najvyšší roztok, pri ktorom nastane optimálna reakcia pri testovaní suspenzie obsahujúcej 105 až 106 buniek na ml homologického kmeňa C. m. subsp. sepedonicus a s použitím vhodného konjugátu fluorescenčného izotiokyanátu (FITC) podľa odporúčania výrobcu.
The crude polyclonal or monoclonal antibodies should have an IF titre of at least 1:2000.
Surové polyklonálne alebo monoklonálne protilátky by mali mať titer IF najmenej 1:2000.
During testing, the antibodies should be used at a working dilution(s) (WD) close to or at the titre.
Počas testovania by sa protilátky mali používať v pracovnom riedení (riedeniach) blízkom alebo na úrovni titra.
Use validated antibodies (see web site http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
Používajte overené protilátky (pozri webovú stránku http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main).
The test should be performed on freshly-prepared sample extracts.
Test by sa mal vykonať na čerstvo pripravených extraktoch vzoriek.