natgillin/translations-raw huggingface dataset:
There has been broad agreement by EU authorities that the Lemna test is a suitable alternative to an algal test for strongly coloured substances (2)(3).
La nivelul autorităților din statele membre ale UE există consens cu privire la faptul că testele pe Lemna constituie o soluție acceptabilă de substituție pentru testele pe alge pentru substanțele puternic colorate (2)(3).
This Testing Method is designed to assess the toxicity of substances to freshwater aquatic plants of the genus Lemna (duckweed).
Prezenta metodă de testare este concepută pentru a evalua toxicitatea substanțelor față de plantele acvatice de apă dulce din genul Lemna (lintiță).
It is based on existing guidelines (4)(5)(6)(7)(8)(9) but includes modifications of those methods to reflect recent research and consultation on a number of key issues.
Se bazează pe orientările (4)(5)(6)(7)(8)(9) existente, dar include modificări ale acestor metode pentru a reflecta cercetările și consultările recente într-un număr de aspecte cheie.
The proposed method has been validated by an international ring-test (10).
Metoda propusă a fost validată printr-un test interlaboratoare internațional (10).
This Testing Method describes toxicity testing using Lemnagibba and Lemna minor, both of which have been extensively studied and are the subject of the standards referred to above.
Prezenta metodă de testare descrie testarea toxicității prin folosirea Lemnagibba și Lemna minor, care au fost ambele studiate pe larg și fac obiectul standardelor menționate mai sus.
The taxonomy of Lemna spp. is difficult, being complicated by the existence of a wide range of phenotypes.
Taxonomia speciilor de Lemna este dificilă, fiind complicată de existența unei game largi de fenotipuri.
Although genetic variability in the response to toxicants can occur with Lemna, there are currently insufficient data on this source of variability to recommend a specific clone for use with this Testing Method.
Deși în cazul Lemna se poate manifesta variabilitate genetică în ceea ce privește răspunsul față de substanțele toxice, în prezent nu există date suficiente despre această sursă de variabilitate pentru a se recomanda folosirea unei anumite clone pentru această metodă de testare.
It should be noted that the test is not conducted axenically, but steps are taken at stages during the test procedure to keep contamination by other organisms to a minimum.
Trebuie reținut că testul nu se desfășoară în condiții axenice, dar sunt luate măsuri de reducere la minimum a contaminării cu alte organisme în timpul procedurii de testare.
Details on testing with renewal (semi-static and flow-through) and without renewal (static) of the test solution are described.
Sunt descrise detaliile privind testarea cu reînnoire (semistatică și în regim dinamic) și fără reînnoire (statică) a soluției de testat.
Depending on the objectives of the test and on the regulatory requirements, it is recommended to consider the application of semi-static and flow through methods, e.g. for substances that are rapidly lost from solution as a result of volatilisation, photodegradation, precipitation or biodegradation.
În funcție de obiectivele testului și de cerințele de reglementare, se recomandă aplicarea metodei semistatice și a metodei dinamice, de exemplu pentru substanțe care se pierd cu rapiditate din soluție ca urmare a volatilizării, fotodegradării, precipitării sau biodegradării.
Further guidance is given in (11).
Alte îndrumări sunt disponibile la nota (11).
Biomass: is the dry weight of living matter present in a population.
Biomasă: este greutatea uscată a materiei vii prezente într-o populație.
In this test, surrogates for biomass, such as frond counts or frond area, are typically measured and the use of the term ‘biomass’ thus refers to these surrogate measures as well.
În prezentul test, înlocuitorii pentru biomasă, cum ar fi numărul de fronde sau suprafața frondelor, se măsoară de obicei, iar folosirea termenului „biomasă” se referă așadar și la măsurarea acestor înlocuitori.
Chlorosis: is the yellowing of frond tissue.
Cloroză: este îngălbenirea țesutului frondei.
Clone: is an organism or cell arisen from a single individual by asexual reproduction.
Clon: este un organism sau celulă provenind de la un singur individ prin reproducere asexuată.
Individuals from the same clone are, therefore, genetically identical.
Indivizii din același clon sunt, prin urmare, identici din punct de vedere genetic.
Colony: means an aggregate of mother and daughter fronds (usually 2 to 4) attached to each other.
Colonie: înseamnă un agregat de fronde mamă și fiică (de obicei, între 2-4) atașate unele de altele.
Sometimes referred to as a plant.
Uneori, este denumită plantă.
ECx: is the concentration of the test substance dissolved in test medium that results in an x % (e.g. 50 %) reduction in growth of Lemna within a stated exposure period (to be mentioned explicitly if deviating from full or normal test duration).
ECx: este concentrația substanței de testat dizolvate în mediul de testare care rezultă în x % (de exemplu 50 %) reducere în creșterea Lemna într-o anumită perioadă de expunere (care se menționează explicit în cazul în care deviază de la durata de testare completă sau normală).
To unambiguously denote an EC value deriving from growth rate or yield, the symbol ‘ErC’ is used for growth rate and ‘EyC’ is used for yield, followed by the measurement variable used, e.g. ErC (frond number).
Pentru a se reprezenta în mod clar o valoare EC derivată din viteza de creștere sau randament, se folosesc simbolurile „ErC” pentru viteza de creștere, respectiv „EyC” pentru randament, urmate de variabila de măsurare folosită, de exemplu ErC (numărul de fronde).
Flow-through: is a test in which the test solutions are replaced continuously.
Test în regim dinamic: este un test în care soluțiile de testat sunt înlocuite continuu.
Frond: is an individual/single ‘leaf-like’ structure of a duckweed plant.
Frondă: desemnează aparatul vegetativ al lintiței redus la o lamelă individuală, având forma unei frunze.
It is the smallest unit, i.e. individual, capable of reproduction.
Este cea mai mică unitate (individ) capabilă de reproducere.
Gibbosity: means fronds exhibiting a humped or swollen appearance.
Gibozitate: înseamnă fronde care prezintă o proeminență sau umflătură.
Growth: is an increase in the measurement variable, e.g. frond number, dry weight, wet weight or frond area, over the test period.
Creștere: este o sporire a variabilei de măsurare, cum ar fi numărul frondelor, greutatea uscată, greutatea umedă sau suprafața frondelor, în perioada de testare.
Measurement variables: are any type of variables which are measured to express the test endpoint using one ore more different response variables.
Variabile de măsurare: sunt orice tipuri de variabile care se măsoară pentru a exprima punctul stoechiometric prin folosirea uneia sau a mai multor variabile de răspuns diferite.
In this method frond number, frond area, fresh weight and dry weight are measurement variables.
În prezenta metodă, numărul de fronde, suprafața frondelor, greutatea în stare proaspătă și greutatea uscată sunt variabile de măsurare.
Monoculture: is a culture with one plant species.
Monocultură: este o cultură cu o singură specie de plante.
Necrosis: is dead (i.e. white or water-soaked) frond tissue.
Necroză: este un țesut al frondei mort (alb sau îmbibat în apă).
Phenotype: is the observable characteristics of an organism determined by the interaction of its genes with its environment.
Fenotip: este caracteristica observabilă a unui organism determinată de interacțiunea genelor sale cu mediul său înconjurător.
Response variables: are variables for the estimation of toxicity derived from any measured variables describing biomass by different methods of calculation.
Variabile de răspuns: sunt variabile pentru estimarea toxicității derivate din orice variabile măsurate care descriu biomasa prin diferite metode de calcul.
For this method, growth rates and yield are response variables derived from measurement variables like frond number, frond area, fresh weight or dry weight.
În cazul acestei metode, vitezele de creștere și randamentul sunt variabile de răspuns derivate din variabile de măsurare precum numărul frondelor, suprafața frondelor, greutatea în stare proaspătă sau greutatea uscată.
Semi-static (renewal) test: is a test in which the test solution is periodically replaced at specific intervals during the test.
Test semistatic (cu reînnoire): este un test în care soluția de testat se înlocuiește periodic, la intervale specifice în timpul testului.
Static test: is a test method without renewal of the test solution during the test.
Test static: este o metodă de testare care nu presupune reînnoirea soluției de testat în timpul testului.
Test endpoint: describes the general factor that will be changed by the test chemical relative to the control as aim of the test.
Punct stoechiometric: descrie factorul general care va fi modificat de către substanța chimică testată, în funcție de proba martor, acesta fiind obiectivul testului.
In this method the test endpoint is inhibition of growth, which may be expressed by different response variables which are based on one or more measurement variables.
În prezenta metodă, punctul stoechiometric este inhibarea creșterii, care poate fi exprimată prin diferite variabile de răspuns bazate pe una sau mai multe variabile de măsurare.
Test medium: is the complete synthetic growth medium on which test plants grow when exposed to the test substance.
Mediu de testare: este mediul de cultură complet sintetic în care plantele testate cresc când sunt expuse la substanța de testat.
Yield: is the value of a measurement variable to express biomass at the end of the exposure period minus the measurement variable at the start of the exposure period.
Randament: este valoarea unei variabile de măsurare pentru exprimarea biomasei la sfârșitul perioadei de expunere minus variabila de măsurare la începutul perioadei de expunere.
Exponentially growing plant cultures of the genus Lemna are allowed to grow as monocultures in different concentrations of the test substance over a period of seven days.
Culturile de plante cu creștere exponențială din genul Lemna se lasă să crească în monoculturi, cu diferite concentrații ale substanței testate, timp de șapte zile.
The objective of the test is to quantify substance-related effects on vegetative growth over this period, based on assessments of selected measurement variables.
Obiectivul testului este de a cuantifica efectele substanței asupra creșterii vegetative în această perioadă, pe baza evaluărilor variabilelor de măsurare selectate.
Frond number is the primary measurement variable.
Numărul frondelor este variabila de măsurare principală.
At least one other measurement variable (total frond area, dry weight or fresh weight) is also measured, since some substances may affect other measurement variables much more than frond numbers.
Se mai măsoară cel puțin încă o variabilă de măsurare (suprafața totală a frondelor, greutatea uscată sau greutatea în stare proaspătă), deoarece unele substanțe pot afecta alte variabile de măsurare considerabil mai mult decât numărul frondelor.
To quantify substance-related effects, growth in the test solutions is compared with that of the controls and the concentration bringing about a specified x % inhibition of growth (e.g. 50 %) is determined and expressed as the ECx (e.g. EC50).
Pentru cuantificarea efectelor substanței, creșterea în soluțiile de testat se compară cu cea a probelor martor, fiind determinată concentrația care provoacă o inhibare specificată de x % a creșterii (de exemplu 50 %) și exprimată ca ECx (de exemplu EC50).
The test endpoint is inhibition of growth, expressed as logarithmic increase in the measurement variable (average specific growth rate) during the exposure period.
Punctul stoechiometric este inhibarea creșterii, exprimată ca creștere logaritmică a variabilei de măsurare (viteza medie specifică de creștere) în timpul perioadei de expunere.
An additional response variable used in this Testing Method is yield, which may be needed to fulfil specific regulatory requirements in some countries.
O variabilă de răspuns suplimentară folosită în prezenta metodă de testare este randamentul, care poate fi necesar pentru îndeplinirea unor cerințe de reglementare specifice din unele țări.
It is defined as the measurement variables at the end of the exposure period minus the measurement variables at the start of the exposure period.
Acesta se definește ca variabilele de măsurare la sfârșitul perioadei de expunere minus variabilele de măsurare la începutul perioadei de expunere.
An analytical method, with adequate sensitivity for quantification of the substance in the test medium, should be available.
Este necesară o metodă analitică cu sensibilitate specifică pentru cuantificarea substanței în mediul de testare.
Information on the test substance which may be useful in establishing the test conditions includes the structural formula, purity, water solubility, stability in water and light, pKa, Kow, vapour pressure and biodegradability.
Informațiile referitoare la substanța de testare, care pot fi utile pentru stabilirea condițiilor de testare, includ formula structurală, puritatea, solubilitatea în apă, stabilitatea în apă și la lumină, pKa, Kow, presiunea de vapori și biodegradabilitatea.
Water solubility and vapour pressure can be used to calculate Henry’s Law constant, which will indicate if significant losses of the test substance during the test period are likely.
Solubilitatea în apă și presiunea de vapori pot fi folosite pentru a calcula constanta legii lui Henry, care va arăta dacă sunt probabile pierderi semnificative ale substanței de testat în perioada de testare.
This will help indicate whether particular steps to control such losses should be taken.
Aceasta va indica dacă este necesară adoptarea anumitor măsuri pentru limitarea unor astfel de pierderi.
Where information on the solubility and stability of the test substance is uncertain, it is recommended that these be assessed under the conditions of the test, i.e. growth medium, temperature, lighting regime to be used in the test.
Dacă informațiile privind solubilitatea și stabilitatea substanței de testat sunt incerte, se recomandă ca acestea să fie evaluate în condițiile testului, cum ar fi mediul de creștere, temperatura sau condițiile de iluminare din test.
When pH control of the test medium is particularly important, e.g. when testing metals or substances which are hydrolytically unstable, the addition of a buffer to the growth medium is recommended (see first paragraph in section 1.7.4).
Când este importantă controlarea pH-ului mediului de testare, de exemplu în cursul testării unor metale sau substanțe instabile din punct de vedere hidrolitic, se recomandă adăugarea unei substanțe tampon în mediul de creștere (a se vedea punctul 1.7.4 primul paragraf).
Further guidance for testing substances with physicochemical properties that make them difficult to test is provided in (11).
Îndrumări suplimentare privind substanțele de testare cu proprietăți fizico-chimice care le fac dificil de testat sunt prezentate la nota (11).
Reference substance(s), such as 3,5-dichlorophenol used in the international ring test (10), may be tested as a means of checking the test procedure.
Substanța (substanțele) de referință folosită (folosite) în testul internațional interlaboratoare (10), cum ar fi 3-5 diclorofenol, poate (pot) fi testată (testate) ca mijloc de validare a procedurii de testare.
It is advisable to test a reference substance at least twice a year or, where testing is carried out at a lower frequency, in parallel to the determination of the toxicity of a test substance.
Este recomandabil ca o substanță de referință să fie testată de cel puțin două ori pe an sau, dacă testarea se desfășoară la o frecvență mai joasă, în paralel cu determinarea toxicității unei substanțe de testat.
For the test to be valid, the doubling time of frond number in the control must be less than 2,5 days (60 h), corresponding to approximately a seven-fold increase in seven days and an average specific growth rate of 0,275 d–1.
Pentru ca un test să fie valid, perioada de dublare a numărului de fronde în proba de control trebuie să fie mai mică de 2,5 zile (60 de ore), corespunzând unei creșteri de aproximativ șapte ori într-o perioadă de șapte zile și unei viteze medii specifice de creștere de 0,275 zi–1.
Using the media and test conditions described in this Testing Method, this criterion can be attained using a static test regime (8).
Folosind mediul și condițiile de testare descrise în prezenta metodă de testare, acest criteriu poate fi îndeplinit prin folosirea unui test static (8).
It is also anticipated that this criterion will be achievable under semi-static and flow-through test conditions.
Se consideră că acest criteriu poate fi îndeplinit în condiții de testare semistatică și dinamică.
Calculation of the doubling time is shown in section 2.1.
Calculul perioadei de dublare este prezentat la punctul 2.1.
All equipment in contact with the test media should be made of glass or other chemically inert material.
Toate echipamentele care intră în contact cu mediile de testare trebuie să fie confecționate din sticlă sau alt material chimic inert.
Glassware used for culturing and testing purposes should be cleaned of chemical contaminants that might leach into the test medium and should be sterile.
Recipientele de sticlă folosite pentru cultură și testare trebuie să fie sterile și curățate de contaminanții chimici care se pot infiltra în mediul de testare.
The test vessels should be wide enough for the fronds of different colonies in the control vessels to grow without overlapping at the end of the test.
Vasele de testare trebuie să fie suficient de largi pentru ca frondele din diferitele colonii aflate în vasele de control să crească fără a se suprapune la sfârșitul testului.
It does not matter if the roots touch the bottoms of the test vessels, but a minimum depth of 20 mm and minimum volume of 100 ml in each test vessel is advised.
Nu este important dacă rădăcinile ating baza vaselor de testare, dar se recomandă o adâncime minimă de 20 mm și un volum minim de 100 ml în fiecare vas.
The choice of test vessels is not critical as long as these requirements are met.
Tipul de vase de testare nu influențează desfășurarea testului atât timp cât se respectă aceste cerințe.
Glass beakers, crystallising dishes or glass petri dishes of appropriate dimensions have all proved suitable.
Pot fi folosite pahare de laborator, vase de cristalizare sau plăci Petri din sticlă de dimensiuni corespunzătoare.
Test vessels must be covered to minimise evaporation and accidental contamination, while allowing necessary air exchange.
Vasele de testare trebuie să fie acoperite pentru a se reduce la minimum evaporarea și contaminarea accidentală, permițând în același timp trecerea aerului.
Suitable test vessels, and particularly covers, must avoid shadowing or changes in the spectral characteristics of light.
Vasele de testare corespunzătoare, în special capacele, trebuie să prevină formarea umbrei sau modificarea caracteristicilor spectrale ale luminii.
The cultures and test vessels should not be kept together.
Culturile și vasele de testare nu se păstrează în același loc.
This is best achieved using separate environmental growth chambers, incubators, or rooms.
Această condiție poate fi îndeplinită prin folosirea unor spații, incubatoare sau camere de creștere care reproduc condițiile de mediu.
Illumination and temperature must be controllable and maintained at a constant level (see section 1.7.8).
Iluminarea și temperatura trebuie să fie controlabile și menținute la un nivel constant (a se vedea punctul 1.7.8).
Test organism
Organismul de testare
The organism used for this test is either Lemna gibba or Lemna minor.
Organismul folosit pentru acest test este Lemna gibba sau Lemna minor.
Short descriptions of duckweed species that have been used for toxicity testing are given in Appendix 1.
Scurte descrieri ale speciilor de lintiță care au fost folosite pentru testarea toxicității sunt prezentate în apendicele 1.
Plant material may be obtained from a culture collection, another laboratory or from the field.
Plantele pot fi obținute dintr-o colecție de culturi, de la un alt laborator sau de pe teren.
If collected from the field, plants should be maintained in culture in the same medium as used for testing for a minimum of eight weeks prior to use.
Dacă sunt colectate de pe teren, plantele se mențin în cultură într-un mediu similar cu cel folosit pentru testare timp de cel puțin opt săptămâni înainte de utilizare.
Field sites used for collecting starting cultures must be free of obvious sources of contamination.
Terenurile de pe care s-au colectat culturile inițiale trebuie să fie lipsite de surse vizibile de contaminare.
If obtained from another laboratory or from a culture collection they should be similarly maintained for a minimum of three weeks.
Dacă au fost obținute de la un alt laborator sau dintr-o colecție de culturi, se vor menține în condiții similare timp de cel puțin trei săptămâni.
The source of plant material and the species and clone (if known) used for testing should always be reported.
Sursa plantelor, a speciilor și a clonului (dacă se cunoaște) folosite pentru testare se raportează întotdeauna.
Monocultures, that are visibly free from contamination by other organisms such as algae and protozoa, should be used.
Se vor folosi monoculturi care sunt vizibil necontaminate cu alte organisme, cum ar fi alge sau protozoare.
Healthy plants of L. minor will consist of colonies comprising between two and five fronds, whilst healthy colonies of L. gibba may contain up to seven fronds.
Plantele sănătoase de L. minor vor consta în colonii cuprinzând între două și cinci fronde, în timp ce coloniile sănătoase de L. gibba pot conține până la șapte fronde.
The quality and uniformity of the plants used for the test will have a significant influence on the outcome of the test and should therefore be selected with care.
Calitatea și uniformitatea plantelor folosite pentru testare vor avea o influență semnificativă asupra rezultatului testului și, prin urmare, se vor selecta cu atenție.
Young, rapidly growing plants without visible lesions or discoloration (chlorosis) should be used.
Se vor folosi plante tinere, cu creștere rapidă, fără leziuni sau decolorări vizibile (cloroză).
Good quality cultures are indicated by a high incidence of colonies comprising at least two fronds.
Culturile de bună calitate sunt indicate de numărul mare de colonii cuprinzând cel puțin două fronde.
A large number of single fronds is indicative of environmental stress, e.g. nutrient limitation, and plant material from such cultures should not be used for testing.
Un număr mare de fronde unice indică stres ambiental, cum ar fi o cantitate redusă de nutrienți, iar plantele din astfel de culturi nu se folosesc pentru testare.
Cultivation
Cultură
To reduce the frequency of culture maintenance (e.g. when no Lemna tests are planned for a period), cultures can be held under reduced illumination and temperature (4-10 °C).
În scopul reducerii frecvenței de întreținere a culturii (de exemplu în situațiile în care nu sunt prevăzute teste cu Lemna pentru o anumită perioadă), culturile pot fi menținute în condiții de iluminare și temperatură scăzută (4-10 °C).
Details of culturing are given in Appendix 2.
Detalii privind culturile sunt prezentate în apendicele 2.
Obvious signs of contamination by algae or other organisms will require surface sterilisation of a sub-sample of Lemna fronds, followed by transfer to fresh medium (see Appendix 2).
Semnele vizibile de contaminare cu alge sau alte organisme necesită sterilizarea la suprafață a unui subeșantion de fronde de Lemna, urmată de transferul către un mediu proaspăt (a se vedea apendicele 2).
In this eventuality, the remaining contaminated culture should be discarded.
În această situație, restul culturii contaminate se elimină.