natgillin/translations-raw huggingface dataset:
In Italy an ‘ad hoc’ serological test based on an indirect fluorescent antibody assay, using as an antigen N proteins expressed by baculovirus recombinants was developed and used.
V Taliansku bol vyvinutý a používaný „ad hoc“ sérologický test založený na nepriamej fluorescenčnej skúške na protilátky, pričom ako antigén sa použijú proteíny N vyjadrené rekombinantmi tyčinkovitého vírusu.
That may have wider and easier application when an ELISA test is developed.
Po vyvinutí testu ELISA môžu mať širšie a ľahšie využitie.
The use of vaccines containing only HA, such as recombinant vector vaccines, allows classical AGID tests or ELISA tests based on nucleoprotein, non-structural protein or matrix proteins to be used to detect infection in vaccinated birds.
Používanie vakcín používajúcich iba HA, ako sú rekombinantné vektorové vakcíny, umožňuje používať na zistenie infekcie u vakcinovaných vtákov klasické AGID testy alebo ELISA testy na báze nukleoproteínu, neštrukturálneho proteínu alebo matrixových proteínov.
For inactivated vaccines, a test that detects antibodies to the non-structural virus protein that are only produced during natural infection has been described.
Pokiaľ ide o inaktivované vakcíny, bol opísaný test, ktorý zisťuje protilátky na vírusy z neštrukturálnych proteínov, ktoré sa vytvárajú iba počas prirodzenej infekcie.
Such a system is yet to be validated in the field, but has the limitation that natural infection of a flock with any influenza virus, irrespective of subtype results in the production of antibodies directed against the non-structural protein.
Takýto systém sa musí ešte validovať v teréne, má však svoje obmedzenie v tom zmysle, že prirodzená infekcia kŕdľa akýmkoľvek vírusom chrípky, bez ohľadu na subtyp, má za následok tvorbu protilátok zameraných proti neštrukturálnemu proteínu.
The development of rapid and sensitive virus-detection methods, especially those that can be automated, such as real time RT-PCR, means that these could be used for simple widespread and regular testing of vaccinated birds for the presence of field virus.
Vývoj rýchlych a citlivých metód na zisťovanie vírusu, najmä takých, ktoré sa dajú automatizovať, ako je RT-PCR v reálnom čase, znamená, že tieto metódy by sa dali použiť na jednoduché, rozšírené a pravidelné testovanie vakcinovaných vtákov na prítomnosť divého vírusu.
Agent detection, however, will be limited to a short window in the acute phase of the infection and cannot be used to conclude that a flock was not exposed to the virus in the past.
Zisťovanie pôvodcu však bude limitované na krátke okienko v akútnej fáze infekcie a nedá sa použiť na to, aby sa dalo dospieť k záveru, že kŕdeľ nebol vystavený vírusu v minulosti.
This approach is most appropriate to the testing of vaccinated birds prior to movement to demonstrate freedom from active infection.
Takýto prístup je najvhodnejší na testovanie vakcinovaných vtákov pred ich premiestnením s cieľom potvrdiť, že sú bez výskytu aktívnej infekcie.
The number of samples to be tested by the systems of choice must enable the exclusion of a prevalence of AI virus infection in a flock of more than 15 % with confidence level of 95 %.
Počet vzoriek, ktoré sa majú testovať s použitím vybratých systémov, musí umožniť vylúčenie prevládania infekcie vírusom vtáčej chrípky v kŕdli väčšom ako 15 % s úrovňou spoľahlivosti 95 %.
Strategies in the diagnosis of AI
Stratégie v diagnostikovaní vtáčej chrípky
As set out in Annex IV to Directive 2005/94/EC, decisions to apply measures in specific areas or contact holdings and the severity of those measures may vary greatly with the magnitude of the risk.
Ako sa uvádza v prílohe IV k smernici 2005/94/ES, rozhodnutia uplatňovať opatrenia v konkrétnych oblastiach alebo v kontaktných chovoch a závažnosti takýchto rozhodnutí sa môžu meniť so závažnosťou rizika.
Similarly, the required diagnostic confirmation of disease is likely to be balanced against the prevailing situation, the magnitude of the hazard and the degree of risk.
Je pravdepodobné, že požadované diagnostické potvrdenie choroby bude v rovnováhe s prevažujúcou situáciou, závažnosťou nebezpečenstva a stupňom rizika.
Veterinary authorities need to make decisions on diagnostic evidence that balance the rapid control and eradication of disease against the potential impact of misdiagnosis.
Je potrebné, aby veterinárne úrady prijali rozhodnutia o diagnostickom dôkaze, ktorým sa vyváži rýchla kontrola a eradikácia choroby s potenciálnym dosahom nesprávnej diagnózy.
Such judgements have to be made against the background of many factors at the time, but certain situations can be predicted.
Takéto posúdenia sa musia vykonať na základe mnohých faktorov v danom čase, určité situácie sa však dajú predpovedať.
Disease situation
Nákazová situácia
Potential problem
Potenciálny problém
Diagnostic criteria
Diagnostické kritériá
Non specific signs, no official suspicion
žiadne špecifické príznaky, žiadne úradné podozrenie
Isolated holding
izolovaný chov
Primary suspected outbreak
podozrenie na primárne ohnisko
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation
vykonať úplné diagnostické testovanie, izoláciu a charakterizáciu vírusu
Holding in densely populated poultry area
chov v oblasti s hustou populáciu hydiny
Carry out full diagnostic testing, virus isolation and characterisation, but concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing [1].
vykonať úplné diagnostické testovanie, izoláciu a charakterizáciu vírusu, koncentrujte sa však na rýchle metódy detekcie a charakterizácie, najmä na tie, ktoré sú založené na RT-PCR a sekvencovaní [1]
Second and subsequent suspected outbreaks
podozrenie na druhé a následné ohnisko
Isolated holdings, epidemiologically linked to primary suspected outbreak
izolované chovy, epidemiologicky spojené s podozrením na primárne ohnisko
Concentrate on rapid detection and characterisation methods especially those based on RT-PCR and sequencing [1].
koncentrujte sa na rýchle metódy detekcie a charakterizácie, najmä na tie, ktoré sú založené na RT-PCR a sekvencovaní [1]
Holdings in densely populated poultry area or with many epidemiological links
chovy v oblasti s hustou populáciou hydiny alebo s mnohými epidemiologickými súvislosťami
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus [1].
spoliehajte sa na rýchle metódy zistenia, ktoré poskytnú najrýchlejší dôkaz o prítomnosti akéhokoľvek vírusu vtáčej chrípky [1]
Multiple suspected outbreaks or disease spreading rapidly including surveillance
podozrenie na viacnásobné ohniská alebo rýchlo sa šíriaca choroba napriek sledovaniu
Spread will become uncontrollable without rapid intervention
bez rýchleho zásahu sa šírenie stane nekontrolovateľným
Rely on rapid detection methods that give the earliest evidence of the presence of any AI virus or rely on clinical signs [1].
Spoliehajte sa na rýchle metódy zistenia, ktoré poskytnú najrýchlejší dôkaz o prítomnosti akéhokoľvek vírusu vtáčej chrípky, alebo sa spoliehajte na klinické príznaky [1]
Diagnosis of infection with AI viruses in pigs and other mammals
Diagnostika infekcie vírusmi vtáčej chrípky u ošípaných a ostatných cicavcov
AI in pigs
Vtáčia chrípka u ošípaných
AI viruses readily infect pigs and although replication is in most cases relatively restricted, there is a potential that infected pigs could transmit the disease to poultry and other susceptible animals.
Vírusy vtáčej chrípky ľahko infikujú ošípané a hoci je replikácia vo väčšine prípadov pomerne obmedzená, existuje potenciál, že infikované ošípané by mohli chorobu preniesť na hydinu a iné vnímavé zvieratá.
To date, there is no evidence from the field that infected pigs transmit AI viruses of H5 and H7 subtypes.
V súčasnosti neexistuje žiadny dôkaz z terénu, že infikované ošípané prenášajú vírusy vtáčej chrípky subtypov H5 a H7.
Experience gained during the outbreak in the Netherlands in 2003 indicated that H7N7 infected pigs did not show clinical signs that could be attributed to the H7N7-infection.
Skúsenosti získané počas vypuknutia v Holandsku v roku 2003 naznačujú, že ošípané infikované H7N7 nevykazovali žiadne klinické príznaky, ktoré by sa dali pripísať infekcii H7N7.
Moreover, apparently no diseased pigs have been reported to date during the H5N1 outbreak in Asia and elsewhere.
Okrem toho dodnes neboli počas vypuknutia H5N1 v Ázii a ani inde hlásené zjavne žiadne ošípané postihnuté chorobu.
Therefore, clinical signs may not be relied upon to indicate whether pigs are infected although clinical presentation due to infection of pigs with other influenza viruses of avian origin, can occur once a virus has become adapted to the host.
Z toho dôvodu nie je možné spoliehať sa na klinické príznaky, ak sa má indikovať, či sú ošípané infikované, hoci klinický obraz spôsobený infekciou ošípaných inými vírusmi chrípky vtáčieho pôvodu sa môže vyskytnúť, hneď ako sa vírus prispôsobí hostiteľovi.
The diagnosis of AI virus infections of pigs is essentially similar to diagnosis for avian species, relying on virus isolation, molecular techniques and detection of specific antibodies using haemagglutination inhibition tests.
Diagnostikovanie infekcií ošípaných vírusom vtáčej chrípky je v podstate podobné diagnostikovaniu vtáčích druhov, spoliehajúc sa na izoláciu vírusu, molekulárne techniky a detekciu špecifických protilátok s použitím hemaglutinačných inhibičných testov.
There are, however, certain differences and none of the tests are fully validated for the use in pigs to confirm infection with AI viruses.
Existujú však určité rozdiely a žiadny z týchto testov nie je v plnej miere schválený na použitie pre ošípané na potvrdenie infikovania vírusmi vtáčej chrípky .
Samples for virus isolation
Vzorky na izoláciu vírusu
AI virus infections in pigs are usually restricted to the respiratory tract and samples must be respiratory tract tissues and, if appropriate, oropharyngeal or nasal swabs, preferably taken from pigs showing signs of that disease.
Infekcie ošípaných vírusom vtáčej chrípky sú zvyčajne obmedzené na dýchacie cesty a vzorkami musia byť tkanivá z dýchacích ciest a prípadne orofaryngálne alebo nazálne výtery, prednostne odobraté z ošípaných, ktoré vykazujú príznaky takejto choroby.
These samples and swabs may be processed for virus isolation or molecular detection of virus, using the same techniques described above for samples from birds.
Tieto vzorky a výtery môžu byť spracované na izoláciu vírusu alebo molekulárnu detekciu vírusu s použitím rovnakých techník opísaných vyššie pre vzorky z vtákov.
However, when using PCR techniques, proper controls must be used to ensure that the amplification is not inhibited by substances in the samples from pigs.
Ak sa však používajú techniky PCR, musia sa používať správne kontroly, pomocou ktorých sa zabezpečí, aby látky nachádzajúce sa vo vzorkách z ošípaných nebránili šíreniu.
Inoculation and incubation of eggs
Inokulácia a inkubácia vajec
To isolate mammalian influenza viruses in 9- to 11-day-old embryonated fowls' eggs it is usual practice to inoculate each egg via the allantoic cavity and into the amniotic cavity.
S obvyklým postupom izolovania vírusov cicavčej chrípky u 9 až 11-dňových embryonovaných hydinových vajec je inokulovať každé vajce cez alantoidnú dutinu a do amniotickej dutiny.
However, when testing pigs in contact with AI viruses, when virus has had little opportunity to adapt, allantoic cavity inoculation is probably sufficient.
Ak sa však testujú ošípané, ktoré sú v kontakte s vírusmi vtáčej chrípky, v prípade, že vírus mal obmedzenú možnosť prispôsobiť sa, inokulácia alantoidnej dutiny bude pravdepodobne dostačujúca.
Similarly, 35 oC is usually recommended for the incubation temperature for isolation of mammalian influenza A viruses, but again for viruses poorly adapted to pigs, 37 oC is not be detrimental to virus isolation.
Podobne ako teplota inkubácie na izoláciu vírusov cicavčej chrípky typu A sa odporúča teplota 35 oC, ale na druhej strane pre vírusy, ktoré sa iba nedostatočne prispôsobili ošípaným, teplota 37 oC nie je pre izoláciu vírusu škodlivá.
Test for specific antibodies in HI tests
Test na špecifické protilátky pri testoch HI
Virus isolation or molecular detection are likely to be the most sensitive for determining AI virus infections of pigs.
Je pravdepodobné, že najcitlivejšími metódami stanovenia infekcií vírusom vtáčej chrípky u ošípaných je izolácia vírusu alebo molekulárna detekcia.
However, serological responses in pigs have been detected in the absence of virus isolation or detection.
Ak sa izolácia alebo detekcia vírusu nevykonávala, u ošípaných boli zistené sérologické reakcie.
HI tests, using pig sera, require some modifications to the test used for avian sera referred to in Chapter VIII.
Testy HI s použitím sér ošípaných si vyžadujú určité úpravy testu používaného pre vtáčie séra uvedeného v kapitole VIII.
Pig sera are notorious for their property of non-specific inhibition in HI tests and therefore each serum sample must be treated with a receptor destroying enzyme (RDE) to prevent this from occurring.
Séra ošípaných sú notoricky známe svojou vlastnosťou nešpecifickej inhibície v testoch HI, a preto musí byť každá vzorka séra ošetrená receptorom – ničiacim enzýmom (RDED), aby sa zabránilo výskytu vyššie uvedeného.
The following method must be used:
Musí sa použiť táto metóda:
To 100 μl of pig antiserum add 400 μl RDE (predetermined working dilution) and mix thoroughly.
K 100 μl prasačieho antiséra pridajte 400 μl RDE (vopred stanovené pracovné riedenie) a dôkladne premiešajte.
Incubate at 37 oC for one hour.
Inkubuje 1 hodinu pri teplote 37 oC.
Then incubate for 30 minutes at 56 oC.
Potom inkubujte 30 minút pri teplote 56 oC.
Cool samples at 4 oC for a minimum of 15 minutes.
Vzorky chlaďte pri teplote 4 oC počas 15 minút.
Add 10 μl of 30 % (v/v packed cells) chick red blood cells and mix vigorously.
Pridajte 10 μl 30 % (obj./obj. balené bunky) kuracích červených krvných buniek a intenzívne premiešajte.
The treated serum is then used in HI tests as described for avian sera in paragraph [..], the initial dilution is 1:10.
Ošetrené sérum sa potom použije pri testoch HI spôsobom opísaným pre vtáčie sérum v odseku [..], počiatočné zriedenie je 1: 10.
A set of sera of pigs with a known sero-negative status regarding AI must be used to assess the specificity of the HI test for the virus strain to be used (see use of virus strain for serology derived from the outbreak; Chapter VIII).
Na posúdenie špecifickosti testu HU pre kmeň vírusov, ktorý sa má použiť (pozri použitie kmeňa vírusov pre sérológiu získaného z ohniska; kapitola VIII), sa musí použiť súbor sér ošípaných so známym séronegatívnym štatútom, pokiaľ ide o vtáčiu chrípku.
During the outbreak in the Netherlands in 2003 up to 2,6 % non-specific reactors were detected in the HI test using pig sera that were collected independently of the outbreak
Počas vypuknutia v Holandsku v roku 2003 bolo zistených až 2,6 % nešpecifických reaktorov pri teste HI s použitím prasačích sér, ktoré boli odobraté nezávisle na ohnisku.
Sampling of pigs
Odber vzoriek od ošípaných
Particularly on farms that keep both pigs and poultry, either mixed or in separate houses, pigs are at risk of becoming infected with AI directly or indirectly via contact with poultry or poultry products.
Najmä na farmách, ktoré chovanú aj ošípané aj hydinu, buď spolu alebo v samostatných domoch, sú ošípané ohrozené infikovaním vtáčou chrípkou priamo alebo nepriamo kontaktom s hydinou alebo výrobkami z hydiny.
To exclude such infection, oropharyngeal or nasal swabs and blood samples must be collected according to the procedures described in point 8.21 of Chapter IV.
S cieľom vylúčiť takúto infekciu sa musia odobrať orofaryngeálne alebo nazálne výtery spolu so vzorkami krvi v súlade s postupmi opísanými v bode 8.21 kapitoly IV.
Samples must be obtained from pigs that show clinical signs of the disease.
Vzorky sa musia získať z ošípaných, ktoré vykazujú klinické príznaky choroby.
However, when they do not show any clinical signs, samples may be collected at random over all sections of the house.
Ak však nevykazujú žiadne klinické príznaky, vzorky sa môžu odobrať náhodne zo všetkých častí domu.
Two to four weeks after culling of the AI infected poultry, at least 60 blood samples must be collected from pigs in such a way that at least some samples are obtained from groups of pigs that are in direct contact with each other.
Dva až štyri týždne po zabití hydiny infikovanej vtáčou chrípkou sa musí od ošípaných odobrať najmenej 60 vzoriek krvi takým spôsobom, aby aspoň niektoré vzorky boli získané zo skupín ošípaných, ktoré sú v priamom vzájomnom kontakte.
Samples must be tested in the HI test using virus derived from the poultry outbreak.
Vzorky sa musia testovať testom HI s použitím vírusu získaného z ohniska hydiny.
Samples from both the acute and convalescent phases must be tested in the same test.
Vzorky tak z akútnej, ako aj rekonvalescentnej fázy sa musia testovať v rámci toho istého testu.
Positive samples can be confirmed using virus neutralisation and/or Western blot analyses.
Pozitívne vzorky sa môžu potvrdiť s použitím analýzy neutralizácie vírusu a/alebo analýzou Western blot.
When any of those samples test positive, an epidemiological investigation on all pig farms located within the protection zone must be carried out, irrespective whether they are of mixed type or not.
Ak je výsledok testu ktorejkoľvek z týchto vzoriek pozitívny, musí sa vykonať epidemiologické prešetrenie všetkých prasačích fariem, ktoré sa nachádzajú v ochrannom pásme bez ohľadu na to, či ide alebo nejde o zmiešaný typ.
AI viruses in other mammals other than pigs
Vírusy vtáčej chrípky u ostatných cicavcov iných ako ošípané
Investigations in other mammals other than pigs which are susceptible to AI including cats must be undertaken.
Musia sa vykonať vyšetrenia ostatných cicavcov iných ako ošípané, ktoré sú vnímavé na vtáčiu chrípku, vrátane mačiek.
With specific reference to HPAI H5N1, the following must be carried out for testing cats:
So špecifickým odkazom na HPAI H5N1, pokiaľ ide o testovanie mačiek, sa musí vykonať toto:
Gross pathological lesions, associated with viral replication, concentrate on the lungs and liver, therefore samples for virological investigations must preferably be taken from these organs of dead animals.
Väčšie patologické lézie súvisiace s vírusovou replikáciou sa koncentrujú v pľúcach a v pečeni, preto musia byť vzorky na virologické vyšetrenia, pokiaľ možno, odobraté z týchto orgánov uhynutých zvierat.
In living animals, preferably tracheal/oropharyngeal swabs must be taken for virus detection.
U živých zvierat sa musia na detekciu vírusu odobrať, pokiaľ možno, tracheálne/orofaryngeálne výtery.
In addition, faecal swabs can be taken separately.
Okrem toho sa môžu samostatne odobrať fekálne výtery.
Blood samples to be examined in HI assays require heat treatment for 56 oC for 30 minutes and RDE treatment can be omitted.
Vzorky krvi, ktoré sa majú vyšetriť skúškou HI, si vyžadujú ošetrenie teplom pri teplote 56 oC počas 30 minút a ošetrenie RDE možno vynechať.
Minimum safety requirements for the transport of samples
Minimálne bezpečnostné požiadavky na prepravu vzoriek
The transport of samples in which pathogens are known to be present or suspected of being present are the subject of strict national and international regulations that must be adhered to at all times.
Preprava vzoriek, o ktorých je známe, že obsahujú patogény, alebo existuje podozrenie na existenciu patogénov, podlieha prísnym vnútroštátnym a medzinárodným predpisom, ktoré sa musia stále dodržiavať.
Virus isolates are not classified as diagnostic samples but must be packaged in accordance with international standards.
Izoláty vírusu nie sú klasifikované ako diagnostické vzorky, musia však byť zabalené v súlade s medzinárodnými normami.
The instructions set out in this chapter are for air transport, but similar packaging must be used for land or sea transport of samples.
Pokyny uvedené v tejto kapitole sú určené pre leteckú prepravu, podobné balenie sa však musí používať aj pri pozemnej alebo námornej preprave vzoriek.
Packing diagnostic specimens for transport
Balenie diagnostických vzoriek na prepravu
Diagnostic specimens transported under the IATA Regulations are assigned to UN identification number 2814, 2900, or 3373, as relevant.
Diagnostickým vzorkám pripravovaným podľa predpisov IATA sa priradí zodpovedajúce identifikačné číslo UN 2814, 2900 alebo 3373.
The shipper and not the transport company is responsible for the shipment until the package reaches the consignee.
Kým príjemca nedostane zásielku, je za ňu zodpovedný prepravca, a nie prepravná spoločnosť.
Primary packaging
Primárny obal
Primary receptacle(s) must be water tight, for example, screw caps must be sealed with parafilm or adhesive tape or similar protections taken.
Primárna(-e) nádoba(-y) musí(-ia) byť vodotesná(-é), napríklad skrutkové uzávery musia byť utesnené parafínovou fóliou alebo lepiacou páskou, alebo sa musia chrániť podobnými ochrannými opatreniami.
Multiple primary receptacles must be wrapped individually to prevent breakage.
Ak sú primárne nádoby vo väčšom počte, musia byť zabalené jednotlivo z dôvodu možného rozbitia.
When determining the volume of diagnostic specimens being shipped, the viral transport media must be taken into account.
Pri stanovovaní objemu prepravovaných diagnostických vzoriek sa musia brať do úvahy médiá na prepravu vírusov.
Primary receptacle(s) must not contain more than 500 ml or 500 g.
Primárna(-e) nádoba(-y) nesmie(-ú) mať obsah väčší ako 500 ml alebo 500 g.
The entire contents of the primary receptacle is the diagnostic specimen.
Celkový obsah primárnej nádoby tvorí diagnostická vzorka.
Secondary packaging
Druhotný obal
Enough absorbent material in the secondary container to absorb the entire contents of all primary receptacles in case of leakage or damage must be used.
V druhotnom kontajneri sa musí použiť dostatočné množstvo absorpčného materiálu tak, aby dokázalo absorbovať celý obsah primárnych nádob v prípade ich netesnosti alebo poškodenia.
Secondary packaging must meet the IATA packaging requirements for diagnostic specimens including 1,2 metres (3,9 feet) drop test procedure.
Druhotný obal musí spĺňať požiadavky IATA na obaly pre diagnostické vzorky a musí vyhovovať pádovej skúške z výšky 1,2 metra (3,9 stopy).
Since infectious substance packaging surpasses the requirements for diagnostic specimen packaging, in the IATA Packing Instruction 602, it may be used.
Ak obal infekčnej látky prekračuje požiadavky kladené na obal diagnostickej vzorky v pokyne IATA 602 o obaloch, môže sa použiť.
Infectious substance packaging must have the required specification markings on packaging (UN will be in a circle), for example:
Na obale infekčných látok musia byť uvedené požadované označenia špecifikácie („UN“ sa nachádza v krúžku), napríklad:
‘UN 4G/CLASS 6.2/99/GB/2450’
„UN 4G/CLASS 6.2/99/GB/2450“
Secondary packaging must be watertight.
Druhotný obal musí byť vodotesný.
The packaging manufacturer or other authorised party's packing instructions, included with the secondary packaging, must be followed.
Musia sa dodržiavať pokyny na balenie výrobcu obalu alebo inej autorizovanej strany, ktoré sú súčasťou druhotného obalu.
Secondary packaging must be at least 100 mm (four inches) in the smallest overall external dimension.
Najmenší celkový vonkajší rozmer druhotného obalu musí byť aspoň 100 mm (štyri palce).
Secondary packaging must be large enough for shipping documents, such as an air waybill.
Druhotný obal musí byť dostatočne veľký pre sprievodné doklady, ako je napríklad letecký nákladný list.
Outer packaging
Vonkajší obal
The outer packaging must not contain more than 4 l or 4 kg.
Obsah vonkajšieho obalu nesmie byť väčší ako 4 litre alebo 4 kg.
If required, either dry ice or wet ice must be placed outside the secondary packaging.
Ak sa to vyžaduje, z vonkajšej strany druhotného obalu sa musí vložiť suchý ľad alebo mokrý ľad.