natgillin/translations-raw huggingface dataset:
When sampling in mollusc farming areas, animals from a sufficient number of sampling points, at least three sampling points, shall be included in the sample in such a way that all parts of the mollusc farming area are proportionally represented in the sample, including natural beds present in the mollusc farming area.
atunci când se efectuează eșantionarea în zone de cultură a moluștelor, se includ în eșantion animale dintr-un număr suficient de puncte de eșantionare, cel puțin trei, în așa fel încât toate părțile zonei de cultură a moluștelor să fie reprezentate proporțional în eșantion, inclusiv bancurile naturale prezente în zona de cultură a moluștelor.
The main factors to be considered for the selection of these sampling points are: previous detection of OsHV-1 μvar in the area, stocking density, water flows, bathymetry and management practices.
Principalii factori care trebuie avuți în vedere pentru selectarea acestor puncte de eșantionare sunt: detectarea prealabilă a OsHV-1 μvar în zonă, densitatea stocurilor, debitele de apă, batimetria și practicile de gestionare.
The sampling provided for in Article 5(2) shall be carried out in the period of the year when prevalence of OsHV-1 μvar in the Member State or compartment is known to be maximal.
Eșantionarea prevăzută la articolul 5 alineatul (2) se efectuează în perioada din an în care prevalența OsHV-1 μvar în statul membru sau în compartiment este cunoscută a fi maximă.
When such data is not available, sampling shall be carried out just after the period when the water temperature exceeds 16 °C or at the time of the year when the temperature normally reaches its yearly maximum.
Atunci când astfel de date nu sunt disponibile, eșantionarea se efectuează imediat după perioada în care temperatura apei depășește 16 °C sau în perioada din an în care temperatura atinge în mod normal valoarea maximă anuală.
The sampling provided for in Article 5(1)(b) shall preferably be carried out in the period of the year described in point c. If samples are collected outside that period of the year, the sampled oysters must be maintained under conditions equivalent to those described in point c for a period suitable for the detection of OsHV-1 μvar, before being tested.
Eșantionarea prevăzută la articolul 5 alineatul (1) litera (b) se efectuează de preferat în perioada din an descrisă la litera (c). Dacă eșantioanele sunt colectate în afara acestei perioade din an, stridiile eșantionate trebuie să fie păstrate în condiții echivalente celor descrise la litera (c) pe o perioadă adecvată pentru detectarea OsHV-1 μvar, înainte de a fi testate.
Diagnostic methods of detecting OsHV-1 μvar
Metode de diagnosticare pentru detectarea OsHV-1 μvar
This procedure explains a standard diagnostic method to be used for OsHV-1 μvar detection and identification by Polymerase Chain Reaction (hereinafter PCR).
Această procedură explică o metodă standard de diagnosticare care trebuie utilizată pentru detectarea și identificarea OsHV-1 μvar prin reacția în lanț a polimerazei (denumită în continuare „PCR”).
It allows distinguishing between OsHV-1 and OsHV-1 μvar.
Aceasta permite realizarea unei distincții între OsHV-1 și OsHV-1 μvar.
When appropriate, in order to optimise the reaction conditions and to suit the equipment and conditions in their own laboratory, the laboratories may apply modifications to the methods described in this Annex, provided that an equal sensitivity and specificity can be demonstrated.
După caz, pentru optimizarea condițiilor de reacție și pentru adaptarea la echipamentele și condițiile proprii de laborator, laboratoarele pot aplica modificări la metodele descrise în prezenta anexă, cu condiția să se demonstreze aceeași sensibilitate și specificitate.
OsHV-1 μvar is defined in Article 1 of this Regulation.
OsHV-1 μvar este definit în articolul 1 din prezentul regulament.
Equipment and environmental conditions
Echipamentele și condițiile de mediu
The diagnostic test used for OsHV-1 μvar detection and identification by PCR requires the equipment and environmental conditions classically used for PCR assays as follows:
Pentru testul de diagnosticare utilizat pentru detectarea și identificarea OsHV-1 μvar prin PCR sunt necesare echipamentele și condițiile de mediu utilizate în mod obișnuit pentru testele PCR, după cum urmează:
A closed hood equipped with an UV producing system to eliminate potential contaminations when preparing PCR mix.
O hotă închisă dotată cu un sistem de lămpi UV pentru eliminarea eventualelor contaminări în timpul preparării amestecului PCR.
Two complete sets of pipettes (2 μl; 20 μl; 200 μl and 1000 μl), the first one for DNA extraction, and the second one for PCR mix preparation.
Două seturi complete de pipete (2 μl, 20 μl, 200 μl și 1000 μl), primul pentru extracția ADN-ului și al doilea pentru prepararea amestecului PCR.
Three different pipettes: one pipette (2 μl) to dispense samples in PCR mix, one pipette (20 μl) for EB sampling and another pipette (20 μl) to load PCR products in agarose gels.
Trei pipete diferite: o pipetă (2 μl) pentru dozarea eșantioanelor în amestecul PCR, o pipetă (20 μl) pentru eșantionarea bromurii de etidiu și o altă pipetă (20 μl) pentru încărcarea produselor PCR în gelul de agaroză.
Filter pipette tips (2 μl; 20 μl; 200 μl and 1000 μl) for DNA extraction, PCR mix preparation and sample dispensing.
Vârfuri de pipete cu filtre (2 μl, 20 μl, 200 μl și 1000 μl) pentru extracția ADN-ului, prepararea amestecului PCR și dozarea eșantioanelor.
Pipette tips (20 μl) to collect EB and to load amplification products in agarose gel.
Vârfuri de pipetă (20 μl) pentru recoltarea bromurii de etidiu și pentru încărcarea produselor amplificate în gelul de agaroză.
A thermal cycler to perform amplifications.
Un ciclor termic pentru efectuarea amplificărilor.
A horizontal electrophoresis system for PCR products electrophoresis.
Un sistem de electroforeză orizontală pentru electroforeza produselor PCR.
An UV table to observe PCR products after agarose gel electrophoresis.
O masă UV pentru observarea produselor PCR după electroforeza în gelul de agaroză.
A system to acquire pictures of the gels.
Un sistem de obținere a imaginilor gelului.
The manipulator must wear a lab coat and some gloves during all the different steps described bellow.
Operatorul trebuie să poarte un halat de laborator și mănuși în timpul tuturor diferitelor etape descrise mai jos.
Lab coat and gloves must be changed preferably after each main step: DNA extraction, preparation of PCR mix, sample dispensing, amplification and gel loading.
Halatul de laborator și mănușile trebuie schimbate, de preferat, după fiecare etapă principală: extracția ADN-ului, prepararea amestecului PCR, dozarea eșantioanelor, amplificarea și încărcarea în gel.
It is recommended to perform these different steps in different rooms.
Se recomandă ca aceste etape diferite să fie efectuate în încăperi diferite.
More particularly, amplification and gel loading/electrophoresis should take place in a room separate from DNA extraction, PCR mix preparation and DNA dispensing.
În special, amplificarea și încărcarea în gel/electroforeza ar trebui să aibă loc într-o altă încăpere decât extracția ADN-ului, prepararea amestecului PCR și dozarea ADN-ului.
Sample preparation
Pregătirea eșantionului
Live or freshly dead (not decomposed) oysters, which can be previously frozen, are processed for DNA extraction.
Stridii vii sau care au murit recent (încă nedescompuse), care pot fi congelate anterior, sunt prelucrate pentru extracția ADN-ului.
Samples are processed differently according to their size:
Eșantioanele sunt prelucrate în mod diferit, în funcție de dimensiunea acestora:
For larvae, pools of 50 mg of the whole animals (including the shell) completed with 200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute.
în cazul larvelor, probe de 50 mg de animale întregi (inclusiv cochilii) completate cu 200 μl de apă distilată sunt zdrobite și centrifugate la 1000 g timp de 1 minut;
For spat smaller than or of 6 mm, pools of 300 mg of the whole animals (including the shell) completed with 1200 μl of distilled water are crushed and centrifuged at 1000 g for 1 minute.
în cazul stridiilor tinere cu dimensiuni de cel mult 6 mm, probe de 300 mg de animale întregi (inclusiv cochilii) completate cu 1200 μl de apă distilată sunt zdrobite și centrifugate la 1000 g timp de 1 minut;
For spat between 6 and 15 mm in size, all the soft tissues of each animal are crushed individually.
în cazul stridiilor tinere cu dimensiuni între 6 și 15 mm, toate țesuturile moi ale fiecărui animal sunt zdrobite individual;
For animals bigger than 15 mm, pieces of gills and mantle are isolated.
în cazul animalelor cu dimensiuni mai mari de 15 mm, sunt izolate porțiuni de branhii și de manta.
DNA extraction is performed using the QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) and following the instructions for Tissue Test Protocol.
Extracția ADN-ului se efectuează utilizând QIAamp® DNA Mini Kit (QIAGEN) și respectând instrucțiunile pentru protocolul de testare a țesuturilor.
The further sample preparation is performed in the following order:
Prepararea în continuare a eșantionului se efectuează în următoarea ordine:
Place 100 μl of supernatant for samples referred to in (a) and (b) or 10 to 50 mg of tissues for samples referred to point (c) and (d) in a 1,5 ml microcentrifuge tube and add 180 μl of Buffer ATL.
Se așază 100 μl de supernatant pentru eșantioanele menționate la literele (a) și (b) sau 10 până la 50 mg de țesut pentru eșantioanele menționate la literele (c) și (d) într-o eprubetă de 1,5 ml pentru microcentrifugă și se adaugă 180 μl de soluție-tampon ATL.
Add 20 μl Proteinase K, mix by vortexing and incubate at 56 °C until the tissue is completely lysed (overnight).
Se adaugă 20 μl de proteinază K, se amestecă intensiv și se incubează la 56 °C până când țesutul este complet lizat (până a doua zi).
Vortex occasionally during incubation to disperse sample.
Ocazional, se amestecă intensiv în timpul incubației pentru dispersarea eșantionului.
Briefly centrifuge the 1,5 ml microcentrifuge tube to remove drops from the lid.
Se centrifughează ușor eprubeta de 1,5 ml pentru microcentrifugă pentru îndepărtarea picăturilor de pe capac.
Add 200 μl Buffer AL to the sample, mix by pulse-vortexing for 15 s and incubate at 70 °C for 10 minutes.
Se adaugă 200 μl de soluție-tampon AL la eșantion, se amestecă intensiv prin pulsații timp de 15 s și se incubează la 70 °C timp de 10 minute.
Add 200 μl ethanol (96-100 %) to the sample, and mix by pulse-vortexing for 15 s. Briefly centrifuge the 1,5 ml microcentrifuge tube to remove drops from the lid.
Se adaugă 200 μl de etanol (96-100 %) la eșantion și se amestecă intensiv prin pulsații timp de 15 s. Se centrifughează rapid eprubeta de 1,5 ml pentru microcentrigfugă pentru îndepărtarea picăturilor de pe capac.
Carefully apply the mixture from step 4 to the QIAamp Spin Column (in a 2 ml collection tube) without wetting the rim.
Cu atenție, se aplică amestecul obținut la etapa 4 la coloana de centrifugare QIAamp (într-o eprubetă de recoltare de 2 ml) fără a uda marginea.
Close the cap and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the tube containing the filtrate.
Se închide capacul și se centrifughează la 10000 rpm timp de 1 minut. Se așază coloana de centrifugare QIAamp într-o eprubetă de recoltare de 2 ml curată (prevăzută în trusă) și se aruncă eprubeta care conține filtratul.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW1 without wetting the rim.
Se deschide cu atenție coloana de centrifugare QIAamp și se adaugă 500 μl de soluție-tampon AW1 fără a se uda marginea.
Close the cap and centrifuge at 10000 rpm for 1 min. Place the QIAamp Spin Column in a clean 2 ml collection tube (provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
Se închide capacul și se centrifughează la 10000 rpm timp de 1 minut. Se așază coloana de centrifugare QIAamp Spin într-o eprubetă de recoltare de 2 ml curată (prevăzută în trusă) și se aruncă eprubeta de recoltare care conține filtratul.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 500 μl Buffer AW2 without wetting the rim.
Se deschide atent coloana de centrifugare QIAamp și se adaugă 500 μl de soluție-tampon AW2 fără a se uda marginea.
Close the cap and centrifuge at full speed (14000 rpm) for 3 min.
Se închide capacul și se centrifughează la viteză maximă (14000 rpm) timp de 3 minute.
(Optional) Place the QIAamp Spin Column in a new 2ml collection tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
(Opțional) Se așază coloana de centrifugare QIAamp într-o eprubetă de recoltare de 2 ml nouă (nu este prevăzută în trusă) și se aruncă eprubeta de recoltare care conține filtratul.
Centrifuge at full speed (14000 rpm) for 1 min.
Se centrifughează la viteza maximă (14000 rpm) timp de 1 minut.
Place the QIAamp Spin Column in a clean 1,5 ml microcentrifuge tube (not provided in the kit) and discard the collection tube containing the filtrate.
Se așază coloana de centrifugare QIAamp într-o eprubetă curată de 1,5 ml pentru microcentrifugă (nu este prevăzută în trusă) și se aruncă eprubeta de recoltare care conține filtratul.
Carefully open the QIAamp Spin Column and add 100 μl of distilled water.
Se deschide cu atenție coloana de centrifugare QIAamp și se adaugă 100 μl de apă distilată.
Incubate 5 minutes at room temperature and centrifuge at 10000 rpm for 1 min.
Se incubează timp de 5 minute la temperatura camerei și se centrifughează la 10000 rpm timp de 1 minut.
Control the quality and efficacy of the extraction (for example by measuring OD (260 nm) under spectrophotometer or after electrophoresis in agarose gel).
Se controlează calitatea și eficacitatea extracției [de exemplu, măsurând DO (260 nm) la spectrofotometru sau după electroforeză în gel de agaroză].
Prepare dilution of your samples in order to have a final DNA concentration of 50-100 ng/μl.
Se prepară diluarea eșantioanelor pentru a avea o concentrație finală de ADN de 50-100 ng/μl.
DNA solutions are kept at 4 °C until PCR analyses are performed.
Soluțiile de ADN se păstrează la o temperatură de 4 °C până când se efectuează analizele PCR.
Other commercial kits may be used for the DNA extractions provided they have been demonstrated to give similar results.
Pentru extracțiile ADN-ului pot fi utilizate alte truse comerciale, cu condiția să se fi demonstrat că acestea oferă rezultate similare.
Polymerase Chain Reaction (PCR)
Reacția în lanț a polimerazei (PCR)
Reactives
Reactivi
10 X Buffer (furnished with the Taq DNA polymerase)
10 X soluție-tampon (furnizată cu ADN polimerază Taq)
MgCl2 (furnished with the DNA polymerase) (25 mM)
MgCl2 (furnizată cu ADN polimerază) (25 mM)
Taq DNA Polymerase (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl
ADN polimerază Taq (Goldstar, Eurogentec) 5 U/μl
dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Master Mix (20mM) must be diluted 10 fold (at 2 mM) before use
dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTT) Amestecul principal (20 mM) trebuie diluat de 10 ori (la 2 mM) înainte de utilizare
d H2O (distilled H2O free of DNA and RNA)
d H2O (H2O distilată fără ADN și ARN)
Primers
Primeri
The following primers [1] must be used:
Trebuie utilizați următorii primeri [1]:
PCR mix
Amestecul PCR
PCR mix for each tube is:
Amestecul PCR pentru fiecare eprubetă este:
Volume per tube
Volum per eprubetă
Final concentration
Concentrație finală
Buffer (10 X)
Soluție-tampon (10 X)
Taq polymérase (5U/μl)
Polimerază Taq (5 U/μl)
49 μl of this PCR mix is dispensed in each PCR tube
49 μl din acest amestec PCR se dozează în fiecare eprubetă PCR
1 μl of extracted DNA (50-100 ng/μl) is added to each tube
1 μl din ADN-ul extras (50-100 ng/μl) se adaugă în fiecare eprubetă.
Two types of control are used:
Se utilizează două tipuri de controale:
Negative controls consist of dH2O (1 μl for 49 μl of PCR mix).
Controalele negative constau în dH2O (1 μl pentru 49 μl de amestec PCR).
They aim at detecting potential reactive contamination or working environment.
Acestea au ca scop detectarea unei eventuale contaminări reactive a mediului de lucru.
One negative control should be included every 10 samples or after each batch of samples.
Un control negativ ar trebui să fie inclus în unul din 10 eșantioane sau după fiecare lot de eșantioane.
Positive controls consist of plasmidic DNA containing the OsHV-1 target genome region CF-CR.
Controalele pozitive constau în ADN plasmidic conținând segmentul țintă CF-CR al genomului OsHV-1.
They aim at checking the efficacy of the PCR reaction.
Acestea au ca scop verificarea eficacității reacției PCR.
One positive control should be included for each PCR analysis.
Un control pozitiv ar trebui inclus pentru fiecare analiză PCR.
Positive controls are available from the Community Reference Laboratory.
Controalele pozitive sunt disponibile la laboratorul comunitar de referință.
Amplification
Amplificare
Amplification cycles are performed in a thermal cycle apparatus.
Ciclurile de amplificare se efectuează într-un ciclor termic.
Initial denaturation: 2 min at 94 °C
Denaturare inițială: 2 min la 94 °C
Amplification: 35 cycles (1 min at 94 °C, 1 min at 50 °C and 1 min at 72 °C)
Amplificare: 35 de cicluri (1 min la 94 °C, 1 min la 50 °C și 1 min la 72 °C)
Final elongation: 5 min at 72 °C
Elongație finală: 5 min la 72 °C
Electrophoresis
Electroforeză
50 X TAE (can be bought directly ready for use):
50 X TAE (poate fi cumpărat gata de utilizare):
Tris base (40 mM) 242 g
Bază tris (40 mM) 242 g
Acetic glacial acid (40 mM) 57,1 ml
Acid acetic glacial (40 mM) 57,1 ml
dH2O for 1 liter
dH2O pentru 1 litru
Ajust at pH 8
Se reglează la pH 8
Agarose gel 2,5 % in 1 X TAE
Gel de agaroză 2,5 % în 1X TAE
Ethidium bromide (0,5 μg/ml) added after cooling the gel.
Bromură de etidiu (0,5 μg/ml) adăugată după răcirea gelului.
Loading blue dye:
Încărcarea colorantului albastru:
Bromophenol blue 0,25 %
Bromofenol albastru 0,25 %
Cyanol xylene FF 0,25 %
Xilen cianol FF 0,25 %
Sucrose 40 %
Zaharoză 40 %
Keep at 4 °C.
Se păstrează la 4 °C.
Use diluted 6 times (2 μl of loading blue buffer for 10μl of PCR products).
Se utilizează diluat de 6 ori (2 μl de tampon albastru de încărcare pentru 10 μl de produse PCR).
Molecular weight marker:
Marcatorul masei moleculare:
SmartLadder SF (Eurogentec): a ready-to-use molecular weight marker including 9 regularly spaced bands from 100 to 1000 bp.
SmartLadder SF (Eurogentec): un marcator al masei moleculare gata de utilizare incluzând 9 benzi distanțate regulat, de la 100 la 1000 bp.
Agarose gel preparation
Prepararea gelului de agaroză
Weight 2,5 g of agarose, add 100 ml of 1 X TAE and heat until the mix is melted.
Se cântăresc 2,5 g de agaroză, se adaugă 100 ml de 1X TAE și se încălzește până la topirea amestecului.
After cooling the solution, ethidium bromide is added (5 μl for 100 ml of agarose gel) and the solution is disposed in a specific mould equipped with combs (to form slots).
După răcirea soluției, se adaugă bromură de etidiu (5 μl pentru 100 ml de gel de agaroză), iar soluția se așază într-un mulaj specific dotat cu dinți de pieptene (pentru formarea cavităților).
When gel is polymerised, combs are removed and gel is placed in a horizontal electrophoresis system containing enough 1 X TAE to the cover agarose gel.
Atunci când gelul se polimerizează, dinții de pieptene sunt îndepărtați și gelul se așază într-un sistem de electroforeză orizontală conținând suficientă 1 X TAE pentru acoperirea gelului de agaroză.
10 μl of PCR products are mixed with 2 μl of blue dye (6 X) and disposed in the slots.
10 μl de produse PCR se amestecă cu 2 μl de colorant albastru (6 X) și se introduc în cavități
One whole is dedicated to the molecular weight marker (5 μl).
O cavitate este destinată marcatorului masei moleculare (5 μl)
A voltage of 50 to 150 volts is applied during 30 min to 1 hour depending on the gel size and thickness.
Se aplică o tensiune de 50-150 volți timp de 30 de minute până la 1 oră, în funcție de dimensiunea și densitatea gelului
Gel is observed under UV.
Gelul se examinează la lampa UV.
Interpretation
Interpretare
The presence of OsHV-1 μvar in a sample is indicated by the presence of a band of the appropriate size (157 bp instead of 173 bp for OsHV-1) on a 2,5 % agarose gel with all negative controls negative and all positive controls positive.
Prezența OsHV-1 μVar într-un eșantion este indicată de prezența unei benzi de dimensiune corespunzătoare (157 bp, în loc de 173 bp pentru OsHV-1) pe gel de agaroză 2,5 %, cu toate controalele negative având rezultate negative și toate controalele pozitive având rezultate pozitive.
Definition of the containment area
Definiția zonei de izolare
The following factors influencing the risks for the spread of the disease shall be taken into account when defining the containment area in accordance with Article 2(2):
Următorii factori care influențează riscurile de răspândire a bolii sunt luați în considerare la definirea zonei de izolare în conformitate cu articolul 2 alineatul (2):
the number, rate and distribution of molluscs on the farm or mollusc farming area infected;
numărul, rata și distribuția moluștelor la ferma sau zona de cultură a moluștelor infectată;
distance and density of neighbouring farms or mollusc farming areas;
distanța și densitatea fermelor sau a zonelor de cultură a moluștelor din vecinătate;
proximity to processing establishments, contact farms or contact mollusc farming areas;
proximitatea față de unitățile de prelucrare, fermele cu care se intră în contact sau zonele de cultură a moluștelor cu care se intră în contact;
species present at the farms or mollusc farming areas;
speciile prezente la ferme sau în zonele de cultură a moluștelor;
farming practices applied in the affected and the neighbouring farms or mollusc farming areas; and
practicile de acvacultură aplicate la ferma afectată sau în fermele sau zonele de cultură a moluștelor învecinate; și
hydrodynamic conditions and other factors of epizootiological significance identified.
condițiile hidrodinamice și alți factori cu potențiale efecte epizootologice identificate.
These primers or descriptions thereof may be obtained from the Community Reference Laboratory for Mollusc Diseases (LGP-Ifremer, av de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, France).
Acești primeri sau descrierile acestora pot fi obținute de la laboratorul comunitar de referință pentru bolile moluștelor (LGP-Ifremer, av de Mus de Loup, 17390 La Tremblade, Franța).
Model animal health certificate for the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas
Model de certificat de sănătate animală pentru introducerea pe piață a stridiilor Crassostrea gigas destinate zonelor de cultură sau de relocare
Place of origin/Place of harvest
Locul de origine/Locul de prelevare
Approved aquaculture holding
Exploatația de acvacultură aprobată
Animals certified as/products certified for
Animale certificate ca/produse certificate pentru:
Relaying
Retransmitere
For the placing on the market of Crassostrea gigas oysters intended for farming and relaying areas
Pentru introducerea pe piață a stridiilor Crassostrea gigas destinate zonelor de cultură sau de relocare
(1)(2)[II.1 Requirements for Crassostrea gigas oysters originating from a containment area established in accordance with Article 2 of Regulation (EU) No 175/2010
(1)(2)[II.1 Cerințe pentru stridiile Crassostrea gigas care provin dintr-o zonă de izolare creată în conformitate cu articolul 2 din Regulamentul (UE) nr. 175/2010
I, the undersigned official inspector, hereby certify that the Crassostrea gigas oysters referred to in Part I of this certificate:
Subsemnatul, inspector oficial, certific prin prezenta că stridiile Crassostrea gigas menționate în partea I a prezentului certificat:
originate from an area subject to disease control measures regarding increased mortalities in Crassostrea gigas oysters in connection with OsHV-1 μvar;.
provin dintr-o zonă care face obiectul măsurilor de control al bolilor în ceea ce privește creșterea mortalității stridiilor Crassostrea gigas în legătură cu OsHV-1 μvar;