natgillin/translations-raw huggingface dataset:
Culturing or bioassays can fail due to competition or inhibition by saprophytic bacteria.
Kultivácia alebo biotesty môžu byť neúspešné kvôli konkurencii alebo inhibícii saprofytickými baktériami.
If clear positive results are obtained in screening tests, but the isolation tests are negative, then repeat the isolation tests from the same pellet or by taking additional vascular tissue near the heel end from cut tubers of the same sample and, if necessary, test additional samples.
Ak sa v skríningových testoch dosiahnu jasne pozitívne výsledky, ale testy izoláciou sú negatívne, zopakujte testy izoláciou z toho istého peletu alebo odoberte ďalšie cievne pletivo pri rezanom pupkovom konci hľuzy tej istej vzorky, a ak je potrebné, testujte ďalšie vzorky.
Scheme for detection and identification of Ralstonia solanacearum in samples of asymptomatic potato, tomato or other host plants
Schéma určovania prítomnosti a identifikácie Ralstonia solanacearum vo vzorkách rastlín zemiakov, rajčiakov alebo iných hostiteľských rastlín bez príznakov
Sample of stem segments (1)
Vzorka segmentov stonky (1)
selective isolation (4) / IF test (5) / PCR test (6) / FISH test (7)
selektívna izolácia (4) / test IF (5) / test PCR (6) / test FISH (7)
optional auxiliary test: ELISA (8), bioassay (9)
nepovinný pomocný test: ELISA (8), biotest (9)
Colonies with typical morphology (10) after isolation
Kolónie s typickou morfológiou (10) po izolácii
All tests done negative
Všetky testy sú negatívne
Sample not infected by
Vzorku nenapadla
Sample infected by
Vzorku napadla
See Section III.2.1. for recommended sample sizes.
Odporúčaná veľkosť vzoriek sa uvádza v oddiele III.2.1.
Pathogen extraction and concentration methods are described in Section III.2.1.
Metódy extrakcie a koncentrácie patogénu sa popisujú v oddiele III.2.1.
If at least two tests based on different biological priciples are positive, isolation and confirmation have to be done Perform at least one screening test.
Ak sú najmenej dva testy založené na rôznych biologických princípoch pozitívne, musí sa urobiť izolácia a potvrdenie. Urobte najmenej jeden skríningový test.
The IF test is described in Section VI.A.5.
Test IF sa popisuje v oddiele VI.A.5.
If positive results are obtained in screening tests, but the isolation tests are negative, then repeat the isolation tests.
Ak sa v skríningových testoch získa pozitívny výsledok, ale izolačné testy sú negatívne, izolačné testy sa opakujú.
Reliable identification of pure presumptive R. solanacearum cultures is achieved using the tests described in Section VI.B.
Spoľahlivá identifikácia predpokladaných čistých kultúr R. solanacearum sa dosiahne pomocou testov popísaných v oddiele VI.B.
DETAILED METHODS FOR DETECTION OF RALSTONIA SOLANACEARUM IN POTATO TUBERS AND POTATO, TOMATO OR OTHER HOST PLANTS WITH SYMPTOMS OF BROWN ROT OR BACTERIAL WILT
PODROBNÉ METÓDY URČOVANIA PRÍTOMNOSTI RALSTONIA SOLANACEARUM V HĽUZÁCH ZEMIAKOV A V RASTLINÁCH ZEMIAKOV, RAJČIAKOV ALEBO INÝCH HOSTITEĽSKÝCH RASTLINÁCH S PRÍZNAKMI HNEDEJ HNILOBY ALEBO BAKTÉRIOVÉHO VÄDNUTIA
Symptoms (see website http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main)
Príznaky (pozri internetovú stránku http://forum.europa.eu.int/Public/irc/sanco/Home/main)
Symptoms on potato
Príznaky na zemiakoch
The potato plant.
Rastlina zemiaka.
The early stage of infection in the field is recognised by wilting of the leaves towards the top of the plant at high temperatures during the day with recovery at night.
V ranom štádiu sa infekcia na poli rozozná podľa uvädnutých listov vo vrchnej časti rastliny pri vysokých teplotách počas dňa, pričom cez noc sa zotavia.
In early stages of wilting leaves remain green, but later yellowing and brown necrosis develops.
V raných štádiách vädnutia listy zostávajú zelené, ale neskôr žltnú a dochádza k hnedému odumieraniu.
Epinasty also occurs.
Vyskytujú sa aj epinastie.
Wilting of one shoot or whole plants becomes rapidly irreversible and results in the collapse and death of the plant.
Vädnutie jedného výhonku alebo celých rastlín sa rýchlo stane nezvratným a jeho dôsledkom je odumretie rastliny.
The vascular tissue of transversely cut stems from wilted plants usually appears brown and a milky bacterial ooze exudes from the cut surface or can be expressed by squeezing.
Cievne zväzky priečne rozrezaných stoniek zvädnutých rastlín sú zvyčajne hnedé a z povrchu rezu sa samovoľne alebo po stlačení vylučuje mliečny baktériový slizovitý exkrét.
When a cut stem is placed vertically in water, threads of slime will stream from the vascular bundles.
Ak sa odrezaná stonka umiestni zvislo do vody, z cievnych zväzkov vytekajú vlákna slizu.
The potato tuber.
Hľuza zemiaka.
Potato tubers must be cut transversely close to the heel (stolon end) or longitudinally over the stolon end.
Hľuzy zemiaka sa musia rozrezať priečne blízko pupkového (stolónového) konca, alebo pozdĺžne cez stolónový koniec.
The early stage of infection is recognised by a glassy yellow to light brown discolouration of the vascular ring from which a pale cream bacterial ooze emerges spontaneously after some minutes.
Rané štádium infekcie sa prejavuje sklovito žltým až svetlohnedým sfarbením cievnych zväzkov, z ktorých sa po niekoľkých minútach spontánne vylučuje svetlý smotanový baktériový sliz.
Later, the vascular discolouration becomes a more distinct brown and necrosis can extend into the parenchymatous tissue.
Neskôr sa cievne sfarbenie zmení na zreteľnejšie hnedé a odumieranie pletiva sa môže rozšíriť na parenchymatózne pletivo.
In advanced stages, infection breaks outwards from the heel end and the eyes from which bacterial slime may ooze causing soil particles to adhere.
V pokročilých štádiách infekcia pokračuje smerom od pupkového konca a očiek, z ktorých sa vylučuje baktériový sliz spôsobujúci prilínanie častíc zeminy.
Reddish-brown slightly sunken lesions may appear on the skin due to collapse of vascular tissues internally.
Môžu sa objaviť červenkasto hnedé, mierne vtlačené lézie na šupe spôsobené prepadnutím cievnych zväzkov dovnútra.
Secondary development of fungal and bacterial soft rots is common in the advanced stages of the disease.
V pokročilých štádiách infekcie sa bežne vyskytuje sekundárna hubová a baktériová mäkká hniloba.
Symptoms on tomato
Príznaky na rajčiaku
The tomato plant.
Rastlina rajčiaka.
The first visible symptom is the flaccid appearance of the youngest leaves.
Prvým viditeľným príznakom je ochabnutý vzhľad najmladších listov.
Under favourable environmental conditions for the pathogen (soil temperatures of approximately 25 °C; saturated humidity), epinasty and wilting of one side or of the whole plant follows within a few days leading to total plant collapse.
V podmienkach priaznivých pre patogény (teplota pôdy okolo 25 °C, nasýtená vlhkosť vzduchu) nasleduje do niekoľkých dní epinastia a vädnutie jednej strany rastliny alebo celej rastliny, čo má za následok kolaps celej rastliny.
Under less favourable conditions (soil temperature below 21 °C), less wilting occurs, but large numbers of adventitious roots may develop on the stem.
V menej priaznivých podmienkach (teplota pôdy pod 21 °C) je vädnutie menej výrazné, ale na stonke sa môže vyvinúť veľký počet postranných výhonkov.
It is possible to observe watersoaked streaks from the base of the stem which is evidence of necrosis in the vascular system.
Pozdĺž stonky možno pozorovať slizovitý pás, ktorý svedčí o odumieraní cievneho systému.
When the stem is cut crosswise, discoloured brown vascular tissues exude white or yellowish bacterial ooze.
Pri priečnom reze stonky sfarbené hnedé cievne zväzky vylučujú biely alebo žltkastý baktériový sliz.
Symptoms on other hosts
Príznaky na iných hostiteľoch
Solanum dulcamara and S. nigrum plants.
Rastliny Solanum dulcamara a S. nigrum.
Under natural conditions, wilting symptoms are rarely observed in these weed hosts unless soil temperatures exceed 25 °C or inoculum levels are extremely high (e.g. as for S. nigrum growing adjacent to diseased potato or tomato plants).
V normálnych podmienkach, ak teploty pôdy neprekročia 25 °C alebo ak úroveň inokula nie je extrémne vysoká (napr. pri S. nigrum, ktoré rastie vedľa infikovaných rastlín zemiaka alebo rajčiaka), sa príznaky vädnutia u týchto hostiteľských burín vyskytujú zriedka.
When wilting does occur, the symptoms are as described for tomato.
Ak sa vädnutie vyskytne, príznaky sú rovnaké, ako sa opisujú u rajčiaka.
Non-wilting S. dulcamara plants growing with stems and roots in water may show internal light brown discolouration of vascular tissues on transverse section of the stem base or underwater stem parts.
Nezvädnuté rastliny S. dulcamara rastúce so stonkou a koreňmi vo vode môžu mať na priečnom reze spodnej časti stonky alebo časti, ktorá je pod vodou, mierne svetlohnedé sfarbenie cievnych zväzkov.
Bacteria may ooze from cut vascular tissues or form threads of slime if the cut stem is placed vertically in water, even in the absence of wilting symptoms.
Ak sa odrezaná stonka umiestni zvisle do vody, aj v prípade absencie príznakov vädnutia sa z povrchu rezu cievnych zväzkov vylučuje baktériový sliz alebo vlákna slizu.
Rapid screening tests may facilitate presumptive diagnosis but are not essential.
Testy vytekania baktétiového slizu zo stonky môžu uľahčiť predbežnú diagnostiku, ale nie sú rozhodujúce.
Use one or more of the following validated tests:
Použije sa jeden alebo viacero z týchto validovaných testov:
(See Section VI.A.1.)
(Pozri oddiel VI.A.1.)
Detection of poly-ß-hydroxybutyrate (PHB) granules
Určovanie prítomnosti granúl poly-β-hydroxybutyrátu (PHB)
Characteristic PHB granules in the cells of R. solanacearum are visualised by staining heat-fixed smears of bacterial ooze from infected tissue on a microscope slide with Nile Blue A or Sudan Black (See Section VI.A.2.).
Charakteristické granuly PHB v bunkách R. solanacearum sa zviditeľňujú sfarbením teplom fixovaného rozteru baktériového slizu z infikovaného pletiva na podložnom mikroskopickom sklíčku prostredníctvom nílskej modrej A alebo sudánskej čiernej (pozri oddiel VI.A.2).
(See Section VI.A.3.)
(Pozri oddiel VI.A.3.)
Other tests
Iné testy
Further appropriate rapid screening tests include the IF test (see Section VI.A.5.), FISH test (see Section VI.A.7.), ELISA tests (see Section VI.A.8.) and PCR tests (see Section VI.A.6).
K ďalším vhodným skríningovým testom patria test IF (pozri oddiel VI.A.5), test FISH (pozri oddiel VI.A.7), testy ELISA (pozri oddiel VI.A.8) a testy PCR (pozri oddiel VI.A.6).
Remove ooze or sections of discoloured tissue from the vascular ring in the potato tuber or from the vascular strands in stems of potato, tomato or other wilting host plants.
Odstráňte sliz alebo časti odfarbeného pletiva z cievnych zväzkov hľuzy zemiaka alebo z cievnych pletív stonky rastliny zemiaka, rajčiaka alebo inej vädnúcej hostiteľskej rastliny.
Suspend in a small volume of sterile distilled water or 50mM phosphate buffer (Appendix 4) and leave for 5 to 10 minutes.
Urobí sa suspenzia v malom objeme sterilnej destilovanej vody alebo v 50 mM fosfátovom pufri (dodatok 4) a nechá sa 5 až 10 minút stáť.
Prepare a series of decimal dilutions of the suspension.
Zo suspenzie sa pripraví viacero desatinných riedení.
Transfer 50-100 µl of the suspension and dilutions to a general nutrient medium (NA, YPGA or SPA; see Appendix 2) and/or to Kelman’s tetrazolium medium (Appendix 2) and/or a validated selective medium (e.g. SMSA; see Appendix 2).
Objem 50 – 100 µl suspenzie a jednotlivých riedení prenesieme na univerzálnu živnú pôdu (NA, YPGA alebo SPA; pozri dodatok 2) a/alebo na Kelmanovo tetrazóliové médium (dodatok 2) a/alebo a validované selektívne médium (napr. SMSA; pozri dodatok 2).
Spread or streak with an appropriate dilution plating technique.
Riedenia rozotrieme vhodnou platňovou metódou.
If useful, prepare separate plates with a diluted cell suspension of R. solanacearum biovar 2 as a positive control.
Je vhodné pripraviť si samostatné platne so zriedenou kultúrou bunkovej suspenzie biovaru 2 R. solanacearum ako pozitívnu kontrolu.
Incubate the plates for two to six days at 28 °C.
Platne sa nechajú inkubovať pri 28 °C 2 až 6 dní.
On the general nutrient media, virulent isolates of R. solanacearum develop pearly cream-white, flat, irregular and fluidal colonies often with characteristic whorls in the centre.
Na univerzálnych živných pôdach virulentné izoláty R. solanacearum vytvárajú perlovo biele, ploché, nepravidelné a fluidné kolónie, často s charakteristickými špirálkami v strede.
Avirulent forms of R. solanacearum form small round non-fluidal, butyrous colonies which are entirely cream-white.
Nevirulentné formy R. solanacearum vytvárajú malé kruhové, nefluidné, maslovité kolónie, ktoré sú celé smotanovo biele.
On Kelman’s tetrazolium and SMSA media, the whorls are blood red in colour.
Na Kelmanovom tetrazóliovom médiu a SMSA médiu majú špirálky krvavočervenú farbu.
Avirulent forms of Ralstonia solanacearum form small round non-fluidal, butyrous colonies which are entirely deep red.
Nevirulentné formy Ralstonia solanacearum vytvárajú malé kruhové, nefluidné, maslovité kolónie, ktoré sú celé tmavočervené.
Tests to confirm identity of presumptive isolates of R. solanacearum are shown in Section VI.B.
Testy na potvrdenie identity predpokladaných izolátov R. solanacearum sa uvádzajú v oddiele VI.B.
Detailed methods for detection and identification of Ralstonia solanacearum in samples of asymptomatic potato tubers
Podrobné metódy určovania prítomnosti a identifikácie Ralstonia solanacearum vo vzorkách hľúz zemiakov bez príznakov
The standard sample size is 200 tubers per test.
Štandardná veľkosť vzoriek je 200 hľúz na test.
More intensive sampling requires more tests on samples of this size.
Intenzívnejšie odoberanie vzoriek vyžaduje viac testov na vzorkách tejto veľkosti.
Larger numbers of tubers in the sample will lead to inhibition or difficult interpretation of the results.
Väčší počet hľúz zemiakov vo vzorke vedie k inhibícii alebo k zložitej interpretácii výsledkov.
However, the procedure can be conveniently applied for samples with less than 200 tubers where fewer tubers are available.
Tento test je však vhodný na použitie aj pri vzorkách s menej ako 200 hľuzami, ak je k dispozícii menej hľúz.
Validation of all detection methods described below is based on testing of samples of 200 tubers.
Validácia všetkých nižšie uvedených metód určovania prítomnosti sa zakladá na skúšaní vzoriek z 200.
The potato extract described below can also be used for detection of the potato ring rot bacterium, Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus.
Nižšie opísaný extrakt zo zemiaka sa môže použiť aj na určenie prítomnosti baktérie spôsobujúcej krúžkovitosť zemiakov, Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus.
Optional pre-treatment in advance to sample preparation:
Nepovinná predúprava pred prípravou vzorky:
Incubation of samples at 25 to 30 °C, for up to two weeks before testing, to encourage multiplication of any R. solanacearum populations.
Inkubácia vzoriek pri 25 – 30 °C až do 2 týždňov pred testovaním podporí množenie všetkých populácií R. solanacearum.
Wash the tubers.
Umytie hľúz.
Use appropriate disinfectants (chlorine compounds when PCR-test is to be used in order to remove pathogen DNA) and detergents between each sample.
Medzi každou vzorkou použite vhodné dezinfekčné prostriedky (ak sa použije test PCR, zlúčeniny chlóru na odstránenie DNA patogénu) a čistidlá.
This washing procedure is particularly useful (but not required) for samples with excess soil and if a PCR-test or direct isolation procedure is to be performed.
Toto umývanie je užitočné (ale nevyžaduje sa) najmä pri vzorkách, na ktorých sa nachádza príliš veľa zeminy, a ak sa má robiť test PCR alebo priama izolácia.
Remove with a clean and disinfected scalpel or vegetable knife the skin at the heel (stolon) end of each tuber so that the vascular tissues become visible.
Čistým, dezinfikovaným skalpelom alebo zeleninovým nožom odstráňte šupku hľuzy na jej pupkovom (stolónovom) konci tak, aby bolo vidieť cievne pletivo.
Note: Set aside any (rotting) tubers with suspected brown rot symptoms and test separately.
Poznámka: Vyraďte všetky (hnijúce): ponechajte hľuzy vykazujúce symptómy hnedej hrdze a testujte ich oddelene.
All tubers including those with suspicioussymptoms should be kept according to Annex III.
Všetky hľuzy, vrátane hľúz podozrivých na symptómy, sa majú uchovávať podľa prílohy III.
Collect the heel end cores in unused disposable containers which can be closed and/or sealed (in case containers are reused they should be thoroughly cleaned and disinfected using chlorine compounds).
Výrezky z pupkových koncov hľúz zhromaždite v nepoužitých jednorazových nádobách, ktoré sa dajú uzatvoriť a/alebo utesniť (v prípade opakovaného použitia nádoby musia byť dôkladne očistené a dezinfikované zlúčeninami chlóru).
Preferably, the heel end cores should be processed immediately.
Odporúča sa výrezky z pupkových koncov okamžite spracovať.
If this is not possible, store them in the container, without addition of buffer, refrigerated for not longer than 72 hours or for not longer than 24 hours at room temperature.
Ak to nie je možné, skladujte ich v nádobe bez pridania pufra schladené najdlhšie 72 hodín alebo pri izbovej teplote najdlhšie 24 hodín.
Process the heel end cores by one of the following procedures: either,
Výrezky z pupkových koncov hľúz spracujete jedným z týchto postupov:
Cover the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4) and agitate on a rotary shaker (50-100 rpm) for 4 hours below 24 °C or for 16 to 24 hours refrigerated,
buď pridajte dostatočný objem (asi 40 ml) maceračného pufra (dodatok 4), aby bol výrezok prekrytý, umiestnite do rotačnej trepačky a inkubujte počas 4 hodín (50 až 100 otáčok/min.) pri teplote pod 24 °C alebo počas 16 až 24 hodín schladené.
Homogenise the cores with sufficient volume (approximately 40 ml) of extraction buffer (Appendix 4), either in a blender (e.g. Waring or Ultra Thurax) or by crushing in a sealed disposable maceration bag (e.g. Stomacher or Bioreba strong guage polythene, 150 mm × 250 mm; radiation sterilised) using a rubber mallet or suitable grinding apparatus (e.g. Homex).
výrezok homogenizujte dostatočným objemom (asi 40 ml) maceračného pufra (dodatok 4) buď v mixéri (napr. Waring alebo Ultra Thurax) alebo rozdrvením v uzatvorenom jednorazovom maceračnom vrecúšku (napr. Stomacher alebo Bioreba strong guage polythene, 150 mm × 250 mm; sterilizovanom ožiarením) gumeným kladivkom alebo iným vhodným nástrojom na drvenie (napr. Homex).
Note: The risk of cross-contamination of samples is high when samples are homogenized using a blender.
Poznámka: Keď sa vzorky homogenizujú v mixéri, je riziko krížovej kontaminácie vzoriek vysoké.
Take precautions to avoid aerosol generation or spillage during the extraction process.
Počas extrakcie treba urobiť opatrenia, aby nedochádzalo k rozprašovaniu ani k rozlievaniu.
Ensure that freshly sterilised blender blades and vessels are used for each sample.
Pri každej vzorke použite čerstvo sterilizované čepele v mixéri a nádoby.
If the PCR test is to be used, avoid carry-over of DNA on containers or grinding apparatus.
Ak sa použije test PCR, zabráňte prenosu DNA na nádobách alebo na drviacom zariadení.
Crushing in disposable bags and use of disposable tubes is recommended where PCR is to be used.
Keď sa použije test PCR, odporúča sa drvenie v jednorazových vrecúškach..
If excessively cloudy, clarify either by slow speed centrifugation (at not more than 180 g for 10 minutes at a temperature between 4 to 10 °C) or by vacuum filtration (40 to 100 µm), washing the filter with additional (approximately 10 ml) extraction buffer.
Ak je príliš kalný, zjasní sa buď odstredením pri nízkej rýchlosti (pri odstredivej sile nie viac ako 180 g počas 10 minút pri teplote od 4 do 10 °C), alebo vákuovou filtráciou (40 až 100 µm), pričom sa filter premyje ďalším maceračným pufrom ( 10 ml).
Concentrate the bacterial fraction by centrifugation at 7000 g for 15 minutes (or 10000 g for 10 minutes) at a temperature between 4 to 10 °C and discard the supernatant without disturbing the pellet.
Bakteriálnu frakciu koncentrujte odstredením pri odstredivej sile 7000 g počas 15 minút (alebo 10000 g počas 10 minút) pri teplote od 4 do 10 °C a supernatant vylejte tak, aby ste neporušili vzniknutý pelet.
Resuspend the pellet in 1.5 ml pellet buffer (Appendix 4).
Pelet resuspendujte v 1,5 ml peletového pufra (dodatok 4).
Use 500 µl to test for R. solanacearum, 500 µl for Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus and 500 µl for reference purposes.
Použite 500 µl na test na R. solanacearum, 500 µl pre Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus a 500 µl na referenčné účely.
Add sterile glycerol to final concentration of 10 to 25 % (v/v) to the 500 µl of the reference aliquot and to the remaining test aliquot, vortex and store at –16 to –24 °C (weeks) or at –68 to –86 °C (months).
Pridajte 10 – 25 % (v/v) sterilný glycerín do 500 µl referenčného alikvotného podielu a do zostávajúceho testovaného alikvotného podielu, pretrepte a skladujte pri teplote od –16 do –24 °C (niekoľko týždňov) alebo pri teplote od –68 do –86 °C (niekoľko mesiacov).
Preserve the test aliquots at 4 to 10 °C during testing.
Testované podiely počas testovania uchovávajte pri teplote od 4 do 10 °C.
If transport of the extract is required, ensure delivery in a cool box within 24 to 48 hours.
Ak je potrebná doprava extraktu, zabezpečte dodanie v chladiacom boxe do 24 až 48 hodín.
It is imperative that all R. solanacearum positive controls and samples are treated separately to avoid contamination.
Je nevyhnutné, aby sa so všetkými pozitívnymi kontrolami a vzorkami R. solanacearum manipulovalo oddelene, aby nedošlo ku kontaminácii.
This applies to IF slides and to all tests.
Toto platí aj pre podložné sklíčka pri testoch IF a pri všetkých ostatných testoch.
See Flow chart and description of the tests and optimised protocols in the relevant appendices:
Vývojové diagramy a popis testov a optimalizovaných protokolov sa nachádzajú v príslušných dodatkoch:
Selective isolation (see Section VI.A.4.)
Selektívna izolácia (pozri oddiel VI.A.4)
IF test (see Section VI.A.5.)
Test IF (pozri oddiel VI.A.5)
PCR tests (see Section VI.A.6.)
Testy PCR (pozri oddiel VI.A.6)
FISH test (see Section VI.A.7.)
Test FISH (pozri oddiel VI.A.7)
ELISA tests (see Section VI.A.8.)
Testy ELISA (pozri oddiel VI.A.8)
Bioassay (see Section VI.A.9.)
Biotest (pozri oddiel VI.A.9)
Detailed methods for detection and identification of R. solanacearum in samples of asymptomatic potato, tomato or other host plants
Podrobné metódy určovania prítomnosti a identifikácie R. solanacearum vo vzorkách rastlín zemiakov, rajčiakov alebo iných hostiteľských rastlín bez príznakov
Note: For detection of latent R. solanacearum populations it is advised to test composite samples.
Poznámka: Pri určovaní prítomnosti latentných populácií R. solanacearum sa odporúča testovať kompozitné vzorky.
The procedure can be conveniently applied for composite samples of up to 200 stem parts.
Postup sa môže vhodným spôsobom uplatniť pri kompozitných vzorkách až z 200 častí stoniek.
Where surveys are performed they should be based on a statistically representative sample of the plant population under investigation.
V prípade prehľadov by sa tieto mali zakladať na štatisticky reprezentatívnej vzorke skúmanej populácie rastlín.
Collect 1 to 2 cm stem segments in a closed sterile container according to the following sampling procedures:
Vložte 1 – 2 cm dlhé segmenty stonky do uzatvorenej sterilnej nádoby podľa týchto postupov odoberania vzoriek:
Other hosts: With a clean disinfected knife or pruning shears, remove a 1 cm segment from the base of each stem, just above the soil level.
Ostatné hostiteľské rastliny: Čistým dezinfikovaným nožom alebo záhradníckymi nožnicami oddeľte 1 cm dlhý úsek z dolnej časti každej stonky tesne nad úrovňou zeminy.