natgillin/translations-raw huggingface dataset:
The result may be expressed as TEQ, thereby assuming that the compounds responsible for the signal correspond to the TEQ principle.
Rezultatul poate fi exprimat ca TEQ, presupunându-se astfel că acei compuși care se află la originea semnalului corespund principiului TEQ.
This can be performed by using TCDD (or a dioxin/furan/dioxin-like PCB standard mixture) to produce a calibration curve to calculate the TEQ level in the extract and thus in the sample.
Acest lucru se poate realiza prin utilizarea TCDD (sau a unui amestec etalon de dioxină/furan/PCB asemănător dioxinei) pentru a se obține o curbă de calibrare pentru calculul nivelului TEQ din extract și, astfel, din eșantion.
This is subsequently corrected for the TEQ level calculated for a blank sample (to account for impurities from solvents and chemicals used), and a recovery (calculated from the TEQ level in a quality control sample around the limit of interest).
Cantitatea obținută se corectează apoi cu valoarea TEQ calculată pentru un eșantion martor (pentru a se ține cont de impuritățile din solvenți și din substanțele chimice utilizate) și pentru recuperare (calculată pe baza valorii TEQ dintr-un eșantion de control al calității apropiată de limita de interes).
It is essential to note that part of the apparent recovery loss may be due to matrix effects and/or differences between the TEF values in the bioassays and the official TEF values set by WHO.
Este esențial să se țină cont de faptul că o parte din aparenta pierdere de recuperare poate fi determinată de efectele matricei și/sau de diferențele dintre valorile TEF în bioteste și valorile TEF oficiale stabilite de OMS.
Requirements for methods of analysis used for screening
Cerințe privind metodele analitice pentru depistare
GC/MS methods of analysis and bioassays may be used for screening.
Depistarea se poate face prin metode analitice CG/SM sau prin bioteste.
For GC/MS methods the requirements as laid down in point 6 are to be used.
Pentru metodele CG/SM, trebuie utilizate cerințele prevăzute la punctul 6.
For cell based bioassays specific requirements are laid down in point 7.3 and for kit-based bioassays in point 7.4.
Pentru biotestele celulare se stabilesc cerințe specifice la punctul 7.3, iar pentru biotestele realizate cu ajutorul kiturilor de testat se stabilesc cerințe specifice la punctul 7.4.
Information on the number of false-positive and false-negative results of a large set of samples below and above the maximum level or action level is necessary, in comparison to the TEQ content as determined by a confirmatory method of analysis.
Sunt necesare informații privind numărul de rezultate fals pozitive și fals negative obținute pentru un set mare de eșantioane peste sau sub nivelul maxim sau nivelul de intervenție, prin comparație cu conținutul TEQ determinat printr-o metodă analitică de confirmare.
Actual false negative rates must be under 1 %.
Ratele efective de rezultate fals negative trebuie să se situeze sub 1 %.
The rate of false positive samples shall be low enough to make the use of a screening tool advantageous.
Rata de rezultate fals pozitive este suficient de scăzută pentru a face ca utilizarea instrumentului de depistare să fie avantajoasă.
Positive results have always to be confirmed by a confirmatory method of analysis (HRGC/HRMS).
Rezultatele pozitive trebuie confirmate întotdeauna printr-o metodă analitică de confirmare (HRGC/HRMS).
In addition, samples from a wide TEQ-range shall be confirmed by HRGC/HRMS (approximately 2 %-10 % of the negative samples).
În plus, eșantioanele dintr-o gamă largă de TEQ se confirmă prin HRGC/HRMS (aproximativ 2-10 % din eșantioanele negative).
Information on correspondence between bioassay and HRGC/HRMS results shall be made available.
Se furnizează informații privind corespondența dintre rezultatele biotestelor și cele ale HRGC/HRMS.
Specific requirements for cell based bioassays
Cerințe specifice pentru bioteste celulare
When performing a bioassay, every test run requires a series of reference concentration of TCDD or a dioxin/furan mixture (full dose-response curve with a R2 > 0,95).
Când se execută un biotest, fiecare testare necesită o serie de concentrații de referință ale TCDD sau ale unui amestec de dioxină/furan (curbă de răspuns pentru o doză completă cu un R2 > 0,95).
However, for screening purposes, an expanded low level curve for analysing low-level samples could be used.
Cu toate acestea, în scopuri de depistare se poate utiliza o curbă de nivel scăzut extinsă, pentru analiza eșantioanelor cu conținut scăzut.
Specific requirements for kit based bioassays
Cerințe specifice pentru biotestele realizate pe bază de kituri
It shall be ensured that the kit-based bioassays have sufficient sensitivity and reliability to be applied for feed.
Este necesar să se garanteze că biotestele pe bază de kituri au o sensibilitate și o fiabilitate suficiente pentru a fi aplicate furajelor.
Manufacturer's instructions for sample preparation and analyses have to be followed.
Trebuie respectate instrucțiunile producătorului privind pregătirea și analiza eșantioanelor.
Test kits shall not be used after the expiration date.
Kiturile de testare nu se utilizează după data expirării.
Materials or components designed for use with other kits shall not be used.
Nu se utilizează materiale sau componente destinate utilizării cu alte kituri.
Test kits shall be kept within the specified range of storage temperature and used at the specified operating temperature.
Kiturile de testare se păstrează la o temperatură de depozitare situată în cadrul unui interval specificat și se utilizează la temperatura de lucru specificată.
The limit of detection for immunoassays is determined as the sum of the mean and 3x the standard deviation, based on 10 replicate analysis of the blank, to be divided by the slope value of the linear regression equation.
Limita de detecție pentru imunodozări este determinată ca suma mediei și a valorii de 3x deviația standard, bazată pe o serie de 10 analize repetate ale martorului și care este împărțită la valoarea pantei ecuației de regresie liniară.
Reference standards shall be used for tests at the laboratory to make sure that the responsiveness to the standard is within an acceptable range.
Pentru testele realizate în laborator se utilizează etaloane de referință, pentru a garanta că răspunsul la etalon se situează într-un interval acceptabil.
Reporting of results
Raportarea rezultatelor
In so far as the used analytical procedure makes it possible, the analytical results shall contain the levels of the individual PCDD/F and PCB congeners and the analytical results have to be reported as lowerbound, upperbound and medium-bound in order to include a maximum of information in the reporting of the results and thereby enabling the interpretation of the results according to specific requirements.
În măsura în care procedura analitică utilizată permite acest lucru, rezultatele analitice conțin niveluri individuale ale congenerilor PCDD/F și PCB; rezultatele analitice se raportează ca limită inferioară, limită superioară și limită medie, pentru a se include un maximum de informații în raportarea rezultatelor, permițând astfel interpretarea rezultatelor în conformitate cu cerințele specifice.
The report shall also include the lipid content of the sample as well the method used for lipid extraction.
Raportarea include, de asemenea, conținutul de lipide al eșantionului, precum și metoda utilizată pentru extracția lipidelor.
The recoveries of the individual internal standards must be made available in case the recoveries are outside the range mentioned in point 6, in case the maximum level is exceeded and in the other cases upon request.
Trebuie să fie disponibile informații despre recuperările etaloanelor interne individuale, dacă recuperările se situează în afara intervalului menționat la punctul 6, dacă depășesc nivelul maxim, iar în celelalte cazuri, la cerere.
As the uncertainty of the measurement is to be taken into account when deciding about the compliance of a sample, this parameter shall also be made available.
Dat fiind că, atunci când se stabilește conformitatea eșantionului, este necesar să se țină cont de incertitudinea măsurării, acest parametru trebuie să fie de asemenea disponibil.
Thus, analytical results shall be reported as x +/- U whereby x is the analytical result and U is the expanded measurement uncertainty using a coverage factor of 2 which gives a level of confidence of approximately 95 %.
De aceea, rezultatul analizei se raportează ca x +/– U, unde x este rezultatul analitic și U este incertitudinea de măsurare extinsă, folosind un factor de acoperire 2, care dă un nivel de încredere de aproximativ 95 %.
In case of a separate determination of dioxins and dioxin-like-PCBs the sum of the estimated expanded uncertainty of the separate analytical results of dioxins and dioxin-like PCBs has to be used for the sum of dioxins and dioxin-like PCBs.
În cazul unei determinări separate a dioxinelor și a PCB asemănători dioxinei, suma incertitudinii extinse estimate a rezultatelor analitice separate ale dioxinelor și PCB asemănători dioxinei se utilizează pentru suma dioxinelor și a PCB asemănători dioxinei.
If the uncertainty of measurement would be taken into account by applying a CCα (as described in I.2 of this Part B) this parameter shall be reported.
Dacă incertitudinea de măsurare se ia în considerare aplicându-se CCα (conform descrierii de la punctul I.2 din prezenta parte B), acest parametru se comunică.
The concept of ‘upperbound’ requires using the limit of quantification for the contribution of each non-quantified congener to the Toxic Equivalent (TEQ).
Conceptul de „limită superioară” necesită utilizarea limitei de cuantificare pentru participarea la TEQ a fiecărui congener necuantificat.
The concept of ‘lowerbound’ requires using zero for the contribution of each non-quantified congener to the TEQ.
Conceptul de „limită inferioară” necesită utilizarea valorii zero pentru participarea la TEQ a fiecărui congener necuantificat.
The concept of ‘mediumbound’ requires using half of the limit of quantification calculating the contribution of each non-quantified congener to the TEQ.
Conceptul de „limită medie” necesită utilizarea jumătății limitei de cuantificare, calculându-se participarea la TEQ a fiecărui congener necuantificat.
The duplicate analysis is necessary to exclude the possibility of internal cross-contamination or an accidental mix-up of samples.
Analiza paralelă este necesară pentru a exclude posibilitatea contaminării încrucișate interne sau a încurcării accidentale a eșantioanelor.
The first analysis, taking into account the measurement uncertainty is used for verification of compliance.In case the analysis is performed in the frame of a dioxin contamination incident, confirmation by duplicate analysis might be omitted in the case the samples selected for analysis are through traceability linked to the dioxin contamination incident.
Prima analiză, care ține cont de incertitudinea de măsurare, se utilizează pentru verificarea conformității.Dacă analiza se efectuează în contextul unui incident de contaminare cu dioxină, se poate omite confirmarea de către o analiză paralelă atunci când eșantioanele selecționate pentru analiză sunt asociate, prin intermediul trasabilității, cu incidentul de contaminare cu dioxină.
METHODS OF ANALYSIS FOR THE DETERMINATION OF CONSTITUENTS OF ANIMAL ORIGIN FOR THE OFFICIAL CONTROL OF FEED
METODE DE ANALIZĂ PENTRU DETERMINAREA CONSTITUENȚILOR DE ORIGINE ANIMALĂ PENTRU CONTROLUL OFICIAL AL FURAJELOR
Conditions for the microscopic detection, identification or estimation of constituents of animal origin in feed
Condiții pentru detectarea, identificarea sau estimarea prin examinare microscopică a constituenților de origine animală în furaje
These conditions shall be used when detection of constituents of animal origin (defined as products from processing bodies and body-parts of mammals, poultry and fish) in feed is carried out by means of microscopic examination in the framework of the coordinated inspection programme in the field of animal nutrition in accordance with Regulation (EC) 882/2004 of the European Parliament and of the Council.
Prezentele condiții se utilizează în cazul în care detectarea constituenților de origine animală (definiți ca produse rezultate din prelucrarea carcaselor sau a unor părți din corpul mamiferelor, păsărilor de crescătorie sau peștilor) din furaje se realizează prin examinare microscopică în cadrul unui program de inspecție coordonat în domeniul nutriției animalelor, în conformitate cu Regulamentul (CE) nr. 882/2004 al Parlamentului European și al Consiliului.
Provided that the methods in this Annex are used in all official tests, a second test may also be carried out using variant or alternative methods, in order to improve the detection of certain types of animal constituents or to further specify the origin of the animal constituents.
Pentru o mai bună detectare a anumitor tipuri de constituenți de origine animală sau pentru a se preciza originea constituenților de origine animală, se poate realiza o a doua analiză prin metode derivate sau metode alternative, cu condiția ca metodele din prezenta anexă să se utilizeze în toate analizele oficiale.
Furthermore, a variant protocol may be used when examining certain specific animal constituents such as plasma or bones in tallow (see also point 9), provided that these analyses are made in addition to the analyses foreseen in the coordinated inspection programme.2.
În plus, se poate utiliza o variantă a protocolului în cazul în care se examinează anumiți constituenți de origine animală specifici, cum ar fi plasma sau oasele prezente în seu (a se vedea și punctul 9), cu condiția ca analizele respective să se realizeze în completarea analizelor prevăzute în programul de inspecție coordonată.2.
Dependent on the nature of the constituents of animal origin, very small amounts (< 0,1 %) in feed can be detected.
În funcție de natura constituenților de origine animală, este posibilă detectarea unor cantități foarte mici (< 0,1 %) în furaje.
A representative sample, taken in accordance with the provisions laid down in Annex I which has undergone suitable preparation is used for the identification.
Pentru identificare se utilizează un eșantion reprezentativ, prelevat în conformitate cu dispozițiile din anexa I și care a fost supus unei preparări adecvate.
The following protocol is fit for handling feed with low moisture content.
Protocolul descris în continuare este adecvat pentru tratarea furajelor cu un conținut mic de umiditate.
Feed with an amount of moisture higher than 14 % shall be dried (condensed) prior to handling.
Furajele cu un conținut de umiditate mai mare de 14 % se usucă (condensează) înaintea tratamentului.
Special feed or feed materials (e.g. fats, oils) need dedicated treatment (see point 9).
Furajele sau materiile prime furajere speciale (de exemplu, grăsimi, uleiuri) necesită un tratament specific (a se vedea punctul 9).
The constituents of animal origin are identified on the basis of typical, microscopically identifiable characteristics (i.e. muscle fibres and other meat particles, cartilage, bones, horn, hair, bristles, blood, feathers, egg shells, fish bones, scales).
Constituenții de origine animală se identifică pe baza caracteristicilor tipice, identificabile prin examinare microscopică (adică fibre musculare și alte particule de carne, cartilagii, oase, coarne, păr, păr de porc, sânge, pene, coji de ouă, oase și solzi de pește).
The identification has to be done both on the sieve fraction (6.1) and the concentrated sediment (6.2) of the sample.
Identificarea trebuie să se realizeze atât pentru fracția care a trecut prin sită (6.1), cât și pentru sedimentul concentrat (6.2) de eșantion.
Embedding agent
Agent de includere
Chloral hydrate (aqueous, 60 % w/v)
Clorhidrat (soluție apoasă, 60 % g/v).
Lye (NaOH 2,5 % w/v or KOH 2,5 % w/v) for sieve fractions
Leșie (NaOH 2,5 % g/v sau KOH 2,5 % g/v) pentru fracțiile cernute.
Paraffin oil or glycerol (viscosity: 68-81) for microscopic observations in the sediment
Ulei de parafină sau glicerol (vâscozitate: 68-81) pentru examinarea microscopică a sedimentului.
Rinsing agents
Agenți de clătire
Alcohol, 96 %
Alcool, 96 %.
Acetone
Acetonă.
Concentrating agent
Agent de concentrare
Tetrachloroethylene (density 1,62)
Tetracloretilenă (densitate 1,62).
Staining reagents
Reactivi de colorare
Iodine/potassium iodide solution (Dissolve 2 g potassium iodide in 100 ml water and add 1 g iodine while frequently shaking)
Soluție de iod/iodură de potasiu (se dizolvă 2 g iodură de potasiu în 100 ml apă și se adaugă 1 g de iod agitând frecvent).
Alizarin Red (Dilute 2,5 ml 1M hydrochloric acid in 100 ml water and add 200 mg alizarine red to this solution)
Roșu de alizarină (se diluează 2,5 ml acid clorhidric 1M în 100 ml apă și se adaugă 200 mg roșu de alizarină în soluția obținută).
Cystine reagent (2 g lead acetate, 10 g NaOH/100 ml H2O)
Reactiv cistină (2 g acetat de plumb, 10 g NaOH/100 ml H2O).
Iodine/potassium iodide solution (dissolved in 70 % ethanol)
Soluție de iod/iodură de potasiu (dizolvată în etanol 70 %).
Bleaching reagent
Reactiv decolorant
Commercial sodium hypochlorite solution (9,6 % active chlorine)
Soluție comercială de hipoclorit de sodiu (9,6 % clor activ).
Equipment and accessories
Echipament și accesorii
Analytical balance (accuracy of 0,01 g except for the concentrated sediment: 0,001 g).
Balanță analitică (precizie de 0,01 g, cu excepția sedimentului concentrat: 0,001 g).
Material for grinding (grinding mill or a mortar, especially for feed containing > 15 % fat on analysis).
Dispozitiv de măcinat (moară de măcinat sau mojar, în special pentru furaje ce conțin > 15 % grăsime, detectată la analiză).
Sieve fitted with sieve mesh with square meshes of width of 0,50 mm maximum.
Sită cu ochiuri pătrate cu lărgimea de maximum 0,5 mm.
Separation funnel or conical bottomed settling beaker.
Pâlnie de separare sau pahar de laborator de decantare cu fund conic.
Stereomicroscope (minimum 40' magnification).
Microscop stereoscopic (mărire de minimum 40 de ori).
Compound microscope (minimum 400' magnification), transmitted light or polarised light.
Microscop compus (mărire de minimum 400 de ori), lumină transmisă sau lumină polarizată.
Standard laboratory glassware.
Sticlărie de laborator standard
All equipment shall be thoroughly cleaned.
Toată aparatura se curăță cu grijă.
Separation funnels and glassware need washing in a washing machine.
Pâlniile de separare și sticlăria se spală în mașina de spălat.
Sieves need cleaning by using a brush with stiff hairs.
Sitele se curăță cu o perie cu peri aspri.
Pelleted feeds may be pre-sieved if both fractions are analysed as a separate sample.
Dacă ambele fracții se analizează ca eșantioane individuale, furajele sub formă de pelete se cern în prealabil.
At least 50 g of the sample shall be treated (ground with care using the suitable grinding equipment (5.2) if necessary in order to achieve an appropriate structure).
Cel puțin 50 g de eșantion se tratează [dacă este necesar, se macină cu grijă cu un dispozitiv de măcinare adecvat (5.2) pentru a obține o structură corespunzătoare].
From the grinded material two representative portions shall be taken, one for the sieve fraction (at least 5 g) (6.1) and one for the concentrated sediment (at least 5 g) (6.2).
Din materialul măcinat se iau două porțiuni reprezentative, una pentru fracția cernută (cel puțin 5 g) (6.1) și una pentru sedimentul concentrat (cel puțin 5 g) (6.2).
Colouring with staining reagents (6.3) can additionally be applied for the identification.
Pentru identificare, se poate aplica suplimentar colorarea cu reactivi de colorare (6.3).
In order to indicate the nature of the animal proteins and the origin of the particles, a decision support system such as ARIES can be used and reference samples can be documented.
Pentru a indica natura proteinelor animale și originea particulelor, se poate utiliza un sistem de decizie asistată de tipul ARIES și pot fi documentate eșantioane de referință.
Identification of constituents of animal origin in the sieve fractions
Identificarea constituenților de origine animală din fracțiile cernute
At least 5 g of the sample is sieved through the sieve (5.3) in two fractions
Un eșantion de cel puțin 5 g se cerne prin sită (5.3) în două fracții.
The sieve fraction(s) with the large particles (or a representative part of the fraction) is applied as a thin layer to a suitable support and screened systematically under the stereomicroscope (5.5) at various magnifications for constituents of animal origin.
Fracția (fracțiile) cernută (cernute) cu particule mari (sau o parte reprezentativă a fracției) se aplică în strat subțire pe un suport adecvat și se examinează sistematic la microscopul stereoscopic (5.5) cu măriri diferite pentru detectarea constituenților de origine animală.
Slides made with the sieve fraction(s) with the fine particles are screened systematically under the compound microscope (5.6) at various magnifications for constituents of animal origin.
Lamelele preparate cu fracția (fracțiile) cu particule fine se examinează sistematic la microscopul compus (5.6) cu măriri diferite pentru detectarea constituenților de origine animală.
Identification of constituents of animal origin from the concentrated sediment
Identificarea constituenților de origine animală din sedimentul concentrat
At least 5 g (accurate to 0,01 g) of the sample shall be transferred into a separation funnel or conical bottomed settling beaker and treated with at least 50 ml of tetrachloroethylene (4.3.1).
Cel puțin 5 g (cu o precizie de până la 0,01 g) de eșantion se transferă într-o pâlnie de separare sau într-un vas de laborator de decantare cu fund conic și se tratează cu cel puțin 50 ml tetracloretilenă (4.3.1).
The mixture shall be shaken or stirred repeatedly.
Amestecul se agită sau se amestecă de mai multe ori.
If a closed separation funnel is used the sediment shall be left to stand for a sufficient time (at least 3 minutes) before the sediment is separated off. Shaking shall be repeated and the sediment shall be left to stand again at least 3 minutes.
Dacă se utilizează o pâlnie de separare închisă, sedimentul se lasă să stea un timp suficient (cel puțin trei minute) înainte de a fi separat. Se repetă agitarea și sedimentul se lasă iar să stea timp de cel puțin trei minute.
The sediment shall be separated off again.
Se separă din nou sedimentul.
If an open beaker is used, the sediment shall be left to stand for at least 5 minutes before the sediment is separated off.
Dacă se utilizează un pahar de laborator deschis, sedimentul se lasă să stea cel puțin cinci minute înainte de a fi separat.
The total sediment shall be dried and subsequently weighed (accurate to 0,001 g).
Sedimentul total se usucă și apoi se cântărește (cu o precizie de 0,001 g).
The weighing is only necessary in case an estimation is required.
Cântărirea este necesară doar dacă este necesară o estimare.
If the sediment consists of many large particles it may be sieved through a sieve (5.3) in two fractions.
Dacă sedimentul conține multe particule mari, se poate cerne printr-o sită (5.3) în două fracții.
The dried sediment shall be examined for bone constituents under the stereomicroscope (5.5) and the compound microscope (5.6).
Sedimentul uscat se examinează la microscopul stereoscopic (5.5) și la microscopul compus (5.6) pentru detectarea constituenților osoși.
Use of embedding agents and staining reagents.
Utilizarea agenților de includere și a reactivilor de colorare
The microscopic identification of the constituents of animal origin can be supported by the use of special embedding agents and staining reagents.
Pentru a facilita identificarea la microscop a constituenților de origine animală se pot utiliza agenți de includere și reactivi de colorare speciali.
Chloral hydrate (4.1.1): By carefully heating, cell structures can be seen more clearly because starch grains gelatinise and unwanted cell contents are removed.
Clorhidrat (4.1.1): Prin încălzire cu atenție, structurile celulare se văd mai clar, ca urmare a faptului că granulele de amidon se gelatinizează, iar conținuturile celulare nedorite sunt eliminate.