natgillin/translations-raw huggingface dataset:
test substance concentrations and the method of analysis with appropriate quality assessment data (validation studies, standard deviations or confidence limits of analyses),
concentrațiile substanțelor de testat și metoda de analiză cu date adecvate de evaluare a calității (studii de validare, deviații standard sau limite de încredere ale analizelor);
methods for determination of frond number and other measurement variables, e.g. dry weight, fresh weight or frond area,
metodele de determinare a numărului de fronde și a altor variabile de măsurare, cum ar fi greutatea uscată, greutatea în stare proaspătă sau suprafața frondelor;
all deviations from this Testing Method.
orice deviere de la prezenta metodă de testare.
raw data: number of fronds and other measurement variables in each test and control vessel at each observation and occasion of analysis,
date brute: numărul de fronde și alte variabile de măsurare în fiecare vas de testare și de control, cu ocazia fiecărei observări sau analize;
means and standard deviations for each measurement variable,
deviația medie și deviația standard pentru fiecare variabilă de măsurare;
growth curves for each concentration (recommended with log transformed measurement variable, see second paragraph in section 2.2.1),
curbele de creștere pentru fiecare concentrație (recomandate cu variabila de măsurare transformată logaritmic, a se vedea punctul 2.2.1 al doilea paragraf);
doubling time/growth rate in the control based on the frond number,
timpul de duplicare/viteza de creștere în grupul de control, pe baza numărului frondelor;
graphical representation of the concentration/effect relationship,
reprezentarea grafică a relației concentrație/efect;
estimates of toxic endpoints for response variables e.g. EC50, EC10, EC20, and associated confidence intervals.
estimări ale punctelor stoechiometrice toxice pentru variabile de răspuns, cum ar fi EC50, EC10, EC20 și intervalele de încredere aferente.
If calculated, LOEC and/or NOEC and the statistical methods used for their determination,
Dacă au fost calculate, CMEO și/sau CFEO și metodele statistice folosite pentru determinarea acestora;
any visual signs of phytotoxicity as well as observations of test solutions,
orice indicii vizuale de fitotoxicitate, precum și observările soluțiilor de testat;
E 1415-91 (Reapproved 1998). pp. 733-742.
E 1415-91 (Reapproved 1998). p. 733-742.
EPS 1/RM/37-120 pp.
EPS 1/RM/37-120 p.
Environmental Research Laboratory — Duluth, Minnesota 55804.
Environmental Research Laboratory – Duluth, Minnesota 55804.
T = t + 273,15
T = t +273,15
Adjustable valve
Ventil ajustabil
gas at ambient pressure
gazos la presiune ambiantă
The sample carrier plate, hanging on a microbalance in a temperature controlled chamber, is swept by a stream of dry nitrogen gas which carries the vaporised molecules of the test substance away.
Placa de susținere a eșantionului, suspendată de o microbalanță aflată într-un spațiu cu temperatură constantă, se află în calea unui curent de azot uscat care evacuează moleculele vaporizate ale substanței testate.
Experimental Thermodynamics, Vol. II, Le Neindre, B., and Vodar, B., Eds., Butterworths, London.
Experimental Thermodynamics, Vol. II, Le Neindre, B., și Vodar, B., Eds., Butterworths, Londra.
Messer G., Röhl, P., Grosse G., and Jitschin W.
Messer G., Röhl, P., Grosse G., Jitschin W.
The material is mixed with spatula and re-pressed at 10 MPa.
Materialul trebuie amestecat cu spatula și presat din nou la 10 MPa.
The material is then removed from the dye and stored in a sealed glass bottle.
Materialul este apoi îndepărtat din matriță și depozitat într-o sticlă închisă ermetic.
complete supporting information for the specific skin model used including its performance.
informații complete privind modelul de epidermă utilizat, inclusiv performanța acestuia.
This should include, but is not limited to:
Aceasta trebuie să includă, fără a se limita la:
reference to historical data of the model.
trimiteri la datele istorice ale modelului.
Available at: http://www.unece.org/trans/danger/publi/ghs/ghs_rev02/02files_e.html.
Disponibilă la adresa: http://www.unece.org/trans/danger/publi/ghs/ghs_rev02/02files_e.html
Adopted July 19, 2006.
Adoptată la 19 iulie 2006.
Available at: http://www.oecd.org/document/22/0,2340,en_2649_34377_1916054_1_1_1_1,00.html.
Disponibilă la adresa: http://www.oecd.org/document/22/0,2340,en_2649_34377_1916054_1_1_1_1,00.html
5 November 2008.
5 November 2008.
Official Journal of the European Union L 396 of 30 December 2006, p. 1.
Jurnalul Oficial al Uniunii Europene L 396/1 din 30.12.2006.
OPOCE, Luxembourg.
OPOCE, Luxemburg.
For full expression of the system response to toxic effects (optimal sensitivity), the cultures are allowed unrestricted exponential growth under sufficient nutrient conditions and continuous light for a sufficient period of time to measure reduction of the specific growth rate.
Pentru exprimarea completă a răspunsului sistemului la efecte toxice (sensibilitate optimă), culturilor le este permisă o creștere exponențială nerestricționată în condiții de hrănire suficientă și lumină continuă, pentru o perioadă de timp suficientă pentru măsurarea reducerii vitezei specifice de creștere.
Growth and growth inhibition are quantified by measurements of the algal biomass as a function of time.
Creșterea și inhibarea creșterii sunt cuantificate prin măsurarea biomasei de alge în funcție de timp.
Algal biomass is defined as the dry weight per volume, e.g. mg algae/litre test solution.
Biomasa de alge se definește ca greutatea uscată per volum de soluție de testat, de exemplu mg alge/litru.
However, dry weight is difficult to measure and therefore surrogate parameters are used.
Greutatea uscată este dificil de măsurat și, prin urmare, se folosesc parametri înlocuitori.
Of these surrogates, cell counts are most often used.
Dintre acești parametri, numărul celulelor este cel mai des folosit.
Other surrogate parameters include cell volume, fluorescence, optical density, etc. A conversion factor between the measured surrogate parameter and biomass should be known.
Alți parametri înlocuitori sunt volumul celulelor, fluorescența, densitatea optică etc. Este necesară cunoașterea unui factor de conversie între parametrul înlocuitorului măsurat și biomasă.
It is defined as biomass at the end of the exposure period minus the biomass at the start of the exposure period.
Acesta se definește ca biomasa la sfârșitul perioadei de expunere minus biomasa la începutul perioadei de expunere.
ln Xi– lated as the logarithmic increase in biomass from the equation for each single vessel of controls and treatments:
ln Xi– calculează ca fiind creșterea logaritmică a biomasei, pe baza ecuației pentru fiecare vas de probe martor și de probe supuse tratamentului:
μT– atment replicate from the equation:
μT– uplicat supus tratării se calculează pe baza ecuației:
YT– or each treatment replicate as follows:
YT– a pentru fiecare duplicat supus tratării, după cum urmează:
With true first order kinetics the specific degradation rate constant, k, is independent of time and concentration.
În cazul cineticii de prim ordin reale, constanta vitezei specifice de degradare k este independentă de timp și concentrație.
That is, k does not vary appreciably during the course of an experiment and does not change with the added concentration between experiments.
Prin urmare, k nu variază apreciabil în cursul experimentului și nu se modifică în funcție de concentrația adăugată între experimente.
Storage and preparation of surface water
Stocarea și prepararea apei de suprafață
The test should preferably be started within one day after sample collection.
Se preferă ca textul să înceapă în termen de o zi de la colectarea eșantionului.
For the suspended sediment test, surface sediment is added to the flasks containing natural water (filtered to remove coarse particles as described in section 1.8.4) to obtain a suspension; the concentration of suspended solids should be between 0,01 and 1 g/L.
Pentru testul cu sedimente în suspensie, se adaugă sedimente de suprafață în recipiente conținând apă naturală (filtrată pentru eliminarea particulelor mari, conform descrierii de la punctul 1.8.4) pentru obținerea unei suspensii; concentrația solidelor în suspensie trebuie să fie între 0,01 și 1 g/l.
The surface sediment should come from the same site as that from which the water sample was taken.
Sedimentele de suprafață trebuie să provină din același loc de unde a fost prelevat eșantionul de apă.
Dependent on the particular aquatic environment, the surface sediment may either be characterised by a high organic carbon content (2,5-7,5 %) and a fine texture or by a low organic carbon content (0,5-2,5 %) and a coarse texture (3).
În funcție de mediul acvatic, sedimentele de suprafață pot fi caracterizate printr-un conținut ridicat de carbon organic (2,5-7,5 %) și o textură fină sau printr-un conținut scăzut de carbon organic (0,5-2,5 %) și o textură rugoasă (3).
This should be checked by substance-specific analysis or, if possible, DOC analysis (6).
Aceasta se verifică prin intermediul unei analize specifice substanței sau, dacă este posibil, prin analiză COD (6).
Care must be taken to limit the amount of solvent transferred to what is absolutely necessary, and to ensure that the amount of test substance can dissolve in the final volume of test water.
Se vor lua măsuri pentru limitarea la strictul necesar a cantității de solvent transferate și pentru asigurarea dizolvării substanței testate în volumul final de apă de testat.
Other techniques to introduce the test substance into the test vessels may be used as described in (7) and (8).
Alte tehnici de introducere a substanței testate în vasele de testare sunt descrise la notele (7) și (8).
When an organic solvent is used for application of the test substance, solvent controls containing the test water (with no additions) and test water with added reference substance should be treated similarly to active test vessels amended with test substance in solvent carrier.
Atunci când la aplicarea substanței de testat se folosește un solvent organic, probele martor ale solventului conținând apa de testat (fără adăugări) și apa de testat cu substanța de referință adăugată sunt tratate similar cu vasele de testare activă în care s-a adăugat substanță de testat în solvent purtător.
However, the test period for the batch test may be extended to a maximum of 90 days, if the degradation of the test substance has started within the first 60 days.
Cu toate acestea, dacă substanța testată a început să se degradeze în primele 60 de zile, perioada de testare a seriei poate fi extinsă la cel mult 90 de zile.
Degradation is monitored, at appropriate time intervals, by the determination of the residual 14C activity or the evolved 14CO2 (see section 1.8.9.4) and/or by chemical analysis (section 1.8.9.5).
Degradarea se monitorizează prin determinarea activității 14C rezidual sau a 14CO2 degajat (a se vedea punctul 1.8.9.4) și/sau prin analiză chimică (punctul 1.8.9.5) la intervale de timp adecvate.
The incubation time must be sufficiently long to evaluate the degradation process.
Perioada de incubare trebuie să fie suficient de lungă pentru a permite evaluarea procesului de degradare.
The extent of degradation should preferably exceed 50 %; for slowly degradable substances, the extent of degradation must be sufficient (normally greater than 20 % degradation) to ensure the estimation of a kinetic degradation rate constant.
Preferabil, nivelul degradării trebuie să depășească 50 %; în cazul substanțelor lent degradabile, nivelul degradării trebuie să fie suficient (în mod normal, mai mare de 20 %) pentru a permite estimarea constantei vitezei cineticii de degradare.
Periodic measurements of pH and oxygen concentration in the test system must be conducted unless previous experience from similar tests with water and sediment samples collected from the same site make such measurements unnecessary.
Se vor efectua măsurători periodice ale pH-ului și concentrației oxigenului în sistemul de testare, cu excepția cazurilor în care astfel de teste sunt inutile ca urmare a existenței unor date anterioare din teste similare cu eșantioane de apă și sedimente colectate din același loc.
Under some conditions, the metabolism of primary substrates at much higher concentrations within the water or sediment could possibly result in enough CO2 evolution and oxygen depletion to significantly alter the experimental conditions during the test.
În unele condiții, metabolismul substraturilor primare la concentrații mult mai mari în apă sau sedimente poate provoca o degajare de CO2 și o epuizare a oxigenului suficient de mari pentru a modifica în mod semnificativ condițiile experimentale din timpul testului.
Preparation of flasks for pelagic test
Pregătirea recipientelor pentru testul pelagic
Transfer a suitable volume of test water to the test flasks, up to about one third of the flask volume and not less than about 100 ml.
Se transferă un volum corespunzător de apă de testat în recipientele de testare, până la aproximativ o treime din volumul recipientului, nu mai puțin de 100 ml.
If multiple flasks are used (to allow harvesting of whole flasks at each sampling time), the appropriate volume of test water is also about 100 ml, as small sample volumes may influence the length of the lag phase.
Dacă se folosesc recipiente multiple (care permit recoltarea conținutului din întregul recipient la fiecare punct de prelevare), volumul corespunzător al apei de testat va fi tot de 100 ml, deoarece volumele mici ale eșantioanelor pot influența lungimea fazei de latență.
The test substance is added from a stock solution as described in sections 1.8.2 and 1.8.7.
Substanța de testat se adaugă dintr-o soluție mamă conform descrierii de la punctele 1.8.2 și 1.8.7.
At least two different concentrations of test substance differing by a factor of 5 to 10 should be used in order to determine degradation kinetics and calculate the kinetic degradation rate constant.
Pentru determinarea cineticii degradării și calcularea constantei vitezei cineticii de degradare se vor folosi cel puțin două concentrații de substanță de testat, diferența dintre acestea fiind un factor cuprins între 5 și 10.
Both of the selected concentrations should be less than 100 µg/L and preferably in the range of < 1-10 µg/L.
Ambele concentrații selectate trebuie să fie mai mici de 100 µg/l și, preferabil, să se situeze în intervalul < 1-10 µg/l.
Close the flasks with stoppers or lids impermeable to air and CO2.
Recipientele se astupă cu dopuri sau capace impermeabile la aer și CO2.
Withdraw samples for chemical analysis or 14C measurements at the beginning of the test (i.e. before biodegradation starts; see section 1.7.1) and then at suitable time intervals during the course of the test.
Eșantioanele se retrag pentru analiză chimică sau măsurarea 14C la începutul testului (înainte de începerea biodegradării; a se vedea punctul 1.7.1), apoi la intervale adecvate în cursul testului.
Sampling may be performed by withdrawal of sub-samples (e.g. 5 ml aliquots) from each replicate or by harvest of whole flasks at each sampling time.
Recoltarea se efectuează prin retragerea subeșantioanelor (de exemplu alicote de 5 ml) din fiecare duplicat sau prin recoltarea întregului conținut al recipientelor la fiecare moment de prelevare.
The mineralisation of the test substance may either be determined indirectly or directly (see Appendix 3).
Mineralizarea substanței de testat poate fi determinată în mod direct sau indirect (a se vedea apendicele 3).
Usually, a minimum of five sampling points are required during the degradation phase (i.e. after ended lag phase) in order to estimate a reliable rate constant, unless it can be justified that three sampling points are sufficient for rapidly degradable substances.
În mod obișnuit, în timpul fazei de degradare (după terminarea fazei de latență) sunt necesare minimum cinci puncte de prelevare pentru estimarea unei constante precise a vitezei, cu excepția cazurilor când se poate demonstra că trei puncte de prelevare sunt suficiente pentru substanțele cu degradare rapidă.
For substances that are not rapidly degraded more measurements during the degradation phase can easily be made and, therefore, more data points should be used for the estimation of k. No fixed time schedule for sampling can be stated, as the rate of biodegradation varies; however the recommendation is to sample once a week if degradation is slow.
Pentru substanțele care nu se degradează rapid se pot face mai multe măsurători în timpul fazei de degradare și, prin urmare, se vor folosi mai multe puncte experimentale pentru estimarea k. Deoarece viteza de biodegradare variază, nu poate fi indicat un program fix de recoltare; cu toate acestea, dacă degradarea este lentă, se recomandă ca recoltarea să aibă loc o dată pe săptămână.
If the test substance is rapidly degradable, sampling should take place once a day during the first three days and then every second or third day.
Dacă substanța testată este rapid degradabilă, recoltarea trebuie să se efectueze o dată pe zi în primele trei zile, apoi la fiecare două sau trei zile.
Under certain circumstances, such as with very rapidly hydrolysing substances, it may be necessary to sample at hourly intervals.
În anumite situații, cum ar fi cele în care se lucrează cu substanțe rapid hidrolizabile, recoltarea poate fi necesară la intervale de o oră.
It is recommended that a preliminary study is conducted prior to the test in order to determine the appropriate sampling intervals.
Se recomandă efectuarea unui studiu preliminar înainte de test, în scopul stabilirii intervalelor de recoltare adecvate.
If samples have to be available for further specific analysis, it is advisable to take more samples and then select those to be analysed at the end of the experiment following a backwards strategy, i.e. the last samples are analysed first (see second paragraph in section 1.8.9.5 for guidance on stability of samples during storage).
Dacă eșantioanele trebuie să fie disponibile și pentru alte analize specifice, se recomandă recoltarea mai multor eșantioane și selectarea celor care urmează să fie analizate la sfârșitul experimentului prin intermediul unei strategii inverse, prin care ultimele eșantioane se analizează prima dată (a se vedea punctul 1.8.9.5 al doilea paragraf, pentru recomandări privind stabilitatea eșantioanelor în timpul stocării).
Number of flasks and samples
Numărul recipientelor și eșantioanelor
Set up a sufficient number of test flasks to have:
Va fi disponibil un număr suficient de recipiente de testare pentru a avea:
test flasks; at least duplicate flasks for each concentration of test substance (preferably a minimum of 3) or multiple test flasks for each concentration, if whole flasks are harvested at each sampling time (symbolised FT),
recipiente de testare: cel puțin două recipiente pentru fiecare concentrație a substanței de testat (preferabil, minimum 3) sau recipiente de testare multiple pentru fiecare concentrație, dacă se recoltează întregul conținut al recipientelor la fiecare moment de prelevare (reprezentate FT);
test flasks for mass balance calculation; at least duplicate flasks for each test concentration (symbolised FM),
recipiente de testare pentru calculul bilanțului masic; cel puțin două recipiente pentru fiecare concentrație de testare (reprezentate FM);
blank control, no test substance; at least one blank test flask containing only the test water (symbolised FB),
probă martor, fără substanță de testat; cel puțin un recipient martor de testat conținând doar apa de testare (reprezentată FB);
reference control; duplicate flasks with reference substance (e.g. aniline or sodium benzoate, at 10 µg/l) (symbolised FC).
etalon de referință; două recipiente cu substanță de referință (de exemplu anilină sau benzoat de sodiu, la 10 µg/l) (reprezentat FC).
The purpose of the reference control is to confirm a minimum of microbial activity.
Scopul etalonului de referință este de a confirma un minim de activitate microbiană.
If convenient, a radiolabelled reference substance may be used, also when the degradation of the test substance is monitored by chemical analyses,
Dacă este util, se poate folosi o substanță de referință marcată radioactiv, folosită și în cazurile când degradarea substanței de testat este monitorizată prin analize chimice;
sterile control; one or two flasks containing sterilised test water for examining possible abiotic degradation or other non-biological removal of the test substance (symbolised FS).
etalon steril; unul sau două recipiente conținând apă de testare sterilizată necesară pentru examinarea posibilei degradări abiotice sau pentru altă procedură de eliminare prin mijloace nebiologice a substanței de testat (reprezentat FS).
The biological activity can be stopped by autoclaving (121 °C; 20 min.) the test water or by adding a toxicant (e.g. sodium azide (NaN3) at 10-20 g/l, mercuric chloride (HgCl2) at 100 mg/l or formalin at 100 mg/l) or by gamma irradiation.
Activitatea biologică poate fi oprită prin autoclavarea (121 °C; 20 min.) apei de testare sau prin adăugarea unei substanțe toxice [de exemplu azidă de sodiu (NaN3), clorură de mercur (HgCl2) la 100 mg/l sau formol la 100 mg/l] sau prin radiații gama.
If HgCl2 is used, it should be disposed of as toxic waste.
Dacă se folosește HgCl2, acesta se va elimina conform procedurii pentru deșeuri toxice.
For water with sediment added in large amount, sterile conditions are not easy to obtain; in this case repeated autoclaving (e.g. three times) is recommended.
Condițiile de sterilitate nu sunt ușor de obținut în cazul în care se adaugă apă cu sedimente în cantitate mare; în acest caz se recomandă autoclavarea repetată (de exemplu de trei ori).
It should be considered that the sorption characteristics of the sediment may be altered by autoclaving,
Trebuie avut în vedere că, prin autoclavare, caracteristicile de sorbție ale sedimentelor pot fi modificate;
solvent controls, containing test water and test water with reference substance; duplicate flasks treated with the same amount of solvent and by use of the same procedure as that used for application of the test substance.
etaloane de solvent, conținând apă de testat și apă de testat cu substanță de referință; recipiente duble tratate cu aceeași cantitate de solvent și prin folosirea unei proceduri similare cu cea pentru aplicarea substanței de testat.
The purpose is to examine possible adverse effects of the solvent by determining the degradation of the reference substance.
Obiectivul este de a examina efectele adverse posibile ale solventului prin determinarea degradării substanței de referință.
In the design of the test, the investigator should consider the relative importance of increased experimental replication versus increased number of sampling times.
În conceperea testului, experimentatorul trebuie să ia în considerare importanța relativă a creșterii duplicării experimentale comparativ cu creșterea numărului momentelor de recoltare.
Specific chemical analysis
Analiză chimică specifică
If a sensitive specific analytical method is available, primary biodegradation can be assessed by measuring the total residual concentration of test substance instead of using radiolabelling techniques.
Dacă există o metodă analitică specifică sensibilă, biodegradarea primară se poate evalua prin măsurarea concentrației reziduale totale a substanței testate, și nu prin folosirea tehnicilor de marcare radioactivă.
If a radiolabelled test substance is used (to measure total mineralisation), specific chemical analyses can be made in parallel to provide useful additional information and check the procedure.
Dacă se folosește o substanță de testat marcată radioactiv (pentru măsurarea mineralizării totale), se pot realiza în paralel analize chimice specifice care să ofere informații suplimentare utile și să contribuie la verificarea procedurii.
The concentration of the test substance and the transformation products at every sampling time should be measured and reported (as a concentration and as percentage of applied).
La fiecare prelevare se măsoară și se înregistrează concentrația substanței de testat și produșii de transformare (ca procent și concentrație de substanță aplicată).